DE1918153A1 - Neues proteinartiges Fermentationsprodukt - Google Patents
Neues proteinartiges FermentationsproduktInfo
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Description
Neues, proteinarfci^es Fermentationsprodukte
Di 3 vorliegende "Zrf induiia: betrifft ein neues j Mitomalcin
■-.-'Vinntes ?ernnntati3n3^roCukt, sowie dessen Herstellung: durch
Periient^tio'i und Kathoden i-.ur laolierung und tjösä Heindarstel-Itui;
-»us liohlÖGUii en ;-iie Gärbrühen. - C-e genstand, der Erfindung
Kino sowohl verdünnte.Lösungen dieses Produkts, Rohkonzentrate
soviIe c\c:f. reine ritorraljine
Das erf i-i^'un· r:?rer.U"L e neue Produkt"!st"--a-l-s-'-aatlleukämisches
und anti'oioti.'sohes Lit bei- sowie als Korrnlextildner für mshr-'■•rorti;:'3
t'bergangsmetallio-ien wie Kupfer, Kobalt, Nickel, Mangan,
"iirilf und Cadmium br:.uchbar. Es eignet sich daher zur Entfernung·
-'viehrw.er.tiver Ionen aus biologischen Synthese-' und Analyseverfahrene
nls Antibioticum inhibiert es sowohl gram-positive wie
?rai!i-nej;ative Bakterien und ist daher als Therc^peuticum, sowie
in der Veterinärmedizin, Industrie und Landwirtschaft brauchbare
Es kann ferner als Desinfektionsmittel eingesetzt werden
sowie 2urn Trennen von Mkroorganismen für medizinische oder
diagnostische Zwecke oder dgl.
1919153
kitomaloin, ein proteinartiges antileukämisches, antibiobisches
und komplexbildendes kit-tel, wird bei der Züchtung
einer neuen Species eines Mikroorganismus, der mit Streptomyces malayensis bezeichnet.wurde, unter kontrollierten Bedingungen
gebildet. Zu den erforderlichen Bedin-nr" on -ehören Kultivierung
in wässrigem Nährmedium unter submers:-r. "cobe-i Bedingungen bei
Temperaturen zwischen etwa 24 und 30° und einem ρH-Viert zwischen
etwa 5t5 und etwa 8,5» während Zeiträumen, die zu einer wesent- '
liehen antimikrobiellen Aktivität im Medium fahren. Der Wirkstoff
wird sodann durch Dialyse der C-ärbrühe oder durch Adsorption an Diäthylaminoäthylcellulose und anschließende EIuierung
mit"wässriger Natriumchloridlösung und Dialyse des EIu-.
ats gewonnen. Er wird chromatographisch an einem stark basischen
AnionenaustauEcherharz gereinigt, des nit Wasser eluiert wird,
worauf an Diathylaminoäthyl-Sephadex chromatographiert wird«
In den beiliegenden Zeichnungen (?ig. 1 und 2) werden die
charakteristischen UV- und IR-AbsorptionsSpektren des erfin- .
:'un;Tsgema.3en Produkts wiedergegeben.
Der zur Verwendung gelangende Fikroorcanismus,- der aus einer
Bodenprobe aus I-ialaya isoliert wurde, besitzt die Eigenschaften
der Streptomyceten. Er wurde auf "I-iedien gezüchtet, die
üblicherweise zur Beschreibung und Identifizierung von Streptomyceten
angewandt werden, wobei die bei der Züchtung auftreten-*
den Charakteristica mit den von Waksman und Lechevalier, "in
"Actinomycetes and Their Antibiotics", The Williams & Wilkins Company (Baltimore, 1953) beschriebenen verglichen wurden. Sine
Kultur der neuen Species Streptomyces malayensis wurde bei der American Type Culture Collection, Washington, D.C. unter der Nrβ
ATCC 21163 deponiert. - ' t ■
Der S. malayensis^s 1 P. nov. ATCC 21163 wird in der Sammlung der Chas. Pfizer & Co., Inc. als Isolate BA-6685 bezeich» ·
net.
Die Eigenschaften der neuen Species Streptomyces malayensis. werden in der folgenden Tabelle wiedergegeben^ in der die nach
ÖÖÖÖ88/i7g7 - ■ : ■ "'
IADGRiGlNAL
* ' -3 zweiwöchiger Züchtung gemachten Beobachtungen festgehalten sind.
Luftmyoel - sehr reich, nahezu mausgrau bis tief oliv^rau
(Ridgway), falls gefärbt} Ränder der Kolonien häufig fransig und weiß.
Vegetatives Kycel - Blafdgelb bis gelblich-braun, jedoch dunkelgrau auf Tomatenpaste-Haferrnehr-Agar und manchmal
mit ros*Färbung auf synthetischem und Calciummaletagar.
- - .
Lösliches Pigment - Kein Melanin.. Schwachgelb bis gelb-braun in
einigen Medien} in Milch zunächst lachsfarben, dann rosa-v/einfarbenj blaßjbräunlich-grau auf K"rtoffelkuchen.
Sporen - Rund bis breit elliptisch, meipt 1,3 χ 0,7/U, nit
feinen Härchen bececkt, die etwas stachli ir sind
(durch Elektronerirr.ikroskonie festgestellt), jedoch
nicht so rauh wie bei S. viridochrorriogenesj in Ketten
i.ieist 10-20 Sporen in Spiralen mit k-5 Windungen«
Zweige bildende Sporen erheben sich wechselptändig
oder gegenüberliegend und manchmal auirl-.
förrrii·;, jedoch ergeben sich bei der Verzweigung häufig Büschel von Spiralen.
Gelatine - Schwache Verflüsr ir.uv-f,
*?lt rate - Kitritbild um:·.
Stärke - Schwache Hydrolyse.
HiIch - Coagulierun^j la^.rsar.e und partielle Peptonisierun~.
Ca-malat - Wird \ier,iaut. _^ :........
HpS-Bildung - Ef*wird H9S re'eildet (l'est mit Eleiacetatstreifen)
aus Pepton i1 iJi-·--\\-^gar-Schrägnährboden und Scir'itielkoll-e1-.
::ϊχ -i^cr., rrote.osepenron, Trypton und
^'steir. durch Hydrochlorid und manchmal schwach aus
Cellulose - Kein Wachstum. Aerobiose - Aeroc.
50 C. - Kein Waclistum
50 C. - Kein Waclistum
Kohlenstofi*quellen - V.'äohst auf Arabinose, Dextrin, Fructose,
Galactose," Glucose, Glycerin, Inosit, Inulin, Lac-S»
Iv"-"-2'it, Haffinose, Hharanose, Salicin,
BAD
- yr-
Sorbit, Stärke, Sucrose, Trehalose und Xylose. . Wuchs manchmal auf Natriumacetat, Äskulin, Sorbose (±) und manchmal, jedoch fraglich, auf DuI-cit.
Diese Kultur wurde verglichen mit verschiedenen Specicn mit haarigen Sporen und erschien zunächst
dem S. calvus etwas ähnlich. Die beiden Kulturen wurden dann nebeneinander auf gleichen
Medien gleichzeitig gezüchtet. Dabei wurde ein Stamm von S.calvus ATCC 13382 verwendet. Die danach
auftretenden Unterschiede sind folgende:
S, malayensls, ATCC 21Z163
Vegetatives Kyeel, grau-braun
Pridham's Hefeextrakt-Agar
Synthetisches Agar Luftmycel bildet
sich. Vegetatives Myeel bräunlich-
Tomatenpaste
Sporen
Vegetatives Kycel dunkelgrau in der Kitte der Unterseite
und grau-braun am Band
Rund bis breit ellir>tisch
S, calvusj ATCC 133*32
Vegetatives Mycel, nahezu schwarz
Kein Luftmyeel. Vegetatives
Myeel blaß gelb.
Vegetativen Ilycel gelb bis dunkegrau
S tabellenförmig
Daneben bestehen Unterschiede bei Verwendung bestimmter Kedien,,
r?.'- r"i;.-r 7or-;l<;.'ei. \--.s '*?sch reibung von S, cflvus durch Wakeman .
in "The Actinomyces", the Williams and Wilkins Company, Baltimore,
Bd, II, 187 (1961) mit den Daten von EA-6685 zeigt:
Kartoffelkuchen
GoIntine
GoIntine
S. malayensls«
ATCC 21163
S. calvus
Keine Piprnentbildung Pigmentbildung
kein Luftmycel
Hildung eines Luftrnycels
ja
nein
iAD ORIGINAL
. Es wurde gefunden, daß bei Züchtung einer Sporensuspen-•
sion von Isolate BA-6685 auf Glucose {!%), Hefeextrakt {!%),
KpHPOh (0,05$)-Agar bei 280C mindestens 9 Varianten, davon jede
mit deutlich unterschiedenen morphologischen Eigenschaften, gebildet
wurden. Wiederholte Übertragung der Varianten auf dasselbe Medium zeigte, daß die Eigenschaften beibehalten werden.
Das Stamm-Isolate BA-6685 und 6 der Varianten verlieren scheinbar
ihre Fähigkeit zur Bildung von Mitomalcin nach wiederholter
Übertragung, und sogar auch beim Stehen bei Raumtemperatur oder
' in der Kälte. Die beste Methode zur Beibehaltung dieser Varianten
wie auch der Stammkultur, besteht darin, daß man eine Serie von Schrägnährböden aus einer vegetativen Kultur herstellt und
diese während einer Periode von etwa 2 Monaten verwendet. Eine neue Serie von Schrägnährböden wird dann aus der so erhaltenen
Variante hergestellt. Die 3 t weiteren Varianten behielten ihre
Fähiü'keit zur Bildung von Mitomalcin nach 2wel Standard-Übertragungen
bei. Sie wurden mit Isolat BA-6685B, BA-6685H und BA-6685I
in der Sammlung der Ghas« Pfiser & Co05 Inoes bezeichnet»
Kulturen dieser 3 Varianten wurden ebenfalls bei der /unei'ica*?.
Type Culture CoIIeGtIOn2 Washington«, D0 Co unter den Hummern
2116^9 2II65 und 21166 feponierto Di© 3 Varianten srar&en als
Streptomyees imlayensis Variants B3 H 12M 1 bezeichnet»'
Das Stamm- Isolat BA-6685 und die 3 oben genannten Varianten wurden auf mehrere Schrägnährböden mit Pridhamfs Yeast-Extract
Agar überführt, welches als Wuchsmaterial für die ve rgleichenden Untersuchungen verwendet wurde.
Als Medien wurden in den vergleichenden Untersuchungen folgende eingesetzt: Synthetisches (Czapek's) Agar ('Waksman, The
Actinomycetes 1950» S. 193 - Medium No. l)j Tomatenpaste-Hafer-.
mehl-Agar (Pridham et al. Antibiotics Annual, 1956-1957, S. 951)
Iridhani's Hofeextrakt-Agar (Antibiotics Annual, 1956-1957,
S. 9^7-953) I Gelatine (Gordon & Milim, Jr. Bact. 73:15-27, 1957)',
Glucoso-Asparagin-Agar (Waksman, The Actinomycetes, 1950} S. 193,
Medium No. 2)| Glucose-Agar (10 «·., Pep ton 10 gkl Fleischextrakt
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BAD
5 g., NaCl 5 g., Agar 15 g., dest. Wasser 1 liter)} Nähr-Agar
(Waksman, The Actinomycetes, 1950, S. 193, Medium No. 5)\ Stärke**
Agar (Kartoffelstärke 20 g., NH^Cl 0,5 g., Agar 15 ., .dest. Wasser 1 Liter)} Galcium-Malat-Agar (VJaksman, Bact. Rev. 221:l-29r.
1957)| Tyrosin-Agar (Gordon k Smith J. Bact. 69:147-150, 1955)}
Glucose-Hefeextrakt-Agar (Glucose (IJi)1- Hefeextrakt (1%),
(0,05$))} Kartoffelkuchen, entrahmte Milch} Cellulose (K
(1 g.), MgNH4PO^ (0,5 &), dest. Wasser 1 Liter, pH 7,0; 8 ml ;
pro Reagensglas, jedes Reageniglas enthaltend einen Streifen
Filterpapier, der über die Gärbrühe hinaussteht)} Kohlenstoffquelle ("Carbon Utilization") (Pridft£;.m & Göttlieb, Jr. Bact,·
56:107-114, 1948 - Grund-Agar)} Dextrqse-Nitrat-brühe (Waksman,
The Actinomycetes, 1950, S. 193» No. I-ir.it 30 g. Dextrose anstelle
von Sucrose und ohne Agar)} Organische NitraWbrühe (Gordon & Mihm, Jr. Bact. ,73.Ί5-27, 1957)} HgS-Bildung (Difco
Pepton-Eisen-Agar mit und ohne Hefeextrekt)} Kandier- und Kutz»
ner-Medium} Glycerin (10g.), L-Asparagin (i g»)s K?HPO^ (1 g» K/
NaGl (2 g.), MgCl2 (0,5 g.), CaCC2 (0,2 g,)p HgO (1 Liter) plus
luster & Williams' (Applied Eicrot>lolo 12j46-52* 1964) verschieäene'
S»Quellen: Oysteia^HGl (O505 ge/100 ffile)'s Wa9S2Oo
(Q3Oi?-go/100 SIo)2 Spypton (1^75 go/iOG IaIo)9 Pepfcon {lp6l'-g»/ :'.
IOD si,5-3 P?otsose«?epton Ci9 56 gö/10ö ml»), sämtliche bei .pH % ■.. '
getestet mit Bleiaeetatstreifeno . .' --
0,5 nil einer Sporensuspension der Kulturen wurden den ReagenzrÖhrchen
mit Nitratbrühe, entrahmter Milch und Kolben mit Medien zum Testen der HgS-Produktion zugegeben. Auf die anderen
Platten und Schrägnährböden wurde ein Tupfer der Sporensuspen«.
sion gegeben. Mit Ausnahme der eigens bezeichneten Fälle wurden sämtliche Kulturen bei 280C inkubiert. Die Inkubierung erfolgte während verschiedenen Zeiträumen von bis zu 2 Wochen. x
Die Ergebnisse sine! nachfolgend zusammengestellt: Starke-Hydrolyse - keine Hydrolyse, abgesehen von 2 mm durch BA-
6685B nach 14 Tai;;en.
GeIatineverflussigung - 5 bis 8 mm-Zone durch sämtliche Kulturen
·" ■""'"'■: . '-"" nach 7"Tagen, 10 bis 12 mm durch sämtliche
Kulturen nach 14 Tf.;,en. »
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-. - BAD OBiSINAL
yitratreduktion - nach drei Tagen hatten sämtliche Stämme, mit
Ausnahme von BA-6685B Nitrit produziert. Nach Ik Tagen i/urde auch bei BA-6685B eine sehr
schwache Nitritbildunf beobachtet, während in
dsn anderen Fällen die Reaktion auf Nitrit
• stark war. Gleiche Ergebnisse wurden rr:it bei
den Medien zur Nitratreduktion gefunden«
Entrahmte Milch - BA-6685 verursachte nach 7 Tagen Koagulierung
und Feptonisierung und bildete ein rasafarbenes,
lösliches Pigment*. Eei den anderen Kulturen
waren Peptonisierunp· und Bildung an löslichem Pigment lar.nsarier. .Tacn lh Tagen war
in allen Fällen Koagulation und Peptonisierung eingetreten, und ein lachsfarbenes lösliches
Pigment hatte sich gebildet, E<,i BA-6685 und
BA-6685B betru3 der pH- 7,2 bei den anderen
Kulturen 6,8 (Vergleich 6,6), - Nach sletentü ;i;-sr Tvuhtunf bei 28°C in der
Schüttelrnaschine wie aus Tabelle II ersichtlich.
3A-6'.' ο 3 EA-6':65? PA-
6.-f:^'1 ~\-h(b.*l
Gr u-id-A.-ar -
Cystein stärk ~l.ark .-*' rY
Ka0S,-CU scr. :;cn -
Pepton + + + f
Try pt on -.- st.^rk .h rk st, rk
Proteofic st.irk .:-L.\rk st--.rk st;irk
Fe-ptop + + + +
Auf Fepto.n-Eiser.-Agar ergaben sä^t'iione Kulturell sov^?o}ll mit
wie auch ohne 0,1"· Hefeextrakt iinerhalt 3 Ti-^en Schwefelwas-
eeratoff.
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verbrauchte Cellulose - keine der Kulturen ^Cellulose «
Calcium-malat - Verdauung
Kohlenstoffquellen - sämtliche Kulturen wuchsen gleich gut oder
nahezu gleich gut mit folgenden Kohlens toff quellen.: Arabinose, Dextrin,. Fructose, Galactose, Glucose,
Glycerin, Inosit, Inulin, Lactose, Maltose, Mannit, Räffinose, Bhamnose, Salicin, Sorbit, Stärke, Sucrose,
Trehalose, Xylose, Na-acetat, Aesculin, Sorbose,
und Dulcit. Auf Sorbose ergaben alle +-Wachstum}, auf Dulcit war das Wachstum bei BA-6685 und BA-6685B
fraglich, jedoch eindeutig negativ bei BA-6685H und BA-6685I.
Sauerstoffbedarf - alle Stämme waren sich in ihrem aeroben Verhalten
gleich.
Wachstum bei 50 C - alle Stämme wuchsen nicht bei 50 C, jedoch
Wachstum bei 280C.
Kartoffelkuchen - gutes Wachstum; kein Luftmycelj vegetatives.
Mycel trüb gräulich-braun} braunes lösliches Pigment«
BA-6685B -.. wie BA-6685.mit der Abweichung, daß die Farbe des *
vegetativen -ycels und des löslichen Pigments blaß
war.»
BA-6685H - wie 3A-66S5
5A-6685I - wie BA-6685
Luftmycel - nach 3Λ-tägiger Inkubierung wurden die Kulturen auf
verschiedenen Medien verglichen.
BA-6685 - gutes Wachstum auf allen Medien. Keine Sporen auf
Glucose-Agar oder Ni:hr-Agar. Sporenfarbe (Ridgway)i
f Olivgrau bis dunkeloliv.-rau auf Glucose, Asparagin,
synthetischer Agar, Pridham's Agar, Tomatenpaste-Hafermehl,
Calciummalat und Tyrosin. Sporenfarbe
hellmausgrau bis mausgrau auf Gelatine, -1Starke und
C-lucose-Hefeextrakt«
BA-6685B - Wachstum schlechter als tei BA-6685, so daß die
Kolonie dünner und rai.t weniger Sporen versehen ist.'
Sporenfärbung wie bei BA-6685, mit folgenden Ausnahmen: Kein Luftmycel auf Glucose-Asparagin-Agarj sehr
geringe Sporentildun? auf synthetischem Agarj
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nackt auf Glucose-Agar; dünn, weiß auf Nähr-Agarj
blaßolivgrau auf Tomatenpas te-Hafermehl-Agar;
dünnes Wachstum mit wenig Luftmycel auf Tyrosin,
BA-6685H - sehr ähnlich BA-6685 mit folgenden Ausnahmen:
Auf synthetischem Agar ist das Luftmycel beschränkt auf die Ränder der Kolonie und liegt
dort als weißer, fransiger Hand vor, während die Mitte der Kolonie zimtbraun ist; auf Tyrosin-Agar
ist die Sporenfarbe etwa mausgrau.
SA-6685I - ähnlich BA-6685, mit folgenden Ausnahmen! auf
synthetischem Agar keine Sporenbildung, sondern weißes Luftmycelj auf Glucose-Agar ist die Kolonie
nackt ; auf Calciunwnalat stärkere Sporenbildung.
Substratmyeel - BA-66851 blaßgelblich bis gelblich-braun bis
bräunlich-grau auf verschiedenen Medien (blaßgelb auf Gelatine-, N'rhr-, Calciummalat-Agar;
gelb auf TJfyrosinj gelblich-braun auf synthetischem
und Glucose-Agar; gelblich-braun mit grau auf Glucose-Asparagin-Agar, Glueose-Hefeextrakt-Agar
und Pridham's Hefeextrakt-Agar; hellgrau auf Stärke).
BA-668^3 - wie BA-6685, mit folgenden Ausnahmen: Gelb-braun
auf Stärke, gelb-oliv auf Glficose-Asparagin-Agarj
gelb-braun auf Glucose-Hefeextrakt-Agarj blaß
durchscheinend gelb-braun auf synthetischem Agar| dunkelbraun auf Pridham's Hefeextrakt-Agarj blaßgelblich-oliv
auf Tyrosin»
BA-6685H - wie BA-6685, mit folgenden Ausnahmen: Gelblichbraun auf Gelatine; hellorange-braun auf Glucose-Asparagin-Agar;
hell bräunlich-orange auf synthetischem Agar; braun auf Pridham's Hefeextrakt-Aimr;
gelblich-braun auf Tyrosin-Agar,
BA-6685I - identisch mit PA-6685H und daher von BA-6685
analog verschieden.
Lösliche .Pigmente - BA-6685J*, kein lösliches Pigment mit Ausnahme
von blassem Gelb, auf synthetischem und gelb auf Glucose-Agar und Tyrosin-Agar,
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-*+-. 19Τ8153
Ba-6685B - wie BA-6685, mit Ausnahme der folgenden Medien: Gelb ■
auf Glucose-Asparag-in-, synthetischem, Pridham's Heft*»,
extrakt-Agarj gelblich-braun auf Glucose-Pepfcon-und
Tyrosin-Agar, hellbraun auf Glucose-Agar und Tomatenpaste-Hafermehl-Agar.
- .
BA-6685H - wie BA-6685, jedoch hellbraun auf Glucoee-Pepton- und
Tomatenpaste-Hafermehl-Agarj gelb auf Glucose-Agar
und synthetischem Agarj hellgelblich-braun auf Tyro«
ain-Agar.
BA-6685I - wie BA-6685, jedoch gelb auf Glucose-Asparagin-, synthetischem
und Glucose-Pepton-Agari hellbraun auf ·
Tomatenpaste-Hafermehl-Agarι hellgelblich-braun auf
Tyrosin-Agar.
Morphologie der Sporenkettea - alle Kulturen waren im Grund
gleich, jedoch waren bei BA-6685B viele Windunsren
offener, und es lagen weniger Ketten vor,
Sporenform - alle Stämme gleich: Sporen stabellenförmig, meistens
1,0 χ 0,7/ü.
Sporenoberfläche - alle Stämme mit dünnen, stachligen Erhebungen,
Selbstverständlich ist die vorliegende Erfindung nicht auf
die Verwendung der oben beschriebenen Organismen oder auf Orga·*
nismen, die obigen Beschreibraigem voll entsprechen, beschrärrt} '
vielmehr sollen diese nur zur Illustrierung der Erfindung dienen.
Die Erfindung umfaßt daher auch die Verwendung natürlich vorkommender
oder künstlich erzeugter Mutanten und/oder yarianten»
wie sie aus dem beschriebenen Organismen in verschiedener Weise.,
2»B. durch Böntgentestrahlung, UV-Bestrahlung, Behandlung mit
Senfölen und dgl. erhalten werden.
Die vorliegende Erfindung umfaßt auch Verfahren zur Züchtung des Fiikroorganisinus S. malayensis ATCC 21163 und dessen...
Varianten ATCC 21164, 21165 und 21166. Die Züchtung dieser Mikroorganismen
erfolgt vorzugsweise in wässrigen Nährmedien.bei Ternperf-.turen zwischen etwa 24 Lind 3O0C und einem Ausgangs- pH--Wert
sv.is.ihen ebvjH. 5,5 und 8,5 unter submersen, aeroben'Bedingungen und unter Rührung. Bevorzugt wird ein Ausganges-pH-Wert *
zwischen etwa 5t5 und 7ι da er zu» verbesserten Produktausbeuten.
909866/1787
ORIGINAL "I
' führt. Geeignete Nährmeäien zur Durchführung derartiger Züchtungsverfahren
enthalten ein Kohlehydrat, s.B. in Form von. .
Zucker, Stärke, Glycerin, I-iaismehlj eine .Quelle für organischen
Stickstoff wie z.B. Casein, Soyabohnenraehl, Erdnußmehl, Trypton,
Weizenglut en, Baumwollsamenmehl, Lactalbumin, enzymatisch abgebautes
Gasein, Ferner sind in den Hediuri zweckmäßig wachstumsfordernde
Stoffe wie Distiller's Solubles, Hefeextrakt, Kolassenextraktrückstände,
sowie Hineralsal-ze wie Natriumchlorid, Kaliumchlorid,
Ksliumphosphat, Marne?iumpulfat, und Spurenmineralien
handen. wie Kupfer, Zink und Eisen, vor·- Bis besonder? geeignetes und
bevorzugtes Medium enthält Glucose, Sovatohrenmehl und Kaliumphosphat.
Falls bei der Fermentation ein übermäßiges Schäumen auftritt, können Antischaummittel wie pflanzliche öle zugesetzt
werden. Der pH-Wert bleibt im allgemeinen weitgehend konstant]
wenn Veränderungen auftreten, kann me.n weiterhin einen Puffer wie Calciumcartonat zusetzen.
Ein Inoculum zur Herstellung von Mitomalcin kann erhalten
werden, indem man da ε vor. Schrägnährböden der vorstehenden Kikroorganisraen
erhaltene WachFtumsprodukt auf KeJien wie Emerson's
Agar oder Fleischextrukt-Läctose verwendet. Kit dem Wachstumsprodukt
können sowohl Schüttelkolben wie Inoculum-Behälfcer beimpft
werden, oder die Inoculum-Eehälter können r-it dem Inhalt
der Schüttelkolben beimpft werden. Dvε Wichs turn der l-iikroorganismen
erreicht gewöhnlich nach etwa eir. 1-ir zwei Tagen sein
Maximum. Durch Veränderungen an der Aiilage, der Eelüftung, der
Hührgeschwindi^keit und dsl. "kann die Geschwindigkeit, rit der
die maximale aktivität erreicht wird, nachteilig beeinflußt werden. Im allfemeinen wird, die C-ärung solange' fortgeführt, bis das
Medium eine wesentliche, antinsikrocielle Aktivität aufweist. Im
allgemeinen ;eiiügen dasu Zeiträume vor. etwa 16 bis 72 Stunden.
Maximales Wachstum wird in Verlauf von 21 bis 28 Stunden erzielt.
Zu diesem '"eitpunkt liegen optimale anti-leukämische und antimikrobielle
Aktivität vor. Die Belüftung des Kediums in Behälters für sucmereses Wachstum, wird vorzugsweise bei etwa 1/2
bis 2 Volumenteilen freier Luft pro Volumenteil Gärbrühe pro
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gAD
Minute gehalten. Die Bewegung des Mediums kann mit den bei
Fermentationen üblichen Kitteln erfolgen. Während der Überfüh-• rung des Mikroorganismus und des Wachstums in den einzelnen
Stufen müssen selbstverständlich aseptische Bedingungen eingehalten werden.
Nach beendetem Wachstum des Mikroorganismus kann das Myeel
durch- Filtration, Zentrifugieren oder dgl. von der Fermentationsbrühe
getrennt vjerden. Danach kann das Mitomalcin nach verschiedenen
Verfahren gewonnen werden« Dabei kann man direkt von
der filtrierten Gärbrühe oder vom Trockenprodukt ausgehen. Vor«,
zugsweise werden die Produkte wie nachstehend beschrieben gereinigt:
I-ütomalcin, das von S. malayensis ATCC 21163 und dessen
Varianten produzierte, antileukämische Mittelmann nicht mit
üblichen organischen Lösungsmitteln (Benzol, Toluol, Chloroform, Tetrachlorkohlenstoff, Methylenchlorid, Äthylenchlorid, Petro}.-äther,
Diäthyläther, n-Butanol) oder Phenol aus seinen Gärbrühen extrahiert werden. Es erliegt nämlich in nicht-wässrigen
Mecien wie auch in wässrigen Medien mit pH-Werten oberhalb 8
einer raschen Denaturierung. Es wird aus Gärbrühen und aus wässrigen
Lösungen durch Adsorbenfcien wie Kohle und Puller(s. Erde
(ein Kagnesiumaluminiumsilikat) nicht adsorbiert, und es ist
mit Hilfe von Cellophanmembranen nicht dialysierbar. Die Denaturierung
in Gegenwart von Lösungsmittel und die fehlende Dia- .·
1-ysierbarkeit weisen auf eine proteinartige Natur des Produkts
hin. Mitomalcin wird hingegen an Diäthylaminoäthylcellulose
(DEAE-Cellulose.) adsorbiert, von welcher es leicht mit wässriger Natriumchloridlösuns, eluiert werden kann.
Verschiedene Methoden können zur Gewinnung des 'Mitomalcins
P-v.k wässrigen Lösungen, z.B. Gärbrühen, eingesetzt werden» Na,ch
einem Verfahren wird eine solche Brühe unter Verwendung von 1 .bis 2% Diatoir.eenerde filtriert. Das Filtrat wird bei vermindertem Druck (unterhalb 35°C) auf etwa 10% des Ausgangsvolumens
_ eingeengt, das Konzentrat wird geklärt und dann gegen Leitungswasser
2k Stunden lang bei 5°C dialyciert. Der Inhalt des Dia-
90 9886/178 7
BAD ORIGINAL
, lysiersacks wird sodann gefriergetrocknet. Der "bei der Gefrier-•trocknung
anfallende Peststoff ist wirksam gegen Leukämie L-1210,
Nach einem zweiten Verfahren wird die eingeengte Gärbrühe
mit genügend Ammoniumsulfat verrührt, so daß man eine 67#-ige
gesättigte Lösung (ca· k2 g pro 100 ml) bei 5°C erhält. Dann
werden dem Gemisch 2 bis % Diatomeenerde zugegeben, danach
.wird filtriert. Der Filterkuchen wird mit 6?#-iger gesättigter
Ammoniumsulfatlösung gewaschen und dann mit 1 Volumenprozent
der Ausgangsbrühe einer 2#-igen Natriumchloridlösung verrührt»
■ Das Gemisch wird filtriert und der Filterkuchen wird nochmals
mit dem gleichen Volumen 2$-iger wässriger Natriumchloridlö-.
sung extrahiert. Die vereinigten Salzlösungen werden gegen Leitungswasser 2 Tage lang dialysiert, dann wird gefrierge«.
trocknet. "
Nach einem weiteren Verfahren wird die konzentrierte und
dialysierte Brühe durch eine Säule geführt, die Diäthylominoäthylcellulose
in 0,01-molarer Phosphat-Pufferlösung (pH 7$0)
enthalt. Die Menge an Diäthylaminoäthyleellulose entspricht
etwa 1 bis 3 g pro Liter Atisgangsbrühe, Sobald die Pr öbe die
Säule passiert hat, wird sie mit dem dreifachen Volumen der Füllkörperschicht an 0,01-molarer Phosphatpufferlösung (pH 7)
gewaschen. Die Eluierung erfolgt mit %i-iger Natriumchloridlösung
in 0,01-molarer Phosphat-Pufferlösung mit einem Volumen,
das 1 bis 2$ des Volumens der Ausgangsbrühe entspricht. Das
Eluat wird gegen Leitungswasser dialysiert und dann gefriergetrocknet.
Die .drei obigen Verfahren können auf Gärbrühen angewandt
werden, die mit beliebigen Medien erhalten wurden. Die beiden folgenden Verfahren sind nur dann anxvendbar, wenn Medien mit
minimalsm Salzgehalt (unterhalb 3fo), verwendet wurden; dabei
wird Einengung und Dialyse der filtrierten Brühe umgangen. Nach
dem ersten Verfahren wird die filtrierte Brühe direkt durch eine·
Säule mit DEAE-cellulose (1-3 g. pro Liter) in 0,01-molarer
Phosphatpufferlösung geleitet. Waschen und Eluieren der Säule
909686/1787
erfolgt dann wie oben beschrieben. Das Eluat wird dialysiertf
und das Produkt durch Gefriertrocknung gewonnen* <
Das zweite und bevorzugte Aufarbeitungsverfahren wird wie
folgt durchgeführt: Die filtrierte Gärbrühe wird, mit DEAE-CeIIu-.
lose (ca. 14 g./l) 30 Minuten lang gerührt, dann wird filtriert;»
Das Filtrat kann nochmals mit der Hälfte DEAE*Cellulose verrührt und dann filtriert werden, um die aktiven Bestandteile
vollständiger zu adsorbieren. Die DEAE-Celluloge wird dann zwei*
mal mit 4#-iger wässriger NatriumchloridlÖsüng in einer YoIu**
menmenge von 1-2$ der Ausgangsbr-ühe eluiert. Das Eluat wird
24 Stunden läng gegen Leitungswasser-dialysiert und
falls gefriergetrocknet, wobei man das rohe feste Produkt Zur weiteren Reinigung wird das Sluat oder eine wässrige Lösung
des auf obige Weise erhaltenen Rohprodukts an der Chlorid-, PhQSw
phat- oder Acetatform eines starken Anionenaustauscherharzes wie Dowex-1, Amberlite IRA-^OO, De-Acidite PP (sämtliche sind
stark basische Anionenaustauscher aus Polystyrol, das -NMe„ - y
Gruppen enthMltj Hersteller Dov? Chemipal Co,, Rohm & Haas Co,\ S
The Permutiti Co*, Ltd.) ch'romatographiert. Mit der Pho@phatfori|F
dieser Harzej scheint man etwas bessere Ergebnisse als mit άϋη |
anderen Salfcforffien zu erzielen. Eine wässrige ^ Lösung des Roh4
Produkts wird durch die mit Harz gefüllte Säufce geführt,die a^*
schließend mit Wasser, gewaschen wird* Das aktive" Ma.terial. liegf
in der aus der Säule austretenden Lösung und der Waschflüssig-s
keit vor, während 70-90$ der optischen Dichte bei 280. ψχ und die
Hauptmenge an Farbstoff adsor-biert wird. Austretende Lösung
und Waschlösung werden dialysiert und dann gefriergetrocknet.
Das Produkt der Gefriertrocknung wird sodann an schwach .
basischem Ionenaustauseherhar-z DEAE-Sephadex (Diäthylaminpäthylderivat
von Sephadex, einem verjnetsten Dextran enthaltend Di- .
äthylaminoäthylgruppeii als funktioneile Gruppen, Hersteller
Pharmacia, Uppsala, Schweden) mit 3-6 g Har-z pro g Probe chro- "
matographiert, .
Das Sephadex wird in 0,01-molarer Phosphatpufferlösung .>-.
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BAD ORIGINAL
(pH 7) gequollen, mit Pufferlösung gewaschen und mit der Wirk-Stoffprobe,
die in einem minimalen Volumen Wassers gelöst ist, versetzt. Die Säule wird mit linear ansteigende Mengen Natriumchlorid
(0-1$) enthaltendem, 0,01-molarem Phosphatpuffer (pH 7)
eluiert. Die wirkstoffhaltigen Fraktionen (bestimmt durch ihre
Wirksamkeit gegen B. subtilis und optische Dichte bei 250 und
280 mu)werden vereinigt, dialysiert'und gefriergetrocknet, wobei
man einen cremfarbigen Feststoff erhält.
Die weitere Reinigung erfolgt.unter Wiederholung der Säulenchromatographie
oder, vorzugsweise durch Chromatographieren an Sephadex G-100 (schwach saures,* vernetstes Dextran mit Carboxymethylgruppen,
Herrteller Pharmacia, Tipps Ii, Schweden)·
Hierbei wird die Säule, die in 0,1-molarer Aranoniumcarbonatlösung,
welche mit Ameisensäure? auf pH n,5 gepuffert ist,
gequollenem Sephadex gefüllt ist, mit einer Probe des Wirkstoffs
beschickt, welcher in ·=»ϊη?:π minimalen Volumen der Pufferlösung
gelöst ist. Die Säule"mit derselben Pufferlösung eluiert, die
linear ansteigend 0-1$ Natriumchlorid enthält.' Anstelle der natriumchlor
idhalt igen Pufferlösung kann auch Wasser oder 0,0025-molare
Essigsäure als Eluierungcmittel dienen;
Das so erhaltene Produkt ist i: cK-?ereich zwischen 1 und
beständig. Es stellt ein weißes, terniisch unbeständiges, amorphes
Pulver dar, das keinen bestimmten Schmelzpunkt aufweist,
sondern allmählich zwischen 250 ur.r? 270° zersetzt wiri. Das UV-Absorptionssoektrun
(s, Fi^. 1) in V!a?5ar zeigt breite Banden
bei 325 bis 330 nju und ein klares Kixi::ar: cei 276 ipu, Et7' =
/ / ' 1 cm
15-18. In .'ilkalischcr Lösung; -.riri die 3-i:-?de hei niedriger WeI-
1 ^
lenlänr;e nach 250 niu, E7/J-_ = 36 verschoben. Das IH-Süektrum
lenlänr;e nach 250 niu, E7/J-_ = 36 verschoben. Das IH-Süektrum
/ 1 CIi
(2 Gew.-55 in KBr-Pellet) zeigt starke $ Bander, bei 3,05, 6,0$,
6,55, 7,20, 8,05 und 9,30 (Fiu. 2). Eine Ausfällung 5?.it Ammoniumsulfat
erfolgt bei 50 bis 75^-iger Sätti^unr unter Erhaltung
der Aktivität. Die Aktivität ist beständig in wässrigen ■ Lösungen mit niedrigem pH-Wert (1-3)» jedoch nicht bei hohen
pH-Werten (6-11)* Das Produkt ist ar. gewöhnlichen Oellophen-
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membranen praktisch nicht dialysierbar. Die Verbindung zeigt
antibakterielle Wirkung, insbesondere gegen gram-positive Bakterien·
Die im Mitomalcin enthaltenen Aminosäuren, bestimmt am
sauren Hydrolysat mit Hilfe eines Technieon-Aminosäure-Anal/«
sators ( Technicon Corp., Ardeley, New York) Bind in Tabelle III
aufgeführt. Die, Zahlenwerte beziehen sich auf reines Produkt·
Tabelle III | i | |
Aminosäure | /U Kol/mK. | 10,28 |
Asparaginsäure | 0,663 | 10,99 |
Threonin | 0,709 | 8,11 |
Serin | 0,523 | 5,36 |
Glutaminsäure | 0,346 | 5,74 |
Prolin | 0,370 | 14,42 |
Glycin | 0,930 | 15,69 |
Alanin | 1,012 | 10,87 |
Valin | 0,701 | 1,35 |
Cystin | 0,087 | 1,55 |
Isoleucin | 0,100 | 5,66 |
Leucin | 0,365 | 0,85 |
Tyrocain | 0,055 | 4,25 |
Phenylalanin | 0,274 | 1,61 |
Lys in | 0,104 | 0,39 |
Histidin | 0,025 | 2,81 |
Arginin | 0,181 | 17,59) |
(Ammoniak | 1,135 | |
Ferner wurden folgende Aminosäuren gefunden:
Allo-3-h;.-droxyprolin n-Hydroxyprolin
Allo-hydroxyprclin
•^-Ar.ir oisobuttersäure
3-1 c-thylhistidin
Cc- mos a m in
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BAD- ORIölN'Ay
. Das Chromatographieoh. am schwach sauren Ionenaustauscher
''-Sephadex 5-100 (Determann et al, J. Chromatog. 2^, 303-313, 1966)
. Uestimmte Molekulargewicht beträgt etwa 1? A-OO.
Die"Wirksamkeit des .Mitomalcins bleibt in wässriger Lösung
bei Kühlung mindestens 6-I'onate lang unverändert, während der
gefriergetrocknete Peststoff seine Wirksamkeit,1 falls er unter
'Kühlung aufbewahrt wird, mindestens 2 Jahre lang beibehält.
Mtoraalcin zeigt sich bei Mäusen wirksam gegen lymphoide
Leukämie L-1210 und akute lymphozytische Leukämie P-388. Es ist
etwas wirksam gegen das Carcinosarcom Walker 25.6,
Durch Injektion von 0,1 mg/kg Mitomalcin wurde bei Fäusen
keine Anaphylaxe hervorgerufen,
Mitomalcin kann parenteral sowohl in wässriger Lösung oder
in physiologischer Kochsalzlösung zur Behandlung ve» verschiedener
Infektionskrankheiten bei Tieren und Menschen
eingesetzt, werdenj es kann ferner in verschiedenen pharmazeutischen
Zubereitungen verwendet werden. Derartige Zubereitungen
können flüssige Verdünnungsmittel, die sich zur Herstellungvon Lösungen direkt vor der"Verabreichung eignen, enthalten.
Als Beispiele solcher Lösungsmittel seien genannt: Propylenglycol,
Diäthylcarbonat, Glycerin, Sorbit uM dgl. Obgleich die
Verabreichung, auch auf anderem Wege erfolgen kann, wird der
parenterale Weg im allgemeinen bevorzugt. Die jeweiligen Dosierun-sformen
können Puffer, Lokalanesthetica und anorganische Salze enthalten.
Feste Mitomalcin-Präparate sollten d.ie Verbindung im allgemeinen
in einer Menge von min ei es tens 0,05 mcg/mg des Präparats
enthalten,- Flüssige Präparate werden entweder direkt gespritzt oder, vorzugsweise, durch Infusion zugeführt. Zur direkten Verabreichung eignet sich eine wässrige Lösung mit bis zu 0,5 mg
Wirkstoff pro ml der Lösung, Zur Infusion wird der Wirkstoff zweckmäßig verdünnt,.beispielsweise mit isotonischer Glucoselösung
auf ein 1, und allmählich im Verlauf von 6-8 Stunden verab·*
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»eiefewag reicht. Flüssige Formulierungen wie z.B. wässrige.Lösungen
sind insbesondere dann von Vorteil, wenn der Wirkstoff ..'■:
in einer Menge von etwa 0,1 bis 2,5 mg/ml Lösung oderSuspension verwendet wird. Selbstverständlich kann auch reines Mit omalcin
zugeführt werden. Die wirksamste Dosis, scheint bei 0,9
bis 1,0 rag/kg Körpergewicht zu liegen. Ausgezeichnete antibakterielle und tumorhemmende Wirkung wird bei 0,5 biß l»0 mg/kg
beobachtet. Als Antibioticum kann der Wirkstoff auch örtlich
angewandt werden unter Verwendung der üblichen Verdünnungsmittel
zur Herstellung entsprechender Formulierungen, .
Witomalcin wird auch mit Vorteil in Kombination mit anderen
pharmazeutisch zulässigen Verbindungen angewandt, wie z.B. mit Antibiotica vom Typus der Tetracycline, mit Carbomycin, Neomycin,
Bacitracin, Tylosin, Sulfomethiazin, Penicillinen und mit
anderen carcinostatischen Verbindungen wie den N-Lostverbindungen,
mit 6-I-iercaptopurin, 8-Äzaguanin, Urethan, Azanerin,
Triäthylamin, 6-Diazo-5-oxo-l-norleucin, Triäthylen-phosphoramid,
1,^-Dimethylsulfonyloxybutan, den carcinostatischen FoI-säure-Antagonisten
und dgl. ·
Wie bereits erwähnt, ist Tiitomalein ein aktives Antibioticum.
Das antibakterielle Spektrum wurde in vitro unter standardisie rten Bedingungen mit einer Nährbrühe bestimmt, Vielehe
die TestVerbindung in verschiedenen Konzentrationen enthielt
und rnit dem jeweiligen Organismus "beimpft wurde. Die. niedrigste
Konzentration (MIC), bei welcher der jeweilige Organismus nicht
mehr wuchs, wurde bestimmt, die Ergebnisse sind in Tabelle IV zusammengefaßt:
Antibacterielles Spektrum in Vitro
j
Staphylococcus aureus 5 3,12
Staphylococcus aureus 400 1,56
Streptococcus pyogenes 8668 0,78 Streptococcus pyogenes C203 0,39
Streptococcus faecalis . 3,12 »
9 09886/170 7
BAD ORIGINAL
- 19 - | Orcani.au« | JV | KIjC (mefr./ml.) | « | UOO |
OiplocoocuB pneumoniae | 0,39 | 3,12 | |||
Irysipelothrlx rhusiopathias | 0,39 | 12,5 | |||
Aerob*eter aerogtnee | >100 | 1,56 | |||
lsoheriohia ooli | >100 | 6,25 | |||
Froftaus Tulparis | >100 | 3,12 | |||
Pseu&omonas aaruginosa | >100 | 50 | |||
Saluonella typhosa | |||||
Klebalella pneuraoniae | |||||
Vibrio comma | |||||
Pasteurella multocida | |||||
Sarcina Iutea | |||||
Bacillus subtilie | |||||
Staphylococcus aureus 2O9P | |||||
Shigella sonnei | |||||
Beispiel 1 | |||||
Ein Nährmedium wur<?e hereectellt, vrobei folgende Stoffe
in der angegebenen Fenge pro Liter War-tar ein. yssstzt wurden:
Dextrose | 3.0 |
Glycerin | 3,0 |
Lactose | 3,0 |
repton | 0,5 |
Apparapin | 0,5 |
NaNO, | 0,5 |
Hirnstoff | 0,5 |
Corn steep liquor | 0,5 |
Fleischextr-kt | C, 5 |
Distillers soluMes | 0,5 |
Kefeextrnkt | 0,5 |
Weizenkeime | 0,5 |
Dann wurde mit Leituiiccv.'npser auf das ^eviur.schte Voiunen
aufcefüllt, IC Kinuten lang gekocht, homogenisiert,
filtriert, auf pK 7,0 einseEtellt und tei
1,05 atr. eine halbe Stunde lan-"sterilisiert.
909886/1787
1318153
Die sterile, abgekühlte Brühe (250 ml/Erlenmeyer Kolben mit 1 Liter Inhalt) wurde mit einer 10-tägigen Schräffnährboden-Züchtung
von S. malayensis ATCC 21163 inokuliert und für 70 Stunden '
bei 280C auf eine Schüttelmaschine gebracht. Dann wurde über ■ ;
Glaswolle filtriert, um größere Anteile des V/achsturns zu ent- '
fernen, und das Filtrat wurde über sterile Seitz-Ultrafilter der
Porosität s-1 'geführt. Das sterile Ultrafiltrat wurde zu. Versuchen
gegen Sarcoma 180, Adenocarcinema 755 und lymphoide Leukämie
1210 eingesetzt, wobei "die Versuchsführung nach dem CCNBC-Protokoll
erfolgte (Cancer Chemotherapy Reports 2£, 1-3 (1962)j
Protocols I.3OI-I.3O3). ■ ' ·
Die Versuche reigten, daß die Gärbrühe gegen lymphoide**'
Leukämie L-1210 bei Hausen äußerst wirksam ist»
Ähnliche Ergebnisse wurden ersielt, wenn man anstelle von
S. malayensis ATCC 21163 S. malayensis ATCC 21164, 21165 Ode-r
21166 einsetzte.
Das Verfahren von Beispiel 1 wurde wiederholt unter Verwendung von S. malayensis ATCC 21163 auf folgendern Medium:
Glucose | 1. |
Soysbohnenmehl | |
Dike11 iumph 0 s pha t | 0,2 |
Distiller's So#lubles | 0,25 |
CaIc iumcarh onat | 0,2 |
Natriumchlorid | 0,2 |
Auffüllen mit Leitungswasser
Die Gärbrühe wird unter Verwendung von 1-2$ Hyflo-Supercel·
(speziell behandelte Diatomeenerde, Hersteller Johns-llanville
Co., N.Y.), filtriert. Das Filtrat wird bei vermindertem Druck '
und unterhalt 35°C auf etwa 10$ des Ausgangsvolumens eingeengt·
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"BAD ORIGINAL
"Das Konzentrat wird dann zwei Tage lang gegen Leitungswasser
• bei-50O dialysiert, und der Inhalt des Dialysierbeutels wird
•gefriergetrocknet. Der Hückstand an rohem Mitomalcin ist wirksam
gegen Leukämie L-1210 in Dosen von 30 bis 100 mg/kg.
Wiederholt man das Verfahren mit S. malayensis ATCG 21164,
21165 oder 21166, so werden ähnliche- Ergebnisse erzielt,
Das Verfahren von Beispiel 1 wird unter-Verwendung des folgenden
Mediums wiederholt:
A.
Glucose | o,3 |
Glycerin | 0,3 |
Lactose | 0,3 |
Pepton | 0,05 |
Natriumnitrat | 0,05 |
51IeIS chextrakt | 0,01 |
Hefeextrakt | 0,03 |
Harnstoff | 0,05 |
Distiller's Solubles | 0,05 |
Corn steep Liquor | 0,05 |
Auffüllen mit Leitungswasser
Die Brühe wird über Hyflo Supercel (1-2$) filtriert und
das FiItrat wird bei vermindertem Druck unterhalb 35°C auf ein
Zehntel des Ausgangsvolumens eingeengt. Das Konzentrat wird sodann mit genügend Ammoniumsulfat zur Erzielung einer 67^-igen
gesättigten Lösung (ca. kZ g/100 ml) bei 5°C verrührt. Dann wird
Supercel (2-5$, Diatomeenerde, Hersteller Johns-Manville Co.,
N.Y.) dem Gemisch· unter Rühren zugegeben, danach wird filtriert. Der Filterkuchen wird mit 67#-iger gesättigter Ammoniumsulfatlösung
gewaschen und dann mit einer Volumenjfienge von 1% der Ausgangsbrühe
an 2%-lgev Natriumchloridlösung verrührt. Das Gemisch
wird filtriert Und der Kuchen wird nochmals mit der gleichen Volumenmenge an 2#-iger wässriger Natriumchloridlösung ex*.
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trahiert» Die vereinigten Extrakte in Form von Salzlösungen werden
zwei Tage lang gegen Leitungswasser dialysiert, danr wird
gefriergetrocknet. Das so erhaltene Produkt ist -egen Leukämie
L-I210 in Dosen von 20 bis 50 mg/kg wirksam. .·
Das Verfahren von Beispiel 1 wird mit S. malayensis ATCC
21163 wiederholt, jedoch wird die Gärbrühe wie folgt aufgearbeitet:
Das durch Filtrieren der Gärbrühe über Hyflo-Supercel erhaltene
Filtrat wird mit ca, 1 bis 2 g pro Liter DEAE-Cellulose
30 Minuten lang verrührt, denn wird filtriert. (Zur besseren
Adsorption kann das so erhaltene Filtrat nochr.£ls mit der ftaTS-benmVnge
DSAli-Cellulose verrührt und wiederum filtrie rt werden).
Fast der ges£>mte Wirkatoff wird an der DEAE-Cellulose adsorbiert,.die
anschließend zweimal mit einer Volumenmenge von 1-2$ der Ausgangsbrühe an ty$-iger wässriger Natriumchloridlösung eluiert
wird. Das 31uat wird 2k Stunden lang gegen Leitungswasser
dialysiert, dann wird gefriergetrocknet.-Das rohe Hitomalcin ist
in dieser Stufe bereits wirksam gegen Leukämie L-I210 in Dosen
von 15-50 mg/kg.
Das nach dem Verfahren von Beispiel k- erhaltene Produkt
wird gereinigt, indem man es in Wasser unter Bildung einer 5,^-igen
Lösung löst, die dann an Dowex-1-Harz in der Fhosphatf.orm chroma
tographiert wird. Das Harz wird vorbereitet, indem man die
Säule mit Harz in der Chloridform mit 0,2-molarer Phosphat-Pufferlösung
(pH 7) wäscht, bis die Waschlösung nur einen geringen Chloridgehalt aufweist» Die Säule wird dann nit-Wasser gewaschen,
bis sie frei von Phosphationen ist. Pro g des gefrigrgetrockneten,
rohen Kitomalcins werden etwa 10 g Harz verwendet«.
Nach dem Durchgang der Hitonalcinlösung wird C1Ie Säule mit ·
Wasser gewaschen, und austretende Lösung und die Wasohlösungen werden vereinigt und gefriergetrocknet, wobei man Mtomalcin mit
einer Aktivität von 5-15 mg/kg gegen Leukämie L-I210 erhält,
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Die weitere Reinigung erfolgt durch Chromatogivphieren
dieses Produkts an einsr Säule π it DEAE-Se^he.dex. In der Säule
liegt das Sephadex-Harz in einer Menge -von 3-6 g pro g Kitomalcin
in 0,01-molarer Phosphat-Pufferlösung (pH 7) vor. Die Probe besteht aus einer 5£-ige*i Lösung im gleichen Puffer, erhalten
durch Dialyse gegen den Puffer während 3-6 Stunden. Nachdem
die Probe auf <?ie Säule aufgegeben wurde, wird mit 0,01-molarer
FhQsphatlösung (pK 7), 1^-iger, 2^-iger und ^-iger
Natriumchloridlösun- ic gleichen Puffer eluiert. Dap Eluierunr.:;--mittel
wird gewechselt, sobald die pptisohe Dichte bei 280 nm
anschließend an einen Pe;-!: niedrige Werte erreicht. '!ewo'hnlich.
wäscht die Pufferlösunf etwa 1-2$ der optischen Dichte aus. Die
l.is-ige Ifctriumchloriclostm^ liefert etwa 2-3 Banden der optischen
Dichte. Werden diese Fraktionen bei 25C und 280 rau abgelesen,
und berechnet ;λ-;-. das Verhältnis der beiden Werte,
so seigi" sich, daß für iie az-rten beiden Pesics das Verhältnis
250/280 box 0,7 bis 0,9 liegt, beim dritten Feak hingegen bei
0,^5 bis 0,65» Die dritte B-nöe wird langsam mit lfj-iger Natriumchlöridlösung,
jecach rasch beim tber:;r.ii:;· zu 2 ;s-irer NatriuinchloridlÖsuiur
eluiert» Da.- let?te Eluierun -r:nittol, die
4-j-ige iretriumchloi'idlösxir -, er ibt 2iur 5 V-i:; 10-1 der ~<::5--ai::ten
optischen Dichte. Die drei Banf^;::, die :..lt 1- bier 2^-i^er Kitrlu-iiohloridlösunf
auftreten, machen 50-70,€ der jenamter. op-Dichte
au£".
Subkulturen von S. malayensis ATCC 21164 werden auf Agar-Schrägnährböden
nit folgender 2usamnensetzung gehalten:
Medium A | % | Kediur. E | 1 | • |
Glucose | C, 3 | Glucose | 1 | |
Glycerin | C,3 | HJf©extrakt | 0,05 | |
Lactose | 0,3 | K2ITO4 | ||
Fleischextrakt | 0,05 | |||
Hefeextrakt | 0,05 | |||
Pepton | 0,05 | |||
NaNO- | o, 05 | |||
Harnstoff | 0.05 | |||
Distiller's Solubles 6.05
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Corn steep liquor 0,05 Weic-enkei.uo 0, C5
.■..r;:£rr^.;;in ..C1C5
pH 6,9-7,0
. Den, jeweiligen Ke el ium werden 1,5/» Agar zugesetzt, dann
vrird c?x,.E Gemisch eruärn-t, um Lo sun j su bewirken, und sterilisiert.
Die UbertrGgarif, von der Subkultur erfolgt entweder iurch
den Pfropfen oder r.it einer Sporensuspension in 1 Liter-InokulierkolV.en.
Die Holten werden :cach der Inokulierun.?; bei 27 bis
290C auf einer Sehrttelnaschine (150 U.p.II.) inkubiert, wobei
die D-.uer be ir; Hediur:: C 20 bis 24, beim Medium A U-O tis 60".
Stunden beträgt.
Kediura C - | % |
Maisstärke | 2 |
Soyabohnenmehl | 2 |
Hefeextrakt | 0,5 |
KnCl2 | 0,005 |
CuSC^ | 0,005 |
ZnSO^ | 0,005 |
CaCO^ | 0,2 |
Na Cl" | 0,25 |
Das Medium D vrird in einen Gärbehälter von 11Λ0 1 Inhalt
ir- 530 bis 76O 1 Vieccerja' eingeführt.
KediuiT D
% ■
Glycerin · 0,9
Pepton 0,05
Fl e i ε c hex t re.k t 0,05
Harnstoff 0,05
N3i:C-3 · . C, 05
Hjfeeztrakt 0,05
Corn steep liquor 0,05
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BAD ORIGINAL
'· . Distiller's Solubles 0,05
Asparagin 0,05
Weizenkeime . 0,05
In den vorbereiteten Tank wird Wasr:erdampf von 125°C/1,4-1 ,-55"
at 25 Mr 35 Minuten lang eingeblasan, dann vrirö die Vorform
zubegeben, bis eine Endkonzentration von etwa 1% erhalten ist.
Das Fermentationsgemisch wird bei 27 bis 280C unter 300 oder
1100 ü.p.M, gerührt. Die Luftzufuhr erfolgt konstant mit'0,0037
c"bm pro Liter, und starkes Schäumen wird durch Zugabe von sterilisiertem
SoyabohnenÖl gesteuert. Die Fermentation ist nach 24 Stunden beendet.
Bei der Aufarbeitung wird das Mycel entfernt, indem man
die G-ärbrühe mit 1,4-2,11 at durch eine Filterpresse führt. Dann
wird das Filtrat 30-40 Minuten lang mit 1-2 g pro Liter DEAE-Cellulose
verrührt und wiederum durch die Filterpresse gegeben*
Das Filtrat wird nochmals mit DEAE-Cellulose behandelt· Beide
Filterkuchen werden· mit Wasser gewaschen" und trocken geblasen,'
Auf diese Weise ifird das aktive Prinzip quantitativ aus der
Gärbrühe gewonnen. Das Raffinat wird verworfen, die Cellulosekuchen
werden in 4$-iger Natriumchloridlösung verrührt, dann
wird filtriert. Der Vorgang wird wiederholt/ die vereinigten Eluate werden bei 5-100C dialysiert (kontinuierlicher Strom).
Mt der sazfroien braunen Lösung erhält man gewöhnlich-auf synthetischen
Böden wit B. subtilis Zonen von 20 bis 25 mm,
10 g frisches Doxiex-l(X-4) phosphat"*"werden-in.das. Eluat
aus der DEAE-Cellulose in einer !!enge entsprechend der Gramm-
Dowex-1-phosphat wird wie folgt hergestellt: Dowex-1-chlorid
wird zunächst mit In-Phosphorsäure, dann mit Wasser gewaschen,
bis der pH des Eluats 4,5-5.0. Durch Eluieren mit 0,1-molarer
Phosphat-Pufferlösung (pH 7; wird der pH-Wert dann auf 6,5-7,0 gesteigert· Überschüssiger Puffer viird durch Waschen mit Wasser
entfernt. . <
909886/1787
Menge an zu erwartendem festem Produkt eingerührt, (570 1 Gärbrühe
ergeben nach der Behandlung mit DEAE-Cellulose etw^ 50-75
g an '_-efriergetrocknetQm Feststoff). Dies entspricht etwa. 30
mg/ml. Die Suspension wird filtriert und die dabei erhaltene hellgelbe Lösung wird gefriergetrocknet. Durch eine .zweite Dialyse
wird das Produkt v/eiter gereinigt.
Man erhält einen cremfarbigen Peststoff (15-30 g pro I50 g
Fermentation), der auf synthetischen Boden mit B, eubtilis Zonen
von 25-30 mm ergibt und deutlich x^irksam ist gegen Leukämie L-1210,
Beispiel 7 · ■-...;
Das Verfahren von Beispiel 6 wird unter Verwendung des folgenden Permentationsmediuins anstelle von Medium D wiederholt.
Dabei werden im vree ent liehen dieselben Ergebnisse erzielt,
Medium % , ■
Cerelose (Dextrose | 0,5. |
hydrat) | 0,k |
Glycerin | 0,1 |
•NZ-Amine-ΪΤΤ | 0,05 |
Pepton | 0,1 |
Fleischextrakt | - 0,1 |
KCl | 0,05 |
CaCOo | |
Das Verfahren des Beispiels 6. viird nochmals wiederholt,
jedoch wird das Eluat aus der Säule mit DEÄE-Cellulose nach der
Dialyse durch Durchleiten durch Dowex-1-phosphat entfärbt. In
dieser und allen folgenden Stufen wird pyrogenfreies Wasser verwendet.
Säe
Die weitere Reinigung erfolgt durch Chromatographieren an.
einer Säule mit DEAE-Sephadex (A-50).
909886/1787
Pro g der Probe v:ird ei:'· lVooke:i>iov'iL''"!t ν ο.· 3 C DKtvS-Seph'vdex
A -50/ (vernetste-r,. Echvi-ch basischer kui-t ■■ uz eher) verwer— ,
det. Das Sephadex-Hars wira ir. 0, Ol-riol^rer Phosphat—Pufferlösung
(pH 7) gequollen, wobei eine ?.0-f.-iche Volurr.e:a::unahme erfolgt.
Die Säule wird sor^/f^ltig r.it'dei1 i-uf farlosung ;ie*i' scher. f
dann wird die Probe, in einer mininälen Kas3ermenge gelöst, aufgegeben.
Die Säule wird nit 0,-01-r-iolarer F^osphat-PufferlöBunc;
(pH 7) mit allmählich auf 1> steinendem I;' triurchloridgehalt
eluiert. Die Trennunr d(?r Fr-«.kt-ionen e rf ο Irrt in Abhän igkeit
von der -optischen Dichte bei 250 und ?H-0 τμυ wie p.uch von oer
Wirksamkeit Fegen B. pubtilis, der :uif synthetischem ITeöiun
gezüchtet '%'ird. Ein Kittelschni tj wir5 ■re.'.ziiP der höchsten Antibiotica-Konzentratior
abgenonren. An r?iecer Stelle tritt auch
eine gut wiiirnehmbare Yerdnaerim äet: UV-Soektri;:-~ ei?- (s, Tabelle 7).
909886/1787
BAD ORIGINAL
co
O
(O
OO
00
(O
OO
00
OO
Für
das aus DIZAE-Seoh; dex
erhaltene, wirksame Prinzip charakteristische Eipenschoften
Fri.'ki;lcr." ' . Zone
85 88
Qli.
97 100 103 106
lOP 115
?nO (min.), 280 (max.), 305 (r.lr..)f 325 (max.) 18
ZfO (Tin.), ??6 (^x,), 2?0 (infl.), 325 (br.Schi)26 260 (mim.), 276 (rar.χ.), 290 (infl.,), 325 (br.Sch,)27
(min.), 276 (max.), 290 (infl.), 325 (br.Sch,)27
260 (rain.), 280 (max.), 305 (min.),
Br. Sch. = breite Schulter NZ ' = keine Zone
Infl, = Inflektion
325/280-C9
325/276=0,75 325/276=0,65 325/276-0,65
325/280=0,8
. Die Messungen der optischen Dichte legen nahe, daß ein
zweites Antibioticum vorliegt. Jedoch zeigt außer der vorstehend beschriebenen keine f. Fraktion antileukämische Wirksamkeit.
Die Fraktionen 90-105 werden vereinigt, dialysiert und gefriergetrocknet, wobei man in etwa 6,5#-iger Ausbeute
einen eremfarbigen Festetoff erhält, der turbidimetrisch gegen
Staphylococcus aureue 5 angesetzt wird. Dabei wurde eine Aktivität
Im Bereich von 5-10 γ festgestellt. Die antileukämische
Wirksamkeit (gegen L-1210) wird im Bereich von 0,1-1,0 mg/kg
beobachtet«
Bei der letzten Reinigungsstufe erfolgt chromatographische
Trennung des aus der Säule mit DSAE-Sephadex erhaltenen Materials
an Sephadex G-100. 'Zur Erzielung bester Ergebnisse beträgt
das Verhältnis Substrat zu Probe etwa 50il, besogen*auf das
Trockengewicht. Das Sephadex G-100 wird in 0,1-molarer Ammoniumcarbonat
lösung, die !Pit Ameisensäure auf ph 7,5 gepuffert ist,
gequollen. Dann wird der Säule die Probe, in einem Minimum dieser
Pufferlösung gelöst, aufgegeben. Wie bereits vorher beschrieben
erfolgt die Trennung in Abhängigkeit von der optischen Dichte bei „250 u/id 2oO rau wie auch der Wirksamkeit gegenüber
B. subtilis. Der Fittelschnitt, d.h. die Fraktionen mit
höchster Wirksamkeit, wird gefriergetrocknet, wobei man in 70$«-
iger Ausbeute einen weißen, flockigen, wasserlöslichen Peststoff
erhält. Die Eigenschaften des Produkts sind in Tatelle VI zu-
909886/1787
Pur aas aus Sephadex G-IOO erhaltene, wirksame Prinzip charakteristische Eigen
schafte nitFPis^ches BeisT>iel) · ■ .
Fraktion Nr. | |
20 | |
21 | |
co | 23 |
O | pil |
co | |
00 | 25 |
co σ> |
26 |
S* : | 27 |
CO | |
ITV -
260(min.), 276(max,), 290(infl.), .325(br. Sch.)
26Q(min.j, 276(max.), 290(infl.), 325(br. Sch.)
200(min.), 276(max.), 2?0(infl,), 325(br. Sch·)
260(min.), 276(max.),· 290(lnfl·), 325tbr. Sch·)
260(min.), 276(mas.), 290(infl.), 325(br. Sch.)
280(Sch.)
330(br. Sch.)
nur Endabsorütion
260/276-0,93i 325/276-0,^3
26o/27Ä*0,9Ö; 325/2?6-O,33
260/276-0*88} 325/2 76-0,32
260/276-0,90j 325/276-0,33
260/276-0,971 325/276-0,38
330/280-0,59
Das ·ο erhaltene Produkt ist bei der Elektrophorese bei
pH 8,8 homogen, wird durch organische Lösungsmittel denaturiert, let bei sauren pH-Werten beständig, unbeständig unter alkalischen Bedingungen, thermisch unbeständig, leicht löslich in
Wasser, unlöslich in üblichen organischen Lösungsmitteln, nicht dialysierbar mit Standard-Cöllophanmembranen, hochaktiv gegen
zahlreiche gram-poeitlve und gram-negative Bakterien, nichtjqrrogen und turbidimetrisch aktiv (gegen S, aureüs 5) im Bereich
von 1-5 γ .
Nachstehend wire* die Wirksamkeit von Kitomalcin gegen
Leukämia L-1210 demonstriert. I it einer Serie von 5 Ansätzen,
hergestellt nach den erfincunc;3£emäi3en Ve-rfahren, wurden mit
Standard-Leukämiä L-1210 ("Hevised Protocols for Screening Chemical Agents and Natural Products Against Animal "Tumours and
Other Biological Systens", CGUSC, Bethesda, Md., Nov. 6, 1962)
die in Tabelle VII zusammenzefaiSten Ergebnisse erzielt. Der
Wirkstoff wurde intraperitoneal an den Tafen 1 bis 15 nach der
Infizierung verabreicht. Tabelle VIII gibt die Werte an, die
bei einer Behandlung an den Tagen 1 bis 9 n&ch Infisierunr erzielt
wurden» (Mit den Syn;bol *
> * vird lannes Überleben der
Mause angegeben, d.h. mindestens k von 6 überleben noch nach
Tapen).
Vero | Tabelle | VII | Überlebens· Hate |
- fi des Ver- |
ζentraten
L-1210 |
Dös
n>·/ |
ν oil- | Uc er lebe:": ε Hate |
c- ieS - 7er*-« -v. |
|
Dosi
r:./k |
uohe nit 5 Ansätzen von Kc r Kito:n„lcin ;re;-en Leuk^-.i-; |
3/r | Ui ('oxisch | An aatz |
0 | is k^ |
153 | |||
Ansatz | h | C ■■""- . |
t/6 | Sl | ) E | C | ,5 | 6/6 | 166 | |
A | '6/6 | ^? | 0 | ,4 | 5/6 | 171 | ||||
A | 2 | ο/6 | 139 | p | 0 | ,3 | 6/6 | 162 | ||
A | χ | ' ' 6/6 | 223 | B | • c | ,2 | 6/6 | 139 | ||
A | ■-"t | 6/6 | 2CC | . E | 0 | »2 | 6/6 | 11*2 | ||
.i | o, | α | 5/6 | 182 | P | 0 | ,1 | 6/6 | 141 | |
A | o, | 8 | *- f ' | 221 | B | C | .05 | 6/6- | 126. | |
A | c, | 7 | 909886/1 | 787 | , 05 | |||||
A | ό | BAD | ORIGINAL | |||||||
Ansatz | Dosis rag./kg. |
1 | 1 | Über lebens- rate |
% des Ver- gleichsv, Ansatz |
B | Dosis mg./kg. |
J | Λ | Über- % des lebens- Ver rate glei- chsy. |
A | 0*5 | 0,9 | 6/6 | 304 | B | 0,05 | 108- | |||
A | 0,5 | 0,9 | 6/6 | 275 | 0,03 | 6/6 111 | ||||
A | 0,1 | 0,8 | 5/6 | 188 | ||||||
A | 0,05 | 0,8 | 6/6 | 162 | (toxisch) G | |||||
B | 2 | 0,8 | 6/6 | 81 | C | 1,5 | 88 | |||
B | 0,7 | 6/6 | 122 | C | 1,0 | 208 | ||||
B | 1,5 | 0,7 | 6/6 | >234 | C | 0,9 | >250 | |||
B | 1 | 0,6 | >229 | C | 0,8 | 191 | ||||
B | 0,6 | 6/6 | 150 | σ | 0,8 | >225 | ||||
B | 0,6 | 6/6 | 37^ | C | 0,7 | >244 | ||||
B | 0,5 | 6/6 | 233 | σ | 0,6 | Λ265. | ||||
B | 1,5 | >212 | C | 0,5 | 221 | |||||
E | 1,0 | 6/6 | 283 | D " | 0,5 | 147 | ||||
ρ | 0,9 | 163 | D | 1,5 | >206 | |||||
B | 0,8 | 6/6 | 164 | D | 1,0 | >239 | ||||
P | 0,7 . | 6/6 | 214 | D | 0,9 | 220 | ||||
E | 0,6 | 157 | D | 0,8 | • >227 | |||||
E | 0,5 | 6/6 | 220 | D | 0,7 | >218 | ||||
B | 0,3 | 153 | D | 0,6 | 141 | |||||
B | 0,1 ■ | 6/6 | 207 | D | 0,5 | I54 | ||||
B | 0,05 | 6/6 | 213 | D | 0,3 | I54 | ||||
S | 0,03 | 225 | . D | 0,1 | 136 | |||||
S | 258 | D | 0,05 | 120 | ||||||
E | 177 | 0,03 | 115 | |||||||
E | 152 | |||||||||
E | 211 | |||||||||
E | 209 | |||||||||
E | 245 | |||||||||
E | 177 | |||||||||
E | 132 | |||||||||
E | U5 | *"- ,---■ -""" | ||||||||
112 |
909886/1787
■An satz |
Dosis m,s:./kg. |
D | 1,5 |
D | 1,0 |
D | 0,9 |
D | 0,8 |
• D | 0,7 |
D | 0,5 |
E | 1,5 |
E | 1,0 |
E | 0,9 |
Ξ | 0,8 |
Ξ | 0,7 |
E | 0,5 |
Über-
lebens-
rate
% des Vergleichs ν.
161
163
130 >262 >2^6
>39O
168 >331
An satz |
Dosis | Über- % des lebens- Ver rate gleichsv. |
P | 2,0 | 119 |
P | 1,5 | 168- |
P | 1,0 | >369 |
P | 0,9 | >257 |
P | 0,8 | , 163 |
F | 0,7 | 212 |
F | 0,6 | 188 |
P | 0,5 | . ^212 |
F | 0,3 ■ | 196 |
F | 0,1 | 193 |
P | 0,05 | 122 |
F | 0,03 | 12*l· |
Zeichnet man den Prozentwert gegenüber dem Vergleich (T/G) gegen die Dosis (mg/kg) bei den Daten der Tabelle VII auf,:so
zeigt sich eine maximale Wirksamkeit von etwa 280$ Überlebenszeit
gegenüber dem Vergleich bei einer Dosis von 0,8 mg/kg pro Tag, Dsr Bereich der maximalen Wirksamkeit liegt zwischen 0,5
und 1 mg/kg. Eine analoge Aufzeichnung der Werte aus Tabelle
VIII gegfen die Dosis zeigt eine maximale Wirksamkeit von 280
bis 300$ des Vergleichs bei 1 mg/kg/fag.
909886/178
BAD ORI&M
Claims (1)
- PatentansprücheIJ Proteinartige Verbindung Mitomalcin, mit folgenden Ei- *. genWlaften: ^eicht löslich in Wasser, unlöslich in üblichen organischen Lösungsmitteln und Phenol, von-denen sie denaturiert, wir.I, nicht dialysierbar, /beständig bei sauren pH-¥ei1%eBT~zersetzt sich allmählich bei 250 bis 2700C, zeigt in wässriger Lösung ein üV-Absorptionsmaximum bei 276 rau, 3/* 15-18} zeigt in Kaliumbromid-Pellet IR-Absorptionsmaxima bei 3,05, 6,05, 6f55t 7,20, 8,05 und 9,30/u; besitzt ein MolekulargVieht von etwa 17 400} ergibt bei Hydrolyse Ammoniak und Asparaginsäure, Threonin, Glutaminsäure, Serin, Prolin, Glycin, Alanin, Valin, Gystin,Isoleucin, Leucin, Tyrosin, Phenylalanin, Lysin, Histidin, Arginin, Allo-3-hydroxyprolin, n- und allo-Hydroxyprolin, OC-Aminoisobuttersäure, 3-Methylhistidin und Carnosamin.2. Verfahren zur Herstellung der Verbindung gemäß Anspruch 1, dadurch gekennzeichnet, daß man Streptomyces malayensis in > einem wässrigen Nährmedium unter submersen aeroben Bedingungen ι züchtet, bis das Medium eine wesentliche, antimikrobielle Wirk'H samkeit besitzt. .; .'3. Verfahren nach Anspruch 2, dadurch gekennzeichnet, daß man den Streptomyces malayensis bei einer Tempera.tür zwischen ] etwa 2^ und ^00C und einem pH-Wert zwischen etwa 5i5 und §,5 i während etwa; 18 bis 72 Stunden züchtet und den Wirkstoff aus der Gärbrühe gewinnt.... ■' k* Verfahren nach Anspruch 3,\dadurch gekennzeichnet, daß man die Gärbrühe filtriert, das Piltrat einengt, das aktive Prinzip an Diäthylaminoäthy!cellulose adsorbiert, die Diäthylaminoäthylcellulose mit wässriger NatriumöhloridlÖsung eluiert| das.so erhaltene Eluat dialysiert und dann mit einem stark basischen Aniojaaustauscherharz in der Acetat-, Chlorid- oder 1?hoι-U phatform behandelt, das Harz mit Wasser _ eluiert und das Eluat *■ gefriergetrocknet. . ν «, * f909886/178f5. Verfahren nach Anspruch 4, dadurch gekennzeichnet, daß das Eluat mit einem schwach basischen vernetzten Dextran-Aus·- tauscherharz mit Diäthylaminoäthylgruppen behandelt, das Harz mit Natriumchlorid-haltiger Phosphatpufferlösung (pK 7) eluiert und das Eluat dialysiert und gefriergetrocknet wird.6. Verfahren nach Anspruch 5» dadurch gekennzeichnet, daß das gefriergetrocknete Produkt in wässriger, mit Ameisensäure auf pH 7 gepufferter Ammoniumcarbonatlösung gelöst, die Lösung mit schwach saurem, vernetzten! Dextran-Aus tauscher harz behandelt, dieses Harz mit wässriger Ammoniumcarbonatlösung. Wasser oder Essigsäure eluiert und das Eluat gefriergetrocknet wird.Pur Chas.. Pfizer & Go., Ine, New York, N.Y., V.St.A.Rechtsanwalt909886/1787BAD ORIGINAL
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Cited By (2)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
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DE2819035A1 (de) * | 1977-07-28 | 1979-02-15 | Calpis Food Ind Co Ltd | Antimikrobielle substanz c-3603 und verfahren zur herstellung derselben |
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US5271935A (en) * | 1988-02-05 | 1993-12-21 | Hoechst Aktiengesellschaft | Antibiotic, cammunocin, a process for the preparation thereof, and the use thereof as a pharmaceutical |
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- 1969-04-11 JP JP44027758A patent/JPS4823917B1/ja active Pending
- 1969-04-11 FR FR6911362A patent/FR2009869A1/fr not_active Withdrawn
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