ES2922422T3 - Soporte para adsorber materia orgánica - Google Patents
Soporte para adsorber materia orgánica Download PDFInfo
- Publication number
- ES2922422T3 ES2922422T3 ES19844208T ES19844208T ES2922422T3 ES 2922422 T3 ES2922422 T3 ES 2922422T3 ES 19844208 T ES19844208 T ES 19844208T ES 19844208 T ES19844208 T ES 19844208T ES 2922422 T3 ES2922422 T3 ES 2922422T3
- Authority
- ES
- Spain
- Prior art keywords
- organic matter
- support
- sea
- island
- type solid
- Prior art date
- Legal status (The legal status is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the status listed.)
- Active
Links
- 239000005416 organic matter Substances 0.000 title claims abstract description 584
- 239000000835 fiber Substances 0.000 claims abstract description 605
- 239000002131 composite material Substances 0.000 claims abstract description 437
- 239000007787 solid Substances 0.000 claims abstract description 413
- 238000001179 sorption measurement Methods 0.000 claims abstract description 249
- 239000011148 porous material Substances 0.000 claims abstract description 92
- 239000000306 component Substances 0.000 claims description 279
- 125000000524 functional group Chemical group 0.000 claims description 100
- 239000012503 blood component Substances 0.000 claims description 34
- 239000003446 ligand Substances 0.000 claims description 34
- 238000000034 method Methods 0.000 claims description 29
- 229920005992 thermoplastic resin Polymers 0.000 claims description 22
- 238000005056 compaction Methods 0.000 claims description 20
- 239000000463 material Substances 0.000 claims description 18
- 230000002378 acidificating effect Effects 0.000 claims description 11
- 229920000098 polyolefin Polymers 0.000 claims description 11
- 239000002253 acid Substances 0.000 claims description 5
- 230000001629 suppression Effects 0.000 abstract description 12
- 238000005259 measurement Methods 0.000 description 137
- 239000007788 liquid Substances 0.000 description 84
- -1 vinyl aromatic compound Chemical class 0.000 description 59
- 239000000243 solution Substances 0.000 description 55
- 102000004890 Interleukin-8 Human genes 0.000 description 52
- 108090001007 Interleukin-8 Proteins 0.000 description 52
- 238000002360 preparation method Methods 0.000 description 52
- 238000009940 knitting Methods 0.000 description 51
- 239000004744 fabric Substances 0.000 description 44
- CQPFMGBJSMSXLP-ZAGWXBKKSA-M Acid orange 7 Chemical compound OC1=C(C2=CC=CC=C2C=C1)/N=N/C1=CC=C(C=C1)S(=O)(=O)[O-].[Na+] CQPFMGBJSMSXLP-ZAGWXBKKSA-M 0.000 description 41
- 239000010419 fine particle Substances 0.000 description 37
- 239000004743 Polypropylene Substances 0.000 description 29
- 229920001155 polypropylene Polymers 0.000 description 29
- 125000003277 amino group Chemical group 0.000 description 28
- 102000004889 Interleukin-6 Human genes 0.000 description 27
- 108090001005 Interleukin-6 Proteins 0.000 description 27
- 239000004793 Polystyrene Substances 0.000 description 27
- 229940100601 interleukin-6 Drugs 0.000 description 27
- 229920002223 polystyrene Polymers 0.000 description 27
- 239000000203 mixture Substances 0.000 description 23
- 150000001875 compounds Chemical class 0.000 description 22
- XLYOFNOQVPJJNP-UHFFFAOYSA-N water Substances O XLYOFNOQVPJJNP-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 22
- 239000012091 fetal bovine serum Substances 0.000 description 21
- 210000004369 blood Anatomy 0.000 description 20
- 239000008280 blood Substances 0.000 description 20
- 238000002156 mixing Methods 0.000 description 20
- 210000000265 leukocyte Anatomy 0.000 description 19
- HEMHJVSKTPXQMS-UHFFFAOYSA-M Sodium hydroxide Chemical compound [OH-].[Na+] HEMHJVSKTPXQMS-UHFFFAOYSA-M 0.000 description 18
- IAZDPXIOMUYVGZ-UHFFFAOYSA-N Dimethylsulphoxide Chemical compound CS(C)=O IAZDPXIOMUYVGZ-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 17
- 230000004087 circulation Effects 0.000 description 17
- 229920000642 polymer Polymers 0.000 description 16
- FAGUFWYHJQFNRV-UHFFFAOYSA-N tetraethylenepentamine Chemical compound NCCNCCNCCNCCN FAGUFWYHJQFNRV-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 16
- 238000011282 treatment Methods 0.000 description 16
- QTBSBXVTEAMEQO-UHFFFAOYSA-N Acetic acid Chemical compound CC(O)=O QTBSBXVTEAMEQO-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 15
- 238000009826 distribution Methods 0.000 description 15
- 239000000126 substance Substances 0.000 description 15
- 102000004127 Cytokines Human genes 0.000 description 14
- 108090000695 Cytokines Proteins 0.000 description 14
- LQNUZADURLCDLV-UHFFFAOYSA-N nitrobenzene Chemical compound [O-][N+](=O)C1=CC=CC=C1 LQNUZADURLCDLV-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 14
- 125000006850 spacer group Chemical group 0.000 description 14
- 239000003463 adsorbent Substances 0.000 description 13
- 238000002844 melting Methods 0.000 description 13
- 230000008018 melting Effects 0.000 description 13
- 206010040047 Sepsis Diseases 0.000 description 12
- 238000009987 spinning Methods 0.000 description 12
- VEXZGXHMUGYJMC-UHFFFAOYSA-N Hydrochloric acid Chemical compound Cl VEXZGXHMUGYJMC-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 10
- QAOWNCQODCNURD-UHFFFAOYSA-N Sulfuric acid Chemical compound OS(O)(=O)=O QAOWNCQODCNURD-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 10
- 230000001965 increasing effect Effects 0.000 description 10
- 208000027866 inflammatory disease Diseases 0.000 description 9
- 238000012856 packing Methods 0.000 description 9
- XSQUKJJJFZCRTK-UHFFFAOYSA-N Urea Chemical compound NC(N)=O XSQUKJJJFZCRTK-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 8
- 239000007853 buffer solution Substances 0.000 description 8
- 230000006872 improvement Effects 0.000 description 8
- BDKLKNJTMLIAFE-UHFFFAOYSA-N 2-(3-fluorophenyl)-1,3-oxazole-4-carbaldehyde Chemical compound FC1=CC=CC(C=2OC=C(C=O)N=2)=C1 BDKLKNJTMLIAFE-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 7
- 210000004027 cell Anatomy 0.000 description 7
- 230000000052 comparative effect Effects 0.000 description 7
- 239000000178 monomer Substances 0.000 description 7
- 102000004169 proteins and genes Human genes 0.000 description 7
- 108090000623 proteins and genes Proteins 0.000 description 7
- 235000017281 sodium acetate Nutrition 0.000 description 7
- 229940087562 sodium acetate trihydrate Drugs 0.000 description 7
- 229920002554 vinyl polymer Polymers 0.000 description 7
- YMWUJEATGCHHMB-UHFFFAOYSA-N Dichloromethane Chemical compound ClCCl YMWUJEATGCHHMB-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 6
- 238000002965 ELISA Methods 0.000 description 6
- OKKJLVBELUTLKV-UHFFFAOYSA-N Methanol Chemical compound OC OKKJLVBELUTLKV-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 6
- ZMANZCXQSJIPKH-UHFFFAOYSA-N Triethylamine Chemical compound CCN(CC)CC ZMANZCXQSJIPKH-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 6
- 239000008358 core component Substances 0.000 description 6
- 230000003247 decreasing effect Effects 0.000 description 6
- 239000002158 endotoxin Substances 0.000 description 6
- 238000011156 evaluation Methods 0.000 description 6
- 238000005470 impregnation Methods 0.000 description 6
- 238000012360 testing method Methods 0.000 description 6
- VILCJCGEZXAXTO-UHFFFAOYSA-N 2,2,2-tetramine Chemical compound NCCNCCNCCN VILCJCGEZXAXTO-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 5
- 241000894006 Bacteria Species 0.000 description 5
- RPNUMPOLZDHAAY-UHFFFAOYSA-N Diethylenetriamine Chemical compound NCCNCCN RPNUMPOLZDHAAY-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 5
- PIICEJLVQHRZGT-UHFFFAOYSA-N Ethylenediamine Chemical compound NCCN PIICEJLVQHRZGT-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 5
- 241000283973 Oryctolagus cuniculus Species 0.000 description 5
- 125000003118 aryl group Chemical group 0.000 description 5
- 239000004202 carbamide Substances 0.000 description 5
- 210000003714 granulocyte Anatomy 0.000 description 5
- 238000001802 infusion Methods 0.000 description 5
- 229920006008 lipopolysaccharide Polymers 0.000 description 5
- 238000000691 measurement method Methods 0.000 description 5
- 230000007935 neutral effect Effects 0.000 description 5
- 239000002245 particle Substances 0.000 description 5
- 239000012779 reinforcing material Substances 0.000 description 5
- 238000009423 ventilation Methods 0.000 description 5
- CKDWPUIZGOQOOM-UHFFFAOYSA-N Carbamyl chloride Chemical compound NC(Cl)=O CKDWPUIZGOQOOM-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 4
- 206010069351 acute lung injury Diseases 0.000 description 4
- VSCWAEJMTAWNJL-UHFFFAOYSA-K aluminium trichloride Chemical compound Cl[Al](Cl)Cl VSCWAEJMTAWNJL-UHFFFAOYSA-K 0.000 description 4
- 238000009530 blood pressure measurement Methods 0.000 description 4
- VXIVSQZSERGHQP-UHFFFAOYSA-N chloroacetamide Chemical compound NC(=O)CCl VXIVSQZSERGHQP-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 4
- 229920001577 copolymer Polymers 0.000 description 4
- 238000001914 filtration Methods 0.000 description 4
- 125000001188 haloalkyl group Chemical group 0.000 description 4
- 229920001519 homopolymer Polymers 0.000 description 4
- 230000003993 interaction Effects 0.000 description 4
- 210000001616 monocyte Anatomy 0.000 description 4
- 229920002492 poly(sulfone) Polymers 0.000 description 4
- 230000009257 reactivity Effects 0.000 description 4
- 239000002904 solvent Substances 0.000 description 4
- 238000003756 stirring Methods 0.000 description 4
- TXNSZCSYBXHETP-UHFFFAOYSA-N 2-chloro-n-(hydroxymethyl)acetamide Chemical compound OCNC(=O)CCl TXNSZCSYBXHETP-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 3
- 206010001052 Acute respiratory distress syndrome Diseases 0.000 description 3
- 206010002091 Anaesthesia Diseases 0.000 description 3
- LYCAIKOWRPUZTN-UHFFFAOYSA-N Ethylene glycol Chemical compound OCCO LYCAIKOWRPUZTN-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 3
- 206010058872 Fungal sepsis Diseases 0.000 description 3
- 201000009794 Idiopathic Pulmonary Fibrosis Diseases 0.000 description 3
- 239000002841 Lewis acid Substances 0.000 description 3
- 239000004695 Polyether sulfone Substances 0.000 description 3
- FAPWRFPIFSIZLT-UHFFFAOYSA-M Sodium chloride Chemical compound [Na+].[Cl-] FAPWRFPIFSIZLT-UHFFFAOYSA-M 0.000 description 3
- YXFVVABEGXRONW-UHFFFAOYSA-N Toluene Chemical compound CC1=CC=CC=C1 YXFVVABEGXRONW-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 3
- 238000002835 absorbance Methods 0.000 description 3
- CQPFMGBJSMSXLP-UHFFFAOYSA-M acid orange 7 Chemical compound [Na+].OC1=CC=C2C=CC=CC2=C1N=NC1=CC=C(S([O-])(=O)=O)C=C1 CQPFMGBJSMSXLP-UHFFFAOYSA-M 0.000 description 3
- 125000000217 alkyl group Chemical group 0.000 description 3
- 230000037005 anaesthesia Effects 0.000 description 3
- QVGXLLKOCUKJST-UHFFFAOYSA-N atomic oxygen Chemical compound [O] QVGXLLKOCUKJST-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 3
- 239000002585 base Substances 0.000 description 3
- 210000000601 blood cell Anatomy 0.000 description 3
- 125000003178 carboxy group Chemical group [H]OC(*)=O 0.000 description 3
- 239000000969 carrier Substances 0.000 description 3
- 239000003054 catalyst Substances 0.000 description 3
- 239000003431 cross linking reagent Substances 0.000 description 3
- 238000005516 engineering process Methods 0.000 description 3
- 239000011521 glass Substances 0.000 description 3
- 125000005843 halogen group Chemical group 0.000 description 3
- 125000002887 hydroxy group Chemical group [H]O* 0.000 description 3
- 206010022000 influenza Diseases 0.000 description 3
- 150000007517 lewis acids Chemical class 0.000 description 3
- 238000004519 manufacturing process Methods 0.000 description 3
- 125000004433 nitrogen atom Chemical group N* 0.000 description 3
- 239000012454 non-polar solvent Substances 0.000 description 3
- 239000001301 oxygen Substances 0.000 description 3
- 229910052760 oxygen Inorganic materials 0.000 description 3
- WEXRUCMBJFQVBZ-UHFFFAOYSA-N pentobarbital Chemical compound CCCC(C)C1(CC)C(=O)NC(=O)NC1=O WEXRUCMBJFQVBZ-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 3
- 125000001997 phenyl group Chemical group [H]C1=C([H])C([H])=C(*)C([H])=C1[H] 0.000 description 3
- 229920006393 polyether sulfone Polymers 0.000 description 3
- 229920000139 polyethylene terephthalate Polymers 0.000 description 3
- 239000005020 polyethylene terephthalate Substances 0.000 description 3
- 238000000926 separation method Methods 0.000 description 3
- 239000012086 standard solution Substances 0.000 description 3
- 230000008961 swelling Effects 0.000 description 3
- MYRTYDVEIRVNKP-UHFFFAOYSA-N 1,2-Divinylbenzene Chemical compound C=CC1=CC=CC=C1C=C MYRTYDVEIRVNKP-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 2
- JSZOAYXJRCEYSX-UHFFFAOYSA-N 1-nitropropane Chemical compound CCC[N+]([O-])=O JSZOAYXJRCEYSX-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 2
- QPJCYJIZFCJYIR-UHFFFAOYSA-N 4-propylazetidin-2-one Chemical compound CCCC1CC(=O)N1 QPJCYJIZFCJYIR-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 2
- NLHHRLWOUZZQLW-UHFFFAOYSA-N Acrylonitrile Chemical compound C=CC#N NLHHRLWOUZZQLW-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 2
- VVJKKWFAADXIJK-UHFFFAOYSA-N Allylamine Chemical compound NCC=C VVJKKWFAADXIJK-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 2
- 229920002284 Cellulose triacetate Polymers 0.000 description 2
- 208000008964 Chemical and Drug Induced Liver Injury Diseases 0.000 description 2
- 206010009900 Colitis ulcerative Diseases 0.000 description 2
- 208000011231 Crohn disease Diseases 0.000 description 2
- ROSDSFDQCJNGOL-UHFFFAOYSA-N Dimethylamine Chemical compound CNC ROSDSFDQCJNGOL-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 2
- 206010072268 Drug-induced liver injury Diseases 0.000 description 2
- QUSNBJAOOMFDIB-UHFFFAOYSA-N Ethylamine Chemical compound CCN QUSNBJAOOMFDIB-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 2
- 241000192125 Firmicutes Species 0.000 description 2
- 208000005176 Hepatitis C Diseases 0.000 description 2
- 208000005331 Hepatitis D Diseases 0.000 description 2
- 206010019728 Hepatitis alcoholic Diseases 0.000 description 2
- DGAQECJNVWCQMB-PUAWFVPOSA-M Ilexoside XXIX Chemical compound C[C@@H]1CC[C@@]2(CC[C@@]3(C(=CC[C@H]4[C@]3(CC[C@@H]5[C@@]4(CC[C@@H](C5(C)C)OS(=O)(=O)[O-])C)C)[C@@H]2[C@]1(C)O)C)C(=O)O[C@H]6[C@@H]([C@H]([C@@H]([C@H](O6)CO)O)O)O.[Na+] DGAQECJNVWCQMB-PUAWFVPOSA-M 0.000 description 2
- NNJVILVZKWQKPM-UHFFFAOYSA-N Lidocaine Chemical compound CCN(CC)CC(=O)NC1=C(C)C=CC=C1C NNJVILVZKWQKPM-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 2
- 241001465754 Metazoa Species 0.000 description 2
- VVQNEPGJFQJSBK-UHFFFAOYSA-N Methyl methacrylate Chemical compound COC(=O)C(C)=C VVQNEPGJFQJSBK-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 2
- BAVYZALUXZFZLV-UHFFFAOYSA-N Methylamine Chemical compound NC BAVYZALUXZFZLV-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 2
- WHNWPMSKXPGLAX-UHFFFAOYSA-N N-Vinyl-2-pyrrolidone Chemical compound C=CN1CCCC1=O WHNWPMSKXPGLAX-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 2
- 206010033645 Pancreatitis Diseases 0.000 description 2
- 229930040373 Paraformaldehyde Natural products 0.000 description 2
- 239000004698 Polyethylene Substances 0.000 description 2
- 108010040201 Polymyxins Proteins 0.000 description 2
- 208000013616 Respiratory Distress Syndrome Diseases 0.000 description 2
- PPBRXRYQALVLMV-UHFFFAOYSA-N Styrene Chemical compound C=CC1=CC=CC=C1 PPBRXRYQALVLMV-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 2
- 229920010524 Syndiotactic polystyrene Polymers 0.000 description 2
- KKEYFWRCBNTPAC-UHFFFAOYSA-N Terephthalic acid Chemical compound OC(=O)C1=CC=C(C(O)=O)C=C1 KKEYFWRCBNTPAC-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 2
- 108060008682 Tumor Necrosis Factor Proteins 0.000 description 2
- 201000006704 Ulcerative Colitis Diseases 0.000 description 2
- 241000700605 Viruses Species 0.000 description 2
- 239000005862 Whey Substances 0.000 description 2
- 102000007544 Whey Proteins Human genes 0.000 description 2
- 108010046377 Whey Proteins Proteins 0.000 description 2
- NNLVGZFZQQXQNW-ADJNRHBOSA-N [(2r,3r,4s,5r,6s)-4,5-diacetyloxy-3-[(2s,3r,4s,5r,6r)-3,4,5-triacetyloxy-6-(acetyloxymethyl)oxan-2-yl]oxy-6-[(2r,3r,4s,5r,6s)-4,5,6-triacetyloxy-2-(acetyloxymethyl)oxan-3-yl]oxyoxan-2-yl]methyl acetate Chemical compound O([C@@H]1O[C@@H]([C@H]([C@H](OC(C)=O)[C@H]1OC(C)=O)O[C@H]1[C@@H]([C@@H](OC(C)=O)[C@H](OC(C)=O)[C@@H](COC(C)=O)O1)OC(C)=O)COC(=O)C)[C@@H]1[C@@H](COC(C)=O)O[C@@H](OC(C)=O)[C@H](OC(C)=O)[C@H]1OC(C)=O NNLVGZFZQQXQNW-ADJNRHBOSA-N 0.000 description 2
- 201000000028 adult respiratory distress syndrome Diseases 0.000 description 2
- 208000002353 alcoholic hepatitis Diseases 0.000 description 2
- 150000001336 alkenes Chemical class 0.000 description 2
- XAGFODPZIPBFFR-UHFFFAOYSA-N aluminium Chemical compound [Al] XAGFODPZIPBFFR-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 2
- 150000001412 amines Chemical class 0.000 description 2
- 239000007864 aqueous solution Substances 0.000 description 2
- 150000001491 aromatic compounds Chemical class 0.000 description 2
- HUMNYLRZRPPJDN-UHFFFAOYSA-N benzaldehyde Chemical compound O=CC1=CC=CC=C1 HUMNYLRZRPPJDN-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 2
- 239000000872 buffer Substances 0.000 description 2
- HQABUPZFAYXKJW-UHFFFAOYSA-N butan-1-amine Chemical compound CCCCN HQABUPZFAYXKJW-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 2
- 238000011088 calibration curve Methods 0.000 description 2
- 238000005119 centrifugation Methods 0.000 description 2
- 238000006243 chemical reaction Methods 0.000 description 2
- MVPPADPHJFYWMZ-UHFFFAOYSA-N chlorobenzene Chemical compound ClC1=CC=CC=C1 MVPPADPHJFYWMZ-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 2
- 239000000084 colloidal system Substances 0.000 description 2
- 239000000470 constituent Substances 0.000 description 2
- 229920006037 cross link polymer Polymers 0.000 description 2
- 230000006378 damage Effects 0.000 description 2
- 230000007423 decrease Effects 0.000 description 2
- 238000000113 differential scanning calorimetry Methods 0.000 description 2
- 238000007599 discharging Methods 0.000 description 2
- 201000010099 disease Diseases 0.000 description 2
- 208000037265 diseases, disorders, signs and symptoms Diseases 0.000 description 2
- 201000008865 drug-induced hepatitis Diseases 0.000 description 2
- 230000000694 effects Effects 0.000 description 2
- 238000000605 extraction Methods 0.000 description 2
- 239000007789 gas Substances 0.000 description 2
- 150000004676 glycans Chemical class 0.000 description 2
- 238000010438 heat treatment Methods 0.000 description 2
- 208000005252 hepatitis A Diseases 0.000 description 2
- 208000002672 hepatitis B Diseases 0.000 description 2
- 201000010284 hepatitis E Diseases 0.000 description 2
- 230000001506 immunosuppresive effect Effects 0.000 description 2
- 239000003018 immunosuppressive agent Substances 0.000 description 2
- 230000002757 inflammatory effect Effects 0.000 description 2
- 230000005764 inhibitory process Effects 0.000 description 2
- 208000036971 interstitial lung disease 2 Diseases 0.000 description 2
- 238000005342 ion exchange Methods 0.000 description 2
- 230000001926 lymphatic effect Effects 0.000 description 2
- 238000012423 maintenance Methods 0.000 description 2
- 230000014759 maintenance of location Effects 0.000 description 2
- 230000004048 modification Effects 0.000 description 2
- 238000012986 modification Methods 0.000 description 2
- 229910052757 nitrogen Inorganic materials 0.000 description 2
- 210000000056 organ Anatomy 0.000 description 2
- 229920002866 paraformaldehyde Polymers 0.000 description 2
- DPBLXKKOBLCELK-UHFFFAOYSA-N pentan-1-amine Chemical compound CCCCCN DPBLXKKOBLCELK-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 2
- 229960001412 pentobarbital Drugs 0.000 description 2
- JLTDJTHDQAWBAV-UHFFFAOYSA-N phenyldimethylamine Natural products CN(C)C1=CC=CC=C1 JLTDJTHDQAWBAV-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 2
- 229920003023 plastic Polymers 0.000 description 2
- 239000004033 plastic Substances 0.000 description 2
- 229920000779 poly(divinylbenzene) Polymers 0.000 description 2
- 229920002239 polyacrylonitrile Polymers 0.000 description 2
- 229920000768 polyamine Polymers 0.000 description 2
- 229920000573 polyethylene Polymers 0.000 description 2
- 229920001282 polysaccharide Polymers 0.000 description 2
- 239000005017 polysaccharide Substances 0.000 description 2
- 229920000036 polyvinylpyrrolidone Polymers 0.000 description 2
- 239000001267 polyvinylpyrrolidone Substances 0.000 description 2
- 235000013855 polyvinylpyrrolidone Nutrition 0.000 description 2
- 150000003141 primary amines Chemical class 0.000 description 2
- WGYKZJWCGVVSQN-UHFFFAOYSA-N propylamine Chemical compound CCCN WGYKZJWCGVVSQN-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 2
- 238000000746 purification Methods 0.000 description 2
- 230000009467 reduction Effects 0.000 description 2
- 229920005989 resin Polymers 0.000 description 2
- 239000011347 resin Substances 0.000 description 2
- 238000005096 rolling process Methods 0.000 description 2
- 150000003335 secondary amines Chemical class 0.000 description 2
- 239000011734 sodium Substances 0.000 description 2
- 229910052708 sodium Inorganic materials 0.000 description 2
- SZHIIIPPJJXYRY-UHFFFAOYSA-M sodium;2-methylprop-2-ene-1-sulfonate Chemical compound [Na+].CC(=C)CS([O-])(=O)=O SZHIIIPPJJXYRY-UHFFFAOYSA-M 0.000 description 2
- 125000000542 sulfonic acid group Chemical group 0.000 description 2
- 210000003437 trachea Anatomy 0.000 description 2
- 230000001960 triggered effect Effects 0.000 description 2
- GETQZCLCWQTVFV-UHFFFAOYSA-N trimethylamine Chemical compound CN(C)C GETQZCLCWQTVFV-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 2
- 102000003390 tumor necrosis factor Human genes 0.000 description 2
- BGSZAXLLHYERSY-XQIGCQGXSA-N vecuronium Chemical compound N1([C@@H]2[C@@H](OC(C)=O)C[C@@H]3CC[C@H]4[C@@H]5C[C@@H]([C@@H]([C@]5(CC[C@@H]4[C@@]3(C)C2)C)OC(=O)C)[N+]2(C)CCCCC2)CCCCC1 BGSZAXLLHYERSY-XQIGCQGXSA-N 0.000 description 2
- 229960003819 vecuronium Drugs 0.000 description 2
- PUPZLCDOIYMWBV-UHFFFAOYSA-N (+/-)-1,3-Butanediol Chemical compound CC(O)CCO PUPZLCDOIYMWBV-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 1
- XINQFOMFQFGGCQ-UHFFFAOYSA-L (2-dodecoxy-2-oxoethyl)-[6-[(2-dodecoxy-2-oxoethyl)-dimethylazaniumyl]hexyl]-dimethylazanium;dichloride Chemical compound [Cl-].[Cl-].CCCCCCCCCCCCOC(=O)C[N+](C)(C)CCCCCC[N+](C)(C)CC(=O)OCCCCCCCCCCCC XINQFOMFQFGGCQ-UHFFFAOYSA-L 0.000 description 1
- NOHQUGRVHSJYMR-UHFFFAOYSA-N 1-chloro-2-isocyanatobenzene Chemical compound ClC1=CC=CC=C1N=C=O NOHQUGRVHSJYMR-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 1
- ADAKRBAJFHTIEW-UHFFFAOYSA-N 1-chloro-4-isocyanatobenzene Chemical compound ClC1=CC=C(N=C=O)C=C1 ADAKRBAJFHTIEW-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 1
- BMVXCPBXGZKUPN-UHFFFAOYSA-N 1-hexanamine Chemical compound CCCCCCN BMVXCPBXGZKUPN-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 1
- ICSNLGPSRYBMBD-UHFFFAOYSA-N 2-aminopyridine Chemical compound NC1=CC=CC=N1 ICSNLGPSRYBMBD-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 1
- BPGIOCZAQDIBPI-UHFFFAOYSA-N 2-ethoxyethanamine Chemical compound CCOCCN BPGIOCZAQDIBPI-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 1
- MMINFSMURORWKH-UHFFFAOYSA-N 3,6-dioxabicyclo[6.2.2]dodeca-1(10),8,11-triene-2,7-dione Chemical group O=C1OCCOC(=O)C2=CC=C1C=C2 MMINFSMURORWKH-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 1
- ZAJAQTYSTDTMCU-UHFFFAOYSA-N 3-aminobenzenesulfonic acid Chemical compound NC1=CC=CC(S(O)(=O)=O)=C1 ZAJAQTYSTDTMCU-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 1
- KDHWOCLBMVSZPG-UHFFFAOYSA-N 3-imidazol-1-ylpropan-1-amine Chemical compound NCCCN1C=CN=C1 KDHWOCLBMVSZPG-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 1
- CNPURSDMOWDNOQ-UHFFFAOYSA-N 4-methoxy-7h-pyrrolo[2,3-d]pyrimidin-2-amine Chemical compound COC1=NC(N)=NC2=C1C=CN2 CNPURSDMOWDNOQ-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 1
- 101100030424 Bombyx mori PPAE gene Proteins 0.000 description 1
- 108091003079 Bovine Serum Albumin Proteins 0.000 description 1
- VEXZGXHMUGYJMC-UHFFFAOYSA-M Chloride anion Chemical compound [Cl-] VEXZGXHMUGYJMC-UHFFFAOYSA-M 0.000 description 1
- 229920001634 Copolyester Polymers 0.000 description 1
- 208000004232 Enteritis Diseases 0.000 description 1
- 102000003951 Erythropoietin Human genes 0.000 description 1
- 108090000394 Erythropoietin Proteins 0.000 description 1
- VGGSQFUCUMXWEO-UHFFFAOYSA-N Ethene Chemical compound C=C VGGSQFUCUMXWEO-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 1
- IMROMDMJAWUWLK-UHFFFAOYSA-N Ethenol Chemical compound OC=C IMROMDMJAWUWLK-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 1
- JOYRKODLDBILNP-UHFFFAOYSA-N Ethyl urethane Chemical compound CCOC(N)=O JOYRKODLDBILNP-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 1
- 239000005977 Ethylene Substances 0.000 description 1
- VTLYFUHAOXGGBS-UHFFFAOYSA-N Fe3+ Chemical class [Fe+3] VTLYFUHAOXGGBS-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 1
- 238000005727 Friedel-Crafts reaction Methods 0.000 description 1
- WQZGKKKJIJFFOK-GASJEMHNSA-N Glucose Natural products OC[C@H]1OC(O)[C@H](O)[C@@H](O)[C@@H]1O WQZGKKKJIJFFOK-GASJEMHNSA-N 0.000 description 1
- HTTJABKRGRZYRN-UHFFFAOYSA-N Heparin Chemical compound OC1C(NC(=O)C)C(O)OC(COS(O)(=O)=O)C1OC1C(OS(O)(=O)=O)C(O)C(OC2C(C(OS(O)(=O)=O)C(OC3C(C(O)C(O)C(O3)C(O)=O)OS(O)(=O)=O)C(CO)O2)NS(O)(=O)=O)C(C(O)=O)O1 HTTJABKRGRZYRN-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 1
- WJYIASZWHGOTOU-UHFFFAOYSA-N Heptylamine Chemical compound CCCCCCCN WJYIASZWHGOTOU-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 1
- 102100037907 High mobility group protein B1 Human genes 0.000 description 1
- 101001025337 Homo sapiens High mobility group protein B1 Proteins 0.000 description 1
- 201000003838 Idiopathic interstitial pneumonia Diseases 0.000 description 1
- 206010061218 Inflammation Diseases 0.000 description 1
- 102000014150 Interferons Human genes 0.000 description 1
- 108010050904 Interferons Proteins 0.000 description 1
- 102000000589 Interleukin-1 Human genes 0.000 description 1
- 108010002352 Interleukin-1 Proteins 0.000 description 1
- 102000003812 Interleukin-15 Human genes 0.000 description 1
- 108090000172 Interleukin-15 Proteins 0.000 description 1
- 229910021578 Iron(III) chloride Inorganic materials 0.000 description 1
- OWIKHYCFFJSOEH-UHFFFAOYSA-N Isocyanic acid Chemical group N=C=O OWIKHYCFFJSOEH-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 1
- 102000014962 Monocyte Chemoattractant Proteins Human genes 0.000 description 1
- 108010064136 Monocyte Chemoattractant Proteins Proteins 0.000 description 1
- 206010028980 Neoplasm Diseases 0.000 description 1
- GRYLNZFGIOXLOG-UHFFFAOYSA-N Nitric acid Chemical compound O[N+]([O-])=O GRYLNZFGIOXLOG-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 1
- CTQNGGLPUBDAKN-UHFFFAOYSA-N O-Xylene Chemical compound CC1=CC=CC=C1C CTQNGGLPUBDAKN-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 1
- 206010033647 Pancreatitis acute Diseases 0.000 description 1
- 206010057249 Phagocytosis Diseases 0.000 description 1
- 229920002873 Polyethylenimine Polymers 0.000 description 1
- 239000004372 Polyvinyl alcohol Substances 0.000 description 1
- 206010063837 Reperfusion injury Diseases 0.000 description 1
- 229920006328 Styrofoam Polymers 0.000 description 1
- 238000005411 Van der Waals force Methods 0.000 description 1
- 235000010724 Wisteria floribunda Nutrition 0.000 description 1
- 210000001015 abdomen Anatomy 0.000 description 1
- IKHGUXGNUITLKF-XPULMUKRSA-N acetaldehyde Chemical compound [14CH]([14CH3])=O IKHGUXGNUITLKF-XPULMUKRSA-N 0.000 description 1
- AVKFYMCRAOFHOC-YZJMRIMCSA-N acetic acid (2R,3S,4R,5R)-2,3,4,5,6-pentahydroxyhexanal Chemical compound CC(O)=O.CC(O)=O.CC(O)=O.OC[C@@H](O)[C@@H](O)[C@H](O)[C@@H](O)C=O AVKFYMCRAOFHOC-YZJMRIMCSA-N 0.000 description 1
- 125000004018 acid anhydride group Chemical group 0.000 description 1
- 238000002479 acid--base titration Methods 0.000 description 1
- 230000004913 activation Effects 0.000 description 1
- 201000003229 acute pancreatitis Diseases 0.000 description 1
- 238000004220 aggregation Methods 0.000 description 1
- 230000002776 aggregation Effects 0.000 description 1
- 229910052782 aluminium Inorganic materials 0.000 description 1
- REDXJYDRNCIFBQ-UHFFFAOYSA-N aluminium(3+) Chemical class [Al+3] REDXJYDRNCIFBQ-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 1
- 150000001408 amides Chemical class 0.000 description 1
- 125000000129 anionic group Chemical group 0.000 description 1
- 239000000427 antigen Substances 0.000 description 1
- 108091007433 antigens Proteins 0.000 description 1
- 102000036639 antigens Human genes 0.000 description 1
- 125000004429 atom Chemical group 0.000 description 1
- WQZGKKKJIJFFOK-VFUOTHLCSA-N beta-D-glucose Chemical compound OC[C@H]1O[C@@H](O)[C@H](O)[C@@H](O)[C@@H]1O WQZGKKKJIJFFOK-VFUOTHLCSA-N 0.000 description 1
- 239000000090 biomarker Substances 0.000 description 1
- 230000000903 blocking effect Effects 0.000 description 1
- 230000017531 blood circulation Effects 0.000 description 1
- 201000001383 blood group incompatibility Diseases 0.000 description 1
- 210000004204 blood vessel Anatomy 0.000 description 1
- 210000001124 body fluid Anatomy 0.000 description 1
- 239000010839 body fluid Substances 0.000 description 1
- 230000036760 body temperature Effects 0.000 description 1
- 230000037396 body weight Effects 0.000 description 1
- 238000004364 calculation method Methods 0.000 description 1
- 210000001715 carotid artery Anatomy 0.000 description 1
- 125000002091 cationic group Chemical group 0.000 description 1
- 230000021164 cell adhesion Effects 0.000 description 1
- 229920002678 cellulose Polymers 0.000 description 1
- 239000001913 cellulose Substances 0.000 description 1
- 230000008859 change Effects 0.000 description 1
- 239000003153 chemical reaction reagent Substances 0.000 description 1
- 239000005482 chemotactic factor Substances 0.000 description 1
- 239000000460 chlorine Substances 0.000 description 1
- 229910052801 chlorine Inorganic materials 0.000 description 1
- BCUPGIHTCQJCSI-UHFFFAOYSA-N chloromethanol Chemical compound OCCl BCUPGIHTCQJCSI-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 1
- 208000003167 cholangitis Diseases 0.000 description 1
- 201000001352 cholecystitis Diseases 0.000 description 1
- 238000012790 confirmation Methods 0.000 description 1
- 238000007334 copolymerization reaction Methods 0.000 description 1
- 238000004132 cross linking Methods 0.000 description 1
- 230000018044 dehydration Effects 0.000 description 1
- 238000006297 dehydration reaction Methods 0.000 description 1
- 238000011161 development Methods 0.000 description 1
- 238000007865 diluting Methods 0.000 description 1
- VONWDASPFIQPDY-UHFFFAOYSA-N dimethyl methylphosphonate Chemical compound COP(C)(=O)OC VONWDASPFIQPDY-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 1
- 231100000676 disease causative agent Toxicity 0.000 description 1
- 239000005446 dissolved organic matter Substances 0.000 description 1
- JRBPAEWTRLWTQC-UHFFFAOYSA-N dodecylamine Chemical compound CCCCCCCCCCCCN JRBPAEWTRLWTQC-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 1
- 239000003814 drug Substances 0.000 description 1
- 238000001035 drying Methods 0.000 description 1
- 230000009881 electrostatic interaction Effects 0.000 description 1
- 230000002708 enhancing effect Effects 0.000 description 1
- 210000003979 eosinophil Anatomy 0.000 description 1
- 125000003700 epoxy group Chemical group 0.000 description 1
- 210000003743 erythrocyte Anatomy 0.000 description 1
- 229940105423 erythropoietin Drugs 0.000 description 1
- 238000005530 etching Methods 0.000 description 1
- RTZKZFJDLAIYFH-UHFFFAOYSA-N ether Substances CCOCC RTZKZFJDLAIYFH-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 1
- 125000001495 ethyl group Chemical group [H]C([H])([H])C([H])([H])* 0.000 description 1
- 239000003925 fat Substances 0.000 description 1
- 238000011049 filling Methods 0.000 description 1
- 238000000684 flow cytometry Methods 0.000 description 1
- 239000011888 foil Substances 0.000 description 1
- 230000008014 freezing Effects 0.000 description 1
- 238000007710 freezing Methods 0.000 description 1
- 230000009477 glass transition Effects 0.000 description 1
- 239000008103 glucose Substances 0.000 description 1
- 230000005484 gravity Effects 0.000 description 1
- 125000005179 haloacetyl group Chemical group 0.000 description 1
- 125000005252 haloacyl group Chemical group 0.000 description 1
- 125000004969 haloethyl group Chemical group 0.000 description 1
- 125000004970 halomethyl group Chemical group 0.000 description 1
- 229920000669 heparin Polymers 0.000 description 1
- 229960002897 heparin Drugs 0.000 description 1
- 150000002391 heterocyclic compounds Chemical group 0.000 description 1
- 239000001257 hydrogen Substances 0.000 description 1
- 229910052739 hydrogen Inorganic materials 0.000 description 1
- 230000007062 hydrolysis Effects 0.000 description 1
- 238000006460 hydrolysis reaction Methods 0.000 description 1
- 230000002209 hydrophobic effect Effects 0.000 description 1
- 230000003100 immobilizing effect Effects 0.000 description 1
- 210000002865 immune cell Anatomy 0.000 description 1
- 230000006698 induction Effects 0.000 description 1
- 208000015181 infectious disease Diseases 0.000 description 1
- 230000004054 inflammatory process Effects 0.000 description 1
- 238000002347 injection Methods 0.000 description 1
- 239000007924 injection Substances 0.000 description 1
- 208000014674 injury Diseases 0.000 description 1
- 229940079322 interferon Drugs 0.000 description 1
- 229940096397 interleukin-8 Drugs 0.000 description 1
- XKTZWUACRZHVAN-VADRZIEHSA-N interleukin-8 Chemical compound C([C@H](NC(=O)[C@H](CC(O)=O)NC(=O)[C@H](CC=1C2=CC=CC=C2NC=1)NC(=O)[C@@H](NC(C)=O)CCSC)C(=O)N[C@@H](CC(O)=O)C(=O)N[C@@H](CC(O)=O)C(=O)N[C@@H](CC(C)C)C(=O)N[C@@H](CC(N)=O)C(=O)N[C@@H](CC=1C=CC=CC=1)C(=O)N[C@@H]([C@@H](C)O)C(=O)NCC(=O)N[C@@H](CCSC)C(=O)N1[C@H](CCC1)C(=O)N1[C@H](CCC1)C(=O)N[C@@H](C)C(=O)N[C@H](CC(O)=O)C(=O)N[C@H](CCC(O)=O)C(=O)N[C@H](CC(O)=O)C(=O)N[C@H](CC=1C=CC(O)=CC=1)C(=O)N[C@H](CO)C(=O)N1[C@H](CCC1)C(N)=O)C1=CC=CC=C1 XKTZWUACRZHVAN-VADRZIEHSA-N 0.000 description 1
- 238000001990 intravenous administration Methods 0.000 description 1
- 238000010253 intravenous injection Methods 0.000 description 1
- RBTARNINKXHZNM-UHFFFAOYSA-K iron trichloride Chemical compound Cl[Fe](Cl)Cl RBTARNINKXHZNM-UHFFFAOYSA-K 0.000 description 1
- 238000005304 joining Methods 0.000 description 1
- GKQPCPXONLDCMU-CCEZHUSRSA-N lacidipine Chemical compound CCOC(=O)C1=C(C)NC(C)=C(C(=O)OCC)C1C1=CC=CC=C1\C=C\C(=O)OC(C)(C)C GKQPCPXONLDCMU-CCEZHUSRSA-N 0.000 description 1
- 229960004194 lidocaine Drugs 0.000 description 1
- 238000012538 light obscuration Methods 0.000 description 1
- 230000007246 mechanism Effects 0.000 description 1
- 125000002496 methyl group Chemical group [H]C([H])([H])* 0.000 description 1
- JUHDUIDUEUEQND-UHFFFAOYSA-N methylium Chemical compound [CH3+] JUHDUIDUEUEQND-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 1
- 244000005700 microbiome Species 0.000 description 1
- 238000006011 modification reaction Methods 0.000 description 1
- 238000000465 moulding Methods 0.000 description 1
- 201000006417 multiple sclerosis Diseases 0.000 description 1
- HYSQEYLBJYFNMH-UHFFFAOYSA-N n'-(2-aminoethyl)-n'-methylethane-1,2-diamine Chemical compound NCCN(C)CCN HYSQEYLBJYFNMH-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 1
- DAZXVJBJRMWXJP-UHFFFAOYSA-N n,n-dimethylethylamine Chemical compound CCN(C)C DAZXVJBJRMWXJP-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 1
- QMHNQZGXPNCMCO-UHFFFAOYSA-N n,n-dimethylhexan-1-amine Chemical compound CCCCCCN(C)C QMHNQZGXPNCMCO-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 1
- DAKZISABEDGGSV-UHFFFAOYSA-N n-(2-aminoethyl)acetamide Chemical compound CC(=O)NCCN DAKZISABEDGGSV-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 1
- DYFFAVRFJWYYQO-UHFFFAOYSA-N n-methyl-n-phenylaniline Chemical compound C=1C=CC=CC=1N(C)C1=CC=CC=C1 DYFFAVRFJWYYQO-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 1
- XJINZNWPEQMMBV-UHFFFAOYSA-N n-methylhexan-1-amine Chemical compound CCCCCCNC XJINZNWPEQMMBV-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 1
- 210000000440 neutrophil Anatomy 0.000 description 1
- 229910017604 nitric acid Inorganic materials 0.000 description 1
- 239000012299 nitrogen atmosphere Substances 0.000 description 1
- 239000004745 nonwoven fabric Substances 0.000 description 1
- IOQPZZOEVPZRBK-UHFFFAOYSA-N octan-1-amine Chemical compound CCCCCCCCN IOQPZZOEVPZRBK-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 1
- 239000003921 oil Substances 0.000 description 1
- 150000002894 organic compounds Chemical class 0.000 description 1
- 150000002926 oxygen Chemical class 0.000 description 1
- 238000001139 pH measurement Methods 0.000 description 1
- 230000000242 pagocytic effect Effects 0.000 description 1
- QNGNSVIICDLXHT-UHFFFAOYSA-N para-ethylbenzaldehyde Natural products CCC1=CC=C(C=O)C=C1 QNGNSVIICDLXHT-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 1
- 230000007170 pathology Effects 0.000 description 1
- 229940100684 pentylamine Drugs 0.000 description 1
- 230000010412 perfusion Effects 0.000 description 1
- 230000002093 peripheral effect Effects 0.000 description 1
- 230000008782 phagocytosis Effects 0.000 description 1
- 239000000049 pigment Substances 0.000 description 1
- 229920001748 polybutylene Polymers 0.000 description 1
- 229920001707 polybutylene terephthalate Polymers 0.000 description 1
- 229920000728 polyester Polymers 0.000 description 1
- 229920001296 polysiloxane Polymers 0.000 description 1
- 229920002451 polyvinyl alcohol Polymers 0.000 description 1
- 229920006216 polyvinyl aromatic Polymers 0.000 description 1
- OXCMYAYHXIHQOA-UHFFFAOYSA-N potassium;[2-butyl-5-chloro-3-[[4-[2-(1,2,4-triaza-3-azanidacyclopenta-1,4-dien-5-yl)phenyl]phenyl]methyl]imidazol-4-yl]methanol Chemical compound [K+].CCCCC1=NC(Cl)=C(CO)N1CC1=CC=C(C=2C(=CC=CC=2)C2=N[N-]N=N2)C=C1 OXCMYAYHXIHQOA-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 1
- 239000000843 powder Substances 0.000 description 1
- 230000037452 priming Effects 0.000 description 1
- 230000001105 regulatory effect Effects 0.000 description 1
- 206010048628 rheumatoid vasculitis Diseases 0.000 description 1
- 238000007789 sealing Methods 0.000 description 1
- 208000013223 septicemia Diseases 0.000 description 1
- 210000002966 serum Anatomy 0.000 description 1
- URGAHOPLAPQHLN-UHFFFAOYSA-N sodium aluminosilicate Chemical class [Na+].[Al+3].[O-][Si]([O-])=O.[O-][Si]([O-])=O URGAHOPLAPQHLN-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 1
- QOOLLUNRNXQIQF-UHFFFAOYSA-N sodium;5-sulfobenzene-1,3-dicarboxylic acid Chemical compound [Na].OC(=O)C1=CC(C(O)=O)=CC(S(O)(=O)=O)=C1 QOOLLUNRNXQIQF-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 1
- 239000010935 stainless steel Substances 0.000 description 1
- 229910001220 stainless steel Inorganic materials 0.000 description 1
- 230000035882 stress Effects 0.000 description 1
- 239000008261 styrofoam Substances 0.000 description 1
- 238000010254 subcutaneous injection Methods 0.000 description 1
- 239000007929 subcutaneous injection Substances 0.000 description 1
- 201000000596 systemic lupus erythematosus Diseases 0.000 description 1
- 239000013076 target substance Substances 0.000 description 1
- KKEYFWRCBNTPAC-UHFFFAOYSA-L terephthalate(2-) Chemical compound [O-]C(=O)C1=CC=C(C([O-])=O)C=C1 KKEYFWRCBNTPAC-UHFFFAOYSA-L 0.000 description 1
- 150000003512 tertiary amines Chemical class 0.000 description 1
- 229920001169 thermoplastic Polymers 0.000 description 1
- 239000004416 thermosoftening plastic Substances 0.000 description 1
- 238000004448 titration Methods 0.000 description 1
- 239000003053 toxin Substances 0.000 description 1
- 231100000765 toxin Toxicity 0.000 description 1
- 108700012359 toxins Proteins 0.000 description 1
- 238000012546 transfer Methods 0.000 description 1
- 230000008733 trauma Effects 0.000 description 1
- MBYLVOKEDDQJDY-UHFFFAOYSA-N tris(2-aminoethyl)amine Chemical compound NCCN(CCN)CCN MBYLVOKEDDQJDY-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 1
- 210000001170 unmyelinated nerve fiber Anatomy 0.000 description 1
- 238000011144 upstream manufacturing Methods 0.000 description 1
- 239000011800 void material Substances 0.000 description 1
- 238000005406 washing Methods 0.000 description 1
- 239000002699 waste material Substances 0.000 description 1
- 239000008215 water for injection Substances 0.000 description 1
- 238000004804 winding Methods 0.000 description 1
- 239000002759 woven fabric Substances 0.000 description 1
- 239000008096 xylene Substances 0.000 description 1
- 229940072358 xylocaine Drugs 0.000 description 1
Classifications
-
- B—PERFORMING OPERATIONS; TRANSPORTING
- B01—PHYSICAL OR CHEMICAL PROCESSES OR APPARATUS IN GENERAL
- B01J—CHEMICAL OR PHYSICAL PROCESSES, e.g. CATALYSIS OR COLLOID CHEMISTRY; THEIR RELEVANT APPARATUS
- B01J20/00—Solid sorbent compositions or filter aid compositions; Sorbents for chromatography; Processes for preparing, regenerating or reactivating thereof
- B01J20/28—Solid sorbent compositions or filter aid compositions; Sorbents for chromatography; Processes for preparing, regenerating or reactivating thereof characterised by their form or physical properties
- B01J20/28014—Solid sorbent compositions or filter aid compositions; Sorbents for chromatography; Processes for preparing, regenerating or reactivating thereof characterised by their form or physical properties characterised by their form
- B01J20/28023—Fibres or filaments
-
- A—HUMAN NECESSITIES
- A61—MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
- A61M—DEVICES FOR INTRODUCING MEDIA INTO, OR ONTO, THE BODY; DEVICES FOR TRANSDUCING BODY MEDIA OR FOR TAKING MEDIA FROM THE BODY; DEVICES FOR PRODUCING OR ENDING SLEEP OR STUPOR
- A61M1/00—Suction or pumping devices for medical purposes; Devices for carrying-off, for treatment of, or for carrying-over, body-liquids; Drainage systems
- A61M1/36—Other treatment of blood in a by-pass of the natural circulatory system, e.g. temperature adaptation, irradiation ; Extra-corporeal blood circuits
-
- B—PERFORMING OPERATIONS; TRANSPORTING
- B01—PHYSICAL OR CHEMICAL PROCESSES OR APPARATUS IN GENERAL
- B01D—SEPARATION
- B01D15/00—Separating processes involving the treatment of liquids with solid sorbents; Apparatus therefor
-
- B—PERFORMING OPERATIONS; TRANSPORTING
- B01—PHYSICAL OR CHEMICAL PROCESSES OR APPARATUS IN GENERAL
- B01J—CHEMICAL OR PHYSICAL PROCESSES, e.g. CATALYSIS OR COLLOID CHEMISTRY; THEIR RELEVANT APPARATUS
- B01J20/00—Solid sorbent compositions or filter aid compositions; Sorbents for chromatography; Processes for preparing, regenerating or reactivating thereof
- B01J20/22—Solid sorbent compositions or filter aid compositions; Sorbents for chromatography; Processes for preparing, regenerating or reactivating thereof comprising organic material
- B01J20/26—Synthetic macromolecular compounds
- B01J20/261—Synthetic macromolecular compounds obtained by reactions only involving carbon to carbon unsaturated bonds
-
- B—PERFORMING OPERATIONS; TRANSPORTING
- B01—PHYSICAL OR CHEMICAL PROCESSES OR APPARATUS IN GENERAL
- B01J—CHEMICAL OR PHYSICAL PROCESSES, e.g. CATALYSIS OR COLLOID CHEMISTRY; THEIR RELEVANT APPARATUS
- B01J20/00—Solid sorbent compositions or filter aid compositions; Sorbents for chromatography; Processes for preparing, regenerating or reactivating thereof
- B01J20/28—Solid sorbent compositions or filter aid compositions; Sorbents for chromatography; Processes for preparing, regenerating or reactivating thereof characterised by their form or physical properties
- B01J20/28054—Solid sorbent compositions or filter aid compositions; Sorbents for chromatography; Processes for preparing, regenerating or reactivating thereof characterised by their form or physical properties characterised by their surface properties or porosity
- B01J20/28069—Pore volume, e.g. total pore volume, mesopore volume, micropore volume
- B01J20/28071—Pore volume, e.g. total pore volume, mesopore volume, micropore volume being less than 0.5 ml/g
-
- B—PERFORMING OPERATIONS; TRANSPORTING
- B01—PHYSICAL OR CHEMICAL PROCESSES OR APPARATUS IN GENERAL
- B01J—CHEMICAL OR PHYSICAL PROCESSES, e.g. CATALYSIS OR COLLOID CHEMISTRY; THEIR RELEVANT APPARATUS
- B01J20/00—Solid sorbent compositions or filter aid compositions; Sorbents for chromatography; Processes for preparing, regenerating or reactivating thereof
- B01J20/28—Solid sorbent compositions or filter aid compositions; Sorbents for chromatography; Processes for preparing, regenerating or reactivating thereof characterised by their form or physical properties
- B01J20/28054—Solid sorbent compositions or filter aid compositions; Sorbents for chromatography; Processes for preparing, regenerating or reactivating thereof characterised by their form or physical properties characterised by their surface properties or porosity
- B01J20/28069—Pore volume, e.g. total pore volume, mesopore volume, micropore volume
- B01J20/28073—Pore volume, e.g. total pore volume, mesopore volume, micropore volume being in the range 0.5-1.0 ml/g
-
- B—PERFORMING OPERATIONS; TRANSPORTING
- B01—PHYSICAL OR CHEMICAL PROCESSES OR APPARATUS IN GENERAL
- B01J—CHEMICAL OR PHYSICAL PROCESSES, e.g. CATALYSIS OR COLLOID CHEMISTRY; THEIR RELEVANT APPARATUS
- B01J20/00—Solid sorbent compositions or filter aid compositions; Sorbents for chromatography; Processes for preparing, regenerating or reactivating thereof
- B01J20/30—Processes for preparing, regenerating, or reactivating
- B01J20/3007—Moulding, shaping or extruding
-
- B—PERFORMING OPERATIONS; TRANSPORTING
- B01—PHYSICAL OR CHEMICAL PROCESSES OR APPARATUS IN GENERAL
- B01J—CHEMICAL OR PHYSICAL PROCESSES, e.g. CATALYSIS OR COLLOID CHEMISTRY; THEIR RELEVANT APPARATUS
- B01J20/00—Solid sorbent compositions or filter aid compositions; Sorbents for chromatography; Processes for preparing, regenerating or reactivating thereof
- B01J20/30—Processes for preparing, regenerating, or reactivating
- B01J20/3085—Chemical treatments not covered by groups B01J20/3007 - B01J20/3078
-
- B—PERFORMING OPERATIONS; TRANSPORTING
- B01—PHYSICAL OR CHEMICAL PROCESSES OR APPARATUS IN GENERAL
- B01J—CHEMICAL OR PHYSICAL PROCESSES, e.g. CATALYSIS OR COLLOID CHEMISTRY; THEIR RELEVANT APPARATUS
- B01J20/00—Solid sorbent compositions or filter aid compositions; Sorbents for chromatography; Processes for preparing, regenerating or reactivating thereof
- B01J20/30—Processes for preparing, regenerating, or reactivating
- B01J20/3092—Packing of a container, e.g. packing a cartridge or column
-
- D—TEXTILES; PAPER
- D01—NATURAL OR MAN-MADE THREADS OR FIBRES; SPINNING
- D01F—CHEMICAL FEATURES IN THE MANUFACTURE OF ARTIFICIAL FILAMENTS, THREADS, FIBRES, BRISTLES OR RIBBONS; APPARATUS SPECIALLY ADAPTED FOR THE MANUFACTURE OF CARBON FILAMENTS
- D01F8/00—Conjugated, i.e. bi- or multicomponent, artificial filaments or the like; Manufacture thereof
- D01F8/04—Conjugated, i.e. bi- or multicomponent, artificial filaments or the like; Manufacture thereof from synthetic polymers
- D01F8/06—Conjugated, i.e. bi- or multicomponent, artificial filaments or the like; Manufacture thereof from synthetic polymers with at least one polyolefin as constituent
-
- G—PHYSICS
- G01—MEASURING; TESTING
- G01N—INVESTIGATING OR ANALYSING MATERIALS BY DETERMINING THEIR CHEMICAL OR PHYSICAL PROPERTIES
- G01N30/00—Investigating or analysing materials by separation into components using adsorption, absorption or similar phenomena or using ion-exchange, e.g. chromatography or field flow fractionation
-
- A—HUMAN NECESSITIES
- A61—MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
- A61M—DEVICES FOR INTRODUCING MEDIA INTO, OR ONTO, THE BODY; DEVICES FOR TRANSDUCING BODY MEDIA OR FOR TAKING MEDIA FROM THE BODY; DEVICES FOR PRODUCING OR ENDING SLEEP OR STUPOR
- A61M1/00—Suction or pumping devices for medical purposes; Devices for carrying-off, for treatment of, or for carrying-over, body-liquids; Drainage systems
- A61M1/36—Other treatment of blood in a by-pass of the natural circulatory system, e.g. temperature adaptation, irradiation ; Extra-corporeal blood circuits
- A61M1/3679—Other treatment of blood in a by-pass of the natural circulatory system, e.g. temperature adaptation, irradiation ; Extra-corporeal blood circuits by absorption
-
- B—PERFORMING OPERATIONS; TRANSPORTING
- B01—PHYSICAL OR CHEMICAL PROCESSES OR APPARATUS IN GENERAL
- B01D—SEPARATION
- B01D15/00—Separating processes involving the treatment of liquids with solid sorbents; Apparatus therefor
- B01D15/08—Selective adsorption, e.g. chromatography
- B01D15/10—Selective adsorption, e.g. chromatography characterised by constructional or operational features
- B01D15/20—Selective adsorption, e.g. chromatography characterised by constructional or operational features relating to the conditioning of the sorbent material
Landscapes
- Chemical & Material Sciences (AREA)
- Analytical Chemistry (AREA)
- Chemical Kinetics & Catalysis (AREA)
- Organic Chemistry (AREA)
- Health & Medical Sciences (AREA)
- Engineering & Computer Science (AREA)
- General Chemical & Material Sciences (AREA)
- Textile Engineering (AREA)
- Heart & Thoracic Surgery (AREA)
- Life Sciences & Earth Sciences (AREA)
- Vascular Medicine (AREA)
- General Health & Medical Sciences (AREA)
- Pathology (AREA)
- Biomedical Technology (AREA)
- General Physics & Mathematics (AREA)
- Cardiology (AREA)
- Biochemistry (AREA)
- Physics & Mathematics (AREA)
- Anesthesiology (AREA)
- Immunology (AREA)
- Hematology (AREA)
- Animal Behavior & Ethology (AREA)
- Public Health (AREA)
- Veterinary Medicine (AREA)
- Solid-Sorbent Or Filter-Aiding Compositions (AREA)
- External Artificial Organs (AREA)
- Multicomponent Fibers (AREA)
- Treatment Of Liquids With Adsorbents In General (AREA)
Abstract
Un objeto de la presente invención es proporcionar un vehículo para adsorber materia orgánica, que logre tanto la capacidad de adsorción de materia orgánica como la supresión del aumento de presión. La presente invención proporciona un vehículo para adsorber materia orgánica, que comprende una fibra compuesta sólida de tipo isla marina, en el que el volumen de poro es de 0,05 a 0,5 cm 3 /gy el diámetro de la fibra es de 25 a 60 μm. (Traducción automática con Google Translate, sin valor legal)
Description
d e s c r ip c ió n
Soporte para adsorber materia orgánica
Campo técnico
La presente invención se refiere a un soporte para adsorber materia orgánica.
Técnica anterior
En Ios últimos años, se han desarrollado diversos soportes para adsorber materia orgánica y columnas compactadas con Ios soportes con el fin de separar y adsorber selectivamente una parte de Ios constituyentes de un líquido que contiene materia orgánica, particularmente un líquido que contiene componentes de la sangre. Entre ellos, las fibras que tienen una gran área superficial por unidad de peso (en lo sucesivo en el presente documento, área superficial específica) son útiles como soportes para adsorber materia orgánica y, por lo tanto, se han desarrollado soportes para adsorber materia orgánica que contienen diversas fibras.
El Documento de Patente 1 desvela una columna de circulación extracorpórea compactada con un adsorbente para una sustancia inmunosupresora tumoral, que adsorbe TGF-p latente. Se ha publicado que el área superficial específica del adsorbente compactado en la columna es preferentemente no inferior a 0,1 m2/g, más preferentemente no inferior a 1 m2/g.
El Documento de Patente 2 desvela un adsorbente desintoxicante en el que un grupo funcional que tiene un átomo de nitrógeno de unión a cloro y una molécula de polimixina se unen a un artículo moldeado de polímero de vinilo insoluble. Se considera que el adsorbente desintoxicante anterior es adecuado para la adsorción de endotoxinas, y se publica que el área superficial específica preferente del artículo moldeado de polímero de vinilo insoluble es no inferior a 0,01 y 100 m2/g o menos, más preferentemente no inferior a 0,05 y 10 m2/g o menos.
El Documento de Patente 3 desvela una estructura fibrosa para un tratamiento de componentes biológicos, que está hecho de fibras con un diámetro promedio de menos de 50 pm, en donde una parte de las fibras se pliega y un coeficiente de cambio en la amplitud de Ios pliegues es no inferior a 0,1. Se ha publicado que la estructura fibrosa anterior puede usarse adecuadamente para tratar componentes biológicos.
El Documento de Patente 4 desvela un adsorbente fibroso en el que un polímero reticulado compuesto principalmente por un compuesto aromático de vinilo se une a la superficie de una fibra de poliolefina mediante un enlace químico.
El Documento de Patente 5 desvela un método en el que se hincha una fibra compuesta de mar-isla que contiene un polímero de poli(vinilo aromático) que tiene una estructura reticulada como componente de mar y una poliolefina como componente de isla y además se añade una estructura reticulada para estabilizar el hinchamiento. Como la fibra, se desvela una fibra que tiene una estructura de macrorred y un área superficial de al menos 100 m2/g o más y el diámetro del filamento incrustado se desvela en el intervalo de aproximadamente 1 a aproximadamente 10 pm. Los Documentos de Patente 6 y 7 describen un adsorbente para sustancias inmunosupresoras, que puede adsorber una sustancia inmunosupresora directamente de un fluido corporal y que puede usarse para realizar una perfusión extracorpórea. Estos adsorbentes para sustancias inmunosupresoras incluyen un soporte insoluble en agua y un grupo amino hidrófilo inmovilizado a dicho soporte insoluble en agua.
El Documento de Patente 8 describe un material adsorbente que tiene una capacidad alta de adsorción de proteínas y un purificador de sangre que contiene el material adsorbente. El material de adsorción de proteínas comprende una relación dada de átomos de nitrógeno con respecto a todos Ios átomos de superficie y usa una fibra compuesta de tipo mar-isla.
Documentos de la técnica anterior
Documentos de patente
Documento de Patente 1: JP 4453395 B2
Documento de Patente 2: JP S60-209525 A
Documento de Patente 3: JP 5293599 B2
Documento de Patente 4: JP 2000-262894 A
Documento de Patente 5: JP H2-84545 A
Documento de Patente 6: US2011/240560
Documento de Patente 7: JP 2004248951
Documento de Patente 8: JP 2014207989
Sumario de la invención
Problema que debe resolver la invención
Con el fin de mejorar la eficiencia de adsorción del soporte para adsorber materia orgánica, es habitual añadir un ligando para reforzar la interacción de adsorción o para mejorar el área superficial específica del soporte. Por ejemplo, con el fin de mejorar el área superficial específica del soporte, se han utilizado convencionalmente fibras que tienen un diámetro de fibra pequeño. Sin embargo, en este caso, se descubrió que la presión en la columna aumentaba durante el paso de un líquido. Por lo tanto, se descubrió que, con el soporte convencional para adsorber materia orgánica, no fue posible conseguir tanto la capacidad de adsorción mejorada por la mejora del área superficial específica como la supresión del aumento de presión durante el paso del líquido.
Como premisa para presentar la capacidad de adsorción del soporte para adsorber materia orgánica, es necesario que el soporte para adsorber materia orgánica permita el paso estable de un líquido que contenga materia orgánica. Cuando la presión aumenta durante el paso del líquido, la cantidad de líquido que pasa se vuelve inestable y no puede controlarse la cantidad de adsorción de la sustancia que ha de adsorberse. Por lo tanto, la capacidad de adsorción inherente al soporte para adsorber materia orgánica no puede presentarse. Además, se considera que, cuando la presión aumenta notablemente, el paso del propio líquido no puede continuar. En particular, cuando se realiza la adsorción de un líquido que contiene componentes de la sangre, un aumento de presión provoca tensión de cizalla en el líquido que contiene componentes de la sangre. Como resultado, surge un problema de daño a los componentes de la sangre. Puesto que el aumento de presión se produce principalmente en la fase del paso de líquido a través del soporte para adsorber materia orgánica, es muy necesario que el soporte para adsorber materia orgánica tenga un riesgo reducido del aumento de presión, así como la capacidad de adsorción.
El Documento de Patente 1 desvela un área superficial específica requerida para presentar la capacidad del adsorbente. Sin embargo, el diámetro de fibra de las fibras utilizadas en los Ejemplos se estima, a partir del método de fabricación, en aproximadamente 4 a 5 pm, lo que plantea la preocupación de que pueda producirse un aumento de presión dependiendo del uso. La idea con respecto a la estructura de fibra y al diámetro de fibra, así como a los poros, para conseguir tanto la mejora de la capacidad de adsorción como la supresión del aumento de presión, no se desvela ni se sugiere.
El Documento de Patente 2 desvela el área superficial específica requerida para presentar la capacidad de un artículo moldeado de polímero de vinilo insoluble. Sin embargo, la técnica desvelada en el Documento de Patente 2 es la mejora de la capacidad de adsorción mediante el uso de un grupo funcional que tiene un átomo de nitrógeno básico y una molécula de polimixina como ligando, y no se describe la mejora de la capacidad de adsorción mediante el aumento del volumen de poro de las fibras. Además, la idea con respecto a la estructura de fibra y al diámetro de fibra, así como a los poros, para conseguir tanto la mejora de la capacidad de adsorción como la supresión del aumento de presión, no se desvela ni se sugiere.
El Documento de Patente 3 desvela la idea de suprimir el aumento de presión mediante el pliegue de las fibras. Sin embargo, puesto que la estructura de la fibra que contiene fibras plegadas tiene una densidad aparente reducida, disminuye la cantidad de compactación de la estructura de fibra que puede compactarse en la columna del mismo volumen. Como resultado, la capacidad de adsorción a medida que la columna baja y es necesario aumentar el volumen de la columna con el fin de conseguir una capacidad de adsorción alta. Cuando los componentes de la sangre son atravesados, con el fin de evitar un aumento de presión debido a la retención dentro de la columna, se requiere que el volumen de la columna sea lo más pequeño posible para acortar el tiempo de retención. Por lo tanto, se cree que es difícil conseguir tanto la supresión del aumento de presión como una capacidad de adsorción alta con la estructura de la fibra del Documento de Patente 3. Además, aunque se describe que el diámetro medio de las fibras debe ser inferior a 50 pm, solo se desvelan las fibras de 5 pm en los Ejemplos. Además, la idea con respecto a la estructura de fibra y al diámetro de fibra, así como a los poros, para conseguir tanto la mejora de la capacidad de adsorción como la supresión del aumento de presión, no se desvela ni se sugiere.
El Documento de Patente 4 desvela una técnica para mejorar el área superficial mediante la modificación de la superficie de una fibra de poliolefina con un polímero reticulado. Sin embargo, el adsorbente fibroso utilizado en los Ejemplos es un tejido no tejido que tiene un diámetro de fibra de 20 pm, lo que plantea la preocupación de que pueda producirse un aumento de presión dependiendo del uso. Además, la idea con respecto a la estructura de fibra y al diámetro de fibra, así como a los poros, para conseguir tanto la mejora de la capacidad de adsorción como la supresión del aumento de presión, no se desvela ni se sugiere.
El Documento de Patente 5 desvela una fibra que tiene un área superficial alta que se obtiene hinchando una fibra compuesta de mar-isla que tiene una estructura reticulada y añadiendo además una estructura reticulada para estabilizar la estructura hinchada. Sin embargo, esta técnica mejora el área superficial específica mediante la formación de una estructura de macrorred sobre la superficie de la fibra y no hay descripción sobre la mejora de la capacidad de adsorción mediante el aumento del volumen de poro. El objeto que ha de adsorberse en el Documento de Patente 5 es un gas, un vapor y similares. En los Ejemplos, la cantidad de adsorción al adsorbente de metilfosfonato de dimetilo que se colocó quieto en el fondo del desecador solo se evaluó con el tiempo. No hay ninguna divulgación específica con respecto al efecto de la supresión del aumento de presión en condiciones dinámicas, por ejemplo, cuando se hace pasar un líquido a través de la fibra. La idea con respecto a la estructura de fibra y al diámetro de
fibra, así como a Ios poros, para conseguir tanto la mejora de la capacidad de adsorción como la supresión del aumento de presión, no se desvela ni se sugiere.
Por lo tanto, se requiere el desarrollo de un soporte para adsorber materia orgánica, que consigue tanto la capacidad de adsorción como la supresión del aumento de presión.
Un objetivo de la presente invención es proporcionar un soporte para adsorber materia orgánica, que consiga tanto la capacidad de adsorción alta para materia orgánica como la supresión del aumento de presión.
Medios para resolver Ios problemas
Como resultado del estudio intensivo para resolver Ios problemas descritos anteriormente, Ios presentes inventores han descubierto que un soporte para adsorber materia orgánica que tiene un volumen de poro y un diámetro de fibra controlados cada uno en un intervalo apropiado puede adsorber materia orgánica con eficiencia alta y puede suprimir el aumento de presión de una columna cuando el soporte se compacta en la columna.
Es decir, la presente invención proporciona Ios siguientes puntos [1] a [6]
[1] Un soporte para adsorber materia orgánica, que comprende una fibra compuesta sólida de tipo mar-isla, que tiene un volumen de poro de 0,05 a 0,5 cm3/g y un diámetro de fibra de 25 a 60 pm, y en donde la distancia desde la superficie de dicha fibra compuesta sólida de tipo mar-isla hasta el componente de isla más externo en una sección transversal perpendicular a la dirección del eje de la fibra de dicha fibra compuesta sólida de tipo mar-isla es no inferior a 1 pm e inferior a 30 pm, y el diámetro de isla máximo del componente de isla de dicha fibra compuesta sólida de tipo mar-isla es de 0,1 a 2 pm.
[2] El soporte para adsorber materia orgánica, de acuerdo con el punto [1], que comprende un ligando que tiene un grupo funcional ácido o un grupo funcional básico sobre la superficie de la fibra compuesta sólida de tipo marisla anterior,
en donde el contenido del grupo funcional ácido anterior o del grupo funcional básico anterior es de 0,5 a 5,0 mmol por 1 g de peso seco de la fibra compuesta sólida de tipo mar-isla.
[3] El soporte para adsorber materia orgánica, de acuerdo con el punto [1] o [2], en donde el componente de mar de la fibra compuesta sólida de tipo mar-isla anterior se compone de una única resina termoplástica, y el componente de isla de la fibra compuesta sólida de tipo mar-isla anterior se compone de poliolefina.
[4] El soporte para adsorber materia orgánica, de acuerdo con uno cualquiera de Ios puntos [1] a [3], que es para adsorber y retirar componentes de la sangre.
[5] Una columna para adsorción, que comprende el soporte para adsorber materia orgánica, de acuerdo con uno cualquiera de Ios puntos [1] a [4].
[6] Una columna para adsorción, que comprende el soporte para adsorber materia orgánica, de acuerdo con uno cualquiera de Ios puntos [1] a [4], en donde la densidad de compactación del soporte anterior para adsorber materia orgánica es de 0,15 a 0,4o g/cm3
Efecto de la invención
El soporte para adsorber materia orgánica de la presente invención puede conseguir tanto una capacidad de adsorción alta para la materia orgánica como la supresión del aumento de presión. Por lo tanto, el soporte para adsorber materia orgánica puede usarse como soporte para el tratamiento de componentes biológicos, particularmente para el tratamiento de componentes de la sangre, en el campo médico.
Breve descripción de Ios dibujos
La Fig. 1 es una vista de una sección transversal perpendicular al eje de la fibra de una fibra compuesta sólida de tipo mar-isla de ejemplo.
La Fig. 2 es una vista de una sección transversal perpendicular al eje de la fibra de una fibra compuesta sólida de tipo mar-isla de ejemplo.
La Fig. 3 es una vista esquemática de un circuito y un dispositivo utilizados en un ensayo de medición de pérdida de presión.
Modo para realizar la invención
La presente invención se describirá ahora en detalle.
El soporte para adsorber materia orgánica de la presente invención se caracteriza por comprender una fibra compuesta sólida de tipo mar-isla que tiene un volumen de poro de 0,05 a 0,5 cm3/g y un diámetro de fibra de 25 a 60 pm, en donde la distancia desde la superficie de dicha fibra compuesta sólida de tipo mar-isla hasta el componente de isla más externo en una sección transversal perpendicular a la dirección del eje de la fibra de dicha fibra compuesta sólida de tipo mar-isla es no inferior a 1 pm e inferior a 30 pm, y el diámetro de isla máximo del componente de isla de dicha fibra compuesta sólida de tipo mar-isla es de 0,1 a 2 pm.
La "adsorción" significa un estado en el que determinadas sustancias se adhieren a un material y no pueden liberarse fácilmente del material. El principio de adsorción no se limita particularmente, pero, por ejemplo, la adsorción significa un estado de adhesión mediante una fuerza intermolecular tal como la interacción electrostática, la interacción hidrófoba, el enlace de hidrógeno y la fuerza de Van der Waals, y un estado de adhesión física tal como la adhesión celular y la fagocitosis de leucocitos.
La "materia orgánica" es una sustancia que contiene un compuesto orgánico, y su estructura química y física no están particularmente limitadas. Los ejemplos de la misma incluyen componentes biológicos tales como componentes de la sangre, componentes linfáticos, virus y bacterias, además de grasas y aceites, pigmentos y polímeros. La materia orgánica como objeto que ha de adsorberse por el soporte para adsorber materia orgánica de las presentes realizaciones no se limita particularmente. Los ejemplos preferentes como objetos que han de adsorberse incluyen componentes biológicos tales como componentes de la sangre, componentes linfáticos, virus y bacterias, que son, entre las materias orgánicas, más susceptibles de daño debido al aumento de presión. Los componentes de la sangre son más preferentes, y los componentes leucocitarios y las citocinas son además preferentes, especialmente en el caso del fin de tratar enfermedades inflamatorias.
El "soporte para adsorber materia orgánica" significa un soporte que tiene una capacidad de adsorber materia orgánica, y la presencia o ausencia de la capacidad de adsorber otras sustancias no se limita particularmente siempre que esté presente la capacidad de adsorber materia orgánica. El soporte para adsorber materia orgánica de acuerdo con las presentes realizaciones es preferentemente para adsorber y retirar componentes de la sangre.
El soporte para adsorber materia orgánica de acuerdo con las presentes realizaciones puede ser uno cualquiera que contenga una fibra compuesta sólida de tipo mar-isla, y puede ser una fibra compuesta sólida de tipo mar-isla sola o puede ser una fibra compuesta sólida de tipo mar-isla inmovilizada o mezclada con un material de refuerzo adecuado. La operación de la inmovilización o mezcla puede realizarse antes o después de que se procese el material para la forma.
La estructura química del material de refuerzo no se limita particularmente y los ejemplos de la misma incluyen homopolímeros que contienen como monómero un tipo cualquiera seleccionado entre el grupo que consiste en etilenglicol, butilenglicol, ácido tereftálico, un compuesto de vinilo aromático (por ejemplo, estireno, divinilbenceno), glucosa, triacetato de glucosa, vinilpirrolidona, alcohol vinílico, acrilonitrilo, metalilsulfonato de sodio, etileno, propileno, £-caprolactama y metacrilato de metilo, copolímeros que contienen como monómeros dos o más tipos seleccionados entre el grupo anterior, o mezclas obtenidas por combinación física de los homopolímeros descritos anteriormente, copolímeros y similares. En vista de la no inhibición de la adsorción por la fibra compuesta sólida de tipo mar-isla, el material de refuerzo descrito anteriormente es preferentemente un polímero que tiene como monómero un compuesto que no contiene ningún anillo aromático y/o grupo hidroxilo. Los ejemplos específicos del mismo incluyen homopolímeros que contienen como monómero un tipo cualquiera seleccionado entre el grupo que consiste en vinilpirrolidona, acrilonitrilo, metalilsulfonato de sodio, etileno, propileno, £-caprolactama y metacrilato de metilo, copolímeros que contienen como monómeros dos o más tipos seleccionados entre el grupo anterior, o mezclas obtenidas por combinación física de los homopolímeros y copolímeros descritos anteriormente. Entre éstos, es preferente un polímero que tenga etileno y/o polipropileno (por ejemplo, polietileno o polipropileno) como monómero.
Los "componentes de la sangre" se refieren a componentes que constituyen la sangre y los ejemplos de los mismos incluyen factores humorales de la sangre y células de la sangre. Los componentes de la sangre que han de ser adsorbidos por el soporte para adsorber materia orgánica de las presentes realizaciones no se limitan particularmente, pero entre los componentes de la sangre, los factores humorales de la sangre son adecuados como objetos que han de ser adsorbidos.
Los "factores humorales de la sangre" significan materia orgánica disuelta en la sangre. Los ejemplos específicos de los mismos incluyen urea, proteínas tales como p2-microglobulina, citocinas, IgE e IgG, y polisacáridos talaes como lipopolisacáridos (LPS). Entre éstos, son generalmente preferentes como objetos que han de adsorberse la urea, proteínas, tales como citocinas, y los polisacáridos, tales como LPS. Además, las citocinas son más preferentes como objetos que han de adsorberse con el fin de tratar enfermedades inflamatorias.
Las "citocinas" significan un grupo de proteínas que, a través de un estímulo tal como una infección o un traumatismo, se producen a partir de diversas células, tales como células inmunocompetentes, liberadas extracelularmente y dejadas actuar, y los ejemplos de citocinas incluyen interferón-a, interferón-p, interferón-y, interleucina-1 a interleucina-15, factor de necrosis tumoral a, factor de necrosis tumoral p, caja del grupo de alta movilidad 1, eritropoyetina o factores quimiotácticos de monocitos.
Las "células de la sangre" significan células contenidas en la sangre, y los ejemplos de células incluyen componentes leucocitarios, tales como granulocitos, monocitos, neutrófilos y eosinófilos; eritrocitos; y plaquetas. Los componentes leucocitarios son objetos preferentes que han de adsorberse con el fin de tratar enfermedades inflamatorias. Entre los leucocitos, son más preferentes los leucocitos activados o Ios complejos leucocito activado-plaqueta activada, y son particularmente preferentes Ios leucocitos activados y Ios complejos leucocito activado-plaqueta activada.
Los "leucocitos activados" significan leucocitos provocados por citocinas, LPS, y similares, para liberar citodnas, oxígeno activo o similares, y los ejemplos de leucocitos activados incluyen granulocitos activados y monocitos activados. El grado de activación puede determinarse midiendo la cantidad de oxígeno activado liberado por los leucocitos activados o midiendo la expresión de antígenos de superficie mediante citometría de flujo o similares. Los ejemplos de leucocitos activados incluyen granulocitos y monocitos activados.
Las "plaquetas activadas" significan plaquetas provocadas por citocinas, LPS, y similares, para liberar citocinas, oxígeno activo o similares.
Los "complejos de leucocito activado-plaqueta activada" no tienen limitaciones particulares en cuanto a los tipos de leucocitos, ya que son complejos en donde un leucocito activado y una plaqueta activada se unen entre sí para tener una actividad fagocítica en los tejidos propios y liberar citocinas, y los ejemplos de los mismos incluyen los complejos de granulocito activado-plaqueta activada y los complejos de monocito activado-plaqueta activada. Para el tratamiento de pacientes con una enfermedad inflamatoria, en particular, se considera necesario retirar los complejos de granulocito activado-plaqueta activada que se consideran directamente relacionados con la patología.
La "enfermedad inflamatoria" se refiere colectivamente a una enfermedad que inicia una reacción inflamatoria en el cuerpo. Los ejemplos de enfermedades inflamatorias incluyen lupus eritematoso sistémico, artritis reumatoide maligna, esclerosis múltiple, colitis ulcerosa, enfermedad de Crohn, hepatitis inducida por fármacos, hepatitis alcohólica, hepatitis A, hepatitis B, hepatitis C, hepatitis D, hepatitis E, septicemia (por ejemplo, septicemia derivada de bacterias gramnegativas, septicemia derivada de bacterias grampositivas, septicemia con cultivo negativo, una septicemia fúngica), gripe, síndrome de dificultad respiratoria aguda (SDRA), lesión pulmonar aguda (LPA), pancreatitis, fibrosis pulmonar idiopática (FPI), enteritis inflamatoria (por ejemplo, colitis ulcerosa y enfermedad de Crohn), transfusión de una preparación de sangre, trasplante de órganos, daño por reperfusión provocado por trasplante de órganos, colecistitis, colangitis o incompatibilidad de grupos sanguíneos del recién nacido, y similares. Entre las enfermedades inflamatorias, son objetos preferentes que han de tratarse la hepatitis inducida por fármacos, hepatitis alcohólica, hepatitis A, hepatitis B, hepatitis C, hepatitis D, hepatitis E, septicemia (por ejemplo, septicemia derivada de bacterias gramnegativas, septicemia derivada de bacterias grampositivas, septicemia con cultivo negativo y septicemia fúngica), gripe, síndrome de dificultad respiratoria aguda, lesión pulmonar aguda, pancreatitis y neumonía intersticial idiopática, que provocan que los agentes causantes se liberen en la sangre y que puede esperarse que se traten eficazmente con la depuración de la sangre. Para la aplicación de la columna para adsorción de acuerdo con las presentes realizaciones, las aplicaciones preferentes son los tratamientos de las enfermedades inflamatorias anteriores, y entre ellas, las aplicaciones más preferentes son los tratamientos para septicemias (por ejemplo, la septicemia derivada de bacterias gramnegativas, septicemia derivada de bacterias grampositivas, septicemia con cultivo negativo y septicemia fúngica), gripe, síndrome de dificultad respiratoria aguda, lesión pulmonar aguda, fibrosis pulmonar idiopática, que son difíciles de tratar solo con productos farmacéuticos y en los que se cree que están implicadas tanto las citocinas como las plaquetas activadas por leucocitos.
La fibra compuesta sólida de tipo mar-isla tiene una estructura transversal en la que los componentes de isla compuestos por un determinado polímero están dispersos en un componente de mar compuesto por otro polímero. La fibra sólida del tipo núcleo-envoltura es una fibra compuesta sólida de tipo mar-isla que tiene un componente de isla. La forma de la sección transversal de la fibra compuesta sólida de tipo mar-isla no se limita particularmente, pero es preferentemente circular porque es menos probable que se dañe por la fricción. La forma del componente de isla no se limita particularmente. La forma procesada de la fibra compuesta sólida de tipo mar-isla no se limita particularmente. Por ejemplo, son preferentes ovillos de hilo, hilo, red, tejido de punto y tejido que se procesan a partir de esta fibra, y son más preferentes los ovillos de hilos, la tela de punto y la tela tejida, teniendo en cuenta la gran área superficial específica y la pequeña resistencia al flujo.
La "fibra compuesta sólida de tipo mar-isla" se refiere a una fibra compuesta de tipo mar-isla que no tiene un vacío continuo en la dirección del eje de la fibra dentro de la fibra compuesta de tipo mar-isla, en otras palabras, una fibra compuesta de tipo mar-isla que no tiene ninguna porción hueca. Cuando hay huecos continuos u orificios sin continuidad, que tienen un diámetro inferior a 1 pm, contenidos dentro de la fibra compuesta de tipo mar-isla, la fibra se considera sólida y no hueca.
El componente de mar se refiere a un polímero presente sobre la superficie de la fibra compuesta sólida de tipo marisla.
El componente de isla se refiere a un polímero de un tipo diferente al del componente de mar, que se dispersa en el componente de mar cuando se observa en la dirección perpendicular a la dirección del eje de la fibra de la fibra compuesta sólido de tipo mar-isla. El material del componente de isla no se limita particularmente siempre que sea un componente diferente del componente de mar.
El "diámetro de fibra" es el valor promedio de los diámetros en una sección transversal obtenido cuando la sección transversal en la dirección perpendicular a la dirección del eje de la fibra se observa aleatoriamente en 100 posiciones mediante MEB. El diámetro de fibra en el presente documento se aplica no solo a las fibras columnares, sino también,
por ejemplo, a fibras elípticas, rectangulares o poligonales. En este caso, se crea el círculo más pequeño que puede envolver toda la sección transversal (Fig. 1) perpendicular a la dirección del eje de la fibra (en lo sucesivo en el presente documento, círculo envolvente mínimo, 2 en la Fig. 1) y se calcula el diámetro del círculo envolvente mínimo que lo encierra y se considera el diámetro. Por ejemplo, tomando como ejemplo una fibra con forma de estrella que tiene cinco salientes, se crea el círculo más pequeño que puede envolver los cinco vértices y se calcula el diámetro del círculo envolvente mínimo. La misma operación se realiza en 100 posiciones y el valor promedio se usa como el diámetro de fibra.
Cuando el diámetro de fibra de la fibra compuesta sólida de tipo mar-isla es inferior a 25 pm, se produce un aumento de presión durante el paso de un líquido. Cuando el diámetro de fibra de la fibra compuesta sólida de tipo mar-isla es superior a 60 pm, los poros presentes en la fibra no pueden utilizarse completamente y la capacidad de adsorción se reduce. Por lo tanto, la fibra compuesta sólida de tipo mar-isla debe tener un diámetro de fibra de 25 a 60 pm. El diámetro de fibra de la fibra compuesta sólida de tipo mar-isla es preferentemente de 30 a 55 pm, más preferentemente de 30 a 50 pm y aún más preferentemente de 35 a 50 pm. Cualquier límite inferior preferente puede combinarse con cualquier límite superior preferente.
La circularidad de la forma de la sección transversal de la fibra compuesta sólida de tipo mar-isla no se limita particularmente, pero una circularidad demasiado grande da como resultado el aumento del área de retención del líquido, que se convierte en el punto de partida del aumento de presión. Por lo tanto, la circularidad es preferentemente de 0 a 15 pm.
La circularidad del presente documento se refiere a la definida en la norma JISB0621-1984. Específicamente, la circularidad es, cuando una forma circular se intercala con dos círculos geométricos concéntricos, la diferencia de radio entre los dos círculos concéntricos con la distancia más pequeña entre los dos círculos.
A continuación se describirá un método de medición de la circularidad.
En una imagen de una sección transversal de una muestra cortada perpendicularmente a la dirección del eje de la fibra, se seleccionan 10 posiciones aleatoriamente y se fotografían con un aumento en el que los componentes de isla pueden observarse claramente mediante MEB. En las imágenes obtenidas de las secciones transversales de las fibras se crea un círculo envolvente mínimo (2 en la Fig. 1), y el radio se calcula en unidades de 0,1 pm. Además, un círculo máximo que es concéntrico con el círculo envolvente mínimo y que puede incluirse dentro de la fibra (en lo sucesivo en el presente documento, círculo inscrito máximo, 3 en la Fig. 1) se crea en las secciones transversales de las fibras, y el radio se calcula en unidades de 0,1 pm. La circularidad es el valor que se obtiene al restar el radio del círculo inscrito máximo del radio del círculo envolvente mínimo.
El "volumen de poro" es la suma de volúmenes de poros diminutos que tienen un diámetro de 200 nm o menos y que están contenidos en 1 g del material. El volumen de poro se obtiene por calorimetría diferencial de barrido usando un calorímetro diferencial de barrido (en lo sucesivo en el presente documento, CDB) en el que se mide el grado de depresión del punto de congelación debido a la agregación capilar del agua en los poros. El volumen de poro se calcula de la siguiente manera: el material que ha de medirse se enfría rápidamente a -55 °C y después se calienta a 5 °C con un aumento de temperatura de 0,3 °C/min para medir el valor calorífico diferencial de barrido; y usando la temperatura máxima de la curva resultante como punto de fusión, el volumen de poro puede calcularse mediante una fórmula teórica. El método de cálculo anterior del volumen de poro usando el método de calorimetría diferencial de barrido y la fórmula teórica sigue el método de Ishikiriyama et al., JOURNAL OF COLLOID AND INTERFACE SCIENCE, 1995, volumen 171, páginas 92-102 y páginas 103-111). El "Vfp" en el artículo anterior corresponde al volumen de poro en la presente solicitud. El volumen de poro también se denomina capacidad de poro, y se traduce como "pore volume" en inglés.
Aunque se desconoce el mecanismo detallado, la capacidad de adsorción no puede mejorarse suficientemente cuando el volumen de poro de la fibra compuesta sólida de tipo mar-isla es demasiado pequeño. Por lo tanto, el volumen de poro no debe ser inferior a 0,05 cm3/g. Cuando el volumen de poro de la fibra es demasiado grande, la resistencia de la fibra no se mantiene, se generan partículas finas durante el uso y los poros no se usan completamente, lo que provoca la falta de capacidad de adsorción. Por lo tanto, el volumen de poro debe ser de 0,5 cm3/g o menos. Es decir, el volumen de poro de la fibra compuesta sólida de tipo mar-isla debe ser de 0,05 a 0,5 cm3/g. El volumen de poro es preferentemente de 0,10 a 0,45 cm3/g, más preferentemente de 0,15 a 0,40 cm3/g y aún más preferentemente de 0,15 a 0,34 cm3/g. Cualquier límite inferior preferente puede combinarse con cualquier límite superior preferente. Los intervalos preferentes del volumen de poro descrito anteriormente de la fibra compuesta sólida de tipo mar-isla y el diámetro de fibra descrito anteriormente de la fibra compuesta sólida de tipo mar-isla pueden combinarse opcionalmente. En una realización, por ejemplo, el volumen de poro anterior de la fibra compuesta sólida de tipo marisla es de 0,10 a 0,45 cm3/g y el diámetro de fibra anterior de la fibra compuesta sólida de tipo mar-isla es de 30 a 55 pm. En otra realización, el volumen de poro anterior de la fibra compuesta sólida de tipo mar-isla es de 0,15 a 0,40 cm3/g y el diámetro de fibra anterior de la fibra compuesta sólida de tipo mar-isla es de 30 a 50 pm. En otra realización, el volumen de poro anterior de la fibra compuesta sólida de tipo mar-isla es de 0,15 a 0,34 cm3/g y el diámetro de fibra anterior de la fibra compuesta sólida de tipo mar-isla es de 30 a 50 pm. En otra realización, el volumen de poro anterior de la fibra compuesta sólida de tipo mar-isla es de 0,15 a 0,34 cm3/g y el diámetro de fibra anterior de la fibra compuesta
sólida de tipo mar-isla es de 35 a 50 |jm.
Los elementos constituyentes de la fibra compuesta sólida de tipo mar-isla no se limitan particularmente, pero el componente de mar se compone preferentemente de una resina termoplástica en vista de la procesabilidad. Como componente de mar, puede usarse una única resina termoplástica compuesta por un tipo de resina termoplástica, o una única resina termoplástica compuesta por dos o más tipos de resinas termoplásticas completamente compatibles entre sí. Pueden mezclarse dos o más tipos de resinas termoplásticas incompatibles entre sí o similares y usarse. Entre éstos, el componente de mar se compone más preferentemente de una única resina termoplástica con vistas a la adsorción uniforme de la sustancia. El componente de isla se compone preferentemente de poliolefina en vista de garantizar la resistencia. Como componente de isla, puede usarse una única poliolefina o pueden mezclarse dos o más tipos de poliolefinas o similares y usarse. Una realización preferente de la fibra compuesta sólida de tipo mar-isla es, por ejemplo, una fibra compuesta sólida de tipo mar-isla en la que el componente de mar se compone de una única resina termoplástica y el componente de isla se compone de poliolefina. En otra realización, la fibra compuesta sólida de tipo mar-isla es una fibra compuesta sólida de tipo mar-isla en la que el componente de mar se compone de poliestireno y el componente de isla se compone de polipropileno.
Por "poliolefina" se entiende un polímero sintetizado mediante el uso de olefinas y alquenos como monómeros, y entre las poliolefinas, el polipropileno o el polietileno es preferente como componente de isla de la fibra compuesta sólida de tipo mar-isla en vista de la resistencia.
La "resina termoplástica" significa un material polimérico que puede ser plastificado y moldeado por calor, y no se limita particularmente siempre que sea un material polimérico termoplástico. Pueden usarse preferentemente materiales poliméricos que contengan un grupo funcional que reaccione con un catión de carbono, tal como un grupo arilo o un grupo hidroxilo, en una estructura repetitiva, por ejemplo, tereftalato de polietileno, tereftalato de polibutileno, poli(compuesto de vinilo aromático), poliéster, polisulfona, poliéter sulfona, poliestireno, polidivinilbenceno, celulosa, triacetato de celulosa, polivinilpirrolidona, poliacrilonitrilo, polimetalilsulfonato de sodio y alcohol polivinílico. En particular, en el caso de uso para adsorber componentes de la sangre, como la resina termoplástica descrita anteriormente, se incluyen preferentemente uno o más materiales poliméricos seleccionados entre el grupo que consiste en poli(compuesto de vinilo aromático), tereftalato de polietileno, tereftalato de polibutileno, poliestireno, polisulfona, poliéter sulfona, polidivinilbenceno, triacetato de celulosa, polivinilpirrolidona, poliacrilonitrilo y polimetilsulfonato de sodio, que son materiales poliméricos sin grupos hidroxilos. Entre ellos, el poliestireno es particularmente preferente porque tiene un gran número de anillos aromáticos por unidad de peso y se introducen fácilmente diversos grupos funcionales o grupos funcionales reactivos a través de la reacción de Friedel-Crafts o similares. Estas resinas termoplásticas pueden adquirirse habitualmente o pueden producirse mediante un método conocido.
La "resina termoplástica única" tiene el mismo significado que una resina termoplástica homogénea y significa un tipo de resina termoplástica o una resina termoplástica constituida por dos o más tipos de resinas termoplásticas completamente compatibles. Entre las resinas termoplásticas únicas, el poliestireno es preferente como componente de mar de la fibra compuesta sólida de tipo mar-isla. La composición del componente de mar de la fibra compuesta sólida de tipo mar-isla por una única resina termoplástica puede confirmarse por la ausencia de grumos de otra resina termoplástica que tengan un diámetro no inferior a 100 nm y estén dispersos en la resina termoplástica del componente de mar por la observación mediante MET de la sección transversal de la fibra.
En vista de mejorar la interacción con la materia orgánica que ha de adsorberse, la superficie de la fibra compuesta sólida de tipo mar-isla (en particular, el componente de mar sobre la superficie) contiene preferentemente (por ejemplo, por unión) un ligando que tiene un grupo funcional ácido o un grupo funcional básico.
El "ligando" significa un compuesto que se une a la superficie de la fibra compuesta sólida de tipo mar-isla, y la estructura química del mismo no se limita particularmente siempre que tenga un grupo funcional ácido o un grupo funcional básico. Los ejemplos del mismo incluyen un compuesto que tiene un grupo ácido sulfónico o un grupo carboxilo que es un grupo funcional ácido (grupo funcional aniónico) o un compuesto con un grupo amino que es un grupo funcional básico (grupo funcional catiónico). En las presentes realizaciones, el ligando es preferentemente un compuesto que tiene un grupo funcional básico, particularmente un compuesto que tiene un grupo amino. El grupo funcional anterior puede usarse combinando una pluralidad de grupos funcionales iguales o diferentes. El ligando puede incluir además un grupo funcional neutro siempre que incluya el grupo funcional ácido o el grupo funcional básico mencionados anteriormente. Por ejemplo, el compuesto en el que, como grupo funcional neutro, un grupo alquilo, tal como metilo o etilo, o un grupo arilo, tal como el grupo fenilo, un grupo fenilo sustituido con alquilo (por ejemplo, para(p)-metilfenilo, meta(m)-metilfenilo, orto(o)-metilfenilo, para(p)-etilfenilo, meta(m)-etilfenilo u orto(o)-etilfenilo) o un grupo fenilo sustituido con un átomo de halógeno (por ejemplo, para(p)-fluorofenilo, meta(m)-fluorofenilo, orto(o)-fluorofenilo, para(p)-clorofenilo, meta(m)-clorofenilo u orto(o)-clorofenilo) se une al compuesto que tiene el grupo funcional ácido o el grupo funcional básico (por ejemplo, la tetraetilenpentamina a la que se une el para(p)-clorofenilo), se incluye en el ligando. En este caso, el grupo funcional neutro y el ligando pueden unirse directamente, o pueden unirse a través de un espaciador (un espaciador implicado en un enlace de este tipo también se denomina espaciador 1). Los ejemplos del espaciador 1 incluyen enlaces de urea, enlaces de amida y enlaces de uretano.
El "grupo funcional ácido o grupo funcional básico" significa un grupo funcional que tiene acidez o un grupo funcional que tiene basicidad. Los ejemplos del grupo funcional que tiene acidez incluyen un grupo de ácido sulfónico, un grupo carboxilo o similares. Los ejemplos del grupo funcional que tiene basicidad incluyen un grupo amino o similares. En las presentes realizaciones, el grupo funcional básico es preferente y el grupo amino es más preferente. El grupo funcional anterior puede usarse combinando una pluralidad de grupos funcionales iguales o diferentes.
Los ejemplos del "grupo amino" incluyen grupos amino derivados de aminas primarias, tales como metilamina, etilamina, propilamina, butilamina, pentilamina, hexilamina, heptilamina, octilamina o dodecilamina; grupos amino derivados de aminas secundarias, tales como metilhexilamina, difenilmetilamina, dimetilamina; grupos amino derivados de aminas que tienen una cadena de alquilo insaturada, tal como alilamina; grupos amino derivados de aminas terciarias, tales como trimetilamina, trietilamina, dimetiletilamina, fenildimetilamina, dimetilhexilamina; grupos amino derivados de aminas que tienen anillos aromáticos, tales como 1-(3-aminopropil)imidazol, piridin-2-amina, 3-sulfoanilina; o grupos amino derivados de compuestos en los que dos o más grupos amino se enlazan a cadenas alquílicas, compuestos aromáticos, compuestos heterocíclicos, compuestos homocíclicos o similares (en lo sucesivo en el presente documento, "poliamina"), tales como tris(2-aminoetil)amina, etilendiamina, dietilentriamina, trietilentetramina, tetraetilenpentamina, dipropilentriamina, polietilenimina, N-metil-2,2'-diaminodietilamina, N-acetiletilendiamina, 1,2-bis(2-aminoetoxietano). El grupo amino es preferentemente grupos amino derivados de poliamina, en particular, preferentemente grupos amino derivados de etilendiamina, dietilentriamina, trietilentetramina o tetraetilenpentamina, más preferentemente, grupos amino derivados de tetraetilenpentamina. Además, el grupo amino es más preferentemente grupos amino derivados de aminas primarias o aminas secundarias.
La fibra compuesta sólida de tipo mar-isla y el ligando que tiene un grupo funcional ácido o un grupo funcional básico pueden unirse directamente, o pueden unirse a través de un espaciador derivado de un grupo funcional reactivo entre la fibra compuesta sólida de tipo mar-isla y el ligando (un espaciador implicado en un enlace de este tipo también se denomina espaciador 2). El espaciador 2 puede ser cualquiera que tenga un enlace químico eléctricamente neutro, tal como enlaces de urea, enlaces de amida, enlaces de éter, enlaces de éster o enlaces de uretano, y preferentemente uno que tenga enlaces de amida o enlaces de urea.
Los ejemplos de los grupos funcionales reactivos que median el enlace entre la fibra compuesta sólida de tipo marisla y el ligando incluyen grupos halógenos activados, tales como grupos haloalquilo (por ejemplo, grupos halometilo o grupos haloetilo), grupos haloacilo (por ejemplo, grupos haloacetilo o grupos halopropionilo) o grupos haloacetamidaalquilo (por ejemplo, grupos haloacetamidametilo o grupos haloacetamidaetilo); grupos epóxido, grupos carboxilo, grupos de ácido isociánico, grupos de ácido tioisociánico o grupos de anhídrido de ácido. A la luz de tener una reactividad adecuada, el grupo funcional reactivo es preferentemente un grupo halógeno activado, más preferentemente el grupo haloacetamida-alquilo y más particularmente el grupo haloacetamidametilo. Los ejemplos específicos de la fibra compuesta sólida de tipo mar-isla a la que se introduce un grupo funcional reactivo incluyen una fibra compuesta sólida de tipo mar-isla que tiene poliestireno como componente de mar y polipropileno como componente de isla, con un grupo cloroacetamidametilo introducido sobre la superficie, y una fibra compuesta sólida de tipo mar-isla que tiene polisulfona como componente de mar y polipropileno como componente de isla, con un grupo cloroacetamidametilo introducido sobre la superficie.
Haciendo reaccionar de antemano la fibra compuesta sólida de tipo mar-isla con un reactivo adecuado, el grupo funcional reactivo puede introducirse en la fibra compuesta sólida de tipo mar-isla. Por ejemplo, en los casos en los que el componente de mar de la fibra compuesta sólida de tipo mar-isla es poliestireno y el grupo funcional reactivo es un grupo cloroacetamidametilo, el poliestireno y la N-hidroximeti-2-cloroacetamida pueden hacerse reaccionar para obtener un poliestireno al que se une el grupo cloroacetamidametilo. Al poliestireno al que se une el grupo cloroacetamidametilo, por ejemplo, se hace reaccionar tetraetilenpentamina que tiene un grupo amino, obteniendo de este modo un poliestireno al que se le une tetraetilenpentamina a través de un grupo acetamidametilo. En este caso, el grupo acetamidametilo corresponde al espaciador 2 y la tetraetilenpentamina corresponde al ligando. Los materiales del componente de mar de la fibra compuesta sólida de tipo mar-isla, los espaciadores (espaciador 1 y espaciador 2) y el ligando pueden combinarse opcionalmente. Los ejemplos del componente de mar al que se une el ligando incluyen un poliestireno al que un compuesto que incluye grupos amino derivados de etilendiamina, dietilentriamina, trietilentetramina o tetraetilentramina se une a través de un grupo acetamidametilo; una polisulfona a la que un compuesto que incluye grupos amino derivados de etilendiamina, dietilentriamina, trietilentetramina o tetraetilentramina se une a través de un grupo acetamidametilo; y una polietersulfona a la que un compuesto que incluye grupos amino derivados de etilendiamina, dietilentriamina, trietilentetramina o tetraetilentramina se une a través de un grupo acetamidametilo.
El contenido del grupo funcional ácido o el grupo funcional básico no se limita particularmente, pero un contenido demasiado pequeño no puede mejorar suficientemente la capacidad de adsorción para materia orgánica cargada, tal como los componentes de la sangre, mientras que un contenido demasiado grande mejora la propiedad hidrófila y reduce la resistencia de la fibra compuesta sólida de tipo mar-isla. Por lo tanto, el contenido del grupo funcional ácido o del grupo funcional básico es preferentemente de 0,5 a 5,0 mmol por 1 g de peso seco de la fibra compuesta sólida de tipo mar-isla, más preferentemente de 0,5 a 2,0 mmol, más preferentemente de 0,5 a 1,5mmol, y aún más preferentemente de 1,0 a 1,5 mmol. Cualquier límite inferior preferente puede combinarse con cualquier límite superior
preferente.
El contenido del grupo funcional ácido o del grupo funcional básico puede medirse mediante una valoración ácidobase usando ácido clorhídrico o hidróxido de sodio acuoso.
En la presente descripción, en los casos en los que la superficie de la fibra compuesta sólida de tipo mar-isla contiene un ligando o similar, el ligando o similar no está incluido en el componente de mar. Solo el componente de mar que constituye la estructura de fibra de la fibra compuesta sólida de tipo mar-isla se considera el componente de mar de la fibra compuesta sólida de tipo mar-isla.
El ligando anterior o similar, en el presente documento, significa una estructura química presente sobre la superficie del componente de mar e incluye una estructura derivada de un ligando, espaciador 1, espaciador 2 y un grupo funcional reactivo, así como un agente de reticulación.
Sobre la superficie de la fibra compuesta sólida de tipo mar-isla, la posición y la orientación de la unión del ligando no se limita particularmente. Sin embargo, puesto que es necesaria la interacción con la sustancia que ha de adsorberse, en el componente de mar de la fibra compuesta sólida de tipo mar-isla, el ligando se une preferentemente al menos al lado de la superficie que entra en contacto con materia orgánica, tal como la sangre. La superficie en el presente documento significa una superficie de la fibra compuesta sólida de tipo mar-isla, y cuando la superficie tiene la forma que tiene poros, la porción de capa más externa a lo largo de la estructura convexo-cóncava está incluida sobre la superficie. Además, cuando el interior de la fibra compuesta sólida de tipo mar-isla tiene orificios pasantes, la superficie incluye no solo la porción de capa más externa de la fibra compuesta sólida de tipo mar-isla, sino también las capas externas de los orificios pasantes dentro de la fibra compuesta sólida de tipo mar-isla.
La estructura de la sección transversal de la fibra perpendicular a la dirección del eje de la fibra de la fibra compuesta sólida de tipo mar-isla no se limita particularmente, pero en vista de suprimir la separación de la componente de isla y el componente de mar, la distancia desde la superficie de la fibra compuesta sólida de tipo mar-isla hasta el componente de isla más externo en la presente invención es no inferior a i pm e inferior a 30 pm, y el diámetro de isla máximo del componente de isla de la fibra compuesta sólida de tipo mar-isla es de 0,1 a 2 pm.
La "distancia desde la superficie de la fibra compuesta sólida de tipo mar-isla hasta el componente de isla más extero" significa, en la sección transversal perpendicular a la dirección del eje de la fibra de la fibra compuesta sólida de tipo mar-isla (también denominada dirección longitudinal o dirección de extensión), la distancia más corta desde la superficie de la fibra compuesta sólida de tipo mar-isla hasta el componente de isla en el lado más externo en la fibra. Cuando el componente de isla está demasiado cerca de la superficie de la fibra compuesta sólida de tipo mar-isla, el componente de isla sobresale de la fibra. Por otro lado, cuando el componente de isla está demasiado lejos de la superficie de la fibra compuesta sólida de tipo mar-isla, la resistencia del componente de mar no puede mantenerse, provocando una fractura por fragilidad. Por lo tanto, la distancia desde la superficie de la fibra compuesta sólida de tipo mar-isla hasta el componente de isla más externo es no inferior a 1 pm e inferior a 30 pm, más preferentemente no inferior a 1 pm y 10 pm o menos, y además preferentemente no inferior a 1 pm y 5 pm o menos.
A continuación se muestra el método para medir la distancia desde la superficie de la fibra compuesta sólida de tipo mar-isla hasta el componente de isla más externo.
En una imagen de una sección transversal de una muestra de las fibras compuestas sólidas de tipo mar-isla cortadas perpendicularmente a la dirección del eje de la fibra, se seleccionan 10 posiciones aleatoriamente y se fotografían con un aumento en el que los componentes de isla pueden observarse claramente mediante MEB. La imagen de la sección transversal de la fibra obtenida se divide en seis partes a 60 grados del centro de la fibra (línea de doble trazo en la Fig. 2) y la distancia más corta desde la superficie de la fibra hasta el componente de isla más externo (d i en la Fig. 2) en cada sección transversal de la fibra dividida se mide en pm con un decimal. Cuando la sección transversal de la fibra tiene una estructura deformada, la fibra se divide en seis partes por 60 grados desde el centro del círculo envolvente mínimo y se mide de la misma manera. Cuando un componente de isla sobresale de la superficie de la fibra, la distancia es de 0,0 pm (d2 en la Fig. 2). Cuando cualquier componente de isla no está presente en la sección transversal de la fibra dividida, se mide la distancia más corta desde el centro de gravedad de la sección transversal de la fibra hasta la superficie de la fibra (d3 en la Fig. 2). Cuando un componente de isla abarca una pluralidad de secciones transversales de fibra divididas y el componente de isla es el componente de isla más externo en la pluralidad de secciones transversales de fibra divididas, se mide la distancia más corta desde la superficie de la fibra en cada una de las secciones transversales de la fibra dividida hasta el componente de isla (d4, d5 en la Fig. 2). El valor promedio de las distancias medidas como se ha descrito anteriormente en cada una de las secciones transversales de fibra dividida (por ejemplo, el valor promedio de d i, d2, d3, d4, d5 y d6 en la Fig. 2) se calcula para todas las 10 imágenes, y el valor promedio obtenido de este modo se define como la distancia desde la superficie de la fibra compuesta sólida de tipo mar-isla hasta el componente de isla más externo.
El "diámetro de isla máximo" significa el diámetro del componente de isla más grande que se observa en la sección transversal perpendicular a la dirección del eje de la fibra de la fibra compuesta sólida de tipo mar-isla (también denominada dirección longitudinal, dirección de extensión). Cuando el diámetro de isla máximo del componente de
isla de la fibra compuesta sólida de tipo mar-isla es demasiado grande, es probable que se produzca la separación del componente de isla y el componente de mar, y cuando el diámetro de isla máximo es demasiado pequeño, la resistencia del componente de isla es insuficiente y es probable que se produzca la ruptura. Por lo tanto, el diámetro de isla máximo es de 0,1 a 2 pm, más preferentemente de 0,5 a 2 pm y aún más preferentemente de 0,5 pm a 1,5 pm. Los intervalos preferentes de la distancia descrita anteriormente desde la superficie de la fibra compuesta sólida de tipo mar-isla hasta el componente de isla más externo y el diámetro de isla máximo descrito anteriormente del componente de isla de la fibra compuesta sólida de tipo mar-isla pueden combinarse opcionalmente.
De acuerdo con la invención, la fibra compuesta sólida de tipo mar-isla tiene una distancia desde la superficie de la fibra compuesta sólida de tipo mar-isla hasta el componente de isla más externo de no menos de 1 pm y menos de 30 pm, y un diámetro de isla máximo del componente de isla de la fibra compuesta sólida de tipo mar-isla es de 0,1 a 2 pm. En otra realización, la fibra compuesta sólida de tipo mar-isla tiene una distancia desde la superficie de la fibra compuesta sólida de tipo mar-isla hasta el componente de isla más externo de no menos de 1 pm y 10 pm o menos, y un diámetro de isla máximo del componente de isla de la fibra compuesta sólida de tipo mar-isla es de 0,5 a 2 pm. En otra realización más, la fibra compuesta sólida de tipo mar-isla tiene una distancia desde la superficie de la fibra compuesta sólida de tipo mar-isla hasta el componente de isla más externo de no menos de 1 pm y 5 pm o menos, y un diámetro de isla máximo del componente de isla de la fibra compuesta sólida de tipo mar-isla es de 0,5 a 1,5 pm. Cada uno de los intervalos preferentes del volumen de poro descrito anteriormente de la fibra compuesta sólida de tipo mar-isla, el diámetro de fibra descrito anteriormente de la fibra compuesta sólida de tipo mar-isla, la distancia descrita anteriormente desde la superficie de la fibra compuesta sólida de tipo mar-isla hasta el componente de isla más externo y el diámetro de isla máximo descrito anteriormente del componente de isla de la fibra compuesta sólida de tipo mar-isla pueden combinarse opcionalmente.
A continuación se muestra el método para medir el diámetro de isla máximo de la fibra compuesta sólida de tipo marisla.
En una Imagen de una sección transversal de una muestra de las fibras compuestas sólidas de tipo mar-isla cortadas perpendicularmente a la dirección del eje de la fibra, se seleccionan 10 posiciones aleatoriamente y se fotografían con un aumento en el que los componentes de isla pueden observarse claramente mediante un microscopio electrónico de barrido (MEB). En las 10 imágenes obtenidas de este modo, se mide el diámetro de un componente de isla seleccionado aleatoriamente en 100 posiciones, y se comparan los diámetros obtenidos de los componentes de isla. El diámetro del componente de isla más grande entre ellos se define como el diámetro de isla máximo. El diámetro de isla no solo se aplica a una forma columnar, sino que también se aplica, por ejemplo, a las formas elíptica, rectangulares o poligonales. En este caso, se crea un círculo envolvente mínimo en un componente de isla incluido en la sección transversal perpendicular a la dirección del eje de la fibra y el diámetro del círculo envolvente mínimo se calcula y se considera el diámetro de isla. Por ejemplo, tomando como ejemplo un componente de isla con forma de estrella que tiene cinco salientes, se crea el círculo más pequeño que puede envolver los cinco vértices y se calcula el diámetro del círculo envolvente mínimo que se define como el diámetro de isla.
La presente invención también proporciona una columna para adsorción, que comprende el soporte para adsorber materia orgánica como se ha descrito anteriormente.
La "columna para adsorción" significa una columna que tiene al menos una porción de entrada de líquido, una porción de caja y una porción de salida de líquido, en donde la porción de la caja se compacta con el soporte para adsorber materia orgánica. Los ejemplos de la columna incluyen una columna de tipo de flujo radial.
La columna para adsorción de las presentes realizaciones puede adsorber materia orgánica de un líquido haciendo pasar el líquido a través de ella y, por lo tanto, puede usarse en una aplicación para purificar o retirar materia orgánica objetivo del líquido que contiene materia orgánica. Por ejemplo, puede usarse para la separación y similares de materia orgánica específica. Puesto que la columna para adsorción de las presentes realizaciones es especialmente adecuada para adsorber componentes de la sangre, se usa más preferentemente como columna para adsorber y retirar componentes de la sangre. La columna para adsorber y retirar componentes de la sangre del presente documento es una columna que tiene la función de retirar los productos de desecho y las sustancias nocivas de los componentes de la sangre cuando se hace pasar a través de la columna un líquido que contiene componentes de la sangre extraídos de un cuerpo vivo. La columna para adsorción de las presentes realizaciones se usa preferentemente como columna para adsorber y retirar, en particular, proteínas, toxinas derivadas de microorganismos, leucocitos y similares de entre los componentes de la sangre, y particularmente preferente como columna para adsorber y retirar proteínas. Cuando la columna para adsorción de las presentes realizaciones se usa para el tratamiento de enfermedades inflamatorias, las citocinas utilizadas para la transferencia de la información de las células inmunitarias son preferentes como objetos que han de adsorberse.
La configuración de recipiente de la columna para adsorción puede tener cualquier configuración, siempre que el recipiente tenga una porción de entrada y una de salida para un líquido que contenga materia orgánica (en lo sucesivo en el presente documento, líquido) y una porción de caja en la que se pueda compactar el soporte para adsorber materia orgánica. Una realización es un recipiente en cuyo interior puede compactarse un cuerpo cilindrico formado por el enrollamiento del soporte para adsorber materia orgánica alrededor de un tubo en forma cilindrica (en lo sucesivo
en el presente documento, cilindro), y Ios ejemplos del recipiente Incluyen un recipiente en el que un líquido entra en el cilindro desde su circunferencia para fluir en el interior del cilindro, y después el líquido se descarga desde el recipiente; o un recipiente en el que un líquido entra en el interior del cilindro para fluir al exterior del cilindro, y después el líquido se descarga desde el recipiente. En vista de la eficiencia de producción o de la inhibición de la derivación del líquido tratado, el recipiente tiene preferentemente una estructura en la que el soporte para adsorber materia orgánica se enrolla alrededor de un tubo cuyo lado tiene poros. Específicamente, Ios ejemplos de Ios mismos incluyen un recipiente de tipo flujo radial que incluye un tubo central que tiene poros en su lado longitudinal, poros que se proporcionan para hacer fluir un líquido hacia afuera; el soporte para adsorber materia orgánica que se compacta alrededor del tubo central y adsorbe las sustancias objetivo contenidas en el líquido; una placa que está comunicada con el extremo corriente arriba del tubo central de manera que el líquido pase a través del interior del tubo central, y que se dispone para evitar que el líquido no pase por el tubo central para entrar en contacto con el soporte para adsorber materia orgánica; una placa que bloquea el extremo corriente abajo del tubo central, y que se dispone para inmovilizar el soporte para adsorber la materia orgánica a un espacio alrededor del tubo central. Los ejemplos de la forma del recipiente incluyen cilindro o prisma, tal como prisma triangular, prisma cuadrangular, prisma hexagonal o prisma octogonal, pero no se limitan a dichas estructuras. Como otra realización, existe un recipiente que tiene un espacio cilindrico en su interior en el que un soporte para adsorber materia orgánica, que se recorta en forma circular, puede compactarse, y que tiene una entrada de liquido y una salida de líquido. Específicamente, Ios ejemplos de ello incluyen un recipiente que comprende en su interior una placa que comprende una entrada de liquido proporcionada para que el liquido suministrado fluya hacia afuera; una placa que comprende una salida de liquido proporcionada para descargar el liquido suministrado; y una porción de caja cilindrica en la que el soporte para adsorber materia orgánica, que se recorta en forma circular, se compacta; recipiente que tiene una entrada de liquido y una salida de líquido. En este caso, la forma del soporte para adsorber materia orgánica no se limita a la forma circular, y puede cambiarse adecuadamente a cualquier otra forma de óvalo; polígono tal como triángulo o rectángulo, trapezoide o similar, de acuerdo con la configuración del recipiente de la columna para adsorción.
Los ejemplos del recipiente de la columna para adsorción incluyen Ios de vidrio, plástico o resina, acero inoxidable o similar. El tamaño del recipiente se selecciona adecuadamente de acuerdo con el uso previsto del mismo y, por lo tanto, el tamaño o similar del recipiente de la columna para adsorción no se limita particularmente. En vista de la operatividad en sitios clínicos o ubicaciones de medición o la facilidad de eliminación, el material está hecho preferentemente de plástico o resina y preferentemente tiene un tamaño fácil de agarrar. Se prefiere que la altura de toda la columna para adsorción no sea inferior a 1 cm y 30 cm o menos, que el diámetro exterior no sea inferior a 1 cm y 10 cm o menos, y que el volumen interior sea de 200 cm3 o menos. En Ios Ejemplos que se describen más adelante, una columna para adsorción que tiene un volumen interno de 11 cm3 (altura de compactación: 4,7 cm, diámetro de compactación: 1,9 cm) y una columna para adsorción con un volumen interno de 145 cm3 (altura de compactación: 12,5 cm, diámetro de compactación: 4,1 cm) se usaron para facilitar la medición, pero la presente invención no se limita a ello.
El soporte para adsorber materia orgánica se compacta preferentemente apilándolo en la columna para adsorción. El apilamiento en el presente documento significa apilar estrechamente dos o más de Ios soportes para adsorber materia orgánica. Los ejemplos de métodos para compactar por apilamiento incluyen un método en el que una pluralidad de Ios soportes para adsorber materia orgánica, que se procesan en forma de lámina, se apilan como una columna de flujo axial; y un método en el que el soporte para adsorber la materia orgánica, que se procesa en forma de lámina, se enrolla alrededor de un tubo cuyo lado tiene poros, como una columna de flujo radial. En particular, es preferente la compactación mediante el enrollamiento del soporte para adsorber materia orgánica como una columna de flujo radial.
La densidad de compactación del soporte para adsorber materia orgánica en la columna para adsorción de las presentes realizaciones es preferentemente de 0,40 g/cm3 o menos porque el aumento de presión se produce con frecuencia cuando la densidad de compactación es demasiado alta, mientras que la densidad de compactación es preferentemente no inferior a 0,15g/cm3 porque la capacidad no puede presentarse suficientemente cuando la densidad de compactación es demasiado baja. Es decir, la densidad de compactación del soporte para adsorber materia orgánica en la columna para adsorción es preferentemente de 0,15 a 0,40 g/cm3. En particular, la densidad de compactación es más preferentemente de 0,20 a 0,40 g/cm3, y aún más preferentemente de 0,20 a 0,35 g/cm3.
La combinación del método de compactación y la densidad de compactación del soporte para adsorber materia orgánica en la columna para adsorción no se limita particularmente, pero, por ejemplo, se prefiere que el soporte para adsorber materia orgánica se apile y se compacte en la columna para adsorción, y que la densidad de compactación del soporte para adsorber materia orgánica sea de 0,15 a 0,40 g/cm3. Se prefiere más que el soporte para adsorber materia orgánica se apile y se compacte en la columna para adsorción, y que la densidad de compactación del soporte para adsorber materia orgánica sea de 0,20 a 0,40 g/cm3. Como otra combinación, se prefiere que el soporte para adsorber materia orgánica se enrolle alrededor de un tubo o similar que tenga poros y se compacte en la columna para adsorción, y que la densidad de compactación del soporte para adsorber materia orgánica sea de 0,15 a 0,40 g/cm3. Se prefiere más que el soporte para adsorber materia orgánica se enrolle alrededor de un tubo o similar que tenga poros y se compacte en la columna para adsorción, y que la densidad de compactación del soporte para adsorber materia orgánica sea de 0,20 a 0,40 g/cm3.
La "densidad de compactación" es el peso seco (g) del soporte para adsorber materia orgánica por volumen interno
(em3) antes de que el soporte para adsorber materia orgánica se compacte en la porción de caja de la columna. Por ejemplo, en los casos en que el soporte para adsorber materia orgánica que tiene un peso seco de 1 g se compacta en un recipiente que tiene un volumen interno de 1 em3, la densidad de eompaetaeión es 1 g dividido por 1 em3 = 1 g/em3
El volumen interno se refiere al volumen de un espacio compactado con el soporte para adsorber materia orgánica y puede calcularse como un valor obtenido restando el volumen de un espacio donde el soporte para adsorber materia orgánica no puede compactarse (en lo sucesivo en el presente documento, volumen muerto) del volumen de todo el espacio a través del cual el líquido pasa en la columna (en lo sucesivo en el presente documento, volumen de eompaetaeión). El volumen muerto es, por ejemplo, un espacio derivado de un miembro para definir la trayectoria de flujo en el recipiente, e incluye el volumen del espacio dentro del tubo central, el espacio de los orificios, la porción de entrada y la porción de salida.
A continuación se describirá un método de medición del volumen interno anterior.
Una columna vacía, antes de ser compactada con el soporte para adsorber materia orgánica, se llena con agua de manera que no entre aire. Se extrae toda el agua compactada al cilindro graduado y se confirma la cantidad de agua extraída. Después, el volumen de eompaetaeión se calcula a partir de la cantidad obtenida de líquido de eompaetaeión, dado que 1 ml de agua es 1 em3. El volumen muerto se calcula midiendo con una regla, calibres o similares, eada volumen ocupado por el miembro de una porción que no puede compactarse con el soporte para adsorber materia orgánica y sumándolos. A partir de estos valores, el volumen interno puede calcularse mediante la siguiente Ecuación 1.
Volumen Interno (em3) = Volumen de Empaquetamiento (em3) - Volumen muerto (em3) Ecuación 1
A continuación se describirá el método para medir el peso en seco del soporte para adsorber materia orgánica compactada en la columna para adsorción.
Se prepara un soporte para adsorber materia orgánica que tiene el mismo volumen que el volumen interno de la columna. Cuando se analiza un soporte para adsorber materia orgánica que ya se ha compactado en la columna, se extrae toda la cantidad del soporte para adsorber materia orgánica en la columna. El soporte para adsorber materia orgánica se seca al vacío en un secador de vacío ajustado a 30 °C, la masa seca se mide mediante una balanza electrónica y el valor obtenido (g) se define como la masa seca. Para la confirmación de la sequedad, puede usarse como índice la diferencia en masa del 1 % o menos cuando la masa seca se mide dos veces. Cuando la masa seca se mide dos veces, el intervalo es de una hora.
El soporte para adsorber materia orgánica de las presentes realizaciones puede producirse usando un método, por ejemplo, pero sin limitación, el siguiente método.
Cuando un material de refuerzo se inmoviliza o se mezcla con la fibra compuesta sólida de tipo mar-isla, los métodos de inmovilización o mezcla de ambos no se limitan particularmente, sino que incluyen la mezcla física mediante un punzón o similar, o el calentamiento hasta una temperatura de transición vitrea o superior, seguido de moldeo.
El diámetro de fibra de la fibra compuesta sólida de tipo mar-isla puede disminuirse reduciendo la cantidad de descarga del polímero durante el hilado y aumentando la velocidad de enrollado. Además, cuando se introduce un ligando, el diámetro de fibra puede aumentar debido al hinchamiento mediante impregnación con un disolvente tras la introducción del ligando. Por lo tanto, el diámetro de fibra puede controlarse dentro de un intervalo objetivo ajustando adecuadamente las condiciones.
La distancia desde la superficie de la fibra compuesta sólida de tipo mar-isla hasta el componente de isla más externo en la sección transversal perpendicular a la dirección del eje de la fibra de la fibra compuesta sólida de tipo mar-isla puede controlarse disponiendo los orificios de distribución para el componente de isla en la porción central de la hilera y los orificios de distribución para el componente de mar en la porción periférica de la hilera, y después uniéndolos para la descarga desde la hilera. Además, la distancia puede engrosarse aumentando la cantidad de descarga del polímero de componente de mar y disminuyendo la cantidad de descarga del polímero de componente de isla durante el hilado.
El diámetro de isla máximo del componente de isla de la fibra compuesta sólida de tipo mar-isla puede disminuirse aumentando el número de divisiones para el componente de isla en la placa de distribución para que los orificios de distribución sean más estrechos en la hilera, disminuyendo la relación de área por hilera, aumentando la cantidad de descarga del polímero de componente de mar durante el hilado o disminuyendo la cantidad de descarga del polímero de componente de isla durante el hilado.
El volumen de poro de la fibra compuesta sólida de tipo mar-isla puede controlarse mediante el método de producción de impregnar la fibra compuesta sólida de tipo mar-isla con un disolvente, seguido de ataque químico. Por ejemplo, el volumen de poro puede aumentarse impregnando la fibra compuesta sólida de tipo mar-isla con un disolvente en el
que el componente de mar se disuelva fácilmente. El volumen de poro también puede aumentarse añadiendo un agente de reticulación y un catalizador a la solución de mezcla al mismo tiempo. Por lo tanto, el volumen de poro puede controlarse dentro de un intervalo objetivo ajustando adecuadamente las condiciones.
En los casos en los que el componente de mar es poliestireno, los ejemplos del disolvente anterior incluyen nitrobenceno, nitropropano, clorobenceno, tolueno y xileno, y preferentemente nitrobenceno y nitropropano.
Los ejemplos del agente de reticulación incluyen compuestos aldehídicos, tales como paraformaldehído, acetaldehído o benzaldehído.
Los ejemplos de catalizadores para la reticulación incluyen ácidos de Lewis, tales como ácido sulfúrico, ácido clorhídrico, ácido nítrico, aluminio (III) halogenado (por ejemplo, cloruro de aluminio (NI)) y hierro (III) halogenado (por ejemplo, cloruro férrico (NI)). Se mezcla preferentemente ácido sulfúrico o cloruro férrico (i II).
La concentración de un catalizador en la solución de mezcla es preferentemente del 5 al 80 % en peso, más preferentemente del 30 al 70 % en peso.
La temperatura de impregnación es preferentemente de 0 a 90 °C, más preferentemente de 5 a 40 °C.
El tiempo de impregnación es preferentemente de 1 minuto a 120 horas, más preferentemente de 5 minutos a 24 horas.
A continuación se describe el método para modificar una fibra compuesta sólida de tipo mar-isla con un ligando. Una fibra compuesta sólida de tipo mar-isla se une a una solución de un ácido de Lewis (por ejemplo, cloruro de aluminio (III)) y cloruro de carbamoílo que tiene un grupo haloalquilo (por ejemplo, cloruro de N,N-bis(2-cloroetil)carbamoílo) disuelto en un disolvente no polar (por ejemplo, diclorometano) y se agitan para obtener una fibra compuesta sólida de tipo mar-isla de unión a cloruro de carbamoílo. Como alternativa, una fibra compuesta sólida de tipo mar-isla se añade a una solución de ácido prótico (por ejemplo, ácido sulfúrico) y una cloroacetamida que tiene un grupo haloalquilo (por ejemplo, N-hidroximetil-2-cloroacetamida) disuelta en un disolvente no polar (por ejemplo, nitrobenceno) y se agitan para obtener una fibra compuesta sólida de tipo mar-isla de unión a cloroacetamida. Posteriormente, como ligando, a una solución, por ejemplo, de un compuesto que tiene un grupo amino (en lo sucesivo en el presente documento también denominado compuesto de amina; por ejemplo, tetraetilenpentamina) disuelto en dimetilsulfóxido (en lo sucesivo en el presente documento, DMSO), se le añade la anterior fibra compuesta sólida de tipo mar-isla de unión a cloruro de carbamoílo o la anterior fibra compuesta sólida de tipo mar-isla de unión a cloroacetamida, y se hacen reaccionar. Por lo tanto, puede obtenerse una fibra compuesta sólida de tipo mar-isla que tenga un compuesto de amina como ligando introducido sobre la superficie. Además, añadiendo y haciendo reaccionar la fibra compuesta sólida de tipo mar-isla que tiene un compuesto de amina introducido como ligando sobre la superficie a una solución en la que se disuelve un compuesto que tiene reactividad con un grupo amino (por ejemplo, clorofenilisocianato), el compuesto de amina introducido sobre la superficie de la fibra puede modificarse adicionalmente. El momento de modificar el compuesto de amina no se limita particularmente. La reacción de modificación, como se ha descrito anteriormente, puede realizarse en la fibra compuesta sólida de tipo mar-isla en la que se ha introducido el compuesto de amina sobre la superficie, o el compuesto de amina y el compuesto que tiene reactividad con un grupo amino pueden reaccionar de antemano antes de hacer reaccionar la fibra compuesta sólida de tipo mar-isla de unión a cloruro de carbamoílo o la fibra compuesta sólida de tipo mar-isla de unión a cloroacetamida con el compuesto de amina. En este último caso, un compuesto que tiene un grupo amino modificado, que se obtiene haciendo reaccionar el compuesto de amina con el compuesto que tiene reactividad con un grupo amino, se usa como ligando, y puede introducirse en la fibra compuesta sólida de tipo mar-isla de unión a cloruro de carbamoílo o en una fibra compuesta sólida de tipo mar-isla de unión a cloroacetamida.
El momento de la modificación del ligando a la fibra compuesta sólida de tipo mar-isla no se limita particularmente y la modificación puede realizarse antes o después de que se procese la forma de la fibra compuesta sólida de tipo marisla. Un polímero que ha de ser un componente de mar (por ejemplo, poliestireno) se añade a una solución de un ácido de Lewis (por ejemplo, cloruro de aluminio (III)) y un compuesto de hidroxialquilo que tiene un grupo haloalquilo (por ejemplo, cloruro de hidroximetilo) disuelto en un disolvente no polar (por ejemplo, diclorometano) y se agita para obtener policlorometilestireno. Posteriormente, como ligando, a una solución, por ejemplo, de un compuesto de amina (por ejemplo, tetraetilenpentamina) disuelto en DMSO, se añade y se hace reaccionar el policlorometilestireno anterior. Por lo tanto, puede obtenerse poliestireno que tenga un compuesto de amina como ligando introducido sobre la superficie. Se funden y se dosifican por separado poliestireno que tiene un compuesto de amina introducido como ligando sobre la superficie y, por ejemplo, un tipo diferente de polímero (por ejemplo, polipropileno) en una máquina de hilar, y fluyen en un paquete de hilatura que integra una hilera compuesta de mar-isla en la que se forman orificios de distribución para el componente de isla. Este flujo compuesto de mar-isla después se descarga por fusión. Por lo tanto, puede obtenerse una fibra compuesta sólida de tipo mar-isla en la que se introduce un compuesto de amina como ligando sobre la superficie.
Los ejemplos del método para evaluar la capacidad de adsorción del soporte para adsorber materia orgánica incluyen un método para medir la tasa de adsorción de p-(2-hidroxi-1-naftilazo)bencenosulfonato de sodio (en lo sucesivo en
el presente documento denominado naranja de ácido 7). El naranja de ácido 7 es un tipo de tinte, y se sabe que se adsorbe a un material adsorbente mediante fuerza intermolecular y, por lo tanto, es adecuado como materia orgánica para evaluar la capacidad de adsorción. Se considera que una mayor tasa de adsorción del naranja de ácido 7 indica una mayor capacidad de adsorción del soporte para adsorber materia orgánica.
En el método de evaluación anterior, puesto que la adsorción de la naranja de ácido 7 se considera una reacción en equilibrio, se considera que el equilibrio de adsorción se alcanza cuando el tratamiento de adsorción se realiza durante aproximadamente 5 horas, independientemente de la concentración de la naranja de ácido 7.
Por la razón anterior, la tasa de adsorción de la naranja de ácido 7 alcanza preferentemente el 100 % en 5 horas. Por lo tanto, la tasa de adsorción de la naranja de ácido 7 es preferentemente no inferior al 40 % en 2 horas y más preferentemente no inferior al 50 %.
Como otro método de evaluación, se mide la tasa de adsorción de interleucina 8 (en lo sucesivo en el presente documento, IL-8), la tasa de adsorción de interleucina 6 (IL-6), la tasa de adsorción del grupo de alta movilidad caja-1 (HMGB-1) o similares. IL-8, IL-6 y HMGB-1 son un tipo de citocinas contenidas en los componentes de la sangre y son componentes de la sangre adecuados para la evaluación de la capacidad de adsorción. Se considera que una mayor tasa de adsorción IL-8, IL-6 y HMGB-1 indica una mayor capacidad de adsorción del soporte para adsorber materia orgánica, particularmente una mayor capacidad de adsorción para componentes de la sangre. En particular, la tasa de adsorción de IL-8 es uno de los biomarcadores representativos en enfermedades inflamatorias y, por lo tanto, puede usarse adecuadamente.
La presencia o ausencia del aumento de presión durante el uso del soporte para adsorber materia orgánica puede evaluarse midiendo la posible duración del paso de líquido a través de la columna. La posible duración del paso de líquido a través de la columna significa, cuando la materia orgánica son componentes de la sangre, la duración durante la cual la diferencia entre la presión de entrada y la presión de salida es de 13,33 kPa (100 mmHg) o menos cuando la columna provista del soporte para adsorber materia orgánica y un vaso sanguíneo de un animal están conectados, y se extrae sangre a un ritmo constante y pasa de forma continua a través de la columna. Puesto que existe el riesgo de dañar los componentes de la sangre cuando se produce un aumento de presión en la circulación extracorpórea, el aumento de presión es un fenómeno que debe evitarse en vista de la seguridad. Además, cuando se produce el aumento de presión, la cantidad de adsorción de los componentes de la sangre y similares se vuelve inestable, por lo que existe el riesgo de que la capacidad de adsorción de la columna no pueda presentarse suficientemente. Si la posible duración anterior del paso de líquido a través de la columna es demasiado corta, los componentes de la sangre y similares no pueden adsorberse suficientemente. Por lo tanto, es necesario que el paso de líquido pueda realizarse de forma continua durante al menos 60 minutos o más, y es particularmente preferente que el paso de líquido pueda realizarse durante no menos de 120 minutos.
Con el fin de garantizar la posible duración del paso de líquido a través de la columna, la pérdida de presión durante la circulación de suero sin células sanguíneas en la columna compactada con el soporte para adsorber materia orgánica es preferentemente baja. La pérdida de presión significa la diferencia entre la presión de entrada y la presión de salida cuando la columna provista del soporte para adsorber materia orgánica y el suero agrupado están conectados, y el suero pasa de forma continua a través de la columna a una tasa constante. Es probable que una pérdida de presión elevada provoque una obstrucción durante la circulación de la sangre y el riesgo de que la presión aumente es mayor. Aunque no se especifica el valor de la pérdida de presión, es preferentemente de 13,33 kPa (100 mmHg) o menos, más preferentemente 4,00 kPa (30 mmHg) o menos.
La pérdida de presión puede medirse haciendo pasar una solución de suero bovino fetal (en lo sucesivo en el presente documento, f Bs ) a través de la columna para adsorción compactada con el soporte para adsorber materia orgánica. A continuación se describirá un método de medición específico. Un soporte para adsorber materia orgánica se compacta em primer lugar en un recipiente que tiene una entrada/salida de líquido. La densidad de compactación del soporte para adsorber materia orgánica puede ajustarse opcionalmente cambiando el método de compactación. A continuación, la solución de FBS se deja pasar a través del recipiente a un caudal determinado, y se miden la presión de entrada y la presión de salida. Después, puede determinarse una pérdida de presión restando el valor de presión de salida del valor de presión de entrada. El caudal (ml/min) de la solución de FBS en la medición y la cantidad de la solución de FBS utilizada para un agolpamiento se ajusta sobre la base de 100 ml/min y 2500 ml por 145 cm3 de volumen del recipiente, teniendo en cuenta la práctica clínica de la purificación de sangre. Por ejemplo, si el volumen del recipiente es de 5 cm3, el caudal es de 100 ml/min - 145 cm3 x 5 cm3 = 3,4 ml/min, y la cantidad de la solución de FBS se ajusta a 2500 ml 145 cm3 x 5 cm3 = 29 ml para la medición. En la Fig. 3 se muestra una vista esquemática de un circuito y un dispositivo utilizados en un ensayo de medición de pérdida de presión. En la Fig. 3, la solución de FBS agrupada 6 se aspira usando una bomba 7 y se deja pasar a través de la columna para adsorción 8. En este momento, un dispositivo 9 de medición de la presión de entrada y un dispositivo 10 de medición de la presión de salida se usan para medir las presiones respectivas para determinar de este modo la pérdida de presión. La solución 6 de FBS que está lista para pasar a través de la columna se mantiene en un baño de agua 11 a temperatura constante a una temperatura constante de 37 °C. Además, un baño de agua 11 a temperatura constante se mantiene a temperatura constante usando un calentador 12. Para un circuito 13, se puede usar un circuito de sangre disponible en el mercado.
La capacidad de la columna para adsorción puede evaluarse, por ejemplo, mediante un ensayo de circulación en columna usando como índice la tasa de adsorción de IL-8, que es un tipo de materia orgánica. A una solución de FBS utilizada en el ensayo de medición de pérdida de presión, se añade IL-8 de antemano en una cantidad de manera que la concentración sea de 2000 pg/ml y después de un paso de líquido durante 2 horas, la concentración de IL-8 en la solución de FBS se mide mediante un ensayo inmunosorbente ligado a enzimas (ELISA). A partir de la tasa de reducción de 2000 pg/ml, puede obtenerse la tasa de adsorción de circulación de IL-8. Por ejemplo, cuando la concentración de IL-8 en la solución de FBS después del paso de líquido durante 2 horas es de 500 pg/ml, 100 x (2000 pg/ml - 500 pg/ml) 2000 pg/ml=75 % es la tasa de adsorción de circulación de IL-8.
Durante el tratamiento de adsorción usando el soporte para adsorber materia orgánica de la presente realización, si la fuerza del soporte para adsorber materia orgánica es insuficiente, la superficie de la fibra se desprende en forma de partículas finas debido a la fractura por fragilidad provocada por la fricción con el líquido y estas partículas finas se mezclan en la solución que ha pasado. Por lo tanto, no puede lograrse el fin de recoger la materia orgánica adsorbida y separar y retirar la materia orgánica del líquido. En particular, cuando el soporte para adsorber materia orgánica se usa para la circulación extracorpórea, las partículas finas generadas pueden mezclarse en el cuerpo. En este caso, debe instalarse un filtro separado para garantizar la seguridad y, por lo tanto, la gestión se complica. Por lo tanto, es deseable que el soporte para adsorber materia orgánica no esté sometido a fractura por fragilidad en la medida de lo posible durante la circulación. La ocurrencia de la fractura por fragilidad puede evaluarse midiendo la cantidad de partículas finas generadas a partir del soporte para adsorber materia orgánica.
Como método para evaluar la cantidad de partículas finas generadas a partir del soporte para adsorber materia orgánica, se recorta una determinada área del soporte para adsorber materia orgánica y se rellena en una celda, el agua de la celda se agita para extraer las partículas finas y, después, se mide la cantidad de partículas finas obtenidas de este modo mediante extracción. Cuando el soporte para adsorber materia orgánica se somete a una fractura por fragilidad durante el uso y se generan partículas finas a partir del soporte, las partículas finas pueden mezclarse en el líquido que ha pasado. Por lo tanto, el soporte no puede usarse adecuadamente como soporte para adsorber materia orgánica. Por lo tanto, la cantidad de las partículas finas generadas es preferentemente de 20 partículas o menos por 1 ml de agua utilizada para la extracción de 0,01 cm3del soporte para adsorber materia orgánica. En particular, cuando el soporte para adsorber materia orgánica se usa para adsorber componentes de la sangre, en los casos en que el número de partículas finas generadas es de 20 partículas o menos, puede garantizarse el mismo nivel de seguridad que el del agua para inyección. En este caso, el soporte para adsorber materia orgánica particularmente puede usarse preferentemente para la circulación extracorpórea y similares.
Ejemplos
El soporte para adsorber materia orgánica de acuerdo con la presente invención se describirá ahora específicamente con referencia a los Ejemplos.
(Preparación de la Fibra A)
Una fibra compuesta sólida de tipo mar-isla de 32 islas descrita en la Descripción de Patente 5293599 B2, en donde las islas eran además materiales compuestos de núcleo-envoltura (en lo sucesivo en el presente documento, Fibra A), se obtuvo usando los siguientes componentes en condiciones de hilatura incluyendo una tasa de hilado de 800 m/minuto.
Componente de núcleo de la isla: polipropileno
Componente de envoltura de la isla: poliestireno y polipropileno amasados en una relación del 90 % en peso y el 10 % en peso, respectivamente
Componente de mar: copoliéster cuya unidad de repetición principal es una unidad de tereftalato de etileno y que contiene un 3 % en peso de ácido 5-sulfoisoftálico de sodio como componente de copolimerización (en lo sucesivo en el presente documento, PETIFA)
Relación de compuesto (relación en peso): componente de núcleo de la isla:componente de envoltura de la isla:componente de mar = 41,5:33,5:25
Finura única: 8,0 dtex (diámetro de fibra: 32 pm)
(Preparación de la Fibra B)
Una fibra compuesta sólida de tipo mar-isla de 32 islas descrita en la Descripción de Patente 5293599 B2, en donde las islas eran además materiales compuestos de núcleo-envoltura (en lo sucesivo en el presente documento, Fibra B), se obtuvo usando los siguientes componentes en condiciones de hilatura incluyendo una tasa de hilado de 800 m/minuto.
Componente de núcleo de la Isla: polipropileno
Componente de envoltura de la Isla: poliestireno
Componente de mar: PETIFA
Relación de compuesto (relación en peso): componente de núcleo de la isla:componente de envoltura de la isla:componente de mar = 41,5:33,5:25
Finura única: 8,0 dtex (diámetro de fibra: 32 |jm)
(Preparación de la fibra C)
Una fibra compuesta sólida de tipo mar-isla de 32 islas descrita en la Descripción de
Patente 5293599 B2, en donde las islas eran además materiales compuestos de núcleo-envoltura (en lo sucesivo en el presente documento, Fibra C), se obtuvo usando los siguientes componentes en condiciones de hilatura incluyendo una tasa de hilado de 800 m/minuto.
Componente de núcleo de la isla: polipropileno
Componente de envoltura de la isla: poliestireno y polipropileno amasados en una relación del 90 % en peso y el 10 % en peso, respectivamente
Componente de mar: p e t if a
Relación de compuesto (relación en peso) componente de núcleo de la island:envoltura componente de isla: componente de mar = 65:10:25
Finura única: 68,3 dtex (diámetro de fibra: 94 jm )
(Preparación de la Fibra D)
El poliestireno, como componente de mar, y el polipropileno, como componente de isla, se fundieron y dosificaron por separado, y fluyeron en un paquete de hilado que integraba una hilera compuesta de mar-isla en la que se formaron 704 orificios de distribución para el componente de isla por orificio de descarga. Este flujo compuesto de mar-isla después se descargó por fusión. La relación de isla se controló al 50 % en peso, la distancia desde la superficie de la fibra compuesta sólida de tipo mar-isla hasta el componente de isla más externo se ajustó a 2 jm . Por lo tanto, se recogió una fibra compuesta sólida de tipo mar-isla (en lo sucesivo en el presente documento, Fibra D) que tenía una finura única de 1,6 dtex (diámetro de fibra: 15 jm).
(Preparación de la Fibra E)
Una mezcla compatible del 90 % en peso de poliestireno y el 10% en peso de poliestireno sindiotáctico, como componente de mar, y polipropileno, como componente de isla, se fundieron y dosificaron por separado, y fluyeron en un paquete de hilado que integraba una hilera compuesta de mar-isla en la que se formaron 704 orificios de distribución para el componente de isla por orificio de descarga. Este flujo compuesto de mar-isla después se descargó por fusión. La relación de isla se controló al 50 % en peso, la distancia desde la superficie de la fibra compuesta sólida de tipo mar-isla hasta el componente de isla más externo se ajustó a 1 jm . Por lo tanto, se recogió una fibra compuesta sólida de tipo mar-isla (en lo sucesivo en el presente documento, Fibra E) que tenía una finura única de 3,0 dtex (diámetro de fibra: 20 jm).
(Preparación de la Fibra F)
El poliestireno sindiotáctico, como componente de mar, y el polipropileno, como componente de isla, se fundieron y dosificaron por separado, y fluyeron en un paquete de hilado que integraba una hilera compuesta de mar-isla en la que se formaron 704 orificios de distribución para el componente de isla por orificio de descarga. Este flujo compuesto de mar-isla después se descargó por fusión. La relación de isla se controló al 50 % en peso, la distancia desde la superficie de la fibra compuesta sólida de tipo mar-isla hasta el componente de isla más externo se ajustó a 2 jm . Por lo tanto, se recogió una fibra compuesta sólida de tipo mar-isla (en lo sucesivo en el presente documento, Fibra F) que tenía una finura única de 7,1 dtex (diámetro de fibra: 30 jm ).
(Preparación de la Fibra G)
El poliestireno, como componente de mar, y el polipropileno, como componente de isla, se fundieron y dosificaron por separado, y fluyeron en un paquete de hilado que integraba una hilera compuesta de mar-isla en la que se formaron 704 orificios de distribución para el componente de isla por orificio de descarga. Este flujo compuesto de mar-isla después se descargó por fusión. La relación de isla se controló al 50 % en peso, la distancia desde la superficie de la
fibra compuesta sólida de tipo mar-isla hasta el componente de isla más externo se ajustó a 2 pm. Por lo tanto, se recogió una fibra compuesta sólida de tipo mar-isla (en lo sucesivo en el presente documento, Fibra G) que tenía una finura única de 3,0 dtex (diámetro de fibra: 20 pm).
(Preparación de la Fibra H)
El poliestireno, como componente de mar, y el polipropileno, como componente de isla, se fundieron y dosificaron por separado, y fluyeron en un paquete de hilado que integraba una hilera compuesta de mar-isla en la que se formaron 704 orificios de distribución para el componente de isla por orificio de descarga. Este flujo compuesto de mar-isla después se descargó por fusión. La relación de isla se controló al 20 % en peso, la distancia desde la superficie de la fibra compuesta sólida de tipo mar-isla hasta el componente de isla más externo se ajustó a 5 pm. Por lo tanto, se recogió una fibra compuesta sólida de tipo mar-isla (en lo sucesivo en el presente documento, Fibra H) que tenía una finura única de 3,0 dtex (diámetro de fibra: 20 pm).
(Preparación de la Fibra I)
El poliestireno, como componente de mar, y el polipropileno, como componente de isla, se fundieron y dosificaron por separado, y fluyeron en un paquete de hilado que integraba una hilera compuesta de mar-isla en la que se formaron 704 orificios de distribución para el componente de isla por orificio de descarga. Este flujo compuesto de mar-isla después se descargó por fusión. La relación de isla se controló al 50 % en peso, la distancia desde la superficie de la fibra compuesta sólida de tipo mar-isla hasta el componente de isla más externo se ajustó a 2 pm. Por lo tanto, se recogió una fibra compuesta sólida de tipo mar-isla (en lo sucesivo en el presente documento, Fibra I) que tenía una finura única de 9,0 dtex (diámetro de fibra: 34 pm).
(Preparación de la Fibra J)
El poliestireno, como componente de mar, y el polipropileno, como componente de isla, se fundieron y dosificaron por separado, y fluyeron en un paquete de hilado que integraba una hilera compuesta de mar-isla en la que se formaron 704 orificios de distribución para el componente de isla por orificio de descarga. Este flujo compuesto de mar-isla después se descargó por fusión. La relación de isla se controló al 50 % en peso, la distancia desde la superficie de la fibra compuesta sólida de tipo mar-isla hasta el componente de isla más externo se ajustó a 2 pm. Por lo tanto, se recogió una fibra compuesta sólida de tipo mar-isla (en lo sucesivo en el presente documento, Fibra J) que tenía una finura única de 12,0 dtex (diámetro de fibra: 40 pm).
(Preparación de la Fibra K)
El poliestireno, como componente de mar, y el polipropileno, como componente de isla, se fundieron y dosificaron por separado, y fluyeron en un paquete de hilado que integraba una hilera compuesta de mar-isla en la que se formaron 210 orificios de distribución para el componente de isla por orificio de descarga. Este flujo compuesto de mar-isla después se descargó por fusión. La relación de isla se controló al 50 % en peso, la distancia desde la superficie de la fibra compuesta sólida de tipo mar-isla hasta el componente de isla más externo se ajustó a 2 pm. Por lo tanto, se recogió una fibra compuesta sólida de tipo mar-isla (en lo sucesivo en el presente documento, Fibra K) que tenía una finura única de 3,0 dtex (diámetro de fibra: 20 pm).
(Preparación de la Fibra L)
El poliestireno, como componente de mar, y el polipropileno, como componente de isla, se fundieron y dosificaron por separado, y fluyeron en un paquete de hilado que integraba una hilera compuesta de mar-isla en la que se formaron 165 orificios de distribución para el componente de isla por orificio de descarga. Este flujo compuesto de mar-isla después se descargó por fusión. La relación de isla se controló al 50 % en peso, la distancia desde la superficie de la fibra compuesta sólida de tipo mar-isla hasta el componente de isla más externo se ajustó a 2 pm. Por lo tanto, se recogió una fibra compuesta sólida de tipo mar-isla (en lo sucesivo en el presente documento, Fibra L) que tenía una finura única de 3,0 dtex (diámetro de fibra: 20 pm).
(Preparación de la Fibra M)
El poliestireno, como componente de mar, y el polipropileno, como componente de isla, se fundieron y dosificaron por separado, y fluyeron en un paquete de hilado que integraba una hilera compuesta de mar-isla en la que se formaron 67 orificios de distribución para el componente de isla por orificio de descarga. Este flujo compuesto de mar-isla después se descargó por fusión. La relación de isla se controló al 50 % en peso, la distancia desde la superficie de la fibra compuesta sólida de tipo mar-isla hasta el componente de isla más externo se ajustó a 2 pm. Por lo tanto, se recogió una fibra compuesta sólida de tipo mar-isla (en lo sucesivo en el presente documento, Fibra M) que tenía una finura única de 3,0 dtex (diámetro de fibra: 20 pm).
(Preparación de Tejido de Punto A)
La Fibra A se convirtió en un punto circular usando una máquina de punto circular (nombre de la máquina: una máquina de punto circular, MR-1, fabricada por Maruzen Sangyo Co., Ltd.), y además se impregnó con una solución acuosa de hidróxido de sodio al 3 % a 95 °C durante 8 horas para hidrolizar el PETIFA del componente de mar. El tejido A, después de la hidrólisis, se lavó con agua hasta que el tejido se volvió neutro y después se secó. Por lo tanto, el PETiFA del componente de mar se retiró por completo y solo quedó el componente de isla de la fibra sólida de tipo núcleo-envoltura. Este tratamiento dio como resultado un tejido de punto circular A que estaba compuesto por una fibra sólida de tipo núcleo-envoltura que tenía una finura única de 0,2 dtex (diámetro de fibra: 5 pm) y que tenía un peso base de 0,0046 g/cm2 y una densidad aparente de 0,4 g/cm3 (en lo sucesivo en el presente documento, Tejido de Punto A).
(Preparación de Tejido de Punto B)
Se realizó la misma operación que en la preparación de Tejido de Punto A, excepto porque se usó Tejido B en lugar de Tejido A para preparar un tejido B tejido circularmente que estaba compuesto por una fibra sólida de tipo núcleoenvoltura que tiene una finura única de 0,2 dtex (diámetro de fibra: 5 pm) y que tenía un peso base de 0,0046 g/cm2 y una densidad aparente de 0,4 g/cm3 (en lo sucesivo en el presente documento, Tejido de Punto B).
(Preparación de Tejido de Punto C)
Se realizó la misma operación que en la preparación de Tejido de Punto A, excepto porque se usó Tejido C en lugar de Tejido A para preparar un tejido C tejido circularmente que estaba compuesto por una fibra sólida de tipo núcleoenvoltura que tiene una finura única de 1,6 dtex (diámetro de fibra: 15 pm) y que tenía un peso base de 0,0046 g/cm2 y una densidad aparente de 0,4 g/cm3 (en lo sucesivo en el presente documento, Tejido de Punto C).
(Preparación de Tejido de Punto D)
Se usó Fibra D y la escala de ajuste de densidad de una máquina de punto circular (nombre de la máquina: una máquina de punto circular, MR-1, fabricada por Maruzen Sangyo Co., Ltd.) se ajustó para preparar un tejido de punto circular D que tenía un peso base de 0,0039 g/cm2 y una densidad aparente de 0,22 g/cm3 (en lo sucesivo en el presente documento, Tejido de Punto D).
(Preparación de Tejido de Punto E)
Se usó Fibra E y la escala de ajuste de densidad de una máquina de punto circular (nombre de la máquina: una máquina de punto circular, MR-1, fabricada por Maruzen Sangyo Co., Ltd.) se ajustó para preparar un tejido de punto circular E que tenía un peso base de 0,0039 g/cm2 y una densidad aparente de 0,22 g/cm3 (en lo sucesivo en el presente documento, Tejido de Punto E).
(Preparación de Tejido de Punto F)
Se usó Fibra F y la escala de ajuste de densidad de una máquina de punto circular (nombre de la máquina: una máquina de punto circular, MR-1, fabricada por Maruzen Sangyo Co., Ltd.) se ajustó para preparar un tejido de punto circular F que tenía un peso base de 0,0039 g/cm2 y una densidad aparente de 0,22 g/cm3 (en lo sucesivo en el presente documento, Tejido de Punto F).
(Preparación de Tejido de Punto G)
Se usó Fibra G y la escala de ajuste de densidad de una máquina de punto circular (nombre de la máquina: una máquina de punto circular, MR-1, fabricada por Maruzen Sangyo Co., Ltd.) se ajustó para preparar un tejido de punto circular G que tenía un peso base de 0,0039 g/cm2 y una densidad aparente de 0,22 g/cm3 (en lo sucesivo en el presente documento, Tejido de Punto G).
(Preparación de Tejido de Punto H)
Se usó Fibra H y la escala de ajuste de densidad de una máquina de punto circular (nombre de la máquina: una máquina de punto circular, MR-1, fabricada por Maruzen Sangyo Co., Ltd.) se ajustó para preparar un tejido de punto circular H que tenía un peso base de 0,0039 g/cm2 y una densidad aparente de 0,22 g/cm3 (en lo sucesivo en el presente documento, Tejido de Punto H).
(Preparación de Tejido de Punto I)
Se usó Fibra I y la escala de ajuste de densidad de una máquina de punto circular (nombre de la máquina: una máquina de punto circular, MR-1, fabricada por Maruzen Sangyo Co., Ltd.) se ajustó para preparar un tejido de punto circular I que tenía un peso base de 0,0039 g/cm2 y una densidad aparente de 0,22 g/cm3 (en lo sucesivo en el presente documento, Tejido de Punto I).
(Preparación de Tejido de Punto J)
Se usó Fibra J y la escala de ajuste de densidad de una máquina de punto circular (nombre de la máquina: una máquina de punto circular, MR-1, fabricada por Maruzen Sangyo Co., Ltd.) se ajustó para preparar un tejido de punto circular J que tenía un peso base de 0,0039 g/cm2 y una densidad aparente de 0,22 g/cm3 (en lo sucesivo en el presente documento, Tejido de Punto J).
(Preparación de Tejido de Punto K)
Se usó Fibra K y la escala de ajuste de densidad de una máquina de punto circular (nombre de la máquina: una máquina de punto circular, MR-1, fabricada por Maruzen Sangyo Co., Ltd.) se ajustó para preparar un tejido de punto circular K que tenía un peso base de 0,0039 g/cm2 y una densidad aparente de 0,22 g/cm3 (en lo sucesivo en el presente documento, Tejido de Punto K).
(Preparación de Tejido de Punto L)
Se usó Fibra L y la escala de ajuste de densidad de una máquina de punto circular (nombre de la máquina: una máquina de punto circular, MR-1, fabricada por Maruzen Sangyo Co., Ltd.) se ajustó para preparar un tejido de punto circular L que tenía un peso base de 0,0039 g/cm2 y una densidad aparente de 0,22 g/cm3 (en lo sucesivo en el presente documento, Tejido de Punto L).
(Preparación de Tejido de Punto M)
Se usó Fibra M y la escala de ajuste de densidad de una máquina de punto circular (nombre de la máquina: una máquina de punto circular, MR-1, fabricada por Maruzen Sangyo Co., Ltd.) se ajustó para preparar un tejido de punto circular M que tenía un peso base de 0,0039 g/cm2 y una densidad aparente de 0,22 g/cm3 (en lo sucesivo en el presente documento, Tejido de Punto M).
(Preparación del Soporte para Adsorber Materia Orgánica 1)
Se añadió N-hidroximetil-2-cloroacetamida (en lo sucesivo en el presente documento, NMCA) en una cantidad de 2,3 g a una mezcla de solución de 31 g de nitrobenceno y 31 g de ácido sulfúrico al 98 % en peso, y la mezcla resultante se agitó a 10°C hasta que el NMCA se disolvió en la solución, para obtener una solución de NMCA. Después, se añadieron 0,2 g de paraformaldehído (en lo sucesivo en el presente documento, PFA) a una mezcla de solución de 2,0 g de nitrobenceno y 2,0 g de ácido sulfúrico al 98 % en peso, y la mezcla resultante se agitó a 20 °C hasta que el PFA se disolvió en la solución, para obtener una solución de PFA. La solución de PFA en una cantidad de 4,2 g se enfrió a 5 °C y se mezcló con 64,3 g de la solución de NMCA, la mezcla resultante se agitó durante 5 minutos, se añadió 1 g de Tejido de Punto A a la mezcla para impregnarse con la mezcla durante 2 horas. El Tejido de Punto A impregnado se sumergió en 200 ml de nitrobenceno a 0 °C para finalizar de este modo la reacción, y el nitrobenceno adherido al Tejido de Punto se lavó con metanol.
Se disolvió tetraetilenpentamina (en lo sucesivo en el presente documento, TEPA) en una cantidad de 0,24 g y trietilamina en una cantidad de 2,1 g en 51 g de DMSO, y a esta solución, se le añadió el Tejido de Punto A lavado con metanol tal cual. El Tejido se impregnó con la solución a 40 °C durante 3 horas. El Tejido de Punto se recogió en un filtro de vidrio por filtración y se lavó con 500 ml de DMSO.
A 47 g de DMSO que fue secaron preliminarmente por deshidratación con tamices moleculares activados 3A, se le añadieron 0,075 g de isocianato de p-clorofenilo en una atmósfera de nitrógeno, la mezcla resultante se calentó a 30 °C y toda la cantidad de Tejido de Punto A lavado se impregnó con la mezcla durante 1 hora. El Tejido de Punto se recogió en un filtro de vidrio por filtración para obtener el Tejido de Punto 1 que era un soporte para adsorber materia orgánica (en lo sucesivo en el presente documento, Soporte para Adsorber Materia Orgánica 1).
Medición del diámetro de fibra de fibras compuestas sólidas de tipo mar-isla contenidas en un Soporte para Adsorber Materia Orgánica 1:
En primer lugar, se congeló e incrustó Soporte para Adsorber Materia Orgánica 1 y se preparó una sección transversal perpendicular a la dirección del eje de la fibra de las fibras compuestas sólidas de tipo mar-isla contenidas en el Soporte para Adsorber Materia Orgánica 1 mediante un microtomo. La superficie obtenida para la observación se sometió a un tratamiento de conductividad y se usó como muestra de observación. La sección transversal de la muestra de observación se observó aleatoriamente usando un microscopio electrónico de barrido de emisión de campo S-5500 fabricado por Hitachi High-Technologies, y se fotografiaron 100 imágenes transversales. En las imágenes transversales obtenidas se creó un círculo envolvente mínimo sobre una sección transversal de fibra y se calculó el diámetro del círculo envolvente mínimo. Esta operación se realizó para las 100 imágenes transversales y el valor promedio de los diámetros obtenidos se usó como diámetro de fibra. Los resultados se muestran en la Tabla 1.
Medición del volumen de poro de fibras compuestas sólidas de tipo mar-isla contenidas en un Soporte para Adsorber Materia Orgánica 1:
Aproximadamente 6 mg de Soporte para Adsorber Materia Orgánica 1 impregnado con agua se extrajo inmediatamente antes de la medición de la CDB, y después de retirar el exceso de agua adherida a la superficie, el Soporte para Adsorber Materia Orgánica 1 estaba encerrado en un recipiente de muestra de sellado de aluminio. Usando un DSC Q100 fabricado por TA Instruments, el Soporte para Adsorber Materia Orgánica 1 se enfrió rápidamente a -55 °C en estado húmedo y después se calentó a 5 °C con un aumento de temperatura de 0,3 °C/min para medir el valor calorífico diferencial de barrido, y usando la temperatura máxima como punto de fusión, se obtuvo una curva de CDB. Se usó agua pura para la calibración de la temperatura y el valor calorífico. A partir de la curva CDB obtenida, se calculó el volumen de poro de las fibras compuestas sólidas de tipo mar-isla contenidas en el Soporte para Adsorber Materia Orgánica 1 de acuerdo con el método de Ishikiriyama et al. (JOURNAL OF COLLOID AND INTERFACE SCIENCE, 1995, volumen 171, páginas 92-102 y páginas 103-111). Los resultados se muestran en la Tabla 1.
Medición del contenido de grupos funcionales básicos de fibras compuestas sólidas de tipo mar-isla contenidas en un Soporte para Adsorber Materia Orgánica 1:
El contenido de grupos funcionales básicos de las fibras compuestas sólidas de tipo mar-isla contenidas en el Soporte para Adsorber Materia Orgánica 1 se midió mediante la retro-valoración ácido-base del grupo funcional básico de las fibras compuestas sólidas de tipo mar-isla. Puesto que el Soporte para Adsorber Materia Orgánica 1 no contenía un material de refuerzo, el peso del Soporte para Adsorber Materia Orgánica 1 se consideró como el peso de las fibras compuestas sólidas de tipo mar-isla en la medición. El Soporte para Adsorber Materia Orgánica 1 en una cantidad de 1,5 g colocado en un matraz de fondo redondo de 200 ml se dejó reposar a 80 °C durante 48 horas en un secador. Por lo tanto, se obtuvo el Soporte para Adsorber Materia Orgánica 1 sometido a un tratamiento de secado. Después, en un recipiente de polipropileno, se añadieron 1,0 g del Soporte para Adsorber Materia Orgánica 1 anterior y 50 ml de una solución acuosa de hidróxido de sodio 6 M, el resultado se agitó durante 30 minutos y el Soporte para Adsorber Materia Orgánica 1 se recogió por filtración usando un filtro de papel. Después, el Soporte para Adsorber Materia Orgánica 1 filtrado se añadió a 5o ml de trihidrato de acetato de sodio y el resultado se agitó durante 30 minutos y se filtró a través de un papel de filtro. La adición del Soporte para Adsorber Materia Orgánica 1 al trihidrato de acetato de sodio y la filtración del Soporte para Adsorber Materia Orgánica 1 se repitieron hasta que el pH del trihidrato de acetato de sodio alcanzó 7 para obtener el Soporte para Adsorber Materia Orgánica 1 desalado. Después de que el Soporte para Adsorber Materia Orgánica 1 se dejara reposar a 80 °C en condiciones normales de presión durante 48 horas, se añadieron 1,0 g del Soporte para Adsorber Materia Orgánica 1 y 30 ml de ácido clorhídrico 0,1 M a un recipiente de polipropileno, y la solución resultante se agitó durante 10 minutos. Después de la agitación, se extrajeron 5 ml de la solución sola y se transfirieron a un recipiente de polipropileno. Después, a la solución obtenida, se añadieron gota a gota 0,1 ml de una solución acuosa de hidróxido de sodio 0,1 M. Después de la adición gota a gota, la solución resultante se agitó durante 10 minutos y se midió el pH de la solución. La misma operación de adición gota a gota, los 10 minutos de agitación y la medición del pH se repitieron 100 veces. La cantidad de la solución acuosa de hidróxido de sodio añadida gota a gota hasta que el pH de la solución superó 8,5 se consideró como título por 1 g. El contenido de grupos funcionales básicos por 1 g de las fibras compuestas sólidas de tipo mar-isla contenidas en el Soporte para Adsorber Materia Orgánica 1 se calculó usando el título por 1 g y la siguiente Ecuación 2. Los resultados se muestran en la Tabla 1.
Contenido de Grupos Funcionales Básicos por 1 g de Peso Seco de Fibras Compuestas Sólidas de Tipo Mar-Isla Contenidas en el Soporte para Adsorber Materia Orgánica 1 (mmol/g) = {Cantidad de Líquido de Ácido Clorhídrico 0,1 M Añadido (30 ml)/Cantidad de Líquido de Ácido Clorhídrico Extraído (5 ml)} x Título por 1 g (ml/g) x Concentración de Solución Acuosa de Hidróxido de Sodio (0,1 mol/l) Ecuación 2
Medición de la Distancia desde la Superficie de la Fibra Compuesta Sólida de Tipo Mar-Isla hasta el Componente de Isla Más Externo en las Fibras Compuestas Sólidas de Tipo Mar-Isla Contenidas en el Soporte para Adsorber Materia Orgánica 1:
En primer lugar, se congeló e incrustó Soporte para Adsorber Materia Orgánica 1 y se preparó una sección transversal perpendicular a la dirección del eje de la fibra de las fibras compuestas sólidas de tipo mar-isla contenidas en el Soporte para Adsorber Materia Orgánica 1 mediante un microtomo. La superficie obtenida para la observación se sometió a un tratamiento de conductividad y se usó como muestra de observación. Las imágenes de 10 posiciones seleccionadas aleatoriamente se fotografiaron con un aumento en el que se podían observar claramente los componentes de isla, usando un microscopio electrónico de barrido de emisión de campo S-5500 fabricado por Hitachi High-Technologies. En cada una de las 10 imágenes obtenidas, una fibra compuesta sólida de tipo mar-isla seleccionada aleatoriamente se dividió en seis partes a 60 grados (línea de doble trazo en la Fig. 2) desde el centro del círculo envolvente mínimo de la imagen de la sección transversal de la fibra, y la distancia más corta desde la superficie de la fibra hasta el componente de isla más externo (d1 en la Fig. 2) en cada sección transversal de la fibra dividida se midió en pm con un decimal. Cuando un componente de isla sobresalí de la superficie de la fibra, la distancia era de 0,0 pm (d2 en la Fig. 2). Cuando un componente de isla abarcaba una pluralidad de secciones transversales de fibra divididas y el componente de isla era el componente de isla más externo en la pluralidad de secciones transversales de fibra divididas, se midió la distancia más corta desde la superficie de la fibra hasta el componente de isla en cada una de las secciones transversales de la fibra dividida (d4, d5 en la Fig. 2). El valor promedio de las distancias medidas como se ha descrito anteriormente en cada una de las secciones transversales de fibra dividida (por ejemplo, el valor promedio de d1, d2, d3, d4, d5 y d6 en la Fig. 2) se calculó para todas las 10 imágenes, y el valor promedio obtenido de este modo se definió como la distancia desde la superficie de la fibra
compuesta sólida de tipo mar-isla hasta el componente de isla más externo. Los resultados se muestran en la Tabla 1.
Medición del diámetro de isla máximo de componentes de isla de fibras compuestas sólidas de tipo mar-isla contenidas en el Soporte para Adsorber Materia Orgánica 1:
En primer lugar, se congeló e incrustó Soporte para Adsorber Materia Orgánica 1 y se preparó una sección transversal perpendicular a la dirección del eje de la fibra de las fibras compuestas sólidas de tipo mar-isla contenidas en el Soporte para Adsorber Materia Orgánica 1 mediante un microtomo. La superficie obtenida para la observación se sometió a un tratamiento de conductividad y se usó como muestra de observación. Las imágenes de 10 posiciones seleccionadas aleatoriamente se fotografiaron con un aumento en el que se podían observar claramente los componentes de isla, usando un microscopio electrónico de barrido de emisión de campo S-5500 fabricado por Hitachi High-Technologies. En las 10 imágenes obtenidas de este modo, se creó un círculo envolvente mínimo en un componente de isla seleccionado aleatoriamente y se calculó el diámetro del círculo envolvente mínimo y se usó como diámetro de isla. Esta operación se realizó en las 100 imágenes de los componentes de isla seleccionados y el diámetro de isla más grande se definió como el diámetro de isla máximo del componente de isla de la fibra compuesta sólida de tipo mar-isla. Los resultados se muestran en la Tabla 1.
(Preparación del Soporte para Adsorber Materia Orgánica 2)
Se realizó la misma operación que para el Soporte para Adsorber Materia Orgánica 1, excepto por que se usó el Tejido de Punto B en lugar del Tejido de Punto A, para obtener el Tejido de Punto 2 que era un soporte para adsorber materia orgánica (en lo sucesivo en el presente documento, Soporte para Adsorber Materia Orgánica 2).
Medición del diámetro de fibra de fibras compuestas sólidas de tipo mar-isla contenidas en un Soporte para Adsorber Materia Orgánica 2:
Se realizó la misma operación que para el Soporte para Adsorber Materia Orgánica 1 y se midió el diámetro de fibra de las fibras compuestas sólidas de tipo mar-isla contenidas en el Soporte para Adsorber Materia Orgánica 2. Los resultados se muestran en la Tabla 1.
Medición del volumen de poro de fibras compuestas sólidas de tipo mar-isla contenidas en un Soporte para Adsorber Materia Orgánica 2:
Se realizó la misma operación que para el Soporte para Adsorber Materia Orgánica 1 y se midió el volumen de poro de las fibras compuestas sólidas de tipo mar-isla contenidas en el Soporte para Adsorber Materia Orgánica 2. Los resultados se muestran en la Tabla 1.
Medición del contenido de grupos funcionales básicos de fibras compuestas sólidas de tipo mar-isla contenidas en un Soporte para Adsorber Materia Orgánica 2:
Se realizó la misma operación que para el Soporte para Adsorber Materia Orgánica 1 y se midió el contenido de grupos funcionales básicos de las fibras compuestas sólidas de tipo mar-isla contenidas en el Soporte para Adsorber Materia Orgánica 2. Los resultados se muestran en la Tabla 1.
Medición de la Distancia desde la Superficie de la Fibra Compuesta Sólida de Tipo Mar-Isla hasta el Componente de Isla Más Externo en las Fibras Compuestas Sólidas de Tipo Mar-Isla Contenidas en el Soporte para Adsorber Materia Orgánica 2:
Se realizó la misma operación que para el Soporte para Adsorber Materia Orgánica 1 y se midió la distancia desde la superficie de una fibra compuesta sólida de tipo mar-isla hasta el componente de isla más externo en las fibras compuestas sólidas de tipo mar-isla contenidas en el Soporte para Adsorber Materia Orgánica 2. Los resultados se muestran en la Tabla 1.
Medición del diámetro de isla máximo de componentes de isla de fibras compuestas sólidas de tipo mar-isla contenidas en el Soporte para Adsorber Materia Orgánica 2:
Se realizó la misma operación que para el Soporte para Adsorber Materia Orgánica 1 y se midió el diámetro de isla máximo de los componentes de isla de las fibras compuestas sólidas de tipo mar-isla contenidas en el Soporte para Adsorber Materia Orgánica 2. Los resultados se muestran en la Tabla 1.
(Preparación del Soporte para Adsorber Materia Orgánica 3)
Se realizó la misma operación que para el Soporte para Adsorber Materia Orgánica 1, excepto por que se usó el Tejido de Punto C en lugar del Tejido de Punto A, para obtener el Tejido de Punto 3 que era un soporte para adsorber materia orgánica (en lo sucesivo en el presente documento, Soporte para Adsorber Materia Orgánica 3).
Medición del diámetro de fibra de fibras compuestas sólidas de tipo mar-isla contenidas en un Soporte para Adsorber Materia Orgánica 3:
Se realizó la misma operación que para el Soporte para Adsorber Materia Orgánica 1 y se midió el diámetro de fibra de las fibras compuestas sólidas de tipo mar-isla contenidas en el Soporte para Adsorber Materia Orgánica 3. Los resultados se muestran en la Tabla 1.
Medición del volumen de poro de fibras compuestas sólidas de tipo mar-isla contenidas en un Soporte para Adsorber Materia Orgánica 3:
Se realizó la misma operación que para el Soporte para Adsorber Materia Orgánica 1 y se midió el volumen de poro de las fibras compuestas sólidas de tipo mar-isla contenidas en el Soporte para Adsorber Materia Orgánica 3. Los resultados se muestran en la Tabla 1.
Medición del contenido de grupos funcionales básicos de fibras compuestas sólidas de tipo mar-isla contenidas en un Soporte para Adsorber Materia Orgánica 3:
Se realizó la misma operación que para el Soporte para Adsorber Materia Orgánica 1 y se midió el contenido de grupos funcionales básicos de las fibras compuestas sólidas de tipo mar-isla contenidas en el Soporte para Adsorber Materia Orgánica 3. Los resultados se muestran en la Tabla 1.
Medición de la Distancia desde la Superficie de la Fibra Compuesta Sólida de Tipo Mar-Isla hasta el Componente de Isla Más Externo en las Fibras Compuestas Sólidas de Tipo Mar-Isla Contenidas en el Soporte para Adsorber Materia Orgánica 3:
Se realizó la misma operación que para el Soporte para Adsorber Materia Orgánica 1 y se midió la distancia desde la superficie de una fibra compuesta sólida de tipo mar-isla hasta el componente de isla más externo en las fibras compuestas sólidas de tipo mar-isla contenidas en el Soporte para Adsorber Materia Orgánica 3. Los resultados se muestran en la Tabla 1.
Medición del diámetro de isla máximo de componentes de isla de fibras compuestas sólidas de tipo mar-isla contenidas en el Soporte para Adsorber Materia Orgánica 3:
Se realizó la misma operación que para el Soporte para Adsorber Materia Orgánica 1 y se midió el diámetro de isla máximo de los componentes de isla de las fibras compuestas sólidas de tipo mar-isla contenidas en el Soporte para Adsorber Materia Orgánica 3. Los resultados se muestran en la Tabla 1.
(Preparación del Soporte para Adsorber Materia Orgánica 4)
Se realizó la misma operación que para el Soporte para Adsorber Materia Orgánica 1, excepto por que se usó el Tejido de Punto D en lugar del Tejido de Punto A, para obtener el Tejido de Punto 4 que era un soporte para adsorber materia orgánica (en lo sucesivo en el presente documento, Soporte para Adsorber Materia Orgánica 4).
Medición del diámetro de fibra de fibras compuestas sólidas de tipo mar-isla contenidas en un Soporte para Adsorber Materia Orgánica 4:
Se realizó la misma operación que para el Soporte para Adsorber Materia Orgánica 1 y se midió el diámetro de fibra de las fibras compuestas sólidas de tipo mar-isla contenidas en el Soporte para Adsorber Materia Orgánica 4. Los resultados se muestran en la Tabla 1.
Medición del volumen de poro de fibras compuestas sólidas de tipo mar-isla contenidas en un Soporte para Adsorber Materia Orgánica 4:
Se realizó la misma operación que para el Soporte para Adsorber Materia Orgánica 1 y se midió el volumen de poro de las fibras compuestas sólidas de tipo mar-isla contenidas en el Soporte para Adsorber Materia Orgánica 4. Los resultados se muestran en la Tabla 1.
Medición del contenido de grupos funcionales básicos de fibras compuestas sólidas de tipo mar-isla contenidas en un Soporte para Adsorber Materia Orgánica 4:
Se realizó la misma operación que para el Soporte para Adsorber Materia Orgánica 1 y se midió el contenido de grupos funcionales básicos de las fibras compuestas sólidas de tipo mar-isla contenidas en el Soporte para Adsorber Materia Orgánica 4. Los resultados se muestran en la Tabla 1.
Medición de la Distancia desde la Superficie de la Fibra Compuesta Sólida de Tipo Mar-Isla hasta el Componente de Isla Más Externo en las Fibras Compuestas Sólidas de Tipo Mar-Isla Contenidas en el Soporte para Adsorber Materia Orgánica 4:
Se realizó la misma operación que para el Soporte para Adsorber Materia Orgánica 1 y se midió la distancia desde la superficie de una fibra compuesta sólida de tipo mar-isla hasta el componente de isla más externo en las fibras compuestas sólidas de tipo mar-isla contenidas en el Soporte para Adsorber Materia Orgánica 4. Los resultados se muestran en la Tabla 1.
Medición del diámetro de isla máximo de componentes de isla de fibras compuestas sólidas de tipo mar-isla contenidas en el Soporte para Adsorber Materia Orgánica 4:
Se realizó la misma operación que para el Soporte para Adsorber Materia Orgánica 1 y se midió el diámetro de isla máximo de los componentes de isla de las fibras compuestas sólidas de tipo mar-isla contenidas en el Soporte para Adsorber Materia Orgánica 4. Los resultados se muestran en la Tabla 1.
(Preparación del Soporte para Adsorber Materia Orgánica 5)
Se realizó la misma operación que para el Soporte para Adsorber Materia Orgánica 1, excepto por que se usó el Tejido de Punto E en lugar del Tejido de Punto A, para obtener el Tejido de Punto 5 que era un soporte para adsorber materia orgánica (en lo sucesivo en el presente documento, Soporte para Adsorber Materia Orgánica 5).
Medición del diámetro de fibra de fibras compuestas sólidas de tipo mar-isla contenidas en un Soporte para Adsorber Materia Orgánica 5:
Se realizó la misma operación que para el Soporte para Adsorber Materia Orgánica 1 y se midió el diámetro de fibra de las fibras compuestas sólidas de tipo mar-isla contenidas en el Soporte para Adsorber Materia Orgánica 5. Los resultados se muestran en la Tabla 1.
Medición del volumen de poro de fibras compuestas sólidas de tipo mar-isla contenidas en un Soporte para Adsorber Materia Orgánica 5:
Se realizó la misma operación que para el Soporte para Adsorber Materia Orgánica 1 y se midió el volumen de poro de las fibras compuestas sólidas de tipo mar-isla contenidas en el Soporte para Adsorber Materia Orgánica 5. Los resultados se muestran en la Tabla 1.
Medición del contenido de grupos funcionales básicos de fibras compuestas sólidas de tipo mar-isla contenidas en un Soporte para Adsorber Materia Orgánica 5:
Se realizó la misma operación que para el Soporte para Adsorber Materia Orgánica 1 y se midió el contenido de grupos funcionales básicos de las fibras compuestas sólidas de tipo mar-isla contenidas en el Soporte para Adsorber Materia Orgánica 5. Los resultados se muestran en la Tabla 1.
Medición de la Distancia desde la Superficie de la Fibra Compuesta Sólida de Tipo Mar-Isla hasta el Componente de Isla Más Externo en las Fibras Compuestas Sólidas de Tipo Mar-Isla Contenidas en el Soporte para Adsorber Materia Orgánica 5:
Se realizó la misma operación que para el Soporte para Adsorber Materia Orgánica 1 y se midió la distancia desde la superficie de una fibra compuesta sólida de tipo mar-isla hasta el componente de isla más externo en las fibras compuestas sólidas de tipo mar-isla contenidas en el Soporte para Adsorber Materia Orgánica 5. Los resultados se muestran en la Tabla 1.
Medición del diámetro de isla máximo de componentes de isla de fibras compuestas sólidas de tipo mar-isla contenidas en el Soporte para Adsorber Materia Orgánica 5:
Se realizó la misma operación que para el Soporte para Adsorber Materia Orgánica 1 y se midió el diámetro de isla máximo de los componentes de isla de las fibras compuestas sólidas de tipo mar-isla contenidas en el Soporte para Adsorber Materia Orgánica 5. Los resultados se muestran en la Tabla 1.
(Preparación del Soporte para Adsorber Materia Orgánica 6)
Se realizó la misma operación que para el Soporte para Adsorber Materia Orgánica 1, excepto por que se usó el Tejido de Punto F en lugar del Tejido de Punto A, para obtener el Tejido de Punto 6 que era un soporte para adsorber materia orgánica (en lo sucesivo en el presente documento, Soporte para Adsorber Materia Orgánica 6).
Medición del diámetro de fibra de fibras compuestas sólidas de tipo mar-isla contenidas en un Soporte para Adsorber Materia Orgánica 6:
Se realizó la misma operación que para el Soporte para Adsorber Materia Orgánica 1 y se midió el diámetro de fibra de las fibras compuestas sólidas de tipo mar-isla contenidas en el Soporte para Adsorber Materia Orgánica 6. Los resultados se muestran en la Tabla 1.
Medición del volumen de poro de fibras compuestas sólidas de tipo mar-isla contenidas en un Soporte para Adsorber Materia Orgánica 6:
Se realizó la misma operación que para el Soporte para Adsorber Materia Orgánica 1 y se midió el volumen de poro de las fibras compuestas sólidas de tipo mar-isla contenidas en el Soporte para Adsorber Materia Orgánica 6. Los resultados se muestran en la Tabla 1.
Medición del contenido de grupos funcionales básicos de fibras compuestas sólidas de tipo mar-isla contenidas en un Soporte para Adsorber Materia Orgánica 6:
Se realizó la misma operación que para el Soporte para Adsorber Materia Orgánica 1 y se midió el contenido de grupos funcionales básicos de las fibras compuestas sólidas de tipo mar-isla contenidas en el Soporte para Adsorber Materia Orgánica 6. Los resultados se muestran en la Tabla 1.
Medición de la Distancia desde la Superficie de la Fibra Compuesta Sólida de Tipo Mar-Isla hasta el Componente de Isla Más Externo en las Fibras Compuestas Sólidas de Tipo Mar-Isla Contenidas en el Soporte para Adsorber Materia Orgánica 6:
Se realizó la misma operación que para el Soporte para Adsorber Materia Orgánica 1 y se midió la distancia desde la superficie de una fibra compuesta sólida de tipo mar-isla hasta el componente de isla más externo en las fibras
compuestas sólidas de tipo mar-isla contenidas en el Soporte para Adsorber Materia Orgánica 6. Los resultados se muestran en la Tabla 1.
Medición del diámetro de isla máximo de componentes de isla de fibras compuestas sólidas de tipo mar-isla contenidas en el Soporte para Adsorber Materia Orgánica 6:
Se realizó la misma operación que para el Soporte para Adsorber Materia Orgánica 1 y se midió el diámetro de isla máximo de los componentes de isla de las fibras compuestas sólidas de tipo mar-isla contenidas en el Soporte para Adsorber Materia Orgánica 6. Los resultados se muestran en la Tabla 1.
(Preparación del Soporte para Adsorber Materia Orgánica 7)
Se realizó la misma operación que para el Soporte para Adsorber Materia Orgánica 1, excepto por que se usó el Tejido de Punto G en lugar del Tejido de Punto A, para obtener el Tejido de Punto 7 que era un soporte para adsorber materia orgánica (en lo sucesivo en el presente documento, Soporte para Adsorber Materia Orgánica 7).
Medición del diámetro de fibra de fibras compuestas sólidas de tipo mar-isla contenidas en un Soporte para Adsorber Materia Orgánica 7:
Se realizó la misma operación que para el Soporte para Adsorber Materia Orgánica 1 y se midió el diámetro de fibra de las fibras compuestas sólidas de tipo mar-isla contenidas en el Soporte para Adsorber Materia Orgánica 7. Los resultados se muestran en la Tabla 1.
Medición del volumen de poro de fibras compuestas sólidas de tipo mar-isla contenidas en un Soporte para Adsorber Materia Orgánica 7:
Se realizó la misma operación que para el Soporte para Adsorber Materia Orgánica 1 y se midió el volumen de poro de las fibras compuestas sólidas de tipo mar-isla contenidas en el Soporte para Adsorber Materia Orgánica 7. Los resultados se muestran en la Tabla 1.
Medición del contenido de grupos funcionales básicos de fibras compuestas sólidas de tipo mar-isla contenidas en un Soporte para Adsorber Materia Orgánica 7:
Se realizó la misma operación que para el Soporte para Adsorber Materia Orgánica 1 y se midió el contenido de grupos funcionales básicos de las fibras compuestas sólidas de tipo mar-isla contenidas en el Soporte para Adsorber Materia Orgánica 7. Los resultados se muestran en la Tabla 1.
Medición de la Distancia desde la Superficie de la Fibra Compuesta Sólida de Tipo Mar-Isla hasta el Componente de Isla Más Externo en las Fibras Compuestas Sólidas de Tipo Mar-Isla Contenidas en el Soporte para Adsorber Materia Orgánica 7:
Se realizó la misma operación que para el Soporte para Adsorber Materia Orgánica 1 y se midió la distancia desde la superficie de una fibra compuesta sólida de tipo mar-isla hasta el componente de isla más externo en las fibras compuestas sólidas de tipo mar-isla contenidas en el Soporte para Adsorber Materia Orgánica 7. Los resultados se muestran en la Tabla 1.
Medición del diámetro de isla máximo de componentes de isla de fibras compuestas sólidas de tipo mar-isla contenidas en el Soporte para Adsorber Materia Orgánica 7:
Se realizó la misma operación que para el Soporte para Adsorber Materia Orgánica 1 y se midió el diámetro de isla máximo de los componentes de isla de las fibras compuestas sólidas de tipo mar-isla contenidas en el Soporte para Adsorber Materia Orgánica 7. Los resultados se muestran en la Tabla 1.
(Preparación del Soporte para Adsorber Materia Orgánica 8)
Se realizó la misma operación que para el Soporte para Adsorber Materia Orgánica 1, excepto por que se usó el Tejido de Punto G en lugar del Tejido de Punto A y que se cambió la cantidad de TEPA de 0,24 g a 0 g, para obtener el Tejido de Punto 8 que era un soporte para adsorber materia orgánica (en lo sucesivo en el presente documento, Soporte para Adsorber Materia Orgánica 8).
Medición del diámetro de fibra de fibras compuestas sólidas de tipo mar-isla contenidas en un Soporte para Adsorber Materia Orgánica 8:
Se realizó la misma operación que para el Soporte para Adsorber Materia Orgánica 1 y se midió el diámetro de fibra de las fibras compuestas sólidas de tipo mar-isla contenidas en el Soporte para Adsorber Materia Orgánica 8. Los resultados se muestran en la Tabla 1.
Medición del volumen de poro de fibras compuestas sólidas de tipo mar-isla contenidas en un Soporte para Adsorber Materia Orgánica 8:
Se realizó la misma operación que para el Soporte para Adsorber Materia Orgánica 1 y se midió el volumen de poro de las fibras compuestas sólidas de tipo mar-isla contenidas en el Soporte para Adsorber Materia Orgánica 8. Los resultados se muestran en la Tabla 1.
Medición del contenido de grupos funcionales básicos de fibras compuestas sólidas de tipo mar-isla contenidas en un Soporte para Adsorber Materia Orgánica 8:
Se realizó la misma operación que para el Soporte para Adsorber Materia Orgánica 1 y se midió el contenido de grupos funcionales básicos de las fibras compuestas sólidas de tipo mar-isla contenidas en el Soporte para Adsorber Materia Orgánica 8. Los resultados se muestran en la Tabla 1.
Medición de la Distancia desde la Superficie de la Fibra Compuesta Sólida de Tipo Mar-Isla hasta el Componente de Isla Más Externo en las Fibras Compuestas Sólidas de Tipo Mar-Isla Contenidas en el Soporte para Adsorber Materia Orgánica 8:
Se realizó la misma operación que para el Soporte para Adsorber Materia Orgánica 1 y se midió la distancia desde la superficie de una fibra compuesta sólida de tipo mar-isla hasta el componente de isla más externo en las fibras compuestas sólidas de tipo mar-isla contenidas en el Soporte para Adsorber Materia Orgánica 8. Los resultados se muestran en la Tabla 1.
Medición del diámetro de isla máximo de componentes de isla de fibras compuestas sólidas de tipo mar-isla contenidas en el Soporte para Adsorber Materia Orgánica 8:
Se realizó la misma operación que para el Soporte para Adsorber Materia Orgánica 1 y se midió el diámetro de isla máximo de los componentes de isla de las fibras compuestas sólidas de tipo mar-isla contenidas en el Soporte para Adsorber Materia Orgánica 8. Los resultados se muestran en la Tabla 1.
(Preparación del Soporte para Adsorber Materia Orgánica 9)
Se realizó la misma operación que para el Soporte para Adsorber Materia Orgánica 1, excepto por que se usó el Tejido de Punto G en lugar del Tejido de Punto A y que se cambió la cantidad de NMCA de 2,3 g a 6,9 g, para obtener el Tejido de Punto 9 que era un soporte para adsorber materia orgánica (en lo sucesivo en el presente documento, Soporte para Adsorber Materia Orgánica 9).
Medición del diámetro de fibra de fibras compuestas sólidas de tipo mar-isla contenidas en un Soporte para Adsorber Materia Orgánica 9:
Se realizó la misma operación que para el Soporte para Adsorber Materia Orgánica 1 y se midió el diámetro de fibra de las fibras compuestas sólidas de tipo mar-isla contenidas en el Soporte para Adsorber Materia Orgánica 9. Los resultados se muestran en la Tabla 1.
Medición del volumen de poro de fibras compuestas sólidas de tipo mar-isla contenidas en un Soporte para Adsorber Materia Orgánica 9:
Se realizó la misma operación que para el Soporte para Adsorber Materia Orgánica 1 y se midió el volumen de poro de las fibras compuestas sólidas de tipo mar-isla contenidas en el Soporte para Adsorber Materia Orgánica 9. Los resultados se muestran en la Tabla 1.
Medición del contenido de grupos funcionales básicos de fibras compuestas sólidas de tipo mar-isla contenidas en un Soporte para Adsorber Materia Orgánica 9:
Se realizó la misma operación que para el Soporte para Adsorber Materia Orgánica 1 y se midió el contenido de grupos funcionales básicos de las fibras compuestas sólidas de tipo mar-isla contenidas en el Soporte para Adsorber Materia Orgánica 9. Los resultados se muestran en la Tabla 1.
Medición de la Distancia desde la Superficie de la Fibra Compuesta Sólida de Tipo Mar-Isla hasta el Componente de Isla Más Externo en las Fibras Compuestas Sólidas de Tipo Mar-Isla Contenidas en el Soporte para Adsorber Materia Orgánica 9:
Se realizó la misma operación que para el Soporte para Adsorber Materia Orgánica 1 y se midió la distancia desde la superficie de una fibra compuesta sólida de tipo mar-isla hasta el componente de isla más externo en las fibras compuestas sólidas de tipo mar-isla contenidas en el Soporte para Adsorber Materia Orgánica 9. Los resultados se muestran en la Tabla 1.
Medición del diámetro de isla máximo de componentes de isla de fibras compuestas sólidas de tipo mar-isla contenidas en el Soporte para Adsorber Materia Orgánica 9:
Se realizó la misma operación que para el Soporte para Adsorber Materia Orgánica 1 y se midió el diámetro de isla máximo de los componentes de isla de las fibras compuestas sólidas de tipo mar-isla contenidas en el Soporte para Adsorber Materia Orgánica 9. Los resultados se muestran en la Tabla 1.
(Preparación del Soporte para Adsorber Materia Orgánica 10)
Se realizó la misma operación que para el Soporte para Adsorber Materia Orgánica 1, excepto por que se usó el Tejido de Punto H en lugar del Tejido de Punto A, para obtener el Tejido de Punto 10 que era un soporte para adsorber materia orgánica (en lo sucesivo en el presente documento, Soporte para Adsorber Materia Orgánica 10).
Medición del diámetro de fibra de fibras compuestas sólidas de tipo mar-isla contenidas en un Soporte para Adsorber
Materia Orgánica 10:
Se realizó la misma operación que para el Soporte para Adsorber Materia Orgánica 1 y se midió el diámetro de fibra de las fibras compuestas sólidas de tipo mar-isla contenidas en el Soporte para Adsorber Materia Orgánica 10. Los resultados se muestran en la Tabla 1.
Medición del volumen de poro de fibras compuestas sólidas de tipo mar-isla contenidas en un Soporte para Adsorber Materia Orgánica 10:
Se realizó la misma operación que para el Soporte para Adsorber Materia Orgánica 1 y se midió el volumen de poro de las fibras compuestas sólidas de tipo mar-isla contenidas en el Soporte para Adsorber Materia Orgánica 10. Los resultados se muestran en la Tabla 1.
Medición del contenido de grupos funcionales básicos de fibras compuestas sólidas de tipo mar-isla contenidas en un Soporte para Adsorber Materia Orgánica 10:
Se realizó la misma operación que para el Soporte para Adsorber Materia Orgánica 1 y se midió el contenido de grupos funcionales básicos de las fibras compuestas sólidas de tipo mar-isla contenidas en el Soporte para Adsorber Materia Orgánica 10. Los resultados se muestran en la Tabla 1.
Medición de la Distancia desde la Superficie de la Fibra Compuesta Sólida de Tipo Mar-Isla hasta el Componente de Isla Más Externo en las Fibras Compuestas Sólidas de Tipo Mar-Isla Contenidas en el Soporte para Adsorber Materia Orgánica 10:
Se realizó la misma operación que para el Soporte para Adsorber Materia Orgánica 1 y se midió la distancia desde la superficie de una fibra compuesta sólida de tipo mar-isla hasta el componente de isla más externo en las fibras compuestas sólidas de tipo mar-isla contenidas en el Soporte para Adsorber Materia Orgánica 10. Los resultados se muestran en la Tabla 1.
Medición del diámetro de isla máximo de componentes de isla de fibras compuestas sólidas de tipo mar-isla contenidas en el Soporte para Adsorber Materia Orgánica 10:
Se realizó la misma operación que para el Soporte para Adsorber Materia Orgánica 1 y se midió el diámetro de isla máximo de los componentes de isla de las fibras compuestas sólidas de tipo mar-isla contenidas en el Soporte para Adsorber Materia Orgánica 10. Los resultados se muestran en la Tabla 1.
(Preparación del Soporte para Adsorber Materia Orgánica 11)
Se realizó la misma operación que para el Soporte para Adsorber Materia Orgánica 1, excepto por que se usó el Tejido de Punto I en lugar del Tejido de Punto A, para obtener el Tejido de Punto 11 que era un soporte para adsorber materia orgánica (en lo sucesivo en el presente documento, Soporte para Adsorber Materia Orgánica l l ) .
Medición del diámetro de fibra de fibras compuestas sólidas de tipo mar-isla contenidas en un Soporte para Adsorber Materia Orgánica 11:
Se realizó la misma operación que para el Soporte para Adsorber Materia Orgánica 1 y se midió el diámetro de fibra de las fibras compuestas sólidas de tipo mar-isla contenidas en el Soporte para Adsorber Materia Orgánica 11. Los resultados se muestran en la Tabla 1.
Medición del volumen de poro de fibras compuestas sólidas de tipo mar-isla contenidas en un Soporte para Adsorber Materia Orgánica 11:
Se realizó la misma operación que para el Soporte para Adsorber Materia Orgánica 1 y se midió el volumen de poro de las fibras compuestas sólidas de tipo mar-isla contenidas en el Soporte para Adsorber Materia Orgánica 11. Los resultados se muestran en la Tabla 1.
Medición del contenido de grupos funcionales básicos de fibras compuestas sólidas de tipo mar-isla contenidas en un Soporte para Adsorber Materia Orgánica 11:
Se realizó la misma operación que para el Soporte para Adsorber Materia Orgánica 1 y se midió el contenido de grupos funcionales básicos de las fibras compuestas sólidas de tipo mar-isla contenidas en el Soporte para Adsorber Materia Orgánica 11. Los resultados se muestran en la Tabla 1.
Medición de la Distancia desde la Superficie de la Fibra Compuesta Sólida de Tipo Mar-Isla hasta el Componente de Isla Más Externo en las Fibras Compuestas Sólidas de Tipo Mar-Isla Contenidas en el Soporte para Adsorber Materia Orgánica 11:
Se realizó la misma operación que para el Soporte para Adsorber Materia Orgánica 1 y se midió la distancia desde la superficie de una fibra compuesta sólida de tipo mar-isla hasta el componente de isla más externo en las fibras compuestas sólidas de tipo mar-isla contenidas en el Soporte para Adsorber Materia Orgánica 11. Los resultados se muestran en la Tabla 1.
Medición del diámetro de isla máximo de componentes de isla de fibras compuestas sólidas de tipo mar-isla contenidas en el Soporte para Adsorber Materia Orgánica 11:
Se realizó la misma operación que para el Soporte para Adsorber Materia Orgánica 1 y se midió el diámetro de isla
máximo de Ios componentes de isla de las fibras compuestas sólidas de tipo mar-isla contenidas en el Soporte para Adsorber Materia Orgánica 11. Los resultados se muestran en la Tabla 1.
(Preparación del Soporte para Adsorber Materia Orgánica 12)
Se realizó la misma operación que para el Soporte para Adsorber Materia Orgánica 1, excepto por que se usó el Tejido de Punto J en lugar del Tejido de Punto A, para obtener el Tejido de Punto 12 que era un soporte para adsorber materia orgánica (en lo sucesivo en el presente documento, Soporte para Adsorber Materia Orgánica 12).
Medición del diámetro de fibra de fibras compuestas sólidas de tipo mar-isla contenidas en un Soporte para Adsorber Materia Orgánica 12:
Se realizó la misma operación que para el Soporte para Adsorber Materia Orgánica 1 y se midió el diámetro de fibra de las fibras compuestas sólidas de tipo mar-isla contenidas en el Soporte para Adsorber Materia Orgánica 12. Los resultados se muestran en la Tabla 1.
Medición del volumen de poro de fibras compuestas sólidas de tipo mar-isla contenidas en un Soporte para Adsorber Materia Orgánica 12:
Se realizó la misma operación que para el Soporte para Adsorber Materia Orgánica 1 y se midió el volumen de poro de las fibras compuestas sólidas de tipo mar-isla contenidas en el Soporte para Adsorber Materia Orgánica 12. Los resultados se muestran en la Tabla 1.
Medición del contenido de grupos funcionales básicos de fibras compuestas sólidas de tipo mar-isla contenidas en un Soporte para Adsorber Materia Orgánica 12:
Se realizó la misma operación que para el Soporte para Adsorber Materia Orgánica 1 y se midió el contenido de grupos funcionales básicos de las fibras compuestas sólidas de tipo mar-isla contenidas en el Soporte para Adsorber Materia Orgánica 12. Los resultados se muestran en la Tabla 1.
Medición de la Distancia desde la Superficie de la Fibra Compuesta Sólida de Tipo Mar-Isla hasta el Componente de Isla Más Externo en las Fibras Compuestas Sólidas de Tipo Mar-Isla Contenidas en el Soporte para Adsorber Materia Orgánica 12:
Se realizó la misma operación que para el Soporte para Adsorber Materia Orgánica 1 y se midió la distancia desde la superficie de una fibra compuesta sólida de tipo mar-isla hasta el componente de isla más externo en las fibras compuestas sólidas de tipo mar-isla contenidas en el Soporte para Adsorber Materia Orgánica 12. Los resultados se muestran en la Tabla 1.
Medición del diámetro de isla máximo de componentes de isla de fibras compuestas sólidas de tipo mar-isla contenidas en el Soporte para Adsorber Materia Orgánica 12:
Se realizó la misma operación que para el Soporte para Adsorber Materia Orgánica 1 y se midió el diámetro de isla máximo de Ios componentes de isla de las fibras compuestas sólidas de tipo mar-isla contenidas en el Soporte para Adsorber Materia Orgánica 12. Los resultados se muestran en la Tabla 1.
(Preparación del Soporte para Adsorber Materia Orgánica 13)
Se realizó la misma operación que para el Soporte para Adsorber Materia Orgánica 1, excepto por que se usó el Tejido de Punto K en lugar del Tejido de Punto A, para obtener el Tejido de Punto 13 que era un soporte para adsorber materia orgánica (en lo sucesivo en el presente documento, Soporte para Adsorber Materia Orgánica 13).
Medición del diámetro de fibra de fibras compuestas sólidas de tipo mar-isla contenidas en un Soporte para Adsorber Materia Orgánica 13:
Se realizó la misma operación que para el Soporte para Adsorber Materia Orgánica 1 y se midió el diámetro de fibra de las fibras compuestas sólidas de tipo mar-isla contenidas en el Soporte para Adsorber Materia Orgánica 13. Los resultados se muestran en la Tabla 1.
Medición del volumen de poro de fibras compuestas sólidas de tipo mar-isla contenidas en un Soporte para Adsorber Materia Orgánica 13:
Se realizó la misma operación que para el Soporte para Adsorber Materia Orgánica 1 y se midió el volumen de poro de las fibras compuestas sólidas de tipo mar-isla contenidas en el Soporte para Adsorber Materia Orgánica 13. Los resultados se muestran en la Tabla 1.
Medición del contenido de grupos funcionales básicos de fibras compuestas sólidas de tipo mar-isla contenidas en un Soporte para Adsorber Materia Orgánica 13:
Se realizó la misma operación que para el Soporte para Adsorber Materia Orgánica 1 y se midió el contenido de grupos funcionales básicos de las fibras compuestas sólidas de tipo mar-isla contenidas en el Soporte para Adsorber Materia Orgánica 13. Los resultados se muestran en la Tabla 1.
Medición de la Distancia desde la Superficie de la Fibra Compuesta Sólida de Tipo Mar-Isla hasta el Componente de
Isla Más Externo en las Fibras Compuestas Sólidas de Tipo Mar-Isla Contenidas en el Soporte para Adsorber Materia Orgánica 13:
Se realizó la misma operación que para el Soporte para Adsorber Materia Orgánica 1 y se midió la distancia desde la superficie de una fibra compuesta sólida de tipo mar-isla hasta el componente de isla más externo en las fibras compuestas sólidas de tipo mar-isla contenidas en el Soporte para Adsorber Materia Orgánica 13. Los resultados se muestran en la Tabla 1.
Medición del diámetro de isla máximo de componentes de isla de fibras compuestas sólidas de tipo mar-isla contenidas en el Soporte para Adsorber Materia Orgánica 13:
Se realizó la misma operación que para el Soporte para Adsorber Materia Orgánica 1 y se midió el diámetro de isla máximo de los componentes de isla de las fibras compuestas sólidas de tipo mar-isla contenidas en el Soporte para Adsorber Materia Orgánica 13. Los resultados se muestran en la Tabla 1.
(Preparación del Soporte para Adsorber Materia Orgánica 14)
Se realizó la misma operación que para el Soporte para Adsorber Materia Orgánica 1, excepto por que se usó el Tejido de Punto L en lugar del Tejido de Punto A, para obtener el Tejido de Punto 14 que era un soporte para adsorber materia orgánica (en lo sucesivo en el presente documento, Soporte para Adsorber Materia Orgánica 14).
Medición del diámetro de fibra de fibras compuestas sólidas de tipo mar-isla contenidas en un Soporte para Adsorber Materia Orgánica 14:
Se realizó la misma operación que para el Soporte para Adsorber Materia Orgánica 1 y se midió el diámetro de fibra de las fibras compuestas sólidas de tipo mar-isla contenidas en el Soporte para Adsorber Materia Orgánica 14. Los resultados se muestran en la Tabla 1.
Medición del volumen de poro de fibras compuestas sólidas de tipo mar-isla contenidas en un Soporte para Adsorber Materia Orgánica 14:
Se realizó la misma operación que para el Soporte para Adsorber Materia Orgánica 1 y se midió el volumen de poro de las fibras compuestas sólidas de tipo mar-isla contenidas en el Soporte para Adsorber Materia Orgánica 14. Los resultados se muestran en la Tabla 1.
Medición del contenido de grupos funcionales básicos de fibras compuestas sólidas de tipo mar-isla contenidas en un Soporte para Adsorber Materia Orgánica 14:
Se realizó la misma operación que para el Soporte para Adsorber Materia Orgánica 1 y se midió el contenido de grupos funcionales básicos de las fibras compuestas sólidas de tipo mar-isla contenidas en el Soporte para Adsorber Materia Orgánica 14. Los resultados se muestran en la Tabla 1.
Medición de la Distancia desde la Superficie de la Fibra Compuesta Sólida de Tipo Mar-Isla hasta el Componente de Isla Más Externo en las Fibras Compuestas Sólidas de Tipo Mar-Isla Contenidas en el Soporte para Adsorber Materia Orgánica 14:
Se realizó la misma operación que para el Soporte para Adsorber Materia Orgánica 1 y se midió la distancia desde la superficie de una fibra compuesta sólida de tipo mar-isla hasta el componente de isla más externo en las fibras compuestas sólidas de tipo mar-isla contenidas en el Soporte para Adsorber Materia Orgánica 14. Los resultados se muestran en la Tabla 1.
Medición del diámetro de isla máximo de componentes de isla de fibras compuestas sólidas de tipo mar-isla contenidas en el Soporte para Adsorber Materia Orgánica 14:
Se realizó la misma operación que para el Soporte para Adsorber Materia Orgánica 1 y se midió el diámetro de isla máximo de los componentes de isla de las fibras compuestas sólidas de tipo mar-isla contenidas en el Soporte para Adsorber Materia Orgánica 14. Los resultados se muestran en la Tabla 1.
(Preparación del Soporte para Adsorber Materia Orgánica 15)
Se realizó la misma operación que para el Soporte para Adsorber Materia Orgánica 1, excepto por que se usó el Tejido de Punto M en lugar del Tejido de Punto A, para obtener el Tejido de Punto 15 que era un soporte para adsorber materia orgánica (en lo sucesivo en el presente documento, Soporte para Adsorber Materia Orgánica 15).
Medición del diámetro de fibra de fibras compuestas sólidas de tipo mar-isla contenidas en un Soporte para Adsorber Materia Orgánica 15:
Se realizó la misma operación que para el Soporte para Adsorber Materia Orgánica 1 y se midió el diámetro de fibra de las fibras compuestas sólidas de tipo mar-isla contenidas en el Soporte para Adsorber Materia Orgánica 15. Los resultados se muestran en la Tabla 1.
Medición del volumen de poro de fibras compuestas sólidas de tipo mar-isla contenidas en un Soporte para Adsorber Materia Orgánica 15:
Se realizó la misma operación que para el Soporte para Adsorber Materia Orgánica 1 y se midió el volumen de poro
de las fibras compuestas sólidas de tipo mar-isla contenidas en el Soporte para Adsorber Materia Orgánica 15. Los resultados se muestran en la Tabla 1.
Medición del contenido de grupos funcionales básicos de fibras compuestas sólidas de tipo mar-isla contenidas en un Soporte para Adsorber Materia Orgánica 15:
Se realizó la misma operación que para el Soporte para Adsorber Materia Orgánica 1 y se midió el contenido de grupos funcionales básicos de las fibras compuestas sólidas de tipo mar-isla contenidas en el Soporte para Adsorber Materia Orgánica 15. Los resultados se muestran en la Tabla 1.
Medición de la Distancia desde la Superficie de la Fibra Compuesta Sólida de Tipo Mar-Isla hasta el Componente de Isla Más Externo en las Fibras Compuestas Sólidas de Tipo Mar-Isla Contenidas en el Soporte para Adsorber Materia Orgánica 15:
Se realizó la misma operación que para el Soporte para Adsorber Materia Orgánica 1 y se midió la distancia desde la superficie de una fibra compuesta sólida de tipo mar-isla hasta el componente de isla más externo en las fibras compuestas sólidas de tipo mar-isla contenidas en el Soporte para Adsorber Materia Orgánica 15. Los resultados se muestran en la Tabla 1.
Medición del diámetro de isla máximo de componentes de isla de fibras compuestas sólidas de tipo mar-isla contenidas en el Soporte para Adsorber Materia Orgánica 15:
Se realizó la misma operación que para el Soporte para Adsorber Materia Orgánica 1 y se midió el diámetro de isla máximo de los componentes de isla de las fibras compuestas sólidas de tipo mar-isla contenidas en el Soporte para Adsorber Materia Orgánica 15. Los resultados se muestran en la Tabla 1.
(Preparación del Soporte para Adsorber Materia Orgánica 16)
Se realizó la misma operación que para el Soporte para Adsorber Materia Orgánica 1, excepto por que se usó el Tejido de Punto G en lugar del Tejido de Punto A y que se cambió la cantidad de TEPA de 0,24 g a 0,lO g, para obtener el Tejido de Punto 16 que era un soporte para adsorber materia orgánica (en lo sucesivo en el presente documento, Soporte para Adsorber Materia Orgánica 16).
Medición del diámetro de fibra de fibras compuestas sólidas de tipo mar-isla contenidas en un Soporte para Adsorber Materia Orgánica 16:
Se realizó la misma operación que para el Soporte para Adsorber Materia Orgánica 1 y se midió el diámetro de fibra de las fibras compuestas sólidas de tipo mar-isla contenidas en el Soporte para Adsorber Materia Orgánica 16. Los resultados se muestran en la Tabla 1.
Medición del volumen de poro de fibras compuestas sólidas de tipo mar-isla contenidas en un Soporte para Adsorber Materia Orgánica 16:
Se realizó la misma operación que para el Soporte para Adsorber Materia Orgánica 1 y se midió el volumen de poro de las fibras compuestas sólidas de tipo mar-isla contenidas en el Soporte para Adsorber Materia Orgánica 16. Los resultados se muestran en la Tabla 1.
Medición del contenido de grupos funcionales básicos de fibras compuestas sólidas de tipo mar-isla contenidas en un Soporte para Adsorber Materia Orgánica 16:
Se realizó la misma operación que para el Soporte para Adsorber Materia Orgánica 1 y se midió el contenido de grupos funcionales básicos de las fibras compuestas sólidas de tipo mar-isla contenidas en el Soporte para Adsorber Materia Orgánica 16. Los resultados se muestran en la Tabla 1.
Medición de la Distancia desde la Superficie de la Fibra Compuesta Sólida de Tipo Mar-Isla hasta el Componente de Isla Más Externo en las Fibras Compuestas Sólidas de Tipo Mar-Isla Contenidas en el Soporte para Adsorber Materia Orgánica 16:
Se realizó la misma operación que para el Soporte para Adsorber Materia Orgánica 1 y se midió la distancia desde la superficie de una fibra compuesta sólida de tipo mar-isla hasta el componente de isla más externo en las fibras compuestas sólidas de tipo mar-isla contenidas en el Soporte para Adsorber Materia Orgánica 16. Los resultados se muestran en la Tabla 1.
Medición del diámetro de isla máximo de componentes de isla de fibras compuestas sólidas de tipo mar-isla contenidas en el Soporte para Adsorber Materia Orgánica 16:
Se realizó la misma operación que para el Soporte para Adsorber Materia Orgánica 1 y se midió el diámetro de isla máximo de los componentes de isla de las fibras compuestas sólidas de tipo mar-isla contenidas en el Soporte para Adsorber Materia Orgánica 16. Los resultados se muestran en la Tabla 1.
(Preparación del Soporte para Adsorber Materia Orgánica 17)
Se realizó la misma operación que para el Soporte para Adsorber Materia Orgánica 1, excepto por que se usó el Tejido de Punto G en lugar del Tejido de Punto A y que se cambió la cantidad de TEPA de 0,24 g a 0 ,l8 g, para obtener el
Tejido de Punto 17 que era un soporte para adsorber materia orgánica (en lo sucesivo en el presente documento, Soporte para Adsorber Materia Orgánica 17).
Medición del diámetro de fibra de fibras compuestas sólidas de tipo mar-isla contenidas en un Soporte para Adsorber Materia Orgánica 17:
Se realizó la misma operación que para el Soporte para Adsorber Materia Orgánica 1 y se midió el diámetro de fibra de las fibras compuestas sólidas de tipo mar-isla contenidas en el Soporte para Adsorber Materia Orgánica 17. Los resultados se muestran en la Tabla 1.
Medición del volumen de poro de fibras compuestas sólidas de tipo mar-isla contenidas en un Soporte para Adsorber Materia Orgánica 17:
Se realizó la misma operación que para el Soporte para Adsorber Materia Orgánica 1 y se midió el volumen de poro de las fibras compuestas sólidas de tipo mar-isla contenidas en el Soporte para Adsorber Materia Orgánica 17. Los resultados se muestran en la Tabla 1.
Medición del contenido de grupos funcionales básicos de fibras compuestas sólidas de tipo mar-isla contenidas en un Soporte para Adsorber Materia Orgánica 17:
Se realizó la misma operación que para el Soporte para Adsorber Materia Orgánica 1 y se midió el contenido de grupos funcionales básicos de las fibras compuestas sólidas de tipo mar-isla contenidas en el Soporte para Adsorber Materia Orgánica 17. Los resultados se muestran en la Tabla 1.
Medición de la Distancia desde la Superficie de la Fibra Compuesta Sólida de Tipo Mar-Isla hasta el Componente de Isla Más Externo en las Fibras Compuestas Sólidas de Tipo Mar-Isla Contenidas en el Soporte para Adsorber Materia Orgánica 17:
Se realizó la misma operación que para el Soporte para Adsorber Materia Orgánica 1 y se midió la distancia desde la superficie de una fibra compuesta sólida de tipo mar-isla hasta el componente de isla más externo en las fibras compuestas sólidas de tipo mar-isla contenidas en el Soporte para Adsorber Materia Orgánica 17. Los resultados se muestran en la Tabla 1.
Medición del diámetro de isla máximo de componentes de isla de fibras compuestas sólidas de tipo mar-isla contenidas en el Soporte para Adsorber Materia Orgánica 17:
Se realizó la misma operación que para el Soporte para Adsorber Materia Orgánica 1 y se midió el diámetro de isla máximo de los componentes de isla de las fibras compuestas sólidas de tipo mar-isla contenidas en el Soporte para Adsorber Materia Orgánica 17. Los resultados se muestran en la Tabla 1.
(Preparación del Soporte para Adsorber Materia Orgánica 18)
Se realizó la misma operación que para el Soporte para Adsorber Materia Orgánica 1, excepto por que se usó el Tejido de Punto G en lugar del Tejido de Punto A y que se cambió la cantidad de TEPA de 0,24 g a 1,0 g, para obtener el Tejido de Punto 18 que era un soporte para adsorber materia orgánica (en lo sucesivo en el presente documento, Soporte para Adsorber Materia Orgánica 18).
Medición del diámetro de fibra de fibras compuestas sólidas de tipo mar-isla contenidas en un Soporte para Adsorber Materia Orgánica 18:
Se realizó la misma operación que para el Soporte para Adsorber Materia Orgánica 1 y se midió el diámetro de fibra de las fibras compuestas sólidas de tipo mar-isla contenidas en el Soporte para Adsorber Materia Orgánica 18. Los resultados se muestran en la Tabla 1.
Medición del volumen de poro de fibras compuestas sólidas de tipo mar-isla contenidas en un Soporte para Adsorber Materia Orgánica 18:
Se realizó la misma operación que para el Soporte para Adsorber Materia Orgánica 1 y se midió el volumen de poro de las fibras compuestas sólidas de tipo mar-isla contenidas en el Soporte para Adsorber Materia Orgánica 18. Los resultados se muestran en la Tabla 1.
Medición del contenido de grupos funcionales básicos de fibras compuestas sólidas de tipo mar-isla contenidas en un Soporte para Adsorber Materia Orgánica 18:
Se realizó la misma operación que para el Soporte para Adsorber Materia Orgánica 1 y se midió el contenido de grupos funcionales básicos de las fibras compuestas sólidas de tipo mar-isla contenidas en el Soporte para Adsorber Materia Orgánica 18. Los resultados se muestran en la Tabla 1.
Medición de la Distancia desde la Superficie de la Fibra Compuesta Sólida de Tipo Mar-Isla hasta el Componente de Isla Más Externo en las Fibras Compuestas Sólidas de Tipo Mar-Isla Contenidas en el Soporte para Adsorber Materia Orgánica 18:
Se realizó la misma operación que para el Soporte para Adsorber Materia Orgánica 1 y se midió la distancia desde la superficie de una fibra compuesta sólida de tipo mar-isla hasta el componente de isla más externo en las fibras compuestas sólidas de tipo mar-isla contenidas en el Soporte para Adsorber Materia Orgánica 18. Los resultados se
muestran en la Tabla 1.
Medición del diámetro de Isla máximo de componentes de Isla de fibras compuestas sólidas de tipo mar-isla contenidas en el Soporte para Adsorber Materia Orgánica 18:
Se realizó la misma operación que para el Soporte para Adsorber Materia Orgánica 1 y se midió el diámetro de isla máximo de los componentes de isla de las fibras compuestas sólidas de tipo mar-isla contenidas en el Soporte para Adsorber Materia Orgánica 18. Los resultados se muestran en la Tabla 1.
(Preparación del Soporte para Adsorber Materia Orgánica 19)
Se realizó la misma operación que para el Soporte para Adsorber Materia Orgánica 1, excepto por que se usó el Tejido de Punto G en lugar del Tejido de Punto A y que se cambió la cantidad de TEPA de 0,24 g a 1,25 g, para obtener el Tejido de Punto 19 que era un soporte para adsorber materia orgánica (en lo sucesivo en el presente documento, Soporte para Adsorber Materia Orgánica 19).
Medición del diámetro de fibra de fibras compuestas sólidas de tipo mar-isla contenidas en un Soporte para Adsorber Materia Orgánica 19:
Se realizó la misma operación que para el Soporte para Adsorber Materia Orgánica 1 y se midió el diámetro de fibra de las fibras compuestas sólidas de tipo mar-isla contenidas en el Soporte para Adsorber Materia Orgánica 19. Los resultados se muestran en la Tabla 1.
Medición del volumen de poro de fibras compuestas sólidas de tipo mar-isla contenidas en un Soporte para Adsorber Materia Orgánica 19:
Se realizó la misma operación que para el Soporte para Adsorber Materia Orgánica 1 y se midió el volumen de poro de las fibras compuestas sólidas de tipo mar-isla contenidas en el Soporte para Adsorber Materia Orgánica 19. Los resultados se muestran en la Tabla 1.
Medición del contenido de grupos funcionales básicos de fibras compuestas sólidas de tipo mar-isla contenidas en un Soporte para Adsorber Materia Orgánica 19:
Se realizó la misma operación que para el Soporte para Adsorber Materia Orgánica 1 y se midió el contenido de grupos funcionales básicos de las fibras compuestas sólidas de tipo mar-isla contenidas en el Soporte para Adsorber Materia Orgánica 19. Los resultados se muestran en la Tabla 1.
Medición de la Distancia desde la Superficie de la Fibra Compuesta Sólida de Tipo Mar-Isla hasta el Componente de Isla Más Externo en las Fibras Compuestas Sólidas de Tipo Mar-Isla Contenidas en el Soporte para Adsorber Materia Orgánica 19:
Se realizó la misma operación que para el Soporte para Adsorber Materia Orgánica 1 y se midió la distancia desde la superficie de una fibra compuesta sólida de tipo mar-isla hasta el componente de isla más externo en las fibras compuestas sólidas de tipo mar-isla contenidas en el Soporte para Adsorber Materia Orgánica 19. Los resultados se muestran en la Tabla 1.
Medición del diámetro de isla máximo de componentes de isla de fibras compuestas sólidas de tipo mar-isla contenidas en el Soporte para Adsorber Materia Orgánica 19:
Se realizó la misma operación que para el Soporte para Adsorber Materia Orgánica 1 y se midió el diámetro de isla máximo de los componentes de isla de las fibras compuestas sólidas de tipo mar-isla contenidas en el Soporte para Adsorber Materia Orgánica 19. Los resultados se muestran en la Tabla 1.
(Preparación de la Columna para Adsorción 1)
Se compactó Soporte para Adsorber Materia Orgánica 7 a una densidad de 0,08 g/cm3 en una columna cilindrica que tiene entrada y salida de solución en la parte superior e inferior con un volumen interno de 145 cm3 (altura: 12,5 cm, diámetro: 4,1 cm), para preparar la Columna para Adsorción 1.
(Preparación de la Columna para Adsorción 2)
Se compactó Soporte para Adsorber Materia Orgánica 7 a una densidad de 0,17 g/cm3 en una columna cilindrica que tiene una entrada y salida de solución en la parte superior e inferior con un volumen interno de 145 cm3 (altura: 12,5 cm, diámetro: 4,1 cm), para preparar la Columna para Adsorción 2.
(Preparación de la Columna para Adsorción 3)
Se compactó Soporte para Adsorber Materia Orgánica 7 a una densidad de 0,22 g/cm3 en una columna cilindrica que tiene una entrada y salida de solución en la parte superior e inferior con un volumen interno de 145 cm3 (altura: i 2,5 cm, diámetro: 4,1 cm), para preparar la Columna para Adsorción 3.
(Preparación de la Columna para Adsorción 4)
Se compactó Soporte para Adsorber Materia Orgánica 7 a una densidad de 0,37 g/cm3 en una columna cilindrica que tiene una entrada y salida de solución en la parte superior e inferior con un volumen interno de 145 cm3 (altura: 12,5 cm, diámetro: 4,1 cm), para preparar la Columna para Adsorción 4.
(Preparación de la Columna para Adsorción 5)
Se compactó Soporte para Adsorber Materia Orgánica 7 a una densidad de 0,45 g/cm3 en una columna cilindrica que tiene una entrada y salida de solución en la parte superior e inferior con un volumen interno de 145 cm3 (altura: 12,5 cm, diámetro: 4,1 cm), para preparar la Columna para Adsorción 5.
(Ejemplo 1)
Medición de la Tasa de Adsorción del Naranja de Ácido 7 del Soporte para Adsorber Materia Orgánica 4:
En primer lugar, se mezclaron 0,0875 g de naranja de ácido 7 en forma de polvo, 0,41 g de trihidrato de acetato de sodio, 0,96 ml de ácido acético y 24 ml de agua de intercambio iónico, y la mezcla se diluyó de nuevo hasta 100 veces con agua de intercambio iónico. Por lo tanto, se preparó una solución tampón de naranja de ácido 7 que tenia una concentración en naranja de ácido 7 de 1,0x10-4 M. Después, se mezclaron además 170 ml de una mezcla de 1,14 ml de ácido acético y 200 ml de agua de intercambio iónico, y 30,6 ml de una mezcla de 1,36 g de trihidrato de acetato de sodio y 100 ml de agua para preparar una solución tampón de ácido acético. Se prepararon soluciones patrón diluyendo la solución tampón de naranja de ácido 7 con trihidrato de acetato de sodio a 2, 4, 8 y 16 veces, y usando un espectrofotómetro UV-visible, las soluciones patrón se midieron para determinar la absorbencia con una longitud de onda de medición de 450 nm y una longitud de onda de referencia de 600 nm. Se preparó una curva de calibración a partir de las absorbancias obtenidas y de las concentraciones de naranja de ácido 7 de las soluciones patrón. El Soporte para Adsorber Materia Orgánica 4 se recortó en un disco de 6 mm de diámetro y este disco se impregnó con 1,5 ml de la solución tampón de ácido acético, y se mezcló por inversión durante 20 minutos. Después de mezclar, el Soporte para Adsorber Materia Orgánica 4 se filtró a través de un papel de filtro, y la solución tampón de ácido acético adherida se retiró por centrifugación a 150 rpm durante 15 minutos. El Soporte para Adsorber Materia Orgánica 4 después de la centrifugación se añadió a un recipiente de polipropileno al que se había añadido 1,0 ml de la solución tampón de naranja de ácido 7, y se mezcló por inversión durante 2 horas. Después de mezclar, solo se extrajo con pinzas el Soporte para Adsorber Materia Orgánica 4. La absorbancia de la solución tampón de naranja de ácido 7 se midió de forma similar antes y después de la adición y la mezcla por inversión del Soporte para Adsorber Materia Orgánica 4, y la concentración de naranja de ácido 7 se calculó usando la curva de calibración. La tasa de adsorción de la naranja de ácido 7 por disco de Soporte para Adsorber Materia Orgánica 4 se calculó usando la siguiente Ecuación 3. Los resultados se muestran en la Tabla 2.
Tasa de adsorción del Naranja de Ácido 7 del Soporte para Adsorber Materia Orgánica 4 (%) = {Concentración de Naranja de Ácido 7 en la Solución Tampón de Naranja de Ácido 7 Antes de la Adición del Soporte para Adsorber Materia Orgánica 4 (M) - Concentración de Naranja de Ácido 7 en la Solución Tampón de Naranja de Ácido 7 Después de la Adición del Soporte para Adsorber Materia Orgánica 4 (M)} / Concentración de Naranja de Ácido 7 en la Solución Tampón de Naranja de Ácido 7 Antes de la Adición del Soporte para Adsorber Materia Orgánica 4 (M) x 100 Ecuación 3
Medición de la Tasa de Adsorción de IL-8 del Soporte para Adsorber Materia Orgánica 4:
Con el fin de confirmar la capacidad de adsorción de IL-8 del Soporte para Adsorber Materia Orgánica 4, el Soporte para Adsorber Materia Orgánica 4 se impregnó con un liquido que contenía IL-8 durante un tiempo predeterminado y se extrajo, y después se midió la tasa de adsorción de IL-8 a partir de la diferencia en la cantidad de IL-8 en el liquido antes y después de la impregnación. El método de medición se describirá a continuación.
El Soporte para Adsorber Materia Orgánica 4 se cortó en discos de 6 mm de diámetro, cuatro de los cuales se pusieron en un recipiente de polipropileno. Al recipiente, se le añadió una solución de FBS preparada de manera que la concentración de IL-8 fuera de 2000 pg/ml, en una cantidad de 30 ml por 1 cm3 de Soporte para Adsorber Materia Orgánica 4. La mezcla resultante se mezcló por inversión durante 2 horas en una incubadora a 37 °C, y después se midió la concentración de IL-8 en la solución de FBS mediante ELISA. La tasa de adsorción de IL-8 se calculó a partir de la concentración de IL-8 medida antes y después de la mezcla por inversión, usando la siguiente Ecuación 4. Los resultados se muestran en la Tabla 2.
Tasa de Adsorción de IL-8 del Soporte para Adsorber Materia Orgánica 4 (%) = {Concentración de IL-8 Antes de la Mezcla por Inversión (pg/ml) -Concentración de IL-8 Después de la Mezcla por Inversión (pg/ml)} / Concentración de IL-8 Antes de la Mezcla por Inversión (pg/ml) x 100 Ecuación 4
Medición de la Tasa de Adsorción de IL-6 del Soporte para Adsorber Materia Orgánica 4:
Con el fin de confirmar la capacidad de adsorción de IL-6 del Soporte para Adsorber Materia Orgánica 4, el Soporte para Adsorber Materia Orgánica 4 se impregnó con un liquido que contenía IL-6 durante un tiempo predeterminado y se extrajo, y después se midió la tasa de adsorción de IL-6 a partir de la diferencia en la cantidad de IL-6 en el liquido antes y después de la impregnación. El método de medición se describirá a continuación.
El Soporte para Adsorber Materia Orgánica 4 se cortó en discos de 6 mm de diámetro, cuatro de Ios cuales se pusieron en un recipiente de polipropileno. Al recipiente, se le añadió una solución de FBS preparada de manera que la concentración de IL-6 fuera de 2000 pg/ml, en una cantidad de 30 ml por 1 cm3 de Soporte para Adsorber Materia Orgánica 4. La mezcla resultante se mezcló por inversión durante 2 horas en una incubadora a 37 °C, y después se midió la concentración de IL-6 en la solución de FBS mediante ELISA. La tasa de adsorción de IL-6 se calculó a partir de la concentración de IL-6 medida antes y después de la mezcla por inversión, usando la siguiente Ecuación 5. Los resultados se muestran en la Tabla 2.
Tasa de Adsorción de IL-6 del Soporte para Adsorber Materia Orgánica 4 (%) = {Concentración de IL-6 Antes de la Mezcla por Inversión (pg/ml) -Concentración de IL-6 Después de la Mezcla por Inversión (pg/ml)} / Concentración de IL-6 Antes de la Mezcla por Inversión (pg/ml) * 100 Ecuación 5
Medición de la Tasa de Adsorción de HMGB-1 del Soporte para Adsorber Materia Orgánica 4:
Con el fin de confirmar la capacidad de adsorción de HMGB-1 del Soporte para Adsorber Materia Orgánica 4, el Soporte para Adsorber Materia Orgánica 4 se impregnó con un líquido que contenía HMGB-1 durante un tiempo predeterminado y se extrajo, y después se midió la tasa de adsorción de HMGB-1 a partir de la diferencia en la cantidad de HMGB-1 en el líquido antes y después de la impregnación. El método de medición se describirá a continuación.
El Soporte para Adsorber Materia Orgánica 4 se cortó en discos de 6 mm de diámetro, cuatro de Ios cuales se pusieron en un recipiente de polipropileno. Al recipiente, se le añadió una solución de FBS preparada de manera que la concentración de HMGB-1 fuera de 100 ng/ml, en una cantidad de 30 ml por 1 cm3 de Soporte para Adsorber Materia Orgánica 4. La mezcla resultante se mezcló por inversión durante 2 horas en una incubadora a 37 °C, y después se midió la concentración de HMGB-1 en la solución de FBS mediante ELISA. La tasa de adsorción de HMGB-1 se calculó a partir de la concentración de HMGB-1 medida antes y después de la mezcla por inversión, usando la siguiente Ecuación 6. Los resultados se muestran en la Tabla 2.
Tasa de Adsorción de HMGB-1 del Soporte para Adsorber Materia Orgánica 4 (%) = {Concentración de HMGB-1 Antes de la Mezcla por Inversión (ng/ml) - Concentración de HMGB-1 Después de la Mezcla por Inversión (ng/ml)} / Concentración de HMGB-1 Antes de la Mezcla por Inversión (ng/ml) * lOo Ecuación 6
Medición de la Posible Duración del Paso de Líquido a Través de la Columna de Soporte para Adsorber Materia Orgánica 4: Se usó un conejo sano para medir la posible duración del paso de líquido a través de la columna del Soporte para Adsorber Materia Orgánica 4. En primer lugar, después de la inducción de la anestesia a través de la administración intravenosa de 30 mg/kg de pentobarbital sódico (25 mg/ml, NACALAI TESQUE, INC.), se afeitó un conejo macho NZW (peso corporal: 3 a 3,5 kg) en el cuello y el abdomen. Después de la inyección subcutánea de lidocaína (Inyección de Xilocaína al 0,5 %, AstraZeneca K.K.), la tráquea se expuso desde el cuello. Se intubó una cánula traqueal (16Fr, Terumo Corporation) y se inmovilizó a la tráquea. Se usó un respirador (EVITA 3OO, Draeger Medical Japan LTD.) para realizar la ventilación. Las condiciones de la ventilación se regularon midiendo Ios parámetros de Ios gases sanguíneos de la sangre recogida de una arteria carótida con presión positiva al final de la espiración (PPAE) aplicada a través de í-STAT (cartucho CG4+, ABBOTT JAPON CO., LTD.) y cambiando el número de ventilaciones de manera que las mediciones (valores corregidos a temperatura corporal) estuvieran dentro del intervalo de pCO2 de 4,66 a 5,99 kPa (35 a 45 mmHg). La concentración de oxígeno inspirado se ajustó al 1OO % y después se ajustaron las condiciones de la ventilación, se inició la evaluación de Ios equipos que se iban a someter a ensayo. Durante la evaluación, las condiciones de la ventilación no se modificaron. Una infusión de O,O6 mg/kg/h de vecuronio disuelto en solución salina normal (VECURONIO 4 mg para inyección intravenosa: Fuji Pharma, Co., Ltd., solución salina normal: Otsuka Pharmaceutical Factory, Inc.) se administró por infusión continua de 2 ml/kg/hora. La infusión se conectó además a una bomba de infusión (55-1111, HARVARD Ap PARATUS, INC.) a través de una llave de paso de tres vías para conseguir una vía de anestesia de mantenimiento. Como anestesia de mantenimiento, se administró pentobarbital (12,5 mg/ml, NACALAI TESQUE, INC.) en infusión continua de 2 a 8 mg/kg/h (disminuyendo o aumentando de acuerdo con el estado del animal). El Soporte para Adsorber Materia Orgánica 4 se compactó a una densidad de 0,35 g/cm3 en una minicolumna cilindrica con un volumen de compactación de 11 cm3 (altura de compactación: 4,7 cm, diámetro de compactación: 1,9cm), para preparar una columna para la circulación extracorpórea del conejo. Esta columna se lavó con solución salina normal y, después del cebado con heparina, se ejecutó a un caudal de 5 ml/min en el conejo sano. Para la evaluación del aumento de presión, usando como índice la diferencia entre la presión aplicada en el lado de entrada y la presión aplicada en el lado de salida de la columna para la circulación extracorpórea del conejo (en lo sucesivo en el presente documento, presión diferencial), el tiempo transcurrido desde el inicio de la circulación hasta el momento en el que la presión diferencial superó Ios 13,33 kPa (1OO mmHg) (60 minutos como máximo) se midió como la posible duración del paso de liquido a través de la columna. Los resultados se muestran en la Tabla 2.
Medición de la Cantidad de Partículas Finas Generadas de Soporte para Adsorber Materia Orgánica 4:
Se cortó el Soporte para Adsorber Materia Orgánica 4 en forma de disco de 26 mm de diámetro y se coIocó en un recipiente limpio junto con 50 ml de trihidrato de acetato de sodio (agua filtrada) que había pasado por un filtro HEPA con un tamaño de poro de 0,3 pm. La mezcla resultante se mezcló mediante 10 inversiones y se lavó después de descargar el líquido. Esta operación de lavado se repitió una vez más. El tejido de punto lavado que se iba a someter
a ensayo se coIocó en la placa base fijada a un ultrasoporte de agitación UHP-25K (fabricado por ADVANTEC Co., Ltd.), y después se coIocó la junta tórica en la misma, el tejido de punto lavado se intercaló con el recipiente cilindrico (celda) de 18 mm de diámetro y se fijó con el soporte de montaje de la base. La salida de liquido de la placa base se cerró con un tubo de silicona y se añadieron lO ml de agua filtrada con el tejido de punto en la parte inferior, y se confirmó que no había fugas de agua. Se instaló un conjunto de agitación fijado al UHP-25K y se realizó la agitación en un agitador magnético RCN-7 (fabricado por Tokyo Rika Kikai Co, Ltd.) a una velocidad de rotación de 6OO rpm durante 5 minutos de forma que el conjunto de agitación no estuviera en contacto con el tejido de punto. Este liquido se recogió y se midieron 3 ml del liquido con un contador automático de partículas por oscurecimiento de la luz KL-O4 (fabricado por Rion Co., Ltd.), y la cantidad de partículas finas de no menos de 10 |jm por 1 ml se midió como la cantidad de partículas finas generadas (unidad: partículas/ml). Los resultados se muestran en la Tabla 2.
(Ejemplo 2)
Se realizaron las mismas mediciones que en el Ejemplo 1, excepto por que se usó el Soporte para Adsorber Materia Orgánica 5 en su lugar y se midieron la tasa de adsorción del naranja de ácido 7, la tasa de adsorción de IL-8, la tasa de adsorción de IL-6, la tasa de adsorción de HMGB-1, la posible duración del paso del liquido a través de la columna y la cantidad de partículas finas generadas. Los resultados se muestran en la Tabla 2.
(Ejemplo 3)
Se realizaron las mismas mediciones que en el Ejemplo 1, excepto por que se usó el Soporte para Adsorber Materia Orgánica 7 en su lugar y se midieron la tasa de adsorción del naranja de ácido 7, la tasa de adsorción de IL-8, la tasa de adsorción de IL-6, la tasa de adsorción de HMGB-1, la posible duración del paso del líquido a través de la columna y la cantidad de partículas finas generadas. Los resultados se muestran en la Tabla 2.
(Ejemplo 4)
Se realizaron las mismas mediciones que en el Ejemplo 1, excepto por que se usó el Soporte para Adsorber Materia Orgánica 8 en su lugar y se midieron la tasa de adsorción del naranja de ácido 7, la tasa de adsorción de IL-8, la tasa de adsorción de IL-6, la tasa de adsorción de HMGB-1, la posible duración del paso del líquido a través de la columna y la cantidad de partículas finas generadas. Los resultados se muestran en la Tabla 2.
(Ejemplo 5)
Se realizaron las mismas mediciones que en el Ejemplo 1, excepto por que se usó el Soporte para Adsorber Materia Orgánica 9 en su lugar y se midieron la tasa de adsorción del naranja de ácido 7, la tasa de adsorción de IL-8, la tasa de adsorción de IL-6, la tasa de adsorción de HMGB-1, la posible duración del paso del líquido a través de la columna y la cantidad de partículas finas generadas. Los resultados se muestran en la Tabla 2.
(Ejemplo 6)
Se realizaron las mismas mediciones que en el Ejemplo 1, excepto por que se usó el Soporte para Adsorber Materia Orgánica 11 en su lugar y se midieron la tasa de adsorción del naranja de ácido 7, la tasa de adsorción de IL-8, la tasa de adsorción de IL-6, la tasa de adsorción de HMGB-1, la posible duración del paso del líquido a través de la columna y la cantidad de partículas finas generadas. Los resultados se muestran en la Tabla 2.
(Ejemplo 7)
Se realizaron las mismas mediciones que en el Ejemplo 1, excepto por que se usó el Soporte para Adsorber Materia Orgánica 13 en su lugar y se midieron la tasa de adsorción del naranja de ácido 7, la tasa de adsorción de IL-8 y la cantidad de partículas finas generadas. Los resultados se muestran en la Tabla 3.
(Ejemplo 8)
Se realizaron las mismas mediciones que en el Ejemplo 1, excepto por que se usó el Soporte para Adsorber Materia Orgánica 14 en su lugar y se midieron la tasa de adsorción del naranja de ácido 7, la tasa de adsorción de IL-8 y la cantidad de partículas finas generadas. Los resultados se muestran en la Tabla 3.
(Ejemplo 9 - Ejemplo de Referencia)
Se realizaron las mismas mediciones que en el Ejemplo 1, excepto por que se usó el Soporte para Adsorber Materia Orgánica 15 en su lugar y se midieron la tasa de adsorción del naranja de ácido 7, la tasa de adsorción de IL-8 y la cantidad de partículas finas generadas. Los resultados se muestran en la Tabla 3.
(Ejemplo 10)
Se realizaron las mismas mediciones que en el Ejemplo 1, excepto por que se usó el Soporte para Adsorber Materia Orgánica 16 en su lugar y se midieron la tasa de adsorción del naranja de ácido 7, la tasa de adsorción de IL-8 y la cantidad de partículas finas generadas. Los resultados se muestran en la Tabla 3.
(Ejemplo 11)
Se realizaron las mismas mediciones que en el Ejemplo 1, excepto por que se usó el Soporte para Adsorber Materia Orgánica 17 en su lugar y se midieron la tasa de adsorción del naranja de ácido 7, la tasa de adsorción de IL-8 y la cantidad de partículas finas generadas. Los resultados se muestran en la Tabla 3.
(Ejemplo 12)
Se realizaron las mismas mediciones que en el Ejemplo 1, excepto por que se usó el Soporte para Adsorber Materia Orgánica 18 en su lugar y se midieron la tasa de adsorción del naranja de ácido 7, la tasa de adsorción de IL-8 y la cantidad de partículas finas generadas. Los resultados se muestran en la Tabla 3.
(Ejemplo 13)
Se realizaron las mismas mediciones que en el Ejemplo 1, excepto por que se usó el Soporte para Adsorber Materia Orgánica 19 en su lugar y se midieron la tasa de adsorción del naranja de ácido 7, la tasa de adsorción de IL-8 y la cantidad de partículas finas generadas. Los resultados se muestran en la Tabla 3.
(Ejemplo 14 - Ejemplo de Referencia)
Ensayo de Medición de la Pérdida de Presión de la Columna para Adsorción 1:
La Columna para Adsorción 1 se conectó como se muestra en la Fig. 3 y la solución de FBS se mantuvo caliente a 37 °C (temperatura exterior). Después, en un baño de agua a temperatura constante se mezclaron 2500 ml de la solución de FBS a la que se le añadió IL-8 de manera que la concentración de la misma fuera de 2000 pg/ml. La solución de FBS anterior se hizo pasar a través de la Columna para Adsorción 1 a un caudal de 100 ml/min durante 2 horas y la presión durante el paso del líquido se midió mediante el dispositivo 9 de medición de la presión de entrada y el dispositivo 10 de medición de la presión de salida. El valor obtenido restando la presión medida mediante el dispositivo de medición de la presión de salida de la presión medida por el dispositivo de medición de la presión de entrada se determinó como la pérdida de presión. Además, después del paso del líquido a través de la Columna para Adsorción 1 durante 2 horas, la concentración de IL-8 en la solución de FBS se midió mediante ELISA. A partir de la tasa de reducción de 2000 pg/ml, se obtuvo la tasa de adsorción de la circulación de IL-8. Los resultados de la pérdida de presión y la tasa de adsorción de la circulación de IL-8 se muestran en la Tabla 4.
(Ejemplo 15 - Ejemplo de Referencia)
Se realizaron las mismas mediciones que en el Ejemplo 14, excepto por que se usó la Columna para Adsorción 2 en su lugar, para obtener la pérdida de presión y la tasa de adsorción de la circulación de IL-8. Los resultados se muestran en la Tabla 4.
(Ejemplo 16 - Ejemplo de Referencia)
Se realizaron las mismas mediciones que en el Ejemplo 14, excepto por que se usó la Columna para Adsorción 3 en su lugar, para obtener la pérdida de presión y la tasa de adsorción de la circulación de IL-8. Los resultados se muestran en la Tabla 4.
(Ejemplo 17)
Se realizaron las mismas mediciones que en el Ejemplo 14, excepto por que se usó la Columna para Adsorción 4 en su lugar, para obtener la pérdida de presión y la tasa de adsorción de la circulación de IL-8. Los resultados se muestran en la Tabla 4.
(Ejemplo 18)
Se realizaron las mismas mediciones que en el Ejemplo 14, excepto por que se usó la Columna para Adsorción 5 en su lugar, para medir la pérdida de presión y la tasa de adsorción de la circulación de IL-8. Los resultados se muestran en la Tabla 4.
(Ejemplo 19)
Medición de la Circularidad de los Soportes para Adsorber Materia Orgánica 4, 5, 7 a 9, 11, 13 a 19:
En una Imagen de un corte transversal de una muestra de las fibras compuestas sólidas de tipo mar-isla contenidas en el Soporte para Adsorber Materia Orgánica 4, que se cortó perpendicularmente a la dirección del eje de la fibra, se
seleccionaron aleatoriamente 10 posiciones y se fotografiaron a un aumento en el que Ios componentes de isla podían observarse claramente mediante MEB. En las imágenes obtenidas de las secciones transversales de las fibras se creó un círculo envolvente mínimo (2 en la Fig. 1), y el radio se calculó en unidades de 0,1 pm. Además, un círculo máximo que era concéntrico con el círculo envolvente mínimo y que podía incluirse dentro de la fibra (en lo sucesivo en el presente documento, círculo inscrito máximo, 3 en la Fig. 1) se creó en las secciones transversales de las fibras, y el radio se calculó en unidades de 0,1 pm. La circularidad era el valor que se obtiene al restar el radio del círculo inscrito máximo del radio del círculo envolvente mínimo. Además, la circularidad de cada uno de Ios Soportes para Adsorber Materia Orgánica 5, 7 a 9, 11 y 13 a 19 también se midió de la misma manera que para el Soporte para Adsorber Materia Orgánica 4. Como resultado, la circularidad de cada uno de Ios Soportes para Adsorber Materia Orgánica 4, 5, 7 a 9, 11, 13 a 19 estaba en el intervalo de 0 a 15 pm.
(Ejemplo Comparativo 1)
Se realizaron las mismas mediciones que en el Ejemplo 1, excepto por que se usó el Soporte para Adsorber Materia Orgánica 1 en su lugar y se midieron la tasa de adsorción del naranja de ácido 7, la tasa de adsorción de IL-8, la tasa de adsorción de IL-6, la tasa de adsorción de HMGB-1, la posible duración del paso del líquido a través de la columna y la cantidad de partículas finas generadas. Los resultados se muestran en la Tabla 2.
(Ejemplo Comparativo 2)
Se realizaron las mismas mediciones que en el Ejemplo 1, excepto por que se usó el Soporte para Adsorber Materia Orgánica 2 en su lugar y se midieron la tasa de adsorción del naranja de ácido 7, la tasa de adsorción de IL-8, la tasa de adsorción de IL-6, la tasa de adsorción de HMGB-1, la posible duración del paso del líquido a través de la columna y la cantidad de partículas finas generadas. Los resultados se muestran en la Tabla 2.
(Ejemplo Comparativo 3)
Se realizaron las mismas mediciones que en el Ejemplo 1, excepto por que se usó el Soporte para Adsorber Materia Orgánica 3 en su lugar y se midieron la tasa de adsorción del naranja de ácido 7, la tasa de adsorción de IL-8, la tasa de adsorción de IL-6, la tasa de adsorción de HMGB-1, la posible duración del paso del líquido a través de la columna y la cantidad de partículas finas generadas. Los resultados se muestran en la Tabla 2.
(Ejemplo Comparativo 4)
Se realizaron las mismas mediciones que en el Ejemplo 1, excepto por que se usó el Soporte para Adsorber Materia Orgánica 6 en su lugar y se midieron la tasa de adsorción del naranja de ácido 7, la tasa de adsorción de IL-8, la tasa de adsorción de IL-6, la tasa de adsorción de HMGB-1, la posible duración del paso del líquido a través de la columna y la cantidad de partículas finas generadas. Los resultados se muestran en la Tabla 2.
(Ejemplo Comparativo 5)
Se realizaron las mismas mediciones que en el Ejemplo 1, excepto por que se usó el Soporte para Adsorber Materia Orgánica 10 en su lugar y se midieron la tasa de adsorción del naranja de ácido 7, la tasa de adsorción de IL-8, la tasa de adsorción de IL-6, la tasa de adsorción de HMGB-1, la posible duración del paso del líquido a través de la columna y la cantidad de partículas finas generadas. Los resultados se muestran en la Tabla 2.
(Ejemplo Comparativo 6)
Se realizaron las mismas mediciones que en el Ejemplo 1, excepto por que se usó el Soporte para Adsorber Materia Orgánica 12 en su lugar y se midieron la tasa de adsorción del naranja de ácido 7, la tasa de adsorción de IL-8, la tasa de adsorción de IL-6, la tasa de adsorción de HMGB-1, la posible duración del paso del líquido a través de la columna y la cantidad de partículas finas generadas. Los resultados se muestran en la Tabla 2.
(Ejemplo Comparativo 7)
Medición de la Circularidad de Ios Soportes para Adsorber Materia Orgánica 1 a 3, 6, 10 y 12:
La circularidad de cada uno de Ios Soportes para Adsorber Materia Orgánica 1 a 3, 6, 10 y 12 se midió de la misma manera que para el Soporte para Adsorber Materia Orgánica 4. La circularidad del Soporte para Adsorber Materia Orgánica 12 era de 18 pm y las circularidades de Ios Soportes para Adsorber Materia Orgánica 1 a 3, 6 y 10 estaban todas en el intervalo de 0 a 15 pm.
[Tabla 11
Nombre del Contenido de soporte para la Diámetro Volumen Distancia de la superficie de fibra
de fibra de poro compuesta sólida de tipo mar-isla Diámetro de
isla máximo grupos funcionales adsorción al componente de isla más externo básicos um cm3/g um um mmol/g Soporte para
adsorción 1 5 0,03 1,2 3,0 1,1 Soporte para
adsorción 2 5 0,27 1,6 3,0 1,5 Soporte para
adsorción 3 20 0,07 1,3 4,4 1,1 Soporte para
adsorción 4 25 0,12 2,2 0,6 1,3 Soporte para
adsorción 5 30 0,07 1,7 0,7 1,2 Soporte para
adsorción 6 35 0,03 2,0 1,0 1,1 Soporte para
adsorción 7 35 0,21 3,8 0,8 1,3 Soporte para
adsorción 8 35 0,21 3,1 0,8 0 Soporte para
adsorción 9 35 0,48 3,0 0,8 1,1 Soporte para
adsorción 10 35 0,59 10,5 1,2 1,4 Soporte para
adsorción 11 55 0,35 5,1 1,1 1,3 Soporte para
adsorción 12 65 0,22 4,7 1,4 1,3 Soporte para
adsorción 13 35 0,20 3,5 1,4 1,0 Soporte para
adsorción 14 35 0,21 3,6 1,6 1,2 Soporte para
adsorción 15 35 0,23 3,7 2,5 1,1 Soporte para
adsorción 16 33 0,16 3,3 0,8 0,4 Soporte para
adsorción 17 34 0,18 3,2 0,8 0,7 Soporte para
adsorción 18 36 0,25 3,5 0,8 4,8 Soporte para
adsorción 19 36 0,28 3,6 0,8 5,2
En la Tabla 1, "Nombre del Soporte para Adsorción" indica el nombre del soporte para adsorber materia orgánica, "Diámetro de fibra" indica el diámetro de fibra de las fibras compuestas sólidas de tipo mar-isla contenidas en el soporte para adsorber materia orgánica y "Volumen de poro" indica el volumen de poro de las fibras compuestas sólidas de tipo mar-isla contenidas en el soporte para adsorber materia orgánica, "Distancia desde la superficie de la fibra compuesta sólida de tipo mar-isla hasta el componente de isla más externo" indica la distancia desde la superficie de la fibra compuesta sólida de tipo mar-isla hasta el componente de isla más externo en una sección transversal perpendicular a la dirección del eje de la fibra de las fibras compuestas sólidas de tipo mar-isla contenidas en el soporte para adsorber materia orgánica, "Diámetro de isla máximo" indica el diámetro de isla máximo de los componentes de isla de las fibras compuestas sólidas de tipo mar-isla contenidas en el soporte para adsorber materia orgánica y "Contenido de grupos funcionales básicos" indica el contenido de grupos funcionales básicos por 1 g de peso seco de las fibras compuestas sólidas de tipo mar-isla contenidas en el soporte para adsorber materia orgánica.
En la Tabla 2, "Nombre del soporte para adsorción" Indica el nombre del soporte para adsorber materia orgánica y Ios que tienen >60 para la Posible duración del paso de líquido a través de la columna indican que una presión diferencial tras la circulación durante 60 minutos es inferior a 6,67 kPa (50 mmHg), sugiriendo un patrón alto porque la circulación durante 120 minutos o más en total es muy posible. Además, Ios que tienen 60 para la Posible duración del paso de líquido a través de la columna indican que una presión diferencial tras la circulación durante 60 minutos es no inferior a 6,67 kPa (50 mmHg), lo que sugiere la preocupación de que la circulación se interrumpa en 120 minutos en total.
Los resultados de la Tabla 2 han demostrado que Ios soportes para adsorber materia orgánica de las presentes realizaciones pueden garantizar una duración de paso de líquido de 60 minutos al suprimir un aumento de presión cuando se compactan en una columna y son excelentes en la adsorción de materia orgánica, especialmente Ios componentes de la sangre. También se ha demostrado que la cantidad de partículas finas generadas se suprime adecuadamente. En el ejemplo 1, el líquido pudo hacerse pasar por la columna durante 60 minutos, pero la presión diferencial superó Ios 6,67 kPa (50 mmHg). Por lo tanto, se cree que existe un riesgo si se continúa con la circulación.
[Tabla 3J
Nombre del soporte para Tasa de adsorción de Tasa de adsorción Cantidad de partículas la adsorción naranja de ácido 7 de IL-8 finas generadas % % Partículas/ml Ejemplo Soporte para adsorción
7 13 55 65 8
Ejemplo Soporte para adsorción
8 14 57 72 21
Ejemplo Soporte para 15
9 Adsorción 15 54 60 32 Ejemplo Soporte para adsorción 48 25 2
10 16
Ejemplo Soporte para adsorción
11 17 52 70 8
Ejemplo Soporte para adsorción
51 15
12 18 71
Ejemplo Soporte para adsorción 74 18 20
13 19
El Ejemplo 9 es un Ejemplo de Referencia en la Tabla 3
En la Tabla 3, "Nombre del Soporte para Adsorción" indica el nombre del soporte para adsorber materia.
Los resultados de la Tabla 3 han demostrado que Ios soportes para adsorber materia orgánica de las presentes realizaciones son excelentes en la adsorción de materia orgánica, especialmente Ios componentes de la sangre. También se ha demostrado que, cuando el contenido de grupos funcionales básicos está en el intervalo de 0,5 a 5,0 mmol por 1 g de peso seco de las fibras compuestas sólidas de tipo mar-isla, la cantidad de la adsorción de materia orgánica, especialmente Ios componentes de la sangre, es excelente, y la cantidad de partículas finas generadas se suprime adecuadamente. Además, se ha descubierto que, cuando el diámetro de isla máximo de Ios componentes de isla de las fibras compuestas sólidas de tipo mar-isla está en el intervalo de 0,1 a 2 pm, la cantidad de la adsorción de materia orgánica, especialmente Ios componentes de la sangre, es excelente, y la cantidad de partículas finas generadas se suprime adecuadamente.
[Tabla 4J
Nombre de la columna para Densidad de Tasa de adsorción de Pérdida de adsorción compactación circulación de IL-8 presión g/cm3 % mmHg Ejemplo 14 Columna para adsorción 1 0,08 21 5 Ejemplo 15 Columna para adsorción 2 0,17 44 15 Ejemplo 16 Columna para adsorción 3 0,22 58 25 Ejemplo 17 Columna para adsorción 4 0,37 68 70 Ejemplo 18 Columna para adsorción 5 0,45 70 150
Los Ejemplos 14, 15 y 16 son Ejemplos de Referencia en la Tabla 4.
Los resultados de la Tabla 4 han demostrado que las columnas para adsorción que comprenden un soporte para adsorber materia orgánica de las presentes realizaciones, cuando la densidad de compactación del soporte para adsorber materia orgánica está en el intervalo de 0,15 a 0,40 g/cm3, son excelentes especialmente en la tasa de
adsorción de la circulación de Ios componentes de la sangre, suprimiendo al mismo tiempo la perdida de presión durante la circulación.
Aplicabilidad industrial
El soporte para adsorber materia orgánica de las presentes realizaciones y la columna que comprende el soporte para adsorber materia orgánica pueden usarse para el tratamiento de componentes biológicos, particularmente para el tratamiento de componentes de la sangre, en el campo medico.
Lista de símbolos de referencia
1: Fibra compuesta sólida de tipo mar-isla
2: Círculo envolvente mínimo
3: Círculo inscrito máximo
4: Componente de mar
5: Componente de isla
d i: Distancia más corta desde la superficie de la fibra hasta el componente de isla más externo en una de las secciones transversales divididas en 6
d2: Distancia más corta desde la superficie de la fibra hasta el componente de isla más externo en una de las secciones transversales divididas en 6
d3: Distancia más corta desde la superficie de la fibra hasta el componente de isla más externo en una de las secciones transversales divididas en 6
d4: Distancia más corta desde la superficie de la fibra hasta el componente de isla más externo en una de las secciones transversales divididas en 6
d5: Distancia más corta desde la superficie de la fibra hasta el componente de isla más externo en una de las secciones transversales divididas en 6
d6: Distancia más corta desde la superficie de la fibra hasta el componente de isla más externo en una de las secciones transversales divididas en 6
6: Solución de FBS
7: Bomba
8: Columna para adsorción
9: Dispositivo de medición de presión de entrada
10: Dispositivo de medición de presión de salida
11: Baño de agua a temperatura constante
12: Calentador
13: Circuito
Claims (6)
1. Un soporte para adsorber materia orgánica, que comprende una fibra compuesta sólida de tipo mar-isla, que tiene un volumen de poro que es la suma de volúmenes de poros diminutos que tienen un diámetro de 200 nm o menos y que están contenidos en 1 g del material,
de 0,05 cm3/g a 0,5 cm3/g, medido mediante el método de la descripción, y un diámetro de fibra de 25 pm a 60 pm, medido mediante el método de la descripción, y
en donde la distancia desde la superficie de dicha fibra compuesta sólida de tipo mar-isla hasta el componente de isla más externo en una sección transversal perpendicular a la dirección del eje de la fibra de dicha fibra compuesta sólida de tipo mar-isla es no inferior a 1 pm e inferior a 30 pm, determinada mediante el método de la descripción, y el diámetro de isla máximo del componente de isla de dicha fibra compuesta sólida de tipo mar-isla es de 0,1 pm a 2 pm, determinado mediante el método de la descripción.
2. El soporte para adsorber materia orgánica, de acuerdo con la reivindicación 1, que comprende un ligando que tiene un grupo funcional ácido o un grupo funcional básico sobre la superficie de dicha fibra compuesta sólida de tipo marisla,
en donde el contenido de dicho grupo funcional ácido o dicho grupo funcional básico es de 0,5 mmol a 5,0 mmol por 1 g de peso seco de dicha fibra compuesta sólida de tipo mar-isla.
3. El soporte para adsorber materia orgánica, de acuerdo con las reivindicaciones 1 o 2, en donde el componente de mar de dicha fibra compuesta sólida de tipo mar-isla se compone de una única resina termoplástica, y
el componente de isla de dicha fibra compuesta sólida de tipo mar-isla se compone de poliolefina.
4. El soporte para adsorber materia orgánica, de acuerdo con una cualquiera de las reivindicaciones 1 a 3, que es para adsorber y retirar componentes de la sangre.
5. Una columna para adsorción, que comprende el soporte para adsorber materia orgánica, de acuerdo con una cualquiera de las reivindicaciones 1 a 4.
6. La columna para adsorción, de acuerdo con la reivindicación 5, en donde la densidad de compactación de dicho soporte para adsorber materia orgánica es de 0,15 g/cm3a 0,40 g/cm3.
Applications Claiming Priority (2)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| JP2018143340 | 2018-07-31 | ||
| PCT/JP2019/026762 WO2020026698A1 (ja) | 2018-07-31 | 2019-07-05 | 有機物吸着用担体 |
Publications (1)
| Publication Number | Publication Date |
|---|---|
| ES2922422T3 true ES2922422T3 (es) | 2022-09-14 |
Family
ID=69230521
Family Applications (1)
| Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
|---|---|---|---|
| ES19844208T Active ES2922422T3 (es) | 2018-07-31 | 2019-07-05 | Soporte para adsorber materia orgánica |
Country Status (12)
| Country | Link |
|---|---|
| US (1) | US11185844B2 (es) |
| EP (1) | EP3769836B1 (es) |
| JP (1) | JP6919789B2 (es) |
| KR (1) | KR102707347B1 (es) |
| CN (1) | CN112203758B (es) |
| BR (1) | BR112020021595A2 (es) |
| CA (1) | CA3099154A1 (es) |
| ES (1) | ES2922422T3 (es) |
| MX (1) | MX2020012381A (es) |
| PH (1) | PH12020552032A1 (es) |
| RU (1) | RU2020136253A (es) |
| WO (1) | WO2020026698A1 (es) |
Families Citing this family (3)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| US11992598B2 (en) | 2019-04-26 | 2024-05-28 | Toray Industries, Inc. | Adsorbing material for soluble tumor necrosis factor receptor |
| JP2022542517A (ja) * | 2019-08-01 | 2022-10-04 | シギュン セラピューティクス，インコーポレーテッド | 血液中の炎症促進性サイトカインの広範囲にわたる減少のためのデバイス、システム及び方法 |
| JPWO2023008489A1 (es) * | 2021-07-29 | 2023-02-02 |
Family Cites Families (31)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| JPS5293599U (es) | 1976-01-09 | 1977-07-13 | ||
| JPS60209525A (ja) | 1984-04-02 | 1985-10-22 | Toray Ind Inc | 内毒素の解毒吸着剤 |
| JPH0284545A (ja) | 1987-10-26 | 1990-03-26 | Rohm & Haas Co | 高表面積繊維 |
| EP0561379B1 (en) | 1992-03-17 | 1998-07-08 | ASAHI MEDICAL Co., Ltd. | Filter medium having a limited surface negative charge for treating a blood material |
| JP3176752B2 (ja) * | 1992-03-17 | 2001-06-18 | 旭メディカル株式会社 | 血液濾過材 |
| JP2000262894A (ja) | 1999-03-19 | 2000-09-26 | Mitsubishi Chemicals Corp | 繊維状合成吸着剤及びその製造方法 |
| JP2003064564A (ja) * | 2001-08-27 | 2003-03-05 | Toray Ind Inc | 吸水材 |
| WO2003101511A1 (fr) * | 2002-05-30 | 2003-12-11 | Toray Industries, Inc. | Adsorbant d'une substance immunosuppressive, colonne de circulation extracorporelle, et procede de traitement du cancer |
| JP2004248951A (ja) * | 2003-02-21 | 2004-09-09 | Toray Ind Inc | 吸着材および該吸着材を充填した体外循環用カラム |
| JP4453395B2 (ja) | 2003-02-27 | 2010-04-21 | 東レ株式会社 | 癌治療に適した体外循環カラム使用方法 |
| JP4969104B2 (ja) * | 2004-01-30 | 2012-07-04 | 旭化成ケミカルズ株式会社 | 多孔質セルロース凝集体及びその成型体組成物 |
| JP2007009339A (ja) * | 2005-06-28 | 2007-01-18 | Teijin Fibers Ltd | 海島型複合繊維の製造方法、該製造方法により得られる海島型複合繊維、および該海島型複合繊維より得られる微細繊維 |
| US20160138225A1 (en) * | 2005-08-22 | 2016-05-19 | The Procter & Gamble Company | Hydroxyl Polymer Fiber Fibrous Structures and Processes for Making Same |
| JP5017996B2 (ja) | 2006-01-30 | 2012-09-05 | 東レ株式会社 | 白血球およびサイトカインの吸着器 |
| WO2008026667A1 (fr) * | 2006-08-31 | 2008-03-06 | Toray Industries, Inc. | Support d'adsorption contenant une fibre composite |
| JP5167727B2 (ja) | 2006-08-31 | 2013-03-21 | 東レ株式会社 | 複合繊維を含む吸着担体 |
| JP5293599B2 (ja) | 2007-12-27 | 2013-09-18 | 東レ株式会社 | 生体成分処理用の繊維構造体 |
| SG189405A1 (en) * | 2010-10-27 | 2013-05-31 | Toray Industries | Carrier for blood component adsorption and blood component adsorption column |
| JP2012211043A (ja) * | 2011-03-31 | 2012-11-01 | Sony Corp | 多孔質炭素材料、吸着剤、経口投与吸着剤、医療用吸着剤、血液浄化カラム用の充填剤、水浄化用吸着剤、クレンジング剤、担持体、薬剤徐放剤、細胞培養足場材、マスク、炭素／ポリマー複合体、吸着シート、及び、機能性食品 |
| JP5810652B2 (ja) * | 2011-06-13 | 2015-11-11 | ソニー株式会社 | 液体塗布用繊維複合体 |
| CA2744780C (en) * | 2011-06-23 | 2014-01-14 | Willard E. Wood | A material and method for absorbing unwanted or target substances from a gas or vapor phase |
| JP5929130B2 (ja) | 2011-11-30 | 2016-06-01 | 東洋紡株式会社 | 水処理装置 |
| CN102794161B (zh) * | 2012-09-10 | 2014-01-08 | 重庆希尔康血液净化器材研发有限公司 | 一种血液灌流用多孔纤维素微球吸附剂及其制备方法 |
| JP6291970B2 (ja) * | 2013-03-29 | 2018-03-14 | 東レ株式会社 | タンパク質吸着材料およびその製造方法、血液浄化器 |
| KR102319779B1 (ko) * | 2014-02-25 | 2021-11-01 | 도레이 카부시키가이샤 | 해도 복합 섬유, 복합 극세 섬유 및 섬유 제품 |
| CN104372442A (zh) * | 2014-11-27 | 2015-02-25 | 中国纺织科学研究院 | 一种聚苯硫醚海岛纤维或超细纤维及其制备方法 |
| EP3263631B1 (en) * | 2015-02-27 | 2020-12-16 | Toray Industries, Inc. | Resin supply material, preform, and method for producing fiber-reinforced resin |
| JP6617957B2 (ja) | 2015-10-14 | 2019-12-11 | ユニチカ株式会社 | 無電解パラジウムめっき液の銅除去材 |
| CN105603718B (zh) * | 2016-02-05 | 2019-02-19 | 济南圣泉集团股份有限公司 | 一种复合纤维、及其制备方法和用途 |
| US10363546B2 (en) * | 2016-05-02 | 2019-07-30 | Liso Plastics LLC | Multilayer polymeric membrane |
| DK3513821T3 (da) * | 2016-09-09 | 2020-09-07 | Toray Industries | Materiale til rensning af blod |
-
2019
- 2019-07-05 JP JP2019539867A patent/JP6919789B2/ja active Active
- 2019-07-05 CN CN201980035997.5A patent/CN112203758B/zh active Active
- 2019-07-05 KR KR1020207026587A patent/KR102707347B1/ko active IP Right Grant
- 2019-07-05 WO PCT/JP2019/026762 patent/WO2020026698A1/ja active Application Filing
- 2019-07-05 RU RU2020136253A patent/RU2020136253A/ru unknown
- 2019-07-05 ES ES19844208T patent/ES2922422T3/es active Active
- 2019-07-05 EP EP19844208.9A patent/EP3769836B1/en active Active
- 2019-07-05 BR BR112020021595-3A patent/BR112020021595A2/pt not_active Application Discontinuation
- 2019-07-05 CA CA3099154A patent/CA3099154A1/en active Pending
- 2019-07-05 MX MX2020012381A patent/MX2020012381A/es unknown
- 2019-07-05 US US17/058,951 patent/US11185844B2/en active Active
-
2020
- 2020-11-25 PH PH12020552032A patent/PH12020552032A1/en unknown
Also Published As
| Publication number | Publication date |
|---|---|
| WO2020026698A1 (ja) | 2020-02-06 |
| CN112203758B (zh) | 2022-12-23 |
| PH12020552032A1 (en) | 2021-06-07 |
| KR102707347B1 (ko) | 2024-09-20 |
| US20210213421A1 (en) | 2021-07-15 |
| KR20210035772A (ko) | 2021-04-01 |
| JP6919789B2 (ja) | 2021-08-18 |
| CA3099154A1 (en) | 2020-02-06 |
| BR112020021595A2 (pt) | 2021-02-17 |
| RU2020136253A (ru) | 2022-05-05 |
| EP3769836B1 (en) | 2022-06-22 |
| EP3769836A1 (en) | 2021-01-27 |
| US11185844B2 (en) | 2021-11-30 |
| CN112203758A (zh) | 2021-01-08 |
| JPWO2020026698A1 (ja) | 2021-06-10 |
| EP3769836A4 (en) | 2021-06-09 |
| MX2020012381A (es) | 2021-02-09 |
| RU2020136253A3 (es) | 2022-05-05 |
Similar Documents
| Publication | Publication Date | Title |
|---|---|---|
| ES2922422T3 (es) | Soporte para adsorber materia orgánica | |
| CA2664770C (en) | Cell adsorption column | |
| ES2608854T3 (es) | Adsorbente y columna para circulación extracorpórea | |
| ES2676593T3 (es) | Aparato de perfusión extracorpórea | |
| JP7497682B2 (ja) | 血液処理材料 | |
| JP6699731B2 (ja) | 活性化白血球−活性化血小板複合体の除去材料 | |
| JP5017996B2 (ja) | 白血球およびサイトカインの吸着器 | |
| JP4997770B2 (ja) | 吸着器 | |
| JP2006288571A (ja) | 癌治療用吸着材および体外循環カラム | |
| EP0819439A1 (en) | Adsorbent for disease-related factors in body fluids, method of elimination by adsorption, body fluid purifier, and apparatus for purifying body fluids | |
| JP7415700B2 (ja) | 血液浄化用担体 | |
| EP3195930B1 (en) | Fiber for protein adsorption and column for protein adsorption | |
| JP2018102659A (ja) | 血液成分吸着カラム | |
| JP7459449B2 (ja) | 可溶性腫瘍壊死因子受容体の吸着材料 | |
| JPH01181875A (ja) | 免疫複合体の吸着体およびそれを用いた免疫複合体の除去装置 | |
| JPH0114791B2 (es) | ||
| JPH0316639A (ja) | 吸着体およびそれを用いた除去装置 | |
| JP2020092879A (ja) | 血液浄化カラム | |
| JPH10328565A (ja) | 免疫複合体の除去装置 | |
| JPH02265565A (ja) | 抗甲状腺刺激ホルモンレセプター抗体の吸着体およびそれを用いた抗甲状腺刺激ホルモンレセプター抗体の除去装置 |