CN101073592A - 一种黄芪药材的提取分离方法 - Google Patents
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Abstract
本发明公开了黄芪标准化提取分离方法，采用该方法可较大程度地将中药材中化学成分提取出来并进一步分离获得黄芪中不同极性的化学组分；具体的说就是将黄芪药材按极性分成若干化学组分，每个组分中仅包含几个主要化合物，由这些药材组分构成一个药材组分库。对药材组分库能够进行药物筛选，从而发现新药。该标准化提取分离方法不需要对每个药材都建立一套提取分离方法，大大缩短了药材提取分离的周期，同时也减少人力物力的消耗；该方法简便、推广性好，适用大部分药材。
Description
技术领域
本发明属于医药领域，具体而言是涉及黄芪提取、分离标准化。
背景技术
目前，在全球范围内，中草药都有一定的市场，随着人们对健康要求认识水平的增高以及人口的老龄化，亚健康状态化，人们更加渴望回归自然，利用纯天然程度高的药物治疗、预防一些化学合成药物所不能解决的问题，因此天然植物药的应用超出它原来民族传统文化的背景。从天然药物中寻求副作用小、且物美价廉的药物成为世界各国医药企业所追逐的目标。欧共体对草药进行了统一立法，加拿大和澳大利亚等国草药地位已经合法化，美国政府也已起草了植物药管理办法，开始接受天然药物的复方混合制剂作为治疗药，这些为中药作为治疗药进入国际医药市场提供了良好的国际环境。另一方面，随着全球经济一体化进程的加快，特别是我国正式加入WTO，中国医药市场融入国际医药大市场的广度和深度将进一步加剧。面临强大跨国医药集团的激烈竞争以及日本、韩国、印度、泰国等亚洲国家传统医药产品和德国、法国等欧洲国家植物药的巨大冲击，我国传统中药产生的众多产品由于尚不能符合国际医药市场的标准和要求而被拒之门外。
中药材提取的标准化和中药制备方法的标准化是中成药走向国际市场或者真正实现大工业生产的关键环节，也是中国医药工作者和国外研究天然植物药的科研人员一直努力研究的方向。目前关于中药的提取方法是中药领域研究的重点，科研人员一直将研究的目光着重于采用何种方法才能从中药材中获得的更多的有效成分，因此目前的中药材提取的局面是：针对不同的中药材其有效成分的提取方法也不同，而针对不同的中药材采用不同的提取方法需要有大量不同的提取设备用于支持中药材的提取，这不适于中药材提取的标准化。
黄芪是一种常用中药，味甘、性温，有补气升阳、固表止汗、托毒排脓和生肌等功效(江苏新医学院，中药大辞典(缩印本)下册[M]，上海：上海科学技术出版社，1986，2036-2037)。药用黄芪有两种(中华人民共和国卫生部药典委员会，中华人民共和国药典[M].广州：广东科技出版社，化学工业出版社，1995.271-274)：豆科植物蒙古黄芪[Astragalus.mongholicus(Bge.)Hsiao]及膜荚黄芪[A.membranaceus(Fisch.)Bge.]的干燥根。近年来，研究发现黄芪中含有的黄芪多糖、皂甙、黄酮等化合物具有较强的生物活性。黄芪的化学成分主要包括多糖(葡聚糖和杂多糖)、皂苷类、黄酮类以及氨基酸类物质。黄芪具有免疫调节作用(张建新.黄芪对小鼠免疫功能影响的研究.时珍国医国药，2000，11(6)：448-449.)，可使细胞的生理代谢增强(郭世宁，张克家.黄芪多糖的药理研究进展.中兽医学杂志，1996，83(2)：41-43.)，黄芪皂苷能通过扩张血管达到降压目的(徐先祥，彭代银，刘青云.黄芪皂甙类成分对心血管系统的作用.北京中医药大学学报，2000，23(增刊)：128-130.)，现代科学发现黄芪的总黄酮和总皂苷等成分具有显著的抗氧化活性，能抑制自由基的产生和清除体内过剩的自由基，故能有效地延缓衰老(LIN L Z.Liquid chromatogphy-electrospry ionization mass spectrometry study of the flavonoids of the roots Astragalusmongholicus and A.membranaceus[J].Journal of Chromatography，2000，876(1-2)：87-95.)。
如何确定一种提取、分离标准化方法，使黄芪中的药物活性成分不仅能够提取完全，还可以通过分离方法进一步分离所获得的药物活性成分。该提取、分离标准化的确立是目前中药实现现代化的关键因素。
发明内容
本发明的目的在于提供一种黄芪提取、分离标准化。具体的说就是将黄芪提取物分成若干组分，每个组分包含几个主要化合物，由这些药材组分构成了一个药材组分库。对药材组分库能够进行药物筛选，从而发现新药。
为了实现黄芪提取的现代化、标准化，本发明人通过大量的试验，对目前黄芪的有效成分的提取方法进行归纳和整理，以寻求一种可标准化的提取方法，即在该提取条件下采用该标准提取方法对黄芪进行提取，可以最大限度的获得中药中的有效成分。
本发明所采用的黄芪提取、分离标准化是本发明人通过试验，对同一味中药材采用不同的提取方法进行比较后，所得到的可适于工业化生产的黄芪提取、分离标准化。
本发明可以通过下述步骤实施：
(1)提取工艺：称取黄芪药材，将其粉碎后过筛，然后加入乙酸乙酯和乙醇，加热提取得提取液fr.1；在药渣中加入乙醇，加热提取得提取液fr.2；在药渣中最后加入水，加热提取得提取液fr.3。
(2)分离工艺：将提取液fr.1浓缩成浸膏后，用硅胶拌样，采用正相硅胶柱对其进行分离，首先用石油醚和乙酸乙酯作为流动相，得洗脱液fr.4，然后改换氯仿和甲醇作为流动相，得洗脱液fr.5，最后用甲醇作为流动相，得洗脱液fr.6；将提取液fr.2浓缩成浸膏后，用甲醇溶解上样，采用ODS-C18柱对其进行分离，首先用低浓度的甲醇作为流动相，得洗脱液fr.7，然后改换中等浓度的甲醇作为流动相，得洗脱液fr.8，最后用纯甲醇溶液作为流动相，得洗脱液fr.9。
(3)制备分离工艺：用制备液相色谱继续分离前面工艺中得到的fr.5和fr.8。色谱柱为制备柱，流动相为水和乙腈，梯度洗脱，在相应的时间段收集馏分，获得经过了进一步分离的各个组分。
优选地，本发明可以通过下述步骤实施：
(1)提取工艺： 称取黄芪药材，将其粉碎后过筛，然后加入5～12倍量体积比为1∶1的乙酸乙酯和乙醇，加热回流0.5～3小时，提取1～3次，合并滤液得提取液fr.1；在药渣中加入5～12倍量70％乙醇，加热回流0.5～3小时，提取1～3次，合并滤液得提取液fr.2；在药渣中最后加入水，加热回流0.5～3小时，提取1～3次，合并滤液得提取液fr.3。
(2)分离工艺：将提取液fr.1浓缩成浸膏后，用硅胶拌样，采用正相硅胶柱对其进行分离，首先用体积比为50∶1的石油醚和乙酸乙酯作为流动相，得洗脱液fr.4，然后改换体积比为10∶1的氯仿和甲醇作为流动相，得洗脱液fr.5，最后用甲醇作为流动相，得洗脱液fr.6。将提取液fr.2浓缩成浸膏后，用2～10％甲醇溶解上样，采用ODS-C18柱对其进行分离，首先用2～10％甲醇作为流动相，得洗脱液fr.7，然后改换40～80％甲醇作为流动相，得洗脱液fr.8，最后用100％甲醇溶液作为流动相，得洗脱液fr.9。
(3)制备分离工艺：用制备液相色谱继续分离前面工艺中得到的fr.5和fr.8。色谱柱为制备柱(Zorbax SB-C18；21.2mm×250mm)，流动相为水和乙腈，梯度洗脱，流速为10ml/min，柱温为室温，在相应的时间段收集馏分，获得经过进一步分离的各个组分。
最佳地，本发明可以通过下述步骤实施：
(1)提取工艺：称取黄芪药材，将其粉碎后过筛，然后加入8倍量体积比为1∶1的乙酸乙酯和乙醇，加热回流1小时，提取2次，合并滤液得提取液fr.1；在药渣中加入8倍量70％乙醇，加热回流1小时，提取2次，合并滤液得提取液fr.2；在药渣中最后加入水，加热回流1小时，提取2次，合并滤液得提取液fr.3。
(2)分离工艺：将提取液fr.1浓缩成浸膏，用硅胶拌样，采用正相硅胶柱对其进行分离，首先用体积比为50∶1的石油醚和乙酸乙酯作为流动相，得洗脱液fr.4，然后改换体积比为10∶1的氯仿和甲醇作为流动相，得洗脱液fr.5，最后用甲醇作为流动相，得洗脱液fr.6。将提取液fr.2浓缩成浸膏，用5％甲醇溶解上样，采用ODS-C18柱对其进行分离，首先用5％甲醇作为流动相，得洗脱液fr.7，然后改换70％甲醇作为流动相，得洗脱液fr.8，最后用100％甲醇溶液作为流动相，得洗脱液fr.9。
(3)制备分离工艺：本发明中为了从步骤(2)中获得黄芪提取物中fr.5和fr.8更加具体的有效成分，用制备液相色谱继续分离fr.5和fr.8。
fr.5的分离条件：色谱柱为Agilent制备柱(Zorbax SB-C18；21.2mm×250mm)；采用梯度洗脱，流动相为水(A)和乙腈(B)，流速为10ml/min，柱温为室温，洗脱梯度如下：
0min时，流动相A为85％的水，流动相B为15％的乙腈溶液；
40min时，流动相A为5％的水，流动相B为95％的乙腈溶液；
50min时，流动相A为5％的水，流动相B为95％的乙腈溶液；
fr.5分离结果：由制备液相色谱分离得到的组分及相应的收集时间如下：
组分fr.51，收集时间3.0-7.0min；
组分fr.52，收集时间7.0-14.1min；
组分fr.53，收集时间14.1-18.9min；
组分fr.54，收集时间18.9-24.5min；
组分fr.55，收集时间24.5-30.0min；
组分fr.56，收集时间30.0-36.0min；
组分fr.57，收集时间36.0-40.0min；
组分fr.58，收集时间40.0-50.0min；
fr.8分离条件：色谱柱为Agilent制备柱(Zorbax SB-C18；21.2mm×250mm)；采用梯度洗脱，流动相为水(A)和乙腈(B)，流速为10ml/min，柱温为室温，洗脱梯度如下：
0min时，流动相A为95％的水溶液，流动相B为5％的乙腈溶液；
10min时，流动相A为70％的水溶液，流动相B为30％的乙腈溶液；
40min时，流动相A为45％的水溶液，流动相B为55％的乙腈溶液；
45min时，流动相A为5％的水溶液，流动相B为95％的乙腈溶液；
fr.8分离结果：由制备液相色谱分离得到的组分及相应的收集时间如下：
组分fr.81，收集时间3.0-7.8min；
组分fr.82，收集时间7.8-10.8min；
组分fr.83，收集时间10.8-14.3min；
组分fr.84，收集时间14.3-19.0min；
组分fr.85，收集时间19.0-24.0min；
组分fr.86，收集时间24.0-34.5min；
组分fr.87，收集时间34.5-45.0min。
为了获得具体的黄芪有效成分，最佳的本发明提取分离方法为：
(1)提取工艺：称取黄芪药材250g，将其粉碎后过筛，然后加入8倍量体积比为1∶1的乙酸乙酯和乙醇，加热回流1小时，提取2次，合并滤液得提取液fr.1。在药渣中加入8倍量70％乙醇，加热回流1小时，提取2次，合并滤液得提取液fr.2。在药渣中最后加入水，加热回流1小时，提取2次，合并滤液得提取液fr.3。
(2)分离工艺：将提取液fr.1浓缩得36.8g浸膏，用硅胶拌样，采用正相硅胶柱对其进行分离，首先用体积比为50∶1的石油醚和乙酸乙酯作为流动相，得洗脱液fr.4，然后改换体积比为10∶1的氯仿和甲醇作为流动相，得洗脱液fr.5，浓缩得3.6g样品，最后用甲醇作为流动相，得洗脱液fr.6。将提取液fr.2浓缩得37.6g浸膏，取3.7g浸膏用5％甲醇溶解上样，采用ODS-C18柱对其进行分离，首先用5％甲醇作为流动相，得洗脱液fr.7，然后改换70％甲醇作为流动相，得洗脱液fr.8，浓缩得1.7g样品，最后用100％甲醇溶液作为流动相，得洗脱液fr.9。
(3)制备分离工艺：本发明中为了从步骤(2)中获得黄芪提取物中fr.5和fr.8更加具体的有效成分，用制备液相色谱继续分离fr.5和fr.8。
fr.5的分离条件：色谱柱为Agilent制备柱(Zorbax SB-C18；21.2mm×250mm)；采用梯度洗脱，流动相为水(A)和乙腈(B)，流速为10ml/min，柱温为室温，洗脱梯度如下：
0min时，流动相A为85％的水，流动相B为15％的乙腈溶液；
40min时，流动相A为5％的水，流动相B为95％的乙腈溶液；
50min时，流动相A为5％的水，流动相B为95％的乙腈溶液；
fr.5分离结果：取组分fr.5共1.2g，用乙醇溶解进样，由制备液相色谱分离得到的组分及相应的收集时间如下：
组分fr.51，收集时间3.0-7.0min；47mg；
组分fr.52，收集时间7.0-14.1min；41mg；
组分fr.53，收集时间14.1-18.9min；34mg；
组分fr.54，收集时间18.9-24.5min；54mg；
组分fr.55，收集时间24.5-30.0min；91mg；
组分fr.56，收集时间30.0-36.0min；32mg；
组分fr.57，收集时间36.0-40.0min；43mg；
组分fr.58，收集时间40.0-50.0min；115mg.
fr.8分离条件：色谱柱为Agilent制备柱(Zorbax SB-C18；21.2mm×250mm)；采用梯度洗脱，流动相为水(A)和乙腈(B)，流速为10ml/min，柱温为室温，洗脱梯度如下：
0min时，流动相A为95％的水溶液，流动相B为5％的乙腈溶液；
10min时，流动相A为70％的水溶液，流动相B为30％的乙腈溶液；
40min时，流动相A为45％的水溶液，流动相B为55％的乙腈溶液；
45min时，流动相A为5％的水溶液，流动相B为95％的乙腈溶液；
fr.8分离结果：取组分fr.8共1.5g，用20％的甲醇溶解进样，由制备液相色谱分离得到的组分及相应的收集时间如下：
组分fr.81，收集时间3.0-7.8min；33mg；
组分fr.82，收集时间7.8-10.8min；54mg；
组分fr.83，收集时间10.8-14.3min；112mg，
组分fr.84，收集时间14.3-19.0min；158mg；
组分fr.85，收集时间19.0-24.0min；47mg；
组分fr.86，收集时间24.0-34.5min；60mg；
组分fr.87，收集时间34.5-45.0min；13mg.
本发明中，黄芪各组分中所含化合物见表1，其分析鉴定方法参见实施例三。
表1.黄芪各组分中所含化合物
| 黄芪组分 | 已鉴定的化合物 |
| fr.51fr.55fr.81fr.82fr.83fr.84fr.85fr.87 | Cycloasgenin B；cycloastragenol；Coumestrol；3′，7-Dihydroxy-2′，4′-dimethoxyisoflavan(±form)；4′-Me ether，7-O-(6-O-malonyl--D-glucopyranoside)4′-Me ether，7-O-(6-O-malonyl--D-glucopyranoside)Cycloasgenin C；Cycloasgenin B；calycosinCycloasgenin B；cycloastragenol；FormononetincycloastragenolCoumestrol |
以上黄芪、提取溶液在工业化提取时可按照相应的比例增大或减少，如大规模生产可以以公斤或以吨为单位，小规模生产也可以以克为单位，重量可以增大或减小，但其重量配比比例不变。
本发明所建立的提取、分离标准化可以适用于目前中药中的任何一种中药材，例如可用于阿魏、艾叶、安息香、柏子仁、鳖甲、槟榔、薄荷、蓖麻子、萹蓄、补骨脂、板蓝根、荜茇、巴豆、巴戟天、北豆根、北沙参、白及、白头翁、白芍、白芷、白附子、白茅根、白果、白前、白扁豆、白蔹、白鲜皮、白薇、半边莲、半枝莲、半夏、百合、冰片、柴胡、蝉蜕、楮实子、常山、椿皮、穿山甲、穿心莲、赤小豆、赤石脂、赤芍、苍术、苍耳子、沉香、垂盆草、侧柏叶、草乌、草乌叶、草豆蔻、草果、川贝母、川牛膝、川乌、川芎、川楝子、车前子、丹参、淡豆豉、党参、淡竹叶、杜仲、独活、胆南星、大蓟、大腹皮、牡丹皮、煅石膏、冬瓜皮、冬虫夏草、地龙、地肤子、地骨皮、熟地黄、地锦草、地榆、当归、灯心草、丁香、刀豆、大青叶、大枣、大黄、鹅不食草、莪术、儿茶、榧子、浮萍、萆解、覆盆子、佛手、附子、茯苓、防己、防风、番泻叶、蜂蜜、蛤蚧、桂枝、葛根、藁本、高良姜、骨碎补、谷芽、谷精草、狗脊、枸杞子、枸骨叶、钩藤、甘松、甘草、甘遂、瓜蒌、瓜蒌子、瓜蒌皮、关木通、干姜、炮姜、干漆、鹤虱、黄精、海藻、槐花、海风藤、荷叶、黄芩、黄连、黄柏、花椒、何首乌、虎杖、胡黄连、厚朴、化橘红、火麻仁、合欢皮、合欢花、红大戟、红花、黑芝麻、菊花、僵蚕、桔梗、橘核、姜黄、鸡血藤、鸡冠花、金果榄、金沸草、金荞麦、金钱草、金银花、降香、荆芥、韭菜子、决明子、款冬花、诃子、苦杏仁、苦参、苦楝皮、莱菔子、雷丸、凌霄花、鹿衔草、漏芦、路路通、莲子、络石藤、芦荟、芦根、两头尖、两面针、连翘、灵芝、罗布麻叶、罗汉果、荔枝核、龙胆、龙眼肉、老鹳草、墨旱莲、麻黄、蔓荆子、满山红、满山红油、密蒙花、梅花、麻黄、麦冬、麦芽、玫瑰花、明党参、马鞭草、马兜铃、马钱子、马钱子粉、马勃、马齿苋、木瓜、木香、木贼、南沙参、女贞子、牛蒡子、牛膝、藕节、蒲黄、蒲公英、枇杷叶、佩兰、片姜黄、瞿麦、秦皮、拳参、芡实、羌活、青木香、青风藤、青皮、青葙子、青蒿、青黛、茜草、牵牛子、前胡、千年健、千金子、秦艽、蕤仁、肉豆蔻、肉苁蓉、肉桂、人参、人参叶、石菖蒲、锁阳、桑叶、商陆、桑椹、蛇床子、桑白皮、桑枝、桑枝、桑寄生、娑罗子、酸枣仁、射干、苏合香、沙苑子、使君子、柿蒂、砂仁、山豆根、山茱萸、山药、山慈菇、山楂、小蓟、升麻、水牛角、水牛角浓缩粉、石韦、石决明、石斛、石榴皮、生姜、丝瓜络、三七、三棱、葶苈子、菟丝子、桃仁、通草、檀香、天花粉、天竺黄、天南星、天麻、天葵子、太子参、土荆皮、土茯苓、吴茱萸、威灵仙、王不留行、五加皮、五味子、五倍子、瓦楞子、乌药、乌梅、夏天无、续断、旋覆花、豨莶草、薤白、夏枯草、辛夷、香加皮、香附、香橼、香薷、小茴香、仙茅、仙鹤草、玄参、玄明粉、西洋参、血余炭、血竭、徐长卿、淫羊藿、益母草、银杏叶、薏苡仁、银柴胡、远志、芫花、郁李仁、郁金、鱼腥草、茵陈、鸦胆子、月季花、玉竹、延胡索、浙贝母、猪牙皂、紫苏子、紫菀、紫花地丁、紫草、猪苓、皂角刺、知母、泽兰、泽泻、珍珠母、枳实、栀子。
按照本发明方法所获得的黄芪有效成分可以制成药剂学上任何一种形式，包括针剂和口服制剂。其中针剂包括注射液、滴注液、粉针剂；口服制剂包括颗粒剂、片剂、冲剂、散剂、口服液、糖衣片剂、薄膜衣片剂、肠溶衣片剂、胶囊剂、硬胶囊剂、软胶囊剂、口含剂、颗粒剂、丸剂、膏剂、丹剂、喷雾剂、滴丸剂、崩解剂、口崩片、微丸等。
对于本领域技术人员而言，根据本发明所公开的技术内容，本领域技术人员将很清楚本发明的其它实施方案，本发明实施例仅作为示例。在不违反本发明主旨及范围的情况下，可对本发明进行各种改变和改进，例如所选用的溶液可以是其他低级醇或者是其他有机溶剂，但只要使用本发明所述的提取方法，均在本发明保护范围之内。
附图说明
下面给出黄芪指纹图谱，黄芪水溶性各组分紫外光谱图、黄芪水溶性各组分质谱图、黄芪脂溶性各组分紫外光谱图、黄芪脂溶性各组分质谱图，旨在进一步说明本发明，但对本发明并不构成限制。
图1黄芪指纹图谱
图2黄芪水溶性各组分紫外光谱图
图3黄芪水溶性各组分质谱图
图4黄芪脂溶性各组分紫外光谱图
图5黄芪脂溶性各组分质谱图
具体实施方式
下面通过具体实施方式来进一步说明本发明，但不构成对本发明的限制。
实施例一
(1)提取工艺：称取黄芪药材250g，将其粉碎后过筛，然后加入8倍量体积比为1∶1的乙酸乙酯和乙醇，加热回流3小时，提取2次，合并滤液得提取液fr.1。在药渣中加入10倍量70％乙醇，加热回流2.5小时，提取2次，合并滤液得提取液fr.2。在药渣中最后加入水，加热回流2小时，提取2次，合并滤液得提取液fr.3。
(2)分离工艺：将提取液fr.1浓缩得33.8g浸膏，用硅胶拌样，采用正相硅胶柱对其进行分离，首先用体积比为50∶1的石油醚和乙酸乙酯作为流动相，得洗脱液fr.4，然后改换体积比为10∶1的氯仿和甲醇作为流动相，得洗脱液fr.5，浓缩得3.4g样品，最后用甲醇作为流动相，得洗脱液fr.6。将提取液fr.2浓缩得33.6g浸膏，取2.7g浸膏用5％甲醇溶解上样，采用ODS-C18柱对其进行分离，首先用5％甲醇作为流动相，得洗脱液fr.7，然后改换70％甲醇作为流动相，得洗脱液fr.8，浓缩得1.5g样品，最后用100％甲醇溶液作为流动相，得洗脱液fr.9。
(3)制备分离工艺：本发明中为了从步骤(2)中获得黄芪提取物中fr.5和fr.8更加具体的有效成分，用制备液相色谱继续分离fr.5和fr.8。
fr.5的分离条件：色谱柱为制备柱(Zorbax SB-C18；21.2mm×250mm)；采用梯度洗脱，流动相为水(A)和乙腈(B)，流速为10ml/min，柱温为室温，洗脱梯度如下：
0min时，流动相A为85％的水，流动相B为15％的乙腈溶液；
40min时，流动相A为5％的水，流动相B为95％的乙腈溶液；
50min时，流动相A为5％的水，流动相B为95％的乙腈溶液；
fr.5分离结果：取组分fr.5共1.2g，用乙醇溶解进样，由制备液相色谱分离得到的组分及相应的收集时间如下：
组分fr.51，收集时间3.0-7.0min；45mg
组分fr.52，收集时间7.0-14.1min；40mg
组分fr.53，收集时间14.1-18.9min；36mg
组分fr.54，收集时间18.9-24.5min；50mg
组分fr.55，收集时间24.5-30.0min；88mg
组分fr.56，收集时间30.0-36.0min；36mg
组分fr.57，收集时间36.0-40.0min；40mg
组分fr.58，收集时间40.0-50.0min；111mg
fr.8分离条件：色谱柱为制备柱(Zorbax SB-C18；21.2mm×250mm)；采用梯度洗脱，流动相为水(A)和乙腈(B)，流速为10ml/min，柱温为室温，洗脱梯度如下：
0min时，流动相A为95％的水溶液，流动相B为5％的乙腈溶液；
10min时，流动相A为70％的水溶液，流动相B为30％的乙腈溶液；
40min时，流动相A为45％的水溶液，流动相B为55％的乙腈溶液；
45min时，流动相A为5％的水溶液，流动相B为95％的乙腈溶液；
fr.8分离结果：取组分fr.8共1.5g，用20％的甲醇溶解进样，由制备液相色谱分离得到的组分及相应的收集时间如下：
组分fr.81，收集时间3.0-7.8min；30mg
组分fr.82，收集时间7.8-10.8min；55mg
组分fr.83，收集时间10.8-14.3min；110mg
组分fr.84，收集时间14.3-19.0min；160mg
组分fr.85，收集时间19.0-24.0min；43mg
组分fr.86，收集时间24.0-34.5min；60mg
组分fr.87，收集时间34.5-45.0min；15mg。
实施例二
(1)提取工艺：称取黄芪药材500g，将其粉碎后过筛，然后加入10倍量体积比为1∶1的乙酸乙酯和乙醇，加热回流2小时，提取3次，合并滤液得提取液fr.1。在药渣中加入5倍量70％乙醇，加热回流2.0小时，提取3次，合并滤液得提取液fr.2。在药渣中最后加入水，加热回流1.5小时，提取3次，合并滤液得提取液fr.3。
(2)分离工艺：将提取液fr.1浓缩得73.0g浸膏，用硅胶拌样，采用正相硅胶柱对其进行分离，首先用体积比为50∶1的石油醚和乙酸乙酯作为流动相，得洗脱液fr.4，然后改换体积比为10∶1的氯仿和甲醇作为流动相，得洗脱液fr.5，浓缩得7.0g样品，最后用甲醇作为流动相，得洗脱液fr.6。将提取液fr.2浓缩得70.1g浸膏，取7.1g浸膏用5％甲醇溶解上样，采用ODS-C18柱对其进行分离，首先用5％甲醇作为流动相，得洗脱液fr.7，然后改换70％甲醇作为流动相，得洗脱液fr.8，浓缩得3.0g样品，最后用100％甲醇溶液作为流动相，得洗脱液fr.9。
(3)制备分离工艺：本发明中为了从步骤(2)中获得黄芪提取物中fr.5和fr.8更加具体的有效成分，用制备液相色谱继续分离fr.5和fr.8。
fr.5的分离条件：色谱柱为Agilent制备柱(Zorbax SB-C18；21.2mm×250mm)；采用梯度洗脱，流动相为水(A)和乙腈(B)，流速为10ml/min，柱温为室温，洗脱梯度如下：
0min时，流动相A为85％的水，流动相B为15％的乙腈溶液；
40min时，流动相A为5％的水，流动相B为95％的乙腈溶液；
50min时，流动相A为5％的水，流动相B为95％的乙腈溶液；
fr.5分离结果：取组分fr.5共2.4g，用乙醇溶解进样，由制备液相色谱分离得到的组分及相应的收集时间如下：
组分fr.51，收集时间3.0-7.0min；80mg
组分fr.52，收集时间7.0-14.1min；79mg
组分fr.53，收集时间14.1-18.9min；66mg
组分fr.54，收集时间18.9-24.5min；102mg
组分fr.55，收集时间24.5-30.0min；180mg
组分fr.56，收集时间30.0-36.0min；60mg
组分fr.57，收集时间36.0-40.0min；86mg
组分fr.58，收集时间40.0-50.0min；220mg
fr.8分离条件：色谱柱为Agilent制备柱(Zorbax SB-C18；21.2mm×250mm)；采用梯度洗脱，流动相为水(A)和乙腈(B)，流速为10ml/min，柱温为室温，洗脱梯度如下：
0min时，流动相A为95％的水溶液，流动相B为5％的乙腈溶液；
10min时，流动相A为70％的水溶液，流动相B为30％的乙腈溶液；
40min时，流动相A为45％的水溶液，流动相B为55％的乙腈溶液；
45min时，流动相A为5％的水溶液，流动相B为95％的乙腈溶液；
fr.8分离结果：取组分fr.8共3.0g，用20％的甲醇溶解进样，由制备液相色谱分离得到的组分及相应的收集时间如下：
组分fr.81，收集时间3.0-7.8min；66mg
组分fr.82，收集时间7.8-10.8min；102mg
组分fr.83，收集时间10.8-14.3min；202mg
组分fr.84，收集时间14.3-19.0min；266mg
组分fr.85，收集时间19.0-24.0min；89mg
组分fr.86，收集时间24.0-34.5min；111mg
组分fr.87，收集时间34.5-45.0min；23mg。
实施例三
一、黄芪药材的提取分离
(1)提取工艺：称取黄芪药材250g，将其粉碎后过筛，然后加入8倍量体积比为1∶1的乙酸乙酯和乙醇，加热回流1小时，提取2次，合并滤液得提取液fr.1。在药渣中加入8倍量70％乙醇，加热回流1小时，提取2次，合并滤液得提取液fr.2。在药渣中最后加入水，加热回流1小时，提取2次，合并滤液得提取液fr.3。
(2)分离工艺：将提取液fr.1浓缩得36.8g浸膏，用硅胶拌样，采用正相硅胶柱对其进行分离，首先用体积比为50∶1的石油醚和乙酸乙酯作为流动相，得洗脱液fr.4，然后改换体积比为10∶1的氯仿和甲醇作为流动相，得洗脱液fr.5，浓缩得3.6g样品，最后用甲醇作为流动相，得洗脱液fr.6。将提取液fr.2浓缩得37.6g浸膏，取3.7g浸膏用5％甲醇溶解上样，采用ODS-C18柱对其进行分离，首先用5％甲醇作为流动相，得洗脱液fr.7，然后改换70％甲醇作为流动相，得洗脱液fr.8，浓缩得1.7g样品，最后用100％甲醇溶液作为流动相，得洗脱液fr.9。
(3)制备分离工艺：本发明中为了从步骤(2)中获得黄芪提取物中fr.5和fr.8更加具体的有效成分，用制备液相色谱继续分离fr.5和fr.8。
fr.5的分离条件：色谱柱为Agilent制备柱(Zorbax SB-C18；21.2mm×250mm)；采用梯度洗脱，流动相为水(A)和乙腈(B)，流速为10ml/min，柱温为室温，洗脱梯度如下：
0min时，流动相A为85％的水，流动相B为15％的乙腈溶液；
40min时，流动相A为5％的水，流动相B为95％的乙腈溶液；
50min时，流动相A为5％的水，流动相B为95％的乙腈溶液；
fr.5分离结果：取组分fr.5共1.2g，用乙醇溶解进样，由制备液相色谱分离得到的组分及相应的收集时间如下：
组分fr.51，收集时间3.0-7.0min；47mg
组分fr.52，收集时间7.0-14.1min；41mg
组分fr.53，收集时间14.1-18.9min；34mg
组分fr.54，收集时间18.9-24.5min；54mg
组分fr.55，收集时间24.5-30.0min；91mg
组分fr.56，收集时间30.0-36.0min；32mg
组分fr.57，收集时间36.0-40.0min；43mg
组分ff.58，收集时间40.0-50.0min；115mg
fr.8分离条件：色谱柱为Agilent制备柱(Zorbax SB-C18；21.2mm×250mm)；采用梯度洗脱，流动相为水(A)和乙腈(B)，流速为10ml/min，柱温为室温，洗脱梯度如下：
0min时，流动相A为95％的水溶液，流动相B为5％的乙腈溶液；
10min时，流动相A为70％的水溶液，流动相B为30％的乙腈溶液；
40min时，流动相A为45％的水溶液，流动相B为55％的乙腈溶液；
45min时，流动相A为5％的水溶液，流动相B为95％的乙腈溶液；
fr.8分离结果：取组分fr.8共1.5g，用20％的甲醇溶解进样，由制备液相色谱分离得到的组分及相应的收集时间如下：
组分fr.81，收集时间3.0-7.8min；33mg
组分fr.82，收集时间7.8-10.8min；54mg
组分fr.83，收集时间10.8-14.3min；112mg
组分fr.84，收集时间14.3-19.0min；158mg
组分fr.85，收集时间19.0-24.0min；47mg
组分fr.86，收集时间24.0-34.5min；60mg
组分fr.87，收集时间34.5-45.0min；13mg。
二、分析
2.1试剂与仪器
Agilent 1100高效液相色谱-质谱联用仪(美国安捷伦公司)，配在线真空脱气机、四元低压泵、自动进样器、柱温箱、DAD检测器、1946D电喷雾四级杆质谱检测器、Chemstation色谱工作站；R-200型旋转蒸发仪(瑞士BUCHI公司)；飞鸽牌TGL-16G高速台式离心机(上海安亭科学仪器厂)；METTLER-AE240型电子天平(梅特勒-托利多仪器有限公司)。
乙腈为色谱纯试剂(MERCK)，水为娃哈哈纯净水(杭州娃哈哈集团)，乙酸为分析纯(杭州试剂厂)。
2.2分析方法
样品来源：黄芪组分fr.51 1.10mg、fr.52 1.30mg、fr.53 1.49mg、fr.54 1.35mg、fr.551.05mg、fr.56 1.05mg、fr.57 1.02mg、fr.58 1.21mg。
样品制备：样品用1ml乙醇溶解，超声，离心(10000r/min)，备用。
HPLC条件：色谱柱为Agilent Zorbax SB-C18型色谱柱(4.6mm×150mm，5μm)，以二元流动相进行梯度洗脱。流动相A为0.2％HAc-H2O，流动相B为0.2％HAc-CH3CN；线性梯度为：0min，10％B；10min，50％B；30min，95％B。流速为0.5mL/min；柱温为30℃；DAD检测在190-400nm范围内扫描；进样量5μL。
质谱条件：正负离子扫描模式，扫描范围100-2000；干燥气(N2气)流速10L/min，雾化温度350℃，毛细管电压3500V，裂解电压100V。
ELSD条件：氮气1.41/min，漂移管温度：100℃。
样品来源：黄芪组分fr.81 1.18mg、fr.82 1.20mg、fr.83 1.01mg、fr.84 1.15mg、fr.851.10mg、fr.86 1.18mg、fr.87 1.42mg。
样品制备：样品用1ml 50％甲醇水溶解，超声，离心(10000r/min)，备用。
HPLC条件：色谱柱为Agilent Zorbax SB-C18型色谱柱(4.6mm×150mm，5μm)，以二元流动相进行梯度洗脱。流动相A为0.2％HAc-H2O，流动相B为0.2％HAc-CH3CN；线性梯度为：0min，20％B；15min，50％B；20min，50％B。流速为0.5mL/min；柱温为30℃；DAD检测在190-400nm范围内扫描；进样量5μL。
质谱条件：正负离子扫描模式，扫描范围100-2000；干燥气(N2气)流速10L/min，雾化温度350℃，毛细管电压3500V，裂解电压100V。
ELSD条件：氮气1.81/min，漂移管温度：105℃。
2.3分析结果
分析结果：图2是黄芪水溶性各组分紫外光谱图，图3是黄芪水溶性各组分质谱图，图4是黄芪脂溶性各组分紫外光谱图，图5是黄芪脂溶性各组分质谱图。
黄芪组分中化合物的鉴定结果[1-2]见表2。
表2.黄芪组分中化合物的鉴定结果
| 组分 | 保留时间(分) | [M-H] | 最大UV | 化合物 | 结构式 | 备注 |
| fr.81 | 3.768 | 531 | 198 | 4′-Me ether，7-O-(6-O-malonyl-β-D-glucopyranoside) | C25H24O13 | DNP |
| fr.82 | 3.780 | 531 | 198 | 4′-Me ether，7-O-(6-O-malonyl-β-D-glucopyranoside) | C25H24O13 | DNP |
| fr.83 | 3.791 | 491 | 198，280 | Cycloasgenin C | C30H52O5 | DNP |
| 7.330 | 505 | 200，220，248，260，290 | Cycloasgenin B | C30H50O6 | DNP | |
| 8.3 | 283 | 198，218，258，290 | calycosin | C16H12O5 | DNP | |
| fr.84 | 7.3 | 505 | 200，220，248，260，290 | Cycloasgenin B | C30H50O6 | DNP |
| 11.5 | 489 | 198，248，264，306 | cycloastragenol | C30H50O5 | DNP | |
| 12.1 | 267 | 196，250，308 | Formononetin | C16H12O4 | DNP | |
| fr.85 | 11.5 | 489 | 198，248，264，306 | cycloastragenol | C30H50O5 | 文献1 |
| fr.87 | 19.4 | 267 | 194，250，308 | Coumestrol | C15H8O5 | DNP |
| fr.51 | 3.3 | 243 | 202，262 | |||
| 9.8 | 505 | 198，220，250，258，290 | Cycloasgenin B | C30H50O6 | 文献1 | |
| 11.9 | 489 | 198，230，250，306 | cycloastragenol | C30H50O5 | 文献1 |
| fr.55 | 16.7 | 267 | 194，250，308 | Coumestrol | C15H8O5 | 文献1 |
| 17.5 | 301 | 204，280 | 3′，7-Dihydroxy-2′，4′-dimethoxyisoflavan(±form) | C17H18O5 | DNP |
1.文献1：中国药科大学硕士学位论文，赵明，黄芪代用资源植物-贺兰山黄芪的化学成分研究，2001年.
2.DNP(Dictionary of Natural Products)：天然产物数据库.
Claims (5)
1.黄芪提取、分离标准化方法，包括以下步骤：
(1)提取工艺：称取黄芪药材，将其粉碎后过筛，然后加入乙酸乙酯和乙醇，加热提取得提取液fr.1；在药渣中加入乙醇，加热提取得提取液fr.2；在药渣中最后加入水，加热提取得提取液fr.3；
(2)分离工艺：将提取液fr.1浓缩成浸膏后，用硅胶拌样，采用正相硅胶柱对其进行分离，首先用石油醚和乙酸乙酯作为流动相，得洗脱液fr.4，然后改换氯仿和甲醇作为流动相，得洗脱液fr.5，最后用甲醇作为流动相，得洗脱液fr.6；将提取液fr.2浓缩成浸膏后，用甲醇溶解上样，采用ODS-C18柱对其进行分离，首先用低浓度的甲醇作为流动相，得洗脱液fr.7，然后改换中等浓度的甲醇作为流动相，得洗脱液fr.8，最后用纯甲醇溶液作为流动相，得洗脱液fr.9；
(3)制备分离工艺：用制备液相色谱分离fr.5和fr.8；色谱柱为制备柱，流动相为水和乙腈，梯度洗脱，在相应的时间段收集馏分，获得经过了进一步分离的各个组分。
2.如权利要求1所述的黄芪提取、分离标准化方法，包括如下步骤：
(1)提取工艺：称取黄芪药材，将其粉碎后过筛，然后加入5～12倍量体积比为1∶1的乙酸乙酯和乙醇，加热回流0.5～3小时，提取1～3次，合并滤液得提取液fr.1；在药渣中加入5～12倍量70％乙醇，加热回流0.5～3小时，提取1～3次，合并滤液得提取液fr.2；在药渣中最后加入水，加热回流0.5～3小时，提取1～3次，合并滤液得提取液fr.3；
(2)分离工艺：将提取液fr.1浓缩成浸膏后，用硅胶拌样，采用正相硅胶柱对其进行分离，首先用体积比为50∶1的石油醚和乙酸乙酯作为流动相，得洗脱液fr.4，然后改换体积比为10∶1的氯仿和甲醇作为流动相，得洗脱液fr.5，最后用甲醇作为流动相，得洗脱液fr.6；将提取液fr.2浓缩成浸膏后，用2～10％甲醇溶解上样，采用ODS-C18柱对其进行分离，首先用2～10％甲醇作为流动相，得洗脱液fr.7，然后改换40～80％甲醇作为流动相，得洗脱液fr.8，最后用100％甲醇溶液作为流动相，得洗脱液fr.9；
(3)制备分离工艺：用制备液相色谱离fr.5和fr.8；色谱柱为制备柱(Zorbax SB-C18；21.2mm×250mm)，流动相为水和乙腈，梯度洗脱，流速为10ml/min，柱温为室温，在相应的时间段收集馏分，获得经过进一步分离的各个组分。
3.如权利要求2所述的黄芪提取、分离标准化方法，包括如下步骤：
(1)提取工艺：称取黄芪药材，将其粉碎后过筛，然后加入8倍量体积比为1∶1的乙酸乙酯和乙醇，加热回流1小时，提取2次，合并滤液得提取液fr.1；在药渣中加入8倍量70％乙醇，加热回流1小时，提取2次，合并滤液得提取液fr.2；在药渣中最后加入水，加热回流1小时，提取2次，合并滤液得提取液fr.3；
(2)分离工艺：将提取液fr.1浓缩成浸膏，用硅胶拌样，采用正相硅胶柱对其进行分离，首先用体积比为50∶1的石油醚和乙酸乙酯作为流动相，得洗脱液fr.4，然后改换体积比为10∶1的氯仿和甲醇作为流动相，得洗脱液fr.5，最后用甲醇作为流动相，得洗脱液fr.6；将提取液fr.2浓缩成浸膏，用5％甲醇溶解上样，采用ODS-C18柱对其进行分离，首先用5％甲醇作为流动相，得洗脱液fr.7，然后改换70％甲醇作为流动相，得洗脱液fr.8，最后用100％甲醇溶液作为流动相，得洗脱液fr.9；
(3)制备分离工艺：用制备液相色谱离fr.5和fr.8；
fr.5的分离条件：色谱柱为Agilent制备柱(Zorbax SB-C18；21.2mm×250mm)；采用梯度洗脱，流动相为水(A)和乙腈(B)，流速为10ml/min，柱温为室温，洗脱梯度如下：
0min时，流动相A为85％的水，流动相B为15％的乙腈溶液；
40min时，流动相A为5％的水，流动相B为95％的乙腈溶液；
50min时，流动相A为5％的水，流动相B为95％的乙腈溶液；
fr.5分离结果：由制备液相色谱分离得到的组分及相应的收集时间如下：
组分fr.51，收集时间3.0-7.0min；
组分fr.52，收集时间7.0-14.1min；
组分fr.53，收集时间14.1-18.9min；
组分fr.54，收集时间18.9-24.5min；
组分fr.55，收集时间24.5-30.0min；
组分fr.56，收集时间30.0-36.0min；
组分fr.57，收集时间36.0-40.0min；
组分fr.58，收集时间40.0-50.0min；
fr.8分离条件：色谱柱为Agilent制备柱(Zorbax SB-C18；21.2mm×250mm)；采用梯度洗脱，流动相为水(A)和乙腈(B)，流速为10ml/min，柱温为室温，洗脱梯度如下：
0min时，流动相A为95％的水溶液，流动相B为5％的乙腈溶液；
10min时，流动相A为70％的水溶液，流动相B为30％的乙腈溶液；
40min时，流动相A为45％的水溶液，流动相B为55％的乙腈溶液；
45min时，流动相A为5％的水溶液，流动相B为95％的乙腈溶液；
fr.8分离结果：由制备液相色谱分离得到的组分及相应的收集时间如下：
组分fr.81，收集时间3.0-7.8min；
组分fr.82，收集时间7.8-10.8min；
组分fr.83，收集时间10.8-14.3min；
组分fr.84，收集时间14.3-19.0min；
组分fr.85，收集时间19.0-24.0min；
组分fr.86，收集时间24.0-34.5min；
组分fr.87，收集时间34.5-45.0min。
4.如权利要求3所述的黄芪提取、分离标准化方法，其特征在于：
组分fr.51中主要化合物为Cycloasgenin B；cycloastragenol；
组分fr.55中主要化合物为Coumestrol；3′，7-Dihydroxy-2′，4′-dimethoxyisoflavan(±form)。
5.如权利要求3所述的黄芪提取、分离标准化方法，其特征在于：
组分fr.81中主要化合物为4′-Me ether，7-O-(6-O-malonyl--D-glucopyranoside)；
组分fr.82中主要化合物为4′-Me ether，7-O-(6-O-malonyl--D-glucopyranoside)；
组分fr.83中主要化合物为Cycloasgenin C；Cycloasgenin B；calycosin；
组分fr.84中主要化合物为Cycloasgenin B；cycloastragenol；Formononetin；
组分fr.85中主要化合物为cycloastragenol；
组分fr.87中主要化合物为Coumestrol。
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