DE2112553B2 - 1-alpha-Aminoisobuttersäurecorticotropinpeptide, deren Derivate, Säureadditionssalze und Komplexe sowie Arzneipräparate - Google Patents
1-alpha-Aminoisobuttersäurecorticotropinpeptide, deren Derivate, Säureadditionssalze und Komplexe sowie ArzneipräparateInfo
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Description
IO
in der X ein L-Lysin- oder L-Ornithinrest und Y
ein L-Prolin-, L-Prolinester- oder L-Prolinamidrest
ist, deren Säureadditionssalze und Komplexe.
10. t-oc-Aminoisobuttersäure-corticotropinpeptide
der allgemeinen Formel
oc-Aminoisobutyryl-L-tyrosyl-L-seryl-
i.-methionyl-L-g!utamyI-L-histidyI-i.-pnen\l-
alanyl-L-arginyl-L-tryptophyl-glycyl-
i--lysyI-L-prolyi-L-valyl-glycyl-X-i-'-I\syl-
i-arginyl-i.-arginyl-L-proiyl-i.-valyl-
L-iysyl-L-valyl-L-tyrosyl-L-prolvi-
L-asparagyl-L-alanyl-Y
in der X ein L-Lysin- oder L-Ornithinrest und Y ein
Glycin-. Glycinesler- oder Glycinamidrest ist.
deren Säureadditionssalze und Komplexe.
11. Arzneipräparate, enthaltend ein 1-j-Aminoisobutiersäure-cor'-cotropinpeptid
nach Anspruch 1 bis 10.
35
Die Erfindung betrifTl neue 1-a-Aminoisobuttersaure-corticotropinpeptide.
die an Stelle des Serini'c>tes ini nativcn Corticotropin als aminocndständige
Aminosäure eine α-Aminoisobuttersäurc enthalten,
deren Derivate, pharmakologisch verträgliche Säureadditionssalze, Zwischenprodukte und Komplexe.
Die Erfindung beruht auf dem Befund, daß der Ersatz der aminoendständigen Aminosäure in Corticotmpinpeptiden
durch a-AminoisoIiuttcrsäure deren biologische Eigenschaften erheblich verstärkt und zu
einer VVirkungsverlängerung führt. Es wurde ferner festgestellt, daß diese verbesserten Eigenschaften auf
einer verminderten Empfindlichkeit der 1-a-Aminoisobuttersäure-corticotropinpeptide
gegenüber der Wirkungder intrazellulären Aminopeptidase beruhen.
Gegenstand der Ei findung sind 1-a-Aminoisobuttersäurc-corlicotropinpeptidc
mit Aminosäureresten entsprechend der Sequenz 1-16 bis 1-39 des nativcn
Corticotropins, deren Derivate. Säurcadditionssalze und Komplexe.
Die I-a-Aminoisobutlcrsäurc-coi licolropinpeplidc
können nach an sich bekannten Methoden durch aufeinanderfolgende Kondensation der Aminosäuren
oder durch Kondensation kleiner Pcplidfragmenle hergestellt werden. Insbesondere können die Verbindungen
der Erfindung entweder
(al durch Umsetzung eines Aminosäureesters oder Pepiideslcrs mil einer freien Aminogruppc mil ft.1; einer anderen Aminosäure oder einem anderen Peptid mit geschützten Aminogruppen in Gegenwart eines Kondensalionsmiltcls oder
(al durch Umsetzung eines Aminosäureesters oder Pepiideslcrs mil einer freien Aminogruppc mil ft.1; einer anderen Aminosäure oder einem anderen Peptid mit geschützten Aminogruppen in Gegenwart eines Kondensalionsmiltcls oder
(b) durch Umsetzung einer Aminosäure oder eine Peptids mit einer freien Amirrogruppe und ge
schützter oder ungeschützter Carboxylgruppe m einer anderen Aminosäure oder einem anderei
Peptid mit einer aktivierten Carboxylgruppe um geschützter Aminogruppe oder
(c) durch Umsetzung einer Aminosäure oder eine Peptids mit freier Carboxylgruppe und geschützte
Aminogruppe mit einer anderen Aminosäur oder einem anderen Peptid mit aktivierter Amino
gruppe und geschützter Carboxylgruppe und an schließende Abspakun3der Schutzgruppen durc
Hydrogenolyse, Acidolyse, Hydrolyse, Hydra zinolyse. Reduktion mit Natrium in flüssigen
Ammoniak oder andere Weise hergestellt wer den.
Peptidhindungen werden nach üblichen
ausgebildet. Beispiele für diese Methoden sind die A/id Dicyclohexylcarbodiimid-. Carbonyldiimidazol-. ge mischte Anhydrid- oder aktivierte Estermethode /. B. die p-Nitrophenylestermethodc, die N-Hydro.\\ succinimidester-, Cyanmelhylester-, p-Nitrophenyl thiolester-. Pentachlorphenylesler-. Isoxazolium-N-Carboxyanhydrid-. Tetraäthylpyrophosphit ode Äthylchlorphosphitmethode oder deren Kombinatio nen. Die Peptide werden auch nach der sogenannter Synthese in fester Phise hergestellt. Die vorgenannter Methoden können zwar zur Ausbildung jeder Peptid bindung bei der Herstellung der Verbindungen de Erfindung angewendet werden, die bevorzugte Me thode ist jedoch die Dicyclohexylcarbodiimid-. Azidgemischte Anhydrid- und aktivierte Estermethode.
ausgebildet. Beispiele für diese Methoden sind die A/id Dicyclohexylcarbodiimid-. Carbonyldiimidazol-. ge mischte Anhydrid- oder aktivierte Estermethode /. B. die p-Nitrophenylestermethodc, die N-Hydro.\\ succinimidester-, Cyanmelhylester-, p-Nitrophenyl thiolester-. Pentachlorphenylesler-. Isoxazolium-N-Carboxyanhydrid-. Tetraäthylpyrophosphit ode Äthylchlorphosphitmethode oder deren Kombinatio nen. Die Peptide werden auch nach der sogenannter Synthese in fester Phise hergestellt. Die vorgenannter Methoden können zwar zur Ausbildung jeder Peptid bindung bei der Herstellung der Verbindungen de Erfindung angewendet werden, die bevorzugte Me thode ist jedoch die Dicyclohexylcarbodiimid-. Azidgemischte Anhydrid- und aktivierte Estermethode.
Zur Herstellung der i-a-Aminoisobuttersäurc-cor
ticotropinpeptide werden freie funktioneile Gruppen die an der Reaktion nicht teilnehmen, vorzugsweisi
geschützt, insbesondere durch solche Gruppen, d■■
durch Hydrogenolyse. Acidolyse. Hydr-izinolyse. Hy
drolysc oder Reduktion mit Natrium in flüssigen Ammoniak leicht entfernt werden können. Die C'arbo
xylgruppe wird vorzugsweise durch Veresterung, ζ. Β mit einem niederen aliphatischen Alkohol, wie Metha
nol. Äthanol. Propanol. Isopropanol oder tert.-Buta
nol. oder einem durch einen aromatischen Rest sub stituierten aliphatischen Alkohol, wie Benzylalkohol
p-Nitrobenzylalkohol oder p-Methoxybenzylalkohol
oder durch Amidbiklung geschützt. Diese Carboxyl schutzgruppen werden in üblicher Weise eingeführt.
Die Aminogruppe wird vorzugsweise mit eine tert. Butyloxycarbonylgruppe. tcrt.-Amyloxycarbo
nylgruppe. o-Nitrophenylsulfenylgruppe, 2-(p-Di
phenyl (-isopropyloxycarbonylgruppc. Bcnzyloxy carbonylgruppe. p-Nitrobenzyloxycarbonylgruppc
p-Methoxybenzyloxycarbonylgruppe. Tosylgruppe Formylgruppe oder Tritylgruppe in üblicher Weisi
geschützt. Zum Schutz der Guanidylgruppe de Arginins wird vorzugsweise die Nitrogruppe. Tosyl
gruppe oder Adamantyloxycarbonylgruppe vcrwcn
det. Der Schutz der Guanidylgruppe ist jedoch nich immer erforderlich. Die cj-ständige Aminogruppe de
Lysins oder Ornithins wird vorzugsweise durch cim
der vorgenannten Aminoschutzgrtippen geschützt Die (/(-ständigen Carboxylgruppen der Glutaminsäure
oder Asparaginsäure werden vorzugsweise durch du vorgenannten Carboxylschutzgruppcn geschützt. un<.
die Imidaznlgruppc des llislidins kann /.B. ilurcl
eine fosyl-. Benz1 loxycarbonyl- oder Bcnzylgruppc
geschützt werden. Die Hydroxylgruppe des Serine oder Tyrosins kann z.B. durch eine Acetyl-, Benzyl
2 Π2553
oder tert.-BMtylgmppe geschürt werden, doch ist
dieser Schutz nicht immer erforderlich.
Die l-ct-Aininpisobuttersäure-corticotropinpeptide
der Erfindung enthalten Vorzugs weise die AminosäureresteentsprechendderSequenzl-18bisl-27desnativen
Corticotropins.
Außer dem Ersatz der aminoendständigen Aminosäure können einige andere Aminosäureresle der Sequenz
durch andere Aminosäuren ersetzt werden, ohne die corticotrope Wirkung wesentlich zu beeinträchtigen.
Beispielsweise kann die 4. Aminosäure Methionin durch Norvalin, Norleucin, Leucin oder a-Aminobuttersäure,
die 5. Aminosäure Glutaminsäure durch Glutamin, die 15. und bzw. oder 16. Aminosäure Lysin
durch Ornithin, die 17. und bzw. oder 18. Aminosäure Arginin durch Lysin oder Ornithin und bzw. oder die
25. Aminosäure Asparaginsäure durch Valin ersetzt »erden.
Die bevorzugten Corticotropinpeplide der Erfindung
haben die allgemeine Formel I a-Aminoisobutyryl-L-tyrosyl-L-seryl-
A-B-L-histidyl-L-phenylalanyl-L-arginyl-
L-tryptophyl-glycyl-L-lysyl-L-prolyl-L-valyl-
glycyl-C-D-E-F (I)
in der A der L-Methionin-. L-Norvalin-, L-Norleucin-.
L-Leucin- oder α-Aminobuttersäurerest. B der L-G!utaminsäure-
oder L-Glutaminrest. C und D jeweils der · L-Lysin- oder L-Ornithinrest, E der L-Arginin·. L-Lysin-
oder L-Ornithinrest und F der L-Arginin-. L-Arginyl-L-prolin-. L-Arginyl-L-prolyl-L-valin-, l-Arginyl-L-prolyl-L-valyl-L-lysin-.
L-Arginyl-L-prolyl-L-valyl-L-lysyl-L-valin-,
L-Arginyl-L-prolyl-L-valyl-L-lysyl-L-valyl-L-tyrosin-.
L-Arginyl-L-prolyl-L-valyl-L-lysyl-L-valyl-L-tyrosyl-L-prolin-.
L-Arginyl-L-prolyl-L-valyl-L-Iysyl-L-valyl-L-tyrosyl-L-prolyl-L-asparaginsäure-,
L-Arginyl-L-prolyl-L-valyl-L-lysyl-L-valyl-L-tyrosyl-L-prolyl-L-valin-.
L-Arginyl-L-prolyl-L-valyl-L-lysyl-L-valyl-L-tyrosyl-L-prolyl-L-asparagyl-L-
alanin-. L-Arginyl-L-prolyl-L-valyl-L-lysyl-L-valyl-L-tyrosyl-L-prolyl-L-asparagyl-L-alanyl-glycin-,
L-Arginyl-L-proiyl-L-valyl-L-lysyl-L-valyl-L-tyrosyl-L-prolyl-L-asparagyl-glycyl-L-glutaminsäure-,
L-Arginyl-L-prolyl-L-valyl-L-lysyl-L-valyl-L-tyrosyl-L-prolyl-L-
alanyl-glycyl-L-glutaminsäure-, L-Arginyl-L-prolyl-L-valyl-L-lysyl-L-valyl-L-tyrosyl-L-prolyl-L-asparagylglycyl-L-glutaminsäo.re-
oder der L-Arginyl-L-prolyl-L-valyl-L-lysyl-L-valyl-L-tyrosyl-L-prolyl-L-asparagylglycyl-L-alaninrest
oder der entsprechende Ester oder das entsprechende Amid ist.
Die Peptide der allgemeinen Formel I können durch Umsetzung eines Aminosäureesters oder Peptidesters
mit freier Aminogruppe mit einer anderen Aminosäure oder einem anderen Peptid mit geschützter Aminogruppe
in Gegenwart eines Kondensationsmittels oder durch Umsetzung einer Aminosäure oder eines
Peptids mit freier Aminogruppe und geschützter oder ungeschützter Carboxylgruppe mit einer anderen
Aminosäure oder einem anderen Peptid mit aktivierter Carboxylgruppe und geschützter Aminogruppe oder
durch Umsetzung einer Aminosäure oder eines Peptids mit freier Carboxylgruppe und geschützter
Aminogruppe mit einer anderen Aminosäure oder einem anderen Peptid mit aktivierter Aminogruppe
und geschützter Carboxylgruppe in der Reihenfolge der vorgenannten Aminosäurensequenz hergestellt
werden.
Die letzte Kupplungsreaktion zur Herstellung des Peptids der allgemeinen Formel I wird z.B. durch
Kondensation eines geschützten Decapeptids der allgemeinen Formel
R,-a-AminoisobutyryI-0-R2-L-tyrosyl-L-seryl-
A-y-Rj-L-glutamyl-L-histidyl-L-phenylalanyl-
L-arginyl-L-tryptc^nylglycin.
in der R1 eine Aminoschutzgruppe, R2 eine Hydroxylschutzgruppe
und R3 eine Carboxylschutzgruppe
bedeutet und A die vorstehend angegebene Bedeutung hat. mit einem geschützten Peptid der allgemeinen
Formel
N'-R4-L-Lysyl-L-prolyl-L-valyl-glycyl-
in der R4, R5 und R6 eine Aminoschutzgruppe bedeuten.
E' ein geschützter oder ungeschützter L-Arginin-. L-Lysin- oder L-Ornithinrest und F' ein geschützter
oder ungeschützter Aminosäure- oder Peptidrest der vorgenannten Art ist. in einem inerten Lösungsmittel
bei Temperaturen von -20 bis 60" C während etwa 2 Stunden bis 7 Tagen kondensiert und anschließend
die Schutzgruppen aus dem erhaltenen geschützten Peptid der allgemeinen Formel
R,-a-Aminoisobutyryl-O-R2-L-tyrosyI-L-seryl-
A-y-Rj-L-glutamyl-L-histidyl-L-phenylalanyl-
L-arginyl-L-tryptophyI-glycyl-Nf-R4-L-lysyl-
L-prolyl-L-valyl-glycyl-Nw-R5-C-Nra-R6-D-E'-F\
in der R1, R2. R3, R4. R5, R6, A. C. D, Ef und F' die
obige Bedeutung haben, in üblicher Weise bei Temperaturen von etwa -20 bis 60°C während etwa 30 Minuten
bis 24 Stunden abspaltet. Beispiele für verwendbare inerte Lösungsmittel sind Dimethylformamid.
Dimethylsulfoxid, Dioxan, Hexamethylphosphortnamid, deren Gemische und Gemische mit Wasser.
Die bevorzugten Verfahren zur Herstellung de; Octadecapeptids. des Tetracosapeptids und des Hepta
cosapeptids sind in den Tabellen I. II und Hl ange geben.
Tabelle I Herstellung des Octadecapeptids
B/l
ioC-tvr-ONP 4 H-Scr-OMe
''iC-Tvr ■ Ser-OMc
DB/l
BfK-GIu-ONP + H-Ilis Phc ■ Ari: Trp CiK-OI
BfK-GIu-ONP + H-Ilis Phc ■ Ari: Trp CiK-OI
OB/I
BOC-GUi His- Phe Arg ■ Trp -GIj-OII
lorlsct/urm
H/l lld λ,on
/.-Ihn-OlI ' 11-Tyr- Scr-OMc
B/l ■*·(■
1
/-IhuTvr Scr-OMc
/-IhuTvr Scr-OMc
Nil,Nil,
B/l i
B/l i
/.-Ibu Tvr Ser-NIINH,
OH/I CI1(OOII
HOC-Mcl-ONI1 ' Il-C.hi llis Phc Ar.u Trp CiU-OH
OH/I
Bf)C-MeI · CiIu His ■ Phc Arg Trp CiIy-OII
Bf)C-MeI · CiIu His ■ Phc Arg Trp CiIy-OII
CI ,COOH
B/l HN°' ^
/■Ihn -Tyr 'scr-N, 4 Η-Met GUMIis Phe ■ Arg Tip CiIy-OH
B/1 lOB/l
; ι
Z-Ibu· Tyr-Scr- Met · GIu ■ His Phc-Arg-Trp- CiIy-OII
I)CC. Hf)Su
B/l
OB/I
BOC
BOCBOC
/■Ihn ■ Tyr ■ Scr · Met ■ GIu His ■ Phc · Arg ■ Trp · Gl)-(JSu - H-Lys ■ Pro ■ V.il · CiIy - Lys · t.ys ■ Arg ■ Arg-NH,
B/l OB/I BOC B(K BOC
7-lbu ■ Tyr ■ Scr · Met ■ CiIu · His ■ Phc ■ Arg · Trp ■ GIy ■ Lys ■ Pro ■ VaI ■ GIy ■ Lys Lys ■ Arg · Arg-NH>
: HI-"
H-Ibu Tyr-Ser- Met · GIu · His- Phc -Arg · Trp ■ GIy · Lys- Pro- VaI ■ GIy · !.;.>■ Lys Arg Arg-Nil,
Tabelle II Herstellung des Tetracosapeptids
NO,
Z-Arg-OH + H-Pro-OMc Z-VaI Tyr-N, + !I-Pro-OMc
Z-Arg-OH + H-Pro-OMc Z-VaI Tyr-N, + !I-Pro-OMc
DCC
NO, Z-Arg Pro-OMe
; HBr CH3COOH
Z-VaI Tyr Pro-OMc i
i H, Pd
i H, Pd
NO, " NOj BOC ' ' :
Z-Arü-OH -i- Η-Arc Pro-OMe Z-L\s-OH + H-V al Tvr Pro-OMe
NO,
M. A. NO,
Z-Ara Ars: Pro-OMe
BOC
Z-Lvs- VaI- Tvr Pro-OMc
Z-Lvs- VaI- Tvr Pro-OMc
BOC
NOV
HBr OLCOOH NO-
BOC
H, Pd
Z-Lys-OH -t- H-Arg · Arg Pro-OMe Z-V;i1-OH + H-Lys ■ VaI - Tyr · Pro-OMe"
j M. A.
BOCJNO, NO,
BOCJNO, NO,
Z-Lys · Arg · Arg Pro-OMe
DCC BOC
Z-VaI Lys ■ VaI - Tyr - Pro-OMc
409539/369
Fortsetzung
on
on
112/IM
IK)CNO, N(I, I)OC
/·! >s Arg Arg ■ Pm-OH ι HAaI ■ l.ys ■ Viii Tyr Pm-OMc
IXC. IIOSii
BOC NO, NO, BOC
i Ί ■ ■ I
Z-I-ys Arg · Arg ■ Pro VaI ■ Lys · VaI ■ Tyr ■ Pro-OMc
H2/Pd BOC HOC BOC BOC
Z-L\s Pro ■ Viii CiIy I.ys-N, + Il-Lys ■ Arg · Arg ■ Pro ■ VaI · l.ys ■ VuI · Tyr ■ Pro-OMc
B/l OB/I BOC BOCBOC BOC
fc-lhn Tyr Scr Met GIu-Ilis-Phe-Arg-Trp GIy-OII Z-I.ys· Pro VaI CiIs · l.ys· L\s Arg-Arg- Pro- VaI- l.ys· VaI ■ Tyr · Pm-OMc
OB/I
DCC-. HOSii
BOC
BOCHOC
II, Pil
BOC
fc-lbu-TyrScr-Met GIu His PlicArg Trp CiIy-OSu + II-Lys· Pro- VaI ■ CiIy Lys· L\s Arg Arg- Pro- VaI ■ Lys· VaI T\r ■ Pro-OMc
B/l OB/1 BOC BOCBOC" BOC
Z-Ihu-Tyr-Scr Met Gin-Hiv PhcArgTrpCil) L\s Pro VaI CiIy l.ys· Lys Arg Arg- Pro VaI Lys· VaI Tyr Pro-OMc
\ Hl-H-lbu-TyrSer
Met GIu His-Phe-Arg-Trp-GIy-iys-Pro-VaI GIy-Lys· Lys· Arg-Arg Pro VaI-Lys-VaI-Tyr-Pro-OMc
Tabelle III
Herstellung des Heptacosapeptids
Herstellung des Heptacosapeptids
NO,
Z-Arg-OH + H-Pro-OMe
Z-Arg-OH + H-Pro-OMe
NO: D«
Z-Arg Pro-OMe
NO, NOJ; HBrAcOH
Z-Are-OH + H-Are ■ Pro-OMe
NO, NO,
M. A.
Z-Arg Arg Pro-OMe
j HBr AcOH
BOC NO, NO, j
Z-L>s-OH + H-Arg - Arg - Pro-OMc
MA. BOCNO, NO,
Z-Lvs · Arg · Arg ■ Pro-OMe
:OH BC)CNC), NO,
Z-[.\s-.Ari! Ars: Pm-OH
Fortsei/U π ι»
/-Alii Cily-OHii1
OHu' 1^ Ul
/-Asp-Oil I H-Ma CiU-OHu'
OHu' j IKC
j *
/.-Asp Ala CiIv-OBu'
H2 Pd OBu' j
Z-l'ro-OH (- Η-Asp Ala-CiIy-OHu'
IXC OHu'
/-Pro Asp Ala CiIy-OBu'
i H, I'd OBu1
/.-Tu-ONP t H-Pm Asp Alii CiIy-OBu1
Z :OBu'
Z-Tyr- Pro Asp · Alii ■ CiIy-OBu1
: π, Pil
OHu1
J-VaI-ONP + H-Tyr· Pro Asp ■ Ala ■ CiIy-OBu1
J-VaI-ONP + H-Tyr· Pro Asp ■ Ala ■ CiIy-OBu1
OBu'
Z-VaI Tyr ■ Pro Asp ■ Ala GIy-OBu1
Z-VaI Tyr ■ Pro Asp ■ Ala GIy-OBu1
BOC i ; OBu1
ι * i
Z-Lys-ONP + H-VaI Tyr· Pro Asp Ala GIy-OBu'
BOC j OBu'
*
Z-Lys ■ VaI ■ Tyr Pro · Asp ■ Ala · GIy-OBu1
! H, Pd
BOC ' OBu1
BOC ' OBu1
H-Lys · VaI · Tyr ■ Pro Asp ■ Ala - GIy-OBu1
BOC OBu1
i i
Z-VaI-ONP + H-Lys VaI ■ Tyr ■ Pro · Asp ■ Ala · GIy-OBu'
BOC OBu'
Z-VaI ■ Lys · VaI ■ Tyr ■ Pro ■ \sp ■ Ala · GIy-OBu1
i H, Pd
BOCNO, NO, BOC [ OBu1
BOCNO, NO, BOC [ OBu1
Ϊ-Lys ■ Arg · Arg · Pro-OH + H-VaI ■ Lys · VaI · Tyr ■ Pro · Asp ■ Ala · GIy-OBu'
•'ortsctzimii
IXV. IIOSii
Ii(K V). N( I. IC K OHm'
/-l\s Λγιι Art I'm VaI l.y. VaI Tw Pro Asp Ala CiIy-OHu'
HOC UOC HOC IHK I OHu1
Z-I.ys- Pm VaI ■ CiIv I ys-N, I ll-l.ys · Λτμ ■ Λΐϋ ■ l'rn· \'al I.ys · VaI Tu Pro · Asp ■ AIa · GIy-OBu'
rt/l H/l HOC H(K H(K HOC OHu'
/•Ihu-Tu Scr MctCilu-Mis-PhcAruTrp-Cily-OII Z-L>s- Pro Λ 1Hl-CiIyLy; -I.ys-Arp-Ar^· Pro A'al-Lys-VuI Tyr- ProAsp-Ala CiIy-OHu
H/l
H/l
IXV. IIOSii
HOC
H(K HOC
II, IM
H(K
H(K
OHu'
i/.-lhii- I'\r ScrMcI din I lis-l'lic Au-Trp-CiIy-OSu ι I I-Lvs- Pro Va! -CiIv LyLy-Arp-Aru- Pro VaI -Lys-Vnl-Tyr Pro Asp AIa CiIv OHu
H/l H/l HOC Hi)CHOf HOC OHn1
/-Ihn-Tyr-Scr-Met-CiIu I Ik- Phc Are-Trp GIv · I.ys· Pro- Viii · GIv · L_\s- LvsArivArü- Pro \.11 I.ys-VaI-Tyr-Pro-Asp-Aiii-CiIv-OM
'hu Tu ■-Scr-Mc! -Cilii Ills PIu- Arg Trp- CiIy -Ly Pro- VnI CiIv · l.vs I.ys- Are -Arg· Pro VaI I ys- VaI T u Pm Asp Ala CiIv- Ol
In ilen Tabellen werden folgende Abkürzungen für
die Aminosäurereste verwendet:
Ihn =-- x-Amincisohuttersäurc. Tyr »-1.-Tyrosin.
Scr - ι.-Serin. Met = i.-Methionin. GIu ^.-Glutaminsäure.
His--1-Histidin. Phe = L-Phenylalanin. Arg --1.-Arginin. Trp = ι -Tryptophan. CJIy — Glycin.
l>- -■ ι .-Lysin. Pro = 1. -Prolin. VaI - L-Valin. Asp =
!,-Asparaginsäure. AIa = !.-Alanin. BOC=tert.-iutvloxyearbonyl.
BzI= Benzyl. OBu1 = lert.-But-•
\>. DCC -- N.N'-Dicyclohexylcarbodiimid. Z=
■V'nzyloxvcarbonyl. HOSu = N-Hydroxysuccinimid.
Il -N = gemischte Anhydridmethode. ONP- p-Nitrophenoxv.
Aus den Tabellen is; ersichtlich, daß das Tripcptid.
das die ersten drei Aminosäuren enthält, nämlich
■-Aniinos(ibutyryl-i,-tyros>l-i,-serin. oder das Tetraf
ept id. nämlich Jc-Aniinoisobuiyryl-L-tyrosyi-i -seryl-1
-methionin, mit dem Heptapeptid oder dem Hexal'cpiid
entsprechend der Stellung 4 bis 10 oder 5 bis 10 vorzugsweise nach der Azidmethode umgesetzt wird.
vorauf das erhaltene Decapeptid mit dem Peptid entsprechend dem Rest des Moleküls, d.h. dem
Octapeptid (Stellungen 11 bis 18) im Falle der Herstellung
des Octadecapeptids. dem Tetradecapeptid (Stellung 1 1 bis 24) im Falle der Herstellung des
Tetracosapeptids. und dem Heptadecapeptid (Stellungen
11 bis 27) im Falle der Herstellung des Heplacosapeptids
kondensiert wird. Die anderen l-a-Aminojsohuuersäure-corticotropinpepiide
können in ähnlicher Weise durch Kondensation des aminoendstäntügen
Deeapcptids mit dem entsprechenden carboxylcndständigen
Rest hergestellt werden.
Das aminoendständige Decapeptid. das Tetrapeptid und das Tripeptid sind neue Verbindungen, die wertvolle
Zwischenprodukte zur Herstellung der Corlicotropinpeptide der HHindung sind.
Das vorgenannte Verfahren ist zwar das bevorzugte Verfahren zur Herstellung der Corticotropinpeptide
der Erfindung, man kann jedoch die Schutzgruppen,
die Kupplungsmethodcn oder die vorgenannte Abspaltung der Schutzgruppe, durch äquivalente
Methoden ersetzen und die Stellungen und die Reihenfolge der Kupplung der Peptidfragmente ändern.
Die im Verfahren verwendeten Schutzgruppen können durch Hydrogenolyse. Hydrolyse, Hydrazinol· e.
Reduktion mit Natrium in flüssigem Ammoniak ^uer
durch Behandlung mit einer Säure, wie Trifluoressigsäure, Ameisensäure, einem Halogenwasserstoff, wie
Fluorwasserstoff. Bromwasserstoff oder Chlorwasserstoff,
einer Halogenwasserstoffsäure, wie Fluorwasserstoffsäure. Bromwasserstoffsäure oder Chlorwasscrstoffsäurc.
oder deren Gemisch in üblicher Weise und je nach der Art der Gruppe abgespalten werden.
Die auf die vorstehend geschilderte Weise hergestellten Corticotropinpeptide der Erfindung können nach
an sich bekannten Methoden gereinigt werden, ζ. Β
durch Säulenchromatographie an lonenaustauscherharzcn.
ionenaustauschercellulose oder Ioncnaustauschersephadex"
oder durch Gcgenstromverteilune.
Die Corticotropinpeptide der Erfindung fallen je nach den Reaktionsbedingungen in Form der freien
Base oder in Form von Säureadditionssalzen an. Die
Salze können auch durch Umsetzung der Peptide mit anorganischen oder organischen Säuren hergestellt
werden. Beispiele fürdiese Säuren sind f la logen wasser-
stofTsäuren, z.B. Fluorwasserstoffsäure, ChlorwasserstofFsäure und BromwasserstotTsäure, wasserfreie Halogenwasserstoff:, wie FluorwasserstofT, Bromwasserstoff und Chlorwasserstoff, Schwefelsäure oder Phosphorsäure, Essigsäure, Ameisensäure, Propionsäure,
Glykolsäure, Milchsäure, Brenztraubensäure, Oxalsäure, Malonsäure, Bernsteinsäure, Maleinsäure. Fumarsäure, Weinsäure, Citronensäure, Benzoesäure,
Methnnsulfonsäure, Benzolsulfonsäure oder Toluolsulfonsäure. Zur Salzbildung kann die Säure in äqui-
molarer Menge oder im Überschuß verwendet werden.
Die 1 -j-Aminoisobuttersäurc-corticotropinpeptide
der Erfindung zeigen eine starke biologische Aktivität, sie stimulieren die Nebenrinde, sie haben eine lipotropc
Wirkung, und sie stimulieren die Melanophoren. Die Verbindungen der Erfindung sind dem nativen Corticotropin
und linderen ähnlichen Peptiden überlegen.
Die biologische Prüfung der Coriicoiropinpepiide
der F.rfmdung im Vergleich zu nativem Corticotropin des Schafs U5-ACTH) und GK ' -ACTH( l-l S)-NM,
(Bull. Chem. Soc. Japan Bd. 43 fl97O]. S. 19oi eifok'te
nach fünf verschiedenen Methoden. Der Asu'rhiiisäureverarinungstest
an der hypopliyscctomien-jü R;u- :<;
te wurde nach der United Siatcs Pharmacopeia XV7II.
S. 147 (19i,5) durchgeführt. Die in vivo Aktivität der
Stcroidbildung durch intravenöse Verabreichung an '".vpophysectomierten Ratten wurde nach der Meihode
von Lipscomb und Nelson (Endocrinol., Bd. 71 [1962], S. 13), geringfügig modifiziert (A.Tanaka
und C. H. Li, Endocrinol. Japonica Bd. 13 [1966]. S. 180) bestimmt- Die In-vivo-Aktivität der Sterojdbildung wurde auch an der mit Dexamethason und
PentobarbitalbehandeltenMausbestimmtfA.Tanaka
und N.Nakamura. »Integrtitive mechanism of
neuroendocrine systeme Hokkaido University Medical Library Serie. Bd. 1 [1968]. S. 49). Außerdem
wurde die Aktivität der Bildung von Steroiden durch intramuskuläre Verabfolgung an hypophysectomierte
Ratten bestimmt, wobei ein Peptid präparat in den Oberschenkelmuskel injiziert und 30 Minuten nach der
Injektion Blut aus der abdominalen Acrta entnommen wurde. Weiter wurde die Aktivität der Steroidbildung
durch intravenöse Verabreichung an hypophysectomierte Rattenderart bestimmt, daß ein Peptidprä parat
in die femorale Vene injiziert und 30 Minuten spater
Blut aus der abdominalen Aorta entnommen wurde Für alle Versuche wurde der dritte USP Corticotropin
Be/ugsiiandard verwendet, und die Bildung
von I 1-1 fydroxycurtieosteroiden (1 1-C)HCSi wurde
fluorometrisch nach Peterson |J. Biol. Chem. Bd. ."!25
[1957], S. 25) durchgeführt. Für jeden Versuch wurden
mehrere Bestimmungen durchgefühlt, uiiu die erhaltenen
Werte wurden nach der Methode von Sheps
1.1 ml Moore. J. Pharmacol. Fxptl. Thcrap. BJ. 12S
(196Oi. S. 99 statistisch behandelt. Die Ergebnisse dieser Versuche sind in Tabelle IV /usammermesteüt.
Tabelle IV Stimulierende Wirkung auf die Nebennieren
Methode
Ver.ihrci-
Ascorbinsäurevcrarmung ! s. c. I
in-vivo-Steroidbiklung im I
Ncbeiinicrenkanälchen j i.v.
Dexumethasonncmbutal- j
blockierte Maus j i.v.
periphcres Blut j i.v. I
' periphercs Blut j is. j
Anmerkung:
Die Aktivitäten sind ausgedrückt in WSP-ljnheitcn ms. Ixvoaen juf den 3. IJSP Corticotropin-Be/ui:ssi;iiiil;ird. I — Ihu'-ACTIIl I ISi-
NH2. H = Ihii'-Orn15-ACTII(I IS)-NII2. Ill ■= ihii'-ACTIIi Γ 27I-OII.
I! | Peptid | III | (r Il |
>:-ACTM | .,.-ACTI |
250 | t | 26 | 100 | ||
305 | 151 | ISO | |||
360 3.S0 318 |
325 320 |
170 177 50 |
|||
Aus label le IV ist ersichtlich, daß die C'orlieotropin-
peptide der Erfindung eine sehr hohe Aktivität bei der
Stimulierung der Nebennieren aufweiset:. Die Aktivität ist mehr als zweimal so groß als die von
Gly'-ACTH(I-18)-NH2 und natürlichem Corticotropin,
bestimmt nach dem Ascorbinsäurcvei armungs-
tesl und der Methode der In-vivo-Bilduiig von Steroiden.
Außerdem ist icstzustcllcn. daß die Aktivität
von I, Il und III. bestimmt durch den I l-l lvdro\\-
cortieostcroidspieiiel im peripheral Blut der Ratte.
unverändert isi. unabhängig davon, ob die Peptide
intravenös oder intramuskulär verahfoliil werden.
Bei (}|y'-ACTH(l-l8)-NH: hui jedoch das Aktivi-
!ätsverhältnis son intramuskulärer zu intravenöser Vciabfolgung einen Wert von etwa I :3. Dies bedeutet.
to daß die l-x-Aminoisobuttersäuie-coi ticotropinpeptide
der Erfindung gegenüber der Finwirkimg von Aminopeplidasc
im Gewebe beständiger sind als das 1-CjIvcinanaloge.
Die Corticolropinpeptide der Erfindung /eigen
f->5 auch eine starke lipotropc Aktivität. In Tabelle V ist
diese Wirkung mit der von ( ils'-ACTHl !-IS)-NI I2
und natürlichem Schaf-Corticotropin <X5-ACTI-I) vcr-
»lichcn.
Tu hello V
Versuchstier
Mindest«irkdosis, 10" mg/50 mg
Gewebe
GIy1-ACTU-Il IS)-NHj
Il
IM
.■,-ACTH
Anmerkung:
Die lipolrope Aktivität wurde nach T a η a k a et al, Arch. Biochem. Biophv. Bd. 99 (1962). S. 294. an Fettacwebe der Ratten cpididymis
und Kaninchennierenfcttgewebc bestimmt. Der Parameter ist die Zunahme der unveresterten Feltsaurckonzentratiün sowohl im Medium
als auch im Gewebe. Die Aktivität wird ausgedrückt durch die Mindestwirkdosis pro 50 mg Gewebe. I, Il und II! haben die in Tabelle V
angegebene Bedeutung.
·. ~. _t_ _1_ J__ 1 x..l_ _ J. Τ.Γ (it·. - viii 1 Λ /"1T^TT / 1 1y1\ /~\ T4 iQ\mn f* t VlPn^'\ Λ7ί*Γ«ΙΪΓ·Κ/»Γ»
livilät wurde nach der Methode von K.Shizume, A.B. Lerner und T. B.Fitzpatrick, Endocrinol.
Bd. 54 (1954t. S. 553. mit isolierten Hnutfnigmenten
von Rana pipicns durchgeführt. Die Ergebnisse siiul
in Tabelle Vl zusammengesiclll. Die Corticoiropin-NH1 und ACTH(l-24)-OH (Synacthen*) verglichen.
Als "Bezugsstandard wird ein reines Präparat von nativem a-melanophoren-stimulierendeii Hormon
I y-MSI 1) verwendet.
Ibu'-ACTIK 1-1S)-NH, Ibu'-Orn^-ACTHd-lSl-NMl
ihu'-ACTHd^l-OH
ACTH(I-24 )-OH Gh'-ACTHd-lSl-NH,
MSH | ill.:· |
Akt | eiu-i". |
HV | |
(ι.ο- | K)1 |
Ι.1 | if)" |
1.6 |
6.7 -IIIs
Die melanophoren-stiniuliereiule Aktivität der
Corticotropinpcptide der Erfindung ist höher als die von Cily'-ACTH(1-18)-NH, und AC'TH(l-24)-()l 1.
Die biologische Halbwertszeit der Corticotropinpeptide
der Erfindung und von natürlichem Corticotropin wurde mit der in vitro lipotropcn Aktivität bestimmt
(ve!. A.Tanaka. B. T. Pickering und C. 11. Li. Arch. Biochem. Biophys. Bd. 99 |1%2;.
S. 294). Die Ergebnisse sind in Tabelle VIl zusammen
gestell!:
Peptid
111 MTO I
Pla>ma
Ulk 'i b|v-t"l Ulli
.\5 min
(<.O min
6.5 min
4.4 min
1.9 min
(<.O min
6.5 min
4.4 min
1.9 min
32.4 min
97.6 min
79.3 mm
5').2 min
30.0 min
97.6 min
79.3 mm
5').2 min
30.0 min
122 261
91 250
42
Ibu'-ACTIld-lSl-NH,
Ibu'-Orn1 '-ACTII(I- IX)-NMI,
Ibu'-ACTH(l-27)-OH '.. .. .
ACTH
GIy^ACTH(MS)-NH,
Anmerkung·
"I Fine Pepiidprohe wurde intravenös in die Vcru c:iva inferioi von ΗμιΙιίι inji/.icrt. un-1 HluipMibcn. die aus der ahdoiniii
lieslininiien /.citabstiindeii cntiioinmen winden, wurden anuo^.iuo'l und ai>f die in Miro lipcirori.· \kti\itiit '.inlcrsiiclil.
') tine Probe wurde in fiisdicin PliKina \on ixicilhclisierlcn Kalten oder in Krehs-Rinücy-Biciirhon.ilpulTer gelöst, der
RHitenohersclienkelniuske!. Rinderserun^ilhuinin und Ci!ueo<e enthielt iJiese (ienii-sthc wurde;· bei 37 ( inkuhiert. und ;uis
in Zeituhständen cntnoniniene Proben wurden ;iuf die in Miro lipotropc Akliviliil untersueht
.9 min
S min .2 min .9 min .6 min
alen Aoit.i m
Sehnilte vor,
dem CieniU(_lt
Aus der Tabelle ist ersichtlich, daß die Halbwertszeit
der I -a-Aminoisobuttcrsiiiirc-corticoiropinpcptide
nahezu die gl.'iche isl wie die von n.ttiirliehem Coriicolropin
und wesentlich langer ist als die von GIy1-ACIH(I-IS)-NH2.
Dies zeigt, da» die aminoeiulsländigc
Subsliliilion durch K-Aminoisobnitcrsäure
im Corticotropin die Wirkungsyeriängeriing und
Akti\nä!sslcigcruni» erheblich verbessei 1.
Die l-y-AminoisobuUcrsäiire-eorlicoiropinpepiide
tier 1 1 t'nickmy können in Komplexe mti kviniplexbildendcn
Schwermetallverbindungen. /.H /ink-Knplei-.
Er-Cn-. Nickel- oder Kobaltvi.-fiiiiidiin.ue.il.
loirplexbildetulen l'olv.inniM^äuien. ui,- Ι'·.ι1\ ljIim aminsäurc.
PoKasparaginsäure. Copoly-glutaniyltyrosin oder Copoly-asparagyl-glutaminsäurc. oder
mit deren Gemischen umgewandelt werden. Die Komplexe /eigen gegenüber dem normalen Peptid
eine ausgezeichnete lange Wirkung. Die Schwcrmehillkoinplcxe
können durch Umsetzung des Corticotropinpeptids mit einer Schwcrmctallvcrbindutig.
/Ii. einem Sehwcrmetallhalogenid. wie /inkchlorid.
Kupferchlorid. Eisenchlorid. Kobaltchlorid oiler Nik-
ds kelcliΙοί id. einem Acetat, vsie Zinkacetat .einem Sulfat,
ν ic /inksulfat. oder einem Hydroxid, wie Zinkhydro
■>iil. im Gt-wichb verhältnis 1:0.1 bis 100 unter
.1 ln\ai-h saiiien I'.e■ 1>nt-unt'cn. voiv.ug-,weise bei pH 6.5
bis 7,0, in üblicher Weise hergestellt werden. Das bevorzugte Schwermetall ist Zink. Der Polyaminosäurekomplex kann durch Umsetzen der Corticotropinpeptide der Erfindung mit einer Polyaminosäure
in einem Gewichtsverhältnis von 1:0,1 bis 100 unter schwach sauren Bedingungen, vorzugsweise bei pH 6,5
bis 7,0, in üblicher Weise hergestellt werden. Die Polyaminosäuren können Homopolymerisate oder
Copolymerisate von Aminosäuren sein, und sie können die l-, d- oder DL-Konfiguration besitzen.
Beispiele für bevorzugte Polyaminosäuren sind PoIy-L-glutaminsäure, Poly-D-glutaminsäure, Poly-DL-glutaminsäure, Poly-L-asparaginsäure, Poly-D-asparaginsäure, Poiy-DL-asparaginsäure, Copoly-L-glutamyl-L-tyrosin und CopoIy-L-asparagyl-L-glutaminsäure.
Die Polyaminosäure hat vorzugsweise ein Mole kulargewicht von 1000 bis 100000. insbesondere
2000 bis 6000. Vorzugsweise wird eine Polyaminosäure verwendet, die vorher mit einer Base. /.B. Natriumhydroxid,
neutralisiert wurde. Zur Herstellung des Komplexes können noch andere geeignete Zusätze
verwendet werden, wie Konservierungsmittel. z.B. Benzylalkohol, Phenol oder Thimerosal. PutTer.
2. B. Citrat-. Phosphat- oder CarbonatpulTer. oder
lsotonisierungsmittel, wie Natriumchlorid.
Die vorstehend angegebenen Versuchsergebnisse sind lediglich Beispiele. Da die anderen Verbindungen
der Erfindung ebenso wie die vorstehend beschriebenen Verbindungen nahezu die gleichen Eigenschaften
lüid Vorteile als ArzneistofTe aufweisen, sind die
1 z-Aminoisobuttersäiire-corticutropir peptide der
Erfindung wertvolle ArzneistofTi. die >. B. zur Behandlung
von akutem und chronischem Gelenkrheumatismus. Allergosen oder Nebennicrenrindenerkrankungcn
bei Menschen und Tieren eingesetzt werden können.
DieCorticotropinpeptideder Erfindung, ihre Säurendditionssalze
und Komplexe können oral oder parenteral in üblichen Vcrabreichungsforiiicn. z.B.
ills Injektionspräparate, Flüssigkeiten. Suspensionen. Emulsionen oder Aerosolen, gegebenenfalls zusammen
mit üblichen Trägerstoffen. Stabilisatoren. Emulgatoren. Konservierungsmitteln. Puffern. isolonisicrmiltein
und bzw. oder Bcfcuchtungsinittcln. verabfolgt werden. Typische Verabreichungsdosen betragen
etwa 0.2 L'/kg bis 0.8 U/kg für einen Erwachsenen.
Die Beispiele erläutern die Erfindung.
Beispiel I
(a) Benzyloxycarbonyl-ii-aminoisobuttcrsaurc
(a) Benzyloxycarbonyl-ii-aminoisobuttcrsaurc
Eine Eösungvon 5,16 g a-Aminoisobuttcrsäure und
5.30 g wasserfreiem Natriumcarbonat in 50 ml 1 n-Natronlaugc wird bei 0"C mit 9.39 g Chloramciscnsäurebenzylc.4er
versetzt, und das Clcmisch wird 3 Stunden gerührt. Danach wird das Reaktionsgemisch mit
Äther extrahiert, um überschüssiges Reagenz abzutrennen,
mit 6 η-Salzsäure angesäuert und in Alhylacetat
extrahiert. Der Äthylacclalexlrakt wird über Natriumsulfat getrocknet und unter vermindertem
Druck eingedampft. Der kristalline Rückstand '»\ird
aus einer Mischung von Äthylacetat und Pctroliithcr umkristallisiert. Ausbeute 8.75g vom I Ci5 '"Ms
(■(-. C.
(hl icil.-Riit\loxycarbonyl-</-aminoisohuttei saute
Eine l.i'isuii!'. von 4.75g a-Aminoist'buttersäure und
J ""■ ι· NairiumhicarSoiiat in 46 ml I n-Natronlaui'.e
und 30 ml Dioxan wird tropfenweise mit einer Dioxun-
lösung von 7,25 g Azidoameisensäurc-tert.-bulylester
versetzt und 5 Tage bei 40 bis 50°C gerührt. Hierauf werden nochmals 6,6 g Azidoameisensäure-tert.-butyl ester und 46 ml 1 η-Natronlauge zugegeben, und das
Gemisch wird 2 Tage bei der gleichen Temperatur gerührt. Danach wird das Reaktionsgemisch unter vermindertem Druck eingedampft. Der Rückstand wird
abgekühlt und mit eiskalter 4 η-Salzsäure auf pH 3
ίο angesäuert. Die Lösung wird mitÄthylacetatextrahiert,
der Extrakt .über Natriumsulfat getrocknet und einsedampft. Nach UmkristaHisation aus Äther werden
0.82 g Produkt vom F. 119 bis 120" C erhalten.
(c) teri.-Buiyloxycarbonyl-O-benzyl-L-iyrosinp-nitrophenylester
Eine Lösung von 2.97g tert.-Butyloxycarhonyl-O-benzyl-i.-tyrosin
und 1.12 g p-Niirophenol in Äthyl-
:o acetal wird hei 0 Γ mit einer Äthylacetatlösung von
Ι.6ς g N.N'-Dicyclohexylcarbodiimid versetzt und
3 Stunden bei 4 C stehengelassen. Der Dicyclohcxylharnstofi"
wird abliltriert und das Filtrat unter vermindertem Druck eingedampft Der feste Rückstand wird
.-■5 in heißem Äthanol aufgenommen, und dio sich heim
Abkühlen abscheidenden Kristalle werden abfilmen, mit kaltem Äthanol gewaschen und unter vermindertem
Druck iielrocknet. Ausbeute 3.39 g vom E". 140
bis 141 C. [zß2-0.3 ±0.4 (c = 0.983. Äthylacetat).
(d) Bi:nz\loxycai bonvl-a-aminoisobutyryli.-ivrosin-hydrazid
1.54 g Benzyloxvcarbonyl-a-aminoisobuttersäure
und 1.27 g L-Tyrosinmethylestcr werden in Acetonitril
gelöst und bei 0 C mit einer Acctonitrillösung von
1.34 g N.N'-Dicyclohcxylcarbodiimic! versetzt. Das Gemisch wird 16bis 18 Stunden bei 4 C'stehengelasscn.
danach wird der ausgeschiedene Dicyclohcxylharnstoff abfiltriert unc1 das EiUj-U unter vermindertem
Druck eingedampft. Der Rückstand wird in Äthylacetat aufgenommen, die Älhylacctatlösung mit 1 n-Salzsäure
und 5prozcniigcr Natriumbicarbonatlösung gewaschen, über Natriumsulfat getrocknet und unter
vermindertem Druck eingedampft. Man erhält den Dipcptidestcr als sirupösen Rückstand. Der Rückstand
wird in 15 ml Äthanol gelöst und mit 0.8 ml Hydrarinhydrat versetzt. Nach 2tägigcm Stehen bei
Raumtemperatur wird das Reaktionsgemisch mit
so Wasser versetzt. Hierbei scheidet sich das Dipcptidhydrazid kristallin aus. Ausbeute 2,35 g. Nach Umkiistallisalion
aus wässricem Äthanol schmilzt das Produkt bei 164 bis 165^C. [aß7 -31.4 + 0.7 (<■=.-1.078.
Methanol).
(el icrt.-Butyloxycarbonyl-O-bcnzyl-i.-lyrosvl-I
-scrin-mcthylcstcr
E.inc eiskalte Lösung von 1.03 g i.-Scrinmcthylcsterhydrochlorid
in 8 ml Dimethylformamid wird mit 0,92 ml 'I'riäthylamin versetzt. Das ausgeschiedene
Triällnlamin-hydrochlorid wird abliltriert. Das EiI-irat
wird mit 2.96 g lert.-Butyloxycarbonyl-O-benzyli.-tyroi-in-p-niifophenylester
mit etwas Dimcthylfor-
('? tnamid versetzt und das Gemisch 2 lage bei 4 C
stehengelassen. Manach wird das Lösungsmittel unter vermindertem Druck bei einer Badtemperatur von
45 bis 50 c ahdcstülicTt. der Rückstand in Äthvl-
acetiit gelöst und die Lösung nacheinander mit eiskalter
I η-Salzsäure, Wasser, 2 n-Ammoniaklösung und Wasser gewaschen, über Natriumsulfat getrocknet
und unter vermindertem Druck eingedampft. Die erhaltene gelatinöse Masse wird mit einer Mischung
von Äthylacetat und Petroläther ausgefällt. Nach
nochmaliger Ausfüllung mit wäßrigem Methanol werden 2,75 g reines Dipeptid vom F. 73 bis 77" C erhalten.
W,2,2+ 7,7 ±0,5° (i·= 1,046, Methanol).
IO
(0 Beiuyloxycarbonyl-ii-aminoisobutyryl-O-benzyl-t.-tyrosyl-i.-serin-hydrazid
2,08 g tert.-Bu'yloxycarbonyl-O-benzyl-L-tyrosy!-
i.-serinmethylester werden in 20 ml einer 1 n-ChlorwasserstofFlösung
in Essigsäure gelöst und 30 Minuten bei Raumtemperatur stehengelassen. Nach dem Abdampfen
des Lösungsmittels hintcrbleibt ein öliger Rückstand, dor nadi Behandlung mit Äther kristallisiert.
Die kristalle werden aM'illriert und in einer
Mischung aus (. mi Wasser und 20 ml Dichlonnethan uelö.sl. Die Lösung wird mit 6 ml ei.sk lter 50prozenti-{:er
Kaliumcarbonailösung versetzt, gründlich gemischt
und die organische Lösung abgetrennt. Die organische Lösung wird über Natriumsulfat getrocknet und unter
\e: !Hinderten! Druck eingedampft.
üererhaltenekrNialiine O-Benzyl-i.-tyrosyl-i.-serinmethylester
wird in Acetonitril zusammen mit 1.04 g Benzyloxycurhonyl-x-aminoisobuuersäure gelöst. Die
Lösung wird mit einer Acetonitrillösung von 0.91 g Dicyelohexylcarbudiimid bei OC versetzt und 16 bis
IS Stunden bei 4 C stehengelassen. Der ausgeschiedene
Dicyclohexy!harnstoff wird abl'iltriert und das
Filtrat unter vermindertem Druck eingedampft Der Rückstand wird in Äthylacetat gelöst und die Lösung
nacheinander mit 1 n-Salzsäurc. Wasser und Sprozentiger
Natriumbicarbonatlösung gewaschen, über Natriumsulfat
getrocknet und unter vermindertem Druck eingedampft. Der erhaltene rohe Tripeptidester zeigt
im Dünnschichtchromatogramm (in Äthylacetat) die Gegenwart einer geringen Menge einer weiteren
Komponente. Der rohe Ester wird in 20 ml Äthanol gelöst und mit 1.0 mi Hydrazinhydrat versetzt. Das
Reaktionsgemisch wird 2 Tage bei Raumtemperatur stehengelassen und hierauf unter vermindertem Druck
eingedampft. Der Rückstand wird in Äthylacetat gelöst, mit Wasser gewaschen und rasch über Natriumsulfat
getrocknet. Die sich beim Stehen abscheidende Fällung wird abn'lriert. mit kaltem Äthyiacetat und
Äther gewaschen und unter vermindertem Druck getrucknet. Ausbeute 1.91 g Hydrazid. Nach nochmaliger
Umfallung aus Äthanol, schmilzt die re::ic Verbindung bei 151 bis 153° C. [aß2-2.2 ±0.4
(c=l,062, Essigsäure).
(g) lert.-Butyloxycarbonyl-j'-benzyl-i.-glulaminsäure-p-nitrophenylcster
9.0 g tcrt.-Butyloxycarbonyl-y-benzyl-i.-glulaminsäure-dicyclohexylaminsalz
werden mit Dowex fto 5OW-8 (H + -Form. feuchtes Volumen IS ml) in
öOprozcnligem Äthanol 30 Minuten geschüttelt. Sodann
wird ei μ s Harz abfihriert. das Filtrat unter vermindertem
Druck eingedampft und der Rückstand in Äther gelöst. Die Lösung wird über Natriumsulfat r>s
getrocknet und unter vermindertem Druck eingedampft. Man erluilt t|iiantitativ die freie Säure. Die
Säure wird in Allylacetat zusammen mit 2.4gp-Nitrophena!
gelöst, und die Lösung bei 0" C mit 3,6g Dicyclohexylcarbodiimid versetzt. Das Reaktionsgemisch
wird 16 bis 18 Stunden stehengelassen, danach vom ausgeschiedenen DicycIoliecylhurnstofTabfiltriert, das
Filtrat unter vermindertem Druck eingedampft und , der Rückstand aus Äthanol umkristallisiert. Nach
nochmaliger Umkristallisation aus Äthanol werden 7,0 g Eister in reiner Form vom F. 118 bis 1 \cj C erhalten
[aß8 - 33.1 + 0,7ί; (c = 1,082. Methanol).
(h) tert.-Butyloxycarbonyl-y-benzyl-L-glutamyl-L-histidyl-L-phenylalanyl-L-arginyl-L-tryplophyl-
glycin
Eine Lösung von 1,20 g L-Histidyl-L-phenylalanyli.-arginyl-L-tryptophyl-glycin-acetat
in 10 ml Dimethylformamid wird mit 1,03 g tert.-Butyloxycarbonyl-y-benzyl-L-glutaminsäure-p-nitro-phenylesier
und 25 ml Dimethylformamid versetzt und 3 Tage bei 4 C stehengelassen. Die -.rhaltene Lösung wird tropfenweise
in 200 ml eines L-.-misches gleicher Volumteile
Äthyiacetat und Äther gegeben. Die ausgeschiedene Fällung wird abliltriert. mit Äthylacetat und
Äther gewaschen und unter vermindertem Druck getrocknet. Ausbeute 1,86 g. Die Füllung wird in etwa
i() ml 50prozenliger Essigsäure gelöst und mit etwa 100 ml Äthanol versetzt. Die ausgeschiedene Fällung
wird abfiltriert und aus Essigsäure lyophilisiert. Anbeute
1.37 g Produkt. [Oi]Jf- 23.'Ji 0.6" (r= 1.020.
50prozentige Essigsäure).
Das Ausgangs-Pentapeptid. d.h. L-Histidyl-i.-phenylakuiyl-L-arginyl-i.-tryptophyl-glycin.
kann nach Bull. Chem. Soc. Japan." Bd. 38Π965). S. 1148 oder der
japanischen Patentanmeldung Nr. 17 117 1969 oder nach folgender Methode hergestellt werden:
tert.-Butyloxycarbonyl-L-phenylalanyl-NCl-tosyl-[.-arginyl-i.-tryptuphyl-gly>.inmethylesiei
5.9 g tert.-Butyloxycarbonyl-L-phenylaIanyl-Nr>tosyl-L-areininhydrazid
(hergestellt nach Bull. Chem Soc. Japan. Bd. 37 [1964], S. 1465) wird mit Natriumnitrit
behandelt. Das ausgeschiedene Azid wird mit L-Tryptophyl-glycinmethylcster in Äthylacetat umgesetzt.
Der L-Tryyptophyl-glycinmcthylcster wird durch
katalytischc Hydrierung von 4,1 g Benzyloxycarbonyl-i.-tryptophyl-elycinmcthylcstcrerhalten.
Ausbeute 5.3gvornF.l ISbis^CIa]?/7 - 14.8 + 0,3 (c= 2.077.
Methanol).
Benzyloxycarbonyl-i.-histidyl-L-phenylalanyl-NG-tosyl-i.-arginyl-t.-tryptophyl-glycinmethylcster
5,0 g des oben erhaltenen Tetrapeptidmelhylesten werden 4 Stunden bei Raumtemperatur mit Ameisen
säure umgesetzt. Der erhaltene Tetrapeptidestcr win mit Ben~yloxycarbfenyl-L-hisiidinazid (hergestellt aiii
2.7 g des entsprechenden Hydrazids) kondensiert Nach beendeter Umsetzung wird das Produkt au
Äthanol umkristallisiert. Ausbeute 3,9 g vom F. IfSr
bis 190 C. [aß7-23,4+ 0.6"- (c= 1.037. Dimethyl
formamid).
Benzy lox year bony l-i.-histidyl-l.-phcnyla lain I-N''-tosyl-ΐ
-arginyl-i.-tryptophyl-glycin
2.2 g vies oben erhaltenen Pcntapeptidcsters werdet
30 Minuten in wäßrigem Methanol mit 2 Moläqiii
\alenlen Natriumhydroxid verseilt. Nach beendeter
I insL't/iini! wird das Produkt aus wäßrigem Methanol
iimkristnllisiert. Ausheule 1.6 i! vom I·. 175 bis I 7S C.
|*tf/ -21.4 I O.fi (C= 1.066. Dimethylformamid).
ι.-I lisii(lyl-i.-phcnyhihtny!-i.-arL'inyl-i.-tryplo|ih>lglyein
1 .Ί.' }·. des oben erhaltenen Penlapeplids werden mit
Fluorwasserstoff in Gegenwart von 1.3 ml Anisol 30 Minuten bei OC umgesetzt. Das von der Schutzgruppe
befreite Pcntapcptidhydrofluorid wird auf eine Austauschersäure mit Amberlite CG-400' (Acetat-Form)
gegeben und in das entsprechende Acetat umgewandelt. Das Acetat wird aiii eine Austauschersäulc
mit Carboxymethylcellulose gegeben und mit einem Ammoniumacctatpufler mit einem linearen
Kon/entrationsgradientcn von 0.01 bis 0.1 Mol eluiert. Ausbeute 0.76 g; [atf/ - 10.5 + 1.0 (c - 1.043.
I n-Sal/.säurc).
Aminosäurenverhältnis nach Abbau mit Lcucinaminopcplidasc:
Histidin 1.00. Phenylalanin 1.00. Arginin 1,02, Tryptophan 1.00. Cilycin 1.07.
(i) tert.-Biilyloxycarbonyl-i.-mcthioninp-nitrophenylestcr
K).S g tcrt.-Butyloxycarbonyl-i.-mcthionin-dicyclohcxylaminsal/
werden mit Dowe.x 50 W · 8* (H ' -Form) gemäß Beispiel 1 (g) behandelt. Die erhaltene ölige
Säure und 3.5 g p-NitrophenoI werden in Äthylacetat
gelöst, und die Lösung wird mit einer Äthylaeetatlösung
von 5,2 g Dicyclohcxylcarbodiimid bei OX versetzt. Das Gemisch wird 16 bis 18 Stunden bei
4' C stehengelassen, der ausgeschiedene DicyclohexylharnstofT
abfiltriert und das Filtrat unter vermindertem Druck eingedampft. Der Rückstand wird aus
Äthanol umkristallisiert. Ausbeute 7,8 g vom F. 96 bis 97"C. lag1 -48.3 ±0.9° (r= 1.020, Methanol).
(j) tert.-Butyloxycarbonyl-i.-methionyl-j-bcnzyl-
i.-glutamyl-i.-histidyl-L-phenylalanyl-L-arginyl-
i.-tryptophyl-glycin
1,26 g tert.-Butyloxycarbonyl-y-benzyl-L-glutamyl-L-histidyl-L-phenylalanyl-L-arginyl-L-tryptophyl-glycin
werden im 6 ml Trifluoressigsäure gelöst und 30 Minuten bei Raumtemperatur stehengelassen.
Danach wird das Reaktionsgemisch in einem Eisbad abgekühlt und mit Äther versetzt. Hierbei fallen 1.34 g
des partiell entblockierten Hexapeptids aus. Die Kristalle werden in 10 ml Dimethylformamid gelöst,
und die Lösung wird mit 0.46 ml Triäthyiamin sowie 0,74g tert.-Butyloxycarbonyl-L-methionin-p-nitrophenylester
versetzt. Das Gemisch wird 24 Stunden bei 4°C stehengelassen und anschließend in 250 ml eines
eiskalten Gemisches von Äthylacetat und Diäthyläther (1:4) eingegossen. Die erhaltene Fällung wird
abfiltriert, mit Äther gewaschen und unter vermindertem
Druck getrocknet. Ausbeute 1,56 g. Das Produkt
wird in 15 ml Äthanol suspendiert und die Suspension
zum Sieden erhitzt. Nach dem Abkühlen werden die ausgeschiedenen Kristalle abfiltriert, mit kaltem
Äthanol und Äther gewaschen und aus Essigsäure lyophilisiert. Ausbeute 1.16 g. [aß2-18.5+0.5°
(c= 1.072, Dimethylformamid).
Ik) Ben/yloxycarhonyl-rt-aminoisobiityryl-
O-bcn/.yl-i -tyrosyl-i.-scryl-i.-methionyl-j-ben/yli.-glutamyl-i.-histidyl-i.-phenylalanyl-i.-aruinyl-
i.-lryptophyl-glyein
s
Fin Gemisch aus 0.47 g Ben/ylo.\ycarbonyl-a
aminoisobutyi'yl-O-ben/yl-i.-lyrosyl-i.-scrinhydrazid
2 ml I η-Salzsäure und 2 ml Dimethylformamid wire in einem Fishad abgekühlt und tropfenweise mi
ίο 0.44 ml einer eiskalten 2 molaren Natriumnitritlösunj
versetzt. Das Gemisch wird 4 Minuten bei 00C gerühr und anschließend mit eiskaltem Äthylacetat extra
hiert. Der Allylacetat wird mit eiskalter Natrium bicarbonatlösung gewaschen und über Natriumsulfa
getrocknet. Die erhaltene Lösung wird mit einer Lö sung von L-Methionyl-y-benzyl-i.-glulamyl-i.-histidyl
L-pheny la lanyl-L-arginyl-i.-tryptophyl-glycin-tri fluor
acetat (hergestellt in quantitativer Ausbeute au: 0.4 mMol Produkt [j] durch Behandlung mit 3 ml Tri
fluoressigsäure) und 0.25 ml Triäthyiamin in 10 m Dimethylformamid versetzt. Das Gemisch wird untei
vermindertem Druck bei einer Badtemperatur vor 20 C eingedampft, bis eine klare Lösung erhaiter
wird. Sodann wird die Lösung 24 Stunden bei 4r C stehengelassen. Hierauf wird der größte Teil de;
Lösungsnviiels unter vermindertem Druck bei einci
Badtemperatur von 45 C abdcstillicrt. Der Rückstanc wird mit Äther versetzt. Hierbei scheidet sich eine
Fällung aus. Ausbeute 0.67 g. Die Fällung wird au<
}o einem Gemisch von Wasser. Methanol und Äthano
umgefällt. Ausbeute 0.62 g rohes Peptid. Das Peptic wird auf eine Chromatographiersäule mit Silikage
(Merck. 0.05 bis 0.2 mm. 150g) gegeben und mit einetr
Lösungsmittelgemisch aus n-Butanol. Essigsäure und Wasser (4:1:1) eluiert. Es werden Fraktionen vor
jeweils 5 ml aufgefangen. Das Produkt wird durch Messung der Absorption bei 280 nm oder durch
Dünnschichtchromatographie im vorgenannten Lösungsmittelgemisch aus n-Butanol. Essigsäure unc
Wasser diagnostiziert. Die Fraktionen 66 bis 90. die das Decapeptid enthalten, werden vereinigt und untei
vermindertem Druck eingedampft. Der gelatinöse Rückstand wird aus Essigsäure lyophilisiert. Ausbeute
0.51 g. Das Produkt gibt bei der Dünnschichtchroma· tographie an Silikagel einen einzigen Fleck (Rf= 0.44
Butanol-Essigsäure-Wasser 4:1:2). Der optische Drehwert
des Hydrochlorids [α]" beträgt -24.7+1.2;
(c = 0.534. Dimethylformamid).
(1) a-Aminoisobutyryl-L-tyrosyl-L-seryl-L-rnethionyl-L-glutamyl-L-histidyl-L-phenylalanyl-
L-arginyl-L-tryptophylglycyl-L-lysyl-L-prolyl-L-valyl-glycyl-L-lysyl-L-lysyl-L-arginyl-L-argininamid
Eine Lösung von 0,32g Benzyloxycarbonyl-rt-amino
isobutyryl-O-benzyl-L-tyrosyl-L-seryl-L-methionyl-ybenzyl-L-glutamyl-L-histidyl-L-phenylalanyl-L-arginyl·
L-tryptophyl-glycin in Essigsäure wird mit 0.4 m 1 n-Chlorwa-öserstoff in Essigsäure versetzt und sofort
lyophilisiert. Das Iyophilisierte Produkt wird übei Natriumhydroxidplätzchen unter verminderten·
Druck getrocknet. Das erhaltene Decapeptid-hydrochlorid wird in 3 ml Dimethylformamid zusammer
mit 0.083 g N-Hydroxysuccinimid gelöst. Die Lösung wird mit einer Lösung von 0.15 g Dicyclohexylcarbo
diimid in 2 ml Dimethylformamid versetzt und If bis 18 Stunden bei 4° C stehengelassen. Der ausge
schiedene Dicyclohexylharnstoff wird abfiltriert unc
409539/36S
das Filtrat in ein eiskaltes Gemisch aus 50 ml Äthylacctat
und 50 ml Diäthyläther gegeben. Die erhaltene Fällung wird «•bfiltricrt. mit Äthylacetat und Äther
gewaschen und unter vermindertem Druck getrocknet. Es werden 0.36 g des aktiven Dccapeptidesters erhalten.
D, s Triacctat von Nr-tcrt.-Butyloxycarbonyl-i.-lysyl-i.-prolyl-i-valyl-glycyl-N'-tert.-butyloxycarbonyl-L-lysyl-N'-tcrl.-bulyloxycarbonyl-i.-lysyl-L-arginyl-L-arginin-amid
(hergestellt in quantitativer Ausbeute aus 0,12 mMol des entsprechenden N'-Benzyloxycarbonylderivats
durch katalytische Hydrierung nach Bull. Chem. Soc. Japan, Bd. 39 [1966]. S. 882)
wird in 2 ml Dimethylformamid gelöst und mit 0.18 ml
Triäthylamin versetzt. Die Lösung wird mit einer Dimethylformamidlösung des obengenannten aktiven
Esters versetzt, und das Gemisch (Gesamtvolumen 4 ml) wird 48 Stunden bei 4"C stehengelassen. Sodann
wird das Gemisch in 100 ml eiskaltes Äthylacetat eingegossen, die ausgeschiedene Fällung abfiltriert, mit
Äthylacetat und Diäthyläther gewaschen, aus Essigsäure lyophilisiert und unter vermindertem Druck
über Natriumhydroxidplätzchen getrocknet. Ausbeute 0.56 g des geschützten Octadccapeptids.
Das erhaltene geschützte Octadecapeptid wird in einen Reaktionsbehälter aus fluoriertem Polyäthylen
gegeben, mit 0,1 g L-Methionin und 0.5 ml Anisol versetzt
und in einem Trockeneis-Acetonbad mit Fluorwasserstoff
versetzt. Das Reaktionsgemisch (etwa 10 ml) wird 90 Minuten bei 00C gerührt und sodann
unter vermindertem Druck eingedampft. Dersirupöse Rückstand wird in eiskaltem Wasser gelöst, die Lösung
mit Äthylacetat gewaschen und anschließend auf eine Äustauschersäule(1.7 χ 12cm)mit AmberliteCG-400*
(Acetat-Form) gegeben. Die Säule wird mit Wasser cluiert. Das Eluat wird unter vermindertem Druck auf
etwa 20 ml eingedampft und lyophilisiert. Ausbeute 0.65 g rohes entblockiertes Peptid. Zur Reinigung wird
das Produkt auf eine Säule (2.7 χ 27 cm) mit Carboxymethylcellulose
(Serva Co.. 0.56 mÄq/g) gegeben und mit einem AmmoniumacetatpufTer (pH 6,8. 2000 ml)
mit einem linearen Konzentrationsgradienten von 0.02 bis 0.6 Mol eluiert. Fraktionen von jeweils 10 ml/
Röhrchen werden aufgefangen, und die Absorption wird bei 280 nm bestimmt. Die Fraktionen mit dem
Hauptmaximum (Nr. 156 bis 180) und der Schulter (Nr. 181 bis 200) werden aufgefangen, und die Haupt menge
des Lösungsmittels wird unter vermindertem Druck bei einer Badtemperatur von 50 bis 55JC abdestilliert.
Die Rückstände werden bis zur Gewichtskonstanz lyophilisiert. Ausbeutel 89 mg(F-I)und 76 mg
(F-II) farblose Pulver. F-I (189 mg) wird an einer Kolonne (2.2 χ 25 cm) mit Carboxymethylcellulose
auf die vorstehend beschriebene Weise nochmals Chromatographien. Es werden 137 mg reines Peptid
F-I-I mit einem einzigen Absorptionsmaximum erhalten. Eine kleine Schulter des Absorptionsmaximums
liefert 37 mg der Fraktion F-I-2. Die Fraktionen F-II (76 mg) und F-I-2 (37 mg) werden vereinigt, und
die Chromatographie wird zweimal wiederholt. Es werden 29 mg des gewünschten Peptids erhalten. Die
Gesamtausbeute an Octadecapeptid beträgt 166 mg. [aß3-58.4 ±1.9" (<· = 0.514. O'.l n-Essigsäure).
O.l nHCI
279
E^ = 25.1). ;£«„»£' 288 nm
t£lcii=l9.7).^i"-NiOH281 nm(£{ä = 25.2).288 nm
{Ε1*£ = 24.4). Das Peptid verhält sich bei der Dünnschichtchromatographie
(Lösungsmittel in n-Butanol-Essigsäure-Pyridin-Wasser
30:6:20:24) und bei der Papicrclcktrophorcse (600 Voll/36 cm. in 2 n-Lssigsäurc)
einheitlich gegenüber Ninhydrin-. Pauly-. Ehrlich-. Sakaguchi- und Methionin (PtJ,,") Reagenz.
Das Aminosäiirevcrhältnis des sauren Hydrolysats (6 n-HCI. 105 C. 40 Stunden) beträgt: Serin 0.83.
Glutaminsäure 1.00. Prolin 1.07. Glycin 2.10. a-Aminoisobuttersäure0.99.
Valin 1,00. Methionin 1.02. Tyrosin 0.97. Phenylalanin 1.04, Lysin 3,17. Histidin 0.92.
Arginin 2.90. Das Tryptophan :Tyrosin-Vcrhältnis im intakten Ocladecapeptid beträgt spcktropholometrisch
1.12:1.
Bei Verwendung von N'-tert.-Butyloxycarbonyli.-lysyl-L-prolyl-L-valyl-glycyl-N'-tert.-butyloxycarbonyl-L-lysyl-N'-tert.-butyloxyearbonyl-L-lysyl-L-arginyl-t.-arginin
(hergestellt gemäß Bull. Chem. Soc. Japan. Bd. 39 [1966], S. 882) alscarboxylendständiges
Octapeptid bei der vorstehenden Reaktion wird in ähnlicher Weise das a-Aminoisobutyryl-L-tyrosyl-i.-scry
l-L-methionyl-t.-glutamyl-i.-histidyl-L-pheny IaIanyl-i.-arginyl-L-tryptophyl-glycyl-i.-lysyl-i.-prolyl-i.-valyl-glycyl-L-lysyl-L-lysyl-L-arginyl-i.-arginin
erhalten.
(a) N'-Benzyloxycarbonyl-N'-tert.-butyloxycarbonyl-L-lysyl-t.-prolyl-L-valyl-glycyl-
Na-tert.-butyloxycarbonyl-i.-ornithinmethylcster
1.2 N"-Benzyloxycarbonyl-N'5-tert.-butyloxycarbonyl-L-ornithinmethylester
(F. 69 bis 70" C, [aßs - 10.6 + 0.5" [<■ = 1.092. Methanol]) wird 2 Stunden
an einem Palladiumschwarz-Katalysator in Methanol, das 10"o Essigsäure enthält, hydriert. Nach
dem Eindampfen unter vermindertem Druck hinterbleibt N^-tert.-Butyloxycarbonyl-L-ornithinmethylester-acetat
als sirupöser Rückstand, der mit 50prozentiger wäßriger Kaliumcarbonatlösung in Dichlor·
methan bei 0" C behandelt wird. Die organische LOsunc
wird über Natriumsulfat getrocknet und unter vermindertem Druck bei einer Badlemperatur von 20"1C
eingedampft. Der Rückstand wird in 10 ml Dichlor methan gelöst und die Lösung mit 1.83 g N '-Benzyl
oxycarbonyl-N'-tert.-butyloxycarbonyl-L-lysyl-t.-pro
lyl-L-valyi-glycin versetzt, das gemäß Bull. Chem. Soc
Japan. Bd. 37. (1964). S. 1471, hergestellt worden war Die Lösung wird mit einer Lösung von 0.60 g Dicyclo
hexylcarbodiimid in Dichlormethan bei 00C versetz und 2 Tage bei 4° C stehengelassen. Nach dem Ab
filtrieren des ausgeschiedenen DicyclohexylharnstofT wird das Filtrat unter vermindertem Druck einge
dampft. Der sirupöse Rückstand wird in Äthylaceta gelöst, mit eiskalter 1 η-Salzsäure und 1 m-Natrium
bicarbonatlösung gewaschen, über Natriumsulfat ge trocknet und unter vermindertem Druck eingedampft
Der Rückstand wird erneut in 30 ml Äthylacetat aufge nommen und mit 30 ml Äther versetzt. Man erhält de
Pentapeptidmethylester in reiner Form. Ausbeut 2.24 g; [aß6-55,9+ 0,9° (c= 1,062. Methanol).
(b) NMJenzyloxycarbonyl-NMert.-butyloxycarbonyl-L-lysyl-L-proIyl-L-valyl-glycyl-
N4-tert.-butyloxycarbonyl-L-ornithinhydrazid
2.2 g des oben erhaltenen Pentapeptidmethylestei
werden in 30 ml Methanol gelöst und mit 0.26 η Hydrazin-hydrat versetzt. Das Reaktionsgemisch wir
3 Tage bei Raumtemperatur stehengelassen und d:
·■*■·>
nach das Hydrazid durch Zugabe von Wasser ausgelallt.
Die Fällung wird abfiltrieil und das wäßrige Methanol umkristallisicrt. Ausbeute 2.1 g. F. 175 bis
180 C. |a]2,5 - 35,8 + 0.7" (<·= 1.040. Dimcthylformaniid).
(c) N'-Bcnzyloxycarbonyl-N'-tcrt.-bulyloxycarbonyl-i.-lysyl-L-prolyl-i.-vaIyl-glycyl-N''-tcrt.-butyloxycarbonyl-i.-ornithyl-Nr-lert.-butylo.\ycarbonyl-t.-lysyl-t.-arginyl-L-argininamiddiacctat
ι ο
Eine eiskalte Lösung von 0.95 g des oben erhaltenen Pentapeplidhydrazids in 10 ml 90prozcntigem Tetrahydrofuran
wird mit 2,75 ml eiskalter 1 n-Salzsäurc und 0.61 ml 2 molarer Natriumnitritlösung versetzt. ,5
Das Gemisch wird 5 Minuten bei 0"C stehengelassen und sodann mit 0,38 ml Triäthylamin auf pH 7.4 bis
7.6 eingestellt. Danach wird die Lösung mit einer eiskalten Lösung von Nr-tcrt.-Butyloxycarbonyl-i -lysyli.-arginyl-L-argininamid-triacetat
(hergestellt aus 0.92 mMol N'-Bcnzyloxycarbonyl-N'-tert.-butyloxycarbonyl-i,-lysyl-Nfi-nitro-L-arginyl-N''-nitro-i.-argininamid
durch katalylischc Hydrierung gemäß Bull. Chem. Soc. Japan. Bd. 39 [1966]. S. 882) und 0.42 ml
Triäthylamin in 7,5 mi SOprozentigem Tetrahydrofuran
gegeben. Das Gemisch wird 3 Tage bei 4" C stehengelassen und sodann unter vermindertem Druck eingedampft.
Der Rückstand wird mit 10 ml Äthylacetat und 10ml 1 n-Essigsäure versetzt und gründlich durchgeschüttelt.
Die wäßrige Phase wird dreimal mit Äthylacetat extrahiert, die vereinigten Äthylacetatextrakte
werden unter vermindertem Druck auf etwa 10 ml eingedampft, und das Konzentrat wird mit
I n-Essigsäure versetzt und gründlich durchgeschüttelt. Das Konzentrat wird mit wassergesättigtem n-Butanol
gründlich extrahiert. Der Extrakt wird über Natriumsulfat getrocknet und unter vermindertem Druck eingedampft.
Der Rückstand wird aus Essigsäure lyophilisiert. Ausbeute 0,85 g. [ag2 -43,1 + 1.5" (c = 0.540,
50prozenlige Essigsäure).
(d) a-Aminoisobulyryl-L-tyrosyl-L-seryl-
L-methionyl-L-glutamyl-L-histidyl-L-phenylalanyl-
L-arginyl-L-tryptophyl-glycyl-L-lysyl-i.-prolyl-
i.-valyl-glycyl-L-ornithyl-L-lysyl-L-arginyl-
L-argininamid
0.32 g des im Beispiel 1 (k) erhaltenen Decapeptidderivats werden in üblicher Weise in den entsprechenden
N-Hydroxysuccinimidester umgewandelt. 0.32 g des erhaltenen aktiven Esters werden dann zu
einer Lösung eines Octapeptids (hergestellt aus 0,19 g des im Beispiel 2 (c) erhaltenen Octapeptidderivats
durch katalytische Hydrierung) 0.18 ml Triäthylamin in 4 ml Dimethylformamid gegeben. Das Reaktionsgemisch
wird 64 Stunden bei 4°C stehengelassen und sodann in 100 ml eiskaltes Äthylacetat eingetropft.
Die gebildete Fällung wird abfiltriert, mit Äthylacetat und Äther gewaschen und unter vermindertem Druck
getrocknet. Ausbeute 0,49 g rohes geschütztes Octadeca peptid.
0,29 g des erhaltenen Rohproduktes werden in 5 bis 6 ml flüssigem Fluorwasserstoff zusammen mit 0,06 g
Methionin und 0,29 ml Anisol bei der Temperatur des Gemisches aus Trockeneis und Aceton gelöst. Das
Gemisch wird 90 Minuten bei 0°C gerührt, danach wird der Fluorwasserstoff unter vermindertem Druck
abgedampft. Der Rückstand wird in eiskaltem Wasser
553
gelöst und die Lösung zweimal mit Äthylacetat gewaschen.
Die erhaltene wäßrige Lösung wird auf eine /\ustauschcrsäulc(1.7 χ 20cm) von AmbcrliteCG-400'
(Acetat-Form) gegeben, und die Säule wird mit Wassei
cluiert. Das Elual wird vereinigt, unter verminderten'
Druck eingedampft und lyophilisicrt. Man erhall 0.34 g des cntblockicrtcn Octadccapcptids.
0.34 g des rohen Octadccapeptids werden an einet
Chromalographicrsäule (1.7 χ 36cm) mit Carboxymethylcellulose
(Serva, 0,56 mÄq/g) mit einem Ammoniumacetatpuffer (pH 6,8) mit einem linearen
Konzentrationsgradienten von 0,02 bis 0,6 Mo (1500 ml) chromatographiert. Es werden Fraktionen
von 7.5 ml/Röhrchen aufgefangen, und es wird die Absorption bei 280 nm aufgenommen. Die Röhrchen
entsprechend dem Hauptmaximum werden in zwei gesonderten Fraktionen F-I (Röhrchen 106 bis 130'
und F-II (Röhrchen 131 bis 155) vereinigt. Die Hauptmenge
des Lösungsmittels wird unter verminderten" Druck abdcstillicrt und der Rückstand wiederhol!
bis zur Gewichtskonstanz lyophilisiert. Die Ausbeute an Fraktion F-I beträgt 76 mg und an F-II 84 mg
Die 84 mg der Fraktion F-II werden erneut an einei Carboxymethylcellulosesäule auf die vorstehend beschriebene
Weise chromatographiert. Es werden 30 mg der Fraktion F-Il-I erhalten. Die Fraktionen F-I und
F-II-I werden vereinigt. Man erhält 106 mg teilweist
gereinigtes Octadecapeptid. Zur weiteren Reinigung eines 65 mg Anteils wird dieses Produkt erneut an einei
Säulc(l,7 χ 30 cmJmitCarboxymethylcelluloseiWhatman
CM-52) mit einem Ammoniumacetatpuffei (pH 6,9) mit einem linearen Konzentrationsgradienter
0.02 bis 0.6 Mol (1500 ml) chromatographiert. Diejenigen
Röhrchen, die einem einzigen Maximum ent sprechen, werden vereinigt, eingedampft und lyophili
siert. Man erhält das reine Octadecapeptid, d.h. α· Aminoisobutyryl-L-tyrosyl-L-seryl-L-methionyl-L-glut
amyl-L-histidyl-L-phenylalanyl-L-arginyl-L-tryptophyl
glycyl-L-Iysyl-L-prolyl-L-valyl-glycyl-L-orr.thyl-L-lysyl
L-arginyl-L-argininamid-acctat. Ausbeute 52 mg [aß5-57.3 ±1,9° (c= 0.499, 0,1 n-Essigsäure)
(Ej$ 17,8); ;^"-NaOH= 281 nm (Zsfä 24,6). 288 nir
(£jcä 23,8). Das Aminosäureverhältnis im saurer
Hydrolysat (6 n-Salzsäure, 105°C, 40 Stunden) hai
folgenden Wert: Serin 0,80. Glutaminsäure 0.99 Prolin 1,04. Glycin 2,03. a-Aminoisobuttersäun
0.95, Valin 1.00, Methionin 1,03. Tyrosin 1.04, Phe nylalanin 1.05, Ornithin 1,08, Lysin 2,00, Histidin 1,01
Arginin 3,12. Das Tryptophan :Tyrosin-Verhältnis irr intakten Octadecapeptid bei der spektrophotometrisehen
Bestimmung hat den Wert 1,19:1. Das Peptic verhält sich einheitlich bei der Dünnschichtchromato
graphie (n-Butanoi-Essigsäure-Pyridin-Wasser 30:6 20:24) und bei der Papierelektrophorese (600 Volt
36 cm in 2 n-Essigsäure).
(a) Benzyloxycarbonyl-L-alanyl-glycintert.-butylester
6.70 g Benzyloxycarbonyl-L-alanin und 3,95 g GIy
cin-tert.-butylester werden in 30 ml Äthylacetat gelös
und mit einer Lösung von 6,20 g Dicyclohexylcarbodi imid in Äthylacetat bei 0°C versetzt. Das Gemiscl
wird 16 bis 18 Stunden bei 4° C stehengelassen, dahacl
wird der Dicyclohexylharnstoff abfiltriert, das Filtra
nil eiskalter I η-Salzsäure und I m-Nalriiinibicarhoiatlosunu
gewaschen, über Nalriumsulfal getrocknet iiui unier vermindertem Druck eingedampl'l. 'Der
■Uiekstand wird aus Allier und Petrnliilhcr umkrisialisictl.
/\usbcutc7.S4i:. (".41 bis42 C.[xß" 41.h I O.U
c 1.026. Methanol).
sH-it.Aiisheuic6.l)it. F. H8bisl5O' C.[7.i,V
lc I.036. Methanol).
(h) Ben/.yliixyearhon\l-/'-lort.-huivl-i -aspart\ I-i.-alanyl
ghein-lert.-butylesler
6,/3 » des üben erhaltenen Dipeplids werden ar
l'alladiuni als Katalysator in 10",, I ssigsaure enthallcndcn\
Methanol 2 Stunden hydriert. Danach wini das Lösungsmittel unter vermindertem Druck ab is
destilliert und der Rückstand mit wäßriger Kaliumearbonatlosiing
in Gegenwart von Dichlormethan durchgeschüttelt. Die organische Phase wird über
Natriumsulfat getrocknet und unter vermindertem Druck irngcdampfl. Man erhält i.-Alanyl-glyein-tert butylestcralsÖI.
Benzyloxyearbonyl-ß-tcrt. -but yl-i. -asparaginsäure
(hergestellt durch Behandlung von 10.1 g des entsprechenden Dicyclohexylaminsalzcs mit Dowcx
50VV · K" [M ''-FormI in üblicher Weise) und der oben
erhaltene Dipeptidester werden in Dichlormethan gelösl.
und die Lösung wird mil einer Lösung von 4.1 3 g
Dicyclohcxylcarbodimiid in Dichlormethan bei OC
versetzt. Das Gemisch wird 16 bis IS Stunden bei 4 (' stehengelassen. Danach wird der ausgcscniedcnc Dicyclohcxylhamsioff
abiiitriert. das Filtnit unter vermindertem
Druck eingedampft, der Rückstand in /Vinylacetat gelöst, mit eiskalter I n-Salzsäurc und 1
molarer Natriumcarbonatlösung gewaschen, über Natriumsulfat getrocknet und unter vermindertem
Druck eingedampft. Das zurückbleibende Öl wird aus einer Mischung von Äther und Pelroliilher umkrislallisiert.
Ausbeute 7.05 g reines Tripeptidderivat vom F. 111 bis 112C {-Al,1 - 29.4 ±0.7* (c = 1.033. Methanol).
(c) ßenzyloxycarbonyI-i.-piol\l-(;-tcrt.-buiyli.-asparagyl-i
-alanyl-glycin-tert.-butylcstcr
6.10 g des oben erhaltenen Tripeptidesters werden an Palladiumschwarz als Katalysator 5 Stunden in
5"„ Essigsäure enthaltendem Methanol hydriert. Nach dem Abfiltrieren des Katalysators wird das
Filtrat unter vermindertem Druck eingedampft und der ölige Rückstand bei O1 C mit wäßriger Kaliumcarbonatlösung
in Gegenwart von Dichlormethan durchgeschüttelt. Die organisches) Lösungen werden
vereinigt und unter vermindertem Druck eingedampft. Man erhält den /i-tert.-Butyl-L-asparagyl-L-alanylglycin-tert.-butylester.
2.90 g Benzyloxycarbonyl-L-prolin und der oben
erhaltene Tripeptidester werden in 50 ml Dichlormethan gelöst, und die Lösung wird mit einer Lösung
von 2.48 g Dicyclohexylcarbodiimid in Dichiormethan bei 0 C versetzt. Das Gemisch wird 30 Minuten
bei 0c C gerührt und hierauf 16 bis 18 Stunden bei
4' C stehengelassen. Der ausgeschiedene Dicyclohexylharnstoff
wird abfiltriert und das Filtrat unter vermindertem Druck eingedampft. Der Rückstand wird mit
Ätheir digeriert. Es werden 6.45 g Kristalle erhalten, die
in Acetonitril gelöst, und eine geringe Menge Dicyclohexy!harnstoff
wird abfiltriert. Das Filtrat wird eineedampft und der Rückstand aus Äther umkristallild)
N.O-1)iben/yloxyearbonyl-i -tyrns\l-i -proM-ii'-tert.-bulyl-i
-asparagyl-i.-al'Mivl-glNcin-
tcrl.-biily':slcr
5.0 g des oben erhaltenen Tctrapcptidesters werd<-o
4 Stunden an Palladiumschwarz als Katalysator m Methanol hydriert, das 1 ml Essigsäure enthüll. Nic'n
dem Abliltricrcn des Katalysators wird das Filirai
unter vermindertem Druck eingedampft. Der Rückstand wiril mit 50prozentiger wäßriger Kaliumcarbonatlösung
in Gegenwart von Dichloimethan bei 0 (
ausgeschüttelt. Die organischen Lösungen werden vereinigt, über Natriumsulfat getrocknet und eingedampft.
Man erhält den i.-Prolyl-ß-tert.-bulyl-i asparagyl-i.-alanyl-glycin-tcrt.-butylester.
Das Produkt ist einheitlich bei der Dünnschichlchromatographic an Kiesclgcl im Lösungsmiltelsystcm 11-Uulanol
F.ssigsäuic-Pyridin-Wasser (30:6:20:24).
Carbodiimidmclhodc
0.45 g(l mMol) N.O-Dibcnzyloxycarhonyl-i.-tyrosin
und 1 mMol des oben erhaltenen Tctrapepiidcsters werden in 10 ml Dichlormethan gelöst. Die Lösung
wird mit einer Lösung von 0,206 g Dicyclohexylcarbodiimid
in Diehlormethan versetzt und 16bis IS Stunden
bei 4 C stehengelassen. Der ausgeschiedene Di cyclohexy'harnstolT wird abfiltriert, das Filtrat imuv
vermindertem Druck eingedampft und der Rückstand mit Äther versetzt. Die ausgeschiedene l'ällun;·
wird abultricrt und aus Äthylacetat und Äther mnkristallisiert.
Das Peptid schmilzt bei 121 bis 123 C.
Ausbeute 0.51 g.
Das Produkt verhält sich einheitlich bei der Dünn schichtchromatogiaphie an Kicsclgel im l.ösungsmittelsy
stern Chloroform-Methanol- F-.si esa nie
90:10:3.
Aktive Estermethode
5.77 mMol i.-Prolyl-/Mert.-butyl-i.-asparas!>l-! alanyl-glycin-tert.-buty
tester werden in 30 ml Dimethylformamid gelöst und mit 3.63 g N.O-Dibenzyloxycarbonyl-i.-lyrosin-p-nitrophenylester
versetzt. Das Gemisch wird 3 Tage bei 4"C stehengelassen, d ach
unter vermindertem Druck eingedampft und der
Rückstand aus Äthylacetat und Äther umkristallisiert. Nach nochmaliger Umkristallisation aus Athylaeeuu
werden 6.65 g Produkt vom F. 126 bis 127 C erhalten
[y.]l? - 48.3 ± 1.0 (c = 0.86. Methanol).
Ie) Benzyloxycarbonyl-L-valyl-L-tyrosyl-i.-prolyli'-tert.-butyl-L-asparagyl-L-alanyl-glycin-
* tert.-butylester
6.60 g des oben erhaltenen Petitapeptidesters werder
an Palladium als Katalysator in 10"o Essigsäure enthaltendem
Methanol 4 Stunden hydriert. Danach wird der Katalysator abfiltriert, das Lösungsmiue
unter vermindertem Druck eingedampft und der Rück stand in Dichlormethan aufgenommen. Die Lösun;
wird mit 50prozentiger wäßriger Kaliumcarbonat lösung bei 00C durchgeschüttelt, die organische Lö
sung über Magnesiumsulfat getrocknet und unte vermindertem Druck eingedampft. Der zurückblei
-*■
/f2 1
12 553
bende kristalline Pentapeptiddiester wird in 50 nil Dimethylformamid gelöst und mit 2,72 g Benzyloxycarbonyl-L-valin-p-nitophenylester
versetzt. Das Gemisch wird 2 Tage bei 4° C stehengelassen und sodann unter vermindertem Druck bei einer Badtemperatur
von 40 bis 45° C eingedampft. Das zurückbleibende Rohprodukt wird an Silikagel(Me rc kT0,05bis0,2mm,
15d g) Chromatographien. Die Kolonne wird mit einem Gemisch aus Methanol und Chloroform mit
einem linearen Methanolkonzcntrationsgradienten von 0 bis 5% entwickelt. Es werden 56 Fraktionen von
jeweils 20 g/Röhrchen erhalten. Anschließend wird die Kolonne mit einem Gemisch aus Methanol und
Chloroform (5:95) eluiert. Jede Fraktion wird dünnschichtchromatographisch geprüft. Die Fraktionen
der Röhrchen 55 bis 60 werden vereinigt. Die Lösung
wird unter vermindertem Druck eingedampft und der Rückstand mit Älher versetzt. Ausbeute 5.25 » Produkt.
[u]in - 70.5 + 1.1 (c= 1.031. Methanol)."
(f) N"-Benzyloxycarbonyl-N'-teri.-but\li)\v-
carbonyl-i.-iysyl-i.-valyl-i.-tsrosvl-i.-proM-
/Mcrt.-butyl-L-asparagyi-i.-alanyl-ghcin-
lert.-butylcster
4.62 g lies Hexapeptidesiers werden 4 Stunden au
Palladium als Katalysator in H.)'',, Essigsäure enthaltendem
Methanol hydriert. Danach wird der Katah sato r abfiltriert, und das Lösungsmittel unter vermindertem
Druck eingedampft Der Rückstand wird in Allylacetat aufgenommen, die Lösung mil Eis abgekühlt
und mit SOprozentiger Kaliuniearbonatlösung durchgeschüttelt. Die organische Lösung wird über
Natriumsulfat getrocknet und linie; vermindertem Druck eingedampft. Man erhält den Hcxapeptiddiester,
der in 40 ml Dimethylformamid gelöst und mit 2.56 g N'-Benzyloxycarbonyl-N'-tert.-butyloxycarbonyl-i.-lysin-p-nitrophenylcster
versetzt wird. Das Gemisch wird 3 Tage bei 4 C stehengelassen und sodann bei einer Badlcmpcratur von 40 bis 45 C unter vertnindcrtem
Druck eingedampft. Der Rückstand wird an Kieselgel (Merck. 0.05 bis 0.2 mm. 15OgI chromatographiert.
Die Kolonne wird mit einer Mischung aus Methanol und Chloroform mit einem linearen
Methanolkonzentrationsgradicnten von 0 bis 5",, entwickelt. Es werden 50 Röhrchen von jeweils 20 g'Röhrchen
aufgefangen. Anschließend wird die Kolonne mit einem Gemisch aus Methanol und Chloroform (5:95)
weiter entwickelt. Die Fraktionen 71 bis 80 werden vereinigt und unter vermindertem Druck eingedampft.
Der erhaltene Rückstand wird mit Äther versetzt. Eis wird eine gelatinöse Masse erhalten, die mit Äther gewaschen
und getrocknet wird. Ausbeute 4.38 g Produkt. [α],2,5 - 64.5 ± 1.0 (c = 1.037. Methanol). "
(g) Bcnzyloxycarbonyl-i -valvl-Nf-(crt.-butylo\\-
carbonyl-i -lysyl-i.-valyl-i.-tyrosyl-i.-prolyl-//-iert -butyl-i -asparagyl-i -alanyl-glvemtcrt.-butylestcr
carbonyl-i -lysyl-i.-valyl-i.-tyrosyl-i.-prolyl-//-iert -butyl-i -asparagyl-i -alanyl-glvemtcrt.-butylestcr
3.5 g des oben erhaltenen Heptapeplidcsters weiden an Palladiumschwarz als Katalysator in K)".,, Essigsäure
enthaltendem Methanol 3 Stunden hydriert. Danach wird der Katalysator abfillricri und das
Lösungsmittel untervermindcitem Druckeingedampl'l. Der Rückstand wird in Äthylacetat aufgenommen und
die Lösung bei 0 C mit 50pro/entiger wäßriger Kaliuniearbonatlösung durchgcschültcll. Die organi
sche Lösung wird über Natriumsulfat getrocknet und
unter vermindertem Druck eingedampft. Der Rückstand wird in 30 ml Dimethylformamid gelöst und mit
1,29 g Benzyloxycarbonyl-L-valin-p-nitrophenylester
versetzt. Das Gemisch wird 2 Tage bei 4=C stehengelassen
und sodann bei einer Badtemperatur von 40 bis 45°C unter vermindertem Druck eingedampft.
Der erhaltene Rückstand wird an Silikagel (Merck. 0,05 bis 0,2 mm, 100 g) Chromatographien und die
Kolonne mit einem Gemisch aus Chloroform und Methanol mit einem linearen Methanolkonzentrationsgradienten
von 0 bis 5°-o gewaschen. Es werden
50 Fraktionen von jeweils 20 g/Röhrchen aufgefangen. Sodann wird die Kolonne mit einem Gemisch aus
Methanol und Chloroform (5:95) weiter entwickelt. Die Fraktionen 52 bis 62. die das gewünschte Peptid
enthalten, werden vereinigt und unter vermindertem Druck eingedampft. Der Rückstand wird mit Äther
behandelt, abwaschen und getrocknet. Ausbeule 3.35 u
Peptid. [2]^ -69,2 ± 1.0 (V = 1.061. Methanol).
lh) N2-Benz\loxycarbon>l-Nf'-nitro-L-argin\l-L-prolin-methylcster
Hin Gemisch aus 1,6 ml Thionylchlorid und 2.0 ml Methanol, das in einem Eis-Kochsalzbad abgekühlt
wurden i>t. wird mit 2.30 g i.-Prolin versetzt und 16
bis \i> Stunden bei Raumtemperatur stehengelassen.
Danach wird das Lösungsmittel unter vermindertem Druck abdestillicrl und der Rückstand in Dichlormethan
gelöst Die Lösung wird mit 2 ml Wasser versetzt und mit 4 ml eiskalter 50prozentiger wäßriger
Kaliumcarbonatlösung bei OC durchgeschüttelt. Die
wäßrige Lösung wird wiederholt mit Dichlormethan extrahiert, und die Extrakte werden vereinigt. Der
Extrakt wird über Natriumsulfat getrocknet und unter vermindertem Druck bei einer Badtemperatur von
20 C eingedampft. Man erhält den L-Prolinmethylester
als sirupöscn Rückstand.
6.IX g N1-Benzyloxycarbonyl-Nc'-niiro-L-arginin
werden in Methanol gelöst, und die Lösung wird unter vermindertem Druck zu einem sirupösen Rückstand
eingedampft, der in Acetonitril gelöst wird. Danach wird die Lösung npit dem oben erhaltenen L-Prolinmcthylcstcr
sowie 3.61 g Dicyclohcxylcarbodiimid bei 0 C versetzt. Das Gemisch wird 16 bis 18 Stunden bei
4 C stehengelassen. Die ausgeschiedenen Kristalle werden abliltricrt. mit kaltem Acetonitril gewaschen
und unter vermindertem Druck getrocknet. Das erhaltene Produkt (9.98 g) wird in heißern Methano
gelöst und von unlöslichem Dicyclohexylharnstofl abfiltriert. Das Filtrat wird unter vermindertem Druck
eingedampft. Der Rückstand wird aus Acetonitril um kristallisiert. Ausbeute 5.75 g vom F. 162 bis 163 C
[%}]{■ - 50.9 ± 0.4' (c = 2.022. Methanol).
(i) N'-Benzyloxyearbonyl-Ntr-nitro-i.-arginvl-Ν''-nitro-i.-arginyl-i.-prolin-niethylcstcr
4.12 g des oben erhaltenen Dipeptidesters werdet in !() ml Essigsäure gelöst, die mit Bromwasserstof
gesättigt ist. Die Lösung wird 60 Minuten bei Raum temperatur stehengelassen. Nach Zusatz von Äthc
wird die amorphe Fällung abfiltriert, gründlich mi Älher gewaschen und über Natriumhydroxidplätz
then unter vermindertem Druck getrocknet. Mai erhält das N'^Nitro-L-arginyl-i.-prolin-mcthylcster
hvdrobromid.
134
2,83 g N*-Benzyloxycarbonyl-NG-nitro-L-arginin
werden in 2,5 ml wasserfreiem Tetrahydrofuran gelöst und mit 1,63 g Tri-n-btUylamin versetzt. Die Lösung wird in einem Eis-Kochsalzbad abgekühlt und
tropfenweise mit 0,96 g Chlorameisensäureäthylesier versetzt. Das Gemisch wird 30 Minuten in der Kältemischung gerührt, danach mit einer Lösung von 2,96 g
des oben erhaltenen Dipeptidester-hydrobromids sowie mit Tri-n-butylamin in 40 ml Dioxan, das 1 ml
Wasser enthält, versetzt. ι ο
Das Reaktionsgemisch wird 3 Stunden bei 00C gerührt und 16 bis 18 Stunden bei 4° C stehengelassen.
Danach wird das Lösungsmittel unter vermindertem Druck abdestilliert und der Rückstand in 10% n-Butanol enthaltendem Äthylacetat gelöst. Die Lösung
v.irdmit 1 n-Salzsäureund 1 moIarerNairiumcarbonatlösung
gewaschen, über Natriumsulfat getrocknet und unter vermindertem Druck eingedampft. Der
Rückstand wird in 30 ml einer Mischung von Methanol und Chloroform (5'.1J^) gelöst und an Silikage!
(Merek. 0.05 bis 0.2 mm. 60 g) Chromatographien.
Die Kolonne wird hintereinander mit 600 ml Chloroform. 200 ml eines Gemisches aus Methanol und Chloroform
(5 :95). 1000 ml eines Gemisches au.·. Methanol
und Chloroform (7:93). 400 ml eines Gemisches au·* ;s
Methanol und Chloroform (10:90) und 400 ml eines Gemischesaus Methanol und Chloroform (1:1 jeliiiert.
Jede Fraktion wird dünnschichichromatographisch
geprüft, und die das Peptid enthaltenden Fraktionen wet ien vereinigt. Die Lösung wird unter vermindertem
Druck eingedampft und der Rückstand mit Athylacetat versetzt. Die gelatinöse Fällung wird abfiltriert,
mit Athylacetat gewaschen und unter vermindertem Druck uetrocknet. Ausbeute 3.8 « vom F. 115
bis 120 C (Zersetzung), [aß7- 37.1 ±0.8 («=0.967. ,5
Essigsäure). —30.5 χ 0.7 (<■ = 0.950. Dimethylformamid).
(J) N'-Benzylox year bonyl-Nr-tert.-buly low carbonyl-i.-lysy
l-N''-iiitro-ΐ. -argin yl-Nf '-nit ro-1.-a
rgitiyl-i.-p'olin-methy lesler
3.7 g des oben erhaltenen Trineplidcsters werden in
10 ml Essigsäure gelöst, die mit Bromwasserstoff gesättigt
ist. Die Lösung wird 90 Minuten bei Raumtemperatur stehengelassen und sodann mit wasserfreiem
Äther versetzt. Hierbei fällt das Tripcptidcsterhydrobroniid
aus. das aus einer Mischung von Methanol und Äther umkristallisiert wird. Ausbeute 4.6 g
amorpher Feststoff. Das Produkt zeigt bei der Papier-Chromatographie
im Lösungsmittclsyslcm n-Butanol-F.ssigsäure-Pyridin-Wasser
(30:6:20:24)einen llauptflcck
(Rf=O[M) und kleinere Flecken (Rf== 0.44 und 0.52).
N'-Benzyloxycarbonyl-N'-lert.-butyloxycarbonyli.-lysin
(hergestellt aus .1.05 g des entsprechenden Dicyclohexylaminsalz.es
durch Behandlung mit Dowex 50W ■ 8ä in der H '-Form) und 1.11 gTri-n-butylamin
werden in 20 ml wasserfreiem Tetrahydrofuran gelöst und in einem Eis-Koehsalz.bad abgekühlt. Die Lösung Ίο
wird mit 0.65 g Chlorameisensaurcalhylester versetzt und 30 Minuten im Eis-Koehsalz.bad gerührt. Danach
wird das Gemisch mit ei tier Lösung Jos oben erhaltenen
Tripcplidcsters und 2.0 g Tri-n-butylamm m 30 ml
Dioxan versetzt, das 3ml Wasser ent hält. Das erhaltene '-5
< icmisch wird 3 Stunden !>.·■ OC gerührt und danach
16 bis IX Stunden bei 4 C stehengelassen. Hierauf wird das Gemisch unter vermindertem Druck einuedampft, der Rückstand in 10% n-Butano| enthaltendem Äthylacelat aufgenommen, die Lösung nacheinander mit eiskalter 1 η-Salzsäure und 1 molarer Natriumcarbortaüösung gewaschen und über Natriumsulfat getrocknet. Danach wird die Lösung unter vermindertem Druck eingedampft. Der Rückstand wird
zweimal aus einer Mischung von Athylacetat und Äther umgefällt. Ausbeule 3,82 g Produkt, [a]]? -37.9 + 0.7° (r = 1.064, Methanol).
(k) N'-Benzyloxycarbonyl-N'-tert.-butyloxy-
carbonyl-L-lysyl-NG-nitro-L-arginyl-NG-nitro-
3.8 g des oben erhaltenen Tetrapeptideslers werden
in 10 ml Methanol gelöst und 5,1 ml 1 n-Natronlauge
\ ersetzt. Das Gemisch wird bei Raumtemperatur
90 Minuten stehengelassen und danach mit 5.Ί !:■:
I n-Sal/.säure angesäuert. Hierauf wird das Mcth:i;n.|
unter vermindertem Druck abdestilliert und der c v^·
Rückstand mit 10",, n-Butanol enthaltendem ΛΛί-acctat
extrahiert. Der Extrakt wird unter vermin.. *■.
tem Druck eingedampft und der Rückstand au·· Mischlina von Methanol und Äther umknsui.ii . ;
Ausbeute 2.6 g Produkt, [atf/ - 36.7 ± 0.S (<
- v:- Methanol).
II) N'-Benzyloxycarbonyl-NMcrt.-hulyUm-
carbonyl-i.-lysyl-N(:-nilro-i.-arginyl-Nt;-nitro-
i.-aruinyl-i.-proiyi-i.-\al\l-Nr-tert.-butyloxycai hui]
i.-lysyl-i.-valyl-i.-tyrosyl-i.-prolyl-fMert.-bunl-1
-asparagvl-i -alanvl-glycin-tert.-butylcster
1.19 iz des oben erhaltenen Tripcptids werden 1.
1.5 ml Methanol gelöst, und die Lösung wird mit >
■ Essigsaure versetzt. Danach wird die l.ösuiv.:
Palladiumschwarz als Katalysator 4 Stunden hvilrv Nach dem Abliltricrcn des Katalysators wird ■; :
Lösungsmittel untervcrmindertem Druck eingeda1·!··■:
und der Rückstand in Allylacetat aufgenommen. 1 )·■.
Lösung wird abgekühlt und mit kalter 5()nrozenn . ·;
wäßriger Kaliumcarbonatlösungdurehgeschüitelt. 1 iv
organische Phase wird über Natriumsulfat getrockn··:
und unter vermindertem Druck eingedampft. Ni;;. erhält den Octapcptiddicster. Dieser Oct.ipeptuKliester
wird in 30 ml Dimethylformamid gelöst und um einer Lösung von 1.32 g N'-Bcnz.yloxycarbonyl-N lcrt.-bulyloy.ycarbonyl-i.-lysyl-N^-nilro-i.-urginyl-N''-nitro-l.-arginyl-i
-prolin.0.173gN-Hydroxysuecimmu
und 0.310 g Dicyclohexylcarbodiimid in Dimeilnl
formamid versetzt. Das Gemisch wird 2 Tage bei 4 ( stehengelassen und danach wird der Dicyclohexyl
harnstoff abfiltriert. Das Fillrat wird unter vermin
dcrtcm Druck bei einer Badlcmpcralur von 40 bi
45 C' eingedampft, und der Rückstand wird an SiIi kagel (Merck. 0.05 bis 0.2 mm, 40 g) cliromatogia
phicrl. Die Kolonne, die vorher mit einem Gemiscl
aus Methanol und Chloroform (2:9K) behände!
w01 den war. wird mit dem gleichen Lösungsmiiu
entwickelt. Es werden 50 Fraktionen von jcweil KMnI Röhrchen aufgefangen. Die Kolonne wird liiei
aiii' mil einer Mischung aus Methanol und Chlore form (1 5:S5) weiter enlwickelt. Die Fraktionen 34 Ir
66 werden vereinig; und unter vermindertem Druc em»eda-.ipf!. Dei Rückstand wird in Äthylacelat au
genommen, und mil einer Mischung \<mi Methane
und Älhvl.icelai \ ι r-;eizl. I lierbei lallt das Produkt au
Ausheute 1,73 g. [α]
78,5 ± 1, p (r = 1.030, Metha
im) Nc-tert.-Butyloxycarbonyl-i.-lysyl-t.-arginii-L-arginyl-L-piOlyl-L-valyl-NMert.-butyloxycaibonyl-L-lysyl-L-valyl-L-tyrosyl-L-prolyl-^'-tert.-butyl-"
L-asparagyl-L-alanyl-glycin-tert.-butylester
L-asparagyl-L-alanyl-glycin-tert.-butylester
577 mg des oben erhaltenen Dodescapeptidesters werden in 15 ml 90prozentiger Essigsäure an Palladium ,0
als Katalysator 16 bis 18 Stunden hydriert. Danach wird der Katalysator abfiltriert und das Lösungsmittel
unter vermindertem Druck abdestilliert. Der Rückstand wird aus Wasser lyophilisiert und über
Natriumhydroxidplätzchen untervermindertem Druck getrocknet. Ausbeute 570 mg Produkt. Das Aminosriureverhältnis
im Säurehydrolysat hat folgenden \\ ,!■■. : Asparaginsäure 1.19, Prolin 2.29. Glycin 1.00.
Ai.iP.m 0.99. Valin _.15. Tyrosin 0.91. Lysin 2.11.
/Vl'mm 1.96.
iüi \'r-tert.-Butyloxycarbon\l-i -'\s_\l-i-pro M-
i -valyl-glycyl-NMert.-butNlowcarhmi;,!-
i -^.svl-NMcrt.-butyloxycarhoinl-i -hs\l-i -ari:m\l-
i -arginyl-i.-pro!yl-i--vaIyl-V-teri.-r>ut\li>\\- 2>
carhonyl-l.-lysyl-i.-valyl-i.-tyros\l-i -pr.'hl-
,;-icrl.-butyI-L-asparag\l-i -alan\l-gl\cin-
tert.-buisiesier
(..492 ggcmäß Bull. Chem.Soc. Japan. Bd. 37 (1%4).
;· 1471. hergestelltes Na-Ben/\ ioxyca ',-lonyl-N'-lert.-iuit
vloxycarbonyl-L-Iysyl-i.-pro! . I-l-v lyl-glycyl-N'-
tei' -butyloxycarbonyl-L-lysin-hvilrazid werden in 4 ml
Pmethylformamid gelöst. Die lösung wird mit Fis
eekühlt und mit 1,375 ml eiskalter 1 η-Salzsäure sowie <%
(1.303 ml 2 molarer Nalriumnitritlösung verseUi. Da-Genii-.ch
wird 4 Minuten hei 0 C geschüttelt. Das erliaiienc
Azid wird mit eiskaltem Äthylacetat extrahiert. Der Äthylacctalextrak; wird mit kalter gesättigter
Natriumbicarbonatlösung gewaschen und über Natriumsulfat getrocknet. Die erhaltene Lösung des
A/ids wird zu einer Lösung von 0.27^ mMol des oben
erhaltenen Dodecapcptids und 0.12" ml Triäthylamin in 4 ml Dimethylformamid gegeben, da- 0.2 ml Wasser
enthält. Das Reaktionsgemisch wird ui.i.:r verminderlern
Druck bei einer Badlcmperaiur \on 10 bis 15 C
eingedampft, bis man eine klare Lösung erhält. Die
I ösimg wird 24 Stunden bei 4 C stehengelassen und
danach mit dem PcrUapcptidazid versetzt, das aus
0.138 mMol des entsprechenden Llydiazids auf die
vorstehend beschriebene Weise hergestellt wurde. Das Gemisch wird 16bis 1 8 Stunden bei 4 C stehengelassen,
danach wird das Lösungsmittel unter vermindertem Druck abdestilliert und der Rückstand durch Zusatz
von Äther ausgefällt. Die Fällung wird in einem Gc- ss
misch von n-Butanol und Äthylacetat (Γ. 2) gelöst und
mit I n-Hssigsäiirc gewaschen. Dir organische Lösung
wird über Natriumsulfat getrocknet und aus Essigsäure lyophilisiert. Ausbeute 1,12 g lleptadccapeptitlcster.
Das erhaltene Peptid wird in Methanol und in G :- ho
genwart von Essigsäure 90 Minuten an Palladium als Katalysator hydriert. Danach wird der Katalysator
abfiltriert und das Lösungsmittel unter \crminilerlem
Druck abdestilliert. Der Rückstand wird ans l\siüsäure
KophilisieiI. Ausbeute 1.007 g. <■"·
Ο.37' ν. des Lyophilisats werden der Gclnlti.ition an
einer kolonne (2.3 κ 143 cm) von Sephadex G-25' mit
20pro/e;iti;.'cr Essigsäure unk'rwoi-fen. Ls werden 5 ml
Fraktionen aufgefangen, und die Absorption b«i 275 nm aufgenommen. Die Fraktionen 32 bis 45, die
das Peptid enthalten, werden vereinigt, konzentriert und aus Essigsäure lyophilisiert. Ausbeute 0,21 g des
Hepladecapeptidesters. [α]" - 74,2 ± 1,6° (c = 0,667,
50prozentige Essigsäure).
(o) ii-Aminoisobuiyryl-L-lyrosyl-L-seryl-u-mclhionyli.-glutamyl-L-histidyl-L-phenylalanyl-L-arginyl-
L-tryptophyl-glycyl-L-lysyl-L-prolyl-L-valyl-glycyl-
L-lysyl-L-lysyl-L-lysyl-L-arginyl-L-arginyl-L-prolyl-
L-valyl-L-lysyl-L-valyl-L-tyrosyi-L-prolyl-
L-asparagyl-L-alanyl-glycin
Eine Lösung von 0.32 g Benzyloxycarbonyl-aaminoisobutyryl-O-benzyl-L-tyrosyl-L-seryl-L-methiony'.-y-benzyl-L-glutamyl-L-histidyl-L-phenylalanyl-L-arginyl-i.-tryptophyl-glycin
fhergestellt gemäß Beispiel I [k]) in Essigsäure wird mit 0.45 ml 1 n-C'h!orwassersiofnösung
in Essigsäure versetzt und sofort lyophilisiert. Der Rückstand wird unter vermindertem
Drück über Natriumhydroxidplalzchen getrocknet.
Das erhaltene Decapeptidhydrochlorid wird in 3 ml Dimethylformamid zusammen mit 0.0X3 g N-IIydroxysuecinimid
gelöst und die Lösung mit einer Lösung von 0.1 5 g Dicyclohexylcarbodiiniid in 2 rrl Dimethylformamid
versetzt. Das Gemisch wird 24 Stunden hei 4 C stehengelassen. Sodann wird der Dicyclohcxylharnstoff
abfiitriert. Das Filtrat wird in 100 ml eines eiskalten Gemisches aus Athylacetal und Äther
(1:1) eingegossen, und die ausgeschiedene Fällung abfiltriert. Die Fallung wird mit Athylacetal und Äther
gewaschen und unter vermindertem Druck getrocknet. Man erhält den aktiven Decapeptidester.
0.30 g des oben erhaltenen Lleptadecapcptidcstcracctats
werden in 3 ml Dimethylformamid gelöst und mit 0.17 ml Triethylamin vcrsetzl. Hierauf wird die
Lösung mit einer Lösung des oben erhaltenen Decapcptideslers
in Dimethylformamid versetzt und das Gemisch (Gesamtvolumen 5 ml) 3 Tage bei 4 C gerührt.
Sodann wird das Reaktionsgemisch in 50 ml eiskaltes Äthylacetat eingegossen und mit 50 ml
Äther versetzt. Die gebildete Fällung wird abfiitriert. mit Äther gewaschen und unter vermindertem Druck
getrocknet. Man erhält 0.60 g rohes geschütztes Heptacosapcptid.
Das oben erhaltene geschützte Heptacosapeptid wird zusammen mit 0.1 g Methionin und 0,6 ml Anisol
in ein Reaktionsgefäß aus fluoriertem Polyäthylen gegeben,
in einem Trockcneis-Acetonbad abgekühlt und mit Fluorwasserstoff gas versetzt. Das Reaktionsgemisch
(etwa 20 ml) wird 40 Minuten bei Raumtemperatur gerührt und sodann unter vermindertem Druck
eingedampft. Der Rückstand wird in Eiswasser gelöst, die Lösung mit Chloroform gewaschen und auf eine
Austauschersäule (1,4 χ 30 cm j von AmberliteC'G-4B"
(Acetat-Form) gegeben. Die Kolonne wird mit Wasser cluieit. das Hluat unter vermindertem Druck eingedampft
und lyophilisiert. Ausbeult 0.41 g Peptid. Das Peptid wird an einer Kolonne (2.2 χ 30cm) von Garboxymethylccllulosc
(Scrva. 0.56 mÄq/g) mit AinmoniumacctatpulTcr
(pH 6.5. 2000 ml) mit einem linearen Konzentrationsgradienten von 0.02 bis 0.6 Mol gereinigt.
Die ,Absorption bei 2H0 nm wird aufgenommen und jeweils Fraktionen von 10 ml.'Höhrchcn aufgelangen.
Die Fraktionen F-I (Nr. 91 his 104) und F^-Il (105 bis 130). die einem Hauptabsorptionsmaximum
entsprechen, ν erden gesondert aufgefangen. ' Die
Ilaupimenge di s Lösungsmitteln wird abdcslilliert
und der Rückstand wiederholt bis zur Gewichtskonsiunz
lyophilisiert. Es werden 100 mg F-I und 180 mg F-II entblockiertes Heptacosapeptid erhalten. F-II
wird erneut an Carboxymethylcellulose in gleicher Weise, wie vorstehend beschrieben, chromatographiert.
Man erhält die Fraktion F-II-I (80 mg) und F-II-2 (85 mg) als erste Hälfte und den Rest des Hauptabsorpticnsmaximums.
F-I und F-II-I werden vereinigt (180 mg) und nochmals Chromatographien.
Man erhält das Peptid in ziemlich reiner Form, was sich aus der Dünnschichtchromatographie an Cellulose
mit dem Lösungsmittelsystem n-Butanol-Essigsäure-Pyridin-Wasser
(30:6:20:24) ergibt. Ein Anteil von 147 mg des vorgenannten Produktes wird an einer
Kolonne (2,0x30 cm) von Carboxymethylcellulose (Whatman CM-52) mit Ammoniumacetatpufter (pH
6.5. 2000 ml) mit einem Iineaiui FCon/entrationsgradienten
von 0.02 bis ü.5 Mol Chromatographien. Die Fraktionen, die einem einzigen Maximum entsprechen,
werden vereinigt, eingedampft und lyophilisiert. Man erhält 100 me reines Heptacosapeptid.
[α]2/ -89.2 ±2.5 U= 0.53^0.1 n-Essigsäure).^,'·/,"-"0
276 nm (E[1JS1 22.0). 2SS nm (E\".^ 15.8). /.^'v H"N:iU"
2*2 nm (E\ ^ 23.0). 288 nm (E] [.m 23.S).
Das Aminosäureverhälinis im Säurehydrolysat hat fuigenden Wert: Asparaginsäure (1.99. Serin 0.89.
Glutaminsäure 1.00. Prolin 3.93. Glycin 3.00. Alanin 1.02. Valin 2.80. Methionin 1.01. Tyrosin 1.90. Phenylalanin
0.99. a-Aminoisobuttersäure 1.19 Lysin 4*52. Histidin 1,22. Arginin 2.91. Das Tryptophan :'Ty- ,o
rosin-Verhäitnis im intakten Heptacosapeptid hat spektrophotometrisch bestimmt den Wert 0.54.
B e i s ρ i e I 4
(a) Benzyloxycarbonyl-i.-valyl-i.-tyrosinmethyiester
5.78 g Benzyloxycarbonyl-L-valin und 4.49 g L-Tyrosinmethylester
werden in 10 ml Dimethylformamid gelöst und bei 0° C mit 4.75 g Dicyclohexylcarbodiimid
in 50 ml Dichlormethan versetzt. Das Gemisch wird 16 bis 18 Stunden bei 4 C stehengelassen, danach wird
der ausgeschiedene DicyclohcxylharnstofT abfiltriert
und das Filtrat unter vermindertem Druck eingedampft. Der Rückstand wird in Älhyiacetat gelöst und
die Lösung mit 1 η-Salzsäure und 1 molarer Natriumbicsrbonatiösung
gewaschen und über Magnesiumsulfat getrocknet. Nachdem Eindampfendes Lös up esmittels
hinterbleibt ein kristalliner Rückstand, der aus einer Mischung von Äthylacetat und Äther umkristallisiert
wird. Ausbeute 8.47 g. F. 154 bis 155 C: [α]22 — 18,3 + 0,6' (c = 0.98. Methanol).
(b) Benzyloxyearbonyl-L-valyl-i.-tyrosinhydni/id
Eine Lösung von 6,42 g Bcnzyloxycarbonyl-i.-valyl-L-tyrosinmethylester
in 10 ml Dimethylformamid und 30 ml Äthanol wird mit 1.8 ml Hydrazin-hydrat versetzt
und 24 Stunden bei Raumtemperatur stehengelassen. Die abgeschiedenen Kristalle werden abfiltriert,
mit kalten, Äthanol und Äther gewaschen und über Schwefelsäure unter vermindertem Druck getrocknet.
Ausbu'.'e 6.26 g. F. 243 bis 244 C (Zersetzung); [α],22-12.0 + 0.5 (r= 1.01. Dimethylformamid).
(c) Benzyloxycarbonyl-L-valyl-L-ty-osylu-prolinmethylesier
20 ml in einem Eis-Kochsalzbad gekühltes Methanoi werden tropfenweise mit 1.5 ml Thionylchlorid und
anschließend mit 2,0 g L-Prolin versetzt. Das Gemisch
wird 16 bis 18 Stunden bei Raumtemperatur stehengelassen und hierauf unter vermindertem Druck eingedampft.
Der sirupöse Rückstand wird in etwa 5 ml Wasser gelöst und mit 20 ml Dichlormethan versetzt.
Das Gemisch wird abgekühlt und mit 10 ml eiskalter 50prozentiger wäßriger Kaliumcarbonailösung versetzt.
Die wäßrige Phase wird wiederholt mit Dichlormethan extrahiert. Die organischen Extrakte werden
vereinigt, über Magnesiumsulfat getrocknet und unter vermindertem Druck eingedampft. Es hinterbleibt
r.-ProIinmeih} !ester als freie Base.
Eine gekühlte Lösung ',on 6.0 g Benzyloxycarboir.ii-valyl-L-tyrosin-hydrazir
:i 20 ml Dimethylformamid und 35 ml Salzsäure wird mit "\7 ml eiskalter 2molarei
Natriumnitritlösung versetzt. 4 Minuten bei 0 C gerührt und danach zweimal mit eiskaltem Aihylacet.ii
extrahiert. Die organischen Extrakte werden vereinig!, mit eiskalter !molarer Natriumbicarbonallösung gewaschen
und über Magnesiumsulfat getrocknet. Die erhaltene Lösung des Azids wird zu dem oben hergestellten
L-Prolinmethvlesier gegeben und das Gemi>ch
2 Tage bei 4 C stehengelassen. Danach wird da·· Reaktionsgemisch mil I η-Salzsäure. Wasser und
1 molarer Natriumbicarbonallösung gewaschen, über Magnesiumsulfat getrocknet und unter vermindertem
Druck eingedampft. Der Rückstand (5.9 g) wird in einer Mischung aus Methanol und Chloroform (5:95)
gelöst und die Lösung auf eine Silikagelsäuie (Merck. 0.05 bis 0.2 mm. 170 g) gegeben, die mit dem gleichen
Methanol-Chloroformgemisch vorbehandelt worden war. Dieses Lösungsmittelgcmisch wird auch zum
Eluieren verwendet. Diejenigen Fraktionen, die eine Hauptkomponente bei der Dünnschichtchromatographie
an Silikagel G mit einem Gemisch aus Methanol und Chloroform (1:9) als Lösungsmittel zeigen
(Rf= 0.57. Schwefelsäure) werden vereinigt und unter vermindertem Druck eingedampft. Es hinterbleibt
das Tripeptid als schaumiger Rückstand. Ausbeute 5.44 g. [α]2,2-60.6 ±1.0 (<
= 1,01, Methanol).
(d) N'-Benzyloxycarbonyl-N'-tert.-butyloxy-
carbonyl-i.-lysyl-i.-valyl-L-tyrosyl-i.-prolin-
methylester
2.63 g Benzyioxycarbonyl-L-valyl-L-tyrosyi-i.-prolinmeth
>lester werden in Methanol gelöst und 3 Stunden an Palladium als Katalysatur hydriert. Danach
wird der Katalysator abfiltriert und das Lösungsmitte! unter vermindertem Druck abdestilliert. Es hinter
bleibt L-Valyl-L-tyrosyl-L-prolinmcthylester als freie
Base. N'-BenzyloxVcarbonyl-N'-tert.-butyloxyc.irbnnyl-L-lysin
(hergestellt aus 2,82 g des Dicyclohcxvlaminsalzes in üblicher Weise) und der oben erhaltene
Tripeptidester werden in Dichlormethan gelöst und mit einer Dichlormcthanlösung von 1.03 g Dicvclohcxylcarbodiimic!
bei 0 C versetzt. Das Gemisch wird 16 bis 18 Stunden bei 4 C stehengelassen, danach vom
auskristallisierten Dicyclohexy !harnstoff befreit und
das Lösungsmittel unter vermindertem Druck abdeslilliert.
Der Rückstand wird in Äthylacetat gelöst und die Lösung mit eiskalter 1 η-Salzsäure. Wasser und I molarer
Natriumbicarbonatlösuniieewaschen. über M:mnc-
iiiimsulfiit getrocknet und unter vermindertem Druck
:ingcdampft. Es liinterblcibt ein farbloser schaumiger
Rückstand, der aus einer Mischung von Allylacetat und Äther umgefüllt wird. Ausbeute .1.61 g[a]f,2 - 56.3
± 1.0" (ί·- 1.00. Methanol).
(c) Ben/yloxycarbonyli.-valyl-N'-tert.-butylow-
carbonyl-L-lysyl-i.-valyl-i.-tyrosyl-K-prolin-
methylester
IO
1,51 g N'-Benzyloxycarbonyl-N'-terl.-butyloxycarbonyl-L-lysyl-L-valyl-i.-tyrosyl-i.-prolinmelhylcster
werden in Methanol 3 Stunden an Palladium als Katalysator hydriert. Danach wird der Katalysator abfiltriert
und das Filtrat unter vermindertem Druck eingedampft. Es hinterblcibt N'-tert.-Butyloxycarbonyl-L-lysyl-i.-valyl-i.-tyrosyl-r
-prolinmethylcster als schaumiger Rückstand. Der Tetrapeptidester wird zusammen
mit 0,50 g Benzyloxycarbonyl-L-valin in Dichlormethan
gelöst und bei O1C mit einer Lösung von 0.41 g
Dicyclohexylcarbodiimid in Dichiormethan versetzt. Das Gemisch wird 16 bis 18 Stunden bei 4°C stehengelassen,
danach wird der ausgeschiedene Dicyclohexylharnstoff abfiltriert und das Filtrat unter vermindertem
Druck eingedampft. Der Rückstand wird in Äthylacetat aufgenommen und die Lösung nacheinander
mit eiskalter 1 η-Salzsäure. Wasser und 1 molarer Natriumbicarbonatlösung gewaschen, über Magnesiumsulfat
getrocknet und unter vermindertem Druck eingedampft. Der Rückstand wird aus einer Mischung
aus Äthylacetat und Äther umgefällt. Ausbeute 1.43 g.
Nach nochmaliger Umfallung aus Acetonitril beträgt die Ausbeute 1.14 g. [aß2-66.4 ±1.1° (r=1.03.
Methanol).
(0 N'-Benzyloxycarbonyl-N'-tert.-butyloxy-
carbony1-L-lysyl-NG-nitro-L-arginyI-NG-nitro-
i.-arginyl-L-prolyl-i.-valyl-Ne-tert.-butyloxy-
carbonyl-L-lysyl-L-valyl-L-tyrosyl-L-prolin-
methylester
35
40
0,51 g Benzyloxycarbonyl-L-valyl-N'-tert.-butyloxycarbonyl-L-lysyl-L-valyl-L-tyrosyl-L-prolinmethylester
in Methanol werden 3 Stunden an Palladium als Katalysator hydriert. Danach wird der Katalysator
abfiltriert und das Lösungsmittel unter vermindertem Druck abdestilliert. Dk Rückstand wird über Natriumhydroxidplätzchen
getrocknet und anschließend in 2 ml Dimethylformamid gelöst. Diese Lösung wird mit 0,53 g N^-Benzyloxycarbonyl-NMert.-butyloxycarbonyl-L-lysyl-NG-nitro-L-arginyl-NG-nitro-L-arginyl-L-piolin
und 0,10 g N-Hydroxysuccinimid sowie bei 00C mit einer Lösung von 0.19 g Dicyclohexylcarbodiimid
in 8 ml Dichiormethan versetzt. Das Gemisch wird 2 Tage bei 4C C stehengelassen und anschließend
tropfenweise in 100 ml eines Gemisches aus Äthylacetat und Äther (1:1) gegeben. Die entstandene
Fällung wird abfiltriert, mit Äther gewaschen und getrocknet, Ausbeute 1.13 g. Die erhaltene Fällung wird
in einer Mischung aus Methanol und Chloroform (1:9) gelöst und auf eine Kolonne mit Silikagel (Merck.
0,05 bis 0,2 mm. 40 g) gegeben, die mit dem gleichen Lösungsmittelgemisch vorbehandelt worden war. Auch
die Eluierung wird mit dem gleichen Lösungsmittel-. gemisch durchgeführt. Fraktionen, die eine Hauptkomponente
im Dünnschichtchromatogramm an SiIikagel
G und mit einem Gemisch aus Methanol und Chloroform (1:9) als Lösungsmittel enthalten (Rf=
0.25. Schwefelsäure) werden vereinigt, unter vermindertem
Druck eingedampft und aus Essigsäure lyophilisiert. Man erhält 0.48 gdcs Nonapeptids. [α],2,2 - 74.X
± 1.2"(C= 1.00. Methanol).
(g) N'-tcrt.-BuIyloxyairbonyl-i.-Iysyl-i.-prolyI-
i.-valyl-glycyl-N'-t'crt.-butvloxycarbonyl-i.-hsyl-
N'-tcrl.-butyloxycarbonyl-i.-lysyl-[.-argin\l-i.-arginyli-prolyl-i.-valyl-N'-tert.-butyloxycarbonyl-i
-lysyl-
i.-valyl-i.-tyrosyl-i.-prolinmelhylester
0.39 g N'-Benzyloxycarbonyl-N'-tert.-butyloxycarbonyl-L-lysyl-L-nitroarginyl-L-nitroarginyl-L-prolyl-ivalyl-N'-tert.-butyloxycarbonyl-i
-lysyl-i.-valyl-i-tyrosyl-i.-proiinmethylester
in 90prozentiger Essigsäure werden 6 Stunden an Palladium als Katalysator hydriert.
Danach wird der Katalysator abfiltriert und das Lösungsmittel unter vermindertem Druck eingedampft.
Der Rückstand wird aus Essigsäure lyophilisiert. Man erhält 0,42 g N'-tert.-Butyloxycarbonyl-L-lysyl-L-arginyl-t.-arginyl-L-prolyl-L-valyl-N'-tert.-butyloxycarbonyl-L-lysyl-L-valyl-i.-tyrosyl-L-prolinmethylester.
Zu einer gekühlten Lösung von 0.32 g N'-Benzyloxycarbonyl-N'-tert.-butyloxycarbonyl-L-lysyl-L-prolyl-L-valyl-glycvl-N'-tert.-butyloxycarbonyl-L-lysinhydrazid
in 5 ml 90prozentigem Tetrahydrofuran wird nacheinander 0.9 ml eiskalte 1 η-Salzsäure und 0,2 ml
2molare Natriumnitritlösung gegeben, und das Gemisch wird 4 Minuten bei O0C gerührt. Sodann wird
das Gemisch mit 15 ml eiskaltem Äthylacetat und 5 ml
5molarer Natriumbicarbonatlösung versetzt. Die organische Lösung wird erneut mit eiskalter 1 molarer Natriumbicarbonatlösung
gewaschen und bei 0°C über Magnesiumsulfat getrocknet. Die erhaltene Lösung
des Pentapeptidazids wird zu einem Gemisch aus dem oben erhaltenen Nonapeptid und 0,067 ml Triäthylamin
in 3 ml Dimethylformamid gegeben. Das Gemisch wird unter vermindertem Druck bei einer Badtemperatur
von 200C eingedampft, bis die gebildeten Fällungen wieder verschwinden. Sodann wird das
Gemisch 2 Tage bei 4° C stehengelassen. Hierauf wird eine weitere Mengedes Azids (hergestellt aus 0,18 mMol
des Hydrazids) zugesetzt. Das Gemisch wird 16 bis 18 Stunden bei 4° Q stehengelassen und anschließend
in 100 ml Äther eingegossen. Die ausgeschiedene Fällung wird abfiltriert, mit Äther gewaschen und
unter vermindertem Druck getrocknet. Ausbeutt;
0,68 g. Nach Umfällung aus einer Mischung von Methanol und Äthylacetat erhält man 0,65 g rohen N*-
Benzyloxycarbonyl-NMert.-butyloxycarbonyl-L-lysyl-L-prolyl-L-valyl-glycyl-NMert.-butyloxycarbonyl-L-lysyl-N£-tert.-butyloxycarbonyl-L-lysyl-L-arginyl-i.-arginyl-L-prolyl-L-valyl-NMert.-butyloxycarbonyl-L-lysyl-L-valyl-L-tyrosyl-L-prolinmethylesteT.
Ein Anteil von 0,20 g des oben erhaltenen Tetradecapeptids in 90prozentiger Essigsäure wird 31I1 Stunden
an Palladium als Katalysator hydriert. Danach wird der Katalysator abfiltriert, das Lösungsmittel
unter vermindertem Druck abdestilliert und der Rückstand aus Essigsäure Iyophilisiert. Man erhält rohes
N*-freies Tetradecapeptid. Diese Verbindung wird chromatographisch an einer Säule (1.7 χ 33 cm) von
Carboxymethylcellulose (Serva. 0.70 mÄq/g) mit Ammoniumacetatpuffer (pH 5,9. 2000 ml) mit einem
linearen Konzentrationsgradienten von 0,005 bis 0,25 Mol gereinigt. Es werden 8 ml Fraktionen aufgefangen
und ihre Absorption bei 275 nm aufgenommen. Die Fraktionen, die einem Hauptabsorptions-
409539/369
maximum entsprechen (Fraktion 111 bis 140). werden vereinigt, und die Hauptmenge des Lösungsmittels
wird unter vermindertem Druck abdcstillicrt. Der Rückstand wird lyophilisiert. Man erhält 0.154 g reines
Peptid. [a],V -67.0 + 2 (r = 0.551. Methanol)!'
(h) Bcnzyloxycarbonyl-ff-aminoisobutyryli.-tyrosyl-i
-scryl-i.-melhioninhydra/id
Eine eiskalte Lösung von 2.3 g Bcnzyloxycarbonyla-aminoisobutyryl-i.-tyrosin-hydrazid
in 15 ml 1 n-Salzsäure wird tropfenweise mit 3.0 ml eiskalter 2molarer
Natriumnitritlösung versetzt, 4 Minuten gerührt und danach mit eiskaltem Äthylacetat extrahiert. Der
organische Extrakt wird dreimal mit eiskalter 1 molarer Natriumbicarbonatlösung gewaschen und bei OC
über Magnesiumsulfat getrocknet. Dicerhallenc Äthylacetatlösung des Dipcptidazids wird zu einer Lösung
von L-scryl-L-methioninmcthylcstcr (hergestellt aus
5 mMol tert.-Butyloxycarbonyl-i.-scryl-i.-mcthioninmethylcster)
in 5 ml Dimethylformamid gegeben, und das Gemisch wird 65 Stunden bei 4"C stehengelassen.
Nach beendeter Umsetzung wird das Gemisch nacheinander mit 1 n-Sal/säurc. Wasser und !molarer
Natriumbicarbonatlösung gewaschen, über Magnesiumsulfat getrocknet und unter vermindertem Druck
eingedampft. Es hintcrblcibt ein schaumiger Rückstand,
der zweimal aus einer Mischung von Äthylacetav und Äther umgefüllt wird. Es werden 2,81 g roher
Tetrapcptidmclhylestcr erhalten. Dieser rohe Ester wird in 25 ml Äthanol gelöst und mit 2.4 ml Hydrazinhydrat
versetzt. Das Gemisch wird 16 bis 18 Stunden bei Raumtemperatur stehengelassen, danach unter
vermindertem Druck eingedampft, der Rückstand mit 10 ml Wasser versetzt und mit 20 ml Äthylacetat ausgeschüttelt.
Die wäßrige Lösung wird noch zweimal mitÄthylacctalcxtrahicrt. DicvcrciniglenÄthylaeetatextraktc
werden mit Wasser gewaschen und eingedampft. Der gelatinöse Rückstand wird mit kaltem
Älhylacelat und Äther gewaschen und unter vermindertem Druck getrocknet. Ausbeute 2,47 g. Nach
nochmaliger Umfällung aus einer Mischung von Äthanol und Äthylacetat wird das reine Tetrapcptidhydrazid
erhalten. Ausheute 1.86 g.
(i) Bcnzyloxycarbonyl-ri-aminoisobutyryl-L-tyrosyl-
i.-seryl-i.-methionyl-y-benzyl-i-glutamyl-L-histidyl-
i.-phenylalanyl-i.-arginyl-i.-tryptophyl-glycin
0.23 g tert.-Butyloxycarbonyl-y-benzyl-L-glutamyli.-histidyl-i.-phenylalanyl-L-arginyl-r.-tryptophyl-glycin
werden in etwa 1.5 ml Trifluoressigsäure gelöst und 30 Minuten bei Raumtemperatur stehengelassen.
Danach wird das Gemisch mit Äther versetzt, die ausgeschiedene Fällung wird abfillricrt. mit Äther gewaschen
und getrocknet. Es werden 0.24 g N2-freies
Hexapeplid erhalten.
0.25 g Benzyloxycarbonyl-a-aminoisobutyryl-L-tyrosyl-L-seryl-L-methioninhydrazid
werden in 1 ml Dimethylformamid gelöst und mit 1 ml 1 n-Salzsäure
versetzt. Das Gemisch wird in Eis abgekühlt und mit 0.22 ml eiskalter 2molarer Natriumnitritlösung versetzt.
Das erhaltene Azid wird mit eiskaltem Athylacetat extrahiert, der Extrakt mit eiskalter !molarer
Natriumdicarbonallösunggewaschenundüber Magnesiumsulfat getrocknet. Danach wird diese Lösung
mit einer Losung des oben erhaltenen Hexapcptids
und 0.125 ml Triäihylamin in 5 ml Dimethylformamid versetzt. Das Gemisch wird unter vermindertem
Druck bei einer Badtemperatur von 15 bis 20 C eingedampft,
bis eine klare Lösung entsteht. Sodann wird die Lösung 40 Stunden bei 4 C stehengelassen, Ilierauf
wird das Gemisch in 100 ml einer Mischung von Äthylacctat und Äther (1:1) eingegossen, die ausgeschiedene
Fällungabfillricrl. mit Älhylacctal und Äther uewaschen und aus Essigsäure lyophilisiert. Ausbeute
0.32 g.
(J) «-Aminoisobutyryl-i.-tyrosyl-i.-seryl-i.-mcthionyl-
i.-glulamyl-L-histidyl-i.-phenylalanyl-i.-arginyll
-tryptophyl-glycyl-L-lysyl-i.-prolyl-L-valyl-glycyli.-lysyl-t-lysyl-i.-arginyl-L-arginyl-t.-prolyl-i.-valyli.-lysyl-i.-valyl-i.-tyrosyl-i.-prolinmclhylcslcr
Eine Lösung von 0.257 g Benzyloxycarbonyl-aaminoisobulyryl-i.-lyrosyl-i.-scryl-i.-methionyl-y-ben-/yl-i.-glutamyl-i.-histidyl-L-phcnylalanyl-t.-arginyl-i-
liyptophyl-glycin in Essigsäure wird mit 0,3 ml einer I n-Salzsäurclösung in Essigsäure versetzt und sofort
lyophilisiert und unter vermindertem Druck über Natriumhydroxidplätzchen getrocknet. Das erhaltene
Decapcplid-hydrochlorid wird in 3 ml Dimethyl-
formamid zusammen mit 0.069 g N- Hydroxysuccinim id gelöst und mit 0,12 g Dicyelohexylcarbodiimid versetzt.
Das Gemisch wird 24 Stunden bei 4°C stehengelassen, danach wird der ausgeschiedene DicyclohcxylharnslofT
abfillricrt, das Filtrat in ein eiskaltes Gemisch gleicher Teile Allylacetat und Äther eingegossen
und die gebildete Fällung abfiltriert, mit Allylacetat
und Äther gewaschen und unter vermindertem Druck getrocknet. Man erhält 0,29 g des aktiven
Decapepliclcslcrs.
0.248 g des Tclradecapcptids N'-lcrl.-Butyloxycaibonyl-L-lysyl-i.-prolyl-L-valyl-glycyl-NMcrt.-buUloxycarbonyl-i.-lysyl-N'-tert.-butyloxycarbonyl-i-lysv:
i.-arginyl-L-arginyl-i.-prclyl-L-valyl-N'-tcrt.-bulylov carbonyl-i.-lysyl-i.-valyl-L-tyrosyl-i.-prolinmeth\!-
ester-acetat werden in 2 ml Dimethylformamid gcio"
und mit 0.15 ml Triäihylamin versetzt. Die Lösung w-ii\i
mit einer Dimethylformamidlösung des oben erhaltenen aktiven Decapeptidestcrs versetzt und 48 Stunden
bei 4T stehengelassen. Sodann wird das Reaktion:·- gemisch in 100 ml eiskaltes Äthylacctal eingegossen,
die ausgeschiedene Fällung abfiltriert. mit Äthylacetai und Äther gewaschen, aus Essigsäure lyophilisieü
und unter vermindertem Druck über NalriumhydroxidpläUchen getrocknet. Ausbeute 0,48 g rohes ge-
schütztesTetracosapeptid.
0.20 g des oben erhaltenen geschützten Peptidwerden 90 Minuten bei 00C in üblicher Weise in Gegenwart
von 0.05 g Methionin und 0,2 ml Anisol als Radikalianger mit wasserfreiem Fluorwasserstoff behandelt.
Danach wird der Fluorwasserstoff unter vermindertem Druck abgetrennt, der Rückstand in Wasser
gelöst und die Lösung mit Äthylacetat gewaschen. Die wäßrige Lösung wird auf eine Kolonne von Amberlite
CG-400 (Acetat-Form) gegeben, und die Kolonne wird
mit Wasser eluiert. Das Eluat wird unter vermindertem
Druck eingedampft und lyophilisiert. Das erhaltene rohe entblockierte Peptid wird an einer Kolonne von
Carboxymethylcellulose (Serva, 0,70 mÄq/g) mit einem Ammoniumacetatpuffer (pH 6.5, 2000 ml) mit
einem linearen Konzentrationsgradienten von 0,02 bis 0,6 Mol gemäß Beispiel 2 Chromatographien. Man
erhält 0,074 g a-Aminoisobutyryl-L-tyrosyl-L-seryl-L-methionyl-i.-glutamyl-i.-histidyl-L-phenylalanyl-L-ar-
ginyl-i.-lryptophyl-glycyl-i.-lysyl-i.-prolyl-i.-valyl-glycyl-i.-lysyl-i.-lysyl-i.-arginyl-i.-arginyl-i.-prolyl-i.-valyli.-lysyl-i.-valyl-i,-i\rosyl-i.-prolinmcthylcstcr.
\y.]f,[ - 75 ± 2Mf = 0.5.0.1 n-Fssigsäurc).
0,5 mg Ibu'-ACTH(l-18)-NH2-acetat werden in
0.25 ml 40mmolarer Zinkchloridlösung bei Raumtemperatur gelöst. Die Lösung wird mit 0.25 ml einer
40mmolaren Dinatriumhydrogenphosphatlösung versetzt,
die 4,5 mg Natriumchlorid enthält. Man erhält eine Suspension eines Komplexes, der durch Zusatz,
von 0.1 η-Natronlauge auf pH 7.0 eingestellt wird.
0.5 mg lbu'-ACTH(l-18)-NH2-acetat werden in
0.15 ml destilliertem Wasser gelöst. Die Lösung wird
mit 0.1 ml einer Lösung von 0.5 mg Poly-i.-glutaminsäure
(Molekulargewicht etwa 1500 bis 2000) versetzt,
die mit 0.1 η-Natronlauge neutralisiert worden war. Das Gemisch wird mehrere Minuten gerührt und danach
mit 0.25 ml eines M/30-PhosphatpulTcrs versetzt. der 4.5 mg Natriumchlorid enthält. Der erhaltene
Komplex wird mit 0,1 n-Natronlaugc auf pH 7.0 eingestellt.
1,0 mg Ibu'-ACTH(l-18)-NH2-acctat werden in
0.2 ml destilliertem Wasser gelöst. Die Lösung wird unter Rühren mit einer Lösung von 2 mg PoIy-L-asparaginsäure
(Molekulargewicht etwa 3000) versetzt, die mil 0.3 ml 0.1 n-Natronlaugc vor der Verwcndung
neutralisiert worden war. Es bildet sich eine weiße Fällung. Die Suspension wird mit 0.5 ml einer
M ■ 15-Dinatriumhydrogerphosphat-Kaliumdihydrogenphosphat-Lösung
pH 6.8 versetzt, die 9,0 mg Natriumchlorid enthält und mit 0.1 η-Natronlauge auf
pH 7.0 eingestellt.
0,5 mg Ibu1-ACTH(I-18)-NH2-acetat werden in
0.15 ml lOOmmolarer Zinkchloridlösung gelöst. Andererseits werden 0.5 mg Poly-L-glutaminsäurc (Molekulargewicht
etwa 2000 bis 3000) mit 0.1 ml 0.1 n-Natronlauge neutralisiert. Die Lösung wird mit 4.5 mg
Natriumchlorid sowie0.25 ml 40mmolarerDinatriumhydrogenphosphatlösung
versetzt. Die erhaltenen Lösungen werden vereinigt und bei Raumtemperatur gerührt. Es entsteht eine Suspension des Komplexes,
der mit 0.1 η-Natronlauge neutralisiert wird.
sung wird mit 0.25 ml einer M 15-Kaliumdihydrogenphosphal-Dinatnumhydrogenphosphat-Lösung
versetzt, die 4.5 mg Natriumchlorid enthalten. 20 mg Copoly -1 - glutamyl -1. - tyrosin (Molekulargewicht
21 850) werden mil 0.15 ml 0.1 n-Natronlaugc neutralisiert.
Die neutralisierte Lösung wird zu der oben erhaltenen I'cptidlösung gegeben, und das Gemisch
wird gerührt. Die Suspension des erhaltenen Komplexes
wird mil 0,1 η-Natronlauge auf pH 7,0 eingestellt.
0.5 mg Ibu'-ACTH(1-18)-NH2-acetat werden in
0.1 ml Wasser gelöst. Diese Lösung wird mit 0,25 ml M/l5-PhosphatpulTer pH 7.0 versetzt, die 4,5 mg Natriumchlorid
enthalten. 7 mg Copoly-L-glutamyl-L-tyrosin
(Molekulargewicht etwa 21850) werden mit 0.1 η-Natronlauge neutralisiert. 0.1 rnl der neutralisierten
Lösung werden zu der Lösung des erhaltenen Peptids gegeben. Man erhäk eine Suspension,die sofort
klar wird. Die Lösung wird mit 0.1 mg Thimerosal in 0.05 ml Wasser versetzt und die erhaltene klare Lösung
mit 0.1 n-Natronlaugc auf pH 7.0 eingestellt.
0.5 mg Ibu'-Orn15-ACTH(l-18)-NH2-acetal werden
bei Raumtemperatur in 0,25 ml 40mmolarer Zinkchloridlösung
gelöst. Die Lösung wird mit 0,25 ml einer 40mmolaren Dinatriumhydrogenphosphatlösung versetzt,
die 4.5 mg Natriumchlorid enthalten. Man erhält eine Suspension eines Komplexes, derdurch Zusatz
von 0.1 η-Natronlauge auf pH 7.0 eingestellt wird.
55
0,5 mg Ibu1 -ACTH(I-18)-NH2-acetat werden bei
Raumtemperatur in 0.1 ml Wasser gelöst. Diese Lö-
0.5 mg lbu'-ACTH(l-24)-OCH,-acetat werden bei
Raumtemperatur in 0,25 ml 40mmolarer Zinkchloridlösung gelöst. Die Lösung wird mit 0.25 ml einer 40mmolaren
Dinatriumhydrogenphosphatlösung versetzt, die 0,45 mg Natriumchlorid enthält. Die erhaltene
Suspension des Komplexes wird mit 0.1 n-Natronlauge auf pH 7,0 eingestellt.
0.5 mg Ibu'-ACTH(l-27)-OH-acetat werden bei
Raumtemperatur in 0.25 ml 40mmolarer Zinkchloridlösung versetzt. Die erhaltene Lösung wird mit 0,25 ml
einer 40mmolaren Dinatriumhydrogenphosphatlösung versetzt, die 0.45 mg Natriumchlorid enthält. Die
erhaltene Suspension des Komplexes wird mit 0,1 n-Natronlauge
auf pH 7 eingestellt.
In ähnlicher Weise, wie vorstehend beschrieben können andere l-a-Aminoisobuttersäure-corticotro·
pinpeptide in die entsprechenden Komplexe umgewan delt werden.
Claims (9)
1. l-ot-Aminoisobuttersäure-corticotropinpep-
:ide mit Aminosäureresten entsprechend der Se-}uenz 1-16 bis 1-39 des nativen Corticotropins,
deren Derivate. Säureadditionssalze und Komplexe.
2. l-at-Aminoisobuttersäure-corticotropinpeptide, in denen die 4. Aminosäure L-Methionin, L-Norvalin. L-Norleucin. L-Leucin oder ot-Aminobuttersäure, die 5. Aminosäure L-Glutaminsäure
oder L-Glutamin, die 15. und 16. Aminosäure
L-Lysin oder L-Ornithin, die 17. und 18. Aminosäure L-Arginin, L-Lysin oder L-Ornithin und die
25. Aminosäure L-Asparaginsäuie oder L-Valin ist. sowie deren Derivate, Säureadditionssalze und
Komplexe.
3. 1 -a-Aminoisobuttersäure-corticoiropinpcptide
mit Aminosäureresten entsprechend der Sequenz 1-16 bis 1-39 des nativen Corticotropins, in
deren 4. Aminosäure L-Methionin. i.-Norvalin. L-Norleucin. i.-Leucin oder a-Aminobuitersaure.
die 5. Aminosäure L-Glutaminsäurc oder L-Glutamin. die 15. und 16. Aminosäure L-Lysin oder
I-Ornithin, die 17 und 18. Aminosäure t-Arginin.
I.-Lysin oder L-Ornithin und die 25. Aminosäure 1 -Asparaginsäure oder i.-Valin ist. deren Derivate.
Säureadditionssalze und Komplexe.
4. l-ac-Aminoisobutiersäure-corticotropinpeptide
mit Ammosäureresten entsprechend der Sequei.z 1-18 bis 1-27 des nativen Corticotropins der
allgemeinen Formel
2-Aminoisobutyryl-L-lyrosyi-L-seryl-
A-B-L-histidyl-L-phenylalanyl-L-arginyl-
i.-tryptophyl-glycyl-L-lysyl-L-prolyl-
i.-vaiyl-glycyl-C-D-E-F
in der A ein L-Methionin-. i.-Norvalin-. L-Norleucin-. L-Leucin- oder a-Ammobuttersäurerest. B ein
1 -Glutaminsäure- oder i.-Glutaminrest. C und D
jeweils ein L-Lysin- oder t.-Orni'hinrcst. L ein L-Arginin-,
L-Lysin- oder I.-Ornithinrcst und F ein L-Arginin-, L-Arginyl-i.-prolin-. i.-Arginyl-i.-prolyl-L-valin-.
L-Arginyl-i.-prolyl-i.-valyl-L-lysin-,
L-Arginyl-L-prolyl-i.-valyl-L-Iysyl-i.-valin-. L-Arginyl-i.-prolyl-L-vaIy
1-L-lysyl-i.-vaIy!-(.-tyrosin-. L-Arginyl-L-prolyl-i.-valyl-L-lysyl-i-valyl-L-tyrosyli
-prolin-. L-Arginyl-[.-prolyl-L-valyl L-lysyl-L-valyl-L-tyrosyl-L-prolyl-i.-asparaginsäurc-,
i.-Arginyl-L-prolyl-L-valyl-i.-lysyl-i
-va IyI-L-ty rosy l-i.-prolyl-L-valin-,
i.-Arginyl-L-prolyl-L-valyl-L-lysyl-L-valyl-i
-tyrosyl-L-prolyl-L-aspiiragyl-i.-alanin-. L-Arginyl-L-prolyl-L-valyl-i.-lysyl-L-valyl-L-lyrosyli.-prolyl-L-aspartyl-t.-alanyl-glycin-,
i.-Arginyl-l.-prolyl-L-valyl-i.-iysyl-i.-valyl-L-iyrosyl-L-piOlyl-i.-asparagy!-glycyl-i.-gl
utaminsäure-. I.-Arginyl-L-proly
l-i.-va Iy l-i.-lysyl-i.-va IyI-I.-ty rosy l-i.-prolyl-L-alanyl-glycyl-i.-gluuiminsäure.
i.-Arginyl-i.-prolyl-L-valyl-i.-lysyl-i.-valyl-i.-tyrosyl-i.-prolyl-i.-a.sparagyl-glycyl-i.-gluiaminsäurc
oder i-Arginyl-L-prolyl-L-valyl-i.-lysyl-i.-valyl-i.-iyrosyl-i.-prolyl-i
-asparagyl-glycyl-i.-alaninrcst
oiler der entsprechende I M ·.· roder da s entsprechende Λ mid ist. deren Sä ureadditionssal/e
und Komplexe.
35
40
45
55
60
5. 1 -at-Aminoisobuttersäure-corticoiropinpeptide der allgemeinen Formel
a-Aminoisobutyryl-L-tyrosyl-L-seryl-
A-B-L-histidyl-L-phenylalanyl-L-arginyl-
L-tryptophyl-glycyl-L-lysyl-L-prolyl-
L-valyl-?lycyl-C-D-E-F
inderAeinL-Methionin-.L-Norvaiin-.L-Norleucin,
L-Leucin- oder a-Aminobuttersäurerest, B ein L- Glutaminsäure- oder L-Glutaminrest, C und D jeweils
ein L-Lysin- oder L-Omithinrest, E ein L-Arginin-. L-Lysin- oder L-Ornithinrest und F ein
L-Arginin-, L-Lysin-, L-Ornithin-, L-Argininester-. L-Lysinester-, L-Ornithinester, L-Argininamid-, L-Lysinamid oder L-Ornithinamidresl ist, deren
Säureadditionssalze und Komplexe.
6. l-Df-Aminoisobuttersäure-cortieotropinpeplide
der allgemeinen Formel
2-Aminoisobutyryl-L-tyrosyl-L-seryl-
A-B-i-histidy 1-L-phenylalanyl-L-arginyl-
L-tryptophyl-glycyl-L-lysyl-L-proIyl-
L-valyl-glycyl-C-D-E-F-prolyl-L-valyl-
L-K syl-L-valyl-L-lyrosyl-G
in der A ein L-Methionin-, L-Norvaiin-. L-Norleucin-.
L-Leucin- oder a-AminobuUersäurerest. B ein L-Glutaminsäure- oder i.-Glutaminrest. C und
D jeweils ein L-Lysin- oder L-Ornithinrest. E und F jeweils ein L-Arginin-. L-Lysin- oder L-Ornithinrest
und G ein L-Prolin-, L-1'rolinester- oder L-Prolinamidrest
ist. deren Säureadditionssalze und Komplexe.
7. I -x-Aminoisobuttersäure-corticotropinpeplide
der allgemeinen Formel
ϊ-Aminoisobutyryl-i.-tyrosyl-L-seryI-
A-B-L-histidyl-L-phenylalanyl L-arginy1-
L-tryptophyl-glycyl-L-lysyl-L-prolyl-l.-valyl-
elycyl-C-b-F.-F-L-prolyl-L-valyl-L-lysyl-
L-\;il>l-L-iyrosyI-L-prolyl-G
in der Λ ein L-Methionin-. L-Norvalin-. L-Norleucin-. L-Lcucin- cder x-Aminobuttcrsäureivst. Bein
L-Glutaminsäurc-oder L-Glutaminrest. C und D jeweils ein L-Lysin- oder t.-Ornithinrcst. E und F
jeweils ein L-Arginin-. L-Lysin- oder L-Ornithin-1""1St
und G ein L-Asparagyl-i.-alanyl-glycin-. L-Asparagyl-glycyl-L-alanin-,
L-Alany!-glycyl-L-glut aminsäure-. i.-Asparagyl-glycyl-L-glutaminsäure-
oder L-Valyl-L-alanyl-glycinrest, der entsprechende
Ester oder das entsprechende Amid ist. deren Säureadditionssalze und Komplexe.
8. I -a-Aminoisobuttersäure-corticotropinpeptide
der allgemeinen Formel
a-Aminoisobulyryl-L-tyrosyl-L-seryl-L-methionyl-L-glutamyl-i.-histidyl-L-phcnyl-
alanyl-L-arginyl-L-tryptophyl-glycyl-
L-lysyi-i.-prolyl-L-valyl-glycyl-X-L-lysyl-
i.-arginyl-Y
in der X ein 1 -Lysin- oder L-Ornithinrcst und Y
ein i.-Arginin-. 1 -Argininester- oder i.-Argininamidrcst
i·■'.. deren Saurcadditionssal/e und Komplexe.
9. I-a-Aminoisobuttersäure-corticotropjnpeptide
der allgemeinen Formel
a-Aminüisobutyryl-L-tyrosyl-L-seryl-L-methionyl-L-glutamyl-L-histidyl-L-phenyl-
alanyl-L-arginyl-L-tryptophyl-glycyl-L-lysyl-L-prolyl-L-valyl-glycyl-X-L-lysyl-L-arginyl-L-arginyl-L-prolyl-L-valyl-L-lysyl-L-valyl-L-tyrosyl-Y
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