ES2243697T3 - Combinacion de probioticos. - Google Patents
Combinacion de probioticos.Info
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Abstract
Es un objeto de la presente invención presentar un nuevo producto que contiene probióticos, cuyo efecto probiótico ha quedado claramente demostrado, que es agradable de usar y sano para el consumidor. Estos objetos fueron conseguidos con una nueva combinación de la invención, que consiste en un número plural de probióticos. La presente invención se basa, por lo tanto, en una nueva combinación consistente en (2) cepas de lactobacillus, una bacteria ácido-propiónica y una bifidobacteria. Además, la combinación contiene preferiblemente un prebiótico que soporta el crecimiento de los microbios antes mencionados. Según la invención, se usan principalmente dos cepas de lactobacilos, es decir, Lactobacillus rhamnosus LGG (ATCC 53103) y Lactobacillus rhamnosus LC705 (DSM 7061). La bacteria ácido-propiónica es Propionibacterium freudenreichii ssp. shermanii PJS (DSM 7067). La bifidobacteria puede ser cualquier bifidobacteria que tenga un efecto probiótico; típicamente, se usan cepas pertenecientes alas especies Bifidobacterium breve, Bifidobacterium infantis, Bifidobacterium longum, Bifidobacterium bifidum y Bifidobacterium adolescentis.
Description
Combinación de probióticos.
La invención se relaciona con una combinación de
probióticos, cuya combinación consiste en lactobacilli, bacterias
ácido-propiónicas y bifidobacterias. Los probióticos
son preferiblemente combinados con un prebiótico adecuado para
producir un sinbiótico. La combinación de la invención puede ser
consumida como tal o puede combinarse con un alimento adecuado, tal
como un producto lácteo o una bebida, y es terapéuticamente útil,
por ejemplo, para estimular el sistema nervioso y para mejorar la
salud en general.
Los probióticos son microbios vivos que, cuando
se administran al hombre o a los animales, promueven el bienestar
del hospedador mejorando el equilibrio microbiano intestinal
(Fuller, R., Probiotics in man and animals, 1989, J. Appl.
Microbiol. 66: 365-378). Los probióticos mejor
documentados incluyen L. Rhamnosus LGG, L. Johnsonii
LAI, L. Casei Shirota y Bifidobacterium lactis Bbl2.
Además, se ha descrito una serie de otros probióticos en la
literatura de la técnica (véase, por ejemplo, M.E. Sanders y J.H.
in't Veld 1999, Antonie van Leeuwenhoek 76: 293-315,
Kluwer Academic Publishers). Los efectos promotores de la salud de
los probióticos incluyen el equilibrio y el mantenimiento de la
flora intestinal, la estimulación del sistema inmune y la actividad
anticarcinogénica. Los efectos útiles de los probióticos en el
intestino humano se basan en varios factores causados por las
células bacterianas vivas, sus estructuras celulares y sus productos
metabólicos. Los probióticos son normalmente administrados en
nutrientes o como cápsulas.
Se puede hacer referencia a una bacteria como
probiótico si cumple esencialmente los siguientes requerimientos
(Lee, Y-K. y Salminen, S., 1995, The coming age of
probiotics. Trend Food Sci. Technol., 6: 241-245):
permanece viable en las condiciones exigentes que prevalecen en el
tracto digestivo (bajo pH gástrico, ácidos en el sistema digestivo,
etc.), se une a las paredes del intestino, se metaboliza en el
intestino, es tecnológicamente aplicable (soporta el procesado),
exhibe efectos para la salud clínicamente estudiados y descritos y
es seguro de consumir.
Los prebióticos son ingredientes alimenticios no
digestibles que promueven la salud de los humanos estimulando
selectivamente el crecimiento y la actividad de una o más bacterias
probióticas en el colon (Gibson, G.R. y Roberfroid, M.B., 1995.
Dietary modulation of the human colonic microbiota - introducing a
concept of prebiotics. J. Nutr. 125: 1401-1412). Un
prebiótico es normalmente un carbohidrato (oligo- o polisacárido) no
digestible o un alcohol azucarado que no se degrada ni absorbe en el
tracto digestivo superior. Como prebióticos conocidos usados en
productos comerciales, se incluyen la inulina (fructooligosacárido o
FOS) y los transgalactooligosacáridos (GOS o TOS).
Se define un sinbiótico como una combinación de
un prebiótico y un probiótico, promoviendo el prebiótico la
viabilidad del microbio añadido y su unión al intestino, promoviendo
así la salud (Gibson y Roberfroid, 1995, antes citado). Cuando los
carbohidratos no digestibles que han pasado a través del intestino
delgado fermentan en el colon, se forman ácidos grasos de cadena
corta, otros ácidos orgánicos, alcoholes, hidrógeno y dióxido de
carbono, por ejemplo (Gibson y Roberfroid, 1995, antes citado). Los
ácidos grasos primarios producidos en la fermentación son ácido
acético, ácido butírico y ácido propiónico (Cummings, J.H.,
Short-chain fatty acids, en: Human Colonic Bacteria:
Role in Nutrition, Physiology and Pathology, G.R. Gibson y G.T.
Macfarlane (eds.), pp. 101-130, CRC Press, Boca
Ratón, 1995). Sería generalmente ventajoso un aumento en el número
de ácidos grasos de cadena corta. Los carbohidratos no digestibles
son el principal substrato para microbios colónicos, aunque también
pueden incluir compuestos cuya fermentación intestinal sea
desventajosa (Gibson y Roberfroid, 1995, antes citado).
El tracto digestivo humano se acomoda a un número
plural de bacterias que viven en simbiosis con el hospedador.
Existen grandes diferencias en el contenido microbiano entre las
diferentes partes del tracto, apareciendo aproximadamente un 95% de
todas las bacterias intestinales en el colon, que es la parte más
importante del intestino. Se ha calculado que más de 400 especies
bacterianas proliferan en el colon. Además de éstas, el intestino
contiene microbios conocidos como microbios transitorios (G.R.
Gibson y M.B. Roberfroid (eds.), Colonic Microbiota; Nutrition and
Health, Kluwer Academic Publisher, Dordrecht, 1999). Las especies
dominantes son las siguientes: Bacteroides, Bifidobacterium,
Coprococcus, Peptostretococcus, Eubacterium y
Ruminococcus. El número de especies de Lactobacillus,
Streptococcus, Fusobacterium, Veillonella, Propionibacterium y
Enterobacteriaceae es ligeramente menor. Algunas de las
especies representan microbios útiles, mientras que otras pueden ser
incluso perjudiciales. El contenido microbiano medio en las heces es
de 10^{12} cfu/g (por materia seca). Las bacterias degradan y
fermentan aquellos componentes del alimento en el colon que no se
absorben en el intestino delgado, absorbiéndose los productos
finales de la fermentación en el intestino para su uso por parte del
organismo. Además de la nutrición, el equilibrio microbiano del
colon tiene una significación fundamental para el estado de salud de
un hombre (Tannock, G.W., 1998, Studies of the intestinal
microflora: A prerequisite for the development of probiotics, Int.
Dairy J., 8: 527-533). Los cambios en la composición
de la flora intestinal o una reducción repentina en la cantidad de
ésta (debido a diarrea grave, tratamiento con antibióticos, etc.)
aumentan la infectividad de especies potencialmente patógenas, lo
que puede tener graves consecuencias (aparición de alergias,
enfermedades intestinales, cáncer).
Se supone que las enzimas
\beta-glucuronidasa producidas por las bacterias
intestinales contribuyen a la formación de compuestos
carcinogénicos, por ejemplo. Los esteroides y otros compuestos
carcinogénicos se metabolizan en el hígado y se conjugan después con
el ácido glucurónico. La bilis conduce el compuesto de glucurona
conjugado al intestino delgado y allí el compuesto pasa al colon,
donde las enzimas glucuronidasa pueden hidrolizar el compuesto,
liberando así compuestos tóxicos en el colon (Rowland, I.R., 1995,
Toxicology of the colon: role of the intestinal microflora, en:
Human Colonic Bacteria, Role in Nutrition, physiology and pathology,
Editores: Gibson, G.R. y Macfarlane, G.T., pp.
155-174, Boca Ratón: CRC Press). Se supone que
especies de Eubacterium, Bacteroides y Clostridium
liberan cantidades mayores de estas enzimas perjudiciales al
intestino que los representantes de especies de
Bifidobacterium y Lactobacillus. Esto proporcionaría,
por lo tanto, una razón por la cual sería ventajoso que la flora
intestinal estuviera compuesta por bifidobacterias y
lactobacilos.
Además, los glicósidos que se originan de
vegetales y del té, por ejemplo, no se absorben en el intestino
delgado y pasan al colon, donde pueden hidrolizarse por la acción de
las \beta-glucosidasas para formar compuestos de
aglicona tóxicos o mutagénicos (Goldin, B.R., 1990, Intestinal
Microflora: metabolism of drugs and carcinogens, Annals of Medicine
22: 43-48).
Más aún, la flora intestinal produce enzima
ureasa, que degrada la urea a amoníaco. Altas cantidades de amoníaco
pueden resultar tóxicas para las células epiteliales del intestino
(Mobley, H.L.T. y Hausinger, R.P.,1989, Microbial ureases:
significance, regulation and molecular characterization,
Microbiological Reviews 53: 85-108).
La flora intestinal humana se forma durante los
primeros años de vida y no se producen cambios importantes en su
composición con posterioridad. Sólo pueden tener lugar cambios
menores dentro de las especies (en bifidobacterias, por
ejemplo).
Junto con la mayor comprensión de la importancia
de la flora intestinal, la investigación ha estado así activamente
enfocada sobre el descubrimiento de los factores que pueden
utilizarse para influir en la composición de la flora y su operación
(viabilidad), de tal forma que se reforzarían las especies
bacterianas beneficiosas y se reducirían las perjudiciales. Se
supone que la operación de microbios puede estar influida por
prebióticos que promueven las bacterias beneficiosas. Se ha llevado
a cabo una amplia investigación en oligosacáridos (GOS) que son di-,
tri-, tetra-, penta- y hexasacáridos y que contienen primariamente
unidades de galactosa. Se preparan enzimáticamente a partir de
lactosa y el contenido del producto final depende de la enzima usada
(Matsumoto, K. y col., 1993, Galactooligosaccharides, en:
Oligosaccharides. Production, properties and applications, Ed.
Nakakuki, T., Japanese Technology Reviews, Vol. 3, Nº 2, pp.
90-116, Gordon and Breach Science Publishers, Suiza,
Australia). Los GOS han demostrado con anterioridad exhibir, por
ejemplo, propiedades bifidogénicas, es decir, aquéllas que promueven
el crecimiento de bifidobacterias (Ito, M. y col., 1990, Effect of
administration of galactooligosaccharides on the human faecal
microflora, stool weight and abdominal sensation, Microb. Ecol.
Health Dis. 3: 285-292).
Se han descrito abundantemente en la literatura
de la técnica productos que contienen tanto una cepa probiótica
individual como combinaciones de un número plural de diferentes
probióticos. También se han descrito sinbióticos en la literatura de
la técnica.
La Publicación EP 904.784, N.V. Nutricia, por
ejemplo, describe un producto probiótico que contiene
Bifidobacterium, Enterococcus faecium y Lactobacillus.
Además, el producto puede contener prebióticos, tales como
polisacáridos o almidón no degradable, e inmunoglobulinas,
vitaminas, etc. Según la publicación, el producto tiene un efecto
promotor de la salud, en el sentido de que estimula el sistema
inmune, por ejemplo. El efecto no ha sido mostrado, sin embargo, en
pruebas clínicas, ni se ha estudiado ninguna otra actividad
biológica.
WO 00/33854, N.V. Nutricia, describe un producto
consistente en un probiótico y oligosacáridos. Los probióticos a los
que se hace referencia en particular, son Lactobacillus y
Bifidobacterium, aunque también se mencionan Pediococcus,
Propionibacterium, Leuconostoc y Saccharomyces. Los
prebióticos implicados incluyen transgalactooligosacáridos (TOS) y
fructooligosacáridos (FOS). Según la publicación, una combinación
particularmente ventajosa consiste en Lactobacillus rhamnosus
y un transgalactooligosacárido o un producto de hidrólisis de
galactano de patata, estando también ilustrada esta combinación y su
preparación en los ejemplos. Según la publicación, el producto tiene
efectos promotores de la salud y es particularmente útil en el
tratamiento de trastornos intestinales. Sin embargo, su actividad no
ha sido demostrada en modo alguno.
WO 97/34615, Universidad de New South Wales,
describe una composición probiótica que contiene, además de uno o
más probióticos, almidón resistente (no degradable) y oligosacárido,
obteniéndose un efecto sinérgico entre los tres componentes. Los
probióticos mencionados son Saccharomyces, Bifidobacterium,
Bacteroides, Clostridium, Fusobacterium, Propionibacterium,
Lactococcus, Streptococcus, Enterococcus, Staphylococcus,
Peptostreptococcus y Lactobacillus y los oligosacáridos
incluyen, entre muchos otros, fructo- y galactooligosacáridos. Los
ejemplos muestran el efecto sinérgico de las bifidobacterias, del
almidón de maíz y de los fructooligosacáridos sobre la cantidad de
bifidobacterias. No se ha descrito, sin embargo, ningún efecto
terapéutico.
EE.UU. 5.895.648, Sitia-Yomo
S.p.A., describe una composición probiótica que contiene, en forma
liofilizada, bacterias vivas, al menos dos especies de
bifidobacterias y al menos dos especies de lactobacilos o
estreptococos combinados con uno o más oligosacáridos. La
composición contiene en total de 4 a 20 partes en peso de
probióticos y de 5 a 22 partes en peso de oligosacáridos, de los
cuales, por ejemplo, se mencionan los galacto- y
fructooligosacáridos, la inulina en particular. Los probióticos
mencionados incluyen Bifidobacterium breve, Bifidobacterium
infantis, Bifidobacterium longum, Bifidobacterium bifidum,
Lactobacillus acidophilus, Lactobacillus bulgaricus, Lactobacillus
casei, Lactobacillus plantarum, Streptococcus thermophilus y
Streptococcus faecium. Según la publicación, se puede añadir
una mezcla que contenga probióticos y prebióticos a postres a base
de leche, leches o zumos para equilibrar el funcionamiento del
intestino. No se ha descrito, sin embargo, ninguna actividad
biológica de la combinación.
La publicación Milchwissenschaft (1988), Vol. 53,
Nº 11, pp. 603-605, describe leche PAB, que contiene
tres cepas bacterianas: Propionibacterium freudenreichii
subsp. shermanii MTCC 1371, Lactobacillus acidophilus
R. y Bifidobacterium bifidum NDRI. No se han añadido
prebióticos al producto. Según la publicación, la leche PAB es
adecuada para bebés y niños y también para quienes padecen de
intolerancia a la lactosa.
WO 99/10476 describe el efecto simulador de cepas
bacterianas específicas, es decir, de Lactobacillus rhamnosus
HN001 (NM97/09514) y HN067 (NM97/01925) y Lactobacillus
acidophilus HN017 (NM97/09515) y Bifidobacterium lactis
HN019 (NM97/09513), sobre el sistema inmune, medido como un aumento
en la fagocitosis. Las cepas pueden ser usadas individualmente o
pueden ser añadidas a productos lácteos o preparaciones
farmacéuticas.
EE.UU. 5.902.578, Abbott Laboratories, se
relaciona con un método para evitar y tratar la diarrea con una
mezcla de Lactobacillus reuterii, Lactobacillus acidophilus y
Bifidobacterium infantis, siendo preparada la mezcla en
polvo, líquido o píldoras.
También se han descrito efectos biológicos y
terapéuticos de probióticos y sinbióticos del tipo anterior en la
técnica antecedente. Como ejemplos, se pueden citar Gallagher, D. y
col., Journal of Nutrition (1996), Vol. 126, Nº 5, pp.
1362-1371, que describen los efectos de
bifidobacterias y Lactobacillus acidophilus sobre el cáncer
de colon en ratas y dicen que se obtuvieron los mejores resultados
usando ambas bacterias y un fructooligosacárido, y Kirjavainen, P. y
col., Clinical and Diagnostic Laboratory Immunology (Noviembre de
1999), Vol. 6, Nº 6, pp. 799-802, que describen los
efectos positivos de dos cepas ácido-lácticas
estudiadas por separado, Lactobacillus rhamnosus GG y
Propionibacterium freudenreichii subsp. shermanii JS,
sobre los niveles de linfocitos, y por lo tanto sobre la respuesta
inmune, de ratones. La combinación de estas dos bacterias no ha sido
descrita ni estudiada.
La combinación de probióticos con otras
substancias que tienen efectos terapéuticos ha sido también descrita
en la literatura de la técnica. Por ejemplo, WO 97/29762 y WO
97/29763, Procter & Gamble Company, describen el uso de
lactobacilos y bifidobacterias combinados con galacto- o
fructooligosacáridos junto con una planta del género
Ericaceae, o un extracto de la misma, para el tratamiento de
infecciones del tracto urinario y de trastornos intestinales, y WO
00/29007, Reddy, describe la combinación de probióticos, tales como
Lactococcus, Lactobacillus, Pediococcus, Streptococcus,
Propionibacterium, Brevibacterium, Penicillium y
Saccharomyces, con productos naturales basados en hierbas y
substancias de tipo fármaco.
Aunque los probióticos y sinbióticos han sido
ampliamente estudiados, no se dispone de productos comerciales
buenos y versátiles en ningún grado significativo. En consecuencia,
existe una necesidad continua y evidente de ofrecer a los
consumidores nuevos productos que tengan efectos probióticos
claramente demostrados y producidos en una forma que permita su uso
como una parte o suplemento conveniente, por ejemplo, de la dieta
diaria.
Es, por lo tanto, un objeto de la presente
invención presentar un nuevo producto que contiene probióticos, cuyo
efecto probiótico ha quedado claramente demostrado, que es agradable
de usar y sano para el consumidor.
Estos objetos fueron conseguidos con una nueva
combinación de la invención, que consiste en un número plural de
probióticos. La presente invención se basa, por lo tanto, en una
nueva combinación consistente en (2) cepas de lactobacillus, una
bacteria ácido-propiónica y una bifidobacteria.
Además, la combinación contiene preferiblemente un prebiótico que
soporta el crecimiento de los microbios antes mencionados.
Según la invención, se usan principalmente dos
cepas de lactobacilos, es decir, Lactobacillus rhamnosus LGG
(ATCC 53103) y Lactobacillus rhamnosus LC705 (DSM 7061). La
bacteria ácido-propiónica es Propionibacterium
freudenreichii ssp. shermanii PJS (DSM 7067). La bifidobacteria
puede ser cualquier bifidobacteria que tenga un efecto probiótico;
típicamente, se usan cepas pertenecientes a las especies
Bifidobacterium breve, Bifidobacterium infantis, Bifidobacterium
longum, Bifidobacterium bifidum y Bifidobacterium
adolescentis.
La combinación más preferida es una mezcla de
cuatro cepas, Lactobacillus rhamnosus LGG (ATCC 53103),
Lactobacillus rhamnosus LC705 (DSM 7061),
Propionibacterium freudenreichii ssp. shermanii PJS (DMS
7067) y Bifidobacterium infantis Bbi99 (DSM 13692). Sin
embargo, se puede incluir cualquier bifidobacteria (tal como Bb12)
en la combinación, si se desea. El prebiótico usado es
preferiblemente galactooligosacárido (GOS).
La nueva combinación puede ser usada como tal o
como parte de otro producto, tal como un producto farmacéutico o
alimentario. La combinación de la invención tiene un efecto
ventajoso sobre el equilibrio intestinal humano, ya que aumenta la
producción de enterolactona y reduce un valor de pH
inconvenientemente alto. La combinación influye también en la
respuesta inmune aumentando la cantidad de linfocitos y la de
\gamma-interferón (IFN) y reduciendo la formación
de substancias carcinogénicas. La combinación de la invención es,
por lo tanto, útil para la prevención y el tratamiento de
trastornos, alergias y cáncer a nivel de intestino y para promover
el estado general de salud.
Según la presente invención, la combinación es,
por lo tanto, aplicable como substancia terapéutica y en la
preparación de substancias terapéuticas.
De las cepas usadas en la invención, se han
descrito Lactobacillus rhamnosus GG (LGG), Lactobacillus
casei ssp. Rhamnosus LC705 y Propionibacterium
freudenreichii ssp. shermanii JS (PJS) en la técnica
anterior. Bifidobacterium infantis Bbi99, que puede ser
incluida en la combinación, es una nueva cepa y será descrita con
más detalle a continuación.
Lactobacillus rhamnosus GG (LGG) está
descrito, por ejemplo, en la Patente EE.UU. 5.032.399, Gorbach y
Goldin. Se aísla la cepa de heces humanas, es capaz de crecer bien a
pH 3 y sobrevive incluso a valores de pH inferiores, así como a
altos contenidos en ácidos biliares. La cepa exhibe una excelente
adhesión tanto a las células del mucus como a las epiteliales. El
rendimiento de ácido láctico a partir de la glucosa es bueno: cuando
se cultiva en caldo MRS, la cepa produce un 1,5-2%
de ácido láctico. La cepa no fermenta la lactosa y, por lo tanto, no
produce ácido láctico a partir de lactosa. La cepa emplea los
siguientes carbohidratos: D-arabinosa, ribosa,
galactosa, D-glucosa, D-fructosa,
D-manosa, ramnosa, dulcitol, inositol, manitol,
sorbitol, N-acetilglucosamina, amigdalina, arbutina,
esculina, salicina, celobiosa, maltosa, sacarosa, trehalosa,
melezitosa, gentibiosa, D-tagatosa,
L-fucosa y gluconato. La cepa crece bien a
+15-45ºC, siendo la temperatura óptima
30-37ºC. Lactobacillus rhamnosus GG está
depositado en la autoridad depositaria American Type Culture
Collection bajo el número de acceso ATCC 53103.
Se describe a Lactobacillus casei ssp.
Rhamnosus LC705 con mayor detalle en la Patente FI 92498,
Valio Oy. LC705 es un bacillo corto gram-positivo
que aparece en cadenas; es homofermentativo; débilmente
proteolítico; crece bien a +15-45ºC; no produce
amoníaco a partir de arginina; es catalasa-negativo;
cuando crece en caldo MRS (LABM), la cepa produce un 1,6% de ácido
láctico con una actividad óptica de la configuración L(+); la cepa
descompone el citrato (0,169%), produciendo así diacetilo y
acetoína; la cepa fermenta al menos los siguientes carbohidratos
(azúcares, alcoholes de azúcares): ribosa, galactosa,
D-glucosa, D-fructosa,
D-manosa, L-sorbosa, ramnosa,
manitol, sorbitol,
metil-D-glucósido,
N-acetilglucosamina, amigdalina, arbutina, esculina,
salicina, celobiosa, maltosa, lactosa, sacarosa, trehalosa,
melezitosa, gentiobiosa, D-turanosa y
D-tagatosa. LC705 se adhiere débilmente a las
células del mucus, pero moderadamente a las células epiteliales. La
viabilidad de la cepa es buena a bajos valores de pH y a altos
contenidos en ácidos biliares. La cepa sobrevive bien a una
salinidad del 5% y bastante bien a una salinidad del 10%.
Lactobacillus casei ssp. rhamnosus LC705 está
depositada en la Deutsche Sammlung von Mikroorganismen und
Zellkulturen GmbH (DSM) bajo el número de acceso DSM 7061.
También se describe Propionibacterium
freudenreichii ssp. shermanii JS (PJS) con mayor detalle
en la Patente FI 92498, Valio Oy. PJS es un bacilo corto
gram-positivo, fermenta la glucosa, la fructosa, la
galactosa y la lactosa; fermenta bien el lactato y su temperatura
óptima de crecimiento es 32ºC. La viabilidad de la cepa a bajos
valores de pH y altos contenidos de ácidos biliares es excelente.
Propionibacterium freudenreichii ssp. shermanii JS
está depositada en la Deutsche Sammlung von Mikroorganismen und
Zellkulturen GmbH (DSM) bajo el número de
\hbox{acceso DSM 7067.}
Bifidobacterium infantis Bbi99 ha sido
aislado de heces de un recién nacido sano. B. Infantis Bbi99
es un bacilo pleomórfico gram-positivo. La cepa es
catalasa-negativa,
fructosa-6-fosfato-fosfocetolasa-posi-tiva
(F6PPK) y tanto \beta-galactosidasa como
\beta-glucosidasa-positiva. B.
Infantis Bbi fermenta los siguientes carbohidratos: ribosa,
galactosa, D-glucosa, D-fructosa,
D-manosa,
metil-D-manosa,
N-acetilglucosamina, esculina, salicina, celobiosa,
maltosa, lactosa, melibiosa y gentiobiosa. La temperatura óptima de
crecimiento es 30-40ºC y el pH
6,5-7,0. Cuando crece en caldos que contienen
hexosa, la cepa produce ácido L-láctico y ácido
acético (en una proporción de 2:3). El contenido en G+C del ADN es
del 55-67% molar. Bifidobacterium infantis
Bbi99 fue depositada en la Deutsche Sammlung von Mikroorganismen und
Zellkulturen GmbH (DSM), según el Tratado de Budapest, bajo el
número de acceso DSM 13692 el 28 de Agosto de 2000.
La combinación de la invención puede incluir
también otros microorganismos, tales como microorganismos y
probióticos contenidos en iniciadores usados en la industria láctea.
Hay una serie de cepas bien documentadas de iniciadores, que pueden
ser comercialmente adquiridas de productores tales como Hansen A/S,
Dinamarca, y Danisco/Wiesby GmbH, Alemania.
Para preparar las combinaciones de la invención,
se cultivan los microorganismos usando procedimientos convencionales
en la técnica. Pueden ser cultivados como cultivos puros o como
diferentes cultivos mixtos. Los cultivos pueden ser usados como
tales o pueden ser procesados como se desee, por ejemplo,
purificándolos, concentrándolos, liofilizándolos o acabándolos para
producir diversas preparaciones.
Se usa una cantidad suficiente de probióticos en
la combinación para producir el efecto probiótico deseado. La
cantidad de cada probiótico puede variar, por lo tanto, dentro de un
amplio rango, dependiendo, por ejemplo, de las cepas usadas y de su
número, de la cantidad total de células de los probióticos, de la
dosis diaria total y de otras propiedades e ingredientes del
producto. Una dosis diaria de la combinación contiene normalmente
aproximadamente 10^{6}-10^{10} cfu de
probióticos.
Se añaden preferiblemente uno o más prebióticos a
la combinación para formar un sinbiótico. Se selecciona el
prebiótico según los microorganismos incluidos en la combinación en
cuestión, de tal forma que soporte el crecimiento de los
microorganismos. Como prebióticos adecuados, se pueden incluir, por
ejemplo, oligosacáridos, particularmente galactooligosacáridos
(GOS), palatinosaoligosacáridos, oligosacáridos de soja,
gentiooligosacáridos, xilioligómeros, almidón no degradable,
lactosacarosa, lactulosa, lactitol, maltitol, polidextrosa o
similares. Se añade una cantidad suficiente del prebiótico al
sinbiótico para producir un efecto prebiótico. Lo que constituye una
cantidad suficiente, es determinado, por ejemplo, según la cepa en
cuestión, la cantidad de los prebióticos incluidos y los otros
contenidos y la aplicación del producto. La cantidad varía también,
por lo tanto, en un amplio margen; puede ser de 0,5 a 5 g en una
dosis diaria, por ejemplo.
El prebiótico no necesita forzosamente ser
incluido en la combinación. Dependiendo del producto final y de la
finalidad de uso, puede ser mejor consumir el prebiótico por
separado, aunque aproximadamente al mismo tiempo que la combinación
probiótica. En algunos casos, puede ser suficiente consumir sólo la
combinación probiótica, no necesitándose así el prebiótico en
absoluto. Un ejemplo de esto es el caso en que las condiciones
intestinales del hospedador son adecuadas para el crecimiento de
probióticos sin necesidad de añadir un prebiótico y cuando el
prebiótico está contenido en la dieta normal (si se consume en
papilla o pan de centeno, por ejemplo).
La presente invención ha mostrado que los
microorganismos usados cumplen los criterios establecidos para los
probióticos: sobreviven bien en las condiciones exigentes del tracto
digestivo, se adhieren bien a las células intestinales y se
multiplican bien en el intestino. También han mostrado exhibir
excelentes efectos biológicos; por ejemplo, aumentan el número de
microorganismos deseables desde el punto de vista de la salud y
reducen el número de microorganismos perjudiciales en el intestino,
reducen la actividad de enzimas perjudiciales y de este modo la
formación de substancias perjudiciales o incluso carcinógenas y
tienen un efecto estimulante sobre la respuesta
inmune.
inmune.
La combinación de la invención puede ser usada
como tal o en forma de cápsulas, píldoras o tabletas, por ejemplo,
fabricadas en procedimientos convencionales de preparación de
productos farmacéuticos. La combinación de la invención puede ser
también añadida a diversos productos comestibles, tales como
alimentos, productos de la industria de la bebida o de la
pastelería, productos promotores de la salud, productos naturales,
etc. En el contexto de la presente invención, se prefieren productos
que contienen la combinación de la invención, tales como productos
lácteos, particularmente yogures y otros productos lácteos
fermentados; quesos y extensiones; alimento para niños; zumos y
sopas, y cápsulas. Un producto en forma de cápsula normalmente
contiene sólo la combinación probiótica, siendo consumido el
prebiótico por separado.
Los productos finales son preparados en
procedimientos convencionales, siendo añadida la combinación en
relación con la preparación o a continuación durante el acabado del
producto final.
La invención es descrita con mayor detalle en
relación a los siguientes ejemplos, que sólo pretenden ilustrar la
invención y no restringir su alcance en modo alguno.
La combinación fue preparada a partir de una
mezcla bacteriana, añadiendo, cuando se deseara,
galactooligosacárido (GOS) como prebiótico. Se formó la mezcla
bacteriana a partir de cultivos bacterianos (concentrados o polvos
liofilizados) de cuatro cepas, es decir, Lactobacillus
rhamnosus LGG (ATCC 53103), Lactobacillus rhamnosus LC705
(DSM 7061), Propionibacterium freudenreichii ssp.
shermanii PJS (DSM 7067) y Bifidobacterium infantis
Bbi99 (DSM 13692).
Tanto LGG como la bifidobacteria son cultivados
individualmente.
LGG fue cultivado en un medio consistente en un
5,0% de permeado de suero (Valio Oy), un 0,5% de hidrolizado de
caseína (Valio Oy), un 0,5% de levadura técnica y un 0,0015% de
MnSO_{4} x H_{2}O. Se disolvieron los componentes del medio en
agua y se esterilizó el medio (durante 20 minutos a 120ºC). Se
realizó el cultivo a una temperatura de 37ºC y un pH de 5,8
(ajustado con NH_{4}OH) durante aproximadamente 18 h y a una
velocidad de mezcla de 100 rpm. Tras el cultivo, se concentraron las
células bacterianas, se lavaron y se liofilizaron usando un
suplemento de agente protector al 10% (v/v), tal como un caldo de
sacarosa del 46% o una alternativa similar conocida para los
expertos en la técnica. El contenido bacteriano final era >1 x
10^{9} cfu/ml en el cultivo, >1 x 10^{10} cfu/g en el
concentrado y >1 x 10^{11} cfu/g en el polvo liofilizado.
La composición del medio de crecimiento de
bifidobacterias era la siguiente: permeado de suero 4% (Valio Ltd.),
hidrolizado de caseína 1,0% (Valio Ltd.), extracto de levadura
técnica 1,0% (LAB M) y cisteína-HCl 0,03% (Merck,
Darmstadt, Alemania). Se disolvieron primeramente otros ingredientes
del medio en agua, se añadió luego la cisteína-HCl y
se esterilizó el medio (durante 20 minutos a 120ºC). Se realizó el
cultivo en aproximadamente 18-20 horas a una
temperatura de 37ºC y un pH de 6,7 (ajustado con NH_{4}OH) y una
velocidad de mezcla de 100 rpm. El contenido bacteriano del cultivo
era >1 x 10^{9} cfu/ml. Después del cultivo, se concentraron
las células bacterianas, se lavaron y se liofilizaron usando un
suplemento de agente protector al 10% (v/v), tal como caldo de
sacarosa del 46%, o una alternativa similar conocida para los
expertos en la técnica. El contenido bacteriano en el concentrado
era >1 x 10^{10} cfu/g y el polvo liofilizado >1 x 10^{11}
cfu/g.
Se cultivaron conjuntamente LC705 y PJS
inoculando células bacterianas en un caldo de cultivo basado en
suero lácteo en una proporción de 1:2. El medio de crecimiento
basado en suero contenía un 3,5-5% de permeado de
suero (Valio Oy), un 1,0% de hidrolizado de caseína y un 1,0% de
extracto de levadura (Valio Oy). Se cultivaron las cepas durante
tres días a 30ºC manteniendo el pH a 4,5 por medio de un ajuste de
pH automatizado. Después del cultivo, el contenido de cada cepa
bacteriana era de >1 x 10^{9} cfu/ml. Después del cultivo, se
concentraron las células bacterianas, se lavaron y se liofilizaron
usando un suplemento de agente protector al 10% (v/v), tal como
caldo de sacarosa del 46% o una alternativa similar conocida para un
experto en la técnica. El contenido de cada una de las bacterias en
el concentrado era >1 x 10^{10} cfu/g y en el polvo liofilizado
>1 x 10^{11} cfu/g.
Las cepas pueden ser también cultivadas por
separado. En ese caso, se cultiva LC705 como se ha descrito antes en
relación al cultivo conjunto, sólo que el tiempo de cultivo es de 1
día a 30ºC. Se cultiva PJS en un medio de cultivo basado en suero
lácteo que contiene un 2% de permeado de suero, un 1,0% de
hidrolizado de caseína y un 1% de extracto de levadura. Se cultiva
la cepa durante 3 días a 30ºC a un valor de pH de 6,3, después de lo
cual se lleva a cabo el proceso como antes.
Se mezclan los concentrados de los polvos en una
proporción de 1:1:1. Cuando se han cultivado LC705 y PJS por
separado, la proporción de mezcla es 1:1:1:1. Se usa la mezcla
obtenida de concentrados o polvos liofilizados como porción
probiótica en las diferentes aplicaciones de producto de la
combinación. Se añade la mezcla a la aplicación de producto para
obtener el siguiente contenido bacteriano final en el producto:
LGG | >10^{6} cfu/g del producto | |
LC705 | >10^{6} cfu/g del producto | |
PJS | >10^{6} cfu/g del producto | |
Bifidobacterium | >10^{6} cfu/g del producto |
Se añadió GOS (Valio Oy), cuando fuera deseable,
como un producto independiente a la aplicación de producto para
obtener una concentración de GOS e aproximadamente
0,5-5 g/dosis en el producto.
Se estudió la adhesión de las cepas probióticas
al mucus según Ouweland y col. (Ouweland, A.C., Kirjavainen, P.V.,
Grönlund, M.-M., Isolauri, E. y Salminen, S.J., 1999, Adhesion of
probiotic micro-organisms to intestinal mucus, Int.
Dairy J. 9: 623-630). LGG y la bacteria propiónica
PJS se adherían excelentemente al mucus intestinal, Bbi99
moderadamente y LC705 débilmente. La adhesión es un prerrequisito
para que el microbio produzca efectos beneficiosos en el intestino.
Por otra parte, se sabe que LC705 se adhiere bien a las células
epiteliales, de forma similar a LGG (Lehto, E. y Salminen, S., 1997,
Adhesion of two lactobacillus strains, one lactococcus
strain and one propionibacterium strain to cultured human
intestinal CaCO-2 cell lines, Bioscience Microflora
16: 13-17). Esta propiedad es beneficiosa cuando
existe un equilibrio en el intestino y se ha debilitado el mucus
protector.
\vskip1.000000\baselineskip
Cepa | Adhesión (+Est.) % |
LGG | 26,3 \pm 1,3 |
LC705 | 0,7 \pm 0,2 |
PJS | 24,9 \pm 2,2 |
Bbi99 | 4,6 \pm 2,3 |
Las pruebas in vitro han mostrado que las
cepas pueden soportar los contenidos fisiológicos de sales biliares
y el bajo pH del estómago.
Se estudiaron las cepas a diferentes valores de
pH en caldos MRS cuyo pH había sido ajustado con ácido láctico a
valores de pH 4, pH 3 y pH 2. Se inoculó la cepa de estudio (cultivo
fresco) en un caldo de pH del 1% y se cultivó a 37ºC durante 3
horas, después de lo cual el contenido en células vivas fue
determinado usando un agar adecuado para la cepa (véase la Tabla 5).
Las cepas mantenían su viabilidad en el proceso de 3 horas a un
valor de pH de 3 excelentemente. La bacteria propiónica permanecía
viable incluso a pH 2. En la prueba, las bacterias no estaban
protegidas por los componentes llevados por el alimento (tales como
grasa) y, por lo tanto, se puede suponer que se conservarán incluso
mejor cuando se consuman in vivo junto con alimento.
Contenido inicial | pH 4 cfu/ml | pH 3 cfu/ml | pH 2 cfu/ml | |
cfu/ml | ||||
Bbi99 | 1 x 10^{7} | 2 x 10^{7} | <10 | <10 |
PJS | 1 x 10^{8} | 9 x 10^{7} | 3 x 10^{7} | 1 x 10^{4} |
LGG | 1 x 10^{7} | 2 x 10^{7} | 1 x 10^{7} | <10^{2} |
LC705 | 6 x 10^{7} | 2 x 10^{8} | 4 x 10^{7} | <10^{2} |
Con respecto a la tolerancia a las sales
biliares, se estudiaron las cepas en caldos MRS que contenían un
0,3% y un 0,5% de sal biliar Oxgal (Sigma) inoculando un 1% del
cultivo fresco en el caldo MRS de sales biliares que había de ser
estudiado. Se cultivaron las cepas en los caldos durante 3 horas a
37ºC, después de lo cual se determinó el contenido en células vivas
usando un agar adecuado para la cepa (véase la Tabla 5). Todas las
cepas sobrevivieron al tratamiento excelentemente.
Contenido inicial | Sales biliares 0,3% | Sales biliares 0,5% | |
(cfu/ml) | |||
Bbi99 | 3 x 10^{7} | 1 x 10^{7} | 1 x 10^{7} |
PJS | 6 x 10^{7} | 6 x 10^{7} | 5 x 10^{7} |
LGG | 1 x 10^{7} | 2 x 10^{7} | 9 x 10^{6} |
LC705 | 1 x 10^{7} | 2 x 10^{7} | 1 x 10^{7} |
Se estudiaron prebióticos alternativos en cepas
individuales cultivando cada cepa en un caldo MRS libre de azúcar al
que se añadió un 1% del prebiótico de estudio. Se cultivó cada cepa
durante 1-2 días a su temperatura óptima. Se observó
el crecimiento bacteriano durante la prueba determinando la turbidez
del cultivo por espectrofotometría. Como se muestra en la Tabla 4,
el mejor promotor para el crecimiento en las cuatro cepas era un
suplemento de galactooligosacárido (GOS) al 1%.
Prebiótico | LGG | LC705 | PJS | Bbi99 |
GOS | ++ | ++ | ++ | + |
FOS | - | - | - | - |
Xilooligómeros | + | ++ | + | + |
Polidextrosa | ++ | ++ | + | - |
Arabinooligómeros | - | - | - | - |
Pectinooligómeros | - | - | - | - |
Xilitol | - | - | - | - |
Maltitol | - | ++ | - | - |
Lactitol | - | ++ | - | - |
Se usó una bebida funcional (en Finlandés,
"tehojuoma", Valio Oy) como base para preparar un zumo
(dosificación 65 ml/día) al que se añadió 0,1 g de mezcla
liofilizada de bacterias/dosis (= 65 ml) y 3,8 g de un jarabe de GOS
al 70%/dosis (= 65 ml). Se usó un zumo correspondiente sin adición
de jarabe de GOS o mezcla bacteriana como
control.
control.
Los contenidos bacterianos del zumo acabado eran
los siguientes:
LGG | >10^{7} cfu/ml | |
LC705 | >10^{7} cfu/ml | |
PJS | >10^{8} cfu/ml | |
Bbi99 | >10^{7} cfu/ml |
Se usó el producto en las siguientes pruebas
clínicas, en donde por = zumo + suplemento probiótico y sin = zumo +
probiótico + suplemento prebiótico.
Se estudió clínicamente en 20 varones la bebida
descrita en el ejemplo 4, que contenía la combinación probiótica
antes descrita (Pro) o la combinación probiótica y un prebiótico
(Sin). Las personas del ensayo tomaron la bebida diariamente según
el plan de estudio y durante el estudio no se les dejó consumir
ningún otro producto que contuviera probióticos. El esquema del
estudio era tal que la prueba se inició con un período de
introducción seguido de un período de probióticos de dos semanas y
un posterior período de sinbióticos y acabó con lo que es conocido
como un período de lavado.
Semana 8 | N(semana 11) | N(semana 13) | N(semana 15) | N(semana 17) |
I 3 semanas | *I 2 semanas | *I 2 semanas | *I 2 semanas | *I |
introducción sin | Pro | Sin | dieta normal sin | |
probiótico | probiótico |
Al final de cada período, las personas del
estudio dieron una muestra de heces y una muestra de sangre (=
N).
Se analizaron los microbios y las enzimas de las
muestras de heces y el contenido en enterolactona y la respuesta
inmune a partir de la sangre.
El contenido total de bacterias
ácido-lácticas, LGG y LC705, el contenido total de
bacterias ácido-propiónicas, PJS, y el contenido
total de bifidobacterias fueron determinados aplicando métodos
conocidos en la técnica y los parámetros mostrados en la Tabla
5.
Determinación | Agar | Temperatura/tiempo de cultivo | |
Lactobacilos | MRS | 37ºC/3 días | Anaerobios |
LGG | MRS + vancomicina | 37ºC/3 días | |
al 0,005% (Sigma) |
Determinación | Agar | Temperatura/tiempo de cultivo | |
LC705 | MRS + vancomicina | 37ºC/3 días | |
al 0,005% | |||
Bacterias propiónicas | Mod. YEL | 30ºC/7 días | Anaerobios |
PJS | Mod. YEL | 30ºC/7 días | Anaerobios |
Bifidobacterias | Agar rafinosa (RB) | 37ºC/2 días | Anaerobios |
Los contenidos en LGG, LC705 y PJS aumentaron
significativamente en las muestras de las personas del estudio
durante el período en que utilizaron el producto que contiene
probióticos (Tabla 6). Como los contenidos en bifidobacterias eran
altos desde el mismísimo comienzo de la prueba, los cambios
presumiblemente sólo tuvieron lugar entre las especies.
Contenido inicial cfu/g | Después de ingerir el | Después de ingerir el | Lavado cfu/g | |
probiótico, cfu/g | sinbiótico, cfu/g | |||
MHB (tot.) | 6,0 (\pm1,2) | 6,1 (\pm1,2) | 6,1 (\pm1,0) | 4,5 (\pm1,6) |
LGG | 2,3 (\pm1,0) | 4,7 (\pm1,7) | 5,3 (\pm1,2) | 3,0 (\pm1,6) |
LC705 | 2,0 (\pm0) | 5,2 (\pm1,3) | 5,4 (\pm1,0) | 2,8 (\pm1,1) |
Propion. | 2,7 (\pm1,4) | 5,7 (\pm1,6) | 5,6 (\pm1,4) | 2,4 (\pm1,7) |
Bifidobacterias | 8,2 (\pm1,5) | 8,6 (\pm2,1) | 8,8 (\pm2,2) | 8,3 (\pm2,1) |
La adición de sinbiótico al producto consumido en
la prueba de ingestión mejoró la viabilidad de los probióticos
añadidos en el intestino. Se ve esto por el aumento en el contenido
en LGG durante el período de sinbióticos, por ejemplo.
El nivel de pH de las personas que tenían un
nivel inicial de pH de más de 7 disminuyó en los grupos que tomaron
la mezcla de probióticos y el sinbiótico, mientras que no se observó
disminución en personas con un valor inicial de pH inferior a 7
(Tabla 7).
\vskip1.000000\baselineskip
Control | Probiótico solo | Sinbiótico | |
pH >7 | 7,2 | 6,9 | 6,7 |
pH < 7 | 6,6 | 6,7 | 6,6 |
Se procesaron las muestras de heces como
describen Ling y col. (Ling, W-H., Korpela, R.,
Mykkänen, H., Salminen, S. y Hänninen, O., 1994, Lactobacillus GG
supplementation decreases colonic hydrolytic and reductive
activities in healthy female adults, Journal of Nutrition 124,
18-24).
Se determinaron la
\beta-glucuronidasa y la
\beta-glucosidasa como describen Freeman (Freeman,
H.J., 1986, Effects of differing purified cellulose pectin and
hemicellulose fibre on faecal enzymes in
1,2-dimethylhidrazine-induced rat
colon carcinogenesis, Cancer Research 46: 5529-5532)
y la ureasa según las instrucciones del fabricante (Boehringer
Mannheim, Nº de catálogo 542946).
Durante los períodos de ensayo, hubo un descenso
en los contenidos de \beta-glucuronidasa, ureasa y
\beta-glucosidasa durante la ingestión del
probiótico y la ingestión del sinbiótico (Tabla 8). Después de la
ingestión, los niveles enzimáticos volvieron a la normalidad. El
sinbiótico tenía un efecto reductor más potente sobre los niveles
enzimáticos que la mezcla de probióticos.
Ureasa | Glucuronidasa | Glucosidasa | ||||
% Cambio | % Cambio | % Cambio | ||||
Nivel | 1080 | 292 | 746 | |||
inicial | ||||||
Probiótico | 895 | -17 | 214 | -27 | 673 | -9,8 |
Sinbiótico | 592 | -45 | 186 | -36 | 448 | -40 |
Lavado | 980 | 227 | 640 |
El metabolismo de la glucosidasa y de la
glucuronidasa produce compuestos carcinogénicos. La reducción
significativa en la actividad enzimática producida por las
combinaciones de probióticos y sinbióticos de la invención demuestra
claramente un efecto positivo con respecto a la reducción de la
formación de substancias carcinógenas.
Se determinó el contenido en enterolactona usando
el método de Adlercreutz y col. (Adlercreutz, H., Fostis, T., Lampe,
J., Wähälä, K., Mäkelä, T., Brunow, G. y Hase, T., 1993,
Quantitative determination of lignans and isoflavonoids in plasma of
omnivorous and vegetarian women by isotope dilution
gas-chromatography
mass-spectrometry, Scan. J. Clin. Lab. Invest. 53:
5-18).
Los niveles de enterolactona de las personas del
estudio con un nivel inicial de enterolactona de <10 nmol/l
aumentaron significativamente como resultado de la ingestión de
sinbiótico (a un nivel de 11,2).
No se observaron cambios durante la prueba en los
niveles de enterolactona de personas cuyo nivel de enterolactona en
suero era normal (10<x>30) ya al comienzo de la prueba. Los
resultados son mostrados en la Tabla 9.
10<x<30 nmol/l | <10 nmol/l | |
Nivel inicial | 24,4 | 3,2 |
Probiótico | 19,8 | 2,6 |
Sinbiótico | 23,9 | 11,2 |
El contenido en enterolactona ha mostrado
correlacionarse claramente con el riesgo de adquirir cáncer: cuanto
mayor es el contenido, menor es el riesgo. Este resultado muestra
también, por lo tanto, el efecto beneficioso de las combinaciones de
probióticos y sinbióticos de la invención para un menor riesgo de
cáncer.
Se estudió la función de los linfocitos antes de
iniciar la ingestión del producto sinbiótico y después de 4 semanas
de haberse iniciado la ingestión.
Se estudió la función de los linfocitos como
sigue:
Se aislaron linfocitos de sangre periférica
usando gradiente de Ficoll. Se estimularon los linfocitos con
mitógeno PHA (Sigma) en caldo de cultivo RPMI (National Public
Health Institute, departamento de caldos nutrientes) que contenía un
5% de AB inactivado + suero (Cruz Roja Finlandesa) y
L-glutamina. A las 48 horas, se recogió el medio del
cultivo celular para la determinación de citokinas de cuatro
pocillos de cultivo adyacentes que tenían una densidad celular de
200.000 células por 200 \mul de caldo de cultivo en el pocillo,
con o sin el mitógeno. Se recogieron las células 16 horas después de
la adición de timidina y se midió la incorporación al ADN (cpm) de
timidina radiactiva. Se determinaron los contenidos en citokinas
IL-4, IL-5,
TGF-\beta1 e IFN-\gamma de los
caldos de cultivo celular usando el método ELISA.
Durante el seguimiento, no se detectaron cambios
en los contenidos en IL-4, IL-5 y
TGF-\beta1 segregados por los linfocitos. El
contenido en IFN-\gamma segregado por linfocitos
estimulados con PHA aumentó significativamente durante el
seguimiento (p=0,009, prueba de Wilcoxon, véase la Figura 1). Tanto
la proliferación de linfocitos espontánea como la inducida con PHA
aumentaron durante el seguimiento (p=0,0002 en ambos casos, prueba
de Wilcoxon, Figuras 1 y 2).
Según los resultados del estudio, el uso del
producto sinbiótico aumenta, por lo tanto, la proliferación de los
linfocitos y la secreción de la citokina
IFN-\gamma en las personas del estudio. El
IFN-\gamma pertenece a lo que se conoce como
citokinas Th1, que refuerzan la función citotóxica de los linfocitos
y son antagonistas de las citokinas IL-4 y
TGF-\beta1. Se ha descrito una baja secreción de
IFN-\gamma para personas propensas a alergias.
Además, se supone que los niños con una predisposición a la atopia y
a las reacciones alérgicas sufren de una lenta maduración de la
secreción de IFN-\gamma. El efecto estimulante
significativo de las combinaciones de la invención sobre la
secreción de IFN-\gamma demuestra así su eficacia
en la prevención y el tratamiento de las alergias.
Claims (11)
1. Una combinación caracterizada por
consistir en los microorganismos Lactobacillus rhamnosus LGG
(ATCC 53103), Lactobacillus rhamnosus LC705 (DSM 7061),
Propionibacterium freudenreichii ssp. shermanii PJS (DSM
7067) y una bifidobacteria.
2. Una combinación según la reivindicación 1,
caracterizada por ser la bifidobacteria Bifidobacterium
infantis Bbi99 (DSM 13692).
3. Una combinación según la reivindicación 1 ó 2,
caracterizada por contener además microbios iniciadores
convencionales.
4. Una combinación según cualquiera de las
reivindicaciones 1 a 3, caracterizada por contener también un
prebiótico o por usarla junto con un prebiótico.
5. Una combinación según la reivindicación 4,
caracterizada por ser el prebiótico un oligosacárido.
6. Una combinación según la reivindicación 5,
caracterizada por ser el prebiótico un galactooligosacárido
(GOS).
7. Una combinación según cualquiera de las
reivindicaciones 1 a 6 para uso como substancia terapéutica.
8. Uso de una combinación según cualquiera de las
reivindicaciones 1 a 6 en la preparación de un producto alimenticio,
un producto farmacéutico, un producto para promover la salud o un
producto natural.
9. Uso según la reivindicación 8,
caracterizado por añadir la combinación a un producto lácteo,
una bebida, un zumo, una sopa o un alimento para niños.
10. Uso según la reivindicación 8,
caracterizado por preparar la combinación en forma de una
sola dosis.
11. Uso según la reivindicación 10,
caracterizado por ser la forma de dosis una cápsula.
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- 2004-06-19 HK HK04104458A patent/HK1061501A1/xx not_active IP Right Cessation
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