DE1767477C3 - Thyrocalcitonin und Verfahren zu seiner Gewinnung - Google Patents
Thyrocalcitonin und Verfahren zu seiner GewinnungInfo
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- C07K14/585—Calcitonins
Description
2. ß-Thyrocalcitonin der Formel
I ι
H — Cys—Ser—Asn — Leu—Ser—Thr—Cys
— VaI — Leu — Ser — AIa — Tyr — Trp
— Arg — Asn — Leu — Asn — Asn — Phe
— His — Arg — Phe — Ser — GIy — Met(O)
— GIy — Phe — GIy — Pro — GIu — Thr — Pro
-NH2. jo
3. Verfahren zur Gewinnung von Schvveine-Thyrocalcitonin, in welchem man entfettetes
Schweine-Schilddrüsengewebe extrahiert und den Extrakt durch Fällung mit Trichloressigsäure oder
Aceton, Gegenstromverteilung und Gelchromatographie in beliebiger Reihenfolge oder durch
Gegenstromdialyse reinigt, dadurch gekennzeichnet, daß man das entfettete und gegebenenfalls
mit Alkohol oder verdünnter wässeriger Trichloressigsäure vorgereinigte Schweine-Schilddrüsengewebe
wenigstens einmal mit einem Wasser und ein Niederalkanol enthaltenden Lösungsmiltelsystem
bei einem pH von etwa 1 bis 6 extrahiert und das reine Thyrocalcitonin und/oder Thyrocalcitonin-sulfoxid abtrennt.
40
Gegenstand der Erfindung sind reines Thyrocalcitonin und ein Verfahren zu seiner Gewinnung. Das
»eue Verfahren ist dadurch gekennzeichnet, daß man Vorzugsweise entfettetes Schilddrüsengewebe, das gegebenenfalls
mit Alkohol oder wäßriger Trichloressig-Säure vorextrahiert ist, ein- oder mehrmals mit einem
Wasser und ein Niederalkanol enthaltenden Lösungsmittelsystem bei einem pH von etwa 1 bis 6 extrahiert
lind die erhaltene Lösung in üblicher Weise, z. B. wie im belgischen Patent 685 991 beschrieben, auferbeitet.
Das als Ausgangsmaterial verwendete entfettete
Schilddrüscngewebe wird in bekannter Weise hergestellt, indem man Schilddrüsen von Säugetieren, wie
t. B. Rindern, Schafen, Ziegen, insbesondere Schweiilen, mit einem lipophüen Lösungsmittel, wie z. B.
Aceton, bei niedriger Temperatur extrahiert (vgl. belgische Patentschrift 685 991).
Das so erhaltene Pulver kann, wenn erwünscht, mit Alkohol, z. B. 95 bis 96%>igem Äthanol oder mit
verdünnter Trichloressigsäure. z. B. einer 15%igcn wäßrigen Lösung von Trichloressigsäure, vorgereinigi
werden.
Das im Lösungsmittelsystcm enthaltene Niederalkanol ist z. B. Methanol, Äthanol, Propanol, η-Butanol
oder see. Butanol. Der Wassergehalt des Systems kann beispielsweise zwischen 4 und 5O0O liegen,
vorzugsweise beträgt er 5 bis 30 ",Ό. Das genannte
saure pH wird beispielsweise mit anorganischen Säuren wie Schwefelsäure oder Salzsäure oder organischen
Säuren wie Ameisensäure, Essigsäure, oder mit sauren Puffern wie Acetatpuffer oder Citratpuffer eingestellt
Das Lösungsmittelsysteni kann gegebenenfalls weitere organische Lösungsmittel wie Aceton
oder organische Basen wie Pyridin oder Morpholin, und/oder anorganische Salze, wie Natriumchlorid,
enthalten Besonders hervorzuheben sind die Systeme n-Butanol-Eisessig-Pyridin-Wasser (17: 12 : 6 : 15),
n-Butanol-Eisessig-Wasser (50 : 5 :14), n-Butanol-Eisessie-Wasser
(4:1: 5), n-Butanol-Ameisensäure-Wasser^
(50:5:14), Äthanol-0,05 η-Salzsäure (70-30), 80°,üiges oder 95°/oiges Äthanol mit verdünnter
'Salzsäure, Aceton-Äthanol-verd. Salzsäure G : 1 : 1).
' Die Extraktion des entfetteten und gegebenenfalls vorgereinigten Schilddrüsenpulvers wird vorzugsweise
unter Sauerstoffausschluß, z. B. in Stickstoffatmosphäre, vorgenommen. (Es ist vorteilhaft, auch die
weiteren Aufarbeitungsoperationen unter Ausschluß von Sauerstoff durchzuführen.) Die Temperatur wird
zweckmäßig zwischen 0 und 25° C gehalten.
Um die aktive Substanz mit wenig Lösungsmittel möglichst quantitativ zu extrahieren, kann man die
Extraktion in mehreren Stufen ausführen. Dabei können die gleichen oder verschiedene Lösungsmittclsysteme
zur Anwendung gebracht werden.
Nach der Extraktion wird das zurückbleibende feste Produkt in beliebiger Weise, z. B. durch Filtrieren
in Gegenwart eines Filterhilfsmittels oder durch Zentrifugieren, abgetrennt. Aus der Lösung,
welche praktisch die gesamte aktive Substanz enthält, wird diese in fester Form erhalten, indem man die
Lösun« mit Aceton fällt oder lyophilisiert bzw. einengt und dann gegebenenfalls aus saurer Lösung mit
Trichloressigsäure fällt. Die dabei erhaltenen Aceton- oder Trichloressigsäure-Fällungen können einer oder
mehreren weiteren Extraktionen mit den erfindungsgemäßen Lösungsmittelsystemen unterworfen werden.
Dabei kommt insbesondere 7O°/oiges Äthanol bei pH etwa 4 bis 6 als Extraktionsmittel zur Anwendung.
Die genannten Extraktions- und Fällungsoperationen können in beliebiger Weise kombiniert werden.
Das Rohprodukt wird in üblicher Weise, z. B. durch Lyophilisieren, partielles Eindampfen, Fällen,
Dialyse, Gegenstromverteilung, Chromatographie, Ionenaustausch, Elektrophorese, weiter gereinigt.
Die Dialyse wird vorzugsweise nach dem Gegenstromprinzip
durchgeführt. Man verwendet dafür beispielsweise einen »Gegenstromdialysator«, wie er in
Fig. 1 schematisch dargestellt ist.
Er besteht aus zwei spiegelbildlich gerillten Platten, P1 und Pn, z. B. aus Kunststoff, die beide plangeschliffen
sind und mittels Schrauben dicht zusammengepreßt werden. Durch Zwischenlegen einer Membran
M, z. B. aus Cellophan. entstehen zwei Zirkulationssysteme, I und II, deren Anschlüsse nach
außen (Z1 und A, = Zufluß und Abfluß der zu dialysiercnden
Lösung; Z11 und An= Zufluß und Abfluß
des Lösungsmittels) in die Platten eingebaut sind. Durch System I zirkuliert die zu dialysierende Lösung,
während durch System TI im Gegenstrom das Lösungsmittel geleitet wird. Der Austausch der Stoffe,
z.B. dialysierbare Peptide, Salzionen, vollzieht sich längs des gesamten Zirkulationsweges. Die Gesamtlänge
ist durch entsprechende Zapfstellen so unter-
leilt, daß, wenn erwünscht, 5/β, V3, V2, »/a oder >/»
jer Gesamtlänge zur Verfügung stehen. Der Quer-
!chnitt der Rillen beträgt bei der verwendeten Appafatur
5 X 1 mm, die Gesamtlänge der Rillen 20 m (Fiillvolumen einschließlich der Zuleitungen 120 ml).
purch verschiedene Zirkulationsgeschwindigkeiteii (und/oder Verkürzung des Zirkulationsweges) der
mittels Schlauchpumpen kontinuierlich durch die Apparatur gepumpten Lösungen und durch geeignete
Wahl der Membran kann die Dialyse so reguliert werden, wie es dem jeweiligen zu dialysiei enden Rohprodukt
entspricht, bis eine genügende Fraktionierung erreicht ist. Das erhaltene Produkt kann, wenn
erwünscht, auf anderem Wege, z. B. durch Craig-Verteilung oder Gel-chromatographie, weitergereinigt
werden.
Bei weitgehender Reinigung des Thyrocalcitonins wird es in verschiedene aktive Komponenten aufgespalten,
unter anderem in die Komponenten *-Thyrocalcitonin und /J-Thyrocalcitonin. a-Thyrocalcitonin ao
wird bei der Chromatographie an A!uminiumoxyd teilweise in 2 Komponenten (I1 und λ.,) aufgespahen.
die mit *-Thyrocalcitonin und /i-thyrocalcitonin
identisch sind. /i-Thyrocalcitonin ist das Sulfoxid von
rt-Thyrocalcitonin.
10 kg mit Aceton entfettetes Schweineschilddrüsengewebe werden mit 100 und dann mit 50 1 Lösungsmittelsystem
I (= 68 1 n-Butanol + 48 1 Pyridin + 24 1 Eisessig + 60 1 bidestilliertes Wasser; pH
= 5,2) in Stickstoffatmosphäre 2 Stunden gerührt und unter Zusatz von 1 bzw. 0,5 kg Filterhilfsmittel filtriert
und mit 25 1 Lösungsmittel I gewaschen. Die vereinigten Lösungen (1751) kühlt man auf 8' ab,
gibt unter Rühren in Stickstoffatmosphäre 875 1 auf
— 20° gekühltes Aceton hinzu und rührt noch 3 Stunden weiter. Man läßt die Mischung über Nacht bei
— 10° stehen, filtriert dann die Fällung ab und wäscht sie mit 101 kaltem Aceton nach. Der feuchte Filterrückstand
(2,82 kg, Trockengehalt 31,4 °/o) wird unter
Rühren in 75 1 0,025 η-Salzsäure gelöst und auf 0° abgekühlt. Darauf gibt man im Verlauf 1 Stunde
unter Rühren 7,5 kg feste Trichloressigsäure zu der Lösung, rührt noch 16 Stunden bei 0 bis 5° und zentrifugiert
dann den Niederschlag auf einer Durchlaufzentrifuge ab. Der ZentrifugenrücWand wird mit
2,651 kalter lO°/oiger TrichloressigsäurelÖsung, anschließend
5mal mit je 3 1 eiskaltem Aceton und dann noch mit 3 1 eiskaltem Äther gewaschen. Nach Trocknen
bei 25 bis 30° während 48 Stunden erhält man 305 g eines beigefarbenen Produktes mit einer Aktivität
von 9 MRC-Einheiten pro Gramm Acctontrockenpulver. (Die Aktivität wurde nach Kumar
et. al.. J. Endocrin. 33 [1965], 470 bestimmt.) Die weitere Reinigung kann wie im Beispiel 2 gezeigt,
durchgeführt werden.
103 g entfettetes (Aceton-getrocknetes) Schweineschilddrüsengewebe
werden unter Sauerstoffausschluß 24 Stunden lang auf der Schüttelmaschinc mit 1,5 I
Lösungsmittelsystem II ( = 75 1 n-Butanol -1-7,5 1 Eisessig + 211 bidestilliertes Wasser; pH = 2,8) bei
Zimmertemperatur geschüttelt. Man zentrifugiert den festen Rückstand ab (! Stunde, 2500 · g), extrahiert
ihn in der beschriebenen Weise mit 750 ml Lösungsmittel II während 5 Stunden, zentrifueiert und extrahiert
den Rückstand wiederum, und zwar mit 375 ml während 12 Stunden. Die vereinigten Lösungen
(2350 ml) kühlt man auf 0° ab und versetzt sie unter
Rühren mit 12 1 eiskaltem Aceton. Man rührt die Mischung noch 1 Stunde weiter und läßt sie dann
24 Stunden bei - 10° stehen. Es setzt sich allmählich
ein schwach rosa gefärbter Niederschlag ab. Er wird durch Dekantieren und Zentrifugieren bei 0 bis 5
abgetrennt, zweimal mit je 80 ml eiskaltem Aceton gewaschen und wiederum abzentrifugiert. Den so erhaltenen
Rückstand extrahiert man bei Zimmertemperatur 5mal mit je 50 ml 0,05 η-Salzsäure, voreinigt
die Extrakte und befreit sie durch Zentrifugieren von unlöslichen Anteilen. Zu der auf 0° abgekühlten Lösung
fügt man unter Rühren 24 g feste Trichloressigsäure, rührt 14 Stunden bei 0 bis 5 ' und zentrifugiert
die feine Fällung (mit etwa 4500 · g) ab. Sie wird zuerst mit 20 ml eiskalter lO'V'oiger Trichloressigsäure
und dann 4mal mit je 70 ml eiskaltem Aceton gewaschen. Den Rückstand extrahiert man unter Rühren
bei Zimmertemperatur mit 100 ml 70°/uigem Äthanol, zentrifugiert (mit etwa 4500 · g) vom unlöslichen
Anteil ab und extrahiert diesen mit weiteren 50 ml 70u/ijigem Äthanol. Die beiden Extrakte werden
vereinigt und im Rotationsverdampfer bei etwa 12 mm Hg auf 25 ml eingeengt. Die konzentrierte
Lösung wird auf 0 ' abgekühlt, unter Rühren tropfenweise mit 25 ml eiskalter 25"/niger Trichloressigsäure
versetzt und noch 18 Stunden unter Ausschluß von Luft bei 0° weitergerührt. Dabei bildet sich allmählich
eine feine Fällung, die durch Zentrifugieren (1 Stunde, 5000 · g) bei 0 bis 5" abgetrennt wird. Sie
wird zuerst mit 10 ml eiskalter lOVoiger Trichloressigsäure
und anschließend 4mal mit je 40 ml eiskaltem Aceton gewaschen. Den Rückstand trocknet
man im Vakuum bei Zimmertemperatur und erhält so 400 mg eines hellgefärbtcn Pulvers. Die Aktivitätsausbeute beträgt 8 MRC-Einheiten pro Gramm Acetontrockenpulver.
25 g der wie beschrieben gewonnenen Fällung werden mit 1500 ml der unteren Phase des Lösungsmittelsystems
III (= n-Butanol-Eisessig-Wasscr [4:1 :5.
alles Volumteilel) mit Zusatz von 0.5 g Natriumchlorid pro Liter System unter Sauerstoffausschluß
gelöst und auf die ersten drei Röhren eines Craig-Gegenstromverteilungsautomaten
verteilt. Weitere 30 Röhren werden mit je 500 ml der gleichen unteren Phase beschickt, worauf man die Apparatur mit Stickstoff
füllt und den Verteilungsprozeß mit je 500 ml der oberen Phase pro Rohr über 33 Röhren durchführt.
Nach beendeter Verteilung werden aliquote Teile von oberer und unterer Phase lyophilisiert und
biologisch getestet. Die aktivsten Lösungen befinden sich in den Röhren 25 bis 33. Sie werden vereinigt,
auf ein Zwanzigstel ihres Volumens eingeengt, durch Zentrifugieren von ausgefallenem Material befreit
und mit 15 Gewichtsprozent fester Trichloressigsäure versetzt. Man läßt noch einige Stunden bei - -10°
stehen, zentrifugiert dann die Fällung ab und wäscht sie zuerst mit 2Oo/oipcr Trichloressigsäure, dann zweimal
mit Aceton-Äther (1 :1). Der noch Acetonfcuchlc Rückstand wird sodann mit der etwa lOOfachcn
Mcncc 0.1 n-Amciscnsäure 1 Stunde i'iitcr
Stickstoff verrührt. Man zentrifugiert ab, wobei sieb '..Ip unlösliche Anteile abscheiden, und lyophilisicri
die klare Lösung. Das farblose Lyophilisat (2f)5 mg' enthält 20 MRC-Einheiten pro mg.
20 mg dieses Lyophilisates werden in 2 ml 0.1 η
Ameisensäure gelöst an Polyacrylaniid-Gel in 0,1 n-Ameiscnsäure
chromatographiert. (Säulenvolumen 28 ml; Fraktionen ä 1,5 ml; Durchfiußgeschwindigkeit
0,1 ml/Min.)· Die durch ein registrierendes UV-Durchflußphotometer (254 nm) laufenden Fraktionen
werden tierexperimentell getestet und chromatographisch (Dünnschichtchromatographie an Aluminiumoxyd,
Silicagel und Polydextran-Gel) und elektrophoretisch (Disc-Elektrophorese nach R c i s f e 1 d et al.,
Nature 195 11962], 281) geprüft. Die aktivsten Fraktionen enthalten 1,5 mg Thyrocalcitonin einer Aktivität
von lOOMRC-Einheiten/mg. Das Produkt wird einer weiteren Craig-Verteilung über 250 Stufen im
System n-Butanol-N-Essigsäure (1:1) unter Zusatz
von 250 mg Ammoniumacetat pro Liter beider Phasen unterworfen. Dabei zeigt sich eine Aufspaltung in
verschiedene aktive Produkte, zur Hauptsache (v-Thyrocalcitonin (Verteilungskoeffizient bei 20°
fcsoo = Q82) und ^-Thyrocalcitonin (fc2"° = 0,29).
Im Dünnschichtchromatogramm an Aluminiumoxyd im System Chloroform-Methanol-17°/oiges Ammoniak
(41 :41 : 18) weist /J-Thyrocalcitonin einen Rs-Wert
(S = Standard = «-MSH-Sulfoxyd = 1) von
0,85 auf, während a-Thyrocalcitonin sich in 2 aktive
Komponenten, α, und <*., aufspaltet;
RSai = 0,97; Rs^ = 0,88;
im System II werden folgende i?s-Werte gefunden:
Rsfi= 1,0;
RSai = 1,09; Rs^ = 1,0.
Eine ähnliche Reinigung erzielt man, wenn man dieses Produkt in einer 300stufigen Craigapparatur
(obere und untere Phase je 3 ml) im System III unter Zusatz von 0,15 g Natriumchlorid pro Liter System
gegenstromverteilt. Dann werden die aktivsten Fraktionen durch eine Gel-Fraktion an Polydextran-Gel
bzw. Polyacryl-Gel von Salzen befreit. Das so gereinigte
κ- bzw. /J-Thyrocalcitonin weist eine Aktivität 4„
von 200 MRC-Einheiten/mg auf und ist chromatographisch und elektrophoretisch homogen.
200 g Aceton-getrocknetes Schweineschilddrüsengewebe werden sukzessive mit 3000, 1500 und 600 ml
Lösungsmittel II (vgl. Beispiel 2) extrahiert, wobei der unlösliche Teil jeweils durch Zentrifugieren abgetrennt
wird. Die vereinigten Extrakte (4,61) liefern bei der Fällung mit 231 eiskaltem Aceton (analog
Beispiel 2) 37 g Aceton-feuchten Rückstand. Dieser wird zuerst mit 500 und dann mit 250 ml 7O°/oigem
Äthanol unter Zugabe von soviel Lösungsmittelsystem IV (= 70 ml absolutes Äthanol + 30 ml 2n-Salzsäure),
daß das pH zwischen 5,0 und 6,0 liegt (gemessen mit einer üblichen Glaselektrode), extrahiert.
Man zentrifugiert die beim genannten pH unlöslichen Anteile ab und engt die vereinigten Extrakte
(730 ml) im Rotationsverdampfer auf 145 ml ein. Mit 1,45 ml 2 η-Salzsäure wird die entstandene Trübung
wieder aufgelöst. Nach Abkühlen auf 0° fügt man 14,7 g feste Trichloressigsäure zu der Lösung, zentrifugiert
die Fällung ab, wäscht mit Aceton und trocknet wie in Beispiel 2. Man erhält so 800 mg eines in
0,1 n-Amcisensäurc gut löslichen Produktes, das wie im Beispiel 2 aufgearbeitet werden kann. Die Aktivitätsausbeutc
beträgt 8 MRC-Einhcitcn pro Gramm Acctontrockcnpulvcr.
a) 200 g entfettetes Aceton-gelrocknetes Schweineschilddrüsengewebe
wird mit 21 7O°/oigem Äthanol bei 20° unter Stickstoff verrührt und tropfenweise mit
soviel Lösungsmittelsystem IV (vgl. Beispiel 3) versetzt, daß das mit einer Glaselektrode gemessene pH
eine halbe Stunde bei 5,8 konstant bleibt. Dann gibt man unter Rühren nochmals 21 70°/oiges Äthanol zu,
rührt noch 1,5 Stunden weiter und trennt den unlöslichen Teil mittels einer Glasfilternutsche ab. Er wird
bei einem pH von 5,8 bis 6,0 zuerst mit 1000 und hierauf mit 500 ml 7O°/oigem Äthanol extrahiert. Die
vereinigten Extrakte werden im Rotationsverdampfer im Vakuum auf 1,2 Liter eingedampft und dann lyophilisiert.
Man löst das Lyophilisat in 500 ml 0,02 n-Salzsäure, nitriert durch ein Wattefilter, kühlt, auf 0°
und fällt mit 50 g fester Trichloressigsäure wie im Beispiel 2 beschrieben. Nach Waschen mit Aceton
und Trocknen wie im Beispiel 2 erhält man 600 mg Rohprodukt. Die Aktivitätsausbeute beträgt 6 MRC-Einheiten
pro Gramm Acetontrockenpulver.
b) Man läßt 80 g Polyacrylamid-Gel über Nacht in
0,1 η-Ameisensäure quellen und füllt das Gel in ein Chromatographie-Rohr (innerer Durchmesser 2,5 cm),
so daß es in gesetztem Zustand eine Höhe von 94 cm erreicht (Gesamtvolumen des Gelbettes 460 ml).
600 mg des nach a) erhaltenen Rohproduktes werden in 20 ml 0,1 η-Ameisensäure gelöst, auf die Gelsäule
gebracht und mit 0,1 η-Ameisensäure eluiert. Das Eluat wird durch ein registrierendes Durchfluß-UV-Photometer
(254 nm) geleitet und in Fraktionen von je 15 ml gesammelt. Die Eluate werden dünnschichtchromatographisch
an Polydextran-Gel in 0,1 n-Ameisensäure (mit Chlor-Tolidin-Reagens) analysiert sowie biologisch geprüft. Das Aktivitätsmaximum
liegt bei einem Eluatvolumen, das 0,8 Säulenvolumen entspricht. Die Fraktionen werden einzeln lyophilisiert
und liefern 70% der Gesamtaktivität; die besten Fraktionen weisen eine Aktivität von 40 MRC-Einheiten/mg
auf. Das Molekulargewicht dieser aktiven Stoffe liegt unter 5000. Das Produkt kann durch multiplikative
Verteilung und/oder Gelchromatographie weitergereinigt werden. Zu diesem Zweck werden je
2 bis 5 g des angereicherten Materials einer Gegenstromverteilung über 250 bis 300 Stufen im Sytem
n-Butanol-Methanol-0,1 n-Essigsäure (4 :1 : 5) unterworfen.
Nach biologischer und chromatographischer Kontrolle erhält man 2 aktive Fraktionen mit
K-Werten von etwa 0,5 und 1,5. Sie werden einer weiteren Polyacrylamid-Chromatographie in 0,1 n-Ameisensäure
unterworfen, worauf die spezifische Aktivität auf etwa 80 MRC-Einheiten steigt. Diese
Fraktionen enthalten noch Trichloressigsäure, die, wenn erwünscht, durch Ionenaustausch in 0,1 nessig-
oder ameisensaurer Lösung an stark basischem Polystyrolharz entfernt wird. Zur weiteren Reinigung
verteilt man 100 bis 500 mg des 50- bis 70°/oigen Produktes im Gegenstrom über 800 bis 1100 Stufen
unter ständiger chromatographischer und elcktrophoretischer Kontrolle. Als System dienen z. B. n-Butanol-n-Essigsäure
(1 :1) mit 0.25 g Ammonacetat/ Liter oder n-Butanol-Eisessig-Wasser (4:1:5) bis
(5:1:4). Nach wiederholter Lyophilisation erhält man chromatographisch und elektrophoretisch einhcitl'ches
λ- und fl-Thyrocalcitonin einer spezifischen Aktivität von je 200 MRC-Einheiten/mg Trockensubstanz;
beide Peptide sind als Acetate leicht, als
Trichloracetate relativ schwer löslich. /5-Thyrocalcitonin
ist gegen milde Oxydation mit Perameisensäure stabil, während a-Thyrocalcitonin in ein stärker polares
Produkt (a2) übergeht, das sich chromatographisch
von /J-Thyrocalcitonin nicht unterscheiden läßt. Durch chromatographischen Vergleich der
Trypsin-Abbauprodukte läßt sich nachweisen, daß sich ß-Thyrocalcitonin von α-Thyrocalcitonin nur
durch den Gehalt an Methioninsulfoxid statt Methionin unterscheidet. Der Trypsin-Abbau ergibt 3 Bruchstücke,
die durch Gegenstromverteilung im Ammonacetatsystem getrennt und rein isoliert werden können.
Die Bruchstücke sind biologisch nicht mehr aktiv. Nach Aminosäureanalyse (s. Tabelle 1) bildeten
sich je ein Hcpta-, Undcca- und Telradecnpeptid. Der durch Methionin/Methioninsulfoxid bedingte
Unterschied von λ- und /?-TC kommt nur im Bruche
stück Trs zur Geltung. Es ergibt sich, daß «-Thyrocalcitonin
ein lineares Dolriacontapepüd mit einem -S-S-Ring ist. Die Formel des (\-Thyrocalcitonins ist
H—Cys—Ser—Asn—Leu—Ser—Thr—Cys
— VaI — Leu — Ser — Al a — Ty r — Trp
— Arg—Asn — Leu — Asn — Asn — Phe
— His — Arg — Phe — Ser — GIy — Met
— GIy — Phe — GIy — Pro — GIu — Thr
— Pro — NH1.
Tabelle I
Analytische Daten für «-TC und a-TC-sulfoxid (=/?-TQ, sowie deren tryptische Fragmente
Analytische Daten für «-TC und a-TC-sulfoxid (=/?-TQ, sowie deren tryptische Fragmente
a-TC und
a-TC- sulfoxid |
a-TC
oxidiert |
Tr, |
Tr,
oxidiert |
Tr, | Tr, |
Tr,-
salfoxid |
0 0 |
1 1125 |
I 1141 |
|
Trpi) | 1 1 |
—*) | 1 0 |
— | 0 1 |
0 0 1 |
0,57 0,78 1,6 1, |
0,40 0,73 1,9 6 |
||
His | 2 4 2 |
4 2 |
1 1 1 |
1 1 |
1 3 0 |
1 | ||||
Arg | 4 | 4 | 3 | 3 | 0 | 1 | ||||
Asp/Asn . . ... | 1 | 1 | 0 | 0 | 0 | 2 | ||||
Thr | 2 | 2 | 0 | 0 | 0 | 3 0 |
||||
Ser | 3 1 |
3 1 |
0 1 |
0 1 |
0 0 |
0 0 0 |
||||
Glu/Gln | 1.3 O 1 |
0 2 1 |
1,2 0 1 |
0 2 1 |
ooo | 1 | ||||
Pro .. ... | 1 | 0 | 0 | 0 | 0 | 0 0 |
||||
GIy | O 3 |
1 3 |
0 2 |
0 2 |
0 i |
0 | ||||
AIa | 1 | 0,5 | 1 | 0,8 | 0 | 2 | ||||
Vs/Cys)2 | 3 | 3 | 0 | 0 | 1 | |||||
Cys(O,H) | 3 3604 |
2 3620 |
14 1601 |
7 914 |
||||||
VaI | 0,56 0,54 1,1 2, |
0,51 0,48 1,5 9 |
0,53 0,51 1,6 2,5 |
0,29 0,24 5,3 4,7 |
||||||
Met | ||||||||||
Met(O,) | ||||||||||
Lee .. | ||||||||||
Tyr | ||||||||||
Phe | ||||||||||
Total Aminosäuren ... Molgewichtsprozent be rechnet |
||||||||||
Dünnschichtchromato- graphies) BuOH — AcOH — H.O (75:7,5: 21) MeOH-CHCL1 -NH4OH 17%ig (41:4L: 18) |
||||||||||
Elektrophorese 4) auf Celluloseacetat.. auf Avicel-Cellulose |
l) Spektraphatometrisch bestimmt.
*) — bedeutet nicht bestimmt
») Rf-Werte auf Aluminiumoxid.
*) pH = 1,9; 90 Min.; 9 Vait/cm. Die Zahlen bedeuten kathodisch«! Laufstrecken in cm.
20 g acetongetrocknetes Schweineschilddräsen gewebe
werden in analoger Weise wie in Beispiel 2 beschrieben mit der oberen Phase des Lösungsmittelsystems
V (= 75 Liter n-Buranol + 7,5 Liter Ameisensäure
-t- 21 Liter bidestilliertes Wasser) extrahiert.
Gleiche Aufarbeitung des Extraktes wie im Beispiel 4 ergibt ein Rohprodukt mit einer Aktivitätsausbei
von 7 MRC-Einheiten pro Gramm Acetontrockc pulver.
500 kg tiefgefrorene Schweineschilddrüsen werd in einer Fleischhackmaschine zerkleinert und
400 Liter auf —10° vorgekühltes Aceton, in w
ίη?Λ?<
Natri"^äthyl^amintftraacetat gelöst
suid, eingetragen Der entstehende Bm wird in einen
5,4 und rührt unter Stickstoffatmosphäre 15 Minuten Anschließend gibt man noch 200 Liter 70Viges
=efLfmlrPÄ
gerührt und dann stehengelassen, so daß sich die imlöslichen
Anteile absetzt. Die überstehende, St
^S^ eter S?" ^
480 Liter Aceton nochmals 4 Stunden bei RaumteT-peratur
in Stickstoffatmosphäre gerührt. Nachstehenlassen wird die überstehende Lösung abgesaugt und
der Rückstand zentrifugiert. Die vereinigen fisun gen (2800Liter) enthalten die Hauptmenfe des Z-rocalcitonins
(etwa 75 bis 80V.). Sie wfrden unter Rühren langsam mit konzentrierter Natronlauge !ersetzt,
bis das pH mit der Glaselektrode gemessen auf 2,9 bis 3,0 konstant bleibt. Bei einem Vakuum von
20 bis 40 mm Hg wird bei einer maximalen Badtemperatur von 30° auf die Hälfte eingedampft Das
Konzentrat wird mit 2800Liter NlethylenchloS
1 Stunde gerührt und 4 Stunden stehengelassen Die obere, leicht gelb gefärbte wäßrige Phase wi?d 2
gesogen, die Methylenchloridphase mit 200 Liter
ffissass^ÄWaschlösu"8
sas
HES
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gieren vom inaiivS M-S κι""0 ^** 2S^
fen?rifuSp T^ Nl<J«?chlag getrennt Die abΖ?η\ΪΕΐ
Γ^£ τ" ΐ^""? Extraktion des
Sn, S8 w·· I0Llter °'01 n"Salzsäure 8ewon-
5°
geseS hT
"ί " kg,
Und
f /^ stellt eine klebnge
ρ ? * ^f0"1 wird-
Γ' ^1** h^' Wifd mH Y
versetzt und einige Stunden
versetzt und einige Stunden
Vakuum (20 bis 40 mm Hg) bei 25° von organischen Lösungsmitteln vollständig befreit, auf 700 Liter konzentriert
und auf 5° abgekühlt. Mit 2,7 Liter konzentrierter Salzsäure wird das pH auf 1,5 gestellt und
84 kgTrichloressigsäure portionenweise unter Rühren in Stickstoffatmosphäre im Laufe von 2 Stunden zu
der bei 0 bis 5° gehaltenen Lösung zugegeben. Die Lösung, in der sich allmählich ein feiner Niederschlag
bildet, wird 6 Stunden in der Kälte stehengelassen. Die Fällung wird in einer Zentrifuge von
der gelbgefärbten Lösung getrennt. Es werden 760 e einer dunkelgefärbten, klebrigen Masse erhalten, dil
mit 4,5 Liter eiskaltem Aceton verrieben wird' In der dunkelgefärbten Acetonlösung bildet sich ein
sandfarbenes Pulver. Unter Rühren werden 4,5 Liter auf -10° abgekühlter Äther zugegeben und diese
Mischung bei - 10° stehengelassen. Der durch Zentrifugieren gewonnene Rückstand wird noch zweimal
mit kaltem Äther gewaschen und bei Zimmertemperatur im Vakuum getrocknet. Das Trockenpulver
(335 g) enthält 2 MRC-Einheiten pro Gramm tiefgefrorener Schweineschilddrüse. Es kann wie im
Beispiel 2 beschrieben weitergereinigt werden.
Man rührt eine Suspension von 40 kg mit Aceton entfettetem Schweineschilddriisengewebe in 400 Liter
absolutem Äthanol, deren pH mit konzentrierter HCl auf 6,5 eingestellt ist, 2 bis 3 Stunden Lei Raumtemperatur.
Durch Zentrifugieren trennt man etwa 360 Liter ab. Das vorextrahierte, noch etwa 40 Liter
Äthanol enthaltende Produkt wird in eine Mischung von 140 Liter absolutem Äthanol und 60 Liter 0 05 η
Salzsäure eingetragen; den pH-Wert von 6,3 'senkt man unter Zugabe von etwa 5 Liter einer Mischung
von absolutem Äthanol und 5 n-Salzsäurc (7 · 3) auf
m oT
d£«ltSr
d£«ltSr
. n — bei Raumtemperatur getrocknet. Aus-
Deute: 20g eines hellen Pulvers mit etwa 6 MRC-Das Produkt kann durch Gelchroma-
- im Beispiel 4 b) beschrieben oder yegenstromdialyse wie im Beispiel 8 beschrieweitergereinigt
werden.
H,,wg 6I"^ xach BeisPie* 4 a) gewonnenen Rohproduktes
(O,9MRC-Einheiten/mg) werden in 20OmI tu (Sn sen?aure gelöst und von unlöslichen An-
« ETA!?' auf der Zentrifuge (1 Stunde, 5000 g)
befreit. D.e klare Lösung zeigt ein pH 2,65. Sie wird m.t emer Geschwindigkeit (F1) von 36 ml/h in dem
•""Msensäure vorgewaschenen Gegenstrom-1S-O
gegen 0,1 η-Ameisensäure mit N=,^ _■· 'indlSkeit (vu) von 365 ml/h geleitet.
y£h, ♦" dle 8esamte zu dialysierende Lösung im
Zirkulation^ystem I eingeströmt ist, wird noch mit
3fimS.\( Fullvolumen) 0,1 η-Ameisensäure (F1 =
36 ml/h) weiter dialysiert. Durch Einengen unter Vakuum m Rotationsverdampfer und Lyophilisation
'*"*"' werden aus dem Zirkulations-.
--_. 1090 ml) 272 mg einer dunkelbrau-Masse
erhalten, welche, 0,W0Jg in 0,1 n-AmeiemhälT
8 mindestens 3 MRC-Einheiten/mg
«o Die Lösunp aus dem Zirkulationssystem I (330 ml),
5 in gleicher Weise gegen 0,1 n-Amei-/siert.
Das Lyophilisat aus dem Synach dieser zweiten Dialyse wiegt 52 mg und
ist mindestens so aktiv wie der dialysierbare Anteil
. Uialyse. Es werden also 324 mg rohes Thyroitonm,
frei von hochmolekularen Stoffen, gewon-
cit^Ä" ?.'-d etWa 5O°/o der gesamten Thyrocalcitonmaktivitat
enthalten.
./t
25 g eines mit Trichloressigsäure gefällten, durch
Verteilung vorgereinigten Produktes mit 3 MRC-Einheiten/mg werden in 2S00 ml 0,01 η-Salzsäure gelöst.
Die nitrierte Lösung wird zwecks Entfernung von Trichloressigsäure dreimal mit dem gleichen Volumen Diäthyläther ausgeschüttelt, nachdem das pH
vor der letzten Extraktion von 3,4 auf 2,5 gesenkt wurde. Die kaum gefärbte wäßrige Phase wird im
Vakuum vom Äther befreit und im Gegenstromdialysator (vt = 163 ml/h) gegen bidestilliertes Wasser
(rn = 365 ml/h) dialysierL
Die aus dem Zirkulationssystem II gewonnene Lösung (4480 ml) wird im Vakuum auf 140 ml eingeengt und zweimal mit dem gleichen Volumen Diäthyläther extrahiert. Aus der von Äther befreiten wäßrigen Phase werden durch Lyophilisation 2,95 g rohes
Thyrocalcitonin gewonnen (5 MRC-Einheiten/mg).
Die im Zirkulationssystem I erhaltene Lösung (2,6 Liter) wird im Vakuum auf 1,5 Liter eingeengt
und zweimal mit je I Liter Äther ausgeschüttelt. Man füllt die von Äther im Vakuum befreite wäßrige
Phase, welche ein pH von 3,2 zeigt, mit bidestilliertem Wasser auf 1500'ml auf und dialysiert sie (vt =
121 ml/h) gegen bidestilliertes Wasser (vn =
365 ml/h).
Die aus dem Zirkulationssystem Π gewonnene Lösung (4530 ml) ergibt 1,6 g angereichertes Thyrocalcitonin mit 10 MRC-Einheiten/mg. Man dialysiert
die aus dem Zirkulationssystem I gewonnene Lösung (1730 ml), der man 17,3 ml 1 η-Ameisensäure zufügt,
um das pH von 4,4 auf 3,4 einzustellen, gegen 0,001 η-Ameisensäure (V1 = 82 ml/h; vn = 365 ml/h).
Aus dem Zirkulationssystem Π werden aus 5,3 Liter
Lösung noch 642 mg angereichertes Produkt mi
einer Aktivität von 9 MRC-Einheiten/mg gewonnen
Beispiel 10
S
Eine aus 450 g Acetontrockenpulver von Schweine-Schilddrüsen nach Beispiel 4 a) erhaltene Trichlor
essigsäurefällung wird, ohne mit Aceton gewascher zu sein, nacheinander mit 80 ml und 40 ml 0,1 πιο Ameisensäure und mit 10 ml 0,1 η-Salzsäure geschüttelt und zentrifugiert. Die überstehenden Lösungen werden vereinigt und mit 0,01 n-Ameisensäurc
auf 200 ml ergänzt. Die Lösung, deren pH = 2,4 ist, wird im Gegenstromdialysator gegen 0,01 n-Ameisensäure dialysiert (V1 — 121 ml/h; vn = 365 ml/h).
Aus dem Zirkulationssystem Π werden 1,1g Produkt gewonnen, das etwa 30°/» Trichloressigsäure enthält
und biologisch inaktiv ist. Die Lösung aus dem Zirkulationssystem I (360 ml) wird mit 0,01 n-Ameisen-SO säure auf 400 ml ergänzt und nochmals gegen 0,01 n-Ameisensäure dialysiert fo = 121 ml/h; υπ =
365 ml/h). Aus dem Zirkulationssystem Π erhält man 213 mg aktives Produkt. Durch nochmalige Dialyse
der auf 200 ml eingeengten Lösung aus dem Zirkuas lationssystem I gegen 0,01 n-Ameisensäure (V1 =
36 ml/h; vn = 365 ml/h) werden 62 mg gereinigtes
Thyrocalcitonin mit 30MRC/mg erhalten. Die aus dem Zirkulationssystem I gewonnene Lösung
(386 ml) wird im Vakuum auf 200 ml eingeengt und nochmals gegen 0,01 η-Ameisensäure dialysiert
(vj = 36 ml/h; νιτ — 365 ml/h). Die Lösung aus
dem Zirkulationssystem II ergibt 42 mg aktives Produkt und diejenige aus dem Zirkulationssystem I
173 mg Produkt, letzteres ist wesentlich weniger aktiv
als die dialysierbaren Anteile der 2. bis 4. Dialyse.
Claims (1)
1. a-Thyrocalcitonin der Formel
, 1
H—Cys—Ser—Asn — Leu —Ser—Thr— Cys
— VaI — Leu — Ser — AIa — Tyr — Trp
— Arg — Asn — Leu — Asn — Asn — Phe
— His — Arg — Phe — Ser — GIy — Met — GIy
— Phe — GIy — Pro— GIu — Thr— Pro
-NH5.
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Date | Code | Title | Description |
---|---|---|---|
C3 | Grant after two publication steps (3rd publication) | ||
E77 | Valid patent as to the heymanns-index 1977 | ||
EHV | Ceased/renunciation |