DE3246873C2 - Mit immunologischer Agglutinationsreaktion arbeitendes Analysiergerät - Google Patents
Mit immunologischer Agglutinationsreaktion arbeitendes AnalysiergerätInfo
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Abstract
Ein Analysiergerät zur Untersuchung von Blutproben durch den Nachweis von Teilchen-Agglutinationsmustern, die auf geneigten Bodenflächen von Küvetten (8) in einer Küvettenplatte (52) entstehen, hat eine Station (31) zum Herstellen verdünnter Proben, in der bestimmte Mengen an Blutzellen bzw. -körperchen und an Serum aus einem Probengefäß (23) in Verdünnungsgefäße (42A bis 42D) abgegeben werden, welche auf einer auf einem umlaufenden Endlosband (37) befestigten Trägerplatte (39) angeordnet sind, und eine im voraus festgelegte Menge eines Verdünnungsmittels in die Verdünnungsgefäße (42A bis 42D) zugegeben wird, um verdünnte Blutkörperchen- und Serumproben herzustellen, ferner eine Abgabestation (70) für verdünnte Proben zum Abgeben bestimmter Mengen an verdünnten Blutkörperchen- und Serumproben aus den Verdünnungsgefäßen (42A bis 42D) selektiv entsprechend den durchzuführenden Bestimmungen in eine regelmäßige Anordnung von Küvetten (8) der Küvettenplatte (52), und eine Reagensabgabestation (60) zum Beschicken der Küvetten (8) mit bestimmten Reagentien. Die mit den verdünnten Blutkörperchen- und Serumproben beschickte Küvettenplatte (52) wird zumindest annähernd erschütterungsfrei in einer in einer vertikalen Ebene angeordneten Reaktionsbahn transportiert, in welcher die auf den Küvettenboden entstandenen Teilchenmuster photoelektrisch nachgewiesen werden.
Description
Die Erfindung betrifft ein mit immunologischer Agglutinationsreaktion arbeitendes Analyrergerät mit einer
Zuführvorrichtung für Blutprobengefäße, einer Einrichtung zum Herstellen mehrerer verdünnter Blutproben in
Verdünnungsgefäßen aus den einzelnen Blutproben, einer Zuführvorrichtung zum Zuführer von Küvettenpiatten
zu einer Einfüllstation, einer Einrichtung zum Einfüllen der verdünnten Blutproben in die reihenweise
angeordneten Küvetten der Küvettenplatten, einer Einrichtung zum Eingeben von Reagentien in die Küvetten,
einer Transportvorrichtung zum Fördern der Küvettenplatten längs einer Reaktionsbahn, die insbesondere
mehrere in einer Vertikalebene verlaufende teils horizontale und teils vertikale Reaktionsbahnabschnitte aufweist,
einer an der Reaktionsbahn angeordneten photoelektrischen Meßeinrichtung für die Agglutinationsreaktion
und einer am Ende der Reaktionsbahn angeordneten Austragsvorrichtung für die Küvettenplatten.
Ein solches Analysiergerät ist bekannt (ältere nachveröffentlichte DE-OS 32 46 274). Das automatisierte
Analysiergerät dient der Untersuchung von Blutproben, wobei aus jeder Blutprobe eine Serumprobe und eine
Blutkörperchenprobe gewonnen werden, die getrennt ir/ vier Verdünnungsgefäße eingefüllt werden. Aus diesen
werden an der Einfüllstation verdünnte Proben an eine zwölf Küvetten aufweisende Küvettenreihe der zugeführten
Küvettenplatten abgegeben. Dieses geschieht mittels vier Einfüllpipetten, die den vier Verdünnungsgefäßen
zugeordnet sind, die in einer der Transportrichtung entsprechenden Reihe hintereinander in die Einfüllstation
bewegt werden. Die Einfüllpipetten sind dementsprechend ebenfalls in einer Längsreihe angeordnet, lassen
sich in senkrechter Richtung auf und nieder bewegen sowie in Querrichtung verlagern, um aus einer auf die
Emfüllpipetten ausgerichteten Stellung in eine auf die Küvetten ausgerichtete Stellung bewegt zu werden, wobei
die bzw. jede Küvettenreihe sich gleichfalls in der Längsrichtung erstreckt.
Um verschiedene Küvettenreihen derselben Küvettenplatte mit verdünnten Proben beschicken zu können,
müssen die an einer gemeinsamen Tragplatte angeordneten Pipetten unterschiedlich weit in Querrichtung
bewegt bzw. gesteuert werden. Außerdem müssen aber die Pipetten auch nach der Querausrichtung auf eine
bestimmte Küvettenreihe in Längsrichtung längs dieser Küvettenreihe bewegt werden, damit die Küvetten
gruppenweise nacheinander beschickt werden können. Diese Relativbewegung zwischen der Küvettenreihe und
den Pipetten läßt sich nicht durch Vorschub der Küvettenplatten mittels ihrer Transportvorrichtung erreichen,
weil dann zum Befüllen der nächsten Küvettenreihe derselben Küvettenplatte diese wieder zurückbewegt
werden müßte.
Aus diesen Gründen ist die Einrichtung zum Einfüllen der verdünnten Blutproben hinsichtlich ihrer Ausbildung
und Betätigung bzw. Steuerung vergleichsweise kompliziert. Das wirkt sich nachteilig auf die für das
Oberführen der Proben aus den Verdünnungsgefäßen in die Küvetten erforderliche Zeitdauer und damit auch
auf die Leistung des AnsJysiergerätes aus. Ebenfalls sind Ausbildung und Betätigung der Einfülleinrichtung der
Forderung nach einer kompakten, Stellfläche einsparenden Bauweise des Analysiergerätes abträglich, obwohl
die beim bekannten Analysiergerät vorgesehene Anordnung von horizontalen und vertikalen Reaktionsbahnabschnitten
in einer Vertikalebene in diesem Zusammenhang besonders vorteilhaft ist.
Dementsprechend liegt der Erfindung die Aufgabe zugrunde, bei einem automatisierten Analysiergerät der
eingangs genannten Art die Einrichtung zum Einfüllen der verdünnten Blutproben in die Küvetten bei platzsparender
Bauweise so auszubilden, daß auch bei einer Vielzahl verschiedener Untersuchungen, die gegebenenfalls
auch an selektiv verschiedenen Blutbestandteilen durchzuführen sind, zuverlässig und schnell gearbeitet werden
kann, so daß sich die Leistungsfähigkeit des Analysiergerätes erhöht
Diese Aufgabe wird erfindungsgemäß dadurch gelöst, daß die Einrichtung zum Einfüllen der verdünnten
Blutproben in die Küvetten einen verschwenkbaren sowie linear und senkrecht bewegbaren Probenabgabearm
aufweist, an dei.. mehrere Pipetten zum gleichzeitigen Aufsaugen der verdünnten Blutkörperchen- und Serumproben
aus den Verdünnungsgefäßen und zum Abgeben der Proben in die Küvetten der Küvettenplatte
angeordnet sind, wobei in der Einfüllstation die Küvettenreihen rechtwinklig zu den in einer Reihe angeordneten
Verdünnungsgefäßen ausgerichtet sind.
Durch diese Maßnahmen vereinfachen sich die Bewegungsschritte der Pipetten, da durch die Querbwegbarkeit
der Pipetten sämtliche Küvetten der entsprechend ausgerichteten Küvettenreihe erreichbar sind Dabei
werden die querausgerichteten Küvettenreihen nach dem Beschicken einer Reihe mit den Proben mittels der
Transportvorrichtung für die Küvettenplatten jeweils um einen Transportschritt vorbewegt, was problemlos
und ohne besonderen Aufwand geschehen kann. Es ist daher ersichtlich, daß mit dem erradungsgemäßen
Anafysiergerät besonders schnell und trotzdem zuverlässig gearbeitet werden kann.
Zweckmäßige Ausgestaltungen und Weiterbildungen ergeben sich aus den Unteransprüchen.
Ausführungsbeispiele der Erfindung sind aus der folgenden Beschreibung eines gattungsgemäßen Analysiergeräts,
die durch schematische Zeichnungen näher erläutert ist, ersichtlich. Es zeigt
F i g. 1 eine vereinfachte Darstellung der aufeinanderfolgender Arbeitsschritte eines Analysierverfahrens für
ein mit immunologischer Agglutinationsreaktion arbeitendes Analysiergerät,
F i g. 2 eine Draufsicht auf eine Ausführungsform des Analysiergerätes, F i g. 3 eine vereinfachte Darstellung einer Reagensabgabevorrichtung des Analysiergerätes gemäß F i g. 2,
F i g. 4 eine Schrägansicht einer Probenabgabevorrichtung,
F i g. 5 einen Querschnitt durch eine Ausführungsform einer Kupplung zwischen einem Endlosband und einer
Proben-Trägerplatte,
F i g. 6 eine vereinfachte Darstellung einer Küvettenplatten-Übergabevorrichtung,
F i g. 7 eine vereinfachte Ansicht eines Küvettenplatten-Abwärtsförderers,
F i g. 8 eine Schrägansicht einer Reaktionsbahnsektion und einer Photometrierstation,
F i g. 9 eine Schrägansicht einer anderen Ausführungsform der in F i g. 8 dargestellten Reaktionsbahnsektion,
F i g. 10 eine vereinfachte Darstellung des Aufbaus der in F i g. 6 und 8 dargestellten Photometrierjtation,
F i g.! 1A und 11B grafische Darstellungen der Ausgangssignale der in F i g. 10 dargestellten Lichtempfangsvorrichtung,
Fig. 12 ein Flußdiagramm der aufeinanderfolgenden Abläufe beim Nachweis eines Agglutinationsmusters
anhand e<nes Ausgangssignals der Lichtempfangsvorrichtung und
F i g. 13 ein Flußdiagramm aufeinanderfolgender Abläufe c js in F i g. 2 dargestellten Analysiergerätes,
im Analysiergerät gemäß der Erfindung wird eine mehrere Reaktionsgefäße bzw. Küvetten aufweisende
Küvettenplatte in bezug auf Proben- und Reagensabgabevorrichtungen und relativ zu einer Photometrierstation
bewegt und zumindest annähernd erschütterungsfrei entlang einer Reaktionsbahn in waagerechter und
senkrechter Richtung transportiert, wobei die Reaktionsbahn aus mehreren in einer vertikalen Ebene angeordneten
Sektionen zusammengesetzt ist Nach Ablauf einer im voraus festgelegten Zeit ab der Proben- und
Reagensabgabe wird mit der Photometriervorrichtung ein Agglutinationsmuster nachgewiesen, das sich auf
einer Bodenfläche des erschütterungsfrei transportierten Reaktionsgefäßes ausgebildet hat.
Beim herkömmlichen Mikrotitrationsverfahren ist es notwendig, daß das Reaktionsgefäß oder die Küvette
nach der Proben- und iv'eagensabgabe völlig ruhigsteht, damit die Teilchen in der Küvette sedimentieren können.
Um die vorstehend angegebenen Arbeitsgänge automatisieren zu können, müssen daher die Proben- und
Reagensabgabevorrichtungen und die Errichtung zur Agglutinationsprüfung an der ortsfest angeordneten
Küvette vorbeibewegt werden — das Gerät bekommt somit gr"3« Abmessungen und wird kompliziert.
Die Anmelderin hat durch Versuche festgestellt, daß, wenn die Küvettenplatte mit derselben Geschwindigkeit
transportiert wird wie das herkömmliche biochemische Analysiergerät, du:· Ausbildung des durch fntürlichc
Sedimentation hervorgerufenen Teilchen-Agglutinationsmusters durch eine Erschütterung oder Bewegung der
Küvettenplatte nicht beeinflußt wird.
Es ist somit möglich, auf der Bodenfiäche der Küvettenplatte ein genaues Agglutinationsmuster entstehen zu
lassen. Daher kann die für die Benutzung im herkömmlichen biochemischen /Analysiergerät vorgesehne bewegliche
Küvette in der immunologischen Agglutinationsreaktion als im wesentlichen stillstehend bzw. erschütterungsfrei
angenommen werden. Weil ferner auf einer Küvettenplatte eine Vielzahl von Küvetten angeordnet
sind, wird die Fördervorrichtung äußerst einfach, und es wird auch eine hohe Leistung erzielt. Weil die Küvettenplatte
entlang einer Reaktionsbahn transportiert wird, die sich aus mehreren in einer vertikalen Ebene angeordneten
Sektionen zusammensetzt, ist es insbesondere möglich, die Abmessungen des Analysiergerätes klein zu
halten.
Weil außerdem die jeweiligen Proben in mehrere Küvetten eingegeben werden, um mehrere Agglutinationsmuster auszubilden, und »synthetisch« beurteilt werden, ist die Durchführung einer äußerst exakten Untersuchung
möglich. Das Ar.alysiergerät gemäß der Erfindung wird beispielsweise in einem Zentral-Blutlabor einge-
setzt, wo eine Fehlbestimmung schwerwiegende und unmittelbare Folgen hat. Es ist daher sehr wichtig, für eine
große Untersuchungsgenauigkeit zu sorgen.
Gemäß Fig. 1 wird das einem Patienten 1 entnommene vollständige Blut BL in ein Prüfrohr 2 gegeben, das
nach Zugabe einer gerinnungshemmenden Substanz, z. B. Natriumeitrat, in eine bekannte Zentrifuge eignesetzt
wird, in der das vollständige Blut BL in ein Serum S und (rote) Blutzellen bzw. Blutkörperchen R getrennt wird.
Die Blutkörperchen R werden dann mit einer von einer Mikrospitze gebildeten Abgabevorrichtung 3-1 aufgesaugt
und in ein Probengefäß 4-1 abgegeben, in welches auch mit einer Abgabevorrichtung 5-1 aus einem Gefäß
6-1 ein Verdünnungsmittel D, z. B. Kochslazlösung, eingegeben wird. Auf diese Weise ist im Probengefäß 4-1
eine Blutkörperchensuspension RD enthalten. Aus dem Prüfrohr 2 wird das Serum S mit einer Abgabevorrichtung
3-2 in Probengefäße 4-2,4-3 und 4-4 agegeben, in die mit Abgabevorrichtungen 5-2,5-3 und 5-4 auch das
Verdünnungsmittel D eingegegeben wird, um ein verdünntes Serum SD herzustellen.
Danach werden die Blutkörperchensuspension RD und das verdünnte Serum SD aus den Probengefäßen 4-1
bis 4-4 quantitativ in Reaktionsgefäße bzw. Küvetten8-1 bis 8-12 (Kanäle Nr. 1 bis 12) mit Abgabevorrichtungen
7-1 bis 7-4 abgegeben. Die Küvetten 8-1 bis 8-12 weisen je eine kegelige Bodenfläche auf. In die Küvetten 8-1 bis
8-12 werden mittels weiterer Abgabevorrichtungen 9-1 bis 9-12 aus ersten Reagensbehältern 10-1 bis 10-12
zusätzlich im voraus festgelegte Reagentien quantitativ eingegeben, die den durchzuführenden Bestimmungen
entsprechen. Ferner werden die Küvetten 8-1 und 8-7 mittels noch anderer Abgabevorrichtungen 11-1 und 11-2
aus zweiten Reagensbehältern 12-1 und 12-2 mit im voraus festgelegten Reagentien quantitativ beschickt, so daß
in Hen Küvetten 8-1 hkft-12 erforderliche Prnhenlösnngen entstehen
Mit anderen Worten, in die Küvette 8-1 werden mit der Abgabevorrichtung 7-1 die Blutkörperchensuspension
RD aus dem Probengefäß 4-1, mit der Abgabevorrichtung 9-1 ein (mit Phosphat-Puffer verdünntes) Anti-D-Serum
D-S aus dem ersten Reagensbehälter 10-1, und mit der Abgabevorrichtung 11-1 ein (mit Phosphat-Puffer
verdünntes) Bromelin V-S aus dem zweiten Reagensbehälter 12-1 eingegeben, so daß eine Probenlösung R-D-Si
entsteht.
In die Küvette 8-2 werden mit der Abgabevorrichtung 7-2 die Blutkörperchensuspension RD aus dem
Probengefäß 4-1 und mit der Abgabevorrichtung 9-2 das (mit Phosphat-Puffer verdünnte) Bromelin V-S aus dem
ersten Reagensbehälter 10-2 eingegeben, so daß eine Probenlösung R-V-S2 entsteht.
In die Küvette 8-3 werden mit der Abgabevorrichtung 7-3 die Blutkörperchensuspension RD aus dem
Probengefäß 4-1 und mit der Abgabevorrichtung 9-3 ein (mit Kochsalzlösung verdünntes) Anti-A-Serum A-S
aus dem ersten Reagensbehälter 10-3 eingegeben, so daß eine Probenlösung R-A-S3 entsteht.
In die Küvette 8-4 werden mit der Abgabevorrichtung 7-4 die BIutkörperchensusp?nsion RD aus dem
Probengefäß 4-1 und mit der Abgabevorrichtung ?/-4 ein (mit Kochsalzlösung verdünntes) Anti-B-Serum B-S aus
dem ersten Reagensbehälter 10-4 eingegeben, so daß eine Probenlösung R-A-S4 entsteht.
In die Küvette 8-5 werden mit der Abgabevorrichtung 7-5 das verdünnte Serum SD aus dem Probengefäß 4-2
und mit der Abgabevorrichtung 9-5 ein (mit Kochsalzlösung verdünntes) Reagens für Blutkörperchen des
Α-Typs A-R aus dem ersten Reagensbehälter 10-5 eingegeben, so daß eine Probenlösung A-R-Si entsteht.
In die Küvette 8-6 werden mit der Abgabevorrichtung 7-6 das verdünnte Serum SD aus dem Probengefäß 4-2
und mit der Abgabevorrichtung 9-6 ein (mit Kochsalzlösung verdünntes) Reagens für Blutkörperchen des
B-Typs B-R aus dem ersten Reagensbehälter 10-6 eingegeben, so daß eine Probenlösung B-R-S2 entsteht.
In die Küvette 8-7 werden mit der Abgabevorrichtung 7-7 das verdünnte Serum SD aus dem Probengefäß 4-2, mit der Abgabevorrichtung 9-7 ein (mit Kochsalzlösung verdünntes) Reagens für Blutkörperchen des A-Typs A-R aus dem ersten Reagensbehälter 10-7 und mit der Abgabevorrichtung 11-2 ein Blutkörperchen-Reagens R-S aus dem zweiten Reagensbehälter 12-2 eingegeben, so daß eine Probenlösung A-R-S3 entsteht
In die Küvette 8-7 werden mit der Abgabevorrichtung 7-7 das verdünnte Serum SD aus dem Probengefäß 4-2, mit der Abgabevorrichtung 9-7 ein (mit Kochsalzlösung verdünntes) Reagens für Blutkörperchen des A-Typs A-R aus dem ersten Reagensbehälter 10-7 und mit der Abgabevorrichtung 11-2 ein Blutkörperchen-Reagens R-S aus dem zweiten Reagensbehälter 12-2 eingegeben, so daß eine Probenlösung A-R-S3 entsteht
In die Küvette 8-8 werden mit der Abgabevorrichtung 7-8 das verdünnte Serum SD aus dem Probengefäß 4-2
und mit der Abgabevorrichtung 9-8 ein (mit Kochsalzlösung verdünntes) Reagens für Blutkörperchen des
B-Typs B-R aus dem ersten Reagensbehälter 10-8 eingegeben, so daß eine Probenlösung B-R-S4 entsteht
In die Küvette 8-9 werden mit der Abgabevorrichtung 7-9 das verdünnte Serum SD aus dem Probengefäß 4-3
und mit der Abgabevorrichtung 9-9 mit einem R-PHA-Puffer aus dem ersten Reagensbehälter 10-9 sensibilisierte
Blutkörperchen R-R eingegeben, so daß eine Probeniösung R-R-S5 entsteht
In die Küvette 8-10 werden das verdünnte Serum SD aus dem Probengefäß 4-3 mit der Abgabevorrichtung
7-10 und mit ösr Abgabevorrichtung 9-10 mit einem R-PHA-Puffer aus dem ersten Reagensbehälter ls-10
sensibilisierte Blutkörperchen R-R eingegeben, so daß eine Probenlösung R-R-S6 entsteht
In die Küvette 8-11 werden mit der Abgabevorrichtung 7-11 das verdünnte Serum SD aus dem Probengefäß
4-4 und mit der Abgabevorrichtung 9-11 mit einem T-PHA-Puffer aus dem ersten Reagensbehälter 10-11
sensibilisierte Blutkörperchen T-R eingegeben, so daß eine Probeniösung T-R-S7 entsteht
In die Küvette 8-12 werden mit der Abgabevorrichtung 7-12 das verdünnte Serum SD aus dem Probengefäß
4-4 und mit der Abgabevorrichtung 9-12 mit einem T-PHA-Puffer aus dem ersten Reagensbehälter 10-12
sensibilisierte Blutkörperchen T-R eingegeben, so daß eine ProbeniösungT-R-Se entsteht
Eine Gegenüberstellung der Probenlösungen in den Küvetten 8-1 bis 8-12 und der von den Agglutinationsmustern
dieser Probenlösungen ausgehenden Bestimmungen sieht folgendermaßen aus.
Bestimmung
Küvette
(Kanal Nr.)
(Kanal Nr.)
Erstes Reagens
Probe
Zweites Reagens
Probenlösung
Blutgruppe
RH
RH
8-1
8-2
Blutgruppe 8-3
ABO
ABO
8-4
8-5
8-6
Antikörper
Suchtest
Suchtest
8-7
HBs-Antigen 8-9
Syphilis-Antikörper
Anti-D-Serum (verdünnt mit Phosphat-Puffer) D-S
Bromelin (verdünnt mit Phosphat-Puffer) V-S
Anti-A-Serum (verdünnt mit Kochsalzlösung) A-S
Anti-B-Serum
(verdünnt mit Kochsalzlösung) B-S
Anti-A-Serum (verdünnt mit Kochsalzlösung) A-R
Anti-B-Serum (verdünnt mit Kochsalzlösung) B-R
Anti-A-Serum (verdünnt mit Kochsalzlösung) A-R
Anti-B-Serum (verdünnt mit Kochsalzlösung) B-R
Blutkörperchen sensibilisiert mit R-PHA
R-R
8-10 10
8-11 11
8-12 12
Blutkörperchen sensibilisiert mit R-PHA
R-R
R-R
Blutkörperchen sensibilisiert mit T-PHA
T-R
T-R
Blutkörperchen sensibilisiert mit T-PHA
T-R
T-R
Blutsuspension (verdünnt mit Kochsalzlösung)
Blutsuspension (verdünnt mit Kochsalzlösung)
Blutsuspension (verdünnt mi! Kochsalzlösung)
Blutsuspension (verdünnt mit Kochsalzlösung)
verdünntes Serum (verdünnt mit Kochsalzlösung)
verdünntes Serum (verdünnt mit Kochsalzlösung)
verdünntes Serum (verdünnt mit Kochsalzlösung)
verdünntes Serum (verdünnt mit Kochsalzlösung)
verdünntes Serum (R-PHA-Puffer)
verdünntes Serum (R-PHA-Puffer)
verdünntes Serum (T-PHA-Puffer)
verdünntes Serum (T-PHA-Puffer)
Bromelin
(verdünnt mit
Phosphat-Puffer)
(verdünnt mit
Phosphat-Puffer)
Blutkörperchen-Reagens
R-D-S,
R-V-S2
R-A-S3
R-B-S4
A-R-S,
B-R-S2
A-R-S3
B-R-S4
R-R-S5
R-R-S6
T-R-S7
T-R-S8
Beim vorstehend beschriebenen Beispiel werden die Küvetten 8-1 bis 8-12 nach Beschickung mit dem verdünnten
Serum oder der Blutsuspension und mit dem Reagens geschüttelt Wenn sich im Falle der Beschickung
mit dem verdünnten Serum oder der Blutkörperchensuspension und mit dem Reagens beide Lösungen ausreichend
miteinander vermischen, ist das Schütteln der Küvette entbehrlich. Nach dem Schütteln zur Vermischung
der eingegebenen Reaktionspartner (einschließlich einem Schütteln der Küvette zwischen der Abgabe der
einzelnen Lösungen eta), muß die mehrere Küvetten aufweisende Küvettenplatte erschütterungsfrei entlang
der Reaktionsbahn transportiert werden, so daß die Prüfflüssigkeiten keine heftige Bewegung erfahren und ein
stetiger Verlauf der Reaktion ermöglicht wird. Während der Reaktion erfolgt eine natürliche Sedimentation der
Blutkörperchen. Die Reaktionszeit wird unter Berücksichtigung des Verdünnungsgrades, der verdünnten Menge
an Blutkörperchen oder Serum und der Reagensmenge sowie weiterer ,-!eaktionen zwischen ihnen festgelegt
und beträgt z. B. etwa 10 bis 60 Minuten.
Unter der Annahme einer Blutprobe des Α-Typs agglutinieren die Slutkörperchen in der Probenlösung
R-A-S3, der das Anti-A-Serum A-S zugegeben worden ist, miteinander und sedimentieren gleichmäßig auf der
geneigten Bodenfläche der Küvette 8-3. In der Probenlösung R-B-S4, die das Anti-B-Serum B-S enthält, agglutinieren
die Blutkörperchen dagegen nicht, rollen auf der geneigten Bodenfläche der Küvette 8-4 nach unten und
sammeln sie*: in der tiefsten Mitte der Bodenfläche an. Bei einer Agglutination bilden die sich auf den geneigten
Küvettenboden niedergeschlagenden Blutkörperchen gemäß F i g. 1 ein gleichmäßiges Niederschlagsmuster,
während sie bei nicht eintretender Agglutination vom geneigten Küvettenboden wegrollen, sich in der Bodenmitte
ansammeln und ein »inlegriertes« oder »geschlossenes« Muster bilden. Di« se Muster können zur Bestimmung
der Blutgruppe photoelektrisch erfaßt werden.
Die Küvette 8-6 zeigt keine Agglutination, sondern ein geschlossenes Muster in der Mitte des Küvettenbodens,
wogegen in der Küvette 8-5 eine Agglutination eingetreten ist und sich daher auf die Bodenfläche ein
gleichmäßiges Muster niedergeschlagen hat. Durch photoelektrisches Prüfen dieser Muster ist ebenfalls eine
Bestimmung der Blutgruppe möglich. Die vorstehend beschriebene Bestimmung wird allgemein auch als indirekte
Bestimmung bezeichnet. Wenn sowohl die direkte als auch die indirekte Bestimmung durchgeführt
werden, läßt sich die Blutgruppe der Blutprobe sehr exakt bestimmen. Bei Verwendung der Küvettenplatte, auf
der eine Vielzahl von Küvetten in Matrixform angeordnet sind, wird die Küvettenplatte nach Prüfung der auf
den Böden aller Küvetten ausgebildeten Muster aus der Reaktionsbahn herausgenommen.
Bei dem in F i g. 1 dargestellten Beispiel werden die Reagentien A-S, B-S, A-R und B-R in die Küvetten
eingegeben, nachdem diese mit den Blutkörperchen- und Serumproben beschickt worden sind. Die Reihenfolge
der Beschickung mit diesen Reagentien und Proben kann umgekehrt werden, die Reagentien und Proben
können aber auch gleichzeitig eingegeben werden.
Da bei dem vorstehend beschriebenen Blutgruppen-Bestimmungsverfahren die Küvetten ruhiggehalten werden
und die Agglutinationsmuster, also das gleichmäßige Niederschlagsmuster und das geschlossene Muster,
sich durch natürliche Sedimentation der Blutkörperchen ausbilden, kann die aufgrund inkompletter Antikörper
schwach agglutinierende Blutgruppe sehr exakt festgestellt werden. Beim bekannten Verfahren dagegen kann es
geschehen, daß die agglutinierten Blutkörperchen durch Erschütterung der Küvette voneinander gelöst werden.
Ferner reicht beim vorstehend beschriebenen Verfahren eine Blutkörperchensuspension aus, die eine sehr
niedrige Konzentration von z. B. 0,5 bis 2% hat, und eine kleine Suspensionsmenge von 5 bis 30 μΐ ist schon
ausreichend. Die Menge der Blutprobe kann daher sehr klein gehalten werden. Beim bekannten Verfahren
dagegen wird von einer 2- bis 5%igen Blutzellen- oder Blutkörperchensuspension eine große Menge benötigt.
Das vorstehend beschriebene Verfahren ist nicht auf die Bestimmung der Blutgruppen des ABO-Systems
beschränkt, sondern kann gleichermaßen zur Bestimmung anderer Blutgruppen und zur Durchführung verschiedener
immunologischer Untersuchungen angewendet werden.
Das in F i g. 2 dargestellte Analysiergerät hat eine Proben-Eingabevorrichtung 20 mit drei Gestelikassetten
bzw. Kassettentabletts 21, in denen je 12 Probengefäß-Gestelle 22 angeordnet sind. Jedes Gestell 22 nimmt zehn
Probengefäße 23 auf. Ein Kassettentablett 21 enthält daher 120 Probengefäße 23. Jedes Probengefäß 23 enthält
eine zentrifugierte Blutprobe und trägt auf einer Seitenwand einen Strichkode mit Probendaten wie z. B.
Patientennummer, die durchzuführenden Bestimmungen, Blutgruppe usw.
Das Kassettentable". 21 ist entlang einer Proben-Führungsbahn 24 in der Eingabevorrichtung 20 in der mit
einem Pfeil A angegebenen Richtung schrittweise mit einer bstimmten Schrittlänge fortbewegbar. Wenn ein
Gestell 22 im Kassettentablett 21 eine Proben-Zuführbahn 25 erreicht, ist es mittels einer nicht dargestellten
Klauen-Vorschubvorrichtung der Eingabevorrichtung 20 in der mit einem Pfeil B angegebenen Richtung bewegbar
und wird an ein Endlosband 27 abgegeben, das von Antriebswellen 26Λ und 26S mit einer bestimmten
Geschwindigkeit antreibbar ist. Auf derr Endlosband 27 wird das Gestell 22 mittels einer Gestell-Positioniervorrichtung
28 zu einer Proben-Feststellstation 29 transportiert, die eine Proben-Feststellvorrichtung 30 aufweist.
Zuerst wird der Strichkode auf dem ersten Probengefäß 23-1 gelesen und dann das Gestell 22 mittels der
Positioniervorrichtung 28 schrittweise so weiterbewegt, daß das nächste Probegefäß 23-2 vor der Proben-Feststellvorrichtung
30 in Stellung kommt, die daraufhin den Strichkode auf dem Probengefäß 23-2 liest. Die
Gestell-Positioniervorrichtung 28 kann so ausgebildet sein, daß mit einem Elektromagneten verbundene Klauen
die Bewegung des Gestells 22 gegen eine Bewegungskraft in der Pfeilrichtung B oder synchron mit dem
Endlosband 27 stoppt Auf diese Weise werden Probendaten nacheinander aus den Strichkodes an den Probengefäßen
23-1 bis 23-10 im Gestell 22 ausgelesen.
Nachdem die Probendaten gelesen worden sind, werden die Probengefäße 23 nacheinander zu einer Probenabgabestation
31 weitertransportiert, in der beispielsweise die Blutkörperchen und das Serum im Probengefäß
23-1 mittels einer Blutkörperchen-Pipette 33 und einer Serum-Pipette 34, welche in einem Endabschnitt eines
Prebenabgabearms 32 angeordnet sind, quantitativ in die Abgabevorrichtungen 3-1 und 3-2 angesaugt werden.
Diese Ansaugung geschieht in der Weise, daß der Probenabgabearm 32 in der mit einem Pfeil C angegebenen
Richtung so verstellt wird, daß die Pipetten 33 und 34 über dem Probengefäß 23-1 in der Probenabgabestation 31
in Stellung kommen, und dann nach unten bewegt wird, um die vorderen Enden der Pipetten 33 und 34 in die
Blutkörperchen bzw. in das Serum einzutauchen. Beim gezeigten Beispiel ist am vorderen Ende des Probenabgabearms
32 eine Elektrode 35 so befestigt, daß sie zusammen mit den Pipetten 33 und 34 in das Probengefäß 23-1
eintaucht, und die Pipetten 33 und 34 sind aus einem elektrisch leitfähigen Werkstoff hergestellt Daher wird ein
Flüssigkeitsspiegel oder eine Grenzfläche zwischen dem Serum und den Blutkörperchen aufgrund einer Änderung
der Impedanz zwischen diesen Elektroden festgestellt Somit ist es möglich, die Abwärtsbewegung des
Probenabgabearms 32 zu steuern und festzustellen, ob das jeweilige Probengefäß 23 Prüfflüssigkeit enthält
Beim gezeigten Beispiel ist der Abstand zwischen der Probenfeststellstation 29 und der Probenabgabestation
31 gleich dem Abstand zwischen den Probengefäßen 23-1 und 23-5, ist aber nicht auf diese Größe beschränkt.
Nach riem Aufsaugen einer Menge an Serum und Blutkörperchen wird der Probenabgabearm 32 nach oben
Nach riem Aufsaugen einer Menge an Serum und Blutkörperchen wird der Probenabgabearm 32 nach oben
und dann in der dem Pfeil C entgegengesetzten Richtung bewegt, um die Blutkörperchen-Pipette 33 und die
Serum-Pipette 34 über einer Proben-Führunjjsbahn 36 in Stellung zu bringen. In der Proben-Führungsbahn 36
ist ein aus rostfreiem Stahl hergestelltes Endlosband 37 mittels zweckdienlicher Antriebswellen 38/4 und 38öin
der mit einem Pfeil D angegebenen Richtung intermittierend bzw. schrittweise bewegbar. Am Endlosband 37
sind mehrere Proben-Trägerplatten 39 befestigt. Auf jeder Trägerplatte 39 ist ein erster Halter 4 \A und in etwas
Abstand davon, mit gleichmäßigen Zwischenabständen in der Pfeilrichtung D, drei weitere Halter 415,41Cund
41D angeordnet. In die Halter 4M bis 41Dsind zugehörige Proben-Verdünnungsgefäße 42/4,425. 42Cbzw. 42D
wegnehmbar eingesetzt. Das Verdünnungsgefäß 42A ist zur Beschickung mit den Blutkörperchen mittels der
Abgabevorrichtung 3-1 vorgesehen und erhält gleichzeitig von der Abgabevorrichtung 5-1 aus einem nicht
dargestellten Behälter eine Kochsalzlösung, so daß in ihm eine im voraus festgelegte Menge der Blutkörperchensuspension
RD hergestellt v/ird. Sodann bringt das Endlosband 37 das Verdünngungsgefäß 425 unter dem
Probenabgabearm 32 in Stellung, in das etwa ein Drittel der Serumprobe aus der Abgabevorrichtung 3-2 und
gleichzeitig mit der Abgabevorrichtung 5-2 die Kochsalzlösung abgegeben werden, so daß in ihm eine im vorau«
festgelegte Menge des verdünnten Serums SD hergestellt wird. Auf dieselbe Weise werden die Verdünnungsgefäße
42Cund 42D mittels der Pipette 34 mit der Serumprobe und aus den Abgabevorrichtungen 5-3 und 5-4 mit
einer vorbestimmter. Menge Kochsalzlösung beschickt, so daß in ihnen das verdünnte Serum SD hergestellt
wird.
Sodann *ird der Probeabgabearm 32 in der dem Pfeil D entgegengesetzten Richtung zu einer Waschvorrichtung
43 bewegt, die in der Nähe des Umfangs der Proben-Führungsbahn 36 angeordnet ist. Nach den; Auswaschen
der Pipetten 33 und 34 und der Elektrode 35 in dieser Waschstation wird der Probenabgabearm 32 in die
F i g. 2 gezeichnete Ausgangsstellung zurückgestellt.
Die vorstehend beschriebenen Arbeitsgänge werden für alle Probengefäße 23 in der Probenabgabestation 31
durchgeführt. Es ist somit möglich, in den auf der Trägerplatte 39 angeordneten Verdünnungsgefäßen 42/4 bis
42D die Blutkörperchensuspension RD und das verdünnte Serum SD je mit einem im voraus festgelegten
Verdünnungsgrad herzustellen. Beim gezeigten Beispiel sind für das Gestell 22 als Transportzeit auf dem
Endlosband 27 15 Sekunden angenommen. Die Abgabe- und Verdünnungsvorgänge für die Proben in den
Probengefäßen 23-1 bis 23-10 eines Gestells 22 sind daher nach 15 mal 10= 150 Sekunden beendet.
Wenn beim gezeigten Beispiel die Abgabe der Blutkörperchenprobe so vorgenommen wird, daß zuerst die
Blutkörperchenprobe und dann nach einer gewissen Zeit die Kochsalzlösung eingegeben wird, setzen sich die
Blutkörperchen auf dem Küvettenboden ab, und es ist somit ein gutes Vermischen nicht möglich. Es ist daher von
Vorteil, wenn die Abgabe der Blutzellenprobe während der Abgabezeit der Kochsalzlösung beendet wird.
Dagegen kann die Abgabe der Kochsalzlösung für die Serumprobe an beliebiger Stelle zwischen der Serumabgabestation
und einer nachfolgend näher beschriebenen Probenaufsaugstation 45 vorgenommen werden.
Außerdem wird beim gezeigten Beispiel die Probe nacheinander in die Verdünnungsgefäße 42/4 bis 42D
synchron mit der Bewegung des Endlosbandes 37 abgegeben. Es ist jedoch auch möglich, den Probenabgabearm
32 entlang der Proben-Führungsbahn 36 so zu bewegen, daß die Pipetten 33 und 34 nacheinander über den
Verdünnungsgefäßen 42Λ bis 42D in Stellung kommen. Es ist außerdem möglich, die Probenabgabe durch
Aufeinanderabstimmen der Bewegungen des Probenabgabearms 32 und des Endlosbandes 37 durchzuführen.
Nach Abgabe der Proben aus allen Probengefäßen 23-1 bis 23-10 des Gestells 22 wird das Endlosband 27 in
umgekehrter Richtung angetrieben und das Gestell 22 in die Ausgangsstellung im Kassettentablett 21 zurückgegeben.
Sodann wird das Kassettentablett 21 einen Schritt in der Pfeilrichtung A verstellt und das nächste Gxstel1
22 in die Proben-Führungsbahn 25 zugeführt, woraufhin die vorstehend beschriebenen Arbeitsgänge für die
nächsten Probengefäße 23-1 bis 23-10 wiederholt werden.
Durch Betätigen des Endlosbandes 37 wird dann die Trägerplatte 39 mit den Verdünnungsgefäßen 42/4 bis
42D, welche die Blutkörperchensuspencion RD und das verdünnte Serum SD enthalten, in der Probenaufsaugstation
45 in Stellung gebracht.
Gemäß F i g. 2 enthält eine Küvettenplatte 52 12 mal 10 = 120 Küvetten 8 und weist in einer Seitenfläche über
zehn Küvettenreihen Positionierrasten auf. Wie im Zusammenhang mit F i g. 1 erläutert, werden für eine Probe
zwölf Küvetten (Kanäle) benutzt; daher ist es möglich, in einer Küvett^nplatte 52 die Probenlösung für zehn
Proben herzustellen.
Jede Küvette 8 weist einen kegelförmigen Boden und mehrere regelmäßig ausgebildete konzentrische Stufen
auf, um auf dieser geneigten Bodenfläche eine stabile Grundschicht von sedimentierten Teilchen zu bilden.
Außerdem kann die geneigte Bodenfläche im Querschnitt sägezahnfönnig sein. Bei gezeigten Beispiel ist es
möglich, die regelmäßigen Stufen entlang der geneigten Bodenfläche mit gleichbleibender, zunehmender oder
abnehmender Höhe auszubilden, wobei die Größe der sedimentierenden Teilchen zu berücksichtigen ist. Ferner
ist die Querschnittsgestalt nicht auf die Sägezahnform beschränkt; sie kann auch konkav oder konvex sein.
Außerdem ist es möglich, auf der geneigten Bodenfläche nur Teilstufen auszubilden. Auch ist die Gestalt der
Bodenfläche nicht auf die kegelige Form beschränkt; sie kann auch kegelstumpfförmig sein. Wenn somit in der
geneigten Fläche regelmäßige Stufen ausgebildet sind, bildet sich die stabile Grundschicht der sedimentierten
Teilchen auf der Stufe aus. Tritt daher eine Agglutinationsreaktion ein, schlagen sich die sedimentierten Teilchen
gleichmäßig auf die Grundschicht nieder, wogegen bei ausbleibender Agglutinationsreaktion die sedimentierten
Teilchen auf der schrägen Bodenfläche nach unten rollen und sich in der tiefsten Bodenmitte ansammeln. Somit
können sich auf der geneigten Bodenfläche eindeutige Agglutinations- oder Nicht-Agglutinationsmuster ausbilden.
Mehrere Küvettenplatten 52 sind in einer automatischen Küvettenplatten-Zuführvorrichtung 53 übereinan-
dergestapelt Diese KOvettenplatten 52 sind durch Führungsstücke 54A bis 54D positioniert bzw. zentriert, die in
der Zuführvorrichtung 53 angeordnet sind. Aus Gründen der einfacheren Darstellung ist in Fig.2 nur die
unterste Küvettenplatte 52 gezeichnet Die in der Zuführvorrichtung 53 gestapelten Küvettenplatten 52 werden
vom unteren Sapelende weg zu im voraus festgelegten Zeitpunkten nacheinander in der mit einem Pfeil E
angegebenen Richtung einer Küvettenplatten-Obergabevorrichtung 55 zugeführt
Die Küvetteaplatten-Obergabevorrichtung 55 weist ein Endlosband 57 auf, das von Antriebswellen 56A und
56B in der mit einem Pfeil Fangegebenen Richtung parallel zur Proben-Führungsbahn 36 antreibbar ist Die auf
das Endlosband 57 abgegebene Küvettenplatte 52 wird zu einer Reagensabgabestation 58 transportiert In der
Prob· i- und Reagensabgabestation 58 werden gemäß F i g. 2 im voraus festgelegte Reagentien quantitativ in
ίο eine Reihe mit zwölf Küvetten 8 abgegeben, und zur gleichen Zeit sind die Blutkörperchensuspension und das
verdünnte Serum mengenmäßig aus den Verdünnungsgefäßen 42A bis 42D in der Probenaufsaugstation 45
abgegeben worden, so daß die vorgesehenen Probenlösungen entstehen.
Ein Reagensabgabearm 60 trägt den in der Reagensabgabestation 58 angeordneten zwölf Küvetten 8 oder
Kanälen zugeordnete Pipetten 61-1 bis 61-12, die über zugehörige Rohre 62 an die Abgabevorrichtungen 9-1 bis
ts £-12 angeschlossen sind. Den zwölf Kanälen entsprechen in einem Reagensbehälter 63 zwölf Reagenskammern
63-5 bis 63-12, die, wie im Zusammenhang mit F i g. 1 erläutert die im voraus festgelegten ersten Reagentien
enthalten. Bei Bedarf sind die Reagenskammern 63-1 bis 63-12 oben mit nicht dargestellten Stopfen versehen,
und für jeden einzelnen Kanal oder für alle Kanäle gemeinsam ist ein Schüttelapparat vorgesehen, um ein
Zusammenklumpen des Reagens und insbesondere eine Sedimentation des Blutkörperchenreagens zu verhin
dem.
Der Resgeüsbebäitcr 63 ist über dens Endlosband 57 der KüvettertplatteR-Übergabevcrrichtung 55 auf einer
Platte 64 angeordnet die an einem Gerätegestell mit solchem Zwischenraum befestigt ist, daß eine Küvettenplatte 52 unter ihr hindurchgeht Ferner sind die dem 1. Kanal zugeordnete Pipette 61-1 und die dem 7. Kanal
zugeordnete Pipette 61-7 des Reagensabgabeanns 60 je mit der zugehörigen Abgabevorrichtung 11-1 bzw. 11-2
verbunden und somit werden die im voraus festgelegten zweiten Reagentien in der im Zusammenhang mit
F i g. 1 erläuterten Weise in die diesen Kanälen entsprechenden Küvetten 8 der Küvettenplatte 52 abgegeben.
Gemäß Fig.2 sind die Abgabevorrichtungen 11-1 und 11-2 übet Rohre 65 an die den Kanälen Nr. 1 und 7
entsprechenden Rohre 62 angeschlossen. Es ist jedoch möglich, die Rohre 65 mit den den Kanälen Nr. 1 und 7
entsprechenden Pipetten 61-1 und 61-7 direkt zu verbinden oder für die Abgabe der zweiten Reagentien
getrennte Pipetten vorzusehen, die an die Rohre 65 direkt angeschlossen sind.
Anhand F i g. 3 werden nun ein Arbeitszyklus des Reagensabgabeanns 60 und eine Beziehung zwischen dem
Reagensbehälter 63 und der Küvettenplatte 52 beschrieben. Die Pipetten 61-1 bis 61-12 sind am Reagensabgabearm 60 gegenüber der Senkrechten in Fig.3 mit einer Seichten Schrägstellung α im Gegenuhrzeigersinn
befestigt In der Proben- und Reagensabgabestation 58 sind an einem Probenabgabearm 70 Probenabgabepipet
ten 71-1 bis 71-4 mit einem Neigungswinkel af angeordnet In der Abgabestation 58 werden Küvetten 8-1-1 bis
8-1-12 in der Küvettenplatte 5Z die vom Endlosband 57 schrittweise herangeführt werden, das erste (und das
zweite) Reagens, die Blutkörperchensuspension und das verdünnte Serum mit den Pipetten 61-1 bis 61-12 und
den Probenabgabepipetten 71-1 bis 71-4 zugeführt, um die Probenlösungen herzustellen. Danach wird die
Agglutinationsreaktion eingeleitet.
Hierzu wird zuerst der Reagensabgabearm 60 in der von einem Pfeil G\ angegebenen Richtung nach unten
bewegt und die vorderen Enden der Pipetten 61-1 bis 61-12 in die entsprechenden Reagenskammern 63-1 bis
63-12 eingetaucht Die Pipetten 61-1 bis 61-12 saugen dann die in den Kammern 63-1 bis 63-12 enthaltenen
Reagentien auf. Danach wird der Reagensabgabearm 60 nach oben bewegt und in dem mit einem Pfeil Gi
angegebenen Bogen geführt und sodann entsprechend einem Pfeil Gi abgesenkt, um eine im voraus festgelegte
Gemäß F i g. 2 sind am Probenabgabearm 70 vier Probenabgabepipetten 71-1 bis 71-4 mit einem im voraus
festgelegten Zwischenabstand angeordnet der dem Abstand zwischen den Verdünnungsgefäßen 42,4 bis 42D
auf der Trägerplatte 39 entsprich·, die vom Endlosband 37 in die Probenaufsaugstation 45 herangeführt wird. Die
Pipetten 71-1 bis 71-4 sind mit den Abgabevorrichtungen 7-1 bis 7-4 über zugehörige Rohre 73 verbunden.
so Sobald die Trägerplatte 39 die Probenaufsaugstation 45 erreicht hat, wird der Probenabgabearm 70 in der
waagerechten Ebene entsprechend einem Pfeil H von einer nicht dargestellten Kardan-Antriebsvorrichtung um
90° in eine mit strichpunktierten Linien gezeichnete Stellung geschwenkt und abgesenkt Sodann werden die
Pipetten 71-1 bis 71-4 in die in der Probenaufsaugstation 45 angeordneten zugehörigen Verdünnungsgefäße 424
bis 42D eingetaucht wolei aus dem Verdünnungsgefäß 42/4 von der Abgabevorrichtung 7-1 über die Pipette
71-1 die Blutkörperchensuspension und aus den Verdünnungsgefäßen 42S bis 42£>
von den Abgabevorrichtungen 7-2 bis 7-4 über die Pipetten 71-2 bis 71-4 auch die verdünnten Seren aufgesaugt werden. Der Probenabgabearm 70 wird dann in eine vorbestimmte Stellung aufwärtsbewegt, um die Pipetten 71-1 bis 71-4 aus den
Verdünnungsgefäßen 42Λ bis 42D herauszuziehen und entsprechend einem Pfeil / in einem Bogen geführt und
dann entsprechend einem Pfeil /gegen die Küvettenplatte 52 zugestellt In dieser Stellung wird zuerst mit der
Pipette 71-4 das verdünnte Serum aus der Abgabevorrichtung 7-4 in die Küvette 8-Π-2 der Küvettenplatte 52
abgegeben, wobei π eine Zahl zwischen 1 und 10 ist. Sodann wird im Laufe einer Rückstellbewegung des
Probenabgabearms 70 in der mit einem Pfeil K angegebenen Richtung das verdünnte Serum aus der Abgabevorrichtung 7-4 mit der Pipette 71-4 in die Küvette 8-n-l 1 abgegeben, das verdünnte Serum aus der Abgabevorrichtung 7-3 mit der Pipette 71-3 in die Küvetten S-n· 10 und 8-/7-9, das verdünnte Serum aus der Abgabevorrich-
3S tung 7-2 mit der Pipette 71-2 in die Küvetten 8-/7-8,8-Π-7,8-/7-6 und 8-/7-5, und die Blutkörperchensuspension aus
der Abgabevorrichtung 7-1 milder Pipette 71-1 in die Küvetten 8-Π-4,8-/7-3,8-/7-2 und 8- /7-1.
Im Hinblick auf die Leistung des Analysiergerätes, die Reaktionsgeschwindigkeit und eine gute Vermischung
ist es bei der Beschickung von Vorteil, wenn die Reagentien mit den Pipetten 61-1 bis 61-12 des Reagensabgabe-
arms 60 sowie die Blutkörperchensuspension und das verdünnte Serum mit den Pipetten 71-1 bis 71-4 des
Probenabgabearms 70 zumindest annähernd gleichzeitig abgegeben werden. Mit anderen Worten, es sind
folgende Beschickungsverfahren denkbar:
1) Abgabe des Reagens in die Küvetten 8-/7-1 bis 8-Π-12 zur gleichen Zeit und danach Abgabe der Proben,
wobei der Probenabgabearm 70 in der Pfeilrichtung K rasch bewegt wird.
2) Abgabe des Reagens nacheinander in die Küvetten 8-n-l bis 8-/7-12 und Abgabe der Proben ebenfalls
nacheinander entsprechend der Reagensabgabe.
3) Abgabe der Reagentien nacheinander in Küvettengruppen je mit einigen Küvetten und Abgabe der Proben
dementsprechend.
Nach beendeter Probenabgabe wird der Probenabgabearm 70 in Pfeilrichtung K in eine vorbestimmte
Stellung bewegt und dann erneut in Pfeilrichtung H geschwenkt Danach wird der Probenabgabeann 70 zu
Pipettenwaschstationen T2A bis 72D weiterbewegt, die entsprechend den Pipetten 71-1 bis 71-4 angeordnet sind,
um diese Pipetten auszuwaschen. Zur Durchführung der Probenabgabe wird der Probenabgabearm 70 mehrmais
entlang dem obenbeschriebenen Ort verstellt Beim gezeigten Beispiel dauert die Reagens- und Probeirabgabe
für eine Küvettenreihe 8-n-l bis 8-/7-12 15 Sekunden. Für die Herstellung der Probenlösungen /ü- eine
Küvettenplatte 52 werden daher 10 mal 15=150 Sekunden benötigt
Anhand F i g. 4 werden nun ein Arbeitszyklus und eine Stellungsbeziehung zwischen dem Probenabgabearm
70, der Küvettenplatte 52 und der Trägerplatte 39 erläutert Der Probenabgabearm 70 setzt sich aus einem
Abgabeabschnitt 70A und einem Träger 70S zusammen. Der Abgabeabschnitt 7OA ist um είπε Tragachse 7OC
schwenkbar, und der Abgabeabschnitt 70A und der Träger 705 sind zusammen in den Pfeilrichtungen K und /
verstellbar. Das Auswaschen der Probenabgabepipetten 71-1 bis 71-4 geschieht in den Pipettenwaschstationen
72A bis 72D einer Waschvorrichtung 72, die in der Nähe des Endlosbandes 37 angeordnet ist
Wenn beispielsweise der Probenabgabearm 70 in der mit einem Pfeil L angegebenen Richtung abgesenkt und
as Auswaschen der Pipetten 71-1 bis 71-4 durchgeführt worden ist wird der Probenabgabearm 70 zuuerst nach
oben und dann entsprechend einem Pfeil M zur Probenzuführbahn 36 bewegt und zum Aufsaugen von Proben
aus den Verdünnungsgefäßen 42A bis 42D in Stellung gebracht In dieser Stellung wird er dann entsprechend
einem Pfeil N abgesenkt, um eine im voraus festgelegte Aufsaugopreation durchzuführen, und wird danach
wieder in Pfeilrichtung / nach oben bewegt und im Bogen in eine Stellung geschwenkt, die dier Pfeilrichtung /
entspricht. Danach wird der Probenabgabearm 70 in der Pfeilrichtung N abgesenkt, um die Küvetten 8-/7-12 bis
8-/7-I der Küvettenplatte 52 nacheinander mit Proben zu beschicken. Anschließend wird der Probenabgabearm
70 in der mit einem Pfeil P angegebenen Richtung nach oben bewegt und dann in Pfeilrichtung K in die
Ausgangsrichtung zurückgestellt Damit ist ein Abgabezyklus beendet
Nachdem die verdünnte Blutkörperchensuspension und das verdünnte Serum mit den Probenabgabepipetten
71-1 bis 71-4 aufgesaugt worden sind, werden die Verdünnungsgefäße 42A Bis 42D durch das Endlosband 37 in
eine Waschstation 75 transportiert (s. F i g. 2). Diese hat Waschdüsen 76A bis 76D, welche so angeordnet sind,
daß sie in die Verdünnungsgefäße 42A bis 42Z? eintauchbar sind. Die Probenreste in den Verdünnungsgefäßen
42A bis 42D werden über die Waschdüsen 76A bis 76D durch Betätigen einer Saugpumpe 77 entfernt Danach
werden die Verdünnungsgefäße 42A bis 42D mit einer Waschflüssigkeit ausgewaschen, die den Waschdüsen 76A
bis 76D von einer nicht dargestellten Zuführvorrichtung zugeleitet wird. Nach dem Waschen werden die
Verdünnungsgefäße 42A bis 42Z? während ihrer Weiterbeförderung auf dem Endlosband 37 getrocknet und zur
Prcbenabgabestation 31 zurücktransportiert, so daß sie erneut benutzt werden können. Beim gezeigten Beispiel
sind die jeweiligen Trägerplatten 39 am Endlosband 37 gemäß F i g. 5 mittels eines Ansatzes 200 auf der
Unterseite der Trägerplatte 39 und einer Mutter 201 befestigt.
Die mit den Reagentien und den Proben beschickte Küvettenplatte 52 wird in der mit dem Pfeil Fangegebenen
Richtung weitertransportiert. Weil beim gezeigten Beispiel die Agglutinationsreaktion ab dem Herstellen
der Probenlösung beginnt, wird das Endlosband 57 nachfolgend als erste Reaktionsbahnsektion bezeichnet.
Gemäß F i g. 2 ist nahezu unter der den Reagensbehälter 63 abstützenden Platte 64 ein Küvettenplatten-Abwärtsförderer
80 angeordnet, der nachstehend anhand F i g. 6 und 7 erläutert wird.
Gemäß Fig.6 und 7 wird die Küvettenplatte 52 auf dem Endlosband 57, das mittels der Antriebswellen 56A
und 565 angetrieben wird, in der mit dem Pfeil Fangegebenen Richtung transportiert und dann zwischen einem
Paar endloser Tragriemen 81A und 81 β des Abwärtsförderers 80 abgestützt. An den Tragriemen 81A und 815
sind mit gleichmäßigen Zwischenabständen mehrere L-förmige Stege 8IA-/7 und 81 S-n für die Aufnahme
mehrerer dazwischen angeordneter Küvettenplatten 52 befestigt. Die Stege 8IA-/7 und 81 S-n weisen nicht
dargestellte Anschläge auf. um ein Herabfallen der Küvettenplatten 52 von den Stegen zu verhindern. Die
Tragriemen 81A und 815 sind in entgegengesetzten Umlaufrichtungen durch Antriebswellen 82Ai und 82A2
bzw. 83ßi und 835? bewegbar, die von einer zweckdienlichen Antriebsvorrichtung mit einer konstanten Geschwindigkeit
drehantreibbar sind. Die vom Endlosband 57 nacheinander zugeführten Küvettenplatten 52
werden daher zwischen Paaren von Stegen 81A-n, 8iB-n abgestützt und in Abhängigkeit von einer Umlaufbewegung
der Tragriemen 81A und 81S nacheinander in der mit einem Pfeil Tangegebenen Richtung gefördert. In I
dieser Förderbahn läuft die Agglutinationsreaktion der in den Küvetten 8 der Küvettenplatte 52 enthaltenen |
Probelösungen ab. Beim gezeigten Beispiel wird diese vertikale Förderbahn als zweite Reaktionsbahnsektion
bezeichnet. Weil die Agglutinationsreaktion in der zweiten Reaktionsbahnsektion stattfindet, müsen die Tragriemen
81A und 815 ruhig laufen, ohne daß die Küvettenplatten 52 heftig erschüttert werden. Die unterste der
zwischen den Tragriemen 81A und 81B geförderten Küvettenplatten 52 wird auf ein Endlosband 90 abgegeben,
wenn die sie abstützenden Stege 81 A-n und 81 B-η voneinander weg bewegt werden.
Gemäß F i g. 8 ist das Endlosband 90 in der mit einem Pfeil U angegebenen Richtung mittels Antriebswellen
91A 9\B und 91Cbewegbar, die mit einer konstanten Geschwindigkeit von einer zweckdienlichen Antriebsvorrichtung weich drehantreibbar sind Das Endlosband 90 wird intermittierend mit einer Schrittlänge bewegt, die
dem Abstand zwischen den Küvetten 8-1 bis 8-10 entspricht, weil die Probenlösungen in den Küvetten 8-n-l bis
8-/J-12 der Küvettenplatte 52 in einer Photometrierstation 92 einzeln photometriert werden. Beim gezeigten
Beispiel wird diese Förderbahn als dritte Reaktionsbahnsektion bezeichnet. Das Endlosband 90 hat ein Bandteil
90Λ von zum Transportieren der Küvettenplatte 52 ausreichender Breite und zwei Riemen 90JS-1 und 90B-2, die
mit Zwischenabstand angeordnet sind, um die in diesem Zwischenraum stattfindende Zwölf-Kanal-Photometrie
nicht zu stören. Das Bandteil 9GA und die Riemen 902M und 905-2 umschlingen die Antriebswelle 91S in einem
bestimmten Abstand voneinander, um sich in ihrem Lauf nicht gegenseitig zu stören.
Gemäß F i g. 6 und 8 weist die Photometrierstation 92 eine Lichtquelle 93, eine Lichtempfangseinrichtung 94
und einen Träger 95 auf. Die Lichtquelle 93 und die Lichtempfangseinrichtung 94 sind am Träger 95 unter bzw.
über der dritten Reaktionsbahnsektion angeordnet Für das Positionieren einer Reihe von zwölf Küvetten 8-n-l
bis 8-Π-12 in der dritten Reaktionsbahnsektion ist an einer vorbestimmten Stelle in der Nähe der Photometrierstation 92 eine Positioniervorrichtung 96 angeordnet, die ein Positionierglied 97 aufweist Dieses wirkt mit
Rasten zusammen, die in eine Seitenwand der Küvettenplatte 52 mit einer Teilung eingearbeitet sind, welche der
Teilung der Küvettenreihen entspricht
Beim gezeigten Beispiel beträgt die Beförderungszeit einer Küvettenplatte 52 zwischen der Reagensabgabestation 58 und der Photometrierstation 92, also die Reaktionszeit, 60 Minuten. Der Träger 95 ist in der mit einem
Pfeil V angegebenen Richtung rechtwinklig zur Pfeilrichtung U hin- und herbewegbar. Somit werden in der
Photometriertation 92 alle zwölf Küvetten 8-n-l bis 8-/7-12 oder Kanäle nacheinander photometriert, wobei das
Photometriet en entweder in einer Richtung oder in beiden Richtungen vorgenommen werden kann.
F i g. 9 zeigt eine andere mögliche Ausgestaltung der dritten Reaktionsbahnsektion: Mit den beiden Antriebswellen 91Λ und 91C ist in der Pfeilrichtung £/ein Endlosband 115 antreibbar, das mehrere Aussparungen 116
aufweist Das Endlosband 115 ist in der Lage, die Küvettenplatte 52 zuverlässig zu transportieren und ermöglicht
durch die Aussparungen 116 hindurch einen einwandfreien Empfang des von der Lichtquelle 93 ausgesandten
mit einem durchsichtigen Baute« von hoher Lichtdurchlässigkeit die Tragfähigkeit zum Abstützen der Küvet
tenplatten 52 zu verbessern.
ao zugeführt auf einer Platte 121 aufgenommen und dann auf dieser mittels einer Antriebsvorrichtung 122 in einer
Aufwärtsförderbahn 123 in der mit einem Pfeil W angegebenen Richtung nach oben bewegt Sobald die
Küvettenplatte 52 eine im voraus festgelegte Stoppstellung 124 erreicht hat, wird die Antriebsvorrichtung 122
abgeschaltet In der Stoppstelk-ig 124 kann die Küvettenplatte 52 mittels eines Betrachtungsgerätes 126 bei
Bedarf visuell überprüft werden. Die auf diese Weise überprüfte Küvettenplatte 52 wird z. B. durch Verstellen
der Platte 121 des Aufwärtsförde crs 120 oder mittels einer Fördervorrichtung zu einer Stapelvorrichtung 127
weitertransportiert und mittels einer Antriebsvorrichtung 128 über eine Platte 129 in der mit einem Pfeil Y
angegebenen Richtung einzeln gestapelt
Es werden nun der Aufbau der Photometrierstation 92 und ein Nachweisvorgang erläutert In F i g. 10 ist eine
Ausführungsform der Lichtquelle 93 und der Lichtempfangseinrichtung 94 gemäß F i g. 6 und 8 dargestellt. In der
. Kondensorlinse 102 und eine Beleuchtungslinse 103 hindurch gleichmäßig auf die Unterseite der Küvette 8 in
der Küvettenplatte 52 projiziert In der Lichtempfangseinrichtung 94 wird ein gleichmäßig ausgeleuchtetes Bild
von der Unterseite der Küvette 8 durch eine Objektivlinse 104 hindurch von einem Lichtempfänger 105
aufgefangen, der zwei Lichtempfängerelemente 106 und 107 hat, welche gemäß einer in die F i g. 10 eingezeich
neten Draufsicht mit Zwischenabstand konzentrisch zueinander angeordnet sind. Beim gezeigten Beispiel wer
den photoelektrisch umgewandelte Ausgangssignale dieser Lichtempfängerelemente 106 und 107 von zugehörigen Verstärkern 108 und 109 verstärkt und danach über einen Analogschalter 110 und einen Analog-Digital-Umsetzer 111 einer Zentraleinheit 112 zugeführt.
Weil beim gezeigten Beispiel die Bodenfläche der Küvetten 8 kegelförmig ist, ist bei Agglutinationsreaktion
so auf der Bodenfläche ein gleichmäßiges Niederschlagsinuster ausgebildet, wogegen bei nicht eingetretener
Agglutinationsreaktion ein geschlossenes Muster in der Bodenmitte vorliegt Beim Abtasten des Teilchenmusters auf der Bodenfiäche der Küvette 8 durch Verstellen der Phototmetrierstation 92 in bezug auf die Küvette 8
nimmt daher ein photoelektrisch umgewandeltes Ausgangssignal aus dem Lichtempfängerelement 106 in der
Nähe der Mitte der Küvette 8 aufgrund der Änderung der Bodendicke einen hohen Wert an (s. Fig. 11A),
dagegen im Falle eines geschlossenen Musters einen niedrigen Wert (s. F i g. 11 B).
Gemäß Fig. 1IA und HB kann das photoelektrisch umgewandelte Ausgangssignal zwischen einem Startpunkt 1 und einem Endpunkt /V'über den gesamten Durchmesser der Küvette 8 abgetastet werden, und die auf
diese Weise abgetasteten Ausgangssignale können der Zentraleinheit 112 zugeführt werden. Beim gezeigten
Beispiel jedoch ist ein Abtastbereich n\ bis n-i festgelegt, dessen Mitte etwa mit der Mitte der Küvette 8
zusammenfällt und dessen Durchmesser kleiner ist als der der Küvette 8, und das photoelektrisch umgewandelte
Ausgangssignal des Lichtempfängerelementes 106 wird an η Stellen im gleichen Abstand (1 bis 100 μπι) abgetastet. Zur gleichen Zeit wird auch das Ausgangssignal des Lichtempfängerelementes 107 abgetastet. Sodann
werden die abgetasteten Ausgangssignale der Zentraleinheit 112 zugeführt. Der Abtastbereich kann unter
Berücksichtigung einer Erhöhung der Untersuchungsgenauigkeit und einer Verkürzung der Abtastzeit festge
legt werden. Außerdem wird die Zahl π der Abtastungen des photoelektrisch umgewandelten Ausgangssignals
zuvor unter Berücksichtigung verschiedener Forderungen festgelegt, z. B. im Hinblick auf die Untersuchungsgenauigkeit, den Küvettendurchmesser, die Form des Agglutinationsmusters, den Abtastabstand, das Reagens u. a.
Beispielsweise kann bei einem angenommenen Durchmesser der Küvette 8 von etwa 5 bis 10 mm die Zahl π der
Abtastungen mehrere zehn bis einhundert betragen.
Anhand des in Fig. 12 dargestellten Flußdiagramms wird nun das Nachweisverfahren erläutert Seim dargestellten
Beispiel wird das photoelektrisch umgewandelte Ausgangssignal des Lichtempfängerelementes 106 als
Zentraldaten, dasjenige des Lichtempfängerelementes 107 als Umfangsdaten bezeichnet.
Nachdem die Zentral- und Umfangsdaten generiert worden sind, wird zuerst ermittelt, ob das Muster der
Zentraldaten »konvex nach oben« (s. Fig. 11 A) oder »konvex nach unten« (s. Fig. MB) ist Diese Ermittlung
wird folgendermaßen durchgeführt Zuerst wird das (fli)te Zentraldatenelement a mit dem (n\ +«)ten Zentraldatenelement
b
R)
oder ^--2)ten, f-|- + l)ten oder ^-
to
verglichen und auch das (ji2)te Zentraldatenelement c mit dem (/72—«Oten Zentraldatenelement d
oder ^<-y)-
Wenn die Bedingung a < b und c< c/ist, dann wird das Muster als »nach oben konvex« erkannt, bei a
> b und c> d als »nach unten konvex«. Wenn a <
b und c> d oder a < b und c< d, liegt eine unbrauchbare oder Fehlbestimmung
vor (Endergebnis ist»?«).
Wenn das Ergebnis »nach ober· konvex« lautet, liegt ein Maximalwert der Zentraldaten vor, be; einem
Ergebnis »nach unten konvex« ein Kleinst« „-it Bei der Ermittlung des Größtwertes wird zuerst der Größtwert
(REm«) unter den π Zentraldatenwerten ermittelt und dann von den Umfangsdaten (RF), die vom Lichtempfängerelement
107 an einer Stelle abgeleitet wurden, welche der Stelle des größten Zentraldatenwertes RLm2x
entspricht Wenn in diesem Falle der Größtwert in mehr als zwei Punkten festgestellt wird, wird als der
Größtwert derjenige Datenwert angenommen, der in einem dem
30
Punkt näheren Punkt erhalten wird (wenn die Abstände dieser Punkte gleich sind, wird als der Größtwert der in
der Reihenfolge jüngere Wert (younger ordering vaiue) angenommen. Beim gezeigten Beispiel werden von
REmM und RF und von zwei neben REm„ und RF liegenden Werten jeweils Durchschnittswerte berechnet um
den Zentraldatenwert REn,*, und den Umfangsdatenwert RFm„ abzuleiten. Bei der Kleinstwertermittlung wird,
in gleicher Weise wie bei der Größtwertermittlung, zuerst der Zentraldaten-Kleinstwert (REm/n) und der entsprechende
Umfangsdatenwert (RF) ermittelt und dann werden zwei neben dem ermittelten Wert (REn,,,,) und
zwei neben dem ermittelten Wert (RF) liegende Werte abgeleitet. Schließlich werden von REn,/,, und RF und von
den jeweils neben ihnen liegenden zwei Werten jeweils Durchschnittswerte ermittelt, um den Zentraldatenwert
REm/>, und den Umfangsdatenwert RFmm abzuleiten.
Die so ermittelten Photometriedaten haben wegen unterschiedlicher Lichtempfangsflächen der Lichtempfängerelemente
106 und 107 verschiedene Gewichtungen, und sop· jt werden, um die beiden Gewichtungen gleich zu
machen, die Photometriedaten mit einer Kcrrekturkonstamen multipliziert, so daß man EmM, FmM oder Em,n, Fm/„
erhält.
Sodann wird festgestellt, ob die korrigierten Photometriedaten innerhalb eines im voraus festgelegten Bereiches
zwischen einem unteren Grenzwert (uG) und einem oberen Grenzwert (oG) liegen (s. F i g. 11A und 11 B).
Wenn die Bedingung gestellt ist, daß unterer Grenzwert <Era„, Fm„ oder En,,)* Fm/n<
oberer Grenzwert, wird eine Erkennungsfunktion C errechnet, und wenn EmM, Fm„S oberer Grenzwert oder Em/ra Fm/„<
unterer Grenzwert ist, dann ist di.s Endergebnis bzw. der Endnachweis »?«.
Als Erkennungsfunktion G wird ein Verhältnis G = F/E benutzt, worin E ein korrigiertes Zentraldatenelement
und F ein korrigiertes Umfangsdatenelement ist Es ist außerdem möglich, als Erkennungsfunktion G »F-E«, »log
(F/E)«, »log (F-QE)« mit Q als Konstante, etc. zu benutzen.
Sodann wird der errechnete Wert mit einem im voraus festgelegten oberen Schwellenwert (oSW) und unteren
Schwellenwert (uSW) verglichen. Wenn in diesem Falle die Bedi^giuig G ä oSW gilt, also »keine Agglutination«,
dann ist der Nachweis » + «, bei G £ uSW, also »Agglutination«, ist der Nachweis » — «, und bei uSW
< G < oSW ist der Nachweis »?«. Wenn der obere Schwellenwert übermäßig hoch angesf tzt ist, ist die Genauigkeit für den
Nachweis » + « groß, jedoch wird die prozentuale Häufigkeit des Nachweises »?« dementsprechend groß. Wenn
der untere Schwellenwert übermäßig niedrig angesetzt ist, wird die Genauigkeit für den Nachweis » —« groß,
aber in gleicher Weise wird der prozentuale Anteil des Nachweises »?« dementsprechend groß. Daher müssen
diese oberen und unteren Schwellenwerte sorgfältig gewählt werden, unter Berücksichtigung verschiedener
Bedingungen wie der Erkennungsfunktion G, des Reagens, der Probe, der Umgebungsbedingungen, der Nachweisgenauigkeit
u. a.
Beim gezeigten Beispiel wird das Nachweisergebnis mit Steuerung durch die Zentraleinheit 112 durch einen
Drucker ausgedruckt, zusammen mit verschiedenen Informationen, die von der Probenfeststell- oder Probenerkennungsvorrichtung
30 zuvor gelesen wurden, z. B. die Probendaten und die vorhandenen Probendaten, die mit
einem Elektrodcnpaar, bestehend aus der Elektrode ?5 und der als Elektrode wirkenden Pipette 33 oder 34,
erfaßt wurden.
F i g. 13 zeigt das Flu^diagramm für die vorstehend beschriebenen, vom Analysiergerät nacheinander ausgeführten
Arbeitsschritte, und da für deren Verständnis die vorstehende ausführliche Erläuterung ausreicht, wird
auf eine nochmalige Beschreibung verzichtet.
Im Vorstehenden wurden als Beförderungszeit für eine Küvettenplatte 52 zwischen der Reagensabgabestation 58 und der Photometrierstation 92, also für die Reaktionszeit, 60 Minuten angenommen; es ist jedoch eine
Verkürzung der Reaktionszeit auf 30 Minuten möglich, wenn die Umlaufgeschwindigkeit der Tragriemen 81A
und 81S im Küvettenplatten-Abwärtsförderer 80 erhöht wird und die Küvettenplatten 52 nur auf jedes zweite
Stegpaar81/4-n,81ß-n aufgegeben werden.
12
Claims (5)
1. Mit immunologischer Agglutinationsreaktion arbeitendes Analysiergerät mit einer Zuführvorrichtung
für Blutprobengefäße, einer Einrichtung zum Herstellen mehrerer verdünnter Blutproben in Verdünnungsgefäßen
aus den einzelnen Blutproben, einer Zuführvorrichtung zum Zuführen von Küvettenplatten zu einer
Einfüllstation, einer Einrichtung zum Einfüllen der verdünnten Blutproben in die reihenweise angeordneten
Küvetten der Küvettenplatten, einer Einrichtung zum Eingeben von Reagentien in die Küvetten, einer
Transportvorrichtung zum Fördern der Küvettenplatten längs einer Reaktionsbahn, die insbesondere mehrere
in einer Vertikalebene verlaufende teils horizontale und teils vertikale Reaktionsbahnabschnitu: aufweist,
einer an der Reaktionsbahn angeordneten photoelektrischen Meßeinrichtung für die Agglutimationsreaktion
und einer am Ende der Reaktionsbahn angeordneten Austragsvorrichtung für die Küvettenplatten,
dadurch gekennzeichnet, daß die Einrichtung zum Einfüllen der verdünnten Blutproben in die
Küvetten einen verschwenkbaren sowie linear und senkrecht bewegbaren Probenabgabearm (70) eufweist,
an dem mehrere Pipetten (71-1 bis 71-4) zum gleichzeitigen Aufsaugen der verdünnten Blutkörperchen- und
Serumproben aus den Verdünnungsgefäßen (42Λ bis 42D) und zum Abgeben der Proben in die Küvetten (8)
der Küvettenplatte (52) angeordnet sind, wobei in der Einfüllstation (45, 58) die Küvettenreihen (8-/7-1 bis
8-/3-12) rechtwinklig zu den in einer Reihe angeordneten Verdünnungsgefäßen (42/4 bis 42D) ausgerichtet
sind.
2. Analysiergerät nach Anspruch 1, dadurch gekennzeichnet, daß die Zahl und Anordnung der Pipetten
(71-1 bir Tl-4) am Probenabgabearm (70) der Zahl und Anordnung der Verdünnungsgefäße (4Z4 bis 42D^ in
der Emiüästation (45, 58) entspricht und daß bei einer größeren Zahl von Küvetten (8) je Küvettenreihe
(8-J7-1 bis 8-/7-12) die Pipetten (71-1 bis 71-4) durch entsprechende Bewegungssteuerung des Probenabgabearms
(70) nacheinander auf zwei oder mehr Küvetten (8) der Küvettenreihe (8-/7-1 bis 8-/7-12) ausrichtbar
sind.
3. Analysiergerät nach Anspruch 2, dadurch gekennzeichnet, daß der Probenabgabearm (70) vier Pipetten
(71-1 bis 71-4) aufweist, mit denen je Einfüllzyklus zwölf Küvetten (8) beschickt werden, die eine Küvettenreihe
(8-Π-1 bis 8-/7-12) bilden.
4. Analysiergerät nach einem der Ansprüche 1 bis 3, dadurch gekennzeichnet, daß die Pipetten (71-1 bis
71-4) durch entsprechende Bewegungssteuerung des Probenabgabearms (70) in eine Waschvorrichtung (72)
einführbar sind.
5. Analysicrgrät nach Anspruch 4, dadurch gekennzeichnet, daß die Waschvorrichtung (72) einer der Zahl
und Anordnung der Pipetten (71-1 bis 71-4) entsprechende Zahl und Anordnung von einzelnen Waschstationen
(72/4 bis 72D^ aufweist, uie seitlich neben den in der Einfüllstation (45,58) befindlichen Verdünnungsgefäßen
(42/4 bis 42Dj angeordnet sind.
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