CS248011B2 - Preparation method of water extracts of permanent composition with low content of fat and other contaminating components with high content of heparin - Google Patents
Preparation method of water extracts of permanent composition with low content of fat and other contaminating components with high content of heparin Download PDFInfo
- Publication number
- CS248011B2 CS248011B2 CS801897A CS189780A CS248011B2 CS 248011 B2 CS248011 B2 CS 248011B2 CS 801897 A CS801897 A CS 801897A CS 189780 A CS189780 A CS 189780A CS 248011 B2 CS248011 B2 CS 248011B2
- Authority
- CS
- Czechoslovakia
- Prior art keywords
- heparin
- extraction
- content
- dry
- concentrate
- Prior art date
Links
- 229920000669 heparin Polymers 0.000 title claims abstract description 109
- 229960002897 heparin Drugs 0.000 title claims abstract description 109
- HTTJABKRGRZYRN-UHFFFAOYSA-N Heparin Chemical compound OC1C(NC(=O)C)C(O)OC(COS(O)(=O)=O)C1OC1C(OS(O)(=O)=O)C(O)C(OC2C(C(OS(O)(=O)=O)C(OC3C(C(O)C(O)C(O3)C(O)=O)OS(O)(=O)=O)C(CO)O2)NS(O)(=O)=O)C(C(O)=O)O1 HTTJABKRGRZYRN-UHFFFAOYSA-N 0.000 title claims abstract description 108
- 239000000203 mixture Substances 0.000 title claims description 31
- 239000000284 extract Substances 0.000 title description 23
- XLYOFNOQVPJJNP-UHFFFAOYSA-N water Substances O XLYOFNOQVPJJNP-UHFFFAOYSA-N 0.000 title description 8
- 238000002360 preparation method Methods 0.000 title description 2
- 239000007864 aqueous solution Substances 0.000 claims abstract description 3
- 238000000605 extraction Methods 0.000 claims description 88
- HEMHJVSKTPXQMS-UHFFFAOYSA-M Sodium hydroxide Chemical compound [OH-].[Na+] HEMHJVSKTPXQMS-UHFFFAOYSA-M 0.000 claims description 36
- 239000012141 concentrate Substances 0.000 claims description 27
- 208000035404 Autolysis Diseases 0.000 claims description 20
- 206010057248 Cell death Diseases 0.000 claims description 20
- 230000028043 self proteolysis Effects 0.000 claims description 20
- FAPWRFPIFSIZLT-UHFFFAOYSA-M Sodium chloride Chemical compound [Na+].[Cl-] FAPWRFPIFSIZLT-UHFFFAOYSA-M 0.000 claims description 15
- 238000004519 manufacturing process Methods 0.000 claims description 12
- 239000011780 sodium chloride Substances 0.000 claims description 7
- 239000006286 aqueous extract Substances 0.000 claims description 6
- 239000002244 precipitate Substances 0.000 claims description 6
- 241001465754 Metazoa Species 0.000 claims description 5
- 239000007900 aqueous suspension Substances 0.000 claims description 4
- 235000004213 low-fat Nutrition 0.000 claims description 4
- 239000000725 suspension Substances 0.000 claims description 4
- 239000003344 environmental pollutant Substances 0.000 claims description 2
- 231100000719 pollutant Toxicity 0.000 claims description 2
- 238000000034 method Methods 0.000 abstract description 62
- 210000001557 animal structure Anatomy 0.000 abstract description 30
- 239000002994 raw material Substances 0.000 abstract description 15
- 239000007788 liquid Substances 0.000 abstract description 12
- 210000000056 organ Anatomy 0.000 abstract description 10
- 239000000126 substance Substances 0.000 abstract description 9
- 150000003839 salts Chemical class 0.000 abstract description 3
- 239000012266 salt solution Substances 0.000 abstract 1
- 239000000243 solution Substances 0.000 description 23
- 239000000463 material Substances 0.000 description 16
- 230000017854 proteolysis Effects 0.000 description 12
- 230000000694 effects Effects 0.000 description 9
- 239000000706 filtrate Substances 0.000 description 8
- 102000004169 proteins and genes Human genes 0.000 description 8
- 108090000623 proteins and genes Proteins 0.000 description 8
- 239000007787 solid Substances 0.000 description 8
- 229940088598 enzyme Drugs 0.000 description 7
- 108090000790 Enzymes Proteins 0.000 description 6
- 102000004190 Enzymes Human genes 0.000 description 6
- YXFVVABEGXRONW-UHFFFAOYSA-N Toluene Chemical compound CC1=CC=CC=C1 YXFVVABEGXRONW-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 6
- 239000013543 active substance Substances 0.000 description 6
- 239000000047 product Substances 0.000 description 6
- 238000004090 dissolution Methods 0.000 description 5
- 239000003925 fat Substances 0.000 description 5
- 238000001914 filtration Methods 0.000 description 5
- 238000010438 heat treatment Methods 0.000 description 5
- 239000002245 particle Substances 0.000 description 5
- 230000002829 reductive effect Effects 0.000 description 5
- 238000003756 stirring Methods 0.000 description 5
- VEXZGXHMUGYJMC-UHFFFAOYSA-N Hydrochloric acid Chemical compound Cl VEXZGXHMUGYJMC-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 4
- 239000004480 active ingredient Substances 0.000 description 4
- 238000009835 boiling Methods 0.000 description 4
- 230000000052 comparative effect Effects 0.000 description 4
- 239000012071 phase Substances 0.000 description 4
- 102000004196 processed proteins & peptides Human genes 0.000 description 4
- 108090000765 processed proteins & peptides Proteins 0.000 description 4
- 238000012545 processing Methods 0.000 description 4
- 239000002904 solvent Substances 0.000 description 4
- 238000003860 storage Methods 0.000 description 4
- 230000002411 adverse Effects 0.000 description 3
- 239000003153 chemical reaction reagent Substances 0.000 description 3
- 238000003776 cleavage reaction Methods 0.000 description 3
- 238000007796 conventional method Methods 0.000 description 3
- 239000012535 impurity Substances 0.000 description 3
- 244000005700 microbiome Species 0.000 description 3
- 230000007017 scission Effects 0.000 description 3
- 238000000926 separation method Methods 0.000 description 3
- 239000007790 solid phase Substances 0.000 description 3
- 239000007858 starting material Substances 0.000 description 3
- 210000001519 tissue Anatomy 0.000 description 3
- NLXLAEXVIDQMFP-UHFFFAOYSA-N Ammonia chloride Chemical compound [NH4+].[Cl-] NLXLAEXVIDQMFP-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 2
- 241000283690 Bos taurus Species 0.000 description 2
- MHAJPDPJQMAIIY-UHFFFAOYSA-N Hydrogen peroxide Chemical compound OO MHAJPDPJQMAIIY-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 2
- 102000057297 Pepsin A Human genes 0.000 description 2
- 108090000284 Pepsin A Proteins 0.000 description 2
- 230000001580 bacterial effect Effects 0.000 description 2
- 239000013043 chemical agent Substances 0.000 description 2
- 239000000356 contaminant Substances 0.000 description 2
- 238000011109 contamination Methods 0.000 description 2
- 238000010790 dilution Methods 0.000 description 2
- 239000012895 dilution Substances 0.000 description 2
- 238000001035 drying Methods 0.000 description 2
- 230000002349 favourable effect Effects 0.000 description 2
- 239000008187 granular material Substances 0.000 description 2
- 238000003306 harvesting Methods 0.000 description 2
- -1 i.e. Chemical compound 0.000 description 2
- 238000002955 isolation Methods 0.000 description 2
- 239000007791 liquid phase Substances 0.000 description 2
- 238000002156 mixing Methods 0.000 description 2
- 210000004877 mucosa Anatomy 0.000 description 2
- 108020004707 nucleic acids Chemical class 0.000 description 2
- 102000039446 nucleic acids Human genes 0.000 description 2
- 150000007523 nucleic acids Chemical class 0.000 description 2
- 229940111202 pepsin Drugs 0.000 description 2
- 150000002978 peroxides Chemical class 0.000 description 2
- 229920001499 Heparinoid Polymers 0.000 description 1
- 108010019160 Pancreatin Proteins 0.000 description 1
- 108090000526 Papain Proteins 0.000 description 1
- 241001494479 Pecora Species 0.000 description 1
- 108091005804 Peptidases Proteins 0.000 description 1
- 102000035195 Peptidases Human genes 0.000 description 1
- 239000004365 Protease Substances 0.000 description 1
- 102000004142 Trypsin Human genes 0.000 description 1
- 108090000631 Trypsin Proteins 0.000 description 1
- 239000000654 additive Substances 0.000 description 1
- 235000019270 ammonium chloride Nutrition 0.000 description 1
- BFNBIHQBYMNNAN-UHFFFAOYSA-N ammonium sulfate Chemical compound N.N.OS(O)(=O)=O BFNBIHQBYMNNAN-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 1
- 244000052616 bacterial pathogen Species 0.000 description 1
- 238000007630 basic procedure Methods 0.000 description 1
- 239000006227 byproduct Substances 0.000 description 1
- 239000007795 chemical reaction product Substances 0.000 description 1
- 150000001875 compounds Chemical class 0.000 description 1
- 239000000470 constituent Substances 0.000 description 1
- 238000010924 continuous production Methods 0.000 description 1
- 230000008094 contradictory effect Effects 0.000 description 1
- 238000005520 cutting process Methods 0.000 description 1
- 238000010908 decantation Methods 0.000 description 1
- 238000004925 denaturation Methods 0.000 description 1
- 230000036425 denaturation Effects 0.000 description 1
- 230000001419 dependent effect Effects 0.000 description 1
- 238000000502 dialysis Methods 0.000 description 1
- 239000008151 electrolyte solution Substances 0.000 description 1
- 230000002255 enzymatic effect Effects 0.000 description 1
- 235000013861 fat-free Nutrition 0.000 description 1
- 238000011049 filling Methods 0.000 description 1
- 239000012467 final product Substances 0.000 description 1
- 210000001156 gastric mucosa Anatomy 0.000 description 1
- 229930182478 glucoside Natural products 0.000 description 1
- 150000004676 glycans Chemical class 0.000 description 1
- 230000005484 gravity Effects 0.000 description 1
- 239000002554 heparinoid Substances 0.000 description 1
- 230000003301 hydrolyzing effect Effects 0.000 description 1
- 230000005764 inhibitory process Effects 0.000 description 1
- 229910052500 inorganic mineral Inorganic materials 0.000 description 1
- 210000000936 intestine Anatomy 0.000 description 1
- 230000002427 irreversible effect Effects 0.000 description 1
- 210000004185 liver Anatomy 0.000 description 1
- 230000007774 longterm Effects 0.000 description 1
- 210000004072 lung Anatomy 0.000 description 1
- 229910052751 metal Inorganic materials 0.000 description 1
- 239000002184 metal Substances 0.000 description 1
- 230000002906 microbiologic effect Effects 0.000 description 1
- 239000011707 mineral Substances 0.000 description 1
- 210000004400 mucous membrane Anatomy 0.000 description 1
- 239000003960 organic solvent Substances 0.000 description 1
- 229940055695 pancreatin Drugs 0.000 description 1
- 229940055729 papain Drugs 0.000 description 1
- 235000019834 papain Nutrition 0.000 description 1
- 230000000704 physical effect Effects 0.000 description 1
- 229920001184 polypeptide Polymers 0.000 description 1
- 229920001282 polysaccharide Polymers 0.000 description 1
- 239000005017 polysaccharide Substances 0.000 description 1
- 235000015277 pork Nutrition 0.000 description 1
- 238000001556 precipitation Methods 0.000 description 1
- 238000004321 preservation Methods 0.000 description 1
- 238000002203 pretreatment Methods 0.000 description 1
- 230000002035 prolonged effect Effects 0.000 description 1
- 239000012460 protein solution Substances 0.000 description 1
- 230000002797 proteolythic effect Effects 0.000 description 1
- 239000002510 pyrogen Substances 0.000 description 1
- 230000001698 pyrogenic effect Effects 0.000 description 1
- 150000003856 quaternary ammonium compounds Chemical class 0.000 description 1
- 238000011160 research Methods 0.000 description 1
- 230000000717 retained effect Effects 0.000 description 1
- 238000009751 slip forming Methods 0.000 description 1
- 210000000813 small intestine Anatomy 0.000 description 1
- 238000000638 solvent extraction Methods 0.000 description 1
- 239000007921 spray Substances 0.000 description 1
- 238000005507 spraying Methods 0.000 description 1
- 238000010186 staining Methods 0.000 description 1
- 239000000758 substrate Substances 0.000 description 1
- 230000002459 sustained effect Effects 0.000 description 1
- 238000012360 testing method Methods 0.000 description 1
- 230000001988 toxicity Effects 0.000 description 1
- 231100000419 toxicity Toxicity 0.000 description 1
- 239000012588 trypsin Substances 0.000 description 1
- 238000000108 ultra-filtration Methods 0.000 description 1
- 238000011144 upstream manufacturing Methods 0.000 description 1
- 239000002699 waste material Substances 0.000 description 1
- 238000003911 water pollution Methods 0.000 description 1
Classifications
-
- A—HUMAN NECESSITIES
- A61—MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
- A61K—PREPARATIONS FOR MEDICAL, DENTAL OR TOILETRY PURPOSES
- A61K31/00—Medicinal preparations containing organic active ingredients
- A61K31/70—Carbohydrates; Sugars; Derivatives thereof
- A61K31/715—Polysaccharides, i.e. having more than five saccharide radicals attached to each other by glycosidic linkages; Derivatives thereof, e.g. ethers, esters
-
- C—CHEMISTRY; METALLURGY
- C08—ORGANIC MACROMOLECULAR COMPOUNDS; THEIR PREPARATION OR CHEMICAL WORKING-UP; COMPOSITIONS BASED THEREON
- C08B—POLYSACCHARIDES; DERIVATIVES THEREOF
- C08B37/00—Preparation of polysaccharides not provided for in groups C08B1/00 - C08B35/00; Derivatives thereof
- C08B37/006—Heteroglycans, i.e. polysaccharides having more than one sugar residue in the main chain in either alternating or less regular sequence; Gellans; Succinoglycans; Arabinogalactans; Tragacanth or gum tragacanth or traganth from Astragalus; Gum Karaya from Sterculia urens; Gum Ghatti from Anogeissus latifolia; Derivatives thereof
- C08B37/0063—Glycosaminoglycans or mucopolysaccharides, e.g. keratan sulfate; Derivatives thereof, e.g. fucoidan
- C08B37/0075—Heparin; Heparan sulfate; Derivatives thereof, e.g. heparosan; Purification or extraction methods thereof
Landscapes
- Health & Medical Sciences (AREA)
- Life Sciences & Earth Sciences (AREA)
- Chemical & Material Sciences (AREA)
- Medicinal Chemistry (AREA)
- General Health & Medical Sciences (AREA)
- Molecular Biology (AREA)
- Polymers & Plastics (AREA)
- Epidemiology (AREA)
- Chemical Kinetics & Catalysis (AREA)
- Biochemistry (AREA)
- Engineering & Computer Science (AREA)
- Organic Chemistry (AREA)
- Pharmacology & Pharmacy (AREA)
- Materials Engineering (AREA)
- Animal Behavior & Ethology (AREA)
- Public Health (AREA)
- Veterinary Medicine (AREA)
- Polysaccharides And Polysaccharide Derivatives (AREA)
- Pharmaceuticals Containing Other Organic And Inorganic Compounds (AREA)
- Medicines Containing Material From Animals Or Micro-Organisms (AREA)
- Extraction Or Liquid Replacement (AREA)
- Agricultural Chemicals And Associated Chemicals (AREA)
Description
Vynález -se - 'týká způsobu přípravy vodných extraktů stálého složení s nízkým obsahem tuků a dalších znečišťujících -složek a s vysokým -obsahem heparinu, přičemž se vychází z amorfní suroviny obohacené heparinem, která si zachovává svoji granulovanou formu, s obsahem 90 až 95 % hmotnostních sušiny -a s 'velkým specifickým povrchem.
Všeobecně je známo, že zpracovávání živočišných orgánů obsahujících -heparin, je nákladný a složitý postup, přičemž je možno tento postup- realizovat jako extrakční postup - prováděný v několika následných stupních -s rozdílným zaměřením. V praxi není možno způsob extrakce živočišných orgánů -oddělit od předběžného -shromažďování a konzervování živočišných orgánů obsahujících heparin, přičemž tyto fáze významně -ovlivňují provedení extrakce v průmyslovém měřítku a rovněž i -dosažitelný výtěžek.
Postupy extrakce heparinu jsou časově náročné, přičemž jejich reprodukovatelnost je mnohdy -sporná. Z výše uvedeného vyplývá, proč se jak technická, tak i patentová literatura tak intenzívně zabývá extrakčními postupy z hlediska technologické i ekonomické účinnosti výroby heparinu jako celku.
Je evidentní, že nejdůležitějším problémem extrakce je najít způsob -nejúčinnějšího rozpuštění obsahu aktivní látky (heparinu) přítomné v různých typech -surovin, které se zpracovávají po shromáždění a uskladnění orgánů, přičemž by při tomto způsobu nedocházelo k poškození a rozštěpení přítomné aktivní látky -a tím i ke snížení jejího obsahu.
Dalším problémem je izolace konečného produktu ve farmaceuticky vyhovující kvalitě z vodných roztoků, obsahujících heparin, které byly získány při extrakci, a to- ve vyhovujícím výtěžku, přičemž bylo použito jen -několika provozních stupňů.
Pro - tento účel je nutné, aby v kapalném extraktu, obsahujícím heparin, bylo přítomno co možno nejmenší množství nečistot, jako Jsou například heparinoidové pyrogenní barvicí polypeptidy, -které ztěžují čištění. Co možno nejdříve selektivní rozpouštění heparinu je nutné z toho důvodu, že přítomnost ostatních složek, obsažených v extraktu, získanému ze živočišných orgánů, jako jsou tuky, pipoidy, proteiny, peptidy -a anorganické soli, inhibují izolaci heparinu, to znamená, že snižují možný výtěžek aktivní složky, dále znečišťují zařízení a konečný produkt není vždy plně vyčístitelný ode všech vedlejších složek.
Uvedené problémy nebyly dosud při zpracovávání známých druhů surovin extrakčními postupy na známých zařízeních úspěšně odstraněny.
Pokud -se týká dosavadního stavu techniky, jsou známy tři následující základní postupy extrakce živočišných orgánů obsahujících heparin.
První teoreticky vypracovaná metoda extrakce byla publikována Charlesem a Scottem v J. Biol. Chem. 102, 425, 1933. Tento extrakční postup je charakterizován použitím hydrolyzačních enzymů, přítomných v přežívajících tkáních po extrakci orgánů, obsahujících heparin, -rozkrájených a převážně -silně zmrazených. Autolýza probíhá po delší dobu a poté -se za účelem zkoagulování extraktu použije mírně alkalického solného- roztoku -a -směs se vaří. Tyto postupy, při kterých se používá autolýzy, jsou popsány v patentech Spojených -států amerických č. 2 571 -697 a 2 797 184. Autolýzu je možno kombinovat s další extrakcí, čímž -se dosáhne -dalšího zlešení tohoto postupu, což je popsáno v patentech Spojených - -států amerických č. 2 884 358 -a 3 016 331.
Nevýhody extrakce pomocí autolýzy jsou popsány v maďarském patentu č. 148 776 a v patentu Spojených států amerických č. 2 587 924. Nevýhody zjištěné na základě experimentálních výzkumů je možno shrnout do několika bodů:
I když budeme při extrakci předpokládat rovnovážný stav mezi extrakčním roztokem a extrahovaným živočišným orgánem, presto vzhledem k vysokému -obsahu vlhkosti v extrahovaném živočišném orgánu je nutno počítat -se značnou ztrátou heparinu. Oddělení extrahovaného orgánu s -sebou nezbytně nese i odstranění vlhkosti ze systému, a tudíž i roztoku heparinu. Vzhledem k rozdílnému stupni autolýzy média nenastává -rovnovážný stav mezi extrahovaným orgánem a extrakční kapalinou v každém -stadiu, a v takových fázích je ztráta na heparinu přirozeně vyšší.
Během -skladování orgánů před autolýzou o během autolýzy se rovněž zvyšuje počet mikroorganismů, které působí nepříznivým způsobem na heparin, což má za následek, že klesá výtěžnost, přičemž bakteriální kontaminace je nežádoucím jevem i z dalších hledisek, jako je pyrogenita, toxicita a podobně.
Jeden z hlavných problémů metod, -při kterých se používá autolýzy, spočívá ve shromažďování živočišných -orgánů, z čehož vyplývá nestejné složení získávaného extraktu. Vzhledem k velkému zpracovávanému objemu je významným rovněž požadavek na velikost, -resp. uspořádání zařízení, potřebného pro tuto fázi -výroby. Provedení postupu z hlediska průmyslové výroby je možné jen tehdy, jestliže -se zmenší objem suroviny na takovou míru, -aby se mohl získávat produkt -obsahující heparin o čistotě alespoň 1 až 10 %. Vzhledem k variabilitě složení se kvalita - získávaného -produktu mění a z tohoto důvodu je obtížné realizovat ekonomicky výhodnou výrobu.
U druhého typu extrakčních metod se obsah aktivní látky ze živočišných orgánů obsahujících heparin extrahuje pomocí chemických -činidel, přičemž tyto postupy za248011
S 6 hrnují rozpouštění heparinu nebo heparin-proteinového komplexu. Takovéto postupy jsou například popsány v maďarských patentech č. 148 776 a 149 339, v patentu Velké Británie č. 992 201 a v patentech Spojených států amerických č. 2 623 001, 3 058 884 a 3 262 854. Extrakce rozpouštědlem má však nevýhodu mimo jiné v tom, že obdobně jako u autolýzy se musí ze systému oddělovat zbytky živočišných orgánů o vysokém obsahu vlhkosti, což způsobuje značné ztráty na heparinu, dosahující 20· až 40 %, a. to v závislosti na koncentraci sušiny · organické látky v extrakčním . zbytku, jak je uvedeno v příkladu v maďarském patentu č. 148 776 ve srovnání s postupem podle . patentu Velké Británie č. 992 201. Rovněž u této . metody je nepříznivým jevem proměnlivé složení použitých živočišných orgánů, způsobující obdobně nerovnoměrnost složení 'získaného extraktu a nejistou reprodukovatelnost v dalších fázích výroby.
Vzhledem k těmto potížím se navrhuje například v ' patentu Spojených států amerických č. 2 623 001 dialýza ve velkém objemu, po dlouhý časový interval, provedená po extrakci. Způsob popsaný v patentu Spojených států amerických č. 3 262 854 používá organického rozpouštědla jako nutné látky ve fázi extrakce, pracující s velkým objemem.
Když se shrnou postupy v první skupině, kde se používá autolýzy a ve druhé skupině, kde se pracuje pouze s extrakcí za pomoci chemických činidel, je možno u těchto metod zjistit společnou nevýhodu spočívající v tom, že během extrakce, jíž je zpravidla souproudý proces prováděný v jednom nebo. ve dvou stupních podle konzistence surovin všeobecně až dosud používaných, získané roztoky obsahují řadu příměsí a . škodlivých nečistot. Koncentrace heparinu v těchto roztocích je velmi zředěná a činí 10 až. 20 m. j./ml nebo v průměru 0,01 %. Z toho vyplývá, že k rozpuštění 1 000 miliónů m. j, to jest 6,5 kg heparinu se extrakce provádí v objemu 50 000 až 100 000 litrů při minimálně 20% ztrátě na heparinu.
Ve třetí skupině extrakčních metod se ze účelem snížení ztrát na heparinu a vyloučení nespolehlivosti u autolýzy, živočišné orgány obsahující heparin podrobují bez pomoci chemických činidel intenzívní a dlouhodobé proteolýze vedoucí až k téměř úplnému nebo úplnému rozpuštění za použití enzymu jako je trypsin, extrakt pankreatu, papain, dodaného dodatečně do uvedeného systému. Takovéto postupy jsou například popsány v maďarském patentu č. 147 323, a dále ještě v patentech Spojených států amerických 2 587 924, 2 989 438 a 3 817 924, a rovněž tak i v patentech Spojených států amerických č. '2 884 358 a 3 016 331, kde se používá kombinace autolýzy a enzymatické proteolýzy.
Přes nesporné výhody účinků takovéhoto postupu je ekonomická účinnost této uvedené extrakce závislá na nákladech, spojených se spotřebou proteolytického enzymu nezbytného pro jednotlivá specifická množství živoč:šných orgánů. Například je . možno uvést, že v jednom z uvedených postupů je nutno přidat 1,5 až 3 kilogramy pankreatu nebo pankreatických zbytků ke 2 kilogramům živočišných orgánů obsahujících heparin.
Jestliže se sníží specifická množství přidávaných enzymů, proteolýza a filtrace se mimořádně prodlouží. Podle . patentu Spojených států amerických č. 3 817 831 trvá pepsinová .autolýza 24 hodin, autolýza provádění s pankreatinem trvá . . 15 hodin, načež potom se provede hrubá filtrace a po uplynutí 24 hodin se provede ultrafiltrace. Mimořádnou nevýhodou je to, že u těchto časově dlouhých postupů vzrůstá riziko bakteriální kontaminace a dále vzrůstá nebezpečí rozštěpení heparinu účinkem enzymů přítomných -v 'těchto. postupech, dodávaných zvnějšku a narušujících glukosidové vazby heparinu nebo jiných štěpících enzymů.
Výsledkem úplné nebo 'téměř úplné proteolýzy je to, že se rozpustí složky přítomné v živočišných orgánech a doprovázející heparin. Jsou to například sloučeniny . typu slizovitých polysacharidů, deriváty kyseliny nukleové, tuky, lipoidy, které významně významně zhoršují rychlost a účinnost dalšího postupu. Podle příkladu 3 uvedeného v patentu Spojených států amerických číslo 3 817 831 po ukončení proteolýzy a hrubé filtraci . činí obsah organické sušiny 10' až 35 %, to znamená že je třikrát vyšší při obsahu ' 0,027 % heparinu v odváděném roztoku. Z uvedeného důvodu je vypouštění zpracovaných roztoků, zbavených aktivní látky, do veřejných .odpadních toků problematické a dochází při něm ke znečišťování vod.
Při postupech používajících ke zpracovávání živočišných orgánů proteolýzy je produktem zředěný roztok .o . 'koncentraci 6,45 m. j./ml, to jest 0,004 až 0,03 %. V koncentrovanějších roztocích nemůže proteolýza probíhat vzhledem ke zvětšující se substrátové . inhibici.
Extrakce živočišných orgánů, to jest rozpouštění heparinu v nich obsaženého, a účinné a reprodukovatelné snížení objemu roztoků je nejdelší a nejsložitější fází celého výrobního postupu, zaměřeného: na výrobu tohoto farmaceuticky použitelného produktu. Extrakce je časově náročná a vzhledem k proteolýze a/nebo vzhledem k řadě chemicko-fyzikálních postupů se provádí v několika stupních, protože nízká koncentrace aktivní látky nezbytně s sebou nese nutnost použití zařízení a postupu pracujícího s velkým objemem zpracovávané suroviny. Ekonomická účinnost chemické extrakce je nepříznivě ovlivňována použitými chemickými látkami a náklady na enzymy ' pro proteolytickou extrakci. Při těchto postupech je reprodukovatelnost nejistá, pro248011 tože vzhledem k rozdílnému systému shromažďování a skladovacím metodám živočišných orgánů se obsah aktivní látky pohybuje v širokých mezích. Současně je další zpracovávání nepříznivě ovlivňováno nečistotami obsaženými v několikanásobně větším množství. ‘
Z těchto důvodů běžně praktikované metody shromažďování živočišných orgánů, používaných pro výrobu heparinu, neumožňují získat konečný produkt farmaceuticky použitelné jakosti beze ztráty nebo pouze s malou ztrátou na ’ heparinu, vzhledem k běžnému velkoobjemovému skladování živočišných orgánů. Extrakční metody se musely přizpůsobit jakosti výchozího materiálu. Na druhé straně nerovnoměrnost v jakosti tohoto· materiálu vedla k tomu, že se při extrakci musely zavést takové operace, které měly protichůdný účinek na selektivní extrakci heparinu a zvýšily tak složitost této metody.
Mimořádně důležitým technických úkolem se tak stalo navrhnout zjednodušený extrakční · postup · pro výrobu heparinu ze živočišných orgánů, při kterém by byl zkrácen výrobní čas tohoto postupu, dále by byl zvýšen ekonomický účinek této výroby a zlepšila selektivita. · Z těchto úkolů se vycházelo při vypracovávání postupu podle uvedeného vynálezu.
Podstata způsobu přípravy vodných extraktů stálého složení a s nízkým obsahem tuků a dalších znečišťujících složek a s vysokým obsahem heparinu, přinejmenším 120 m. j./ml, přičemž se vychází ze suchého, amorfního koncentrátu, který si zachovává svoji granulovanou formu, s hmotnostním obsahem sušiny v rozmezí od 90 do 95 % a s velkým specifickým povrchem, získaným tak, že se podrobí vodná suspenze rozřezaných živočišných tkání autolýze, přičemž po autolýze se · suspenze tepelně zpracuje při teplotě v rozmezí od 75 do 100 °C a takto získaný vysrážený komplex obsahující heparin se oddělí a oddělená sraženina se suší na obsah 90 až 95 % hmotnostních sušiny, podle uvedeného vynálezu spočívá v tom, že se tento suchý granulovaný koncentrát, obsahující heparin, podrobí při teplotě v rozmezí od 20 do 80 °C kontinuální nebo přerušované protiproude · extrakci vodným roztokem chloridu sodného o koncentraci v rozmezí od 1,5 do 12 % hmotnostních, který se zalkalizuje hydroxidem sodným na hodnotu pH v rozmezí od 8 do 12,8.
Výhodu · postupu podle uvedeného vynálezu spočívají ve stručnosti v tom, že je možno tímto postupem připravit extrakty o mimořádně vysoké koncentraci aktivní složky, nejméně 120 m. j./ml, o konstantním složení, které •obsahují minimální množství škodlivých znečišťujících složek, přičemž tato metoda je ve srovnání · s dřívějšími metodami méně náročná na energii, chemická činidla i na pracnost. Podrobně bude . o výhodách postupu podle vynálezu ve srovnání s dosavadním stavem techniky pojednáno v dalším.
Poměr extrahovaného materiálu a extrakční kapaliny se řídí během protiproude extrakce podle vynálezu tak, aby byl získán extrakt, jehož aktivita heparinu je alespoň 150 · m. j./ml. Ve výhodném provedení se udržuje teplota, hodnota pH a koncentrace chloridu sodného při provádění extrakčního postupu na konstantní úrovni. Při vhodném nastavení poměru extrakčního roztoku chloridu sodného k množství suchého heparinového koncentrátu, který je zpracováván (a který v případě kontinuální protiproude extrakce je výhodně ' asi 5:1), je možno dosáhnout v produkovaném vodném iieparinovém extraktu koncentrace heparinu v rozmezí od 150· do· 300 m. j./ml.
Protiproudý extrakční postup podle vynálezu je možno provádět, jak již bylo uvedeno, kontinuálním způsobem nebo· přerušovaným způsobem, přičemž ve výhodném provedení je možno tento postup provádět ve vibračním U-extraktoru, rozděleném do· komor. Tuto extrakci je možno provádět v jediném zařízení.
Fyzikální vlastnosti dosud používaných výchozích surovin obsahujících heparin dosud znemožňovaly použití protiproude extrakce k výrobě extraktů s vysokým obsahem heparinu. Podle uvedeného postupu bylo zjištěno, že pouze při protiproude extrakci suchého granulovaného koncentrátu s hmotnostním obsahem sušiny v rozmezí od 90 do 95 % a s velkým specifickým povrchem podle vynálezu je možno dosáhnout velmi účinné extrakce, přičemž se získají extrakty s vysokým obsahem heparinu, přinejmenším 120 m. j./ml. Možnost extrahovat heparin protíproudým způsobem nebyla dosud známa z toho prostého důvodu, že výchozí materiál, obsahující heparin, tzn. rozmělněné tkáně, různé kapalné, polopevné nebo jiné suroviny, · který byl při dosavadních postupech používán, nemohl být protiproudým způsobem vůbec zpracováván.
Postup podle uvedeného · vynálezu je možno provádět v U-extraktoru, který je popsán v maďarském patentu č. 159 977, který kromě použití pro extrakci léčivých rostlin může být rovněž velmi účinně využit pro postup podle vynálezu pro přípravu vodných extraktů s vysokým obsahem heparinu.
Při provádění zpracovávání v tomto zařízení se granulovaný materiál, obsahující heparin, který je určen к extrahování, stejnoměrně postřikuje rozpouštědlem nebo roztokem ještě předtím, než vstupuje do extraktoru za účelem homogenního zvlhčení tohoto materiálu a snadnějšího provedení extrakce, přičemž potom následuje další postřikování stejným nebo jiných rozpouštědlem nebo roztokem, přičemž množství tohoto roztoku nebo· rozpouštědla převyšuje absorpční schopnost tohoto pevného surového materiálu. Potom se tento pevný podíl
10 a kapalná fáze vedou společně do extraktoru, přičemž se vedou ve stejném směru, ale rozdílnou rychlostí, přičemž rychlost pevné fáze odpovídá pohybu komor tohoto· extraktoru. Roztok se odvádí výstupem, přičemž zbývající pevná fáze se vede do kontaktu s kapalnou fází v extraktoru, která se pohybuje opačným směrem, a nakonec se vede protiproudou sekcí, ve které rozpouštědlo postupuje pevnou fází. Extraktor je vybaven systémem komor, přičemž je zabráněno možnosti zpětného míšení vodných extraktů mezi komorami. Současně vibrační jednotky značně usnadňují trvalé udržování extrakční rovnováhy po stanovený určitý časový interval. Při provádění postupu v tomto zařízení je výhodné to, že jak poměr extrakční kapaliny k extrahovanému materilu, tak i doba extrakce, a rovněž tak délka extrakční dráhy se mohou významně zkrátit, resp. zmenšit.
Při provádění postupu podle uvedeného vynálezu se používá heparinem obohacená amorfní surovina, zachovávající si svoji granulovanou formu ze živočišných orgánů, v suchém stavu, s velkým specifickým povrchem, která se připraví postupem podle patentu Velké Británie č. 2 · 045 272.
Surový materiál obsahující heparin, s obohaceným obsahem aktivní složky, o konstantním složení, s nízkým obsahem · tuků a zárodků mikroorganismů, který je skladovatelný beze změny morfologie a obsahu účinné složky, získaný ze živočišných orgánů, který se používá jako výchozí materiál při postupu podle uvedeného vynálezu, se připraví ze shromážděných živočišných · orgánů, obsahujících heparin, které se případně rozřežou, v kapalném prostředí zpracováváním při teplotě v rozmezí od 10 do 50 °C po dobu v rozmezí od 0,15 do 15 hodin. Komplex obsahující heparin, který je nerozpustný ve vodě, se potom oddělí od předběžně zpracované suspenze při teplotě v rozmezí od 75 do 100 °C, přičemž tento komplex se potom převede na snadno filtrovatelné agregované částice dalším tepelným zpracováním. Takto vzniklá sraženina se oddělí a izolovaný surový materiál obsahující heparin se suší při teplotě 100 °C, přičemž se získá produkt s obsahem 90 až 95 procent sušiny, který má drobivý charakter.
Výchozím surovým materiálem je ve výhodném provedení sliznice z prasat, seróza, plíce z· hovězího dobytka, přičemž je ale možno použít i jiné živočišné orgány obsahující heparin, jako je například sliznice tenkého střeva z hovězího dobytka, z ovcí, další jiné vnitřnosti a játra.
V případech, kdy se použije sliznice, potom není nutné použít rozřezávání a zřeďování vodou.
Ostatní živočišné orgány se rozřezávají na části o velikosti v rozmezí od 4 do 6 milimetrů, přičemž se z nich připraví vodná suspenze, která obsahuje heparin a protein v různém stupni rozpuštění a rovněž ve formě koloidního roztoku.
Vodná suspenze se potom upraví na obsah sušiny v rozmezí od 1,5 do 17 %. Zředění se provádí vodou, ve výhodném provedení o teplotě v rozmezí od · 36 do· 42 °C. Z tohoto důvodu není . vnější zahřívání při předběžném zpracovávání nezbytné nebo se zahřívání · používá pouze v malé míře.
Jestliže se vychází z běžného materiálu obsahujícího heparin, potom se získaná suspenze předběžně zpracuje při teplotě asi 30 CU po dobu obvykle v rozmezí od 2 do 6 hodin.
Po předběžném zpracování se . vysrážený heparin-proteinový komplex uvede do· styku s párou nebo· se tepelně zpracuje po delší časový interval, přičemž se hlavní podíl heparinu váže na filtrovatelné proteiny.
Toto tepelné zpracovávání se provádí kontinuálním způsobem při teplotě 85 CC nebo· při teplotě vyšší po dobu minimálně 2 minuty a v případě přerušovaného· provedení tohoto postupu po dobu 15 minut nebo· ještě déle.
Vysrážením proteinů se dosáhne vhodné velikosti aglomerovaných částic, což je příznivé · pro oddělování filtrací, přičemž se současně zničí škodlivé zárodky mikroorganismů. Sraženina s obsahem sušiny v rozmezí od 20 do 25 % se izoluje v mechanickém usazováku, který pracuje na principu gravitační síly.
Tento mechanický separátor má kontinuálně se · obnovující filtrační povrch, přičemž je rovněž možno použít kontinuálních nebo diskontinuálních plochých sít, zakřivených sít, odstředivek nebo šnekových separátorů.
Odvedený filtrát může obsahovat 5 až 25 procent původního obsahu sušiny a v závislosti na kontrolovaném předběžném zpracovávání je složen z proteinů tepelně nedenaturovatelných, peptidů, derivátů kyseliny nukleové, tuků, lipoidů a minerálních solí.
Izolovaný heparinový koncentrát se suší v sušicím zařízení při teplotě 100 °C na obsah sušiny v rozmezí od 90 do 95 %, přičemž se tímto způsobem získá koncentrát s nízkým obsahem tuků o velikosti částic v rozmezí od · 0,2 do 1,6 milimetru ve formě amorfních částic o velikém povrchu, které jsou skladovatelné po dlouhý časový interval, přičemž tento materiál je zvláště vhodný pro extrakci heparinu.
Výhody postupu podle uvedeného vynálezu ve srovnání s dosud používanými a známými postupy je možno shrnout následujícím způsobem.
Při souproudé jedno- nebo dvoustupňové extrakci, běžně používané pro výrobu heparinových extraktů, jsou nezbytné programově řízené změny teplot, hodnot pH a dále je nezbytné najít vhodná extrakční chemická činidla. Protiproudů extrakce podle vynálezu je realizovatelná v témže zařízení
jednoduchým rozpuštěním výchozí -suroviny, provedeném v daném -systému v optimálně vybraném vodném alkalickém médiu, beze změn provozních podmínek a bez potřeby přidávání .různých chemických látek.
Při protiproudé extrakci vznikají extrakty stálého -složení, prakticky bez obsahu tuků, o pěti- až desetinásobné vyšší koncentraci aktivní látky než u běžně prováděných extrakcí. Postup podle uvedeného vynálezu proběhne během krátkého časového intervalu a -s dostačujícím výtěžkem, přičemž poměr heparinu -k vedlejším nežádoucím přidruženým látkám je u tohoto postupu mnohem příznivější než u běžně prováděných metod.
Protiproudů extrakce není závislá na chemických vlastnostech použitých -chemických látek, ale provádí se pomocí nejvhodnějších a nejméně drahých chemických látek, které jsou k dispozici.
Požadavek -na objemovou kapacitu zařízení pro protiproudou extrakci ve srovnání se zařízeními používanými při běžně známých postupech se -snižuje na 1/4 až 1/10. Při této protiproudé extrakci se - získá extrakt o- konstantním -složení, -obsahující heparin koncentrovaný v malém objemu. Objemovou kapacitu zařízení je možno zmenšit -a zvýšit tak stupeň její využitelnosti.
V případech, kdy je zapotřebí úplně oddělit heparin ze -systému protiproudé extrakce a současně zmenšit objem, dostačuje použití dopravních čerpadel a vakuových bubnových filtrů. Kontinuální oddělování heparinu je možno v tomto případě realizovat přidáváním kvartérních amonných -sloučenin a roztoku proteinu o známých vlastnostech a složení, přičemž poté -se systém okyselí, načež -se izoluje -sraženina obsahující oddělený heparin.
Zmenšení -objemu znamená významnou úsporu energie, -snížení pracnosti a úsporu výdajů -na chemické prostředky.
Shrnou-li -se výhody postupu podle uvedeného vynálezu, je možno konstatovat, že tímto- postupem podle vynálezu je možno připravit extrakty -s mimořádně vysokým obsahem heparinu o -stálém -složení kontinuální protiproudou extrakcí, -s krátkou provozní dobou, - v malých -objemech a na jednoduchém zařízení. Z těchto extraktů je možno účinně izolovat heparin farmaceutické’ kvality libovolným - běžným způsobem.
Použije-li se k provádění postupu - podle vynálezu U^é^e^trraktor popsaný v maďarském patentu č. 159 977 a extrakce se provede pomocí extrakčního -roztoku o teplotě 50- °C, koncentraci 0-,5 až 1,0- N, -a obsahující minimálně 5 % chloridu -sodného, přičemž doba zdržení v extraktoru je 30 minut, potom je - možno z koncentrátu živočišných orgánů, obsahujících heparin, úplně vyextrahovat tuto aktivní látku. Poměr sušiny koncentrátu ze živočišných orgánů -k extrakční kapalině je 1 : 5.
Koncentrát z orgánu o velkém specifickém povrchu při kontaktu s vodou mírně nabobtná, ale zachová -si -svůj granulami charakter -a výborné filtrační vlastnosti i při vysoké alkalické koncentraci. Vzrůst alkalické koncentrace prakticky skoro neovlivňuje množství rozpuštěné neheparinové -organické -sušiny a -množství rozpuštěných proteinů a peptidů se rovněž nemění. Příčinou toho je pravděpodobně podstatná a nevratná denaturace proteinů, zasahující hlavní část živočišného orgánu určeného k extrakci, ke které dochází během -sušení.
Postup podle uvedeného· vynálezu bude v dalším podrobně ilustrován v příkladech provedení. Některé -srovnávací příklady jsou uvedeny za účelem porovnání výhod postupu podle vynálezu -s -dosavadními používanými postupy.
Příklad 1
Postup -podle -tohoto příkladu je postupem srovnávacím. Suchý, granulovaný, heparinový koncentrát získaný postupem - podle patentu Velké Británie -č. 2 045 272 -byl extrahován běžným způsobem -autolýzou v přítomnosti toluenu -a za použití -roztoku elektrolytu.
V tomto provedení bylo 20 kg granulovaného, heparinového -koncentrátu intenzívně mícháno -se 100 kg jemně rozemletých vepřových tenkých -střev o -obsahu 18 % -sušiny, dále se 450 litry vody -a 150 litry 10% roztoku -síranu amonného- v -duplikátoru -s míchadlem. Po promíchání byla směs zahřáta na teplotu 38 °C. Po- dosažení této- teploty byla za stálého míchání upravena - hodnota pH pomocí 40% hydroxidu -sodného. Za účelem zabránění -nežádoucích mikrobiologických procesů byly do -systému přidány ještě 3 litry toluenu.
Po přidání -enzymů proběhla autolýza - během 36 - hodin, přičemž teplota byla udržována na 38 °C a systém -se periodicky promíchával. Hodnota pH byla zjišťována každých 6 hodin a v případě potřeby byla stanovená hodnota pH udržována pomocí 40%o hydroxidu -sodného.
Po 36hodinové autolýze byla hodnota pH upravena na 7,3 až 7,7 pomocí 18% kyseliny chlorovodíkové a směs byla zahřáta k teplotě varu. Potom byla -směs udržována za varu po> dobu 10 minut, přičemž částice účinkem tepla zkoagulovaly a byly odstraněny pomocí -síta. Filtrát byl - oddělen od tuku při teplotě 60 CC. Tímto -shora uvedeným postupem bylo- získáno 638 litrů tmavě hnědé zabarvené kapaliny o koncentraci heparinu 18,1 m. j./ml, odpovídající 11,5 miliónům m. j. heparinu. Výtěžek srovnaný -s dále uvedeným příkladem 5 -byl pouze 76 %.
Příklad 2
Postup podle tohoto příkladu je postupem srovnávacím. Podle tohoto příkladu prove248011
14 dění byl suchý, granulovaný, heparinový koncentrát uvedených charakteristik extrahován postupem uvedeným v příkladu 1 patentu Spojených států amerických 3 817 831. Při tomto postupu bylo 40· kg granulovaného heparinového koncentrátu pečlivě promícháno se 400 litry vody v duplikátoru s míchadlem, přičemž hodnota pH byla . udržována na 2,7 kyselinou chlorovodíkovou a směs bvla zahřáta na teplotu 38 °C. Po-tom byl 'přidán do uvedené směsi pepsin, odpovídající 10 kg vepřové žaludeční mukózy, a hodnota pH byla upravena na původní hodnotu. Proteolýza probíhala po dobu 20 hodin za stálého míchání, přičemž teplota byla udržována na hodnotě v rozmezí od 37 do 39 °C. ·
Po· proběhnutí proteolýzy, která trvala 20 hodin, byla hodnota pH upravena pomocí 40% hydroxidu sodného· a teplota byla potom upravena na. 37 °C, načež bylo přidáno 20 litrů směsi aktivovaného pankreatu. Druhá proteolýza probíhala po· dobu 10 hodin, hodnota pH byla zjišťována každé dvě hrdiny a v případě potřeby byla upravována pomocí hydroxidu sodného na hodnotu pH 8. Teplota byla udržována na 37 °C. Po proběhnutí druhé proteolýzy se směs zahřála k teplotě varu a potom byla přefiltrována přes síto. Tímto· způsobem bylo získáno 417 • litrů hnědavého filtrátu o koncentraci heparinu 32,0 m. j./ml, odpovídající 13,32 miliónu m. j. heparinu. Ve srovnání s dále uvedeným příkladem 5 činil výtěžek pouze 62,7 %.
Příklad 3
Postup podle tohoto příkladu je postupem srovnávacím. Suchý, granulovaný heparinový koncentrát byl zpracován způsobem uvedeným v maďarském patentu č. 148 776. Při tomto postupu bylo 11,2 kg granulovaného· heparinového koncentrátu pečlivě promícháno se 195 litry vody v duplikátoru s míchadlem. Potom bylo přidáno 6,5 kg hydroxidu sodného· a hodnota pH byla upravena na 10 pomocí 40% hydroxidu sodného. Za pravidelného míchání byla . teplota směsi zvýšena pomocí . páry na 65 °C a za této teplo.y byla uvedená ·směs zpracována peroxidem. K tomuto účelu bylo 250 mililitrů 40% peroxidu vodíku zředěno vodou na 4,1 litru, načež 1 litr takto zředěného roztoku byl přimíchán do· směsi. Zbývající 3 litry byly postupně přidávány do systému pravidelnou rychlostí během 30· m;nut, přičemž byla stále udržována teplota 65 °C. Po zpracování směsi peroxidem se směs míchala po dobu 1 hodiny při teplotě ·65 °C a potom se přidalo· 600· gramů chloridu amonného, přičemž tato směs měl a hodnotu pH 8,7. Potom se směs zahřála prostřednictvím pláště duplikátoru až k teplotě varu a na této teplotě byla udržována po dobu 5 minut, přičemž potom bylo zahřívání a míchání zastaveno.
Směs se během 15 minut nechala usadit a světle žlutá, zcela průsvitná kapalina nad zbytky extrahovaných živočišných orgánů, usazených na dně zařízení, se dekantovala pomocí drenážní výpustě, umístěné na boční stěně zařízení. Po dekantaci byla směs zbytků orgánů a vodného · extraktu, vyplňující asi 1/4 zařízení, po promíchání vylita na síto o velikosti ok ·0·,8 mm. Objem spojených extraktů činil 168 litrů, koncentrace heparinu byla 32,4 m. j./ml, odpovídající výtěžku 5,44 miliónu m. j. heparinu. Výtěžek ve srovnání s dále uvedeným příkladem 5 byl pouze 72,4 %. t
P ' ř i k 1 a d 4
Podle tohoto příkladu provedení bylo 5,0 kilogramů suchého, granulovaného heparinového koncentrátu o kvalitě specifikované v příkladu 1, rozděleno na 10 stejných dílů, přičemž takto získané · 0,5kg podíly byly zpracovány metodou přerušované protiproude extrakce v pěti extrakčních stupních, přičemž objem extrakčních roztoků byl vždy
3,2 litru. Extrakční stupně probíhaly následujícím způsobem.
První podíl 0,5 kg suchého, granulovaného heparinového koncentrátu byl vložen do- extrakční nádoby obsahující 3,2 litru směsi 0,25 N hydroxidu sodného obsahujícího 6 % hmotnostních · chloridu sodného, o teplotě 40 C. Směs byla míchána při teplotě 40 CC po dobu 20 minut. Po 20 minutách byl extrakt zfiltrován vakuovým způsobem na Biíchnerově nálevce, přičemž jako filtračního prostředku bylo použito kovového sítka s velikostí ok 0,6 mm. Takto získaný první extrakční filtrát byl jímán, přičemž byla u něho zjišťována aktivita heparinu.
Podél mokrých živočišných orgánů, zachycený na sítu se opět smíchal při teplotě 40 °C s roztokem 0,25 N hydroxidu sodného· obsahujícího 6 % hmotnostních chloridu sodného o celkovém množství 3,2 litru extrakčního objemu. Druhá extrakce již jednou extrahovaných orgánů proběhla jako předtím. Druhý extrakční filtrát již jednou extrahovaného podílu suché heparinové ’ suroviny se smíchal s druhým 50-0gramovým podílem suchého heparinového koncentrátu a extrakční objem byl doplněn do' 3,2 litru pomocí již uvedeného roztoku. Další stupně byly prováděny stejným způsobem přerušované protiproudé extrakce. Extrakční objem byl · vždy 3,2 litru a teplota byla 40 °C.
Filtrát z posledního extrakčního· stupně předchozí vsázky granulovaného· koncentrátu se vždy použije pro extrakci následující čerstvé vsázky suchého granulovaného· koncentrátu. Takto získaný filtrát .je v každém stupni oddělován jako část konečného extraktu.
Objemy a aktivita heparinu v jednotlivých získaných extrakčních roztocích je uvedena ních podílů jsou uvedeny pouze souhrnné výsledky.
souhrnně · v následující tabulce. Pouze u desátého podílu jsou uvedeny výsledky jednotlivých stupňů extrakce, přičemž u ostat-
Číslo podílu | Objem filtrátu (ml) | Aktivita heparinu (m. j./ml) | Obsah heparinu (milión m. j.) |
I. | 1770 | 83 | 0,147 |
II. | 1810 | 118 | 0,214 |
III. | 1790 | 133 | 0,238 |
IV. | 1750 | 140 | 0,245 |
v. | 1800 | 143 | 0,257 |
VI. | 1770 | 153 | 0,271 |
VII. | 1800 | 153 | 0,275 |
VIII. | 1780 | 152 | 0,271 |
IX. | 1815 | 149 | 0,270 |
X./1 | 1790 | 153 | 0,274 |
stupeň | |||
X./2 | 1800 | 52,5 | 0,095 |
stupeň | |||
X./3 | 1850 | 16,4 | 0,030 |
stupeň | |||
X,/4 | 1830 | 5,2 | 0,009 |
stupeň | |||
X./5 | 1780 | 1,8 | 0,003 |
Celkem | 2,599 |
Jak ukazuje tabulka, z 5 kg suchého, granulovaného heparinového koncentrátu o· obsahu 90,4 °/o sušiny bylo· získáno 2,599 miliónů m. j. heparinu za pomoci pětistupňové přerušované protiproudé extrakce. Z hodnot aktivit heparinu v každém extrakčním stupni u 10. podílu je· možno' udělat závěr, že 'tato· extrakce proběhla exhaustivním způsobem. Výtěžek byl prakticky shodný s výtěžkem uvedeným v následujícím příkladu 5, to jest 98,3 %.
Příklad 5
Suchý, granulovaný heparinový koncentrát o stejné kvalitě jako v příkladu 1 byl podle tohoto příkladu provedení extrahován protiproudým způsobem v U-extraktoru uvedeném v maďarském patentu 159 977.
Při provádění tohoto postupu byl 'suchý, granulovaný heparinový koncentrát · nepřetržitě přiváděn do extraktoru šnekovým dávkovačem. Rozprašovacími hlavicemi, umístěnými nad dávkovačem byl přiváděn roztok 0,55 N hydroxidu sodného, obsahující 6 % hmotnostních chloridu sodného, ó' teplotě 70 °C a o objemu rovnajícímu se dvojnásobku množství přiváděné suroviny. Doba prodlení materiálu ve šnekovém dávkovači byla 10 · minut. Objem extrakční kapaliny k · objemu nabotnalého materiálu byl 5 :1. V dalším postupu byl k nabotnalému materiálu přidáván roztok 6% chloridu sodného obsahující 0,1 N hydroxid sodný, přičemž toto zpracování ' bylo provedeno· protiproudně vzhledem k postupu nabotnalého materiálu vedeného do komor U-extraktoru. Během kontinuální protiproudé extrakce pro bíhající v zařízení byla udržována teplota 50 °C. K usnadnění dopravy materiálu bylo použito· vibrátoru, umístěného na dně U-ex- . traktoru, pomocí kterého· byl aplikován · na materiál rázový posun.
Kontinuálně vznikající objem extrakční kapaliny, která měla světle hnědou barvu a byla téměř průhledná, byl měřen rotametrem a koncentrace heparinu byla stanovována u vzorků odebíraných každých 30· minut.
Obsah heparinu v kontinuálně · vznikajícím extraktu ·v protiproudem extrakčním systému byl separován obvyklým způsobem, používaným při kontinuálním postupu, přičemž sraženina oddělená na bubnovém filtru byla určena k dalšímu zpracování.
Uvedený postup byl prováděn na · zařízení kapacitou 10 kg vysušené suroviny za hodinu, přičemž doba prodlení materiálu byla 35 · minut.
Po desetihodinovém provozu měl heparin aktivitu v průměru 252 m. j./ml, vycházejíce ze vzorku odebraného z 210 litrů · extraktu. To představuje výtěžek 52,9 miliónu m. j., vztaženo na 100 kg suroviny· o obsahu
90,4 % sušiny.
Při testování vlhkých zbytků granulovaného heparinového koncentrátu, odvedených z и-ех^а^т za účelem zjištění aktivity heparinu, bylo shledáno, že protiproudá extrakce byla realizována s výtěžkem asi 98 procent.
Zbytky extrahovaného granulovaného heparinového koncentrátu je možno použít jako vynikajícího krmivá pro zvířata, přičemž tento materiál obsahuje vysokou koncentraci proteinů.
Claims (1)
- Způsob přípravy vodných extraktů stálého složení s nízkým obsohem tuků a dalších. znečišťujících složek a s vysokým obsahem heparinu, . přičemž se vychází ze suchého, amorfního koncentrátu, který si zachovává svoji granulovanou formu, · s hmotnostním obsahem sušiny v rozmezí od 90 do 95 % a s velkým specifickým povrchem, získaným z živočišných tkání obsahujících heparin tak, že ' se podrobí vodná suspenze rozřezaných živočišných tkání autolýze, přičemž po· autolýze se suspenze tepelně zpracuje při teplotě v rozmezí od 75 do 100 °C a takto získaný vysrážený komplex obsahující heparin se oddělí a oddělená sraženina se suší na obsah 90· až 95 % . hmotnostních sušiny, vyznačující se tím, že tento suchý granulovaný koncentrát, obsahující heparin, se podrobí při teplotě v rozmezí od 20· do 80· C,C kontinuální nebo přerušované protiproudé extrakci vodným roztokem chloridu sodného o koncentraci v rozmezí od 1,5 do 12 % hmotnostních, který se zalkalizuje hydroxidem sodným na hodnotu pH v · rozmezí od 8 · do 12,8.
Applications Claiming Priority (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
HU79RI705A HU177887B (en) | 1979-03-21 | 1979-03-21 | Process for preparing a raw material containing heparin |
Publications (1)
Publication Number | Publication Date |
---|---|
CS248011B2 true CS248011B2 (en) | 1987-01-15 |
Family
ID=11001090
Family Applications (2)
Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
---|---|---|---|
CS801897A CS248011B2 (en) | 1979-03-21 | 1980-03-19 | Preparation method of water extracts of permanent composition with low content of fat and other contaminating components with high content of heparin |
CS801898A CS248012B2 (en) | 1979-03-21 | 1980-03-19 | Production method of the raw material containing heparin with the enriched of active compound |
Family Applications After (1)
Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
---|---|---|---|
CS801898A CS248012B2 (en) | 1979-03-21 | 1980-03-19 | Production method of the raw material containing heparin with the enriched of active compound |
Country Status (26)
Country | Link |
---|---|
US (1) | US4315923A (cs) |
JP (2) | JPS55164201A (cs) |
AR (2) | AR219226A1 (cs) |
AT (2) | AT368004B (cs) |
AU (2) | AU533021B2 (cs) |
BE (2) | BE882370A (cs) |
BR (2) | BR8001717A (cs) |
CA (2) | CA1137081A (cs) |
CS (2) | CS248011B2 (cs) |
DD (2) | DD149532A5 (cs) |
DE (2) | DE3010972A1 (cs) |
DK (2) | DK166504C (cs) |
ES (2) | ES490537A0 (cs) |
FR (2) | FR2451744A1 (cs) |
GB (2) | GB2045271B (cs) |
GR (2) | GR67681B (cs) |
HU (1) | HU177887B (cs) |
IN (1) | IN153527B (cs) |
IT (2) | IT1133068B (cs) |
NL (2) | NL8001695A (cs) |
NZ (2) | NZ193188A (cs) |
PL (2) | PL134709B1 (cs) |
SE (2) | SE451297B (cs) |
SU (2) | SU1375115A3 (cs) |
YU (2) | YU76580A (cs) |
ZA (2) | ZA801480B (cs) |
Families Citing this family (7)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
US4692435A (en) * | 1978-11-06 | 1987-09-08 | Choay, S.A. | Mucopolysaccharide composition having a regulatory action on coagulation, medicament containing same and process of preparation |
SE449753B (sv) * | 1978-11-06 | 1987-05-18 | Choay Sa | Mukopolysackaridkomposition med reglerande verkan pa koagulation, lekemedel innehallande densamma samt forfarande for framstellning derav |
US4826600A (en) * | 1987-06-24 | 1989-05-02 | Amoco Corporation | Process for treatment of wastewater |
FR2704226B1 (fr) * | 1993-04-22 | 1995-07-21 | Sanofi Elf | 3-desoxy oligosaccharides, leurs procedes de preparation et les compositions pharmaceutiques qui les contiennent. |
AU739225B2 (en) * | 1997-07-16 | 2001-10-04 | Merck Sharp & Dohme B.V. | Process for the production of heparin |
MXPA04012270A (es) * | 2002-06-19 | 2005-07-25 | Can Technologies Inc | Composicion para alimentacion de animales que comprende subproducto de mucosa. |
EP4490233B1 (en) * | 2022-03-08 | 2025-05-21 | Horizon IP, S.L. | Heparin and mixtures of native proteins and peptides from waste tissue of slaughtered animals |
Family Cites Families (16)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
US2410084A (en) * | 1943-12-09 | 1946-10-29 | Upjohn Co | Recovery of heparin |
US2587924A (en) * | 1948-05-27 | 1952-03-04 | Univ Alberta | Methods of producing heparin |
US2571679A (en) * | 1948-07-08 | 1951-10-16 | Carlo Erba S A | Process for preparing purified heparin |
DE950594C (de) * | 1953-07-01 | 1956-10-11 | Upjohn Co | Verfahren zur Gewinnung von Heparin |
GB872214A (en) * | 1957-09-23 | 1961-07-05 | Upjohn Co | Extraction process for the recovery of heparin |
US2989438A (en) * | 1958-12-29 | 1961-06-20 | Roussel Uclaf | Process of purifying heparin, and product produced therefrom |
GB1221784A (en) * | 1967-04-07 | 1971-02-10 | John Ernest Scott | Precipitation of heparin from aqueous solution |
US3451996A (en) * | 1968-02-12 | 1969-06-24 | Thompson Farms Co | Method for the preparation of heparin |
IT1019525B (it) * | 1972-03-21 | 1977-11-30 | Ferdinando D | Metodo apparecchio e prodotto per formare complessi stabili di polia nioni |
US4192916A (en) * | 1975-10-31 | 1980-03-11 | A. H. Robins Company, Incorporated | Process for producing defatted heparin tissue for heparin production |
DE2646678C2 (de) * | 1975-10-31 | 1985-11-28 | A. H. Robins Co. Inc., Richmond, Va. | Verfahren zur Herstellung eines entfetteten Heparin-Gewebes |
DE2646677C2 (de) * | 1975-10-31 | 1985-11-07 | A. H. Robins Co. Inc., Richmond, Va. | Verfahren zum Tempern von gefrorenem, Heparin führendem tierischem Gewebe |
US4188467A (en) * | 1975-10-31 | 1980-02-12 | A. H. Robins Company, Incorporated | Process for tempering tissue for heparin production |
DE2652272C2 (de) * | 1976-11-12 | 1979-02-15 | Schering Ag, 1000 Berlin Und 4619 Bergkamen | Verfahren zur Herstellung von Heparin |
DE2660052A1 (de) * | 1976-11-12 | 1979-01-25 | Schering Ag | Verfahren zur herstellung von heparin |
US4175182A (en) * | 1978-07-03 | 1979-11-20 | Research Corporation | Separation of high-activity heparin by affinity chromatography on supported protamine |
-
1979
- 1979-03-21 HU HU79RI705A patent/HU177887B/hu unknown
-
1980
- 1980-03-11 AT AT0134880A patent/AT368004B/de not_active IP Right Cessation
- 1980-03-13 ZA ZA00801480A patent/ZA801480B/xx unknown
- 1980-03-17 AT AT0144280A patent/AT365927B/de not_active IP Right Cessation
- 1980-03-18 ZA ZA00801564A patent/ZA801564B/xx unknown
- 1980-03-18 SE SE8002125A patent/SE451297B/sv not_active IP Right Cessation
- 1980-03-18 SE SE8002126A patent/SE453725B/sv not_active IP Right Cessation
- 1980-03-18 PL PL1980222794A patent/PL134709B1/pl unknown
- 1980-03-19 YU YU00765/80A patent/YU76580A/xx unknown
- 1980-03-19 US US06/131,824 patent/US4315923A/en not_active Expired - Lifetime
- 1980-03-19 GR GR61492A patent/GR67681B/el unknown
- 1980-03-19 CS CS801897A patent/CS248011B2/cs unknown
- 1980-03-19 CS CS801898A patent/CS248012B2/cs unknown
- 1980-03-19 GR GR61493A patent/GR67682B/el unknown
- 1980-03-20 DK DK119780A patent/DK166504C/da not_active IP Right Cessation
- 1980-03-20 SU SU802897802A patent/SU1375115A3/ru active
- 1980-03-20 FR FR8006267A patent/FR2451744A1/fr active Granted
- 1980-03-20 YU YU00769/80A patent/YU76980A/xx unknown
- 1980-03-20 CA CA000348224A patent/CA1137081A/en not_active Expired
- 1980-03-20 SU SU802897057A patent/SU1366042A3/ru active
- 1980-03-20 NZ NZ193188A patent/NZ193188A/en unknown
- 1980-03-20 AU AU56636/80A patent/AU533021B2/en not_active Ceased
- 1980-03-20 DD DD80219786A patent/DD149532A5/de not_active IP Right Cessation
- 1980-03-20 DK DK119480A patent/DK166393C/da not_active IP Right Cessation
- 1980-03-20 FR FR8006266A patent/FR2451743A1/fr active Granted
- 1980-03-20 CA CA000348222A patent/CA1152894A/en not_active Expired
- 1980-03-20 DD DD80219787A patent/DD149467A5/de unknown
- 1980-03-20 AU AU56637/80A patent/AU529809B2/en not_active Ceased
- 1980-03-21 AR AR280392A patent/AR219226A1/es active
- 1980-03-21 BE BE0/199895A patent/BE882370A/fr not_active IP Right Cessation
- 1980-03-21 AR AR280393A patent/AR222215A1/es active
- 1980-03-21 IT IT67438/80A patent/IT1133068B/it active
- 1980-03-21 BE BE0/199894A patent/BE882369A/fr not_active IP Right Cessation
- 1980-03-21 JP JP3600680A patent/JPS55164201A/ja active Granted
- 1980-03-21 NL NL8001695A patent/NL8001695A/nl not_active Application Discontinuation
- 1980-03-21 BR BR8001717A patent/BR8001717A/pt unknown
- 1980-03-21 IT IT67444/80A patent/IT1133074B/it active
- 1980-03-21 NZ NZ193215A patent/NZ193215A/en unknown
- 1980-03-21 GB GB8009608A patent/GB2045271B/en not_active Expired
- 1980-03-21 DE DE19803010972 patent/DE3010972A1/de active Granted
- 1980-03-21 PL PL1980222906A patent/PL128250B1/pl unknown
- 1980-03-21 DE DE19803011062 patent/DE3011062A1/de not_active Withdrawn
- 1980-03-21 ES ES490537A patent/ES490537A0/es active Granted
- 1980-03-21 GB GB8009611A patent/GB2045272B/en not_active Expired
- 1980-03-21 NL NL8001693A patent/NL8001693A/nl not_active Application Discontinuation
- 1980-03-21 BR BR8001711A patent/BR8001711A/pt unknown
- 1980-03-21 JP JP3601280A patent/JPS55164202A/ja active Granted
- 1980-03-21 ES ES490538A patent/ES8102581A1/es not_active Expired
- 1980-08-21 IN IN952/CAL/80A patent/IN153527B/en unknown
Also Published As
Similar Documents
Publication | Publication Date | Title |
---|---|---|
JP3935938B2 (ja) | ▲ii▼型コラーゲンの調製法 | |
US2583096A (en) | Process for the production of high viscosity hyaluronic acid | |
US3451996A (en) | Method for the preparation of heparin | |
WO1997025435A9 (en) | Method for preparation of type ii collagen | |
CN1151222C (zh) | 骨胶原的制备方法 | |
EP0050431B1 (en) | Protein production | |
CS248011B2 (en) | Preparation method of water extracts of permanent composition with low content of fat and other contaminating components with high content of heparin | |
US5061627A (en) | Method for preparing enzymes from crustaceans | |
JPH1149972A (ja) | 殻廃棄物からアスタキサンチン及びキトーサンを同時に生成する方法 | |
RU2001577C1 (ru) | Способ фракционировани сухих молочных продуктов | |
WO1986000788A1 (en) | Separation process with recovery of proteins and fats from substances of animal origin, organic substances or refluent from working organic substances and a plant to carry out the process | |
RU2039819C1 (ru) | Способ получения коллагеназы | |
JPS6157520A (ja) | フコイダン純度の高い溶液又は、フコイダンの製造方法 | |
DE2757377A1 (de) | Verfahren zum stabilisieren, konzentrieren und reinigen von insulin | |
US4394374A (en) | Thymus gland extracts | |
SU899611A1 (ru) | Способ производства жемчужного пата из чешуи рыб | |
US2752286A (en) | Extraction of insulin from pancreas tissue | |
US2751329A (en) | Preparation of pancreatic enzymes-ribonuclease, trypsinogen, chymotrypsin b and alphachymotrypsin | |
Phan et al. | Research on Eggshell Membrane Separation for High-Purity Calcium Carbonate (CaCO3) Recovery | |
CN1038104A (zh) | 提取超氧化物歧化酶复合物的方法 | |
EP0540513A1 (en) | Process for recovering proteins and fats from waste flesh and the like and apparatus to implement the process | |
SU1382469A1 (ru) | Способ извлечени белка из костного остатка,полученного в результате механической дообвалки кости | |
RU2010831C1 (ru) | Способ подготовки костного сырья к производству клея и желатина | |
JPH01128795A (ja) | デオキシリボ核酸の製造方法 | |
DD275481A1 (de) | Verfahren zur gewinnung von desoxyribonucleinsaeure aus fischmilch |