CZ20031582A3 - Izotermická amplifikace nukleových kyselin na pevném povrchu - Google Patents

Izotermická amplifikace nukleových kyselin na pevném povrchu Download PDF

Info

Publication number
CZ20031582A3
CZ20031582A3 CZ20031582A CZ20031582A CZ20031582A3 CZ 20031582 A3 CZ20031582 A3 CZ 20031582A3 CZ 20031582 A CZ20031582 A CZ 20031582A CZ 20031582 A CZ20031582 A CZ 20031582A CZ 20031582 A3 CZ20031582 A3 CZ 20031582A3
Authority
CZ
Czechia
Prior art keywords
nucleic acid
sequence
dna
primers
amplification
Prior art date
Application number
CZ20031582A
Other languages
English (en)
Inventor
Pascal Mayer
Original Assignee
Applied Research Systems Ars Holding N. V.
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Applied Research Systems Ars Holding N. V. filed Critical Applied Research Systems Ars Holding N. V.
Publication of CZ20031582A3 publication Critical patent/CZ20031582A3/cs

Links

Classifications

    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12QMEASURING OR TESTING PROCESSES INVOLVING ENZYMES, NUCLEIC ACIDS OR MICROORGANISMS; COMPOSITIONS OR TEST PAPERS THEREFOR; PROCESSES OF PREPARING SUCH COMPOSITIONS; CONDITION-RESPONSIVE CONTROL IN MICROBIOLOGICAL OR ENZYMOLOGICAL PROCESSES
    • C12Q1/00Measuring or testing processes involving enzymes, nucleic acids or microorganisms; Compositions therefor; Processes of preparing such compositions
    • C12Q1/68Measuring or testing processes involving enzymes, nucleic acids or microorganisms; Compositions therefor; Processes of preparing such compositions involving nucleic acids
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12QMEASURING OR TESTING PROCESSES INVOLVING ENZYMES, NUCLEIC ACIDS OR MICROORGANISMS; COMPOSITIONS OR TEST PAPERS THEREFOR; PROCESSES OF PREPARING SUCH COMPOSITIONS; CONDITION-RESPONSIVE CONTROL IN MICROBIOLOGICAL OR ENZYMOLOGICAL PROCESSES
    • C12Q1/00Measuring or testing processes involving enzymes, nucleic acids or microorganisms; Compositions therefor; Processes of preparing such compositions
    • C12Q1/68Measuring or testing processes involving enzymes, nucleic acids or microorganisms; Compositions therefor; Processes of preparing such compositions involving nucleic acids
    • C12Q1/6813Hybridisation assays
    • C12Q1/6834Enzymatic or biochemical coupling of nucleic acids to a solid phase
    • C12Q1/6837Enzymatic or biochemical coupling of nucleic acids to a solid phase using probe arrays or probe chips
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12QMEASURING OR TESTING PROCESSES INVOLVING ENZYMES, NUCLEIC ACIDS OR MICROORGANISMS; COMPOSITIONS OR TEST PAPERS THEREFOR; PROCESSES OF PREPARING SUCH COMPOSITIONS; CONDITION-RESPONSIVE CONTROL IN MICROBIOLOGICAL OR ENZYMOLOGICAL PROCESSES
    • C12Q1/00Measuring or testing processes involving enzymes, nucleic acids or microorganisms; Compositions therefor; Processes of preparing such compositions
    • C12Q1/68Measuring or testing processes involving enzymes, nucleic acids or microorganisms; Compositions therefor; Processes of preparing such compositions involving nucleic acids
    • C12Q1/6844Nucleic acid amplification reactions

Landscapes

  • Chemical & Material Sciences (AREA)
  • Organic Chemistry (AREA)
  • Life Sciences & Earth Sciences (AREA)
  • Health & Medical Sciences (AREA)
  • Wood Science & Technology (AREA)
  • Proteomics, Peptides & Aminoacids (AREA)
  • Zoology (AREA)
  • Engineering & Computer Science (AREA)
  • Immunology (AREA)
  • Biochemistry (AREA)
  • Microbiology (AREA)
  • Molecular Biology (AREA)
  • Analytical Chemistry (AREA)
  • Biotechnology (AREA)
  • Physics & Mathematics (AREA)
  • Biophysics (AREA)
  • Bioinformatics & Cheminformatics (AREA)
  • General Engineering & Computer Science (AREA)
  • General Health & Medical Sciences (AREA)
  • Genetics & Genomics (AREA)
  • Chemical Kinetics & Catalysis (AREA)
  • Measuring Or Testing Involving Enzymes Or Micro-Organisms (AREA)
  • Saccharide Compounds (AREA)
  • Heterocyclic Carbon Compounds Containing A Hetero Ring Having Oxygen Or Sulfur (AREA)

Description

Izotermická amplifikace nukleových kyselin na pevném povrchu oblast techniky
Vynález spadá do oblasti amplifikace nukleových kyselin.
Popisuje se způsob izotermické amplifikace nukleových kyselin aložený na použití pevného povrchu. Dále se popisuje přístroj sady, které je možné použít při aplikacích, kde je nutný yysoký výkon, zvláště při sekvenování nukleových kyselin.
Dosavadní stav techniky
Analýza sekvencí nukleových kyselin je základ při řadě aktivit oblasti bilogie, biotechnologie a medicíny. Schopnost stanovit sekvence nukleových kyselin se stává stále důležitější a využívá se při sekvenování velkých genomů lidí a jiných vyšších organizmů a také například umožňuje stanovení polymorfizmu jediného nukleotidu (SNP) a testování a sledování exprese genů. Genetická informace získaná sekvenováním 'nukleových kyselin má řadu aplikací, například při zkoumání a potvrzení cílových míst v případě léků, při stanovení diagnózy onemocnění, při hodnoceníohrožení a při identifikaci a charakterizaci organizmu.
Na základě rostoucí poptávky po spolehlivých genetických informacích spojených s organizmem, s onemocněním nebo s jedinci v populaci, je stále důležitější zlepšit výkonnost sekvenačních metod. Základním úkolem takových aplikaci je stanovení sekvence čtyř baží adenin (A) , cytosin (C) , guanin (G) a tymin (T) nebo uráčil (U) , která je obsažena v nukleových kyselinách a náleží určitému typu buněk, organizmu nebo populaci jedinců. Většina metod sekvenování nukleových kyselin (popisuje se v publikaci Yan H., et al. , Science 2000, 289 (5486):1890-2) umožňuje stanovit sekvenci • ·
nukleové kyseliny buď přímo (extenzí nukleotidů použitím primerů nebo hybridizací) nebo nepřímé (elektroforetickou analýzou a/nebo analýzou na základě štěpení). Vědecká nebo ekonomická hodnota libovolné aplikace udělené sekvenační analýze nukleových kyselin vysoce závisí na skutečném výkonnu letody.
Úsilí nutné pro získání izolovaných nukleových kyselin v množství a kvalitě, která je. přijatelná 'pro získání spolehlivých výsledků, tvoří jeden z hlavních problémů, které je nutné zvažovat při hodnocení výkonnosti sekvenační metody. Původní vzorek obsahující nukleovou kyselinu, která se má sekvenovat, často neposkytuje dostatek materiálu, aby se mohla provést uvedená analýza. Je nutné použít velké množství počátečního materiálu a/nebo výrazný zásah člověka. To je zvláště důležité v případě . soudní analýzy DNA a při archivování vzorků DNA nebo mRNA získaných z určitých typů buněk, kdy se provádějí sekvenační metody vyžadující stovky nanogramů izolované sekvence DNA, přičemž se zažíná. z jednoho ňanogramu nebo z menšího množství celkové genomové.DNA.
Aby se tento problém vyřešil, je možné amplifikovat sekvenci DNA, přičemž vzniká několik kopií pouze fragmentu nukleové kyseliny, který je ve středu zájmu. V obecném případě amplifikace nukleové kyseliny vyžaduje opakování série akcí:
a) Získání první nukleové kyseliny (templát) obsahující sekvenci, která nás zajímá.
b) Získání druhé nukleové kyseliny (primer), která obsahuje, alespoň na svém 3'konci, sekvenci komplementární se sekvencí obsaženou v první nukleové kyselině a sekvenci přilehlou nebo vnitřní, vztaženo k 3'-konci, která je středem zájmu.
• ···
c)
d)
e)
f)
Vytvoření podmínek, které umožňují přechod templátu a primeru na jednořetězcové molekuly, alespoň v komplementární oblasti dvou nukleových kyselin.
Vytvoření podmínek, které umožňují hybridizaci mezi komplementárními sekvencemi lokalizovanými na templátu a v primeru.
Použití polymerázy nukleových kyselin schopné syntetizovat komplementární řetězec oblasti templátu začínající na 3'konci hybridizovaného primeru podle pravidel párování baží podle Watsona a Cricka (A-T nebo A-U a C-G) .
Vyvolání oddělení výsledné dvouřetězcové nukleové kyseliny (jeden řetězec patří původnímu templátu, druhý obsahující primer fúzovaný se sekvencí komplementární s oblastí templátu, kde je možná extenze nukleotidů) tak, že každý řetězec se může stát templátem pro další hybridizaci a polymerizaci.
Do amplifikační reakce se také přidá druhý primer, aby začala polymerizace jeho hybridizaci s částí nově syntetizovaného řetězce, která sousedí se sekvencí, jenž je Ltředem zájmu nebo je její součástí. Jestliže se použijí dva orimery, kdy každý je specifický pro jeden komplementární řetězec, opakování každého z těchto cyklů umožňuje syntetizovat více kopií obou řetězců templátové sekvence obsažené mezi sekvencemi používanými k hybridizaci primerů. V jiném případě, jestliže se použije pouze jeden primer, vzniká více kopií jednoho řetězce.
Klíčovým bodem je kontinuální zajištění podmínek, které umožňují dehybridizaci původních a nově syntetizovaných řetězců a jejich hybridizaci s volnými molekulami primerů, přičemž dochází k opětné polymerizaci a rychle se tvoří požadované množství specifické sekvence nukleové kyseliny. Molekuly primerů jsou v obecném případě přítomny v koncentraci
Ί,.
• · podstatně vyšší než templátové molekuly, což podporuje exponencionální kinetiku procesu amplifikace.
V běžném případě přechod mezi jednořetězcovou a dvouřetězcovou formou nukleových kyselin vzniká na základě zvyšující se a snižující· se teploty v systému, při které dochází k amplifikaci. V tomto rozsahu elementy nezbytné pro amplifikaci (templát, primery, polymeráza nukleových kyselin, nukleotidy a sole) se podrobují sérii fází zahřívání a chlazení, které vytváří externí zařízení.
Takový přístup, který se‘obvykle nazývá teplotní cyklus, se aplikuje při postupu dobře známém v oboru, který se nazývá oolymerázová řetězcová reakce (PÓR) (popisuje se v publikaci Taylor G.R., „Polymerase chain reaction: Basic prínciples and automation in PCR: a Practical approach, edit.ed by Mcpherson M.J. et al., Oxford Univ. Press -1991), kdy následující kroky se provádějí v přesném pořadí a v předem definovaném časovém úseku:
a) Denaturace (provádí se při teplotě 90 až 95 °C po dobu .30 až 60 sekund). Vnější zařízení poskytuje energii (ve formě tepla) nezbytnou ke zvýšení pohybu molekul nukleových kyselin na úroveň, která je dostatečná pro porušení nekovalentních interakcí, které stabilizují dvouřetězcovou konfiguraci. Tento krok je možné v prvním cyklu vypustit, v případě, že templáty a primery jsou už v jednořetězcové formě, ale je absolutně nezbytný v následujících cyklech.
b) Hybridizace (probíhá při teplotě 35 až 80 °C po dobu 30 až 90 sekund). Komplementární sekvence získaná v molekulách primerů a templátů může hybridizovat v okamžiku snížení teploty. Tato teplota, kterou je nutné pozorné kontrolovat, aby se zabránilo hybridizaci molekul, které vykazují pouze omezenou homologii, se ’ ’ ·« ·· ···· * · · ♦ · · · • · ·· · · · • ·· ··· · φ • · · · · ·· · vypočítá případ od případu, protože je funkcí délky a obsahu baží G/C v sekvenci nukleové kyseliny primeru a komplementární oblasti templátu.
c) Elongace (probíhá při teplotě 60 až 85 °C po dobu 60 až 180 sekund). To je jediný krok, ve kterém vznikají nové molekuly nukleových· kyselin. Teplota, při které dochází k elongaci, je funkcí vybrané polymerázy a až na několik výjimek neodpovídá teplotě hybridizace. Elongace nově syntetizovaného řetězce se obvykle provádí za použití polymeráz během jedné nebo několika minut, v závislosti na délce amplifikované nukleové kyseliny. Nové navázání primerů nemůže proběhnout až do okamžiku, kdy se prodloužený řetězec alespoň částečně neuvolní jako jednořetězcová molekula z dvouřetězcové molekuly vzniklé elongaci..
Za účelem získání množství nukleové kyseliny, které je dostatečné pro další analýzu, se tyto kroky opakují v 15-ti až 40-ti cyklech. Po uplynutí této doby PCR obvykle nepokračuje, protože dochází k vyčerpání polymerázy.
Vyvinula se řada různých technologií, strategií a reakčních podmínek, které odpovídají základnímu schématu, ale PCR má stále vážná omezení způsobená řadou specifických požadavků.
a) zařízení pro zahřívaní a chlazení,
b) polymeráza, která zůstává vysoce progresivní a přesná dokonce po řadě cyklů při vysokých teplotách nutných při denaturaci nukleových kyselin,
c) dělení amplifikačního postupu ha řadu cyklů tak, že polymerizace není kontinuální, ale je synchronizovaná s teplotními cykly. Polymerizační reakce nukleové kyseliny nelze dosáhnout kontinuálním způsobem, protože je pravidelně přerušována opětným vytvořením podmínek, • · · . . . . , ! ?··. · · ·. · , * · * · · »· »·· , . .. · · · . . , ’ ·· ·· ·· ..
které jsou nezbytné pro hybridizaci mezi . volným primerem a templátem, což zpomaluje celý postup.
V předchozím stavu techniky se popisují různá řešení, jak obejít taková omezení klasické PCR. Zvláště se popisují alternativní přístupy, které umožňují oddělení řetězců a lJybridizace při izotermických 'podmínkách, ' aniž dochází Jeplotním cyklům.
Amplifikace s nahrazením řetězce (SDA) je izotermická amplifikační a detekční metoda nukleových kyselin, při kterých se používá polymeráza ve spojení s endonukleázou, která štěpí pouze polymerízovaný řetězec tak, že polymeráza nahradí takový řetězec zatímco vytváří nově polymerizovaný řetězec (popisuje se v patentovém dokumentu EP 497272, a v publikaci Walker.
G.T., PCR Methods Appl. 1993, 3 (1): 1-6). Tato· metoda.
založená na opakované tvorbě zlomů jediného řetězce, na kroku prodlužování a nahrazování, se různě přizpůsobovala (popisuje se v patentovém dokumentu WO 96/23 904 a v publikaci Westin L.
et al.., Nat. Biotechnol. 2000, 18(2):199-204), ale uvedený přístup vykazuje omezenou použitelnost. Endonukleáza se musí přidávat spolu s polymerázou a proto rozmezí povolených teplot, při kterých se uskutečni celý proces, je omezeno na teploty při kterých jsou oba enzymy aktivní. V případě endonukleáz je takové rozmezí (obvykle 25 až 50 °C) obvykle příliš malé, aby se předešlo nespecifické hybridizaci primerů s templátem vedoucí k tomu, že část reakcí je neproduktuvní >1>
nebo se tvoří nežádoucí produkty. Nukleové kyseliny působící jako primery a/nebo templáty se. musí dále upravovat, protože je nutné, aby templátová oblast, aby se mohlo amplifikovat, neobsahovala místo rozeznávané . endonukleázou, zatímco toto místo musí být vždy přítomné v primerové sekvenci.
• · I • · « • 4 ··
7*
Amplifikace po otáčivé kružnici (RCA) je metoda využívající DNA polymerázu prodlužující kruhové oligonukleotidové sondy za izotermických podmínek. Tato metoda vykazuje buď lineární nebo geometrickou kinetiku a tvoří tandemově spojené kopie molekuly DNA pro amplifikaci v důsledku komplexního paternu nahrazení řetězce (popisuje se v publikaci Walter N.G. and Strunk G., Proč. Nati. Acad. Sci USA 1994, 91 (17): 7937-41 a v patentovém dokumentu WO 94/03624). Také v tomto případě, dokonce i jestliže se technologie už dříve upravila (popisuje se v patentovém dokumentu WO 97/19193 a v publikaci Isaksson A and Landergren U, Curr. Opin. Biotechnol. 1999, 10(1):11-5), vykazuje uvedený přístup řadu omezení. Jako například, použití kruhových molekul a příprava amplífíkovaných molekul není možné ve formě jedné entity, ale jako série molekul obsahující různý počet kopií původních . sekvencí, které jsou vzájemně tandemově spojeny.
Vyvinuly se další metody, které řeší problém prostřednictvím dočasného hybridu DNA-RNA v izotermické multir enzymatické reakci obsahující RNA polymerázu, ribonukleázu a reverzní transkriptázu (popisuje se v patentových dokumentech WO 91/04340, WO 92/08800, WO 97/04126 a v publikaci Gebinoga M. and Oehlenschlager F., Eur. J. Biochem. 1996, 235 (12):256-61). Při použití uvedené metody se musí počítat s řadou problémů spojených s rychlou degradací RNA a s nalezením komplexních podmínek, při kterých budou v jednom okamžiku správně pracovat všechny složky obsažené v reakci, přičemž je nutné udržet specifitu a rychlost amplifikačního procesu.
Dokonce v případě, že amplifikační metody jsou nápomocné při analýze sekvencí velmi malého množství nukleové kyseliny, výkonnost metod sekvenace nukleových kyselin není spojena pouze s dostupností izolovaných nukleových kyselina v množství •8.
• · • ··· • · « • · « • · ·· ···· dostatečném pro zpracování a pro získání spolehlivých informací, ale také s možností zpracovat velké množství vzorků rychle a s minimálními zásahy člověka. Většina genetických informací se dnes stále získává použitím technologií, jako je gelová elektroforéza, která je těžkopádná, pracná, obtížně se automatizuje a vyžaduje -relativně velké přístroje. Takové metody však v obecném případě umožňují pouze individuální zpracování každé entity nukleové kyseliny, která se bude sekvenovat. Proto se vyvinula řada technologií, které poskytují specifická řešení' umožňující paralelní analýzu několika různých nukleových kyselin.
405 (6788): 827-36).
obsahující více jak
V předchozím stavu techniky běžným způsobem . zvýšení výkonnosti je zpracování řady vzorků při paralelním použití pevného povrchu, které se často definuje jako mikroerej DNA nebo DNA čipy, na kterých se DNA zachytí a pak se analyzuje za použití různých přístupů, které zahrnují buď značené jednotlivé nukleotidy, nebo značené nukleové kyseliny (popisuje v publikaci Southern E. et al., Nat. Gent. 1999, 21 (1
Suppl.): 5-9, Lockhart D.J., and Winzeler E.A., Nátuře 2000, Velké molekuly (například molekuly 500 nukleotidů) stejně jako menší molekuly, jako jsou oligonukleotidové primery se mohou účinně spojovat s pevným povrchem kovalentním způsobem fyzikálně nebo chemicky a to buď nespecificky nebo použitím specifické chemické skupiny na jednom konci nukleové kyseliny (popisuje se v publikaci Adessi C., et al., Nucleic Acids Res. 2000, 28(20): E87, Okamoto T. et al., Nat. Biotechnol. 2000,
18(4):438-41). Kombinace vhodných robotů, systémů založených na mikromechanice a mikroskopické metody umožňují technicky provést uložení a analýzu až miliónů nukleových kyselin na jeden centimetr čtvereční podkladu.
• · • · φ • · • · · ·· ··
Za použití stejných přístupů je možné provést reakci extenze primerů nebo templátových molekul . (popisuje se v patentovém dokumentu WO 91/13075, WO 00/47767). V jiném případě se mohou primery zachytit na povrchu a ve spojení s volnými primery v roztoku umožňují amplifikaci a zachycení produktu PCR na povrchu -podkladu (popisuje se v publikaci Andreadis, J. D. and Chrisey L.A., Nucleic Acids Res. 2000, 28 (2) : e5) . Primery se mohou také imobilizovat na matrici a templátové molekuly jsou obsaženy v kapalné fázi při teplotě (58 až 74 °C) , což umožňuje velmi náhodné a neřízené ustanovení rovnováhy mezi jednořetězcovou a dvouřetězcovou formou, stejně jako extenzi o jedinou bázi (popisuje se v publikaci Dubiley, S., et al., Nucleic Acids Res. 1999, 27(18)el9).
Hlavní nevýhodou těchto technologií je, že v případě každé amplifikace je nutné nejdříve navrhnout a vyrobit čip. Postup výroby je stále docela zdlouhavý, komplexní a nákladný a proto se provádí pouze, když je potřeba1 velké množství čipů. Čipy se mohou často používat pouze. při hybridizaci a/nebo elongaci postupující po jedné bázi, není možné je použít opakovaně a v případě jednoho čipu je možné v jednom čase zpracovat pouze jeden vzorek nukleových kyselin (popisuje se v publikaci Cheung, V. G. et al., Nat. Genet. 1999, 21 (1 Suppl) : 25-32).
Jiné technologie se vyvinuly za účelem alespoň částečně vyřešit problémy spojené s výkonností amplifikace a sekvenování tím, že se zvýší účinnost spojením dvou postupů.
Patentový dokument WO 96/04404 (Mosaic technologies lne.) popisuje metody detekce cílové nukleové kyseliny potencionálně obsažené ve vzorku. Způsob zahrnuje vyvolání amplifikace cílové nukleové kyseliny založené na PCR pouze v případě, jeli cílová nukleová kyselina v testovaném vzorku přítomna.
φφ • ·
• φ • ΦΦ φ
• ·
Λ * » φ • · · Φ • · ΦΦ • ♦ · · Φ • » · Φ ·· ·Φ • · « · <» φ
Φ
Φ
Φ • Φ
Specifické primery jsou zachyceny na pevném podkladu, což umožňuje amplifikovaným sekvencím cílové nukleové kyseliny být také zachyceny na uvedeném povrchu. Dva primery specifické pro řetězec stejně, jako 'v případě běžné PCR, se specificky navrhují tak, že hybridizuji se sekvencemi, které lemují nebo jsou uvnitř cílové sekvence, která se bude amplifikovat a probíhá standardní proces teplotních cyklů.
Prvním krokem uvedeného postupu amplifikace založeného na PCR je hybridizace cílové nukleové kyseliny s prvním specifickým primerem zachyceným na podkladu (primer 1) . První elongační produkt komplementární s cílovou nukleovou kyselinou se pak tvoří extenzí sekvence primeru 1. Když se podklad vystaví působení vysokých teplot nezbytných pro dehybridizaci, cílová nukleová kyselina se uvolní a může se pak účastnit dalších hybridizačních reakcí s jinými sekvencemi primeru 1, které mohou být zachyceny na podkladu. První zachycený produkt elongace může pak hybridizovat s druhým specifickým primerem (primer .2.) zachyceným také na. uvedeném podkladu, a. může. se tak tvořit druhý elongační produkt komplementární s prvním extenzí sekvence primeru 2 a je také zachycen na podkladu. Cílová nukleová kyselina, první a druhý produkt elongace jsou pak templátové molekuly schopné se účastnit vysokého počtu hybridizaci a extenzí. Tento postup limituje pouze přítomnost cílové nukleové kyseliny na začátku postupu a počet sekvencí primer 1 a 2 na počátku postupu. Konečný výsledek je množství kopií cílové sekvence zachycené na povrchu.
Amplifikační postup popsaný v tomto dokumentu se v obecném případě nazývá „můstková amplifíkace protože po prvním cyklu, kdy templát je v roztoku, molekuly templátu a primeru jsou zachyceny na podkladu jejich 5'-koncem, čímž tvoří typickou strukturu podobnou můstkům.
«· ·· • · · • 9 999 • ♦ · · • « · ·
Λ 9 9 9
Vzhledem k tomu, že tento amplifikační postup umožňuje imobilizaci pouze cílové nukleové kyseliny, sledování podkladu umožňuje genericky kvalitativní hodnocení přítomnosti nebo absence specifické cílové sekvence předem definované při návrhu primerů. Můstková amplifikace se může použít jako metoda pro analýzu sekvence s vysokou účinností, .jestliže v různých oblastech pevného povrchu jsou uspořádány různé sady prvního a druhého primeru a jestliže není nutné provést postupnou analýzu cílové sekvence postupující po jediné bázi. Taková technologie poskytuje podstatné zlepšení v postupné analýze různých sekvencí a/nebo vzorků pouze v případě, že jsou známy primery specifické pro každou . odlišnou cílovou sekvenci a mohou amplifikovat cílovou sekvenci v podobných amplifikačních podmínkách.
Jiné technologie zkouší využít účinněji mechanizmus můstkové amplifikace. Patentový dokument WO 98/44151 (Glaxo) popisuje jak, použitím všech analyzovaných templátů nukleové kyseliny přidáním, při obou extrémech, sekvence linkeru komplementární s imobilizovanými primery, každá templátová molekula v roztoku může být náhodně uspořádána a amplifikována bez ohledu na jejich skutečnou sekvenci. Tímto způsobem jsou shodné produkty amplifikace PCR imobilizovány s vysokou hustotou v diskrétní oblasti pevného podkladu, která se nazývá „DNA kolonie. Název vznikl na základě podobnosti s bakteriálními koloniemi na kultivační plotně. Každá DNA kolonie se může zviditelnit a analyzovat jednotlivě, například hybridizací se značenými referenčními sekvencemi nebo použitím přístupu založeném na elongaci primeru. V patentovém dokumentu WO 00/18957 (Appl. Res. Syst.) se popisuje zvýšení účinnosti technologie můstkové amplifikace současnou imobilizaci molekul primeru a templátů na pevném podkladu dříve, než skutečně začne amplifikace.
.·» ···» : :: : *: :: : ·:
·· ·« «· « technologií založených na můstkové nezávisle na zvolené specifiťě nebo nebylo popsáno, jak uskutečnit postup
Podstatné omezení amplifikaci je to, že imobilizační strategii, při izotermických podmínkách (to znamená, aniž je nutné použít teplotních cyklů). Tyto metody proto stále vykazují stejná omezení spojená s PCR. Dokonce, jestliže je možné aplikovat omezený počet cyklů, dochází, na základě citlivosti analýzy a systému vizualizace, k dalším komplikacím, protože teplota dehybridizace může ovlivnit jednotnost pevného povrchu, stejně jako stabilitu navázání nukleových kyselina na povrch. Žádný z izotermických amplifikačních systémů popsaných v předchozím stavu techniky nedosahuje, ve stejném okamžiku, . hustoty různých templátových molekul, které se mohou amplifikovat a analyzovat současně, a samo-dostatečnosti, které charakterizující technologii můstkové amplifikace.
Proto je stále výhodné navrhnout způsob, kde hybridizace primeru, elongace řetězce a oddělení řetězce probíhá kontinuálním způsobem při konstantní teplotě, přičemž se aplikují principy můstkové amplifikace. Dokonce důležitějším bodem je dosažení separace řetězce, poněvadž pouze teplota nebo použití komplexní a specifické techniky, jak se popisuje v předchozím stavu techniky, řeší tento problém. V patentovém dokumentu WO 97/47767 (Sarnoff Corp.) se navrhuje použití chemických a elektrostatických denaturačních postupů amplikovaných při amplifikačních postupech. Takové postupy však vyžadují vysoce specifické materiály, jako. je přístroj generující elektrické pole nebo chemikálie, jako hydroxid sodný, a jsou málo kompatibilní s běžnými postupy amplifikace a vyžaduje specifické další kroky (to je modifikující primery, vymývání chemikálií před začátkem elongace).
Technologie můstkové amplifikace nese další výhody.
Jestliže je možné provést oddělení řetězce v izotermických « · • · • ·· t « » · · · · • · ··· · · ·· · · · podmínkách, pak oddělení řetězce bude možné pouze po úplné elongaci nebo v případě, že elongace1 není dokončena, pak nedochází k přerušení elongace prováděné polymerázou nukleových kyselin.
Podstata.vynálezu
Zjistilo se, že oddělení řetězce dvouřetězcové nukleové kyseliny imobilizované 5'-koncem obou řetězců na stejném pevném podkladu může jednoduše proběhnout v izotermických podmínkách, .jestliže délka nukleové kyseliny omezuje možnost tvořit ohyb. Tento biofyzikální rys se úspěšně využil . při tvorbě DNA kolonií za použití můstkové amplifikace při izotermických podmínkách.
Flexibilita makromolekuly je tradičně vyjádřena jako stabilní délka, což znamená, jakou minimální velikost makromolekuly musí mít, aby se vytvořil ohyb, aniž se podstatně upraví jejich lokální struktura. V případě koncentrací solí kompatibilní s aktivitou polymeráz nukleových kyselin uvedená délka koresponduje přibližně s 5 nanometry (nebo z 15 bázemi) jednořetězcové DNA a přibližně, s 50 nanometry (nebo ze 150 páry baží) v případě dvouřetězcové DNA (Tinland B et al., Macromolecules 1997, 30 (19): 5763-5765,
Williams LD and Mhaler L.J., Annu Rev. Biophys. Biomol. Sťurct. 2000, 29, 497-521). Jinými slovy dvouřetězcové DNA je daleko pevnější ve srovnání s jednořetězcovou DNA, což je způsobeno velkým množstvím nekovalentních interakcí, které stabilizují její strukturu. Podobné pozorování je možné udělat také v případě RNA, dokonce přes to, že stabilní délka dvouřetězcové RNA se podle literatury kolísá v případě dvouřetězcové RNA od 35 do 72 nanometrů (popisuje se v publikaci Zachyrias M., Biopolymers 2000, 54(7): 547-60,
Kebbekus P. et al., Biochemistry 1995. 4, 43(13): 4354-7).
V případě, že externí podmínky vytváří ohyb, dvouřetězcová molekula podstoupí daleko vyšší mechanický stres ve srovnání s jednořetězcovou molekulou.
Řada biofyzíkálních studií zkoušela kvantifikovat a předpovědět destabilizační účinky energie, která vzniká z mechanického stresu na nekovalentní interakce přítomné ve dvouřetězcové DNA, který může následovat po transkripci, po vytvoření dvoušroubovice nebo po mechanické separaci přiléhajících extrémů 5'/3'konce (popisuje se v publikaci Strick T.R., et al., Annu. Rev. Biophys. Biomol. Struct. 2000, 29, 523-43). Takové přechody mezí jednořetězcovou· a dvouřetězcovou nukleovou kyselinou jsou ukázány jako přirozený a neřízený jev, ke kterému dochází, když dvouřetězcová molekula se vystaví působení teplot, které se přibližují denaturačním teplotám (popisuje se v publikaci Dubiley S. ét al., Nucleic Acids Res. 1999, 27 (18)·: e!9) . Nikdy se neprokázalo, že takový jev je možné vyvolat a využít, jestliže oba 5'-konce (částečně nebo zcela) molekul dvouřetězcové DNA se současně im.obilizuj.í na· pevném podkladu. Žádný z uvedených dokumnetů stejně jako žádný dokument popisující technologii příbuznou s můstkovou amplifikací nenaznačuje, že taková energie může být vyvolána, aby se předešlo teplotním cyklům v případě provedení můstkové amplifikace.
Na obrázku č. 1 jsou zobrazeny molekulární mechanizmy probíhající podle vynálezu.
V případě, že komplementární sekvence patřící jednořetězcovým primerům (a' a a'') a templáty ’ (b) imobilizované 5'koncem na pevný povrch (c) jsou dostatečně blízko hybridizaci (1) . Každý produkt hybridizace primeru a templátu je více či méně zakřiven v závislosti na vzdálenosti mezi imobilizovanými 5z-konci (zobrazeno na obrázku č. 1A).
• · • ·
4 4 4
V přítomnosti amplifikačního roztoku (d) molekula polymerázy nukleové kyseliny (e) může začínat extenzi nového řetězce, která je kopií imobilizovaného templátu od 3' konce hybridizovaného primeru (2). Dvouřetězcová oblast se následně prodlužuje z počáteční hybridizační oblasti a komplex obsahuje progresivně rostoucí množství uměle zakřivené dvouřetězcové nukleové kyseliny.(zobrazeno na obrázku č IB) .
Během extenze dvouřetězcového segmentu polymeráza se může denaturovat spontánně, jako účinek mechanického stresu vyvolaného kontrastem mezi pevností dvouřetězcového uspořádání a ohybností vyvolanou fixovanou polohou 5'-konce obou řetězců (3). Nekovalentní interakce stabilizující dvouřetězcovou nukleovou kyselinu mohou tvořit konzistentní mechanický stres, jestliže templát není dostatečně dlouhý, aby se taková pevná struktura přizpůsobila zakřivené konfiguraci. Dvouřetězcová část molekuly může méně a méně přijímat vyvolané zakřivení s rostoucím počtem nekovalentních interakcí přítomných v molekule a mechanický stres se může eliminovat pouze redukcí části templátu na dvouřetězcové uspořádání. V tento okamžik část, která je slaběji vázána a proto jednodušeji absorbuje takový stres, je 3'-konec templátové molekuly, který leží distálně k pokračující polymeráze nukleových kyselin a který se může stát jednořetězcový. Stres, který vyvolává zakřivení se následně redukuje a činnost polymerázy dále pokračuje do okamžiku, kdy se stres stane opět příliš silný, aby byl absorbován. Zatímco postup probíhá molekuly dvouřetězcové nukleové kyseliny se oddělí, přičemž ponechají 3'-konec dostupný pro hybridizaci s jiným primerem (4) a druhá molekula polymerázy DNA může iniciovat druhou kopii templátu (5) . Tento postup může probíhat dokonce jako postup postupující po jednotlivých bázích. Mechanický stres aktivovaný otevřením řetězce přes 1 až 2 báze na 3'-konci templátu může být • · · · • · · ···· · · · • · · · · · · · · · · · xš....: =..::..: :..:-..= průvodní jev začlenění 1 až 2 bází polymerázou na 3'-konec neo-syntetizovaného řetězce (zobrazeno na obrázku č. 1C) .
Když se ukončí první kopie templátu nebo je ukončována, DNA polymeráza syntetizující druhou kopii je schopna vyvolat mechanický stres na sdíleném řetězci, který je možné progresivně separovat a nahradit prvním syntetizovaným řetězcem (6) (zobrazeno na obrázku č. ID).
Reakce pak pokračuje až do ukončení, to znamená, že dva řetězce templátu jsou imobilizovány a pravděpodobně iniciují amplifikaci, jak se popisuje dříve v textu. Po té, co druhá kopie templátu je dokončena nebo se dokončuje, může se uvolnit 5'-konec tvořený jediným řetězcem templátu (7) a hybridizuje s jiným imobilizovaným primerem v sousedstvím (8), zatímco jiná molekula polymerázy nukleové kyseliny může opětovně nastartovat syntézu (9). Ve stejný čas první jednořetězcová kopie může hybriďizovat s jiným primerem (10) a může iniciovat nové vytváření kopií (11). Tento postup, zobrazený na obrázku č. 1E, umožňuje, aby se neo-syntetizované kopie přetvářely na jednořetězcové nukleové kyseliny pomocí separace a nahrazení řízené mechanickým stresem, který může být reprodukován libovolnou imobilizovanou templátovou molekulou, která hybridizuje s imobilizovaným primerem, aniž působí externě vytvořená cyklická aktivita.
Vynález zobrazuje, že flexibilita nukleových kyselin, která se podstatně liší, jestliže nukleová kyselina, je buď jednořetězcová nebo dvouřetězcová, umožňuje částečné uvolnění templátů ve formě jednořetězcové molekuly, zatímco, stále probíhá polymerizace. Vynález překvapivě také ukazuje, že tento jev neovlivňuje aktivitu polymerázy, ale může se použít k řízení izotermické amplifikace molekuly templátu za vzniku ·· · · · · · · ·· ····
nově syntetizované molekuly, kdy všechny jsou imobilizovány v určité oblasti pevného povrchu.
Zdokonalení metody zde popsané můstkové amplifikace umožňuje exponencionální produkci komplementárních sekvencí, které mají smíchanou jednořetězcovou nebo dvouřetězcovou konfiguraci v diskrétní oblasti pevného povrchu (v případě kolonií DNA se popisuje v patentových dokumentech WO 98/44151 a WO 00/18957), ale izotermickým a kontinuálním způsobem. V případě, že se uvažuje, že množství shodných amplifikovaných molekul je dostatečné, sekvenování a jiné popsané analytické metody se mohou stejně aplikovat v případě kolonií DNA vytvořených izotermicky buď na samotném podkladu nebo na molekulách uvolněných z kolonií DNA do roztoku metodami, které se popisují v předchozím stavu techniky.
Kontinuita amplifikačního postupu podle vynálezu spojená s izotermickými podmínkami poskytuje zřejmé výhody ve srovnání s metodami popsanými v předchozím stavu techniky, co se týká uspořeného času a úsilí při získání molekul nukleové kyseliny ve formě a v množství umožňující aplikovatelnost výkonných sekvenčních metod. 'Je nutné poznamenat, že vynález popisuje použití pevného, podkladu ne pouze jako nástroje, který umožňuje paralelní analýzu amplifikovaných molekul (které jsou dobře známy v předchozím stavu techniky), ale také jako komponent podstatný při provedení amplifikace nukleových kyselin, jako kontinuální postup při izotermických podmínkách.
Dokonce ačkoli stabilní délka pro dvouřetězcovou DNA koresponduje s 150 páry baží, metody podle vynálezu ukázaly, že je možné použít templátu DNA nebo RNA v širokém rozsahu délek v řádu několik stovek nukleotidů. Je možné odvodit, že takové rozmezí je možné dále rozšířit na templáty obsahující až 1 000 nukleotidů za použití podmínek identifikovaných ··· · pomocí stejných empirických metod popsaných v příkladech v případě molekul DNA, které obsahují 68 až 605 nukleotidů.
Hlavní předmětnou věcí vynálezu jé způsob izotermické amplifikace alespoň jednoho segmentu nukleové kyseliny obsahující až 1 000 nukleotidů zahrnující:
a) vytvoření aléspoň jednoho templátu nukleové kyseliny obsahující nukleovou kyselinu(y), který se mají amplifikovat, kde uvedená nukleová kyselina obsahuje na 5' konci oligonukleotidovou sekvenci Y a na 3'konci oligonukleotidovou sekvenci Z a navíc nukleové kyseliny nesou na 5'-konci prostředek pro imobilizaci na pevný podklad,
b) vytvoření jednoho nebo více primerů kolonií X, které mohou hybridizovat buď s oligonukleotidovou sekvencí Z nebo s oligonukleotidovpu sekvencí Y a nesou na 5' konci prostředek imobilizůjící uvedené primery kolonií, na pevný podklad,
c) smíchání uvedeného templátu(ů) nukleových kyselin a primerů kolonií spolu s roztokem, který umožňuje jejich imobilizaci 5'-.koncem na pevný podklad v přítomnosti uvedeného pevného podkladu tak, že 5' konce templátu.(ů) nukleových kyselin a primerů' kolinií se váží na uvedený pevný podklad,
d) aplikace amplifikačního roztoku, který obsahuje alespoň polymerázu. nukleové kyseliny a nukleotidové prekurzory, na uvedený pevný podklad za účelem izotermicky vytvořit a ímobilízovat nukleové kyseliny, které vykazují sekvenci shodnou nebo komplementární se sekvencí imobilizovaného templátu(ů) nukleové kyseliny.
• · , · · 9 9 9 9
9 9 9 9 9 • ,· 999 9999
19: :: : ·: ::.....
·· ·· 99 99 99 99
Způsob podle vynálezu se s úspěchem provedl při izotermické amplifikaci na pevném povrchu molekul jednořetezcové DNA, které obsahují 68 až 605 baží.
Množství imobilizovaných nukleových kyselin, jak se uvádí v odstavci c) udává průměrný počet kolonií DNA na jednotce povrchu, která se může vytvořit způsobem podle vynálezu. Rozmezí výhodných, koncentrací molekul DNA, které se mají imobilizovat, se stanoví v příkladech a pohybuje se mezi 1 nM a 0,01 nM v případě templátových molekul a mezi 50 a 1 000 nM v případě primerů kolonií. Takové koncentrace nukleových kyselin umožňuji vytvoření kolonií DNA s hustotou 1 000 až 100 000 na mm2.
Konstantní teplota při amplifikaci podle vynálezu je teplota, při které vybraná polymeráza nukleové kyseliny vykazuje optimální aktivitu. Příklady ukazují, že polymerázy nukleových kyselin, které se běžně používají v systémech amplifikace nukleových kyselin známých v předchozím stavu techniky, . je možné také použít k provedení metod podle vynálezu při teplotě mezi 70 až 85°C nebo výhodněji mezi 77 a 81 °C. Toto rozmezí teplot je také funkční v případě hybridizace, protože při těchto teplotách se v obecném případě snižuje nespecifická hybridizace mezi primerem a templátem.
Termín „izotermický je ekvivalentní termínu v podstatě stejná teplota, což znamená, že libovolná odchylka od teploty, která se na začátku vybrala, aby se provedl způsob se specifickou polymerázou nukleových kyselin je v rozmezí odchylek, který vykazuje běžně dostupný termostat.
Termín „pevný podklad znamená libovolný pevný povrch, na který se mohou zachytit nukleové kyseliny. Mohou to být latexové částice, dextranové částice, polystyrénové povrchy, • · • · • · · 9 » · · · 4 9 • · · · · · ··· 9 · · polypropylenové povrchy, polyakrylamidový gel, povrchy tvořené zlatém, skleněné povrchy a silikonové destičky. S výhodou se používá pevný podklad, jako je sklo nebo polystyren.
Termín „templát nukleové kyseliny znamená entitu obsahující nukleovou kyselinu (DNA nebo RNA), která se bude amplifikovat a je přítomna v reakci jako- jednodořetězcová, dvouřetězcová nebo jednořetězcová a dvouřetězcová. nukleová kyselina. Nukleotidy, které tvoří templáty nukleových kyselin, se mohou přirozeně vyskytovat nebo to mohou být syntetické nukleotidy.
Termín „primer. kolonií znamená entitu, která obsahuje oligonukleotidový primer, který je možné mobilizovat na pevném povrchu za použití jeho 5'-konce a je schopen hybridizovat s komplementární sekvencí za použití jeho 3'-konce pro iniciaci specifické polymerázové reakce.
Termín degenerované sekvence primerů znamená krátkou oligonukleot.idovou sekvenci, která je schopna hybridizovat s libovolným fragmentem nukleové kyseliny nezávisle na sekvenci uvedeného fragmentu nukleové kyseliny.
Termín „prostředek pro imobi-lizaci nukleových kyselina na pevném podkladu znamená libovolné chemické zachycení nebo zachycení, které neprobíhá chemickým způsobem, zahrnující použití funkční skupiny, které je možné upravit chemickým způsobem. Termín „zachycení se vztahuje k imob.ilizaci nukleové kyseliny na pevném podkladu kovalentní vazbou nebo' nekovalentní interakcí.
Termín „chemicky upravitelná , funkční skupina znamená skupinu, jako je například fosfátová skupina, karboxylová skupina nebo aldehydová skupina, thiol nebo aminoskupina.
»· ·· ···· • · · · • · ··· ·
2Í··**··’ ’
Termín „kolonie nukleové kyseliny znamená diskrétní oblast obsahující více kopií dvou komplementárních řetězců nukleové kyseliny.
Termín „derivatizovaný povrch znamená povrch, který je možné upravit chemicky reaktivními skupinami, jako je například aminoskupina, thiolnebo akrylátová skupina.
Termín „funkcionalizovaný povrch znamená derivatizovaný povrch, který se upravil se specifickými funkčními skupinami, jako jsou například funkční části kyseliny maleinové nebo jantarové.
molekul nukleových neznámou sekvenci.
Nukleové kyseliny, které se mohou amplifikovat způsobem podle vynálezu zahrnují DNA, jako je například genomová DNA, komplementární DNA, ’ rekombinanntí DNA nebo libovolná forma syntetické nebo upravené DNA. Jejich délka může kolísat mezi molekulami templátů současně imobilizovanými na stejném pevném povrchu a mohou to být fragmenty nebo menší části . větších kyselin, které vykazují známou nebo Nukleové kyseliny, které se mají amplifikovat, se mohou získat z libovolného zdroje /například fragmenty genomové DNA získané z částečného štěpení restrikčními enzymy). Uvedené nukleové kyseliny se musí dříve než se použijí metody podle vynález dále zpracovávat za použití standardních technik genetických manipulací, jak se popisuje v patentovém dokumentu WO 00/18 957. Zvláště je.nutné přidat sekvenci Y a Z, které jsou nezbytné při hybridizaci primerů kolonií. V případě mRNA ,se může izolovaná mRNA dříve než se upraví pro metody podle vynálezu transformovat na cDNA použitím reverzní transkriptázy a případně na dvouřetězcovou
DNA.
·· · · • · · · · · · · * ‘ · • · tu · · · · * · · • · · ··* · · · · · · · • · · · · · · · · · · · __»· ·· ·· ·· ·· ··
V jiném případě, když je templář přirozená, syntetická nebo upravená molekula RNA, může se přímo amplifikovat způsobem podle vynálezu za použití specifického enzymu, o kterém je známo, že _může vytvořit z jednořetězcové RNA dvouřetězcovou RNA.
Templáty nukleové kyseliny podle vynálezu obsahují nejen nukleovou kyselinu, která se bude amplifikovat, ale také oligonukleotidy v sekvenci Y a Z, které, mají známé sekvence a mohou mít různou délku. Oligonukleotidové sekvence Y . a Z vhodné pro použití v uvedených metodách podle vynálezu s výhodou obsahují alespoň pět nukleotidů, výhodněji 5 a 100 nukleotidů a ještě výhodněji přibližně 20 nukleotidů.
Oligonukleotidové sekvence Y a Z podle vynálezu se mohou připravit použitím metod, které jsou v oboru standardní nebo běžné nebo se mohou získat z komerčních zdrojů. Jestliže se má amplifikovat velké množství sekvencí nukleových kyselin, pak zachycení oligonukleotidů Y a Z se může provést stejnou nebo odlišnou reakcí.
Oligonukleotidové sekvence Y a Z obsažené na 5'-konci respektive 3'-konci templářů nukleové kyseliny se nemusí nacházet na samých koncích templářů. Ačkoliv se oligonukleotidové sekvence Y a Z nacházejí s výhodou na 5' nebo 3'konci templářů nukleových kyselin nebo v jejich blízkosti (například v oblasti 0 až 100 nukleotidů 5' konce a 3'konce), mohou se také nacházet dále (například více jak 100 nukleotidů ) od 5'nebo 3'konce templářů nukleové kyseliny, což umožňuje, že sekvence Y a Z lemují amplifikovanou sekvenci nukleové kyseliny, která není delší než 1 000 baží.
Po té, co se připraví templář nukleové kyseliny, může se před použitím v metodách podle vynálezu amplifikovat. Taková ·« «4 ♦· ·· 44 ·44· • 4 4 · 4 · · 4 4 4 • 4 ··· 4 · 4 4 4 4 4 • 44 ··· ·· · · 4 · · . Κ 44 4 4 . · 4 4 4 44 4
23·· · · ·· ·· ·· ·♦ amplifikace se může provést za použití metod, které jsou dobře známy a popsány v oboru, jako je například začlenění templátu nukleové kyseliny do expresívního vektoru a její amplifikace ve vhodném biologickém hostiteli nebo amplifikace pomocí PCR. Tento amplifikační krok není podstatný, ale jako způsob podle vynálezu umožňuje přípravu velkého množství kopií, templátu nukleové kyseliny ve vytvořených kolonií nukleových kyselin vzniklých z jediné kopie templátu nukleové kyseliny. To je možné provést zavedením 5'chemicky upravené imobilizační skupiny, jak je zobrazeno v příkladech.
Templát nukleové kyseliny se může imobilizovat na pevném povrchu jako dvouřetězcová molekula, ale může se připravit jako jednořetězcová forma za použití metod, které jsou dobře známy v oboru a jsou dobře zdokumentovány. Je to například zahřívání na přibližnou teplotu 94 °C a rychlé ochlazení na ledu na teplotu 0 °C nebo promytím 0,1 až 0,5 M NaOH.
Sekvence obsažená v primeru kolonií a komplementární s oligonukleotidovými sekvencemi obsaženými v templátu.(ech) se vybraly tak, že vykazují maximální hybridizační aktivitu vůči své komplementární sekvenci a velmi nízkou nespecifickou hybridizační aktivitu vůči libovolné jiné sekvenci. Primer kolonií může obsahovat 5 až 100 baží, ale s výhodou 15 až 25 baží. V primeru se mohou také vyskytovat přirozeně se vyskytující nebo syntetické nukleotidy.
Za účelem vytvoření kolonií nukleových kyseliny způsoby podle vynálezu se mohou použít jeden nebo dva různé primery kolonií. V základním provedení vynálezu se smíchají dva různé primery kolonií X'a X'' s templáty nukleové kyseliny, jak se popisuje v odstavci c) a sekvence primeru kolonií X'a X' ' jsou takové, že oligonukleotidová sekvence Z může hybridizovat s jedním z primeru kolonií X' a oligonukleotidová sekvence Y «9 ·« ·· ··
4 9 4 · · · ··· 4 4 ·· • 4 4 4 > 4 4 · • 4 Λ · 4 4 4 • 9 4 ·· 4·
2Φ •9 4444
4
4 9*4
4 4 4 je stejná jako jeden z primerů kolonií X''. V jiném případě oligonukleotidová sekvence Z je komplementární s oligonukleotidovou sekvencí Y a sekvence primeru kolonií X je stejná jako oligonukleotidová sekvence Y.
Když se připravují templáty nukleových kyselin a primery podle vynálezu mohou se dále do nich zavést požadované sekvence způsoby, které jsou dobře známy v oboru a jsou dobře dokumentovány. Takové další sekvence zahrnují například místa rozeznávaná restrikčními enzymy, upravené nukleotidy nebo jiné značky nukleových kyselin, ' které umožňují identifikaci a izolaci produktů amplifikace, které obsahují sekvenci. daného templátu nukleové kyseliny. Další požadované sekvence zahrnují sekvence vlásenkové struktury DNA (které tvoří ' vlásenkovou strukturu nebo jiné sekundární struktury, když jsou jednořetězcové), řídící sekvence DNA, které řídí interakce protein-DNA, jako je promotor, zesilovač, začátek replikace nebo sekvence operátoru DNA, které rozeznávají specifické proteiny vázající se na DNA.
Primery kolonií podle vynálezu mohou také zahrnovat sekvence degenerovaných' primerů. Takové degenerované primery tak nevyžadují přítomnost oligonukleotidových sekvencí Y nebo Z v templátu(ech), aby došlo k hybridizaci s templátem, ačkoli použití degenerovaných primerů při hybridizaci s templátem, který obsahuje oligonukleotidové sekvence X nebo Y, není vyloučeno. Při použití při amplifikačních metodách podle vynálezu degenerované primery musí hybridizovat . se. sekvencemi nukleových kyselin templátu v místech lokalizovaných na obou stranách sekvence nukleové kyseliny, která se amplifikuje, nebo v místech, která uvedenou sekvenci lemují.
5'-konec templátu nukleové kyseliny a primery připravené způsobem popsaným shora v textu se upravuje tak, aby nesl ··
Λ.
• ··· • · · !· · ·· ···· • · · • · · • · · · ·· ·· prostředek pro imobilizaci 5'konců templátu nukleové kyseliny a primerů kolonií. Imobilizace nukleových kyselin za použití 5'konce nechává 3'-konec volný tak, že oblast 3'-konce templátů a primerů mohou hybridizovat a řídit syntézu nového řetězce.
Protokol imobilizace by měl zabránit uvolnění templátu a primerů z pevného povrchu během izotermické amplifikace. Proto prostředky pro imobilizaci jsou s výhodou chemicky upravené funkční skupiny, které umožňují tvorbu kovalentní vazby mezi uvedenými molekulami a pevným povrchem, který má derivační povrch a následně se upravuje řetězením bifunkčních skupin za vzniku funkčního povrchu. V jiném případě je možné dosáhnout imobilizace nevratnou pasivní adsorpcí nebo využitím afinity mezi specifickými molekulami (například imobilizace na povrchu potaženém avidinem pomocí molekul značených biotinem).
Příklady chemicky upravených funkčních skupin, které se přidávají na 5'-konec nukleových kyselin za účelem imobilizace jsou thiol, hydroxyl, dimetoxyltrityl (DMT), aminoskupina nebo fosfátová skupina, stejně jako karboxylová skupina ' a aldehydová skupina. Příklady řetězících činidel, použitelné při úpravě pevného povrchu jsou hydrochlorid l-etyl-3-(3-dimetylaminopropyl)karbodiimidu (EDC), anhydrid kyseliny jantarové, fenyldiizothiokyanát nebo anhydrid kyseliny maleinové nebo hetero-bifunkční řetězící činidlo, jako je například ester m-maleimidobenzoyl-N-hydroxysukcinimidu (MBS), N-sukcinimidyl[4-jodoacetyl]aminobenzoát (SIAB), sukcinimidyl4-[N-maleimidometyl] cyklohexan-l-karboxylát (SMCC) , ester N-ymaleimidobutyryloxysukcinimidu (GMBS), sukcinimidyl-4-[pmaleimidofenyl]butyrát (SMPB) a odpovídající sloučeniny obsahující sulfoskupinu (rozpustné ve vodě). Nejvýhodnější je, když jsou templáty nukleových kyselin a primery upravené na 5'-konci thiolem, fosfátovou skupinou nebo aminoskupinou a ··
·· ···· • · « • · · • · · · ·· ·· imobilizují se za použití imobilizačního roztoku, který obsahuje hydrochlorid l-etyl-3-(3-dimetylaminopropyl)karbodiimidu.
Ačkoli pevným podkladem může být libovolný pevný povrch, na který je možné imobilizovat nukleové kyseliny, jako jsou například latexové nebo dextranové částice, polystyrénové povrchy, polypropylenové povrchy, polyakrylamidový gel, povrch tvořený zlatém, skleněné povrchy a silikonové destičky.· Je výhodné, aby pevný povrch byl dostatečně odolný,, aby nebyl ovlivněn silou vyvinutou během elongace a umožnil kovalentní navázání nukleové kyseliny za použití monofunkčních nebo bifunkčních řetězících činidel, jak se popisuje dříve v textu a v patentovém dokumentu WO 00/18957. Po syntéze templátů nukleové kyseliny a primerů kolonií nebo izolaci ze vzorku a po úpravě, jak se popisuje dříve v textu, může dojít k jejich smíchání ve vypočtených koncentracích, kdy se berou v úvahu data udávaná v tomto dokumentu stejně jako hustota kolonií DNA. Koncentrace templátů je s výhodou nižší než nM a primery kolonií jsou v koncentraci 50 krát až 100 000 krát vyšší.
Po imobilizaci primerů kolonií a templátů nukleové kyseliny na pevný povrch se .mohou vytvořit izoteřmickou amplifikační reakcí kolonie DNA podle vynálezu, jak je znázorněno na obrázku č. 1 tak, že každá kolonie obsahuje více kopií původního imobilizovaného templátů nukleové kyseliny a jejich komplementární sekvenci. Hranice vytvořené kolonie nukleové kyseliny je omezena relativně malou oblast, na které se mobilizuje počáteční templář nukleové kyseliny. Je zřejmé, že jednou tolik kopií, molekuly templátů se syntetizuje provedením amplifikační metody podle ,vynálezu, pak vytvořená hranice kolonie nukleové kyseliny je schopná se posunout dále, ačkoliv hranice vytvořené kolonie jé stále omezena na malou '44 44 44 4· 44 ····
4 4 4 4 « 4 4 4 4
4 444 4 4 44 4 4 4
2!7 « · · * · · · ϊ * ί ·» · ·· *· ·· »· ·· ·· část pevného povrchu, na kterém jsou imobilizované nukleové kyseliny.
Velikost a počet kolonii DNA se může řídit úpravou času, během kterého se pevný povrch vystaví izotermické amplifikací. Tak počet kolonií nukleových kyselin vytvořených na povrchu pevného podkladu závisí na počtu templátů nukleové kyseliny, které se na začátku imobilizují na podklad za vzniku dostatečného počtu imobilizovaných' primerů kolonií ve vzdálenosti, která umožňuje hybridizací s molekulami templátů. Řízením počáteční hustoty templátů nukleové kyseliny a primerů je možné dosáhnout optimální situace, kdy se může izotermicky na pevném povrchu připravit vysoká hustota jednotlivých nukleových kyselin o velikosti, která je dostatečná, aby mohla proběhnout jejich analýza, a dále kolonie DNA obsahují dostatečný počet amplifikovaných sekvencí.
Izotermická amplifikace podle vynálezu se může provést za použití' DNA polymerázy závislé na DNA nebo RNA a za. podpory molekul nukleosidtrifosfátů nebo libovolných jiných nukleotidových prekurzorů, jako jsou například upravené nukleosidtrifosfátové molekuly.
Příklady polymeráz nukleových kyselin, které se mohou použít podle vynálezu, jsou DNA polymeráza (Klenow fragment, T4 DNA polymeráza), teplotně stabilní DNA polymerázy (popisuje se v publikaci Perler F. B. et al., Adv. Protein Chem. 1996, 48: 377-435) identifikované v různých teplotně stabilních bakteriích nebo se mohou do těchto bakterií klonovat (jsou to DNA polymeráza Taq, VENT, Pfu, Tfl) stejně jako jejich geneticky upravené deriváty (TaqGold, VENTexo, Pfuexo). Polymeráza nukleové kyseliny s výhodou používaná v případě extenze primerů kolonií je stabilní za teploty, při které • Φ φφ *· »· φφ' φφφφ • · · · ·Φ\ φ φ * · • φ φφφ ΦΦΦ· φ φ · • φφ φφ* φφ φφφ φ · φφφφ φφφφ φφφ φ
28** ·* ........
hybridizace primeru a templátu je dostatečně specifická, aby se zabránilo neúplné nebo nežádoucí ampiifikaci templátu.
skupinou. diverzitu
Amplifikační roztok obsahuje s výhodou nukleotidové prekurzory, deoxyribonukleotidtrifosfáty, jako. je například dATP, dTTP, dCTP, dGTP, které se přirozeně nebo nepřirozeně vyskytují například upravené fluorescenční nebo radioaktivní Za účelem zvýšit detekovatelnost a/nebo funkční nukleových kyselin se vyvinulo velké množství synteticky upravených nukleových kyselin pro chemické a biologické metody. Tyto funkční/upravené molekuly mohou být zcela kompatibilní s přirozenými polymerizačními enzymy, které udržují parametry párování baží a replikace přirozených doplňků (popisuje se v publikaci Thum 0. et al., Angew. Chem. Int. Ed. 2001, 40 (21): 3990-3993).
Jestliže templátem je buď molekula RNA nebo DNA a je nutné získat amplifikační produkty ve formě dvouřetězcové RNA, pak polymerázou nukleové kyseliny může být RNA polymeráza.. závislá.
na RNA a DNA, jako je například virová replikáza RNA nebo
ribozym (popisuje se v publikaci Johnston, W. K. et al.,
Science 2001, 292 (5520) : 1319-25, Tayon, R. Jr. et al.,
Nucleic Acids Res. 2001, 29(17):3576-82). Amplifikační roztok bude následně obsahovat nukleotidové . prekurzory, ribonukleotidtrifosfáty.
Po volbě polymerázy nukleových kyselin do amplifikačního roztoku přidají další složky a v podstatě , odpovídají sloučeninám známým v oboru a účinně podporují aktivitu každé polymerázy. V oboru je známo, že koncentrace sloučenin, jako je dimetylsulfoxid (DMSO), bovinní sérový albumin (BSA), Triton X-100 nebo MgCl2, jsou důležité, aby došlo k optimální ampiifikaci a proto odborník může jednoduše upravit takové
4« ·· ·» ·· «444 • 4 « 4 4··»« « : ·.
• · · · 4 · · · 4 4 « 4 * · 44 44 44 4 4 koncentrace vhodné pro určité metody podlé vynálezu na základě zde popsaných příkladů.
Velké množství kopií řetězců nukleových kyselin tvořící kolonie jsou v obecném případě imobilizované. na pevném povrchu a mohou být v jednořetězcovém, dvouřetězcovém uspořádání nebo ve smíchaném uspořádání. Všechny formy jsou reprezentovány v populaci amplifikovaných molekul patřících do jediné kolonie DNA. Jestliže je pro metodu nezbytné, aby všechny molekuly nukleové kyseliny, které se budou analyzovat a/nebo sekvenovat, byly ve specifickém uspořádání, mohou se provést další úprava izotermicky amplifikovaných produktů, aby se všechny dostaly do požadovaného stádia (nebo alespoň většina z nich). Denaturace řízená elektrický nábojem, chemickou cestou nebo teplotou se může použít k transformaci všech amplifikačních produktů na jednořetězcovou DNA. Takové molekuly mohou nyní hybridizovat účinněji s primerem'přidaným do kapalné fáze nebo zachyceným na podkladu, který vykazuje sekvenční komplementaritu s vnitřní sekvencí jednoho amplifikačního řetězce. V závislosti na sekvenační metodě tento pomocný oligonukleotid umožňuje detekci sekvence různými způsoby. Oligonukleotid může být značen nebo může vyvolat elongaci použitím značeného/upraveného nukleotidu. V jiném případě je možné použít endonukleolytických enzymů, které rozeznávají specifickou sekvenci nebo strukturu vytvořenou po hybridizaci a po elongaci.
Kolonie nukleových kyselin podle vynálezu se mohou tvořit v různých velikostech a v hustotách v závislosti na používaných podmínkách. Velikost kolonií se s výhodou pohybuje v intervalu 0,2 mikrometrů do 6 mikrometrů. Hustota kolonií nukleových kyselin vhodných pro použití při metodě podle vynálezu je v typickém případě 1 000 až 100 000 na jeden milimetr čtvereční. Vyšší hustoty například 100 000 až 10 000
A AAAA
A A A
A · · J * ·
AAA AA AAA A AAAA A
A · A ·
A A A ζλΑΑ »·
3(7
000 na jeden milimetr -čtvereční je možné dosáhnout způsoby podle vynálezu. Limitujícím prvkem pro· analýzu zobrazení je v současné době pouze technologie zobrazení -(mikroskopy,, kamery CCD, software). Toto omezení se pravděpodobně odstraní v budoucnosti a bude možné získat jasné rozlišení jednotlivých kolonií při uvedené hustotě.
Po té, co se izotermicky vytvořily kolonie nukleových kyselin, mohou se pro současnou vizualizaci a/nebo charakterizaci jedné nebo více kolonií DNA použít různé technologie sloužící například pro ověření, že se dosáhlo předpokládané hustoty a rozměru izotermicky vytvořených kolonií DNA. V závislosti na specifickém postupu výstup analytické metody je možné získat monitorováním buď pevného povrchu, na kterém izotermická amplifikacé probíhá, nebo materiálu uvolněného z takového podkladu do kapalné fáze. Molekuly nukleových kyselin odlišné od molekul používaných při izotermické amplifikaci se mohou použít při specifických analytických metodách a hybridizují s produkty amplif.ikace v kapalné fázi podle optimálních hybridizačních podmínek, které je možné jednoduše stanovit empiricky pro každou sekvenci nukleové kyseliny za použití metod, které jsou dobře známy v oboru.
Metody pro vizualizaci kolonií a stanovení sekvencí, které je možné použít, v souvislosti s koloniemi . DNA se popisují v dokumentu WO 00/18957. Neúplný seznam takových metod zahrnuje hybridizaci. se značenými oligonukleotidy, začlenění značených nukleotidů, opětná amplifikacé použitím specifických sond, použití barviv, která se váží na DNA, štěpení endonukleázami, které . jsou specifické pro sekvenci nebo strukturu a použití, jiných enzymů, které upravují DNA (jako jsou ligázy, metylázy, exonukleázy) a jiné proteiny ·vázající se na DNA.
·«
4 4
4 444 • 4 4 4
4 4 4
31*· “
44 • •44 4 4 ·
4 4 4 4 4 ·
44 4 44 4 4
44 4 4 44 4
44 44 44
Dříve než se provede sekvenační analýza je možné vypočítat hustotu a rozměry izotermicky vytvořených kolonií nukleových kyselin použitím metod detekce fluorescence, které jsou dobře známy v oboru. Za účelem obarvení izotermicky amplifikovaných dvouřetězcových molekul imobilizováných na povrchu se může například použít interkalační barvivo, jako je etidiumbromid nebo PicoGreen(tm) (Molecular Probes, Eugene, OR) nebo jiná chemická metoda pro barvení DNA jako je sada Ulisys(tm) (Molecular Probes) a výsledek barvení je možné pozorovat epifluorescenčním mikroskopem, jak zobrazuje obrázek č. 3. Pro stanovení sekvence je možné použít libovolný přístroj umožňující detekci a kvantifikaci vhodného značení, jako je například fluorescence nebo radioaktivita, jak se popisuje v dokumentu WO 00/18957. Mimo mikroskopu je možné použít například jiné přístroje dobře známé v oboru, jako je například skenovací zařízení.
Celá nebo část sekvence jedné nebo více nukleových kyselin se může stanovit stanovením celé nebo částečné sekvence amplifikovaných templátů nukleové kyseliny přítomné ; ve více jak jedné kolonii DNA. Tyto další kroky se mohou provést s amplifikovanými nukleovými kyselinami buď na pevném povrchu samotné nebo po uvolnění jednoho nebo obou řetězců nukleových kyselin, které patří do jedné nebo více kolonií DNA. Výhodné je, když se, současně stanoví velké množství sekvencí.
Jakmile je nutné provést přímé značení amplifikovaného produktu nebo sekvenování amplifikovaného produktu, je možné do amplifikovačního roztoku zavést značený nukleotid, pak je možné po ukončení reakce detekovat izolované kolonie DNA. Značící skupina může být radioaktivní nebo fluorescenční, jako je červeň Texas, - a může se přidat 'do amplif ikačního roztoku spolu s primerem odlišným od primerů používaných při «· ·<ι ·· ·· ···· ··· · » · · 9 · · • · ··· · · ·> · · · • 9 · ··· ·· 9 9 9 9 9
9 9 · 9 9 9 9 9 99 9
32· ·· ·· *· ·· ·· amplifikací templátových molekul ve vhodné koncentraci (v typickém případě desetkrát až tisíc krát vyšší koncentrace neznačeného dATP). Vysoké koncentrace značených nukleotidů mohou inhibovat amplifikační proces, což je jev dobře známý v oboru v případě jiných amplifikačních metod, jako je kapalná fáze PCR.
Metody podle vynálezu proto obsahují další krok postupu nebo více izotermicky Stanovení sekvence může stanovení sekvence, amplifikovaných kolonií následovat po začlenění j edné DNA.
značených nukleotidů, přičemž se využívají primery kolonií nebo jiné primery imobilizované na pevném povrchu nebo v kapalné fázi. V jiném případě stanovení sekvence může následovat po hybridizaci se značeným oligonukleotidem nebo po .uvolnění jednoho nebo obou řetězců nukleových kyselin patřící do jedné nebo více kolonií nukleových kyselin.
Vynález dále popisuje způsob obsahující další krok uvolnění jednoho nebo obou řetězců nukleové kyseliny patřící do jedné nebo více kolonií DNA vytvořených izotermicky tak, že se mohou získat v roztoku pro další použití. Uvolnění takové nukleové kyseliny je možné dosáhnout chemickou, optickou, fyzikální nebo enzymatickou cestou, přičemž dochází ke štěpení vazby mezi primerem a povrchem, nebo specifickou sekvencí, strukturou nebo nukleotidem obsaženým v amplifikovaných nukleových kyselinách. Například v patentovém dokumentu WO 00/58329 (Goldsbo.rough.. A) popisuje způsob oddělení molekuly nukleové kyseliny z pevného povrchu selektivním štěpením nukleotidu, který není běžný. V jiném případě sekvence obsažená v imobilizovaných koloniích DNA se mohou znovu amplifikovat v kapalné fázi, ve které jsou kolonie ponořeny, za použití libovolné z amplifikačních metod, jako je například
PCR.
• · ··
Za účelem stanovení počtu nebo · podstaty nukleotidů začleněných v každé kolonii je možné použít libovolný detekční systém kolonií DNA v kombinaci s analytickým systémem. Například po každém kroku prodloužení primeru nebo později za použití zaznamenaných dat .je možné stanovit sekvenci templátu nukleové kyseliny v dané kolonii.
Za účelem vytvoření kolonií· nukleových kyselin při izotermických podmínkách je možné použít metody podle vynálezu. Kolonie nukleových kyselin podle vynálezu se mohou vytvořit z jediného imobilizovaného templátu nukleové kyseliny podle vynálezu. Způsob podle vynálezu umožňuje současnou produkci řady takových kolonií nukleových kyselin, každá z nich potencionálně obsahuje různé imobilizované sekvence.
V tomto dokumentu se popisuje alternativní řešení problému urychlení amplifikace nukleové kyseliny a sekvenování podstatným zjednodušením postupů nezbytných pro . izotermickou amplifikaci nukleových kyselin na pevném podkladu. Vynález může uspokojit řadu rostoucích požadavků vysoko výkonnostních metod, dokonce i v případě, že je možné použití, v případě sekvencí nukleových kyselin omezených délek (až 1 000 baží).
V oblasti studií genomu a v příbuzných studiích (účinky farmakologických činidel na organizaci genomu, zkoumání léků, charakterizace potravin, genotypování, diagnostice, sledování exprese genů, zkoumání profilů genetické diverzit.y, sekvenování celého genomu a zkoumání polymorfizmů) jsou stanovované a porovnávané sekvence nukleových kyselin příbuzné několika stovkám různých fragmentům DNA genomu, rekombinantním fragmentům DNA a retrotranskribovaným fragmentům DNA, kdy každý z nich není delší než 1 000 bází. Metody podle vynálezu je možné zvláště použít při idetnifikaci sekvencí DNA • ♦ ·· ··· · v situacích, kdy velké množství genů nebo mRNA (například 500) z velkého množství jedinců (například 500) se musí sekvenovat současně nebo je nutné současně vyhódnotit velké množství (například milion) polymorfizmů nebo je nutné současně sledovat expresi velkého množství genů (například 100 000).
Různé metody analýzy exprese genu umožňují charakterizaci exprese genů typické v subpopulaci buněk nebo v mikroanatomických strukturách. Tyto vysoce citlivé metody mohou často použít komplementární DNA, která je rozdělena na fragmenty obsahující 10 až 20 párů baží (značky), a řadu baží, které jsou dostatečné pro identifikaci jednořetězcové mRNA tak, že je možné přibližně vypočítat množství mRNA kódující protein nebo porovnat množství v jednotlivých vzorcích tím, že se určí počet značek přítomných vé vzorku, které jsou spojeny s uvedenou mRNA. Tyto segmenty se obvykle tandemově ligují, aby se mohly sekvenovat, jako například v případě SAGE (postupná analýza exprese genů) (popisuje
Velculascu V. E., et al., Trends.. Gent. 2000.
nebo je možné použít jiné systémy, které jsou také založeny na vytvoření značek použitím restrikčních nukleáz typu lis (popisuje se v dokumentu WO 00/53806). Způsoby podle vynálezu umožňují identifikaci a stanovení počtu značek. Po ligaci sekvencí vhodných linkerů do každé značky, aby se umožnila imobilizace a izotermická amplifikace na pevném povrchu, je možné zviditelnit každou kolonii DNA odpovídající dané značce, je jí možné přímo nebo nepřímo sekvenovat a hodnotit za použití softwaru zobrazovací analýzy. Tímto způsobem je možné vypočítat frekvenci každé značky v populaci . cDNA, aniž je nutné ligovat všechny značky do doplňků, které se budou klonovat do plazmidu.
se v publikaci 16(10) : 423-5)
Podobný přístup je možné aplikovat v případě EST nebo genomové DNA za účelem identifikovat haplotypy nebo specifické »4 4444 • · ··
SNP, spojené s onemocněním nebo s jinými fenotypy, protože také v tomto případě, existuje základní požadavek rychle identifikovat sekvenci obsahující tisíce malých segmentů jediné nukleové kyseliny.
Vynález dále popisuje použití metody izotermické amplifikace nukleových kyselin na pevném podkladu pro přípravu molekul nukleových kyselin, které se použijí pro sekvenování nukleových organizace organizaci kyselin genomů, genomů, a při opětném . sekvenování v oblasti účinků farmakologických činidel na zkoumání léků, charakterizace potravin, genotypování, diagnostiky, monitorování exprese genů, profilů genetické diverzity, sekvenování celého genomů a zkoumání polymorfizmu nebo libovolné jiné aplikace amplifikaci nukleových kyselin.
zahrnuj ící
Dále vynález popisuje sadu pro izotermickou amplifikaci nukleových kyselin na pevném podkladu za vzniku molekul nukleových kyselin, který se používají pro sekvenování nukleových kyselin a opětném sekvenování v oblasti- organizace genomů, účinků farmakologických činidel na organizaci genomů, zkoumání léků, charakterizace potravin, genotypování, diagnostiky, monitorování exprese genů, profilů genetické diverzity, sekvenování celého genomů a zkoumání polymorfizmu nebo libovolné jiné aplikace zahrnující amplifikaci nukleových kyselin.
Příklad postupu pro identifikaci a charakterizaci amplifikačních produktů získaných způsoby podle vynálezu a založených na značených nukleotidech by mohly být:
la) vytvoření a zviditelnění amplifikovaných nukleových kyselin na pevném povrchu za použití metod popsaných dříve v textu tohoto patentového dokumentu .a zaznamenávání výsledků,
lb) ošetření amplifikováných nukleových kyselin tak, že se odstraní interkalační barvivo používané pro zviditelnění, lc) transformace, alespoň částečná, amplifikovaných nukleových kyselin na jednořetězcové molekuly, ld) příprava oligonukleotidů v kapalné nebo pevné fázi, kde fáze a/nebo oligonukleotidy' mohou by ty samé, jako se používají při izotermické amplifikaci nebo mohou být odlišné a oligonukleotidy by měly obsahovat sekvenci 3'-konce schopnou hybridizovat se sekvencí přítomnou alespoň v jednom amplifikovaném produktu, le) vytvoření podmínek. pro hybridizaci mezi oligonukleotidy a amplifikovanou .molekulou, lf) získání polymerázy nukleové kyseliny a alespoň jednoho typu značeného nukleotidu ' v kapalné fázi spolu s vhodným pufrem za podmínek, které umožňují elongaci primeru, lg) , detekce amplifikovaných nukleových kyselin, ve kterých jsou začleněné značené nukleotidy, prostřednictvím značení nebo interakce tohoto značení s amplifikovaným produktem a zaznamenání výsledku, lh) odstranění kapalné fáze a opakování kroku lf) a lg) za použití nukleotidu, které mají značení odlišné od značení používaného při předchozí elongaci a zaznamenávání výsledků,.
li) opakování kroku lc) až lf) za použití oligonukleotidů a/nebo značených nukleotidů odlišných od těch používaných při předchozí elongaci a zaznamenávání výsledku.
Shora v textu popsaný způsob je zvláště možné použít pro sekvenování amplifikovaného produktu podle vynálezu postupujícího po jednotlivých bazích, kdy relativní variace výsledků se převádějí na signál a porovnávají se, aby se získal důkaz o začlenění značeného nukleotidu, jak se popisuje v dokumentu WO 00/18957.
Příklad postupu pro identifikaci a charakterizaci produktů amplifikace získaných metodami podle vynálezu a založených na značených oligonukleotidech by mohl být:
2a) vytvoření a zviditelnění amplifikovaných nukleových kyselin na pevném povrchu za použití metod popsaných dříve v textu tohoto patentového dokumentu a zaznamenávání výsledků,
2b) ošetření amplifikovaných nukleových kyselin tak, že se odstraní interkalační barvivo používané pro zviditelnění,
2c) transformace, alespoň částečná, amplifikovaných nukleových kyselin na jednořetězcové molekuly,
2d) příprava oligonukleotidů v kapalné fázi nebo na pevné fázi, kde fáze a/nebo oligonukleotidy mohou by ty samé, jako se používají při izotermické 'amplifikaci nebo mohou být odlišné, a oligonukleotidy by měly obsahovat sekvenci 3'-konce schopnou hybridizovat se sekvencí přítomnou alespoň v jednom amplifikováném produktu,
2e) vytvoření podmínek pro hybridizaci mezi
Ί1 oligonukleotidy a amplifikovanými molekulami,
2f) detekce amplifikovaných nukleových kyselin hybridizaci se značeným oligonukleotidem prostřednictvím uvedeného značení nebo interakce tohoto značení s amplifikovaným produktem a zaznamenání výsledku,
2g) možnost opakování kroků 2c) až 2f) nebo 2e) až 2f) za použití oligonukleotidů obsahujících rozdílnou sekvenci a/nebo odlišné značení a zaznamenávání výsledku.
Příklad postupu identifikace a charakterizace produktů amplifikace získaných metodami podle vynálezu a založeném na restrikčních enzymech by mohl být:
3a) vytvoření a zviditelnění amplifikovaných nukleových kyselin na pevném povrchu za použití metod popsaných dříve v textu tohoto patentového dokumentu a zaznamenávání výsledků,
3b) ošetření amplifikovaných nukleových kyselin tak, že se odstraní interkalační barvivo používané pro zviditelnění,
3c) ošetření amplifikovaných nukleových kyselin roztokem obsahujícím alespoň, jednu restrikční endonukleázu, která potencionálně štěpí molekulu dvouřetězcové nukleové kyseliny přítomné alespoň v jednom produktu amplifikace podle vynálezu a/nebo získané po kroku popsaném v odstavci b) , spolu s vhodným pufrem a za podmínek umožňující takovou enzymatickou aktivitu,
3d) získání uvolněných nukleových kyselin,
3e) opakování kroku 3aj a zaznamenávání výsledku;
porovnání výsledků vizualizace před a po štěpení,
3f) možnost opakování kroků 3b) až 3e) s různými restrikčními endonukleázami a zaznamenávání výsledků.
Přehled obrázků na výkrese
Na obrázku č. 1 je zobrazeno schéma mechanizmu probíhající izotermické amplifikace na pevném povrchu. Písmena a číslice zobrazují působení a složky definované v popisu vynálezu.
Obrázek č. 2 zobrazuje sekvenci plasmidového insertu templátu: TI. Podtrženy jsou sekvence užívané k hybridizaci různých primerů a k amplifikaci specifických templátů testovaných v příkladech. Název primerů a směr extenze je označen v horním řádku.
Obrázek č. 3 zobrazuje kopie digitálně invertovaných zobrazení fluorescenčně barvených izotermicky amplifikovaných nukleových kyselin na pevném podkladu pozorované epif luor.escenčním mikroskopem vybaveným CCD kamerou. Měřítko zobrazení je uvedeno na horní levé straně obrázku.
Obrázek č. 4 zobrazuje graf hustoty DNA kolonií pozorovaných na dně prohlubní po obarvení systémem PicoGreenŤM po izotermické amplifikaci, když se imobilizovaly různé
4« 4« ·· 44*4>
4 4 4 4 4 · • 4 ·· 4 4 4 • ·· 4 4 4 · 4 • · · 4' · 4 · 4
44 44 44 koncentrace templátů. Hodnoty jsou vyneseny v logaritmech. Každý bod znázorňuje průměrnou hodnotu tří pozorování. Směrnice přímky je 1.
Obrázek č. 5 zobrazuje rozptyl celkové fluorescence získaný v případě, že templáty různé délky se amplifikují izotermicky. Stejná jednotka se používá v případě všech křivek.
Obrázek č. 6 zobrazuje porovnání celkové fluorescence získané, když templát T386 se imobilizuje v buňkách nebo v roztoku nebo templát T386 není přítomen v amplifikačním postupu.
Obrázek č. 7 ukazuje digitalizované zobrazení 2% agarózového gelu, do kterého se nanesly amplifikační produkty získané PCR nebo kapalnou izotermickou amplifikaci, přičemž elektroforéza probíhala po dobu 30 minut v elektrickém poli 10 V/cm. Dráha 1, 5, 9, 13 obsahuje 2,5 mikrolitrů markéru molekulových hmotností (Superladder low, žebříček po 100 párech baží, Gensura), přičemž relevantní počet baží je označen na levé straně. Dráha 2, 3 a 4 obsahují 6 mikrolitrů amplifikovaného a izolovaného templátů T90 vytvořeného po PCR s teplotními cykly (dráha 2) nebo při izotermických podmínkách pří teplotě 72 °C (dráha 3) a 78 °C (dráha 4) . Dráha 6, 7 a 8 obsahuje 2,5 mikrolitrů amplifikovaného a čištěného templátů T386 vytvořeného PCR s teplotními cykly (dráha 6) nebo v izotermických podmínkách při teplotě 72 °C (dráha 7) a 78 °C (dráha 8). Dráha 10, 11 a 12 obsahuje 2,5 mikrolitrů amplifikované a izolované negativní kontroly (pouze primery) vytvořené po PCR s teplotními cykly (dráha 10) nebo v izotermických podmínkách při teplotě 72 °C (dráha 11) a 78°C (dráha 12). Gel se barvil systémem SybrGreen™ (Molecular Probes, Eugene OR).
• · · • ·· > · · « » · · « ·· ·· » · · « ·· ··
Na obrázku č. 8 jsou znázorněny průměrné hodnoty' 2 experimentů vykazující množství začleněného 32P-dCTP za použití izotermické amplifikace použitím různých enzymů: přípravek Dynazyme (Dyn), polymeráza Pfu (Pfu), polymeráza Taq (Taq), Vent™ (Vent).
Na obrázku č. 9 je zobrazen výkyv množství fluorescence získané provedením izotermické amplifikace za použití různých teplot (A) nebo procent DMSO (B) za- použití templátů různé délky. Každá křivka se normalizovala ve vztahu k.její nejvyšší hodnotě. ;
Obrázek č. 10 ukazuje .digitalizované zobrazení agarózového gelu, kdy elektroforéza probíhala po dobu 30 minut v elektrickém poli lOV/cm. Do agarózového gelu se nanesly produkty PCR získané použitím různých počátečních materiálů. Dráha 1 a 8 obsahuje žebříček DNA po 100 pb (Superladder low, Gensura) s relevantními počty baží, které jsou uvedeny na levé straně. Počáteční materiál PCR byl 0,1 nanogram T386 (dráha 2) . Do dráhy 3 se nanesl materiál, který není počátečním materiálem. Alikvót prohlubní, kde T386 byl imobilizován, se nanesl do dráhy 4 a 6 nebo nebyl immobilizován se nanesl do dráhy 5 a 7 s předchozí izotermickou amplifikaci (dráha 4 a 5) nebo bez předchozí izotermické amplifikace (dráha 6 a 7). Gel se obarvil použitím . systému SybrGreen™ (Molecular Probes, Eugene OR) . Slabé pruhy na spodní části gelu jsou primery pro amplifikaci PCR.
Příklady provedení vynálezu
Izotermické amplifikace templátové imobilizované na pevném povrchu
DNA
1:
Příklad <«9 • 9 9
9 9 99 • 9 9 9 • · · · • 9 9 9
Metody:
sekvence DNA
Primer Pl (24-mér, SEQ ID NO: 1),. P2 (24-mér, SEQ ID NO: 2) a P3 (40-mér, SEQ ID NO: 3) jsou syntetické oligonukleotidy, které nesou na samém 5-konci skupinu tvořenou šesti atomy uhlíku s aminovou vazbou. Tato chemická skupina se používá k imobilizaci primerů a, templátů na pevném povrchu za účelem aplikovat metody podle vynálezu .
Templáty T3 (SEQ ID NO: 9) a T4 (SEQ ID NO: 10), které jsou 68-méry, mají sekvenci odpovídající primeru Pl na 5'konci a sekvenci komplementární s primerem P2 na 3'-konci, a T90 (90-mér, který má sekvenci odpovídající primeru Pl na 5'konci a sekvenci komplementární s primerem P2 na 3'-konci, SEQ ID NO: 11) jsou syntetické oligonukleotidy' nesoucí skupinu tvořenou šesti atomy uhlíku a aminovou vazbou (T9Ó) nebo 5'fosfátovou skupinu (T3 a T4).
Templáty T155 (155-mér, SEQ ID NO: 12), T203 (203-mér, SEQ ID NO: 13), T386 (386-mér, SEQ ID NO:4) a T605 (605-mér, SEQ ID NO: 15) mají na 5'-konci sekvence odpovídající primeru P3 a na 3'-konci sekvence komplementární s P2. Templáty se zkonstruovaly amplifíkací fragmentů Tl (SEQ I.D NO: 8) a sekvence obsahující 823 párů baží obsažené v plazmidu pBSk (Stratagene), jak je zobrazeno na obrázku č. 2). Přímý primer P3 (40-mér, který vykazuje na svém 5'-konci sekvenci odpovídající primeru Pl a na 3'-konci sekvenci komplementární se sekvencí Tl obsahující 16 nukleotidů, SEQ. ID NO: 3) nese na 5'-konci skupinu s aminovou vazbou. Reverzní primery P155r (SEQ ID NO: 4), P203r (SEQ ID NO: 5), P386r (SEQ ID NO: 6) a P605r (SEQ ID NO: 7) jsou 44-mérní syntetické oligonukleotidy, které na svém 5'-konci mají sekvenci’ odpovídající primeru P2 a sekvenci komplementární s různými sekvencemi Tl obsahující 16
4* ··
4 4 4
4 44 ···· • 4 4 1
44 nukleotidů. Tyto templáty se amplifikovaly za použití 100 mikrolitrů roztoku, který obsahuje 5 jednotek polymerázy Taq (Perkin-Elmer), lx Taq pufr (Perkin-Elmer), dNTP (dATP, dGTP, dCTP, dTTP, od firmy Pharmacia) v koncentraci 200 μΜ, a 5 nanogramů v jednom mikrolitrů plazmidu pBSK, primer P3 v koncentraci 1 mikromol a odpovídající reverzní primer v koncentraci 1 mikromol. Provedlo se dvacet cyklů PCR (probíhají při teplotě 94 °C po dobu 30 sekund, při teplotě 62 °C po dobu 30 sekund a při teplotě 72 °C po dobu 60 sekund) a výsledný produkt se čistil za použití sady QiaQuick (od firmy Qiagen) podle instrukcí výrobce. Roztok používaný k získání izolovaných nukleových kyselin borát sodný v koncentraci 10 mM (hodnota pH je 7,5).
Všechny syntetické oligonukleotidy se získaly od firmy Microsynth (Švýcarsko).
Protokol pro imobilizaci primeru ra templátové nukleové kyseliny na pevném povrchu
Pevný povrch používaný k demonstraci vhodnosti metod podle vynálezu byl reprezentován vnitřním prostorem rovného dna prohlubní připraveného z funkcionalizovaného syntetického materiálu, který se nazývá Nucleolink<tm) (Nunc, Dánsko) . Prohlubně jsou sestaveny na destičky, které svým uspořádáním vyhovují zařízení PCR probíhající na destičkách obsahující 96 prohlubní. Jestliže se prohlubně naplní imobilizačním a amplifikačním roztokem' používaným v příkladech (15 až 20 mikrolitrů), plocha povrchu vystavená působení uvedených roztoků odpovídá přibližně 30 mm2.
Primery a templáty jsou zachycené na destičkách Nucleolink(tm), které se udržovaly na ledu, zatímco nukleové kyseliny se ředily v imobilizačním roztoku, který obsahuje «4 «4 44 44 44 4444 4 4 4 4 4 4 4 44 4
4 444 4 4 44 4 4 4 • 44 444 44 44 4 4 4
44 4 4 4 4 4 4 4 4 4
44 44 44 44 44 imidazol v koncentraci 10 nM a hypochlorid l-etyl-3-(3dimetylaminopropyl)karbodiimidu (EDC) v koncentraci 10 nM, a pak se přidaly do prohlubni. Po té, co se všechny prohlubně naplnily, destičky se inkubovaly po'dobu.10 minut při teplotě 50 °C. Prohlubně se pak dvakrát promyly při teplotě místnosti roztokem, který obsahuje 0., 4 M NaOH a 0,1 % Tween 20 a nakonec třikrát s TNT, což je roztok, který obsahuje 100 mM Tris-HCl (hodnota pH je 7,5), 150 mM NaCl a 0,1 % Tween-20 a pak se provedla izotermická amplifikace.
Protokol pro vizualizaci amplifikovaných nukleových kyselin
Po izotermické amplifikaci se prohlubně třikrát promyly 20 mM Tris-HCl s hodnotou pH 7,5 a pak se kolonie DNA vizualizovaly inkubací prohlubní s PicoGreen(tm) (od firmy Molecular Probes), což je molekula, která vakyzuje fluorescenčníaktivitu v případě, že je navázaná na dvouřetězcovou DNA. V běžném případě se ředí 2 000 krát 20 mM roztokem Tris-HCl (hodnota pH je 7,5). Každá prohlubeň se inkubovala s 50 mikrolitry ředěného PicoGreen(tm) po dobu 10 minut při teplotě místnosti.
Kolonie DNA imobilizované na dně prohlubní se pozorovaly za použití epifluorescenčního mikroskopu (Axiovert 100TV, Zeiss, Německo) vybaveného chlazenou CCD kamerou /Micomax 512x768, Princeton Instruments, Treton, NJ) , která ‘je řízena softwarem Winview. Zobrazení se získalo po expozici po dobu 2 minut a analyzovala se za použití softwaru analySIS (Soft Imaging Systém GmBH, Německo) nebo jiného ekvivalentního softwaru.
Výsledky
Primery PÍ a P2 a templátové nukleové kyseliny T90 a T386 se zachytily na dně prohlubní Nucleolink(tm), jak se popisuje
44 4 4 4
4 ·
4 4 dříve v textu. Aby se stanovilo první rozmezí délky templátu, při kterém je možné aplikovat metody podle vynálezu, templáty, obsahují počet nukleotidů, který je přibližně 0,6 až 2,5 větší než je perzistentní délka.
Prohlubně se naplnily . 20. mikrolitry imobilizačního roztoku, který obsahuje primery Pl a P2 (každý v koncentraci 250 nM) a typ templátu, přičemž koncentrace se liší v případě každé prohlubně, jak je uvedeno v tabulce č. 1:
Tabulka č. 1:
číslo prohlubně název templátu koncentrace templátu (nM)
Al T90 3,1
B1 T90 1
Cl T90 0,3
Dl T90 0,1
El T90 0,03
F1 T90 0,01
G1 · T90 0,003 '
H1 - 0
A2 T38.6 3,1
B2 T386 1
C2 T386 0,3.
D2 T386 0,1
E2 T386 0,03
F2 T386 0,01
G2 T386 0,003 1
H2 - 0
Izotermická amplifikace se provedla inkubací prohlubní po dobu 1 hodiny při teplotě 78 °C s 15 mikrolitry amplifikačního roztoku, který obsahuje 1 jednotku polymerázy Pfu (od firmy Stratagene), 10 % dimetylsulfoxidu (DMSO), 10 mM dNTP (dATP, • · ·· • « · » · · · · • · · · • · · · *· ·« • V w • · · · • · »· ·· t··· • · · • · · · · ' · ·· ·· dGTP, dCTP, dTTP, od firmy Pharmacia), 2 mM MgSO4, 0,1 % Triton X-100 a 0,1 mg/ml BSA. Izotermické irikuísace se uskutečnila za použití standardního přístroje pro PCR s 96 prohlubněmi (MJResearch PTC-200) při konstantní teplotě 78 °C za použití výhřevného příklopu.
Výsledná zobrazení jsou uvedena na obrázku č. 3. Na základě používaného postupu barvení DNA signál způsobuje přítomnost (alespoň částečně) dvouřetězcové DNA amplifikované a imobilizované do kolonií na dně prohlubní Nucleolinkítm). Zobrazení se vytisklo inverzně. Signál slabší nebo roven hodnotě 130 AU (libovolné jednotky, k výpočtu se použil software řídící CCD kameru) se jeví jako bílá barva a signál silnější nebo roven 350 AU se jeví jako černá barva.
Na obrázku č. 3 je zobrazeno, že pokud jsou primery pouze zachyceny (Hl a H2), zobrazení je.úplně bílé, což ukazuje, že nedochází ke spontánní amplifikaci. Zatímco při nej vyšších koncentracích templátu (Al/2, Bl/2) produkty amplifikace pokrývají celý povrch saturující zobrazení. V případě koncentrací obou templátu nižších než nanomoly se. získaly kolonie. DNA v prohlubních Cl/2, Dl/2 a El/2. Počet takových bodů (každý zabírá plochu 1 až 5 čtverečních mikrometrů) roste přibližně lineárně s koncentrací templátu používaného během kroku zachycení. Amplifikace se provedla s templáty, které mají dvě různé · délky a za použití templát/primer během postupu imobilizace.
různých poměrů
Další data získaná kvantitativní analýzou účinnosti izotermické amplifikace, co se týká počtu kolonií DNA, jsou zobrazena na obrázku č. 4. V testovaných experimentálních podmínkách (roztok pro imobilizaci nukleových kyselin imidazol/EDC, prohlubně Nucleolink(tHl), doba inkubace 10 minut při teplotě 50 °C a každý primer v koncentraci 250 mM) se • 4 4*44 • 4 4 · · « 4 · · · • β 444 4 4 44 4 · ·
44 4 4 4 44 44 4 4 ·
6 4«4* 4444 4444
4. 44 4444 ·444 templáty obsahující rozmezí nukleotidů 90 až 386 přidané do imobilizačního roztoku v koncentracích nižších než nM amplifikovaly izotermicky jako kolonie DNA na pevném povrchu, přičemž se získalo několik desítek tisíc kolonií DNA na jeden čtvereční milimetr.
Postup izotermické amplifikace se také aplikoval za použití jiných délek templářů a různých koncentrací primerů. Série osmi prohlubní Nucleolink<tm) se naplnily 20 mikrolitry imobilizačního roztoku, který obsahuje konstantní koncentraci jednoho templátu nižší než je nM v případě sérií A (T155, 0,14 nM), Β (T203, 0,2 nM), C (T386, 0, 08 nM) a D (T606, 0, 04 nM) .
Koncentrace se definovaly na základe křivek získaných v případě každého templátu, jak je zobrazeno na obrázku č. 4 v případě dvou z nich.
Osm prohlubní obsahovalo primery PÍ a P2 .v koncentracích zobrazených v tabulce č. II.
Tabulka č. II
číslo prohlubně PÍ (nM) P2 (nM)
1 250 250
2 75 75
3 55 55
4 37,5 37,5
5 22,5 22,5
6 00 6, 8
7 2,0 2,0
8 0,6 0, 6
Po provedení izotermické amplifikace, jak se popisuje dříve v textu, účinnost způsobů podle vynálezu se měřila fluorescenčním signálem normalizovaným pro délku templátu při různých koncentracích primeru (zobrazeno na obrázku č. 5) ·« ·· «· ·β ·» ···· ··· ······ · • · ··· · · ·· · · · • >· ·»· ·· ··· · · >··· ···· ···· ·« ·· ·· »· ·♦ ··
Normalizace je nezbytná vzhledem k tomu, že delší templáty začleňují více sloučenin barvících DNA, tak, že surový fluorescenční signál po odečtení pozadí se dělil délkou templátu (vyjádřené v kilobazích).
Tyto experimenty ukazují, že množství primerů PÍ a P2, které je nezbytné pro získání detekovatelné síly amplifikacé za použití metod podle vynálezu za imobilizačních a amplifikačních podmínek uvedených dříve v textu, částečně závisí na délce templátu. Zatímco signál je dostatečně silný v případě, že celková koncentrace primerů je nižší než 100 nM v případě menších templátu, které vykazují délku přibližně odpovídající stabilní délce (T90 a T155, respektive 0,6 a 1 násobek perzistentní délky), v případě delších templátu (T386 a T605, respektive 2,5 a 4 násobek perzistentní délky) stále dochází k amplifikaci, ale celková koncentrace primerů je vyšší než 100 nM. Tyto výsledky naznačují, že menší mechanický stres se vyvolá za použití delších imobilizovaných nukleových kyselin, které mohou pravděpodobně vytvořit, alternativní třírozměrné uspořádání absorbující frakci mechanický stres nezbytný při řízení izotermického oddělení řetězce a nahrazení.
Za účelem ověřit, že se amplifikované produkty opravdu získaly vhodnou imobilizací primerů a templátů na pevném povrchu, se provedly následující kontrolní experimenty.
V prvním experimentu se provedla izotermická amplifikacé a vizualizace podle dříve v textu popsaného protokolu, přičemž se imobilizovaly primery (PÍ a P2, koncentrace každého byla 250 mM) nebo se neimobilizovaly primery, a s templátem (T386 v koncentraci 0,08 nM) , který je buď imobilizovaný nebo je volný v roztoku. Jak je zobrazeno 'na obrázku č. 6, celková fluorescence je velmi slabá, v případě, že templát je buď
v roztoku nebo není přítomen nebo dokonce, jestliže se imobilizuje velké množství primeru. Takový signál je pravděpodobně způsoben mezni samoamplifikací. Je zřejmé, že pouze imobilizace obou primerů a templátu umožňuje izotermickou amplifikaci dvouřetězcové DNA ve formě kolonií DNA.
Ve druhém kontrolním experimentu se použily stejné nukleové kyseliny jako v předešlých experimentech v kapalné fázi za použití podmínek PCR nebo se aplikovaly stejné izotermické podmínky na pevném povrchu.
Amplifikační roztok používaný pro amplifikační experimenty obsahoval 0,05 jednotek na jeden mikrolitr polymerázy Pfu (Stratagene) , 80 μΜ dNTP (dATP, dGTP, dCTP, dTTP, od firmy
Pharmacia), 200 mM Tris-HCl (hodnota pH je 8,8), 10 mM KC1, 10 mM (NH4)2SO4 , 2 mM MgSO4, 0,1 % Triton X-100, 0,1 mg/ml BSA, 1 μΜ primer Pl a 1 μΜ primer P2 s templátem nebo bez templátu (0,13 nM T386, 0,33 nM T90) . Amplif ikační roztok se rozdělil do tří alikvotů, . každý se podrobil různým amplifikačním podmínkám: 20 cyklů při PCR s teplotními cykly (teplota 94 °C, po dobu 30 sekund, teplota 60 °C pó dobu 40 sekund, teplota 72 °C po dobu 60 sekund), 1 hodina .při teplotě 72 °C nebo 1 hodina při teplotě 78 °C. Produkty amplifikace se čistily na kolonách Qiaquick (od firmy Qiagen) a nanesly se na 2% agarózový gel.
Jak je zobrazeno na obrázku, - č. 7, při izotermických podmínkách se nezískal žádný produkt amplifikace, dokonce i když primery mohli amplifikovat stejný templát v roztoku za podmínek teplotních cyklů.
Měřením začlenění radioaktivního nukleotidu se testovala účinnost různých běžných polymeráz DNA při použití v metodách
45:
podle vynálezu. Izotermická amplifikace se provedla za použití primerů PÍ a P2 (každý v koncentraci 250 nM) v případě, že se velmi krátké templáty (68-mér) T3 a T4 přidaly ve velkém nadbytku a nebo se vůbec nepřidaly (koncentrace každého templátů je 5 nM). Izotermická amplifikace se provedla při teplotě 80 °C po dobu 90 minut za použití 20 μΐ amplifikačního roztoku, který obsahuje 0,5 jednotek polymerázy DNA, 5 % DMSO, 80 μΜ dNTP (dATP, dGTP, dCTP, dTTP od firmy Pharmacia), 200 mM Tris-HCl (pH 8,8), 10 mM KC1, 10 mM (NH4)2SO4, 2 mM MgSO4, 0,1 % Triton X-100, 0,1 mg/ml BSA a 0,128 μΜ a32P-dCTP. Používanou
DNA polymerázou je Dynazyrne(tm) (od firmy Finzyme, Finsko) , polymeráza Pfu (od firmy Promega), Taq polymráza (od firmy Perkin Elmer) a polymeráza Vent(tm) (New England Biolabs) .
Po izotermické amplifikaci se pětkrát promyly 20 mM Tris-HCl (pH scintilačního roztoku (Ultima gold, začleněných značených nukleotidů se Beckmanově scintilačním počítači.
prohlubně Nucleolink<tm) 7,5) a umístily se do
Packard), a množství stanovil počítáním na
Jak je zobrazeno na obrázku č. 8, všechny testované polymerázy umožňují izoteřmickou amplifikaci způsoby podle vynálezu, ale s odlišnými výtěžky a s různou hodnotou amplif ikačního pozadí. Polymerázy Pfu a Vent(tm) mají nejvýhodnější poměr specifického a nespecifického signálu.
Testovaly se další podmínky pro izoteřmickou amplfikaci podle vynálezu s ohledem na teplotu a koncentraci DMSO, přičemž se porovnávaly výsledky získané použitím templátů různé délky.
Každý templát (T155 v koncentraci 0,14 nM , T203 v koncentraci 0,2 nM, -T386 v koncentraci 0,08 nM a T606 v koncentraci 0,04 nM) se imobilizoval v odlišných sériích ·· ·· .... . · • · · ... · · ·
5$··:: ::./-./ prohlubní Nucleolink(tm> spolu s primery. PÍ a P2, kdy každý je v koncentraci 250 nM. Izotermická amplifikace se provedla buď použitím 10 % DMSO, ale za použití přístroje PCR, který tvoří v sérii prohlubní teplotní gradient, nebo při teplotě 78 °C v přítomnosti různých množství DMSO.
Po izotermické amplifikaci, promytí a vizualizaci se měřila celková fluorescence kolonií DNA pomocí softwaru pro zobrazovací analýzu, který kvantifikuje intenzitu bodů přítomných na zobrazení. Jak je, zobrazeno na obrázcích 9A a 9B, množství amplifikovaného produktu může vysoce záviset na aplikovaných podmínkách amplifikace. Izotermická amplfikace je částečně účinná v případě všech teplot, mezi 77 a 81 °C a v rozsahu koncentrací DMSO 8 až 14 %.
Příklad 2: Analýza amplifikované nukleové kyseliny
Po té, co se izotermický získaly kolonie DNA, provedly se některé experimenty, které hodnotí některé rysy amplifikovaných nukleových kyselin.
Průměrné, množství řetězců nukleových kyselin přítomné v každém bodě se. odhadlo na základě použití barvené DNA a radioaktivně značených nukleotidů, za použití polymerázy Pfu a podmínek imobilizace, amplifikace, vizualizace a počítání impulzů užívané v experimentu reprezentovaném na obrázku č. 8.
Templát T386 se přidal do sérií prohlubní v různých koncentracích (1 nM, 0,31 nM) : nebo nebyl přítomen. Počet signálů se přenesl na počet molekul v' kolonii DNA, přičemž se uvažuje povrch prohlubně pokrytý objemem amplifikačního roztoku (přibližně 27; 56 mm2, když se použije objem 15 mikrolitrů a prohlubeň má průměr '4 mm), velikost každého analyzovaného zobrazení (přibližně 0,8 mm2), stejně jako • 4 4
specifická aktivita značení. Výsledky’ jsou uvedeny v tabulce č. III.
Tabulka č. III
prohlubně obsahující T386 (lnM) Prohlubně obsahující T386 (1 nM) č. T386
počet 8304 8536 6754 8615 6427 . 4867 3687 . 4787 4988 2902 3693 4072 843
počet kolon 3846 3831 . 3149. 3788 2844 2349 1808 2087 2408 1218 1638 1935 0
prům. počet řetě. v kol onii 3007 3103 2987 3167 3147 2885 2840 3194 2885 3318 3140 2931 bez
3 049 ± 109 3 051 ± 193
Tento experiment ukazuje, že metody podle vynálezu umožňují izotermickou amplifikací jediné molekuly templátů za vzniku až několik tisíc řetězců imobilizovaných v diskrétní oblasti. Zatímco počet kolonií jasně závisí na koncentraci templátů, účinnost metody podle vynálezu měřená jako počet amplifikovaných řetězců v kolonii DNA závisí na koncentraci templátů (to znamená na rozmezí uvedené v nM).
Bylo také možné získat produkty izotermické amplifikace z povrchu. Imobilizační protokol popsaný shora v textu se aplikoval v případě čtyř prohlubní, kdy ve všech prohlubních se použily primery PÍ a P2 a ve dvou z nich templát T386. Pouze dvě prohlubně, kdy jedna obsahuje imobilizovaný templát T386 a jedna neobsahuje templát, se podrobily izotermické amplifikací podle·protokolu, který se aplikuje shora v textu. Všechny prohlubně se pak naplnily 60 mikrolitry roztoku PCR za použití 5 jednotek polymerázy Pfu (Stratagene), 10 % DMSO, 100 μΜ dNTP (dATP, dGTP, dCTP, dTTP od firmy Pharmaci-a)..., 200 mM. Tris-HCl (pH 8,8), 10 mM KC1 , 10 mM (NH4)2SO4, 2mM MgSO4, 0,1 % Triton X-100, 0,1 mg/ml BSA a primery P3 a P386 (každý má koncentraci 1 μΜ) . V prohlubních se provedl jeden cyklus PCR (při teplotě 94 °C po dobu 30 sekund, při teplotě 60 °C po ···· dobu 30 sekund, při teplotě- 72 °C po' dobu 60 sekund) a pak se 30 mikrolitrů PCR roztoku přeneslo do zkumavky PCR. Jako kontrola slouží zkumavky PCR naplněné 30 mikrolitry stejného roztoku PCR, do kterého se přidalo 0,1 ng templářů Ť386. Pak se uskutečnilo 10 cyklů PCR (teplota 94 °C po dobu 30 sekund, teplota 60 °C po dobu 30 sekund, teplota 72 °C po dobu 60 sekund) a na 2% agarózový gel se nanesly 4 μΐ každého vzorku. Výsledky jsou uvedeny na obrázku, č. 10.- Izotermícky amplifikovaný produkt poskytuje produkt PCR srovnatelný s produktem PCR získaným za podmínek, když je v roztoku přítomen templát T386, zatímco produkt je sotva viditelný, v případě, že je DNA zachycena vé zkumavce, ve které neprobíhá izotermická amplifikace. Kontroly ukazují, že během izotermické,amplifikace ani během amplifikace PCR nedochází ke vzniku diméru primerů ani jiným artefaktům.
···· • ·· · ::.. ·
3». : ·:
Seznam sekvencí (2) Informace o SEQ ID NO: 1:
(i) CHARAKTERISTIKA SEKVENCE:
(A) DÉLKA: 24 párů baží (B) TYP: nukleová kyselina (C) DRUH ŘETĚZCE: jednořetězcová (D) TOPOLOGIE: lineární (ii) DRUH MOLEKULY: DNA (A) (ix) ZNAKY:
(D) Jiné informace:
/poznámka=syntetická konstrukce (xi) Popis sekvence: SEQ ID NO: 1:
zGaccaaccca; aaccaaccca aacc ......24
Informace o SEQ ID NO: 2:
(i) CHARAKTERISTIKA SEKVENCE:
(A) DÉLKA: 24 párů baží
(B) TYP: nukleová kyselina
(C) DRUH ŘETĚZCE: jednořetě
(D) TOPOLOGIE: lineární
(ii) DRUH MOLEKULY: DNA
(ix) ZNAKY:
(D) Jiné informace:
/poznámka=syntetická konstrukce (xi) Popis sekvence: SEQ ID NO: 2:
.aaggaaaggg aaggdáaagg aagg
V-.V 24 (2) Informace o SEQ ID NO: 3:
·· ···· « · • · • · • · · ·· ·· (i) CHARAKTERISTIKA SEKVENCE:
(A) DÉLKA: 40 párů baží (B) TYP: nukleová kyselina (C) DRUH ŘETĚZCE: jednořetězcová (D) TOPOLOGIE: lineární (ii) DRUH MOLEKULY:.DNA (ix) ZNAKY:
(D) Jiné informace:
/poznámka=syntetická konstrukce (xi) Popis sekvence: SEQ ID NO: 3:
caccaaccca aaccaaccca' aaccggctca cgcctataat (2) Informace o SEQ ID NO: 4:
(i) CHARAKTERISTIKA SEKVENCE:
(A) DÉLKA: 44 párů baží
(B) TYP: nukleová kyselina
(C) DRUH ŘETĚZCE: jednořetězcová
(D) TOPOLOGIE: lineární
(ii) DRUH MOLEKULY: DNA
(ix) ZNAKY:
(D) Jiné informace: /poznámka=syntetická konstrukce
(xi) Popis sekvence: SEQ ID NO: 4:
gagga 44 aaggg a .agggaaagg aaggatccgc ctcccaggta
Informace o SEQ ID NO: 5:
(i) CHARAKTERISTIKA SEKVENCE:
(A) DÉLKA: 44 párů baží
(B) TYP: nukleová kyselina
(C) DRUH ŘETĚZCE: jednořetězcová
(D) TOPOLOGIE: lineární
(ii) DRUH MOLEKULY: DNA
3?*”** » τ?γ
9 · • 9 999 : 55: :
·· (ix) ZNAKY:
(D). Jiné informace:
/poznámka=syntetická konstrukce (xi) Popis sekvence: SEQ ID NO: 5:
gaggaaaggg aagggaaagg aaggatccgc ctcctgggtt caag . 44 (2) Informace o SEQ ID NO: 6:
(iii) CHARAKTERISTIKA SEKVENCE:
(A) DÉLKA: 44 párů baží
(B) TYP: nukleová kyselina
(C) DRUH ŘETĚZCE: jednořet
(D) TOPOLOGIE: lineární
(iii) DRUH MOLEKULY: DNA
(ix) ZNAKY:
(D) Jiné informace:
/poznámka=syntetická konstrukce (xi) Popis sekvence: SEQ ID NO: 6:
gagaaaaggg s«J99aaagg· aaggatccga tctgcctggt tctg (2) Informace o SEQ ID. NO: 7:
(i) CHARAKTERISTIKA SEKVENCE:
(A) DÉLKA: 44 párů baží (B) TYP: nukleová kyselina (C) DRUH ŘETĚZCE: jednořetěžcová (D) TOPOLOGIE: lineární (i i) DRUH MOLEKULY: DNA (ix) ZNAKY:
(D) Jiné informace:
/poznámka=syntetická konstrukce (xi) Popis sekvence: SEQ ID NO: 7:
gaggaaagag aagggaaagg aaggatccgt gagcgcaacg caat 44 ·· ···· : ? ···.
...... :
•ř.9·./ ·. »· (2) Informace o SEQ. ID NO: 8:
(i) CHARAKTERISTIKA SEKVENCE:
(A) DÉLKA: 823 párů baží (B) TYP: nukleová kyselina (C) DRUH ŘETĚZCE: jednořetězcová (D) TOPOLOGIE: lineární (II) DRUH MOLEKULY: DNA (ix) ZNAKY:
(D) Jiné informace:
/poznámka=syntetická konstrukce (xi) Popis sekvence: SEQ ID NO:.8:
gggccccccc tcgagaagcc gtgctgtcag catcagcatc. atcggtgaga 60 agccctacag accctgggac tagggtgcag gscagcacag gctctaattt 120 tctggcctta tccctaacag ccaccccacc tctccctcca tgcacccaca 180 ccctacccca cccaaattct gccaagagag cagccaagcc tctcccttct 240 cctctcccca cctgccccat cccaagcctc tccctctgag aacactccat agtcgagcat aacccaggag acaaaagtga ctaaataacc agaaccaggc gttcccttta tgtgaaattg aagcctgggg ctaaaaaaag gaacagacgg ctgggcgcgg tggctcacgc ctgtaatccc 300 gcatctggtg atgcgagctc gactctgggg aaaacactgg gttttcccag 360 tctacctggg aggccagcta cttgagággc tgaggcagga gaattgcťtg 420 gcatagattg tgatgagcca agatcgcaccattgcatgcc agcctcggca 480 aactccatct caaaaaaaaa agaaagggaa agactccact ggggctccca 540 ctctctcaac ccgaagtctt cctttctgac: tggatccaac tttgtcttcc 600 agatccacta gttctagagc ggccgccacc gcggtggagc tccagctttt 660 gtgagggtta attccgagct tggcgtaatc atggtcatag ctgtttcctg 720 ttatccgctc acaattccac acaacatacg agccggaagc ataaagtgta 780 tgcctaatga gtgagctaac tcacattaat tgcgttgcgc tca 823 (2) Informace o SEQ ID ŇÓ: 9:
(i) CHARAKTERISTIKA SEKVENCE:
(A) DÉLKA: 68 párů baží
(B) TYP: nukleová kyselina
(C) DRUH ŘETĚZCE: jednořetězcová
(D) TOPOLOGIE: lineární
(ii) DRUH MOLEKULY: DNA
(ix) ZNAKY:
(D) Jiné informace:
/poznámka=syntetická konstrukce (xi) Popis sekvence: SEQ ID NO: 9:
caccaaccca aaccaaccca aaccatgccg atgacctgca gaagccttcc tttcccttcc 60 ctttcctc '
(2) Informace o SEQ ID NO: 10:
(i) CHARAKTERISTIKA SEKVENCE:
(A) DÉLKA:. 68 párů baží
(B) TYP: nukleová kyselina
(C) DRUH ŘETĚZCE: jednořetě
(D) TOPOLOGIE: lineární
(ii) DRUH MOLEKULY: DNA
(ix) ZNAKY:
(D) Jiné informace:
/poznámka=syntetická konstrukce (xi) Popis sekvence: SEQ ‘ID NO: 10:
caccaaccca aaccaaccca aac.cgtáctg caccaggcgg ccgcccttcc tttcccttcc . · 60 ctttcctc (2) Informace o SEQ ID NO: 11:
(i) CHARAKTERISTIKA SEKVENCE:
(A) DÉLKA: 90 párů bázi (B) TYP: nukleová kyselina (C) DRUH ŘETĚZCE: jednořetězcová (D) TOPOLOGIE: lineární (ii) DRUH MOLEKULY: DNA (ix) ZNAKY:
(D) Jiné informace:
/poznámka=syntetická konstrukce (xi) Popis sekvence: SEQ.ID NO: 11:
caccaaccca aaccaaccca aacccctggg gaggčatgcc gatgacctgc agaagccatg 60 ggatggcctt cctttccctt ccctttcctc 90 (2) Informace o SEQ ID NO: 12:
(i) CHARAKTERISTIKA SEKVENCE:
(A) DÉLKA: 155 párů baží
(B) TYP: nukleová kyselina
(C) DRUH ŘETĚZCE: jednořetězcová
(D) TOPOLOGIE: lineární
(ii) DRUH MOLEKULY: DNA
ix) ZNAKY:
(D) Jiné informace:
/poznámka=syntetická konstrukce (xi) Popis sekvence: SEQ ID NO: 12:
caccaaccca aaccaaccca aaccggctca cgcctgtaat cccaacactc. catgcatctg60 gtgatgcgag ctcgactctg gggaaaacac tgggttttcc cagagtcgag cattctacct 120 · gggaggcgga tccttccttt cccttccctt. tcctc 155 · ·.
:ss: : ·: · ·· · ·· ··
13:
SEKVENCE:
Dárů baží (2) Informace o SEQ ID NO:
(i) CHARAKTERISTIKA (A) DÉLKA: 203 (B) TYP: nukleová kyselina (C) DRUH ŘETĚZCE: jednořetězcové (D) TOPOLOGIE: lineární (ii) DRUH MOLEKULY: DNA (ix) ZNAKY:
(D) Jiné informace:
/poznámka=syntetická konstrukce (xi) Popis sekvence: SEQ ID NO: 13:
caccaaccca 60 aaccaaccca aaccggctca cgcctgtaat cccaacactc catacgtctg
gtgatgcgag 120· ctcgactctg gggaaaacac tgggttttcc cagagtcgag cattctacct
gggaggccag 180 ctacttgaga ggctgaggca ggagaattgc ttgaacccag gaggcggatc
cttcctttcc cttccctttc ctc
203 (2) Informace o SEQ ID NO: 14:
(i) CHARAKTERISTIKA SEKVENCE:
(A) DÉLKA: 386 párů baží (B) TYP: nukleová kyselina (C) DRUH ŘETĚZCE: jednořetězcové (D) TOPOLOGIE: lineární (ii) DRUH MOLEKULY: DNA (ix) ZNAKY:
(D) Jiné informace:
/poznámka=syntetická konstrukce (xi) Popis sekvence: SEQ ID NO: 14:
·· ·· '60
caccaaccca 60 aaccaaccca aaccggctca cgcctgtaat cccaacactc catgcatctg ) i 1
gtgatgcgag 120 ctcgactctg gggaaaacac tgggttttcc cagagtcgag cattctacct !
gggaggccag 180 ctacttgaga ggctgaggca ggagaattgc ttgaacccag gaggcataga 1
ttgtgatgag 240 ccaagatcgc accattgcat gccagcctcg gcaacaaaag tgaaactcca
tctcaaaaaa 300 aaaagaaagg gaaagactcc actggggctc ccactaaata accctctctc
aacccgaagt 360 cttcctttct gactggatcc aactttgtct tccagaacca ggcagatcgg
atccttcctt tcccttccct ttcctc
386 (2) Informace o SEQ ID NO: 15:
(i) CHARAKTERISTIKA SEKVENCE:
(A) DÉLKA: 605 párů)bázi
(B) TYP: nukleová kyselina
(C) DRUH ŘETĚZCE: jednořetězcová
(D) TOPOLOGIE: lineární •í
(ii) DRUH MOLEKULY: DN
(ix) ZNAKY:
(D) Jiné informace:
/poznámka=syntetická konstrukce (xi) Popis sekvence: SEQ “ID NO: 15:
.·%.·* .··..··· •.rt*··· ···’ ·· ·· ···· * * • · !
« 9 · »· ** caccaaccca aaccaaccca aaccggctca cgcctgtaat cccaacactc catacgtctg 60 gtgatgcgag ctcgactctg gggaaaacac tgggttttcc cagagtcgag cattctacct 120 gggaggccag ctacttgaga ggctgaggca ggagaattgc ttgaacccag gaggcataga
180 ttgtgatgag ccaagatcgc accattgcat gccagcctcg gcaacaaaag tgaaactcca 240 tctcaaaaaa aaaagaaagg gaaagactcc actggggctc ccactaaata accctctctc 300 aacccgaagt cttcctttct gactggatcc aactttgtct tccagaacca ggcagatcca 360 ctagttctag agcggccgcc accgcggtgg agčtccagct tttgttccct ttagtgaggg 420 ttaattccga gcttggcgta atcatggtca tagctgtttč ctgtgtgaaa ttgttatccg '480 ctcacaattc cacacaacat acgagccgga agcataaagt gtaaagcctg gggtgcctaa 540 tgagtgagct aactcacatt aattgcgttg cgctcacgga tccttccttt cccttccctt 600 tcctc
605 • · ' • ··· • · « • · · ·“>
·<· ·'« «· ·· ♦e·· « · • · • · • · · ·· ··

Claims (2)

1. Způsob pro izotermickou amplifikaci alespoň jednoho segmentu nukleové kyseliny obsahující až 1 000 nukleotidů, vyznačující se tím, že zahrnuje: .
a) vytvoření alespoň jednoho templátu nukleové kyseliny obsahující nukleovou kyselinu(y), která se bude amplifikovat, přičemž uvedená nukleová kyselina(y) obsahuje na 5'konci oligonukleotidovou sekvenci Y a na 3'konci oligonukleotidovou' sekvenci Z a navíc nukleová kyselina(y). : nese na 5'-konci prostředek pro její imobilizaci na pevný podklad,
b) vytvoření jednoho nebo více primerů kolonií X, které mohou hybridizovat s oligonukleotidovou sekvencí Z a nesou na 5'-konci prostředek imobilizující . uvedené primery kolonií ha pevný podklad,
c) smíchání - uvedeného templátu(ů) nukleové kyseliny a primerů kolonií spolu s roztokem, který umožňuje jejich imobilizaci 5'-koncem na pevný podklad v přítomnosti uvedeného pevného podkladu tak, že 5'-konce templátu(ů) nukleových kyselin a primerů kolinií jsou vázány na uvedený pevný podklad,
d) aplikace amplífikačního roztoku, který obsahuje alespoň polymerázu nukleové kyseliny a nukleotidové prekurzory, na uvedený pevný podklad za účelem vytvořit a imobilizovat izotermicky nukleové kyseliny, které vykazují sekvenci shodnou nebo komplementární se sekvencí imobilizovaného.'templátu (ů) nukleové kyseliny.
2. Způsob podle nároku 1, vyznačující se tím, ž e dva různé primery kolonií X' ‘a X'' se smíchají s templátem(y) nukleové kyseliny a kolonií X' a X' ' jsou takové, že sekvence Z může hybridizovat s jedním X'a oligonukleotidové sekvence Y je z primerů kolonií X' ' .
sekvence primerů oligonukleotidové z primerů kolonií stejná jako jeden
Způsob podle nároku 1, vyznač ž e oligonukleotidové sekvence s oligonukleotídovou sekvencí Y vykazuje stejnou sekvenci jako sekvence Y.
ující se tím, Z je komplementární a primer kolonií X je oligonukleotidové
Způsob podle nároku 1, vyznačující se tím, ž e jeden' nebo více primerů· kolonií X může obsahovat degenerovanou sekvenci primeru a templát(y) nukleových kyselin obsahuje nukleovou(é) kyselinu(y), které se budou amplifikovat, a neobsahuje na 5'-konci a 3'-konci oligonukleotidové sekvence Y respektive Z.
Způsob podle nároku 1 až 4, vyznačující se tím, že uvedeným templátem nukleové kyseliny je genomová DNA, komplementární DNA, rekombinantní DNA nebo libovolná forma syntetické nebo upravené DNA, RNA, mRNA nebo libovolná forma syntetické nebo .upravené RNA.
Způsob, podle nároku 5, vyznačující se tím, ž e templát nukleové kyseliny obsahuje 68 až 605 bází.
Způsob podle nároku 6, vyznačující se tím, ž e templát(y) nukleové kyseliny v imobilizačním roztoku se vyskytuje v koncentraci 1 až 0,01 nM.
Způsob podle libovolného ’ z nároků 1 až 7, vyznačující se tím, že primery kolonií • · • · v imobilizačním roztoku se vyskytuje v koncentraci 1 000 až 50 nM.
9. Způsob podle libovolného z nároků 1' až 8, vyznačující se tím, že uvedená polymeráza nukleové kyseliny je DNA polymeráza závislá na DNA nebo DNA polymeráza závislá na RNA.
10. Způsob podle nároku 5, v y z n a č u j í c i se tím, ž e uvedená polymeráza „nukleové kyseliny je DNA polymeráza, která je aktivní v teplotním rozmezí 70 až 85°C.
11. Způsob podle nároku 6, vyznačující se tím, ž e amplifikacé se uskutečnila při teplotě 77 až 81 °C.
Způsob podle vyznačuj nukleotidů jsou libovolného z nároků 1 ící setím, že deoxyribonukleotidtrifosfáty.
až 11, prekurzory
13. Způsob podle libovolného z nároků 1 až 12, vyznačující se tím, že prostředky imobiliz.ující 5.-konce templátu (ů) nukleových kyselin a primery kolonií jsou chemicky upravitelné funkční skupiny, které umožňují tvorbu kovalentní vazby mezi uvedenými molekulami a pevným podkladem.
14. Způsob podle, nároku 13, vyznačující se tím, ž e templáty nukleové kyseliny a primery jsou upraveny na 5-konci thiolem,. fosfátovou skupinou nebo aminoskupinou a jsou imobilizovány použitím imobilizačního roztoku, který obsahuje hydrochlorid ' l-etyl-3-(3-dimetylaminopropyl)karbodiimidu (EDC).
00 ····
15. Způsob podle nároku 13, vyznačující se tím, ž e pevný podklad umožňuje kovaiéntní navázání nukleové kyseliny prostřednictvím funkcionalizace za použití monofunkčních nebo bifunkčních činidel tvořících příčné vazby.
16. Způsob podle libovolného z nároků 1 až 12, vyznačující se tím, že prostředky imobilizující 5'-konce templátu(ů) nukleových kyselin a primerů kolonií jsou chemické skupiny vázající se na molekuly imobilizované na pevném podkladu na základě afinity.
17. Způsob v y z n roztok podle a č u j i obsahuje 6 libovolného z nároků c i setím, ž až 14 % DMSO. 1 e až amplifik 16, ační 18. Způsob podle libovolného z nároků 1 17, v y z n a č u j i cí setím, že je vhodný pro
izotermickou přípravu kolonií DNA na pevném podkladu.
19. Způsob podle nároku 18, vyznačující se tím, ž e hustota vytvořených kolonií nukleových kyselin je 1 000 až 100 000 na každém čtverečním milimetru.
20. Způsob podle libovolného z nároků 18 nebo 19, vyznačující se tím, že obsahuje další krok, který zviditelňuje amplifikované nukleové kyseliny.
21. Způsob podle nároku 20, vyznačující se tím, ž e se používá interkalační činidlo pro dvouřetězcovou DNA, značený nukleotid(y) nebo značený oligonukleotid(y).
22. Způsob podle libovolného z nároků 18 až 21, vyznačující se t í ní; že zahrnuje další krok uvolnění jednoho nebo více imobilizovaných řetězců nukleových kyselin patřících do jedné nebo více kolonií nukleových kyselin chemickým, optickým, fyzikálním nebo enzymatickým způsobem.
23. Způsob podle libovolného z nároků 18 až 22, vyznačující se tím, že zahrnuje další krok provedení alespoň jednoho kroku determinace sekvence jedné nebo více kolonií nukleových kyselin.
24. Způsob podle nároku 23, vyznačující se tím, ž e determinace sekvencí se' provedla začleněním značeného nukleotidu(ů).
25. Způsob podle nároku 24, vyznačující se tím, ž e značený nukleotid(y) jsou začleněny využitím primerů kolonií.
26. Způsob podle nároku 25, vyznačující se tím, ž e značený nukleotid(y) je začleněn využitím primerů jiných než jsou primery' kolonií, které hybridizuj! s jednou nebo více amplifikovaných nukleových kyselin.
27. Způsob podle nároku 23, vyznačující se tím, ž e determinace, sekvence následuje po hybridizaci se značeným oligonukleotidem(y) jednoho nebo obou řetězců nukleových kyselin, které patří do jedné nebo více kolonií nukleových. kyselin.
28. Způsob podle libovolného z nároků 23 až 27, vyznačující se tím, radioaktivní nebo fluorescenční skupina.
ž e značkou je
29. Způsob podle nároku 23, vyznačující se tím, ž e determinace sekvence následuje po uvolnění jednoho nebo obou řetězců nukleových kyselin podle nároku 22.
30. Způsob podle nároku 22, vyznačující se tím, že se stanovily celé nebo částečné sekvence amplifikovaných templátů nukleových kyselin přítomných v koloniích, které obsahují alespoň jednu nukleovou kyselinu.
31. Způsob podle libovolného z nároků 19 až 29, vyznačující se tím, že další krok(y) se provádějí současně s jednou nebo více kolonií nukleových kyselin.
32. Použití způsobu podle libovolného z nároků 1 až 31 při přípravě molekul nukleových kyselin, které se budou používat při sekvenování nukleových kyselin a resekvenování v oblasti organizace molekul genomové DNA a fyzikálního mapování, vliv farmaceutických prostředků na organizaci - molekul genomové DNA, objevení léků, charakterizaci potravin, genotypování, diagnostiky, sledování exprese genů, analýzy genové diverzity, sekvenování celého genomu a zkoumání polymorfizmů nebo při libovolných jiných aplikacích, které zahrnují amplifikaci nukleových kyselin.
33. Sada, vyznačující se tím, že se používá při izotermické amplifikaci nukleových kyselin a zahrnuje způsob podle, libovolného z nároků 1 až 31 pro přípravu molekul nukleových kyselin, které se budou používat pro sekvenování nukleových kyselin' a re-sekvenování v oblasti organizace molekul genomové DNA a fyzikální mapování, eJX·-·; A- y- -J
9 9 . *· 9 9 . 9 · 9 9 9 999 • · · · · 9' >' 9 9 9 .· •9999,9999 99 9
9 99 9 9 9 99 999 9 9
9 99 9 9 99 9 9 99 9 vlivu farmaceutických prostředků na organizace molekul genomové DNA, objevení léků, čhárakterizace potravin, genotypování, diagnostiky, sledování exprese genů, analýzy genové diverzity, sekvenování celého genomu a zkoumání polymorfizmů nebo při libovolných jiných aplikacích, které zahrnují amplifikací nukleových kyselin.
CZ20031582A 2000-12-08 2001-12-07 Izotermická amplifikace nukleových kyselin na pevném povrchu CZ20031582A3 (cs)

Applications Claiming Priority (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
EP00127011 2000-12-08

Publications (1)

Publication Number Publication Date
CZ20031582A3 true CZ20031582A3 (cs) 2003-10-15

Family

ID=8170618

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
CZ20031582A CZ20031582A3 (cs) 2000-12-08 2001-12-07 Izotermická amplifikace nukleových kyselin na pevném povrchu

Country Status (21)

Country Link
US (2) US7790418B2 (cs)
EP (1) EP1339877A1 (cs)
JP (1) JP2004524012A (cs)
KR (1) KR20030055343A (cs)
CN (1) CN1489632A (cs)
AR (1) AR031640A1 (cs)
AU (1) AU2002219161A1 (cs)
BG (1) BG107861A (cs)
BR (1) BR0116033A (cs)
CA (1) CA2430369A1 (cs)
CZ (1) CZ20031582A3 (cs)
EA (1) EA200300647A1 (cs)
EE (1) EE200300256A (cs)
HU (1) HUP0302803A2 (cs)
IL (1) IL156311A0 (cs)
MX (1) MXPA03005078A (cs)
NO (1) NO20032455L (cs)
PL (1) PL363742A1 (cs)
SK (1) SK6952003A3 (cs)
WO (1) WO2002046456A1 (cs)
ZA (1) ZA200304102B (cs)

Families Citing this family (372)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
EP2327797B1 (en) 1997-04-01 2015-11-25 Illumina Cambridge Limited Method of nucleic acid sequencing
US7846733B2 (en) * 2000-06-26 2010-12-07 Nugen Technologies, Inc. Methods and compositions for transcription-based nucleic acid amplification
JP2004513617A (ja) * 2000-06-26 2004-05-13 ニューゲン テクノロジーズ, インコーポレイテッド 転写に基づく核酸増幅のための方法および組成物
AR031640A1 (es) * 2000-12-08 2003-09-24 Applied Research Systems Amplificacion isotermica de acidos nucleicos en un soporte solido
AU2002228974A1 (en) 2000-12-13 2002-06-24 Nugen Technologies, Inc Methods and compositions for generation of multiple copies of nucleic acid sequences and methods of detection thereof
US6946251B2 (en) 2001-03-09 2005-09-20 Nugen Technologies, Inc. Methods and compositions for amplification of RNA sequences using RNA-DNA composite primers
ATE397095T1 (de) 2001-04-20 2008-06-15 Penn State Res Found Verfahren zur manipulation von nukleinsäuren
WO2004092418A2 (en) * 2003-04-14 2004-10-28 Nugen Technologies, Inc. Global amplification using a randomly primed composite primer
US7220549B2 (en) * 2004-12-30 2007-05-22 Helicos Biosciences Corporation Stabilizing a nucleic acid for nucleic acid sequencing
JP2006234712A (ja) * 2005-02-28 2006-09-07 Sumitomo Bakelite Co Ltd Dnaの固定化方法
JP2006230335A (ja) * 2005-02-28 2006-09-07 Sumitomo Bakelite Co Ltd 遺伝子の検出方法
JP2008538496A (ja) * 2005-04-12 2008-10-30 454 ライフ サイエンシーズ コーポレイション ウルトラディープ配列決定を用いて配列変異体を決定するための方法
US20060228721A1 (en) 2005-04-12 2006-10-12 Leamon John H Methods for determining sequence variants using ultra-deep sequencing
EP3257949A1 (en) 2005-06-15 2017-12-20 Complete Genomics Inc. Nucleic acid analysis by random mixtures of non-overlapping fragments
GB0514935D0 (en) 2005-07-20 2005-08-24 Solexa Ltd Methods for sequencing a polynucleotide template
GB0514910D0 (en) 2005-07-20 2005-08-24 Solexa Ltd Method for sequencing a polynucleotide template
US9424392B2 (en) 2005-11-26 2016-08-23 Natera, Inc. System and method for cleaning noisy genetic data from target individuals using genetic data from genetically related individuals
US11111543B2 (en) 2005-07-29 2021-09-07 Natera, Inc. System and method for cleaning noisy genetic data and determining chromosome copy number
US11111544B2 (en) 2005-07-29 2021-09-07 Natera, Inc. System and method for cleaning noisy genetic data and determining chromosome copy number
EP1929046B1 (en) * 2005-09-07 2012-07-11 Nugen Technologies, Inc. Improved nucleic acid amplification procedure
GB0524069D0 (en) 2005-11-25 2006-01-04 Solexa Ltd Preparation of templates for solid phase amplification
US8192930B2 (en) 2006-02-08 2012-06-05 Illumina Cambridge Limited Method for sequencing a polynucleotide template
EP2021503A1 (en) * 2006-03-17 2009-02-11 Solexa Ltd. Isothermal methods for creating clonal single molecule arrays
CA2648149A1 (en) 2006-03-31 2007-11-01 Solexa, Inc. Systems and devices for sequence by synthesis analysis
WO2008002502A2 (en) 2006-06-23 2008-01-03 Illumina, Inc. Devices and systems for creation of dna cluster arrays
US7501254B2 (en) 2006-07-20 2009-03-10 Ghc Technologies, Inc. Methods and compositions for amplification and capture of nucleic acid sequences
ATE538216T1 (de) * 2006-07-31 2012-01-15 Wanli Bi Nukleinsäureverstärkung mithilfe eines reversibel modifizierten oligonukleotids
US20080081330A1 (en) * 2006-09-28 2008-04-03 Helicos Biosciences Corporation Method and devices for analyzing small RNA molecules
US7754429B2 (en) * 2006-10-06 2010-07-13 Illumina Cambridge Limited Method for pair-wise sequencing a plurity of target polynucleotides
JP2010521156A (ja) 2007-03-16 2010-06-24 454 ライフ サイエンシーズ コーポレイション Hiv薬物耐性バリアントの検出のためのシステムおよび方法
WO2008157640A2 (en) 2007-06-18 2008-12-24 Illumina, Inc. Microfabrication methods for the optimal patterning of substrates
US9689031B2 (en) 2007-07-14 2017-06-27 Ionian Technologies, Inc. Nicking and extension amplification reaction for the exponential amplification of nucleic acids
JP5020734B2 (ja) * 2007-07-31 2012-09-05 株式会社日立ハイテクノロジーズ 核酸解析方法及び装置
EP2191011B1 (en) * 2007-08-29 2017-03-29 Illumina Cambridge Limited Method for sequencing a polynucleotide template
ITBO20070627A1 (it) * 2007-09-14 2009-03-15 Twof Inc Metodo per la preparazione di dna microarray con sonde ad alta densita' lineare
JP2009178159A (ja) 2007-11-05 2009-08-13 Hitachi Plant Technologies Ltd 核酸配列の検出方法及び核酸配列検出基板
US20090203531A1 (en) * 2008-02-12 2009-08-13 Nurith Kurn Method for Archiving and Clonal Expansion
EP2247727A4 (en) * 2008-02-12 2011-08-03 Nugen Technologies Inc PROCESS FOR ARCHIVING AND CLONING EXPANSION
US12060554B2 (en) 2008-03-10 2024-08-13 Illumina, Inc. Method for selecting and amplifying polynucleotides
WO2011025477A1 (en) 2009-08-25 2011-03-03 Illumina, Inc. Methods for selecting and amplifying polynucleotides
WO2009117698A2 (en) * 2008-03-21 2009-09-24 Nugen Technologies, Inc. Methods of rna amplification in the presence of dna
US20100036110A1 (en) * 2008-08-08 2010-02-11 Xiaoliang Sunney Xie Methods and compositions for continuous single-molecule nucleic acid sequencing by synthesis with fluorogenic nucleotides
US20100227327A1 (en) * 2008-08-08 2010-09-09 Xiaoliang Sunney Xie Methods and compositions for continuous single-molecule nucleic acid sequencing by synthesis with fluorogenic nucleotides
US8383345B2 (en) 2008-09-12 2013-02-26 University Of Washington Sequence tag directed subassembly of short sequencing reads into long sequencing reads
US8728764B2 (en) 2008-10-02 2014-05-20 Illumina Cambridge Limited Nucleic acid sample enrichment for sequencing applications
US8486865B2 (en) 2008-11-03 2013-07-16 The Regents Of The University Of California Methods for detecting modification resistant nucleic acids
EP2379748A4 (en) 2008-12-23 2012-08-29 Illumina Inc MULTIBASE RELEASE FOR LONG READINGS IN SEQUENCING BY SYNTHESIS PROTOCOLS
US20120156728A1 (en) 2010-12-17 2012-06-21 Life Technologies Corporation Clonal amplification of nucleic acid on solid surface with template walking
US9309566B2 (en) 2010-12-17 2016-04-12 Life Technologies Corporation Methods, compositions, systems, apparatuses and kits for nucleic acid amplification
US9334531B2 (en) 2010-12-17 2016-05-10 Life Technologies Corporation Nucleic acid amplification
US9309557B2 (en) * 2010-12-17 2016-04-12 Life Technologies Corporation Nucleic acid amplification
US8182994B2 (en) 2009-09-15 2012-05-22 Illumina Cambridge Limited Centroid markers for image analysis of high denisty clusters in complex polynucleotide sequencing
WO2011038241A1 (en) * 2009-09-25 2011-03-31 President And Fellows Of Harvard College Nucleic acid amplification and sequencing by synthesis with fluorogenic nucleotides
WO2011053845A2 (en) 2009-10-30 2011-05-05 Illumina, Inc. Microvessels, microparticles, and methods of manufacturing and using the same
CN202281746U (zh) 2010-03-06 2012-06-20 伊鲁米那股份有限公司 检测来自样品光信号的测定设备及其光学组件和光学系统
DK2556171T3 (en) 2010-04-05 2015-12-14 Prognosys Biosciences Inc Spatially CODED BIOLOGICAL ASSAYS
US10787701B2 (en) 2010-04-05 2020-09-29 Prognosys Biosciences, Inc. Spatially encoded biological assays
US20190300945A1 (en) 2010-04-05 2019-10-03 Prognosys Biosciences, Inc. Spatially Encoded Biological Assays
US11322224B2 (en) 2010-05-18 2022-05-03 Natera, Inc. Methods for non-invasive prenatal ploidy calling
US10316362B2 (en) 2010-05-18 2019-06-11 Natera, Inc. Methods for simultaneous amplification of target loci
US12152275B2 (en) 2010-05-18 2024-11-26 Natera, Inc. Methods for non-invasive prenatal ploidy calling
US9677118B2 (en) 2014-04-21 2017-06-13 Natera, Inc. Methods for simultaneous amplification of target loci
US11332785B2 (en) 2010-05-18 2022-05-17 Natera, Inc. Methods for non-invasive prenatal ploidy calling
US11939634B2 (en) 2010-05-18 2024-03-26 Natera, Inc. Methods for simultaneous amplification of target loci
US11408031B2 (en) 2010-05-18 2022-08-09 Natera, Inc. Methods for non-invasive prenatal paternity testing
US12545960B2 (en) 2010-05-18 2026-02-10 Natera, Inc. Methods for simultaneous amplification of target loci
US10179937B2 (en) 2014-04-21 2019-01-15 Natera, Inc. Detecting mutations and ploidy in chromosomal segments
US12221653B2 (en) 2010-05-18 2025-02-11 Natera, Inc. Methods for simultaneous amplification of target loci
AU2011255641A1 (en) 2010-05-18 2012-12-06 Natera, Inc. Methods for non-invasive prenatal ploidy calling
US11339429B2 (en) 2010-05-18 2022-05-24 Natera, Inc. Methods for non-invasive prenatal ploidy calling
US11332793B2 (en) 2010-05-18 2022-05-17 Natera, Inc. Methods for simultaneous amplification of target loci
US11326208B2 (en) 2010-05-18 2022-05-10 Natera, Inc. Methods for nested PCR amplification of cell-free DNA
US20190010543A1 (en) 2010-05-18 2019-01-10 Natera, Inc. Methods for simultaneous amplification of target loci
WO2011159942A1 (en) 2010-06-18 2011-12-22 Illumina, Inc. Conformational probes and methods for sequencing nucleic acids
US9029103B2 (en) 2010-08-27 2015-05-12 Illumina Cambridge Limited Methods for sequencing polynucleotides
EP2632593B1 (en) 2010-10-27 2021-09-29 Illumina, Inc. Flow cells for biological or chemical analysis
EP3388532B1 (en) 2010-11-01 2021-03-10 Gen-Probe Incorporated Integrated capture and amplification of target nucleic acid for sequencing
US8575071B2 (en) 2010-11-03 2013-11-05 Illumina, Inc. Reducing adapter dimer formation
US9074251B2 (en) 2011-02-10 2015-07-07 Illumina, Inc. Linking sequence reads using paired code tags
EP2643484A4 (en) 2010-11-22 2014-04-16 Univ California METHOD OF IDENTIFYING AN RNA TRANSCRIPTION OF CELLULAR ORIGIN
CA2821906C (en) 2010-12-22 2020-08-25 Natera, Inc. Methods for non-invasive prenatal paternity testing
US8951781B2 (en) 2011-01-10 2015-02-10 Illumina, Inc. Systems, methods, and apparatuses to image a sample for biological or chemical analysis
JP6017458B2 (ja) 2011-02-02 2016-11-02 ユニヴァーシティ・オブ・ワシントン・スルー・イッツ・センター・フォー・コマーシャリゼーション 大量並列連続性マッピング
CA2824387C (en) 2011-02-09 2019-09-24 Natera, Inc. Methods for non-invasive prenatal ploidy calling
GB201106254D0 (en) 2011-04-13 2011-05-25 Frisen Jonas Method and product
US8778848B2 (en) 2011-06-09 2014-07-15 Illumina, Inc. Patterned flow-cells useful for nucleic acid analysis
AU2012281152B2 (en) 2011-07-13 2017-09-07 The Multiple Myeloma Research Foundation, Inc. Methods for data collection and distribution
CA3104322C (en) 2011-09-23 2023-06-13 Illumina, Inc. Methods and compositions for nucleic acid sequencing
WO2013049135A1 (en) 2011-09-26 2013-04-04 Gen-Probe Incorporated Algorithms for sequence determinations
CN102559864B (zh) * 2011-09-29 2014-04-16 东南大学 可进行单分子核酸扩增的颗粒、其制备方法及应用
EP3305400A3 (en) 2011-10-28 2018-06-06 Illumina, Inc. Microarray fabrication system and method
WO2013096460A1 (en) 2011-12-20 2013-06-27 The Regents Of The University Of Michigan Pseudogenes and uses thereof
WO2013117595A2 (en) 2012-02-07 2013-08-15 Illumina Cambridge Limited Targeted enrichment and amplification of nucleic acids on a support
WO2013124738A2 (en) 2012-02-21 2013-08-29 Oslo Universitetssykehus Hf Methods and biomarkers for detection and prognosis of cervical cancer
US20150111758A1 (en) 2012-03-06 2015-04-23 Oslo Universitetssykehus Hf Gene signatures associated with efficacy of postmastectomy radiotherapy in breast cancer
NO2694769T3 (cs) 2012-03-06 2018-03-03
US20130261984A1 (en) 2012-03-30 2013-10-03 Illumina, Inc. Methods and systems for determining fetal chromosomal abnormalities
CN204832037U (zh) 2012-04-03 2015-12-02 伊鲁米那股份有限公司 检测设备
US20130274148A1 (en) 2012-04-11 2013-10-17 Illumina, Inc. Portable genetic detection and analysis system and method
US9012022B2 (en) 2012-06-08 2015-04-21 Illumina, Inc. Polymer coatings
US8895249B2 (en) 2012-06-15 2014-11-25 Illumina, Inc. Kinetic exclusion amplification of nucleic acid libraries
EP2870264A4 (en) 2012-07-03 2016-03-02 Sloan Kettering Inst Cancer QUANTITATIVE ASSESSMENT OF THE RECOVERY OF HUMAN T-CELL REPERTOIR AFTER TRANSPLANTATION OF ALLOGENIC BLOOD-GENERATING STEM CELLS
US9977861B2 (en) 2012-07-18 2018-05-22 Illumina Cambridge Limited Methods and systems for determining haplotypes and phasing of haplotypes
NL2017959B1 (en) 2016-12-08 2018-06-19 Illumina Inc Cartridge assembly
US20140100126A1 (en) 2012-08-17 2014-04-10 Natera, Inc. Method for Non-Invasive Prenatal Testing Using Parental Mosaicism Data
CA3040684C (en) 2012-08-20 2023-02-07 Hod Finkelstein Method and system for fluorescence lifetime based sequencing
WO2014060483A1 (en) 2012-10-17 2014-04-24 Spatial Transcriptomics Ab Methods and product for optimising localised or spatial detection of gene expression in a tissue sample
US9683230B2 (en) 2013-01-09 2017-06-20 Illumina Cambridge Limited Sample preparation on a solid support
US9512422B2 (en) 2013-02-26 2016-12-06 Illumina, Inc. Gel patterned surfaces
DK3553175T3 (da) 2013-03-13 2021-08-23 Illumina Inc Fremgangsmåde til fremstilling af et nukleinsyresekvenseringsbibliotek
WO2014142841A1 (en) 2013-03-13 2014-09-18 Illumina, Inc. Multilayer fluidic devices and methods for their fabrication
EP2971171A4 (en) 2013-03-14 2016-11-02 Abbott Molecular Inc SYSTEMS AND METHODS FOR MULTIPLEX AMPLIFICATION SPECIFIC TO METHYLATION
EP2971175B1 (en) 2013-03-14 2019-04-17 Abbott Molecular Inc. Minimizing errors using uracil-dna-n-glycosylase
CA2905410A1 (en) 2013-03-15 2014-09-25 Abbott Molecular Inc. Systems and methods for detection of genomic copy number changes
US9255265B2 (en) 2013-03-15 2016-02-09 Illumina, Inc. Methods for producing stranded cDNA libraries
ES2716094T3 (es) 2013-03-15 2019-06-10 Ibis Biosciences Inc Métodos para analizar la contaminación en la secuenciación del ADN
EP2971071B1 (en) 2013-03-15 2018-02-28 Illumina, Inc. Enzyme-linked nucleotides
US9868979B2 (en) 2013-06-25 2018-01-16 Prognosys Biosciences, Inc. Spatially encoded biological assays using a microfluidic device
MX363806B (es) 2013-07-01 2019-04-03 Illumina Inc Funcionalización de superficies sin catalizador e injerto de polímeros..
EP3241913B1 (en) 2013-07-03 2019-02-20 Illumina, Inc. System for sequencing by orthogonal synthesis
KR102043320B1 (ko) 2013-08-08 2019-11-11 일루미나, 인코포레이티드 플로우 셀로의 시약 전달을 위한 유체 시스템
US20160199832A1 (en) 2013-08-30 2016-07-14 Advanced Liquid Logic France Sas Manipulation of droplets on hydrophilic or variegated-hydrophilic surfaces
US10415083B2 (en) 2013-10-28 2019-09-17 The Translational Genomics Research Institute Long insert-based whole genome sequencing
CA2931533C (en) 2013-12-09 2023-08-08 Illumina, Inc. Methods and compositions for targeted nucleic acid sequencing
NZ720871A (en) 2013-12-10 2020-03-27 Illumina Inc Biosensors for biological or chemical analysis and methods of manufacturing the same
US10353633B2 (en) * 2013-12-19 2019-07-16 Sony Interactive Entertainment LLC Mass storage virtualization for cloud computing
EP3084523B1 (en) 2013-12-19 2019-07-03 Illumina, Inc. Substrates comprising nano-patterning surfaces and methods of preparing thereof
CN106414765A (zh) 2013-12-20 2017-02-15 Illumina公司 在片段化的基因组dna样品中保留基因组连接信息
WO2015103225A1 (en) 2013-12-31 2015-07-09 Illumina, Inc. Addressable flow cell using patterned electrodes
AU2015209103B2 (en) 2014-01-27 2021-07-01 Archerdx, Llc Isothermal methods and related compositions for preparing nucleic acids
US12492429B2 (en) 2014-04-21 2025-12-09 Natera, Inc. Detecting mutations and ploidy in chromosomal segments
EP3143161B1 (en) 2014-05-16 2021-04-21 Illumina, Inc. Nucleic acid synthesis techniques
AU2015267189B2 (en) 2014-05-27 2019-12-05 Illumina, Inc. Systems and methods for biochemical analysis including a base instrument and a removable cartridge
EP3669985B1 (en) 2014-06-05 2022-02-02 Illumina, Inc. Systems including a rotary valve for at least one of sample preparation or sample analysis
US20180173846A1 (en) 2014-06-05 2018-06-21 Natera, Inc. Systems and Methods for Detection of Aneuploidy
CN106715693A (zh) 2014-06-13 2017-05-24 伊卢米纳剑桥有限公司 用于制备序列文库的方法和组合物
ES2713153T3 (es) 2014-06-30 2019-05-20 Illumina Inc Métodos y composiciones que utilizan la transposición unilateral
WO2016026924A1 (en) 2014-08-21 2016-02-25 Illumina Cambridge Limited Reversible surface functionalization
WO2016040602A1 (en) 2014-09-11 2016-03-17 Epicentre Technologies Corporation Reduced representation bisulfite sequencing using uracil n-glycosylase (ung) and endonuclease iv
AU2015318017B2 (en) 2014-09-18 2022-02-03 Illumina, Inc. Methods and systems for analyzing nucleic acid sequencing data
BR112017005038B1 (pt) 2014-10-09 2022-01-25 Illumina, Inc Método e dispositivo para separar líquidos imiscíveis para isolar efetivamente pelo menos um dos líquidos
AU2015331739B2 (en) 2014-10-17 2021-12-02 Illumina Cambridge Limited Contiguity preserving transposition
CN107074904B (zh) 2014-10-23 2022-12-23 深圳华大智造科技股份有限公司 信号约束测序(scs)和用于信号约束测序的核苷酸类似物
SI3212684T1 (sl) 2014-10-31 2020-04-30 Illumina Cambridge Limited Polimeri in DNK kopolimer premazi
EP3218482A4 (en) 2014-11-11 2018-05-09 Abbott Molecular Inc. Hybridization probes and methods
CN107810404B (zh) 2015-03-24 2020-11-10 伊鲁米那股份有限公司 用于对样品成像用于生物或化学分析的方法、载体组件和系统
EP4282977B1 (en) 2015-04-10 2024-06-05 10x Genomics Sweden AB Spatially distinguished, multiplex nucleic acid analysis of biological specimens
US11220705B2 (en) 2015-04-24 2022-01-11 Qiagen Gmbh Method for immobilizing a nucleic acid molecule on solid support
WO2016170182A1 (en) 2015-04-24 2016-10-27 Qiagen Gmbh Method for immobilizing a nucleic acid molecule on a solid support
DK3294906T3 (en) 2015-05-11 2024-08-05 Natera Inc Methods for determining ploidy
EP4190912A1 (en) 2015-05-11 2023-06-07 Illumina, Inc. Platform for discovery and analysis of therapeutic agents
EP3302804B1 (en) 2015-05-29 2022-07-13 Illumina, Inc. Sample carrier and assay system for conducting designated reactions
CN107849600A (zh) 2015-06-09 2018-03-27 生命技术公司 用于分子标记的方法、系统、组合物、试剂盒、装置和计算机可读媒体
WO2017007753A1 (en) 2015-07-07 2017-01-12 Illumina, Inc. Selective surface patterning via nanoimrinting
US20180207920A1 (en) 2015-07-17 2018-07-26 Illumina, Inc. Polymer sheets for sequencing applications
WO2017019278A1 (en) 2015-07-30 2017-02-02 Illumina, Inc. Orthogonal deblocking of nucleotides
US10976334B2 (en) 2015-08-24 2021-04-13 Illumina, Inc. In-line pressure accumulator and flow-control system for biological or chemical assays
US10906044B2 (en) 2015-09-02 2021-02-02 Illumina Cambridge Limited Methods of improving droplet operations in fluidic systems with a filler fluid including a surface regenerative silane
EP3359669B1 (en) 2015-10-06 2020-05-13 Pierce Biotechnology, Inc. Devices and methods for producing proteins
WO2017087724A1 (en) 2015-11-17 2017-05-26 Omniome, Inc. Methods for determining sequence profiles
WO2017123533A1 (en) 2016-01-11 2017-07-20 Illumina, Inc. Detection apparatus having a microfluorometer, a fluidic system, and a flow cell latch clamp module
EP3377226B1 (en) 2016-03-28 2021-02-17 Illumina, Inc. Multi-plane microarrays
WO2017181202A2 (en) 2016-04-15 2017-10-19 Natera, Inc. Methods for lung cancer detection
PT109359A (pt) 2016-05-03 2017-11-03 Univ Aveiro Dispositivo portátil, método para leitura de etiquetas de autenticação e seus usos.
SG11201809376WA (en) 2016-05-18 2018-12-28 Illumina Inc Self assembled patterning using patterned hydrophobic surfaces
ES2873723T3 (es) 2016-07-22 2021-11-03 Univ Oregon Health & Science Colecciones de genoma completo de células individuales y métodos de indexación combinatoria para prepararlas
WO2018053362A1 (en) 2016-09-15 2018-03-22 ArcherDX, Inc. Methods of nucleic acid sample preparation
WO2018053365A1 (en) 2016-09-15 2018-03-22 ArcherDX, Inc. Methods of nucleic acid sample preparation for analysis of cell-free dna
WO2018064116A1 (en) 2016-09-28 2018-04-05 Illumina, Inc. Methods and systems for data compression
WO2018067517A1 (en) 2016-10-04 2018-04-12 Natera, Inc. Methods for characterizing copy number variation using proximity-litigation sequencing
MY194951A (en) 2016-10-14 2022-12-28 Illumina Inc Cartridge assembly
GB201618485D0 (en) 2016-11-02 2016-12-14 Ucl Business Plc Method of detecting tumour recurrence
CN116606726A (zh) 2016-11-03 2023-08-18 深圳华大智造科技股份有限公司 用于生物或化学分析的生物传感器及其制造方法
AU2017360993A1 (en) 2016-11-16 2019-06-13 Illumina, Inc. Validation methods and systems for sequence variant calls
US10011870B2 (en) 2016-12-07 2018-07-03 Natera, Inc. Compositions and methods for identifying nucleic acid molecules
GB201704754D0 (en) 2017-01-05 2017-05-10 Illumina Inc Kinetic exclusion amplification of nucleic acid libraries
AU2018210944B2 (en) 2017-01-20 2021-07-22 Pacific Biosciences Of California, Inc. Process for cognate nucleotide detection in a nucleic acid sequencing workflow
CA3063364A1 (en) 2017-01-26 2018-08-02 Qiagen Gmbh Method for enriching template nucleic acids
WO2018152162A1 (en) 2017-02-15 2018-08-23 Omniome, Inc. Distinguishing sequences by detecting polymerase dissociation
KR102657576B1 (ko) 2017-03-20 2024-04-12 엠쥐아이 테크 컴퍼니 엘티디. 생물학적 또는 화학적 분석을 위한 바이오센서 및 그 제조 방법
US10737267B2 (en) 2017-04-04 2020-08-11 Omniome, Inc. Fluidic apparatus and methods useful for chemical and biological reactions
US10934584B2 (en) 2017-04-23 2021-03-02 Illumina, Inc. Compositions and methods for improving sample identification in indexed nucleic acid libraries
SG11201909918XA (en) 2017-04-23 2019-11-28 Illumina Cambridge Ltd Compositions and methods for improving sample identification in indexed nucleic acid libraries
CN110785492B (zh) 2017-04-23 2024-04-30 伊鲁米纳剑桥有限公司 用于改进编索引的核酸文库中的样品鉴定的组合物和方法
US10161003B2 (en) 2017-04-25 2018-12-25 Omniome, Inc. Methods and apparatus that increase sequencing-by-binding efficiency
WO2018213803A1 (en) 2017-05-19 2018-11-22 Neon Therapeutics, Inc. Immunogenic neoantigen identification
DK3981884T3 (da) 2017-06-07 2023-09-04 Univ Oregon Health & Science Enkeltcelle-helgenombiblioteker til methyleringssekventering
EP3662482A1 (en) 2017-07-31 2020-06-10 Illumina Inc. Sequencing system with multiplexed biological sample aggregation
WO2019035897A1 (en) 2017-08-15 2019-02-21 Omniome, Inc. SCANNING APPARATUS AND METHODS USEFUL FOR DETECTION OF CHEMICAL OR BIOLOGICAL ANALYTES
EP3476938B1 (en) * 2017-09-14 2020-05-13 Zhongke Xinray (Suzhou) Biological Science Technologies Co., Ltd. Method and kit for synthesizing nucleic acid under constant temperature conditions
CN118045644A (zh) 2017-09-19 2024-05-17 深圳华大智造科技股份有限公司 晶片级测序流通池制造
CA3066775A1 (en) 2017-10-16 2019-04-25 Illumina, Inc. Deep learning-based techniques for training deep convolutional neural networks
US11488009B2 (en) 2017-10-16 2022-11-01 Illumina, Inc. Deep learning-based splice site classification
AU2018353136B2 (en) 2017-10-19 2022-05-19 Pacific Biosciences Of California, Inc. Simultaneous background reduction and complex stabilization in binding assay workflows
CA3036161C (en) 2017-11-13 2023-03-28 The Multiple Myeloma Research Foundation, Inc. Integrated, molecular, omics, immunotherapy, metabolic, epigenetic, and clinical database
CA3085933A1 (en) 2017-12-14 2019-06-20 Tai Diagnostics, Inc. Assessing graft suitability for transplantation
CN110832305A (zh) 2018-01-08 2020-02-21 因美纳有限公司 利用基于半导体的检测的高通量测序系统和设备
US11378544B2 (en) 2018-01-08 2022-07-05 Illumina, Inc. High-throughput sequencing with semiconductor-based detection
WO2019140402A1 (en) 2018-01-15 2019-07-18 Illumina, Inc. Deep learning-based variant classifier
KR20200024167A (ko) 2018-03-22 2020-03-06 일루미나, 인코포레이티드 Rna 및 dna로부터의 핵산 라이브러리의 제조
AU2019248635B2 (en) 2018-04-02 2022-01-27 Illumina, Inc. Compositions and methods for making controls for sequence-based genetic testing
CA3095292A1 (en) 2018-04-02 2019-10-10 Progenity, Inc. Methods, systems, and compositions for counting nucleic acid molecules
NL2020861B1 (en) 2018-04-12 2019-10-22 Illumina Inc Variant classifier based on deep neural networks
WO2019200338A1 (en) 2018-04-12 2019-10-17 Illumina, Inc. Variant classifier based on deep neural networks
EP3781714B1 (en) 2018-04-14 2026-01-07 Natera, Inc. Methods for cancer detection and monitoring by means of personalized detection of circulating tumor dna
AU2019255987A1 (en) 2018-04-19 2020-12-10 Pacific Biosciences Of California, Inc. Improving accuracy of base calls in nucleic acid sequencing methods
WO2019209426A1 (en) 2018-04-26 2019-10-31 Omniome, Inc. Methods and compositions for stabilizing nucleic acid-nucleotide-polymerase complexes
CN119955902A (zh) 2018-05-17 2025-05-09 伊鲁米纳公司 具有减少的扩增偏倚的高通量单细胞测序
WO2019231568A1 (en) 2018-05-31 2019-12-05 Omniome, Inc. Increased signal to noise in nucleic acid sequencing
SG11202000905PA (en) 2018-06-04 2020-02-27 Illumina Inc High-throughput single-cell transcriptome libraries and methods of making and of using
KR102088262B1 (ko) 2018-06-21 2020-03-12 재단법인 대구경북첨단의료산업진흥재단 금 나노쉘 상에 형성되는 헤어핀을 이용한 유전자 돌연변이의 단일 단계 등온 검출방법
US12234509B2 (en) 2018-07-03 2025-02-25 Natera, Inc. Methods for detection of donor-derived cell-free DNA
US12073922B2 (en) 2018-07-11 2024-08-27 Illumina, Inc. Deep learning-based framework for identifying sequence patterns that cause sequence-specific errors (SSEs)
WO2020018824A1 (en) 2018-07-19 2020-01-23 Ultima Genomics, Inc. Nucleic acid clonal amplification and sequencing methods, systems, and kits
WO2020023362A1 (en) 2018-07-24 2020-01-30 Omniome, Inc. Serial formation of ternary complex species
US11519033B2 (en) 2018-08-28 2022-12-06 10X Genomics, Inc. Method for transposase-mediated spatial tagging and analyzing genomic DNA in a biological sample
CN113767175B (zh) 2018-08-28 2025-07-25 10X基因组学股份有限公司 增加空间阵列分辨率
NZ759665A (en) 2018-10-15 2022-07-01 Illumina Inc Deep learning-based techniques for pre-training deep convolutional neural networks
US20240011086A1 (en) 2018-11-15 2024-01-11 Omniome, Inc. Electronic detection of nucleic acid structure
TWI853851B (zh) 2018-11-15 2024-09-01 中國商深圳華大智造科技有限公司 微流體裝置與其製備方法
CN118853850A (zh) 2018-12-01 2024-10-29 深圳华大智造科技股份有限公司 改善生物传感器光收集效率的方法和结构
WO2020117653A1 (en) 2018-12-04 2020-06-11 Omniome, Inc. Mixed-phase fluids for nucleic acid sequencing and other analytical assays
SG11202012762WA (en) 2018-12-05 2021-01-28 Illumina Cambridge Ltd Methods and compositions for cluster generation by bridge amplification
WO2020123311A2 (en) 2018-12-10 2020-06-18 10X Genomics, Inc. Resolving spatial arrays using deconvolution
CN112639126A (zh) 2018-12-14 2021-04-09 伊卢米纳剑桥有限公司 降低测序期间用未标记的核苷酸的定相
CN112654714B (zh) 2018-12-17 2024-10-11 伊卢米纳剑桥有限公司 用于测序的引物寡核苷酸
ES3032918T3 (en) 2018-12-17 2025-07-28 Illumina Cambridge Ltd Method of polynucleotide sequencing
KR102872035B1 (ko) 2018-12-18 2025-10-16 일루미나 케임브리지 리미티드 단일 표면 프라이머를 사용하는 페어드 엔드 서열분석을 위한 방법 및 조성물
WO2020132103A1 (en) 2018-12-19 2020-06-25 Illumina, Inc. Methods for improving polynucleotide cluster clonality priority
CN113227348B (zh) 2018-12-20 2025-05-27 加利福尼亚太平洋生物科学股份有限公司 用于分析核酸和其他分析物的温度控制
US11649485B2 (en) 2019-01-06 2023-05-16 10X Genomics, Inc. Generating capture probes for spatial analysis
US11926867B2 (en) 2019-01-06 2024-03-12 10X Genomics, Inc. Generating capture probes for spatial analysis
WO2020167574A1 (en) 2019-02-14 2020-08-20 Omniome, Inc. Mitigating adverse impacts of detection systems on nucleic acids and other biological analytes
US11680950B2 (en) 2019-02-20 2023-06-20 Pacific Biosciences Of California, Inc. Scanning apparatus and methods for detecting chemical and biological analytes
WO2020180778A1 (en) 2019-03-01 2020-09-10 Illumina, Inc. High-throughput single-nuclei and single-cell libraries and methods of making and of using
WO2020191387A1 (en) 2019-03-21 2020-09-24 Illumina, Inc. Artificial intelligence-based base calling
NL2023316B1 (en) 2019-03-21 2020-09-28 Illumina Inc Artificial intelligence-based sequencing
US11210554B2 (en) 2019-03-21 2021-12-28 Illumina, Inc. Artificial intelligence-based generation of sequencing metadata
US11347965B2 (en) 2019-03-21 2022-05-31 Illumina, Inc. Training data generation for artificial intelligence-based sequencing
EP3947718A4 (en) 2019-04-02 2022-12-21 Enumera Molecular, Inc. METHODS, SYSTEMS AND COMPOSITIONS FOR COUNTING NUCLEIC ACID MOLECULES
GB201905303D0 (en) 2019-04-15 2019-05-29 Thermo Fisher Scient Geneart Gmbh Multiplex assembly of nucleic acid molecules
US11593649B2 (en) 2019-05-16 2023-02-28 Illumina, Inc. Base calling using convolutions
CA3104851A1 (en) 2019-05-16 2020-11-19 Illumina, Inc. Base calling using convolutions
US11423306B2 (en) 2019-05-16 2022-08-23 Illumina, Inc. Systems and devices for characterization and performance analysis of pixel-based sequencing
WO2020243579A1 (en) 2019-05-30 2020-12-03 10X Genomics, Inc. Methods of detecting spatial heterogeneity of a biological sample
US12305235B2 (en) 2019-06-06 2025-05-20 Natera, Inc. Methods for detecting immune cell DNA and monitoring immune system
WO2020252186A1 (en) 2019-06-11 2020-12-17 Omniome, Inc. Calibrated focus sensing
US11377655B2 (en) 2019-07-16 2022-07-05 Pacific Biosciences Of California, Inc. Synthetic nucleic acids having non-natural structures
US10656368B1 (en) 2019-07-24 2020-05-19 Omniome, Inc. Method and system for biological imaging using a wide field objective lens
US11180520B2 (en) 2019-09-10 2021-11-23 Omniome, Inc. Reversible modifications of nucleotides
MX2021015885A (es) * 2019-09-20 2022-03-22 Illumina Inc Métodos y composiciones para identificar ligandos en arreglos usando índices y códigos de barra.
CN118186063A (zh) 2019-10-18 2024-06-14 加利福尼亚太平洋生物科学股份有限公司 用于对核酸加帽的方法和组合物
EP4025711A2 (en) 2019-11-08 2022-07-13 10X Genomics, Inc. Enhancing specificity of analyte binding
EP4055185A1 (en) 2019-11-08 2022-09-14 10X Genomics, Inc. Spatially-tagged analyte capture agents for analyte multiplexing
EP3927824A2 (en) 2019-12-19 2021-12-29 Illumina, Inc. High-throughput single-cell libraries and methods of making and of using
US11747262B2 (en) 2019-12-23 2023-09-05 Singular Genomics Systems, Inc. Flow cell carrier and methods of use
CN115135984B (zh) 2019-12-23 2025-12-23 10X基因组学有限公司 可逆固定试剂及其使用方法
DK3891300T3 (da) 2019-12-23 2023-05-22 10X Genomics Inc Fremgangsmåder til rumlig analyse ved anvendelse af rna-template-ligering
US11498078B2 (en) 2019-12-23 2022-11-15 Singular Genomics Systems, Inc. Flow cell receiver and methods of use
US12241890B2 (en) 2019-12-23 2025-03-04 10X Genomics, Inc. Methods for generating barcoded nucleic acid molecules using fixed cells
US11155858B2 (en) 2019-12-31 2021-10-26 Singular Genomics Systems, Inc. Polynucleotide barcodes for long read sequencing
US12365942B2 (en) 2020-01-13 2025-07-22 10X Genomics, Inc. Methods of decreasing background on a spatial array
US12405264B2 (en) 2020-01-17 2025-09-02 10X Genomics, Inc. Electrophoretic system and method for analyte capture
US11732299B2 (en) 2020-01-21 2023-08-22 10X Genomics, Inc. Spatial assays with perturbed cells
US11702693B2 (en) 2020-01-21 2023-07-18 10X Genomics, Inc. Methods for printing cells and generating arrays of barcoded cells
US20210230681A1 (en) 2020-01-24 2021-07-29 10X Genomics, Inc. Methods for spatial analysis using proximity ligation
US11821035B1 (en) 2020-01-29 2023-11-21 10X Genomics, Inc. Compositions and methods of making gene expression libraries
US12076701B2 (en) 2020-01-31 2024-09-03 10X Genomics, Inc. Capturing oligonucleotides in spatial transcriptomics
US11898205B2 (en) 2020-02-03 2024-02-13 10X Genomics, Inc. Increasing capture efficiency of spatial assays
US12110541B2 (en) 2020-02-03 2024-10-08 10X Genomics, Inc. Methods for preparing high-resolution spatial arrays
CN115243792A (zh) 2020-02-04 2022-10-25 加利福尼亚太平洋生物科学股份有限公司 流通池及其制造和使用方法
US11732300B2 (en) 2020-02-05 2023-08-22 10X Genomics, Inc. Increasing efficiency of spatial analysis in a biological sample
US12129516B2 (en) 2020-02-07 2024-10-29 10X Genomics, Inc. Quantitative and automated permeabilization performance evaluation for spatial transcriptomics
US11835462B2 (en) 2020-02-11 2023-12-05 10X Genomics, Inc. Methods and compositions for partitioning a biological sample
US12399123B1 (en) 2020-02-14 2025-08-26 10X Genomics, Inc. Spatial targeting of analytes
US12281357B1 (en) 2020-02-14 2025-04-22 10X Genomics, Inc. In situ spatial barcoding
US12354008B2 (en) 2020-02-20 2025-07-08 Illumina, Inc. Knowledge distillation and gradient pruning-based compression of artificial intelligence-based base caller
US20210265016A1 (en) 2020-02-20 2021-08-26 Illumina, Inc. Data Compression for Artificial Intelligence-Based Base Calling
BR112022016415A2 (pt) 2020-02-20 2022-10-11 Illumina Inc Múltiplas chamadas de base à base de inteligência artificial
US11891654B2 (en) 2020-02-24 2024-02-06 10X Genomics, Inc. Methods of making gene expression libraries
US11926863B1 (en) 2020-02-27 2024-03-12 10X Genomics, Inc. Solid state single cell method for analyzing fixed biological cells
US11768175B1 (en) 2020-03-04 2023-09-26 10X Genomics, Inc. Electrophoretic methods for spatial analysis
EP4118656A1 (en) 2020-03-11 2023-01-18 Illumina, Inc. Incremental secondary analysis of nucleic acid sequences
ES3014967T3 (en) 2020-04-22 2025-04-28 10X Genomics Inc Methods for spatial analysis using targeted rna depletion
US20230183798A1 (en) 2020-05-05 2023-06-15 Pacific Biosciences Of California, Inc. Compositions and methods for modifying polymerase-nucleic acid complexes
US11188778B1 (en) 2020-05-05 2021-11-30 Illumina, Inc. Equalization-based image processing and spatial crosstalk attenuator
EP4150065A2 (en) 2020-05-12 2023-03-22 Illumina Inc Generating nucleic acids with modified bases using recombinant terminal deoxynucleotidyl transferase
US12416603B2 (en) 2020-05-19 2025-09-16 10X Genomics, Inc. Electrophoresis cassettes and instrumentation
EP4153776B1 (en) 2020-05-22 2025-03-05 10X Genomics, Inc. Spatial analysis to detect sequence variants
EP4414459B1 (en) 2020-05-22 2025-09-03 10X Genomics, Inc. Simultaneous spatio-temporal measurement of gene expression and cellular activity
WO2021242834A1 (en) 2020-05-26 2021-12-02 10X Genomics, Inc. Method for resetting an array
US12265079B1 (en) 2020-06-02 2025-04-01 10X Genomics, Inc. Systems and methods for detecting analytes from captured single biological particles
EP4158054B1 (en) 2020-06-02 2025-04-16 10X Genomics, Inc. Spatial transcriptomics for antigen-receptors
EP4025692A2 (en) 2020-06-02 2022-07-13 10X Genomics, Inc. Nucleic acid library methods
US12031177B1 (en) 2020-06-04 2024-07-09 10X Genomics, Inc. Methods of enhancing spatial resolution of transcripts
EP4421186B1 (en) 2020-06-08 2025-08-13 10X Genomics, Inc. Methods of determining a surgical margin and methods of use thereof
WO2021252617A1 (en) 2020-06-09 2021-12-16 Illumina, Inc. Methods for increasing yield of sequencing libraries
US12435363B1 (en) 2020-06-10 2025-10-07 10X Genomics, Inc. Materials and methods for spatial transcriptomics
WO2021252591A1 (en) 2020-06-10 2021-12-16 10X Genomics, Inc. Methods for determining a location of an analyte in a biological sample
WO2021252747A1 (en) 2020-06-10 2021-12-16 1Ox Genomics, Inc. Fluid delivery methods
EP4450639B1 (en) 2020-06-25 2025-10-15 10X Genomics, Inc. Spatial analysis of dna methylation
JP2023532231A (ja) 2020-06-30 2023-07-27 イルミナ インコーポレイテッド 傷なしdnaを生成するための触媒的に制御された合成による配列決定
CN115843315A (zh) 2020-07-02 2023-03-24 伊鲁米纳公司 用于校准流通池中核酸文库接种效率的方法
US11981960B1 (en) 2020-07-06 2024-05-14 10X Genomics, Inc. Spatial analysis utilizing degradable hydrogels
US12209280B1 (en) 2020-07-06 2025-01-28 10X Genomics, Inc. Methods of identifying abundance and location of an analyte in a biological sample using second strand synthesis
US11761038B1 (en) 2020-07-06 2023-09-19 10X Genomics, Inc. Methods for identifying a location of an RNA in a biological sample
EP4153606A4 (en) 2020-07-13 2024-10-02 Singular Genomics Systems, Inc. METHODS FOR SEQUENCING COMPLEMENTARY POLYNUCLEOTIDES
US12553898B1 (en) 2020-08-10 2026-02-17 10X Genomics, Inc. Fluorescent hybridization of antibody-oligonucleotide for multiplexing and signal amplification
US11981958B1 (en) 2020-08-20 2024-05-14 10X Genomics, Inc. Methods for spatial analysis using DNA capture
EP4214678B1 (en) 2020-09-18 2024-11-06 10X Genomics, Inc. Sample handling apparatus and image registration methods
US11926822B1 (en) 2020-09-23 2024-03-12 10X Genomics, Inc. Three-dimensional spatial analysis
WO2022087485A1 (en) 2020-10-22 2022-04-28 Singular Genomics Systems, Inc. Nucleic acid circularization and amplification on a surface
US11827935B1 (en) 2020-11-19 2023-11-28 10X Genomics, Inc. Methods for spatial analysis using rolling circle amplification and detection probes
WO2022140028A1 (en) 2020-12-21 2022-06-30 10X Genomics, Inc. Methods, compositions, and systems for capturing probes and/or barcodes
US12576400B2 (en) 2021-01-08 2026-03-17 Cellanome, Inc. Methods for incubating and analyzing a cell in a compartment of a fluidic device
MX2023007842A (es) 2021-01-08 2023-09-19 Cellanome Inc Dispositivos y metodos para analizar muestras biologicas.
JP2024505508A (ja) 2021-01-29 2024-02-06 イルミナ インコーポレイテッド ポリヌクレオチドによるフローセルの播種効率を改善するための方法、組成物、及びキット
WO2022170212A1 (en) 2021-02-08 2022-08-11 Singular Genomics Systems, Inc. Methods and compositions for sequencing complementary polynucleotides
WO2022178267A2 (en) 2021-02-19 2022-08-25 10X Genomics, Inc. Modular assay support devices
US12525320B2 (en) 2021-03-16 2026-01-13 Illumina, Inc. Neural network parameter quantization for base calling
WO2022197754A1 (en) 2021-03-16 2022-09-22 Illumina Software, Inc. Neural network parameter quantization for base calling
WO2022198068A1 (en) 2021-03-18 2022-09-22 10X Genomics, Inc. Multiplex capture of gene and protein expression from a biological sample
US20220333178A1 (en) 2021-03-22 2022-10-20 Illumina Cambridge Limited Methods for improving nucleic acid cluster clonality
EP4305196B1 (en) 2021-04-14 2025-04-02 10X Genomics, Inc. Methods of measuring mislocalization of an analyte
US20220336057A1 (en) 2021-04-15 2022-10-20 Illumina, Inc. Efficient voxelization for deep learning
US12217829B2 (en) 2021-04-15 2025-02-04 Illumina, Inc. Artificial intelligence-based analysis of protein three-dimensional (3D) structures
WO2022236054A1 (en) 2021-05-06 2022-11-10 10X Genomics, Inc. Methods for increasing resolution of spatial analysis
EP4582555A3 (en) 2021-06-03 2025-10-22 10X Genomics, Inc. Methods, compositions, kits, and systems for enhancing analyte capture for spatial analysis
WO2022265994A1 (en) 2021-06-15 2022-12-22 Illumina, Inc. Hydrogel-free surface functionalization for sequencing
KR20240027608A (ko) 2021-06-29 2024-03-04 일루미나, 인코포레이티드 유기체 서열을 사용하여 훈련된 자체-학습 염기 호출자
WO2023278184A1 (en) 2021-06-29 2023-01-05 Illumina, Inc. Methods and systems to correct crosstalk in illumination emitted from reaction sites
US12530882B2 (en) 2021-07-01 2026-01-20 Illumina, Inc. Efficient artificial intelligence-based base calling of index sequences
US12423815B2 (en) 2021-07-13 2025-09-23 Illumina, Inc. Methods and systems for real time extraction of crosstalk in illumination emitted from reaction sites
JP2024532004A (ja) 2021-07-19 2024-09-04 イルミナ インコーポレイテッド ベースコールのための補間及び適合による強度抽出
US11455487B1 (en) 2021-10-26 2022-09-27 Illumina Software, Inc. Intensity extraction and crosstalk attenuation using interpolation and adaptation for base calling
GB202110485D0 (en) 2021-07-21 2021-09-01 Dnae Diagnostics Ltd Compositions, kits and methods for sequencing target polynucleotides
WO2023002203A1 (en) 2021-07-21 2023-01-26 Dnae Diagnostics Limited Method and system comprising a cartridge for sequencing target polynucleotides
GB202110479D0 (en) 2021-07-21 2021-09-01 Dnae Diagnostics Ltd Compositions, kits and methods for sequencing target polynucleotides
WO2023009758A1 (en) 2021-07-28 2023-02-02 Illumina, Inc. Quality score calibration of basecalling systems
US12553805B2 (en) 2021-08-02 2026-02-17 10X Genomics, Inc. Methods of preserving a biological sample
KR20240035413A (ko) 2021-08-03 2024-03-15 일루미나, 인코포레이티드 다중 염기 호출자 모델을 사용한 염기 호출
EP4196605B1 (en) 2021-09-01 2024-12-04 10X Genomics, Inc. Methods for blocking a capture probe on a spatial array
US12480157B2 (en) 2021-09-30 2025-11-25 Illumina, Inc. Polynucleotide sequencing
US20250236865A1 (en) 2021-10-20 2025-07-24 Illumina, Inc. Methods for capturing library dna for sequencing
WO2023081485A1 (en) 2021-11-08 2023-05-11 Pacific Biosciences Of California, Inc. Stepwise sequencing of a polynucleotide with a homogenous reaction mixture
WO2023086880A1 (en) 2021-11-10 2023-05-19 10X Genomics, Inc. Methods, compositions, and kits for determining the location of an analyte in a biological sample
WO2023102118A2 (en) 2021-12-01 2023-06-08 10X Genomics, Inc. Methods, compositions, and systems for improved in situ detection of analytes and spatial analysis
EP4441711A1 (en) 2021-12-20 2024-10-09 10X Genomics, Inc. Self-test for pathology/histology slide imaging device
EP4457364A1 (en) 2021-12-29 2024-11-06 Illumina, Inc. Methods of nucleic acid sequencing using surface-bound primers
US20240294967A1 (en) 2022-01-20 2024-09-05 Illumina, Inc. Methods of detecting methylcytosine and hydroxymethylcytosine by sequencing
CN114438186A (zh) * 2022-01-28 2022-05-06 赛纳生物科技(北京)有限公司 一种芯片上恒温扩增测序的方法
JP2025512975A (ja) 2022-04-07 2025-04-22 イルミナ インコーポレイテッド 改変シチジンデアミナーゼ及び使用方法
CN119677869A (zh) 2022-09-16 2025-03-21 伊路米纳有限公司 具有多核苷酸结合位点的纳米颗粒及其制备方法
WO2024069581A1 (en) 2022-09-30 2024-04-04 Illumina Singapore Pte. Ltd. Helicase-cytidine deaminase complexes and methods of use
WO2024073047A1 (en) 2022-09-30 2024-04-04 Illumina, Inc. Cytidine deaminases and methods of use in mapping modified cytosine nucleotides
WO2024073043A1 (en) 2022-09-30 2024-04-04 Illumina, Inc. Methods of using cpg binding proteins in mapping modified cytosine nucleotides
GB202215624D0 (en) 2022-10-21 2022-12-07 Dnae Diagnostics Ltd Clonal amplification
EP4482979B1 (en) 2022-11-09 2025-10-01 10X Genomics, Inc. Methods, compositions, and kits for determining the location of multiple analytes in a biological sample
WO2024129969A1 (en) 2022-12-14 2024-06-20 Illumina, Inc. Systems and methods for capture and enrichment of clustered beads on flow cell substrates
WO2024249200A1 (en) 2023-05-26 2024-12-05 Illumina, Inc. Methods for preserving methylation status during clustering
US20240401129A1 (en) 2023-05-31 2024-12-05 Illumina, Inc. Methods for double-stranded sequencing by synthesis
WO2024249061A1 (en) 2023-05-31 2024-12-05 Illumina, Inc. Detecting a methylated nucleotide using a quencher
WO2025072783A1 (en) 2023-09-28 2025-04-03 Illumina, Inc. Altered cytidine deaminases and methods of use
WO2025081064A2 (en) 2023-10-11 2025-04-17 Illumina, Inc. Thermophilic deaminase and methods for identifying modified cytosine
WO2025137222A1 (en) 2023-12-19 2025-06-26 Illumina, Inc. Methylation detection assay
US20250215491A1 (en) 2023-12-28 2025-07-03 Illumina, Inc. Sequencing with single-stranded binding proteins
WO2025207535A1 (en) 2024-03-26 2025-10-02 Illumina, Inc. Photo-switchable surfaces
WO2025240905A1 (en) 2024-05-17 2025-11-20 The Broad Institute, Inc. Imaging-free high-resolution spatial macromolecule abundance reconstruction
WO2025264831A1 (en) 2024-06-18 2025-12-26 Illumina, Inc. Methods for increasing sequencing quality of gc-rich regions
WO2025264836A1 (en) 2024-06-18 2025-12-26 Illumina, Inc. Methods for increasing sequencing quality of gc-rich regions
WO2026006774A1 (en) 2024-06-28 2026-01-02 Illumina, Inc. Altered cytidine deaminases and methods of use
WO2026006314A1 (en) 2024-06-28 2026-01-02 Illumina, Inc. Tagging target regions prior to nucleotide sequencing

Family Cites Families (90)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
US4957858A (en) 1986-04-16 1990-09-18 The Salk Instute For Biological Studies Replicative RNA reporter systems
US4719179A (en) * 1984-11-30 1988-01-12 Pharmacia P-L Biochemicals, Inc. Six base oligonucleotide linkers and methods for their use
US4683202A (en) 1985-03-28 1987-07-28 Cetus Corporation Process for amplifying nucleic acid sequences
EP0224126A3 (en) 1985-11-25 1989-02-01 The University of Calgary Covalently linked complementary oligodeoxynucleotides as universal nucleic acid sequencing primer linkers
IL86724A (en) 1987-06-19 1995-01-24 Siska Diagnostics Inc Methods and kits for amplification and testing of nucleic acid sequences
IE72468B1 (en) 1987-07-31 1997-04-09 Univ Leland Stanford Junior Selective amplification of target polynucleotide sequences
US5093245A (en) * 1988-01-26 1992-03-03 Applied Biosystems Labeling by simultaneous ligation and restriction
SE8801070D0 (sv) 1988-03-23 1988-03-23 Pharmacia Ab Method for immobilizing a dna sequence on a solid support
US6107023A (en) 1988-06-17 2000-08-22 Genelabs Technologies, Inc. DNA amplification and subtraction techniques
AU632760B2 (en) * 1988-07-26 1993-01-14 Genelabs Technologies, Inc. Rna and dna amplification techniques
GB8818020D0 (en) 1988-07-28 1988-09-01 Ici Plc Method for amplification of nucleotide sequences
WO1990002205A1 (en) 1988-08-25 1990-03-08 Angenics, Inc. Detection of nucleic acid sequences using particle agglutination
GB8827160D0 (en) 1988-11-21 1988-12-29 Apothekernes Lab Detection & quantitative determination of rna & dna
IE66572B1 (en) 1989-02-13 1996-01-24 Geneco Pty Ltd Detection of a nucleic acid sequence or a change therein
KR920700360A (ko) 1989-03-22 1992-02-19 하리크 프리드리히 미끄럼 베어링
US5629158A (en) 1989-03-22 1997-05-13 Cemu Bitecknik Ab Solid phase diagnosis of medical conditions
US5547839A (en) 1989-06-07 1996-08-20 Affymax Technologies N.V. Sequencing of surface immobilized polymers utilizing microflourescence detection
US5800992A (en) * 1989-06-07 1998-09-01 Fodor; Stephen P.A. Method of detecting nucleic acids
GB2233654A (en) 1989-07-07 1991-01-16 Nat Res Dev Immobilised polynucleotides
US5302509A (en) 1989-08-14 1994-04-12 Beckman Instruments, Inc. Method for sequencing polynucleotides
EP0450060A1 (en) 1989-10-26 1991-10-09 Sri International Dna sequencing
CA2036946C (en) * 1990-04-06 2001-10-16 Kenneth V. Deugau Indexing linkers
US5326692B1 (en) * 1992-05-13 1996-04-30 Molecular Probes Inc Fluorescent microparticles with controllable enhanced stokes shift
US5645994A (en) * 1990-07-05 1997-07-08 University Of Utah Research Foundation Method and compositions for identification of species in a sample using type II topoisomerase sequences
GB9019512D0 (en) 1990-09-06 1990-10-24 Ici Plc Assay method
CA2055755A1 (en) 1990-11-22 1992-05-23 Toshihiko Kishimoto Method of immobilizing single-stranded dna on carrier at terminal
US5455166A (en) * 1991-01-31 1995-10-03 Becton, Dickinson And Company Strand displacement amplification
WO1993003151A1 (en) 1991-08-10 1993-02-18 Medical Research Council Treatment of cell populations
WO1993004199A2 (en) 1991-08-20 1993-03-04 Scientific Generics Limited Methods of detecting or quantitating nucleic acids and of producing labelled immobilised nucleic acids
CA2077135A1 (en) 1991-08-30 1993-03-01 Joh-E Ikeda A method of dna amplification
US5474796A (en) 1991-09-04 1995-12-12 Protogene Laboratories, Inc. Method and apparatus for conducting an array of chemical reactions on a support surface
GB9119735D0 (en) * 1991-09-16 1991-10-30 Secr Defence Gene probe biosensor method
CA2119557C (en) * 1991-09-24 2004-02-24 Marc Zabeau Selective restriction fragment amplification: a general method for dna fingerprinting
WO1993009245A1 (en) 1991-10-31 1993-05-13 University Of Pittsburgh Reverse dot blot hybridization using tandem head-to-tail monomers containing probes synthesized by staggered complementary primers
WO1993009250A1 (en) 1991-11-01 1993-05-13 Adelaide Children's Hospital Solid phase amplification process
DE4141178A1 (de) 1991-12-13 1993-06-17 Europ Lab Molekularbiolog Verfahren zur sequenzierung von nukleinsaeuren
EP0675966B1 (en) 1992-02-19 2004-10-06 The Public Health Research Institute Of The City Of New York, Inc. Novel oligonucleotide arrays and their use for sorting, isolating, sequencing, and manipulating nucleic acids
GB9208733D0 (en) 1992-04-22 1992-06-10 Medical Res Council Dna sequencing method
US5849544A (en) 1992-07-24 1998-12-15 University Of Australia Amplification and detection process
WO1994003624A1 (en) 1992-08-04 1994-02-17 Auerbach Jeffrey I Methods for the isothermal amplification of nucleic acid molecules
US5639423A (en) 1992-08-31 1997-06-17 The Regents Of The University Of Calfornia Microfabricated reactor
RU2048522C1 (ru) * 1992-10-14 1995-11-20 Институт белка РАН Способ размножения нуклеиновых кислот, способ их экспрессии и среда для их осуществления
US5795714A (en) 1992-11-06 1998-08-18 Trustees Of Boston University Method for replicating an array of nucleic acid probes
US6277606B1 (en) * 1993-11-09 2001-08-21 Cold Spring Harbor Laboratory Representational approach to DNA analysis
ATE217347T1 (de) * 1992-12-04 2002-05-15 Univ Yale Diagnose mittels signalverstärkung durch ein ribozym
US5462854A (en) 1993-04-19 1995-10-31 Beckman Instruments, Inc. Inverse linkage oligonucleotides for chemical and enzymatic processes
US5514539A (en) * 1993-06-29 1996-05-07 The United States Of America As Represented By The Department Of Health And Human Services Nucleotide and deduced amino acid sequences of the envelope 1 gene of 51 isolates of hepatitis C virus and the use of reagents derived from these sequences in diagnostic methods and vaccines
US5645801A (en) 1993-10-21 1997-07-08 Abbott Laboratories Device and method for amplifying and detecting target nucleic acids
HUT74275A (en) 1993-11-02 1996-11-28 Neurobiological Technologies Process for treatment of rheumatoid arthritis
JPH07203998A (ja) 1994-01-26 1995-08-08 Hamamatsu Photonics Kk 核酸塩基配列決定方法
EP0763135B1 (en) 1994-05-28 2002-07-10 Tepnel Medical Limited Producing copies of nucleic acids
US5942391A (en) * 1994-06-22 1999-08-24 Mount Sinai School Of Medicine Nucleic acid amplification method: ramification-extension amplification method (RAM)
US5641658A (en) * 1994-08-03 1997-06-24 Mosaic Technologies, Inc. Method for performing amplification of nucleic acid with two primers bound to a single solid support
US6090592A (en) * 1994-08-03 2000-07-18 Mosaic Technologies, Inc. Method for performing amplification of nucleic acid on supports
US6468751B1 (en) * 1994-08-03 2002-10-22 Mosaic Technologies, Inc. Method and apparatus for performing amplification of nucleic acid on supports
US6060288A (en) * 1994-08-03 2000-05-09 Mosaic Technologies Method for performing amplification of nucleic acid on supports
JP3612092B2 (ja) 1994-09-07 2005-01-19 株式会社日立製作所 Dnaの分離・分取法及びその解析法
US5843660A (en) * 1994-09-30 1998-12-01 Promega Corporation Multiplex amplification of short tandem repeat loci
WO1996024688A1 (en) 1995-02-07 1996-08-15 Mosaic Technologies Diagnostics based on dna duplex repair
AU5171696A (en) 1995-02-27 1996-09-18 Ely Michael Rabani Device, compounds, algorithms, and methods of molecular characterization and manipulation with molecular parallelism
CA2218188A1 (en) 1995-04-11 1996-10-17 Trustees Of Boston University Solid phase sequencing of biopolymers
DE19515552A1 (de) 1995-04-27 1996-10-31 Europ Lab Molekularbiolog Simultane Sequenzierung von Nukleinsäuren
AU5797696A (en) 1995-05-19 1996-11-29 Ely Michael Rabani Parallel multiplex polynucleotide sequencing
US5753439A (en) * 1995-05-19 1998-05-19 Trustees Of Boston University Nucleic acid detection methods
US5690894A (en) 1995-05-23 1997-11-25 The Regents Of The University Of California High density array fabrication and readout method for a fiber optic biosensor
AT402203B (de) * 1995-06-13 1997-03-25 Himmler Gottfried Dipl Ing Dr Verfahren zur transkriptionsfreien amplifizierung von nucleinsäuren
FR2737223B1 (fr) 1995-07-24 1997-09-12 Bio Merieux Procede d'amplification de sequences d'acide nucleique par deplacement, a l'aide d'amorces chimeres
WO1997019193A2 (en) 1995-11-21 1997-05-29 Yale University Unimolecular segment amplification and detection
US5955268A (en) 1996-04-26 1999-09-21 Abbott Laboratories Method and reagent for detecting multiple nucleic acid sequences in a test sample
US6203978B1 (en) 1996-05-31 2001-03-20 Du Vergier Ltd. Capture of single stranded nucleic acids
US5939291A (en) 1996-06-14 1999-08-17 Sarnoff Corporation Microfluidic method for nucleic acid amplification
US5837466A (en) * 1996-12-16 1998-11-17 Vysis, Inc. Devices and methods for detecting nucleic acid analytes in samples
EP2327797B1 (en) 1997-04-01 2015-11-25 Illumina Cambridge Limited Method of nucleic acid sequencing
EP1498494A3 (en) 1997-04-01 2007-06-20 Solexa Ltd. Method of nucleic acid sequencing
WO1998045474A1 (en) 1997-04-04 1998-10-15 Innogenetics N.V. Isothermal polymerase chain reaction by cycling the concentration of divalent metal ions
US6235471B1 (en) * 1997-04-04 2001-05-22 Caliper Technologies Corp. Closed-loop biochemical analyzers
ES2283936T3 (es) 1997-07-07 2007-11-01 Medical Research Council Procedimiento de clasificacion in vitro.
US6326489B1 (en) 1997-08-05 2001-12-04 Howard Hughes Medical Institute Surface-bound, bimolecular, double-stranded DNA arrays
US6124120A (en) 1997-10-08 2000-09-26 Yale University Multiple displacement amplification
US6511803B1 (en) 1997-10-10 2003-01-28 President And Fellows Of Harvard College Replica amplification of nucleic acid arrays
EP1032705B1 (en) * 1997-10-30 2011-12-14 Cold Spring Harbor Laboratory Probe arrays and methods of using probe arrays for distinguishing dna
US6054276A (en) * 1998-02-23 2000-04-25 Macevicz; Stephen C. DNA restriction site mapping
US6248558B1 (en) 1998-03-31 2001-06-19 Vanderbilt University Sequence and method for genetic engineering of proteins with cell membrane translocating activity
WO2000004193A1 (en) 1998-07-20 2000-01-27 Yale University Method for detecting nucleic acids using target-mediated ligation of bipartite primers
AR021833A1 (es) * 1998-09-30 2002-08-07 Applied Research Systems Metodos de amplificacion y secuenciacion de acido nucleico
CA2345441A1 (en) * 1998-10-27 2000-05-04 Affymetrix, Inc. Complexity management and analysis of genomic dna
AU2410500A (en) 1999-01-11 2000-08-01 President And Fellows Of Harvard College Isothermal amplification of dna
GB9902970D0 (en) * 1999-02-11 1999-03-31 Zeneca Ltd Novel matrix
US6300070B1 (en) * 1999-06-04 2001-10-09 Mosaic Technologies, Inc. Solid phase methods for amplifying multiple nucleic acids
AR031640A1 (es) * 2000-12-08 2003-09-24 Applied Research Systems Amplificacion isotermica de acidos nucleicos en un soporte solido

Also Published As

Publication number Publication date
EE200300256A (et) 2003-08-15
IL156311A0 (en) 2004-01-04
US7790418B2 (en) 2010-09-07
AR031640A1 (es) 2003-09-24
WO2002046456A1 (en) 2002-06-13
BR0116033A (pt) 2003-10-07
AU2002219161A1 (en) 2002-06-18
ZA200304102B (en) 2004-06-23
US7972820B2 (en) 2011-07-05
SK6952003A3 (en) 2003-09-11
CN1489632A (zh) 2004-04-14
JP2004524012A (ja) 2004-08-12
HUP0302803A2 (hu) 2003-11-28
BG107861A (en) 2004-07-30
NO20032455D0 (no) 2003-05-28
NO20032455L (no) 2003-08-05
CA2430369A1 (en) 2002-06-13
US20040096853A1 (en) 2004-05-20
PL363742A1 (en) 2004-11-29
MXPA03005078A (es) 2003-09-05
EA200300647A1 (ru) 2003-10-30
US20110008781A1 (en) 2011-01-13
KR20030055343A (ko) 2003-07-02
EP1339877A1 (en) 2003-09-03

Similar Documents

Publication Publication Date Title
CZ20031582A3 (cs) Izotermická amplifikace nukleových kyselin na pevném povrchu
JP5806213B2 (ja) 核酸の特異的解析のためのプローブ
AU771073B2 (en) Methods of nucleic acid amplification and sequencing
US20080274904A1 (en) Method of target enrichment
US20070141604A1 (en) Method of target enrichment
US20100222232A1 (en) Enrichment and sequence analysis of genomic regions
KR20140024378A (ko) 조직 샘플 중의 핵산의 국지적 또는 공간적 검출을 위한 방법 및 그 방법의 생성물
US20230175047A1 (en) Array and method for detecting spatial information of nucleic acids
JP2013535986A (ja) 核酸の捕捉法および配列決定法
JP2006508677A (ja) 遺伝子発現のオリゴヌクレオチド誘導分析
JP4731081B2 (ja) 核酸を選択的に単離するための方法
HK1184831A (en) Methods for nucleic acid capture and sequencing
JP2003061656A (ja) 標的核酸の検出法及びキット