CN100347268C - 抗氧化剂及其制备方法 - Google Patents
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Abstract
本发明提供了通过从大豆中有效地提取抗氧化剂组分而实际获得天然抗氧化剂的方法,这种天然抗氧化剂在加到食品中时可以给消费者提供安全感。可以确定,通过在100℃以上高温于弱酸条件下用热水提取大豆籽获得的热水提取物具有抗氧化剂效果。通过利用在含水的有机溶剂中的溶解度差异,或者使用适于分子量大小的适当过滤器,对所述热水提取物的低分子量级分进一步分级,来有效地提供高抗氧化剂级分。
Description
技术领域
本发明涉及来源于大豆的用于防止食品氧化的天然抗氧化剂物质及其制备方法,尤其是,通过从大豆籽原料中分离出在热水提取物中是抗氧化剂效能的主要组分的低分子量级分而获得的抗氧化剂,及其制备方法。
背景技术
作为用于食品的抗氧化剂,尤其是,作为防止脂肪和油的自氧化的抗氧化剂,作为天然抗氧化剂的生育酚和L-抗坏血酸,以及作为合成抗氧化剂的BHA(丁基羟基苯甲醚)、BHT(二丁基羟基苯酚)等迄今已经为人们所知。然而,近年来,化学合成产品例如BHA和BHT不太常用于食品,因为消费者对化学合成产品具有一种担心的感觉。另一方面,由于天然L-抗坏血酸不耐热和碱,而生育酚价格昂贵,所以它们的使用受到限制。
作为天然来源的物质,尤其是,来源于植物或植物蛋白质的那些物质,已知的物质包括大豆粕的降解产品(JP 6-287554A(1994)),这是通过用胃蛋白酶降解大豆蛋白质而获得的一种独特的肽(JP 9-157292A(1997)),使用来源于大豆以及鱼睾丸组分的蛋白质降解产品(JP 10-219244A(1998))等。作为与得自植物的抗氧化剂不同的蛋白类抗氧化剂物质,已知的物质包括得自乳铁蛋白-一种乳蛋白的肽及其衍生物(JP 6-199687A(1994),JP 8-176190A(1996))。然而,由于昂贵的原料,过低的产率等原因,这些物质存在颇多问题而还不具有实用水平。
此外,Tamura等人报道了得自“okara(来源于‘豆腐’或豆乳产品的不溶残余物)”的水溶性抗氧化剂物质(Bulletin of JapaneseFood Science Technology Society,Vol.46,No.5,303-310(1990))。这是一篇关于用沸水从脱脂“okara”中提取出来的抗氧化剂肽的报道,并且,因为活性组分是具有800-1400分子量的非常低分子量的组分,所以这种肽具有高吸湿性。另外,由于生产步骤复杂且产率低,所以这种肽不具实用性。况且,作为得自“okara”的抗氧化剂,大豆多糖据说具有抗氧化剂能力(Food Processing Technology,Vol.19,No.4,173-179(1999))。然而,由于这些得自“okara”的抗氧化剂具有不足够的抗氧化剂能力,或者很昂贵,所有它们还没有被投入实用。
发明公开
本发明的一个目的是提供通过有效地从大豆中提取出抗氧化剂组分来实际获得天然抗氧化剂的方法,这种天然抗氧化剂在加到食品中时可以给消费者提供安全感。
为了达到前述目的,本发明人为达到上述目的进行了深入细致的研究,作为结果,证实通过在超过100℃的高温于弱酸条件下用热水提取大豆籽原料获得的热水提取物具有抗氧化剂特性,并且还发现,在这种热水提取物中,抗氧化剂物质的抗氧化剂能力随分子量而变化。更为特别的是,抗氧化剂能力集中于低分子量级分。如此,本发明得以完成。
就是说,本发明是生产抗氧化剂的方法,该方法包括将低分子量级分从通过在超过100℃的高温于弱酸条件下用热水提取而由大豆籽原料获得的热水提取物中分离出来。优选地,所述低分子量级分的分子量为30,000或者更小。
此外,在本发明中,作为从热水提取物中分离低分子量级分的具体实例,所述分离是通过用含水的亲水性有机溶剂使高分子量级分沉淀出来,并且使低分子量级分溶解在含水的亲水性有机溶剂中来进行的。优选地,亲水性有机溶剂的浓度为30%或更高。此外,本发明还提供了制备抗氧化剂的方法,其中从热水提取物中分离低分子量级分是用超滤薄膜通过薄膜分离来进行的。
另外,本发明是包含作为有效组分的热水提取物的低分子量级分的抗氧化剂,所述热水提取物是通过在超过100℃的高温于弱酸条件下用热水提取大豆籽原料而获得的。
实施本发明的最佳方式
在本发明中任何大豆籽原料都可以使用,但利用作为在生产“豆腐”、豆乳或大豆蛋白分离物的过程中产生的“okara”,是非常有利的。由于大豆所贮藏的蛋白质和油组分已经被预先脱去了,所以“okara”适合于加工,而且还可以实现副产品的有效利用。
在超过100℃的高温,优选超过100℃且在150℃以下的高温,更优选105℃以上且130℃以下的高温,于弱酸条件下,优选pH值3.0-7.0,更优选pH值3.0-5.0下,用热水提取大豆原料。因为在提取中温度超过水的沸点而产生蒸汽压力,所以适于用耐压反应器进行提取。当热水提取温度为100℃或更低时,水溶性产物的产率就非常低。这是不实用的。另一方面,当在超过150℃的高温进行提取时,会引起副反应例如水解和聚合反应。因此,提取物的品质由于着色而下降,抗氧化剂能力在整体上就会降低。
热水提取物中的抗氧化剂特性主要通过具有不大于30,000的分子量的低分子量级分显示出来。为了分离和浓缩该低分子量级分,应当选择可以以约30,000的分子量截止进行分级的方法。例如,合适的方法包括利用由于不同的分子量而在含水有机溶剂中有不同溶解度,或者使用能够根据分子量的不同来分离级分的过滤器。
在一个优选的分级方法中,将高分子量级分用含水的亲水性有机溶剂沉淀,并且低分子量级分被溶解并作为上层清液分离出来。在这种情况下,作为亲水性有机溶剂,醇是适合使用的。乙醇和异丙醇是特别适宜的。对于在这些醇中的溶解度而言,能够溶解的分子量的范围随着醇的浓度而变化。为了有效地分离本发明的低分子量级分,醇的浓度适宜地为30%或更高,优选30-80%。当浓度高时,就有活性组分也沉淀的可能性。当浓度低时,高分子量物质没有被充分沉淀,因而低分子量物质的分离就会是不充分的。偶尔地,是沉淀级分的高分子量级分作为水溶性大豆多糖或水溶性大豆半纤维素而获得,其中具有有益功能例如蛋白质的乳化作用和分散稳定作用的组分得到纯化。
溶解在亲水性有机溶剂中的抗氧化剂物质能够通过将溶液冷冻干燥或者喷雾干燥而作为粉末被分离出来。如果需要,在干燥之前,于降低的压力下通过蒸馏将亲水性有机溶剂除去。然后,通过电透析或离子交换树脂处理进行脱盐,并进行浓缩,冷冻干燥或者喷雾干燥。在提取时所加的酸或者碱的种类没有特别限制,盐酸、硫酸、有机酸例如柠檬酸、乳酸等,它们的盐,以及氢氧化钠、氢氧化钾等,都可以使用。
其它从热水提取物中分离显示抗氧化剂特性的物质的方法包括用具有约30,000的分子量截止的超滤薄膜或者作为一种超滤薄膜的陶瓷过滤器进行过滤。作为超滤薄膜,可以将由Toshiba Ceramics制备的一种陶瓷过滤器(孔径:500直径)作为例示。具有相似功能的抗氧化剂物质也可以通过在减压下使溶液渗透通过薄膜来浓缩,然后干燥而获得。
如上面所述分离的抗氧化剂物质基本上由糖类和蛋白质组分构成。关于糖类组分,糖类的含量为大约25-60%,并且所包含的代表性的组成糖是半乳糖、阿拉伯糖、鼠李糖、岩藻糖、木糖、葡萄糖半乳糖醛酸。在本文里,总的糖含量用苯酚磺酸方法测量,糖醛酸用Blumenkrantz方法测量,中性糖的测量是将中性糖转化成糖醇乙酸酯形式,然后用GLC方法分析。
本发明抗氧化剂含有15-35%重量的作为粗蛋白质的蛋白质组分。它的量可以用已知的分析方法例如含有巯基乙醇的SDS聚丙烯酰胺凝胶电泳方法(在下文,SDS-PAGE)测定。每一氨基酸聚合物的分子量用标准分子量标志物的迁移率来确定,并且用光密度计进行确定也是适合的。本发明抗氧化剂中有效的氨基酸聚合物以约200-30,000的分子量范围分布。
以与氨基酸聚合物相同的质量存在的糖可以在SDS-PAGE之后,按照路径染色法,通过染色糖类组分来确定。这样,本发明抗氧化剂包含作为主要组分的多肽和多糖组分。不清楚在蛋白质和多糖组分存在的体系中产生了怎样的相互作用。
在本文中,本发明抗氧化剂中有效组分的分子量的测定,是在下列条件下,用凝胶过滤方法进行的。条件)以1.0mm/min的流速进行洗脱,使用柱:由Tosoh公司生产的G300PWXL(7.6mm×30cm),洗脱剂:含有1%SDS和0.2M NaCl的25mM磷酸盐缓冲液(pH7.0)。检测是通过测定在220nm的吸收度来进行的。把要分析的样本溶解在0.5%(含有0.1%巯基乙醇)浓度的洗脱剂中,并且煮沸2分钟,以便使经受分析的样本完全溶解。分子量的确定是以具有已知分子量的标准蛋白质的洗脱时间为基础进行的。在本发明抗氧化剂的有效组分中,具有2,000-30,000分子量的物质占据了全部峰面积的70%或者以上。
用下列方法测量本发明的抗氧化剂能力。也就是说,依据TBA方法通过测定脂肪的氧化来评价抗氧化能力,其中将TBA与丙二醛(MDA)(在酸性条件下通过过氧化脂质的降解而形成的)反应,并且测定所得红色物质(Buege and Aust,Method in Enzymology,52,302-310(1978))。首先,将乳化剂(0.5%β-酪蛋白或2%吐温20)预先溶解在10mM磷酸盐缓冲液(pH 7.0)中,将乳化剂和油(亚油酸甲酯)以19∶1的比例混合,将此混合物用均化器(由Nition RikakikiSeisakusyo生产)预乳化,然后通过超声(2分钟)来彻底乳化以获得乳液。将具有抗氧化剂能力的物质溶解在3ml乳液中,加入0.5μM偶氮化合物或0.5μM硫酸铁,将此混合物用接触混合器充分搅拌,在控制于37℃的恒温浴中开始氧化反应。24小时和48小时后,从恒温浴中分别取出0.5ml部分。为了测量MDA的量,将0.5ml磷酸盐缓冲液、2ml TBA试剂(15g三氯乙酸+0.375g TBA+25ml 1N HCl(在100ml水中)和60mg 2,6-二叔丁基对甲酚(在3ml乙醇中))加到0.5ml乳液中,将此混合物在95℃或者以上温度煮沸15分钟,然后迅速在冰水中冷却,在531nm测定上清液。
就其所含上述抗氧化剂物质来说,本发明抗氧化剂可以呈任何形式例如水溶液、糊或者粉末。当本发明抗氧化剂被用于脂肪和油的抗氧化时,根据需要,基于在脂肪和油的重量,抗氧化剂物质以0.005-20%重量,优选0.01-5%重量的比例使用,其中所述抗氧化剂物质的量是按干的抗氧化剂物质的量计的。当比例低于0.005%重量时,仅获得小的抗氧化效果,甚至当抗氧化剂物质以超过20%重量的量混合时,也并没有期待到与加入的量相对应的抗氧化效果。这是不经济的。或者,可以将本发明抗氧化剂作为具有脂肪和油以及乳化剂的O/W乳液或W/O乳液预先加入。任选地,其它物质例如蛋白质、糖类、脂肪和油,或者其它天然抗氧化剂物质可以与本发明抗氧化剂一起使用。蛋白质的实例包括来源于植物的蛋白质例如大豆蛋白质、小麦蛋白质、玉米蛋白质和大米蛋白质,来源于动物的蛋白质例如乳蛋白质、卵蛋白质、鱼蛋白质、家畜肉蛋白质以及它们的肽。糖类的实例包括已知的糖类例如单糖、二糖和寡糖、糖醇,多糖例如果胶、半纤维素、纤维素、淀粉、树胶以及它们的部分降解产物。脂肪和油的实例包括已知的脂肪和油例如来自植物的脂肪和油,例如大豆油、棉籽油、芝麻油、橄榄油、棕榈油、油菜籽油和葵花子油,来自动物的脂肪和油例如乳脂肪、牛油、猪油和鱼油。任何乳化剂都可以使用,它们的实例包括酪蛋白、卵磷脂、溶血卵磷脂;蔗糖脂肪酸酯和甘油脂肪酸酯。其它天然抗氧化剂物质的实例包括生育酚、L-抗坏血酸及其衍生物、β-胡萝卜素、来自芝麻籽的sesamolinol and sesaminol、茶叶儿茶素所含的表没食子儿茶精以及多酚例如异黄酮和皂草苷。除了这些抗氧化剂以外的其它组分可以单独或两种或多种一起使用。如上面所述,因为本发明抗氧化剂能够对脂肪和油产生抗氧化剂能力,所以可以将其用于食品领域、化妆品和医药中。
实施例
下面实施例对本发明做进一步的详细说明,但本发明并不受这些实施例的限制。实施例中所有的百分比都以重量计。
[由“okara”1制备抗氧化剂物质]
实施例1(抗氧化剂物质A)
将2倍的水(200份)加到100份在大豆蛋白质分离生产步骤中获得的“okara”(水80%)中,用盐酸把pH值调节至4.5,然后在120℃将此混合物热提取1.5小时。冷却后,将此混合物离心(10,000G×30min)分离成上清液和沉淀级分。将如此分离的沉淀级分进一步用相等重量的水洗涤,离心,把该上清液与上面的上清液合并,用Toshiba Ceramics制备的陶瓷过滤器(孔径:500直径)进行超滤,将所得滤液在减压下浓缩至10倍浓度,然后冷冻干燥获得抗氧化剂物质A。相对于原料“okara”的干燥重量,产率为5.6%。当将该分子量用Tosoh Corporation生产的HPLC柱测量时,抗氧化剂物质A的分子量分布范围是2,000-28,000。当把干燥产品放置在室中时,没有观察到潮解现象。
实施例2(抗氧化剂物质B)
在制备抗氧化剂物质A的过程中,固体-液体分离后,将99%的异丙醇加到上清液中,以使最终异丙醇的浓度为70%。用离心法(10,000G×30min)除去所得沉淀,在减压下除去异丙醇,然后冷冻干燥残余物获得抗氧化剂物质B。相对于原料“okara”的干燥重量,产率为6.3%。用Tosoh Corporation生产的HPLC柱(G3000PWXL(7.6mm×30cm))确定分子量,抗氧化剂物质B的分子量的范围是30,000或更小。
实施例3(抗氧化剂物质C)
按照与制备抗氧化剂物质B相同的方法,获得抗氧化剂物质C,只是最终的异丙醇浓度是60%。相对于原料“okara”的干燥重量,产率为6.5%。用HPLC确定的分子量范围是28,000或更小。
实施例4(抗氧化剂物质D)
按照与制备抗氧化剂物质B相同的方法,获得抗氧化剂物质D,只是最终的异丙醇浓度是50%。相对于原料“okara”的干燥重量,产率为6.2%。用HPLC确定的分子量范围是26,000或更小。
实施例5(抗氧化剂物质E)
按照制备抗氧化剂物质B的方法,获得抗氧化剂物质E,只是最终的异丙醇浓度是40%。相对于原料“okara”的干燥重量,产率为5.8%。用HPLC确定的分子量范围是26,000-25,000。
实施例6(抗氧化剂物质F)
按照与制备抗氧化剂物质B相同的方法,获得抗氧化剂物质F,只是最终的异丙醇浓度是35%。相对于原料“okara”的干燥重量,产率为5.1%。用HPLC确定的分子量范围是2,000-22,000。
比较实施例1(抗氧化剂物质G)
按照与制备抗氧化剂物质B相同的方法,获得抗氧化剂物质G,只是最终的异丙醇浓度是20%。相对于原料“okara”的干燥重量,产率为29.1%。当用HPLC确定分子量的分布时,甚至发现分子量的范围是大约1,200,000。
比较实施例2(抗氧化剂物质H)
在制备抗氧化剂物质A的过程中,在未用陶瓷过滤器过滤的情况下冷冻干燥获得抗氧化剂物质H。相对于原料“okara”的干燥重量,产率为41.5%。当用HPLC确定分子量的分布时,发现分子量的范围甚至是大约2,000,000。
对于用上述方法制备的抗氧化剂物质,通过贮存24小时和48小时以后,用TBA方法测量MDA的量,确定其对亚油酸甲酯的抗氧化作用。加到系统中的抗氧化剂物质的量为1.0%。因为数值比较小,被氧化的脂质的量比较小,因而可以确定抗氧化剂具有较强的抗氧化剂能力。
(表1)贮存过程中MDA的量的变化
贮存时间(小时) | 实施例 | 比较实施例 | 未加入 | ||||
1 | 2 | 3 | 6 | 1 | 2 | ||
0 | 1.6 | 1.2 | 1.0 | 1.6 | 1.6 | 1.8 | 1.2 |
24 | 1.8 | 1.4 | 1.0 | 2.0 | 17 | 19 | 27 |
48 | 2.2 | 1.5 | 1.1 | 4.5 | 29 | 28 | 34 |
产率(%) | 5.6 | 6.3 | 6.5 | 5.1 | 29.1 | 41.5 | - |
尽管认识到在每一从“okara”中提取的热水提取物中具有一定的抗氧化剂能力,但还是需要30%重量或更高浓度的异丙醇用以分离具有高纯度抗氧化剂功能的级分。当浓度低于这一范围,就不能获得具有足够抗氧化剂能力的高纯度的级分,尽管由于多糖组分杂质而使产率得以改进。通过用陶瓷过滤器制备的抗氧化剂物质具有与用60%异丙醇沉淀制备的抗氧化剂相同的功能。
[由“okara”2制备抗氧化剂物质]
按照实与施例3和实施例5相同的方法,获得抗氧化剂物质,只是所使用的亲水性溶剂由异丙醇变为乙醇。获得与使用异丁醇所获得的几乎相同的结果。具有抗氧化剂能力的物质的产率分别为5.3%和6.6%,并且在这两种情况下中分子量分布都是30,000或更小。
[由“okara”3制备抗氧化剂物质]
按照实施例3,将用于从热水提取物中制备抗氧化剂物质的异丙醇浓度设定为60%,并且通过用“okara”作为原料以及改变热水提取温度,对抗氧化剂的制备进行研究。
实施例7(抗氧化剂物质I)
按照与制备抗氧化剂物质C相同的方法,获得抗氧化剂物质I,只是获得热水提取物的温度为110℃。相对于原料“okara”的干燥重量,抗氧化剂物质的产率为5.2%。用HPLC确定的分子量范围是30,000或者更小。
实施例8(抗氧化剂物质J)
按照与制备抗氧化剂物质C相同的方法,只是获得热水提取物的温度为130℃,获得抗氧化剂物质J。相对于原料“okara”的干燥重量,抗氧化剂物质的产率为6.6%。
实施例9(抗氧化剂物质K)
按照与制备抗氧化剂物质C相同的方法,只是获得热水提取物的温度为140℃,获得抗氧化剂物质K。相对于原料“okara”的干燥重量,抗氧化剂物质的产率为7.1%。
实施例10(抗氧化剂物质L)
按照与制备抗氧化剂物质C相同的方法,只是获得热水提取物的温度为150℃,获得抗氧化剂物质L。相对于原料“okara”的干燥重量,抗氧化剂物质的产率为7.5%。
比较实施例3(抗氧化剂物质M)
按照与制备抗氧化剂物质C相同的方法,只是获得热水提取物的温度为98℃,获得抗氧化剂物质M。相对于原料“okara”的干燥重量,抗氧化剂物质的产率为1.1%。用HPLC确定的分子量范围为32,000或者更小。
关于用上述方法制备的抗氧化剂物质,通过贮存24小时和48小时以后,用TBA方法测量MDA的量,确定其对亚油酸甲酯的抗氧化作用。加到系统中的抗氧化剂物质的量为1.0%。此外,还对所制备的抗氧化剂的色调加以评估。因为数值比较小,被氧化的脂质的量比较小,因而可以确定抗氧化剂具有较强的抗氧化剂能力。
(表2)贮存过程中MDA的量的变化
贮存时间(小时) | 实施例7 | 实施例8 | 实施例9 | 实施例10 | 比较实施例3 | 未加入 |
0 | 1.2 | 1.1 | 1.2 | 1.1 | 1.7 | 0.3 |
24 | 1.2 | 1.2 | 1.2 | 1.4 | 2.9 | 27 |
48 | 1.5 | 1.4 | 1.5 | 1.5 | 8.6 | 34 |
产率 | 5.2 | 6.6 | 7.1 | 7.5 | 1.1 | - |
色调* | ○ | ○ | ○ | △ | ○ | - |
(*○:灰白色,△:深棕色,×:深褐色,-:未评估)
在抗氧化剂能力上,根据获得热水提取物的温度,功能有很大不同。也就是说,虽然在100℃或者更低的温度下观察到很小的抗氧化剂特性,但是作为抗氧化剂这样的抗氧化剂特性被认为不充分的。而且,产率显著降低。另一方面,当在超过100℃的温度进行提取时,产率高,并观察到强烈的抗氧化剂特性。然而,在140℃或者更高的温度下,发生褐变,因而在某种程度上被认为是不实用的。
[比较大豆蛋白质和肽的抗氧化剂特性]
按照上面[由“okara”1制备抗氧化剂物质]所描述的方法,对实施例3的抗氧化剂物质、市场上可以买到的大豆蛋白质分离物“FUJIPRO-E(商品名;由Fuji Oil Company,Limited生产)”(比较实施例4)以及酶降解的大豆肽“HINEUT S(商品名;由Fuji OilCompany,Limited生产)”(比较实施例5)的抗氧化剂能力进行评估。因为数值比较小,被氧化的脂质的量比较小,因而可以确定抗氧化剂具有较强的抗氧化剂能力。
(表3)贮存过程中MDA的量的变化
贮存时间(小时) | 实施例3 | 比较实施例4 | 比较实施例5 |
0 | 1.0 | 2.1 | 1.3 |
24 | 1.0 | 9.9 | 3.5 |
48 | 1.1 | 14 | 97 |
从上面的结果,可以看到本发明抗氧化剂物质具有较好的抗氧化剂能力。
[大豆油的抗氧化试验]
实施例11
将100g 5%重量的在上述实施例中获得的抗氧化剂物质C的水溶液、100g纯化的大豆油和2g聚甘油缩合的蓖麻油酸酯(由SakamotoYakuhin Kogyo生产,商品名:“SY Glyster CRS-75”)的混合物用均化器在40℃以10,000rpm搅拌并混合3分钟,制备W/O-型乳液。基于大豆油重量,将乳液以2%重量的量(抗氧化剂物质:500ppm)加到大豆油中,然后在110℃下进行变质加速试验。
比较实施例6
按照与实施例11相同的方法,只是用生育酚代替抗氧化剂物质C,进行变质加速试验。用CDM试验(由Metrohm-Sibata Ltd.生产,“Lanshimat E679型”)测定抗氧化能力,结果显示于表4。
(表4)对大豆油的抗氧化能力
样本 | 加到大豆油中的量(ppm) | 诱导时间(小时) |
实施例11 | 1,000 | 7.2 |
比较实施例6 | 1,000 | 7.4 |
未加入 | 0 | 4.3 |
结果显示,随着诱导时间的延长,抗氧化剂能力相应增强。
从表4可以看出,本发明抗氧化剂物质显示较好的抗氧化剂能力,并且与加入生育酚的产品比较,具有几乎相同的有效水平。
[使用人造奶油的抗氧化特性试验]
实施例12
加入上面实施例获得的抗氧化剂物质C,制备具有下面表5(实施例12)所示配方的人造奶油(实施例12)。
比较实施例7
按照与实施例12相同的方法,只是加入脱脂奶粉来代替抗氧化剂物质C,制备人造奶油(比较实施例7)。
(表5)人造奶油配方(%重量)
原料 | 混合量 |
氢化大豆油(mp 34℃) | 32 |
氢化棉籽油(mp 34℃) | 17 |
大豆色拉油 | 21 |
抗氧化剂物质C或脱脂奶粉 | 1 |
食盐 | 1 |
单酸甘油酯 | 0.2 |
卵磷脂 | 0.2 |
失水山梨糖醇脂肪酸酯 | 0.2 |
β-胡萝卜素 | 0.002 |
水 | 27.398 |
通过AOM试验来测量直至POV达到100的时间,评估每一所得人造奶油的氧化稳定性。作为结果,在使用脱脂奶粉的比较实施例7中,时间为41小时,而在使用抗氧化剂物质C的实施例12中,时间为66小时。因此,其中混合了抗氧化剂物质C的人造奶油在氧化稳定方面是优良的。
工业实用性
按照本发明,对包含于大豆原料的热水提取物中的抗氧化剂物质,可以容易地予以分离和浓缩,提供具有高稳定性的新的天然抗氧化剂成为可能,并且可以通过实用的方法将之应用于食品、脂肪和油等。
Claims (6)
1.生产抗氧化剂的方法,该方法包括将具有30,000或更小的分子量的低分子量级分从通过在超过100℃至最高达150℃高温于3.0-7.0的pH下用热水提取大豆籽原料获得的热水提取物中分离出来。
2.按照权利要求1的方法,其中从热水提取物中分离低分子量级分是通过用含水的亲水性有机溶剂使高分子量级分沉淀,并且将低分子量级分溶解在含水的亲水性有机溶剂中来进行的。
3.按照权利要求2的方法,其中在含水的亲水性有机溶剂中亲水性有机溶剂的浓度为30%或者更高。
4.按照权利要求1的方法,其中从热水提取物中分离低分子量级分是用超滤薄膜通过薄膜分离来进行的。
5.包含作为有效组分的热水提取物的级分的抗氧化剂,所述热水提取物的级分是通过在超过100℃至最高达150℃高温于3.0-7.0的pH下用热水提取大豆籽原料获得的,并且具有30,000或者更小分子量。
6.按照权利要求5的抗氧化剂,其中具有30,000或者更小分子量的级分包含糖类和蛋白质组分。
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