DE112008002456T5 - Pflanzen mit erhöhtem Ertrag - Google Patents

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Abstract

Verfahren zur Herstellung einer Pflanze mit einem erhöhten Ertrag, verglichen mit einer entsprechenden Pflanze vom Wildtyp, welches wenigstens den folgenden Schritt umfasst: Erhöhen oder Erzeugen einer oder mehrerer Aktivitäten, ausgewählt aus der Gruppe bestehend aus einer (DL)-Glycerin-3-phosphatase, einer 2-Desoxyglucose-6-phosphatphosphatase, einer 3-Methyl-2-oxobutanoat-Hydroxymethyltransferase, einer Alkoholacetyltransferase, einer Aminosäurepermease, einer Aminomethyltransferase, einem Ammoniumtransporter, einem Aquaporin, einem ATP-bindenden Protein eines Arabinosetransportsystems, einer Argininosuccinatsynthase, einer Aspartataminotransferase, einem B1906-Protein, einem B3410-Protein, einer Cardiolipinsynthetase, einem CoA-Transferase-ähnlichen Protein (NAD(P)-bindend), einem Cobalttransportprotein, einem DNA- und proteinbindenden Protein zur Steuerung des Proteoms auf der posttranskriptionellen Ebene, einer Enoyl-CoA-Hydratase, einer Enoyl-CoA-Isomerase, einer Ethanolaminkinase, einer Formiatacetyltransferase 1, einem Protein einer Glucit/Sorbit-spezifischen Enzym-IIA-Komponente, einer Glutaminsynthetase, einer Glutathion-S-transferase, einer Glycerindehydrogenase, einem Glykogensyntheseinitiatorprotein, einem GTP-bindenden Protein, einem Hitzeschorkprotein, einem Hexosetransporter, einer Holo-[Acylträgerprotein]-Synthase, einem anorganischen Phosphattransporter, einer Lanosterolsynthase, einer molybdänbindenden Untereinheit von Aldehydoxidasen und Xanthindehydrogenasen, einem Multidrug-Resistenzprotein, einem Multiple-Drug-Resistenzprotein, einer NADH-Dehydrogenase/NAD(P)H-Nitroreduktase, einer Oxidoreduktase, einer Peptidyl-Prolyl-cis/trans-Isomerase, einem Peroxisomal-Targeting-Signal-2-Rezeptor, einer Phosphoadenosinphosphosulfatreduktase, einem Phosphoträgerprotein, einem Pirin-ähnlichen Protein, einer Precorrin-6y-Methylase, einem...

Description

  • Die vorliegende, hier offenbarte Erfindung stellt ein Verfahren zur Herstellung einer Pflanze mit erhöhtem Ertrag verglichen mit einer entsprechenden Pflanze vom Wildtyp bereit, bei dem man eine oder mehrere Aktivitäten in einer Pflanze oder einem Teil davon erhöht oder erzeugt. Die vorliegende Erfindung betrifft weiterhin Nukleinsäuren, die eines oder mehrere Merkmale einer transgenen Pflanze verstärken oder verbessern, und Zellen, Nachkommen, Samen und Pollen, die sich von diesen Pflanzen oder Teilen ableiten, sowie Herstellungsverfahren und Verfahren zur Anwendung solcher Pflanzenzellen bzw. Pflanzen, Nachkommen, Samen oder Pollen. Dieses verbesserte Merkmal/diese verbesserten Merkmale zeigt/zeigen sich in einem erhöhten Ertrag, vorzugsweise durch die Verbesserung eines oder mehrerer Ertragsmerkmale, z. B. Toleranz gegenüber niedrigen Temperaturen.
  • Unter Freilandbedingungen hängt die Leistung von Pflanzen zum Beispiel hinsichtlich Wachstum, Entwicklung, Aufbau von Biomasse und Samenbildung von der Fähigkeit der Pflanze, zahlreiche Umweltbedingungen, -veränderungen und -stressfaktoren zu tolerieren bzw. sich daran anzupassen, ab. Seit Anbeginn der Landwirtschaft und des Gartenbaus besteht ein Bedarf, bei der Kultivierung von Pflanzen Pflanzenmerkmale zu verbessern. Durch Zuchtstrategien werden die Kulturpflanzeneigenschaften zum Widerstehen gegen biotische und abiotische Stressfaktoren, zur Verbesserung der Effizienz der Nährstoffausnutzung und zur Veränderung anderer den Pflanzen eigener kulturpflanzenspezifischer Ertragsparameter gefördert, d. h. die Erhöhung des Ertrags durch die Anwendung von technischen Fortschritten. Pflanzen sind sesshafte Organismen und müssen infolgedessen dazu fähig sein, mit verschiedenen Umweltstressfaktoren zu leben. Biotische Stressfaktoren wie Pflanzenschädlinge und Pathogene einerseits und abiotische Umweltstressfaktoren andererseits sind bedeutende limitierende Faktoren des Wachstums und der Produktivität von Pflanzen (Boyer, Plant Productivity and Environment, Science 218, 443–448 (1982); Bohnert et al., Adaptations to Environmental Stresses, Plant Cell 7 (7), 1099–1111 (1995)), die so der Kultivierung und der geographischen Verteilung von Pflanzen Grenzen setzen. Den verschiedenen Stressfaktoren ausgesetzte Pflanzen haben typischerweise geringe Erträge an Pflanzenmaterial wie Samen, Früchten oder Produkten. Durch abiotische und biotische Stressfaktoren bewirkte Verluste an Kulturpflanzen und Kulturpflanzenertragsverluste stellen einen wichtigen ökonomischen und politischen Faktor dar und tragen insbesondere in vielen unterentwickelten Ländern zu Nahrungsmittelknappheit bei. Bei den heutzutage herkömmlichen Verfahren zum Herbeiführen von Verbesserungen bei Kulturpflanzen und Gartenpflanzen wendet man selektive Zuchtverfahren an, um Pflanzen mit wünschenswerten Charakteristika zu identifizieren. Durch Fortschritte in der Molekularbiologie ist es inzwischen möglich, das Germplasma von Pflanzen auf eine spezifische Weise zu modifizieren. Die Modifikation eines einzelnen Gens zum Beispiel führte in mehreren Fällen zu einer signifikanten Steigerung z. B. der Stresstoleranz (Wang et al., 2003) sowie anderer Ertragsmerkmale. Es besteht ein Bedarf, Gene zu identifizieren, die Resistenz gegen verschiedene Kombinationen von Stressfaktoren verleihen oder die unter suboptimalen Wachstumsbedingungen einen verbesserten Ertrag verleihen. Es besteht immer noch ein Bedarf, Gene zu identifizieren, die dazu in der Lage sind, insgesamt den Ertrag von Pflanzen zu verbessern.
  • Es besteht somit ein Bedarf, Gene zu identifizieren, die einer Pflanze einen erhöhten Ertrag verleihen.
  • Gemäß einer ersten Ausführungsform stellt die vorliegende Erfindung somit ein Verfahren zur Herstellung einer Pflanze mit erhöhtem Ertrag, verglichen mit einer entsprechenden Pflanze vom Wildtyp, bereit, welches wenigstens den folgenden Schritt umfasst: Erhöhen oder Erzeugen einer oder mehrerer Aktivitäten, ausgewählt aus der Gruppe bestehend aus einer (DL)-Glycerin-3-phosphatase, einer 2-Desoxyglucose-6-phosphatphosphatase, einer 3-Methyl-2-oxobutanoat-Hydroxymethyltransferase, einer Alcoholacetyltransferase, einer Aminosäurepermease, einer Aminomethyltransferase, einem Aammoniumtransporter, einem Aquaporin, einem ATP-bindenden Protein des Arabinosetransoprtsystems, einer Argininosuccinatsynthase, einer Aspartataminotransferase, einem B1906-Protein, einem B3410-Protein, einer Cardiolipinsynthetase, einem CoA-Transferase-ähnlichen Protein (NAD(P)-bindend), einem Cobalttransportprotein, einem DNA- und proteinbindenden Protein zur Steuerung des Proteoms auf der posttranskriptionellen Ebene, einer Enoyl-CoA-Hydratase, einer Enoyl-CoA-Isomerase, einer Ethanolaminkinase, einer Formiatacetyltransferase 1, einem Protein einer Glucit/Sorbit-specifischen Enzym-IIA-Komponente, einer Glutaminsynthetase, einer Glutathion-S-transferase, einer Glycerindehydrogenase, einem Glykogensyntheseinitiatorprotein, einem GTP-bindenden Protein, Hitzeschockprotein, einem Hexosetransporter, einer Holo-[Acylträgerprotein]-Synthase, einem inorganichen Phosphattransporter, einer Lanosterolsynthase, eine molybdänbindenden Untereinheit von Aldehydoxidasen und Xanthindehydrogenasen, einem Multidrug-Resistenzprotein, einem Multiple-Drug-Resistenzprotein, einer NADH-Dehydrogenase/NAD(P)H-Nitroreduktase, einer Oxidoreduktase, einer Peptidyl-Prolyl-cis/trans-Isomerase, einem Peroxisomal-Targeting-Signal-2-Rezeptor, einer Phosphoadenosinphosphosulfatreduktase, einem Phosphoträgerprotein, einem Pirin-ähnlichen Protein, einer Precorrin-6y-Methylase, einem für den Abbau von Glykoproteinen benötigten Protein, einer Pyrimidindeaminase/-reduktase, einem Regulator der Zellmorphogenese und der NO-Signalvermittlung, einer Serinacetyltrasnferase, einer Untereinheit des Signalosomkomplexes, einem SLR1094-Protein, einer Untereinheit von TORC1, einer thiolspezifischen Monooxygenase, einem die Transkription steuernden Protein, einer Transketolase, einem Zwei-Modul-Transportprotein, einem Uridindiphosphat-N-acetylgrucosamintransporter, einem yer175w-a-Protein, einem yhr213w-a-Protein, einem YML079W-Protein, einem YMR157C-Protein, einem YNL024C-Protein und einem YNR040W-Protein.
  • Der Ausdruck ”Ertrag” bezieht sich, so wie er hier verwendet wird, allgemein auf ein messbares Produkt von einer Pflanze, insbesondere einer Kulturpflanze. Ertrag und Ertragszunahme (im Vergleich zu einer nicht transformierten Ausgangspflanze bzw. einer Pflanze vom Wildtyp) lässt sich auf eine Reihe von Wegen messen, und es versteht sich, dass es einem Fachmann möglich ist, angesichts der jeweiligen Ausführungsformen, der jeweils betroffenen Kulturpflanze und dem speziellen betreffenden Zweck bzw. der betreffenden Anwendung die korrekte Bedeutung zu bestimmen. Vorzugsweise lassen sich die bevorzugten gesteigerten oder verbesserten Ertragscharakteristika einer hier beschriebenen Pflanze gemäß der vorliegenden Erfindung in Abwesenheit oder Gegenwart von Stressbedingungen erzielen. Die Bedeutung von ”Ertrag” hängt somit vor allem von der interessierenden Kulturpflanze und der vorgesehenen Verwendung ab, und es versteht sich, dass der Fachmann sich in jedem betreffenden Fall von den Einzelheiten der Beschreibung her darüber klar sein wird, was gemeint ist. Für die Zwecke der Beschreibung der vorliegenden Erfindung bezieht sich gesteigerter oder erhöhter „Ertrag” auf einen oder mehrere Ertragsparameter, ausgewählt aus der Gruppe bestehend aus Biomasseertrag, Ertrag an Trockenbiomasse, Ertrag an oberirdischer Trockenbiomasse, Ertrag an unterirdischer Trockenbiomasse, Ertrag an Frischgewichtbiomasse, Ertrag an oberirdischer Frischgewichtbiomasse, Ertrag an unterirdischer Frischgewichtbiomasse, gesteigerter Ertrag an Erntegut, entweder Trockengewicht oder Frischgewicht oder beides, entweder oberirdisch oder unterirdisch oder beides, gesteigerter Ertrag an Kulturpflanzenfrüchten, entweder Trockengewicht oder Frischgewicht oder beides, entweder oberirdisch oder unterirdisch oder beides, und vorzugsweise gesteigerter Ertrag an Samen, entweder Trockengewicht oder Frischgewicht oder beides, entweder oberirdisch oder unterirdisch oder beides. Der Ausdruck ”Ertrag” bezieht sich, so wie er hier verwendet wird, allgemein auf ein messbares Produkt von einer Pflanze, insbesondere einer Kulturpflanze. Ertrag und Ertragszunahme (im Vergleich zu einer nicht transformierten Ursprungspflanze bzw. einer Pflanze vom Wildtyp) lässt sich auf eine Reihe von Wegen messen. Es versteht sich, dass es einem Fachmann möglich ist, angesichts der jeweiligen Ausführungsformen, der jeweils betroffenen Kulturpflanze und dem speziellen betreffenden Zweck bzw. der betreffenden Anwendung die korrekte Bedeutung zu bestimmen.
  • So stellt die vorliegende Erfindung zum Beispiel Verfahren zur Herstellung transgener Pflanzenzellen oder Pflanzen bereit, die ein erhöhtes Ertragsmerkmal zeigen können, z. B. eine erhöhte Toleranz gegenüber Umweltstress und/oder einen erhöhten intrinsischen Ertrag und/oder eine erhöhte der Pflanze eigene Biomasseproduktion verglichen mit einer entsprechenden (z. B. nicht transformierten) Pflanze vom Wildtyp oder Ausgangspflanze, bei dem man eine oder mehrere der oben erwähnten Aktivitäten erhöht oder erzeugt.
  • Gemäß einer Ausführungsform bezieht sich eine Erhöhung des Ertrags auf einen erhöhten Erntegutertrag, einen erhöhten Biomasseertrag und/oder einen erhöhten Samenertrag. Gemäß einer Ausführungsform bezieht sich „Ertrag”, so wie er hier beschrieben wird, auf den Erntegutertrag einer Pflanze. Der Ertrag einer Pflanze kann jeweils von der betreffenden Pflanze/Kulturpflanze von Interesse sowie deren jeweils vorgesehener Verwendung (wie Nahrungsmittelproduktion, Futterproduktion, der Produktion von verarbeiteten Nahrungsmitteln, der Produktion von Biotreibstoff, Biogas oder Alkohol oder dergleichen) von Interesse abhängen. Gemäß einer Ausführungsform wird Ertrag als Ernteindex (ausgedrückt als Verhältnis des Gewichts der entsprechenden erntbaren Teile dividiert durch die Gesamtbiomasse), das Gewicht der erntbaren Teile pro Fläche (Hektar, Quadratmeter oder dergleichen); und dergleichen berechnet. Gemäß einer Ausführungsform bezieht sich „Ertrag” auf Biomasseertrag, z. B. auf Trockengewicht-Biomasseertrag und/oder Frischgewicht-Biomasseertrag. Biomasseertrag bezieht sich auf die oberirdischen oder unterirdischen Teile einer Pflanze, je nach den speziellen Umständen (Testbedingungen, spezielle Pflanze von Interesse, Anwendung von Interesse und dergleichen). Gemäß einer Ausführungsform bezieht sich Biomasseertrag auf die oberirdischen und unterirdischen Teile. Der Biomasseertrag kann als Frischgewicht, als Trockengewicht oder auf einer feuchtigkeitsangepassten Basis berechnet werden. Der Biomasseertrag kann auf einer Pro-Pflanze-Basis oder bezogen auf eine spezielle Fläche (z. B. Biomasseertrag pro Hektar/Quadratmeter oder dergleichen) berechnet werden. Bei anderen Ausführungsformen bezieht sich ”Ertrag” auf den Samenertrag, der sich anhand eines oder mehrerer der folgenden Parameter bestimmen lässt: Anzahl an Samen oder Anzahl an gefüllten Samen (pro Pflanze oder pro Fläche (Hektar/Quadratmeter oder dergleichen)); Samenfülltrate (Verhältnis zwischen der Anzahl an gefüllten Samen und der Gesamtanzahl an Samen); Anzahl an Blüten pro Pflanze; Samenbiomasse oder Gesamtsamengewicht (pro Pflanze oder pro Fläche (Hektar/Quadratmeter oder dergleichen)); „Thousand Kernel Weight” (TKW; extrapoliert aus der Anzahl gezählter gefüllter Samen und deren Gesamtgewicht; eine Erhöhung des TKW kann auf eine erhöhte Samengröße, ein erhöhtes Samengewicht, eine erhöhte Embryogröße und/oder einen erhöhten Endosperm zurückzuführen sein). Auch andere Parameter, die eine Messung des Samenertrags erlauben, sind im Stand der Technik bekannt. Der Samenertrag lässt sich auf Trockengewichtsbasis oder auf Frischgewichtsbasis oder typischerweise auf einer feuchtigkeitsangepassten Basis, z. B. bei einer Feuchtigkeit von 15,5 Prozent, bestimmen.
  • Dieser erhöhte Ertrag gemäß der vorliegenden Erfindung lässt sich typischerweise erzielen, indem man, im Vergleich zu einer Ursprungspflanze bzw. einer Pflanze vom Wildtyp, eines oder mehrere der Ertragsmerkmale einer Pflanze steigert oder verbessert. Zu diesen Ertragsmerkmalen einer Pflanze, deren Verbesserung zu einem erhöhten Ertrag führt, zählen, ohne dass dies als Einschränkung gelten soll, die Erhöhung der der Pflanze eigenen Ertragskapazität, eine verbesserte Effizienz der Nährstoffausnutzung und/oder eine erhöhte Toleranz gegenüber Stress, insbesondere eine erhöhte Toleranz gegenüber abiotischem Stress.
  • Dementsprechend handelt es sich gemäß einer Ausführungsform bei dem eine Erhöhung des Ertrags der Pflanze verleihenden Ertragsmerkmal um eine Erhöhung der der Pflanze eigenen Ertragskapazität, die sich zum Beispiel in einer Verbesserung des spezifischen (intrinsischen) Samenertrags (z. B. hinsichtlich einer erhöhten Samen-/Korngröße, einer erhöhten Ährenzahl, einer erhöhten Anzahl an Samen pro Ähre, einer Verbesserung der Samenfüllung, einer Verbesserung der Samenzusammensetzung, Embryo- und/oder Endospermverbesserungen oder dergleichen); Modifikation und Verbesserung der inhärenten Wachstums- und Entwicklungsmechanismen einer Pflanze (wie Pflanzenhöhe, Pflanzenwachstumsrate, Anzahl an Schoten, Position der Schoten an der Pflanze, Anzahl an Internodien, Häufigkeit von Aufplatzen der Schoten, Effizienz der Nodulation und Stickstofffixierung, Effizienz der Kohlenstoffassimilation, Verbesserung der Wachstumskraft der Keimlinge/der frühen Wachstumskraft, verbesserte Keimungseffizienz (unter Stress- oder Nicht-Stress-Bedingungen), Verbesserung der Pflanzenarchitektur, Zellzyklusmodifikationen, Photosynthesemodifikationen, verschiedene Signalpfadmodifikationen, Modifikation der Steuerung der Transkription, Modifikation der Steuerung der Translation, Modifikation von Enzymaktivitäten und dergleichen); und/oder dergleichen zeigen kann. Dementsprechend handelt es sich gemäß einer Ausführungsform bei dem eine Erhöhung des Ertrags der Pflanze verleihenden Ertragsmerkmal um eine Verbesserung oder Erhöhung der Stresstoleranz einer Pflanze, die sich zum Beispiel in einer verbesserten oder erhöhten Toleranz einer Pflanze gegenüber Stress, insbesondere abiotischem Stress, zeigen kann. In der vorliegenden Anmeldung bezieht sich abiotischer Stress im Allgemeinen auf abiotische Umweltbedingungen, denen eine Pflanze typischerweise ausgesetzt ist, einschließlich Bedingungen, die typischerweise als Bedingungen von ”abiotischem Stress” bezeichnet werden, einschließlich, jedoch nicht darauf beschränkt, Dürre (Toleranz gegenüber Dürre lässt sich als Ergebnis einer verbesserten Effizienz der Wasserausnutzung erzielen), Bedingungen von Hitze, niedrigen Temperaturen und Kälte (wie Frostbedingungen und Bedingungen von kühlen Temperaturen), Versalzung, osmotischer Stress, Schatten, hohe Pflanzendichte, mechanischer Stress, oxidativer Stress und dergleichen.
  • Dementsprechend wird bei einer Ausführungsform der vorliegenden Erfindung eine Erhöhung des Ertrags der Pflanze vermittelt, indem man die „Effizienz der Nährstoffausnutzung einer Pflanze” erhöht, z. B. indem man die Ausnutzungseffizienz von Nährstoffen einschließlich, jedoch nicht darauf beschränkt, Phosphor, Kalium und Stickstoff, verbessert. Es besteht zum Beispiel ein Bedarf an Pflanzen, die dazu fähig sind, Stickstoff effizienter auszunutzen, so dass für das Wachstum weniger Stickstoff benötigt wird, was somit zu einem verbesserten Ertragsniveau unter Stickstoffmangelbedingungen führt. Weiterhin lassen sich mit den gegenwärtigen bzw. standardgemäßen Niveaus an Stickstoffaufwand höhere Erträge erzielen. Dementsprechend wird bei einer Ausführungsform der vorliegenden Erfindung der Pflanzenertrag erhöht, indem man die Effizienz der Stickstoffausnutzung einer Pflanze oder eines Teils davon erhöht. Es ist somit eine weitere Aufgabe der vorliegenden Erfindung, eine Pflanze bereitzustellen, die eine gesteigerte Effizienz der Stickstoffausnutzung zeigt und/oder unter Bedingungen mit eingeschränkter Stickstoffversorgung einen erhöhten Ertrag zeigt, verglichen mit einer entsprechenden Pflanze vom Wildtyp. Aufgrund der hohen Kosten von Stickstoffdünger im Verhältnis zu den Erlösen aus landwirtschaftlichen Produkten und darüber hinaus seiner abträglichen Wirkung auf die Umwelt ist es wünschenswert, Strategien zu entwickeln, um den Stickstoffeintrag zu reduzieren und/oder die Stickstoffaufnahme und/oder die Verwertung des zur Verfügung stehenden Stickstoffs zu optimieren und gleichzeitig einen optimalen Ertrag, eine optimale Produktivität und eine optimale Qualität an Pflanzen, vorzugsweise kultivierten Pflanzen, z. B. Kulturpflanzen, zu bewahren. Ebenfalls wünschenswert ist es, den gleichen Ertrag an Kulturpflanzen mit einen geringeren Einsatz an Düngemitteln und/oder einen höheren Ertrag auf Böden mit ähnlicher oder sogar schlechterer Qualität zu erzielen. Eine gesteigerte NUE der Pflanze lässt sich gemäß der folgenden Methode bestimmen und quantifizieren:
    Transformierte Pflanzen werden in Töpfen in einer Wachstumskammer (Svalöf Weibull, Svalöv, Schweden) herangezogen. Handelt es sich bei den Pflanzen um Arabidopsis thaliana, so werden Samen davon in Töpfe ausgesät, die eine 1:1 (v:v) Mischung von nährstoffarmem Boden („Einheitserde Typ 0”, 30% Lehm, Tantau, Wansdorf Deutschland) und Sand enthalten. Die Keimung wird durch eine 4-tägige Dunkelperiode bei 4°C induziert. Anschließend werden die Pflanzen unter Standardwachstumsbedingungen herangezogen. In dem Fall, dass es sich bei den Pflanzen um Arabidopsis thaliana handelt, sind die Standardwachstumsbedingungen folgende: Lichtperiode von 16 Stunden Licht und 8 Stunden Dunkelheit, 20°C, 60% relative Luftfeuchtigkeit, und eine Photonenflussdichte von 200 μE. Handelt es sich bei den Pflanzen um Arabidopsis thaliana, so werden sie jeden zweiten Tag mit einer stickstoffarmen Nährstofflösung gegossen. Nach 9 bis 10 Tagen werden die Pflanzen vereinzelt. Nach einer Gesamtzeit von 29 bis 31 Tagen werden die Pflanzen geerntet und anhand des Frischgewichts der oberirdischen Teile der Pflanzen, vorzugsweise der Rosetten, eingestuft. Bei einer weiteren Ausführungsform wird die Toleranz gegenüber Dürre nach der in den Beispielen beschriebenen Methode bestimmt. Dementsprechend betrifft die vorliegende Erfindung in einer Ausführungsform ein Verfahren zur Erhöhung des Ertrags, welches die folgenden Schritte umfasst:
    • (a) Messen des Stickstoffgehalts im Boden und
    • (b) Bestimmen, ob der Stickstoffgehalt im Boden optimal oder suboptimal für das Wachstum einer Ursprungspflanze oder einer Pflanze vom Wildtyp, zum Beispiel einer Kulturpflanze, ist und
    • (c1) Heranziehen der erfindungsgemäßen Pflanze in diesem Boden, wenn der Stickstoffgehalt suboptimal für das Wachstum der Ursprungspflanze oder der Pflanze vom Wildtyp ist, oder
    • (c2) Heranziehen der erfindungsgemäßen Pflanze in dem Boden und Vergleich des Ertrags mit dem Ertrag einer Standardpflanze, einer Ursprungspflanze oder einer Pflanze vom Wildtyp und Auswahl und Heranziehen der Pflanze, die den höchsten Ertrag zeigt, wenn der Stickstoffgehalt optimal für die Ursprungspflanze bzw. die Pflanze vom Wildtyp ist.
  • Bei einer weiteren Ausführungsform der vorliegenden Erfindung wird der Pflanzenertrag erhöht, indem man die Stresstoleranz(en) der Pflanze erhöht. Im Allgemeinen kann der Ausdruck „erhöhte Toleranz gegenüber Stress” als das Überleben von Pflanzen und/oder eine höhere Ertragsproduktion unter Stressbedingungen, verglichen mit einer nicht transformierten Pflanze vom Wildtyp bzw. Ausgangspflanze, definiert werden. Während ihres Lebenszyklus ist eine Pflanze im Allgemeinen verschiedenen Umweltbedingungen ausgesetzt. Hier werden alle solchen Bedingungen, die unter gewissen Umständen einen Einfluss auf den Pflanzenertrag haben, als ”Stress”bedingung bezeichnet. Umweltstressfaktoren können allgemein in biotische und abiotische (Umwelt-)Stressfaktoren unterteilt werden. Ungünstige Nährstoffbedingungen werden manchmal auch als „Umweltstress” bezeichnet. Die vorliegende Erfindung zieht auch Lösungen für diese Art von Umweltstress in Betracht, die sich zum Beispiel auf eine erhöhte Effizienz der Nährstoffausnutzung beziehen. Bei einer weiteren Ausführungsform der vorliegenden Erfindung wird der Pflanzenertrag erhöht, indem man die Toleranz(en) einer Pflanze oder eines Teils davon gegenüber abiotischem Stress erhöht. Für die Zwecke der Beschreibung der vorliegenden Erfindung werden die Ausdrücke „gesteigerte Toleranz gegenüber abiotischem Stress”, „gesteigterte Resistenz gegen abiotischen Umweltstress”, „gesteigerte Toleranz gegenüber Umweltstress”, „verbesserte Anpassung an Umweltstress” und andere Variationen davon sowie Ausdrücke mit einer ähnlichen Bedeutung austauschbar verwendet und beziehen sich ohne Einschränkung auf eine Verbesserung der Toleranz gegenüber einem oder mehreren der wie hier beschriebenen abiotischen Umweltstressfaktoren, verglichen mit einer entsprechenden Ursprungspflanze bzw. Pflanze vom Wildtyp oder einem Teil davon. Der Ausdruck Toleranz(en) gegenüber abiotischem Stress bezieht sich zum Beispiel auf Toleranz gegenüber niedrigen Temperaturen, Toleranz gegenüber Dürre, Toleranz gegenüber Hitze, Toleranz gegenüber Salzstress und andere. Stresstoleranz in Pflanzen wie Toleranz gegenüber Stress durch niedrige Temperaturen, Dürre, Hitze und Salz können ein gemeinsames, für das Pflanzenwachstum wichtiges Element, nähmlich die Verfügbarkeit von Wasser, haben. Pflanzen sind während ihres Lebenszyklus typischerweise Bedingungen von verringertem Wassergehalt in der Umwelt ausgesetzt. Die Schutzstrategien sind ähnlich denen für die Toleranz gegenüber kühlen Temperaturen.
  • Dementsprechend bezieht sich bei einer Ausführungsform der vorliegenden Erfindung dieses Ertragsmerkmal auf eine erhöhte Effizienz der Wasserausnutzung der erfindungsgemäßen Pflanze und/oder eine erhöhte Toleranz der erfindungsgemäßen Pflanze gegenüber Dürrebedingungen. Gemäß einer Ausführungsform der vorliegenden Erfindung bezieht sich der Ausdruck Dürrestress auf einen Umweltstress, der einen Wassermangel in Pflanzen oder eine verminderte Wasserversorgung von Pflanzen zur Folge hat, einschließlich einem sekundären Stress durch niedrige Temperaturen und/oder Salz und/oder einem primären Stress während einer Dürre oder Hitzewelle, z. B. Austrocknung usw. Eine erhöhte Toleranz gegenüber Dürrebedingungen lässt sich nach der folgenden Methode bestimmen und quantifizieren. Transformierte Pflanzen werden einzeln in Töpfen in einer Wachstumskammer (York Industriekälte GmbH, Mannheim, Deutschland) kultiviert. Die Keimung wird induziert. In dem Fall, dass es sich bei den Pflanzen um Arabidopsis thaliana handelt, werden die ausgesäten Samen bei 4°C im Dunkeln 3 Tage lang gehalten, um die Keimung zu induzieren. Anschließend werden die Bedingungen 3 Tage lang zu 20°C/6°C Tages/Nacht-Temperatur mit einem 16/8h-Tag-Nacht-Zyklus bei 150 μE/m2s verändert. Anschließend werden die Pflanzen unter Standardwachstumsbedingungen herangezogen. In dem Fall, dass es sich bei den Pflanzen um Arabidopsis thaliana handelt, sind die Standardwachstumsbedingungen folgende: Lichtperiode von 16 Stunden Licht und 8 Stunden Dunkelheit, 20°C, 60% relative Luftfeuchtigkeit, und eine Photonenflussdichte von 200 μE. Die Pflanzen werden wachsen gelassen und kultiviert, bis sie Blätter entwickeln. In dem Fall, dass es sich bei den Pflanzen um Arabidopsis thaliana handelt, werden sie täglich bewässert, bis sie ungefähr 3 Wochen alt waren. Beginnend zu dieser Zeit wurde eine Dürre durch Wasserentzug herbeigeführt. Nachdem die nicht-transformierten Wildtyp-Pflanzen sichtbare Symptome einer Schädigung aufzeigen, beginnt die Auswertung, und die Pflanzen werden hinsichtlich Symptomen von Dürresymptomen und hinsichtlich des Biomasseproduktion-Vergleichs mit Wildtyp- und Nachbarpflanzen 5–6 Tage lang nacheinander bewertet. Bei einer weiteren Ausführungsform wird die Toleranz gegenüber Dürre, z. B. Toleranz gegenüber zyklischer Dürre, nach der in den Beispielen beschriebenen Methode bestimmt. Bei einer bevorzugten Ausführungsform handelt es sich bei der Toleranz gegenüber Dürre um eine Toleranz gegenüber zyklischer Dürre. Dementsprechend betrifft die vorliegende Erfindung in einer Ausführungsform ein Verfahren zur Erhöhung des Ertrags, welches die folgenden Schritte umfasst:
    • (a) Bestimmen, ob die Wasserversorgung in der Pflanzfläche optimal oder suboptimal für das Wachstum einer Ursprungspflanze oder einer Pflanze vom Wildtyp, zum Beispiel einer Kulturpflanze, ist und/oder Bestimmen der visuellen Symptome von Verletzungen von Pflanzen, die in der Pflanzfläche wachsen, und
    • (b1) Heranziehen der erfindungsgemäßen Pflanze in diesem Boden, wenn die Wasserversorgung suboptimal für das Wachstum einer Ursprungspflanze oder einer Pflanze vom Wildtyp ist oder visuelle Symptome von Dürre bei einer Standardpflanze, eine Ursprungspflanze oder einer Pflanze vom Wildtyp, die in der Pflanzfläche wachsen, festgestellt werden können, oder
    • (b2) Heranziehen der erfindungsgemäßen Pflanze in dem Boden und Vergleich des Ertrags mit dem Ertrag einer Standardpflanze, einer Ursprungspflanze oder einer Pflanze vom Wildtyp und Auswahl und Heranziehen der Pflanze, die den höchsten Ertrag zeigt, wenn die Wasserversorgung optimal für die Ursprungspflanze bzw. die Pflanze vom Wildtyp ist.
  • Zu den sichtbaren Schädigungssymptomen gehören eines oder eine beliebige Kombination von zwei, drei oder mehreren der folgenden Merkmale:
    • a) Welken,
    • b) Braunfärbung der Blätter,
    • c) Abnahme des Turgordrucks, was ein Herunterhängen von Blättern bzw. Nadelstängeln und Blüten zur Folge hat,
    • d) Herunterhängen und/oder Abwerfen von Blättern oder Nadeln,
    • e) die Blätter sind grün, aber im Vergleich zu den Kontrollen leicht zum Boden hin abgewinkelt,
    • f) die Blattkanten haben begonnen, sich nach innen zu falten (einzudrehen),
    • g) vorzeitiges Abwerfen von Blättern oder Nadeln,
    • h) Verlust von Chlorophyll in den Blättern oder Nadeln und/oder Vergilbung.
  • Bei einer weiteren Ausführungsform der vorliegenden Erfindung handelt es sich bei diesem Ertragsmerkmal der erfindungsgemäßen Pflanze um eine erhöhte Toleranz dieser Pflanze gegenüber Bedingungen von Hitze.
  • Bei einer anderen Ausführungsform der vorliegenden Erfindung handelt es sich bei diesem Ertragsmerkmal der erfindungsgemäßen Pflanze um eine erhöhte Toleranz dieser Pflanze gegenüber niedrigen Temperaturen, wozu z. B. Frosttoleranz und eine Toleranz gegenüber kühlen Temperaturen zählt. Niedrige Temperaturen beeinträchtigen eine Vielzahl von biologischen Prozessen. Sie verzögern oder inhibieren nahezu alle metabolischen und zellulären Prozesse. Die Reaktion von Pflanzen auf niedrige Temperaturen ist eine wichtige Determinante ihres ökologischen Bereichs. Das Problem, die niedrigen Temperaturen ertragen zu müssen, wird dadurch verschlimmert, dass es erforderlich ist, die Wachstumsperiode über den in hohen Breitengraden oder großen Höhen anzutreffenden kurzen Sommer hinaus zu verlängern. Die meisten Pflanzen haben Anpassungsstrategien entwickelt, um sich gegen niedrige Temperaturen zu schützen. Im Allgemeinen kann man die Anpassung an niedrige Temperaturen in eine Toleranz gegenüber kühlen Temperaturen und eine Frosttoleranz unterteilen. Eine Toleranz gegenüber kühlen Temperaturen findet man in der Natur in Arten aus gemäßigten oder borealen Zonen, und sie ermöglicht das Überleben und ein verbessertes Wachstum bei niedrigen Temperaturen, jedoch Nicht-Frost-Temperaturen. Arten aus tropischen oder subtropischen Zonen sind empfindlich gegenüber kühlen Temperaturen und zeigen häufig ein Welken, Chlorose oder Nekrose, ein verlangsamtes Wachstum und sogar Absterben bei Temperaturen um etwa 10°C während eines oder mehrerer Entwicklungsstadien. Dementsprechend bezieht sich eine verbesserte oder gesteigerte ”Abkühlungstoleranz”, oder Abwandlungen hiervon, auf eine verbesserte Adaptierung an niedrige, jedoch Nicht-Frost-Temperaturen um 10°C, vorzugsweise Temperaturen zwischen 1 bis 18°C, weiter bevorzugt 4–14°C, und am stärksten bevorzugt 8 bis 12°C, was hierin nachstehend als eine ”Abkühlungstemperatur” bezeichnet wird. Eine Frosttoleranz ermöglicht ein Überleben bei Temperaturen von um null Grad bis insbesondere Temperaturen von unter null Grad. Man nimmt an, dass dies durch ein Verfahren gefordert wird, das als Kälteakklimatisierung bezeichnet wird und das bei niedrigen Temperaturen, jedoch Nicht-Frost-Temperaturen, stattfindet und für eine erhöhte Frosttoleranz bei Temperaturen von unter null Grad sorgt. Darüber hinaus haben die meisten Arten aus gemäßigten Regionen Lebenszyklen, die an die saisonalen Temperaturveränderungen angepasst sind. Bei diesen Pflanzen können niedrige Temperaturen über den Prozess der Stratifizierung und Vernalisierung auch eine wichtige Rolle bei der Pflanzenentwicklung spielen. Es wird offensichtlich, dass eine klare Unterscheidung zwischen bzw. Definition von Toleranz gegenüber kühlen Temperaturen und Frosttoleranz schwierig ist, und dass die Prozesse überlappend oder miteinander verbunden sein können. Eine verbesserte oder gesteigerte ”Frosttoleranz”, oder Abwandlungen hiervon, bezieht sich hier auf eine verbesserte Adaptierung an Temperaturen nahe oder unter null, nämlich vorzugsweise Temperaturen unterhalb von 4°C, weiter bevorzugt unter 3 oder 2°C, und besonders bevorzugt bei oder unter 0 (null)°C oder unterhalb von –4°C, oder sogar extrem geringe Temperaturen bis hinab zu –10°C oder tiefer, was hierin als ”Frosttemperatur” bezeichnet wird. „Verbesserte Anpassung” an Umweltstress wie z. B. Frosttemperaturen und/oder kühle Temperaturen bezieht sich hier auf eine verbesserte Pflanzenleistung, die zu einem erhöhten Ertrag, insbesondere hinsichtlich eines oder mehrerer der oben ausführlicher definierten Ertragsmerkmale, führt. Dementsprechend kann die erfindungsgemäße Pflanze bei einer Ausführungsform ein frühes Keimlingswachstum zeigen, nachdem eine gegenüber kühlen Temperaturen empfindliche Pflanze vom Wildtyp oder Ursprungspflanze niedrigen Temperaturen ausgesetzt wurde, wodurch bei einer weiteren Ausführungsform die Samenkeimungsraten verbessert werden. Der Prozess der Samenkeimung hängt stark von der Umwelttemperatur ab, und die Eigenschaften der Samen bestimmen das Aktivitätsniveau und die Leistung während der Keimung und dem Auflaufen der Keimlinge, wenn man sie niedrigen Temperaturen aussetzt. Das erfindungsgemäße Verfahren stellt gemäß einer Ausführungsform eine Pflanze bereit, die unter kühlen Bedingungen eine reduzierte Verzögerung der Blattentwicklung zeigt. Gemäß einer Ausführungsform betrifft das Verfahren gemäß der Erfindung eine Herstellung toleranter wichtiger Kulturpflanzen, z. B. Mais, Bohnen, Reis, Sojabohnen, Baumwolle, Tomaten, Bananen, Gurken und Kartoffeln, da die meisten wichtigen Kulturpflanzen gegenüber kühlen Temperaturen empfindlich sind. Eine gesteigerte Toleranz gegenüber niedrigen Temperaturen lässt sich zum Beispiel nach der folgenden Methode bestimmen:
    Transformierte Pflanzen werden in Blumentöpfen in einer Wachstumskammer (z. B. York, Mannheim, Deutschland) herangezogen. Handelt es sich bei den Pflanzen um Arabidopsis thaliana, so werden die Samen davon in Töpfe eingesät, die eine 3,5:1 (v:v) Mischung an nährstoffreichem Boden (GS90, Tantau, Wansdorf, Deutschland) und Sand enthalten. Die Pflanzen werden unter standardmäßigen Wachstumsbedingungen wachsen gelassen. In dem Fall, dass es sich bei den Pflanzen um Arabidopsis thaliana handelt, sind die Standardwachstumsbedingungen folgende: Lichtperiode von 16 Stunden Licht und 8 Stunden Dunkelheit, 20°C, 60% relative Luftfeuchtigkeit, und eine Photonenflussdichte von 200 μmol/m2s. Die Pflanzen werden herangezüchtet und kultiviert. In dem Fall, dass es sich bei den Pflanzen um Arabidopsis thaliana handelt, werden sie jeden zweiten Tag bewässert. Nach 9 bis 10 Tagen werden die Pflanzen vereinzelt. Kälte (z. B. Abkühlen bei 11–12°C) wird 14 Tage nach der Aussaat bis zum Ende des Experiments angewandt. Nach einer Gesamtwachstumsperiode von 29 bis 31 Tagen werden die Pflanzen geerntet und anhand des Frischgewichts der oberirdischen Teile der Pflanzen, im Fall von Arabidopsis vorzugsweise der Rosetten, eingestuft.
  • Dementsprechend betrifft die vorliegende Erfindung in einer Ausführungsform ein Verfahren zur Erhöhung des Ertrags, welches die folgenden Schritte umfasst:
    • (a) Bestimmen, ob die Temperatur in der Pflanzfläche optimal oder suboptimal für das Wachstum einer Ursprungspflanze oder einer Pflanze vom Wildtyp ist, zum Beispiel einer Kulturpflanze, und
    • (b1) Heranziehen der erfindungsgemäßen Pflanze in diesem Boden, wenn die Temperatur suboptimal niedrig für das Wachstum einer auf dieser Fläche wachsenden Ursprungspflanze oder Pflanze vom Wildtyp ist, oder
    • (b2) Heranziehen der erfindungsgemäßen Pflanze in dem Boden und Vergleich des Ertrags mit dem Ertrag einer Standardpflanze, einer Ursprungspflanze oder einer Pflanze vom Wildtyp und Auswahl und Heranziehen der Pflanze, die den höhsten Ertrag zeigt, wenn die Temperatur optimal für die Ursprungspflanze bzw. die Pflanze vom Wildtyp ist.
  • Gemäß einer weiteren Ausführungsform der vorliegenden Erfindung kann es sich bei diesem Ertragsmerkmal auch um eine erhöhte Versalzungstoleranz (Salztoleranz), eine Toleranz gegenüber osmotischem Stress, eine erhöhte Schattentoleranz, eine erhöhte Toleranz gegenüber einer hohen Pflanzendichte, eine erhöhte Toleranz gegenüber mechanischen Stressfaktoren, und/oder eine erhöhte Toleranz gegenüber oxidativem Stress handeln.
  • Dementsprechend wird bei einer Ausführungsform der vorliegenden Erfindung der Ertrag erhöht, indem man eines oder mehrere der wie hier definierten Ertragsmerkmale verbessert.
  • Die vorliegende Erfindung stellt somit ein Verfahren zur Herstellung einer transgenen Pflanze mit einem erhöhten Ertragsmerkmal, verglichen mit einer entsprechenden Ursprungspflanze oder Pflanze vom Wildtyp bereit, bei dem man eine oder mehrere Aktivitäten („Aktivitäten”), ausgewählt aus der Gruppe bestehend aus einer (DL)-Glycerin-3-phosphatase, einer 2-Desoxyglucose-6-phosphatphosphatase, einer 3-Methyl-2-oxobutanoat-Hydroxymethyltransferase, einer Alkoholacetyltransferase, einer Aminosäurepermease, einer Aminomethyltransferase, einem Ammoniumtransporter, einem Aquaporin, einem ATP-bindenden Protein des Arabinosetransportsystems, einer Argininosuccinatsynthase, einer Aspartataminotransferase, einem B1906-Protein, einem B3410-Protein, einer Cardiolipinsynthetase, einem CoA-Transferase-ähnlichen Protein (NAD(P)-bindend), einem Cobalttransportprotein, einem DNA- und proteinbindenden Protein zur Steuerung des Proteoms auf der posttranskriptionellen Ebene, einer Enoyl-CoA-Hydratase, einer Enoyl-CoA-Isomerase, einer Ethanolaminkinase, einer Formiatacetyltransferase 1, einem Protein einer Glucit/Sorbit-spezifischen Enzym-IIA-Komponente, einer Glutaminsynthetase, einer Glutathion-S-transferase, einer Glycerindehydrogenase, einem Glykogensyntheseinitiatorprotein, einem GTP-bindenden Protein, einem Hitzeschockprotein, einem Hexosetransporter, einer Holo-[Acylträgerprotein]-Synthase, einem anorganischen Phosphattransporter, einer Lanosterolsynthase, einer molybdänbindenden Untereinheit von Aldehydoxidasen und Xanthindehydrogenasen, einem Multidrug-Resistenzprotein, einem Multiple-Drug-Resistenzprotein, einer NADH-Dehydrogenase/NAD(P)H-Nitroreduktase, einer Oxidoreduktase, einer Peptidyl-Prolyl-cis/trans-Isomerase, einem Peroxisomal-Targeting-Signal-2-Rezeptor, einer Phosphoadenosinphosphosulfatreduktase, einem Phosphoträgerprotein, einem Pirin-ähnlichen Protein, einer Precorrin-6y-Methylase, einem für den Abbau von Glykoproteinen benötigten Protein, einer Pyrimidindeaminase/-reduktase, einem Regulator der Zellmorphogenese und der NO-Signalvermittlung, einer Serinacetyltransferase, einer Untereinheit des Signalosomkomplexes, einem SLR1094-Protein, einer Untereinheit von TORC1, einer thiolspezifischen Monooxygenase, einem die Transkription steuernden Protein, einer Transketolase, einem Zwei-Modul-Transportprotein, einem Uridindiphosphat-N-acetylglucosamintransporter, einem yer175w-a-Protein, einem yhr213w-a-Protein, einem YML079W-Protein, einem YMR157C-Protein, einem YNL024C-Protein und einem YNR040W-Protein, erhöht oder erzeugt.
  • Gemäß einer Ausführungsform stellt die vorliegende Erfindung somit ein Verfahren zur Herstellung einer Pflanze mit einer erhöhten Stressresistenz, insbesondere Resistenz gegenüber abiotischem Stress, verglichen mit einer entsprechenden Ursprungspflanze oder Pflanze vom Wildtyp bereit, bei dem man eine oder mehrere dieser Aktivitäten erhöht oder erzeugt. Bei einer anderen Ausführungsform handelt es sich bei der gemäß den Verfahren der vorliegenden Erfindung erzielten Resistenz gegen abiotischen Stress, die von der erfindungsgemäßen transgenen Pflanze gezeigt wird, um eine erhöhte Toleranz gegenüber niedrigen Temperaturen, insbesondere eine erhöhte Toleranz gegenüber kühlen Temperaturen. Bei einer anderen Ausführungsform handelt es sich bei der gemäß den Verfahren der vorliegenden Erfindung erzielten Resistenz gegen abiotischen Stress, die von der erfindungsgemäßen transgenen Pflanze gezeigt wird, um eine erhöhte Toleranz gegenüber Dürre, insbesondere eine erhöhte Toleranz gegenüber zyklischer Dürre.
  • Gemäß einer anderen Ausführungsform stellt die vorliegende Erfindung ein Verfahren zur Herstellung einer Pflanze mit einem erhöhten intrinsischen Ertrag, verglichen mit einer entsprechenden Ursprungspflanze oder Pflanze vom Wildtyp bereit, bei dem man eine oder mehrere dieser Aktivitäten erhöht oder erzeugt.
  • Gemäß einer anderen Ausführungsform stellt die vorliegende Erfindung ein Verfahren zur Herstellung einer Pflanze mit einer erhöhten Effizienz der Nährstoffausnutzung, verglichen mit einer entsprechenden Ursprungspflanze oder Pflanze vom Wildtyp bereit, bei dem man eine oder mehrere dieser Aktivitäten erhöht oder erzeugt. Bei einer anderen Ausführungsform handelt es sich bei der gemäß den Verfahren der vorliegenden Erfindung erzielten und durch die transgene Pflanze der Erfindung gezeigte Effizienz der Nährstoffausnutzung um eine erhöhte Effizienz der Stickstoffausnutzung.
  • Gemäß einer weiteren Ausführungsform der vorliegenden Erfindung wird somit ein Verfahren zur Herstellung einer transgenen Pflanze, von Nachkommen, Samen und/oder Pollen, die/das sich von solch einer Pflanze ableitet/ableiten, bereitgestellt, die jeweils verglichen mit einer entsprechenden, z. B. nicht transformierten, Pflanzenzelle oder Pflanze vom Wildtyp eine erhöhte Toleranz gegenüber niedrigen Temperaturen, insbesondere eine Toleranz gegenüber kühlen Temperaturen, zeigen, bei dem man eine oder mehrere dieser Aktivitäten erhöht oder erzeugt.
  • Gemäß einer weiteren Ausführungsform der vorliegenden Erfindung wird somit ein Verfahren zur Herstellung einer transgenen Pflanze, von Nachkommen, Samen und/oder Pollen, die/das sich von solch einer Pflanze ableitet/ableiten, bereitgestellt, die jeweils verglichen mit einer entsprechenden, z. B. nicht transformierten, Pflanzenzelle oder Pflanze vom Wildtyp eine erhöhte Toleranz gegenüber niedrigen Temperaturen sowie Effizienz der Stickstoffausnutzung (NUE) und/oder einen erhöhten intrinsischen Ertrag und/oder eine Toleranz gegenüber zyklischer Dürre, insbesondere eine Toleranz gegenüber kühlen Temperaturen, und eine Toleranz gegenüber Dürre, zeigen, bei dem man eine oder mehrere dieser Aktivitäten erhöht oder erzeugt.
  • Gemäß einer weiteren Ausführungsform der vorliegenden Erfindung wird somit ein Verfahren zur Herstellung einer transgenen Pflanze, von Nachkommen, Samen und/oder Pollen, die/das sich von solch einer Pflanze ableitet/ableiten, bereitgestellt, die jeweils verglichen mit einer entsprechenden, z. B. nicht transformierten, Pflanzenzelle oder Pflanze vom Wildtyp eine erhöhte Toleranz gegenüber niedrigen Temperaturen sowie Effizienz der Stickstoffausnutzung (NUE) und eine erhöhte Toleranz gegenüber zyklischer Dürre oder einen erhöhten intrinsischen Ertrag, insbesondere eine Toleranz gegenüber kühlen Temperaturen, und eine Toleranz gegenüber Dürre und eine erhöhte Biomasse, zeigen, bei dem man eine oder mehrere dieser Aktivitäten erhöht oder erzeugt.
  • Gemäß einer weiteren Ausführungsform der vorliegenden Erfindung wird somit ein Verfahren zur Herstellung einer transgenen Pflanze, von Nachkommen, Samen und/oder Pollen, die/das sich von solch einer Pflanze ableitet/ableiten, bereitgestellt, die jeweils verglichen mit einer entsprechenden, z. B. nicht transformierten, Pflanzenzelle oder Pflanze vom Wildtyp eine erhöhte Toleranz gegenüber niedrigen Temperaturen sowie Effizienz der Stickstoffausnutzung (NUE) oder eine erhöhte Toleranz gegenüber zyklischer Dürre und einen erhöhten intrinsischen Ertrag, insbesondere eine Toleranz gegenüber kühlen Temperaturen, und eine Toleranz gegenüber Dürre und eine erhöhte Biomasse, zeigen, bei dem man eine oder mehrere dieser Aktivitäten erhöht oder erzeugt.
  • Gemäß einer weiteren Ausführungsform der vorliegenden Erfindung wird somit ein Verfahren zur Herstellung einer transgenen Pflanze, von Nachkommen, Samen und/oder Pollen, die/das sich von solch einer Pflanze ableitet/ableiten, bereitgestellt, die jeweils verglichen mit einer entsprechenden, z. B. nicht transformierten, Pflanzenzelle oder Pflanze vom Wildtyp eine erhöhte Toleranz gegenüber niedrigen Temperaturen sowie Effizienz der Stickstoffausnutzung (NUE) und eine erhöhte Toleranz gegenüber zyklischer Dürre und einen erhöhten intrinsischen Ertrag, insbesondere eine Toleranz gegenüber kühlen Temperaturen, und eine Toleranz gegenüber Dürre und eine erhöhte Biomasse, zeigen, bei dem man eine oder mehrere dieser Aktivitäten erhöht oder erzeugt.
  • Weiterhin stellt die vorliegende Erfindung gemäß einer Ausführungsform eine transgene Pflanze bereit, die verglichen mit einer entsprechenden, z. B. nicht transformierten, Ursprungspflanze oder -pflanzenzelle bzw. Pflanzenzelle oder Pflanze vom Wildtyp eines oder mehrere mit einem erhöhten Ertrag in Zusammenhang stehende Merkmale zeigt, bei dem man eine oder mehrere aus der oben erwähnten Gruppe von Aktivitäten ausgewählte Aktivitäten erhöht oder erzeugt.
  • Weiterhin betrifft die vorliegende Erfindung ein Verfahren zur Herstellung einer Pflanze mit einem erhöhten Ertrag, verglichen mit einer entsprechenden Pflanze vom Wildtyp, welches wenigstens einen der Schritte umfasst, die aus der aus den folgenden Punkten bestehenden Gruppe ausgewählt sind:
    • (i) Erhöhen oder Erzeugen der Aktivität eines Polypeptids, umfassend ein Polypeptid, eine Konsensussequenz oder wenigstens ein Polypeptidmotiv, wie in Spalte 5 oder 7 von Tabelle II bzw. Tabelle IV aufgeführt; oder
    • (ii) Erhöhen oder Erzeugen der Aktivität eines Expressionsprodukts eines Nukleinsäuremoleküls, umfassend ein Polynukleotid, wie in Spalte 5 oder 7 von Tabelle I aufgeführt, und
    • (iii) Erhöhen oder Erzeugen der Aktivität eines funktionellen Äquivalents von (i) oder (ii).
  • Gemäß einer Ausführungsform wird die Erhöhung oder Erzeugung einer oder mehrerer Aktivitäten durch eine oder mehrere Nukleinsäuresequenzen verliehen, die ein Polynukleotid, ausgewählt aus der wie in Tabelle 1, Spalte 5 oder 7, gezeigten Gruppe, umfassen. Dementsprechend wird die Erhöhung oder Erzeugung einer oder mehrerer Aktivitäten zum Beispiel durch eines oder mehrere Expressionsprodukte dieses Nukleinsäuremoleküls, z. B. Proteine, verliehen. Dementsprechend wird bei der oben beschriebenen vorliegenden Erfindung die Erhöhung oder Erzeugung dieser einen Aktivität oder dieser mehreren Aktivitäten zum Beispiel durch ein oder mehrere Protein(e) verliehen, die jeweils ein aus der wie in Tabelle II, Spalten 5 und 7, gezeigten Gruppe ausgewähltes Polypeptid umfassen.
  • Für die Zwecke der Beschreibung der vorliegenden Erfindung werden die Proteine mit einer Aktivität, ausgewählt aus der Gruppe bestehend aus einer (DL)-Glycerin-3-phosphatase, einer 2-Desoxyglucose-6-phosphatphosphatase, einer 3-Methyl-2-oxobutanoat-Hydroxymethyltransferase, einer Alkoholacetyltransferase, einer Aminosäurepermease, einer Aminomethyltransferase, einem Ammoniumtransporter, einem Aquaporin, einem ATP-bindenden Protein des Arabinosetransportsystems, einer Argininosuccinatsynthase, einer Aspartataminotransferase, einem B1906-Protein, einem B3410-Protein, einer Cardiolipinsynthetase, einem CoA-Transferase-ähnlichen Protein (NAD(P)-bindend), einem Cobalttransportprotein, einem DNA- und proteinbindenden Protein zur Steuerung des Proteoms auf der posttranskriptionellen Ebene, einer Enoyl-CoA-Hydratase, einer Enoyl-CoA-Isomerase, einer Ethanolaminkinase, einer Formiatacetyltransferase 1, einem Protein einer Glucit/Sorbit-spezifischen Enzym-IIA-Komponente, einer Glutaminsynthetase, einer Glutathion-S-transferase, einer Glycerindehydrogenase, einem Glykogensyntheseinitiatorprotein, einem GTP-bindenden Protein, einem Hitzeschockprotein, einem Hexosetransporter, einer Holo-[Acylträgerprotein]-Synthase, einem anorganischen Phosphattransporter, einer Lanosterolsynthase, einer molybdänbindenden Untereinheit von Aldehydoxidasen und Xanthindehydrogenasen, einem Multidrug-Resistenzprotein, einem Multiple-Drug-Resistenzprotein, einer NADH-Dehydrogenase/NAD(P)H-Nitroreduktase, einer Oxidoreduktase, einer Peptidyl-Prolyl-cis/trans-Isomerase, einem Peroxisomal-Targeting-Signal-2-Rezeptor, einer Phosphoadenosinphosphosulfatreduktase, einem Phosphoträgerprotein, einem Pirin-ähnlichen Protein, einer Precorrin-6y-Methylase, einem für den Abbau von Glykoproteinen benötigten Protein, einer Pyrimidindeaminase/-reduktase, einem Regulator der Zellmorphogenese und der NO-Signalvermittlung, einer Serinacetyltransferase, einer Untereinheit des Signalosomkomplexes, einem SLR1094-Protein, einer Untereinheit von TORC1, einer thiolspezifischen Monooxygenase, einem die Transkription steuernden Protein, einer Transketolase, einem Zwei-Modul-Transportprotein, einem Uridindiphosphat-N-acetylglucosamintransporter, einem yer175w-a-Protein, einem yhr213w-a-Protein, einem YML079W-Protein, einem YMR157C-Protein, einem YNL024C-Protein und einem YNR040W-Protein, Proteinen, die ein Polypeptid umfassen, das von einer oder mehreren wie in Tabelle I, Spalte 5 oder 7, gezeigten Nukleinsäuresequenzen kodiert wird, oder Proteinen, die ein wie in Tabelle II, Spalten 5 und 7, gezeigtes Polypeptid umfassen, auch als „Yield Related Proteins” bzw. „YRPs” bezeichnet.
  • Dementsprechend werden die Gene der vorliegenden Erfindung bzw. die gemäß der vorliegenden Erfindung verwendeten Gene, die für ein Protein mit einer Aktivität, ausgewählt aus der Gruppe bestehend aus einer (DL)-Glycerin-3-phosphatase, einer 2-Desoxyglucose-6-phosphatphosphatase, einer 3-Methyl-2-oxobutanoat-Hydroxymethyltransferase, einer Alkoholacetyltransferase, einer Aminosäurepermease, einer Aminomethyltransferase, einem Ammoniumtransporter, einem Aquaporin, einem ATP-bindenden Protein des Arabinosetransportsystems, einer Argininosuccinatsynthase, einer Aspartataminotransferase, einem B1906-Protein, einem B3410-Protein, einer Cardiolipinsynthetase, einem CoA-Transferase-ähnlichen Protein (NAD(P)-bindend), einem Cobalttransportprotein, einem DNA- und proteinbindenden Protein zur Steuerung des Proteoms auf der posttranskriptionellen Ebene, einer Enoyl-CoA-Hydratase, einer Enoyl-CoA-Isomerase, einer Ethanolaminkinase, einer Formiatacetyltransferase 1, einem Protein einer Glucit/Sorbit-spezifischen Enzym-IIA-Komponente, einer Glutaminsynthetase, einer Glutathion-S-transferase, einer Glycerindehydrogenase, einem Glykogensyntheseinitiatorprotein, einem GTP-bindenden Protein, einem Hitzeschockprotein, einem Hexosetransporter, einer Holo-[Acylträgerprotein]-Synthase, einem anorganischen Phosphattransporter, einer Lanosterolsynthase, einer molybdänbindenden Untereinheit von Aldehydoxidasen und Xanthindehydrogenasen, einem Multidrug-Resistenzprotein, einem Multiple-Drug-Resistenzprotein, einer NADH-Dehydrogenase/NAD(P)H-Nitroreduktase, einer Oxidoreduktase, einer Peptidyl-Prolyl-cis/trans-Isomerase, einem Peroxisomal-Targeting-Signal-2-Rezeptor, einer Phosphoadenosinphosphosulfatreduktase, einem Phosphoträgerprotein, einem Pirin-ähnlichen Protein, einer Precorrin-6y-Methylase, einem für den Abbau von Glykoproteinen benötigten Protein, einer Pyrimidindeaminase/-reduktase, einem Regulator der Zellmorphogenese und der NO-Signalvermittlung, einer Serinacetyltransferase, einer Untereinheit des Signalosomkomplexes, einem SLR1094-Protein, einer Untereinheit von TORC1, einer thiolspezifischen Monooxygenase, einem die Transkription steuernden Protein, einer Transketolase, einem Zwei-Modul-Transportprotein, einem Uridindiphosphat-N-acetylglucosamintransporter, einem yer175w-a-Protein, einem yhr213w-a-Protein, einem YML079W-Protein, einem YMR157C-Protein, einem YNL024C-Protein und einem YNR040W-Protein, kodieren, die für ein Protein kodieren, das ein Polypeptid umfasst, das von einer wie in Tabelle I, Spalte 5 oder 7, gezeigten Nukleinsäuresequenz kodiert wird, und/oder die für ein Protein kodieren, das ein wie in Tabelle II, Spalten 5 und 7, gezeigtes Polypeptid umfasst, auch als „für YRP kodierende Gene” bezeichnet.
  • Die vorliegende Erfindung stellt somit gemäß einer Ausführungsform ein Verfahren zur Herstellung einer Pflanze mit einer erhöhten Ausbeute, verglichen mit einer entsprechenden Ursprungspflanze oder Pflanze vom Wildtyp bereit, bei dem man eine oder mehrere Aktivitäten, ausgewählt aus der Gruppe bestehend aus einer (DL)-Glycerin-3-phosphatase, einer 2-Desoxyglucose-6-phosphatphosphatase, einer 3-Methyl-2-oxobutanoat-Hydroxymethyltransferase, einer Alkoholacetyltransferase, einer Aminosäurepermease, einer Aminomethyltransferase, einem Ammoniumtransporter, einem Aquaporin, einem ATP-bindenden Protein des Arabinosetransportsystems, einer Argininosuccinatsynthase, einer Aspartataminotransferase, einem B1906-Protein, einem B3410-Protein, einer Cardiolipinsynthetase, einem CoA-Transferase-ähnlichen Protein (NAD(P)-bindend), einem Cobalttransportprotein, einem DNA- und proteinbindenden Protein zur Steuerung des Proteoms auf der posttranskriptionellen Ebene, einer Enoyl-CoA-Hydratase, einer Enoyl-CoA-Isomerase, einer Ethanolaminkinase, einer Formiatacetyltransferase 1, einem Protein einer Glucit/Sorbit-spezifischen Enzym-IIA-Komponente, einer Glutaminsynthetase, einer Glutathion-S-transferase, einer Glycerindehydrogenase, einem Glykogensyntheseinitiatorprotein, einem GTP-bindenden Protein, einem Hitzeschockprotein, einem Hexosetransporter, einer Holo-[Acylträgerprotein]-Synthase, einem anorganischen Phosphattransporter, einer Lanosterolsynthase, einer molybdänbindenden Untereinheit von Aldehydoxidasen und Xanthindehydrogenasen, einem Multidrug-Resistenzprotein, einem Multiple-Drug-Resistenzprotein, einer NADH-Dehydrogenase/NAD(P)H-Nitroreduktase, einer Oxidoreduktase, einer Peptidyl-Prolyl-cis/trans-Isomerase, einem Peroxisomal-Targeting-Signal-2-Rezeptor, einer Phosphoadenosinphosphosulfatreduktase, einem Phosphoträgerprotein, einem Pirin-ähnlichen Protein, einer Precorrin-6y-Methylase, einem für den Abbau von Glykoproteinen benötigten Protein, einer Pyrimidindeaminase/-reduktase, einem Regulator der Zellmorphogenese und der NO-Signalvermittlung, einer Serinacetyltransferase, einer Untereinheit des Signalosomkomplexes, einem SLR1094-Protein, einer Untereinheit von TORC1, einer thiolspezifischen Monooxygenase, einem die Transkription steuernden Protein, einer Transketolase, einem Zwei-Modul-Transportprotein, einem Uridindiphosphat-N-acetylglucosamintransporter, einem yer175w-a-Protein, einem yhr213w-a-Protein, einem YML079W-Protein, einem YMR157C-Protein, einem YNL024C-Protein und einem YNR040W-Protein, erhöht oder erzeugt, was durch eine oder mehrere Nukleinsäuresequenzen, die ein Polynukleotid, ausgewählt aus der wie in Tabelle I, Spalten 5 oder 7, gezeigten Gruppe, umfassen, oder durch ein oder mehrere Proteine, die jeweils ein Polypeptid umfassen, das durch eine oder mehrere aus der wie in Tabelle I, Spalte 5 oder 7, gezeigten Gruppe ausgewählte Nukleinsäuresequenzen kodiert wird, oder durch ein oder mehrere Proteine, die jeweils ein aus der wie in Tabelle II, Spalten 5 und 7, gezeigten Gruppe ausgewähltes Polypeptid umfassen, verliehen wird. Wie erwähnt kann die Ertragserhöhung durch ein oder mehrere Ertragsmerkmale vermittelt werden. Das erfindungsgemäße Verfahren betrifft somit die Herstellung einer Pflanze, die ein oder mehrere Ertragsmerkmale zeigt.
  • Das erfindungsgemäße Verfahren stellt somit ein Verfahren zur Herstellung einer Pflanze bereit, die eine erhöhte Effizienz der Nährstoffausnutzung, z. B. Effizienz der Stickstoffausnutzung (NUE), eine erhöhte Stressresistenz, insbesonders Resistenz gegen abiotischen Stress, eine erhöhte Effizienz der Nährstoffausnutzung, eine erhöhte Effizienz der Wasserausnutzung und/oder eine erhöhte Stressresistenz, insbesonders Resistenz gegen abiotischen Stress, insbesondere Toleranz gegenüber niedrigen Temperaturen oder Toleranz gegenüber Dürre oder einen erhöhten intrinsischen Ertrag zeigt.
  • Gemäß einer Ausführungsform wird diese Aktivität, ausgewählt aus der Gruppe bestehend aus:
    einer (DL)-Glycerin-3-phosphatase, einer 2-Desoxyglucose-6-phosphatphosphatase, einer 3-Methyl-2-oxobutanoat-Hydroxymethyltransferase, einer Alkoholacetyltransferase, einer Aminosäurepermease, einer Aminomethyltransferase, einem Ammoniumtransporter, einem Aquaporin, einem ATP-bindenden Protein des Arabinosetransportsystems, einer Argininosuccinatsynthase, einer Aspartataminotransferase, einem B1906-Protein, einem B3410-Protein, einer Cardiolipinsynthetase, einem CoA-Transferase-ähnlichen Protein (NAD(P)-bindend), einem Cobalttransportprotein, einem DNA- und proteinbindenden Protein zur Steuerung des Proteoms auf der posttranskriptionellen Ebene, einer Enoyl-CoA-Hydratase, einer Enoyl-CoA-Isomerase, einer Ethanolaminkinase, einer Formiatacetyltransferase 1, dem Protein einer Glucit/Sorbit-spezifischen Enzym-IIA-Komponente, einer Glutaminsynthetase, einer Glutathion-S-transferase, einer Glycerindehydrogenase, einem Glykogensyntheseinitiatorprotein, einem GTP-bindenden Protein, einem Hitzeschockprotein, einem Hexosetransporter, einer Holo-[Acylträgerprotein]-Synthase, einem anorganischen Phosphattransporter, einer Lanosterolsynthase, einer molybdänbindenden Untereinheit von Aldehydoxidasen und Xanthindehydrogenasen, einem Multidrug-Resistenzprotein, einem Multiple-Drug-Resistenzprotein, einer NADH-Dehydrogenase/NAD(P)H-Nitroreduktase, einer Oxidoreduktase, einer Peptidyl-Prolyl-cis/trans-Isomerase, einem Peroxisomal-Targeting-Signal-2-Rezeptor, einer Phosphoadenosinphosphosulfatreduktase, einem Phosphoträgerprotein, einem Pirin-ähnlichen Protein, einer Precorrin-6y-Methylase, einem für den Abbau von Glykoproteinen benötigten Protein, einer Pyrimidindeaminase/-reduktase, einem Regulator der Zellmorphogenese und der NO-Signalvermittlung, einer Serinacetyltransferase, einer Untereinheit des Signalosomkomplexes, einem SLR1094-Protein, einer Untereinheit von TORC1, einer thiolspezifischen Monooxygenase, einem die Transkription steuernden Protein, einer Transketolase, einem Zwei-Modul-Transportprotein, einem Uridindiphosphat-N-acetylglucosamintransporter, einem yer175w-a-Protein, einem yhr213w-a-Protein, einem YML079W-Protein, einem YMR157C-Protein, einem YNL024C-Protein und einem YNR040W-Protein erhöht, indem man die Menge und/oder spezifische Aktivität eines oder mehrerer Proteine mit dieser Aktivität erhöht, z. B. eines oder mehrerer der wie in Tabelle II, Spalten 5 und 7, gezeigten Polypeptide.
  • Die vorliegende Erfindung betrifft weiterhin ein Verfahren zur Herstellung einer Pflanze mit einem erhöhten Ertrag, verglichen mit einer entsprechenden Ursprungspflanze oder Pflanze vom Wildtyp, bei dem man
    • (a) in einem Kern einer Pflanzenzelle, einer Pflanzenzelle, einer Pflanze oder einem Teil davon eine oder mehrere Aktivitäten, ausgewählt aus der Gruppe bestehend aus einer (DL)-Glycerin-3-phosphatase, einer 2-Desoxyglucose-6-phosphatphosphatase, einer 3-Methyl-2-oxobutanoat-Hydroxymethyltransferase, einer Alkoholacetyltransferase, einer Aminosäurepermease, einer Aminomethyltransferase, einem Ammoniumtransporter, einem Aquaporin, einem ATP-bindenden Protein des Arabinosetransportsystems, einer Argininosuccinatsynthase, einer Aspartataminotransferase, einem B1906-Protein, einem B3410-Protein, einer Cardiolipinsynthetase, einem CoA-Transferase-ähnlichen Protein (NAD(P)-bindend), einem Cobalttransportprotein, einem DNA- und proteinbindenden Protein zur Steuerung des Proteoms auf der posttranskriptionellen Ebene, einer Enoyl-CoA-Hydratase, einer Enoyl-CoA-Isomerase, einer Ethanolaminkinase, einer Formiatacetyltransferase 1, einem Protein einer Glucit/Sorbit-spezifischen Enzym-IIA-Komponente, einer Glutaminsynthetase, einer Glutathion-S-transferase, einer Glycerindehydrogenase, einem Glykogensyntheseinitiatorprotein, einem GTP-bindenden Protein, einem Hitzeschockprotein, einem Hexosetransporter, einer Holo-[Acylträgerprotein]-Synthase, einem anorganischen Phosphattransporter, einer Lanosterolsynthase, einer molybdänbindenden Untereinheit von Aldehydoxidasen und Xanthindehydrogenasen, einem Multidrug-Resistenzprotein, einem Multiple-Drug-Resistenzprotein, einer NADH-Dehydrogenase/NAD(P)H-Nitroreduktase, einer Oxidoreduktase, einer Peptidyl-Prolyl-cis/trans-Isomerase, einem Peroxisomal-Targeting-Signal-2-Rezeptor, einer Phosphoadenosinphosphosulfatreduktase, einem Phosphoträgerprotein, einem Pirin-ähnlichen Protein, einer Precorrin-6y-Methylase, einem für den Abbau von Glykoproteinen benötigten Protein, einer Pyrimidindeaminase/-reduktase, einem Regulator der Zellmorphogenese und der NO-Signalvermittlung, einer Serinacetyltransferase, einer Untereinheit des Signalosomkomplexes, einem SLR1094-Protein, einer Untereinheit von TORC1, einer thiolspezifischen Monooxygenase, einem die Transkription steuernden Protein, einer Transketolase, einem Zwei-Modul-Transportprotein, einem Uridindiphosphat-N-acetylglucosamintransporter, einem yer175w-a-Protein, einem yhr213w-a-Protein, einem YML079W-Protein, einem YMR157C-Protein, einem YNL024C-Protein und einem YNR040W-Protein, erhöht oder erzeugt; und
    • (b) die Pflanzenzelle, die Pflanze oder den Teil davon unter Bedingungen kultiviert oder heranzieht, die die Entwicklung der Pflanzenzelle, der Pflanze oder des Teils davon erlauben, und
    • (c) eine Pflanze regeneriert, die einen erhöhten Ertrag, verglichen mit einer entsprechenden, z. B. nicht transformierten, Ursprungspflanze oder Pflanze vom Wildtyp zeigt;
    • (d) und gegebenenfalls die Pflanze oder einen Teil davon mit erhöhtem Ertrag, vorzugsweise verbesserter Effizienz der Nährstoffausnutzung und/oder Resistenz gegen abiotischen Stress, verglichen mit einer entsprechenden, z. B. nicht transformierten, Pflanzenzelle vom Wildtyp, einer transgenen Pflanze oder einem Teil davon, die/das sichtbare Symptome von Mängeln und/oder Absterben zeigt, auswählt.
  • Die vorliegende Erfindung betrifft außerdem ein Verfahren zur Identifikation einer Pflanze mit einem erhöhten Ertrag, bei dem man eine Population von einem oder mehreren Kernen von Pflanzenzellen, Pflanzenzellen, Pflanzengeweben oder Pflanzen oder Teilen davon auf eine Aktivität, ausgewählt aus der Gruppe bestehend aus einer (DL)-Glycerin-3-phosphatase, einer 2-Desoxyglucose-6-phosphatphosphatase, einer 3-Methyl-2-oxobutanoat-Hydroxymethyltransferase, einer Alkoholacetyltransferase, einer Aminosäurepermease, einer Aminomethyltransferase, einem Ammoniumtransporter, einem Aquaporin, einem ATP-bindenden Protein des Arabinosetransportsystems, einer Argininosuccinatsynthase, einer Aspartataminotransferase, einem B1906-Protein, einem B3410-Protein, einer Cardiolipinsynthetase, einem CoA-Transferase-ähnlichen Protein (NAD(P)-bindend), einem Cobalttransportprotein, einem DNA- und proteinbindenden Protein zur Steuerung des Proteoms auf der posttranskriptionellen Ebene, einer Enoyl-CoA-Hydratase, einer Enoyl-CoA-Isomerase, einer Ethanolaminkinase, einer Formiatacetyltransferase 1, einem Protein einer Glucit/Sorbit-spezifischen Enzym-IIA-Komponente, einer Glutaminsynthetase, einer Glutathion-S-transferase, einer Glycerindehydrogenase, einem Glykogensyntheseinitiatorprotein, einem GTP-bindenden Protein, einem Hitzeschockprotein, einem Hexosetransporter, einer Holo-[Acylträgerprotein]-Synthase, einem anorganischen Phosphattransporter, einer Lanosterolsynthase, einer molybdänbindenden Untereinheit von Aldehydoxidasen und Xanthindehydrogenasen, einem Multidrug-Resistenzprotein, einem Multiple-Drug-Resistenzprotein, einer NADH-Dehydrogenase/NAD(P)H-Nitroreduktase, einer Oxidoreduktase, einer Peptidyl-Prolyl-cis/trans-Isomerase, einem Peroxisomal-Targeting-Signal-2-Rezeptor, einer Phosphoadenosinphosphosulfatreduktase, einem Phosphoträgerprotein, einem Pirin-ähnlichen Protein, einer Precorrin-6y-Methylase, einem für den Abbau von Glykoproteinen benötigten Protein, einer Pyrimidindeaminase/-reduktase, einem Regulator der Zellmorphogenese und der NO-Signalvermittlung, einer Serinacetyltransferase, einer Untereinheit des Signalosomkomplexes, einem SLR1094-Protein, einer Untereinheit von TORC1, einer thiolspezifischen Monooxygenase, einem die Transkription steuernden Protein, einer Transketolase, einem Zwei-Modul-Transportprotein, einem Uridindiphosphat-N-acetylglucosamintransporter, einem yer175w-a-Protein, einem yhr213w-a-Protein, einem YML079W-Protein, einem YMR157C-Protein, einem YNL024C-Protein und einem YNR040W-Protein, untersucht, das Ausmaß der Aktivität mit dem Ausmaß der Aktivität in einer Referenz vergleicht; einen oder mehrere Kerne von Pflanzenzellen, Pflanzenzellen, Pflanzengewebe oder Pflanzen oder Teile davon mit einer im Vergleich zur Referenz erhöhten Aktivität identifiziert und gegebenenfalls eine Pflanze aus dem identifizierten Kern einer Pflanzenzelle, der identifizierten Zelle bzw. dem identifizierten Gewebe herstellt.
  • Gemäß einer weiteren Ausführungsform betrifft die vorliegende Erfindung außerdem ein Verfahren zur Identifikation einer Pflanze mit einem erhöhten Ertrag, bei dem man eine Population von einem oder mehreren Kernen von Pflanzenzellen, Pflanzenzellen, Pflanzengeweben oder Pflanzen oder Teilen davon auf das Expressionsniveau einer Nukleinsäure untersucht, die für ein Polypeptid kodiert, das eine Aktivität, ausgewählt aus der Gruppe bestehend aus einer (DL)-Glycerin-3-phosphatase, einer 2-Desoxyglucose-6-phosphatphosphatase, einer 3-Methyl-2-oxobutanoat-Hydroxymethyltransferase, einer Alkoholacetyltransferase, einer Aminosäurepermease, einer Aminomethyltransferase, einem Ammoniumtransporter, einem Aquaporin, einem ATP-bindenden Protein des Arabinosetransportsystems, einer Argininosuccinatsynthase, einer Aspartataminotransferase, einem B1906-Protein, einem B3410-Protein, einer Cardiolipinsynthetase, einem CoA-Transferase-ähnlichen Protein (NAD(P)-bindend), einem Cobalttransportprotein, einem DNA- und proteinbindenden Protein zur Steuerung des Proteoms auf der posttranskriptionellen Ebene, einer Enoyl-CoA-Hydratase, einer Enoyl-CoA-Isomerase, einer Ethanolaminkinase, einer Formiatacetyltransferase 1, einem Protein einer Glucit/Sorbit-spezifischen Enzym-IIA-Komponente, einer Glutaminsynthetase, einer Glutathion-S-transferase, einer Glycerindehydrogenase, einem Glykogensyntheseinitiatorprotein, einem GTP-bindenden Protein, einem Hitzeschockprotein, einem Hexosetransporter, einer Holo-[Acylträgerprotein]-Synthase, einem anorganischen Phosphattransporter, einer Lanosterolsynthase, einer molybdänbindenden Untereinheit von Aldehydoxidasen und Xanthindehydrogenasen, einem Multidrug-Resistenzprotein, einem Multiple-Drug-Resistenzprotein, einer NADH-Dehydrogenase/NAD(P)H-Nitroreduktase, einer Oxidoreduktase, einer Peptidyl-Prolyl-cis/trans-Isomerase, einem Peroxisomal-Targeting-Signal-2-Rezeptor, einer Phosphoadenosinphosphosulfatreduktase, einem Phosphoträgerprotein, einem Pirin-ähnlichen Protein, einer Precorrin-6y-Methylase, einem für den Abbau von Glykoproteinen benötigten Protein, einer Pyrimidindeaminase/-reduktase, einem Regulator der Zellmorphogenese und der NO-Signalvermittlung, einer Serinacetyltransferase, einer Untereinheit des Signalosomkomplexes, einem SLR1094-Protein, einer Untereinheit von TORC1, einer thiolspezifischen Monooxygenase, einem die Transkription steuernden Protein, einer Transketolase, einem Zwei-Modul-Transportprotein, einem Uridindiphosphat-N-acetylglucosamintransporter, einem yer175w-a-Protein, einem yhr213w-a-Protein, einem YML079W-Protein, einem YMR157C-Protein, einem YNL024C-Protein und einem YNR040W-Protein, verleiht, das Expressionsniveau mit einer Referenz vergleicht; einen oder mehrere Kerne von Pflanzenzellen, Pflanzenzellen, Pflanzengewebe oder Pflanzen oder Teile davon mit einem im Vergleich zur Referenz erhöhten Expressionsniveau identifiziert und gegebenenfalls eine Pflanze aus dem identifizierten Kern einer Pflanzenzelle, der identifizierten Zelle bzw. dem identifizierten Gewebe herstellt.
  • Gemäß einer anderen Ausführungsform betrifft die vorliegende Erfindung ein Verfahren zum Erhöhen des Ertrags einer Population von Pflanzen, bei dem man die Wachstumstemperatur(en) in der Pflanzfläche prüft, die Temperaturen mit der optimalen Wachstumstemperatur einer Pflanzenart oder einer Sorte, die für das Pflanzen in Betracht gezogen wird, vergleicht und die erfindungsgemäße Pflanze pflanzt und heranzieht, wenn die Wachstumstemperatur für das Pflanzen und Heranziehen der für das Pflanzen in Betracht gezogenen Pflanzenart oder oder Sorte nicht optimal ist. Das Verfahren kann in Teilen oder als Ganzes einmal oder mehrmals wiederholt werden.
  • Gemäß einer Ausführungsform war es Aufgabe der vorliegenden Erfindung, ein Verfahren zur Verbesserung der Anpassung an Umweltstress, insbesondere der Anpassung an niedrige Temperaturen, d. h. zur Steigerung der Toleranz eines photosynthetisch aktiven Organismus gegenüber niedrigen Temperaturen einschließlich, jedoch nicht darauf beschränkt, der Steigerung der Toleranz gegenüber kühlen Temperaturen und/oder der Frosttoleranz, was sich alleine oder insgesamt in einer solchen erhöhten Anpassung an abiotischen Stress zeigt, und/oder ein Verfahren für einen erhöhten Ertrag unter Bedingungen von abiotischem Stress, insbesondere niedrigen Temperaturen, zu entwickeln. Es wurde gefunden, dass diese Aufgabe durch die Bereitstellung eines hier beschriebenen Verfahrens gemäß der vorliegenden Erfindung gelöst wird.
  • Eine weitere Aufgabe der vorliegenden Erfindung ist die Bereitstellung einer Pflanzenzelle und/oder einer Pflanze mit einer verbesserten Toleranz gegenüber abiotischem Umwelstress, insbesondere niedrigen Temperaturen, und/oder mit einem erhöhten Ertrag unter Bedingungen von abiotischem Umweltstress wie niedrigen Temperaturen, verglichen mit einer entsprechenden, z. B. nicht transformierten, Pflanzenzelle oder Pflanze vom Wildtyp bzw. einer Ausgangspflanzenzelle und/oder Ausgangspflanze. Es wurde gefunden, dass diese Aufgabe durch die Bereitstellung einer hier beschriebenen Pflanzenzelle und/oder Pflanze gemäß der vorliegenden Erfindung gelöst wird.
  • Gemäß einer Ausführungsform der vorliegenden Erfindung werden diese Merkmale durch ein Verfahren für eine gesteigerte Toleranz gegenüber abiotischem Umweltstress in einem photosynthetisch aktiven Organismus, vorzugsweise einer Pflanze, verglichen mit einem entsprechenden (nicht transformierten) photosynthetisch aktiven Organismus vom Wildtyp oder photosynthetisch aktiven Ausgangsorganismus, erzielt. „Verbesserte Anpassung” an Umwelstress wie z. B. Frosttemperaturen und/oder kühle Temperaturen bezieht sich auf eine verbesserte Pflanzenleistung. Dementsprechend bezieht sich, für die Zwecke der Beschreibung der vorliegenden Erfindung, der Ausdruck ”niedrige Temperatur” mit Bezug auf Stress durch niedrige Temperaturen auf einen photosynthetisch aktiven Organismus, vorzugsweise eine Pflanze und ganz besonders bevorzugt eine Kulturpflanze, auf eine beliebige der wie oben beschriebenen Niedertemperaturbedingungen, vorzugsweise wie oben definierte kühle Temperaturen und/oder Frosttemperaturen, je nach Zusammenhang.
  • Bei einer weiteren Ausführungsform bedeutet „gesteigerte Toleranz gegenüber abiotischem Umweltstress” bei einem photosynthetisch aktiven Organismus, dass der photosynthetisch aktive Organismus, vorzugsweise eine Pflanze, bei einer Konfrontation mit wie oben erwähnten Bedingungen von abiotischem Umweltstress, z. B. Niedertemperaturbedingungen einschließlich kühlen Temperaturen und Frosttemperaturen oder Dürre, einen gesteigerten Ertrag zeigt, z. B. einen wie oben erwähnten Ertrag, z. B. einen Samenertrag oder einen Biomasseertrag, verglichen mit einem entsprechenden (nicht transformierten) photosynthetisch aktiven Organismus vom Wildtyp oder einem photosynthetisch aktiven Ausgangsorganismus. Gemäß einer Ausführungsform davon bedeutet der Ausdruck „gesteigerte Toleranz gegenüber abiotischem Umweltstress” in einem photosynthetisch aktiven Organismus, dass der photosynthetisch aktive Organismus, vorzugsweise eine Pflanze, bei einer Konfrontation mit Bedingungen von abiotischem Umweltstress wie Niedertemperaturbedingungen einschließlich kühlen Temperaturen und Frosttemperaturen, verglichen mit einem entsprechenden, z. B. nicht transformierten, photosynthetisch aktiven Organismus vom Wildtyp einen gesteigerten Ertrag an Trockenbiomasse zeigt. Gemäß einer Ausführungsform davon bedeutet der Ausdruck „gesteigerte Toleranz gegenüber abiotischem Umweltstress” in einem photosynthetisch aktiven Organismus, dass der photosynthetisch aktive Organismus, vorzugsweise eine Pflanze, bei einer Konfrontation mit Bedingungen von abiotischem Umweltstress wie Niedertemperaturbedingungen einschließlich kühlen Temperaturen und Frosttemperaturen, verglichen mit einem entsprechenden, z. B. nicht transformierten, photosynthetisch aktiven Organismus vom Wildtyp einen gesteigerten Ertrag an oberirdischer Trockenbiomasse zeigt. Gemäß einer Ausführungsform davon bedeutet der Ausdruck „gesteigerte Toleranz gegenüber abiotischem Umweltstress” in einem photosynthetisch aktiven Organismus, dass der photosynthetisch aktive Organismus, vorzugsweise eine Pflanze, bei einer Konfrontation mit Bedingungen von abiotischem Umweltstress wie Niedertemperaturbedingungen einschließlich kühlen Temperaturen und Frosttemperaturen, verglichen mit einem entsprechenden, z. B. nicht transformierten, photosynthetisch aktiven Organismus vom Wildtyp einen gesteigerten Ertrag an unterirdischer Trockenbiomasse zeigt. Gemäß einer anderen Ausführungsform davon bedeutet der Ausdruck „gesteigerte Toleranz gegenüber abiotischem Umweltstress” in einem photosynthetisch aktiven Organismus, dass der photosynthetisch aktive Organismus, vorzugsweise eine Pflanze, bei einer Konfrontation mit Bedingungen von abiotischem Umweltstress wie Niedertemperaturbedingungen einschließlich kühlen Temperaturen und Frosttemperaturen, verglichen mit einem entsprechenden, z. B. nicht transformierten, photosynthetisch aktiven Organismus vom Wildtyp einen gesteigerten Ertrag an Frischgewichtbiomasse zeigt. Gemäß einer Ausführungsform davon bedeutet der Ausdruck „gesteigerte Toleranz gegenüber abiotischem Umweltstress” in einem photosynthetisch aktiven Organismus, dass der photosynthetisch aktive Organismus, vorzugsweise eine Pflanze, bei einer Konfrontation mit Bedingungen von abiotischem Umweltstress wie Niedertemperaturbedingungen einschließlich kühlen Temperaturen und Frosttemperaturen, verglichen mit einem entsprechenden, z. B. nicht transformierten, photosynthetisch aktiven Organismus vom Wildtyp einen gesteigerten Ertrag an oberirdischer Frischgewichtbiomasse zeigt. Gemäß einer Ausführungsform davon bedeutet der Ausdruck „gesteigerte Toleranz gegenüber abiotischem Umweltstress” in einem photosynthetisch aktiven Organismus, dass der photosynthetisch aktive Organismus, vorzugsweise eine Pflanze, bei einer Konfrontation mit Bedingungen von abiotischem Umweltstress wie Niedertemperaturbedingungen einschließlich kühlen Temperaturen und Frosttemperaturen, verglichen mit einem entsprechenden, z. B. nicht transformierten, photosynthetisch aktiven Organismus vom Wildtyp einen gesteigerten Ertrag an unterirdischer Frischgewichtbiomasse zeigt. Gemäß einer anderen Ausführungsform davon bedeutet der Ausdruck „gesteigerte Toleranz gegenüber abiotischem Umweltstress” in einem photosynthetisch aktiven Organismus, dass der photosynthetisch aktive Organismus, vorzugsweise eine Pflanze, bei einer Konfrontation mit Bedingungen von abiotischem Umweltstress wie Niedertemperaturbedingungen einschließlich kühlen Temperaturen und Frosttemperaturen, verglichen mit einem entsprechenden, z. B. nicht transformierten, photosynthetisch aktiven Organismus vom Wildtyp einen gesteigerten Ertrag an erntbaren Teilen einer Pflanze zeigt. Gemäß einer Ausführungsform davon bedeutet der Ausdruck „gesteigerte Toleranz gegenüber abiotischem Umweltstress” in einem photosynthetisch aktiven Organismus, dass der photosynthetisch aktive Organismus, vorzugsweise eine Pflanze, bei einer Konfrontation mit Bedingungen von abiotischem Umweltstress wie Niedertemperaturbedingungen einschließlich kühlen Temperaturen und Frosttemperaturen, verglichen mit einem entsprechenden, z. B. nicht transformierten, photosynthetisch aktiven Organismus vom Wildtyp einen gesteigerten Ertrag an trockenen erntbaren Teilen einer Pflanze zeigt. Gemäß einer Ausführungsform davon bedeutet der Ausdruck „gesteigerte Toleranz gegenüber abiotischem Umweltstress” in einem photosynthetisch aktiven Organismus, dass der photosynthetisch aktive Organismus, vorzugsweise eine Pflanze, bei einer Konfrontation mit Bedingungen von abiotischem Umweltstress wie Niedertemperaturbedingungen einschließlich kühlen Temperaturen und Frosttemperaturen, verglichen mit einem entsprechenden, z. B. nicht transformierten, photosynthetisch aktiven Organismus vom Wildtyp einen gesteigerten Ertrag an trockenen oberirdischen erntbaren Teilen einer Pflanze zeigt. Gemäß einer Ausführungsform davon bedeutet der Ausdruck „gesteigerte Toleranz gegenüber abiotischem Umweltstress” in einem photosynthetisch aktiven Organismus, dass der photosynthetisch aktive Organismus, vorzugsweise eine Pflanze, bei einer Konfrontation mit Bedingungen von abiotischem Umweltstress wie Niedertemperaturbedingungen einschließlich kühlen Temperaturen und Frosttemperaturen, verglichen mit einem entsprechenden, z. B. nicht transformierten, photosynthetisch aktiven Organismus vom Wildtyp einen gesteigerten Ertrag an unterirdischen trockenen erntbaren Teilen einer Pflanze zeigt. Gemäß einer anderen Ausführungsform davon bedeutet der Ausdruck „gesteigerte Toleranz gegenüber abiotischem Umweltstress” in einem photosynthetisch aktiven Organismus, dass der photosynthetisch aktive Organismus, vorzugsweise eine Pflanze, bei einer Konfrontation mit Bedingungen von abiotischem Umweltstress wie Niedertemperaturbedingungen einschließlich kühlen Temperaturen und Frosttemperaturen, verglichen mit einem entsprechenden, z. B. nicht transformierten, photosynthetisch aktiven Organismus vom Wildtyp einen gesteigerten Ertrag an erntbaren Teilen einer Pflanze (Frischgewicht) zeigt. Gemäß einer Ausführungsform davon bedeutet der Ausdruck „gesteigerte Toleranz gegenüber abiotischem Umweltstress” in einem photosynthetisch aktiven Organismus, dass der photosynthetisch aktive Organismus, vorzugsweise eine Pflanze, bei einer Konfrontation mit Bedingungen von abiotischem Umweltstress wie Niedertemperaturbedingungen einschließlich kühlen Temperaturen und Frosttemperaturen, verglichen mit einem entsprechenden, z. B. nicht transformierten, photosynthetisch aktiven Organismus vom Wildtyp einen gesteigerten Ertrag an oberirdischen erntbaren Teilen einer Pflanze (Frischgewicht) zeigt. Gemäß einer Ausführungsform davon bedeutet der Ausdruck „gesteigerte Toleranz gegenüber abiotischem Umweltstress” in einem photosynthetisch aktiven Organismus, dass der photosynthetisch aktive Organismus, vorzugsweise eine Pflanze, bei einer Konfrontation mit Bedingungen von abiotischem Umweltstress wie Niedertemperaturbedingungen einschließlich kühlen Temperaturen und Frosttemperaturen, verglichen mit einem entsprechenden, z. B. nicht transformierten, photosynthetisch aktiven Organismus vom Wildtyp einen gesteigerten Ertrag an unterirdischen erntbaren Teilen einer Pflanze (Frischgewicht) zeigt. Gemäß einer weiteren Ausführungsform bedeutet der Ausdruck „gesteigerte Toleranz gegenüber abiotischem Umweltstress” in einem photosynthetisch aktiven Organismus, dass der photosynthetisch aktive Organismus, vorzugsweise eine Pflanze, bei einer Konfrontation mit Bedingungen von abiotischem Umweltstress wie Niedertemperaturbedingungen einschließlich kühlen Temperaturen und Frosttemperaturen, verglichen mit einem entsprechenden, z. B. nicht transformierten, photosynthetisch aktiven Organismus vom Wildtyp einen gesteigerten Ertrag an Kulturpflanzenfrüchten zeigt. Gemäß einer weiteren Ausführungsform bedeutet der Ausdruck „gesteigerte Toleranz gegenüber abiotischem Umweltstress” in einem photosynthetisch aktiven Organismus, dass der photosynthetisch aktive Organismus, vorzugsweise eine Pflanze, bei einer Konfrontation mit Bedingungen von abiotischem Umweltstress wie Niedertemperaturbedingungen einschließlich kühlen Temperaturen und Frosttemperaturen, verglichen mit einem entsprechenden, z. B. nicht transformierten, photosynthetisch aktiven Organismus vom Wildtyp einen gesteigerten Ertrag an den frischen Kulturpflanzenfrüchten zeigt. Gemäß einer Ausführungsform davon bedeutet der Ausdruck „gesteigerte Toleranz gegenüber abiotischem Umweltstress” in einem photosynthetisch aktiven Organismus, dass der photosynthetisch aktive Organismus, vorzugsweise eine Pflanze, bei einer Konfrontation mit Bedingungen von abiotischem Umweltstress wie Niedertemperaturbedingungen einschließlich kühlen Temperaturen und Frosttemperaturen, verglichen mit einem entsprechenden, z. B. nicht transformierten, photosynthetisch aktiven Organismus vom Wildtyp einen gesteigerten Ertrag an den trockenen Kulturpflanzenfrüchten zeigt. Gemäß einer Ausführungsform davon bedeutet der Ausdruck „gesteigerte Toleranz gegenüber abiotischem Umweltstress” in einem photosynthetisch aktiven Organismus, dass der photosynthetisch aktive Organismus, vorzugsweise eine Pflanze, bei einer Konfrontation mit Bedingungen von abiotischem Umweltstress wie Niedertemperaturbedingungen einschließlich kühlen Temperaturen und Frosttemperaturen, verglichen mit einem entsprechenden, z. B. nicht transformierten, photosynthetisch aktiven Organismus vom Wildtyp einen gesteigerten Ertrag an Korntrockengewicht zeigt. Gemäß einer weiteren Ausführungsform bedeutet der Ausdruck „gesteigerte Toleranz gegenüber abiotischem Umweltstress” in einem photosynthetisch aktiven Organismus, dass der photosynthetisch aktive Organismus, vorzugsweise eine Pflanze, bei einer Konfrontation mit Bedingungen von abiotischem Umweltstress wie Niedertemperaturbedingungen einschließlich kühlen Temperaturen und Frosttemperaturen, verglichen mit einem entsprechenden, z. B. nicht transformierten, photosynthetisch aktiven Organismus vom Wildtyp einen gesteigerten Ertrag an Samen zeigt. Gemäß einer Ausführungsform davon bedeutet der Ausdruck „gesteigerte Toleranz gegenüber abiotischem Umweltstress” in einem photosynthetisch aktiven Organismus, dass der photosynthetisch aktive Organismus, vorzugsweise eine Pflanze, bei einer Konfrontation mit Bedingungen von abiotischem Umweltstress wie Niedertemperaturbedingungen einschließlich kühlen Temperaturen und Frosttemperaturen, verglichen mit einem entsprechenden, z. B. nicht transformierten, photosynthetisch aktiven Organismus vom Wildtyp einen gesteigerten Ertrag an Samen (Frischgewicht) zeigt. Gemäß einer Ausführungsform davon bedeutet der Ausdruck „gesteigerte Toleranz gegenüber abiotischem Umweltstress” in einem photosynthetisch aktiven Organismus, dass der photosynthetisch aktive Organismus, vorzugsweise eine Pflanze, bei einer Konfrontation mit Bedingungen von abiotischem Umweltstress wie Niedertemperaturbedingungen einschließlich kühlen Temperaturen und Frosttemperaturen, verglichen mit einem entsprechenden, z. B. nicht transformierten, photosynthetisch aktiven Organismus vom Wildtyp einen gesteigerten Ertrag an trockenen Samen zeigt.
  • Gemäß einer anderen Ausführungsform der vorliegenden Erfindung werden diese Merkmale durch ein Verfahren für einen erhöhten Ertrag unter Bedingungen von Umweltstress, insbesondere Bedingungen von abiotischem Umweltstress, in einem photosynthetisch aktiven Organismus, vorzugsweise einer Pflanze, verglichen mit einem entsprechenden (nicht transformierten) photosynthetisch aktiven Organismus vom Wildtyp oder photosynthetisch aktiven Ausgangsorganismus, erzielt. Gemäß einer Ausführungsform davon bedeutet der Ausdruck „erhöhter Ertrag”, dass der photosynthetisch aktive Organismus, vorzugsweise eine Pflanze, unter Bedingungen von abiotischem Umweltstress, verglichen mit dem entsprechenden photosynthetisch aktiven Organismus vom Wildtyp einen erhöhten Ertrag, z. B. eine erhöhte Wachstumsrate, zeigt. Eine erhöhte Wachstumsrate kann sich unter anderem in einer erhöhten Biomasseproduktion der gesamten Pflanze oder in einer erhöhten Biomasseproduktion der oberirdischen Teile einer Pflanze oder in einer erhöhten Biomasseproduktion der unterirdischen Teile einer Pflanze oder in einer erhöhten Biomasseproduktion von Teilen einer Pflanze wie Stängeln, Blättern, Blüten, Früchten und/oder Samen widerspiegeln oder diese verleihen. Gemäß einer Ausführungsform davon schließt erhöhter Ertrag höhere Fruchterträge, höhere Samenerträge, eine höhere Produktion an frischem Material und/oder eine höhere Produktion an Trockenmaterial ein. Gemäß einer anderen Ausführungsform davon bedeutet der Ausdruck „erhöhter Ertrag”, dass der photosynthetisch aktive Organismus, vorzugsweise eine Pflanze, unter Bedingungen von abiotischem Umweltstress, verglichen mit dem entsprechenden, z. B. nicht transformierten, photosynthetisch aktiven Organismus vom Wildtyp ein verlängertes Wachstum zeigt. Ein verlängertes Wachstum umfasst Überleben und/oder fortgesetztes Wachstum des photosynthetisch aktiven Organismus, vorzugsweise einer Pflanze, zu dem Zeitpunkt, wo der nicht transformierte photosynthetisch aktive Organismus vom Wildtyp sichtbare Anzeichen von Mängeln und/oder Absterben zeigt.
  • Dementsprechend stellt die vorliegende Erfindung gemäß einer bevorzugten Ausführungsform ein Verfahren zur Herstellung einer transgenen Pflanzenzelle mit einem erhöhten Ertrag, z. B. Toleranz gegenüber abiotischem Umweltstress und/oder einem anderen erhöhten Ertragsmerkmal, verglichen mit einer entsprechenden, z. B. nicht transformierten, Pflanzenzelle vom Wildtyp bereit, bei dem man eine oder mehrere Aktivitäten, ausgewählt aus der Gruppe bestehend aus einer (DL)-Glycerin-3-phosphatase, einer 2-Desoxyglucose-6-phosphatphosphatase, einer 3-Methyl-2-oxobutanoat-Hydroxymethyltransferase, einer Alkoholacetyltransferase, einer Aminosäurepermease, einer Aminomethyltransferase, einem Ammoniumtransporter, einem Aquaporin, einem ATP-bindenden Protein des Arabinosetransportsystems, einer Argininosuccinatsynthase, einer Aspartataminotransferase, einem B1906-Protein, einem B3410-Protein, einer Cardiolipinsynthetase, einem CoA-Transferase-ähnlichen Protein (NAD(P)-bindend), einem Cobalttransportprotein, einem DNA- und proteinbindenden Protein zur Steuerung des Proteoms auf der posttranskriptionellen Ebene, einer Enoyl-CoA-Hydratase, einer Enoyl-CoA-Isomerase, einer Ethanolaminkinase, einer Formiatacetyltransferase 1, einem Protein einer Glucit/Sorbit-spezifischen Enzym-IIA-Komponente, einer Glutaminsynthetase, einer Glutathion-S-transferase, einer Glycerindehydrogenase, einem Glykogensyntheseinitiatorprotein, einem GTP-bindenden Protein, einem Hitzeschockprotein, einem Hexosetransporter, einer Holo-[Acylträgerprotein]-Synthase, einem anorganischen Phosphattransporter, einer Lanosterolsynthase, einer molybdänbindenden Untereinheit von Aldehydoxidasen und Xanthindehydrogenasen, einem Multidrug-Resistenzprotein, einem Multiple-Drug-Resistenzprotein, einer NADH-Dehydrogenase/NAD(P)H-Nitroreduktase, einer Oxidoreduktase, einer Peptidyl-Prolyl-cis/trans-Isomerase, einem Peroxisomal-Targeting-Signal-2-Rezeptor, einer Phosphoadenosinphosphosulfatreduktase, einem Phosphoträgerprotein, einem Pirin-ähnlichen Protein, einer Precorrin-6y-Methylase, einem für den Abbau von Glykoproteinen benötigten Protein, einer Pyrimidindeaminase/-reduktase, einem Regulator der Zellmorphogenese und der NO-Signalvermittlung, einer Serinacetyltransferase, einer Untereinheit des Signalosomkomplexes, einem SLR1094-Protein, einer Untereinheit von TORC1, einer thiolspezifischen Monooxygenase, einem die Transkription steuernden Protein, einer Transketolase, einem Zwei-Modul-Transportprotein, einem Uridindiphosphat-N-acetylglucosamintransporter, einem yer175w-a-Protein, einem yhr213w-a-Protein, einem YML079W-Protein, einem YMR157C-Protein, einem YNL024C-Protein und einem YNR040W-Protein, erhöht oder erzeugt.
  • Gemäß einer Ausführungsform der Erfindung werden die Proteine mit einer Aktivität, ausgewählt aus der Gruppe bestehend aus einer (DL)-Glycerin-3-phosphatase, einer 2-Desoxyglucose-6-phosphatphosphatase, einer 3-Methyl-2-oxobutanoat-Hydroxymethyltransferase, einer Alkoholacetyltransferase, einer Aminosäurepermease, einer Aminomethyltransferase, einem Ammoniumtransporter, einem Aquaporin, einem ATP-bindenden Protein des Arabinosetransportsystems, einer Argininosuccinatsynthase, einer Aspartataminotransferase, einem B1906-Protein, einem B3410-Protein, einer Cardiolipinsynthetase, einem CoA-Transferase-ähnlichen Protein (NAD(P)-bindend), einem Cobalttransportprotein, einem DNA- und proteinbindenden Protein zur Steuerung des Proteoms auf der posttranskriptionellen Ebene, einer Enoyl-CoA-Hydratase, einer Enoyl-CoA-Isomerase, einer Ethanolaminkinase, einer Formiatacetyltransferase 1, einem Protein einer Glucit/Sorbit-spezifischen Enzym-IIA-Komponente, einer Glutaminsynthetase, einer Glutathion-S-transferase, einer Glycerindehydrogenase, einem Glykogensyntheseinitiatorprotein, einem GTP-bindenden Protein, einem Hitzeschockprotein, einem Hexosetransporter, einer Holo-[Acylträgerprotein]-Synthase, einem anorganischen Phosphattransporter, einer Lanosterolsynthase, einer molybdänbindenden Untereinheit von Aldehydoxidasen und Xanthindehydrogenasen, einem Multidrug-Resistenzprotein, einem Multiple-Drug-Resistenzprotein, einer NADH-Dehydrogenase/NAD(P)H-Nitroreduktase, einer Oxidoreduktase, einer Peptidyl-Prolyl-cis/trans-Isomerase, einem Peroxisomal-Targeting-Signal-2-Rezeptor, einer Phosphoadenosinphosphosulfatreduktase, einem Phosphoträgerprotein, einem Pirin-ähnlichen Protein, einer Precorrin-6y-Methylase, einem für den Abbau von Glykoproteinen benötigten Protein, einer Pyrimidindeaminase/-reduktase, einem Regulator der Zellmorphogenese und der NO-Signalvermittlung, einer Serinacetyltransferase, einer Untereinheit des Signalosomkomplexes, einem SLR1094-Protein, einer Untereinheit von TORC1, einer thiolspezifischen Monooxygenase, einem die Transkription steuernden Protein, einer Transketolase, einem Zwei-Modul-Transportprotein, einem Uridindiphosphat-N-acetylglucosamintransporter, einem yer175w-a-Protein, einem yhr213w-a-Protein, einem YML079W-Protein, einem YMR157C-Protein, einem YNL024C-Protein und einem YNR040W-Protein, und die wie in Tabelle II, Spalten 5 und 7, gezeigten Polypeptide als ”LTRRP” oder ”Yield Related Proteins” (”YRPs”) bezeichnet. Beide Ausdrücke sollen die gleiche Bedeutung haben und sind austauschbar.
  • Gemäß einer anderen bevorzugten Ausführungsform zeigt ein photosynthetisch aktiver Organismus, insbesondere eine Pflanze, unter Bedingungen von abiotischem Umweltstress, eine gesteigerte Toleranz gegenüber abiotischem Umweltstress oder ein anderes Ertragsmerkmal.
  • Gemäß einer anderen Ausführungsform befriedigt die vorliegende Erfindung das Bedürfnis, neue, einzigartige Gene zu identifizieren, die bei der Expression oder Überexpression von endogenen und/oder exogenen Genen dazu in der Lage sind, einem photosynthetisch aktiven Organismus, vorzugsweise Pflanzen, einen erhöhten Ertrag, z. B. mit einem erhöhten Ertragsmerkmal, zum Beispiel einer gesteigerten Toleranz gegenüber abiotischem Umweltstress, zum Beispiel einer erhöhten Toleranz gegenüber Dürre und/oder Toleranz gegenüber niedrigen Temperaturen und/oder einer erhöhten Effizienz der Nährstoffausnutzung, einem erhöhten intrinsischen Ertrag und/oder anderen erhöhten Ertragsmerkmalen zu verleihen.
  • Gemäß einer anderen Ausführungsform davon befriedigt die vorliegende Erfindung das Bedürfnis, neue, einzigartige Gene zu identifizieren, die bei der Expression oder Überexpression von endogenen Genen dazu in der Lage sind, einem photosynthetisch aktiven Organismus, vorzugsweise Pflanzen, einen erhöhten Ertrag, z. B. mit einem erhöhten Ertragsmerkmal, zum Beispiel einer gesteigerten Toleranz gegenüber abiotischem Umweltstress, zum Beispiel einer erhöhten Toleranz gegenüber Dürre und/oder Toleranz gegenüber niedrigen Temperaturen und/oder einer erhöhten Effizienz der Nährstoffausnutzung, einem erhöhten intrinsischen Ertrag und/oder anderen erhöhten Ertragsmerkmalen zu verleihen.
  • Gemäß einer anderen Ausführungsform davon befriedigt die vorliegende Erfindung das Bedürfnis, neue, einzigartige Gene zu identifizieren, die bei der Expression oder Überexpression von exogenen Genen dazu in der Lage sind, einem photosynthetisch aktiven Organismus, vorzugsweise Pflanzen, einen erhöhten Ertrag, z. B. mit einem erhöhten Ertragsmerkmal, zum Beispiel einer gesteigerten Toleranz gegenüber abiotischem Umweltstress, zum Beispiel einer erhöhten Toleranz gegenüber Dürre und/oder Toleranz gegenüber niedrigen Temperaturen und/oder einer erhöhten Effizienz der Nährstoffausnutzung, einem erhöhten intrinsischen Ertrag und/oder einem anderen erhöhten Ertragsmerkmal zu verleihen.
  • Gemäß einer anderen Ausführungsform befriedigt die vorliegende Erfindung das Bedürfnis, neue einzigartige Gene, die dazu in der Lage sind, bei der Expression oder Überexpression endogener und/oder exogener Gene photosynthetisch aktiven Organismen, vorzugsweise Pflanzen, eine gesteigerte Toleranz gegenüber abiotischem Umweltstress in Kombination mit einer Erhöhung des Ertrags zu verleihen, zu identifizieren.
  • Dementsprechend betrifft die vorliegende Erfindung ein Verfahren zur Herstellung eines zum Beispiel transgenen photosynthetisch aktiven Organismus oder eines Teils davon, oder einer Pflanzenzelle, einer Pflanze oder eines Teils davon, zum Beispiel für die Erzeugung einer solchen Pflanze, mit erhöhtem Ertrag, z. B. mit einem erhöhten Ertragsmerkmal, zum Beispiel einer gesteigerten Toleranz gegenüber abiotischem Umweltstress, zum Beispiel einer erhöhten Toleranz gegenüber Dürre und/oder Toleranz gegenüber niedrigen Temperaturen und/oder einer erhöhten Effizienz der Nährstoffausnutzung, einem erhöhten intrinsischen Ertrag und/oder einem anderen erhöhten Ertragsmerkmal, verglichen mit einem entsprechenden, zum Beispiel nicht transformierten, photosynthetisch aktiven Organismus vom Wildtyp oder einem Teil davon, oder einer Pflanzenzelle, einer Pflanze oder einem Teil davon, bei dem man
    • (a) eine oder mehrere Aktivitäten, ausgewählt aus der Gruppe bestehend aus einer (DL)-Glycerin-3-phosphatase, einer 2-Desoxyglucose-6-phosphatphosphatase, einer 3-Methyl-2-oxobutanoat-Hydroxymethyltransferase, einer Alkoholacetyltransferase, einer Aminosäurepermease, einer Aminomethyltransferase, einem Ammoniumtransporter, einem Aquaporin, einem ATP-bindenden Protein des Arabinosetransportsystems, einer Argininosuccinatsynthase, einer Aspartataminotransferase, einem B1906-Protein, einem B3410-Protein, einer Cardiolipinsynthetase, einem CoA-Transferase-ähnlichen Protein (NAD(P)-bindend), einem Cobalttransportprotein, einem DNA- und proteinbindenden Protein zur Steuerung des Proteoms auf der posttranskriptionellen Ebene, einer Enoyl-CoA-Hydratase, einer Enoyl-CoA-Isomerase, einer Ethanolaminkinase, einer Formiatacetyltransferase 1, einem Protein einer Glucit/Sorbit-spezifischen Enzym-IIA-Komponente, einer Glutaminsynthetase, einer Glutathion-S-transferase, einer Glycerindehydrogenase, einem Glykogensyntheseinitiatorprotein, einem GTP-bindenden Protein, einem Hitzeschockprotein, einem Hexosetransporter, einer Holo-[Acylträgerprotein]-Synthase, einem anorganischen Phosphattransporter, einer Lanosterolsynthase, einer molybdänbindenden Untereinheit von Aldehydoxidasen und Xanthindehydrogenasen, einem Multidrug-Resistenzprotein, einem Multiple-Drug-Resistenzprotein, einer NADH-Dehydrogenase/NAD(P)H-Nitroreduktase, einer Oxidoreduktase, einer Peptidyl-Prolyl-cis/trans-Isomerase, einem Peroxisomal-Targeting-Signal-2-Rezeptor, einer Phosphoadenosinphosphosulfatreduktase, einem Phosphoträgerprotein, einem Pirin-ähnlichen Protein, einer Precorrin-6y-Methylase, einem für den Abbau von Glykoproteinen benötigten Protein, einer Pyrimidindeaminase/-reduktase, einem Regulator der Zellmorphogenese und der NO-Signalvermittlung, einer Serinacetyltransferase, einer Untereinheit des Signalosomkomplexes, einem SLR1094-Protein, einer Untereinheit von TORC1, einer thiolspezifischen Monooxygenase, einem die Transkription steuernden Protein, einer Transketolase, einem Zwei-Modul-Transportprotein, einem Uridindiphosphat-N-acetylglucosamintransporter, einem yer175w-a-Protein, einem yhr213w-a-Protein, einem YML079W-Protein, einem YMR157C-Protein, einem YNL024C-Protein und einem YNR040W-Protein in einem photosynthetisch aktiven Organismus oder einem Teil davon, z. B. einer Pflanzenzelle, einer Pflanze oder einem Teil davon, erhöht oder erzeugt, und
    • (b) den photosynthetisch aktiven Organismus oder einen Teil davon, z. B. eine Pflanzenzelle, eine Pflanze oder einen Teil davon, unter Bedingungen heranzieht, die die Entwicklung eines photosynthetisch aktiven Organismus oder eines Teils davon, z. B. einer Pflanzenzelle, einer Pflanze oder eines Teils davon, mit erhöhtem Ertrag, z. B. mit einem erhöhten Ertragsmerkmal, zum Beispiel einer gesteigerten Toleranz gegenüber abiotischem Umweltstress, zum Beispiel einer erhöhten Toleranz gegenüber Dürre und/oder Toleranz gegenüber niedrigen Temperaturen und/oder einer erhöhten Effizienz der Nährstoffausnutzung, einem erhöhten intrinsischen Ertrag und/oder einem anderen erhöhten Ertragsmerkmal, verglichen mit einem entsprechenden, zum Beispiel nicht transformierten, photosynthetisch aktiven Organismus vom Wildtyp oder einem Teil davon, vorzugsweise einer Pflanzenzelle, einer Pflanze oder einem Teil davon erlauben.
  • Gemäß einer weiteren Ausführungsform betrifft die vorliegende Erfindung ein Verfahren zur Herstellung eines Kerns einer transgenen Pflanzenzelle, einer transgenen Pflanzenzelle, einer transgenen Pflanze oder eines Teils davon, welches zu einem erhöhten Ertrag, verglichen mit einer entsprechenden nicht transformierten Pflanzenzelle vom Wildtyp, einer transgenen Pflanze oder einem Teil davon führt, bei dem man
    • (a) in diesem Kern einer Pflanzenzelle, dieser Pflanzenzelle, dieser Pflanze oder einem Teil davon eine oder mehrere Aktivitäten, ausgewählt aus der Gruppe bestehend aus einer (DL)-Glycerin-3-phosphatase, einer 2-Desoxyglucose-6-phosphatphosphatase, einer 3-Methyl-2-oxobutanoat-Hydroxymethyltransferase, einer Alkoholacetyltransferase, einer Aminosäurepermease, einer Aminomethyltransferase, einem Ammoniumtransporter, einem Aquaporin, einem ATP-bindenden Protein des Arabinosetransportsystems, einer Argininosuccinatsynthase, einer Aspartataminotransferase, einem B1906-Protein, einem B3410-Protein, einer Cardiolipinsynthetase, einem CoA-Transferase-ähnlichen Protein (NAD(P)-bindend), einem Cobalttransportprotein, einem DNA- und proteinbindenden Protein zur Steuerung des Proteoms auf der posttranskriptionellen Ebene, einer Enoyl-CoA-Hydratase, einer Enoyl-CoA-Isomerase, einer Ethanolaminkinase, einer Formiatacetyltransferase 1, einem Protein einer Glucit/Sorbit-spezifischen Enzym-IIA-Komponente, einer Glutaminsynthetase, einer Glutathion-S-transferase, einer Glycerindehydrogenase, einem Glykogensyntheseinitiatorprotein, einem GTP-bindenden Protein, einem Hitzeschockprotein, einem Hexosetransporter, einer Holo-[Acylträgerprotein]-Synthase, einem anorganischen Phosphattransporter, einer Lanosterolsynthase, einer molybdänbindenden Untereinheit von Aldehydoxidasen und Xanthindehydrogenasen, einem Multidrug-Resistenzprotein, einem Multiple-Drug-Resistenzprotein, einer NADH-Dehydrogenase/NAD(P)H-Nitroreduktase, einer Oxidoreduktase, einer Peptidyl-Prolyl-cis/trans-Isomerase, einem Peroxisomal-Targeting-Signal-2-Rezeptor, einer Phosphoadenosinphosphosulfatreduktase, einem Phosphoträgerprotein, einem Pirin-ähnlichen Protein, einer Precorrin-6y-Methylase, einem für den Abbau von Glykoproteinen benötigten Protein, einer Pyrimidindeaminase/-reduktase, einem Regulator der Zellmorphogenese und der NO-Signalvermittlung, einer Serinacetyltransferase, einer Untereinheit des Signalosomkomplexes, einem SLR1094-Protein, einer Untereinheit von TORC1, einer thiolspezifischen Monooxygenase, einem die Transkription steuernden Protein, einer Transketolase, einem Zwei-Modul-Transportprotein, einem Uridindiphosphat-N-acetylglucosamintransporter, einem yer175w-a-Protein, einem yhr213w-a-Protein, einem YML079W-Protein, einem YMR157C-Protein, einem YNL024C-Protein und einem YNR040W-Protein, erhöht oder erzeugt;
    • (b) eine Pflanzenzelle, eine Pflanze oder einen Teil davon unter Bedingungen, vorzugsweise in Gegenwart oder Abwesenheit von Nährstoffmangel und/oder abiotischem Stress, heranzieht, die die Entwicklung einer Pflanzenzelle, einer Pflanze oder eines Teils davon mit einem erhöhten Ertrag, verglichen mit einer entsprechenden nicht transformierten Pflanzenzelle vom Wildtyp, einer transgenen Pflanze oder einem Teil davon erlauben, und
    • (c) die Pflanzenzelle, eine Pflanze oder einen Teil davon mit erhöhtem Ertrag, vorzugsweise verbesserter Effizienz der Nährstoffausnutzung und/oder Resistenz gegen abiotischen Stress, verglichen mit einer entsprechenden nicht transformierten Pflanzenzelle vom Wildtyp, einer transgenen Pflanze oder einem Teil davon, die/das unter diesen Bedingungen sichtbare Symptome von Mängeln und/oder Absterben zeigt, auswählt.
  • Gemäß einer Ausführungsform betrifft die vorliegende Erfindung ein Verfahren zur Herstellung eines z. B. transgenen photosynthetisch aktiven Organismus oder eines Teils davon, vorzugsweise einer Pflanzenzelle, einer Pflanze oder eines Teils davon, mit erhöhtem Ertrag, z. B. mit erhöhten Ertragsmerkmalen, zum Beispiel einer gesteigerten Toleranz gegenüber abiotischem Umweltstress, zum Beispiel einer erhöhten Toleranz gegenüber Dürre und/oder Toleranz gegenüber niedrigen Temperaturen und/oder einer erhöhten Effizienz der Nährstoffausnutzung, einem erhöhten intrinsischen Ertrag und/oder einem anderen erhöhten Ertragsmerkmal, verglichen mit einem entsprechenden z. B. nicht transformierten photosynthetisch aktiven Organismus vom Wildtyp oder einem Teil davon, vorzugsweise einer Pflanzenzelle, einer Pflanze oder einem Teil davon, bei dem man
    • (a) eine oder mehrere Aktivitäten, ausgewählt aus der Gruppe bestehend aus einer (DL)-Glycerin-3-phosphatase, einer 2-Desoxyglucose-6-phosphatphosphatase, einer 3-Methyl-2-oxobutanoat-Hydroxymethyltransferase, einer Alkoholacetyltransferase, einer Aminosäurepermease, einer Aminomethyltransferase, einem Ammoniumtransporter, einem Aquaporin, einem ATP-bindenden Protein des Arabinosetransportsystems, einer Argininosuccinatsynthase, einer Aspartataminotransferase, einem B1906-Protein, einem B3410-Protein, einer Cardiolipinsynthetase, einem CoA-Transferase-ähnlichen Protein (NAD(P)-bindend), einem Cobalttransportprotein, einem DNA- und proteinbindenden Protein zur Steuerung des Proteoms auf der posttranskriptionellen Ebene, einer Enoyl-CoA-Hydratase, einer Enoyl-CoA-Isomerase, einer Ethanolaminkinase, einer Formiatacetyltransferase 1, einem Protein einer Glucit/Sorbit-spezifischen Enzym-IIA-Komponente, einer Glutaminsynthetase, einer Glutathion-S-transferase, einer Glycerindehydrogenase, einem Glykogensyntheseinitiatorprotein, einem GTP-bindenden Protein, einem Hitzeschockprotein, einem Hexosetransporter, einer Holo-[Acylträgerprotein]-Synthase, einem anorganischen Phosphattransporter, einer Lanosterolsynthase, einer molybdänbindenden Untereinheit von Aldehydoxidasen und Xanthindehydrogenasen, einem Multidrug-Resistenzprotein, einem Multiple-Drug-Resistenzprotein, einer NADH-Dehydrogenase/NAD(P)H-Nitroreduktase, einer Oxidoreduktase, einer Peptidyl-Prolyl-cis/trans-Isomerase, einem Peroxisomal-Targeting-Signal-2-Rezeptor, einer Phosphoadenosinphosphosulfatreduktase, einem Phosphoträgerprotein, einem Pirin-ähnlichen Protein, einer Precorrin-6y-Methylase, einem für den Abbau von Glykoproteinen benötigten Protein, einer Pyrimidindeaminase/-reduktase, einem Regulator der Zellmorphogenese und der NO-Signalvermittlung, einer Serinacetyltransferase, einer Untereinheit des Signalosomkomplexes, einem SLR1094-Protein, einer Untereinheit von TORC1, einer thiolspezifischen Monooxygenase, einem die Transkription steuernden Protein, einer Transketolase, einem Zwei-Modul-Transportprotein, einem Uridindiphosphat-N-acetylglucosamintransporter, einem yer175w-a-Protein, einem yhr213w-a-Protein, einem YML079W-Protein, einem YMR157C-Protein, einem YNL024C-Protein und einem YNR040W-Protein in einem photosynthetisch aktiven Organismus oder einem Teil davon, z. B. einer Pflanzenzelle, einer Pflanze oder einem Teil davon, erhöht oder erzeugt,
    • (b) den photosynthetisch aktiven Organismus oder einen Teil davon, vorzugsweise eine Pflanzenzelle, eine Pflanze oder einen Teil davon, zusammen mit einem z. B. nicht transformierten photosynthetisch aktiven Organismus vom Wildtyp oder einem Teil davon, vorzugsweise einer Pflanze, unter Bedingungen von abiotischem Umweltstress heranzieht,
    • (c) den photosynthetisch aktiven Organismus oder einen Teil davon, vorzugsweise eine Pflanzenzelle, eine Pflanze oder einen Teil davon, mit erhöhtem Ertrag, z. B. mit einem erhöhten Ertragsmerkmal, zum Beispiel einer gesteigerten Toleranz gegenüber abiotischem Umweltstress, zum Beispiel einer erhöhten Toleranz gegenüber Dürre und/oder Toleranz gegenüber niedrigen Temperaturen und/oder einer erhöhten Effizienz der Nährstoffausnutzung, einem erhöhten intrinsischen Ertrag und/oder einem anderen erhöhten Ertragsmerkmal, verglichen mit einem entsprechenden, z. B. nicht transformierten, photosynthetisch aktiven Organismus vom Wildtyp oder einem Teil davon, vorzugsweise einer Pflanzenzelle, einer Pflanze oder einem Teil davon, auswählt, nachdem der z. B. nicht transformierte, photosynthetisch aktive Organismus vom Wildtyp oder ein Teil davon, vorzugsweise eine Pflanzenzelle, eine Pflanze oder ein Teil davon, sichtbare Symptome von Mängeln und/oder Absterben zeigt.
  • Gemäß einer Ausführungsform bezieht sich in der gesamten Beschreibung abiotischer Umweltstress auf Stress durch niedrige Temperaturen.
  • Gemäß einer Ausführungsform betrifft die vorliegende Erfindung ein Verfahren zur Herstellung eines z. B. transgenen photosynthetisch aktiven Organismus oder eines Teils davon, vorzugsweise einer Pflanzenzelle, einer Pflanze oder eines Teils davon, z. B. für die Erzeugung dieser Pflanze, mit erhöhtem Ertrag, z. B. mit einem erhöhten Ertragsmerkmal, zum Beispiel einer gesteigerten Toleranz gegenüber abiotischem Umweltstress, zum Beispiel einer erhöhten Toleranz gegenüber Dürre und/oder Toleranz gegenüber niedrigen Temperaturen und/oder einer erhöhten Effizienz der Nährstoffausnutzung, einem erhöhten intrinsischen Ertrag und/oder einem anderen erhöhten Ertragsmerkmal, verglichen mit einem entsprechenden z. B. nicht transformierten photosynthetisch aktiven Organismus vom Wildtyp oder einem Teil davon, vorzugsweise einer Pflanzenzelle, einer Pflanze oder einem Teil davon, bei dem man
    • (a) die Aktivität eines wie in Tabelle II, Spalte 3, gezeigten Proteins, oder eines durch die wie in Tabelle I, Spalte 5, gezeigten Nukleinsäuresequenzen kodierten Proteins in einem photosynthetisch aktiven Organismus oder einem Teil davon, vorzugsweise einem Kern einer Pflanzenzelle, einer Pflanzenzelle, einer Pflanze oder einem Teil davon, erhöht oder erzeugt und
    • (b) den photosynthetisch aktiven Organismus oder einen Teil davon, vorzugsweise eine Pflanzenzelle, eine Pflanze oder einen Teil davon, unter Bedingungen heranzieht, die die Entwicklung einer Pflanze mit erhöhtem Ertrag, z. B. mit einem erhöhten Ertragsmerkmal, zum Beispiel einer gesteigerten Toleranz gegenüber abiotischem Umweltstress, zum Beispiel einer erhöhten Toleranz gegenüber Dürre und/oder Toleranz gegenüber niedrigen Temperaturen und/oder einer erhöhten Effizienz der Nährstoffausnutzung, einem erhöhten intrinsischen Ertrag und/oder einem anderen erhöhten Ertragsmerkmal, verglichen mit einem entsprechenden, z. B. nicht transformierten, photosynthetisch aktiven Organismus vom Wildtyp oder einem Teil davon, vorzugsweise einer Pflanze, erlauben.
  • Gemäß einer Ausführungsform wird diese Aktivität, z. B. die Aktivität des wie in Tabelle II, Spalte 3, gezeigten Proteins oder des durch wie in Tabelle I, Spalte 5, gezeigte Nukleinsäuresequenzen kodierten Proteins in dem wie in Tabelle II oder Tabelle I in Spalte 6 angegebenen Teil einer Zelle erhöht.
  • Das erfindungsgemäße Verfahren umfasst gemäß einer Ausführungsform die folgenden Schritte:
    • (i) Erhöhen oder Erzeugen der Expression wenigstens eines Nukleinsäuremoleküls und/oder
    • (ii) Erhöhen oder Erzeugen der Expression eines Expressionsprodukts wenigstens eines Nukleinsäuremoleküls und/oder
    • (iii) Erhöhen oder Erzeugen einer oder mehrerer Aktivitäten eines durch wenigstens ein Nukleinsäuremolekül kodierten Expressionsprodukts,
    wobei das Nukleinsäuremolekül ein Nukleinsäuremolekül umfasst, welches ausgewählt ist aus der Gruppe bestehend aus:
    • (a) einem Nukleinsäuremolekül, das für das in Spalte 5 oder 7 von Tabelle II gezeigte Polypeptid kodiert;
    • (b) einem in Spalte 5 oder 7 von Tabelle I gezeigten Nukleinsäuremolekül;
    • (c) einem Nukleinsäuremolekül, welches als Folge der Degeneration des genetischen Kodes von einer in Spalte 5 oder 7 von Tabelle II gezeigten Polypeptidsequenz abgeleitet sein kann und, verglichen mit einer entsprechenden, z. B. nicht transformierten, Pflanzenzelle vom Wildtyp, einer transgenen Pflanze oder einem Teil davon, einen erhöhten Ertrag verleiht;
    • (d) einem Nukleinsäuremolekül mit wenigstens 30% Identität mit der Nukleinsäuremolekülsequenz eines Polynukleotids, das das in Spalte 5 oder 7 von Tabelle I gezeigte Nukleinsäuremolekül umfasst und verglichen mit einer entsprechenden, z. B. nicht transformierten, Pflanzenzelle vom Wildtyp, einer transgenen Pflanze oder einem Teil davon, einen erhöhten Ertrag verleiht;
    • (e) einem Nukleinsäuremolekül, das für ein Polypeptid mit wenigstens 30% Identität mit der Aminosäuresequenz des Polypeptids, das durch das Nukleinsäuremolekül von (a) bis (c) kodiert wird, kodiert und die Aktivität aufweist, die durch ein Nukleinsäuremolekül wiedergegeben wird, welches ein wie in Spalte 5 von Tabelle I gezeigtes Polynukleotid umfasst und verglichen mit einer entsprechenden, z. B. nicht transformierten, Pflanzenzelle vom Wildtyp, einer transgenen Pflanze oder einem Teil davon, einen erhöhten Ertrag verleiht;
    • (f) einem Nukleinsäuremolekül, welches unter stringenten Hybridisierungsbedingungen mit einem Nukleinsäuremolekül von (a) bis (c) hybridisiert und verglichen mit einer entsprechenden, z. B. nicht transformierten, Pflanzenzelle vom Wildtyp, einer transgenen Pflanze oder einem Teil davon, einen erhöhten Ertrag verleiht;
    • (g) einem Nukleinsäuremolekül, das für ein Polypeptid kodiert, das mit Hilfe von monoklonalen oder polyklonalen Antikörpern gegen ein Polypeptid, das durch eines der Nukleinsäuremoleküle von (a) bis (e) kodiert wird und die Aktivität aufweist, die durch das Nukleinsäuremolekül wiedergegeben wird, welches ein wie in Spalte 5 von Tabelle I gezeigtes Polynukleotid umfasst, isoliert werden kann;
    • (h) einem Nukleinsäuremolekül, das für ein Polypeptid kodiert, das die Konsensussequenz oder ein oder mehrere Polypeptidmotive wie in Spalte 7 von Tabelle IV gezeigt umfasst und vorzugsweise die Aktivität aufweist, die durch ein Nukleinsäuremolekül wiedergegeben wird, welches ein wie in Spalte 5 von Tabelle II oder IV gezeigtes Polynukleotid umfasst;
    • (i) einem Nukleinsäuremolekül, das für ein Polypeptid kodiert, das die Aktivität aufweist, die durch ein wie in Spalte 5 von Tabelle II gezeigtes Protein wiedergegeben wird, und verglichen mit einer entsprechenden, z. B. nicht transformierten, Pflanzenzelle vom Wildtyp, einer transgenen Pflanze oder einem Teil davon, einen erhöhten Ertrag verleiht;
    • (j) einem Nukleinsäuremolekül, welches ein Polynukleotid umfasst, das man erhält, indem man eine cDNA-Bibliothek oder eine genomische Bibliothek unter Verwendung der Primer aus Spalte 7 von Tabelle III amplifiziert, und vorzugsweise die Aktivität aufweist, die durch ein Nukleinsäuremolekül, welches ein wie in Spalte 5 von Tabelle II oder IV gezeigtes Polynukleotid umfasst, wiedergegeben wird; und
    • (k) einem Nukleinsäuremolekül, welches erhältlich ist, indem man eine geeignete Nukleinsäurebibliothek unter stringenten Hybridisierungsbedingungen mit einer Sonde, die eine komplementäre Sequenz eines Nukleinsäuremoleküls von (a) oder (b) umfasst, oder mit einem Fragment davon, mit wenigstens 15 nt, vorzugsweise 20 nt, 30 nt, 50 nt, 100 nt, 200 nt oder 500 nt, 1000 nt, 1500 nt, 2000 nt oder 3000 nt eines Nukleinsäuremoleküls, das komplementär zu einer in (a) bis (e) charakterisierten Nukleinsäuremolekülsequenz ist und für ein Polypeptid kodiert, das die Aktivität aufweist, die durch ein Protein, welches ein wie in Spalte 5 von Tabelle II gezeigtes Polypeptid umfasst, wiedergegeben wird, screent.
  • Die vorliegende Erfindung betrifft weiterhin ein Verfahren zur Herstellung einer transgenen Pflanze mit erhöhtem Ertrag, verglichen mit einer entsprechenden, z. B. nicht transformierten, Pflanze vom Wildtyp, bei dem man eine Pflanzenzelle oder den Kern einer Pflanzenzelle oder ein Pflanzengewebe so transformiert, dass solch eine Pflanze gebildet wird, mit einem Nukleinsäuremolekül, welches ein Nukleinsäuremolekül umfasst, ausgewählt aus der Gruppe bestehend aus:
    • (a) einem Nukleinsäuremolekül, das für das in Spalte 5 oder 7 von Tabelle II gezeigte Polypeptid kodiert;
    • (b) einem in Spalte 5 oder 7 von Tabelle I gezeigten Nukleinsäuremolekül;
    • (c) einem Nukleinsäuremolekül, welches als Folge der Degeneration des genetischen Kodes von einer in Spalte 5 oder 7 von Tabelle II gezeigten Polypeptidsequenz abgeleitet sein kann und, verglichen mit einer entsprechenden, z. B. nicht transformierten, Pflanzenzelle vom Wildtyp, einer transgenen Pflanze oder einem Teil davon, einen erhöhten Ertrag verleiht;
    • (d) einem Nukleinsäuremolekül mit wenigstens 30% Identität mit der Nukleinsäuremolekülsequenz eines Polynukleotids, das das in Spalte 5 oder 7 von Tabelle I gezeigte Nukleinsäuremolekül umfasst und verglichen mit einer entsprechenden, z. B. nicht transformierten, Pflanzenzelle vom Wildtyp, einer transgenen Pflanze oder einem Teil davon, einen erhöhten Ertrag verleiht;
    • (e) einem Nukleinsäuremolekül, das für ein Polypeptid mit wenigstens etwa 30% Identität mit der Aminosäuresequenz des Polypeptids, das durch das Nukleinsäuremolekül von (a) bis (c) kodiert wird, kodiert und die Aktivität aufweist, die durch ein Nukleinsäuremolekül wiedergegeben wird, welches ein wie in Spalte 5 von Tabelle I gezeigtes Polynukleotid umfasst und verglichen mit einer entsprechenden, z. B. nicht transformierten, Pflanzenzelle vom Wildtyp, einer transgenen Pflanze oder einem Teil davon, einen erhöhten Ertrag verleiht;
    • (f) einem Nukleinsäuremolekül, welches unter stringenten Hybridisierungsbedingungen mit einem Nukleinsäuremolekül von (a) bis (c) hybridisiert und verglichen mit einer entsprechenden, z. B. nicht transformierten, Pflanzenzelle vom Wildtyp, einer transgenen Pflanze oder einem Teil davon, einen erhöhten Ertrag verleiht;
    • (g) einem Nukleinsäuremolekül, das für ein Polypeptid kodiert, das mit Hilfe von monoklonalen oder polyklonalen Antikörpern gegen ein Polypeptid, das durch eines der Nukleinsäuremoleküle von (a) bis (e) kodiert wird und die Aktivität aufweist, die durch das Nukleinsäuremolekül wiedergegeben wird, welches ein wie in Spalte 5 von Tabelle I gezeigtes Polynukleotid umfasst, isoliert werden kann;
    • (h) einem Nukleinsäuremolekül, das für ein Polypeptid kodiert, das die Konsensussequenz oder ein oder mehrere Polypeptidmotive wie in Spalte 7 von Tabelle IV gezeigt umfasst und vorzugsweise die Aktivität aufweist, die durch ein Nukleinsäuremolekül wiedergegeben wird, welches ein wie in Spalte 5 von Tabelle II oder IV gezeigtes Polynukleotid umfasst;
    • (i) einem Nukleinsäuremolekül, das für ein Polypeptid kodiert, das die Aktivität aufweist, die durch ein wie in Spalte 5 von Tabelle II gezeigtes Protein wiedergegeben wird, und verglichen mit einer entsprechenden, z. B. nicht transformierten, Pflanzenzelle vom Wildtyp, einer transgenen Pflanze oder einem Teil davon, einen erhöhten Ertrag verleiht;
    • (j) einem Nukleinsäuremolekül, welches ein Polynukleotid umfasst, das man erhält, indem man eine cDNA-Bibliothek oder eine genomische Bibliothek unter Verwendung der Primer aus Spalte 7 von Tabelle III amplifiziert, und vorzugsweise die Aktivität aufweist, die durch ein Nukleinsäuremolekül, welches ein wie in Spalte 5 von Tabelle II oder IV gezeigtes Polynukleotid umfasst, wiedergegeben wird; und
    • (k) einem Nukleinsäuremolekül, welches erhältlich ist, indem man eine geeignete Nukleinsäurebibliothek unter stringenten Hybridisierungsbedingungen mit einer Sonde, die eine komplementäre Sequenz eines Nukleinsäuremoleküls von (a) oder (b) umfasst, oder mit einem Fragment davon, mit wenigstens 50 nt eines Nukleinsäuremoleküls, das komplementär zu einer in (a) bis (e) charakterisierten Nukleinsäuremolekülsequenz ist und für ein Polypeptid kodiert, das die Aktivität aufweist, die durch ein Protein, welches wie in Spalte 5 von Tabelle II gezeigtes Polypeptid umfasst, wiedergegeben wird, screent.
    und eine transgene Pflanze mit erhöhtem Ertrag aus diesem transformierten Kern einer Pflanzenzelle, dieser transformierten Pflanzenzelle bzw. diesem transformierten Pflanzengewebe regeneriert.
  • Eine Modifikation, d. h. eine Erhöhung, kann durch endogene oder exogene Faktoren bewirkt werden. So kann zum Beispiel eine Erhöhung der Aktivität in einem Organismus oder einem Teil davon herbeigeführt werden, indem man ein Genprodukt oder eine Vorstufe davon oder einen Aktivator oder einen Agonisten zum Medium oder der Nahrung gibt, oder sie kann herbeigeführt werden, indem man diese Gegenstände transient oder stabil in einen Organismus einführt. Weiterhin lässt sich eine solche Erhöhung durch die Einführung der erfindungsgemäßen Nukleinsäuresequenz oder des kodierten Proteins in das korrekte Zellkompartiment, zum Beispiel in den Kern bzw. das Zytoplasma oder in Plastide entweder durch Transformation und/oder durch Targeting erzielen. Für die Zwecke der Beschreibung der vorliegenden Erfindung sollen die Ausdrücke „zytoplasmatisch” und „nicht gezielt” bedeuten, dass die erfindungsgemäße Nukleinsäure ohne Zusatz einer nicht-natürlichen, für ein Transitpeptid kodierenden Sequenz exprimiert wird. Eine nicht-natürliche, für ein Transitpeptid kodierende Sequenz ist eine Sequenz, die nicht ein natürlicher Teil der erfindungsgemäßen Nukleinsäure, z. B. der in Tabelle I, Spalte 5 oder 7, gezeigten Nukleinsäuren, ist, sondern vielmehr durch Schritte molekularer Manipulation wie zum Beispiel in den Beispielen unter ”plastid targeted expression” beschrieben angefügt wurde. Die Ausdrücke „zytoplasmatisch” und „nicht gezielt” sollen daher eine gezielte Lokalisation in einem Zellkompartiment für die Produkte der erfindungsgemäßen Nukleinsäuresequenzen aufgrund der Eigenschaften ihrer natürlich vorkommenden Sequenz vor dem Hintergrund des transgenen Organismus nicht ausschließen. Die subzelluläre Lokation des von den angefügten Sequenzen abgeleiteten reifen Polypeptids lässt sich von einem Fachman für den Organismus (die Pflanze) unter Anwendung von Softwareprogrammen wie TargetP (Emanuelsson et al., (2000), Predicting sub-cellular localization of Proteins based an their N-terminal amino acid sequence., J. Mol. Biol. 300, 1005–1016.), ChloroP (Emanuelsson et al. (1999), ChloroP, a neural network-based method for predicting chloroplast transit peptides and their cleavage sites., Protein Science, 8: 978–984) oder anderen prädiktiven Softwareprogrammen (Emanuelsson et al. (2007), Locating proteins in the cell using TargetP, SignalP, and related tools., Nature Protocols 2, 953–971) vorhersagen.
  • Dementsprechend betrifft die vorliegende Erfindung ein Verfahren zur Herstellung einer z. B. transgenen Pflanzenzelle, einer Pflanze oder eines Teils davon, mit erhöhtem Ertrag, z. B. mit einem erhöhten Ertragsmerkmal, zum Beispiel einer gesteigerten Toleranz gegenüber abiotischem Umweltstress, zum Beispiel einer erhöhten Toleranz gegenüber Dürre und/oder Toleranz gegenüber niedrigen Temperaturen und/oder einer erhöhten Effizienz der Nährstoffausnutzung, einem erhöhten intrinsischen Ertrag und/oder einem anderen erhöhten Ertragsmerkmal, verglichen mit einer entsprechenden, z. B. nicht transformierten, Pflanzenzelle vom Wildtyp, einer Pflanze oder einem Teil davon, bei dem man
    • (a) eine oder mehrere Aktivitäten, ausgewählt aus der Gruppe bestehend aus einer (DL)-Glycerin-3-phosphatase, einer 2-Desoxyglucose-6-phosphatphosphatase, einer 3-Methyl-2-oxobutanoat-Hydroxymethyltransferase, einer Alkoholacetyltransferase, einer Aminosäurepermease, einer Aminomethyltransferase, einem Ammoniumtransporter, einem Aquaporin, einem ATP-bindenden Protein des Arabinosetransportsystems, einer Argininosuccinatsynthase, einer Aspartataminotransferase, einem B1906-Protein, einem B3410-Protein, einer Cardiolipinsynthetase, einem CoA-Transferase-ähnlichen Protein (NAD(P)-bindend), einem Cobalttransportprotein, einem DNA- und proteinbindenden Protein zur Steuerung des Proteoms auf der posttranskriptionellen Ebene, einer Enoyl-CoA-Hydratase, einer Enoyl-CoA-Isomerase, einer Ethanolaminkinase, einer Formiatacetyltransferase 1, einem Protein einer Glucit/Sorbit-spezifischen Enzym-IIA-Komponente, einer Glutaminsynthetase, einer Glutathion-S-transferase, einer Glycerindehydrogenase, einem Glykogensyntheseinitiatorprotein, einem GTP-bindenden Protein, einem Hitzeschockprotein, einem Hexosetransporter, einer Holo-[Acylträgerprotein]-Synthase, einem anorganischen Phosphattransporter, einer Lanosterolsynthase, einer molybdänbindenden Untereinheit von Aldehydoxidasen und Xanthindehydrogenasen, einem Multidrug-Resistenzprotein, einem Multiple-Drug-Resistenzprotein, einer NADH-Dehydrogenase/NAD(P)H-Nitroreduktase, einer Oxidoreduktase, einer Peptidyl-Prolyl-cis/trans-Isomerase, einem Peroxisomal-Targeting-Signal-2-Rezeptor, einer Phosphoadenosinphosphosulfatreduktase, einem Phosphoträgerprotein, einem Pirin-ähnlichen Protein, einer Precorrin-6y-Methylase, einem für den Abbau von Glykoproteinen benötigten Protein, einer Pyrimidindeaminase/-reduktase, einem Regulator der Zellmorphogenese und der NO-Signalvermittlung, einer Serinacetyltransferase, einer Untereinheit des Signalosomkomplexes, einem SLR1094-Protein, einer Untereinheit von TORC1, einer thiolspezifischen Monooxygenase, einem die Transkription steuernden Protein, einer Transketolase, einem Zwei-Modul-Transportprotein, einem Uridindiphosphat-N-acetylglucosamintransporter, einem yer175w-a-Protein, einem yhr213w-a-Protein, einem YML079W-Protein, einem YMR157C-Protein, einem YNL024C-Protein und einem YNR040W-Protein in einer Organelle, insbesondere im Plastid einer Pflanzenzelle, erhöht oder erzeugt, und
    • (b) die Pflanzenzelle unter Bedingungen heranzieht, die die Entwicklung einer Pflanze mit erhöhtem Ertrag, z. B. mit einem erhöhten Ertragsmerkmal, zum Beispiel einer gesteigerten Toleranz gegenüber abiotischem Umweltstress, zum Beispiel einer erhöhten Toleranz gegenüber Dürre und/oder Toleranz gegenüber niedrigen Temperaturen und/oder einer erhöhten Effizienz der Nährstoffausnutzung, einem erhöhten intrinsischen Ertrag und/oder einem anderen erhöhten Ertragsmerkmal, verglichen mit einer entsprechenden, z. B. nicht transformierten, Pflanze vom Wildtyp erlauben.
  • Gemäß einer Ausführungsform wird eine Aktivität, die wie hier offenbart durch ein in Tabelle II gezeigtes Polypeptid verliehen wird, im Plastid, z. B. einer Organelle, erhöht oder erzeugt, wenn in Spalte 6 von Tabelle I jeweils der Ausdruck „plastidisch” für dieses Polypeptid aufgeführt ist.
  • Gemäß einer anderen Ausführungsform betrifft die vorliegende Erfindung ein Verfahren zur Herstellung einer z. B. transgenen Pflanzenzelle, einer Pflanze oder eines Teils davon, mit erhöhtem Ertrag, z. B. mit einem erhöhten Ertragsmerkmal, zum Beispiel einer gesteigerten Toleranz gegenüber abiotischem Umweltstress, zum Beispiel einer erhöhten Toleranz gegenüber Dürre und/oder Toleranz gegenüber niedrigen Temperaturen und/oder einer erhöhten Effizienz der Nährstoffausnutzung, einem erhöhten intrinsischen Ertrag und/oder einem anderen erhöhten Ertragsmerkmal, verglichen mit einer entsprechenden, z. B. nicht transformierten, Pflanzenzelle vom Wildtyp, einer Pflanze oder einem Teil davon, bei dem man
    • (a) eine oder mehrere Aktivitäten, ausgewählt aus der Gruppe bestehend aus einer (DL)-Glycerin-3-phosphatase, einer 2-Desoxyglucose-6-phosphatphosphatase, einer 3-Methyl-2-oxobutanoat-Hydroxymethyltransferase, einer Alkoholacetyltransferase, einer Aminosäurepermease, einer Aminomethyltransferase, einem Ammoniumtransporter, einem Aquaporin, einem ATP-bindenden Protein des Arabinosetransportsystems, einer Argininosuccinatsynthase, einer Aspartataminotransferase, einem B1906-Protein, einem B3410-Protein, einer Cardiolipinsynthetase, einem CoA-Transferase-ähnlichen Protein (NAD(P)-bindend), einem Cobalttransportprotein, einem DNA- und proteinbindenden Protein zur Steuerung des Proteoms auf der posttranskriptionellen Ebene, einer Enoyl-CoA-Hydratase, einer Enoyl-CoA-Isomerase, einer Ethanolaminkinase, einer Formiatacetyltransferase 1, einem Protein einer Glucit/Sorbit-spezifischen Enzym-IIA-Komponente, einer Glutaminsynthetase, einer Glutathion-S-transferase, einer Glycerindehydrogenase, einem Glykogensyntheseinitiatorprotein, einem GTP-bindenden Protein, einem Hitzeschockprotein, einem Hexosetransporter, einer Holo-[Acylträgerprotein]-Synthase, einem anorganischen Phosphattransporter, einer Lanosterolsynthase, einer molybdänbindenden Untereinheit von Aldehydoxidasen und Xanthindehydrogenasen, einem Multidrug-Resistenzprotein, einem Multiple-Drug-Resistenzprotein, einer NADH-Dehydrogenase/NAD(P)H-Nitroreduktase, einer Oxidoreduktase, einer Peptidyl-Prolyl-cis/trans-Isomerase, einem Peroxisomal-Targeting-Signal-2-Rezeptor, einer Phosphoadenosinphosphosulfatreduktase, einem Phosphoträgerprotein, einem Pirin-ähnlichen Protein, einer Precorrin-6y-Methylase, einem für den Abbau von Glykoproteinen benötigten Protein, einer Pyrimidindeaminase/-reduktase, einem Regulator der Zellmorphogenese und der NO-Signalvermittlung, einer Serinacetyltransferase, einer Untereinheit des Signalosomkomplexes, einem SLR1094-Protein, einer Untereinheit von TORC1, einer thiolspezifischen Monooxygenase, einem die Transkription steuernden Protein, einer Transketolase, einem Zwei-Modul-Transportprotein, einem Uridindiphosphat-N-acetylglucosamintransporter, einem yer175w-a-Protein, einem yhr213w-a-Protein, einem YML079W-Protein, einem YMR157C-Protein, einem YNL024C-Protein und einem YNR040W-Protein, im Zytoplasma einer Pflanzenzelle erhöht oder erzeugt, und
    • (b) die Pflanzenzelle unter Bedingungen heranzieht, die die Entwicklung einer Pflanze mit erhöhtem Ertrag, z. B. mit einem erhöhten Ertragsmerkmal, zum Beispiel einer gesteigerten Toleranz gegenüber abiotischem Umweltstress, zum Beispiel einer erhöhten Toleranz gegenüber Dürre und/oder Toleranz gegenüber niedrigen Temperaturen und/oder einer erhöhten Effizienz der Nährstoffausnutzung, einem erhöhten intrinsischen Ertrag und/oder einem anderen erhöhten Ertragsmerkmal, verglichen mit einer entsprechenden, z. B. nicht transformierten, Pflanze vom Wildtyp erlauben.
  • Gemäß einer Ausführungsform wird eine Aktivität, die wie hier offenbart durch ein in Tabelle II gezeigtes Polypeptid verliehen wird, im Zytoplasma erhöht oder erzeugt, wenn in Spalte 6 von Tabelle I jeweils der Ausdruck „zytoplasmatisch” für dieses Polypeptid aufgeführt ist.
  • Gemäß einer Ausführungsform wird die Aktivität vom SLR1348, die wie hier offenbart durch ein in Tabelle II gezeigtes Polypeptid verliehen wird, als hit 44 in den Mitochondrien erhöht oder erzeugt.
  • Gemäß einer Ausführungsform betrifft die vorliegende Erfindung ein Verfahren zur Herstellung einer z. B. transgenen Pflanzenzelle, einer Pflanze oder eines Teils davon, mit erhöhtem Ertrag, z. B. mit einem erhöhten Ertragsmerkmal, zum Beispiel einer gesteigerten Toleranz gegenüber abiotischem Umweltstress, zum Beispiel einer erhöhten Toleranz gegenüber Düne und/oder Toleranz gegenüber niedrigen Temperaturen und/oder einer erhöhten Effizienz der Nährstoffausnutzung, einem erhöhten intrinsischen Ertrag und/oder einem anderen erhöhten Ertragsmerkmal, verglichen mit einer entsprechenden, z. B. nicht transformierten, Pflanzenzelle vom Wildtyp, einer Pflanze oder einem Teil davon, bei dem man
    • (a) die Aktivität eines wie in Tabelle II, Spalte 3, gezeigten Proteins, kodiert durch die wie in Tabelle I, Spalte 5 oder 7, gezeigten Nukleinsäuresequenzen, in dem wie in Spalte 6 dieser Tabellen gezeigten zellulären Kompartiment erhöht oder erzeugt, und
    • (b) die Pflanzenzelle unter Bedingungen heranzieht, die die Entwicklung einer Pflanze mit erhöhtem Ertrag, z. B. mit einem erhöhten Ertragsmerkmal, zum Beispiel einer gesteigerten Toleranz gegenüber abiotischem Umweltstress, zum Beispiel einer erhöhten Toleranz gegenüber Dürre und/oder Toleranz gegenüber niedrigen Temperaturen und/oder einer erhöhten Effizienz der Nährstoffausnutzung, einem erhöhten intrinsischen Ertrag und/oder einem anderen erhöhten Ertragsmerkmal, verglichen mit einer entsprechenden, z. B. nicht transformierten, Pflanze vom Wildtyp erlauben.
  • Gemäß einer Ausführungsform betrifft die vorliegende Erfindung ein Verfahren zur Herstellung einer z. B. transgenen Pflanzenzelle, einer Pflanze oder eines Teils davon, mit erhöhtem Ertrag, z. B. mit einem erhöhten Ertragsmerkmal, zum Beispiel einer gesteigerten Toleranz gegenüber abiotischem Umweltstress, zum Beispiel einer erhöhten Toleranz gegenüber Dürre und/oder Toleranz gegenüber niedrigen Temperaturen und/oder einer erhöhten Effizienz der Nährstoffausnutzung, einem erhöhten intrinsischen Ertrag und/oder einem anderen erhöhten Ertragsmerkmal, verglichen mit einer entsprechenden, z. B. nicht transformierten, Pflanzenzelle vom Wildtyp, einer Pflanze oder einem Teil davon, bei dem man
    • (a) die Aktivität eines wie in Tabelle II, Spalte 3, gezeigten Proteins, kodiert durch die wie in Tabelle I, Spalte 5 oder 7, gezeigten Nukleinsäuresequenzen, in einer Organelle, insbesondere dem Plastid einer Pflanzenzelle, erhöht oder erzeugt, und
    • (b) die Pflanzenzelle unter Bedingungen heranzieht, die die Entwicklung einer Pflanze mit erhöhtem Ertrag, z. B. mit einem erhöhten Ertragsmerkmal, zum Beispiel einer gesteigerten Toleranz gegenüber abiotischem Umweltstress, zum Beispiel einer erhöhten Toleranz gegenüber Dürre und/oder Toleranz gegenüber niedrigen Temperaturen und/oder einer erhöhten Effizienz der Nährstoffausnutzung, einem erhöhten intrinsischen Ertrag und/oder einem anderen erhöhten Ertragsmerkmal, verglichen mit einer entsprechenden, z. B. nicht transformierten, Pflanze vom Wildtyp erlauben.
  • Gemäß einer Ausführungsform wird eine Aktivität eines in Tabelle II gezeigten Polypeptids im Plastid erhöht oder erzeugt, wenn in Spalte 6 von Tabelle I der Ausdruck „Plastid” für dieses Polypeptid aufgeführt ist.
  • Gemäß einer Ausführungsform betrifft die vorliegende Erfindung ein Verfahren zur Herstellung einer z. B. transgenen Pflanzenzelle, einer Pflanze oder eines Teils davon, mit erhöhtem Ertrag, z. B. mit einem erhöhten Ertragsmerkmal, zum Beispiel einer gesteigerten Toleranz gegenüber abiotischem Umweltstress, zum Beispiel einer erhöhten Toleranz gegenüber Dürre und/oder Toleranz gegenüber niedrigen Temperaturen und/oder einer erhöhten Effizienz der Nährstoffausnutzung, einem erhöhten intrinsischen Ertrag und/oder einem anderen erhöhten Ertragsmerkmal, verglichen mit einer entsprechenden, z. B. nicht transformierten, Pflanzenzelle vom Wildtyp, einer Pflanze oder einem Teil davon, bei dem man
    • (a) die Aktivität eines wie in Tabelle II, Spalte 3, gezeigten Proteins, kodiert durch die wie in Tabelle I, Spalte 5 oder 7, gezeigten Nukleinsäuresequenzen, im Zytoplasma einer Pflanzenzelle erhöht oder erzeugt, und
    • (b) die Pflanzenzelle unter Bedingungen heranzieht, die die Entwicklung einer Pflanze mit erhöhtem Ertrag, z. B. mit einem erhöhten Ertragsmerkmal, zum Beispiel einer gesteigerten Toleranz gegenüber abiotischem Umweltstress, zum Beispiel einer erhöhten Toleranz gegenüber Dürre und/oder Toleranz gegenüber niedrigen Temperaturen und/oder einer erhöhten Effizienz der Nährstoffausnutzung, einem erhöhten intrinsischen Ertrag und/oder einem anderen erhöhten Ertragsmerkmal, verglichen mit einer entsprechenden, z. B. nicht transformierten, Pflanze vom Wildtyp erlauben.
  • Gemäß einer Ausführungsform wird eine Aktivität eines in Tabelle II gezeigten Polypeptids im Zytoplasma erhöht oder erzeugt, wenn in Spalte 6 von Tabelle I der Ausdruck „Zytoplasma” für dieses Polypeptid aufgeführt ist. Gemäß einer Ausführungsform wird eine Aktivität eines in Tabelle II gezeigten Polypeptids im Zytoplasma und anderen Kompartimenten, z. B. Plastiden und/oder Mitochondrien, einer Pflanzenzelle erhöht oder erzeugt, wenn in Spalte 6 von Tabelle I der Ausdruck „Zytoplasma” für dieses Polypeptid aufgeführt ist.
  • Gemäß einer Ausführungsform betrifft die vorliegende Erfindung ein Verfahren zur Herstellung einer z. B. transgenen Pflanzenzelle, einer Pflanze oder eines Teils davon, mit erhöhtem Ertrag, z. B. mit einem erhöhten Ertragsmerkmal, zum Beispiel einer gesteigerten Toleranz gegenüber abiotischem Umweltstress, zum Beispiel einer erhöhten Toleranz gegenüber Dürre und/oder Toleranz gegenüber niedrigen Temperaturen und/oder einer erhöhten Effizienz der Nährstoffausnutzung, einem erhöhten intrinsischen Ertrag und/oder einem anderen erhöhten Ertragsmerkmal, verglichen mit einer entsprechenden, z. B. nicht transformierten, Pflanzenzelle vom Wildtyp, einer Pflanze oder einem Teil davon, bei dem man
    • (a) die Aktivität eines wie in Tabelle II, Spalte 3, gezeigten Proteins, kodiert durch die wie in Tabelle I, Spalte 5 oder 7, gezeigten Nukleinsäuresequenzen, in den Mitochondrien einer Pflanzenzelle erhöht oder erzeugt, und
    • (b) die Pflanzenzelle unter Bedingungen heranzieht, die die Entwicklung einer Pflanze mit erhöhtem Ertrag, z. B. mit einem erhöhten Ertragsmerkmal, zum Beispiel einer gesteigerten Toleranz gegenüber abiotischem Umweltstress, zum Beispiel einer erhöhten Toleranz gegenüber Dürre und/oder Toleranz gegenüber niedrigen Temperaturen und/oder einer erhöhten Effizienz der Nährstoffausnutzung, einem erhöhten intrinsischen Ertrag und/oder einem anderen erhöhten Ertragsmerkmal, verglichen mit einer entsprechenden, z. B. nicht transformierten, Pflanze vom Wildtyp erlauben.
  • Gemäß einer Ausführungsform wird eine Aktivität eines in Tabelle II gezeigten Polypeptids in den Mitochondrien erhöht oder erzeugt, wenn in Spalte 6 von Tabelle I der Ausdruck „Mitochondrien” für dieses Polypeptid aufgeführt ist.
  • Gemäß einer anderen Ausführungsform betrifft die vorliegende Erfindung ein Verfahren zur Herstellung einer z. B. transgenen Pflanzenzelle, einer Pflanze oder eines Teils davon, mit erhöhtem Ertrag, z. B. mit einem erhöhten Ertragsmerkmal, zum Beispiel einer gesteigerten Toleranz gegenüber abiotischem Umweltstress, zum Beispiel einer erhöhten Toleranz gegenüber Dürre und/oder Toleranz gegenüber niedrigen Temperaturen und/oder einer erhöhten Effizienz der Nährstoffausnutzung, einem erhöhten intrinsischen Ertrag und/oder einem anderen erhöhten Ertragsmerkmal, verglichen mit einer entsprechenden, z. B. nicht transformierten, Pflanzenzelle vom Wildtyp, einer Pflanze oder einem Teil davon, bei dem man
    • (a1) eine oder mehrere Aktivitäten, ausgewählt aus der Gruppe bestehend aus einer (DL)-Glycerin-3-phosphatase, einer 2-Desoxyglucose-6-phosphatphosphatase, einer 3-Methyl-2-oxobutanoat-Hydroxymethyltransferase, einer Alkoholacetyltransferase, einer Aminosäurepermease, einer Aminomethyltransferase, einem Ammoniumtransporter, einem Aquaporin, einem ATP-bindenden Protein des Arabinosetransportsystems, einer Argininosuccinatsynthase, einer Aspartataminotransferase, einem B1906-Protein, einem B3410-Protein, einer Cardiolipinsynthetase, einem CoA-Transferase-ähnlichen Protein (NAD(P)-bindend), einem Cobalttransportprotein, einem DNA- und proteinbindenden Protein zur Steuerung des Proteoms auf der posttranskriptionellen Ebene, einer Enoyl-CoA-Hydratase, einer Enoyl-CoA-Isomerase, einer Ethanolaminkinase, einer Formiatacetyltransferase 1, einem Protein einer Glucit/Sorbit-spezifischen Enzym-IIA-Komponente, einer Glutaminsynthetase, einer Glutathion-S-transferase, einer Glycerindehydrogenase, einem Glykogensyntheseinitiatorprotein, einem GTP-bindenden Protein, einem Hitzeschockprotein, einem Hexosetransporter, einer Holo-[Acylträgerprotein]-Synthase, einem anorganischen Phosphattransporter, einer Lanosterolsynthase, einer molybdänbindenden Untereinheit von Aldehydoxidasen und Xanthindehydrogenasen, einem Multidrug-Resistenzprotein, einem Multiple-Drug-Resistenzprotein, einer NADH-Dehydrogenase/NAD(P)H-Nitroreduktase, einer Oxidoreduktase, einer Peptidyl-Prolyl-cis/trans-Isomerase, einem Peroxisomal-Targeting-Signal-2-Rezeptor, einer Phosphoadenosinphosphosulfatreduktase, einem Phosphoträgerprotein, einem Pirin-ähnlichen Protein, einer Precorrin-6y-Methylase, einem für den Abbau von Glykoproteinen benötigten Protein, einer Pyrimidindeaminase/-reduktase, einem Regulator der Zellmorphogenese und der NO-Signalvermittlung, einer Serinacetyltransferase, einer Untereinheit des Signalosomkomplexes, einem SLR1094-Protein, einer Untereinheit von TORC1, einer thiolspezifischen Monooxygenase, einem die Transkription steuernden Protein, einer Transketolase, einem Zwei-Modul-Transportprotein, einem Uridindiphosphat-N-acetylglucosamintransporter, einem yer175w-a-Protein, einem yhr213w-a-Protein, einem YML079W-Protein, einem YMR157C-Protein, einem YNL024C-Protein und einem YNR040W-Protein, in einer Organelle einer Pflanzenzelle erhöht oder erzeugt, und
    • (a2) die Aktivität eines wie in Tabelle II, Spalte 3, gezeigten Proteins, kodiert durch die wie in Tabelle I, Spalte 5 oder 7, gezeigten Nukleinsäuresequenzen, die sich an eine für ein Transitpeptid kodierende Nukleinsäuresequenz anschließen, in einer Pflanzenzelle erhöht oder erzeugt; oder
    • (a3) die Aktivität eines wie in Tabelle II, Spalte 3, gezeigten Proteins, kodiert durch die wie in Tabelle I, Spalte 5 oder 7, gezeigten Nukleinsäuresequenzen, die sich an eine für eine Organellenlokalisierungssequenz, insbesondere eine Chloroplastlokalisierungssequenz, kodierende Nukleinsäuresequenz anschließen, in einer Pflanzenzelle erhöht oder erzeugt, und
    • (b) die Pflanzenzelle unter Bedingungen heranzieht, die die Entwicklung einer Pflanze mit erhöhtem Ertrag, z. B. mit einem erhöhten Ertragsmerkmal, zum Beispiel einer gesteigerten Toleranz gegenüber abiotischem Umweltstress, zum Beispiel einer erhöhten Toleranz gegenüber Dürre und/oder Toleranz gegenüber niedrigen Temperaturen und/oder einer erhöhten Effizienz der Nährstoffausnutzung, einem erhöhten intrinsischen Ertrag und/oder einem anderen erhöhten Ertragsmerkmal, verglichen mit einer entsprechenden, z. B. nicht transformierten, Pflanze vom Wildtyp erlauben.
  • Gemäß einer anderen Ausführungsform betrifft die vorliegende Erfindung ein Verfahren zur Herstellung einer transgenen Pflanzenzelle, einer Pflanze oder eines Teils davon, mit erhöhtem Ertrag, z. B. mit einem erhöhten Ertragsmerkmal, zum Beispiel einer gesteigerten Toleranz gegenüber abiotischem Umweltstress, zum Beispiel einer erhöhten Toleranz gegenüber Düne und/oder Toleranz gegenüber niedrigen Temperaturen und/oder einer erhöhten Effizienz der Nährstoffausnutzung, einem erhöhten intrinsischen Ertrag und/oder einem anderen erhöhten Ertragsmerkmal, verglichen mit einer entsprechenden, z. B. nicht transformierten, Pflanzenzelle vom Wildtyp, einer Pflanze oder einem Teil davon, bei dem man
    • (a1) die Aktivität eines wie in Tabelle II, Spalte 3, gezeigten Proteins, kodiert durch die wie in Tabelle I, Spalte 5 oder 7, gezeigten Nukleinsäuresequenzen, in einer Organelle einer Pflanze durch die Transformation der Organelle erhöht oder erzeugt, oder
    • (a2) die Aktivität eines wie in Tabelle II, Spalte 3, gezeigten Proteins, kodiert durch die wie in Tabelle I, Spalte 5 oder 7, gezeigten Nukleinsäuresequenzen, im Plastid einer Pflanze oder in einem oder mehreren Teilen davon durch die Transformation der Plastide erhöht oder erzeugt; und
    • (b) die Pflanzenzelle unter Bedingungen, die die Entwicklung einer Pflanze mit einer gesteigerten Toleranz gegenüber abiotischem Umweltstress und/oder einem erhöhten Ertrag, verglichen mit einer entsprechenden nicht transformierten Pflanze vom Wildtyp, erlauben, heranzieht.
  • Infolgedessen betrifft die vorliegende Erfindung auch ein Verfahren zur Herstellung einer Pflanze mit erhöhtem Ertrag, z. B. auf Grundlage eines erhöhten oder verbesserten Ertragsmerkmals, verglichen mit einer entsprechenden Pflanze vom Wildtyp, welches wenigstens einen der folgenden Schritte, ausgewählt aus der Gruppe bestehend aus:
    • (i) Erhöhen oder Erzeugen der Aktivität eines Polypeptids, umfassend ein Polypeptid, eine Konsensussequenz oder wenigstens ein Polypeptidmotiv, wie in Spalte 5 oder 7 von Tabelle II bzw. Tabelle IV aufgeführt; oder
    • (ii) Erhöhen oder Erzeugen der Aktivität eines Expressionsprodukts eines Nukleinsäuremoleküls, umfassend ein Polynukleotid, wie in Spalte 5 oder 7 von Tabelle I aufgeführt, und
    • (iii) Erhöhen oder Erzeugen der Aktivität eines funktionellen Äquivalents von (i) oder (ii) umfasst.
  • Im Prinzip kann die für ein Transitpeptid kodierende Nukleinsäuresequenz aus einem beliebigen Organismus wie Mikroorganismen wie Algen oder Pflanzen, die Plastide, vorzugsweise Chloroplasten, enthalten, isoliert werden. Bei einem „Transitpeptid” handelt es sich um eine Aminosäuresequenz, deren kodierende Nukleinsäuresequenz zusammen mit dem entsprechenden Strukturgen translatiert wird. Dies bedeutet, dass das Transitpeptid ein integraler Teil des translatierten Proteins ist und eine aminoterminale Verlängerung des Proteins bildet. Beide werden als sogenanntes ”Präprotein” translatiert. Im Allgemeinen wird das Transitpeptid während oder unmittelbar nach dem Importieren des Proteins in die korrekte Zellorganelle wie z. B. ein Plastid vom Präprotein abgespalten, wodurch man das reife Protein erhält. Das Transitpeptid sorgt für die korrekte Lokalisierung des reifen Proteins, indem es den Transport des Proteins durch intrazelluläre Membranen vermittelt. Für ein Transitpeptid kodierende Nukleinsäuresequenzen können aus einer Nukleinsäuresequenz stammen, die für ein Protein kodiert, welches letztlich im Plastid residiert und aus einem Organismus, ausgewählt aus der aus den Gattungen Acetabularia, Arabidopsis, Brassica, Capsicum, Chlamydomonas, Cururbita, Dunaliella, Euglena, Flaveria, Glycine, Helianthus, Hordeum, Lemna, Lolium, Lycopersion, Malus, Medicago, Mesembryanthemum, Nicotiana, Oenotherea, Oryza, Petunia, Phaseolus, Physcomitrella, Pinus, Pisum, Raphanus, Silene, Sinapis, Solanum, Spinacea, Stevia, Synechococcus, Triticum und Zea bestehenden Gruppe, stammt.
  • Solche Transitpeptide, die im erfindungsgemäßen Verfahren förderlich zur Anwendung gelangen, sind zum Beispiel von einer Nukleinsäuresequenz abgeleitet, die für ein Protein, ausgewählt aus der Gruppe bestehend aus Ribulosebisphosphatcarboxylase/oxygenase, 5-Enolpyruvyl-shikimate-3-phosphatsynthase, Acetolactatsynthase, dem ribosomalen Chloroplastenprotein CS17, dem Cs-Protein, Ferredoxin, Plastocyanin, Ribulosebisphosphatcarboxylaseactivase, Tryptophansynthase, dem Acylträgerprotein, dem Chaperonin-60 aus Plastiden, Cytochrom c552, dem 22-kDA Hitzeschockprotein, dem 33-kDa Oxygen-Evolving Enhancer Protein 1, der γ-Untereinheit von ATP-Synthase, der d-Untereinheit von ATP-Synthase, dem chlorophyll-a/b-bindenden Protein II-1, dem Oxygen-Evolving Enhancer Protein 2, dem Oxygen-Evolving Enhancer Protein 3, dem Photosystem I: P21, dem Photosystem I: P28, dem Photosystem I: P30, dem Photosystem I: P35, dem Photosystem I: P37, Glycerin-3-phosphatacyltransferasen, dem chlorophyll-a/b-bindenden Protein, dem CAB2-Protein, Hydroxymethylbilansynthase, Pyruvatorthophosphatdikinase, dem CAB3-Protein, dem Ferritin aus Plastiden, Ferritin, dem Early Light-Inducible Protein, Glutamat-1-semialdehydaminotransferase, Protochlorophyllidreduktase, der stärkekorngebundenen Amylasesynthase, dem lichtsammelnden chlorophyll-a/b-bindenden Protein des Photosystems II, dem Majorpollenallergen Lol p 5a, der ClpB ATP-abhängigen Protease aus Plastiden, Superoxiddismutase, Ferredoxin-NADP-oxidoreduktase, dem 28-kDa Ribonukleoprotein, dem 31-kDa Ribonukleoprotein, dem 33-kDa Ribonukleoprotein, Acetolactatsynthase, der CF0-Untereinheit 1 der ATP-Synthase, der CF0-Untereinheit 2 der ATP-Synthase, der CF0-Untereinheit 3 der ATP-Synthase, der CF0-Untereinheit 4 der ATP-Synthase, Cytochrom f, ADP-Glucosepyrophosphorylase, Glutaminsynthase, Glutaminsynthase 2, Carboanhydrase, dem GapA-Protein, dem Hitzeschockprotein hsp21, dem Phosphattranslokator, der ClpA ATP-abhängigen Protease aus Plastiden, dem ribosomalen Protein CL24 aus Plastiden, dem ribosomalen Protein CL9 aus Plastiden, dem ribosomalen Protein PsCL18 aus Plastiden, dem ribosomalen Protein PsCL25 aus Plastiden, DAHP-Synthase, Stärkephosphorylase, dem Acylträgerprotein II aus Wurzeln, Betainaldehyddehydrogenase, dem GapB-Protein, Glutaminsynthetase 2, Phosphoribulokinase, Nitritreduktase, dem ribosomalen Protein L12, dem ribosomalen Protein L13, dem ribosomalen Protein L21, dem ribosomalen Protein L35, dem ribosomalen Protein L40, dem Triosephosphat-3-phosphoglyeratphosphattranslokator, der ferredoxinabhängigen Glutamatsynthase, Glyceraldehyd-3-phosphatdehydrogenase, der NADP-abhängigen Malatdecarboxylase und NADP-Malatdehydrogenase, kodiert.
  • Gemäß einer Ausführungsform leitet sich die für ein Transitpeptid kodierende Nukleinsäuresequenz von einer Nukleinsäuresequenz ab, die für ein Protein kodiert, das letztlich im Plastid residiert und aus einem Organismus, ausgewählt aus der Gruppe bestehend aus den Arten Acetabularia mediterranea, Arabidopsis thaliana, Brassica campestris, Brassica napus, Capsicum annuum, Chlamydomonas reinhardtii, Cururbita moschata, Dunaliella salina, Dunaliella tertiolecta, Euglena gracilis, Flaveria trinervia, Glycine max, Helianthus annuus, Hordeum vulgare, Lemna gibba, Lolium perenne, Lycopersion esculentum, Malus domestica, Medicago falcata, Medicago sativa, Mesembryanthemum crystallinum, Nicotiana plumbaginifolia, Nicotiana sylvestris, Nicotiana tabacum, Oenotherea hookeri, Oryza sativa, Petunia hybrida, Phaseolus vulgaris, Physcomitrella patens, Pinus tunbergii, Pisum sativum, Raphanus sativus, Silene pratensis, Sinapis alba, Solanum tuberosum, Spinacea oleracea, Stevia rebaudiana, Synechococcus, Synechocystis, Triticum aestivum und Zea mays, stammt.
  • Nukleinsäuresequenzen sind die für die von Heijne et al. (Plant Molecular Biology Reporter, 9 (2), 104, (1991)) offenbarten Transitpeptide kodierenden, die hiermit durch Verweis Bestandteil der vorliegenden Erfindung werden. In Tabelle V sind einige Beispiele für die von Heijne et al. offenbarten Transitpeptidsequenzen gezeigt. Gemäß der Offenbarung der Erfindung, insbesondere in den Beispielen, ist es dem Fachmann möglich, andere von Heijne et al. offenbarten, Nukleinsäuresequenzen mit den in Tabelle I, Spalten 5 und 7, gezeigten Nukleinsäuresequenzen in Verbindung zu setzen, z. B. bei Nukleinsäuremolekülen, bei denen in Spalte 6 von Tabelle I der Ausdruck ”plastidisch” aufgeführt ist. Die für Transitpeptide kodierenden Nukleinsäuresequenzen leiten sich von der Gattung Spinacia ab, wie das Chlorplast 30S-ribosomale Protein PSrp-1, das Acylträgerprotein II aus Wurzeln, das Acylträgerprotein, die γ-Untereinheit der ATP-Synthase, die d-Untereinheit der ATP-Synthase, Cytochrom f, Ferredoxin I, Ferredoxin-NADP-oxidoreduktase (= FNR), Nitritreduktase, Phosphoribulokinase, Plastocyanin oder Carboanhydrase. Dem Fachmann wird bewusst sein, dass sich verschiedene andere für Transitpeptide kodierende Nukleinsäuresequenzen leicht aus in Plastiden befindlichen Proteinen, die als Vorstufen von nukleären Genen exprimiert werden und dann in die Plastide wandern, isolieren lassen. Solche für Transitpeptide kodierenden Sequenzen lassen sich für die Konstruktion anderer Expressionskonstrukte verwenden. Die im erfindungsgemäßen Verfahren vorteilhaft verwendeten Transitpeptide, die zu den erfindungsgemäßen Nukleinsäuresequenzen und Proteinen zählen, haben typischerweise eine Länge von 20 bis 120 Aminosäuren, vorzugsweise 25 bis 110, 30 bis 100 oder 35 bis 90 Aminosäuren, besonders bevorzugt 40 bis 85 Aminosäuren und ganz besonders bevorzugt 45 bis 80 Aminosäuren und wirken posttranslational, indem sie das Protein zum Plastid, vorzugsweise dem Chloroplast, dirigieren. Die für solche Transitpeptide kodierenden Nukleinsäuresequenzen befinden sich upstream von der Nukleinsäuresequenz, die für das reife Protein kodiert. Für die korrekte molekulare Anbindung der für das Transitpeptid kodierenden Nukleinsäure an die für das Targetprotein kodierende Nukleinsäure ist es manchmal erforderlich, zusätzliche Basenpaare an der benachbarten Position einzuführen, die Sequenzen bilden, die von Restriktionsenzymen erkannt werden, was für die molekulare Anbindung der verschiedenen Nukleinsäuremoleküle von Nutzen ist. Diese Vorgehensweise kann dazu führen, dass am N-Terminus des reifen importierten Proteins einige wenige zusätzliche Aminosäuren vorhanden sind, die gewöhnlich und vorzugsweise die Funktion des Proteins nicht beeinträchtigen. In jedem Fall sind die zusätzlichen Basenpaare an der angrenzenden Position, die Sequenzen bilden, die von Restriktionsenzymen erkannt werden, mit Vorsicht auszuwählen, um die Bildung von Stoppcodons oder Codons, die für Aminosäuren mit einem starken Einfluss auf die Proteinfaltung wie z. B. Prolin, kodieren, zu vermeiden. Vorzugsweise kodieren diese zusätzlichen Codons für kleine, strukturell flexible Aminosäuren wie Glycin oder Alanin.
  • Wie oben erwähnt können die für die wie in Tabelle II, Spalte 3 oder 5, gezeigten Proteine und ihre wie in Tabelle I, Spalte 7, offenbarten Homologa kodierenden Nukleinsäuresequenzen mit einer Nukleinsäuresequenz verbunden werden, die für ein Transitpeptid kodiert, z. B. wenn bei dem Nukleinsäuremolekül in Spalte 6 von Tabelle I der Ausdruck „plastidisch” aufgeführt ist. Diese für ein Transitpeptid kodierende Nukleinsäuresequenz sorgt für den Transport des Proteins zur betreffenden Organelle, insbesondere dem Plastid. Die Nukleinsäuresequenz des zu exprimierenden Gens und die für das Transitpeptid kodierende Nukleinsäuresequenz sind operativ miteinander verbunden. Das Transitpeptid ist daher im Leserahmen an die für die wie in Tabelle II, Spalte 3 oder 5, gezeigten Proteine und ihre wie in Tabelle I, Spalte 5, offenbarten Homologa kodierende Nukleinsäuresequenz kondensiert, z. B. wenn bei dem Nukleinsäuremolekül in Spalte 6 von Tabelle I der Ausdruck „plastidisch” aufgeführt ist.
  • Erfindungsgemäß steht der Ausdruck ”Organelle” zum Beispiel für ”Mitochondrien” oder vorzugsweise ”Plastid” (in der gesamten Beschreibung schließt der Plural den Singular mit ein und umgekehrt). Erfindungsgemäß soll der Ausdruck ”Plastid” verschiedene Formen an Plastiden mit umfassen, einschließlich Proplastiden, Chloroplasten, Chromoplasten, Gerontoplasten, Leukoplasten, Amyloplasten, Elaioplasten und Etioplasten, vorzugsweise Chloroplasten. Alle haben als gemeinsamen Vorfahren die obenerwähnten Proplasten.
  • Andere Transitpeptide wurden von Schmidt et al. (J. Biol. Chem. 268 (36), 27447 (1993)), Della-Cioppa et al. (Plant. Physiol. 84, 965 (1987)), de Castro Silva Filho et al. (Plant Mol. Biol. 30, 769 (1996)), Zhao et al. (J. Biol. Chem. 270 (11), 6081 (1995)), Römer et al. (Biochem. Biophys. Res. Commun. 196 (3), 1414 (1993)), Keegstra et al. (Annu. Rev. Plant Physiol. Plant Mol. Biol. 40, 471 (1989)), Lubben et al. (Photosynthesis Res. 17, 173 (1988)) und Lawrence et al. (J. Biol. Chem. 272 (33), 20357 (1997)) offenbart. Ein allgemeiner Übersichtsartikel über Targeting wurde von Kermode Allison R. in Critical Reviews in Plant Science 15 (4), 285 (1996) unter dem Titel "Mechanisms of Intracellular Protein Transport and Targeting in Plant Cells" veröffentlicht.
  • Bevorzugte Transitpeptidsequenzen, die beim erfindungsgemäßen Verfahren zur Anwendung kommen und die zu den erfindungsgemäßen Nukleinsäuresequenzen zählen, sind im Allgemeinen reich an hydroxylierten Aminosäureresten (Serin und Threonin), wobei diese beiden Reste im Allgemeinen 20–35% des Ganzen ausmachen. Sie haben häufig eine aminoterminale Region ohne Gly und Pro und ohne geladene Reste. Weiterhin weisen sie eine Reihe kleiner hydrophober Aminosäuren wie Valin und Alanin auf, und im Allgemeinen fehlen saure Aminosäuren. Darüber hinaus haben sie im Allgemeinen eine mittlere Region, die reich an Ser, Thr, Lys und Arg ist. Insgesamt haben sie sehr häufig eine positive Nettoladung.
  • Alternativ dazu können für die Transitpeptide kodierende Nukleinsäuresequenzen entweder teilweise oder ganz chemisch synthetisiert werden, gemäß der Struktur von im Stand der Technik offenbarten Transitpeptidsequenzen. Diese natürlichen oder chemisch synthetisierten Sequenzen können direkt oder über eine Linker-Nukleinsäuresequenz, die typischerweise eine Länge von weniger als 500 Basenpaaren, vorzugsweise weniger als 450, 400, 350, 300, 250 oder 200 Basenpaaren, besonders bevorzugt weniger als 150, 100, 90, 80, 70, 60, 50, 40 oder 30 Basenpaaren und ganz besonders bevorzugt weniger als 25, 20, 15, 12, 9, 6 oder 3 Basenpaaren aufweist und sich im Leserahmen mit der kodierenden Sequenz befindet, an die für das reife Protein kodierenden Sequenzen gebunden werden. Weiterhin bevorzugte, für Transitpeptide kodierende Nukleinsäuresequenzen können Sequenzen umfassen, die aus mehr als einer biologischen und/oder chemischen Quelle stammen, und können eine Nukleinsäuresequenz einschließen, die sich von der aminoterminalen Region des reifen Proteins ableitet, das in seinem nativen Zustand an das Transitpeptid gebunden ist. Gemäß einer bevorzugten Ausführungsform der Erfindung hat diese aminoterminale Region des reifen Proteins typischerweise eine Länge von weniger als 150 Aminosäuren, vorzugsweise weniger als 140, 130, 120, 110, 100 oder 90 Aminosäuren, besonders bevorzugt weniger als 80, 70, 60, 50, 40, 35, 30, 25 oder 20 Aminosäuren und ganz besonders bevorzugt weniger als 19, 18, 17, 16, 15, 14, 13, 12, 11 oder 10 Aminosäuren. Es sind jedoch auch noch kürzere oder längere Abschnitte möglich. Darüber hinaus können auch Targetsequenzen, die den Transport von Proteinen zu anderen Zellkompartimenten wie der Vakuole, dem endoplasmischen Retikulum, dem Golgi-Komplex, Glyoxysomen, Peroxisomen oder Mitochondrien vermitteln, Teil der erfindungsgemäßen Nukleinsäuresequenz sein.
  • Bei den aus diesen erfindungsgemäßen Nukleinsäuresequenzen translatierten Proteinen handelt es sich um eine Art von Fusionsproteinen, was bedeutet, dass die Nukleinsäuresequenzen, die für das Transitpeptid, zum Beispiel eines der in Tabelle V gezeigten, zum Beispiel das letzte der Tabelle, kodieren, mit den in Tabelle I, Spalten 5 und 7, gezeigten Nukleinsäuresequenzen verbunden sind, z. B. wenn bei dem Nukleinsäuremolekül in Spalte 6 von Tabelle I der Ausdruck „plastidisch” aufgeführt ist. Dem Fachmann ist es möglich, diese Sequenzen funktionell zu verbinden. Vorteilhafterweise wird der Transitpeptidteil während des Transports, vorzugsweise in die Plastide, von dem in Tabelle II, Spalten 5 und 7, gezeigten Teil des Proteins abgespalten. Alle der in der letzten Zeile der Tabelle V gezeigten Produkte der Spaltung des bevorzugten Transitpeptids haben vorzugsweise die N-terminalen Aminosäuresequenzen QIA CSS oder QIA EFQLTT vor dem Start-Methionin des in Tabelle II, Spalten 5 und 7, erwähnten Proteins. Es können sich auch andere kurze Aminosäuresequenzen mit einem Bereich von 1 bis 20 Aminosäuren, vorzugsweise 2 bis 15 Aminosäuren, besonders bevorzugt 3 bis 10 Aminosäuren, ganz besonders bevorzugt 4 bis 8 Aminosäuren, vor dem Start-Methionin des in Tabelle II, Spalten 5 und 7, erwähnten Proteins befinden. Bei der Aminosäuresequenz QIA CSS stammen die drei Aminosäuren vor dem Start-Methionin aus der LIC-Kassette (LIC = ligation independent cloning). Diese kurze Aminosäuresequenz wird für die Expression von Escherichia coli-Genen bevorzugt. Bei der Aminosäuresequenz QIA EFQLTT stammen die sechs Aminosäuren vor dem Start-Methionin aus der LIC-Kassette. Diese kurze Aminosäuresequenz wird für die Expression von Saccharomyces cerevisiae-Genen bevorzugt. Dem Fachmann ist bekannt, dass sich auch andere kurze Sequenzen für die Expression der in Tabelle, Spalten 5 und 7, erwähnten Gene eignen. Weiterhin ist sich der Fachmann der Tatsache bewusst, dass es bei der Expression der Gene solcher kurzen Sequenzen nicht bedarf. Tabelle V: Beispiele für von Heijne et al. offenbarte Transitpeptide
    Trans Pep Organismus Transitpeptid SEQ ID NO: Referenz
    1 Acetabularia mediterranea MASIMMNKSVVLSKECAKPLATPKVTLNKRGFATTIATKNREMMVWQPFNNKMFETFSFLPP 17 Mol. Gen. Genet. 218, 445 (1989)
    2 Arabidopsis thaliana MAASLQSTATFLQSAKIATAPSRGSSHLRSTQAVGKSFGLETSSARLTCSFQSDFKDFTGKCSDAVKIAGFALATSALVVSGASAEGAPK 18 EMBO J. 8, 3187 (1989)
    3 Arabidopsis thaliana MAQVSRICNGVQNPSLICNLSKSSQRKSPLSVSLKTQQHPRAYPISSSWGLKKSGMTLIGSELRPLKVMSSVSTAEKASEIVLQPIREISGLIKLP 19 Mol. Gen. Genet. 210, 437 (1987)
    4 Arabidopsis thaliana MAAATTTTTTSSSISFSTKPSPSSSKSPLPISRFSLPFSLNPNKSSSSSRRRGIKSSSPSSISAVLNTTTNVTTTPSPTKPTKPETFISRFAPDQPRKGA 20 Plant Physiol. 85, 1110 (1987)
    5 Arabidopsis thaliana MITSSLTCSLQALKLSSPFAHGSTPLSSLSKPNSFPNHRMPALVPV 21 J. Biol. Chem. 265, 2763 (1990)
    6 Arabidopsis thaliana MASLLGTSSSAIWASPSLSSPSSKPSSSPICFRPGKLFGSKLNAGIQIRPKKNRSRYHVSVMNVATEINSTEQVVGKFDSKKSARPVYPFAAI 22 EMBO J. 9, 1337 (1990)
    7 Arabidopsis thaliana MASTALSSAIVGTSFIRRSPAPISLRSLPSANTQSLFGLKSGTARGGRVVAM 23 Plant Physiol. 93, 572 (1990)
    8 Arabidopsis thaliana MAASTMALSSPAFAGKAVNLSPAASEVLGSGRVTNRKTV 24 Nucl. Acids Res. 14, 4051 (1986)
    9 Arabidopsis thaliana MAAITSATVTIPSFTGLKLAVSSKPKTLSTISRSSSATRAPPKLALKSSLKDFGVIAVATAASIVLAGNAMAMEVLLGSDDGSLAFVPSEFT 25 Gene 65, 59 (1988)
    10 Arabidopsis thaliana MAAAVSTVGAINRAPLSLNGSGSGAVSAPASTFLGKKVVTVSRFAQSNKKSNGSFKVLAVKEDKQTDGDRWRGLAYDTSDDQIDI 26 Nucl. Acids Res. 17, 2871 (1989)
    11 Arabidopsis thaliana MKSSMLSSTAWTSPAQATMVAPFTGLKSSASFPVTRKANNDITSITSNGGRVSC 27 Plant Mol. Biol. 11, 745 (1988)
    12 Arabidopsis thaliana MAASGTSATFRASVSSAPSSSSQLTHLKSPFKAVKYTPLPSSRSKSSSFSVSCTIAKDPPVLMAAGSDPALWQRPDSFGRFGKFGGKYVPE 28 Proc. Natl. Acad. Sci. USA, 86, 4604 (1989)
    13 Brassica campestris MSTTFCSSVCMQATSLAATTRISFQKPALVSTTNLSFNLRRSIPTRFSISCAAKPETVEKVSKIVKKQLSLKDDQKVVAE 29 Nucl. Acids Res. 15, 7197 (1987)
    14 Brassica napus MATTFSASVSMQATSLATTTRISFQKPVLVSNHGRTNLSFNLSRTRLSISC 30 Eur. J. Biochem. 174, 287 (1988)
    15 Chlamydomonas reinhardtii MQALSSRVNIAAKPQRAQRLVVRAEEVKAAPKKEVGPKRGSLVK 31 Plant Mol. Biol. 12, 463 (1989)
    16 Cucurbita moschata MAELIQDKESAQSAATAAAASSGYERRNEPAHSRKFLEVRSEEELLSCIKK 32 FEBS Lett. 238, 424 (1988)
    17 Spinacea oleracea MSTINGCLTSISPSRTQLKNTSTLRPTFIANSRVNPSSSVPPSLIRNQPVFAAPAPIITPTL 33 J. Biol. Chem. 265, (10) 5414 (1990)
    18 Spinacea oleracea MTTAVTAAVSFPSTKTTSLSARCSSVISPDKISYKKVPLYYRNVSATGKMGPIRAQIASDVEAPPPAPAKVEKMS 34 Curr. Genet. 13, 517 (1988)
    19 Spinacea oleracea MTTAVTAAVSFPSTKTTSLSARSSSVISPDKISYKKVPLYYRNVSATGKMGPIRA 35
  • Alternativ zum Targeting der in Tabelle II, Spalten 5 und 7, gezeigten Sequenzen, vorzugsweise von Sequenzen, die allgemein im Kern kodiert sind, mit Hilfe der zum Beispiel in Tabelle V erwähnten Targetingsequenzen alleine oder in Kombination mit anderen Targetingsequenzen, vorzugsweise in die Plastide, können die erfindungsgemäßen Nukleinsäuren direkt in das Plastidgenom eingeführt werden, z. B. bei denen in Spalte 6 von Tabelle II der Ausdruck „plastidisch” aufgeführt ist. Bei einer bevorzugten Ausführungsform werden die in Tabelle I, Spalten 5 und 7, gezeigten Nukleinsäuresequenzen daher direkt in Plastide eingeführt und dort exprimiert, insbesondere wenn in Spalte 6 von Tabelle I der Ausdruck „plastidisch” aufgeführt ist.
  • Im Rahmen der vorliegenden Beschreibung bedeutet der Ausdruck „eingeführt” das Einführen einer Nukleinsäuresequenz in den Organismus mittels einer „Transfektion”, „Transduktion” oder vorzugsweise durch „Transformation”. Ein Plastid wie z. B. ein Chloroplast wurde durch eine exogene (vorzugsweise fremde) Nukleinsäuresequenz ”transformiert”, wenn die Nukleinsäuresequenz in das Plastid eingeführt wurde, was bedeutet, dass diese Sequenz die Membran bzw. die Membranen des Plastids durchdrungen hat. Die fremde DNA kann in die das Genom des Plastids bildende Plastid-DNA integriert sein (kovalent damit verbunden sein) oder nicht integriert bleiben (z. B. indem sie einen Chloroplasten-Replikationsursprung einschließen). ”Stabil” integrierte DNA-Sequenzen sind die, die über Plastidreplikation weitervererbt werden, wodurch neue Plastide mit den Merkmalen der integrierten DNA-Sequenz an die Nachkommenschaft weitergegeben werden.
  • Für die Expression ist der Fachmann mit verschiedenen Methoden zur Einführung der Nukleinsäuresequenzen in verschiedene Organellen wie die bevorzugten Plastide vertraut. Solche Methoden wurden zum Beispiel von Maiga P. (Annu. Rev. Plant Biol. 55, 289 (2004)), Evans T. ( WO 2004/040973 ), McBride K. E. et al. ( US 5,455,818 ), Daniell H. et al. ( US 5,932,479 und US 5,693,507 ) und Straub J. M. et al. ( US 6,781,033 ) offenbart. Eine bevorzugte Methode ist die Transformation von aus Mikrosporen gewonnenem Hypokotyl- oder Kotyledongewebe (die grün sind und zahlreiche Plastide enthalten) Blattgewebe und die anschließende Regeneration von Sprossen aus diesem transformierten Pflanzenmaterial auf einem selektiven Medium. Als Methoden zur Transformation sind die Bombardierung des Pflanzenmaterials oder der Einsatz von unabhängig replizierenden Shuttle-Vektoren dem Fachmann gut bekannt. Eine durch PEG vermittelte Transformation der Plastide oder eine Agrobacterium-Transformation mit binären Vektoren ist jedoch ebenfalls möglich. Nützliche Marker für die Transformation von Plastiden sind positive Selektionsmarker, zum Beispiel die Gene für Chloramphenicol-, Streptomycin-, Kanamycin-, Neomycin-, Amikamycin-, Spectinomycin-, Triazin- und/oder Lincomycintoleranz. Für eine weitere Selektion eignen sich als zusätzliche Marker in der Literatur häufig als sekundäre Marker angeführte Gene, die für eine Toleranz gegenüber Herbiziden wie Phosphinothricin (= Glufosinat, BASTATM, LibertyTM, kodiert durch das bar-Gen), Glyphosat (= N-(Phosphonomethyl)glycin, RoundupTM, kodiert durch das 5-Enolpyruvylshikimat-3-phosphatsynthasegen = epsps), Sulfonylharnstoffe (wie StapleTM, kodiert durch das Acetolactatsynthasegen (ALS-Gen)), Imidazolinone [= IMI, wie Imazethapyr, Imazamox, ClearfieldTM, kodiert durch das Acetohydroxysäuresynthasegen (AHAS-Gen), das auch als Acetolactatsynthasegen (ALS-Gen) bekannt ist], oder Bromoxynil (= BuctrilTM, kodiert durch das oxy-Gen) kodieren, oder Gene, die für Antibiotika wie Hygromycin oder G418 kodieren. Solche sekundären Marker eignen sich in den Fällen, bei denen die meisten Genomkopien transformiert sind. Darüber hinaus sind auch negative Selektionsmarker wie die bakterielle Cytosindeaminase (kodiert durch das codA-Gen) für die Transformation von Plastiden geeignet. Somit wird gemäß einer Ausführungsform eine Aktivität, die hier als durch ein in Tabelle II gezeigtes Polypeptid verliehen wird, erhöht oder erzeugt, indem man das in Tabelle II offenbarte Polypetid oder ein Polypeptid, das die gleiche Aktivität verleiht, mit einem wie hier beschriebenen Targeting-Signal verbindet, wenn in Spalte 6 von Tabelle II für dieses Polypeptid der Ausdruck „plastidisch” aufgeführt ist. Das beschriebene Polypeptid kann zum Beispiel an das in Tabelle VII gezeigte Targeting-Signal gebunden sein. Dementsprechend kodiert bei dem erfindungsgemäßen Verfahren zur Herstellung einer transgenen Pflanze mit erhöhtem Ertrag, verglichen mit einer entsprechenden, z. B. nicht transformierten, Pflanze vom Wildtyp, bei dem man eine Pflanzenzelle oder den Kern einer Pflanzenzelle oder ein Pflanzengewebe mit dem erwähnten Nukleinsäuremolekül transformiert, dieses aus der erwähnten Gruppe ausgewählte Nukleinsäuremolekül für ein diese Aktivität verleihendes Polypeptid, das an ein wie hier erwähntes Targeting-Signal, z. B. wie in Tabelle VII erwähnt, gebunden ist, z. B. wenn in Spalte 6 von Tabelle II für das kodierte Polypeptid der Ausdruck „plastidisch” aufgeführt ist.
  • Um die Möglichkeiten zur Identifizierung von Transformanten zu erhöhen, ist es außerdem wünschenswert, Reportergene zu verwenden, bei denen es sich nicht um die obenerwähnten Toleranzgene handelt, oder diese zusätzlich zu diesen Genen zu verwenden. Reportergene sind zum Beispiel die Gene für β-Galactosidase, β-Glucuronidase (GUS), alkalische Phosphatase und/oder für das grün fluoreszierende Protein (green-fluorescent protein, GFP).
  • Bei der Transformation der Plastide ist der spezifische Transgenfluss zwischen Arten blockiert, da viele Arten wie Mais, Baumwolle und Reis eine streng maternale Vererbung von Plastiden aufweisen. Dadurch, dass man die in Tabelle I, Spalten 5 und 7, z. B. wenn in Spalte 6 von Tabelle I für das Nukleinsäuremolekül der Ausdruck „plastidisch” aufgeführt ist, angeführten Gene oder aktive Fragmente davon in die Plastide von Pflanzen gibt, kommen diese Gene nicht in den Pollen dieser Pflanzen vor.
  • Eine weitere Ausführungsform der Erfindung betrifft die Verwendung von sogenannten „Chloroplastlokalisierungssequenzen”, bei denen eine erste RNA-Sequenz bzw. ein erstes RNA-Molekül dazu fähig ist, eine zweite RNA-Sequenz wie z. B. eine von den in Tabelle I, Spalten 5 und 7, gezeigten Sequenzen transkribierte RNA-Sequenz oder eine für ein wie in Tabelle II, Spalten 5 und 7, gezeigtes Protein kodierende Sequenz von einer externen Umgebung in eine Zelle oder von außerhalb eines Plastids in einen Chloroplast zu transportieren bzw. zu begleiten („chaperoning”). Gemäß einer Ausführungsform ist das Chloroplastlokalisierungssignal im Wesentlichen ähnlich oder komplementär zu einer vollständigen bzw. intakten Viroidsequenz, z. B. wenn für das Polypeptid in Spalte 6 von Tabelle II der Ausdruck „plastidisch” aufgeführt ist. Das Chloroplastlokalisierungssignal kann durch eine DNA-Sequenz kodiert sein, die in die Chloroplastlokalisierung-RNA transkribiert wird. Der Ausdruck „Viroid” bezieht sich auf ein natürlich vorkommendes einzelsträngiges RNA-Molekül (Flores, C. R. Acad Sci III. 324 (10), 943 (2001)). Viroide enthalten in der Regel etwa 200–500 Nukleotide und liegen im Allgemeinen als kreisförmige Moleküle vor. Beispiele für Viroide, die Chloroplastlokalisierungssignale enthalten, schließen ASBVd, PLMVd, CChMVd und ELVd ein, sind jedoch nicht hierauf beschränkt. Die Viroidsequenz oder ein funktioneller Teil davon kann so mit den in Tabelle I, Spalten 5 und 7, gezeigten Sequenzen oder einer für ein wie in Tabelle II, Spalten 5 und 7, gezeigtes Protein kodierenden Sequenz kondensiert sein, dass die Viroidsequenz eine aus einer der wie in Tabelle I, Spalten 5 und 7, gezeigten Sequenzen oder einer für ein wie in Tabelle II, Spalten 5 und 7, gezeigtes Protein kodierenden Sequenz transkribierte Sequenz in die Chloroplasten transportiert, z. B. wenn in Spalte 6 von Tabelle I oder II für das Nukleinsäuremolekül oder Polynukleotid der Ausdruck „plastidisch” aufgeführt ist. Gemäß einer bevorzugten Ausführungsform verwendet man ein modifiziertes ASBVd (Navarro et al., Virology. 268 (1), 218 (2000)).
  • Gemäß einer weiteren besonderen Ausführungsform wird das in den Plastiden zu exprimierende Protein, wie z. B. die in Tabelle II, Spalten 5 und 7, gezeigten Proteine, z. B. wenn in Spalte 6 von Tabelle II für das Polypeptid der Ausdruck „plastidisch” aufgeführt ist, durch verschiedene Nukleinsäuren kodiert. Eine solche Methode ist in WO 2004/040973 , die hiermit durch Verweis Bestandteil der vorliegenden Anmeldung wird, offenbart. WO 2004/040973 lehrt eine Methode, die die Translokation einer einem Gen oder Genfragment entsprechenden RNA in das Chloroplast mittels einer Chloroplastlokalisierungssequenz betrifft. Die Gene, die in der Pflanze oder den Pflanzenzellen exprimiert werden sollen, werden in Nukleinsäurefragmente gespalten, die in verschiedene Kompartimente in der Pflanze, z. B. den Kern, die Plastide und/oder die Mitochondrien, eingeführt werden. Zusätzlich werden Pflanzenzellen beschrieben, bei denen der Chloroplast ein Ribozym enthält, das an einem Ende mit einer RNA fusioniert ist, die für ein Fragment eines im erfindungsgemäßen Verfahren verwendeten Proteins kodiert, so dass das Ribozym die translozierte Fusions-RNA zu der für das Genfragment kodierenden RNA trans-spleißen kann, zur Bildung und je nach Fall Wiedervereinigung der Nukleinsäurefragmente zu einer intakten, für ein funktionelles, zum Beispiel wie in Tabelle II, Spalten 5 und 7, offenbartes Protein kodierenden mRNA.
  • Gemäß einer anderen Ausführungsform der Erfindung werden die wie in Tabelle I, Spalten 5 und 7, gezeigten, im erfindungsgemäßen Verfahren eingesetzten Nukleinsäuresequenzen z. B. wenn in Spalte 6 von Tabelle I der Ausdruck „plastidisch” aufgeführt ist, in Plastide transformiert, die metabolisch aktiv sind. Diese Plastide sollten vorzugsweise in der interessierenden Pflanze bzw. im interessierenden Pflanzengewebe, ganz besonders bevorzugt in den in grünem Pflanzengewebe wie Blättern oder Kotyledonen oder in Samen anzutreffenden Chloroplasten, eine hohe Kopienzahl aufrechterhalten.
  • Gemäß einer anderen Ausführungsform der Erfindung werden die wie in Tabelle I, Spalten 5 und 7, gezeigten, im erfindungsgemäßen Verfahren eingesetzten Nukleinsäuresequenzen z. B. wenn in Spalte 6 von Tabelle I der Ausdruck „mitochondrisch” aufgeführt ist, in Mitochondrien transformiert, die metabolisch aktiv sind.
  • Um eine gute Expression in den Plastiden zu erzielen, werden die wie in Tabelle I, Spalten 5 und 7, gezeigten Nukleinsäuresequenzen z. B. wenn in Spalte 6 von Tabelle I der Ausdruck „plastidisch” aufgeführt ist, vorzugsweise unter Verwendung eines Promotors und eines Terminators, die in Plastiden aktiv sind, bevorzugt eines Chloroplastenpromotors, in eine Expressionskassette eingeführt. Beispiele für solche Promotoren schließen den psbA-Promotor aus dem Gen von Spinat oder Erbse, den rbcL-Promotor und den atpB-Promotor aus Mais ein.
  • Die Begriffe „umfassen”/„umfassend” und grammatikalische Variationen davon, falls in dieser Beschreibung verwendet, verstehen sich zur Bezeichnung des Vorliegens der angegebenen Merkmale, ganzen Zahlen, Schritte oder Komponenten oder Gruppen davon, aber schließen das Vorliegen oder die Hinzufügung von einem oder mehreren anderen Merkmalen, ganzen Zahlen, Schritten, Komponenten oder Gruppen davon nicht aus.
  • Gemäß der Erfindung bezieht sich der Ausdruck „Pflanzenzelle” bzw. der Ausdruck „Organismus”, so wie er hier verstanden wird, immer auf eine Pflanzenzelle oder eine Organelle davon, vorzugsweise ein Plastid, besonders bevorzugt einen Chloroplasten. So, wie der Begriff hier verwendet wird, soll „Pflanze” nicht nur eine ganze Pflanze sondern auch Teile davon einschließen, d. h. eine oder mehrere Zellen und Gewebe einschließlich zum Beispiel Blättern, Stängeln, Sprossen, Wurzeln, Blüten, Früchten und Samen.
  • Überraschenderweise wurde gefunden, dass die transgene Expression des wie in Tabelle II, Spalte 3, gezeigten Saccaromyces cerevisiae-, E. coli-, Synechocystis- oder A. thaliana-Proteins in einer Pflanze wie A. thaliana zum Beispiel der transgenen Pflanzenzelle, Pflanze oder einen Teil davon, verglichen mit einer entsprechenden, z. B. nicht transformierten, Pflanzenzelle oder Pflanze vom Wildtyp oder einem Teil davon, einen erhöhten Ertrag, z. B. mit einem erhöhten Ertragsmerkmal, zum Beispiel einer gesteigerten Toleranz gegenüber abiotischem Umweltstress, einer erhöhten Effizienz der Nährstoffausnutzung, einer erhöhten Toleranz gegenüber Dürre, einer erhöhten Toleranz gegenüber niedrigen Temperaturen und/oder einem anderen erhöhten Ertragsmerkmal verleiht.
  • Dementsprechend wird gemäß einer Ausführungsform, wenn die Aktivität eines Polypeptids gemäß der Polypeptid-SEQ ID NO.: 39 beziehungsweise kodiert durch ein Nukleinsäuremolekül, das die Nukleinsäure-SEQ ID NO.: 38 umfasst, oder eines Homologs dieses Nukleinsäuremoleküls beziehungsweise Polypeptids, z. B. im Fall der Aktivität des Escherichia coli-Nukleinsäuremoleküls beziehungsweise eines Polypeptids, welches die Nukleinsäure-SEQ ID NO. 38 beziehungsweise Polypeptid-SEQ ID NO. 39 umfasst, erhöht oder erzeugt wird, z. B. wenn die Aktivität eines Nukleinsäuremoleküls oder eines Polypeptids, welches die Nukleinsäure oder das Polypeptid oder die Konsensussequenz oder das Polypeptidmotiv wie in Tabelle I, II bzw. IV, Spalte 7, in der jeweils gleichen Zeile wie das Nukleinsäuremolekül SEQ ID NO.: 38 beziehungsweise das Polypeptid SEQ ID NO.: 39 gezeigt umfasst, erhöht oder erzeugt wird, oder wenn die Aktivität „Pyrimidindeaminase/reduktase” in einer Pflanzenzelle, einer Pflanze oder einem Teil davon erhöht oder erzeugt wird, insbesondere bei einer Lokalisierung im Zytoplasma, ein erhöhter Ertrag, verglichen mit einer entsprechenden nicht modifizierten, z. B. nicht transformierten, Pflanzenzelle oder Pflanze vom Wildtyp oder einem Teil davon verliehen.
  • Gemäß einer weiteren Ausführungsform wird, wenn die Aktivität eines Polypeptids gemäß der Polypeptid-SEQ ID NO.: 39 beziehungsweise kodiert durch ein Nukleinsäuremolekül, das die Nukleinsäure-SEQ ID NO.: 38 umfasst, oder eines Homologs dieses Nukleinsäuremoleküls beziehungsweise Polypeptids, z. B. im Fall der Aktivität des Escherichia coli-Nukleinsäuremoleküls beziehungsweise eines Polypeptids, welches die Nukleinsäure-SEQ ID NO. 38 beziehungsweise Polypeptid-SEQ ID NO. 39 umfasst, erhöht oder erzeugt wird, z. B. wenn die Aktivität eines Nukleinsäuremoleküls oder eines Polypeptids, welches die Nukleinsäure oder das Polypeptid oder die Konsensussequenz oder das Polypeptidmotiv wie in Tabelle I, II bzw. IV, Spalte 7, in der jeweils gleichen Zeile wie das Nukleinsäuremolekül SEQ ID NO.: 38 beziehungsweise das Polypeptid SEQ ID NO.: 39 gezeigt umfasst, erhöht oder erzeugt wird, oder wenn die Aktivität „Pyrimidindeaminase/reduktase” in einer Pflanzenzelle, einer Pflanze oder einem Teil davon erhöht oder erzeugt wird, insbesondere bei einer Lokalisierung des Polypeptids im Zytoplasma eine erhöhte Toleranz gegenüber abiotischem Umweltstress, insbesondere eine erhöhte Toleranz gegenüber niedrigen Temperaturen, verglichen mit einer entsprechenden nicht modifizierten, z. B. nicht transformierten, Pflanzenzelle oder Pflanze vom Wildtyp oder einem Teil davon verliehen. Insbesondere wird eine Ertragserhöhung von 1,1-fach bis 1,361-fach, zum Beispiel plus wenigstens 100% davon unter Bedingungen niedriger Temperaturen verliehen, verglichen mit einer entsprechenden nicht modifizierten, z. B. nicht transformierten, Pflanzenzelle oder Pflanze vom Wildtyp oder einem Teil davon.
  • Gemäß einer weiteren Ausführungsform wird, wenn die Aktivität eines Polypeptids gemäß der Polypeptid-SEQ ID NO.: 39 beziehungsweise kodiert durch ein Nukleinsäuremolekül, das die Nukleinsäure-SEQ ID NO.: 38 umfasst, oder eines Homologs dieses Nukleinsäuremoleküls beziehungsweise Polypeptids, z. B. im Fall der Aktivität des Escherichia coli-Nukleinsäuremoleküls beziehungsweise eines Polypeptids, welches die Nukleinsäure-SEQ ID NO. 38 beziehungsweise Polypeptid-SEQ ID NO. 39 umfasst, erhöht oder erzeugt wird, z. B. wenn die Aktivität eines Nukleinsäuremoleküls oder eines Polypeptids, welches die Nukleinsäure oder das Polypeptid oder die Konsensussequenz oder das Polypeptidmotiv wie in Tabelle I, II bzw. IV, Spalte 7, in der jeweils gleichen Zeile wie das Nukleinsäuremolekül SEQ ID NO.: 38 beziehungsweise das Polypeptid SEQ ID NO.: 39 gezeigt umfasst, erhöht oder erzeugt wird, oder wenn die Aktivität „Pyrimidindeaminase/reduktase” in einer Pflanzenzelle, einer Pflanze oder einem Teil davon erhöht oder erzeugt wird, insbesondere bei einer Lokalisierung des Polypeptids im Zytoplasma eine erhöhte Effizienz der Nährstoffausnutzung, verglichen mit einer entsprechenden nicht modifizierten, z. B. nicht transformierten, Pflanzenzelle oder Pflanze vom Wildtyp oder einem Teil davon verliehen. Gemäß einer Ausführungsform wird eine erhöhte Effizienz der Stickstoffausnutzung verliehen. Insbesondere wird eine Ertragserhöhung von 1,05-fach bis 1,610-fach, zum Beispiel plus wenigstens 100% davon unter Stickstoffmangelbedingungen verliehen, verglichen mit einer entsprechenden nicht modifizierten, z. B. nicht transformierten, Pflanzenzelle oder Pflanze vom Wildtyp oder einem Teil davon.
  • Gemäß einer weiteren Ausführungsform wird, wenn die Aktivität eines Polypeptids gemäß der Polypeptid-SEQ ID NO.: 39 beziehungsweise kodiert durch ein Nukleinsäuremolekül, das die Nukleinsäure-SEQ ID NO.: 38 umfasst, oder eines Homologs dieses Nukleinsäuremoleküls beziehungsweise Polypeptids, z. B. im Fall der Aktivität des Escherichia coli-Nukleinsäuremoleküls beziehungsweise eines Polypeptids, welches die Nukleinsäure-SEQ ID NO. 38 beziehungsweise Polypeptid-SEQ ID NO. 39 umfasst, erhöht oder erzeugt wird, z. B. wenn die Aktivität eines Nukleinsäuremoleküls oder eines Polypeptids, welches die Nukleinsäure oder das Polypeptid oder die Konsensussequenz oder das Polypeptidmotiv wie in Tabelle I, II bzw. IV, Spalte 7, in der jeweils gleichen Zeile wie das Nukleinsäuremolekül SEQ ID NO.: 38 beziehungsweise das Polypeptid SEQ ID NO.: 39 gezeigt umfasst, erhöht oder erzeugt wird, oder wenn die Aktivität „Pyrimidindeaminase/reduktase” in einer Pflanzenzelle, einer Pflanze oder einem Teil davon erhöht oder erzeugt wird, insbesondere bei einer Lokalisierung des Polypeptids im Zytoplasma ein erhöhter intrinsischer Ertrag, verglichen mit einer entsprechenden nicht modifizierten, z. B. nicht transformierten, Pflanzenzelle oder Pflanze vom Wildtyp oder einem Teil davon verliehen. Gemäß einer Ausführungsform wird ein erhöhter Ertrag unter Standardbedingungen (intrinsischer Ertrag) verliehen, z. B. in Abwesenheit von Nährstoffmangel sowie Stressbedingungen. Insbesondere wird eine Ertragserhöhung von 1,05-fach bis 1,168-fach, zum Beispiel plus wenigstens 100% davon unter Standardbedingungen (intrinsischer Ertrag) verliehen, z. B. in Abwesenheit von Nährstoffmangel sowie Stressbedingungen, verglichen mit einer entsprechenden nicht modifizierten, z. B. nicht transformierten, Pflanzenzelle oder Pflanze vom Wildtyp oder einem Teil davon.
  • Dementsprechend wird gemäß einer Ausführungsform, wenn die Aktivität eines Polypeptids gemäß der Polypeptid-SEQ ID NO.: 148 beziehungsweise kodiert durch ein Nukleinsäuremolekül, das die Nukleinsäure-SEQ ID NO.: 147 umfasst, oder eines Homologs dieses Nukleinsäuremoleküls beziehungsweise Polypeptids, z. B. im Fall der Aktivität des Escherichia coli-Nukleinsäuremoleküls beziehungsweise eines Polypeptids, welches die Nukleinsäure-SEQ ID NO. 147 beziehungsweise Polypeptid-SEQ ID NO. 148 umfasst, erhöht oder erzeugt wird, z. B. wenn die Aktivität eines Nukleinsäuremoleküls oder eines Polypeptids, welches die Nukleinsäure oder das Polypeptid oder die Konsensussequenz oder das Polypeptidmotiv wie in Tabelle I, II bzw. IV, Spalte 7, in der jeweils gleichen Zeile wie das Nukleinsäuremolekül SEQ ID NO.: 147 beziehungsweise das Polypeptid SEQ ID NO.: 148 gezeigt umfasst, erhöht oder erzeugt wird, oder wenn die Aktivität „Oxidoreduktase” in einer Pflanzenzelle, einer Pflanze oder einem Teil davon erhöht oder erzeugt wird, insbesondere bei einer Lokalisierung im Zytoplasma, ein erhöhter Ertrag, verglichen mit einer entsprechenden nicht modifizierten, z. B. nicht transformierten, Pflanzenzelle oder Pflanze vom Wildtyp oder einem Teil davon verliehen.
  • Gemäß einer weiteren Ausführungsform wird, wenn die Aktivität eines Polypeptids gemäß der Polypeptid-SEQ ID NO.: 148 beziehungsweise kodiert durch ein Nukleinsäuremolekül, das die Nukleinsäure-SEQ ID NO.: 147 umfasst, oder eines Homologs dieses Nukleinsäuremoleküls beziehungsweise Polypeptids, z. B. im Fall der Aktivität des Escherichia coli-Nukleinsäuremoleküls beziehungsweise eines Polypeptids, welches die Nukleinsäure-SEQ ID NO. 147 beziehungsweise Polypeptid-SEQ ID NO. 148 umfasst, erhöht oder erzeugt wird, z. B. wenn die Aktivität eines Nukleinsäuremoleküls oder eines Polypeptids, welches die Nukleinsäure oder das Polypeptid oder die Konsensussequenz oder das Polypeptidmotiv wie in Tabelle I, II bzw. IV, Spalte 7, in der jeweils gleichen Zeile wie das Nukleinsäuremolekül SEQ ID NO.: 147 beziehungsweise das Polypeptid SEQ ID NO.: 148 gezeigt umfasst, erhöht oder erzeugt wird, oder wenn die Aktivität „Oxidoreduktase” in einer Pflanzenzelle, einer Pflanze oder einem Teil davon erhöht oder erzeugt wird, insbesondere bei einer Lokalisierung des Polypeptids im Zytoplasma eine erhöhte Toleranz gegenüber abiotischem Umweltstress, insbesondere eine erhöhte Toleranz gegenüber niedrigen Temperaturen, verglichen mit einer entsprechenden nicht modifizierten, z. B. nicht transformierten, Pflanzenzelle oder Pflanze vom Wildtyp oder einem Teil davon verliehen. Insbesondere wird eine Ertragserhöhung von 1,1-fach bis 1,357-fach, zum Beispiel plus wenigstens 100% davon unter Bedingungen niedriger Temperaturen verliehen, verglichen mit einer entsprechenden nicht modifizierten, z. B. nicht transformierten, Pflanzenzelle oder Pflanze vom Wildtyp oder einem Teil davon.
  • Gemäß einer weiteren Ausführungsform wird, wenn die Aktivität eines Polypeptids gemäß der Polypeptid-SEQ ID NO.: 148 beziehungsweise kodiert durch ein Nukleinsäuremolekül, das die Nukleinsäure-SEQ ID NO.: 147 umfasst, oder eines Homologs dieses Nukleinsäuremoleküls beziehungsweise Polypeptids, z. B. im Fall der Aktivität des Escherichia coli-Nukleinsäuremoleküls beziehungsweise eines Polypeptids, welches die Nukleinsäure-SEQ ID NO. 147 beziehungsweise Polypeptid-SEQ ID NO. 148 umfasst, erhöht oder erzeugt wird, z. B. wenn die Aktivität eines Nukleinsäuremoleküls oder eines Polypeptids, welches die Nukleinsäure oder das Polypeptid oder die Konsensussequenz oder das Polypeptidmotiv wie in Tabelle I, II bzw. IV, Spalte 7, in der jeweils gleichen Zeile wie das Nukleinsäuremolekül SEQ ID NO.: 147 beziehungsweise das Polypeptid SEQ ID NO.: 148 gezeigt umfasst, erhöht oder erzeugt wird, oder wenn die Aktivität „Oxidoreduktase” in einer Pflanzenzelle, einer Pflanze oder einem Teil davon erhöht oder erzeugt wird, insbesondere bei einer Lokalisierung des Polypeptids im Zytoplasma eine erhöhte Effizienz der Nährstoffausnutzung, verglichen mit einer entsprechenden nicht modifizierten, z. B. nicht transformierten, Pflanzenzelle oder Pflanze vom Wildtyp oder einem Teil davon verliehen. Gemäß einer Ausführungsform wird eine erhöhte Effizienz der Stickstoffausnutzung verliehen. Insbesondere wird eine Ertragserhöhung von 1,05-fach bis 1,209-fach, zum Beispiel plus wenigstens 100% davon unter Stickstoffmangelbedingungen verliehen, verglichen mit einer entsprechenden nicht modifizierten, z. B. nicht transformierten, Pflanzenzelle oder Pflanze vom Wildtyp oder einem Teil davon.
  • Gemäß einer weiteren Ausführungsform wird, wenn die Aktivität eines Polypeptids gemäß der Polypeptid-SEQ ID NO.: 148 beziehungsweise kodiert durch ein Nukleinsäuremolekül, das die Nukleinsäure-SEQ ID NO.: 147 umfasst, oder eines Homologs dieses Nukleinsäuremoleküls beziehungsweise Polypeptids, z. B. im Fall der Aktivität des Escherichia coli-Nukleinsäuremoleküls beziehungsweise eines Polypeptids, welches die Nukleinsäure-SEQ ID NO. 147 beziehungsweise Polypeptid-SEQ ID NO. 148 umfasst, erhöht oder erzeugt wird, z. B. wenn die Aktivität eines Nukleinsäuremoleküls oder eines Polypeptids, welches die Nukleinsäure oder das Polypeptid oder die Konsensussequenz oder das Polypeptidmotiv wie in Tabelle I, II bzw. IV, Spalte 7, in der jeweils gleichen Zeile wie das Nukleinsäuremolekül SEQ ID NO.: 147 beziehungsweise das Polypeptid SEQ ID NO.: 148 gezeigt umfasst, erhöht oder erzeugt wird, oder wenn die Aktivität „Oxidoreduktase” in einer Pflanzenzelle, einer Pflanze oder einem Teil davon erhöht oder erzeugt wird, insbesondere bei einer Lokalisierung des Polypeptids im Zytoplasma ein erhöhter intrinsischer Ertrag, verglichen mit einer entsprechenden nicht modifizierten, z. B. nicht transformierten, Pflanzenzelle oder Pflanze vom Wildtyp oder einem Teil davon verliehen. Gemäß einer Ausführungsform wird ein erhöhter Ertrag unter Standardbedingungen (intrinsischer Ertrag) verliehen, z. B. in Abwesenheit von Nährstoffmangel sowie Stressbedingungen. Insbesondere wird eine Ertragserhöhung von 1,05-fach bis 1,088-fach, zum Beispiel plus wenigstens 100% davon unter Standardbedingungen (intrinsischer Ertrag) verliehen, z. B. in Abwesenheit von Nährstoffmangel sowie Stressbedingungen, verglichen mit einer entsprechenden nicht modifizierten, z. B. nicht transformierten, Pflanzenzelle oder Pflanze vom Wildtyp oder einem Teil davon.
  • Dementsprechend wird gemäß einer Ausführungsform, wenn die Aktivität eines Polypeptids gemäß der Polypeptid-SEQ ID NO.: 173 beziehungsweise kodiert durch ein Nukleinsäuremolekül, das die Nukleinsäure-SEQ ID NO.: 172 umfasst, oder eines Homologs dieses Nukleinsäuremoleküls beziehungsweise Polypeptids, z. B. im Fall der Aktivität des Escherichia coli-Nukleinsäuremoleküls beziehungsweise eines Polypeptids, welches die Nukleinsäure-SEQ ID NO. 172 beziehungsweise Polypeptid-SEQ ID NO. 173 umfasst, erhöht oder erzeugt wird, z. B. wenn die Aktivität eines Nukleinsäuremoleküls oder eines Polypeptids, welches die Nukleinsäure oder das Polypeptid oder die Konsensussequenz oder das Polypeptidmotiv wie in Tabelle I, II bzw. IV, Spalte 7, in der jeweils gleichen Zeile wie das Nukleinsäuremolekül SEQ ID NO.: 172 beziehungsweise das Polypeptid SEQ ID NO.: 173 gezeigt umfasst, erhöht oder erzeugt wird, oder wenn die Aktivität „Glycerindehydrogenase” in einer Pflanzenzelle, einer Pflanze oder einem Teil davon erhöht oder erzeugt wird, insbesondere bei einer Lokalisierung im Zytoplasma, ein erhöhter Ertrag, verglichen mit einer entsprechenden nicht modifizierten, z. B. nicht transformierten, Pflanzenzelle oder Pflanze vom Wildtyp oder einem Teil davon verliehen.
  • Gemäß einer weiteren Ausführungsform wird, wenn die Aktivität eines Polypeptids gemäß der Polypeptid-SEQ ID NO.: 173 beziehungsweise kodiert durch ein Nukleinsäuremolekül, das die Nukleinsäure-SEQ ID NO.: 172 umfasst, oder eines Homologs dieses Nukleinsäuremoleküls beziehungsweise Polypeptids, z. B. im Fall der Aktivität des Escherichia coli-Nukleinsäuremoleküls beziehungsweise eines Polypeptids, welches die Nukleinsäure-SEQ ID NO. 172 beziehungsweise Polypeptid-SEQ ID NO. 173 umfasst, erhöht oder erzeugt wird, z. B. wenn die Aktivität eines Nukleinsäuremoleküls oder eines Polypeptids, welches die Nukleinsäure oder das Polypeptid oder die Konsensussequenz oder das Polypeptidmotiv wie in Tabelle I, II bzw. IV, Spalte 7, in der jeweils gleichen Zeile wie das Nukleinsäuremolekül SEQ ID NO.: 172 beziehungsweise das Polypeptid SEQ ID NO.: 173 gezeigt umfasst, erhöht oder erzeugt wird, oder wenn die Aktivität „Glycerindehydrogenase” in einer Pflanzenzelle, einer Pflanze oder einem Teil davon erhöht oder erzeugt wird, insbesondere bei einer Lokalisierung des Polypeptids im Zytoplasma eine erhöhte Toleranz gegenüber abiotischem Umweltstress, insbesondere eine erhöhte Toleranz gegenüber niedrigen Temperaturen, verglichen mit einer entsprechenden nicht modifizierten, z. B. nicht transformierten, Pflanzenzelle oder Pflanze vom Wildtyp oder einem Teil davon verliehen. Insbesondere wird eine Ertragserhöhung von 1,1-fach bis 1,353-fach, zum Beispiel plus wenigstens 100% davon unter Bedingungen niedriger Temperaturen verliehen, verglichen mit einer entsprechenden nicht modifizierten, z. B. nicht transformierten, Pflanzenzelle oder Pflanze vom Wildtyp oder einem Teil davon.
  • Gemäß einer weiteren Ausführungsform wird, wenn die Aktivität eines Polypeptids gemäß der Polypeptid-SEQ ID NO.: 173 beziehungsweise kodiert durch ein Nukleinsäuremolekül, das die Nukleinsäure-SEQ ID NO.: 172 umfasst, oder eines Homologs dieses Nukleinsäuremoleküls beziehungsweise Polypeptids, z. B. im Fall der Aktivität des Escherichia coli-Nukleinsäuremoleküls beziehungsweise eines Polypeptids, welches die Nukleinsäure-SEQ ID NO. 172 beziehungsweise Polypeptid-SEQ ID NO. 173 umfasst, erhöht oder erzeugt wird, z. B. wenn die Aktivität eines Nukleinsäuremoleküls oder eines Polypeptids, welches die Nukleinsäure oder das Polypeptid oder die Konsensussequenz oder das Polypeptidmotiv wie in Tabelle I, II bzw. IV, Spalte 7, in der jeweils gleichen Zeile wie das Nukleinsäuremolekül SEQ ID NO.: 172 beziehungsweise das Polypeptid SEQ ID NO.: 173 gezeigt umfasst, erhöht oder erzeugt wird, oder wenn die Aktivität „Glycerindehydrogenase” in einer Pflanzenzelle, einer Pflanze oder einem Teil davon erhöht oder erzeugt wird, insbesondere bei einer Lokalisierung des Polypeptids im Zytoplasma eine erhöhte Effizienz der Nährstoffausnutzung, verglichen mit einer entsprechenden nicht modifizierten, z. B. nicht transformierten, Pflanzenzelle oder Pflanze vom Wildtyp oder einem Teil davon verliehen. Gemäß einer Ausführungsform wird eine erhöhte Effizienz der Stickstoffausnutzung verliehen. Insbesondere wird eine Ertragserhöhung von 1,05-fach bis 1,457-fach, zum Beispiel plus wenigstens 100% davon unter Stickstoffmangelbedingungen verliehen, verglichen mit einer entsprechenden nicht modifizierten, z. B. nicht transformierten, Pflanzenzelle oder Pflanze vom Wildtyp oder einem Teil davon.
  • Gemäß einer weiteren Ausführungsform wird, wenn die Aktivität eines Polypeptids gemäß der Polypeptid-SEQ ID NO.: 173 beziehungsweise kodiert durch ein Nukleinsäuremolekül, das die Nukleinsäure-SEQ ID NO.: 172 umfasst, oder eines Homologs dieses Nukleinsäuremoleküls beziehungsweise Polypeptids, z. B. im Fall der Aktivität des Escherichia coli-Nukleinsäuremoleküls beziehungsweise eines Polypeptids, welches die Nukleinsäure-SEQ ID NO. 172 beziehungsweise Polypeptid-SEQ ID NO. 173 umfasst, erhöht oder erzeugt wird, z. B. wenn die Aktivität eines Nukleinsäuremoleküls oder eines Polypeptids, welches die Nukleinsäure oder das Polypeptid oder die Konsensussequenz oder das Polypeptidmotiv wie in Tabelle I, II bzw. IV, Spalte 7, in der jeweils gleichen Zeile wie das Nukleinsäuremolekül SEQ ID NO.: 172 beziehungsweise das Polypeptid SEQ ID NO.: 173 gezeigt umfasst, erhöht oder erzeugt wird, oder wenn die Aktivität „Glycerindehydrogenase” in einer Pflanzenzelle, einer Pflanze oder einem Teil davon erhöht oder erzeugt wird, insbesondere bei einer Lokalisierung des Polypeptids im Zytoplasma ein erhöhter intrinsischer Ertrag, verglichen mit einer entsprechenden nicht modifizierten, z. B. nicht transformierten, Pflanzenzelle oder Pflanze vom Wildtyp oder einem Teil davon verliehen. Gemäß einer Ausführungsform wird ein erhöhter Ertrag unter Standardbedingungen (intrinsischer Ertrag) verliehen, z. B. in Abwesenheit von Nährstoffmangel sowie Stressbedingungen. Insbesondere wird eine Ertragserhöhung von 1,05-fach bis 1,191-fach, zum Beispiel plus wenigstens 100% davon unter Standardbedingungen (intrinsischer Ertrag) verliehen, z. B. in Abwesenheit von Nährstoffmangel sowie Stressbedingungen, verglichen mit einer entsprechenden nicht modifizierten, z. B. nicht transformierten, Pflanzenzelle oder Pflanze vom Wildtyp oder einem Teil davon.
  • Dementsprechend wird gemäß einer Ausführungsform, wenn die Aktivität eines Polypeptids gemäß der Polypeptid-SEQ ID NO.: 383 beziehungsweise kodiert durch ein Nukleinsäuremolekül, das die Nukleinsäure-SEQ ID NO.: 382 umfasst, oder eines Homologs dieses Nukleinsäuremoleküls beziehungsweise Polypeptids, z. B. im Fall der Aktivität des Saccharomyces cerevisiae-Nukleinsäuremoleküls beziehungsweise eines Polypeptids, welches die Nukleinsäure-SEQ ID NO. 382 beziehungsweise Polypeptid-SEQ ID NO. 383 umfasst, erhöht oder erzeugt wird, z. B. wenn die Aktivität eines Nukleinsäuremoleküls oder eines Polypeptids, welches die Nukleinsäure oder das Polypeptid oder die Konsensussequenz oder das Polypeptidmotiv wie in Tabelle I, II bzw. IV, Spalte 7, in der jeweils gleichen Zeile wie das Nukleinsäuremolekül SEQ ID NO.: 382 beziehungsweise das Polypeptid SEQ ID NO.: 383 gezeigt umfasst, erhöht oder erzeugt wird, oder wenn die Aktivität „Uridindiphosphat-N-acetylglucosamintransporter” in einer Pflanzenzelle, einer Pflanze oder einem Teil davon erhöht oder erzeugt wird, insbesondere bei einer Lokalisierung im Zytoplasma, ein erhöhter Ertrag, verglichen mit einer entsprechenden nicht modifizierten, z. B. nicht transformierten, Pflanzenzelle oder Pflanze vom Wildtyp oder einem Teil davon verliehen.
  • Gemäß einer weiteren Ausführungsform wird, wenn die Aktivität eines Polypeptids gemäß der Polypeptid-SEQ ID NO.: 383 beziehungsweise kodiert durch ein Nukleinsäuremolekül, das die Nukleinsäure-SEQ ID NO.: 382 umfasst, oder eines Homologs dieses Nukleinsäuremoleküls beziehungsweise Polypeptids, z. B. im Fall der Aktivität des Saccharomyces cerevisiae-Nukleinsäuremoleküls beziehungsweise eines Polypeptids, welches die Nukleinsäure-SEQ ID NO. 382 beziehungsweise Polypeptid-SEQ ID NO. 383 umfasst, erhöht oder erzeugt wird, z. B. wenn die Aktivität eines Nukleinsäuremoleküls oder eines Polypeptids, welches die Nukleinsäure oder das Polypeptid oder die Konsensussequenz oder das Polypeptidmotiv wie in Tabelle I, II bzw. IV, Spalte 7, in der jeweils gleichen Zeile wie das Nukleinsäuremolekül SEQ ID NO.: 382 beziehungsweise das Polypeptid SEQ ID NO.: 383 gezeigt umfasst, erhöht oder erzeugt wird, oder wenn die Aktivität „Uridindiphosphat-N-acetylglucosamintransporter” in einer Pflanzenzelle, einer Pflanze oder einem Teil davon erhöht oder erzeugt wird, insbesondere bei einer Lokalisierung des Polypeptids im Zytoplasma eine erhöhte Toleranz gegenüber abiotischem Umweltstress, insbesondere eine erhöhte Toleranz gegenüber niedrigen Temperaturen, verglichen mit einer entsprechenden nicht modifizierten, z. B. nicht transformierten, Pflanzenzelle oder Pflanze vom Wildtyp oder einem Teil davon verliehen. Insbesondere wird eine Ertragserhöhung von 1,1-fach bis 1,575-fach, zum Beispiel plus wenigstens 100% davon unter Bedingungen niedriger Temperaturen verliehen, verglichen mit einer entsprechenden nicht modifizierten, z. B. nicht transformierten, Pflanzenzelle oder Pflanze vom Wildtyp oder einem Teil davon.
  • Gemäß einer weiteren Ausführungsform wird, wenn die Aktivität eines Polypeptids gemäß der Polypeptid-SEQ ID NO.: 383 beziehungsweise kodiert durch ein Nukleinsäuremolekül, das die Nukleinsäure-SEQ ID NO.: 382 umfasst, oder eines Homologs dieses Nukleinsäuremoleküls beziehungsweise Polypeptids, z. B. im Fall der Aktivität des Saccharomyces cerevisiae-Nukleinsäuremoleküls beziehungsweise eines Polypeptids, welches die Nukleinsäure-SEQ ID NO. 382 beziehungsweise Polypeptid-SEQ ID NO. 383 umfasst, erhöht oder erzeugt wird, z. B. wenn die Aktivität eines Nukleinsäuremoleküls oder eines Polypeptids, welches die Nukleinsäure oder das Polypeptid oder die Konsensussequenz oder das Polypeptidmotiv wie in Tabelle I, II bzw. IV, Spalte 7, in der jeweils gleichen Zeile wie das Nukleinsäuremolekül SEQ ID NO.: 382 beziehungsweise das Polypeptid SEQ ID NO.: 383 gezeigt umfasst, erhöht oder erzeugt wird, oder wenn die Aktivität „Uridindiphosphat-N-acetylglucosamintransporter” in einer Pflanzenzelle, einer Pflanze oder einem Teil davon erhöht oder erzeugt wird, insbesondere bei einer Lokalisierung des Polypeptids im Zytoplasma eine erhöhte Effizienz der Nährstoffausnutzung, verglichen mit einer entsprechenden nicht modifizierten, z. B. nicht transformierten, Pflanzenzelle oder Pflanze vom Wildtyp oder einem Teil davon verliehen. Gemäß einer Ausführungsform wird eine erhöhte Effizienz der Stickstoffausnutzung verliehen. Insbesondere wird eine Ertragserhöhung von 1,05-fach bis 1,370-fach, zum Beispiel plus wenigstens 100% davon unter Stickstoffmangelbedingungen verliehen, verglichen mit einer entsprechenden nicht modifizierten, z. B. nicht transformierten, Pflanzenzelle oder Pflanze vom Wildtyp oder einem Teil davon.
  • Gemäß einer weiteren Ausführungsform wird, wenn die Aktivität eines Polypeptids gemäß der Polypeptid-SEQ ID NO.: 383 beziehungsweise kodiert durch ein Nukleinsäuremolekül, das die Nukleinsäure-SEQ ID NO.: 382 umfasst, oder eines Homologs dieses Nukleinsäuremoleküls beziehungsweise Polypeptids, z. B. im Fall der Aktivität des Saccharomyces cerevisiae-Nukleinsäuremoleküls beziehungsweise eines Polypeptids, welches die Nukleinsäure-SEQ ID NO. 382 beziehungsweise Polypeptid-SEQ ID NO. 383 umfasst, erhöht oder erzeugt wird, z. B. wenn die Aktivität eines Nukleinsäuremoleküls oder eines Polypeptids, welches die Nukleinsäure oder das Polypeptid oder die Konsensussequenz oder das Polypeptidmotiv wie in Tabelle I, II bzw. IV, Spalte 7, in der jeweils gleichen Zeile wie das Nukleinsäuremolekül SEQ ID NO.: 382 beziehungsweise das Polypeptid SEQ ID NO.: 383 gezeigt umfasst, erhöht oder erzeugt wird, oder wenn die Aktivität „Uridindiphosphat-N-acetylglucosamintransporter” in einer Pflanzenzelle, einer Pflanze oder einem Teil davon erhöht oder erzeugt wird, insbesondere bei einer Lokalisierung des Polypeptids im Zytoplasma ein erhöhter intrinsischer Ertrag, verglichen mit einer entsprechenden nicht modifizierten, z. B. nicht transformierten, Pflanzenzelle oder Pflanze vom Wildtyp oder einem Teil davon verliehen. Gemäß einer Ausführungsform wird ein erhöhter Ertrag unter Standardbedingungen (intrinsischer Ertrag) verliehen, z. B. in Abwesenheit von Nährstoffmangel sowie Stressbedingungen. Insbesondere wird eine Ertragserhöhung von 1,05-fach bis 1,306-fach, zum Beispiel plus wenigstens 100% davon unter Standardbedingungen (intrinsischer Ertrag) verliehen, z. B. in Abwesenheit von Nährstoffmangel sowie Stressbedingungen, verglichen mit einer entsprechenden nicht modifizierten, z. B. nicht transformierten, Pflanzenzelle oder Pflanze vom Wildtyp oder einem Teil davon.
  • Dementsprechend wird gemäß einer Ausführungsform, wenn die Aktivität eines Polypeptids gemäß der Polypeptid-SEQ ID NO.: 407 beziehungsweise kodiert durch ein Nukleinsäuremolekül, das die Nukleinsäure-SEQ ID NO.: 406 umfasst, oder eines Homologs dieses Nukleinsäuremoleküls beziehungsweise Polypeptids, z. B. im Fall der Aktivität des Saccharomyces cerevisiae-Nukleinsäuremoleküls beziehungsweise eines Polypeptids, welches die Nukleinsäure-SEQ ID NO. 406 beziehungsweise Polypeptid-SEQ ID NO. 407 umfasst, erhöht oder erzeugt wird, z. B. wenn die Aktivität eines Nukleinsäuremoleküls oder eines Polypeptids, welches die Nukleinsäure oder das Polypeptid oder die Konsensussequenz oder das Polypeptidmotiv wie in Tabelle I, II bzw. IV, Spalte 7, in der jeweils gleichen Zeile wie das Nukleinsäuremolekül SEQ ID NO.: 406 beziehungsweise das Polypeptid SEQ ID NO.: 407 gezeigt umfasst, erhöht oder erzeugt wird, oder wenn die Aktivität „DNA- und proteinbindendes Protein zur Steuerung des Proteoms auf der posttranskriptionellen Ebene” in einer Pflanzenzelle, einer Pflanze oder einem Teil davon erhöht oder erzeugt wird, insbesondere bei einer Lokalisierung im Zytoplasma, ein erhöhter Ertrag, verglichen mit einer entsprechenden nicht modifizierten, z. B. nicht transformierten, Pflanzenzelle oder Pflanze vom Wildtyp oder einem Teil davon verliehen.
  • Gemäß einer weiteren Ausführungsform wird, wenn die Aktivität eines Polypeptids gemäß der Polypeptid-SEQ ID NO.: 407 beziehungsweise kodiert durch ein Nukleinsäuremolekül, das die Nukleinsäure-SEQ ID NO.: 406 umfasst, oder eines Homologs dieses Nukleinsäuremoleküls beziehungsweise Polypeptids, z. B. im Fall der Aktivität des Saccharomyces cerevisiae-Nukleinsäuremoleküls beziehungsweise eines Polypeptids, welches die Nukleinsäure-SEQ ID NO. 406 beziehungsweise Polypeptid-SEQ ID NO. 407 umfasst, erhöht oder erzeugt wird, z. B. wenn die Aktivität eines Nukleinsäuremoleküls oder eines Polypeptids, welches die Nukleinsäure oder das Polypeptid oder die Konsensussequenz oder das Polypeptidmotiv wie in Tabelle I, II bzw. IV, Spalte 7, in der jeweils gleichen Zeile wie das Nukleinsäuremolekül SEQ ID NO.: 406 beziehungsweise das Polypeptid SEQ ID NO.: 407 gezeigt umfasst, erhöht oder erzeugt wird, oder wenn die Aktivität „DNA- und proteinbindendes Protein zur Steuerung des Proteoms auf der posttranskriptionellen Ebene” in einer Pflanzenzelle, einer Pflanze oder einem Teil davon erhöht oder erzeugt wird, insbesondere bei einer Lokalisierung des Polypeptids im Zytoplasma eine erhöhte Toleranz gegenüber abiotischem Umweltstress, insbesondere eine erhöhte Toleranz gegenüber niedrigen Temperaturen, verglichen mit einer entsprechenden nicht modifizierten, z. B. nicht transformierten, Pflanzenzelle oder Pflanze vom Wildtyp oder einem Teil davon verliehen. Insbesondere wird eine Ertragserhöhung von 1,1-fach bis 1,300-fach, zum Beispiel plus wenigstens 100% davon unter Bedingungen niedriger Temperaturen verliehen, verglichen mit einer entsprechenden nicht modifizierten, z. B. nicht transformierten, Pflanzenzelle oder Pflanze vom Wildtyp oder einem Teil davon.
  • Gemäß einer weiteren Ausführungsform wird, wenn die Aktivität eines Polypeptids gemäß der Polypeptid-SEQ ID NO.: 407 beziehungsweise kodiert durch ein Nukleinsäuremolekül, das die Nukleinsäure-SEQ ID NO.: 406 umfasst, oder eines Homologs dieses Nukleinsäuremoleküls beziehungsweise Polypeptids, z. B. im Fall der Aktivität des Saccharomyces cerevisiae-Nukleinsäuremoleküls beziehungsweise eines Polypeptids, welches die Nukleinsäure-SEQ ID NO. 406 beziehungsweise Polypeptid-SEQ ID NO. 407 umfasst, erhöht oder erzeugt wird, z. B. wenn die Aktivität eines Nukleinsäuremoleküls oder eines Polypeptids, welches die Nukleinsäure oder das Polypeptid oder die Konsensussequenz oder das Polypeptidmotiv wie in Tabelle I, II bzw. IV, Spalte 7, in der jeweils gleichen Zeile wie das Nukleinsäuremolekül SEQ ID NO.: 406 beziehungsweise das Polypeptid SEQ ID NO.: 407 gezeigt umfasst, erhöht oder erzeugt wird, oder wenn die Aktivität „DNA- und proteinbindendes Protein zur Steuerung des Proteoms auf der posttranskriptionellen Ebene” in einer Pflanzenzelle, einer Pflanze oder einem Teil davon erhöht oder erzeugt wird, insbesondere bei einer Lokalisierung im Zytoplasma, ein erhöhter intrinsischer Ertrag, verglichen mit einer entsprechenden nicht modifizierten, z. B. nicht transformierten, Pflanzenzelle oder Pflanze vom Wildtyp oder einem Teil davon verliehen. Gemäß einer Ausführungsform wird ein erhöhter Ertrag unter Standardbedingungen (intrinsischer Ertrag) verliehen, z. B. in Abwesenheit von Nährstoffmangel sowie Stressbedingungen. Insbesondere wird eine Ertragserhöhung von 1,05-fach bis 1,340-fach, zum Beispiel plus wenigstens 100% davon unter Standardbedingungen (intrinsischer Ertrag) verliehen, z. B. in Abwesenheit von Nährstoffmangel sowie Stressbedingungen, verglichen mit einer entsprechenden nicht modifizierten, z. B. nicht transformierten, Pflanzenzelle oder Pflanze vom Wildtyp oder einem Teil davon.
  • Dementsprechend wird gemäß einer Ausführungsform, wenn die Aktivität eines Polypeptids gemäß der Polypeptid-SEQ ID NO.: 918 beziehungsweise kodiert durch ein Nukleinsäuremolekül, das die Nukleinsäure-SEQ ID NO.: 917 umfasst, oder eines Homologs dieses Nukleinsäuremoleküls beziehungsweise Polypeptids, z. B. im Fall der Aktivität des Saccharomyces cerevisiae-Nukleinsäuremoleküls beziehungsweise eines Polypeptids, welches die Nukleinsäure-SEQ ID NO. 917 beziehungsweise Polypeptid-SEQ ID NO. 918 umfasst, erhöht oder erzeugt wird, z. B. wenn die Aktivität eines Nukleinsäuremoleküls oder eines Polypeptids, welches die Nukleinsäure oder das Polypeptid oder die Konsensussequenz oder das Polypeptidmotiv wie in Tabelle I, II bzw. IV, Spalte 7, in der jeweils gleichen Zeile wie das Nukleinsäuremolekül SEQ ID NO.: 917 beziehungsweise das Polypeptid SEQ ID NO.: 918 gezeigt umfasst, erhöht oder erzeugt wird, oder wenn die Aktivität „für den Abbau von Glykoproteinen benötigtes Protein” in einer Pflanzenzelle, einer Pflanze oder einem Teil davon erhöht oder erzeugt wird, insbesondere bei einer Lokalisierung im Zytoplasma, ein erhöhter Ertrag, verglichen mit einer entsprechenden nicht modifizierten, z. B. nicht transformierten, Pflanzenzelle oder Pflanze vom Wildtyp oder einem Teil davon verliehen.
  • Gemäß einer weiteren Ausführungsform wird, wenn die Aktivität eines Polypeptids gemäß der Polypeptid-SEQ ID NO.: 918 beziehungsweise kodiert durch ein Nukleinsäuremolekül, das die Nukleinsäure-SEQ ID NO.: 917 umfasst, oder eines Homologs dieses Nukleinsäuremoleküls beziehungsweise Polypeptids, z. B. im Fall der Aktivität des Saccharomyces cerevisiae-Nukleinsäuremoleküls beziehungsweise eines Polypeptids, welches die Nukleinsäure-SEQ ID NO. 917 beziehungsweise Polypeptid-SEQ ID NO. 918 umfasst, erhöht oder erzeugt wird, z. B. wenn die Aktivität eines Nukleinsäuremoleküls oder eines Polypeptids, welches die Nukleinsäure oder das Polypeptid oder die Konsensussequenz oder das Polypeptidmotiv wie in Tabelle I, II bzw. IV, Spalte 7, in der jeweils gleichen Zeile wie das Nukleinsäuremolekül SEQ ID NO.: 917 beziehungsweise das Polypeptid SEQ ID NO.: 918 gezeigt umfasst, erhöht oder erzeugt wird, oder wenn die Aktivität „für den Abbau von Glykoproteinen benötigtes Protein” in einer Pflanzenzelle, einer Pflanze oder einem Teil davon erhöht oder erzeugt wird, insbesondere bei einer Lokalisierung des Polypeptids im Zytoplasma eine erhöhte Toleranz gegenüber abiotischem Umweltstress, insbesondere eine erhöhte Toleranz gegenüber niedrigen Temperaturen, verglichen mit einer entsprechenden nicht modifizierten, z. B. nicht transformierten, Pflanzenzelle oder Pflanze vom Wildtyp oder einem Teil davon verliehen. Insbesondere wird eine Ertragserhöhung von 1,1-fach bis 1,697-fach, zum Beispiel plus wenigstens 100% davon unter Bedingungen niedriger Temperaturen verliehen, verglichen mit einer entsprechenden nicht modifizierten, z. B. nicht transformierten, Pflanzenzelle oder Pflanze vom Wildtyp oder einem Teil davon.
  • Gemäß einer weiteren Ausführungsform wird, wenn die Aktivität eines Polypeptids gemäß der Polypeptid-SEQ ID NO.: 918 beziehungsweise kodiert durch ein Nukleinsäuremolekül, das die Nukleinsäure-SEQ ID NO.: 917 umfasst, oder eines Homologs dieses Nukleinsäuremoleküls beziehungsweise Polypeptids, z. B. im Fall der Aktivität des Saccharomyces cerevisiae-Nukleinsäuremoleküls beziehungsweise eines Polypeptids, welches die Nukleinsäure-SEQ ID NO. 917 beziehungsweise Polypeptid-SEQ ID NO. 918 umfasst, erhöht oder erzeugt wird, z. B. wenn die Aktivität eines Nukleinsäuremoleküls oder eines Polypeptids, welches die Nukleinsäure oder das Polypeptid oder die Konsensussequenz oder das Polypeptidmotiv wie in Tabelle I, II bzw. IV, Spalte 7, in der jeweils gleichen Zeile wie das Nukleinsäuremolekül SEQ ID NO.: 917 beziehungsweise das Polypeptid SEQ ID NO.: 918 gezeigt umfasst, erhöht oder erzeugt wird, oder wenn die Aktivität „für den Abbau von Glykoproteinen benötigtes Protein” in einer Pflanzenzelle, einer Pflanze oder einem Teil davon erhöht oder erzeugt wird, insbesondere bei einer Lokalisierung des Polypeptids im Zytoplasma eine erhöhte Effizienz der Nährstoffausnutzung, verglichen mit einer entsprechenden nicht modifizierten, z. B. nicht transformierten, Pflanzenzelle oder Pflanze vom Wildtyp oder einem Teil davon verliehen. Gemäß einer Ausführungsform wird eine erhöhte Effizienz der Stickstoffausnutzung verliehen. Insbesondere wird eine Ertragserhöhung von 1,05-fach bis 1,469-fach, zum Beispiel plus wenigstens 100% davon unter Stickstoffmangelbedingungen verliehen, verglichen mit einer entsprechenden nicht modifizierten, z. B. nicht transformierten, Pflanzenzelle oder Pflanze vom Wildtyp oder einem Teil davon.
  • Gemäß einer weiteren Ausführungsform wird, wenn die Aktivität eines Polypeptids gemäß der Polypeptid-SEQ ID NO.: 918 beziehungsweise kodiert durch ein Nukleinsäuremolekül, das die Nukleinsäure-SEQ ID NO.: 917 umfasst, oder eines Homologs dieses Nukleinsäuremoleküls beziehungsweise Polypeptids, z. B. im Fall der Aktivität des Saccharomyces cerevisiae-Nukleinsäuremoleküls beziehungsweise eines Polypeptids, welches die Nukleinsäure-SEQ ID NO. 917 beziehungsweise Polypeptid-SEQ ID NO. 918 umfasst, erhöht oder erzeugt wird, z. B. wenn die Aktivität eines Nukleinsäuremoleküls oder eines Polypeptids, welches die Nukleinsäure oder das Polypeptid oder die Konsensussequenz oder das Polypeptidmotiv wie in Tabelle I, II bzw. IV, Spalte 7, in der jeweils gleichen Zeile wie das Nukleinsäuremolekül SEQ ID NO.: 917 beziehungsweise das Polypeptid SEQ ID NO.: 918 gezeigt umfasst, erhöht oder erzeugt wird, oder wenn die Aktivität „für den Abbau von Glykoproteinen benötigtes Protein” in einer Pflanzenzelle, einer Pflanze oder einem Teil davon erhöht oder erzeugt wird, insbesondere bei einer Lokalisierung des Polypeptids im Zytoplasma ein erhöhter intrinsischer Ertrag, verglichen mit einer entsprechenden nicht modifizierten, z. B. nicht transformierten, Pflanzenzelle oder Pflanze vom Wildtyp oder einem Teil davon verliehen. Gemäß einer Ausführungsform wird ein erhöhter Ertrag unter Standardbedingungen (intrinsischer Ertrag) verliehen, z. B. in Abwesenheit von Nährstoffmangel sowie Stressbedingungen. Insbesondere wird eine Ertragserhöhung von 1,05-fach bis 1,369-fach, zum Beispiel plus wenigstens 100% davon unter Standardbedingungen (intrinsischer Ertrag) verliehen, z. B. in Abwesenheit von Nährstoffmangel sowie Stressbedingungen, verglichen mit einer entsprechenden nicht modifizierten, z. B. nicht transformierten, Pflanzenzelle oder Pflanze vom Wildtyp oder einem Teil davon.
  • Dementsprechend wird gemäß einer Ausführungsform, wenn die Aktivität eines Polypeptids gemäß der Polypeptid-SEQ ID NO.: 953 beziehungsweise kodiert durch ein Nukleinsäuremolekül, das die Nukleinsäure-SEQ ID NO.: 952 umfasst, oder eines Homologs dieses Nukleinsäuremoleküls beziehungsweise Polypeptids, z. B. im Fall der Aktivität des Saccharomyces cerevisiae-Nukleinsäuremoleküls beziehungsweise eines Polypeptids, welches die Nukleinsäure-SEQ ID NO. 952 beziehungsweise Polypeptid-SEQ ID NO. 953 umfasst, erhöht oder erzeugt wird, z. B. wenn die Aktivität eines Nukleinsäuremoleküls oder eines Polypeptids, welches die Nukleinsäure oder das Polypeptid oder die Konsensussequenz oder das Polypeptidmotiv wie in Tabelle I, II bzw. IV, Spalte 7, in der jeweils gleichen Zeile wie das Nukleinsäuremolekül SEQ ID NO.: 952 beziehungsweise das Polypeptid SEQ ID NO.: 953 gezeigt umfasst, erhöht oder erzeugt wird, oder wenn die Aktivität „Aquaporin” in einer Pflanzenzelle, einer Pflanze oder einem Teil davon erhöht oder erzeugt wird, insbesondere bei einer Lokalisierung im Zytoplasma, ein erhöhter Ertrag, verglichen mit einer entsprechenden nicht modifizierten, z. B. nicht transformierten, Pflanzenzelle oder Pflanze vom Wildtyp oder einem Teil davon verliehen.
  • Gemäß einer weiteren Ausführungsform wird, wenn die Aktivität eines Polypeptids gemäß der Polypeptid-SEQ ID NO.: 953 beziehungsweise kodiert durch ein Nukleinsäuremolekül, das die Nukleinsäure-SEQ ID NO.: 952 umfasst, oder eines Homologs dieses Nukleinsäuremoleküls beziehungsweise Polypeptids, z. B. im Fall der Aktivität des Saccharomyces cerevisiae-Nukleinsäuremoleküls beziehungsweise eines Polypeptids, welches die Nukleinsäure-SEQ ID NO. 952 beziehungsweise Polypeptid-SEQ ID NO. 953 umfasst, erhöht oder erzeugt wird, z. B. wenn die Aktivität eines Nukleinsäuremoleküls oder eines Polypeptids, welches die Nukleinsäure oder das Polypeptid oder die Konsensussequenz oder das Polypeptidmotiv wie in Tabelle I, II bzw. IV, Spalte 7, in der jeweils gleichen Zeile wie das Nukleinsäuremolekül SEQ ID NO.: 952 beziehungsweise das Polypeptid SEQ ID NO.: 953 gezeigt umfasst, erhöht oder erzeugt wird, oder wenn die Aktivität „Aquaporin” in einer Pflanzenzelle, einer Pflanze oder einem Teil davon erhöht oder erzeugt wird, insbesondere bei einer Lokalisierung des Polypeptids im Zytoplasma eine erhöhte Toleranz gegenüber abiotischem Umweltstress, insbesondere eine erhöhte Toleranz gegenüber niedrigen Temperaturen, verglichen mit einer entsprechenden nicht modifizierten, z. B. nicht transformierten, Pflanzenzelle oder Pflanze vom Wildtyp oder einem Teil davon verliehen. Insbesondere wird eine Ertragserhöhung von 1,1-fach bis 1,353-fach, zum Beispiel plus wenigstens 100% davon unter Bedingungen niedriger Temperaturen verliehen, verglichen mit einer entsprechenden nicht modifizierten, z. B. nicht transformierten, Pflanzenzelle oder Pflanze vom Wildtyp oder einem Teil davon.
  • Gemäß einer weiteren Ausführungsform wird, wenn die Aktivität eines Polypeptids gemäß der Polypeptid-SEQ ID NO.: 953 beziehungsweise kodiert durch ein Nukleinsäuremolekül, das die Nukleinsäure-SEQ ID NO.: 952 umfasst, oder eines Homologs dieses Nukleinsäuremoleküls beziehungsweise Polypeptids, z. B. im Fall der Aktivität des Saccharomyces cerevisiae-Nukleinsäuremoleküls beziehungsweise eines Polypeptids, welches die Nukleinsäure-SEQ ID NO. 952 beziehungsweise Polypeptid-SEQ ID NO. 953 umfasst, erhöht oder erzeugt wird, z. B. wenn die Aktivität eines Nukleinsäuremoleküls oder eines Polypeptids, welches die Nukleinsäure oder das Polypeptid oder die Konsensussequenz oder das Polypeptidmotiv wie in Tabelle I, II bzw. IV, Spalte 7, in der jeweils gleichen Zeile wie das Nukleinsäuremolekül SEQ ID NO.: 952 beziehungsweise das Polypeptid SEQ ID NO.: 953 gezeigt umfasst, erhöht oder erzeugt wird, oder wenn die Aktivität „Aquaporin” in einer Pflanzenzelle, einer Pflanze oder einem Teil davon erhöht oder erzeugt wird, insbesondere bei einer Lokalisierung des Polypeptids im Zytoplasma eine erhöhte Effizienz der Nährstoffausnutzung, verglichen mit einer entsprechenden nicht modifizierten, z. B. nicht transformierten, Pflanzenzelle oder Pflanze vom Wildtyp oder einem Teil davon verliehen. Gemäß einer Ausführungsform wird eine erhöhte Effizienz der Stickstoffausnutzung verliehen. Insbesondere wird eine Ertragserhöhung von 1,05-fach bis 1,525-fach, zum Beispiel plus wenigstens 100% davon unter Stickstoffmangelbedingungen verliehen, verglichen mit einer entsprechenden nicht modifizierten, z. B. nicht transformierten, Pflanzenzelle oder Pflanze vom Wildtyp oder einem Teil davon.
  • Gemäß einer weiteren Ausführungsform wird, wenn die Aktivität eines Polypeptids gemäß der Polypeptid-SEQ ID NO.: 953 beziehungsweise kodiert durch ein Nukleinsäuremolekül, das die Nukleinsäure-SEQ ID NO.: 952 umfasst, oder eines Homologs dieses Nukleinsäuremoleküls beziehungsweise Polypeptids, z. B. im Fall der Aktivität des Saccharomyces cerevisiae-Nukleinsäuremoleküls beziehungsweise eines Polypeptids, welches die Nukleinsäure-SEQ ID NO. 952 beziehungsweise Polypeptid-SEQ ID NO. 953 umfasst, erhöht oder erzeugt wird, z. B. wenn die Aktivität eines Nukleinsäuremoleküls oder eines Polypeptids, welches die Nukleinsäure oder das Polypeptid oder die Konsensussequenz oder das Polypeptidmotiv wie in Tabelle I, II bzw. IV, Spalte 7, in der jeweils gleichen Zeile wie das Nukleinsäuremolekül SEQ ID NO.: 952 beziehungsweise das Polypeptid SEQ ID NO.: 953 gezeigt umfasst, erhöht oder erzeugt wird, oder wenn die Aktivität „Aquaporin” in einer Pflanzenzelle, einer Pflanze oder einem Teil davon erhöht oder erzeugt wird, insbesondere bei einer Lokalisierung des Polypeptids im Zytoplasma ein erhöhter intrinsischer Ertrag, verglichen mit einer entsprechenden nicht modifizierten, z. B. nicht transformierten, Pflanzenzelle oder Pflanze vom Wildtyp oder einem Teil davon verliehen. Gemäß einer Ausführungsform wird ein erhöhter Ertrag unter Standardbedingungen (intrinsischer Ertrag) verliehen, z. B. in Abwesenheit von Nährstoffmangel sowie Stressbedingungen. Insbesondere wird eine Ertragserhöhung von 1,05-fach bis 1,162-fach, zum Beispiel plus wenigstens 100% davon unter Standardbedingungen (intrinsischer Ertrag) verliehen, z. B. in Abwesenheit von Nährstoffmangel sowie Stressbedingungen, verglichen mit einer entsprechenden nicht modifizierten, z. B. nicht transformierten, Pflanzenzelle oder Pflanze vom Wildtyp oder einem Teil davon.
  • Dementsprechend wird gemäß einer Ausführungsform, wenn die Aktivität eines Polypeptids gemäß der Polypeptid-SEQ ID NO.: 1321 beziehungsweise kodiert durch ein Nukleinsäuremolekül, das die Nukleinsäure-SEQ ID NO.: 1320 umfasst, oder eines Homologs dieses Nukleinsäuremoleküls beziehungsweise Polypeptids, z. B. im Fall der Aktivität des Saccharomyces cerevisiae-Nukleinsäuremoleküls beziehungsweise eines Polypeptids, welches die Nukleinsäure-SEQ ID NO. 1320 beziehungsweise Polypeptid-SEQ ID NO. 1321 umfasst, erhöht oder erzeugt wird, z. B. wenn die Aktivität eines Nukleinsäuremoleküls oder eines Polypeptids, welches die Nukleinsäure oder das Polypeptid oder die Konsensussequenz oder das Polypeptidmotiv wie in Tabelle I, II bzw. IV, Spalte 7, in der jeweils gleichen Zeile wie das Nukleinsäuremolekül SEQ ID NO.: 1320 beziehungsweise das Polypeptid SEQ ID NO.: 1321 gezeigt umfasst, erhöht oder erzeugt wird, oder wenn die Aktivität „anorganischer Phosphattransporter” in einer Pflanzenzelle, einer Pflanze oder einem Teil davon erhöht oder erzeugt wird, insbesondere bei einer Lokalisierung im Zytoplasma, ein erhöhter Ertrag, verglichen mit einer entsprechenden nicht modifizierten, z. B. nicht transformierten, Pflanzenzelle oder Pflanze vom Wildtyp oder einem Teil davon verliehen.
  • Gemäß einer weiteren Ausführungsform wird, wenn die Aktivität eines Polypeptids gemäß der Polypeptid-SEQ ID NO.: 1321 beziehungsweise kodiert durch ein Nukleinsäuremolekül, das die Nukleinsäure-SEQ ID NO.: 1320 umfasst, oder eines Homologs dieses Nukleinsäuremoleküls beziehungsweise Polypeptids, z. B. im Fall der Aktivität des Saccharomyces cerevisiae-Nukleinsäuremoleküls beziehungsweise eines Polypeptids, welches die Nukleinsäure-SEQ ID NO. 1320 beziehungsweise Polypeptid-SEQ ID NO. 1321 umfasst, erhöht oder erzeugt wird, z. B. wenn die Aktivität eines Nukleinsäuremoleküls oder eines Polypeptids, welches die Nukleinsäure oder das Polypeptid oder die Konsensussequenz oder das Polypeptidmotiv wie in Tabelle I, II bzw. IV, Spalte 7, in der jeweils gleichen Zeile wie das Nukleinsäuremolekül SEQ ID NO.: 1320 beziehungsweise das Polypeptid SEQ ID NO.: 1321 gezeigt umfasst, erhöht oder erzeugt wird, oder wenn die Aktivität „anorganischer Phosphattransporter” in einer Pflanzenzelle, einer Pflanze oder einem Teil davon erhöht oder erzeugt wird, insbesondere bei einer Lokalisierung des Polypeptids im Zytoplasma eine erhöhte Toleranz gegenüber abiotischem Umweltstress, insbesondere eine erhöhte Toleranz gegenüber niedrigen Temperaturen, verglichen mit einer entsprechenden nicht modifizierten, z. B. nicht transformierten, Pflanzenzelle oder Pflanze vom Wildtyp oder einem Teil davon verliehen. Insbesondere wird eine Ertragserhöhung von 1,1-fach bis 1,405-fach, zum Beispiel plus wenigstens 100% davon unter Bedingungen niedriger Temperaturen verliehen, verglichen mit einer entsprechenden nicht modifizierten, z. B. nicht transformierten, Pflanzenzelle oder Pflanze vom Wildtyp oder einem Teil davon.
  • Gemäß einer weiteren Ausführungsform wird, wenn die Aktivität eines Polypeptids gemäß der Polypeptid-SEQ ID NO.: 1321 beziehungsweise kodiert durch ein Nukleinsäuremolekül, das die Nukleinsäure-SEQ ID NO.: 1320 umfasst, oder eines Homologs dieses Nukleinsäuremoleküls beziehungsweise Polypeptids, z. B. im Fall der Aktivität des Saccharomyces cerevisiae-Nukleinsäuremoleküls beziehungsweise eines Polypeptids, welches die Nukleinsäure-SEQ ID NO. 1320 beziehungsweise Polypeptid-SEQ ID NO. 1321 umfasst, erhöht oder erzeugt wird, z. B. wenn die Aktivität eines Nukleinsäuremoleküls oder eines Polypeptids, welches die Nukleinsäure oder das Polypeptid oder die Konsensussequenz oder das Polypeptidmotiv wie in Tabelle I, II bzw. IV, Spalte 7, in der jeweils gleichen Zeile wie das Nukleinsäuremolekül SEQ ID NO.: 1320 beziehungsweise das Polypeptid SEQ ID NO.: 1321 gezeigt umfasst, erhöht oder erzeugt wird, oder wenn die Aktivität „anorganischer Phosphattransporter” in einer Pflanzenzelle, einer Pflanze oder einem Teil davon erhöht oder erzeugt wird, insbesondere bei einer Lokalisierung des Polypeptids im Zytoplasma eine erhöhte Effizienz der Nährstoffausnutzung, verglichen mit einer entsprechenden nicht modifizierten, z. B. nicht transformierten, Pflanzenzelle oder Pflanze vom Wildtyp oder einem Teil davon verliehen. Gemäß einer Ausführungsform wird eine erhöhte Effizienz der Stickstoffausnutzung verliehen. Insbesondere wird eine Ertragserhöhung von 1,05-fach bis 1,597-fach, zum Beispiel plus wenigstens 100% davon unter Stickstoffmangelbedingungen verliehen, verglichen mit einer entsprechenden nicht modifizierten, z. B. nicht transformierten, Pflanzenzelle oder Pflanze vom Wildtyp oder einem Teil davon.
  • Gemäß einer weiteren Ausführungsform wird, wenn die Aktivität eines Polypeptids gemäß der Polypeptid-SEQ ID NO.: 1321 beziehungsweise kodiert durch ein Nukleinsäuremolekül, das die Nukleinsäure-SEQ ID NO.: 1320 umfasst, oder eines Homologs dieses Nukleinsäuremoleküls beziehungsweise Polypeptids, z. B. im Fall der Aktivität des Saccharomyces cerevisiae-Nukleinsäuremoleküls beziehungsweise eines Polypeptids, welches die Nukleinsäure-SEQ ID NO. 1320 beziehungsweise Polypeptid-SEQ ID NO. 1321 umfasst, erhöht oder erzeugt wird, z. B. wenn die Aktivität eines Nukleinsäuremoleküls oder eines Polypeptids, welches die Nukleinsäure oder das Polypeptid oder die Konsensussequenz oder das Polypeptidmotiv wie in Tabelle I, II bzw. IV, Spalte 7, in der jeweils gleichen Zeile wie das Nukleinsäuremolekül SEQ ID NO.: 1320 beziehungsweise das Polypeptid SEQ ID NO.: 1321 gezeigt umfasst, erhöht oder erzeugt wird, oder wenn die Aktivität „anorganischer Phosphattransporter” in einer Pflanzenzelle, einer Pflanze oder einem Teil davon erhöht oder erzeugt wird, insbesondere bei einer Lokalisierung des Polypeptids im Zytoplasma ein erhöhter intrinsischer Ertrag, verglichen mit einer entsprechenden nicht modifizierten, z. B. nicht transformierten, Pflanzenzelle oder Pflanze vom Wildtyp oder einem Teil davon verliehen. Gemäß einer Ausführungsform wird ein erhöhter Ertrag unter Standardbedingungen (intrinsischer Ertrag) verliehen, z. B. in Abwesenheit von Nährstoffmangel sowie Stressbedingungen. Insbesondere wird eine Ertragserhöhung von 1,05-fach bis 1,327-fach, zum Beispiel plus wenigstens 100% davon unter Standardbedingungen (intrinsischer Ertrag) verliehen, z. B. in Abwesenheit von Nährstoffmangel sowie Stressbedingungen, verglichen mit einer entsprechenden nicht modifizierten, z. B. nicht transformierten, Pflanzenzelle oder Pflanze vom Wildtyp oder einem Teil davon.
  • Dementsprechend wird gemäß einer Ausführungsform, wenn die Aktivität eines Polypeptids gemäß der Polypeptid-SEQ ID NO.: 1649 beziehungsweise kodiert durch ein Nukleinsäuremolekül, das die Nukleinsäure-SEQ ID NO.: 1648 umfasst, oder eines Homologs dieses Nukleinsäuremoleküls beziehungsweise Polypeptids, z. B. im Fall der Aktivität des Saccharomyces cerevisiae-Nukleinsäuremoleküls beziehungsweise eines Polypeptids, welches die Nukleinsäure-SEQ ID NO. 1648 beziehungsweise Polypeptid-SEQ ID NO. 1649 umfasst, erhöht oder erzeugt wird, z. B. wenn die Aktivität eines Nukleinsäuremoleküls oder eines Polypeptids, welches die Nukleinsäure oder das Polypeptid oder die Konsensussequenz oder das Polypeptidmotiv wie in Tabelle I, II bzw. IV, Spalte 7, in der jeweils gleichen Zeile wie das Nukleinsäuremolekül SEQ ID NO.: 1648 beziehungsweise das Polypeptid SEQ ID NO.: 1649 gezeigt umfasst, erhöht oder erzeugt wird, oder wenn die Aktivität „Ammoniumtransporter” in einer Pflanzenzelle, einer Pflanze oder einem Teil davon erhöht oder erzeugt wird, insbesondere bei einer Lokalisierung im Zytoplasma, ein erhöhter Ertrag, verglichen mit einer entsprechenden nicht modifizierten, z. B. nicht transformierten, Pflanzenzelle oder Pflanze vom Wildtyp oder einem Teil davon verliehen.
  • Gemäß einer weiteren Ausführungsform wird, wenn die Aktivität eines Polypeptids gemäß der Polypeptid-SEQ ID NO.: 1649 beziehungsweise kodiert durch ein Nukleinsäuremolekül, das die Nukleinsäure-SEQ ID NO.: 1648 umfasst, oder eines Homologs dieses Nukleinsäuremoleküls beziehungsweise Polypeptids, z. B. im Fall der Aktivität des Saccharomyces cerevisiae-Nukleinsäuremoleküls beziehungsweise eines Polypeptids, welches die Nukleinsäure-SEQ ID NO. 1648 beziehungsweise Polypeptid-SEQ ID NO. 1649 umfasst, erhöht oder erzeugt wird, z. B. wenn die Aktivität eines Nukleinsäuremoleküls oder eines Polypeptids, welches die Nukleinsäure oder das Polypeptid oder die Konsensussequenz oder das Polypeptidmotiv wie in Tabelle I, II bzw. IV, Spalte 7, in der jeweils gleichen Zeile wie das Nukleinsäuremolekül SEQ ID NO.: 1648 beziehungsweise das Polypeptid SEQ ID NO.: 1649 gezeigt umfasst, erhöht oder erzeugt wird, oder wenn die Aktivität „Ammoniumtransporter” in einer Pflanzenzelle, einer Pflanze oder einem Teil davon erhöht oder erzeugt wird, insbesondere bei einer Lokalisierung des Polypeptids im Zytoplasma eine erhöhte Toleranz gegenüber abiotischem Umweltstress, insbesondere eine erhöhte Toleranz gegenüber niedrigen Temperaturen, verglichen mit einer entsprechenden nicht modifizierten, z. B. nicht transformierten, Pflanzenzelle oder Pflanze vom Wildtyp oder einem Teil davon verliehen. Insbesondere wird eine Ertragserhöhung von 1,1-fach bis 1,808-fach, zum Beispiel plus wenigstens 100% davon unter Bedingungen niedriger Temperaturen verliehen, verglichen mit einer entsprechenden nicht modifizierten, z. B. nicht transformierten, Pflanzenzelle oder Pflanze vom Wildtyp oder einem Teil davon.
  • Gemäß einer weiteren Ausführungsform wird, wenn die Aktivität eines Polypeptids gemäß der Polypeptid-SEQ ID NO.: 1649 beziehungsweise kodiert durch ein Nukleinsäuremolekül, das die Nukleinsäure-SEQ ID NO.: 1648 umfasst, oder eines Homologs dieses Nukleinsäuremoleküls beziehungsweise Polypeptids, z. B. im Fall der Aktivität des Saccharomyces cerevisiae-Nukleinsäuremoleküls beziehungsweise eines Polypeptids, welches die Nukleinsäure-SEQ ID NO. 1648 beziehungsweise Polypeptid-SEQ ID NO. 1649 umfasst, erhöht oder erzeugt wird, z. B. wenn die Aktivität eines Nukleinsäuremoleküls oder eines Polypeptids, welches die Nukleinsäure oder das Polypeptid oder die Konsensussequenz oder das Polypeptidmotiv wie in Tabelle I, II bzw. IV, Spalte 7, in der jeweils gleichen Zeile wie das Nukleinsäuremolekül SEQ ID NO.: 1648 beziehungsweise das Polypeptid SEQ ID NO.: 1649 gezeigt umfasst, erhöht oder erzeugt wird, oder wenn die Aktivität „Ammoniumtransporter” in einer Pflanzenzelle, einer Pflanze oder einem Teil davon erhöht oder erzeugt wird, insbesondere bei einer Lokalisierung des Polypeptids im Zytoplasma eine erhöhte Effizienz der Nährstoffausnutzung, verglichen mit einer entsprechenden nicht modifizierten, z. B. nicht transformierten, Pflanzenzelle oder Pflanze vom Wildtyp oder einem Teil davon verliehen. Gemäß einer Ausführungsform wird eine erhöhte Effizienz der Stickstoffausnutzung verliehen. Insbesondere wird eine Ertragserhöhung von 1,05-fach bis 1,593-fach, zum Beispiel plus wenigstens 100% davon unter Stickstoffmangelbedingungen verliehen, verglichen mit einer entsprechenden nicht modifizierten, z. B. nicht transformierten, Pflanzenzelle oder Pflanze vom Wildtyp oder einem Teil davon.
  • Gemäß einer weiteren Ausführungsform wird, wenn die Aktivität eines Polypeptids gemäß der Polypeptid-SEQ ID NO.: 1649 beziehungsweise kodiert durch ein Nukleinsäuremolekül, das die Nukleinsäure-SEQ ID NO.: 1648 umfasst, oder eines Homologs dieses Nukleinsäuremoleküls beziehungsweise Polypeptids, z. B. im Fall der Aktivität des Saccharomyces cerevisiae-Nukleinsäuremoleküls beziehungsweise eines Polypeptids, welches die Nukleinsäure-SEQ ID NO. 1648 beziehungsweise Polypeptid-SEQ ID NO. 1649 umfasst, erhöht oder erzeugt wird, z. B. wenn die Aktivität eines Nukleinsäuremoleküls oder eines Polypeptids, welches die Nukleinsäure oder das Polypeptid oder die Konsensussequenz oder das Polypeptidmotiv wie in Tabelle I, II bzw. IV, Spalte 7, in der jeweils gleichen Zeile wie das Nukleinsäuremolekül SEQ ID NO.: 1648 beziehungsweise das Polypeptid SEQ ID NO.: 1649 gezeigt umfasst, erhöht oder erzeugt wird, oder wenn die Aktivität „Ammoniumtransporter” in einer Pflanzenzelle, einer Pflanze oder einem Teil davon erhöht oder erzeugt wird, insbesondere bei einer Lokalisierung des Polypeptids im Zytoplasma ein erhöhter intrinsischer Ertrag, verglichen mit einer entsprechenden nicht modifizierten, z. B. nicht transformierten, Pflanzenzelle oder Pflanze vom Wildtyp oder einem Teil davon verliehen. Gemäß einer Ausführungsform wird ein erhöhter Ertrag unter Standardbedingungen (intrinsischer Ertrag) verliehen, z. B. in Abwesenheit von Nährstoffmangel sowie Stressbedingungen. Insbesondere wird eine Ertragserhöhung von 1,05-fach bis 1,214-fach, zum Beispiel plus wenigstens 100% davon unter Standardbedingungen (intrinsischer Ertrag) verliehen, z. B. in Abwesenheit von Nährstoffmangel sowie Stressbedingungen, verglichen mit einer entsprechenden nicht modifizierten, z. B. nicht transformierten, Pflanzenzelle oder Pflanze vom Wildtyp oder einem Teil davon.
  • Dementsprechend wird gemäß einer Ausführungsform, wenn die Aktivität eines Polypeptids gemäß der Polypeptid-SEQ ID NO.: 2066 beziehungsweise kodiert durch ein Nukleinsäuremolekül, das die Nukleinsäure-SEQ ID NO.: 2065 umfasst, oder eines Homologs dieses Nukleinsäuremoleküls beziehungsweise Polypeptids, z. B. im Fall der Aktivität des Saccharomyces cerevisiae-Nukleinsäuremoleküls beziehungsweise eines Polypeptids, welches die Nukleinsäure-SEQ ID NO. 2065 beziehungsweise Polypeptid-SEQ ID NO. 2066 umfasst, erhöht oder erzeugt wird, z. B. wenn die Aktivität eines Nukleinsäuremoleküls oder eines Polypeptids, welches die Nukleinsäure oder das Polypeptid oder die Konsensussequenz oder das Polypeptidmotiv wie in Tabelle I, II bzw. IV, Spalte 7, in der jeweils gleichen Zeile wie das Nukleinsäuremolekül SEQ ID NO.: 2065 beziehungsweise das Polypeptid SEQ ID NO.: 2066 gezeigt umfasst, erhöht oder erzeugt wird, oder wenn die Aktivität „YNR040W-Protein” in einer Pflanzenzelle, einer Pflanze oder einem Teil davon erhöht oder erzeugt wird, insbesondere bei einer Lokalisierung im Zytoplasma, ein erhöhter Ertrag, verglichen mit einer entsprechenden nicht modifizierten, z. B. nicht transformierten, Pflanzenzelle oder Pflanze vom Wildtyp oder einem Teil davon verliehen.
  • Gemäß einer weiteren Ausführungsform wird, wenn die Aktivität eines Polypeptids gemäß der Polypeptid-SEQ ID NO.: 2066 beziehungsweise kodiert durch ein Nukleinsäuremolekül, das die Nukleinsäure-SEQ ID NO.: 2065 umfasst, oder eines Homologs dieses Nukleinsäuremoleküls beziehungsweise Polypeptids, z. B. im Fall der Aktivität des Saccharomyces cerevisiae-Nukleinsäuremoleküls beziehungsweise eines Polypeptids, welches die Nukleinsäure-SEQ ID NO. 2065 beziehungsweise Polypeptid-SEQ ID NO. 2066 umfasst, erhöht oder erzeugt wird, z. B. wenn die Aktivität eines Nukleinsäuremoleküls oder eines Polypeptids, welches die Nukleinsäure oder das Polypeptid oder die Konsensussequenz oder das Polypeptidmotiv wie in Tabelle I, II bzw. IV, Spalte 7, in der jeweils gleichen Zeile wie das Nukleinsäuremolekül SEQ ID NO.: 2065 beziehungsweise das Polypeptid SEQ ID NO.: 2066 gezeigt umfasst, erhöht oder erzeugt wird, oder wenn die Aktivität „YNR040W-Protein” in einer Pflanzenzelle, einer Pflanze oder einem Teil davon erhöht oder erzeugt wird, insbesondere bei einer Lokalisierung des Polypeptids im Zytoplasma eine erhöhte Toleranz gegenüber abiotischem Umweltstress, insbesondere eine erhöhte Toleranz gegenüber niedrigen Temperaturen, verglichen mit einer entsprechenden nicht modifizierten, z. B. nicht transformierten, Pflanzenzelle oder Pflanze vom Wildtyp oder einem Teil davon verliehen. Insbesondere wird eine Ertragserhöhung von 1,1-fach bis 1,390-fach, zum Beispiel plus wenigstens 100% davon unter Bedingungen niedriger Temperaturen verliehen, verglichen mit einer entsprechenden nicht modifizierten, z. B. nicht transformierten, Pflanzenzelle oder Pflanze vom Wildtyp oder einem Teil davon.
  • Gemäß einer weiteren Ausführungsform wird, wenn die Aktivität eines Polypeptids gemäß der Polypeptid-SEQ ID NO.: 2066 beziehungsweise kodiert durch ein Nukleinsäuremolekül, das die Nukleinsäure-SEQ ID NO.: 2065 umfasst, oder eines Homologs dieses Nukleinsäuremoleküls beziehungsweise Polypeptids, z. B. im Fall der Aktivität des Saccharomyces cerevisiae-Nukleinsäuremoleküls beziehungsweise eines Polypeptids, welches die Nukleinsäure-SEQ ID NO. 2065 beziehungsweise Polypeptid-SEQ ID NO. 2066 umfasst, erhöht oder erzeugt wird, z. B. wenn die Aktivität eines Nukleinsäuremoleküls oder eines Polypeptids, welches die Nukleinsäure oder das Polypeptid oder die Konsensussequenz oder das Polypeptidmotiv wie in Tabelle I, II bzw. IV, Spalte 7, in der jeweils gleichen Zeile wie das Nukleinsäuremolekül SEQ ID NO.: 2065 beziehungsweise das Polypeptid SEQ ID NO.: 2066 gezeigt umfasst, erhöht oder erzeugt wird, oder wenn die Aktivität „YNR040W-Protein” in einer Pflanzenzelle, einer Pflanze oder einem Teil davon erhöht oder erzeugt wird, insbesondere bei einer Lokalisierung des Polypeptids im Zytoplasma ein erhöhter intrinsischer Ertrag, verglichen mit einer entsprechenden nicht modifizierten, z. B. nicht transformierten, Pflanzenzelle oder Pflanze vom Wildtyp oder einem Teil davon verliehen. Gemäß einer Ausführungsform wird ein erhöhter Ertrag unter Standardbedingungen (intrinsischer Ertrag) verliehen, z. B. in Abwesenheit von Nährstoffmangel sowie Stressbedingungen. Insbesondere wird eine Ertragserhöhung von 1,05-fach bis 1,069-fach, zum Beispiel plus wenigstens 100% davon unter Standardbedingungen (intrinsischer Ertrag) verliehen, z. B. in Abwesenheit von Nährstoffmangel sowie Stressbedingungen, verglichen mit einer entsprechenden nicht modifizierten, z. B. nicht transformierten, Pflanzenzelle oder Pflanze vom Wildtyp oder einem Teil davon.
  • Gemäß einer weiteren Ausführungsform wird, wenn die Aktivität eines Polypeptids gemäß der Polypeptid-SEQ ID NO.: 2066 beziehungsweise kodiert durch ein Nukleinsäuremolekül, das die Nukleinsäure-SEQ ID NO.: 2065 umfasst, oder eines Homologs dieses Nukleinsäuremoleküls beziehungsweise Polypeptids, z. B. im Fall der Aktivität des Saccharomyces cerevisiae-Nukleinsäuremoleküls beziehungsweise eines Polypeptids, welches die Nukleinsäure-SEQ ID NO. 2065 beziehungsweise Polypeptid-SEQ ID NO. 2066 umfasst, erhöht oder erzeugt wird, z. B. wenn die Aktivität eines Nukleinsäuremoleküls oder eines Polypeptids, welches die Nukleinsäure oder das Polypeptid oder die Konsensussequenz oder das Polypeptidmotiv wie in Tabelle I, II bzw. IV, Spalte 7, in der jeweils gleichen Zeile wie das Nukleinsäuremolekül SEQ ID NO.: 2065 beziehungsweise das Polypeptid SEQ ID NO.: 2066 gezeigt umfasst, erhöht oder erzeugt wird, oder wenn die Aktivität „YNR040W-Protein” in einer Pflanzenzelle, einer Pflanze oder einem Teil davon erhöht oder erzeugt wird, insbesondere bei einer Lokalisierung des Polypeptids im Zytoplasma eine erhöhte Toleranz gegenüber Dürre, verglichen mit einer entsprechenden nicht modifizierten, z. B. nicht transformierten, Pflanzenzelle oder Pflanze vom Wildtyp oder einem Teil davon verliehen. Gemäß einer Ausführungsform wird eine erhöhte Toleranz gegenüber zyklischer Dürre verliehen. Insbesondere wird eine Ertragserhöhung von 1,05-fach bis 1,496-fach, zum Beispiel plus wenigstens 100% davon unter Bedingungen von abiotischem Stress, z. B. unter Dürrebedingungen verliehen, insbesondere Bedingungen von zyklischer Dürre, verglichen mit einer entsprechenden nicht modifizierten, z. B. nicht transformierten, Pflanzenzelle oder Pflanze vom Wildtyp oder einem Teil davon.
  • Dementsprechend wird gemäß einer Ausführungsform, wenn die Aktivität eines Polypeptids gemäß der Polypeptid-SEQ ID NO.: 2082 beziehungsweise kodiert durch ein Nukleinsäuremolekül, das die Nukleinsäure-SEQ ID NO.: 2081 umfasst, oder eines Homologs dieses Nukleinsäuremoleküls beziehungsweise Polypeptids, z. B. im Fall der Aktivität des Saccharomyces cerevisiae-Nukleinsäuremoleküls beziehungsweise eines Polypeptids, welches die Nukleinsäure-SEQ ID NO. 2081 beziehungsweise Polypeptid-SEQ ID NO. 2082 umfasst, erhöht oder erzeugt wird, z. B. wenn die Aktivität eines Nukleinsäuremoleküls oder eines Polypeptids, welches die Nukleinsäure oder das Polypeptid oder die Konsensussequenz oder das Polypeptidmotiv wie in Tabelle I, II bzw. IV, Spalte 7, in der jeweils gleichen Zeile wie das Nukleinsäuremolekül SEQ ID NO.: 2081 beziehungsweise das Polypeptid SEQ ID NO.: 2082 gezeigt umfasst, erhöht oder erzeugt wird, oder wenn die Aktivität „Glutaminsynthetase” in einer Pflanzenzelle, einer Pflanze oder einem Teil davon erhöht oder erzeugt wird, insbesondere bei einer Lokalisierung im Zytoplasma, ein erhöhter Ertrag, verglichen mit einer entsprechenden nicht modifizierten, z. B. nicht transformierten, Pflanzenzelle oder Pflanze vom Wildtyp oder einem Teil davon verliehen.
  • Gemäß einer weiteren Ausführungsform wird, wenn die Aktivität eines Polypeptids gemäß der Polypeptid-SEQ ID NO.: 2082 beziehungsweise kodiert durch ein Nukleinsäuremolekül, das die Nukleinsäure-SEQ ID NO.: 2081 umfasst, oder eines Homologs dieses Nukleinsäuremoleküls beziehungsweise Polypeptids, z. B. im Fall der Aktivität des Saccharomyces cerevisiae-Nukleinsäuremoleküls beziehungsweise eines Polypeptids, welches die Nukleinsäure-SEQ ID NO. 2081 beziehungsweise Polypeptid-SEQ ID NO. 2082 umfasst, erhöht oder erzeugt wird, z. B. wenn die Aktivität eines Nukleinsäuremoleküls oder eines Polypeptids, welches die Nukleinsäure oder das Polypeptid oder die Konsensussequenz oder das Polypeptidmotiv wie in Tabelle I, II bzw. IV, Spalte 7, in der jeweils gleichen Zeile wie das Nukleinsäuremolekül SEQ ID NO.: 2081 beziehungsweise das Polypeptid SEQ ID NO.: 2082 gezeigt umfasst, erhöht oder erzeugt wird, oder wenn die Aktivität „Glutaminsynthetase” in einer Pflanzenzelle, einer Pflanze oder einem Teil davon erhöht oder erzeugt wird, insbesondere bei einer Lokalisierung des Polypeptids im Zytoplasma eine erhöhte Toleranz gegenüber abiotischem Umweltstress, insbesondere eine erhöhte Toleranz gegenüber niedrigen Temperaturen, verglichen mit einer entsprechenden nicht modifizierten, z. B. nicht transformierten, Pflanzenzelle oder Pflanze vom Wildtyp oder einem Teil davon verliehen. Insbesondere wird eine Ertragserhöhung von 1,1-fach bis 1,451-fach, zum Beispiel plus wenigstens 100% davon unter Bedingungen niedriger Temperaturen verliehen, verglichen mit einer entsprechenden nicht modifizierten, z. B. nicht transformierten, Pflanzenzelle oder Pflanze vom Wildtyp oder einem Teil davon.
  • Gemäß einer weiteren Ausführungsform wird, wenn die Aktivität eines Polypeptids gemäß der Polypeptid-SEQ ID NO.: 2082 beziehungsweise kodiert durch ein Nukleinsäuremolekül, das die Nukleinsäure-SEQ ID NO.: 2081 umfasst, oder eines Homologs dieses Nukleinsäuremoleküls beziehungsweise Polypeptids, z. B. im Fall der Aktivität des Saccharomyces cerevisiae-Nukleinsäuremoleküls beziehungsweise eines Polypeptids, welches die Nukleinsäure-SEQ ID NO. 2081 beziehungsweise Polypeptid-SEQ ID NO. 2082 umfasst, erhöht oder erzeugt wird, z. B. wenn die Aktivität eines Nukleinsäuremoleküls oder eines Polypeptids, welches die Nukleinsäure oder das Polypeptid oder die Konsensussequenz oder das Polypeptidmotiv wie in Tabelle I, II bzw. IV, Spalte 7, in der jeweils gleichen Zeile wie das Nukleinsäuremolekül SEQ ID NO.: 2081 beziehungsweise das Polypeptid SEQ ID NO.: 2082 gezeigt umfasst, erhöht oder erzeugt wird, oder wenn die Aktivität „Glutaminsynthetase” in einer Pflanzenzelle, einer Pflanze oder einem Teil davon erhöht oder erzeugt wird, insbesondere bei einer Lokalisierung des Polypeptids im Zytoplasma eine erhöhte Effizienz der Nährstoffausnutzung, verglichen mit einer entsprechenden nicht modifizierten, z. B. nicht transformierten, Pflanzenzelle oder Pflanze vom Wildtyp oder einem Teil davon verliehen. Gemäß einer Ausführungsform wird eine erhöhte Effizienz der Stickstoffausnutzung verliehen. Insbesondere wird eine Ertragserhöhung von 1,05-fach bis 1,237-fach, zum Beispiel plus wenigstens 100% davon unter Stickstoffmangelbedingungen verliehen, verglichen mit einer entsprechenden nicht modifizierten, z. B. nicht transformierten, Pflanzenzelle oder Pflanze vom Wildtyp oder einem Teil davon.
  • Gemäß einer weiteren Ausführungsform wird, wenn die Aktivität eines Polypeptids gemäß der Polypeptid-SEQ ID NO.: 2082 beziehungsweise kodiert durch ein Nukleinsäuremolekül, das die Nukleinsäure-SEQ ID NO.: 2081 umfasst, oder eines Homologs dieses Nukleinsäuremoleküls beziehungsweise Polypeptids, z. B. im Fall der Aktivität des Saccharomyces cerevisiae-Nukleinsäuremoleküls beziehungsweise eines Polypeptids, welches die Nukleinsäure-SEQ ID NO. 2081 beziehungsweise Polypeptid-SEQ ID NO. 2082 umfasst, erhöht oder erzeugt wird, z. B. wenn die Aktivität eines Nukleinsäuremoleküls oder eines Polypeptids, welches die Nukleinsäure oder das Polypeptid oder die Konsensussequenz oder das Polypeptidmotiv wie in Tabelle I, II bzw. IV, Spalte 7, in der jeweils gleichen Zeile wie das Nukleinsäuremolekül SEQ ID NO.: 2081 beziehungsweise das Polypeptid SEQ ID NO.: 2082 gezeigt umfasst, erhöht oder erzeugt wird, oder wenn die Aktivität „Glutaminsynthetase” in einer Pflanzenzelle, einer Pflanze oder einem Teil davon erhöht oder erzeugt wird, insbesondere bei einer Lokalisierung des Polypeptids im Zytoplasma ein erhöhter intrinsischer Ertrag, verglichen mit einer entsprechenden nicht modifizierten, z. B. nicht transformierten, Pflanzenzelle oder Pflanze vom Wildtyp oder einem Teil davon verliehen. Gemäß einer Ausführungsform wird ein erhöhter Ertrag unter Standardbedingungen (intrinsischer Ertrag) verliehen, z. B. in Abwesenheit von Nährstoffmangel sowie Stressbedingungen. Insbesondere wird eine Ertragserhöhung von 1,05-fach bis 1,236-fach, zum Beispiel plus wenigstens 100% davon unter Standardbedingungen (intrinsischer Ertrag) verliehen, z. B. in Abwesenheit von Nährstoffmangel sowie Stressbedingungen, verglichen mit einer entsprechenden nicht modifizierten, z. B. nicht transformierten, Pflanzenzelle oder Pflanze vom Wildtyp oder einem Teil davon.
  • Dementsprechend wird gemäß einer Ausführungsform, wenn die Aktivität eines Polypeptids gemäß der Polypeptid-SEQ ID NO.: 2407 beziehungsweise kodiert durch ein Nukleinsäuremolekül, das die Nukleinsäure-SEQ ID NO.: 2406 umfasst, oder eines Homologs dieses Nukleinsäuremoleküls beziehungsweise Polypeptids, z. B. im Fall der Aktivität des Escherichia coli-Nukleinsäuremoleküls beziehungsweise eines Polypeptids, welches die Nukleinsäure-SEQ ID NO. 2406 beziehungsweise Polypeptid-SEQ ID NO. 2407 umfasst, erhöht oder erzeugt wird, z. B. wenn die Aktivität eines Nukleinsäuremoleküls oder eines Polypeptids, welches die Nukleinsäure oder das Polypeptid oder die Konsensussequenz oder das Polypeptidmotiv wie in Tabelle I, II bzw. IV, Spalte 7, in der jeweils gleichen Zeile wie das Nukleinsäuremolekül SEQ ID NO.: 2406 beziehungsweise das Polypeptid SEQ ID NO.: 2407 gezeigt umfasst, erhöht oder erzeugt wird, oder wenn die Aktivität „Formiatacetyltransferase 1” in einer Pflanzenzelle, einer Pflanze oder einem Teil davon erhöht oder erzeugt wird, insbesondere bei einer Lokalisierung in Plastiden und/oder im Zytoplasma, ein erhöhter Ertrag, verglichen mit einer entsprechenden nicht modifizierten, z. B. nicht transformierten, Pflanzenzelle oder Pflanze vom Wildtyp oder einem Teil davon verliehen.
  • Gemäß einer weiteren Ausführungsform wird, wenn die Aktivität eines Polypeptids gemäß der Polypeptid-SEQ ID NO.: 2407 beziehungsweise kodiert durch ein Nukleinsäuremolekül, das die Nukleinsäure-SEQ ID NO.: 2406 umfasst, oder eines Homologs dieses Nukleinsäuremoleküls beziehungsweise Polypeptids, z. B. im Fall der Aktivität des Escherichia coli-Nukleinsäuremoleküls beziehungsweise eines Polypeptids, welches die Nukleinsäure-SEQ ID NO. 2406 beziehungsweise Polypeptid-SEQ ID NO. 2407 umfasst, erhöht oder erzeugt wird, z. B. wenn die Aktivität eines Nukleinsäuremoleküls oder eines Polypeptids, welches die Nukleinsäure oder das Polypeptid oder die Konsensussequenz oder das Polypeptidmotiv wie in Tabelle I, II bzw. IV, Spalte 7, in der jeweils gleichen Zeile wie das Nukleinsäuremolekül SEQ ID NO.: 2406 beziehungsweise das Polypeptid SEQ ID NO.: 2407 gezeigt umfasst, erhöht oder erzeugt wird, oder wenn die Aktivität „Formiatacetyltransferase 1” in einer Pflanzenzelle, einer Pflanze oder einem Teil davon erhöht oder erzeugt wird, insbesondere bei einer Lokalisierung des Polypeptids in Plastiden eine erhöhte Toleranz gegenüber abiotischem Umweltstress, insbesondere eine erhöhte Toleranz gegenüber niedrigen Temperaturen, verglichen mit einer entsprechenden nicht modifizierten, z. B. nicht transformierten, Pflanzenzelle oder Pflanze vom Wildtyp oder einem Teil davon verliehen. Insbesondere wird bei der Expression unter der Kontrolle einer plastidischen Signalsequenz eine Ertragserhöhung von 1,1-fach bis 1,391-fach, zum Beispiel plus wenigstens 100% davon unter Bedingungen niedriger Temperaturen verliehen, verglichen mit einer entsprechenden nicht modifizierten, z. B. nicht transformierten, Pflanzenzelle oder Pflanze vom Wildtyp oder einem Teil davon.
  • Gemäß einer weiteren Ausführungsform wird, wenn die Aktivität eines Polypeptids gemäß der Polypeptid-SEQ ID NO.: 2407 beziehungsweise kodiert durch ein Nukleinsäuremolekül, das die Nukleinsäure-SEQ ID NO.: 2406 umfasst, oder eines Homologs dieses Nukleinsäuremoleküls beziehungsweise Polypeptids, z. B. im Fall der Aktivität des Escherichia coli-Nukleinsäuremoleküls beziehungsweise eines Polypeptids, welches die Nukleinsäure-SEQ ID NO. 2406 beziehungsweise Polypeptid-SEQ ID NO. 2407 umfasst, erhöht oder erzeugt wird, z. B. wenn die Aktivität eines Nukleinsäuremoleküls oder eines Polypeptids, welches die Nukleinsäure oder das Polypeptid oder die Konsensussequenz oder das Polypeptidmotiv wie in Tabelle I, II bzw. IV, Spalte 7, in der jeweils gleichen Zeile wie das Nukleinsäuremolekül SEQ ID NO.: 2406 beziehungsweise das Polypeptid SEQ ID NO.: 2407 gezeigt umfasst, erhöht oder erzeugt wird, oder wenn die Aktivität „Formiatacetyltransferase 1” in einer Pflanzenzelle, einer Pflanze oder einem Teil davon erhöht oder erzeugt wird, insbesondere bei einer Lokalisierung des Polypeptids in Plastiden eine erhöhte Effizienz der Nährstoffausnutzung, verglichen mit einer entsprechenden nicht modifizierten, z. B. nicht transformierten, Pflanzenzelle oder Pflanze vom Wildtyp oder einem Teil davon verliehen. Gemäß einer Ausführungsform wird eine erhöhte Effizienz der Stickstoffausnutzung verliehen. Insbesondere wird bei der Expression unter der Kontrolle einer plastidischen Signalsequenz eine Ertragserhöhung von 1,05-fach bis 1,397-fach, zum Beispiel plus wenigstens 100% davon unter Stickstoffmangelbedingungen verliehen, verglichen mit einer entsprechenden nicht modifizierten, z. B. nicht transformierten, Pflanzenzelle oder Pflanze vom Wildtyp oder einem Teil davon.
  • Gemäß einer weiteren Ausführungsform wird, wenn die Aktivität eines Polypeptids gemäß der Polypeptid-SEQ ID NO.: 2407 beziehungsweise kodiert durch ein Nukleinsäuremolekül, das die Nukleinsäure-SEQ ID NO.: 2406 umfasst, oder eines Homologs dieses Nukleinsäuremoleküls beziehungsweise Polypeptids, z. B. im Fall der Aktivität des Escherichia coli-Nukleinsäuremoleküls beziehungsweise eines Polypeptids, welches die Nukleinsäure-SEQ ID NO. 2406 beziehungsweise Polypeptid-SEQ ID NO. 2407 umfasst, erhöht oder erzeugt wird, z. B. wenn die Aktivität eines Nukleinsäuremoleküls oder eines Polypeptids, welches die Nukleinsäure oder das Polypeptid oder die Konsensussequenz oder das Polypeptidmotiv wie in Tabelle I, II bzw. IV, Spalte 7, in der jeweils gleichen Zeile wie das Nukleinsäuremolekül SEQ ID NO.: 2406 beziehungsweise das Polypeptid SEQ ID NO.: 2407 gezeigt umfasst, erhöht oder erzeugt wird, oder wenn die Aktivität „Formiatacetyltransferase 1” in einer Pflanzenzelle, einer Pflanze oder einem Teil davon erhöht oder erzeugt wird, insbesondere bei einer Lokalisierung des Polypeptids in Plastiden und/oder im Zytoplasma ein erhöhter intrinsischer Ertrag, verglichen mit einer entsprechenden nicht modifizierten, z. B. nicht transformierten, Pflanzenzelle oder Pflanze vom Wildtyp oder einem Teil davon verliehen. Gemäß einer Ausführungsform wird ein erhöhter Ertrag unter Standardbedingungen (intrinsischer Ertrag) verliehen, z. B. in Abwesenheit von Nährstoffmangel sowie Stressbedingungen. Insbesondere wird bei der Expression unter der Kontrolle einer plastidischen Signalsequenz eine Ertragserhöhung von 1,05-fach bis 1,260-fach, zum Beispiel plus wenigstens 100% davon unter Standardbedingungen (intrinsischer Ertrag) verliehen, z. B. in Abwesenheit von Nährstoffmangel sowie Stressbedingungen, verglichen mit einer entsprechenden nicht modifizierten, z. B. nicht transformierten, Pflanzenzelle oder Pflanze vom Wildtyp oder einem Teil davon. Insbesondere wird bei der Expression ohne Kombinieren dieser Sequenz bzw. dieses Moleküls mit einer weiteren Targeting- bzw. Signalsequenz, z. B. ohne eine weitere Target-Sequenz oder Signalsequenz, eine Ertragserhöhung von 1,05-fach bis 1,286-fach, zum Beispiel plus wenigstens 100% davon unter Standardbedingungen (intrinsischer Ertrag) verliehen, z. B. in Abwesenheit von Nährstoffmangel sowie Stressbedingungen, verglichen mit einer entsprechenden nicht modifizierten, z. B. nicht transformierten, Pflanzenzelle oder Pflanze vom Wildtyp oder einem Teil davon.
  • Gemäß einer weiteren Ausführungsform wird, wenn die Aktivität eines Polypeptids gemäß der Polypeptid-SEQ ID NO.: 2407 beziehungsweise kodiert durch ein Nukleinsäuremolekül, das die Nukleinsäure-SEQ ID NO.: 2406 umfasst, oder eines Homologs dieses Nukleinsäuremoleküls beziehungsweise Polypeptids, z. B. im Fall der Aktivität des Escherichia coli-Nukleinsäuremoleküls beziehungsweise eines Polypeptids, welches die Nukleinsäure-SEQ ID NO. 2406 beziehungsweise Polypeptid-SEQ ID NO. 2407 umfasst, erhöht oder erzeugt wird, z. B. wenn die Aktivität eines Nukleinsäuremoleküls oder eines Polypeptids, welches die Nukleinsäure oder das Polypeptid oder die Konsensussequenz oder das Polypeptidmotiv wie in Tabelle I, II bzw. IV, Spalte 7, in der jeweils gleichen Zeile wie das Nukleinsäuremolekül SEQ ID NO.: 2406 beziehungsweise das Polypeptid SEQ ID NO.: 2407 gezeigt umfasst, erhöht oder erzeugt wird, oder wenn die Aktivität „Formiatacetyltransferase 1” in einer Pflanzenzelle, einer Pflanze oder einem Teil davon erhöht oder erzeugt wird, insbesondere bei einer Lokalisierung des Polypeptids in Plastiden eine erhöhte Toleranz gegenüber Dürre, verglichen mit einer entsprechenden nicht modifizierten, z. B. nicht transformierten, Pflanzenzelle oder Pflanze vom Wildtyp oder einem Teil davon verliehen. Gemäß einer Ausführungsform wird eine erhöhte Toleranz gegenüber zyklischer Dürre verliehen. Insbesondere wird bei der Expression unter der Kontrolle einer plastidischen Signalsequenz eine Ertragserhöhung von 1,05-fach bis 1,276-fach, zum Beispiel plus wenigstens 100% davon unter Bedingungen von abiotischem Stress verliehen, z. B. unter Dürrebedingungen, insbesondere Bedingungen von zyklischer Dürre, verglichen mit einer entsprechenden nicht modifizierten, z. B. nicht transformierten, Pflanzenzelle oder Pflanze vom Wildtyp oder einem Teil davon.
  • Dementsprechend wird gemäß einer Ausführungsform, wenn die Aktivität eines Polypeptids gemäß der Polypeptid-SEQ ID NO.: 2565 beziehungsweise kodiert durch ein Nukleinsäuremolekül, das die Nukleinsäure-SEQ ID NO.: 2564 umfasst, oder eines Homologs dieses Nukleinsäuremoleküls beziehungsweise Polypeptids, z. B. im Fall der Aktivität des Escherichia coli-Nukleinsäuremoleküls beziehungsweise eines Polypeptids, welches die Nukleinsäure-SEQ ID NO. 2564 beziehungsweise Polypeptid-SEQ ID NO. 2565 umfasst, erhöht oder erzeugt wird, z. B. wenn die Aktivität eines Nukleinsäuremoleküls oder eines Polypeptids, welches die Nukleinsäure oder das Polypeptid oder die Konsensussequenz oder das Polypeptidmotiv wie in Tabelle I, II bzw. IV, Spalte 7, in der jeweils gleichen Zeile wie das Nukleinsäuremolekül SEQ ID NO.: 2564 beziehungsweise das Polypeptid SEQ ID NO.: 2565 gezeigt umfasst, erhöht oder erzeugt wird, oder wenn die Aktivität „Enoyl-CoA-Hydratase” in einer Pflanzenzelle, einer Pflanze oder einem Teil davon erhöht oder erzeugt wird, insbesondere bei einer Lokalisierung im Zytoplasma ein erhöhter Ertrag, verglichen mit einer entsprechenden nicht modifizierten, z. B. nicht transformierten, Pflanzenzelle oder Pflanze vom Wildtyp oder einem Teil davon verliehen.
  • Gemäß einer weiteren Ausführungsform wird, wenn die Aktivität eines Polypeptids gemäß der Polypeptid-SEQ ID NO.: 2565 beziehungsweise kodiert durch ein Nukleinsäuremolekül, das die Nukleinsäure-SEQ ID NO.: 2564 umfasst, oder eines Homologs dieses Nukleinsäuremoleküls beziehungsweise Polypeptids, z. B. im Fall der Aktivität des Escherichia coli-Nukleinsäuremoleküls beziehungsweise eines Polypeptids, welches die Nukleinsäure-SEQ ID NO. 2564 beziehungsweise Polypeptid-SEQ ID NO. 2565 umfasst, erhöht oder erzeugt wird, z. B. wenn die Aktivität eines Nukleinsäuremoleküls oder eines Polypeptids, welches die Nukleinsäure oder das Polypeptid oder die Konsensussequenz oder das Polypeptidmotiv wie in Tabelle I, II bzw. IV, Spalte 7, in der jeweils gleichen Zeile wie das Nukleinsäuremolekül SEQ ID NO.: 2564 beziehungsweise das Polypeptid SEQ ID NO.: 2565 gezeigt umfasst, erhöht oder erzeugt wird, oder wenn die Aktivität „Enoyl-CoA-Hydratase” in einer Pflanzenzelle, einer Pflanze oder einem Teil davon erhöht oder erzeugt wird, insbesondere bei einer Lokalisierung des Polypeptids im Zytoplasma eine erhöhte Toleranz gegenüber abiotischem Umweltstress, insbesondere eine erhöhte Toleranz gegenüber niedrigen Temperaturen, verglichen mit einer entsprechenden nicht modifizierten, z. B. nicht transformierten, Pflanzenzelle oder Pflanze vom Wildtyp oder einem Teil davon verliehen. Insbesondere wird eine Ertragserhöhung von 1,1-fach bis 1,224-fach, zum Beispiel plus wenigstens 100% davon unter Bedingungen niedriger Temperaturen verliehen, verglichen mit einer entsprechenden nicht modifizierten, z. B. nicht transformierten, Pflanzenzelle oder Pflanze vom Wildtyp oder einem Teil davon.
  • Gemäß einer weiteren Ausführungsform wird, wenn die Aktivität eines Polypeptids gemäß der Polypeptid-SEQ ID NO.: 2565 beziehungsweise kodiert durch ein Nukleinsäuremolekül, das die Nukleinsäure-SEQ ID NO.: 2564 umfasst, oder eines Homologs dieses Nukleinsäuremoleküls beziehungsweise Polypeptids, z. B. im Fall der Aktivität des Escherichia coli-Nukleinsäuremoleküls beziehungsweise eines Polypeptids, welches die Nukleinsäure-SEQ ID NO. 2564 beziehungsweise Polypeptid-SEQ ID NO. 2565 umfasst, erhöht oder erzeugt wird, z. B. wenn die Aktivität eines Nukleinsäuremoleküls oder eines Polypeptids, welches die Nukleinsäure oder das Polypeptid oder die Konsensussequenz oder das Polypeptidmotiv wie in Tabelle I, II bzw. IV, Spalte 7, in der jeweils gleichen Zeile wie das Nukleinsäuremolekül SEQ ID NO.: 2564 beziehungsweise das Polypeptid SEQ ID NO.: 2565 gezeigt umfasst, erhöht oder erzeugt wird, oder wenn die Aktivität „Enoyl-CoA-Hydratase” in einer Pflanzenzelle, einer Pflanze oder einem Teil davon erhöht oder erzeugt wird, insbesondere bei einer Lokalisierung des Polypeptids im Zytoplasma eine erhöhte Toleranz gegenüber Dürre, verglichen mit einer entsprechenden nicht modifizierten, z. B. nicht transformierten, Pflanzenzelle oder Pflanze vom Wildtyp oder einem Teil davon verliehen. Gemäß einer Ausführungsform wird eine erhöhte Toleranz gegenüber zyklischer Dürre verliehen. Insbesondere wird eine Ertragserhöhung von 1,05-fach bis 1,244-fach, zum Beispiel plus wenigstens 100% davon unter Bedingungen von abiotischem Stress verliehen, z. B. unter Dürrebedingungen, insbesondere Bedingungen von zyklischer Dürre, verglichen mit einer entsprechenden nicht modifizierten, z. B. nicht transformierten, Pflanzenzelle oder Pflanze vom Wildtyp oder einem Teil davon.
  • Dementsprechend wird gemäß einer Ausführungsform, wenn die Aktivität eines Polypeptids gemäß der Polypeptid-SEQ ID NO.: 2842 beziehungsweise kodiert durch ein Nukleinsäuremolekül, das die Nukleinsäure-SEQ ID NO.: 2841 umfasst, oder eines Homologs dieses Nukleinsäuremoleküls beziehungsweise Polypeptids, z. B. im Fall der Aktivität des Escherichia coli-Nukleinsäuremoleküls beziehungsweise eines Polypeptids, welches die Nukleinsäure-SEQ ID NO. 2841 beziehungsweise Polypeptid-SEQ ID NO. 2842 umfasst, erhöht oder erzeugt wird, z. B. wenn die Aktivität eines Nukleinsäuremoleküls oder eines Polypeptids, welches die Nukleinsäure oder das Polypeptid oder die Konsensussequenz oder das Polypeptidmotiv wie in Tabelle I, II bzw. IV, Spalte 7, in der jeweils gleichen Zeile wie das Nukleinsäuremolekül SEQ ID NO.: 2841 beziehungsweise das Polypeptid SEQ ID NO.: 2842 gezeigt umfasst, erhöht oder erzeugt wird, oder wenn die Aktivität „Protein einer Glucit/Sorbit-spezifischen Enzym-IIA-Komponente” in einer Pflanzenzelle, einer Pflanze oder einem Teil davon erhöht oder erzeugt wird, insbesondere bei einer Lokalisierung in Plastiden ein erhöhter Ertrag, verglichen mit einer entsprechenden nicht modifizierten, z. B. nicht transformierten, Pflanzenzelle oder Pflanze vom Wildtyp oder einem Teil davon verliehen.
  • Gemäß einer weiteren Ausführungsform wird, wenn die Aktivität eines Polypeptids gemäß der Polypeptid-SEQ ID NO.: 2842 beziehungsweise kodiert durch ein Nukleinsäuremolekül, das die Nukleinsäure-SEQ ID NO.: 2841 umfasst, oder eines Homologs dieses Nukleinsäuremoleküls beziehungsweise Polypeptids, z. B. im Fall der Aktivität des Escherichia coli-Nukleinsäuremoleküls beziehungsweise eines Polypeptids, welches die Nukleinsäure-SEQ ID NO. 2841 beziehungsweise Polypeptid-SEQ ID NO. 2842 umfasst, erhöht oder erzeugt wird, z. B. wenn die Aktivität eines Nukleinsäuremoleküls oder eines Polypeptids, welches die Nukleinsäure oder das Polypeptid oder die Konsensussequenz oder das Polypeptidmotiv wie in Tabelle I, II bzw. IV, Spalte 7, in der jeweils gleichen Zeile wie das Nukleinsäuremolekül SEQ ID NO.: 2841 beziehungsweise das Polypeptid SEQ ID NO.: 2842 gezeigt umfasst, erhöht oder erzeugt wird, oder wenn die Aktivität „Protein einer Glucit/Sorbit-spezifischen Enzym-IIA-Komponente” in einer Pflanzenzelle, einer Pflanze oder einem Teil davon erhöht oder erzeugt wird, insbesondere bei einer Lokalisierung des Polypeptids in Plastiden eine erhöhte Toleranz gegenüber abiotischem Umweltstress, insbesondere eine erhöhte Toleranz gegenüber niedrigen Temperaturen, verglichen mit einer entsprechenden nicht modifizierten, z. B. nicht transformierten, Pflanzenzelle oder Pflanze vom Wildtyp oder einem Teil davon verliehen. Insbesondere wird eine Ertragserhöhung von 1,1-fach bis 1,462-fach, zum Beispiel plus wenigstens 100% davon unter Bedingungen niedriger Temperaturen verliehen, verglichen mit einer entsprechenden nicht modifizierten, z. B. nicht transformierten, Pflanzenzelle oder Pflanze vom Wildtyp oder einem Teil davon.
  • Gemäß einer weiteren Ausführungsform wird, wenn die Aktivität eines Polypeptids gemäß der Polypeptid-SEQ ID NO.: 2842 beziehungsweise kodiert durch ein Nukleinsäuremolekül, das die Nukleinsäure-SEQ ID NO.: 2841 umfasst, oder eines Homologs dieses Nukleinsäuremoleküls beziehungsweise Polypeptids, z. B. im Fall der Aktivität des Escherichia coli-Nukleinsäuremoleküls beziehungsweise eines Polypeptids, welches die Nukleinsäure-SEQ ID NO. 2841 beziehungsweise Polypeptid-SEQ ID NO. 2842 umfasst, erhöht oder erzeugt wird, z. B. wenn die Aktivität eines Nukleinsäuremoleküls oder eines Polypeptids, welches die Nukleinsäure oder das Polypeptid oder die Konsensussequenz oder das Polypeptidmotiv wie in Tabelle I, II bzw. IV, Spalte 7, in der jeweils gleichen Zeile wie das Nukleinsäuremolekül SEQ ID NO.: 2841 beziehungsweise das Polypeptid SEQ ID NO.: 2842 gezeigt umfasst, erhöht oder erzeugt wird, oder wenn die Aktivität „Protein einer Glucit/Sorbit-spezifischen Enzym-IIA-Komponente” in einer Pflanzenzelle, einer Pflanze oder einem Teil davon erhöht oder erzeugt wird, insbesondere bei einer Lokalisierung des Polypeptids in Plastiden eine erhöhte Effizienz der Nährstoffausnutzung, verglichen mit einer entsprechenden nicht modifizierten, z. B. nicht transformierten, Pflanzenzelle oder Pflanze vom Wildtyp oder einem Teil davon verliehen. Gemäß einer Ausführungsform wird eine erhöhte Effizienz der Stickstoffausnutzung verliehen. Insbesondere wird eine Ertragserhöhung von 1,05-fach bis 1,140-fach, zum Beispiel plus wenigstens 100% davon unter Stickstoffmangelbedingungen verliehen, verglichen mit einer entsprechenden nicht modifizierten, z. B. nicht transformierten, Pflanzenzelle oder Pflanze vom Wildtyp oder einem Teil davon.
  • Gemäß einer weiteren Ausführungsform wird, wenn die Aktivität eines Polypeptids gemäß der Polypeptid-SEQ ID NO.: 2842 beziehungsweise kodiert durch ein Nukleinsäuremolekül, das die Nukleinsäure-SEQ ID NO.: 2841 umfasst, oder eines Homologs dieses Nukleinsäuremoleküls beziehungsweise Polypeptids, z. B. im Fall der Aktivität des Escherichia coli-Nukleinsäuremoleküls beziehungsweise eines Polypeptids, welches die Nukleinsäure-SEQ ID NO. 2841 beziehungsweise Polypeptid-SEQ ID NO. 2842 umfasst, erhöht oder erzeugt wird, z. B. wenn die Aktivität eines Nukleinsäuremoleküls oder eines Polypeptids, welches die Nukleinsäure oder das Polypeptid oder die Konsensussequenz oder das Polypeptidmotiv wie in Tabelle I, II bzw. IV, Spalte 7, in der jeweils gleichen Zeile wie das Nukleinsäuremolekül SEQ ID NO.: 2841 beziehungsweise das Polypeptid SEQ ID NO.: 2842 gezeigt umfasst, erhöht oder erzeugt wird, oder wenn die Aktivität „Protein einer Glucit/Sorbit-spezifischen Enzym-IIA-Komponente” in einer Pflanzenzelle, einer Pflanze oder einem Teil davon erhöht oder erzeugt wird, insbesondere bei einer Lokalisierung des Polypeptids in Plastiden ein erhöhter intrinsischer Ertrag, verglichen mit einer entsprechenden nicht modifizierten, z. B. nicht transformierten, Pflanzenzelle oder Pflanze vom Wildtyp oder einem Teil davon verliehen. Gemäß einer Ausführungsform wird ein erhöhter Ertrag unter Standardbedingungen (intrinsischer Ertrag) verliehen, z. B. in Abwesenheit von Nährstoffmangel sowie Stressbedingungen. Insbesondere wird eine Ertragserhöhung von 1,05-fach bis 1,133-fach, zum Beispiel plus wenigstens 100% davon unter Standardbedingungen (intrinsischer Ertrag) verliehen, z. B. in Abwesenheit von Nährstoffmangel sowie Stressbedingungen, verglichen mit einer entsprechenden nicht modifizierten, z. B. nicht transformierten, Pflanzenzelle oder Pflanze vom Wildtyp oder einem Teil davon.
  • Gemäß einer weiteren Ausführungsform wird, wenn die Aktivität eines Polypeptids gemäß der Polypeptid-SEQ ID NO.: 2842 beziehungsweise kodiert durch ein Nukleinsäuremolekül, das die Nukleinsäure-SEQ ID NO.: 2841 umfasst, oder eines Homologs dieses Nukleinsäuremoleküls beziehungsweise Polypeptids, z. B. im Fall der Aktivität des Escherichia coli-Nukleinsäuremoleküls beziehungsweise eines Polypeptids, welches die Nukleinsäure-SEQ ID NO. 2841 beziehungsweise Polypeptid-SEQ ID NO. 2842 umfasst, erhöht oder erzeugt wird, z. B. wenn die Aktivität eines Nukleinsäuremoleküls oder eines Polypeptids, welches die Nukleinsäure oder das Polypeptid oder die Konsensussequenz oder das Polypeptidmotiv wie in Tabelle I, II bzw. IV, Spalte 7, in der jeweils gleichen Zeile wie das Nukleinsäuremolekül SEQ ID NO.: 2841 beziehungsweise das Polypeptid SEQ ID NO.: 2842 gezeigt umfasst, erhöht oder erzeugt wird, oder wenn die Aktivität „Protein einer Glucit/Sorbit-spezifischen Enzym-IIA-Komponente” in einer Pflanzenzelle, einer Pflanze oder einem Teil davon erhöht oder erzeugt wird, insbesondere bei einer Lokalisierung des Polypeptids in Plastiden eine erhöhte Toleranz gegenüber Dürre, verglichen mit einer entsprechenden nicht modifizierten, z. B. nicht transformierten, Pflanzenzelle oder Pflanze vom Wildtyp oder einem Teil davon verliehen. Gemäß einer Ausführungsform wird eine erhöhte Toleranz gegenüber zyklischer Dürre verliehen. Insbesondere wird eine Ertragserhöhung von 1,05-fach bis 1,192-fach, zum Beispiel plus wenigstens 100% davon unter Bedingungen von abiotischem Stress verliehen, z. B. unter Dürrebedingungen, insbesondere Bedingungen von zyklischer Dürre, verglichen mit einer entsprechenden nicht modifizierten, z. B. nicht transformierten, Pflanzenzelle oder Pflanze vom Wildtyp oder einem Teil davon.
  • Dementsprechend wird gemäß einer Ausführungsform, wenn die Aktivität eines Polypeptids gemäß der Polypeptid-SEQ ID NO.: 2880 beziehungsweise kodiert durch ein Nukleinsäuremolekül, das die Nukleinsäure-SEQ ID NO.: 2879 umfasst, oder eines Homologs dieses Nukleinsäuremoleküls beziehungsweise Polypeptids, z. B. im Fall der Aktivität des Escherichia coli-Nukleinsäuremoleküls beziehungsweise eines Polypeptids, welches die Nukleinsäure-SEQ ID NO. 2879 beziehungsweise Polypeptid-SEQ ID NO. 2880 umfasst, erhöht oder erzeugt wird, z. B. wenn die Aktivität eines Nukleinsäuremoleküls oder eines Polypeptids, welches die Nukleinsäure oder das Polypeptid oder die Konsensussequenz oder das Polypeptidmotiv wie in Tabelle I, II bzw. IV, Spalte 7, in der jeweils gleichen Zeile wie das Nukleinsäuremolekül SEQ ID NO.: 2879 beziehungsweise das Polypeptid SEQ ID NO.: 2880 gezeigt umfasst, erhöht oder erzeugt wird, oder wenn die Aktivität „Aminomethyltransferase” in einer Pflanzenzelle, einer Pflanze oder einem Teil davon erhöht oder erzeugt wird, insbesondere bei einer Lokalisierung im Zytoplasma ein erhöhter Ertrag, verglichen mit einer entsprechenden nicht modifizierten, z. B. nicht transformierten, Pflanzenzelle oder Pflanze vom Wildtyp oder einem Teil davon verliehen.
  • Gemäß einer weiteren Ausführungsform wird, wenn die Aktivität eines Polypeptids gemäß der Polypeptid-SEQ ID NO.: 2880 beziehungsweise kodiert durch ein Nukleinsäuremolekül, das die Nukleinsäure-SEQ ID NO.: 2879 umfasst, oder eines Homologs dieses Nukleinsäuremoleküls beziehungsweise Polypeptids, z. B. im Fall der Aktivität des Escherichia coli-Nukleinsäuremoleküls beziehungsweise eines Polypeptids, welches die Nukleinsäure-SEQ ID NO. 2879 beziehungsweise Polypeptid-SEQ ID NO. 2880 umfasst, erhöht oder erzeugt wird, z. B. wenn die Aktivität eines Nukleinsäuremoleküls oder eines Polypeptids, welches die Nukleinsäure oder das Polypeptid oder die Konsensussequenz oder das Polypeptidmotiv wie in Tabelle I, II bzw. IV, Spalte 7, in der jeweils gleichen Zeile wie das Nukleinsäuremolekül SEQ ID NO.: 2879 beziehungsweise das Polypeptid SEQ ID NO.: 2880 gezeigt umfasst, erhöht oder erzeugt wird, oder wenn die Aktivität „Aminomethyltransferase” in einer Pflanzenzelle, einer Pflanze oder einem Teil davon erhöht oder erzeugt wird, insbesondere bei einer Lokalisierung des Polypeptids im Zytoplasma eine erhöhte Toleranz gegenüber abiotischem Umweltstress, insbesondere eine erhöhte Toleranz gegenüber niedrigen Temperaturen, verglichen mit einer entsprechenden nicht modifizierten, z. B. nicht transformierten, Pflanzenzelle oder Pflanze vom Wildtyp oder einem Teil davon verliehen. Insbesondere wird eine Ertragserhöhung von 1,1-fach bis 1,289-fach, zum Beispiel plus wenigstens 100% davon unter Bedingungen niedriger Temperaturen verliehen, verglichen mit einer entsprechenden nicht modifizierten, z. B. nicht transformierten, Pflanzenzelle oder Pflanze vom Wildtyp oder einem Teil davon.
  • Gemäß einer weiteren Ausführungsform wird, wenn die Aktivität eines Polypeptids gemäß der Polypeptid-SEQ ID NO.: 2880 beziehungsweise kodiert durch ein Nukleinsäuremolekül, das die Nukleinsäure-SEQ ID NO.: 2879 umfasst, oder eines Homologs dieses Nukleinsäuremoleküls beziehungsweise Polypeptids, z. B. im Fall der Aktivität des Escherichia coli-Nukleinsäuremoleküls beziehungsweise eines Polypeptids, welches die Nukleinsäure-SEQ ID NO. 2879 beziehungsweise Polypeptid-SEQ ID NO. 2880 umfasst, erhöht oder erzeugt wird, z. B. wenn die Aktivität eines Nukleinsäuremoleküls oder eines Polypeptids, welches die Nukleinsäure oder das Polypeptid oder die Konsensussequenz oder das Polypeptidmotiv wie in Tabelle I, II bzw. IV, Spalte 7, in der jeweils gleichen Zeile wie das Nukleinsäuremolekül SEQ ID NO.: 2879 beziehungsweise das Polypeptid SEQ ID NO.: 2880 gezeigt umfasst, erhöht oder erzeugt wird, oder wenn die Aktivität „Aminomethyltransferase” in einer Pflanzenzelle, einer Pflanze oder einem Teil davon erhöht oder erzeugt wird, insbesondere bei einer Lokalisierung des Polypeptids im Zytoplasma ein erhöhter intrinsischer Ertrag, verglichen mit einer entsprechenden nicht modifizierten, z. B. nicht transformierten, Pflanzenzelle oder Pflanze vom Wildtyp oder einem Teil davon verliehen. Gemäß einer Ausführungsform wird ein erhöhter Ertrag unter Standardbedingungen (intrinsischer Ertrag) verliehen, z. B. in Abwesenheit von Nährstoffmangel sowie Stressbedingungen. Insbesondere wird eine Ertragserhöhung von 1,05-fach bis 1,104-fach, zum Beispiel plus wenigstens 100% davon unter Standardbedingungen (intrinsischer Ertrag) verliehen, z. B. in Abwesenheit von Nährstoffmangel sowie Stressbedingungen, verglichen mit einer entsprechenden nicht modifizierten, z. B. nicht transformierten, Pflanzenzelle oder Pflanze vom Wildtyp oder einem Teil davon.
  • Gemäß einer weiteren Ausführungsform wird, wenn die Aktivität eines Polypeptids gemäß der Polypeptid-SEQ ID NO.: 2880 beziehungsweise kodiert durch ein Nukleinsäuremolekül, das die Nukleinsäure-SEQ ID NO.: 2879 umfasst, oder eines Homologs dieses Nukleinsäuremoleküls beziehungsweise Polypeptids, z. B. im Fall der Aktivität des Escherichia coli-Nukleinsäuremoleküls beziehungsweise eines Polypeptids, welches die Nukleinsäure-SEQ ID NO. 2879 beziehungsweise Polypeptid-SEQ ID NO. 2880 umfasst, erhöht oder erzeugt wird, z. B. wenn die Aktivität eines Nukleinsäuremoleküls oder eines Polypeptids, welches die Nukleinsäure oder das Polypeptid oder die Konsensussequenz oder das Polypeptidmotiv wie in Tabelle I, II bzw. IV, Spalte 7, in der jeweils gleichen Zeile wie das Nukleinsäuremolekül SEQ ID NO.: 2879 beziehungsweise das Polypeptid SEQ ID NO.: 2880 gezeigt umfasst, erhöht oder erzeugt wird, oder wenn die Aktivität „Aminomethyltransferase” in einer Pflanzenzelle, einer Pflanze oder einem Teil davon erhöht oder erzeugt wird, insbesondere bei einer Lokalisierung des Polypeptids im Zytoplasma eine erhöhte Toleranz gegenüber Dürre, verglichen mit einer entsprechenden nicht modifizierten, z. B. nicht transformierten, Pflanzenzelle oder Pflanze vom Wildtyp oder einem Teil davon verliehen. Gemäß einer Ausführungsform wird eine erhöhte Toleranz gegenüber zyklischer Dürre verliehen. Insbesondere wird eine Ertragserhöhung von 1,05-fach bis 1,233-fach, zum Beispiel plus wenigstens 100% davon unter Bedingungen von abiotischem Stress verliehen, z. B. unter Dürrebedingungen, insbesondere Bedingungen von zyklischer Dürre, verglichen mit einer entsprechenden nicht modifizierten, z. B. nicht transformierten, Pflanzenzelle oder Pflanze vom Wildtyp oder einem Teil davon.
  • Dementsprechend wird gemäß einer Ausführungsform, wenn die Aktivität eines Polypeptids gemäß der Polypeptid-SEQ ID NO.: 3110 beziehungsweise kodiert durch ein Nukleinsäuremolekül, das die Nukleinsäure-SEQ ID NO.: 3109 umfasst, oder eines Homologs dieses Nukleinsäuremoleküls beziehungsweise Polypeptids, z. B. im Fall der Aktivität des Escherichia coli-Nukleinsäuremoleküls beziehungsweise eines Polypeptids, welches die Nukleinsäure-SEQ ID NO. 3109 beziehungsweise Polypeptid-SEQ ID NO. 3110 umfasst, erhöht oder erzeugt wird, z. B. wenn die Aktivität eines Nukleinsäuremoleküls oder eines Polypeptids, welches die Nukleinsäure oder das Polypeptid oder die Konsensussequenz oder das Polypeptidmotiv wie in Tabelle I, II bzw. IV, Spalte 7, in der jeweils gleichen Zeile wie das Nukleinsäuremolekül SEQ ID NO.: 3109 beziehungsweise das Polypeptid SEQ ID NO.: 3110 gezeigt umfasst, erhöht oder erzeugt wird, oder wenn die Aktivität „Phosphoträgerprotein” in einer Pflanzenzelle, einer Pflanze oder einem Teil davon erhöht oder erzeugt wird, insbesondere bei einer Lokalisierung in Plastiden ein erhöhter Ertrag, verglichen mit einer entsprechenden nicht modifizierten, z. B. nicht transformierten, Pflanzenzelle oder Pflanze vom Wildtyp oder einem Teil davon verliehen.
  • Gemäß einer weiteren Ausführungsform wird, wenn die Aktivität eines Polypeptids gemäß der Polypeptid-SEQ ID NO.: 3110 beziehungsweise kodiert durch ein Nukleinsäuremolekül, das die Nukleinsäure-SEQ ID NO.: 3109 umfasst, oder eines Homologs dieses Nukleinsäuremoleküls beziehungsweise Polypeptids, z. B. im Fall der Aktivität des Escherichia coli-Nukleinsäuremoleküls beziehungsweise eines Polypeptids, welches die Nukleinsäure-SEQ ID NO. 3109 beziehungsweise Polypeptid-SEQ ID NO. 3110 umfasst, erhöht oder erzeugt wird, z. B. wenn die Aktivität eines Nukleinsäuremoleküls oder eines Polypeptids, welches die Nukleinsäure oder das Polypeptid oder die Konsensussequenz oder das Polypeptidmotiv wie in Tabelle I, II bzw. IV, Spalte 7, in der jeweils gleichen Zeile wie das Nukleinsäuremolekül SEQ ID NO.: 3109 beziehungsweise das Polypeptid SEQ ID NO.: 3110 gezeigt umfasst, erhöht oder erzeugt wird, oder wenn die Aktivität „Phosphoträgerprotein” in einer Pflanzenzelle, einer Pflanze oder einem Teil davon erhöht oder erzeugt wird, insbesondere bei einer Lokalisierung des Polypeptids in Plastiden eine erhöhte Toleranz gegenüber abiotischem Umweltstress, insbesondere eine erhöhte Toleranz gegenüber niedrigen Temperaturen, verglichen mit einer entsprechenden nicht modifizierten, z. B. nicht transformierten, Pflanzenzelle oder Pflanze vom Wildtyp oder einem Teil davon verliehen. Insbesondere wird eine Ertragserhöhung von 1,1-fach bis 1,304-fach, zum Beispiel plus wenigstens 100% davon unter Bedingungen niedriger Temperaturen verliehen, verglichen mit einer entsprechenden nicht modifizierten, z. B. nicht transformierten, Pflanzenzelle oder Pflanze vom Wildtyp oder einem Teil davon.
  • Gemäß einer weiteren Ausführungsform wird, wenn die Aktivität eines Polypeptids gemäß der Polypeptid-SEQ ID NO.: 3110 beziehungsweise kodiert durch ein Nukleinsäuremolekül, das die Nukleinsäure-SEQ ID NO.: 3109 umfasst, oder eines Homologs dieses Nukleinsäuremoleküls beziehungsweise Polypeptids, z. B. im Fall der Aktivität des Escherichia coli-Nukleinsäuremoleküls beziehungsweise eines Polypeptids, welches die Nukleinsäure-SEQ ID NO. 3109 beziehungsweise Polypeptid-SEQ ID NO. 3110 umfasst, erhöht oder erzeugt wird, z. B. wenn die Aktivität eines Nukleinsäuremoleküls oder eines Polypeptids, welches die Nukleinsäure oder das Polypeptid oder die Konsensussequenz oder das Polypeptidmotiv wie in Tabelle I, II bzw. IV, Spalte 7, in der jeweils gleichen Zeile wie das Nukleinsäuremolekül SEQ ID NO.: 3109 beziehungsweise das Polypeptid SEQ ID NO.: 3110 gezeigt umfasst, erhöht oder erzeugt wird, oder wenn die Aktivität „Phosphoträgerprotein” in einer Pflanzenzelle, einer Pflanze oder einem Teil davon erhöht oder erzeugt wird, insbesondere bei einer Lokalisierung des Polypeptids in Plastiden ein erhöhter intrinsischer Ertrag, verglichen mit einer entsprechenden nicht modifizierten, z. B. nicht transformierten, Pflanzenzelle oder Pflanze vom Wildtyp oder einem Teil davon verliehen. Gemäß einer Ausführungsform wird ein erhöhter Ertrag unter Standardbedingungen (intrinsischer Ertrag) verliehen, z. B. in Abwesenheit von Nährstoffmangel sowie Stressbedingungen. Insbesondere wird eine Ertragserhöhung von 1,05-fach bis 1,160-fach, zum Beispiel plus wenigstens 100% davon unter Standardbedingungen (intrinsischer Ertrag) verliehen, z. B. in Abwesenheit von Nährstoffmangel sowie Stressbedingungen, verglichen mit einer entsprechenden nicht modifizierten, z. B. nicht transformierten, Pflanzenzelle oder Pflanze vom Wildtyp oder einem Teil davon.
  • Dementsprechend wird gemäß einer Ausführungsform, wenn die Aktivität eines Polypeptids gemäß der Polypeptid-SEQ ID NO.: 3404 beziehungsweise kodiert durch ein Nukleinsäuremolekül, das die Nukleinsäure-SEQ ID NO.: 3403 umfasst, oder eines Homologs dieses Nukleinsäuremoleküls beziehungsweise Polypeptids, z. B. im Fall der Aktivität des Escherichia coli-Nukleinsäuremoleküls beziehungsweise eines Polypeptids, welches die Nukleinsäure-SEQ ID NO. 3403 beziehungsweise Polypeptid-SEQ ID NO. 3404 umfasst, erhöht oder erzeugt wird, z. B. wenn die Aktivität eines Nukleinsäuremoleküls oder eines Polypeptids, welches die Nukleinsäure oder das Polypeptid oder die Konsensussequenz oder das Polypeptidmotiv wie in Tabelle I, II bzw. IV, Spalte 7, in der jeweils gleichen Zeile wie das Nukleinsäuremolekül SEQ ID NO.: 3403 beziehungsweise das Polypeptid SEQ ID NO.: 3404 gezeigt umfasst, erhöht oder erzeugt wird, oder wenn die Aktivität „Zwei-Modul-Transportprotein” in einer Pflanzenzelle, einer Pflanze oder einem Teil davon erhöht oder erzeugt wird, insbesondere bei einer Lokalisierung im Zytoplasma ein erhöhter Ertrag, verglichen mit einer entsprechenden nicht modifizierten, z. B. nicht transformierten, Pflanzenzelle oder Pflanze vom Wildtyp oder einem Teil davon verliehen.
  • Gemäß einer weiteren Ausführungsform wird, wenn die Aktivität eines Polypeptids gemäß der Polypeptid-SEQ ID NO.: 3404 beziehungsweise kodiert durch ein Nukleinsäuremolekül, das die Nukleinsäure-SEQ ID NO.: 3403 umfasst, oder eines Homologs dieses Nukleinsäuremoleküls beziehungsweise Polypeptids, z. B. im Fall der Aktivität des Escherichia coli-Nukleinsäuremoleküls beziehungsweise eines Polypeptids, welches die Nukleinsäure-SEQ ID NO. 3403 beziehungsweise Polypeptid-SEQ ID NO. 3404 umfasst, erhöht oder erzeugt wird, z. B. wenn die Aktivität eines Nukleinsäuremoleküls oder eines Polypeptids, welches die Nukleinsäure oder das Polypeptid oder die Konsensussequenz oder das Polypeptidmotiv wie in Tabelle I, II bzw. IV, Spalte 7, in der jeweils gleichen Zeile wie das Nukleinsäuremolekül SEQ ID NO.: 3403 beziehungsweise das Polypeptid SEQ ID NO.: 3404 gezeigt umfasst, erhöht oder erzeugt wird, oder wenn die Aktivität „Zwei-Modul-Transportprotein” in einer Pflanzenzelle, einer Pflanze oder einem Teil davon erhöht oder erzeugt wird, insbesondere bei einer Lokalisierung des Polypeptids im Zytoplasma eine erhöhte Toleranz gegenüber abiotischem Umweltstress, insbesondere eine erhöhte Toleranz gegenüber niedrigen Temperaturen, verglichen mit einer entsprechenden nicht modifizierten, z. B. nicht transformierten, Pflanzenzelle oder Pflanze vom Wildtyp oder einem Teil davon verliehen. Insbesondere wird eine Ertragserhöhung von 1,1-fach bis 1,696-fach, zum Beispiel plus wenigstens 100% davon unter Bedingungen niedriger Temperaturen verliehen, verglichen mit einer entsprechenden nicht modifizierten, z. B. nicht transformierten, Pflanzenzelle oder Pflanze vom Wildtyp oder einem Teil davon.
  • Gemäß einer weiteren Ausführungsform wird, wenn die Aktivität eines Polypeptids gemäß der Polypeptid-SEQ ID NO.: 3404 beziehungsweise kodiert durch ein Nukleinsäuremolekül, das die Nukleinsäure-SEQ ID NO.: 3403 umfasst, oder eines Homologs dieses Nukleinsäuremoleküls beziehungsweise Polypeptids, z. B. im Fall der Aktivität des Escherichia coli-Nukleinsäuremoleküls beziehungsweise eines Polypeptids, welches die Nukleinsäure-SEQ ID NO. 3403 beziehungsweise Polypeptid-SEQ ID NO. 3404 umfasst, erhöht oder erzeugt wird, z. B. wenn die Aktivität eines Nukleinsäuremoleküls oder eines Polypeptids, welches die Nukleinsäure oder das Polypeptid oder die Konsensussequenz oder das Polypeptidmotiv wie in Tabelle I, II bzw. IV, Spalte 7, in der jeweils gleichen Zeile wie das Nukleinsäuremolekül SEQ ID NO.: 3403 beziehungsweise das Polypeptid SEQ ID NO.: 3404 gezeigt umfasst, erhöht oder erzeugt wird, oder wenn die Aktivität „Zwei-Modul-Transportprotein” in einer Pflanzenzelle, einer Pflanze oder einem Teil davon erhöht oder erzeugt wird, insbesondere bei einer Lokalisierung des Polypeptids im Zytoplasma ein erhöhter intrinsischer Ertrag, verglichen mit einer entsprechenden nicht modifizierten, z. B. nicht transformierten, Pflanzenzelle oder Pflanze vom Wildtyp oder einem Teil davon verliehen. Gemäß einer Ausführungsform wird ein erhöhter Ertrag unter Standardbedingungen (intrinsischer Ertrag) verliehen, z. B. in Abwesenheit von Nährstoffmangel sowie Stressbedingungen. Insbesondere wird eine Ertragserhöhung von 1,05-fach bis 1,435-fach, zum Beispiel plus wenigstens 100% davon unter Standardbedingungen (intrinsischer Ertrag) verliehen, z. B. in Abwesenheit von Nährstoffmangel sowie Stressbedingungen, verglichen mit einer entsprechenden nicht modifizierten, z. B. nicht transformierten, Pflanzenzelle oder Pflanze vom Wildtyp oder einem Teil davon.
  • Gemäß einer weiteren Ausführungsform wird, wenn die Aktivität eines Polypeptids gemäß der Polypeptid-SEQ ID NO.: 3404 beziehungsweise kodiert durch ein Nukleinsäuremolekül, das die Nukleinsäure-SEQ ID NO.: 3403 umfasst, oder eines Homologs dieses Nukleinsäuremoleküls beziehungsweise Polypeptids, z. B. im Fall der Aktivität des Escherichia coli-Nukleinsäuremoleküls beziehungsweise eines Polypeptids, welches die Nukleinsäure-SEQ ID NO. 3403 beziehungsweise Polypeptid-SEQ ID NO. 3404 umfasst, erhöht oder erzeugt wird, z. B. wenn die Aktivität eines Nukleinsäuremoleküls oder eines Polypeptids, welches die Nukleinsäure oder das Polypeptid oder die Konsensussequenz oder das Polypeptidmotiv wie in Tabelle I, II bzw. IV, Spalte 7, in der jeweils gleichen Zeile wie das Nukleinsäuremolekül SEQ ID NO.: 3403 beziehungsweise das Polypeptid SEQ ID NO.: 3404 gezeigt umfasst, erhöht oder erzeugt wird, oder wenn die Aktivität „Zwei-Modul-Transportprotein” in einer Pflanzenzelle, einer Pflanze oder einem Teil davon erhöht oder erzeugt wird, insbesondere bei einer Lokalisierung des Polypeptids im Zytoplasma eine erhöhte Toleranz gegenüber Dürre, verglichen mit einer entsprechenden nicht modifizierten, z. B. nicht transformierten, Pflanzenzelle oder Pflanze vom Wildtyp oder einem Teil davon verliehen. Gemäß einer Ausführungsform wird eine erhöhte Toleranz gegenüber zyklischer Dürre verliehen. Insbesondere wird eine Ertragserhöhung von 1,05-fach bis 1,128-fach, zum Beispiel plus wenigstens 100% davon unter Bedingungen von abiotischem Stress verliehen, z. B. unter Dürrebedingungen, insbesondere Bedingungen von zyklischer Dürre, verglichen mit einer entsprechenden nicht modifizierten, z. B. nicht transformierten, Pflanzenzelle oder Pflanze vom Wildtyp oder einem Teil davon.
  • Dementsprechend wird gemäß einer Ausführungsform, wenn die Aktivität eines Polypeptids gemäß der Polypeptid-SEQ ID NO.: 3442 beziehungsweise kodiert durch ein Nukleinsäuremolekül, das die Nukleinsäure-SEQ ID NO.: 3441 umfasst, oder eines Homologs dieses Nukleinsäuremoleküls beziehungsweise Polypeptids, z. B. im Fall der Aktivität des Escherichia coli-Nukleinsäuremoleküls beziehungsweise eines Polypeptids, welches die Nukleinsäure-SEQ ID NO. 3441 beziehungsweise Polypeptid-SEQ ID NO. 3442 umfasst, erhöht oder erzeugt wird, z. B. wenn die Aktivität eines Nukleinsäuremoleküls oder eines Polypeptids, welches die Nukleinsäure oder das Polypeptid oder die Konsensussequenz oder das Polypeptidmotiv wie in Tabelle I, II bzw. IV, Spalte 7, in der jeweils gleichen Zeile wie das Nukleinsäuremolekül SEQ ID NO.: 3441 beziehungsweise das Polypeptid SEQ ID NO.: 3442 gezeigt umfasst, erhöht oder erzeugt wird, oder wenn die Aktivität „GTP-bindendes Protein” in einer Pflanzenzelle, einer Pflanze oder einem Teil davon erhöht oder erzeugt wird, insbesondere bei einer Lokalisierung im Zytoplasma ein erhöhter Ertrag, verglichen mit einer entsprechenden nicht modifizierten, z. B. nicht transformierten, Pflanzenzelle oder Pflanze vom Wildtyp oder einem Teil davon verliehen.
  • Gemäß einer weiteren Ausführungsform wird, wenn die Aktivität eines Polypeptids gemäß der Polypeptid-SEQ ID NO.: 3442 beziehungsweise kodiert durch ein Nukleinsäuremolekül, das die Nukleinsäure-SEQ ID NO.: 3441 umfasst, oder eines Homologs dieses Nukleinsäuremoleküls beziehungsweise Polypeptids, z. B. im Fall der Aktivität des Escherichia coli-Nukleinsäuremoleküls beziehungsweise eines Polypeptids, welches die Nukleinsäure-SEQ ID NO. 3441 beziehungsweise Polypeptid-SEQ ID NO. 3442 umfasst, erhöht oder erzeugt wird, z. B. wenn die Aktivität eines Nukleinsäuremoleküls oder eines Polypeptids, welches die Nukleinsäure oder das Polypeptid oder die Konsensussequenz oder das Polypeptidmotiv wie in Tabelle I, II bzw. IV, Spalte 7, in der jeweils gleichen Zeile wie das Nukleinsäuremolekül SEQ ID NO.: 3441 beziehungsweise das Polypeptid SEQ ID NO.: 3442 gezeigt umfasst, erhöht oder erzeugt wird, oder wenn die Aktivität „GTP-bindendes Protein” in einer Pflanzenzelle, einer Pflanze oder einem Teil davon erhöht oder erzeugt wird, insbesondere bei einer Lokalisierung des Polypeptids im Zytoplasma eine erhöhte Toleranz gegenüber abiotischem Umweltstress, insbesondere eine erhöhte Toleranz gegenüber niedrigen Temperaturen, verglichen mit einer entsprechenden nicht modifizierten, z. B. nicht transformierten, Pflanzenzelle oder Pflanze vom Wildtyp oder einem Teil davon verliehen. Insbesondere wird eine Ertragserhöhung von 1,1-fach bis 1,611-fach, zum Beispiel plus wenigstens 100% davon unter Bedingungen niedriger Temperaturen verliehen, verglichen mit einer entsprechenden nicht modifizierten, z. B. nicht transformierten, Pflanzenzelle oder Pflanze vom Wildtyp oder einem Teil davon.
  • Dementsprechend wird gemäß einer Ausführungsform, wenn die Aktivität eines Polypeptids gemäß der Polypeptid-SEQ ID NO.: 3979 beziehungsweise kodiert durch ein Nukleinsäuremolekül, das die Nukleinsäure-SEQ ID NO.: 3978 umfasst, oder eines Homologs dieses Nukleinsäuremoleküls beziehungsweise Polypeptids, z. B. im Fall der Aktivität des Saccharomyces cerevisiae-Nukleinsäuremoleküls beziehungsweise eines Polypeptids, welches die Nukleinsäure-SEQ ID NO. 3978 beziehungsweise Polypeptid-SEQ ID NO. 3979 umfasst, erhöht oder erzeugt wird, z. B. wenn die Aktivität eines Nukleinsäuremoleküls oder eines Polypeptids, welches die Nukleinsäure oder das Polypeptid oder die Konsensussequenz oder das Polypeptidmotiv wie in Tabelle I, II bzw. IV, Spalte 7, in der jeweils gleichen Zeile wie das Nukleinsäuremolekül SEQ ID NO.: 3978 beziehungsweise das Polypeptid SEQ ID NO.: 3979 gezeigt umfasst, erhöht oder erzeugt wird, oder wenn die Aktivität „Peroxisomal-Targeting-Signal-2-Rezeptor” in einer Pflanzenzelle, einer Pflanze oder einem Teil davon erhöht oder erzeugt wird, insbesondere bei einer Lokalisierung in Plastiden ein erhöhter Ertrag, verglichen mit einer entsprechenden nicht modifizierten, z. B. nicht transformierten, Pflanzenzelle oder Pflanze vom Wildtyp oder einem Teil davon verliehen.
  • Gemäß einer weiteren Ausführungsform wird, wenn die Aktivität eines Polypeptids gemäß der Polypeptid-SEQ ID NO.: 3979 beziehungsweise kodiert durch ein Nukleinsäuremolekül, das die Nukleinsäure-SEQ ID NO.: 3978 umfasst, oder eines Homologs dieses Nukleinsäuremoleküls beziehungsweise Polypeptids, z. B. im Fall der Aktivität des Saccharomyces cerevisiae-Nukleinsäuremoleküls beziehungsweise eines Polypeptids, welches die Nukleinsäure-SEQ ID NO. 3978 beziehungsweise Polypeptid-SEQ ID NO. 3979 umfasst, erhöht oder erzeugt wird, z. B. wenn die Aktivität eines Nukleinsäuremoleküls oder eines Polypeptids, welches die Nukleinsäure oder das Polypeptid oder die Konsensussequenz oder das Polypeptidmotiv wie in Tabelle I, II bzw. IV, Spalte 7, in der jeweils gleichen Zeile wie das Nukleinsäuremolekül SEQ ID NO.: 3978 beziehungsweise das Polypeptid SEQ ID NO.: 3979 gezeigt umfasst, erhöht oder erzeugt wird, oder wenn die Aktivität „Peroxisomal-Targeting-Signal-2-Rezeptor” in einer Pflanzenzelle, einer Pflanze oder einem Teil davon erhöht oder erzeugt wird, insbesondere bei einer Lokalisierung des Polypeptids in Plastiden eine erhöhte Toleranz gegenüber abiotischem Umweltstress, insbesondere eine erhöhte Toleranz gegenüber niedrigen Temperaturen, verglichen mit einer entsprechenden nicht modifizierten, z. B. nicht transformierten, Pflanzenzelle oder Pflanze vom Wildtyp oder einem Teil davon verliehen. Insbesondere wird eine Ertragserhöhung von 1,1-fach bis 1,274-fach, zum Beispiel plus wenigstens 100% davon unter Bedingungen niedriger Temperaturen verliehen, verglichen mit einer entsprechenden nicht modifizierten, z. B. nicht transformierten, Pflanzenzelle oder Pflanze vom Wildtyp oder einem Teil davon.
  • Gemäß einer weiteren Ausführungsform wird, wenn die Aktivität eines Polypeptids gemäß der Polypeptid-SEQ ID NO.: 3979 beziehungsweise kodiert durch ein Nukleinsäuremolekül, das die Nukleinsäure-SEQ ID NO.: 3978 umfasst, oder eines Homologs dieses Nukleinsäuremoleküls beziehungsweise Polypeptids, z. B. im Fall der Aktivität des Saccharomyces cerevisiae-Nukleinsäuremoleküls beziehungsweise eines Polypeptids, welches die Nukleinsäure-SEQ ID NO. 3978 beziehungsweise Polypeptid-SEQ ID NO. 3979 umfasst, erhöht oder erzeugt wird, z. B. wenn die Aktivität eines Nukleinsäuremoleküls oder eines Polypeptids, welches die Nukleinsäure oder das Polypeptid oder die Konsensussequenz oder das Polypeptidmotiv wie in Tabelle I, II bzw. IV, Spalte 7, in der jeweils gleichen Zeile wie das Nukleinsäuremolekül SEQ ID NO.: 3978 beziehungsweise das Polypeptid SEQ ID NO.: 3979 gezeigt umfasst, erhöht oder erzeugt wird, oder wenn die Aktivität „Peroxisomal-Targeting-Signal-2-Rezeptor” in einer Pflanzenzelle, einer Pflanze oder einem Teil davon erhöht oder erzeugt wird, insbesondere bei einer Lokalisierung des Polypeptids in Plastiden eine erhöhte Effizienz der Nährstoffausnutzung, verglichen mit einer entsprechenden nicht modifizierten, z. B. nicht transformierten, Pflanzenzelle oder Pflanze vom Wildtyp oder einem Teil davon verliehen. Gemäß einer Ausführungsform wird eine erhöhte Effizienz der Stickstoffausnutzung verliehen. Insbesondere wird eine Ertragserhöhung von 1,05-fach bis 1,305-fach, zum Beispiel plus wenigstens 100% davon unter Stickstoffmangelbedingungen verliehen, verglichen mit einer entsprechenden nicht modifizierten, z. B. nicht transformierten, Pflanzenzelle oder Pflanze vom Wildtyp oder einem Teil davon.
  • Gemäß einer weiteren Ausführungsform wird, wenn die Aktivität eines Polypeptids gemäß der Polypeptid-SEQ ID NO.: 3979 beziehungsweise kodiert durch ein Nukleinsäuremolekül, das die Nukleinsäure-SEQ ID NO.: 3978 umfasst, oder eines Homologs dieses Nukleinsäuremoleküls beziehungsweise Polypeptids, z. B. im Fall der Aktivität des Saccharomyces cerevisiae-Nukleinsäuremoleküls beziehungsweise eines Polypeptids, welches die Nukleinsäure-SEQ ID NO. 3978 beziehungsweise Polypeptid-SEQ ID NO. 3979 umfasst, erhöht oder erzeugt wird, z. B. wenn die Aktivität eines Nukleinsäuremoleküls oder eines Polypeptids, welches die Nukleinsäure oder das Polypeptid oder die Konsensussequenz oder das Polypeptidmotiv wie in Tabelle I, II bzw. IV, Spalte 7, in der jeweils gleichen Zeile wie das Nukleinsäuremolekül SEQ ID NO.: 3978 beziehungsweise das Polypeptid SEQ ID NO.: 3979 gezeigt umfasst, erhöht oder erzeugt wird, oder wenn die Aktivität „Peroxisomal-Targeting-Signal-2-Rezeptor” in einer Pflanzenzelle, einer Pflanze oder einem Teil davon erhöht oder erzeugt wird, insbesondere bei einer Lokalisierung des Polypeptids in Plastiden ein erhöhter intrinsischer Ertrag, verglichen mit einer entsprechenden nicht modifizierten, z. B. nicht transformierten, Pflanzenzelle oder Pflanze vom Wildtyp oder einem Teil davon verliehen. Gemäß einer Ausführungsform wird ein erhöhter Ertrag unter Standardbedingungen (intrinsischer Ertrag) verliehen, z. B. in Abwesenheit von Nährstoffmangel sowie Stressbedingungen. Insbesondere wird eine Ertragserhöhung von 1,05-fach bis 1,476-fach, zum Beispiel plus wenigstens 100% davon unter Standardbedingungen (intrinsischer Ertrag) verliehen, z. B. in Abwesenheit von Nährstoffmangel sowie Stressbedingungen, verglichen mit einer entsprechenden nicht modifizierten, z. B. nicht transformierten, Pflanzenzelle oder Pflanze vom Wildtyp oder einem Teil davon.
  • Dementsprechend wird gemäß einer Ausführungsform, wenn die Aktivität eines Polypeptids gemäß der Polypeptid-SEQ ID NO.: 4048 beziehungsweise kodiert durch ein Nukleinsäuremolekül, das die Nukleinsäure-SEQ ID NO.: 4047 umfasst, oder eines Homologs dieses Nukleinsäuremoleküls beziehungsweise Polypeptids, z. B. im Fall der Aktivität des Saccharomyces cerevisiae-Nukleinsäuremoleküls beziehungsweise eines Polypeptids, welches die Nukleinsäure-SEQ ID NO. 4047 beziehungsweise Polypeptid-SEQ ID NO. 4048 umfasst, erhöht oder erzeugt wird, z. B. wenn die Aktivität eines Nukleinsäuremoleküls oder eines Polypeptids, welches die Nukleinsäure oder das Polypeptid oder die Konsensussequenz oder das Polypeptidmotiv wie in Tabelle I, II bzw. IV, Spalte 7, in der jeweils gleichen Zeile wie das Nukleinsäuremolekül SEQ ID NO.: 4047 beziehungsweise das Polypeptid SEQ ID NO.: 4048 gezeigt umfasst, erhöht oder erzeugt wird, oder wenn die Aktivität „yer175w-a-Protein” in einer Pflanzenzelle, einer Pflanze oder einem Teil davon erhöht oder erzeugt wird, insbesondere bei einer Lokalisierung im Zytoplasma ein erhöhter Ertrag, verglichen mit einer entsprechenden nicht modifizierten, z. B. nicht transformierten, Pflanzenzelle oder Pflanze vom Wildtyp oder einem Teil davon verliehen.
  • Gemäß einer weiteren Ausführungsform wird, wenn die Aktivität eines Polypeptids gemäß der Polypeptid-SEQ ID NO.: 4048 beziehungsweise kodiert durch ein Nukleinsäuremolekül, das die Nukleinsäure-SEQ ID NO.: 4047 umfasst, oder eines Homologs dieses Nukleinsäuremoleküls beziehungsweise Polypeptids, z. B. im Fall der Aktivität des Saccharomyces cerevisiae-Nukleinsäuremoleküls beziehungsweise eines Polypeptids, welches die Nukleinsäure-SEQ ID NO. 4047 beziehungsweise Polypeptid-SEQ ID NO. 4048 umfasst, erhöht oder erzeugt wird, z. B. wenn die Aktivität eines Nukleinsäuremoleküls oder eines Polypeptids, welches die Nukleinsäure oder das Polypeptid oder die Konsensussequenz oder das Polypeptidmotiv wie in Tabelle I, II bzw. IV, Spalte 7, in der jeweils gleichen Zeile wie das Nukleinsäuremolekül SEQ ID NO.: 4047 beziehungsweise das Polypeptid SEQ ID NO.: 4048 gezeigt umfasst, erhöht oder erzeugt wird, oder wenn die Aktivität „yer175w-a-Protein” in einer Pflanzenzelle, einer Pflanze oder einem Teil davon erhöht oder erzeugt wird, insbesondere bei einer Lokalisierung des Polypeptids im Zytoplasma eine erhöhte Toleranz gegenüber abiotischem Umweltstress, insbesondere eine erhöhte Toleranz gegenüber niedrigen Temperaturen, verglichen mit einer entsprechenden nicht modifizierten, z. B. nicht transformierten, Pflanzenzelle oder Pflanze vom Wildtyp oder einem Teil davon verliehen. Insbesondere wird eine Ertragserhöhung von 1,1-fach bis 2,340-fach, zum Beispiel plus wenigstens 100% davon unter Bedingungen niedriger Temperaturen verliehen, verglichen mit einer entsprechenden nicht modifizierten, z. B. nicht transformierten, Pflanzenzelle oder Pflanze vom Wildtyp oder einem Teil davon.
  • Gemäß einer weiteren Ausführungsform wird, wenn die Aktivität eines Polypeptids gemäß der Polypeptid-SEQ ID NO.: 4048 beziehungsweise kodiert durch ein Nukleinsäuremolekül, das die Nukleinsäure-SEQ ID NO.: 4047 umfasst, oder eines Homologs dieses Nukleinsäuremoleküls beziehungsweise Polypeptids, z. B. im Fall der Aktivität des Saccharomyces cerevisiae-Nukleinsäuremoleküls beziehungsweise eines Polypeptids, welches die Nukleinsäure-SEQ ID NO. 4047 beziehungsweise Polypeptid-SEQ ID NO. 4048 umfasst, erhöht oder erzeugt wird, z. B. wenn die Aktivität eines Nukleinsäuremoleküls oder eines Polypeptids, welches die Nukleinsäure oder das Polypeptid oder die Konsensussequenz oder das Polypeptidmotiv wie in Tabelle I, II bzw. IV, Spalte 7, in der jeweils gleichen Zeile wie das Nukleinsäuremolekül SEQ ID NO.: 4047 beziehungsweise das Polypeptid SEQ ID NO.: 4048 gezeigt umfasst, erhöht oder erzeugt wird, oder wenn die Aktivität „yer175w-a-Protein” in einer Pflanzenzelle, einer Pflanze oder einem Teil davon erhöht oder erzeugt wird, insbesondere bei einer Lokalisierung des Polypeptids im Zytoplasma ein erhöhter intrinsischer Ertrag, verglichen mit einer entsprechenden nicht modifizierten, z. B. nicht transformierten, Pflanzenzelle oder Pflanze vom Wildtyp oder einem Teil davon verliehen. Gemäß einer Ausführungsform wird ein erhöhter Ertrag unter Standardbedingungen (intrinsischer Ertrag) verliehen, z. B. in Abwesenheit von Nährstoffmangel sowie Stressbedingungen. Insbesondere wird eine Ertragserhöhung von 1,05-fach bis 1,370-fach, zum Beispiel plus wenigstens 100% davon unter Standardbedingungen (intrinsischer Ertrag) verliehen, z. B. in Abwesenheit von Nährstoffmangel sowie Stressbedingungen, verglichen mit einer entsprechenden nicht modifizierten, z. B. nicht transformierten, Pflanzenzelle oder Pflanze vom Wildtyp oder einem Teil davon.
  • Dementsprechend wird gemäß einer Ausführungsform, wenn die Aktivität eines Polypeptids gemäß der Polypeptid-SEQ ID NO.: 4052 beziehungsweise kodiert durch ein Nukleinsäuremolekül, das die Nukleinsäure-SEQ ID NO.: 4051 umfasst, oder eines Homologs dieses Nukleinsäuremoleküls beziehungsweise Polypeptids, z. B. im Fall der Aktivität des Saccharomyces cerevisiae-Nukleinsäuremoleküls beziehungsweise eines Polypeptids, welches die Nukleinsäure-SEQ ID NO. 4051 beziehungsweise Polypeptid-SEQ ID NO. 4052 umfasst, erhöht oder erzeugt wird, z. B. wenn die Aktivität eines Nukleinsäuremoleküls oder eines Polypeptids, welches die Nukleinsäure oder das Polypeptid oder die Konsensussequenz oder das Polypeptidmotiv wie in Tabelle I, II bzw. IV, Spalte 7, in der jeweils gleichen Zeile wie das Nukleinsäuremolekül SEQ ID NO.: 4051 beziehungsweise das Polypeptid SEQ ID NO.: 4052 gezeigt umfasst, erhöht oder erzeugt wird, oder wenn die Aktivität „Hexosetransporter” in einer Pflanzenzelle, einer Pflanze oder einem Teil davon erhöht oder erzeugt wird, insbesondere bei einer Lokalisierung in Plastiden ein erhöhter Ertrag, verglichen mit einer entsprechenden nicht modifizierten, z. B. nicht transformierten, Pflanzenzelle oder Pflanze vom Wildtyp oder einem Teil davon verliehen.
  • Gemäß einer weiteren Ausführungsform wird, wenn die Aktivität eines Polypeptids gemäß der Polypeptid-SEQ ID NO.: 4052 beziehungsweise kodiert durch ein Nukleinsäuremolekül, das die Nukleinsäure-SEQ ID NO.: 4051 umfasst, oder eines Homologs dieses Nukleinsäuremoleküls beziehungsweise Polypeptids, z. B. im Fall der Aktivität des Saccharomyces cerevisiae-Nukleinsäuremoleküls beziehungsweise eines Polypeptids, welches die Nukleinsäure-SEQ ID NO. 4051 beziehungsweise Polypeptid-SEQ ID NO. 4052 umfasst, erhöht oder erzeugt wird, z. B. wenn die Aktivität eines Nukleinsäuremoleküls oder eines Polypeptids, welches die Nukleinsäure oder das Polypeptid oder die Konsensussequenz oder das Polypeptidmotiv wie in Tabelle I, II bzw. IV, Spalte 7, in der jeweils gleichen Zeile wie das Nukleinsäuremolekül SEQ ID NO.: 4051 beziehungsweise das Polypeptid SEQ ID NO.: 4052 gezeigt umfasst, erhöht oder erzeugt wird, oder wenn die Aktivität „Hexosetransporter” in einer Pflanzenzelle, einer Pflanze oder einem Teil davon erhöht oder erzeugt wird, insbesondere bei einer Lokalisierung des Polypeptids in Plastiden eine erhöhte Toleranz gegenüber abiotischem Umweltstress, insbesondere eine erhöhte Toleranz gegenüber niedrigen Temperaturen, verglichen mit einer entsprechenden nicht modifizierten, z. B. nicht transformierten, Pflanzenzelle oder Pflanze vom Wildtyp oder einem Teil davon verliehen. Insbesondere wird eine Ertragserhöhung von 1,1-fach bis 1,271-fach, zum Beispiel plus wenigstens 100% davon unter Bedingungen niedriger Temperaturen verliehen, verglichen mit einer entsprechenden nicht modifizierten, z. B. nicht transformierten, Pflanzenzelle oder Pflanze vom Wildtyp oder einem Teil davon.
  • Gemäß einer weiteren Ausführungsform wird, wenn die Aktivität eines Polypeptids gemäß der Polypeptid-SEQ ID NO.: 4052 beziehungsweise kodiert durch ein Nukleinsäuremolekül, das die Nukleinsäure-SEQ ID NO.: 4051 umfasst, oder eines Homologs dieses Nukleinsäuremoleküls beziehungsweise Polypeptids, z. B. im Fall der Aktivität des Saccharomyces cerevisiae-Nukleinsäuremoleküls beziehungsweise eines Polypeptids, welches die Nukleinsäure-SEQ ID NO. 4051 beziehungsweise Polypeptid-SEQ ID NO. 4052 umfasst, erhöht oder erzeugt wird, z. B. wenn die Aktivität eines Nukleinsäuremoleküls oder eines Polypeptids, welches die Nukleinsäure oder das Polypeptid oder die Konsensussequenz oder das Polypeptidmotiv wie in Tabelle I, II bzw. IV, Spalte 7, in der jeweils gleichen Zeile wie das Nukleinsäuremolekül SEQ ID NO.: 4051 beziehungsweise das Polypeptid SEQ ID NO.: 4052 gezeigt umfasst, erhöht oder erzeugt wird, oder wenn die Aktivität „Hexosetransporter” in einer Pflanzenzelle, einer Pflanze oder einem Teil davon erhöht oder erzeugt wird, insbesondere bei einer Lokalisierung des Polypeptids in Plastiden eine erhöhte Effizienz der Nährstoffausnutzung, verglichen mit einer entsprechenden nicht modifizierten, z. B. nicht transformierten, Pflanzenzelle oder Pflanze vom Wildtyp oder einem Teil davon verliehen. Gemäß einer Ausführungsform wird eine erhöhte Effizienz der Stickstoffausnutzung verliehen. Insbesondere wird eine Ertragserhöhung von 1,05-fach bis 1,256-fach, zum Beispiel plus wenigstens 100% davon unter Stickstoffmangelbedingungen verliehen, verglichen mit einer entsprechenden nicht modifizierten, z. B. nicht transformierten, Pflanzenzelle oder Pflanze vom Wildtyp oder einem Teil davon.
  • Gemäß einer weiteren Ausführungsform wird, wenn die Aktivität eines Polypeptids gemäß der Polypeptid-SEQ ID NO.: 4052 beziehungsweise kodiert durch ein Nukleinsäuremolekül, das die Nukleinsäure-SEQ ID NO.: 4051 umfasst, oder eines Homologs dieses Nukleinsäuremoleküls beziehungsweise Polypeptids, z. B. im Fall der Aktivität des Saccharomyces cerevisiae-Nukleinsäuremoleküls beziehungsweise eines Polypeptids, welches die Nukleinsäure-SEQ ID NO. 4051 beziehungsweise Polypeptid-SEQ ID NO. 4052 umfasst, erhöht oder erzeugt wird, z. B. wenn die Aktivität eines Nukleinsäuremoleküls oder eines Polypeptids, welches die Nukleinsäure oder das Polypeptid oder die Konsensussequenz oder das Polypeptidmotiv wie in Tabelle I, II bzw. IV, Spalte 7, in der jeweils gleichen Zeile wie das Nukleinsäuremolekül SEQ ID NO.: 4051 beziehungsweise das Polypeptid SEQ ID NO.: 4052 gezeigt umfasst, erhöht oder erzeugt wird, oder wenn die Aktivität „Hexosetransporter” in einer Pflanzenzelle, einer Pflanze oder einem Teil davon erhöht oder erzeugt wird, insbesondere bei einer Lokalisierung des Polypeptids in Plastiden ein erhöhter intrinsischer Ertrag, verglichen mit einer entsprechenden nicht modifizierten, z. B. nicht transformierten, Pflanzenzelle oder Pflanze vom Wildtyp oder einem Teil davon verliehen. Gemäß einer Ausführungsform wird ein erhöhter Ertrag unter Standardbedingungen (intrinsischer Ertrag) verliehen, z. B. in Abwesenheit von Nährstoffmangel sowie Stressbedingungen. Insbesondere wird eine Ertragserhöhung von 1,05-fach bis 1,398-fach, zum Beispiel plus wenigstens 100% davon unter Standardbedingungen (intrinsischer Ertrag) verliehen, z. B. in Abwesenheit von Nährstoffmangel sowie Stressbedingungen, verglichen mit einer entsprechenden nicht modifizierten, z. B. nicht transformierten, Pflanzenzelle oder Pflanze vom Wildtyp oder einem Teil davon.
  • Gemäß einer weiteren Ausführungsform wird, wenn die Aktivität eines Polypeptids gemäß der Polypeptid-SEQ ID NO.: 4052 beziehungsweise kodiert durch ein Nukleinsäuremolekül, das die Nukleinsäure-SEQ ID NO.: 4051 umfasst, oder eines Homologs dieses Nukleinsäuremoleküls beziehungsweise Polypeptids, z. B. im Fall der Aktivität des Saccharomyces cerevisiae-Nukleinsäuremoleküls beziehungsweise eines Polypeptids, welches die Nukleinsäure-SEQ ID NO. 4051 beziehungsweise Polypeptid-SEQ ID NO. 4052 umfasst, erhöht oder erzeugt wird, z. B. wenn die Aktivität eines Nukleinsäuremoleküls oder eines Polypeptids, welches die Nukleinsäure oder das Polypeptid oder die Konsensussequenz oder das Polypeptidmotiv wie in Tabelle I, II bzw. IV, Spalte 7, in der jeweils gleichen Zeile wie das Nukleinsäuremolekül SEQ ID NO.: 4051 beziehungsweise das Polypeptid SEQ ID NO.: 4052 gezeigt umfasst, erhöht oder erzeugt wird, oder wenn die Aktivität „Hexosetransporter” in einer Pflanzenzelle, einer Pflanze oder einem Teil davon erhöht oder erzeugt wird, insbesondere bei einer Lokalisierung des Polypeptids in Plastiden eine erhöhte Toleranz gegenüber Dürre, verglichen mit einer entsprechenden nicht modifizierten, z. B. nicht transformierten, Pflanzenzelle oder Pflanze vom Wildtyp oder einem Teil davon verliehen. Gemäß einer Ausführungsform wird eine erhöhte Toleranz gegenüber zyklischer Dürre verliehen. Insbesondere wird eine Ertragserhöhung von 1,05-fach bis 1,324-fach, zum Beispiel plus wenigstens 100% davon unter Bedingungen von abiotischem Stress verliehen, z. B. unter Dürrebedingungen, insbesondere Bedingungen von zyklischer Dürre, verglichen mit einer entsprechenden nicht modifizierten, z. B. nicht transformierten, Pflanzenzelle oder Pflanze vom Wildtyp oder einem Teil davon.
  • Dementsprechend wird gemäß einer Ausführungsform, wenn die Aktivität eines Polypeptids gemäß der Polypeptid-SEQ ID NO.: 4132 beziehungsweise kodiert durch ein Nukleinsäuremolekül, das die Nukleinsäure-SEQ ID NO.: 4131 umfasst, oder eines Homologs dieses Nukleinsäuremoleküls beziehungsweise Polypeptids, z. B. im Fall der Aktivität des Saccharomyces cerevisiae-Nukleinsäuremoleküls beziehungsweise eines Polypeptids, welches die Nukleinsäure-SEQ ID NO. 4131 beziehungsweise Polypeptid-SEQ ID NO. 4132 umfasst, erhöht oder erzeugt wird, z. B. wenn die Aktivität eines Nukleinsäuremoleküls oder eines Polypeptids, welches die Nukleinsäure oder das Polypeptid oder die Konsensussequenz oder das Polypeptidmotiv wie in Tabelle I, II bzw. IV, Spalte 7, in der jeweils gleichen Zeile wie das Nukleinsäuremolekül SEQ ID NO.: 4131 beziehungsweise das Polypeptid SEQ ID NO.: 4132 gezeigt umfasst, erhöht oder erzeugt wird, oder wenn die Aktivität „2-Desoxyglucose-6-phosphatphosphatase” in einer Pflanzenzelle, einer Pflanze oder einem Teil davon erhöht oder erzeugt wird, insbesondere bei einer Lokalisierung in Plastiden ein erhöhter Ertrag, verglichen mit einer entsprechenden nicht modifizierten, z. B. nicht transformierten, Pflanzenzelle oder Pflanze vom Wildtyp oder einem Teil davon verliehen.
  • Gemäß einer weiteren Ausführungsform wird, wenn die Aktivität eines Polypeptids gemäß der Polypeptid-SEQ ID NO.: 4132 beziehungsweise kodiert durch ein Nukleinsäuremolekül, das die Nukleinsäure-SEQ ID NO.: 4131 umfasst, oder eines Homologs dieses Nukleinsäuremoleküls beziehungsweise Polypeptids, z. B. im Fall der Aktivität des Saccharomyces cerevisiae-Nukleinsäuremoleküls beziehungsweise eines Polypeptids, welches die Nukleinsäure-SEQ ID NO. 4131 beziehungsweise Polypeptid-SEQ ID NO. 4132 umfasst, erhöht oder erzeugt wird, z. B. wenn die Aktivität eines Nukleinsäuremoleküls oder eines Polypeptids, welches die Nukleinsäure oder das Polypeptid oder die Konsensussequenz oder das Polypeptidmotiv wie in Tabelle I, II bzw. IV, Spalte 7, in der jeweils gleichen Zeile wie das Nukleinsäuremolekül SEQ ID NO.: 4131 beziehungsweise das Polypeptid SEQ ID NO.: 4132 gezeigt umfasst, erhöht oder erzeugt wird, oder wenn die Aktivität „2-Desoxyglucose-6-phosphatphosphatase” in einer Pflanzenzelle, einer Pflanze oder einem Teil davon erhöht oder erzeugt wird, insbesondere bei einer Lokalisierung des Polypeptids in Plastiden eine erhöhte Toleranz gegenüber abiotischem Umweltstress, insbesondere eine erhöhte Toleranz gegenüber niedrigen Temperaturen, verglichen mit einer entsprechenden nicht modifizierten, z. B. nicht transformierten, Pflanzenzelle oder Pflanze vom Wildtyp oder einem Teil davon verliehen. Insbesondere wird eine Ertragserhöhung von 1,1-fach bis 1,215-fach, zum Beispiel plus wenigstens 100% davon unter Bedingungen niedriger Temperaturen verliehen, verglichen mit einer entsprechenden nicht modifizierten, z. B. nicht transformierten, Pflanzenzelle oder Pflanze vom Wildtyp oder einem Teil davon.
  • Dementsprechend wird gemäß einer Ausführungsform, wenn die Aktivität eines Polypeptids gemäß der Polypeptid-SEQ ID NO.: 4218 beziehungsweise kodiert durch ein Nukleinsäuremolekül, das die Nukleinsäure-SEQ ID NO.: 4217 umfasst, oder eines Homologs dieses Nukleinsäuremoleküls beziehungsweise Polypeptids, z. B. im Fall der Aktivität des Saccharomyces cerevisiae-Nukleinsäuremoleküls beziehungsweise eines Polypeptids, welches die Nukleinsäure-SEQ ID NO. 4217 beziehungsweise Polypeptid-SEQ ID NO. 4218 umfasst, erhöht oder erzeugt wird, z. B. wenn die Aktivität eines Nukleinsäuremoleküls oder eines Polypeptids, welches die Nukleinsäure oder das Polypeptid oder die Konsensussequenz oder das Polypeptidmotiv wie in Tabelle I, II bzw. IV, Spalte 7, in der jeweils gleichen Zeile wie das Nukleinsäuremolekül SEQ ID NO.: 4217 beziehungsweise das Polypeptid SEQ ID NO.: 4218 gezeigt umfasst, erhöht oder erzeugt wird, oder wenn die Aktivität „Lanosterolsynthase” in einer Pflanzenzelle, einer Pflanze oder einem Teil davon erhöht oder erzeugt wird, insbesondere bei einer Lokalisierung im Zytoplasma ein erhöhter Ertrag, verglichen mit einer entsprechenden nicht modifizierten, z. B. nicht transformierten, Pflanzenzelle oder Pflanze vom Wildtyp oder einem Teil davon verliehen.
  • Gemäß einer weiteren Ausführungsform wird, wenn die Aktivität eines Polypeptids gemäß der Polypeptid-SEQ ID NO.: 4218 beziehungsweise kodiert durch ein Nukleinsäuremolekül, das die Nukleinsäure-SEQ ID NO.: 4217 umfasst, oder eines Homologs dieses Nukleinsäuremoleküls beziehungsweise Polypeptids, z. B. im Fall der Aktivität des Saccharomyces cerevisiae-Nukleinsäuremoleküls beziehungsweise eines Polypeptids, welches die Nukleinsäure-SEQ ID NO. 4217 beziehungsweise Polypeptid-SEQ ID NO. 4218 umfasst, erhöht oder erzeugt wird, z. B. wenn die Aktivität eines Nukleinsäuremoleküls oder eines Polypeptids, welches die Nukleinsäure oder das Polypeptid oder die Konsensussequenz oder das Polypeptidmotiv wie in Tabelle I, II bzw. IV, Spalte 7, in der jeweils gleichen Zeile wie das Nukleinsäuremolekül SEQ ID NO.: 4217 beziehungsweise das Polypeptid SEQ ID NO.: 4218 gezeigt umfasst, erhöht oder erzeugt wird, oder wenn die Aktivität „Lanosterolsynthase” in einer Pflanzenzelle, einer Pflanze oder einem Teil davon erhöht oder erzeugt wird, insbesondere bei einer Lokalisierung des Polypeptids im Zytoplasma eine erhöhte Toleranz gegenüber abiotischem Umweltstress, insbesondere eine erhöhte Toleranz gegenüber niedrigen Temperaturen, verglichen mit einer entsprechenden nicht modifizierten, z. B. nicht transformierten, Pflanzenzelle oder Pflanze vom Wildtyp oder einem Teil davon verliehen. Insbesondere wird eine Ertragserhöhung von 1,1-fach bis 1,387-fach, zum Beispiel plus wenigstens 100% davon unter Bedingungen niedriger Temperaturen verliehen, verglichen mit einer entsprechenden nicht modifizierten, z. B. nicht transformierten, Pflanzenzelle oder Pflanze vom Wildtyp oder einem Teil davon.
  • Dementsprechend wird gemäß einer Ausführungsform, wenn die Aktivität eines Polypeptids gemäß der Polypeptid-SEQ ID NO.: 4492 beziehungsweise kodiert durch ein Nukleinsäuremolekül, das die Nukleinsäure-SEQ ID NO.: 4491 umfasst, oder eines Homologs dieses Nukleinsäuremoleküls beziehungsweise Polypeptids, z. B. im Fall der Aktivität des Saccharomyces cerevisiae-Nukleinsäuremoleküls beziehungsweise eines Polypeptids, welches die Nukleinsäure-SEQ ID NO. 4491 beziehungsweise Polypeptid-SEQ ID NO. 4492 umfasst, erhöht oder erzeugt wird, z. B. wenn die Aktivität eines Nukleinsäuremoleküls oder eines Polypeptids, welches die Nukleinsäure oder das Polypeptid oder die Konsensussequenz oder das Polypeptidmotiv wie in Tabelle I, II bzw. IV, Spalte 7, in der jeweils gleichen Zeile wie das Nukleinsäuremolekül SEQ ID NO.: 4491 beziehungsweise das Polypeptid SEQ ID NO.: 4492 gezeigt umfasst, erhöht oder erzeugt wird, oder wenn die Aktivität „yhr213w-a-Protein” in einer Pflanzenzelle, einer Pflanze oder einem Teil davon erhöht oder erzeugt wird, insbesondere bei einer Lokalisierung im Zytoplasma ein erhöhter Ertrag, verglichen mit einer entsprechenden nicht modifizierten, z. B. nicht transformierten, Pflanzenzelle oder Pflanze vom Wildtyp oder einem Teil davon verliehen.
  • Gemäß einer weiteren Ausführungsform wird, wenn die Aktivität eines Polypeptids gemäß der Polypeptid-SEQ ID NO.: 4492 beziehungsweise kodiert durch ein Nukleinsäuremolekül, das die Nukleinsäure-SEQ ID NO.: 4491 umfasst, oder eines Homologs dieses Nukleinsäuremoleküls beziehungsweise Polypeptids, z. B. im Fall der Aktivität des Saccharomyces cerevisiae-Nukleinsäuremoleküls beziehungsweise eines Polypeptids, welches die Nukleinsäure-SEQ ID NO. 4491 beziehungsweise Polypeptid-SEQ ID NO. 4492 umfasst, erhöht oder erzeugt wird, z. B. wenn die Aktivität eines Nukleinsäuremoleküls oder eines Polypeptids, welches die Nukleinsäure oder das Polypeptid oder die Konsensussequenz oder das Polypeptidmotiv wie in Tabelle I, II bzw. IV, Spalte 7, in der jeweils gleichen Zeile wie das Nukleinsäuremolekül SEQ ID NO.: 4491 beziehungsweise das Polypeptid SEQ ID NO.: 4492 gezeigt umfasst, erhöht oder erzeugt wird, oder wenn die Aktivität „yhr213w-a-Protein” in einer Pflanzenzelle, einer Pflanze oder einem Teil davon erhöht oder erzeugt wird, insbesondere bei einer Lokalisierung des Polypeptids im Zytoplasma eine erhöhte Toleranz gegenüber abiotischem Umweltstress, insbesondere eine erhöhte Toleranz gegenüber niedrigen Temperaturen, verglichen mit einer entsprechenden nicht modifizierten, z. B. nicht transformierten, Pflanzenzelle oder Pflanze vom Wildtyp oder einem Teil davon verliehen. Insbesondere wird eine Ertragserhöhung von 1,1-fach bis 1,570-fach, zum Beispiel plus wenigstens 100% davon unter Bedingungen niedriger Temperaturen verliehen, verglichen mit einer entsprechenden nicht modifizierten, z. B. nicht transformierten, Pflanzenzelle oder Pflanze vom Wildtyp oder einem Teil davon.
  • Gemäß einer weiteren Ausführungsform wird, wenn die Aktivität eines Polypeptids gemäß der Polypeptid-SEQ ID NO.: 4492 beziehungsweise kodiert durch ein Nukleinsäuremolekül, das die Nukleinsäure-SEQ ID NO.: 4491 umfasst, oder eines Homologs dieses Nukleinsäuremoleküls beziehungsweise Polypeptids, z. B. im Fall der Aktivität des Saccharomyces cerevisiae-Nukleinsäuremoleküls beziehungsweise eines Polypeptids, welches die Nukleinsäure-SEQ ID NO. 4491 beziehungsweise Polypeptid-SEQ ID NO. 4492 umfasst, erhöht oder erzeugt wird, z. B. wenn die Aktivität eines Nukleinsäuremoleküls oder eines Polypeptids, welches die Nukleinsäure oder das Polypeptid oder die Konsensussequenz oder das Polypeptidmotiv wie in Tabelle I, II bzw. IV, Spalte 7, in der jeweils gleichen Zeile wie das Nukleinsäuremolekül SEQ ID NO.: 4491 beziehungsweise das Polypeptid SEQ ID NO.: 4492 gezeigt umfasst, erhöht oder erzeugt wird, oder wenn die Aktivität „yhr213w-a-Protein” in einer Pflanzenzelle, einer Pflanze oder einem Teil davon erhöht oder erzeugt wird, insbesondere bei einer Lokalisierung des Polypeptids im Zytoplasma ein erhöhter intrinsischer Ertrag, verglichen mit einer entsprechenden nicht modifizierten, z. B. nicht transformierten, Pflanzenzelle oder Pflanze vom Wildtyp oder einem Teil davon verliehen. Gemäß einer Ausführungsform wird ein erhöhter Ertrag unter Standardbedingungen (intrinsischer Ertrag) verliehen, z. B. in Abwesenheit von Nährstoffmangel sowie Stressbedingungen. Insbesondere wird eine Ertragserhöhung von 1,05-fach bis 1,407-fach, zum Beispiel plus wenigstens 100% davon unter Standardbedingungen (intrinsischer Ertrag) verliehen, z. B. in Abwesenheit von Nährstoffmangel sowie Stressbedingungen, verglichen mit einer entsprechenden nicht modifizierten, z. B. nicht transformierten, Pflanzenzelle oder Pflanze vom Wildtyp oder einem Teil davon.
  • Dementsprechend wird gemäß einer Ausführungsform, wenn die Aktivität eines Polypeptids gemäß der Polypeptid-SEQ ID NO.: 4496 beziehungsweise kodiert durch ein Nukleinsäuremolekül, das die Nukleinsäure-SEQ ID NO.: 4495 umfasst, oder eines Homologs dieses Nukleinsäuremoleküls beziehungsweise Polypeptids, z. B. im Fall der Aktivität des Saccharomyces cerevisiae-Nukleinsäuremoleküls beziehungsweise eines Polypeptids, welches die Nukleinsäure-SEQ ID NO. 4495 beziehungsweise Polypeptid-SEQ ID NO. 4496 umfasst, erhöht oder erzeugt wird, z. B. wenn die Aktivität eines Nukleinsäuremoleküls oder eines Polypeptids, welches die Nukleinsäure oder das Polypeptid oder die Konsensussequenz oder das Polypeptidmotiv wie in Tabelle I, II bzw. IV, Spalte 7, in der jeweils gleichen Zeile wie das Nukleinsäuremolekül SEQ ID NO.: 4495 beziehungsweise das Polypeptid SEQ ID NO.: 4496 gezeigt umfasst, erhöht oder erzeugt wird, oder wenn die Aktivität „(DL)-Glycerin-3-phosphatase” in einer Pflanzenzelle, einer Pflanze oder einem Teil davon erhöht oder erzeugt wird, insbesondere bei einer Lokalisierung im Zytoplasma ein erhöhter Ertrag, verglichen mit einer entsprechenden nicht modifizierten, z. B. nicht transformierten, Pflanzenzelle oder Pflanze vom Wildtyp oder einem Teil davon verliehen.
  • Gemäß einer weiteren Ausführungsform wird, wenn die Aktivität eines Polypeptids gemäß der Polypeptid-SEQ ID NO.: 4496 beziehungsweise kodiert durch ein Nukleinsäuremolekül, das die Nukleinsäure-SEQ ID NO.: 4495 umfasst, oder eines Homologs dieses Nukleinsäuremoleküls beziehungsweise Polypeptids, z. B. im Fall der Aktivität des Saccharomyces cerevisiae-Nukleinsäuremoleküls beziehungsweise eines Polypeptids, welches die Nukleinsäure-SEQ ID NO. 4495 beziehungsweise Polypeptid-SEQ ID NO. 4496 umfasst, erhöht oder erzeugt wird, z. B. wenn die Aktivität eines Nukleinsäuremoleküls oder eines Polypeptids, welches die Nukleinsäure oder das Polypeptid oder die Konsensussequenz oder das Polypeptidmotiv wie in Tabelle I, II bzw. IV, Spalte 7, in der jeweils gleichen Zeile wie das Nukleinsäuremolekül SEQ ID NO.: 4495 beziehungsweise das Polypeptid SEQ ID NO.: 4496 gezeigt umfasst, erhöht oder erzeugt wird, oder wenn die Aktivität „(DL)-Glycerin-3-phosphatase” in einer Pflanzenzelle, einer Pflanze oder einem Teil davon erhöht oder erzeugt wird, insbesondere bei einer Lokalisierung des Polypeptids im Zytoplasma eine erhöhte Toleranz gegenüber abiotischem Umweltstress, insbesondere eine erhöhte Toleranz gegenüber niedrigen Temperaturen, verglichen mit einer entsprechenden nicht modifizierten, z. B. nicht transformierten, Pflanzenzelle oder Pflanze vom Wildtyp oder einem Teil davon verliehen. Insbesondere wird eine Ertragserhöhung von 1,1-fach bis 1,523-fach, zum Beispiel plus wenigstens 100% davon unter Bedingungen niedriger Temperaturen verliehen, verglichen mit einer entsprechenden nicht modifizierten, z. B. nicht transformierten, Pflanzenzelle oder Pflanze vom Wildtyp oder einem Teil davon.
  • Gemäß einer weiteren Ausführungsform wird, wenn die Aktivität eines Polypeptids gemäß der Polypeptid-SEQ ID NO.: 4496 beziehungsweise kodiert durch ein Nukleinsäuremolekül, das die Nukleinsäure-SEQ ID NO.: 4495 umfasst, oder eines Homologs dieses Nukleinsäuremoleküls beziehungsweise Polypeptids, z. B. im Fall der Aktivität des Saccharomyces cerevisiae-Nukleinsäuremoleküls beziehungsweise eines Polypeptids, welches die Nukleinsäure-SEQ ID NO. 4495 beziehungsweise Polypeptid-SEQ ID NO. 4496 umfasst, erhöht oder erzeugt wird, z. B. wenn die Aktivität eines Nukleinsäuremoleküls oder eines Polypeptids, welches die Nukleinsäure oder das Polypeptid oder die Konsensussequenz oder das Polypeptidmotiv wie in Tabelle I, II bzw. IV, Spalte 7, in der jeweils gleichen Zeile wie das Nukleinsäuremolekül SEQ ID NO.: 4495 beziehungsweise das Polypeptid SEQ ID NO.: 4496 gezeigt umfasst, erhöht oder erzeugt wird, oder wenn die Aktivität „(DL)-Glycerin-3-phosphatase” in einer Pflanzenzelle, einer Pflanze oder einem Teil davon erhöht oder erzeugt wird, insbesondere bei einer Lokalisierung des Polypeptids im Zytoplasma eine erhöhte Effizienz der Nährstoffausnutzung, verglichen mit einer entsprechenden nicht modifizierten, z. B. nicht transformierten, Pflanzenzelle oder Pflanze vom Wildtyp oder einem Teil davon verliehen. Gemäß einer Ausführungsform wird eine erhöhte Effizienz der Stickstoffausnutzung verliehen. Insbesondere wird eine Ertragserhöhung von 1,05-fach bis 1,498-fach, zum Beispiel plus wenigstens 100% davon unter Stickstoffmangelbedingungen verliehen, verglichen mit einer entsprechenden nicht modifizierten, z. B. nicht transformierten, Pflanzenzelle oder Pflanze vom Wildtyp oder einem Teil davon.
  • Gemäß einer weiteren Ausführungsform wird, wenn die Aktivität eines Polypeptids gemäß der Polypeptid-SEQ ID NO.: 4496 beziehungsweise kodiert durch ein Nukleinsäuremolekül, das die Nukleinsäure-SEQ ID NO.: 4495 umfasst, oder eines Homologs dieses Nukleinsäuremoleküls beziehungsweise Polypeptids, z. B. im Fall der Aktivität des Saccharomyces cerevisiae-Nukleinsäuremoleküls beziehungsweise eines Polypeptids, welches die Nukleinsäure-SEQ ID NO. 4495 beziehungsweise Polypeptid-SEQ ID NO. 4496 umfasst, erhöht oder erzeugt wird, z. B. wenn die Aktivität eines Nukleinsäuremoleküls oder eines Polypeptids, welches die Nukleinsäure oder das Polypeptid oder die Konsensussequenz oder das Polypeptidmotiv wie in Tabelle I, II bzw. IV, Spalte 7, in der jeweils gleichen Zeile wie das Nukleinsäuremolekül SEQ ID NO.: 4495 beziehungsweise das Polypeptid SEQ ID NO.: 4496 gezeigt umfasst, erhöht oder erzeugt wird, oder wenn die Aktivität „(DL)-Glycerin-3-phosphatase” in einer Pflanzenzelle, einer Pflanze oder einem Teil davon erhöht oder erzeugt wird, insbesondere bei einer Lokalisierung des Polypeptids im Zytoplasma ein erhöhter intrinsischer Ertrag, verglichen mit einer entsprechenden nicht modifizierten, z. B. nicht transformierten, Pflanzenzelle oder Pflanze vom Wildtyp oder einem Teil davon verliehen. Gemäß einer Ausführungsform wird ein erhöhter Ertrag unter Standardbedingungen (intrinsischer Ertrag) verliehen, z. B. in Abwesenheit von Nährstoffmangel sowie Stressbedingungen. Insbesondere wird eine Ertragserhöhung von 1,05-fach bis 1,383-fach, zum Beispiel plus wenigstens 100% davon unter Standardbedingungen (intrinsischer Ertrag) verliehen, z. B. in Abwesenheit von Nährstoffmangel sowie Stressbedingungen, verglichen mit einer entsprechenden nicht modifizierten, z. B. nicht transformierten, Pflanzenzelle oder Pflanze vom Wildtyp oder einem Teil davon.
  • Dementsprechend wird gemäß einer Ausführungsform, wenn die Aktivität eines Polypeptids gemäß der Polypeptid-SEQ ID NO.: 4559 beziehungsweise kodiert durch ein Nukleinsäuremolekül, das die Nukleinsäure-SEQ ID NO.: 4558 umfasst, oder eines Homologs dieses Nukleinsäuremoleküls beziehungsweise Polypeptids, z. B. im Fall der Aktivität des Saccharomyces cerevisiae-Nukleinsäuremoleküls beziehungsweise eines Polypeptids, welches die Nukleinsäure-SEQ ID NO. 4558 beziehungsweise Polypeptid-SEQ ID NO. 4559 umfasst, erhöht oder erzeugt wird, z. B. wenn die Aktivität eines Nukleinsäuremoleküls oder eines Polypeptids, welches die Nukleinsäure oder das Polypeptid oder die Konsensussequenz oder das Polypeptidmotiv wie in Tabelle I, II bzw. IV, Spalte 7, in der jeweils gleichen Zeile wie das Nukleinsäuremolekül SEQ ID NO.: 4558 beziehungsweise das Polypeptid SEQ ID NO.: 4559 gezeigt umfasst, erhöht oder erzeugt wird, oder wenn die Aktivität „die Transkription steuerndes Protein” in einer Pflanzenzelle, einer Pflanze oder einem Teil davon erhöht oder erzeugt wird, insbesondere bei einer Lokalisierung in Plastiden ein erhöhter Ertrag, verglichen mit einer entsprechenden nicht modifizierten, z. B. nicht transformierten, Pflanzenzelle oder Pflanze vom Wildtyp oder einem Teil davon verliehen.
  • Gemäß einer weiteren Ausführungsform wird, wenn die Aktivität eines Polypeptids gemäß der Polypeptid-SEQ ID NO.: 4559 beziehungsweise kodiert durch ein Nukleinsäuremolekül, das die Nukleinsäure-SEQ ID NO.: 4558 umfasst, oder eines Homologs dieses Nukleinsäuremoleküls beziehungsweise Polypeptids, z. B. im Fall der Aktivität des Saccharomyces cerevisiae-Nukleinsäuremoleküls beziehungsweise eines Polypeptids, welches die Nukleinsäure-SEQ ID NO. 4558 beziehungsweise Polypeptid-SEQ ID NO. 4559 umfasst, erhöht oder erzeugt wird, z. B. wenn die Aktivität eines Nukleinsäuremoleküls oder eines Polypeptids, welches die Nukleinsäure oder das Polypeptid oder die Konsensussequenz oder das Polypeptidmotiv wie in Tabelle I, II bzw. IV, Spalte 7, in der jeweils gleichen Zeile wie das Nukleinsäuremolekül SEQ ID NO.: 4558 beziehungsweise das Polypeptid SEQ ID NO.: 4559 gezeigt umfasst, erhöht oder erzeugt wird, oder wenn die Aktivität „die Transkription steuerndes Protein” in einer Pflanzenzelle, einer Pflanze oder einem Teil davon erhöht oder erzeugt wird, insbesondere bei einer Lokalisierung des Polypeptids in Plastiden eine erhöhte Toleranz gegenüber abiotischem Umweltstress, insbesondere eine erhöhte Toleranz gegenüber niedrigen Temperaturen, verglichen mit einer entsprechenden nicht modifizierten, z. B. nicht transformierten, Pflanzenzelle oder Pflanze vom Wildtyp oder einem Teil davon verliehen. Insbesondere wird eine Ertragserhöhung von 1,1-fach bis 1,296-fach, zum Beispiel plus wenigstens 100% davon unter Bedingungen niedriger Temperaturen verliehen, verglichen mit einer entsprechenden nicht modifizierten, z. B. nicht transformierten, Pflanzenzelle oder Pflanze vom Wildtyp oder einem Teil davon.
  • Gemäß einer weiteren Ausführungsform wird, wenn die Aktivität eines Polypeptids gemäß der Polypeptid-SEQ ID NO.: 4559 beziehungsweise kodiert durch ein Nukleinsäuremolekül, das die Nukleinsäure-SEQ ID NO.: 4558 umfasst, oder eines Homologs dieses Nukleinsäuremoleküls beziehungsweise Polypeptids, z. B. im Fall der Aktivität des Saccharomyces cerevisiae-Nukleinsäuremoleküls beziehungsweise eines Polypeptids, welches die Nukleinsäure-SEQ ID NO. 4558 beziehungsweise Polypeptid-SEQ ID NO. 4559 umfasst, erhöht oder erzeugt wird, z. B. wenn die Aktivität eines Nukleinsäuremoleküls oder eines Polypeptids, welches die Nukleinsäure oder das Polypeptid oder die Konsensussequenz oder das Polypeptidmotiv wie in Tabelle I, II bzw. IV, Spalte 7, in der jeweils gleichen Zeile wie das Nukleinsäuremolekül SEQ ID NO.: 4558 beziehungsweise das Polypeptid SEQ ID NO.: 4559 gezeigt umfasst, erhöht oder erzeugt wird, oder wenn die Aktivität „die Transkription steuerndes Protein” in einer Pflanzenzelle, einer Pflanze oder einem Teil davon erhöht oder erzeugt wird, insbesondere bei einer Lokalisierung des Polypeptids in Plastiden ein erhöhter intrinsischer Ertrag, verglichen mit einer entsprechenden nicht modifizierten, z. B. nicht transformierten, Pflanzenzelle oder Pflanze vom Wildtyp oder einem Teil davon verliehen. Gemäß einer Ausführungsform wird ein erhöhter Ertrag unter Standardbedingungen (intrinsischer Ertrag) verliehen, z. B. in Abwesenheit von Nährstoffmangel sowie Stressbedingungen. Insbesondere wird eine Ertragserhöhung von 1,05-fach bis 1,175-fach, zum Beispiel plus wenigstens 100% davon unter Standardbedingungen (intrinsischer Ertrag) verliehen, z. B. in Abwesenheit von Nährstoffmangel sowie Stressbedingungen, verglichen mit einer entsprechenden nicht modifizierten, z. B. nicht transformierten, Pflanzenzelle oder Pflanze vom Wildtyp oder einem Teil davon.
  • Dementsprechend wird gemäß einer Ausführungsform, wenn die Aktivität eines Polypeptids gemäß der Polypeptid-SEQ ID NO.: 4590 beziehungsweise kodiert durch ein Nukleinsäuremolekül, das die Nukleinsäure-SEQ ID NO.: 4589 umfasst, oder eines Homologs dieses Nukleinsäuremoleküls beziehungsweise Polypeptids, z. B. im Fall der Aktivität des Saccharomyces cerevisiae-Nukleinsäuremoleküls beziehungsweise eines Polypeptids, welches die Nukleinsäure-SEQ ID NO. 4589 beziehungsweise Polypeptid-SEQ ID NO. 4590 umfasst, erhöht oder erzeugt wird, z. B. wenn die Aktivität eines Nukleinsäuremoleküls oder eines Polypeptids, welches die Nukleinsäure oder das Polypeptid oder die Konsensussequenz oder das Polypeptidmotiv wie in Tabelle I, II bzw. IV, Spalte 7, in der jeweils gleichen Zeile wie das Nukleinsäuremolekül SEQ ID NO.: 4589 beziehungsweise das Polypeptid SEQ ID NO.: 4590 gezeigt umfasst, erhöht oder erzeugt wird, oder wenn die Aktivität „Glykogensyntheseinitiatorprotein” in einer Pflanzenzelle, einer Pflanze oder einem Teil davon erhöht oder erzeugt wird, insbesondere bei einer Lokalisierung in Plastiden ein erhöhter Ertrag, verglichen mit einer entsprechenden nicht modifizierten, z. B. nicht transformierten, Pflanzenzelle oder Pflanze vom Wildtyp oder einem Teil davon verliehen.
  • Gemäß einer weiteren Ausführungsform wird, wenn die Aktivität eines Polypeptids gemäß der Polypeptid-SEQ ID NO.: 4590 beziehungsweise kodiert durch ein Nukleinsäuremolekül, das die Nukleinsäure-SEQ ID NO.: 4589 umfasst, oder eines Homologs dieses Nukleinsäuremoleküls beziehungsweise Polypeptids, z. B. im Fall der Aktivität des Saccharomyces cerevisiae-Nukleinsäuremoleküls beziehungsweise eines Polypeptids, welches die Nukleinsäure-SEQ ID NO. 4589 beziehungsweise Polypeptid-SEQ ID NO. 4590 umfasst, erhöht oder erzeugt wird, z. B. wenn die Aktivität eines Nukleinsäuremoleküls oder eines Polypeptids, welches die Nukleinsäure oder das Polypeptid oder die Konsensussequenz oder das Polypeptidmotiv wie in Tabelle I, II bzw. IV, Spalte 7, in der jeweils gleichen Zeile wie das Nukleinsäuremolekül SEQ ID NO.: 4589 beziehungsweise das Polypeptid SEQ ID NO.: 4590 gezeigt umfasst, erhöht oder erzeugt wird, oder wenn die Aktivität „Glykogensyntheseinitiatorprotein” in einer Pflanzenzelle, einer Pflanze oder einem Teil davon erhöht oder erzeugt wird, insbesondere bei einer Lokalisierung des Polypeptids in Plastiden eine erhöhte Toleranz gegenüber abiotischem Umweltstress, insbesondere eine erhöhte Toleranz gegenüber niedrigen Temperaturen, verglichen mit einer entsprechenden nicht modifizierten, z. B. nicht transformierten, Pflanzenzelle oder Pflanze vom Wildtyp oder einem Teil davon verliehen. Insbesondere wird eine Ertragserhöhung von 1,1-fach bis 1,48-fach, zum Beispiel plus wenigstens 100% davon unter Bedingungen niedriger Temperaturen verliehen, verglichen mit einer entsprechenden nicht modifizierten, z. B. nicht transformierten, Pflanzenzelle oder Pflanze vom Wildtyp oder einem Teil davon.
  • Gemäß einer weiteren Ausführungsform wird, wenn die Aktivität eines Polypeptids gemäß der Polypeptid-SEQ ID NO.: 4590 beziehungsweise kodiert durch ein Nukleinsäuremolekül, das die Nukleinsäure-SEQ ID NO.: 4589 umfasst, oder eines Homologs dieses Nukleinsäuremoleküls beziehungsweise Polypeptids, z. B. im Fall der Aktivität des Saccharomyces cerevisiae-Nukleinsäuremoleküls beziehungsweise eines Polypeptids, welches die Nukleinsäure-SEQ ID NO. 4589 beziehungsweise Polypeptid-SEQ ID NO. 4590 umfasst, erhöht oder erzeugt wird, z. B. wenn die Aktivität eines Nukleinsäuremoleküls oder eines Polypeptids, welches die Nukleinsäure oder das Polypeptid oder die Konsensussequenz oder das Polypeptidmotiv wie in Tabelle I, II bzw. IV, Spalte 7, in der jeweils gleichen Zeile wie das Nukleinsäuremolekül SEQ ID NO.: 4589 beziehungsweise das Polypeptid SEQ ID NO.: 4590 gezeigt umfasst, erhöht oder erzeugt wird, oder wenn die Aktivität „Glykogensyntheseinitiatorprotein” in einer Pflanzenzelle, einer Pflanze oder einem Teil davon erhöht oder erzeugt wird, insbesondere bei einer Lokalisierung des Polypeptids in Plastiden ein erhöhter intrinsischer Ertrag, verglichen mit einer entsprechenden nicht modifizierten, z. B. nicht transformierten, Pflanzenzelle oder Pflanze vom Wildtyp oder einem Teil davon verliehen. Gemäß einer Ausführungsform wird ein erhöhter Ertrag unter Standardbedingungen (intrinsischer Ertrag) verliehen, z. B. in Abwesenheit von Nährstoffmangel sowie Stressbedingungen. Insbesondere wird eine Ertragserhöhung von 1,05-fach bis 1,065-fach, zum Beispiel plus wenigstens 100% davon unter Standardbedingungen (intrinsischer Ertrag) verliehen, z. B. in Abwesenheit von Nährstoffmangel sowie Stressbedingungen, verglichen mit einer entsprechenden nicht modifizierten, z. B. nicht transformierten, Pflanzenzelle oder Pflanze vom Wildtyp oder einem Teil davon.
  • Dementsprechend wird gemäß einer Ausführungsform, wenn die Aktivität eines Polypeptids gemäß der Polypeptid-SEQ ID NO.: 4623 beziehungsweise kodiert durch ein Nukleinsäuremolekül, das die Nukleinsäure-SEQ ID NO.: 4622 umfasst, oder eines Homologs dieses Nukleinsäuremoleküls beziehungsweise Polypeptids, z. B. im Fall der Aktivität des Saccharomyces cerevisiae-Nukleinsäuremoleküls beziehungsweise eines Polypeptids, welches die Nukleinsäure-SEQ ID NO. 4622 beziehungsweise Polypeptid-SEQ ID NO. 4623 umfasst, erhöht oder erzeugt wird, z. B. wenn die Aktivität eines Nukleinsäuremoleküls oder eines Polypeptids, welches die Nukleinsäure oder das Polypeptid oder die Konsensussequenz oder das Polypeptidmotiv wie in Tabelle I, II bzw. IV, Spalte 7, in der jeweils gleichen Zeile wie das Nukleinsäuremolekül SEQ ID NO.: 4622 beziehungsweise das Polypeptid SEQ ID NO.: 4623 gezeigt umfasst, erhöht oder erzeugt wird, oder wenn die Aktivität „Aspartataminotransferase” in einer Pflanzenzelle, einer Pflanze oder einem Teil davon erhöht oder erzeugt wird, insbesondere bei einer Lokalisierung im Zytoplasma ein erhöhter Ertrag, verglichen mit einer entsprechenden nicht modifizierten, z. B. nicht transformierten, Pflanzenzelle oder Pflanze vom Wildtyp oder einem Teil davon verliehen.
  • Gemäß einer weiteren Ausführungsform wird, wenn die Aktivität eines Polypeptids gemäß der Polypeptid-SEQ ID NO.: 4623 beziehungsweise kodiert durch ein Nukleinsäuremolekül, das die Nukleinsäure-SEQ ID NO.: 4622 umfasst, oder eines Homologs dieses Nukleinsäuremoleküls beziehungsweise Polypeptids, z. B. im Fall der Aktivität des Saccharomyces cerevisiae-Nukleinsäuremoleküls beziehungsweise eines Polypeptids, welches die Nukleinsäure-SEQ ID NO. 4622 beziehungsweise Polypeptid-SEQ ID NO. 4623 umfasst, erhöht oder erzeugt wird, z. B. wenn die Aktivität eines Nukleinsäuremoleküls oder eines Polypeptids, welches die Nukleinsäure oder das Polypeptid oder die Konsensussequenz oder das Polypeptidmotiv wie in Tabelle I, II bzw. IV, Spalte 7, in der jeweils gleichen Zeile wie das Nukleinsäuremolekül SEQ ID NO.: 4622 beziehungsweise das Polypeptid SEQ ID NO.: 4623 gezeigt umfasst, erhöht oder erzeugt wird, oder wenn die Aktivität „Aspartataminotransferase” in einer Pflanzenzelle, einer Pflanze oder einem Teil davon erhöht oder erzeugt wird, insbesondere bei einer Lokalisierung des Polypeptids im Zytoplasma eine erhöhte Toleranz gegenüber abiotischem Umweltstress, insbesondere eine erhöhte Toleranz gegenüber niedrigen Temperaturen, verglichen mit einer entsprechenden nicht modifizierten, z. B. nicht transformierten, Pflanzenzelle oder Pflanze vom Wildtyp oder einem Teil davon verliehen. Insbesondere wird eine Ertragserhöhung von 1,1-fach bis 1,848-fach, zum Beispiel plus wenigstens 100% davon unter Bedingungen niedriger Temperaturen verliehen, verglichen mit einer entsprechenden nicht modifizierten, z. B. nicht transformierten, Pflanzenzelle oder Pflanze vom Wildtyp oder einem Teil davon.
  • Gemäß einer weiteren Ausführungsform wird, wenn die Aktivität eines Polypeptids gemäß der Polypeptid-SEQ ID NO.: 4623 beziehungsweise kodiert durch ein Nukleinsäuremolekül, das die Nukleinsäure-SEQ ID NO.: 4622 umfasst, oder eines Homologs dieses Nukleinsäuremoleküls beziehungsweise Polypeptids, z. B. im Fall der Aktivität des Saccharomyces cerevisiae-Nukleinsäuremoleküls beziehungsweise eines Polypeptids, welches die Nukleinsäure-SEQ ID NO. 4622 beziehungsweise Polypeptid-SEQ ID NO. 4623 umfasst, erhöht oder erzeugt wird, z. B. wenn die Aktivität eines Nukleinsäuremoleküls oder eines Polypeptids, welches die Nukleinsäure oder das Polypeptid oder die Konsensussequenz oder das Polypeptidmotiv wie in Tabelle I, II bzw. IV, Spalte 7, in der jeweils gleichen Zeile wie das Nukleinsäuremolekül SEQ ID NO.: 4622 beziehungsweise das Polypeptid SEQ ID NO.: 4623 gezeigt umfasst, erhöht oder erzeugt wird, oder wenn die Aktivität „Aspartataminotransferase” in einer Pflanzenzelle, einer Pflanze oder einem Teil davon erhöht oder erzeugt wird, insbesondere bei einer Lokalisierung des Polypeptids im Zytoplasma eine erhöhte Effizienz der Nährstoffausnutzung, verglichen mit einer entsprechenden nicht modifizierten, z. B. nicht transformierten, Pflanzenzelle oder Pflanze vom Wildtyp oder einem Teil davon verliehen. Gemäß einer Ausführungsform wird eine erhöhte Effizienz der Stickstoffausnutzung verliehen. Insbesondere wird eine Ertragserhöhung von 1,05-fach bis 1,172-fach, zum Beispiel plus wenigstens 100% davon unter Stickstoffmangelbedingungen verliehen, verglichen mit einer entsprechenden nicht modifizierten, z. B. nicht transformierten, Pflanzenzelle oder Pflanze vom Wildtyp oder einem Teil davon.
  • Gemäß einer weiteren Ausführungsform wird, wenn die Aktivität eines Polypeptids gemäß der Polypeptid-SEQ ID NO.: 4623 beziehungsweise kodiert durch ein Nukleinsäuremolekül, das die Nukleinsäure-SEQ ID NO.: 4622 umfasst, oder eines Homologs dieses Nukleinsäuremoleküls beziehungsweise Polypeptids, z. B. im Fall der Aktivität des Saccharomyces cerevisiae-Nukleinsäuremoleküls beziehungsweise eines Polypeptids, welches die Nukleinsäure-SEQ ID NO. 4622 beziehungsweise Polypeptid-SEQ ID NO. 4623 umfasst, erhöht oder erzeugt wird, z. B. wenn die Aktivität eines Nukleinsäuremoleküls oder eines Polypeptids, welches die Nukleinsäure oder das Polypeptid oder die Konsensussequenz oder das Polypeptidmotiv wie in Tabelle I, II bzw. IV, Spalte 7, in der jeweils gleichen Zeile wie das Nukleinsäuremolekül SEQ ID NO.: 4622 beziehungsweise das Polypeptid SEQ ID NO.: 4623 gezeigt umfasst, erhöht oder erzeugt wird, oder wenn die Aktivität „Aspartataminotransferase” in einer Pflanzenzelle, einer Pflanze oder einem Teil davon erhöht oder erzeugt wird, insbesondere bei einer Lokalisierung des Polypeptids im Zytoplasma ein erhöhter intrinsischer Ertrag, verglichen mit einer entsprechenden nicht modifizierten, z. B. nicht transformierten, Pflanzenzelle oder Pflanze vom Wildtyp oder einem Teil davon verliehen. Gemäß einer Ausführungsform wird ein erhöhter Ertrag unter Standardbedingungen (intrinsischer Ertrag) verliehen, z. B. in Abwesenheit von Nährstoffmangel sowie Stressbedingungen. Insbesondere wird eine Ertragserhöhung von 1,05-fach bis 1,329-fach, zum Beispiel plus wenigstens 100% davon unter Standardbedingungen (intrinsischer Ertrag) verliehen, z. B. in Abwesenheit von Nährstoffmangel sowie Stressbedingungen, verglichen mit einer entsprechenden nicht modifizierten, z. B. nicht transformierten, Pflanzenzelle oder Pflanze vom Wildtyp oder einem Teil davon.
  • Dementsprechend wird gemäß einer Ausführungsform, wenn die Aktivität eines Polypeptids gemäß der Polypeptid-SEQ ID NO.: 5071 beziehungsweise kodiert durch ein Nukleinsäuremolekül, das die Nukleinsäure-SEQ ID NO.: 5070 umfasst, oder eines Homologs dieses Nukleinsäuremoleküls beziehungsweise Polypeptids, z. B. im Fall der Aktivität des Saccharomyces cerevisiae-Nukleinsäuremoleküls beziehungsweise eines Polypeptids, welches die Nukleinsäure-SEQ ID NO. 5070 beziehungsweise Polypeptid-SEQ ID NO. 5071 umfasst, erhöht oder erzeugt wird, z. B. wenn die Aktivität eines Nukleinsäuremoleküls oder eines Polypeptids, welches die Nukleinsäure oder das Polypeptid oder die Konsensussequenz oder das Polypeptidmotiv wie in Tabelle I, II bzw. IV, Spalte 7, in der jeweils gleichen Zeile wie das Nukleinsäuremolekül SEQ ID NO.: 5070 beziehungsweise das Polypeptid SEQ ID NO.: 5071 gezeigt umfasst, erhöht oder erzeugt wird, oder wenn die Aktivität „YML079W-Protein” in einer Pflanzenzelle, einer Pflanze oder einem Teil davon erhöht oder erzeugt wird, insbesondere bei einer Lokalisierung in Plastiden und/oder im Zytoplasma ein erhöhter Ertrag, verglichen mit einer entsprechenden nicht modifizierten, z. B. nicht transformierten, Pflanzenzelle oder Pflanze vom Wildtyp oder einem Teil davon verliehen.
  • Gemäß einer weiteren Ausführungsform wird, wenn die Aktivität eines Polypeptids gemäß der Polypeptid-SEQ ID NO.: 5071 beziehungsweise kodiert durch ein Nukleinsäuremolekül, das die Nukleinsäure-SEQ ID NO.: 5070 umfasst, oder eines Homologs dieses Nukleinsäuremoleküls beziehungsweise Polypeptids, z. B. im Fall der Aktivität des Saccharomyces cerevisiae-Nukleinsäuremoleküls beziehungsweise eines Polypeptids, welches die Nukleinsäure-SEQ ID NO. 5070 beziehungsweise Polypeptid-SEQ ID NO. 5071 umfasst, erhöht oder erzeugt wird, z. B. wenn die Aktivität eines Nukleinsäuremoleküls oder eines Polypeptids, welches die Nukleinsäure oder das Polypeptid oder die Konsensussequenz oder das Polypeptidmotiv wie in Tabelle I, II bzw. IV, Spalte 7, in der jeweils gleichen Zeile wie das Nukleinsäuremolekül SEQ ID NO.: 5070 beziehungsweise das Polypeptid SEQ ID NO.: 5071 gezeigt umfasst, erhöht oder erzeugt wird, oder wenn die Aktivität „YML079W-Protein” in einer Pflanzenzelle, einer Pflanze oder einem Teil davon erhöht oder erzeugt wird, insbesondere bei einer Lokalisierung des Polypeptids in Plastiden eine erhöhte Toleranz gegenüber abiotischem Umweltstress, insbesondere eine erhöhte Toleranz gegenüber niedrigen Temperaturen, verglichen mit einer entsprechenden nicht modifizierten, z. B. nicht transformierten, Pflanzenzelle oder Pflanze vom Wildtyp oder einem Teil davon verliehen. Insbesondere wird bei der Expression unter der Kontrolle einer plastidischen Signalsequenz eine Ertragserhöhung von 1,1-fach bis 1,331-fach, zum Beispiel plus wenigstens 100% davon unter Bedingungen niedriger Temperaturen verliehen, verglichen mit einer entsprechenden nicht modifizierten, z. B. nicht transformierten, Pflanzenzelle oder Pflanze vom Wildtyp oder einem Teil davon.
  • Gemäß einer weiteren Ausführungsform wird, wenn die Aktivität eines Polypeptids gemäß der Polypeptid-SEQ ID NO.: 5071 beziehungsweise kodiert durch ein Nukleinsäuremolekül, das die Nukleinsäure-SEQ ID NO.: 5070 umfasst, oder eines Homologs dieses Nukleinsäuremoleküls beziehungsweise Polypeptids, z. B. im Fall der Aktivität des Saccharomyces cerevisiae-Nukleinsäuremoleküls beziehungsweise eines Polypeptids, welches die Nukleinsäure-SEQ ID NO. 5070 beziehungsweise Polypeptid-SEQ ID NO. 5071 umfasst, erhöht oder erzeugt wird, z. B. wenn die Aktivität eines Nukleinsäuremoleküls oder eines Polypeptids, welches die Nukleinsäure oder das Polypeptid oder die Konsensussequenz oder das Polypeptidmotiv wie in Tabelle I, II bzw. IV, Spalte 7, in der jeweils gleichen Zeile wie das Nukleinsäuremolekül SEQ ID NO.: 5070 beziehungsweise das Polypeptid SEQ ID NO.: 5071 gezeigt umfasst, erhöht oder erzeugt wird, oder wenn die Aktivität „YMR157C-Protein” in einer Pflanzenzelle, einer Pflanze oder einem Teil davon erhöht oder erzeugt wird, insbesondere bei einer Lokalisierung des Polypeptids im Zytoplasma eine erhöhte Effizienz der Nährstoffausnutzung, verglichen mit einer entsprechenden nicht modifizierten, z. B. nicht transformierten, Pflanzenzelle oder Pflanze vom Wildtyp oder einem Teil davon verliehen. Gemäß einer Ausführungsform wird eine erhöhte Effizienz der Stickstoffausnutzung verliehen. Insbesondere wird bei der Expression ohne Kombinieren dieser Sequenz bzw. dieses Moleküls mit einer weiteren Targeting- bzw. Signalsequenz, z. B. ohne eine weitere wie hier beschriebene heterologe Target-Sequenz oder Signalsequenz, eine Ertragserhöhung von 1,05-fach bis 1,057-fach (zytoplasmatisch), zum Beispiel plus wenigstens 100% davon unter Stickstoffmangelbedingungen verliehen, verglichen mit einer entsprechenden nicht modifizierten, z. B. nicht transformierten, Pflanzenzelle oder Pflanze vom Wildtyp oder einem Teil davon.
  • Gemäß einer weiteren Ausführungsform wird, wenn die Aktivität eines Polypeptids gemäß der Polypeptid-SEQ ID NO.: 5071 beziehungsweise kodiert durch ein Nukleinsäuremolekül, das die Nukleinsäure-SEQ ID NO.: 5070 umfasst, oder eines Homologs dieses Nukleinsäuremoleküls beziehungsweise Polypeptids, z. B. im Fall der Aktivität des Saccharomyces cerevisiae-Nukleinsäuremoleküls beziehungsweise eines Polypeptids, welches die Nukleinsäure-SEQ ID NO. 5070 beziehungsweise Polypeptid-SEQ ID NO. 5071 umfasst, erhöht oder erzeugt wird, z. B. wenn die Aktivität eines Nukleinsäuremoleküls oder eines Polypeptids, welches die Nukleinsäure oder das Polypeptid oder die Konsensussequenz oder das Polypeptidmotiv wie in Tabelle I, II bzw. IV, Spalte 7, in der jeweils gleichen Zeile wie das Nukleinsäuremolekül SEQ ID NO.: 5070 beziehungsweise das Polypeptid SEQ ID NO.: 5071 gezeigt umfasst, erhöht oder erzeugt wird, oder wenn die Aktivität „YMR157C-Protein” in einer Pflanzenzelle, einer Pflanze oder einem Teil davon erhöht oder erzeugt wird, insbesondere bei einer Lokalisierung des Polypeptids in Plastiden ein erhöhter intrinsischer Ertrag, verglichen mit einer entsprechenden nicht modifizierten, z. B. nicht transformierten, Pflanzenzelle oder Pflanze vom Wildtyp oder einem Teil davon verliehen. Gemäß einer Ausführungsform wird ein erhöhter Ertrag unter Standardbedingungen (intrinsischer Ertrag) verliehen, z. B. in Abwesenheit von Nährstoffmangel sowie Stressbedingungen. Insbesondere wird bei der Expression unter der Kontrolle einer plastidischen Signalsequenz eine Ertragserhöhung von 1,05-fach bis 1,066-fach, zum Beispiel plus wenigstens 100% davon unter Standardbedingungen (intrinsischer Ertrag) verliehen, z. B. in Abwesenheit von Nährstoffmangel sowie Stressbedingungen, verglichen mit einer entsprechenden nicht modifizierten, z. B. nicht transformierten, Pflanzenzelle oder Pflanze vom Wildtyp oder einem Teil davon.
  • Dementsprechend wird gemäß einer Ausführungsform, wenn die Aktivität eines Polypeptids gemäß der Polypeptid-SEQ ID NO.: 5103 beziehungsweise kodiert durch ein Nukleinsäuremolekül, das die Nukleinsäure-SEQ ID NO.: 5102 umfasst, oder eines Homologs dieses Nukleinsäuremoleküls beziehungsweise Polypeptids, z. B. im Fall der Aktivität des Saccharomyces cerevisiae-Nukleinsäuremoleküls beziehungsweise eines Polypeptids, welches die Nukleinsäure-SEQ ID NO. 5102 beziehungsweise Polypeptid-SEQ ID NO. 5103 umfasst, erhöht oder erzeugt wird, z. B. wenn die Aktivität eines Nukleinsäuremoleküls oder eines Polypeptids, welches die Nukleinsäure oder das Polypeptid oder die Konsensussequenz oder das Polypeptidmotiv wie in Tabelle I, II bzw. IV, Spalte 7, in der jeweils gleichen Zeile wie das Nukleinsäuremolekül SEQ ID NO.: 5102 beziehungsweise das Polypeptid SEQ ID NO.: 5103 gezeigt umfasst, erhöht oder erzeugt wird, oder wenn die Aktivität „YMR157C-Protein” in einer Pflanzenzelle, einer Pflanze oder einem Teil davon erhöht oder erzeugt wird, insbesondere bei einer Lokalisierung in Plastiden ein erhöhter Ertrag, verglichen mit einer entsprechenden nicht modifizierten, z. B. nicht transformierten, Pflanzenzelle oder Pflanze vom Wildtyp oder einem Teil davon verliehen.
  • Gemäß einer weiteren Ausführungsform wird, wenn die Aktivität eines Polypeptids gemäß der Polypeptid-SEQ ID NO.: 5103 beziehungsweise kodiert durch ein Nukleinsäuremolekül, das die Nukleinsäure-SEQ ID NO.: 5102 umfasst, oder eines Homologs dieses Nukleinsäuremoleküls beziehungsweise Polypeptids, z. B. im Fall der Aktivität des Saccharomyces cerevisiae-Nukleinsäuremoleküls beziehungsweise eines Polypeptids, welches die Nukleinsäure-SEQ ID NO. 5102 beziehungsweise Polypeptid-SEQ ID NO. 5103 umfasst, erhöht oder erzeugt wird, z. B. wenn die Aktivität eines Nukleinsäuremoleküls oder eines Polypeptids, welches die Nukleinsäure oder das Polypeptid oder die Konsensussequenz oder das Polypeptidmotiv wie in Tabelle I, II bzw. IV, Spalte 7, in der jeweils gleichen Zeile wie das Nukleinsäuremolekül SEQ ID NO.: 5102 beziehungsweise das Polypeptid SEQ ID NO.: 5103 gezeigt umfasst, erhöht oder erzeugt wird, oder wenn die Aktivität „YMR157C-Protein” in einer Pflanzenzelle, einer Pflanze oder einem Teil davon erhöht oder erzeugt wird, insbesondere bei einer Lokalisierung des Polypeptids in Plastiden eine erhöhte Toleranz gegenüber abiotischem Umweltstress, insbesondere eine erhöhte Toleranz gegenüber niedrigen Temperaturen, verglichen mit einer entsprechenden nicht modifizierten, z. B. nicht transformierten, Pflanzenzelle oder Pflanze vom Wildtyp oder einem Teil davon verliehen. Insbesondere wird eine Ertragserhöhung von 1,1-fach bis 1,267-fach, zum Beispiel plus wenigstens 100% davon unter Bedingungen niedriger Temperaturen verliehen, verglichen mit einer entsprechenden nicht modifizierten, z. B. nicht transformierten, Pflanzenzelle oder Pflanze vom Wildtyp oder einem Teil davon.
  • Gemäß einer weiteren Ausführungsform wird, wenn die Aktivität eines Polypeptids gemäß der Polypeptid-SEQ ID NO.: 5103 beziehungsweise kodiert durch ein Nukleinsäuremolekül, das die Nukleinsäure-SEQ ID NO.: 5102 umfasst, oder eines Homologs dieses Nukleinsäuremoleküls beziehungsweise Polypeptids, z. B. im Fall der Aktivität des Saccharomyces cerevisiae-Nukleinsäuremoleküls beziehungsweise eines Polypeptids, welches die Nukleinsäure-SEQ ID NO. 5102 beziehungsweise Polypeptid-SEQ ID NO. 5103 umfasst, erhöht oder erzeugt wird, z. B. wenn die Aktivität eines Nukleinsäuremoleküls oder eines Polypeptids, welches die Nukleinsäure oder das Polypeptid oder die Konsensussequenz oder das Polypeptidmotiv wie in Tabelle I, II bzw. IV, Spalte 7, in der jeweils gleichen Zeile wie das Nukleinsäuremolekül SEQ ID NO.: 5102 beziehungsweise das Polypeptid SEQ ID NO.: 5103 gezeigt umfasst, erhöht oder erzeugt wird, oder wenn die Aktivität „YMR157C-Protein” in einer Pflanzenzelle, einer Pflanze oder einem Teil davon erhöht oder erzeugt wird, insbesondere bei einer Lokalisierung des Polypeptids in Plastiden ein erhöhter intrinsischer Ertrag, verglichen mit einer entsprechenden nicht modifizierten, z. B. nicht transformierten, Pflanzenzelle oder Pflanze vom Wildtyp oder einem Teil davon verliehen. Gemäß einer Ausführungsform wird ein erhöhter Ertrag unter Standardbedingungen (intrinsischer Ertrag) verliehen, z. B. in Abwesenheit von Nährstoffmangel sowie Stressbedingungen. Insbesondere wird eine Ertragserhöhung von 1,05-fach bis 1,211-fach, zum Beispiel plus wenigstens 100% davon unter Standardbedingungen (intrinsischer Ertrag) verliehen, z. B. in Abwesenheit von Nährstoffmangel sowie Stressbedingungen, verglichen mit einer entsprechenden nicht modifizierten, z. B. nicht transformierten, Pflanzenzelle oder Pflanze vom Wildtyp oder einem Teil davon.
  • Dementsprechend wird gemäß einer Ausführungsform, wenn die Aktivität eines Polypeptids gemäß der Polypeptid-SEQ ID NO.: 5116 beziehungsweise kodiert durch ein Nukleinsäuremolekül, das die Nukleinsäure-SEQ ID NO.: 5115 umfasst, oder eines Homologs dieses Nukleinsäuremoleküls beziehungsweise Polypeptids, z. B. im Fall der Aktivität des Saccharomyces cerevisiae-Nukleinsäuremoleküls beziehungsweise eines Polypeptids, welches die Nukleinsäure-SEQ ID NO. 5115 beziehungsweise Polypeptid-SEQ ID NO. 5116 umfasst, erhöht oder erzeugt wird, z. B. wenn die Aktivität eines Nukleinsäuremoleküls oder eines Polypeptids, welches die Nukleinsäure oder das Polypeptid oder die Konsensussequenz oder das Polypeptidmotiv wie in Tabelle I, II bzw. IV, Spalte 7, in der jeweils gleichen Zeile wie das Nukleinsäuremolekül SEQ ID NO.: 5115 beziehungsweise das Polypeptid SEQ ID NO.: 5116 gezeigt umfasst, erhöht oder erzeugt wird, oder wenn die Aktivität „YNL024C-Protein” in einer Pflanzenzelle, einer Pflanze oder einem Teil davon erhöht oder erzeugt wird, insbesondere bei einer Lokalisierung in Plastiden ein erhöhter Ertrag, verglichen mit einer entsprechenden nicht modifizierten, z. B. nicht transformierten, Pflanzenzelle oder Pflanze vom Wildtyp oder einem Teil davon verliehen.
  • Gemäß einer weiteren Ausführungsform wird, wenn die Aktivität eines Polypeptids gemäß der Polypeptid-SEQ ID NO.: 5116 beziehungsweise kodiert durch ein Nukleinsäuremolekül, das die Nukleinsäure-SEQ ID NO.: 5115 umfasst, oder eines Homologs dieses Nukleinsäuremoleküls beziehungsweise Polypeptids, z. B. im Fall der Aktivität des Saccharomyces cerevisiae-Nukleinsäuremoleküls beziehungsweise eines Polypeptids, welches die Nukleinsäure-SEQ ID NO. 5115 beziehungsweise Polypeptid-SEQ ID NO. 5116 umfasst, erhöht oder erzeugt wird, z. B. wenn die Aktivität eines Nukleinsäuremoleküls oder eines Polypeptids, welches die Nukleinsäure oder das Polypeptid oder die Konsensussequenz oder das Polypeptidmotiv wie in Tabelle I, II bzw. IV, Spalte 7, in der jeweils gleichen Zeile wie das Nukleinsäuremolekül SEQ ID NO.: 5115 beziehungsweise das Polypeptid SEQ ID NO.: 5116 gezeigt umfasst, erhöht oder erzeugt wird, oder wenn die Aktivität „YNL024C-Protein” in einer Pflanzenzelle, einer Pflanze oder einem Teil davon erhöht oder erzeugt wird, insbesondere bei einer Lokalisierung des Polypeptids in Plastiden eine erhöhte Toleranz gegenüber abiotischem Umweltstress, insbesondere eine erhöhte Toleranz gegenüber niedrigen Temperaturen, verglichen mit einer entsprechenden nicht modifizierten, z. B. nicht transformierten, Pflanzenzelle oder Pflanze vom Wildtyp oder einem Teil davon verliehen. Insbesondere wird eine Ertragserhöhung von 1,1-fach bis 1,376-fach, zum Beispiel plus wenigstens 100% davon unter Bedingungen niedriger Temperaturen verliehen, verglichen mit einer entsprechenden nicht modifizierten, z. B. nicht transformierten, Pflanzenzelle oder Pflanze vom Wildtyp oder einem Teil davon.
  • Gemäß einer weiteren Ausführungsform wird, wenn die Aktivität eines Polypeptids gemäß der Polypeptid-SEQ ID NO.: 5116 beziehungsweise kodiert durch ein Nukleinsäuremolekül, das die Nukleinsäure-SEQ ID NO.: 5115 umfasst, oder eines Homologs dieses Nukleinsäuremoleküls beziehungsweise Polypeptids, z. B. im Fall der Aktivität des Saccharomyces cerevisiae-Nukleinsäuremoleküls beziehungsweise eines Polypeptids, welches die Nukleinsäure-SEQ ID NO. 5115 beziehungsweise Polypeptid-SEQ ID NO. 5116 umfasst, erhöht oder erzeugt wird, z. B. wenn die Aktivität eines Nukleinsäuremoleküls oder eines Polypeptids, welches die Nukleinsäure oder das Polypeptid oder die Konsensussequenz oder das Polypeptidmotiv wie in Tabelle I, II bzw. IV, Spalte 7, in der jeweils gleichen Zeile wie das Nukleinsäuremolekül SEQ ID NO.: 5115 beziehungsweise das Polypeptid SEQ ID NO.: 5116 gezeigt umfasst, erhöht oder erzeugt wird, oder wenn die Aktivität „YNL024C-Protein” in einer Pflanzenzelle, einer Pflanze oder einem Teil davon erhöht oder erzeugt wird, insbesondere bei einer Lokalisierung des Polypeptids in Plastiden ein erhöhter intrinsischer Ertrag, verglichen mit einer entsprechenden nicht modifizierten, z. B. nicht transformierten, Pflanzenzelle oder Pflanze vom Wildtyp oder einem Teil davon verliehen. Gemäß einer Ausführungsform wird ein erhöhter Ertrag unter Standardbedingungen (intrinsischer Ertrag) verliehen, z. B. in Abwesenheit von Nährstoffmangel sowie Stressbedingungen. Insbesondere wird eine Ertragserhöhung von 1,05-fach bis 1,068-fach, zum Beispiel plus wenigstens 100% davon unter Standardbedingungen (intrinsischer Ertrag) verliehen, z. B. in Abwesenheit von Nährstoffmangel sowie Stressbedingungen, verglichen mit einer entsprechenden nicht modifizierten, z. B. nicht transformierten, Pflanzenzelle oder Pflanze vom Wildtyp oder einem Teil davon.
  • Dementsprechend wird gemäß einer Ausführungsform, wenn die Aktivität eines Polypeptids gemäß der Polypeptid-SEQ ID NO.: 5160 beziehungsweise kodiert durch ein Nukleinsäuremolekül, das die Nukleinsäure-SEQ ID NO.: 5159 umfasst, oder eines Homologs dieses Nukleinsäuremoleküls beziehungsweise Polypeptids, z. B. im Fall der Aktivität des Saccharomyces cerevisiae-Nukleinsäuremoleküls beziehungsweise eines Polypeptids, welches die Nukleinsäure-SEQ ID NO. 5159 beziehungsweise Polypeptid-SEQ ID NO. 5160 umfasst, erhöht oder erzeugt wird, z. B. wenn die Aktivität eines Nukleinsäuremoleküls oder eines Polypeptids, welches die Nukleinsäure oder das Polypeptid oder die Konsensussequenz oder das Polypeptidmotiv wie in Tabelle I, II bzw. IV, Spalte 7, in der jeweils gleichen Zeile wie das Nukleinsäuremolekül SEQ ID NO.: 5159 beziehungsweise das Polypeptid SEQ ID NO.: 5160 gezeigt umfasst, erhöht oder erzeugt wird, oder wenn die Aktivität „Argininosuccinatsynthase” in einer Pflanzenzelle, einer Pflanze oder einem Teil davon erhöht oder erzeugt wird, insbesondere bei einer Lokalisierung in Plastiden und/oder im Zytoplasma, ein erhöhter Ertrag, verglichen mit einer entsprechenden nicht modifizierten, z. B. nicht transformierten, Pflanzenzelle oder Pflanze vom Wildtyp oder einem Teil davon verliehen.
  • Gemäß einer weiteren Ausführungsform wird, wenn die Aktivität eines Polypeptids gemäß der Polypeptid-SEQ ID NO.: 5160 beziehungsweise kodiert durch ein Nukleinsäuremolekül, das die Nukleinsäure-SEQ ID NO.: 5159 umfasst, oder eines Homologs dieses Nukleinsäuremoleküls beziehungsweise Polypeptids, z. B. im Fall der Aktivität des Saccharomyces cerevisiae-Nukleinsäuremoleküls beziehungsweise eines Polypeptids, welches die Nukleinsäure-SEQ ID NO. 5159 beziehungsweise Polypeptid-SEQ ID NO. 5160 umfasst, erhöht oder erzeugt wird, z. B. wenn die Aktivität eines Nukleinsäuremoleküls oder eines Polypeptids, welches die Nukleinsäure oder das Polypeptid oder die Konsensussequenz oder das Polypeptidmotiv wie in Tabelle I, II bzw. IV, Spalte 7, in der jeweils gleichen Zeile wie das Nukleinsäuremolekül SEQ ID NO.: 5159 beziehungsweise das Polypeptid SEQ ID NO.: 5160 gezeigt umfasst, erhöht oder erzeugt wird, oder wenn die Aktivität „Argininosuccinatsynthase” in einer Pflanzenzelle, einer Pflanze oder einem Teil davon erhöht oder erzeugt wird, insbesondere bei einer Lokalisierung des Polypeptids in Plastiden eine erhöhte Toleranz gegenüber abiotischem Umweltstress, insbesondere eine erhöhte Toleranz gegenüber niedrigen Temperaturen, verglichen mit einer entsprechenden nicht modifizierten, z. B. nicht transformierten, Pflanzenzelle oder Pflanze vom Wildtyp oder einem Teil davon verliehen. Insbesondere wird bei der Expression unter der Kontrolle einer plastidischen Signalsequenz eine Ertragserhöhung von 1,1-fach bis 1,300-fach, zum Beispiel plus wenigstens 100% davon unter Bedingungen niedriger Temperaturen verliehen, verglichen mit einer entsprechenden nicht modifizierten, z. B. nicht transformierten, Pflanzenzelle oder Pflanze vom Wildtyp oder einem Teil davon.
  • Gemäß einer weiteren Ausführungsform wird, wenn die Aktivität eines Polypeptids gemäß der Polypeptid-SEQ ID NO.: 5160 beziehungsweise kodiert durch ein Nukleinsäuremolekül, das die Nukleinsäure-SEQ ID NO.: 5159 umfasst, oder eines Homologs dieses Nukleinsäuremoleküls beziehungsweise Polypeptids, z. B. im Fall der Aktivität des Saccharomyces cerevisiae-Nukleinsäuremoleküls beziehungsweise eines Polypeptids, welches die Nukleinsäure-SEQ ID NO. 5159 beziehungsweise Polypeptid-SEQ ID NO. 5160 umfasst, erhöht oder erzeugt wird, z. B. wenn die Aktivität eines Nukleinsäuremoleküls oder eines Polypeptids, welches die Nukleinsäure oder das Polypeptid oder die Konsensussequenz oder das Polypeptidmotiv wie in Tabelle I, II bzw. IV, Spalte 7, in der jeweils gleichen Zeile wie das Nukleinsäuremolekül SEQ ID NO.: 5159 beziehungsweise das Polypeptid SEQ ID NO.: 5160 gezeigt umfasst, erhöht oder erzeugt wird, oder wenn die Aktivität „Argininosuccinatsynthase” in einer Pflanzenzelle, einer Pflanze oder einem Teil davon erhöht oder erzeugt wird, insbesondere bei einer Lokalisierung des Polypeptids im Zytoplasma eine erhöhte Effizienz der Nährstoffausnutzung, verglichen mit einer entsprechenden nicht modifizierten, z. B. nicht transformierten, Pflanzenzelle oder Pflanze vom Wildtyp oder einem Teil davon verliehen. Gemäß einer Ausführungsform wird eine erhöhte Effizienz der Stickstoffausnutzung verliehen. Bei der Expression ohne Kombinieren dieser Sequenz bzw. dieses Moleküls mit einer weiteren Targeting- bzw. Signalsequenz, z. B. ohne eine weitere wie hier beschriebene heterologe Target-Sequenz oder Signalsequenz, wird eine Ertragserhöhung von 1,05-fach bis 1,172-fach (zytoplasmatisch), zum Beispiel plus wenigstens 100% davon unter Stickstoffmangelbedingungen verliehen, verglichen mit einer entsprechenden nicht modifizierten, z. B. nicht transformierten, Pflanzenzelle oder Pflanze vom Wildtyp oder einem Teil davon.
  • Gemäß einer weiteren Ausführungsform wird, wenn die Aktivität eines Polypeptids gemäß der Polypeptid-SEQ ID NO.: 5160 beziehungsweise kodiert durch ein Nukleinsäuremolekül, das die Nukleinsäure-SEQ ID NO.: 5159 umfasst, oder eines Homologs dieses Nukleinsäuremoleküls beziehungsweise Polypeptids, z. B. im Fall der Aktivität des Saccharomyces cerevisiae-Nukleinsäuremoleküls beziehungsweise eines Polypeptids, welches die Nukleinsäure-SEQ ID NO. 5159 beziehungsweise Polypeptid-SEQ ID NO. 5160 umfasst, erhöht oder erzeugt wird, z. B. wenn die Aktivität eines Nukleinsäuremoleküls oder eines Polypeptids, welches die Nukleinsäure oder das Polypeptid oder die Konsensussequenz oder das Polypeptidmotiv wie in Tabelle I, II bzw. IV, Spalte 7, in der jeweils gleichen Zeile wie das Nukleinsäuremolekül SEQ ID NO.: 5159 beziehungsweise das Polypeptid SEQ ID NO.: 5160 gezeigt umfasst, erhöht oder erzeugt wird, oder wenn die Aktivität „Argininosuccinatsynthase” in einer Pflanzenzelle, einer Pflanze oder einem Teil davon erhöht oder erzeugt wird, insbesondere bei einer Lokalisierung des Polypeptids in Plastiden ein erhöhter intrinsischer Ertrag, verglichen mit einer entsprechenden nicht modifizierten, z. B. nicht transformierten, Pflanzenzelle oder Pflanze vom Wildtyp oder einem Teil davon verliehen. Gemäß einer Ausführungsform wird ein erhöhter Ertrag unter Standardbedingungen (intrinsischer Ertrag) verliehen, z. B. in Abwesenheit von Nährstoffmangel sowie Stressbedingungen. Insbesondere wird bei der Expression unter der Kontrolle einer plastidischen Signalsequenz eine Ertragserhöhung von 1,05-fach bis 1,091-fach, zum Beispiel plus wenigstens 100% davon unter Standardbedingungen (intrinsischer Ertrag) verliehen, z. B. in Abwesenheit von Nährstoffmangel sowie Stressbedingungen, verglichen mit einer entsprechenden nicht modifizierten, z. B. nicht transformierten, Pflanzenzelle oder Pflanze vom Wildtyp oder einem Teil davon.
  • Dementsprechend wird gemäß einer Ausführungsform, wenn die Aktivität eines Polypeptids gemäß der Polypeptid-SEQ ID NO.: 5747 beziehungsweise kodiert durch ein Nukleinsäuremolekül, das die Nukleinsäure-SEQ ID NO.: 5746 umfasst, oder eines Homologs dieses Nukleinsäuremoleküls beziehungsweise Polypeptids, z. B. im Fall der Aktivität des Saccharomyces cerevisiae-Nukleinsäuremoleküls beziehungsweise eines Polypeptids, welches die Nukleinsäure-SEQ ID NO. 5746 beziehungsweise Polypeptid-SEQ ID NO. 5747 umfasst, erhöht oder erzeugt wird, z. B. wenn die Aktivität eines Nukleinsäuremoleküls oder eines Polypeptids, welches die Nukleinsäure oder das Polypeptid oder die Konsensussequenz oder das Polypeptidmotiv wie in Tabelle I, II bzw. IV, Spalte 7, in der jeweils gleichen Zeile wie das Nukleinsäuremolekül SEQ ID NO.: 5746 beziehungsweise das Polypeptid SEQ ID NO.: 5747 gezeigt umfasst, erhöht oder erzeugt wird, oder wenn die Aktivität „Untereinheit von TORC1” in einer Pflanzenzelle, einer Pflanze oder einem Teil davon erhöht oder erzeugt wird, insbesondere bei einer Lokalisierung im Zytoplasma ein erhöhter Ertrag, verglichen mit einer entsprechenden nicht modifizierten, z. B. nicht transformierten, Pflanzenzelle oder Pflanze vom Wildtyp oder einem Teil davon verliehen.
  • Gemäß einer weiteren Ausführungsform wird, wenn die Aktivität eines Polypeptids gemäß der Polypeptid-SEQ ID NO.: 5747 beziehungsweise kodiert durch ein Nukleinsäuremolekül, das die Nukleinsäure-SEQ ID NO.: 5746 umfasst, oder eines Homologs dieses Nukleinsäuremoleküls beziehungsweise Polypeptids, z. B. im Fall der Aktivität des Saccharomyces cerevisiae-Nukleinsäuremoleküls beziehungsweise eines Polypeptids, welches die Nukleinsäure-SEQ ID NO. 5746 beziehungsweise Polypeptid-SEQ ID NO. 5747 umfasst, erhöht oder erzeugt wird, z. B. wenn die Aktivität eines Nukleinsäuremoleküls oder eines Polypeptids, welches die Nukleinsäure oder das Polypeptid oder die Konsensussequenz oder das Polypeptidmotiv wie in Tabelle I, II bzw. IV, Spalte 7, in der jeweils gleichen Zeile wie das Nukleinsäuremolekül SEQ ID NO.: 5746 beziehungsweise das Polypeptid SEQ ID NO.: 5747 gezeigt umfasst, erhöht oder erzeugt wird, oder wenn die Aktivität „Untereinheit von TORC1” in einer Pflanzenzelle, einer Pflanze oder einem Teil davon erhöht oder erzeugt wird, insbesondere bei einer Lokalisierung des Polypeptids im Zytoplasma eine erhöhte Toleranz gegenüber abiotischem Umweltstress, insbesondere eine erhöhte Toleranz gegenüber niedrigen Temperaturen, verglichen mit einer entsprechenden nicht modifizierten, z. B. nicht transformierten, Pflanzenzelle oder Pflanze vom Wildtyp oder einem Teil davon verliehen. Insbesondere wird eine Ertragserhöhung von 1,1-fach bis 2,471-fach, zum Beispiel plus wenigstens 100% davon unter Bedingungen niedriger Temperaturen verliehen, verglichen mit einer entsprechenden nicht modifizierten, z. B. nicht transformierten, Pflanzenzelle oder Pflanze vom Wildtyp oder einem Teil davon.
  • Gemäß einer weiteren Ausführungsform wird, wenn die Aktivität eines Polypeptids gemäß der Polypeptid-SEQ ID NO.: 5747 beziehungsweise kodiert durch ein Nukleinsäuremolekül, das die Nukleinsäure-SEQ ID NO.: 5746 umfasst, oder eines Homologs dieses Nukleinsäuremoleküls beziehungsweise Polypeptids, z. B. im Fall der Aktivität des Saccharomyces cerevisiae-Nukleinsäuremoleküls beziehungsweise eines Polypeptids, welches die Nukleinsäure-SEQ ID NO. 5746 beziehungsweise Polypeptid-SEQ ID NO. 5747 umfasst, erhöht oder erzeugt wird, z. B. wenn die Aktivität eines Nukleinsäuremoleküls oder eines Polypeptids, welches die Nukleinsäure oder das Polypeptid oder die Konsensussequenz oder das Polypeptidmotiv wie in Tabelle I, II bzw. IV, Spalte 7, in der jeweils gleichen Zeile wie das Nukleinsäuremolekül SEQ ID NO.: 5746 beziehungsweise das Polypeptid SEQ ID NO.: 5747 gezeigt umfasst, erhöht oder erzeugt wird, oder wenn die Aktivität „Untereinheit von TORC1” in einer Pflanzenzelle, einer Pflanze oder einem Teil davon erhöht oder erzeugt wird, insbesondere bei einer Lokalisierung des Polypeptids im Zytoplasma eine erhöhte Effizienz der Nährstoffausnutzung, verglichen mit einer entsprechenden nicht modifizierten, z. B. nicht transformierten, Pflanzenzelle oder Pflanze vom Wildtyp oder einem Teil davon verliehen. Gemäß einer Ausführungsform wird eine erhöhte Effizienz der Stickstoffausnutzung verliehen. Insbesondere wird eine Ertragserhöhung von 1,05-fach bis 1,169-fach, zum Beispiel plus wenigstens 100% davon unter Stickstoffmangelbedingungen verliehen, verglichen mit einer entsprechenden nicht modifizierten, z. B. nicht transformierten, Pflanzenzelle oder Pflanze vom Wildtyp oder einem Teil davon.
  • Gemäß einer weiteren Ausführungsform wird, wenn die Aktivität eines Polypeptids gemäß der Polypeptid-SEQ ID NO.: 5747 beziehungsweise kodiert durch ein Nukleinsäuremolekül, das die Nukleinsäure-SEQ ID NO.: 5746 umfasst, oder eines Homologs dieses Nukleinsäuremoleküls beziehungsweise Polypeptids, z. B. im Fall der Aktivität des Saccharomyces cerevisiae-Nukleinsäuremoleküls beziehungsweise eines Polypeptids, welches die Nukleinsäure-SEQ ID NO. 5746 beziehungsweise Polypeptid-SEQ ID NO. 5747 umfasst, erhöht oder erzeugt wird, z. B. wenn die Aktivität eines Nukleinsäuremoleküls oder eines Polypeptids, welches die Nukleinsäure oder das Polypeptid oder die Konsensussequenz oder das Polypeptidmotiv wie in Tabelle I, II bzw. IV, Spalte 7, in der jeweils gleichen Zeile wie das Nukleinsäuremolekül SEQ ID NO.: 5746 beziehungsweise das Polypeptid SEQ ID NO.: 5747 gezeigt umfasst, erhöht oder erzeugt wird, oder wenn die Aktivität „Untereinheit von TORC1” in einer Pflanzenzelle, einer Pflanze oder einem Teil davon erhöht oder erzeugt wird, insbesondere bei einer Lokalisierung des Polypeptids im Zytoplasma ein erhöhter intrinsischer Ertrag, verglichen mit einer entsprechenden nicht modifizierten, z. B. nicht transformierten, Pflanzenzelle oder Pflanze vom Wildtyp oder einem Teil davon verliehen. Gemäß einer Ausführungsform wird ein erhöhter Ertrag unter Standardbedingungen (intrinsischer Ertrag) verliehen, z. B. in Abwesenheit von Nährstoffmangel sowie Stressbedingungen. Insbesondere wird eine Ertragserhöhung von 1,05-fach bis 1,326-fach, zum Beispiel plus wenigstens 100% davon unter Standardbedingungen (intrinsischer Ertrag) verliehen, z. B. in Abwesenheit von Nährstoffmangel sowie Stressbedingungen, verglichen mit einer entsprechenden nicht modifizierten, z. B. nicht transformierten, Pflanzenzelle oder Pflanze vom Wildtyp oder einem Teil davon.
  • Dementsprechend wird gemäß einer Ausführungsform, wenn die Aktivität eines Polypeptids gemäß der Polypeptid-SEQ ID NO.: 5757 beziehungsweise kodiert durch ein Nukleinsäuremolekül, das die Nukleinsäure-SEQ ID NO.: 5756 umfasst, oder eines Homologs dieses Nukleinsäuremoleküls beziehungsweise Polypeptids, z. B. im Fall der Aktivität des Saccharomyces cerevisiae-Nukleinsäuremoleküls beziehungsweise eines Polypeptids, welches die Nukleinsäure-SEQ ID NO. 5756 beziehungsweise Polypeptid-SEQ ID NO. 5757 umfasst, erhöht oder erzeugt wird, z. B. wenn die Aktivität eines Nukleinsäuremoleküls oder eines Polypeptids, welches die Nukleinsäure oder das Polypeptid oder die Konsensussequenz oder das Polypeptidmotiv wie in Tabelle I, II bzw. IV, Spalte 7, in der jeweils gleichen Zeile wie das Nukleinsäuremolekül SEQ ID NO.: 5756 beziehungsweise das Polypeptid SEQ ID NO.: 5757 gezeigt umfasst, erhöht oder erzeugt wird, oder wenn die Aktivität „Phosphoadenosinphosphosulfatreduktase” in einer Pflanzenzelle, einer Pflanze oder einem Teil davon erhöht oder erzeugt wird, insbesondere bei einer Lokalisierung in Plastiden ein erhöhter Ertrag, verglichen mit einer entsprechenden nicht modifizierten, z. B. nicht transformierten, Pflanzenzelle oder Pflanze vom Wildtyp oder einem Teil davon verliehen.
  • Gemäß einer weiteren Ausführungsform wird, wenn die Aktivität eines Polypeptids gemäß der Polypeptid-SEQ ID NO.: 5757 beziehungsweise kodiert durch ein Nukleinsäuremolekül, das die Nukleinsäure-SEQ ID NO.: 5756 umfasst, oder eines Homologs dieses Nukleinsäuremoleküls beziehungsweise Polypeptids, z. B. im Fall der Aktivität des Saccharomyces cerevisiae-Nukleinsäuremoleküls beziehungsweise eines Polypeptids, welches die Nukleinsäure-SEQ ID NO. 5756 beziehungsweise Polypeptid-SEQ ID NO. 5757 umfasst, erhöht oder erzeugt wird, z. B. wenn die Aktivität eines Nukleinsäuremoleküls oder eines Polypeptids, welches die Nukleinsäure oder das Polypeptid oder die Konsensussequenz oder das Polypeptidmotiv wie in Tabelle I, II bzw. IV, Spalte 7, in der jeweils gleichen Zeile wie das Nukleinsäuremolekül SEQ ID NO.: 5756 beziehungsweise das Polypeptid SEQ ID NO.: 5757 gezeigt umfasst, erhöht oder erzeugt wird, oder wenn die Aktivität „Phosphoadenosinphosphosulfatreduktase” in einer Pflanzenzelle, einer Pflanze oder einem Teil davon erhöht oder erzeugt wird, insbesondere bei einer Lokalisierung des Polypeptids in Plastiden eine erhöhte Toleranz gegenüber abiotischem Umweltstress, insbesondere eine erhöhte Toleranz gegenüber niedrigen Temperaturen, verglichen mit einer entsprechenden nicht modifizierten, z. B. nicht transformierten, Pflanzenzelle oder Pflanze vom Wildtyp oder einem Teil davon verliehen. Insbesondere wird eine Ertragserhöhung von 1,1-fach bis 1,303-fach, zum Beispiel plus wenigstens 100% davon unter Bedingungen niedriger Temperaturen verliehen, verglichen mit einer entsprechenden nicht modifizierten, z. B. nicht transformierten, Pflanzenzelle oder Pflanze vom Wildtyp oder einem Teil davon.
  • Gemäß einer weiteren Ausführungsform wird, wenn die Aktivität eines Polypeptids gemäß der Polypeptid-SEQ ID NO.: 5757 beziehungsweise kodiert durch ein Nukleinsäuremolekül, das die Nukleinsäure-SEQ ID NO.: 5756 umfasst, oder eines Homologs dieses Nukleinsäuremoleküls beziehungsweise Polypeptids, z. B. im Fall der Aktivität des Saccharomyces cerevisiae-Nukleinsäuremoleküls beziehungsweise eines Polypeptids, welches die Nukleinsäure-SEQ ID NO. 5756 beziehungsweise Polypeptid-SEQ ID NO. 5757 umfasst, erhöht oder erzeugt wird, z. B. wenn die Aktivität eines Nukleinsäuremoleküls oder eines Polypeptids, welches die Nukleinsäure oder das Polypeptid oder die Konsensussequenz oder das Polypeptidmotiv wie in Tabelle I, II bzw. IV, Spalte 7, in der jeweils gleichen Zeile wie das Nukleinsäuremolekül SEQ ID NO.: 5756 beziehungsweise das Polypeptid SEQ ID NO.: 5757 gezeigt umfasst, erhöht oder erzeugt wird, oder wenn die Aktivität „Phosphoadenosinphosphosulfatreduktase” in einer Pflanzenzelle, einer Pflanze oder einem Teil davon erhöht oder erzeugt wird, insbesondere bei einer Lokalisierung des Polypeptids in Plastiden ein erhöhter intrinischer Ertrag, verglichen mit einer entsprechenden nicht modifizierten, z. B. nicht transformierten, Pflanzenzelle oder Pflanze vom Wildtyp oder einem Teil davon verliehen. Gemäß einer Ausführungsform wird ein erhöhter Ertrag unter Standardbedingungen (intrinsischer Ertrag) verliehen, z. B. in Abwesenheit von Nährstoffmangel sowie Stressbedingungen. Insbesondere wird eine Ertragserhöhung von 1,05-fach bis 1,219-fach, zum Beispiel plus wenigstens 100% davon unter Standardbedingungen (intrinsischer Ertrag) verliehen, z. B. in Abwesenheit von Nährstoffmangel sowie Stressbedingungen, verglichen mit einer entsprechenden nicht modifizierten, z. B. nicht transformierten, Pflanzenzelle oder Pflanze vom Wildtyp oder einem Teil davon.
  • Dementsprechend wird gemäß einer Ausführungsform, wenn die Aktivität eines Polypeptids gemäß der Polypeptid-SEQ ID NO.: 6087 beziehungsweise kodiert durch ein Nukleinsäuremolekül, das die Nukleinsäure-SEQ ID NO.: 6086 umfasst, oder eines Homologs dieses Nukleinsäuremoleküls beziehungsweise Polypeptids, z. B. im Fall der Aktivität des Escherichia coli-Nukleinsäuremoleküls beziehungsweise eines Polypeptids, welches die Nukleinsäure-SEQ ID NO. 6086 beziehungsweise Polypeptid-SEQ ID NO. 6087 umfasst, erhöht oder erzeugt wird, z. B. wenn die Aktivität eines Nukleinsäuremoleküls oder eines Polypeptids, welches die Nukleinsäure oder das Polypeptid oder die Konsensussequenz oder das Polypeptidmotiv wie in Tabelle I, II bzw. IV, Spalte 7, in der jeweils gleichen Zeile wie das Nukleinsäuremolekül SEQ ID NO.: 6086 beziehungsweise das Polypeptid SEQ ID NO.: 6087 gezeigt umfasst, erhöht oder erzeugt wird, oder wenn die Aktivität „Enoyl-CoA-Hydratase” in einer Pflanzenzelle, einer Pflanze oder einem Teil davon erhöht oder erzeugt wird, insbesondere bei einer Lokalisierung in Plastiden ein erhöhter Ertrag, verglichen mit einer entsprechenden nicht modifizierten, z. B. nicht transformierten, Pflanzenzelle oder Pflanze vom Wildtyp oder einem Teil davon verliehen.
  • Gemäß einer weiteren Ausführungsform wird, wenn die Aktivität eines Polypeptids gemäß der Polypeptid-SEQ ID NO.: 6087 beziehungsweise kodiert durch ein Nukleinsäuremolekül, das die Nukleinsäure-SEQ ID NO.: 6086 umfasst, oder eines Homologs dieses Nukleinsäuremoleküls beziehungsweise Polypeptids, z. B. im Fall der Aktivität des Escherichia coli-Nukleinsäuremoleküls beziehungsweise eines Polypeptids, welches die Nukleinsäure-SEQ ID NO. 6086 beziehungsweise Polypeptid-SEQ ID NO. 6087 umfasst, erhöht oder erzeugt wird, z. B. wenn die Aktivität eines Nukleinsäuremoleküls oder eines Polypeptids, welches die Nukleinsäure oder das Polypeptid oder die Konsensussequenz oder das Polypeptidmotiv wie in Tabelle I, II bzw. IV, Spalte 7, in der jeweils gleichen Zeile wie das Nukleinsäuremolekül SEQ ID NO.: 6086 beziehungsweise das Polypeptid SEQ ID NO.: 6087 gezeigt umfasst, erhöht oder erzeugt wird, oder wenn die Aktivität „Enoyl-CoA-Hydratase” in einer Pflanzenzelle, einer Pflanze oder einem Teil davon erhöht oder erzeugt wird, insbesondere bei einer Lokalisierung des Polypeptids in Plastiden eine erhöhte Toleranz gegenüber abiotischem Umweltstress, insbesondere eine erhöhte Toleranz gegenüber niedrigen Temperaturen, verglichen mit einer entsprechenden nicht modifizierten, z. B. nicht transformierten, Pflanzenzelle oder Pflanze vom Wildtyp oder einem Teil davon verliehen. Insbesondere wird eine Ertragserhöhung von 1,1-fach bis 1,336-fach, zum Beispiel plus wenigstens 100% davon unter Bedingungen niedriger Temperaturen verliehen, verglichen mit einer entsprechenden nicht modifizierten, z. B. nicht transformierten, Pflanzenzelle oder Pflanze vom Wildtyp oder einem Teil davon.
  • Gemäß einer weiteren Ausführungsform wird, wenn die Aktivität eines Polypeptids gemäß der Polypeptid-SEQ ID NO.: 6087 beziehungsweise kodiert durch ein Nukleinsäuremolekül, das die Nukleinsäure-SEQ ID NO.: 6086 umfasst, oder eines Homologs dieses Nukleinsäuremoleküls beziehungsweise Polypeptids, z. B. im Fall der Aktivität des Escherichia coli-Nukleinsäuremoleküls beziehungsweise eines Polypeptids, welches die Nukleinsäure-SEQ ID NO. 6086 beziehungsweise Polypeptid-SEQ ID NO. 6087 umfasst, erhöht oder erzeugt wird, z. B. wenn die Aktivität eines Nukleinsäuremoleküls oder eines Polypeptids, welches die Nukleinsäure oder das Polypeptid oder die Konsensussequenz oder das Polypeptidmotiv wie in Tabelle I, II bzw. IV, Spalte 7, in der jeweils gleichen Zeile wie das Nukleinsäuremolekül SEQ ID NO.: 6086 beziehungsweise das Polypeptid SEQ ID NO.: 6087 gezeigt umfasst, erhöht oder erzeugt wird, oder wenn die Aktivität „Enoyl-CoA-Hydratase” in einer Pflanzenzelle, einer Pflanze oder einem Teil davon erhöht oder erzeugt wird, insbesondere bei einer Lokalisierung des Polypeptids in Plastiden ein erhöhter intrinsischer Ertrag, verglichen mit einer entsprechenden nicht modifizierten, z. B. nicht transformierten, Pflanzenzelle oder Pflanze vom Wildtyp oder einem Teil davon verliehen. Gemäß einer Ausführungsform wird ein erhöhter Ertrag unter Standardbedingungen (intrinsischer Ertrag) verliehen, z. B. in Abwesenheit von Nährstoffmangel sowie Stressbedingungen. Insbesondere wird eine Ertragserhöhung von 1,05-fach bis 1,117-fach, zum Beispiel plus wenigstens 100% davon unter Standardbedingungen (intrinsischer Ertrag) verliehen, z. B. in Abwesenheit von Nährstoffmangel sowie Stressbedingungen, verglichen mit einer entsprechenden nicht modifizierten, z. B. nicht transformierten, Pflanzenzelle oder Pflanze vom Wildtyp oder einem Teil davon.
  • Dementsprechend wird gemäß einer Ausführungsform, wenn die Aktivität eines Polypeptids gemäß der Polypeptid-SEQ ID NO.: 6582 beziehungsweise kodiert durch ein Nukleinsäuremolekül, das die Nukleinsäure-SEQ ID NO.: 6581 umfasst, oder eines Homologs dieses Nukleinsäuremoleküls beziehungsweise Polypeptids, z. B. im Fall der Aktivität des Escherichia coli-Nukleinsäuremoleküls beziehungsweise eines Polypeptids, welches die Nukleinsäure-SEQ ID NO. 6581 beziehungsweise Polypeptid-SEQ ID NO. 6582 umfasst, erhöht oder erzeugt wird, z. B. wenn die Aktivität eines Nukleinsäuremoleküls oder eines Polypeptids, welches die Nukleinsäure oder das Polypeptid oder die Konsensussequenz oder das Polypeptidmotiv wie in Tabelle I, II bzw. IV, Spalte 7, in der jeweils gleichen Zeile wie das Nukleinsäuremolekül SEQ ID NO.: 6581 beziehungsweise das Polypeptid SEQ ID NO.: 6582 gezeigt umfasst, erhöht oder erzeugt wird, oder wenn die Aktivität „B1906-Protein” in einer Pflanzenzelle, einer Pflanze oder einem Teil davon erhöht oder erzeugt wird, insbesondere bei einer Lokalisierung im Zytoplasma ein erhöhter Ertrag, verglichen mit einer entsprechenden nicht modifizierten, z. B. nicht transformierten, Pflanzenzelle oder Pflanze vom Wildtyp oder einem Teil davon verliehen.
  • Gemäß einer weiteren Ausführungsform wird, wenn die Aktivität eines Polypeptids gemäß der Polypeptid-SEQ ID NO.: 6582 beziehungsweise kodiert durch ein Nukleinsäuremolekül, das die Nukleinsäure-SEQ ID NO.: 6581 umfasst, oder eines Homologs dieses Nukleinsäuremoleküls beziehungsweise Polypeptids, z. B. im Fall der Aktivität des Escherichia coli-Nukleinsäuremoleküls beziehungsweise eines Polypeptids, welches die Nukleinsäure-SEQ ID NO. 6581 beziehungsweise Polypeptid-SEQ ID NO. 6582 umfasst, erhöht oder erzeugt wird, z. B. wenn die Aktivität eines Nukleinsäuremoleküls oder eines Polypeptids, welches die Nukleinsäure oder das Polypeptid oder die Konsensussequenz oder das Polypeptidmotiv wie in Tabelle I, II bzw. IV, Spalte 7, in der jeweils gleichen Zeile wie das Nukleinsäuremolekül SEQ ID NO.: 6581 beziehungsweise das Polypeptid SEQ ID NO.: 6582 gezeigt umfasst, erhöht oder erzeugt wird, oder wenn die Aktivität „B1906-Protein” in einer Pflanzenzelle, einer Pflanze oder einem Teil davon erhöht oder erzeugt wird, insbesondere bei einer Lokalisierung des Polypeptids im Zytoplasma eine erhöhte Toleranz gegenüber abiotischem Umweltstress, insbesondere eine erhöhte Toleranz gegenüber niedrigen Temperaturen, verglichen mit einer entsprechenden nicht modifizierten, z. B. nicht transformierten, Pflanzenzelle oder Pflanze vom Wildtyp oder einem Teil davon verliehen. Insbesondere wird eine Ertragserhöhung von 1,1-fach bis 1,290-fach, zum Beispiel plus wenigstens 100% davon unter Bedingungen niedriger Temperaturen verliehen, verglichen mit einer entsprechenden nicht modifizierten, z. B. nicht transformierten, Pflanzenzelle oder Pflanze vom Wildtyp oder einem Teil davon.
  • Gemäß einer weiteren Ausführungsform wird, wenn die Aktivität eines Polypeptids gemäß der Polypeptid-SEQ ID NO.: 6582 beziehungsweise kodiert durch ein Nukleinsäuremolekül, das die Nukleinsäure-SEQ ID NO.: 6581 umfasst, oder eines Homologs dieses Nukleinsäuremoleküls beziehungsweise Polypeptids, z. B. im Fall der Aktivität des Escherichia coli-Nukleinsäuremoleküls beziehungsweise eines Polypeptids, welches die Nukleinsäure-SEQ ID NO. 6581 beziehungsweise Polypeptid-SEQ ID NO. 6582 umfasst, erhöht oder erzeugt wird, z. B. wenn die Aktivität eines Nukleinsäuremoleküls oder eines Polypeptids, welches die Nukleinsäure oder das Polypeptid oder die Konsensussequenz oder das Polypeptidmotiv wie in Tabelle I, II bzw. IV, Spalte 7, in der jeweils gleichen Zeile wie das Nukleinsäuremolekül SEQ ID NO.: 6581 beziehungsweise das Polypeptid SEQ ID NO.: 6582 gezeigt umfasst, erhöht oder erzeugt wird, oder wenn die Aktivität „B1906-Protein” in einer Pflanzenzelle, einer Pflanze oder einem Teil davon erhöht oder erzeugt wird, insbesondere bei einer Lokalisierung des Polypeptids im Zytoplasma eine erhöhte Effizienz der Nährstoffausnutzung, verglichen mit einer entsprechenden nicht modifizierten, z. B. nicht transformierten, Pflanzenzelle oder Pflanze vom Wildtyp oder einem Teil davon verliehen. Gemäß einer Ausführungsform wird eine erhöhte Effizienz der Stickstoffausnutzung verliehen. Insbesondere wird eine Ertragserhöhung von 1,05-fach bis 1,321-fach, zum Beispiel plus wenigstens 100% davon unter Stickstoffmangelbedingungen verliehen, verglichen mit einer entsprechenden nicht modifizierten, z. B. nicht transformierten, Pflanzenzelle oder Pflanze vom Wildtyp oder einem Teil davon.
  • Gemäß einer weiteren Ausführungsform wird, wenn die Aktivität eines Polypeptids gemäß der Polypeptid-SEQ ID NO.: 6582 beziehungsweise kodiert durch ein Nukleinsäuremolekül, das die Nukleinsäure-SEQ ID NO.: 6581 umfasst, oder eines Homologs dieses Nukleinsäuremoleküls beziehungsweise Polypeptids, z. B. im Fall der Aktivität des Escherichia coli-Nukleinsäuremoleküls beziehungsweise eines Polypeptids, welches die Nukleinsäure-SEQ ID NO. 6581 beziehungsweise Polypeptid-SEQ ID NO. 6582 umfasst, erhöht oder erzeugt wird, z. B. wenn die Aktivität eines Nukleinsäuremoleküls oder eines Polypeptids, welches die Nukleinsäure oder das Polypeptid oder die Konsensussequenz oder das Polypeptidmotiv wie in Tabelle I, II bzw. IV, Spalte 7, in der jeweils gleichen Zeile wie das Nukleinsäuremolekül SEQ ID NO.: 6581 beziehungsweise das Polypeptid SEQ ID NO.: 6582 gezeigt umfasst, erhöht oder erzeugt wird, oder wenn die Aktivität „B1906-Protein” in einer Pflanzenzelle, einer Pflanze oder einem Teil davon erhöht oder erzeugt wird, insbesondere bei einer Lokalisierung des Polypeptids im Zytoplasma ein erhöhter intrinsischer Ertrag, verglichen mit einer entsprechenden nicht modifizierten, z. B. nicht transformierten, Pflanzenzelle oder Pflanze vom Wildtyp oder einem Teil davon verliehen. Gemäß einer Ausführungsform wird ein erhöhter Ertrag unter Standardbedingungen (intrinsischer Ertrag) verliehen, z. B. in Abwesenheit von Nährstoffmangel sowie Stressbedingungen. Insbesondere wird eine Ertragserhöhung von 1,05-fach bis 1,092-fach, zum Beispiel plus wenigstens 100% davon unter Standardbedingungen (intrinsischer Ertrag) verliehen, z. B. in Abwesenheit von Nährstoffmangel sowie Stressbedingungen, verglichen mit einer entsprechenden nicht modifizierten, z. B. nicht transformierten, Pflanzenzelle oder Pflanze vom Wildtyp oder einem Teil davon.
  • Dementsprechend wird gemäß einer Ausführungsform, wenn die Aktivität eines Polypeptids gemäß der Polypeptid-SEQ ID NO.: 6610 beziehungsweise kodiert durch ein Nukleinsäuremolekül, das die Nukleinsäure-SEQ ID NO.: 6609 umfasst, oder eines Homologs dieses Nukleinsäuremoleküls beziehungsweise Polypeptids, z. B. im Fall der Aktivität des Escherichia coli-Nukleinsäuremoleküls beziehungsweise eines Polypeptids, welches die Nukleinsäure-SEQ ID NO. 6609 beziehungsweise Polypeptid-SEQ ID NO. 6610 umfasst, erhöht oder erzeugt wird, z. B. wenn die Aktivität eines Nukleinsäuremoleküls oder eines Polypeptids, welches die Nukleinsäure oder das Polypeptid oder die Konsensussequenz oder das Polypeptidmotiv wie in Tabelle I, II bzw. IV, Spalte 7, in der jeweils gleichen Zeile wie das Nukleinsäuremolekül SEQ ID NO.: 6609 beziehungsweise das Polypeptid SEQ ID NO.: 6610 gezeigt umfasst, erhöht oder erzeugt wird, oder wenn die Aktivität „CoA-Transferase-ähnliches Protein (NAD(P)-bindend)” in einer Pflanzenzelle, einer Pflanze oder einem Teil davon erhöht oder erzeugt wird, insbesondere bei einer Lokalisierung im Zytoplasma ein erhöhter Ertrag, verglichen mit einer entsprechenden nicht modifizierten, z. B. nicht transformierten, Pflanzenzelle oder Pflanze vom Wildtyp oder einem Teil davon verliehen.
  • Gemäß einer weiteren Ausführungsform wird, wenn die Aktivität eines Polypeptids gemäß der Polypeptid-SEQ ID NO.: 6610 beziehungsweise kodiert durch ein Nukleinsäuremolekül, das die Nukleinsäure-SEQ ID NO.: 6609 umfasst, oder eines Homologs dieses Nukleinsäuremoleküls beziehungsweise Polypeptids, z. B. im Fall der Aktivität des Escherichia coli-Nukleinsäuremoleküls beziehungsweise eines Polypeptids, welches die Nukleinsäure-SEQ ID NO. 6609 beziehungsweise Polypeptid-SEQ ID NO. 6610 umfasst, erhöht oder erzeugt wird, z. B. wenn die Aktivität eines Nukleinsäuremoleküls oder eines Polypeptids, welches die Nukleinsäure oder das Polypeptid oder die Konsensussequenz oder das Polypeptidmotiv wie in Tabelle I, II bzw. IV, Spalte 7, in der jeweils gleichen Zeile wie das Nukleinsäuremolekül SEQ ID NO.: 6609 beziehungsweise das Polypeptid SEQ ID NO.: 6610 gezeigt umfasst, erhöht oder erzeugt wird, oder wenn die Aktivität „CoA-Transferase-ähnliches Protein (NAD(P)-bindend)” in einer Pflanzenzelle, einer Pflanze oder einem Teil davon erhöht oder erzeugt wird, insbesondere bei einer Lokalisierung des Polypeptids im Zytoplasma eine erhöhte Toleranz gegenüber abiotischem Umweltstress, insbesondere eine erhöhte Toleranz gegenüber niedrigen Temperaturen, verglichen mit einer entsprechenden nicht modifizierten, z. B. nicht transformierten, Pflanzenzelle oder Pflanze vom Wildtyp oder einem Teil davon verliehen. Insbesondere wird eine Ertragserhöhung von 1,1-fach bis 1,328-fach, zum Beispiel plus wenigstens 100% davon unter Bedingungen niedriger Temperaturen verliehen, verglichen mit einer entsprechenden nicht modifizierten, z. B. nicht transformierten, Pflanzenzelle oder Pflanze vom Wildtyp oder einem Teil davon.
  • Gemäß einer weiteren Ausführungsform wird, wenn die Aktivität eines Polypeptids gemäß der Polypeptid-SEQ ID NO.: 6610 beziehungsweise kodiert durch ein Nukleinsäuremolekül, das die Nukleinsäure-SEQ ID NO.: 6609 umfasst, oder eines Homologs dieses Nukleinsäuremoleküls beziehungsweise Polypeptids, z. B. im Fall der Aktivität des Escherichia coli-Nukleinsäuremoleküls beziehungsweise eines Polypeptids, welches die Nukleinsäure-SEQ ID NO. 6609 beziehungsweise Polypeptid-SEQ ID NO. 6610 umfasst, erhöht oder erzeugt wird, z. B. wenn die Aktivität eines Nukleinsäuremoleküls oder eines Polypeptids, welches die Nukleinsäure oder das Polypeptid oder die Konsensussequenz oder das Polypeptidmotiv wie in Tabelle I, II bzw. IV, Spalte 7, in der jeweils gleichen Zeile wie das Nukleinsäuremolekül SEQ ID NO.: 6609 beziehungsweise das Polypeptid SEQ ID NO.: 6610 gezeigt umfasst, erhöht oder erzeugt wird, oder wenn die Aktivität „CoA-Transferase-ähnliches Protein (NAD(P)-bindend)” in einer Pflanzenzelle, einer Pflanze oder einem Teil davon erhöht oder erzeugt wird, insbesondere bei einer Lokalisierung des Polypeptids im Zytoplasma eine erhöhte Effizienz der Nährstoffausnutzung, verglichen mit einer entsprechenden nicht modifizierten, z. B. nicht transformierten, Pflanzenzelle oder Pflanze vom Wildtyp oder einem Teil davon verliehen. Gemäß einer Ausführungsform wird eine erhöhte Effizienz der Stickstoffausnutzung verliehen. Insbesondere wird eine Ertragserhöhung von 1,05-fach bis 1,261-fach, zum Beispiel plus wenigstens 100% davon unter Stickstoffmangelbedingungen verliehen, verglichen mit einer entsprechenden nicht modifizierten, z. B. nicht transformierten, Pflanzenzelle oder Pflanze vom Wildtyp oder einem Teil davon.
  • Gemäß einer weiteren Ausführungsform wird, wenn die Aktivität eines Polypeptids gemäß der Polypeptid-SEQ ID NO.: 6610 beziehungsweise kodiert durch ein Nukleinsäuremolekül, das die Nukleinsäure-SEQ ID NO.: 6609 umfasst, oder eines Homologs dieses Nukleinsäuremoleküls beziehungsweise Polypeptids, z. B. im Fall der Aktivität des Escherichia coli-Nukleinsäuremoleküls beziehungsweise eines Polypeptids, welches die Nukleinsäure-SEQ ID NO. 6609 beziehungsweise Polypeptid-SEQ ID NO. 6610 umfasst, erhöht oder erzeugt wird, z. B. wenn die Aktivität eines Nukleinsäuremoleküls oder eines Polypeptids, welches die Nukleinsäure oder das Polypeptid oder die Konsensussequenz oder das Polypeptidmotiv wie in Tabelle I, II bzw. IV, Spalte 7, in der jeweils gleichen Zeile wie das Nukleinsäuremolekül SEQ ID NO.: 6609 beziehungsweise das Polypeptid SEQ ID NO.: 6610 gezeigt umfasst, erhöht oder erzeugt wird, oder wenn die Aktivität „CoA-Transferase-ähnliches Protein (NAD(P)-bindend)” in einer Pflanzenzelle, einer Pflanze oder einem Teil davon erhöht oder erzeugt wird, insbesondere bei einer Lokalisierung des Polypeptids im Zytoplasma ein erhöhter intrinsischer Ertrag, verglichen mit einer entsprechenden nicht modifizierten, z. B. nicht transformierten, Pflanzenzelle oder Pflanze vom Wildtyp oder einem Teil davon verliehen. Gemäß einer Ausführungsform wird ein erhöhter Ertrag unter Standardbedingungen (intrinsischer Ertrag) verliehen, z. B. in Abwesenheit von Nährstoffmangel sowie Stressbedingungen. Insbesondere wird eine Ertragserhöhung von 1,05-fach bis 1,121-fach, zum Beispiel plus wenigstens 100% davon unter Standardbedingungen (intrinsischer Ertrag) verliehen, z. B. in Abwesenheit von Nährstoffmangel sowie Stressbedingungen, verglichen mit einer entsprechenden nicht modifizierten, z. B. nicht transformierten, Pflanzenzelle oder Pflanze vom Wildtyp oder einem Teil davon.
  • Dementsprechend wird gemäß einer Ausführungsform, wenn die Aktivität eines Polypeptids gemäß der Polypeptid-SEQ ID NO.: 6950 beziehungsweise kodiert durch ein Nukleinsäuremolekül, das die Nukleinsäure-SEQ ID NO.: 6949 umfasst, oder eines Homologs dieses Nukleinsäuremoleküls beziehungsweise Polypeptids, z. B. im Fall der Aktivität des Escherichia coli-Nukleinsäuremoleküls beziehungsweise eines Polypeptids, welches die Nukleinsäure-SEQ ID NO. 6949 beziehungsweise Polypeptid-SEQ ID NO. 6950 umfasst, erhöht oder erzeugt wird, z. B. wenn die Aktivität eines Nukleinsäuremoleküls oder eines Polypeptids, welches die Nukleinsäure oder das Polypeptid oder die Konsensussequenz oder das Polypeptidmotiv wie in Tabelle I, II bzw. IV, Spalte 7, in der jeweils gleichen Zeile wie das Nukleinsäuremolekül SEQ ID NO.: 6949 beziehungsweise das Polypeptid SEQ ID NO.: 6950 gezeigt umfasst, erhöht oder erzeugt wird, oder wenn die Aktivität „molybdänbindende Untereinheit von Aldehydoxidasen und Xanthindehydrogenasen” in einer Pflanzenzelle, einer Pflanze oder einem Teil davon erhöht oder erzeugt wird, insbesondere bei einer Lokalisierung im Zytoplasma ein erhöhter Ertrag, verglichen mit einer entsprechenden nicht modifizierten, z. B. nicht transformierten, Pflanzenzelle oder Pflanze vom Wildtyp oder einem Teil davon verliehen.
  • Gemäß einer weiteren Ausführungsform wird, wenn die Aktivität eines Polypeptids gemäß der Polypeptid-SEQ ID NO.: 6950 beziehungsweise kodiert durch ein Nukleinsäuremolekül, das die Nukleinsäure-SEQ ID NO.: 6949 umfasst, oder eines Homologs dieses Nukleinsäuremoleküls beziehungsweise Polypeptids, z. B. im Fall der Aktivität des Escherichia coli-Nukleinsäuremoleküls beziehungsweise eines Polypeptids, welches die Nukleinsäure-SEQ ID NO. 6949 beziehungsweise Polypeptid-SEQ ID NO. 6950 umfasst, erhöht oder erzeugt wird, z. B. wenn die Aktivität eines Nukleinsäuremoleküls oder eines Polypeptids, welches die Nukleinsäure oder das Polypeptid oder die Konsensussequenz oder das Polypeptidmotiv wie in Tabelle I, II bzw. IV, Spalte 7, in der jeweils gleichen Zeile wie das Nukleinsäuremolekül SEQ ID NO.: 6949 beziehungsweise das Polypeptid SEQ ID NO.: 6950 gezeigt umfasst, erhöht oder erzeugt wird, oder wenn die Aktivität „molybdänbindende Untereinheit von Aldehydoxidasen und Xanthindehydrogenasen” in einer Pflanzenzelle, einer Pflanze oder einem Teil davon erhöht oder erzeugt wird, insbesondere bei einer Lokalisierung des Polypeptids im Zytoplasma eine erhöhte Toleranz gegenüber abiotischem Umweltstress, insbesondere eine erhöhte Toleranz gegenüber niedrigen Temperaturen, verglichen mit einer entsprechenden nicht modifizierten, z. B. nicht transformierten, Pflanzenzelle oder Pflanze vom Wildtyp oder einem Teil davon verliehen. Insbesondere wird eine Ertragserhöhung von 1,1-fach bis 1,230-fach, zum Beispiel plus wenigstens 100% davon unter Bedingungen niedriger Temperaturen verliehen, verglichen mit einer entsprechenden nicht modifizierten, z. B. nicht transformierten, Pflanzenzelle oder Pflanze vom Wildtyp oder einem Teil davon.
  • Gemäß einer weiteren Ausführungsform wird, wenn die Aktivität eines Polypeptids gemäß der Polypeptid-SEQ ID NO.: 6950 beziehungsweise kodiert durch ein Nukleinsäuremolekül, das die Nukleinsäure-SEQ ID NO.: 6949 umfasst, oder eines Homologs dieses Nukleinsäuremoleküls beziehungsweise Polypeptids, z. B. im Fall der Aktivität des Escherichia coli-Nukleinsäuremoleküls beziehungsweise eines Polypeptids, welches die Nukleinsäure-SEQ ID NO. 6949 beziehungsweise Polypeptid-SEQ ID NO. 6950 umfasst, erhöht oder erzeugt wird, z. B. wenn die Aktivität eines Nukleinsäuremoleküls oder eines Polypeptids, welches die Nukleinsäure oder das Polypeptid oder die Konsensussequenz oder das Polypeptidmotiv wie in Tabelle I, II bzw. IV, Spalte 7, in der jeweils gleichen Zeile wie das Nukleinsäuremolekül SEQ ID NO.: 6949 beziehungsweise das Polypeptid SEQ ID NO.: 6950 gezeigt umfasst, erhöht oder erzeugt wird, oder wenn die Aktivität „molybdänbindende Untereinheit von Aldehydoxidasen und Xanthindehydrogenasen” in einer Pflanzenzelle, einer Pflanze oder einem Teil davon erhöht oder erzeugt wird, insbesondere bei einer Lokalisierung des Polypeptids im Zytoplasma eine erhöhte Effizienz der Nährstoffausnutzung, verglichen mit einer entsprechenden nicht modifizierten, z. B. nicht transformierten, Pflanzenzelle oder Pflanze vom Wildtyp oder einem Teil davon verliehen. Gemäß einer Ausführungsform wird eine erhöhte Effizienz der Stickstoffausnutzung verliehen. Insbesondere wird eine Ertragserhöhung von 1,05-fach bis 1,202-fach, zum Beispiel plus wenigstens 100% davon unter Stickstoffmangelbedingungen verliehen, verglichen mit einer entsprechenden nicht modifizierten, z. B. nicht transformierten, Pflanzenzelle oder Pflanze vom Wildtyp oder einem Teil davon.
  • Gemäß einer weiteren Ausführungsform wird, wenn die Aktivität eines Polypeptids gemäß der Polypeptid-SEQ ID NO.: 6950 beziehungsweise kodiert durch ein Nukleinsäuremolekül, das die Nukleinsäure-SEQ ID NO.: 6949 umfasst, oder eines Homologs dieses Nukleinsäuremoleküls beziehungsweise Polypeptids, z. B. im Fall der Aktivität des Escherichia coli-Nukleinsäuremoleküls beziehungsweise eines Polypeptids, welches die Nukleinsäure-SEQ ID NO. 6949 beziehungsweise Polypeptid-SEQ ID NO. 6950 umfasst, erhöht oder erzeugt wird, z. B. wenn die Aktivität eines Nukleinsäuremoleküls oder eines Polypeptids, welches die Nukleinsäure oder das Polypeptid oder die Konsensussequenz oder das Polypeptidmotiv wie in Tabelle I, II bzw. IV, Spalte 7, in der jeweils gleichen Zeile wie das Nukleinsäuremolekül SEQ ID NO.: 6949 beziehungsweise das Polypeptid SEQ ID NO.: 6950 gezeigt umfasst, erhöht oder erzeugt wird, oder wenn die Aktivität „molybdänbindende Untereinheit von Aldehydoxidasen und Xanthindehydrogenasen” in einer Pflanzenzelle, einer Pflanze oder einem Teil davon erhöht oder erzeugt wird, insbesondere bei einer Lokalisierung des Polypeptids im Zytoplasma ein erhöhter intrinsischer Ertrag, verglichen mit einer entsprechenden nicht modifizierten, z. B. nicht transformierten, Pflanzenzelle oder Pflanze vom Wildtyp oder einem Teil davon verliehen. Gemäß einer Ausführungsform wird ein erhöhter Ertrag unter Standardbedingungen (intrinsischer Ertrag) verliehen, z. B. in Abwesenheit von Nährstoffmangel sowie Stressbedingungen. Insbesondere wird eine Ertragserhöhung von 1,05-fach bis 1,074-fach, zum Beispiel plus wenigstens 100% davon unter Standardbedingungen (intrinsischer Ertrag) verliehen, z. B. in Abwesenheit von Nährstoffmangel sowie Stressbedingungen, verglichen mit einer entsprechenden nicht modifizierten, z. B. nicht transformierten, Pflanzenzelle oder Pflanze vom Wildtyp oder einem Teil davon.
  • Dementsprechend wird gemäß einer Ausführungsform, wenn die Aktivität eines Polypeptids gemäß der Polypeptid-SEQ ID NO.: 7079 beziehungsweise kodiert durch ein Nukleinsäuremolekül, das die Nukleinsäure-SEQ ID NO.: 7078 umfasst, oder eines Homologs dieses Nukleinsäuremoleküls beziehungsweise Polypeptids, z. B. im Fall der Aktivität des Escherichia coli-Nukleinsäuremoleküls beziehungsweise eines Polypeptids, welches die Nukleinsäure-SEQ ID NO. 7078 beziehungsweise Polypeptid-SEQ ID NO. 7079 umfasst, erhöht oder erzeugt wird, z. B. wenn die Aktivität eines Nukleinsäuremoleküls oder eines Polypeptids, welches die Nukleinsäure oder das Polypeptid oder die Konsensussequenz oder das Polypeptidmotiv wie in Tabelle I, II bzw. IV, Spalte 7, in der jeweils gleichen Zeile wie das Nukleinsäuremolekül SEQ ID NO.: 7078 beziehungsweise das Polypeptid SEQ ID NO.: 7079 gezeigt umfasst, erhöht oder erzeugt wird, oder wenn die Aktivität „Pirin-ähnliches Protein” in einer Pflanzenzelle, einer Pflanze oder einem Teil davon erhöht oder erzeugt wird, insbesondere bei einer Lokalisierung im Zytoplasma ein erhöhter Ertrag, verglichen mit einer entsprechenden nicht modifizierten, z. B. nicht transformierten, Pflanzenzelle oder Pflanze vom Wildtyp oder einem Teil davon verliehen.
  • Gemäß einer weiteren Ausführungsform wird, wenn die Aktivität eines Polypeptids gemäß der Polypeptid-SEQ ID NO.: 7079 beziehungsweise kodiert durch ein Nukleinsäuremolekül, das die Nukleinsäure-SEQ ID NO.: 7078 umfasst, oder eines Homologs dieses Nukleinsäuremoleküls beziehungsweise Polypeptids, z. B. im Fall der Aktivität des Escherichia coli-Nukleinsäuremoleküls beziehungsweise eines Polypeptids, welches die Nukleinsäure-SEQ ID NO. 7078 beziehungsweise Polypeptid-SEQ ID NO. 7079 umfasst, erhöht oder erzeugt wird, z. B. wenn die Aktivität eines Nukleinsäuremoleküls oder eines Polypeptids, welches die Nukleinsäure oder das Polypeptid oder die Konsensussequenz oder das Polypeptidmotiv wie in Tabelle I, II bzw. IV, Spalte 7, in der jeweils gleichen Zeile wie das Nukleinsäuremolekül SEQ ID NO.: 7078 beziehungsweise das Polypeptid SEQ ID NO.: 7079 gezeigt umfasst, erhöht oder erzeugt wird, oder wenn die Aktivität „Pirin-ähnliches Protein” in einer Pflanzenzelle, einer Pflanze oder einem Teil davon erhöht oder erzeugt wird, insbesondere bei einer Lokalisierung des Polypeptids im Zytoplasma eine erhöhte Toleranz gegenüber abiotischem Umweltstress, insbesondere eine erhöhte Toleranz gegenüber niedrigen Temperaturen, verglichen mit einer entsprechenden nicht modifizierten, z. B. nicht transformierten, Pflanzenzelle oder Pflanze vom Wildtyp oder einem Teil davon verliehen. Insbesondere wird eine Ertragserhöhung von 1,1-fach bis 1,381-fach, zum Beispiel plus wenigstens 100% davon unter Bedingungen niedriger Temperaturen verliehen, verglichen mit einer entsprechenden nicht modifizierten, z. B. nicht transformierten, Pflanzenzelle oder Pflanze vom Wildtyp oder einem Teil davon.
  • Gemäß einer weiteren Ausführungsform wird, wenn die Aktivität eines Polypeptids gemäß der Polypeptid-SEQ ID NO.: 7079 beziehungsweise kodiert durch ein Nukleinsäuremolekül, das die Nukleinsäure-SEQ ID NO.: 7078 umfasst, oder eines Homologs dieses Nukleinsäuremoleküls beziehungsweise Polypeptids, z. B. im Fall der Aktivität des Escherichia coli-Nukleinsäuremoleküls beziehungsweise eines Polypeptids, welches die Nukleinsäure-SEQ ID NO. 7078 beziehungsweise Polypeptid-SEQ ID NO. 7079 umfasst, erhöht oder erzeugt wird, z. B. wenn die Aktivität eines Nukleinsäuremoleküls oder eines Polypeptids, welches die Nukleinsäure oder das Polypeptid oder die Konsensussequenz oder das Polypeptidmotiv wie in Tabelle I, II bzw. IV, Spalte 7, in der jeweils gleichen Zeile wie das Nukleinsäuremolekül SEQ ID NO.: 7078 beziehungsweise das Polypeptid SEQ ID NO.: 7079 gezeigt umfasst, erhöht oder erzeugt wird, oder wenn die Aktivität „Pirin-ähnliches Protein” in einer Pflanzenzelle, einer Pflanze oder einem Teil davon erhöht oder erzeugt wird, insbesondere bei einer Lokalisierung des Polypeptids im Zytoplasma eine erhöhte Effizienz der Nährstoffausnutzung, verglichen mit einer entsprechenden nicht modifizierten, z. B. nicht transformierten, Pflanzenzelle oder Pflanze vom Wildtyp oder einem Teil davon verliehen. Gemäß einer Ausführungsform wird eine erhöhte Effizienz der Stickstoffausnutzung verliehen. Insbesondere wird eine Ertragserhöhung von 1,05-fach bis 1,533-fach, zum Beispiel plus wenigstens 100% davon unter Stickstoffmangelbedingungen verliehen, verglichen mit einer entsprechenden nicht modifizierten, z. B. nicht transformierten, Pflanzenzelle oder Pflanze vom Wildtyp oder einem Teil davon.
  • Gemäß einer weiteren Ausführungsform wird, wenn die Aktivität eines Polypeptids gemäß der Polypeptid-SEQ ID NO.: 7079 beziehungsweise kodiert durch ein Nukleinsäuremolekül, das die Nukleinsäure-SEQ ID NO.: 7078 umfasst, oder eines Homologs dieses Nukleinsäuremoleküls beziehungsweise Polypeptids, z. B. im Fall der Aktivität des Escherichia coli-Nukleinsäuremoleküls beziehungsweise eines Polypeptids, welches die Nukleinsäure-SEQ ID NO. 7078 beziehungsweise Polypeptid-SEQ ID NO. 7079 umfasst, erhöht oder erzeugt wird, z. B. wenn die Aktivität eines Nukleinsäuremoleküls oder eines Polypeptids, welches die Nukleinsäure oder das Polypeptid oder die Konsensussequenz oder das Polypeptidmotiv wie in Tabelle I, II bzw. IV, Spalte 7, in der jeweils gleichen Zeile wie das Nukleinsäuremolekül SEQ ID NO.: 7078 beziehungsweise das Polypeptid SEQ ID NO.: 7079 gezeigt umfasst, erhöht oder erzeugt wird, oder wenn die Aktivität „Pirin-ähnliches Protein” in einer Pflanzenzelle, einer Pflanze oder einem Teil davon erhöht oder erzeugt wird, insbesondere bei einer Lokalisierung des Polypeptids im Zytoplasma ein erhöhter intrinsischer Ertrag, verglichen mit einer entsprechenden nicht modifizierten, z. B. nicht transformierten, Pflanzenzelle oder Pflanze vom Wildtyp oder einem Teil davon verliehen. Gemäß einer Ausführungsform wird ein erhöhter Ertrag unter Standardbedingungen (intrinsischer Ertrag) verliehen, z. B. in Abwesenheit von Nährstoffmangel sowie Stressbedingungen. Insbesondere wird eine Ertragserhöhung von 1,05-fach bis 1,082-fach, zum Beispiel plus wenigstens 100% davon unter Standardbedingungen (intrinsischer Ertrag) verliehen, z. B. in Abwesenheit von Nährstoffmangel sowie Stressbedingungen, verglichen mit einer entsprechenden nicht modifizierten, z. B. nicht transformierten, Pflanzenzelle oder Pflanze vom Wildtyp oder einem Teil davon.
  • Dementsprechend wird gemäß einer Ausführungsform, wenn die Aktivität eines Polypeptids gemäß der Polypeptid-SEQ ID NO.: 7271 beziehungsweise kodiert durch ein Nukleinsäuremolekül, das die Nukleinsäure-SEQ ID NO.: 7270 umfasst, oder eines Homologs dieses Nukleinsäuremoleküls beziehungsweise Polypeptids, z. B. im Fall der Aktivität des Escherichia coli-Nukleinsäuremoleküls beziehungsweise eines Polypeptids, welches die Nukleinsäure-SEQ ID NO. 7270 beziehungsweise Polypeptid-SEQ ID NO. 7271 umfasst, erhöht oder erzeugt wird, z. B. wenn die Aktivität eines Nukleinsäuremoleküls oder eines Polypeptids, welches die Nukleinsäure oder das Polypeptid oder die Konsensussequenz oder das Polypeptidmotiv wie in Tabelle I, II bzw. IV, Spalte 7, in der jeweils gleichen Zeile wie das Nukleinsäuremolekül SEQ ID NO.: 7270 beziehungsweise das Polypeptid SEQ ID NO.: 7271 gezeigt umfasst, erhöht oder erzeugt wird, oder wenn die Aktivität „Hitzeschockprotein” in einer Pflanzenzelle, einer Pflanze oder einem Teil davon erhöht oder erzeugt wird, insbesondere bei einer Lokalisierung in Plastiden ein erhöhter Ertrag, verglichen mit einer entsprechenden nicht modifizierten, z. B. nicht transformierten, Pflanzenzelle oder Pflanze vom Wildtyp oder einem Teil davon verliehen.
  • Gemäß einer weiteren Ausführungsform wird, wenn die Aktivität eines Polypeptids gemäß der Polypeptid-SEQ ID NO.: 7271 beziehungsweise kodiert durch ein Nukleinsäuremolekül, das die Nukleinsäure-SEQ ID NO.: 7270 umfasst, oder eines Homologs dieses Nukleinsäuremoleküls beziehungsweise Polypeptids, z. B. im Fall der Aktivität des Escherichia coli-Nukleinsäuremoleküls beziehungsweise eines Polypeptids, welches die Nukleinsäure-SEQ ID NO. 7270 beziehungsweise Polypeptid-SEQ ID NO. 7271 umfasst, erhöht oder erzeugt wird, z. B. wenn die Aktivität eines Nukleinsäuremoleküls oder eines Polypeptids, welches die Nukleinsäure oder das Polypeptid oder die Konsensussequenz oder das Polypeptidmotiv wie in Tabelle I, II bzw. IV, Spalte 7, in der jeweils gleichen Zeile wie das Nukleinsäuremolekül SEQ ID NO.: 7270 beziehungsweise das Polypeptid SEQ ID NO.: 7271 gezeigt umfasst, erhöht oder erzeugt wird, oder wenn die Aktivität „Hitzeschockprotein” in einer Pflanzenzelle, einer Pflanze oder einem Teil davon erhöht oder erzeugt wird, insbesondere bei einer Lokalisierung des Polypeptids in Plastiden eine erhöhte Toleranz gegenüber abiotischem Umweltstress, insbesondere eine erhöhte Toleranz gegenüber niedrigen Temperaturen, verglichen mit einer entsprechenden nicht modifizierten, z. B. nicht transformierten, Pflanzenzelle oder Pflanze vom Wildtyp oder einem Teil davon verliehen. Insbesondere wird eine Ertragserhöhung von 1,1-fach bis 1,394-fach, zum Beispiel plus wenigstens 100% davon unter Bedingungen niedriger Temperaturen verliehen, verglichen mit einer entsprechenden nicht modifizierten, z. B. nicht transformierten, Pflanzenzelle oder Pflanze vom Wildtyp oder einem Teil davon.
  • Gemäß einer weiteren Ausführungsform wird, wenn die Aktivität eines Polypeptids gemäß der Polypeptid-SEQ ID NO.: 7271 beziehungsweise kodiert durch ein Nukleinsäuremolekül, das die Nukleinsäure-SEQ ID NO.: 7270 umfasst, oder eines Homologs dieses Nukleinsäuremoleküls beziehungsweise Polypeptids, z. B. im Fall der Aktivität des Escherichia coli-Nukleinsäuremoleküls beziehungsweise eines Polypeptids, welches die Nukleinsäure-SEQ ID NO. 7270 beziehungsweise Polypeptid-SEQ ID NO. 7271 umfasst, erhöht oder erzeugt wird, z. B. wenn die Aktivität eines Nukleinsäuremoleküls oder eines Polypeptids, welches die Nukleinsäure oder das Polypeptid oder die Konsensussequenz oder das Polypeptidmotiv wie in Tabelle I, II bzw. IV, Spalte 7, in der jeweils gleichen Zeile wie das Nukleinsäuremolekül SEQ ID NO.: 7270 beziehungsweise das Polypeptid SEQ ID NO.: 7271 gezeigt umfasst, erhöht oder erzeugt wird, oder wenn die Aktivität „Hitzeschockprotein” in einer Pflanzenzelle, einer Pflanze oder einem Teil davon erhöht oder erzeugt wird, insbesondere bei einer Lokalisierung des Polypeptids in Plastiden ein erhöhter intrinsischer Ertrag, verglichen mit einer entsprechenden nicht modifizierten, z. B. nicht transformierten, Pflanzenzelle oder Pflanze vom Wildtyp oder einem Teil davon verliehen. Gemäß einer Ausführungsform wird ein erhöhter Ertrag unter Standardbedingungen (intrinsischer Ertrag) verliehen, z. B. in Abwesenheit von Nährstoffmangel sowie Stressbedingungen. Insbesondere wird eine Ertragserhöhung von 1,05-fach bis 1,191-fach, zum Beispiel plus wenigstens 100% davon unter Standardbedingungen (intrinsischer Ertrag) verliehen, z. B. in Abwesenheit von Nährstoffmangel sowie Stressbedingungen, verglichen mit einer entsprechenden nicht modifizierten, z. B. nicht transformierten, Pflanzenzelle oder Pflanze vom Wildtyp oder einem Teil davon.
  • Dementsprechend wird gemäß einer Ausführungsform, wenn die Aktivität eines Polypeptids gemäß der Polypeptid-SEQ ID NO.: 7468 beziehungsweise kodiert durch ein Nukleinsäuremolekül, das die Nukleinsäure-SEQ ID NO.: 7467 umfasst, oder eines Homologs dieses Nukleinsäuremoleküls beziehungsweise Polypeptids, z. B. im Fall der Aktivität des Escherichia coli-Nukleinsäuremoleküls beziehungsweise eines Polypeptids, welches die Nukleinsäure-SEQ ID NO. 7467 beziehungsweise Polypeptid-SEQ ID NO. 7468 umfasst, erhöht oder erzeugt wird, z. B. wenn die Aktivität eines Nukleinsäuremoleküls oder eines Polypeptids, welches die Nukleinsäure oder das Polypeptid oder die Konsensussequenz oder das Polypeptidmotiv wie in Tabelle I, II bzw. IV, Spalte 7, in der jeweils gleichen Zeile wie das Nukleinsäuremolekül SEQ ID NO.: 7467 beziehungsweise das Polypeptid SEQ ID NO.: 7468 gezeigt umfasst, erhöht oder erzeugt wird, oder wenn die Aktivität „B3410-Protein” in einer Pflanzenzelle, einer Pflanze oder einem Teil davon erhöht oder erzeugt wird, insbesondere bei einer Lokalisierung im Zytoplasma ein erhöhter Ertrag, verglichen mit einer entsprechenden nicht modifizierten, z. B. nicht transformierten, Pflanzenzelle oder Pflanze vom Wildtyp oder einem Teil davon verliehen.
  • Gemäß einer weiteren Ausführungsform wird, wenn die Aktivität eines Polypeptids gemäß der Polypeptid-SEQ ID NO.: 7468 beziehungsweise kodiert durch ein Nukleinsäuremolekül, das die Nukleinsäure-SEQ ID NO.: 7467 umfasst, oder eines Homologs dieses Nukleinsäuremoleküls beziehungsweise Polypeptids, z. B. im Fall der Aktivität des Escherichia coli-Nukleinsäuremoleküls beziehungsweise eines Polypeptids, welches die Nukleinsäure-SEQ ID NO. 7467 beziehungsweise Polypeptid-SEQ ID NO. 7468 umfasst, erhöht oder erzeugt wird, z. B. wenn die Aktivität eines Nukleinsäuremoleküls oder eines Polypeptids, welches die Nukleinsäure oder das Polypeptid oder die Konsensussequenz oder das Polypeptidmotiv wie in Tabelle I, II bzw. IV, Spalte 7, in der jeweils gleichen Zeile wie das Nukleinsäuremolekül SEQ ID NO.: 7467 beziehungsweise das Polypeptid SEQ ID NO.: 7468 gezeigt umfasst, erhöht oder erzeugt wird, oder wenn die Aktivität „B3410-Protein” in einer Pflanzenzelle, einer Pflanze oder einem Teil davon erhöht oder erzeugt wird, insbesondere bei einer Lokalisierung des Polypeptids im Zytoplasma eine erhöhte Toleranz gegenüber abiotischem Umweltstress, insbesondere eine erhöhte Toleranz gegenüber niedrigen Temperaturen, verglichen mit einer entsprechenden nicht modifizierten, z. B. nicht transformierten, Pflanzenzelle oder Pflanze vom Wildtyp oder einem Teil davon verliehen. Insbesondere wird eine Ertragserhöhung von 1,1-fach bis 1,420-fach, zum Beispiel plus wenigstens 100% davon unter Bedingungen niedriger Temperaturen verliehen, verglichen mit einer entsprechenden nicht modifizierten, z. B. nicht transformierten, Pflanzenzelle oder Pflanze vom Wildtyp oder einem Teil davon.
  • Gemäß einer weiteren Ausführungsform wird, wenn die Aktivität eines Polypeptids gemäß der Polypeptid-SEQ ID NO.: 7468 beziehungsweise kodiert durch ein Nukleinsäuremolekül, das die Nukleinsäure-SEQ ID NO.: 7467 umfasst, oder eines Homologs dieses Nukleinsäuremoleküls beziehungsweise Polypeptids, z. B. im Fall der Aktivität des Escherichia coli-Nukleinsäuremoleküls beziehungsweise eines Polypeptids, welches die Nukleinsäure-SEQ ID NO. 7467 beziehungsweise Polypeptid-SEQ ID NO. 7468 umfasst, erhöht oder erzeugt wird, z. B. wenn die Aktivität eines Nukleinsäuremoleküls oder eines Polypeptids, welches die Nukleinsäure oder das Polypeptid oder die Konsensussequenz oder das Polypeptidmotiv wie in Tabelle I, II bzw. IV, Spalte 7, in der jeweils gleichen Zeile wie das Nukleinsäuremolekül SEQ ID NO.: 7467 beziehungsweise das Polypeptid SEQ ID NO.: 7468 gezeigt umfasst, erhöht oder erzeugt wird, oder wenn die Aktivität „B3410-Protein” in einer Pflanzenzelle, einer Pflanze oder einem Teil davon erhöht oder erzeugt wird, insbesondere bei einer Lokalisierung des Polypeptids im Zytoplasma eine erhöhte Effizienz der Nährstoffausnutzung, verglichen mit einer entsprechenden nicht modifizierten, z. B. nicht transformierten, Pflanzenzelle oder Pflanze vom Wildtyp oder einem Teil davon verliehen. Gemäß einer Ausführungsform wird eine erhöhte Effizienz der Stickstoffausnutzung verliehen. Insbesondere wird eine Ertragserhöhung von 1,05-fach bis 1,286-fach, zum Beispiel plus wenigstens 100% davon unter Stickstoffmangelbedingungen verliehen, verglichen mit einer entsprechenden nicht modifizierten, z. B. nicht transformierten, Pflanzenzelle oder Pflanze vom Wildtyp oder einem Teil davon.
  • Gemäß einer weiteren Ausführungsform wird, wenn die Aktivität eines Polypeptids gemäß der Polypeptid-SEQ ID NO.: 7468 beziehungsweise kodiert durch ein Nukleinsäuremolekül, das die Nukleinsäure-SEQ ID NO.: 7467 umfasst, oder eines Homologs dieses Nukleinsäuremoleküls beziehungsweise Polypeptids, z. B. im Fall der Aktivität des Escherichia coli-Nukleinsäuremoleküls beziehungsweise eines Polypeptids, welches die Nukleinsäure-SEQ ID NO. 7467 beziehungsweise Polypeptid-SEQ ID NO. 7468 umfasst, erhöht oder erzeugt wird, z. B. wenn die Aktivität eines Nukleinsäuremoleküls oder eines Polypeptids, welches die Nukleinsäure oder das Polypeptid oder die Konsensussequenz oder das Polypeptidmotiv wie in Tabelle I, II bzw. IV, Spalte 7, in der jeweils gleichen Zeile wie das Nukleinsäuremolekül SEQ ID NO.: 7467 beziehungsweise das Polypeptid SEQ ID NO.: 7468 gezeigt umfasst, erhöht oder erzeugt wird, oder wenn die Aktivität „B3410-Protein” in einer Pflanzenzelle, einer Pflanze oder einem Teil davon erhöht oder erzeugt wird, insbesondere bei einer Lokalisierung des Polypeptids im Zytoplasma ein erhöhter intrinsischer Ertrag, verglichen mit einer entsprechenden nicht modifizierten, z. B. nicht transformierten, Pflanzenzelle oder Pflanze vom Wildtyp oder einem Teil davon verliehen. Gemäß einer Ausführungsform wird ein erhöhter Ertrag unter Standardbedingungen (intrinsischer Ertrag) verliehen, z. B. in Abwesenheit von Nährstoffmangel sowie Stressbedingungen. Insbesondere wird eine Ertragserhöhung von 1,05-fach bis 1,167-fach, zum Beispiel plus wenigstens 100% davon unter Standardbedingungen (intrinsischer Ertrag) verliehen, z. B. in Abwesenheit von Nährstoffmangel sowie Stressbedingungen, verglichen mit einer entsprechenden nicht modifizierten, z. B. nicht transformierten, Pflanzenzelle oder Pflanze vom Wildtyp oder einem Teil davon.
  • Dementsprechend wird gemäß einer Ausführungsform, wenn die Aktivität eines Polypeptids gemäß der Polypeptid-SEQ ID NO.: 7493 beziehungsweise kodiert durch ein Nukleinsäuremolekül, das die Nukleinsäure-SEQ ID NO.: 7492 umfasst, oder eines Homologs dieses Nukleinsäuremoleküls beziehungsweise Polypeptids, z. B. im Fall der Aktivität des Escherichia coli-Nukleinsäuremoleküls beziehungsweise eines Polypeptids, welches die Nukleinsäure-SEQ ID NO. 7492 beziehungsweise Polypeptid-SEQ ID NO. 7493 umfasst, erhöht oder erzeugt wird, z. B. wenn die Aktivität eines Nukleinsäuremoleküls oder eines Polypeptids, welches die Nukleinsäure oder das Polypeptid oder die Konsensussequenz oder das Polypeptidmotiv wie in Tabelle I, II bzw. IV, Spalte 7, in der jeweils gleichen Zeile wie das Nukleinsäuremolekül SEQ ID NO.: 7492 beziehungsweise das Polypeptid SEQ ID NO.: 7493 gezeigt umfasst, erhöht oder erzeugt wird, oder wenn die Aktivität „Regulator der Zellmorphogenese und der NO-Signalvermittlung” in einer Pflanzenzelle, einer Pflanze oder einem Teil davon erhöht oder erzeugt wird, insbesondere bei einer Lokalisierung in Plastiden ein erhöhter Ertrag, verglichen mit einer entsprechenden nicht modifizierten, z. B. nicht transformierten, Pflanzenzelle oder Pflanze vom Wildtyp oder einem Teil davon verliehen.
  • Gemäß einer weiteren Ausführungsform wird, wenn die Aktivität eines Polypeptids gemäß der Polypeptid-SEQ ID NO.: 7493 beziehungsweise kodiert durch ein Nukleinsäuremolekül, das die Nukleinsäure-SEQ ID NO.: 7492 umfasst, oder eines Homologs dieses Nukleinsäuremoleküls beziehungsweise Polypeptids, z. B. im Fall der Aktivität des Escherichia coli-Nukleinsäuremoleküls beziehungsweise eines Polypeptids, welches die Nukleinsäure-SEQ ID NO. 7492 beziehungsweise Polypeptid-SEQ ID NO. 7493 umfasst, erhöht oder erzeugt wird, z. B. wenn die Aktivität eines Nukleinsäuremoleküls oder eines Polypeptids, welches die Nukleinsäure oder das Polypeptid oder die Konsensussequenz oder das Polypeptidmotiv wie in Tabelle I, II bzw. IV, Spalte 7, in der jeweils gleichen Zeile wie das Nukleinsäuremolekül SEQ ID NO.: 7492 beziehungsweise das Polypeptid SEQ ID NO.: 7493 gezeigt umfasst, erhöht oder erzeugt wird, oder wenn die Aktivität „Regulator der Zellmorphogenese und der NO-Signalvermittlung” in einer Pflanzenzelle, einer Pflanze oder einem Teil davon erhöht oder erzeugt wird, insbesondere bei einer Lokalisierung des Polypeptids in Plastiden eine erhöhte Toleranz gegenüber abiotischem Umweltstress, insbesondere eine erhöhte Toleranz gegenüber niedrigen Temperaturen, verglichen mit einer entsprechenden nicht modifizierten, z. B. nicht transformierten, Pflanzenzelle oder Pflanze vom Wildtyp oder einem Teil davon verliehen. Insbesondere wird eine Ertragserhöhung von 1,1-fach bis 1,489-fach, zum Beispiel plus wenigstens 100% davon unter Bedingungen niedriger Temperaturen verliehen, verglichen mit einer entsprechenden nicht modifizierten, z. B. nicht transformierten, Pflanzenzelle oder Pflanze vom Wildtyp oder einem Teil davon.
  • Gemäß einer weiteren Ausführungsform wird, wenn die Aktivität eines Polypeptids gemäß der Polypeptid-SEQ ID NO.: 7493 beziehungsweise kodiert durch ein Nukleinsäuremolekül, das die Nukleinsäure-SEQ ID NO.: 7492 umfasst, oder eines Homologs dieses Nukleinsäuremoleküls beziehungsweise Polypeptids, z. B. im Fall der Aktivität des Escherichia coli-Nukleinsäuremoleküls beziehungsweise eines Polypeptids, welches die Nukleinsäure-SEQ ID NO. 7492 beziehungsweise Polypeptid-SEQ ID NO. 7493 umfasst, erhöht oder erzeugt wird, z. B. wenn die Aktivität eines Nukleinsäuremoleküls oder eines Polypeptids, welches die Nukleinsäure oder das Polypeptid oder die Konsensussequenz oder das Polypeptidmotiv wie in Tabelle I, II bzw. IV, Spalte 7, in der jeweils gleichen Zeile wie das Nukleinsäuremolekül SEQ ID NO.: 7492 beziehungsweise das Polypeptid SEQ ID NO.: 7493 gezeigt umfasst, erhöht oder erzeugt wird, oder wenn die Aktivität „Regulator der Zellmorphogenese und der NO-Signalvermittlung” in einer Pflanzenzelle, einer Pflanze oder einem Teil davon erhöht oder erzeugt wird, insbesondere bei einer Lokalisierung des Polypeptids im Zytoplasma eine erhöhte Effizienz der Nährstoffausnutzung, verglichen mit einer entsprechenden nicht modifizierten, z. B. nicht transformierten, Pflanzenzelle oder Pflanze vom Wildtyp oder einem Teil davon verliehen. Gemäß einer Ausführungsform wird eine erhöhte Effizienz der Stickstoffausnutzung verliehen. Insbesondere wird eine Ertragserhöhung von 1,05-fach bis 1,232-fach, zum Beispiel plus wenigstens 100% davon unter Stickstoffmangelbedingungen verliehen, verglichen mit einer entsprechenden nicht modifizierten, z. B. nicht transformierten, Pflanzenzelle oder Pflanze vom Wildtyp oder einem Teil davon.
  • Gemäß einer weiteren Ausführungsform wird, wenn die Aktivität eines Polypeptids gemäß der Polypeptid-SEQ ID NO.: 7493 beziehungsweise kodiert durch ein Nukleinsäuremolekül, das die Nukleinsäure-SEQ ID NO.: 7492 umfasst, oder eines Homologs dieses Nukleinsäuremoleküls beziehungsweise Polypeptids, z. B. im Fall der Aktivität des Escherichia coli-Nukleinsäuremoleküls beziehungsweise eines Polypeptids, welches die Nukleinsäure-SEQ ID NO. 7492 beziehungsweise Polypeptid-SEQ ID NO. 7493 umfasst, erhöht oder erzeugt wird, z. B. wenn die Aktivität eines Nukleinsäuremoleküls oder eines Polypeptids, welches die Nukleinsäure oder das Polypeptid oder die Konsensussequenz oder das Polypeptidmotiv wie in Tabelle I, II bzw. IV, Spalte 7, in der jeweils gleichen Zeile wie das Nukleinsäuremolekül SEQ ID NO.: 7492 beziehungsweise das Polypeptid SEQ ID NO.: 7493 gezeigt umfasst, erhöht oder erzeugt wird, oder wenn die Aktivität „Regulator der Zellmorphogenese und der NO-Signalvermittlung” in einer Pflanzenzelle, einer Pflanze oder einem Teil davon erhöht oder erzeugt wird, insbesondere bei einer Lokalisierung des Polypeptids im Zytoplasma ein erhöhter intrinsischer Ertrag verglichen mit einer entsprechenden nicht modifizierten, z. B. nicht transformierten, Pflanzenzelle oder Pflanze vom Wildtyp oder einem Teil davon verliehen. Gemäß einer Ausführungsform wird ein erhöhter Ertrag unter Standardbedingungen (intrinsischer Ertrag) verliehen, z. B. in Abwesenheit von Nährstoffmangel sowie Stressbedingungen. Insbesondere wird eine Ertragserhöhung von 1,05-fach bis 1,137-fach, zum Beispiel plus wenigstens 100% davon unter Standardbedingungen (intrinsischer Ertrag) verliehen, z. B. in Abwesenheit von Nährstoffmangel sowie Stressbedingungen, verglichen mit einer entsprechenden nicht modifizierten, z. B. nicht transformierten, Pflanzenzelle oder Pflanze vom Wildtyp oder einem Teil davon.
  • Dementsprechend wird gemäß einer Ausführungsform, wenn die Aktivität eines Polypeptids gemäß der Polypeptid-SEQ ID NO.: 7592 beziehungsweise kodiert durch ein Nukleinsäuremolekül, das die Nukleinsäure-SEQ ID NO.: 7591 umfasst, oder eines Homologs dieses Nukleinsäuremoleküls beziehungsweise Polypeptids, z. B. im Fall der Aktivität des Synechocystis sp.-Nukleinsäuremoleküls beziehungsweise eines Polypeptids, welches die Nukleinsäure-SEQ ID NO. 7591 beziehungsweise Polypeptid-SEQ ID NO. 7592 umfasst, erhöht oder erzeugt wird, z. B. wenn die Aktivität eines Nukleinsäuremoleküls oder eines Polypeptids, welches die Nukleinsäure oder das Polypeptid oder die Konsensussequenz oder das Polypeptidmotiv wie in Tabelle I, II bzw. IV, Spalte 7, in der jeweils gleichen Zeile wie das Nukleinsäuremolekül SEQ ID NO.: 7591 beziehungsweise das Polypeptid SEQ ID NO.: 7592 gezeigt umfasst, erhöht oder erzeugt wird, oder wenn die Aktivität „Glutathion-S-transferase” in einer Pflanzenzelle, einer Pflanze oder einem Teil davon erhöht oder erzeugt wird, insbesondere bei einer Lokalisierung im Zytoplasma ein erhöhter Ertrag, verglichen mit einer entsprechenden nicht modifizierten, z. B. nicht transformierten, Pflanzenzelle oder Pflanze vom Wildtyp oder einem Teil davon verliehen.
  • Gemäß einer weiteren Ausführungsform wird, wenn die Aktivität eines Polypeptids gemäß der Polypeptid-SEQ ID NO.: 7592 beziehungsweise kodiert durch ein Nukleinsäuremolekül, das die Nukleinsäure-SEQ ID NO.: 7591 umfasst, oder eines Homologs dieses Nukleinsäuremoleküls beziehungsweise Polypeptids, z. B. im Fall der Aktivität des Synechocystis sp.-Nukleinsäuremoleküls beziehungsweise eines Polypeptids, welches die Nukleinsäure-SEQ ID NO. 7591 beziehungsweise Polypeptid-SEQ ID NO. 7592 umfasst, erhöht oder erzeugt wird, z. B. wenn die Aktivität eines Nukleinsäuremoleküls oder eines Polypeptids, welches die Nukleinsäure oder das Polypeptid oder die Konsensussequenz oder das Polypeptidmotiv wie in Tabelle I, II bzw. IV, Spalte 7, in der jeweils gleichen Zeile wie das Nukleinsäuremolekül SEQ ID NO.: 7591 beziehungsweise das Polypeptid SEQ ID NO.: 7592 gezeigt umfasst, erhöht oder erzeugt wird, oder wenn die Aktivität „Glutathion-S-transferase” in einer Pflanzenzelle, einer Pflanze oder einem Teil davon erhöht oder erzeugt wird, insbesondere bei einer Lokalisierung des Polypeptids im Zytoplasma eine erhöhte Toleranz gegenüber abiotischem Umweltstress, insbesondere eine erhöhte Toleranz gegenüber niedrigen Temperaturen, verglichen mit einer entsprechenden nicht modifizierten, z. B. nicht transformierten, Pflanzenzelle oder Pflanze vom Wildtyp oder einem Teil davon verliehen. Insbesondere wird eine Ertragserhöhung von 1,1-fach bis 1,293-fach, zum Beispiel plus wenigstens 100% davon unter Bedingungen niedriger Temperaturen verliehen, verglichen mit einer entsprechenden nicht modifizierten, z. B. nicht transformierten, Pflanzenzelle oder Pflanze vom Wildtyp oder einem Teil davon.
  • Gemäß einer weiteren Ausführungsform wird, wenn die Aktivität eines Polypeptids gemäß der Polypeptid-SEQ ID NO.: 7592 beziehungsweise kodiert durch ein Nukleinsäuremolekül, das die Nukleinsäure-SEQ ID NO.: 7591 umfasst, oder eines Homologs dieses Nukleinsäuremoleküls beziehungsweise Polypeptids, z. B. im Fall der Aktivität des Synechocystis sp.-Nukleinsäuremoleküls beziehungsweise eines Polypeptids, welches die Nukleinsäure-SEQ ID NO. 7591 beziehungsweise Polypeptid-SEQ ID NO. 7592 umfasst, erhöht oder erzeugt wird, z. B. wenn die Aktivität eines Nukleinsäuremoleküls oder eines Polypeptids, welches die Nukleinsäure oder das Polypeptid oder die Konsensussequenz oder das Polypeptidmotiv wie in Tabelle I, II bzw. IV, Spalte 7, in der jeweils gleichen Zeile wie das Nukleinsäuremolekül SEQ ID NO.: 7591 beziehungsweise das Polypeptid SEQ ID NO.: 7592 gezeigt umfasst, erhöht oder erzeugt wird, oder wenn die Aktivität „Glutathion-S-transferase” in einer Pflanzenzelle, einer Pflanze oder einem Teil davon erhöht oder erzeugt wird, insbesondere bei einer Lokalisierung des Polypeptids im Zytoplasma eine erhöhte Effizienz der Nährstoffausnutzung, verglichen mit einer entsprechenden nicht modifizierten, z. B. nicht transformierten, Pflanzenzelle oder Pflanze vom Wildtyp oder einem Teil davon verliehen. Gemäß einer Ausführungsform wird eine erhöhte Effizienz der Stickstoffausnutzung verliehen. Insbesondere wird eine Ertragserhöhung von 1,05-fach bis 1,406-fach, zum Beispiel plus wenigstens 100% davon unter Stickstoffmangelbedingungen verliehen, verglichen mit einer entsprechenden nicht modifizierten, z. B. nicht transformierten, Pflanzenzelle oder Pflanze vom Wildtyp oder einem Teil davon.
  • Gemäß einer weiteren Ausführungsform wird, wenn die Aktivität eines Polypeptids gemäß der Polypeptid-SEQ ID NO.: 7592 beziehungsweise kodiert durch ein Nukleinsäuremolekül, das die Nukleinsäure-SEQ ID NO.: 7591 umfasst, oder eines Homologs dieses Nukleinsäuremoleküls beziehungsweise Polypeptids, z. B. im Fall der Aktivität des Synechocystis sp.-Nukleinsäuremoleküls beziehungsweise eines Polypeptids, welches die Nukleinsäure-SEQ ID NO. 7591 beziehungsweise Polypeptid-SEQ ID NO. 7592 umfasst, erhöht oder erzeugt wird, z. B. wenn die Aktivität eines Nukleinsäuremoleküls oder eines Polypeptids, welches die Nukleinsäure oder das Polypeptid oder die Konsensussequenz oder das Polypeptidmotiv wie in Tabelle I, II bzw. IV, Spalte 7, in der jeweils gleichen Zeile wie das Nukleinsäuremolekül SEQ ID NO.: 7591 beziehungsweise das Polypeptid SEQ ID NO.: 7592 gezeigt umfasst, erhöht oder erzeugt wird, oder wenn die Aktivität „Glutathion-S-transferase” in einer Pflanzenzelle, einer Pflanze oder einem Teil davon erhöht oder erzeugt wird, insbesondere bei einer Lokalisierung des Polypeptids im Zytoplasma ein erhöhter intrinsischer Ertrag, verglichen mit einer entsprechenden nicht modifizierten, z. B. nicht transformierten, Pflanzenzelle oder Pflanze vom Wildtyp oder einem Teil davon verliehen. Gemäß einer Ausführungsform wird ein erhöhter Ertrag unter Standardbedingungen (intrinsischer Ertrag) verliehen, z. B. in Abwesenheit von Nährstoffmangel sowie Stressbedingungen. Insbesondere wird eine Ertragserhöhung von 1,05-fach bis 1,208-fach, zum Beispiel plus wenigstens 100% davon unter Standardbedingungen (intrinsischer Ertrag) verliehen, z. B. in Abwesenheit von Nährstoffmangel sowie Stressbedingungen, verglichen mit einer entsprechenden nicht modifizierten, z. B. nicht transformierten, Pflanzenzelle oder Pflanze vom Wildtyp oder einem Teil davon.
  • Dementsprechend wird gemäß einer Ausführungsform, wenn die Aktivität eines Polypeptids gemäß der Polypeptid-SEQ ID NO.: 7671 beziehungsweise kodiert durch ein Nukleinsäuremolekül, das die Nukleinsäure-SEQ ID NO.: 7670 umfasst, oder eines Homologs dieses Nukleinsäuremoleküls beziehungsweise Polypeptids, z. B. im Fall der Aktivität des Synechocystis sp.-Nukleinsäuremoleküls beziehungsweise eines Polypeptids, welches die Nukleinsäure-SEQ ID NO. 7670 beziehungsweise Polypeptid-SEQ ID NO. 7671 umfasst, erhöht oder erzeugt wird, z. B. wenn die Aktivität eines Nukleinsäuremoleküls oder eines Polypeptids, welches die Nukleinsäure oder das Polypeptid oder die Konsensussequenz oder das Polypeptidmotiv wie in Tabelle I, II bzw. IV, Spalte 7, in der jeweils gleichen Zeile wie das Nukleinsäuremolekül SEQ ID NO.: 7670 beziehungsweise das Polypeptid SEQ ID NO.: 7671 gezeigt umfasst, erhöht oder erzeugt wird, oder wenn die Aktivität „Serinacetyltransferase” in einer Pflanzenzelle, einer Pflanze oder einem Teil davon erhöht oder erzeugt wird, insbesondere bei einer Lokalisierung in Mitochondrien ein erhöhter Ertrag, verglichen mit einer entsprechenden nicht modifizierten, z. B. nicht transformierten, Pflanzenzelle oder Pflanze vom Wildtyp oder einem Teil davon verliehen.
  • Gemäß einer weiteren Ausführungsform wird, wenn die Aktivität eines Polypeptids gemäß der Polypeptid-SEQ ID NO.: 7671 beziehungsweise kodiert durch ein Nukleinsäuremolekül, das die Nukleinsäure-SEQ ID NO.: 7670 umfasst, oder eines Homologs dieses Nukleinsäuremoleküls beziehungsweise Polypeptids, z. B. im Fall der Aktivität des Synechocystis sp.-Nukleinsäuremoleküls beziehungsweise eines Polypeptids, welches die Nukleinsäure-SEQ ID NO. 7670 beziehungsweise Polypeptid-SEQ ID NO. 7671 umfasst, erhöht oder erzeugt wird, z. B. wenn die Aktivität eines Nukleinsäuremoleküls oder eines Polypeptids, welches die Nukleinsäure oder das Polypeptid oder die Konsensussequenz oder das Polypeptidmotiv wie in Tabelle I, II bzw. IV, Spalte 7, in der jeweils gleichen Zeile wie das Nukleinsäuremolekül SEQ ID NO.: 7670 beziehungsweise das Polypeptid SEQ ID NO.: 7671 gezeigt umfasst, erhöht oder erzeugt wird, oder wenn die Aktivität „Serinacetyltransferase” in einer Pflanzenzelle, einer Pflanze oder einem Teil davon erhöht oder erzeugt wird, insbesondere bei einer Lokalisierung des Polypeptids in Mitochondrien eine erhöhte Toleranz gegenüber abiotischem Umweltstress, insbesondere eine erhöhte Toleranz gegenüber niedrigen Temperaturen, verglichen mit einer entsprechenden nicht modifizierten, z. B. nicht transformierten, Pflanzenzelle oder Pflanze vom Wildtyp oder einem Teil davon verliehen. Insbesondere wird eine Ertragserhöhung von 1,1-fach bis 1,413-fach, zum Beispiel plus wenigstens 100% davon unter Bedingungen niedriger Temperaturen verliehen, verglichen mit einer entsprechenden nicht modifizierten, z. B. nicht transformierten, Pflanzenzelle oder Pflanze vom Wildtyp oder einem Teil davon.
  • Gemäß einer weiteren Ausführungsform wird, wenn die Aktivität eines Polypeptids gemäß der Polypeptid-SEQ ID NO.: 7671 beziehungsweise kodiert durch ein Nukleinsäuremolekül, das die Nukleinsäure-SEQ ID NO.: 7670 umfasst, oder eines Homologs dieses Nukleinsäuremoleküls beziehungsweise Polypeptids, z. B. im Fall der Aktivität des Synechocystis sp.-Nukleinsäuremoleküls beziehungsweise eines Polypeptids, welches die Nukleinsäure-SEQ ID NO. 7670 beziehungsweise Polypeptid-SEQ ID NO. 7671 umfasst, erhöht oder erzeugt wird, z. B. wenn die Aktivität eines Nukleinsäuremoleküls oder eines Polypeptids, welches die Nukleinsäure oder das Polypeptid oder die Konsensussequenz oder das Polypeptidmotiv wie in Tabelle I, II bzw. IV, Spalte 7, in der jeweils gleichen Zeile wie das Nukleinsäuremolekül SEQ ID NO.: 7670 beziehungsweise das Polypeptid SEQ ID NO.: 7671 gezeigt umfasst, erhöht oder erzeugt wird, oder wenn die Aktivität „Serinacetyltransferase” in einer Pflanzenzelle, einer Pflanze oder einem Teil davon erhöht oder erzeugt wird, insbesondere bei einer Lokalisierung des Polypeptids in Mitochondrien eine erhöhte Effizienz der Nährstoffausnutzung, verglichen mit einer entsprechenden nicht modifizierten, z. B. nicht transformierten, Pflanzenzelle oder Pflanze vom Wildtyp oder einem Teil davon verliehen. Gemäß einer Ausführungsform wird eine erhöhte Effizienz der Stickstoffausnutzung verliehen. Insbesondere wird eine Ertragserhöhung von 1,05-fach bis 1,268-fach, zum Beispiel plus wenigstens 100% davon unter Stickstoffmangelbedingungen verliehen, verglichen mit einer entsprechenden nicht modifizierten, z. B. nicht transformierten, Pflanzenzelle oder Pflanze vom Wildtyp oder einem Teil davon.
  • Gemäß einer weiteren Ausführungsform wird, wenn die Aktivität eines Polypeptids gemäß der Polypeptid-SEQ ID NO.: 7671 beziehungsweise kodiert durch ein Nukleinsäuremolekül, das die Nukleinsäure-SEQ ID NO.: 7670 umfasst, oder eines Homologs dieses Nukleinsäuremoleküls beziehungsweise Polypeptids, z. B. im Fall der Aktivität des Synechocystis sp.-Nukleinsäuremoleküls beziehungsweise eines Polypeptids, welches die Nukleinsäure-SEQ ID NO. 7670 beziehungsweise Polypeptid-SEQ ID NO. 7671 umfasst, erhöht oder erzeugt wird, z. B. wenn die Aktivität eines Nukleinsäuremoleküls oder eines Polypeptids, welches die Nukleinsäure oder das Polypeptid oder die Konsensussequenz oder das Polypeptidmotiv wie in Tabelle I, II bzw. IV, Spalte 7, in der jeweils gleichen Zeile wie das Nukleinsäuremolekül SEQ ID NO.: 7670 beziehungsweise das Polypeptid SEQ ID NO.: 7671 gezeigt umfasst, erhöht oder erzeugt wird, oder wenn die Aktivität „Serinacetyltransferase” in einer Pflanzenzelle, einer Pflanze oder einem Teil davon erhöht oder erzeugt wird, insbesondere bei einer Lokalisierung des Polypeptids in Mitochondrien ein erhöhter intrinsischer Ertrag, verglichen mit einer entsprechenden nicht modifizierten, z. B. nicht transformierten, Pflanzenzelle oder Pflanze vom Wildtyp oder einem Teil davon verliehen. Gemäß einer Ausführungsform wird ein erhöhter Ertrag unter Standardbedingungen (intrinsischer Ertrag) verliehen, z. B. in Abwesenheit von Nährstoffmangel sowie Stressbedingungen. Insbesondere wird eine Ertragserhöhung von 1,05-fach bis 1,376-fach, zum Beispiel plus wenigstens 100% davon unter Standardbedingungen (intrinsischer Ertrag) verliehen, z. B. in Abwesenheit von Nährstoffmangel sowie Stressbedingungen, verglichen mit einer entsprechenden nicht modifizierten, z. B. nicht transformierten, Pflanzenzelle oder Pflanze vom Wildtyp oder einem Teil davon.
  • Dementsprechend wird gemäß einer Ausführungsform, wenn die Aktivität eines Polypeptids gemäß der Polypeptid-SEQ ID NO.: 8237 beziehungsweise kodiert durch ein Nukleinsäuremolekül, das die Nukleinsäure-SEQ ID NO.: 8236 umfasst, oder eines Homologs dieses Nukleinsäuremoleküls beziehungsweise Polypeptids, z. B. im Fall der Aktivität des Saccharomyces cerevisiae-Nukleinsäuremoleküls beziehungsweise eines Polypeptids, welches die Nukleinsäure-SEQ ID NO. 8236 beziehungsweise Polypeptid-SEQ ID NO. 8237 umfasst, erhöht oder erzeugt wird, z. B. wenn die Aktivität eines Nukleinsäuremoleküls oder eines Polypeptids, welches die Nukleinsäure oder das Polypeptid oder die Konsensussequenz oder das Polypeptidmotiv wie in Tabelle I, II bzw. IV, Spalte 7, in der jeweils gleichen Zeile wie das Nukleinsäuremolekül SEQ ID NO.: 8236 beziehungsweise das Polypeptid SEQ ID NO.: 8237 gezeigt umfasst, erhöht oder erzeugt wird, oder wenn die Aktivität „Aminosäurepermease” in einer Pflanzenzelle, einer Pflanze oder einem Teil davon erhöht oder erzeugt wird, insbesondere bei einer Lokalisierung in Plastiden ein erhöhter Ertrag, verglichen mit einer entsprechenden nicht modifizierten, z. B. nicht transformierten, Pflanzenzelle oder Pflanze vom Wildtyp oder einem Teil davon verliehen.
  • Gemäß einer weiteren Ausführungsform wird, wenn die Aktivität eines Polypeptids gemäß der Polypeptid-SEQ ID NO.: 8237 beziehungsweise kodiert durch ein Nukleinsäuremolekül, das die Nukleinsäure-SEQ ID NO.: 8236 umfasst, oder eines Homologs dieses Nukleinsäuremoleküls beziehungsweise Polypeptids, z. B. im Fall der Aktivität des Saccharomyces cerevisiae-Nukleinsäuremoleküls beziehungsweise eines Polypeptids, welches die Nukleinsäure-SEQ ID NO. 8236 beziehungsweise Polypeptid-SEQ ID NO. 8237 umfasst, erhöht oder erzeugt wird, z. B. wenn die Aktivität eines Nukleinsäuremoleküls oder eines Polypeptids, welches die Nukleinsäure oder das Polypeptid oder die Konsensussequenz oder das Polypeptidmotiv wie in Tabelle I, II bzw. IV, Spalte 7, in der jeweils gleichen Zeile wie das Nukleinsäuremolekül SEQ ID NO.: 8236 beziehungsweise das Polypeptid SEQ ID NO.: 8237 gezeigt umfasst, erhöht oder erzeugt wird, oder wenn die Aktivität „Aminosäurepermease” in einer Pflanzenzelle, einer Pflanze oder einem Teil davon erhöht oder erzeugt wird, insbesondere bei einer Lokalisierung des Polypeptids in Plastiden eine erhöhte Toleranz gegenüber abiotischem Umweltstress, insbesondere eine erhöhte Toleranz gegenüber niedrigen Temperaturen, verglichen mit einer entsprechenden nicht modifizierten, z. B. nicht transformierten, Pflanzenzelle oder Pflanze vom Wildtyp oder einem Teil davon verliehen. Insbesondere wird eine Ertragserhöhung von 1,1-fach bis 1,298-fach, zum Beispiel plus wenigstens 100% davon unter Bedingungen niedriger Temperaturen verliehen, verglichen mit einer entsprechenden nicht modifizierten, z. B. nicht transformierten, Pflanzenzelle oder Pflanze vom Wildtyp oder einem Teil davon.
  • Gemäß einer weiteren Ausführungsform wird, wenn die Aktivität eines Polypeptids gemäß der Polypeptid-SEQ ID NO.: 8237 beziehungsweise kodiert durch ein Nukleinsäuremolekül, das die Nukleinsäure-SEQ ID NO.: 8236 umfasst, oder eines Homologs dieses Nukleinsäuremoleküls beziehungsweise Polypeptids, z. B. im Fall der Aktivität des Saccharomyces cerevisiae-Nukleinsäuremoleküls beziehungsweise eines Polypeptids, welches die Nukleinsäure-SEQ ID NO. 8236 beziehungsweise Polypeptid-SEQ ID NO. 8237 umfasst, erhöht oder erzeugt wird, z. B. wenn die Aktivität eines Nukleinsäuremoleküls oder eines Polypeptids, welches die Nukleinsäure oder das Polypeptid oder die Konsensussequenz oder das Polypeptidmotiv wie in Tabelle I, II bzw. IV, Spalte 7, in der jeweils gleichen Zeile wie das Nukleinsäuremolekül SEQ ID NO.: 8236 beziehungsweise das Polypeptid SEQ ID NO.: 8237 gezeigt umfasst, erhöht oder erzeugt wird, oder wenn die Aktivität „Aminosäurepermease” in einer Pflanzenzelle, einer Pflanze oder einem Teil davon erhöht oder erzeugt wird, insbesondere bei einer Lokalisierung des Polypeptids in Plastiden ein erhöhter intrinsischer Ertrag, verglichen mit einer entsprechenden nicht modifizierten, z. B. nicht transformierten, Pflanzenzelle oder Pflanze vom Wildtyp oder einem Teil davon verliehen. Gemäß einer Ausführungsform wird ein erhöhter Ertrag unter Standardbedingungen (intrinsischer Ertrag) verliehen, z. B. in Abwesenheit von Nährstoffmangel sowie Stressbedingungen. Insbesondere wird eine Ertragserhöhung von 1,05-fach bis 1,156-fach, zum Beispiel plus wenigstens 100% davon unter Standardbedingungen (intrinsischer Ertrag) verliehen, z. B. in Abwesenheit von Nährstoffmangel sowie Stressbedingungen, verglichen mit einer entsprechenden nicht modifizierten, z. B. nicht transformierten, Pflanzenzelle oder Pflanze vom Wildtyp oder einem Teil davon.
  • Dementsprechend wird gemäß einer Ausführungsform, wenn die Aktivität eines Polypeptids gemäß der Polypeptid-SEQ ID NO.: 8564 beziehungsweise kodiert durch ein Nukleinsäuremolekül, das die Nukleinsäure-SEQ ID NO.: 8563 umfasst, oder eines Homologs dieses Nukleinsäuremoleküls beziehungsweise Polypeptids, z. B. im Fall der Aktivität des Arabidopsis thaliana-Nukleinsäuremoleküls beziehungsweise eines Polypeptids, welches die Nukleinsäure-SEQ ID NO. 8563 beziehungsweise Polypeptid-SEQ ID NO. 8564 umfasst, erhöht oder erzeugt wird, z. B. wenn die Aktivität eines Nukleinsäuremoleküls oder eines Polypeptids, welches die Nukleinsäure oder das Polypeptid oder die Konsensussequenz oder das Polypeptidmotiv wie in Tabelle I, II bzw. IV, Spalte 7, in der jeweils gleichen Zeile wie das Nukleinsäuremolekül SEQ ID NO.: 8563 beziehungsweise das Polypeptid SEQ ID NO.: 8564 gezeigt umfasst, erhöht oder erzeugt wird, oder wenn die Aktivität „Untereinheit des Signalosomkomplexes” in einer Pflanzenzelle, einer Pflanze oder einem Teil davon erhöht oder erzeugt wird, insbesondere bei einer Lokalisierung im Zytoplasma ein erhöhter Ertrag, verglichen mit einer entsprechenden nicht modifizierten, z. B. nicht transformierten, Pflanzenzelle oder Pflanze vom Wildtyp oder einem Teil davon verliehen.
  • Gemäß einer weiteren Ausführungsform wird, wenn die Aktivität eines Polypeptids gemäß der Polypeptid-SEQ ID NO.: 8564 beziehungsweise kodiert durch ein Nukleinsäuremolekül, das die Nukleinsäure-SEQ ID NO.: 8563 umfasst, oder eines Homologs dieses Nukleinsäuremoleküls beziehungsweise Polypeptids, z. B. im Fall der Aktivität des Arabidopsis thaliana-Nukleinsäuremoleküls beziehungsweise eines Polypeptids, welches die Nukleinsäure-SEQ ID NO. 8563 beziehungsweise Polypeptid-SEQ ID NO. 8564 umfasst, erhöht oder erzeugt wird, z. B. wenn die Aktivität eines Nukleinsäuremoleküls oder eines Polypeptids, welches die Nukleinsäure oder das Polypeptid oder die Konsensussequenz oder das Polypeptidmotiv wie in Tabelle I, II bzw. IV, Spalte 7, in der jeweils gleichen Zeile wie das Nukleinsäuremolekül SEQ ID NO.: 8563 beziehungsweise das Polypeptid SEQ ID NO.: 8564 gezeigt umfasst, erhöht oder erzeugt wird, oder wenn die Aktivität „Untereinheit des Signalosomkomplexes” in einer Pflanzenzelle, einer Pflanze oder einem Teil davon erhöht oder erzeugt wird, insbesondere bei einer Lokalisierung des Polypeptids im Zytoplasma eine erhöhte Toleranz gegenüber abiotischem Umweltstress, insbesondere eine erhöhte Toleranz gegenüber niedrigen Temperaturen, verglichen mit einer entsprechenden nicht modifizierten, z. B. nicht transformierten, Pflanzenzelle oder Pflanze vom Wildtyp oder einem Teil davon verliehen. Insbesondere wird eine Ertragserhöhung von 1,1-fach bis 1,610-fach, zum Beispiel plus wenigstens 100% davon unter Bedingungen niedriger Temperaturen verliehen, verglichen mit einer entsprechenden nicht modifizierten, z. B. nicht transformierten, Pflanzenzelle oder Pflanze vom Wildtyp oder einem Teil davon.
  • Gemäß einer weiteren Ausführungsform wird, wenn die Aktivität eines Polypeptids gemäß der Polypeptid-SEQ ID NO.: 8564 beziehungsweise kodiert durch ein Nukleinsäuremolekül, das die Nukleinsäure-SEQ ID NO.: 8563 umfasst, oder eines Homologs dieses Nukleinsäuremoleküls beziehungsweise Polypeptids, z. B. im Fall der Aktivität des Arabidopsis thaliana-Nukleinsäuremoleküls beziehungsweise eines Polypeptids, welches die Nukleinsäure-SEQ ID NO. 8563 beziehungsweise Polypeptid-SEQ ID NO. 8564 umfasst, erhöht oder erzeugt wird, z. B. wenn die Aktivität eines Nukleinsäuremoleküls oder eines Polypeptids, welches die Nukleinsäure oder das Polypeptid oder die Konsensussequenz oder das Polypeptidmotiv wie in Tabelle I, II bzw. IV, Spalte 7, in der jeweils gleichen Zeile wie das Nukleinsäuremolekül SEQ ID NO.: 8563 beziehungsweise das Polypeptid SEQ ID NO.: 8564 gezeigt umfasst, erhöht oder erzeugt wird, oder wenn die Aktivität „Untereinheit des Signalosomkomplexes” in einer Pflanzenzelle, einer Pflanze oder einem Teil davon erhöht oder erzeugt wird, insbesondere bei einer Lokalisierung des Polypeptids im Zytoplasma ein erhöhter intrinsischer Ertrag, verglichen mit einer entsprechenden nicht modifizierten, z. B. nicht transformierten, Pflanzenzelle oder Pflanze vom Wildtyp oder einem Teil davon verliehen. Gemäß einer Ausführungsform wird ein erhöhter Ertrag unter Standardbedingungen (intrinsischer Ertrag) verliehen, z. B. in Abwesenheit von Nährstoffmangel sowie Stressbedingungen. Insbesondere wird eine Ertragserhöhung von 1,05-fach bis 1,385-fach, zum Beispiel plus wenigstens 100% davon unter Standardbedingungen (intrinsischer Ertrag) verliehen, z. B. in Abwesenheit von Nährstoffmangel sowie Stressbedingungen, verglichen mit einer entsprechenden nicht modifizierten, z. B. nicht transformierten, Pflanzenzelle oder Pflanze vom Wildtyp oder einem Teil davon.
  • Dementsprechend wird gemäß einer Ausführungsform, wenn die Aktivität eines Polypeptids gemäß der Polypeptid-SEQ ID NO.: 8649 beziehungsweise kodiert durch ein Nukleinsäuremolekül, das die Nukleinsäure-SEQ ID NO.: 8648 umfasst, oder eines Homologs dieses Nukleinsäuremoleküls beziehungsweise Polypeptids, z. B. im Fall der Aktivität des Escherichia coli-Nukleinsäuremoleküls beziehungsweise eines Polypeptids, welches die Nukleinsäure-SEQ ID NO. 8648 beziehungsweise Polypeptid-SEQ ID NO. 8649 umfasst, erhöht oder erzeugt wird, z. B. wenn die Aktivität eines Nukleinsäuremoleküls oder eines Polypeptids, welches die Nukleinsäure oder das Polypeptid oder die Konsensussequenz oder das Polypeptidmotiv wie in Tabelle I, II bzw. IV, Spalte 7, in der jeweils gleichen Zeile wie das Nukleinsäuremolekül SEQ ID NO.: 8648 beziehungsweise das Polypeptid SEQ ID NO.: 8649 gezeigt umfasst, erhöht oder erzeugt wird, oder wenn die Aktivität „Multidrug-Resistenzprotein” in einer Pflanzenzelle, einer Pflanze oder einem Teil davon erhöht oder erzeugt wird, insbesondere bei einer Lokalisierung in Plastiden ein erhöhter Ertrag, verglichen mit einer entsprechenden nicht modifizierten, z. B. nicht transformierten, Pflanzenzelle oder Pflanze vom Wildtyp oder einem Teil davon verliehen.
  • Gemäß einer weiteren Ausführungsform wird, wenn die Aktivität eines Polypeptids gemäß der Polypeptid-SEQ ID NO.: 8649 beziehungsweise kodiert durch ein Nukleinsäuremolekül, das die Nukleinsäure-SEQ ID NO.: 8648 umfasst, oder eines Homologs dieses Nukleinsäuremoleküls beziehungsweise Polypeptids, z. B. im Fall der Aktivität des Escherichia coli-Nukleinsäuremoleküls beziehungsweise eines Polypeptids, welches die Nukleinsäure-SEQ ID NO. 8648 beziehungsweise Polypeptid-SEQ ID NO. 8649 umfasst, erhöht oder erzeugt wird, z. B. wenn die Aktivität eines Nukleinsäuremoleküls oder eines Polypeptids, welches die Nukleinsäure oder das Polypeptid oder die Konsensussequenz oder das Polypeptidmotiv wie in Tabelle I, II bzw. IV, Spalte 7, in der jeweils gleichen Zeile wie das Nukleinsäuremolekül SEQ ID NO.: 8648 beziehungsweise das Polypeptid SEQ ID NO.: 8649 gezeigt umfasst, erhöht oder erzeugt wird, oder wenn die Aktivität „Multidrug-Resistenzprotein” in einer Pflanzenzelle, einer Pflanze oder einem Teil davon erhöht oder erzeugt wird, insbesondere bei einer Lokalisierung des Polypeptids in Plastiden eine erhöhte Toleranz gegenüber abiotischem Umweltstress, insbesondere eine erhöhte Toleranz gegenüber niedrigen Temperaturen, verglichen mit einer entsprechenden nicht modifizierten, z. B. nicht transformierten, Pflanzenzelle oder Pflanze vom Wildtyp oder einem Teil davon verliehen. Insbesondere wird eine Ertragserhöhung von 1,1-fach bis 1,293-fach, zum Beispiel plus wenigstens 100% davon unter Bedingungen niedriger Temperaturen verliehen, verglichen mit einer entsprechenden nicht modifizierten, z. B. nicht transformierten, Pflanzenzelle oder Pflanze vom Wildtyp oder einem Teil davon.
  • Gemäß einer weiteren Ausführungsform wird, wenn die Aktivität eines Polypeptids gemäß der Polypeptid-SEQ ID NO.: 8649 beziehungsweise kodiert durch ein Nukleinsäuremolekül, das die Nukleinsäure-SEQ ID NO.: 8648 umfasst, oder eines Homologs dieses Nukleinsäuremoleküls beziehungsweise Polypeptids, z. B. im Fall der Aktivität des Escherichia coli-Nukleinsäuremoleküls beziehungsweise eines Polypeptids, welches die Nukleinsäure-SEQ ID NO. 8648 beziehungsweise Polypeptid-SEQ ID NO. 8649 umfasst, erhöht oder erzeugt wird, z. B. wenn die Aktivität eines Nukleinsäuremoleküls oder eines Polypeptids, welches die Nukleinsäure oder das Polypeptid oder die Konsensussequenz oder das Polypeptidmotiv wie in Tabelle I, II bzw. IV, Spalte 7, in der jeweils gleichen Zeile wie das Nukleinsäuremolekül SEQ ID NO.: 8648 beziehungsweise das Polypeptid SEQ ID NO.: 8649 gezeigt umfasst, erhöht oder erzeugt wird, oder wenn die Aktivität „Multidrug-Resistenzprotein” in einer Pflanzenzelle, einer Pflanze oder einem Teil davon erhöht oder erzeugt wird, insbesondere bei einer Lokalisierung des Polypeptids in Plastiden eine erhöhte Effizienz der Nährstoffausnutzung, verglichen mit einer entsprechenden nicht modifizierten, z. B. nicht transformierten, Pflanzenzelle oder Pflanze vom Wildtyp oder einem Teil davon verliehen. Gemäß einer Ausführungsform wird eine erhöhte Effizienz der Stickstoffausnutzung verliehen. Insbesondere wird eine Ertragserhöhung von 1,05-fach bis 1,616-fach, zum Beispiel plus wenigstens 100% davon unter Stickstoffmangelbedingungen verliehen, verglichen mit einer entsprechenden nicht modifizierten, z. B. nicht transformierten, Pflanzenzelle oder Pflanze vom Wildtyp oder einem Teil davon.
  • Gemäß einer weiteren Ausführungsform wird, wenn die Aktivität eines Polypeptids gemäß der Polypeptid-SEQ ID NO.: 8649 beziehungsweise kodiert durch ein Nukleinsäuremolekül, das die Nukleinsäure-SEQ ID NO.: 8648 umfasst, oder eines Homologs dieses Nukleinsäuremoleküls beziehungsweise Polypeptids, z. B. im Fall der Aktivität des Escherichia coli-Nukleinsäuremoleküls beziehungsweise eines Polypeptids, welches die Nukleinsäure-SEQ ID NO. 8648 beziehungsweise Polypeptid-SEQ ID NO. 8649 umfasst, erhöht oder erzeugt wird, z. B. wenn die Aktivität eines Nukleinsäuremoleküls oder eines Polypeptids, welches die Nukleinsäure oder das Polypeptid oder die Konsensussequenz oder das Polypeptidmotiv wie in Tabelle I, II bzw. IV, Spalte 7, in der jeweils gleichen Zeile wie das Nukleinsäuremolekül SEQ ID NO.: 8648 beziehungsweise das Polypeptid SEQ ID NO.: 8649 gezeigt umfasst, erhöht oder erzeugt wird, oder wenn die Aktivität „Multidrug-Resistenzprotein” in einer Pflanzenzelle, einer Pflanze oder einem Teil davon erhöht oder erzeugt wird, insbesondere bei einer Lokalisierung des Polypeptids in Plastiden ein erhöhter intrinsischer Ertrag, verglichen mit einer entsprechenden nicht modifizierten, z. B. nicht transformierten, Pflanzenzelle oder Pflanze vom Wildtyp oder einem Teil davon verliehen. Gemäß einer Ausführungsform wird ein erhöhter Ertrag unter Standardbedingungen (intrinsischer Ertrag) verliehen, z. B. in Abwesenheit von Nährstoffmangel sowie Stressbedingungen. Insbesondere wird eine Ertragserhöhung von 1,05-fach bis 1,401-fach, zum Beispiel plus wenigstens 100% davon unter Standardbedingungen (intrinsischer Ertrag) verliehen, z. B. in Abwesenheit von Nährstoffmangel sowie Stressbedingungen, verglichen mit einer entsprechenden nicht modifizierten, z. B. nicht transformierten, Pflanzenzelle oder Pflanze vom Wildtyp oder einem Teil davon.
  • Dementsprechend wird gemäß einer Ausführungsform, wenn die Aktivität eines Polypeptids gemäß der Polypeptid-SEQ ID NO.: 8761 beziehungsweise kodiert durch ein Nukleinsäuremolekül, das die Nukleinsäure-SEQ ID NO.: 8760 umfasst, oder eines Homologs dieses Nukleinsäuremoleküls beziehungsweise Polypeptids, z. B. im Fall der Aktivität des Escherichia coli-Nukleinsäuremoleküls beziehungsweise eines Polypeptids, welches die Nukleinsäure-SEQ ID NO. 8760 beziehungsweise Polypeptid-SEQ ID NO. 8761 umfasst, erhöht oder erzeugt wird, z. B. wenn die Aktivität eines Nukleinsäuremoleküls oder eines Polypeptids, welches die Nukleinsäure oder das Polypeptid oder die Konsensussequenz oder das Polypeptidmotiv wie in Tabelle I, II bzw. IV, Spalte 7, in der jeweils gleichen Zeile wie das Nukleinsäuremolekül SEQ ID NO.: 8760 beziehungsweise das Polypeptid SEQ ID NO.: 8761 gezeigt umfasst, erhöht oder erzeugt wird, oder wenn die Aktivität „ATP-bindendes Protein des Arabinosetransportsystems” in einer Pflanzenzelle, einer Pflanze oder einem Teil davon erhöht oder erzeugt wird, insbesondere bei einer Lokalisierung in Plastiden ein erhöhter Ertrag, verglichen mit einer entsprechenden nicht modifizierten, z. B. nicht transformierten, Pflanzenzelle oder Pflanze vom Wildtyp oder einem Teil davon verliehen.
  • Gemäß einer weiteren Ausführungsform wird, wenn die Aktivität eines Polypeptids gemäß der Polypeptid-SEQ ID NO.: 8761 beziehungsweise kodiert durch ein Nukleinsäuremolekül, das die Nukleinsäure-SEQ ID NO.: 8760 umfasst, oder eines Homologs dieses Nukleinsäuremoleküls beziehungsweise Polypeptids, z. B. im Fall der Aktivität des Escherichia coli-Nukleinsäuremoleküls beziehungsweise eines Polypeptids, welches die Nukleinsäure-SEQ ID NO. 8760 beziehungsweise Polypeptid-SEQ ID NO. 8761 umfasst, erhöht oder erzeugt wird, z. B. wenn die Aktivität eines Nukleinsäuremoleküls oder eines Polypeptids, welches die Nukleinsäure oder das Polypeptid oder die Konsensussequenz oder das Polypeptidmotiv wie in Tabelle I, II bzw. IV, Spalte 7, in der jeweils gleichen Zeile wie das Nukleinsäuremolekül SEQ ID NO.: 8760 beziehungsweise das Polypeptid SEQ ID NO.: 8761 gezeigt umfasst, erhöht oder erzeugt wird, oder wenn die Aktivität „ATP-bindendes Protein des Arabinosetransportsystems” in einer Pflanzenzelle, einer Pflanze oder einem Teil davon erhöht oder erzeugt wird, insbesondere bei einer Lokalisierung des Polypeptids in Plastiden eine erhöhte Toleranz gegenüber abiotischem Umweltstress, insbesondere eine erhöhte Toleranz gegenüber niedrigen Temperaturen, verglichen mit einer entsprechenden nicht modifizierten, z. B. nicht transformierten, Pflanzenzelle oder Pflanze vom Wildtyp oder einem Teil davon verliehen. Insbesondere wird eine Ertragserhöhung von 1,1-fach bis 1,341-fach, zum Beispiel plus wenigstens 100% davon unter Bedingungen niedriger Temperaturen verliehen, verglichen mit einer entsprechenden nicht modifizierten, z. B. nicht transformierten, Pflanzenzelle oder Pflanze vom Wildtyp oder einem Teil davon.
  • Gemäß einer weiteren Ausführungsform wird, wenn die Aktivität eines Polypeptids gemäß der Polypeptid-SEQ ID NO.: 8761 beziehungsweise kodiert durch ein Nukleinsäuremolekül, das die Nukleinsäure-SEQ ID NO.: 8760 umfasst, oder eines Homologs dieses Nukleinsäuremoleküls beziehungsweise Polypeptids, z. B. im Fall der Aktivität des Escherichia coli-Nukleinsäuremoleküls beziehungsweise eines Polypeptids, welches die Nukleinsäure-SEQ ID NO. 8760 beziehungsweise Polypeptid-SEQ ID NO. 8761 umfasst, erhöht oder erzeugt wird, z. B. wenn die Aktivität eines Nukleinsäuremoleküls oder eines Polypeptids, welches die Nukleinsäure oder das Polypeptid oder die Konsensussequenz oder das Polypeptidmotiv wie in Tabelle I, II bzw. IV, Spalte 7, in der jeweils gleichen Zeile wie das Nukleinsäuremolekül SEQ ID NO.: 8760 beziehungsweise das Polypeptid SEQ ID NO.: 8761 gezeigt umfasst, erhöht oder erzeugt wird, oder wenn die Aktivität „ATP-bindendes Protein des Arabinosetransportsystems” in einer Pflanzenzelle, einer Pflanze oder einem Teil davon erhöht oder erzeugt wird, insbesondere bei einer Lokalisierung des Polypeptids in Plastiden eine erhöhte Effizienz der Nährstoffausnutzung, verglichen mit einer entsprechenden nicht modifizierten, z. B. nicht transformierten, Pflanzenzelle oder Pflanze vom Wildtyp oder einem Teil davon verliehen. Gemäß einer Ausführungsform wird eine erhöhte Effizienz der Stickstoffausnutzung verliehen. Insbesondere wird eine Ertragserhöhung von 1,05-fach bis 1,318-fach, zum Beispiel plus wenigstens 100% davon unter Stickstoffmangelbedingungen verliehen, verglichen mit einer entsprechenden nicht modifizierten, z. B. nicht transformierten, Pflanzenzelle oder Pflanze vom Wildtyp oder einem Teil davon.
  • Gemäß einer weiteren Ausführungsform wird, wenn die Aktivität eines Polypeptids gemäß der Polypeptid-SEQ ID NO.: 8761 beziehungsweise kodiert durch ein Nukleinsäuremolekül, das die Nukleinsäure-SEQ ID NO.: 8760 umfasst, oder eines Homologs dieses Nukleinsäuremoleküls beziehungsweise Polypeptids, z. B. im Fall der Aktivität des Escherichia coli-Nukleinsäuremoleküls beziehungsweise eines Polypeptids, welches die Nukleinsäure-SEQ ID NO. 8760 beziehungsweise Polypeptid-SEQ ID NO. 8761 umfasst, erhöht oder erzeugt wird, z. B. wenn die Aktivität eines Nukleinsäuremoleküls oder eines Polypeptids, welches die Nukleinsäure oder das Polypeptid oder die Konsensussequenz oder das Polypeptidmotiv wie in Tabelle I, II bzw. IV, Spalte 7, in der jeweils gleichen Zeile wie das Nukleinsäuremolekül SEQ ID NO.: 8760 beziehungsweise das Polypeptid SEQ ID NO.: 8761 gezeigt umfasst, erhöht oder erzeugt wird, oder wenn die Aktivität „ATP-bindendes Protein des Arabinosetransportsystems” in einer Pflanzenzelle, einer Pflanze oder einem Teil davon erhöht oder erzeugt wird, insbesondere bei einer Lokalisierung des Polypeptids in Plastiden ein erhöhter intrinsischer Ertrag, verglichen mit einer entsprechenden nicht modifizierten, z. B. nicht transformierten, Pflanzenzelle oder Pflanze vom Wildtyp oder einem Teil davon verliehen. Gemäß einer Ausführungsform wird ein erhöhter Ertrag unter Standardbedingungen (intrinsischer Ertrag) verliehen, z. B. in Abwesenheit von Nährstoffmangel sowie Stressbedingungen. Insbesondere wird eine Ertragserhöhung von 1,05-fach bis 1,136-fach, zum Beispiel plus wenigstens 100% davon unter Standardbedingungen (intrinsischer Ertrag) verliehen, z. B. in Abwesenheit von Nährstoffmangel sowie Stressbedingungen, verglichen mit einer entsprechenden nicht modifizierten, z. B. nicht transformierten, Pflanzenzelle oder Pflanze vom Wildtyp oder einem Teil davon.
  • Dementsprechend wird gemäß einer Ausführungsform, wenn die Aktivität eines Polypeptids gemäß der Polypeptid-SEQ ID NO.: 8862 beziehungsweise kodiert durch ein Nukleinsäuremolekül, das die Nukleinsäure-SEQ ID NO.: 8861 umfasst, oder eines Homologs dieses Nukleinsäuremoleküls beziehungsweise Polypeptids, z. B. im Fall der Aktivität des Synechocystis sp.-Nukleinsäuremoleküls beziehungsweise eines Polypeptids, welches die Nukleinsäure-SEQ ID NO. 8861 beziehungsweise Polypeptid-SEQ ID NO. 8862 umfasst, erhöht oder erzeugt wird, z. B. wenn die Aktivität eines Nukleinsäuremoleküls oder eines Polypeptids, welches die Nukleinsäure oder das Polypeptid oder die Konsensussequenz oder das Polypeptidmotiv wie in Tabelle I, II bzw. IV, Spalte 7, in der jeweils gleichen Zeile wie das Nukleinsäuremolekül SEQ ID NO.: 8861 beziehungsweise das Polypeptid SEQ ID NO.: 8862 gezeigt umfasst, erhöht oder erzeugt wird, oder wenn die Aktivität „Precorrin-6y-Methylase” in einer Pflanzenzelle, einer Pflanze oder einem Teil davon erhöht oder erzeugt wird, insbesondere bei einer Lokalisierung im Zytoplasma ein erhöhter Ertrag, verglichen mit einer entsprechenden nicht modifizierten, z. B. nicht transformierten, Pflanzenzelle oder Pflanze vom Wildtyp oder einem Teil davon verliehen.
  • Gemäß einer weiteren Ausführungsform wird, wenn die Aktivität eines Polypeptids gemäß der Polypeptid-SEQ ID NO.: 8862 beziehungsweise kodiert durch ein Nukleinsäuremolekül, das die Nukleinsäure-SEQ ID NO.: 8861 umfasst, oder eines Homologs dieses Nukleinsäuremoleküls beziehungsweise Polypeptids, z. B. im Fall der Aktivität des Synechocystis sp.-Nukleinsäuremoleküls beziehungsweise eines Polypeptids, welches die Nukleinsäure-SEQ ID NO. 8861 beziehungsweise Polypeptid-SEQ ID NO. 8862 umfasst, erhöht oder erzeugt wird, z. B. wenn die Aktivität eines Nukleinsäuremoleküls oder eines Polypeptids, welches die Nukleinsäure oder das Polypeptid oder die Konsensussequenz oder das Polypeptidmotiv wie in Tabelle I, II bzw. IV, Spalte 7, in der jeweils gleichen Zeile wie das Nukleinsäuremolekül SEQ ID NO.: 8861 beziehungsweise das Polypeptid SEQ ID NO.: 8862 gezeigt umfasst, erhöht oder erzeugt wird, oder wenn die Aktivität „Precorrin-6y-Methylase” in einer Pflanzenzelle, einer Pflanze oder einem Teil davon erhöht oder erzeugt wird, insbesondere bei einer Lokalisierung des Polypeptids im Zytoplasma eine erhöhte Toleranz gegenüber abiotischem Umweltstress, insbesondere eine erhöhte Toleranz gegenüber niedrigen Temperaturen, verglichen mit einer entsprechenden nicht modifizierten, z. B. nicht transformierten, Pflanzenzelle oder Pflanze vom Wildtyp oder einem Teil davon verliehen. Insbesondere wird eine Ertragserhöhung von 1,1-fach bis 1,310-fach, zum Beispiel plus wenigstens 100% davon unter Bedingungen niedriger Temperaturen verliehen, verglichen mit einer entsprechenden nicht modifizierten, z. B. nicht transformierten, Pflanzenzelle oder Pflanze vom Wildtyp oder einem Teil davon.
  • Gemäß einer weiteren Ausführungsform wird, wenn die Aktivität eines Polypeptids gemäß der Polypeptid-SEQ ID NO.: 8862 beziehungsweise kodiert durch ein Nukleinsäuremolekül, das die Nukleinsäure-SEQ ID NO.: 8861 umfasst, oder eines Homologs dieses Nukleinsäuremoleküls beziehungsweise Polypeptids, z. B. im Fall der Aktivität des Synechocystis sp.-Nukleinsäuremoleküls beziehungsweise eines Polypeptids, welches die Nukleinsäure-SEQ ID NO. 8861 beziehungsweise Polypeptid-SEQ ID NO. 8862 umfasst, erhöht oder erzeugt wird, z. B. wenn die Aktivität eines Nukleinsäuremoleküls oder eines Polypeptids, welches die Nukleinsäure oder das Polypeptid oder die Konsensussequenz oder das Polypeptidmotiv wie in Tabelle I, II bzw. IV, Spalte 7, in der jeweils gleichen Zeile wie das Nukleinsäuremolekül SEQ ID NO.: 8861 beziehungsweise das Polypeptid SEQ ID NO.: 8862 gezeigt umfasst, erhöht oder erzeugt wird, oder wenn die Aktivität „Precorrin-6y-Methylase” in einer Pflanzenzelle, einer Pflanze oder einem Teil davon erhöht oder erzeugt wird, insbesondere bei einer Lokalisierung des Polypeptids im Zytoplasma eine erhöhte Effizienz der Nährstoffausnutzung, verglichen mit einer entsprechenden nicht modifizierten, z. B. nicht transformierten, Pflanzenzelle oder Pflanze vom Wildtyp oder einem Teil davon verliehen. Gemäß einer Ausführungsform wird eine erhöhte Effizienz der Stickstoffausnutzung verliehen. Insbesondere wird eine Ertragserhöhung von 1,05-fach bis 1,582-fach, zum Beispiel plus wenigstens 100% davon unter Stickstoffmangelbedingungen verliehen, verglichen mit einer entsprechenden nicht modifizierten, z. B. nicht transformierten, Pflanzenzelle oder Pflanze vom Wildtyp oder einem Teil davon.
  • Gemäß einer weiteren Ausführungsform wird, wenn die Aktivität eines Polypeptids gemäß der Polypeptid-SEQ ID NO.: 8862 beziehungsweise kodiert durch ein Nukleinsäuremolekül, das die Nukleinsäure-SEQ ID NO.: 8861 umfasst, oder eines Homologs dieses Nukleinsäuremoleküls beziehungsweise Polypeptids, z. B. im Fall der Aktivität des Synechocystis sp.-Nukleinsäuremoleküls beziehungsweise eines Polypeptids, welches die Nukleinsäure-SEQ ID NO. 8861 beziehungsweise Polypeptid-SEQ ID NO. 8862 umfasst, erhöht oder erzeugt wird, z. B. wenn die Aktivität eines Nukleinsäuremoleküls oder eines Polypeptids, welches die Nukleinsäure oder das Polypeptid oder die Konsensussequenz oder das Polypeptidmotiv wie in Tabelle I, II bzw. IV, Spalte 7, in der jeweils gleichen Zeile wie das Nukleinsäuremolekül SEQ ID NO.: 8861 beziehungsweise das Polypeptid SEQ ID NO.: 8862 gezeigt umfasst, erhöht oder erzeugt wird, oder wenn die Aktivität „Precorrin-6y-Methylase” in einer Pflanzenzelle, einer Pflanze oder einem Teil davon erhöht oder erzeugt wird, insbesondere bei einer Lokalisierung des Polypeptids im Zytoplasma ein erhöhter intrinsischer Ertrag, verglichen mit einer entsprechenden nicht modifizierten, z. B. nicht transformierten, Pflanzenzelle oder Pflanze vom Wildtyp oder einem Teil davon verliehen. Gemäß einer Ausführungsform wird ein erhöhter Ertrag unter Standardbedingungen (intrinsischer Ertrag) verliehen, z. B. in Abwesenheit von Nährstoffmangel sowie Stressbedingungen. Insbesondere wird eine Ertragserhöhung von 1,05-fach bis 1,178-fach, zum Beispiel plus wenigstens 100% davon unter Standardbedingungen (intrinsischer Ertrag) verliehen, z. B. in Abwesenheit von Nährstoffmangel sowie Stressbedingungen, verglichen mit einer entsprechenden nicht modifizierten, z. B. nicht transformierten, Pflanzenzelle oder Pflanze vom Wildtyp oder einem Teil davon.
  • Dementsprechend wird gemäß einer Ausführungsform, wenn die Aktivität eines Polypeptids gemäß der Polypeptid-SEQ ID NO.: 9047 beziehungsweise kodiert durch ein Nukleinsäuremolekül, das die Nukleinsäure-SEQ ID NO.: 9046 umfasst, oder eines Homologs dieses Nukleinsäuremoleküls beziehungsweise Polypeptids, z. B. im Fall der Aktivität des Synechocystis sp.-Nukleinsäuremoleküls beziehungsweise eines Polypeptids, welches die Nukleinsäure-SEQ ID NO. 9046 beziehungsweise Polypeptid-SEQ ID NO. 9047 umfasst, erhöht oder erzeugt wird, z. B. wenn die Aktivität eines Nukleinsäuremoleküls oder eines Polypeptids, welches die Nukleinsäure oder das Polypeptid oder die Konsensussequenz oder das Polypeptidmotiv wie in Tabelle I, II bzw. IV, Spalte 7, in der jeweils gleichen Zeile wie das Nukleinsäuremolekül SEQ ID NO.: 9046 beziehungsweise das Polypeptid SEQ ID NO.: 9047 gezeigt umfasst, erhöht oder erzeugt wird, oder wenn die Aktivität „Cobalttransportprotein” in einer Pflanzenzelle, einer Pflanze oder einem Teil davon erhöht oder erzeugt wird, insbesondere bei einer Lokalisierung im Zytoplasma ein erhöhter Ertrag, verglichen mit einer entsprechenden nicht modifizierten, z. B. nicht transformierten, Pflanzenzelle oder Pflanze vom Wildtyp oder einem Teil davon verliehen.
  • Gemäß einer weiteren Ausführungsform wird, wenn die Aktivität eines Polypeptids gemäß der Polypeptid-SEQ ID NO.: 9047 beziehungsweise kodiert durch ein Nukleinsäuremolekül, das die Nukleinsäure-SEQ ID NO.: 9046 umfasst, oder eines Homologs dieses Nukleinsäuremoleküls beziehungsweise Polypeptids, z. B. im Fall der Aktivität des Synechocystis sp.-Nukleinsäuremoleküls beziehungsweise eines Polypeptids, welches die Nukleinsäure-SEQ ID NO. 9046 beziehungsweise Polypeptid-SEQ ID NO. 9047 umfasst, erhöht oder erzeugt wird, z. B. wenn die Aktivität eines Nukleinsäuremoleküls oder eines Polypeptids, welches die Nukleinsäure oder das Polypeptid oder die Konsensussequenz oder das Polypeptidmotiv wie in Tabelle I, II bzw. IV, Spalte 7, in der jeweils gleichen Zeile wie das Nukleinsäuremolekül SEQ ID NO.: 9046 beziehungsweise das Polypeptid SEQ ID NO.: 9047 gezeigt umfasst, erhöht oder erzeugt wird, oder wenn die Aktivität „Cobalttransportprotein” in einer Pflanzenzelle, einer Pflanze oder einem Teil davon erhöht oder erzeugt wird, insbesondere bei einer Lokalisierung des Polypeptids im Zytoplasma eine erhöhte Toleranz gegenüber abiotischem Umweltstress, insbesondere eine erhöhte Toleranz gegenüber niedrigen Temperaturen, verglichen mit einer entsprechenden nicht modifizierten, z. B. nicht transformierten, Pflanzenzelle oder Pflanze vom Wildtyp oder einem Teil davon verliehen. Insbesondere wird eine Ertragserhöhung von 1,1-fach bis 1,415-fach, zum Beispiel plus wenigstens 100% davon unter Bedingungen niedriger Temperaturen verliehen, verglichen mit einer entsprechenden nicht modifizierten, z. B. nicht transformierten, Pflanzenzelle oder Pflanze vom Wildtyp oder einem Teil davon.
  • Gemäß einer weiteren Ausführungsform wird, wenn die Aktivität eines Polypeptids gemäß der Polypeptid-SEQ ID NO.: 9047 beziehungsweise kodiert durch ein Nukleinsäuremolekül, das die Nukleinsäure-SEQ ID NO.: 9046 umfasst, oder eines Homologs dieses Nukleinsäuremoleküls beziehungsweise Polypeptids, z. B. im Fall der Aktivität des Synechocystis sp.-Nukleinsäuremoleküls beziehungsweise eines Polypeptids, welches die Nukleinsäure-SEQ ID NO. 9046 beziehungsweise Polypeptid-SEQ ID NO. 9047 umfasst, erhöht oder erzeugt wird, z. B. wenn die Aktivität eines Nukleinsäuremoleküls oder eines Polypeptids, welches die Nukleinsäure oder das Polypeptid oder die Konsensussequenz oder das Polypeptidmotiv wie in Tabelle I, II bzw. IV, Spalte 7, in der jeweils gleichen Zeile wie das Nukleinsäuremolekül SEQ ID NO.: 9046 beziehungsweise das Polypeptid SEQ ID NO.: 9047 gezeigt umfasst, erhöht oder erzeugt wird, oder wenn die Aktivität „Cobalttransportprotein” in einer Pflanzenzelle, einer Pflanze oder einem Teil davon erhöht oder erzeugt wird, insbesondere bei einer Lokalisierung des Polypeptids im Zytoplasma eine erhöhte Effizienz der Nährstoffausnutzung, verglichen mit einer entsprechenden nicht modifizierten, z. B. nicht transformierten, Pflanzenzelle oder Pflanze vom Wildtyp oder einem Teil davon verliehen. Gemäß einer Ausführungsform wird eine erhöhte Effizienz der Stickstoffausnutzung verliehen. Insbesondere wird eine Ertragserhöhung von 1,05-fach bis 1,432-fach, zum Beispiel plus wenigstens 100% davon unter Stickstoffmangelbedingungen verliehen, verglichen mit einer entsprechenden nicht modifizierten, z. B. nicht transformierten, Pflanzenzelle oder Pflanze vom Wildtyp oder einem Teil davon.
  • Gemäß einer weiteren Ausführungsform wird, wenn die Aktivität eines Polypeptids gemäß der Polypeptid-SEQ ID NO.: 9047 beziehungsweise kodiert durch ein Nukleinsäuremolekül, das die Nukleinsäure-SEQ ID NO.: 9046 umfasst, oder eines Homologs dieses Nukleinsäuremoleküls beziehungsweise Polypeptids, z. B. im Fall der Aktivität des Synechocystis sp.-Nukleinsäuremoleküls beziehungsweise eines Polypeptids, welches die Nukleinsäure-SEQ ID NO. 9046 beziehungsweise Polypeptid-SEQ ID NO. 9047 umfasst, erhöht oder erzeugt wird, z. B. wenn die Aktivität eines Nukleinsäuremoleküls oder eines Polypeptids, welches die Nukleinsäure oder das Polypeptid oder die Konsensussequenz oder das Polypeptidmotiv wie in Tabelle I, II bzw. IV, Spalte 7, in der jeweils gleichen Zeile wie das Nukleinsäuremolekül SEQ ID NO.: 9046 beziehungsweise das Polypeptid SEQ ID NO.: 9047 gezeigt umfasst, erhöht oder erzeugt wird, oder wenn die Aktivität „Cobalttransportprotein” in einer Pflanzenzelle, einer Pflanze oder einem Teil davon erhöht oder erzeugt wird, insbesondere bei einer Lokalisierung des Polypeptids im Zytoplasma ein erhöhter intrinsischer Ertrag, verglichen mit einer entsprechenden nicht modifizierten, z. B. nicht transformierten, Pflanzenzelle oder Pflanze vom Wildtyp oder einem Teil davon verliehen. Gemäß einer Ausführungsform wird ein erhöhter Ertrag unter Standardbedingungen (intrinsischer Ertrag) verliehen, z. B. in Abwesenheit von Nährstoffmangel sowie Stressbedingungen. Insbesondere wird eine Ertragserhöhung von 1,05-fach bis 1,383-fach, zum Beispiel plus wenigstens 100% davon unter Standardbedingungen (intrinsischer Ertrag) verliehen, z. B. in Abwesenheit von Nährstoffmangel sowie Stressbedingungen, verglichen mit einer entsprechenden nicht modifizierten, z. B. nicht transformierten, Pflanzenzelle oder Pflanze vom Wildtyp oder einem Teil davon.
  • Dementsprechend wird gemäß einer Ausführungsform, wenn die Aktivität eines Polypeptids gemäß der Polypeptid-SEQ ID NO.: 9281 beziehungsweise kodiert durch ein Nukleinsäuremolekül, das die Nukleinsäure-SEQ ID NO.: 9280 umfasst, oder eines Homologs dieses Nukleinsäuremoleküls beziehungsweise Polypeptids, z. B. im Fall der Aktivität des Synechocystis sp.-Nukleinsäuremoleküls beziehungsweise eines Polypeptids, welches die Nukleinsäure-SEQ ID NO. 9280 beziehungsweise Polypeptid-SEQ ID NO. 9281 umfasst, erhöht oder erzeugt wird, z. B. wenn die Aktivität eines Nukleinsäuremoleküls oder eines Polypeptids, welches die Nukleinsäure oder das Polypeptid oder die Konsensussequenz oder das Polypeptidmotiv wie in Tabelle I, II bzw. IV, Spalte 7, in der jeweils gleichen Zeile wie das Nukleinsäuremolekül SEQ ID NO.: 9280 beziehungsweise das Polypeptid SEQ ID NO.: 9281 gezeigt umfasst, erhöht oder erzeugt wird, oder wenn die Aktivität „SLR1094-Protein” in einer Pflanzenzelle, einer Pflanze oder einem Teil davon erhöht oder erzeugt wird, insbesondere bei einer Lokalisierung im Zytoplasma ein erhöhter Ertrag, verglichen mit einer entsprechenden nicht modifizierten, z. B. nicht transformierten, Pflanzenzelle oder Pflanze vom Wildtyp oder einem Teil davon verliehen.
  • Gemäß einer weiteren Ausführungsform wird, wenn die Aktivität eines Polypeptids gemäß der Polypeptid-SEQ ID NO.: 9281 beziehungsweise kodiert durch ein Nukleinsäuremolekül, das die Nukleinsäure-SEQ ID NO.: 9280 umfasst, oder eines Homologs dieses Nukleinsäuremoleküls beziehungsweise Polypeptids, z. B. im Fall der Aktivität des Synechocystis sp.-Nukleinsäuremoleküls beziehungsweise eines Polypeptids, welches die Nukleinsäure-SEQ ID NO. 9280 beziehungsweise Polypeptid-SEQ ID NO. 9281 umfasst, erhöht oder erzeugt wird, z. B. wenn die Aktivität eines Nukleinsäuremoleküls oder eines Polypeptids, welches die Nukleinsäure oder das Polypeptid oder die Konsensussequenz oder das Polypeptidmotiv wie in Tabelle I, II bzw. IV, Spalte 7, in der jeweils gleichen Zeile wie das Nukleinsäuremolekül SEQ ID NO.: 9280 beziehungsweise das Polypeptid SEQ ID NO.: 9281 gezeigt umfasst, erhöht oder erzeugt wird, oder wenn die Aktivität „SLR1094-Protein” in einer Pflanzenzelle, einer Pflanze oder einem Teil davon erhöht oder erzeugt wird, insbesondere bei einer Lokalisierung des Polypeptids im Zytoplasma eine erhöhte Toleranz gegenüber abiotischem Umweltstress, insbesondere eine erhöhte Toleranz gegenüber niedrigen Temperaturen, verglichen mit einer entsprechenden nicht modifizierten, z. B. nicht transformierten, Pflanzenzelle oder Pflanze vom Wildtyp oder einem Teil davon verliehen. Insbesondere wird eine Ertragserhöhung von 1,1-fach bis 1,352-fach, mm Beispiel plus wenigstens 100% davon unter Bedingungen niedriger Temperaturen verliehen, verglichen mit einer entsprechenden nicht modifizierten, z. B. nicht transformierten, Pflanzenzelle oder Pflanze vom Wildtyp oder einem Teil davon.
  • Gemäß einer weiteren Ausführungsform wird, wenn die Aktivität eines Polypeptids gemäß der Polypeptid-SEQ ID NO.: 9281 beziehungsweise kodiert durch ein Nukleinsäuremolekül, das die Nukleinsäure-SEQ ID NO.: 9280 umfasst, oder eines Homologs dieses Nukleinsäuremoleküls beziehungsweise Polypeptids, z. B. im Fall der Aktivität des Synechocystis sp.-Nukleinsäuremoleküls beziehungsweise eines Polypeptids, welches die Nukleinsäure-SEQ ID NO. 9280 beziehungsweise Polypeptid-SEQ ID NO. 9281 umfasst, erhöht oder erzeugt wird, z. B. wenn die Aktivität eines Nukleinsäuremoleküls oder eines Polypeptids, welches die Nukleinsäure oder das Polypeptid oder die Konsensussequenz oder das Polypeptidmotiv wie in Tabelle I, II bzw. IV, Spalte 7, in der jeweils gleichen Zeile wie das Nukleinsäuremolekül SEQ ID NO.: 9280 beziehungsweise das Polypeptid SEQ ID NO.: 9281 gezeigt umfasst, erhöht oder erzeugt wird, oder wenn die Aktivität „SLR1094-Protein” in einer Pflanzenzelle, einer Pflanze oder einem Teil davon erhöht oder erzeugt wird, insbesondere bei einer Lokalisierung des Polypeptids im Zytoplasma ein erhöhter intrinsischer Ertrag, verglichen mit einer entsprechenden nicht modifizierten, z. B. nicht transformierten, Pflanzenzelle oder Pflanze vom Wildtyp oder einem Teil davon verliehen. Gemäß einer Ausführungsform wird ein erhöhter Ertrag unter Standardbedingungen (intrinsischer Ertrag) verliehen, z. B. in Abwesenheit von Nährstoffmangel sowie Stressbedingungen.
  • Insbesondere wird eine Ertragserhöhung von 1,05-fach bis 1,104-fach, zum Beispiel plus wenigstens 100% davon unter Standardbedingungen (intrinsischer Ertrag) verliehen, z. B. in Abwesenheit von Nährstoffmangel sowie Stressbedingungen, verglichen mit einer entsprechenden nicht modifizierten, z. B. nicht transformierten, Pflanzenzelle oder Pflanze vom Wildtyp oder einem Teil davon.
  • Dementsprechend wird gemäß einer Ausführungsform, wenn die Aktivität eines Polypeptids gemäß der Polypeptid-SEQ ID NO.: 9308 beziehungsweise kodiert durch ein Nukleinsäuremolekül, das die Nukleinsäure-SEQ ID NO.: 9307 umfasst, oder eines Homologs dieses Nukleinsäuremoleküls beziehungsweise Polypeptids, z. B. im Fall der Aktivität des Synechocystis sp.-Nukleinsäuremoleküls beziehungsweise eines Polypeptids, welches die Nukleinsäure-SEQ ID NO. 9307 beziehungsweise Polypeptid-SEQ ID NO. 9308 umfasst, erhöht oder erzeugt wird, z. B. wenn die Aktivität eines Nukleinsäuremoleküls oder eines Polypeptids, welches die Nukleinsäure oder das Polypeptid oder die Konsensussequenz oder das Polypeptidmotiv wie in Tabelle I, II bzw. IV, Spalte 7, in der jeweils gleichen Zeile wie das Nukleinsäuremolekül SEQ ID NO.: 9307 beziehungsweise das Polypeptid SEQ ID NO.: 9308 gezeigt umfasst, erhöht oder erzeugt wird, oder wenn die Aktivität „Oxidoreduktase” in einer Pflanzenzelle, einer Pflanze oder einem Teil davon erhöht oder erzeugt wird, insbesondere bei einer Lokalisierung im Zytoplasma ein erhöhter Ertrag, verglichen mit einer entsprechenden nicht modifizierten, z. B. nicht transformierten, Pflanzenzelle oder Pflanze vom Wildtyp oder einem Teil davon verliehen.
  • Gemäß einer weiteren Ausführungsform wird, wenn die Aktivität eines Polypeptids gemäß der Polypeptid-SEQ ID NO.: 9308 beziehungsweise kodiert durch ein Nukleinsäuremolekül, das die Nukleinsäure-SEQ ID NO.: 9307 umfasst, oder eines Homologs dieses Nukleinsäuremoleküls beziehungsweise Polypeptids, z. B. im Fall der Aktivität des Synechocystis sp.-Nukleinsäuremoleküls beziehungsweise eines Polypeptids, welches die Nukleinsäure-SEQ ID NO. 9307 beziehungsweise Polypeptid-SEQ ID NO. 9308 umfasst, erhöht oder erzeugt wird, z. B. wenn die Aktivität eines Nukleinsäuremoleküls oder eines Polypeptids, welches die Nukleinsäure oder das Polypeptid oder die Konsensussequenz oder das Polypeptidmotiv wie in Tabelle I, II bzw. IV, Spalte 7, in der jeweils gleichen Zeile wie das Nukleinsäuremolekül SEQ ID NO.: 9307 beziehungsweise das Polypeptid SEQ ID NO.: 9308 gezeigt umfasst, erhöht oder erzeugt wird, oder wenn die Aktivität „Oxidoreduktase” in einer Pflanzenzelle, einer Pflanze oder einem Teil davon erhöht oder erzeugt wird, insbesondere bei einer Lokalisierung des Polypeptids im Zytoplasma eine erhöhte Toleranz gegenüber abiotischem Umweltstress, insbesondere eine erhöhte Toleranz gegenüber niedrigen Temperaturen, verglichen mit einer entsprechenden nicht modifizierten, z. B. nicht transformierten, Pflanzenzelle oder Pflanze vom Wildtyp oder einem Teil davon verliehen. Insbesondere wird eine Ertragserhöhung von 1,1-fach bis 1,361-fach, zum Beispiel plus wenigstens 100% davon unter Bedingungen niedriger Temperaturen verliehen, verglichen mit einer entsprechenden nicht modifizierten, z. B. nicht transformierten, Pflanzenzelle oder Pflanze vom Wildtyp oder einem Teil davon.
  • Gemäß einer weiteren Ausführungsform wird, wenn die Aktivität eines Polypeptids gemäß der Polypeptid-SEQ ID NO.: 9308 beziehungsweise kodiert durch ein Nukleinsäuremolekül, das die Nukleinsäure-SEQ ID NO.: 9307 umfasst, oder eines Homologs dieses Nukleinsäuremoleküls beziehungsweise Polypeptids, z. B. im Fall der Aktivität des Synechocystis sp.-Nukleinsäuremoleküls beziehungsweise eines Polypeptids, welches die Nukleinsäure-SEQ ID NO. 9307 beziehungsweise Polypeptid-SEQ ID NO. 9308 umfasst, erhöht oder erzeugt wird, z. B. wenn die Aktivität eines Nukleinsäuremoleküls oder eines Polypeptids, welches die Nukleinsäure oder das Polypeptid oder die Konsensussequenz oder das Polypeptidmotiv wie in Tabelle I, II bzw. IV, Spalte 7, in der jeweils gleichen Zeile wie das Nukleinsäuremolekül SEQ ID NO.: 9307 beziehungsweise das Polypeptid SEQ ID NO.: 9308 gezeigt umfasst, erhöht oder erzeugt wird, oder wenn die Aktivität „Oxidoreduktase” in einer Pflanzenzelle, einer Pflanze oder einem Teil davon erhöht oder erzeugt wird, insbesondere bei einer Lokalisierung des Polypeptids im Zytoplasma eine erhöhte Effizienz der Nährstoffausnutzung, verglichen mit einer entsprechenden nicht modifizierten, z. B. nicht transformierten, Pflanzenzelle oder Pflanze vom Wildtyp oder einem Teil davon verliehen. Gemäß einer Ausführungsform wird eine erhöhte Effizienz der Stickstoffausnutzung verliehen. Insbesondere wird eine Ertragserhöhung von 1,05-fach bis 1,441-fach, zum Beispiel plus wenigstens 100% davon unter Stickstoffmangelbedingungen verliehen, verglichen mit einer entsprechenden nicht modifizierten, z. B. nicht transformierten, Pflanzenzelle oder Pflanze vom Wildtyp oder einem Teil davon.
  • Gemäß einer weiteren Ausführungsform wird, wenn die Aktivität eines Polypeptids gemäß der Polypeptid-SEQ ID NO.: 9308 beziehungsweise kodiert durch ein Nukleinsäuremolekül, das die Nukleinsäure-SEQ ID NO.: 9307 umfasst, oder eines Homologs dieses Nukleinsäuremoleküls beziehungsweise Polypeptids, z. B. im Fall der Aktivität des Synechocystis sp.-Nukleinsäuremoleküls beziehungsweise eines Polypeptids, welches die Nukleinsäure-SEQ ID NO. 9307 beziehungsweise Polypeptid-SEQ ID NO. 9308 umfasst, erhöht oder erzeugt wird, z. B. wenn die Aktivität eines Nukleinsäuremoleküls oder eines Polypeptids, welches die Nukleinsäure oder das Polypeptid oder die Konsensussequenz oder das Polypeptidmotiv wie in Tabelle I, II bzw. IV, Spalte 7, in der jeweils gleichen Zeile wie das Nukleinsäuremolekül SEQ ID NO.: 9307 beziehungsweise das Polypeptid SEQ ID NO.: 9308 gezeigt umfasst, erhöht oder erzeugt wird, oder wenn die Aktivität „Oxidoreduktase” in einer Pflanzenzelle, einer Pflanze oder einem Teil davon erhöht oder erzeugt wird, insbesondere bei einer Lokalisierung des Polypeptids im Zytoplasma ein erhöhter intrinsischer Ertrag, verglichen mit einer entsprechenden nicht modifizierten, z. B. nicht transformierten, Pflanzenzelle oder Pflanze vom Wildtyp oder einem Teil davon verliehen. Gemäß einer Ausführungsform wird ein erhöhter Ertrag unter Standardbedingungen (intrinsischer Ertrag) verliehen, z. B. in Abwesenheit von Nährstoffmangel sowie Stressbedingungen. Insbesondere wird eine Ertragserhöhung von 1,05-fach bis 1,103-fach, zum Beispiel plus wenigstens 100% davon unter Standardbedingungen (intrinsischer Ertrag) verliehen, z. B. in Abwesenheit von Nährstoffmangel sowie Stressbedingungen, verglichen mit einer entsprechenden nicht modifizierten, z. B. nicht transformierten, Pflanzenzelle oder Pflanze vom Wildtyp oder einem Teil davon.
  • Dementsprechend wird gemäß einer Ausführungsform, wenn die Aktivität eines Polypeptids gemäß der Polypeptid-SEQ ID NO.: 9431 beziehungsweise kodiert durch ein Nukleinsäuremolekül, das die Nukleinsäure-SEQ ID NO.: 9430 umfasst, oder eines Homologs dieses Nukleinsäuremoleküls beziehungsweise Polypeptids, z. B. im Fall der Aktivität des Saccharomyces cerevisiae-Nukleinsäuremoleküls beziehungsweise eines Polypeptids, welches die Nukleinsäure-SEQ ID NO. 9430 beziehungsweise Polypeptid-SEQ ID NO. 9431 umfasst, erhöht oder erzeugt wird, z. B. wenn die Aktivität eines Nukleinsäuremoleküls oder eines Polypeptids, welches die Nukleinsäure oder das Polypeptid oder die Konsensussequenz oder das Polypeptidmotiv wie in Tabelle I, II bzw. IV, Spalte 7, in der jeweils gleichen Zeile wie das Nukleinsäuremolekül SEQ ID NO.: 9430 beziehungsweise das Polypeptid SEQ ID NO.: 9431 gezeigt umfasst, erhöht oder erzeugt wird, oder wenn die Aktivität „Cardiolipinsynthetase” in einer Pflanzenzelle, einer Pflanze oder einem Teil davon erhöht oder erzeugt wird, insbesondere bei einer Lokalisierung im Zytoplasma ein erhöhter Ertrag, verglichen mit einer entsprechenden nicht modifizierten, z. B. nicht transformierten, Pflanzenzelle oder Pflanze vom Wildtyp oder einem Teil davon verliehen.
  • Gemäß einer weiteren Ausführungsform wird, wenn die Aktivität eines Polypeptids gemäß der Polypeptid-SEQ ID NO.: 9431 beziehungsweise kodiert durch ein Nukleinsäuremolekül, das die Nukleinsäure-SEQ ID NO.: 9430 umfasst, oder eines Homologs dieses Nukleinsäuremoleküls beziehungsweise Polypeptids, z. B. im Fall der Aktivität des Saccharomyces cerevisiae-Nukleinsäuremoleküls beziehungsweise eines Polypeptids, welches die Nukleinsäure-SEQ ID NO. 9430 beziehungsweise Polypeptid-SEQ ID NO. 9431 umfasst, erhöht oder erzeugt wird, z. B. wenn die Aktivität eines Nukleinsäuremoleküls oder eines Polypeptids, welches die Nukleinsäure oder das Polypeptid oder die Konsensussequenz oder das Polypeptidmotiv wie in Tabelle I, II bzw. IV, Spalte 7, in der jeweils gleichen Zeile wie das Nukleinsäuremolekül SEQ ID NO.: 9430 beziehungsweise das Polypeptid SEQ ID NO.: 9431 gezeigt umfasst, erhöht oder erzeugt wird, oder wenn die Aktivität „Cardiolipinsynthetase” in einer Pflanzenzelle, einer Pflanze oder einem Teil davon erhöht oder erzeugt wird, insbesondere bei einer Lokalisierung des Polypeptids im Zytoplasma eine erhöhte Toleranz gegenüber abiotischem Umweltstress, insbesondere eine erhöhte Toleranz gegenüber niedrigen Temperaturen, verglichen mit einer entsprechenden nicht modifizierten, z. B. nicht transformierten, Pflanzenzelle oder Pflanze vom Wildtyp oder einem Teil davon verliehen. Insbesondere wird eine Ertragserhöhung von 1,1-fach bis 1,503-fach, zum Beispiel plus wenigstens 100% davon unter Bedingungen niedriger Temperaturen verliehen, verglichen mit einer entsprechenden nicht modifizierten, z. B. nicht transformierten, Pflanzenzelle oder Pflanze vom Wildtyp oder einem Teil davon.
  • Gemäß einer weiteren Ausführungsform wird, wenn die Aktivität eines Polypeptids gemäß der Polypeptid-SEQ ID NO.: 9431 beziehungsweise kodiert durch ein Nukleinsäuremolekül, das die Nukleinsäure-SEQ ID NO.: 9430 umfasst, oder eines Homologs dieses Nukleinsäuremoleküls beziehungsweise Polypeptids, z. B. im Fall der Aktivität des Saccharomyces cerevisiae-Nukleinsäuremoleküls beziehungsweise eines Polypeptids, welches die Nukleinsäure-SEQ ID NO. 9430 beziehungsweise Polypeptid-SEQ ID NO. 9431 umfasst, erhöht oder erzeugt wird, z. B. wenn die Aktivität eines Nukleinsäuremoleküls oder eines Polypeptids, welches die Nukleinsäure oder das Polypeptid oder die Konsensussequenz oder das Polypeptidmotiv wie in Tabelle I, II bzw. IV, Spalte 7, in der jeweils gleichen Zeile wie das Nukleinsäuremolekül SEQ ID NO.: 9430 beziehungsweise das Polypeptid SEQ ID NO.: 9431 gezeigt umfasst, erhöht oder erzeugt wird, oder wenn die Aktivität „Cardiolipinsynthetase” in einer Pflanzenzelle, einer Pflanze oder einem Teil davon erhöht oder erzeugt wird, insbesondere bei einer Lokalisierung des Polypeptids im Zytoplasma ein erhöhter intrinsischer Ertrag, verglichen mit einer entsprechenden nicht modifizierten, z. B. nicht transformierten, Pflanzenzelle oder Pflanze vom Wildtyp oder einem Teil davon verliehen. Gemäß einer Ausführungsform wird ein erhöhter Ertrag unter Standardbedingungen (intrinsischer Ertrag) verliehen, z. B. in Abwesenheit von Nährstoffmangel sowie Stressbedingungen. Insbesondere wird eine Ertragserhöhung von 1,05-fach bis 1,200-fach, zum Beispiel plus wenigstens 100% davon unter Standardbedingungen (intrinsischer Ertrag) verliehen, z. B. in Abwesenheit von Nährstoffmangel sowie Stressbedingungen, verglichen mit einer entsprechenden nicht modifizierten, z. B. nicht transformierten, Pflanzenzelle oder Pflanze vom Wildtyp oder einem Teil davon.
  • Dementsprechend wird gemäß einer Ausführungsform, wenn die Aktivität eines Polypeptids gemäß der Polypeptid-SEQ ID NO.: 9480 beziehungsweise kodiert durch ein Nukleinsäuremolekül, das die Nukleinsäure-SEQ ID NO.: 9479 umfasst, oder eines Homologs dieses Nukleinsäuremoleküls beziehungsweise Polypeptids, z. B. im Fall der Aktivität des Saccharomyces cerevisiae-Nukleinsäuremoleküls beziehungsweise eines Polypeptids, welches die Nukleinsäure-SEQ ID NO. 9479 beziehungsweise Polypeptid-SEQ ID NO. 9480 umfasst, erhöht oder erzeugt wird, z. B. wenn die Aktivität eines Nukleinsäuremoleküls oder eines Polypeptids, welches die Nukleinsäure oder das Polypeptid oder die Konsensussequenz oder das Polypeptidmotiv wie in Tabelle I, II bzw. IV, Spalte 7, in der jeweils gleichen Zeile wie das Nukleinsäuremolekül SEQ ID NO.: 9479 beziehungsweise das Polypeptid SEQ ID NO.: 9480 gezeigt umfasst, erhöht oder erzeugt wird, oder wenn die Aktivität „Ethanolaminkinase” in einer Pflanzenzelle, einer Pflanze oder einem Teil davon erhöht oder erzeugt wird, insbesondere bei einer Lokalisierung im Zytoplasma, ein erhöhter Ertrag verglichen mit einer entsprechenden nicht modifizierten, z. B. nicht transformierten, Pflanzenzelle oder Pflanze vom Wildtyp oder einem Teil davon verliehen.
  • Gemäß einer weiteren Ausführungsform wird, wenn die Aktivität eines Polypeptids gemäß der Polypeptid-SEQ ID NO.: 9480 beziehungsweise kodiert durch ein Nukleinsäuremolekül, das die Nukleinsäure-SEQ ID NO.: 9479 umfasst, oder eines Homologs dieses Nukleinsäuremoleküls beziehungsweise Polypeptids, z. B. im Fall der Aktivität des Saccharomyces cerevisiae-Nukleinsäuremoleküls beziehungsweise eines Polypeptids, welches die Nukleinsäure-SEQ ID NO. 9479 beziehungsweise Polypeptid-SEQ ID NO. 9480 umfasst, erhöht oder erzeugt wird, z. B. wenn die Aktivität eines Nukleinsäuremoleküls oder eines Polypeptids, welches die Nukleinsäure oder das Polypeptid oder die Konsensussequenz oder das Polypeptidmotiv wie in Tabelle I, II bzw. IV, Spalte 7, in der jeweils gleichen Zeile wie das Nukleinsäuremolekül SEQ ID NO.: 9479 beziehungsweise das Polypeptid SEQ ID NO.: 9480 gezeigt umfasst, erhöht oder erzeugt wird, oder wenn die Aktivität „Ethanolaminkinase” in einer Pflanzenzelle, einer Pflanze oder einem Teil davon erhöht oder erzeugt wird, insbesondere bei einer Lokalisierung des Polypeptids im Zytoplasma eine erhöhte Toleranz gegenüber abiotischem Umweltstress, insbesondere eine erhöhte Toleranz gegenüber niedrigen Temperaturen, verglichen mit einer entsprechenden nicht modifizierten, z. B. nicht transformierten, Pflanzenzelle oder Pflanze vom Wildtyp oder einem Teil davon verliehen. Insbesondere wird eine Ertragserhöhung von 1,1-fach bis 1,167-fach, zum Beispiel plus wenigstens 100% davon unter Bedingungen niedriger Temperaturen verliehen, verglichen mit einer entsprechenden nicht modifizierten, z. B. nicht transformierten, Pflanzenzelle oder Pflanze vom Wildtyp oder einem Teil davon.
  • Gemäß einer weiteren Ausführungsform wird, wenn die Aktivität eines Polypeptids gemäß der Polypeptid-SEQ ID NO.: 9480 beziehungsweise kodiert durch ein Nukleinsäuremolekül, das die Nukleinsäure-SEQ ID NO.: 9479 umfasst, oder eines Homologs dieses Nukleinsäuremoleküls beziehungsweise Polypeptids, z. B. im Fall der Aktivität des Saccharomyces cerevisiae-Nukleinsäuremoleküls beziehungsweise eines Polypeptids, welches die Nukleinsäure-SEQ ID NO. 9479 beziehungsweise Polypeptid-SEQ ID NO. 9480 umfasst, erhöht oder erzeugt wird, z. B. wenn die Aktivität eines Nukleinsäuremoleküls oder eines Polypeptids, welches die Nukleinsäure oder das Polypeptid oder die Konsensussequenz oder das Polypeptidmotiv wie in Tabelle I, II bzw. IV, Spalte 7, in der jeweils gleichen Zeile wie das Nukleinsäuremolekül SEQ ID NO.: 9479 beziehungsweise das Polypeptid SEQ ID NO.: 9480 gezeigt umfasst, erhöht oder erzeugt wird, oder wenn die Aktivität „Ethanolaminkinase” in einer Pflanzenzelle, einer Pflanze oder einem Teil davon erhöht oder erzeugt wird, insbesondere bei einer Lokalisierung des Polypeptids im Zytoplasma eine erhöhte Effizienz der Nährstoffausnutzung, verglichen mit einer entsprechenden nicht modifizierten, z. B. nicht transformierten, Pflanzenzelle oder Pflanze vom Wildtyp oder einem Teil davon verliehen. Gemäß einer Ausführungsform wird eine erhöhte Effizienz der Stickstoffausnutzung verliehen. Insbesondere wird eine Ertragserhöhung von 1,05-fach bis 1,117-fach, zum Beispiel plus wenigstens 100% davon unter Stickstoffmangelbedingungen verliehen, verglichen mit einer entsprechenden nicht modifizierten, z. B. nicht transformierten, Pflanzenzelle oder Pflanze vom Wildtyp oder einem Teil davon.
  • Dementsprechend wird gemäß einer Ausführungsform, wenn die Aktivität eines Polypeptids gemäß der Polypeptid-SEQ ID NO.: 9501 beziehungsweise kodiert durch ein Nukleinsäuremolekül, das die Nukleinsäure-SEQ ID NO.: 9500 umfasst, oder eines Homologs dieses Nukleinsäuremoleküls beziehungsweise Polypeptids, z. B. im Fall der Aktivität des Saccharomyces cerevisiae-Nukleinsäuremoleküls beziehungsweise eines Polypeptids, welches die Nukleinsäure-SEQ ID NO. 9500 beziehungsweise Polypeptid-SEQ ID NO. 9501 umfasst, erhöht oder erzeugt wird, z. B. wenn die Aktivität eines Nukleinsäuremoleküls oder eines Polypeptids, welches die Nukleinsäure oder das Polypeptid oder die Konsensussequenz oder das Polypeptidmotiv wie in Tabelle I, II bzw. IV, Spalte 7, in der jeweils gleichen Zeile wie das Nukleinsäuremolekül SEQ ID NO.: 9500 beziehungsweise das Polypeptid SEQ ID NO.: 9501 gezeigt umfasst, erhöht oder erzeugt wird, oder wenn die Aktivität „Enoyl-CoA-Isomerase” in einer Pflanzenzelle, einer Pflanze oder einem Teil davon erhöht oder erzeugt wird, insbesondere bei einer Lokalisierung in Plastiden ein erhöhter Ertrag, verglichen mit einer entsprechenden nicht modifizierten, z. B. nicht transformierten, Pflanzenzelle oder Pflanze vom Wildtyp oder einem Teil davon verliehen.
  • Gemäß einer weiteren Ausführungsform wird, wenn die Aktivität eines Polypeptids gemäß der Polypeptid-SEQ ID NO.: 9501 beziehungsweise kodiert durch ein Nukleinsäuremolekül, das die Nukleinsäure-SEQ ID NO.: 9500 umfasst, oder eines Homologs dieses Nukleinsäuremoleküls beziehungsweise Polypeptids, z. B. im Fall der Aktivität des Saccharomyces cerevisiae-Nukleinsäuremoleküls beziehungsweise eines Polypeptids, welches die Nukleinsäure-SEQ ID NO. 9500 beziehungsweise Polypeptid-SEQ ID NO. 9501 umfasst, erhöht oder erzeugt wird, z. B. wenn die Aktivität eines Nukleinsäuremoleküls oder eines Polypeptids, welches die Nukleinsäure oder das Polypeptid oder die Konsensussequenz oder das Polypeptidmotiv wie in Tabelle I, II bzw. IV, Spalte 7, in der jeweils gleichen Zeile wie das Nukleinsäuremolekül SEQ ID NO.: 9500 beziehungsweise das Polypeptid SEQ ID NO.: 9501 gezeigt umfasst, erhöht oder erzeugt wird, oder wenn die Aktivität „Enoyl-CoA-Isomerase” in einer Pflanzenzelle, einer Pflanze oder einem Teil davon erhöht oder erzeugt wird, insbesondere bei einer Lokalisierung des Polypeptids in Plastiden eine erhöhte Toleranz gegenüber abiotischem Umweltstress, insbesondere eine erhöhte Toleranz gegenüber niedrigen Temperaturen, verglichen mit einer entsprechenden nicht modifizierten, z. B. nicht transformierten, Pflanzenzelle oder Pflanze vom Wildtyp oder einem Teil davon verliehen. Insbesondere wird eine Ertragserhöhung von 1,1-fach bis 1,306-fach, zum Beispiel plus wenigstens 100% davon unter Bedingungen niedriger Temperaturen verliehen, verglichen mit einer entsprechenden nicht modifizierten, z. B. nicht transformierten, Pflanzenzelle oder Pflanze vom Wildtyp oder einem Teil davon.
  • Gemäß einer weiteren Ausführungsform wird, wenn die Aktivität eines Polypeptids gemäß der Polypeptid-SEQ ID NO.: 9501 beziehungsweise kodiert durch ein Nukleinsäuremolekül, das die Nukleinsäure-SEQ ID NO.: 9500 umfasst, oder eines Homologs dieses Nukleinsäuremoleküls beziehungsweise Polypeptids, z. B. im Fall der Aktivität des Saccharomyces cerevisiae-Nukleinsäuremoleküls beziehungsweise eines Polypeptids, welches die Nukleinsäure-SEQ ID NO. 9500 beziehungsweise Polypeptid-SEQ ID NO. 9501 umfasst, erhöht oder erzeugt wird, z. B. wenn die Aktivität eines Nukleinsäuremoleküls oder eines Polypeptids, welches die Nukleinsäure oder das Polypeptid oder die Konsensussequenz oder das Polypeptidmotiv wie in Tabelle I, II bzw. IV, Spalte 7, in der jeweils gleichen Zeile wie das Nukleinsäuremolekül SEQ ID NO.: 9500 beziehungsweise das Polypeptid SEQ ID NO.: 9501 gezeigt umfasst, erhöht oder erzeugt wird, oder wenn die Aktivität „Enoyl-CoA-Isomerase” in einer Pflanzenzelle, einer Pflanze oder einem Teil davon erhöht oder erzeugt wird, insbesondere bei einer Lokalisierung des Polypeptids in Plastiden ein erhöhter intrinsischer Ertrag, verglichen mit einer entsprechenden nicht modifizierten, z. B. nicht transformierten, Pflanzenzelle oder Pflanze vom Wildtyp oder einem Teil davon verliehen. Gemäß einer Ausführungsform wird ein erhöhter Ertrag unter Standardbedingungen (intrinsischer Ertrag) verliehen, z. B. in Abwesenheit von Nährstoffmangel sowie Stressbedingungen. Insbesondere wird eine Ertragserhöhung von 1,05-fach bis 1,229-fach, zum Beispiel plus wenigstens 100% davon unter Standardbedingungen (intrinsischer Ertrag) verliehen, z. B. in Abwesenheit von Nährstoffmangel sowie Stressbedingungen, verglichen mit einer entsprechenden nicht modifizierten, z. B. nicht transformierten, Pflanzenzelle oder Pflanze vom Wildtyp oder einem Teil davon.
  • Dementsprechend wird gemäß einer Ausführungsform, wenn die Aktivität eines Polypeptids gemäß der Polypeptid-SEQ ID NO.: 9554 beziehungsweise kodiert durch ein Nukleinsäuremolekül, das die Nukleinsäure-SEQ ID NO.: 9553 umfasst, oder eines Homologs dieses Nukleinsäuremoleküls beziehungsweise Polypeptids, z. B. im Fall der Aktivität des Saccharomyces cerevisiae-Nukleinsäuremoleküls beziehungsweise eines Polypeptids, welches die Nukleinsäure-SEQ ID NO. 9553 beziehungsweise Polypeptid-SEQ ID NO. 9554 umfasst, erhöht oder erzeugt wird, z. B. wenn die Aktivität eines Nukleinsäuremoleküls oder eines Polypeptids, welches die Nukleinsäure oder das Polypeptid oder die Konsensussequenz oder das Polypeptidmotiv wie in Tabelle I, II bzw. IV, Spalte 7, in der jeweils gleichen Zeile wie das Nukleinsäuremolekül SEQ ID NO.: 9553 beziehungsweise das Polypeptid SEQ ID NO.: 9554 gezeigt umfasst, erhöht oder erzeugt wird, oder wenn die Aktivität „Holo-[Acylträgerprotein]-Synthase” in einer Pflanzenzelle, einer Pflanze oder einem Teil davon erhöht oder erzeugt wird, insbesondere bei einer Lokalisierung in Plastiden ein erhöhter Ertrag, verglichen mit einer entsprechenden nicht modifizierten, z. B. nicht transformierten, Pflanzenzelle oder Pflanze vom Wildtyp oder einem Teil davon verliehen.
  • Gemäß einer weiteren Ausführungsform wird, wenn die Aktivität eines Polypeptids gemäß der Polypeptid-SEQ ID NO.: 9554 beziehungsweise kodiert durch ein Nukleinsäuremolekül, das die Nukleinsäure-SEQ ID NO.: 9553 umfasst, oder eines Homologs dieses Nukleinsäuremoleküls beziehungsweise Polypeptids, z. B. im Fall der Aktivität des Saccharomyces cerevisiae-Nukleinsäuremoleküls beziehungsweise eines Polypeptids, welches die Nukleinsäure-SEQ ID NO. 9553 beziehungsweise Polypeptid-SEQ ID NO. 9554 umfasst, erhöht oder erzeugt wird, z. B. wenn die Aktivität eines Nukleinsäuremoleküls oder eines Polypeptids, welches die Nukleinsäure oder das Polypeptid oder die Konsensussequenz oder das Polypeptidmotiv wie in Tabelle I, II bzw. IV, Spalte 7, in der jeweils gleichen Zeile wie das Nukleinsäuremolekül SEQ ID NO.: 9553 beziehungsweise das Polypeptid SEQ ID NO.: 9554 gezeigt umfasst, erhöht oder erzeugt wird, oder wenn die Aktivität „Holo-[Acylträgerprotein]-Synthase” in einer Pflanzenzelle, einer Pflanze oder einem Teil davon erhöht oder erzeugt wird, insbesondere bei einer Lokalisierung des Polypeptids in Plastiden eine erhöhte Toleranz gegenüber abiotischem Umweltstress, insbesondere eine erhöhte Toleranz gegenüber niedrigen Temperaturen, verglichen mit einer entsprechenden nicht modifizierten, z. B. nicht transformierten, Pflanzenzelle oder Pflanze vom Wildtyp oder einem Teil davon verliehen. Insbesondere wird eine Ertragserhöhung von 1,1-fach bis 1,276-fach, zum Beispiel plus wenigstens 100% davon unter Bedingungen niedriger Temperaturen verliehen, verglichen mit einer entsprechenden nicht modifizierten, z. B. nicht transformierten, Pflanzenzelle oder Pflanze vom Wildtyp oder einem Teil davon.
  • Gemäß einer weiteren Ausführungsform wird, wenn die Aktivität eines Polypeptids gemäß der Polypeptid-SEQ ID NO.: 9554 beziehungsweise kodiert durch ein Nukleinsäuremolekül, das die Nukleinsäure-SEQ ID NO.: 9553 umfasst, oder eines Homologs dieses Nukleinsäuremoleküls beziehungsweise Polypeptids, z. B. im Fall der Aktivität des Saccharomyces cerevisiae-Nukleinsäuremoleküls beziehungsweise eines Polypeptids, welches die Nukleinsäure-SEQ ID NO. 9553 beziehungsweise Polypeptid-SEQ ID NO. 9554 umfasst, erhöht oder erzeugt wird, z. B. wenn die Aktivität eines Nukleinsäuremoleküls oder eines Polypeptids, welches die Nukleinsäure oder das Polypeptid oder die Konsensussequenz oder das Polypeptidmotiv wie in Tabelle I, II bzw. IV, Spalte 7, in der jeweils gleichen Zeile wie das Nukleinsäuremolekül SEQ ID NO.: 9553 beziehungsweise das Polypeptid SEQ ID NO.: 9554 gezeigt umfasst, erhöht oder erzeugt wird, oder wenn die Aktivität „Holo-[Acylträgerprotein]-Synthase” in einer Pflanzenzelle, einer Pflanze oder einem Teil davon erhöht oder erzeugt wird, insbesondere bei einer Lokalisierung des Polypeptids in Plastiden eine erhöhte Effizienz der Nährstoffausnutzung, verglichen mit einer entsprechenden nicht modifizierten, z. B. nicht transformierten, Pflanzenzelle oder Pflanze vom Wildtyp oder einem Teil davon verliehen. Gemäß einer Ausführungsform wird eine erhöhte Effizienz der Stickstoffausnutzung verliehen. Insbesondere wird eine Ertragserhöhung von 1,05-fach bis 1,226-fach, zum Beispiel plus wenigstens 100% davon unter Stickstoffmangelbedingungen verliehen, verglichen mit einer entsprechenden nicht modifizierten, z. B. nicht transformierten, Pflanzenzelle oder Pflanze vom Wildtyp oder einem Teil davon.
  • Gemäß einer weiteren Ausführungsform wird, wenn die Aktivität eines Polypeptids gemäß der Polypeptid-SEQ ID NO.: 9554 beziehungsweise kodiert durch ein Nukleinsäuremolekül, das die Nukleinsäure-SEQ ID NO.: 9553 umfasst, oder eines Homologs dieses Nukleinsäuremoleküls beziehungsweise Polypeptids, z. B. im Fall der Aktivität des Saccharomyces cerevisiae-Nukleinsäuremoleküls beziehungsweise eines Polypeptids, welches die Nukleinsäure-SEQ ID NO. 9553 beziehungsweise Polypeptid-SEQ ID NO. 9554 umfasst, erhöht oder erzeugt wird, z. B. wenn die Aktivität eines Nukleinsäuremoleküls oder eines Polypeptids, welches die Nukleinsäure oder das Polypeptid oder die Konsensussequenz oder das Polypeptidmotiv wie in Tabelle I, II bzw. IV, Spalte 7, in der jeweils gleichen Zeile wie das Nukleinsäuremolekül SEQ ID NO.: 9553 beziehungsweise das Polypeptid SEQ ID NO.: 9554 gezeigt umfasst, erhöht oder erzeugt wird, oder wenn die Aktivität „Holo-[Acylträgerprotein]-Synthase” in einer Pflanzenzelle, einer Pflanze oder einem Teil davon erhöht oder erzeugt wird, insbesondere bei einer Lokalisierung des Polypeptids in Plastiden ein erhöhter intrinsischer Ertrag, verglichen mit einer entsprechenden nicht modifizierten, z. B. nicht transformierten, Pflanzenzelle oder Pflanze vom Wildtyp oder einem Teil davon verliehen. Gemäß einer Ausführungsform wird ein erhöhter Ertrag unter Standardbedingungen (intrinsischer Ertrag) verliehen, z. B. in Abwesenheit von Nährstoffmangel sowie Stressbedingungen. Insbesondere wird eine Ertragserhöhung von 1,05-fach bis 1,276-fach, zum Beispiel plus wenigstens 100% davon unter Standardbedingungen (intrinsischer Ertrag) verliehen, z. B. in Abwesenheit von Nährstoffmangel sowie Stressbedingungen, verglichen mit einer entsprechenden nicht modifizierten, z. B. nicht transformierten, Pflanzenzelle oder Pflanze vom Wildtyp oder einem Teil davon.
  • Dementsprechend wird gemäß einer Ausführungsform, wenn die Aktivität eines Polypeptids gemäß der Polypeptid-SEQ ID NO.: 9575 beziehungsweise kodiert durch ein Nukleinsäuremolekül, das die Nukleinsäure-SEQ ID NO.: 9574 umfasst, oder eines Homologs dieses Nukleinsäuremoleküls beziehungsweise Polypeptids, z. B. im Fall der Aktivität des Saccharomyces cerevisiae-Nukleinsäuremoleküls beziehungsweise eines Polypeptids, welches die Nukleinsäure-SEQ ID NO. 9574 beziehungsweise Polypeptid-SEQ ID NO. 9575 umfasst, erhöht oder erzeugt wird, z. B. wenn die Aktivität eines Nukleinsäuremoleküls oder eines Polypeptids, welches die Nukleinsäure oder das Polypeptid oder die Konsensussequenz oder das Polypeptidmotiv wie in Tabelle I, II bzw. IV, Spalte 7, in der jeweils gleichen Zeile wie das Nukleinsäuremolekül SEQ ID NO.: 9574 beziehungsweise das Polypeptid SEQ ID NO.: 9575 gezeigt umfasst, erhöht oder erzeugt wird, oder wenn die Aktivität „Transketolase” in einer Pflanzenzelle, einer Pflanze oder einem Teil davon erhöht oder erzeugt wird, insbesondere bei einer Lokalisierung in Plastiden ein erhöhter Ertrag, verglichen mit einer entsprechenden nicht modifizierten, z. B. nicht transformierten, Pflanzenzelle oder Pflanze vom Wildtyp oder einem Teil davon verliehen.
  • Gemäß einer weiteren Ausführungsform wird, wenn die Aktivität eines Polypeptids gemäß der Polypeptid-SEQ ID NO.: 9575 beziehungsweise kodiert durch ein Nukleinsäuremolekül, das die Nukleinsäure-SEQ ID NO.: 9574 umfasst, oder eines Homologs dieses Nukleinsäuremoleküls beziehungsweise Polypeptids, z. B. im Fall der Aktivität des Saccharomyces cerevisiae-Nukleinsäuremoleküls beziehungsweise eines Polypeptids, welches die Nukleinsäure-SEQ ID NO. 9574 beziehungsweise Polypeptid-SEQ ID NO. 9575 umfasst, erhöht oder erzeugt wird, z. B. wenn die Aktivität eines Nukleinsäuremoleküls oder eines Polypeptids, welches die Nukleinsäure oder das Polypeptid oder die Konsensussequenz oder das Polypeptidmotiv wie in Tabelle I, II bzw. IV, Spalte 7, in der jeweils gleichen Zeile wie das Nukleinsäuremolekül SEQ ID NO.: 9574 beziehungsweise das Polypeptid SEQ ID NO.: 9575 gezeigt umfasst, erhöht oder erzeugt wird, oder wenn die Aktivität „Transketolase” in einer Pflanzenzelle, einer Pflanze oder einem Teil davon erhöht oder erzeugt wird, insbesondere bei einer Lokalisierung des Polypeptids in Plastiden eine erhöhte Toleranz gegenüber abiotischem Umweltstress, insbesondere eine erhöhte Toleranz gegenüber niedrigen Temperaturen, verglichen mit einer entsprechenden nicht modifizierten, z. B. nicht transformierten, Pflanzenzelle oder Pflanze vom Wildtyp oder einem Teil davon verliehen. Insbesondere wird eine Ertragserhöhung von 1,1-fach bis 1,287-fach, zum Beispiel plus wenigstens 100% davon unter Bedingungen niedriger Temperaturen verliehen, verglichen mit einer entsprechenden nicht modifizierten, z. B. nicht transformierten, Pflanzenzelle oder Pflanze vom Wildtyp oder einem Teil davon.
  • Gemäß einer weiteren Ausführungsform wird, wenn die Aktivität eines Polypeptids gemäß der Polypeptid-SEQ ID NO.: 9575 beziehungsweise kodiert durch ein Nukleinsäuremolekül, das die Nukleinsäure-SEQ ID NO.: 9574 umfasst, oder eines Homologs dieses Nukleinsäuremoleküls beziehungsweise Polypeptids, z. B. im Fall der Aktivität des Saccharomyces cerevisiae-Nukleinsäuremoleküls beziehungsweise eines Polypeptids, welches die Nukleinsäure-SEQ ID NO. 9574 beziehungsweise Polypeptid-SEQ ID NO. 9575 umfasst, erhöht oder erzeugt wird, z. B. wenn die Aktivität eines Nukleinsäuremoleküls oder eines Polypeptids, welches die Nukleinsäure oder das Polypeptid oder die Konsensussequenz oder das Polypeptidmotiv wie in Tabelle I, II bzw. IV, Spalte 7, in der jeweils gleichen Zeile wie das Nukleinsäuremolekül SEQ ID NO.: 9574 beziehungsweise das Polypeptid SEQ ID NO.: 9575 gezeigt umfasst, erhöht oder erzeugt wird, oder wenn die Aktivität „Transketolase” in einer Pflanzenzelle, einer Pflanze oder einem Teil davon erhöht oder erzeugt wird, insbesondere bei einer Lokalisierung des Polypeptids in Plastiden ein erhöhter intrinsischer Ertrag, verglichen mit einer entsprechenden nicht modifizierten, z. B. nicht transformierten, Pflanzenzelle oder Pflanze vom Wildtyp oder einem Teil davon verliehen. Gemäß einer Ausführungsform wird ein erhöhter Ertrag unter Standardbedingungen (intrinsischer Ertrag) verliehen, z. B. in Abwesenheit von Nährstoffmangel sowie Stressbedingungen. Insbesondere wird eine Ertragserhöhung von 1,05-fach bis 1,245-fach, zum Beispiel plus wenigstens 100% davon unter Standardbedingungen (intrinsischer Ertrag) verliehen, z. B. in Abwesenheit von Nährstoffmangel sowie Stressbedingungen, verglichen mit einer entsprechenden nicht modifizierten, z. B. nicht transformierten, Pflanzenzelle oder Pflanze vom Wildtyp oder einem Teil davon.
  • Dementsprechend wird gemäß einer Ausführungsform, wenn die Aktivität eines Polypeptids gemäß der Polypeptid-SEQ ID NO.: 10405 beziehungsweise kodiert durch ein Nukleinsäuremolekül, das die Nukleinsäure-SEQ ID NO.: 10404 umfasst, oder eines Homologs dieses Nukleinsäuremoleküls beziehungsweise Polypeptids, z. B. im Fall der Aktivität des Escherichia coli-Nukleinsäuremoleküls beziehungsweise eines Polypeptids, welches die Nukleinsäure-SEQ ID NO. 10404 beziehungsweise Polypeptid-SEQ ID NO. 10405 umfasst, erhöht oder erzeugt wird, z. B. wenn die Aktivität eines Nukleinsäuremoleküls oder eines Polypeptids, welches die Nukleinsäure oder das Polypeptid oder die Konsensussequenz oder das Polypeptidmotiv wie in Tabelle I, II bzw. IV, Spalte 7, in der jeweils gleichen Zeile wie das Nukleinsäuremolekül SEQ ID NO.: 10404 beziehungsweise das Polypeptid SEQ ID NO.: 10405 gezeigt umfasst, erhöht oder erzeugt wird, oder wenn die Aktivität „NADH-Dehydrogenase/NAD(P)H-Nitroreduktase” in einer Pflanzenzelle, einer Pflanze oder einem Teil davon erhöht oder erzeugt wird, insbesondere bei einer Lokalisierung in Plastiden ein erhöhter Ertrag, verglichen mit einer entsprechenden nicht modifizierten, z. B. nicht transformierten, Pflanzenzelle oder Pflanze vom Wildtyp oder einem Teil davon verliehen.
  • Gemäß einer weiteren Ausführungsform wird, wenn die Aktivität eines Polypeptids gemäß der Polypeptid-SEQ ID NO.: 10405 beziehungsweise kodiert durch ein Nukleinsäuremolekül, das die Nukleinsäure-SEQ ID NO.: 10404 umfasst, oder eines Homologs dieses Nukleinsäuremoleküls beziehungsweise Polypeptids, z. B. im Fall der Aktivität des Escherichia coli-Nukleinsäuremoleküls beziehungsweise eines Polypeptids, welches die Nukleinsäure-SEQ ID NO. 10404 beziehungsweise Polypeptid-SEQ ID NO. 10405 umfasst, erhöht oder erzeugt wird, z. B. wenn die Aktivität eines Nukleinsäuremoleküls oder eines Polypeptids, welches die Nukleinsäure oder das Polypeptid oder die Konsensussequenz oder das Polypeptidmotiv wie in Tabelle I, II bzw. IV, Spalte 7, in der jeweils gleichen Zeile wie das Nukleinsäuremolekül SEQ ID NO.: 10404 beziehungsweise das Polypeptid SEQ ID NO.: 10405 gezeigt umfasst, erhöht oder erzeugt wird, oder wenn die Aktivität „NADH-Dehydrogenase/NAD(P)H-Nitroreduktase” in einer Pflanzenzelle, einer Pflanze oder einem Teil davon erhöht oder erzeugt wird, insbesondere bei einer Lokalisierung des Polypeptids in Plastiden eine erhöhte Toleranz gegenüber abiotischem Umweltstress, insbesondere eine erhöhte Toleranz gegenüber niedrigen Temperaturen, verglichen mit einer entsprechenden nicht modifizierten, z. B. nicht transformierten, Pflanzenzelle oder Pflanze vom Wildtyp oder einem Teil davon verliehen. Insbesondere wird eine Ertragserhöhung von 1,1-fach bis 1,585-fach, zum Beispiel plus wenigstens 100% davon unter Bedingungen niedriger Temperaturen verliehen, verglichen mit einer entsprechenden nicht modifizierten, z. B. nicht transformierten, Pflanzenzelle oder Pflanze vom Wildtyp oder einem Teil davon.
  • Gemäß einer weiteren Ausführungsform wird, wenn die Aktivität eines Polypeptids gemäß der Polypeptid-SEQ ID NO.: 10405 beziehungsweise kodiert durch ein Nukleinsäuremolekül, das die Nukleinsäure-SEQ ID NO.: 10404 umfasst, oder eines Homologs dieses Nukleinsäuremoleküls beziehungsweise Polypeptids, z. B. im Fall der Aktivität des Escherichia coli-Nukleinsäuremoleküls beziehungsweise eines Polypeptids, welches die Nukleinsäure-SEQ ID NO. 10404 beziehungsweise Polypeptid-SEQ ID NO. 10405 umfasst, erhöht oder erzeugt wird, z. B. wenn die Aktivität eines Nukleinsäuremoleküls oder eines Polypeptids, welches die Nukleinsäure oder das Polypeptid oder die Konsensussequenz oder das Polypeptidmotiv wie in Tabelle I, II bzw. IV, Spalte 7, in der jeweils gleichen Zeile wie das Nukleinsäuremolekül SEQ ID NO.: 10404 beziehungsweise das Polypeptid SEQ ID NO.: 10405 gezeigt umfasst, erhöht oder erzeugt wird, oder wenn die Aktivität „NADH-Dehydrogenase/NAD(P)H-Nitroreduktase” in einer Pflanzenzelle, einer Pflanze oder einem Teil davon erhöht oder erzeugt wird, insbesondere bei einer Lokalisierung des Polypeptids in Plastiden eine erhöhte Effizienz der Nährstoffausnutzung, verglichen mit einer entsprechenden nicht modifizierten, z. B. nicht transformierten, Pflanzenzelle oder Pflanze vom Wildtyp oder einem Teil davon verliehen. Gemäß einer Ausführungsform wird eine erhöhte Effizienz der Stickstoffausnutzung verliehen. Insbesondere wird eine Ertragserhöhung von 1,05-fach bis 1,166-fach, zum Beispiel plus wenigstens 100% davon unter Stickstoffmangelbedingungen verliehen, verglichen mit einer entsprechenden nicht modifizierten, z. B. nicht transformierten, Pflanzenzelle oder Pflanze vom Wildtyp oder einem Teil davon.
  • Gemäß einer weiteren Ausführungsform wird, wenn die Aktivität eines Polypeptids gemäß der Polypeptid-SEQ ID NO.: 10405 beziehungsweise kodiert durch ein Nukleinsäuremolekül, das die Nukleinsäure-SEQ ID NO.: 10404 umfasst, oder eines Homologs dieses Nukleinsäuremoleküls beziehungsweise Polypeptids, z. B. im Fall der Aktivität des Escherichia coli-Nukleinsäuremoleküls beziehungsweise eines Polypeptids, welches die Nukleinsäure-SEQ ID NO. 10404 beziehungsweise Polypeptid-SEQ ID NO. 10405 umfasst, erhöht oder erzeugt wird, z. B. wenn die Aktivität eines Nukleinsäuremoleküls oder eines Polypeptids, welches die Nukleinsäure oder das Polypeptid oder die Konsensussequenz oder das Polypeptidmotiv wie in Tabelle I, II bzw. IV, Spalte 7, in der jeweils gleichen Zeile wie das Nukleinsäuremolekül SEQ ID NO.: 10404 beziehungsweise das Polypeptid SEQ ID NO.: 10405 gezeigt umfasst, erhöht oder erzeugt wird, oder wenn die Aktivität „NADH-Dehydrogenase/NAD(P)H-Nitroreduktase” in einer Pflanzenzelle, einer Pflanze oder einem Teil davon erhöht oder erzeugt wird, insbesondere bei einer Lokalisierung des Polypeptids in Plastiden ein erhöhter intrinsischer Ertrag, verglichen mit einer entsprechenden nicht modifizierten, z. B. nicht transformierten, Pflanzenzelle oder Pflanze vom Wildtyp oder einem Teil davon verliehen. Gemäß einer Ausführungsform wird ein erhöhter Ertrag unter Standardbedingungen (intrinsischer Ertrag) verliehen, z. B. in Abwesenheit von Nährstoffmangel sowie Stressbedingungen. Insbesondere wird eine Ertragserhöhung von 1,05-fach bis 1,200-fach, zum Beispiel plus wenigstens 100% davon unter Standardbedingungen (intrinsischer Ertrag) verliehen, z. B. in Abwesenheit von Nährstoffmangel sowie Stressbedingungen, verglichen mit einer entsprechenden nicht modifizierten, z. B. nicht transformierten, Pflanzenzelle oder Pflanze vom Wildtyp oder einem Teil davon.
  • Dementsprechend wird gemäß einer Ausführungsform, wenn die Aktivität eines Polypeptids gemäß der Polypeptid-SEQ ID NO.: 10504 beziehungsweise kodiert durch ein Nukleinsäuremolekül, das die Nukleinsäure-SEQ ID NO.: 10503 umfasst, oder eines Homologs dieses Nukleinsäuremoleküls beziehungsweise Polypeptids, z. B. im Fall der Aktivität des Escherichia coli-Nukleinsäuremoleküls beziehungsweise eines Polypeptids, welches die Nukleinsäure-SEQ ID NO. 10503 beziehungsweise Polypeptid-SEQ ID NO. 10504 umfasst, erhöht oder erzeugt wird, z. B. wenn die Aktivität eines Nukleinsäuremoleküls oder eines Polypeptids, welches die Nukleinsäure oder das Polypeptid oder die Konsensussequenz oder das Polypeptidmotiv wie in Tabelle I, II bzw. IV, Spalte 7, in der jeweils gleichen Zeile wie das Nukleinsäuremolekül SEQ ID NO.: 10503 beziehungsweise das Polypeptid SEQ ID NO.: 10504 gezeigt umfasst, erhöht oder erzeugt wird, oder wenn die Aktivität „Multiple-Drug-Resistenzprotein” in einer Pflanzenzelle, einer Pflanze oder einem Teil davon erhöht oder erzeugt wird, insbesondere bei einer Lokalisierung in Plastiden ein erhöhter Ertrag, verglichen mit einer entsprechenden nicht modifizierten, z. B. nicht transformierten, Pflanzenzelle oder Pflanze vom Wildtyp oder einem Teil davon verliehen.
  • Gemäß einer weiteren Ausführungsform wird, wenn die Aktivität eines Polypeptids gemäß der Polypeptid-SEQ ID NO.: 10504 beziehungsweise kodiert durch ein Nukleinsäuremolekül, das die Nukleinsäure-SEQ ID NO.: 10503 umfasst, oder eines Homologs dieses Nukleinsäuremoleküls beziehungsweise Polypeptids, z. B. im Fall der Aktivität des Escherichia coli-Nukleinsäuremoleküls beziehungsweise eines Polypeptids, welches die Nukleinsäure-SEQ ID NO. 10503 beziehungsweise Polypeptid-SEQ ID NO. 10504 umfasst, erhöht oder erzeugt wird, z. B. wenn die Aktivität eines Nukleinsäuremoleküls oder eines Polypeptids, welches die Nukleinsäure oder das Polypeptid oder die Konsensussequenz oder das Polypeptidmotiv wie in Tabelle I, II bzw. IV, Spalte 7, in der jeweils gleichen Zeile wie das Nukleinsäuremolekül SEQ ID NO.: 10503 beziehungsweise das Polypeptid SEQ ID NO.: 10504 gezeigt umfasst, erhöht oder erzeugt wird, oder wenn die Aktivität „Multiple-Drug-Resistenzprotein” in einer Pflanzenzelle, einer Pflanze oder einem Teil davon erhöht oder erzeugt wird, insbesondere bei einer Lokalisierung des Polypeptids in Plastiden eine erhöhte Toleranz gegenüber abiotischem Umweltstress, insbesondere eine erhöhte Toleranz gegenüber niedrigen Temperaturen, verglichen mit einer entsprechenden nicht modifizierten, z. B. nicht transformierten, Pflanzenzelle oder Pflanze vom Wildtyp oder einem Teil davon verliehen. Insbesondere wird eine Ertragserhöhung von 1,1-fach bis 1,426-fach, zum Beispiel plus wenigstens 100% davon unter Bedingungen niedriger Temperaturen verliehen, verglichen mit einer entsprechenden nicht modifizierten, z. B. nicht transformierten, Pflanzenzelle oder Pflanze vom Wildtyp oder einem Teil davon.
  • Dementsprechend wird gemäß einer Ausführungsform, wenn die Aktivität eines Polypeptids gemäß der Polypeptid-SEQ ID NO.: 10592 beziehungsweise kodiert durch ein Nukleinsäuremolekül, das die Nukleinsäure-SEQ ID NO.: 10591 umfasst, oder eines Homologs dieses Nukleinsäuremoleküls beziehungsweise Polypeptids, z. B. im Fall der Aktivität des Escherichia coli-Nukleinsäuremoleküls beziehungsweise eines Polypeptids, welches die Nukleinsäure-SEQ ID NO. 10591 beziehungsweise Polypeptid-SEQ ID NO. 10592 umfasst, erhöht oder erzeugt wird, z. B. wenn die Aktivität eines Nukleinsäuremoleküls oder eines Polypeptids, welches die Nukleinsäure oder das Polypeptid oder die Konsensussequenz oder das Polypeptidmotiv wie in Tabelle I, II bzw. IV, Spalte 7, in der jeweils gleichen Zeile wie das Nukleinsäuremolekül SEQ ID NO.: 10591 beziehungsweise das Polypeptid SEQ ID NO.: 10592 gezeigt umfasst, erhöht oder erzeugt wird, oder wenn die Aktivität „Peptidyl-Prolyl-cis/trans-Isomerase” in einer Pflanzenzelle, einer Pflanze oder einem Teil davon erhöht oder erzeugt wird, insbesondere bei einer Lokalisierung in Plastiden ein erhöhter Ertrag, verglichen mit einer entsprechenden nicht modifizierten, z. B. nicht transformierten, Pflanzenzelle oder Pflanze vom Wildtyp oder einem Teil davon verliehen.
  • Gemäß einer weiteren Ausführungsform wird, wenn die Aktivität eines Polypeptids gemäß der Polypeptid-SEQ ID NO.: 10592 beziehungsweise kodiert durch ein Nukleinsäuremolekül, das die Nukleinsäure-SEQ ID NO.: 10591 umfasst, oder eines Homologs dieses Nukleinsäuremoleküls beziehungsweise Polypeptids, z. B. im Fall der Aktivität des Escherichia coli-Nukleinsäuremoleküls beziehungsweise eines Polypeptids, welches die Nukleinsäure-SEQ ID NO. 10591 beziehungsweise Polypeptid-SEQ ID NO. 10592 umfasst, erhöht oder erzeugt wird, z. B. wenn die Aktivität eines Nukleinsäuremoleküls oder eines Polypeptids, welches die Nukleinsäure oder das Polypeptid oder die Konsensussequenz oder das Polypeptidmotiv wie in Tabelle I, II bzw. IV, Spalte 7, in der jeweils gleichen Zeile wie das Nukleinsäuremolekül SEQ ID NO.: 10591 beziehungsweise das Polypeptid SEQ ID NO.: 10592 gezeigt umfasst, erhöht oder erzeugt wird, oder wenn die Aktivität „Peptidyl-Prolyl-cis/trans-Isomerase” in einer Pflanzenzelle, einer Pflanze oder einem Teil davon erhöht oder erzeugt wird, insbesondere bei einer Lokalisierung des Polypeptids in Plastiden eine erhöhte Toleranz gegenüber abiotischem Umweltstress, insbesondere eine erhöhte Toleranz gegenüber niedrigen Temperaturen, verglichen mit einer entsprechenden nicht modifizierten, z. B. nicht transformierten, Pflanzenzelle oder Pflanze vom Wildtyp oder einem Teil davon verliehen. Insbesondere wird eine Ertragserhöhung von 1,1-fach bis 1,480-fach, zum Beispiel plus wenigstens 100% davon unter Bedingungen niedriger Temperaturen verliehen, verglichen mit einer entsprechenden nicht modifizierten, z. B. nicht transformierten, Pflanzenzelle oder Pflanze vom Wildtyp oder einem Teil davon.
  • Gemäß einer weiteren Ausführungsform wird, wenn die Aktivität eines Polypeptids gemäß der Polypeptid-SEQ ID NO.: 10592 beziehungsweise kodiert durch ein Nukleinsäuremolekül, das die Nukleinsäure-SEQ ID NO.: 10591 umfasst, oder eines Homologs dieses Nukleinsäuremoleküls beziehungsweise Polypeptids, z. B. im Fall der Aktivität des Escherichia coli-Nukleinsäuremoleküls beziehungsweise eines Polypeptids, welches die Nukleinsäure-SEQ ID NO. 10591 beziehungsweise Polypeptid-SEQ ID NO. 10592 umfasst, erhöht oder erzeugt wird, z. B. wenn die Aktivität eines Nukleinsäuremoleküls oder eines Polypeptids, welches die Nukleinsäure oder das Polypeptid oder die Konsensussequenz oder das Polypeptidmotiv wie in Tabelle I, II bzw. IV, Spalte 7, in der jeweils gleichen Zeile wie das Nukleinsäuremolekül SEQ ID NO.: 10591 beziehungsweise das Polypeptid SEQ ID NO.: 10592 gezeigt umfasst, erhöht oder erzeugt wird, oder wenn die Aktivität „Peptidyl-Prolyl-cis/trans-Isomerase” in einer Pflanzenzelle, einer Pflanze oder einem Teil davon erhöht oder erzeugt wird, insbesondere bei einer Lokalisierung des Polypeptids in Plastiden eine erhöhte Effizienz der Nährstoffausnutzung, verglichen mit einer entsprechenden nicht modifizierten, z. B. nicht transformierten, Pflanzenzelle oder Pflanze vom Wildtyp oder einem Teil davon verliehen. Gemäß einer Ausführungsform wird eine erhöhte Effizienz der Stickstoffausnutzung verliehen. Insbesondere wird eine Ertragserhöhung von 1,05-fach bis 1,339-fach, zum Beispiel plus wenigstens 100% davon unter Stickstoffmangelbedingungen verliehen, verglichen mit einer entsprechenden nicht modifizierten, z. B. nicht transformierten, Pflanzenzelle oder Pflanze vom Wildtyp oder einem Teil davon.
  • Gemäß einer weiteren Ausführungsform wird, wenn die Aktivität eines Polypeptids gemäß der Polypeptid-SEQ ID NO.: 10592 beziehungsweise kodiert durch ein Nukleinsäuremolekül, das die Nukleinsäure-SEQ ID NO.: 10591 umfasst, oder eines Homologs dieses Nukleinsäuremoleküls beziehungsweise Polypeptids, z. B. im Fall der Aktivität des Escherichia coli-Nukleinsäuremoleküls beziehungsweise eines Polypeptids, welches die Nukleinsäure-SEQ ID NO. 10591 beziehungsweise Polypeptid-SEQ ID NO. 10592 umfasst, erhöht oder erzeugt wird, z. B. wenn die Aktivität eines Nukleinsäuremoleküls oder eines Polypeptids, welches die Nukleinsäure oder das Polypeptid oder die Konsensussequenz oder das Polypeptidmotiv wie in Tabelle I, II bzw. IV, Spalte 7, in der jeweils gleichen Zeile wie das Nukleinsäuremolekül SEQ ID NO.: 10591 beziehungsweise das Polypeptid SEQ ID NO.: 10592 gezeigt umfasst, erhöht oder erzeugt wird, oder wenn die Aktivität „Peptidyl-Prolyl-cis/trans-Isomerase” in einer Pflanzenzelle, einer Pflanze oder einem Teil davon erhöht oder erzeugt wird, insbesondere bei einer Lokalisierung des Polypeptids in Plastiden ein erhöhter intrinsischer Ertrag, verglichen mit einer entsprechenden nicht modifizierten, z. B. nicht transformierten, Pflanzenzelle oder Pflanze vom Wildtyp oder einem Teil davon verliehen. Gemäß einer Ausführungsform wird ein erhöhter Ertrag unter Standardbedingungen (intrinsischer Ertrag) verliehen, z. B. in Abwesenheit von Nährstoffmangel sowie Stressbedingungen. Insbesondere wird eine Ertragserhöhung von 1,05-fach bis 1,188-fach, zum Beispiel plus wenigstens 100% davon unter Standardbedingungen (intrinsischer Ertrag) verliehen, z. B. in Abwesenheit von Nährstoffmangel sowie Stressbedingungen, verglichen mit einer entsprechenden nicht modifizierten, z. B. nicht transformierten, Pflanzenzelle oder Pflanze vom Wildtyp oder einem Teil davon.
  • Dementsprechend wird gemäß einer Ausführungsform, wenn die Aktivität eines Polypeptids gemäß der Polypeptid-SEQ ID NO.: 10935 beziehungsweise kodiert durch ein Nukleinsäuremolekül, das die Nukleinsäure-SEQ ID NO.: 10934 umfasst, oder eines Homologs dieses Nukleinsäuremoleküls beziehungsweise Polypeptids, z. B. im Fall der Aktivität des Saccharomyces cerevisiae-Nukleinsäuremoleküls beziehungsweise eines Polypeptids, welches die Nukleinsäure-SEQ ID NO. 10934 beziehungsweise Polypeptid-SEQ ID NO. 10935 umfasst, erhöht oder erzeugt wird, z. B. wenn die Aktivität eines Nukleinsäuremoleküls oder eines Polypeptids, welches die Nukleinsäure oder das Polypeptid oder die Konsensussequenz oder das Polypeptidmotiv wie in Tabelle I, II bzw. IV, Spalte 7, in der jeweils gleichen Zeile wie das Nukleinsäuremolekül SEQ ID NO.: 10934 beziehungsweise das Polypeptid SEQ ID NO.: 10935 gezeigt umfasst, erhöht oder erzeugt wird, oder wenn die Aktivität „3-Methyl-2-oxobutanoat-Hydroxymethyltransferase” in einer Pflanzenzelle, einer Pflanze oder einem Teil davon erhöht oder erzeugt wird, insbesondere bei einer Lokalisierung im Zytoplasma ein erhöhter Ertrag, verglichen mit einer entsprechenden nicht modifizierten, z. B. nicht transformierten, Pflanzenzelle oder Pflanze vom Wildtyp oder einem Teil davon verliehen.
  • Gemäß einer weiteren Ausführungsform wird, wenn die Aktivität eines Polypeptids gemäß der Polypeptid-SEQ ID NO.: 10935 beziehungsweise kodiert durch ein Nukleinsäuremolekül, das die Nukleinsäure-SEQ ID NO.: 10934 umfasst, oder eines Homologs dieses Nukleinsäuremoleküls beziehungsweise Polypeptids, z. B. im Fall der Aktivität des Saccharomyces cerevisiae-Nukleinsäuremoleküls beziehungsweise eines Polypeptids, welches die Nukleinsäure-SEQ ID NO. 10934 beziehungsweise Polypeptid-SEQ ID NO. 10935 umfasst, erhöht oder erzeugt wird, z. B. wenn die Aktivität eines Nukleinsäuremoleküls oder eines Polypeptids, welches die Nukleinsäure oder das Polypeptid oder die Konsensussequenz oder das Polypeptidmotiv wie in Tabelle I, II bzw. IV, Spalte 7, in der jeweils gleichen Zeile wie das Nukleinsäuremolekül SEQ ID NO.: 10934 beziehungsweise das Polypeptid SEQ ID NO.: 10935 gezeigt umfasst, erhöht oder erzeugt wird, oder wenn die Aktivität „3-Methyl-2-oxobutanoat-Hydroxymethyltransferase” in einer Pflanzenzelle, einer Pflanze oder einem Teil davon erhöht oder erzeugt wird, insbesondere bei einer Lokalisierung des Polypeptids im Zytoplasma eine erhöhte Toleranz gegenüber abiotischem Umweltstress, insbesondere eine erhöhte Toleranz gegenüber niedrigen Temperaturen, verglichen mit einer entsprechenden nicht modifizierten, z. B. nicht transformierten, Pflanzenzelle oder Pflanze vom Wildtyp oder einem Teil davon verliehen. Insbesondere wird eine Ertragserhöhung von 1,1-fach bis 1,429-fach, zum Beispiel plus wenigstens 100% davon unter Bedingungen niedriger Temperaturen verliehen, verglichen mit einer entsprechenden nicht modifizierten, z. B. nicht transformierten, Pflanzenzelle oder Pflanze vom Wildtyp oder einem Teil davon.
  • Dementsprechend wird gemäß einer Ausführungsform, wenn die Aktivität eines Polypeptids gemäß der Polypeptid-SEQ ID NO.: 11462 beziehungsweise kodiert durch ein Nukleinsäuremolekül, das die Nukleinsäure-SEQ ID NO.: 11461 umfasst, oder eines Homologs dieses Nukleinsäuremoleküls beziehungsweise Polypeptids, z. B. im Fall der Aktivität des Saccharomyces cerevisiae-Nukleinsäuremoleküls beziehungsweise eines Polypeptids, welches die Nukleinsäure-SEQ ID NO. 11461 beziehungsweise Polypeptid-SEQ ID NO. 11462 umfasst, erhöht oder erzeugt wird, z. B. wenn die Aktivität eines Nukleinsäuremoleküls oder eines Polypeptids, welches die Nukleinsäure oder das Polypeptid oder die Konsensussequenz oder das Polypeptidmotiv wie in Tabelle I, II bzw. IV, Spalte 7, in der jeweils gleichen Zeile wie das Nukleinsäuremolekül SEQ ID NO.: 11461 beziehungsweise das Polypeptid SEQ ID NO.: 11462 gezeigt umfasst, erhöht oder erzeugt wird, oder wenn die Aktivität „Alkoholacetyltransferase” in einer Pflanzenzelle, einer Pflanze oder einem Teil davon erhöht oder erzeugt wird, insbesondere bei einer Lokalisierung im Zytoplasma ein erhöhter Ertrag, verglichen mit einer entsprechenden nicht modifizierten, z. B. nicht transformierten, Pflanzenzelle oder Pflanze vom Wildtyp oder einem Teil davon verliehen.
  • Gemäß einer weiteren Ausführungsform wird, wenn die Aktivität eines Polypeptids gemäß der Polypeptid-SEQ ID NO.: 11462 beziehungsweise kodiert durch ein Nukleinsäuremolekül, das die Nukleinsäure-SEQ ID NO.: 11461 umfasst, oder eines Homologs dieses Nukleinsäuremoleküls beziehungsweise Polypeptids, z. B. im Fall der Aktivität des Saccharomyces cerevisiae-Nukleinsäuremoleküls beziehungsweise eines Polypeptids, welches die Nukleinsäure-SEQ ID NO. 11461 beziehungsweise Polypeptid-SEQ ID NO. 11462 umfasst, erhöht oder erzeugt wird, z. B. wenn die Aktivität eines Nukleinsäuremoleküls oder eines Polypeptids, welches die Nukleinsäure oder das Polypeptid oder die Konsensussequenz oder das Polypeptidmotiv wie in Tabelle I, II bzw. IV, Spalte 7, in der jeweils gleichen Zeile wie das Nukleinsäuremolekül SEQ ID NO.: 11461 beziehungsweise das Polypeptid SEQ ID NO.: 11462 gezeigt umfasst, erhöht oder erzeugt wird, oder wenn die Aktivität „Alkoholacetyltransferase” in einer Pflanzenzelle, einer Pflanze oder einem Teil davon erhöht oder erzeugt wird, insbesondere bei einer Lokalisierung des Polypeptids im Zytoplasma eine erhöhte Toleranz gegenüber abiotischem Umweltstress, insbesondere eine erhöhte Toleranz gegenüber niedrigen Temperaturen, verglichen mit einer entsprechenden nicht modifizierten, z. B. nicht transformierten, Pflanzenzelle oder Pflanze vom Wildtyp oder einem Teil davon verliehen. Insbesondere wird eine Ertragserhöhung von 1,1-fach bis 1,416-fach, zum Beispiel plus wenigstens 100% davon unter Bedingungen niedriger Temperaturen verliehen, verglichen mit einer entsprechenden nicht modifizierten, z. B. nicht transformierten, Pflanzenzelle oder Pflanze vom Wildtyp oder einem Teil davon.
  • Dementsprechend wird gemäß einer Ausführungsform, wenn die Aktivität eines Polypeptids gemäß der Polypeptid-SEQ ID NO.: 11502 beziehungsweise kodiert durch ein Nukleinsäuremolekül, das die Nukleinsäure-SEQ ID NO.: 11501 umfasst, oder eines Homologs dieses Nukleinsäuremoleküls beziehungsweise Polypeptids, z. B. im Fall der Aktivität des Saccharomyces cerevisiae-Nukleinsäuremoleküls beziehungsweise eines Polypeptids, welches die Nukleinsäure-SEQ ID NO. 11501 beziehungsweise Polypeptid-SEQ ID NO. 11502 umfasst, erhöht oder erzeugt wird, z. B. wenn die Aktivität eines Nukleinsäuremoleküls oder eines Polypeptids, welches die Nukleinsäure oder das Polypeptid oder die Konsensussequenz oder das Polypeptidmotiv wie in Tabelle I, II bzw. IV, Spalte 7, in der jeweils gleichen Zeile wie das Nukleinsäuremolekül SEQ ID NO.: 11501 beziehungsweise das Polypeptid SEQ ID NO.: 11502 gezeigt umfasst, erhöht oder erzeugt wird, oder wenn die Aktivität „thiolspezifische Monooxygenase” in einer Pflanzenzelle, einer Pflanze oder einem Teil davon erhöht oder erzeugt wird, insbesondere bei einer Lokalisierung im Zytoplasma ein erhöhter Ertrag, verglichen mit einer entsprechenden nicht modifizierten, z. B. nicht transformierten, Pflanzenzelle oder Pflanze vom Wildtyp oder einem Teil davon verliehen.
  • Gemäß einer weiteren Ausführungsform wird, wenn die Aktivität eines Polypeptids gemäß der Polypeptid-SEQ ID NO.: 11502 beziehungsweise kodiert durch ein Nukleinsäuremolekül, das die Nukleinsäure-SEQ ID NO.: 11501 umfasst, oder eines Homologs dieses Nukleinsäuremoleküls beziehungsweise Polypeptids, z. B. im Fall der Aktivität des Saccharomyces cerevisiae-Nukleinsäuremoleküls beziehungsweise eines Polypeptids, welches die Nukleinsäure-SEQ ID NO. 11501 beziehungsweise Polypeptid-SEQ ID NO. 11502 umfasst, erhöht oder erzeugt wird, z. B. wenn die Aktivität eines Nukleinsäuremoleküls oder eines Polypeptids, welches die Nukleinsäure oder das Polypeptid oder die Konsensussequenz oder das Polypeptidmotiv wie in Tabelle I, II bzw. IV, Spalte 7, in der jeweils gleichen Zeile wie das Nukleinsäuremolekül SEQ ID NO.: 11501 beziehungsweise das Polypeptid SEQ ID NO.: 11502 gezeigt umfasst, erhöht oder erzeugt wird, oder wenn die Aktivität „thiolspezifische Monooxygenase” in einer Pflanzenzelle, einer Pflanze oder einem Teil davon erhöht oder erzeugt wird, insbesondere bei einer Lokalisierung des Polypeptids im Zytoplasma eine erhöhte Toleranz gegenüber abiotischem Umweltstress, insbesondere eine erhöhte Toleranz gegenüber niedrigen Temperaturen, verglichen mit einer entsprechenden nicht modifizierten, z. B. nicht transformierten, Pflanzenzelle oder Pflanze vom Wildtyp oder einem Teil davon verliehen. Insbesondere wird eine Ertragserhöhung von 1,1-fach bis 1,621-fach, zum Beispiel plus wenigstens 100% davon unter Bedingungen niedriger Temperaturen verliehen, verglichen mit einer entsprechenden nicht modifizierten, z. B. nicht transformierten, Pflanzenzelle oder Pflanze vom Wildtyp oder einem Teil davon.
  • Gemäß einer weiteren Ausführungsform wird, wenn die Aktivität eines Polypeptids gemäß der Polypeptid-SEQ ID NO.: 11502 beziehungsweise kodiert durch ein Nukleinsäuremolekül, das die Nukleinsäure-SEQ ID NO.: 11501 umfasst, oder eines Homologs dieses Nukleinsäuremoleküls beziehungsweise Polypeptids, z. B. im Fall der Aktivität des Saccharomyces cerevisiae-Nukleinsäuremoleküls beziehungsweise eines Polypeptids, welches die Nukleinsäure-SEQ ID NO. 11501 beziehungsweise Polypeptid-SEQ ID NO. 11502 umfasst, erhöht oder erzeugt wird, z. B. wenn die Aktivität eines Nukleinsäuremoleküls oder eines Polypeptids, welches die Nukleinsäure oder das Polypeptid oder die Konsensussequenz oder das Polypeptidmotiv wie in Tabelle I, II bzw. IV, Spalte 7, in der jeweils gleichen Zeile wie das Nukleinsäuremolekül SEQ ID NO.: 11501 beziehungsweise das Polypeptid SEQ ID NO.: 11502 gezeigt umfasst, erhöht oder erzeugt wird, oder wenn die Aktivität „thiolspezifische Monooxygenase” in einer Pflanzenzelle, einer Pflanze oder einem Teil davon erhöht oder erzeugt wird, insbesondere bei einer Lokalisierung des Polypeptids im Zytoplasma eine erhöhte Effizienz der Nährstoffausnutzung, verglichen mit einer entsprechenden nicht modifizierten, z. B. nicht transformierten, Pflanzenzelle oder Pflanze vom Wildtyp oder einem Teil davon verliehen. Gemäß einer Ausführungsform wird eine erhöhte Effizienz der Stickstoffausnutzung verliehen. Insbesondere wird eine Ertragserhöhung von 1,05-fach bis 1,330-fach, zum Beispiel plus wenigstens 100% davon unter Stickstoffmangelbedingungen verliehen, verglichen mit einer entsprechenden nicht modifizierten, z. B. nicht transformierten, Pflanzenzelle oder Pflanze vom Wildtyp oder einem Teil davon.
  • Gemäß einer weiteren Ausführungsform wird, wenn die Aktivität eines Polypeptids gemäß der Polypeptid-SEQ ID NO.: 11502 beziehungsweise kodiert durch ein Nukleinsäuremolekül, das die Nukleinsäure-SEQ ID NO.: 11501 umfasst, oder eines Homologs dieses Nukleinsäuremoleküls beziehungsweise Polypeptids, z. B. im Fall der Aktivität des Saccharomyces cerevisiae-Nukleinsäuremoleküls beziehungsweise eines Polypeptids, welches die Nukleinsäure-SEQ ID NO. 11501 beziehungsweise Polypeptid-SEQ ID NO. 11502 umfasst, erhöht oder erzeugt wird, z. B. wenn die Aktivität eines Nukleinsäuremoleküls oder eines Polypeptids, welches die Nukleinsäure oder das Polypeptid oder die Konsensussequenz oder das Polypeptidmotiv wie in Tabelle I, II bzw. IV, Spalte 7, in der jeweils gleichen Zeile wie das Nukleinsäuremolekül SEQ ID NO.: 11501 beziehungsweise das Polypeptid SEQ ID NO.: 11502 gezeigt umfasst, erhöht oder erzeugt wird, oder wenn die Aktivität „thiolspezifische Monooxygenase” in einer Pflanzenzelle, einer Pflanze oder einem Teil davon erhöht oder erzeugt wird, insbesondere bei einer Lokalisierung des Polypeptids im Zytoplasma ein erhöhter intrinsischer Ertrag, verglichen mit einer entsprechenden nicht modifizierten, z. B. nicht transformierten, Pflanzenzelle oder Pflanze vom Wildtyp oder einem Teil davon verliehen. Gemäß einer Ausführungsform wird ein erhöhter Ertrag unter Standardbedingungen (intrinsischer Ertrag) verliehen, z. B. in Abwesenheit von Nährstoffmangel sowie Stressbedingungen. Insbesondere wird eine Ertragserhöhung von 1,05-fach bis 1,258-fach, zum Beispiel plus wenigstens 100% davon unter Standardbedingungen (intrinsischer Ertrag) verliehen, z. B. in Abwesenheit von Nährstoffmangel sowie Stressbedingungen, verglichen mit einer entsprechenden nicht modifizierten, z. B. nicht transformierten, Pflanzenzelle oder Pflanze vom Wildtyp oder einem Teil davon.
  • Dementsprechend wird gemäß einer Ausführungsform, wenn die Aktivität eines Polypeptids gemäß der Polypeptid-SEQ ID NO.: 11565 beziehungsweise kodiert durch ein Nukleinsäuremolekül, das die Nukleinsäure-SEQ ID NO.: 11564 umfasst, oder eines Homologs dieses Nukleinsäuremoleküls beziehungsweise Polypeptids, z. B. im Fall der Aktivität des Escherichia coli-Nukleinsäuremoleküls beziehungsweise eines Polypeptids, welches die Nukleinsäure-SEQ ID NO. 11564 beziehungsweise Polypeptid-SEQ ID NO. 11565 umfasst, erhöht oder erzeugt wird, z. B. wenn die Aktivität eines Nukleinsäuremoleküls oder eines Polypeptids, welches die Nukleinsäure oder das Polypeptid oder die Konsensussequenz oder das Polypeptidmotiv wie in Tabelle I, II bzw. IV, Spalte 7, in der jeweils gleichen Zeile wie das Nukleinsäuremolekül SEQ ID NO.: 11564 beziehungsweise das Polypeptid SEQ ID NO.: 11565 gezeigt umfasst, erhöht oder erzeugt wird, oder wenn die Aktivität „molybdänbindende Untereinheit von Aldehydoxidasen und Xanthindehydrogenasen” in einer Pflanzenzelle, einer Pflanze oder einem Teil davon erhöht oder erzeugt wird, insbesondere bei einer Lokalisierung im Zytoplasma ein erhöhter Ertrag, verglichen mit einer entsprechenden nicht modifizierten, z. B. nicht transformierten, Pflanzenzelle oder Pflanze vom Wildtyp oder einem Teil davon verliehen.
  • Gemäß einer weiteren Ausführungsform wird, wenn die Aktivität eines Polypeptids gemäß der Polypeptid-SEQ ID NO.: 11565 beziehungsweise kodiert durch ein Nukleinsäuremolekül, das die Nukleinsäure-SEQ ID NO.: 11564 umfasst, oder eines Homologs dieses Nukleinsäuremoleküls beziehungsweise Polypeptids, z. B. im Fall der Aktivität des Escherichia coli-Nukleinsäuremoleküls beziehungsweise eines Polypeptids, welches die Nukleinsäure-SEQ ID NO. 11564 beziehungsweise Polypeptid-SEQ ID NO. 11565 umfasst, erhöht oder erzeugt wird, z. B. wenn die Aktivität eines Nukleinsäuremoleküls oder eines Polypeptids, welches die Nukleinsäure oder das Polypeptid oder die Konsensussequenz oder das Polypeptidmotiv wie in Tabelle I, II bzw. IV, Spalte 7, in der jeweils gleichen Zeile wie das Nukleinsäuremolekül SEQ ID NO.: 11564 beziehungsweise das Polypeptid SEQ ID NO.: 11565 gezeigt umfasst, erhöht oder erzeugt wird, oder wenn die Aktivität „molybdänbindende Untereinheit von Aldehydoxidasen und Xanthindehydrogenasen” in einer Pflanzenzelle, einer Pflanze oder einem Teil davon erhöht oder erzeugt wird, insbesondere bei einer Lokalisierung des Polypeptids im Zytoplasma eine erhöhte Toleranz gegenüber abiotischem Umweltstress, insbesondere eine erhöhte Toleranz gegenüber niedrigen Temperaturen, verglichen mit einer entsprechenden nicht modifizierten, z. B. nicht transformierten, Pflanzenzelle oder Pflanze vom Wildtyp oder einem Teil davon verliehen. Insbesondere wird eine Ertragserhöhung von 1,1-fach bis 1,230-fach, zum Beispiel plus wenigstens 100% davon unter Bedingungen niedriger Temperaturen verliehen, verglichen mit einer entsprechenden nicht modifizierten, z. B. nicht transformierten, Pflanzenzelle oder Pflanze vom Wildtyp oder einem Teil davon.
  • Gemäß einer weiteren Ausführungsform wird, wenn die Aktivität eines Polypeptids gemäß der Polypeptid-SEQ ID NO.: 11565 beziehungsweise kodiert durch ein Nukleinsäuremolekül, das die Nukleinsäure-SEQ ID NO.: 11564 umfasst, oder eines Homologs dieses Nukleinsäuremoleküls beziehungsweise Polypeptids, z. B. im Fall der Aktivität des Escherichia coli-Nukleinsäuremoleküls beziehungsweise eines Polypeptids, welches die Nukleinsäure-SEQ ID NO. 11564 beziehungsweise Polypeptid-SEQ ID NO. 11565 umfasst, erhöht oder erzeugt wird, z. B. wenn die Aktivität eines Nukleinsäuremoleküls oder eines Polypeptids, welches die Nukleinsäure oder das Polypeptid oder die Konsensussequenz oder das Polypeptidmotiv wie in Tabelle I, II bzw. IV, Spalte 7, in der jeweils gleichen Zeile wie das Nukleinsäuremolekül SEQ ID NO.: 11564 beziehungsweise das Polypeptid SEQ ID NO.: 11565 gezeigt umfasst, erhöht oder erzeugt wird, oder wenn die Aktivität „molybdänbindende Untereinheit von Aldehydoxidasen und Xanthindehydrogenasen” in einer Pflanzenzelle, einer Pflanze oder einem Teil davon erhöht oder erzeugt wird, insbesondere bei einer Lokalisierung des Polypeptids im Zytoplasma eine erhöhte Effizienz der Nährstoffausnutzung, verglichen mit einer entsprechenden nicht modifizierten, z. B. nicht transformierten, Pflanzenzelle oder Pflanze vom Wildtyp oder einem Teil davon verliehen. Gemäß einer Ausführungsform wird eine erhöhte Effizienz der Stickstoffausnutzung verliehen. Insbesondere wird eine Ertragserhöhung von 1,05-fach bis 1,202-fach, zum Beispiel plus wenigstens 100% davon unter Stickstoffmangelbedingungen verliehen, verglichen mit einer entsprechenden nicht modifizierten, z. B. nicht transformierten, Pflanzenzelle oder Pflanze vom Wildtyp oder einem Teil davon.
  • Gemäß einer weiteren Ausführungsform wird, wenn die Aktivität eines Polypeptids gemäß der Polypeptid-SEQ ID NO.: 11565 beziehungsweise kodiert durch ein Nukleinsäuremolekül, das die Nukleinsäure-SEQ ID NO.: 11564 umfasst, oder eines Homologs dieses Nukleinsäuremoleküls beziehungsweise Polypeptids, z. B. im Fall der Aktivität des Escherichia coli-Nukleinsäuremoleküls beziehungsweise eines Polypeptids, welches die Nukleinsäure-SEQ ID NO. 11564 beziehungsweise Polypeptid-SEQ ID NO. 11565 umfasst, erhöht oder erzeugt wird, z. B. wenn die Aktivität eines Nukleinsäuremoleküls oder eines Polypeptids, welches die Nukleinsäure oder das Polypeptid oder die Konsensussequenz oder das Polypeptidmotiv wie in Tabelle I, II bzw. IV, Spalte 7, in der jeweils gleichen Zeile wie das Nukleinsäuremolekül SEQ ID NO.: 11564 beziehungsweise das Polypeptid SEQ ID NO.: 11565 gezeigt umfasst, erhöht oder erzeugt wird, oder wenn die Aktivität „molybdänbindende Untereinheit von Aldehydoxidasen und Xanthindehydrogenasen” in einer Pflanzenzelle, einer Pflanze oder einem Teil davon erhöht oder erzeugt wird, insbesondere bei einer Lokalisierung des Polypeptids im Zytoplasma ein erhöhter intrinsischer Ertrag, verglichen mit einer entsprechenden nicht modifizierten, z. B. nicht transformierten, Pflanzenzelle oder Pflanze vom Wildtyp oder einem Teil davon verliehen. Gemäß einer Ausführungsform wird ein erhöhter Ertrag unter Standardbedingungen (intrinsischer Ertrag) verliehen, z. B. in Abwesenheit von Nährstoffmangel sowie Stressbedingungen. Insbesondere wird eine Ertragserhöhung von 1,05-fach bis 1,074-fach, zum Beispiel plus wenigstens 100% davon unter Standardbedingungen (intrinsischer Ertrag) verliehen, z. B. in Abwesenheit von Nährstoffmangel sowie Stressbedingungen, verglichen mit einer entsprechenden nicht modifizierten, z. B. nicht transformierten, Pflanzenzelle oder Pflanze vom Wildtyp oder einem Teil davon.
  • Dementsprechend wird gemäß einer Ausführungsform, wenn die Aktivität eines Polypeptids gemäß der Polypeptid-SEQ ID NO.: 11696 beziehungsweise kodiert durch ein Nukleinsäuremolekül, das die Nukleinsäure-SEQ ID NO.: 11695 umfasst, oder eines Homologs dieses Nukleinsäuremoleküls beziehungsweise Polypeptids, z. B. im Fall der Aktivität des Escherichia coli-Nukleinsäuremoleküls beziehungsweise eines Polypeptids, welches die Nukleinsäure-SEQ ID NO. 11695 beziehungsweise Polypeptid-SEQ ID NO. 11696 umfasst, erhöht oder erzeugt wird, z. B. wenn die Aktivität eines Nukleinsäuremoleküls oder eines Polypeptids, welches die Nukleinsäure oder das Polypeptid oder die Konsensussequenz oder das Polypeptidmotiv wie in Tabelle I, II bzw. IV, Spalte 7, in der jeweils gleichen Zeile wie das Nukleinsäuremolekül SEQ ID NO.: 11695 beziehungsweise das Polypeptid SEQ ID NO.: 11696 gezeigt umfasst, erhöht oder erzeugt wird, oder wenn die Aktivität „Glycerindehydrogenase” in einer Pflanzenzelle, einer Pflanze oder einem Teil davon erhöht oder erzeugt wird, insbesondere bei einer Lokalisierung im Zytoplasma ein erhöhter Ertrag, verglichen mit einer entsprechenden nicht modifizierten, z. B. nicht transformierten, Pflanzenzelle oder Pflanze vom Wildtyp oder einem Teil davon verliehen.
  • Gemäß einer weiteren Ausführungsform wird, wenn die Aktivität eines Polypeptids gemäß der Polypeptid-SEQ ID NO.: 11696 beziehungsweise kodiert durch ein Nukleinsäuremolekül, das die Nukleinsäure-SEQ ID NO.: 11695 umfasst, oder eines Homologs dieses Nukleinsäuremoleküls beziehungsweise Polypeptids, z. B. im Fall der Aktivität des Escherichia coli-Nukleinsäuremoleküls beziehungsweise eines Polypeptids, welches die Nukleinsäure-SEQ ID NO. 11695 beziehungsweise Polypeptid-SEQ ID NO. 11696 umfasst, erhöht oder erzeugt wird, z. B. wenn die Aktivität eines Nukleinsäuremoleküls oder eines Polypeptids, welches die Nukleinsäure oder das Polypeptid oder die Konsensussequenz oder das Polypeptidmotiv wie in Tabelle I, II bzw. IV, Spalte 7, in der jeweils gleichen Zeile wie das Nukleinsäuremolekül SEQ ID NO.: 11695 beziehungsweise das Polypeptid SEQ ID NO.: 11696 gezeigt umfasst, erhöht oder erzeugt wird, oder wenn die Aktivität „Glycerindehydrogenase” in einer Pflanzenzelle, einer Pflanze oder einem Teil davon erhöht oder erzeugt wird, insbesondere bei einer Lokalisierung des Polypeptids im Zytoplasma eine erhöhte Toleranz gegenüber abiotischem Umweltstress, insbesondere eine erhöhte Toleranz gegenüber niedrigen Temperaturen, verglichen mit einer entsprechenden nicht modifizierten, z. B. nicht transformierten, Pflanzenzelle oder Pflanze vom Wildtyp oder einem Teil davon verliehen. Insbesondere wird eine Ertragserhöhung von 1,1-fach bis 1,353-fach, zum Beispiel plus wenigstens 100% davon unter Bedingungen niedriger Temperaturen verliehen, verglichen mit einer entsprechenden nicht modifizierten, z. B. nicht transformierten, Pflanzenzelle oder Pflanze vom Wildtyp oder einem Teil davon.
  • Gemäß einer weiteren Ausführungsform wird, wenn die Aktivität eines Polypeptids gemäß der Polypeptid-SEQ ID NO.: 11696 beziehungsweise kodiert durch ein Nukleinsäuremolekül, das die Nukleinsäure-SEQ ID NO.: 11695 umfasst, oder eines Homologs dieses Nukleinsäuremoleküls beziehungsweise Polypeptids, z. B. im Fall der Aktivität des Escherichia coli-Nukleinsäuremoleküls beziehungsweise eines Polypeptids, welches die Nukleinsäure-SEQ ID NO. 11695 beziehungsweise Polypeptid-SEQ ID NO. 11696 umfasst, erhöht oder erzeugt wird, z. B. wenn die Aktivität eines Nukleinsäuremoleküls oder eines Polypeptids, welches die Nukleinsäure oder das Polypeptid oder die Konsensussequenz oder das Polypeptidmotiv wie in Tabelle I, II bzw. IV, Spalte 7, in der jeweils gleichen Zeile wie das Nukleinsäuremolekül SEQ ID NO.: 11695 beziehungsweise das Polypeptid SEQ ID NO.: 11696 gezeigt umfasst, erhöht oder erzeugt wird, oder wenn die Aktivität „Glycerindehydrogenase” in einer Pflanzenzelle, einer Pflanze oder einem Teil davon erhöht oder erzeugt wird, insbesondere bei einer Lokalisierung des Polypeptids im Zytoplasma eine erhöhte Effizienz der Nährstoffausnutzung, verglichen mit einer entsprechenden nicht modifizierten, z. B. nicht transformierten, Pflanzenzelle oder Pflanze vom Wildtyp oder einem Teil davon verliehen. Gemäß einer Ausführungsform wird eine erhöhte Effizienz der Stickstoffausnutzung verliehen. Insbesondere wird eine Ertragserhöhung von 1,05-fach bis 1,457-fach, zum Beispiel plus wenigstens 100% davon unter Stickstoffmangelbedingungen verliehen, verglichen mit einer entsprechenden nicht modifizierten, z. B. nicht transformierten, Pflanzenzelle oder Pflanze vom Wildtyp oder einem Teil davon.
  • Gemäß einer weiteren Ausführungsform wird, wenn die Aktivität eines Polypeptids gemäß der Polypeptid-SEQ ID NO.: 11696 beziehungsweise kodiert durch ein Nukleinsäuremolekül, das die Nukleinsäure-SEQ ID NO.: 11695 umfasst, oder eines Homologs dieses Nukleinsäuremoleküls beziehungsweise Polypeptids, z. B. im Fall der Aktivität des Escherichia coli-Nukleinsäuremoleküls beziehungsweise eines Polypeptids, welches die Nukleinsäure-SEQ ID NO. 11695 beziehungsweise Polypeptid-SEQ ID NO. 11696 umfasst, erhöht oder erzeugt wird, z. B. wenn die Aktivität eines Nukleinsäuremoleküls oder eines Polypeptids, welches die Nukleinsäure oder das Polypeptid oder die Konsensussequenz oder das Polypeptidmotiv wie in Tabelle I, II bzw. IV, Spalte 7, in der jeweils gleichen Zeile wie das Nukleinsäuremolekül SEQ ID NO.: 11695 beziehungsweise das Polypeptid SEQ ID NO.: 11696 gezeigt umfasst, erhöht oder erzeugt wird, oder wenn die Aktivität „Glycerindehydrogenase” in einer Pflanzenzelle, einer Pflanze oder einem Teil davon erhöht oder erzeugt wird, insbesondere bei einer Lokalisierung des Polypeptids im Zytoplasma ein erhöhter intrinsischer Ertrag, verglichen mit einer entsprechenden nicht modifizierten, z. B. nicht transformierten, Pflanzenzelle oder Pflanze vom Wildtyp oder einem Teil davon verliehen. Gemäß einer Ausführungsform wird ein erhöhter Ertrag unter Standardbedingungen (intrinsischer Ertrag) verliehen, z. B. in Abwesenheit von Nährstoffmangel sowie Stressbedingungen. Insbesondere wird eine Ertragserhöhung von 1,05-fach bis 1,191-fach, zum Beispiel plus wenigstens 100% davon unter Standardbedingungen (intrinsischer Ertrag) verliehen, z. B. in Abwesenheit von Nährstoffmangel sowie Stressbedingungen, verglichen mit einer entsprechenden nicht modifizierten, z. B. nicht transformierten, Pflanzenzelle oder Pflanze vom Wildtyp oder einem Teil davon.
  • Dementsprechend wird gemäß einer Ausführungsform, wenn die Aktivität eines Polypeptids gemäß der Polypeptid-SEQ ID NO.: 11908 beziehungsweise kodiert durch ein Nukleinsäuremolekül, das die Nukleinsäure-SEQ ID NO.: 11907 umfasst, oder eines Homologs dieses Nukleinsäuremoleküls beziehungsweise Polypeptids, z. B. im Fall der Aktivität des Saccharomyces cerevisiae-Nukleinsäuremoleküls beziehungsweise eines Polypeptids, welches die Nukleinsäure-SEQ ID NO. 11907 beziehungsweise Polypeptid-SEQ ID NO. 11908 umfasst, erhöht oder erzeugt wird, z. B. wenn die Aktivität eines Nukleinsäuremoleküls oder eines Polypeptids, welches die Nukleinsäure oder das Polypeptid oder die Konsensussequenz oder das Polypeptidmotiv wie in Tabelle I, II bzw. IV, Spalte 7, in der jeweils gleichen Zeile wie das Nukleinsäuremolekül SEQ ID NO.: 11907 beziehungsweise das Polypeptid SEQ ID NO.: 11908 gezeigt umfasst, erhöht oder erzeugt wird, oder wenn die Aktivität „für den Abbau von Glykoproteinen benötigtes Protein” in einer Pflanzenzelle, einer Pflanze oder einem Teil davon erhöht oder erzeugt wird, insbesondere bei einer Lokalisierung im Zytoplasma ein erhöhter Ertrag, verglichen mit einer entsprechenden nicht modifizierten, z. B. nicht transformierten, Pflanzenzelle oder Pflanze vom Wildtyp oder einem Teil davon verliehen.
  • Gemäß einer weiteren Ausführungsform wird, wenn die Aktivität eines Polypeptids gemäß der Polypeptid-SEQ ID NO.: 11908 beziehungsweise kodiert durch ein Nukleinsäuremolekül, das die Nukleinsäure-SEQ ID NO.: 11907 umfasst, oder eines Homologs dieses Nukleinsäuremoleküls beziehungsweise Polypeptids, z. B. im Fall der Aktivität des Saccharomyces cerevisiae-Nukleinsäuremoleküls beziehungsweise eines Polypeptids, welches die Nukleinsäure-SEQ ID NO. 11907 beziehungsweise Polypeptid-SEQ ID NO. 11908 umfasst, erhöht oder erzeugt wird, z. B. wenn die Aktivität eines Nukleinsäuremoleküls oder eines Polypeptids, welches die Nukleinsäure oder das Polypeptid oder die Konsensussequenz oder das Polypeptidmotiv wie in Tabelle I, II bzw. IV, Spalte 7, in der jeweils gleichen Zeile wie das Nukleinsäuremolekül SEQ ID NO.: 11907 beziehungsweise das Polypeptid SEQ ID NO.: 11908 gezeigt umfasst, erhöht oder erzeugt wird, oder wenn die Aktivität „für den Abbau von Glykoproteinen benötigtes Protein” in einer Pflanzenzelle, einer Pflanze oder einem Teil davon erhöht oder erzeugt wird, insbesondere bei einer Lokalisierung des Polypeptids im Zytoplasma eine erhöhte Toleranz gegenüber abiotischem Umweltstress, insbesondere eine erhöhte Toleranz gegenüber niedrigen Temperaturen, verglichen mit einer entsprechenden nicht modifizierten, z. B. nicht transformierten, Pflanzenzelle oder Pflanze vom Wildtyp oder einem Teil davon verliehen. Insbesondere wird eine Ertragserhöhung von 1,1-fach bis 1,697-fach, zum Beispiel plus wenigstens 100% davon unter Bedingungen niedriger Temperaturen verliehen, verglichen mit einer entsprechenden nicht modifizierten, z. B. nicht transformierten, Pflanzenzelle oder Pflanze vom Wildtyp oder einem Teil davon.
  • Gemäß einer weiteren Ausführungsform wird, wenn die Aktivität eines Polypeptids gemäß der Polypeptid-SEQ ID NO.: 11908 beziehungsweise kodiert durch ein Nukleinsäuremolekül, das die Nukleinsäure-SEQ ID NO.: 11907 umfasst, oder eines Homologs dieses Nukleinsäuremoleküls beziehungsweise Polypeptids, z. B. im Fall der Aktivität des Saccharomyces cerevisiae-Nukleinsäuremoleküls beziehungsweise eines Polypeptids, welches die Nukleinsäure-SEQ ID NO. 11907 beziehungsweise Polypeptid-SEQ ID NO. 11908 umfasst, erhöht oder erzeugt wird, z. B. wenn die Aktivität eines Nukleinsäuremoleküls oder eines Polypeptids, welches die Nukleinsäure oder das Polypeptid oder die Konsensussequenz oder das Polypeptidmotiv wie in Tabelle I, II bzw. IV, Spalte 7, in der jeweils gleichen Zeile wie das Nukleinsäuremolekül SEQ ID NO.: 11907 beziehungsweise das Polypeptid SEQ ID NO.: 11908 gezeigt umfasst, erhöht oder erzeugt wird, oder wenn die Aktivität „für den Abbau von Glykoproteinen benötigtes Protein” in einer Pflanzenzelle, einer Pflanze oder einem Teil davon erhöht oder erzeugt wird, insbesondere bei einer Lokalisierung des Polypeptids im Zytoplasma eine erhöhte Effizienz der Nährstoffausnutzung, verglichen mit einer entsprechenden nicht modifizierten, z. B. nicht transformierten, Pflanzenzelle oder Pflanze vom Wildtyp oder einem Teil davon verliehen. Gemäß einer Ausführungsform wird eine erhöhte Effizienz der Stickstoffausnutzung verliehen. Insbesondere wird eine Ertragserhöhung von 1,05-fach bis 1,469-fach, zum Beispiel plus wenigstens 100% davon unter Stickstoffmangelbedingungen verliehen, verglichen mit einer entsprechenden nicht modifizierten, z. B. nicht transformierten, Pflanzenzelle oder Pflanze vom Wildtyp oder einem Teil davon.
  • Gemäß einer weiteren Ausführungsform wird, wenn die Aktivität eines Polypeptids gemäß der Polypeptid-SEQ ID NO.: 11908 beziehungsweise kodiert durch ein Nukleinsäuremolekül, das die Nukleinsäure-SEQ ID NO.: 11907 umfasst, oder eines Homologs dieses Nukleinsäuremoleküls beziehungsweise Polypeptids, z. B. im Fall der Aktivität des Saccharomyces cerevisiae-Nukleinsäuremoleküls beziehungsweise eines Polypeptids, welches die Nukleinsäure-SEQ ID NO. 11907 beziehungsweise Polypeptid-SEQ ID NO. 11908 umfasst, erhöht oder erzeugt wird, z. B. wenn die Aktivität eines Nukleinsäuremoleküls oder eines Polypeptids, welches die Nukleinsäure oder das Polypeptid oder die Konsensussequenz oder das Polypeptidmotiv wie in Tabelle I, II bzw. IV, Spalte 7, in der jeweils gleichen Zeile wie das Nukleinsäuremolekül SEQ ID NO.: 11907 beziehungsweise das Polypeptid SEQ ID NO.: 11908 gezeigt umfasst, erhöht oder erzeugt wird, oder wenn die Aktivität „für den Abbau von Glykoproteinen benötigtes Protein” in einer Pflanzenzelle, einer Pflanze oder einem Teil davon erhöht oder erzeugt wird, insbesondere bei einer Lokalisierung des Polypeptids im Zytoplasma ein erhöhter intrinsischer Ertrag, verglichen mit einer entsprechenden nicht modifizierten, z. B. nicht transformierten, Pflanzenzelle oder Pflanze vom Wildtyp oder einem Teil davon verliehen. Gemäß einer Ausführungsform wird ein erhöhter Ertrag unter Standardbedingungen (intrinsischer Ertrag) verliehen, z. B. in Abwesenheit von Nährstoffmangel sowie Stressbedingungen. Insbesondere wird eine Ertragserhöhung von 1,05-fach bis 1,369-fach, zum Beispiel plus wenigstens 100% davon unter Standardbedingungen (intrinsischer Ertrag) verliehen, z. B. in Abwesenheit von Nährstoffmangel sowie Stressbedingungen, verglichen mit einer entsprechenden nicht modifizierten, z. B. nicht transformierten, Pflanzenzelle oder Pflanze vom Wildtyp oder einem Teil davon.
  • Dementsprechend wird gemäß einer Ausführungsform, wenn die Aktivität eines Polypeptids gemäß der Polypeptid-SEQ ID NO.: 11945 beziehungsweise kodiert durch ein Nukleinsäuremolekül, das die Nukleinsäure-SEQ ID NO.: 11944 umfasst, oder eines Homologs dieses Nukleinsäuremoleküls beziehungsweise Polypeptids, z. B. im Fall der Aktivität des Saccharomyces cerevisiae-Nukleinsäuremoleküls beziehungsweise eines Polypeptids, welches die Nukleinsäure-SEQ ID NO. 11944 beziehungsweise Polypeptid-SEQ ID NO. 11945 umfasst, erhöht oder erzeugt wird, z. B. wenn die Aktivität eines Nukleinsäuremoleküls oder eines Polypeptids, welches die Nukleinsäure oder das Polypeptid oder die Konsensussequenz oder das Polypeptidmotiv wie in Tabelle I, II bzw. IV, Spalte 7, in der jeweils gleichen Zeile wie das Nukleinsäuremolekül SEQ ID NO.: 11944 beziehungsweise das Polypeptid SEQ ID NO.: 11945 gezeigt umfasst, erhöht oder erzeugt wird, oder wenn die Aktivität „Ammoniumtransporter” in einer Pflanzenzelle, einer Pflanze oder einem Teil davon erhöht oder erzeugt wird, insbesondere bei einer Lokalisierung im Zytoplasma ein erhöhter Ertrag, verglichen mit einer entsprechenden nicht modifizierten, z. B. nicht transformierten, Pflanzenzelle oder Pflanze vom Wildtyp oder einem Teil davon verliehen.
  • Gemäß einer weiteren Ausführungsform wird, wenn die Aktivität eines Polypeptids gemäß der Polypeptid-SEQ ID NO.: 11945 beziehungsweise kodiert durch ein Nukleinsäuremolekül, das die Nukleinsäure-SEQ ID NO.: 11944 umfasst, oder eines Homologs dieses Nukleinsäuremoleküls beziehungsweise Polypeptids, z. B. im Fall der Aktivität des Saccharomyces cerevisiae-Nukleinsäuremoleküls beziehungsweise eines Polypeptids, welches die Nukleinsäure-SEQ ID NO. 11944 beziehungsweise Polypeptid-SEQ ID NO. 11945 umfasst, erhöht oder erzeugt wird, z. B. wenn die Aktivität eines Nukleinsäuremoleküls oder eines Polypeptids, welches die Nukleinsäure oder das Polypeptid oder die Konsensussequenz oder das Polypeptidmotiv wie in Tabelle I, II bzw. IV, Spalte 7, in der jeweils gleichen Zeile wie das Nukleinsäuremolekül SEQ ID NO.: 11944 beziehungsweise das Polypeptid SEQ ID NO.: 11945 gezeigt umfasst, erhöht oder erzeugt wird, oder wenn die Aktivität „Ammoniumtransporter” in einer Pflanzenzelle, einer Pflanze oder einem Teil davon erhöht oder erzeugt wird, insbesondere bei einer Lokalisierung des Polypeptids im Zytoplasma eine erhöhte Toleranz gegenüber abiotischem Umweltstress, insbesondere eine erhöhte Toleranz gegenüber niedrigen Temperaturen, verglichen mit einer entsprechenden nicht modifizierten, z. B. nicht transformierten, Pflanzenzelle oder Pflanze vom Wildtyp oder einem Teil davon verliehen. Insbesondere wird eine Ertragserhöhung von 1,1-fach bis 1,808-fach, zum Beispiel plus wenigstens 100% davon unter Bedingungen niedriger Temperaturen verliehen, verglichen mit einer entsprechenden nicht modifizierten, z. B. nicht transformierten, Pflanzenzelle oder Pflanze vom Wildtyp oder einem Teil davon.
  • Gemäß einer weiteren Ausführungsform wird, wenn die Aktivität eines Polypeptids gemäß der Polypeptid-SEQ ID NO.: 11945 beziehungsweise kodiert durch ein Nukleinsäuremolekül, das die Nukleinsäure-SEQ ID NO.: 11944 umfasst, oder eines Homologs dieses Nukleinsäuremoleküls beziehungsweise Polypeptids, z. B. im Fall der Aktivität des Saccharomyces cerevisiae-Nukleinsäuremoleküls beziehungsweise eines Polypeptids, welches die Nukleinsäure-SEQ ID NO. 11944 beziehungsweise Polypeptid-SEQ ID NO. 11945 umfasst, erhöht oder erzeugt wird, z. B. wenn die Aktivität eines Nukleinsäuremoleküls oder eines Polypeptids, welches die Nukleinsäure oder das Polypeptid oder die Konsensussequenz oder das Polypeptidmotiv wie in Tabelle I, II bzw. IV, Spalte 7, in der jeweils gleichen Zeile wie das Nukleinsäuremolekül SEQ ID NO.: 11944 beziehungsweise das Polypeptid SEQ ID NO.: 11945 gezeigt umfasst, erhöht oder erzeugt wird, oder wenn die Aktivität „Ammoniumtransporter” in einer Pflanzenzelle, einer Pflanze oder einem Teil davon erhöht oder erzeugt wird, insbesondere bei einer Lokalisierung des Polypeptids im Zytoplasma eine erhöhte Effizienz der Nährstoffausnutzung, verglichen mit einer entsprechenden nicht modifizierten, z. B. nicht transformierten, Pflanzenzelle oder Pflanze vom Wildtyp oder einem Teil davon verliehen. Gemäß einer Ausführungsform wird eine erhöhte Effizienz der Stickstoffausnutzung verliehen. Insbesondere wird eine Ertragserhöhung von 1,05-fach bis 1,593-fach, zum Beispiel plus wenigstens 100% davon unter Stickstoffmangelbedingungen verliehen, verglichen mit einer entsprechenden nicht modifizierten, z. B. nicht transformierten, Pflanzenzelle oder Pflanze vom Wildtyp oder einem Teil davon.
  • Gemäß einer weiteren Ausführungsform wird, wenn die Aktivität eines Polypeptids gemäß der Polypeptid-SEQ ID NO.: 11945 beziehungsweise kodiert durch ein Nukleinsäuremolekül, das die Nukleinsäure-SEQ ID NO.: 11944 umfasst, oder eines Homologs dieses Nukleinsäuremoleküls beziehungsweise Polypeptids, z. B. im Fall der Aktivität des Saccharomyces cerevisiae-Nukleinsäuremoleküls beziehungsweise eines Polypeptids, welches die Nukleinsäure-SEQ ID NO. 11944 beziehungsweise Polypeptid-SEQ ID NO. 11945 umfasst, erhöht oder erzeugt wird, z. B. wenn die Aktivität eines Nukleinsäuremoleküls oder eines Polypeptids, welches die Nukleinsäure oder das Polypeptid oder die Konsensussequenz oder das Polypeptidmotiv wie in Tabelle I, II bzw. IV, Spalte 7, in der jeweils gleichen Zeile wie das Nukleinsäuremolekül SEQ ID NO.: 11944 beziehungsweise das Polypeptid SEQ ID NO.: 11945 gezeigt umfasst, erhöht oder erzeugt wird, oder wenn die Aktivität „Ammoniumtransporter” in einer Pflanzenzelle, einer Pflanze oder einem Teil davon erhöht oder erzeugt wird, insbesondere bei einer Lokalisierung des Polypeptids im Zytoplasma ein erhöhter intrinsischer Ertrag, verglichen mit einer entsprechenden nicht modifizierten, z. B. nicht transformierten, Pflanzenzelle oder Pflanze vom Wildtyp oder einem Teil davon verliehen. Gemäß einer Ausführungsform wird ein erhöhter Ertrag unter Standardbedingungen (intrinsischer Ertrag) verliehen, z. B. in Abwesenheit von Nährstoffmangel sowie Stressbedingungen. Insbesondere wird eine Ertragserhöhung von 1,05-fach bis 1,214-fach, zum Beispiel plus wenigstens 100% davon unter Standardbedingungen (intrinsischer Ertrag) verliehen, z. B. in Abwesenheit von Nährstoffmangel sowie Stressbedingungen, verglichen mit einer entsprechenden nicht modifizierten, z. B. nicht transformierten, Pflanzenzelle oder Pflanze vom Wildtyp oder einem Teil davon.
  • Dementsprechend wird gemäß einer Ausführungsform, wenn die Aktivität eines Polypeptids gemäß der Polypeptid-SEQ ID NO.: 12358 beziehungsweise kodiert durch ein Nukleinsäuremolekül, das die Nukleinsäure-SEQ ID NO.: 12357 umfasst, oder eines Homologs dieses Nukleinsäuremoleküls beziehungsweise Polypeptids, z. B. im Fall der Aktivität des Saccharomyces cerevisiae-Nukleinsäuremoleküls beziehungsweise eines Polypeptids, welches die Nukleinsäure-SEQ ID NO. 12357 beziehungsweise Polypeptid-SEQ ID NO. 12358 umfasst, erhöht oder erzeugt wird, z. B. wenn die Aktivität eines Nukleinsäuremoleküls oder eines Polypeptids, welches die Nukleinsäure oder das Polypeptid oder die Konsensussequenz oder das Polypeptidmotiv wie in Tabelle I, II bzw. IV, Spalte 7, in der jeweils gleichen Zeile wie das Nukleinsäuremolekül SEQ ID NO.: 12357 beziehungsweise das Polypeptid SEQ ID NO.: 12358 gezeigt umfasst, erhöht oder erzeugt wird, oder wenn die Aktivität „Argininosuccinatsynthase” in einer Pflanzenzelle, einer Pflanze oder einem Teil davon erhöht oder erzeugt wird, insbesondere bei einer Lokalisierung in Plastiden und/oder im Zytoplasma ein erhöhter Ertrag, verglichen mit einer entsprechenden nicht modifizierten, z. B. nicht transformierten, Pflanzenzelle oder Pflanze vom Wildtyp oder einem Teil davon verliehen.
  • Gemäß einer weiteren Ausführungsform wird, wenn die Aktivität eines Polypeptids gemäß der Polypeptid-SEQ ID NO.: 12358 beziehungsweise kodiert durch ein Nukleinsäuremolekül, das die Nukleinsäure-SEQ ID NO.: 12357 umfasst, oder eines Homologs dieses Nukleinsäuremoleküls beziehungsweise Polypeptids, z. B. im Fall der Aktivität des Saccharomyces cerevisiae-Nukleinsäuremoleküls beziehungsweise eines Polypeptids, welches die Nukleinsäure-SEQ ID NO. 12357 beziehungsweise Polypeptid-SEQ ID NO. 12358 umfasst, erhöht oder erzeugt wird, z. B. wenn die Aktivität eines Nukleinsäuremoleküls oder eines Polypeptids, welches die Nukleinsäure oder das Polypeptid oder die Konsensussequenz oder das Polypeptidmotiv wie in Tabelle I, II bzw. IV, Spalte 7, in der jeweils gleichen Zeile wie das Nukleinsäuremolekül SEQ ID NO.: 12357 beziehungsweise das Polypeptid SEQ ID NO.: 12358 gezeigt umfasst, erhöht oder erzeugt wird, oder wenn die Aktivität „Argininosuccinatsynthase” in einer Pflanzenzelle, einer Pflanze oder einem Teil davon erhöht oder erzeugt wird, insbesondere bei einer Lokalisierung des Polypeptids in Plastiden eine erhöhte Toleranz gegenüber abiotischem Umweltstress, insbesondere eine erhöhte Toleranz gegenüber niedrigen Temperaturen, verglichen mit einer entsprechenden nicht modifizierten, z. B. nicht transformierten, Pflanzenzelle oder Pflanze vom Wildtyp oder einem Teil davon verliehen. Insbesondere wird bei der Expression unter der Kontrolle einer plastidischen Signalsequenz eine Ertragserhöhung von 1,1-fach bis 1,300-fach, zum Beispiel plus wenigstens 100% davon unter Bedingungen niedriger Temperaturen verliehen, verglichen mit einer entsprechenden nicht modifizierten, z. B. nicht transformierten, Pflanzenzelle oder Pflanze vom Wildtyp oder einem Teil davon.
  • Gemäß einer weiteren Ausführungsform wird, wenn die Aktivität eines Polypeptids gemäß der Polypeptid-SEQ ID NO.: 12358 beziehungsweise kodiert durch ein Nukleinsäuremolekül, das die Nukleinsäure-SEQ ID NO.: 12357 umfasst, oder eines Homologs dieses Nukleinsäuremoleküls beziehungsweise Polypeptids, z. B. im Fall der Aktivität des Saccharomyces cerevisiae-Nukleinsäuremoleküls beziehungsweise eines Polypeptids, welches die Nukleinsäure-SEQ ID NO. 12357 beziehungsweise Polypeptid-SEQ ID NO. 12358 umfasst, erhöht oder erzeugt wird, z. B. wenn die Aktivität eines Nukleinsäuremoleküls oder eines Polypeptids, welches die Nukleinsäure oder das Polypeptid oder die Konsensussequenz oder das Polypeptidmotiv wie in Tabelle I, II bzw. IV, Spalte 7, in der jeweils gleichen Zeile wie das Nukleinsäuremolekül SEQ ID NO.: 12357 beziehungsweise das Polypeptid SEQ ID NO.: 12358 gezeigt umfasst, erhöht oder erzeugt wird, oder wenn die Aktivität „Argininosuccinatsynthase” in einer Pflanzenzelle, einer Pflanze oder einem Teil davon erhöht oder erzeugt wird, insbesondere bei einer Lokalisierung des Polypeptids im Zytoplasma eine erhöhte Effizienz der Nährstoffausnutzung, verglichen mit einer entsprechenden nicht modifizierten, z. B. nicht transformierten, Pflanzenzelle oder Pflanze vom Wildtyp oder einem Teil davon verliehen. Gemäß einer Ausführungsform wird eine erhöhte Effizienz der Stickstoffausnutzung verliehen. Bei der Expression ohne Kombinieren dieser Sequenz bzw. dieses Moleküls mit einer weiteren Targeting- bzw. Signalsequenz, z. B. ohne eine weitere wie hier beschriebene heterologe Target-Sequenz oder Signalsequenz, wird eine Ertragserhöhung von 1,05-fach bis 1,172-fach, zum Beispiel plus wenigstens 100% davon unter Stickstoffmangelbedingungen verliehen, verglichen mit einer entsprechenden nicht modifizierten, z. B. nicht transformierten, Pflanzenzelle oder Pflanze vom Wildtyp oder einem Teil davon.
  • Gemäß einer weiteren Ausführungsform wird, wenn die Aktivität eines Polypeptids gemäß der Polypeptid-SEQ ID NO.: 12358 beziehungsweise kodiert durch ein Nukleinsäuremolekül, das die Nukleinsäure-SEQ ID NO.: 12357 umfasst, oder eines Homologs dieses Nukleinsäuremoleküls beziehungsweise Polypeptids, z. B. im Fall der Aktivität des Saccharomyces cerevisiae-Nukleinsäuremoleküls beziehungsweise eines Polypeptids, welches die Nukleinsäure-SEQ ID NO. 12357 beziehungsweise Polypeptid-SEQ ID NO. 12358 umfasst, erhöht oder erzeugt wird, z. B. wenn die Aktivität eines Nukleinsäuremoleküls oder eines Polypeptids, welches die Nukleinsäure oder das Polypeptid oder die Konsensussequenz oder das Polypeptidmotiv wie in Tabelle I, II bzw. IV, Spalte 7, in der jeweils gleichen Zeile wie das Nukleinsäuremolekül SEQ ID NO.: 12357 beziehungsweise das Polypeptid SEQ ID NO.: 12358 gezeigt umfasst, erhöht oder erzeugt wird, oder wenn die Aktivität „Argininosuccinatsynthase” in einer Pflanzenzelle, einer Pflanze oder einem Teil davon erhöht oder erzeugt wird, insbesondere bei einer Lokalisierung des Polypeptids in Plastiden ein erhöhter intrinsischer Ertrag, verglichen mit einer entsprechenden nicht modifizierten, z. B. nicht transformierten, Pflanzenzelle oder Pflanze vom Wildtyp oder einem Teil davon verliehen. Gemäß einer Ausführungsform wird ein erhöhter Ertrag unter Standardbedingungen (intrinsischer Ertrag) verliehen, z. B. in Abwesenheit von Nährstoffmangel sowie Stressbedingungen. Insbesondere wird bei der Expression unter der Kontrolle einer plastidischen Signalsequenz eine Ertragserhöhung von 1,05-fach bis 1,091-fach, zum Beispiel plus wenigstens 100% davon unter Standardbedingungen (intrinsischer Ertrag) verliehen, z. B. in Abwesenheit von Nährstoffmangel sowie Stressbedingungen, verglichen mit einer entsprechenden nicht modifizierten, z. B. nicht transformierten, Pflanzenzelle oder Pflanze vom Wildtyp oder einem Teil davon.
  • Dementsprechend wird gemäß einer Ausführungsform, wenn die Aktivität eines Polypeptids gemäß der Polypeptid-SEQ ID NO.: 12937 beziehungsweise kodiert durch ein Nukleinsäuremolekül, das die Nukleinsäure-SEQ ID NO.: 12936 umfasst, oder eines Homologs dieses Nukleinsäuremoleküls beziehungsweise Polypeptids, z. B. im Fall der Aktivität des Saccharomyces cerevisiae-Nukleinsäuremoleküls beziehungsweise eines Polypeptids, welches die Nukleinsäure-SEQ ID NO. 12936 beziehungsweise Polypeptid-SEQ ID NO. 12937 umfasst, erhöht oder erzeugt wird, z. B. wenn die Aktivität eines Nukleinsäuremoleküls oder eines Polypeptids, welches die Nukleinsäure oder das Polypeptid oder die Konsensussequenz oder das Polypeptidmotiv wie in Tabelle I, II bzw. IV, Spalte 7, in der jeweils gleichen Zeile wie das Nukleinsäuremolekül SEQ ID NO.: 12936 beziehungsweise das Polypeptid SEQ ID NO.: 12937 gezeigt umfasst, erhöht oder erzeugt wird, oder wenn die Aktivität „Glutaminsynthetase” in einer Pflanzenzelle, einer Pflanze oder einem Teil davon erhöht oder erzeugt wird, insbesondere bei einer Lokalisierung im Zytoplasma ein erhöhter Ertrag, verglichen mit einer entsprechenden nicht modifizierten, z. B. nicht transformierten, Pflanzenzelle oder Pflanze vom Wildtyp oder einem Teil davon verliehen.
  • Gemäß einer weiteren Ausführungsform wird, wenn die Aktivität eines Polypeptids gemäß der Polypeptid-SEQ ID NO.: 12937 beziehungsweise kodiert durch ein Nukleinsäuremolekül, das die Nukleinsäure-SEQ ID NO.: 12936 umfasst, oder eines Homologs dieses Nukleinsäuremoleküls beziehungsweise Polypeptids, z. B. im Fall der Aktivität des Saccharomyces cerevisiae-Nukleinsäuremoleküls beziehungsweise eines Polypeptids, welches die Nukleinsäure-SEQ ID NO. 12936 beziehungsweise Polypeptid-SEQ ID NO. 12937 umfasst, erhöht oder erzeugt wird, z. B. wenn die Aktivität eines Nukleinsäuremoleküls oder eines Polypeptids, welches die Nukleinsäure oder das Polypeptid oder die Konsensussequenz oder das Polypeptidmotiv wie in Tabelle I, II bzw. IV, Spalte 7, in der jeweils gleichen Zeile wie das Nukleinsäuremolekül SEQ ID NO.: 12936 beziehungsweise das Polypeptid SEQ ID NO.: 12937 gezeigt umfasst, erhöht oder erzeugt wird, oder wenn die Aktivität „Glutaminsynthetase” in einer Pflanzenzelle, einer Pflanze oder einem Teil davon erhöht oder erzeugt wird, insbesondere bei einer Lokalisierung des Polypeptids im Zytoplasma eine erhöhte Toleranz gegenüber abiotischem Umweltstress, insbesondere eine erhöhte Toleranz gegenüber niedrigen Temperaturen, verglichen mit einer entsprechenden nicht modifizierten, z. B. nicht transformierten, Pflanzenzelle oder Pflanze vom Wildtyp oder einem Teil davon verliehen. Insbesondere wird eine Ertragserhöhung von 1,1-fach bis 1,451-fach, zum Beispiel plus wenigstens 100% davon unter Bedingungen niedriger Temperaturen verliehen, verglichen mit einer entsprechenden nicht modifizierten, z. B. nicht transformierten, Pflanzenzelle oder Pflanze vom Wildtyp oder einem Teil davon.
  • Gemäß einer weiteren Ausführungsform wird, wenn die Aktivität eines Polypeptids gemäß der Polypeptid-SEQ ID NO.: 12937 beziehungsweise kodiert durch ein Nukleinsäuremolekül, das die Nukleinsäure-SEQ ID NO.: 12936 umfasst, oder eines Homologs dieses Nukleinsäuremoleküls beziehungsweise Polypeptids, z. B. im Fall der Aktivität des Saccharomyces cerevisiae-Nukleinsäuremoleküls beziehungsweise eines Polypeptids, welches die Nukleinsäure-SEQ ID NO. 12936 beziehungsweise Polypeptid-SEQ ID NO. 12937 umfasst, erhöht oder erzeugt wird, z. B. wenn die Aktivität eines Nukleinsäuremoleküls oder eines Polypeptids, welches die Nukleinsäure oder das Polypeptid oder die Konsensussequenz oder das Polypeptidmotiv wie in Tabelle I, II bzw. IV, Spalte 7, in der jeweils gleichen Zeile wie das Nukleinsäuremolekül SEQ ID NO.: 12936 beziehungsweise das Polypeptid SEQ ID NO.: 12937 gezeigt umfasst, erhöht oder erzeugt wird, oder wenn die Aktivität „Glutaminsynthetase” in einer Pflanzenzelle, einer Pflanze oder einem Teil davon erhöht oder erzeugt wird, insbesondere bei einer Lokalisierung des Polypeptids im Zytoplasma eine erhöhte Effizienz der Nährstoffausnutzung, verglichen mit einer entsprechenden nicht modifizierten, z. B. nicht transformierten, Pflanzenzelle oder Pflanze vom Wildtyp oder einem Teil davon verliehen. Gemäß einer Ausführungsform wird eine erhöhte Effizienz der Stickstoffausnutzung verliehen. Insbesondere wird eine Ertragserhöhung von 1,05-fach bis 1,237-fach, zum Beispiel plus wenigstens 100% davon unter Stickstoffmangelbedingungen verliehen, verglichen mit einer entsprechenden nicht modifizierten, z. B. nicht transformierten, Pflanzenzelle oder Pflanze vom Wildtyp oder einem Teil davon.
  • Gemäß einer weiteren Ausführungsform wird, wenn die Aktivität eines Polypeptids gemäß der Polypeptid-SEQ ID NO.: 12937 beziehungsweise kodiert durch ein Nukleinsäuremolekül, das die Nukleinsäure-SEQ ID NO.: 12936 umfasst, oder eines Homologs dieses Nukleinsäuremoleküls beziehungsweise Polypeptids, z. B. im Fall der Aktivität des Saccharomyces cerevisiae-Nukleinsäuremoleküls beziehungsweise eines Polypeptids, welches die Nukleinsäure-SEQ ID NO. 12936 beziehungsweise Polypeptid-SEQ ID NO. 12937 umfasst, erhöht oder erzeugt wird, z. B. wenn die Aktivität eines Nukleinsäuremoleküls oder eines Polypeptids, welches die Nukleinsäure oder das Polypeptid oder die Konsensussequenz oder das Polypeptidmotiv wie in Tabelle I, II bzw. IV, Spalte 7, in der jeweils gleichen Zeile wie das Nukleinsäuremolekül SEQ ID NO.: 12936 beziehungsweise das Polypeptid SEQ ID NO.: 12937 gezeigt umfasst, erhöht oder erzeugt wird, oder wenn die Aktivität „Glutaminsynthetase” in einer Pflanzenzelle, einer Pflanze oder einem Teil davon erhöht oder erzeugt wird, insbesondere bei einer Lokalisierung des Polypeptids im Zytoplasma ein erhöhter intrinsischer Ertrag, verglichen mit einer entsprechenden nicht modifizierten, z. B. nicht transformierten, Pflanzenzelle oder Pflanze vom Wildtyp oder einem Teil davon verliehen. Gemäß einer Ausführungsform wird ein erhöhter Ertrag unter Standardbedingungen (intrinsischer Ertrag) verliehen, z. B. in Abwesenheit von Nährstoffmangel sowie Stressbedingungen. Insbesondere wird eine Ertragserhöhung von 1,05-fach bis 1,236-fach, zum Beispiel plus wenigstens 100% davon unter Standardbedingungen (intrinsischer Ertrag) verliehen, z. B. in Abwesenheit von Nährstoffmangel sowie Stressbedingungen, verglichen mit einer entsprechenden nicht modifizierten, z. B. nicht transformierten, Pflanzenzelle oder Pflanze vom Wildtyp oder einem Teil davon.
  • Die oben angegebenen Verhältnisse beziehen sich insbesondere auf einen erhöhten Ertrag, der tatsächlich als Erhöhung der Biomasse, insbesondere als Frischgewicht-Biomasse der oberirdischen Teile, gemessen wird.
  • Für die Zwecke der Erfindung ist es beabsichtigt, dass der Plural in der Regel den Singular einschließt und umgekehrt.
  • Wenn nicht anderweitig angegeben, sind die Begriffe ”Polynukleotide”, ”Nukleinsäure” und ”Nukleinsäuremolekül” im vorliegenden Kontext austauschbar. Wenn nicht anderweitig angegeben, sind die Begriffe ”Peptid”, ”Polypeptid” und ”Protein” im vorliegenden Kontext austauschbar. Der Begriff ”Sequenz” kann Polynukleotide, Nukleinsäuren, Nukleinsäuremoleküle, Peptide, Polypeptide und Proteine betreffen, abhängig vom Zusammenhang, in dem der Begriff ”Sequenz” verwendet wird. Die Begriffe ”Gen(e)”, ”Polynukleotid”, ”Nukleinsäuresequenz”, ”Nukleotidsequenz” oder ”Nukleinsäuremolekül(e)”, wie hierin verwendet, beziehen sich auf eine polymere Form von Nukleotiden von beliebiger Länge, entweder Ribonukleotide oder Desoxyribonukleotide. Die Begriffe betreffen lediglich die Primärstruktur des Moleküls.
  • So schließen die Begriffe ”Gen(e)”, ”Polynukleotid”, ”Nukleinsäuresequenz”, ”Nukleotidsequenz” oder ”Nukleinsäuremolekül(e)”, wie hierin verwendet, doppel- und einzelsträngige DNA und/oder RNA ein. Sie beinhalten außerdem bekannte Arten von Modifikationen, zum Beispiel Methylierung, ”Caps” und Substitutionen von einem oder mehreren der natürlich vorkommenden Nukleotide mit einem Analog. Vorzugsweise umfasst die DNA- oder RNA-Sequenz eine kodierende Sequenz, die das hierin definierte Polypeptid kodiert.
  • Eine ”kodierende Sequenz” ist eine Nukleotidsequenz, welche in eine RNA transkribiert wird, z. B. eine regulatorische RNA, wie eine miRNA, eine ta-siRNA, ein Cosuppressionsmolekül, eine RNAi, ein Ribozym etc., oder in eine mRNA, die in ein Polypeptid translatiert wird, wenn sie unter die Steuerung von geeigneten regulatorischen Sequenzen gebracht wird. Die Grenzen der kodierenden Sequenz werden von einem Translations-Startcodon am 5'-Terminus und einem Translations-Stoppcodon am 3'-Terminus festgelegt. Eine kodierende Sequenz kann, ohne jedoch darauf eingeschränkt zu sein, mRNA, cDNA, rekombinante Nukleotidsequenzen oder genomische DNA einschließen, während Introns unter gewissen Umständen ebenfalls vorhanden sein können.
  • Wie im vorliegenden Kontext verwendet, kann ein Nukleinsäuremolekül auch die untranslatierte Sequenz umfassen, die sich am 3'-Ende und am 5'-Ende der kodierenden Genregion befindet, beispielsweise mindestens 500, vorzugsweise 200, besonders bevorzugt 100 Nukleotide der Sequenz stromaufwärts vom 5'-Ende der kodierenden Region, und mindestens 100, vorzugsweise 50, besonders bevorzugt 20 Nukleotide der Sequenz stromabwärts vom 3'-Ende der kodierenden Genregion. Für den Fall, dass zum Beispiel die Technologie mit Antisense, RNAi, snRNA, dsRNA, siRNA, miRNA, ta-siRNA, Cosuppressionsmolekül, Ribozym etc. angewandt wird, können sowohl kodierende Regionen als auch die 5'- und/oder 3'-Regionen vorteilhaft verwendet werden. Allerdings ist es häufig vorteilhaft, für Klonierungs- und Expressionszwecke lediglich die kodierende Region zu wählen.
  • ”Polypeptid” bezieht sich auf ein Aminosäurepolymer (Aminosäuresequenz) und bezieht sich nicht auf eine spezifische Länge des Moleküls. Somit fallen Peptide und Oligopeptide mit unter die Definition von Polypeptid. Dieser Begriff betrifft oder beinhaltet auch post-translationale Modifikationen des Polypeptids, zum Beispiel Glykosylierungen, Acetylierungen, Phosphorylierungen und dergleichen. Innerhalb der Definition sind beispielsweise Polypeptide, die ein oder mehrere Analoga einer Aminosäure enthalten (einschließlich zum Beispiel unnatürlicher Aminosäuren, etc.), und Polypeptide mit substituierten Bindungen sowie sonstigen im Fachgebiet bekannten, sowohl natürlich vorkommenden als auch nicht-natürlich vorkommenden, Modifikationen inbegriffen.
  • Es versteht sich, dass der in dieser Beschreibung verwendete Begriff ”Tabelle I” den Inhalt von Tabelle I A und Tabelle I B bezeichnet. Der in dieser Beschreibung verwendete Begriff ”Tabelle II” soll herangezogen werden, um den Inhalt von Tabelle II A und Tabelle II B zu bezeichnen. Der in dieser Beschreibung verwendete Begriff ”Tabelle I A” soll herangezogen werden, um den Inhalt von Tabelle I A zu bezeichnen. Der in dieser Beschreibung verwendete Begriff ”Tabelle I B” soll den Inhalt von Tabelle I B bezeichnen. Der in dieser Beschreibung verwendete Begriff ”Tabelle II A” soll den Inhalt von Tabelle II A bezeichnen. Der in dieser Beschreibung verwendete Begriff ”Tabelle II B” soll den Inhalt von Tabelle II B bezeichnen. In einer bevorzugten Ausführungsform bedeutet der Begriff ”Tabelle I” die Tabelle I B. In einer bevorzugten Ausführungsform bedeutet der Begriff ”Tabelle II” die Tabelle II B.
  • Die Begriffe ”umfassen” oder ”umfassend” und grammatikalische Variationen davon, falls in dieser Beschreibung verwendet, verstehen sich zur Bezeichnung des Vorliegens der angegebenen Merkmale, ganzen Zahlen, Schritte oder Komponenten oder Gruppen davon, aber schließen das Vorliegen oder die Hinzufügung von einem oder mehreren anderen Merkmalen, ganzen Zahlen, Schritten, Komponenten oder Gruppen davon nicht aus.
  • Gemäß der Erfindung hat ein Protein oder Polypeptid die ”Aktivität eines wie in Tabelle II, Spalte 3, gezeigten Proteins”, wenn seine de novo-Aktivität oder seine erhöhte Expression direkt oder indirekt zu einem erhöhten Ertrag, z. B. einem erhöhten Ertragsmerkmal, zum Beispiel einer gesteigerten Toleranz gegenüber abiotischem Umweltstress, zum Beispiel einer erhöhten Toleranz gegenüber Dürre und/oder Toleranz gegenüber niedrigen Temperaturen und/oder einer erhöhten Effizienz der Nährstoffausnutzung, einem erhöhten intrinsischen Ertrag und/oder anderen erhöhten Ertragsmerkmalen, verglichen mit einer entsprechenden, z. B. nicht transformierten, Pflanzenzelle oder Pflanze vom Wildtyp oder einem Teil davon führt und diese verleiht und das Protein die obenerwähnten Aktivitäten eines wie in Tabelle II, Spalte 3, gezeigten Proteins hat. In der gesamten Beschreibung ist die Aktivität oder vorzugsweise die biologische Aktivität eines solchen Proteins oder Polypeptids oder eines für ein solches Protein oder Polypeptid kodierenden Nukleinsäuremoleküls bzw. einer für ein solches Protein oder Polypeptid kodierenden Nukleinsäuresequenz identisch oder ähnlich, wenn es noch über die biologische oder enzymatische Aktivität eines wie in Tabelle II, Spalte 3, gezeigten Proteins oder wenigstens 10% der ursprünglichen enzymatischen Aktivität, vorzugsweise 20%, 30%, 40%, 50%, besonders bevorzugt 60%, 70%, 80%, ganz besonders bevorzugt 90%, 95%, 98%, 99% verfügt, verglichen mit einem wie in Tabelle II, Spalte 3, gezeigten Protein von S. cerevisiae oder E. coli oder Synechocystis sp. oder A. thaliana. Gemäß einer anderen Ausführungsform beträgt die biologische oder enzymatische Aktivität eines wie in Tabelle II, Spalte 3, gezeigten Proteins wenigstens 101% der ursprünglichen enzymatischen Aktivität, vorzugsweise 110%, 120%, %, 150%, besonders bevorzugt 150%, 200%, 300%, verglichen mit einem wie in Tabelle II, Spalte 3, gezeigten Protein von S. cerevisiae oder E. coli oder Synechocystis sp. oder A. thaliana.
  • Die Ausdrücke „erhöht”, „gesteigert”, „ausgeweitet”, „verstärkt”, „verbessert” oder „erweitert” beziehen sich auf eine entsprechende Veränderung einer Eigenschaft in einer Pflanze, einem Organismus, einem Teil eines Organismus wie einem Gewebe, Samen, Wurzeln, Blättern, Blüten usw. oder in einer Zelle und sind austauschbar. Vorzugsweise ist die Gesamtaktivität im Volumen erhöht oder verstärkt in Fällen, bei denen die Erhöhung bzw. Verstärkung mit der Erhöhung bzw. Verstärkung einer Aktivität eines Genprodukts in Zusammenhang steht, unabhängig davon, ob die Menge an Genprodukt oder die spezifische Aktivität des Genprodukts oder beide erhöht oder verstärkt sind oder ob die Menge, Stabilität oder Translationseffizienz der für das Genprodukt kodierenden Nukleinsäuresequenz bzw. des für das Genprodukt kodierenden Gens erhöht oder verstärkt ist. Der Ausdruck „Erhöhung” bezieht sich auf eine entsprechende Veränderung einer Eigenschaft in einem Organismus oder in einem Teil einer Pflanze, einem Organismus wie einem Gewebe, Samen, Wurzeln, Blättern, Blüten usw. oder in einer Zelle. Vorzugsweise ist die Gesamtaktivität im Volumen erhöht in Fällen, bei denen die Erhöhung mit der Erhöhung einer Aktivität eines Genprodukts in Zusammenhang steht, unabhängig davon, ob die Menge an Genprodukt oder die spezifische Aktivität des Genprodukts oder beide erhöht oder verstärkt sind oder ob die Menge, Stabilität oder Translationseffizienz der für das Genprodukt kodierenden Nukleinsäuresequenz bzw. des für das Genprodukt kodierenden Gens erhöht oder verstärkt ist. Unter „Veränderung einer Eigenschaft” versteht man, dass die Aktivität, das Expressionsniveau oder die Menge eines Genprodukts oder der Metabolitengehalt in einem spezifischen Volumen im Verhältnis zu einem entsprechenden Volumen einer Kontrolle, einer Referenz oder eines Wildtyps verändert ist, einschließlich der de novo-Erzeugung der Aktivität oder Expression. Der Ausdruck „Erhöhung” schließt die Veränderung dieser Eigenschaft nur in Teilen des Gegenstands der vorliegenden Erfindung ein; so kann sich die Modifikation zum Beispiel in einem Kompartiment einer Zelle wie einer Organelle oder in einem Teil einer Pflanze wie Gewebe, Samen, Wurzeln, Blättern, Blüten usw. finden, jedoch nicht nachweisbar sein, wenn man den gesamten Gegenstand, d. h. die gesamte Zelle oder Pflanze, untersucht. Dementsprechend bedeutet der Ausdruck „Erhöhung”, dass die spezifische Aktivität eines Enzyms sowie die Menge einer Verbindung oder eines Metaboliten, z. B. eines Polypeptids, eines Nukleinsäuremoleküls der Erfindung oder einer kodierenden mRNA oder DNA vom Volumen her erhöht sein kann.
  • Folglich sind die Begriffe „Wildtyp”, „Kontrolle” oder „Referenz” austauschbar und können eine Zelle oder ein Teil von Organismen, wie eine Organelle wie z. B. ein Chloroplast oder ein Gewebe, oder ein Organismus, insbesondere eine Pflanze, sein, welche(r) nicht gemäß dem hierin beschriebenen Verfahren gemäß der Erfindung modifiziert oder behandelt worden ist. Dementsprechend entspricht die Zelle oder ein Teil von Organismen wie eine Organelle wie z. B. ein Chloroplast oder ein Gewebe, oder ein Organismus, insbesondere eine Pflanze, die/der als Wildtyp, Kontrolle oder Referenz verwendet wird, der Zelle, dem Organismus, der Pflanze oder dem Teil davon soweit wie möglich und ist in jeder anderen Eigenschaft mit Ausnahme des Ergebnisses des erfindungsgemäßen Verfahrens mit dem Gegenstand der Erfindung so identisch wie möglich. Daher wird der Wildtyp, die Kontrolle oder die Referenz identisch oder bestmöglich identisch behandelt, womit besagt wird, dass nur Bedingungen oder Eigenschaften verschieden sein könnten, welche die Qualität der getesteten Eigenschaft nicht beeinflussen. Vorzugsweise wird jeder Vergleich unter analogen Bedingungen durchgeführt. Der Ausdruck „analoge Bedingungen” bedeutet, dass alle Bedingungen wie zum Beispiel Kultivierungs- bzw. Wachstumsbedingungen, Boden, Nährstoff, Wassergehalt des Bodens, Temperatur, Feuchtigkeit oder Umgebungsluft oder Boden, Assaybedingungen (wie Pufferzusammensetzung, Temperatur, Substrate, Pathogenstamm, Konzentrationen und dergleichen) zwischen den zu vergleichenden Experimenten gleichgehalten werden. Bei der ”Referenz”, ”Kontrolle” oder dem ”Wildtyp” handelt es sich vorzugsweise um ein Subjekt, z. B. eine Organelle, eine Zelle, ein Gewebe, einen Organismus, insbesondere eine Pflanze, das nicht gemäß dem hierin beschriebenen Verfahren der Erfindung modifiziert oder behandelt worden ist und in jedweder anderen Eigenschaften so ähnlich zum Subjekt der Erfindung ist, wie möglich. Die Referenz, Kontrolle oder der Wildtyp ist hinsichtlich seines Genoms, Transkriptoms, Proteoms oder Metaboloms so ähnlich wie möglich zum Subjekt der vorliegenden Erfindung. Vorzugsweise bezieht sich der Begriff „Referenz-”, „Kontroll-” oder „Wildtyp-”Organelle, -Zelle, -Gewebe oder -Organismus, insbesondere -Pflanze, auf eine Organelle, Zelle, ein Gewebe oder einen Organismus, insbesondere eine Pflanze, welche(s,r) zu der Organelle, Zelle, dem Gewebe oder Organismus, insbesondere Pflanze, der vorliegenden Erfindung, oder einem Teil davon, beinahe genetisch identisch ist, und zwar vorzugsweise zu 95%, weiter bevorzugt zu 98%, noch weiter bevorzugt zu 99,00%, insbesondere 99,10%, 99,30%, 99,50%, 99,70%, 99,90%, 99,99%, 99,999% oder mehr. Am meisten bevorzugt handelt es sich bei der „Referenz”, der „Kontrolle” bzw. dem „Wildtyp” um einen Gegenstand, z. B. eine Organelle, eine Zelle, ein Gewebe oder einen Organismus, insbesondere eine Pflanze, die/das/der genetisch identisch ist mit dem Organismus, insbesondere der Pflanze, der Zelle, einem Gewebe, oder einer Organelle, der/die/das gemäß dem Verfahren der Erfindung verwendet wird, wobei allerdings die verantwortlichen bzw. Aktivität verleihenden Nukleinsäuremoleküle oder das durch sie kodierte Genprodukt gemäß dem Verfahren der Erfindung ergänzt, manipuliert, ausgetauscht oder eingeführt ist/sind.
  • Kann eine Kontrolle, eine Referenz bzw. ein Wildtyp, die bzw. der sich vom Gegenstand der vorliegenden Erfindung nur dadurch unterscheidet, dass sie/er nicht Gegenstand des erfindungsgemäßen Verfahrens ist, nicht bereitgestellt werden, so kann es sich bei einer Kontrolle, einer Referenz bzw. einem Wildtyp um einen Organismus handeln, bei dem die Ursache für die Modulation einer die im Vergleich zu einer entsprechenden, z. B. nicht transformierten, Pflanzenzelle oder Pflanze vom Wildtyp oder einem Teil davon gesteigerte Toleranz gegenüber abiotischem Umweltstress und/oder einen erhöhten Ertrag verleihenden Aktivität oder die Expression des wie hier beschriebenen Nukleinsäuremoleküls der Erfindung zurück- oder abgeschaltet worden ist, z. B. durch Eliminieren der Expression des verantwortlichen Genprodukts, z. B. durch Antisense-Inhibierung, durch Deaktivierung eines Aktivators oder Agonisten, durch Aktivierung eines Inhibitors oder Antagonisten, durch Inhibierung durch Zugabe hemmender Antikörper, durch Zugabe von Wirkstofffen wie z. B. Hormonen, durch Einführung negativ dominanter Mutanten usw. Eine Genproduktion kann zum Beispiel eliminiert werden, indem man deaktivierende Punktmutationen einführt, die eine Inhibierung der enzymatischen Aktivität oder eine Destabilisierung oder eine Inhibierung der Fähigkeit zur Bindung von Kofaktoren usw. zur Folge haben.
  • Folglich ist das bevorzugte Referenzsubjekt das Ausgangssubjekt des vorliegenden Verfahrens der Erfindung. Vorzugsweise werden die Referenz und der Gegenstand der Erfindung nach Standardisierung und Normalisierung z. B. auf die Menge an Gesamt-RNA, -DNA oder -Protein oder der Aktivität oder Expression von Referenzgenen wie Haushaltsgenen wie z. B. Ubiquitin, Aktin oder ribosomalen Proteinen miteinander verglichen.
  • Die Erhöhung bzw. Modulation gemäß der vorliegenden Erfindung kann konstitutiv sein, z. B. aufgrund einer stabilen permanenten transgenen Expression oder einer stabilen Mutation in dem entsprechenden endogenen Gen, das für das Nukleinsäuremolekül der Erfindung kodiert, oder einer Modulation der Expression oder des Verhaltens eines Gens, das die Expression des Polypeptids der Erfindung verleiht, oder transient, z. B. aufgrund einer transienten Transformation oder eines zeitweiligen Zusatzes eines Modulators wie einem Agonisten oder Antagonisten, oder induzierbar, z. B. nach einer Transformation mit einem induzierbaren Konstrukt, das das Nukleinsäuremolekül der Erfindung unter der Kontrolle eines induzierbaren Promotors trägt, und Zugabe des Induktors, z. B. Tetracyclin, oder wie hier unten beschrieben. Die Erhöhung in der Aktivität des Polypeptids beläuft sich in einer Zelle, einem Gewebe, einer Organelle, einem Organ oder einem Organismus, vorzugsweise einer Pflanze, oder einem Teil davon bevorzugt auf wenigstens 5%, vorzugsweise auf wenigstens 20% oder auf wenigstens 50%, besonders bevorzugt auf wenigstens 70%, 80%, 90% oder mehr, ganz besonders bevorzugt auf wenigstens 100%, 150% oder 200%, am meisten bevorzugt auf wenigstens 250% oder mehr im Vergleich zur Kontrolle, zur Referenz bzw. zum Wildtyp. Gemäß einer Ausführungsform bedeutet der Ausdruck Erhöhung die Erhöhung der Menge in Bezug auf das Gewicht des Organismus oder eines Teils davon (w/w).
  • Gemäß einer Ausführungsform tritt die Erhöhung der Aktivität des Polypeptids in einer Organelle wie einem Plastid auf. Gemäß einer anderen Ausführungsform tritt die Erhöhung der Aktivität des Polypeptids im Zytoplasma auf.
  • Die spezifische Aktivität eines durch ein Nukleinsäuremolekül der vorliegenden Erfindung kodierten Polypeptids oder des Polypeptids der vorliegenden Erfindung lässt sich wie in den Beispielen beschrieben untersuchen. Insbesondere die Expression eines betreffenden Proteins in einer Zelle, z. B. einer Pflanzenzelle, im Vergleich zu einer Kontrolle ist ein einfacher Test und kann wie im Stand der Technik beschrieben durchgeführt werden.
  • Der Ausdruck „Erhöhung” schließt ein, dass eine Verbindung oder eine Aktivität, insbesondere eine Aktivität, de novo in eine Zelle, das Zytoplasma oder ein subzelluläres Kompartiment oder eine Organelle eingeführt wird, oder dass die Verbindung oder die Aktivität, insbesondere eine Aktivität, zuvor nicht nachweisbar war, also in anderen Worten „erzeugt” wurde.
  • Dementsprechend umfasst im Folgenden der Ausdruck „Erhöhen” auch den Ausdruck „Erzeugen” oder „Stimulieren”. Die erhöhte Aktivität manifestiert sich in einem erhöhtem Ertrag, z. B. einem erhöhten Ertragsmerkmal, zum Beispiel einer gesteigerten Toleranz gegenüber abiotischem Umweltstress, zum Beispiel einer erhöhten Toleranz gegenüber Dürre und/oder Toleranz gegenüber niedrigen Temperaturen und/oder einer erhöhten Effizienz der Nährstoffausnutzung, einem erhöhten intrinsischen Ertrag und/oder einem anderen erhöhten Ertragsmerkmal, verglichen mit einer entsprechenden, z. B. nicht transformierten, Pflanzenzelle oder Pflanze vom Wildtyp oder einem Teil davon.
  • Die Sequenz von B0414 aus Escherichia coli, z. B. wie in Spalte 5 von Tabelle I gezeigt, wurde veröffentlicht (z. B. Sequenzen aus S. cerevisiae wurden in Goffeau et al., Science 274 (5287), 546 (1996) veröffentlicht, Sequenzen aus E. coli wurden in Blattner et al., Science 277 (5331), 1453 (1997) veröffentlicht), und/oder ihre Aktivität wurde als Pyrimidindeaminase/-reduktase beschrieben. Dementsprechend umfasst das Verfahren der vorliegenden Erfindung gemäß einer Ausführungsform die Erhöhung oder Erzeugung der Aktivität eines Genprodukts mit der Aktivität einer „Pyrimidindeaminase/reduktase” aus Escherichia coli oder einem funktionellen Äquivalent davon oder einem Homolog davon, z. B. die Erhöhung
    • (a) eines Genprodukts eines Gens, das das Nukleinsäuremolekül, welches wie in Spalte 5 von Tabelle I gezeigt ist und in der gleichen entsprechenden Zeile wie dieses B0414 steht, oder ein funktionelles Äquivalent oder ein Homolog davon wie in Spalte 7 von Tabelle I gezeigt, vorzugsweise ein Homolog oder funktionelles Äquivalent wie in Spalte 7 von Tabelle I B gezeigt, welches in der gleichen entsprechenden Zeile wie dieses B0414 steht, umfasst; oder
    • (b) eines ein Polypeptid, eine Konsensussequenz oder ein Polypeptidmotiv wie in Spalte 5 von Tabelle II beziehungsweise in Spalte 7 von Tabelle IV gezeigt umfassenden Polypeptids, welches in der gleichen entsprechenden Zeile wie dieses B0414 steht, oder ein funktionelles Äquivalent oder ein Homolog davon wie in Spalte 7 von Tabelle II gezeigt, vorzugsweise ein Homolog oder funktionelles Äquivalent wie in Spalte 7 von Tabelle II B gezeigt, welches in der gleichen entsprechenden Zeile wie dieses B0414 steht,
    wie hier erwähnt, zur Erhöhung des Ertrags, z. B. zur Erhöhung eines oder mehrerer Ertragsmerkmale, zum Beispiel einer gesteigerten Toleranz gegenüber abiotischem Umweltstress, zum Beispiel einer erhöhten Toleranz gegenüber Dürre und/oder Toleranz gegenüber niedrigen Temperaturen und/oder einer erhöhten Effizienz der Nährstoffausnutzung, verglichen mit einer entsprechenden, z. B. nicht transformierten, Pflanzenzelle oder Pflanze vom Wildtyp oder einem Teil davon in einer Pflanzenzelle, einer Pflanze oder einem Teil davon, wie erwähnt, insbesondere für eine gesteigerte Toleranz gegenüber abiotischem Umweltstress, oder einen erhöhten Ertrag, oder eine gesteigerte Toleranz gegenüber abiotischem Umweltstress und einen erhöhten Ertrag. Dementsprechend handelt es sich bei einer Ausführungsform bei dem Molekül, dessen Aktivität im erfindungsgemäßen Verfahren zu erhöhen ist, um das Genprodukt mit einer als „Pyrimidindeaminase/reduktase” beschriebenen Aktivität; bevorzugt handelt es sich dabei um das in Abschnitt (a) oder (b) dieses Absatzes beschriebene Molekül. Gemäß einer Ausführungsform wird das Molekül, dessen Aktivität bei dem erfindungsgemäßen Verfahren zu erhöhen ist und bei dem es sich um das Genprodukt mit einer als „Pyrimidindeaminase/reduktase” beschriebenen Aktivität handelt, zytoplasmatisch erhöht.
  • Die Sequenz von B2931 aus Escherichia coli, z. B. wie in Spalte 5 von Tabelle I gezeigt, wurde veröffentlicht (z. B. Sequenzen aus S. cerevisiae wurden in Goffeau et al., Science 274 (5287), 546 (1996) veröffentlicht, Sequenzen aus E. coli wurden in Blattner et al., Science 277 (5331), 1453 (1997) veröffentlicht), und/oder ihre Aktivität wurde als Oxidoreduktase beschrieben. Dementsprechend umfasst das Verfahren der vorliegenden Erfindung gemäß einer Ausführungsform die Erhöhung oder Erzeugung der Aktivität eines Genprodukts mit der Aktivität einer „Oxidoreduktase” aus Escherichia coli oder einem funktionellen Äquivalent davon oder einem Homolog davon, z. B. die Erhöhung
    • (a) eines Genprodukts eines Gens, das das Nukleinsäuremolekül, welches wie in Spalte 5 von Tabelle I gezeigt ist und in der gleichen entsprechenden Zeile wie dieses B2931 steht, oder ein funktionelles Äquivalent oder ein Homolog davon wie in Spalte 7 von Tabelle I gezeigt, vorzugsweise ein Homolog oder funktionelles Äquivalent wie in Spalte 7 von Tabelle I B gezeigt, welches in der gleichen entsprechenden Zeile wie dieses B2931 steht, umfasst; oder
    • (b) eines ein Polypeptid, eine Konsensussequenz oder ein Polypeptidmotiv wie in Spalte 5 von Tabelle II beziehungsweise in Spalte 7 von Tabelle IV gezeigt umfassenden Polypeptids, welches in der gleichen entsprechenden Zeile wie dieses B2931 steht, oder ein funktionelles Äquivalent oder ein Homolog davon wie in Spalte 7 von Tabelle II gezeigt, vorzugsweise ein Homolog oder funktionelles Äquivalent wie in Spalte 7 von Tabelle II B gezeigt, welches in der gleichen entsprechenden Zeile wie dieses B2931 steht,
    wie hier erwähnt, zur Erhöhung des Ertrags, z. B. zur Erhöhung eines oder mehrerer Ertragsmerkmale, zum Beispiel einer gesteigerten Toleranz gegenüber abiotischem Umweltstress, zum Beispiel einer erhöhten Toleranz gegenüber Dürre und/oder Toleranz gegenüber niedrigen Temperaturen und/oder einer erhöhten Effizienz der Nährstoffausnutzung, verglichen mit einer entsprechenden, z. B. nicht transformierten, Pflanzenzelle oder Pflanze vom Wildtyp oder einem Teil davon in einer Pflanzenzelle, einer Pflanze oder einem Teil davon, wie erwähnt, insbesondere für eine gesteigerte Toleranz gegenüber abiotischem Umweltstress, oder einen erhöhten Ertrag, oder eine gesteigerte Toleranz gegenüber abiotischem Umweltstress und einen erhöhten Ertrag. Dementsprechend handelt es sich bei einer Ausführungsform bei dem Molekül, dessen Aktivität im erfindungsgemäßen Verfahren zu erhöhen ist, um das Genprodukt mit einer als „Oxidoreduktase” beschriebenen Aktivität; bevorzugt handelt es sich dabei um das in Abschnitt (a) oder (b) dieses Absatzes beschriebene Molekül. Gemäß einer Ausführungsform wird das Molekül, dessen Aktivität bei dem erfindungsgemäßen Verfahren zu erhöhen ist und bei dem es sich um das Genprodukt mit einer als „Oxidoreduktase” beschriebenen Aktivität handelt, zytoplasmatisch erhöht.
  • Die Sequenz von B3945 aus Escherichia coli, z. B. wie in Spalte 5 von Tabelle I gezeigt, wurde veröffentlicht (z. B. Sequenzen aus S. cerevisiae wurden in Goffeau et al., Science 274 (5287), 546 (1996) veröffentlicht, Sequenzen aus E. coli wurden in Blattner et al., Science 277 (5331), 1453 (1997) veröffentlicht), und/oder ihre Aktivität wurde als Glycerindehydrogenase beschrieben. Dementsprechend umfasst das Verfahren der vorliegenden Erfindung gemäß einer Ausführungsform die Erhöhung oder Erzeugung der Aktivität eines Genprodukts mit der Aktivität einer „Glycerindehydrogenase” aus Escherichia coli oder einem funktionellen Äquivalent davon oder einem Homolog davon, z. B. die Erhöhung
    • (a) eines Genprodukts eines Gens, das das Nukleinsäuremolekül, welches wie in Spalte 5 von Tabelle I gezeigt ist und in der gleichen entsprechenden Zeile wie dieses B3945 steht, oder ein funktionelles Äquivalent oder ein Homolog davon wie in Spalte 7 von Tabelle I gezeigt, vorzugsweise ein Homolog oder funktionelles Äquivalent wie in Spalte 7 von Tabelle I B gezeigt, welches in der gleichen entsprechenden Zeile wie dieses B3945 steht, umfasst; oder
    • (b) eines ein Polypeptid, eine Konsensussequenz oder ein Polypeptidmotiv wie in Spalte 5 von Tabelle II beziehungsweise in Spalte 7 von Tabelle IV gezeigt umfassenden Polypeptids, welches in der gleichen entsprechenden Zeile wie dieses B3945 steht, oder ein funktionelles Äquivalent oder ein Homolog davon wie in Spalte 7 von Tabelle II gezeigt, vorzugsweise ein Homolog oder funktionelles Äquivalent wie in Spalte 7 von Tabelle II B gezeigt, welches in der gleichen entsprechenden Zeile wie dieses B3945 steht,
    wie hier erwähnt, zur Erhöhung des Ertrags, z. B. zur Erhöhung eines oder mehrerer Ertragsmerkmale, zum Beispiel einer gesteigerten Toleranz gegenüber abiotischem Umweltstress, zum Beispiel einer erhöhten Toleranz gegenüber Dürre und/oder Toleranz gegenüber niedrigen Temperaturen und/oder einer erhöhten Effizienz der Nährstoffausnutzung, verglichen mit einer entsprechenden, z. B. nicht transformierten, Pflanzenzelle oder Pflanze vom Wildtyp oder einem Teil davon in einer Pflanzenzelle, einer Pflanze oder einem Teil davon, wie erwähnt, insbesondere für eine gesteigerte Toleranz gegenüber abiotischem Umweltstress, oder einen erhöhten Ertrag, oder eine gesteigerte Toleranz gegenüber abiotischem Umweltstress und einen erhöhten Ertrag. Dementsprechend handelt es sich bei einer Ausführungsform bei dem Molekül, dessen Aktivität im erfindungsgemäßen Verfahren zu erhöhen ist, um das Genprodukt mit einer als „Glycerindehydrogenase” beschriebenen Aktivität; bevorzugt handelt es sich dabei um das in Abschnitt (a) oder (b) dieses Absatzes beschriebene Molekül. Gemäß einer Ausführungsform wird das Molekül, dessen Aktivität bei dem erfindungsgemäßen Verfahren zu erhöhen ist und bei dem es sich um das Genprodukt mit einer als „Glycerindehydrogenase” beschriebenen Aktivität handelt, zytoplasmatisch erhöht.
  • Die Sequenz von Yel004w aus Saccharomyces cerevisiae, z. B. wie in Spalte 5 von Tabelle I gezeigt, wurde veröffentlicht (z. B. Sequenzen aus S. cerevisiae wurden in Goffeau et al., Science 274 (5287), 546 (1996) veröffentlicht, Sequenzen aus E. coli wurden in Blattner et al., Science 277 (5331), 1453 (1997) veröffentlicht), und/oder ihre Aktivität wurde als Uridindiphosphat-N-acetylglucosamintransporter beschrieben. Dementsprechend umfasst das Verfahren der vorliegenden Erfindung gemäß einer Ausführungsform die Erhöhung oder Erzeugung der Aktivität eines Genprodukts mit der Aktivität eines „Uridindiphosphat-N-acetylglucosamintransporters” aus Saccharomyces cerevisiae oder einem funktionellen Äquivalent davon oder einem Homolog davon, z. B. die Erhöhung
    • (a) eines Genprodukts eines Gens, das das Nukleinsäuremolekül, welches wie in Spalte 5 von Tabelle I gezeigt ist und in der gleichen entsprechenden Zeile wie dieses Yel004w steht, oder ein funktionelles Äquivalent oder ein Homolog davon wie in Spalte 7 von Tabelle I gezeigt, vorzugsweise ein Homolog oder funktionelles Äquivalent wie in Spalte 7 von Tabelle I B gezeigt, welches in der gleichen entsprechenden Zeile wie dieses Yel004w steht, umfasst; oder
    • (b) eines ein Polypeptid, eine Konsensussequenz oder ein Polypeptidmotiv wie in Spalte 5 von Tabelle II beziehungsweise in Spalte 7 von Tabelle IV gezeigt umfassenden Polypeptids, welches in der gleichen entsprechenden Zeile wie dieses Yel004w steht, oder ein funktionelles Äquivalent oder ein Homolog davon wie in Spalte 7 von Tabelle II gezeigt, vorzugsweise ein Homolog oder funktionelles Äquivalent wie in Spalte 7 von Tabelle II B gezeigt, welches in der gleichen entsprechenden Zeile wie dieses Yel004w steht,
    wie hier erwähnt, zur Erhöhung des Ertrags, z. B. zur Erhöhung eines oder mehrerer Ertragsmerkmale, zum Beispiel einer gesteigerten Toleranz gegenüber abiotischem Umweltstress, zum Beispiel einer erhöhten Toleranz gegenüber Dürre und/oder Toleranz gegenüber niedrigen Temperaturen und/oder einer erhöhten Effizienz der Nährstoffausnutzung, verglichen mit einer entsprechenden, z. B. nicht transformierten, Pflanzenzelle oder Pflanze vom Wildtyp oder einem Teil davon in einer Pflanzenzelle, einer Pflanze oder einem Teil davon, wie erwähnt, insbesondere für eine gesteigerte Toleranz gegenüber abiotischem Umweltstress, oder einen erhöhten Ertrag, oder eine gesteigerte Toleranz gegenüber abiotischem Umweltstress und einen erhöhten Ertrag. Dementsprechend handelt es sich bei einer Ausführungsform bei dem Molekül, dessen Aktivität im erfindungsgemäßen Verfahren zu erhöhen ist, um das Genprodukt mit einer als „Uridindiphosphat-N-acetylglucosamintransporter” beschriebenen Aktivität; bevorzugt handelt es sich dabei um das in Abschnitt (a) oder (b) dieses Absatzes beschriebene Molekül. Gemäß einer Ausführungsform wird das Molekül, dessen Aktivität bei dem erfindungsgemäßen Verfahren zu erhöhen ist und bei dem es sich um das Genprodukt mit einer als „Uridindiphosphat-N-acetylglucosamintransporter” beschriebenen Aktivität handelt, zytoplasmatisch erhöht.
  • Die Sequenz von Yer177w aus Saccharomyces cerevisiae, z. B. wie in Spalte 5 von Tabelle I gezeigt, wurde veröffentlicht (z. B. Sequenzen aus S. cerevisiae wurden in Goffeau et al., Science 274 (5287), 546 (1996) veröffentlicht, Sequenzen aus E. coli wurden in Blattner et al., Science 277 (5331), 1453 (1997) veröffentlicht), und/oder ihre Aktivität wurde als DNA- und proteinbindendes Protein zur Steuerung des Proteoms auf der posttranskriptionellen Ebene beschrieben. Dementsprechend umfasst das Verfahren der vorliegenden Erfindung gemäß einer Ausführungsform die Erhöhung oder Erzeugung der Aktivität eines Genprodukts mit der Aktivität eines „DNA- und proteinbindenden Proteins zur Steuerung des Proteoms auf der posttranskriptionellen Ebene” aus Saccharomyces cerevisiae oder einem funktionellen Äquivalent davon oder einem Homolog davon, z. B. die Erhöhung
    • (a) eines Genprodukts eines Gens, das das Nukleinsäuremolekül, welches wie in Spalte 5 von Tabelle I gezeigt ist und in der gleichen entsprechenden Zeile wie dieses Yer177w steht, oder ein funktionelles Äquivalent oder ein Homolog davon wie in Spalte 7 von Tabelle I gezeigt, vorzugsweise ein Homolog oder funktionelles Äquivalent wie in Spalte 7 von Tabelle I B gezeigt, welches in der gleichen entsprechenden Zeile wie dieses Yer177w steht, umfasst; oder
    • (b) eines ein Polypeptid, eine Konsensussequenz oder ein Polypeptidmotiv wie in Spalte 5 von Tabelle II beziehungsweise in Spalte 7 von Tabelle IV gezeigt umfassenden Polypeptids, welches in der gleichen entsprechenden Zeile wie dieses Yer177w steht, oder ein funktionelles Äquivalent oder ein Homolog davon wie in Spalte 7 von Tabelle II gezeigt, vorzugsweise ein Homolog oder funktionelles Äquivalent wie in Spalte 7 von Tabelle II B gezeigt, welches in der gleichen entsprechenden Zeile wie dieses Yer177w steht,
    wie hier erwähnt, zur Erhöhung des Ertrags, z. B. zur Erhöhung eines oder mehrerer Ertragsmerkmale, zum Beispiel einer gesteigerten Toleranz gegenüber abiotischem Umweltstress, zum Beispiel einer erhöhten Toleranz gegenüber Dürre und/oder Toleranz gegenüber niedrigen Temperaturen und/oder einer erhöhten Effizienz der Nährstoffausnutzung, verglichen mit einer entsprechenden, z. B. nicht transformierten, Pflanzenzelle oder Pflanze vom Wildtyp oder einem Teil davon in einer Pflanzenzelle, einer Pflanze oder einem Teil davon, wie erwähnt, insbesondere für eine gesteigerte Toleranz gegenüber abiotischem Umweltstress, oder einen erhöhten Ertrag, oder eine gesteigerte Toleranz gegenüber abiotischem Umweltstress und einen erhöhten Ertrag. Dementsprechend handelt es sich bei einer Ausführungsform bei dem Molekül, dessen Aktivität im erfindungsgemäßen Verfahren zu erhöhen ist, um das Genprodukt mit einer als „DNA- und proteinbindendes Protein zur Steuerung des Proteoms auf der posttranskriptionellen Ebene” beschriebenen Aktivität; bevorzugt handelt es sich dabei um das in Abschnitt (a) oder (b) dieses Absatzes beschriebene Molekül. Gemäß einer Ausführungsform wird das Molekül, dessen Aktivität bei dem erfindungsgemäßen Verfahren zu erhöhen ist und bei dem es sich um das Genprodukt mit einer als ein „DNA- und proteinbindendes Protein zur Steuerung des Proteoms auf der posttranskriptionellen Ebene” beschriebenen Aktivität handelt, zytoplasmatisch erhöht.
  • Die Sequenz von Yhr204w aus Saccharomyces cerevisiae, z. B. wie in Spalte 5 von Tabelle I gezeigt, wurde veröffentlicht (z. B. Sequenzen aus S. cerevisiae wurden in Goffeau et al., Science 274 (5287), 546 (1996) veröffentlicht, Sequenzen aus E. coli wurden in Blattner et al., Science 277 (5331), 1453 (1997) veröffentlicht), und/oder ihre Aktivität wurde als für den Abbau von Glykoproteinen benötigtes Protein beschrieben. Dementsprechend umfasst das Verfahren der vorliegenden Erfindung gemäß einer Ausführungsform die Erhöhung oder Erzeugung der Aktivität eines Genprodukts mit der Aktivität eines „für den Abbau von Glykoproteinen benötigten Proteins” aus Saccharomyces cerevisiae oder einem funktionellen Äquivalent davon oder einem Homolog davon, z. B. die Erhöhung
    • (a) eines Genprodukts eines Gens, das das Nukleinsäuremolekül, welches wie in Spalte 5 von Tabelle I gezeigt ist und in der gleichen entsprechenden Zeile wie dieses Yhr204w steht, oder ein funktionelles Äquivalent oder ein Homolog davon wie in Spalte 7 von Tabelle I gezeigt, vorzugsweise ein Homolog oder funktionelles Äquivalent wie in Spalte 7 von Tabelle I B gezeigt, welches in der gleichen entsprechenden Zeile wie dieses Yhr204w steht, umfasst; oder
    • (b) eines ein Polypeptid, eine Konsensussequenz oder ein Polypeptidmotiv wie in Spalte 5 von Tabelle II beziehungsweise in Spalte 7 von Tabelle IV gezeigt umfassenden Polypeptids, welches in der gleichen entsprechenden Zeile wie dieses Yhr204w steht, oder ein funktionelles Äquivalent oder ein Homolog davon wie in Spalte 7 von Tabelle II gezeigt, vorzugsweise ein Homolog oder funktionelles Äquivalent wie in Spalte 7 von Tabelle II B gezeigt, welches in der gleichen entsprechenden Zeile wie dieses Yhr204w steht,
    wie hier erwähnt, zur Erhöhung des Ertrags, z. B. zur Erhöhung eines oder mehrerer Ertragsmerkmale, zum Beispiel einer gesteigerten Toleranz gegenüber abiotischem Umweltstress, zum Beispiel einer erhöhten Toleranz gegenüber Dürre und/oder Toleranz gegenüber niedrigen Temperaturen und/oder einer erhöhten Effizienz der Nährstoffausnutzung, verglichen mit einer entsprechenden, z. B. nicht transformierten, Pflanzenzelle oder Pflanze vom Wildtyp oder einem Teil davon in einer Pflanzenzelle, einer Pflanze oder einem Teil davon, wie erwähnt, insbesondere für eine gesteigerte Toleranz gegenüber abiotischem Umweltstress, oder einen erhöhten Ertrag, oder eine gesteigerte Toleranz gegenüber abiotischem Umweltstress und einen erhöhten Ertrag. Dementsprechend handelt es sich bei einer Ausführungsform bei dem Molekül, dessen Aktivität im erfindungsgemäßen Verfahren zu erhöhen ist, um das Genprodukt mit einer als „für den Abbau von Glykoproteinen benötigtes Protein” beschriebenen Aktivität; bevorzugt handelt es sich dabei um das in Abschnitt (a) oder (b) dieses Absatzes beschriebene Molekül. Gemäß einer Ausführungsform wird das Molekül, dessen Aktivität bei dem erfindungsgemäßen Verfahren zu erhöhen ist und bei dem es sich um das Genprodukt mit einer als „für den Abbau von Glykoproteinen benötigtes Protein” beschriebenen Aktivität handelt, zytoplasmatisch erhöht.
  • Die Sequenz von Yll053c aus Saccharomyces cerevisiae, z. B. wie in Spalte 5 von Tabelle I gezeigt, wurde veröffentlicht (z. B. Sequenzen aus S. cerevisiae wurden in Goffeau et al., Science 274 (5287), 546 (1996) veröffentlicht, Sequenzen aus E. coli wurden in Blattner et al., Science 277 (5331), 1453 (1997) veröffentlicht), und/oder ihre Aktivität wurde als Aquaporin beschrieben. Dementsprechend umfasst das Verfahren der vorliegenden Erfindung gemäß einer Ausführungsform die Erhöhung oder Erzeugung der Aktivität eines Genprodukts mit der Aktivität eines „Aquaporins” aus Saccharomyces cerevisiae oder einem funktionellen Äquivalent davon oder einem Homolog davon, z. B. die Erhöhung
    • (a) eines Genprodukts eines Gens, das das Nukleinsäuremolekül, welches wie in Spalte 5 von Tabelle I gezeigt ist und in der gleichen entsprechenden Zeile wie dieses Yll053c steht, oder ein funktionelles Äquivalent oder ein Homolog davon wie in Spalte 7 von Tabelle I gezeigt, vorzugsweise ein Homolog oder funktionelles Äquivalent wie in Spalte 7 von Tabelle I B gezeigt, welches in der gleichen entsprechenden Zeile wie dieses Yll053c steht, umfasst; oder
    • (b) eines ein Polypeptid, eine Konsensussequenz oder ein Polypeptidmotiv wie in Spalte 5 von Tabelle II beziehungsweise in Spalte 7 von Tabelle IV gezeigt umfassenden Polypeptids, welches in der gleichen entsprechenden Zeile wie dieses Yll053c steht, oder ein funktionelles Äquivalent oder ein Homolog davon wie in Spalte 7 von Tabelle II gezeigt, vorzugsweise ein Homolog oder funktionelles Äquivalent wie in Spalte 7 von Tabelle II B gezeigt, welches in der gleichen entsprechenden Zeile wie dieses Yll053c steht,
    wie hier erwähnt, zur Erhöhung des Ertrags, z. B. zur Erhöhung eines oder mehrerer Ertragsmerkmale, zum Beispiel einer gesteigerten Toleranz gegenüber abiotischem Umweltstress, zum Beispiel einer erhöhten Toleranz gegenüber Dürre und/oder Toleranz gegenüber niedrigen Temperaturen und/oder einer erhöhten Effizienz der Nährstoffausnutzung, verglichen mit einer entsprechenden, z. B. nicht transformierten, Pflanzenzelle oder Pflanze vom Wildtyp oder einem Teil davon in einer Pflanzenzelle, einer Pflanze oder einem Teil davon, wie erwähnt, insbesondere für eine gesteigerte Toleranz gegenüber abiotischem Umweltstress, oder einen erhöhten Ertrag, oder eine gesteigerte Toleranz gegenüber abiotischem Umweltstress und einen erhöhten Ertrag. Dementsprechend handelt es sich bei einer Ausführungsform bei dem Molekül, dessen Aktivität im erfindungsgemäßen Verfahren zu erhöhen ist, um das Genprodukt mit einer als „Aquaporin” beschriebenen Aktivität; bevorzugt handelt es sich dabei um das in Abschnitt (a) oder (b) dieses Absatzes beschriebene Molekül. Gemäß einer Ausführungsform wird das Molekül, dessen Aktivität bei dem erfindungsgemäßen Verfahren zu erhöhen ist und bei dem es sich um das Genprodukt mit einer als „Aquaporin” beschriebenen Aktivität handelt, zytoplasmatisch erhöht.
  • Die Sequenz von Yml123c aus Saccharomyces cerevisiae, z. B. wie in Spalte 5 von Tabelle I gezeigt, wurde veröffentlicht (z. B. Sequenzen aus S. cerevisiae wurden in Goffeau et al., Science 274 (5287), 546 (1996) veröffentlicht, Sequenzen aus E. coli wurden in Blattner et al., Science 277 (5331), 1453 (1997) veröffentlicht), und/oder ihre Aktivität wurde als anorganischer Phosphattransporter beschrieben. Dementsprechend umfasst das Verfahren der vorliegenden Erfindung gemäß einer Ausführungsform die Erhöhung oder Erzeugung der Aktivität eines Genprodukts mit der Aktivität eines „anorganischen Phosphattransporters” aus Saccharomyces cerevisiae oder einem funktionellen Äquivalent davon oder einem Homolog davon, z. B. die Erhöhung
    • (a) eines Genprodukts eines Gens, das das Nukleinsäuremolekül, welches wie in Spalte 5 von Tabelle I gezeigt ist und in der gleichen entsprechenden Zeile wie dieses Yml123c steht, oder ein funktionelles Äquivalent oder ein Homolog davon wie in Spalte 7 von Tabelle I gezeigt, vorzugsweise ein Homolog oder funktionelles Äquivalent wie in Spalte 7 von Tabelle I B gezeigt, welches in der gleichen entsprechenden Zeile wie dieses Yml123c steht, umfasst; oder
    • (b) eines ein Polypeptid, eine Konsensussequenz oder ein Polypeptidmotiv wie in Spalte 5 von Tabelle II beziehungsweise in Spalte 7 von Tabelle IV gezeigt umfassenden Polypeptids, welches in der gleichen entsprechenden Zeile wie dieses Yml123c steht, oder ein funktionelles Äquivalent oder ein Homolog davon wie in Spalte 7 von Tabelle II gezeigt, vorzugsweise ein Homolog oder funktionelles Äquivalent wie in Spalte 7 von Tabelle II B gezeigt, welches in der gleichen entsprechenden Zeile wie dieses Yml123c steht,
    wie hier erwähnt, zur Erhöhung des Ertrags, z. B. zur Erhöhung eines oder mehrerer Ertragsmerkmale, zum Beispiel einer gesteigerten Toleranz gegenüber abiotischem Umweltstress, zum Beispiel einer erhöhten Toleranz gegenüber Dürre und/oder Toleranz gegenüber niedrigen Temperaturen und/oder einer erhöhten Effizienz der Nährstoffausnutzung, verglichen mit einer entsprechenden, z. B. nicht transformierten, Pflanzenzelle oder Pflanze vom Wildtyp oder einem Teil davon in einer Pflanzenzelle, einer Pflanze oder einem Teil davon, wie erwähnt, insbesondere für eine gesteigerte Toleranz gegenüber abiotischem Umweltstress, oder einen erhöhten Ertrag, oder eine gesteigerte Toleranz gegenüber abiotischem Umweltstress und einen erhöhten Ertrag. Dementsprechend handelt es sich bei einer Ausführungsform bei dem Molekül, dessen Aktivität im erfindungsgemäßen Verfahren zu erhöhen ist, um das Genprodukt mit einer als „anorganischer Phosphattransporter” beschriebenen Aktivität; bevorzugt handelt es sich dabei um das in Abschnitt (a) oder (b) dieses Absatzes beschriebene Molekül. Gemäß einer Ausführungsform wird das Molekül, dessen Aktivität bei dem erfindungsgemäßen Verfahren zu erhöhen ist und bei dem es sich um das Genprodukt mit einer als „anorganischer Phosphattransporter” beschriebenen Aktivität handelt, zytoplasmatisch erhöht.
  • Die Sequenz von Ynl142w aus Saccharomyces cerevisiae, z. B. wie in Spalte 5 von Tabelle I gezeigt, wurde veröffentlicht (z. B. Sequenzen aus S. cerevisiae wurden in Goffeau et al., Science 274 (5287), 546 (1996) veröffentlicht, Sequenzen aus E. coli wurden in Blattner et al., Science 277 (5331), 1453 (1997) veröffentlicht), und/oder ihre Aktivität wurde als Ammoniumtransporter beschrieben. Dementsprechend umfasst das Verfahren der vorliegenden Erfindung gemäß einer Ausführungsform die Erhöhung oder Erzeugung der Aktivität eines Genprodukts mit der Aktivität eines „Ammoniumtransporters” aus Saccharomyces cerevisiae oder einem funktionellen Äquivalent davon oder einem Homolog davon, z. B. die Erhöhung
    • (a) eines Genprodukts eines Gens, das das Nukleinsäuremolekül, welches wie in Spalte 5 von Tabelle I gezeigt ist und in der gleichen entsprechenden Zeile wie dieses Ynl142w steht, oder ein funktionelles Äquivalent oder ein Homolog davon wie in Spalte 7 von Tabelle I gezeigt, vorzugsweise ein Homolog oder funktionelles Äquivalent wie in Spalte 7 von Tabelle I B gezeigt, welches in der gleichen entsprechenden Zeile wie dieses Ynl142w steht, umfasst; oder
    • (b) eines ein Polypeptid, eine Konsensussequenz oder ein Polypeptidmotiv wie in Spalte 5 von Tabelle II beziehungsweise in Spalte 7 von Tabelle IV gezeigt umfassenden Polypeptids, welches in der gleichen entsprechenden Zeile wie dieses Ynl142w steht, oder ein funktionelles Äquivalent oder ein Homolog davon wie in Spalte 7 von Tabelle II gezeigt, vorzugsweise ein Homolog oder funktionelles Äquivalent wie in Spalte 7 von Tabelle II B gezeigt, welches in der gleichen entsprechenden Zeile wie dieses Ynl142w steht,
    wie hier erwähnt, zur Erhöhung des Ertrags, z. B. zur Erhöhung eines oder mehrerer Ertragsmerkmale, zum Beispiel einer gesteigerten Toleranz gegenüber abiotischem Umweltstress, zum Beispiel einer erhöhten Toleranz gegenüber Dürre und/oder Toleranz gegenüber niedrigen Temperaturen und/oder einer erhöhten Effizienz der Nährstoffausnutzung, verglichen mit einer entsprechenden, z. B. nicht transformierten, Pflanzenzelle oder Pflanze vom Wildtyp oder einem Teil davon in einer Pflanzenzelle, einer Pflanze oder einem Teil davon, wie erwähnt, insbesondere für eine gesteigerte Toleranz gegenüber abiotischem Umweltstress, oder einen erhöhten Ertrag, oder eine gesteigerte Toleranz gegenüber abiotischem Umweltstress und einen erhöhten Ertrag. Dementsprechend handelt es sich bei einer Ausführungsform bei dem Molekül, dessen Aktivität im erfindungsgemäßen Verfahren zu erhöhen ist, um das Genprodukt mit einer als „Ammoniumtransporter” beschriebenen Aktivität; bevorzugt handelt es sich dabei um das in Abschnitt (a) oder (b) dieses Absatzes beschriebene Molekül. Gemäß einer Ausführungsform wird das Molekül, dessen Aktivität bei dem erfindungsgemäßen Verfahren zu erhöhen ist und bei dem es sich um das Genprodukt mit einer als „Ammoniumtransporter” beschriebenen Aktivität handelt, zytoplasmatisch erhöht.
  • Die Sequenz von Ynr040w aus Saccharomyces cerevisiae, z. B. wie in Spalte 5 von Tabelle I gezeigt, wurde veröffentlicht (z. B. Sequenzen aus S. cerevisiae wurden in Goffeau et al., Science 274 (5287), 546 (1996) veröffentlicht, Sequenzen aus E. coli wurden in Blattner et al., Science 277 (5331), 1453 (1997) veröffentlicht), und/oder ihre Aktivität wurde als YNR040W-Protein beschrieben. Dementsprechend umfasst das Verfahren der vorliegenden Erfindung gemäß einer Ausführungsform die Erhöhung oder Erzeugung der Aktivität eines Genprodukts mit der Aktivität eines ”YNR040W-Proteins” aus Saccharomyces cerevisiae oder einem funktionellen Äquivalent davon oder einem Homolog davon, z. B. die Erhöhung
    • (a) eines Genprodukts eines Gens, das das Nukleinsäuremolekül, welches wie in Spalte 5 von Tabelle I gezeigt ist und in der gleichen entsprechenden Zeile wie dieses Ynr040w steht, oder ein funktionelles Äquivalent oder ein Homolog davon wie in Spalte 7 von Tabelle I gezeigt, vorzugsweise ein Homolog oder funktionelles Äquivalent wie in Spalte 7 von Tabelle I B gezeigt, welches in der gleichen entsprechenden Zeile wie dieses Ynr040w steht, umfasst; oder
    • (b) eines ein Polypeptid, eine Konsensussequenz oder ein Polypeptidmotiv wie in Spalte 5 von Tabelle II beziehungsweise in Spalte 7 von Tabelle IV gezeigt umfassenden Polypeptids, welches in der gleichen entsprechenden Zeile wie dieses Ynr040w steht, oder ein funktionelles Äquivalent oder ein Homolog davon wie in Spalte 7 von Tabelle II gezeigt, vorzugsweise ein Homolog oder funktionelles Äquivalent wie in Spalte 7 von Tabelle II B gezeigt, welches in der gleichen entsprechenden Zeile wie dieses Ynr040w steht,
    wie hier erwähnt, zur Erhöhung des Ertrags, z. B. zur Erhöhung eines oder mehrerer Ertragsmerkmale, zum Beispiel einer gesteigerten Toleranz gegenüber abiotischem Umweltstress, zum Beispiel einer erhöhten Toleranz gegenüber Düne und/oder Toleranz gegenüber niedrigen Temperaturen und/oder einer erhöhten Effizienz der Nährstoffausnutzung, verglichen mit einer entsprechenden, z. B. nicht transformierten, Pflanzenzelle oder Pflanze vom Wildtyp oder einem Teil davon in einer Pflanzenzelle, einer Pflanze oder einem Teil davon, wie erwähnt, insbesondere für eine gesteigerte Toleranz gegenüber abiotischem Umweltstress, oder einen erhöhten Ertrag, oder eine gesteigerte Toleranz gegenüber abiotischem Umweltstress und einen erhöhten Ertrag. Dementsprechend handelt es sich bei einer Ausführungsform bei dem Molekül, dessen Aktivität im erfindungsgemäßen Verfahren zu erhöhen ist, um das Genprodukt mit einer als „YNR040W-Protein” beschriebenen Aktivität; bevorzugt handelt es sich dabei um das in Abschnitt (a) oder (b) dieses Absatzes beschriebene Molekül. Gemäß einer Ausführungsform wird das Molekül, dessen Aktivität bei dem erfindungsgemäßen Verfahren zu erhöhen ist und bei dem es sich um das Genprodukt mit einer als „YNR040W-Protein” beschriebenen Aktivität handelt, zytoplasmatisch erhöht.
  • Die Sequenz von Ypr035w aus Saccharomyces cerevisiae, z. B. wie in Spalte 5 von Tabelle I gezeigt, wurde veröffentlicht (z. B. Sequenzen aus S. cerevisiae wurden in Goffeau et al., Science 274 (5287), 546 (1996) veröffentlicht, Sequenzen aus E. coli wurden in Blattner et al., Science 277 (5331), 1453 (1997) veröffentlicht), und/oder ihre Aktivität wurde als Glutaminsynthetase beschrieben. Dementsprechend umfasst das Verfahren der vorliegenden Erfindung gemäß einer Ausführungsform die Erhöhung oder Erzeugung der Aktivität eines Genprodukts mit der Aktivität einer „Glutaminsynthetase” aus Saccharomyces cerevisiae oder einem funktionellen Äquivalent davon oder einem Homolog davon, z. B. die Erhöhung
    • (a) eines Genprodukts eines Gens, das das Nukleinsäuremolekül, welches wie in Spalte 5 von Tabelle I gezeigt ist und in der gleichen entsprechenden Zeile wie dieses Ypr035w steht, oder ein funktionelles Äquivalent oder ein Homolog davon wie in Spalte 7 von Tabelle I gezeigt, vorzugsweise ein Homolog oder funktionelles Äquivalent wie in Spalte 7 von Tabelle I B gezeigt, welches in der gleichen entsprechenden Zeile wie dieses Ypr035w steht, umfasst; oder
    • (b) eines ein Polypeptid, eine Konsensussequenz oder ein Polypeptidmotiv wie in Spalte 5 von Tabelle II beziehungsweise in Spalte 7 von Tabelle IV gezeigt umfassenden Polypeptids, welches in der gleichen entsprechenden Zeile wie dieses Ypr035w steht, oder ein funktionelles Äquivalent oder ein Homolog davon wie in Spalte 7 von Tabelle II gezeigt, vorzugsweise ein Homolog oder funktionelles Äquivalent wie in Spalte 7 von Tabelle II B gezeigt, welches in der gleichen entsprechenden Zeile wie dieses Ypr035w steht,
    wie hier erwähnt, zur Erhöhung des Ertrags, z. B. zur Erhöhung eines oder mehrerer Ertragsmerkmale, zum Beispiel einer gesteigerten Toleranz gegenüber abiotischem Umweltstress, zum Beispiel einer erhöhten Toleranz gegenüber Dürre und/oder Toleranz gegenüber niedrigen Temperaturen und/oder einer erhöhten Effizienz der Nährstoffausnutzung, verglichen mit einer entsprechenden, z. B. nicht transformierten, Pflanzenzelle oder Pflanze vom Wildtyp oder einem Teil davon in einer Pflanzenzelle, einer Pflanze oder einem Teil davon, wie erwähnt, insbesondere für eine gesteigerte Toleranz gegenüber abiotischem Umweltstress, oder einen erhöhten Ertrag, oder eine gesteigerte Toleranz gegenüber abiotischem Umweltstress und einen erhöhten Ertrag. Dementsprechend handelt es sich bei einer Ausführungsform bei dem Molekül, dessen Aktivität im erfindungsgemäßen Verfahren zu erhöhen ist, um das Genprodukt mit einer als „Glutaminsynthetase” beschriebenen Aktivität; bevorzugt handelt es sich dabei um das in Abschnitt (a) oder (b) dieses Absatzes beschriebene Molekül. Gemäß einer Ausführungsform wird das Molekül, dessen Aktivität bei dem erfindungsgemäßen Verfahren zu erhöhen ist und bei dem es sich um das Genprodukt mit einer als „Glutaminsynthetase” beschriebenen Aktivität handelt, zytoplasmatisch erhöht.
  • Die Sequenz von B0903 aus Escherichia coli, z. B. wie in Spalte 5 von Tabelle I gezeigt, wurde veröffentlicht (z. B. Sequenzen aus S. cerevisiae wurden in Goffeau et al., Science 274 (5287), 546 (1996) veröffentlicht, Sequenzen aus E. coli wurden in Blattner et al., Science 277 (5331), 1453 (1997) veröffentlicht), und/oder ihre Aktivität wurde als Formiatacetyltransferase 1 beschrieben. Dementsprechend umfasst das Verfahren der vorliegenden Erfindung gemäß einer Ausführungsform die Erhöhung oder Erzeugung der Aktivität eines Genprodukts mit der Aktivität einer „Formiatacetyltransferase 1” aus Escherichia coli oder einem funktionellen Äquivalent davon oder einem Homolog davon, z. B. die Erhöhung
    • (a) eines Genprodukts eines Gens, das das Nukleinsäuremolekül, welches wie in Spalte 5 von Tabelle I gezeigt ist und in der gleichen entsprechenden Zeile wie dieses B0903 steht, oder ein funktionelles Äquivalent oder ein Homolog davon wie in Spalte 7 von Tabelle I gezeigt, vorzugsweise ein Homolog oder funktionelles Äquivalent wie in Spalte 7 von Tabelle I B gezeigt, welches in der gleichen entsprechenden Zeile wie dieses B0903 steht, umfasst; oder
    • (b) eines ein Polypeptid, eine Konsensussequenz oder ein Polypeptidmotiv wie in Spalte 5 von Tabelle II beziehungsweise in Spalte 7 von Tabelle IV gezeigt umfassenden Polypeptids, welches in der gleichen entsprechenden Zeile wie dieses B0903 steht, oder ein funktionelles Äquivalent oder ein Homolog davon wie in Spalte 7 von Tabelle II gezeigt, vorzugsweise ein Homolog oder funktionelles Äquivalent wie in Spalte 7 von Tabelle II B gezeigt, welches in der gleichen entsprechenden Zeile wie dieses B0903 steht,
    wie hier erwähnt, zur Erhöhung des Ertrags, z. B. zur Erhöhung eines oder mehrerer Ertragsmerkmale, zum Beispiel einer gesteigerten Toleranz gegenüber abiotischem Umweltstress, zum Beispiel einer erhöhten Toleranz gegenüber Dürre und/oder Toleranz gegenüber niedrigen Temperaturen und/oder einer erhöhten Effizienz der Nährstoffausnutzung, verglichen mit einer entsprechenden, z. B. nicht transformierten, Pflanzenzelle oder Pflanze vom Wildtyp oder einem Teil davon in einer Pflanzenzelle, einer Pflanze oder einem Teil davon, wie erwähnt, insbesondere für eine verbesserte Toleranz gegenüber abiotischem Umweltstress, oder einen erhöhten Ertrag, oder eine verbesserte Toleranz gegenüber abiotischem Umweltstress und einen erhöhten Ertrag. Dementsprechend handelt es sich bei einer Ausführungsform bei dem Molekül, dessen Aktivität im erfindungsgemäßen Verfahren zu erhöhen ist, um das Genprodukt mit einer als „Formiatacetyltransferase 1” beschriebenen Aktivität; bevorzugt handelt es sich dabei um das in Abschnitt (a) oder (b) dieses Absatzes beschriebene Molekül. Gemäß einer Ausführungsform wird das Molekül, dessen Aktivität bei dem erfindungsgemäßen Verfahren zu erhöhen ist und bei dem es sich um das Genprodukt mit einer als „Formiatacetyltransferase 1” beschriebenen Aktivität handelt, wie in Spalte 6 von Tabelle 1 angeführt, z. B. plastidisch oder plastidisch und/oder zytoplasmatisch erhöht.
  • Die Sequenz von B1393 aus Escherichia coli, z. B. wie in Spalte 5 von Tabelle I gezeigt, wurde veröffentlicht (z. B. Sequenzen aus S. cerevisiae wurden in Goffeau et al., Science 274 (5287), 546 (1996) veröffentlicht, Sequenzen aus E. coli wurden in Blattner et al., Science 277 (5331), 1453 (1997) veröffentlicht), und/oder ihre Aktivität wurde als Enoyl-CoA-Hydratase beschrieben. Dementsprechend umfasst das Verfahren der vorliegenden Erfindung gemäß einer Ausführungsform die Erhöhung oder Erzeugung der Aktivität eines Genprodukts mit der Aktivität einer „Enoyl-CoA-Hydratase” aus Escherichia coli oder einem funktionellen Äquivalent davon oder einem Homolog davon, z. B. die Erhöhung
    • (a) eines Genprodukts eines Gens, das das Nukleinsäuremolekül, welches wie in Spalte 5 von Tabelle I gezeigt ist und in der gleichen entsprechenden Zeile wie dieses B1393 steht, oder ein funktionelles Äquivalent oder ein Homolog davon wie in Spalte 7 von Tabelle I gezeigt, vorzugsweise ein Homolog oder funktionelles Äquivalent wie in Spalte 7 von Tabelle I B gezeigt, welches in der gleichen entsprechenden Zeile wie dieses B1393 steht, umfasst; oder
    • (b) eines ein Polypeptid, eine Konsensussequenz oder ein Polypeptidmotiv wie in Spalte 5 von Tabelle II beziehungsweise in Spalte 7 von Tabelle IV gezeigt umfassenden Polypeptids, welches in der gleichen entsprechenden Zeile wie dieses B1393 steht, oder ein funktionelles Äquivalent oder ein Homolog davon wie in Spalte 7 von Tabelle II gezeigt, vorzugsweise ein Homolog oder funktionelles Äquivalent wie in Spalte 7 von Tabelle II B gezeigt, welches in der gleichen entsprechenden Zeile wie dieses B1393 steht,
    wie hier erwähnt, zur Erhöhung des Ertrags, z. B. zur Erhöhung eines oder mehrerer Ertragsmerkmale, zum Beispiel einer gesteigerten Toleranz gegenüber abiotischem Umweltstress, zum Beispiel einer erhöhten Toleranz gegenüber Dürre und/oder Toleranz gegenüber niedrigen Temperaturen und/oder einer erhöhten Effizienz der Nährstoffausnutzung, verglichen mit einer entsprechenden, z. B. nicht transformierten, Pflanzenzelle oder Pflanze vom Wildtyp oder einem Teil davon in einer Pflanzenzelle, einer Pflanze oder einem Teil davon, wie erwähnt, insbesondere für eine gesteigerte Toleranz gegenüber abiotischem Umweltstress, oder einen erhöhten Ertrag, oder eine gesteigerte Toleranz gegenüber abiotischem Umweltstress und einen erhöhten Ertrag. Dementsprechend handelt es sich bei einer Ausführungsform bei dem Molekül, dessen Aktivität im erfindungsgemäßen Verfahren zu erhöhen ist, um das Genprodukt mit einer als „Enoyl-CoA-Hydratase” beschriebenen Aktivität; bevorzugt handelt es sich dabei um das in Abschnitt (a) oder (b) dieses Absatzes beschriebene Molekül. Gemäß einer Ausführungsform wird das Molekül, dessen Aktivität bei dem erfindungsgemäßen Verfahren zu erhöhen ist und bei dem es sich um das Genprodukt mit einer als „Enoyl-CoA-Hydratase” beschriebenen Aktivität handelt, zytoplasmatisch erhöht.
  • Die Sequenz von B2704 aus Escherichia coli, z. B. wie in Spalte 5 von Tabelle I gezeigt, wurde veröffentlicht (z. B. Sequenzen aus S. cerevisiae wurden in Goffeau et al., Science 274 (5287), 546 (1996) veröffentlicht, Sequenzen aus E. coli wurden in Blattner et al., Science 277 (5331), 1453 (1997) veröffentlicht), und/oder ihre Aktivität wurde als Protein einer Glucit/Sorbit-spezifischen Enzym-IIA-Komponente beschrieben. Dementsprechend umfasst das Verfahren der vorliegenden Erfindung gemäß einer Ausführungsform die Erhöhung oder Erzeugung der Aktivität eines Genprodukts mit der Aktivität eines „Proteins einer Glucit/Sorbit-spezifischen Enzym-IIA-Komponente” aus Escherichia coli oder einem funktionellen Äquivalent davon oder einem Homolog davon, z. B. die Erhöhung
    • (a) eines Genprodukts eines Gens, das das Nukleinsäuremolekül, welches wie in Spalte 5 von Tabelle I gezeigt ist und in der gleichen entsprechenden Zeile wie dieses B2704 steht, oder ein funktionelles Äquivalent oder ein Homolog davon wie in Spalte 7 von Tabelle I gezeigt, vorzugsweise ein Homolog oder funktionelles Äquivalent wie in Spalte 7 von Tabelle I B gezeigt, welches in der gleichen entsprechenden Zeile wie dieses B2704 steht, umfasst; oder
    • (b) eines ein Polypeptid, eine Konsensussequenz oder ein Polypeptidmotiv wie in Spalte 5 von Tabelle II beziehungsweise in Spalte 7 von Tabelle IV gezeigt umfassenden Polypeptids, welches in der gleichen entsprechenden Zeile wie dieses B2704 steht, oder ein funktionelles Äquivalent oder ein Homolog davon wie in Spalte 7 von Tabelle II gezeigt, vorzugsweise ein Homolog oder funktionelles Äquivalent wie in Spalte 7 von Tabelle II B gezeigt, welches in der gleichen entsprechenden Zeile wie dieses B2704 steht,
    wie hier erwähnt, zur Erhöhung des Ertrags, z. B. zur Erhöhung eines oder mehrerer Ertragsmerkmale, zum Beispiel einer gesteigerten Toleranz gegenüber abiotischem Umweltstress, zum Beispiel einer erhöhten Toleranz gegenüber Dürre und/oder Toleranz gegenüber niedrigen Temperaturen und/oder einer erhöhten Effizienz der Nährstoffausnutzung, verglichen mit einer entsprechenden, z. B. nicht transformierten, Pflanzenzelle oder Pflanze vom Wildtyp oder einem Teil davon in einer Pflanzenzelle, einer Pflanze oder einem Teil davon, wie erwähnt, insbesondere für eine gesteigerte Toleranz gegenüber abiotischem Umweltstress, oder einen erhöhten Ertrag, oder eine gesteigerte Toleranz gegenüber abiotischem Umweltstress und einen erhöhten Ertrag. Dementsprechend handelt es sich bei einer Ausführungsform bei dem Molekül, dessen Aktivität im erfindungsgemäßen Verfahren zu erhöhen ist, um das Genprodukt mit einer als „Protein einer Glucit/Sorbit-spezifischen Enzym-IIA-Komponente” beschriebenen Aktivität; bevorzugt handelt es sich dabei um das in Abschnitt (a) oder (b) dieses Absatzes beschriebene Molekül. Gemäß einer Ausführungsform wird das Molekül, dessen Aktivität bei dem erfindungsgemäßen Verfahren zu erhöhen ist und bei dem es sich um das Genprodukt mit einer als „Protein einer Glucit/Sorbit-spezifischen Enzym-IIA-Komponente” beschriebenen Aktivität handelt, plastidisch erhöht.
  • Die Sequenz von B2905 aus Escherichia coli, z. B. wie in Spalte 5 von Tabelle I gezeigt, wurde veröffentlicht (z. B. Sequenzen aus S. cerevisiae wurden in Goffeau et al., Science 274 (5287), 546 (1996) veröffentlicht, Sequenzen aus E. coli wurden in Blattner et al., Science 277 (5331), 1453 (1997) veröffentlicht), und/oder ihre Aktivität wurde als Aminomethyltransferase beschrieben. Dementsprechend umfasst das Verfahren der vorliegenden Erfindung gemäß einer Ausführungsform die Erhöhung oder Erzeugung der Aktivität eines Genprodukts mit der Aktivität einer „Aminomethyltransferase” aus Escherichia coli oder einem funktionellen Äquivalent davon oder einem Homolog davon, z. B. die Erhöhung
    • (a) eines Genprodukts eines Gens, das das Nukleinsäuremolekül, welches wie in Spalte 5 von Tabelle I gezeigt ist und in der gleichen entsprechenden Zeile wie dieses B2905 steht, oder ein funktionelles Äquivalent oder ein Homolog davon wie in Spalte 7 von Tabelle I gezeigt, vorzugsweise ein Homolog oder funktionelles Äquivalent wie in Spalte 7 von Tabelle I B gezeigt, welches in der gleichen entsprechenden Zeile wie dieses B2905 steht, umfasst; oder
    • (b) eines ein Polypeptid, eine Konsensussequenz oder ein Polypeptidmotiv wie in Spalte 5 von Tabelle II beziehungsweise in Spalte 7 von Tabelle IV gezeigt umfassenden Polypeptids, welches in der gleichen entsprechenden Zeile wie dieses B2905 steht, oder ein funktionelles Äquivalent oder ein Homolog davon wie in Spalte 7 von Tabelle II gezeigt, vorzugsweise ein Homolog oder funktionelles Äquivalent wie in Spalte 7 von Tabelle II B gezeigt, welches in der gleichen entsprechenden Zeile wie dieses B2905 steht,
    wie hier erwähnt, zur Erhöhung des Ertrags, z. B. zur Erhöhung eines oder mehrerer Ertragsmerkmale, zum Beispiel einer gesteigerten Toleranz gegenüber abiotischem Umweltstress, zum Beispiel einer erhöhten Toleranz gegenüber Dürre und/oder Toleranz gegenüber niedrigen Temperaturen und/oder einer erhöhten Effizienz der Nährstoffausnutzung, verglichen mit einer entsprechenden, z. B. nicht transformierten, Pflanzenzelle oder Pflanze vom Wildtyp oder einem Teil davon in einer Pflanzenzelle, einer Pflanze oder einem Teil davon, wie erwähnt, insbesondere für eine gesteigerte Toleranz gegenüber abiotischem Umweltstress, oder einen erhöhten Ertrag, oder eine gesteigerte Toleranz gegenüber abiotischem Umweltstress und einen erhöhten Ertrag. Dementsprechend handelt es sich bei einer Ausführungsform bei dem Molekül, dessen Aktivität im erfindungsgemäßen Verfahren zu erhöhen ist, um das Genprodukt mit einer als „Aminomethyltransferase” beschriebenen Aktivität; bevorzugt handelt es sich dabei um das in Abschnitt (a) oder (b) dieses Absatzes beschriebene Molekül. Gemäß einer Ausführungsform wird das Molekül, dessen Aktivität bei dem erfindungsgemäßen Verfahren zu erhöhen ist und bei dem es sich um das Genprodukt mit einer als „Aminomethyltransferase” beschriebenen Aktivität handelt, zytoplasmatisch erhöht.
  • Die Sequenz von B3206 aus Escherichia coli, z. B. wie in Spalte 5 von Tabelle I gezeigt, wurde veröffentlicht (z. B. Sequenzen aus S. cerevisiae wurden in Goffeau et al., Science 274 (5287), 546 (1996) veröffentlicht, Sequenzen aus E. coli wurden in Blattner et al., Science 277 (5331), 1453 (1997) veröffentlicht), und/oder ihre Aktivität wurde als Phosphoträgerprotein beschrieben. Dementsprechend umfasst das Verfahren der vorliegenden Erfindung gemäß einer Ausführungsform die Erhöhung oder Erzeugung der Aktivität eines Genprodukts mit der Aktivität eines „Phosphoträgerproteins” aus Escherichia coli oder einem funktionellen Äquivalent davon oder einem Homolog davon, z. B. die Erhöhung
    • (a) eines Genprodukts eines Gens, das das Nukleinsäuremolekül, welches wie in Spalte 5 von Tabelle I gezeigt ist und in der gleichen entsprechenden Zeile wie dieses B3206 steht, oder ein funktionelles Äquivalent oder ein Homolog davon wie in Spalte 7 von Tabelle I gezeigt, vorzugsweise ein Homolog oder funktionelles Äquivalent wie in Spalte 7 von Tabelle I B gezeigt, welches in der gleichen entsprechenden Zeile wie dieses B3206 steht, umfasst; oder
    • (b) eines ein Polypeptid, eine Konsensussequenz oder ein Polypeptidmotiv wie in Spalte 5 von Tabelle II beziehungsweise in Spalte 7 von Tabelle IV gezeigt umfassenden Polypeptids, welches in der gleichen entsprechenden Zeile wie dieses B3206 steht, oder ein funktionelles Äquivalent oder ein Homolog davon wie in Spalte 7 von Tabelle II gezeigt, vorzugsweise ein Homolog oder funktionelles Äquivalent wie in Spalte 7 von Tabelle II B gezeigt, welches in der gleichen entsprechenden Zeile wie dieses B3206 steht,
    wie hier erwähnt, zur Erhöhung des Ertrags, z. B. zur Erhöhung eines oder mehrerer Ertragsmerkmale, zum Beispiel einer gesteigerten Toleranz gegenüber abiotischem Umweltstress, zum Beispiel einer erhöhten Toleranz gegenüber Dürre und/oder Toleranz gegenüber niedrigen Temperaturen und/oder einer erhöhten Effizienz der Nährstoffausnutzung, verglichen mit einer entsprechenden, z. B. nicht transformierten, Pflanzenzelle oder Pflanze vom Wildtyp oder einem Teil davon in einer Pflanzenzelle, einer Pflanze oder einem Teil davon, wie erwähnt, insbesondere für eine gesteigerte Toleranz gegenüber abiotischem Umweltstress, oder einen erhöhten Ertrag, oder eine gesteigerte Toleranz gegenüber abiotischem Umweltstress und einen erhöhten Ertrag. Dementsprechend handelt es sich bei einer Ausführungsform bei dem Molekül, dessen Aktivität im erfindungsgemäßen Verfahren zu erhöhen ist, um das Genprodukt mit einer als „Phosphoträgerprotein” beschriebenen Aktivität; bevorzugt handelt es sich dabei um das in Abschnitt (a) oder (b) dieses Absatzes beschriebene Molekül. Gemäß einer Ausführungsform wird das Molekül, dessen Aktivität bei dem erfindungsgemäßen Verfahren zu erhöhen ist und bei dem es sich um das Genprodukt mit einer als „Phosphoträgerprotein” beschriebenen Aktivität handelt, plastidisch erhöht.
  • Die Sequenz von B3659 aus Escherichia coli, z. B. wie in Spalte 5 von Tabelle I gezeigt, wurde veröffentlicht (z. B. Sequenzen aus S. cerevisiae wurden in Goffeau et al., Science 274 (5287), 546 (1996) veröffentlicht, Sequenzen aus E. coli wurden in Blattner et al., Science 277 (5331), 1453 (1997) veröffentlicht), und/oder ihre Aktivität wurde als Zwei-Modul-Transportprotein beschrieben. Dementsprechend umfasst das Verfahren der vorliegenden Erfindung gemäß einer Ausführungsform die Erhöhung oder Erzeugung der Aktivität eines Genprodukts mit der Aktivität eines „Zwei-Modul-Transportproteins” aus Escherichia coli oder einem funktionellen Äquivalent davon oder einem Homolog davon, z. B. die Erhöhung
    • (a) eines Genprodukts eines Gens, das das Nukleinsäuremolekül, welches wie in Spalte 5 von Tabelle I gezeigt ist und in der gleichen entsprechenden Zeile wie dieses B3659 steht, oder ein funktionelles Äquivalent oder ein Homolog davon wie in Spalte 7 von Tabelle I gezeigt, vorzugsweise ein Homolog oder funktionelles Äquivalent wie in Spalte 7 von Tabelle I B gezeigt, welches in der gleichen entsprechenden Zeile wie dieses B3659 steht, umfasst; oder
    • (b) eines ein Polypeptid, eine Konsensussequenz oder ein Polypeptidmotiv wie in Spalte 5 von Tabelle II beziehungsweise in Spalte 7 von Tabelle IV gezeigt umfassenden Polypeptids, welches in der gleichen entsprechenden Zeile wie dieses B3659 steht, oder ein funktionelles Äquivalent oder ein Homolog davon wie in Spalte 7 von Tabelle II gezeigt, vorzugsweise ein Homolog oder funktionelles Äquivalent wie in Spalte 7 von Tabelle II B gezeigt, welches in der gleichen entsprechenden Zeile wie dieses B3659 steht,
    wie hier erwähnt, zur Erhöhung des Ertrags, z. B. zur Erhöhung eines oder mehrerer Ertragsmerkmale, zum Beispiel einer gesteigerten Toleranz gegenüber abiotischem Umweltstress, zum Beispiel einer erhöhten Toleranz gegenüber Dürre und/oder Toleranz gegenüber niedrigen Temperaturen und/oder einer erhöhten Effizienz der Nährstoffausnutzung, verglichen mit einer entsprechenden, z. B. nicht transformierten, Pflanzenzelle oder Pflanze vom Wildtyp oder einem Teil davon in einer Pflanzenzelle, einer Pflanze oder einem Teil davon, wie erwähnt, insbesondere für eine gesteigerte Toleranz gegenüber abiotischem Umweltstress, oder einen erhöhten Ertrag, oder eine gesteigerte Toleranz gegenüber abiotischem Umweltstress und einen erhöhten Ertrag. Dementsprechend handelt es sich bei einer Ausführungsform bei dem Molekül, dessen Aktivität im erfindungsgemäßen Verfahren zu erhöhen ist, um das Genprodukt mit einer als „Zwei-Modul-Transportprotein” beschriebenen Aktivität; bevorzugt handelt es sich dabei um das in Abschnitt (a) oder (b) dieses Absatzes beschriebene Molekül. Gemäß einer Ausführungsform wird das Molekül, dessen Aktivität bei dem erfindungsgemäßen Verfahren zu erhöhen ist und bei dem es sich um das Genprodukt mit einer als „Zwei-Modul-Transportprotein” beschriebenen Aktivität handelt, zytoplasmatisch erhöht.
  • Die Sequenz von B3871 aus Escherichia coli, z. B. wie in Spalte 5 von Tabelle I gezeigt, wurde veröffentlicht (z. B. Sequenzen aus S. cerevisiae wurden in Goffeau et al., Science 274 (5287), 546 (1996) veröffentlicht, Sequenzen aus E. coli wurden in Blattner et al., Science 277 (5331), 1453 (1997) veröffentlicht), und/oder ihre Aktivität wurde als GTP-bindendes Protein beschrieben. Dementsprechend umfasst das Verfahren der vorliegenden Erfindung gemäß einer Ausführungsform die Erhöhung oder Erzeugung der Aktivität eines Genprodukts mit der Aktivität eines „GTP-bindenden Proteins” aus Escherichia coli oder einem funktionellen Äquivalent davon oder einem Homolog davon, z. B. die Erhöhung
    • (a) eines Genprodukts eines Gens, das das Nukleinsäuremolekül, welches wie in Spalte 5 von Tabelle I gezeigt ist und in der gleichen entsprechenden Zeile wie dieses B3871 steht, oder ein funktionelles Äquivalent oder ein Homolog davon wie in Spalte 7 von Tabelle I gezeigt, vorzugsweise ein Homolog oder funktionelles Äquivalent wie in Spalte 7 von Tabelle I B gezeigt, welches in der gleichen entsprechenden Zeile wie dieses B3871 steht, umfasst; oder
    • (b) eines ein Polypeptid, eine Konsensussequenz oder ein Polypeptidmotiv wie in Spalte 5 von Tabelle II beziehungsweise in Spalte 7 von Tabelle IV gezeigt umfassenden Polypeptids, welches in der gleichen entsprechenden Zeile wie dieses B3871 steht, oder ein funktionelles Äquivalent oder ein Homolog davon wie in Spalte 7 von Tabelle II gezeigt, vorzugsweise ein Homolog oder funktionelles Äquivalent wie in Spalte 7 von Tabelle II B gezeigt, welches in der gleichen entsprechenden Zeile wie dieses B3871 steht,
    wie hier erwähnt, zur Erhöhung des Ertrags, z. B. zur Erhöhung eines oder mehrerer Ertragsmerkmale, zum Beispiel einer gesteigerten Toleranz gegenüber abiotischem Umweltstress, mm Beispiel einer erhöhten Toleranz gegenüber Dürre und/oder Toleranz gegenüber niedrigen Temperaturen und/oder einer erhöhten Effizienz der Nährstoffausnutzung, verglichen mit einer entsprechenden, z. B. nicht transformierten, Pflanzenzelle oder Pflanze vom Wildtyp oder einem Teil davon in einer Pflanzenzelle, einer Pflanze oder einem Teil davon, wie erwähnt, insbesondere für eine gesteigerte Toleranz gegenüber abiotischem Umweltstress, oder einen erhöhten Ertrag, oder eine gesteigerte Toleranz gegenüber abiotischem Umweltstress und einen erhöhten Ertrag. Dementsprechend handelt es sich bei einer Ausführungsform bei dem Molekül, dessen Aktivität im erfindungsgemäßen Verfahren zu erhöhen ist, um das Genprodukt mit einer als „GTP-bindendes Protein” beschriebenen Aktivität; bevorzugt handelt es sich dabei um das in Abschnitt (a) oder (b) dieses Absatzes beschriebenen Molekül. Gemäß einer Ausführungsform wird das Molekül, dessen Aktivität bei dem erfindungsgemäßen Verfahren zu erhöhen ist und bei dem es sich um das Genprodukt mit einer als „GTP-bindendes Protein” beschriebenen Aktivität handelt, zytoplasmatisch erhöht.
  • Die Sequenz von Ydr142c aus Saccharomyces cerevisiae, z. B. wie in Spalte 5 von Tabelle I gezeigt, wurde veröffentlicht (z. B. Sequenzen aus S. cerevisiae wurden in Goffeau et al., Science 274 (5287), 546 (1996) veröffentlicht, Sequenzen aus E. coli wurden in Blattner et al., Science 277 (5331), 1453 (1997) veröffentlicht), und/oder ihre Aktivität wurde als Peroxisomal-Targeting-Signal-2-Rezeptor beschrieben. Dementsprechend umfasst das Verfahren der vorliegenden Erfindung gemäß einer Ausführungsform die Erhöhung oder Erzeugung der Aktivität eines Genprodukts mit der Aktivität eines „Peroxisomal-Targeting-Signal-2-Rezeptors” aus Saccharomyces cerevisiae oder einem funktionellen Äquivalent davon oder einem Homolog davon, z. B. die Erhöhung
    • (a) eines Genprodukts eines Gens, das das Nukleinsäuremolekül, welches wie in Spalte 5 von Tabelle I gezeigt ist und in der gleichen entsprechenden Zeile wie dieses Ydr142c steht, oder ein funktionelles Äquivalent oder ein Homolog davon wie in Spalte 7 von Tabelle I gezeigt, vorzugsweise ein Homolog oder funktionelles Äquivalent wie in Spalte 7 von Tabelle I B gezeigt, welches in der gleichen entsprechenden Zeile wie dieses Ydr142c steht, umfasst; oder
    • (b) eines ein Polypeptid, eine Konsensussequenz oder ein Polypeptidmotiv wie in Spalte 5 von Tabelle II beziehungsweise in Spalte 7 von Tabelle IV gezeigt umfassenden Polypeptids, welches in der gleichen entsprechenden Zeile wie dieses Ydr142c steht, oder ein funktionelles Äquivalent oder ein Homolog davon wie in Spalte 7 von Tabelle II gezeigt, vorzugsweise ein Homolog oder funktionelles Äquivalent wie in Spalte 7 von Tabelle II B gezeigt, welches in der gleichen entsprechenden Zeile wie dieses Ydr142c steht,
    wie hier erwähnt, zur Erhöhung des Ertrags, z. B. zur Erhöhung eines oder mehrerer Ertragsmerkmale, zum Beispiel einer gesteigerten Toleranz gegenüber abiotischem Umweltstress, zum Beispiel einer erhöhten Toleranz gegenüber Dürre und/oder Toleranz gegenüber niedrigen Temperaturen und/oder einer erhöhten Effizienz der Nährstoffausnutzung, verglichen mit einer entsprechenden, z. B. nicht transformierten, Pflanzenzelle oder Pflanze vom Wildtyp oder einem Teil davon in einer Pflanzenzelle, einer Pflanze oder einem Teil davon, wie erwähnt, insbesondere für eine gesteigerte Toleranz gegenüber abiotischem Umweltstress, oder einen erhöhten Ertrag, oder eine gesteigerte Toleranz gegenüber abiotischem Umweltstress und einen erhöhten Ertrag. Dementsprechend handelt es sich bei einer Ausführungsform bei dem Molekül, dessen Aktivität im erfindungsgemäßen Verfahren zu erhöhen ist, um das Genprodukt mit einer als „Peroxisomal-Targeting-Signal-2-Rezeptor” beschriebenen Aktivität; bevorzugt handelt es sich dabei um das in Abschnitt (a) oder (b) dieses Absatzes beschriebene Molekül. Gemäß einer Ausführungsform wird das Molekül, dessen Aktivität bei dem erfindungsgemäßen Verfahren zu erhöhen ist und bei dem es sich um das Genprodukt mit einer als „Peroxisomal-Targeting-Signal-2-Rezeptor” beschriebenen Aktivität handelt, plastidisch erhöht.
  • Die Sequenz von Yer175w-a aus Saccharomyces cerevisiae, z. B. wie in Spalte 5 von Tabelle I gezeigt, wurde veröffentlicht (z. B. Sequenzen aus S. cerevisiae wurden in Goffeau et al., Science 274 (5287), 546 (1996) veröffentlicht, Sequenzen aus E. coli wurden in Blattner et al., Science 277 (5331), 1453 (1997) veröffentlicht), und/oder ihre Aktivität wurde als yer175w-a-Protein beschrieben. Dementsprechend umfasst das Verfahren der vorliegenden Erfindung gemäß einer Ausführungsform die Erhöhung oder Erzeugung der Aktivität eines Genprodukts mit der Aktivität eines ”yer175w-a-Proteins” aus Saccharomyces cerevisiae oder einem funktionellen Äquivalent davon oder einem Homolog davon, z. B. die Erhöhung
    • (a) eines Genprodukts eines Gens, das das Nukleinsäuremolekül, welches wie in Spalte 5 von Tabelle I gezeigt ist und in der gleichen entsprechenden Zeile wie dieses Yer175w-a steht, oder ein funktionelles Äquivalent oder ein Homolog davon wie in Spalte 7 von Tabelle I gezeigt, vorzugsweise ein Homolog oder funktionelles Äquivalent wie in Spalte 7 von Tabelle I B gezeigt, welches in der gleichen entsprechenden Zeile wie dieses Yer175w-a steht, umfasst; oder
    • (b) eines ein Polypeptid, eine Konsensussequenz oder ein Polypeptidmotiv wie in Spalte 5 von Tabelle II beziehungsweise in Spalte 7 von Tabelle IV gezeigt umfassenden Polypeptids, welches in der gleichen entsprechenden Zeile wie dieses Yer175w-a steht, oder ein funktionelles Äquivalent oder ein Homolog davon wie in Spalte 7 von Tabelle II gezeigt, vorzugsweise ein Homolog oder funktionelles Äquivalent wie in Spalte 7 von Tabelle II B gezeigt, welches in der gleichen entsprechenden Zeile wie dieses Yer175w-a steht,
    wie hier erwähnt, zur Erhöhung des Ertrags, z. B. zur Erhöhung eines oder mehrerer Ertragsmerkmale, zum Beispiel einer gesteigerten Toleranz gegenüber abiotischem Umweltstress, zum Beispiel einer erhöhten Toleranz gegenüber Dürre und/oder Toleranz gegenüber niedrigen Temperaturen und/oder einer erhöhten Effizienz der Nährstoffausnutzung, verglichen mit einer entsprechenden, z. B. nicht transformierten, Pflanzenzelle oder Pflanze vom Wildtyp oder einem Teil davon in einer Pflanzenzelle, einer Pflanze oder einem Teil davon, wie erwähnt, insbesondere für eine gesteigerte Toleranz gegenüber abiotischem Umweltstress, oder einen erhöhten Ertrag, oder eine gesteigerte Toleranz gegenüber abiotischem Umweltstress und einen erhöhten Ertrag. Dementsprechend handelt es sich bei einer Ausführungsform bei dem Molekül, dessen Aktivität im erfindungsgemäßen Verfahren zu erhöhen ist, um das Genprodukt mit einer als „Yer175w-a-Protein” beschriebenen Aktivität; bevorzugt handelt es sich dabei um das in Abschnitt (a) oder (b) dieses Absatzes beschriebene Molekül. Gemäß einer Ausführungsform wird das Molekül, dessen Aktivität bei dem erfindungsgemäßen Verfahren zu erhöhen ist und bei dem es sich um das Genprodukt mit einer als „Yer175w-a-Protein” beschriebenen Aktivität handelt, zytoplasmatisch erhöht.
  • Die Sequenz von Ygr289c aus Saccharomyces cerevisiae, z. B. wie in Spalte 5 von Tabelle I gezeigt, wurde veröffentlicht (z. B. Sequenzen aus S. cerevisiae wurden in Goffeau et al., Science 274 (5287), 546 (1996) veröffentlicht, Sequenzen aus E. coli wurden in Blattner et al., Science 277 (5331), 1453 (1997) veröffentlicht), und/oder ihre Aktivität wurde als Hexosetransporter beschrieben. Dementsprechend umfasst das Verfahren der vorliegenden Erfindung gemäß einer Ausführungsform die Erhöhung oder Erzeugung der Aktivität eines Genprodukts mit der Aktivität eines „Hexosetransporters” aus Saccharomyces cerevisiae oder einem funktionellen Äquivalent davon oder einem Homolog davon, z. B. die Erhöhung
    • (a) eines Genprodukts eines Gens, das das Nukleinsäuremolekül, welches wie in Spalte 5 von Tabelle I gezeigt ist und in der gleichen entsprechenden Zeile wie dieses Ygr289c steht, oder ein funktionelles Äquivalent oder ein Homolog davon wie in Spalte 7 von Tabelle I gezeigt, vorzugsweise ein Homolog oder funktionelles Äquivalent wie in Spalte 7 von Tabelle I B gezeigt, welches in der gleichen entsprechenden Zeile wie dieses Ygr289c steht, umfasst; oder
    • (b) eines ein Polypeptid, eine Konsensussequenz oder ein Polypeptidmotiv wie in Spalte 5 von Tabelle II beziehungsweise in Spalte 7 von Tabelle IV gezeigt umfassenden Polypeptids, welches in der gleichen entsprechenden Zeile wie dieses Ygr289c steht, oder ein funktionelles Äquivalent oder ein Homolog davon wie in Spalte 7 von Tabelle II gezeigt, vorzugsweise ein Homolog oder funktionelles Äquivalent wie in Spalte 7 von Tabelle II B gezeigt, welches in der gleichen entsprechenden Zeile wie dieses Ygr289c steht,
    wie hier erwähnt, zur Erhöhung des Ertrags, z. B. zur Erhöhung eines oder mehrerer Ertragsmerkmale, zum Beispiel einer gesteigerten Toleranz gegenüber abiotischem Umweltstress, zum Beispiel einer erhöhten Toleranz gegenüber Dürre und/oder Toleranz gegenüber niedrigen Temperaturen und/oder einer erhöhten Effizienz der Nährstoffausnutzung, verglichen mit einer entsprechenden, z. B. nicht transformierten, Pflanzenzelle oder Pflanze vom Wildtyp oder einem Teil davon in einer Pflanzenzelle, einer Pflanze oder einem Teil davon, wie erwähnt, insbesondere für eine gesteigerte Toleranz gegenüber abiotischem Umweltstress, oder einen erhöhten Ertrag, oder eine gesteigerte Toleranz gegenüber abiotischem Umweltstress und einen erhöhten Ertrag. Dementsprechend handelt es sich bei einer Ausführungsform bei dem Molekül, dessen Aktivität im erfindungsgemäßen Verfahren zu erhöhen ist, um das Genprodukt mit einer als „Hexosetransporter” beschriebenen Aktivität; bevorzugt handelt es sich dabei um das in Abschnitt (a) oder (b) dieses Absatzes beschriebene Molekül. Gemäß einer Ausführungsform wird das Molekül, dessen Aktivität bei dem erfindungsgemäßen Verfahren zu erhöhen ist und bei dem es sich um das Genprodukt mit einer als „Hexosetransporter” beschriebenen Aktivität handelt, plastidisch erhöht.
  • Die Sequenz von Yhr044c aus Saccharomyces cerevisiae, z. B. wie in Spalte 5 von Tabelle I gezeigt, wurde veröffentlicht (z. B. Sequenzen aus S. cerevisiae wurden in Goffeau et al., Science 274 (5287), 546 (1996) veröffentlicht, Sequenzen aus E. coli wurden in Blattner et al., Science 277 (5331), 1453 (1997) veröffentlicht), und/oder ihre Aktivität wurde als 2-Desoxyglucose-6-phosphatphosphatase beschrieben. Dementsprechend umfasst das Verfahren der vorliegenden Erfindung gemäß einer Ausführungsform die Erhöhung oder Erzeugung der Aktivität eines Genprodukts mit der Aktivität einer „2-Desoxyglucose-6-phosphatphosphatase” aus Saccharomyces cerevisiae oder einem funktionellen Äquivalent davon oder einem Homolog davon, z. B. die Erhöhung
    • (a) eines Genprodukts eines Gens, das das Nukleinsäuremolekül, welches wie in Spalte 5 von Tabelle I gezeigt ist und in der gleichen entsprechenden Zeile wie dieses Yhr044c steht, oder ein funktionelles Äquivalent oder ein Homolog davon wie in Spalte 7 von Tabelle I gezeigt, vorzugsweise ein Homolog oder funktionelles Äquivalent wie in Spalte 7 von Tabelle I B gezeigt, welches in der gleichen entsprechenden Zeile wie dieses Yhr044c steht, umfasst; oder
    • (b) eines ein Polypeptid, eine Konsensussequenz oder ein Polypeptidmotiv wie in Spalte 5 von Tabelle II beziehungsweise in Spalte 7 von Tabelle IV gezeigt umfassenden Polypeptids, welches in der gleichen entsprechenden Zeile wie dieses Yhr044c steht, oder ein funktionelles Äquivalent oder ein Homolog davon wie in Spalte 7 von Tabelle II gezeigt, vorzugsweise ein Homolog oder funktionelles Äquivalent wie in Spalte 7 von Tabelle II B gezeigt, welches in der gleichen entsprechenden Zeile wie dieses Yhr044c steht,
    wie hier erwähnt, zur Erhöhung des Ertrags, z. B. zur Erhöhung eines oder mehrerer Ertragsmerkmale, zum Beispiel einer gesteigerten Toleranz gegenüber abiotischem Umweltstress, zum Beispiel einer erhöhten Toleranz gegenüber Dürre und/oder Toleranz gegenüber niedrigen Temperaturen und/oder einer erhöhten Effizienz der Nährstoffausnutzung, verglichen mit einer entsprechenden, z. B. nicht transformierten, Pflanzenzelle oder Pflanze vom Wildtyp oder einem Teil davon in einer Pflanzenzelle, einer Pflanze oder einem Teil davon, wie erwähnt, insbesondere für eine gesteigerte Toleranz gegenüber abiotischem Umweltstress, oder einen erhöhten Ertrag, oder eine gesteigerte Toleranz gegenüber abiotischem Umweltstress und einen erhöhten Ertrag. Dementsprechend handelt es sich bei einer Ausführungsform bei dem Molekül, dessen Aktivität im erfindungsgemäßen Verfahren zu erhöhen ist, um das Genprodukt mit einer als „2-Desoxyglucose-6-phosphatphosphatase” beschriebenen Aktivität; bevorzugt handelt es sich dabei um das in Abschnitt (a) oder (b) dieses Absatzes beschriebene Molekül. Gemäß einer Ausführungsform wird das Molekül, dessen Aktivität bei dem erfindungsgemäßen Verfahren zu erhöhen ist und bei dem es sich um das Genprodukt mit einer als „2-Desoxyglucose-6-phosphatphosphatase” beschriebenen Aktivität handelt, plastidisch erhöht.
  • Die Sequenz von YHR072W aus Saccharomyces cerevisiae, z. B. wie in Spalte 5 von Tabelle I gezeigt, wurde veröffentlicht (z. B. Sequenzen aus S. cerevisiae wurden in Goffeau et al., Science 274 (5287), 546 (1996) veröffentlicht, Sequenzen aus E. coli wurden in Blattner et al., Science 277 (5331), 1453 (1997) veröffentlicht), und/oder ihre Aktivität wurde als Lanosterolsynthase beschrieben. Dementsprechend umfasst das Verfahren der vorliegenden Erfindung gemäß einer Ausführungsform die Erhöhung oder Erzeugung der Aktivität eines Genprodukts mit der Aktivität einer „Lanosterolsynthase” aus Saccharomyces cerevisiae oder einem funktionellen Äquivalent davon oder einem Homolog davon, z. B. die Erhöhung
    • (a) eines Genprodukts eines Gens, das das Nukleinsäuremolekül, welches wie in Spalte 5 von Tabelle I gezeigt ist und in der gleichen entsprechenden Zeile wie dieses YHR072W steht, oder ein funktionelles Äquivalent oder ein Homolog davon wie in Spalte 7 von Tabelle I gezeigt, vorzugsweise ein Homolog oder funktionelles Äquivalent wie in Spalte 7 von Tabelle I B gezeigt, welches in der gleichen entsprechenden Zeile wie dieses YHR072W steht, umfasst; oder
    • (b) eines ein Polypeptid, eine Konsensussequenz oder ein Polypeptidmotiv wie in Spalte 5 von Tabelle II beziehungsweise in Spalte 7 von Tabelle IV gezeigt umfassenden Polypeptids, welches in der gleichen entsprechenden Zeile wie dieses YHR072W steht, oder ein funktionelles Äquivalent oder ein Homolog davon wie in Spalte 7 von Tabelle II gezeigt, vorzugsweise ein Homolog oder funktionelles Äquivalent wie in Spalte 7 von Tabelle II B gezeigt, welches in der gleichen entsprechenden Zeile wie dieses YHR072W steht,
    wie hier erwähnt, zur Erhöhung des Ertrags, z. B. zur Erhöhung eines oder mehrerer Ertragsmerkmale, zum Beispiel einer gesteigerten Toleranz gegenüber abiotischem Umweltstress, zum Beispiel einer erhöhten Toleranz gegenüber Dürre und/oder Toleranz gegenüber niedrigen Temperaturen und/oder einer erhöhten Effizienz der Nährstoffausnutzung, verglichen mit einer entsprechenden, z. B. nicht transformierten, Pflanzenzelle oder Pflanze vom Wildtyp oder einem Teil davon in einer Pflanzenzelle, einer Pflanze oder einem Teil davon, wie erwähnt, insbesondere für eine gesteigerte Toleranz gegenüber abiotischem Umweltstress, oder einen erhöhten Ertrag, oder eine gesteigerte Toleranz gegenüber abiotischem Umweltstress und einen erhöhten Ertrag. Dementsprechend handelt es sich bei einer Ausführungsform bei dem Molekül, dessen Aktivität im erfindungsgemäßen Verfahren zu erhöhen ist, um das Genprodukt mit einer als „Lanosterolsynthase” beschriebenen Aktivität; bevorzugt handelt es sich dabei um das in Abschnitt (a) oder (b) dieses Absatzes beschriebene Molekül. Gemäß einer Ausführungsform wird das Molekül, dessen Aktivität bei dem erfindungsgemäßen Verfahren zu erhöhen ist und bei dem es sich um das Genprodukt mit einer als „Lanosterolsynthase” beschriebenen Aktivität handelt, zytoplasmatisch erhöht.
  • Die Sequenz von Yhr213w-a aus Saccharomyces cerevisiae, z. B. wie in Spalte 5 von Tabelle I gezeigt, wurde veröffentlicht (z. B. Sequenzen aus S. cerevisiae wurden in Goffeau et al., Science 274 (5287), 546 (1996) veröffentlicht, Sequenzen aus E. coli wurden in Blattner et al., Science 277 (5331), 1453 (1997) veröffentlicht), und/oder ihre Aktivität wurde als Yhr213w-a-Protein beschrieben. Dementsprechend umfasst das Verfahren der vorliegenden Erfindung gemäß einer Ausführungsform die Erhöhung oder Erzeugung der Aktivität eines Genprodukts mit der Aktivität eines ”Yhr213w-a-Proteins” aus Saccharomyces cerevisiae oder einem funktionellen Äquivalent davon oder einem Homolog davon, z. B. die Erhöhung
    • (a) eines Genprodukts eines Gens, das das Nukleinsäuremolekül, welches wie in Spalte 5 von Tabelle I gezeigt ist und in der gleichen entsprechenden Zeile wie dieses Yhr213w-a steht, oder ein funktionelles Äquivalent oder ein Homolog davon wie in Spalte 7 von Tabelle I gezeigt, vorzugsweise ein Homolog oder funktionelles Äquivalent wie in Spalte 7 von Tabelle I B gezeigt, welches in der gleichen entsprechenden Zeile wie dieses Yhr213w-a steht, umfasst; oder
    • (b) eines ein Polypeptid, eine Konsensussequenz oder ein Polypeptidmotiv wie in Spalte 5 von Tabelle II beziehungsweise in Spalte 7 von Tabelle IV gezeigt umfassenden Polypeptids, welches in der gleichen entsprechenden Zeile wie dieses Yhr213w-a steht, oder ein funktionelles Äquivalent oder ein Homolog davon wie in Spalte 7 von Tabelle II gezeigt, vorzugsweise ein Homolog oder funktionelles Äquivalent wie in Spalte 7 von Tabelle II B gezeigt, welches in der gleichen entsprechenden Zeile wie dieses Yhr213w-a steht,
    wie hier erwähnt, zur Erhöhung des Ertrags, z. B. zur Erhöhung eines oder mehrerer Ertragsmerkmale, zum Beispiel einer gesteigerten Toleranz gegenüber abiotischem Umweltstress, zum Beispiel einer erhöhten Toleranz gegenüber Dürre und/oder Toleranz gegenüber niedrigen Temperaturen und/oder einer erhöhten Effizienz der Nährstoffausnutzung, verglichen mit einer entsprechenden, z. B. nicht transformierten, Pflanzenzelle oder Pflanze vom Wildtyp oder einem Teil davon in einer Pflanzenzelle, einer Pflanze oder einem Teil davon, wie erwähnt, insbesondere für eine gesteigerte Toleranz gegenüber abiotischem Umweltstress, oder einen erhöhten Ertrag, oder eine gesteigerte Toleranz gegenüber abiotischem Umweltstress und einen erhöhten Ertrag. Dementsprechend handelt es sich bei einer Ausführungsform bei dem Molekül, dessen Aktivität im erfindungsgemäßen Verfahren zu erhöhen ist, um das Genprodukt mit einer als „yhr213w-a-Protein” beschriebenen Aktivität; bevorzugt handelt es sich dabei um das in Abschnitt (a) oder (b) dieses Absatzes beschriebene Molekül. Gemäß einer Ausführungsform wird das Molekül, dessen Aktivität bei dem erfindungsgemäßen Verfahren zu erhöhen ist und bei dem es sich um das Genprodukt mit einer als „yhr213w-a-Protein” beschriebenen Aktivität handelt, zytoplasmatisch erhöht.
  • Die Sequenz von Yil053w aus Saccharomyces cerevisiae, z. B. wie in Spalte 5 von Tabelle I gezeigt, wurde veröffentlicht (z. B. Sequenzen aus S. cerevisiae wurden in Goffeau et al., Science 274 (5287), 546 (1996) veröffentlicht, Sequenzen aus E. coli wurden in Blattner et al., Science 277 (5331), 1453 (1997) veröffentlicht), und/oder ihre Aktivität wurde als (DL)-Glycerin-3-phosphatase beschrieben. Dementsprechend umfasst das Verfahren der vorliegenden Erfindung gemäß einer Ausführungsform die Erhöhung oder Erzeugung der Aktivität eines Genprodukts mit der Aktivität einer „(DL)-Glycerin-3-phosphatase” aus Saccharomyces cerevisiae oder einem funktionellen Äquivalent davon oder einem Homolog davon, z. B. die Erhöhung
    • (a) eines Genprodukts eines Gens, das das Nukleinsäuremolekül, welches wie in Spalte 5 von Tabelle 1 gezeigt ist und in der gleichen entsprechenden Zeile wie dieses Yil053w steht, oder ein funktionelles Äquivalent oder ein Homolog davon wie in Spalte 7 von Tabelle I gezeigt, vorzugsweise ein Homolog oder funktionelles Äquivalent wie in Spalte 7 von Tabelle I B gezeigt, welches in der gleichen entsprechenden Zeile wie dieses Yil053w steht, umfasst; oder
    • (b) eines ein Polypeptid, eine Konsensussequenz oder ein Polypeptidmotiv wie in Spalte 5 von Tabelle II beziehungsweise in Spalte 7 von Tabelle IV gezeigt umfassenden Polypeptids, welches in der gleichen entsprechenden Zeile wie dieses Yil053w steht, oder ein funktionelles Äquivalent oder ein Homolog davon wie in Spalte 7 von Tabelle II gezeigt, vorzugsweise ein Homolog oder funktionelles Äquivalent wie in Spalte 7 von Tabelle II B gezeigt, welches in der gleichen entsprechenden Zeile wie dieses Yil053w steht,
    wie hier erwähnt, zur Erhöhung des Ertrags, z. B. zur Erhöhung eines oder mehrerer Ertragsmerkmale, zum Beispiel einer gesteigerten Toleranz gegenüber abiotischem Umweltstress, zum Beispiel einer erhöhten Toleranz gegenüber Dürre und/oder Toleranz gegenüber niedrigen Temperaturen und/oder einer erhöhten Effizienz der Nährstoffausnutzung, verglichen mit einer entsprechenden, z. B. nicht transformierten, Pflanzenzelle oder Pflanze vom Wildtyp oder einem Teil davon in einer Pflanzenzelle, einer Pflanze oder einem Teil davon, wie erwähnt, insbesondere für eine gesteigerte Toleranz gegenüber abiotischem Umweltstress, oder einen erhöhten Ertrag, oder eine gesteigerte Toleranz gegenüber abiotischem Umweltstress und einen erhöhten Ertrag. Dementsprechend handelt es sich bei einer Ausführungsform bei dem Molekül, dessen Aktivität im erfindungsgemäßen Verfahren zu erhöhen ist, um das Genprodukt mit einer als „(DL)-Glycerin-3-phosphatase” beschriebenen Aktivität; bevorzugt handelt es sich dabei um das in Abschnitt (a) oder (b) dieses Absatzes beschriebene Molekül. Gemäß einer Ausführungsform wird das Molekül, dessen Aktivität bei dem erfindungsgemäßen Verfahren zu erhöhen ist und bei dem es sich um das Genprodukt mit einer als „(DL)-Glycerin-3-phosphatase” beschriebenen Aktivität handelt, zytoplasmatisch erhöht.
  • Die Sequenz von Yjl103c aus Saccharomyces cerevisiae, z. B. wie in Spalte 5 von Tabelle I gezeigt, wurde veröffentlicht (z. B. Sequenzen aus S. cerevisiae wurden in Goffeau et al., Science 274 (5287), 546 (1996) veröffentlicht, Sequenzen aus E. coli wurden in Blattner et al., Science 277 (5331), 1453 (1997) veröffentlicht), und/oder ihre Aktivität wurde als die Transkription steuerndes Protein beschrieben. Dementsprechend umfasst das Verfahren der vorliegenden Erfindung gemäß einer Ausführungsform die Erhöhung oder Erzeugung der Aktivität eines Genprodukts mit der Aktivität eines ”die Transkription steuernden Proteins” aus Saccharomyces cerevisiae oder einem funktionellen Äquivalent davon oder einem Homolog davon, z. B. die Erhöhung
    • (a) eines Genprodukts eines Gens, das das Nukleinsäuremolekül, welches wie in Spalte 5 von Tabelle I gezeigt ist und in der gleichen entsprechenden Zeile wie dieses Yjl103c steht, oder ein funktionelles Äquivalent oder ein Homolog davon wie in Spalte 7 von Tabelle I gezeigt, vorzugsweise ein Homolog oder funktionelles Äquivalent wie in Spalte 7 von Tabelle I B gezeigt, welches in der gleichen entsprechenden Zeile wie dieses Yjl103c steht, umfasst; oder
    • (b) eines ein Polypeptid, eine Konsensussequenz oder ein Polypeptidmotiv wie in Spalte 5 von Tabelle II beziehungsweise in Spalte 7 von Tabelle IV gezeigt umfassenden Polypeptids, welches in der gleichen entsprechenden Zeile wie dieses Yjl103c steht, oder ein funktionelles Äquivalent oder ein Homolog davon wie in Spalte 7 von Tabelle II gezeigt, vorzugsweise ein Homolog oder funktionelles Äquivalent wie in Spalte 7 von Tabelle II B gezeigt, welches in der gleichen entsprechenden Zeile wie dieses Yjl103c steht,
    wie hier erwähnt, zur Erhöhung des Ertrags, z. B. zur Erhöhung eines oder mehrerer Ertragsmerkmale, zum Beispiel einer gesteigerten Toleranz gegenüber abiotischem Umweltstress, zum Beispiel einer erhöhten Toleranz gegenüber Dürre und/oder Toleranz gegenüber niedrigen Temperaturen und/oder einer erhöhten Effizienz der Nährstoffausnutzung, verglichen mit einer entsprechenden, z. B. nicht transformierten, Pflanzenzelle oder Pflanze vom Wildtyp oder einem Teil davon in einer Pflanzenzelle, einer Pflanze oder einem Teil davon, wie erwähnt, insbesondere für eine gesteigerte Toleranz gegenüber abiotischem Umweltstress, oder einen erhöhten Ertrag, oder eine gesteigerte Toleranz gegenüber abiotischem Umweltstress und einen erhöhten Ertrag. Dementsprechend handelt es sich bei einer Ausführungsform bei dem Molekül, dessen Aktivität im erfindungsgemäßen Verfahren zu erhöhen ist, um das Genprodukt mit einer als „die Transkription steuerndes Protein” beschriebenen Aktivität; bevorzugt handelt es sich dabei um das in Abschnitt (a) oder (b) dieses Absatzes beschriebene Molekül. Gemäß einer Ausführungsform wird das Molekül, dessen Aktivität bei dem erfindungsgemäßen Verfahren zu erhöhen ist und bei dem es sich um das Genprodukt mit einer als „die Transkription steuerndes Protein” beschriebenen Aktivität handelt, plastidisch erhöht.
  • Die Sequenz von Yjl137c aus Saccharomyces cerevisiae, z. B. wie in Spalte 5 von Tabelle I gezeigt, wurde veröffentlicht (z. B. Sequenzen aus S. cerevisiae wurden in Goffeau et al., Science 274 (5287), 546 (1996) veröffentlicht, Sequenzen aus E. coli wurden in Blattner et al., Science 277 (5331), 1453 (1997) veröffentlicht), und/oder ihre Aktivität wurde als Glykogensyntheseinitiatorprotein beschrieben. Dementsprechend umfasst das Verfahren der vorliegenden Erfindung gemäß einer Ausführungsform die Erhöhung oder Erzeugung der Aktivität eines Genprodukts mit der Aktivität eines ”Glykogensyntheseinitiatorproteins” aus Saccharomyces cerevisiae oder einem funktionellen Äquivalent davon oder einem Homolog davon, z. B. die Erhöhung
    • (a) eines Genprodukts eines Gens, das das Nukleinsäuremolekül, welches wie in Spalte 5 von Tabelle I gezeigt ist und in der gleichen entsprechenden Zeile wie dieses Yjl137c steht, oder ein funktionelles Äquivalent oder ein Homolog davon wie in Spalte 7 von Tabelle I gezeigt, vorzugsweise ein Homolog oder funktionelles Äquivalent wie in Spalte 7 von Tabelle I B gezeigt, welches in der gleichen entsprechenden Zeile wie dieses Yjl137c steht, umfasst; oder
    • (b) eines ein Polypeptid, eine Konsensussequenz oder ein Polypeptidmotiv wie in Spalte 5 von Tabelle II beziehungsweise in Spalte 7 von Tabelle IV gezeigt umfassenden Polypeptids, welches in der gleichen entsprechenden Zeile wie dieses Yjl137c steht, oder ein funktionelles Äquivalent oder ein Homolog davon wie in Spalte 7 von Tabelle II gezeigt, vorzugsweise ein Homolog oder funktionelles Äquivalent wie in Spalte 7 von Tabelle II B gezeigt, welches in der gleichen entsprechenden Zeile wie dieses Yjl137c steht,
    wie hier erwähnt, zur Erhöhung des Ertrags, z. B. zur Erhöhung eines oder mehrerer Ertragsmerkmale, zum Beispiel einer gesteigerten Toleranz gegenüber abiotischem Umweltstress, zum Beispiel einer erhöhten Toleranz gegenüber Dürre und/oder Toleranz gegenüber niedrigen Temperaturen und/oder einer erhöhten Effizienz der Nährstoffausnutzung, verglichen mit einer entsprechenden, z. B. nicht transformierten, Pflanzenzelle oder Pflanze vom Wildtyp oder einem Teil davon in einer Pflanzenzelle, einer Pflanze oder einem Teil davon, wie erwähnt, insbesondere für eine gesteigerte Toleranz gegenüber abiotischem Umweltstress, oder einen erhöhten Ertrag, oder eine gesteigerte Toleranz gegenüber abiotischem Umweltstress und einen erhöhten Ertrag. Dementsprechend handelt es sich bei einer Ausführungsform bei dem Molekül, dessen Aktivität im erfindungsgemäßen Verfahren zu erhöhen ist, um das Genprodukt mit einer als „Glykogensyntheseinitiatorprotein” beschriebenen Aktivität; bevorzugt handelt es sich dabei um das in Abschnitt (a) oder (b) dieses Absatzes beschriebene Molekül. Gemäß einer Ausführungsform wird das Molekül, dessen Aktivität bei dem erfindungsgemäßen Verfahren zu erhöhen ist und bei dem es sich um das Genprodukt mit einer als „Glykogensyntheseinitiatorprotein” beschriebenen Aktivität handelt, plastidisch erhöht.
  • Die Sequenz von Ylr027c aus Saccharomyces cerevisiae, z. B. wie in Spalte 5 von Tabelle I gezeigt, wurde veröffentlicht (z. B. Sequenzen aus S. cerevisiae wurden in Goffeau et al., Science 274 (5287), 546 (1996) veröffentlicht, Sequenzen aus E. coli wurden in Blattner et al., Science 277 (5331), 1453 (1997) veröffentlicht), und/oder ihre Aktivität wurde als Aspartataminotransferase beschrieben. Dementsprechend umfasst das Verfahren der vorliegenden Erfindung gemäß einer Ausführungsform die Erhöhung oder Erzeugung der Aktivität eines Genprodukts mit der Aktivität einer „Aspartataminotransferase” aus Saccharomyces cerevisiae oder einem funktionellen Äquivalent davon oder einem Homolog davon, z. B. die Erhöhung
    • (a) eines Genprodukts eines Gens, das das Nukleinsäuremolekül, welches wie in Spalte 5 von Tabelle I gezeigt ist und in der gleichen entsprechenden Zeile wie dieses Ylr027c steht, oder ein funktionelles Äquivalent oder ein Homolog davon wie in Spalte 7 von Tabelle I gezeigt, vorzugsweise ein Homolog oder funktionelles Äquivalent wie in Spalte 7 von Tabelle I B gezeigt, welches in der gleichen entsprechenden Zeile wie dieses Ylr027c steht, umfasst; oder
    • (b) eines ein Polypeptid, eine Konsensussequenz oder ein Polypeptidmotiv wie in Spalte 5 von Tabelle II beziehungsweise in Spalte 7 von Tabelle IV gezeigt umfassenden Polypeptids, welches in der gleichen entsprechenden Zeile wie dieses Ylr027c steht, oder ein funktionelles Äquivalent oder ein Homolog davon wie in Spalte 7 von Tabelle II gezeigt, vorzugsweise ein Homolog oder funktionelles Äquivalent wie in Spalte 7 von Tabelle II B gezeigt, welches in der gleichen entsprechenden Zeile wie dieses Ylr027c steht,
    wie hier erwähnt, zur Erhöhung des Ertrags, z. B. zur Erhöhung eines oder mehrerer Ertragsmerkmale, zum Beispiel einer gesteigerten Toleranz gegenüber abiotischem Umweltstress, zum Beispiel einer erhöhten Toleranz gegenüber Dürre und/oder Toleranz gegenüber niedrigen Temperaturen und/oder einer erhöhten Effizienz der Nährstoffausnutzung, verglichen mit einer entsprechenden, z. B. nicht transformierten, Pflanzenzelle oder Pflanze vom Wildtyp oder einem Teil davon in einer Pflanzenzelle, einer Pflanze oder einem Teil davon, wie erwähnt, insbesondere für eine gesteigerte Toleranz gegenüber abiotischem Umweltstress, oder einen erhöhten Ertrag, oder eine gesteigerte Toleranz gegenüber abiotischem Umweltstress und einen erhöhten Ertrag. Dementsprechend handelt es sich bei einer Ausführungsform bei dem Molekül, dessen Aktivität im erfindungsgemäßen Verfahren zu erhöhen ist, um das Genprodukt mit einer als „Aspartataminotransferase” beschriebenen Aktivität; bevorzugt handelt es sich dabei um das in Abschnitt (a) oder (b) dieses Absatzes beschriebene Molekül. Gemäß einer Ausführungsform wird das Molekül, dessen Aktivität bei dem erfindungsgemäßen Verfahren zu erhöhen ist und bei dem es sich um das Genprodukt mit einer als „Aspartataminotransferase” beschriebenen Aktivität handelt, zytoplasmatisch erhöht.
  • Die Sequenz von Yml079w aus Saccharomyces cerevisiae, z. B. wie in Spalte 5 von Tabelle I gezeigt, wurde veröffentlicht (z. B. Sequenzen aus S. cerevisiae wurden in Goffeau et al., Science 274 (5287), 546 (1996) veröffentlicht, Sequenzen aus E. coli wurden in Blattner et al., Science 277 (5331), 1453 (1997) veröffentlicht), und/oder ihre Aktivität wurde als YML079W-Protein beschrieben. Dementsprechend umfasst das Verfahren der vorliegenden Erfindung gemäß einer Ausführungsform die Erhöhung oder Erzeugung der Aktivität eines Genprodukts mit der Aktivität eines ”YML079W-Proteins” aus Saccharomyces cerevisiae oder einem funktionellen Äquivalent davon oder einem Homolog davon, z. B. die Erhöhung
    • (a) eines Genprodukts eines Gens, das das Nukleinsäuremolekül, welches wie in Spalte 5 von Tabelle I gezeigt ist und in der gleichen entsprechenden Zeile wie dieses Yml079w steht, oder ein funktionelles Äquivalent oder ein Homolog davon wie in Spalte 7 von Tabelle I gezeigt, vorzugsweise ein Homolog oder funktionelles Äquivalent wie in Spalte 7 von Tabelle I B gezeigt, welches in der gleichen entsprechenden Zeile wie dieses Yml079w steht, umfasst; oder
    • (b) eines ein Polypeptid, eine Konsensussequenz oder ein Polypeptidmotiv wie in Spalte 5 von Tabelle II beziehungsweise in Spalte 7 von Tabelle IV gezeigt umfassenden Polypeptids, welches in der gleichen entsprechenden Zeile wie dieses Yml079w steht, oder ein funktionelles Äquivalent oder ein Homolog davon wie in Spalte 7 von Tabelle II gezeigt, vorzugsweise ein Homolog oder funktionelles Äquivalent wie in Spalte 7 von Tabelle II B gezeigt, welches in der gleichen entsprechenden Zeile wie dieses Yml079w steht,
    wie hier erwähnt, zur Erhöhung des Ertrags, z. B. zur Erhöhung eines oder mehrerer Ertragsmerkmale, zum Beispiel einer gesteigerten Toleranz gegenüber abiotischem Umweltstress, zum Beispiel einer erhöhten Toleranz gegenüber Dürre und/oder Toleranz gegenüber niedrigen Temperaturen und/oder einer erhöhten Effizienz der Nährstoffausnutzung, verglichen mit einer entsprechenden, z. B. nicht transformierten, Pflanzenzelle oder Pflanze vom Wildtyp oder einem Teil davon in einer Pflanzenzelle, einer Pflanze oder einem Teil davon, wie erwähnt, insbesondere für eine gesteigerte Toleranz gegenüber abiotischem Umweltstress, oder einen erhöhten Ertrag, oder eine gesteigerte Toleranz gegenüber abiotischem Umweltstress und einen erhöhten Ertrag. Dementsprechend handelt es sich bei einer Ausführungsform bei dem Molekül, dessen Aktivität im erfindungsgemäßen Verfahren zu erhöhen ist, um das Genprodukt mit einer als „YML079W-Protein” beschriebenen Aktivität; bevorzugt handelt es sich dabei um das in Abschnitt (a) oder (b) dieses Absatzes beschriebene Molekül. Gemäß einer Ausführungsform wird das Molekül, dessen Aktivität bei dem erfindungsgemäßen Verfahren zu erhöhen ist und bei dem es sich um das Genprodukt mit einer als „YML079W-Protein” beschriebenen Aktivität handelt, wie in Spalte 6 von Tabelle 1 angeführt, z. B. plastidisch oder zytoplasmatisch erhöht.
  • Die Sequenz von Ymr157c aus Saccharomyces cerevisiae, z. B. wie in Spalte 5 von Tabelle I gezeigt, wurde veröffentlicht (z. B. Sequenzen aus S. cerevisiae wurden in Goffeau et al., Science 274 (5287), 546 (1996) veröffentlicht, Sequenzen aus E. coli wurden in Blattner et al., Science 277 (5331), 1453 (1997) veröffentlicht), und/oder ihre Aktivität wurde als YMR157C-Protein beschrieben. Dementsprechend umfasst das Verfahren der vorliegenden Erfindung gemäß einer Ausführungsform die Erhöhung oder Erzeugung der Aktivität eines Genprodukts mit der Aktivität eines ”YMR157C-Proteins” aus Saccharomyces cerevisiae oder einem funktionellen Äquivalent davon oder einem Homolog davon, z. B. die Erhöhung
    • (a) eines Genprodukts eines Gens, das das Nukleinsäuremolekül, welches wie in Spalte 5 von Tabelle I gezeigt ist und in der gleichen entsprechenden Zeile wie dieses Ymr157c steht, oder ein funktionelles Äquivalent oder ein Homolog davon wie in Spalte 7 von Tabelle I gezeigt, vorzugsweise ein Homolog oder funktionelles Äquivalent wie in Spalte 7 von Tabelle I B gezeigt, welches in der gleichen entsprechenden Zeile wie dieses Ymr157c steht, umfasst; oder
    • (b) eines ein Polypeptid, eine Konsensussequenz oder ein Polypeptidmotiv wie in Spalte 5 von Tabelle II beziehungsweise in Spalte 7 von Tabelle IV gezeigt umfassenden Polypeptids, welches in der gleichen entsprechenden Zeile wie dieses Ymr157c steht, oder ein funktionelles Äquivalent oder ein Homolog davon wie in Spalte 7 von Tabelle II gezeigt, vorzugsweise ein Homolog oder funktionelles Äquivalent wie in Spalte 7 von Tabelle II B gezeigt, welches in der gleichen entsprechenden Zeile wie dieses Ymr157c steht,
    wie hier erwähnt, zur Erhöhung des Ertrags, z. B. zur Erhöhung eines oder mehrerer Ertragsmerkmale, zum Beispiel einer gesteigerten Toleranz gegenüber abiotischem Umweltstress, zum Beispiel einer erhöhten Toleranz gegenüber Dürre und/oder Toleranz gegenüber niedrigen Temperaturen und/oder einer erhöhten Effizienz der Nährstoffausnutzung, verglichen mit einer entsprechenden, z. B. nicht transformierten, Pflanzenzelle oder Pflanze vom Wildtyp oder einem Teil davon in einer Pflanzenzelle, einer Pflanze oder einem Teil davon, wie erwähnt, insbesondere für eine gesteigerte Toleranz gegenüber abiotischem Umweltstress, oder einen erhöhten Ertrag, oder eine gesteigerte Toleranz gegenüber abiotischem Umweltstress und einen erhöhten Ertrag. Dementsprechend handelt es sich bei einer Ausführungsform bei dem Molekül, dessen Aktivität im erfindungsgemäßen Verfahren zu erhöhen ist, um das Genprodukt mit einer als „YMR157C-Protein” beschriebenen Aktivität; bevorzugt handelt es sich dabei um das in Abschnitt (a) oder (b) dieses Absatzes beschriebene Molekül. Gemäß einer Ausführungsform wird das Molekül, dessen Aktivität bei dem erfindungsgemäßen Verfahren zu erhöhen ist und bei dem es sich um das Genprodukt mit einer als „YMR157C-Protein” beschriebenen Aktivität handelt, plastidisch erhöht.
  • Die Sequenz von Ynl024c aus Saccharomyces cerevisiae, z. B. wie in Spalte 5 von Tabelle I gezeigt, wurde veröffentlicht (z. B. Sequenzen aus S. cerevisiae wurden in Goffeau et al., Science 274 (5287), 546 (1996) veröffentlicht, Sequenzen aus E. coli wurden in Blattner et al., Science 277 (5331), 1453 (1997) veröffentlicht), und/oder ihre Aktivität wurde als YNL024C-Protein beschrieben. Dementsprechend umfasst das Verfahren der vorliegenden Erfindung gemäß einer Ausführungsform die Erhöhung oder Erzeugung der Aktivität eines Genprodukts mit der Aktivität eines ”YNL024C-Proteins” aus Saccharomyces cerevisiae oder einem funktionellen Äquivalent davon oder einem Homolog davon, z. B. die Erhöhung
    • (a) eines Genprodukts eines Gens, das das Nukleinsäuremolekül, welches wie in Spalte 5 von Tabelle I gezeigt ist und in der gleichen entsprechenden Zeile wie dieses Ynl024c steht, oder ein funktionelles Äquivalent oder ein Homolog davon wie in Spalte 7 von Tabelle I gezeigt, vorzugsweise ein Homolog oder funktionelles Äquivalent wie in Spalte 7 von Tabelle I B gezeigt, welches in der gleichen entsprechenden Zeile wie dieses Ynl024c steht, umfasst; oder
    • (b) eines ein Polypeptid, eine Konsensussequenz oder ein Polypeptidmotiv wie in Spalte 5 von Tabelle II beziehungsweise in Spalte 7 von Tabelle IV gezeigt umfassenden Polypeptids, welches in der gleichen entsprechenden Zeile wie dieses Ynl024c steht, oder ein funktionelles Äquivalent oder ein Homolog davon wie in Spalte 7 von Tabelle II gezeigt, vorzugsweise ein Homolog oder funktionelles Äquivalent wie in Spalte 7 von Tabelle II B gezeigt, welches in der gleichen entsprechenden Zeile wie dieses Ynl024c steht,
    wie hier erwähnt, zur Erhöhung des Ertrags, z. B. zur Erhöhung eines oder mehrerer Ertragsmerkmale, zum Beispiel einer gesteigerten Toleranz gegenüber abiotischem Umweltstress, zum Beispiel einer erhöhten Toleranz gegenüber Dürre und/oder Toleranz gegenüber niedrigen Temperaturen und/oder einer erhöhten Effizienz der Nährstoffausnutzung, verglichen mit einer entsprechenden, z. B. nicht transformierten, Pflanzenzelle oder Pflanze vom Wildtyp oder einem Teil davon in einer Pflanzenzelle, einer Pflanze oder einem Teil davon, wie erwähnt, insbesondere für eine gesteigerte Toleranz gegenüber abiotischem Umweltstress, oder einen erhöhten Ertrag, oder eine gesteigerte Toleranz gegenüber abiotischem Umweltstress und einen erhöhten Ertrag. Dementsprechend handelt es sich bei einer Ausführungsform bei dem Molekül, dessen Aktivität im erfindungsgemäßen Verfahren zu erhöhen ist, um das Genprodukt mit einer als „YNL024C-Protein” beschriebenen Aktivität; bevorzugt handelt es sich dabei um das in Abschnitt (a) oder (b) dieses Absatzes beschriebene Molekül. Gemäß einer Ausführungsform wird das Molekül, dessen Aktivität bei dem erfindungsgemäßen Verfahren zu erhöhen ist und bei dem es sich um das Genprodukt mit einer als „YNL024C-Protein” beschriebenen Aktivität handelt, plastidisch erhöht.
  • Die Sequenz von Yol058w aus Saccharomyces cerevisiae, z. B. wie in Spalte 5 von Tabelle I gezeigt, wurde veröffentlicht (z. B. Sequenzen aus S. cerevisiae wurden in Goffeau et al., Science 274 (5287), 546 (1996) veröffentlicht, Sequenzen aus E. coli wurden in Blattner et al., Science 277 (5331), 1453 (1997) veröffentlicht), und/oder ihre Aktivität wurde als Argininosuccinatsynthase beschrieben. Dementsprechend umfasst das Verfahren der vorliegenden Erfindung gemäß einer Ausführungsform die Erhöhung oder Erzeugung der Aktivität eines Genprodukts mit der Aktivität einer „Argininosuccinatsynthase” aus Saccharomyces cerevisiae oder einem funktionellen Äquivalent davon oder einem Homolog davon, z. B. die Erhöhung
    • (a) eines Genprodukts eines Gens, das das Nukleinsäuremolekül, welches wie in Spalte 5 von Tabelle I gezeigt ist und in der gleichen entsprechenden Zeile wie dieses Yol058w steht, oder ein funktionelles Äquivalent oder ein Homolog davon wie in Spalte 7 von Tabelle I gezeigt, vorzugsweise ein Homolog oder funktionelles Äquivalent wie in Spalte 7 von Tabelle I B gezeigt, welches in der gleichen entsprechenden Zeile wie dieses Yol058w steht, umfasst; oder
    • (b) eines ein Polypeptid, eine Konsensussequenz oder ein Polypeptidmotiv wie in Spalte 5 von Tabelle II beziehungsweise in Spalte 7 von Tabelle IV gezeigt umfassenden Polypeptids, welches in der gleichen entsprechenden Zeile wie dieses Yol058w steht, oder ein funktionelles Äquivalent oder ein Homolog davon wie in Spalte 7 von Tabelle II gezeigt, vorzugsweise ein Homolog oder funktionelles Äquivalent wie in Spalte 7 von Tabelle II B gezeigt, welches in der gleichen entsprechenden Zeile wie dieses Yol058w steht,
    wie hier erwähnt, zur Erhöhung des Ertrags, z. B. zur Erhöhung eines oder mehrerer Ertragsmerkmale, zum Beispiel einer gesteigerten Toleranz gegenüber abiotischem Umweltstress, zum Beispiel einer erhöhten Toleranz gegenüber Dürre und/oder Toleranz gegenüber niedrigen Temperaturen und/oder einer erhöhten Effizienz der Nährstoffausnutzung, verglichen mit einer entsprechenden, z. B. nicht transformierten, Pflanzenzelle oder Pflanze vom Wildtyp oder einem Teil davon in einer Pflanzenzelle, einer Pflanze oder einem Teil davon, wie erwähnt, insbesondere für eine gesteigerte Toleranz gegenüber abiotischem Umweltstress, oder einen erhöhten Ertrag, oder eine gesteigerte Toleranz gegenüber abiotischem Umweltstress und einen erhöhten Ertrag. Dementsprechend handelt es sich bei einer Ausführungsform bei dem Molekül, dessen Aktivität im erfindungsgemäßen Verfahren zu erhöhen ist, um das Genprodukt mit einer als „Argininosuccinatsynthase” beschriebenen Aktivität; bevorzugt handelt es sich dabei um das in Abschnitt (a) oder (b) dieses Absatzes beschriebene Molekül. Gemäß einer Ausführungsform wird das Molekül, dessen Aktivität bei dem erfindungsgemäßen Verfahren zu erhöhen ist und bei dem es sich um das Genprodukt mit einer als „Argininosuccinatsynthase” beschriebenen Aktivität handelt, wie in Spalte 6 von Tabelle 1 angeführt, z. B. plastidisch oder zytoplasmatisch erhöht.
  • Die Sequenz von Ypl180w aus Saccharomyces cerevisiae, z. B. wie in Spalte 5 von Tabelle I gezeigt, wurde veröffentlicht (z. B. Sequenzen aus S. cerevisiae wurden in Goffeau et al., Science 274 (5287), 546 (1996) veröffentlicht, Sequenzen aus E. coli wurden in Blattner et al., Science 277 (5331), 1453 (1997) veröffentlicht), und/oder ihre Aktivität wurde als Untereinheit von TORC1 beschrieben. Dementsprechend umfasst das Verfahren der vorliegenden Erfindung gemäß einer Ausführungsform die Erhöhung oder Erzeugung der Aktivität eines Genprodukts mit der Aktivität einer ”Untereinheit von TORC1” aus Saccharomyces cerevisiae oder einem funktionellen Äquivalent davon oder einem Homolog davon, z. B. die Erhöhung
    • (a) eines Genprodukts eines Gens, das das Nukleinsäuremolekül, welches wie in Spalte 5 von Tabelle I gezeigt ist und in der gleichen entsprechenden Zeile wie dieses Ypl180w steht, oder ein funktionelles Äquivalent oder ein Homolog davon wie in Spalte 7 von Tabelle I gezeigt, vorzugsweise ein Homolog oder funktionelles Äquivalent wie in Spalte 7 von Tabelle I B gezeigt, welches in der gleichen entsprechenden Zeile wie dieses Ypl180w steht, umfasst; oder
    • (b) eines ein Polypeptid, eine Konsensussequenz oder ein Polypeptidmotiv wie in Spalte 5 von Tabelle II beziehungsweise in Spalte 7 von Tabelle IV gezeigt umfassenden Polypeptids, welches in der gleichen entsprechenden Zeile wie dieses Ypl180w steht, oder ein funktionelles Äquivalent oder ein Homolog davon wie in Spalte 7 von Tabelle II gezeigt, vorzugsweise ein Homolog oder funktionelles Äquivalent wie in Spalte 7 von Tabelle II B gezeigt, welches in der gleichen entsprechenden Zeile wie dieses Ypl180w steht,
    wie hier erwähnt, zur Erhöhung des Ertrags, z. B. zur Erhöhung eines oder mehrerer Ertragsmerkmale, zum Beispiel einer gesteigerten Toleranz gegenüber abiotischem Umweltstress, zum Beispiel einer erhöhten Toleranz gegenüber Dürre und/oder Toleranz gegenüber niedrigen Temperaturen und/oder einer erhöhten Effizienz der Nährstoffausnutzung, verglichen mit einer entsprechenden, z. B. nicht transformierten, Pflanzenzelle oder Pflanze vom Wildtyp oder einem Teil davon in einer Pflanzenzelle, einer Pflanze oder einem Teil davon, wie erwähnt, insbesondere für eine gesteigerte Toleranz gegenüber abiotischem Umweltstress, oder einen erhöhten Ertrag, oder eine gesteigerte Toleranz gegenüber abiotischem Umweltstress und einen erhöhten Ertrag. Dementsprechend handelt es sich bei einer Ausführungsform bei dem Molekül, dessen Aktivität im erfindungsgemäßen Verfahren zu erhöhen ist, um das Genprodukt mit einer als „Untereinheit von TORC1” beschriebenen Aktivität; bevorzugt handelt es sich dabei um das in Abschnitt (a) oder (b) dieses Absatzes beschriebene Molekül. Gemäß einer Ausführungsform wird das Molekül, dessen Aktivität bei dem erfindungsgemäßen Verfahren zu erhöhen ist und bei dem es sich um das Genprodukt mit einer als ”Untereinheit von TORC1” beschriebenen Aktivität handelt, zytoplasmatisch erhöht.
  • Die Sequenz von Ypr167c aus Saccharomyces cerevisiae, z. B. wie in Spalte 5 von Tabelle I gezeigt, wurde veröffentlicht (z. B. Sequenzen aus S. cerevisiae wurden in Goffeau et al., Science 274 (5287), 546 (1996) veröffentlicht, Sequenzen aus E. coli wurden in Blattner et al., Science 277 (5331), 1453 (1997) veröffentlicht), und/oder ihre Aktivität wurde als Phosphoadenosinphosphosulfatreduktase beschrieben. Dementsprechend umfasst das Verfahren der vorliegenden Erfindung gemäß einer Ausführungsform die Erhöhung oder Erzeugung der Aktivität eines Genprodukts mit der Aktivität einer „Phosphoadenosinphosphosulfatreduktase” aus Saccharomyces cerevisiae oder einem funktionellen Äquivalent davon oder einem Homolog davon, z. B. die Erhöhung
    • (a) eines Genprodukts eines Gens, das das Nukleinsäuremolekül, welches wie in Spalte 5 von Tabelle I gezeigt ist und in der gleichen entsprechenden Zeile wie dieses Ypr167c steht, oder ein funktionelles Äquivalent oder ein Homolog davon wie in Spalte 7 von Tabelle I gezeigt, vorzugsweise ein Homolog oder funktionelles Äquivalent wie in Spalte 7 von Tabelle I B gezeigt, welches in der gleichen entsprechenden Zeile wie dieses Ypr167c steht, umfasst; oder
    • (b) eines ein Polypeptid, eine Konsensussequenz oder ein Polypeptidmotiv wie in Spalte 5 von Tabelle II beziehungsweise in Spalte 7 von Tabelle IV gezeigt umfassenden Polypeptids, welches in der gleichen entsprechenden Zeile wie dieses Ypr167c steht, oder ein funktionelles Äquivalent oder ein Homolog davon wie in Spalte 7 von Tabelle II gezeigt, vorzugsweise ein Homolog oder funktionelles Äquivalent wie in Spalte 7 von Tabelle II B gezeigt, welches in der gleichen entsprechenden Zeile wie dieses Ypr167c steht,
    wie hier erwähnt, zur Erhöhung des Ertrags, z. B. zur Erhöhung eines oder mehrerer Ertragsmerkmale, zum Beispiel einer gesteigerten Toleranz gegenüber abiotischem Umweltstress, zum Beispiel einer erhöhten Toleranz gegenüber Dürre und/oder Toleranz gegenüber niedrigen Temperaturen und/oder einer erhöhten Effizienz der Nährstoffausnutzung, verglichen mit einer entsprechenden, z. B. nicht transformierten, Pflanzenzelle oder Pflanze vom Wildtyp oder einem Teil davon in einer Pflanzenzelle, einer Pflanze oder einem Teil davon, wie erwähnt, insbesondere für eine gesteigerte Toleranz gegenüber abiotischem Umweltstress, oder einen erhöhten Ertrag, oder eine gesteigerte Toleranz gegenüber abiotischem Umweltstress und einen erhöhten Ertrag. Dementsprechend handelt es sich bei einer Ausführungsform bei dem Molekül, dessen Aktivität im erfindungsgemäßen Verfahren zu erhöhen ist, um das Genprodukt mit einer als „Phosphoadenosinphosphosulfatreduktase” beschriebenen Aktivität; bevorzugt handelt es sich dabei um das in Abschnitt (a) oder (b) dieses Absatzes beschriebene Molekül. Gemäß einer Ausführungsform wird das Molekül, dessen Aktivität bei dem erfindungsgemäßen Verfahren zu erhöhen ist und bei dem es sich um das Genprodukt mit einer als „Phosphoadenosinphosphosulfatreduktase” beschriebenen Aktivität handelt, plastidisch erhöht.
  • Die Sequenz von B0036 aus Escherichia coli, z. B. wie in Spalte 5 von Tabelle I gezeigt, wurde veröffentlicht (z. B. Sequenzen aus S. cerevisiae wurden in Goffeau et al., Science 274 (5287), 546 (1996) veröffentlicht, Sequenzen aus E. coli wurden in Blattner et al., Science 277 (5331), 1453 (1997) veröffentlicht), und/oder ihre Aktivität wurde als Enoyl-CoA-Hydratase beschrieben. Dementsprechend umfasst das Verfahren der vorliegenden Erfindung gemäß einer Ausführungsform die Erhöhung oder Erzeugung der Aktivität eines Genprodukts mit der Aktivität einer „Enoyl-CoA-Hydratase” aus Escherichia coli oder einem funktionellen Äquivalent davon oder einem Homolog davon, z. B. die Erhöhung
    • (a) eines Genprodukts eines Gens, das das Nukleinsäuremolekül, welches wie in Spalte 5 von Tabelle I gezeigt ist und in der gleichen entsprechenden Zeile wie dieses B0036 steht, oder ein funktionelles Äquivalent oder ein Homolog davon wie in Spalte 7 von Tabelle I gezeigt, vorzugsweise ein Homolog oder funktionelles Äquivalent wie in Spalte 7 von Tabelle I B gezeigt, welches in der gleichen entsprechenden Zeile wie dieses B0036 steht, umfasst; oder
    • (b) eines ein Polypeptid, eine Konsensussequenz oder ein Polypeptidmotiv wie in Spalte 5 von Tabelle II beziehungsweise in Spalte 7 von Tabelle IV gezeigt umfassenden Polypeptids, welches in der gleichen entsprechenden Zeile wie dieses B0036 steht, oder ein funktionelles Äquivalent oder ein Homolog davon wie in Spalte 7 von Tabelle II gezeigt, vorzugsweise ein Homolog oder funktionelles Äquivalent wie in Spalte 7 von Tabelle II B gezeigt, welches in der gleichen entsprechenden Zeile wie dieses B0036 steht,
    wie hier erwähnt, zur Erhöhung des Ertrags, z. B. zur Erhöhung eines oder mehrerer Ertragsmerkmale, zum Beispiel einer gesteigerten Toleranz gegenüber abiotischem Umweltstress, zum Beispiel einer erhöhten Toleranz gegenüber Dürre und/oder Toleranz gegenüber niedrigen Temperaturen und/oder einer erhöhten Effizienz der Nährstoffausnutzung, verglichen mit einer entsprechenden, z. B. nicht transformierten, Pflanzenzelle oder Pflanze vom Wildtyp oder einem Teil davon in einer Pflanzenzelle, einer Pflanze oder einem Teil davon, wie erwähnt, insbesondere für eine gesteigerte Toleranz gegenüber abiotischem Umweltstress, oder einen erhöhten Ertrag, oder eine gesteigerte Toleranz gegenüber abiotischem Umweltstress und einen erhöhten Ertrag. Dementsprechend handelt es sich bei einer Ausführungsform bei dem Molekül, dessen Aktivität im erfindungsgemäßen Verfahren zu erhöhen ist, um das Genprodukt mit einer als „Enoyl-CoA-Hydratase” beschriebenen Aktivität; bevorzugt handelt es sich dabei um das in Abschnitt (a) oder (b) dieses Absatzes beschriebene Molekül. Gemäß einer Ausführungsform wird das Molekül, dessen Aktivität bei dem erfindungsgemäßen Verfahren zu erhöhen ist und bei dem es sich um das Genprodukt mit einer als „Enoyl-CoA-Hydratase” beschriebenen Aktivität handelt, plastidisch erhöht.
  • Die Sequenz von B1906 aus Escherichia coli, z. B. wie in Spalte 5 von Tabelle I gezeigt, wurde veröffentlicht (z. B. Sequenzen aus S. cerevisiae wurden in Goffeau et al., Science 274 (5287), 546 (1996) veröffentlicht, Sequenzen aus E. coli wurden in Blattner et al., Science 277 (5331), 1453 (1997) veröffentlicht), und/oder ihre Aktivität wurde als B1906-Protein beschrieben. Dementsprechend umfasst das Verfahren der vorliegenden Erfindung gemäß einer Ausführungsform die Erhöhung oder Erzeugung der Aktivität eines Genprodukts mit der Aktivität eines „B1906-Proteins” aus Escherichia coli oder einem funktionellen Äquivalent davon oder einem Homolog davon, z. B. die Erhöhung
    • (a) eines Genprodukts eines Gens, das das Nukleinsäuremolekül, welches wie in Spalte 5 von Tabelle I gezeigt ist und in der gleichen entsprechenden Zeile wie dieses B1906 steht, oder ein funktionelles Äquivalent oder ein Homolog davon wie in Spalte 7 von Tabelle I gezeigt, vorzugsweise ein Homolog oder funktionelles Äquivalent wie in Spalte 7 von Tabelle I B gezeigt, welches in der gleichen entsprechenden Zeile wie dieses B 1906 steht, umfasst; oder
    • (b) eines ein Polypeptid, eine Konsensussequenz oder ein Polypeptidmotiv wie in Spalte 5 von Tabelle II beziehungsweise in Spalte 7 von Tabelle IV gezeigt umfassenden Polypeptids, welches in der gleichen entsprechenden Zeile wie dieses B 1906 steht, oder ein funktionelles Äquivalent oder ein Homolog davon wie in Spalte 7 von Tabelle II gezeigt, vorzugsweise ein Homolog oder funktionelles Äquivalent wie in Spalte 7 von Tabelle II B gezeigt, welches in der gleichen entsprechenden Zeile wie dieses B1906 steht,
    wie hier erwähnt, zur Erhöhung des Ertrags, z. B. zur Erhöhung eines oder mehrerer Ertragsmerkmale, zum Beispiel einer gesteigerten Toleranz gegenüber abiotischem Umweltstress, zum Beispiel einer erhöhten Toleranz gegenüber Dürre und/oder Toleranz gegenüber niedrigen Temperaturen und/oder einer erhöhten Effizienz der Nährstoffausnutzung, verglichen mit einer entsprechenden, z. B. nicht transformierten, Pflanzenzelle oder Pflanze vom Wildtyp oder einem Teil davon in einer Pflanzenzelle, einer Pflanze oder einem Teil davon, wie erwähnt, insbesondere für eine gesteigerte Toleranz gegenüber abiotischem Umweltstress, oder einen erhöhten Ertrag, oder eine gesteigerte Toleranz gegenüber abiotischem Umweltstress und einen erhöhten Ertrag. Dementsprechend handelt es sich bei einer Ausführungsform bei dem Molekül, dessen Aktivität im erfindungsgemäßen Verfahren zu erhöhen ist, um das Genprodukt mit einer als „B1906-Protein” beschriebenen Aktivität; bevorzugt handelt es sich dabei um das in Abschnitt (a) oder (b) dieses Absatzes beschriebene Molekül. Gemäß einer Ausführungsform wird das Molekül, dessen Aktivität bei dem erfindungsgemäßen Verfahren zu erhöhen ist und bei dem es sich um das Genprodukt mit einer als „B1906-Protein” beschriebenen Aktivität handelt, zytoplasmatisch erhöht.
  • Die Sequenz von B2371 aus Escherichia coli, z. B. wie in Spalte 5 von Tabelle I gezeigt, wurde veröffentlicht (z. B. Sequenzen aus S. cerevisiae wurden in Goffeau et al., Science 274 (5287), 546 (1996) veröffentlicht, Sequenzen aus E. coli wurden in Blattner et al., Science 277 (5331), 1453 (1997) veröffentlicht), und/oder ihre Aktivität wurde als CoA-Transferase-ähnliches Protein (NAD(P)-bindend) beschrieben. Dementsprechend umfasst das Verfahren der vorliegenden Erfindung gemäß einer Ausführungsform die Erhöhung oder Erzeugung der Aktivität eines Genprodukts mit der Aktivität eines „CoA-Transferase-ähnlichen Proteins (NAD(P)-bindend)” aus Escherichia coli oder einem funktionellen Äquivalent davon oder einem Homolog davon, z. B. die Erhöhung
    • (a) eines Genprodukts eines Gens, das das Nukleinsäuremolekül, welches wie in Spalte 5 von Tabelle I gezeigt ist und in der gleichen entsprechenden Zeile wie dieses B2371 steht, oder ein funktionelles Äquivalent oder ein Homolog davon wie in Spalte 7 von Tabelle I gezeigt, vorzugsweise ein Homolog oder funktionelles Äquivalent wie in Spalte 7 von Tabelle I B gezeigt, welches in der gleichen entsprechenden Zeile wie dieses B2371 steht, umfasst; oder
    • (b) eines ein Polypeptid, eine Konsensussequenz oder ein Polypeptidmotiv wie in Spalte 5 von Tabelle II beziehungsweise in Spalte 7 von Tabelle IV gezeigt umfassenden Polypeptids, welches in der gleichen entsprechenden Zeile wie dieses B2371 steht, oder ein funktionelles Äquivalent oder ein Homolog davon wie in Spalte 7 von Tabelle II gezeigt, vorzugsweise ein Homolog oder funktionelles Äquivalent wie in Spalte 7 von Tabelle II B gezeigt, welches in der gleichen entsprechenden Zeile wie dieses B2371 steht,
    wie hier erwähnt, zur Erhöhung des Ertrags, z. B. zur Erhöhung eines oder mehrerer Ertragsmerkmale, zum Beispiel einer gesteigerten Toleranz gegenüber abiotischem Umweltstress, zum Beispiel einer erhöhten Toleranz gegenüber Dürre und/oder Toleranz gegenüber niedrigen Temperaturen und/oder einer erhöhten Effizienz der Nährstoffausnutzung, verglichen mit einer entsprechenden, z. B. nicht transformierten, Pflanzenzelle oder Pflanze vom Wildtyp oder einem Teil davon in einer Pflanzenzelle, einer Pflanze oder einem Teil davon, wie erwähnt, insbesondere für eine gesteigerte Toleranz gegenüber abiotischem Umweltstress, oder einen erhöhten Ertrag, oder eine gesteigerte Toleranz gegenüber abiotischem Umweltstress und einen erhöhten Ertrag. Dementsprechend handelt es sich bei einer Ausführungsform bei dem Molekül, dessen Aktivität im erfindungsgemäßen Verfahren zu erhöhen ist, um das Genprodukt mit einer als „CoA-Transferase-ähnliches Protein (NAD(P)-bindend)” beschriebenen Aktivität; bevorzugt handelt es sich dabei um das in Abschnitt (a) oder (b) dieses Absatzes beschriebene Molekül. Gemäß einer Ausführungsform wird das Molekül, dessen Aktivität bei dem erfindungsgemäßen Verfahren zu erhöhen ist und bei dem es sich um das Genprodukt mit einer als „CoA-Transferase-ähnliches Protein (NAD(P)-bindend)” beschriebenen Aktivität handelt, zytoplasmatisch erhöht.
  • Die Sequenz von B2881 aus Escherichia coli, z. B. wie in Spalte 5 von Tabelle I gezeigt, wurde veröffentlicht (z. B. Sequenzen aus S. cerevisiae wurden in Goffeau et al., Science 274 (5287), 546 (1996) veröffentlicht, Sequenzen aus E. coli wurden in Blattner et al., Science 277 (5331), 1453 (1997) veröffentlicht), und/oder ihre Aktivität wurde als molybdänbindende Untereinheit von Aldehydoxidasen und Xanthindehydrogenasen beschrieben. Dementsprechend umfasst das Verfahren der vorliegenden Erfindung gemäß einer Ausführungsform die Erhöhung oder Erzeugung der Aktivität eines Genprodukts mit der Aktivität einer „molybdänbindenden Untereinheit von Aldehydoxidasen und Xanthindehydrogenasen” aus Escherichia coli oder einem funktionellen Äquivalent davon oder einem Homolog davon, z. B. die Erhöhung
    • (a) eines Genprodukts eines Gens, das das Nukleinsäuremolekül, welches wie in Spalte 5 von Tabelle I gezeigt ist und in der gleichen entsprechenden Zeile wie dieses B2881 steht, oder ein funktionelles Äquivalent oder ein Homolog davon wie in Spalte 7 von Tabelle I gezeigt, vorzugsweise ein Homolog oder funktionelles Äquivalent wie in Spalte 7 von Tabelle I B gezeigt, welches in der gleichen entsprechenden Zeile wie dieses B2881 steht, umfasst; oder
    • (b) eines ein Polypeptid, eine Konsensussequenz oder ein Polypeptidmotiv wie in Spalte 5 von Tabelle II beziehungsweise in Spalte 7 von Tabelle IV gezeigt umfassenden Polypeptids, welches in der gleichen entsprechenden Zeile wie dieses B2881 steht, oder ein funktionelles Äquivalent oder ein Homolog davon wie in Spalte 7 von Tabelle II gezeigt, vorzugsweise ein Homolog oder funktionelles Äquivalent wie in Spalte 7 von Tabelle II B gezeigt, welches in der gleichen entsprechenden Zeile wie dieses B2881 steht,
    wie hier erwähnt, zur Erhöhung des Ertrags, z. B. zur Erhöhung eines oder mehrerer Ertragsmerkmale, zum Beispiel einer gesteigerten Toleranz gegenüber abiotischem Umweltstress, zum Beispiel einer erhöhten Toleranz gegenüber Dürre und/oder Toleranz gegenüber niedrigen Temperaturen und/oder einer erhöhten Effizienz der Nährstoffausnutzung, verglichen mit einer entsprechenden, z. B. nicht transformierten, Pflanzenzelle oder Pflanze vom Wildtyp oder einem Teil davon in einer Pflanzenzelle, einer Pflanze oder einem Teil davon, wie erwähnt, insbesondere für eine gesteigerte Toleranz gegenüber abiotischem Umweltstress, oder einen erhöhten Ertrag, oder eine gesteigerte Toleranz gegenüber abiotischem Umweltstress und einen erhöhten Ertrag. Dementsprechend handelt es sich bei einer Ausführungsform bei dem Molekül, dessen Aktivität im erfindungsgemäßen Verfahren zu erhöhen ist, um das Genprodukt mit einer als „molybdänbindende Untereinheit von Aldehydoxidasen und Xanthindehydrogenasen” beschriebenen Aktivität; bevorzugt handelt es sich dabei um das in Abschnitt (a) oder (b) dieses Absatzes beschriebene Molekül. Gemäß einer Ausführungsform wird das Molekül, dessen Aktivität bei dem erfindungsgemäßen Verfahren zu erhöhen ist und bei dem es sich um das Genprodukt mit einer als „molybdänbindende Untereinheit von Aldehydoxidasen und Xanthindehydrogenasen” beschriebenen Aktivität handelt, zytoplasmatisch erhöht.
  • Die Sequenz von B3106 aus Escherichia coli, z. B. wie in Spalte 5 von Tabelle I gezeigt, wurde veröffentlicht (z. B. Sequenzen aus S. cerevisiae wurden in Goffeau et al., Science 274 (5287), 546 (1996) veröffentlicht, Sequenzen aus E. coli wurden in Blattner et al., Science 277 (5331), 1453 (1997) veröffentlicht), und/oder ihre Aktivität wurde als Pirin-ähnliches Protein beschrieben. Dementsprechend umfasst das Verfahren der vorliegenden Erfindung gemäß einer Ausführungsform die Erhöhung oder Erzeugung der Aktivität eines Genprodukts mit der Aktivität eines „Pirin-ähnlichen Proteins” aus Escherichia coli oder einem funktionellen Äquivalent davon oder einem Homolog davon, z. B. die Erhöhung
    • (a) eines Genprodukts eines Gens, das das Nukleinsäuremolekül, welches wie in Spalte 5 von Tabelle I gezeigt ist und in der gleichen entsprechenden Zeile wie dieses B3106 steht, oder ein funktionelles Äquivalent oder ein Homolog davon wie in Spalte 7 von Tabelle I gezeigt, vorzugsweise ein Homolog oder funktionelles Äquivalent wie in Spalte 7 von Tabelle I B gezeigt, welches in der gleichen entsprechenden Zeile wie dieses B3106 steht, umfasst; oder
    • (b) eines ein Polypeptid, eine Konsensussequenz oder ein Polypeptidmotiv wie in Spalte 5 von Tabelle II beziehungsweise in Spalte 7 von Tabelle IV gezeigt umfassenden Polypeptids, welches in der gleichen entsprechenden Zeile wie dieses B3106 steht, oder ein funktionelles Äquivalent oder ein Homolog davon wie in Spalte 7 von Tabelle II gezeigt, vorzugsweise ein Homolog oder funktionelles Äquivalent wie in Spalte 7 von Tabelle II B gezeigt, welches in der gleichen entsprechenden Zeile wie dieses B3106 steht,
    wie hier erwähnt, zur Erhöhung des Ertrags, z. B. zur Erhöhung eines oder mehrerer Ertragsmerkmale, zum Beispiel einer gesteigerten Toleranz gegenüber abiotischem Umweltstress, zum Beispiel einer erhöhten Toleranz gegenüber Dürre und/oder Toleranz gegenüber niedrigen Temperaturen und/oder einer erhöhten Effizienz der Nährstoffausnutzung, verglichen mit einer entsprechenden, z. B. nicht transformierten, Pflanzenzelle oder Pflanze vom Wildtyp oder einem Teil davon in einer Pflanzenzelle, einer Pflanze oder einem Teil davon, wie erwähnt, insbesondere für eine gesteigerte Toleranz gegenüber abiotischem Umweltstress, oder einen erhöhten Ertrag, oder eine gesteigerte Toleranz gegenüber abiotischem Umweltstress und einen erhöhten Ertrag. Dementsprechend handelt es sich bei einer Ausführungsform bei dem Molekül, dessen Aktivität im erfindungsgemäßen Verfahren zu erhöhen ist, um das Genprodukt mit einer als „Pirin-ähnliches Protein” beschriebenen Aktivität; bevorzugt handelt es sich dabei um das in Abschnitt (a) oder (b) dieses Absatzes beschriebene Molekül. Gemäß einer Ausführungsform wird das Molekül, dessen Aktivität bei dem erfindungsgemäßen Verfahren zu erhöhen ist und bei dem es sich um das Genprodukt mit einer als „Pirin-ähnliches Protein” beschriebenen Aktivität handelt, zytoplasmatisch erhöht.
  • Die Sequenz von B3400 aus Escherichia coli, z. B. wie in Spalte 5 von Tabelle I gezeigt, wurde veröffentlicht (z. B. Sequenzen aus S. cerevisiae wurden in Goffeau et al., Science 274 (5287), 546 (1996) veröffentlicht, Sequenzen aus E. coli wurden in Blattner et al., Science 277 (5331), 1453 (1997) veröffentlicht), und/oder ihre Aktivität wurde als Hitzeschockprotein beschrieben. Dementsprechend umfasst das Verfahren der vorliegenden Erfindung gemäß einer Ausführungsform die Erhöhung oder Erzeugung der Aktivität eines Genprodukts mit der Aktivität eines „Hitzeschockproteins” aus Escherichia coli oder einem funktionellen Äquivalent davon oder einem Homolog davon, z. B. die Erhöhung
    • (a) eines Genprodukts eines Gens, das das Nukleinsäuremolekül, welches wie in Spalte 5 von Tabelle I gezeigt ist und in der gleichen entsprechenden Zeile wie dieses B3400 steht, oder ein funktionelles Äquivalent oder ein Homolog davon wie in Spalte 7 von Tabelle I gezeigt, vorzugsweise ein Homolog oder funktionelles Äquivalent wie in Spalte 7 von Tabelle I B gezeigt, welches in der gleichen entsprechenden Zeile wie dieses B3400 steht, umfasst; oder
    • (b) eines ein Polypeptid, eine Konsensussequenz oder ein Polypeptidmotiv wie in Spalte 5 von Tabelle II beziehungsweise in Spalte 7 von Tabelle IV gezeigt umfassenden Polypeptids, welches in der gleichen entsprechenden Zeile wie dieses B3400 steht, oder ein funktionelles Äquivalent oder ein Homolog davon wie in Spalte 7 von Tabelle II gezeigt, vorzugsweise ein Homolog oder funktionelles Äquivalent wie in Spalte 7 von Tabelle II B gezeigt, welches in der gleichen entsprechenden Zeile wie dieses B3400 steht,
    wie hier erwähnt, zur Erhöhung des Ertrags, z. B. zur Erhöhung eines oder mehrerer Ertragsmerkmale, zum Beispiel einer gesteigerten Toleranz gegenüber abiotischem Umweltstress, zum Beispiel einer erhöhten Toleranz gegenüber Dürre und/oder Toleranz gegenüber niedrigen Temperaturen und/oder einer erhöhten Effizienz der Nährstoffausnutzung, verglichen mit einer entsprechenden, z. B. nicht transformierten, Pflanzenzelle oder Pflanze vom Wildtyp oder einem Teil davon in einer Pflanzenzelle, einer Pflanze oder einem Teil davon, wie erwähnt, insbesondere für eine gesteigerte Toleranz gegenüber abiotischem Umweltstress, oder einen erhöhten Ertrag, oder eine gesteigerte Toleranz gegenüber abiotischem Umweltstress und einen erhöhten Ertrag. Dementsprechend handelt es sich bei einer Ausführungsform bei dem Molekül, dessen Aktivität im erfindungsgemäßen Verfahren zu erhöhen ist, um das Genprodukt mit einer als „Hitzeschockprotein” beschriebenen Aktivität; bevorzugt handelt es sich dabei um das in Abschnitt (a) oder (b) dieses Absatzes beschriebene Molekül. Gemäß einer Ausführungsform wird das Molekül, dessen Aktivität bei dem erfindungsgemäßen Verfahren zu erhöhen ist und bei dem es sich um das Genprodukt mit einer als „Hitzeschockprotein” beschriebenen Aktivität handelt, plastidisch erhöht.
  • Die Sequenz von B3410 aus Escherichia coli, z. B. wie in Spalte 5 von Tabelle I gezeigt, wurde veröffentlicht (z. B. Sequenzen aus S. cerevisiae wurden in Goffeau et al., Science 274 (5287), 546 (1996) veröffentlicht, Sequenzen aus E. coli wurden in Blattner et al., Science 277 (5331), 1453 (1997) veröffentlicht), und/oder ihre Aktivität wurde als B3410-Protein beschrieben. Dementsprechend umfasst das Verfahren der vorliegenden Erfindung gemäß einer Ausführungsform die Erhöhung oder Erzeugung der Aktivität eines Genprodukts mit der Aktivität eines „B3410-Proteins” aus Escherichia coli oder einem funktionellen Äquivalent davon oder einem Homolog davon, z. B. die Erhöhung
    • (a) eines Genprodukts eines Gens, das das Nukleinsäuremolekül, welches wie in Spalte 5 von Tabelle I gezeigt ist und in der gleichen entsprechenden Zeile wie dieses B3410 steht, oder ein funktionelles Äquivalent oder ein Homolog davon wie in Spalte 7 von Tabelle I gezeigt, vorzugsweise ein Homolog oder funktionelles Äquivalent wie in Spalte 7 von Tabelle I B gezeigt, welches in der gleichen entsprechenden Zeile wie dieses B3410 steht, umfasst; oder
    • (b) eines ein Polypeptid, eine Konsensussequenz oder ein Polypeptidmotiv wie in Spalte 5 von Tabelle II beziehungsweise in Spalte 7 von Tabelle IV gezeigt umfassenden Polypeptids, welches in der gleichen entsprechenden Zeile wie dieses B3410 steht, oder ein funktionelles Äquivalent oder ein Homolog davon wie in Spalte 7 von Tabelle II gezeigt, vorzugsweise ein Homolog oder funktionelles Äquivalent wie in Spalte 7 von Tabelle II B gezeigt, welches in der gleichen entsprechenden Zeile wie dieses B3410 steht,
    wie hier erwähnt, zur Erhöhung des Ertrags, z. B. zur Erhöhung eines oder mehrerer Ertragsmerkmale, zum Beispiel einer gesteigerten Toleranz gegenüber abiotischem Umweltstress, zum Beispiel einer erhöhten Toleranz gegenüber Dürre und/oder Toleranz gegenüber niedrigen Temperaturen und/oder einer erhöhten Effizienz der Nährstoffausnutzung, verglichen mit einer entsprechenden, z. B. nicht transformierten, Pflanzenzelle oder Pflanze vom Wildtyp oder einem Teil davon in einer Pflanzenzelle, einer Pflanze oder einem Teil davon, wie erwähnt, insbesondere für eine gesteigerte Toleranz gegenüber abiotischem Umweltstress, oder einen erhöhten Ertrag, oder eine gesteigerte Toleranz gegenüber abiotischem Umweltstress und einen erhöhten Ertrag. Dementsprechend handelt es sich bei einer Ausführungsform bei dem Molekül, dessen Aktivität im erfindungsgemäßen Verfahren zu erhöhen ist, um das Genprodukt mit einer als „B3410-Protein” beschriebenen Aktivität; bevorzugt handelt es sich dabei um das in Abschnitt (a) oder (b) dieses Absatzes beschriebene Molekül. Gemäß einer Ausführungsform wird das Molekül, dessen Aktivität bei dem erfindungsgemäßen Verfahren zu erhöhen ist und bei dem es sich um das Genprodukt mit einer als „B3410-Protein” beschriebenen Aktivität handelt, zytoplasmatisch erhöht.
  • Die Sequenz von B4209 aus Escherichia coli, z. B. wie in Spalte 5 von Tabelle I gezeigt, wurde veröffentlicht (z. B. Sequenzen aus S. cerevisiae wurden in Goffeau et al., Science 274 (5287), 546 (1996) veröffentlicht, Sequenzen aus E. coli wurden in Blattner et al., Science 277 (5331), 1453 (1997) veröffentlicht), und/oder ihre Aktivität wurde als Regulator der Zellmorphogenese und der NO-Signalvermittlung beschrieben. Dementsprechend umfasst das Verfahren der vorliegenden Erfindung gemäß einer Ausführungsform die Erhöhung oder Erzeugung der Aktivität eines Genprodukts mit der Aktivität eines „Regulators der Zellmorphogenese und der NO-Signalvermittlung” aus Escherichia coli oder einem funktionellen Äquivalent davon oder einem Homolog davon, z. B. die Erhöhung
    • (a) eines Genprodukts eines Gens, das das Nukleinsäuremolekül, welches wie in Spalte 5 von Tabelle I gezeigt ist und in der gleichen entsprechenden Zeile wie dieses 84209 steht, oder ein funktionelles Äquivalent oder ein Homolog davon wie in Spalte 7 von Tabelle I gezeigt, vorzugsweise ein Homolog oder funktionelles Äquivalent wie in Spalte 7 von Tabelle I B gezeigt, welches in der gleichen entsprechenden Zeile wie dieses 84209 steht, umfasst; oder
    • (b) eines ein Polypeptid, eine Konsensussequenz oder ein Polypeptidmotiv wie in Spalte 5 von Tabelle II beziehungsweise in Spalte 7 von Tabelle IV gezeigt umfassenden Polypeptids, welches in der gleichen entsprechenden Zeile wie dieses 84209 steht, oder ein funktionelles Äquivalent oder ein Homolog davon wie in Spalte 7 von Tabelle II gezeigt, vorzugsweise ein Homolog oder funktionelles Äquivalent wie in Spalte 7 von Tabelle II B gezeigt, welches in der gleichen entsprechenden Zeile wie dieses B4209 steht,
    wie hier erwähnt, zur Erhöhung des Ertrags, z. B. zur Erhöhung eines oder mehrerer Ertragsmerkmale, zum Beispiel einer gesteigerten Toleranz gegenüber abiotischem Umweltstress, zum Beispiel einer erhöhten Toleranz gegenüber Dürre und/oder Toleranz gegenüber niedrigen Temperaturen und/oder einer erhöhten Effizienz der Nährstoffausnutzung, verglichen mit einer entsprechenden, z. B. nicht transformierten, Pflanzenzelle oder Pflanze vom Wildtyp oder einem Teil davon in einer Pflanzenzelle, einer Pflanze oder einem Teil davon, wie erwähnt, insbesondere für eine gesteigerte Toleranz gegenüber abiotischem Umweltstress, oder einen erhöhten Ertrag, oder eine gesteigerte Toleranz gegenüber abiotischem Umweltstress und einen erhöhten Ertrag. Dementsprechend handelt es sich bei einer Ausführungsform bei dem Molekül, dessen Aktivität im erfindungsgemäßen Verfahren zu erhöhen ist, um das Genprodukt mit einer als „Regulator der Zellmorphogenese und der NO-Signalvermittlung” beschriebenen Aktivität; bevorzugt handelt es sich dabei um das in Abschnitt (a) oder (b) dieses Absatzes beschriebene Molekül. Gemäß einer Ausführungsform wird das Molekül, dessen Aktivität bei dem erfindungsgemäßen Verfahren zu erhöhen ist und bei dem es sich um das Genprodukt mit einer als „Regulator der Zellmorphogenese und der NO-Signalvermittlung” beschriebenen Aktivität handelt, plastidisch erhöht.
  • Die Sequenz von SLL1545 aus Synechocystis sp., z. B. wie in Spalte 5 von Tabelle I gezeigt, wurde veröffentlicht (z. B. Sequenzen aus S. cerevisiae wurden in Goffeau et al., Science 274 (5287), 546 (1996) veröffentlicht, Sequenzen aus E. coli wurden in Blattner et al., Science 277 (5331), 1453 (1997) veröffentlicht), und/oder ihre Aktivität wurde als Glutathion-S-transferase beschrieben. Dementsprechend umfasst das Verfahren der vorliegenden Erfindung gemäß einer Ausführungsform die Erhöhung oder Erzeugung der Aktivität eines Genprodukts mit der Aktivität einer „Glutathion-S-transferase” aus Synechocystis sp. oder einem funktionellen Äquivalent davon oder einem Homolog davon, z. B. die Erhöhung
    • (a) eines Genprodukts eines Gens, das das Nukleinsäuremolekül, welches wie in Spalte 5 von Tabelle I gezeigt ist und in der gleichen entsprechenden Zeile wie dieses SLL1545 steht, oder ein funktionelles Äquivalent oder ein Homolog davon wie in Spalte 7 von Tabelle I gezeigt, vorzugsweise ein Homolog oder funktionelles Äquivalent wie in Spalte 7 von Tabelle I B gezeigt, welches in der gleichen entsprechenden Zeile wie dieses SLL1545 steht, umfasst; oder
    • (b) eines ein Polypeptid, eine Konsensussequenz oder ein Polypeptidmotiv wie in Spalte 5 von Tabelle II beziehungsweise in Spalte 7 von Tabelle IV gezeigt umfassenden Polypeptids, welches in der gleichen entsprechenden Zeile wie dieses SLL1545 steht, oder ein funktionelles Äquivalent oder ein Homolog davon wie in Spalte 7 von Tabelle II gezeigt, vorzugsweise ein Homolog oder funktionelles Äquivalent wie in Spalte 7 von Tabelle II B gezeigt, welches in der gleichen entsprechenden Zeile wie dieses SLL1545 steht,
    wie hier erwähnt, zur Erhöhung des Ertrags, z. B. zur Erhöhung eines oder mehrerer Ertragsmerkmale, zum Beispiel einer gesteigerten Toleranz gegenüber abiotischem Umweltstress, zum Beispiel einer erhöhten Toleranz gegenüber Dürre und/oder Toleranz gegenüber niedrigen Temperaturen und/oder einer erhöhten Effizienz der Nährstoffausnutzung, verglichen mit einer entsprechenden, z. B. nicht transformierten, Pflanzenzelle oder Pflanze vom Wildtyp oder einem Teil davon in einer Pflanzenzelle, einer Pflanze oder einem Teil davon, wie erwähnt, insbesondere für eine gesteigerte Toleranz gegenüber abiotischem Umweltstress, oder einen erhöhten Ertrag, oder eine gesteigerte Toleranz gegenüber abiotischem Umweltstress und einen erhöhten Ertrag. Dementsprechend handelt es sich bei einer Ausführungsform bei dem Molekül, dessen Aktivität im erfindungsgemäßen Verfahren zu erhöhen ist, um das Genprodukt mit einer als „Glutathion-S-transferase” beschriebenen Aktivität; bevorzugt handelt es sich dabei um das in Abschnitt (a) oder (b) dieses Absatzes beschriebene Molekül. Gemäß einer Ausführungsform wird das Molekül, dessen Aktivität bei dem erfindungsgemäßen Verfahren zu erhöhen ist und bei dem es sich um das Genprodukt mit einer als „Glutathion-S-transferase” beschriebenen Aktivität handelt, zytoplasmatisch erhöht.
  • Die Sequenz von SLR1348 aus Synechocystis sp., z. B. wie in Spalte 5 von Tabelle I gezeigt, wurde veröffentlicht (z. B. Sequenzen aus S. cerevisiae wurden in Goffeau et al., Science 274 (5287), 546 (1996) veröffentlicht, Sequenzen aus E. coli wurden in Blattner et al., Science 277 (5331), 1453 (1997) veröffentlicht), und/oder ihre Aktivität wurde als Serinacetyltransferase beschrieben. Dementsprechend umfasst das Verfahren der vorliegenden Erfindung gemäß einer Ausführungsform die Erhöhung oder Erzeugung der Aktivität eines Genprodukts mit der Aktivität einer „Serinacetyltransferase” aus Synechocystis sp. oder einem funktionellen Äquivalent davon oder einem Homolog davon, z. B. die Erhöhung
    • (a) eines Genprodukts eines Gens, das das Nukleinsäuremolekül, welches wie in Spalte 5 von Tabelle I gezeigt ist und in der gleichen entsprechenden Zeile wie dieses SLR1348 steht, oder ein funktionelles Äquivalent oder ein Homolog davon wie in Spalte 7 von Tabelle I gezeigt, vorzugsweise ein Homolog oder funktionelles Äquivalent wie in Spalte 7 von Tabelle I B gezeigt, welches in der gleichen entsprechenden Zeile wie dieses SLR1348 steht, umfasst; oder
    • (b) eines ein Polypeptid, eine Konsensussequenz oder ein Polypeptidmotiv wie in Spalte 5 von Tabelle II beziehungsweise in Spalte 7 von Tabelle IV gezeigt umfassenden Polypeptids, welches in der gleichen entsprechenden Zeile wie dieses SLR1348 steht, oder ein funktionelles Äquivalent oder ein Homolog davon wie in Spalte 7 von Tabelle II gezeigt, vorzugsweise ein Homolog oder funktionelles Äquivalent wie in Spalte 7 von Tabelle II B gezeigt, welches in der gleichen entsprechenden Zeile wie dieses SLR1348 steht,
    wie hier erwähnt, zur Erhöhung des Ertrags, z. B. zur Erhöhung eines oder mehrerer Ertragsmerkmale, zum Beispiel einer gesteigerten Toleranz gegenüber abiotischem Umweltstress, zum Beispiel einer erhöhten Toleranz gegenüber Dürre und/oder Toleranz gegenüber niedrigen Temperaturen und/oder einer erhöhten Effizienz der Nährstoffausnutzung, verglichen mit einer entsprechenden, z. B. nicht transformierten, Pflanzenzelle oder Pflanze vom Wildtyp oder einem Teil davon in einer Pflanzenzelle, einer Pflanze oder einem Teil davon, wie erwähnt, insbesondere für eine gesteigerte Toleranz gegenüber abiotischem Umweltstress, oder einen erhöhten Ertrag, oder eine gesteigerte Toleranz gegenüber abiotischem Umweltstress und einen erhöhten Ertrag. Dementsprechend handelt es sich bei einer Ausführungsform bei dem Molekül, dessen Aktivität im erfindungsgemäßen Verfahren zu erhöhen ist, um das Genprodukt mit einer als „Serinacetyltransferase” beschriebenen Aktivität; bevorzugt handelt es sich dabei um das in Abschnitt (a) oder (b) dieses Absatzes beschriebene Molekül. Gemäß einer Ausführungsform wird das Molekül, dessen Aktivität bei dem erfindungsgemäßen Verfahren zu erhöhen ist und bei dem es sich um das Genprodukt mit einer als „Serinacetyltransferase” beschriebenen Aktivität handelt, in Mitochondrien erhöht.
  • Die Sequenz von YGR191W aus Saccharomyces cerevisiae, z. B. wie in Spalte 5 von Tabelle I gezeigt, wurde veröffentlicht (z. B. Sequenzen aus S. cerevisiae wurden in Goffeau et al., Science 274 (5287), 546 (1996) veröffentlicht, Sequenzen aus E. coli wurden in Blattner et al., Science 277 (5331), 1453 (1997) veröffentlicht), und/oder ihre Aktivität wurde als Aminosäurepermease beschrieben. Dementsprechend umfasst das Verfahren der vorliegenden Erfindung gemäß einer Ausführungsform die Erhöhung oder Erzeugung der Aktivität eines Genprodukts mit der Aktivität einer „Aminosäurepermease” aus Saccharomyces cerevisiae oder einem funktionellen Äquivalent davon oder einem Homolog davon, z. B. die Erhöhung
    • (a) eines Genprodukts eines Gens, das das Nukleinsäuremolekül, welches wie in Spalte 5 von Tabelle I gezeigt ist und in der gleichen entsprechenden Zeile wie dieses YGR191W steht, oder ein funktionelles Äquivalent oder ein Homolog davon wie in Spalte 7 von Tabelle I gezeigt, vorzugsweise ein Homolog oder funktionelles Äquivalent wie in Spalte 7 von Tabelle I B gezeigt, welches in der gleichen entsprechenden Zeile wie dieses YGR191W steht, umfasst; oder
    • (b) eines ein Polypeptid, eine Konsensussequenz oder ein Polypeptidmotiv wie in Spalte 5 von Tabelle II beziehungsweise in Spalte 7 von Tabelle IV gezeigt umfassenden Polypeptids, welches in der gleichen entsprechenden Zeile wie dieses YGR191W steht, oder ein funktionelles Äquivalent oder ein Homolog davon wie in Spalte 7 von Tabelle II gezeigt, vorzugsweise ein Homolog oder funktionelles Äquivalent wie in Spalte 7 von Tabelle II B gezeigt, welches in der gleichen entsprechenden Zeile wie dieses YGR191W steht,
    wie hier erwähnt, zur Erhöhung des Ertrags, z. B. zur Erhöhung eines oder mehrerer Ertragsmerkmale, zum Beispiel einer gesteigerten Toleranz gegenüber abiotischem Umweltstress, zum Beispiel einer erhöhten Toleranz gegenüber Dürre und/oder Toleranz gegenüber niedrigen Temperaturen und/oder einer erhöhten Effizienz der Nährstoffausnutzung, verglichen mit einer entsprechenden, z. B. nicht transformierten, Pflanzenzelle oder Pflanze vom Wildtyp oder einem Teil davon in einer Pflanzenzelle, einer Pflanze oder einem Teil davon, wie erwähnt, insbesondere für eine gesteigerte Toleranz gegenüber abiotischem Umweltstress, oder einen erhöhten Ertrag, oder eine gesteigerte Toleranz gegenüber abiotischem Umweltstress und einen erhöhten Ertrag. Dementsprechend handelt es sich bei einer Ausführungsform bei dem Molekül, dessen Aktivität im erfindungsgemäßen Verfahren zu erhöhen ist, um das Genprodukt mit einer als „Aminosäurepermease” beschriebenen Aktivität; bevorzugt handelt es sich dabei um das in Abschnitt (a) oder (b) dieses Absatzes beschriebene Molekül. Gemäß einer Ausführungsform wird das Molekül, dessen Aktivität bei dem erfindungsgemäßen Verfahren zu erhöhen ist und bei dem es sich um das Genprodukt mit einer als „Aminosäurepermease” beschriebenen Aktivität handelt, plastidisch erhöht.
  • Die Sequenz von AT1G22920 aus Arabidopsis thaliana, z. B. wie in Spalte 5 von Tabelle I gezeigt, wurde veröffentlicht (z. B. Sequenzen aus S. cerevisiae wurden in Goffeau et al., Science 274 (5287), 546 (1996) veröffentlicht, Sequenzen aus E. coli wurden in Blattner et al., Science 277 (5331), 1453 (1997) veröffentlicht), und/oder ihre Aktivität wurde als Untereinheit des Signalosomkomplexes beschrieben. Dementsprechend umfasst das Verfahren der vorliegenden Erfindung gemäß einer Ausführungsform die Erhöhung oder Erzeugung der Aktivität eines Genprodukts mit der Aktivität einer „Untereinheit des Signalosomkomplexes” aus Arabidopsis thaliana oder einem funktionellen Äquivalent davon oder einem Homolog davon, z. B. die Erhöhung
    • (a) eines Genprodukts eines Gens, das das Nukleinsäuremolekül, welches wie in Spalte 5 von Tabelle I gezeigt ist und in der gleichen entsprechenden Zeile wie dieses AT1G22920 steht, oder ein funktionelles Äquivalent oder ein Homolog davon wie in Spalte 7 von Tabelle I gezeigt, vorzugsweise ein Homolog oder funktionelles Äquivalent wie in Spalte 7 von Tabelle I B gezeigt, welches in der gleichen entsprechenden Zeile wie dieses AT1G22920 steht, umfasst; oder
    • (b) eines ein Polypeptid, eine Konsensussequenz oder ein Polypeptidmotiv wie in Spalte 5 von Tabelle II beziehungsweise in Spalte 7 von Tabelle IV gezeigt umfassenden Polypeptids, welches in der gleichen entsprechenden Zeile wie dieses AT1G22920 steht, oder ein funktionelles Äquivalent oder ein Homolog davon wie in Spalte 7 von Tabelle II gezeigt, vorzugsweise ein Homolog oder funktionelles Äquivalent wie in Spalte 7 von Tabelle II B gezeigt, welches in der gleichen entsprechenden Zeile wie dieses AT1G22920 steht,
    wie hier erwähnt, zur Erhöhung des Ertrags, z. B. zur Erhöhung eines oder mehrerer Ertragsmerkmale, zum Beispiel einer gesteigerten Toleranz gegenüber abiotischem Umweltstress, zum Beispiel einer erhöhten Toleranz gegenüber Dürre und/oder Toleranz gegenüber niedrigen Temperaturen und/oder einer erhöhten Effizienz der Nährstoffausnutzung, verglichen mit einer entsprechenden, z. B. nicht transformierten, Pflanzenzelle oder Pflanze vom Wildtyp oder einem Teil davon in einer Pflanzenzelle, einer Pflanze oder einem Teil davon, wie erwähnt, insbesondere für eine gesteigerte Toleranz gegenüber abiotischem Umweltstress, oder einen erhöhten Ertrag, oder eine gesteigerte Toleranz gegenüber abiotischem Umweltstress und einen erhöhten Ertrag. Dementsprechend handelt es sich bei einer Ausführungsform bei dem Molekül, dessen Aktivität im erfindungsgemäßen Verfahren zu erhöhen ist, um das Genprodukt mit einer als „Untereinheit des Signalosomkomplexes” beschriebenen Aktivität; bevorzugt handelt es sich dabei um das in Abschnitt (a) oder (b) dieses Absatzes beschriebene Molekül. Gemäß einer Ausführungsform wird das Molekül, dessen Aktivität bei dem erfindungsgemäßen Verfahren zu erhöhen ist und bei dem es sich um das Genprodukt mit einer als „Untereinheit des Signalosomkomplexes” beschriebenen Aktivität handelt, zytoplasmatisch erhöht.
  • Die Sequenz von B1600 aus Escherichia coli, z. B. wie in Spalte 5 von Tabelle I gezeigt, wurde veröffentlicht (z. B. Sequenzen aus S. cerevisiae wurden in Goffeau et al., Science 274 (5287), 546 (1996) veröffentlicht, Sequenzen aus E. coli wurden in Blattner et al., Science 277 (5331), 1453 (1997) veröffentlicht), und/oder ihre Aktivität wurde als Multidrug-Resistenzprotein beschrieben. Dementsprechend umfasst das Verfahren der vorliegenden Erfindung gemäß einer Ausführungsform die Erhöhung oder Erzeugung der Aktivität eines Genprodukts mit der Aktivität eines „Multidrug-Resistenzproteins” aus Escherichia coli oder einem funktionellen Äquivalent davon oder einem Homolog davon, z. B. die Erhöhung
    • (a) eines Genprodukts eines Gens, das das Nukleinsäuremolekül, welches wie in Spalte 5 von Tabelle I gezeigt ist und in der gleichen entsprechenden Zeile wie dieses B1600 steht, oder ein funktionelles Äquivalent oder ein Homolog davon wie in Spalte 7 von Tabelle I gezeigt, vorzugsweise ein Homolog oder funktionelles Äquivalent wie in Spalte 7 von Tabelle I B gezeigt, welches in der gleichen entsprechenden Zeile wie dieses B1600 steht, umfasst; oder
    • (b) eines ein Polypeptid, eine Konsensussequenz oder ein Polypeptidmotiv wie in Spalte 5 von Tabelle II beziehungsweise in Spalte 7 von Tabelle IV gezeigt umfassenden Polypeptids, welches in der gleichen entsprechenden Zeile wie dieses B1600 steht, oder ein funktionelles Äquivalent oder ein Homolog davon wie in Spalte 7 von Tabelle II gezeigt, vorzugsweise ein Homolog oder funktionelles Äquivalent wie in Spalte 7 von Tabelle II B gezeigt, welches in der gleichen entsprechenden Zeile wie dieses B1600 steht,
    wie hier erwähnt, zur Erhöhung des Ertrags, z. B. zur Erhöhung eines oder mehrerer Ertragsmerkmale, zum Beispiel einer gesteigerten Toleranz gegenüber abiotischem Umweltstress, zum Beispiel einer erhöhten Toleranz gegenüber Dürre und/oder Toleranz gegenüber niedrigen Temperaturen und/oder einer erhöhten Effizienz der Nährstoffausnutzung, verglichen mit einer entsprechenden, z. B. nicht transformierten, Pflanzenzelle oder Pflanze vom Wildtyp oder einem Teil davon in einer Pflanzenzelle, einer Pflanze oder einem Teil davon, wie erwähnt, insbesondere für eine gesteigerte Toleranz gegenüber abiotischem Umweltstress, oder einen erhöhten Ertrag, oder eine gesteigerte Toleranz gegenüber abiotischem Umweltstress und einen erhöhten Ertrag. Dementsprechend handelt es sich bei einer Ausführungsform bei dem Molekül, dessen Aktivität im erfindungsgemäßen Verfahren zu erhöhen ist, um das Genprodukt mit einer als „Multidrug-Resistenzprotein” beschriebenen Aktivität; bevorzugt handelt es sich dabei um das in Abschnitt (a) oder (b) dieses Absatzes beschriebene Molekül. Gemäß einer Ausführungsform wird das Molekül, dessen Aktivität bei dem erfindungsgemäßen Verfahren zu erhöhen ist und bei dem es sich um das Genprodukt mit einer als „Multidrug-Resistenzprotein” beschriebenen Aktivität handelt, plastidisch erhöht.
  • Die Sequenz von B1900 aus Escherichia coli, z. B. wie in Spalte 5 von Tabelle I gezeigt, wurde veröffentlicht (z. B. Sequenzen aus S. cerevisiae wurden in Goffeau et al., Science 274 (5287), 546 (1996) veröffentlicht, Sequenzen aus E. coli wurden in Blattner et al., Science 277 (5331), 1453 (1997) veröffentlicht), und/oder ihre Aktivität wurde als ATP-bindendes Protein des Arabinosetransportsystems beschrieben. Dementsprechend umfasst das Verfahren der vorliegenden Erfindung gemäß einer Ausführungsform die Erhöhung oder Erzeugung der Aktivität eines Genprodukts mit der Aktivität eines „ATP-bindenden Proteins des Arabinosetransportsystems” aus Escherichia coli oder einem funktionellen Äquivalent davon oder einem Homolog davon, z. B. die Erhöhung
    • (a) eines Genprodukts eines Gens, das das Nukleinsäuremolekül, welches wie in Spalte 5 von Tabelle I gezeigt ist und in der gleichen entsprechenden Zeile wie dieses B1900 steht, oder ein funktionelles Äquivalent oder ein Homolog davon wie in Spalte 7 von Tabelle I gezeigt, vorzugsweise ein Homolog oder funktionelles Äquivalent wie in Spalte 7 von Tabelle I B gezeigt, welches in der gleichen entsprechenden Zeile wie dieses B1900 steht, umfasst; oder
    • (b) eines ein Polypeptid, eine Konsensussequenz oder ein Polypeptidmotiv wie in Spalte 5 von Tabelle II beziehungsweise in Spalte 7 von Tabelle IV gezeigt umfassenden Polypeptids, welches in der gleichen entsprechenden Zeile wie dieses B1900 steht, oder ein funktionelles Äquivalent oder ein Homolog davon wie in Spalte 7 von Tabelle II gezeigt, vorzugsweise ein Homolog oder funktionelles Äquivalent wie in Spalte 7 von Tabelle II B gezeigt, welches in der gleichen entsprechenden Zeile wie dieses B1900 steht,
    wie hier erwähnt, zur Erhöhung des Ertrags, z. B. zur Erhöhung eines oder mehrerer Ertragsmerkmale, zum Beispiel einer gesteigerten Toleranz gegenüber abiotischem Umweltstress, zum Beispiel einer erhöhten Toleranz gegenüber Dürre und/oder Toleranz gegenüber niedrigen Temperaturen und/oder einer erhöhten Effizienz der Nährstoffausnutzung, verglichen mit einer entsprechenden, z. B. nicht transformierten, Pflanzenzelle oder Pflanze vom Wildtyp oder einem Teil davon in einer Pflanzenzelle, einer Pflanze oder einem Teil davon, wie erwähnt, insbesondere für eine gesteigerte Toleranz gegenüber abiotischem Umweltstress, oder einen erhöhten Ertrag, oder eine gesteigerte Toleranz gegenüber abiotischem Umweltstress und einen erhöhten Ertrag. Dementsprechend handelt es sich bei einer Ausführungsform bei dem Molekül, dessen Aktivität im erfindungsgemäßen Verfahren zu erhöhen ist, um das Genprodukt mit einer als „ATP-bindendes Protein des Arabinosetransportsystems” beschriebenen Aktivität; bevorzugt handelt es sich dabei um das in Abschnitt (a) oder (b) dieses Absatzes beschriebene Molekül. Gemäß einer Ausführungsform wird das Molekül, dessen Aktivität bei dem erfindungsgemäßen Verfahren zu erhöhen ist und bei dem es sich um das Genprodukt mit einer als „ATP-bindendes Protein des Arabinosetransportsystems” beschriebenen Aktivität handelt, plastidisch erhöht.
  • Die Sequenz von SLL0099 aus Synechocystis sp., z. B. wie in Spalte 5 von Tabelle I gezeigt, wurde veröffentlicht (z. B. Sequenzen aus S. cerevisiae wurden in Goffeau et al., Science 274 (5287), 546 (1996) veröffentlicht, Sequenzen aus E. coli wurden in Blattner et al., Science 277 (5331), 1453 (1997) veröffentlicht), und/oder ihre Aktivität wurde als Precorrin-6y-Methylase beschrieben. Dementsprechend umfasst das Verfahren der vorliegenden Erfindung gemäß einer Ausführungsform die Erhöhung oder Erzeugung der Aktivität eines Genprodukts mit der Aktivität einer „Precorrin-6y-Methylase” aus Synechocystis sp. oder einem funktionellen Äquivalent davon oder einem Homolog davon, z. B. die Erhöhung
    • (a) eines Genprodukts eines Gens, das das Nukleinsäuremolekül, welches wie in Spalte 5 von Tabelle I gezeigt ist und in der gleichen entsprechenden Zeile wie dieses SLL0099 steht, oder ein funktionelles Äquivalent oder ein Homolog davon wie in Spalte 7 von Tabelle I gezeigt, vorzugsweise ein Homolog oder funktionelles Äquivalent wie in Spalte 7 von Tabelle I B gezeigt, welches in der gleichen entsprechenden Zeile wie dieses SLL0099 steht, umfasst; oder
    • (b) eines ein Polypeptid, eine Konsensussequenz oder ein Polypeptidmotiv wie in Spalte 5 von Tabelle II beziehungsweise in Spalte 7 von Tabelle IV gezeigt umfassenden Polypeptids, welches in der gleichen entsprechenden Zeile wie dieses SLL0099 steht, oder ein funktionelles Äquivalent oder ein Homolog davon wie in Spalte 7 von Tabelle II gezeigt, vorzugsweise ein Homolog oder funktionelles Äquivalent wie in Spalte 7 von Tabelle II B gezeigt, welches in der gleichen entsprechenden Zeile wie dieses SLL0099 steht,
    wie hier erwähnt, zur Erhöhung des Ertrags, z. B. zur Erhöhung eines oder mehrerer Ertragsmerkmale, zum Beispiel einer gesteigerten Toleranz gegenüber abiotischem Umweltstress, zum Beispiel einer erhöhten Toleranz gegenüber Dürre und/oder Toleranz gegenüber niedrigen Temperaturen und/oder einer erhöhten Effizienz der Nährstoffausnutzung, verglichen mit einer entsprechenden, z. B. nicht transformierten, Pflanzenzelle oder Pflanze vom Wildtyp oder einem Teil davon in einer Pflanzenzelle, einer Pflanze oder einem Teil davon, wie erwähnt, insbesondere für eine gesteigerte Toleranz gegenüber abiotischem Umweltstress, oder einen erhöhten Ertrag, oder eine gesteigerte Toleranz gegenüber abiotischem Umweltstress und einen erhöhten Ertrag. Dementsprechend handelt es sich bei einer Ausführungsform bei dem Molekül, dessen Aktivität im erfindungsgemäßen Verfahren zu erhöhen ist, um das Genprodukt mit einer als „Precorrin-6y-Methylase” beschriebenen Aktivität; bevorzugt handelt es sich dabei um das in Abschnitt (a) oder (b) dieses Absatzes beschriebene Molekül. Gemäß einer Ausführungsform wird das Molekül, dessen Aktivität bei dem erfindungsgemäßen Verfahren zu erhöhen ist und bei dem es sich um das Genprodukt mit einer als „Precorrin-6y-Methylase” beschriebenen Aktivität handelt, zytoplasmatisch erhöht.
  • Die Sequenz von SLL0383 aus Synechocystis sp., z. B. wie in Spalte 5 von Tabelle I gezeigt, wurde veröffentlicht (z. B. Sequenzen aus S. cerevisiae wurden in Goffeau et al., Science 274 (5287), 546 (1996) veröffentlicht, Sequenzen aus E. coli wurden in Blattner et al., Science 277 (5331), 1453 (1997) veröffentlicht), und/oder ihre Aktivität wurde als Cobalttransportprotein beschrieben. Dementsprechend umfasst das Verfahren der vorliegenden Erfindung gemäß einer Ausführungsform die Erhöhung oder Erzeugung der Aktivität eines Genprodukts mit der Aktivität eines „Cobalttransportproteins” aus Synechocystis sp. oder einem funktionellen Äquivalent davon oder einem Homolog davon, z. B. die Erhöhung
    • (a) eines Genprodukts eines Gens, das das Nukleinsäuremolekül, welches wie in Spalte 5 von Tabelle I gezeigt ist und in der gleichen entsprechenden Zeile wie dieses SLL0383 steht, oder ein funktionelles Äquivalent oder ein Homolog davon wie in Spalte 7 von Tabelle I gezeigt, vorzugsweise ein Homolog oder funktionelles Äquivalent wie in Spalte 7 von Tabelle I B gezeigt, welches in der gleichen entsprechenden Zeile wie dieses SLL0383 steht, umfasst; oder
    • (b) eines ein Polypeptid, eine Konsensussequenz oder ein Polypeptidmotiv wie in Spalte 5 von Tabelle II beziehungsweise in Spalte 7 von Tabelle IV gezeigt umfassenden Polypeptids, welches in der gleichen entsprechenden Zeile wie dieses SLL0383 steht, oder ein funktionelles Äquivalent oder ein Homolog davon wie in Spalte 7 von Tabelle II gezeigt, vorzugsweise ein Homolog oder funktionelles Äquivalent wie in Spalte 7 von Tabelle II B gezeigt, welches in der gleichen entsprechenden Zeile wie dieses SLL0383 steht,
    wie hier erwähnt, zur Erhöhung des Ertrags, z. B. zur Erhöhung eines oder mehrerer Ertragsmerkmale, zum Beispiel einer gesteigerten Toleranz gegenüber abiotischem Umweltstress, zum Beispiel einer erhöhten Toleranz gegenüber Dürre und/oder Toleranz gegenüber niedrigen Temperaturen und/oder einer erhöhten Effizienz der Nährstoffausnutzung, verglichen mit einer entsprechenden, z. B. nicht transformierten, Pflanzenzelle oder Pflanze vom Wildtyp oder einem Teil davon in einer Pflanzenzelle, einer Pflanze oder einem Teil davon, wie erwähnt, insbesondere für eine gesteigerte Toleranz gegenüber abiotischem Umweltstress, oder einen erhöhten Ertrag, oder eine gesteigerte Toleranz gegenüber abiotischem Umweltstress und einen erhöhten Ertrag. Dementsprechend handelt es sich bei einer Ausführungsform bei dem Molekül, dessen Aktivität im erfindungsgemäßen Verfahren zu erhöhen ist, um das Genprodukt mit einer als „Cobalttransportprotein” beschriebenen Aktivität; bevorzugt handelt es sich dabei um das in Abschnitt (a) oder (b) dieses Absatzes beschriebene Molekül. Gemäß einer Ausführungsform wird das Molekül, dessen Aktivität bei dem erfindungsgemäßen Verfahren zu erhöhen ist und bei dem es sich um das Genprodukt mit einer als „Cobalttransportprotein” beschriebenen Aktivität handelt, zytoplasmatisch erhöht.
  • Die Sequenz von SLR1094 aus Synechocystis sp., z. B. wie in Spalte 5 von Tabelle I gezeigt, wurde veröffentlicht, und ihre Aktivität wurde als SLR1094-Protein beschrieben. Dementsprechend umfasst das Verfahren der vorliegenden Erfindung gemäß einer Ausführungsform die Erhöhung oder Erzeugung der Aktivität eines Genprodukts mit der Aktivität eines „SLR1094-Proteins” aus Synechocystis sp. oder einem funktionellen Äquivalent davon oder einem Homolog davon, z. B. die Erhöhung
    • (a) eines Genprodukts eines Gens, das das Nukleinsäuremolekül, welches wie in Spalte 5 von Tabelle I gezeigt ist und in der gleichen entsprechenden Zeile wie dieses SLR1094 steht, oder ein funktionelles Äquivalent oder ein Homolog davon wie in Spalte 7 von Tabelle I gezeigt, vorzugsweise ein Homolog oder funktionelles Äquivalent wie in Spalte 7 von Tabelle I B gezeigt, welches in der gleichen entsprechenden Zeile wie dieses SLR1094 steht, umfasst; oder
    • (b) eines ein Polypeptid, eine Konsensussequenz oder ein Polypeptidmotiv wie in Spalte 5 von Tabelle II beziehungsweise in Spalte 7 von Tabelle IV gezeigt umfassenden Polypeptids, welches in der gleichen entsprechenden Zeile wie dieses SLR1094 steht, oder ein funktionelles Äquivalent oder ein Homolog davon wie in Spalte 7 von Tabelle II gezeigt, vorzugsweise ein Homolog oder funktionelles Äquivalent wie in Spalte 7 von Tabelle II B gezeigt, welches in der gleichen entsprechenden Zeile wie dieses SLR1094 steht,
    wie hier erwähnt, zur Erhöhung des Ertrags, z. B. zur Erhöhung eines oder mehrerer Ertragsmerkmale, zum Beispiel einer gesteigerten Toleranz gegenüber abiotischem Umweltstress, zum Beispiel einer erhöhten Toleranz gegenüber Dürre und/oder Toleranz gegenüber niedrigen Temperaturen und/oder einer erhöhten Effizienz der Nährstoffausnutzung, verglichen mit einer entsprechenden, z. B. nicht transformierten, Pflanzenzelle oder Pflanze vom Wildtyp oder einem Teil davon in einer Pflanzenzelle, einer Pflanze oder einem Teil davon, wie erwähnt, insbesondere für eine gesteigerte Toleranz gegenüber abiotischem Umweltstress, oder einen erhöhten Ertrag, oder eine gesteigerte Toleranz gegenüber abiotischem Umweltstress und einen erhöhten Ertrag. Dementsprechend handelt es sich bei einer Ausführungsform bei dem Molekül, dessen Aktivität im erfindungsgemäßen Verfahren zu erhöhen ist, um das Genprodukt mit einer als „SLR1094-Protein” beschriebenen Aktivität; bevorzugt handelt es sich dabei um das in Abschnitt (a) oder (b) dieses Absatzes beschriebene Molekül. Gemäß einer Ausführungsform wird das Molekül, dessen Aktivität bei dem erfindungsgemäßen Verfahren zu erhöhen ist und bei dem es sich um das Genprodukt mit einer als „SLR1094-Protein” beschriebenen Aktivität handelt, zytoplasmatisch erhöht.
  • Die Sequenz von SLR1520 aus Synechocystis sp., z. B. wie in Spalte 5 von Tabelle I gezeigt, wurde veröffentlicht, und ihre Aktivität wurde als Oxidoreduktase beschrieben. Dementsprechend umfasst das Verfahren der vorliegenden Erfindung gemäß einer Ausführungsform die Erhöhung oder Erzeugung der Aktivität eines Genprodukts mit der Aktivität einer „Oxidoreduktase” aus Synechocystis sp. oder einem funktionellen Äquivalent davon oder einem Homolog davon, z. B. die Erhöhung
    • (a) eines Genprodukts eines Gens, das das Nukleinsäuremolekül, welches wie in Spalte 5 von Tabelle I gezeigt ist und in der gleichen entsprechenden Zeile wie dieses SLR1520 steht, oder ein funktionelles Äquivalent oder ein Homolog davon wie in Spalte 7 von Tabelle I gezeigt, vorzugsweise ein Homolog oder funktionelles Äquivalent wie in Spalte 7 von Tabelle I B gezeigt, welches in der gleichen entsprechenden Zeile wie dieses SLR1520 steht, umfasst; oder
    • (b) eines ein Polypeptid, eine Konsensussequenz oder ein Polypeptidmotiv wie in Spalte 5 von Tabelle II beziehungsweise in Spalte 7 von Tabelle IV gezeigt umfassenden Polypeptids, welches in der gleichen entsprechenden Zeile wie dieses SLR1520 steht, oder ein funktionelles Äquivalent oder ein Homolog davon wie in Spalte 7 von Tabelle II gezeigt, vorzugsweise ein Homolog oder funktionelles Äquivalent wie in Spalte 7 von Tabelle II B gezeigt, welches in der gleichen entsprechenden Zeile wie dieses SLR1520 steht,
    wie hier erwähnt, zur Erhöhung des Ertrags, z. B. zur Erhöhung eines oder mehrerer Ertragsmerkmale, zum Beispiel einer gesteigerten Toleranz gegenüber abiotischem Umweltstress, zum Beispiel einer erhöhten Toleranz gegenüber Dürre und/oder Toleranz gegenüber niedrigen Temperaturen und/oder einer erhöhten Effizienz der Nährstoffausnutzung, verglichen mit einer entsprechenden, z. B. nicht transformierten, Pflanzenzelle oder Pflanze vom Wildtyp oder einem Teil davon in einer Pflanzenzelle, einer Pflanze oder einem Teil davon, wie erwähnt, insbesondere für eine gesteigerte Toleranz gegenüber abiotischem Umweltstress, oder einen erhöhten Ertrag, oder eine gesteigerte Toleranz gegenüber abiotischem Umweltstress und einen erhöhten Ertrag. Dementsprechend handelt es sich bei einer Ausführungsform bei dem Molekül, dessen Aktivität im erfindungsgemäßen Verfahren zu erhöhen ist, um das Genprodukt mit einer als „Oxidoreduktase” beschriebenen Aktivität; bevorzugt handelt es sich dabei um das in Abschnitt (a) oder (b) dieses Absatzes beschriebene Molekül. Gemäß einer Ausführungsform wird das Molekül, dessen Aktivität bei dem erfindungsgemäßen Verfahren zu erhöhen ist und bei dem es sich um das Genprodukt mit einer als „Oxidoreduktase” beschriebenen Aktivität handelt, zytoplasmatisch erhöht.
  • Die Sequenz von YDL142C aus Saccharomyces cerevisiae, z. B. wie in Spalte 5 von Tabelle I gezeigt, wurde veröffentlicht (z. B. Sequenzen aus S. cerevisiae wurden in Goffeau et al., Science 274 (5287), 546 (1996) veröffentlicht, Sequenzen aus E. coli wurden in Blattner et al., Science 277 (5331), 1453 (1997) veröffentlicht), und/oder ihre Aktivität wurde als Cardiolipinsynthetase beschrieben. Dementsprechend umfasst das Verfahren der vorliegenden Erfindung gemäß einer Ausführungsform die Erhöhung oder Erzeugung der Aktivität eines Genprodukts mit der Aktivität einer „Cardiolipinsynthetase” aus Saccharomyces cerevisiae oder einem funktionellen Äquivalent davon oder einem Homolog davon, z. B. die Erhöhung
    • (a) eines Genprodukts eines Gens, das das Nukleinsäuremolekül, welches wie in Spalte 5 von Tabelle I gezeigt ist und in der gleichen entsprechenden Zeile wie dieses YDL142C steht, oder ein funktionelles Äquivalent oder ein Homolog davon wie in Spalte 7 von Tabelle I gezeigt, vorzugsweise ein Homolog oder funktionelles Äquivalent wie in Spalte 7 von Tabelle I B gezeigt, welches in der gleichen entsprechenden Zeile wie dieses YDL142C steht, umfasst; oder
    • (b) eines ein Polypeptid, eine Konsensussequenz oder ein Polypeptidmotiv wie in Spalte 5 von Tabelle II beziehungsweise in Spalte 7 von Tabelle IV gezeigt umfassenden Polypeptids, welches in der gleichen entsprechenden Zeile wie dieses YDL142C steht, oder ein funktionelles Äquivalent oder ein Homolog davon wie in Spalte 7 von Tabelle II gezeigt, vorzugsweise ein Homolog oder funktionelles Äquivalent wie in Spalte 7 von Tabelle II B gezeigt, welches in der gleichen entsprechenden Zeile wie dieses YDL142C steht,
    wie hier erwähnt, zur Erhöhung des Ertrags, z. B. zur Erhöhung eines oder mehrerer Ertragsmerkmale, zum Beispiel einer gesteigerten Toleranz gegenüber abiotischem Umweltstress, zum Beispiel einer erhöhten Toleranz gegenüber Dürre und/oder Toleranz gegenüber niedrigen Temperaturen und/oder einer erhöhten Effizienz der Nährstoffausnutzung, verglichen mit einer entsprechenden, z. B. nicht transformierten, Pflanzenzelle oder Pflanze vom Wildtyp oder einem Teil davon in einer Pflanzenzelle, einer Pflanze oder einem Teil davon, wie erwähnt, insbesondere für eine gesteigerte Toleranz gegenüber abiotischem Umweltstress, oder einen erhöhten Ertrag, oder eine gesteigerte Toleranz gegenüber abiotischem Umweltstress und einen erhöhten Ertrag. Dementsprechend handelt es sich bei einer Ausführungsform bei dem Molekül, dessen Aktivität im erfindungsgemäßen Verfahren zu erhöhen ist, um das Genprodukt mit einer als „Cardiolipinsynthetase” beschriebenen Aktivität; bevorzugt handelt es sich dabei um das in Abschnitt (a) oder (b) dieses Absatzes beschriebene Molekül. Gemäß einer Ausführungsform wird das Molekül, dessen Aktivität bei dem erfindungsgemäßen Verfahren zu erhöhen ist und bei dem es sich um das Genprodukt mit einer als „Cardiolipinsynthetase” beschriebenen Aktivität handelt, zytoplasmatisch erhöht.
  • Die Sequenz von YDR147W aus Saccharomyces cerevisiae, z. B. wie in Spalte 5 von Tabelle I gezeigt, wurde veröffentlicht (z. B. Sequenzen aus S. cerevisiae wurden in Goffeau et al., Science 274 (5287), 546 (1996) veröffentlicht, Sequenzen aus E. coli wurden in Blattner et al., Science 277 (5331), 1453 (1997) veröffentlicht), und/oder ihre Aktivität wurde als Ethanolaminkinase beschrieben. Dementsprechend umfasst das Verfahren der vorliegenden Erfindung gemäß einer Ausführungsform die Erhöhung oder Erzeugung der Aktivität eines Genprodukts mit der Aktivität einer „Ethanolaminkinase” aus Saccharomyces cerevisiae oder einem funktionellen Äquivalent davon oder einem Homolog davon, z. B. die Erhöhung
    • (a) eines Genprodukts eines Gens, das das Nukleinsäuremolekül, welches wie in Spalte 5 von Tabelle I gezeigt ist und in der gleichen entsprechenden Zeile wie dieses YDR147W steht, oder ein funktionelles Äquivalent oder ein Homolog davon wie in Spalte 7 von Tabelle I gezeigt, vorzugsweise ein Homolog oder funktionelles Äquivalent wie in Spalte 7 von Tabelle I B gezeigt, welches in der gleichen entsprechenden Zeile wie dieses YDR147W steht, umfasst; oder
    • (b) eines ein Polypeptid, eine Konsensussequenz oder ein Polypeptidmotiv wie in Spalte 5 von Tabelle II beziehungsweise in Spalte 7 von Tabelle IV gezeigt umfassenden Polypeptids, welches in der gleichen entsprechenden Zeile wie dieses YDR147W steht, oder ein funktionelles Äquivalent oder ein Homolog davon wie in Spalte 7 von Tabelle II gezeigt, vorzugsweise ein Homolog oder funktionelles Äquivalent wie in Spalte 7 von Tabelle II B gezeigt, welches in der gleichen entsprechenden Zeile wie dieses YDR147W steht,
    wie hier erwähnt, zur Erhöhung des Ertrags, z. B. zur Erhöhung eines oder mehrerer Ertragsmerkmale, zum Beispiel einer gesteigerten Toleranz gegenüber abiotischem Umweltstress, zum Beispiel einer erhöhten Toleranz gegenüber Dürre und/oder Toleranz gegenüber niedrigen Temperaturen und/oder einer erhöhten Effizienz der Nährstoffausnutzung, verglichen mit einer entsprechenden, z. B. nicht transformierten, Pflanzenzelle oder Pflanze vom Wildtyp oder einem Teil davon in einer Pflanzenzelle, einer Pflanze oder einem Teil davon, wie erwähnt, insbesondere für eine gesteigerte Toleranz gegenüber abiotischem Umweltstress, oder einen erhöhten Ertrag, oder eine gesteigerte Toleranz gegenüber abiotischem Umweltstress und einen erhöhten Ertrag. Dementsprechend handelt es sich bei einer Ausführungsform bei dem Molekül, dessen Aktivität im erfindungsgemäßen Verfahren zu erhöhen ist, um das Genprodukt mit einer als „Ethanolaminkinase” beschriebenen Aktivität; bevorzugt handelt es sich dabei um das in Abschnitt (a) oder (b) dieses Absatzes beschriebene Molekül. Gemäß einer Ausführungsform wird das Molekül, dessen Aktivität bei dem erfindungsgemäßen Verfahren zu erhöhen ist und bei dem es sich um das Genprodukt mit einer als „Ethanolaminkinase” beschriebenen Aktivität handelt, zytoplasmatisch erhöht.
  • Die Sequenz von YLR284C aus Saccharomyces cerevisiae, z. B. wie in Spalte 5 von Tabelle I gezeigt, wurde veröffentlicht (z. B. Sequenzen aus S. cerevisiae wurden in Goffeau et al., Science 274 (5287), 546 (1996) veröffentlicht, Sequenzen aus E. coli wurden in Blattner et al., Science 277 (5331), 1453 (1997) veröffentlicht), und/oder ihre Aktivität wurde als Enoyl-CoA-Isomerase beschrieben. Dementsprechend umfasst das Verfahren der vorliegenden Erfindung gemäß einer Ausführungsform die Erhöhung oder Erzeugung der Aktivität eines Genprodukts mit der Aktivität einer „Enoyl-CoA-Isomerase” aus Saccharomyces cerevisiae oder einem funktionellen Äquivalent davon oder einem Homolog davon, z. B. die Erhöhung
    • (a) eines Genprodukts eines Gens, das das Nukleinsäuremolekül, welches wie in Spalte 5 von Tabelle I gezeigt ist und in der gleichen entsprechenden Zeile wie dieses YLR284C steht, oder ein funktionelles Äquivalent oder ein Homolog davon wie in Spalte 7 von Tabelle I gezeigt, vorzugsweise ein Homolog oder funktionelles Äquivalent wie in Spalte 7 von Tabelle I B gezeigt, welches in der gleichen entsprechenden Zeile wie dieses YLR284C steht, umfasst; oder
    • (b) eines ein Polypeptid, eine Konsensussequenz oder ein Polypeptidmotiv wie in Spalte 5 von Tabelle II beziehungsweise in Spalte 7 von Tabelle IV gezeigt umfassenden Polypeptids, welches in der gleichen entsprechenden Zeile wie dieses YLR284C steht, oder ein funktionelles Äquivalent oder ein Homolog davon wie in Spalte 7 von Tabelle II gezeigt, vorzugsweise ein Homolog oder funktionelles Äquivalent wie in Spalte 7 von Tabelle II B gezeigt, welches in der gleichen entsprechenden Zeile wie dieses YLR284C steht,
    wie hier erwähnt, zur Erhöhung des Ertrags, z. B. zur Erhöhung eines oder mehrerer Ertragsmerkmale, zum Beispiel einer gesteigerten Toleranz gegenüber abiotischem Umweltstress, zum Beispiel einer erhöhten Toleranz gegenüber Dürre und/oder Toleranz gegenüber niedrigen Temperaturen und/oder einer erhöhten Effizienz der Nährstoffausnutzung, verglichen mit einer entsprechenden, z. B. nicht transformierten, Pflanzenzelle oder Pflanze vom Wildtyp oder einem Teil davon in einer Pflanzenzelle, einer Pflanze oder einem Teil davon, wie erwähnt, insbesondere für eine gesteigerte Toleranz gegenüber abiotischem Umweltstress, oder einen erhöhten Ertrag, oder eine gesteigerte Toleranz gegenüber abiotischem Umweltstress und einen erhöhten Ertrag. Dementsprechend handelt es sich bei einer Ausführungsform bei dem Molekül, dessen Aktivität im erfindungsgemäßen Verfahren zu erhöhen ist, um das Genprodukt mit einer als „Enoyl-CoA-Isomerase” beschriebenen Aktivität; bevorzugt handelt es sich dabei um das in Abschnitt (a) oder (b) dieses Absatzes beschriebene Molekül. Gemäß einer Ausführungsform wird das Molekül, dessen Aktivität bei dem erfindungsgemäßen Verfahren zu erhöhen ist und bei dem es sich um das Genprodukt mit einer als „Enoyl-CoA-Isomerase” beschriebenen Aktivität handelt, plastidisch erhöht.
  • Die Sequenz von YPL148C aus Saccharomyces cerevisiae, z. B. wie in Spalte 5 von Tabelle I gezeigt, wurde veröffentlicht (z. B. Sequenzen aus S. cerevisiae wurden in Goffeau et al., Science 274 (5287), 546 (1996) veröffentlicht, Sequenzen aus E. coli wurden in Blattner et al., Science 277 (5331), 1453 (1997) veröffentlicht), und/oder ihre Aktivität wurde als Holo-[Acylträgerprotein]-Synthase beschrieben. Dementsprechend umfasst das Verfahren der vorliegenden Erfindung gemäß einer Ausführungsform die Erhöhung oder Erzeugung der Aktivität eines Genprodukts mit der Aktivität einer „Holo-[Acylträgerprotein]-Synthase” aus Saccharomyces cerevisiae oder einem funktionellen Äquivalent davon oder einem Homolog davon, z. B. die Erhöhung
    • (a) eines Genprodukts eines Gens, das das Nukleinsäuremolekül, welches wie in Spalte 5 von Tabelle I gezeigt ist und in der gleichen entsprechenden Zeile wie dieses YPL148C steht, oder ein funktionelles Äquivalent oder ein Homolog davon wie in Spalte 7 von Tabelle I gezeigt, vorzugsweise ein Homolog oder funktionelles Äquivalent wie in Spalte 7 von Tabelle I B gezeigt, welches in der gleichen entsprechenden Zeile wie dieses YPL148C steht, umfasst; oder
    • (b) eines ein Polypeptid, eine Konsensussequenz oder ein Polypeptidmotiv wie in Spalte 5 von Tabelle II beziehungsweise in Spalte 7 von Tabelle IV gezeigt umfassenden Polypeptids, welches in der gleichen entsprechenden Zeile wie dieses YPL148C steht, oder ein funktionelles Äquivalent oder ein Homolog davon wie in Spalte 7 von Tabelle II gezeigt, vorzugsweise ein Homolog oder funktionelles Äquivalent wie in Spalte 7 von Tabelle II B gezeigt, welches in der gleichen entsprechenden Zeile wie dieses YPL148C steht,
    wie hier erwähnt, zur Erhöhung des Ertrags, z. B. zur Erhöhung eines oder mehrerer Ertragsmerkmale, zum Beispiel einer gesteigerten Toleranz gegenüber abiotischem Umweltstress, zum Beispiel einer erhöhten Toleranz gegenüber Dürre und/oder Toleranz gegenüber niedrigen Temperaturen und/oder einer erhöhten Effizienz der Nährstoffausnutzung, verglichen mit einer entsprechenden, z. B. nicht transformierten, Pflanzenzelle oder Pflanze vom Wildtyp oder einem Teil davon in einer Pflanzenzelle, einer Pflanze oder einem Teil davon, wie erwähnt, insbesondere für eine gesteigerte Toleranz gegenüber abiotischem Umweltstress, oder einen erhöhten Ertrag, oder eine gesteigerte Toleranz gegenüber abiotischem Umweltstress und einen erhöhten Ertrag. Dementsprechend handelt es sich bei einer Ausführungsform bei dem Molekül, dessen Aktivität im erfindungsgemäßen Verfahren zu erhöhen ist, um das Genprodukt mit einer als „Holo-[Acylträgerprotein]-Synthase” beschriebenen Aktivität; bevorzugt handelt es sich dabei um das in Abschnitt (a) oder (b) dieses Absatzes beschriebene Molekül. Gemäß einer Ausführungsform wird das Molekül, dessen Aktivität bei dem erfindungsgemäßen Verfahren zu erhöhen ist und bei dem es sich um das Genprodukt mit einer als „Holo-[Acylträgerprotein]-Synthase” beschriebenen Aktivität handelt, plastidisch erhöht.
  • Die Sequenz von YPR074C aus Saccharomyces cerevisiae, z. B. wie in Spalte 5 von Tabelle I gezeigt, wurde veröffentlicht (z. B. Sequenzen aus S. cerevisiae wurden in Goffeau et al., Science 274 (5287), 546 (1996) veröffentlicht, Sequenzen aus E. coli wurden in Blattner et al., Science 277 (5331), 1453 (1997) veröffentlicht), und/oder ihre Aktivität wurde als Transketolase beschrieben. Dementsprechend umfasst das Verfahren der vorliegenden Erfindung gemäß einer Ausführungsform die Erhöhung oder Erzeugung der Aktivität eines Genprodukts mit der Aktivität einer „Transketolase” aus Saccharomyces cerevisiae oder einem funktionellen Äquivalent davon oder einem Homolog davon, z. B. die Erhöhung
    • (a) eines Genprodukts eines Gens, das das Nukleinsäuremolekül, welches wie in Spalte 5 von Tabelle I gezeigt ist und in der gleichen entsprechenden Zeile wie dieses YPR074C steht, oder ein funktionelles Äquivalent oder ein Homolog davon wie in Spalte 7 von Tabelle I gezeigt, vorzugsweise ein Homolog oder funktionelles Äquivalent wie in Spalte 7 von Tabelle I B gezeigt, welches in der gleichen entsprechenden Zeile wie dieses YPR074C steht, umfasst; oder
    • (b) eines ein Polypeptid, eine Konsensussequenz oder ein Polypeptidmotiv wie in Spalte 5 von Tabelle II beziehungsweise in Spalte 7 von Tabelle IV gezeigt umfassenden Polypeptids, welches in der gleichen entsprechenden Zeile wie dieses YPR074C steht, oder ein funktionelles Äquivalent oder ein Homolog davon wie in Spalte 7 von Tabelle II gezeigt, vorzugsweise ein Homolog oder funktionelles Äquivalent wie in Spalte 7 von Tabelle II B gezeigt, welches in der gleichen entsprechenden Zeile wie dieses YPR074C steht,
    wie hier erwähnt, zur Erhöhung des Ertrags, z. B. zur Erhöhung eines oder mehrerer Ertragsmerkmale, zum Beispiel einer gesteigerten Toleranz gegenüber abiotischem Umweltstress, zum Beispiel einer erhöhten Toleranz gegenüber Dürre und/oder Toleranz gegenüber niedrigen Temperaturen und/oder einer erhöhten Effizienz der Nährstoffausnutzung, verglichen mit einer entsprechenden, z. B. nicht transformierten, Pflanzenzelle oder Pflanze vom Wildtyp oder einem Teil davon in einer Pflanzenzelle, einer Pflanze oder einem Teil davon, wie erwähnt, insbesondere für eine gesteigerte Toleranz gegenüber abiotischem Umweltstress, oder einen erhöhten Ertrag, oder eine gesteigerte Toleranz gegenüber abiotischem Umweltstress und einen erhöhten Ertrag. Dementsprechend handelt es sich bei einer Ausführungsform bei dem Molekül, dessen Aktivität im erfindungsgemäßen Verfahren zu erhöhen ist, um das Genprodukt mit einer als „Transketolase” beschriebenen Aktivität; bevorzugt handelt es sich dabei um das in Abschnitt (a) oder (b) dieses Absatzes beschriebene Molekül. Gemäß einer Ausführungsform wird das Molekül, dessen Aktivität bei dem erfindungsgemäßen Verfahren zu erhöhen ist und bei dem es sich um das Genprodukt mit einer als „Transketolase” beschriebenen Aktivität handelt, plastidisch erhöht.
  • Die Sequenz von B1008 aus Escherichia coli, z. B. wie in Spalte 5 von Tabelle I gezeigt, wurde veröffentlicht (z. B. Sequenzen aus S. cerevisiae wurden in Goffeau et al., Science 274 (5287), 546 (1996) veröffentlicht, Sequenzen aus E. coli wurden in Blattner et al., Science 277 (5331), 1453 (1997) veröffentlicht), und/oder ihre Aktivität wurde als NADH-Dehydrogenase/NAD(P)H-Nitroreduktase beschrieben. Dementsprechend umfasst das Verfahren der vorliegenden Erfindung gemäß einer Ausführungsform die Erhöhung oder Erzeugung der Aktivität eines Genprodukts mit der Aktivität einer „NADH-Dehydrogenase/NAD(P)H-Nitroreduktase” aus Escherichia coli oder einem funktionellen Äquivalent davon oder einem Homolog davon, z. B. die Erhöhung
    • (a) eines Genprodukts eines Gens, das das Nukleinsäuremolekül, welches wie in Spalte 5 von Tabelle I gezeigt ist und in der gleichen entsprechenden Zeile wie dieses B1008 steht, oder ein funktionelles Äquivalent oder ein Homolog davon wie in Spalte 7 von Tabelle I gezeigt, vorzugsweise ein Homolog oder funktionelles Äquivalent wie in Spalte 7 von Tabelle I B gezeigt, welches in der gleichen entsprechenden Zeile wie dieses B1008 steht, umfasst; oder
    • (b) eines ein Polypeptid, eine Konsensussequenz oder ein Polypeptidmotiv wie in Spalte 5 von Tabelle II beziehungsweise in Spalte 7 von Tabelle IV gezeigt umfassenden Polypeptids, welches in der gleichen entsprechenden Zeile wie dieses B1008 steht, oder ein funktionelles Äquivalent oder ein Homolog davon wie in Spalte 7 von Tabelle II gezeigt, vorzugsweise ein Homolog oder funktionelles Äquivalent wie in Spalte 7 von Tabelle II B gezeigt, welches in der gleichen entsprechenden Zeile wie dieses B1008 steht,
    wie hier erwähnt, zur Erhöhung des Ertrags, z. B. zur Erhöhung eines oder mehrerer Ertragsmerkmale, zum Beispiel einer gesteigerten Toleranz gegenüber abiotischem Umweltstress, zum Beispiel einer erhöhten Toleranz gegenüber Dürre und/oder Toleranz gegenüber niedrigen Temperaturen und/oder einer erhöhten Effizienz der Nährstoffausnutzung, verglichen mit einer entsprechenden, z. B. nicht transformierten, Pflanzenzelle oder Pflanze vom Wildtyp oder einem Teil davon in einer Pflanzenzelle, einer Pflanze oder einem Teil davon, wie erwähnt, insbesondere für eine gesteigerte Toleranz gegenüber abiotischem Umweltstress, oder einen erhöhten Ertrag, oder eine gesteigerte Toleranz gegenüber abiotischem Umweltstress und einen erhöhten Ertrag. Dementsprechend handelt es sich bei einer Ausführungsform bei dem Molekül, dessen Aktivität im erfindungsgemäßen Verfahren zu erhöhen ist, um das Genprodukt mit einer als „NADH-Dehydrogenase/NAD(P)H-Nitroreduktase” beschriebenen Aktivität; bevorzugt handelt es sich dabei um das in Abschnitt (a) oder (b) dieses Absatzes beschriebene Molekül. Gemäß einer Ausführungsform wird das Molekül, dessen Aktivität bei dem erfindungsgemäßen Verfahren zu erhöhen ist und bei dem es sich um das Genprodukt mit einer als „NADH-Dehydrogenase/NAD(P)H-Nitroreduktase” beschriebenen Aktivität handelt, plastidisch erhöht.
  • Die Sequenz von B1529 aus Escherichia coli, z. B. wie in Spalte 5 von Tabelle I gezeigt, wurde veröffentlicht (z. B. Sequenzen aus S. cerevisiae wurden in Goffeau et al., Science 274 (5287), 546 (1996) veröffentlicht, Sequenzen aus E. coli wurden in Blattner et al., Science 277 (5331), 1453 (1997) veröffentlicht), und/oder ihre Aktivität wurde als Multiple-Drug-Resistenzprotein beschrieben. Dementsprechend umfasst das Verfahren der vorliegenden Erfindung gemäß einer Ausführungsform die Erhöhung oder Erzeugung der Aktivität eines Genprodukts mit der Aktivität eines „Multiple-Drug-Resistenzproteins” aus Escherichia coli oder einem funktionellen Äquivalent davon oder einem Homolog davon, z. B. die Erhöhung
    • (a) eines Genprodukts eines Gens, das das Nukleinsäuremolekül, welches wie in Spalte 5 von Tabelle I gezeigt ist und in der gleichen entsprechenden Zeile wie dieses B1529 steht, oder ein funktionelles Äquivalent oder ein Homolog davon wie in Spalte 7 von Tabelle I gezeigt, vorzugsweise ein Homolog oder funktionelles Äquivalent wie in Spalte 7 von Tabelle I B gezeigt, welches in der gleichen entsprechenden Zeile wie dieses B1529 steht, umfasst; oder
    • (b) eines ein Polypeptid, eine Konsensussequenz oder ein Polypeptidmotiv wie in Spalte 5 von Tabelle II beziehungsweise in Spalte 7 von Tabelle IV gezeigt umfassenden Polypeptids, welches in der gleichen entsprechenden Zeile wie dieses B1529 steht, oder ein funktionelles Äquivalent oder ein Homolog davon wie in Spalte 7 von Tabelle II gezeigt, vorzugsweise ein Homolog oder funktionelles Äquivalent wie in Spalte 7 von Tabelle II B gezeigt, welches in der gleichen entsprechenden Zeile wie dieses B1529 steht,
    wie hier erwähnt, zur Erhöhung des Ertrags, z. B. zur Erhöhung eines oder mehrerer Ertragsmerkmale, zum Beispiel einer gesteigerten Toleranz gegenüber abiotischem Umweltstress, zum Beispiel einer erhöhten Toleranz gegenüber Dürre und/oder Toleranz gegenüber niedrigen Temperaturen und/oder einer erhöhten Effizienz der Nährstoffausnutzung, verglichen mit einer entsprechenden, z. B. nicht transformierten, Pflanzenzelle oder Pflanze vom Wildtyp oder einem Teil davon in einer Pflanzenzelle, einer Pflanze oder einem Teil davon, wie erwähnt, insbesondere für eine gesteigerte Toleranz gegenüber abiotischem Umweltstress, oder einen erhöhten Ertrag, oder eine gesteigerte Toleranz gegenüber abiotischem Umweltstress und einen erhöhten Ertrag. Dementsprechend handelt es sich bei einer Ausführungsform bei dem Molekül, dessen Aktivität im erfindungsgemäßen Verfahren zu erhöhen ist, um das Genprodukt mit einer als „Multiple-Drug-Resistenzprotein” beschriebenen Aktivität; bevorzugt handelt es sich dabei um das in Abschnitt (a) oder (b) dieses Absatzes beschriebene Molekül. Gemäß einer Ausführungsform wird das Molekül, dessen Aktivität bei dem erfindungsgemäßen Verfahren zu erhöhen ist und bei dem es sich um das Genprodukt mit einer als „Multiple-Drug-Resistenzprotein” beschriebenen Aktivität handelt, plastidisch erhöht.
  • Die Sequenz von B3347 aus Escherichia coli, z. B. wie in Spalte 5 von Tabelle I gezeigt, wurde veröffentlicht (z. B. Sequenzen aus S. cerevisiae wurden in Goffeau et al., Science 274 (5287), 546 (1996) veröffentlicht, Sequenzen aus E. coli wurden in Blattner et al., Science 277 (5331), 1453 (1997) veröffentlicht), und/oder ihre Aktivität wurde als Peptidyl-Prolyl-cis/trans-Isomerase beschrieben. Dementsprechend umfasst das Verfahren der vorliegenden Erfindung gemäß einer Ausführungsform die Erhöhung oder Erzeugung der Aktivität eines Genprodukts mit der Aktivität einer „Peptidyl-Prolyl-cis/trans-Isomerase” aus Escherichia coli oder einem funktionellen Äquivalent davon oder einem Homolog davon, z. B. die Erhöhung
    • (a) eines Genprodukts eines Gens, das das Nukleinsäuremolekül, welches wie in Spalte 5 von Tabelle I gezeigt ist und in der gleichen entsprechenden Zeile wie dieses B3347 steht, oder ein funktionelles Äquivalent oder ein Homolog davon wie in Spalte 7 von Tabelle I gezeigt, vorzugsweise ein Homolog oder funktionelles Äquivalent wie in Spalte 7 von Tabelle I B gezeigt, welches in der gleichen entsprechenden Zeile wie dieses B3347 steht, umfasst; oder
    • (b) eines ein Polypeptid, eine Konsensussequenz oder ein Polypeptidmotiv wie in Spalte 5 von Tabelle II beziehungsweise in Spalte 7 von Tabelle IV gezeigt umfassenden Polypeptids, welches in der gleichen entsprechenden Zeile wie dieses B3347 steht, oder ein funktionelles Äquivalent oder ein Homolog davon wie in Spalte 7 von Tabelle II gezeigt, vorzugsweise ein Homolog oder funktionelles Äquivalent wie in Spalte 7 von Tabelle II B gezeigt, welches in der gleichen entsprechenden Zeile wie dieses B3347 steht,
    wie hier erwähnt, zur Erhöhung des Ertrags, z. B. zur Erhöhung eines oder mehrerer Ertragsmerkmale, zum Beispiel einer gesteigerten Toleranz gegenüber abiotischem Umweltstress, zum Beispiel einer erhöhten Toleranz gegenüber Düne und/oder Toleranz gegenüber niedrigen Temperaturen und/oder einer erhöhten Effizienz der Nährstoffausnutzung, verglichen mit einer entsprechenden, z. B. nicht transformierten, Pflanzenzelle oder Pflanze vom Wildtyp oder einem Teil davon in einer Pflanzenzelle, einer Pflanze oder einem Teil davon, wie erwähnt, insbesondere für eine gesteigerte Toleranz gegenüber abiotischem Umweltstress, oder einen erhöhten Ertrag, oder eine gesteigerte Toleranz gegenüber abiotischem Umweltstress und einen erhöhten Ertrag. Dementsprechend handelt es sich bei einer Ausführungsform bei dem Molekül, dessen Aktivität im erfindungsgemäßen Verfahren zu erhöhen ist, um das Genprodukt mit einer als „Peptidyl-Prolyl-cis/trans-Isomerase” beschriebenen Aktivität; bevorzugt handelt es sich dabei um das in Abschnitt (a) oder (b) dieses Absatzes beschriebene Molekül. Gemäß einer Ausführungsform wird das Molekül, dessen Aktivität bei dem erfindungsgemäßen Verfahren zu erhöhen ist und bei dem es sich um das Genprodukt mit einer als „Peptidyl-Prolyl-cis/trans-Isomerase” beschriebenen Aktivität handelt, plastidisch erhöht.
  • Die Sequenz von YBR176W aus Saccharomyces cerevisiae, z. B. wie in Spalte 5 von Tabelle I gezeigt, wurde veröffentlicht (z. B. Sequenzen aus S. cerevisiae wurden in Goffeau et al., Science 274 (5287), 546 (1996) veröffentlicht, Sequenzen aus E. coli wurden in Blattner et al., Science 277 (5331), 1453 (1997) veröffentlicht), und/oder ihre Aktivität wurde als 3-Methyl-2-oxobutanoat-Hydroxymethyltransferase beschrieben. Dementsprechend umfasst das Verfahren der vorliegenden Erfindung gemäß einer Ausführungsform die Erhöhung oder Erzeugung der Aktivität eines Genprodukts mit der Aktivität eines „3-Methyl-2-oxobutanoat-Hydroxymethyltransferase” aus Saccharomyces cerevisiae oder einem funktionellen Äquivalent davon oder einem Homolog davon, z. B. die Erhöhung
    • (a) eines Genprodukts eines Gens, das das Nukleinsäuremolekül, welches wie in Spalte 5 von Tabelle I gezeigt ist und in der gleichen entsprechenden Zeile wie dieses YBR176W steht, oder ein funktionelles Äquivalent oder ein Homolog davon wie in Spalte 7 von Tabelle I gezeigt, vorzugsweise ein Homolog oder funktionelles Äquivalent wie in Spalte 7 von Tabelle I B gezeigt, welches in der gleichen entsprechenden Zeile wie dieses YBR176W steht, umfasst; oder
    • (b) eines ein Polypeptid, eine Konsensussequenz oder ein Polypeptidmotiv wie in Spalte 5 von Tabelle II beziehungsweise in Spalte 7 von Tabelle IV gezeigt umfassenden Polypeptids, welches in der gleichen entsprechenden Zeile wie dieses YBR176W steht, oder ein funktionelles Äquivalent oder ein Homolog davon wie in Spalte 7 von Tabelle II gezeigt, vorzugsweise ein Homolog oder funktionelles Äquivalent wie in Spalte 7 von Tabelle II B gezeigt, welches in der gleichen entsprechenden Zeile wie dieses YBR176W steht,
    wie hier erwähnt, zur Erhöhung des Ertrags, z. B. zur Erhöhung eines oder mehrerer Ertragsmerkmale, zum Beispiel einer gesteigerten Toleranz gegenüber abiotischem Umweltstress, zum Beispiel einer erhöhten Toleranz gegenüber Dürre und/oder Toleranz gegenüber niedrigen Temperaturen und/oder einer erhöhten Effizienz der Nährstoffausnutzung, verglichen mit einer entsprechenden, z. B. nicht transformierten, Pflanzenzelle oder Pflanze vom Wildtyp oder einem Teil davon in einer Pflanzenzelle, einer Pflanze oder einem Teil davon, wie erwähnt, insbesondere für eine gesteigerte Toleranz gegenüber abiotischem Umweltstress, oder einen erhöhten Ertrag, oder eine gesteigerte Toleranz gegenüber abiotischem Umweltstress und einen erhöhten Ertrag. Dementsprechend handelt es sich bei einer Ausführungsform bei dem Molekül, dessen Aktivität im erfindungsgemäßen Verfahren zu erhöhen ist, um das Genprodukt mit einer als „3-Methyl-2-oxobutanoat-Hydroxymethyltransferase” beschriebenen Aktivität; bevorzugt handelt es sich dabei um das in Abschnitt (a) oder (b) dieses Absatzes beschriebene Molekül. Gemäß einer Ausführungsform wird das Molekül, dessen Aktivität bei dem erfindungsgemäßen Verfahren zu erhöhen ist und bei dem es sich um das Genprodukt mit einer als „3-Methyl-2-oxobutanoat-Hydroxymethyltransferase” beschriebenen Aktivität handelt, zytoplasmatisch erhöht.
  • Die Sequenz von YGR177C aus Saccharomyces cerevisiae, z. B. wie in Spalte 5 von Tabelle I gezeigt, wurde veröffentlicht (z. B. Sequenzen aus S. cerevisiae wurden in Goffeau et al., Science 274 (5287), 546 (1996) veröffentlicht, Sequenzen aus E. coli wurden in Blattner et al., Science 277 (5331), 1453 (1997) veröffentlicht), und/oder ihre Aktivität wurde als Alkoholacetyltransferase beschrieben. Dementsprechend umfasst das Verfahren der vorliegenden Erfindung gemäß einer Ausführungsform die Erhöhung oder Erzeugung der Aktivität eines Genprodukts mit der Aktivität einer „Alkoholacetyltransferase” aus Saccharomyces cerevisiae oder einem funktionellen Äquivalent davon oder einem Homolog davon, z. B. die Erhöhung
    • (a) eines Genprodukts eines Gens, das das Nukleinsäuremolekül, welches wie in Spalte 5 von Tabelle I gezeigt ist und in der gleichen entsprechenden Zeile wie dieses YGR177C steht, oder ein funktionelles Äquivalent oder ein Homolog davon wie in Spalte 7 von Tabelle I gezeigt, vorzugsweise ein Homolog oder funktionelles Äquivalent wie in Spalte 7 von Tabelle I B gezeigt, welches in der gleichen entsprechenden Zeile wie dieses YGR177C steht, umfasst; oder
    • (b) eines ein Polypeptid, eine Konsensussequenz oder ein Polypeptidmotiv wie in Spalte 5 von Tabelle II beziehungsweise in Spalte 7 von Tabelle IV gezeigt umfassenden Polypeptids, welches in der gleichen entsprechenden Zeile wie dieses YGR177C steht, oder ein funktionelles Äquivalent oder ein Homolog davon wie in Spalte 7 von Tabelle II gezeigt, vorzugsweise ein Homolog oder funktionelles Äquivalent wie in Spalte 7 von Tabelle II B gezeigt, welches in der gleichen entsprechenden Zeile wie dieses YGR177C steht,
    wie hier erwähnt, zur Erhöhung des Ertrags, z. B. zur Erhöhung eines oder mehrerer Ertragsmerkmale, zum Beispiel einer gesteigerten Toleranz gegenüber abiotischem Umweltstress, zum Beispiel einer erhöhten Toleranz gegenüber Dürre und/oder Toleranz gegenüber niedrigen Temperaturen und/oder einer erhöhten Effizienz der Nährstoffausnutzung, verglichen mit einer entsprechenden, z. B. nicht transformierten, Pflanzenzelle oder Pflanze vom Wildtyp oder einem Teil davon in einer Pflanzenzelle, einer Pflanze oder einem Teil davon, wie erwähnt, insbesondere für eine gesteigerte Toleranz gegenüber abiotischem Umweltstress, oder einen erhöhten Ertrag, oder eine gesteigerte Toleranz gegenüber abiotischem Umweltstress und einen erhöhten Ertrag. Dementsprechend handelt es sich bei einer Ausführungsform bei dem Molekül, dessen Aktivität im erfindungsgemäßen Verfahren zu erhöhen ist, um das Genprodukt mit einer als „Alkoholacetyltransferase” beschriebenen Aktivität; bevorzugt handelt es sich dabei um das in Abschnitt (a) oder (b) dieses Absatzes beschriebene Molekül. Gemäß einer Ausführungsform wird das Molekül, dessen Aktivität bei dem erfindungsgemäßen Verfahren zu erhöhen ist und bei dem es sich um das Genprodukt mit einer als „Alkoholacetyltransferase” beschriebenen Aktivität handelt, zytoplasmatisch erhöht.
  • Die Sequenz von YHR176W aus Saccharomyces cerevisiae, z. B. wie in Spalte 5 von Tabelle I gezeigt, wurde veröffentlicht (z. B. Sequenzen aus S. cerevisiae wurden in Goffeau et al., Science 274 (5287), 546 (1996) veröffentlicht, Sequenzen aus E. coli wurden in Blattner et al., Science 277 (5331), 1453 (1997) veröffentlicht), und/oder ihre Aktivität wurde als thiolspezifische Monooxygenase beschrieben. Dementsprechend umfasst das Verfahren der vorliegenden Erfindung gemäß einer Ausführungsform die Erhöhung oder Erzeugung der Aktivität eines Genprodukts mit der Aktivität einer „thiolspezifischen Monooxygenase” aus Saccharomyces cerevisiae oder einem funktionellen Äquivalent davon oder einem Homolog davon, z. B. die Erhöhung
    • (a) eines Genprodukts eines Gens, das das Nukleinsäuremolekül, welches wie in Spalte 5 von Tabelle I gezeigt ist und in der gleichen entsprechenden Zeile wie dieses YHR176W steht, oder ein funktionelles Äquivalent oder ein Homolog davon wie in Spalte 7 von Tabelle I gezeigt, vorzugsweise ein Homolog oder funktionelles Äquivalent wie in Spalte 7 von Tabelle I B gezeigt, welches in der gleichen entsprechenden Zeile wie dieses YHR176W steht, umfasst; oder
    • (b) eines ein Polypeptid, eine Konsensussequenz oder ein Polypeptidmotiv wie in Spalte 5 von Tabelle II beziehungsweise in Spalte 7 von Tabelle IV gezeigt umfassenden Polypeptids, welches in der gleichen entsprechenden Zeile wie dieses YHR176W steht, oder ein funktionelles Äquivalent oder ein Homolog davon wie in Spalte 7 von Tabelle II gezeigt, vorzugsweise ein Homolog oder funktionelles Äquivalent wie in Spalte 7 von Tabelle II B gezeigt, welches in der gleichen entsprechenden Zeile wie dieses YHR176W steht,
    wie hier erwähnt, zur Erhöhung des Ertrags, z. B. zur Erhöhung eines oder mehrerer Ertragsmerkmale, zum Beispiel einer gesteigerten Toleranz gegenüber abiotischem Umweltstress, zum Beispiel einer erhöhten Toleranz gegenüber Dürre und/oder Toleranz gegenüber niedrigen Temperaturen und/oder einer erhöhten Effizienz der Nährstoffausnutzung, verglichen mit einer entsprechenden, z. B. nicht transformierten, Pflanzenzelle oder Pflanze vom Wildtyp oder einem Teil davon in einer Pflanzenzelle, einer Pflanze oder einem Teil davon, wie erwähnt, insbesondere für eine gesteigerte Toleranz gegenüber abiotischem Umweltstress, oder einen erhöhten Ertrag, oder eine gesteigerte Toleranz gegenüber abiotischem Umweltstress und einen erhöhten Ertrag. Dementsprechend handelt es sich bei einer Ausführungsform bei dem Molekül, dessen Aktivität im erfindungsgemäßen Verfahren zu erhöhen ist, um das Genprodukt mit einer als „thiolspezifische Monooxygenase” beschriebenen Aktivität; bevorzugt handelt es sich dabei um das in Abschnitt (a) oder (b) dieses Absatzes beschriebene Molekül. Gemäß einer Ausführungsform wird das Molekül, dessen Aktivität bei dem erfindungsgemäßen Verfahren zu erhöhen ist und bei dem es sich um das Genprodukt mit einer als „thiolspezifische Monooxygenase” beschriebenen Aktivität handelt, zytoplasmatisch erhöht.
  • Die Sequenz von B2881_2 aus Escherichia coli, z. B. wie in Spalte 5 von Tabelle I gezeigt, wurde veröffentlicht (z. B. Sequenzen aus S. cerevisiae wurden in Goffeau et al., Science 274 (5287), 546 (1996) veröffentlicht, Sequenzen aus E. coli wurden in Blattner et al., Science 277 (5331), 1453 (1997)veröffentlicht), und/oder ihre Aktivität wurde als molybdänbindende Untereinheit von Aldehydoxidasen und Xanthindehydrogenasen beschrieben. Dementsprechend umfasst das Verfahren der vorliegenden Erfindung gemäß einer Ausführungsform die Erhöhung oder Erzeugung der Aktivität eines Genprodukts mit der Aktivität einer „molybdänbindenden Untereinheit von Aldehydoxidasen und Xanthindehydrogenasen” aus Escherichia coli oder einem funktionellen Äquivalent davon oder einem Homolog davon, z. B. die Erhöhung
    • (a) eines Genprodukts eines Gens, das das Nukleinsäuremolekül, welches wie in Spalte 5 von Tabelle I gezeigt ist und in der gleichen entsprechenden Zeile wie dieses B2881_2 steht, oder ein funktionelles Äquivalent oder ein Homolog davon wie in Spalte 7 von Tabelle I gezeigt, vorzugsweise ein Homolog oder funktionelles Äquivalent wie in Spalte 7 von Tabelle I B gezeigt, welches in der gleichen entsprechenden Zeile wie dieses B2881_2 steht, umfasst; oder
    • (b) eines ein Polypeptid, eine Konsensussequenz oder ein Polypeptidmotiv wie in Spalte 5 von Tabelle II beziehungsweise in Spalte 7 von Tabelle IV gezeigt umfassenden Polypeptids, welches in der gleichen entsprechenden Zeile wie dieses B2881_2 steht, oder ein funktionelles Äquivalent oder ein Homolog davon wie in Spalte 7 von Tabelle II gezeigt, vorzugsweise ein Homolog oder funktionelles Äquivalent wie in Spalte 7 von Tabelle II B gezeigt, welches in der gleichen entsprechenden Zeile wie dieses B2881_2 steht,
    wie hier erwähnt, zur Erhöhung des Ertrags, z. B. zur Erhöhung eines oder mehrerer Ertragsmerkmale, zum Beispiel einer gesteigerten Toleranz gegenüber abiotischem Umweltstress, zum Beispiel einer erhöhten Toleranz gegenüber Dürre und/oder Toleranz gegenüber niedrigen Temperaturen und/oder einer erhöhten Effizienz der Nährstoffausnutzung, verglichen mit einer entsprechenden, z. B. nicht transformierten, Pflanzenzelle oder Pflanze vom Wildtyp oder einem Teil davon in einer Pflanzenzelle, einer Pflanze oder einem Teil davon, wie erwähnt, insbesondere für eine gesteigerte Toleranz gegenüber abiotischem Umweltstress, oder einen erhöhten Ertrag, oder eine gesteigerte Toleranz gegenüber abiotischem Umweltstress und einen erhöhten Ertrag. Dementsprechend handelt es sich bei einer Ausführungsform bei dem Molekül, dessen Aktivität im erfindungsgemäßen Verfahren zu erhöhen ist, um das Genprodukt mit einer als „molybdänbindende Untereinheit von Aldehydoxidasen und Xanthindehydrogenasen” beschriebenen Aktivität; bevorzugt handelt es sich dabei um das in Abschnitt (a) oder (b) dieses Absatzes beschriebene Molekül. Gemäß einer Ausführungsform wird das Molekül, dessen Aktivität bei dem erfindungsgemäßen Verfahren zu erhöhen ist und bei dem es sich um das Genprodukt mit einer als „molybdänbindende Untereinheit von Aldehydoxidasen und Xanthindehydrogenasen” beschriebenen Aktivität handelt, zytoplasmatisch erhöht.
  • Die Sequenz von B3945_2 aus Escherichia coli, z. B. wie in Spalte 5 von Tabelle I gezeigt, wurde veröffentlicht (z. B. Sequenzen aus S. cerevisiae wurden in Goffeau et al., Science 274 (5287), 546 (1996) veröffentlicht, Sequenzen aus E. coli wurden in Blattner et al., Science 277 (5331), 1453 (1997) veröffentlicht), und/oder ihre Aktivität wurde als Glycerindehydrogenase beschrieben. Dementsprechend umfasst das Verfahren der vorliegenden Erfindung gemäß einer Ausführungsform die Erhöhung oder Erzeugung der Aktivität eines Genprodukts mit der Aktivität einer „Glycerindehydrogenase” aus Escherichia coli oder einem funktionellen Äquivalent davon oder einem Homolog davon, z. B. die Erhöhung
    • (a) eines Genprodukts eines Gens, das das Nukleinsäuremolekül, welches wie in Spalte 5 von Tabelle I gezeigt ist und in der gleichen entsprechenden Zeile wie dieses B3945_2 steht, oder ein funktionelles Äquivalent oder ein Homolog davon wie in Spalte 7 von Tabelle I gezeigt, vorzugsweise ein Homolog oder funktionelles Äquivalent wie in Spalte 7 von Tabelle I B gezeigt, welches in der gleichen entsprechenden Zeile wie dieses B3945_2 steht, umfasst; oder
    • (b) eines ein Polypeptid, eine Konsensussequenz oder ein Polypeptidmotiv wie in Spalte 5 von Tabelle II beziehungsweise in Spalte 7 von Tabelle IV gezeigt umfassenden Polypeptids, welches in der gleichen entsprechenden Zeile wie dieses B3945_2 steht, oder ein funktionelles Äquivalent oder ein Homolog davon wie in Spalte 7 von Tabelle II gezeigt, vorzugsweise ein Homolog oder funktionelles Äquivalent wie in Spalte 7 von Tabelle II B gezeigt, welches in der gleichen entsprechenden Zeile wie dieses B3945_2 steht,
    wie hier erwähnt, zur Erhöhung des Ertrags, z. B. zur Erhöhung eines oder mehrerer Ertragsmerkmale, zum Beispiel einer gesteigerten Toleranz gegenüber abiotischem Umweltstress, zum Beispiel einer erhöhten Toleranz gegenüber Dürre und/oder Toleranz gegenüber niedrigen Temperaturen und/oder einer erhöhten Effizienz der Nährstoffausnutzung, verglichen mit einer entsprechenden, z. B. nicht transformierten, Pflanzenzelle oder Pflanze vom Wildtyp oder einem Teil davon in einer Pflanzenzelle, einer Pflanze oder einem Teil davon, wie erwähnt, insbesondere für eine gesteigerte Toleranz gegenüber abiotischem Umweltstress, oder einen erhöhten Ertrag, oder eine gesteigerte Toleranz gegenüber abiotischem Umweltstress und einen erhöhten Ertrag. Dementsprechend handelt es sich bei einer Ausführungsform bei dem Molekül, dessen Aktivität im erfindungsgemäßen Verfahren zu erhöhen ist, um das Genprodukt mit einer als „Glycerindehydrogenase” beschriebenen Aktivität; bevorzugt handelt es sich dabei um das in Abschnitt (a) oder (b) dieses Absatzes beschriebene Molekül. Gemäß einer Ausführungsform wird das Molekül, dessen Aktivität bei dem erfindungsgemäßen Verfahren zu erhöhen ist und bei dem es sich um das Genprodukt mit einer als „Glycerindehydrogenase” beschriebenen Aktivität handelt, zytoplasmatisch erhöht.
  • Die Sequenz von Yhr204w_2 aus Saccharomyces cerevisiae, z. B. wie in Spalte 5 von Tabelle I gezeigt, wurde veröffentlicht (z. B. Sequenzen aus S. cerevisiae wurden in Goffeau et al., Science 274 (5287), 546 (1996) veröffentlicht, Sequenzen aus E. coli wurden in Blattner et al., Science 277 (5331), 1453 (1997) veröffentlicht), und/oder ihre Aktivität wurde als für den Abbau von Glykoproteinen benötigtes Protein beschrieben. Dementsprechend umfasst das Verfahren der vorliegenden Erfindung gemäß einer Ausführungsform die Erhöhung oder Erzeugung der Aktivität eines Genprodukts mit der Aktivität eines „für den Abbau von Glykoproteinen benötigten Proteins” aus Saccharomyces cerevisiae oder einem funktionellen Äquivalent davon oder einem Homolog davon, z. B. die Erhöhung
    • (a) eines Genprodukts eines Gens, das das Nukleinsäuremolekül, welches wie in Spalte 5 von Tabelle I gezeigt ist und in der gleichen entsprechenden Zeile wie dieses Yhr204w_2 steht, oder ein funktionelles Äquivalent oder ein Homolog davon wie in Spalte 7 von Tabelle I gezeigt, vorzugsweise ein Homolog oder funktionelles Äquivalent wie in Spalte 7 von Tabelle I B gezeigt, welches in der gleichen entsprechenden Zeile wie dieses Yhr204w_2 steht, umfasst; oder
    • (b) eines ein Polypeptid, eine Konsensussequenz oder ein Polypeptidmotiv wie in Spalte 5 von Tabelle II beziehungsweise in Spalte 7 von Tabelle IV gezeigt umfassenden Polypeptids, welches in der gleichen entsprechenden Zeile wie dieses Yhr204w_2 steht, oder ein funktionelles Äquivalent oder ein Homolog davon wie in Spalte 7 von Tabelle II gezeigt, vorzugsweise ein Homolog oder funktionelles Äquivalent wie in Spalte 7 von Tabelle II B gezeigt, welches in der gleichen entsprechenden Zeile wie dieses Yhr204w_2 steht,
    wie hier erwähnt, zur Erhöhung des Ertrags, z. B. zur Erhöhung eines oder mehrerer Ertragsmerkmale, zum Beispiel einer gesteigerten Toleranz gegenüber abiotischem Umweltstress, zum Beispiel einer erhöhten Toleranz gegenüber Dürre und/oder Toleranz gegenüber niedrigen Temperaturen und/oder einer erhöhten Effizienz der Nährstoffausnutzung, verglichen mit einer entsprechenden, z. B. nicht transformierten, Pflanzenzelle oder Pflanze vom Wildtyp oder einem Teil davon in einer Pflanzenzelle, einer Pflanze oder einem Teil davon, wie erwähnt, insbesondere für eine gesteigerte Toleranz gegenüber abiotischem Umweltstress, oder einen erhöhten Ertrag, oder eine gesteigerte Toleranz gegenüber abiotischem Umweltstress und einen erhöhten Ertrag. Dementsprechend handelt es sich bei einer Ausführungsform bei dem Molekül, dessen Aktivität im erfindungsgemäßen Verfahren zu erhöhen ist, um das Genprodukt mit einer als „für den Abbau von Glykoproteinen benötigten Protein” beschriebenen Aktivität; bevorzugt handelt es sich dabei um das in Abschnitt (a) oder (b) dieses Absatzes beschriebene Molekül. Gemäß einer Ausführungsform wird das Molekül, dessen Aktivität bei dem erfindungsgemäßen Verfahren zu erhöhen ist und bei dem es sich um das Genprodukt mit einer als „für den Abbau von Glykoproteinen benötigtes Protein” beschriebenen Aktivität handelt, zytoplasmatisch erhöht.
  • Die Sequenz von Ynl142w_2 aus Saccharomyces cerevisiae, z. B. wie in Spalte 5 von Tabelle I gezeigt, wurde veröffentlicht (z. B. Sequenzen aus S. cerevisiae wurden in Goffeau et al., Science 274 (5287), 546 (1996) veröffentlicht, Sequenzen aus E. coli wurden in Blattner et al., Science 277 (5331), 1453 (1997) veröffentlicht), und/oder ihre Aktivität wurde als Ammoniumtransporter beschrieben. Dementsprechend umfasst das Verfahren der vorliegenden Erfindung gemäß einer Ausführungsform die Erhöhung oder Erzeugung der Aktivität eines Genprodukts mit der Aktivität eines „Ammoniumtransporters” aus Saccharomyces cerevisiae oder einem funktionellen Äquivalent davon oder einem Homolog davon, z. B. die Erhöhung
    • (a) eines Genprodukts eines Gens, das das Nukleinsäuremolekül, welches wie in Spalte 5 von Tabelle I gezeigt ist und in der gleichen entsprechenden Zeile wie dieses Ynl142w_2 steht, oder ein funktionelles Äquivalent oder ein Homolog davon wie in Spalte 7 von Tabelle I gezeigt, vorzugsweise ein Homolog oder funktionelles Äquivalent wie in Spalte 7 von Tabelle I B gezeigt, welches in der gleichen entsprechenden Zeile wie dieses Ynl142w_2 steht, umfasst; oder
    • (b) eines ein Polypeptid, eine Konsensussequenz oder ein Polypeptidmotiv wie in Spalte 5 von Tabelle II beziehungsweise in Spalte 7 von Tabelle IV gezeigt umfassenden Polypeptids, welches in der gleichen entsprechenden Zeile wie dieses Ynl142w_2 steht, oder ein funktionelles Äquivalent oder ein Homolog davon wie in Spalte 7 von Tabelle II gezeigt, vorzugsweise ein Homolog oder funktionelles Äquivalent wie in Spalte 7 von Tabelle II B gezeigt, welches in der gleichen entsprechenden Zeile wie dieses Ynl142w_2 steht,
    wie hier erwähnt, zur Erhöhung des Ertrags, z. B. zur Erhöhung eines oder mehrerer Ertragsmerkmale, zum Beispiel einer gesteigerten Toleranz gegenüber abiotischem Umweltstress, zum Beispiel einer erhöhten Toleranz gegenüber Dürre und/oder Toleranz gegenüber niedrigen Temperaturen und/oder einer erhöhten Effizienz der Nährstoffausnutzung, verglichen mit einer entsprechenden, z. B. nicht transformierten, Pflanzenzelle oder Pflanze vom Wildtyp oder einem Teil davon in einer Pflanzenzelle, einer Pflanze oder einem Teil davon, wie erwähnt, insbesondere für eine gesteigerte Toleranz gegenüber abiotischem Umweltstress, oder einen erhöhten Ertrag, oder eine gesteigerte Toleranz gegenüber abiotischem Umweltstress und einen erhöhten Ertrag. Dementsprechend handelt es sich bei einer Ausführungsform bei dem Molekül, dessen Aktivität im erfindungsgemäßen Verfahren zu erhöhen ist, um das Genprodukt mit einer als „Ammoniumtransporter” beschriebenen Aktivität; bevorzugt handelt es sich dabei um das in Abschnitt (a) oder (b) dieses Absatzes beschriebene Molekül. Gemäß einer Ausführungsform wird das Molekül, dessen Aktivität bei dem erfindungsgemäßen Verfahren zu erhöhen ist und bei dem es sich um das Genprodukt mit einer als „Ammoniumtransporter” beschriebenen Aktivität handelt, zytoplasmatisch erhöht.
  • Die Sequenz von Yol058w_2 aus Saccharomyces cerevisiae, z. B. wie in Spalte 5 von Tabelle I gezeigt, wurde veröffentlicht (z. B. Sequenzen aus S. cerevisiae wurden in Goffeau et al., Science 274 (5287), 546 (1996) veröffentlicht, Sequenzen aus E. coli wurden in Blattner et al., Science 277 (5331), 1453 (1997) veröffentlicht), und/oder ihre Aktivität wurde als Argininosuccinatsynthase beschrieben. Dementsprechend umfasst das Verfahren der vorliegenden Erfindung gemäß einer Ausführungsform die Erhöhung oder Erzeugung der Aktivität eines Genprodukts mit der Aktivität einer „Argininosuccinatsynthase” aus Saccharomyces cerevisiae oder einem funktionellen Äquivalent davon oder einem Homolog davon, z. B. die Erhöhung
    • (a) eines Genprodukts eines Gens, das das Nukleinsäuremolekül, welches wie in Spalte 5 von Tabelle I gezeigt ist und in der gleichen entsprechenden Zeile wie dieses Yol058w_2 steht, oder ein funktionelles Äquivalent oder ein Homolog davon wie in Spalte 7 von Tabelle I gezeigt, vorzugsweise ein Homolog oder funktionelles Äquivalent wie in Spalte 7 von Tabelle I B gezeigt, welches in der gleichen entsprechenden Zeile wie dieses Yol058w_2 steht, umfasst; oder
    • (b) eines ein Polypeptid, eine Konsensussequenz oder ein Polypeptidmotiv wie in Spalte 5 von Tabelle II beziehungsweise in Spalte 7 von Tabelle IV gezeigt umfassenden Polypeptids, welches in der gleichen entsprechenden Zeile wie dieses Yol058w_2 steht, oder ein funktionelles Äquivalent oder ein Homolog davon wie in Spalte 7 von Tabelle II gezeigt, vorzugsweise ein Homolog oder funktionelles Äquivalent wie in Spalte 7 von Tabelle II B gezeigt, welches in der gleichen entsprechenden Zeile wie dieses Yol058w_2 steht,
    wie hier erwähnt, zur Erhöhung des Ertrags, z. B. zur Erhöhung eines oder mehrerer Ertragsmerkmale, zum Beispiel einer gesteigerten Toleranz gegenüber abiotischem Umweltstress, zum Beispiel einer erhöhten Toleranz gegenüber Dürre und/oder Toleranz gegenüber niedrigen Temperaturen und/oder einer erhöhten Effizienz der Nährstoffausnutzung, verglichen mit einer entsprechenden, z. B. nicht transformierten, Pflanzenzelle oder Pflanze vom Wildtyp oder einem Teil davon in einer Pflanzenzelle, einer Pflanze oder einem Teil davon, wie erwähnt, insbesondere für eine gesteigerte Toleranz gegenüber abiotischem Umweltstress, oder einen erhöhten Ertrag, oder eine gesteigerte Toleranz gegenüber abiotischem Umweltstress und einen erhöhten Ertrag. Dementsprechend handelt es sich bei einer Ausführungsform bei dem Molekül, dessen Aktivität im erfindungsgemäßen Verfahren zu erhöhen ist, um das Genprodukt mit einer als ”Argininosuccinatsynthase” beschriebenen Aktivität; bevorzugt handelt es sich dabei um das in Abschnitt (a) oder (b) dieses Absatzes beschriebene Molekül. Gemäß einer Ausführungsform wird das Molekül, dessen Aktivität bei dem erfindungsgemäßen Verfahren zu erhöhen ist und bei dem es sich um das Genprodukt mit einer als „Argininosuccinatsynthase” beschriebenen Aktivität handelt, wie in Spalte 6 von Tabelle 1 angeführt, z. B. plastidisch oder zytoplasmatisch, erhöht.
  • Die Sequenz von Ypr035w_2 aus Saccharomyces cerevisiae, z. B. wie in Spalte 5 von Tabelle I gezeigt, wurde veröffentlicht (z. B. Sequenzen aus S. cerevisiae wurden in Goffeau et al., Science 274 (5287), 546 (1996) veröffentlicht, Sequenzen aus E. coli wurden in Blattner et al., Science 277 (5331), 1453 (1997) veröffentlicht), und/oder ihre Aktivität wurde als Glutaminsynthetase beschrieben. Dementsprechend umfasst das Verfahren der vorliegenden Erfindung gemäß einer Ausführungsform die Erhöhung oder Erzeugung der Aktivität eines Genprodukts mit der Aktivität einer „Glutaminsynthetase” aus Saccharomyces cerevisiae oder einem funktionellen Äquivalent davon oder einem Homolog davon, z. B. die Erhöhung
    • (a) eines Genprodukts eines Gens, das das Nukleinsäuremolekül, welches wie in Spalte 5 von Tabelle I gezeigt ist und in der gleichen entsprechenden Zeile wie dieses Ypr035w_2 steht, oder ein funktionelles Äquivalent oder ein Homolog davon wie in Spalte 7 von Tabelle I gezeigt, vorzugsweise ein Homolog oder funktionelles Äquivalent wie in Spalte 7 von Tabelle I B gezeigt, welches in der gleichen entsprechenden Zeile wie dieses Ypr035w_2 steht, umfasst; oder
    • (b) eines ein Polypeptid, eine Konsensussequenz oder ein Polypeptidmotiv wie in Spalte 5 von Tabelle II beziehungsweise in Spalte 7 von Tabelle IV gezeigt umfassenden Polypeptids, welches in der gleichen entsprechenden Zeile wie dieses Ypr035w_2 steht, oder ein funktionelles Äquivalent oder ein Homolog davon wie in Spalte 7 von Tabelle II gezeigt, vorzugsweise ein Homolog oder funktionelles Äquivalent wie in Spalte 7 von Tabelle II B gezeigt, welches in der gleichen entsprechenden Zeile wie dieses Ypr035w_2 steht,
    wie hier erwähnt, zur Erhöhung des Ertrags, z. B. zur Erhöhung eines oder mehrerer Ertragsmerkmale, zum Beispiel einer gesteigerten Toleranz gegenüber abiotischem Umweltstress, zum Beispiel einer erhöhten Toleranz gegenüber Dürre und/oder Toleranz gegenüber niedrigen Temperaturen und/oder einer erhöhten Effizienz der Nährstoffausnutzung, verglichen mit einer entsprechenden, z. B. nicht transformierten, Pflanzenzelle oder Pflanze vom Wildtyp oder einem Teil davon in einer Pflanzenzelle, einer Pflanze oder einem Teil davon, wie erwähnt, insbesondere für eine gesteigerte Toleranz gegenüber abiotischem Umweltstress, oder einen erhöhten Ertrag, oder eine gesteigerte Toleranz gegenüber abiotischem Umweltstress und einen erhöhten Ertrag. Dementsprechend handelt es sich bei einer Ausführungsform bei dem Molekül, dessen Aktivität im erfindungsgemäßen Verfahren zu erhöhen ist, um das Genprodukt mit einer als „Glutaminsynthetase” beschriebenen Aktivität; bevorzugt handelt es sich dabei um das in Abschnitt (a) oder (b) dieses Absatzes beschriebene Molekül. Gemäß einer Ausführungsform wird das Molekül, dessen Aktivität bei dem erfindungsgemäßen Verfahren zu erhöhen ist und bei dem es sich um das Genprodukt mit einer als „Glutaminsynthetase” beschriebenen Aktivität handelt, zytoplasmatisch erhöht.
  • Überraschenderweise wurde beobachtet, dass man durch Erhöhen bzw. Erzeugen wenigstens eines Gens, das eine Aktivität, ausgewählt aus der Gruppe bestehend aus einer (DL)-Glycerin-3-phosphatase, einer 2-Desoxyglucose-6-phosphatphosphatase, einer 3-Methyl-2-oxobutanoat-Hydroxymethyltransferase, einer Alkoholacetyltransferase, einer Aminosäurepermease, einer Aminomethyltransferase, einem Ammoniumtransporter, einem Aquaporin, einem Arabinosetransportsystem, einem ATP-bindenden Protein, einer Argininosuccinatsynthase, einer Aspartataminotransferase, einem B1906-Protein, einem B3410-Protein, einer Cardiolipinsynthetase, einem CoA-Transferase-ähnlichen Protein (NAD(P)-bindend), einem Cobalttransportprotein, einem DNA- und proteinbindenden Protein zur Steuerung des Proteoms auf der posttranskriptionellen Ebene, einer Enoyl-CoA-Hydratase, einer Enoyl-CoA-Isomerase, einer Ethanolaminkinase, einer Formiatacetyltransferase 1, einem Protein einer Glucit/Sorbit-spezifischen Enzym-IIA-Komponente, einer Glutaminsynthetase, einer Glutathion-S-transferase, einer Glycerindehydrogenase, einem Glykogensyntheseinitiatorprotein, einem GTP-bindenden Protein, einem Hitzeschockprotein, einem Hexosetransporter, einer Holo-[Acylträgerprotein]-Synthase, einem anorganischen Phosphattransporter, einer Lanosterolsynthase, einer molybdänbindenden Untereinheit von Aldehydoxidasen und Xanthindehydrogenasen, einem Multidrug-Resistenzprotein, einem Multiple-Drug-Resistenzprotein, einer NADH-Dehydrogenase/NAD(P)H-Nitroreduktase, einer Oxidoreduktase, einer Peptidyl-Prolyl-cis/trans-Isomerase, einem Peroxisomal-Targeting-Signal-2-Rezeptor, einer Phosphoadenosinphosphosulfatreduktase, einem Phosphoträgerprotein, einem Pirin-ähnlichen Protein, einer Precorrin-6y-Methylase, einem für den Abbau von Glykoproteinen benötigten Protein, einer Pyrimidindeaminase/-reduktase, einem Regulator der Zellmorphogenese und der NO-Signalvermittlung, einer Serinacetyltransferase, einer Untereinheit des Signalosomkomplexes, einem SLR1094-Protein, einer Untereinheit von TORC1, einer thiolspezifischen Monooxygenase, einem die Transkription steuernden Protein, einer Transketolase, einem Zwei-Modul-Transportprotein, einem Uridindiphosphat-N-acetylglucosamintransporter, einem yer175w-a-Protein, einem yhr213w-a-Protein, einem YML079W-Protein, einem YMR157C-Protein, einem YNL024C-Protein und einem YNR040W-Protein, verleiht, oder eines eine in Spalte 5 von Tabelle I beschriebene Nukleinsäuresequenz enthaltenden Gens in einer Pflanze, z. B. A. thaliana, den transformierten Pflanzen, verglichen mit einer entsprechenden, z. B. nicht transformierten, Pflanze vom Wildtyp einen erhöhten Ertrag, z. B. mit einem erhöhten Ertragsmerkmal, zum Beispiel eine gesteigerte Toleranz gegenüber abiotischem Umweltstress, zum Beispiel eine erhöhte Toleranz gegenüber Dürre und/oder Toleranz gegenüber niedrigen Temperaturen und/oder eine erhöhte Effizienz der Nährstoffausnutzung, einen erhöhten intrinsischen Ertrag und/oder ein erhöhtes anderes erwähntes Ertragsmerkmal, insbesondere eine gesteigerte Toleranz gegenüber abiotischem Umweltstress, oder einen erhöhten Ertrag, oder eine gesteigerte Toleranz gegenüber abiotischem Umweltstress und einen erhöhten Ertrag, verleiht.
  • Insbesondere wurde beobachtet, dass man durch Erhöhen bzw. Erzeugen der Aktivität eines Genprodukts, kodiert durch ein Gen, das die Nukleinsäuresequenz SEQ ID NO.: 38 umfasst, A. thaliana zum Beispiel mit der Aktivität einer „Pyrimidindeaminase/-reduktase” einen erhöhten Ertrag, z. B. ein erhöhtes Ertragsmerkmal, zum Beispiel eine gesteigerte Toleranz gegenüber abiotischem Umweltstress, zum Beispiel eine erhöhte Toleranz gegenüber Dürre und/oder Toleranz gegenüber niedrigen Temperaturen und/oder eine erhöhte Effizienz der Nährstoffausnutzung, einen erhöhten intrinsischen Ertrag und/oder ein erhöhtes anderes erwähntes Ertragsmerkmal verleiht, verglichen mit der Kontrolle vom Wildtyp. Weiterhin wurde beobachtet, dass man durch Erhöhen bzw. Erzeugen der Aktivität eines Genprodukts mit der Aktivität einer „Pyrimidindeaminase/-reduktase”, kodiert durch ein Gen, das die Nukleinsäuresequenz SEQ ID NO.: 38 umfasst, A. thaliana eine Toleranz gegenüber abiotischem Umweltstress, z. B. eine erhöhte Toleranz gegenüber niedrigen Temperaturen, verleiht, verglichen mit der Kontrolle vom Wildtyp. Insbesondere wurde beobachtet, dass man durch Erhöhen bzw. Erzeugen der Aktivität eines Genprodukts, kodiert durch ein Gen, das die Nukleinsäuresequenz SEQ ID NO.: 38 umfasst, welches wie in Tabelle I, Spalte 6, lokalisiert ist, z. B. im Zytoplasma von A. thaliana, zum Beispiel mit der Aktivität einer „Pyrimidindeaminase/-reduktase”, einen erhöhten Ertrag, zum Beispiel erhöhte Toleranz gegenüber niedrigen Temperaturen, verleiht. Insbesondere wurde beobachtet, dass man durch Erhöhen bzw. Erzeugen der Aktivität eines Genprodukts, kodiert durch ein Gen, das die Nukleinsäuresequenz SEQ ID NO.: 147 umfasst, A. thaliana zum Beispiel mit der Aktivität einer „Oxidoreduktase” einen erhöhten Ertrag, z. B. ein erhöhtes Ertragsmerkmal, zum Beispiel eine gesteigerte Toleranz gegenüber abiotischem Umweltstress, zum Beispiel eine erhöhte Toleranz gegenüber Dürre und/oder Toleranz gegenüber niedrigen Temperaturen und/oder eine erhöhte Effizienz der Nährstoffausnutzung, einen erhöhten intrinsischen Ertrag und/oder ein erhöhtes anderes erwähntes Ertragsmerkmal verleiht, verglichen mit der Kontrolle vom Wildtyp. Weiterhin wurde beobachtet, dass man durch Erhöhen bzw. Erzeugen der Aktivität eines Genprodukts mit dieser Aktivität einer „Oxidoreduktase” und kodiert durch ein Gen, das die Nukleinsäuresequenz SEQ ID NO.: 147 umfasst, A. thaliana eine Toleranz gegenüber abiotischem Umweltstress, z. B. eine erhöhte Toleranz gegenüber niedrigen Temperaturen, verleiht, verglichen mit der Kontrolle vom Wildtyp. Insbesondere wurde beobachtet, dass man durch Erhöhen bzw. Erzeugen der Aktivität eines Genprodukts, kodiert durch ein Gen, das die Nukleinsäuresequenz SEQ ID NO.: 147 umfasst, welches wie in Tabelle I, Spalte 6, lokalisiert ist, z. B. im Zytoplasma von A. thaliana, zum Beispiel mit der Aktivität einer „Oxidoreduktase”, einen erhöhten Ertrag, zum Beispiel erhöhte Toleranz gegenüber niedrigen Temperaturen, verleiht. Insbesondere wurde beobachtet, dass man durch Erhöhen bzw. Erzeugen der Aktivität eines Genprodukts, kodiert durch ein Gen, das die Nukleinsäuresequenz SEQ ID NO.: 172 umfasst, A. thaliana zum Beispiel mit der Aktivität einer „Glycerindehydrogenase” einen erhöhten Ertrag, z. B. ein erhöhtes Ertragsmerkmal, zum Beispiel eine gesteigerte Toleranz gegenüber abiotischem Umweltstress, zum Beispiel eine erhöhte Toleranz gegenüber Dürre und/oder Toleranz gegenüber niedrigen Temperaturen und/oder eine erhöhte Effizienz der Nährstoffausnutzung, einen erhöhten intrinsischen Ertrag und/oder ein erhöhtes anderes erwähntes Ertragsmerkmal verleiht, verglichen mit der Kontrolle vom Wildtyp. Weiterhin wurde beobachtet, dass man durch Erhöhen bzw. Erzeugen der Aktivität eines Genprodukts mit dieser Aktivität einer „Glycerindehydrogenase” und kodiert durch ein Gen, das die Nukleinsäuresequenz SEQ ID NO.: 172 umfasst, A. thaliana eine Toleranz gegenüber abiotischem Umweltstress, z. B. eine erhöhte Toleranz gegenüber niedrigen Temperaturen, verleiht, verglichen mit der Kontrolle vom Wildtyp. Insbesondere wurde beobachtet, dass man durch Erhöhen bzw. Erzeugen der Aktivität eines Genprodukts, kodiert durch ein Gen, das die Nukleinsäuresequenz SEQ ID NO.: 172 umfasst, welches wie in Tabelle I, Spalte 6, lokalisiert ist, z. B. im Zytoplasma von A. thaliana, zum Beispiel mit der Aktivität einer „Glycerindehydrogenase”, einen erhöhten Ertrag, zum Beispiel erhöhte Toleranz gegenüber niedrigen Temperaturen, verleiht. Insbesondere wurde beobachtet, dass man durch Erhöhen bzw. Erzeugen der Aktivität eines Genprodukts, kodiert durch ein Gen, das die Nukleinsäuresequenz SEQ ID NO.: 382 umfasst, A. thaliana zum Beispiel mit der Aktivität eines „Uridindiphosphat-N-acetylglucosamintransporters” einen erhöhten Ertrag, z. B. ein erhöhtes Ertragsmerkmal, zum Beispiel eine gesteigerte Toleranz gegenüber abiotischem Umweltstress, zum Beispiel eine erhöhte Toleranz gegenüber Dürre und/oder Toleranz gegenüber niedrigen Temperaturen und/oder eine erhöhte Effizienz der Nährstoffausnutzung, einen erhöhten intrinsischen Ertrag und/oder ein erhöhtes anderes erwähntes Ertragsmerkmal verleiht, verglichen mit der Kontrolle vom Wildtyp. Weiterhin wurde beobachtet, dass man durch Erhöhen bzw. Erzeugen der Aktivität eines Genprodukts mit dieser Aktivität eines „Uridindiphosphat-N-acetylglucosamintransporters” und kodiert durch ein Gen, das die Nukleinsäuresequenz SEQ ID NO.: 382 umfasst, A. thaliana eine Toleranz gegenüber abiotischem Umweltstress, z. B. eine erhöhte Toleranz gegenüber niedrigen Temperaturen, verleiht, verglichen mit der Kontrolle vom Wildtyp. Insbesondere wurde beobachtet, dass man durch Erhöhen bzw. Erzeugen der Aktivität eines Genprodukts, kodiert durch ein Gen, das die Nukleinsäuresequenz SEQ ID NO.: 382 umfasst, welches wie in Tabelle I, Spalte 6, lokalisiert ist, z. B. im Zytoplasma von A. thaliana, zum Beispiel mit der Aktivität eines „Uridindiphosphat-N-acetylglucosamintransporters”, einen erhöhten Ertrag, zum Beispiel erhöhte Toleranz gegenüber niedrigen Temperaturen, verleiht. Insbesondere wurde beobachtet, dass man durch Erhöhen bzw. Erzeugen der Aktivität eines Genprodukts, kodiert durch ein Gen, das die Nukleinsäuresequenz SEQ ID NO.: 406 umfasst, A. thaliana zum Beispiel mit der Aktivität eines „DNA- und proteinbindenden Proteins zur Steuerung des Proteoms auf der posttranskriptionellen Ebene” einen erhöhten Ertrag, z. B. ein erhöhtes Ertragsmerkmal, zum Beispiel eine gesteigerte Toleranz gegenüber abiotischem Umweltstress, zum Beispiel eine erhöhte Toleranz gegenüber Dürre und/oder Toleranz gegenüber niedrigen Temperaturen und/oder eine erhöhte Effizienz der Nährstoffausnutzung, einen erhöhten intrinsischen Ertrag und/oder ein erhöhtes anderes erwähntes Ertragsmerkmal verleiht, verglichen mit der Kontrolle vom Wildtyp. Weiterhin wurde beobachtet, dass man durch Erhöhen bzw. Erzeugen der Aktivität eines Genprodukts mit der Aktivität eines „DNA- und proteinbindenden Proteins zur Steuerung des Proteoms auf der posttranskriptionellen Ebene” und kodiert durch ein Gen, das die Nukleinsäuresequenz SEQ ID NO.: 406 umfasst, A. thaliana eine Toleranz gegenüber abiotischem Umweltstress, z. B. eine erhöhte Toleranz gegenüber niedrigen Temperaturen, verleiht, verglichen mit der Kontrolle vom Wildtyp. Insbesondere wurde beobachtet, dass man durch Erhöhen bzw. Erzeugen der Aktivität eines Genprodukts, kodiert durch ein Gen, das die Nukleinsäuresequenz SEQ ID NO.: 406 umfasst, welches wie in Tabelle I, Spalte 6, lokalisiert ist, z. B. im Zytoplasma von A. thaliana, zum Beispiel mit der Aktivität eines „DNA- und proteinbindenden Proteins zur Steuerung des Proteoms auf der posttranskriptionellen Ebene”, einen erhöhten Ertrag, zum Beispiel erhöhte Toleranz gegenüber niedrigen Temperaturen, verleiht. Insbesondere wurde beobachtet, dass man durch Erhöhen bzw. Erzeugen der Aktivität eines Genprodukts, kodiert durch ein Gen, das die Nukleinsäuresequenz SEQ ID NO.: 917 umfasst, A. thaliana zum Beispiel mit der Aktivität eines „für den Abbau von Glykoproteinen benötigten Proteins” einen erhöhten Ertrag, z. B. ein erhöhtes Ertragsmerkmal, zum Beispiel eine gesteigerte Toleranz gegenüber abiotischem Umweltstress, mm Beispiel eine erhöhte Toleranz gegenüber Dürre und/oder Toleranz gegenüber niedrigen Temperaturen und/oder eine erhöhte Effizienz der Nährstoffausnutzung, einen erhöhten intrinsischen Ertrag und/oder ein erhöhtes anderes erwähntes Ertragsmerkmal verleiht, verglichen mit der Kontrolle vom Wildtyp. Weiterhin wurde beobachtet, dass man durch Erhöhen bzw. Erzeugen der Aktivität eines Genprodukts mit dieser Aktivität eines „für den Abbau von Glykoproteinen benötigten Proteins” und kodiert durch ein Gen, das die Nukleinsäuresequenz SEQ ID NO.: 917 umfasst, A. thaliana eine Toleranz gegenüber abiotischem Umweltstress, z. B. eine erhöhte Toleranz gegenüber niedrigen Temperaturen, verleiht, verglichen mit der Kontrolle vom Wildtyp. Insbesondere wurde beobachtet, dass man durch Erhöhen bzw. Erzeugen der Aktivität eines Genprodukts, kodiert durch ein Gen, das die Nukleinsäuresequenz SEQ ID NO.: 917 umfasst, welches wie in Tabelle I, Spalte 6, lokalisiert ist, z. B. im Zytoplasma von A. thaliana, zum Beispiel mit der Aktivität eines „ für den Abbau von Glykoproteinen benötigten Proteins”, einen erhöhten Ertrag, zum Beispiel erhöhte Toleranz gegenüber niedrigen Temperaturen, verleiht. Insbesondere wurde beobachtet, dass man durch Erhöhen bzw. Erzeugen der Aktivität eines Genprodukts, kodiert durch ein Gen, das die Nukleinsäuresequenz SEQ ID NO.: 952 umfasst, A. thaliana zum Beispiel mit der Aktivität eines „Aquaporins” einen erhöhten Ertrag, z. B. ein erhöhtes Ertragsmerkmal, zum Beispiel eine gesteigerte Toleranz gegenüber abiotischem Umweltstress, zum Beispiel eine erhöhte Toleranz gegenüber Dürre und/oder Toleranz gegenüber niedrigen Temperaturen und/oder eine erhöhte Effizienz der Nährstoffausnutzung, einen erhöhten intrinsischen Ertrag und/oder ein erhöhtes anderes erwähntes Ertragsmerkmal verleiht, verglichen mit der Kontrolle vom Wildtyp. Weiterhin wurde beobachtet, dass man durch Erhöhen bzw. Erzeugen der Aktivität eines Genprodukts mit dieser Aktivität eines „Aquaporins” und kodiert durch ein Gen, das die Nukleinsäuresequenz SEQ ID NO.: 952 umfasst, A. thaliana eine Toleranz gegenüber abiotischem Umweltstress, z. B. eine erhöhte Toleranz gegenüber niedrigen Temperaturen, verleiht, verglichen mit der Kontrolle vom Wildtyp. Insbesondere wurde beobachtet, dass man durch Erhöhen bzw. Erzeugen der Aktivität eines Genprodukts, kodiert durch ein Gen, das die Nukleinsäuresequenz SEQ ID NO.: 952 umfasst, welches wie in Tabelle I, Spalte 6, lokalisiert ist, z. B. im Zytoplasma von A. thaliana, zum Beispiel mit der Aktivität eines „Aquaporins”, einen erhöhten Ertrag, zum Beispiel erhöhte Toleranz gegenüber niedrigen Temperaturen, verleiht. Insbesondere wurde beobachtet, dass man durch Erhöhen bzw. Erzeugen der Aktivität eines Genprodukts, kodiert durch ein Gen, das die Nukleinsäuresequenz SEQ ID NO.: 1320 umfasst, A. thaliana zum Beispiel mit der Aktivität eines „anorganischen Phosphattransporters” einen erhöhten Ertrag, z. B. ein erhöhtes Ertragsmerkmal, zum Beispiel eine gesteigerte Toleranz gegenüber abiotischem Umweltstress, zum Beispiel eine erhöhte Toleranz gegenüber Dürre und/oder Toleranz gegenüber niedrigen Temperaturen und/oder eine erhöhte Effizienz der Nährstoffausnutzung, einen erhöhten intrinsischen Ertrag und/oder ein erhöhtes anderes erwähntes Ertragsmerkmal verleiht, verglichen mit der Kontrolle vom Wildtyp. Weiterhin wurde beobachtet, dass man durch Erhöhen bzw. Erzeugen der Aktivität eines Genprodukts mit dieser Aktivität eines „anorganischen Phosphattransporters” und kodiert durch ein Gen, das die Nukleinsäuresequenz SEQ ID NO.: 1320 umfasst, A. thaliana eine Toleranz gegenüber abiotischem Umweltstress, z. B. eine erhöhte Toleranz gegenüber niedrigen Temperaturen, verleiht, verglichen mit der Kontrolle vom Wildtyp. Insbesondere wurde beobachtet, dass man durch Erhöhen bzw. Erzeugen der Aktivität eines Genprodukts, kodiert durch ein Gen, das die Nukleinsäuresequenz SEQ ID NO.: 1320 umfasst, welches wie in Tabelle I, Spalte 6, lokalisiert ist, z. B. im Zytoplasma von A. thaliana, zum Beispiel mit der Aktivität eines „anorganischen Phosphattransporters”, einen erhöhten Ertrag, zum Beispiel erhöhte Toleranz gegenüber niedrigen Temperaturen, verleiht. Insbesondere wurde beobachtet, dass man durch Erhöhen bzw. Erzeugen der Aktivität eines Genprodukts, kodiert durch ein Gen, das die Nukleinsäuresequenz SEQ ID NO.: 1648 umfasst, A. thaliana zum Beispiel mit der Aktivität eines „Ammoniumtransporters” einen erhöhten Ertrag, z. B. ein erhöhtes Ertragsmerkmal, zum Beispiel eine gesteigerte Toleranz gegenüber abiotischem Umweltstress, zum Beispiel eine erhöhte Toleranz gegenüber Dürre und/oder Toleranz gegenüber niedrigen Temperaturen und/oder eine erhöhte Effizienz der Nährstoffausnutzung, einen erhöhten intrinsischen Ertrag und/oder ein erhöhtes anderes erwähntes Ertragsmerkmal verleiht, verglichen mit der Kontrolle vom Wildtyp. Weiterhin wurde beobachtet, dass man durch Erhöhen bzw. Erzeugen der Aktivität eines Genprodukts mit dieser Aktivität eines „Ammoniumtransporters” und kodiert durch ein Gen, das die Nukleinsäuresequenz SEQ ID NO.: 1648 umfasst, A. thaliana eine Toleranz gegenüber abiotischem Umweltstress, z. B. eine erhöhte Toleranz gegenüber niedrigen Temperaturen, verleiht, verglichen mit der Kontrolle vom Wildtyp. Insbesondere wurde beobachtet, dass man durch Erhöhen bzw. Erzeugen der Aktivität eines Genprodukts, kodiert durch ein Gen, das die Nukleinsäuresequenz SEQ ID NO.: 1648 umfasst, welches wie in Tabelle I, Spalte 6, lokalisiert ist, z. B. im Zytoplasma von A. thaliana, zum Beispiel mit der Aktivität eines „Ammoniumtransporters”, einen erhöhten Ertrag, zum Beispiel erhöhte Toleranz gegenüber niedrigen Temperaturen, verleiht. Insbesondere wurde beobachtet, dass man durch Erhöhen bzw. Erzeugen der Aktivität eines Genprodukts, kodiert durch ein Gen, das die Nukleinsäuresequenz SEQ ID NO.: 2065 umfasst, A. thaliana zum Beispiel mit der Aktivität eines „YNR040W-Proteins” einen erhöhten Ertrag, z. B. ein erhöhtes Ertragsmerkmal, zum Beispiel eine gesteigerte Toleranz gegenüber abiotischem Umweltstress, zum Beispiel eine erhöhte Toleranz gegenüber Dürre und/oder Toleranz gegenüber niedrigen Temperaturen und/oder eine erhöhte Effizienz der Nährstoffausnutzung, einen erhöhten intrinsischen Ertrag und/oder ein erhöhtes anderes erwähntes Ertragsmerkmal verleiht, verglichen mit der Kontrolle vom Wildtyp. Weiterhin wurde beobachtet, dass man durch Erhöhen bzw. Erzeugen der Aktivität eines Genprodukts mit der Aktivität eines „YNR040W-Proteins” und kodiert durch ein Gen, das die Nukleinsäuresequenz SEQ ID NO.: 2065 umfasst, A. thaliana eine Toleranz gegenüber abiotischem Umweltstress, z. B. eine erhöhte Toleranz gegenüber niedrigen Temperaturen, verleiht, verglichen mit der Kontrolle vom Wildtyp. Insbesondere wurde beobachtet, dass man durch Erhöhen bzw. Erzeugen der Aktivität eines Genprodukts, kodiert durch ein Gen, das die Nukleinsäuresequenz SEQ ID NO.: 2065 umfasst, welches wie in Tabelle I, Spalte 6, lokalisiert ist, z. B. im Zytoplasma von A. thaliana, zum Beispiel mit der Aktivität eines „YNR040W-Proteins”, einen erhöhten Ertrag, zum Beispiel erhöhte Toleranz gegenüber niedrigen Temperaturen, verleiht. Insbesondere wurde beobachtet, dass man durch Erhöhen bzw. Erzeugen der Aktivität eines Genprodukts, kodiert durch ein Gen, das die Nukleinsäuresequenz SEQ ID NO.: 2081 umfasst, A. thaliana zum Beispiel mit der Aktivität einer „Glutaminsynthetase” einen erhöhten Ertrag, z. B. ein erhöhtes Ertragsmerkmal, zum Beispiel eine gesteigerte Toleranz gegenüber abiotischem Umweltstress, zum Beispiel eine erhöhte Toleranz gegenüber Dürre und/oder Toleranz gegenüber niedrigen Temperaturen und/oder eine erhöhte Effizienz der Nährstoffausnutzung, einen erhöhten intrinsischen Ertrag und/oder ein erhöhtes anderes erwähntes Ertragsmerkmal verleiht, verglichen mit der Kontrolle vom Wildtyp. Weiterhin wurde beobachtet, dass man durch Erhöhen bzw. Erzeugen der Aktivität eines Genprodukts mit dieser Aktivität einer „Glutaminsynthetase” und kodiert durch ein Gen, das die Nukleinsäuresequenz SEQ ID NO.: 2081 umfasst, A. thaliana eine Toleranz gegenüber abiotischem Umweltstress, z. B. eine erhöhte Toleranz gegenüber niedrigen Temperaturen, verleiht, verglichen mit der Kontrolle vom Wildtyp. Insbesondere wurde beobachtet, dass man durch Erhöhen bzw. Erzeugen der Aktivität eines Genprodukts, kodiert durch ein Gen, das die Nukleinsäuresequenz SEQ ID NO.: 2081 umfasst, welches wie in Tabelle I, Spalte 6, lokalisiert ist, z. B. im Zytoplasma von A. thaliana, zum Beispiel mit der Aktivität einer „Glutaminsynthetase”, einen erhöhten Ertrag, zum Beispiel erhöhte Toleranz gegenüber niedrigen Temperaturen, verleiht. Insbesondere wurde beobachtet, dass man durch Erhöhen bzw. Erzeugen der Aktivität eines Genprodukts, kodiert durch ein Gen, das die Nukleinsäuresequenz SEQ ID NO.: 2406 umfasst, A. thaliana zum Beispiel mit der Aktivität einer „Formiatacetyltransferase 1” einen erhöhten Ertrag, z. B. ein erhöhtes Ertragsmerkmal, zum Beispiel eine gesteigerte Toleranz gegenüber abiotischem Umweltstress, zum Beispiel eine erhöhte Toleranz gegenüber Dürre und/oder Toleranz gegenüber niedrigen Temperaturen und/oder eine erhöhte Effizienz der Nährstoffausnutzung, einen erhöhten intrinsischen Ertrag und/oder ein erhöhtes anderes erwähntes Ertragsmerkmal verleiht, verglichen mit der Kontrolle vom Wildtyp. Weiterhin wurde beobachtet, dass man durch Erhöhen bzw. Erzeugen der Aktivität eines Genprodukts mit dieser Aktivität einer „Formiatacetyltransferase 1” und kodiert durch ein Gen, das die Nukleinsäuresequenz SEQ ID NO.: 2406 umfasst, A. thaliana eine Toleranz gegenüber abiotischem Umweltstress, z. B. eine erhöhte Toleranz gegenüber niedrigen Temperaturen, verleiht, verglichen mit der Kontrolle vom Wildtyp. Insbesondere wurde beobachtet, dass man durch Erhöhen bzw. Erzeugen der Aktivität eines Genprodukts, kodiert durch ein Gen, das die Nukleinsäuresequenz SEQ ID NO.: 2406 umfasst, welches wie in Tabelle I, Spalte 6, lokalisiert ist, z. B. in Plastiden oder in Plastiden und/oder im Zytoplasma von A. thaliana, zum Beispiel mit der Aktivität einer „Formiatacetyltransferase 1”, einen erhöhten Ertrag, zum Beispiel erhöhte Toleranz gegenüber niedrigen Temperaturen, verleiht. Insbesondere wurde beobachtet, dass man durch Erhöhen bzw. Erzeugen der Aktivität eines Genprodukts, kodiert durch ein Gen, das die Nukleinsäuresequenz SEQ ID NO.: 2564 umfasst, A. thaliana zum Beispiel mit der Aktivität einer „Enoyl-CoA-Hydratase” einen erhöhten Ertrag, z. B. ein erhöhtes Ertragsmerkmal, zum Beispiel eine gesteigerte Toleranz gegenüber abiotischem Umweltstress, zum Beispiel eine erhöhte Toleranz gegenüber Dürre und/oder Toleranz gegenüber niedrigen Temperaturen und/oder eine erhöhte Effizienz der Nährstoffausnutzung, einen erhöhten intrinsischen Ertrag und/oder ein erhöhtes anderes erwähntes Ertragsmerkmal verleiht, verglichen mit der Kontrolle vom Wildtyp. Weiterhin wurde beobachtet, dass man durch Erhöhen bzw. Erzeugen der Aktivität eines Genprodukts mit dieser Aktivität einer „Enoyl-CoA-Hydratase” und kodiert durch ein Gen, das die Nukleinsäuresequenz SEQ ID NO.: 2564 umfasst, A. thaliana eine Toleranz gegenüber abiotischem Umweltstress, z. B. eine erhöhte Toleranz gegenüber niedrigen Temperaturen, verleiht, verglichen mit der Kontrolle vom Wildtyp. Insbesondere wurde beobachtet, dass man durch Erhöhen bzw. Erzeugen der Aktivität eines Genprodukts, kodiert durch ein Gen, das die Nukleinsäuresequenz SEQ ID NO.: 2564 umfasst, welches wie in Tabelle I, Spalte 6, lokalisiert ist, z. B. im Zytoplasma von A. thaliana, zum Beispiel mit der Aktivität einer „Enoyl-CoA-Hydratase”, einen erhöhten Ertrag, zum Beispiel erhöhte Toleranz gegenüber niedrigen Temperaturen, verleiht. Insbesondere wurde beobachtet, dass man durch Erhöhen bzw. Erzeugen der Aktivität eines Genprodukts, kodiert durch ein Gen, das die Nukleinsäuresequenz SEQ ID NO.: 2841 umfasst, A. thaliana zum Beispiel mit der Aktivität eines „Proteins einer Glucit/Sorbit-spezifischen Enzym-IIA-Komponente” einen erhöhten Ertrag, z. B. ein erhöhtes Ertragsmerkmal, zum Beispiel eine gesteigerte Toleranz gegenüber abiotischem Umweltstress, zum Beispiel eine erhöhte Toleranz gegenüber Dürre und/oder Toleranz gegenüber niedrigen Temperaturen und/oder eine erhöhte Effizienz der Nährstoffausnutzung, einen erhöhten intrinsischen Ertrag und/oder ein erhöhtes anderes erwähntes Ertragsmerkmal verleiht, verglichen mit der Kontrolle vom Wildtyp. Weiterhin wurde beobachtet, dass man durch Erhöhen bzw. Erzeugen der Aktivität eines Genprodukts mit dieser Aktivität eines „Proteins einer Glucit/Sorbit-spezifischen Enzym-IIA-Komponente” und kodiert durch ein Gen, das die Nukleinsäuresequenz SEQ ID NO.: 2841 umfasst, A. thaliana eine Toleranz gegenüber abiotischem Umweltstress, z. B. eine erhöhte Toleranz gegenüber niedrigen Temperaturen, verleiht, verglichen mit der Kontrolle vom Wildtyp. Insbesondere wurde beobachtet, dass man durch Erhöhen bzw. Erzeugen der Aktivität eines Genprodukts, kodiert durch ein Gen, das die Nukleinsäuresequenz SEQ ID NO.: 2841 umfasst, welches wie in Tabelle I, Spalte 6, lokalisiert ist, z. B. in Plastiden von A. thaliana, zum Beispiel mit der Aktivität eines „Proteins einer Glucit/Sorbit-spezifischen Enzym-IIA-Komponente”, einen erhöhten Ertrag, zum Beispiel erhöhte Toleranz gegenüber niedrigen Temperaturen, verleiht. Insbesondere wurde beobachtet, dass man durch Erhöhen bzw. Erzeugen der Aktivität eines Genprodukts, kodiert durch ein Gen, das die Nukleinsäuresequenz SEQ ID NO.: 2879 umfasst, A. thaliana zum Beispiel mit der Aktivität einer „Aminomethyltransferase” einen erhöhten Ertrag, z. B. ein erhöhtes Ertragsmerkmal, zum Beispiel eine gesteigerte Toleranz gegenüber abiotischem Umweltstress, zum Beispiel eine erhöhte Toleranz gegenüber Dürre und/oder Toleranz gegenüber niedrigen Temperaturen und/oder eine erhöhte Effizienz der Nährstoffausnutzung, einen erhöhten intrinsischen Ertrag und/oder ein erhöhtes anderes erwähntes Ertragsmerkmal verleiht, verglichen mit der Kontrolle vom Wildtyp. Weiterhin wurde beobachtet, dass man durch Erhöhen bzw. Erzeugen der Aktivität eines Genprodukts mit dieser Aktivität einer „Aminomethyltransferase” und kodiert durch ein Gen, das die Nukleinsäuresequenz SEQ ID NO.: 2879 umfasst, A. thaliana eine Toleranz gegenüber abiotischem Umweltstress, z. B. eine erhöhte Toleranz gegenüber niedrigen Temperaturen, verleiht, verglichen mit der Kontrolle vom Wildtyp. Insbesondere wurde beobachtet, dass man durch Erhöhen bzw. Erzeugen der Aktivität eines Genprodukts, kodiert durch ein Gen, das die Nukleinsäuresequenz SEQ ID NO.: 2879 umfasst, welches wie in Tabelle I, Spalte 6, lokalisiert ist, z. B. im Zytoplasma von A. thaliana, zum Beispiel mit der Aktivität einer „Aminomethyltransferase”, einen erhöhten Ertrag, zum Beispiel erhöhte Toleranz gegenüber niedrigen Temperaturen, verleiht. Insbesondere wurde beobachtet, dass man durch Erhöhen bzw. Erzeugen der Aktivität eines Genprodukts, kodiert durch ein Gen, das die Nukleinsäuresequenz SEQ ID NO.: 3109 umfasst, A. thaliana zum Beispiel mit der Aktivität eines „Phosphoträgerproteins” einen erhöhten Ertrag, z. B. ein erhöhtes Ertragsmerkmal, zum Beispiel eine gesteigerte Toleranz gegenüber abiotischem Umweltstress, zum Beispiel eine erhöhte Toleranz gegenüber Dürre und/oder Toleranz gegenüber niedrigen Temperaturen und/oder eine erhöhte Effizienz der Nährstoffausnutzung, einen erhöhten intrinsischen Ertrag und/oder ein erhöhtes anderes erwähntes Ertragsmerkmal verleiht, verglichen mit der Kontrolle vom Wildtyp. Weiterhin wurde beobachtet, dass man durch Erhöhen bzw. Erzeugen der Aktivität eines Genprodukts mit dieser Aktivität eines „Phosphoträgerproteins” und kodiert durch ein Gen, das die Nukleinsäuresequenz SEQ ID NO.: 3109 umfasst, A. thaliana eine Toleranz gegenüber abiotischem Umweltstress, z. B. eine erhöhte Toleranz gegenüber niedrigen Temperaturen, verleiht, verglichen mit der Kontrolle vom Wildtyp. Insbesondere wurde beobachtet, dass man durch Erhöhen bzw. Erzeugen der Aktivität eines Genprodukts, kodiert durch ein Gen, das die Nukleinsäuresequenz SEQ ID NO.: 3109 umfasst, welches wie in Tabelle I, Spalte 6, lokalisiert ist, z. B. in Plastiden von A. thaliana, zum Beispiel mit der Aktivität eines „Phosphoträgerproteins”, einen erhöhten Ertrag, zum Beispiel erhöhte Toleranz gegenüber niedrigen Temperaturen, verleiht. Insbesondere wurde beobachtet, dass man durch Erhöhen bzw. Erzeugen der Aktivität eines Genprodukts, kodiert durch ein Gen, das die Nukleinsäuresequenz SEQ ID NO.: 3403 umfasst, A. thaliana zum Beispiel mit der Aktivität eines „Zwei-Modul-Transportproteins” einen erhöhten Ertrag, z. B. ein erhöhtes Ertragsmerkmal, zum Beispiel eine gesteigerte Toleranz gegenüber abiotischem Umweltstress, zum Beispiel eine erhöhte Toleranz gegenüber Dürre und/oder Toleranz gegenüber niedrigen Temperaturen und/oder eine erhöhte Effizienz der Nährstoffausnutzung, einen erhöhten intrinsischen Ertrag und/oder ein erhöhtes anderes erwähntes Ertragsmerkmal verleiht, verglichen mit der Kontrolle vom Wildtyp. Weiterhin wurde beobachtet, dass man durch Erhöhen bzw. Erzeugen der Aktivität eines Genprodukts mit dieser Aktivität eines „Zwei-Modul-Transportproteins” und kodiert durch ein Gen, das die Nukleinsäuresequenz SEQ ID NO.: 3403 umfasst, A. thaliana eine Toleranz gegenüber abiotischem Umweltstress, z. B. eine erhöhte Toleranz gegenüber niedrigen Temperaturen, verleiht, verglichen mit der Kontrolle vom Wildtyp. Insbesondere wurde beobachtet, dass man durch Erhöhen bzw. Erzeugen der Aktivität eines Genprodukts, kodiert durch ein Gen, das die Nukleinsäuresequenz SEQ ID NO.: 3403 umfasst, welches wie in Tabelle I, Spalte 6, lokalisiert ist, z. B. im Zytoplasma von A. thaliana, zum Beispiel mit der Aktivität eines „Zwei-Modul-Transportproteins”, einen erhöhten Ertrag, zum Beispiel erhöhte Toleranz gegenüber niedrigen Temperaturen, verleiht. Insbesondere wurde beobachtet, dass man durch Erhöhen bzw. Erzeugen der Aktivität eines Genprodukts, kodiert durch ein Gen, das die Nukleinsäuresequenz SEQ ID NO.: 3441 umfasst, A. thaliana zum Beispiel mit der Aktivität eines „GTP-bindenden Proteins” einen erhöhten Ertrag, z. B. ein erhöhtes Ertragsmerkmal, zum Beispiel eine gesteigerte Toleranz gegenüber abiotischem Umweltstress, zum Beispiel eine erhöhte Toleranz gegenüber Dürre und/oder Toleranz gegenüber niedrigen Temperaturen und/oder eine erhöhte Effizienz der Nährstoffausnutzung, einen erhöhten intrinsischen Ertrag und/oder ein erhöhtes anderes erwähntes Ertragsmerkmal verleiht, verglichen mit der Kontrolle vom Wildtyp. Weiterhin wurde beobachtet, dass man durch Erhöhen bzw. Erzeugen der Aktivität eines Genprodukts mit dieser Aktivität eines „GTP-bindenden Proteins” und kodiert durch ein Gen, das die Nukleinsäuresequenz SEQ ID NO.: 3441 umfasst, A. thaliana eine Toleranz gegenüber abiotischem Umweltstress, z. B. eine erhöhte Toleranz gegenüber niedrigen Temperaturen, verleiht, verglichen mit der Kontrolle vom Wildtyp. Insbesondere wurde beobachtet, dass man durch Erhöhen bzw. Erzeugen der Aktivität eines Genprodukts, kodiert durch ein Gen, das die Nukleinsäuresequenz SEQ ID NO.: 3441 umfasst, welches wie in Tabelle I, Spalte 6, lokalisiert ist, z. B. im Zytoplasma von A. thaliana, zum Beispiel mit der Aktivität eines „GTP-bindenden Proteins”, einen erhöhten Ertrag, zum Beispiel erhöhte Toleranz gegenüber niedrigen Temperaturen, verleiht. Insbesondere wurde beobachtet, dass man durch Erhöhen bzw. Erzeugen der Aktivität eines Genprodukts, kodiert durch ein Gen, das die Nukleinsäuresequenz SEQ ID NO.: 3978 umfasst, A. thaliana zum Beispiel mit der Aktivität eines „Peroxisomal-Targeting-Signal-2-Rezeptors” einen erhöhten Ertrag, z. B. ein erhöhtes Ertragsmerkmal, zum Beispiel eine gesteigerte Toleranz gegenüber abiotischem Umweltstress, zum Beispiel eine erhöhte Toleranz gegenüber Dürre und/oder Toleranz gegenüber niedrigen Temperaturen und/oder eine erhöhte Effizienz der Nährstoffausnutzung, einen erhöhten intrinsischen Ertrag und/oder ein erhöhtes anderes erwähntes Ertragsmerkmal verleiht, verglichen mit der Kontrolle vom Wildtyp. Weiterhin wurde beobachtet, dass man durch Erhöhen bzw. Erzeugen der Aktivität eines Genprodukts mit dieser Aktivität eines „Peroxisomal-Targeting-Signal-2-Rezeptors” und kodiert durch ein Gen, das die Nukleinsäuresequenz SEQ ID NO.: 3978 umfasst, A. thaliana eine Toleranz gegenüber abiotischem Umweltstress, z. B. eine erhöhte Toleranz gegenüber niedrigen Temperaturen, verleiht, verglichen mit der Kontrolle vom Wildtyp. Insbesondere wurde beobachtet, dass man durch Erhöhen bzw. Erzeugen der Aktivität eines Genprodukts, kodiert durch ein Gen, das die Nukleinsäuresequenz SEQ ID NO.: 3978 umfasst, welches wie in Tabelle I, Spalte 6, lokalisiert ist, z. B. in Plastiden von A. thaliana, zum Beispiel mit der Aktivität eines „Peroxisomal-Targeting-Signal-2-Rezeptors”, einen erhöhten Ertrag, zum Beispiel erhöhte Toleranz gegenüber niedrigen Temperaturen, verleiht. Insbesondere wurde beobachtet, dass man durch Erhöhen bzw. Erzeugen der Aktivität eines Genprodukts, kodiert durch ein Gen, das die Nukleinsäuresequenz SEQ ID NO.: 4047 umfasst, A. thaliana zum Beispiel mit der Aktivität eines „yer175w-a-Proteins” einen erhöhten Ertrag, z. B. ein erhöhtes Ertragsmerkmal, zum Beispiel eine gesteigerte Toleranz gegenüber abiotischem Umweltstress, zum Beispiel eine erhöhte Toleranz gegenüber Dürre und/oder Toleranz gegenüber niedrigen Temperaturen und/oder eine erhöhte Effizienz der Nährstoffausnutzung, einen erhöhten intrinsischen Ertrag und/oder ein erhöhtes anderes erwähntes Ertragsmerkmal verleiht, verglichen mit der Kontrolle vom Wildtyp. Weiterhin wurde beobachtet, dass man durch Erhöhen bzw. Erzeugen der Aktivität eines Genprodukts mit dieser Aktivität eines „yer175w-a-Proteins” und kodiert durch ein Gen, das die Nukleinsäuresequenz SEQ ID NO.: 4047 umfasst, A. thaliana eine Toleranz gegenüber abiotischem Umweltstress, z. B. eine erhöhte Toleranz gegenüber niedrigen Temperaturen, verleiht, verglichen mit der Kontrolle vom Wildtyp. Insbesondere wurde beobachtet, dass man durch Erhöhen bzw. Erzeugen der Aktivität eines Genprodukts, kodiert durch ein Gen, das die Nukleinsäuresequenz SEQ ID NO.: 4047 umfasst, welches wie in Tabelle I, Spalte 6, lokalisiert ist, z. B. im Zytoplasma von A. thaliana, zum Beispiel mit der Aktivität eines „yer175w-a-Proteins”, einen erhöhten Ertrag, zum Beispiel erhöhte Toleranz gegenüber niedrigen Temperaturen, verleiht. Insbesondere wurde beobachtet, dass man durch Erhöhen bzw. Erzeugen der Aktivität eines Genprodukts, kodiert durch ein Gen, das die Nukleinsäuresequenz SEQ ID NO.: 4051 umfasst, A. thaliana zum Beispiel mit der Aktivität eines „Hexosetransporters” einen erhöhten Ertrag, z. B. ein erhöhtes Ertragsmerkmal, zum Beispiel eine gesteigerte Toleranz gegenüber abiotischem Umweltstress, zum Beispiel eine erhöhte Toleranz gegenüber Dürre und/oder Toleranz gegenüber niedrigen Temperaturen und/oder eine erhöhte Effizienz der Nährstoffausnutzung, einen erhöhten intrinsischen Ertrag und/oder ein erhöhtes anderes erwähntes Ertragsmerkmal verleiht, verglichen mit der Kontrolle vom Wildtyp. Weiterhin wurde beobachtet, dass man durch Erhöhen bzw. Erzeugen der Aktivität eines Genprodukts mit dieser Aktivität eines „Hexosetransporters” und kodiert durch ein Gen, das die Nukleinsäuresequenz SEQ ID NO.: 4051 umfasst, A. thaliana eine Toleranz gegenüber abiotischem Umweltstress, z. B. eine erhöhte Toleranz gegenüber niedrigen Temperaturen, verleiht, verglichen mit der Kontrolle vom Wildtyp. Insbesondere wurde beobachtet, dass man durch Erhöhen bzw. Erzeugen der Aktivität eines Genprodukts, kodiert durch ein Gen, das die Nukleinsäuresequenz SEQ ID NO.: 4051 umfasst, welches wie in Tabelle I, Spalte 6, lokalisiert ist, z. B. in Plastiden von A. thaliana, zum Beispiel mit der Aktivität eines „Hexosetransporters”, einen erhöhten Ertrag, zum Beispiel erhöhte Toleranz gegenüber niedrigen Temperaturen, verleiht. Insbesondere wurde beobachtet, dass man durch Erhöhen bzw. Erzeugen der Aktivität eines Genprodukts, kodiert durch ein Gen, das die Nukleinsäuresequenz SEQ ID NO.: 4131 umfasst, A. thaliana zum Beispiel mit der Aktivität einer „2-Desoxyglucose-6-phosphatphosphatase” einen erhöhten Ertrag, z. B. ein erhöhtes Ertragsmerkmal, zum Beispiel eine gesteigerte Toleranz gegenüber abiotischem Umweltstress, zum Beispiel eine erhöhte Toleranz gegenüber Dürre und/oder Toleranz gegenüber niedrigen Temperaturen und/oder eine erhöhte Effizienz der Nährstoffausnutzung, einen erhöhten intrinsischen Ertrag und/oder ein erhöhtes anderes erwähntes Ertragsmerkmal verleiht, verglichen mit der Kontrolle vom Wildtyp. Weiterhin wurde beobachtet, dass man durch Erhöhen bzw. Erzeugen der Aktivität eines Genprodukts mit dieser Aktivität einer „2-Desoxyglucose-6-phosphatphosphatase” und kodiert durch ein Gen, das die Nukleinsäuresequenz SEQ ID NO.: 4131 umfasst, A. thaliana eine Toleranz gegenüber abiotischem Umweltstress, z. B. eine erhöhte Toleranz gegenüber niedrigen Temperaturen, verleiht, verglichen mit der Kontrolle vom Wildtyp. Insbesondere wurde beobachtet, dass man durch Erhöhen bzw. Erzeugen der Aktivität eines Genprodukts, kodiert durch ein Gen, das die Nukleinsäuresequenz SEQ ID NO.: 4131 umfasst, welches wie in Tabelle I, Spalte 6, lokalisiert ist, z. B. in Plastiden von A. thaliana, zum Beispiel mit der Aktivität einer „2-Desoxyglucose-6-phosphatphosphatase”, einen erhöhten Ertrag, zum Beispiel erhöhte Toleranz gegenüber niedrigen Temperaturen, verleiht. Insbesondere wurde beobachtet, dass man durch Erhöhen bzw. Erzeugen der Aktivität eines Genprodukts, kodiert durch ein Gen, das die Nukleinsäuresequenz SEQ ID NO.: 4217 umfasst, A. thaliana zum Beispiel mit der Aktivität einer „Lanosterolsynthase” einen erhöhten Ertrag, z. B. ein erhöhtes Ertragsmerkmal, zum Beispiel eine gesteigerte Toleranz gegenüber abiotischem Umweltstress, zum Beispiel eine erhöhte Toleranz gegenüber Dürre und/oder Toleranz gegenüber niedrigen Temperaturen und/oder eine erhöhte Effizienz der Nährstoffausnutzung, einen erhöhten intrinsischen Ertrag und/oder ein erhöhtes anderes erwähntes Ertragsmerkmal verleiht, verglichen mit der Kontrolle vom Wildtyp. Weiterhin wurde beobachtet, dass man durch Erhöhen bzw. Erzeugen der Aktivität eines Genprodukts mit dieser Aktivität einer „Lanosterolsynthase” und kodiert durch ein Gen, das die Nukleinsäuresequenz SEQ ID NO.: 4217 umfasst, A. thaliana eine Toleranz gegenüber abiotischem Umweltstress, z. B. eine erhöhte Toleranz gegenüber niedrigen Temperaturen, verleiht, verglichen mit der Kontrolle vom Wildtyp. Insbesondere wurde beobachtet, dass man durch Erhöhen bzw. Erzeugen der Aktivität eines Genprodukts, kodiert durch ein Gen, das die Nukleinsäuresequenz SEQ ID NO.: 4217 umfasst, welches wie in Tabelle I, Spalte 6, lokalisiert ist, z. B. im Zytoplasma von A. thaliana, zum Beispiel mit der Aktivität einer „Lanosterolsynthase”, einen erhöhten Ertrag, zum Beispiel erhöhte Toleranz gegenüber niedrigen Temperaturen, verleiht. Insbesondere wurde beobachtet, dass man durch Erhöhen bzw. Erzeugen der Aktivität eines Genprodukts, kodiert durch ein Gen, das die Nukleinsäuresequenz SEQ ID NO.: 4491 umfasst, A. thaliana zum Beispiel mit der Aktivität eines „yhr213w-a-Proteins” einen erhöhten Ertrag, z. B. ein erhöhtes Ertragsmerkmal, zum Beispiel eine gesteigerte Toleranz gegenüber abiotischem Umweltstress, zum Beispiel eine erhöhte Toleranz gegenüber Dürre und/oder Toleranz gegenüber niedrigen Temperaturen und/oder eine erhöhte Effizienz der Nährstoffausnutzung, einen erhöhten intrinsischen Ertrag und/oder ein erhöhtes anderes erwähntes Ertragsmerkmal verleiht, verglichen mit der Kontrolle vom Wildtyp. Weiterhin wurde beobachtet, dass man durch Erhöhen bzw. Erzeugen der Aktivität eines Genprodukts mit dieser Aktivität eines „yhr213w-a-Proteins” und kodiert durch ein Gen, das die Nukleinsäuresequenz SEQ ID NO.: 4491 umfasst, A. thaliana eine Toleranz gegenüber abiotischem Umweltstress, z. B. eine erhöhte Toleranz gegenüber niedrigen Temperaturen, verleiht, verglichen mit der Kontrolle vom Wildtyp. Insbesondere wurde beobachtet, dass man durch Erhöhen bzw. Erzeugen der Aktivität eines Genprodukts, kodiert durch ein Gen, das die Nukleinsäuresequenz SEQ ID NO.: 4491 umfasst, welches wie in Tabelle I, Spalte 6, lokalisiert ist, z. B. im Zytoplasma von A. thaliana, zum Beispiel mit der Aktivität einer „yhr213w-a-Proteins”, einen erhöhten Ertrag, zum Beispiel erhöhte Toleranz gegenüber niedrigen Temperaturen, verleiht. Insbesondere wurde beobachtet, dass man durch Erhöhen bzw. Erzeugen der Aktivität eines Genprodukts, kodiert durch ein Gen, das die Nukleinsäuresequenz SEQ ID NO.: 4495 umfasst, A. thaliana zum Beispiel mit der Aktivität einer „(DL)-Glycerin-3-phosphatase” einen erhöhten Ertrag, z. B. ein erhöhtes Ertragsmerkmal, zum Beispiel eine gesteigerte Toleranz gegenüber abiotischem Umweltstress, zum Beispiel eine erhöhte Toleranz gegenüber Dürre und/oder Toleranz gegenüber niedrigen Temperaturen und/oder eine erhöhte Effizienz der Nährstoffausnutzung, einen erhöhten intrinsischen Ertrag und/oder ein erhöhtes anderes erwähntes Ertragsmerkmal verleiht, verglichen mit der Kontrolle vom Wildtyp. Weiterhin wurde beobachtet, dass man durch Erhöhen bzw. Erzeugen der Aktivität eines Genprodukts mit dieser Aktivität einer „(DL)-Glycerin-3-phosphatase” und kodiert durch ein Gen, das die Nukleinsäuresequenz SEQ ID NO.: 4495 umfasst, A. thaliana eine Toleranz gegenüber abiotischem Umweltstress, z. B. eine erhöhte Toleranz gegenüber niedrigen Temperaturen, verleiht, verglichen mit der Kontrolle vom Wildtyp. Insbesondere wurde beobachtet, dass man durch Erhöhen bzw. Erzeugen der Aktivität eines Genprodukts, kodiert durch ein Gen, das die Nukleinsäuresequenz SEQ ID NO.: 4495 umfasst, welches wie in Tabelle I, Spalte 6, lokalisiert ist, z. B. im Zytoplasma von A. thaliana, zum Beispiel mit der Aktivität einer „(DL)-Glycerin-3-phosphatase”, einen erhöhten Ertrag, zum Beispiel erhöhte Toleranz gegenüber niedrigen Temperaturen, verleiht. Insbesondere wurde beobachtet, dass man durch Erhöhen bzw. Erzeugen der Aktivität eines Genprodukts, kodiert durch ein Gen, das die Nukleinsäuresequenz SEQ ID NO.: 4558 umfasst, A. thaliana zum Beispiel mit der Aktivität eines „die Transkription steuernden Proteins” einen erhöhten Ertrag, z. B. ein erhöhtes Ertragsmerkmal, zum Beispiel eine gesteigerte Toleranz gegenüber abiotischem Umweltstress, zum Beispiel eine erhöhte Toleranz gegenüber Dürre und/oder Toleranz gegenüber niedrigen Temperaturen und/oder eine erhöhte Effizienz der Nährstoffausnutzung, einen erhöhten intrinsischen Ertrag und/oder ein erhöhtes anderes erwähntes Ertragsmerkmal verleiht, verglichen mit der Kontrolle vom Wildtyp. Weiterhin wurde beobachtet, dass man durch Erhöhen bzw. Erzeugen der Aktivität eines Genprodukts mit dieser Aktivität eines „die Transkription steuernden Proteins” und kodiert durch ein Gen, das die Nukleinsäuresequenz SEQ ID NO.: 4558 umfasst, A. thaliana eine Toleranz gegenüber abiotischem Umweltstress, z. B. eine erhöhte Toleranz gegenüber niedrigen Temperaturen, verleiht, verglichen mit der Kontrolle vom Wildtyp. Insbesondere wurde beobachtet, dass man durch Erhöhen bzw. Erzeugen der Aktivität eines Genprodukts, kodiert durch ein Gen, das die Nukleinsäuresequenz SEQ ID NO.: 4558 umfasst, welches wie in Tabelle I, Spalte 6, lokalisiert ist, z. B. in Plastiden von A. thaliana, zum Beispiel mit der Aktivität eines „die Transkription steuernden Proteins”, einen erhöhten Ertrag, zum Beispiel erhöhte Toleranz gegenüber niedrigen Temperaturen, verleiht. Insbesondere wurde beobachtet, dass man durch Erhöhen bzw. Erzeugen der Aktivität eines Genprodukts, kodiert durch ein Gen, das die Nukleinsäuresequenz SEQ ID NO.: 4589 umfasst, A. thaliana zum Beispiel mit der Aktivität eines „Glykogensyntheseinitiatorproteins” einen erhöhten Ertrag, z. B. ein erhöhtes Ertragsmerkmal, zum Beispiel eine gesteigerte Toleranz gegenüber abiotischem Umweltstress, zum Beispiel eine erhöhte Toleranz gegenüber Dürre und/oder Toleranz gegenüber niedrigen Temperaturen und/oder eine erhöhte Effizienz der Nährstoffausnutzung, einen erhöhten intrinsischen Ertrag und/oder ein erhöhtes anderes erwähntes Ertragsmerkmal verleiht, verglichen mit der Kontrolle vom Wildtyp. Weiterhin wurde beobachtet, dass man durch Erhöhen bzw. Erzeugen der Aktivität eines Genprodukts mit dieser Aktivität eines „Glykogensyntheseinitiatorproteins” und kodiert durch ein Gen, das die Nukleinsäuresequenz SEQ ID NO.: 4589 umfasst, A. thaliana eine Toleranz gegenüber abiotischem Umweltstress, z. B. eine erhöhte Toleranz gegenüber niedrigen Temperaturen, verleiht, verglichen mit der Kontrolle vom Wildtyp. Insbesondere wurde beobachtet, dass man durch Erhöhen bzw. Erzeugen der Aktivität eines Genprodukts, kodiert durch ein Gen, das die Nukleinsäuresequenz SEQ ID NO.: 4589 umfasst, welches wie in Tabelle I, Spalte 6, lokalisiert ist, z. B. in Plastiden von A. thaliana, zum Beispiel mit der Aktivität eines „Glykogensyntheseinitiatorproteins”, einen erhöhten Ertrag, zum Beispiel erhöhte Toleranz gegenüber niedrigen Temperaturen, verleiht. Insbesondere wurde beobachtet, dass man durch Erhöhen bzw. Erzeugen der Aktivität eines Genprodukts, kodiert durch ein Gen, das die Nukleinsäuresequenz SEQ ID NO.: 4622 umfasst, A. thaliana zum Beispiel mit der Aktivität einer „Aspartataminotransferase” einen erhöhten Ertrag, z. B. ein erhöhtes Ertragsmerkmal, zum Beispiel eine gesteigerte Toleranz gegenüber abiotischem Umweltstress, zum Beispiel eine erhöhte Toleranz gegenüber Dürre und/oder Toleranz gegenüber niedrigen Temperaturen und/oder eine erhöhte Effizienz der Nährstoffausnutzung, einen erhöhten intrinsischen Ertrag und/oder ein erhöhtes anderes erwähntes Ertragsmerkmal verleiht, verglichen mit der Kontrolle vom Wildtyp. Weiterhin wurde beobachtet, dass man durch Erhöhen bzw. Erzeugen der Aktivität eines Genprodukts mit dieser Aktivität einer „Aspartataminotransferase” und kodiert durch ein Gen, das die Nukleinsäuresequenz SEQ ID NO.: 4622 umfasst, A. thaliana eine Toleranz gegenüber abiotischem Umweltstress, z. B. eine erhöhte Toleranz gegenüber niedrigen Temperaturen, verleiht, verglichen mit der Kontrolle vom Wildtyp. Insbesondere wurde beobachtet, dass man durch Erhöhen bzw. Erzeugen der Aktivität eines Genprodukts, kodiert durch ein Gen, das die Nukleinsäuresequenz SEQ ID NO.: 4622 umfasst, welches wie in Tabelle I, Spalte 6, lokalisiert ist, z. B. im Zytoplasma von A. thaliana, zum Beispiel mit der Aktivität einer „Aspartataminotransferase”, einen erhöhten Ertrag, zum Beispiel erhöhte Toleranz gegenüber niedrigen Temperaturen, verleiht. Insbesondere wurde beobachtet, dass man durch Erhöhen bzw. Erzeugen der Aktivität eines Genprodukts, kodiert durch ein Gen, das die Nukleinsäuresequenz SEQ ID NO.: 5070 umfasst, A. thaliana zum Beispiel mit der Aktivität eines „YML079W-Proteins” einen erhöhten Ertrag, z. B. ein erhöhtes Ertragsmerkmal, zum Beispiel eine gesteigerte Toleranz gegenüber abiotischem Umweltstress, zum Beispiel eine erhöhte Toleranz gegenüber Dürre und/oder Toleranz gegenüber niedrigen Temperaturen und/oder eine erhöhte Effizienz der Nährstoffausnutzung, einen erhöhten intrinsischen Ertrag und/oder ein erhöhtes anderes erwähntes Ertragsmerkmal verleiht, verglichen mit der Kontrolle vom Wildtyp. Weiterhin wurde beobachtet, dass man durch Erhöhen bzw. Erzeugen der Aktivität eines Genprodukts mit dieser Aktivität eines „YML079W-Proteins” und kodiert durch ein Gen, das die Nukleinsäuresequenz SEQ ID NO.: 5070 umfasst, A. thaliana eine Toleranz gegenüber abiotischem Umweltstress, z. B. eine erhöhte Toleranz gegenüber niedrigen Temperaturen, verleiht, verglichen mit der Kontrolle vom Wildtyp. Insbesondere wurde beobachtet, dass man durch Erhöhen bzw. Erzeugen der Aktivität eines Genprodukts, kodiert durch ein Gen, das die Nukleinsäuresequenz SEQ ID NO.: 5070 umfasst, welches wie in Tabelle I, Spalte 6, lokalisiert ist, z. B. in Plastiden oder im Zytoplasma von A. thaliana, zum Beispiel mit der Aktivität eines „YML079W-Proteins”, einen erhöhten Ertrag, zum Beispiel erhöhte Toleranz gegenüber niedrigen Temperaturen, verleiht. Insbesondere wurde beobachtet, dass man durch Erhöhen bzw. Erzeugen der Aktivität eines Genprodukts, kodiert durch ein Gen, das die Nukleinsäuresequenz SEQ ID NO.: 5102 umfasst, A. thaliana zum Beispiel mit der Aktivität eines „YMR157C-Proteins” einen erhöhten Ertrag, z. B. ein erhöhtes Ertragsmerkmal, zum Beispiel eine gesteigerte Toleranz gegenüber abiotischem Umweltstress, zum Beispiel eine erhöhte Toleranz gegenüber Dürre und/oder Toleranz gegenüber niedrigen Temperaturen und/oder eine erhöhte Effizienz der Nährstoffausnutzung, einen erhöhten intrinsischen Ertrag und/oder ein erhöhtes anderes erwähntes Ertragsmerkmal verleiht, verglichen mit der Kontrolle vom Wildtyp. Weiterhin wurde beobachtet, dass man durch Erhöhen bzw. Erzeugen der Aktivität eines Genprodukts mit dieser Aktivität eines „YMR157C-Proteins” und kodiert durch ein Gen, das die Nukleinsäuresequenz SEQ ID NO.: 5102 umfasst, A. thaliana eine Toleranz gegenüber abiotischem Umweltstress, z. B. eine erhöhte Toleranz gegenüber niedrigen Temperaturen, verleiht, verglichen mit der Kontrolle vom Wildtyp. Insbesondere wurde beobachtet, dass man durch Erhöhen bzw. Erzeugen der Aktivität eines Genprodukts, kodiert durch ein Gen, das die Nukleinsäuresequenz SEQ ID NO.: 5102 umfasst, welches wie in Tabelle I, Spalte 6, lokalisiert ist, z. B. in Plastiden von A. thaliana, zum Beispiel mit der Aktivität eines „YMR157C-Proteins”, einen erhöhten Ertrag, zum Beispiel erhöhte Toleranz gegenüber niedrigen Temperaturen, verleiht. Insbesondere wurde beobachtet, dass man durch Erhöhen bzw. Erzeugen der Aktivität eines Genprodukts, kodiert durch ein Gen, das die Nukleinsäuresequenz SEQ ID NO.: 5115 umfasst, A. thaliana zum Beispiel mit der Aktivität eines „YNL024C-Proteins” einen erhöhten Ertrag, z. B. ein erhöhtes Ertragsmerkmal, zum Beispiel eine gesteigerte Toleranz gegenüber abiotischem Umweltstress, zum Beispiel eine erhöhte Toleranz gegenüber Dürre und/oder Toleranz gegenüber niedrigen Temperaturen und/oder eine erhöhte Effizienz der Nährstoffausnutzung, einen erhöhten intrinsischen Ertrag und/oder ein erhöhtes anderes erwähntes Ertragsmerkmal verleiht, verglichen mit der Kontrolle vom Wildtyp. Weiterhin wurde beobachtet, dass man durch Erhöhen bzw. Erzeugen der Aktivität eines Genprodukts mit der Aktivität eines „YNL024C-Proteins”, kodiert durch ein Gen, das die Nukleinsäuresequenz SEQ ID NO.: 5115 umfasst, A. thaliana eine Toleranz gegenüber abiotischem Umweltstress, z. B. eine erhöhte Toleranz gegenüber niedrigen Temperaturen, verleiht, verglichen mit der Kontrolle vom Wildtyp. Insbesondere wurde beobachtet, dass man durch Erhöhen bzw. Erzeugen der Aktivität eines Genprodukts, kodiert durch ein Gen, das die Nukleinsäuresequenz SEQ ID NO.: 5115 umfasst, welches wie in Tabelle I, Spalte 6, lokalisiert ist, z. B. in Plastiden von A. thaliana, zum Beispiel mit der Aktivität eines „YNL024C-Proteins”, einen erhöhten Ertrag, zum Beispiel erhöhte Toleranz gegenüber niedrigen Temperaturen, verleiht. Insbesondere wurde beobachtet, dass man durch Erhöhen bzw. Erzeugen der Aktivität eines Genprodukts, kodiert durch ein Gen, das die Nukleinsäuresequenz SEQ ID NO.: 5159 umfasst, A. thaliana zum Beispiel mit der Aktivität einer „Argininosuccinatsynthase” einen erhöhten Ertrag, z. B. ein erhöhtes Ertragsmerkmal, zum Beispiel eine gesteigerte Toleranz gegenüber abiotischem Umweltstress, zum Beispiel eine erhöhte Toleranz gegenüber Dürre und/oder Toleranz gegenüber niedrigen Temperaturen und/oder eine erhöhte Effizienz der Nährstoffausnutzung, einen erhöhten intrinsischen Ertrag und/oder ein erhöhtes anderes erwähntes Ertragsmerkmal verleiht, verglichen mit der Kontrolle vom Wildtyp. Weiterhin wurde beobachtet, dass man durch Erhöhen bzw. Erzeugen der Aktivität eines Genprodukts mit dieser Aktivität einer „Argininosuccinatsynthase” und kodiert durch ein Gen, das die Nukleinsäuresequenz SEQ ID NO.: 5159 umfasst, A. thaliana eine Toleranz gegenüber abiotischem Umweltstress, z. B. eine erhöhte Toleranz gegenüber niedrigen Temperaturen, verleiht, verglichen mit der Kontrolle vom Wildtyp. Insbesondere wurde beobachtet, dass man durch Erhöhen bzw. Erzeugen der Aktivität eines Genprodukts, kodiert durch ein Gen, das die Nukleinsäuresequenz SEQ ID NO.: 5159 umfasst, welches wie in Tabelle I, Spalte 6, lokalisiert ist, z. B. in Plastiden oder im Zytoplasma von A. thaliana, zum Beispiel mit der Aktivität einer „Argininosuccinatsynthase”, einen erhöhten Ertrag, zum Beispiel erhöhte Toleranz gegenüber niedrigen Temperaturen, verleiht. Insbesondere wurde beobachtet, dass man durch Erhöhen bzw. Erzeugen der Aktivität eines Genprodukts, kodiert durch ein Gen, das die Nukleinsäuresequenz SEQ ID NO.: 5746 umfasst, A. thaliana zum Beispiel mit der Aktivität einer „Untereinheit von TORC1” einen erhöhten Ertrag, z. B. ein erhöhtes Ertragsmerkmal, zum Beispiel eine gesteigerte Toleranz gegenüber abiotischem Umweltstress, zum Beispiel eine erhöhte Toleranz gegenüber Dürre und/oder Toleranz gegenüber niedrigen Temperaturen und/oder eine erhöhte Effizienz der Nährstoffausnutzung, einen erhöhten intrinsischen Ertrag und/oder ein erhöhtes anderes erwähntes Ertragsmerkmal verleiht, verglichen mit der Kontrolle vom Wildtyp. Weiterhin wurde beobachtet, dass man durch Erhöhen bzw. Erzeugen der Aktivität eines Genprodukts mit dieser Aktivität einer „Untereinheit von TORC1” und kodiert durch ein Gen, das die Nukleinsäuresequenz SEQ ID NO.: 5746 umfasst, A. thaliana eine Toleranz gegenüber abiotischem Umweltstress, z. B. eine erhöhte Toleranz gegenüber niedrigen Temperaturen, verleiht, verglichen mit der Kontrolle vom Wildtyp. Insbesondere wurde beobachtet, dass man durch Erhöhen bzw. Erzeugen der Aktivität eines Genprodukts, kodiert durch ein Gen, das die Nukleinsäuresequenz SEQ ID NO.: 5746 umfasst, welches wie in Tabelle I, Spalte 6, lokalisiert ist, z. B. im Zytoplasma von A. thaliana, zum Beispiel mit der Aktivität einer „Untereinheit von TORC1”, einen erhöhten Ertrag, zum Beispiel erhöhte Toleranz gegenüber niedrigen Temperaturen, verleiht. Insbesondere wurde beobachtet, dass man durch Erhöhen bzw. Erzeugen der Aktivität eines Genprodukts, kodiert durch ein Gen, das die Nukleinsäuresequenz SEQ ID NO.: 5756 umfasst, A. thaliana zum Beispiel mit der Aktivität einer „Phosphoadenosinphosphosulfatreduktase” einen erhöhten Ertrag, z. B. ein erhöhtes Ertragsmerkmal, zum Beispiel eine gesteigerte Toleranz gegenüber abiotischem Umweltstress, zum Beispiel eine erhöhte Toleranz gegenüber Dürre und/oder Toleranz gegenüber niedrigen Temperaturen und/oder eine erhöhte Effizienz der Nährstoffausnutzung, einen erhöhten intrinsischen Ertrag und/oder ein erhöhtes anderes erwähntes Ertragsmerkmal verleiht, verglichen mit der Kontrolle vom Wildtyp. Weiterhin wurde beobachtet, dass man durch Erhöhen bzw. Erzeugen der Aktivität eines Genprodukts mit der Aktivität einer „Phosphoadenosinphosphosulfatreduktase”, kodiert durch ein Gen, das die Nukleinsäuresequenz SEQ ID NO.: 5756 umfasst, A. thaliana eine Toleranz gegenüber abiotischem Umweltstress, z. B. eine erhöhte Toleranz gegenüber niedrigen Temperaturen, verleiht, verglichen mit der Kontrolle vom Wildtyp. Insbesondere wurde beobachtet, dass man durch Erhöhen bzw. Erzeugen der Aktivität eines Genprodukts, kodiert durch ein Gen, das die Nukleinsäuresequenz SEQ ID NO.: 5756 umfasst, welches wie in Tabelle I, Spalte 6, lokalisiert ist, z. B. in Plastiden von A. thaliana, zum Beispiel mit der Aktivität einer „Phosphoadenosinphosphosulfatreduktase”, einen erhöhten Ertrag, zum Beispiel erhöhte Toleranz gegenüber niedrigen Temperaturen, verleiht. Insbesondere wurde beobachtet, dass man durch Erhöhen bzw. Erzeugen der Aktivität eines Genprodukts, kodiert durch ein Gen, das die Nukleinsäuresequenz SEQ ID NO.: 6086 umfasst, A. thaliana zum Beispiel mit der Aktivität einer „Enoyl-CoA-Hydratase” einen erhöhten Ertrag, z. B. ein erhöhtes Ertragsmerkmal, zum Beispiel eine gesteigerte Toleranz gegenüber abiotischem Umweltstress, zum Beispiel eine erhöhte Toleranz gegenüber Dürre und/oder Toleranz gegenüber niedrigen Temperaturen und/oder eine erhöhte Effizienz der Nährstoffausnutzung, einen erhöhten intrinsischen Ertrag und/oder ein erhöhtes anderes erwähntes Ertragsmerkmal verleiht, verglichen mit der Kontrolle vom Wildtyp. Weiterhin wurde beobachtet, dass man durch Erhöhen bzw. Erzeugen der Aktivität eines Genprodukts mit dieser Aktivität einer „Enoyl-CoA-Hydratase” und kodiert durch ein Gen, das die Nukleinsäuresequenz SEQ ID NO.: 6086 umfasst, A. thaliana eine Toleranz gegenüber abiotischem Umweltstress, z. B. eine erhöhte Toleranz gegenüber niedrigen Temperaturen, verleiht, verglichen mit der Kontrolle vom Wildtyp. Insbesondere wurde beobachtet, dass man durch Erhöhen bzw. Erzeugen der Aktivität eines Genprodukts, kodiert durch ein Gen, das die Nukleinsäuresequenz SEQ ID NO.: 6086 umfasst, welches wie in Tabelle I, Spalte 6, lokalisiert ist, z. B. in Plastiden von A. thaliana, zum Beispiel mit der Aktivität einer „Enoyl-CoA-Hydratase”, einen erhöhten Ertrag, zum Beispiel erhöhte Toleranz gegenüber niedrigen Temperaturen, verleiht. Insbesondere wurde beobachtet, dass man durch Erhöhen bzw. Erzeugen der Aktivität eines Genprodukts, kodiert durch ein Gen, das die Nukleinsäuresequenz SEQ ID NO.: 6581 umfasst, A. thaliana zum Beispiel mit der Aktivität eines „B1906-Proteins” einen erhöhten Ertrag, z. B. ein erhöhtes Ertragsmerkmal, zum Beispiel eine gesteigerte Toleranz gegenüber abiotischem Umweltstress, zum Beispiel eine erhöhte Toleranz gegenüber Dürre und/oder Toleranz gegenüber niedrigen Temperaturen und/oder eine erhöhte Effizienz der Nährstoffausnutzung, einen erhöhten intrinsischen Ertrag und/oder ein erhöhtes anderes erwähntes Ertragsmerkmal verleiht, verglichen mit der Kontrolle vom Wildtyp. Weiterhin wurde beobachtet, dass man durch Erhöhen bzw. Erzeugen der Aktivität eines Genprodukts mit dieser Aktivität eines „B1906-Proteins” und kodiert durch ein Gen, das die Nukleinsäuresequenz SEQ ID NO.: 6581 umfasst, A. thaliana eine Toleranz gegenüber abiotischem Umweltstress, z. B. eine erhöhte Toleranz gegenüber niedrigen Temperaturen, verleiht, verglichen mit der Kontrolle vom Wildtyp. Insbesondere wurde beobachtet, dass man durch Erhöhen bzw. Erzeugen der Aktivität eines Genprodukts, kodiert durch ein Gen, das die Nukleinsäuresequenz SEQ ID NO.: 6581 umfasst, welches wie in Tabelle I, Spalte 6, lokalisiert ist, z. B. im Zytoplasma von A. thaliana, zum Beispiel mit der Aktivität eines „B1906-Proteins”, einen erhöhten Ertrag, zum Beispiel erhöhte Toleranz gegenüber niedrigen Temperaturen, verleiht. Insbesondere wurde beobachtet, dass man durch Erhöhen bzw. Erzeugen der Aktivität eines Genprodukts, kodiert durch ein Gen, das die Nukleinsäuresequenz SEQ ID NO.: 6609 umfasst, A. thaliana zum Beispiel mit der Aktivität eines „CoA-Transferase-ähnlichen Proteins (NAD(P)-bindend)” einen erhöhten Ertrag, z. B. ein erhöhtes Ertragsmerkmal, zum Beispiel eine gesteigerte Toleranz gegenüber abiotischem Umweltstress, zum Beispiel eine erhöhte Toleranz gegenüber Dürre und/oder Toleranz gegenüber niedrigen Temperaturen und/oder eine erhöhte Effizienz der Nährstoffausnutzung, einen erhöhten intrinsischen Ertrag und/oder ein erhöhtes anderes erwähntes Ertragsmerkmal verleiht, verglichen mit der Kontrolle vom Wildtyp. Weiterhin wurde beobachtet, dass man durch Erhöhen bzw. Erzeugen der Aktivität eines Genprodukts mit dieser Aktivität eines „CoA-Transferase-ähnlichen Proteins (NAD(P)-bindend)” und kodiert durch ein Gen, das die Nukleinsäuresequenz SEQ ID NO.: 6609 umfasst, A. thaliana eine Toleranz gegenüber abiotischem Umweltstress, z. B. eine erhöhte Toleranz gegenüber niedrigen Temperaturen, verleiht, verglichen mit der Kontrolle vom Wildtyp. Insbesondere wurde beobachtet, dass man durch Erhöhen bzw. Erzeugen der Aktivität eines Genprodukts, kodiert durch ein Gen, das die Nukleinsäuresequenz SEQ ID NO.: 6609 umfasst, welches wie in Tabelle I, Spalte 6, lokalisiert ist, z. B. im Zytoplasma von A. thaliana, zum Beispiel mit der Aktivität eines „CoA-Transferase-ähnlichen Proteins (NAD(P)-bindend)”, einen erhöhten Ertrag, zum Beispiel erhöhte Toleranz gegenüber niedrigen Temperaturen, verleiht. Insbesondere wurde beobachtet, dass man durch Erhöhen bzw. Erzeugen der Aktivität eines Genprodukts, kodiert durch ein Gen, das die Nukleinsäuresequenz SEQ ID NO.: 6949 umfasst, A. thaliana zum Beispiel mit der Aktivität einer „molybdänbindenden Untereinheit von Aldehydoxidasen und Xanthindehydrogenasen” einen erhöhten Ertrag, z. B. ein erhöhtes Ertragsmerkmal, zum Beispiel eine gesteigerte Toleranz gegenüber abiotischem Umweltstress, zum Beispiel eine erhöhte Toleranz gegenüber Dürre und/oder Toleranz gegenüber niedrigen Temperaturen und/oder eine erhöhte Effizienz der Nährstoffausnutzung, einen erhöhten intrinsischen Ertrag und/oder ein erhöhtes anderes erwähntes Ertragsmerkmal verleiht, verglichen mit der Kontrolle vom Wildtyp. Weiterhin wurde beobachtet, dass man durch Erhöhen bzw. Erzeugen der Aktivität eines Genprodukts mit dieser Aktivität einer „molybdänbindenden Untereinheit von Aldehydoxidasen und Xanthindehydrogenasen” und kodiert durch ein Gen, das die Nukleinsäuresequenz SEQ ID NO.: 6949 umfasst, A. thaliana eine Toleranz gegenüber abiotischem Umweltstress, z. B. eine erhöhte Toleranz gegenüber niedrigen Temperaturen, verleiht, verglichen mit der Kontrolle vom Wildtyp. Insbesondere wurde beobachtet, dass man durch Erhöhen bzw. Erzeugen der Aktivität eines Genprodukts, kodiert durch ein Gen, das die Nukleinsäuresequenz SEQ ID NO.: 6949 umfasst, welches wie in Tabelle I, Spalte 6, lokalisiert ist, z. B. im Zytoplasma von A. thaliana, zum Beispiel mit der Aktivität einer „molybdänbindenden Untereinheit von Aldehydoxidasen und Xanthindehydrogenasen”, einen erhöhten Ertrag, zum Beispiel erhöhte Toleranz gegenüber niedrigen Temperaturen, verleiht. Insbesondere wurde beobachtet, dass man durch Erhöhen bzw. Erzeugen der Aktivität eines Genprodukts, kodiert durch ein Gen, das die Nukleinsäuresequenz SEQ ID NO.: 7078 umfasst, A. thaliana zum Beispiel mit der Aktivität eines „Pirin-ähnlichen Proteins” einen erhöhten Ertrag, z. B. ein erhöhtes Ertragsmerkmal, zum Beispiel eine gesteigerte Toleranz gegenüber abiotischem Umweltstress, zum Beispiel eine erhöhte Toleranz gegenüber Dürre und/oder Toleranz gegenüber niedrigen Temperaturen und/oder eine erhöhte Effizienz der Nährstoffausnutzung, einen erhöhten intrinsischen Ertrag und/oder ein erhöhtes anderes erwähntes Ertragsmerkmal verleiht, verglichen mit der Kontrolle vom Wildtyp. Weiterhin wurde beobachtet, dass man durch Erhöhen bzw. Erzeugen der Aktivität eines Genprodukts mit dieser Aktivität eines „Pirin-ähnlichen Proteins” und kodiert durch ein Gen, das die Nukleinsäuresequenz SEQ ID NO.: 7078 umfasst, A. thaliana eine Toleranz gegenüber abiotischem Umweltstress, z. B. eine erhöhte Toleranz gegenüber niedrigen Temperaturen, verleiht, verglichen mit der Kontrolle vom Wildtyp. Insbesondere wurde beobachtet, dass man durch Erhöhen bzw. Erzeugen der Aktivität eines Genprodukts, kodiert durch ein Gen, das die Nukleinsäuresequenz SEQ ID NO.: 7078 umfasst, welches wie in Tabelle I, Spalte 6, lokalisiert ist, z. B. im Zytoplasma von A. thaliana, zum Beispiel mit der Aktivität eines „Pirin-ähnlichen Proteins”, einen erhöhten Ertrag, zum Beispiel erhöhte Toleranz gegenüber niedrigen Temperaturen, verleiht. Insbesondere wurde beobachtet, dass man durch Erhöhen bzw. Erzeugen der Aktivität eines Genprodukts, kodiert durch ein Gen, das die Nukleinsäuresequenz SEQ ID NO.: 7270 umfasst, A. thaliana zum Beispiel mit der Aktivität eines „Hitzeschockproteins” einen erhöhten Ertrag, z. B. ein erhöhtes Ertragsmerkmal, zum Beispiel eine gesteigerte Toleranz gegenüber abiotischem Umweltstress, zum Beispiel eine erhöhte Toleranz gegenüber Dürre und/oder Toleranz gegenüber niedrigen Temperaturen und/oder eine erhöhte Effizienz der Nährstoffausnutzung, einen erhöhten intrinsischen Ertrag und/oder ein erhöhtes anderes erwähntes Ertragsmerkmal verleiht, verglichen mit der Kontrolle vom Wildtyp. Weiterhin wurde beobachtet, dass man durch Erhöhen bzw. Erzeugen der Aktivität eines Genprodukts mit dieser Aktivität eines „Hitzeschockproteins” und kodiert durch ein Gen, das die Nukleinsäuresequenz SEQ ID NO.: 7270 umfasst, A. thaliana eine Toleranz gegenüber abiotischem Umweltstress, z. B. eine erhöhte Toleranz gegenüber niedrigen Temperaturen, verleiht, verglichen mit der Kontrolle vom Wildtyp. Insbesondere wurde beobachtet, dass man durch Erhöhen bzw. Erzeugen der Aktivität eines Genprodukts, kodiert durch ein Gen, das die Nukleinsäuresequenz SEQ ID NO.: 7270 umfasst, welches wie in Tabelle I, Spalte 6, lokalisiert ist, z. B. in Plastiden von A. thaliana, zum Beispiel mit der Aktivität eines „Hitzeschockproteins”, einen erhöhten Ertrag, zum Beispiel erhöhte Toleranz gegenüber niedrigen Temperaturen, verleiht. Insbesondere wurde beobachtet, dass man durch Erhöhen bzw. Erzeugen der Aktivität eines Genprodukts, kodiert durch ein Gen, das die Nukleinsäuresequenz SEQ ID NO.: 7467 umfasst, A. thaliana zum Beispiel mit der Aktivität eines „B3410-Proteins” einen erhöhten Ertrag, z. B. ein erhöhtes Ertragsmerkmal, zum Beispiel eine gesteigerte Toleranz gegenüber abiotischem Umweltstress, mm Beispiel eine erhöhte Toleranz gegenüber Dürre und/oder Toleranz gegenüber niedrigen Temperaturen und/oder eine erhöhte Effizienz der Nährstoffausnutzung, einen erhöhten intrinsischen Ertrag und/oder ein erhöhtes anderes erwähntes Ertragsmerkmal verleiht, verglichen mit der Kontrolle vom Wildtyp. Weiterhin wurde beobachtet, dass man durch Erhöhen bzw. Erzeugen der Aktivität eines Genprodukts mit dieser Aktivität eines „B3410-Proteins” und kodiert durch ein Gen, das die Nukleinsäuresequenz SEQ ID NO.: 7467 umfasst, A. thaliana eine Toleranz gegenüber abiotischem Umweltstress, z. B. eine erhöhte Toleranz gegenüber niedrigen Temperaturen, verleiht, verglichen mit der Kontrolle vom Wildtyp. Insbesondere wurde beobachtet, dass man durch Erhöhen bzw. Erzeugen der Aktivität eines Genprodukts, kodiert durch ein Gen, das die Nukleinsäuresequenz SEQ ID NO.: 7467 umfasst, welches wie in Tabelle I, Spalte 6, lokalisiert ist, z. B. im Zytoplasma von A. thaliana, zum Beispiel mit der Aktivität eines „B3410-Proteins”, einen erhöhten Ertrag, zum Beispiel erhöhte Toleranz gegenüber niedrigen Temperaturen, verleiht. Insbesondere wurde beobachtet, dass man durch Erhöhen bzw. Erzeugen der Aktivität eines Genprodukts, kodiert durch ein Gen, das die Nukleinsäuresequenz SEQ ID NO.: 7492 umfasst, A. thaliana zum Beispiel mit der Aktivität eines „Regulators der Zellmorphogenese und der NO-Signalvermittlung” einen erhöhten Ertrag, z. B. ein erhöhtes Ertragsmerkmal, zum Beispiel eine gesteigerte Toleranz gegenüber abiotischem Umweltstress, zum Beispiel eine erhöhte Toleranz gegenüber Dürre und/oder Toleranz gegenüber niedrigen Temperaturen und/oder eine erhöhte Effizienz der Nährstoffausnutzung, einen erhöhten intrinsischen Ertrag und/oder ein erhöhtes anderes erwähntes Ertragsmerkmal verleiht, verglichen mit der Kontrolle vom Wildtyp. Weiterhin wurde beobachtet, dass man durch Erhöhen bzw. Erzeugen der Aktivität eines Genprodukts mit dieser Aktivität eines „Regulators der Zellmorphogenese und der NO-Signalvermittlung” und kodiert durch ein Gen, das die Nukleinsäuresequenz SEQ ID NO.: 7492 umfasst, A. thaliana eine Toleranz gegenüber abiotischem Umweltstress, z. B. eine erhöhte Toleranz gegenüber niedrigen Temperaturen, verleiht, verglichen mit der Kontrolle vom Wildtyp. Insbesondere wurde beobachtet, dass man durch Erhöhen bzw. Erzeugen der Aktivität eines Genprodukts, kodiert durch ein Gen, das die Nukleinsäuresequenz SEQ ID NO.: 7492 umfasst, welches wie in Tabelle I, Spalte 6, lokalisiert ist, z. B. in Plastiden von A. thaliana, zum Beispiel mit der Aktivität eines „Regulators der Zellmorphogenese und der NO-Signalvermittlung”, einen erhöhten Ertrag, zum Beispiel erhöhte Toleranz gegenüber niedrigen Temperaturen, verleiht. Insbesondere wurde beobachtet, dass man durch Erhöhen bzw. Erzeugen der Aktivität eines Genprodukts, kodiert durch ein Gen, das die Nukleinsäuresequenz SEQ ID NO.: 7591 umfasst, A. thaliana zum Beispiel mit der Aktivität einer „Glutathion-S-transferase” einen erhöhten Ertrag, z. B. ein erhöhtes Ertragsmerkmal, zum Beispiel eine gesteigerte Toleranz gegenüber abiotischem Umweltstress, zum Beispiel eine erhöhte Toleranz gegenüber Dürre und/oder Toleranz gegenüber niedrigen Temperaturen und/oder eine erhöhte Effizienz der Nährstoffausnutzung, einen erhöhten intrinsischen Ertrag und/oder ein erhöhtes anderes erwähntes Ertragsmerkmal verleiht, verglichen mit der Kontrolle vom Wildtyp. Weiterhin wurde beobachtet, dass man durch Erhöhen bzw. Erzeugen der Aktivität eines Genprodukts mit dieser Aktivität einer „Glutathion-S-transferase” und kodiert durch ein Gen, das die Nukleinsäuresequenz SEQ ID NO.: 7591 umfasst, A. thaliana eine Toleranz gegenüber abiotischem Umweltstress, z. B. eine erhöhte Toleranz gegenüber niedrigen Temperaturen, verleiht, verglichen mit der Kontrolle vom Wildtyp. Insbesondere wurde beobachtet, dass man durch Erhöhen bzw. Erzeugen der Aktivität eines Genprodukts, kodiert durch ein Gen, das die Nukleinsäuresequenz SEQ ID NO.: 7591 umfasst, welches wie in Tabelle I, Spalte 6, lokalisiert ist, z. B. im Zytoplasma von A. thaliana, zum Beispiel mit der Aktivität einer „Glutathion-S-transferase”, einen erhöhten Ertrag, zum Beispiel erhöhte Toleranz gegenüber niedrigen Temperaturen, verleiht. Insbesondere wurde beobachtet, dass man durch Erhöhen bzw. Erzeugen der Aktivität eines Genprodukts, kodiert durch ein Gen, das die Nukleinsäuresequenz SEQ ID NO.: 7670 umfasst, A. thaliana zum Beispiel mit der Aktivität einer „Serinacetyltransferase” einen erhöhten Ertrag, z. B. ein erhöhtes Ertragsmerkmal, zum Beispiel eine gesteigerte Toleranz gegenüber abiotischem Umweltstress, zum Beispiel eine erhöhte Toleranz gegenüber Dürre und/oder Toleranz gegenüber niedrigen Temperaturen und/oder eine erhöhte Effizienz der Nährstoffausnutzung, einen erhöhten intrinsischen Ertrag und/oder ein erhöhtes anderes erwähntes Ertragsmerkmal verleiht, verglichen mit der Kontrolle vom Wildtyp. Weiterhin wurde beobachtet, dass man durch Erhöhen bzw. Erzeugen der Aktivität eines Genprodukts mit dieser Aktivität einer „Serinacetyltransferase” und kodiert durch ein Gen, das die Nukleinsäuresequenz SEQ ID NO.: 7670 umfasst, A. thaliana eine Toleranz gegenüber abiotischem Umweltstress, z. B. eine erhöhte Toleranz gegenüber niedrigen Temperaturen, verleiht, verglichen mit der Kontrolle vom Wildtyp. Insbesondere wurde beobachtet, dass man durch Erhöhen bzw. Erzeugen der Aktivität eines Genprodukts, kodiert durch ein Gen, das die Nukleinsäuresequenz SEQ ID NO.: 7670 umfasst, welches wie in Tabelle I, Spalte 6, lokalisiert ist, z. B. in Mitochondrien von A. thaliana, zum Beispiel mit der Aktivität einer „Serinacetyltransferase”, einen erhöhten Ertrag, zum Beispiel erhöhte Toleranz gegenüber niedrigen Temperaturen, verleiht. Insbesondere wurde beobachtet, dass man durch Erhöhen bzw. Erzeugen der Aktivität eines Genprodukts, kodiert durch ein Gen, das die Nukleinsäuresequenz SEQ ID NO.: 8236 umfasst, A. thaliana zum Beispiel mit der Aktivität einer „Aminosäurepermease” einen erhöhten Ertrag, z. B. ein erhöhtes Ertragsmerkmal, zum Beispiel eine gesteigerte Toleranz gegenüber abiotischem Umweltstress, zum Beispiel eine erhöhte Toleranz gegenüber Dürre und/oder Toleranz gegenüber niedrigen Temperaturen und/oder eine erhöhte Effizienz der Nährstoffausnutzung, einen erhöhten intrinsischen Ertrag und/oder ein erhöhtes anderes erwähntes Ertragsmerkmal verleiht, verglichen mit der Kontrolle vom Wildtyp. Weiterhin wurde beobachtet, dass man durch Erhöhen bzw. Erzeugen der Aktivität eines Genprodukts mit dieser Aktivität einer „Aminosäurepermease” und kodiert durch ein Gen, das die Nukleinsäuresequenz SEQ ID NO.: 8236 umfasst, A. thaliana eine Toleranz gegenüber abiotischem Umweltstress, z. B. eine erhöhte Toleranz gegenüber niedrigen Temperaturen, verleiht, verglichen mit der Kontrolle vom Wildtyp. Insbesondere wurde beobachtet, dass man durch Erhöhen bzw. Erzeugen der Aktivität eines Genprodukts, kodiert durch ein Gen, das die Nukleinsäuresequenz SEQ ID NO.: 8236 umfasst, welches wie in Tabelle I, Spalte 6, lokalisiert ist, z. B. in Plastiden von A. thaliana, zum Beispiel mit der Aktivität einer „Aminosäurepermease”, einen erhöhten Ertrag, zum Beispiel erhöhte Toleranz gegenüber niedrigen Temperaturen, verleiht. Insbesondere wurde beobachtet, dass man durch Erhöhen bzw. Erzeugen der Aktivität eines Genprodukts, kodiert durch ein Gen, das die Nukleinsäuresequenz SEQ ID NO.: 8563 umfasst, A. thaliana zum Beispiel mit der Aktivität einer „Untereinheit des Signalosomkomplexes” einen erhöhten Ertrag, z. B. ein erhöhtes Ertragsmerkmal, zum Beispiel eine gesteigerte Toleranz gegenüber abiotischem Umweltstress, zum Beispiel eine erhöhte Toleranz gegenüber Dürre und/oder Toleranz gegenüber niedrigen Temperaturen und/oder eine erhöhte Effizienz der Nährstoffausnutzung, einen erhöhten intrinsischen Ertrag und/oder ein erhöhtes anderes erwähntes Ertragsmerkmal verleiht, verglichen mit der Kontrolle vom Wildtyp. Weiterhin wurde beobachtet, dass man durch Erhöhen bzw. Erzeugen der Aktivität eines Genprodukts mit dieser Aktivität einer „Untereinheit des Signalosomkomplexes” und kodiert durch ein Gen, das die Nukleinsäuresequenz SEQ ID NO.: 8563 umfasst, A. thaliana eine Toleranz gegenüber abiotischem Umweltstress, z. B. eine erhöhte Toleranz gegenüber niedrigen Temperaturen, verleiht, verglichen mit der Kontrolle vom Wildtyp. Insbesondere wurde beobachtet, dass man durch Erhöhen bzw. Erzeugen der Aktivität eines Genprodukts, kodiert durch ein Gen, das die Nukleinsäuresequenz SEQ ID NO.: 8563 umfasst, welches wie in Tabelle I, Spalte 6, lokalisiert ist, z. B. im Zytoplasma von A. thaliana, zum Beispiel mit der Aktivität einer „Untereinheit des Signalosomkomplexes”, einen erhöhten Ertrag, zum Beispiel erhöhte Toleranz gegenüber niedrigen Temperaturen, verleiht. Insbesondere wurde beobachtet, dass man durch Erhöhen bzw. Erzeugen der Aktivität eines Genprodukts, kodiert durch ein Gen, das die Nukleinsäuresequenz SEQ ID NO.: 8648 umfasst, A. thaliana zum Beispiel mit der Aktivität eines „Multidrug-Resistenzproteins” einen erhöhten Ertrag, z. B. ein erhöhtes Ertragsmerkmal, zum Beispiel eine gesteigerte Toleranz gegenüber abiotischem Umweltstress, zum Beispiel eine erhöhte Toleranz gegenüber Dürre und/oder Toleranz gegenüber niedrigen Temperaturen und/oder eine erhöhte Effizienz der Nährstoffausnutzung, einen erhöhten intrinsischen Ertrag und/oder ein erhöhtes anderes erwähntes Ertragsmerkmal verleiht, verglichen mit der Kontrolle vom Wildtyp. Weiterhin wurde beobachtet, dass man durch Erhöhen bzw. Erzeugen der Aktivität eines Genprodukts mit dieser Aktivität eines „Multidrug-Resistenzproteins” und kodiert durch ein Gen, das die Nukleinsäuresequenz SEQ ID NO.: 8648 umfasst, A. thaliana eine Toleranz gegenüber abiotischem Umweltstress, z. B. eine erhöhte Toleranz gegenüber niedrigen Temperaturen, verleiht, verglichen mit der Kontrolle vom Wildtyp. Insbesondere wurde beobachtet, dass man durch Erhöhen bzw. Erzeugen der Aktivität eines Genprodukts, kodiert durch ein Gen, das die Nukleinsäuresequenz SEQ ID NO.: 8648 umfasst, welches wie in Tabelle I, Spalte 6, lokalisiert ist, z. B. in Plastiden von A. thaliana, zum Beispiel mit der Aktivität eines „Multidrug-Resistenzproteins”, einen erhöhten Ertrag, zum Beispiel erhöhte Toleranz gegenüber niedrigen Temperaturen, verleiht. Insbesondere wurde beobachtet, dass man durch Erhöhen bzw. Erzeugen der Aktivität eines Genprodukts, kodiert durch ein Gen, das die Nukleinsäuresequenz SEQ ID NO.: 8760 umfasst, A. thaliana zum Beispiel mit der Aktivität eines „ATP-bindenden Proteins des Arabinosetransportsystems” einen erhöhten Ertrag, z. B. ein erhöhtes Ertragsmerkmal, zum Beispiel eine gesteigerte Toleranz gegenüber abiotischem Umweltstress, zum Beispiel eine erhöhte Toleranz gegenüber Dürre und/oder Toleranz gegenüber niedrigen Temperaturen und/oder eine erhöhte Effizienz der Nährstoffausnutzung, einen erhöhten intrinsischen Ertrag und/oder ein erhöhtes anderes erwähntes Ertragsmerkmal verleiht, verglichen mit der Kontrolle vom Wildtyp. Weiterhin wurde beobachtet, dass man durch Erhöhen bzw. Erzeugen der Aktivität eines Genprodukts mit dieser Aktivität eines „ATP-bindenden Proteins des Arabinosetransportsystems” und kodiert durch ein Gen, das die Nukleinsäuresequenz SEQ ID NO.: 8760 umfasst, A. thaliana eine Toleranz gegenüber abiotischem Umweltstress, z. B. eine erhöhte Toleranz gegenüber niedrigen Temperaturen, verleiht, verglichen mit der Kontrolle vom Wildtyp. Insbesondere wurde beobachtet, dass man durch Erhöhen bzw. Erzeugen der Aktivität eines Genprodukts, kodiert durch ein Gen, das die Nukleinsäuresequenz SEQ ID NO.: 8760 umfasst, welches wie in Tabelle I, Spalte 6, lokalisiert ist, z. B. in Plastiden von A. thaliana, zum Beispiel mit der Aktivität eines „ATP-bindenden Proteins des Arabinosetransportsystems”, einen erhöhten Ertrag, zum Beispiel erhöhte Toleranz gegenüber niedrigen Temperaturen, verleiht. Insbesondere wurde beobachtet, dass man durch Erhöhen bzw. Erzeugen der Aktivität eines Genprodukts, kodiert durch ein Gen, das die Nukleinsäuresequenz SEQ ID NO.: 8861 umfasst, A. thaliana zum Beispiel mit der Aktivität einer „Precorrin-6y-Methylase” einen erhöhten Ertrag, z. B. ein erhöhtes Ertragsmerkmal, zum Beispiel eine gesteigerte Toleranz gegenüber abiotischem Umweltstress, zum Beispiel eine erhöhte Toleranz gegenüber Dürre und/oder Toleranz gegenüber niedrigen Temperaturen und/oder eine erhöhte Effizienz der Nährstoffausnutzung, einen erhöhten intrinsischen Ertrag und/oder ein erhöhtes anderes erwähntes Ertragsmerkmal verleiht, verglichen mit der Kontrolle vom Wildtyp. Weiterhin wurde beobachtet, dass man durch Erhöhen bzw. Erzeugen der Aktivität eines Genprodukts mit dieser Aktivität einer „Precorrin-6y-Methylase” und kodiert durch ein Gen, das die Nukleinsäuresequenz SEQ ID NO.: 8861 umfasst, A. thaliana eine Toleranz gegenüber abiotischem Umweltstress, z. B. eine erhöhte Toleranz gegenüber niedrigen Temperaturen, verleiht, verglichen mit der Kontrolle vom Wildtyp. Insbesondere wurde beobachtet, dass man durch Erhöhen bzw. Erzeugen der Aktivität eines Genprodukts, kodiert durch ein Gen, das die Nukleinsäuresequenz SEQ ID NO.: 8861 umfasst, welches wie in Tabelle I, Spalte 6, lokalisiert ist, z. B. im Zytoplasma von A. thaliana, zum Beispiel mit der Aktivität einer „Precorrin-6y-Methylase”, einen erhöhten Ertrag, zum Beispiel erhöhte Toleranz gegenüber niedrigen Temperaturen, verleiht. Insbesondere wurde beobachtet, dass man durch Erhöhen bzw. Erzeugen der Aktivität eines Genprodukts, kodiert durch ein Gen, das die Nukleinsäuresequenz SEQ ID NO.: 9046 umfasst, A. thaliana zum Beispiel mit der Aktivität eines „Cobalttransportproteins” einen erhöhten Ertrag, z. B. ein erhöhtes Ertragsmerkmal, zum Beispiel eine gesteigerte Toleranz gegenüber abiotischem Umweltstress, zum Beispiel eine erhöhte Toleranz gegenüber Dürre und/oder Toleranz gegenüber niedrigen Temperaturen und/oder eine erhöhte Effizienz der Nährstoffausnutzung, einen erhöhten intrinsischen Ertrag und/oder ein erhöhtes anderes erwähntes Ertragsmerkmal verleiht, verglichen mit der Kontrolle vom Wildtyp. Weiterhin wurde beobachtet, dass man durch Erhöhen bzw. Erzeugen der Aktivität eines Genprodukts mit dieser Aktivität eines „Cobalttransportproteins” und kodiert durch ein Gen, das die Nukleinsäuresequenz SEQ ID NO.: 9046 umfasst, A. thaliana eine Toleranz gegenüber abiotischem Umweltstress, z. B. eine erhöhte Toleranz gegenüber niedrigen Temperaturen, verleiht, verglichen mit der Kontrolle vom Wildtyp. Insbesondere wurde beobachtet, dass man durch Erhöhen bzw. Erzeugen der Aktivität eines Genprodukts, kodiert durch ein Gen, das die Nukleinsäuresequenz SEQ ID NO.: 9046 umfasst, welches wie in Tabelle I, Spalte 6, lokalisiert ist, z. B. im Zytoplasma von A. thaliana, zum Beispiel mit der Aktivität eines „Cobalttransportproteins”, einen erhöhten Ertrag, zum Beispiel erhöhte Toleranz gegenüber niedrigen Temperaturen, verleiht. Insbesondere wurde beobachtet, dass man durch Erhöhen bzw. Erzeugen der Aktivität eines Genprodukts, kodiert durch ein Gen, das die Nukleinsäuresequenz SEQ ID NO.: 9280 umfasst, A. thaliana zum Beispiel mit der Aktivität eines „SLR1094-Proteins” einen erhöhten Ertrag, z. B. ein erhöhtes Ertragsmerkmal, zum Beispiel eine gesteigerte Toleranz gegenüber abiotischem Umweltstress, zum Beispiel eine erhöhte Toleranz gegenüber Dürre und/oder Toleranz gegenüber niedrigen Temperaturen und/oder eine erhöhte Effizienz der Nährstoffausnutzung, einen erhöhten intrinsischen Ertrag und/oder ein erhöhtes anderes erwähntes Ertragsmerkmal verleiht, verglichen mit der Kontrolle vom Wildtyp. Weiterhin wurde beobachtet, dass man durch Erhöhen bzw. Erzeugen der Aktivität eines Genprodukts mit dieser Aktivität eines „SLR1094-Proteins” und kodiert durch ein Gen, das die Nukleinsäuresequenz SEQ ID NO.: 9280 umfasst, A. thaliana eine Toleranz gegenüber abiotischem Umweltstress, z. B. eine erhöhte Toleranz gegenüber niedrigen Temperaturen, verleiht, verglichen mit der Kontrolle vom Wildtyp. Insbesondere wurde beobachtet, dass man durch Erhöhen bzw. Erzeugen der Aktivität eines Genprodukts, kodiert durch ein Gen, das die Nukleinsäuresequenz SEQ ID NO.: 9280 umfasst, welches wie in Tabelle I, Spalte 6, lokalisiert ist, z. B. im Zytoplasma von A. thaliana, zum Beispiel mit der Aktivität eines „SLR1094-Proteins”, einen erhöhten Ertrag, zum Beispiel erhöhte Toleranz gegenüber niedrigen Temperaturen, verleiht. Insbesondere wurde beobachtet, dass man durch Erhöhen bzw. Erzeugen der Aktivität eines Genprodukts, kodiert durch ein Gen, das die Nukleinsäuresequenz SEQ ID NO.: 9307 umfasst, A. thaliana zum Beispiel mit der Aktivität einer „Oxidoreduktase” einen erhöhten Ertrag, z. B. ein erhöhtes Ertragsmerkmal, zum Beispiel eine gesteigerte Toleranz gegenüber abiotischem Umweltstress, zum Beispiel eine erhöhte Toleranz gegenüber Dürre und/oder Toleranz gegenüber niedrigen Temperaturen und/oder eine erhöhte Effizienz der Nährstoffausnutzung, einen erhöhten intrinsischen Ertrag und/oder ein erhöhtes anderes erwähntes Ertragsmerkmal verleiht, verglichen mit der Kontrolle vom Wildtyp. Weiterhin wurde beobachtet, dass man durch Erhöhen bzw. Erzeugen der Aktivität eines Genprodukts mit dieser Aktivität einer „Oxidoreduktase” und kodiert durch ein Gen, das die Nukleinsäuresequenz SEQ ID NO.: 9307 umfasst, A. thaliana eine Toleranz gegenüber abiotischem Umweltstress, z. B. eine erhöhte Toleranz gegenüber niedrigen Temperaturen, verleiht, verglichen mit der Kontrolle vom Wildtyp. Insbesondere wurde beobachtet, dass man durch Erhöhen bzw. Erzeugen der Aktivität eines Genprodukts, kodiert durch ein Gen, das die Nukleinsäuresequenz SEQ ID NO.: 9307 umfasst, welches wie in Tabelle I, Spalte 6, lokalisiert ist, z. B. im Zytoplasma von A. thaliana, zum Beispiel mit der Aktivität einer „Oxidoreduktase”, einen erhöhten Ertrag, zum Beispiel erhöhte Toleranz gegenüber niedrigen Temperaturen, verleiht. Insbesondere wurde beobachtet, dass man durch Erhöhen bzw. Erzeugen der Aktivität eines Genprodukts, kodiert durch ein Gen, das die Nukleinsäuresequenz SEQ ID NO.: 9430 umfasst, A. thaliana zum Beispiel mit der Aktivität einer „Cardiolipinsynthetase” einen erhöhten Ertrag, z. B. ein erhöhtes Ertragsmerkmal, zum Beispiel eine gesteigerte Toleranz gegenüber abiotischem Umweltstress, zum Beispiel eine erhöhte Toleranz gegenüber Dürre und/oder Toleranz gegenüber niedrigen Temperaturen und/oder eine erhöhte Effizienz der Nährstoffausnutzung, einen erhöhten intrinsischen Ertrag und/oder ein erhöhtes anderes erwähntes Ertragsmerkmal verleiht, verglichen mit der Kontrolle vom Wildtyp. Weiterhin wurde beobachtet, dass man durch Erhöhen bzw. Erzeugen der Aktivität eines Genprodukts mit dieser Aktivität einer „Cardiolipinsynthetase” und kodiert durch ein Gen, das die Nukleinsäuresequenz SEQ ID NO.: 9430 umfasst, A. thaliana eine Toleranz gegenüber abiotischem Umweltstress, z. B. eine erhöhte Toleranz gegenüber niedrigen Temperaturen, verleiht, verglichen mit der Kontrolle vom Wildtyp. Insbesondere wurde beobachtet, dass man durch Erhöhen bzw. Erzeugen der Aktivität eines Genprodukts, kodiert durch ein Gen, das die Nukleinsäuresequenz SEQ ID NO.: 9430 umfasst, welches wie in Tabelle I, Spalte 6, lokalisiert ist, z. B. im Zytoplasma von A. thaliana, zum Beispiel mit der Aktivität einer „Cardiolipinsynthetase”, einen erhöhten Ertrag, zum Beispiel erhöhte Toleranz gegenüber niedrigen Temperaturen, verleiht. Insbesondere wurde beobachtet, dass man durch Erhöhen bzw. Erzeugen der Aktivität eines Genprodukts, kodiert durch ein Gen, das die Nukleinsäuresequenz SEQ ID NO.: 9479 umfasst, A. thaliana zum Beispiel mit der Aktivität einer „Ethanolaminkinase” einen erhöhten Ertrag, z. B. ein erhöhtes Ertragsmerkmal, zum Beispiel eine gesteigerte Toleranz gegenüber abiotischem Umweltstress, zum Beispiel eine erhöhte Toleranz gegenüber Dürre und/oder Toleranz gegenüber niedrigen Temperaturen und/oder eine erhöhte Effizienz der Nährstoffausnutzung, einen erhöhten intrinsischen Ertrag und/oder ein erhöhtes anderes erwähntes Ertragsmerkmal verleiht, verglichen mit der Kontrolle vom Wildtyp. Weiterhin wurde beobachtet, dass man durch Erhöhen bzw. Erzeugen der Aktivität eines Genprodukts mit dieser Aktivität einer „Ethanolaminkinase” und kodiert durch ein Gen, das die Nukleinsäuresequenz SEQ ID NO.: 9479 umfasst, A. thaliana eine Toleranz gegenüber abiotischem Umweltstress, z. B. eine erhöhte Toleranz gegenüber niedrigen Temperaturen, verleiht, verglichen mit der Kontrolle vom Wildtyp. Insbesondere wurde beobachtet, dass man durch Erhöhen bzw. Erzeugen der Aktivität eines Genprodukts, kodiert durch ein Gen, das die Nukleinsäuresequenz SEQ ID NO.: 9479 umfasst, welches wie in Tabelle I, Spalte 6, lokalisiert ist, z. B. im Zytoplasma von A. thaliana, zum Beispiel mit der Aktivität einer „Ethanolaminkinase”, einen erhöhten Ertrag, zum Beispiel erhöhte Toleranz gegenüber niedrigen Temperaturen, verleiht. Insbesondere wurde beobachtet, dass man durch Erhöhen bzw. Erzeugen der Aktivität eines Genprodukts, kodiert durch ein Gen, das die Nukleinsäuresequenz SEQ ID NO.: 9500 umfasst, A. thaliana zum Beispiel mit der Aktivität einer „Enoyl-CoA-Isomerase” einen erhöhten Ertrag, z. B. ein erhöhtes Ertragsmerkmal, zum Beispiel eine gesteigerte Toleranz gegenüber abiotischem Umweltstress, zum Beispiel eine erhöhte Toleranz gegenüber Dürre und/oder Toleranz gegenüber niedrigen Temperaturen und/oder eine erhöhte Effizienz der Nährstoffausnutzung, einen erhöhten intrinsischen Ertrag und/oder ein erhöhtes anderes erwähntes Ertragsmerkmal verleiht, verglichen mit der Kontrolle vom Wildtyp. Weiterhin wurde beobachtet, dass man durch Erhöhen bzw. Erzeugen der Aktivität eines Genprodukts mit dieser Aktivität einer „Enoyl-CoA-Isomerase” und kodiert durch ein Gen, das die Nukleinsäuresequenz SEQ ID NO.: 9500 umfasst, A. thaliana eine Toleranz gegenüber abiotischem Umweltstress, z. B. eine erhöhte Toleranz gegenüber niedrigen Temperaturen, verleiht, verglichen mit der Kontrolle vom Wildtyp. Insbesondere wurde beobachtet, dass man durch Erhöhen bzw. Erzeugen der Aktivität eines Genprodukts, kodiert durch ein Gen, das die Nukleinsäuresequenz SEQ ID NO.: 9500 umfasst, welches wie in Tabelle I, Spalte 6, lokalisiert ist, z. B. in Plastiden von A. thaliana, zum Beispiel mit der Aktivität einer „Enoyl-CoA-Isomerase”, einen erhöhten Ertrag, zum Beispiel erhöhte Toleranz gegenüber niedrigen Temperaturen, verleiht. Insbesondere wurde beobachtet, dass man durch Erhöhen bzw. Erzeugen der Aktivität eines Genprodukts, kodiert durch ein Gen, das die Nukleinsäuresequenz SEQ ID NO.: 9553 umfasst, A. thaliana zum Beispiel mit der Aktivität einer „Holo-[Acylträgerprotein]-Synthase” einen erhöhten Ertrag, z. B. ein erhöhtes Ertragsmerkmal, zum Beispiel eine gesteigerte Toleranz gegenüber abiotischem Umweltstress, zum Beispiel eine erhöhte Toleranz gegenüber Dürre und/oder Toleranz gegenüber niedrigen Temperaturen und/oder eine erhöhte Effizienz der Nährstoffausnutzung, einen erhöhten intrinsischen Ertrag und/oder ein erhöhtes anderes erwähntes Ertragsmerkmal verleiht, verglichen mit der Kontrolle vom Wildtyp. Weiterhin wurde beobachtet, dass man durch Erhöhen bzw. Erzeugen der Aktivität eines Genprodukts mit dieser Aktivität einer „Holo-[Acylträgerprotein]-Synthase” und kodiert durch ein Gen, das die Nukleinsäuresequenz SEQ ID NO.: 9553 umfasst, A. thaliana eine Toleranz gegenüber abiotischem Umweltstress, z. B. eine erhöhte Toleranz gegenüber niedrigen Temperaturen, verleiht, verglichen mit der Kontrolle vom Wildtyp. Insbesondere wurde beobachtet, dass man durch Erhöhen bzw. Erzeugen der Aktivität eines Genprodukts, kodiert durch ein Gen, das die Nukleinsäuresequenz SEQ ID NO.: 9553 umfasst, welches wie in Tabelle I, Spalte 6, lokalisiert ist, z. B. in Plastiden von A. thaliana, zum Beispiel mit der Aktivität einer „Holo-[Acylträgerprotein]-Synthase”, einen erhöhten Ertrag, zum Beispiel erhöhte Toleranz gegenüber niedrigen Temperaturen, verleiht. Insbesondere wurde beobachtet, dass man durch Erhöhen bzw. Erzeugen der Aktivität eines Genprodukts, kodiert durch ein Gen, das die Nukleinsäuresequenz SEQ ID NO.: 9574 umfasst, A. thaliana zum Beispiel mit der Aktivität einer „Transketolase” einen erhöhten Ertrag, z. B. ein erhöhtes Ertragsmerkmal, zum Beispiel eine gesteigerte Toleranz gegenüber abiotischem Umweltstress, zum Beispiel eine erhöhte Toleranz gegenüber Dürre und/oder Toleranz gegenüber niedrigen Temperaturen und/oder eine erhöhte Effizienz der Nährstoffausnutzung, einen erhöhten intrinsischen Ertrag und/oder ein erhöhtes anderes erwähntes Ertragsmerkmal verleiht, verglichen mit der Kontrolle vom Wildtyp. Weiterhin wurde beobachtet, dass man durch Erhöhen bzw. Erzeugen der Aktivität eines Genprodukts mit dieser Aktivität einer „Transketolase” und kodiert durch ein Gen, das die Nukleinsäuresequenz SEQ ID NO.: 9574 umfasst, A. thaliana eine Toleranz gegenüber abiotischem Umweltstress, z. B. eine erhöhte Toleranz gegenüber niedrigen Temperaturen, verleiht, verglichen mit der Kontrolle vom Wildtyp. Insbesondere wurde beobachtet, dass man durch Erhöhen bzw. Erzeugen der Aktivität eines Genprodukts, kodiert durch ein Gen, das die Nukleinsäuresequenz SEQ ID NO.: 9574 umfasst, welches wie in Tabelle I, Spalte 6, lokalisiert ist, z. B. in Plastiden von A. thaliana, zum Beispiel mit der Aktivität einer „Transketolase”, einen erhöhten Ertrag, zum Beispiel erhöhte Toleranz gegenüber niedrigen Temperaturen, verleiht. Insbesondere wurde beobachtet, dass man durch Erhöhen bzw. Erzeugen der Aktivität eines Genprodukts, kodiert durch ein Gen, das die Nukleinsäuresequenz SEQ ID NO.: 10404 umfasst, A. thaliana zum Beispiel mit der Aktivität einer „NADH-Dehydrogenase/NAD(P)H-Nitroreduktase” einen erhöhten Ertrag, z. B. ein erhöhtes Ertragsmerkmal, zum Beispiel eine gesteigerte Toleranz gegenüber abiotischem Umweltstress, zum Beispiel eine erhöhte Toleranz gegenüber Dürre und/oder Toleranz gegenüber niedrigen Temperaturen und/oder eine erhöhte Effizienz der Nährstoffausnutzung, einen erhöhten intrinsischen Ertrag und/oder ein erhöhtes anderes erwähntes Ertragsmerkmal verleiht, verglichen mit der Kontrolle vom Wildtyp. Weiterhin wurde beobachtet, dass man durch Erhöhen bzw. Erzeugen der Aktivität eines Genprodukts mit dieser Aktivität einer „NADH-Dehydrogenase/NAD(P)H-Nitroreduktase” und kodiert durch ein Gen, das die Nukleinsäuresequenz SEQ ID NO.: 10404 umfasst, A. thaliana eine Toleranz gegenüber abiotischem Umweltstress, z. B. eine erhöhte Toleranz gegenüber niedrigen Temperaturen, verleiht, verglichen mit der Kontrolle vom Wildtyp. Insbesondere wurde beobachtet, dass man durch Erhöhen bzw. Erzeugen der Aktivität eines Genprodukts, kodiert durch ein Gen, das die Nukleinsäuresequenz SEQ ID NO.: 10404 umfasst, welches wie in Tabelle I, Spalte 6, lokalisiert ist, z. B. in Plastiden von A. thaliana, zum Beispiel mit der Aktivität einer „NADH-Dehydrogenase/NAD(P)H-Nitroreduktase”, einen erhöhten Ertrag, zum Beispiel erhöhte Toleranz gegenüber niedrigen Temperaturen, verleiht. Insbesondere wurde beobachtet, dass man durch Erhöhen bzw. Erzeugen der Aktivität eines Genprodukts, kodiert durch ein Gen, das die Nukleinsäuresequenz SEQ ID NO.: 10503 umfasst, A. thaliana zum Beispiel mit der Aktivität eines „Multiple-Drug-Resistenzproteins” einen erhöhten Ertrag, z. B. ein erhöhtes Ertragsmerkmal, zum Beispiel eine gesteigerte Toleranz gegenüber abiotischem Umweltstress, zum Beispiel eine erhöhte Toleranz gegenüber Dürre und/oder Toleranz gegenüber niedrigen Temperaturen und/oder eine erhöhte Effizienz der Nährstoffausnutzung, einen erhöhten intrinsischen Ertrag und/oder ein erhöhtes anderes erwähntes Ertragsmerkmal verleiht, verglichen mit der Kontrolle vom Wildtyp. Weiterhin wurde beobachtet, dass man durch Erhöhen bzw. Erzeugen der Aktivität eines Genprodukts mit dieser Aktivität eines „Multiple-Drug-Resistenzproteins” und kodiert durch ein Gen, das die Nukleinsäuresequenz SEQ ID NO.: 10503 umfasst, A. thaliana eine Toleranz gegenüber abiotischem Umweltstress, z. B. eine erhöhte Toleranz gegenüber niedrigen Temperaturen, verleiht, verglichen mit der Kontrolle vom Wildtyp. Insbesondere wurde beobachtet, dass man durch Erhöhen bzw. Erzeugen der Aktivität eines Genprodukts, kodiert durch ein Gen, das die Nukleinsäuresequenz SEQ ID NO.: 10503 umfasst, welches wie in Tabelle I, Spalte 6, lokalisiert ist, z. B. in Plastiden von A. thaliana, zum Beispiel mit der Aktivität eines „Multiple-Drug-Resistenzproteins”, einen erhöhten Ertrag, zum Beispiel erhöhte Toleranz gegenüber niedrigen Temperaturen, verleiht. Insbesondere wurde beobachtet, dass man durch Erhöhen bzw. Erzeugen der Aktivität eines Genprodukts, kodiert durch ein Gen, das die Nukleinsäuresequenz SEQ ID NO.: 10591 umfasst, A. thaliana zum Beispiel mit der Aktivität einer „Peptidyl-Prolyl-cis/trans-Isomerase” einen erhöhten Ertrag, z. B. ein erhöhtes Ertragsmerkmal, zum Beispiel eine gesteigerte Toleranz gegenüber abiotischem Umweltstress, zum Beispiel eine erhöhte Toleranz gegenüber Dürre und/oder Toleranz gegenüber niedrigen Temperaturen und/oder eine erhöhte Effizienz der Nährstoffausnutzung, einen erhöhten intrinsischen Ertrag und/oder ein erhöhtes anderes erwähntes Ertragsmerkmal verleiht, verglichen mit der Kontrolle vom Wildtyp. Weiterhin wurde beobachtet, dass man durch Erhöhen bzw. Erzeugen dieser Aktivität eines Genprodukts mit der Aktivität einer „Peptidyl-Prolyl-cis/trans-Isomerase” und kodiert durch ein Gen, das die Nukleinsäuresequenz SEQ ID NO.: 10591 umfasst, A. thaliana eine Toleranz gegenüber abiotischem Umweltstress, z. B. eine erhöhte Toleranz gegenüber niedrigen Temperaturen, verleiht, verglichen mit der Kontrolle vom Wildtyp. Insbesondere wurde beobachtet, dass man durch Erhöhen bzw. Erzeugen der Aktivität eines Genprodukts, kodiert durch ein Gen, das die Nukleinsäuresequenz SEQ ID NO.: 10591 umfasst, welches wie in Tabelle I, Spalte 6, lokalisiert ist, z. B. in Plastiden von A. thaliana, zum Beispiel mit der Aktivität einer „Peptidyl-Prolyl-cis/trans-Isomerase”, einen erhöhten Ertrag, zum Beispiel erhöhte Toleranz gegenüber niedrigen Temperaturen, verleiht. Insbesondere wurde beobachtet, dass man durch Erhöhen bzw. Erzeugen der Aktivität eines Genprodukts, kodiert durch ein Gen, das die Nukleinsäuresequenz SEQ ID NO.: 10934 umfasst, A. thaliana zum Beispiel mit der Aktivität einer „3-Methyl-2-oxobutanoat-Hydroxymethyltransferase” einen erhöhten Ertrag, z. B. ein erhöhtes Ertragsmerkmal, zum Beispiel eine gesteigerte Toleranz gegenüber abiotischem Umweltstress, zum Beispiel eine erhöhte Toleranz gegenüber Dürre und/oder Toleranz gegenüber niedrigen Temperaturen und/oder eine erhöhte Effizienz der Nährstoffausnutzung, einen erhöhten intrinsischen Ertrag und/oder ein erhöhtes anderes erwähntes Ertragsmerkmal verleiht, verglichen mit der Kontrolle vom Wildtyp. Weiterhin wurde beobachtet, dass man durch Erhöhen bzw. Erzeugen der Aktivität eines Genprodukts mit dieser Aktivität einer „3-Methyl-2-oxobutanoat-Hydroxymethyltransferase” und kodiert durch ein Gen, das die Nukleinsäuresequenz SEQ ID NO.: 10934 umfasst, A. thaliana eine Toleranz gegenüber abiotischem Umweltstress, z. B. eine erhöhte Toleranz gegenüber niedrigen Temperaturen, verleiht, verglichen mit der Kontrolle vom Wildtyp. Insbesondere wurde beobachtet, dass man durch Erhöhen bzw. Erzeugen der Aktivität eines Genprodukts, kodiert durch ein Gen, das die Nukleinsäuresequenz SEQ ID NO.: 10934 umfasst, welches wie in Tabelle I, Spalte 6, lokalisiert ist, z. B. im Zytoplasma von A. thaliana, zum Beispiel mit der Aktivität einer „3-Methyl-2-oxobutanoat-Hydroxymethyltransferase”, einen erhöhten Ertrag, zum Beispiel erhöhte Toleranz gegenüber niedrigen Temperaturen, verleiht. Insbesondere wurde beobachtet, dass man durch Erhöhen bzw. Erzeugen der Aktivität eines Genprodukts, kodiert durch ein Gen, das die Nukleinsäuresequenz SEQ ID NO.: 11461 umfasst, A. thaliana zum Beispiel mit der Aktivität einer „Alkoholacetyltransferase” einen erhöhten Ertrag, z. B. ein erhöhtes Ertragsmerkmal, zum Beispiel eine gesteigerte Toleranz gegenüber abiotischem Umweltstress, zum Beispiel eine erhöhte Toleranz gegenüber Dürre und/oder Toleranz gegenüber niedrigen Temperaturen und/oder eine erhöhte Effizienz der Nährstoffausnutzung, einen erhöhten intrinsischen Ertrag und/oder ein erhöhtes anderes erwähntes Ertragsmerkmal verleiht, verglichen mit der Kontrolle vom Wildtyp. Weiterhin wurde beobachtet, dass man durch Erhöhen bzw. Erzeugen der Aktivität eines Genprodukts mit dieser Aktivität einer „Alkoholacetyltransferase” und kodiert durch ein Gen, das die Nukleinsäuresequenz SEQ ID NO.: 11461 umfasst, A. thaliana eine Toleranz gegenüber abiotischem Umweltstress, z. B. eine erhöhte Toleranz gegenüber niedrigen Temperaturen, verleiht, verglichen mit der Kontrolle vom Wildtyp. Insbesondere wurde beobachtet, dass man durch Erhöhen bzw. Erzeugen der Aktivität eines Genprodukts, kodiert durch ein Gen, das die Nukleinsäuresequenz SEQ ID NO.: 11461 umfasst, welches wie in Tabelle I, Spalte 6, lokalisiert ist, z. B. im Zytoplasma von A. thaliana, zum Beispiel mit der Aktivität einer „Alkoholacetyltransferase”, einen erhöhten Ertrag, zum Beispiel erhöhte Toleranz gegenüber niedrigen Temperaturen, verleiht. Insbesondere wurde beobachtet, dass man durch Erhöhen bzw. Erzeugen der Aktivität eines Genprodukts, kodiert durch ein Gen, das die Nukleinsäuresequenz SEQ ID NO.: 11501 umfasst, A. thaliana zum Beispiel mit der Aktivität einer „thiolspezifischen Monooxygenase” einen erhöhten Ertrag, z. B. ein erhöhtes Ertragsmerkmal, zum Beispiel eine gesteigerte Toleranz gegenüber abiotischem Umweltstress, zum Beispiel eine erhöhte Toleranz gegenüber Dürre und/oder Toleranz gegenüber niedrigen Temperaturen und/oder eine erhöhte Effizienz der Nährstoffausnutzung, einen erhöhten intrinsischen Ertrag und/oder ein erhöhtes anderes erwähntes Ertragsmerkmal verleiht, verglichen mit der Kontrolle vom Wildtyp. Weiterhin wurde beobachtet, dass man durch Erhöhen bzw. Erzeugen der Aktivität eines Genprodukts mit dieser Aktivität einer „thiolspezifischen Monooxygenase” und kodiert durch ein Gen, das die Nukleinsäuresequenz SEQ ID NO.: 11501 umfasst, A. thaliana eine Toleranz gegenüber abiotischem Umweltstress, z. B. eine erhöhte Toleranz gegenüber niedrigen Temperaturen, verleiht, verglichen mit der Kontrolle vom Wildtyp. Insbesondere wurde beobachtet, dass man durch Erhöhen bzw. Erzeugen der Aktivität eines Genprodukts, kodiert durch ein Gen, das die Nukleinsäuresequenz SEQ ID NO.: 11501 umfasst, welches wie in Tabelle I, Spalte 6, lokalisiert ist, z. B. im Zytoplasma von A. thaliana, zum Beispiel mit der Aktivität einer „thiolspezifischen Monooxygenase”, einen erhöhten Ertrag, zum Beispiel erhöhte Toleranz gegenüber niedrigen Temperaturen, verleiht. Insbesondere wurde beobachtet, dass man durch Erhöhen bzw. Erzeugen der Aktivität eines Genprodukts, kodiert durch ein Gen, das die Nukleinsäuresequenz SEQ ID NO.: 11564 umfasst, A. thaliana zum Beispiel mit der Aktivität einer „molybdänbindenden Untereinheit von Aldehydoxidasen und Xanthindehydrogenasen” einen erhöhten Ertrag, z. B. ein erhöhtes Ertragsmerkmal, zum Beispiel eine gesteigerte Toleranz gegenüber abiotischem Umweltstress, zum Beispiel eine erhöhte Toleranz gegenüber Dürre und/oder Toleranz gegenüber niedrigen Temperaturen und/oder eine erhöhte Effizienz der Nährstoffausnutzung, einen erhöhten intrinsischen Ertrag und/oder ein erhöhtes anderes erwähntes Ertragsmerkmal verleiht, verglichen mit der Kontrolle vom Wildtyp. Weiterhin wurde beobachtet, dass man durch Erhöhen bzw. Erzeugen der Aktivität eines Genprodukts mit dieser Aktivität einer „molybdänbindenden Untereinheit von Aldehydoxidasen und Xanthindehydrogenasen” und kodiert durch ein Gen, das die Nukleinsäuresequenz SEQ ID NO.: 11564 umfasst, A. thaliana eine Toleranz gegenüber abiotischem Umweltstress, z. B. eine erhöhte Toleranz gegenüber niedrigen Temperaturen, verleiht, verglichen mit der Kontrolle vom Wildtyp. Insbesondere wurde beobachtet, dass man durch Erhöhen bzw. Erzeugen der Aktivität eines Genprodukts, kodiert durch ein Gen, das die Nukleinsäuresequenz SEQ ID NO.: 11564 umfasst, welches wie in Tabelle I, Spalte 6, lokalisiert ist, z. B. im Zytoplasma von A. thaliana, zum Beispiel mit der Aktivität einer „molybdänbindenden Untereinheit von Aldehydoxidasen und Xanthindehydrogenasen”, einen erhöhten Ertrag, zum Beispiel erhöhte Toleranz gegenüber niedrigen Temperaturen, verleiht. Insbesondere wurde beobachtet, dass man durch Erhöhen bzw. Erzeugen der Aktivität eines Genprodukts, kodiert durch ein Gen, das die Nukleinsäuresequenz SEQ ID NO.: 11695 umfasst, A. thaliana zum Beispiel mit der Aktivität einer „Glycerindehydrogenase” einen erhöhten Ertrag, z. B. ein erhöhtes Ertragsmerkmal, zum Beispiel eine gesteigerte Toleranz gegenüber abiotischem Umweltstress, zum Beispiel eine erhöhte Toleranz gegenüber Dürre und/oder Toleranz gegenüber niedrigen Temperaturen und/oder eine erhöhte Effizienz der Nährstoffausnutzung, einen erhöhten intrinsischen Ertrag und/oder ein erhöhtes anderes erwähntes Ertragsmerkmal verleiht, verglichen mit der Kontrolle vom Wildtyp. Weiterhin wurde beobachtet, dass man durch Erhöhen bzw. Erzeugen der Aktivität eines Genprodukts mit dieser Aktivität einer „Glycerindehydrogenase” und kodiert durch ein Gen, das die Nukleinsäuresequenz SEQ ID NO.: 11695 umfasst, A. thaliana eine Toleranz gegenüber abiotischem Umweltstress, z. B. eine erhöhte Toleranz gegenüber niedrigen Temperaturen, verleiht, verglichen mit der Kontrolle vom Wildtyp. Insbesondere wurde beobachtet, dass man durch Erhöhen bzw. Erzeugen der Aktivität eines Genprodukts, kodiert durch ein Gen, das die Nukleinsäuresequenz SEQ ID NO.: 11695 umfasst, welches wie in Tabelle I, Spalte 6, lokalisiert ist, z. B. im Zytoplasma von A. thaliana, zum Beispiel mit der Aktivität einer „Glycerindehydrogenase”, einen erhöhten Ertrag, zum Beispiel erhöhte Toleranz gegenüber niedrigen Temperaturen, verleiht. Insbesondere wurde beobachtet, dass man durch Erhöhen bzw. Erzeugen der Aktivität eines Genprodukts, kodiert durch ein Gen, das die Nukleinsäuresequenz SEQ ID NO.: 11907 umfasst, A. thaliana zum Beispiel mit der Aktivität eines „für den Abbau von Glykoproteinen benötigten Proteins” einen erhöhten Ertrag, z. B. ein erhöhtes Ertragsmerkmal, zum Beispiel eine gesteigerte Toleranz gegenüber abiotischem Umweltstress, zum Beispiel eine erhöhte Toleranz gegenüber Dürre und/oder Toleranz gegenüber niedrigen Temperaturen und/oder eine erhöhte Effizienz der Nährstoffausnutzung, einen erhöhten intrinsischen Ertrag und/oder ein erhöhtes anderes erwähntes Ertragsmerkmal verleiht, verglichen mit der Kontrolle vom Wildtyp. Weiterhin wurde beobachtet, dass man durch Erhöhen bzw. Erzeugen der Aktivität eines Genprodukts mit dieser Aktivität eines „für den Abbau von Glykoproteinen benötigten Proteins” und kodiert durch ein Gen, das die Nukleinsäuresequenz SEQ ID NO.: 11907 umfasst, A. thaliana eine Toleranz gegenüber abiotischem Umweltstress, z. B. eine erhöhte Toleranz gegenüber niedrigen Temperaturen, verleiht, verglichen mit der Kontrolle vom Wildtyp. Insbesondere wurde beobachtet, dass man durch Erhöhen bzw. Erzeugen der Aktivität eines Genprodukts, kodiert durch ein Gen, das die Nukleinsäuresequenz SEQ ID NO.: 11907 umfasst, welches wie in Tabelle I, Spalte 6, lokalisiert ist, z. B. im Zytoplasma von A. thaliana, zum Beispiel mit der Aktivität eines „für den Abbau von Glykoproteinen benötigten Proteins”, einen erhöhten Ertrag, zum Beispiel erhöhte Toleranz gegenüber niedrigen Temperaturen, verleiht. Insbesondere wurde beobachtet, dass man durch Erhöhen bzw. Erzeugen der Aktivität eines Genprodukts, kodiert durch ein Gen, das die Nukleinsäuresequenz SEQ ID NO.: 11944 umfasst, A. thaliana zum Beispiel mit der Aktivität eines „Ammoniumtransporters” einen erhöhten Ertrag, z. B. ein erhöhtes Ertragsmerkmal, zum Beispiel eine gesteigerte Toleranz gegenüber abiotischem Umweltstress, zum Beispiel eine erhöhte Toleranz gegenüber Dürre und/oder Toleranz gegenüber niedrigen Temperaturen und/oder eine erhöhte Effizienz der Nährstoffausnutzung, einen erhöhten intrinsischen Ertrag und/oder ein erhöhtes anderes erwähntes Ertragsmerkmal verleiht, verglichen mit der Kontrolle vom Wildtyp. Weiterhin wurde beobachtet, dass man durch Erhöhen bzw. Erzeugen der Aktivität eines Genprodukts mit dieser Aktivität eines „Ammoniumtransporters” und kodiert durch ein Gen, das die Nukleinsäuresequenz SEQ ID NO.: 11944 umfasst, A. thaliana eine Toleranz gegenüber abiotischem Umweltstress, z. B. eine erhöhte Toleranz gegenüber niedrigen Temperaturen, verleiht, verglichen mit der Kontrolle vom Wildtyp. Insbesondere wurde beobachtet, dass man durch Erhöhen bzw. Erzeugen der Aktivität eines Genprodukts, kodiert durch ein Gen, das die Nukleinsäuresequenz SEQ ID NO.: 11944 umfasst, welches wie in Tabelle I, Spalte 6, lokalisiert ist, z. B. im Zytoplasma von A. thaliana, zum Beispiel mit der Aktivität eines „Ammoniumtransporters”, einen erhöhten Ertrag, zum Beispiel erhöhte Toleranz gegenüber niedrigen Temperaturen, verleiht. Insbesondere wurde beobachtet, dass man durch Erhöhen bzw. Erzeugen der Aktivität eines Genprodukts, kodiert durch ein Gen, das die Nukleinsäuresequenz SEQ ID NO.: 12357 umfasst, A. thaliana zum Beispiel mit der Aktivität einer „Argininosuccinatsynthase” einen erhöhten Ertrag, z. B. ein erhöhtes Ertragsmerkmal, zum Beispiel eine gesteigerte Toleranz gegenüber abiotischem Umweltstress, zum Beispiel eine erhöhte Toleranz gegenüber Dürre und/oder Toleranz gegenüber niedrigen Temperaturen und/oder eine erhöhte Effizienz der Nährstoffausnutzung, einen erhöhten intrinsischen Ertrag und/oder ein erhöhtes anderes erwähntes Ertragsmerkmal verleiht, verglichen mit der Kontrolle vom Wildtyp. Weiterhin wurde beobachtet, dass man durch Erhöhen bzw. Erzeugen der Aktivität eines Genprodukts mit dieser Aktivität einer „Argininosuccinatsynthase” und kodiert durch ein Gen, das die Nukleinsäuresequenz SEQ ID NO.: 12357 umfasst, A. thaliana eine Toleranz gegenüber abiotischem Umweltstress, z. B. eine erhöhte Toleranz gegenüber niedrigen Temperaturen, verleiht, verglichen mit der Kontrolle vom Wildtyp. Insbesondere wurde beobachtet, dass man durch Erhöhen bzw. Erzeugen der Aktivität eines Genprodukts, kodiert durch ein Gen, das die Nukleinsäuresequenz SEQ ID NO.: 12357 umfasst, welches wie in Tabelle I, Spalte 6, lokalisiert ist, z. B. in Plastiden oder im Zytoplasma von A. thaliana, zum Beispiel mit der Aktivität einer „Argininosuccinatsynthase”, einen erhöhten Ertrag, zum Beispiel erhöhte Toleranz gegenüber niedrigen Temperaturen, verleiht. Insbesondere wurde beobachtet, dass man durch Erhöhen bzw. Erzeugen der Aktivität eines Genprodukts, kodiert durch ein Gen, das die Nukleinsäuresequenz SEQ ID NO.: 12936 umfasst, A. thaliana zum Beispiel mit der Aktivität einer „Glutaminsynthetase” einen erhöhten Ertrag, z. B. ein erhöhtes Ertragsmerkmal, zum Beispiel eine gesteigerte Toleranz gegenüber abiotischem Umweltstress, zum Beispiel eine erhöhte Toleranz gegenüber Dürre und/oder Toleranz gegenüber niedrigen Temperaturen und/oder eine erhöhte Effizienz der Nährstoffausnutzung, einen erhöhten intrinsischen Ertrag und/oder ein erhöhtes anderes erwähntes Ertragsmerkmal verleiht, verglichen mit der Kontrolle vom Wildtyp. Weiterhin wurde beobachtet, dass man durch Erhöhen bzw. Erzeugen der Aktivität eines Genprodukts mit dieser Aktivität einer „Glutaminsynthetase” und kodiert durch ein Gen, das die Nukleinsäuresequenz SEQ ID NO.: 12936 umfasst, A. thaliana eine Toleranz gegenüber abiotischem Umweltstress, z. B. eine erhöhte Toleranz gegenüber niedrigen Temperaturen, verleiht, verglichen mit der Kontrolle vom Wildtyp. Insbesondere wurde beobachtet, dass man durch Erhöhen bzw. Erzeugen der Aktivität eines Genprodukts, kodiert durch ein Gen, das die Nukleinsäuresequenz SEQ ID NO.: 12936 umfasst, welches wie in Tabelle I, Spalte 6, lokalisiert ist, z. B. im Zytoplasma von A. thaliana, zum Beispiel mit der Aktivität einer „Glutaminsynthetase”, einen erhöhten Ertrag, zum Beispiel erhöhte Toleranz gegenüber niedrigen Temperaturen, verleiht.
  • Es wurde weiterhin beobachtet, dass man durch Erhöhen oder Erzeugen der Aktivität eines von einem in Tabelle VIIIa gezeigten Nukleinsäuremolekül abgeleiteten Nukleinsäuremoleküls in A. thaliana eine erhöhte Effizienz der Nährstoffausnutzung, z. B. eine erhöhte Effizienz der Stickstoffausnutzung, verglichen mit der Kontrolle vom Wildtyp, verlieh. Gemäß einer Ausführungsform wird somit ein in Tabelle VIIIa aufgeführtes Nukleinsäuremolekül oder dessen in Tabelle I aufgeführtes Homolog oder das Expressionsprodukt in dem Verfahren der vorliegenden Erfindung zur Erhöhung der Effizienz der Nährstoffausnutzung, z. B. der Erhöhung der Effizienz der Stickstoffausnutzung, der Pflanze verglichen mit der Kontrolle vom Wildtyp eingesetzt. Es wurde weiterhin beobachtet, dass man durch Erhöhen oder Erzeugen der Aktivität eines von einem in Tabelle VIIIb gezeigten Nukleinsäuremolekül abgeleiteten Nukleinsäuremoleküls in A. thaliana eine erhöhte Toleranz gegenüber Stress, z. B. eine erhöhte Toleranz gegenüber niedrigen Temperaturen, verglichen mit der Kontrolle vom Wildtyp, verlieh. Gemäß einer Ausführungsform wird somit ein in Tabelle VIIIb aufgeführtes Nukleinsäuremolekül oder dessen in Tabelle I aufgeführtes Homolog oder das Expressionsprodukt in dem Verfahren der vorliegenden Erfindung zur Erhöhung der Toleranz gegenüber Stress, z. B. der Erhöhung der Toleranz gegenüber niedrigen Temperaturen, einer Pflanze verglichen mit der Kontrolle vom Wildtyp eingesetzt. Es wurde weiterhin beobachtet, dass man durch Erhöhen oder Erzeugen der Aktivität eines von einem in Tabelle VIIIc gezeigten Nukleinsäuremolekül abgeleiteten Nukleinsäuremoleküls in A. thaliana eine erhöhte Toleranz gegenüber Stress, z. B. eine erhöhte Toleranz gegenüber zyklischer Dürre, verglichen mit der Kontrolle vom Wildtyp, verlieh. Gemäß einer Ausführungsform wird somit ein in Tabelle VIIIc aufgeführtes Nukleinsäuremolekül oder dessen in Tabelle I aufgeführtes Homolog oder das Expressionsprodukt in dem Verfahren der vorliegenden Erfindung zur Erhöhung der Toleranz gegenüber Stress, z. B. der Erhöhung der Toleranz gegenüber zyklischer Dürre, einer Pflanze verglichen mit der Kontrolle vom Wildtyp eingesetzt. Es wurde weiterhin beobachtet, dass man durch Erhöhen oder Erzeugen der Aktivität eines von einem in Tabelle VIIId gezeigten Nukleinsäuremolekül abgeleiteten Nukleinsäuremoleküls in A. thaliana einen erhöhten intrinsischen Ertrag, z. B. eine erhöhte Biomasse unter Standardbedingungen, z. B. eine erhöhte Biomasse unter Nicht-Mangel- oder Nicht-Stress-Bedingungen, verglichen mit der Kontrolle vom Wildtyp, verlieh. Gemäß einer Ausführungsform wird somit ein in Tabelle VIIId aufgeführtes Nukleinsäuremolekül oder dessen in Tabelle I aufgeführtes Homolog oder das Expressionsprodukt in dem Verfahren der vorliegenden Erfindung zur Erhöhung des intrinsischen Ertrags, z. B. zur Erhöhung des Ertrags unter Standardbedingungen, z. B. eine erhöhte Biomasse unter Nicht-Mangel- oder Nicht-Stress-Bedingungen, einer Pflanze verglichen mit der Kontrolle vom Wildtyp eingesetzt.
  • Der Ausdruck ”Expression” bezieht sich auf die Transkription und/oder Translation eines codogenen Gensegmentes oder Gens. In der Regel handelt es sich bei dem erhaltenen Produkt um eine mRNA oder ein Protein. Expressionsprodukte können jedoch auch funktionelle RNAs wie zum Beispiel Antisense, Nukleinsäuren, tRNAs, snRNAs, rRNAs, RNAi, siRNA, Ribozyme usw. einschließen. Die Expression kann systemisch, lokal oder zeitweilig erfolgen, zum Beispiel eingeschränkt auf bestimmte Zelltypen, Gewebe, Organe oder Organellen oder Zeitperioden.
  • Gemäß einer Ausführungsform umfasst das Verfahren der vorliegenden Erfindung einen oder mehrere der folgenden Schritte
    • (a) die Stabilisierung eines Proteins, das die erhöhte Expression eines durch das Nukleinsäuremolekül der Erfindung kodierten Proteins oder des Polypeptids der Erfindung mit der hier erwähnten Aktivität, ausgewählt aus der Gruppe bestehend aus einer (DL)-Glycerin-3-phosphatase, einer 2-Desoxyglucose-6-phosphatphosphatase, einer 3-Methyl-2-oxobutanoat-Hydroxymethyltransferase, einer Alkoholacetyltransferase, einer Aminosäurepermease, einer Aminomethyltransferase, einem Ammoniumtransporter, einem Aquaporin, einem Arabinosetransportsystem, einem ATP-bindenden Protein, einer Argininosuccinatsynthase, einer Aspartataminotransferase, einem B1906-Protein, einem B3410-Protein, einer Cardiolipinsynthetase, einem CoA-Transferase-ähnlichen Protein (NAD(P)-bindend), einem Cobalttransportprotein, einem DNA- und proteinbindenden Protein zur Steuerung des Proteoms auf der posttranskriptionellen Ebene, einer Enoyl-CoA-Hydratase, einer Enoyl-CoA-Isomerase, einer Ethanolaminkinase, einer Formiatacetyltransferase 1, dem Protein einer Glucit/Sorbit-spezifischen Enzym-IIA-Komponente, einer Glutaminsynthetase, einer Glutathion-S-transferase, einer Glycerindehydrogenase, einem Glykogensyntheseinitiatorprotein, einem GTP-bindenden Protein, einem Hitzeschockprotein, einem Hexosetransporter, einer Holo-[Acylträgerprotein]-Synthase, einem anorganischen Phosphattransporter, einer Lanosterolsynthase, einer molybdänbindenden Untereinheit von Aldehydoxidasen und Xanthindehydrogenasen, einem Multidrug-Resistenzprotein, einem Multiple-Drug-Resistenzprotein, einer NADH-Dehydrogenase/NAD(P)H-Nitroreduktase, einer Oxidoreduktase, einer Peptidyl-Prolyl-cis/trans-Isomerase, einem Peroxisomal-Targeting-Signal-2-Rezeptor, einer Phosphoadenosinphosphosulfatreduktase, einem Phosphoträgerprotein, einem Pirin-ähnlichen Protein, einer Precorrin-6y-Methylase, einem für den Abbau von Glykoproteinen benötigten Protein, einer Pyrimidindeaminase/-reduktase, einem Regulator der Zellmorphogenese und der NO-Signalvermittlung, einer Serinacetyltransferase, einer Untereinheit des Signalosomkomplexes, einem SLR1094-Protein, einer Untereinheit von TORC1, einer thiolspezifischen Monooxygenase, einem die Transkription steuernden Protein, einer Transketolase, einem Zwei-Modul-Transportprotein, einem Uridindiphosphat-N-acetylglucosamintransporter, einem yer175w-a-Protein, einem yhr213w-a-Protein, einem YML079W-Protein, einem YMR157C-Protein, einem YNL024C-Protein und einem YNR040W-Protein, verleiht und einen erhöhten Ertrag, z. B. ein erhöhtes Ertragsmerkmal, zum Beispiel eine gesteigerte Toleranz gegenüber abiotischem Umweltstress, zum Beispiel eine erhöhte Toleranz gegenüber Dürre und/oder Toleranz gegenüber niedrigen Temperaturen und/oder eine erhöhte Effizienz der Nährstoffausnutzung, einen erhöhten intrinsischen Ertrag und/oder ein erhöhtes anderes erwähntes Ertragsmerkmal, verglichen mit einer entsprechenden, z. B. nicht transformierten, Pflanzenzelle oder Pflanze vom Wildtyp oder einem Teil davon, verleiht;
    • (b) die Stabilisierung einer mRNA, die die erhöhte Expression eines durch das Nukleinsäuremolekül der Erfindung kodierten Proteins oder dessen Homologe verleiht, oder einer mRNA, die für das Polypeptid der vorliegenden Erfindung mit der hier erwähnten Aktivität, ausgewählt aus der Gruppe bestehend aus den unter (a) erwähnten Aktivitäten, kodiert und einen erhöhten Ertrag, z. B. ein erhöhtes Ertragsmerkmal, zum Beispiel eine gesteigerte Toleranz gegenüber abiotischem Umweltstress, zum Beispiel eine erhöhte Toleranz gegenüber Dürre und/oder Toleranz gegenüber niedrigen Temperaturen und/oder eine erhöhte Effizienz der Nährstoffausnutzung, einen erhöhten intrinsischen Ertrag und/oder ein erhöhtes anderes erwähntes Ertragsmerkmal, verglichen mit einer entsprechenden, z. B. nicht transformierten, Pflanzenzelle oder Pflanze vom Wildtyp oder einem Teil davon, verleiht;
    • (c) die Erhöhung der spezifischen Aktivität eines Proteins, das die erhöhte Expression eines durch das Nukleinsäuremolekül der Erfindung kodierten Proteins oder des Polypeptids der vorliegenden Erfindung verleiht oder die inhibitorische Regulation des Polypeptids der Erfindung vermindert;
    • (d) die Erzeugung oder Erhöhung der Expression eines endogenen oder künstlichen Transkriptionsfaktors, der die Expression eines Proteins vermittelt, welches die erhöhte Expression eines durch das Nukleinsäuremolekül der Erfindung kodierten Proteins oder des Polypeptids der Erfindung mit der hier erwähnten Aktivität, ausgewählt aus der Gruppe bestehend aus den unter (a) erwähnten Aktivitäten, verleiht und einen erhöhten Ertrag, z. B. ein erhöhtes Ertragsmerkmal, zum Beispiel eine gesteigerte Toleranz gegenüber abiotischem Umweltstress, zum Beispiel eine erhöhte Toleranz gegenüber Dürre und/oder Toleranz gegenüber niedrigen Temperaturen und/oder eine erhöhte Effizienz der Nährstoffausnutzung, einen erhöhten intrinsischen Ertrag und/oder ein erhöhtes anderes erwähntes Ertragsmerkmal, verglichen mit einer entsprechenden, z. B. nicht transformierten, Pflanzenzelle oder Pflanze vom Wildtyp oder einem Teil davon, verleiht;
    • (e) die Stimulierung der Aktivität eines Proteins, welches die erhöhte Expression eines durch das Nukleinsäuremolekül der vorliegenden Erfindung kodierten Proteins oder eines Polypeptids der vorliegenden Erfindung mit der hier erwähnten Aktivität, ausgewählt aus der Gruppe bestehend aus den unter (a) erwähnten Aktivitäten, verleiht und einen erhöhten Ertrag, z. B. ein erhöhtes Ertragsmerkmal, zum Beispiel eine gesteigerte Toleranz gegenüber abiotischem Umweltstress, zum Beispiel eine erhöhte Toleranz gegenüber Dürre und/oder Toleranz gegenüber niedrigen Temperaturen und/oder eine erhöhte Effizienz der Nährstoffausnutzung, einen erhöhten intrinsischen Ertrag und/oder ein erhöhtes anderes erwähntes Ertragsmerkmal, verglichen mit einer entsprechenden, z. B. nicht transformierten, Pflanzenzelle oder Pflanze vom Wildtyp oder einem Teil davon, verleiht durch Hinzufügen eines oder mehrerer exogener induzierender Faktoren zu einem Organismus oder Teilen davon;
    • (f) die Expression eines transgenen Gens, das für ein Protein kodiert, welches die erhöhte Expression eines durch das Nukleinsäuremolekül der vorliegenden Erfindung kodierten Polypeptids oder eines Polypeptids der vorliegenden Erfindung mit der hier erwähnten Aktivität, ausgewählt aus der Gruppe bestehend aus den unter (a) erwähnten Aktivitäten, verleiht und einen erhöhten Ertrag, z. B. ein erhöhtes Ertragsmerkmal, zum Beispiel eine gesteigerte Toleranz gegenüber abiotischem Umweltstress, zum Beispiel eine erhöhte Toleranz gegenüber Dürre und/oder Toleranz gegenüber niedrigen Temperaturen und/oder eine erhöhte Effizienz der Nährstoffausnutzung, einen erhöhten intrinsischen Ertrag und/oder ein erhöhtes anderes erwähntes Ertragsmerkmal, verglichen mit einer entsprechenden, z. B. nicht transformierten, Pflanzenzelle oder Pflanze vom Wildtyp oder einem Teil davon, verleiht; und/oder
    • (g) die Erhöhung der Kopienzahl eines Gens, welches die erhöhte Expression eines Nukleinsäuremoleküls, das für ein durch das Nukleinsäuremolekül der vorliegenden Erfindung kodiertes Polypeptid oder das Polypeptid der vorliegenden Erfindung mit der hier erwähnten Aktivität, ausgewählt aus der Gruppe bestehend aus den unter (a) erwähnten Aktivitäten, kodiert und einen erhöhten Ertrag, z. B. ein erhöhtes Ertragsmerkmal, zum Beispiel eine gesteigerte Toleranz gegenüber abiotischem Umweltstress, zum Beispiel eine erhöhte Toleranz gegenüber Dürre und/oder Toleranz gegenüber niedrigen Temperaturen und/oder eine erhöhte Effizienz der Nährstoffausnutzung, einen erhöhten intrinsischen Ertrag und/oder ein erhöhtes anderes erwähntes Ertragsmerkmal, verglichen mit einer entsprechenden, z. B. nicht transformierten, Pflanzenzelle oder Pflanze vom Wildtyp oder einem Teil davon, verleiht;
    • (h) die Erhöhung der Expression des endogenen Gens, das für das Polypeptid der Erfindung oder seine Homologe kodiert, durch Zugabe von positiven Expressionselementen oder durch Entfernen von negativen Expressionselementen; so lassen sich z. B. mit homologer Rekombination entweder positive Regulationselemente, wie für Pflanzen der 35S-Enhancer, in den Promotor einführen oder Repressorelemente aus regulatorischen Regionen entfernen. Weiterhin lassen sich Methoden zur Genumwandlung anwenden, um Repressorelemente zu stören oder um die Aktivität positiver Elemente zu verstärken – positive Elemente lassen sich durch T-DNA oder Transposonmutagenese ungezielt in Pflanzen einführen, und die Linien, bei denen die positiven Elemente in der Nähe eines erfindungsgemäßen Gens integriert worden sind und deren Expression daher verstärkt ist, können identifiziert werden; und/oder
    • (i) die Modulierung der Wachstumsbedingungen der Pflanze derart, dass die Expression oder Aktivität des für das Protein der Erfindung kodierenden Gens oder das Protein selbst verbessert ist;
    • (j) die Auswahl von Organismen mit besonders hoher Aktivität des Proteins der Erfindung aus natürlichen oder aus mutagenisierten Quellen und deren Züchtung in die Zielorganismen, z. B. die Elite-Kulturpflanzen.
  • Vorzugsweise handelt es sich bei der mRNA um das Nukleinsäuremolekül der vorliegenden Erfindung, und/oder das Protein, das die erhöhte Expression eines durch das Nukleinsäuremolekül der vorliegenden Erfindung alleine oder in Verbindung mit einer Transitnukleinsäuresequenz bzw. einer für das Transitpeptid kodierenden Nukleinsäuresequenz kodierten Proteins oder des Polypeptids mit der hier erwähnten Aktivität verleiht, z. B. einen erhöhten Ertrag, z. B. mit einem erhöhten Ertragsmerkmal, zum Beispiel einer gesteigerten Toleranz gegenüber abiotischem Umweltstress, zum Beispiel einer erhöhten Toleranz gegenüber Dürre und/oder Toleranz gegenüber niedrigen Temperaturen und/oder einer erhöhten Effizienz der Nährstoffausnutzung, einem erhöhten intrinsischen Ertrag und/oder einem erhöhten anderen erwähnten Ertragsmerkmal, verglichen mit einer entsprechenden, z. B. nicht transformierten, Pflanzenzelle oder Pflanze vom Wildtyp oder einem Teil davon nach Erhöhen der Expression oder Aktivität des kodierten Polypeptids verleiht oder die Aktivität eines Polypeptids mit einer Aktivität wie das in Tabelle II Spalte 3 gezeigte Protein oder dessen Homologe hat.
  • Im Allgemeinen korreliert die Menge an mRNA oder Polypeptid in einer Zelle oder einem Kompartiment eines Organismus mit der Menge an kodiertem Protein und somit mit der Gesamtaktivität des kodierten Proteins in diesem Volumen. Diese Korrelation ist nicht immer linear, und die Aktivität in dem Volumen hängt von der Stabilität der Moleküle oder dem Vorhandensein aktivierender oder inhibierender Kofaktoren ab. Weiterhin sind Produkt- und Eduktinhibierungen von Enzymen gut bekannt und in Lehrbüchern, z. B. Stryer, Biochemistry, beschrieben.
  • Im Allgemeinen korreliert die Menge an mRNA, Polynukleotid oder Nukleinsäuremolekül in einer Zelle oder einem Kompartiment eines Organismus mit der Menge an kodiertem Protein und somit mit der Gesamtaktivität des kodierten Proteins in diesem Volumen. Diese Korrelation ist nicht immer linear, sondern die Aktivität in dem Volumen ist abhängig von der Stabilität der Moleküle, dem Abbau der Moleküle oder der Gegenwart von aktivierenden oder inhibierenden Cofaktoren. Weiterhin sind Produkt- und Eduktinhibierungen von Enzymen gut bekannt, z. B. Zinser et al. „Enzyminhibitoren"/Enzyme inhibitors".
  • Die Aktivität der obenerwähnten Proteine und/oder Polypeptide, die durch das Nukleinsäuremolekül der vorliegenden Erfindung kodiert werden, lässt sich auf verschiedene Weisen erhöhen. So wird zum Beispiel die Aktivität in einem Organismus oder in einem Teil davon wie einer Zelle erhöht, indem man die Anzahl an Genprodukten erhöht, z. B. durch Erhöhen der Expressionsrate, wie der Einführung eines stärkeren Promotors, oder durch Erhöhen der Stabilität der exprimierten mRNA, wodurch die Translationsrate erhöht wird, und/oder durch Erhöhen der Stabilität des Genprodukts, wodurch die Anzahl der zerfallenen Proteine reduziert wird. Weiterhin kann man die Aktivität oder den Umsatz von Enzymen so beeinflussen, dass eine Abnahme oder Zunahme der Reaktionsrate oder eine Modifikation (Abnahme oder Zunahme) der Affinität zum Substrat resultiert. Eine Mutation im katalytischen Zentrum eines Polypeptids der Erfindung, z. B. einem Enzym, kann die Umsatzrate des Enzyms modulieren, ein Eliminieren einer essentiellen Aminosäure zum Beispiel kann eine verminderte oder vollständig abgeschaltete Aktivität des Enzyms zur Folge haben, oder die Deletion oder Mutation von Regulator-Bindungsstellen kann eine negative Regulation wie eine Rückkopplungsinhibierung (oder eine Substratinhibierung, wenn die Substratkonzentration ebenfalls erhöht wird) reduzieren. Die spezifische Aktivität eines Enzyms der vorliegenden Erfindung lässt sich so erhöhen, dass die Umsatzrate erhöht ist oder die Bindung eines Kofaktors verbessert ist. Durch eine Verbesserung der Stabilität der kodierenden mRNA oder des Proteins lässt sich auch die Aktivität eines Genprodukts erhöhen. Die Stimulierung der Aktivität fällt ebenfalls unter den Umfang des Ausdrucks ”erhöhte Aktivität”.
  • Außerdem kann man die Regulation der obenerwähnten Nukleinsäuresequenzen so modifizieren, dass die Genexpression erhöht wird. Dies lässt sich vorteilhaft mit Hilfe von heterologen regulatorischen Sequenzen erreichen, oder indem man die vorhandenen natürlichen regulatorischen Seqenzen modifiziert, zum Beispiel mutiert. Die vorteilhaften Methoden können auch miteinander kombiniert werden.
  • Im Allgemeinen lässt sich eine Aktivität eines Genprodukts in einem Organismus oder einem Teil davon, insbesondere in einer Pflanzenzelle oder einer Organelle einer Pflanzenzelle, einer Pflanze oder einem Pflanzengewebe oder einem Teil davon oder in einem Mikroorganismus erhöhen, indem man die Menge an spezifisch kodierender mRNA oder des entsprechenden Proteins in diesem Organismus oder einem Teil davon erhöht. ”Menge an Protein oder mRNA” ist so zu verstehen, dass damit die Molekülzahl an Polypeptiden oder mRNA-Molekülen in einem Organismus, insbesondere einer Pflanze, einem Gewebe, einer Zelle oder einem Zellkompartiment gemeint ist. Eine ”Erhöhung” der Menge eines Proteins bedeutet die quantitative Erhöhung der Molekülzahl dieses Proteins in einem Organismus, insbesondere einer Pflanze, einem Gewebe, einer Zelle oder einem Zellkompartiment wie einer Organelle wie z. B. einem Plastid oder Mitochondrien oder einem Teil davon – zum Beispiel durch eine der hier unten beschriebenen Methoden – im Vergleich zu einem Wildtyp, einer Kontrolle oder einer Referenz.
  • Die Erhöhung der Molekülzahl beläuft sich vorzugsweise auf wenigstens 1%, vorzugsweise auf mehr als 10%, besonders bevorzugt auf 30% oder mehr, insbesondere bevorzugt auf 50%, 70% oder mehr, ganz insbesondere bevorzugt auf 100%, ganz besonders bevorzugt auf 500% oder mehr. Eine denovo-Expression wird jedoch ebenfalls als Gegenstand der vorliegenden Erfindung betrachtet.
  • Eine Modifikation, d. h. eine Erhöhung, kann durch endogene oder exogene Faktoren bewirkt werden. So kann zum Beispiel eine Erhöhung der Aktivität in einem Organismus oder einem Teil davon herbeigeführt werden, indem man ein Genprodukt oder eine Vorstufe davon oder einen Aktivator oder einen Agonisten zum Medium oder der Nahrung gibt, oder sie kann herbeigeführt werden, indem man diese Gegenstände transient oder stabil in einen Organismus einführt. Weiterhin lässt sich eine solche Erhöhung durch die Einführung der erfindungsgemäßen Nukleinsäuresequenz oder des kodierten Proteins in das korrekte Zellkompartiment, zum Beispiel in den Kern oder das Zytoplasma oder in Plastide entweder durch Transformation und/oder durch Targeting erzielen.
  • Für die Zwecke der Beschreibung der vorliegenden Erfindung soll der Ausdruck „zytoplasmatisch” bedeuten, dass die erfindungsgemäße Nukleinsäure ohne Zusatz einer nicht-natürlichen, für ein Transitpeptid kodierenden Sequenz exprimiert wird. Eine nicht-natürliche, für ein Transitpeptid kodierende Sequenz ist eine Sequenz, die nicht ein natürlicher Teil der erfindungsgemäßen Nukleinsäure ist, sondern vielmehr durch Schritte molekularer Manipulation, wie zum Beispiel in den Beispielen unter ”plastid targeted expression” beschrieben, angefügt wurde. Der Ausdruck „zytoplasmatisch” soll daher eine gezielte Lokalisierung der Produkte der erfindungsgemäßen Nukleinsäuresequenzen in einem beliebigen Zellkompartiment aufgrund ihrer natürlich vorkommenden Sequenzeigenschaften nicht ausschließen.
  • Gemäß einer Ausführungsform erreicht man den erhöhten Ertrag, z. B. das erhöhte Ertragsmerkmal, zum Beispiel eine gesteigerte Toleranz gegenüber abiotischem Umweltstress, zum Beispiel eine erhöhte Toleranz gegenüber Dürre und/oder Toleranz gegenüber niedrigen Temperaturen und/oder eine erhöhte Effizienz der Nährstoffausnutzung, einen erhöhten intrinsischen Ertrag und/oder ein erhöhtes anderes erwähntes Ertragsmerkmal, verglichen mit einer entsprechenden, z. B. nicht transformierten, Pflanzenzelle in der Pflanze vom Wildtyp oder einem Teil davon, z. B. in einer Zelle, einem Gewebe, einem Organ, einer Organelle, dem Zytoplasma usw., indem man die endogene Konzentration des Polypeptids der Erfindung erhöht. Dementsprechend betrifft die vorliegende Erfindung gemäß einer Ausführungsform der vorliegenden Erfindung ein Verfahren, bei dem man die Genkopienzahl eines für das Polynukleotid oder Nukleinsäuremolekül der Erfindung kodierenden Gens erhöht. Weiterhin lässt sich die endogene Konzentration des Polypeptids der Erfindung zum Beispiel erhöhen, indem man die transkriptionelle oder translationale Regulation des Polypeptids modifiziert.
  • Gemäß einer Ausführungsform lässt sich der erhöhte Ertrag, z. B. das erhöhte Ertragsmerkmal, zum Beispiel eine gesteigerte Toleranz gegenüber abiotischem Umweltstress, zum Beispiel eine erhöhte Toleranz gegenüber Dürre und/oder Toleranz gegenüber niedrigen Temperaturen und/oder eine erhöhte Effizienz der Nährstoffausnutzung, ein erhöhter intrinsischer Ertrag und/oder ein erhöhtes anderes erwähntes Ertragsmerkmal in der Pflanze oder einem Teil davon durch gezielte oder zufällige Mutagenese der endogenen erfindungsgemäßen Gene verändern. So lassen sich zum Beispiel mit homologer Rekombination entweder positive Regulationselemente, wie für Pflanzen der 35S-Enhancer, in den Promotor einführen oder Repressorelemente aus regulatorischen Regionen entfernen. Darüber hinaus können bei der Genumwandlung wie z. B. von Kochevenko und Willmitzer (Plant Physiol. 132 (1), 174 (2003)) und in den darin angeführten Literaturstellen beschriebene Methoden angewendet werden, um Repressorelemente zu stören oder um die Aktivität positiver regulatorischer Elemente zu verstärken. Weiterhin lassen sich positive Elemente durch t-DNA oder Transposonmutagenese ungezielt in (Pflanzen-)Genome einführen, und die Linien, bei denen die positiven Elemente in der Nähe eines erfindungsgemäßen Gens integriert worden sind und deren Expression daher verstärkt ist, können identifiziert werden. Die Aktivierung von Pflanzengenen durch statistische Integrationen von Enhancer-Elementen wurde von Hayashi et al. (Science 258, 1350 (1992)) oder Weigel et al. (Plant Physiol. 122, 1003 (2000)) und anderen dort zitierten beschrieben. Reverse genetische Strategien zur Identifizierung von Insertionen (die gegebenenfalls die Aktivierungselemente tragen) in der Nähe der interessierenden Gene wurden verschiedentlich beschrieben, z. B. Krysan et al. (Plant Cell 11, 2283 (1999)); Sessions et al. (Plant Cell 14, 2985 (2002)); Young et al. (Plant Physiol. 125, 513 (2001)); Koprek et al. (Plant J. 24, 253 (2000)); Jeon et al. (Plant J. 22, 561 (2000)); Tissier et al. (Plant Cell 11, 1841 (1999)); Speulmann et al. (Plant Cell 11, 1853 (1999)). Kurz gesagt, wird Material aus allen Pflanzen einer großen durch T-DNA oder Transposon mutagenisierten Pflanzenpopulation geerntet und genomische DNA wird präpariert. Die genomische DNA wird dann nach spezifischen Architekturen wie zum Beispiel in Krysan et al. (Plant Cell 11, 2283 (1999)) beschrieben gepoolt. Die Pools der genomischen DNAs werden dann mittels spezifischer Multiplex-PCR-Reaktionen, mit denen die Kombination des insertierten Mutagens (z. B. T-DNA oder Transposon) und des interessierenden Gens nachgewiesen wird, gescreent. Daher werden PCR-Reaktionen an den DNA-Pools mit spezifischen Kombinationen von T-DNA- oder Transposon-Border-Primern und genspezifischen Primern ausgeführt. Allgemeine Richtlinien für die Entwicklung von Primern finden sich wiederum bei Krysan et al. (Plant Cell 11, 2283 (1999)). Ein erneutes Screening von DNA-Pools mit geringeren Konzentrationen führt zur Identifizierung von einzelnen Pflanzen, bei denen das interessierende Gen durch das insertierte Mutagen aktiviert ist. Die Verstärkung von positiven regulatorischen Elementen oder die Störung oder Schwächung von negativen regulatorischen Elementen lässt sich auch durch herkömmliche Mutagenesetechniken erreichen: Die Herstellung von chemisch oder durch Strahlung mutierten Populationen ist ein herkömmliches, dem Fachmann bekanntes Verfahren. Methoden für Pflanzen wurden von Koorneef et al. (Mutat Res. Mar. 93 (1) (1982)) und in den darin angeführten Literaturstellen und von Lightner und Caspar in „Methods in Molecular Biology" Band 82 beschrieben. Bei diesen Techniken induziert man gewöhnlich Punktmutationen, die sich in jedem bekannten Gen unter Anwendung von Methoden wie TILLING (Colbert et al., Plant Physiol, 126, (2001)) identifizieren lassen.
  • Dementsprechend lässt sich das Expressionsniveau erhöhen, wenn die endogenen Gene, die für ein Polypeptid kodieren, das eine erhöhte Expression des Polypeptids der vorliegenden Erfindung verleiht, insbesondere Gene, die das Nukleinsäuremolekül der vorliegenden Erfindung umfassen, durch homologe Rekombination, Tilling-Ansätze oder Genumwandlung modifiziert werden. Es ist außerdem möglich, wie hier erwähnt den erfindungsgemäßen Nukleinsäuresequenzen Erkennungssequenzen zuzufügen.
  • Falls gewünscht sind regulatorische Sequenzen zusätzlich zu einer Targetsequenz oder einem Teil davon operativ an die kodierende Region eines endogenen Proteins gebunden und steuern dessen Transkription und Translation oder die Stabilität bzw. den Abbau der kodierenden mRNA oder des exprimierten Proteins. Zum Modifizieren und zur Steuerung der Expression kann man Promotor, UTRs, Spleißstellen, Verarbeitungssignale, Polyadenylierungsstellen, Terminatoren, Enhancer, Repressoren, posttranskriptionelle oder posttranslationale Modifikationstellen verändern, hinzufügen oder ergänzen. Die Aktivierung von Pflanzengenen durch statistische Integrationen von Enhancer-Elementen zum Beispiel wurde von Hayashi et al. (Science 258, 1350 (1992)) oder Weigel et al. (Plant Physiol. 122, 1003 (2000)) und anderen dort zitierten beschrieben. Man kann zum Beispiel die Expressionsniveaus des endogenen Proteins modulieren, indem man den endogenen Promotor durch einen stärkeren transgenen Promotor ersetzt oder die endogene 3'UTR durch eine 3'UTR ersetzt, die für eine bessere Stabilität sorgt, ohne dabei die kodierende Region zu ändern. Weiterhin lässt sich die transkriptionelle Regulation wie in den Beispielen beschrieben durch Einführen eines künstlichen Transkriptionsfaktors modulieren. Alternative Promotoren, Terminatoren und UTR sind unten beschrieben.
  • Die Aktivierung eines endogenen Polypeptids mit der obenerwähnten Aktivität, z. B. mit der Aktivität eines wie in Tabelle II, Spalte 3, gezeigten Proteins oder des Polypeptids der Erfindung, z. B. die Verleihung eines erhöhten Ertrags, z. B. eines erhöhten Ertragsmerkmals, zum Beispiel einer gesteigerten Toleranz gegenüber abiotischem Umweltstress, zum Beispiel einer erhöhten Toleranz gegenüber Dürre und/oder Toleranz gegenüber niedrigen Temperaturen und/oder einer erhöhten Effizienz der Nährstoffausnutzung, einem erhöhten intrinsischen Ertrag und/oder eines erhöhten anderen erwähnten Ertragsmerkmals, verglichen mit einer entsprechenden, z. B. nicht transformierten, Pflanzenzelle oder Pflanze vom Wildtyp oder einem Teil davon, nach einer erhöhten Expression oder Aktivität im Zytoplasma und/oder in einer Organelle wie z. B. einem Plastid lässt sich auch erhöhen, indem man einen synthetischen Transkriptionsfaktor einführt, der in unmittelbarer Nähe zur kodierenden Region des für das wie in Tabelle II, Spalte 3, gezeigte Protein kodierenden Gens bindet und dessen Transkription aktiviert. Es lässt sich ein chimäres Zinkfingerprotein konstruieren, welches eine spezifische DNA-bindende Domäne und eine Aktivierungsdomäne z. B. die VP16-Domäne des Herpes-Simplex-Virus umfasst. Die spezifische Bindungsdomäne kann an die regulatorische Region des für das wie in Tabelle II, Spalte 3, gezeigte Protein kodierenden Gens binden. Die Expression des chimären Transkriptionsfaktors in einem Organismus, insbesondere in einer Pflanze, hat eine spezifische Expression des wie in Tabelle II, Spalte 3, gezeigten Proteins zur Folge. Die Methoden dafür sind dem Fachmann bekannt und/oder z. B. in WO 01/52620 , Oriz, Proc. Natl. Acad. Sci. USA, 99, 13290 (2002) oder Guan, Proc. Natl. Acad. Sci. USA 99, 13296 (2002) offenbart.
  • Gemäß einer weiteren Ausführungsform des Verfahrens gemäß der Erfindung werden Organismen verwendet, bei denen eines der obenerwähnten Gene, oder eine der obenerwähnten Nukleinsäuren, auf eine Weise mutiert ist, dass die Aktivität des kodierten Genprodukts verglichen mit den nicht mutierten Proteinen weniger oder überhaupt nicht durch zelluläre Faktoren beeinflusst wird. Gut bekannte Regulationsmechanismen der Enzymaktivität sind zum Beispiel Substratinhibierung oder Rückkopplungsregulationsmechanismen. Wege und Techniken zur Einführung von Substitutionen, Deletierungen und Additionen einer oder mehrerer Basen, Nukleotide oder Aminosäuren einer entsprechenden Sequenz sind hier unten in den entsprechenden Absätzen und den dort angeführten Literaturstellen beschrieben, z. B. in Sambrook et al., Molecular Cloning, Cold Spring Harbour, NY, 1989. Dem Fachmann wird es möglich sein, Regulationsdomänen und Bindungsstellen von Regulatoren zu identifizieren, indem er die Sequenz des Nukleinsäuremoleküls der vorliegenden Erfindung oder des Expressionsprodukts davon mit Hilfe von Computersoftware, die Algorithmen zur Identifizierung von Bindungsstellen und regulatorischen Domänen umfasst, mit dem Stand der Technik vergleicht oder indem er systematisch Mutationen in ein Nukleinsäuremolekül oder in ein Protein einführt und Assays auf diese Mutationen, die eine erhöhte spezifische Aktivität oder eine erhöhte Aktivität pro Volumen, insbesondere pro Zelle, bewirken, durchführt.
  • Es kann daher von Vorteil sein, in einem Organismus ein von einem evolutionär entfernt verwandten Organismus abgeleitetes Nukleinsäuremolekül der Erfindung oder ein Polypeptid der Erfindung zu exprimieren, wie z. B. bei der Verwendung eines prokaryontischen Gens in einem eukaryontischen Wirt, da in diesen Fällen die Regulationsmechanismen der Wirtszelle die Aktivität (zellular oder spezifisch) des Gens oder seines Expressionsprodukts nicht abschwächen.
  • Die Mutation wird so eingeführt, dass der erhöhte Ertrag, z. B. das erhöhte Ertragsmerkmal, zum Beispiel eine gesteigerte Toleranz gegenüber abiotischem Umweltstress, zum Beispiel eine erhöhte Toleranz gegenüber Dürre und/oder Toleranz gegenüber niedrigen Temperaturen und/oder eine erhöhte Effizienz der Nährstoffausnutzung, ein erhöhter intrinsischer Ertrag und/oder ein erhöhtes anderes erwähntes Ertragsmerkmal, nicht beeinträchtigt werden.
  • Weniger Einfluss auf die Regulation eines Gens oder dessen Genprodukt ist so zu verstehen, dass damit eine verminderte Regulation der enzymatischen Aktivität gemeint ist, die eine erhöhte spezifische oder zelluläre Aktivität des Gens bzw. dessen Produkts zur Folge hat. Eine Erhöhung der enzymatischen Aktivität ist so zu verstehen, dass damit eine enzymatische Aktivität gemeint ist, die im Vergleich zum Ausgangsorganismus um wenigstens 10%, vorteilhafterweise wenigstens 20, 30 oder 40%, besonders vorteilhaft um wenigstens 50, 60 oder 70% erhöht ist. Dies manifestiert sich in einem erhöhten Ertrag, z. B. einem erhöhten Ertragsmerkmal, zum Beispiel einer gesteigerten Toleranz gegenüber abiotischem Umweltstress, zum Beispiel einer erhöhten Toleranz gegenüber Dürre und/oder Toleranz gegenüber niedrigen Temperaturen und/oder einer erhöhten Effizienz der Nährstoffausnutzung, einem erhöhten intrinsischen Ertrag und/oder einem erhöhten anderen erwähnten Ertragsmerkmal, verglichen mit einer entsprechenden, z. B. nicht transformierten, Pflanzenzelle oder Pflanze vom Wildtyp oder einem Teil davon.
  • Durch die Erfindung ist es möglich, die obigen Methoden auf eine solche Weise durchzuführen, dass der Ertrag, z. B. ein Ertragsmerkmal, zum Beispiel eine gesteigerte Toleranz gegenüber abiotischem Umweltstress, zum Beispiel Toleranz gegenüber Dürre und/oder Toleranz gegenüber niedrigen Temperaturen und/oder die Effizienz der Nährstoffausnutzung, der intrinsische Ertrag und/oder andere erwähnte Ertragsmerkmale, erhöht wird, wobei insbesondere die Toleranz gegenüber niedrigen Temperaturen erhöht wird. Gemäß einer weiteren Ausführungsform ist es durch die Erfindung möglich, die obigen Methoden so durchzuführen, dass die Toleranz gegenüber abiotischem Stress, insbesondere die Toleranz gegenüber niedrigen Temperaturen und/oder Effizienz der Wasserausnutzung, und gleichzeitig die Effizienz der Nährstoffausnutzung, insbesondere die Effizienz der Stickstoffausnutzung, erhöht wird. Gemäß einer anderen Ausführungsform ist es durch die Erfindung möglich, die obigen Methoden so durchzuführen, dass der Ertrag in Abwesenheit von Nährstoffmangel sowie in Abwesenheit von Stressbedingungen erhöht wird. Gemäß einer weiteren Ausführungsform ist es durch die Erfindung möglich, die obigen Methoden so durchzuführen, dass die Effizienz der Nährstoffausnutzung, insbesondere die Effizienz der Stickstoffausnutzung, und der Ertrag in Abwesenheit von Nährstoffmangel sowie in Abwesenheit von Stressbedingungen erhöht wird. Gemäß einer bevorzugten Ausführungsform ist es durch die Erfindung möglich, die obigen Methoden so durchzuführen, dass die Toleranz gegenüber abiotischem Stress, insbesondere die Toleranz gegenüber niedrigen Temperaturen und/oder Effizienz der Wasserausnutzung, und gleichzeitig die Effizienz der Nährstoffausnutzung, insbesondere die Effizienz der Stickstoffausnutzung, und der Ertrag in Abwesenheit von Nährstoffmangel sowie in Abwesenheit von Stressbedingungen erhöht wird.
  • Die Erfindung ist nicht auf spezifische Nukleinsäuren, spezifische Polypeptide, spezifische Zelltypen, spezifische Wirtszellen, spezifische Bedingungen oder spezifische Methoden usw. als solche eingeschränkt, sondern kann variieren, und zahlreiche Modifikationen und Variationen davon werden dem Fachmann offensichtlich sein. Es versteht sich außerdem, dass die hier verwendete Terminologie lediglich zum Zweck der Beschreibung spezifischer Ausführungsformen dient und nicht einschränkend verstanden werden soll.
  • Die vorliegende Erfindung betrifft außerdem isolierte Nukleinsäuren, die ein Nukleinsäuremolekül, ausgewählt aus der Gruppe bestehend aus:
    • (a) einem Nukleinsäuremolekül, das für das in Spalte 7 von Tabelle II B, Anwendung Nr. 1 gezeigte Polypeptid kodiert;
    • (b) einem in Spalte 7 von Tabelle IB, Anwendung Nr. 1 gezeigten Nukleinsäuremolekül;
    • (c) einem Nukleinsäuremolekül, das, als Folge der Degeneration des genetischen Kodes, von einer in Spalte 5 oder 7 von Tabelle II, Anwendung Nr. 1, abgeleitet werden kann und, verglichen mit einer entsprechenden z. B. nicht transformierten Pflanzenzelle oder Pflanze vom Wildtyp oder einem Teil davon, einen erhöhten Ertrag, z. B. ein erhöhtes Ertragsmerkmal, zum Beispiel eine gesteigerte Toleranz gegenüber abiotischem Umweltstress, zum Beispiel eine erhöhte Toleranz gegenüber Dürre und/oder Toleranz gegenüber niedrigen Temperaturen und/oder eine erhöhte Effizienz der Nährstoffausnutzung, einen erhöhten intrinsischen Ertrag und/oder ein erhöhtes anderes erwähntes Ertragsmerkmal, verleiht;
    • (d) einem Nukleinsäuremolekül mit wenigstens 30% Identität, vorzugsweise wenigstens 40%, 50%, 60%, 70%, 75%, 80%, 85%, 90%, 95%, 96%, 97%, 98%, 99%, 99,5%, mit der Nukleinsäuremolekülsequenz eines Polynukleotids, welches das in Spalte 5 oder 7 von Tabelle I, Anwendung Nr. 1, gezeigte Nukleinsäuremolekül umfasst und, verglichen mit einer entsprechenden z. B. nicht transformierten Pflanzenzelle oder Pflanze vom Wildtyp oder einem Teil davon, einen erhöhten Ertrag, z. B. ein erhöhtes Ertragsmerkmal, zum Beispiel eine gesteigerte Toleranz gegenüber abiotischem Umweltstress, zum Beispiel eine erhöhte Toleranz gegenüber Dürre und/oder Toleranz gegenüber niedrigen Temperaturen und/oder eine erhöhte Effizienz der Nährstoffausnutzung, einen erhöhten intrinsischen Ertrag und/oder ein erhöhtes anderes erwähntes Ertragsmerkmal, verleiht;
    • (e) einem Nukleinsäuremolekül, das für ein Polypeptid kodiert, das wenigstens 30% Identität, vorzugsweise wenigstens 40%, 50%, 60%, 70%, 75%, 80%, 85%, 90%, 95%, 96%, 97%, 98%, 99%, 99,5%, mit der Aminosäuresequenz des durch das Nukleinsäuremolekül von (a), (b), (c) oder (d) kodierten Polypeptids hat und die durch ein ein wie in Spalte 5 von Tabelle I, Anwendung Nr. 1, gezeigtes Polynukleotid umfassendes Nukleinsäuremolekül wiedergegebene Aktivität hat und, verglichen mit einer entsprechenden z. B. nicht transformierten Pflanzenzelle oder Pflanze vom Wildtyp oder einem Teil davon, einen erhöhten Ertrag, z. B. ein erhöhtes Ertragsmerkmal, zum Beispiel eine gesteigerte Toleranz gegenüber abiotischem Umweltstress, zum Beispiel eine erhöhte Toleranz gegenüber Dürre und/oder Toleranz gegenüber niedrigen Temperaturen und/oder eine erhöhte Effizienz der Nährstoffausnutzung, einen erhöhten intrinsischen Ertrag und/oder ein erhöhtes anderes erwähntes Ertragsmerkmal, verleiht;
    • (f) einem Nukleinsäuremolekül, das mit einem Nukleinsäuremolekül von (a), (b), (c), (d) oder
    • (e) unter stringenten Hybridisierungsbedingungen hybridisiert und, verglichen mit einer entsprechenden z. B. nicht transformierten Pflanzenzelle oder Pflanze vom Wildtyp oder einem Teil davon, einen erhöhten Ertrag, z. B. ein erhöhtes Ertragsmerkmal, zum Beispiel eine gesteigerte Toleranz gegenüber abiotischem Umweltstress, zum Beispiel eine erhöhte Toleranz gegenüber Dürre und/oder Toleranz gegenüber niedrigen Temperaturen und/oder eine erhöhte Effizienz der Nährstoffausnutzung, einen erhöhten intrinsischen Ertrag und/oder ein erhöhtes anderes erwähntes Ertragsmerkmal, verleiht;
    • (g) einem Nukleinsäuremolekül, das für ein Polypeptid kodiert, das mit Hilfe von monoklonalen oder polyklonalen Antikörpern gegen ein durch eines der Nukleinsäuremoleküle von (a), (b), (c), (d), (e) oder
    • (f) kodiertes Polypeptid isoliert werden kann und die durch ein ein wie in Spalte 5 von Tabelle I, Anwendung Nr. 1 gezeigtes Polynukleotid umfassendes Nukleinsäuremolekül wiedergegebene Aktivität hat;
    • (h) einem Nukleinsäuremolekül, das für ein Polypeptid kodiert, das die Konsensussequenz oder eines oder mehrere der wie in Spalte 7 von Tabelle IV, Anwendung Nr. 1, gezeigten Polypeptidmotive umfasst und vorzugsweise die durch ein ein wie in Spalte 5 von Tabelle II oder IV, Anwendung Nr. 1 gezeigtes Polypeptid umfassendes Protein wiedergegebene Aktivität hat;
    • (i) einem Nukleinsäuremolekül, das für ein Polypeptid kodiert, das die durch ein wie in Spalte 5 von Tabelle II, Anwendung Nr. 1, gezeigtes Protein wiedergegebene Aktivität hat und, verglichen mit einer entsprechenden z. B. nicht transformierten Pflanzenzelle oder Pflanze vom Wildtyp oder einem Teil davon, einen erhöhten Ertrag, z. B. ein erhöhtes Ertragsmerkmal, zum Beispiel eine gesteigerte Toleranz gegenüber abiotischem Umweltstress, zum Beispiel eine erhöhte Toleranz gegenüber Dürre und/oder Toleranz gegenüber niedrigen Temperaturen und/oder eine erhöhte Effizienz der Nährstoffausnutzung, einen erhöhten intrinsischen Ertrag und/oder ein erhöhtes anderes erwähntes Ertragsmerkmal, verleiht;
    • (j) einem Nukleinsäuremolekül, welches ein Polynukleotid umfasst, das man erhält, indem man eine cDNA-Bibliothek oder eine genomische Bibliothek unter Verwendung der Primer aus Spalte 7 von Tabelle III, Anwendung Nr. 1, amplifiziert, und z. B. die Aktivität aufweist, die durch ein Protein, welches ein wie in Spalte 5 von Tabelle II oder IV, Anwendung Nr. 1, gezeigtes Polypetid umfasst, wiedergegeben wird; und
    • (k) einem Nukleinsäuremolekül, das durch Screening einer geeigneten Nukleinsäure-Bibliothek, insbesondere einer cDNA-Bibliothek und/oder einer genomischen Bibliothek, unter stringenten Hybridisierungsbedingungen mit einer Sonde, die eine komplementäre Sequenz eines Nukleinsäuremoleküls von (a) oder (b) umfasst, oder mit einem Fragment davon mit wenigstens 15 nt, vorzugsweise 20 nt, 30 nt, 50 nt, 100 nt, 200 nt, 500 nt, 750 nt oder 1000 nt eines Nukleinsäuremoleküls komplementär zu einer in (a) bis (e) charakterisierten Nukleinsäuremolekülsequenz, die für ein Polypeptid mit der durch ein ein wie in Spalte 5 von Tabelle II, Anwendung Nr. 1 gezeigtes Polypeptid umfassendes Protein wiedergegebenen Aktivität kodiert, erhältlich ist, enthalten.
    Gemäß einer Ausführungsform unterscheidet sich das Nukleinsäuremolekül gemäß (a), (b), (c), (d), (e), (f), (g), (h), (i), (j) und (k) in wenigstens einem oder mehreren Nukleotiden von der in Spalte 5 oder 7 von Tabelle I A, Anwendung Nr. 1, gezeigten Sequenz und kodiert vorzugsweise für ein Protein, das sich in wenigstens einer oder mehreren Aminosäuren von den in Spalte 5 oder 7 von Tabelle II A, Anwendung Nr. 1 gezeigten Proteinsequenzen unterscheidet.
  • Gemäß einer Ausführungsform betrifft die Erfindung Homologe der obenerwähnten Sequenzen, die sich vorteilhaft zum Beispiel aus Hefe, Pilzen, Viren, Algen, Bakterien wie Acetobacter (subgen. Acetobacter) aceti; Acidithiobacillus ferrooxidans; Acinetobacter sp.; Actinobacillus sp; Aeromonas salmonicida; Agrobacterium tumefaciens; Aquifex aeolicus; Arcanobacterium pyogenes; Aster yellows phytoplasma; Bacillus sp.; Bifidobacterium sp.; Borrelia burgdorferi; Brevibacterium linens; Brucella melitensis; Buchnera sp.; Butyrivibrio fibrisolvens; Campylobacter jejuni; Caulobacter crescentus; Chlamydia sp.; Chlamydophila sp.; Chlorobium limicola; Citrobacter rodentium; Clostridium sp.; Comamonas testosteroni; Corynebacterium sp.; Coxiella burnetii; Deinococcus radiodurans; Dichelobacter nodosus; Edwardsiella ictaluri; Enterobacter sp.; Erysipelothrix rhusiopathiae; E. coli; Flavobacterium sp.; Francisella tularensis; Frankia sp. CpI1; Fusobacterium nucleatum; Geobacillus stearothermophilus; Gluconobacter oxydans; Haemophilus sp.; Helicobacter pylori; Klebsiella pneumoniae; Lactobacillus sp.; Lactococcus lactis; Listeria sp.; Mannheimia haemolytica; Mesorhizobium loti; Methylophaga thalassica; Microcystis aeruginosa; Microscilla sp. PRE1; Moraxella sp. TA144; Mycobacterium sp.; Mycoplasma sp.; Neisseria sp.; Nitrosomonas sp.; Nostoc sp. PCC 7120; Novosphingobium aromaticivorans; Oenococcus oeni; Pantoea citrea; Pasteurella multocida; Pediococcus pentosaceus; Phormidium foveolarum; Phytoplasma sp.; Plectonema boryanum; Prevotella ruminicola; Propionibacterium sp.; Proteus vulgaris; Pseudomonas sp.; Ralstonia sp.; Rhizobium sp.; Rhodococcus equi; Rhodothermus marinus; Rickettsia sp.; Riemerella anatipestifer; Ruminococcus flavefaciens; Salmonella sp.; Selenomonas ruminantium; Serratia entomophila; Shigella sp.; Sinorhizobium meliloti; Staphylococcus sp.; Streptococcus sp.; Streptomyces sp.; Synechococcus sp.; Synechocystis sp. PCC 6803; Thermotoga maritima; Treponema sp.; Ureaplasma urealyticum; Vibrio cholerae; Vibrio parahaemolyticus; Xylella fastidiosa; Yersinia sp.; Zymomonas mobilis, vorzugsweise Salmonella sp. oder E. coli, oder Pflanzen, vorzugsweise aus Hefen wie aus den Gattungen Saccharomyces, Pichia, Candida, Hansenula, Torulopsis oder Schizosaccharomyces oder Pflanzen wie A. thaliana, Mais, Weizen, Roggen, Hafer, Triticale, Reis, Gerste, Sojabohne, Erdnuss, Baumwolle, Borretsch, Sonnenblume, Lein, Schlüsselblume, Raps, Canola und Ölrübsen, Maniok, Pfeffer, Sonnenblume, Tagetes, nachtschattenartigen Pflanzen wie Kartoffel, Tabak, Aubergine und Tomate, Vicia-Arten, Erbse, Luzerne, buschartigen Pflanzen wie Kaffee, Kakao, Tee, Salix-Arten, Bäumen wie Ölpalme, Kokosnuss, ausdauernden Gräser wie Roggengras und Schwingel, und Futterpflanzen wie Luzerne und Klee und aus Fichte, Kiefer oder Tanne isolieren lassen. Besonders bevorzugt lassen sich Homologe der obenerwähnten Sequenzen aus S. cerevisiae, E. coli oder Synechocystis sp. oder Pflanzen, vorzugsweise Brassica napus, Glycine max, Zea mays, Baumwolle oder Oryza sativa, isolieren.
  • Die Proteine der vorliegenden Erfindung werden vorzugsweise durch rekombinante DNA-Techniken hergestellt. So wird zum Beispiel ein für das Protein kodierendes Nukleinsäuremolekül in einen Expressionsvektor kloniert, zum Beispiel in einen binären Vektor, der Expressionsvektor wird in eine Wirtszelle eingeführt, zum Beispiel den A. thaliana-Wildtyp NASC N906 oder eine andere wie unten in den Beispielen beschriebene Pflanzenzelle, und das Protein wird in dieser Wirtszelle exprimiert. Beispiele für binäre Vektoren sind pBIN19, pBI101, pBinAR, pGPTV, pCAMBIA, pBIB-HYG, pBecks, pGreen oder pPZP (Hajukiewicz, P. et al., Plant Mol. Biol. 25, 989 (1994), und Hellens et al, Trends in Plant Science 5, 446 (2000)).
  • Gemäß einer Ausführungsform wird das Protein der vorliegenden Erfindung vorzugsweise in einem Kompartiment der Zelle, z. B. in den Plastiden, produziert. Wege zur Einführung von Nukleinsäuren in Plastide und zur Produktion von Proteinen in diesem Kompartiment sind dem Fachmann bekannt und werden ebenfalls in der vorliegenden Anmeldung beschrieben. Gemäß einer Ausführungsform handelt es sich bei dem erfindungsgemäßen Polypeptid um ein Protein, das nach der Expression wie in Spalte 6 von Tabelle II lokalisiert ist, z. B. nicht gezielt, im Zytosol oder Zytoplasma oder in einer Organelle wie einem Plastid oder Mitochondrien oder beiden; für eine Lokalisierung in Plastiden wird es zum Beispiel wie oben beschrieben mit einem Transitpeptid kondensiert. Gemäß einer anderen Ausführungsform wird das Protein der vorliegenden Erfindung ohne ein weiteres Targeting-Signal (z. B. wie hier erwähnt) produziert, z. B. im Zytoplasma der Zelle. Wege zur Produktion von Proteinen im Zytoplasma sind dem Fachmann bekannt. Wege zur Produktion von Proteinen ohne künstliches Targeting sind dem Fachmann bekannt.
  • Die erfindungsgemäßen Nukleinsäuresequenzen oder das Genkonstrukt werden/wird vorteilhafterweise zusammen mit mindestens einem Reportergen in eine Expressionskassette kloniert, die mittels eines Vektors oder direkt in das Genom in den Organismus eingeführt wird. Dieses Reportergen sollte ein leichtes Nachweisen über einen Wachstums-Assay, einen Fluoreszenz-Assay, einen chemischen Assay, einen Biolumineszenz-Assay oder einen Toleranz-Assay, oder über eine photometrische Messung ermöglichen. Zu Beispielen für Reportergene, die zu erwähnen sind, zählen Gene für Toleranz gegenüber Antibiotika oder Herbiziden, Hydrolasegene, Fluoreszenzproteingene, Biolumineszenzgene, Zuckermetabolismusgene oder Nukleotidmetabolismusgene, oder Biosynthesegene wie das Ura3-Gen, das Ilv2-Gen, das Luziferasegen, das β-Galactosidasegen, das gfp-Gen, das 2-Desoxyglucose-6-phosphatphosphatase-Gen, das β-Glucuronidasegen, das β-Lactamasegen, das Neomycinphosphotransferasegen, das Hygromycinphosphotransferasegen, ein Gen für eine mutierte Acetohydroxysäuresynthase (AHAS), das auch als Acetolactatsynthasegen (ALS-Gen) bekannt ist, ein Gen für ein D-Aminosäuren metabolisierendes Enzym oder das BASTA-Gen (= Glufosinattoleranzgen). Diese Gene ermöglichen die einfache Messung und Quantifizierung der Transkriptionsaktivität und somit der Expression der Gene. Auf diese Weise lassen sich Genompositionen identifizieren, die eine abweichende Produktivität zeigen.
  • Gemäß einer bevorzugten Ausführungsform enthält ein Nukleinsäurekonstrukt, zum Beispiel eine Expressionskassette, upstream, d. h. am 5'-Ende der kodierenden Sequenz, einen Promotor, und downstream, d. h. am 3'-Ende, ein Polyadenylierungssignal, und gegebenenfalls noch andere regulatorische Elemente, die operativ an die dazwischenliegende kodierende Sequenz mit einer der wie in Tabelle I, Spalten 5 und 7, gezeigten Nukleinsäure-SEQ ID NO gebunden sind. Mit operativer Bindung ist die aufeinanderfolgende Anordnung von Promotor, kodierender Sequenz, Terminator und gegebenenfalls anderen regulatorischen Elementen in einer solchen Weise, dass alle der regulatorischen Elemente ihre Funktion bei der Expression der kodierenden Sequenz in angemessener Weise erfüllen können, gemeint. Die für die operative Bindung bevorzugten Sequenzen sind Erkennungssequenzen, mit denen die subzelluläre Lokalisierung in Plastiden sichergestellt wird. Es können jedoch auch Erkennungssequenzen, mit denen die subzelluläre Lokalisierung im Mitochondrium, im endoplasmischen Retikulum (= ER), im Zellkern, in Ölkörperchen oder in anderen Kompartimenten sichergestellt wird, eingesetzt werden, ebenso wie Translationspromotoren wie die 5'-Leitsequenz im Tabakmosaikvirus (Gallie et al., Nucl. Acids Res. 15 8693 (1987)).
  • Ein Nukleinsäurekonstrukt, zum Beispiel eine Expressionskassette, kann zum Beispiel einen konstitutiven Promotor oder einen gewebespezifischen Promotor (vorzugsweise den USP- oder Napin-Promotor) des zu exprimierenden Gens und das ER-Retentionssignal enthalten. Für das ER-Retentionssignal verwendet man vorzugsweise die KDEL-Aminosäuresequenz (Lysin, Asparaginsäure, Glutaminsäure, Leucin) oder die KKX-Aminosäuresequenz (Lysin-Lysin-X-Stop, wobei X jede andere bekannte Aminosäure bedeutet).
  • Zur Expression in einem Wirtsorganismus, zum Beispiel einer Pflanze, insertiert man die Expressionskassette vorteilhafterweise in einen Vektor wie beispielsweise ein Plasmid, einen Phagen oder andere DNA, die eine optimale Expression von Genen in dem Wirtsorganismus erlaubt. Beispiele für geeignete Plasmide sind: in E. coli pLG338, pACYC184, die pBR-Reihe wie z. B. pBR322, die pUC-Reihe wie z. B. pUC18 oder pUC19, die M113mp-Reihe, pKC30, pRep4, pHS1, pHS2, pPLc236, pMBL24, pLG200, pUR290, pIN-III113-B1, λgt11 oder pBdCI; in Streptomyces pIJ101, pIJ364, pIJ702 oder pIJ361; in Bacillus pUB110, pC194 oder pBD214; in Corynebacterium pSA77 oder pAJ667; in Pilzen pALS1, pIL2 oder pBB116; andere vorteilhafte Pilzvektoren wurden von Romans M. A. et al., Yeast 8, 423 (1992) und von van den Hondel, C. A. M. J. J. et al. [(1991) "Heterologous gene expression in filamentous fungi"] sowie in "More Gene Manipulations" in "Fungi" in Bennet J. W. & Lasure L. L., Hrsg., S. 396–428, Academic Press, San Diego, und in "Gene transfer systems and vector development for filamentous fungi" [van den Hondel, C. A. M. J. J. & Punt, P. J. (1991) in: Applied Molecular Genetics of Fungi, Peberdy J. F. et al., Hrsg., S. 1–28, Cambridge University Press: Cambridge]. Beispiele für vorteilhafte Hefepromotoren sind 2 μM, pAG-1, YEp6, YEp13 oder pEMBLYe23. Beispiele für Algen- oder Pflanzenpromotoren sind pLGV23, pGHlac+, pBIN19, pAK2004, pVKH oder pDH51 (siehe Schmidt, R. und Willmitzer, L., Plant Cell Rep. 7, 583 (1988))). Die oben angeführten Vektoren bzw. Derivate der oben angeführten Vektoren sind eine kleine Auswahl aus den möglichen Plasmiden. Weitere Plasmide sind dem Fachmann gut bekannt und finden sich zum Beispiel in dem Buch "Cloning Vektors" (Hrsg. Pouwels P. H. et al. Elsevier, Amsterdam-New York-Oxford, 1985, ISBN 0 444 904018). Geeignete Pflanzenvektoren sind unter anderem in "Methods in Plant Molecular Biology and Biotechnology" (CRC Press, Kap. 6/7, S. 71–119) beschrieben. Vorteilhafte Vektoren sind als Shuttle-Vektoren oder binäre Vektoren bekannt, die in E. coli und Agrobacterium replizieren.
  • Mit Vektoren sind mit Ausnahme von Plasmiden alle anderen dem Fachmann bekannten Vektoren gemeint, wie zum Beispiel Phagen, Viren wie SV40, CMV, Baculovirus, Adenovirus, Transposonen, IS-Elemente, Phasmide, Phagemide, Cosmide, lineare oder zirkuläre DNA. Diese Vektoren können autonom im Wirtsorganismus repliziert werden oder chromosomal repliziert werden, wobei die chromosomale Replikation bevorzugt ist.
  • Gemäß einer weiteren Ausführungsform des Vektors kann die erfindungsgemäße Expressionskassette auch vorteilhaft in Form einer linearen DNA in die Organismen eingeführt und durch heterologe oder homologe Rekombination in das Genom des Wirtsorganismus integriert werden. Diese lineare DNA kann sich aus einem linearisierten Plasmid oder nur aus der Expressionskassette als Vektor oder den erfindungsgemäßen Nukleinsäuresequenzen zusammensetzen.
  • Gemäß einer weiteren vorteilhaften Ausführungsform kann die erfindungsgemäße Nukleinsäuresequenz auch alleine in einen Organismus eingeführt werden.
  • Wenn zusätzlich zu der erfindungsgemäßen Nukleinsäuresequenz weitere Gene in den Organismus eingeführt werden sollen, können jeweils alle zusammen mit einem Reportergen in einem einzelnen Vektor oder jedes einzelne Gen mit einem Reportergen in einem Vektor in den Organismus eingeführt werden, wobei die verschiedenen Vektoren gleichzeitig oder nacheinander eingeführt werden können.
  • Der Vektor enthält vorteilhafterweise wenigstens eine Kopie der erfindungsgemäßen Nukleinsäuresequenzen und/oder der erfindungsgemäßen Expressionskassette (= Genkonstrukt).
  • Die Erfindung stellt weiterhin einen isolierten rekombinanten Expressionsvektor bereit, der eine für ein wie in Tabelle II, Spalte 5 oder 7, gezeigtes Polypeptid kodierende Nukleinsäure enthält, wobei die Expression des Vektors in einer Wirtszelle zu einem erhöhten Ertrag, z. B. einem erhöhten Ertragsmerkmal, zum Beispiel einer gesteigerten Toleranz gegenüber abiotischem Umweltstress, zum Beispiel einer erhöhten Toleranz gegenüber Dürre und/oder Toleranz gegenüber niedrigen Temperaturen und/oder einer erhöhten Effizienz der Nährstoffausnutzung, einem erhöhten intrinsischen Ertrag und/oder einem erhöhten anderen erwähnten Ertragsmerkmal, verglichen mit einer Wirtszellensorte vom Wildtyp führt. So, wie er hier verwendet wird, bezieht sich der Ausdruck ”Vektor” auf ein Nukleinsäuremolekül, das dazu in der Lage ist, eine andere Nukleinsäure, an die es gebunden ist, zu transportieren. Ein Typ von Vektor ist ein ”Plasmid”, was sich auf eine zirkuläre doppelsträngige DNA-Schleife bezieht, in die zusätzliche DNA-Segmente ligiert werden können. Ein anderer Vektortyp ist ein viraler Vektor, bei dem zusätzliche DNA-Segmente in das virale Genom ligiert werden können. Bestimmte Vektoren sind zur autonomen Replikation in einer Wirtszelle, in die sie eingeführt worden sind, in der Lage (z. B. bakterielle Vektoren mit einem bakteriellen Replikationsursprung und episomale Säugetiervektoren). Andere Vektoren (z. B. nicht-episomale Säugetiervektoren) werden, wenn sie in die Wirtszelle eingebracht werden, in das Genom einer Wirtszelle oder einer Organelle integriert, und sie replizieren sich somit zusammen mit dem Genom des Wirts bzw. der Organelle. Außerdem sind bestimmte Vektoren dazu fähig, die Expression von Genen, mit denen sie operativ verbunden sind, zu steuern. Solche Vektoren werden hier als ”Expressionsvektoren” bezeichnet. Im Allgemeinen liegen Expressionsvektoren, die bei rekombinanten DNA-Techniken von Nutzen sind, häufig in Form von Plasmiden vor. In der vorliegenden Beschreibung können ”Plasmid” und ”Vektor” austauschbar verwendet werden, da es sich bei dem Plasmid um die am häufigsten verwendete Form von Vektor handelt. Die Erfindung soll jedoch auch solche anderen Formen von Expressionsvektoren wie virale Vektoren (z. B. replikationsdefektive Retroviren, Adenoviren und adenoassoziierte Viren), die äquivalente Funktionen erfüllen, einschließen.
  • Die rekombinanten Expressionsvektoren der Erfindung enthalten eine Nukleinsäure der Erfindung in einer Form, die für die Expression der Nukleinsäure in einer Wirtszelle geeignet ist, was heißt, dass die rekombinanten Expressionsvektoren eine oder mehrere auf Grundlage der für die Expression zu verwendenden Wirtszellen ausgewählte regulatorische Sequenzen einschließen, die operativ mit der zu exprimierenden Nukleinsäuresequenz verbunden sind. So, wie der Ausdruck hier in Bezug auf einen rekombinanten Expressionsvektor verwendet wird, soll „operativ gebunden” bedeuten, dass die Nukleotidsequenz von Interesse auf eine Weise an die regulatorische(n) Sequenz(en) gebunden ist, die die Expression der Nukleotidsequenz (z. B. in einem in-vitro-Transkriptions/Translationssystem oder, wenn der Vektor in eine Wirtszelle eingeführt wird, in einer Wirtszelle) erlaubt. Der Ausdruck „regulatorische Sequenz” soll Promotoren, Enhancer und andere Elemente zur Steuerung der Expression (z. B. Polyadenylierungssignale) einschließen. Solche regulatorischen Sequenzen sind zum Beispiel in Goeddel, Gene Expression Technology: Methods in Enzymology 185, Academic Press, San Diego, CA (1990) und Gruber und Crosby, in: Methods in Plant Molecular Biology and Biotechnology, Hrsg. Glick und Thompson, Kapitel 7, 89–108, CRC Press: Boca Raton, Florida einschließlich den darin aufgeführten Literaturstellen beschrieben. Zu den regulatorischen Sequenzen zählen die, die in vielen Arten von Wirtszellen die konstitutive Expression einer Nukleotidsequenz steuern, und die, die die Expression der Nukleotidsequenz nur in bestimmten Wirtszellen oder unter bestimmten Bedingungen steuern. Dem Fachmann wird klar sein, dass die Entwicklung des Expressionsvektors von Faktoren wie der Wahl der zu transformierenden Wirtszelle, dem gewünschten Expressionsniveau des Polypeptids usw. abhängen kann. Die Expressionsvektoren der Erfindung können in Wirtszellen eingeführt werden, um so Polypeptide oder Peptide einschließlich Fusionspolypeptide oder -peptide zu produzieren, die durch wie hier beschriebene Nukleinsäuren kodiert werden (z. B. LTRRPs, mutierte Formen von LTRRPs, Fusionspolypeptide, „Yield Related Proteins” or „YRPs” usw.).
  • Die rekombinanten Expressionsvektoren der Erfindung können für die Expression des Polypeptids der Erfindung in Pflanzenzellen entwickelt sein. So können zum Beispiel LTRRP- oder YRP-Gene in Pflanzenzellen exprimiert werden (siehe Schmidt R., und Willmitzer L., Plant Cell Rep. 7 (1988); Plant Molecular Biology and Biotechnology, C Press, Boca Raton, Florida, Chapter 6/7, S. 71–119 (1993); White F. F., Jenes B. et al., Techniques for Gene Transfer, in: Transgenic Plants, Band 1, Engineering and Utilization, Hrsg.. Kung und Wu R., 128–43, Academic Press: 1993; Potrykus, Annu. Rev. Plant Physiol. Plant Molec. Biol. 42, 205 (1991) und die darin angeführten Literaturstellen). Geeignete Wirtszellen werden weiter in Goeddel, Gene Expression Technology: Methods in Enzymology 185, Academic Press: San Diego, CA (1990) diskutiert. Alternativ dazu kann man den rekombinanten Expressionsvektor in vitro transkribieren und translatieren, zum Beispiel unter Einsatz von regulatorischen Sequenzen des T7-Promotors und T7-Polymerase.
  • Die Expression von Polypeptiden in Prokaryonten wird am häufigsten mit Vektoren, die konstitutive oder induzierbare Promotoren enthalten, die die Expression entweder von Fusions- oder von Nicht-Fusionspolypeptiden steuern, durchgeführt. Fusionsvektoren addieren eine gewisse Anzahl an Aminosäuren an ein darin kodiertes Polypeptid, gewöhnlich am Aminoterminus des rekombinanten Polypeptids, jedoch auch am C-Terminus oder fusioniert in geeigneten Regionen in den Polypeptiden. Solche Fusionsvektoren dienen typischerweise drei Zwecken: 1) zur Erhöhung der Expression eines rekombinanten Polypeptids; 2) zur Erhöhung der Löslichkeit eines rekombinanten Polypeptids und 3) zur Unterstützung bei der Aufreinigung eines rekombinanten Polypeptids, indem sie als Ligand bei der Affinitätsaufreinigung wirken. Häufig wird bei Fusionsexpressionsvektoren eine Stelle für die proteolytische Spaltung an dem Verbindungspunkt zwischen der Fusionseinheit und dem rekombinanten Polypeptid eingeführt, um die Abtrennung des rekombinanten Polypeptids von der Fusionseinheit im Anschluss an die Aufreinigung des Fusionspolypeptids zu ermöglichen. Solche Enzyme und ihre entsprechenden Erkennungssequenzen schließen Faktor Xa, Thrombin und Enterokinase ein.
  • Die Pflanzenexpressionskassette kann beispielsweise in dem pRT-Transformationsvektor ((a) Toepfer et al., Methods Enzymol. 217, 66 (1993), (b) Toepfer et al., Nucl. Acids. Res. 15, 5890 (1987)) installiert werden. Alternativ dazu kann man einen rekombinanten Vektor (= Expressionsvektor) auch in vitro transkribieren und translatieren, z. B. unter Verwendung des T7-Promotors und der T7-RNA-Polymerase.
  • In Prokaryonten eingesetzte Expressionsvektoren bedienen sich häufig induzierbarer Systeme mit und ohne Fusionsproteinen oder Fusionsoligopeptiden, wobei diese Fusionen sowohl N-terminal als auch C-terminal oder in anderen brauchbaren Domänen eines Proteins erfolgen können. Solche Fusionsvektoren dienen gewöhnlich den folgenden Zwecken: 1) zur Erhöhung der RNA-Expressionsrate; 2) zur Erhöhung der erzielbaren Proteinsyntheserate; 3) zur Erhöhung der Löslichkeit des Proteins; 4) oder zur Vereinfachung der Aufreinigung mittels einer Bindungssequenz, die sich für die Affinitätschromatographie verwenden lässt. Stellen für eine proteolytische Spaltung werden häufig auch über Fusionsproteine eingeführt, was es erlaubt, einen Teil des Fusionsproteins abzuspalten und aufzureinigen. Solche Erkennungssequenzen für Proteasen werden erkannt, z. B. Faktor Xa, Thrombin und Enterokinase.
  • Typische vorteilhafte Fusions- und Expressionsvektoren sind pGEX (Pharmacia Biotech Inc; Smith D. B. und Johnson K. S., Gene 67, 31 (1988)), pMAL (New England Biolabs, Beverly, MA) und pRIT5 (Pharmacia, Piscataway, NJ), die Glutathion-S-transferase (GST), das maltosebindende Protein bzw. Protein A enthalten.
  • Gemäß einer Ausführungsform wird die kodierende Sequenz des Polypeptids der Erfindung in einen pGEX-Expressionsvektor kloniert, wodurch ein Vektor geschaffen wird, der für ein Fusionspolypeptid kodiert, welches, vom N-Terminus zum C-Terminus, GST-Thrombinspaltstelle-X-Polypeptid enthält. Das Fusionspolypeptid kann durch Affinitätschromatographie unter Verwendung von Glutathion-Agarose-Harz aufgereinigt werden. Rekombinante PK LTRRP oder YRP unfusioniert von GST lässt sich durch Spaltung des Fusionspolypeptids mit Thrombin zurückgewinnen. Andere Beispiele für E. coli-Expressionsvektoren sind pTrc-(Amann et al., Gene 69, 301 (1988)) und pET-Vektoren (Studier et al., Gene Expression Technology: Methods in Enzymology 185, Academic Press, San Diego, California (1990) 60–89; Stratagene, Amsterdam, Niederlande).
  • Die Expression des Target-Gens vom pTrc-Vektor beruht auf der Wirts-RNA-Polymerasetranskription von einem Hybrid-trp-lac-Fusionspromotor. Die Expression des Target-Gens vom pET 11d-Vektor beruht auf der Transkription von einem T7 gn10-lac-Fusionspromotor, vermittelt durch eine gemeinsam exprimierte virale RNA-Polymerase (T7 gn1). Diese virale Polymerase wird durch den Wirtsstamm BL21(DE3) oder HMS174(DE3) aus einem residierenden 1-Prophagen, der ein T7 gn1-Gen unter der transkriptionellen Kontrolle des lacUV 5-Promotors trägt, bereitgestellt.
  • Gemäß einer weiteren Ausführungsform der vorliegenden Erfindung werden die LTRRPs oder YRPs in Pflanzen und Pflanzenzellen wie einzelligen Pflanzenzellen (z. B. Algen) (siehe Falciatore et al., Marine Biotechnology 1 (3), 239 (1999) und die darin aufgeführten Literaturstellen) und Pflanzenzellen aus höheren Pflanzen (z. B. die Spermatophyten, wie Kulturpflanzen) exprimiert, zum Beispiel um Pflanzen aus den Pflanzenzellen zu regenerieren. Ein wie in Tabelle II, Spalte 5 oder 7, gezeigtes, für LTRRP oder YRP kodierendes Nukleinsäuremolekül lässt sich auf beliebige Weise einschließlich Transfektion, Transformation oder Transduction, Elektroporation, Bombardierung mit Partikeln, Agroinfektion und dergleichen in eine Pflanzenzelle „einführen”. Eine dem Fachmann bekannte Transformationsmethode ist das Eintauchen einer blühenden Pflanze in eine Agrobacteria-Lösung, wobei das Agrobacterium die Nukleinsäure der Erfindung enthält, gefolgt vom Züchten der transformierten Gameten.
  • Andere geeignete Methoden zur Transformierung oder Transfizierung von Wirtszellen einschließlich Pflanzenzellen finden sich in Sambrook, et al., Molecular Cloning: A Laboratory Manual. 2. Aufl., Cold Spring Harbor Laboratory, Cold Spring Harbor Laboratory Press, Cold Spring Harbor, NY, 1989, und anderen Laborhandbüchern wie Methods in Molecular Biology, 1995, Band 44, Agrobacterium protocols, Hrsg.: Gartland und Davey, Humana Press, Totowa, New Jersey. Da eine erhöhte Toleranz gegenüber abiotischem Umweltstress und/oder ein erhöhter Ertrag ein allgemeines Merkmal ist, das in einer Vielzahl verschiedener Pflanzen wie Mais, Weizen, Roggen, Hafer, Triticale, Reis, Gerste, Sojabohne, Erdnuss, Baumwolle, Raps und Canola, Maniok, Pfeffer, Sonnenblume und Tagetes, nachtschattenartige Pflanzen wie Kartoffel, Tabak, Aubergine, und Tomate, Vicia-Arten, Erbse, Luzerne, buschartigen Pflanzen (Kaffee, Kakao, Tee), Salix-Arten, Bäumen (Ölpalme, Kokosnuss), ausdauernden Gräsern, und Futterpflanzen vererbt werden soll, sind diese Kulturpflanzen auch die bevorzugten Target-Pflanzen für einen genetischen Eingriff als eine weitere Ausführungsform der vorliegenden Erfindung. Zu den Futterkulturpflanzen zählen, wobei diese Aufzählung nicht einschränkend ist, Weizengras, Kanarisches Glanzgras, Holub/Sumpftrespe, Deutsches Weidelgras, Wiesenrispengras, Wiesenknäuelgras, Luzerne, Salfoin, Gewöhnlicher Hornklee, Schweden-Klee, Wiesenklee/Roter Klee und Honigklee.
  • Gemäß einer Ausführungsform der vorliegenden Erfindung wird die Transfektion eines für LTRRP oder YRP wie in Tabelle II, Spalte 5 oder 7, gezeigt kodierenden Nukleinsäuremoleküls in eine Pflanze durch einen durch Agrobacterium vermittelten Gentransfer erzielt. Die durch Agrobacterium vermittelte Pflanzentransformation kann zum Beispiel unter Verwendung des GV3101(pMP90)-(Koncz und Schell, Mol. Gen. Genet. 204, 383 (1986)) oder LBA4404-(Clontech)Stamms von Agrobacterium tumefaciens durchgeführt werden. Die Transformation kann gemäß Standardtransformations- und -regenerationstechniken erfolgen (Deblaere et al., Nucl. Acids Res. 13, 4777 (1994), Gelvin, Stanton B. und Schilperoort Robert A, Plant Molecular Biology Manual, 2. Aufl. – Dordrecht: Kluwer Academic Publ., 1995. – in Sect., Ringbuc Zentrale Signatur: BT11-P ISBN 0-7923-2731-4; Glick Bernard R., Thompson John E., Methods in Plant Molecular Biology and Biotechnology, Boca Raton: CRC Press, 1993 360 S., ISBN 0-8493-5164-2). Raps zum Beispiel kann durch Kotyledon- oder Hypokotyltransformation (Moloney et al., Plant Cell Report 8, 238 (1989); De Block et al., Plant Physiol. 91, 694 (1989)) transformiert werden. Die Verwendung von Antibiotika für Agrobacterium und Pflanzenselektion hängt von dem für die Transformation verwendeten binären Vektor und dem Agrobacterium-Stamm ab. Die Rapsselektion erfolgt normalerweise unter Einsatz von Kanamycin als selektierbarem Pflanzenmacker. Ein durch Agrobacterium vermittelter Gentransfer auf Flachs kann zum Beispiel unter Anwendung einer von Mlynarova et al., Plant Cell Report 13, 282 (1994) beschriebenen Technik durchgeführt werden. Darüber hinaus kann die Transformation von Sojabohne zum Beispiel unter Anwendung einer in der europäischen Patentschrift Nr. 424 047 , US-Patentschrift Nr. 5,322,783 , europäischen Patentschrift Nr. 397 687 , US-Patentschrift Nr. 5,376,543 , oder US-Patentschrift Nr. 5,169,770 beschriebenen Technik durchgeführt werden. Die Transformation von Mais lässt sich durch Partikelbombardierung, polyethylenglykolvermittelte DNA-Aufnahme oder durch die Siliziumcarbidfasertechnik (siehe zum Beispiel, Freeling und Walbot "The maize handbook" Springer Verlag: New York (1993) ISBN 3-540-97826-7) erreichen. Ein spezielles Beispiel einer Mais-Transformation findet sich in der US-Patentschrift Nr. 5,990,387 , und ein spezielles Beispiel einer Weizen-Transformation findet sich in der PCT-Anmeldung Nr. WO 93/07256 .
  • Gemäß der vorliegenden Erfindung kann das eingeführte, für LTRRP oder YRP wie in Tabelle II, Spalte 5 oder 7, gezeigt kodierende Nukleinsäuremolekül in der Pflanzenzelle stabil gehalten werden, wenn es in ein nicht chromosomales autonomes Replikon eingebaut oder in die Pflanzenchromosomen oder das Genom der Organelle integriert wird. Alternativ dazu kann das eingeführte LTRRP oder YRP auf einem extrachromosomalen, nicht replizierenden Vektor vorliegen und transient exprimiert werden bzw. transient aktiv sein.
  • Gemäß einer Ausführungsform kann man einen homologen rekombinanten Mikroorganismus herstellen, bei dem das LTRRP oder YRP in ein Chromosom integriert ist, ein Vektor wird hergestellt, welcher wenigstens einen Teil eines für LTRRP oder YRP wie in Tabelle II, Spalte 5 oder 7, gezeigt kodierenden Nukleinsäuremoleküls enthält, in den eine Deletion, Addition oder Substitution eingeführt wurde, um so das LTRRP- oder YRP-Gen zu verändern, z. B. funktionell zu stören. Zum Beispiel handelt es sich bei dem LTRRP- oder YRP-Gen um ein Hefegen wie ein Gen von S. cerevisiae, oder von Synechocystis, oder ein bakterielles Gen wie ein E.coli-Gen, es kann jedoch auch ein Homolog aus einer verwandten Pflanze oder sogar aus einer Säugetier- oder Insektenquelle sein. Der Vektor kann so beschaffen sein, dass bei der homologen Rekombination das endogene, für LTRRP oder YRP wie in Tabelle II, Spalte 5 oder 7, gezeigt kodierende Nukleinsäuremolekül mutiert oder anderweitig verändert ist, aber immer noch für ein funktionelles Polypeptid kodiert (z. B. kann die upstream befindliche regulatorische Region verändert sein, wodurch die Expression des endogenen LTRRP oder YRP geändert wird). Gemäß einer bevorzugten Ausführungsform wird die biologische Aktivität des Proteins der Erfindung bei der homologen Rekombination erhöht. Zur Bildung einer Punktmutation über eine homologe Rekombination kann man bei einer als Chimeraplastie bekannten Technik DNA-RNA-Hybride einsetzen (Cole-Strauss et al., Nucleic Acids Research 27 (5), 1323 (1999) und Kmiec, Gene Therapy American Scientist. 87 (3), 240 (1999)). Vorschriften für die homologe Rekombination in Physcomitrella patens sind ebenfalls im Stand der Technik gut bekannt und werden hier für eine Verwendung in Betracht gezogen.
  • Wogegen der veränderte Teil des für LTRRP oder YRP wie in Tabelle II, Spalte 5 oder 7, gezeigt kodierenden Nukleinsäuremoleküls im Vektor für die homologe Rekombination an seinem 5'- und 3'-Ende durch ein zusätzliches Nukleinsäuremolekül des LTRRP- oder YRP-Gens flankiert wird, um zu ermöglichen, dass eine homologe Rekombination zwischen dem auf dem Vektor befindlichen exogenen LTRRP- oder YRP-Gen und einem endogenen LTRRP- oder YRP-Gen in einem Mikroorganismus oder einer Pflanze stattfinden kann. Das zusätzliche flankierende LTRRP- oder YRP-Nukleinsäuremolekül weist eine Länge auf, die für eine erfolgreiche homologe Rekombination mit dem endogenen Gen ausreicht. Typischerweise schließt der Vektor mehrere hundert Basenpaare bis zu Kilobasen flankierender DNA ein (sowohl am 5'- als auch am 3'-Ende). Siehe z. B. Thomas K. R., und Capecchi M. R., Cell 51, 503 (1987) für eine Beschreibung von Vektoren für die homologe Rekombination oder Strepp et al., PNAS, 95 (8), 4368 (1998) zur cDNA-basierten Rekombination in Physcomitrella patens. Der Vektor wird in einen Mikroorganismus oder eine Pflanzenzelle eingeführt (z. B. durch polyethylenglykolvermittelte DNA), und Zellen, in denen sich das eingeführte LTRRP- oder YRP-Gen homolog mit dem endogenen LTRRP- oder YRP-Gen rekombiniert hat, werden nach im Stand der Technik bekannten Methoden selektiert.
  • Ob es in einem extrachromosomalen, nicht replizierenden Vektor oder einem in ein Chromosom integrierten Vektor vorliegt – das für LTRRP oder YRP wie in Tabelle II, Spalte 5 oder 7, gezeigt kodierende Nukleinsäuremolekül residiert vorzugsweise in einer Pflanzenexpressionskassette. Eine Pflanzenexpressionskassette enthält vorzugsweise regulatorische Sequenzen, die dazu in der Lage sind, die Genexpression in Pflanzenzellen zu steuern, die operativ gebunden sind, so dass jede Sequenz ihre Funktion erfüllen kann, zum Beispiel die Termination der Transkription durch Polyadenylierungssignale. Bevorzugte Polyadenylierungssignale sind diejenigen, die aus Agrobacterium tumefaciens t-DNA stammen, wie das als Octopinsynthase bekannte Gen 3 des Ti-Plasmids pTiACH5 (Gielen et al., EMBO J. 3, 835 (1984)) oder funktionelle Äquivalente davon, es eignen sich jedoch auch alle anderen in Pflanzen funktionell aktiven Terminatoren. Da die Expression von Pflanzengenen sehr häufig nicht auf die transkriptionellen Ebenen beschränkt ist, enthält eine Pflanzen-Expressionskassette vorzugsweise auch andere funktionsfähig verbundene Sequenzen wie Translationsenhancer, beispielsweise die Overdrive-Sequenz, welche die 5'-untranslatierte Leader-Sequenz aus Tabakmosaikvirus, die das Polypeptid/RNA-Verhältnis erhöht, enthält (Gallie et al., Nucl. Acids Research 15, 8693 (1987)). Beispiele für Pflanzenexpressionsvektoren schließen die, die in: Becker D. et al., Plant Mol. Biol. 20, 1195 (1992); und Bevan M. W., Nucl. Acid. Res. 12, 8711 (1984); und "Vectors for Gene Transfer in Higher Plants" in: Transgenic Plants, Band 1, Engineering and Utilization, Hrsg.. Kung und R. Wu, Academic Press, 1993, S. 15–38 ausführlich beschrieben sind, ein.
  • ”Transformation” ist hier als ein Verfahren zur Einführung von heterologer DNA in eine Pflanzenzelle, in Pflanzengewebe oder in eine Pflanze definiert. Sie kann unter natürlichen oder künstlichen Bedingungen stattfinden, unter Einsatz verschiedener im Stand der Technik gut bekannter Methoden. Transformation kann auf einer beliebigen bekannten Methode zur Insertion fremder Nukleinsäuresequenzen in eine prokaryontische oder eukaryontische Wirtszelle beruhen. Die Methode wird entsprechend der zu transformierenden Wirtszelle ausgewählt und kann, wobei dies nicht ausschließend ist, eine virale Infektion, eine Elektroporation, eine Lipofektion und eine Bombardierung mit Partikeln einschließen. Zu diesen ”transformierten” Zellen zählen stabil transformierte Zellen, bei denen die insertierte DNA dazu in der Lage ist, entweder als ein autonom replizierendes Plasmid oder als Teil des Wirtschromosoms zu replizieren. Sie können auch Zellen einschließen, die die insertierte DNA oder RNA über begrenzte Zeiträume transient exprimieren. Transformierte Pflanzenzellen, Pflanzengewebe oder Pflanzen sind so zu verstehen, dass sie nicht nur das Endprodukt des Transformationsprozesses umfassen, sondern auch die transgene Nachkommenschaft davon.
  • Die Ausdrücke ”transformiert,” ”transgen” und ”rekombinant” beziehen sich auf einen Wirtsorganismus, z. B. ein Bakterium oder eine Pflanze, in den ein heterologes Nukleinsäuremolekül eingeführt wurde. Das Nukleinsäuremolekül kann stabil in das Genom des Wirts integriert sein oder das Nukleinsäuremolekül kann auch als extrachromosomales Molekül vorliegen. Ein solches extrachromosomales Molekül kann autoreplizierend sein. Transformierte Zellen, Gewebe oder Pflanzen sind so zu verstehen, dass sie nicht nur das Endprodukt des Transformationsprozesses umfassen, sondern auch die transgene Nachkommenschaft davon. Ein ”nicht transformierter”, ”nicht transgener” oder ”nicht rekombinanter” Wirt bezieht sich auf einen Organismus vom Wildtyp, z. B. ein Bakterium oder eine Pflanze, der das heterologe Nukleinsäuremolekül nicht enthält.
  • Der Ausdruck ”transgene Pflanze” bezieht sich, so wie er hier verwendet wird, auf eine Pflanze, die eine fremde Nukleotidsequenz enthält, die entweder in ihr nukleares Genom oder ein organellares Genom insertiert ist. Er umfasst weiterhin die Nachkommengenerationen, d. h. die T1-, T2- und sich daran anschließende Generationen oder die BC1-, BC2- und sich daran anschließende Generationen sowie Kreuzungen davon mit nicht transgenen oder anderen transgenen Pflanzen.
  • Der Wirtsorganismus (= transgene Organismus) enthält vorteilhafterweise wenigstens eine Kopie der erfindungsgemäßen Nukleinsäure und/oder des erfindungsgemäßen Nukleinsäurekonstrukts.
  • Im Prinzip lassen sich alle Pflanzen als Wirtsorganismus verwenden. Bevorzugte transgene Pflanzen sind zum Beispiel ausgewählt aus den Familien Aceraceae, Anacardiaceae, Apiaceae, Asteraceae, Brassicaceae, Cactaceae, Cucurbitaceae, Euphorbiaceae, Fabaceae, Malvaceae, Nymphaeaceae, Papaveraceae, Rosaceae, Salicaceae, Solanaceae, Arecaceae, Bromeliaceae, Cyperaceae, Iridaceae, Liliaceae, Orchidaceae, Gentianaceae, Labiaceae, Magnoliaceae, Ranunculaceae, Carifolaceae, Rubiaceae, Scrophulariaceae, Caryophyllaceae, Ericaceae, Polygonaceae, Violaceae, Juncaceae oder Poaceae, und vorzugsweise aus einer Pflanze, gewählt aus der Gruppe der Familien Apiaceae, Asteraceae, Brassicaceae, Cucurbitaceae, Fabaceae, Papaveraceae, Rosaceae, Solanaceae, Liliaceae oder Poaceae. Bevorzugt werden Nutzpflanzen, wie etwa Pflanzen, die in vorteilhafter Weise ausgewählt werden aus der Gruppe der Gattung Erdnuss, Ölraps, Canola, Sonnenblume, Saflor, Olive, Sesam, Haselnuss, Mandel, Avocado, Lorbeer, Gartenkürbis/Kürbis, Leinsamen, Soja, Pistazie, Borretsch, Mais, Weizen, Roggen, Hafer, Sorghum und Hirse, Triticale, Reis, Gerste, Cassava bzw. Maniokstrauch, Kartoffel, Zuckerrübe, Aubergine, Alfalfa und winterharten Gräsern und Viehfutterpflanzen, Ölpalme, Gemüsepflanzen (Kohlarten, Wurzelgemüse, Knollengemüse, Bohnengemüse bzw. Hülsenfrüchte, Fruchtgemüse, Zwiebelgemüse, Blattgemüse und Stängelgemüse), Buchweizen, Jerusalm-Artischocke, Saubohne, Wicken, Linse, Buschbohne, Lupine, Klee und Luzerne, um nur einige von ihnen zu erwähnen.
  • Gemäß einer Ausführungsform der Erfindung sind transgene Pflanzen aus der aus Getreide, Sojabohne, Raps (einschließlich Ölraps, insbesondere Canola und Winterraps), Baumwolle, Zuckerrohr und Kartoffel, insbesondere Mais, Soja, Raps (einschließlich Ölraps, insbesondere Canola und Winterraps), Baumwolle, Weizen und Reis bestehenden Gruppe ausgewählt.
  • Gemäß einer Ausführungsform der Erfindung handelt es sich bei der transgenen Pflanze um eine gymnosperme Pflanze, insbesondere eine Fichte, Kiefer oder Tanne.
  • Gemäß einer Ausführungsform ist die Wirtspflanze aus den Familien Aceraceae, Anacardiaceae, Apiaceae, Asteraceae, Brassicaceae, Cactaceae, Cucurbitaceae, Euphorbiaceae, Fabaceae, Malvaceae, Nymphaeaceae, Papaveraceae, Rosaceae, Salicaceae, Solanaceae, Arecaceae, Bromeliaceae, Cyperaceae, Iridaceae, Liliaceae, Orchidaceae, Gentianaceae, Labiaceae, Magnoliaceae, Ranunculaceae, Carifolaceae, Rubiaceae, Scrophulariaceae, Caryophyllaceae, Ericaceae, Polygonaceae, Violaceae, Juncaceae oder Poaceae und vorzugsweise aus einer Pflanze, ausgewählt aus der Gruppe der Familien Apiaceae, Asteraceae, Brassicaceae, Cucurbitaceae, Fabaceae, Papaveraceae, Rosaceae, Solanaceae, Liliaceae oder Poaceae, ausgewählt. Bevorzugt als Wirtspflanzen sind Kulturpflanzen und insbesondere die obenerwähnten Pflanzen, wie die obenerwähnten Familien und Gattungen, zum Beispiel bevorzugt die Arten Anacardium occidentale, Calendula officinalis, Carthamus tinctorius, Cichorium intybus, Cynara scolymus, Helianthus annus, Tagetes lucida, Tagetes erecta, Tagetes tenuifolia; Daucus carota; Corylus avellana, Corylus colurna, Borago officinalis; Brassica napus, Brassica rapa ssp., Sinapis arvensis Brassica juncea, Brassica juncea var. juncea, Brassica juncea var. crispifolia, Brassica juncea var. foliosa, Brassica nigra, Brassica sinapioides, Melanosinapis communis, Brassica oleracea, Arabidopsis thaliana, Anana comosus, Ananas ananas, Bromelia comosa, Carica papaya, Cannabis sative, Ipomoea batatus, Ipomoea pandurata, Convolvulus batatas, Convolvulus tiliaceus, Ipomoea fastigiata, Ipomoea tiliacea, Ipomoea triloba, Convolvulus panduratus, Beta vulgaris, Beta vulgaris var. altissima, Beta vulgaris var. vulgaris, Beta maritima, Beta vulgaris var. perennis, Beta vulgaris var. conditiva, Beta vulgaris var. esculenta, Cucurbita maxima, Cucurbita mixta, Cucurbita pepo, Cucurbita moschata, Olea europaea, Manihot utilissima, Janipha manihot, Jatropha manihot., Manihot aipil, Manihot dulcis, Manihot manihot, Manihot melanobasis, Manihot esculenta, Ricinus communis, Pisum sativum, Pisum arvense, Pisum humile, Medicago sativa, Medicago falcata, Medicago varia, Glycine max Dolichos soja, Glycine gracilis, Glycine hispida, Phaseolus max, Soja hispida, Soja max, Cocos nucifera, Pelargonium grossularioides, Oleum cocoas, Laurus nobilis, Persea americana, Arachis hypogaea, Linum usitatissimum, Linum humile, Linum austriacum, Linum bienne, Linum angustifolium, Linum catharticum, Linum flavum, Linum grandiflorum, Adenolinum grandiflorum, Linum lewisii, Linum narbonense, Linum perenne, Linum perenne var. lewisii, Linum pratense, Linum trigynum, Punica granatum, Gossypium hirsutum, Gossypium arboreum, Gossypium barbadense, Gossypium herbaceum, Gossypium thurberi, Musa nana, Musa acuminata, Musa paradisiaca, Musa spp., Elaeis guineensis, Papaver orientale, Papaver rhoeas, Papaver dubium, Sesamum indicum, Piper aduncum, Piper amalago, Piper angustifolium, Piper auritum, Piper betel, Piper cubeba, Piper longum, Piper nigrum, Piper retrofractum, Artanthe adunca, Artanthe elongata, Peperomia elongata, Piper elongatum, Steffensia elongata, Hordeum vulgare, Hordeum jubatum, Hordeum murinum, Hordeum secalinum, Hordeum distichon Hordeum aegiceras, Hordeum hexastichon., Hordeum hexastichum, Hordeum irregulare, Hordeum sativum, Hordeum secalinum, Avena sativa, Avena fatua, Avena byzantina, Avena fatua var. sativa, Avena hybrida, Sorghum bicolor, Sorghum halepense, Sorghum saccharatum, Sorghum vulgare, Andropogon drummondii, Holcus bicolor, Holcus sorghum, Sorghum aethiopicum, Sorghum arundinaceum, Sorghum caffrorum, Sorghum cernuum, Sorghum dochna, Sorghum drummondii, Sorghum durra, Sorghum guineense, Sorghum lanceolatum, Sorghum nervosum, Sorghum saccharatum, Sorghum subglabrescens, Sorghum verticilliflorum, Sorghum vulgare, Holcus halepensis, Sorghum miliaceum Hirse, Panicum militaceum, Zea mays, Triticum aestivum, Triticum durum, Triticum turgidum, Triticur hybernum, Triticum macha, Triticum sativum oder Triticum vulgare, Cofea spp., Coffea arabica, Coffea canephora, Coffea liberica, Capsicum annuum, Capsicum annuum var. glabriusculum, Capsicum frutescens, Capsicum annuum, Nicotiana tabacum, Solanum tuberosum, Solanum melongena, Lycopersicon esculentum, Lycopersicon lycopersicum., Lycopersicon pyriforme, Solanum integrifolium, Solanum lycopersicum Theobroma Kakao oder Camellia sinensis. Anacardiaceae wie die Gattungen Pistacia, Mangifera, Anacardium, z. B. die Spezies Pistacia vera [Pistazie], Mangifer indica [Mango] oder Anacardium occidentale [Cashew]; Asteraceae wie die Gattungen Calendula, Carthamus, Centaurea, Cichorium, Cynara, Helianthus, Lactuca, Locusta, Tagetes, Valeriana, z. B. die Spezies Calendula officinalis [Ringelblume], Carthamus tinctorius [Färberdistel, Saflor], Centaurea cyanus [Kornblume], Cichorium intybus [Gemeine Wegwarte], Cynara scolymus [Artischocke], Helianthus annus [Sonnenblume], Lactuca sativa, Lactuca crispa, Lactuca esculenta, Lactuca scariota L. ssp. sativa, Lactuca scariola L. var. integrata, Lactuca scariola L. var. integrifolia, Lactuca sativa subsp. romana, Locusta communis, Valeriana locusta [Feldsalat], Tagetes lucida, Tagetes erecta oder Tagetes tenuifolia [Gewürztagetes]; Apiaceae wie die Gattungen Daucus, z. B. die Spezies Daucus carota [Karotte]; Betulaceae wie die Gattungen Corylus, z. B. die Spezies Corylus avellana oder Corylus colurna [Haselnuss]; Boraginaceae wie die Gattungen Borago, z. B. die Spezies Borago officinalis [Borretsch]; Brassicaceae wie die Gattungen Brassica, Melanosinapis, Sinapis, Arabadopsis, z. B. die Spezies Brassica napus, Brassica rapa ssp. [Canola, Ölsamenraps, Rübsamen], Sinapis arvensis Brassica juncea, Brassica juncea var. juncea, Brassica juncea var. crispifolia, Brassica juncea var. foliosa, Brassica nigra, Brassica sinapioides, Melanosinapis communis [Senf], Brassica oleracea [Futterrübe] oder Arabidopsis thaliana; Bromeliaceae, wie die Gattung Anana, Bromelia, z. B. die Spezies Anana comosus, Ananas ananas oder Bromelia comosa [Ananas]; Caricaceae, wie die Gattung Carica, z. B. die Spezies Carica papaya [Papaya]; Cannabaceae, wie die Gattung Cannabis, z. B. die Spezies Cannabis sative [Hanf], Convolvulaceae, wie die Gattung Ipomea, Convolvulus, z. B. die Spezies Ipomoea batatus, Ipomoea pandurata, Convolvulus batatas, Convolvulus tiliaceus, Ipomoea fastigiata, Ipomoea tiliacea, Ipomoea triloba oder Convolvulus panduratus [Süsskartoffel, Prunkwinde, Wildkartoffel], Chenopodiaceae, wie die Gattung Beta, d. h. die Spezies Beta vulgaris, Beta vulgaris var. altissima, Beta vulgaris var. Vulgaris, Beta maritima, Beta vulgaris var. perennis, Beta vulgaris var. conditiva oder Beta vulgaris var. esculenta [Zuckerrübe]; Cucurbitaceae wie die Gattungen Cucubita, z. B. die Spezies Cucurbita maxima, Cucurbita mixta, Cucurbita pepo oder Cucurbita moschata [Kürbis]; Elaeagnaceae wie die Gattungen Elaeagnus, z. B. die Spezies Olea europaea [Olive]; Ericaceae wie die Gattung Kalmia, z. B. die Spezies Kalmia latifolia, Kalmia angustifolia, Kalmia microphylla, Kalmia polifolia, Kalmia occidentalis, Cistus chamaerhodendros oder Kalmia lucida [Berglorbeer, Breitblättrige Lorbeerrose, Schmalblättrige Lorbeerrose, Poleiblättrige Lorbeerrose, Sumpf-Kalmie, Alpen-Lorbeerrose]; Euphorbiaceae wie die Gattungen Manihot, Janipha, Jatropha, Ricinus, z. B. die Spezies Manihot utilissima, Janipha manihot, Jatropha manihot., Manihot aipil, Manihot dulcis, Manihot manihot, Manihot melanobasis, Manihot esculenta [Maniok, Pfeilwurz, Tapioka, Cassava] oder Ricinus communis [Rizinusbohne, Hundsbaum, Läusebaum, Kreuzbaum, Christuspalme, Wunderbaum]; Fabaceae wie die Gattungen Pisum, Albizia, Cathormion, Feuillea, Inga, Pithecolobium, Acacia, Mimosa, Medicajo, Glycine, Dolichos, Phaseolus, Soja, z. B. die Spezies Pisum sativum, Pisum arvense, Pisum humile [Erbse], Albizia berteriana, Albizia julibrissin, Albizia lebbeck, Acacia berteriana, Acacia littoralis, Albizia berteriana, Albizzia berteriana, Cathormion berteriana, Feuillea berteriana, Inga fragrans, Pithecellobium berterianum, Pithecellobium fragrans, Pithecolobium berterianum, Pseudalbizzia berteriana, Acacia julibrissin, Acacia nemu, Albizia nemu, Feuilleea julibrissin, Mimosa julibrissin, Mimosa speciosa, Sericanrda julibrissin, Acacia lebbeck, Acacia macrophylla, Albizia lebbek, Feuilleea lebbeck, Mimosa lebbeck, Mimosa speciosa [Federbaum, Schirmakazie, Seidenakazie], Medicago sativa, Medicago falcata, Medicago varia [Luzerne] Glycine max Dolichos soja, Glycine gracilis, Glycine hispida, Phaseolus max, Soja hispida oder Soja max [Sojabohne]; Geraniaceae wie die Gattungen Pelargonium, Cocos, Oleum, z. B. die Spezies Cocos nucifera, Pelargonium grossularioides oder Oleum cocois [Kokosnuss]; Gramineae wie die Gattungen Saccharum, z. B. die Spezies Saccharum officinarum; Juglandaceae wie die Gattungen Juglans, Wallia, z. B. die Spezies Juglans regia, Juglans ailanthifolia, Juglans sieboldiana, Juglans cinerea, Wallia cinerea, Juglans bixbyi, Juglans californica, Juglans hindsii, Juglans intermedia, Juglans jamaicensis, Juglans major, Juglans microcarpa, Juglans nigra oder Wallia nigra [Echte Walnuss, Schwarznuss, Gemeine Walnuss, Persische Walnuss, Weiße Walnuss, Butternuss, Schwarze Walnuss]; Lauraceae wie die Gattungen Persea, Laurus, z. B. die Spezies Laurus nobilis [Lorbeer], Persea americana Persea americana, Persea gratissima oder Persea Persea [Avocado]; Leguminosae wie die Gattungen Arachis, z. B. die Spezies Arachis hypogaea [Erdnuss]; Linaceae wie die Gattungen Linum, Adenolinum, z. B. die Spezies Linum usitatissimum, Linum humile, Linum austriacum, Linum bienne, Linum angustifolium, Linum catharticum, Linum flavum, Linum grandiflorum, Adenolinum grandiflorum, Linum lewisii, Linum narbonense, Linum perenne, Linum perenne var. lewisii, Linum pratense oder Linum trigynum [Flachs, Lein]; Lythrarieae wie die Gattungen Punica, z. B. die Spezies Punica granatum [Granatapfel]; Malvaceae wie die Gattungen Gossypium, z. B. die Spezies Gossypium hirsutum, Gossypium arboreum, Gossypium barbadense, Gossypium herbaceum oder Gossypium thurberi [Baumwolle]; Musaceae wie die Gattungen Musa, z. B. die Spezies Musa nana, Musa acuminata, Musa paradisiaca, Musa spp. [Banane]; Onagraceae, wie die Gattung Camissonia, Oenothera, z. B. die Spezies Oenothera biennis oder Camissonia brevipes [Primel, Nachtkerze]; Palmae, wie die Gattung Elacis, z. B. die Spezies Elaeis guineensis [Ölpalme]; Papaveraceae, wie die Gattung Papaver, z. B. die Spezies Papaver orientale, Papaver rhoeas, Papaver dubium [Mohn, Türkenmohn, Klatschmohn, Mohnblume, Feldmohn, Klatschrose, Feldmohn, Saat-Mohn, Ackermohn]; Pedaliaceae, wie die Gattung Sesamum, z. B. die Spezies Sesamum indicum [Sesam]; Piperaceae, wie die Gattung Piper, Artanthe, Peperomia, Steffensia, z. B. die Spezies Piper aduncum, Piper amalago, Piper angustifolium, Piper auritum, Piper betel, Piper cubeba, Piper longum, Piper nigrum, Piper retrofractum, Artanthe adunca, Artanthe elongata, Peperomia elongata, Piper elongatum, Steffensia elongata. [Cayenne-Pfeffer, Wilder Pfeffer]; Poaceae, wie die Gattung Hordeum, Secale, Avena, Sorghum, Andropogon, Holcus, Panicum, Oryza, Zea, Triticum, z. B. die Spezies Hordeum vulgare, Hordeum jubatum, Hordeum murinum, Hordeum secalinum, Hordeum distichon Hordeum aegiceras, Hordeum hexastichon., Hordeum hexastichum, Hordeum irregulare, Hordeum sativum, Hordeum secalinum [Gerste, Graupen, Mähnengerste, Mäusegerste, Wiesengerste], Secale cereale [Roggen], Avena sativa, Avena fatua, Avena byzantina, Avena fatua var. sativa, Avena hybrida [Hafer], Sorghum bicolor, Sorghum halepense, Sorghum saccharatum, Sorghum vulgare, Andropogon drummondii, Holcus bicolor, Holcus sorghum, Sorghum aethiopicum, Sorghum arundinaceum, Sorghum caffrorum, Sorghum cernuum, Sorghum dochna, Sorghum drummondii, Sorghum durra, Sorghum guineense, Sorghum lanceolatum, Sorghum nervosum, Sorghum saccharatum, Sorghum subglabrescens, Sorghum verticilliflorum, Sorghum vulgare, Holcus halepensis, Sorghum miliaceum Hirse, Panicum militaceum [Sorghum, Hirse], Oryza sativa, Oryza latifolia [Reis], Zea mays [corn, Mais] Triticum aestivum, Triticum durum, Triticum turgidum, Triticum hybernum, Triticum macha, Triticum sativum oder Triticum vulgare [Weizen, Ackerweizen, Gemeiner Weizen], Proteaceae, wie die Gattung Macadamia, z. B. die Spezies Macadamia intergrifolia [Macademia]; Rubiaceae, wie die Gattung Coffea, z. B. die Spezies Cofea spp., Coffea arabica, Coffea canephora oder Coffea liberica [Kaffee]; Scrophulariaceae, wie die Gattung Verbascum, z. B. die Spezies Verbascum blattaria, Verbascum chaixii, Verbascum densiflorum, Verbascum lagurus, Verbascum longifolium, Verbascum lychnitis, Verbascum nigrum, Verbascum olympicum, Verbascum phlomoides, Verbascum phoenicum, Verbascum pulverulentum oder Verbascum thapsus [Königskerze, Schaben-Königskerze, Chaix-Königskerze, Großblütige Königskerze, Seidenhaar-Königskerze, Langblättrige Königskerze, Mehlige Königskerze, Schwarze Königskerze, Kandelaber-Königskerze, Windblumen-Königskerze, Violette Königskerze, Flockige Königskerze, Himmelbrand]; Solanaceae, wie die Gattung Capsicum, Nicotiana, Solanum, Lycopersicon, z. B. die Spezies Capsicum annuum, Capsicum annuum var. glabriusculum, Capsicum frutescens [Pfeffer], Capsicum annuum [Paprika], Nicotiana tabacum, Nicotiana alata, Nicotiana attenuata, Nicotiana glauca, Nicotiana langsdorffii, Nicotiana obtusifolia, Nicotiana quadrivalvis, Nicotiana repanda, Nicotiana rustica, Nicotiana sylvestris [Tabak], Solanum tuberosum [Kartoffel], Solanum melongena [Aubergine] (Lycopersicon esculentum, Lycopersicon lycopersicum., Lycopersicon pyriforme, Solanum integrifolium oder Solanum lycopersicum [Tomate]; Sterculiaceae, wie die Gattung Theobroma, z. B. die Spezies Theobroma cacao [Kakao]; Theaceae, wie die Gattung Camellia, z. B. die Spezies Camellia sinensis) [Tee].
  • Die Einführung der erfindungsgemäßen Nukleinsäuren, der Expressionskassette oder des Vektors in Organismen, zum Beispiel Pflanzen, kann im Prinzip nach allen dem Fachmann bekannten Methoden erfolgen. Die Einführungs der Nukleinsäuresequenzen führt zur Entstehung von rekombinanten bzw. transgenen Organismen.
  • Wenn nicht anders angegeben sind die Ausdrücke ”Polynukleotide”, ”Nukleinsäure” und ”Nukleinsäuremolekül”, so wie sie hier verwendet werden, austauschbar. Außer es ist anderslautend angegeben, sind die Begriffe ”Peptid”, ”Polypeptid” und ”Protein” im vorliegenden Kontext austauschbar. Der Begriff ”Sequenz” kann Polynukleotide, Nukleinsäuren, Nukleinsäuremoleküle, Peptide, Polypeptide und Proteine betreffen, abhängig vom Zusammenhang, in dem der Begriff ”Sequenz” verwendet wird. Die Begriffe ”Gen(e)”, ”Polynukleotid”, ”Nukleinsäuresequenz”, ”Nukleotidsequenz” oder ”Nukleinsäuremolekül(e)”, wie hierin verwendet, beziehen sich auf eine polymere Form von Nukleotiden von beliebiger Länge, entweder Ribonukleotide oder Desoxyribonucleotide. Die Begriffe betreffen lediglich die Primärstruktur des Moleküls.
  • Somit schließen die Ausdrücke ”Gen(e)”, ”Polynukleotid”, ”Nukleinsäuresequenz”, ”Nukleotidsequenz” bzw. ”Nukleinsäuremolekül(e)”, so wie sie hier verwendet werden, doppel- und einzelsträngige DNA und/oder RNA ein. Sie beinhalten außerdem bekannte Arten von Modifikationen, zum Beispiel Methylierung, ”Caps” und Substitutionen von einem oder mehreren der natürlich vorkommenden Nukleotide mit einem Analog. Vorzugsweise umfasst die erfindungsgemäße DNA- bzw. RNA-Sequenz eine kodierende Sequenz, die für ein hier definiertes Polypeptid kodiert.
  • Die erfindungsgemäßen Gene, die für eine Aktivität ausgewählt aus der Gruppe bestehend aus einer (DL)-Glycerin-3-phosphatase, einer 2-Desoxyglucose-6-phosphatphosphatase, einer 3-Methyl-2-oxobutanoat-Hydroxymethyltransferase, einer Alkoholacetyltransferase, einer Aminosäurepermease, einer Aminomethyltransferase, einem Ammoniumtransporter, einem Aquaporin, einem Arabinosetransportsystem, einem ATP-bindenden Protein, einer Argininosuccinatsynthase, einer Aspartataminotransferase, einem B1906-Protein, einem B3410-Protein, einer Cardiolipinsynthetase, einem CoA-Transferase-ähnlichen Protein (NAD(P)-bindend), einem Cobalttransportprotein, einem DNA- und proteinbindenden Protein zur Steuerung des Proteoms auf der posttranskriptionellen Ebene, einer Enoyl-CoA-Hydratase, einer Enoyl-CoA-Isomerase, einer Ethanolaminkinase, einer Formiatacetyltransferase 1, dem Protein einer Glucit/Sorbit-spezifischen Enzym-IIA-Komponente, einer Glutaminsynthetase, einer Glutathion-S-transferase, einer Glycerindehydrogenase, einem Glykogensyntheseinitiatorprotein, einem GTP-bindenden Protein, einem Hitzeschockprotein, einem Hexosetransporter, einer Holo-[Acylträgerprotein]-Synthase, einem anorganischen Phosphattransporter, einer Lanosterolsynthase, einer molybdänbindenden Untereinheit von Aldehydoxidasen und Xanthindehydrogenasen, einem Multidrug-Resistenzprotein, einem Multiple-Drug-Resistenzprotein, einer NADH-Dehydrogenase/NAD(P)H-Nitroreduktase, einer Oxidoreduktase, einer Peptidyl-Prolyl-cis/trans-Isomerase, einem Peroxisomal-Targeting-Signal-2-Rezeptor, einer Phosphoadenosinphosphosulfatreduktase, einem Phosphoträgerprotein, einem Pirin-ähnlichen Protein, einer Precorrin-6y-Methylase, einem für den Abbau von Glykoproteinen benötigten Protein, einer Pyrimidindeaminase/-reduktase, einem Regulator der Zellmorphogenese und der NO-Signalvermittlung, einer Serinacetyltransferase, einer Untereinheit des Signalosomkomplexes, einem SLR1094-Protein, einer Untereinheit von TORC1, einer thiolspezifischen Monooxygenase, einem die Transkription steuernden Protein, einer Transketolase, einem Zwei-Modul-Transportprotein, einem Uridindiphosphat-N-acetylglucosamintransporter, einem yer175w-a-Protein, einem yhr213w-a-Protein, einem YML079W-Protein, einem YMR157C-Protein, einem YNL024C-Protein und einem YNR040W-Protein kodieren, werden auch als „LTRRP-Gene” oder austauschbare „YRP-Gene” bezeichnet.
  • Eine ”kodierende Sequenz” ist eine Nukleotidsequenz, die in mRNA transkribiert wird und/oder in ein Polypeptid translatiert wird, wenn sie sich unter der Kontrolle von entsprechenden regulatorischen Sequenzen befindet. Die Grenzen der kodierenden Sequenzen werden von einem Translations-Startcodon am 5'-Terminus und einem Translations-Stoppcodon am 3'-Terminus festgelegt. Die Tripletts taa, tga und tag stehen für die (gewöhnlichen) Stopp-Codons, die austauschbar sind. Eine kodierende Sequenz kann, ohne jedoch darauf eingeschränkt zu sein, mRNA, cDNA, rekombinante Nukleotidsequenzen oder genomische DNA einschließen, während Introns unter gewissen Umständen ebenfalls vorhanden sein können.
  • Der Transfer von Fremdgenen in das Genom einer Pflanze wird Transformation genannt. Bei der Ausführung derselbigen werden Verfahren, welche für die Transformation und Regeneration von Pflanzen aus Pflanzengeweben oder Pflanzenzellen beschrieben wurden, für transiente oder stabile Transformation eingesetzt. Geeignete Methoden sind die Protoplasttransformation durch poly(ethylenglykol)-induzierte DNA-Aufnahme, die ”biolistische” Methode unter Einsatz der Genkanone – die als Partikelbombardierungsmethode bezeichnet wird, die Elektroporation, die Inkubation von getrockneten Embryos in DNA-Lösung, die Mikroinjektion und der durch Agrobacterium vermittelte Gentransfer. Diese Methoden sind beispielhaft in Jenes B. et al., Techniques for Gene Transfer, in: Transgenic Plants, Band 1, Engineering and Utilization, Hrsg.. Kung S. D und Wu R., Academic Press (1993) 128–143 und in Potrykus, Annu. Rev. Plant Physiol. Plant Molec. Biol. 42, 205 (1991) beschrieben. Die zu exprimierenden Nukleinsäuren bzw. das zu exprimierende Konstrukt werden/wird vorzugsweise in einen Vektor kloniert, der sich für die Transformation von Agrobakterium tumefaciens eignet, zum Beispiel pBin19 (Bevan et al., Nucl. Acids Res. 12, 8711 (1984)). Durch einen derartigen Vektor transformierte Agrobakterien können dann auf die bekannte Weise für die Transformation von Pflanzen, insbesondere von Nutzpflanzen, wie zum Beispiel Tabakpflanzen, verwendet werden, beispielsweise durch Baden von zerstampften Blättern oder zerhackten Blättern in einer Agrobakterienlösung und danach Kultivieren derselben in geeigneten Medien. Die Transformation von Pflanzen mittels Agrobacterium tumefaciens ist beispielsweise von Höfgen und Willmitzer in Nucl. Acid Res. 16, 9877 (1988) beschrieben oder ist unter anderem aus White F. F., Vectors for Gene Transfer in Higher Plants; in Transgenic Plants, Band 1, Engineering and Utilization, Hrsg. Kung S. D. und Wu R., Academic Press, 1993, S. 15–38 bekannt.
  • Durch einen erfindungsgemäßen Expressionsvektor transformierte Agrobakterien können gleichermaßen in bekannter Weise zur Transformation von Pflanzen wie Testpflanzen wie z. B. Arabidopsis oder Kulturpflanzen wie Getreide, Mais, Hafer, Roggen, Gerste, Weizen, Sojabohne, Reis, Baumwolle, Zuckerrübe, Canola, Sonnenblume, Flachs, Hanf, Kartoffeln, Tabak, Tomaten, Karotten, Paprika, Raps, Tapioka, Cassava, Pfeilwurz, Tagetes, Luzerne, Salat und den verschiedenen Baum-, Nuss- und Kletterpflanzenarten, insbesondere ölhaltigen Kulturpflanzen wie Sojabohne, Erdnuss, der Rizinusölpflanze, Sonnenblume, Mais, Baumwolle, Flachs, Raps, Kokosnuss, Ölpalme, Färberdistel (Carthamus tinctorius) oder Kokoabohne oder insbesondere in Mais, Weizen, Sojabohne, Reis, Baumwolle und Canola eingesetzt werden, zum Beispiel indem man gestoßene Blätter oder gehackte Blätter in einer Agrobakterium-Lösung badet und sie dann in geeigneten Medien kultiviert.
  • Die genetisch modifizierten Pflanzenzellen können nach allen dem Fachmann bekannten Methoden regeneriert werden. Geeignete Methoden finden sich in den oben angeführten Publikationen von Kung S. D. und Wu R., Potrykus oder Höfgen und Willmitzer.
  • Dementsprechend betrifft ein weiterer Aspekt der Erfindung transgene Organismen, die durch wenigstens eine erfindungsgemäße Nukleinsäuresequenz, wenigstens eine erfindungsgemäße Expressionskassette oder wenigstens einen erfindungsgemäßen Vektor transformiert sind, sowie Zellen, Zellkulturen, Gewebe, Teile – wie zum Beispiel Blätter, Wurzeln usw. im Fall von Pflanzenorganismen – oder von solchen Organismen gewonnenes Reproduktionsmaterial. Die Ausdrücke ”Wirtsorganismus”, ”Wirtszelle”, ”rekombinanter (Wirts)Organismus” und ”transgene (Wirts)Zelle” werden hier austauschbar verwendet. Natürlich beziehen sich diese Ausdrücke nicht nur auf den betreffenden Wirtsorganismus oder die betreffende Target-Zelle, sondern auch auf die Nachkommen oder potentiellen Nachkommen dieser Organismen bzw. Zellen. Da aufgrund von Mutation oder Umwelteinflüssen in nachfolgenden Generationen bestimmte Modifikationen auftreten können, müssen diese Nachkommen nicht notwendigerweise mit der Elternzelle identisch sein, fallen jedoch dennoch unter den Ausdruck, so wie er hier verwendet wird.
  • Für die Zwecke der Erfindung bedeutet ”transgen” oder ”rekombinant” in Bezug zum Beispiel auf eine Nukleinsäuresequenz, eine Expressionskassette (= Genkonstrukt, Nukleinsäurekonstrukt) oder einen Vektor, die/der die erfindungsgemäße Nukleinsäuresequenz enthält, oder einen durch die erfindungsgemäßen Nukleinsäuresequenzen, die erfindungsgemäße Expressionskassette oder den erfindungsgemäßen Vektor transformierten Organismus alle die Konstruktionen, die durch gentechnische Methoden hergestellt wurden und in denen man entweder
    • (a) die in Tabelle I, Anwendung Nr. 1, Spalte 5 oder 7, gezeigte Nukleinsäuresequenz oder ihre Derivate oder Teile davon oder
    • (b) eine funktionell an die unter (a) beschriebene Nukleinsäuresequenz gebundene genetische Kontrollsequenz, zum Beispiel eine 3'- und/oder 5'-genetische Kontrollsequenz wie einen Promotor oder Terminator, oder
    • (c) (a) und (b);
    nicht in ihrer natürlichen genetischen Umgebung findet oder diese durch gentechnische Methoden modifiziert wurden, wobei es sich bei der Modifikation beispielsweise um eine Substitution, Addition, Deletion, Inversion oder Insertion eines oder mehrerer Nukleotidreste handeln kann. Mit natürlich genetischer Umgebung ist der natürliche genome oder chromosomale Locus im Ursprungsorganismus oder im Wirtsorganismus oder das Vorkommen in einer genomischen Bibliothek gemeint. Bei einer genomischen Bibliothek bleibt die natürliche genetische Umgebung der Nukleinsäuresequenz vorzugsweise wenigstens teilweise erhalten. Die Umgebung grenzt wenigstens an einer Seite an die Nukleinsäuresequenz und hat eine Sequenzlänge von wenigstens 50 bp, vorzugsweise wenigstens 500 bp, besonders bevorzugt wenigstens 1,000 bp, ganz besonders bevorzugt wenigstens 5,000 bp. Eine natürlich vorkommende Expressionskassette – zum Beispiel die natürlich vorkommende Kombination des natürlichen Promotors der erfindungsgemäßen Nukleinsäuresequenz mit dem entsprechenden Gen – wird zu einer transgenen Expressionskassette, wenn man letzteres durch unnatürliche synthetische (”künstliche”) Methoden wie zum Beispiel eine Mutagenation modifiziert. Geeignete Methoden sind beispielsweise in US 5,565,350 oder WO 00/15815 beschrieben.
  • Geeignete Organismen bzw. Wirtsorganismen für die Nukleinsäure, die Expressionskassette oder den Vektor gemäß der Erfindung sind vorteilhafterweise im Prinzip alle Organismen, die sich für die Expression von wie oben beschriebenen rekombinanten Genen eignen. Als weitere Beispiele können Pflanzen wie Arabidopsis, Asteraceae wie Calendula oder Kulturpflanzen wie Sojabohne, Erdnuss, Rizinusölpflanze, Sonnenblume, Flachs, Mais, Baumwolle, Flachs, Raps, Kokosnuss, Ölpalme, Färberdistel (Carthamus tinctorius) oder Kokoabohne erwähnt werden. Gemäß einer Ausführungsform der Erfindung sind die Wirtspflanzen für die Nukleinsäure, die Expressionskassette oder den Vektor gemäß der Erfindung ausgewählt aus der Gruppe, die Mais, Soja, Raps (einschließlich Canola und Winterraps), Baumwolle, Weizen und Reis umfasst.
  • Ein weiterer Gegenstand der Erfindung betrifft die Verwendung eines Nukleinsäurekonstrukts, z. B. einer Expressionskassette, das eine oder mehrere DNA-Sequenzen, die für eines oder mehrere der in Tabelle II gezeigten Polypeptide kodieren oder eines oder mehrere der wie in Tabelle I gezeigten Nukleinsäuremoleküle umfassen oder kodieren, oder damit hybridisierende DNA-Sequenzen zur Transformation von Pflanzenzellen, Geweben oder Teilen von Pflanzen enthält. Hierbei können je nach gewähltem Promotor die in Tabelle I oder II gezeigten Nukleinsäuremoleküle oder Sequenzen spezifisch in den Blättern, in den Samen, in den Nodi, in Wurzeln, im Stängel oder in anderen Teilen der Pflanze exprimiert werden. Diese transgenen Pflanzen, die die z. B. wie in Tabelle I gezeigten Sequenzen überproduzieren, und das reproduktive Material davon sind zusammen mit den Pflanzenzellen, Geweben oder Teilen davon ein weiterer Gegenstand der vorliegenden Erfindung. Die erfindungsgemäße Expressionskassette oder die erfindungsgemäßen Nukleinsäuresequenzen oder das erfindungsgemäße Konstrukt mit Nukleinsäuremolekülen oder Sequenzen gemäß Tabelle I kann/können außerdem zur Transformation der oben beispielhaft angeführten Organismen wie Bakterien, Hefen, filamentösen Pilze und Pflanzen eingesetzt werden.
  • Im Rahmen der vorliegenden Erfindung bezieht sich erhöhter Ertrag, z. B. ein erhöhtes Ertragsmerkmal, zum Beispiel eine gesteigerte Toleranz gegenüber abiotischem Umweltstress, zum Beispiel eine erhöhte Toleranz gegenüber Dürre und/oder Toleranz gegenüber niedrigen Temperaturen und/oder eine erhöhte Effizienz der Nährstoffausnutzung, ein erhöhter intrinsischer Ertrag und/oder ein erhöhtes anderes erwähntes Ertragsmerkmal, zum Beispiel auf das künstlich erworbene Merkmal eines erhöhten Ertrages, z. B. eines erhöhten Ertragsmerkmals, zum Beispiel einer gesteigerten Toleranz gegenüber abiotischem Umweltstress, zum Beispiel einer erhöhten Toleranz gegenüber Dürre und/oder Toleranz gegenüber niedrigen Temperaturen und/oder einer erhöhten Effizienz der Nährstoffausnutzung, eines erhöhten intrinsischen Ertrags und/oder eines erhöhten anderen erwähnten Ertragsmerkmals, im Vergleich zu den nicht genetisch modifizierten Ausgangspflanzen, z. B. das durch genetische Modifikation des Zielorganismus und aufgrund einer funktionellen Überexpression eines oder mehrerer Polypeptide/Polypeptidsequenzen der Tabelle II, die z. B. durch die entsprechenden, wie in Tabelle I, Spalte 5 oder 7, gezeigten Nukleinsäuremoleküle kodiert werden, und/oder Homologen in den erfindungsgemäßen Organismen, vorteilhafterweise in der transgenen erfindungsgemäßen Pflanze oder der gemäß dem erfindungsgemäßen Verfahren hergestellten Pflanze, erworbene Merkmal, wenigstens für die Dauer wenigstens einer Pflanzengeneration.
  • Eine konstitutive Expression der Polypeptidsequenzen der Tabelle II, kodiert durch das entsprechende, wie in Tabelle I, Spalte 5 oder 7, gezeigte Nukleinsäuremolekül und/oder Homologe ist außerdem vorteilhaft. Andererseits könnte auch eine induzierbare Expression wünschenswert sein. Die Expression der Polypeptidsequenzen der Erfindung kann entweder direkt in das Zytoplasma oder in die Organellen, vorzugsweise die Plastide der Wirtszellen, vorzugsweise der Pflanzenzellen, erfolgen. Die Effizienz der Expression der Sequenzen der Tabelle II, kodiert durch das entsprechende, wie in Tabelle I, Spalte 5 oder 7, gezeigte Nukleinsäuremolekül und/oder Homologe lässt sich zum Beispiel in vitro durch Sprossmeristempropagierung bestimmen. Darüber hinaus lassen sich eine Expression der Sequenzen der Tabelle II, kodiert durch das entsprechende, wie in Tabelle I, Spalte 5 oder 7, gezeigte Nukleinsäuremolekül und/oder in der Art und dem Niveau modifizierte Homologe und ihre Wirkung auf den Ertrag, z. B. auf ein erhöhtes Ertragsmerkmal, insbesondere eine erhöhte Toleranz gegenüber abiotischem Umweltstress, zum Beispiel eine erhöhte Toleranz gegenüber Dürre und/oder Toleranz gegenüber niedrigen Temperaturen und/oder erhöhte Effizienz der Nährstoffausnutzung, jedoch auch auf die Leistung der Stoffwechselpfade, an Testpflanzen in Gewächshausversuchen untersuchen.
  • Ein weiterer Gegenstand der Erfindung umfasst transgene Organismen wie transgene Pflanzen, die durch eine Expressionskassette transformiert wurden, die wie in Tabelle I, Spalte 5 oder 7, gezeigte erfindungsgemäße Sequenzen oder damit hybridisierende DNA-Sequenzen enthält, sowie transgene Zellen, Gewebe, Teile und Reproduktionsmaterial solcher Pflanzen. Besonders bevorzugt sind in diesem Fall transgene Kulturpflanzen wie beispielsweise Gerste, Weizen, Roggen, Hafer, Mais, Sojabohne, Reis, Baumwolle, Zuckerrübe, Raps und Canola, Sonnenblume, Flachs, Hanf, Distel, Kartoffeln, Tabak, Tomaten, Tapioka, Cassava, Pfeilwurz, Luzerne, Salat und die verschiedenen Baum-, Nuss- und Kletterpflanzenarten. Gemäß einer Ausführungsform der Erfindung sind transgene Pflanzen, die durch eine Expressionskassette transformiert wurden, die wie in Tabelle I, Spalte 5 oder 7, insbesondere in Tabelle IIB, gezeigte erfindungsgemäße Nukleinsäuremoleküle oder Sequenzen oder damit hybridisierende DNA-Sequenzen enthält oder umfasst, aus der Mais, Soja, Raps (einschließlich Canola und Winterraps), Baumwolle, Weizen und Reis umfassenden Gruppe ausgewählt.
  • Für die Zwecke der Erfindung sind Pflanzen mono- und dikotyledone Pflanzen, Mose oder Algen, insbesondere Pflanzen, zum Beispiel gemäß einer Ausführungsform monokotyledone Pflanzen, oder gemäß einer anderen Ausführungsform dikotyledone Pflanzen. Eine weitere erfindungsgemäße Ausführungsform sind wie oben beschriebene transgene Pflanzen, die eine erfindungsgemäße Nukleinsäuresequenz oder ein erfindungsgemäßes Nukleinsäurekonstrukt oder eine erfindungsgemäße Expressionskassette enthalten.
  • Transgen bedeutet jedoch auch, dass die erfindungsgemäßen Nukleinsäuren sich in ihrer natürlichen Position im Genom eines Organismus befinden, dass die Sequenz, z. B. die kodierende Sequenz oder eine regulatorische Sequenz, zum Beispiel die Promotorsequenz, jedoch im Vergleich zur natürlichen Sequenz modifiziert worden ist. Vorzugsweise ist transgen/rekombinant so zu verstehen, dass damit gemeint ist, dass die Transkription einer oder mehrerer der in Tabelle I gezeigten Nukleinsäuren bzw. eines oder mehrerer der in Tabelle I gezeigten Moleküle an einer nicht-natürlichen Position im Genom auftritt. Gemäß einer Ausführungsform erfolgt die Expression der Nukleinsäuren bzw. Moleküle homolog. Gemäß einer weiteren Ausführungsform erfolgt die Expression der Nukleinsäuren bzw. Moleküle heterolog. Diese Expression kann transient oder von einer stabil in das Genom integrierten Sequenz aus erfolgen. Der gemäß der Erfindung verwendete Ausdruck ”transgene Pflanzen” bezieht sich auch auf die Nachkommenschaft einer transgenen Pflanze, zum Beispiel die T1, T2, T3 und darauf folgende Pflanzengenerationen oder die BC1, BC2, BC3 und darauf folgende Pflanzengenerationen. Somit können die transgenen Pflanzen gemäß der Erfindung aufgezogen bzw. kultiviert und geselbstet oder mit anderen Individuen gekreuzt werden, um weitere transgene Pflanzen gemäß der Erfindung zu erhalten. Transgene Pflanzen können ebenfalls erhalten werden, indem man transgene Pflanzenzellen vegetativ vermehrt. Die vorliegende Erfindung betrifft außerdem transgenes Pflanzenmaterial, welches aus einer transgenen Pflanzenpopulation gemäß der Erfindung abgeleitet werden kann. Derartiges Material umfasst Pflanzenzellen und bestimmte Gewebe, Organe und Teile von Pflanzen in allen ihren Ausprägungen, wie etwa Samen, Blätter, Antheren, Fasern, Knollen, Wurzeln, Wurzelhaare, Stängel bzw. Halme, Embryo, Kalli, Kotyledonen, Petiolen, abgeerntetes Material, Pflanzengewebe, Fortpflanzungsgewebe und Zellkulturen, welche aus der eigentlichen transgenen Pflanze abgeleitet sind und/oder zum Hervorbringen der transgenen Pflanze verwendet werden können. Jedwede gemäß der Erfindung erhaltene transformierte Pflanze kann in einem herkömmlichen Züchtungsschema oder in einer In-vitro-Pflanzenvermehrung verwendet werden, um mehr transformierte Pflanzen mit den gleichen Charakteristika herzustellen, und/oder kann verwendet werden, um das gleiche Charakteristikum in anderen Varietäten derselben oder einer verwandten Spezies einzuführen. Derartige Pflanzen sind ebenfalls Teil der Erfindung. Aus den transformierten Pflanzen erhaltene Samen umfassen genetisch ebenfalls dasselbe Charakteristikum und sind Teil der Erfindung. Wie bereits erwähnt ist die vorliegende Erfindung im Prinzip auf alle Pflanzen einschließlich Kulturpflanzen anwendbar, die sich mit einer dem Fachmann bekannten Transformationsmethode transformieren lassen.
  • Vorteilhafte induzierbare Pflanzenpromotoren sind beispielsweise der PRP1-Promotor (Ward et al., Plant. Mol. Biol. 22361 (1993)), ein durch Benzolsulfonamid induzierbarer Promotor ( EP 388 186 ), ein durch Tetracyclin induzierbarer Promotor (Gatz et al., Plant J. 2, 397 (1992)), ein durch Salicylsäure induzierbarer Promotor ( WO 95/19443 ), ein durch Abscidinsäure induzierbarer Promotor ( EP 335 528 ) und ein durch Ethanol oder Cyclohexanon induzierbarer Promotor ( WO 93/21334 ). Andere Beispiele für Pflanzenpromotoren, die vorteilhaft eingesetzt werden können, sind der Promotor der zytoplasmatischen FBPase aus Kartoffel, der ST-LSI-Promotor aus Kartoffel (Stockhaus et al., EMBO J. 8, 2445 (1989)), der Promotor von Phosphoribosylpyrophosphatamidotransferase aus Glycine max (siehe auch Genbank-Zugangsnummer U87999) oder ein nodienspezifischer Promotor, wie in EP 249 676 beschrieben. Besonders vorteilhaft sind die Promotoren, die eine Expression beim Einsetzen der Bedingungen von abiotischem Stress sicherstellen. Besonders vorteilhaft sind die Promotoren, die eine Expression beim Einsetzen der Bedingungen niedriger Temperaturen, z. B. beim Einsetzen wie oben definierter kühler Temperaturen und/oder Frosttemperaturen, sicherstellen, z. B. für die Expression von wie in Tabelle VIIIb gezeigten Nukleinsäuremolekülen. Vorteilhaft sind die Promotoren, die eine Expression unter Bedingungen einer eingeschränkten Verfügbarkeit von Nährstoffen, z. B. dem Einsetzen eingeschränkter Stickstoffquellen, wenn der Stickstoff des Bodens oder der Nährstoff erschöpft ist, sicherstellen, z. B. für die Expression von Nukleinsäuremolekülen oder ihren Genprodukten, wie in Tabelle VIIIa gezeigt. Besonders vorteilhaft sind die Promotoren, die eine Expression beim Einsetzen von Wassermangel, wie oben definiert, sicherstellen, z. B. für die Expression von Nukleinsäuremolekülen oder ihren Genprodukten, wie in Tabelle VIIIc gezeigt. Besonders vorteilhaft sind die Promotoren, die eine Expression beim Einsetzen von Standard-Wachstumsbedingungen, z. B. unter Bedingungen ohne Stress und bereitgestellten Mangelnährstoffen, sicherstellen, z. B. für die Expression von Nukleinsäuremolekülen oder ihren Genprodukten, wie in Tabelle VIIIc gezeigt.
  • Solche Promotoren sind dem Fachmann bekannt oder lassen sich aus Genen isolieren, die unter den oben erwähnten Bedingungen induziert werden. Gemäß einer Ausführungsform können für monokotyledone oder dikotyledone Pflanzen samenspezifische Promotoren verwendet werden.
  • Im Prinzip kann man alle natürlichen Promotoren mit ihren Regulationssequenzen verwenden, wie die oben namentlich für die erfindungsgemäße Expressionskassette und die erfindungsgemäße Methode erwähnten. Darüber hinaus können auch synthetische Promotoren vorteilhaft zur Anwendung gelangen. Bei der Herstellung einer Expressionskassette können verschiedene DNA-Fragmente so manipuliert werden, dass man eine Nukleotidsequenz erhält, die brauchbar in der richtigen Richtung liest und mit einem korrekten Leserahmen ausgestattet ist. Zum Verbinden der DNA-Fragmente (= erfindungsgemäße Nukleinsäuren) miteinander können an die Fragmente Adaptoren oder Linker angebunden werden. Die Promotor- und die Terminatorregionen können zweckmäßigerweise in der Transkriptionsrichtung mit einem Linker oder Polylinker bereitgestellt werden, der einen oder mehrere Restriktionsstellen für die Insertierung dieser Sequenz enthält. Im Allgemeinen hat der Linker 1 bis 10, meistens 1 bis 8, vorzugsweise 2 bis 6, Restriktionsstellen. Im Allgemeinen beträgt sie Größe des Linkers in der regulatorischen Region weniger als 100 bp, häufig weniger als 60 bp, jedoch wenigstens 5 bp. Der Promotor kann zum Wirtsorganismus, zum Beispiel zur Wirtspflanze, sowohl nativ bzw. homolog als auch fremd bzw. heterolog sein. In der 5'-3'-Transkriptionsrichtung enthält die Expressionskassette den Promotor, eine in Tabelle I gezeigte DNA-Sequenz und eine Region für die Termination der Transkription. Verschiedene Terminationsregionen können in jeder gewünschten Weise gegeneinander ausgetauscht werden.
  • So, wie sie hier auch verwendet werden, sollen die Ausdrücke ”Nukleinsäure” und ”Nukleinsäuremolekül” DNA-Moleküle (z. B. cDNA oder genomische DNA) und RNA-Moleküle (z. B. mRNA) und unter Verwendung von Nukleotidanaloga erzeugte Analoga der DNA oder RNA einschließen. Dieser Ausdruck umfasst auch nicht translatierte Sequenzen, die sich sowohl am 3'- als auch am 5'-Ende der kodierenden Region des Gens befinden: wenigstens etwa 1000 Nukleotide der Sequenz upstream vom 5'-Ende der kodierenden Region und wenigstens etwa 200 Nukleotide der Sequenz downstream vom 3'-Ende der kodierenden Region des Gens. Das Nukleinsäuremolekül kann einzelsträngig oder doppelsträngig sein, ist jedoch vorzugsweise doppelsträngige DNA. Ein ”isoliertes” Nukleinsäuremolekül ist eines, das im Wesentlichen von anderen Nukleinsäuremolekülen, die in der natürlichen Quelle der Nukleinsäure vorhanden sind, getrennt ist. Dies bedeutet, dass andere Nukleinsäuremoleküle in einer Menge von weniger als 5%, bezogen auf das Gewicht der gewünschten Nukleinsäure, vorzugsweise weniger als 2 Gew.-%, besonders bevorzugt weniger als 1 Gew.-%, ganz besonders bevorzugt weniger als 0,5 Gew.-%, vorhanden sind. Vorzugsweise ist eine ”isolierte” Nukleinsäure frei von einigen der Sequenzen, die die Nukleinsäure natürlich flankieren (d. h. Sequenzen, die sich an dem 5'- und 3'-Ende der Nukleinsäure befinden) in der genomischen DNA des Organismus, von dem sich die Nukleinsäure ableitet. So kann zum Beispiel in verschiedenen Ausführungsformen das isolierte, für das ertragserhöhende, zum Beispiel mit Resistenz gegen und/oder Toleranz gegenüber niedrigen Temperaturen in Zusammenhang stehende Protein (LTRRP oder YRP) kodierende Nukleinsäuremolekül weniger als etwa 5 kb, 4 kb, 3 kb, 2 kb, 1 kb, 0,5 kb oder 0,1 kb Nukleotidsequenzen, die das Nukleinsäuremolekül in der genomischen DNA der Zelle, aus der sich die Nukleinsäure ableitet, natürlich flankieren, enthalten. Außerdem kann ein ”isoliertes” Nukleinsäuremolekül, wie ein cDNA-Molekül, frei von einigen der anderen zellulären Materialien, mit denen es natürlich assoziiert ist, oder Kulturmedium, wenn es durch rekombinante Techniken hergestellt wurde, oder chemischen Vorstufen oder anderen Chemikalien, wenn es chemisch synthetisiert wurde, sein.
  • Ein Nukleinsäuremolekül der vorliegenden Erfindung, z. B. ein Nukleinsäuremolekül, das für ein LTRRP oder YRP oder einen Teil davon, das Pflanzen einen erhöhten Ertrag, z. B. ein erhöhtes Ertragsmerkmal, z. B. eine gesteigerte Toleranz gegenüber abiotischem Umweltstress und/oder eine erhöhte Effizienz der Nährstoffausnutzung und/oder eine gesteigerte Toleranz gegenüber zyklischer Dürre verleiht, kodiert, kann unter Anwendung von molekularbiologischen Standardtechniken und den hier bereitgestellten Sequenzinformationen isoliert werden. So kann zum Beispiel eine für das LTRRP oder YRP kodierende A. thaliana-cDNA aus einer A. thaliana-c-DNA-Bibliothek isoliert werden, oder eine für das LTRRP oder YRP kodierende Synechocystis sp.-, A. thaliana-, Brassica napus-, Glycine max-, Zea mays- oder Oryza sativa-cDNA kann aus einer Synechocystis sp.-, A. thaliana-, Brassica napus-, Glycine max-, Zea mays- bzw. Oryza sativa-c-DNA-Bibliothek isoliert werden, wobei alle oder ein Teil einer der in Tabelle I gezeigten Sequenzen verwendet werden. Außerdem lässt sich ein Nukleinsäuremolekül, das alle oder einen Teil einer der in Tabelle I gezeigten Sequenzen umfasst, durch die Polymerasekettenreaktion unter Verwendung von auf dieser Sequenz basierend entwickelten Oligonukleotidprimern isolieren. So kann man zum Beispiel mRNA aus Pflanzenzellen isolieren (z. B. durch die Guanidiniumthiocyanat-Extraktionsvorschrift von Chirgwin et al., Biochemistry 18, 5294 (1979)), und cDNA lässt sich unter Verwendung von reverser Transkriptase (z. B. Moloney MLV reverse Transkriptase, erhältlich von Gibco/BRL, Bethesda, MD; oder AMV reverse Transkriptase, erhältlich von Seikagaku America, Inc., St. Petersburg, FL) herstellen. Synthetische Oligonukleotidprimer für die Amplifikation durch Polymerasekettenreaktion lassen sich auf Basis einer der in Tabelle I gezeigten Nukleotidsequenzen entwickeln. Ein Nukleinsäuremolekül der Erfindung kann mit cDNA oder alternativ dazu mit genomischer DNA als Schablone und entsprechenden Oligonukleotidprimern gemäß Standard-PCR-Amplifikationstechniken amplifiziert werden. Das so amplifizierte Nukleinsäuremolekül kann in einen geeigneten Vektor kloniert und durch DNA-Sequenzanalyse charakterisiert werden. Weiterhin lassen sich einer für das LTRRP oder YRP kodierenden Nukleotidsequenz entsprechende Oligonukleotide durch synthetische Standardtechniken, z. B. unter Einsatz eines automatischen DNA-Synthesizers, herstellen. Gemäß einer Ausführungsform umfasst ein isoliertes Nukleinsäuremolekül der Erfindung eine der in Tabelle I gezeigten, für das LTRRP oder YRP kodierenden Nukleotidsequenzen oder -moleküle (d. h. die ”kodierende Region”), sowie eine 5'-untranslatierte Sequenz und 3'-untranslatierte Sequenz. Außerdem kann das Nukleinsäuremolekül der Erfindung nur einen Teil der kodierenden Region einer der Sequenzen oder Moleküle der Nukleinsäure von Tabelle I, zum Beispiel ein Fragment, das als Sonde oder Primer verwendet werden kann, oder ein Fragment, das für einen biologisch aktiven Teil eines LTRRP oder YRP kodiert, umfassen.
  • Teile von Proteinen, die durch die LTRRP- oder YRP-kodierenden Nukleinsäuremoleküle der Erfindung kodiert werden, sind vorzugsweise die hier beschriebenen biologisch aktiven Teile. So, wie er hier verwendet wird, soll der Ausdruck ”biologisch aktiver Teil von” einem LTRRP oder YRP einen Teil, z. B. eine Domäne/ein Motiv, eines mit erhöhtem Ertrag, z. B. einem erhöhten oder gesteigerten Ertragsmerkmal, z. B. einer erhöhten Resistenz gegen oder Toleranz gegenüber niedrige Temperaturen, in Zusammenhang stehenden Proteins einschließen, das zu einer gesteigerten Effizienz der Nährstoffausnutzung, z. B. NUE-Effizienz, und/oder einem erhöhten intrinsischen Ertrag in einer Pflanze beiträgt. Um herauszufinden, ob ein LTRRP oder YRP oder ein biologisch aktiver Teil davon zu einem erhöhten Ertrag, z. B. einem erhöhten oder gesteigerten Ertragsmerkmal, z. B. einer erhöhten Resistenz gegen und/oder Toleranz gegenüber niedrigen Temperaturen, in Zusammenhang stehendes Protein führt, das zu einer gesteigerten Effizienz der Nährstoffausnutzung, z. B. NUE-Effizienz, und/oder einem erhöhten intrinsischen Ertrag in einer Pflanze führt, kann man eine Analyse einer das LTRRP oder YRP enthaltenden Pflanze durchführen. Solche Analysemethoden sind dem Fachmann gut bekannt, wie in den Beispielen im Detail ausgeführt. Genauer gesagt kann man für biologisch aktive Teile einer LTRRP oder YRP kodierende Nukleinsäurefragmente herstellen, indem man einen Teil einer der Sequenzen der Nukleinsäure aus Tabelle I isoliert, den kodierten Teil des LTRRP oder YRP oder Peptids exprimiert (z. B. durch rekombinante Expression in vitro) und die Aktivität des kodierten Teils des LTRRP oder YRP bzw. Peptids feststellt. Biologisch aktive Teile eines LTRRP oder YRP fallen unter den Schutzbereich der vorliegenden Erfindung und schließen Peptide ein, die Aminosäuresequenzen enthalten, die sich von der Aminosäuresequenz eines für das LTRRP oder YRP kodierenden Gens oder der Aminosäuresequenz eines zum LTRRP oder YRP homologen Proteins ableiten, die weniger Aminosäuren einschließen als das vollständige LTRRP oder YRP bzw. das vollständige zum LTRRP oder YRP homologe Protein und wenigstens einen Teil der enzymatischen oder biologischen Aktivität eines LTRRP oder YRP zeigt. Typischerweise umfassen biologisch aktive Teile (z. B. Peptide mit einer Länge von zum Beispiel 5, 10, 15, 20, 30, 35, 36, 37, 38, 39, 40, 50, 100 oder mehr Aminosäuren) eine Domäne oder ein Motiv mit wenigstens einer Aktivität eines LTRRP oder YRP. Außerdem lassen sich andere biologisch aktive Teile, in denen andere Regionen des Proteins deletiert sind, durch rekombinante Techniken herstellen und auf eine oder mehrere der hier beschriebenen Aktivitäten untersuchen. Vorzugsweise schließen die biologisch aktiven Teile eines LTRRP oder YRP eine oder mehrere ausgewählte Domänen/Motive oder Teile davon mit biologischer Aktivität ein. Der Ausdruck ”biologisch aktiver Teil” oder ”biologische Aktivität” bezeichnet ein wie in Tabelle II, Spalte 3, gezeigtes Polypeptid oder einen Teil dieses Polypeptids, der immer noch über wenigstens 10% oder 20%, vorzugsweise 30%, 40%, 50% oder 60%, besonders bevorzugt 70%, 75%, 80%, 90% oder 95%, der enzymatischen oder biologischen Aktivität des natürlichen bzw. Ausgangsenzyms bzw. -proteins verfügt.
  • In dem Verfahren gemäß der Erfindung können Nukleinsäuresequenzen oder -moleküle verwendet werden, welche, falls geeignet, synthetische, nicht-natürliche oder modifizierte Nukleotidbasen enthalten, die in DNA oder RNA eingebaut werden können. Die synthetischen, nicht-natürlichen oder modifizierten Basen können zum Beispiel die Stabilität des Nukleinsäuremoleküls außerhalb oder innerhalb einer Zelle erhöhen. Die Nukleinsäuremoleküle der Erfindung können die gleichen Modifikationen wie obenerwähnt enthalten.
  • So, wie er im vorliegenden Zusammenhang verwendet wird, kann der Ausdruck ”Nukleinsäuremolekül” auch die/das am 3'- und am 5'-Ende der kodierenden Genregion befindliche nicht translatierte Sequenz/Molekül, zum Beispiel wenigstens 500, vorzugsweise 200, besonders bevorzugt 100, Nukleotide der Sequenz upstream vom 5'-Ende der kodierenden Region und wenigstens 100, vorzugsweise 50, besonders bevorzugt 20, Nukleotide der Sequenz downstream vom 3'-Ende der kodierenden Genregion, einschließen. Es ist häufig vorteilhaft, für Klonierungs- und Expressionzwecke nur die kodierende Region auszuwählen.
  • Vorzugsweise ist das im Verfahren gemäß der Erfindung verwendete Nukleinsäuremolekül oder das Nukleinsäuremolekül der Erfindung ein isoliertes Nukleinsäuremolekül. Gemäß einer Ausführungsform handelt es sich bei dem erfindungsgemäßen Nukleinsäuremolekül um das im erfindungsgemäßen Verfahren verwendete Nukleinsäuremolekül.
  • Ein ”isoliertes” Polynukleotid oder Nukleinsäuremolekül ist von anderen Polynukleotiden oder Nukleinsäuremolekülen getrennt, welche in der natürlichen Quelle des Nukleinsäuremoleküls vorhanden sind. Ein isoliertes Nukleinsäuremolekül kann ein chromosomales Fragment von mehreren kb, oder, vorzugsweise, ein Molekül, das nur die kodierende Region des Gens umfasst, sein. Dementsprechend kann ein isoliertes Nukleinsäuremolekül der Erfindung chromosomale Regionen umfassen, die an 5' und 3' angrenzen, oder weitere angrenzende chromosomale Regionen, umfasst jedoch vorzugsweise keine solchen Sequenzen, die die Nukleinsäuremolekülsequenz im genomischen oder chromosomalen Kontext im Organismus, aus dem das Nukleinsäuremolekül stammt, natürlich flankieren (zum Beispiel Sequenzen, die an die für die 5'- und 3'-UTRs des Nukleinsäuremoleküls kodierenden Regionen angrenzen). In verschiedenen Ausführungsformen kann das im Verfahren gemäß der Erfindung verwendete, isolierte Nukleinsäuremolekül zum Beispiel weniger als ungefähr 5 kb, 4 kb, 3 kb, 2 kb, 1 kb, 0,5 kb oder 0,1 kb Nukleotidsequenzen umfassen, welche in natürlicher Weise das Nukleinsäuremolekül in der genomischen DNA der Zelle flankieren, aus der das Nukleinsäuremolekül stammt.
  • Die in dem Verfahren verwendeten Nukleinsäuremoleküle, zum Beispiel die Polynukleotide der Erfindung oder ein Teil davon, lassen sich unter Anwendung von molekularbiologischen Standardtechniken und der hier bereitgestellten Sequenzinformationen isolieren. Außerdem können beispielsweise eine homologe Sequenz oder homologe, konservierte Sequenzregionen auf DNA- oder Aminosäure-Ebene mit Hilfe von Vergleichsalgorithmen identifiziert werden. Erstere kann/können als Hybridisierungssonden unter standardmäßigen Hybridisierungstechniken (zum Beispiel denjenigen, beschrieben in Sambrook et al., Molecular Cloning: A Laboratory Manual. 2. Aufl., Cold Spring Harbor Laboratory, Cold Spring Harbor Laboratory Press, Cold Spring Harbor, NY, 1989) zum Isolieren weiterer Nukleinsäuresequenzen verwendet werden, welche in diesem Verfahren nützlich sind.
  • Ein eine komplette Sequenz des im Verfahren eingesetzten Nukleinsäuremoleküls, zum Beispiel des Polynukleotids der Erfindung, umfassendes Nukleinsäuremolekül oder ein Teil davon lässt sich zusätzlich durch die Polymerasekettenreaktion isolieren, wobei auf dieser Sequenz oder Teilen davon basierende Oligonukleotidprimer verwendet werden. So kann man zum Beispiel ein die komplette Sequenz oder einen Teil davon umfassendes Nukleinsäuremolekül durch Polymerasekettenreaktion unter Einsatz von Oligonukleotidprimern, die auf Grundlage dieser Sequenz selbst erzeugt wurden, isolieren. Zum Beispiel lässt sich mRNA aus Zellen isolieren (zum Beispiel mittels der Guanidiniumthiocyanat-Extraktionsmethode von Chirgwin et al., Biochemistry 18, 5294 (1979)), und die cDNA lässt sich unter Verwendung von reverser Transkriptase (z. B. Moloney MLV reverse Transkriptase, erhältlich von Gibco/BRL, Bethesda, MD; oder AMV reverse Transkriptase, erhältlich von Seikagaku America, Inc., St. Petersburg, FL) herstellen.
  • Synthetische Oligonukleotidprimer für die Amplifikation, z. B. wie in Tabelle III, Spalte 7 gezeigt, lassen sich mittels einer Polymerasekettenreaktion auf Basis der hier gezeigten Sequenz, zum Beispiel der in Tabelle I, Spalten 5 und 7, gezeigten Sequenz oder den von Tabelle II, Spalten 5 und 7 abgeleiteten Sequenzen, herstellen.
  • Außerdem ist es möglich, konserviertes Protein zu identifizieren, indem man Proteinsequenzabgleichungen mit dem durch die Nukleinsäuremoleküle der vorliegenden Erfindung kodierten Polypeptid, insbesondere mit den durch das wie in Spalte 5 oder 7 von Tabelle I, gezeigte Nukleinsäuremolekül, von dem sich konservierte Regionen und daraus wiederum degenerierte Primer ableiten lassen, kodierten Sequenzen durchführt. Konservierte Regionen sind diejenigen, welche eine sehr geringe Variation an der Aminosäure in einer jeweiligen Position von mehreren Homologen unterschiedlicher Herkunft aufzeigen. Die in Spalte 7 von Tabelle IV gezeigte(n) Konsensussequenz und Polypeptidmotive werden aus diesen Alignments hergeleitet. Außerdem ist es möglich, konservierte Regionen von verschiedenen Organismen zu identifizieren, indem man Proteinsequenzabgleichungen mit dem durch die Nukleinsäure der vorliegenden Erfindung kodierten Polypeptid, insbesondere mit den durch das in Spalte 5 oder 7 von Tabelle II gezeigte Polypeptidmolekül, von dem sich konservierte Regionen und daraus wiederum degenerierte Primer ableiten lassen, kodierten Sequenzen durchführt. Gemäß einer vorteilhaften Ausführungsform wird in der Methode der vorliegenden Erfindung die Aktivität eines Polypeptids erhöht, das eine Konsensussequenz oder ein in Tabelle IV, Spalte 7 gezeigtes Polypeptidmotiv umfasst bzw. daraus besteht, und in einer anderen Ausführungsform betrifft die vorliegende Erfindung ein Polypeptid, das eine Konsensussequenz oder ein in Tabelle IV, Spalte 7 gezeigtes Polypeptidmotiv umfasst bzw. daraus besteht, wobei 20 oder weniger, vorzugsweise weniger als 15 oder 10, vorzugsweise weniger als 9, 8, 7, oder 6, besonders bevorzugt weniger als 5 oder 4, noch mehr bevorzugt weniger als 3, noch mehr bevorzugt weniger als 2, noch mehr bevorzugt 0 der angegebenen Aminosäurepositionen durch eine beliebige Aminosäure ersetzt werden können. Gemäß einer Ausführungsform sind nicht mehr als 15%, vorzugsweise 10%, noch mehr bevorzugt 5%, 4%, 3%, oder 2%, am meisten bevorzugt 1% oder 0% der durch einen Buchstaben bezeichneten Aminosäureposition durch eine andere Aminosäure ersetzt. Gemäß einer Ausführungsform sind 20 oder weniger, vorzugsweise weniger als 15 oder 10, vorzugsweise weniger als 9, 8, 7, oder 6, besonders bevorzugt weniger als 5 oder 4, noch mehr bevorzugt weniger als 3, noch mehr bevorzugt weniger als 2, noch mehr bevorzugt 0 Aminosäuren in eine Konsensussequenz oder ein Proteinmotiv insertiert. Die Konsensussequenz wurde aus einem Mehrfach-Alignment der Sequenzen, wie sie in Tabelle II aufgelistet sind, abgeleitet. Die Buchstaben stehen für den Ein-Buchstaben-Aminosäurekode und zeigen, dass die Aminosäuren in wenigstens 80% der abgeglichenen Proteine konserviert sind, während der Buchstabe X für Aminosäuren steht, die nicht in wenigstens 80% der abgeglichenen Sequenzen konserviert sind. Die Konsensussequenz beginnt mit der ersten konservierten Aminosäure im Alignment und endet mit der letzten konservierten Aminosäure im Alignment der betrachteten Sequenzen. Die Anzahl von angezeigten X gibt die Distanzen zwischen konservierten Aminosäureresten an, wobei Y-x(21,23)-F beispielsweise bedeutet, dass konservierte Tyrosin- und Phenylalaninreste beim Alignment durch minimal 21 und maximal 23 Aminosäurereste beim Alignment in allen betrachteten Sequenzen voneinander getrennt sind. Konservierte Domänen wurden aus allen Sequenzen identifiziert und sind unter Anwendung einer Untergruppe der standardmäßigen Prosite-Notation beschrieben, wobei z. B. das Muster Y-x(21,23)-[FW] bedeutet, dass ein konserviertes Tyrosin durch minimal 21 und maximal 23 Aminosäurereste von entweder einem Phenylalanin oder Tryptophan getrennt ist. Die Muster mussten mit wenigstens 80% der untersuchten Proteine übereinstimmen. Konservierte Muster wurden mit dem Softwareprogramm MEME Version 3.5.1 oder per Hand identifiziert. MEME wurde von Timothy L. Bailey und Charles Elkan, Dept. of Computer Science and Engineering, University of California, San Diego, USA entwickelt und wurde von Timothy L. Bailey und Charles Elkan (Fitting a mixture model by expectation maximization to discover motifs in biopolymers, Proceedings of the Second International Conference an Intelligent Systems for Molecular Biology, S. 28–36, AAAI Press, Menlo Park, Kalifornien, 1994) beschrieben. Der Quelltext für das Standalone-Programm ist vom San Diego Supercomputer Center (http://meme.sdsc.edu) öffentlich verfügbar. Zum Identifizieren von gemeinsamen Motiven in allen Sequenzen mit dem Software-Tool MEME wurden die folgenden Einstellungen verwendet: -maxsize 500000, -nmotifs 15, -evt 0.001, -maxw 60, -distance 1e – 3, -minsites, Anzahl von Sequenzen, die für die Analyse verwendet werden. Die Eingabesequenzen für MEME waren nicht-alignierte Sequenzen im Fasta-Format. Andere Parameter wurden in den Standardeinstellungen in dieser Softwareversion verwendet. Prosite-Muster für konservierte Domänen wurden mit dem Software-Werkzeug Pratt, Version 2.1, oder manuell erzeugt. Pratt wurde von Inge Jonassen, Dept. of Informatics, Universität Bergen, Norwegen, entwickelt und wurde von Jonassen et al. (I. Jonassen, J. F. Collins und D. G. Higgins, Finding flexible patterns in unaligned protein sequences, Protein Science 4 (1995), S. 1587–1595; I. Jonassen, Effizient discovery of conserved patterns using a pattern graph, eingereicht bei CABIOS Febr. 1997] beschrieben. Der Quelltext (ANSI C) für das Standalone-Programm ist öffentlich verfügbar, z. B. bei etablierten Bioinformatik-Zentren, wie dem EBI (Europäisches Bioinformatik-Institut). Zum Erzeugen von Mustern mit dem Software-Tool Pratt wurden die folgenden Einstellungen verwendet: PL (max. Muster-Länge): 100, PN (max. Anz. an Mustersymbolen): 100, PX (max. Anz. aufeinanderfolgender x's): 30, FN (max. Anz. flexibler Spacer): 5, FL (max. Flexibilität): 30, FP (max. Flex. Produkt): 10, ON (max. Anzahl an Mustern): 50. Die Eingabesequenzen für Pratt waren einzelne Regionen der Proteinsequenzen, welche eine hohe Ähnlichkeit aufwiesen, wie identifiziert mit dem Software-Werkzeug MEME. Die Minimumanzahl an Sequenzen, welche mit den erzeugten Mustern übereinstimmen müssen (CM, min. Anz. von Seq., die Übereinstimmung zeigen müssen) wurde auf mindestens 80% der eingegebenen Sequenzen eingestellt. Hier nicht angeführte Parameter wurden in ihren vorgegebenen Einstellungen verwendet. Mit den Prosite-Mustern der konservierten Domänen kann man nach Proteinsequenzen, die diesem Muster entsprechen, suchen. Verschiedene etablierte Bioinformationszentren bieten öffentliche Internetportale an, bei denen man mit diesen Muster Datenbanksuchen durchführen kann (z. B. PIR (Protein Information Resource, am Georgetown University Medical Center) oder ExPASy (Expert Protein Analysis System)). Alternativ dazu ist Standalone-Software verfügbar, wie etwa das Programm Fuzzpro, welches ein Teil des EMBOSS Software-Pakets ist. Beispielsweise gestattet das Programm Fuzzpro nicht nur die Suche nach einer exakten Muster-Protein-Übereinstimmung, sondern ermöglicht es auch, verschiedene Mehrdeutigkeiten bei der durchgeführten Suche vorzugeben bzw. einzustellen. Die Abgleichung erfolgte mit der Software ClustalW (Version 1.83) und wurde von Thompson et al. (Nucleic Acids Research 22, 4673 (1994)) beschrieben. Der Quelltext für das Standalone-Programm ist vom European Molecular Biology Laboratory; Heidelberg, Deutschland, öffentlich verfügbar. Die Analyse wurde unter Verwendung der Standardparameter von ClustalW v1.83 durchgeführt (Lücken-Öffnungs-Strafwert: 10,0; Lücken-Erweiterungs-Strafwert: 0,2; Proteinmatrix: Gonnet; Protein/DNA endgap: –1; Protein/DNA-Lückendistanz: 4).
  • Degenerierte Primer können dann in der PCR zur Amplifizierung von Fragmenten neuer Proteine mit der obenerwähnten Aktivität, die z. B. die Erhöhung des Ertrags, z. B. ein erhöhtes Ertragsmerkmal, insbesondere eine gesteigerte Toleranz gegenüber abiotischem Umweltstress, z. B. eine erhöhte Toleranz gegenüber niedrigen Temperaturen, Toleranz gegenüber Zyklischer Dürre, Effizienz von Wasserverbrauch eine erhöhte Effizienz der Nährstoffausnutzung (z. B. Stickstoffausnutzung) und/oder einen erhöhten intrinsischen Ertrag verglichen mit einer entsprechenden, z. B. nicht transformierten, Pflanzenzelle oder Pflanze vom Wildtyp oder einem Teil davon, verleihen, nach Erhöhen der Expression oder Aktivität oder mit der Aktivität eines wie in Tabelle II, Spalte 3, gezeigten Proteins oder weiteren funktionellen Homologen des Polypeptids der Erfindung aus anderen Organismen Verwendung finden.
  • Diese Fragmente können dann als Hybridisierungssonde zum Isolieren der vollständigen Gensequenz verwendet werden. Als Alternative können die fehlenden 5'- und 3'-Sequenzen mit Hilfe von RACE-PCR isoliert werden. Ein Nukleinsäuremolekül gemäß der Erfindung kann unter Verwendung von cDNA oder, als Alternative, genomischer DNA als Matrize und von geeigneten Oligonukleotid-Primern unter Befolgung von standardmäßigen PCR-Amplifikationstechniken amplifiziert werden. Das derartig amplifizierte Nukleinsäuremolekül kann in einen geeigneten Vektor kloniert und mittels DNA-Sequenzanalyse charakterisiert werden. Oligonukleotide, welche einem der im Verfahren verwendeten Nukleinsäuremoleküle entsprechen, können durch standardmäßige Syntheseverfahren, zum Beispiel unter Verwendung eines automatischen DNA-Synthesizers, erzeugt werden.
  • Nukleinsäuremoleküle, welche für das Verfahren gemäß der Erfindung vorteilhaft sind, können basierend auf ihrer Homologie zu den hierin offenbarten Nukleinsäuremolekülen unter Verwendung der Sequenzen oder eines Teils davon oder für die Erzeugung einer Hybridisierungssonde und gemäß Standardhybridisierungstechniken unter stringenten Hybridisierungsbedingungen isoliert werden. In diesem Zusammenhang ist es zum Beispiel möglich, ein oder mehrere isolierte Nukleinsäuremoleküle mit einer Länge von wenigstens 15, 20, 25, 30, 35, 40, 50, 60 oder mehr Nukleotiden, vorzugsweise wenigstens 15, 20 oder 25 Nukleotiden, die unter stringenten Bedingungen mit den oben beschriebenen Nukleinsäuremolekülen hybridisieren, insbesondere mit denen, die eine Nukleotidsequenz des Nukleinsäuremoleküls, das im Verfahren der Erfindung verwendet wird oder für ein in der Erfindung verwendetes Protein kodiert, oder des Nukleinsäuremoleküls der Erfindung umfassen, einzusetzen. Nukleinsäuremoleküle mit 30, 50, 100, 250 oder mehr Nukleotiden können ebenfalls verwendet werden.
  • Der Begriff ”Homologie” bedeutet, dass die jeweiligen Nukleinsäuremoleküle oder kodierten Proteine funktionell und/oder strukturell äquivalent sind. Die Nukleinsäuremoleküle, welche homolog zu den oben beschriebenen Nukleinsäuremolekülen sind und welche Derivate der Nukleinsäuremoleküle sind, sind beispielsweise Variationen der Nukleinsäuremoleküle, welche Modifikationen mit der gleichen biologischen Funktion repräsentieren, insbesondere Proteine mit der gleichen oder im wesentlichen der gleichen biologischen Funktion kodieren. Sie können natürlich vorkommende Variationen, wie Sequenzen aus anderen Pflanzenvarietäten oder -spezies, oder Mutationen sein. Diese Mutationen können natürlich vorkommen oder sie können durch Mutagenesetechniken erhalten werden. Die allelischen Variationen können natürlich vorkommende allelische Varianten sowie synthetisch hergestellte oder gentechnisch erzeugte Varianten sein. Strukturelle Äquivalente lassen sich zum Beispiel identifizieren, indem man die Bindung des Polypeptids an Antikörper testet, oder durch computergestützte Vorhersagen. Strukturäquivalente weisen ähnliche immunologische Charakteristika auf, wobei sie zum Beispiel ähnliche Epitope enthalten.
  • Mit ”Hybridisieren” ist gemeint, dass derartige Nukleinsäuremoleküle unter herkömmlichen Hybridisierungsbedingungen, vorzugsweise unter stringenten Bedingungen, hybridisieren, wie z. B. beschrieben von Sambrook (Molecular Cloning; A Laboratory Manual, 2. Ausgabe, Cold Spring Harbor Laboratory Press, Cold Spring Harbor, NY (1989)) oder in Current Protocols in Molecular Biology, John Wiley & Sons, N. Y. (1989), 6.3.1–6.3.6.
  • Gemäß der Erfindung können sowohl DNA- als auch RNA-Moleküle der Nukleinsäure der Erfindung als Sonden verwendet werden. Ferner können, als Matrize zur Identifizierung von funktionellen Homologen, sowohl Northern-Blot-Assays als auch Southern-Blot-Assays durchgeführt werden. Der Northern-Blot-Assay liefert vorteilhafterweise weitere Informationen über das exprimierte Genprodukt: z. B. Expressionsmuster, Auftreten der Verabreitungsschritte wie Spleißen und Capping, usw. Der Southern-Blot-Assay liefert zusätzliche Informationen über die chromosomale Lokalisierung und Organisation des für das Nukleinsäuremolekül der Erfindung kodierenden Gens.
  • Ein bevorzugtes, nicht einschränkendes Beispiel für stringente Hydridisierungsbedingungen sind Hybridisierungen in 6 × Natriumchlorid/Natriumcitrat (= SSC) bei ungefähr 45°C, gefolgt von einem oder mehreren Waschschritten in 0,2 × SSC, 0,1% SDS bei 50 bis 65°C, zum Beispiel bei 50°C, 55°C oder 60°C. Der Fachmann weiß, dass diese Hybridisierungsbedingungen sich in Abhängigkeit vom Typ der Nukleinsäure unterscheiden und, zum Beispiel wenn organische Lösungsmittel vorhanden sind, hinsichtlich der Temperatur und der Konzentration des Puffers. Die Temperatur unter ”Standard-Hybridisierungsbedingungen” liegt zum Beispiel in Abhängigkeit vom Typ der Nukleinsäure zwischen 42°C und 58°C, vorzugsweise zwischen 45°C und 50°C in einem wässrigen Puffer mit einer Konzentration von 0,1 ×, 0,5 ×, 1 ×, 2 ×, 3 ×, 4 × oder 5 × SSC (pH 7,2). Wenn organische(s) Lösungsmittel im oben erwähnten Puffer vorhanden ist/sind, beispielsweise 50% Formamid, beläuft sich die Temperatur unter Standardbedingungen auf ungefähr 40°C, 42°C oder 45°C. Die Hybridisierungsbedingungen für DNA:DNA-Hybride sind beispielsweise bevorzugt 0,1 × SSC und 20°C, 25°C, 30°C, 35°C, 40°C oder 45°C, vorzugsweise zwischen 30°C und 45°C. Die Hybridisierungsbedingungen für DNA:RNA-Hybride sind beispielsweise bevorzugt 0,1 × SSC und 30°C, 35°C, 40°C, 45°C, 50°C oder 55°C, vorzugsweise zwischen 45°C und 55°C. Die oben erwähnten Hybridisierungstemperaturen werden zum Beispiel für eine Nukleinsäure von ungefähr 100 bp (= Basenpaare) Länge und mit einem G + C-Gehalt von 50% in Abwesenheit von Formamid ermittelt. Der Fachmann weiß, wie man die erforderlichen Hybridisierungsbedingungen mit der Hilfe von Lehrbüchern ermittelt, zum Beispiel denjenigen, welche oben erwähnt wurden, oder aus den folgenden Lehrbüchern: Sambrook et al., "Molecular Cloning", Cold Spring Harbor Laboratory, 1989; Harnes und Higgins (Hrsg.) 1985, "Nucleic Acids Hybridization: A Practical Approach", IRL Press bei Oxford University Press, Oxford; Brown (Hrsg.) 1991, "Essential Molecular Biology: A Practical Approach", IRL Press bei Oxford University Press, Oxford.
  • Ein weiteres Beispiel einer derartigen stringenten Hybridisierungsbedingung ist die Hybridisierung bei 4 × SSC bei 65°C, gefolgt von Waschen in 0,1 × SSC bei 65°C während einer Stunde. Alternativ dazu erfolgt eine beispielhafte stringente Hybridisierungsbedingung in 50% Formamid, 4 × SSC bei 42°C. Ferner können die Bedingungen während des Waschschrittes aus dem Bereich von Bedingungen ausgewählt werden, der von Niederstringenzbedingungen (ungefähr 2 × SSC bei 50°C) und Hochstringenzbedingungen (ungefähr 0,2 × SSC bei 50°C, vorzugsweise bei 65°C) begrenzt wird (20 × SSC: 0,3M Natriumcitrat, 3M NaCl, pH 7,0). Zusätzlich kann die Temperatur während des Waschschritts von niederstringenten Bedingungen bei Raumtemperatur, ungefähr 22°C, auf höherstringente Bedingungen bei ungefähr 65°C erhöht werden. Die Parameter Salzkonzentration und Temperatur können beide gleichzeitig variiert werden, oder ansonsten kann einer der beiden Parameter konstant gehalten werden, während man den anderen variiert. Denaturierungsmittel, zum Beispiel Formamid oder SDS, können ebenfalls während der Hybridisierung verwendet werden. In Gegenwart von 50% Formamid erfolgt die Hybridisierung vorzugsweise bei 42°C. Relevante Faktoren wie 1) Dauer der Behandlung, 2) Salzbedingungen, 3) Tensidbedingungen, 4) Kompetitor-DNAs, 5) Temperatur und 6) gewählte Sonde können von Fall zu Fall kombiniert werden, so dass hier nicht alle Möglichkeiten aufgeführt werden können. So werden in einer bevorzugten Ausführungsform Northern-Blots mit Rothi-Hybri-Quick-Puffer (Roth, Karlsruhe) 2 h bei 68°C vorhybridisiert. Die Hybridsierung mit einer radioaktiv markierten Sonde erfolgt über Nacht bei 68°C. Die anschließenden Waschschritte werden bei 68°C mit 1 × SSC durchgeführt. Bei den Southern-Blot-Assays wird die Membran 2 h bei 68°C mit Rothi-Hybri-Quick-Puffer (Roth, Karlsruhe) vorhybridisiert. Die Hybridisierung mit einer radioaktiv markierten Sonde erfolgt über Nacht bei 68°C. Anschließend wird der Hybridisierungspuffer verworfen und der Filter kurz mit 2 × SSC; 0,1% SDS gewaschen. Nachdem der Waschpuffer verworfen wurde, wird neuer 2 × SSC; 0,1% SDS-Puffer zugegeben, und es wird 15 Minuten lang bei 68°C inkubiert. Dieser Waschschritt wird zweimal durchgeführt, worauf sich ein zusätzlicher 10-minütiger Waschschritt mit 1 × SSC; 0,1% SDS bei 68°C anschließt.
  • Einige Beispiele für Bedingungen zur DNA-Hybridisierung (Southern-Blot-Assays) und Waschschritte sind unten gezeigt:
    • (1) Hybridisierungsbedingungen können zum Beispiel aus den folgenden Bedingungen ausgewählt werden: (a) 4 × SSC bei 65°C, (b) 6 × SSC bei 45°C, (c) 6 × SSC, 100 mg/ml DNA aus denaturiertem fragmentiertem Fischsperma bei 68°C, (d) 6 × SSC, 0,5% SDS, 100 mg/ml DNA aus denaturiertem Lachssperma bei 68°C, (e) 6 × SSC, 0,5% SDS, 100 mg/ml DNA aus denaturiertem fragmentiertem Lachssperma, 50% Formamid bei 42°C, (f) 50% Formamid, 4 × SSC bei 42°C, (g) 50% (v/v) Formamid, 0,1% Rinderserumalbumin, 0,1% Ficoll, 0,1% Polyvinylpyrrolidon, 50 mM Natriumphosphatpuffer pH 6,5, 750 mM NaCl, 75 mM Natriumcitrat bei 42°C, (h) 2 × oder 4 × SSC bei 50°C (niederstringente Bedingung), oder (i) 30 bis 40% Formamid, 2 × oder 4 × SSC bei 42°C (niederstringente Bedingung).
    • (2) Waschschritte können beispielsweise aus den folgenden Bedingungen ausgewählt sein: (a) 0,015 M NaCl/0,0015 M Natriumcitrat/0,1% SDS bei 50°C. (b) 0,1 × SSC bei 65°C. (c) 0,1 × SSC, 0,5% SDS bei 68°C. (d) 0,1 × SSC, 0,5% SDS, 50% Formamid bei 42°C. (e) 0,2 × SSC, 0,1% SDS bei 42°C. (f) 2 × SSC bei 65°C (niederstringente Bedingung).
  • Polypeptide mit der obenerwähnten Aktivität, d. h. Polypeptide, die die Erhöhung des Ertrags, z. B. ein wie hier erwähntes erhöhtes Ertragsmerkmal, z. B. eine gesteigerte Toleranz gegenüber abiotischem Stress, z. B. Toleranz gegenüber niedrigen Temperaturen, z. B. mit erhöhter Effizienz der Nährstoffausnutzung, und/oder Effizienz der Wasserausnutzung und/oder erhöhtem intrinsischen Ertrag, verglichen mit einer entsprechenden, z. B. nicht transformierten, Pflanzenzelle oder Pflanze vom Wildtyp oder einem Teil davon, verleihen, die aus anderen Organismen abgeleitet sind, können durch andere DNA-Sequenzen kodiert sein, die mit den in Tabelle I, Spalten 5 und 7, gezeigten Sequenzen unter niederstringenten Hybridisierungsbedingungen hybridisieren und die bei der Expression für Peptide kodieren, die den erhöhten Ertrag, z. B. ein wie hier erwähntes erhöhtes Ertragsmerkmal, z. B. eine gesteigerte Toleranz gegenüber abiotischem Stress, z. B. Toleranz gegenüber niedrigen Temperaturen oder eine gesteigerte Toleranz gegenüber Kälte, z. B. mit erhöhter Effizienz der Nährstoffausnutzung, und/oder Effizienz der Wasserausnutzung und/oder erhöhtem intrinsischen Ertrag, verglichen mit einer entsprechenden, z. B. nicht transformierten, Pflanzenzelle oder Pflanze vom Wildtyp oder einem Teil davon, verleihen.
  • Weiterhin müssen einige Anwendungen bei niederstringenten Hybridisierungsbedingungen durchgeführt werden, ohne dass sich dadurch irgendwelche Konsequenzen für die Spezifität der Hybridisierung ergeben. So könnte man zum Beispiel für eine Southern-Blot-Analyse der gesamt-DNA als Sonde ein Nukleinsäuremolekül der vorliegenden Erfindung verwenden und niederstringent waschen (55°C in 2 × SSPE, 0,1% SDS). Die Hybridisierungsanalyse könnte ein einfaches Muster nur mit Genen, die für Polypeptide der vorliegenden Erfindung oder für im Verfahren der Erfindung verwendete Polypeptide kodieren, z. B. mit der hier erwähnten Aktivität der Steigerung der Ertragerhöhung, z. B. eines wie hier erwähnten erhöhten Ertragsmerkmals, z. B. einer erhöhten Toleranz gegenüber abiotischem Stress, z. B. einer erhöhten Toleranz gegenüber niedrigen Temperaturen oder einer erhöhten Toleranz gegenüber Kälte, z. B. mit einer erhöhten Effizienz der Nährstoffausnutzung, und/oder Effizienz der Wasserausnutzung und/oder einem erhöhten intrinsischen Ertrag, verglichen mit einer entsprechenden, z. B. nicht transformierten, Pflanzenzelle oder Pflanze vom Wildtyp oder einem Teil davon. Ein weiteres Beispiel für solche niederstringenten Hybridisierungsbedingungen ist 4 × SSC bei 50°C oder die Hybridisierung mit 30 bis 40% Formamid bei 42°C. Solche Moleküle schließen die ein, bei denen es sich um Fragmente, Analoga oder Derivate des Polypeptids der Erfindung oder des im Verfahren der Erfindung verwendeten Polypeptids handelt und die sich zum Beispiel in Bezug auf eine oder mehrere Aminosäuren- und/oder Nukleotiddeletionen, -insertionen, -substitutionen, -additionen und/oder -rekombinationen oder andere im Stand der Technik bekannte Modifikationen entweder alleine oder in Kombination von den oben beschriebenen Aminosäuresequenzen oder ihrer/ihren zugrundeliegenden Nukleotidsequenz(en) unterscheiden. Bevorzugt wendet man jedoch hochstringente Hybridisierungsbedingungen an.
  • Die Hybridisierung sollte in vorteilhafter Weise mit Fragmenten von mindestens 5, 10, 15, 20, 25, 30, 35 oder 40 bp, vorteilhafterweise mindestens 50, 60, 70 oder 80 bp, vorzugsweise mindestens 90, 100 oder 110 bp durchgeführt werden. Am stärksten bevorzugt sind Fragmente mit wenigstens 15, 20, 25 oder 30 bp. Bevorzugt sind auch Hybridisierungen mit mindestens 100 bp oder 200, insbesondere bevorzugt mindestens 400 bp Länge. In einer besonders bevorzugten Ausführungsform sollte die Hybridisierung mit der gesamten Nukleinsäuresequenz bei den oben beschriebenen Bedingungen durchgeführt werden.
  • Die Begriffe ”Fragment”, ”Fragment einer Sequenz” oder ”Teil einer Sequenz” bedeuten eine trunkierte bzw. verkürzte Sequenz der betreffenden Originalsequenz. Die gekürzte Sequenz (Nukleinsäure- oder Proteinsequenz) kann in ihrer Länge stark schwanken; die Mindestgröße ist eine Sequenz mit einer Größe, die ausreicht, um eine Sequenz bereitzustellen, die wenigstens eine vergleichbare Funktion und/oder Aktivität der betreffenden Originalsequenz bzw. des betreffenden Originalmoleküls aufweist oder mit dem Nukleinsäuremolekül der Erfindung oder dem im Verfahren der Erfindung verwendeten Nukleinsäuremolekül unter stringenten Bedingungen hybridisiert, während die maximal Größe nicht kritisch ist. Bei einigen Anwendungen ist die maximale Größe nicht wesentlich größer als die, die erforderlich ist, um die gewünschte Aktivität und/oder Funktion(en) der Originalsequenz bereitzustellen.
  • Typischerweise wird das trunkierte Aminosäuremolekül im Bereich von etwa 5 bis etwa 310 Aminosäuren Länge liegen. Noch typischer wird die Sequenz jedoch eine Länge von maximal etwa 250 Aminosäuren, vorzugsweise maximal etwa 200 oder 100 Aminosäuren, aufweisen. Es ist gewöhnlich wünschenswert, Sequenzen mit wenigstens etwa 10, 12 oder 15 Aminosäuren, bis zu einem Maximum von etwa 20 oder 25 Aminosäuren, auszuwählen.
  • Der Begriff ”Epitop” bezieht sich auf spezifische immunreaktive Stellen innerhalb eines Antigens, welche ebenfalls als antigene Determinanten bekannt sind. Diese Epitope können eine lineare Anordnung von Monomeren in einer polymeren Zusammensetzung – wie etwa Aminosäuren in einem Protein – sein oder aus einer komplexeren Sekundär- oder Tertiärstruktur bestehen, oder diese umfassen. Der Fachmann wird erkennen, dass immunogene (d. h. Substanzen, die zum Hervorrufen einer Immunantwort befähigt sind) Antigene sind; allerdings sind manche Antigene, wie etwa Haptene, keine Immunogene, sondern können durch Kopplung an ein Trägermolekül immunogen gemacht werden. Der Begriff ”Antigen” beinhaltet Bezugnahmen auf eine Substanz, gegen die ein Antikörper erzeugt werden kann und/oder gegen die der Antikörper spezifisch immunreaktiv ist.
  • Gemäß einer Ausführungsform betrifft die vorliegende Erfindung ein Epitop des Polypeptids der vorliegenden Erfindung bzw. des im Verfahren der vorliegenden Erfindung verwendeten Polypeptids und verleiht einen erhöhten Ertrag, z. B. ein wie hier erwähntes erhöhtes Ertragsmerkmal, z. B. eine gesteigerte Toleranz gegenüber abiotischem Stress, z. B. eine erhöhte Toleranz gegenüber niedrigen Temperaturen oder eine gesteigerte Toleranz gegenüber Kälte, z. B. mit einer erhöhten Effizienz der Nährstoffausnutzung und/oder einer erhöhten Effizienz der Wasserausnutzung und/oder einem erhöhten intrinsischen Ertrag usw., verglichen mit einer entsprechenden, z. B. nicht transformierten, Pflanzenzelle oder Pflanze vom Wildtyp oder einem Teil davon.
  • Der Ausdruck ”eine oder mehrere Aminosäuren” bezieht sich auf wenigstens eine Aminosäure, jedoch nicht mehr als die Anzahl an Aminosäuren, die eine Homologie von unter 50% Identität zur Folge haben würde. Vorzugsweise ist die Identität mehr als 70% oder 80%, weiter bevorzugt sind 85%, 90%, 91%, 92%, 93%, 94% oder 95%, noch weiter bevorzugt sind 96%, 97%, 98% oder 99% Identität.
  • Weiterhin umfasst das Nukleinsäuremolekül der Erfindung ein Nukleinsäuremolekül, bei dem es sich um ein Komplement zu einer der Nukleotidsequenzen der obenerwähnten Nukleinsäuremoleküle oder eines Teils davon handelt. Ein Nukleinsäuremolekül oder seine Sequenz, das/die komplementär zu einer der in Tabelle I, Spalten 5 und 7, gezeigten Nukleotidmoleküle bzw. -sequenzen ist, ist eines/eine, das/die ausreichend komplementär zu einer der in Tabelle I, Spalten 5 und 7, gezeigten Nukleotidmoleküle bzw. -sequenzen ist, so dass es/sie mit einer der in Tabelle I, Spalten 5 und 7, gezeigten Nukleotidsequenzen unter Bildung eines stabilen Duplex hybridisieren kann. Vorzugsweise wird die Hybridisierung unter stringenten Hybridisierungsbedingungen durchgeführt. Allerdings ist ein Komplement von einer der hierin offenbarten Sequenzen vorzugsweise ein Sequenzkomplement dazu, in Übereinstimmung mit der dem Fachmann gut bekannten Basenpaarung von Nukleinsäuremolekülen. So paaren sich zum Beispiel die Basen A und G mit den Basen T und U bzw. C, und umgekehrt. Modifikationen der Basen können den Basenpaarungs-Partner beeinflussen.
  • Das Nukleinsäuremolekül der Erfindung umfasst eine Nukleotidsequenz, die wenigstens etwa 30%, 35%, 40% oder 45%, vorzugsweise wenigstens etwa 50%, 55%, 60% oder 65%, besonders bevorzugt wenigstens etwa 70%, 80% oder 90%, und ganz besonders bevorzugt wenigstens etwa 95%, 97%, 98%, 99% oder mehr homolog zu einer in Tabelle I, Spalten 5 und 7, gezeigten Nukleotidsequenz oder einem Teil davon ist und vorzugsweise die obenerwähnte Aktivität aufweist, insbesondere eine ertragserhöhende Aktivität, z. B. ein erhöhtes Ertragsmerkmal, zum Beispiel eine gesteigerte Toleranz gegenüber abiotischem Umweltstress, zum Beispiel eine erhöhte Toleranz gegenüber Dürre und/oder Toleranz gegenüber niedrigen Temperaturen und/oder eine erhöhte Effizienz der Nährstoffausnutzung, einen erhöhten intrinsischen Ertrag und/oder ein erhöhtes anderes erwähntes Ertragsmerkmal, nach der Erhöhung der Aktivität oder einer Aktivität eines wie in Tabelle I gezeigten Gens oder eines wie in Tabelle II, Spalte 3, gezeigten Genprodukts, zum Beispiel durch Expression entweder im Zytosol oder Zytoplasma oder in einer Organelle wie einem Plastid oder Mitochondrien oder beiden, vorzugsweise in Plastiden. Gemäß einer Ausführungsform werden die in Tabelle I, Spalte 6, mit „plastidisch” gekennzeichneten Nukleinsäuremoleküle bzw. durch diese Nukleinsäuremoleküle kodierten Genprodukte in Kombination mit einem wie hier beschriebenen Targeting-Signal exprimiert.
  • Das Nukleinsäuremolekül der Erfindung umfasst eine Nukleotidsequenz bzw. ein Nukleotidmolekül, die/das mit einer der in Tabelle I, Spalten 5 und 7, gezeigten Nukleotidsequenzen oder einem Teil davon vorzugsweise unter wie hier definierten stringenten Bedingungen hybridisiert und für ein Protein mit der obenerwähnten Aktivität kodiert, welches verglichen mit einer entsprechenden, z. B. nicht transformierten, Pflanzenzelle oder Pflanze vom Wildtyp oder einem Teil davon z. B. einen erhöhten Ertrag, z. B. ein erhöhtes Ertragsmerkmal, zum Beispiel eine gesteigerte Toleranz gegenüber abiotischem Umweltstress, zum Beispiel eine erhöhte Toleranz gegenüber Dürre und/oder Toleranz gegenüber niedrigen Temperaturen und/oder eine erhöhte Effizienz der Nährstoffausnutzung, einen erhöhten intrinsischen Ertrag und/oder ein erhöhtes anderes erwähntes Ertragsmerkmal verleiht, zum Beispiel durch Expression entweder im Zytosol oder in einer Organelle wie einem Plastid oder Mitochondrien oder beiden, vorzugsweise in Plastiden, und gegebenenfalls die Aktivität, ausgewählt aus der Gruppe bestehend aus einer (DL)-Glycerin-3-phosphatase, einer 2-Desoxyglucose-6-phosphatphosphatase, einer 3-Methyl-2-oxobutanoat-Hydroxymethyltransferase, einer Alkoholacetyltransferase, einer Aminosäurepermease, einer Aminomethyltransferase, einem Ammoniumtransporter, einem Aquaporin, einem ATP-bindenden Protein eines Arabinasetransportsystems, einer Argininosuccinatsynthase, einer Aspartataminotransferase, einem B1906-Protein, einem B3410-Protein, einer Cardiolipinsynthetase, einem CoA-Transferase-ähnlichen Protein (NAD(P)-bindend), einem Cobalttransportprotein, einem DNA- und proteinbindenden Protein zur Steuerung des Proteoms auf der posttranskriptionellen Ebene, einer Enoyl-CoA-Hydratase, einer Enoyl-CoA-Isomerase, einer Ethanolaminkinase, einer Formiatacetyltransferase 1, einem Protein einer Glucit/Sorbit-spezifischen Enzym-IIA-Komponente, einer Glutaminsynthetase, einer Glutathion-S-transferase, einer Glycerindehydrogenase, einem Glykogensyntheseinitiatorprotein, einem GTP-bindenden Protein, einem Hitzeschockprotein, einem Hexosetransporter, einer Holo-[Acylträgerprotein]-Synthase, einem anorganischen Phosphattransporter, einer Lanosterolsynthase, einer molybdänbindenden Untereinheit von Aldehydoxidasen und Xanthindehydrogenasen, einem Multidrug-Resistenzprotein, einem Multiple-Drug-Resistenzprotein, einer NADH-Dehydrogenase/NAD(P)H-Nitroreduktase, einer Oxidoreduktase, einer Peptidyl-Prolyl-cis/trans-Isomerase, einem Peroxisomal-Targeting-Signal-2-Rezeptor, einer Phosphoadenosinphosphosulfatreduktase, einem Phosphoträgerprotein, einem Pirin-ähnlichen Protein, einer Precorrin-6y-Methylase, einem für den Abbau von Glykoproteinen benötigten Protein, einer Pyrimidindeaminase/-reduktase, einem Regulator der Zellmorphogenese und der NO-Signalvermittlung, einer Serinacetyltransferase, einer Untereinheit des Signalosomkomplexes, einem SLR1094-Protein, einer Untereinheit von TORC1, einer thiolspezifischen Monooxygenase, einem die Transkription steuernden Protein, einer Transketolase, einem Zwei-Modul-Transportprotein, einem Uridindiphosphat-N-acetylglucosamintransporter, einem yer175w-a-Protein, einem yhr213w-a-Protein, einem YML079W-Protein, einem YMR157C-Protein, einem YNL024C-Protein und einem YNR040W-Protein, verleiht.
  • Außerdem kann das Nukleinsäuremolekül der Erfindung nur einen Teil der kodierenden Region einer der in Tabelle I, Spalten 5 und 7, gezeigten Sequenzen aufweisen, zum Beispiel ein Fragment, das als Sonde oder Primer verwendet werden kann oder ein Fragment, das für einen biologisch aktiven Teil des Polypeptids der vorliegenden Erfindung oder eines im Verfahren der vorliegenden Erfindung verwendeten Polypeptids kodiert, d. h. eines Polypeptids mit der obenerwähnten Aktivität, das z. B. einen erhöhten Ertrag, z. B. mit einem erhöhten Ertragsmerkmal, zum Beispiel einer gesteigerten Toleranz gegenüber abiotischem Umweltstress, zum Beispiel einer erhöhten Toleranz gegenüber Dürre und/oder Toleranz gegenüber niedrigen Temperaturen und/oder einer erhöhten Effizienz der Nährstoffausnutzung, einem erhöhten intrinsischen Ertrag und/oder einem erhöhten anderen erwähnten Ertragsmerkmal, verglichen mit einer entsprechenden, z. B. nicht transformierten, Pflanzenzelle oder Pflanze vom Wildtyp oder einem Teil davon, verleiht, wenn dessen Aktivität erhöht wird, zum Beispiel durch Expression entweder im Zytosol oder in einer Organelle wie einem Plastid oder Mitochondrien oder beiden, vorzugsweise in Plastiden. Die durch Klonieren des für das vorliegende, für das erfindungsgemäße Protein kodierenden Gens bestimmten Nukleotidsequenzen ermöglichen die Herstellung von Sonden und Primer, die auf die Identifizierung und/oder Klonierung ihrer Homologe in anderen Zelltypen und Organismen zugeschnitten sind. Die Sonde/der Primer umfasst typischerweise im Wesentlichen gereinigtes Oligonukleotid. Das Oligonukleotid umfasst typischerweise eine Region einer Nukleotidsequenz, die unter stringenten Bedingungen mit wenigstens etwa 12, 15, vorzugsweise etwa 20 oder 25, besonders bevorzugt etwa 40, 50 oder 75, aufeinanderfolgenden Nukleotiden eines Sense-Strangs einer der z. B. in Tabelle I, Spalten 5 und 7, angeführten Sequenzen, einer Antisense-Sequenz einer der z. B. in Tabelle I, Spalten 5 und 7, angeführten Sequenzen oder natürlich vorkommenden Mutanten davon hybridisiert. Auf einem Nukleotid der Erfindung basierende Primer können in PCR-Reaktionen zum Klonieren von Homologen des Polypeptids der Erfindung oder des im Verfahren der Erfindung verwendeten Polypeptids verwendet werden, z. B. als die in den Beispielen der vorliegenden Erfindung beschriebenen Primer, z. B. wie in den Beispielen gezeigt. Eine PCR mit den in Tabelle III, Spalte 7, gezeigten Primern führt zu einem Fragment des wie in Tabelle II, Spalte 3, gezeigten Genprodukts.
  • Primersets sind austauschbar. Dem Fachmann ist bekannt, wie man diese Primer kombiniert, um zu dem gewünschten Produkt zu gelangen, z. B. in einem Klon der vollständigen Länge oder einer Teilsequenz. Auf den Sequenzen des Nukleinsäuremoleküls der Erfindung oder des im Verfahren der vorliegenden Erfindung verwendeten Nukleinsäuremoleküls basierende Sonden lassen sich einsetzen, um Transkripte oder für diese kodierende genomische Sequenzen oder homologe Proteine nachzuweisen. Die Sonde kann ferner eine daran gebundene Markierungsgruppe umfassen, wobei die Markierungsgruppe z. B. ein radioaktives Isotop, eine fluoreszierende Verbindung, ein Enzym oder ein Enzym-Cofaktor sein kann. Solche Sonden können als Teil eines Testkits für genomische Marker zur Identifizierung von Zellen, die ein Polypeptid der Erfindung oder ein im Verfahren der vorliegenden Erfindung verwendetes Polypeptid exprimieren, verwendet werden, wie z. B. durch die Messung einer Konzentration eines kodierenden Nukleinsäuremoleküls in einer Probe von Zellen, z. B. indem man mRNA-Konzentrationen nachweist oder bestimmt, ob ein die Sequenz des Polynukleotids der Erfindung oder des in den Verfahren der vorliegenden Erfindung verwendeten Polynukleotids enthaltendes genomisches Gen mutiert oder deletiert worden ist.
  • Das Nukleinsäuremolekül der Erfindung kodiert für ein Polypeptid oder einen Teil davon, der eine Aminosäuresequenz einschließt, die ausreichend homolog mit der in Tabelle II, Spalten 5 und 7, gezeigten Aminosäuresequenz ist, so dass das Protein oder der Teil davon die Fähigkeit beibehält, zur Erhöhung des Ertrags, z. B. der Erhöhung eines Ertragsmerkmals, zum Beispiel der Steigerung der Toleranz gegenüber abiotischem Umweltstress, zum Beispiel der Erhöhung der Toleranz gegenüber Dürre und/oder Toleranz gegenüber niedrigen Temperaturen und/oder zur Erhöhung der Effizienz der Nährstoffausnutzung, zur Erhöhung des intrinsischen Ertrags und/oder eines anderen erwähnten Ertragsmerkmals, verglichen mit einer entsprechenden, z. B. nicht transformierten, Pflanzenzelle oder Pflanze vom Wildtyp oder einem Teil davon, beizutragen; dies schließt insbesondere die Erhöhung der wie oben erwähnten oder wie in den Beispielen beschriebenen Aktivität in Pflanzen ein.
  • So, wie er hier verwendet wird, bezieht sich der Ausdruck ”ausreichend homolog” auf Proteine oder Teile davon mit Aminosäuresequenzen, die eine Mindestzahl an mit einer in Tabelle II, Spalten 5 und 7, gezeigten Aminosäuresequenz identischen oder äquivalenten Aminosäureresten (z. B. einen Aminosäurerest mit einer ähnlichen Seitenkette wie ein Aminosäurerest in einer der Sequenzen des Polypeptids der vorliegenden Erfindung) einschließen, so dass das Protein oder der Teil davon dazu fähig ist, zur Erhöhung des Ertrags, z. B. der Erhöhung eines Ertragsmerkmals, zum Beispiel der Steigerung der Toleranz gegenüber abiotischem Umweltstress, zum Beispiel der Erhöhung der Toleranz gegenüber Dürre und/oder Toleranz gegenüber niedrigen Temperaturen und/oder zur Erhöhung der Effizienz der Nährstoffausnutzung, zur Erhöhung des intrinsischen Ertrags und/oder eines anderen erwähnten Ertragsmerkmals, verglichen mit einer entsprechenden, z. B. nicht transformierten, Pflanzenzelle oder Pflanze vom Wildtyp oder einem Teil davon, beizutragen. Für Beispiele mit der Aktivität eines wie in Tabelle II, Spalte 3, gezeigten und wie hier beschriebenen Proteins.
  • Gemäß einer Ausführungsform umfasst das Nukleinsäuremolekül der vorliegenden Erfindung eine Nukleinsäure, die für einen Teil des Proteins der vorliegenden Erfindung kodiert. Das Protein ist wenigstens etwa 30%, 35%, 40%, 45% oder 50%, vorzugsweise wenigstens etwa 55%, 60%, 65% oder 70%, und besonders bevorzugt wenigstens etwa 75%, 80%, 85%, 90%, 91%, 92%, 93% oder 94% und ganz besonders bevorzugt wenigstens etwa 95%, 97%, 98%, 99% oder mehr homolog zu einer ganzen Aminosäuresequenz aus Tabelle II, Spalten 5 und 7 und hat die obenerwähnte Aktivität, z. B. verleiht sie einen erhöhten Ertrag, z. B. ein erhöhtes Ertragsmerkmal, zum Beispiel eine gesteigerte Toleranz gegenüber abiotischem Umweltstress, zum Beispiel eine erhöhte Toleranz gegenüber Dürre und/oder Toleranz gegenüber niedrigen Temperaturen und/oder eine erhöhte Effizienz der Nährstoffausnutzung, einen erhöhten intrinsischen Ertrag und/oder ein erhöhtes anderes erwähntes Ertragsmerkmal, verglichen mit einer entsprechenden, z. B. nicht transformierten, Pflanzenzelle oder Pflanze vom Wildtyp oder einem Teil davon, zum Beispiel durch Expression entweder im Zytosol oder in einer Organelle wie einem Plastid oder Mitochondrien oder beiden, vorzugsweise in Plastiden.
  • Teile von durch das Nukleinsäuremolekül der Erfindung kodierten Proteinen sind vorzugsweise biologisch aktiv, vorzugsweise mit der obenerwähnten kommentierten Aktivität, z. B. indem sie nach Erhöhung der Aktivität einen erhöhten Ertrag, z. B. ein erhöhtes Ertragsmerkmal, zum Beispiel eine gesteigerte Toleranz gegenüber abiotischem Umweltstress, zum Beispiel eine erhöhte Toleranz gegenüber Dürre und/oder Toleranz gegenüber niedrigen Temperaturen und/oder eine erhöhte Effizienz der Nährstoffausnutzung, einen erhöhten intrinsischen Ertrag und/oder ein erhöhtes anderes erwähntes Ertragsmerkmal, verglichen mit einer entsprechenden, z. B. nicht transformierten, Pflanzenzelle oder Pflanze vom Wildtyp oder einem Teil davon verleihen.
  • Wie hier erwähnt soll der Ausdruck „biologisch aktiver Teil” einen Teil, z. B. eine Domäne/ein Motiv, einschließen, der einen erhöhten Ertrag, z. B. ein erhöhtes Ertragsmerkmal, zum Beispiel eine gesteigerte Toleranz gegenüber abiotischem Umweltstress, zum Beispiel eine erhöhte Toleranz gegenüber Dürre und/oder Toleranz gegenüber niedrigen Temperaturen und/oder eine erhöhte Effizienz der Nährstoffausnutzung, einen erhöhten intrinsischen Ertrag und/oder ein erhöhtes anderes erwähntes Ertragsmerkmal, verglichen mit einer entsprechenden, z. B. nicht transformierten, Pflanzenzelle oder Pflanze vom Wildtyp oder einem Teil davon, verleiht oder eine immunologische Aktivität hat, so dass er an einen Antikörper bindet, der spezifisch an das Polypeptid der vorliegenden Erfindung oder ein im Verfahren der vorliegenden Erfindung für einen erhöhten Ertrag, z. B. ein erhöhtes Ertragsmerkmal, zum Beispiel eine gesteigerte Toleranz gegenüber abiotischem Umweltstress, zum Beispiel eine erhöhte Toleranz gegenüber Dürre und/oder Toleranz gegenüber niedrigen Temperaturen und/oder eine erhöhte Effizienz der Nährstoffausnutzung, einen erhöhten intrinsischen Ertrag und/oder ein anderes erhöhtes Ertragsmerkmal, verglichen mit einer entsprechenden, z. B. nicht transformierten, Pflanzenzelle oder Pflanze vom Wildtyp oder einem Teil davon, verwendetes Polypeptid bindet.
  • Die Erfindung betrifft weiterhin Nukleinsäuremoleküle, die sich aufgrund der Degeneration des genetischen Kodes von einer der in Tabelle I A, Spalten 5 und 7, gezeigten Nukleotidsequenzen (und Teilen davon) unterscheiden und somit für ein Polypeptid der vorliegenden Erfindung, insbesondere ein Polypeptid mit der obenerwähnten Aktivität, z. B. wie die durch die in Tabelle II, Spalten 5 und 7, gezeigte Sequenz wiedergegebenen Polypeptide oder die funktionellen Homologe kodieren. Vorteilhafterweise umfasst oder (gemäß einer anderen Ausführungsform) hat, das Nukleinsäuremolekül der Erfindung eine Nukleotidsequenz, die für ein Protein, welches eine in Tabelle II, Spalten 5 und 7, gezeigte Aminosäuresequenz umfasst oder (gemäß einer anderen Ausführungsform) hat, oder die funktionellen Homologen kodiert. Gemäß noch einer weiteren Ausführungsform kodiert das Nukleinsäuremolekül der Erfindung für ein Protein vollständiger Länge, das im Wesentlichen homolog zu einer in Tabelle II, Spalten 5 und 7, gezeigten Aminosäuresequenz oder den funktionellen Homologen ist. In einer Ausführungsform jedoch besteht das Nukleinsäuremolekül der vorliegenden Erfindung nicht aus der in Tabelle I, vorzugsweise Tabelle IA, Spalten 5 und 7, gezeigten Sequenz.
  • Darüber hinaus wird es der Fachmann auf dem Gebiet richtig verstehen, dass die DNA-Sequenzpolymorphismen, welche zu Änderungen in den Aminosäuresequenzen führen, innerhalb einer Population vorkommen können. Solche genetischen Polymorphismen beim für das Polypeptid der Erfindung kodierenden oder das Nukleinsäuremolekül der Erfindung enthaltenden Gen können aufgrund der natürlichen Variation zwischen Individuen in einer Population vorhanden sein.
  • So, wie sie hier verwendet werden, beziehen sich die Ausdrücke ”Gen” und ”rekombinantes Gen” auf Nukleinsäuremoleküle, die einen offenen Leserahmen enthalten, der für das Polypeptid der Erfindung kodiert, oder die das Nukleinsäuremolekül der Erfindung umfassen oder die für das im Verfahren der vorliegenden Erfindung verwendete Polypeptid kodieren, vorzugsweise aus einer Kulturpflanze oder aus einem Mikroorganismus, der sich für das Verfahren der Erfindung eignet. Solche natürlichen Variationen können typischerweise eine 1–5%ige Varianz in der Nukleotidsequenz des Gens zur Folge haben. Alle diese Nukleotidvariationen und die resultierenden Aminosäurepolymorphismen in Genen, die für ein Polypeptid der Erfindung kodieren oder ein Nukleinsäuremolekül der Erfindung umfassen, die auf die natürliche Variation zurückzuführen sind und die die beschriebene funktionelle Aktivität nicht verändern, sollen mit in den Schutzumfang der Erfindung fallen.
  • Nukleinsäuremoleküle, die den natürlichen Variantenhomologen eines Nukleinsäuremoleküls der Erfindung entsprechen und bei denen es sich auch um eine cDNA handeln kann, können auf Grundlage ihrer Homologie mit den hier offenbarten Nukleinsäuremolekülen isoliert werden, wobei man das Nukleinsäuremolekül der Erfindung oder einen Teil davon als eine Hybridisierungssonde gemäß den Standard-Hybridisierungtechniken unter stringenten Hybridisierungsbedingungen verwendet.
  • Dementsprechend hat gemäß einer anderen Ausführungsform ein Nukleinsäuremolekül der Erfindung eine Länge von wenigstens 15, 20, 25 oder 30 Nukleotiden. Vorzugsweise hybridisiert es unter stringenten Bedingungen mit einem Nukleinsäuremolekül, das eine Nukleotidsequenz des Nukleinsäuremoleküls der vorliegenden Erfindung oder des im Verfahren der vorliegenden Erfindung verwendeten Nukleinsäuremoleküls, z. B. vorzugsweise die in Tabelle I, Spalten 5 und 7, gezeigte Sequenz, umfasst. Das Nukleinsäuremolekül hat vorzugsweise eine Länge von wenigstens 20, 30, 50, 100, 250 oder mehr Nukleotiden.
  • Der Begriff ”hybridisiert unter stringenten Bedingungen” ist oben stehend definiert. Gemäß einer Ausführungsform soll der Ausdruck ”hybridisiert unter stringenten Bedingungen” Hybridisierungs- und Waschbedingungen beschreiben, bei denen Nukleotidsequenzen, die wenigstens 30%, 40%, 50% oder 65% identisch zueinander sind, typischerweise miteinander hybridisiert bleiben. Vorzugsweise sind die Bedingungen so, dass die Sequenzen, die wenigstens etwa 70%, besonders bevorzugt wenigstens etwa 75% oder 80%, und ganz besonders bevorzugt wenigstens etwa 85%, 90% oder 95% oder mehr identisch zueinander sind, typischerweise miteinander hybridisiert bleiben.
  • Vorzugsweise entspricht das Nukleinsäuremolekül der Erfindung, das unter stringenten Bedingungen mit einer in Tabelle I, Spalten 5 und 7, gezeigten Sequenz hybridisiert, einem natürlich vorkommenden Nukleinsäuremolekül der Erfindung. So wie hier verwendet bezieht sich ”natürlich vorkommendes” Nukleinsäuremolekül auf ein RNA- oder DNA-Molekül mit einer in der Natur vorkommenden Nukleotidsequenz (die z. B. für ein natürliches Protein kodiert). Vorzugsweise kodiert das Nukleinsäuremolekül für ein natürliches Protein mit der obenerwähnten Aktivität, das nach der Erhöhung der Expression oder Aktivität davon oder der Aktivität eines Proteins der Erfindung oder eines im Verfahren der Erfindung verwendeten Proteins, zum Beispiel durch Expression der Nukleinsäuresequenz des Genprodukts im Zytosol und/oder in einer Organelle wie einem Plastid oder Mitochondrien, vorzugsweise in Plastiden, z. B. einen erhöhten Ertrag, z. B. ein erhöhtes Ertragsmerkmal, zum Beispiel eine gesteigerte Toleranz gegenüber abiotischem Umweltstress, zum Beispiel eine erhöhte Toleranz gegenüber Dürre und/oder Toleranz gegenüber niedrigen Temperaturen und/oder eine erhöhte Effizienz der Nährstoffausnutzung, einen erhöhten intrinsischen Ertrag und/oder ein erhöhtes anderes erwähntes Ertragsmerkmal verleiht.
  • Dem Fachmann wird weiterhin bewusst sein, dass zusätzlich zu den natürlich vorkommenden Varianten der Sequenzen des Polypeptids oder Nukleinsäuremoleküls der Erfindung sowie des im Verfahren der Erfindung verwendeten Polypeptids oder Nukleinsäuremoleküls, die in der Population vorhanden sein können, Veränderungen durch Mutation in eine Nukleotidsequenz des Nukleinsäuremoleküls, das für das Polypeptid der Erfindung oder das im Verfahren der vorliegenden Erfindung verwendete Polypeptid kodiert, eingeführt werden können, wodurch es zu Veränderungen in der Aminosäuresequenz des kodierten Polypeptids kommt, ohne dass die funktionelle Fähigkeit des Polypeptids beeinträchtig wird und vorzugsweise die Aktivität nicht abnimmt.
  • So kann man zum Beispiel in einer Sequenz des Nukleinsäuremoleküls der Erfindung oder eines im Verfahren der Erfindung verwendeten Nukleinsäuremoleküls, z. B. wie in Tabelle I, Spalten 5 und 7, gezeigt, Nukleotidsubstitutionen vornehmen, die zu Aminosäuresubstitutionen bei ”nicht essentiellen” Aminosäureresten führen.
  • Ein ”nicht essentieller” Aminosäurerest ist ein Rest, der in der Wildtyp-Sequenz geändert werden kann, ohne dass sich die Aktivität des Polypeptids ändert, während ein ”essentieller” Aminosäurerest für eine wie obenerwähnte Aktivität benötigt wird, was z. B. zu einem erhöhten Ertrag, z. B. einem erhöhten Ertragsmerkmal, zum Beispiel einer gesteigerten Toleranz gegenüber abiotischem Umweltstress, zum Beispiel einer erhöhten Toleranz gegenüber Düne und/oder Toleranz gegenüber niedrigen Temperaturen und/oder einer erhöhten Effizienz der Nährstoffausnutzung, einem erhöhten intrinsischen Ertrag und/oder einem erhöhten anderen erwähnten Ertragsmerkmal, verglichen mit einer entsprechenden, z. B. nicht transformierten, Pflanzenzelle oder Pflanze vom Wildtyp oder einem Teil davon in einem Organismus führt, nachdem die Aktivität des Polypeptids erhöht wurde. Andere Aminosäurereste jedoch (z. B. die, die in der Domäne mit der besagten Aktivität nicht konserviert oder nur teilweise konserviert sind) können nicht essentiell für die Aktivität sein und sind daher wahrscheinlich Veränderungen zugänglich, ohne dass dabei die Aktivität verändert wird.
  • Ferner weiß der Fachmann auf dem Gebiet, dass sich die Codon-Verwendung zwischen Organismen unterscheiden kann. Daher kann er die Codon-Verwendung im Nukleinsäuremolekül der vorliegenden Erfindung an die Verwendung des Organismus oder des Zellkompartiments, zum Beispiel des Plastids oder der Mitochondrien, in dem/in denen das Polynukleotid bzw. Polypeptid exprimiert wird, anpassen.
  • Dementsprechend betrifft die Erfindung Nukleinsäuremoleküle, die für ein Polypeptid mit der obenerwähnten Aktivität kodieren, in einem Organismus oder Teilen davon, zum Beispiel durch Expression entweder im Zytosol oder in einer Organelle wie einem Plastid oder Mitochondrien oder beiden, vorzugsweise in Plastiden, die Veränderungen bei den Aminosäureresten enthalten, die nicht essentiell für diese Aktivität sind. Solche Polypeptide unterscheiden sich in der Aminosäuresequenz von einer in den in Tabelle II, Spalten 5 und 7, gezeigten Sequenzen enthaltenen Sequenz, haben aber immer noch die hier beschriebene Aktivität. Das Nukleinsäuremolekül kann eine für ein Polypeptid kodierende Nukleotidsequenz umfassen, wobei das Polypeptid eine Aminosäuresequenz umfasst, die wenigstens etwa 50% identisch zu einer in Tabelle II, Spalten 5 und 7, gezeigten Aminosäuresequenz ist und nach der Erhöhung ihrer Aktivität dazu in der Lage ist, zur Erhöhung des Ertrags, z. B. zur Erhöhung eines Ertragsmerkmals, zum Beispiel zur Steigerung der Toleranz gegenüber abiotischem Umweltstress, zum Beispiel zur Erhöhung der Toleranz gegenüber Dürre und/oder Toleranz gegenüber niedrigen Temperaturen und/oder zur Erhöhung der Effizienz der Nährstoffausnutzung, zur Erhöhung des intrinsischen Ertrags und/oder zur Erhöhung eines anderen erwähnten Ertragsmerkmals, verglichen mit einer entsprechenden, z. B. nicht transformierten, Pflanzenzelle oder Pflanze vom Wildtyp oder einem Teil davon, beizutragen, z. B. dessen Expression zum Beispiel durch Expression entweder im Zytosol oder in einer Organelle wie einem Plastid oder Mitochondrien oder beiden, vorzugsweise in Plastiden. Vorzugsweise ist das durch das Nukleinsäuremolekül kodierte Protein wenigstens etwa 60% identisch mit der in Tabelle II, Spalten 5 und 7, gezeigten Sequenz, besonders bevorzugt wenigstens etwa 70% identisch mit einer der in Tabelle II, Spalten 5 und 7, gezeigten Sequenzen, noch mehr bevorzugt wenigstens etwa 80%, 90%, 95% homolog zu der in Tabelle II, Spalten 5 und 7, gezeigten Sequenz, und ganz besonders bevorzugt wenigstens etwa 96%, 97%, 98% oder 99% identisch mit der in Tabelle II, Spalten 5 und 7, gezeigten Sequenz.
  • Zur Bestimmung der prozentualen Homologie (= Identität, hier austauschbar verwendet) von zwei Aminosäuresequenzen oder von zwei Nukleinsäuremolekülen werden die Sequenzen für einen optimalen Vergleich untereinander geschrieben (man kann zum Beispiel Lücken in die Sequenz eines Proteins oder einer Nukleinsäure einfügen, um eine optimale Ausrichtung mit dem anderen Protein bzw. der anderen Nukleinsäure zu erzielen).
  • Dann werden die Aminosäurereste oder Nukleinsäuremoleküle an den entsprechenden Aminosäurepositionen bzw. Nukleotidpositionen verglichen. Ist eine Position in einer Sequenz durch den gleichen Aminosäurerest bzw. das gleiche Nukleinsäuremolekül wie die entsprechende Position in der anderen Sequenz belegt, so sind die Moleküle in dieser Position homolog (d. h. Aminosäure- oder Nukleinsäure-”homologie” wie im vorliegenden Zusammenhang verwendet entspricht einer Aminosäure- bzw. Nukleinsäure”identität”). Die prozentuale Homologie zwischen den beiden Sequenzen ist eine Funktion der Zahl an identischen Positionen, die von den Sequenzen geteilt werden (d. h. % Homologie = Anzahl an identischen Positionen/Gesamtanzahl an Positionen × 100). Die Ausdrücke ”Homologie” und ”Identität” sind somit als Synonyme anzusehen.
  • Zur Bestimmung der prozentualen Homologie (= Identität) von zwei oder mehr Aminosäuren oder von zwei oder mehr Nukleotidsequenzen wurden mehrere Computersoftware-Programme entwickelt. Die Homologie von zwei oder mehr Sequenzen lässt sich zum Beispiel mit der fasta-Software berechnen, die in der vorliegenden Erfindung in Version fasta 3 verwendet wurde (W. R. Pearson und D. J. Lipman, PNAS 85, 2444 (1988); W. R. Pearson, Methods in Enzymology 183, 63 (1990); W. R. Pearson und D. J. Lipman, PNAS 85, 2444 (1988); W. R. Pearson, Enzymology 183, 63 (1990)). Ein anderes nützliches Programm für die Berechnung von Homologien verschiedener Sequenzen ist das standardmäßige Blast-Programm, welches in der Biomax-Pedant-Software (Biomax, München, Bundesrepublik Deutschland) enthalten ist. Dieses führt unglücklicherweise manchmal zu suboptimalen Ergebnissen, da Blast nicht immer vollständige Sequenzen der Datenbanksequenz (Subject) und der Suchsequenz (Query) beinhaltet. Da dieses Programm nichtsdestoweniger sehr effizient ist, kann es für den Vergleich einer gewaltigen Anzahl von Sequenzen verwendet werden. Die folgenden Einstellungen werden typischerweise für einen derartigen Vergleich von Sequenzen verwendet: -p Program Name [String]; -d Database [String]; default = nr; -i Query File [File In]; default = stdin; -e Expectation value (E) [Real]; default = 10.0; -m alignment view options: 0 = pairwise; 1 = query-anchored showing identities; 2 = query-anchored no identities; 3 = flat query-anchored, show identities; 4 = flat query-anchored, no identities; 5 = query-anchored no identities and blunt ends; 6 = flat query-anchored, no identities and blunt ends; 7 = XML Blast Output; 8 = tabular; 9 tabular with comment lines [Integer]; default = 0; -o BLAST report Output File [File Out] Optional; default = stdout; -F Filter query sequence (DUST with blastn, SEG with others) [String]; default = T; -G Cost to open a gap (zero invokes default behavior) [Integer]; default = 0; -E Cost to extend a gap (zero invokes default behavior) [Integer]; default = 0; -X X dropoff value for gapped alignment (in bits) (zero invokes default behavior); blastn 30, megablast 20, tblastx 0, all others 15 [Integer]; default = 0; -I Show GI's in deflines [T/F]; default = F; -q Penalty for a nucleotide mismatch (blastn only) [Integer]; default = –3; -r Reward for a nucleotide match (blastn only) [Integer]; default = 1; -v Number of database sequences to show one-line descriptions for (V) [Integer]; default = 500; -b Number of database sequence to show alignments for (B) [Integer]; default = 250; -f Threshold for extending hits, default if zero; blastp 11, blastn 0, blastx 12, tblastn 13; tblastx 13, megablast 0 [Integer]; default = 0; -g Perfom gapped alignment (not available with tblastx) [T/F]; default = T; -Q Query Genetic code to use [Integer]; default = 1; -D DB Genetic code (for tblast[nx] only) [Integer]; default = 1; -a Number of processors to use [Integer]; default = 1; -O SeqAlign file [File Out] Optional; -J Believe the query defline [T/F]; default = F; -M Matrix [String]; default = BLOSUM62; -W Word size, default if zero (blastn 11, megablast 28, all others 3) [Integer]; default = 0; -z Effective length of the database (use zero for the real size) [Real]; default = 0; -K Number of best hits from a region to keep (off by default, if used a value of 100 is recommended) [Integer]; default = 0; -P 0 for multiple hit, 1 for single hit [Integer]; default = 0; -Y Effective length of the search space (use zero for the real size) [Real]; default = 0; -S Query strands to search against database (for blast[nx], and tblastx); 3 is both, 1 is top, 2 is bottom [Integer]; default = 3; -T Produce HTML Output [T/F]; default = F; –1 Restrict search of database to list of GI's [String] Optional; -U Use lower case filtering of FASTA sequence [T/F] Optional; default = F; -y X dropoff value for ungapped extensions in bits (0.0 invokes default behavior); blastn 20, megablast 10, all others 7 [Real]; default = 0.0; -Z X dropoff value for final gapped alignment in bits (0.0 invokes default behavior); blastn/megablast 50, tblastx 0, all others 25 [Integer]; default = 0; -R PSI-TBLASTN checkpoint file [File In] Optional; -n MegaBlast search [T/F]; default = F; -L Location an query sequence [String] Optional; -A Multiple Hits window size, default if zero (blastn/megablast 0, all others 40 [Integer]; default = 0; -w Frame shift penalty (OOF algorithm for blastx) [Integer]; default = 0; -t Length of the largest intron allowed in tblastn for linking HSPs (0 disables linking) [Integer]; default = 0.
  • Ergebnisse von hoher Qualität werden durch Verwenden des Algorithmus von Needleman und Wunsch oder Smith und Waterman erreicht. Deshalb werden Programme, die auf den genannten Algorithmen basieren, bevorzugt. Vorteilhafterweise können die Vergleiche von Sequenzen mit dem Programm PileUp (J. Mol. Evolution., 25, 351 (1987), Higgins et al., CABIOS 5, 151 (1989)) oder vorzugsweise mit den Programmen „Gap” und „Needle”, welche beide auf den Algorithmen von Needleman und Wunsch basieren (J. Mol. Biol. 48; 443 (1970)), sowie „Best-Fit”, welches auf dem Algorithmus von Smith und Waterman basiert (Adv. Appl. Math. 2; 482 (1981)), durchgeführt werden. „Gap” and „BestFit” sind Teil des GCG-Software-Pakets [Genetics Computer Group, 575 Science Drive, Madison, Wisconsin, USA 53711 (1991); Altschul et al. (Nucleic Acids Res. 25, 3389) (1997)), „Needle” ist Teil der The European Molecular Biology Open Software Suite (EMBOSS) (Trends in Genetics 16 (6), 276 (2000)). Deshalb werden die Berechnungen zur Bestimmung der Prozentsätze der Sequenzhomologie vorzugsweise mit den Programmen ”Gap” oder ”Needle” über den gesamten Bereich der Sequenzen hinweg durchgeführt. Die folgenden Standardeinstellungen für den Vergleich von Nukleinsäuresequenzen wurden für ”Needle” verwendet: Matrix: EDNAFULL, Gap_penalty: 10,0, Extend_penalty: 0.5. Die folgenden Standardeinstellungen für den Vergleich von Nukleinsäuresequenzen wurden für ”Gap” verwendet: Lücken-Gewichtung: 50, Längen-Gewichtung: 3, mittlere Übereinstimmung: 10,000, mittlere Fehlpaarung: 0.000.
  • So ist zum Beispiel eine Sequenz, die 80% Homologie mit der Sequenz SEQ ID NO: 38 auf der Nukleinsäureebene hat, so zu verstehen, dass hiermit eine Sequenz gemeint ist, die beim Vergleich mit der Sequenz SEQ ID NO: 38 mittels des obigen Programms ”Needle” mit dem obigen Parametersatz 80% Homologie aufweist.
  • Homologie zwischen zwei Polypeptiden ist so zu verstehen, dass damit die Identität der Aminosäuresequenz über jeweils die gesamte Sequenzlänge gemeint ist, die durch Vergleich mit Hilfe des obigen ”Needle”-Programms unter Verwendung von Matrix: EBLOSUM62, Gap_penalty: 8.0, Extend_penalty: 2.0 berechnet wird.
  • Zum Beispiel versteht es sich, dass eine Sequenz, welche eine 80%ige Homologie mit der Sequenz SEQ-ID NR.: 39 auf dem Proteinniveau aufweist, eine Sequenz bedeutet, welche bei einem Vergleich zur Sequenz SEQ-ID NR.: 39 mittels des obigen Programms ”Needle” mit dem obigen Parametersatz 80% Homologie aufweist.
  • Von der wie in Tabelle I, Spalten 5 und 7, gezeigten erfindungsgemäßen Nukleinsäuresequenz durch Substitution, Insertion oder Deletion abgeleitete funktionelle Äquivalente haben eine Homologie von wenigstens 30%, 35%, 40%, 45% oder 50%, vorzugsweise wenigstens 55%, 60%, 65% oder 70%, bevorzugt wenigstens 80%, besonders bevorzugt wenigstens 85% oder 90%, 91%, 92%, 93% oder 94%, ganz besonders bevorzugt wenigstens 95%, 97%, 98% oder 99% mit einem der wie in Tabelle II, Spalten 5 und 7, gezeigten erfindungsgemäßen Polypeptide und kodieren für Polypeptide mit im Wesentlichen den gleichen Eigenschaften wie das wie in Tabelle II, Spalten 5 und 7, gezeigte Polypeptid. Funktionelle Äquivalente, die sich durch Substitution, Insertion oder Deletion von einem der wie in Tabelle II, Spalten 5 und 7, gezeigten erfindungsgemäßen Polypeptide ableiten, haben eine Homologie von wenigstens 30%, 35%, 40%, 45% oder 50%, vorzugsweise wenigstens 55%, 60%, 65% oder 70%, bevorzugt wenigstens 80%, besonders bevorzugt wenigstens 85% oder 90%, 91%, 92%, 93% oder 94%, ganz besonders bevorzugt wenigstens 95%, 97%, 98% oder 99% mit einem der wie in Tabelle II, Spalten 5 und 7, gezeigten erfindungsgemäßen Polypeptide und zeichnen sich durch im Wesentlichen die gleichen Eigenschaften wie das wie in Tabelle II, Spalten 5 und 7, gezeigte Polypeptid aus.
  • ”Im Wesentlichen die gleichen Eigenschaften” eines funktionellen Äquivalents ist vor allem so zu verstehen, dass das funktionelle Äquivalent die obenerwähnte Aktivität hat, zum Beispiel bei der Expression entweder im Zytosol oder in einer Organelle wie einem Plastid oder Mitochondrien oder beiden, vorzugsweise in Plastiden, und dabei die Menge an Protein, die Aktivität oder die Funktion dieses funktionellen Äquivalents in einem Organismus, z. B. einem Mikroorganismus, einer Pflanze oder pflanzlichem oder tierischem Gewebe, Pflanzen- oder Tierzellen oder einem Teil davon erhöht.
  • Ein Nukleinsäuremolekül, das für ein Homolog zu einer Proteinsequenz aus Tabelle II, Spalten 5 und 7 kodiert, lässt sich erzeugen, indem man eine oder mehrere Nukleotidsubstitutionen, -additionen oder -deletionen in eine Nukleotidsequenz des Nukleinsäuremoleküls der vorliegenden Erfindung einführt, insbesondere aus Tabelle I, Spalten 5 und 7, so dass eine oder mehrere Aminosäuresubstitutionen, -additionen bzw. -deletionen in das kodierte Protein eingeführt werden. Mutationen lassen sich durch Standardtechniken wie zielgerichtete Mutagenese und PCR-vermittelte Mutagenese in die kodierenden Sequenzen von Tabelle I, Spalten 5 und 7 einführen.
  • Vorzugsweise führt man bei einem oder mehren der vorhergesagten nicht essentiellen Aminosäurereste konservative Aminosäuresubstitutionen durch. Eine ”konservative Aminosäuresubstitution” ist eine solche, bei welcher der Aminosäurerest mit einem Aminosäurerest ersetzt wird, der eine ähnliche Seitenkette enthält. Familien von Aminosäureresten mit ähnlichen Seitenketten sind im Stand der Technik definiert. Diese Familien schließen Aminosäuren mit basischen Seitenketten (z. B. Lysin, Arginin, Histidin), sauren Seitenketten (z. B. Asparaginsäure, Glutaminsäure), ungeladenen polaren Seitenketten (z. B. Glycin, Asparagin, Glutamin, Serin, Threonin, Tyrosin, Cystein), nicht polaren Seitenketten (z. B. Alanin, Valin, Leucin, Isoleucin, Prolin, Phenylalanin, Methionin, Tryptophan), beta-verzweigten Seitenketten (z. B. Threonin, Valin, Isoleucin) und aromatischen Seitenketten (z. B. Tyrosin, Phenylalanin, Tryptophan, Histidin) ein.
  • Somit wird ein vorhergesagter nicht essentieller Aminosäurerest in einem Polypeptid der Erfindung oder einem im Verfahren der Erfindung verwendeten Polypeptid vorzugsweise durch einen anderen Aminosäurerest aus der gleichen Familie ersetzt. Alternativ dazu kann man gemäß einer anderen Ausführungsform Mutationen zufällig entlang einer kodierenden Sequenz oder einem Teil davon eines Nukleinsäuremoleküls der Erfindung oder eines im Verfahren der Erfindung verwendeten Nukleinsäuremoleküls einführen, wie z. B. durch Sättigungsmutagenese, und die erhaltenen Mutanten können auf die hier beschriebene Aktivität gescreent werden, um Mutanten zu identifizieren, die die obenerwähnte Aktivität beibehalten oder sogar erhöht haben, z. B. einen erhöhten Ertrag, z. B. ein erhöhtes Ertragsmerkmal, zum Beispiel eine gesteigerte Toleranz gegenüber abiotischem Umweltstress, zum Beispiel eine erhöhte Toleranz gegenüber Dürre und/oder Toleranz gegenüber niedrigen Temperaturen und/oder eine erhöhte Effizienz der Nährstoffausnutzung, einen erhöhten intrinsischen Ertrag und/oder ein erhöhtes anderes erwähntes Ertragsmerkmal, verglichen mit einer entsprechenden, z. B. nicht transformierten, Pflanzenzelle oder Pflanze vom Wildtyp oder einem Teil davon verleihen.
  • Nach der Mutagenese einer der hier gezeigten Sequenzen kann das kodierte Protein rekombinant exprimiert werden, und die Aktivität des Proteins kann zum Beispiel unter Anwendung von hier beschriebenen Assays (siehe Beispiele) bestimmt werden.
  • Die größte Homologie des im erfindungsgemäßen Verfahren verwendeten Nukleinsäuremoleküls wurde für die folgenden Dateieinträge durch eine Gap-Suche gefunden.
  • Homologe der verwendeten Nukleinsäuresequenzen mit der in Tabelle I, Spalten 5 und 7, gezeigten Sequenz umfassen auch allelische Varianten mit wenigstens ungefähr 30%, 35%, 40% oder 45% Homologie, vorzugsweise wenigstens ungefähr 50%, 60% oder 70%, besonders bevorzugt wenigstens ungefähr 90%, 91%, 92%, 93%, 94% oder 95% und besonders bevorzugt wenigstens ungefähr 96%, 97%, 98%, 99% oder mehr Homologie mit einer der gezeigten Nukleotidsequenzen oder der obenerwähnten abgeleiteten Nukleinsäuresequenzen oder ihren Homologen, Derivaten oder Analoga oder Teilen von diesen. Allelische Varianten umfassen insbesondere funktionelle Varianten, die sich durch Deletion, Insertion oder Substitution von Nukleotiden der gezeigten Sequenzen, vorzugsweise aus Tabelle I, Spalten 5 und 7, oder von den abgeleiteten Nukleinsäuresequenzen erhalten lassen, wobei jedoch die Enzymaktivität oder die biologische Aktivität der resultierenden synthetisierten Proteine vorteilhafterweise erhalten oder erhöht werden sollte.
  • Gemäß einer Ausführungsform der vorliegenden Erfindung umfasst das Nukleinsäuremolekül der Erfindung oder das im Verfahren der Erfindung verwendete Nukleinsäuremolekül die in einer der Spalten 5 und 7 von Tabelle I gezeigten Sequenzen. Vorzugsweise umfasst das Nukleinsäuremolekül so wenig wie möglich andere, nicht in einer der Spalten 5 und 7 von Tabelle I gezeigte Nukleotide. Gemäß einer Ausführungsform umfasst das Nukleinsäuremolekül weniger als 500, 400, 300, 200, 100, 90, 80, 70, 60, 50 oder 40 weitere Nukleotide. Gemäß einer weiteren Ausführungsform umfasst das Nukleinsäuremolekül weniger als 30, 20 oder 10 weitere Nukleotide. Gemäß einer Ausführungsform ist das im Verfahren der Erfindung verwendete Nukleinsäuremolekül identisch mit den in Tabelle I, Spalten 5 und 7, gezeigten Sequenzen.
  • Ebenfalls bevorzugt kodiert das im Verfahren der Erfindung verwendete Nukleinsäuremolekül für ein Polypeptid, das die in Tabelle II, Spalten 5 und 7, gezeigte Sequenz umfasst. Gemäß einer Ausführungsform kodiert das Nukleinsäuremolekül für weniger als 150, 130, 100, 80, 60, 50, 40 oder 30 weitere Aminosäuren. Gemäß einer weiteren Ausführungsform umfasst das kodierte Polypeptid weniger als 20, 15, 10, 9, 8, 7, 6 oder 5 weitere Aminosäuren. Gemäß einer im erfindungsgemäßen Verfahren verwendeten Ausführungsform ist das kodierte Polypeptid identisch zu den in Tabelle II, Spalten 5 und 7, gezeigten Sequenzen.
  • Gemäß einer Ausführungsform kodiert das Nukleinsäuremolekül der Erfindung oder das im Verfahren verwendete Nukleinsäuremolekül für ein Polypeptid, das die in Tabelle II, Spalten 5 und 7, gezeigte Sequenz umfasst, mit weniger als 100 weiteren Nukleotiden. Gemäß einer weiteren Ausführungsform umfasst dieses Nukleinsäuremolekül weniger als 30 weitere Nukleotide. Gemäß einer Ausführungsform ist das in dem Verfahren verwendete Nukleinsäuremolekül identisch zu einer kodierenden Sequenz der in Tabelle I, Spalten 5 und 7, gezeigten Sequenzen.
  • Polypeptide (= Proteine), die noch über die essentielle biologische oder enzymatische Aktivität des Polypeptids der vorliegenden Erfindung verfügen und, verglichen mit einer entsprechenden z. B. nicht transformierten, Pflanzenzelle oder Pflanze vom Wildtyp oder einem Teil davon, einen erhöhten Ertrag, z. B. ein erhöhtes Ertragsmerkmal, zum Beispiel eine gesteigerte Toleranz gegenüber abiotischem Umweltstress, zum Beispiel eine erhöhte Toleranz gegenüber Dürre und/oder Toleranz gegenüber niedrigen Temperaturen und/oder eine erhöhte Effizienz der Nährstoffausnutzung, einen erhöhten intrinsischen Ertrag und/oder ein erhöhtes anderes erwähntes Ertragsmerkmal, verleihen, d. h. deren Aktivität im Wesentlichen nicht reduziert ist, sind Polypeptide mit wenigstens 10% oder 20%, vorzugsweise 30% oder 40%, besonders bevorzugt 50% oder 60%, ganz besonders bevorzugt 80% oder 90% oder mehr der biologischen Aktivität bzw. Enzymaktivität des Wildtyps; vorzugsweise ist die Aktivität im Vergleich mit der Aktivität eines in Tabelle II, Spalten 5 und 7, gezeigten Polypeptids, exprimiert unter identischen Bedingungen, im Wesentlichen nicht reduziert.
  • Homologe von Tabelle I, Spalten 5 und 7 oder von den abgeleiteten Sequenzen von Tabelle II, Spalten 5 und 7 schließen auch gekürzte Sequenzen, cDNA, einzelsträngige DNA oder RNA der kodierenden und nicht kodierenden DNA-Sequenz ein. Homologe dieser Sequenzen sind auch so zu verstehen, dass damit Derivate gemeint sind, die nicht kodierende Regionen enthalten, wie zum Beispiel UTRs, Terminatoren, Enhancer oder Promotorvarianten. Die Promotoren upstream von den angegebenen Nukleotidsequenzen können durch eine oder mehrere Nukleotidsubstitutionen, -insertionen und/oder -deletionen modifiziert sein, ohne dass jedoch die Funktionalität oder Aktivität der Promotoren, der offenen Leserahmen (open reading frame, ORF) oder der 3'-regulatorischen Region wie Terminatoren oder andere 3'-regulatorische Regionen, die weit von ORF entfernt sind, beeinträchtigt ist. Es ist weiterhin möglich, dass die Aktivität der Promotoren durch die Modifikation ihrer Sequenz erhöht ist, oder dass sie vollständig durch aktivere Promotoren ersetzt sind, selbst Promotoren aus heterologen Organismen. Geeignete Promotoren sind dem Fachmann auf dem Gebiet bekannt und sind hierin nachstehend erwähnt.
  • Zusätzlich zu den für die oben beschriebenen LTRRP oder YRPs kodierenden Nukleinsäuremolekülen betrifft ein anderer Aspekt der Erfindung negative Regulatoren der Aktivität eines Nukleinsäuremoleküls, ausgewählt aus der Gruppe gemäß Tabelle I, Spalten 5 und/oder 7, vorzugsweise Spalte 7. Man nimmt an, dass Antisense-Polynukleotide dazu die herunterregulierende Aktivität dieser negativen Regulatoren inhibieren, indem sie sich spezifisch an das Target-Polynukleotid binden und Transkription, Spleißen, Transport, Translation und/oder Stabilität des Target-Polynukleotids stören. Methoden zum Targeting des Antisense-Polynukleotids auf die chromosomale DNA, auf ein primäres RNA-Transkript oder auf eine prozessierte mRNA sind im Stand der Technik beschrieben. Vorzugsweise schließen die Target-Regionen Spleißstellen, Translationsinitiationscodons, Translationsterminationscodons und andere Sequenzen im offenen Leserahmen ein.
  • Der Ausdruck „antisense” bezieht sich für die Zwecke der Erfindung auf eine Nukleinsäure, die ein Polynukleotid umfasst, das ausreichend komplementär zu einem ganzen oder einem Teil eines Gens, primären Transkripts oder prozessierter mRNA ist, so dass die Expression des endogenen Gens gestört wird. „Komplementäre” Polynukleotide sind solche, die zur Basenpaarung gemäß den Standard-Komplementaritätsregeln von Watson-Crick fähig sind. Spezifisch bilden Purine Basepaare mit Pyrimidinen unter Bildung einer Kombination von Guanin gepaart mit Cytosin (G:C) und Adenin gepaart mit entweder Thymin (A:T) im Fall von DNA oder Adenin gepaart mit Uracil (A:U) im Fall von RNA. Es versteht sich, dass zwei Polynukleotide miteinander hybridisieren können, selbst wenn sie nicht vollständig komplementär zueinander sind, vorausgesetzt, dass jedes wenigstens eine Region aufweist, die im Wesentlichen komplementär zu der anderen ist. Der Ausdruck ”Antisense-Nukleinsäure” schließt einzelsträngige RNA- sowie doppelsträngige DNA-Expressionskassetten ein, die transkribiert werden können, wodurch man eine Antisense-RNA erhält. ”Aktive” Antisense-Nukleinsäuren sind Antisense-RNA-Moleküle, die dazu in der Lage sind, selektiv mit einem negativen Regulator der Aktivität eines Nukleinsäuremoleküls, das für ein Polypeptid mit wenigstens 80% Sequenzidentität mit dem aus der Gruppe gemäß Tabelle II, Spalten 5 und/oder 7, vorzugsweise Spalte 7, ausgewählten Polypeptid kodiert, zu hybridisieren.
  • Die Antisense-Nukleinsäure kann komplementär zu einem ganzen negativen Regulatorstrang oder zu nur einem Teil davon sein. Gemäß einer Ausführungsform ist das Antisense-Nukleinsäuremolekül antisense zu einer ”nicht kodierenden Region” des kodierenden Strangs einer für ein LTRRP oder YRP kodierenden Nukleotidsequenz. Der Ausdruck ”nicht kodierende Region” bezieht sich auf die kodierende Region flankierende 5'- und 3'-Sequenzen, die nicht in Aminosäuren translatiert werden (d. h. die auch als 5'- und 3'-untranslatierte Regionen bezeichnet werden). Das Antisense-Nukleinsäuremolekül kann komplementär zu nur einem Teil der nicht kodierenden Region der LTRRP- oder YRP-mRNA sein. So kann das Antisense-Oligonukleotid zum Beispiel komplementär zur die Translation-Startstelle der LTRRP- oder YRP-mRNA umgebenden Region sein. Ein Antisense-Oligonukleotid kann zum Beispiel eine Länge von etwa 5, 10, 15, 20, 25, 30, 35, 40, 45 oder 50 Nukleotiden haben. Typischerweise enthalten die Antisense-Moleküle der vorliegenden Erfindung eine RNA mit 60–100% Sequenzidentität mit wenigstens 14 aufeinanderfolgenden Nukleotiden einer nicht kodierenden Region einer der Nukleinsäuren aus Tabelle I. Vorzugsweise beträgt die Sequenzidentität wenigstens 70%, besonders bevorzugt wenigstens 75%, 80%, 85%, 90%, 95%, 98% und ganz besonders bevorzugt 99%.
  • Eine Antisense-Nukleinsäure der Erfindung lässt sich durch chemische Synthese und enzymatische Ligationsreaktionen unter Anwendung von im Stand der Technik bekannnten Vorschriften konstruieren. So kann eine Antisense-Nukleinsäure (z. B. ein Antisense-Oligonukleotid) zum Beispiel unter Verwendung von natürlich vorkommenden Nukleotiden oder verschieden modifizierten Nukleotiden, die so beschaffen sind, dass sie die biologische Stabilität der Moleküle erhöhen oder die physikalische Stabilität der zwischen den Antisense- und Sense-Nukleinsäuren gebildeten Duplex erhöhen, chemisch synthetisiert werden; man kann z. B. Phosphorothioatderivate und acridinsubstituierte Nukleotide einsetzen. Beispiele für modifizierte Nukleotide, die zur Bildung der Antisense-Nukleinsäure verwendet werden können, schließen 5-Fluoruracil, 5-Bromuracil, 5-Chloruracil, 5-Ioduracil, Hypoxanthin, Xanthin, 4-Acetylcytosin, 5-(Carboxyhydroxylmethyl)uracil, 5-Carboxymethylaminomethyl-2-thiouridin, 5-Carboxymethylaminomethyluracil, Dihydrouracil, beta-D-Galactosylcheosin, Inosin, N6-Isopentenyladenin, 1-Methylguanin, 1-Methylinosin, 2,2-Dimethylguanin, 2-Methyladenin, 2-Methylguanin, 3-Methylcytosin, 5-Methylcytosin, N6-Adenin, 7-Methylguanin, 5-Methylaminomethyluracil, 5-Methoxyaminomethyl-2-thiouracil, beta-D-Mannosylcheosin, 5'-Methoxycarboxymethyluracil, 5-Methoxyuracil, 2-Methylthio-N6-isopentenyladenin, Uracil-5-oxyessigsäure (v), Wybutoxosin, Pseudouracil, Cheosin, 2-Thiocytosin, 5-Methyl-2-thiouracil, 2-Thiouracil, 4-Thiouracil, 5-Methyluracil, Uracil-5-oxyessigsäuremethylester, 5-Methyl-2-thiouracil, 3-(3-Amino-3-N-2-carboxypropyl)uracil, (acp3)w und 2,6-Diaminopurin ein. Alternativ dazu kann man die Antisense-Nukleinsäure biologisch mit einem Expressionsvektor herstellen, in den eine Nukleinsäure in einer Antisense-Richtung subkloniert wurde (d. h. die von der insertierten Nukleinsäure transkribierte RNA hat eine Antisense-Orientierung zu einer betreffenden Target-Nukleinsäure, im nächsten Unterabschnitt eingehender beschrieben).
  • Gemäß noch einer anderen Ausführungsform handelt es sich bei dem Antisense-Nukleinsäuremolekül der Erfindung um ein alpha-anomeres Nukleinsäuremolekül. Ein alpha-anomeres Nukleinsäuremolekül bildet spezifisch doppelsträngige Hybride mit komplementärer RNA, bei welchen, im Gegensatz zu den gewöhnlichen b-Einheiten, die Stränge parallel zueinander verlaufen (Gaultier et al., Nucleic Acids. Res. 15, 6625 (1987)). Das Antisense-Nukleinsäuremolekül kann auch ein 2'-o-Methylribonukleotid (Inoue et al., Nucleic Acids Res. 15, 6131 (1987)) oder ein chimäres RNA-DNA-Analogon (Inoue et al., FEBS Lett. 215, 327 (1987)) enthalten.
  • Die Antisense-Nukleinsäuremoleküle der Erfindung werden typischerweise an eine Zelle verabreicht oder in situ erzeugt, so dass sie mit zellulärer mRNA und/oder genomischer DNA hybridisieren oder daran binden. Die Hybridisierung kann durch herkömmliche Nukleotidkomplementarität unter Bildung eines stabilen Duplex erfolgen oder, zum Beispiel im Fall eines Antisense-Nukleinsäuremoleküls, das an DNA-Duplexe bindet, über spezifische Wechselwirkungen in der großen Furche der Doppelhelix. Das Antisense-Molekül kann so modifiziert sein, dass es spezifisch an einen Rezeptor oder ein auf einer ausgewählten Zelloberfläche exprimiertes Antigen bindet, z. B. indem man das Antisense-Nukleinsäuremolekül an ein Peptid oder einen Antikörper bindet, das/der an einen Zelloberflächenrezeptor oder -antigen bindet. Das Antisense-Nukleinsäuremolekül kann auch mit den hier beschriebenen Vektoren an Zellen verabreicht werden. Um ausreichende intrazelluläre Konzentrationen der Antisense-Moleküle zu erreichen, sind Vektorkonstrukte, in denen sich das Antisense-Nukleinsäuremolekül unter der Kontrolle eines starken prokaryontischen, viralen oder eukaryontischen (einschließlich Pflanzen-)Promotors befindet, bevorzugt.
  • Als Alternative zu Antisense-Polynukleotiden kann man Ribozyme, Sense-Polynukleotide oder doppelsträngige RNA (dsRNA) einsetzen, um die Expression eines LTRRP- oder YRP-Polypeptids zu reduzieren. Mit ”Ribozym” ist ein katalytisches Enzym auf RNA-Basis mit Ribonukleaseaktivität gemeint, das dazu in der Lage ist, eine einzelsträngige Nukleinsäure, wie eine mRNA, zu der es eine komplementäre Region aufweist, zu spalten. Ribozyme (z. B. in Haselhoff und Gerlach, Nature 334, 585 (1988), beschriebene Hammerkopf-Ribozyme) lassen sich verwenden, um LTRRP- oder YRP-mRNA-Transkripte katalytisch zu spalten und somit die Translation von LTRRP- oder YRP-mRNA zu inhibieren. Ein Ribozym mit Spezifität für eine für das LTRRP oder YRP kodierende Nukleinsäure lässt sich auf Grundlage der wie hier offenbarten Nukleotidsequenz einer LTRRP- oder YRP-cDNA oder auf Grundlage einer gemäß in der vorliegenden Erfindung gelehrter Methoden isolierten heterologen Sequenz entwickeln. So kann man zum Beispiel ein Derivat einer Tetrahymena L-19 IVS-RNA konstruieren, bei der die Nukleotidsequenz des aktiven Zentrums komplementär zur zu spaltenden Nukleotidsequenz in einer für das LTRRP oder YRP kodierenden mRNA ist, siehe z. B. die US-Patentschriften Nr. 4,987,071 und 5,116,742 an Cech et al. Alternativ dazu kann man mit LTRRP- oder YRP-mRNA eine katalytische RNA mit einer spezifischen Ribonukleaseaktivität aus einem Pool von RNA-Molekülen selektieren, siehe z. B. Bartel D., und Szostak J. W., Science 261, 1411 (1993). Bei bevorzugten Ausführungsformen enthält das Ribozym einen Teil mit wenigstens 7, 8, 9, 10, 12, 14, 16, 18 oder 20 Nukleotiden und besonders bevorzugt 7 oder 8 Nukleotiden, der 100% komplementär zu einem Teil der Target-RNA ist. Methoden zur Herstellung von Ribozymen sind dem Fachmann bekannt, siehe z. B. die US-Patentschriften Nr. 6,025,167 ; 5,773,260 und 5,496,698 .
  • Der Ausdruck ”dsRNA” bezieht sich, so wie er hier verwendet wird, auf RNA-Hybride, die zwei Stränge RNA umfassen. Die dsRNAs können in der Struktur linear oder zirkulär sein. Gemäß einer bevorzugten Ausführungsform ist die dsRNA spezifisch für ein Polynukleotid, das entweder für das Polypeptid gemäß Tabelle II oder ein Polypeptid mit wenigstens 70% Sequenzidentität mit einem Polypeptid gemäß Tabelle II kodiert. Die hybridisierenden RNAs können im Wesentlichen oder vollständig komplementär sein. Mit ”im Wesentlichen komplementär” ist gemeint, dass, wenn die beiden hybridisierenden RNAs unter Verwendung des BLAST-Programms wie oben beschrieben optimal ausgerichtet sind, die hybridisierenden Teile wenigstens 95% komplementär sind. Vorzugsweise hat die dsRNA eine Länge von wenigstens 100 Basenpaaren. Typischerweise haben die hybridisierenden RNAs die gleiche Länge, ohne überhängende 5'- oder 3'-Enden und ohne Lücken. Es können jedoch bei den Methoden der Erfindung dsRNAs mit 5'- oder 3'-Überhängen von bis zu 100 Nukleotiden verwendet werden.
  • Die dsRNA kann Ribonukleotide oder Ribonukleotidanaloga wie 2'-O-Methyl-ribosylreste oder Kombinationen davon enthalten, siehe z. B. die US-Patentschriften Nr. 4,130,641 und 4,024,222 . Eine dsRNA-Polyriboinosinsäure:Polyribocytidylsäure ist in der US-Patentschrift 4,283,393 beschrieben. Methoden zur Herstellung und Anwendung von dsRNA sind im Stand der Technik bekannt. Eine Methode beinhaltet die gleichzeitige Transkription von zwei komplementären DNA-Strängen entweder in vivo oder in einer einzelnen in-vitro-Reaktionsmischung, siehe z. B. die US-Patentschrift Nr. 5,795,715 . Gemäß einer Ausführungsform kann dsRNA direkt durch Standard-Transformationsvorschriften in eine Pflanze oder Pflanzenzelle eingeführt werden. Alternativ dazu kann dsRNA in einer Pflanzenzelle exprimiert werden, indem man zwei komplementäre RNAs transkribiert.
  • Andere Methoden zur Inhibierung der endogenen Genexpression wie die Tripelhelixbildung (Moser et al., Science 238, 645 (1987), und Cooney et al., Science 241, 456 (1988)) und Kosuppression (Napoli et al., The Plant Cell 2, 279 (1990)) sind im Stand der Technik bekannt. Teil-cDNAs und vollständige cDNAs wurden für die Kosuppression von endogenen Pflanzengenen verwendet, siehe z. B. die US-Patentschriften Nr. 4,801,340 , 5,034,323 , 5,231,020 , und 5,283,184 ; Van der Kroll et al., The Plant Cell 2, 291, (1990); Smith et al., Mol. Gen. Genetics 224, 477 (1990), und Napoli et al., The Plant Cell 2, 279 (1990).
  • Man nimmt an, dass bei der Sense-Suppression durch die Einführung eines Sense-Polynukleotids die Transkription des entsprechenden Target-Gens blockiert wird. Das Sense-Polynukleotid hat eine Sequenzidentität von wenigstens 65% mit dem Gen oder der RNA der Target-Pflanze. Vorzugsweise beträgt die prozentuale Identität wenigstens 80%, 90%, 95% oder mehr. Das eingeführte Sense-Polynukleotid braucht, bezogen auf das Target-Gen oder -Transkript, nicht die volle Länge aufzuweisen. Vorzugsweise hat das Sense-Polynukleotid eine Sequenzidentität von wenigstens 65% mit wenigstens 100 aufeinanderfolgenden Nukleotiden einer der wie in Tabelle I, Anwendung Nr. 1 gezeigten Nukleinsäuren. Die Identitätsregionen können Introns und/oder Exons und nicht translatierte Regionen umfassen. Das eingeführte Sense-Polynukleotid kann transient in der Pflanzenzelle vorhanden sein oder stabil in ein Pflanzenchromosom oder ein extrachromosomales Replikon integriert sein.
  • Ein weiterer Gegenstand der Erfindung ist ein Expressionsvektor, der ein Nukleinsäuremolekül umfasst, welches ein Nukleinsäuremolekül, ausgewählt aus der Gruppe bestehend aus:
    • (a) einem Nukleinsäuremolekül, das für das in Spalte 5 oder 7 von Tabelle II, Anwendung Nr. 1 gezeigte Polypeptid kodiert;
    • (b) einem in Spalte 5 oder 7 von Tabelle I, Anwendung Nr. 1, gezeigten Nukleinsäuremolekül;
    • (c) einem Nukleinsäuremolekül, das, als Folge der Degeneration des genetischen Kodes, von einer in Spalte 5 oder 7 von Tabelle II gezeigten Polypeptidsequenz abgeleitet sein kann und, verglichen mit einer entsprechenden, z. B. nicht transformierten, Pflanzenzelle oder Pflanze vom Wildtyp oder einem Teil davon, einen erhöhten Ertrag, z. B. ein erhöhtes Ertragsmerkmal, zum Beispiel eine gesteigerte Toleranz gegenüber abiotischem Umweltstress, zum Beispiel eine erhöhte Toleranz gegenüber Dürre und/oder Toleranz gegenüber niedrigen Temperaturen und/oder eine erhöhte Effizienz der Nährstoffausnutzung, einen erhöhten intrinsischen Ertrag und/oder ein erhöhtes anderes erwähntes Ertragsmerkmal, verleiht;
    • (d) einem Nukleinsäuremolekül mit wenigstens 30% Identität, vorzugsweise wenigstens 40%, 50%, 60%, 70%, 75%, 80%, 85%, 90%, 95%, 96%, 97%, 98%, 99%, 99,5% mit der Nukleinsäuremolekülsequenz eines Polynukleotids, welches das in Spalte 5 oder 7 von Tabelle I gezeigte Nukleinsäuremolekül umfasst und, verglichen mit einer entsprechenden, z. B. nicht transformierten, Pflanzenzelle oder Pflanze vom Wildtyp oder einem Teil davon, einen erhöhten Ertrag, z. B. ein erhöhtes Ertragsmerkmal, zum Beispiel eine gesteigerte Toleranz gegenüber abiotischem Umweltstress, zum Beispiel eine erhöhte Toleranz gegenüber Dürre und/oder Toleranz gegenüber niedrigen Temperaturen und/oder eine erhöhte Effizienz der Nährstoffausnutzung, einen erhöhten intrinsischen Ertrag und/oder ein erhöhtes anderes erwähntes Ertragsmerkmal, verleiht;
    • (e) einem Nukleinsäuremolekül, das für ein Polypeptid kodiert, das wenigstens 30% Identität, vorzugsweise wenigstens 40%, 50%, 60%, 70%, 75%, 80%, 85%, 90%, 95%, 96%, 97%, 98%, 99%, 99,5%, mit der Aminosäuresequenz des durch das Nukleinsäuremolekül von (a), (b), (c) oder (d) kodierten Polypeptids hat und die durch ein ein wie in Spalte 5 von Tabelle I gezeigtes Polynukleotid umfassendes Nukleinsäuremolekül wiedergegebene Aktivität hat und, verglichen mit einer entsprechenden, z. B. nicht transformierten, Pflanzenzelle oder Pflanze vom Wildtyp oder einem Teil davon, einen erhöhten Ertrag, z. B. ein erhöhtes Ertragsmerkmal, zum Beispiel eine gesteigerte Toleranz gegenüber abiotischem Umweltstress, zum Beispiel eine erhöhte Toleranz gegenüber Dürre und/oder Toleranz gegenüber niedrigen Temperaturen und/oder eine erhöhte Effizienz der Nährstoffausnutzung, einen erhöhten intrinsischen Ertrag und/oder ein erhöhtes anderes erwähntes Ertragsmerkmal, verleiht;
    • (f) einem Nukleinsäuremolekül, das mit einem Nukleinsäuremolekül von (a), (b), (c), (d) oder (e) unter stringenten Hybridisierungsbedingungen hybridisiert und, verglichen mit einer entsprechenden, z. B. nicht transformierten, Pflanzenzelle oder Pflanze vom Wildtyp oder einem Teil davon, einen erhöhten Ertrag, z. B. ein erhöhtes Ertragsmerkmal, zum Beispiel eine gesteigerte Toleranz gegenüber abiotischem Umweltstress, zum Beispiel eine erhöhte Toleranz gegenüber Dürre und/oder Toleranz gegenüber niedrigen Temperaturen und/oder eine erhöhte Effizienz der Nährstoffausnutzung, einen erhöhten intrinsischen Ertrag und/oder ein erhöhtes anderes erwähntes Ertragsmerkmal, verleiht;
    • (g) einem Nukleinsäuremolekül, das für ein Polypeptid kodiert, das mit Hilfe von monoklonalen oder polyklonalen Antikörpern gegen ein durch eines der Nukleinsäuremoleküle von (a), (b), (c), (d), (e) oder (f) kodiertes Polypeptid isoliert werden kann und die durch ein ein wie in Spalte 5 von Tabelle I, Anwendung Nr. 1, gezeigtes Polynukleotid umfassendes Nukleinsäuremolekül wiedergegebene Aktivität hat;
    • (h) einem Nukleinsäuremolekül, das für ein Polypeptid kodiert, das die Konsensussequenz oder eines oder mehrere der wie in Spalte 7 von Tabelle IV gezeigten Polypeptidmotive umfasst und vorzugsweise die durch ein ein wie in Spalte 5 von Tabelle II oder IV gezeigtes Polypeptid umfassendes Protein wiedergegebene Aktivität hat;
    • (i) einem Nukleinsäuremolekül, das für ein Polypeptid kodiert, das die durch ein wie in Spalte 5 von Tabelle II gezeigtes Protein wiedergegebene Aktivität hat und, verglichen mit einer entsprechenden, z. B. nicht transformierten, Pflanzenzelle oder Pflanze vom Wildtyp oder einem Teil davon, einen erhöhten Ertrag, z. B. ein erhöhtes Ertragsmerkmal, zum Beispiel eine gesteigerte Toleranz gegenüber abiotischem Umweltstress, zum Beispiel eine erhöhte Toleranz gegenüber Dürre und/oder Toleranz gegenüber niedrigen Temperaturen und/oder eine erhöhte Effizienz der Nährstoffausnutzung, einen erhöhten intrinsischen Ertrag und/oder ein erhöhtes anderes erwähntes Ertragsmerkmal, verleiht;
    • (j) einem Nukleinsäuremolekül, welches ein Polynukleotid umfasst, das man erhält, indem man eine cDNA-Bibliothek oder eine genomische Bibliothek unter Verwendung der Primer aus Spalte 7 von Tabelle III amplifiziert, und zum Beispiel die Aktivität aufweist, die durch ein Protein, welches ein wie in Spalte 5 von Tabelle II oder IV gezeigtes Polypetid umfasst, wiedergegeben wird; und
    • (k) einem Nukleinsäuremolekül, das durch Screening einer geeigneten Nukleinsäure-Bibliothek, insbesondere einer cDNA-Bibliothek und/oder einer genomischen Bibliothek, unter stringenten Hybridisierungsbedingungen mit einer Sonde, die eine komplementäre Sequenz eines Nukleinsäuremoleküls von (a) oder (b) umfasst, oder mit einem Fragment davon mit wenigstens 15 nt, vorzugsweise 20 nt, 30 nt, 50 nt, 100 nt, 200 nt, 500 nt, 750 oder 1000 nt, eines Nukleinsäuremoleküls komplementär zu einer in (a) bis (e) charakterisierten Nukleinsäuremolekülsequenz, die für ein Polypeptid mit der durch ein ein wie in Spalte 5 von Tabelle II, Anwendung Nr. 1, gezeigtes Polypeptid umfassendes Protein wiedergegebenen Aktivität kodiert, erhältlich ist, umfasst.
  • Die Erfindung stellt weiterhin einen isolierten rekombinanten Expressionsvektor bereit, der eine für LTRRP oder YRP kodierende Nukleinsäure wie oben beschrieben enthält, wobei die Expression des Vektors bzw. der für LTRRP oder YRP kodierenden Nukleinsäure in einer Wirtszelle zu einem erhöhten Ertrag, z. B. einem erhöhten Ertragsmerkmal, zum Beispiel einer gesteigerten Toleranz gegenüber abiotischem Umweltstress, zum Beispiel einer erhöhten Toleranz gegenüber Dürre und/oder Toleranz gegenüber niedrigen Temperaturen und/oder einer erhöhten Effizienz der Nährstoffausnutzung, einem erhöhten intrinsischen Ertrag und/oder einem erhöhten anderen erwähnten Ertragsmerkmal, verglichen mit dem entsprechenden, z. B. nicht tranformierten, Wildtyp der Wirtszelle, führt. So, wie er hier verwendet wird, bezieht sich der Ausdruck ”Vektor” auf ein Nukleinsäuremolekül, das dazu in der Lage ist, eine andere Nukleinsäure, an die es gebunden ist, zu transportieren. Ein Typ von Vektor ist ein ”Plasmid”, was sich auf eine zirkuläre doppelsträngige DNA-Schleife bezieht, in die zusätzliche DNA-Segmente ligiert werden können. Ein anderer Vektortyp ist ein viraler Vektor, bei dem zusätzliche DNA-Segmente in das virale Genom ligiert werden können. Weitere mögliche Typen von Vektoren sind linearisierte Nukleinsäuresequenzen wie Transposone, bei denen es sich um Teile von DNA handelt, die sich kopieren und insertieren können. Es wurden 2 Typen von Transposonen gefunden: einfache Transposone, die als Insertionssequenzen bekannt sind, und zusammengesetzte Transposone, die mehrere Gene zusätzlich zu den für die Transposition erforderlichen Genen aufweisen können. Bestimmte Vektoren sind zu einer autonomen Replikation in einer Wirtszelle, in die sie eingeführt wurden, fähig (z. B. bakterielle Vektoren mit einem bakteriellen Replikationsursprung und episomale Säugetiervektoren). Andere Vektoren (z. B. nicht-episomale Säugetiervektoren) werden bei der Einführung in eine Wirtszelle in das Genom der Wirtszelle integriert und werden somit zusammen mit dem Wirtsgenom repliziert. Außerdem sind bestimmte Vektoren dazu fähig, die Expression von Genen, mit denen sie operativ verbunden sind, zu steuern. Solche Vektoren werden hier als ”Expressionsvektoren” bezeichnet. Im Allgemeinen liegen Expressionsvektoren, die bei rekombinanten DNA-Techniken von Nutzen sind, häufig in Form von Plasmiden vor. In der vorliegenden Beschreibung können ”Plasmid” und ”Vektor” austauschbar verwendet werden, da es sich bei dem Plasmid um die am häufigsten verwendete Form von Vektor handelt. Die Erfindung soll jedoch auch solche anderen Formen von Expressionsvektoren wie virale Vektoren (z. B. replikationsdefektive Retroviren, Adenoviren und adenoassoziierte Viren) einschließen, die äquivalente Funktionen erfüllen.
  • Eine Pflanzen-Expressionskassette enthält vorzugsweise regulatorische Sequenzen, die dazu in der Lage sind, die Genexpression in Pflanzenzellen zu steuern und die operativ gebunden sind, so dass jede Sequenz ihre Funktion erfüllen kann, zum Beispiel die Terminierung der Transkription durch Polyadenylierungssignale. Bevorzugte Polyadenylierungssignale sind die, die aus Agrobacterium tumefaciens-t-DNA stammen, wie das als Octopinsynthase bekannte Gen 3 des Ti-Plasmids pTiACH5 (Gielen et al., EMBO J. 3, 835 1(984)) oder funktionelle Äquivalente davon, es eignen sich jedoch auch alle anderen Terminatoren, die in Pflanzen funktionell aktiv sind. Da die Pflanzengenexpression sehr häufig nicht auf die transkriptionellen Ebenen beschränkt ist, enthält eine Pflanzenexpressionskassette vorzugsweise andere operativ gebundene Sequenzen wie Translations-Enhancer wie z. B. die Overdrive-Sequenz, die die 5'-untranslatierte Leitsequenz aus dem Tabakmosaikvirus enthält und das Protein:RNA-Verhältnis verbessert (Gallie et al., Nucl. Acids Research 15, 8693 (1987)).
  • Die Pflanzengenexpression muss operativ mit einem geeigneten Promotor verbunden sein, der für die Genexpression in einer zeit-, zell oder gewebespezifischen Weise verantwortlich ist. Bevorzugt sind Promotoren, die für eine konstitutive Expression (Benfey et al., EMBO J. 8, 2195 (1989)) sorgen, wie die, die sich von Pflanzenviren wie 35S CaMV (Franck et al., Cell 21, 285 (1980)) oder 19S CaMV (siehe auch US-Patentschrift Nr. 5352605 und PCT-Anmeldung Nr. WO 84/02913 ) ableiten, oder Pflanzenpromotoren wie die aus der kleinen Untereinheit von Rubisco, beschrieben in der US-Patentschrift Nr. 4,962,028 .
  • Zusätzliche vorteilhafte regulatorische Sequenzen befinden sich zum Beispiel in Pflanzenpromotoren wie CaMV/35S (Franck et al., Cell 21 285 (1980)), PRP1 (Ward et al., Plant. Mol. Biol. 22, 361 (1993)), SSU, OCS, lib4, usp, STLS1, B33, LEB4, nos oder im Ubiquitin-, Napin- oder Phaseolin-Promotor. Ebenfalls vorteilhaft in diesem Zusammenhang sind induzierbare Promotoren wie die in EP 388 186 (benzylsulfonamidinduzierbar), (Gatz et al., Plant J. 2, 397 (1992) (tetracyclininduzierbar), EP-A-0 335 528 (abszisinsäureinduzierbar) oder WO 93/21334 (ethanol- oder cyclohexenolinduzierbar) beschriebenen Promotoren. Weitere brauchbare Pflanzenpromotoren sind der zytoplasmatische FBPase-Promotor oder der ST-LSI-Promotor der Kartoffel (Stockhaus et al., EMBO J. 8, 2445 (1989)), der Phosphoribosylpyrophosphatamidotransferase-Promotor von Glycine max (Genbank Zugangs-Nr. U87999) oder der in EP-A-0 249 676 beschriebene knotenspezifische Promotor. Weitere besonders vorteilhafte Promotoren sind samenspezifische Promotoren, die für Monokotyledone oder Dikotyledone verwendet werden können und in US 5,608,152 (Napin-Promotor aus Raps), WO 98/45461 (Phaseolin-Promotor aus Arabidopsis), US 5,504,200 (Phaseolin-Promotor aus Phaseolus vulgaris), WO 91/13980 (Bce4-Promotor aus Brassica) und Baeumlein et al., Plant J., 2 (2), 233 (1992) (LEB4-Promotor aus Leguminosen) beschrieben sind. Diese Promotoren eignen sich für dikotyledone Pflanzen. Die folgenden Promotoren eignen sich zum Beispiel für Monokotyledone: der lpt-2- oder lpt-1-Promotor aus Gerste ( WO 95/15389 und WO 95/23230 ) oder der Hordein-Promotor aus Gerste. Andere brauchbare Promotoren sind in WO 99/16890 beschrieben. Im Prinzip können alle natürlichen Promotoren mit ihren regulatorischen Sequenzen wie die obenerwähnten für das neue Verfahren verwendet werden. Es ist außerdem möglich und vorteilhaft, zusätzlich synthetische Promotoren einzusetzen.
  • Das Genkonstrukt kann auch weitere Gene umfassen, die in die Organismen zu insertieren sind und die zum Beispiel an der Toleranz gegenüber Stress und der Erhöhung des Ertrags beteiligt sind. Es ist möglich und vorteilhaft, regulatorische Gene wie Gene für Induktoren, Repressoren oder Enzyme, die durch ihrer enzymatische Aktivität in die Regulation eingreifen, oder eines oder mehrere oder alle Gene eines Biosynthesepfades in Wirtsorganismen zu insertieren und exprimieren. Diese Gene können vom Ursprung her heterolog oder homolog sein. Die insertierten Gene können ihren eigenen Promotor haben oder sich ansonsten unter der Kontrolle des gleichen Promotors wie die Sequenzen der Nukleinsäure von Tabelle I oder ihrer Homologe befinden. Das Genkonstrukt umfasst vorteilhafterweise, für die Expression der anderen vorhandenen Gene, zusätzliche 3'- und/oder 5'-terminale regulatorische Sequenzen zur Steigerung der Expression, die je nach ausgewähltem Wirtsorganismus und Gen oder ausgewählten Genen für eine optimale Expression ausgewählt sind.
  • Diese regulatorischen Sequenzen sollen wie oben erwähnt eine spezifische Expression der Gene und der Proteinexpression ermöglichen. Dies kann je nach Wirtsorganismus zum Beispiel bedeuten, dass das Gen erst nach einer Induktion exprimiert oder überexprimiert wird, oder dass es sofort exprimiert und/oder überexprimiert wird. Die regulatorischen Sequenzen oder Faktoren können außerdem vorzugsweise eine vorteilhafte Wirkung auf die Expression der eingeführten Gene haben und sie somit erhöhen. Es ist auf diese Weise möglich, die regulatorischen Elemente vorteilhaft auf der Ebene der Transkription zu verstärken, indem man starke Transkriptionssignale wie Promotoren und/oder Enhancer einsetzt. Zusätzlich ist es auch möglich, die Translation zu verstärken, indem man zum Beispiel die Stabilität der mRNA verbessert.
  • Andere bevorzugte Sequenzen für eine Verwendung in Pflanzengenexpressionskassetten sind Erkennungssequenzen, die benötigt werden, um das Genprodukt in sein entsprechendes Zellkompartiment (ein Übersichtsartikel findet sich bei Kermode, Crit. Rev. Plant Sci. 15 (4), 285 (1996) und den darin angeführten Literaturstellen) wie die Vakuole, den Kern, alle Typen von Plastiden wie Amyloplaste, Chloroplaste, Chromoplaste, den extrazellulären Raum, Mitochondrien, das endoplasmatische Retikulum, Ölkörperchen, Peroxisome und andere Kompartimente von Pflanzenzellen zu lenken. Die Pflanzengenexpression kann auch durch einen induzierbaren Promotor (ein Übersichtsartikel findet sich bei Gatz, Annu. Rev. Plant Physiol. Plant Mol. Biol. 48, 89 (1997) begünstigt werden. Chemisch induzierbare Promotoren sind dann insbesondere geeignet, wenn die Genexpression auf eine zeitspezifische Weise erfolgen soll.
  • In Tabelle VI sind mehrere Beispiele für Promotoren aufgeführt, die zur Regulation der Transkription der kodierenden Nukleinsäuresequenzen der vorliegenden Erfindung verwendet werden können. Tab. VI: Beispiele für gewebespezifische und induzierbare Promotoren in Pflanzen
    Expression Referenz
    Cor78 – kälte-, dürre-, salz-, ABA-, wundinduzierbar Ishitani, et al., Plant Cell 9, 1935 (1997), Yamaguchi-Shinozaki und Shinozaki, Plant Cell 6, 251 (1994)
    Rci2A – kälte-, dehydratationsinduzierbar Capel et al., Plant Physiol 115, 569 (1997)
    Rd22 – Dürre, Salz Yamaguchi-Shinozaki und Shinozaki, Mol. Gen. Genet. 238, 17 (1993)
    Cor15A – Kälte, Dehydratation, ABA Baker et al., Plant Mol. Biol. 24, 701 (1994)
    GH3 – auxininduzierbar Liu et al., Plant Cell 6, 645 (1994)
    ARSK1 – Wurzel, salzinduzierbar Hwang und Goodman, Plant J. 8, 37 (1995)
    PtxA – Wurzel, salzinduzierbar GenBank Zugangsnr. X67427
    SbHRGP3 – wurzelspezifisch Ahn et al., Plant Cell 8, 1477 (1998).
    KST1 – wächterzellenspezifisch Plesch et al., Plant Journal. 28(4), 455 – (2001)
    KAT1 – wächterzellenspezifisch Plesch et al., Gene 249, 83 (2000), Nakamura et al., Plant Physiol. 109, 371 (1995)
    salicylsäureinduzierbar PCT-Anmeldung Nr. WO 95/19443
    tetracyclininduzierbar Gatz et al., Plant J. 2, 397 (1992)
    ethanolinduzierbar PCT-Anmeldung Nr. WO 93/21334
    pathogeninduzierbar PRP1 Ward et al., Plant. Mol. Biol. 22, 361 – (1993)
    hitzeinduzierbar hsp80 US-Patentschrift Nr. 5,187,267
    kälteinduzierbar alpha-Amylase PCT-Anmeldung Nr. WO 96/12814
    wundinduzierbar pinII europäische Patentschrift Nr. 375 091
    RD29A – salzinduzierbar Yamaguchi-Shinozalei et al. Mol. Gen. Genet. 236, 331 (1993)
    plastidspezifische virale RNA-Polymerase PCT-Anmeldung Nr. WO 95/16783 , PCT-Anmeldung Nr. WO 97/06250
  • Andere Promotoren, z. B. der Superpromotor (Ni et al., Plant Journal 7, 661 (1995)), der Ubiquitin-Promotor (Callis et al., J. Biol. Chem., 265, 12486 (1990); US 5,510,474 ; US 6,020,190 ; Kawalleck et al., Plant. Molecular Biology, 21, 673 (1993)) oder der 34S-Promotor (GenBank Zugangsnummern M59930 und X16673) haben sich in ähnlicher Weise als brauchbar für die vorliegende Erfindung erwiesen und sind dem Fachmann bekannt. Promotoren mit Entwicklungsstadiumpreferenz werden vorzugsweise in bestimmten Entwicklungsstadien exprimiert. Gewebe- und organbevorzugte Promotoren schließen die ein, die vorzugsweise in bestimmten Geweben oder Organen wie Blättern, Wurzeln, Samen oder Xylem exprimiert werden. Beispiele für gewebebevorzugte und organbevorzugte Promotoren schließen, wobei diese Aufzählung nicht einschränkend ist, fruchtbevorzugte, samenanlagenbevorzugte, in männlichen Geweben bevorzugte, samenbevorzugte, integumentbevorzugte, knollenbevorzugte, stielbevorzugte, perikarpbevorzugte und blattbevorzugte, stigmabevorzugte, pollenbevorzugte, staubbeutelbevorzugte, petalbevorzugte, sepalumbevorzugte, blütenstielbevorzugte, schotenbevorzugte, stängelbevorzugte, wurzelbevorzugte Promotoren und dergleichen ein. Samenbevorzugte Promotoren werden vorzugsweise während der Samenentwicklung und/oder Keimung exprimiert. Samenbevorzugte Promotoren können zum Beispiel embryobevorzugte, endospermbevorzugte und samenmantelbevorzugte sein, siehe Thompson et al., BioEssays 10, 108 (1989). Beispiele für samenbevorzugte Promotoren schließen, wobei diese Aufzählung nicht einschränkend ist, Cellulosesynthase (celA), Cim1, gamma-Zein, Globulin-1, Mais 19 kD-Zein (cZ19B1), und dergleichen ein.
  • Andere für die Expressionskassetten der Erfindung brauchbare Promotoren schließen, wobei diese Aufzählung nicht einschränkend ist, den Promotor des Major Chlorophyll a/b Binding Protein, die Histon-Promotoren, den Ap3-Promotor, den β-Conglycin-Promotor, den Napin-Promotor, den Lectin-Promotor aus der Sojabohne, den 15kD-Zein-Promotor aus Mais, den 22kD-Zein-Promotor, den 27kD-Zein-Promotor, den g-Zein-Promotor, die Waxy-, Shrunken-1-, Shrunken-2- und Bronze-Promotoren, den Zml3-Promotor ( US-Patentschrift Nr. 5,086,169 ), die Polygalacturonase-Promotoren (PG) aus Mais ( US-Patentschrift Nos. 5,412,085 und 5,545,546 ), und den SGB6-Promotor ( US-Patentschrift Nr. 5,470,359 ), sowie synthetische oder andere natürliche Promotoren ein.
  • Eine zusätzliche Flexibilität bei der Steuerung der heterologen Genexpression in Pflanzen lässt sich durch die Verwendung von DNA-bindenden Domänen und Reaktionselementen aus heterologen Quellen (d. h. DNA-Bindungsdomänen aus nicht pflanzlichen Quellen) erzielen. Ein Beispiel für eine solche heterologe DNA-Bindungsdomaine ist die LexA-DNA-Bindungsdomäne (Brent und Ptashne, Cell 43, 729 (1985)).
  • Die Erfindung stellt weiterhin einen rekombinanten Expressionsvektor bereit, der ein LTRRP- oder YRP-DNA-Molekül der Erfindung umfasst, das in einer Antisense-Orientierung in den Expressionsvektor kloniert ist. Das heißt, das DNA-Molekül ist operativ mit einer regulatorischen Sequenz auf eine Weise verbunden, die die Expression (durch Transkription des DNA-Moleküls) eines RNA-Moleküls, das antisense zu einer LTRRP- oder YRP-mRNA ist, erlaubt. Es können regulatorische Sequenzen ausgewählt werden, die operativ an ein Nukleinsäuremolekül gebunden sind, das in der Antisense-Orientierung kloniert wurde, und die die kontinuierliche Expression des Antisense-RNA-Moleküls in verschiedenen Zelltypen steuern. So können zum Beispiel virale Promotoren und/oder Enhancer, oder regulatorische Sequenzen ausgewählt werden, die die konstitutive, gewebespezifische oder zelltypspezifische Expression von Antisense-RNA steuern. Der Antisense-Expressionsvektor kann in Form eines rekombinanten Plasmids, Phagemids oder eines abgeschwächten Virus vorliegen, in welchem Antisense-Nukleinsäuren unter der Kontrolle einer hocheffizienten regulatorischen Region produziert werden. Die Aktivität der regulatorischen Region lässt sich mit dem Zelltyp bestimmen, in den der Vektor eingeführt wird. Eine Diskussion der Steuerung der Genexpression mit Antisense-Genen findet sich bei Weintraub H. et al., Reviews – Trends in Genetics, Band 1(1), 23 (1986) und Mol et al., FEBS Letters 268, 427 (1990).
  • Ein weiterer Aspekt der Erfindung betrifft isolierte LTRRP oder YRPs und biologisch aktive Teile davon. Ein ”isoliertes” oder ”aufgereinigtes” Polypeptid oder ein biologisch aktiver Teil davon ist frei von einigem des zellulären Materials, wenn die Produktion durch rekombinante DNA-Techniken erfolgte, oder chemischen Vorstufen oder anderen Chemikalien, wenn es chemisch synthetisiert wurde. Der Ausdruck ”im Wesentlichen frei von zellulärem Material” schließt Zubereitungen von LTRRP oder YRP ein, bei denen das Polypeptid von einigen der zellulären Komponenten der Zelle, in denen es natürlich oder rekombinant produziert wird, abgetrennt ist. Gemäß einer Ausführungsform schließt der Ausdruck ”im Wesentlichen frei von zellulärem Material” Zubereitungen von LTRRP oder YRP mit weniger als etwa 30% (Trockengewicht) an Nicht-LTRRP- oder -YRP-Material (hier auch als ein ”kontaminierendes Polypeptid” bezeichnet), besonders bevorzugt weniger als etwa 20% an Nicht-LTRRP- oder -YRP-Material, weiter besonders bevorzugt weniger als etwa 10% an Nicht-LTRRP- oder -YRP-Material, und ganz besonders bevorzugt weniger als etwa 5% an Nicht-LTRRP- oder -YRP-Material, ein.
  • Wird das LTRRP oder YRP oder der biologisch aktive Teil davon rekombinant produziert, so ist es ebenfalls vorzugsweise im Wesentlichen frei von Kulturmedium, d. h. das Kulturmedium macht weniger als etwa 20%, besonders bevorzugt weniger als etwa 10%, und ganz besonders bevorzugt weniger als etwa 5% des Volumens der Polypeptidzubereitung aus. Der Ausdruck ”im Wesentlichen frei von chemischen Vorstufen oder anderen Chemikalien” schließt Zubereitungen eines LTRRP oder YRP ein, in denen das Polypeptid von chemischen Vorstufen oder anderen an der Synthese des Polypeptids beteiligten Chemikalien abgetrennt ist. Gemäß einer Ausführungsform schließt der Ausdruck ”im Wesentlichen frei von chemischen Vorstufen oder anderen Chemikalien” Zubereitungen eines LTRRP oder YRP mit weniger als etwa 30% (Trockengewicht) an chemischen Vorstufen oder Nicht-LTRRP- oder -YRP-Chemikalien, besonders bevorzugt weniger als etwa 20% an chemischen Vorstufen oder Nicht-LTRRP- oder -YRP-Chemikalien, weiter besonders bevorzugt weniger als etwa 10% an chemischen Vorstufen oder Nicht-LTRRP- oder -YRP-Chemikalien, und ganz besonders bevorzugt weniger als etwa 5% an chemischen Vorstufen oder Nicht-LTRRP- oder -YRP-Chemikalien ein. Bei bevorzugten Ausführungsformen sind in den isolierten Polypeptiden oder biologisch aktiven Teilen davon keine kontaminierenden Polypeptide aus dem gleichen Organismus, aus dem das LTRRP oder YRP abgeleitet ist, vorhanden. Typischerweise werden solche Polypeptide durch rekombinante Expression von zum Beispiel einem S. cerevisiae-, E.coli- oder A. thaliana-, Brassica napus-, Glycine max-, Zea mays- oder Oryza sativa-LTRRP oder -YRP in einem Mikororganismus wie S. cerevisiae, E. coli, C. glutamicum, Wimperntierchen, Algen, Pilzen oder Pflanzen produziert, mit der Maßgabe, dass das Polypeptid in einem Organismus rekombinant exprimiert wird, der sich vom Originalorganismus unterscheidet.
  • Die hier beschriebenen Nukleinsäuremoleküle, Polypeptide, Polypeptidhomologe, Fusionspolypeptide, Primer, Vektoren und Wirtszellen können bei einer oder mehreren der folgenden Methoden zur Anwendung kommen: Identifizierung von S. cerevisiae, E. coli or A. thaliana, Brassica napus, Glycine max, Zea mays oder Oryza sativa und verwandten Organismen; Kartierung von Genomen von mit S. cerevisiae, E. coli verwandten Organismen; Identifizierung und Lokalisierung von betreffenden Saccharomyces cerevisiae-, E. coli- oder A. thaliana-, Brassica napus-, Glycine max-, Zea mays- oder Oryza sativa-Sequenzen; Evolutionsstudien; Bestimmung der für die Funktion erforderlichen LTRRP- oder YRP-Regionen; Modulation einer LTRRP- oder YRP-Aktivität; Modulation des Metabolismus einer oder mehrerer Zellfunktionen; Modulation des transmembranen Transports einer oder mehrerer Verbindungen; Modulation des Ertrags, z. B. eines Ertragsmerkmals, zum Beispiel der Toleranz gegenüber abiotischem Umweltstress, zum Beispiel der Toleranz gegenüber niedrigen Temperaturen, der Toleranz gegenüber Dürre, der Effizienz der Wasserausnutzung, der Effizienz der Nährstoffausnutzung und/oder des intrinsischen Ertrags; und Modulation der Expression von LTRRP- oder YRP-Nukleinsäuren.
  • Die LTRRP- oder YRP-Nukleinsäuremoleküle der Erfindung eignen sich auch für Evolutionsstudien und Polypeptidstrukturuntersuchungen. Die metabolischen Vorgänge und Transportprozesse, bei denen die Moleküle der Erfindung eine Rolle spielen, werden von einer Vielzahl verschiedener prokaryontischer und eukaryontischer Zellen genutzt; durch einen Vergleich der Sequenzen der Nukleinsäuremoleküle der vorliegenden Erfindung mit denen, die für ähnliche Enzyme aus anderen Organismen kodieren, kann man die evolutionären Verwandtschaftsbeziehungen der Organismen bewerten. In ähnlicher Weise erlaubt ein solcher Vergleich eine Abschätzung davon, welche Regionen der Sequenz konserviert sind und welche nicht, was dabei helfen kann, die Regionen des Polypeptids zu bestimmen, die für die Funktion des Enzyms wesentlich sind. Diese Art von Bestimmung ist bei Polypeptidentwicklungsstudien von Nutzen und kann darauf hindeuten, was das Polypeptid hinsichtlich einer Mutagenese tolerieren kann, ohne die Funktionsfähigkeit zu verlieren.
  • Eine Manipulation der LTRRP- oder YRP-Nukleinsäuremoleküle der Erfindung kann zur Folge haben, dass SRPs produziert werden, die sich in ihrer Funktion von den LTRRP oder YRPs des Wildtyps unterscheiden. Diese Polypeptide können eine verbesserte Effizienz oder Aktivität aufweisen, in einer größeren Anzahl als gewöhnlich in der Zelle vorhanden sein oder eine verminderte Effizienz oder Aktivität aufweisen.
  • Es gibt eine Reihe von Mechanismen, durch die eine Abänderung eines LTRRP oder YRP der Erfindung einen direkten Einfluss auf den Ertrag, z. B. ein Ertragsmerkmal, zum Beispiel die Toleranz gegenüber abiotischem Umweltstress, zum Beispiel die Toleranz gegenüber Dürre und/oder die Toleranz gegenüber niedrigen Temperaturen und/oder die Effizienz der Nährstoffausnutzung, den intrinsischen Ertrag und/oder ein anderes erwähntes Ertragsmerkmal haben kann.
  • Die Auswirkung der genetischen Modifikation in Pflanzen auf den Ertrag, z. B. ein Ertragsmerkmal, zum Beispiel die Toleranz gegenüber abiotischem Umweltstress, zum Beispiel die Toleranz gegenüber Dürre und/oder die Toleranz gegenüber niedrigen Temperaturen und/oder die Effizienz der Nährstoffausnutzung, den intrinsischen Ertrag und/oder ein anderes erwähntes Ertragsmerkmal lässt sich abschätzen, indem man die modifizierte Pflanze unter weniger als geeigneten Bedingungen heranzieht und dann die Wachstumscharakteristika und/oder den Metabolismus der Pflanze analysiert. Solche Analysetechniken sind dem Fachmann gut bekannt und schließen Trockengewicht, Frischgewicht, Polypeptidsynthese, Kohlenhydratsynthese, Lipidsynthese, Evapotranspirationsraten, allgemeine Erträge an Pflanze und/oder Erntegut, Blühleistung, Reproduktion, Samenansatz, Wurzelwachstum, Respirationsraten, Photosyntheseraten usw. ein (Applications of HPLC in Biochemistry in: Laboratory Techniques in Biochemistry and Molecular Biology, Band 17; Rehm et al., 1993 Biotechnology, Band 3, Kapitel III: Product recovery and purification, Seite 469–714, VCH: Weinheim; Belter P. A. et al., 1988, Bioseparations: downstream processing for biotechnology, John Wiley and Sons; Kennedy J. F., und Cabral J. M. S., 1992, Recovery processes for biological materials, John Wiley and Sons; Shaeiwitz J. A. und Henry J. D., 1988, Biochemical separations, in Ulmann's Encyclopedia of Industrial Chemistry, Band B3, Kapitel 11, Seite 1–27, VCH: Weinheim; und Dechow F. J., 1989, Separation and purification techniques in biotechnology, Noyes Publications).
  • So kann man zum Beispiel Hefe-Expressionsvektoren, die die hier offenbarten Nukleinsäuren oder Fragmente davon umfassen, unter Anwendung von Standardprotokollen konstruieren und in S. cerevisiae transformieren. Die erhaltenen transgenen Zellen können dann auf Erzeugung oder Veränderung ihres Ertrages, z. B. ihrer Ertragsmerkmale, zum Beispiel ihrer Toleranz gegenüber abiotischem Umweltstress, zum Beispiel ihrer Toleranz gegenüber Dürre und/oder ihrer Toleranz gegenüber niedrigen Temperaturen und/oder ihrer Effizienz der Nährstoffausnutzung, ihres intrinsischen Ertrags und/oder eines anderen erwähnten Ertragsmerkmals, untersucht werden. In ähnlicher Weise können Pflanzen-Expressionsvektoren, die die hier offenbarten Nukleinsäuren oder Fragmente davon umfassen, unter Anwendung von Standardprotokollen konstruiert und in eine geeignete Pflanzenzelle wie Arabidopsis, Soja, Raps, Mais, Baumwolle, Reis, Weizen, Medicago truncatula usw. transformiert werden. Die erhaltenen transgenen Zellen und/oder daraus abgeleiteten Pflanzen können dann auf Erzeugung oder Veränderung ihres Ertrages, z. B. ihrer Ertragsmerkmale, zum Beispiel ihrer Toleranz gegenüber abiotischem Umweltstress, zum Beispiel ihrer Toleranz gegenüber Dürre und/oder ihrer Toleranz gegenüber niedrigen Temperaturen und/oder ihrer Effizienz der Nährstoffausnutzung, ihres intrinsischen Ertrags und/oder eines anderen erwähnten Ertragsmerkmals, untersucht werden.
  • Die Entwicklung eines oder mehrerer Gene gemäß Tabelle I, die für das LTRRP oder YRP von Tabelle II der Erfindung kodieren, kann auch zu LTRRP oder YRPs mit abgeänderten Aktivitäten führen, was eine indirekte und/oder direkte Auswirkung auf die Toleranz gegenüber abiotischem Umweltstress von Algen, Pflanzen, Wimperntierchen oder Pilzen oder anderen Mikroorganismen wie C. glutamicum hat.
  • Darüber hinaus kann man mit den hier offenbarten Sequenzen oder Fragmenten davon Knockout-Mutationen in den Genomen verschiedener Organismen wie Bakterien, Säugetierzellen, Hefezellen und Pflanzenzellen produzieren (Girke, T., The Plant Journal 15, 39 (1998)). Die erhaltenen Knockout-Zellen können dann auf ihre Fähigkeit bzw. Kapazität zur Erhöhung des Ertrags, z. B. zur Erhöhung eines Ertragsmerkmals, zum Beispiel zur Steigerung der Toleranz gegenüber abiotischem Umweltstress, zum Beispiel zur Erhöhung der Toleranz gegenüber Dürre und/oder der Toleranz gegenüber niedrigen Temperaturen und/oder zur Erhöhung der Effizienz der Nährstoffausnutzung, zur Erhöhung des intrinsischen Ertrags und/oder eines anderen erwähnten Ertragsmerkmals, ihre Reaktion auf verschiedene Bedingungen von abiotischem Umweltstress und die Auswirkung auf den Phänotyp und/oder Gentyp der Mutation untersucht werden. Zu anderen Methoden der Gendesaktivierung siehe die US-Patentschrift Nr. 6,004,804 und Puttaraju et al., Nature Biotechnology 17, 246 (1999).
  • Die obenerwähnten Mutagenesestrategien für LTRRP oder YRPs, die zu einem erhöhten Ertrag führen, z. B. zur Erhöhung eines Ertragsmerkmals, zum Beispiel zur Steigerung der Toleranz gegenüber abiotischem Umweltstress, zum Beispiel zur Erhöhung der Toleranz gegenüber Dürre und/oder der Toleranz gegenüber niedrigen Temperaturen und/oder zur Erhöhung der Effizienz der Nährstoffausnutzung, zur Erhöhung des intrinsischen Ertrags und/oder zur Erhöhung eines anderen erwähnten Ertragsmerkmals, sollen nicht einschränkend sein; Variationen dieser Strategien werden für den Fachmann offensichtlich sein. Durch Anwendung solcher Strategien und unter Einbau der hier offenbarten Mechanismen können die Nukleinsäure- und Polypeptidmoleküle der Erfindung eingesetzt werden, um Algen, Wimperntierchen, Pflanzen, Pilze oder andere Mikroorganismen wie C. glutamicum, die mutierte LTRRP- oder YRP-Nukleinsäure- und Polypeptidmoleküle exprimieren, zu erzeugen, so dass die Toleranz gegenüber abiotischem Umweltstress und/oder der Ertrag verbessert wird.
  • Die vorliegende Erfindung stellt außerdem Antikörper bereit, die spezifisch an ein durch eine hier beschriebene Nukleinsäure kodiertes LTRRP oder YRP oder einen Teil davon binden. Antikörper lassen sich nach vielen gut bekannten Methoden herstellen (siehe z. B. Harlow and Lane, "Antibodies; A Laboratory Manual", Cold Spring Harbor Laboratory, Cold Spring Harbor, New York, (1988)). Kurz gesagt kann aufgereinigtes Antigen einem Tier in einer Menge und in zeitlichen Abständen, die ausreichen, um eine Immunreaktion auszulösen, injiziert werden. Antikörper können entweder direkt aufgereinigt werden, oder man kann aus dem Tier Milzzellen gewinnen. Die Zellen können dann mit einer unsterblichen Zelllinie fusioniert und auf Antikörpersekretion gescreent werden. Mit den Antikörpern kann man Bibliotheken von Nukleinsäureklonen auf das Antigen sezernierende Zellen screenen. Diese positiven Klone können dann sequenziert werden. Siehe zum Beispiel Kelly et al., Bio/Technology 10, 163 (1992); Bebbington et al., Bio/Technology 10, 169 (1992).
  • Die Begriffe ”selektiv binden” und ”spezifisch binden” beziehen sich beim Polypeptid auf eine Bindungsreaktion, die in Gegenwart des Polypeptid in einer heterogenen Population von Polypeptiden und anderen Biologika determinativ ist. Somit binden unter festgelegten Immunoassaybedingungen die spezifizierten, an ein bestimmtes Polypeptid gebundenen Antikörper nicht in signifikanter Menge an andere in der Probe vorhandene Polypeptide. Für eine selektive Bindung eines Antikörpers unter solchen Bedingungen kann ein Antikörper erforderlich sein, der auf Basis seiner Spezifität für ein bestimmtes Polypeptid ausgewählt wurde. Für die Auswahl von selektiv an ein bestimmtes Polypeptid bindenden Antikörpern stehen verschiedene Immunoassayformate zur Verfügung. So werden zum Beispiel Festphasen-ELISA-Immunoassays routinemäßig zur Selektion von mit einem Polypeptid selektiv immunreaktiven Antikörpern eingesetzt. Siehe Harlow und Lane, "Antibodies, A Laboratory Manual," Cold Spring Harbor Publications, New York, (1988) für eine Beschreibung von Immunoassayformaten und Bedingungen, die angewendet werden können, um eine selektive Bindung zu bestimmen.
  • In einigen Fällen ist es wünschenswert, monoklonale Antikörper aus verschiedenen Wirten herzustellen. Eine Beschreibung von Techniken zur Herstellung solcher monoklonalen Antiköper findet sich in Stites et al., Hrsg., "Basic and Clinical Immunology," (Lange Medical Publications, Los Altos, Kalif., 4. Auflage) und den darin angeführten Literaturstellen, und in Harlow und Lane, "Antibodies, A Laboratory Manual," Cold Spring Harbor Publications, New York, (1988).
  • Die Genexpression in Pflanzen wird reguliert durch die Wechselwirkung von Proteintranskriptionsfaktoren mit spezifischen Nukleotidsequenzen innerhalb der regulatorischen Region eines Gens. Ein Beispiel für Transkriptionsfaktoren sind Polypeptide, die Zinkfingermotive (ZF-Motive) enthalten. Jedes ZF-Modul ist ungefähr 30 Aminosäuren lang und um ein Zinkion herum gefaltet. Die DNA-Erkennungsdomäne eines ZF-Proteins ist eine a-helikale Struktur, die sich in die große Furche der DNA-Doppelhelix einschiebt. Das Modul enthält drei Aminosäuren, die an die DNA binden, wobei jede Aminosäure mit einem einzelnen Basenpaar in der Target-DNA-Sequenz in Kontakt steht. ZF-Motive sind in einer modular wiederholten Weise unter Ausbildung eines Satzes von Fingern, die eine benachbarte DNA-Sequenz erkennen, angeordnet. So erkennt zum Beispiel ein dreifingriges ZF-Motiv 9 Bp an DNA. Es wurde gezeigt, dass Hunderte von Proteinen ZF-Motive enthalten, mit zwischen 2 und 37 ZF-Modulen in jedem Protein (Isalan M. et al., Biochemistry 37 (35), 12026 (1998); Moore M. et al., Proc. Natl. Acad. Sci. USA 98 (4), 1432 (2001) und Moore M. et al., Proc. Natl. Acad. Sci. USA 98 (4), 1437 (2001); US-Patentschriften US 6,007,988 und US 6,013,453 ).
  • Die regulatorische Region eines Pflanzengens enthält viele kurze DNA-Sequenzen (cis-acting elements), die als Erkennungsdomänen für Transkriptionsfaktoren einschließlich ZF-Proteinen dienen. Ähnliche Erkennungsdomänen in verschiedenen Genen ermöglichen die koordinierte Expression mehrerer für Enzyme in einem metabolischen Pfad kodierender Gene durch gemeinsame Transkriptionsfaktoren. Durch Variationen bei den Erkennungsdomänen zwischen Mitgliedern einer Genfamilie kommt es zu Unterschieden bei der Genexpression in der gleichen Genfamilie, zum Beispiel zwischen Geweben und Entwicklungsstadien und als Reaktion auf Umwelteinflüsse. Typische ZF-Proteine enthalten nicht nur eine DNA-Erkennungsdomäne, sondern auch eine funktionelle Domäne, die es dem ZF-Protein ermöglicht, die Transkription eines spezifischen Gens zu aktivieren oder zu unterdrücken. Experimentell wurde mit einer Aktivierungsdomäne die Transkription des Target-Gens aktiviert ( US-Patentschrift 5,789,538 und Patentanmeldung WO 95/19431 ), es ist jedoch auch möglich, eine Transkriptionsrepressordomäne an den ZF anzubinden und somit die Transkription zu inhibieren (Patentanmeldungen WO 00/47754 und WO 01/002019 ). Es wurde beschrieben, dass eine enzymatische Funktion wie Nukleinsäurespaltung an den ZF gebunden werden kann (Patentanmeldung WO 00/20622 ).
  • Die Erfindung stellt eine Methode bereit, die es dem Fachmann ermöglicht, die regulatorische Region eines oder mehrerer für das LTRRP oder YRP kodierender Gene aus dem Genom einer Pflanzenzelle zu isolieren und an eine funktionelle Domäne, die mit der regulatorischen Region des Gens in Wechselwirkung tritt, gebundene Zinkfinger-Transkriptionfaktoren zu entwickeln. Die Wechselwirkung des Zinkfingerproteins mit dem Pflanzengen kann so zugeschnitten sein, dass die Expression des Gens abgeändert ist, wodurch vorzugsweise ein erhöhter Ertrag, z. B. ein erhöhtes Ertragsmerkmal, zum Beispiel eine gesteigerte Toleranz gegenüber abiotischem Umweltstress, zum Beispiel eine erhöhte Toleranz gegenüber Dürre und/oder Toleranz gegenüber niedrigen Temperaturen und/oder eine erhöhte Effizienz der Nährstoffausnutzung, ein erhöhter intrinsischer Ertrag und/oder ein erhöhtes anderes erwähntes Ertragsmerkmal, verliehen wird.
  • Die Erfindung stellt insbesondere eine Methode zur Herstellung einer transgenen Pflanze einer für ein LTRRP oder YRP kodierenden Nukleinsäure bereit, wobei die Expression der Nukleinsäure(n) in der Pflanze zu einem erhöhten Ertrag, z. B. einem erhöhten Ertragsmerkmal, zum Beispiel einer gesteigerten Toleranz gegenüber abiotischem Umweltstress, zum Beispiel einer erhöhten Toleranz gegenüber Dürre und/oder Toleranz gegenüber niedrigen Temperaturen und/oder einer erhöhten Effizienz der Nährstoffausnutzung, einem erhöhten intrinsischen Ertrag und/oder einem erhöhten anderen erwähnten Ertragsmerkmal, verglichen mit einer Pflanze vom Wildtyp führt, bei dem man: (a) eine Pflanzenzelle mit einem Expressionsvektor, der eine für ein LTRRP oder YRP kodierende Nukleinsäure umfasst, transformiert, und (b) aus der Pflanzenzelle eine transgene Pflanze mit einer gesteigerten Toleranz gegenüber abiotischem Umwelstress und/oder einem erhöhten Ertrag, verglichen mit einer Pflanze vom Wildtyp erzeugt. Für eine solche Pflanzentransformation kann man sich binärer Vektoren wie pBinAR bedienen (Höfgen und Willmitzer, Plant Science 66, 221 (1990)). Geeignete binäre Vektoren sind außerdem zum Beispiel pBIN19, pBI101, pGPTV oder pPZP (Hajukiewicz P. et al., Plant Mol. Biol., 25, 989 (1994)).
  • Die Konstruktion der binären Vektoren kann durch Ligation der cDNA in die t-DNA erfolgen. 5' zur cDNA aktiviert ein Pflanzenpromotor die Transkription der cDNA. Eine Polyadenylierungssequenz befindet sich 3' zur cDNA. Eine gewebespezifische Expression kann durch Einsatz eines wie oben angeführten gewebespezifischen Promotors erreicht werden. Darüber hinaus kann man auch alle anderen Promotorelemente verwenden. Für eine konstitutive Expression in der gesamten Pflanze kann man sich des CaMV 35S-Promotors bedienen. Das exprimierte Protein kann mit einem Signalpeptid gezielt in einem zellulären Kompartiment exprimiert werden, zum Beispiel in Plastiden, Mitochondrien oder dem endoplasmatischen Retikulum (Kermode, Crit. Rev. Plant Sci. 4 (15), 285 (1996)). Das Signalpeptid wird 5' im Leserahmen in die cDNA kloniert, um eine subzelluläre Lokalisierung des Fusionsproteins zu erreichen. Dem Fachmann wird bewusst sein, dass der verwendete Promotor operativ an die Nukleinsäure gebunden sein sollte, so dass der Promotor die Transkription der Nukleinsäure bewirkt, was die Synthese einer mRNA zur Folge hat, die für ein Polypeptid kodiert.
  • Alternative Methoden zur Transfektion schließen den direkten Transfer von DNA in sich entwickelnde Blumen mittels Elektroporation oder durch Agrobacterium vermittelten Gentransfer ein. Die durch Agrobacterium vermittelte Pflanzentransformation kann zum Beispiel unter Verwendung des GV3101(pMP90)-(Koncz und Schell, Mol. Gen. Genet. 204, 383 (1986)) oder LBA4404-(Ooms et al., Plasmid, 7, 15 (1982); Hoekema et al., Nature, 303, 179 (1983))Stamms von Agrobacterium tumefaciens durchgeführt werden. Die Transformation kann gemäß Standardtransformations- und -regenerationstechniken erfolgen (Deblaere et al., Nucl. Acids. Res. 13, 4777 (1994); Gelvin und Schilperoort, Plant Molecular Biology Manual, 2. Aufl. – Dordrecht: Kluwer Academic Publ., 1995. – in Sect., Ringbuc Zentrale Signatur: BT11-P ISBN 0-7923-2731-4; Glick B. R. und Thompson J. E., Methods in Plant Molecular Biology and Biotechnology, Boca Raton: CRC Press, 1993. – 360 S., ISBN 0-8493-5164-2). Raps zum Beispiel kann durch Kotyledon- oder Hypokotyltransformation (Moloney et al., Plant Cell Reports 8, 238 (1989); De Block et al., Plant Physiol. 91, 694 (1989)) transformiert werden. Die Verwendung von Antibiotika für Agrobacterium und Pflanzenselektion hängt von dem für die Transformation verwendeten binären Vektor und dem Agrobacterium-Stamm ab. Die Rapsselektion erfolgt normalerweise unter Einsatz von Kanamycin als selektierbarem Pflanzenmarker. Ein durch Agrobacterium vermittelter Gentransfer auf Flachs kann zum Beispiel unter Anwendung einer von Mlynarova et al., Plant Cell Report 13, 282 (1994)) beschriebenen Technik durchgeführt werden. Darüber hinaus kann die Transformation von Sojabohne zum Beispiel unter Anwendung einer in der europäischen Patentschrift Nr. 424 047 , US-Patentschrift Nr. 5,322,783 , europäischen Patentschrift Nr. 397 687 , US-Patentschrift Nr. 5,376,543 oder US-Patentschrift Nr. 5,169,770 beschriebenen Technik durchgeführt werden. Die Transformation von Mais lässt sich durch Partikelbombardierung, polyethylenglykolvermittelte DNA-Aufnahme oder durch die Siliciumcarbidfasertechnik (siehe zum Beispiel Freeling und Walbot "The maize handbook" Springer Verlag: New York (1993) ISBN 3-540-97826-7) erreichen. Ein spezielles Beispiel einer Mais-Transformation findet sich in der US-Patentschrift Nr. 5,990,387 , und ein spezielles Beispiel einer Weizen-Transformation findet sich in der PCT-Anmeldung Nr. WO 93/07256 .
  • Durch Heranziehen der modifizierten Pflanzen unter Bedingungen mit definierter Stickstoffversorgung, bei einer besonderen Ausführungsform unter Bedingungen von abiotischem Umweltstress, und anschließendes Screening und Analysieren der Wachstumscharakteristika und/oder metabolischen Aktivität kann man die Wirkung der genetischen Modifikation in Pflanzen auf eine Erhöhung des Ertrags, z. B. eine Erhöhung eines Ertragsmerkmals, zum Beispiel eine Steigerung der Toleranz gegenüber abiotischem Umweltstress, zum Beispiel eine Erhöhung der Toleranz gegenüber Dürre und/oder Toleranz gegenüber niedrigen Temperaturen und/oder eine Erhöhung der Effizienz der Nährstoffausnutzung, eine Erhöhung des intrinsischen Ertrags und/oder eine Erhöhung eines anderen erwähnten Ertragsmerkmals untersuchen. Solche Analysetechniken sind dem Fachmann gut bekannt. Sie schließen neben Screening (Römpp Lexikon Biotechnologie, Stuttgart/New York: Georg Thieme Verlag 1992, "screening" S. 701) Trockengewicht, Frischgewicht, Proteinsynthese, Kohlenhydratsynthese, Lipidsynthese, Evapotranspirationsraten, allgemeine Erträge an Pflanze und/oder Erntegut, Blühleistung, Reproduktion, Samenansatz, Wurzelwachstum, Respirationsraten, Photosyntheseraten usw. ein (Applications of HPLC in Biochemistry in: Laboratory Techniques in Biochemistry and Molecular Biology, Band 17; Rehm et al., 1993 Biotechnology, Band 3, Kapitel III: Product recovery and purification, Seite 469–714, VCH: Weinheim; Belter, P. A. et al., 1988 Bioseparations: downstream processing for biotechnology, John Wiley and Sons; Kennedy J. F. und Cabral J. M. S., 1992 Recovery processes for biological materials, John Wiley and Sons; Shaeiwitz J. A. und Henry J. D., 1988 Biochemical separations, in: Ullmann's Encyclopedia of Industrial Chemistry, Band B3, Kapitel 11, Seite 1–27, VCH: Weinheim; und Dechow F. J. (1989) Separation and purification techniques in biotechnology, Noyes Publications).
  • Gemäß einer Ausführungsform betrifft die vorliegende Erfindung eine Methode zur Identifizierung eines Genprodukts, welches, verglichen mit einer entsprechenden, z. B. nicht transformierten, Zelle vom Wildtyp in einer Zelle eines Organismus, zum Beispiel einer Pflanze, einen erhöhten Ertrag, z. B. ein erhöhtes Ertragsmerkmal, zum Beispiel eine gesteigerte Toleranz gegenüber abiotischem Umweltstress, zum Beispiel eine erhöhte Toleranz gegenüber Dürre und/oder Toleranz gegenüber niedrigen Temperaturen und/oder eine erhöhte Effizienz der Nährstoffausnutzung, einen erhöhten intrinsischen Ertrag und/oder ein anderes erhöhtes Ertragsmerkmal verleiht, welches die folgenden Schritte umfasst:
    • (a) In-Kontakt-Bringen, z. B. Hybridisieren, einiger oder aller Nukleinsäuremoleküle einer Probe, z. B. Zellen, Gewebe, Pflanzen oder Mikroorganismen oder einer Nukleinsäurebibliothek, welche ein Kandidatengen enthalten kann, das für ein Genprodukt kodiert, das einen erhöhten Ertrag, z. B. ein erhöhtes Ertragsmerkmal, zum Beispiel eine gesteigerte Toleranz gegenüber abiotischem Umweltstress, zum Beispiel eine erhöhte Toleranz gegenüber Dürre und/oder Toleranz gegenüber niedrigen Temperaturen und/oder eine erhöhte Effizienz der Nährstoffausnutzung, einen erhöhten i verleiht, mit einem wie in Spalte 5 oder 7 von Tabelle I A oder B gezeigten Nukleinsäuremolekül oder einem funktionellen Homolog davon;
    • (b) Identifizieren der Nukleinsäuremoleküle, welche unter gelockerten stringenten Bedingungen mit dem Nukleinsäuremolekül hybridisieren, insbesondere an die Nukleinsäuremolekülsequenz, wie aufgeführt in Spalte 5 oder 7 von Tabelle I, und gegebenenfalls isolieren des Volllängen-cDNA-Klons oder vollständigen genomischen Klons;
    • (c) Identifizieren der Kandidaten-Nukleinsäuremoleküle oder eines Fragments davon in Wirtszellen, vorzugsweise in einer Pflanzenzelle;
    • (d) Erhöhen der Expression der identifizierten Nukleinsäuremoleküle in den Wirtszellen, für die gesteigerte Toleranz gegenüber abiotischem Umweltstress und/oder ein erhöhter Ertrag gewünscht werden;
    • (e) Untersuchung des Ausmaßes an gesteigerter Toleranz gegenüber abiotischem Umweltstress und/oder erhöhtem Ertrag bei den Wirtszellen; und
    • (f) Identifizieren des Nukleinsäuremoleküls und seines Genprodukts, welches der Wirtszelle verglichen mit dem Wildtyp einen erhöhten Ertrag, z. B. ein erhöhtes Ertragsmerkmal, zum Beispiel eine gesteigerte Toleranz gegenüber abiotischem Umweltstress, zum Beispiel eine erhöhte Toleranz gegenüber Dürre und/oder Toleranz gegenüber niedrigen Temperaturen und/oder eine erhöhte Effizienz der Nährstoffausnutzung, einen erhöhten intrinsischen Ertrag und/oder ein erhöhtes anderes erwähntes Ertragsmerkmal verleiht.
  • Entspannte Hybridisierungsbedingungen sind wie folgt: nach den Standard-Hybridisierungsvorschriften können Waschschritte bei nieder- bis mittelstringenten Bedingungen gewöhnlich mit Waschbedingungen von 40°–55°C und Salzbedingungen zwischen 2 × SSC und 0,2 × SSC mit 0,1% SDS im Vergleich zu stringenten Waschbedingungen wie z. B. 60° bis 68°C mit 0,1% SDS durchgeführt werden. Weitere Beispiele können in den oben aufgeführten Bezugsstellen für die stringenten Hybridisierungsbedingungen gefunden werden. Gewöhnlich werden Waschschritte mit zunehmender Stringenz und Dauer wiederholt, bis man ein brauchbares Signal:Rausch-Verhältnis feststellt und hängen von vielen Faktoren wie dem Target, z. B. dessen Reinheit, GC-Gehalt, Größe usw., der Sonde, z. B. deren Länge, ob es eine RNA- oder eine DNA-Sonde ist, den Salzbedingungen, der Wasch- oder Hybridisierungstemperatur, der Wasch- oder Hybridisierungsdauer usw. ab.
  • Gemäß einer anderen Ausführungsform betrifft die vorliegende Erfindung eine Methode zur Identifizierung eines Genprodukts, dessen Expression einer Zelle einen erhöhten Ertrag, z. B. ein erhöhtes Ertragsmerkmal, zum Beispiel eine gesteigerte Toleranz gegenüber abiotischem Umweltstress, zum Beispiel eine erhöhte Toleranz gegenüber Dürre und/oder Toleranz gegenüber niedrigen Temperaturen und/oder eine erhöhte Effizienz der Nährstoffausnutzung, einen erhöhten intrinsischen Ertrag und/oder ein erhöhtes anderes erwähntes Ertragsmerkmal verleiht, welches die folgenden Schritte umfasst:
    • (a) Identifizieren eines Nukleinsäuremoleküls in einem Organismus, welches wenigstens 20%, vorzugsweise 25%, besonders bevorzugt 30%, noch mehr bevorzugt sind 35%, 40% oder 50%, noch mehr bevorzugt sind 60%, 70% oder 80%, am meisten bevorzugt sind 90% oder 95% oder mehr homolog zu dem Nukleinsäuremolekül ist, das für ein Protein kodiert, welches das wie in Spalte 5 oder 7 von Tabelle II gezeigte Polypeptidmolekül umfasst oder eine Konsensussequenz oder ein Polypeptidmotiv wie in Spalte 7 von Tabelle IV gezeigt umfasst oder durch ein Nukleinsäuremolekül, welches ein wie in Spalte 5 oder 7 von Tabelle I, Anwendung Nr. 1, gezeigtes Polynukleotid oder ein Homolog davon wie hier beschrieben umfasst, kodiert wird, zum Beispiel mittels Homologiesuche in einer Datenbank;
    • (b) Steigerung der Expression der identifizierten Nukleinsäuremoleküle in den Wirtszellen;
    • (c) Untersuchung des Ausmaßes der Steigerung des erhöhten Ertrags, z. B. eines erhöhten Ertragsmerkmals, zum Beispiel einer gesteigerten Toleranz gegenüber abiotischem Umweltstress, zum Beispiel eine erhöhte Toleranz gegenüber Dürre und/oder Toleranz gegenüber niedrigen Temperaturen und/oder eine erhöhte Effizienz der Nährstoffausnutzung, einen erhöhten intrinsischen Ertrag und/oder ein erhöhtes anderes erwähntes Ertragsmerkmal in den Wirtszellen; und
    • (d) Identifizieren der Wirtszelle, in welcher die gesteigerte Expression zu einem erhöhten Ertrag, z. B. einem erhöhten Ertragsmerkmal, zum Beispiel einer gesteigerten Toleranz gegenüber abiotischem Umweltstress, zum Beispiel einer erhöhten Toleranz gegenüber Dürre und/oder Toleranz gegenüber niedrigen Temperaturen und/oder einer erhöhten Effizienz der Nährstoffausnutzung, einem erhöhten intrinsischen Ertrag und/oder einem erhöhten anderen erwähnten Ertragsmerkmal in der Wirtszelle im Vergleich zu einem Wildtyp führt.
  • Ferner kann das hierin offenbarte Nukleinsäuremolekül, insbesondere das Nukleinsäuremolekül, wie aufgeführt in Spalte 5 oder 7 von Tabelle I A oder B, ausreichend homolog zu den Sequenzen aus verwandten Arten sein, sodass diese Nukleinsäuremoleküle als Marker für die Konstruktion einer genomischen Karte in verwandten Organismen oder für Assoziationskartierung dienen können. Weiterhin können natürliche Variationen in den genomischen Regionen, die den hier offenbarten Nukleinsäuren, insbesondere dem in Spalte 5 oder 7 von Tabelle I A oder B, gezeigten Nukleinsäuremolekül, oder Homologen davon entsprechen, zu Variationen bei der Aktivität der hier offenbarten Proteine führen, insbesondere den Proteinen, die wie in Spalte 5 oder 7 von Tabelle II A oder B gezeigte Polypeptide umfassen oder die Konsensussequenz oder das Polypeptidmotiv wie in Spalte 7 von Tabelle IV gezeigt umfassen, und ihren Homologen, und in Folge zu natürlichen Variationen bei einem erhöhten Ertrag, z. B. einem erhöhten Ertragsmerkmal, zum Beispiel einer gesteigerten Toleranz gegenüber abiotischem Umweltstress, zum Beispiel einer erhöhten Toleranz gegenüber Dürre und/oder Toleranz gegenüber niedrigen Temperaturen und/oder einer erhöhten Effizienz der Nährstoffausnutzung und/oder einem erhöhten anderen erwähnten Ertragsmerkmal.
  • Als Folge kommt es gegebenenfalls auch zu natürlichen Variationen in Form aktiverer allelischer Varianten, die bereits zu einer relativen Erhöhung beim Ertrag, z. B. einem erhöhten Ertragsmerkmal, zum Beispiel einer gesteigerten Toleranz gegenüber abiotischem Umweltstress, zum Beispiel einer erhöhten Toleranz gegenüber Dürre und/oder Toleranz gegenüber niedrigen Temperaturen und/oder einer erhöhten Effizienz der Nährstoffausnutzung und/oder einem erhöhten anderen erwähnten Ertragsmerkmal, führen. Verschiedene Varianten des hier offenbarten Nukleinsäuremoleküls, insbesondere der Nukleinsäure, die das wie in Spalte 5 oder 7 von Tabelle I A oder B gezeigte Nukleinsäuremolekül umfasst, die verschiedenen Niveaus an Ertragserhöhung, z. B. verschiedenen Niveaus an einem erhöhten Ertragsmerkmal, zum Beispiel einer unterschiedlichen gesteigerten Toleranz gegenüber abiotischem Umweltstress, zum Beispiel einer erhöhten Toleranz gegenüber Dürre und/oder Toleranz gegenüber niedrigen Temperaturen und/oder einer erhöhten Effizienz der Nährstoffausnutzung, einem erhöhten intrinsischen Ertrag und/oder einem erhöhten anderen erwähnten Ertragsmerkmal, entsprechen, lassen sich identifizieren und für die markerunterstützte Züchtung auf einen erhöhten Ertrag, z. B. ein erhöhtes Ertragsmerkmal, zum Beispiel eine gesteigerte Toleranz gegenüber abiotischem Umweltstress, zum Beispiel eine erhöhte Toleranz gegenüber Dürre und/oder Toleranz gegenüber niedrigen Temperaturen und/oder eine erhöhte Effizienz der Nährstoffausnutzung und/oder ein erhöhtes anderes erwähntes Ertragsmerkmal, anwenden.
  • Dementsprechend betrifft die vorliegende Erfindung eine Methode zur Züchtung von Pflanzen mit erhöhtem Ertrag, z. B. einem erhöhten Ertragsmerkmal, zum Beispiel einer gesteigerten Toleranz gegenüber abiotischem Umweltstress, zum Beispiel einer erhöhten Toleranz gegenüber Dürre und/oder Toleranz gegenüber niedrigen Temperaturen und/oder einer erhöhten Effizienz der Nährstoffausnutzung, einem erhöhten intrinsischen Ertrag und/oder einem erhöhten anderen Ertragsmerkmal, bei der man
    • (a) eine erste Pflanzensorte mit erhöhtem Ertrag, z. B. einem erhöhten Ertragsmerkmal, zum Beispiel einer gesteigerten Toleranz gegenüber abiotischem Umweltstress, zum Beispiel einer erhöhten Toleranz gegenüber Dürre und/oder Toleranz gegenüber niedrigen Temperaturen und/oder einer erhöhten Effizienz der Nährstoffausnutzung, einem erhöhten intrinsischen Ertrag und/oder einem erhöhten anderen Ertragsmerkmal, basierend auf einer erhöhten Expression einer wie hier offenbarten Nukleinsäure der Erfindung, insbesondere einem Nukleinsäuremolekül, welches ein wie in Spalte 5 oder 7 von Tabelle I A oder B gezeigtes Nukleinsäuremolekül umfasst, oder einem Polypeptid, welches ein wie in Spalte 5 oder 7 von Tabelle II A oder B gezeigtes Polypeptid umfasst oder eine Konsensussequenz oder ein Polypeptidmotiv wie in Spalte 7 von Tabelle IV gezeigt umfasst, oder einem Homolog davon wie hier beschrieben, auswählt;
    • (b) das Ausmaß der Erhöhung des Ertrags, z. B. eines erhöhten Ertragsmerkmals, zum Beispiel einer gesteigerten Toleranz gegenüber abiotischem Umweltstress, zum Beispiel einer erhöhten Toleranz gegenüber Dürre und/oder Toleranz gegenüber niedrigen Temperaturen und/oder einer erhöhten Effizienz der Nährstoffausnutzung, einem erhöhten intrinsischen Ertrag und/oder einem erhöhten anderen Ertragsmerkmal, mit dem Expressionsniveau oder der genomischen Struktur eines für dieses Polypeptid oder dieses Nukleinsäuremolekül kodierenden Gens assoziiert;
    • (c) die erste Pflanzensorte mit einer zweiten Pflanzesorte kreuzt, die in dem Ausmaß ihrer Erhöhung des Ertrags, z. B. einem erhöhten Ertragsmerkmal, zum Beispiel einer gesteigerten Toleranz gegenüber abiotischem Umweltstress, zum Beispiel einer erhöhten Toleranz gegenüber Dürre und/oder Toleranz gegenüber niedrigen Temperaturen und/oder einer erhöhten Effizienz der Nährstoffausnutzung und/oder einem erhöhten anderen erwähnten Ertragsmerkmal, signifikant verschieden ist; und
    • (d) anhand des Expressionsniveaus des Polypeptids oder Nukleinsäuremoleküls oder der genomischen Struktur der Gene, die für dieses Polypeptid oder Nukleinsäuremolekül der Erfindung kodieren, feststellt, welche der Nachkommenschaftssorten ein erhöhtes Ausmaß an erhöhtem Ertrag, z. B. ein erhöhtes Ertragsmerkmal, zum Beispiel eine gesteigerte Toleranz gegenüber abiotischem Umweltstress, zum Beispiel eine erhöhte Toleranz gegenüber Dürre und/oder Toleranz gegenüber niedrigen Temperaturen und/oder eine erhöhte Effizienz der Nährstoffausnutzung und/oder ein erhöhtes anderes erwähntes Ertragsmerkmal, hat.
  • Gemäß einer Ausführungsform ist das Expressionsniveau des Gens gemäß Schritt (b) erhöht.
  • Noch eine andere Ausführungsform der Erfindung betrifft ein Verfahren zur Identifizierung einer Verbindung, die einen erhöhten Ertrag, z. B. ein erhöhtes Ertragsmerkmal, zum Beispiel eine gesteigerte Toleranz gegenüber abiotischem Umweltstress, zum Beispiel eine erhöhte Toleranz gegenüber Dürre und/oder Toleranz gegenüber niedrigen Temperaturen und/oder eine erhöhte Effizienz der Nährstoffausnutzung und/oder ein erhöhtes anderes erwähntes Ertragsmerkmal, verglichen mit einem entsprechenden, z. B. nicht transformierten, Pflanzenzelle oder einer Pflanze vom Wildtyp oder einem Teil davon in einer Pflanzenzelle, einer Pflanze oder einem Teil davon, einer Pflanze oder einem Teil davon verleiht, welches die folgenden Schritte umfasst:
    • (a) Kultivieren einer Pflanzenzelle, einer Pflanze oder eines Teils davon, wodurch man eine Pflanze erhält, die das wie in Spalte 5 oder 7 von Tabelle II gezeigte oder durch ein das wie in Spalte 5 oder 7 von Tabelle I gezeigte Polynukleotid umfassendes Nukleinsäuremolekül oder ein Homolog davon wie hier beschrieben kodierte Polypeptid oder ein für dieses Polypeptid kodierendes Polynukleotid exprimiert und einen erhöhten Ertrag, z. B. ein erhöhtes Ertragsmerkmal, zum Beispiel eine gesteigerte Toleranz gegenüber abiotischem Umweltstress, zum Beispiel eine erhöhte Toleranz gegenüber Dürre und/oder Toleranz gegenüber niedrigen Temperaturen und/oder eine erhöhte Effizienz der Nährstoffausnutzung, einen erhöhten intrinsischen Ertrag und/oder ein erhöhtes anderes erwähntes Ertragsmerkmal, verglichen mit einer entsprechenden, z. B. nicht transformierten, Pflanzenzelle oder Pflanze vom Wildtyp oder einem Teil davon einer nicht transformierten Pflanzenzelle vom Wildtyp oder einem Teil davon verleiht, und Bereitstellen eines Ablesesystems, das dazu in der Lage ist, unter geeigneten Bedingungen, die eine Wechselwirkung des Polypeptids mit diesem Ablesesystem in Gegenwart einer chemischen Verbindung oder einer Probe, die eine Mehrzahl an chemischen Verbindungen enthält, erlauben, mit dem Polypeptid in Wechselwirkung zu treten und dazu in der Lage ist, ein nachweisbares Signal als Reaktion auf die Bindung einer chemischen Verbindung an das Polypeptid bereitzustellen, unter Bedingungen, die die Expression dieses Ablesesystems und des wie in Spalte 5 oder 7 von Tabelle II gezeigten oder durch ein Nukleinsäuremolekül, welches ein wie in Spalte 5 oder 7 von Tabelle I, Anwendung Nr. 1, gezeigtes Polynukleotid umfasst, oder eines Homologs davon, wie hier beschrieben, kodierten Proteins ermöglichen; und
    • (b) Feststellen, ob es sich bei der chemischen Verbindung um einen wirksamen Agonisten handelt, indem man das Vorhandensein oder das Fehlen oder die Verminderung oder Zunahme eines durch dieses Ablesesystem produzierten Signals detektiert.
  • Die Verbindung kann chemisch synthetisiert oder mikrobiologisch hergestellt und/oder beispielsweise in Proben enthalten sein, z. B. Zellextrakten aus z. B. Pflanzen, Tieren oder Mikroorganismen, z. B. Pathogenen. Ferner kann/können die Verbindung(en) im Fachgebiet bekannt sein, wobei von ihr/ihnen jedoch bislang nicht bekannt war, dass sie fähig zum Unterdrücken des Polypeptids der vorliegenden Erfindung ist/sind. Die Reaktionsmischung kann ein zellfreier Extrakt sein oder kann eine Zell- oder Gewebekultur umfassen. Geeignete Ansätze bzw. Einrichtungen für das Verfahren zur Identifizierung einer Verbindung der Erfindung sind dem Fachmann auf dem Gebiet bekannt und sind zum Beispiel allgemein in Alberts et al., Molecular Biology of the Cell, dritte Auflage (1994), insbesondere Kapitel 17, beschrieben. Die Verbindungen können z. B. der Reaktionsmischung, dem Kulturmedium, zugesetzt werden, in die Zelle injiziert werden oder auf die Pflanze aufgesprüht werden.
  • Wird in dem Verfahren eine Probe identifiziert, die eine Verbindung enthält, so ist es entweder möglich, die Verbindung aus der Originalprobe, von der festgestellt wurde, dass sie die Verbindung enthält, die dazu in der Lage ist, den Ertrag, z. B. ein Ertragsmerkmal, zum Beispiel Toleranz gegenüber abiotischem Umweltstress, zum Beispiel Toleranz gegenüber Dürre und/oder Toleranz gegenüber niedrigen Temperaturen und/oder eine erhöhte Effizienz der Nährstoffausnutzung und/oder ein erhöhtes anderes erwähntes Ertragsmerkmal, verglichen mit einem entsprechenden, z. B. nicht transformierten, Wildtyp zu aktivieren, zu steigern oder zu erhöhen, zu isolieren, oder man kann die Originalprobe weiter unterteilen, zum Beispiel, wenn sie aus mehreren verschiedenen Verbindungen besteht, um die Anzahl verschiedener Substanzen pro Probe zu verringern, und die Methode mit den Unterteilungen der Originalprobe wiederholen. Abhängig von der Komplexität der Proben können die oben beschriebenen Schritte mehrmals durchgeführt werden, vorzugsweise bis die gemäß dem Verfahren identifizierte Probe nur eine beschränkte Anzahl an Substanzen oder nur noch eine Substanz enthält. Vorzugsweise enthält die Probe Substanzen mit ähnlichen chemischen und/oder physikalischen Eigenschaften, und am stärksten bevorzugt sind die Substanzen identisch. Vorzugsweise wird die gemäß dem oben beschriebenen Verfahren identifizierte Verbindung, oder ihr Derivat, ferner in einer Form aufbereitet, die für die Anwendung in der Pflanzenzucht oder der Zell- und Gewebekultur von Pflanzen geeignet ist.
  • Bei den Verbindungen, die gemäß diesem Verfahren getestet und identifiziert werden können, kann es sich um Expressionsbibliotheken, z. B. cDNA-Expressionsbibliotheken, Peptide, Proteine, Nukleinsäuren, Antikörper, kleine organische Verbindungen, Hormone, Peptidomimetika, PNAs oder dergleichen handeln (Milner, Nature Medicine 1, 879 (1995); Hupp, Cell 83, 237 (1995); Gibbs, Cell 79, 193 (1994), und oben angeführte Literaturstellen). Die Verbindungen können außerdem funktionale Derivate oder Analoga von bekannten Inhibitoren oder Aktivatoren sein. Methoden zur Herstellung chemischer Derivate und Analoga sind dem Fachmann gut bekannt und zum Beispiel in Beilstein, Handbook of Organic Chemistry, Springer, New York Inc., 175 Fifth Avenue, New York, N.Y. 10010 U.S.A. und Organic Synthesis, Wiley, New York, USA, beschrieben. Ferner können die Derivate und Analoge hinsichtlich ihrer Effekte gemäß im Fachgebiet bekannter Methoden getestet werden. Darüber hinaus können Peptidomimetika und/oder computerunterstütztes Design von passenden Derivaten und Analogen, zum Beispiel gemäß der oben beschriebenen Methoden, eingesetzt werden. Die Zelle oder das Gewebe, welches im Verfahren verwendet werden kann, ist vorzugsweise eine Wirtszelle, Pflanzenzelle oder ein Pflanzengewebe der Erfindung, welche(s) in den Ausführungsformen hierin oben beschrieben ist. Somit betrifft die Erfindung gemäß einer weiteren Ausführungsform eine gemäß der Methode zur Identifizierung eines Agonisten der Erfindung erhaltene oder identifizierte Verbindung, wobei es sich bei dieser Verbindung um einen Antagonisten des Polypeptids der vorliegenden Erfindung handelt. Folglich betrifft die vorliegende Erfindung, in einer Ausführungsform, ferner eine Verbindung, identifiziert durch die Methode zum Identifizieren einer Verbindung der vorliegenden Erfindung.
  • Gemäß einer Ausführungsform betrifft die Erfindung einen Antikörper, der spezifisch die Verbindung oder den Agonisten der vorliegenden Erfindung erkennt.
  • Die Erfindung betrifft außerdem eine diagnostische Zusammensetzung, die mindestens eines aus den/dem/der zuvor erwähnten Nukleinsäuremolekülen, Antisense-Nukleinsäuremolekül, RNAi, snRNA, dsRNA, siRNA, miRNA, ta-siRNA, Cosuppressionsmolekül, Ribozym, Vektoren, Proteine, Antikörpern oder Verbindungen der Erfindung, und gegebenenfalls geeignete Nachweismittel umfasst.
  • Die diagnostische Zusammensetzung der vorliegenden Erfindung ist für die Isolierung von mRNA aus einer Zelle und das Inkontaktbringen der so erhaltenen mRNA mit einer Sonde, einschließlich einer Nukleinsäuresonde, wie oben beschrieben, unter Hybridisierungsbedingungen, das Nachweisen der Gegenwart von an die Sonde hybridisierter mRNA, und dadurch das Nachweisen der Expression des Proteins in der Zelle geeignet. Weitere Methoden zum Nachweis der Gegenwart eines Proteins gemäß der vorliegenden Erfindung umfassen im Fachgebiet allgemein bekannte Immuntechniken, zum Beispiel den Enzyme-Linked-Immunoadsorbent-Assay. Ferner ist es möglich, die Nukleinsäuremoleküle gemäß der Erfindung als molekulare Marker oder Primer in der Pflanzenzucht zu verwenden. Geeignete Mittel bzw. Methoden zum Nachweis sind einem Fachmann auf dem Gebiet gut bekannt, z. B. Puffer und Lösungen für Hybridisierungs-Assays, z. B. die obenerwähnten Lösungen und Puffer, und ferner sind Mittel für Southern-, Western-, Northern- etc. -Blots, wie z. B. beschrieben in Sambrook et al., bekannt. In einer Ausführungsform enthält die diagnostische Zusammensetzung PCR-Primer, entworfen zum spezifischen Nachweisen der Gegenwart oder der Expressionshöhe des Nukleinsäuremoleküls, das im Verfahren der Erfindung reduziert werden soll, z. B. des Nukleinsäuremoleküls der Erfindung, oder zum Unterscheiden zwischen verschiedenen Varianten oder Allelen des Nukleinsäuremoleküls der Erfindung, oder desjenigen, dessen Aktivität im Verfahren der Erfindung reduziert werden soll.
  • Gemäß einer anderen Ausführungsform betrifft die vorliegende Erfindung ein Kit, welches das Nukleinsäuremolekül, den Vektor, die Wirtszelle, das Polypeptid, oder das Antisense, die RNAi, die snRNA, die dsRNA, die siRNA, die miRNA, die ta-siRNA, das Kosuppressionsmolekül oder das Ribozymmolekül, oder das virale Nukleinsäuremolekül, den Antikörper, die Pflanzenzelle, die Pflanze oder das Pflanzengewebe, den erntbaren Teil, das Fortpflanzungsmaterial und/oder die Verbindung und/oder den Agonisten, identifiziert gemäß der Methode der Erfindung, umfasst.
  • Die Verbindungen des Kits der vorliegenden Erfindung können in Behältern, wie Gefäßen, gegebenenfalls mit/in Puffern und/oder Lösung, verpackt sein. Geeignetenfalls könnten eine oder mehrere der Komponenten in ein und demselben Behälter verpackt sein. Zusätzlich dazu oder alternativ dazu könnten eine oder mehrere der Komponenten an einem festen Träger, wie z. B. einem Nitrozellulosefilter, einer Glasplatte, einem Chip oder einer Nylonmembran oder an die Vertiefung einer Mikrotiterplatte, absorbiert sein. Das Kit kann für ein beliebiges aus den hierin beschriebenen Verfahren und Ausführungsformen, z. B. für die Herstellung der Wirtszellen, transgenen Pflanzen, pharmazeutischen Zusammensetzungen, den Nachweis von homologen Sequenzen, die Identifizierung von Antagonisten oder Agonisten, als Nahrungsmittel oder Futtermittel oder als Ergänzung davon, oder als Zusatz zum Behandeln von Pflanzen etc., zur Anwendung kommen. Weiterhin kann das Kit Anweisungen zur Anwendung des Kits bei einer dieser Ausführungsformen enthalten. In einer Ausführungsform umfasst das Kit ferner ein Nukleinsäuremolekül, kodierend ein oder mehrere von dem zuvor erwähnten Protein und/oder einen Antikörper, einen Vektor, eine Wirtszelle, eine Antisense-Nukleinsäure, eine Pflanzenzelle oder Pflanzengewebe oder eine Pflanze. Gemäß einer anderen Ausführungsform umfasst das Kit PCR-Primer zum Nachweis und zur Unterscheidung des im Verfahren der Erfindung zu vermindernden Nukleinsäuremoleküls, z. B. des Nukleinsäuremoleküls der Erfindung.
  • Gemäß einer weiteren Ausführungsform betrifft die vorliegende Erfindung eine Methode zur Herstellung einer agrikulturellen Zusammensetzung, die das Nukleinsäuremolekül zur Verwendung gemäß dem Verfahren der Erfindung, das Nukleinsäuremolekül der Erfindung, den Vektor der Erfindung, das Antisense, die RNAi, die snRNA, die dsRNA, die siRNA, die miRNA, die ta-siRNA, das Kosuppressionsmolekül, das Ribozym oder den Antikörper der Erfindung, das virale Nukleinsäuremolekül der Erfindung oder das Polypeptid der Erfindung bereitstellt oder die die Schritte der erfindungsgemäßen Methode zur Identifizierung dieser Verbindung oder dieses Agonisten umfasst; und die Formulierung des Nukleinsäuremoleküls, des Vektors oder des Polypeptids der Erfindung oder des Agonisten, oder der gemäß den Methoden bzw. Verfahren der vorliegenden Erfindung oder unter Verwendung des Gegenstands der vorliegenden Erfindung identifizierten Verbindung in einer als Agrikulturzusammensetzung für Pflanzen anwendbaren Form bereitstellt.
  • Gemäß einer anderen Ausführungsform betrifft die vorliegende Erfindung eine Methode zur Herstellung der Kulturzusammensetzung für Pflanzen, welche die Schritte der Methode der vorliegenden Erfindung umfasst; und die Formulierung der identifizierten Verbindung in einer als Agrikulturzusammensetzung annehmbaren Form. Unter ”annehmbar als landwirtschaftliche Zusammensetzung” versteht man, dass eine derartige Zusammensetzung in Übereinstimmung mit den Gesetzen steht, welche den Gehalt an Fungiziden, Pflanzennährstoffen, Herbiziden etc., regulieren. Vorzugsweise ist eine derartige Zusammensetzung für geschützte Pflanzen sowie Tiere (einschließlich Menschen), welche diese aufnehmen, gefahrlos.
  • In dieser Anmeldung wird auf verschiedene Veröffentlichungen verwiesen. Die Offenbarungen aller dieser Veröffentlichungen und der in diesen Veröffentlichungen angeführten Literaturstellen werden hiermit in ihrer Gesamtheit durch Verweis zur eingehenderen Beschreibung des Stands der Technik, auf den sich diese Erfindung bezieht, Bestandteil der vorliegenden Anmeldung. Es versteht sich auch, dass das Obengesagte bevorzugte Ausführungsformen der vorliegenden Erfindung betrifft und dass zahlreiche Änderungen und Variationen daran vorgenommen werden können, ohne den Schutzbereich der Erfindung zu verlassen. Die Erfindung wird durch die folgenden Beispiele näher erläutert, wobei diese in keiner Weise als einschränkend ausgelegt werden sollen. Es versteht sich vielmehr im Gegenteil, dass verschiedene andere Ausführungsformen, Modifikationen und Äquivalente davon, die für den Fachmann nach dem Lesen der vorliegenden Beschreibung naheliegend sind, nicht vom Gedanken der vorliegenden Erfindung und/oder dem Umfang der Ansprüche abweichen. Gemäß einer Ausführungsform führt der erhöhte Ertrag zur Erhöhung der Produktion eines spezifischen Inhaltsstoffes einschließlich, ohne Einschränkung, eines gesteigerten und/oder verbesserten Zuckergehalts oder einer gesteigerten und/oder verbesserten Zuckerzusammensetzung, eines gesteigerten und/oder verbesserten Stärkegehalts oder einer gesteigerten und/oder verbesserten Stärkezusammensetzung, eines gesteigerten und/oder verbesserten Ölgehalts oder einer gesteigerten und/oder verbesserten Ölzusammensetzung (wie eines gesteigerten Samenölgehalts), eines gesteigerten und/oder verbesserten Proteingehalts oder einer gesteigerten und/oder verbesserten Proteinzusammensetzung (wie eines gesteigerten Samenproteingehalts), eines gesteigerten und/oder verbesserten Vitamingehalts und/oder einer gesteigerten und/oder verbesserten Vitaminzusammensetzung, oder dergleichen.
  • Durch Verweis Bestandteil der vorliegenden Erfindung sind weiterhin die folgenden Anmeldungen, von denen die vorliegenden Anmeldung die Priorität beansprucht: EP 07116983.3 , EP 07119635.6 , 08153046.1 , EP 08157331.3 und EP 08162290.4 .
  • Dementsprechend betrifft die vorliegende Erfindung auch eine Methode zur Herstellung einer transgenen Pflanzenzelle oder Pflanze oder einem Teil davon, mit gesteigerter Toleranz und/oder Resistenz gegenüber abiotischem Umweltstress und/oder einem erhöhten Ertrag, verglichen mit einer entsprechenden, z. B. nicht transformierten, Pflanzenzelle oder Pflanze vom Wildtyp oder einem Teil davon, bei der man in dieser Pflanzenzelle oder Pflanze oder einem Teil davon eine oder mehrere Aktivitäten, ausgewählt aus der Gruppe bestehend aus einer (DL)-Glycerin-3-phosphatase, einer 2-Desoxyglucose-6-phosphatphosphatase, einer 3-Methyl-2-oxobutanoat-Hydroxymethyltransferase, einer Alkoholacetyltransferase, einer Aminosäurepermease, einer Aminomethyltransferase, einem Ammoniumtransporter, einem Aquaporin, einem ATP-bindenden Protein eines Arabinosetransportsystems, einer Argininosuccinatsynthase, einer Aspartataminotransferase, einem B1906-Protein, einem B3410-Protein, einer Cardiolipinsynthetase, einem CoA-Transferase-ähnlichen Protein (NAD(P)-bindend), einem Cobalttransportprotein, einem DNA- und proteinbindenden Protein zur Steuerung des Proteoms auf der posttranskriptionellen Ebene, einer Enoyl-CoA-Hydratase, einer Enoyl-CoA-Isomerase, einer Ethanolaminkinase, einer Formiatacetyltransferase 1, einem Protein einer Glucit/Sorbit-spezifischen Enzym-IIA-Komponente, einer Glutaminsynthetase, einer Glutathion-S-transferase, einer Glycerindehydrogenase, einem Glykogensyntheseinitiatorprotein, einem GTP-bindenden Protein, einem Hitzeschockprotein, einem Hexosetransporter, einer Holo-[Acylträgerprotein]-Synthase, einem anorganischen Phosphattransporter, einer Lanosterolsynthase, einer molybdänbindenden Untereinheit von Aldehydoxidasen und Xanthindehydrogenasen, einem Multidrug-Resistenzprotein, einem Multiple-Drug-Resistenzprotein, einer NADH-Dehydrogenase/NAD(P)H-Nitroreduktase, einer Oxidoreduktase, einer Peptidyl-Prolyl-cis/trans-Isomerase, einem Peroxisomal-Targeting-Signal-2-Rezeptor, einer Phosphoadenosinphosphosulfatreduktase, einem Phosphoträgerprotein, einem Pirin-ähnlichen Protein, einer Precorrin-6y-Methylase, einem für den Abbau von Glykoproteinen benötigten Protein, einer Pyrimidindeaminase/-reduktase, einem Regulator der Zellmorphogenese und der NO-Signalvermittlung, einer Serinacetyltransferase, einer Untereinheit des Signalosomkomplexes, einem SLR1094-Protein, einer Untereinheit von TORC1, einer thiolspezifischen Monooxygenase, einem die Transkription steuernden Protein, einer Transketolase, einem Zwei-Modul-Transportprotein, einem Uridindiphosphat-N-acetylglucosamintransporter, einem yer175w-a-Protein, einem yhr213w-a-Protein, einem YML079W-Protein, einem YMR157C-Protein, einem YNL024C-Protein und einem YNR040W-Protein, erhöht oder erzeugt.
  • Dementsprechend betrifft die vorliegende Erfindung auch eine Methode zur Herstellung einer trangenen Pflanzenzelle, einer Pflanze oder einem Teil davon mit gesteigerter Toleranz gegenüber und/oder Resistenz gegen abiotischen Umweltstress und/oder erhöhtem Ertrag, verglichen mit einer entsprechenden, z. B. nicht transformierten, Pflanzenzelle oder Pflanze vom Wildtyp oder einem Teil davon, bei der man in dieser Pflanzenzelle oder Pflanze oder einem Teil davon eine oder mehrere Aktivitäten wenigstens eines Polypeptids erhöht oder erzeugt, das ein Polypeptid, ausgewählt aus der folgenden Gruppe umfasst:
    • (i) ein Polypeptid, umfassend ein Polypeptid, eine Konsensussequenz oder wenigstens ein Polypeptidmotiv wie in Spalte 5 oder 7 von Tabelle II bzw. Tabelle IV gezeigt; oder
    • (ii) ein Expressionsprodukt eines Nukleinsäuremoleküls, welches ein wie in Spalte 5 oder 7 von Tabelle I gezeigtes Polynukleotid umfasst,
    • (iii) oder ein funktionelles Äquivalent von (i) oder (ii).
    Dementsprechend betrifft die vorliegende Erfindung weiterhin eine Methode zur Herstellung einer trangenen Pflanzenzelle oder Pflanze oder einem Teil davon mit gesteigerter Toleranz gegenüber und/oder Resistenz gegen abiotischen Umweltstress und/oder erhöhtem Ertrag, verglichen mit einer entsprechenden, z. B. nicht transformierten, Pflanzenzelle oder Pflanze vom Wildtyp oder einem Teil davon, bei der man in dieser Pflanzenzelle oder Pflanze oder einem Teil davon eine oder mehrere Aktivitäten erhöht oder erzeugt, indem man die Expression wenigstens eines Nukleinsäuremoleküls erhöht, das ein Nukleinsäuremolekül, ausgewählt aus der folgenden Gruppe umfasst:
    • (a) ein Nukleinsäuremolekül, das für das in Spalte 5 oder 7 von Tabelle II gezeigte Polypeptid kodiert;
    • (b) ein in Spalte 5 oder 7 von Tabelle I gezeigtes Nukleinsäuremolekül;
    • (c) ein Nukleinsäuremolekül, welches als Folge der Degeneration des genetischen Kodes von einer in Spalte 5 oder 7 von Tabelle II gezeigten Polypeptidsequenz abgeleitet sein kann und, verglichen mit einer entsprechenden, z. B. nicht transformierten, Pflanzenzelle oder Pflanze vom Wildtyp oder einem Teil davon, eine gesteigerte Toleranz gegenüber und/oder Resistenz gegen abiotischen Umweltstress und/oder einen erhöhten Ertrag verleiht;
    • (d) ein Nukleinsäuremolekül mit wenigstens 30% Identität mit der Nukleinsäuremolekülsequenz eines Polynukleotids, das das in Spalte 5 oder 7 von Tabelle I gezeigte Nukleinsäuremolekül umfasst und, verglichen mit einer entsprechenden, z. B. nicht transformierten, Pflanzenzelle oder Pflanze vom Wildtyp oder einem Teil davon, eine gesteigerte Toleranz gegenüber und/oder Resistenz gegen abiotischen Umweltstress und/oder einen erhöhten Ertrag verleiht;
    • (e) ein Nukleinsäuremolekül, das für ein Polypeptid mit wenigstens 30% Identität mit der Aminosäuresequenz des Polypeptids, das durch das Nukleinsäuremolekül von (a) bis (c) kodiert wird, kodiert und die Aktivität aufweist, die durch ein Nukleinsäuremolekül wiedergegeben wird, welches ein wie in Spalte 5 von Tabelle I gezeigtes Polynukleotid umfasst und, verglichen mit einer entsprechenden, z. B. nicht transformierten, Pflanzenzelle oder Pflanze vom Wildtyp oder einem Teil davon, eine gesteigerte Toleranz gegenüber und/oder Resistenz gegen abiotischen Umweltstress und/oder einen erhöhten Ertrag verleiht;
    • (f) ein Nukleinsäuremolekül, welches unter stringenten Hybridisierungsbedingungen mit einem Nukleinsäuremolekül von (a) bis (c) hybridisiert und, verglichen mit einer entsprechenden, z. B. nicht transformierten, Pflanzenzelle oder Pflanze vom Wildtyp oder einem Teil davon, eine gesteigerte Toleranz gegenüber und/oder Resistenz gegen abiotischen Umweltstress und/oder einen erhöhten Ertrag verleiht;
    • (g) ein Nukleinsäuremolekül, das für ein Polypeptid kodiert, das mit Hilfe von monoklonalen oder polyklonalen Antikörpern gegen ein Polypeptid, das durch eines der Nukleinsäuremoleküle von (a) bis (e) kodiert wird und die Aktivität aufweist, die durch ein Nukleinsäuremolekül wiedergegeben wird, welches ein wie in Spalte 5 von Tabelle I gezeigtes Polynukleotid umfasst, isoliert werden kann;
    • (h) ein Nukleinsäuremolekül, das für ein Polypeptid kodiert, das die Konsensussequenz oder ein oder mehrere Polypeptidmotive wie in Spalte 7 von Tabelle IV gezeigt umfasst und vorzugsweise die Aktivität aufweist, die durch ein Nukleinsäuremolekül wiedergegeben wird, welches ein wie in Spalte 5 von Tabelle II oder IV gezeigtes Polynukleotid umfasst;
    • (i) ein Nukleinsäuremolekül, das für ein Polypeptid kodiert, das die Aktivität aufweist, die durch ein wie in Spalte 5 von Tabelle II gezeigtes Protein wiedergegeben wird, und, verglichen mit einer entsprechenden, z. B. nicht transformierten, Pflanzenzelle oder Pflanze vom Wildtyp oder einem Teil davon, eine gesteigerte Toleranz gegenüber und/oder Resistenz gegen abiotischen Umweltstress und/oder einen erhöhten Ertrag verleiht;
    • (j) ein Nukleinsäuremolekül, das ein Polynukleotid umfasst, das durch Amplifizieren einer cDNA-Bibliothek oder einer genomischen Bibliothek unter Verwendung der Primer in Spalte 7 von Tabelle III, welche an ihrem 5'-Ende nicht mit den Nukleotiden ATA beginnen, erhalten wird, und das vorzugsweise die Aktivität aufweist, die durch ein Nukleinsäuremolekül repräsentiert wird, das ein wie in Spalte 5 von Tabelle II oder IV aufgeführtes Polynukleotid umfasst; und
    • (k) ein Nukleinsäuremolekül, das durch Screenen einer geeigneten Nukleinsäurebibliothek unter stringenten Hybridisierungsbedingungen mit einer Sonde, umfassend eine komplementäre Sequenz von einem Nukleinsäuremolekül von (a) oder (b), oder mit einem Fragment davon, enthaltend mindestens 15 nt, bevorzugt 20 nt, 30 nt, 50 nt, 100 nt, 200 nt oder 500 nt eines Nukleinsäuremoleküls, komplementär zu einer in (a) bis (d) charakterisierten Nukleinsäuremolekülsequenz, erhältlich ist und ein Polypeptid kodiert, das die Aktivität aufweist, repräsentiert durch ein Protein, umfassend ein Polypeptid, wie aufgeführt in Spalte 5 von Tabelle II.
    Dementsprechend betrifft die vorliegende Erfindung auch die erfindungsgemäße Methode, bei der man eine oder mehrere Aktivitäten, ausgewählt aus der Gruppe bestehend aus einer (DL)-Glycerin-3-phosphatase, einer 2-Desoxyglucose-6-phosphatphosphatase, einer 3-Methyl-2-oxobutanoat-Hydroxymethyltransferase, einer Alkoholacetyltransferase, einer Aminosäurepermease, einer Aminomethyltransferase, einem Ammoniumtransporter, einem Aquaporin, einem ATP-bindenden Protein eines Arabinosetransportsystems, einer Argininosuccinatsynthase, einer Aspartataminotransferase, einem B1906-Protein, einem B3410-Protein, einer Cardiolipinsynthetase, einem CoA-Transferase-ähnlichen Protein (NAD(P)-bindend), einem Cobalttransportprotein, einem DNA- und proteinbindenden Protein zur Steuerung des Proteoms auf der posttranskriptionellen Ebene, einer Enoyl-CoA-Hydratase, einer Enoyl-CoA-Isomerase, einer Ethanolaminkinase, einer Formiatacetyltransferase 1, einem Protein einer Glucit/Sorbit-spezifischen Enzym-IIA-Komponente, einer Glutaminsynthetase, einer Glutathion-S-transferase, einer Glycerindehydrogenase, einem Glykogensyntheseinitiatorprotein, einem GTP-bindenden Protein, einem Hitzeschockprotein, einem Hexosetransporter, einer Holo-[Acylträgerprotein]-Synthase, einem anorganischen Phosphattransporter, einer Lanosterolsynthase, einer molybdänbindenden Untereinheit von Aldehydoxidasen und Xanthindehydrogenasen, einem Multidrug-Resistenzprotein, einem Multiple-Drug-Resistenzprotein, einer NADH-Dehydrogenase/NAD(P)H-Nitroreduktase, einer Oxidoreduktase, einer Peptidyl-Prolyl-cis/trans-Isomerase, einem Peroxisomal-Targeting-Signal-2-Rezeptor, einer Phosphoadenosinphosphosulfatreduktase, einem Phosphoträgerprotein, einem Pirin-ähnlichen Protein, einer Precorrin-6y-Methylase, einem für den Abbau von Glykoproteinen benötigten Protein, einer Pyrimidindeaminase/-reduktase, einem Regulator der Zellmorphogenese und der NO-Signalvermittlung, einer Serinacetyltransferase, einer Untereinheit des Signalosomkomplexes, einem SLR1094-Protein, einer Untereinheit von TORC1, einer thiolspezifischen Monooxygenase, einem die Transkription steuernden Protein, einer Transketolase, einem Zwei-Modul-Transportprotein, einem Uridindiphosphat-N-acetylglucosamintransporter, einem yer175w-a-Protein, einem yhr213w-a-Protein, einem YML079W-Protein, einem YMR157C-Protein, einem YNL024C-Protein und einem YNR040W-Protein, erhöht oder erzeugt. Dementsprechend betrifft die vorliegende Erfindung auch eine transgene Pflanzenzelle oder Pflanze oder einen Teil davon mit gesteigerter Toleranz gegenüber und/oder Resistenz gegen abiotischen Umweltstress und/oder einem erhöhten Ertrag, verglichen mit einer entsprechenden, z. B. nicht transformierten, Pflanzenzelle oder Pflanze vom Wildtyp oder einem Teil davon. Dementsprechend betrifft die vorliegende Erfindung auch die von einer monokotyledonen Pflanze abgeleitete erfindungsgemäße transgene Pflanzenzelle oder Pflanze oder einen Teil davon. Dementsprechend betrifft die vorliegende Erfindung auch die von einer dikotyledonen Pflanze abgeleitete erfindungsgemäße transgene Pflanzenzelle oder Pflanze oder einen Teil davon. Dementsprechend betrifft die vorliegende Erfindung auch die erfindungsgemäße transgene Pflanzenzelle oder Pflanze oder einen Teil davon, wobei die Pflanze ausgewählt ist aus der Gruppe bestehend aus Mais, Weizen, Roggen, Hafer, Triticale, Reis, Gerste, Sojabohne, Erdnuss, Baumwolle, Raps einschließlich Canola und Winterraps, Maniok, Pfeffer, Sonnenblume, Flachs, Borretsch, Safflor (Färberdistel), Lein, Schlüsselblume, Raps, Rübsen, Tagetes, nachtschattenartige Pflanzen einschließlich Kartoffel, Tabak, Aubergine und Tomate, Vicia-Arten, Erbse, Luzerne, Kaffee, Kakao, Tee, Salix-Arten, Ölpalme, Kokosnuss, ausdauernde Gräser, Futterpflanzen und Arabidopsis thaliana. Dementsprechend betrifft die vorliegende Erfindung auch die erfindungsgemäße transgene Pflanzenzelle oder Pflanze oder einen Teil davon, wobei die Pflanze ausgewählt ist aus der Gruppe bestehend aus Mais, Soja, Raps (einschließlich Canola und Winterraps), Baumwolle, Weizen und Reis. Dementsprechend betrifft die vorliegende Erfindung auch einen von einer erfindungsgemäßen transgenen Pflanze produzierten Samen, wobei der Samen genetisch homozygot ist für ein Transgen, welches eine gesteigerte Toleranz gegenüber und/oder Resistenz gegen abiotischen Umweltstress und/oder einen erhöhten Ertrag, verglichen mit einer entsprechenden, z. B. nicht transformierten, Pflanzenzelle oder Pflanze vom Wildtyp oder einem Teil davon verleiht. Dementsprechend betrifft die vorliegende Erfindung auch ein isoliertes Nukleinsäuremolekül, das ein Nukleinsäuremolekül umfasst, das aus der folgenden Gruppe ausgewählt ist:
    • (a) einem Nukleinsäuremolekül, das für das in Spalte 5 oder 7 von Tabelle II B gezeigte Polypeptid kodiert;
    • (b) einem in Spalte 5 oder 7 von Tabelle I B gezeigten Nukleinsäuremolekül;
    • (c) einem Nukleinsäuremolekül, welches als Folge der Degeneration des genetischen Kodes von einer in Spalte 5 oder 7 von Tabelle II gezeigten Polypeptidsequenz abgeleitet sein kann und, verglichen mit einer entsprechenden, z. B. nicht transformierten, Pflanzenzelle oder Pflanze vom Wildtyp oder einem Teil davon, eine gesteigerte Toleranz gegenüber und/oder Resistenz gegen abiotischen Umweltstress und/oder einen erhöhten Ertrag verleiht;
    • (d) einem Nukleinsäuremolekül mit wenigstens 30% Identität mit der Nukleinsäuremolekülsequenz eines Polynukleotids, das das in Spalte 5 oder 7 von Tabelle I gezeigte Nukleinsäuremolekül umfasst und, verglichen mit einer entsprechenden, z. B. nicht transformierten, Pflanzenzelle oder Pflanze vom Wildtyp oder einem Teil davon, eine gesteigerte Toleranz gegenüber und/oder Resistenz gegen abiotischen Umweltstress und/oder einen erhöhten Ertrag verleiht;
    • (e) einem Nukleinsäuremolekül, das für ein Polypeptid mit wenigstens 30% Identität mit der Aminosäuresequenz des Polypeptids, das durch das Nukleinsäuremolekül von (a) bis (c) kodiert wird, kodiert und die Aktivität aufweist, die durch ein Nukleinsäuremolekül wiedergegeben wird, welches ein wie in Spalte 5 von Tabelle I gezeigtes Polynukleotid umfasst und, verglichen mit einer entsprechenden, z. B. nicht transformierten, Pflanzenzelle oder Pflanze vom Wildtyp oder einem Teil davon, eine gesteigerte Toleranz gegenüber und/oder Resistenz gegen abiotischen Umweltstress und/oder einen erhöhten Ertrag verleiht;
    • (f) einem Nukleinsäuremolekül, welches unter stringenten Hybridisierungsbedingungen mit einem Nukleinsäuremolekül von (a) bis (c) hybridisiert und, verglichen mit einer entsprechenden, z. B. nicht transformierten, Pflanzenzelle oder Pflanze vom Wildtyp oder einem Teil davon, eine gesteigerte Toleranz gegenüber und/oder Resistenz gegen abiotischen Umweltstress und/oder einen erhöhten Ertrag verleiht;
    • (g) einem Nukleinsäuremolekül, das für ein Polypeptid kodiert, das mit Hilfe von monoklonalen oder polyklonalen Antikörpern gegen ein Polypeptid, das durch eines der Nukleinsäuremoleküle von (a) bis (e) kodiert wird und die Aktivität aufweist, die durch ein Nukleinsäuremolekül wiedergegeben wird, welches ein wie in Spalte 5 von Tabelle I gezeigtes Polynukleotid umfasst, isoliert werden kann;
    • (h) einem Nukleinsäuremolekül, das für ein Polypeptid kodiert, das die Konsensussequenz oder ein oder mehrere Polypeptidmotive wie in Spalte 7 von Tabelle IV gezeigt umfasst und vorzugsweise die Aktivität aufweist, die durch ein Nukleinsäuremolekül wiedergegeben wird, welches ein wie in Spalte 5 von Tabelle II oder IV gezeigtes Polynukleotid umfasst;
    • (i) einem Nukleinsäuremolekül, das für ein Polypeptid kodiert, das die Aktivität aufweist, die durch ein wie in Spalte 5 von Tabelle II gezeigtes Protein wiedergegeben wird, und, verglichen mit einer entsprechenden, z. B. nicht transformierten, Pflanzenzelle oder Pflanze vom Wildtyp oder einem Teil davon, eine gesteigerte Toleranz gegenüber und/oder Resistenz gegen abiotischen Umweltstress und/oder einen erhöhten Ertrag verleiht;
    • (j) einem Nukleinsäuremolekül, das ein Polynukleotid umfasst, das durch Amplifizieren einer cDNA-Bibliothek oder einer genomischen Bibliothek unter Verwendung der Primer in Spalte 7 von Tabelle III, welche an ihrem 5'-Ende nicht mit den Nukleotiden ATA beginnen, erhalten wird und das vorzugsweise die Aktivität aufweist, die durch ein Nukleinsäuremolekül repräsentiert wird, das ein wie in Spalte 5 von Tabelle II oder IV aufgeführtes Polynukleotid umfasst; und
    • (k) einem Nukleinsäuremolekül, das durch Screenen einer geeigneten Nukleinsäurebibliothek unter stringenten Hybridisierungsbedingungen mit einer Sonde, umfassend eine komplementäre Sequenz von einem Nukleinsäuremolekül von (a) oder (b), oder mit einem Fragment davon, enthaltend mindestens 15 nt, bevorzugt 20 nt, 30 nt, 50 nt, 100 nt, 200 nt oder 500 nt eines Nukleinsäuremoleküls, komplementär zu einer in (a) bis (e) charakterisierten Nukleinsäuremolekülsequenz, erhältlich ist und ein Polypeptid kodiert, das die Aktivität aufweist, repräsentiert durch ein Protein, umfassend ein Polypeptid, wie aufgeführt in Spalte 5 von Tabelle II;
    wobei das Nukleinsäuremolekül gemäß (a) bis (k) wenigstens in einem oder mehreren Nukleotiden von der Sequenz, wie aufgeführt in Spalte 5 oder 7 von Tabelle I A, verschieden ist und vorzugsweise ein Protein kodiert, das sich wenigstens in einer oder mehreren Aminosäuren von den Proteinsequenzen, wie aufgeführt in Spalte 5 oder 7 von Tabelle II A, unterscheidet. Dementsprechend betrifft die vorliegende Erfindung auch ein Nukleinsäurekonstrukt, welches die Expression dieses erfindungsgemäßen Nukleinsäuremoleküls verleiht und welches ein oder mehrere Regulationselemente umfasst, wobei die Expression der Nukleinsäure in einer Wirtszelle, verglichen mit einer entsprechenden, z. B. nicht transformierten, Pflanzenzelle oder Pflanze vom Wildtyp oder einem Teil davon zu einer gesteigerten Toleranz gegenüber und/oder Resistenz gegen abiotischen Umweltstress und/oder einem erhöhten Ertrag führt. Dementsprechend betrifft die vorliegende Erfindung auch einen Vektor, welcher das erfindungsgemäße Nukleinsäuremolekül oder das erfindungsgemäße Nukleinsäurekonstrukt umfasst, wobei die Expression der kodierenden Nukleinsäure in einer Wirtszelle, verglichen mit einer entsprechenden, z. B. nicht transformierten, Pflanzenzelle oder Pflanze vom Wildtyp oder einem Teil davon zu einer gesteigerten Toleranz gegenüber und/oder Resistenz gegen abiotischen Umweltstress und/oder einem erhöhten Ertrag führt. Dementsprechend betrifft die vorliegende Erfindung auch eine Wirtszelle, die mit dem erfindungsgemäßen Vektor oder dem erfindungsgemäße Nukleinsäuremolekül oder dem erfindungsgemäßen Nukleinsäurekonstrukt stabil oder transient transformiert wurde und welche aufgrund der Transformation, verglichen mit einer entsprechenden, z. B. nicht transformierten, Pflanzenzelle oder Pflanze vom Wildtyp oder einem Teil davon eine gesteigerte Toleranz gegenüber und/oder Resistenz gegen abiotischen Umweltstress und/oder einen erhöhten Ertrag zeigt. Dementsprechend betrifft die vorliegende Erfindung auch ein Verfahren zur Herstellung eines Polypeptids, bei dem das Polypeptid in einer erfindungsgemäßen Wirtszelle exprimiert wird. Dementsprechend betrifft die vorliegende Erfindung auch ein durch das erfindungsgemäße Verfahren hergestelltes oder durch das erfindungsgemäße Nukleinsäuremolekül kodiertes Polypeptid, wobei sich das Polypeptid in einer oder mehreren Aminosäuren von der in Tabelle II gezeigten Sequenz unterscheidet.
  • Dementsprechend betrifft die vorliegende Erfindung auch einen Antikörper, der spezifisch an das erfindungsgemäße Polypeptid bindet.
  • Dementsprechend betrifft die vorliegende Erfindung auch Pflanzengewebe, Fortpflanzungsmaterial, Erntegut oder eine Pflanze, das/die die erfindungsgemäße Wirtszelle enthält.
  • Dementsprechend betrifft die vorliegende Erfindung auch ein Verfahren zur Identifizierung einer Verbindung, die einer Pflanzenzelle oder Pflanze oder einen Teil davon, verglichen mit einer entsprechenden, z. B. nicht transformierten, Pflanzenzelle oder Pflanze vom Wildtyp oder einem Teil davon eine gesteigerte Toleranz gegenüber und/oder Resistenz gegen abiotischen Umweltstress und/oder einen erhöhten Ertrag verleiht, wobei das Verfahren die folgenden Schritte umfasst:
    • (a) Kultivieren einer Pflanzenzelle, einer Pflanze oder eines Teils davon, wodurch man eine Pflanze erhält, die das von dem erfindungsgemäßen Nukleinsäuremolekül kodierte Polypeptid exprimiert und verglichen mit einer entsprechenden, z. B. nicht transformierten, Pflanzenzelle oder Pflanze vom Wildtyp oder einem Teil davon eine gesteigerte Toleranz gegenüber und/oder Resistenz gegen abiotischen Umweltstress und/oder einen erhöhten Ertrag verleiht; einer nicht transformierten Pflanze vom Wildtyp oder eines Teils davon und eines Ablesesystems, das dazu in der Lage ist, unter geeigneten Bedingungen, die eine Wechselwirkung des Polypeptids mit diesem Ablesesystem in Gegenwart einer Verbindung oder einer Probe, die eine Mehrzahl an Verbindungen enthält, erlauben, mit dem Polypeptid in Wechselwirkung zu treten und dazu in der Lage ist, ein nachweisbares Signal als Reaktion auf die Bindung einer Verbindung an das Polypeptid bereitzustellen, unter Bedingungen, die die Expression dieses Ablesesystems und des von dem erfindungsgemäßen Nukleinsäuremolekül kodierten Polypeptids, welches verglichen mit einer entsprechenden, z. B. nicht transformierten, Pflanzenzelle oder Pflanze vom Wildtyp oder einem Teil davon eine gesteigerte Toleranz gegenüber und/oder Resistenz gegen abiotischen Umweltstress und/oder einen erhöhten Ertrag verleiht, ermöglichen; einer nicht transformierten Pflanze vom Wildtyp oder einen Teil davon;
    • (b) Feststellen, ob es sich bei der Verbindung um einen wirksamen Agonisten handelt, indem man das Vorhandensein oder das Fehlen oder die Zunahme eines durch dieses Ablesesystem produzierten Signals detektiert.
  • Dementsprechend betrifft die vorliegende Erfindung auch eine Methode zur Herstellung einer landwirtschaftlichen Zusammensetzung, welche die Schritte der erfindungsgemäßen Methode und die Formulierung der bei dieser erfindungsgemäßen Methode zur Identifikation einer solchen Verbindung identifizierten Verbindung in einer für eine Anwendung in der Landwirtschaft unbedenklichen Form umfasst.
  • Dementsprechend betrifft die vorliegende Erfindung auch eine Zusammensetzung, welche das erfindungsgemäße Nukleinsäuremolekül, das erfindungsgemäße Polypeptid, das erfindungsgemäße Nukleinsäurekonstrukt, den erfindungsgemäßen Vektor, die erfindungsgemäße Verbindung, den erfindungsgemäßen Antikörper und gegebenenfalls einen landwirtschaftlich unbedenklichen Träger umfasst.
  • Dementsprechend betrifft die vorliegende Erfindung auch ein wie in Tabelle II, vorzugsweise Tabelle II B, gezeigtes isoliertes Polypeptid, ausgewählt aus Hefe, vorzugsweise Saccharomyces cerevisiae, oder E. coli.
  • Dementsprechend betrifft die vorliegende Erfindung auch eine Methode zur Herstellung einer transgenen Pflanzenzelle oder Pflanze oder einem Teil davon mit einer gesteigerten Toleranz gegenüber und/oder Resistenz gegen abiotischen Umweltstress und/oder einem erhöhten Ertrag, verglichen mit einer entsprechenden nicht transformierten Pflanzenzelle oder Pflanze vom Wildtyp oder einem Teil davon, bei der die gesteigerte Toleranz gegenüber und/oder Resistenz gegen abiotischen Umweltstress und/oder der erhöhte Ertrag durch die Expression eines durch eine erfindungsgemäße Nukleinsäure kodierten Polypeptids erhöht wird, was zu einer gesteigerten Toleranz gegenüber und/oder Resistenz gegen abiotischen Umweltstress und/oder einem erhöhten Ertrag, verglichen mit einer entsprechenden, z. B. nicht transformierten, Pflanzenzelle oder Pflanze vom Wildtyp oder einem Teil davon führt, bei der man
    • (a) eine Pflanzenzelle oder einen Teil einer Pflanze mit einem erfindungsgemäßen Vektor tranformiert und
    • (b) aus der Pflanzenzelle oder dem Teil einer Pflanze eine transgene Pflanze mit einer gesteigerten Toleranz gegenüber und/oder Resistenz gegen abiotischen Umweltstress und/oder einem erhöhten Ertrag, verglichen mit einer entsprechenden, z. B. nicht transformierten, Pflanze vom Wildtyp erzeugt.
  • Dementsprechend betrifft die vorliegende Erfindung auch eine Methode zur Herstellung einer transgenen Pflanze mit einem erhöhten Ertrag, verglichen mit einer entsprechenden nicht transformierten Pflanze vom Wildtyp unter Bedingungen niedriger Temperaturen durch Erhöhen oder Erzeugen einer oder mehrerer Aktivitäten, ausgewählt aus der Gruppe der „Low Temperature Resistance/Tolerance-related-Proteine” (LTRRP) bestehend aus einer (DL)-Glycerin-3-phosphatase, einer 2-Desoxyglucose-6-phosphatphosphatase, einer 3-Methyl-2-oxobutanoat-Hydroxymethyltransferase, einer Alkoholacetyltransferase, einer Aminosäurepermease, einer Aminomethyltransferase, einem Ammoniumtransporter, einem Aquaporin, einem ATP-bindenden Protein eines Arabinosetransportsystems, einer Argininosuccinatsynthase, einer Aspartataminotransferase, einem B1906-Protein, einem B3410-Protein, einer Cardiolipinsynthetase, einem CoA-Transferase-ähnlichen Protein (NAD(P)-bindend), einem Cobalttransportprotein, einem DNA- und proteinbindenden Protein zur Steuerung des Proteoms auf der posttranskriptionellen Ebene, einer Enoyl-CoA-Hydratase, einer Enoyl-CoA-Isomerase, einer Ethanolaminkinase, einer Formiatacetyltransferase 1, einem Protein einer Glucit/Sorbit-spezifischen Enzym-IIA-Komponente, einer Glutaminsynthetase, einer Glutathion-S-transferase, einer Glycerindehydrogenase, einem Glykogensyntheseinitiatorprotein, einem GTP-bindenden Protein, einem Hitzeschockprotein, einem Hexosetransporter, einer Holo-[Acylträgerprotein]-Synthase, einem anorganischen Phosphattransporter, einer Lanosterolsynthase, einer molybdänbindenden Untereinheit von Aldehydoxidasen und Xanthindehydrogenasen, einem Multidrug-Resistenzprotein, einem Multiple-Drug-Resistenzprotein, einer NADH-Dehydrogenase/NAD(P)H-Nitroreduktase, einer Oxidoreduktase, einer Peptidyl-Prolyl-cis/trans-Isomerase, einem Peroxisomal-Targeting-Signal-2-Rezeptor, einer Phosphoadenosinphosphosulfatreduktase, einem Phosphoträgerprotein, einem Pirin-ähnlichen Protein, einer Precorrin-6y-Methylase, einem für den Abbau von Glykoproteinen benötigten Protein, einer Pyrimidindeaminase/-reduktase, einem Regulator der Zellmorphogenese und der NO-Signalvermittlung, einer Serinacetyltransferase, einer Untereinheit des Signalosomkomplexes, einem SLR1094-Protein, einer Untereinheit von TORC1, einer thiolspezifischen Monooxygenase, einem die Transkription steuernden Protein, einer Transketolase, einem Zwei-Modul-Transportprotein, einem Uridindiphosphat-N-acetylglucosamintransporter, einem yer175w-a-Protein, einem yhr213w-a-Protein, einem YML079W-Protein, einem YMR157C-Protein, einem YNL024C-Protein und einem YNR040W-Protein.
  • Dementsprechend betrifft die vorliegende Erfindung auch eine erfindungsgemäße Methode, bei der man:
    • (a) eine Pflanzenzelle oder einen Teil einer Pflanze mit einem erfindungsgemäßen Vektor tranformiert und
    • (b) aus der Pflanzenzelle oder dem Teil einer Pflanze eine transgene Pflanze mit einer gesteigerten Toleranz gegenüber und/oder Resistenz gegen abiotischen Umweltstress und/oder einem erhöhten Ertrag, verglichen mit einer entsprechenden, z. B. nicht transformierten, Pflanze vom Wildtyp erzeugt.
    Dementsprechend betrifft die vorliegende Erfindung auch eine Verwendung eines für ein LTRRP kodierenden Nukleinsäuremoleküls, ausgewählt aus der die erfindungsgemäße Nukleinsäure umfassenden Gruppe zur Herstellung einer Pflanzenzelle, einer Pflanze oder eines Teils davon mit einer gesteigerten Toleranz gegenüber und/oder Resistenz gegen abiotischen Umweltstress und/oder einem erhöhten Ertrag, verglichen mit einer entsprechenden, z. B. nicht transformierten, Pflanzenzelle oder Pflanze vom Wildtyp oder einem Teil einer Pflanze vom Wildtyp. Dementsprechend betrifft die vorliegende Erfindung auch eine Verwendung eines für ein LTRRP kodierenden Nukleinsäuremoleküls, ausgewählt aus der die erfindungsgemäßen Nukleinsäuren umfassenden Gruppe oder Teilen davon als Marker zur Auswahl von Pflanzen oder Pflanzenzellen mit einer gesteigerten Toleranz gegenüber und/oder Resistenz gegen abiotischen Umweltstress und/oder einem erhöhten Ertrag, verglichen mit einer entsprechenden, z. B. nicht transformierten, Pflanzenzelle oder Pflanze vom Wildtyp oder einem Teil davon.
  • Dementsprechend betrifft die vorliegende Erfindung auch eine Verwendung eines für ein LTRRP kodierenden Nukleinsäuremoleküls, ausgewählt aus der die erfindungsgemäße Nukleinsäure umfassenden Gruppe oder Teilen davon als Marker zum Nachweis von Toleranz gegenüber Stress in Pflanzen oder Pflanzenzellen. Dementsprechend betrifft die vorliegende Erfindung auch eine transgene Pflanzenzelle, die ein Nukleinsäuremolekül enthält, welches für ein Polypeptid mit einer Aktivität, ausgewählt aus der Gruppe von LTRRP bestehend aus einer (DL)-Glycerin-3-phosphatase, einer 2-Desoxyglucose-6-phosphatphosphatase, einer 3-Methyl-2-oxobutanoat-Hydroxymethyltransferase, einer Alkoholacetyltransferase, einer Aminosäurepermease, einer Aminomethyltransferase, einem Ammoniumtransporter, einem Aquaporin, einem Arabinosetransportsystem, einem ATP-bindenden Protein, einer Argininosuccinatsynthase, einer Aspartataminotransferase, einem B1906-Protein, einem B3410-Protein, einer Cardiolipinsynthetase, einem CoA-Transferase-ähnlichen Protein (NAD(P)-bindend), einem Cobalttransportprotein, einem DNA- und proteinbindenden Protein zur Steuerung des Proteoms auf der posttranskriptionellen Ebene, einer Enoyl-CoA-Hydratase, einer Enoyl-CoA-Isomerase, einer Ethanolaminkinase, einer Formiatacetyltransferase 1, einem Protein einer Glucit/Sorbit-spezifischen Enzym-IIA-Komponente, einer Glutaminsynthetase, einer Glutathion-S-transferase, einer Glycerindehydrogenase, einem Glykogensyntheseinitiatorprotein, einem GTP-bindenden Protein, einem Hitzeschockprotein, einem Hexosetransporter, einer Holo-[Acylträgerprotein]-Synthase, einem anorganischen Phosphattransporter, einer Lanosterolsynthase, einer molybdänbindenden Untereinheit von Aldehydoxidasen und Xanthindehydrogenasen, einem Multidrug-Resistenzprotein, einem Multiple-Drug-Resistenzprotein, einer NADH-Dehydrogenase/NAD(P)H-Nitroreduktase, einer Oxidoreduktase, einer Peptidyl-Prolyl-cis/trans-Isomerase, einem Peroxisomal-Targeting-Signal-2-Rezeptor, einer Phosphoadenosinphosphosulfatreduktase, einem Phosphoträgerprotein, einem Pirin-ähnlichen Protein, einer Precorrin-6y-Methylase, einem für den Abbau von Glykoproteinen benötigten Protein, einer Pyrimidindeaminase/-reduktase, einem Regulator der Zellmorphogenese und der NO-Signalvermittlung, einer Serinacetyltransferase, einer Untereinheit des Signalosomkomplexes, einem SLR1094-Protein, einer Untereinheit von TORC1, einer thiolspezifischen Monooxygenase, einem die Transkription steuernden Protein, einer Transketolase, einem Zwei-Modul-Transportprotein, einem Uridindiphosphat-N-acetylglucosamintransporter, einem yer175w-a-Protein, einem yhr213w-a-Protein, einem YML079W-Protein, einem YMR157C-Protein, einem YNL024C-Protein und einem YNR040W-Protein, kodiert, wobei dieses Polypeptid eine gesteigerte Toleranz gegenüber und/oder Resistenz gegen abiotischen Umweltstress verglichen mit einer entsprechenden, z. B. nicht transformierten, Pflanzenzelle oder Pflanze vom Wildtyp oder einem Teil davon verleiht, vorzugsweise, wenn das Polypeptid überexprimiert wird. Dementsprechend betrifft die vorliegende Erfindung auch die Methode, die transgene Pflanzenzelle oder Pflanze oder einen Teil davon, das Saatgut, das isolierte Nukleinsäurekonstrukt, den Vektor, die Wirtszelle, das Verfahren, das Polypeptid, den Antikörper, das Pflanzengewebe, das Fortpflanzungsmaterial, das Erntegut oder die geerntete Pflanze, die Zusammensetzung, das isolierte Polypeptid oder die Verwendung gemäß der Erfindung, wobei die Toleranz gegenüber abiotischem Umweltstress ausgewählt ist aus der aus Toleranz gegenüber Salzstress, Dürrestress, Hitzestress und/oder Stress durch niedrige Temperaturen bestehenden Gruppe. Dementsprechend betrifft die vorliegende Erfindung auch die Methode, die transgene Pflanzenzelle oder Pflanze oder einen Teil davon, das Saatgut, das isolierte Nukleinsäurekonstrukt, den Vektor, die Wirtszelle, das Verfahren, das Polypeptid, den Antikörper, das Pflanzengewebe, das Fortpflanzungsmaterial, das Erntegut oder die geerntete Pflanze, die Zusammensetzung, das isolierte Polypeptid oder die Verwendung gemäß der Erfindung, wobei sich bei der Toleranz gegenüber abiotischem Umweltstress um Stress durch niedrige Temperaturen handelt.
  • Dementsprechend betrifft die vorliegende Erfindung auch die Methode, die transgene Pflanzenzelle oder Pflanze oder einen Teil davon, das Saatgut, das isoliertes Nukleinsäurekonstrukt, den Vektor, die Wirtszelle, das Verfahren, das Polypeptid, den Antikörper, das Pflanzengewebe, das Fortpflanzungsmaterial, das Erntegut oder die geerntete Pflanze, die Zusammensetzung, das isolierte Polypeptid oder die Verwendung gemäß der Erfindung, wobei es sich bei der Toleranz gegenüber und/oder Resistenz gegen Stress durch niedrige Temperaturen um Toleranz gegenüber und/oder Resistenz gegen Stress durch kühle Temperaturen und/oder Stress durch Frosttemperaturen handelt. Dementsprechend betrifft die vorliegende Erfindung auch die Methode, die transgene Pflanzenzelle oder Pflanze oder einen Teil davon, das Saatgut, das isolierte Nukleinsäurekonstrukt, den Vektor, die Wirtszelle, das Verfahren, das Polypeptid, den Antikörper, das Pflanzengewebe, das Fortpflanzungsmaterial, das Erntegut oder die geerntete Pflanze, die Zusammensetzung, das isolierte Polypeptid oder die Verwendung gemäß der Erfindung, wobei sich die Toleranz gegenüber niedrigen Temperaturen darin zeigt, dass der Prozentsatz an keimenden Samen unter solchen Bedingungen niedriger Temperaturen höher ist als bei den (nicht transformierten) Ausgangsorganismen bzw. Organismen vom Wildtyp. Dementsprechend betrifft die vorliegende Erfindung auch eine Methode, eine transgene Pflanzenzelle oder Pflanze oder einen Teil davon, ein Saatgut, ein isoliertes Nukleinsäurekonstrukt, einen Vektor, eine Wirtszelle, ein Verfahren, ein Polypeptid, einen Antikörper, ein Pflanzengewebe, ein Fortpflanzungsmaterial, ein Erntegut oder eine geerntete Pflanze, eine Zusammensetzung, ein isoliertes Polypeptid oder eine Verwendung gemäß der Erfindung, wobei es sich bei der niedrigen Temperatur um eine Temperatur handelt, die wachstumseinschränkend wäre, verglichen mit einem (nicht transformierten) Ausgangsorganismus bzw. Organismus vom Wildtyp.
  • Beispiel 1: Entwicklung von Arabidopsis-Pflanzen mit einem erhöhten Ertrag, z. B. einem erhöhten Ertragsmerkmal, zum Beispiel einer gesteigerten Toleranz gegenüber abiotischem Umweltstress, zum Beispiel einer erhöhten Toleranz gegenüber Dürre und/oder Toleranz gegenüber niedrigen Temperaturen und/oder einer erhöhten Effizienz der Nährstoffausnutzung und/oder einem erhöhten anderen erwähnten Ertragsmerkmal durch Überexprimieren der Gene für das YLR-Protein, z. B. durch Exprimieren der Gene der vorliegenden Erfindung.
  • Klonieren der wie in Tabelle I, Spalte 5 und 7, gezeigten erfindungsgemäßen Sequenzen zur Expression in Pflanzen. Wenn nicht anders angegeben, werden die in Sambrook et al., Molecular Cloning: A laboratory manual, Cold Spring Harbor 1989, Cold Spring Harbor Laboratory Press, beschriebenen Standardverfahren angewendet.
  • Die in der Tabelle I, Spalte 5 und 7, gezeigten erfindungsgemäßen Sequenzen wurden mittels PCR amplifiziert, wie in dem Protokoll für die Pfu Ultra-, Pfu Turbo- oder Herculase-DNA-Polymerase (Stratagene) beschrieben. Die Zusammensetzung für das Protokoll der Pfu Ultra-, Pfu Turbo- oder Herculase-DNA-Polymerase war wie folgt: 1 × PCR-Puffer (Stratagene), jeweils 0,2 mM der dNTP, 100 ng genomische DNA von Saccharomyces cerevisiae (Stamm S288C; Research Genetics, Inc., jetzt Invitrogen), Escherichia coli (Stamm MG1655; E. coli Genetic Stock Center), Synechocystis sp. (Stamm PCC6803), Azotobacter vinelandii (Stamm N. R. Smith, 16), Thermus thermophilus (HB8) oder 50 ng cDNA von verschiedenen Geweben und Entwicklungsstadien von Arabidopsis thaliana (Ökotyp Columbia), Physcomitrella patens, Glycine max (Sorte Resnick), oder Zea mays (Sorte B73, Moll, A188), 50 pmol Vorwärts-Primer, 50 pmol Revers-Primer, mit oder ohne 1 M Betain, 2.5 u Pfu Ultra-, Pfu Turbo- oder Herculase-DNA-Polymerase.
  • Die Amplifikationszyklen waren wie folgt:
    1 Zyklus von 2–3 Minuten bei 94–95°C, gefolgt von 25–36 Zyklen von 30–60 Sekunden bei 94–95°C, 30–45 Sekunden bei 50–60°C und 210–480 Sekunden bei 72°C, gefolgt von 1 Zyklus von 5–10 Minuten bei 72°C, dann 4–16°C – vorzugsweise für Saccharomyces cerevisiae;
    Escherichia coli, Synechocystis sp., Acetobacter vinelandii, Thermus thermophilus.
  • Bei Arabidopsis thaliana, Brassica napus, Glycine max, Oryza sativa, Physcomitrella patens, Zea mays waren die Amplifikationszyklen wie folgt:
    1 Zyklus von 30 Sekunden bei 94°C, 30 Sekunden bei 61°C, 15 Minuten bei 72°C, dann 2 Zyklen von 30 Sekunden bei 94°C, 30 Sekunden bei 60°C, 15 Minuten bei 72°C, dann 3 Zyklen von 30 Sekunden bei 94°C, 30 Sekunden bei 59°C, 15 Minuten bei 72°C, dann 4 Zyklen von 30 Sekunden bei 94°C, 30 Sekunden bei 58°C, 15 Minuten bei 72°C, dann 25 Zyklen von 30 Sekunden bei 94°C, 30 Sekunden bei 57°C, 15 Minuten bei 72°C, dann 1 Zyklus von 10 Minuten bei 72°C,
    dann schließlich 4–16°C.
  • RNA wurden mit dem RNeasy Plant Kit gemäß dem Standardprotokoll (Qiagen) erzeugt, und doppelsträngige cDNA wurde gemäß dem Standardprotokoll (Invitrogen) mit Superscript II Reverse Transkriptase produziert.
  • ORF-spezifische Primer-Paare für die zu exprimierenden Gene sind in Tabelle III, Spalte 7, gezeigt. Die folgenden Adaptorsequenzen wurden für Klonierungszwecke zu Saccharomyces cerevisiae-ORF-spezifischen Primern (siehe Tabelle III) hinzugefügt:
    • i) Vorwärts-Primer: 5'-GGAATTCCAGCTGACCACC-3' SEQ ID NO: 7
    • ii) Revers-Primer: 5'-GATCCCCGGGAATPGCCAPG-3' SEQ ID NO: 8
    Diese Adaptorsequenzen ermöglichen das Klonieren des ORF in verschiedene die Resgen-Adaptoren enthaltende Vektoren, siehe Tabellenspalte E von Tabelle VII. Die folgenden Adaptorsequenzen wurden für Klonierungszwecke zu Saccharomyces cerevisiae-, Escherichia coli-, Synechocystis sp.-, Azotobacter vinelandii-, Thermus thermophilus-, Arabidopsis thaliana-, Brassica napus-, Glycine max-, Oryza sativa-, Physcomitrella patens- oder Zea mays-ORF-spezifischen Primern hinzugefügt:
    • iii) Vorwärts-Primer: 5'-TTGCTCTTCC-3' SEQ ID NO: 9
    • iiii) Revers-Primer: 5'-TTGCTCTTCG-3' SEQ ID NO: 10
    Die Adaptorsequenzen ermöglichen das Klonieren des ORF in verschiedene die Colic-Adaptoren enthaltende Vektoren, siehe Tabellenspalte E von Tabelle VII. Daher wurden zur Amplifikation und Klonierung von Saccharomyces cerevisiae SEQ ID NO: 382 ein Primer, bestehend aus der Adaptorsequenz i) und der ORF-spezifischen Sequenz SEQ ID NO: 398, und ein zweiter Primer, bestehend aus der Adaptorsequenz ii) und der ORF-spezifischen Sequenz SEQ ID NO: 399, verwendet. Zur Amplifikation und Klonierung von Escherichia coli SEQ ID NO: 38 wurden ein Primer, bestehend aus der Adaptorsequenz iii) und der ORF-spezifischen Sequenz SEQ ID NO: 136, und ein zweiter Primer, bestehend aus der Adaptorsequenz iiii) und der ORF-spezifischen Sequenz SEQ ID NO: 137, verwendet. Zur Amplifikation und Klonierung von Synechocystis sp. SEQ ID NO: 7591 wurden ein Primer, bestehend aus der Adaptorsequenz iii) und der ORF-spezifischen Sequenz SEQ ID NO: 7667, und ein zweiter Primer, bestehend aus der Adaptorsequenz iiii) und der ORF-spezifischen Sequenz SEQ ID NO: 7668, verwendet. Zur Amplifikation und Klonierung von Arabidopsis thaliana SEQ ID NO: 8563 wurden ein Primer, bestehend aus der Adaptorsequenz iii) und der ORF-spezifischen Sequenz SEQ ID NO: 8639, und ein zweiter Primer, bestehend aus der Adaptorsequenz iiii) und der ORF-spezifischen Sequenz SEQ ID NO: 8640, verwendet.
  • Anhand dieser Beispiele kann jede in Tabelle I, vorzugsweise Spalte 5, offenbarte Sequenz durch Fusionieren der Adaptorsequenzen mit den in der Tabelle III, Spalte 7, aufgeführten entsprechenden spezifischen Primersequenzen kloniert werden, wobei die betreffenden in Tabelle VII gezeigten Vektoren eingesetzt werden. Tabelle VII. Überblick über die verschiedenen zum Klonieren der ORFs verwendeten Vektoren mit ihren SEQIDs (Spalte A), ihren Vektornamen (Spalte B), den Promotoren, die sie für die Expression der ORFs enthalten (Spalte C), den zusätzlichen künstlichen Erkennungssequenzen (Spalte D), der Adaptorsequenz (Spalte E), dem durch den in Spalte B erwähnten Promotor verliehenen Expressionstyp (Spalte F) und der Nummer der Figur (Spalte G).
    A B C D E F G
    SeqID Vektorname Promotorname Target-Sequenz Adaptorsequenz Expressionstyp Figur
    1 VC-MME220-1 Super Colic nicht zielgesteuerte konstitutive Expression vorzugsweise in grünen Geweben 1a
    2 VC-MME221-1 PcUbi Colic nicht zielgesteuerte konstitutive Expression vorzugsweise in grünen Geweben 2a
    3 VC-MME354-1 Super FNR Resgen auf Plastide gerichtete konstitutive Expression vorzugsweise in grünen Geweben 3a
    5 VC-MME432-1 Super FNR Colic auf Plastide gerichtete konstitutive Expression vorzugsweise in grünen Geweben 4a
    15 VC-MME489-1p Super Resgen nicht zielgesteuerte konstitutive Expression vorzugsweise in grünen Geweben 5a
    16 pMTX0270p Super Colic nicht zielgesteuerte konstitutive Expression vorzugsweise in grünen Geweben 6
    6054 pMTX155 Big35S Resgen nicht zielgesteuerte konstitutive Expression vorzugsweise in grünen Geweben 7
    6055 VC-MME354-1QCZ Super FNR Resgen auf Plastide gerichtete konstitutive Expression vorzugsweise in grünen Geweben 3b
    6057 VC-MME356-1QCZ Super IVD Resgen auf Mitochondrien gerichtete konstitutive Expression vorzugsweise in grünen Geweben 8
    6059 VC-MME301-1QCZ USP Resgen nicht zielgesteuerte Expression vorzugsweise in Samen 9
    6060 pMTX461korrp USP FNR Resgen auf Plastide gerichtete Expression vorzugsweise in Samen 10
    6062 VC-MME462-1QCZ USP IVD Resgen auf Mitochondrien gerichtete Expression vorzugsweise in Samen 11
    6064 VC-MME220-1qcz Super Colic nicht zielgesteuerte konstitutive Expression vorzugsweise in grünen Geweben 1b
    6065 VC-MME432-1qcz Super FNR Colic auf Plastide gerichtete konstitutive Expression vorzugsweise in grünen Geweben 4b
    6067 VC-MME431-1qcz Super IVD Colic auf Mitochondrien gerichtete konstitutive Expression vorzugsweise in grünen Geweben 12
    6069 VC-MME221-1qcz PcUbi Colic nicht zielgesteuerte konstitutive Expression vorzugsweise in grünen Geweben 2b
    6070 pMTX447korr PcUbi FNR Colic auf Plastide gerichtete konstitutive Expression vorzugsweise in grünen Geweben 13
    6072 VC-MME445-1qcz PcUbi IVD Colic auf Mitochondrien gerichtete konstitutive Expression vorzugsweise in grünen Geweben 14
    6074 VC-MME289-1qcz USP Colic nicht zielgesteuerte Expression vorzugsweise in Samen 15
    6075 VC-MME464-1qcz USP FNR Colic auf Plastide gerichtete Expression vorzugsweise in Samen 16
    6077 VC-MME465-1qcz USP IVD Colic auf Mitochondrien gerichtete Expression vorzugsweise in Samen 17
    6079 VC-MME489-1QCZ Super Resgen nicht zielgesteuerte konstitutive Expression vorzugsweise in grünen Geweben 5b
  • Beispiel 1b): Konstruktion binärer Vektoren für die nicht zielgesteuerte Expression von Proteinen.
  • „Nicht zielgesteuerte” Expression bedeutet in diesem Zusammenhang, dass an den zu exprimierenden ORF keine zusätzliche Erkennungssequenz angefügt wurde.
  • Für die nicht zielgesteuerte Expression wurden die folgenden binären Vektoren zur Klonierung verwendet: VC-MME220-1 SEQ ID NO 1 (1a) und VC-MME220-1qcz SEQ ID NO 6064 (1b), VC-MME221-1 SEQ ID NO 2 (2a) und VC-MME221-1qcz SEQ ID NO 6069 (2b) beziehungsweise VC-MME489-1p SEQ ID NO 15 (5a) und VC-MME489-1QCZ SEQ ID NO: 6079 (5b). Bei den zur Klonierung der Erkennungssequenz verwendeten binären Vektoren handelte es sich um VC-MME489-1p SEQ ID NO 15 (5a) und VC-MME489-1QCZ SEQ ID NO: 6079 (5b) beziehungsweise pMTX0270p SEQ ID NO 16 (6). Andere brauchbare binäre Vektoren sind dem Fachmann bekannt; einen Übersichtsartikel zu binären Vektoren und ihrer Verwendung findet sich in Hellens R., Mullineaux P. und Klee H., (Trends in Plant Science, 5 (10), 446 (2000)). Solche Vektoren müssen gleichermaßen mit entsprechenden Promotoren und Erkennungssequenzen ausgestattet sein.
  • Beispiel 1c): Amplifikation der plastidischen Erkennungssequenz des Gens FNR aus Spinacia oleracea und Konstruktion des Vektors für die auf Plastide gerichtete Expression vorzugsweise in grünen Geweben oder vorzugsweise in Samen.
  • Zur Amplifikation der Erkennungssequenz des FNR-Gens aus S. oleracea wurde genomische DNA aus Blättern von 4 Wochen alten S. oleracea-Pflanzen extrahiert (DNeasy Plant Mini Kit, Qiagen, Hilden). Die gDNA wurde als Matrize für eine PCR verwendet. Zur Ermöglichung der Klonierung der Transitsequenz in den Vektor VC-MME489-1p, VC-MME489-1QCZ und VC-MME301-1QCZ wurde eine EcoRI-Restriktionsenzym-Erkennungssequenz sowohl zu dem Vorwärts- als auch zu dem Revers-Primer hinzugefügt, wohingegen zur Klonierung in die Vektoren pMPX0270p, VC-MME220-1, VC-MME220-1qcz, VC-MME221-1, VC-MME221-1qcz und VC-MME289-1qcz eine PmeI-Restriktionsenzym-Erkennungssequenz zu dem Vorwärts-Primer und eine NcoI-Stelle zu dem Revers-Primer hinzugefügt wurde.
  • Figure 03700001
  • Die aus genomischer DNA von Spinat amplifizierte, resultierende Sequenz SEQ ID NO: 36 umfasste eine 5'UTR (Bp 1-165) und die kodierende Region (Bp 166-273 und 351-419). Die kodierende Sequenz ist durch eine Intronsequenz von Bp 274 bis Bp 350 unterbrochen.
  • Figure 03700002
  • Figure 03710001
  • Das mit den Primern FNR5EcoResgen und FNR3EcoResgen erhaltene PCR-Fragment wurde mit EcoRI gespalten und in die Vektoren VC-MME489-1p oder VC-MME489-1QCZ und VC-MME301-1QCZ ligiert, die ebenfalls mit EcoRI gespalten worden waren. Die korrekte Orientierung der FNR-Erkennungssequenz wurde durch Sequenzierung überprüft. Bei den in diesem Ligationsschritt erzeugten Vektoren handelte es sich um VC-MME354-1 oder VC-MME354-1QCZ beziehungsweise pMTX461korrp.
  • Das mit den Primern FNR5PmeColic und FNR3NcoColic erhaltene PCR-Fragment wurde mit PmeI und NcoI gespalten und in die Vektoren pMTX0270p, VC-MME220-1 oder VC-MME220-1qcz, VC-MME221-1 oder VC-MME221-1qcz und VC-MME289-1qcz ligiert, die mit SmaI und NcoI gespalten worden waren. Bei den in diesem Ligierungsschritt erzeugten Vektoren handelte es sich um VC-MME432-1 oder VC-MME432-1qcz, VC-MME464-1qcz beziehungsweise pMTX447korrp. Für die auf Plastide gerichtete konstitutive Expression in vorzugsweise grünen Geweben wurde ein künstlicher Promotor A(ocs)3AmasPmas Promotor (Super-Promotor)) (Ni et al,. Plant Journal 7, 661 (1995), WO 95/14098 ) zusammen mit dem Vektor VC-MME354-1 oder VC-MME354-1QCZ für ORFs aus Saccharomyces cerevisiae und zusammen mit dem Vektor VC-MME432-1 oder VC-MME432-1qcz für ORFs aus Escherichia coli verwendet, was jeweils eine „in-frame”-Fusion der FNR-Erkennungssequenz mit den ORFs zur Folge hatte.
  • Für die auf Plastide gerichtete Expression vorzugsweise in Samen wurde der USP-Promotor (Bäumlein et al., Mol Gen Genet. 225 (3): 459–67 (1991)) zusammen mit dem Vektor pMTX461korrp für ORFs aus Saccharomyces cerevisiae zusammen mit dem Vektor VC-MME464-1qcz für ORFs aus Escherichia coli verwendet, was jeweils eine „in-frame”-Fusion der FNR-Erkennungssequenz mit den ORFs zur Folge hatte.
  • Für die auf Plastide gerichtete konstitutive Expression vorzugsweise in grünen Geweben und Samen wurde der PcUbi-Promotor zusammen mit dem Vektor pMTX447korr für ORFs aus Saccharomyces cerevisiae, Escherichia coli, Synechocystis sp., Azotobacter vinelandii, Thermus thermophilus, Arabidopsis thaliana, Brassica napus, Glycine max, Oryza sativa, Physcomitrella patens oder Zea mays verwendet, was jeweils eine „in-frame”-Fusion der FNR-Erkennungssequenz mit den ORFs zur Folge hatte.
  • Beispiel 1d) Konstruktion binärer Vektoren für die auf Mitochondrien gerichtete Expression von Proteinen.
  • Amplifikation der mitochondrialen Erkennungssequenz des Gens IVD aus Arabidopsis thaliana und Konstruktion des Vektors für die auf Mitochondrien gerichtete Expression vorzugsweise in grünen Geweben oder vorzugsweise in Samen. Zur Amplifikation der Erkennungssequenz des IVD-Gens aus A. thaliana wurde genomische DNA aus Blättern von A. thaliana-Pflanzen extrahiert (DNeasy Plant Mini Kit, Qiagen, Hilden). Die gDNA wurde als Matrize für die PCR verwendet. Zur Ermöglichung der Klonierung der Transitsequenz in die Vektoren VC-MME489-1QCZ und VC-MME301-1QCZ wurde eine EcoRI-Restriktionsenzym-Erkennungssequenz sowohl zu dem Vorwärts- als auch zu dem Revers-Primer hinzugefügt, wohingegen zur Klonierung in die Vektoren VC-MME220-1qcz, VC-MME221-1qcz und VC-MME289-1qcz eine PmeI-Restriktionsenzym-Erkennungssequenz zu dem Vorwärts-Primer und eine NcoI-Stelle zu dem Revers-Primer hinzugefügt wurde.
    Figure 03720001
    Das mit den Primern IVD5EcoResgen und ND3EcoResgen erhaltene PCR-Fragment wurde mit EcoRI gespalten und in die Vektoren VC-MME489-1QCZ und VC-MME301-1QCZ ligiert, die ebenfalls mit EcoRI gespalten worden waren. Die korrekte Orientierung der IVD-Erkennungssequenz wurde durch Sequenzierung überprüft. Bei den in diesem Ligierungsschritt erzeugten Vektoren handelte es sich um VC-MME356-1QCZ bzw. VC-MME462-1QCZ. Das mit den Primern ND5PmeColic and IVD3NcoColic erhaltene PCR-Fragment wurde mit PmeI und NcoI gespalten und in die Vektoren VC-MME220-1qcz, VC-MME221-1qcz und VC-MME289-1qcz ligiert, die mit SmaI und NcoI gespalten worden waren. Bei den in diesem Ligierungsschritt erzeugten Vektoren handelte es sich um VC-MME431-1qcz, VC-MME465-1qcz beziehungsweise VC-MME445-1qcz. Für die auf Mitochondrien gerichtete konstitutive Expression in vorzugsweise grünen Geweben wurde ein künstlicher Promotor A(ocs)3AmasPmas Promotor (Super-Promotor)) (Ni et al,. Plant Journal 7, 661 (1995), WO 95/14098 ) zusammen mit dem Vektor VC-MME356-1QCZ für ORFs aus Saccharomyces cerevisiae und zusammen mit dem Vektor VC-MME431-1qcz für ORFs aus Escherichia coli verwendet, was jeweils eine „in-frame”-Fusion der IVD-Sequenz mit den betreffenden ORFs zur Folge hatte. Für die auf Mitochondrien gerichtete Expression vorzugsweise in Samen wurde der USP-Promotor (Bäumlein et al., Mol Gen Genet. 225(3): 459–67 (1991)) zusammen mit dem Vektor VC-MME462-1QCZ für ORFs aus Saccharomyces cerevisiae zusammen mit dem Vektor VC-MME465-1qcz für ORFs aus Escherichia coli verwendet, was jeweils eine „in-frame”-Fusion der IVD-Sequenz mit den betreffenden ORFs zur Folge hatte. Für die auf Mitochondrien gerichtete konstitutive Expression vorzugsweise in grünen Geweben und Samen wurde der PcUbi-Promotor zusammen mit dem Vektor VC-MME445-1qcz für ORFs aus Saccharomyces cerevisiae, Escherichia coli, Synechocystis sp., Azotobacter vinelandii, Thermus thermophilus, Arabidopsis thaliana, Brassica napus, Glycine max, Oryza sativa, Physcomitrella patens oder Zea mays verwendet, was jeweils eine „in-frame”-Fusion der IVD-Sequenz mit den betreffenden ORFs zur Folge hatte.
  • Andere brauchbare binäre Vektoren sind dem Fachmann bekannt; einen Übersichtsartikel zu binären Vektoren und ihrer Verwendung findet sich in Hellens R., Mullineaux P. und Klee H., (Trends in Plant Science, 5 (10), 446 (2000)). Solche Vektoren müssen gleichermaßen mit entsprechenden Promotoren und Erkennungssequenzen ausgestattet sein.
  • Beispiel 1e) Klonieren von wie in Tabelle I, Spalten 5 und 7, gezeigten erfindungsgemäßen Sequenzen in die verschiedenen Expressionsvektoren.
  • Zum Klonieren der ORFs der SEQ ID NO: 382 aus S. cerevisiae in Vektoren mit der Resgen-Adaptorsequenz wurde die betreffende Vektor-DNA mit dem Restriktionsenzym NcoI behandelt. Zur Klonierung der ORFs aus Saccharomyces cerevisiae in Vektoren mit der Colic-Adaptorsequenz wurde die betreffende Vektor-DNA mit den Restriktionsenzymen PacI und NcoI gemäß dem Standardprotokoll (MBI Fermentas) behandelt. Zur Klonierung der ORFs aus Escherichia coli, Synechocystis sp., Azotobacter vinelandii, Thermus thermophilus, Arabidopsis thaliana, Brassica napus, Glycine max, Oryza sativa, Physcomitrella patens oder Zea mays wurde die Vektor-DNA mit den Restriktionsenzymen PacI und NcoI gemäß dem Standardprotokoll (MBI Fermentas) behandelt. In allen Fällen wurde die Reaktion durch 20 minütige Desaktivierung bei 70°C gestoppt und gemäß dem Standardprotokoll (Qiagen bzw. Macherey-Nagel) über QIAquick- oder NucleoSpin Extract II-Säulen gereinigt. Dann wurde das PCR-Produkt, das den amplifizierten ORF mit den betreffenden Adaptorsequenzen und der Vektor-DNA darstellt, gemäß dem Standardprotokoll (MBI Fermentas) mit T4 DNA-Polymerase behandelt, so dass Einzelstrangüberhänge erhalten wurden, und zwar mit den Parametern 1 Einheit T4 DNA-Polymerase bei 37°C für 2–10 Minuten für den Vektor und 1–2 Einheiten T4 DNA-Polymerase bei 15–17°C für 10–60 Minuten für das PCR-Produkt mit der SEQ ID NO: 382. Die Reaktion wurde durch Zugabe von Hochsalzpuffer abgestoppt und über QIAquick- oder NucleoSpin Extract II-Säulen gemäß dem Standardprotokoll (Qiagen bzw. Macherey-Nagel) aufgereinigt. Der Fachmann kann nach diesem Beispiel sämtliche in Tabelle I, vorzugsweise Spalte 5, aufgeführten Sequenzen klonieren.
  • Etwa 30–60 ng präparierter Vektor und eine definierte Menge des präparierten Amplifikats wurden gemischt und bei 65°C für 15 Minuten lang hybridisiert gefolgt von 37°C 0,1°C/1 Sekunde, gefolgt von 37°C 10 Minuten, gefolgt von 0,1°C/1 Sekunde, dann 4–10°C. Die ligierten Konstrukte wurden in dem gleichen Reaktionsgefäß durch Zugabe kompetenter E. coli-Zellen (Stamm DH5alpha) und Inkubation für 20 Minuten bei 1°C, und einem anschließenden Hitzeschock für 90 Sekunden bei 42°C sowie Abkühlen auf 1–4°C transformiert. Dann wurde Vollmedium (SOC) zugegeben und das Gemisch wurde für 45 Minuten bei 37°C inkubiert. Das gesamte Gemisch wurde anschließend auf eine Agarplatte mit 0,05 mg/ml Kanamycin plattiert und über Nacht bei 37°C inkubiert.
  • Das Ergebnis des Klonierungsschritts wurde durch Amplifikation mit Hilfe der Primer verifiziert, die stromaufwärts und stromabwärts der Integrationsstelle binden, so dass die Amplifikation der Insertion ermöglicht wurde. Die Amplifikationen erfolgten wie in dem Protokoll der Taq DNA-Polymerase (Gibco-BRL) beschrieben. Die Amplifikationszyklen waren wie folgt:
    1 Zyklus von 1–5 Minuten bei 94°C, gefolgt von 35 Zyklen mit jeweils 15–60 Sekunden bei 94°C, 15–60 Sekunden bei 50–66°C und 5–15 Minuten bei 72°C, gefolgt von 1 Zyklus von 10 Minuten bei 72°C, dann 4–16°C.
  • Mehrere Kolonien wurden überprüft, jedoch wurde nur die Kolonie, für die ein PCR-Produkt mit der erwarteten Größe nachgewiesen wurde, in den folgenden Schritten verwendet. Ein Teil dieser positiven Kolonie wurde in ein Reaktionsgefäß überführt, das mit Vollmedium (LB), das mit Kanamycin angereichert war, gefüllt war, und über Nacht bei 37°C inkubiert. Die Plasmidzubereitung erfolgte wie im Qiaprep- bzw. NucleoSpin Multi-96 Plus-Standardprotokoll (Qiagen bzw. Macherey-Nagel) angegeben.
  • Herstellung transgener Pflanzen, die SEQ ID NO: 382 oder eine andere, in Tabelle I, vorzugsweise Spalte 5, aufgeführte Sequenz exprimieren
  • 1–5 ng isolierte Plasmid-DNA wurde durch Elektroporation oder Transformation in kompetente Zellen von Agrobacterium tumefaciens, Stamm GV 3101 pMP90 (Koncz und Schell, Mol. Gen. Gent. 204, 383, 1986), transformiert. Danach wurde Vollmedium (YEP) zugegeben und das Gemisch wurde für 3 Stunden bei 28°C in ein frisches Reaktionsgefäß überführt. Anschließend wurde das gesamte Reaktionsgemisch auf YEP-Agarplatten plattiert, die mit den entsprechenden Antibiotika, beispielsweise Rifampicin (0,1 mg/ml), Gentamycin (0,025 mg/ml) und Kanamycin (0,05 mg/ml), angereichert waren, und 48 Stunden lang bei 28°C inkubiert. Die Agrobakterien, die das Plasmidkonstrukt enthielten, wurden dann zur Transformation von Pflanzen verwendet.
  • Mit Hilfe einer Pipettenspitze wurde eine Kolonie von der Agarplatte gepickt und in 3 ml flüssigem TB-Medium aufgenommen, das auch geeignete Antibiotika, wie oben beschrieben, enthielt. Die Vorkultur wurde 48 Std. bei 28°C und 120 U/min gezüchtet. 400 ml LB-Medium, das die gleichen Antibiotika wie oben enthielt, wurde für die Hauptkultur verwendet. Die Vorkultur wurde in die Hauptkultur überführt. Sie wurde 18 Std. bei 28°C und 120 U/min gezüchtet. Nach Zentrifugation bei 4000 U/min wurde das Pellet in Infiltrationsmedium (MS-Medium, 10% Saccharose) resuspendiert.
  • Zum Anziehen der Pflanzen für die Transformation wurden Wannen (Piki Saat 80, grün, mit Siebboden versehen, 30 × 20 × 4,5 cm, von Wiesauplast, Kunststofftechnik, Deutschland) bis zur Hälfte mit einem GS 90-Substrat (Standardboden, Werkverband E.V., Deutschland) gefüllt. Die Wannen wurden über Nacht mit 0,05% Proplant-Lösung (Chimac-Apriphar, Belgien) gegossen. Samen von A. thaliana C24 (Nottingham Arabidopsis Stock Centre, UK; NASC Stock N906) wurden über die Wanne verteilt, und zwar etwa 1000 Samen pro Wanne. Die Wannen wurden mit einer Haube abgedeckt und in der Stratifikationseinheit (8 h, 110 μmol/m2s1, 22°C; 16 h, Dunkelheit, 6°C) untergebracht. Nach 5 Tagen wurden die Wannen in einer Kammer mit kurztaggesteuerter Umgebung (8 h, 130 μmol/m2s1, 22°C; 16 Std., Dunkelheit 20°C) untergebracht, wo sie etwa 10 Tage verblieben, bis sich die ersten echten Blätter gebildet hatten.
  • Die Keimlinge wurden in Töpfe überführt, die das gleiche Substrat enthielten (Teku Töpfe, 7 cm, LC Serie, hergestellt von Pöppelmann GmbH & Co, Deutschland). Für jeden Topf wurden fünf Pflanzen ausgestochen. Die Töpfe wurden dann in die Kammer mit kurztaggesteuerter Umgebung zurückgestellt, damit die Pflanzen weiter wachsen konnten. Nach 10 Tagen wurden die Pflanzen in das Gewächshaus (ergänzende Beleuchtung 16 h, 340 μE/m2s, 22°C; 8 h, Dunkelheit, 20°C) überführt, wo sie weitere 17 Tage wachsen konnten.
  • Für die Transformation wurden 6 Wochen alte Arabidopsis-Pflanzen, die gerade zu blühen begonnen hatten, 10 Sekunden lang in die vorstehend beschriebene Agrobakteriensuspension getaucht, die vorher mit 10 μl Silwett L77 (Crompton S. A., Osi Specialties, Schweiz) behandelt worden war. Das entsprechende Verfahren ist in Clough J. C. und Bent A. F. (Plant J. 16, 735 (1998)) beschrieben. Die Pflanzen wurden anschließend 18 Stunden lang in einer Feuchtkammer untergebracht. Danach wurden die Töpfe zurück in das Gewächshaus gestellt, damit die Pflanzen weiter wachsen konnten. Die Pflanzen verblieben weitere 10 Wochen im Gewächshaus, bis die Samen erntereif waren. Je nach dem Toleranzmarker, der zur Selektion der transformierten Pflanzen verwendet wurde, wurden die geernteten Samen im Gewächshaus ausgepflanzt und einer Sprühselektion unterzogen oder ansonsten zuerst sterilisiert und dann auf Agarplatten gezüchtet, die mit dem entsprechenden Selektionsmittel angereichert waren. Da der Vektor das Bar-Gen als Toleranzmarker enthielt, wurden die Jungpflanzen viermal in einem Abstand von 2 bis 3 Tagen mit 0,02% BASTA® besprüht, und man ließ die transformierten Pflanzen Samen bilden. Die Samen transgener A. thaliana-Pflanzen wurden in einem Gefrierschrank (bei –20°C) aufbewahrt.
  • Screening von Pflanzen (Arabidopsis) auf Wachstum bei begrenztem Stickstoffvorrat Beim Screening kamen zwei verschiedene Vorschriften zur Anwendung:
    • – Vorschrift 1). Pro transgenem Konstrukt wurden 4 unabhängige transgene Linie (= Ereignisse) getestet (22–28 Pflanzen pro Konstrukt). Arabidopsis thaliana Samen werden in Töpfe ausgesät, die eine 1:1 (v:v) Mischung von nährstoffarmem Boden (”Einheitserde Typ 0”, 30% Lehm, Tantau, Wansdorf Deutschland) und Sand enthalten. Die Keimung wird durch eine 4-tägige Dunkelperiode bei 4°C induziert. Anschließend werden die Pflanzen unter Standardwachstumsbedingungen (Photoperiode mit 16 h Licht und 8 h Dunkelheit, 20°C, 60% relative Feuchtigkeit, und eine Photonenflussdichte von 200 μE) herangezogen. Die Pflanzen werden herangezogen und kultiviert, unter anderem werden sie jeden zweiten Tag mit einer stickstoffarmen Nährstofflösung gegossen. Die stickstoffarme Nährstofflösung enthält z. B. neben Wasser
    Mineralnährstoff Endkonzentration
    KCl 3,00 mM
    MgSO4 × 7 H2O 0,5 mM
    CaCl2 × 6 H2O 1,5 mM
    K2SO4 1,5 mM
    NaH2PO4 1,5 mM
    Fe-EDTA 40 μM
    H3BO3 25 μM
    MnSO4 × H2O 1 μM
    ZnSO4 × 7 H2O 0,5 μM
    Cu2SO4 × 5 H2O 0,3 μM
    Na2MoO4 × 2 H2O 0,05 μM
  • Nach 9 bis 10 Tagen werden die Pflanzen vereinzelt. Nach einer Gesamtzeit von 28 bis 31 Tagen werden die Pflanzen geerntet und anhand des Frischgewichts der oberirdischen Teile der Pflanzen eingestuft. Die Zunahme an Biomasse wird als Verhältnis des Frischgewichts der oberirdischen Teile der betreffenden transgenen Pflanze und der nicht transgenen Pflanze vom Wildtyp gemessen.
    • – Vorschrift 2). Beim Screening von transgenen Pflanzen wurde eine spezielle Kulturvorrichtung verwendet. Um einen hohen Durchsatz zu erzielen, werden Pflanzen auf Agarplatten mit einem begrenzten Stickstoffvorrat (adaptiert von Estelle und Somerville, 1987) auf Biomasseproduktion gescreent. Diese Screening-Pipeline umfasst zwei Ebenen. Transgene Linien werden auf einer nächsten Ebene getestet, wenn die Produktion von Biomasse im Vergleich zu Pflanzen vom Wildtyp signifikant verbessert ist. Bei jeder Ebene wird die Anzahl an Wiederholungstests und die statistische Stringenz erhöht.
    Beim Aussäen werden die Samen mit Hilfe eines Zahnstochers aus den Eppendorf-Röhrchen entnommen und auf die obenerwähnten Agarplatten mit begrenztem Stickstoffvorrat (0,05 mM KNO3) gegeben. Insgesamt werden auf jeder Platte (12 × 12 cm) ungefähr 15–30 Samen verteilt. Nach dem Säen der Samen werden die Platten 2–4 Tage lang im Dunkeln bei 4°C stratifiziert. Nach dem Stratifizieren werden die Testpflanzen 22 bis 25 Tage lang bei einem 16-h-Licht, 8-h-Dunkelheit-Rhythmus bei 20°C, einer Luftfeuchtigkeit von 60% und einer CO2-Konzentration von ungefähr 400 ppm herangezogen. Die verwendeten Lichtquellen erzeugen ein Licht, das dem Farbspektrum der Sonne ähnelt, mit einer Lichtintensität von ungefähr 100 μE/m2s. Nach 10 bis 11 Tagen werden die Pflanzen vereinzelt. Ein verbessertes Wachstum unter Stickstoffmangelbedingungen wird nach 20–25 Tagen Wachstum anhand der Biomasseproduktion von Sprossen und Wurzeln der transgenen Pflanzen im Vergleich zu Wildtyp-Kontrollpflanzen bewertet. Transgene Linien, die eine signifikant verbesserte Biomasseproduktion im Vergleich zu Pflanzen vom Wildtyp zeigen, werden auf der nächsten Stufe dem folgenden Experiment auf Boden unterzogen, wie in Vorschrift 1 beschrieben, wobei jedoch pro Konstrukt 3–6 Linien getestet wurden (bis zu 60 Pflanzen pro Konstrukt).
  • Die Biomasseproduktion von transgenem, unter eingeschränkter Stickstoffversorgung herangezogenem Arabidopsis thaliana ist in Tabelle VIIIa gezeigt: Biomasseproduktion wurde durch Wiegen von Pflanzenrosetten gemessen. Die Zunahme an Biomasse wurde als Verhältnis des Durchschnittsgewichts transgener Pflanzen zum Durchschnittsgewicht von Wildtyp-Kontrollpflanzen des Wildtyps aus dem gleichen Experiment berechnet. Angeführt ist die mittlere Zunahme der Biomasse von transgenen Konstrukten (Signifikanzwert < 0,3 und Zunahme an Biomasse > 5% (Verhältnis > 1,05)) Tabelle VII-A (NUE):
    SeqID Ziel Genort Zunahme an Biomasse
    38 zytoplasmatisch B0414 1,610
    147 zytoplasmatisch B2931 1,209
    172 zytoplasmatisch B3945 1,457
    382 zytoplasmatisch Yel004w 1,370
    917 zytoplasmatisch Yhr204w 1,469
    952 zytoplasmatisch Yll053c 1,525
    1320 zytoplasmatisch Yml123c 1,597
    1648 zytoplasmatisch Ynl142w 1,593
    2081 zytoplasmatisch Ypr035w 1,237
    2406 plastidisch B0903 1,397
    2841 plastidisch B2704 1,140
    3978 plastidisch Ydr142c 1,305
    4051 plastidisch Ygr289c 1,256
    4495 zytoplasmatisch Yil053w 1,498
    4622 zytoplasmatisch Ylr027c 1,172
    5070 zytoplasmatisch Yml079w 1,057
    5159 zytoplasmatisch Yol058w 1,172
    5746 zytoplasmatisch Ypl180w 1,169
    6581 zytoplasmatisch B1906 1,321
    6609 zytoplasmatisch B2371 1,261
    6949 zytoplasmatisch B2881 1,202
    7078 zytoplasmatisch B3106 1,533
    7467 zytoplasmatisch B3410 1,286
    7492 plastidisch B4209 1,232
    7591 zytoplasmatisch SLL1545 1,406
    7670 mitochondrisch SLR1348 1,268
    8648 plastidisch B1600 1,616
    8760 plastidisch B1900 1,318
    8861 zytoplasmatisch SLL0099 1,582
    9046 zytoplasmatisch SLL0383 1,432
    9307 zytoplasmatisch SLR1520 1,441
    9479 zytoplasmatisch YDR147W 1,117
    9553 plastidisch YPL148C 1,226
    10404 plastidisch B1008 1,166
    10591 plastidisch B3347 1,339
    11501 zytoplasmatisch YHR176W 1,330
    11564 zytoplasmatisch B2881_2 1,202
    11695 zytoplasmatisch B3945_2 1,457
    11907 zytoplasmatisch Yhr204w_2 1,469
    11944 zytoplasmatisch Ynl142w_2 1,593
    12357 zytoplasmatisch Yol058w_2 1,172 (zytoplasmatisch)
    12936 zytoplasmatisch Ypr035w_2 1,237
  • Pflanzen-Screening hinsichtlich Wachstum unter Niedertemperatur-Bedingungen In einem Standardexperiment wurde Erdboden als eine Mischung von 3,5:1 (v/v) an nährstoffreicher Erde (GS90, Tantau, Wansdorf, Deutschland) und Sand zubereitet. Blumentöpfe wurden mit dem Erdgemisch befüllt und in Wannen gebracht. Wasser wurde den Wannen zugesetzt, damit die Erdmischung eine angemessene Menge an Wasser für die Aussaat-Prozedur aufnimmt. Die Samen für transgene A. thaliana-Pflanzen wurden in die Blumentöpfe eingesät (6 cm Durchmesser). Blumentöpfe wurden gesammelt, bis sie eine Wanne für die Wachstumskammer füllten. Dann wurde die gefüllte Wanne mit einer transparenten Haube abgedeckt und in das Regalsystem der vorgekühlten (4°C–5°C) Wachstumskammer überführt. Die Stratifikation wurde während eines Zeitraums von 2–3 Tagen im Dunklen bei 4°C–5°C etabliert. Die Keimung der Samen und das Wachstum wurden bei einer Wachstumsbedingung von 20°C, 60% relative Feuchtigkeit, 16 h-Lichtperiode und Beleuchtung mit Fluoreszenzlicht bei 200 μmol/m2s initiiert. Die Hauben wurden 7 Tage nach dem Säen entfernt. Die BASTA-Selektion wurde am Tag 9 nach der Aussaat durch Besprühen der Blumentöpfe mit den Pflänzchen von oben vorgenommen. Demgemäß wurde eine Lösung von 0,07% (v/v) BASTA-Konzentrat (183 g/l Glufosinat-Ammonium) in Leitungswasser versprüht. Transgene Ereignisse und Wildtyp-Kontrollpflanzen waren zufallsmäßig in der Kammer verteilt. Die Anordnung der Wannen innerhalb der Kammern wurde an Arbeitstagen ab dem Tag 7 nach dem Einsäen verändert. Das Bewässern erfolgte alle zwei Tage, nachdem die Hauben von den Wannen entfernt worden waren. Die Pflanzen wurden 12–13 Tage nach der Aussaat durch Entfernen des Überschusses an Keimlingen, wobei nur ein Keimling in einem Blumentopf übergelassen wurde, vereinzelt. Kälte (Kühlen auf 11°C–12°C) wurde 14 Tage nach der Aussaat bis zum Ende des Experiments angewandt. Zum Messen der Biomasseleistung wurde das Pflanzenfrischgewicht zur Erntezeit (29–30 Tage nach der Aussaat) durch Abschneiden der Sprosse und Wiegen derselben ermittelt. Neben dem Wiegen wurde im Falle von Pflanzen, welche von der Wildtypkontrolle abweichen, eine Phänotyp-Information hinzugefügt. Die Pflanzen waren bei der Ernte im Stadium vor dem Aufblühen und vor dem Wachstum des Blütenstands. Signifikanzwerte für die statistische Signifikanz der Biomasse-Änderungen wurden durch Anwenden des t-Tests nach Student (Parameter: zweiseitige, ungleiche Varianz) berechnet. Drei aufeinanderfolgende Experimente wurden durchgeführt. Im ersten Experiment wurde ein Individuum aus jeder transformierten Linie getestet. Im zweiten Experiment, wurde das Ereignis, das im ersten Experiment als abkühlungstolerant oder -resistent ermittelt wurde, d. h. einen erhöhten Ertrag, in diesem Fall eine erhöhte Biomasseproduktion, im Vergleich zum Wildtyp aufzeigte, einem Bestätigungs-Screening gemäß den gleichen experimentellen Verfahrensweisen unterzogen. In diesem Experiment wurden max. 10 Pflanzen jedes toleranten oder resistenten Ereignisses kultiviert, behandelt und bewertet, wie zuvor. In den ersten zwei Experimenten wurde Abkühlungs-Toleranz oder Toleranz und Biomasseproduktion mit Wildtyp-Pflanzen verglichen, Im dritten Experiment wurden bis zu 20 Replikate jedes bestätigten toleranten Ereignisses, d. h. diejenigen, die im zweiten Experiment als tolerant oder resistent bewertet worden waren, wachsen gelassen, behandelt und bewertet, wie zuvor. Die Ergebnisse hiervon sind in der Tabelle VIII zusammengefasst.
  • Tabelle VIIIB: Biomasseproduktion von transgenen A. thaliana nach Herbeiführung von Abkühlungsstress.
  • Biomasseproduktion wurde durch Wiegen von Pflanzenrosetten gemessen. Der Biomassezuwachs wurde als Verhältnis des durchschnittlichen Gewichts für trangene Pflanzen im Vergleich zum durchschnittlichen Gewicht von Wildtyp-Kontrollpflanzen berechnet. Der minimale und maximale Biomassezuwachs, beobachtet innerhalb der Gruppe von transgenen Ereignissen, ist für einen Genort angegeben, wobei alle Ereignisse einen Signifikanzwert < 0,1 und einen Biomassezuwachs > 1,1 zeigen. Tabelle VIII-B (LT mit min/max Werten)
    SeqID Ziel Genort Biomassezu Biomassezu
    wachs min. wachs max.
    38 zytoplasmatisch B0414 1,334 1,361
    147 zytoplasmatisch B2931 1,209 1,357
    172 zytoplasmatisch B3945 1,192 1,353
    382 zytoplasmatisch Yel004w 1,368 1,575
    406 zytoplasmatisch Yer177w 1,222 1,300
    917 zytoplasmatisch Yhr204w 1,383 1,697
    952 zytoplasmatisch Yll053c 1,302 1,353
    1320 zytoplasmatisch Yml123c 1,311 1,405
    1648 zytoplasmatisch Ynl142w 1,380 1,808
    2065 zytoplasmatisch Ynr040w 1,276 1,390
    2081 zytoplasmatisch Ypr035w 1,370 1,451
    2406 plastidisch B0903 1,326 1,391
    2564 zytoplasmatisch B1393 1,186 1,224
    2841 plastidisch B2704 1,233 1,462
    2879 zytoplasmatisch B2905 1,246 1,289
    3109 plastidisch B3206 1,193 1,304
    3403 zytoplasmatisch B3659 1,325 1,696
    3441 zytoplasmatisch B3871 1,233 1,611
    3978 plastidisch Ydr142c 1,205 1,274
    4047 zytoplasmatisch Yer175w-a 1,502 2,340
    4051 plastidisch Ygr289c 1,218 1,271
    4131 plastidisch Yhr044c 1,215 1,215
    4217 zytoplasmatisch YHR072W 1,387 1,387
    4491 zytoplasmatisch Yhr213w-a 1,284 1,570
    4495 zytoplasmatisch Yil053w 1,463 1,523
    4558 plastidisch Yjl103c 1,269 1,296
    4589 plastidisch Yjl137c 1,395 1,48
    4622 zytoplasmatisch Ylr027c 1,342 1,848
    5070 plastidisch Yml079w 1,296 1,331
    5102 plastidisch Ymr157c 1,190 1,267
    5115 plastidisch Ynl024c 1,191 1,376
    5159 plastidisch Yol058w 1,235 1,300
    5746 zytoplasmatisch Ypl180w 1,247 2,471
    5756 plastidisch Ypr167c 1,295 1,303
    6086 plastidisch B0036 1,220 1,336
    6581 zytoplasmatisch B1906 1,137 1,290
    6609 zytoplasmatisch B2371 1,207 1,328
    6949 zytoplasmatisch B2881 1,157 1,230
    7078 zytoplasmatisch B3106 1,241 1,381
    7270 plastidisch B3400 1,176 1,394
    7467 zytoplasmatisch B3410 1,168 1,420
    7492 plastidisch B4209 1,112 1,489
    7591 zytoplasmatisch SLL1545 1,248 1,293
    7670 mitochondrisch SLR1348 1,349 1,413
    8236 plastidisch YGR191W 1,159 1,298
    8563 zytoplasmatisch AT1G22920 1,149 1,610
    8648 plastidisch B1600 1,276 1,293
    8760 plastidisch B1900 1,264 1,341
    8861 zytoplasmatisch SLL0099 1,199 1,310
    9046 zytoplasmatisch SLL0383 1,158 1,415
    9280 zytoplasmatisch SLR1094 1,122 1,352
    9307 zytoplasmatisch SLR1520 1,284 1,361
    9430 zytoplasmatisch YDL142C 1,187 1,503
    9479 zytoplasmatisch YDR147W 1,142 1,167
    9500 plastidisch YLR284C 1,150 1,306
    9553 plastidisch YPL148C 1,127 1,276
    9574 plastidisch YPR074C 1,222 1,287
    10404 plastidisch B1008 1,512 1,585
    10503 plastidisch B1529 1,119 1,426
    10591 plastidisch B3347 1,136 1,480
    10934 zytoplasmatisch YBR176W 1,132 1,429
    11461 zytoplasmatisch YGR177C 1,229 1,416
    11501 zytoplasmatisch YHR176W 1,167 1,621
    11564 zytoplasmatisch B2881_2 1,157 1,230
    11695 zytoplasmatisch B3945_2 1,192 1,353
    11907 zytoplasmatisch Yhr204w_2 1,383 1,697
    11944 zytoplasmatisch Ynl142w_2 1,380 1,808
    12357 plastidisch Yol058w_2 1,235 1,300
    12936 zytoplasmatisch Ypr035w_2 1,370 1,451
  • Screening von Pflanzen auf Wachstum unter zyklischen Dürrebedingungen
  • In dem Assay mit zyklischen Dürrebedingungen werden die Pflanzen wiederholtem Stress ausgesetzt, ohne dass dies zur Austrockung führt. In einem Standardexperiment wird Boden als 1:1(v/v)-Gemisch von nährstoffreichem Boden (GS90, Tantau, Wansdorf, Deutschland) und Quarzsand hergestellt. Töpfe (6 cm Durchmesser) wurden mit diesem Gemisch gefüllt und in Wannen gestellt. In die Wannen wurde Wasser gegeben, so dass das Bodengemisch eine angemessene Menge Wasser für das Säverfahren aufnehmen konnte (Tag 1) und anschließend wurden Samen von transgenen A. thaliana-Pflanzen und ihre Wildtypkontrollen in Töpfe gesät. Dann wurde die gefüllte Wanne mit einem transparenten Deckel abgedeckt und in eine vorgekühlte (4°C–5°C) und abgedunkelte Wachstumskammer überführt. Die Stratifizierung wurde über einen Zeitraum von 3 Tagen im Dunkeln bei 4°C–5°C oder alternativ für 4 Tage im Dunkeln bei 4°C etabliert. Die Keimung der Samen und das Wachstum wurde bei Wachstumsbedingungen von 20°C, 60% relativer Feuchtigkeit, 16 Photoperiode und Belichtung mit Fluoreszenzlicht bei 200 μmol/m2s eingeleitet. Die Deckel wurden 7–8 Tage nach der Aussaat abgenommen. Eine BASTA-Selektion erfolgte am Tag 10 oder Tag 11 (9 oder 10 Tage nach der Aussaat) durch Besprühen der Töpfe mit den Pflänzchen von oben. Im Standardexperiment wurde eine 0,07%ige (v/v) Lösung von BASTA-Konzentrat (183 g/l Glufosinat-Ammonium) in Leitungswasser einmal versprüht oder alternativ wurde eine 0,02%ige (v/v) BASTA-Lösung dreimal versprüht. Die Wildtyp-Kontrollpflanzen wurden nur mit Leitungswasser (anstelle von in Leitungswasser gelöstem BASTA) besprüht, aber ansonsten identisch behandelt. Die Pflanzen wurden 13–14 Tage nach der Aussaat vereinzelt, indem die überschüssigen Keimlinge entfernt wurden und ein Keimling im Boden belassen wurde. Die transgenen Ereignisse und die Wildtyp-Kontrollpflanzen wurden gleichmäßig über die Kammer verteilt. Die Versorgung mit Wasser war während des gesamten Experiments einschränkt, und die Pflanzen wurden Zyklen mit Dürre und erneuter Bewässerung ausgesetzt. Die Bewässerung erfolgte am Tag 1 (vor der Aussaat), am Tag 14 oder Tag 15, am Tag 21 oder Tag 22 und schließlich am Tag 27 oder Tag 28. Zur Messung der Biomasseproduktion wurde das Frischgewicht der Pflanzen einen Tag nach der abschließenden Bewässerung (am Tag 28 oder Tag 29) bestimmt, indem die Sprosse abgeschnitten und gewogen wurden. Neben dem Wiegen wurde Phänotyp-Information im Falle solcher Pflanzen hinzugefügt, die sich von der Wildtypkontrolle unterschieden. Die Pflanzen waren bei der Ernte im Stadium vor dem Aufblühen und vor dem Wachstum des Blütenstands. Signifikanzwerte für die statistische Signifikanz der Biomasse-Änderungen wurden durch Anwenden des t-Tests nach Student (Parameter: zweiseitige, ungleiche Varianz) berechnet. Bis zu fünf Linien (Ereignisse) pro transgenem Konstrukt wurden in aufeinander folgenden Stufen (bis zu 4) des Experiments getestet. Nur Konstrukte, die eine positive Leistung zeigten, wurden auf der nächsten Stufe des Experiments untersucht. Gewöhnlich wurden bei der ersten Stufe fünf Pflanzen pro Konstrukt und bei den darauf folgenden Stufen 30–60 Pflanzen getestet. Die Biomasseleistung wurde wie oben beschrieben bewertet. Gezeigt sind die Daten von Konstrukten, die bei wenigstens zwei aufeinander folgenden Stufen des Experiments eine erhöhte Biomasseleistung zeigten.
  • Die Biomasseproduktion von transgenem A. thaliana, das sich unter Wachstumsbedingungen zyklischer Dürre entwickelt hatte, ist in Tabelle VIIIc gezeigt: Biomasseproduktion wurde durch Wiegen von Pflanzenrosetten gemessen. Die Zunahme an Biomasse wurde als Verhältnis des Durchschnittsgewichts transgener Pflanzen zum Durchschnittsgewicht von Pflanzen des Wildtyps aus dem gleichen Experiment berechnet. Angeführt ist die mittlere Zunahme der Biomasse von transgenen Konstrukten (Signifikanzwert < 0,3 und Zunahme an Biomasse > 5% (Verhältnis > 1,05)) Tabelle VIII-C (ZD)
    SeqID Ziel Genort Zunahme an Biomasse
    2065 zytoplasmatisch Ynr040w 1,496
    2406 plastidisch B0903 1,276
    2564 zytoplasmatisch B1393 1,244
    2841 plastidisch B2704 1,192
    2879 zytoplasmatisch B2905 1,233
    3403 zytoplasmatisch B3659 1,128
    4051 plastidisch Ygr289c 1,324
  • Screening von Pflanzen auf Ertragszunahme unter standardisierten Wachstumsbedingungen In diesem Experiment wurde ein Screening von Pflanzen auf Ertragszunahme (in diesem Fall: Zunahme an Biomasseertrag) unter standardisierten Wachstumsbedingungen in Abwesenheit von erheblichem abiotischen Stress durchgeführt. In einem Standardexperiment wird Boden als 3,5:1(v/v)-Gemisch von nährstoffreichem Boden (GS90, Tantau, Wansdorf, Deutschland) und Quarzsand hergestellt. Alternativ wurden die Pflanzen auf nährstoffreichem Boden (GS90, Tantau, Deutschland) herangezogen. Blumentöpfe wurden mit dem Erdgemisch befüllt und in Wannen gebracht. Wasser wurde den Wannen zugesetzt, damit die Erdmischung eine angemessene Menge an Wasser für die Aussaat-Prozedur aufnimmt. Die Samen für transgene A. thaliana-Pflanzen und ihre nicht-transgenen Wildtypkontrollen wurden in Töpfe (6 cm Durchmesser) gesät. Dann wurde die gefüllte Wanne mit einem transparenten Deckel abgedeckt und in eine vorgekühlte (4°C–5°C) und abgedunkelte Wachstumskammer überführt. Die Stratifikation wurde während eines Zeitraums von 3–4 Tagen im Dunklen bei 4°C–5°C etabliert. Die Keimung der Samen und das Wachstum wurden bei einer Wachstumsbedingung von 20°C, 60% relative Feuchtigkeit, 16 h-Lichtperiode und Beleuchtung mit Fluoreszenzlicht bei ungefähr 200 μmol/m2s initiiert. Die Deckel wurden 7–8 Tage nach der Aussaat abgenommen. Eine BASTA-Selektion erfolgte am Tag 10 oder Tag 11 (9 oder 10 Tage nach der Aussaat) durch Besprühen der Töpfe mit den Pflänzchen von oben. Im Standardexperiment wurde eine 0,07%ige (v/v) Lösung von BASTA-Konzentrat (183 g/l Glufosinat-Ammonium) in Leitungswasser einmal versprüht oder alternativ wurde eine 0,02%ige (v/v) BASTA-Lösung dreimal versprüht. Die Wildtyp-Kontrollpflanzen wurden nur mit Leitungswasser (anstelle von in Leitungswasser gelöstem BASTA) besprüht, aber ansonsten identisch behandelt. Die Pflanzen wurden 13–14 Tage nach der Aussaat vereinzelt, indem die überschüssigen Keimlinge entfernt wurden und ein Keimling im Boden belassen wurde. Die transgenen Ereignisse und die Wildtyp-Kontrollpflanzen wurden gleichmäßig über die Kammer verteilt. Gewässert wurde alle zwei Tage nach dem Entfernen der Deckel bei einem Standardexperiment oder alternativ dazu jeden Tag. Zum Messen der Biomasseleistung wurde das Pflanzenfrischgewicht zur Erntezeit (24–29 Tage nach der Aussaat) durch Abschneiden der Sprosse und Wiegen derselben ermittelt. Die Pflanzen waren bei der Ernte im Stadium vor dem Aufblühen und vor dem Wachstum des Blütenstands. Transgene Pflanzen wurden mit den nicht transgenen Wildtyp-Kontrollpflanzen verglichen. Signifikanzwerte für die statistische Signifikanz der Biomasse-Änderungen wurden durch Anwenden des t-Tests nach Student (Parameter: zweiseitige, ungleiche Varianz) berechnet. Zwei verschiedene Arten experimenteller Vorschriften wurden durchgeführt:
    • – Vorschrift 1). Pro transgenem Konstrukt wurden 3–4 unabhängige transgene Linen (= Ereignisse) getestet (22–30 Pflanzen pro Konstrukt), und die Biomasseleistung wurde wie oben beschrieben bewertet.
    • – Vorschrift 2). Bis zu fünf Linien pro transgenem Konstrukt wurden in aufeinander folgenden Stufen (bis zu 4) des Experiments getestet. Nur Konstrukte, die eine positive Leistung zeigten, wurden auf der nächsten Stufe des Experiments untersucht. Gewöhnlich wurden bei der ersten Stufe fünf Pflanzen pro Konstrukt und bei den darauf folgenden Stufen 30–60 Pflanzen getestet. Die Biomasseleistung wurde wie oben beschrieben bewertet. Gezeigt sind die Daten aus dieser Art von Experiment (Vorschrift 2) von Konstrukten, die bei wenigstens zwei aufeinander folgenden Stufen des Experiments eine erhöhte Biomasseleistung zeigten.
  • In Tabelle VIIId ist die Biomasseproduktion von unter Standardbedingungen herangezogenem transgenem A. thaliana gezeigt: Biomasseproduktion wurde durch Wiegen von Pflanzenrosetten gemessen. Die Zunahme an Biomasse wurde als Verhältnis des Durchschnittsgewichts transgener Pflanzen zum Durchschnittsgewicht von Kontrollpflanzen des Wildtyps aus dem gleichen Experiment berechnet. Angeführt ist die mittlere Zunahme der Biomasse von transgenen Konstrukten (Signifikanzwert < 0,3 und Zunahme an Biomasse > 5% (Verhältnis > 1,05)) Tabelle VIII-D (BM):
    SeqID Ziel Genort Zunahme an Biomasse
    38 zytoplasmatisch B0414 1,168
    147 zytoplasmatisch B2931 1,088
    172 zytoplasmatisch B3945 1,191
    382 zytoplasmatisch Yel004w 1,306
    406 zytoplasmatisch Yer177w 1,340
    917 zytoplasmatisch Yhr204w 1,369
    952 zytoplasmatisch Yll053c 1,162
    1320 zytoplasmatisch Yml123c 1,327
    1648 zytoplasmatisch Ynl142w 1,214
    2065 zytoplasmatisch Ynr040w 1,069
    2081 zytoplasmatisch Ypr035w 1,236
    2406 plastidisch B0903 1,260
    2406 zytoplasmatisch B0903 1,286
    2841 plastidisch B2704 1,133
    2879 zytoplasmatisch B2905 1,104
    3109 plastidisch B3206 1,160
    3403 zytoplasmatisch B3659 1,435
    3978 plastidisch Ydr142c 1,476
    4047 zytoplasmatisch Yer175w-a 1,370
    4051 plastidisch Ygr289c 1,398
    4491 zytoplasmatisch Yhr213w-a 1,407
    4495 zytoplasmatisch Yil053w 1,383
    4558 plastidisch Yjl103c 1,175
    4589 plastidisch Yjl137c 1,065
    4622 zytoplasmatisch Ylr027c 1,329
    5070 plastidisch Yml079w 1,066
    5102 plastidisch Ymr157c 1,211
    5115 plastidisch Ynl024c 1,068
    5159 plastidisch Yol058w 1,091
    5746 zytoplasmatisch Ypl180w 1,326
    5756 plastidisch Ypr167c 1,219
    6086 plastidisch B0036 1,117
    6581 zytoplasmatisch B1906 1,092
    6609 zytoplasmatisch B2371 1,121
    6949 zytoplasmatisch B2881 1,074
    7078 zytoplasmatisch B3106 1,082
    7270 plastidisch B3400 1,191
    7467 zytoplasmatisch B3410 1,167
    7492 plastidisch B4209 1,137
    7591 zytoplasmatisch SLL1545 1,208
    7670 mitochondrisch SLR1348 1,376
    8236 plastidisch YGR191W 1,156
    8563 zytoplasmatisch AT1G22920 1,385
    8648 plastidisch B1600 1,401
    8760 plastidisch B1900 1,136
    8861 zytoplasmatisch SLL0099 1,178
    9046 zytoplasmatisch SLL0383 1,383
    9280 zytoplasmatisch SLR1094 1,104
    9307 zytoplasmatisch SLR1520 1,103
    9430 zytoplasmatisch YDL142C 1,200
    9500 plastidisch YLR284C 1,229
    9553 plastidisch YPL148C 1,276
    9574 plastidisch YPR074C 1,245
    10404 plastidisch B1008 1,200
    10591 plastidisch B3347 1,188
    11501 zytoplasmatisch YHR176W 1,258
    11564 zytoplasmatisch B2881_2 1,074
    11695 zytoplasmatisch B3945_2 1,191
    11907 zytoplasmatisch Yhr204w_2 1,369
    11944 zytoplasmatisch Ynl142w_2 1,214
    12357 plastidisch Yol058w_2 1,091
    12936 zytoplasmatisch Ypr035w_2 1,236
  • Beispiel 2: Gentechnische Herstellung von Arabidopsis-Pflanzen mit einem erhöhten Ertrag, z. B. einem erhöhten Ertragsmerkmal, zum Beispiel einer gesteigerten Toleranz gegenüber abiotischem Umweltstress, zum Beispiel einer erhöhten Toleranz gegenüber Dürre und/oder Toleranz gegenüber niedrigen Temperaturen und/oder einer erhöhten Effizienz der Nährstoffausnutzung und/oder einem erhöhten anderen erwähnten Ertragsmerkmal, durch Überexpression von für das ertragserhöhende, z. B. LTRRP- oder YRP-, Protein, z. B. mit der Resistenz gegen und/oder Toleranz gegenüber niedrige(n) Temperaturen in Zusammenhang stehende Protein, kodierenden Genen aus Saccharomyces cerevisiae oder Synechocystis oder E. coli unter Einsatz von gewebespezifischen Promotoren und/oder stressinduzierbaren Promotoren.
  • Transgene Arabidopsis-Pflanzen werden wie in Beispiel 1 so produziert, dass sie die für das LTRRP oder YRP, z. B. ertragserhöhende, z. B. mit der Resistenz gegen und/oder Toleranz gegenüber niedrige(n) Temperaturen kodierenden Transgene unter der Kontrolle eines gewebespezifischen Promotors und/oder eines stressinduzierbaren Promotors exprimieren.
  • Die Pflanzen der T2-Generation werden produziert und unter den Stressbedingungen, vorzugsweise Bedingungen niedriger Temperaturen, herangezogen. Die Biomasseproduktion wird nach einer Gesamtzeit von 29 bis 30 Tagen beginnend mit dem Säen bestimmt. Die transgene Arabidopsis-Pflanze produziert mehr Biomasse als die nicht transgenen Kontrollpflanzen.
  • Beispiel 3: Eine Überexpression des ertragserhöhenden, z. B. LTRRP- oder YRP-Proteins, z. B. mit Resistenz gegen bzw. Toleranz gegenüber niedrigen Temperaturen in Zusammenhang stehenden Proteins, z. B. mit Stress in Zusammenhang stehenden Genen aus S. cerevisiae oder E. coli oder Synechocystis hat eine Toleranz gegenüber multiplen abiotischen Stressfaktoren zur Folge
  • Pflanzen, die eine Toleranz für einen abiotischen Stressfaktor aufweisen, zeigen oft eine Toleranz für einen anderen Umweltstressfaktor. Dieses Phänomen der Kreuztoleranz ist auf der Ebene des Mechanismus noch unklar (McKersie and Leshem, 1994). Trotzdem kann man vernünftigerweise erwarten, dass Pflanzen, die aufgrund der Expression eines Transgens eine gesteigerte Toleranz gegenüber niedrigen Temperaturen, z. B. kühlen Temperaturen und/oder Frosttemperaturen, haben, auch eine Toleranz gegenüber Dürre und/oder Salz und/oder anderen abiotischen Stressfaktoren aufweisen könnten. Diese Hypothese wird dadurch gestützt, dass die Expression mehrerer Gene durch mehrere abiotische Stressfaktoren einschließlich niedrigen Temperaturen, Dürre, Salz, Osmotikum, ABA usw., hinauf- oder herunterreguliert wird (z. B. Hong et al., Plant Mol Biol 18, 663 (1992); Jagendorf und Takabe, Plant Physiol 127, 1827 (2001)); Mizoguchi et al., Proc Natl Acad Sci U S A 93, 765 (1996); Zhu, Curr Opin Plant Biol 4, 401 (2001)).
  • Zur Bestimmung der Salztoleranz werden Samen von A. thaliana sterilisiert (100% Bleichmittel, 0,1% Triton X zweimal für fünf Minuten und fünfmaliges Spülen mit ddH2O). Die Samen wurden auf nichtselektive Medien (1/2 MS, 0,6% Phytagar, 0,5g/1 MES, 1% Saccharose, 2 μg/ml Benamyl) ausplattiert. Man ließ die Samen etwa 10 Tage lang auskeimen. Im 4-5-Blattstadium wurden transgene Pflanzen in Töpfe mit 5,5 cm Durchmesser eingetopft und man ließ sie etwa sieben Tage lang wachsen (22°C, Dauerlicht), wobei nach Bedarf gewässert wurde. Zu Beginn des Assays werden zwei Liter 100 mM NaCl und 1/8 MS zu der Wanne unter den Töpfen zugegeben. Zu der Wanne, die die Kontrollpflanzen enthält, werden drei Liter 1/8 MS hinzugefügt. Die Konzentrationen der NaCl-Anreicherung werden schrittweise alle 4 Tage um 50 mM bis auf 200 mM erhöht. Nach der Salzbehandlung mit 200 mM werden die Frische und das Überleben und die Biomasseproduktion der Pflanzen bestimmt.
  • Zur Bestimmung der Toleranz gegenüber Dürre werden Samen der transgenen und Niedrige-Temperatur-Linien gekeimt, und man lässt sie etwa 10 Tage bis zum 4-5-Blattstadium wie oben heranwachsen. Die Pflanzen werden dann auf Dürrebedingungen umgestellt und können durch das Blüte- und das Samenansatz-Entwicklungsstadium herangezogen werden. Die Photosynthese kann unter Verwendung der Chlorophyll-Fluoreszenz als Indikator für die Photosynthesefähigkeit und die Unversehrtheit der Photosysteme gemessen werden. Das Überleben und die Pflanzen-Biomasseproduktion wird als Indikator für den Samenertrag bestimmt. Pflanzen, die eine Toleranz gegen Salinität oder niedrige Temperaturen besitzen, weisen höhere Überlebensraten und eine höhere Biomasseproduktion, einschließlich höherem Samenertrag und höherer Trockensubstanzproduktion, auf als empfindliche Pflanzen.
  • Beispiel 4: Gentechnische Herstellung von Luzernepflanzen mit einem erhöhtem Ertrag, z. B. einem erhöhten Ertragsmerkmal, zum Beispiel einer gesteigerten Toleranz gegenüber abiotischem Umweltstress, zum Beispiel einer erhöhten Toleranz gegenüber Dürre und/oder Toleranz gegenüber niedrigen Temperaturen und/oder einer erhöhten Effizienz der Nährstoffausnutzung und/oder einem erhöhten anderen erwähnten Ertragsmerkmal, z. B. einer gesteigerten Toleranz gegenüber abiotischem Umweltstress und/oder einer erhöhten Biomasseproduktion, durch Überexpression von für das ertragserhöhende, z. B. LTRRP- oder YRP-, Protein kodierenden Genen, z. B. mit Resistenz gegen und/oder Toleranz gegenüber niedrigen Temperaturen in Zusammenhang stehenden Genen, aus S. cerevisiae oder E. coli oder Synechocystis.
  • Ein regenerierender Klon von Luzerne (Medicago sativa) wird unter Anwendung von Methoden aus dem Stand der Technik (z. B. McKersie et al., Plant Physiol 119, 839 (1999)) transformiert. Die Regeneration und Transformation von Alfalfa ist genotyp-abhängig, und deswegen wird eine regenerierende Pflanze benötigt. Verfahren zum Erhalten von regenerierenden Pflanzen sind beschrieben worden. Sie können zum Beispiel aus dem Kultivar Rangelander (Agriculture Canada) oder anderen im Handel erhältlichen Luzernesorten wie von Brown D. C. W. und Atanassov A. (Plant Cell Tissue Organ Culture 4, 111 (1985)) beschrieben ausgewählt werden. Alternativ dazu wählt man die RA3-Sorte (University of Wisconsin) für die Verwendung in der Gewebekultur (Walker et al., Am. J. Bot. 65, 654 (1978)).
  • Blattstielexplantate werden gemeinsam mit einer Übernachtkultur von Agrobacterium tumefaciens C58C1 pMP90 (McKersie et al., Plant Physiol 119, 839 (1999)) oder LBA4404, die einen binären Vektor enthalten, kultiviert. Für die Pflanzentransformation wurden viele verschiedene binäre Vektorsysteme beschrieben (z. B. An G., in Agrobacterium Protocols, Methods in Molecular Biology, Band 44, S. 47–62, Gartland K. M. A. und Davey M. R. Hrsg. Humana Press, Totowa, New Jersey). Viele basieren auf dem von Bevan (Nucleic Acid Research. 12, 8711 (1984)) beschriebenen Vektor pBIN19, der eine Pflanzengenexpressionskassette, flankiert von der rechten und linken Grenzsequenz aus dem Ti-Plasmid von Agrobacterium tumefaciens, enthält. Eine Pflanzengenexpressionskassette besteht aus mindestens zwei Genen – einem Selektionsmarkergen und einem Pflanzenpromotor, der die Transkription der cDNA oder der genomischen DNA des Merkmalsgens reguliert. Man kann verschiedene Selektionsmarkergene verwenden, darunter das Arabidopsis-Gen, das für ein mutiertes Acetohydroxysäuresynthaseenzym (AHAS-Enzym) kodiert ( US-Patentschriften 5,7673,666 und 6,225,105 ). In ähnlicher Weise lässt sich mit verschiedenen Promotoren das Merkmalsgen, welches für eine konstitutive, entwicklungsgesteuerte, Gewebe- oder Umwelt-Regulation der Gentranskription sorgt, steuern. Im vorliegenden Beispiel wird mit dem 34S-Promotor (GenBank Zugangsnummern M59930 und X16673) für die konstitutive Expression des Merkmalsgens gesorgt.
  • Die Explantate werden 3 Tage lang im Dunkeln auf SH-Induktionsmedium, das 288 mg/l Pro, 53 mg/l Thioprolin, 4,35 g/l K2SO4 und 100 μm Acetosyringinon enthält, gezüchtet. Die Explantate werden in Murashige-Skoog-Medium (Murashige und Skoog, 1962) von halber Stärke gewaschen und auf dem gleichen SH-Induktionsmedium ohne Acetosyringinon, aber mit einem geeigneten Selektionsmittel und geeignetem Antibiotikum zum Inhibieren des Wachstums von Agrobacterium, ausplattiert. Nach mehreren Wochen werden somatische Embryos auf BOi2Y-Entwicklungsmedium, das keine Wachstumsregulatoren, keine Antibiotika, und 50 g/l Saccharose enthält, überführt. Somatische Embryos werden anschließend auf Murashige-Skoog-Medium von halber Stärke keimen gelassen. Bewurzelte Setzlinge werden in Blumentöpfe überführt und in einem Treibhaus wachsen gelassen.
  • Es werden Pflanzen der T1- bzw. T2-Generation produziert und Experimenten mit niedrigen Temperaturen unterzogen, z. B. wie oben in Beispiel 1 beschrieben. Für die Beurteilung der Ertragserhöhung werden z. B. Toleranz gegenüber niedrigen Temperaturen, Biomasseproduktion, intrinsischer Ertrag und/oder Trockenmasseproduktion und/oder Samenertrag mit Pflanzen, denen das Transgen fehlt, z. B. entsprechenden nicht transgenen Pflanzen vom Wildtyp, verglichen.
  • Beispiel 5: Gentechnische Herstellung von Weidelgraspflanzen mit einem erhöhten Ertrag, z. B. einem erhöhten Ertragsmerkmal, zum Beispiel einer gesteigerten Toleranz gegenüber abiotischem Umweltstress, zum Beispiel einer erhöhten Toleranz gegenüber Dürre und/oder Toleranz gegenüber niedrigen Temperaturen und/oder einer erhöhten Effizienz der Nährstoffausnutzung und/oder einem erhöhten anderen erwähnten Ertragsmerkmal, z. B. einer gesteigerten Toleranz gegenüber Stress, vorzugsweise Toleranz gegenüber niedrigen Temperaturen, und/oder einer erhöhten Biomasseproduktion, durch Überexpression von für das ertragserhöhende, z. B. LTRRP- oder YRP-, Protein kodierenden Genen, z. B. mit Toleranz gegenüber niedrigen Temperaturen in Zusammenhang stehenden Genen, aus S. cerevisiae oder E. coli oder Synechocystis.
  • Samen verschiedener Weidelgrassorten können als Quellen von Explantaten für die Transformation verwendet werden, einschließlich der handelsüblichen Sorte Gunne, die von der Firma Svalöf Weibull Samenhandel erhältlich ist, oder die Sorte Affinity. Die Samen werden nacheinander 1 Minute lang mit 1% Tween-20 und 60 Minuten lang mit 100% Bleichmittel oberflächensterilisiert, 3mal jeweils 5 Minuten lang mit deionisiertem und destilliertem H2O gespült und anschließend 3–4 Tage lang auf feuchtem, sterilem Filterpapier im Dunkeln keimen gelassen. Die Setzlinge werden ferner 1 Minute lang mit 1% Tween-20, 5 Minuten mit 75% Bleichmittel, sterilisiert und dreimal mit dd H2O jeweils 5 Minuten lang gespült.
  • Die oberflächensterilisierten Samen werden auf das Kallusinduktionsmedium umgesetzt, das Murashige und Skoog-Basalsalze und Vitamine, 20 g/l Saccharose, 150 mg/l Asparagin, 500 mg/l Casein-Hydrolysat, 3 g/l Phytagel, 10 mg/l BAP und 5 mg/l Dicamba enthält. Die Platten werden 4 Wochen lang im Dunklen bei 25°C für die Samenkeimung und zur Induktion von embryogenem Kallus inkubiert.
  • Nach 4 Wochen auf dem Kallusinduktionsmedium werden die Sprosse und Wurzeln der Keimlinge abgeschnitten, der Kallus wird auf frisches Medium umgesetzt, weitere 4 Wochen lang kultiviert und dann 2 Wochen lang auf MSO-Medium ins Licht umgesetzt. Mehrere (11–17 Wochen alte) Kallusstückchen werden entweder durch ein 10-Mesh-Sieb gesiebt und auf Kallusinduktionsmedium gesetzt oder in 100 ml flüssiges Weidelgras-Kallusinduktionsmedium (dasselbe Medium wie für die Kallusinduktion, mit Agar) in einem 250 ml-Kolben gezüchtet. Der Kolben wird in Folie eingewickelt und im Dunklen bei 23°C eine Woche lang bei 175 U/min geschüttelt. Durch Sieben der Flüssigkultur durch ein 40-Mesh-Sieb werden die Zellen gesammelt. Die auf dem Sieb gesammelte Fraktion wird auf festem Weidelgras-Kallusinduktionsmedium ausplattiert und darauf 1 Woche lang im Dunkeln bei 25°C kultiviert. Der Kallus wird dann auf MS-Medium mit 1% Saccharose umgesetzt und darauf 2 Wochen lang gezüchtet.
  • Die Transformation kann entweder mit Agrobacterium oder mit Teilchenbeschussverfahren durchgeführt werden. Es wird ein Expressionsvektor hergestellt, der einen konstitutiven Pflanzenpromotor und die cDNA des Gens in einem pUC-Vektor enthält. Die Plasmid-DNA wird aus E. coli-Zellen mit Hilfe des Qiagen-Kits gemäß den Anweisungen des Herstellers präpariert. Ungefähr 2 g embryogener Kallus werden in der Mitte eines sterilen Filterpapiers in einer Petri-Wanne verteilt. Ein Aliquot flüssiges MSO mit 10 g/l Saccharose wird auf das Filterpapier gegeben. Goldpartikel (Größe 1,0 μm) werden mit der Plasmid-DNA entsprechend dem Verfahren von Sanford et al., 1993, beschichtet und in den embryogenen Kallus unter Verwendung der folgenden Parameter eingebracht: 500 μg Teilchen und 2 μg DNA je Schuß, 1300 psi und eine Zieldistanz von 8,5 cm von der Stoppingplatte zur Kallus-Platte, sowie 1 Schuß je Kallus-Platte.
  • Nach dem Beschuß werden die Kalli zurück zu frischem Kallus-Entwicklungsmedium überführt und während eines Zeitraums von 1 Woche im Dunklen bei Raumtemperatur gehalten. Der Kallus wird dann nach Wachstumsbedingungen im Licht bei 25°C mit dem geeigneten Selektionsmittel, z. B. 250 nM Arsenal, 5 mg/l PPT oder 50 mg/l Kanamycin, umgestellt, so dass die Differenzierung des Embryos eingeleitet wird. Sprosse, die gegen das Selektionsmittel resistent sind, erscheinen und werden nach der Bewurzelung auf Boden umgesetzt.
  • Proben der primären transgenen Pflanzen (T0) werden durch PCR analysiert, um die Gegenwart von T-DNA zu bestätigen. Diese Ergebnisse werden durch Southern-Hybridisierung, in welcher DNA einer Elektrophorese auf einem 1%igen Agarosegel unterzogen und auf eine positiv geladene Nylonmembran (Roche Diagnostics) überführt wird, bestätigt. Das PCR DIG Probe Synthesis-Kit (Roche Diagnostics) wird verwendet, um eine Digoxigenin-markierte Sonde durch PCR herzustellen, wobei es gemäß den Empfehlungen des Herstellers angewandt wird.
  • Transgene T0-Weidelgraspflanzen werden durch Exzision von Sprossen vegetativ vermehrt. Die transplantierten Sprosse werden 2 Monate lang im Gewächshaus gehalten, bis sie sich gut entwickelt haben. Die Sprosse werden entlaubt und 2 Wochen lang wachsen gelassen.
  • Es werden Pflanzen der Ti- bzw. T2-Generation produziert und Experimenten mit niedrigen Temperaturen unterzogen, z. B. wie oben in Beispiel 1 beschrieben. Für die Beurteilung der Ertragserhöhung werden z. B. Toleranz gegenüber niedrigen Temperaturen, Biomasseproduktion, intrinsischer Ertrag und/oder Trockenmasseproduktion und/oder Samenertrag mit Pflanzen, denen das Transgen fehlt, z. B. entsprechenden nicht transgenen Pflanzen vom Wildtyp, verglichen.
  • Beispiel 6: Gentechnische Herstellung von Sojabohnenpflanzen mit einem erhöhten Ertrag, z. B. einem erhöhten Ertragsmerkmal, zum Beispiel einer gesteigerten Toleranz gegenüber abiotischem Umweltstress, zum Beispiel einer erhöhten Toleranz gegenüber Dürre und/oder Toleranz gegenüber niedrigen Temperaturen und/oder einer erhöhten Effizienz der Nährstoffausnutzung und/oder einem erhöhten anderen erwähnten Ertragsmerkmal, z. B. einer gesteigerten Toleranz gegenüber Stress, vorzugsweise Toleranz gegenüber niedrigen Temperaturen, und/oder einer erhöhten Biomasseproduktion, durch Überexpression von für das ertragserhöhende, z. B. LTRRP- oder YRP-, Protein kodierenden Genen, z. B. mit Toleranz gegenüber niedrigen Temperaturen in Zusammenhang stehenden Genen, aus S. cerevisiae oder E. coli oder Synechocystis.
  • Soja wird entsprechend der folgenden Modifikation des Verfahrens, das im Texas A&M-Patent US 5,164,310 beschrieben ist, transformiert. Mehrere im Handel erhältliche Soja-Sorten sind der Transformation durch dieses Verfahren zugänglich. Üblicherweise wird die (von der Illinois Seed Foundation erhältliche) Sorte Jack für die Transformation verwendet. Die Samen werden durch Eintauchen in 70% (v/v) Ethanol während 6 Minuten und in 25% kommerziellem Bleichmittel (NaOCl), ergänzt mit 0,1% (v/v) Tween, während 20 Minuten sterilisiert, gefolgt von viermaligem Spülen mit sterilem doppeltdestilliertem Wasser. Sieben Tage alte Keimlinge werden vermehrt, indem die Keimwurzel, das Hypokotyl und ein Keimblatt von jedem Keimling entfernt werden. Dann wird das Epikotyl mit einem Keimblatt auf frisches Keimungsmedium in Petrischalen überführt und drei Wochen lang bei 25°C unter einer 16-stündigen Photoperiode (ca. 100 μmol/m2s) inkubiert. Die Achselknoten (mit einer Länge von etwa 4 mm) wurden von 3–4 Wochen alten Pflanzen abgeschnitten. Die Achselknoten werden herausgeschnitten und in Agrobacterium LBA4404-Kultur inkubiert.
  • Für die Transformation von Pflanzen sind viele unterschiedliche binäre Vektorsysteme beschrieben worden (z. B. An, G., in Agrobacterium Protocols. Methods in Molecular Biology Band. 44, S. 47–62, Gartland K. M. A. und Davey M. R. Hrsg. Humana Press, Totowa, New Jersey). Viele basieren auf dem von Bevan (Nucleic Acid Research. 12, 8711 (1984)) beschriebenen Vektor pBIN19, der eine Pflanzengenexpressionskassette, flankiert von der rechten und linken Grenzsequenz aus dem Ti-Plasmid von Agrobacterium tumefaciens, enthält. Eine Pflanzengenexpressionskassette besteht aus mindestens zwei Genen – einem Selektionsmarkergen und einem Pflanzenpromotor, der die Transkription der cDNA oder der genomischen DNA des Merkmalsgens reguliert. Man kann verschiedene Selektionsmarkergen verwenden, darunter das Arabidopsis-Gen, das für ein mutiertes Acetohydroxysäuresynthaseenzym (AHAS-Enzym) kodiert ( US-Patentschriften 5,7673,666 und 6,225,105 ). In ähnlicher Weise lässt sich mit verschiedenen Promotoren das Merkmalsgen, welches für eine konstitutive, entwicklungsgesteuerte, Gewebe- oder Umwelt-Regulation der Gentranskription sorgt, steuern. Im vorliegenden Beispiel wird mit dem 34S-Promotor (GenBank Zugangsnummern M59930 und X16673) für die konstitutive Expression des Merkmalsgens gesorgt.
  • Nach der Cokultivierungsbehandlung werden die Explantate gewaschen und auf Selektionsmedien umgesetzt, die mit 500 mg/l Timentin angereichert sind. Sprosse werden herausgeschnitten und auf ein Spross-Elongationsmedium gebracht. Sprosse, die länger als 1 cm sind, werden zwei bis vier Wochen lang auf Bewurzelungsmedium gesetzt, bevor sie in Erde umgepflanzt werden.
  • Die primären transgenen Pflanzen (T0) werden durch PCR analysiert, um die Gegenwart von T-DNA zu bestätigen. Diese Ergebnisse werden durch Southern-Hybridisierung, in welcher DNA einer Elektrophorese auf einem 1%igen Agarosegel unterzogen und auf eine positiv geladene Nylonmembran (Roche Diagnostics) überführt wird, bestätigt. Das PCR DIG Probe Synthesis-Kit (Roche Diagnostics) wird verwendet, um eine Digoxigenin-markierte Sonde durch PCR herzustellen, wobei es gemäß den Empfehlungen des Herstellers angewandt wird.
  • Es werden Pflanzen der T1- bzw. T2-Generation produziert und Experimenten mit niedrigen Temperaturen unterzogen, z. B. wie oben in Beispiel 1 beschrieben. Für die Beurteilung der Ertragserhöhung werden z. B. Toleranz gegenüber niedrigen Temperaturen, Biomasseproduktion, intrinsischer Ertrag und/oder Trockenmasseproduktion und/oder Samenertrag mit Pflanzen, denen das Transgen fehlt, z. B. entsprechenden nicht transgenen Pflanzen vom Wildtyp, verglichen.
  • Beispiel 7: Gentechnische Herstellung von Raps-/Canola-Pflanzen mit einem erhöhten Ertrag, z. B. einem erhöhten Ertragsmerkmal, zum Beispiel einer gesteigerten Toleranz gegenüber abiotischem Umweltstress, zum Beispiel einer erhöhten Toleranz gegenüber Dürre und/oder Toleranz gegenüber niedrigen Temperaturen und/oder einer erhöhten Effizienz der Nährstoffausnutzung und/oder einem erhöhten anderen erwähnten Ertragsmerkmal, z. B. einer gesteigerten Toleranz gegenüber Stress, vorzugsweise Toleranz gegenüber niedrigen Temperaturen, und/oder einer erhöhten Biomasseproduktion, durch Überexpression von für das ertragserhöhende, z. B. LTRRP- oder YRP-, Protein kodierenden Genen, z. B. mit Toleranz gegenüber niedrigen Temperaturen in Zusammenhang stehenden Genen, aus S. cerevisiae oder E. coli oder Synechocystis.
  • Keimblatt-Blattstiele und Hypokotyle 5- bis 6-Tage-alter junger Keimlinge werden als Explante für die Gewebekultur verwendet und gemäß Babic et al. (Plant Cell Rep 17, 183 (1998)) transformiert. Das kommerzielle Kultivar Westar (Agriculture Canada) ist die Standardvarietät, die für die Transformation herangezogen wird, aber es können andere Varietäten verwendet werden. Für die Transformation von Canola kann man Agrobacterium tumefaciens LBA4404 mit einem binären Vektor verwenden. Für die Transformation von Pflanzen sind viele unterschiedliche binäre Vektorsysteme beschrieben worden (z. B. An G., in Agrobacterium Protocols. Methods in Molecular Biology Band. 44, S. 47–62, Gartland K. M. A. und Davey M. R. Hrsg. Humana Press, Totowa, New Jersey). Viele basieren auf dem von Bevan (Nucleic Acid Research. 12, 8711 (1984)) beschriebenen Vektor pBIN19, der eine Pflanzengenexpressionskassette, flankiert von der rechten und linken Grenzsequenz aus dem Ti-Plasmid von Agrobacterium tumefaciens, enthält. Eine Pflanzengenexpressionskassette besteht aus mindestens zwei Genen – einem Selektionsmarkergen und einem Pflanzenpromotor, der die Transkription der cDNA oder der genomischen DNA des Merkmalsgens reguliert. Man kann verschiedene Selektionsmarkergene verwenden, darunter das Arabidopsis-Gen, das für ein mutiertes Acetohydroxysäuresynthaseenzym (AHAS-Enzym) kodiert ( US-Patentschriften 5,7673,666 und 6,225,105 ). In ähnlicher Weise lässt sich mit verschiedenen Promotoren das Merkmalsgen, welches für eine konstitutive, entwicklungsgesteuerte, Gewebe- oder Umwelt-Regulation der Gentranskription sorgt, steuern. Im vorliegenden Beispiel wird mit dem 34S-Promotor (GenBank Zugangsnummern M59930 und X16673) für die konstitutive Expression des Merkmalsgens gesorgt.
  • Canola-Samen werden in 70% Ethanol während 2 min, und dann in 30% Clorox mit einem Tropfen Tween-20 während 10 min oberflächensterilisiert, woran sich drei Spülungen mit sterilisiertem destilliertem Wasser anschließen. Die Samen werden dann in vitro 5 Tage lang auf MS-Medium der halben Stärke ohne Hormone, 1% Saccharose, 0,7% Phytagar bei 23°C, 16 Std. Licht keimen gelassen. Die Kotyledonenblattstielexplantate mit dem daran befindlichen Keimblatt werden aus den In-vitro-Keimlingen herauspräpariert und mit Agrobacterium beimpft, indem man das abgeschnittene Ende des Blattstielexplantats in die Bakterienlösung taucht. Die Explantate werden dann bei 23°C, 16 Std. Licht 2 Tage lang auf MSBAP-3-Medium, das 3 mg/l BAP, 3% Saccharose, 0,7% Phytagar enthält, gezüchtet. Nach zweitägiger Cokultur mit Agrobacterium werden die Blattstielexplantate 7 Tage lang auf MSBAP-3-Medium umgesetzt, das 3 mg/l BAP, Cefotaxim, Carbenicillin oder Timentin (300 mg/l) enthält, und dann bis zur Sprossregeneration auf MSBAP-3-Medium mit Cefotaxim, Carbenicillin oder Timentin und Selektionsmittel gezüchtet. Als die Sprosse eine Länge von 5–10 mm hatten, wurden sie abgeschnitten und auf Sprossverlängerungsmedium (MSBAP-0,5 mit 0,5 mg/l BAP) umgesetzt. Sprosse mit einer Länge von etwa 2 cm werden für die Wurzelinduktion auf Wurzelmedium (MSO) umgesetzt.
  • Proben der primären transgenen Pflanzen (T0) werden durch PCR analysiert, um die Gegenwart von T-DNA zu bestätigen. Diese Ergebnisse werden durch Southern-Hybridisierung, in welcher DNA einer Elektrophorese auf einem 1%igen Agarosegel unterzogen und auf eine positiv geladene Nylonmembran (Roche Diagnostics) überführt wird, bestätigt. Das PCR DIG Probe Synthesis-Kit (Roche Diagnostics) wird verwendet, um eine Digoxigenin-markierte Sonde durch PCR herzustellen, wobei es gemäß den Empfehlungen des Herstellers angewandt wird.
  • Es werden Pflanzen der T1- bzw. T2-Generation produziert und Experimenten mit niedrigen Temperaturen unterzogen, z. B. wie oben in Beispiel 1 beschrieben. Für die Beurteilung der Ertragserhöhung werden z. B. Toleranz gegenüber niedrigen Temperaturen, Biomasseproduktion, intrinsischer Ertrag und/oder Trockenmasseproduktion und/oder Samenertrag mit Pflanzen, denen das Transgen fehlt, z. B. entsprechenden nicht transgenen Pflanzen vom Wildtyp, verglichen.
  • Beispiel 8: Gentechnische Herstellung von Maispflanzen mit einem erhöhten Ertrag, z. B. einem erhöhten Ertragsmerkmal, zum Beispiel einer gesteigerten Toleranz gegenüber abiotischem Umweltstress, zum Beispiel einer erhöhten Toleranz gegenüber Dürre und/oder Toleranz gegenüber niedrigen Temperaturen und/oder einer erhöhten Effizienz der Nährstoffausnutzung und/oder einem erhöhten anderen erwähnten Ertragsmerkmal, z. B. einer gesteigerten Toleranz gegenüber Stress, vorzugsweise Toleranz gegenüber niedrigen Temperaturen, und/oder einer erhöhten Biomasseproduktion, durch Überexpression von für das ertragserhöhende, z. B. LTRRP- oder YRP-, Protein kodierenden Genen, z. B. mit Resistenz gegen und/oder Toleranz gegenüber niedrigen Temperaturen in Zusammenhang stehenden Genen, aus S. cerevisiae oder E. coli oder Synechocystis.
  • Die Transformation von Mais (Zea Mays L.) wird mit einer Modifikation des von Ishida et al. (Nature Biotech 14745 (1996)) beschriebenen Verfahrens durchgeführt. Die Transformation in Mais ist genotypabhängig, und nur spezielle Gentypen sind für eine Transformation und Regeneration geeignet. Die Inzuchtlinie A188 (University of Minnesota) oder Hybride mit A188 als einem Elter sind gute Quellen für Donormaterial für die Transformation (Fromm et al. Biotech 8, 833 (1990)), aber es können auch andere Genotypen erfolgreich verwendet werden. Ähren werden ungefähr 11 Tage nach der Bestäubung (DAP) von Maispflanzen geerntet, wenn die Länge von unreifen Embryos etwa 1 bis 1,2 mm beträgt. Unreife Embryos werden mit Agrobacterium tumefaciens, welche ”superbinäre” Vektoren tragen, cokultiviert, und transgene Pflanzen werden durch Organogenese gewonnen. Das super-binäre Vektorsystem von Japan Tobacco ist in den WO-Patenten WO 94/00977 und WO 95/06722 beschrieben. Vektoren werden wie beschrieben konstruiert. Verschiedene Selektionsmarkergene können verwendet werden, einschließlich des Maisgens, das ein mutiertes Acetohydroxysäure-Synthase-Enzym (AHAS-Enzym) kodiert ( US-Patent 6,025,541 ). In ähnlicher Weise lässt sich mit verschiedenen Promotoren das Merkmalsgen, welches für eine konstitutive, entwicklungsgesteuerte, Gewebe- oder Umwelt-Regulation der Gentranskription sorgt, steuern. Im vorliegenden Beispiel wird mit dem 34S-Promotor (GenBank Zugangsnummern M59930 und X16673) für die konstitutive Expression des Merkmalsgens gesorgt.
  • Herausgeschnittene Embryos werden auf Kallusinduktionsmedium, dann Maisregenerationsmedium, das Imidazolinon als Selektionsmittel enthält, wachsen gelassen. Die Petrischalen werden im Licht 2–3 Wochen lang bei 25°C oder, bis sich Sprosse entwickeln, inkubiert. Die grünen Sprosse werden von jedem Embryo auf Mais-Wurzelmedium überführt und 2–3 Wochen lang bei 25°C inkubiert, bis sich Wurzeln entwickeln. Die bewurzelten Sprosse werden in Erde im Gewächshaus umgepflanzt. T1-Samen werden von Pflanzen gewonnen, die eine Toleranz gegen die Imidazolinon-Herbizide aufweisen und in der PCR positiv für die Transgene sind.
  • Die transgenen T1-Pflanzen werden dann gemäß des im Beispiel 1 beschriebenen Verfahrens auf ihre verbesserte Toleranz gegenüber Stress wie z. B. Toleranz gegenüber niedrigen Temperaturen und/oder erhöhte Biomasseproduktion hin untersucht. Die T1-Generation von Pflanzen mit Insertionen der T-DNA an einem einzigen Locus segregiert für das Transgen in einem Verhältnis von 3:1. Diejenigen Nachkommen, die eine oder zwei Kopien des Transgens enthalten, sind tolerant gegenüber dem Imidazolinon-Herbizid und zeigen einen erhöhten Ertrag, z. B. ein erhöhtes Ertragsmerkmal, zum Beispiel eine gesteigerte Toleranz gegenüber Stress wie Toleranz gegenüber niedrigen Temperaturen, und/oder eine erhöhte Biomasseproduktion als diejenigen Nachkommen, die die Transgen nicht enthalten.
  • Es werden Pflanzen der T1- bzw. T2-Generation produziert und Experimenten mit niedrigen Temperaturen unterzogen, z. B. wie oben in Beispiel 2 beschrieben. Für die Beurteilung der Ertragserhöhung werden z. B. Toleranz gegenüber niedrigen Temperaturen, Biomasseproduktion, intrinsischer Ertrag und/oder Trockenmasseproduktion und/oder Samenertrag z. B. mit entsprechenden nicht transgenen Pflanzen vom Wildtyp verglichen.
  • Homozygote T2-Pflanzen zeigten ähnliche Phänotypen. Hybridpflanzen (F1-Nachkommenschaft) von homozygoten transgenen Pflanzen und nicht-transgenen Pflanzen zeigten ebenfalls einen erhöhten Ertrag, z. B. ein erhöhtes Ertragsmerkmal, zum Beispiel eine gesteigerte Toleranz gegenüber abiotischem Umweltstress, zum Beispiel eine erhöhte Toleranz gegenüber Dürre und/oder eine erhöhte Effizienz der Nährstoffausnutzung und/oder ein erhöhtes anderes erwähntes Ertragsmerkmal, z. B. eine gesteigerte Toleranz gegenüber niedrigen Temperaturen.
  • Beispiel 9 Gentechnische Herstellung von Weizenpflanzen mit einem erhöhten Ertrag, z. B. einem erhöhten Ertragsmerkmal, zum Beispiel einer gesteigerten Toleranz gegenüber abiotischem Umweltstress, zum Beispiel einer erhöhten Toleranz gegenüber Dürre und/oder Toleranz gegenüber niedrigen Temperaturen und/oder einer erhöhten Effizienz der Nährstoffausnutzung und/oder einem erhöhten anderen erwähnten Ertragsmerkmal, z. B. einer gesteigerten Toleranz gegenüber Stress, vorzugsweise Toleranz gegenüber niedrigen Temperaturen, und/oder einer erhöhten Biomasseproduktion, durch Überexpression von für das ertragserhöhende, z. B. LTRRP- oder YRP-, Protein kodierenden Genen, z. B. mit Resistenz gegen und/oder Toleranz gegenüber niedrigen Temperaturen in Zusammenhang stehenden Genen, aus S. cerevisiae oder E. coli oder Synechocystis.
  • Die Transformation von Weizen wird mit Hilfe des Verfahrens durchgeführt, das von Ishida et al. (Nature Biotech. 14745 (1996)) beschrieben wurde. In der Transformation wird gewöhnlich das Kultivar Bobwhite (erhältlich von CYMMIT, Mexiko) verwendet. Unreife Embryos werden mit Agrobacterium tumefaciens, welche ”superbinäre” Vektoren tragen, cokultiviert, und transgene Pflanzen werden durch Organogenese gewonnen. Das superbinäre Vektorsystem von Japan Tobacco ist in den WO-Patenten WO 94/00977 und WO 95/06722 beschrieben. Vektoren werden wie beschrieben konstruiert. Verschiedene Selektionsmarkergene können verwendet werden, einschließlich des Maisgens, das ein mutiertes Acetohydroxysäure-Synthase-Enzym (AHAS-Enzym) kodiert ( US-Patent 6,025,541 ). In ähnlicher Weise lässt sich mit verschiedenen Promotoren das Merkmalsgen, welches für eine konstitutive, entwicklungsgesteuerte, Gewebe- oder Umwelt-Regulation der Gentranskription sorgt, steuern. Im vorliegenden Beispiel wird mit dem 34S-Promotor (GenBank Zugangsnummern M59930 und X16673) für die konstitutive Expression des Merkmalsgens gesorgt.
  • Nach Inkubation mit Agrobacterium werden die Embryonen auf Kallusinduktionsmedium, dann Regenerationsmedium mit Imidazolinon als einem Selektionsmittel, wachsen gelassen. Die Petrischalen werden im Licht 2–3 Wochen lang bei 25°C oder, bis sich Sprosse entwickeln, inkubiert. Die grünen Sprosse werden von jedem Embryo auf Wurzelmedium überführt und 2–3 Wochen lang bei 25°C inkubiert, bis sich Wurzeln entwickeln. Die bewurzelten Sprosse werden in Erde im Gewächshaus umgepflanzt. T1-Samen werden von Pflanzen gewonnen, die eine Toleranz gegen die Imidazolinon-Herbizide aufweisen und in der PCR positiv für die Transgene sind.
  • Die transgenen T1-Pflanzen werden dann gemäß des im Beispiel 2 beschriebenen Verfahrens auf ihre gesteigerte Toleranz gegenüber niedrigen Temperaturen und/oder erhöhte Biomasseproduktion hin untersucht. Die T1-Generation von Pflanzen mit Insertionen der T-DNA an einem einzigen Locus segregiert für das Transgen in einem Verhältnis von 3:1. Diejenigen Nachkommen, die eine oder zwei Kopien des Transgens enthalten, sind tolerant gegenüber dem Imidazolinon-Herbizid und zeigen einen erhöhten Ertrag, z. B. ein erhöhtes Ertragsmerkmal, zum Beispiel eine gesteigerte Toleranz gegenüber niedrigen Temperaturen und/oder eine erhöhte Biomasseproduktion verglichen mit denjenigen Nachkommen, die die Transgene nicht enthalten. Homozygote T2-Pflanzen zeigen ähnliche Phänotypen.
  • Zur Untersuchung der Ertragserhöhung werden z. B. Toleranz gegenüber niedrigen Temperaturen, Biomasseproduktion, intrinsischer Ertrag und/oder Trockenmasseproduktion und/oder Samenertrag mit z. B. entsprechenden nicht transgenen Pflanzen vom Wildtyp verglichen. Pflanzen mit einem erhöhten Ertrag, z. B. einem erhöhten Ertragsmerkmal, z. B. einer höheren Toleranz gegenüber Stress, z. B. mit einer erhöhten Effizienz der Nährstoffausnutzung oder einem erhöhten intrinsischen Ertrag, und mit einer höheren Toleranz gegenüber niedrigen Temperaturen, können eine erhöhte Biomasseproduktion und/oder eine erhöhte Trockenmasseproduktion und/oder einen erhöhten Samenertrag bei niedrigen Temperaturen zeigen, verglichen z. B. mit entsprechenden nicht transgenen Pflanzen vom Wildtyp.
  • Beispiel 10 Identifikation identischer und heterologer Gene
  • Gensequenzen können dazu verwendet werden, identische oder heterologe Gene aus cDNA- oder genomischen Banken zu identifizieren. Identische Gene (z. B. Volllängen-cDNA-Klone) können über Nukleinsäurehybridisierung isoliert werden, wobei zum Beispiel cDNA-Banken eingesetzt werden. Je nach der Häufigkeit des interessierenden Gens werden 100 000 bis zu 1 000 000 rekombinante Bakteriophagen ausplattiert und auf Nylonmembranen übertragen. Nach Denaturierung mit Alkali wird die DNA auf der Membran immobilisiert, z. B. durch UV-Vernetzung. Die Hybridisierung erfolgt unter hochstringenten Bedingungen. In wässriger Lösung werden Hybridisierung und Waschen bei einer Ionenstärke von 1 M NaCl und einer Temperatur von 68°C durchgeführt. Die Hybridisierungssonden werden z. B. durch radioaktive (32P) Nick-Transkriptionsmarkierung (High Prime, Roche, Mannheim, Deutschland) hergestellt. Die Signale werden durch Autoradiographie ermittelt.
  • Teilweise identische oder heterologe Gene, die verwandt, aber nicht identisch sind, können analog zu dem vorstehend beschriebenen Verfahren unter Verwendung von Hybridisierungs- und Waschbedingungen mit niedriger Stringenz identifiziert werden. Für die wässrige Hybridisierung wird die Ionenstärke in der Regel bei 1 M NaCl gehalten, während die Temperatur nach und nach von 68 auf 42°C gesenkt wird.
  • Die Isolation von Gensequenzen mit einer Homologie (oder Sequenzidentität/-ähnlichkeit) in nur einer bestimmten Domäne (zum Beispiel 10–20 Aminosäuren) kann unter Verwendung synthetischer radioaktiv markierter Oligonukleotidsonden erfolgen. Radioaktiv markierte Oligonukleotide werden durch Phosphorylierung des 5'-Endes zweier komplementärer Oligonukleotide mit T4-Polynukleotidkinase hergestellt. Die komplementären Oligonukleotide werden aneinander hybridisiert und unter Bildung von Konkatemeren ligiert. Die doppelsträngigen Konkatemere werden dann beispielsweise mittels Nick-Transkription radioaktiv markiert. Die Hybridisierung erfolgt gewöhnlich bei Bedingungen einer niedrigen Stringenz mit hohen Oligonukleotidkonzentrationen.
  • Oligonukleotid-Hybridisierungslösung:
    • 6 × SSC
    • 0,01 M Natriumphosphat
    • 1 mM EDTA (pH 8)
    • 0,5% SDS
    • 100 μg/ml denaturierte Lachssperma-DNA
    • 0,1% fettfreie Trockenmilch
  • Während der Hybridisierung wird die Temperatur schrittweise bis auf 5–10°C unter die geschätzte Tm des Oligonukleotids oder bis auf Raumtemperatur gesenkt, worauf die Waschschritte und die Autoradiographie durchgeführt werden. Das Waschen erfolgt mit niedriger Stringenz, beispielsweise durch 3 Waschschritte mit 4 × SSC. Weitere Einzelheiten sind in Sambrook, J. et al., 1989, "Molecular Cloning: A Laboratory Manual," Cold Spring Harbor Laboratory Press, oder Ausubel, F. M. et al., 1994, "Current Protocols in Molecular Biology," John Wiley & Sons, beschrieben.
  • Beispiel 11: Identifikation identischer Gene durch Screening von Expressionsbibliotheken mit Antikörpern
  • Man kann cDNA-Klone dazu verwenden, rekombinantes Polypeptid zum Beispiel in E. coli herzustellen (z. B. Qiagen QIAexpress pQE-System). Die rekombinanten Polypeptide werden dann gewöhnlich über Ni-NTA-Affinitätschromatographie (Qiagen) affinitätsgereinigt. Die rekombinanten Polypeptide werden dann für die Herstellung spezifischer Antikörper verwendet, indem zum Beispiel Standardtechniken für die Immunisierung von Kaninchen eingesetzt werden. Die Antikörper werden unter Verwendung einer Ni-NTA-Säule, die mit dem rekombinanten Antigen gesättigt wurde, affinitätsgereinigt, wie von Gu et al., BioTechniques 17, 257 (1994) beschrieben. Der Antikörper kann dann für das Screening von Expressions-cDNA-Bibliotheken verwendet werden, so dass identische oder heterologe Gene über ein immunologisches Screening identifiziert werden (Sambrook, J. et al., 1989, "Molecular Cloning: A Laboratory Manual," Cold Spring Harbor Laboratory Press oder Ausubel, F. M. et al., 1994, "Current Protocols in Molecular Biology", John Wiley & Sons).
  • Beispiel 12: In-vivo-Mutagenese
  • Die In-vivo-Mutagenese von Mikroorganismen kann durch Passage von Plasmid-DNA (oder einer anderen Vektor-DNA) durch E. coli oder andere Mikroorganismen (z. B. Bacillus spp. oder Hefen, wie S. cerevisiae) erfolgen, bei denen die Fähigkeiten, die Unversehrtheit ihrer genetischen Information aufrecht zu erhalten, gestört sind. Übliche Mutator-Stämme haben Mutationen in den Genen für das DNA-Reparatursystem (z. B. mutHLS, mutD, mutT usw.; als Literaturstelle siehe Rupp W. D., DNA repair mechanisms, in: E. coli and Salmonella, S. 2277–2294, ASM, 1996, Washington.). Solche Stämme sind dem Fachmann gut bekannt. Die Verwendung solcher Stämme ist zum Beispiel in Greener A. und Callahan M., Strategies 7, 32 (1994) veranschaulicht. Der Transfer mutierter DNA-Moleküle in Pflanzen erfolgt vorzugsweise nach einer Selektion und nach Testen in Mikroorganismen. Transgene Pflanzen werden anhand verschiedener Beispiele im Beispielteil dieses Dokuments hergestellt.
  • Beispiel 13: Gentechnische Herstellung von Arabidopsis-Pflanzen mit erhöhtem Ertrag, z. B. einem erhöhten Ertragsmerkmal, z. B. einer gesteigerten Toleranz gegenüber Stress, vorzugsweise einer gesteigerten Toleranz gegenüber niedrigen Temperaturen, und/oder einer erhöhten Biomasseproduktion durch Überexpression von LTRRP- oder YRP-kodierenden Genen zum Beispiel aus A. thaliana, Brassica napus, Glycine max, Zea mays oder Oryza sativa unter Verwendung gewebespezifischer oder stressinduzierbarer Promotoren.
  • Transgene Arabidopsis-Pflanzen, die LTRRP-Gene oder YRP-Gene, z. B. für mit Resistenz gegen und/oder Toleranz gegenüber niedrigen Temperaturen in Zusammenhang stehende Proteine kodierenden Genen, zum Beispiel aus A. thaliana, Brassica napus, Glycine max, Zea mays und Oryza sativa, überexprimieren, werden wie im Beispiel 1 beschrieben hergestellt, so dass die für das LTRRP bzw. YRP kodierenden Transgene unter der Kontrolle eines gewebespezifischen oder stressinduzierbaren Promotors exprimiert werden. Die Pflanzen der T2-Generation werden produziert und unter Stress- oder Nicht-Stress-Bedingungen, z. B. Bedingungen niedriger Temperaturen, herangezogen. Pflanzen mit einem erhöhten Ertrag, z. B. einem erhöhten Ertragsmerkmal, z. B. einer gesteigerten Toleranz gegenüber Stress, z. B. niedrigen Temperaturen, oder mit einer erhöhten Effizienz der Nährstoffausnutzung oder einem erhöhten intrinsischen Ertrag, zeigen eine erhöhte Biomasseproduktion und/oder eine erhöhte Trockenmasseproduktion und/oder einen erhöhten Samenertrag bei niedrigen Temperaturen, verglichen mit Pflanzen, denen das Transgen fehlt, z. B. mit entsprechenden nicht transgenen Pflanzen vom Wildtyp.
  • Beispiel 14: Gentechnische Herstellung von Luzernepflanzen mit erhöhtem Ertrag, z. B. einem erhöhten Ertragsmerkmal, zum Beispiel einer gesteigerten Toleranz gegenüber Stress, vorzugsweise Toleranz gegenüber niedrigen Temperaturen, und/oder einer erhöhten Biomasseproduktion durch Überexpression von LTRRP-Genen oder YRP-Genen, zum Beispiel von mit einer Resistenz und/oder Toleranz gegenüber niedrigen Temperaturen in Zusammenhang stehenden Genen, zum Beispiel aus A. thaliana, Brassica napus, Glycine max, Zea mays oder Oryza sativa.
  • Ein regenerierender Klon von Luzerne (Medicago sativa) wird unter Anwendung der Methode von McKersie et al., (Plant Physiol 119, 839 (1999)) transformiert. Die Regeneration and Transformation von Alfalfa ist genotyp-abhängig, und deswegen wird eine regenerierende Pflanze benötigt. Verfahren zum Erhalten von regenerierenden Pflanzen sind beschrieben worden. Sie können zum Beispiel aus dem Kultivar Rangelander (Agriculture Canada) oder anderen im Handel erhältlichen Luzernesorten wie von Brown und Atanassov (Plant Cell Tissue Organ Culture 4, 111 (1985)) beschrieben ausgewählt werden. Alternativ dazu wählte man die RA3-Sorte (University of Wisconsin) für die Verwendung in der Gewebekultur (Walker et al., Am. J. Bot. 65, 54 (1978)). Blattstielexplantate werden gemeinsam mit einer Übernachtkultur von Agrobacterium tumefaciens C58C1 pMP90 (McKersie et al., Plant Physiol 119, 839 (1999)) oder LBA4404, die einen binären Vektor enthalten, kultiviert. Für die Transformation von Pflanzen sind viele unterschiedliche binäre Vektorsysteme beschrieben worden (z. B. An G., in Agrobacterium Protocols. Methods in Molecular Biology Band. 44, S. 47–62, Gartland K. M. A. und Davey M. R. Hrsg. Humana Press, Totowa, New Jersey). Viele basieren auf dem von Bevan (Nucleic Acid Research. 12, 8711 (1984)) beschriebenen Vektor pBIN19, der eine Pflanzengenexpressionskassette, flankiert von der rechten und linken Grenzsequenz aus dem Ti-Plasmid von Agrobacterium tumefaciens, enthält. Eine Pflanzengenexpressionskassette besteht aus mindestens zwei Genen – einem Selektionsmarkergen und einem Pflanzenpromotor, der die Transkription der cDNA oder der genomischen DNA des Merkmalsgens reguliert. Man kann verschiedene Selektionsmarkergene verwenden, darunter das Arabidopsis-Gen, das für ein mutiertes Acetohydroxysäuresynthaseenzym (AHAS-Enzym) kodiert ( US-Patentschriften 5,7673,666 und 6,225,105 ). In ähnlicher Weise lässt sich mit verschiedenen Promotoren das Merkmalsgen, welches für eine konstitutive, entwicklungsgesteuerte, Gewebe- oder Umwelt-Regulation der Gentranskription sorgt, steuern. Im vorliegenden Beispiel wird mit dem 34S-Promotor (GenBank Zugangsnummern M59930 und X16673) für die konstitutive Expression des Merkmalsgens gesorgt. Die Explantate werden 3 Tage lang im Dunkeln auf SH-Induktionsmedium, das 288 mg/l Pro, 53 mg/l Thioprolin, 4,35 g/l K2SO4 und 100 μm Acetosyringinon enthält, gezüchtet. Die Explantate wurden in Murashige-Skoog-Medium (Murashige und Skoog, 1962) von halber Stärke gewaschen und auf dem gleichen SH-Induktionsmedium ohne Acetosyringinon, aber mit einem geeigneten Selektionsmittel und geeignetem Antibiotikum zum Inhibieren des Wachstums von Agrobacterium, ausplattiert. Nach mehreren Wochen werden somatische Embryos auf BOi2Y-Entwicklungsmedium, das keine Wachstumsregulatoren, keine Antibiotika, und 50 g/l Saccharose enthält, überführt. Somatische Embryos werden anschließend auf Murashige-Skoog-Medium von halber Stärke keimen gelassen. Bewurzelte Setzlinge werden in Blumentöpfe überführt und in einem Treibhaus wachsen gelassen. Die transgenen T0-Pflanzen werden durch Nodienabschnitte vermehrt, und man lässt sie in Turface-Wachstumsmedium wurzeln. Pflanzen der T1- oder T2-Generation werden herangezogen und Experimenten unter Stress- oder Nicht-Stress-Bedingungen, z. B. niedrigen Temperaturen, unterzogen, wie in den vorherigen Beispielen beschrieben. Zur Untersuchung der Ertragserhöhung werden z. B. Toleranz gegenüber niedrigen Temperaturen, Biomasseproduktion, intrinsischer Ertrag und/oder Trockenmasseproduktion und/oder Samenertrag mit z. B. entsprechenden nicht transgenen Pflanzen vom Wildtyp verglichen. Pflanzen mit einem erhöhten Ertrag, z. B. einem erhöhten Ertragsmerkmal, z. B. einer höheren Toleranz gegenüber Stress, z. B. mit einer erhöhten Effizienz der Nährstoffausnutzung oder einem erhöhten intrinsischen Ertrag, und z. B. mit einer höheren Toleranz gegenüber niedrigen Temperaturen, können eine erhöhte Biomasseproduktion und/oder eine erhöhte Trockenmasseproduktion und/oder einen erhöhten Samenertrag bei niedrigen Temperaturen zeigen, verglichen mit Pflanzen, denen dieses Transgen fehlt, z. B. mit entsprechenden nicht transgenen Pflanzen vom Wildtyp.
  • Beispiel 15: Gentechnische Herstellung von Weidelgraspflanzen mit erhöhtem Ertrag, z. B. einem erhöhten Ertragsmerkmal, zum Beispiel einer gesteigerten Toleranz gegenüber Stress, vorzugsweise Toleranz gegenüber niedrigen Temperaturen, und/oder einer erhöhten Biomasseproduktion durch Überexpression von LTRRP-Genen oder YRP-Genen, zum Beispiel von mit einer Resistenz und/oder Toleranz gegenüber niedrigen Temperaturen in Zusammenhang stehenden gegen, zum Beispiel aus A. thaliana, Brassica napus, Glycine max, Zea mays oder Oryza sativa.
  • Samen verschiedener Weidelgrassorten können als Quellen von Explantaten für die Transformation verwendet werden, einschließlich der handelsüblichen Sorte Gunne, die von der Firma Svalöf Weibull Samenhandel erhältlich ist, oder die Sorte Affinity. Die Samen werden nacheinander 1 Minute lang mit 1% Tween-20 und 60 Minuten lang mit 100% Bleichmittel oberflächensterilisiert, 3mal jeweils 5 Minuten lang mit deionisiertem und destilliertem H2O gespült und anschließend 3–4 Tage lang auf feuchtem, sterilem Filterpapier im Dunkeln keimen gelassen. Die Keimlinge werden weiterhin 1 Minute lang mit 1% Tween-20 und 5 Minuten lang mit 75% Bleichmittel sterilisiert und 3mal jeweils 5 min mit doppelt destilliertem H2O gespült. Die oberflächensterilisierten Samen werden auf das Kallusinduktionsmedium umgesetzt, das Murashige und Skoog-Basalsalze und Vitamine, 20 g/l Saccharose, 150 mg/l Asparagin, 500 mg/l Casein-Hydrolysat, 3 g/l Phytagel, 10 mg/l BAP und 5 mg/l Dicamba enthält. Die Platten werden 4 Wochen lang im Dunklen bei 25°C für die Samenkeimung und zur Induktion von embryogenem Kallus inkubiert. Nach 4 Wochen auf dem Kallusinduktionsmedium werden die Sprosse und Wurzeln der Keimlinge abgeschnitten, der Kallus wird auf frisches Medium umgesetzt, weitere 4 Wochen lang kultiviert und dann 2 Wochen lang auf MSO-Medium ins Licht umgesetzt. Mehrere (11–17 Wochen alte) Kallusstückchen werden entweder durch ein 10-Mesh-Sieb gesiebt und auf Kallusinduktionsmedium gesetzt oder in 100 ml flüssiges Weidelgras-Kallusinduktionsmedium (dasselbe Medium wie für die Kallusinduktion, mit Agar) in einem 250 ml-Kolben gezüchtet. Der Kolben wird in Folie eingewickelt und im Dunklen bei 23°C eine Woche lang bei 175 U/min geschüttelt. Durch Sieben der Flüssigkultur durch ein 40-Mesh-Sieb werden die Zellen gesammelt. Die auf dem Sieb gesammelte Fraktion wird auf festem Weidelgras-Kallusinduktionsmedium ausplattiert und darauf 1 Woche lang im Dunkeln bei 25°C kultiviert. Der Kallus wird dann auf MS-Medium mit 1% Saccharose umgesetzt und darauf 2 Wochen lang gezüchtet. Die Transformation kann entweder mit Agrobacterium oder mit Teilchenbeschussverfahren durchgeführt werden. Es wird ein Expressionsvektor hergestellt, der einen konstitutiven Pflanzenpromotor und die cDNA des Gens in einem pUC-Vektor enthält. Die Plasmid-DNA wird aus E. coli-Zellen mit Hilfe des Qiagen-Kits gemäß den Anweisungen des Herstellers präpariert. Ungefähr 2 g embryogener Kallus werden in der Mitte eines sterilen Filterpapiers in einer Petri-Wanne verteilt. Ein Aliquot von flüssigem MSO mit 10 g/l Saccharose wird dem Filterpapier zugesetzt. Goldpartikel (Größe 1,0 μm) werden mit der Plasmid-DNA entsprechend dem Verfahren von Sanford et al., 1993, beschichtet und in den embryogenen Kallus unter Verwendung der folgenden Parameter eingebracht: 500 μg Teilchen und 2 μg DNA je Schuß, 1300 psi und eine Zieldistanz von 8,5 cm von der Stoppingplatte zur Kallus-Platte, sowie 1 Schuß je Kallus-Platte. Nach dem Beschuß werden die Kalli zurück zu frischem Kallus-Entwicklungsmedium überführt und während eines Zeitraums von 1 Woche im Dunklen bei Raumtemperatur gehalten. Der Kallus wird dann nach Wachstumsbedingungen im Licht bei 25°C mit dem geeigneten Selektionsmittel, z. B. 250 nM Arsenal, 5 mg/l PPT oder 50 mg/l Kanamycin, umgestellt. Sprosse, die gegen das Selektionsmittel resistent sind, erscheinen und werden, nach der Wurzelbildung, in Erdboden überführt. Proben der primären transgenen Pflanzen (T0) werden durch PCR analysiert, um die Gegenwart von T-DNA zu bestätigen. Diese Ergebnisse werden durch Southern-Hybridisierung, in welcher DNA einer Elektrophorese auf einem 1%igen Agarosegel unterzogen und auf eine positiv geladene Nylonmembran (Roche Diagnostics) überführt wird, bestätigt. Das PCR DIG Probe Synthesis-Kit (Roche Diagnostics) wird verwendet, um eine Digoxigenin-markierte Sonde durch PCR herzustellen, wobei es gemäß den Empfehlungen des Herstellers angewandt wird. Transgene T0-Weidelgraspflanzen werden durch Exzision von Sprossen vegetativ vermehrt. Die transplantierten Sprosse werden 2 Monate lang im Gewächshaus gehalten, bis sie sich gut entwickelt haben. Pflanzen der T1- oder T2-Generation werden herangezogen und Experimenten unter Stress- oder Nicht-Stress-Bedingungen, z. B. niedrigen Temperaturen, unterzogen, z. B. wie oben in Beispiel 1 beschrieben. Zur Untersuchung der Ertragserhöhung werden z. B. Toleranz gegenüber niedrigen Temperaturen, Biomasseproduktion, intrinsischer Ertrag und/oder Trockenmasseproduktion und/oder Samenertrag mit z. B. entsprechenden nicht transgenen Pflanzen vom Wildtyp verglichen. Pflanzen mit einem erhöhten Ertrag, z. B. einem erhöhten Ertragsmerkmal, z. B. einer höheren Toleranz gegenüber Stress, z. B. mit einer erhöhten Effizienz der Nährstoffausnutzung oder einem erhöhten intrinsischen Ertrag, und mit einer höheren Toleranz gegenüber niedrigen Temperaturen, können eine erhöhte Biomasseproduktion und/oder eine erhöhte Trockenmasseproduktion und/oder einen erhöhten Samenertrag bei niedrigen Temperaturen zeigen, verglichen mit Pflanzen, denen dieses Transgen fehlt, z. B. mit entsprechenden nicht transgenen Pflanzen vom Wildtyp.
  • Beispiel 16: Gentechnische Herstellung von Sojabohnenpflanzen mit erhöhtem Ertrag, z. B. einem erhöhten Ertragsmerkmal, zum Beispiel einer gesteigerten Toleranz gegenüber Stress, vorzugsweise Toleranz gegenüber niedrigen Temperaturen, und/oder einer erhöhten Biomasseproduktion durch Überexpression von LTRRP-Genen oder YRP-Genen, zum Beispiel von mit einer Resistenz und/oder Toleranz gegenüber niedrigen Temperaturen in Zusammenhang stehenden Genen, zum Beispiel aus A. thaliana, Brassica napus, Glycine max, Zea mays oder Oryza sativa.
  • Soja wird entsprechend der folgenden Modifikation des Verfahrens, das im Texas A&M-Patent US 5,164,310 beschrieben ist, transformiert. Mehrere im Handel erhältliche Soja-Sorten sind der Transformation durch dieses Verfahren zugänglich. Üblicherweise wird die (von der Illinois Seed Foundation erhältliche) Sorte Jack für die Transformation verwendet. Die Samen werden durch Eintauchen in 70% (v/v) Ethanol während 6 Minuten und in 25% kommerziellem Bleichmittel (NaOCl), ergänzt mit 0,1% (v/v) Tween, während 20 Minuten sterilisiert, gefolgt von viermaligem Spülen mit sterilem doppeltdestilliertem Wasser. Sieben Tage alte Keimlinge werden vermehrt, indem die Keimwurzel, das Hypokotyl und ein Keimblatt von jedem Keimling entfernt werden. Dann wird das Epikotyl mit einem Keimblatt auf frisches Keimungsmedium in Petrischalen überführt und drei Wochen lang bei 25°C unter einer 16-stündigen Photoperiode (ca. 100 μmol/ms) inkubiert. Achselknoten (ungefähr 4 mm Länge) werden von 3–4 Wochen alten Pflanzen abgeschnitten. Die Achselknoten werden herausgeschnitten und in Agrobacterium LBA4404-Kultur inkubiert. Für die Transformation von Pflanzen sind viele unterschiedliche binäre Vektorsysteme beschrieben worden (z. B. An G., in Agrobacterium Protocols. Methods in Molecular Biology Band. 44, S. 47–62, Gartland K. M. A. und Davey M. R. Hrsg. Humana Press, Totowa, New Jersey). Viele basieren auf dem von Bevan (Nucleic Acid Research. 12, 8711 (1984)) beschriebenen Vektor pBIN19, der eine Pflanzengenexpressionskassette, flankiert von der rechten und linken Grenzsequenz aus dem Ti-Plasmid von Agrobacterium tumefaciens, enthält. Eine Pflanzengenexpressionskassette besteht aus mindestens zwei Genen – einem Selektionsmarkergen und einem Pflanzenpromotor, der die Transkription der cDNA oder der genomischen DNA des Merkmalsgens reguliert. Man kann verschiedene Selektionsmarkergene verwenden, darunter das Arabidopsis-Gen, das für ein mutiertes Acetohydroxysäuresynthaseenzym (AHAS-Enzym) kodiert ( US-Patentschriften 5,7673,666 und 6,225,105 ). In ähnlicher Weise lässt sich mit verschiedenen Promotoren das Merkmalsgen, welches für eine konstitutive, entwicklungsgesteuerte, Gewebe- oder Umwelt-Regulation der Gentranskription sorgt, steuern. Im vorliegenden Beispiel wird mit dem 34S-Promotor (GenBank Zugangsnummern M59930 und X16673) für die konstitutive Expression des Merkmalsgens gesorgt.
  • Nach der Cokultivierungsbehandlung werden die Explantate gewaschen und auf Selektionsmedien umgesetzt, die mit 500 mg/l Timentin angereichert sind. Sprosse werden herausgeschnitten und auf ein Spross-Elongationsmedium gebracht. Sprosse, die länger als 1 cm sind, werden zwei bis vier Wochen lang auf Bewurzelungsmedium gesetzt, bevor sie in Erde umgepflanzt werden. Die primären transgenen Pflanzen (T0) werden durch PCR analysiert, um die Gegenwart von T-DNA zu bestätigen. Diese Ergebnisse werden durch Southern-Hybridisierung, in welcher DNA einer Elektrophorese auf einem 1%igen Agarosegel unterzogen und auf eine positiv geladene Nylonmembran (Roche Diagnostics) überführt wird, bestätigt. Das PCR DIG Probe Synthesis-Kit (Roche Diagnostics) wird verwendet, um eine Digoxigenin-markierte Sonde durch PCR herzustellen, wobei es gemäß den Empfehlungen des Herstellers angewandt wird. Sojabohnenpflanzen, die LTRRP-Gene oder YRP-Gene, z. B. mit Resistenz gegen und/oder Toleranz gegenüber niedrigen Temperaturen in Zusammenhang stehende Gene aus A. thaliana, Brassica napus, Glycine max, Zea mays oder Oryza sativa überexprimieren, zeigen einen erhöhten Ertrag und haben zum Beispiel höhere Samenerträge. Pflanzen der T1- oder T2-Generation werden herangezogen und Experimenten unter Stress- und Nicht-Stress-Bedingungen, z. B. niedrigen Temperaturen, unterzogen, z. B. wie oben in Beispiel 1 beschrieben. Zur Untersuchung der Ertragserhöhung werden z. B. Toleranz gegenüber niedrigen Temperaturen, Biomasseproduktion, intrinsischer Ertrag und/oder Trockenmasseproduktion und/oder Samenertrag mit z. B. entsprechenden nicht transgenen Pflanzen vom Wildtyp verglichen. Pflanzen mit einem erhöhten Ertrag, z. B. einem erhöhten Ertragsmerkmal, z. B. einer höheren Toleranz gegenüber Stress, z. B. mit einer erhöhten Effizienz der Nährstoffausnutzung oder einem erhöhten intrinsischen Ertrag, und mit einer höheren Toleranz gegenüber niedrigen Temperaturen, können eine erhöhte Biomasseproduktion und/oder eine erhöhte Trockenmasseproduktion und/oder einen erhöhten Samenertrag bei niedrigen Temperaturen zeigen, verglichen mit Pflanzen, denen dieses Transgen fehlt, z. B. mit entsprechenden nicht transgenen Pflanzen vom Wildtyp.
  • Beispiel 17: Gentechnische Herstellung von Raps-/Canola-Pflanzen mit erhöhtem Ertrag, z. B. einem erhöhten Ertragsmerkmal, zum Beispiel einer gesteigerten Toleranz gegenüber Stress, vorzugsweise Toleranz gegenüber niedrigen Temperaturen, und/oder einer erhöhten Biomasseproduktion durch Überexpression von LTRRP-Genen oder YRP-Genen, zum Beispiel von mit einer Resistenz und/oder Toleranz gegenüber niedrigen Temperaturen in Zusammenhang stehenden Genen, zum Beispiel aus A. thaliana, Brassica napus, Glycine max, Zea mays oder Oryza sativa.
  • Keimblatt-Blattstiele und Hypokotyle 5- bis 6-Tage-alter junger Keimlinge werden als Explantate für die Gewebekultur verwendet und gemäß Babic et al. (Plant Cell Rep 17, 183 (1998)) transformiert. Das kommerzielle Kultivar Westar (Agriculture Canada) ist die Standardvarietät, die für die Transformation verwendet wird, aber es können andere Varietäten verwendet werden. Agrobacterium tumefaciens LBA4404, enthaltend einen binären Vektor, werden für die Transformation von Canola eingesetzt. Für die Transformation von Pflanzen sind viele unterschiedliche binäre Vektorsysteme beschrieben worden (z. B. An G., in Agrobacterium Protocols. Methods in Molecular Biology Band. 44, S. 47–62, Gartland K. M. A. und Davey M. R. Hrsg. Humana Press, Totowa, New Jersey). Viele basieren auf dem von Bevan (Nucleic Acid Research. 12, 8711 (1984)) beschriebenen Vektor pBIN19, der eine Pflanzengenexpressionskassette, flankiert von der rechten und linken Grenzsequenz aus dem Ti-Plasmid von Agrobacterium tumefaciens, enthält. Eine Pflanzengenexpressionskassette besteht aus mindestens zwei Genen – einem Selektionsmarkergen und einem Pflanzenpromotor, der die Transkription der cDNA oder der genomischen DNA des Merkmalsgens reguliert. Man kann verschiedene Selektionsmarkergene verwenden, darunter das Arabidopsis-Gen, das für ein mutiertes Acetohydroxysäuresynthaseenzym (AHAS-Enzym) kodiert ( US-Patentschriften 5,7673,666 und 6,225,105 ). In ähnlicher Weise lässt sich mit verschiedenen Promotoren das Merkmalsgen, welches für eine konstitutive, entwicklungsgesteuerte, Gewebe- oder Umwelt-Regulation der Gentranskription sorgt, steuern. Im vorliegenden Beispiel wird mit dem 34S-Promotor (GenBank Zugangsnummern M59930 und X16673) für die konstitutive Expression des Merkmalsgens gesorgt. Canola-Samen werden in 70% Ethanol während 2 min, und dann in 30% Clorox mit einem Tropfen Tween-20 während 10 min oberflächensterilisiert, woran sich drei Spülungen mit sterilisiertem destilliertem Wasser anschließen. Die Samen werden dann in vitro für 5 Tage lang auf MS-Medium der halben Stärke ohne Hormone, 1% Saccharose, 0,7% Phytagar bei 23°C, 16 Std. Licht keimen gelassen. Die Kotyledonenblattstielexplantate mit dem daran befindlichen Keimblatt werden aus den In-vitro-Keimlingen herauspräpariert und mit Agrobacterium beimpft, indem man das abgeschnittene Ende des Blattstielexplantats in die Bakterienlösung taucht. Die Explantate werden dann bei 23°C, 16 Std. Licht 2 Tage lang auf MSBAP-3-Medium, das 3 mg/l BAP, 3% Saccharose, 0,7% Phytagar enthält, gezüchtet. Nach zwei Tagen Cokultivation mit Agrobacterium, werden die Petiolen-Explantate zu MSBAP-3-Medium, enthaltend 3 mg/l BAP, Cefotaxim, Carbenicillin oder Timentin (300 mg), während 7 Tagen transferiert und dann auf MSBAP-3-Medium mit Cefotaxim, Carbenicillin, oder Timentin und Selektionsmittel bis zur Sprossregeneration kultiviert. Als die Sprosse eine Länge von 5–10 mm hatten, wurden sie abgeschnitten und auf Sprossverlängerungsmedium (MSBAP-0,5 mit 0,5 mg/l BAP) umgesetzt. Sprosse mit einer Länge von etwa 2 cm werden für die Wurzelinduktion auf Wurzelmedium (MSO) umgesetzt.
  • Proben der primären transgenen Pflanzen (T0) werden durch PCR analysiert, um die Gegenwart von T-DNA zu bestätigen. Diese Ergebnisse werden durch Southern-Hybridisierung, in welcher DNA einer Elektrophorese auf einem 1%igen Agarosegel unterzogen und auf eine positiv geladene Nylonmembran (Roche Diagnostics) überführt wird, bestätigt. Das PCR DIG Probe Synthesis-Kit (Roche Diagnostics) wird verwendet, um eine Digoxigenin-markierte Sonde durch PCR herzustellen, wobei es gemäß den Empfehlungen des Herstellers angewandt wird. Die transgenen Pflanzen werden dann gemäß dem in Beispiel 2 beschriebenen Verfahren auf ihren erhöhten Ertrag, z. B. ein erhöhtes Ertragsmerkmal, z. B. eine höhere Toleranz gegenüber Stress, z. B. eine erhöhte Toleranz gegenüber niedrigen Temperaturen, und/oder eine erhöhte Biomasseproduktion untersucht. Man findet, dass transgener Raps/Canola, der LTRRP-Gene oder YRP-Gene, z. B. Gene, die mit einer Resistenz gegen und/oder Toleranz gegenüber niedrigen Temperaturen in Zusammenhang stehen, aus Brassica napus, Glycine max, Zea mays oder Oryza sativa überexprimiert, einen erhöhten Ertrag zeigt, zum Beispiel einen erhöhten Ertrag, z. B. ein erhöhtes Ertragsmerkmal, z. B. eine höhere Toleranz gegenüber Stress, z. B. mit gesteigerter Toleranz gegenüber niedrigen Temperaturen und/oder erhöhter Biomasseproduktion, verglichen mit Pflanzen ohne das Transgen, z. B. entsprechenden nicht transgenen Kontrollpflanzen.
  • Beispiel 18: Gentechnische Herstellung von Maispflanzen mit erhöhtem Ertrag, z. B. einem erhöhten Ertragsmerkmal, zum Beispiel einer gesteigerten Toleranz gegenüber Stress, vorzugsweise Toleranz gegenüber niedrigen Temperaturen, und/oder einer erhöhten Biomasseproduktion durch Überexpression von LTRRP-Genen oder YRP-Genen, z. B. Genen, die mit Toleranz gegenüber niedrigen Temperaturen in Zusammenhang stehen, zum Beispiel aus A. thaliana, Brassica napus, Glycine max, Zea mays oder Oryza sativa.
  • Die Transformation von Mais (Zea mays L.) wird mit einer Modifikation des von Ishida et al. (Nature Biotech 14745 (1996)) beschriebenen Verfahrens durchgeführt. Die Transformation in Mais ist genotypabhängig, und nur spezielle Gentypen sind für eine Transformation und Regeneration geeignet. Die Inzuchtlinie A188 (University of Minnesota) oder Hybride mit A188 als einem Elter sind gute Quellen für Donormaterial für die Transformation (Fromm et al. Biotech 8, 833 (1990)), aber es können auch andere Gentypen erfolgreich verwendet werden. Ähren werden ungefähr 11 Tage nach der Bestäubung (DAP) von Maispflanzen geerntet, wenn die Länge von unreifen Embryos etwa 1 bis 1,2 mm beträgt. Unreife Embryos werden mit Agrobacterium tumefaciens, welche ”superbinäre” Vektoren tragen, cokultiviert, und transgene Pflanzen werden durch Organgenese gewonnen. Das superbinäre Vektorsystem von Japan Tobacco ist in den WO-Patenten WO 94/00977 und WO 95/06722 beschrieben. Vektoren werden wie beschrieben konstruiert. Verschiedene Selektionsmarkergene können verwendet werden, einschließlich des Maisgens, das ein mutiertes Acetohydroxysäuresynthaseenzym (AHAS-Enzym) kodiert ( US-Patent 6,025,541 ). In ähnlicher Weise lässt sich mit verschiedenen Promotoren das Merkmalsgen, welches für eine konstitutive, entwicklungsgesteuerte, Gewebe- oder Umwelt-Regulation der Gentranskription sorgt, steuern. Im vorliegenden Beispiel wird mit dem 34S-Promotor (GenBank Zugangsnummern M59930 und X16673) für die konstitutive Expression des Merkmalsgens gesorgt.
  • Herausgeschnittene Embryos werden auf Kallusinduktionsmedium, dann Maisregenerationsmedium, das Imidazolinon als Selektionsmittel enthält, wachsen gelassen. Die Petrischalen werden im Licht 2–3 Wochen lang bei 25°C oder, bis sich Sprosse entwickeln, inkubiert. Die grünen Sprosse werden von jedem Embryo auf Mais-Wurzelmedium überführt und 2–3 Wochen lang bei 25°C inkubiert, bis sich Wurzeln entwickeln. Die bewurzelten Sprosse werden in Erde im Gewächshaus umgepflanzt. T1-Samen werden von Pflanzen gewonnen, die eine Toleranz gegen die Imidazolinon-Herbizide aufweisen und in der PCR positiv für die Transgen sind. Die transgenen T1-Pflanzen werden dann gemäß des im Beispiel 2 beschriebenen Verfahrens auf erhöhten Ertrag, z. B. ein erhöhtes Ertragsmerkmal, z. B. eine höhere Toleranz gegenüber Stress, z. B. mit gesteigerter Toleranz gegenüber niedrigen Temperaturen, und/oder erhöhte Biomasseproduktion hin untersucht. Die T1-Generation von Pflanzen mit Insertionen der T-DNA an einem einzigen Locus segregiert für das Transgen in einem Verhältnis von 1:2:1. Diejenigen Nachkommen, die eine oder zwei Kopien des Transgens enthalten (3/4 der Nachkommenschaft), sind tolerant gegenüber dem Imidazolinon-Herbizid und zeigen einen erhöhten Ertrag, z. B. ein erhöhtes Ertragsmerkmal, z. B. eine höhere Toleranz gegenüber Stress, z. B. mit gesteigerter Toleranz gegenüber niedrigen Temperaturen und/oder einer erhöhten Biomasseproduktion verglichen mit denjenigen Nachkommen, die die Transgene nicht enthalten. Tolerante Pflanzen haben höhere Samenerträge. Homozygote T2-Pflanzen zeigten ähnliche Phänotypen. Hybridpflanzen (F1-Nachkommenschaft) von homozygoten transgenen Pflanzen und nicht-transgenen Pflanzen zeigten ebenfalls einen erhöhten Ertrag, z. B. ein erhöhtes Ertragsmerkmal, z. B. eine höhere Toleranz gegenüber Stress, z. B. mit gesteigerter Toleranz gegenüber niedrigen Temperaturen und/oder einer erhöhten Biomasseproduktion.
  • Beispiel 19: Gentechnische Herstellung von Weizenpflanzen mit erhöhtem Ertrag, z. B. einem erhöhten Ertragsmerkmal, zum Beispiel einer gesteigerten Toleranz gegenüber Stress, vorzugsweise Toleranz gegenüber niedrigen Temperaturen, und/oder einer erhöhten Biomasseproduktion durch Überexpression von LTRRP-Genen oder YRP-Genen, zum Beispiel von mit einer Resistenz und/oder Toleranz gegenüber niedrigen Temperaturen in Zusammenhang stehenden Genen, zum Beispiel aus A. thaliana, Brassica napus, Glycine max, Zea mays oder Oryza sativa.
  • Die Transformation von Weizen wird mit Hilfe des Verfahrens durchgeführt, das von Ishida et al. (Nature Biotech. 14745 (1996)) beschrieben wurde. In der Transformation wird gewöhnlich das Kultivar Bobwhite (erhältlich von CYMMIT, Mexiko) verwendet. Unreife Embryos werden mit Agrobacterium tumefaciens, welche ”superbinäre” Vektoren tragen, cokultiviert, und transgene Pflanzen werden durch Organogenese gewonnen. Das superbinäre Vektorsystem von Japan Tobacco ist in den WO-Patenten WO 94/00977 und WO 95/06722 beschrieben. Vektoren werden wie beschrieben konstruiert. Verschiedene Selektionsmarkergene können verwendet werden, einschließlich des Maisgens, das ein mutiertes Acetohydroxysäure-Synthase-Enzym (AHAS) kodiert ( US-Patent 6,025,541 ). In ähnlicher Weise lässt sich mit verschiedenen Promotoren das Merkmalsgen, welches für eine konstitutive, entwicklungsgesteuerte, Gewebe- oder Umwelt-Regulation der Gentranskription sorgt, steuern. Im vorliegenden Beispiel wird mit dem 34S-Promotor (GenBank Zugangsnummern M59930 und X16673) für die konstitutive Expression des Merkmalsgens gesorgt.
  • Nach Inkubation mit Agrobacterium werden die Embryonen auf Kallusinduktionsmedium, dann Regenerationsmedium mit Imidazolinon als einem Selektionsmittel, wachsen gelassen. Die Petrischalen werden im Licht 2–3 Wochen lang bei 25°C oder, bis sich Sprosse entwickeln, inkubiert. Die grünen Sprosse werden von jedem Embryo auf Wurzelmedium überführt und 2–3 Wochen lang bei 25°C inkubiert, bis sich Wurzeln entwickeln. Die bewurzelten Sprosse werden in Erde im Gewächshaus umgepflanzt. T1-Samen werden von Pflanzen gewonnen, die eine Toleranz gegen die Imidazolinon-Herbizide aufweisen und in der PCR positiv für die Transgene sind.
  • Die transgenen T1-Pflanzen werden dann gemäß des im Beispiel 2 beschriebenen Verfahrens auf ihren erhöhten Ertrag, z. B. ein erhöhtes Ertragsmerkmal, z. B. eine höhere Toleranz gegenüber Stress, z. B. mit gesteigerter Toleranz gegenüber niedrigen Temperaturen, und/oder erhöhte Biomasseproduktion hin untersucht. Die T1-Generation von Pflanzen mit Insertionen der T-DNA an einem einzigen Locus segregiert für das Transgen in einem Verhältnis von 1:2:1. Diejenigen Nachkommen, die eine oder zwei Kopien des Transgens enthalten (3/4 der Nachkommenschaft), sind tolerant gegenüber dem Imidazolinon-Herbizid und zeigen einen erhöhten Ertrag, z. B. ein erhöhtes Ertragsmerkmal, z. B. eine höhere Toleranz gegenüber Stress, z. B. mit gesteigerter Toleranz gegenüber niedrigen Temperaturen und/oder einer erhöhten Biomasseproduktion verglichen mit denjenigen Nachkommen, die die Transgene nicht enthalten.
  • Zur Untersuchung der Ertragserhöhung werden z. B. Toleranz gegenüber niedrigen Temperaturen, Biomasseproduktion, intrinsischer Ertrag und/oder Trockenmasseproduktion und/oder Samenertrag mit z. B. entsprechenden nicht transgenen Pflanzen vom Wildtyp verglichen. Pflanzen mit einem erhöhten Ertrag, z. B. einem erhöhten Ertragsmerkmal, z. B. einer höheren Toleranz gegenüber Stress, z. B. mit einer erhöhten Effizienz der Nährstoffausnutzung oder einem erhöhten intrinsischen Ertrag, und mit einer höheren Toleranz gegenüber niedrigen Temperaturen, können eine erhöhte Biomasseproduktion und/oder eine erhöhte Trockenmasseproduktion und/oder einen erhöhten Samenertrag bei niedrigen Temperaturen zeigen, verglichen mit Pflanzen, denen dieses Transgen fehlt, z. B. mit entsprechenden nicht transgenen Pflanzen vom Wildtyp.
  • Beispiel 20: Gentechnische Herstellung von Reispflanzen mit erhöhtem Ertrag under Bedingungen von transientem und wiederholtem abiotischem Stress, z. B. einem erhöhten Ertragsmerkmal, zum Beispiel einer gesteigerten Toleranz gegenüber Stress, vorzugsweise Toleranz gegenüber niedrigen Temperaturen, und/oder einer erhöhten Biomasseproduktion durch Überexpression von LTRRP-Genen oder YRP-Genen, z. B. mit Resistenz gegen und/oder Toleranz gegenüber niedrigen Temperaturen in Zusammenhang stehenden Genen, durch Überexpression von mit Stress in Zusammenhang stehenden Genen aus Saccharomyces cerevisiae oder E. coli oder Synechocystis. Reistransformation
  • Agrobacterium, das den erfindungsgemäßen Expressionsvektor enthält, wird zur Transformation von Oryza-sativa-Pflanzen verwendet. Reife trockene Samen der japonica-Reissorte Nipponbare werden entspelzt. Die Sterilisation erfolgt durch einminütiges Inkubieren in 70%igem Ethanol und anschließend 30 Minuten in 0,2% HgCl2, wonach 6 mal je 15 Minuten mit sterilem destilliertem Wasser gewaschen wird. Anschließend werden die sterilen Samen auf einem Medium, das 2,4-D (Kallusinduktionsmedium) enthielt, zur Keimung gebracht. Nach vierwöchiger Inkubation im Dunkeln werden embryogene, von Scutellum stammende Kalli herauspräpariert und auf dem gleichen Medium vermehrt. Nach zwei Wochen werden die Kalli durch Subkultur auf dem gleichen Medium weitere 2 Wochen lang vervielfacht oder vermehrt. Embryogene Kallusstückchen wurden auf frischem Medium 3 Tage vor der Cokultivierung subkultiviert (um die Zellteilungsaktivität zu fördern). Für die Cokultivierung verwendet man den Agrobacterium-Stamm LBA4404. Agrobacterium wird auf AB-Medium mit den entsprechenden Antibiotika überimpft und 3 Tage lang bei 28°C kultiviert. Anschließend werden die Bakterien gewonnen und bis zum Erreichen einer Dichte (OD600) von ungefähr 1 in flüssigem Cokultivierungsmedium suspendiert. Anschließend wird die Suspension in eine Petrischale überführt, und die Kalli werden 15 Minuten lang in die Suspension eingetaucht. Dann werden die Kallusgewebe auf einem Papierfilter trocken getupft und auf ein verfestigtes Cokultivierungsmedium umgesetzt und 3 Tage lang im Dunkeln bei 25°C inkubiert. Die cokultivierten Kalli werden 4 Wochen im Dunkeln bei 28°C in Gegenwart eines Selektionsmittels auf 2,4-D-haltigem Medium herangezogen. Während dieses Zeitraums entwickeln sich rasch wachsende resistente Kallusinseln. Nach dem Umsetzen dieses Materials auf ein Regenerationsmedium und Inkubation im Hellen wird das embryogene Potential freigesetzt, und in den nächsten 4 bis 5 Wochen entwickeln sich Sprosse. Die Sprosse werden aus den Kalli herauspräpariert und 2 bis 3 Wochen lang auf auxinhaltigem Medium inkubiert, von dem sie in Erde umgesetzt werden. Abgehärtete Sprosse werden im Gewächshaus unter hoher Feuchtigkeit und im Kurztag herangezogen. Pro Konstrukt werden ungefähr 35 unabhängige T0-Reistransformanten erzeugt. Die Primärtransformanten werden von einer Gewebekulturkammer in ein Gewächshaus umgesetzt. Nach einer quantitativen PCR-Analyse zur Überprüfung der Kopienzahl des T-DNA-Inserts werden nur transgene Ein-Kopien-Pflanzen mit Toleranz für die Selektionsmittel zurückbehalten, um T1-Samen zu ernten. Die Samen werden dann 3 bis 5 Monate nach dem Umsetzen geerntet. Das Verfahren ergibt Ein-Locus-Transformanten mit einer Rate von über 50% (Aldemita und Hodges 1996, Chan et al. 1993, Hiei et al. 1994). Zur Untersuchung der Ertragserhöhung werden z. B. Toleranz gegenüber niedrigen Temperaturen, Biomasseproduktion, intrinsischer Ertrag und/oder Trockenmasseproduktion und/oder Samenertrag mit z. B. entsprechenden nicht transgenen Pflanzen vom Wildtyp verglichen. Pflanzen mit einem erhöhten Ertrag, z. B. einem erhöhten Ertragsmerkmal, z. B. einer höheren Toleranz gegenüber Stress, z. B. mit einer erhöhten Effizienz der Nährstoffausnutzung oder einem erhöhten intrinsischen Ertrag, und mit einer höheren Toleranz gegenüber niedrigen Temperaturen, können eine erhöhte Biomasseproduktion und/oder eine erhöhte Trockenmasseproduktion und/oder einen erhöhten Samenertrag bei niedrigen Temperaturen zeigen, verglichen mit Pflanzen, denen dieses Transgen fehlt, z. B. mit entsprechenden nicht transgenen Pflanzen vom Wildtyp. Für den Assay mit zyklischer Dürre werden die Pflanzen z. B. wiederholtem Stress ausgesetzt, ohne dass dies zur Austrocknung führt. Während des Experiments wird die Versorgung mit Wasser eingeschränkt, und die Pflanzen werden Zyklen von Dürre und erneuter Bewässerung ausgesetzt. Zum Messen der Biomasseproduktion wird das Frischgewicht der Pflanzen einen Tag nach dem letzten Bewässern bestimmt, indem man die Sprosse abschneidet und sie wiegt.
  • Beispiel 21: Gentechnische Herstellung von Reispflanzen mit erhöhtem Ertrag unter Bedingungen von transientem und wiederholtem abiotischem Stress, z. B. einem erhöhten Ertragsmerkmal, zum Beispiel einer gesteigerten Toleranz gegenüber Stress, vorzugsweise Toleranz gegenüber niedrigen Temperaturen, und/oder einer erhöhten Biomasseproduktion durch Überexpression von LTRRP-Genen oder YRP-Genen, z. B. mit Resistenz gegen und/oder Toleranz gegenüber niedrigen Temperaturen in Zusammenhang stehenden Genen, durch Überexpression von mit Ertrag und Stress in Zusammenhang stehenden Genen aus zum Beispiel aus A. thaliana, Brassica napus, Glycine max, Zea mays oder Oryza sativa. Reistransformation
  • Agrobacterium, das den erfindungsgemäßen Expressionsvektor enthält, wird zur Transformation von Oryza-sativa-Pflanzen verwendet. Reife trockene Samen der japonica-Reissorte Nipponbare werden entspelzt. Die Sterilisation erfolgt durch einminütiges Inkubieren in 70%igem Ethanol und anschließend 30 Minuten in 0,2% HgCl2, wonach 6 mal je 15 Minuten mit sterilem destilliertem Wasser gewaschen wird. Anschließend werden die sterilen Samen auf einem Medium, das 2,4-D (Kallusinduktionsmedium) enthielt, zur Keimung gebracht. Nach vierwöchiger Inkubation im Dunkeln werden embryogene, von Scutellum stammende Kalli herauspräpariert und auf dem gleichen Medium vermehrt. Nach zwei Wochen werden die Kalli durch Subkultur auf dem gleichen Medium weitere 2 Wochen lang vervielfacht oder vermehrt. Embryogene Kallusstückchen wurden auf frischem Medium 3 Tage vor der Cokultivierung subkultiviert (um die Zellteilungsaktivität zu fördern). Für die Cokultivierung verwendet man den Agrobacterium-Stamm LBA4404. Agrobacterium wird auf AB-Medium mit den entsprechenden Antibiotika überimpft und 3 Tage lang bei 28°C kultiviert. Anschließend werden die Bakterien gewonnen und bis zum Erreichen einer Dichte (OD600) von ungefähr 1 in flüssigem Cokultivierungsmedium suspendiert. Anschließend wird die Suspension in eine Petrischale überführt, und die Kalli werden 15 Minuten lang in die Suspension eingetaucht. Dann werden die Kallusgewebe auf einem Papierfilter trocken getupft und auf ein verfestigtes Cokultivierungsmedium umgesetzt und 3 Tage lang im Dunkeln bei 25°C inkubiert. Die cokultivierten Kalli werden 4 Wochen im Dunkeln bei 28°C in Gegenwart eines Selektionsmittels auf 2,4-D-haltigem Medium herangezogen. Während dieses Zeitraums entwickeln sich rasch wachsende resistente Kallusinseln. Nach dem Umsetzen dieses Materials auf ein Regenerationsmedium und Inkubation im Hellen wird das embryogene Potential freigesetzt, und in den nächsten 4 bis 5 Wochen entwickeln sich Sprosse. Die Sprosse werden aus den Kalli herauspräpariert und 2 bis 3 Wochen lang auf auxinhaltigem Medium inkubiert, von dem sie in Erde umgesetzt werden. Abgehärtete Sprosse werden im Gewächshaus unter hoher Feuchtigkeit und im Kurztag herangezogen. Pro Konstrukt werden ungefähr 35 unabhängige T0-Reistransformanten erzeugt. Die Primärtransformanten werden von einer Gewebekulturkammer in ein Gewächshaus umgesetzt. Nach einer quantitativen PCR-Analyse zur Überprüfung der Kopienzahl des T-DNA-Inserts werden nur transgene Ein-Kopien-Pflanzen mit Toleranz für die Selektionsmittel zurückbehalten, um T1-Samen zu ernten. Die Samen werden dann 3 bis 5 Monate nach dem Umsetzen geerntet. Das Verfahren ergibt Ein-Locus-Transformanten mit einer Rate von über 50% (Aldemita und Hodges 1996, Chan et al. 1993, Hiei et al. 1994). Zur Untersuchung der Ertragserhöhung werden z. B. Toleranz gegenüber niedrigen Temperaturen, Biomasseproduktion, intrinsischer Ertrag und/oder Trockenmasseproduktion und/oder Samenertrag mit z. B. entsprechenden nicht transgenen Pflanzen vom Wildtyp verglichen. Pflanzen mit einem erhöhten Ertrag, z. B. einem erhöhten Ertragsmerkmal, z. B. einer höheren Stresstoleranz, z. B. mit einer erhöhten Effizienz der Nährstoffausnutzung oder einem erhöhten intrinsischen Ertrag, und z. B. mit einer höheren Toleranz gegenüber niedrigen Temperaturen, können eine erhöhte Biomasseproduktion und/oder eine erhöhte Trockenmasseproduktion und/oder einen erhöhten Samenertrag bei niedrigen Temperaturen zeigen, verglichen mit Pflanzen, denen dieses Transgen fehlt, z. B. mit entsprechenden nicht transgenen Pflanzen vom Wildtyp. Für den Assay mit zyklischer Dürre werden die Pflanzen z. B. wiederholtem Stress ausgesetzt, ohne dass dies zur Austrocknung führt. Während des Experiments wird die Versorgung mit Wasser eingeschränkt, und die Pflanzen werden Zyklen von Dürre und erneuter Bewässerung ausgesetzt. Zum Messen der Biomasseproduktion wird das Frischgewicht der Pflanzen einen Tag nach dem letzten Bewässern bestimmt, indem man die Sprosse abschneidet und sie wiegt. Bei einem äquivalenten Grad an Dürrestress sind tolerante Pflanzen dazu in der Lage, ihr normales Wachstum wieder aufzunehmen, während empfindliche Pflanzen abgestorben sind oder erhebliche Schäden davongetragen haben, die kürzere Blätter und eine geringere Trockenmasse zur Folge haben.
  • Beispiel 22: Screening von Pflanzen auf Wachstum unter zyklischen Dürrebedingungen
  • In dem Assay mit zyklischen Dürrebedingungen werden die Pflanzen wiederholtem Stress ausgesetzt, ohne dass dies zur Austrockung führt. In einem Standardexperiment wird Boden als 1:1(v/v)-Gemisch von nährstoffreichem Boden (GS90, Tantau, Wansdorf, Deutschland) und Quarzsand hergestellt. Töpfe (6 cm Durchmesser) wurden mit diesem Gemisch gefüllt und in Wannen gestellt. In die Wannen wurde Wasser gegeben, so dass das Bodengemisch eine angemessene Menge Wasser für das Säverfahren aufnehmen konnte (Tag 1) und anschließend wurden Samen von transgenen A. thaliana-Pflanzen und ihre Wildtypkontrollen in Töpfe gesät. Dann wurde die gefüllte Wanne mit einem transparenten Deckel abgedeckt und in eine vorgekühlte (4°C–5°C) und abgedunkelte Wachstumskammer überführt. Die Stratifizierung wurde über einen Zeitraum von 3 Tagen im Dunkeln bei 4°C–5°C oder alternativ für 4 Tage im Dunkeln bei 4°C etabliert. Die Keimung der Samen und das Wachstum wurde bei Wachstumsbedingungen von 20°C, 60% relativer Feuchtigkeit, 16 h Photoperiode und Belichtung mit Fluoreszenzlicht bei 200 μmol/m2s eingeleitet. Die Deckel wurden 7–8 Tage nach der Aussaat abgenommen. Eine BASTA-Selektion erfolgte am Tag 10 oder Tag 11 (9 oder 10 Tage nach der Aussaat) durch Besprühen der Töpfe mit den Pflänzchen von oben. Im Standardexperiment wurde eine 0,07%ige (v/v) Lösung von BASTA-Konzentrat (183 g/l Glufosinat-Ammonium) in Leitungswasser einmal versprüht oder alternativ wurde eine 0,02%ige (v/v) BASTA-Lösung dreimal versprüht. Die Wildtyp-Kontrollpflanzen wurden nur mit Leitungswasser (anstelle von in Leitungswasser gelöstem BASTA) besprüht, aber ansonsten identisch behandelt. Die Pflanzen wurden 13–14 Tage nach der Aussaat vereinzelt, indem die überschüssigen Keimlinge entfernt wurden und ein Keimling im Boden belassen wurde. Die transgenen Ereignisse und die Wildtyp-Kontrollpflanzen wurden gleichmäßig über die Kammer verteilt. Die Versorgung mit Wasser war während des gesamten Experiments einschränkt, und die Pflanzen wurden Zyklen mit Dürre und erneuter Bewässerung ausgesetzt. Die Bewässerung erfolgte am Tag 1 (vor der Aussaat), am Tag 14 oder Tag 15, am Tag 21 oder Tag 22 und schließlich am Tag 27 oder Tag 28. Zur Messung der Biomasseproduktion wurde das Frischgewicht der Pflanzen einen Tag nach der abschließenden Bewässerung (am Tag 28 oder Tag 29) bestimmt, indem die Sprosse abgeschnitten und gewogen wurden. Neben dem Wiegen wurde Phänotyp-Information im Falle solcher Pflanzen hinzugefügt, die sich von der Wildtypkontrolle unterschieden. Die Pflanzen waren bei der Ernte im Stadium vor dem Aufblühen und vor dem Wachstum des Blütenstands. Signifikanzwerte für die statistische Signifikanz der Biomasse-Änderungen wurden durch Anwenden des t-Tests nach Student (Parameter: zweiseitige, ungleiche Varianz) berechnet. Bis zu fünf Linien (Ereignisse) pro transgenem Konstrukt wurden in aufeinander folgenden Stufen (bis zu 4) des Experiments getestet. Nur Konstrukte, die eine positive Leistung zeigten, wurden auf der nächsten Stufe des Experiments untersucht. Gewöhnlich wurden bei der ersten Stufe fünf Pflanzen pro Konstrukt und bei den darauf folgenden Stufen 30–60 Pflanzen getestet. Die Biomasseleistung wurde wie oben beschrieben bewertet. Gezeigt sind die Daten von Konstrukten, die bei wenigstens zwei aufeinander folgenden Stufen des Experiments eine erhöhte Biomasseleistung zeigten.
  • Die Biomasseproduktion von transgenem A. thaliana, das sich unter Wachstumsbedingungen zyklischer Dürre entwickelt hatte, ist in Tabelle VIIc gezeigt: Biomasseproduktion wurde durch Wiegen von Pflanzenrosetten gemessen. Die Zunahme an Biomasse wurde als Verhältnis des Durchschnittsgewichts transgener Pflanzen zum Durchschnittsgewicht von Pflanzen des Wildtyps aus dem gleichen Experiment berechnet. Angeführt ist die mittlere Zunahme der Biomasse von transgenen Konstrukten (Signifikanzwert < 0,3 und Zunahme an Biomasse > 5% (Verhältnis > 1,05))
  • Beispiel 23: Screening von Pflanzen auf Ertragszunahme unter standardisierten Wachstumsbedingungen (intrinsischer Ertrag)
  • In diesem Experiment wurde ein Screening von Pflanzen auf Ertragszunahme (in diesem Fall: Zunahme an Biomasseertrag) unter standardisierten Wachstumsbedingungen in Abwesenheit von erheblichem abiotischen Stress durchgeführt. In einem Standardexperiment wird Boden als 3,5:1(v/v)-Gemisch von nährstoffreichem Boden (GS90, Tantau, Wansdorf, Deutschland) und Quarzsand hergestellt. Alternativ wurden die Pflanzen auf nährstoffreichem Boden (GS90, Tantau, Deutschland) herangezogen. Blumentöpfe wurden mit dem Erdgemisch befüllt und in Wannen gebracht. Wasser wurde den Wannen zugesetzt, damit die Erdmischung eine angemessene Menge an Wasser für die Aussaat-Prozedur aufnimmt. Die Samen für transgene A. thaliana-Pflanzen und ihre nicht-transgenen Wildtypkontrollen wurden in Töpfe (6 cm Durchmesser) gesät. Dann wurde die gefüllte Wanne mit einem transparenten Deckel abgedeckt und in eine vorgekühlte (4°C–5°C) und abgedunkelte Wachstumskammer überführt. Die Stratifikation wurde während eines Zeitraums von 3–4 Tagen im Dunklen bei 4°C–5°C etabliert. Die Keimung der Samen und das Wachstum wurden bei einer Wachstumsbedingung von 20°C, 60% relative Feuchtigkeit, 16 h-Lichtperiode und Beleuchtung mit Fluoreszenzlicht bei ungefähr 200 μmol/m2s initiert. Die Deckel wurden 7–8 Tage nach der Aussaat abgenommen. Eine BASTA-Selektion erfolgte am Tag 10 oder Tag 11 (9 oder 10 Tage nach der Aussaat) durch Besprühen der Töpfe mit den Pflänzchen von oben. Im Standardexperiment wurde eine 0,07%ige (v/v) Lösung von BASTA-Konzentrat (183 g/l Glufosinat-Ammonium) in Leitungswasser einmal versprüht oder alternativ wurde eine 0,02%ige (v/v) BASTA-Lösung dreimal versprüht. Die Wildtyp-Kontrollpflanzen wurden nur mit Leitungswasser (anstelle von in Leitungswasser gelöstem BASTA) besprüht, aber ansonsten identisch behandelt. Die Pflanzen wurden 13–14 Tage nach der Aussaat vereinzelt, indem die überschüssigen Keimlinge entfernt wurden und ein Keimling im Boden belassen wurde. Die transgenen Ereignisse und die Wildtyp-Kontrollpflanzen wurden gleichmäßig über die Kammer verteilt. Gewässert wurde alle zwei Tage nach dem Entfernen der Deckel bei einem Standardexperiment oder alternativ dazu jeden Tag. Zum Messen der Biomasseleistung wurde das Pflanzenfrischgewicht zur Erntezeit (24–29 Tage nach der Aussaat) durch Abschneiden der Sprosse und Wiegen derselben ermittelt. Die Pflanzen waren bei der Ernte im Stadium vor dem Aufblühen und vor dem Wachstum des Blütenstands. Transgene Pflanzen wurden mit den nicht transgenen Wildtyp-Kontrollpflanzen verglichen. Signifikanzwerte für die statistische Signifikanz der Biomasse-Änderungen wurden durch Anwenden des t-Tests nach Student (Parameter: zweiseitige, ungleiche Varianz) berechnet. Zwei verschiedene Arten experimenteller Vorschriften wurden durchgeführt:
    • – Vorschrift 1). Pro transgenem Konstrukt wurden 3–4 unabhängige transgene Linen (= Ereignisse) getestet (22–30 Pflanzen pro Konstrukt), und die Biomasseleistung wurde wie oben beschrieben bewertet.
    • – Vorschrift 2). Bis zu fünf Linien pro transgenem Konstrukt wurden in aufeinander folgenden Stufen (bis zu 4) des Experiments getestet. Nur Konstrukte, die eine positive Leistung zeigten, wurden auf der nächsten Stufe des Experiments untersucht. Gewöhnlich wurden bei der ersten Stufe fünf Pflanzen pro Konstrukt und bei den darauf folgenden Stufen 30–60 Pflanzen getestet. Die Biomasseleistung wurde wie oben beschrieben bewertet. Gezeigt sind die Daten aus dieser Art von Experiment (Vorschrift 2) von Konstrukten, die bei wenigstens zwei aufeinander folgenden Stufen des Experiments eine erhöhte Biomasseleistung zeigten.
  • In Tabelle VIIId ist die Biomasseproduktion von unter Standardbedingungen herangezogenem transgenem A. thaliana gezeigt: Biomasseproduktion wurde durch Wiegen von Pflanzenrosetten gemessen. Die Zunahme an Biomasse wurde als Verhältnis des Durchschnittsgewichts transgener Pflanzen zum Durchschnittsgewicht von Wildtyp-Kontrollpflanzen aus dem gleichen Experiment berechnet. Angeführt ist die mittlere Zunahme der Biomasse von transgenen Konstrukten (Signifikanzwert < 0,3 und Zunahme an Biomasse > 5% (Verhältnis > 1,05))
  • Beispiel 24: Screening von Pflanzen (Arabidopsis) auf Wachstum bei begrenztem Stickstoffvorrat
  • Beim Screening kamen zwei verschiedene Vorschriften zur Anwendung:
    • – Vorschrift 1). Pro transgenem Konstrukt wurden 4 unabhängige transgene Linie (= Ereignisse) getestet (22–28 Pflanzen pro Konstrukt). Arabidopsis thaliana Samen werden in Töpfe ausgesät, die eine 1:1 (v:v) Mischung von nährstoffarmem Boden (”Einheitserde Typ 0”, 30% Lehm, Tantau, Wansdorf Deutschland) und Sand enthalten. Die Keimung wird durch eine 4-tägige Dunkelperiode bei 4°C induziert. Anschließend werden die Pflanzen unter Standardwachstumsbedingungen (Photoperiode mit 16 h Licht und 8 h Dunkelheit, 20°C, 60% relative Feuchtigkeit, und eine Photonenflussdichte von 200 μE) herangezogen. Die Pflanzen werden herangezogen und kultiviert, unter anderem werden sie jeden zweiten Tag mit einer stickstoffarmen Nährstofflösung gegossen. Die stickstoffarme Nährstofflösung enthält z. B. neben Wasser
    Mineralnährstoff Endkonzentration
    KCl 3,00 mM
    MgSO4 × 7 H2O 0,5 mM
    CaCl2 × 6 H2O 1,5 mM
    K2SO4 1,5 mM
    NaH2PO4 1,5 mM
    Fe-EDTA 40 μM
    H3BO3 25 μM
    MnSO4 × H2O 1 μM
    ZnSO4 × 7 H2O 0,5 μM
    Cu2SO4 × 5 H2O 0,3 μM
    Na2MoO4 × 2 H2O 0,05 μM
  • Nach 9 bis 10 Tagen werden die Pflanzen vereinzelt. Nach einer Gesamtzeit von 28 bis 31 Tagen werden die Pflanzen geerntet und anhand des Frischgewichts der oberirdischen Teile der Pflanzen eingestuft. Die Zunahme an Biomasse wird als Verhältnis des Frischgewichts der oberirdischen Teile der betreffenden transgenen Pflanze und der nicht transgenen Pflanze vom Wildtyp gemessen.
    • – Vorschrift 2). Beim Screening von transgenen Pflanzen wurde eine spezielle Kulturvorrichtung verwendet. Um einen hohen Durchsatz zu erzielen, werden Pflanzen auf Agarplatten mit einem begrenzten Stickstoffvorrat (adaptiert von Estelle und Somerville, 1987) auf Biomasseproduktion gescreent. Diese Screening-Pipeline umfasst zwei Ebenen. Transgene Linien werden auf einer nächsten Ebene getestet, wenn die Produktion von Biomasse im Vergleich zu Pflanzen vom Wildtyp signifikant verbessert ist. Bei jeder Ebene wird die Anzahl an Wiederholungstests und die statistische Stringenz erhöht.
    Beim Aussäen werden die Samen mit Hilfe eines Zahnstochers aus den Eppendorf-Röhrchen entnommen und auf die obenerwähnten Agarplatten mit begrenztem Stickstoffvorrat (0,05 mM KNO3) gegeben. Insgesamt werden auf jeder Platte (12 × 12 cm) ungefähr 15–30 Samen verteilt.
  • Nach dem Säen der Samen werden die Platten 2–4 Tage lang im Dunkeln bei 4°C stratifiziert. Nach dem Stratifizieren werden die Testpflanzen 22 bis 25 Tage lang bei einem 16-h-Licht, 8-h-Dunkelheit-Rhythmus bei 20°C, einer Luftfeuchtigkeit von 60% und einer CO2-Konzentration von ungefähr 400 ppm herangezogen. Die verwendeten Lichtquellen erzeugen ein Licht, das dem Farbspektrum der Sonne ähnelt, mit einer Lichtintensität von ungefähr 100 μE/m2s. Nach 10 bis 11 Tagen werden die Pflanzen vereinzelt. Ein verbessertes Wachstum unter Stickstoffmangelbedingungen wird nach 20–25 Tagen Wachstum anhand der Biomasseproduktion von Sprossen und Wurzeln der transgenen Pflanzen im Vergleich zu Wildtyp-Kontrollpflanzen Wildtyp bewertet. Transgene Linien, die eine signifikant verbesserte Biomasseproduktion im Vergleich zu Pflanzen vom Wildtyp zeigen, werden auf der nächsten Stufe dem folgenden Experiment auf Boden unterzogen, wie in Vorschrift 1 beschrieben, wobei jedoch pro Konstrukt 3–6 Linien getestet wurden (bis zu 60 Pflanzen pro Konstrukt).
  • Die Biomasseproduktion von transgenem, unter eingeschränkter Stickstoffversorgung herangezogenem Arabidopsis thaliana ist in Tabelle VIIIa gezeigt: Biomasseproduktion wurde durch Wiegen von Pflanzenrosetten gemessen. Die Zunahme an Biomasse wurde als Verhältnis des Durchschnittsgewichts transgener Pflanzen zum Durchschnittsgewicht von Wildtyp-Kontrollpflanzen aus dem gleichen Experiment berechnet. Angeführt ist die mittlere Zunahme der Biomasse von transgenen Konstrukten (Signifikanzwert < 0,3 und Zunahme an Biomasse > 5% (Verhältnis > 1,05))
  • Figuren:
  • 1a und b. Vektor VC-MME220-1 (SEQ ID NO: 1) oder VC-MME220-1qcz (SEQ ID NO: 6064), der zur Klonierung des interessierenden Gens für die Expression ohne Zielsteuerung verwendet wurde.
  • 2a und b. Vektor VC-MME221-1 (SEQ ID NO: 2) oder VC-MME221-1qcz (SEQ ID NO: 6069), der zur Klonierung des interessierenden Gens für die Expression ohne Zielsteuerung verwendet wurde.
  • 3a und b. Vektor VC-MME354-1 (SEQ ID NO: 3) oder VC-MME354-1QCZ (SEQ ID NO: 6055), der zur Klonierung des interessierenden Gens für die auf Plastide gerichtete Expression verwendet wurde.
  • 4a und b. Vektor VC-MME432-1 (SEQ ID NO: 5) oder VC-MME432-1qcz (SEQ ID NO: 6065), der zur Klonierung des interessierenden Gens für die auf Plastide gerichtete Expression verwendet wurde.
  • 5a und b. Vektor VC-MME489-1p (SEQ ID NO: 15) oder VC-MME489-1QCZ (SEQ ID NO: 6079), der zur Klonierung des interessierenden Gens für die Expression ohne Zielsteuerung und zur Klonierung einer Erkennungssequenz verwendet wurde.
  • 6 Vektor pMTX0270p SEQ ID NO: 16), der zur Klonierung einer Erkennungssequenz verwendet wurde.
  • 7. Vektor pMTX155 (SEQ ID NO: 6054), der zur Klonierung des interessierenden Gens für die Expression ohne Zielsteuerung verwendet wurde.
  • 8. Vektor VC-MME356-1QCZ (SEQ ID NO: 6057), der für die auf Mitochondrien gerichtete Expression verwendet wurde.
  • 9. Vektor VC-MME301-1QCZ (SEQ ID NO: 6059), der für die Expression ohne Zielsteuerung vorzugsweise in Samen verwendet wurde.
  • 10. Vektor pMTX461korrp (SEQ ID NO: 6060), der für die auf Plastide gerichtete Expression vorzugsweise in Samen verwendet wurde.
  • 11. Vektor VC-MME462-1QCZ (SEQ ID NO: 6062), der für die auf Mitochondrien gerichtete Expression vorzugsweise in Samen verwendet wurde.
  • 12. Vektor VC-MME431-1qcz (SEQ ID NO: 6067), der für die auf Mitochondrien gerichtete Expression verwendet wurde.
  • 13. Vektor pMTX447korr (SEQ ID NO: 6070), der für die auf Plastide gerichtete Expression verwendet wurde.
  • 14. Vektor VC-MME445-1qcz (SEQ ID NO: 6072), der für die auf Mitochondrien gerichtete Expression verwendet wurde.
  • 15. Vektor VC-MME289-1qcz (SEQ ID NO: 6074), der für die Expression ohne Zielsteuerung vorzugsweise in Samen verwendet wurde.
  • 16. Vektor VC-MME464-1qcz (SEQ ID NO: 6075), der für die auf Plastide gerichtete Expression vorzugsweise in Samen verwendet wurde.
  • 17. Vektor VC-MME465-1qcz (SEQ ID NO: 6077), der für die auf Mitochondrien gerichtete Expression vorzugsweise in Samen verwendet wurde.
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  • Die vorliegende, hier offenbarte Erfindung stellt eine Methode zur Herstellung einer Pflanze mit erhöhtem Ertrag, verglichen mit einer entsprechenden Pflanze vom Wildtyp bereit, bei dem man eine oder mehrere Aktivitäten in einer Pflanze oder einem Teil davon erhöht oder erzeugt. Die vorliegende Erfindung betrifft weiterhin Nukleinsäuren, die eines oder mehrere Merkmale einer transgenen Pflanze verstärken oder verbessern, und Zellen, Nachkommen, Samen und Pollen, die/das sich von diesen Pflanzen oder Teilen ableiten, sowie Herstellungsmethoden und Methoden zur Anwendung solcher Pflanzenzellen bzw. Pflanzen, Nachkommen, Samen oder Pollen. Dieses verbesserte Merkmal/diese verbesserten Merkmale zeigt/zeigen sich in einem erhöhten Ertrag, vorzugsweise durch die Verbesserung eines oder mehrerer Ertragsmerkmale, z. B. Toleranz gegenüber niedrigen Temperaturen.
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    • - Aldemita und Hodges 1996 [0756]
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    • - Hiei et al. 1994 [0756]
    • - Estelle und Somerville, 1987 [0762]

Claims (36)

  1. Verfahren zur Herstellung einer Pflanze mit einem erhöhten Ertrag, verglichen mit einer entsprechenden Pflanze vom Wildtyp, welches wenigstens den folgenden Schritt umfasst: Erhöhen oder Erzeugen einer oder mehrerer Aktivitäten, ausgewählt aus der Gruppe bestehend aus einer (DL)-Glycerin-3-phosphatase, einer 2-Desoxyglucose-6-phosphatphosphatase, einer 3-Methyl-2-oxobutanoat-Hydroxymethyltransferase, einer Alkoholacetyltransferase, einer Aminosäurepermease, einer Aminomethyltransferase, einem Ammoniumtransporter, einem Aquaporin, einem ATP-bindenden Protein eines Arabinosetransportsystems, einer Argininosuccinatsynthase, einer Aspartataminotransferase, einem B1906-Protein, einem B3410-Protein, einer Cardiolipinsynthetase, einem CoA-Transferase-ähnlichen Protein (NAD(P)-bindend), einem Cobalttransportprotein, einem DNA- und proteinbindenden Protein zur Steuerung des Proteoms auf der posttranskriptionellen Ebene, einer Enoyl-CoA-Hydratase, einer Enoyl-CoA-Isomerase, einer Ethanolaminkinase, einer Formiatacetyltransferase 1, einem Protein einer Glucit/Sorbit-spezifischen Enzym-IIA-Komponente, einer Glutaminsynthetase, einer Glutathion-S-transferase, einer Glycerindehydrogenase, einem Glykogensyntheseinitiatorprotein, einem GTP-bindenden Protein, einem Hitzeschorkprotein, einem Hexosetransporter, einer Holo-[Acylträgerprotein]-Synthase, einem anorganischen Phosphattransporter, einer Lanosterolsynthase, einer molybdänbindenden Untereinheit von Aldehydoxidasen und Xanthindehydrogenasen, einem Multidrug-Resistenzprotein, einem Multiple-Drug-Resistenzprotein, einer NADH-Dehydrogenase/NAD(P)H-Nitroreduktase, einer Oxidoreduktase, einer Peptidyl-Prolyl-cis/trans-Isomerase, einem Peroxisomal-Targeting-Signal-2-Rezeptor, einer Phosphoadenosinphosphosulfatreduktase, einem Phosphoträgerprotein, einem Pirin-ähnlichen Protein, einer Precorrin-6y-Methylase, einem für den Abbau von Glykoproteinen benötigten Protein, einer Pyrimidindeaminase/-reduktase, einem Regulator der Zellmorphogenese und der NO-Signalvermittlung, einer Serinacetyltransferase, einer Untereinheit des Signalosomkomplexes, einem SLR1094-Protein, einer Untereinheit von TORC1, einer thiolspezifischen Monooxygenase, einem die Transkription steuernden Protein, einer Transketolase, einem Zwei-Modul-Transportprotein, einem Uridindiphosphat-N-acetylglucosamintransporter, einem yer175w-a-Protein, einem yhr213w-a-Protein, einem YML079W-Protein, einem YMR157C-Protein, einem YNL024C-Protein und einem YNR040W-Protein, in einer Pflanze oder einem Teil davon.
  2. Verfahren zur Herstellung einer Pflanze mit einem erhöhten Ertrag, verglichen mit einer entsprechenden Pflanze vom Wildtyp, welches wenigstens einen der Schritte umfasst, die aus der aus den folgenden Punkten bestehenden Gruppe ausgewählt sind: (i) Erhöhen oder Erzeugen der Aktivität eines Polypeptids, umfassend ein Polypeptid, eine Konsensussequenz oder wenigstens ein Polypeptidmotiv, wie in Spalte 5 oder 7 von Tabelle II bzw. Tabelle IV aufgeführt; oder (ii) Erhöhen oder Erzeugen der Aktivität eines Expressionsprodukts eines Nukleinsäuremoleküls, umfassend ein Polynukleotid, wie in Spalte 5 oder 7 von Tabelle I aufgeführt, und (iii) Erhöhen oder Erzeugen der Aktivität eines funktionellen Äquivalents von (i) oder (ii).
  3. Verfahren gemäß Anspruch 1 oder 2, welches Folgendes umfasst: (i) Erhöhen oder Erzeugen der Expression wenigstens eines Nukleinsäuremoleküls und/oder (ii) Erhöhen oder Erzeugen der Expression eines Expressionsprodukts wenigstens eines Nukleinsäuremoleküls und/oder (iii) Erhöhen oder Erzeugen einer oder mehrerer Aktivitäten eines durch wenigstens ein Nukleinsäuremolekül kodierten Expressionsprodukts, wobei das Nukleinsäuremolekül ein Nukleinsäuremolekül umfasst, welches ausgewählt ist aus der Gruppe bestehend aus: (a) einem Nukleinsäuremolekül, das für das in Spalte 5 oder 7 von Tabelle II gezeigte Polypeptid kodiert; (b) einem in Spalte 5 oder 7 von Tabelle I gezeigten Nukleinsäuremolekül; (c) einem Nukleinsäuremolekül, welches als Folge der Degeneration des genetischen Kodes von einer in Spalte 5 oder 7 von Tabelle II gezeigten Polypeptidsequenz abgeleitet sein kann und verglichen mit einer entsprechenden nicht transformierten Pflanzenzelle vom Wildtyp, einer transgenen Pflanze oder einem Teil davon einen erhöhten Ertrag verleiht; (d) einem Nukleinsäuremolekül mit wenigstens etwa 30% Identität mit der Nukleinsäuremolekülsequenz eines Polynukleotids, das das in Spalte 5 oder 7 von Tabelle I gezeigte Nukleinsäuremolekül umfasst und verglichen mit einer entsprechenden nicht transformierten Pflanzenzelle vom Wildtyp, einer transgenen Pflanze oder einem Teil davon einen erhöhten Ertrag verleiht; (e) einem Nukleinsäuremolekül, das für ein Polypeptid mit wenigstens etwa 30% Identität mit der Aminosäuresequenz des Polypeptids, das durch das Nukleinsäuremolekül von (a) bis (c) kodiert wird, kodiert und die Aktivität aufweist, die durch ein Nukleinsäuremolekül wiedergegeben wird, welches ein wie in Spalte 5 von Tabelle I gezeigtes Polynukleotid umfasst und verglichen mit einer entsprechenden nicht transformierten Pflanzenzelle vom Wildtyp, einer transgenen Pflanze oder einem Teil davon einen erhöhten Ertrag verleiht; (f) einem Nukleinsäuremolekül, welches unter stringenten Hybridisierungsbedingungen mit einem Nukleinsäuremolekül von (a) bis (c) hybridisiert und verglichen mit einer entsprechenden nicht transformierten Pflanzenzelle vom Wildtyp, einer transgenen Pflanze oder einem Teil davon einen erhöhten Ertrag verleiht; (g) einem Nukleinsäuremolekül, das für ein Polypeptid kodiert, das mit Hilfe von monoklonalen oder polyklonalen Antikörpern gegen ein Polypeptid, das durch eines der Nukleinsäuremoleküle von (a) bis (e) kodiert wird und die Aktivität aufweist, die durch ein Nukleinsäuremolekül wiedergegeben wird, welches ein wie in Spalte 5 von Tabelle I gezeigtes Polynukleotid umfasst, isoliert werden kann; (h) einem Nukleinsäuremolekül, das für ein Polypeptid kodiert, das die Konsensussequenz oder ein oder mehrere Polypeptidmotive wie in Spalte 7 von Tabelle IV gezeigt umfasst und vorzugsweise die Aktivität aufweist, die durch ein Nukleinsäuremolekül wiedergegeben wird, welches ein wie in Spalte 5 von Tabelle II oder IV gezeigtes Polynukleotid umfasst; (i) einem Nukleinsäuremolekül, das für ein Polypeptid kodiert, das die Aktivität aufweist, die durch ein wie in Spalte 5 von Tabelle II gezeigtes Protein wiedergegeben wird, und verglichen mit einer entsprechenden nicht transformierten Pflanzenzelle vom Wildtyp, einer transgenen Pflanze oder einem Teil davon einen erhöhten Ertrag verleiht; (j) einem Nukleinsäuremolekül, welches ein Polynukleotid umfasst, das man erhält, indem man eine cDNA-Bibliothek oder eine genomische Bibliothek unter Verwendung der Primer aus Spalte 7 von Tabelle III amplifiziert, und vorzugsweise die Aktivität aufweisen, die durch ein Nukleinsäuremolekül, welches ein wie in Spalte 5 von Tabelle II oder IV gezeigtes Polynukleotid umfasst, wiedergegeben wird; und k) einem Nukleinsäuremolekül, welches erhältlich ist, indem man eine geeignete Nukleinsäurebibliothek unter stringenten Hybridisierungsbedingungen mit einer Sonde, die eine komplementäre Sequenz eines Nukleinsäuremoleküls von (a) oder (b) umfasst, oder mit einem Fragment davon, mit wenigstens etwa 50 nt eines Nukleinsäuremoleküls, das komplementär zu einer in (a) bis (e) charakterisierten Nukleinsäuremolekülsequenz ist und für ein Polypeptid kodiert, das die Aktivität aufweist, die durch ein ein wie in Spalte 5 von Tabelle II gezeigtes Polypeptid umfassendes Protein wiedergegeben wird, screent.
  4. Verfahren zur Herstellung einer transgenen Pflanze mit einem erhöhten Ertrag, verglichen mit einer entsprechenden nicht transformierten Pflanze vom Wildtyp, bei dem man eine Pflanzenzelle oder den Kern einer Pflanzenzelle oder ein Pflanzengewebe mit einem Nukleinsäuremolekül, welches ein Nukleinsäuremolekül, ausgewählt aus der folgenden Gruppe umfasst, transformiert: (a) einem Nukleinsäuremolekül, das für das in Spalte 5 oder 7 von Tabelle II gezeigte Polypeptid kodiert; (b) einem in Spalte 5 oder 7 von Tabelle I gezeigten Nukleinsäuremolekül; (c) einem Nukleinsäuremolekül, welches als Folge der Degeneration des genetischen Kodes von einer in Spalte 5 oder 7 von Tabelle II gezeigten Polypeptidsequenz abgeleitet sein kann und verglichen mit einer entsprechenden nicht transformierten Pflanzenzelle vom Wildtyp, einer transgenen Pflanze oder einem Teil davon einen erhöhten Ertrag verleiht; (d) einem Nukleinsäuremolekül mit wenigstens etwa 30% Identität mit der Nukleinsäuremolekülsequenz eines Polynukleotids, das das in Spalte 5 oder 7 von Tabelle I gezeigte Nukleinsäuremolekül umfasst und verglichen mit einer entsprechenden nicht transformierten Pflanzenzelle vom Wildtyp, einer transgenen Pflanze oder einem Teil davon einen erhöhten Ertrag verleiht; (e) einem Nukleinsäuremolekül, das für ein Polypeptid mit wenigstens etwa 30% Identität mit der Aminosäuresequenz des Polypeptids, das durch das Nukleinsäuremolekül von (a) bis (c) kodiert wird, kodiert und die Aktivität aufweist, die durch ein Nukleinsäuremolekül wiedergegeben wird, welches ein wie in Spalte 5 von Tabelle I gezeigtes Polynukleotid umfasst und verglichen mit einer entsprechenden nicht transformierten Pflanzenzelle vom Wildtyp, einer transgenen Pflanze oder einem Teil davon einen erhöhten Ertrag verleiht; (f) einem Nukleinsäuremolekül, welches unter stringenten Hybridisierungsbedingungen mit einem Nukleinsäuremolekül von (a) bis (c) hybridisiert und verglichen mit einer entsprechenden nicht transformierten Pflanzenzelle vom Wildtyp, einer transgenen Pflanze oder einem Teil davon einen erhöhten Ertrag verleiht; (g) einem Nukleinsäuremolekül, das für ein Polypeptid kodiert, das mit Hilfe von monoklonalen oder polyklonalen Antikörpern gegen ein Polypeptid, das durch eines der Nukleinsäuremoleküle von (a) bis (e) kodiert wird und die Aktivität aufweist, die durch ein Nukleinsäuremolekül wiedergegeben wird, welches ein wie in Spalte 5 von Tabelle I gezeigtes Polynukleotid umfasst, isoliert werden kann; (h) einem Nukleinsäuremolekül, das für ein Polypeptid kodiert, das die Konsensussequenz oder ein oder mehrere Polypeptidmotive wie in Spalte 7 von Tabelle IV gezeigt umfasst und vorzugsweise die Aktivität aufweist, die durch ein Nukleinsäuremolekül wiedergegeben wird, welches ein wie in Spalte 5 von Tabelle II oder IV gezeigtes Polynukleotid umfasst; (i) einem Nukleinsäuremolekül, das für ein Polypeptid kodiert, das die Aktivität aufweist, die durch ein wie in Spalte 5 von Tabelle II gezeigtes Protein wiedergegeben wird, und verglichen mit einer entsprechenden nicht transformierten Pflanzenzelle vom Wildtyp, einer transgenen Pflanze oder einem Teil davon einen erhöhten Ertrag verleiht; (j) einem Nukleinsäuremolekül, welches ein Polynukleotid umfasst, das man erhält, indem man eine cDNA-Bibliothek oder eine genomische Bibliothek unter Verwendung der Primer aus Spalte 7 von Tabelle III amplifiziert, und vorzugsweise die Aktivität aufweisen, die durch ein Nukleinsäuremolekül, welches ein wie in Spalte 5 von Tabelle II oder IV gezeigtes Polynukleotid umfasst, wiedergegeben wird; und k) einem Nukleinsäuremolekül, welches erhältlich ist, indem man eine geeignete Nukleinsäurebibliothek unter stringenten Hybridisierungsbedingungen mit einer Sonde, die eine komplementäre Sequenz eines Nukleinsäuremoleküls von (a) oder (b) umfasst, oder mit einem Fragment davon, mit wenigstens etwa 50 nt eines Nukleinsäuremoleküls, das komplementär zu einer in (a) bis (e) charakterisierten Nukleinsäuremolekülsequenz ist und für ein Polypeptid kodiert, das die Aktivität aufweist, die durch ein ein wie in Spalte 5 von Tabelle II gezeigtes Polypeptid umfassendes Protein wiedergegeben wird, screent. und eine transgene Pflanze mit erhöhtem Ertrag aus diesem transformierten Kern einer Pflanzenzelle, dieser transformierten Pflanzenzelle bzw. diesem transformierten Pflanzengewebe regeneriert.
  5. Verfahren gemäß einem der Ansprüche 2 bis 4, bei dem es sich bei der einen oder den mehreren erhöhten oder erzeugten Aktivitäten um eine (DL)-Glycerin-3-phosphatase, eine 2-Desoxyglucose-6-phosphatphosphatase, eine 3-Methyl-2-oxobutanoat-Hydroxymethyltransferase, eine Alkoholacetyltransferase, eine Aminosäurepermease, eine Aminomethyltransferase, einen Ammoniumtransporter, ein Aquaporin, ein ATP-bindendes Protein eines Arabinosetransportsystems, eine Argininosuccinatsynthase, eine Aspartataminotransferase, ein B1906-Protein, ein B3410-Protein, eine Cardiolipinsynthetase, ein CoA-Transferase-ähnliches Protein (NAD(P)-bindend), ein Cobalttransportprotein, ein DNA- und proteinbindendes Protein zur Steuerung des Proteoms auf der posttranskriptionellen Ebene, eine Enoyl-CoA-Hydratase, eine Enoyl-CoA-Isomerase, eine Ethanolaminkinase, eine Formiatacetyltransferase 1, ein Protein einer Glucit/Sorbit-spezifischen Enzym-IIA-Komponente, eine Glutaminsynthetase, eine Glutathion-S-transferase, eine Glycerindehydrogenase, ein Glykogensyntheseinitiatorprotein, ein GTP-bindendes Protein, ein Hitzeschockprotein, einen Hexosetransporter, eine Holo-[Acylträgerprotein]-Synthase, einen anorganischen Phosphattransporter, eine Lanosterolsynthase, eine molybdänbindende Untereinheit von Aldehydoxidasen und Xanthindehydrogenasen, ein Multidrug-Resistenzprotein, ein Multiple-Drug-Resistenzprotein, eine NADH-Dehydrogenase/NAD(P)H-Nitroreduktase, eine Oxidoreduktase, eine Peptidyl-Prolyl-cis/trans-Isomerase, einen Peroxisomal-Targeting-Signal-2-Rezeptor, eine Phosphoadenosinphosphosulfatreduktase, ein Phosphoträgerprotein, ein Pirin-ähnliches Protein, eine Precorrin-6y-Methylase, ein für den Abbau von Glykoproteinen benötigtes Protein, eine Pyrimidindeaminase/-reduktase, einen Regulator der Zellmorphogenese und der NO-Signalvermittlung, eine Serinacetyltransferase, eine Untereinheit des Signalosomkomplexes, ein SLR1094-Protein, eine Untereinheit von TORC1, eine thiolspezifische Monooxygenase, ein die Transkription steuerndes Protein, eine Transketolase, ein Zwei-Modul-Transportprotein, einen Uridindiphosphat-N-acetylglucosamintransporter, ein yer175w-a-Protein, ein yhr213w-a-Protein, ein YML079W-Protein, ein YMR157C-Protein, ein YNL024C-Protein beziehungsweise ein YNR040W-Protein handelt.
  6. Verfahren gemäß einem der Ansprüche 1 bis 5, das unter Standard-Wachstumsbedingungen zu einem erhöhten Ertrag, verglichen mit einer entsprechenden nicht transformierten Pflanze vom Wildtyp führt.
  7. Isoliertes Nukleinsäuremolekül, welches ein Nukleinsäuremolekül umfasst, welches ausgewählt ist aus der Gruppe bestehend aus: (a) einem Nukleinsäuremolekül, das für das in Spalte 5 oder 7 von Tabelle II B gezeigte Polypeptid kodiert; (b) einem in Spalte 5 oder 7 von Tabelle I B gezeigten Nukleinsäuremolekül; (c) einem Nukleinsäuremolekül, welches als Folge der Degeneration des genetischen Kodes von einer in Spalte 5 oder 7 von Tabelle II gezeigten Polypeptidsequenz abgeleitet sein kann und verglichen mit einer entsprechenden nicht transformierten Pflanzenzelle vom Wildtyp, einer transgenen Pflanze oder einem Teil davon einen erhöhten Ertrag verleiht; (d) einem Nukleinsäuremolekül mit wenigstens etwa 30% Identität mit der Nukleinsäuremolekülsequenz eines Polynukleotids, das das in Spalte 5 oder 7 von Tabelle I gezeigte Nukleinsäuremolekül umfasst und verglichen mit einer entsprechenden nicht transformierten Pflanzenzelle vom Wildtyp, einer transgenen Pflanze oder einem Teil davon einen erhöhten Ertrag verleiht; (e) einem Nukleinsäuremolekül, das für ein Polypeptid mit wenigstens etwa 30% Identität mit der Aminosäuresequenz des Polypeptids, das durch das Nukleinsäuremolekül von (a) bis (c) kodiert wird, kodiert und die Aktivität aufweist, die durch ein Nukleinsäuremolekül wiedergegeben wird, welches ein wie in Spalte 5 von Tabelle I gezeigtes Polynukleotid umfasst und verglichen mit einer entsprechenden nicht transformierten Pflanzenzelle vom Wildtyp, einer transgenen Pflanze oder einem Teil davon einen erhöhten Ertrag verleiht; (f) einem Nukleinsäuremolekül, welches unter stringenten Hybridisierungsbedingungen mit einem Nukleinsäuremolekül von (a) bis (c) hybridisiert und verglichen mit einer entsprechenden nicht transformierten Pflanzenzelle vom Wildtyp, einer transgenen Pflanze oder einem Teil davon einen erhöhten Ertrag verleiht; (g) einem Nukleinsäuremolekül, das für ein Polypeptid kodiert, das mit Hilfe von monoklonalen oder polyklonalen Antikörpern gegen ein Polypeptid, das durch eines der Nukleinsäuremoleküle von (a) bis (e) kodiert wird und die Aktivität aufweist, die durch ein Nukleinsäuremolekül wiedergegeben wird, welches ein wie in Spalte 5 von Tabelle I gezeigtes Polynukleotid umfasst, isoliert werden kann; (h) einem Nukleinsäuremolekül, das für ein Polypeptid kodiert, das die Konsensussequenz oder ein oder mehrere Polypeptidmotive wie in Spalte 7 von Tabelle IV gezeigt umfasst und vorzugsweise die Aktivität aufweist, die durch ein Nukleinsäuremolekül wiedergegeben wird, welches ein wie in Spalte 5 von Tabelle II oder IV gezeigtes Polynukleotid umfasst; (i) einem Nukleinsäuremolekül, das für ein Polypeptid kodiert, das die Aktivität aufweist, die durch ein wie in Spalte 5 von Tabelle II gezeigtes Protein wiedergegeben wird, und verglichen mit einer entsprechenden nicht transformierten Pflanzenzelle vom Wildtyp, einer transgenen Pflanze oder einem Teil davon einen erhöhten Ertrag verleiht; (j) einem Nukleinsäuremolekül, welches ein Polynukleotid umfasst, das man erhält, indem man eine cDNA-Bibliothek oder eine genomische Bibliothek unter Verwendung der Primer aus Spalte 7 von Tabelle III amplifiziert, und vorzugsweise die Aktivität aufweisen, die durch ein Nukleinsäuremolekül, welches ein wie in Spalte 5 von Tabelle II oder IV gezeigtes Polynukleotid umfasst, wiedergegeben wird; und (k) einem Nukleinsäuremolekül, welches erhältlich ist, indem man eine geeignete Nukleinsäurebibliothek unter stringenten Hybridisierungsbedingungen mit einer Sonde, die eine komplementäre Sequenz eines Nukleinsäuremoleküls von (a) oder (b) umfasst, oder mit einem Fragment davon, mit wenigstens 50 nt eines Nukleinsäuremoleküls, das komplementär zu einer in (a) bis (e) charakterisierten Nukleinsäuremolekülsequenz ist und für ein Polypeptid kodiert, das die Aktivität aufweist, die durch ein ein wie in Spalte 5 von Tabelle II gezeigtes Polypeptid umfassendes Protein wiedergegeben wird, screent.
  8. Nukleinsäuremolekül gemäß Anspruch 7, wobei das Nukleinsäuremolekül gemäß (a) bis (k) wenigstens in einem oder mehreren Nukleotiden von der in Spalte 5 oder 7 von Tabelle I A gezeigten Sequenz verschieden ist und vorzugsweise für ein Protein kodiert, das sich wenigstens in einer oder mehreren Aminosäuren von den in Spalte 5 oder 7 von Tabelle II A gezeigten Proteinsequenzen unterscheidet.
  9. Nukleinsäurekonstrukt, welches die Expression des Nukleinsäuremoleküls gemäß Anspruch 7 oder 8 oder des wie in einem der Ansprüche 1 bis 4 charakterisierten Nukleinsäuremoleküls verleiht und ein oder mehrere regulatorische Elemente umfasst.
  10. Vektor, welcher das Nukleinsäuremolekül gemäß Anspruch 7 oder 8 oder das wie in einem der Ansprüche 1 bis 4 charakterisierte Nukleinsäuremolekül oder das Nukleinsäurekonstrukt von Anspruch 9 umfasst.
  11. Verfahren zur Herstellung eines Polypeptids, bei dem das Polypeptid im Wirtskern oder in der Wirtszelle gemäß Anspruch 11 exprimiert wird.
  12. Polypeptid, hergestellt nach dem Verfahren gemäß Anspruch 12 oder kodiert durch das Nukleinsäuremolekül gemäß Anspruch 7 oder 8 oder wie in Tabelle II B gezeigt, wobei sich das Polypeptid in einer oder mehreren Aminosäuren von der wie in Tabelle II A gezeigten Sequenz unterscheidet.
  13. Antikörper, der spezifisch an das Polypeptid gemäß Anspruch 13 bindet.
  14. Kern einer Pflanzenzelle, Pflanzenzelle, Pflanzengewebe, Fortpflanzungsmaterial, Pollen, Nachkommen, geerntetes Material oder Pflanze, umfassend das Nukleinsäuremolekül gemäß Anspruch 7 oder 8 oder das wie in einem der Ansprüche 1 bis 4 charakterisierte Nukleinsäuremolekül, den Wirtskern oder die Wirtszelle gemäß Anspruch 11.
  15. Kern einer Pflanzenzelle, Pflanzenzelle, Pflanzengewebe, Fortpflanzungsmaterial, Samen, Pollen, Nachkommen oder Teil einer Pflanze, welche/welcher/welches zu einer Pflanze mit einem erhöhten Ertrag nach der Regeneration oder einer Pflanze mit einem erhöhten Ertrag oder einem Teil davon führt/führen, wobei dieser Ertrag im Vergleich zu einem entsprechenden Wildtyp erhöht ist, hergestellt durch ein Verfahren gemäß einem der Ansprüche 1 bis 6 oder transformiert durch das Nukleinsäuremolekül gemäß Anspruch 7 oder 8 oder das wie in einem der Ansprüche 1 bis 4 charakterisierte Nukleinsäuremolekül oder das Nukleinsäurekonstrukt gemäß Anspruch 9.
  16. Kern einer transgenen Pflanzenzelle, transgene Pflanzenzelle, transgene Pflanze oder Teil davon gemäß Anspruch 15, abgeleitet von einer monokotyledonen Pflanze.
  17. Kern einer transgenen Pflanzenzelle, transgene Pflanzenzelle, transgene Pflanze oder Teil davon gemäß Anspruch 15, abgeleitet von einer dikotyledonen Pflanze.
  18. Kern einer transgenen Pflanzenzelle, transgene Pflanzenzelle, transgene Pflanze oder Teil davon gemäß Anspruch 15, wobei die Pflanze ausgewählt ist aus der Gruppe bestehend aus Mais, Weizen, Roggen, Hafer, Triticale, Reis, Gerste, Sojabohne, Erdnuss, Baumwolle, Raps einschließlich Canola und Winterraps, Maniok, Pfeffer, Sonnenblume, Flachs, Borretsch, Safflor (Färberdistel), Lein, Schlüsselblume, Raps, Rübsen, Tagetes, nachtschattenartige Pflanzen einschließlich Kartoffel, Tabak, Aubergine und Tomate, Vicia-Arten, Erbse, Luzerne, Kaffee, Kakao, Tee, Salix-Arten, Ölpalme, Kokosnuss, ausdauernde Gräser, Futterpflanzen und Arabidopsis thaliana.
  19. Kern einer transgenen Pflanzenzelle, transgene Pflanzenzelle, transgene Pflanze oder Teil davon gemäß Anspruch 15, wobei die Pflanze ausgewählt ist aus der Gruppe bestehend aus Mais, Sojabohne, Raps (einschließlich Canola und Winterraps), Baumwolle, Weizen und Reis.
  20. Transgene Pflanze, umfassend einen oder mehrere Kerne einer Pflanzenzelle oder Pflanzenzellen, Nachkommen, Samen oder Pollen oder hergestellt von einer transgenen Pflanze gemäß einem der Ansprüche 14 bis 19.
  21. Transgene Pflanze, Kern einer transgenen Pflanzenzelle, transgene Pflanzenzelle, Pflanze, die einen oder mehrere solcher Kerne einer transgenen Pflanzenzelle oder Pflanzenzellen umfasst, Nachkommenschaft, Samen oder Pollen, die von einer transgenen Pflanze gemäß einem der Ansprüche 6 bis 9 abgeleitet oder hergestellt wurden, wobei diese transgene Pflanze, dieser Kern einer transgenen Pflanzenzelle, diese transgene Pflanzenzelle, diese Pflanze, die einen oder mehrere solcher Kerne einer transgenen Pflanzenzelle oder Pflanzenzellen umfasst, diese Nachkommenschaft, diese Samen bzw. diese Pollen genetisch homozygot sind für ein Transgen, das einen erhöhten Ertrag, verglichen mit einer entsprechenden nicht transformierten Pflanzenzelle vom Wildtyp, einer transgenen Pflanze oder einem Teil davon verleiht.
  22. Verfahren zur Identifikation einer Verbindung, die verglichen mit einer entsprechenden nicht transformierten Pflanzenzelle vom Wildtyp, einer transgenen Pflanze oder einem Teil davon in einer Pflanzenzelle, einer transgenen Pflanze oder einem Teil davon, einer transgenen Pflanze oder einem Teil davon einen erhöhten Ertrag verleiht, welches die folgenden Schritte umfasst: (a) Kultivieren einer Pflanzenzelle, einer transgenen Pflanze oder eines Teils davon, welche/welches das Polypeptid gemäß Anspruch 12 und ein Ablesesystem exprimiert, das dazu in der Lage ist, unter geeigneten Bedingungen, die eine Wechselwirkung des Polypeptids mit diesem Ablesesystem in Gegenwart einer Verbindung oder einer Probe, die eine Mehrzahl an chemischen Verbindungen umfasst, erlauben, mit dem Polypeptid in Wechselwirkung zu treten und dazu in der Lage ist, ein nachweisbares Signal als Reaktion auf die Bindung einer Verbindung an das Polypeptid bereitzustellen, unter Bedingungen, die die Expression dieses Ablesesystems und des durch das Nukleinsäuremolekül gemäß Anspruch 12 kodierten Polypeptids ermöglichen; (b) Feststellen, ob es sich bei der Verbindung um einen wirksamen Agonisten handelt, indem man das Vorhandensein oder das Fehlen oder die Zunahme eines durch dieses Ablesesystem produzierten Signals detektiert.
  23. Verfahren zur Herstellung einer landwirtschaftlichen Zusammensetzung, welches die Schritte des Verfahrens gemäß Anspruch 22 und das Formulieren der in Anspruch 22 identifizierten Verbindung in einer für eine Anwendung in der Landwirtschaft geeigneten Form umfasst.
  24. Zusammensetzung. umfassend das Nukleinsäuremolekül gemäß Anspruch 7 oder 8, das Nukleinsäurekonstrukt gemäß Anspruch 9, den Vektor gemäß Anspruch 10, das Polypeptid gemäß Anspruch 12, die Verbindung gemäß Anspruch 22, das wie in einem der Ansprüche 1 bis 4 charakterisierte Nukleinsäuremolekül und/oder den Antikörper gemäß Anspruch 13 und gegebenenfalls einen landwirtschaftlich unbedenklichen Träger.
  25. Polypeptid gemäß Anspruch 12 oder Nukleinsäuremolekül, ausgewählt aus Hefe oder E. coli.
  26. Verwendung der Nukleinsäuren gemäß Anspruch 7 oder 8 zur Herstellung einer Pflanze mit einem erhöhten Ertrag, verglichen mit einer entsprechenden nicht transformierten Pflanze vom Wildtyp.
  27. Verwendung der Nukleinsäuren gemäß Anspruch 7 oder 8 als Marker zur Identifikation oder Auswahl einer Pflanze mit einem erhöhten Ertrag, verglichen mit einer entsprechenden nicht transformierten Pflanze vom Wildtyp.
  28. Verwendung der Nukleinsäuren gemäß Anspruch 17 oder von Teilen davon als Marker zum Nachweis einer Ertragserhöhung in Pflanzen oder Pflanzenzellen.
  29. Verfahren zur Identifikation einer Pflanze mit einem erhöhten Ertrag, bei dem man eine Population von einem oder mehreren Kernen von Pflanzenzellen, Pflanzenzellen, Pflanzengeweben oder Pflanzen oder Teilen davon auf eine Aktivität, ausgewählt aus der Gruppe bestehend aus einer (DL)-Glycerin-3-phosphatase, einer 2-Desoxyglucose-6-phosphatphosphatase, einer 3-Methyl-2-oxobutanoat-Hydroxymethyltransferase, einer Alkoholacetyltransferase, einer Aminosäurepermease, einer Aminomethyltransferase, einem Ammoniumtransporter, einem Aquaporin, einem ATP-bindenden Protein eines Arabinasetransportsystems, einer Argininosuccinatsynthase, einer Aspartataminotransferase, einem B1906-Protein, einem B3410-Protein, einer Cardiolipinsynthetase, einem CoA-Transferase-ähnlichen Protein (NAD(P)-bindend), einem Cobalttransportprotein, einem DNA- und proteinbindenden Protein zur Steuerung des Proteoms auf der posttranskriptionellen Ebene, einer Enoyl-CoA-Hydratase, einer Enoyl-CoA-Isomerase, einer Ethanolaminkinase, einer Formiatacetyltransferase 1, einem Protein einer Glucit/Sorbit-spezifischen Enzym-IIA-Komponente, einer Glutaminsynthetase, einer Glutathion-S-transferase, einer Glycerindehydrogenase, einem Glykogensyntheseinitiatorprotein, einem GTP-bindenden Protein, einem Hitzeschockprotein, einem Hexosetransporter, einer Holo-[Acylträgerprotein]-Synthase, einem anorganischen Phosphattransporter, einer Lanosterolsynthase, einer molybdänbindenden Untereinheit von Aldehydoxidasen und Xanthindehydrogenasen, einem Multidrug-Resistenzprotein, einem Multiple-Drug-Resistenzprotein, einer NADH-Dehydrogenase/NAD(P)H-Nitroreduktase, einer Oxidoreduktase, einer Peptidyl-Prolyl-cis/trans-Isomerase, einem Peroxisomal-Targeting-Signal-2-Rezeptor, einer Phosphoadenosinphosphosulfatreduktase, einem Phosphoträgerprotein, einem Pirin-ähnlichen Protein, einer Precorrin-6y-Methylase, einem für den Abbau von Glykoproteinen benötigten Protein, einer Pyrimidindeaminase/-reduktase, einem Regulator der Zellmorphogenese und der NO-Signalvermittlung, einer Serinacetyltransferase, einer Untereinheit des Signalosomkomplexes, einem SLR1094-Protein, einer Untereinheit von TORC1, einer thiolspezifischen Monooxygenase, einem die Transkription steuernden Protein, einer Transketolase, einem Zwei-Modul-Transportprotein, einem Uridindiphosphat-N-acetylglucosamintransporter, einem yer175w-a-Protein, einem yhr213w-a-Protein, einem YML079W-Protein, einem YMR157C-Protein, einem YNL024C-Protein und einem YNR040W-Protein, screent, das Ausmaß der Aktivität mit dem Ausmaß der Aktivität in einer Referenz vergleicht; einen oder mehrere Kerne von Pflanzenzellen, Pflanzenzellen, Pflanzengewebe oder Pflanzen oder Teile davon mit einer im Vergleich zur Referenz erhöhten Aktivität identifiziert und gegebenenfalls eine Pflanze aus dem identifizierten Kern einer Pflanzenzelle, der identifizierten Zelle bzw. dem identifizierten Gewebe herstellt.
  30. Verfahren zur Identifikation einer Pflanze mit einem erhöhten Ertrag, bei dem man eine Population von einem oder mehreren Kernen von Pflanzenzellen, Pflanzenzellen, Pflanzengeweben oder Pflanzen oder Teilen davon auf das Expressionsniveau einer Nukleinsäure screent, die für ein Polypeptid kodiert, das eine Aktivität, ausgewählt aus der Gruppe bestehend aus einer (DL)-Glycerin-3-phosphatase, einer 2-Desoxyglucose-6-phosphatphosphatase, einer 3-Methyl-2-oxobutanoat-Hydroxymethyltransferase, einer Alkoholacetyltransferase, einer Aminosäurepermease, einer Aminomethyltransferase, einem Ammoniumtransporter, einem Aquaporin, einem ATP-bindenden Protein eines Arabinosetransportsystems, einer Argininosuccinatsynthase, einer Aspartataminotransferase, einem B1906-Protein, einem B3410-Protein, einer Cardiolipinsynthetase, einem CoA-Transferase-ähnlichen Protein (NAD(P)-bindend), einem Cobalttransportprotein, einem DNA- und proteinbindenden Protein zur Steuerung des Proteoms auf der posttranskriptionellen Ebene, einer Enoyl-CoA-Hydratase, einer Enoyl-CoA-Isomerase, einer Ethanolaminkinase, einer Formiatacetyltransferase 1, einem Protein einer Glucit/Sorbit-spezifischen Enzym-IIA-Komponente, einer Glutaminsynthetase, einer Glutathion-S-transferase, einer Glycerindehydrogenase, einem Glykogensyntheseinitiatorprotein, einem GTP-bindenden Protein, einem Hitzeschockprotein, einem Hexosetransporter, einer Holo-[Acylträgerprotein]-Synthase, einem anorganischen Phosphattransporter, einer Lanosterolsynthase, einer molybdänbindenden Untereinheit von Aldehydoxidasen und Xanthindehydrogenasen, einem Multidrug-Resistenzprotein, einem Multiple-Drug-Resistenzprotein, einer NADH-Dehydrogenase/NAD(P)H-Nitroreduktase, einer Oxidoreduktase, einer Peptidyl-Prolyl-cis/trans-Isomerase, einem Peroxisomal-Targeting-Signal-2-Rezeptor, einer Phosphoadenosinphosphosulfatreduktase, einem Phosphoträgerprotein, einem Pirin-ähnlichen Protein, einer Precorrin-6y-Methylase, einem für den Abbau von Glykoproteinen benötigten Protein, einer Pyrimidindeaminase/-reduktase, einem Regulator der Zellmorphogenese und der NO-Signalvermittlung, einer Serinacetyltransferase, einer Untereinheit des Signalosomkomplexes, einem SLR1094-Protein, einer Untereinheit von TORC1, einer thiolspezifischen Monooxygenase, einem die Transkription steuernden Protein, einer Transketolase, einem Zwei-Modul-Transportprotein, einem Uridindiphosphat-N-acetylglucosamintransporter, einem yer175w-a-Protein, einem yhr213w-a-Protein, einem YML079W-Protein, einem YMR157C-Protein, einem YNL024C-Protein und einem YNR040W-Protein, verleiht, das Expressionsniveau mit einer Referenz vergleicht; einen oder mehrere Kerne von Pflanzenzellen, Pflanzenzellen, Pflanzengewebe oder Pflanzen oder Teile davon mit einem im Vergleich zur Referenz erhöhten Expressionsniveau identifiziert und gegebenenfalls eine Pflanze aus dem identifizierten Kern einer Pflanzenzelle, der identifizierten Zelle bzw. dem identifizierten Gewebe herstellt.
  31. Verfahren gemäß einem der Ansprüche 1 bis 6 oder Pflanze gemäß einem der Ansprüche 14 bis 20, wobei diese Pflanze ein verbessertes Ertragsmerkmal zeigt.
  32. Verfahren gemäß einem der Ansprüche 1 bis 6 oder Pflanze gemäß einem der Ansprüche 14 oder 15, wobei diese Pflanze eine verbessertes Effizienz der Nährstoffausnutzung und/oder Toleranz gegenüber abiotischem Stress zeigt.
  33. Verfahren gemäß einem der Ansprüche 1 bis 6 oder Pflanze gemäß einem der Ansprüche 14 bis 20, wobei diese Pflanze eine verbesserte Toleranz gegenüber niedrigen Temperaturen zeigt.
  34. Verfahren gemäß einem der Ansprüche 1 bis 6 oder Pflanze gemäß einem der Ansprüche 14 bis 20, wobei die Pflanze einen erhöhten Ernteertrag zeigt.
  35. Verfahren gemäß einem der Ansprüche 1 bis 6 oder Pflanze gemäß einem der Ansprüche 14 bis 20, wobei die Pflanze einen verbesserten Ertrag zeigt, wobei die Ertragserhöhung auf einer pro-Pflanze-Basis oder in Bezug auf eine bestimmte landwirtschaftlich nutzbare Fläche berechnet wird.
  36. Verfahren zum Erhöhen des Ertrags einer Population von Pflanzen, bei dem man die Wachstumstemperatur(en) in der Pflanzfläche prüft, die Temperaturen mit der optimalen Wachstumstemperatur einer Pflanzenart oder einer Sorte, die für das Pflanzen in Betracht gezogen wird, vergleicht und die Pflanze gemäß einem der Ansprüche 14 bis 20 oder 31 bis 35 pflanzt und heranzieht, wenn die Wachstumstemperatur für das Pflanzen und Heranziehen der für das Pflanzen in Betracht gezogenen Pflanzenart oder Sorte nicht optimal ist.
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