JPH11507509A

JPH11507509A - 前立腺癌の治療および診断

Info

Publication number: JPH11507509A
Application number: JP9500949A
Authority: JP
Inventors: バンダー，ニール・エイチ
Original assignee: Cornell Research Foundation Inc
Current assignee: Cornell Research Foundation Inc
Priority date: 1995-06-05
Filing date: 1996-06-03
Publication date: 1999-07-06
Also published as: US5773292A; US20020015704A1; AU5964996A; EP0831904A1; WO1996039185A1; US20040105865A1; US6767711B2; EP0831904A4; CA2223291A1; AU722022B2

Abstract

(57)【要約】本発明は、正常、良性、増殖性および癌性の前立腺上皮細胞またはその部分の抗原を認識する抗体やその部分あるいはプローブの利用に関する。これらの抗体やその部分あるいはプローブは、ラベルされ、該細胞の検出に用いられる。これらは、前立腺癌の治療として該細胞を切除する、または殺すため、単独でまたは効果的な物質と結合して使用される。正常、良性、増殖性および癌性の前立腺上皮細胞またはその部分の抗原を認識するモノクローナル抗体を産生するハイブリッド細胞系も開示する。

Description

【発明の詳細な説明】前立腺癌の治療および診断発明の分野本発明は抗体あるいはその結合部位による前立腺癌の治療および診断に関する。発明の背景前立腺癌は、男性に最も多い癌であり、１９９５年、米国において推定２４４ ,０００症例とされている。腫瘍により死亡する男性における死因の第２位であり、推定で年間４４,０００人が死亡している。前立腺癌による死亡率を抑制するために迅速な発見と治療が必要とされている。前立腺癌の発見癌細胞の転移において、前立腺癌は骨およびリンパ節に転移する明確な傾向を有する。Saitoh,H.,etal.,“Metastatic Patterns of Prostatic Cancer.Correl ation Between Sites And Number of Organs Involved.”Cancer,54:3078-3084( 1984)。臨床診断において、放射性核種走査により患者の２５％に骨への転移が認められている。Murphy,G.P.,etal.,“The National Survey Of Prostate Canc er In The United States By The American College Of Surgeons,”J.Urol.,12 7:928-939(1982)。結節での併発を正確に臨床上判定することは困難である。コンピュータ断層撮影法（“ＣＴ”）あるいは磁気共鳴（“ＭＲ”）映像法のようなイメージング技術により、リンパ節の転移性前立腺癌併発をサイズ（すなわち、＞１ｃｍ）とは別の基準によって識別することは不可能である。従って、当然これらのイメージング様式は本来、大きい容積のアデノパシーの発見において非特異的であり、小さい容積（＜１ｃｍ）の疾病の発見において感受性が鈍い。最近の研究において、臨床的に局在性の前立腺癌の患者におけるＭＲの精密性が調査された。Rifkin,M.D.,etal.,“Comparison Of Magnetic Resonance Imaging A nd Ultrasonography In Staging Early Prostate Cancer,”N.Engl.J.Med.,323: 621-626(1990)。この研究において、１９４人の患者がＭＲを受け、そのうち１８５人の患者がリンパ節切開を受けた。２３人の患者（１３％）が病理的にリンパ節に併発していた。４％の感受性となる２３症例のうち唯１例においてＭＲが疑わしかった。同様の結果がＣＴスキャンについても見られた。Gasser,T.C.,et al.,“MRI And U ltrasonography In Staging Prostate Cancer,”N.Engl.J.Med.(Correspondence ) ,324(7):49-495(1991)。前立腺癌転移の患者における血清酸性ホスファターゼ活性の増加が最初、Gutm an et al.によりJ.Clin.Invest17:473(1938)に報告された。前立腺の癌において、前立腺酸性ホスファターゼは癌組織から血流へと放出され、その結果全血清酸性ホスファターゼレベルは正常値よりはるかに増加する。この酵素およびその前立腺癌との関係について数多くの研究がその当時からなされてきた（例えば、Ya m,Amer.J.Med.56:604(1974)）。しかしながら、血清酸性ホスファターゼの測定値は、骨に転移した前立腺の癌腫がある患者の約６５〜９０％；Ｘ線による骨への転移の証拠がない患者の約３０％；臨床的に明らかな転移がない患者の約５〜１０％のみにおいて増加した。前立腺酸性ホスファターゼに関する特異的試験を開発しようとする先行技術の試みは、限定的な成功しか納めていない。なぜなら、いわゆる“特異的”基質に対する酵素活性を基とする技術は、前立腺起源の酵素活性とは無関係の多くの酸性ホスファターゼにおいて他の生化学的および免疫化学的差異を考慮し得ないからである。イソ酵素の場合、すなわち同じ特徴的酵素活性および同様の分子構造を有するが、アミノ酸配列および／あるいは含量が異なる、従って、免疫化学的には区別され得る、遺伝子学的に定義された酵素の場合、特定の基質を選択するだけで種々のイソ酵素の形態を識別することは、本来不可能であると思われる。従って、これらの先行技術の方法において、前立腺酸性ホスファターゼ活性の直接的測定に関して非常に特異的なものが何もないことは驚くべきことではない；例えば、参照 Cancer 5:236(1952);J.Lab.Clin.Med.82:486(1973);Clin.Chem.Ac ta .44:21(1973);and J.Physiol.Chem.356:1775(1975)。前立腺酸性ホスファターゼの検出に使用される先行技術の試薬の多くに特有であるとみられる上記の非特異性の問題に加え、他の疾病と関連のある血清酸性ホスファターゼの増加についての報告があり、前立腺癌の正確な臨床診断についての問題をさらに複雑にしている。例えば、Tuchman et al.,Am.J.Med.27:959(195 9)はゴーシェ病患者の血清酸性ホスファターゼレベルが上昇するらしいことに注目している。前立腺酸性ホスファターゼのための“特異的”基質の開発が本来難しいので、数人の研究者が前立腺酸性ホスファターゼの検出に関する免疫化学的方法を開発してきた。しかしながら、先に報告された免疫化学的方法には広範囲の受容を妨げるというそれ自身の欠点がある。例えば、Shulman et al.,Immunology 93:474 (1964)はヒト前立腺酸性ホスファターゼの検出のための免疫−拡散法試験を記載している。前立腺疾病の患者から直腸マッサージによって得られる前立腺液抗原から製造される抗血清を使用し、正常な腎臓、睾丸、肝臓および肺の抽出物に対する二重拡散技術において交差反応沈降素ラインは観察されなかった。しかしながら、この方法は、抗原が大量に使用されても、および前立腺液に存在する抗原的に無関係の血清タンパク質成分といった他のものと交差反応することがある抗血清が大量に使用されても、感受性が限定的であるという不都合を有する。Ｃhu et al.のＷＯ７９／００４７５には、上記の欠点の多くを取り除く前立腺癌関連の前立腺酸性ホスファターゼイソ酵素パターンの検出のための新しい方法が記載されている。しかしながら、実際の問題は、診断上意味のある前立腺癌関連の前立腺酸性ホスファターゼイソ酵素パターンがその抗体の製造のために抽出される癌前立腺組織の源を必要とすることから生じている。最近、特異的診断用試薬の開発の目的で、様々なタイプの悪性腫瘍についての酵素あるいは抗原マーカーを同定するために多大な努力が費やされている。理想的な腫瘍マーカーは、他の特性において組織あるいは細胞型についての特異性を示し、個体から容易に得られる循環系あるいは他の生物的環境へ放出されるものである。先の研究者らはヒト前立腺の組織特異的抗原の発生を証明している。前立腺癌の治療 W.J.Catalona,“Management of Cancer of the Prostate,”New Engl.J.Med.3 31(15):996-1004(1994)に記載されているように、前立腺癌への対応は、注意深く見守ること、治療的処置をとること、および改善を得ることによって達成され得る。平均余命が１０年以下の男性において、良性の前立腺肥大の部分的切除の際に低程度、低段階の前立腺癌が発見された場合、注意深く見守ることが肝要である。このような癌は発見後の最初の５年間で進行することはめったにない。一方、若い男性にとって、治療はしばしばより適切である。前立腺癌が局在性であり、患者の平均余命が１０年あるいはそれ以上の場合、前立腺の全切除は疾病の根絶のための最良の可能性を提供する。歴史的に、この方法の欠点は、癌が発見されたときにはほとんどの癌が手術の限界を越えてしまっていることである。しかしながら、前立腺特異的抗原試験の使用は、前立腺癌の早期発見につながる。結果として、合併症は少なく、外科手術は少ない費用で済む。大きい、高程度の腫瘍がある患者は、前立腺の全切除によって好結果の治療を受ける見込みは低い。外科手術後、血清前立腺特異的抗原が検出可能な濃度にある場合、残存する癌を示している。多くの場合、前立腺特異的抗原濃度は放射線治療によって低下する。しかしながら、この濃度は２年以内にしばしば再び増加する。放射線療法は前立腺の全切除に代わる手段としても広く使用されてきた。一般に放射線療法によって治療される患者は、高齢の健康でない者や高程度の臨床的に進行した腫瘍を有する者である。特に好ましい方法は、放射線の領域を治療される組織の容量に適合するように設定されている３次元の適合放射線療法を伴う外線療法であり、および放射線化合物の種子が超音波誘導によって移植される介在性放射線療法である。局部的に進行した疾病の患者の治療には、前立腺の全切除あるいは放射線療法の前あるいは後にホルモン療法が利用されてきた。ホルモン療法は前立腺癌が拡大してしまった男性を治療する主要な手段である。睾丸摘除は血清テストステロン濃度を減じ、エストロゲン治療も同様に有益である。エストロゲンからのジエチルスチルベストロールは、別の有用なホルモン療法であるが、心臓血管系の障害を起こす不都合を有する。ゴナドトロピン放出ホルモンアゴニストが投与されると、テストステロン濃度は最終的に減少する。フルタミドは、非ステロイドであり、テストステロンとその細胞内受容体との結合を阻害する抗−アンドロゲン剤である。結果として、血清テストステロン濃度が増加しながら、また患者に性的能力が残存したままでフルタミドはテストステロンの効果を阻害する。性的能力については、前立腺の全切除および放射線治療の後では、重要な問題である。細胞毒性化学療法は前立腺癌治療においてほとんど効果がない。この療法はその毒性のために高齢患者にとって不適切となる。さらに、前立腺癌は比較的細胞毒性剤に抵抗力がある。前立腺癌の発見と治療におけるモノクローナル抗体の使用理論的には、放射ラベルモノクローナル抗体（“ｍＡｂｓ”）は、リンパ節内および他の部位内の前立腺癌の発見に対する感受性および特異性の両方を高める能力を提供する。多くのｍＡｂｓがすでに前立腺関連抗原に対して製造されてきたが、一方イメージング目的として特に製造されたものはない。しかしながら、臨床的な必要性からこれらｍＡｂｓのいくつかが可能なイメージング試薬として検討されてきた。Vihko,P.,et al.,“Radioimaging of Prostatic Carcinoma Wi th Prostatic Acid Phosphatase-Specific Antibodies,”Biotechnology in Dia gnostics, 131-134(1985);Babaian,R.J.,et al.,“Radioimmunological Imaging of Metastatic Prostatic Cancer With 111-Indium-Labeled Monoclonal Antibo dy PAY 276,”J.Urol.,137:439-443(1987);Leroy,JM.,et al.,“Radioimmunodet ection of Lymph Node Invasion In Prostatic Cancer.The Use of Iodine 123( 123-I)Labeled Monoclonal Anti-Prostatic Acid Phosphatase(PAP)227 A F(ab' )2 Antibody Fragments In Vivo,”Cancer,64:1-5(1989);Meyers,J.F.,et al., “Development of Monoclonal Antibody Imaging of Metastatic Prostatic Car cinoma,”The Prostate,14:209-220(1989)。いくつかの場合、前立腺癌の発見および／または治療のために開発されたモノクローナル抗体は、悪性の前立腺組織に特異的な抗原を認識する。従って、このような抗体は悪性前立腺組織を（治療あるいは検出のため）良性前立腺組織と区別するために使用される。参照、Ｂazinet et al.の米国特許第４,９７０,２９９およびＦreeman et al.の米国特許第４,９０２,６１５。他のモノクローナル抗体は、癌性あるいは良性のすべての前立腺表皮細胞上で表面抗原と反応する。参照、Ｃhu et al.の米国特許第４,４４６,１２２およびＲｅ３３,４０５、ＭcEwan et al.の米国特許第４,８６３,８５１およびＵeda e t al.の米国特許第５,０５５,４０４。しかし、これらのモノクローナル抗体によって検出される抗原は、血液中に存在し、従って、モノクローナル抗体について腫瘍部位での抗原と競合する。これは、インビボでのイメージングにおけるこのような抗体の使用に不都合をもたらすノイズを引き起こす。治療において、このような抗体は、細胞障害剤と結合する場合、他の組織に有害となり得る。本発明は前立腺癌の診断および治療における先行技術の抗体の欠点を克服することに関する。発明の要約本発明の第一点は、正常、良性、増殖性および癌性の前立腺上皮細胞を切除または殺す方法に関する。この方法は、かかる細胞の抗原（表面抗原など）を認識するが、血中を循環する抗原を実質的に認識しない抗体やその結合部分あるいはプローブを提供する。抗体やその結合部分あるいはプローブは、単独で用いられるか、または、抗体やその結合部分あるいはプローブが細胞に結合する際に細胞を殺すのに効果的な物質と結合している。それゆえに、これらの抗体やその結合部分あるいはプローブは、抗体やその結合部分あるいはプローブを抗原に結合すること、および細胞を殺すまたは切除することの両方を可能にする効果的な条件で細胞と接触する。本発明の他の点は、生物サンプル中の正常、良性、増殖性および癌性の前立腺上皮細胞を検出する方法に関する。その方法は、かかる細胞の抗原（表面抗原など）を認識するが、血中を循環する抗原を実質的に認識しない抗体やその結合部分あるいはプローブを提供することを含む。その抗体やその結合部分あるいはプローブは、抗体やその結合部分あるいはプローブが細胞やその部分に結合する際に細胞やその部分の検出を可能にするのに効果的なラベルと結合している。生物サンプルは、生物サンプル中の細胞やその部分の抗原に抗体やその結合部分あるいはプローブが結合するのを可能にする効果的な条件で、ラベルを有する抗体やその結合部分あるいはプローブに接触する。生物サンプル中の細胞やその部分の抗原はラベルの検知により検出される。本発明の他の点は、正常、良性、増殖性および癌性の前立腺上皮細胞を認識するが、血中を循環する抗原を実質的に認識しない、単離された抗体やその結合部分あるいはプローブに関する。このタイプのモノクローナル抗体およびこのモノクローナル抗体により認識される抗原を産生するハイブリドーマ細胞ラインも開示する。図面の簡単な説明図１Ａ−Ｄは、プロスト３０（図１ＡおよびＢ）およびプロスト４１０（図１ＣおよびＤ）を有する良性前立腺増殖（図１ＡおよびＣ）および前立腺癌（図１ＢおよびＤ）についての免疫組織化学的着色を示す。プロスト３０は、細胞表面での免疫反応性の上昇を表す。倍率×３５０（図１Ａ、ＣおよびＤ）、１５０（図１Ｂ）。図２Ａ−Ｂは、５μｇ／ｍｌでのｍＡｂプロスト１３０（図２Ａ）およびプロスト１８５（図２Ｂ）によるＢＰＨ（すなわち前立腺上皮）の免疫組織化学的着色を示す。図３Ａ−Ｂは、プロスト１３０（図３Ａ）またはプロスト１８５（図３Ｂ）がテラサキ・プレート上コート緩衝液により一夜３７℃でコートされたサンドウィッチＥＬＩＳＡを示す。プロスト１３０−ビオチンおよびプロスト１８５−ビオチンはプロスト１３０（図３Ａ）により捕捉された抗原と反応した。プロスト１３０はプロスト１３０により阻害される（図３Ａ）。プロスト１３０−ビオチンはプロスト１８５により捕捉された抗原と反応したが、プロスト１８５−ビオチンは反応しなかった。図４Ａ−Ｂは阻害検定を示す。図４Ａにおいて、プロスト１３０−ビオチンのプロスト１３０で捕捉された抗原との結合は、プロスト１８５により阻害されるが、プロスト１３０によっては阻害されない。図５は、各々が直角である２つの隣接血管を有する切除前立腺を示す。後者は前立腺を切除した同じ時点、すなわち１３１１−プロスト３０投与１週間後に描かれた。色強度は放射活性に直接比例する。本図は、放射ラベル抗体が１）前立腺に局在していること、２）血液よりも前立腺に高レベルに実質的に集中し、１週間以上前立腺に保たれていることを示す。発明の詳細な説明本発明の第一点は、正常、良性、増殖性および癌性の前立腺上皮細胞を切除または殺す方法に関する。この方法は、かかる細胞の抗原（表面抗原など）を認識するが、血中を循環する抗原を実質的に認識しない抗体やその結合部分あるいはプローブを提供する。抗体やその結合部分あるいはプローブは、単独で用いられるか、または、抗体やその結合部分あるいはプローブが細胞に結合する際に細胞を殺すのに効果的な物質と結合している。それゆえに、これらの抗体やその結合部分あるいはプローブは、抗体やその結合部分あるいはプローブを抗原に結合すること、および細胞を殺すまたは切除することの両方を可能にする効果的な条件で細胞と接触する。好ましい形態として、かかる接触は、抗体やその結合部分あるいはプローブを抗原に結合すること、および細胞を殺すまたは切除することの両方を可能にする効果的な条件で、哺乳動物に抗体やその結合部分あるいはプローブを投与することにより、生きている哺乳動物内でなされる。この投与は経口または非経口で行い得る。本発明の他の点は、生物サンプル中の正常、良性、増殖性および癌性の前立腺上皮細胞を検出する方法に関する。その方法は、かかる細胞の抗原（表面抗原など）を認識するが、血中を循環する抗原を実質的に認識しない抗体やその結合部分あるいはプローブを提供することを含む。その抗体やその結合部分あるいはプローブは、抗体やその結合部分あるいはプローブが細胞やその部分に結合する際に細胞やその部分の検出を可能にするのに効果的なラベルと結合している。生物サンプルは、生物サンプル中の細胞の抗原やその部分に抗体やその結合部分あるいはプローブが結合するのを可能にする効果的な条件で、ラベルを有する抗体やその結合部分あるいはプローブと接触する。生物サンプル中の細胞やその部分の存在はラベルの検知により検出される。好ましい形態として、かかる接触は、生きている哺乳動物内でなされ、生物サンプル中の細胞やその部分の抗原に抗体やその結合部分あるいはプローブが結合するのを可能にする効果的な条件で、哺乳動物に抗体やその結合部分あるいはプローブを投与することを含む。また、この投与は経口または非経口で実施され得る。別法として、接触段階は、血清、尿または他の体液中でなされ得る。正常、良性、増殖性および癌性の前立腺上皮細胞を殺し、切除し、あるいは検出するのに適した抗体は、モノクローナルまたはポリクローナルである。更に、抗体フラグメント、半抗体、ハイブリド誘導体およびプローブが用いられ得る。これらの抗体やその結合部分あるいはプローブは、正常、良性、増殖性および癌性の前立腺上皮細胞中の細胞抗原やその部分を認識する。しかし、これらの抗体やその結合部分あるいはプローブは血液中の抗原に実質的に結合しない。結果として、抗体やその結合部分あるいはプローブは、多数の前立腺上皮細胞やその部分が存在する場所に集中する。モノクローナル抗体の製造は、既知の技術により行われる。基本的に、その製法は、哺乳動物（例えば、マウス）の脾臓から最初に免疫細胞（リンパ球）を取得することであり、動物はインビトロまたはインビボで望む抗原で免疫化しておく。次いで、抗体−分泌リンパ球を（マウスの）ミエローマ細胞または形質転換細胞と融合する。この細胞は細胞培養中で際限なく複製することができ、それによって継代的な免疫グロブリン−分泌細胞ラインをつくる。得た融合細胞、すなわちハイブリドーマを培養し、得たコロニーを望むモノクローナル抗体の製造のために選別する。この抗体をつくるコロニーをクローン化し、インビトロまたはインビボで生育すると、多量の抗体がつくられる。このような細胞を融合する理論的根拠および実際的方法については、Kohler and Milstein，Nature 256:495( 1975)（参照することにより、ここに合体する）に記載されている。哺乳動物のリンパ球は、本発明のタンパク質またはポリペプチドでの動物（例えば、マウス）のインビボ免疫により免疫される。かかる免疫は、抗体の充分な力価を得るために、数週間の以上の間隔で繰り返すことが必要である。最後の抗原強化の後に、動物を殺し、脾臓を摘出する。哺乳動物のミエローマ細胞または細胞培養中で際限なく複製できる他の融合相手との融合は、標準的な既知の技術、例えば、ポリエチレングリコール（ＰＥＧ）や他の融合剤を用いて行われる（参照、Milstein and Kohler,Eur.J.Immunol. 6:511(1976)参照することにより、ここに合体する）。この不死の細胞系は、好ましくはネズミであるが、限定的でなくラットやヒトを含む他の哺乳動物の細胞からも誘導され得るものであり、迅速な成長ができ、優れた融合能力を有するために、ある種の栄養物の利用に必要な酵素を欠いて、選択される。これらの細胞系の多くは当業者に知られており、その他の系も常に報告されている。ポリクローナル抗体を生育する方法もよく知られている。典型的には、かかる抗体は、本発明のタンパク質またはポリペプチドをニュージランド白兎（プレ免疫血清を得るために、まず採血されている）に皮下投与することにより、増殖される。抗原を６カ所の異なる場所に１カ所につき計１００μｌ注射する。各注射物質には、合成表面活性アジュバント・プルロニックポリオールまたはＳＤＳポリアクリルアミドゲル電気泳動後のタンパク質やポリペプチド含有の微細アクリルアミドゲルが含まれる。最初の注射２週間後にウサギから採血し、、次いで定期的に同じ抗原で３回６週おきに免疫強化する。各強化１０日後にサンプルの血清を採取する。抗体を捕らえる対応抗原を用いてアフィニティークロマトグラフィーにより血清からポリクローナル抗体を得る。最後にウサギをフェノバルビタール１５０ｍｇ／ｋｇＩＶで安楽死させる。ポリクロナール抗体を得るこの方法および他の方法は、E.Harlow,et al.,editors,Antibodies:A Laboratory Manual (1988)（参照することにより、ここに合体する）に記載されている。抗体全体の使用に加えて、本発明の方法は該抗体の結合部分の利用にも関する。この結合部分には、Ｆａｂフラグメント、Ｆ（ａｂ’）₂フラグメントおよびＦｖフラグメントが含まれる。これらの抗体フラグメントは、タンパク質分解フラグメンテイション法などの従来法によりつくられる。これは、J.Goding,Monoc lonal Antibodies:Principles and Practice ,pp.98-118(N.Y.Academic Press 19 83)（参照することにより、ここに合体する）に記載されている。別の手段として、本発明方法において、天然に存在するプローブまたは組換えＤＮＡ法あるいは他の生物学的方法により合成されたプローブが使用される。適当なプローブは、本発明のモノクローナル抗体により同定される前立腺関連抗原に結合する分子である。該プローブは、例えばタンパク質、ペプチド、レクチンまたは核酸のプローブで有り得る。下記の表１に同定されるモノクローナル抗体を使用するのが好ましい。種々の表面抗原特性の前立腺上皮細胞を処理し、イメージングするために、これらの抗体あるいは他の抗体の混合物を用いることが特に望ましい。本発明は、表１のモノクローナル抗体により認識される正常、良性、増殖性および癌性の前立腺上皮細胞の抗原にも関する。どのような抗体やその結合部分あるいはプローブが処置や治療に使用されても、それらは、経口、非経口、皮下、静脈内、筋肉内、腹腔内、点鼻、空洞または小胞点滴、点眼、動脈内、病巣内に投与され、または鼻、喉および気管支などの粘膜に適用される。単独で投与されるか、薬学的あるいは生理的に許容される担体、賦形剤または安定剤とともに投与され、そして錠剤、カプセル、粉末、溶液、懸濁液、エマルションなどの固体または液体の形態をとる。固体用量形態は通常のタイプであり得る。固体形態は、本発明の抗体やその結合部分および担体、例えば滑沢剤やラクトース、スクロースまたはトウモロコシデンプンなどの無活性充填剤を含有する通常のゼラチンタイプなどのカプセルであり得る。他の実施態様において、これらの化合物は、ラクトース、スクロースまたはトウモロコシデンプンなどの通常の錠剤基剤をアカシア、トウモロコシデンプンまたはゼラチンなどの結合剤、トウモロコシデンプン、ジャガイモデンプンまたはアルギン酸などの崩壊剤およびステアリン酸やステアリン酸マグネシウムのような滑沢剤と併用して錠剤にされる。本発明の抗体やその結合部分あるいはプローブは、薬学的担体と共に生理的に許容される希釈剤中のこれらの物質の溶液または懸濁液により注射可能な用量形態でも投与され得る。この担体には水や油などの液体があり、それに界面活性剤およびアジュバント、賦形剤または安定剤などを含む他の薬理学的および栄養学的に許容される担体が加えられたり、加えられなかったりする。上記した油は、石油、動物、植物、合成を起源とし、例えばピーナッツ油、大豆油、鉱物油である。一般的に、水、塩水、水性デキストールおよび関連糖溶液およびプロピレングリコールまたはポリエチリングリコールなどのグリコール類が好ましい液体担体、特に注射用の担体である。エアゾルとしての使用のために、溶液や懸濁液中の本発明の抗体やその結合部分あるいはプローブは、適当な噴霧剤、例えばプロパン、ブタンまたはイソブタンのような炭化水素系噴霧剤、通常のアジュバンドとともに、加圧エアゾル容器に充填され得る。本発明の物質はネブライザーやアトマイザーなどの非加圧形態でも投与され得る。抗体やその結合部分あるいはプローブは、インビボでの正常、良性、増殖性および癌性の前立腺上皮細胞を検出するのに、用いられる。抗体やその結合部分あるいはプローブをラベルし、それを哺乳動物に投与し、次いで哺乳動物をイメージングして、検出する。本発明による診断イメージングに有用なラベルの例には、¹³¹Ｉ，¹¹¹Ｉｎ，¹² ³ Ｉ，⁹⁹ｍＴｃ，³²Ｐ，¹²⁵Ｉ，³Ｈ，¹⁴Ｃおよび¹⁸⁸Ｒｈなどの放射ラベル、フルオレセインおよびローダニンなどの蛍光ラベル、核磁気共鳴活性ラベル、ルシフェリンなどの化学発光体、ペロキシダーゼまたはホスファターゼなどの酵素マーカーがある。抗体やその結合部分あるいはプローブは既知の技術を用いてこれらの試薬でラベルされる。例えば、抗体の放射ラベルについては、Wensel and Meare s,Radioimmunoimaging and Radioimmunotherapy,Elsevier,New York(1983)（引用することにより、ここに合体する）を参照。D.Colcher et al.,“Use of Mono clonal Antibodies as Radiopharmaceuticals for the Localization of Human Carcinoma Xenografts in Athymic Mice”,Meth.Enzymol.121:802-816(1986)（引用することにより、ここに合体する）も参照。放射ラベルされた本発明の抗体やその結合部分あるいはプローブは、インビトロ診断試験に使用され得る。標識された抗体やその結合部分あるいはプローブの特異的活性は、放射活性ラベルの半減期や同位体純度と、いかにラベルが抗体やその結合部分あるいはプローブに合体しているかとに依存する。表２は、いくつかの普通に使用される同位体、その特異的活性および半減期を表示する。免疫検定において、特異的活性が高くなるほど、一般的に、感受性がよくなる。抗体やその結合部分あるいはプローブを表２の放射活性同位体でラベルする方法は、一般的に知られている。トリチウム・ラベル法は米国特許第４,３０２,４３８（引用することにより、ここに合体する）に記載されている。ネズミモノクローナル抗体に特に適用されるヨウ素化法、トリチウム・ラベル法および³²Ｓラベル法は、Goding,J.W.(上記、pp124-126)（引用することにより、ここに合体する）に記載されている。抗体やその結合部分あるいはプローブをヨウ化する他の方法は、Hunter and Greenwood,Nature 144:945(1962),David et al.,Biochemis try 13:1014-1021(1974),および米国特許第３,８６７,５１７および４,３７６, １１０（引用することにより、ここに合体する）に記載されている。イメージングに有用な放射ラベル元素は、例えば¹²³Ｉ、¹³¹Ｉ、¹¹¹Ｉｎおよび^99mＴｃである。抗体やその結合部分あるいはプローブをヨウ化する方法は、Greenwood,F.et al.,Biochem.J.89:114-123(1963);Marchalonis,J.,Biochem.J.113:299-305(196 9);and Morrison,M.et al.,Immunochemistry,289-297(1971)（引用することにより、ここに合体する）に記載される。^99mＴｃラベル法は、Rhodes,B.et al．in Burchiel,S.et al.(eds.),Tumor Imaging: The Radioimmunochemical Detection of Cancer ，New York:Masson 111-123(1982)（引用することにより、ここに合体する）に記載されている。抗体やその結合部分あるいはプローブを¹¹¹Ｉｎラベルするのに適した方法は、Hnatowich,D.J.et al.,J.Immul.Methods，65:147-1 57(1983),Hnatowich,D.et al.,J.Applied Radiation,35:554-557(1984),and Buc kley,R.G.et al.,F.E.B.S.166:202-204(1984)（引用することにより、ここに合体する）に記載されている。放射ラベルされた抗体やその結合部分あるいはプローブの場合、抗体やその結合部分あるいはプローブは患者に投与されて、抗原を生じる腫瘍に局在する。抗体やその結合部分あるいはプローブは、その抗原と反応し、次いで、例えばガンマー・カメラまたは発光断層撮影法を用いる放射核スキャンなどの既知方法でインビボで検出すなわち“イメージング”される。参照A.R.Bradwell et al.,“De velopments in Antibody Imaging”,Monoclonal Antibodies for Cancer Detect ion and Therapy ,R.W.Baldwin et al.,(eds.),pp.65-85(Academic Press 1985) （引用することにより、ここに合体する）。他方、放射ラベルが陽電子（例えば、¹¹Ｃ、¹⁸Ｆ、¹⁵Ｏおよび¹³Ｎ）を放出するときは、Brookhaven National Labo ratoryに存在するＰｅｔＶＩなどの陽電子放出軸移送断層撮影スキャナーを使用し得る。発蛍光団および発色団ラベルされた抗体やその結合部分あるいはプローブは、既知の標準的分子部分からつくられる。抗体および他のタンパク質が約３１０ｎｍ以上の波長の光を吸収するので、選択される蛍光部分は、約３１０ｎｍ以上、好ましくは４００ｎｍ以上の波長で実質的な吸収を有するべきである。種々の適当な発蛍光団および発色団は、Stryer,Science,162:526(1968)and Brand,L.et a l.,Annual Review of Biochemistry,41:843-868(1972)（引用することにより、ここに合体する）に記載されている。抗体やその結合部分あるいはプローブは、米国特許第３,９４０,４７５、４,２８９,７４７および４,３７６,１１０（引用することにより、ここに合体する）に記載のような通常の方法によって、蛍光発色基でラベルされ得る。上記のいくつかの望ましい特性を有する蛍光体のひとつのグループは、キサンテン色素であって、これは、３,６−ジヒドロ−９−ヘニルキサントヒドロールから誘導されたフルオレセイン、レサミン、３,６−ジアミノ−９−フェニルキサントヒドロールから誘導されたローダニン、リサニムローダミンＢを含む。ローダミンＢおよびフルオレセインの９−ｏ−カルボキシフェニルキサントヒドロール誘導体は９−ｏ−カルボキシフェニル基を有する。アミノおよびイソチオシアネート基などの活性カップリング基を有するフルオレセイン化合物、例えばフルオレセイン・イソシアネートおよびフルオレセスカミンは、容易に利用される。蛍光化合物の他のグループは、αまたはβ位にアミノ基を有するナフチルアミンである。抗体やその結合部分あるいはプローブは、Goding,J.(上記、pp208-249)記載の方法により発蛍光団または発色団でラベルされる。抗体やその結合部分あるいはプローブは、ＮＭＲ活性¹⁹Ｆ原子を含む指示基またはこのような原子の複数でラベルされ得る。それは、（ｉ）天然に豊富にあるフッ素原子の実質的にすべてが¹⁹ Ｆ同位体であり、したがって、実質的にすべてのフッ素含有化合物はＮＭＲ活性であり、（ii）トリフルオロ酢酸無水物などの多くの化学的活性ポリフッ化化合物が比較的低価格で市販されており、（iii）多くのフッ化化合物がヒトに医学的に使用し得る事が知られ、過フッ化ポリエーテルがヘモグロビン置換などの酸素移送に用いられているからである。インキュベーションの時間を取った後、前立腺上皮細胞を局在化しイメージングするために、全体ＮＭＲ測定をPykett,S cientific American ,246:78-88(1982)（引用することにより、ここに合体する）に記載されるような機器を用いて実施する。抗体やその結合部分あるいはプローブは、インビボで正常、良性、増殖性および癌性の前立腺上皮細胞を切除または殺すためにも用いられる。抗体やその結合部分あるいはプローブは、それのみ、または細胞障害剤とともに用いられて、正常、良性、増殖性および癌性の前立腺上皮細胞を切除または殺す。それには、細胞障害剤と結合した抗体やその結合部分あるいはプローブを処置を必要とする哺乳動物に投与することが含まれる。抗体やその結合部分あるいはプローブは、前立腺上皮細胞を認識するので、抗体やその結合部分あるいはプローブが結合するような細胞は破壊される。このような投与が正常な前立腺上皮細胞を破壊するが、前立腺が生命に、すなわち生存に必要でないので問題でない。前立腺は間接的に生殖に関係するが、本発明の処置を受ける患者にとって実際的に考慮すべき問題ではなかったようである。本発明の抗体やその結合部分あるいはプローブは、治療薬剤、放射化合物、植物、かび、細菌源の分子、生物的タンパク質、およびこれらの混合物などの様々な細胞障害剤を輸送するのに用いられる。酵素的に活性のトキシンおよびそのフラグメントには、例えば、ジフテリア・トキシンＡフラグメント、ジフテリア・トキシンの非結合活性フラグメント、エキソトキシンＡ（Pseudomonas aeruginosaから）、リシンＡ鎖、アブリンＡ鎖、モデシンＡ鎖、α−サクリン、ある種のAleurites fordiiタンパク質、ある種のジアンシン・タンパク質、Phytolacca americanaタンパク質（ＰＡＰ,ＰＡＰＩＩおよびＰＡＰ−Ｓ）、Morodica charantia阻害剤、クルシン、クロチン、Sapo naria officinalis阻害剤、ゲロニン、ミタギリン、レストリクトシン、フェノマイシンおよびエノマイシンがある。酵素的活性タンパク質の製造方法は、ＷＯ８４／０３５０８およびＷＯ８５／０３５０８（引用することにより、ここに合体する）に記載されている。ある種の細胞障害部分は、例えば、アドリアマイシン、クロラムブシル、ダウノマイシン、メトトレキセート、ネオカルジノスタチンおよびプラチナムから誘導される。抗体やその結合部分あるいはプローブを細胞障害剤とコンジュゲートする方法は、以前から知られている。クロラムブシルを抗体とコンジュゲートする方法は、Flechner,I,.European Journal of Cancer,9:741-745(1973);Ghose,T.et al.,British Medical Journal ,3:495-499(1972);and Szekerke,M.,et al.,Neoplasma ,19:211-215(1972)（引用することにより、ここに合体する）に記載されている。ダウノマイシンおよびアドリアマイシンを抗体とコンジュゲートする方法は、 Hurwitz,E.et al.,Cancer Research,35:1175-1181(1975)and Arnon,R.et al.,Ca ncer Surveys ,1:429-449(1982)（引用することにより、ここに合体する）に記載されている。抗体−リシン・コンジュゲートを製造する方法は、米国特許第４, ４１４,１４８およびOsawa,T.,et al.,Cancer Surveys,1:373-388(1982)（引用することにより、ここに合体する）に記載されている。カップリング方法は、ＥＰ８６３０９５１６.２（引用することにより、ここに合体する）に記載されている。別法において、抗体やその結合部分あるいはプローブは、高エネルギー放射物、例えば、¹³¹Ｉなどの放射同位体とカップリングさすことができ、腫瘍部位に局在して、いくつかの細胞を殺す。参照、例えば、S.E.Order,“Analysis,Resul ts,and Future Prospective of the Therapeutic Use of Radiolabeled Antibod y in Cancer Therapy”,Monoclonal Antibodies for Cancer Detection and The rapy ，R.W.Baldwin et al.(eds.),pp303-316(Academic Press 1985)（引用することにより、ここに合体する）。前立腺癌が放射線に比較的感受性の腫瘍であることから、放射治療は特に効果的であると期待される。本発明の抗体やその結合部分あるいはプローブは、特定のラベルを検出するために、キットとして器具とともに使用され、販売される。本発明の抗体やその結合部分あるいはプローブの治療的使用は、他の治療的処置形態と併用することができる。その他の処置には、外科処置、放射線照射、冷凍外科法、温熱療法、ホルモン治療、化学療法、ワクチンおよび他の免疫治療が含まれる。本発明にさらに包含されるものとして、予防のために抗体やその結合部分あるいはプローブを用いて、殺す又は切除する方法がある。例えば、これらの物質は、前立腺癌の発生あるいは進行を防止または遅延するのに用いられる。本発明の前立腺癌治療には多くの利点がある。抗体やその結合部分あるいはプローブは、前立腺上皮細胞のみを標的とするので、他の組織に影響しない。結果として、抗体やその結合部分あるいはプローブによる処置は安全性が高く、特に高齢者により安全である。本発明による処置は、前立腺癌の転移が起こりやすい骨髄やリンパ節に高レベルの抗体やその結合部分あるいはプローブを向けるので、特に効果的であると期待される。さらに、前立腺癌の腫瘍部位は大きさが小さい傾向にあり、従って、細胞障害剤により容易に破壊される。本発明による処置は、血清前立腺特異抗原などの臨床パラメーター、患者の癌の病理的特性、グリーソン・スコア、嚢外の、精液の、小胞の、眼周辺の侵入、リンパ節を含むポジチブ・マージンなどにより効果的に監視され得る。実施例実施例１ヒト組織良性および悪性組織の新鮮な試料は、記念スローン−ケタリング癌センターの病理学部門の腫瘍調達事業サービスにより提供された。可溶性組織調製物（『ＳＰＴＰ』）は、新鮮な良性および悪性前立腺を始めに機械的に細かく切り刻むことで調製した。組織を、ブレードホモジナイザー中で、０.２ｍＭフッ化フェニルメチルスルホニル（Sigma Chemical、セントルイス、ミズーリ）および２０μ／ｍｌアプロチニン（Calbiochem、サンディエゴ、カリフォルニア）を含むｐＨ７.２のリン酸緩衝溶液中で１分間ホモジナイズした。ホモジネートを１００,０００ｇで６０分間４℃で遠心し、上清をデカントし取得した。実施例２ −組織培養ヒト癌の培養細胞系は、記念スローン−ケタリング癌センターのヒト腫瘍免疫学の研究所から得た。前立腺癌細胞系ＰＣ−３（Mickey、D.D.、et al.、『単層培養および無胸腺マウスにおける固形癌としての、ヒト前立腺癌細胞系（ＤＵ１４５）の特徴づけ』、Prog.Clin.Biol.Res.、37:67-84(1980)、参照することにより、ここに合体する）、ＤＵ−１４５(Mickey、D.D.、et al.、『単層培養および無胸腺マウスにおける固形癌としての、ヒト前立腺癌細胞系（ＤＵ１４５）の特徴づけ』、Prog.Clin.Biol.Res.、37:67-84(1980)、参照することにより、ここに合体する)、およびＬＮＣａＰ（Horoszewicz、J.S.、et al.、『ヒト前立腺癌のＬＮＣａＰモデル』、Cancer Res.、43:1809-1818（1983）、参照することにより、ここに合体する）は、アメリカ基準菌株保存機構（ＡＴＣＣ）(Rockv ille、MD.)から入手した。始めにハイブリドーマを、１０％ＦＣＳ、０.１ｍＭ非必須アミノ酸、２ｍＭＬ−グルタミン、１００単位／ｍｌペニシリン、１００μｇ／ｍｌストレプトマイシンおよびＨＡＴ培地（GIBCO、Grand Island、NY ）を追加したＲＰＭＩ−１６４０培地中でクローン化した。サブクローンをアミノプテリン非含有の同培地で培養した。実施例３ −マウスモノクローナル抗体の調製ＢＡＬＢ／ｃマウスを、１週間間隔で３回、新鮮な良性増殖および悪性前立腺組織由来の機械的に切り刻んだ組織を用いて皮下注射により免疫化した。１週間後、最後の腹膜免疫を投与した。３日後、脾臓細胞を、標準的な技術を用いて、ＳＰ−２マウス骨髄腫細胞と融合させた。Ueda、R.、et al.、『マウスモノクローナル抗体により規定されるヒト腎臓癌の細胞表面抗原：組織特異的肝臓糖蛋白質の同定』、Proc.Natl.Acad.Sci.USA、78:5122-5126（1981）（参照することにより、ここに合体する）。得られたクローンの上清を免疫組織化学によりスクリーニングした。良性前立腺組織とは反応するが、正常リンパ節とは反応しないクローンを選別し、限界希釈法で３回サブクローニングした。各クローン由来の培養上清の免疫グロブリンクラスを、特異的ウサギ抗血清を用いて免疫拡散法により決定した（Calbiochem、サンディエゴ、カリフォルニア）。ＭＡＰＳ−IIキットを用いて、ｍＡｂを精製した（Bio-Rad、リッチモンド、カリフォルニア）。実施例４ −ｍＡｂのビオチニル化精製ｍＡｂを０.１ＭＮａＣＯ₃中で２時間透析した。１ｍｇ／ｍｌのｍＡｂ１ｍｌをジメチルスルホキシド中、ビオチンアミドカプロン酸Ｎ−ヒドロキシスクシンアミドエステル（Sigma）１ｍｇ／ｍｌの０.１ｍｌと混合し、４時間室温で撹拌した。非結合ビオチンをＰＢＳに対する透析により除去した。実施例５ −免疫組織化学的染色ハイブリドーマの最初のスクリーニングにおいて、前立腺組織のクリオスタット画分を、前以て０.４５％ゼラチン溶液で被膜したファルコン３０３４プレートカバー（Becton-Dickenson、Lincoln Park、NJ）のリング内に置いた。Marusi ch、M.F.、『免疫組織化学的ハイブリドーマスクリーニング用の、組織画分を非常に大量に調製する迅速な方法』、J.Immunol.Methods、111:143-145（1988）（参照することにより、ここに合体する）。プレートを−８０℃で貯蔵した。クリオスタット画分を１０分間室温でＰＢＳ中、２％パラホルムアルデヒドで固定し、ＰＢＳで洗浄後、内因性ペルオキシダーゼ活性は１０分間室温でＰＢＳ中、０ .３％過酸化水素で処理することにより阻害された。画分を２０分間ＰＢＳ中、２％ＢＳＡでインキュベートした後、ｍＡｂを６０分間で室温にて加えた。スライドは、ＰＢＳで充分に洗浄し、ＰＢＳ中１０％正常ヒト血清で１：１００に希釈したペルオキシダーゼ−コンジュゲートウサギ・アンチ−マウスＩｇ（DAKO C orp.、サンタバーバラ、カリフォルニア）と共に６０分間、室温でインキュベートした。ジアミノベンジン反応後、画分をヘマトキシリンを用いて対比染色した。検知された抗原の表面細胞発現を確認するために、組織サンプルを集め、５０ミクロンの網目を通過させることにより、新鮮な前立腺組織を機械的に単一細胞懸濁液中に分散させた。細胞懸濁液を洗浄し、１時間室温でｍＡｂと共に、ついでウサギ・アンチ−マウスＩｇ−フルオレセイン（DAKO Corp.、サンタバーバラ、カリフォルニア）と共にインキュベートした。スライドを蛍光顕微鏡で解読した。陰性対照はイソタイプ適合不適切ｍＡｂから成り、一方、アンチ−クラスＩＭＨＣｍＡｂは陽性対照として使用した。実施例６ −血清学的解析アンチ−マウス免疫グロブリン混合血球吸着検定をすでに発表されているように行った。Ueda、R.、et al.、『マウスモノクローナル抗体により規定されるヒト腎臓癌の細胞表面抗原：組織特異性肝臓糖蛋白質の同定』、Proc.Natl.Acad.S ci.USA 、78:5122-5126（1981）（参照することにより、ここに合体する）。指示細胞を調製するために、０.０１％塩化クロムを用いて、アンチ−マウスＩｇ（D AKO Corp.）を、０型ヒトＲＢＣに結合させた。血清学的検定は、前以てテラサキプレート（Nunc、デンマーク）で培養した細胞で行った。抗体を室温で１時間、標的細胞と共にインキュベートした。ついで、標的細胞を洗浄し、指示細胞を１時間で加えた。実施例７ −前立腺酸性ホスファターゼ（『ＰＡＰ』）に対するｍＡｂの反応性前立腺酸性ホスファターゼに対するモノクローナル抗体の反応性を直接的ＥＬＩＳＡで検定した。精製ＰＡＰ（Calbiochem、La Jolla、カリフォルニア）の連続希釈液を一晩３７℃でテラサキプレートに吸着させた。プレートをＰＢＳ０. ５％ＢＳＡで洗浄した。非特異的結合を阻害するために、ＰＢＳ２％ＢＳＡを６０分間、３７℃でインキュベートした。ビオチニル化ｍＡｂを４５分間室温でインキュベートした。ＰＢＳ２％ＢＳＡ中で１／６０００に希釈したウサギ・アンチ−ＰＡＰ（Sigma、セントルイス、ミズーリ）を陽性対照として使用した。ウサギ・アンチ−ＰＡＰの次は、ＰＢＳ２％ＢＳＡ中のビオチン−コンジュゲートヤギ・アンチ−ウサギＩｇ（Sigma）１／５０００であった。ビオチニル化抗体の次に、ＰＢＳ２％ＢＳＡ中、アビジン−コンジュゲートアルカリ性ホスファターゼSigma１／５００を４５分間室温で行った。アルカリ性ホスファターゼ（ｐ −ニトロフェニルリン酸）の基質を３７℃でインキュベートし、反応性をテラサキプレートに適したアルテックＥＬＩＳＡ解読機にて、ＯＤ₄₀₅で解読した。陰性対照では、ＰＡＰ抗原および／またはウサギアンチ−ＰＡＰを削除した。実施例８ −前立腺特異的抗原（『ＰＳＡ』）に対するｍＡｂの反応性前立腺特異的抗原に対するモノクローナル抗体の反応性を二抗体サンドウィッチＥＬＩＳＡで検定した。炭酸被膜緩衝液中で１／１０００に希釈したウサギアンチ−ＰＳＡ（Accurate Chemical and Scientific Corp、NY）を用いて、テラサキプレートを一晩３７℃で被膜した。ＰＢＳ２％ＢＳＡを使用して非特異的結合を阻害した。可溶性前立腺組織調製物（『ＳＰＴＰ』）によりＰＳＡ源が提供された。ＳＰＴＰをＰＢＳ２％ＢＳＡ中で連続的に希釈し、室温で４５分間インキュベートした。ビオチニル化ｍＡｂを４５分間で加えた。アビジン−コンジュゲートアルカリ性ホスファターゼおよび基質は、直接的ＥＬＩＳＡのために、上記のように使用した。陰性対照では、ウサギアンチ−ＰＳＡ捕獲抗血清またはＰＳＡ（ＳＰＴＰ）を削除した。実施例９ −免疫沈降反応ＳＰＴＰをコンカナバリンＡカラムにのせ、０.２Ｍａ−メチルＤ−マンノシドで溶出した。ＰＳＡを含む画分は、ウサギ・アンチ−ＰＳＡおよびビオチン −コンジュゲートプロスト４１０を用いてサンドウィッチＥＬＩＳＡにより決定した。貯蔵ＰＳＡ画分をクロラミドＴ方法によりＩ−１２５でラベルした。非結合Ｉ−１２５をＰＤ１０カラム（BIO-RAD、リッチモンド、カリフォルニア）で除去した。ラベル化抗原は、正常マウスまたはウサギ血清で一度安全性を事前に確認し、ｍＡｂまたはポリクローナル抗体およびタンパク質Ａセファロース（Bo ehringer Manheim Biochem）で沈降させた。連続的免疫沈降反応で、ラベル化抗原は、正常血清で安全性を確認し、第一番目の抗体で３回安全性を確認した。得られた上清を第２番目の抗体およびタンパク質Ａセファロースで沈降させた。La emmliの方法で、各沈澱物を９％ＳＤＳ−ＰＡＧＥに適用した。Laemmli、U.K.、『バクテリオファージＴ４の頭部が会合する間の構造タンパク質の除去』、Natu re （London）、227:680-685（1970）、参照することにより、ここに合体する。この融合で得られたおよそ８００個のクローン中６個のクローンを前立腺上皮との免疫組織化学的反応性およびリンパ節組織との無反応に基づき最初に選別した。サブクローン化した後、混合血球吸着検定を用いて、６個のハイブリドーマ由来の上清を、細胞系のパネルについて検定した（表３）。プロスト１６およびプロスト２８４は、実質的に同じ反応性を示した；プロスト２８４は、ＩｇＭなので、ＩｇＧ₁であるプロスト１６に偏っている。プロスト４１０は、ＬＮＣａＰのみと反応し、プロスト３０、プロスト１３０、およびプロスト１８５は、前立腺癌細胞系のＰＣ−３、ＤＵ１４５、およびＬＮＣａＰを含むあらゆる細胞系と反応しなかった。タンパク質Ａカラムを用いて５個の選別されたｍＡｂを精製した後、正常ヒト組織におけるこれらのｍＡｂの反応性を免疫組織化学的に測定した（表４）。プロスト１６は広範な反応性を示し、これ以上特徴づけをしなかった。プロスト１３０およびプロスト１８５は、相対的に限定された、ほとんど同じ反応性を示した。プロスト３０およびプロスト４１０は、極めて限定された反応性を示した。これら５個のｍＡｂはどれも、正常ラット前立腺にもダニングＲ３３２７ラット前立腺癌細胞系にも免疫組織化学的反応性を示さなかった。ｍＡｂプロスト３０：精製プロスト３０（４０μｇ／ｍｌ）は、ＭＨＡにより、７４個のヒト細胞系の増量されたパネルのいずれとも反応しなかった。間接的免疫ペルオキシダーゼ検定により、プロスト３０はまた、２％パラホルムアルデヒド固定後に、２９個の細胞系（ＬＮＣａＰ、ＰＣ−３、およびＤＵ１４５を含む）のいずれとも反応しなかった。凍結組織画分の免疫組織化学的研究により、全ての３５個の良性および３０個の悪性前立腺は、プロスト３０に陽性であることが示された（図１）。プロスト３０は前立腺上皮細胞および蛍光分泌物と反応した。試験した他の組織はどれも、１９個中７個の正常腎試料および７個中１個の肺癌において、いくらかの細管と弱く異種的に反応する以外は反応性がなかった（表５および６）。全３個のｍＡｂでの相対的終点滴定に基づくと、前立腺組織の免疫反応性は他の陽性組織の２００−５００倍であった。全ての３個のｍＡｂでの相対的終点滴定に基づき、前立腺組織の免疫反応性は他の陽性組織の２００−５００倍であった。ｎ.ｔ.＝未試験ｍＡｂプロスト３０はパラフィン画分と反応しなかった。新鮮な、生存能力のある前立腺細胞を蛍光免疫検定すると、細胞表面蛍光が示された。プロスト３０により認識される抗原は、熱感受性であり、２０ｍＭ過ヨウ素酸ナトリウムでの処理に耐性であった。プロスト３０は、ＥＬＩＳＡにより、ＰＳＡまたはＰＡＰのいずれにも反応しなかった。ｍＡｂプロスト１３０およびプロスト１８５：前述したように、ｍＡｂプロスト１３０およびピロスト１８５は、細胞系標的物（すなわち、非反応性；表３参照）および組織画分に対して実質的に同等の反応性を示した（表５および６；図２参照）。質的にはプロスト３０のように組織特異性ではないので、プロスト１３０および１８５は質的に極めて特異的であった。すなわち、プロスト１３０および１８５のＩＨＣ終点滴定は、他のＩＨＣ−反応性組織におけるよりも、前立腺組織におけるものの方が２００−５００倍高かった。プロスト３０のように、ｍＡｂプロスト１３０および１８５もまた、パラフィン画分と反応しなかった。新鮮で、生存能力のある前立腺細胞を蛍光免疫検定すると、細胞表面に蛍光を示した。ｍＡｂは、両方共、直接的ＥＬＩＳＡによりＳＰＴＰに対して反応性であった。二抗体サンドウィッチＥＬＩＳＡを用いて、プロスト１３０により捕獲された抗原は、プロスト１３０−ビオチンまたはプロスト１８５−ビオチンのいずれかに反応したが、第２の抗体であるプロスト４１０−ビオチンには反応しなかった（図３Ａ）。逆に、一次抗体であるプロスト１８５を用いて捕獲した抗原は、プロスト１３０−ビオチンとは反応したが、二次抗体であるプロスト１８５−ビオチンまたはプロスト４１０−ビオチンのいずれとも反応しなかった（図３Ｂ）。これらの結果により、プロスト１３０およびプロスト１８５は同じ分子を認識し、この分子は唯１つのプロスト１８５−反応性エピトープ以外に少なくとも２つのプロスト１３０−反応性エピトープを有すが、抗原はＰＳＡではないことが示される。プロスト１３０およびプロスト１８５エピトープが異なることを確認するために、二抗体サンドウィッチ競合的ＥＬＩＳＡを行った（図４）。ＳＰＴＰ由来の抗原はプロスト１３０により捕獲された。非コンジュゲートｍＡｂプロスト１３０、プロスト１８５、およびプロスト４１０をプロスト１３０−ビオチンによる結合と競合させるために加えた（図４Ａ）。プロスト１８５でもプロスト４１０でもなく、プロスト１３０のみが、プロスト１３０−ビオチン結合を阻害し得た。同様に、プロスト１３０でもプロスト４１０でもなくプロスト１８５のみが、プロスト１８５−ビオチンを阻害し得た（図４Ｂ）。ｍＡｂプロスト４１０：ウサギ・アンチ−マウスＩｇＭＨＡおよびＥＬＩＳＡ検定を用いて、４０μｇ／ｍｌの精製プロスト４１０は、試験した８３個のヒト細胞系のＬＮＣａＰ系とのみ反応した。免疫組織化学法によると、このプロスト４１０は試験した全ての正常で、増殖性および新生物形成の前立腺組織画分と反応した（図１、表５）。サンドウィッチＥＬＩＳＡ検定により、プロスト４１０の前立腺特異的抗原（『ＰＳＡ』）に対する反応性が示された。プロスト４１０のＰＳＡ反応性は免疫沈降法により確認された。ｍＡｂを前立腺関連分子にしようとする従来の試みは、ＰＡＰまたはＰＳＡなどの前立腺起源の、すでに特徴づけがなされた分子を指向するか、あるいは、正常または増殖前立腺上皮（すなわち、ＢＰＨ）から前立腺癌を区別する抗原を明確にすることを指向してきた。本研究においては、異なる試みを行った。局所結節のイメージングを改善する必要が、臨床的に価値のあるゴールとして認められている。なぜなら、この部分は転移拡大がよく見られる部位であり、また、手術の段階における手法なしには評価するのが困難であるからである。目的は局所的（骨盤）リンパ節内における前立腺癌の臨床的イメージングに使用するｍＡｂを開発することであった。数多くの仮定がなされた。第一に、ｍＡｂは、ＢＰＨまたは正常前立腺から前立腺癌を区別する必要は特にない。なぜなら、リンパ節内の前立腺抗原発現細胞の存在は、明らかに転移性前立腺癌である。特異性の要件が拡がったことは、実質的に成功の可能性を増加させたように思われた。第２に、全身性ではなく、選択的経路（すなわち、前立腺内への、または前立腺周辺への注入または、下肢の皮下注入もまた期待される）を介した患者へのｍＡｂの投与である。動物（Weinstein、J.N.、et al.、『リンパにおけるモノクローナル抗体：腫瘍転移の診断および治療に向けて』、Science、218:1334-1337（1982）；Weinstein、J.N.、et al.、『リンパにおけるモノクローナル抗体：固形腫瘍のリンパ節転移部位への選択的運搬』、Science、222:423-426（1983）；Parker 、R.J.、et al.、『リンパにおけるネズミ放射ラベルモノクローナル抗体の標的化』、Cancer Res.、47:2073-2076（1987）、参照することにより、ここに合体する）およびヒト（Keenan、A.M.、et al.、『インジウム−１１１−ラベルＴ１０１モノクローナル抗体の皮下注入後のリンパ腫をもつ患者における免疫シンチグラフィー』、J.Nucl.Med.、28:42-46（1987）；Keenan、A.M.、et al.、皮膚Ｔ細胞リンパ腫をもつ患者における免疫シンチグラフィーおよびインジウム１１１−ラベルＴ１０１モノクローナル抗体の用量依存性』、Cancer Res.、47:6093 -6099（1987）、参照することにより、ここに合体する）。研究によると、ｍＡｂの付着抗原特異性に対する解剖的選択性などを列挙することにより顕著な効力のある利点が示されている。それ故、予期される局所投与によりｍＡｂ特異性要件がさらに広くなった。この設定により、結節の反応性がなくても、前立腺反応性に基づき単純にクローンをスクリーニングし選別することが妥当となった。本研究で産生されたｍＡｂ中、プロスト３０、１３０、および１８５は以前に明確にされた前立腺関連ｍＡｂとは異なるようである。例えば、ｍＡｂＰＤ４１（Beckett、M.L.、et al.、『モノクローナル抗体ＰＤ４１は、前立腺癌に限定された抗原を認識する』、Cancer Res.、51:1326-1333（1987）、これは参照することにより、ここに合体する）、Ｐ２５.４８およびＰ２５.９１（Bazinet 、M.、et al.、『新しい前立腺特異的抗原を規定する、Ｐ２５.４８およびＰ２５.９１である、２つのモノクローナル抗体の免疫組織化学的特徴づけ』、Cance r Res. 、48:6938-6942（1988）、参照することにより、ここに合体する）、およびＰ６.２（Wright、G.L.、Jr.、et al.、前立腺癌関連抗原の免疫組織化学的局在化』、Cancer Res.、43:5509-5516（1983）、参照することにより、ここに合体する）は、前立腺癌の部分集合に限定された抗原を明確にするが、正常または増殖前立腺上皮細胞により発現されない。正常で、増殖性、および新生物形成性の前立腺細胞に関係する抗原を規定するｍＡｂ中、クローン３５（Frankell、A. E.、et al.、『ヒト前立腺抗原に対するモノクローナル抗体』、Cancer Res.、4 2:3714-3718（1982）、参照することにより、ここに合体する）は、乳房上皮および膀胱癌細胞系Ｔ−２４とクローン３５が反応することにより、ここで報告されたｍＡｂとは異なる。クローン３５を膜ラジオ免疫検定（『ＲＩＡ』）により検定した場合、前立腺組織よりも正常腎臓との方がより反応性を示す。クローン２４（Frankel、A.E.、et al.、『ヒト前立腺抗原に対するモノクローナル抗体』、Cancer Res.、42:3714-3718（1982）、参照することにより、ここに合体する）は、ＰＣ−３細胞系と反応性を有するが、膜ＲＩＡにおいては、ＢＰＨに対する高い反応性を示したが、前立腺癌とはバックグラウンドの反応性しか示さなかった。ｍＡｂ αＰro３（Ware、J.L.、et al.、『ヒト前立腺癌抗原を認識するモノクローナル抗体αプロ３の産生』、Cancer Res.、42:1215-1222（1982）、参照することにより、ここに合体する）、結合ＰＣ−３細胞、および免疫組織化学法は行わなかったが、組織抽出物を使用する吸収検定は、ＢＰＨにおけるよりも広い範囲の非前立腺組織においてより大きな抗原発現を示すようである。ｍＡｂＦ７７により検知されるエピトープ（Carroll、A.M.、et al.、『組織特異的細胞表面抗原に対するモノクローナル抗体』、Clin.Immunol.And Immunopathol.33:2 68-281（1984）、参照することにより、ここに合体する）、ＫＢ−Ｐ８（Raynor 、R.H.、et al.、『新しい前立腺特異的マーカーを検知する、モノクローナル抗体ＫＲ−Ｐ８の特徴づけ』、J.Natl.Cancer Inst.、73:617-625（1984）；Rayno r、R.H.、et al.、『モノクローナル抗体により同定された前立腺関連抗原の生化学的特質』、ＫＲ−Ｐ８、Prostate、9:21-31（1986）、参照することにより、ここに合体する）、ＴＵＲＦ−２７およびＴＵＲＦ−７３（Starling、J.J.、 et al.、『ネズミモノクローナル抗体により規定されるヒト前立腺組織抗原』、Cancer Res. 、46::367-374（1986）、参照することにより、ここに合体する）は、プロスト３０、１３０または１８５と異なりホルマリン固定／パラフィン固定組織画分で検出可能である。ＴＵＲＰ−７３抗原はまた、いくつかの前立腺癌細胞系において検出可能である。以前に報告された１つのｍＡｂ、７Ｅ１１−Ｃ５（Horoszewicz、J.S.、et al.、『上皮前立腺細胞および前立腺癌患者の血清における新しい抗原性マーカーに対するモノクローナル抗体』、Anticancer Res. 、7:927-936（1987）、参照することにより、ここに合体する）は、プロスト３０、１３０、および１８５に類似の特徴を有する。これらの類似点には、細胞系との反応性の欠如、いくつかの尿細管との弱い免疫組織化学的反応性、および全ての正常、ＢＰＨ、および試験した新生物形成前立腺との反応性を含む。しかしながら、異なる特徴もある：７Ｅ１１−Ｃ５は固定化後にＬＮＣａＰ細胞と反応し、骨格筋と免疫組織化学的反応性を有すること（Lopes、A.D.、et al.、『アンチ前立腺モノクローナル抗体７Ｅ１１−Ｃ５由来の部位特異的免疫コンジュゲートＣＹＴ−３５６の免疫組織化学的および薬物動力学的特徴』、Cancer Res. 、50:6423-6429（1990）、参照することにより、ここに合体する）および、少なくとも初めの報告では、血清中での７Ｅ１１−Ｃ５Ａｇの存在（Horoszewic、J .S.、et al.、『上皮前立腺細胞および前立腺癌患者の血清における新しい抗原性マーカーに対するモノクローナル抗体』、Anticancer Res.、7:927-936（1987）、参照することにより、ここに合体する）。以前に発表されたｍＡｂ中、前立腺癌をイメージングするための臨床的評価をすでに開始した者もいる（Vihko、P.et al.、『前立腺酸性ホスファターゼを用いた前立腺癌の放射イメージング−特異的抗体』、Biotechnology In Diagnosti cs 、pp.131-134（1985）、Babaian、R.J.、et al.、『１１１−インジウムラベルモノクローナル抗体ＰＡＹ２７６を用いた転移性前立腺癌のラジオ免疫検定イメージング、J.Urol.、137:439-443（1987）；Leroy、M.、et al.、『前立腺癌におけるリンパ節侵入の放射免疫検出』。『インビボにおけるヨウ素１２３（１２３−Ｉ）ラベルモノクローナルアンチ前立腺酸性ホスファターゼ（ＰＡＰ）２２７ＡＦ（ａｂ'）２抗体フラグメントの使用』、Cancer、64：1-5（1989）；M eyers、J.F.、et al.、『転移性前立腺癌のモノクローナル抗体イメージングの発展』、The Prostate、14:209-220（1989）、参照することにより、ここに合体する）。例えば、ＰＳＡに対するｍＡｂはイメージングに使用されたが、あまり成功することがなかった（Meyers、J.F.、et al.、『転移性前立腺癌のモノクローナル抗体イメージングの発展』、The Prostate、14:209-220（1989）、参照することにより、ここに合体する）。ＰＳＡ抗原の性質からして、これはおそらく驚くべきことではない。ＰＳＡは大変組織特異的であるが、抗原は基本的に細胞表面発現をほとんど有さない細胞質である（Warhol、J.J.、et al.、『増殖および新生物形成ヒト前立腺における、前立腺特異的抗原および前立腺酸性ホスファターゼの超構造局在化』、J.Urol.、134:607-613（1985）、参照することにより、ここに合体する）。さらに、ＰＳＡが分泌され、血清中に検出できる。ＰＳＡに対する抗体を全身投与することにより免疫複合体形成、網内系への取り込み、および結果として起こるバックグラウンドのイメージングをもたらすと期待される。ＰＡＰに対するｍＡｂもまた、イメージングについて研究された（Vihko、P. 、et al.、『前立腺酸性ホスファターゼを用いた前立腺癌の放射イメージング− 特異的抗体』、Biotechnology In Diagnostics、pp.131-134、（1985）；Leroy 、M.、et al.、『前立腺癌におけるリンパ節侵入の放射免疫検定。インビボでの、ヨウ素１２３（１２３−Ｉ）ラベルモノクローナルアンチ−前立腺酸性ホスファターゼ（ＰＡＰ）２２７ＡＦ（ａｂ'）２抗体フラグメントの使用』、Cancer、64:1 -5（1989）、参照することにより、ここに合体する）。ＰＡＰは基本的に細胞質の分泌抗原であるなどのＰＳＡに類似の特徴を有すが、局所的、すなわち、前立腺周辺注入を用いた試みが初めて成功した（Leroy、M.、et al.、『前立腺癌におけるリンパ節侵入の放射免疫検定。インビボでの、ヨウ素１２３（１２３−Ｉ）ラベルモノクローナルアンチ−前立腺酸性ホスファターゼ（ＰＡＰ）２２７ＡＦ（ａｂ'）２抗体フラグメントの使用』、Cancer、64:1-5（1989）、参照することにより、ここに合体する）。おそらく、このような抗原性標的物の欠点は選択的／局所的投与により克服され得る。抗体プロスト１３０およびプロスト１８５は、このような選択的部位投与を介した研究に値するとみられる。これらの抗体は検出抗原上の少なくとも３つのエピトープを標的とし、抗原は細胞表面に強く発現され、循環しない。プロスト１３０／プロスト１８５を発現する正常組織（胸腺、耳下腺、結腸、包皮および胎盤）は、大きな実際上の問題を引き起こさない。イメージングだけでなく治療にも使用されることが現在評価されているもう１つのｍＡｂは、ＣＹＴ−３５６（Lopes、A.D.、et al.、『アンチ前立腺モノクローナル抗体７Ｅ１１−Ｃ５由来の部位特異的免疫コンジュゲートＣＹＴ−３５６の免疫組織化学的および薬物動力学的特徴』、Cancer Res.、50:6423-6429（1 990）；Wynant、G.E.、『前立腺癌の免疫シンチグラフィー：¹¹¹Ｉｎ−ラベルモノクローナル抗体７Ｅ１１−Ｃ５.３（ＣＹＴ−３５６）の初期の結果、The Pro state 、18:229-241』（1991）、参照することにより、ここに合体する）、７Ｅ１１−Ｃ５のサブクローン（Horoszewicz、J.S.、et al.、『上皮前立腺細胞および前立腺癌患者の血清における新しい抗原性マーカーに対するモノクローナル抗体』、Anticancer Res.、7:927-936（1987）；Lopes、A.D.、『アンチ前立腺モノクローナル抗体７Ｅ１１−Ｃ５由来の部位特異的免疫コンジュゲートＣＹＴ −３５６の免疫組織化学的および薬物動力学的特徴』、Cancer Res.、50:6423-6 429（1990）、参照することにより、ここに合体する）である。記述したように、このｍＡｂとプロスト３０の間にいくつかの類似点があった。初めのイメージングの結果により、ＣＹＴ−３５６に効果がありそうである（Wynant、G.E.、et a l.、『前立腺癌の免疫シンチグラフィー：¹¹¹Ｉｎ−ラベルモノクローナル抗体７Ｅ１１−Ｃ５.３（ＣＹＴ−３５６）での初期の結果、The Prostate、18:229- 241（1991）、参照することにより、ここに合体する）。ｍＡｂプロスト３０は、局所または全身投与のいずれかによる、正常および新生物形成前立腺への局在化に最適の特質を有するようである。実際、ｍＡｂプロスト３０は、他の抗体−ｍＡｂＧ２５０−（腎癌の患者における臨床試験において成功したことがすでに示されている）と共に多くの特徴を有する。Oosterwi jk、E.、et al.、『ヒト腎細胞癌における抗体局在化：モノクローナル抗体Ｇ２５０の第１相試験』、J.Of Clin.Oncol.、11:738-750（1993）、参照することにより、ここに合体する）を参照。これらの共通の特徴には、イソタイプ（γ₁）、免疫組織化学法による高度な特異性、細胞表面発現および循環抗原の不在が含まれる。Ｇ２５０では、正常組織取り込みの非存在下で原発性および転移性腎臓癌部位の両方における特異的で高レベルの蓄積が明らかにされている。免疫シンチグラフィー試験で、高い感受性（１２人中３人の患者に、ｍＡｂＧ２５０走査で検出された疾病部位があった。これは通常の試験では診断されなかったものである）および高い（１００％）特異性−全てのｍＡｂ検出部位は組織病理学的に腎臓癌を確認した。転移性前立腺癌部位へのｍＡｂ局在化が可能であることにより、診断的免疫シンチグラフィーにおいてだけでなく、転移性疾病の治療を指向した抗体にも有益であり得る。正常または増殖性の前立腺へ局在できることにより、大きな問題は提起されない。実際、これは利点と考えられる。もし、プロスト３０が前立腺によく局在することを示すことができれば、ＢＰＨの処置、またはＢＰＨまたは前立腺癌の予防において、前立腺の局在化癌の処置（単独または他の療法との組み合わせで）に臨床的に有効である。実施例１０ −臨床データ前立腺癌の診断を受けた１５人の患者は、手術（すなわち、前立腺全切除）または疑いのある病巣の生検の１週間前に、¹³¹ヨウ素（１０ｍＣｉ）ラベルｍＡｂプロスト３０の静脈内投与を受けた。プロスト３０注入と手術／生検との間の週に、患者は２〜３回、全身放射性核種走査および１回のＳＰＥＣＴ走査を受けた。３人からなる連続的な患者は、プロスト３０（全て１０ｍＣｉ¹³¹ヨウ素）の漸増用量を受けた：１.０ｍｇ（３人の患者）、２.０ｍｇ（３人の患者）、５ .０ｍｇ（３人の患者）、１０.０ｍｇ（３人の患者）、および２０.０ｍｇ（３人の患者）。１５人の患者中、１４人が本来の位置に前立腺を有していた。これらの場合の全てにおいて、前立腺は全身および走査像において視覚化され得る。本来の位置に前立腺をもたない１人の患者では、前立腺床にプロスト３０が全く局在しないことが示され、これにより、特異性および偽陽性の不存在が示される。２人の患者には、慣用的なＣＴ走査により明白な転移性疾病があった。両方の場合において、モノクローナル抗体像はこれらの部位を視覚化した（１人の患者：リンパ節に加えて肝臓；２番目の患者：リンパ節）。３例において、切削された前立腺試料を切削の時に引き出された血管に沿って走査／イメージングした。これらイメージング（図５参照）は、血液または他の正常組織に比較して、前立腺（疾病の標的部位）におけるラベル化プロスト３０の特異的および選択的蓄積および濃度を示す。これは、前立腺細胞が体のどこにあろうと(例えば、リンパ節、骨髄等) 、プロスト３０がこれらの細胞に結合することを示す。上記の試験の患者２人は、試験の前に前立腺特異的抗原（『ＰＳＡ』）が増加している進行性のホルモン難治性疾病にかかっていた。プロスト３０の投与に続いて、ＰＳＡの推移が逆となり、かなり低下した（約７５％）。ＰＳＡは９−１０カ月間、前処理の基線レベルに戻らなかった。前以てホルモン療法で処置されていない３人の患者に対しプロスト３０の直後にホルモン療法を行った。ＰＳＡは下降し、非検知レベルに維持された。再発の高い危険性をもつ４人を含む５人の患者（すなわち、高い前処理ＰＳＡおよび逆の病理特徴をもつ）は、プロスト３０に加えて手術を受けた。これらの患者の誰もまだ再発していない。１人の患者が放射療法に続いてプロスト３０を受けた。この患者は、前処理ＰＳＡ、イメージング試験および生検に失敗の危険性が高いが、検知不可能な血清ＰＳＡレベルに完全に応答し、疾病の症候はない。上記の結果は、プロスト３０抗体自体が治療効果を有することを示す。投与用量のわずか１ｍｇが実際に¹³¹Ｉでレベルされているが、投与用量（０〜１９ｍｇ）の残りはヨウ素を含有しなかった。プロスト３０モノクローナル抗体に付着した¹³¹ヨウ素ラベルは、治療効果をもたらすとするには不充分な極微量である。７人中２人の患者は、プロスト３０処置後に、大変感度の高い検定により明確にされたように、ヒトアンチ−マウス抗体（ＨＡＭＡ）形成の症候が現れなかった。２人のホルモン難治性患者でＨＡＭＡが生じなかった。非コンジュゲートプロスト３０を用いた第Ｉ／ＩＩ相治療試験が始められた。参加した最初の２人の患者に、ＰＳＡ下降が見られ、これは治療に有益であることを示す。実施例１１ −Ｃ３７およびＣ２１９モノクローナル抗体ＢＡＬＢ／ｃマウスをＬＮＣａＰヒト前立腺癌細胞系の細胞懸濁液で１回免疫した。およそ４日後に、マウスを殺戮し、脾臓をハイブリドーマ調製のために取り出した。この免疫方法は、補体固定において最も強いＩｇＭ抗体の作成に最適である（すなわち、それらは、標的細胞の補体溶解を仲介するのに最も良い）。ＩｇＭは、非常に大きな分子（ＩｇＧよりも５−１０倍大きい）であるので、モノクローン化研究にはしばしば敬遠され、腫瘍沈着物を貫通し得るかどうかの疑問がある。このことは、転移性疾病の支配部位がＩｇＭに容易に接近できるべき骨髄およびリンパ節であるので、有利であり得る。逆に、正常組織は、交差反応の機会を減少させて、低いレベルのこれらのＩｇＭにさらされる。候補となる抗体は、免疫細胞系（ＬＮＣａＰ）を標的とした補体固定検定を用いて、スクリーンし、選別した。ハイブリドーマ上清をヒト血清（すなわち、補体源）の存在下、標的細胞と共にインキュベートし、その上清が標的細胞を溶解／殺戮するハイブリドーマを選別した。非前立腺細胞をも溶解するいかなる抗体も選別されなかった。結果として、大変効力があり、ＬＮＣａＰの溶解に特異的であるＣ３７およびＣ２１９を指向する２つのクローンを同定した。さらに、これらの抗体は、結合したときに、相加的ではなく相乗的に機能した。補体などの細胞障害性機構を使用する試みは、コンジュゲート薬剤を使用する方法よりも優れる本質的な利点を有する。それにより薬剤を抗体に結合させる必要がなくなり、かかるコンジュゲートはコンジュゲート自体の科学を発展させつつある。これらの薬剤がどのように細胞を殺すかに関連した全ての問題もまた解決する。例えば、放射性同位体を使用するとの考え方は、連結問題のために複雑であるだけでなく、放射放出体の科学でもある。アルファ、ベータ、またはガンマ放出体を使用するのか。内在性または非内在性抗原を必要とするのか。補体仲介細胞障害性などのこれらの内因性細胞障害性メカニズムを使用すると、コンジュゲート薬剤の副作用もまたなくなる。また治療薬の取り扱いおよび調製をより簡単にする。さらに、補体系はそれ自体で自己増加する。すなわち、カスケード中の各連環酵素は、活性化されると、順次、さらに多くの分子を活性化し、増幅工程をおこす。補体系を引き起こす部分的効果は、免疫細胞を含む白血球を走化性因子の放出による領域に補充することである。結果として、補体系は、引き起こされるメカニズムのように抗体単独を使用して、細胞性およびホルモン性の極めて大量の増幅された免疫応答を産生する。本発明を説明の目的で詳細に記載したが、このような詳細な記述は唯その目的のためになされたものであり、以下の請求の範囲で定義される本発明の精神および範囲からそれることなく、当業者による変法をなし得る。

───────────────────────────────────────────────────── フロントページの続き (51)Int.Cl.⁶ 識別記号ＦＩＡ６１Ｋ 49/00 Ａ６１Ｋ 49/00 Ａ 51/00 Ｃ０７Ｋ 16/30 Ｃ０７Ｋ 16/30 Ｃ１２Ｐ 21/08 Ｃ１２Ｎ 5/10 Ｃ１２Ｑ 1/68 Ａ 15/02 Ｇ０１Ｎ 33/574 ＤＣ１２Ｐ 21/08 Ｃ１２Ｎ 15/00 ＣＣ１２Ｑ 1/68 Ａ６１Ｋ 43/00 Ｇ０１Ｎ 33/574 Ｃ１２Ｎ 5/00 Ｂ (81)指定国ＥＰ(ＡＴ，ＢＥ，ＣＨ，ＤＥ，ＤＫ，ＥＳ，ＦＩ，ＦＲ，ＧＢ，ＧＲ，ＩＥ，ＩＴ，ＬＵ，ＭＣ，ＮＬ，ＰＴ，ＳＥ)，ＯＡ(ＢＦ，ＢＪ，ＣＦ，ＣＧ，ＣＩ，ＣＭ，ＧＡ，ＧＮ，ＭＬ，ＭＲ，ＮＥ，ＳＮ，ＴＤ，ＴＧ)，ＡＰ(ＫＥ，ＬＳ，ＭＷ，ＳＤ，ＳＺ，ＵＧ)，ＡＬ，ＡＭ，ＡＴ，ＡＵ，ＡＺ，ＢＢ，ＢＧ，ＢＲ，ＢＹ，ＣＡ，ＣＨ，ＣＮ，ＣＺ，ＤＥ，ＤＫ，ＥＥ，ＥＳ，ＦＩ，ＧＢ，ＧＥ，ＨＵ，ＩＳ，ＪＰ，ＫＥ，ＫＧ，ＫＰ，ＫＲ，ＫＺ，ＬＫ，ＬＲ，ＬＳ，ＬＴ，ＬＵ，ＬＶ，ＭＤ，ＭＧ，ＭＫ，ＭＮ，ＭＷ，ＭＸ，ＮＯ，ＮＺ，ＰＬ，ＰＴ，ＲＯ，ＲＵ，ＳＤ，ＳＥ，ＳＧ，ＳＩ，ＳＫ，ＴＪ，ＴＭ，ＴＲ，ＴＴ，ＵＡ，ＵＧ，ＵＺ，ＶＮ

Claims

【特許請求の範囲】１．正常、良性、増殖性および癌性の前立腺上皮細胞を切除する、または殺す方法であって、該細胞の抗原を認識するが、血中を循環する抗原を実質的に認識しない抗体やその結合部分あるいはプローブ（抗体やその結合部分あるいはプローブは該細胞に結合し得る）を提供すること、および該細胞を抗体やその結合部分あるいはプローブに、抗体やその結合部分あるいはプローブが抗原と結合することおよび細胞を切除する、または殺すことの両方を可能にする効果的な条件で、接触せしめること、を含む方法。２．該接触が、生きている哺乳動物で実施され、そして、抗体やその結合部分あるいはプローブを哺乳動物に、抗体やその結合部分あるいはプローブが抗原と結合することおよび該細胞を殺すことの両方を可能にする効果的な条件で、投与することを含む、請求項１の方法。３．該投与が、経口で、非経口で、皮下に、静脈内に、筋肉内に、腹腔内に、点鼻で、空洞または小胞点滴で、点眼で、動脈内に、病巣内に、および粘膜になされる、請求項２の方法。４．該方法の実施において抗体が用いられ、該抗体がモノクローナル抗体およびポリクローナル抗体よりなる群から選ばれる、請求項１の方法。５．抗体がプロスト３０、プロスト１３０、プロスト１８５、プロスト４１０、Ｃ３７およびＣ２１９よりなる群から選ばれるモノクローナル抗体である、請求項４の方法。６．抗体がＨＢ１１４２４、ＨＢ１１４２５、ＨＢ１１４２６、ＨＢ１１４２７、ＨＢ１１８９２およびＨＢ１１８９３よりなる群から選ばれるＡＴＣＣ受託番号を有するハイブリッド細胞系により産生されるモノクローナル抗体である、請求項４の方法。７．該方法の実施において抗体の結合部分が用いられ、該結合部分がＦａｂフラグメント、Ｆ（ａｂ'）₂フラグメントおよびＦｖフラグメントよりなる群から選ばれる、請求項４の方法。８．該方法の実施においてプローブが用いられる、請求項１の方法。９．抗体やその結合部分あるいはプローブが、抗体やその結合部分あるいはプローブの該細胞への結合において該細胞を殺す、または切除するのに効果的な物質と結合している、請求項１の方法。１０．該細胞を殺すのに効果的な物質が細胞障害剤である、請求項９の方法。１１．細胞障害剤が治療薬剤、放射化合物、植物、カビまたは細菌源の分子、生物的タンパク質およびこれらの混合物よりなる群から選ばれる、請求項１０の方法。１２．抗体やその結合部分あるいはプローブが生理的に許容される担体、賦形剤または安定剤をさらに含有する組成物に含まれる、請求項１の方法。１３．抗体やその結合部分あるいはプローブが薬学的に許容される担体、賦形剤または安定剤をさらに含有する組成物に含まれる、請求項１の方法。１４．生物サンプル中の正常、良性、増殖性および癌性の前立腺上皮細胞を検出する方法であって、該細胞の抗原を認識するが、血中を循環する抗原を実質的に認識しない抗体やその結合部分あるいはプローブ（抗体やその結合部分あるいはプローブは、抗体やその結合部分あるいはプローブが該細胞またはその部分に結合する際に、該細胞またはその部分の検出を可能とする効果的なラベルに結合している）を提供すること、ラベルを有する抗体やその結合部分あるいはプローブに生物サンプルを、生物サンプル中の該細胞またはその部分の抗原に抗体やその結合部分あるいはプローブが結合するのを可能にする効果的な条件で、接触せしめること、および生物サンプル中の該細胞またはその部分の存在を、ラベルを検定することにより検出すること、を含む方法。１５．該接触が、生きている哺乳動物で実施され、そして、抗体やその結合部分あるいはプローブを哺乳動物に、生物サンプル中の該細胞またはその部分の抗原に抗体やその結合部分あるいはプローブが結合するのを可能にする効果的な条件で、投与することを含む、請求項１４の方法。１６．該投与が、経口で、非経口で、皮下に、静脈内に、筋肉内に、腹腔内に、点鼻で、空洞または小胞点滴で、点眼で、動脈内に、病巣内に、および粘膜になされる、請求項１５の方法。１７．該方法の実施において抗体が用いられ、該抗体がモノクローナル抗体およびポリクローナル抗体よりなる群から選ばれる、請求項１４の方法。１８．抗体がプロスト３０、プロスト１３０、プロスト１８５、プロスト４１０、Ｃ３７およびＣ２１９よりなる群から選ばれるモノクローナル抗体である、請求項１７の方法。１９．抗体がＨＢ１１４２４、ＨＢ１１４２５、ＨＢ１１４２６、ＨＢ１１４２７、ＨＢ１１８９２およびＨＢ１１８９３よりなる群から選ばれるＡＴＣＣ受託番号を有するハイブリッド細胞系により産生されるモノクローナル抗体である、請求項１７の方法。２０．該方法の実施において抗体の結合部分が用いられ、該結合部分がＦａｂフラグメント、Ｆ（ａｂ'）₂フラグメントおよびＦｖフラグメントよりなる群から選ばれる、請求項１７の方法。２１．該方法の実施においてプローブが用いられる、請求項１４の方法。２２．ラベルが蛍光ラベル、放射ラベル・核磁気共鳴活性ラベル、発光ラベルおよび発色ラベルよりなる群から選ばれる、請求項１４の方法。２３．抗体やその結合部分あるいはプローブが生理的に許容される担体、賦形剤または安定剤をさらに含有する組成物に含まれる、請求項１４の方法。２４．抗体やその結合部分あるいはプローブが薬学的に許容される担体、賦形剤または安定剤をさらに含有する組成物に含まれる、請求項１４の方法。２５．該接触が血清サンプルまたは尿サンプル中でなされる、請求項１４の方法。２６．正常、良性、増殖性および癌性の前立腺上皮細胞およびその部分の抗原を認識するが、血中を循環する抗原を実質的に認識しない、単離された抗体やその結合部分あるいはプローブ。２７．単離された抗体やその結合部分あるいはプローブがモノクローナル抗体およびポリクローナル抗体よりなる群から選ばれる、請求項２６の単離された抗体やその結合部分あるいはプローブ。２８．抗体がプローブプロスト３０、プロスト１３０、プロスト１８５、プロスト４１０、Ｃ３７およびＣ２１９よりなる群から選ばれるモノクローナル抗体である、請求項２７の単離された抗体やその結合部分あるいはプローブ。２９．抗体がＨＢ１１４２４、ＨＢ１１４２５、ＨＢ１１４２６、ＨＢ１１４２７、ＨＢ１１８９２およびＨＢ１１８９３よりなる群から選ばれるＡＴＣＣ受託番号を有するハイブリッド細胞系により産生されるモノクローナル抗体である、請求項２７の単離された抗体やその結合部分あるいはプローブ。３０．単離された抗体やその結合部分あるいはプローブがＦａｂフラグメント、Ｆ（ａｂ'）₂フラグメントおよびＦｖフラグメントよりなる群から選ばれる抗体の結合部分である、請求項２７の単離された抗体やその結合部分あるいはプローブ。３１．単離された抗体やその結合部分あるいはプローブがプローブである、抗体やその結合部分あるいはプローブ。３２．抗体やその結合部分あるいはプローブが細胞障害剤と結合している、請求項２６の単離された抗体やその結合部分あるいはプローブ。３３．細胞障害剤が治療薬剤、放射化合物、植物、カビまたは細菌源の分子、生物的タンパク質およびこれらの混合物よりなる群から選ばれる、請求項３２の単離された抗体やその結合部分あるいはプローブ。３４．請求項３２の抗体やその結合部分あるいはプローブ、および抗体やその結合部分あるいはプローブと混合された生理的に許容される担体、賦形剤または安定剤を含む組成物。３５．請求項３２の抗体やその結合部分あるいはプローブ、および抗体やその結合部分あるいはプローブと混合された薬学的に許容される担体、賦形剤または安定剤を含む組成物。３６．該抗体やその結合部分あるいはプローブがラベルと結合している、請求項２６の単離された抗体やその結合部分あるいはプローブ。３７．ラベルが蛍光ラベル、放射ラベル・核磁気共鳴活性ラベル、発光ラベルおよび発色ラベルよりなる群から選ばれる、請求項３６の単離された抗体やその結合部分あるいはプローブ。３８．請求項３６の抗体やその結合部分あるいはプローブ、および単離された抗体やその結合部分あるいはプローブと混合された生理的に許容される担体、賦形剤または安定剤を含む組成物。３９．請求項３６の抗体やその結合部分あるいはプローブ、および単離された抗体やその結合部分あるいはプローブと混合された薬学的に許容される担体、賦形剤または安定剤を含む組成物。４０．請求項３６の抗体やその結合部分あるいはプローブ、およびラベルを検出する手段を含む前立腺癌発見のためのキット。４１．ラベルが蛍光ラベル、放射ラベル・核磁気共鳴活性ラベル、発光ラベルおよび発色ラベルよりなる群から選ばれる、請求項４０のキット。４２．該抗体やその結合部分あるいはプローブがプロスト３０、プロスト１３０、プロスト１８５、プロスト４１０、Ｃ３７およびＣ２１９よりなる群から選ばれるモノクローナル抗体である、請求項４０のキット。４３．抗体やその結合部分あるいはプローブが生理的に許容される担体、賦形剤または安定剤をさらに含有する組成物に含まれる、請求項４０のキット。４４．抗体やその結合部分あるいはプローブが薬学的に許容される担体、賦形剤または安定剤をさらに含有する組成物に含まれる、請求項４０のキット。４５．正常、良性、増殖性および癌性の前立腺上皮細胞およびその部分の抗原を認識するが、血中を循環する抗原を実質的に認識しないモノクローナル抗体を産生するハイブリッド細胞系。４６．モノクローナル抗体がプロスト３０、プロスト１３０、プロスト１８５、プロスト４１０、Ｃ３７およびＣ２１９よりなる群から選ばれるモノクローナル抗体である、請求項４５のハイブリッド細胞系。４７．ハイブリッド細胞系がＨＢ１１４２４、ＨＢ１１４２５、ＨＢ１１４２６、ＨＢ１１４２７、ＨＢ１１８９２およびＨＢ１１８９３よりなる群から選ばれるＡＴＣＣ受託番号を有する、請求項４５のハイブリッド細胞系。４８．プロスト３０、プロスト１３０、プロスト１８５、プロスト４１０、Ｃ３７およびＣ２１９よりなる群から選ばれるモノクローナル抗体により認識された正常、良性、増殖性および癌性の前立腺上皮細胞の抗原。４９．モノクローナル抗体がＨＢ１１４２４、ＨＢ１１４２５、ＨＢ１１４２６、ＨＢ１１４２７、ＨＢ１１８９２およびＨＢ１１８９３よりなる群から選ばれるＡＴＣＣ受託番号を有するハイブリッド細胞系により産生される、請求項４８の抗原。