具体实施方式
以下实施例用于说明本发明,但不用来限制本发明的范围。
实施例1:红景天胶囊
1、组成:红景天100g,黄芪30g,红花15g。
2、制备方法:
1)将上述重量配比的各种药物分别筛选、挑拣、整理;
2)然后将药物粉碎至40-80目,填充入胶囊,即得。
3、用法用量:每日2次,每次4粒。
实施例2:红景天胶囊
1、组成:红景天75g,黄芪55g,红花8g。
2、制备方法:
1)将上述重量配比的各种药物分别筛选、挑拣、整理;
2)提取:红景天和黄芪的提取方法如下;
①取处方量的红景天、黄芪加95%乙醇回流提取两次,每次2h,两次溶剂用量分别为10倍量。
②合并醇提液,用120目不锈钢筛过滤,将醇提液减压浓缩回收乙醇并浓缩至相对密度为1.25(50℃测定)的浸膏(真空度75KPa,温度65℃)。
③将浸膏真空干燥,真空度0.1MPa,温度55℃,将干膏粉碎成80目的细粉,得醇提浸膏粉(收膏率约为6%)。
④药渣用水煎煮提取2次,每次2小时,第一次用10倍量水煎煮提取,第二次用6倍量水煎煮提取。
⑤合并煎煮液,用120目不锈钢筛过滤,滤液减压浓缩至相对密度1.20(50℃测定),真空度75KPa,温度65℃的浸膏。
⑥浸膏真空干燥,真空度0.1MPa,温度55℃。将干膏粉碎成80目的细粉,得水提浸膏粉(收膏率为8%)。
3)然后将步骤2)得到的浸膏粉粉碎过80目筛,与粉碎过100目筛的红花混合均匀,装胶囊。
3、用法用量:每日2次,每次3粒。
实施例3:红景天胶囊
1、组成:红景天30g,黄芪50g,红花25g
2、制备方法:
1)将上述重量配比的各种药物分别筛选、挑拣、整理;
2)对红景天和黄芪进行提取,其提取方法如下:
①取处方量的红景天、黄芪加75%乙醇回流提取两次,每次2h,第一次溶剂用量为8倍量,第二次用量为6倍量。
②合并醇提液,用120目不锈钢筛过滤,将醇提液减压浓缩回收乙醇并浓缩至相对密度为1.25(50℃测定)的浸膏(真空度75KPa,温度65℃)。
③将浸膏真空干燥,真空度0.1MPa,温度55℃。将干膏粉碎成80目的细粉,得醇提浸膏粉(收膏率约为7.8%)。
④药渣用水煎煮提取2次,每次2小时,第一次用8倍量水煎煮提取,第二次用6倍量水煎煮提取。
⑤合并煎煮液,用120目不锈钢筛过滤,滤液减压浓缩至相对密度1.20(50℃测定),真空度75KPa,温度65℃的浸膏。
⑥浸膏真空干燥,真空度0.1MPa,温度55℃。将干膏粉碎成80目的细粉,得水提浸膏粉(得膏率为10.9%)。
3)然后将步骤2)得到的醇提取浸膏粉、水提取浸膏粉分别粉碎过80目筛,与粉碎过100目筛的红花混合均匀,装胶囊。
3、用法用量:每日2次,每次3粒。
实验例1:景天红花胶囊安全性毒理学评价试验
1、实验药物:红景天胶囊(按照实施例3的方法制备),由石家庄藏诺生物科技有限公司提供,其中内容物外观为砖红色粉状物,推荐量为2.4g/60kg/日。
2、实验动物:清洁级昆明种小鼠及SD大鼠,购自河北省实验动物中心;饲养环境:室温:22-25℃,相对湿度:60-70%。
3、实验方法:
3.1小鼠急性经口毒性试验:选用清洁级昆明种小鼠20只,体重18-22克,雌雄各半,按MTD法(最大耐受量)进行试验。称取受试物60g加去离子水至160ml混匀,采用等体积灌胃法(0.2ml/10g·bw)24小时内二次灌胃,剂量为15000mg/kg·bw。连续观察两周,记录中毒表现及死亡情况。
3.2大鼠急性经口毒性试验:选用清洁级SD大鼠20只,体重180-220克,雌雄各半,按MTD法进行试验。称取受试物120g加去离子水至320ml混匀,采用等体积灌胃法(2ml/100g·bw)24小时内二次灌胃,剂量为15000mg/kg·bw。连续观察两周,记录中毒表现及死亡情况。
4、结果
4.1小鼠急性经口毒性试验:见表1
表1:红景天胶囊对小鼠的急性经口毒性试验
表1结果显示:红景天胶囊15000mg/kg·bw的剂量条件下,雌雄小鼠均未见中毒症状及死亡。该产品对雌雄小鼠的MTD均大于15000mg/kg·bw,由此推断其急性经口毒性试验LD50大于15000mg/kg·bw。
4.2大鼠急性经口毒性试验:见表2。
表2:红景天胶囊对大鼠的急性经口毒性试验
表2结果显示:红景天胶囊15000mg/kg·bw的剂量条件下,两种性别的大鼠均未见中毒症状及死亡。该产品对雌雄大鼠的MTD均大于15000mg/kg·bw,其急性经口毒性试验LD50大于15000mg/kg·bw。
同样,对实施例1、2及本发明的配方进行相同的实验,结果与实施例3的相同,未见到中毒症状及死亡。
5、结论:根据急性毒性分级,本发明的红景天胶囊属无毒物。
实验例2:红景天胶囊Ames实验报告
1、实验药物:受试物为红景天胶囊(按照实施例1的方法制备),由石家庄藏诺生物科技有限公司提供,推荐量为2.4g/60kg/日。
2、实验方法:
采用平板掺入法,分加与不加S-9混合液两种。剂量分别为0.008、0.040、0.200、1.000、5.000mg/皿,另设空白对照组、溶剂对照组(去离子水)和阳性对照组。
受试物配制方法为,称取受试物2.5g溶于50ml去离子水中,0.103Mpa20分钟灭菌为原液;取原液1ml加灭菌去离子水4ml为1.000mg/皿剂量;依次5倍稀释成其它剂量。取各剂量组液体100μl加入顶层培养基中。阳性对照组使用2-AF20μg/皿、2,4,7-TNFone 0.5μg/皿、NaN3 2.5μg/皿、丝裂霉素C4.0μg/皿、1,8二羟基蒽醌50μg/皿,每个剂量组做三个平行皿,重复做两次。菌株为TA97(a)、TA98、TA100、和TA102四株菌,S-9用量为每皿0.5mlS-9混合液(含S-950μl)。菌株购自天津市卫生防病中心,S-9购自中国疾病预防控制中心职业卫生与中毒控制所,试剂购自于北京化学试剂公司。
3、实验结果:
由表3可见,红景天胶囊对TA97(a)、TA98、TA100、和TA102四株试验菌株,在加与不加S-9的情况下,均未呈现致突变作用。
实验例3:红景天胶囊小鼠骨髓嗜多染红细胞微核(MNPCE)试验
1、实验药品:红景天胶囊(按照实施例3的方法制备),由石家庄藏诺生物科技有限公司提供,推荐量为2.4g/60kg/日。
2、实验动物:清洁级昆明种小鼠,体重25-30克,购自河北省实验动物中心。饲养环境:室温:22-25℃,相对湿度:60-70%。
3、实验方法:
选用清洁级昆明种小鼠50只,随机分为五组,每组10只,雌雄各半;设三个剂量组:1900mg/kg·bw、3750mg/kg·bw、7500mg/kg·bw。
受试物配制方法为:称取受试物7.5g、15g、30g分别加去离子水至80ml混匀;同时设阴性对照组(去离子水)和阳性对照组(环磷酰胺200mg加生理盐水至100ml,剂量为40mg/kg·bw)。采用等体积灌胃法(0.2ml/10g·bw),各组均间隔24小时两次给养,第二次给养后6小时取胸骨骨髓制片,每只动物计数1000个嗜多染红细胞(PCE),计算其微核发生率;计数200个嗜多染红细胞视野内的成熟红细胞(RBC),计算PCE/RBC比值。
4、实验结果:(见表4)
表4:红景天胶囊小鼠骨髓嗜多染红细胞微核试验结果
表4结果显示:红景天胶囊的三个剂量组的微核发生率均在正常范围内,与阴性对照组比较无显著差异(P>0.05),阴性对照组与阳性对照组相比较差异显著(P<0.01),该产品微核试验阴性。
同样,对实施例1、2及本发明的其他配方进行相同的实验,结果与实施例3的相同,微核试验阴性。
实验例4:红景天胶囊小鼠精子畸形试验报告
1、实验药品:红景天胶囊(参考实施例2的方法制备),由石家庄藏诺生物科技有限公司提供,推荐量为2.4g/60kg/日。
2、实验动物:清洁级昆明种雄性小鼠,体重30-35克,购自河北省实验动物中心。饲养环境:室温:22-25℃,相对湿度:60-70%。
3、试验方法:
选用清洁级昆明种性小鼠25只,随机分为五组,每组五只;设三个剂量组:1900、3750、7500mg/kg·bw。
受试物配制方法为:称取受试物15、30、60g分别加去离子水至160ml混匀;同时设阴性对照组(去离子水)和阳性对照组(环磷酰胺200mg加生理盐水至100ml,剂量为40mg/kg·bw)。采用等体积灌胃法(0.2ml/10g·bw),连续经口给养5天,从首次给养计第35天处死动物,取双侧附睾制片,每只动物计数1000个精子,计算畸形率。
4、实验结果:(见表5)
表5:小鼠精子畸形试验结果
表5结果显示:红景天胶囊的三个剂量组的精子畸形率均在正常范围内,与阴性对照组比较无明显差异(P>0.05),阴性对照与阳性对照组比较差异显著(P<0.01),该产品小鼠精子畸形试验阴性。
同样,对实施例1、3及本发明的其他配方进行相同的实验,结果与实施例3的相同,小鼠精子畸形试验阴性。
实验例5:30天喂养试验报告
1、实验药物:红景天胶囊(实施例3的方法制备),由石家庄藏诺生物科技有限公司提供,推荐量为2.4g/60kg/日。
2、实验动物:清洁级SD大鼠,雄性大鼠体重66.5±7.5克,雌性大鼠体重66.8±6.8克,购自河北省实验动物中心。饲养环境:室温:22-25℃,相对湿度:60-70%。
3、试验方法:选用清洁级SD大鼠80只,雌雄各半,随机分为四组,每组20只,单笼饲养。红景天胶囊样品推荐量为2.4g/60kg/日,受试物设三个剂量,分别为1.0g/kg·bw、2.0g/kg·bw、4.0g/kg·bw(相当于推荐量的100倍),大鼠的日进食量按体重的10%计算,受试物掺入饲料的比例分别为1.0%、2.0%、4.0%;设一个阴性对照组,阴性对照组喂养基础饲料。各剂量组连续喂养30天,喂养期间各组动物均自由进食和饮水,每周称一次鼠体重并记录二次饲料消耗量,计算每周食物利用率。试验末期采尾血进行血液学和生化学检查。
4、检测指标:
实验过程中,观察生长发育、食物利用率、血液学检查(采用MEK-6318K血细胞分析仪测定)、生化学检查(分离血清后采用相应试剂盒及德国Human公司F1型全自动生化分析仪测定);
试验末期处死大鼠,解剖取肝、脾、肾、睾丸称重,计算脏器系数,然后对肝、肾、脾、胃、十二指肠、睾丸、卵巢进行组织病理学检查(石蜡切片)。
5、实验统计:采用SPSS11.5 for Windows进行统计分析。当P<0.05时,用LSD法进行多个试验组与对照组间均数的两两比较。
6、实验结果:见表6
6.1一般状况:经过30天喂养,各组发育良好,未见异常体征,大鼠全部存活。
6.2对大鼠体重的影响:见表6
表6结果显示:组间比较无显著性差异。
6.3对大鼠食物利用率的影响:结果见表7-1、表7-2、表7-3。
表7-1、7-2、7-3结果显示:各组大鼠的周进食量、周食物利用率及总食物利用率经方差分析,组间比较无显著性差异。
6.4血液学检查:(见表8)
与对照组比较:*P<0.05,**<0.01
表8结果显示:试验结束时,各组动物红细胞、血红蛋白、白细胞及分类均在本实验室历史对照范围内波动。个别受试物组与对照组白细胞分类出现的统计学差异,不具有生物学意义。6.5末期生化检验结果:(结果见表9-1、9-2、9-3)。
表9-1:末期生化检验结果
表9-3:末期生化检验结果
表9-1、9-2、9-3结果显示:试验结束时,各组动物谷丙转氨酶(速率法)、谷草转氨酶(速率法)、血糖(己糖激酶法)、尿素氮(酶法)、甘油三酯(酶法)、肌酐(苦味酸两点法)、总蛋白(双缩脲法)、白蛋白(溴甲酚氯法)等指标均在正常范围内波动,各实验组血清生化值均无显著性差异。
6.6红景天胶囊对大鼠脏器重量和脏/体比值的影响:
见表10-1、10-2。
表10-2:各组动物脏器重量和脏/体比值
表10-1、10-2结果显示:各实验组脏器重量和脏/体比值均无显著差异。
同样,对实施例1、2及本发明的其他配方进行30天喂养实验,结果与实施例3的相同。
6.7红景天胶囊30天喂养试验病例报告:
6.7.1大体检查:试验结束时,处死动物共80只,剖检后进行肉眼观察心脏、肺、肝脏、脾脏、胃、十二指肠、睾丸、卵巢等脏器形态、颜色、质地未见异常。
6.7.2对肝、肾、胃、十二指肠、睾丸、卵巢肠固定进行组织病理学检查,共检查高剂量实验组和对照组大鼠共40只,雌雄各半。
肝脏:40只大鼠的肝脏结构清晰辨识,肝小叶排列整齐,肝细胞以中央静脉为轴心呈大致辐射状走向。对照组1例(雄)肝细胞胞浆中偶见少量小气泡,高剂量组1例(雄)偶见单个肝细胞坏死,未见其他明显病理改变。对照组与测试组个别标本肝细胞改变,考虑由实验动物质量所致。
肾脏:40只大鼠肾脏结构清晰辨识,肾单位呈均匀分布。肾小球类圆形,血管球可见丰富的毛细血管断面,肾球囊围在血管球周围由上皮细胞环绕形成半月型腔隙。肾小管由曲管和集合管等部分组成。肾单位间分布着较稀疏的纤维结缔组织及血管等。肾孟粘膜由菲薄的移行上皮被覆。均可见少量肾小管上皮细胞胞浆呈嗜酸性改变、核浓缩。未见肾间质炎细胞浸润和纤维组织增生。少数肾小管上皮细胞的改变,考虑为动物本身因素所致。
胃、十二指肠:40只大鼠胃壁结构易于识别。前胃部分粘膜上皮为复层鳞状上皮,近胃窦部分粘膜上皮为单层柱状上皮。固有膜内分布着大量腺体,多数腺细胞为壁细胞,其间散布者少量粘液细胞,腺体较下部分则多见主细胞。胃腺之间有结缔组织及血管等。肌层较厚,呈环、纵不同走向。最外层为浆膜层。无出血、坏死及炎性渗出,也无腺细胞组成的变化。40只大鼠十二指肠粘膜、粘膜下层、肌层、浆膜各层均可清晰辨识,粘膜表面可见指状突起的绒毛,覆以单层柱状上皮。粘膜内有肠腺、毛细血管、结缔组织。肌层外为浆膜层。各层未见出血、坏死及炎细胞浸润。
脾脏:40例大鼠脾脏结构易于辨认。血管穿行于结缔组织的小梁状间隔,团块状分布的白髓中包含脾小体及小动脉,淋巴细胞呈弥散分布于动脉周围。红随广阔分布在白髓与脾小梁之间,组成网状的淋巴细胞条索和丰富的血窦,可见血窦稍有扩张,窦内聚集大量的红细胞、白细胞及一些网状细胞和吞噬细胞等。
睾丸:20例大鼠睾丸正常组分易于识别,最外层为致密结缔组织形成的白膜,下方有大量的曲精小管的断面散布其中。小管界膜清晰,由外向内可见由精原细胞分裂增殖形成的各阶段细胞和精子。未见出血、坏死及精细胞发育异常。
卵巢:20例大鼠正常卵巢结构易于识别,被膜下方皮质内可见不同发育阶段的卵泡。成熟卵泡具有卵丘、放射冠、颗粒层及卵泡腔等组份。可见排卵后的黄体。卵泡周围由纤维结缔组织和血管包绕。未见卵泡的发育异常及组织内出血、炎症等病理变化。
以上结果表明,对照组和高剂量组雌、雄大鼠的肝、肾、脾、胃、十二指肠、睾丸、卵巢均未见与受试物有关的组织病理学改变。
7、小结:
本实验表明,红景天胶囊对雌雄大、小鼠急性经口毒性试验LD50均大于15000mg/kg·bw,说明该产品属无毒物;三项致突变试验结果阴性;大鼠30天喂养试验各项指标均未见异常。
实验例6:红景天胶囊耐缺氧作用试验报告
1、实验药物:红景天胶囊(实施例3制备的药物),由石家庄藏诺生物科技有限公司提供。人体推荐量为2.4g/日/60kg体重,试验时按所需剂量用去离子水配制。
2、实验动物:雌性昆明种小鼠,体重18-22g,购自河北省实验动物中心。饲养环境:室温:22-25℃,相对湿度:60-70%。
3、实验分组:
对照组(去离子水0.2ml/10g)、红景天胶囊高(1.2g/kg)、中(0.8g/kg)、低剂量组(0.4g/kg)。
红景天胶囊人体推荐量为2.4g/日/60kg体重,小鼠的等效剂量相当于人体推荐量的10倍,即每日服用0.4g/kg体重为低剂量,再按低剂量的2倍和3倍各设一个剂量组,即0.8g/日/kg体重(中剂量)和1.2g/日/kg体重(高剂量)。
4、实验方法:
4.1小鼠常压耐缺氧试验:
末次给予受试物后1小时,将各组小鼠粉分别放入盛有5g钠石灰(别名为碱石灰)的250ml磨口广口瓶内,每瓶一只小鼠,用凡士林封瓶口,盖严,使之不漏气,立即计时,以呼吸停止为指标,观察小鼠因缺氧而死亡的时间。
4.2小鼠亚硝酸钠中毒存活时间
末次给予受试物后1小时,各组动物腹腔注射(0.1ml/10kg)亚硝酸钠水溶液,剂量为240mg/kg·bw,立即计时,记录动物存活时间。
4.3急性脑缺血性缺氧试验
末次给予受试物后1小时,各组动物自颈部遂只断头,立即按秒表记录小鼠断头后至张口喘气停止的时间。
5、统计方法:验数据应用SPSS11.5进行统计,采用方差分析进行组间比较,当P<0.05时,选用LSD进行多个实验组和一个对照组的两两比较。
6、结果
6.1红景天胶囊对小鼠体重的影响:(见表11-13)
剂量(g/kg BW) |
动物数(只) |
一组体重(g) |
二组体重(g) |
三组体重(g) |
0.0 |
12 |
19.0±1.0 |
19.2±1.5 |
19.0±1.1 |
0.4 |
12 |
18.9±1.1 |
19.3±1.2 |
19.1±1.2 |
0.8 |
12 |
19.2±1.3 |
19.0±1.2 |
19.6±1.3 |
1.2 |
12 |
18.7±0.7 |
18.7±0.7 |
19.1±1.2 |
P值 |
|
0.617 |
0.725 |
0.580 |
F值 |
|
0.608 |
0.542 |
0.631 |
剂量(g/kg BW) |
动物数(只) |
一组体重(g) |
二组体重(g) |
三组体重(g) |
0.0 |
12 |
30.8±1.7 |
30.8±2.0 |
30.8±1.7 |
0.4 |
12 |
30.3±2.6 |
30.3±1.6 |
30.3±2.0 |
0.8 |
12 |
30.9±2.4 |
30.3±1.6 |
30.2±1.8 |
1.2 |
12 |
30.4±1.9 |
30.5±1.5 |
30.0±1.7 |
P值 |
|
0.195 |
0.164 |
0.398 |
F值 |
|
0.899 |
0.920 |
0.755 |
剂量(g/kg BW) |
动物数(只) |
一组体重(g) |
二组体重(g) |
三组体重(g) |
0.0 |
12 |
33.3±1.7 |
32.9±1.9 |
32.8±2.1 |
0.4 |
12 |
33.0±2.1 |
33.7±1.8 |
33.3±2.3 |
0.8 |
12 |
32.8±2.4 |
33.3±1.9 |
33.4±1.2 |
1.2 |
12 |
33.3±2.2 |
32.8±2.1 |
33.1±1.9 |
P值 |
|
0.169 |
0.571 |
0.223 |
F值 |
|
0.917 |
0.637 |
0.880 |
表11-13结果显示:经口给予小鼠不同剂量的红景天胶囊30天,各剂量组小鼠的体重变化均无显著性差异(P>0.05)。
6.2红景天胶囊对小鼠常压耐缺氧时间的影响:(见表14)
表14:对小鼠常压耐缺氧时间的影响
剂量(g/kg BW) |
动物数(只) |
耐缺氧时间(s) |
F值 |
P值 |
与对照组比较P值 |
0.0 |
12 |
1279±126 |
|
|
|
0.4 |
12 |
1433±300 |
|
|
0.148 |
0.8 |
12 |
1463±200 |
3.155 |
0.034 |
0.013 |
1.2 |
12 |
1469±139 |
|
|
0.010 |
由表14可见,经口给予小鼠不同剂量的红景天胶囊30天,中、高剂量组常压耐缺氧时间明显长于对照组,差异有显著性(P<0.05)。
6.3红景天胶囊对小鼠亚硝酸钠中毒存活时间的影响:见表15:
表15:对小鼠亚硝酸钠中毒存活时间的影响
剂量(g/kg BW) |
动物数(只) |
存活时间(s) |
F值 |
P值 |
0.0 |
12 |
825±87 |
|
|
0.4 |
12 |
860±151 |
1.689 |
0.183 |
0.8 |
12 |
940±152 |
|
|
1.2 |
12 |
859±95 |
|
|
由表15可知:经口给予小鼠不同剂显著性量的红景天胶囊30天,受试物组小鼠的亚硝酸钠中毒存活时间与对照组比较差异无显著性。
6.4红景天胶囊对小鼠急性脑缺血性缺氧时间的影响:见表16:
表16:对小鼠急性脑缺血性缺氧时间的影响
由表16可知:经口给予小鼠不同剂量的红景天胶囊30天,中、高剂量组小鼠脑缺血性缺氧时间长于对照组,差异有显著性(P<0.05、P<0.01)。
同样,对实施例1、2及本发明的其他配方进行相同的实验,结果与实施例3的相同,体重无明显影响、常压耐缺氧时间增加、亚硝酸钠中毒存活时间无差异、脑缺血性缺氧时间延长。
7、小结:
经口给予小鼠不同剂量的红景天胶囊30天,能明显延长小鼠常压耐缺氧时间,延长小鼠急性脑缺血耐缺氧时间,根据《保健食品功能学评价程序和检验方法》(2003年)的规定,可以确定红景天胶囊具有提高缺氧耐受力功能。
实验例7:红景天胶囊缓解体力疲劳功能试验报告
1、实验药物:红景天胶囊(实施例3的方法制备),由石家庄藏诺生物科技生物有限公司提供,人体推荐量为每日6粒,每粒0.4g。试验时直接将胶囊内容物用去离子水配制成所需计量。
2、实验动物:清洁级雄性昆明种小鼠,体重18-22g,购自河北省实验动物中心。饲养环境:室温22-25℃,相对湿度60-70%。
3、实验分组:
对照组(去离子水0.2ml/10g)、红景天胶囊高(1.2g/kg)、中(0.8g/kg)、低剂量组(0.4g/kg)。
红景天胶囊人体推荐量为2.4g/日/60kg体重,小鼠的等效剂量相当于人体推荐量的10倍,即每日服用0.4k/kg体重为低剂量,再按低剂量的2倍和3倍各设一个剂量组,即0.8g/日/kg体重(中剂量)和1.2g/日/kg体重(高剂量),对照组给去离子水,连续等体积灌胃受试物30天后,测定各项指标。
4、实验方法
4.1游泳试验:末次给予30分钟后,小鼠尾根部负体重5%的铅皮,放入水温为25℃,水深35cm的游泳箱中。每一批小鼠下水之前均将水温调至25℃,并将室温恒定在25℃。每只水箱一次放入6只小鼠。用秒表记录自游泳开始至死亡的时间,改时间为小鼠的游泳时间。
4.2血清尿素氮测定(紫外法)
末次给予受试物30分钟后,将小鼠放于温度30℃的水中游泳90分钟,休息60分钟,摘眼球采血,分离血清用全自动生化分析仪测定。
4.3肝糖原测定(蒽酮法)
末次给予小鼠受试物30分钟后,立即处死。取肝脏经生理盐水漂水后用滤纸吸干,精确称取肝脏100mg,加入8mlTCA,每管匀浆1分钟,将匀浆液倒入离心管,3000转/分离心15分钟,将上清液转移至另一试管内。取1ml上清液放入10ml离心管中,每管加入95%的乙醇4ml,充分混匀至两种液体间不留界面。用干净塞子赛上,室温下竖直放置过夜。沉淀完全后,将试管于3000转/分离心15分钟。小心倒掉上清液并使试管倒立放置10分钟。用2ml去离子水溶解糖原,加水时将管壁的糖原洗下,使之完全溶解。试剂空白:吸2mL去离子水到干净离心管。标准管:吸0.5mL葡萄糖标准液(含100mg/dl葡萄糖)和1.5ml去离子水放入同样的离心管。测定:将10ml蒽酮试剂用力加入各管,液流直接进入管子中央,保证充分混合好。从管子中注入蒽酮试剂时起,将管子放入冷水中,达到冷水温度后,将其浸入沸水浴15分钟,然后移到冷水浴,冷却到室温。将管内液体移入比色皿,620nm波长,用试剂空白调零后测定样品管和标准管的吸光度。根据肝脏重量换算成肝糖原含量(以mg/g肝表示)。
4.4血乳糖测定
末次给予小鼠受试物30分钟后,小鼠不负重放入水温为30℃、水深35cm的游泳箱中游泳10分钟后取出,即刻采尾血20ul,加入盛有40ul溶血剂的试管中混匀,用生物传感分析仪测定血乳酸值。此外,采用同样的方法测定游泳前和游泳后休息20分钟时的血乳酸水平。
5、统计方法:实验数据用应用SPSS11.5进行统计分析,采用方差进行组间比较,当P<0.05时,选用LSD进行多个实验组和一个对照组的两两比较。
6、实验结果
6.1红景天胶囊对小鼠体重的影响(见表17-19)
表17:各组小鼠初始体重
剂量(g/kg BW) |
动物数(只) |
一组体重(g) |
二组体重(g) |
三组体重(g) |
四组体重(g) |
0.0 |
12 |
19.1±1.1 |
19.3±1.1 |
20.1±1.4 |
19.6±1.3 |
0.4 |
12 |
19.5±1.5 |
19.8±1.1 |
19.5±1.2 |
19.6±1.2 |
0.8 |
12 |
19.7±1.2 |
19.6±1.7 |
19.8±1.3 |
19.2±1.5 |
1.2 |
12 |
19.8±1.6 |
19.8±1.3 |
19.8±1.4 |
19.7±1.4 |
P值 |
|
0.649 |
0.269 |
0.393 |
0.327 |
F值 |
|
0.588 |
0.947 |
0.759 |
0.806 |
表18:各组小鼠中期体重
剂量(g/kg BW) |
动物数(只) |
一组体重(g) |
二组体重(g) |
三组体重(g) |
四组体重(g) |
0.0 |
12 |
35.4±2.1 |
36.0±2.7 |
35.8±2.8 |
36.1±2.3 |
0.4 |
12 |
36.9±3.4 |
35.6±2.2 |
35.5±1.8 |
36.0±2.9 |
0.8 |
12 |
35.4±2.8 |
35.5±2.3 |
34.6±2.4 |
35.3±1.9 |
1.2 |
12 |
34.6±2.8 |
34.9±2.9 |
35.2±1.4 |
35.3±3.6 |
P值 |
|
1.468 |
0.369 |
0.434 |
0.298 |
F值 |
|
0.236 |
0.776 |
0.730 |
0.826 |
表19:各组小鼠末期体重
剂量(g/kg BW) |
动物数(只) |
一组体重(g) |
二组体重(g) |
三组体重(g) |
四组体重(g) |
0.0 |
12 |
41.5±4.5 |
42.1±3.7 |
41.3±4.2 |
42.2±2.4 |
0.4 |
12 |
40.9±4.1 |
41.1±2.7 |
40.6±3.1 |
41.3±4.3 |
0.8 |
12 |
40.4±3.8 |
41.4±3.8 |
39.3±2.8 |
41.1±3.8 |
1.2 |
12 |
40.3±4.3 |
41.3±3.1 |
39.8±4.4 |
41.3±3.6 |
P值 |
|
0.200 |
0.204 |
0.669 |
0.229 |
F值 |
|
0.896 |
0.893 |
0.575 |
0.876 |
由表17-19可见,经口给予小鼠不同剂量的红景天胶囊30天,各剂量组小鼠的体重变化与对照组比较无显著性差异(P>0.05)。
6.2红景天胶囊对小鼠游泳时间的影响(见表20)
表20:对小鼠游泳时间的影响
剂量(g/kg BW) |
动物数(只) |
游泳时间(s) |
F值 |
P值 |
与对照组比较P值 |
0.0 |
12 |
370.8±111.6 |
|
|
|
0.4 |
12 |
439.1±93.1 |
|
|
0.121 |
0.8 |
12 |
477.4±98.9 |
2.936 |
0.044 |
0.017 |
1.2 |
12 |
485.3±117.4 |
|
|
0.011 |
表20结果显示:经多个实验组与对照组的两两比较,中、高剂量组的游泳时间明显延长且有显著性差异(P<0.05)。
6.3红景天胶囊对小鼠血清尿素氮的影响(见表21)
表21:对小鼠血清尿素氮的影响
剂量(g/kg BW) |
动物数(只) |
尿素氮含量(mmol/L) |
F值 |
P值 |
与对照组比较P值 |
0.0 |
12 |
2.71±0.30 |
|
|
|
0.4 |
12 |
2.44±0.33 |
|
|
0.030 |
0.8 |
12 |
2.27±0.29 |
8.020 |
0.000 |
0.001 |
1.2 |
12 |
2.16±0.22 |
|
|
0.000 |
表21结果显示:经方差分析P>0.05,经多个实验组与对照组的两两比较,低、中、高剂量组小鼠运动后血清尿素氮水平,均较对照组降低,差异有显著性(P<0.05、P<0.01)
6.4红景天胶囊对小鼠肝糖原的影响:(见表22)
表22:红景天胶囊对小鼠肝糖原的影响
剂量(g/kg BW) |
动物数(只) |
肝糖原含量(mg/100g肝) |
F值 |
P值 |
与对照组比较P值 |
0.0 |
12 |
3610±306 |
|
|
|
0.4 |
12 |
3991±469 |
|
|
0.037 |
0.8 |
12 |
4222±493 |
4.665 |
0.006 |
0.001 |
1.2 |
12 |
4139±445 |
|
|
0.005 |
表22结果显示:经方差分析P<0.05,经多个实验组与对照组的两两比较,低、中、高剂量组小鼠的肝糖原含量与对照组比较有明显提高,差异均有显著性(P<0.05、P<0.01)
6.5红景天胶囊对小鼠血乳酸曲线下面积的影响(见表23)
表23:红景天胶囊对小鼠血乳酸曲线下面积的影响
剂(g/kg BW) |
动物数(只) |
乳酸曲线下面积 |
F值 |
P值 |
与对照组比较P值 |
0.0 |
12 |
207.6±32.8 |
|
|
|
0.4 |
12 |
188.5±30.0 |
|
|
0.261 |
0.8 |
12 |
199.8±66.5 |
0.464 |
0.709 |
0.641 |
1.2 |
12 |
194.8±19.1 |
|
|
0.447 |
表23结果显示:低、中、高剂量组小鼠的血乳酸曲线下面积与对照组比较,差异无显著性。
同样,对实施例1、3及本发明的其他配方进行相同的实验,结果与实施例3的相同,体重无明显影响、游泳时间明显延长、小鼠运动后血清尿素氮水平、肝糖原含量明显增加。
7、小结:经口给予小鼠不同剂量的红景天胶囊30天后,能明显延长小鼠的游泳时间;显著降低小鼠运动后血清尿素氮水平;提高小鼠肝糖原含量。
根据《保健食品检验与评价技术规范》(2003年版)的规定,可判定红景天胶囊具有缓解体力疲劳功能。
虽然,上文中已经用一般性说明、具体实施方式及试验,对本发明作了详尽的描述,但在本发明基础上,可以对之作出一些修改或改进,这对本领域技术人员而言是显而易见的。因此,在不偏离本发明精神的基础上所做的这些修改或改进,均属于本发明要求保护的范围。