WO2013065302A1 - 未分化細胞検出方法及び複合糖質検出方法 - Google Patents

未分化細胞検出方法及び複合糖質検出方法 Download PDF

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WO2013065302A1
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lectin
sugar chain
undifferentiated
protein
cells
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浩章 舘野
淳 平林
弓弦 伊藤
泰子 小沼
浅島　誠
敦 久野
雅岐 藁科
雅和 福田
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独立行政法人産業技術総合研究所
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    • G01N33/56966—Animal cells
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    • G01N2333/47—Assays involving proteins of known structure or function as defined in the subgroups
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    • G01—MEASURING; TESTING
    • G01N—INVESTIGATING OR ANALYSING MATERIALS BY DETERMINING THEIR CHEMICAL OR PHYSICAL PROPERTIES
    • G01N2400/00—Assays, e.g. immunoassays or enzyme assays, involving carbohydrates

Definitions

  • the present invention relates to a method for discriminating the state of a cell using a cell culture supernatant.
  • the present invention relates to a method for evaluating the presence or absence of undifferentiated cells.
  • the present invention also relates to a method for detecting a detection target substance having a sugar chain, such as a glycoprotein.
  • Pluripotent stem cells are attracting attention because of their ability to differentiate into all the cells that make up the body and their ability to maintain their undifferentiated nature. Research is underway.
  • iPS cells which are new human pluripotent stem cells from Japan
  • RIKEN Center for Developmental Biology and Regenerative Science and the Advanced Medical Center are planning to start clinical research using iPS cells in patients with age-related macular degeneration in 2013. Will start clinical research on spinal cord injury patients in 2015.
  • pluripotent stem cells such as ES cells and iPS cells
  • the production method, culture conditions, storage conditions, and the like affect the quality such as undifferentiation, differentiation ability, and proliferation ability. For this reason, if it is managed without being based on an appropriate method, it may produce different results for each producer or user. This causes adverse effects such as a decrease in the reliability of the stem cell treatment and the occurrence of health damage due to the treatment. Therefore, a maintenance culture method and measurement / evaluation system with high reliability and reproducibility are required.
  • pluripotent stem cells are not used as they are for cell therapy, but are used for transplantation after differentiation into the target cells, but undifferentiated cells are mixed in the cell source differentiated into the target cells It has been pointed out that the undifferentiated cells cause tumor formation. Therefore, development of a technique for evaluating whether or not undifferentiated cells, that is, tumorigenic cells, are mixed in cells used for cell therapy is demanded.
  • somatic stem cells are more diverse than human pluripotent stem cells such as ES cells and iPS cells, but clinical applications exist as existing technologies.
  • ES cells and iPS cells since it is not easy to stably obtain cells of suitable quality for transplantation, the establishment of a quality verification method for mesenchymal stem cells and the establishment of a stable culture method based on it are extremely important issues. ing.
  • development of a quality verification method for cells before transplantation is required.
  • the present inventors previously used human lectin microarrays to prepare human iPS cells (114 specimens) prepared from five different somatic cells (skin, fetal lung, endometrium, placental artery, amniotic membrane) and human ES cells ( Nine specimens) were analyzed comprehensively.
  • Non-patent Document 1 rBC2LCN binds only to undifferentiated human ES • iPS cells by the expression analysis of a glycosyltransferase gene using a DNA array and the method using a mass spectrometer.
  • the rBC2LCN is a recombinant in which a BC2LCN lectin (YP_002232818) corresponding to the N-terminal domain of BC2L-C protein derived from Gram-negative bacteria (Burkholderia cenocepacia) is expressed in transformed E. coli, and the non-reducing end of the complex sugar chain "Fuc ⁇ 1-2Gal ⁇ 1-3GlcNAc” and a lectin that recognizes the sugar chain structure of "Fuc ⁇ 1-2Gal ⁇ 1-3GalNAc" (Non-patent Documents 1 and 3).
  • a BC2LCN lectin corresponding to the N-terminal domain of BC2L-C protein derived from Gram-negative bacteria (Burkholderia cenocepacia)
  • rBC2LCN is a novel undifferentiated sugar chain marker that characterizes undifferentiated cells
  • rBC2LCN is the undifferentiated sugar chain marker “Fuc ⁇ 1-2Gal ⁇ 1-3GlcNAc”.
  • / or “Fuc ⁇ 1-2Gal ⁇ 1-3GalNAc” (hereinafter, both may be referred to as “Fuc ⁇ 1-2Gal ⁇ 1-3GlcNAc / GalNAc”) as a specific probe.
  • Tateno H Toyota M, Saito S, OnumaY, Ito Y, Hiemori K, ieFukumura M, Matsushima A, Nakanishi M, Ohnuma K, Akutsu H, Umezawa A, Horimoto K, , 286 (23): 20345-53.
  • Tang C Lee AS, Volkmer JP, SahooD, Nag D, Mosley AR, Inlay MA, Ardehali R, Chavez SL, Pera RR, Behr B, Wu JC, Weissman IL, Drukker M., Nat Bion, 29 ): 829-34.
  • the present inventors have been able to determine the sugar chain structure itself as an undifferentiated sugar chain marker for distinguishing undifferentiated cells from differentiated cells.
  • the method of Drukker et al. But also our previous technique using rBC2LCN does not deviate from the prior art in terms of observing the sugar chains of glycoproteins or glycolipids on the cell surface. is there. That is, these techniques are similar in that they require a step of recovering test cells or a further purification step, and do not solve the conventional problems such as the complexity of the steps in the detection evaluation step and the waste of effective cells. There wasn't.
  • the main object of the present invention is to provide a method for non-invasively examining a cell state without reducing the number of test cells.
  • the present inventors prepared a substrate on which rBC2LCN was immobilized on a slide glass as a probe specific to “Fuc ⁇ 1-2Gal ⁇ 1-3GlcNAc / GalNAc”, and evaluated the differentiation state of ES cells and iPS stem cells using the substrate. In doing so, instead of the cells themselves (crushed material), the reactivity with the culture supernatant was also evaluated and examined.
  • rBC2LCN on the substrate allows one drop of the culture supernatant (corresponding to 1 ⁇ L) collected from the test cell medium to be placed on the lectin on the substrate surface without any purification step. It was found that differentiation status can be evaluated only by supplying. Specifically, rBC2LCN did not react with the culture medium of iPS cells cultured and differentiated in the presence of a control medium or retinoic acid, whereas it maintained an undifferentiated state in the absence of retinoic acid. The iPS cell culture supernatant reacted specifically.
  • the undifferentiated sugar chain marker having the sugar chain structure of “Fuc ⁇ 1-2Gal ⁇ 1-3GlcNAc / GalNAc” is always secreted in the culture supernatant of undifferentiated cells. This indicates that the differentiation decreases and the undifferentiated sugar chain marker disappears when it is completely differentiated.
  • the technique using the culture supernatant can be said to be a very simple technique that does not require a step of recovering a target test cell itself or a step of purifying a specific target molecule.
  • BC2LCN lectin has a characteristic of recognizing both sugar chains of “Fuc ⁇ 1-2Gal ⁇ 1-3GlcNAc” and “Fuc ⁇ 1-2Gal ⁇ 1-3GalNAc” with high sensitivity.
  • a more reliable undifferentiated state evaluation system can be provided. The present invention has been completed by obtaining the above knowledge.
  • a differentiation state of a stem cell characterized by measuring the presence or absence of an undifferentiated sugar chain marker represented by the following (formula 1) or (formula 2) in the culture supernatant of the stem cell: How to determine; (In the figure, R1 represents an OH group or any sugar chain. R2 represents an OH group or any sugar chain, protein, lipid, or other molecule.) (In the figure, R1 represents an OH group or any sugar chain. R2 represents an OH group or any sugar chain, protein, lipid, or other molecule). According to this method, the differentiation state of the cell can be evaluated using the culture supernatant in which the cell is cultured instead of the cell itself.
  • the presence or amount of the undifferentiated sugar chain marker is measured using a protein that specifically recognizes the sugar chain structure represented by (Formula 1) or (Formula 2), The method according to [1] above.
  • the protein is the following protein;
  • the amino acid sequence shown in SEQ ID NO: 1, or an amino acid sequence in which one or several amino acids of the amino acid sequence are deleted, substituted, inserted, or added, is represented by the above (formula 1) or (formula 2) A protein that specifically recognizes the sugar chain structure.
  • [5] The presence or absence or abundance of the undifferentiated sugar chain marker represented by (Formula 1) or / and (Formula 2) derived from podocalyxin is measured. [4] The method according to any one of [4].
  • [6] The undifferentiated sugar chain marker Specifically recognizing the sugar chain structure represented by (Formula 1) or (Formula 2), The amino acid sequence shown in SEQ ID NO: 1, or an amino acid sequence in which one or several amino acids of the amino acid sequence are deleted, substituted, inserted, or added, and having no sugar chain, The method according to [1] to [5] above, wherein the detection is performed by a lectin-lectin sandwich method using a protein.
  • [8] Confirming the absence of the undifferentiated sugar chain marker is the amino acid sequence shown in SEQ ID NO: 1, or an amino acid in which one or several amino acids of the amino acid sequence are deleted, substituted, inserted, or added
  • R2 represents an OH group or any sugar chain, protein, lipid, or other molecule.
  • R1 represents an OH group or any sugar chain.
  • R2 represents an OH group or any sugar chain, protein, lipid, or other molecule.
  • the culture supernatant of the test cell is directly reacted with an undifferentiated sugar chain marker-specific protein such as lectin, without destroying the cell,
  • an undifferentiated sugar chain marker-specific protein such as lectin
  • Undifferentiated sugar chain marker measurable with the culture supernatant of the present invention is “Fuc ⁇ 1-2Gal ⁇ 1 -3GlcNAc / GalNAc ", ie,” Fuc ⁇ 1-2Gal ⁇ 1-3GlcNAc (H type 1 sugar chain) "or” Fuc ⁇ 1-2Gal ⁇ 1-3GalNAc (H type 3 sugar chain) ", human ES / iPS cells
  • Complex carbohydrates such as glycoproteins and glycolipids that are remarkably expressed on the cell surface.
  • podocalyxin has been identified as one of the complex carbohydrates. The structure of the podocalyxin sugar chain was predicted to contain “Fuc ⁇ 1-2Gal ⁇ 1-3GalNAc (H type 3 sugar chain)”.
  • these two types of sugar chains are always secreted into the culture supernatant in undifferentiated cells such as ES cells and iPS cells, but in differentiated somatic cells, they are secreted into the culture supernatant. It is an invention characterized by the fact that it is not secreted, that is, these sugar chain ligands are first secreted into the cell supernatant only when they are in an undifferentiated state. It is useful as an “undifferentiated sugar chain marker that can be measured in the supernatant”.
  • the sugar chain structure of “Fuc ⁇ 1-2Gal ⁇ 1-3GlcNAc” is such that the hydroxyl group at the 4-position of GlcNAc consists of a monosaccharide (preferably fucose) or a branched or unbranched oligosaccharide chain (preferably 2 to 5 sugars) Sugar chain).
  • the sugar chain structure is a sugar chain that is bound to the non-reducing end of glycoprotein, glycolipid, saccharide or the like at the 1-position of GlcNAc as a membrane component on the surface of stem cells of undifferentiated cells.
  • the sugar chain structure secreted in the culture supernatant of undifferentiated stem cells also includes non-reduction of OH groups, other saccharides, proteins, lipids, or other molecules at position 1 of GlcNAc.
  • the ends are bound. That is, it can be expressed as (Equation 1) below.
  • R1 represents an OH group or any sugar chain, for example, 4 ⁇ Fuc group.
  • R2 represents an OH group or any sugar chain, protein, lipid, or other molecule.
  • the hydroxyl group at position 1 of GalNAc is replaced with a branched or unbranched oligosaccharide chain (preferably a sugar chain composed of 2 to 5 sugars). May be.
  • the sugar chain structure is a sugar chain that is bound to a non-reducing end such as a glycoprotein, glycolipid, or saccharide at the position 1 of GalNAc as a membrane constituent component on the surface of stem cells of undifferentiated cells.
  • Equation 2 As a sugar chain structure secreted in the culture supernatant of undifferentiated stem cells, non-reduction of OH group, other saccharides, proteins, lipids, or other molecules at position 1 of GalNAc The ends are bound. That is, it can be expressed as (Equation 2) below.
  • R1 represents an OH group or an arbitrary sugar chain such as a Gal ⁇ 1-4Glc group.
  • R2 represents an OH group or an arbitrary sugar chain, protein, lipid, or other molecule.
  • Probe for detection of “undifferentiated sugar chain marker” of the present invention “Fuc ⁇ 1-2Gal ⁇ 1-3GlcNAc (Formula 1)” or “Fuc ⁇ 1-2Gal ⁇ 1-3GalNAc (Formula 2) of the undifferentiated sugar chain marker in the culture supernatant of the present invention
  • a protein probe is generally used, and any protein that specifically binds to the undifferentiated sugar chain marker can be used.
  • BC2LCN which is a lectin that recognizes both sugar chain structures of (Formula 1) and (Formula 2) found by the present inventors, or a variant thereof is preferably used. Even a lectin that recognizes any of 2) can be used.
  • Non-patent Document 2 Drukker et al.'S “Fuc ⁇ 1-2Gal ⁇ 1-3GlcNAc (H type 1 sugar chain)” antibody (Non-patent Document 2) and the like can be exemplified.
  • kits for discriminating the differentiation state of stem cells can be obtained by combining a means for labeling the culture supernatant.
  • the kit can determine the differentiation state of stem cells with extremely high sensitivity.
  • substrate is not limited to a flat shape such as a slide glass, but includes substrates of any shape and material to which a normal protein immobilization method can be applied, such as ELISA plates, magnetic beads, and filters. It is.
  • substrate material is preferably a substance used in a normal microarray, and a silicon wafer, glass, polycarbonate, a film, a polymer film such as polystyrene or polyurethane, and a porous substance are used.
  • rBC2LCN 3.
  • an undifferentiated sugar chain marker H type 1 sugar chain and / or H type 3 sugar chain
  • rBC2LCN As the probes, it is possible to use all proteins showing binding specificity to these sugar chain structures, but the most preferred lectin among these proteins is “rBC2LCN” previously found by the present inventors. Therefore, “rBC2LCN” will be described below.
  • rBC2LCN refers to a recombinant in which a lectin found in a gram-negative bacterium (Burkholderia cenocepacia) is expressed in E. coli. This lectin is an N-terminal domain (GenBank) of a protein called BC2L-C. / NCBI-GI registration number: YP_002232818) (non-patent document 3). rBC2LCN is known to show structural similarity to TNF-like proteins and to form trimers.
  • this lectin is H type 1 or H type 3 together with “Fuc ⁇ 1-2Gal ⁇ 1-3GlcNAc (H type 1 sugar chain)” and “Fuc ⁇ 1-2Gal ⁇ 1-3GalNAc (H type 3 sugar chain)”. “Lewis b sugar chain (Fuc ⁇ 1-2Gal ⁇ 1-3 (Fuc ⁇ 1-4) GlcNAc)”, “Globo H sugar chain (Fuc ⁇ 1-2Gal ⁇ 1-3GalNAc ⁇ 1-3Gal ⁇ 1-4Gal ⁇ 1-4Glc)” Has also been shown to exhibit binding specificity.
  • rBC2LCN Since rBC2LCN does not contain sugar chains, it can be mass-produced by transformed bacteria. Specifically, the BC2LCN gene encoding the amino acid sequence (SEQ ID NO: 1) of GenBank / NCBI-GI registration number: YP_002232818 (Genome ID: 206562055) was appropriately optimized for the host, and transformed E. coli. And purified by conventional protein purification means.
  • BC2LCN of the present invention or a variant thereof can be expressed, for example, as follows. “The amino acid sequence shown in SEQ ID NO: 1 or the amino acid sequence in which one or several amino acids of the amino acid sequence are deleted, substituted, inserted or added,“ Fuc ⁇ 1-2Gal ⁇ 1-3GlcNAc ”or“ Fuc ⁇ 1-2Gal ⁇ 1- A protein that specifically recognizes the sugar chain structure of 3GalNAc. "
  • the sugar chain structure is expressed using the above (formula 1) and (formula 2), “the amino acid sequence shown in SEQ ID NO: 1 or one or several amino acids of the amino acid sequence is deleted, substituted, inserted, Alternatively, a protein that specifically includes the sugar chain structure represented by (Formula 1) or (Formula 2), including an added amino acid sequence.
  • “several” represents a natural number of 20 or less, preferably 10 or less, more preferably 5 or less.
  • Detection and measurement of “undifferentiated glycan marker” of the present invention (1) Method for collecting culture supernatant In the present invention, a certain amount of culture supernatant of undifferentiated stem cells or cells after differentiation induction is collected with a micropipette or the like. Then, the reactivity with the protein that specifically binds to the undifferentiated sugar chain marker of the present invention is analyzed. The culture medium is generally replaced with a fresh culture medium every certain period (about 1 day). For this reason, the undifferentiated sugar chain marker is detected after the undifferentiated sugar chain marker is secreted in a detectable amount in the culture medium after replacement from undifferentiated cells or insufficiently differentiated cells.
  • the time required until a detectable amount of undifferentiated glycan marker is eluted in the culture solution may vary depending on the cell type and culture conditions. Therefore, the time until the culture supernatant used for detection of the undifferentiated sugar chain marker after the culture medium exchange can be appropriately set depending on the cell type and culture conditions, and is, for example, about 18 to 30 hours. Usually, since the medium is changed every about 24 hours, it is preferable to use the culture supernatant discarded at that time.
  • any method may be used for “differentiation induction” of stem cells into nerve cells, digestive system cells, etc.
  • stem cells are cultured in the presence of retinoic acid to differentiate into nervous system cells.
  • Various known methods such as a method and a method of forming epidermal cells using the NIH3T3 cell surface on which proliferation has been stopped as a base can be applied. Since the expression level of the undifferentiated sugar chain marker of the present invention on the differentiated cell surface is negligible, it is expected that the noise is extremely low under any differentiation induction condition.
  • the culture supernatant is collected periodically or as needed or discarded when the medium is replaced. If the amount of undifferentiated sugar chain marker of the present invention is measured, it can be confirmed whether or not all the cells being stored are maintained in an undifferentiated state. For example, as a typical method for culturing stem cells in an undifferentiated state, there is a method of culturing on the surface of feeder cells such as mouse fibroblasts. At least once a day, the culture supernatant is removed and replaced with a fresh medium. Differentiation / undifferentiation determination can be performed using the culture supernatant removed and discarded.
  • a lectin or antibody that is a protein that specifically binds to the undifferentiated glycan marker of the present invention is labeled and directly added to the culture supernatant. It is possible to measure the intensity of the label, but it is preferable to immobilize lectins or antibodies on the substrate, and label the culture supernatant with “Cy3-NHS ester” (GE Healthcare Biosciences). Then, it is detected and measured by an ELISA method or a method using an evanescent wave excitation fluorescent scanner.
  • the culture supernatant collected from the stem cell culture solution is subjected to the detection step without being subjected to the purification step, as it is or after dilution, or concentrated in advance with an antibody, a lectin or the like.
  • detection can be performed using a confocal scanner, a fluorescent plate reader, or the like. A similar method can be applied to the immobilized antibody.
  • the present invention is not limited to this method, and the binding activity can also be measured by methods such as ELISA, surface plasmon resonance sensor, equilibrium dialysis method, titration calorimetry, crystal oscillator sensor detection method and the like.
  • the undifferentiated sugar chain marker according to the present invention can also be measured by an ordinary competition method or a “lectin-lectin sandwich method” described later.
  • the “lectin-lectin sandwich method” is used, the undifferentiated glycan marker in the culture supernatant can be measured with high quantitativeness, so that the completion of differentiation (the absence of undifferentiated cells) can be determined more accurately. .
  • the culture supernatant after differentiation induction is subjected to the above analysis, and after confirming that undifferentiated cells are not mixed, the differentiated cells are collected by separating the cells in the well, petri dish or flask. Can be acquired.
  • the quality maintenance state of the stem cells can be confirmed by applying the above analysis method to the culture supernatant for disposal at the time of medium exchange.
  • Kit or apparatus for discriminating the differentiation state of stem cells by analyzing the “undifferentiated glycan marker” of the present invention The probe for detecting an undifferentiated glycan marker of the present invention, preferably BC2LCN or a variant thereof If the kit or apparatus is combined with the following means (1) to (3), it becomes a kit or apparatus capable of analyzing an undifferentiated sugar chain marker. Can do.
  • the probe for detecting an undifferentiated sugar chain marker of the present invention is preferably used after being immobilized on the substrate surface. (1) Means for contact with stem cell culture supernatant; however, this means is not essential because it can be done manually.
  • a chain marker that is, a fluorescent substance (for example, “Cy3-NHS ester”) that can fluorescently label “the sugar chain structure represented by (Formula 1) or (Formula 2) or the sugar chain structure-containing substance”.
  • a fluorescent substance for example, “Cy3-NHS ester”
  • a set of a substrate on which the probe for detecting an undifferentiated sugar chain marker of the present invention is immobilized and a means for labeling the protein or culture supernatant immobilized on the surface of the substrate, to distinguish the differentiation state of stem cells It can be a kit.
  • a means or device for bringing the culture supernatant of stem cells into contact with the substrate surface may be set, and further, a means or device for detecting a fluorescent label may be set.
  • the kit can determine the differentiation state of stem cells with extremely high sensitivity.
  • a culture supernatant labeled with “Cy3-NHS ester” or the like is directly reacted with a substrate on which rBC2LCN is immobilized on a slide glass, and its binding is measured by an evanescent wave excitation fluorescence detection system.
  • the culture supernatant may be used for analysis after being physically or chemically concentrated in advance.
  • rBC2LCN immobilized on a substrate such as an ELISA plate, magnetic beads, or filter is allowed to react with a culture supernatant that has been previously labeled with enzyme, fluorescence, biotin, etc. It is also possible to detect by fluorescence.
  • a labeled antibody or lectin that binds to a protein bound to rBC2LCN can be reacted from above.
  • a “lectin-lectin sandwich method” (described in detail later) using a lectin that binds to a protein bound to rBC2LCN, a more sensitive measurement can be performed.
  • rBC2LCN is labeled with fluorescence, enzyme, biotin or the like by a conventional method, and detected by a known method such as fluorescence staining, flow cytometry, ELISA, lectin blotting or the like.
  • Non-Patent Document 6 for introducing a fluorescently labeled amino acid at an arbitrary site in an amino acid sequence, a general Fluorescence Resonance Energy Transfer (FRET) method, Using Perkinelmer's chemically amplified luminescence-proximity homogeneous assay (http://www.perkinelmer.co.jp/products_ls/assays/assays_0010.html), fluorescence is generated at a specific site in the sugar chain binding domain of rBC2LCN. Since a mutant into which a labeled amino acid has been introduced can be prepared, the degree of cell differentiation can be evaluated by simply mixing the rBC2LCN mutant with the cell culture supernatant.
  • FRET Fluorescence Resonance Energy Transfer
  • the sensitivity is very good. Therefore, when the culture supernatant is reacted with a substrate on which rBC2LCN is immobilized, the amount of the undifferentiated sugar chain marker “Fuc ⁇ 1-2Gal ⁇ 1-3GlcNAc / GalNAc” of the present invention is Presence / absence can be discriminated at the picomolar (pM) or nanomolar (nM) level, so it is possible to collect and measure about 0.1 to 10 ⁇ l of a portion of the culture supernatant of the culture medium during differentiation induction. It is. In general, it is preferable to measure using a culture supernatant to be discarded when the medium is changed periodically (for example, every day).
  • (E) As a control for determining the degree of differentiation of cells that have undergone differentiation induction, the measured values of only the medium with the same composition are usually used. The value in the supernatant is preferably used as a control.
  • test cells to be tested are “stem cells” in an undifferentiated state, or cells that have been differentiated in various tissues by inducing differentiation of the cells. “Stem cells” in this case broadly mean cells in an undifferentiated state. For example, pluripotent stem cells (embryonic stem cells: ES cells), hematopoietic stem cells, neural stem cells, skin tissue stem cells, etc. In addition to stem cells, stem cells (iPS cells) that have been dedifferentiated by introducing a stem cell-specific expression gene into somatic cells are also included.
  • stem cells pluripotent stem cells (embryonic stem cells: ES cells), hematopoietic stem cells, neural stem cells, skin tissue stem cells, etc.
  • stem cells iPS cells that have been dedifferentiated by introducing a stem cell-specific expression gene into somatic cells are also included.
  • stem cells such as ES cells are considered to be controlled by a common mechanism in mammals, not limited to humans, and the stem cells of the present invention include mammals other than humans such as monkeys and pigs. It can also be applied when using stem cells derived from bovine, goat, sheep, mouse, or rat.
  • an “antibody-antibody sandwich method” in which a protein is sandwiched and detected using two types of antibodies is known as a method for specifically detecting a protein including a glycoprotein.
  • a target protein is specifically separated from a sample using a first antibody (capture antibody) that binds to the target protein.
  • the second antibody that binds to the target protein is brought into contact with the “capture antibody-target protein” complex, and then the “capture antibody-target protein-detection antibody” complex.
  • An antibody labeled with fluorescence or the like is used as the detection antibody, and the target protein is detected by detecting the complex in the sample by detection of fluorescence or the like.
  • the target protein can be detected with high specificity and high sensitivity by using two types of antibodies against the same antigen.
  • the antibody-antibody sandwich method has a problem that it is not suitable for the construction of a sugar chain detection system for glycoproteins.
  • a purified product of the target protein must be obtained.
  • the present invention provides a method (hereinafter also referred to as “lectin-lectin sandwich method”) and a kit for detecting a detection target substance having a sugar chain, as described below.
  • a composite composed of the lectin 1, the detection target substance, and the lectin 2 by bringing the detection target substance having a sugar chain into contact with the lectin 1 and the lectin 2 having binding properties to the sugar chain A detection method of the substance to be detected, which is carried out by forming a body and detecting the complex, wherein at least one of the lectin 1 and the lectin 2 is a lectin having no sugar chain.
  • the above-mentioned detection target substance is a complex carbohydrate selected from the group consisting of glycoproteins, glycolipids, proteoglycans, glycopeptides, lipopolysaccharides, peptidoglycans, and glycosides in which sugar chains are bound to steroid compounds.
  • [1] The detection method according to [1].
  • [3] The detection method according to the above [1] or [2], wherein the lectin 1 and the lectin 2 have binding properties to different sugar chain structures.
  • [4] The above [1] to [3], wherein the lectin having no sugar chain is a recombinant lectin expressed in prokaryotic cells or a modified lectin obtained by modifying the sugar chain structure of a natural protein.
  • the detection method in any one of.
  • [5] The detection target substance, the lectin 1 having no sugar chain bound to an insoluble carrier, and the lectin 2 not bound to an insoluble carrier are contacted to form the complex,
  • [6] First to obtain a complex 1 composed of the lectin 1 and the detection target substance by bringing the detection target substance into contact with the lectin 1 bound to an insoluble carrier and having no sugar chain. [5] including a procedure and a second procedure for obtaining the complex 2 composed of the lectin 1, the detection target substance, and the lectin 2 by bringing the complex 1 and the lectin 2 into contact with each other. ] The detection method of description. [7] The detection method according to any one of [1] to [6], wherein both the lectin 1 and the lectin 2 are lectins having no sugar chain.
  • kits used for detection of a detection target substance having a sugar chain comprising lectin 1 and lectin 2 having binding properties to the sugar chain, wherein at least one of the lectin 1 and the lectin 2 is a sugar
  • a kit that is a lectin having no chain comprising an insoluble carrier, the lectin 1 having no sugar chain bound to the insoluble carrier, and the lectin 2 not bound to the insoluble carrier.
  • “Sugar chain” means a group of compounds having a structure in which monosaccharides are linked in a chain (straight chain or branched chain branched in a dendritic manner) by glycosidic bonds.
  • Monosaccharides constituting the sugar chain include hexoses such as glucose, galactose and mannose; deoxyhexoses such as L-fucose; hexosamines such as N-acetylglucosamine and N-acetylgalactosamine; N-acetylneuraminic acid and N-glyco Examples thereof include sialic acids such as rilneuraminic acid; pentoses such as xylos and L-arabinose.
  • the number of monosaccharides constituting the “sugar chain” is not particularly limited, and is about 20,000 to tens of thousands.
  • Lectin refers to a partial or entire structure of a sugar chain bound to a complex carbohydrate such as a glycoprotein, glycolipid, proteoglycan, glycopeptide, lipopolysaccharide, peptidoglycan, and a glycoside such as a steroid compound, It means the protein that binds.
  • the lectin-lectin sandwich method includes a “complex formation procedure” and a “detection procedure”.
  • the “complex formation procedure” is composed of lectin 1, a detection target substance, and lectin 2 by bringing a detection target substance having a sugar chain into contact with lectin 1 and lectin 2 having binding properties to the sugar chain.
  • the “detection procedure” is a procedure for detecting the detection target substance by detecting the “lectin 1-detection target substance-lectin 2” complex formed in the complex formation procedure.
  • the “detection target substance” may be a substance having a sugar chain (hereinafter also referred to as “complex carbohydrate”), and specifically, glycoprotein, glycolipid, proteoglycan. Glycosides in which sugar chains are bound to glycopeptides, lipopolysaccharides, peptidoglycans, steroid compounds, and the like.
  • examples of the “sample” that may contain the substance to be detected include living organisms such as blood, serum, plasma, urine, saliva, lymph, spinal fluid, pleural effusion, ascites, and tears. Examples include, but are not limited to, derived materials.
  • Both lectin 1 and lectin 2 used in the complex formation procedure are those that recognize and bind to the partial structure or the entire structure of the sugar chain of the detection target substance (having binding properties).
  • the sugar chain structure recognized by lectin 1 and the sugar chain structure recognized by lectin 2 may be the same, but are preferably different from each other. By using lectin 1 and lectin 2 that bind to different sugar chain structures, the detection specificity of the detection target substance can be further increased.
  • Lectin 1 may be a single lectin or a mixture of a plurality of types of lectins. The same applies to lectin 2.
  • lectin 1 When a mixture of a plurality of lectins is used as the lectin 1, the sugar chain structures recognized by the lectins contained in the mixture may be the same or different. The same applies to lectin 2.
  • the lectin originally has a sugar chain, but in this procedure, a lectin having no sugar chain is used for at least one of lectin 1 and lectin 2. More preferably, a lectin having no sugar chain in both lectin 1 and lectin 2 is used.
  • “lectin having no sugar chain” includes lectins having no sugar chain that can cause binding of lectins via sugar chains in addition to lectins having no sugar chain modification. Shall be. More specifically, “lectin 1 having no sugar chain” is modified with a sugar chain having a sugar chain structure recognized by lectin 1 and / or a sugar chain having a sugar chain structure recognized by lectin 2. Any lectin can be used. Even if lectin 1 has a sugar chain, if the sugar chain does not contain a sugar chain structure recognized by lectin 1 and / or lectin 2, a complex of lectins 1 and / or lectin 1 and This is because the complex of lectin 2 is not generated.
  • “lectin 2 having no sugar chain” is a lectin in which a sugar chain having a sugar chain structure recognized by lectin 1 and / or a sugar chain having a sugar chain structure recognized by lectin 2 is not modified. You can use it if you want.
  • the lectin having no sugar chain include a recombinant lectin expressed in prokaryotic cells or a modified lectin obtained by modifying the sugar chain structure of a natural protein.
  • recombinant lectin Since prokaryotic cells do not have a membrane structure that modifies sugar chains in proteins synthesized in the cells, recombinant lectins (recombinant lectins) expressed using prokaryotic cells as host cells do not have sugar chains. As will be described below, the recombinant lectin can be mass-produced simply and at low cost using a general genetic engineering technique.
  • a base sequence containing a base sequence encoding the amino acid sequence of a lectin having binding properties to a target sugar chain structure is used for appropriate expression according to a conventional method. Integrate into a vector to obtain a recombinant vector for expression.
  • a base sequence containing only a base sequence encoding the amino acid sequence of the sugar chain structure binding portion in the amino acid sequence of the lectin having binding ability to the target sugar chain structure may be incorporated.
  • the expression vector is not particularly limited as long as it has a function of expressing recombinant lectin in various host cells and producing the recombinant lectin.
  • Examples of expression vectors include plasmid vectors, phage vectors, and viral vectors.
  • pTrcHis2 vector pcDNA3.1 / myc-His vector (Invitrogen), pUC119 (Takara Shuzo), pBR322 (Takara Shuzo), pBluescript II KS + Stratagene), Pqe-tri ( Qiagen), plasmid vectors such as pET, pGEM-3Z, pGEX and pMAL, bacteriophage vectors such as ⁇ ENBL3 (Stratagene), ⁇ DASHII (Funakoshi), Charomid DNA (Wako Pure Chemical Industries, Ltd.) And cosmid vectors such as Lorist6 (manufactured by Wako Pure Chemical Industries, Ltd.).
  • plasmid vectors such as pET, pGEM-3Z, pGEX and pMAL
  • bacteriophage vectors such as ⁇ ENBL3 (Stratagene), ⁇ DASHII (Funakoshi), Charomid DNA (W
  • bacteriophages such as ⁇ phage, etc., pA1-11, pXT1, pRc / CMV, pRc / RSV, pcDNA I / Neo, p3 ⁇ FLAG-CMV- 14, pCAT3, pcDNA3.1, pCMV and the like.
  • the lectin may be expressed as a fusion protein with a tag peptide or another protein.
  • tag peptide to be fused include a FLAG tag, 3XFLAG tag, His tag (His tag, for example, 6 ⁇ His tag) and the like.
  • a transformant is prepared by transforming (transducing) an appropriate host cell using the obtained recombinant vector for expression.
  • a host cell a cell that expresses and produces a recombinant protein without modification with a sugar chain is used.
  • host cells include prokaryotes, specifically Escherichia coli and Bacillus (B. subtilis, B. brevis, B. borstelenis, etc.).
  • E. coli include BL21, BL21 (DE3), K-12, DH1, DH5, DH5 ⁇ , M15, HB101, C600, XL-1 Blue, JM109, JM105, JM127, XL1-Blue, VCS257, TOP10, etc. can be used.
  • competent Cell With higher introduction efficiency of plasmid or phage DNA.
  • competent cells include E. coli DH5 ⁇ Competent Cell, E. coli And JM109 Competent Cells (manufactured by Takara Bio Inc.).
  • Transformation of a host cell with a recombinant expression vector can be performed using a conventionally known method.
  • the host cell is Escherichia coli
  • the method by Cohen et al. See Proc. Natl. Acad. Sci. USA, (1972) 9,2110)
  • the protoplast method see Mol. Gen. Genet., (1979) 168, 111
  • Competent method see J. Mol. Biol., (1971) 56, 209)
  • M. Morrison method Methodhod in Enzymology, 68, 326-331, 1979.
  • transformation may be performed according to the product protocol.
  • transformant expresses and produces recombinant lectin
  • a conventional method such as Southern hybridization or colony hybridization using a probe can be applied. .
  • the following method can also be employed.
  • the cells are disrupted or lysed by a conventional method (for example, sonication, treatment with a homogenizer, etc.
  • a membrane solubilizing agent such as a suitable surfactant to obtain the lysate.
  • the protein is further purified, and then, for example, a usual immunoassay using an antibody against the tag peptide (dot western blotting method, western blotting method, etc.) is performed. Confirm that is expressed.
  • the transformant is cultured in a nutrient medium to produce recombinant lectin.
  • the culture is performed by a conventionally known method, and the temperature, the pH of the medium, and the culture time can be appropriately set.
  • cultivating a transformant whose host cell is Escherichia coli it may be carried out in a commonly used liquid medium under the usual conditions for culturing Escherichia coli.
  • Recombinant lectin can be obtained from a culture obtained by culturing as follows. That is, when recombinant lectin is present in the periplasm or cytoplasm of the transformant, the cells or cells are recovered from the culture by a method such as filtration or centrifugation, and resuspended in an appropriate buffer. Then, for example, after disrupting the cell wall and / or cell membrane of the collected cells by a method such as surfactant treatment, ultrasonic treatment, lysozyme treatment, freeze-thawing, etc., the recombinant lectin is contained by a method such as centrifugation or filtration. To obtain a crude extract.
  • a culture solution (culture supernatant) is obtained. Then, according to a generally used method, recombinant lectin is isolated and purified from the crude extract or the culture solution (culture supernatant) so that no saccharide (sugar chain) is mixed.
  • Recombinant lectin isolation and purification methods include, for example, methods using solubility such as salting out, solvent precipitation, dialysis, ultrafiltration, gel filtration, and molecular weight differences such as sodium dodecyl sulfate-polyacrylamide gel electrophoresis.
  • Method using charge such as ion exchange chromatography, method utilizing specific affinity such as affinity chromatography, method utilizing difference in hydrophobicity such as reversed-phase high performance liquid chromatography, isoelectric point electricity
  • a method using the difference in isoelectric point such as electrophoresis.
  • the purified recombinant lectin can be confirmed by, for example, ELISA using an anti-His antibody.
  • the modified lectin can be obtained by treating a natural lectin with an acid or a glycolytic enzyme.
  • the hydroxyl group of the sugar chain is oxidized, and the entire structure of the sugar chain or in the sugar chain The partial structure of can be changed.
  • the sugar chain structure can also be removed by ⁇ decomposition by alkali treatment.
  • the sugar chain structure recognized by the natural lectin or the sugar chain structure recognized by other lectins in the sugar chain of the natural lectin is modified so that the natural lectin is mediated through the sugar chain.
  • what is necessary is just to perform an acid process by a conventionally well-known method (refer also Example 11 mentioned later).
  • natural lectins are obtained by glycolytic enzymes such as glycanase (N-glycanase, O-glycanase, etc.), mannosidase, galactosidase, keratanase, chondroitinase, sialidase, fucosidase, N-acetylglucosaminidase, N-acetylhexosaminidase, etc.
  • glycolytic enzymes such as glycanase (N-glycanase, O-glycanase, etc.), mannosidase, galactosidase, keratanase, chondroitinase, sialidase, fucosidase, N-acetylglucosaminidase, N-acetylhexosaminidase, etc.
  • sugar chains can be removed from natural lectins.
  • the sugar chain of the natural lectin can be
  • the sugar chain structure recognized by the natural lectin or the sugar chain structure recognized by other lectins in the sugar chain of the natural lectin is modified so that the natural lectin is mediated through the sugar chain. It can be converted into a modified lectin that does not cause binding between lectins.
  • what is necessary is just to perform an enzyme process by a conventionally well-known method (refer also Example 11 mentioned later).
  • modified lectins obtained by acid treatment, alkali treatment or glycolytic enzyme treatment may lose or weaken the binding to sugar chains due to protein denaturation. Therefore, it is more preferable to use the above-mentioned recombinant lectin for lectin 1 and lectin 2 used in the complex formation procedure. Recombinant lectins are also preferred because they can be mass-produced simply and at low cost.
  • complex formation procedure In the complex formation procedure, when the substance to be detected is brought into contact with lectin 1 and lectin 2, lectin 1 and lectin 2 may be reacted with the sample simultaneously or sequentially.
  • the complex formation procedure may be performed by a heterogeneous method in which B / F separation is performed using an insoluble carrier, or may be performed by a homogeneous method in which B / F separation is not performed.
  • the amount (concentration) of lectin 1 and lectin 2 to be reacted with the sample is appropriately set according to the type of detection target substance, required measurement sensitivity, measurement method, measurement apparatus, and the like.
  • the method for performing B / F separation is a process in which a detection target substance and a lectin 1 bound to an insoluble carrier are brought into contact with each other to obtain a complex 1 composed of the lectin 1 and the detection target substance.
  • One procedure and a second procedure in which the complex 1 and the free lectin 2 are brought into contact with each other to obtain the complex 2 composed of the lectin 1, the substance to be detected, and the lectin 2 are performed.
  • a lectin having no sugar chain as the lectin 1 bound to the insoluble carrier, and it is more preferable to use a lectin having no sugar chain in both the lectin 1 and the lectin 2.
  • lectin 1 is bound to an insoluble carrier
  • lectin 2 is preferably bound to lectin 2, more preferably lectin 2 and A lectin having no sugar chain in both lectins 1 is used.
  • a substrate used in a general protein immobilization method such as a slide glass, an ELISA plate, a magnetic bead, a filter, a film, and a membrane can be used.
  • a substrate used in a general protein immobilization method such as a slide glass, an ELISA plate, a magnetic bead, a filter, a film, and a membrane
  • glass, silicon, polycarbonate, polystyrene, polyurethane, or the like is used as the material for the substrate.
  • the method for immobilizing the lectin on the insoluble carrier is not particularly limited, and a known method such as a chemical bonding method (a method for immobilizing by a covalent bond) or a physical adsorption method can be applied. It is also possible to immobilize a lectin on an insoluble carrier using a very strong binding reaction such as an avidin-biotin reaction. In this case, a biotinylated lectin obtained by binding biotin to lectin may be immobilized on a streptamidine plate coated with streptamidine. Alternatively, the lectin may be immobilized on an insoluble carrier via various linkers usually used in this field.
  • a washing procedure for removing unnecessary substances from the surface of the solid phase may be included. Further, a washing procedure may be included after the second procedure and before performing the detection procedure. By the washing procedure, impurities in the sample and unreacted lectin 2 can be removed from the solid surface, and only complex 2 (insoluble carrier-lectin 1-detectable substance-lectin 2) can be separated on the solid surface. .
  • a method that does not perform B / F separation for example, a chromatography method, a high-performance liquid chromatography method, an electrophoresis method, or a capillary electrophoresis method is used as a method for separating a complex of lectin 1, a substance to be detected, and lectin 2.
  • capillary chip electrophoresis for example, a method using an automatic immunoanalyzer such as LiBASys (manufactured by Shimadzu Corporation) can be applied. Specific conditions are appropriately set according to the type and properties of the sample, the substance to be detected, lectin 1 and lectin 2. For example, in the case of separation using HPLC, it may be performed according to the methods described in Anal. Chem.
  • a complex of lectins 1, a complex of lectins 2, and lectin 1 and lectin 2 can be selectively formed.
  • the use of a lectin having no sugar chain as one of lectin 1 and lectin 2 also suppresses the formation of a complex between lectins 1, a complex between lectins 2, and a complex between lectin 1 and lectin 2.
  • a complex of “lectin 1-detection target substance-lectin 2” can be selectively formed.
  • Detection of the “lectin 1-detectable substance-lectin 2” complex formed by the complex formation procedure can be performed by, for example, a method using a labeling substance.
  • the labeling substance include enzymes, radioisotopes, fluorescent substances, luminescent substances, substances having absorption in the ultraviolet region, substances having properties as a spin labeling agent, etc. used in ordinary immunoassay methods, etc. And all the labeling substances usually used in this field.
  • a labeling method performed in a normal immunoassay or the like may be appropriately used.
  • a method of binding a labeling substance to a lectin through one or several amino acids or through one or several amino acids and a linker can be employed.
  • labeling may be performed using them according to the instruction manual attached to the kit.
  • the detection and measurement of the complex is performed according to a predetermined method depending on the property of the labeling substance that can be detected by some method.
  • a method for performing B / F separation using lectin 1 immobilized on an insoluble carrier and free lectin 2 labeled with horseradish peroxidase (HRP) as a labeling substance is as follows.
  • a sample containing a detection target substance having a sugar chain is brought into contact with an insoluble carrier on which lectin 1 is immobilized, and the reaction is performed at 4 to 40 ° C. for 3 minutes to 20 hours. And the detection target substance 1 is generated.
  • a solution containing lectin 2 labeled with HRP is added onto the surface of the solid phase, and reacted at 4 to 40 ° C. for 3 minutes to 16 hours to immobilize lectin 1-detectable substance-labeled lectin 2 complex. 2 is generated.
  • an appropriate concentration of TMB (3,3'5,5'-tetramethylbenzidine) solution is added and allowed to react for a certain period of time.
  • reaction stop solution such as 1M sulfuric acid is added to stop the reaction, and the absorbance at 450 nm is measured.
  • the amount of the detection target substance in the sample can be obtained from the obtained measurement value and a calibration curve obtained by performing the same measurement on a solution of the detection target substance whose concentration is known in advance.
  • lectin 1 labeled with Alexa Fluor-488-tetrafluorophenyl ester or the like and lectin 2 labeled with Alexa Fluor-647 succinimidyl ester or the like are detected according to a known fluorescence cross-correlation spectroscopy (FCCS). Substances can also be measured.
  • FCCS fluorescence cross-correlation spectroscopy
  • the complex of “lectin 1-detection target substance-lectin 2” can be detected without using a labeling substance, for example, by using a property derived from the complex, specifically surface plasmon resonance, etc. It can also be carried out by a method such as a homogeneous immunoassay system.
  • the complex of “lectin 1-detectable substance-lectin 2” is used in this procedure. Only can be detected with high sensitivity.
  • a complex of “lectin 1-detectable substance-lectin 2” can be detected with high sensitivity by using a lectin having no sugar chain in one of lectin 1 and lectin 2 in the complex formation procedure. It becomes possible to do.
  • Example Embodiment Specific examples of embodiments of the lectin-lectin sandwich method are described below. In addition, you may perform operation (cleaning etc.) which removes an unnecessary substance as needed after each operation.
  • the lectin-lectin sandwich method A detection system can be easily constructed using a lectin that reacts with the chain structure. Furthermore, in the lectin-lectin sandwich method, if a recombinant protein is used as a lectin, a low-cost detection system can be constructed.
  • Recent research has revealed various functions of sugar chains. Especially cancer (metastasis, tumor marker, etc.), immunity (immunoreceptor regulation, immune cell differentiation, antibody drug, etc.), fertilization, development / differentiation (regenerative medicine, etc.), infectious diseases (influenza, Helicobacter pylori, cholera toxin, etc.)
  • cancer metastasis, tumor marker, etc.
  • immunity immunogenoreceptor regulation, immune cell differentiation, antibody drug, etc.
  • fertilization development / differentiation (regenerative medicine, etc.)
  • infectious diseases influenza, Helicobacter pylori, cholera toxin, etc.
  • the lectin-lectin sandwich method of the present invention capable of detecting a specific sugar chain structure is used for research (discovery, development, etc.) of disease-related biomarkers such as cancer markers (SLX antigen, CA19-9 antigen, etc.) Diagnosis / determination of cancer and other diseases by detecting biomarkers (e.g., determination of malignancy of cancer, evaluation of cancer metastasis, etc.), elucidation of pathogenesis of each disease and development of treatment methods, mesenchymal stem cell markers / differentiation It is particularly effectively used in fields such as marker research, biopharmaceutical quality control and development, and cell quality control.
  • cancer markers SLX antigen, CA19-9 antigen, etc.
  • biomarkers e.g., determination of malignancy of cancer, evaluation of cancer metastasis, etc.
  • mesenchymal stem cell markers / differentiation e.g., mesenchymal stem cell markers / differentiation
  • the lectin-lectin sandwich method according to the present invention is not limited to the application method, and can be easily and quickly measured by applying it to a measurement system using an automatic analyzer.
  • an automatic analyzer There are no particular restrictions on the combination of reagents, etc. when performing measurement using a method for use or an automatic analyzer, depending on the environment and model of the automatic analyzer to be applied, or taking other factors into consideration What is necessary is just to select and use the combination of reagents etc. which seems to be the best.
  • the lectin-lectin sandwich method according to the present invention is a micro-TAS (Micro-Total Analysis). Systems: ⁇ -TAS, ⁇ comprehensive analysis system) is also possible.
  • a lectin L 1 recombinant BC2LCN (hereinafter referred to as "rBC2LCN") is a solid surface S of the immobilized insoluble carrier (see Figure A)
  • rBC2LCN is contained in the sugar chain structure G 1 (Fuc ⁇ 1-2Gal ⁇ 1-3GlcNAc / GalNAc) of the undifferentiated sugar chain marker represented by the above (Formula 1) or (Formula 2), which is contained in the culture supernatant as the detection target substance T. It has binding properties. Accordingly, the complex 1 in which the lectin L 1 is bound to the detection target substance T via the sugar chain structure G 1 is formed on the solid phase surface S after the reaction (see FIG. B).
  • Lectin L 1 preferably has a high specificity for carbohydrate structures G 1 having the detection target substance T.
  • rBC2LCN has high specificity for the sugar chain structure “Fuc ⁇ 1-2Gal ⁇ 1-3GlcNAc / GalNAc”. For this reason, in this procedure, the undifferentiated sugar chain marker in the culture supernatant can be specifically captured on the solid phase surface S by specific binding between the lectin L 1 and the sugar chain structure G 1 .
  • Lectin L 2 is, SRL which have a binding undifferentiated glycan markers revealed, CGL2, ABA, XCL is used (see Example 6).
  • SEQ ID NOs: 2 to 5 show the amino acid sequences of these lectins.
  • SEQ ID NO: 2 shows the amino acid sequence of ABA
  • SEQ ID NO: 3 shows the amino acid sequence of XCL
  • SEQ ID NO: 4 shows the amino acid sequence of SRL
  • SEQ ID NO: 5 shows the amino acid sequence of CGL2.
  • These lectins may be used in combination of two or more. In the figure, among the sugar chain structure having undifferentiated glycan markers showed sugar chain structure in which these lectins are bound by the reference numeral G 2.
  • SRL, CGL2, ABA, and XCL do not require the full length corresponding to SEQ ID NOs: 2 to 5 as long as they maintain the property of specifically recognizing undifferentiated sugar chain markers, and SEQ ID NOs: 2 to 5 In part, some amino acids may be deleted, substituted, inserted or added.
  • the solid-phase surface S, lectin L 1 is a composite 1 which is conjugated to a detectable substance T via the sugar chain structure G 1, lectin L 2 is bonded further through the sugar chain structure G 2 A complex 2 is formed (see FIG. C).
  • rBC2LCN having no sugar chain is used as lectin L 1 , and in this procedure, lectin L 2 is prevented from binding to the sugar chain of lectin L 1 to form a complex.
  • lectin L 2 is prevented from binding to the sugar chain of lectin L 1 to form a complex.
  • only composite 2 can be selectively formed consisting of the rBC2LCN on the solid surface S undifferentiated sugar chain marker and lectin L 2 Prefecture.
  • lectin L 2 by using rSRL having no sugar chain, RCGL2, Raba, the RXCL, or form a complex lectin L 1 is attached to the sugar chain of the lectin L 2, lectin L 2 It is possible to prevent each other from forming a complex.
  • the amount of labeling substance may be measured by measuring fluorescence intensity, etc., and the amount of undifferentiated sugar chain marker in the culture supernatant may be measured based on the amount of labeling substance obtained.
  • washing for removing impurities present on the solid phase surface S and unreacted lectin L 2 may be performed.
  • rBC2LCN is obtained by performing a sandwich method using a combination of rBC2LCN (lectin L 1 ), which binds to different sugar chain structures, and rSRL, rCGL2, rABA and / or rXCL (lectin L 2 ).
  • the detection specificity of the undifferentiated sugar chain marker can be improved as compared with the case of using and detecting.
  • the reagents included in the kit include reagents usually used in this field, for example, stabilizers such as buffers, reaction accelerators, sugars, proteins, salts, surfactants, preservatives, and the like.
  • stabilizers such as buffers, reaction accelerators, sugars, proteins, salts, surfactants, preservatives, and the like.
  • a substance that does not inhibit the stability of the coexisting reagent or the like and does not inhibit the reaction between the substance to be detected and lectin 1 and lectin 2 may be included.
  • the concentration may be appropriately selected from a concentration range usually used in this field.
  • the kit may include a standard product used for preparing a calibration curve for the detection target substance.
  • the standard product may be a commercially available substance or a substance produced according to a known method.
  • Example 1 Cell staining of ES cells ES cells (KhES1 strain) used in this example were purchased from the Center for Stem Cell Medicine, Research Institute for Regenerative Medicine, Kyoto University. The cells were cultured by the method of Suemori et al. (See Non-Patent Document 4). The cells were fixed with 4% paraformaldehyde, washed with PBS, then rBC2LCN labeled with fluorescence (conjugated with Cy3) was added, and reacted at room temperature for 1 hour (FIG. 2, middle left, right shows the nucleus of the same cell) Stained).
  • Tra1-60 antibody that specifically recognizes ES cells and iPS cells was reacted with KhES1 cell colonies, and then stained with a secondary antibody anti-mouse anti IgM-Alexa488. It is shown on the upper left of FIG. The upper right column shows the same cell nucleus stained with DAPI.
  • Fluorescently labeled rBC2LCN strongly stains ES cells in the same manner as the Tra1-60 antibody (the middle left in FIG. 2, the same is the tissue nucleus stained).
  • the middle left in FIG. 2 the same is the tissue nucleus stained.
  • rBC2LCN was comparable to Tra1-60 antibody or It can be seen that ES cells are detected more strongly than that.
  • Example 2 Cell staining at the time of induction of differentiation of ES cells
  • the final concentration was determined according to the method of Draper et al. Differentiation of ES cells was induced by adding retinoic acid to 10-5 M and culturing. After culturing for 8 days, it was confirmed that differentiation was sufficiently advanced from the viewpoint of cell morphology, and fluorescent labeled rBC2LCN was reacted with each cell (FIG. 3).
  • Tra1-60 antibody was reacted, and then secondary antibody anti-mouse IgM-Alexa488 was further reacted.
  • the “+ RA” stage indicates the case where the retinoic acid treatment is performed and the nerve is differentiated, and the “ ⁇ RA” stage indicates the case where it is not treated.
  • “DAPI” on the right side of FIG. 3 shows the result of staining the nucleus of the same cell with DAPI.
  • the sugar chain structure of “Fuc ⁇ 1-2Gal ⁇ 1-3GlcNAc / GalNAc” is an extremely excellent marker as an undifferentiated sugar chain marker for determining differentiation or undifferentiation.
  • the rBC2LCN-immobilized substrate has excellent utility as a kit for determining differentiation and undifferentiation that specifically recognizes stem cells such as ES cells and iPS cells having undifferentiation. .
  • Example 3 Direct analysis of fluorescence-labeled culture supernatant
  • the iPS cells (201B7 strain, 253G1 strain) used in this experiment were purchased from RIKEN BioResource Center.
  • the TIGMKOS # 19 strain was established at the Stem Cell Engineering Research Center, National Institute of Advanced Industrial Science and Technology (unpublished).
  • the cells were cultured by the method of Tateno et al. (See Non-Patent Document 1).
  • the culture solution cultured for about 24 hours was collected, and only the liquid component was separated by centrifugation to obtain a culture supernatant.
  • iPS cells 201B7 and 253G1 were cultured for 8 days in the same manner as in Example 2 to induce differentiation.
  • iPS cells 201B7 and 253G1 without retinoic acid (RA) were also cultured for the same day.
  • the TIGMKOS # 19 strain was also cultured for 4 days without retinoic acid (RA).
  • the culture medium was replaced with a fresh culture medium every day, and the resulting culture supernatant for disposal was subjected to the following measurement step.
  • the culture supernatant of each iPS cell was fluorescently labeled, reacted with rBC2LCN immobilized on a slide glass at 20 ° C. overnight, washed, and its binding was detected with an evanescent wave excitation fluorescent scanner (FIG. 4). ).
  • rBC2LCN reacted with the culture supernatant of undifferentiated iPS cells cultured without retinoic acid (201B7 strain, 253G1 strain, TIGMKOS # 19 strain), but differentiated iPS cultured in the presence of retinoic acid. There was no reactivity with cells (201B7 strain, 253G1 strain) or control medium. This demonstrates that the sugar chain structure of “Fuc ⁇ 1-2Gal ⁇ 1-3GlcNAc / GalNAc” functions effectively as an undifferentiated sugar chain marker for determining differentiation or undifferentiation in the culture supernatant. .
  • ES cells and iPS cells were established using the culture supernatant without collecting the cells. It is also possible to verify that differentiated cells are not contaminated when preserving these stem cells or proliferating with undifferentiated properties.
  • various organ cells cardiac cells, liver cells, neurons, pancreatic islet cells, chondrocytes, bone cells, etc.
  • stem cells such as ES cells and iPS cells, and thus have undifferentiated properties. The remaining cells can be detected simply and quickly simply by examining the culture supernatant.
  • proteins such as Nanog, POU5F1, DNMT3B, TERT, UTF1 (undifferentiated embryonic cell transcription factor 1), FOXD3, LIN28, and BRIX are known as undifferentiated cell markers, but most of these proteins are in the nucleus. It is considered that detection in the culture supernatant is impossible.
  • Example 4 Analysis of culture supernatant by lectin overlay
  • the undifferentiated sugar chain marker captured by rBC2LCN (lectin 1) on the slide glass
  • a detection lectin (lectin 2) was bound to the lectin, and detection by the lectin-lectin sandwich method was attempted.
  • Biotinylated rAAL was used as the detection lectin.
  • Example 3 the culture supernatant obtained by culturing the iPS cells without retinoic acid (RA) (TIGMKOS # 19 strain) and the medium alone (control medium) for 4 days was collected, and the slide glass on which rBC2LCN was immobilized. And reacted at 20 ° C. overnight. After washing, biotinylated rAAL was reacted at 20 ° C. overnight, 1 ⁇ g / mL Cy3-labeled streptavidin was reacted at 20 ° C. for 30 minutes, and binding was detected with an evanescent wave excitation fluorescent scanner ( FIG. 5). The same treatment and measurement were performed for the control medium.
  • RA retinoic acid
  • Example 5 Screening for overlay lectin
  • a lectin that can be used as a detection lectin (overlay lectin) together with a capture lectin rBC2LCN. was screened.
  • Recombinant lectins to be screened are shown in “Table 1” below.
  • the result of measuring the fluorescence intensity with GlycoStation TM Reader 1200 is shown in FIG.
  • the vertical axis represents the value obtained by subtracting the fluorescence intensity value obtained from the control medium from the fluorescence intensity value obtained from the culture supernatant.
  • Example 6 Lectin-lectin sandwich method (recombinant lectin)
  • rSRL, rCGL2, rABA, and rXCL specified in Example 5 were used for lectin 2 (detection lectin)
  • rBC2LCN was used for lectin 1 (capture lectin)
  • lectin-lectin sandwich method was not performed. The differentiation sugar chain marker was detected.
  • Biotinylated rBC2LCN was immobilized on a streptavidin plate (Nunc, # 436020).
  • iPS cells were cultured in the presence or absence of retinoic acid (RA) for 8 days while changing the medium every day, and the culture supernatant on the 8th day of culture (approximately 24 hours after the medium change)
  • the culture supernatant obtained by collecting was added dropwise and reacted at 37 ° C. for 1 hour.
  • the above-mentioned recombinant lectin labeled with HRP was added to the washed plate again and reacted at 37 ° C. for 1 hour.
  • 1-step ULTRA TMB-ELISA (Thermo, # 34028) was added dropwise, reacted at room temperature for 30 minutes, the reaction was stopped by adding 1M sulfuric acid, and the absorbance at 450 nm was measured.
  • Results are shown in FIG. In FIG. 7, the absorbance value obtained with the culture supernatant was divided by the absorbance value obtained with the control medium, and the value was displayed as S / N.
  • the culture supernatant of undifferentiated iPS cells (253G1 (RA-)) showed a higher S / N value than the culture supernatant of differentiated iPS cells.
  • (253G1 (RA +)) showed a lower S / N value.
  • rABA showed the highest S / N value.
  • the culture supernatant of feeder cells (MEF) showed almost the same reactivity as the control medium regardless of the addition of retinoic acid (RA).
  • Example 7 Preparation of calibration curve in lectin-lectin sandwich method
  • undifferentiated cells in the culture supernatant in the detection system for undifferentiated sugar chain markers by the lectin-lectin sandwich method constructed in Example 6 were used.
  • a calibration curve for quantifying the number was prepared.
  • iPS cells (201B7 or 253G4) were cultured for 24 hours, the medium (Medium WakoB, Nutristem, ReproFF, or MEF-CM) was collected, and the number of iPS cells in the medium was counted.
  • the culture supernatant of iPS cells was serially diluted and analyzed in the same manner as in Example 6.
  • a regression line showing the relationship between the obtained absorbance value and the number of cells was obtained as a calibration curve.
  • Calibration curves obtained using rABA as a detection lectin are shown in FIGS. 8 and 9, and calibration curves obtained using rSRL are shown in FIGS.
  • the calibration curves shown in FIGS. 8 to 11 all showed a high correlation coefficient of 0.961 or more.
  • Example 8 Identification of undifferentiated sugar chain marker
  • an undifferentiated sugar chain marker was identified.
  • FIG. 12D A signal was observed in a molecule having a molecular weight of 240 kDa or more, and it was revealed that this molecule is a podocalyxin protein or a part of a podocalyxin protein.
  • Podocalixin is a type 1 transmembrane glycoprotein that has been identified from epithelial glomerular cells known as podocytes and plays an important role in maintaining the function and morphology of glomeruli. It is known to be related to development (see Non-Patent Document 8).
  • podocalyxin was predicted to contain “Fuc ⁇ 1-2Gal ⁇ 1-3GalNAc (H type 3 sugar chain)” in the structure of the modified sugar chain. It was. It is unknown whether H type 1 sugar chains are present in podocalyxin.
  • podocalyxin having an H-type 3 sugar chain was identified as an anti-podocalyxin antibody as a probe for detecting undifferentiated cells, and the modification site of the podocalyxin H-type 3 sugar chain was specifically identified. This shows the possibility of using antibodies that can be recognized automatically.
  • Example 9 Analysis of binding characteristics of rBC2LCN
  • the sugar chain structure recognized by rBC2LCN was analyzed.
  • FIG. 13 (A) the dotted line shows the elution profile of Man ⁇ 1-6 (Man ⁇ 1-3) Man ⁇ 1-4GlcNAc ⁇ 1-4GlcNAc-PA, which is a control PA sugar chain.
  • the solid line shows the elution profile of Fuc ⁇ 1-2Gal ⁇ 1-3 (Gal ⁇ 1-3GlcNAc ⁇ 1-6) GalNAc-PA, which is a PA sugar chain isolated from iPS cells.
  • FIG. 13B is a schematic diagram of Fuc ⁇ 1-2Gal ⁇ 1-3 (Gal ⁇ 1-3GlcNAc ⁇ 1-6) GalNAc-PA (O-type sugar chain including H type 3).
  • Circles indicate galactose
  • white squares indicate N-acetylgalactosamine
  • black squares indicate N-acetylglucosamine
  • triangles indicate fucose.
  • a thick line between galactose and N-acetylglucosamine, a galactose and N-acetylgalactosamine indicates a ⁇ linkage
  • a thin line between galactose and fucose indicates an ⁇ linkage.
  • PNGaseF was dropped onto a high-density natural lectin array (see Non-Patent Document 1) in which 96 types of lectins were immobilized on a slide glass, and allowed to react overnight at 37 ° C. After the reaction, washing was performed once, Cy3-labeled recombinant lectin (rOrysata) was dropped, and the mixture was reacted at 20 ° C. overnight. After the reaction, washing was performed twice and the fluorescence intensity was measured with GlycoStation TM Reader 1200 (GP BioSciences). For comparison, the same operation was performed using a high-density natural lectin array that had not been treated with PNGase.
  • rOrysata Cy3-labeled recombinant lectin
  • Example 11 Lectin sandwich method (sugar-removed natural lectin)
  • glycoproteins were detected by a lectin-lectin sandwich method using a modified lectin array obtained by treating a natural lectin array with a glycolytic enzyme.
  • PNGaseF was dropped on the natural lectin array used in Reference Example 10, and incubated overnight at 37 ° C. After incubation, washing was performed twice, thyroglobulin (10 ⁇ g / mL) was added dropwise, and the mixture was reacted at 37 ° C. overnight. After the reaction, washing was performed twice, and Cy3-labeled recombinant lectin (rOrysata) was added dropwise and reacted at 20 ° C. for 3 hours. After the reaction, washing was performed twice and the fluorescence intensity was measured with GlycoStation TM Reader 1200 (GP BioSciences).
  • the S / N ratio of SSA (natural lectin) in the lectin array not subjected to PNGaseF treatment was about 1.9.
  • the SSA (sugar chain-removed natural lectin) of the lectin array that had been treated with PNGaseF significantly improved the S / N ratio to about 8.0.
  • the S / N ratio for thyroglobulin detection was significantly improved in the lectin array treated with PNGaseF compared to the lectin array not treated with PNGaseF.

Abstract

　本発明の目的は、幹細胞を培養している培養上清を用いて、細胞の分化状態を評価する方法を提供することである。本発明において、「Fucα1-2Galβ1-3GlcNAc」又は「Fucα1-2Galβ1-3GalNAc」の糖鎖構造からなり、幹細胞の培養上清を用いて幹細胞の未分化状態を高感度で判別することができる「未分化糖鎖マーカー」が提供できた。同時に当該「未分化糖鎖マーカー」を高感度で認識できるＢＣ２ＬＣＮレクチン又はその改変体が、細胞の未分化状態を培養上清で判別できる、優れた「未分化糖鎖マーカー検出用プローブ」であることを見出した。

Description

未分化細胞検出方法及び複合糖質検出方法
　本発明は、細胞培養上清を用いて細胞の状態を判別する方法に関する。特に、未分化細胞の存在、非存在を評価する方法に関する。また、本発明は、糖タンパク質などの、糖鎖を有する検出対象物質を検出する方法に関する。
　多能性幹細胞は体を構成するあらゆる細胞に分化できる性質やその未分化性を維持できる性質により注目を集め、創薬スクリーニングや疾患メカニズム解明への応用のみならず、再生医療の材料として世界中で研究が進められている。
　２０１０年に世界で初めてのヒトＥＳ細胞を用いた第１相臨床試験が米国で急性脊髄損傷に対して始まり、さらに網膜変性疾患に対するヒトＥＳ細胞を用いた第１/２相臨床試験の治験許可申請（ＩＮＤ）がＦＤＡにより承認され、ヒト多能性幹細胞を用いた再生医療研究は飛躍的な発展を続けている。
　とりわけ、日本発の新たなヒト多能性幹細胞であるｉＰＳ細胞は、受精胚を使用しないなどの理由から倫理的な障壁が低く、且つ自家組織からも樹立できるという極めて大きなメリットがあり、再生医療現場からも大きな期待を集めている。我が国では、理化学研究所発生・再生科学総合研究センターや先端医療センターなどが、加齢黄斑変性症の患者を対象に、ｉＰＳ細胞を使った臨床研究を２０１３年度から開始する計画であり、慶応大学も２０１５年に脊髄損傷患者に対しての臨床研究を始める方針である。
　このように、ＥＳ細胞やｉＰＳ細胞といったヒト多能性幹細胞の臨床応用が開始されるなか、品質と安全性を確保して細胞を供給する体制に関しては十分に整備がなされていない。多能性幹細胞は、作製の方法、培養条件、保存条件などが、未分化性、分化能、増殖能などの品質に影響を与える。このため適切な方法に基づかずに管理されると、生産者や使用者ごとに違った結果を生じる可能性がある。このことは、幹細胞治療の信頼性の低下、治療による健康被害の発生などの弊害を及ぼす原因となる。そのため、信頼性や再現性の高い維持培養法や計測・評価システムが必要である。
　たとえば、細胞治療には多能性幹細胞をそのまま用いるのではなく、目的の細胞に分化させてから移植に用いるが、目的の細胞に分化させた細胞源に未分化な細胞が混入している場合、その未分化細胞が腫瘍形成の原因になることが指摘されている。そこで細胞治療に用いる細胞に未分化細胞、すなわち腫瘍形成細胞が混入しているかどうかを評価する技術の開発が求められている。
　一方、体性幹細胞の種類や特性は、ＥＳ細胞やｉＰＳ細胞といったヒト多能性幹細胞と比べて多種多様ではあるが、臨床への適用が既存技術として存在する。しかしながら、移植に適した品質の細胞を安定的に得ることが容易ではないため、間葉系幹細胞の品質検証方法の確立と、それに基づいた安定的な培養方法の確立はきわめて重要な課題となっている。また、体性幹細胞を用いた細胞移植の有効性の評価、その機序の理解及びリスク評価を行う上でも、移植前の細胞の品質検証方法の開発が求められている。
　本発明者らは以前、レクチンマイクロアレイを用いて、５種類の異なる体細胞（皮膚、胎児肺、子宮内膜、胎盤動脈、羊膜）から作製したヒトｉＰＳ細胞（１１４検体）と、ヒトＥＳ細胞（９検体）の糖鎖プロファイルを網羅的に解析した。
　その結果、元の体細胞が組織毎に異なる糖鎖プロファイルを持っていたにもかかわらず、作製されたｉＰＳ細胞は、いずれもほぼ同じ糖鎖プロファイルを示し、初期化遺伝子の導入により一様にＥＳ細胞と類似の糖鎖構造に収束化することを見出した。ヒトＥＳ・ｉＰＳ細胞とヒト体細胞とのレクチンアレイデータを詳細に解析した結果によると、未分化のヒトＥＳ・ｉＰＳ細胞では、体細胞と比較してα2-6Sia、α1-2Fuc、タイプ1 LacNAcの発現量が顕著に増加していることが推定された。さらに、ＤＮＡアレイを用いた糖転移酵素遺伝子の発現解析、及び質量分析計を用いた方法によって、ｒＢＣ２ＬＣＮが未分化のヒトＥＳ・ｉＰＳ細胞のみに結合することを見出した（非特許文献１）。
　上記ｒＢＣ２ＬＣＮは、グラム陰性細菌（Burkholderia cenocepacia）由来のBC2L-Cタンパク質のＮ末端ドメインに対応したＢＣ２ＬＣＮレクチン（YP_002232818）を形質転換大腸菌で発現させた組換え体であり、複合糖鎖の非還元末端の「Fucα1-2Galβ1-3GlcNAc」並びに、「Fucα1-2Galβ1-3GalNAc」の糖鎖構造を認識するレクチンである（非特許文献１，３）。
　本発明者らは、上述のレクチンアレイを用いた実験において、ｒＢＣ２ＬＣＮが、未分化のヒトＥＳ・ｉＰＳ細胞と反応するものの、分化した体細胞（皮膚、胎児肺、子宮内膜、胎盤動脈、羊膜）とは全く反応しないことを見出した。ｒＢＣ２ＬＣＮは、「α1-2Fuc」、「タイプ1 LacNAc」及び「α2-6Sia」のうちの２つ（α1-2Fuc、タイプ1 LacNAc）を有する「Fucα1-2Galβ1-3GlcNAc（=Ｈタイプ１構造）」及び「Fucα1-2Galβ1-3GalNAc（=Ｈタイプ３構造）」の糖鎖構造と特異的に反応していると解される。これら２つの糖鎖構造は、ヒトＥＳ・ｉＰＳ細胞で高発現しており、分化した皮膚、胎児肺、子宮内膜、胎盤動脈、羊膜の細胞ではほとんど発現のない糖鎖である。
　このことは、ｒＢＣ２ＬＣＮが認識する糖鎖リガンドは未分化細胞を特徴付ける新規未分化糖鎖マーカーであることを示すものであり、かつ、ｒＢＣ２ＬＣＮは、当該未分化糖鎖マーカー「Fucα1-2Galβ1-3GlcNAc」及び／又は「Fucα1-2Galβ1-3GalNAc」（以下、両者をあわせて「Fucα1-2Galβ1-3GlcNAc/GalNAc」ということもある。）に特異的なプローブとして用いることができることを示している。
　その後、Drukkerらのチームも、「Fucα1-2Galβ1-3GlcNAc」を認識する抗体が、未分化状態のＥＳ細胞及びｉＰＳ細胞を認識することを見出しており（非特許文献２）、本発明者らの上記知見が裏付けられた。
　ただし、Drukkerらの上記抗体は「Fucα1-2Galβ1-3GlcNAc （=Ｈタイプ１構造）」には特異的に反応するものの、「Fucα1-2Galβ1-3GalNAc （=Ｈタイプ３構造）」とは反応しない。ｒＢＣ２ＬＣＮと比較すると、未分化細胞のうち「Fucα1-2Galβ1-3GalNAc」もしくは「Fucα1-2Galβ1-3GalNAc含有糖鎖」を検出することができないため、本発明者らのｒＢＣ２ＬＣＮと比較すると、充分な感度が上がらない欠点がある。
特開平9-301995号 WO2007/027495
Tateno H, Toyota M, Saito S, OnumaY, Ito Y, Hiemori K, Fukumura M, Matsushima A, Nakanishi M, Ohnuma K, Akutsu H,Umezawa A, Horimoto K, Hirabayashi J, Asashima M., J Biol Chem. 2011, 286(23):20345-53. Tang C, Lee AS, Volkmer JP, SahooD, Nag D, Mosley AR, Inlay MA, Ardehali R, Chavez SL, Pera RR, Behr B, Wu JC,Weissman IL, Drukker M., Nat Biotechnol. 2011, 29(9):829-34. Sulak O, Cioci G, Delia M, LahmannM, Varrot A, Imberty A, Wimmerova M., Structure. 2010, 18(1):59-72. Suemori H.,Yasuchika K.,HasegawaK.,Fujioka T.,Tsuneyoshi N.,Nakatsuji N. Biochem.Biophys.Res.Commun. 2006, 345,926-932. Draper JS,Pigott C,ThomsonJA,Andrews PW. J Anat. 2000, 200,249-58. Iijima et al. Chem. Bio. Chem.2009, 10,999-1006 Tateno, H., Nakamura-Tsuruta, S.,and Hirabayashi, J. Nat. Protoc. 2007, 2,2529-2537 Nielsen, J. S., and McNagny, K. M.J Am Soc Nephrol, 2009, 20,1669-1676.
　現在、細胞の品質を検査する場合には、細胞の遺伝子発現、エピゲノム状態、細胞表面マーカー等の差異を、シーケンサー、マイクロアレイ、フローサイトメトリー、免疫組織科学等で分析するのが一般的である。しかしながら、これらの方法では細胞そのものを分析に用いる必要があるため、細胞を回収する煩雑な工程が必要なばかりでなく、細胞治療に用いるための貴重な細胞を検査で使用してしまうという大きな問題点がある。
　また、上述のように、本発明者らによって未分化細胞と分化細胞とを識別する未分化糖鎖マーカーとなる糖鎖構造自身は確定することができた。しかし、Drukkerらの方法のみならず、本発明者らの以前のｒＢＣ２ＬＣＮを用いる技術は、細胞表面の糖タンパク質又は糖脂質等が有する糖鎖を観察する点では従来技術の域を出ないものである。すなわち、これらの技術は、被検細胞を回収する工程、もしくはさらに精製工程を要する点も同様で、検出評価工程における工程の煩雑さ、有効細胞の浪費という従来からの問題点を解決するものではなかった。
　そこで、本発明は、被検細胞を減らすことなく、非侵襲的に細胞の状態を調べる方法を提供することを主な目的とする。
　本発明者らは、「Fucα1-2Galβ1-3GlcNAc/GalNAc」に特異的なプローブとしてｒＢＣ２ＬＣＮをスライドグラス上に固定化した基板を作製し、当該基板を用いてＥＳ細胞及びｉＰＳ幹細胞の分化状態を評価する際に、細胞自身（破砕物）に代えて、培養上清との反応性も同時に評価検討してみた。
　その結果、驚くべきことに、基板上のｒＢＣ２ＬＣＮは、被検細胞培地から採取してきた１滴の培養上清（１μＬ相当）を、何らの精製工程も施さない状態のまま基板表面のレクチン上に供給するだけで、分化状態が評価できることを見出した。具体的には、ｒＢＣ２ＬＣＮは、コントロール培地やレチノイン酸存在下で培養して分化させたｉＰＳ細胞の培養上清とは反応しなかったのに対して、レチノイン酸非存在下で未分化状態を維持したｉＰＳ細胞の培養上清とは特異的に反応した。
　以上の結果からみて、上記「Fucα1-2Galβ1-3GlcNAc/GalNAc」の糖鎖構造を有する未分化糖鎖マーカーが、未分化細胞の培養上清には常に分泌されているのに対し、分化誘導により分化が進行するにつれ減少して、完全に分化すると当該未分化糖鎖マーカーは消失してしまうことを示すものである。
　このことは、本願発明においてはじめて「Fucα1-2Galβ1-3GlcNAc/GalNAc」糖鎖が培養上清中で観察可能な未分化糖鎖マーカーとして機能することを見出したのみならず、本発明によりはじめて培養上清中で観察可能な未分化糖鎖マーカーが提供されたことに相当する。なお、本発明者らの知る限り、培養下で未分化状態を維持したＥＳ細胞及びｉＰＳ幹細胞の細胞表面の糖タンパク質又は糖脂質等が培養液中に検出可能な状態で溶出し得ることを示す知見はこれまで存在していない。
　すなわち、ＥＳ細胞、ｉＰＳ細胞など未分化細胞を分化誘導する際の分化状態を評価する場合、又はこれら未分化細胞を未分化状態を維持したままで保存する際の保存状態の評価のためには、これら未分化細胞の培養上清を採取して、培養上清中の「Fucα1-2Galβ1-3GlcNAc/GalNAc」の存在・非存在を、当該糖鎖構造特異的なレクチン及び抗体などにより評価することが可能であることを示すものである。培養上清を用いる当該手法は、標的となる被検細胞自身を回収する工程も、特定の標的分子を精製する工程も不要な、きわめて簡便な技術であるといえる。特に、「ＢＣ２ＬＣＮレクチン」は、「Fucα1-2Galβ1-3GlcNAc」及び「Fucα1-2Galβ1-3GalNAc」のいずれの糖鎖構造も高感度で認識する特性を有しているため、当該レクチンを用いることで、より確実な未分化状態の評価システムを提供することができる。
　以上の知見を得たことで本発明を完成するに至った。
　即ち、本発明は以下の発明を包含する。
〔１〕　幹細胞の培養上清中の下記（式１）又は（式２）で表される未分化糖鎖マーカーの存在の有無又は存在量を測定することを特徴とする、幹細胞の分化状態を判別する方法；
Figure JPOXMLDOC01-appb-C000001
  
（図中、Ｒ１はＯＨ基、若しくは任意の糖鎖を表す。Ｒ２はＯＨ基、又は任意の糖鎖、タンパク質、脂質、若しくは他の分子を表す。）
Figure JPOXMLDOC01-appb-C000002
 （図中、Ｒ１はＯＨ基、若しくは任意の糖鎖を表す。Ｒ２はＯＨ基、又は任意の糖鎖、タンパク質、脂質、若しくは他の分子を表す。）。
　この方法によれば、細胞そのものではなく、細胞を培養している培養上清を用いて、細胞の分化状態を評価できる。
〔２〕　前記未分化糖鎖マーカーの有無又は存在量を、（式１）又は（式２）で表される糖鎖構造を特異的に認識するタンパク質を用いて測定することを特徴とする、前記〔１〕に記載の方法。
〔３〕　前記タンパク質が、下記のタンパク質である前記〔２〕に記載の方法；
配列番号１に示されるアミノ酸配列、又は当該アミノ酸配列の１若しくは数個のアミノ酸が欠失、置換、挿入、もしくは付加されたアミノ酸配列を含み、前記（式１）又は（式２）で表される糖鎖構造を特異的に認識するタンパク質。
〔４〕　前記幹細胞の培養上清が、当該幹細胞に対して分化誘導処理を施した後の培養上清であることを特徴とする、前記〔１〕～〔３〕のいずれかに記載の方法。
〔５〕　ポドカリキシンに由来する前記（式１）又は／及び（式２）で表される前記未分化糖鎖マーカーの存在の有無又は存在量を測定することを特徴とする、前記〔１〕～〔４〕のいずれかに記載の方法。
〔６〕　前記未分化糖鎖マーカーを、
前記（式１）又は（式２）で表される糖鎖構造を特異的に認識し、
配列番号１に示されるアミノ酸配列、又は当該アミノ酸配列の１若しくは数個のアミノ酸が欠失、置換、挿入、もしくは付加されたアミノ酸配列を含み、かつ、糖鎖を有さない、
タンパク質を用いたレクチン‐レクチンサンドイッチ法により検出することを特徴とする、前記〔１〕～〔５〕記載の方法。
〔７〕　分化誘導処理を施した幹細胞の培養上清中の下記（式１）又は（式２）で表される未分化糖鎖マーカーが存在しないことを確認して採取することを特徴とする、未分化細胞の混入していない分化細胞の取得方法；
Figure JPOXMLDOC01-appb-C000003
 （図中、Ｒ１はＯＨ基、若しくは任意の糖鎖を表す。Ｒ２はＯＨ基、又は任意の糖鎖、タンパク質、脂質、若しくは他の分子を表す。）
Figure JPOXMLDOC01-appb-C000004
 （図中、Ｒ１はＯＨ基、若しくは任意の糖鎖を表す。Ｒ２はＯＨ基、又は任意の糖鎖、タンパク質、脂質、若しくは他の分子を表す。）。
〔８〕　前記未分化糖鎖マーカーが存在しないことの確認を、配列番号１に示されるアミノ酸配列、又は当該アミノ酸配列の１若しくは数個のアミノ酸が欠失、置換、挿入、もしくは付加されたアミノ酸配列を含み、前記（式１）又は（式２）で表される糖鎖構造を特異的に認識するタンパク質を用いて行うことを特徴とする、前記〔７〕に記載の方法。
〔９〕　幹細胞の分化状態を判別する方法に用いるためのキットであって、下記（式１）又は（式２）で表される糖鎖構造を特異的に認識するタンパク質を含むことを特徴とするキット。
Figure JPOXMLDOC01-appb-C000005
 （図中、Ｒ１はＯＨ基、若しくは任意の糖鎖を表す。Ｒ２はＯＨ基、又は任意の糖鎖、タンパク質、脂質、若しくは他の分子を表す。）
Figure JPOXMLDOC01-appb-C000006
 （図中、Ｒ１はＯＨ基、若しくは任意の糖鎖を表す。Ｒ２はＯＨ基、又は任意の糖鎖、タンパク質、脂質、若しくは他の分子を表す。）。
〔１０〕　前記タンパク質が、下記のタンパク質である前記〔９〕に記載のキット；
配列番号１に示されるアミノ酸配列、又は当該アミノ酸配列の１若しくは数個のアミノ酸が欠失、置換、挿入、もしくは付加されたアミノ酸配列を含み、前記（式１）又は（式２）で表される糖鎖構造を特異的に認識するタンパク質。
　本発明に係る幹細胞の分化状態を判別する方法によれば、被検細胞の培養上清を直接レクチンなどの未分化糖鎖マーカー特異的なタンパク質と反応させることで、細胞を破壊することなく、非侵襲的に細胞の状態を評価することができる。従って、本発明は、特に未分化細胞の状態を簡便かつ効率的に判別することに用いることができるので、再生医療やバイオロジクスなどへの応用が期待できる。
レクチン‐レクチンサンドイッチ法の具体的手順の一例を説明するための図である。 未分化なＥＳ細胞（KhES1株）をＣｙ３ラベルしたｒＢＣ２ＬＣＮ及びTra1-60で染色した写真である（実施例１）。ネガティブコントロールとしては、Ｃｙ３ラベルしたＢＳＡを反応させた。細胞の存在を確認するために、DAPIでの核染色をそれぞれ行った。 未分化なＥＳ細胞（KhES1株）及び分化誘導処理（レチノイン酸処理）を施したＥＳ細胞をＣｙ３ラベルしたｒＢＣ２ＬＣＮ及びTra1-60で染色した写真である（実施例２）。細胞の存在を確認するために、DAPIでの核染色をそれぞれ行った。 分化誘導処理（レチノイン酸処理）を施したｉＰＳ細胞（201B7株、253G1株）培養上清と、処理をしていない未分化状態のｉＰＳ細胞（201B7株、253G1株、TIGMKOS#19株）培養上清とのｒＢＣ２ＬＣＮに対する反応性の比較結果を示すグラフである（実施例３）。なお、コントロールとして培地のみの場合を測定。 未分化糖鎖マーカーをレクチン‐レクチンサンドイッチ法により検出した結果を示すグラフである（実施例４）。 未分化糖鎖マーカーをレクチン‐レクチンサンドイッチ法により検出するための検出用レクチン（オーバーレイレクチン）をスクリーニングした結果を示すグラフである（実施例５）。 未分化糖鎖マーカーをレクチン‐レクチンサンドイッチ法により検出した結果を示すグラフである（実施例６）。 レクチン‐レクチンサンドイッチ法における未分化細胞数の検量線を示すグラフである（実施例７）。 レクチン‐レクチンサンドイッチ法における未分化細胞数の検量線を示すグラフである（実施例７）。 レクチン‐レクチンサンドイッチ法における未分化細胞数の検量線を示すグラフである（実施例７）。 レクチン‐レクチンサンドイッチ法における未分化細胞数の検量線を示すグラフである（実施例７）。 未分化糖鎖マーカーを同定した結果を示す写真である（実施例８）。 ｒＢＣ２ＬＣＮが認識する糖鎖構造を解析した結果を示すグラフである（実施例９）。
Ａ．幹細胞の分化状態判別方法等
１．本発明の培養上清で測定可能な未分化糖鎖マーカー
　本発明の培養上清で検出可能な未分化糖鎖マーカー（以下、単に「未分化糖鎖マーカー」ともいう）は、「Fucα1-2Galβ1-3GlcNAc/GalNAc」すなわち「Fucα1-2Galβ1-3GlcNAc（Ｈタイプ１糖鎖）」又は「Fucα1-2Galβ1-3GalNAc（Ｈタイプ３糖鎖）」の糖鎖構造を有しており、ヒトＥＳ・ｉＰＳ細胞の細胞表面に顕著に発現している、糖タンパク質及び糖脂質等の複合糖質である。なお、後述する実施例８では、この複合糖質の一つとしてポドカリキシン（podocalyxin）が同定されている。ポドカリキシンの糖鎖の構造には、「Fucα1-2Galβ1-3GalNAc（Ｈタイプ３糖鎖）」が含まれているものと予想された。
　本発明では、これら２種類の糖鎖が、ＥＳ細胞、ｉＰＳ細胞など未分化状態の細胞では、培養上清中に常に分泌されているが、分化した体細胞においては、培養上清中への分泌がないこと、すなわちこれらの糖鎖リガンドが未分化状態の場合においてのみ細胞上清中に分泌されることをはじめて見出した点に特徴を有する発明であり、これらの糖鎖リガンドは、「細胞上清中で測定可能な未分化糖鎖マーカー」として有用である。
　「Fucα1-2Galβ1-3GlcNAc」の糖鎖構造は、GlcNAcの４位の位置の水酸基は単糖（好ましくはフコース）又は分岐した若しくは分岐していないオリゴ糖鎖（好ましくは２～５の糖からなる糖鎖）で置換されていてもよい。また、当該糖鎖構造は、未分化細胞の幹細胞表面では、膜構成成分として、GlcNAcの１位の位置で糖タンパク質、糖脂質又は糖類などの非還元末端に結合している糖鎖であるから、未分化状態の幹細胞の培養上清中に分泌されている糖鎖構造としても、GlcNAcの１位の位置で、ＯＨ基、又は他の糖類、タンパク質、若しくは脂質、若しくはその他の分子の非還元末端が結合している。すなわち、下記（式１）として表すことができる。
Figure JPOXMLDOC01-appb-C000007
 （図中、Ｒ１はＯＨ基、若しくは任意の糖鎖、例えば、4αFuc基を表す。Ｒ２はＯＨ基、又は任意の糖鎖、タンパク質、脂質、若しくはその他の分子を表す。）
　同様に、「Fucα1-2Galβ1-3GalNAc」の糖鎖構造は、GalNAcの１位の位置の水酸基は分岐した若しくは分岐していないオリゴ糖鎖（好ましくは２～５の糖からなる糖鎖）で置換されていてもよい。また、当該糖鎖構造は、未分化細胞の幹細胞表面では、膜構成成分として、GalNAcの１位の位置で糖タンパク質、糖脂質又は糖類などの非還元末端に結合している糖鎖であるから、未分化状態の幹細胞の培養上清中に分泌されている糖鎖構造としても、GalNAcの１位の位置で、ＯＨ基、又は他の糖類、タンパク質、若しくは脂質、若しくはその他の分子の非還元末端が結合している。すなわち、下記（式２）として表すことができる。
Figure JPOXMLDOC01-appb-C000008
 （図中、Ｒ１はＯＨ基、若しくは任意の糖鎖、例えば、Galβ1-4Glc基を表す。Ｒ２はＯＨ基、又は任意の糖鎖、タンパク質、脂質、若しくはその他の分子を表す。）
２．本発明の「未分化糖鎖マーカー」の検出用プローブ
　本発明の培養上清中の未分化糖鎖マーカーの「Fucα1-2Galβ1-3GlcNAc（式１）」又は「Fucα1-2Galβ1-3GalNAc（式２）」の検出用プローブとしては、一般にタンパク質プローブが用いられ、当該未分化糖鎖マーカーと特異的に結合するタンパク質であればどのようなものでも用いることができる。典型的には、本発明者らが見出した前記（式１）及び（式２）の両糖鎖構造を認識するレクチンであるＢＣ２ＬＣＮ又はその改変体が好ましく用いられるが（式１）又は（式２）のいずれかを認識するレクチンであっても用いることができる。
　また、レクチンのみならず未分化糖鎖マーカーを認識できる抗体若しくはそのフラグメント、又はＴＣＲ若しくはそのフラグメントなど他のタンパク質であれば用いることができる。具体的には、Drukkerらの「Fucα1-2Galβ1-3GlcNAc（Ｈタイプ１糖鎖）」抗体（非特許文献２）などを例示することができる。
　後述するが、本発明の「未分化糖鎖マーカー」の検出用プローブを固定化した基板と共に、当該基板表面と幹細胞の培養上清とを接触させる手段、及び基板に固定化した上記検出用プローブもしくは培養上清を標識化する手段とをセットとすることで、幹細胞の分化状態の判別用キットとすることができる。特に、「未分化糖鎖マーカー」として、ＢＣ２ＬＣＮ又はその改変体を用いた場合は、きわめて高感度に幹細胞の分化状態を判定することができるキットとなる。
　ここで、「基板」というとき、スライドグラスなど平坦な形状のものには限られず、ＥＬＩＳＡプレート、磁気ビーズ、フィルターなど、通常のタンパク質固定化法が適用できる任意の形状、材質の基材が含まれる。「基板材料」として、好ましくは通常のマイクロアレイで使用される物質であり、シリコンウエハー、ガラス、ポリカーボネート、膜、ポリスチレンまたはポリウレタンのような高分子フィルム及び多孔性物質が用いられる。
３．ｒＢＣ２ＬＣＮについて
　上記２．で述べたように、本発明において、未分化糖鎖マーカー（Ｈタイプ１糖鎖及び／又はＨタイプ３糖鎖）、すなわち、（式１）又は（式２）の糖鎖構造を検出するためのプローブとしては、これらの糖鎖構造に結合特異性を示すタンパク質は全て使用することが可能であるが、これらタンパク質の中で最も好ましいレクチンは、本発明者らが以前見出した「ｒＢＣ２ＬＣＮ」であるので、以下「ｒＢＣ２ＬＣＮ」について説明する。
　本発明において「ｒＢＣ２ＬＣＮ」というとき、グラム陰性細菌（Burkholderia cenocepacia）から見つかったレクチンを大腸菌で発現させた組換え体のことを指すが、このレクチンはBC2L-Cと呼ばれるタンパク質のＮ末端ドメイン（GenBank／NCBI-GI登録番号：YP_002232818）に相当する（非特許文献３）。ｒＢＣ２ＬＣＮはＴＮＦ様タンパク質に構造類似性を示し、３量体を形成することが知られている。糖鎖アレイを用いた解析から、このレクチンは「Fucα1-2Galβ1-3GlcNAc（Hタイプ１糖鎖）」、「Fucα1-2Galβ1-3GalNAc（Ｈタイプ３糖鎖）」と共に、Ｈタイプ１又はＨタイプ３糖鎖を含有する糖鎖構造である、「Lewis b糖鎖 (Fucα1-2Galβ1-3(Fucα1-4)GlcNAc)」、「Globo H糖鎖(Fucα1-2Galβ1-3GalNAcβ1-3Galα1-4Galβ1-4Glc）」に対しても結合特異性を示すことが明らかになっている。
　ｒＢＣ２ＬＣＮは、糖鎖を含まないので、形質転換細菌によっても大量生産可能である。具体的には、GenBank／NCBI-GI登録番号：YP_002232818（Genome ID：206562055）のアミノ酸配列（配列番号１）をコードするＢＣ２ＬＣＮ遺伝子を用い、適宜宿主に対して最適化した後、形質転換した大腸菌から発現させ、通常のタンパク質精製手段により精製することができる。
　その際、ＢＣ２ＬＣＮとしては、配列番号１に対応する全長は必要とせず、また配列番号１において部分的に一部のアミノ酸が欠失、置換、挿入、付加されている場合であっても、「Fucα1-2Galβ1-3GlcNAc/GalNAc」、すなわち（式１）又は（式２）で表される糖鎖構造を特異的に認識する特性を維持していればよい。
　具体的には、本発明のＢＣ２ＬＣＮ又はその改変体は、例えば、以下のように表現することができる。
　「配列番号１に示されるアミノ酸配列又は当該アミノ酸配列の１若しくは数個のアミノ酸が欠失、置換、挿入、若しくは付加されたアミノ酸配列を含み、「Fucα1-2Galβ1-3GlcNAc」又は「Fucα1-2Galβ1-3GalNAc」の糖鎖構造を特異的に認識するタンパク質。」
　また、前記（式１）及び（式２）を用いて糖鎖構造を表せば、「配列番号１に示されるアミノ酸配列又は当該アミノ酸配列の１若しくは数個のアミノ酸が欠失、置換、挿入、若しくは付加されたアミノ酸配列を含み、（式１）又は（式２）で表される糖鎖構造を特異的に認識するタンパク質。」と表現できる。
　なお、ここで、数個とは２０個以下、好ましくは１０個以下、より好ましくは５個以下の自然数を表す。
４．本発明の「未分化糖鎖マーカー」の検出、測定
（１）培養上清の採取方法
　本発明では、未分化状態の幹細胞又は分化誘導後の細胞の培養上清をマイクロピペットなどで一定量採取し、本発明の未分化糖鎖マーカーに特異的に結合するタンパク質との反応性を解析する。培養液は一般に一定期間（約１日）毎に新鮮な培養液と交換する。このため、未分化糖鎖マーカーの検出は、未分化糖鎖マーカーが未分化細胞又は分化が不十分な細胞から交換後の培養液中に検出可能な量分泌された後に行う。培養液交換後、培養液中に検出可能な量の未分化糖鎖マーカーが溶出されるまでに要する時間は、細胞の種類や培養条件によって異なり得る。従って、培養液交換後、未分化糖鎖マーカーの検出に用いる培養上清を採取するまでの時間は、細胞の種類や培養条件によって適宜設定され得るが、例えば１８～３０時間程度とされる。通常は２４時間程度毎に培地交換を行うので、その際に廃棄する培養上清を利用することが好ましい。
　このような解析方法によれば、未分化状態の幹細胞を分化誘導した際に、細胞上清中から上記未分化糖鎖マーカーが検出されなくなった（バックグラウンド値と同レベルになった）ウエル、シャーレ、又はフラスコ内の細胞中には、もはや未分化細胞が混入していない分化細胞のみからなる細胞群であると評価できるから、ウエル、シャーレ又はフラスコ単位で未分化細胞の混入のおそれのない分化細胞を大量かつ迅速に取得できる。
　ここで、幹細胞を神経細胞、消化器系細胞などに「分化誘導」する方法としては、どのような手法であってもよく、例えば幹細胞をレチノイン酸存在下で培養して神経系細胞に分化する方法、増殖をストップさせたＮＩＨ３Ｔ３細胞表面を土台として表皮細胞を形成させる方法など種々の公知の手法が適用できる。本発明の未分化糖鎖マーカーの分化した細胞表面での発現量は無視できる程度であるから、どの分化誘導条件下でもノイズが極めて少ないことが予想される。
　また、未分化状態を維持しておきたい幹細胞の品質管理のためには、定期的にもしくは必要に応じて培養上清を採取して、又は培地交換の際に廃棄する培養上清を用いて、本発明の未分化糖鎖マーカー量を測定すれば、保存中の全ての細胞が未分化状態に維持されているかどうかを確認することができる。例えば、典型的な幹細胞の未分化状態維持培養方法として、マウス繊維芽細胞などのフィーダー細胞表面で培養する方法があるが、少なくとも１日１回は培養上清を取り去り新鮮な培地と交換する。その取り去って廃棄する培養上清を用いて分化／未分化判定を行うことができる。
　ここで、培養上清を一定量採取する手段としては、手作業でも良いが、自動培養装置などにより自動的に機械的に採取することが確実であり、特に、分化誘導後に未分化細胞の混入のない分化した細胞群のみをできるだけ早く得ようとする場合には、一定時間間隔で採取し解析することにより、確実に分化した細胞群のみを速やかに取得できる。
（２）本発明の「未分化糖鎖マーカー」の解析方法
　本発明の未分化糖鎖マーカーと特異的に結合するタンパク質であるレクチンや抗体等を標識化して、培養上清中に直接添加して標識の強さを計測することもできるが、好ましくはレクチンや抗体等を基板上に固定化して、培養上清を「Cy3-NHS ester」（GEヘルスケアバイオサイエンス社製）などで蛍光標識し、ＥＬＩＳＡ法やエバネッセント波励起蛍光型スキャナーを用いる方法等により検出、測定する。
　幹細胞の培養液から採取した培養上清は、精製工程を経ることなくそのまま、もしくは希釈して、又は予め抗体やレクチン等で濃縮して検出工程に供する。本発明者らが以前に開発した基板上に固定化したレクチン表面に接触させ、エバネッセント波励起蛍光型スキャナーを用いる方法の他、共焦点型スキャナー、蛍光プレートリーダー等を用いて検出できる。固定化された抗体も同様な方法が適用できる。
　しかし、当該方法に限定されることはなく、ＥＬＩＳＡ、表面プラズモン共鳴センサ、平衡透析法、滴定カロリメトリー、水晶発振子センサ検出法などの方法によっても結合活性の測定をすることができる。また、通常の競合法や、後記する「レクチン－レクチンサンドイッチ法」によっても、本発明に係る未分化糖鎖マーカーの測定をすることができる。「レクチン－レクチンサンドイッチ法」を用いた場合には、培養上清中の未分化糖鎖マーカーを定量性良く測定できるので、より精度よく分化の完了（未分化細胞がなくなったこと）を判定できる。
　分化誘導後の培養上清に対して、上記解析を施し、未分化細胞が混入していないことを確認した後、当該ウエル、シャーレ、又はフラスコ内の細胞を分収することにより、分化細胞を取得することができる。反対に、未分化維持状態に保持した状態の幹細胞保存方法において、培地交換時の廃棄用培養上清に対して上記解析方法を適用することで、幹細胞の品質保持状態を確認することができる。
（３）本発明の「未分化糖鎖マーカー」を解析することによる、幹細胞の分化状態の判別用キット又は装置
　本発明の未分化糖鎖マーカーの検出用プローブ、好ましくはＢＣ２ＬＣＮ又はその改変体を、下記（１）～（３）の手段と共にキット又は装置とすれば、未分化糖鎖マーカーの解析が可能なキット、又は装置となるから、幹細胞の分化状態の判別用キット又は装置とすることができる。なお、本発明の未分化糖鎖マーカーの検出用プローブは基板表面に固定化して用いることが好ましい。
(1)幹細胞の培養上清と接触させる手段；ただし、当該手段は手作業でも可能なので必須ではない。
(2)検出用プローブ若しくは培養上清を蛍光標識するための蛍光標識；ここで、「培養上清を蛍光標識する」というとき、培養上清中での検出対象である本発明の未分化糖鎖マーカーすなわち、「（式１）もしくは（式２）で表される糖鎖構造又は当該糖鎖構造含有物質」を蛍光標識することができる蛍光物質（例えば、「Cy3-NHS ester」）を意味する。
(3)蛍光標識を検出するための手段又は装置。
　本発明の未分化糖鎖マーカーの検出用プローブを固定化した基板と共に、基板表面に固定化したタンパク質又は培養上清を標識化する手段とをセットとすることで、幹細胞の分化状態の判別用キットとすることができる。好ましくは当該基板表面に幹細胞の培養上清を接触させる手段若しくは装置をセットしてもよく、さらに蛍光標識を検出するための手段もしくは装置をセットにすることもできる。特に、未分化糖鎖マーカーとして、ＢＣ２ＬＣＮ又はその改変体を用いた場合は、きわめて高感度に幹細胞の分化状態を判定することができるキットとなる。
（４）ｒＢＣ２ＬＣＮを用いた未分化糖鎖マーカーの測定手順
　以下、本発明の典型的なレクチンであるｒＢＣ２ＬＣＮを用いた場合について主に述べるが、本発明はｒＢＣ２ＬＣＮのみに限定されないことは上記したとおりである。
（ア）ｒＢＣ２ＬＣＮをスライドグラス上に固定化した基板に対し、「Cy3-NHS ester」などでラベル化した培養上清を直接反応させて、エバネッセント波励起蛍光検出系で、その結合を測定する。この場合、培養上清は予め物理的もしくは化学的に濃縮してから解析に用いることもある。
（イ）また、ｒＢＣ２ＬＣＮをＥＬＩＳＡプレート、磁気ビーズ、フィルターなどの基板に固定化したものに対して予め酵素、蛍光、ビオチンなどでラベル化した培養上清を反応させて、その結合を発色、発光、蛍光などで検出することも可能である。あるいは、培養上清反応後、ｒＢＣ２ＬＣＮに結合しているタンパク質に結合するラベル化した抗体やレクチンを、上から反応させることもできる。特に、ｒＢＣ２ＬＣＮに結合しているタンパク質に結合するレクチンを用いた「レクチン‐レクチンサンドイッチ法」（詳しくは後述）を用いることで、より高感度な測定が可能となる。
（ウ）本発明の内未分化糖鎖マーカーに対する抗体やレクチンを固定化したものに培養上清を反応させて、予め酵素、ビオチン、蛍光などでラベル化したｒＢＣ２ＬＣＮを反応させることも可能である。ｒＢＣ２ＬＣＮは、常法により蛍光や酵素、ビオチン等でラベル化して、蛍光染色、フローサイトメトリー、ＥＬＩＳＡ、レクチンブロッティングなどの公知の方法で検出する。ｒＢＣ２ＬＣＮをラベル化する際に、アミノ酸配列中の任意の部位に蛍光標識アミノ酸を導入する公知の芳坂らの方法（非特許文献６参照）又は、一般的なFluorescence　Resonance　Energy　Transfer（ＦＲＥＴ）法やパーキンエルマー社の化学増幅型ルミネッセンス プロキシミティホモジニアスアッセイ法（http://www.perkinelmer.co.jp/products_ls/assays/assays_0010.html）を用いれば、ｒＢＣ２ＬＣＮの糖鎖結合ドメインの特定の部位に蛍光標識アミノ酸を導入した変異体を作製することができるから当該ｒＢＣ２ＬＣＮ変異体を細胞の培養上清と混合するだけで、細胞の分化度を評価することができる。
（エ）ｒＢＣ２ＬＣＮの場合は極めて感度がよいので、ｒＢＣ２ＬＣＮを固定した基板に対して、培養上清を反応させる場合、本発明の未分化糖鎖マーカー「Fucα1-2Galβ1-3GlcNAc/GalNAc」量は、ピコモル（ｐＭ）又はナノモル（ｎＭ）レベルでも存在、非存在を判別可能なため、分化誘導中の培養液の培養上清の１部の０.１～１０μl程度を採取して測定することも可能である。一般には、定期的（例えば１日ごと）に行う培地交換の際に、廃棄する培養上清を利用して測定することが好ましい。
（オ）分化誘導を施した細胞の分化程度を判定する際のコントロールとしては、通常、同一組成の培地のみの測定値を用いるが、正確に定量する場合は、分化誘導を施さない細胞の培養上清での値をコントロールとして用いることが好ましい。
５．対象となる被検細胞について
　本明細書において、対象となる被検細胞は、未分化状態にある「幹細胞」、又は当該細胞を分化誘導して種々の組織特異的に分化した細胞である。その際の「幹細胞」とは、未分化状態にある細胞を広く意味し、例えば、多能性幹細胞（胚性幹細胞：ＥＳ細胞）、造血幹細胞、神経幹細胞、皮膚組織幹細胞等の様々な体性幹細胞の他、体細胞に幹細胞特異的発現遺伝子などを導入して脱分化させた幹細胞（ｉＰＳ細胞）も包まれる。また、ＥＳ細胞をはじめとする幹細胞はヒトに限らず哺乳動物ではかなりの部分で共通したしくみで制御されていると考えられるので、本発明の幹細胞としてはヒト以外の哺乳動物、例えばサル、ブタ、ウシ、ヤギ、ヒツジ、マウス、ラット由来の幹細胞を用いる場合にも適用できる。
Ｂ．糖鎖を有する検出対象物質の検出方法
［概要］
　次に、本発明に係る糖鎖を有する検出対象物質の検出方法について説明する。
　疾患への罹患あるいは疾患の進展などに伴って生体試料中に検出されるタンパク質を疾患マーカーとして用いる試みがなされてきている。血液、尿及び唾液等の生体試料中に出現する疾患マーカーを検出することで、罹患の有無あるいは進展の程度などを非侵襲的に判定することができ、疾患の早期診断、治療効果の評価及び予後の診断等に役立てることができる。これまでに、種々の癌において、ムチン等の糖タンパク質が特異的に検出されることが報告されている。また、癌の種類に応じて特定の糖タンパク質の糖鎖構造が変化することも報告されている。
　従来、糖タンパク質を含むタンパク質を特異的に検出するための手法として、タンパク質を２種類の抗体を用いて挟み込んで検出する「抗体－抗体サンドイッチ法」が知られている。抗体－抗体サンドイッチ法では、まず、目的タンパク質に結合する第一の抗体（捕捉用抗体）を用いて試料中から目的タンパク質を特異的に分離する。次に、「捕捉用抗体－目的タンパク質」の複合体に、目的タンパク質に結合する第二の抗体（検出用抗体）を接触させて、「捕捉用抗体－目的タンパク質－検出用抗体」の複合体を形成させる。検出用抗体には蛍光等で標識された抗体が用いられ、蛍光等の検出によって試料中の上記複合体を検出することによって目的タンパク質の検出が行われる。抗体－抗体サンドイッチ法では、同一抗原に対する２種類の抗体を用いることで、目的タンパク質を特異性高く、かつ高感度に検出することが可能である。
　一般に糖鎖は抗原性が低いため、特定の糖鎖構造を有するタンパク質のみに結合する抗体を得ることは難しい。このため、抗体－抗体サンドイッチ法には、糖タンパク質の糖鎖の検出系の構築には適さないという問題がある。また、抗体－抗体サンドイッチ法を実施するためには、目的タンパク質に特異的に結合する抗体を得る必要があるが、そのためには、まず目的タンパク質の精製物が得られていなくてはならない。
　上記課題を解決するため、本発明は、以下に記載する、糖鎖を有する検出対象物質を検出するための方法（以下、「レクチン－レクチンサンドイッチ法」とも称する）及びキットを提供する。
〔１〕　糖鎖を有する検出対象物質と前記糖鎖に対して結合性を有するレクチン１及びレクチン２とを接触させて、前記レクチン１と前記検出対象物質と前記レクチン２とから構成される複合体を形成させ、該複合体を検出することにより行う前記検出対象物質の検出方法であって、前記レクチン１及び前記レクチン２の少なくとも一方は、糖鎖を有さないレクチンである検出方法。
〔２〕　前記検出対象物質が、糖蛋白質、糖脂質、プロテオグリカン、グリコペプチド、リポ多糖、ペプチドグリカン、及びステロイド化合物に糖鎖が結合した配糖体からなる群より選択される複合糖質である上記〔１〕記載の検出方法。
〔３〕　前記レクチン１と前記レクチン２が、互いに異なる糖鎖構造に対する結合性を有するものである上記〔１〕又は〔２〕記載の検出方法。
〔４〕　前記糖鎖を有さないレクチンが、原核細胞で発現した組換型レクチン、又は天然型タンパク質の糖鎖構造を改変して得た改変型レクチンである上記〔１〕～〔３〕のいずれかに記載の検出方法。
〔５〕　前記検出対象物質と、不溶性担体に結合した、糖鎖を有さない前記レクチン１と、不溶性担体に結合していない前記レクチン２と、を接触させて前記複合体を形成させ、該複合体を検出することにより行う上記〔１〕～〔４〕のいずれかに記載の検出方法。
〔６〕　前記検出対象物質と、不溶性担体に結合した、糖鎖を有さない前記レクチン１とを接触させて、前記レクチン１と前記検出対象物質とから構成される複合体１を得る第一手順と、前記複合体１と、前記レクチン２とを接触させて、前記レクチン１と前記検出対象物質と前記レクチン２とから構成される複合体２を得る第二手順と、を含む上記〔５〕記載の検出方法。
〔７〕　前記レクチン１と前記レクチン２の両方が糖鎖を有さないレクチンである上記〔１〕～〔６〕のいずれかに記載の検出方法。
〔８〕　糖鎖を有する検出対象物質の検出に用いられるキットであって、前記糖鎖に対して結合性を有するレクチン１及びレクチン２を含み、前記レクチン１及び前記レクチン２の少なくとも一方は糖鎖を有さないレクチンであるキット。
〔９〕　不溶性担体と、前記不溶性担体に結合した、糖鎖を有さない前記レクチン１と、前記不溶性担体に結合していないレクチン２と、を含む上記〔８〕記載のキット。
〔１０〕　前記レクチン１と前記レクチン２の両方が糖鎖を有さないレクチンである上記〔８〕又は〔９〕記載のキット。
　ここで、本発明に係るレクチン－レクチンサンドイッチ法等で用いる用語について説明する。
「糖鎖」とは、単糖が、グリコシド結合によって、鎖状（直鎖あるいは樹状に分枝した分岐鎖）につながった構造を有する一群の化合物を意味する。糖鎖を構成する単糖としては、グルコース，ガラクトース，マンノース等のヘキソース；Ｌ－フコース等のデオキシヘキソース；Ｎ－アセチルグルコサミン，Ｎ－アセチルガラクトサミン等のヘキソサミン；Ｎ－アセチルノイラミン酸，Ｎ－グリコリルノイラミン酸等のシアル酸；キシロ－ス，Ｌ－アラビノース等のペントース等が挙げられる。「糖鎖」を構成する単糖の数は、特に限定されず、２～数万程度である。
　「レクチン」とは、糖蛋白質、糖脂質、プロテオグリカン、グリコペプチド、リポ多糖、ペプチドグリカン、及びステロイド化合物等の配糖体などの複合糖質に結合した糖鎖の部分構造あるいは全体構造を認識し、結合するタンパク質を意味する。
［レクチン－レクチンサンドイッチ法］
　以下、本発明に係るレクチン－レクチンサンドイッチ法について説明する。レクチン－レクチンサンドイッチ法は、「複合体形成手順」と「検出手順」とを含む。「複合体形成手順」は、糖鎖を有する検出対象物質と前記糖鎖に対して結合性を有するレクチン１及びレクチン２とを接触させて、レクチン１と検出対象物質とレクチン２とから構成される複合体（「レクチン１－検出対象物質－レクチン２」の複合体）を形成させる手順である。また、「検出手順」は、複合体形成手順で形成した「レクチン１－検出対象物質－レクチン２」の複合体を検出することにより、検出対象物質の検出を行う手順である。
　本発明に係るレクチン－レクチンサンドイッチ法において、「検出対象物質」は、糖鎖を有する物質（以下、「複合糖質」とも称する）であればよく、具体的には糖蛋白質、糖脂質、プロテオグリカン、グリコペプチド、リポ多糖、ペプチドグリカン、及びステロイド化合物等に糖鎖が結合した配糖体などとされる。
　また、本発明に係るレクチン－レクチンサンドイッチ法において、検出対象物質を含み得る「試料」としては、例えば血液、血清、血漿、尿、唾液、リンパ、髄液、胸水、腹水、涙液等の生体由来材料が挙げられるが、これらに限定されない。
［レクチン１，レクチン２］
　複合体形成手順に用いるレクチン１及びレクチン２はいずれも検出対象物質が有する糖鎖の部分構造あるいは全体構造を認識し、結合するもの（結合性を有するもの）である。レクチン１が認識する糖鎖構造及びレクチン２が認識する糖鎖構造は、同一であってよいが、互いに異なっていることが好ましい。異なる糖鎖構造に結合するレクチン１及びレクチン２を用いることで、検出対象物質の検出特異性をより高めることができる。
　レクチン１は、単一のレクチンであってよく、あるいは複数種のレクチンの混合物であってもよい。レクチン２も同様である。また、レクチン１として複数種のレクチンの混合物を用いる場合、混合物中に含まれるレクチンが認識する糖鎖構造は、同一であっても異なっていてもよい。レクチン２についても同様である。
　ここで、元来レクチンはそれ自身糖鎖を有するものであるが、本手順では、レクチン１及びレクチン２の少なくとも一方に、糖鎖を有さないレクチンを用いる。より好ましくは、レクチン１とレクチン２の両方に糖鎖を有さないレクチンが用いられる。
　本発明者らの検討の結果、レクチン１及びレクチン２として糖鎖を有するレクチンを用いた場合には、「レクチン１－検出対象物質－レクチン２」の複合体を検出する際にバックグランドが高くなり、高感度な検出ができないことが明らかとなった。バックグランドの上昇の要因として、本発明者らは、レクチン１及びレクチン２として糖鎖を有するレクチンを用いた場合に、レクチン１同士が互いの糖鎖に結合してなる複合体、レクチン２同士が互いの糖鎖に結合してなる複合体、又はレクチン１とレクチン２が互いの糖鎖に結合してなる複合体が生成している可能性を想定した。そして、本発明者らは、レクチン１及び／又はレクチン２として糖鎖を有さないレクチンを用いてこれらの複合体の生成を抑制することを試み、これによって「レクチン１－検出対象物質－レクチン２」の複合体を感度よく検出できることを見出した。
　すなわち、レクチン１及びレクチン２の両方に糖鎖を有さないレクチンを用いることで、レクチン１同士の複合体、レクチン２同士の複合体、及びレクチン１とレクチン２の複合体の生成をなくして、「レクチン１－検出対象物質－レクチン２」の複合体のみを高感度に検出することができることが明らかとなった。また、レクチン１及びレクチン２の一方に糖鎖を有さないレクチンを用いることによっても、レクチン１同士の複合体、レクチン２同士の複合体、及びレクチン１とレクチン２の複合体の生成を抑制して、「レクチン１－検出対象物質－レクチン２」の複合体を感度よく検出できる。
　なお、ここで、「糖鎖を有さないレクチン」には、糖鎖の修飾が全くないレクチンに加えて、糖鎖を介したレクチン同士の結合を引き起こし得る糖鎖を有さないレクチンが包含されるものとする。より具体的には、「糖鎖を有さないレクチン１」には、レクチン１が認識する糖鎖構造を有する糖鎖及び／又はレクチン２が認識する糖鎖構造を有する糖鎖が修飾されていないレクチンであれば使用可能である。レクチン１が糖鎖を有していても、該糖鎖中にレクチン１及び／又はレクチン２が認識する糖鎖構造が含まれない場合には、レクチン１同士の複合体及び／又はレクチン１とレクチン２の複合体が生成しないためである。同様に、「糖鎖を有さないレクチン２」には、レクチン１が認識する糖鎖構造を有する糖鎖及び／又はレクチン２が認識する糖鎖構造を有する糖鎖が修飾されていないレクチンであれば使用できる。
　糖鎖を有さないレクチンとして、具体的には、原核細胞で発現した組換型レクチン、又は天然型タンパク質の糖鎖構造を改変して得た改変型レクチンが挙げられる。
［組換型レクチン］
　原核細胞は、細胞内で合成したタンパク質に糖鎖を修飾する膜系構造を有さないため、原核細胞を宿主細胞として発現した組換型レクチン（リコンビナントレクチン）は、糖鎖を有さない。以下に説明するように、組換型レクチンは、一般的な遺伝子工学的手法を用いて簡便かつ低コストに大量生産が可能である。
　組換型レクチンの製造方法の一例を説明すれば、まず、目的の糖鎖構造に対して結合性を有するレクチンのアミノ酸配列をコードする塩基配列を含む塩基配列を、常法に従って適当な発現用ベクターに組み込み、発現用組み換えベクターを得る。発現用ベクターには、目的の糖鎖構造に対して結合性を有するレクチンのアミノ酸配列のうち糖鎖構造結合部分のアミノ酸配列をコードする塩基配列のみを含む塩基配列を組み込んでもよい。
　発現ベクターは、各種の宿主細胞中でリコンビナントレクチンを発現し、リコンビナントレクチンを産生する機能を有するものであれば特に制限されない。発現ベクターとしては、例えば、プラスミドベクター，ファージベクター及びウイルスベクターが挙げられる。具体的には、例えば、pTrcHis2ベクター、pcDNA3.1/myc-Hisベクター（Invitrogen社製）、pUC119（宝酒造社製）、pBR322（宝酒造社製）、pBluescript　II　KS+　Stratagene社製）、Pqe-tri（Qiagen社製）、pET、pGEM-3Z、pGEX、pMAL等のプラスミドベクター、λENBL３（Stratagene社製）、λDASHII（フナコシ社製）等のバクテリオファージベクター、Charomid　DNA（和光純薬工業(株)製）、Lorist6（和光純薬工業(株)製）等のコスミドベクター等が挙げられる。また、大腸菌由来のプラスミド(例えばpTrc99A，pKK223，pET3a)、λファージ等のバクテリオファージ等の他、pA1－11、pXT1、pRc/CMV、pRc/RSV、pcDNA I/Neo、p3×FLAG-CMV-14、pCAT3、pcDNA3.1、pCMV等も挙げられる。
　リコンビナントレクチンの検出や精製を容易にするために、レクチンは、タグペプチドや他のタンパク質との融合蛋白として発現させても良い。融合させるタグペプチドとしてはFLAGタグ，3XFLAGタグ，Hisタグ（His tag、例えば６×Hisタグ）等が挙げられる。
　次いで、得られた発現用組み換えベクターを用いて、適当な宿主細胞を形質転換（形質導入）することにより、形質転換体を調製する。宿主細胞には、リコンビナントタンパクを糖鎖修飾なく発現、産生する細胞が用いられる。宿主細胞としては、例えば原核生物、具体的には大腸菌（Escherichia coli.）やバチルス属菌（B. subtilis, B. brevis, B. borstelenis等）などが挙げられる。大腸菌としては、例えば、BL21, BL21(DE3), K-12, DH1, DH5,
DH5α, M15，HB101, C600, XL-1 Blue, JM109, JM105， JM127, XL1-Blue, VCS257, TOP10などを使用できる。また、よりプラスミドやファージＤＮＡの導入効率の高い、コンピテントセル（Competent Cell）を用いても良い。コンピテントセルとしては、例えば、E. coli DH5α Competent Cell、E. coli
JM109 Competent Cells（タカラバイオ社製）等が挙げられる。
　発現用組み換えベクターによる宿主細胞の形質転換は、従来公知の方法を用いて行うことができる。例えば宿主細胞が大腸菌の場合は、Cohenらの方法（Proc.Natl.Acad.Sci. U.S.A., (1972) 9,2110参照）、プロトプラスト法（Mol.Gen. Genet., (1979) 168,111参照）又はコンピテント法（J.Mol.Biol., (1971) 56, 209参照）、M.Morrisonの方法（Method　in　Enzymology,
68, 326-331,1979参照）等により行うことができる。また、市販のCompetent　Cellを用いる場合には、その製品プロトコールに従って形質転換を行えばよい。
　形質転換体（形質導入体）が、リコンビナントレクチンを発現、産生していることを確認するためには、例えば、プローブを用いたサザンハイブリダイゼーション、コロニーハイブリダイゼーション等のハイブリダイゼーションによる常法を適用できる。また、以下の方法も採用できる。
　リコンビナントレクチンが、例えば膜貫通型蛋白として発現した場合等、形質転換体の培養液中に分泌されてこない場合には、細胞を破壊又は溶解する常法（例えば超音波処理する、ホモジナイザー等で処理する、適当な界面活性剤等の膜溶解剤で処理する等）にて、得られた形質転換体を処理し、そのライセートを得る。そして、ライセートについて、必要であればさらにタンパク質を精製した後、例えばタグペプチドに対する抗体を用いた通常の免疫学的測定法（ドットウェスタンブロッティング法、ウェスタンブロッティング法等）を行い、ライセート中にタグペプチドが発現していることを確認する。
　また、リコンビナントレクチンが形質転換体の培養液中に分泌されてくる場合には、培養液（培養上清）について、上記ライセートについて行う場合と同様の確認手順を行う。
　形質転換体を、栄養培地中で培養して、リコンビナントレクチンを生成させる。培養は従来公知の方法により行われ、温度、培地のpH及び培養時間も適宜設定され得る。宿主細胞が大腸菌である形質転換体を培養する場合は、大腸菌を培養する常法の条件で、通常用いられる液体培地で行えばよい。
　リコンビナントレクチンは、培養により得られる培養物から、以下のようにして取得できる。すなわち、リコンビナントレクチンが形質転換体のペリプラズムまたは細胞質内に存在する場合は、濾過または遠心分離などの方法によって培養物から菌体あるいは細胞を回収し、適当な緩衝液に再懸濁する。そして、例えば界面活性剤処理、超音波処理、リゾチーム処理、凍結融解などの方法で、回収された細胞等の細胞壁及び／又は細胞膜を破壊した後、遠心分離や濾過などの方法でリコンビナントレクチンを含有する粗抽出液を得る。リコンビナントレクチンが形質転換体の培養液中に分泌されてくる場合には、培養液（培養上清）を得る。そして、一般に用いられる方法に従って、糖類（糖鎖）の混入がないように、粗抽出液又は培養液（培養上清）からリコンビナントレクチンを単離、精製する。
　リコンビナントレクチンの単離、精製方法としては、例えば塩析、溶媒沈殿法等の溶解度を利用する方法、透析、限外濾過、ゲル濾過、ドデシル硫酸ナトリウム－ポリアクリルアミドゲル電気泳動など分子量の差を利用する方法、イオン交換クロマトグラフィーなどの荷電を利用する方法、アフィニティークロマトグラフィーなどの特異的親和性を利用する方法、逆相高速液体クロマトグラフィーなどの疎水性の差を利用する方法、等電点電気泳動などの等電点の差を利用する方法などが挙げられる。精製されたリコンビナントレクチンは、例えば抗His抗体を用いたELISA等により確認することができる。
［改変型レクチン］
　改変型レクチンは、天然型レクチンを酸あるいは糖分解酵素で処理することによって得ることができる。
　過ヨウ素酸又はその塩（ナトリウム塩、カリウム塩等）、トリフルオロメタンスルホン酸等の酸により天然型レクチンを処理することで、糖鎖の水酸基を酸化して、糖鎖の全体構造あるいは糖鎖中の部分構造を変化させることができる。また、アルカリ処理によるβ分解により糖鎖構造を除去することもできる。これにより、天然型レクチンの糖鎖中に存在する、該天然型レクチンが認識しる糖鎖構造あるいは他のレクチンが認識する糖鎖構造を改変して、該天然型レクチンを、糖鎖を介したレクチン同士の結合を引き起こさない改変型レクチンに変換できる。なお、酸処理は、従来公知の手法によって行えばよい（後述する実施例１１も参照）。
　また、グリカナーゼ（Ｎ－グリカナーゼ、Ｏ―グリカナーゼ等）、マンノシダーゼ、ガラクトシダーゼ、ケラタナーゼ、コンドロイチナーゼ、シアリダーゼ、フコシダーゼ、Ｎ－アセチルグルコサミニダーゼ、Ｎ－アセチルヘキソサミニダーゼ等の糖分解酵素により天然型レクチンを処理することで、天然型レクチンから糖鎖を除去できる。あるいは、糖分解酵素処理により、天然型レクチンの糖鎖を切断して、糖鎖の全体構造あるいは糖鎖中の部分構造を変化させることができる。これらにより、天然型レクチンの糖鎖中に存在する、該天然型レクチンが認識する糖鎖構造あるいは他のレクチンが認識する糖鎖構造を改変して、該天然型レクチンを、糖鎖を介したレクチン同士の結合を引き起こさない改変型レクチンに変換できる。なお、酵素処理は、従来公知の手法によって行えばよい（後述する実施例１１も参照）。
　なお、酸処理、アルカリ処理又は糖分解酵素処理によって得た改変型レクチンでは、タンパク変性によって、糖鎖に対する結合性が喪失したり弱まったりする場合がある。そのため、複合体形成手順に用いるレクチン１及びレクチン２には、上述の組換型レクチンを用いることがより好ましい。組換型レクチンは、簡便かつ低コストに大量生産が可能であることからも好ましい。
［複合体形成手順］
　複合体形成手順において、検出対象物質とレクチン１及びレクチン２とを接触させる際、レクチン１とレクチン２は、同時に試料と反応させても良いし、順次に反応させてもよい。また、複合体形成手順は、不溶性担体を用いてB／F分離を行うヘテロジニアスな方法で行ってもよく、B／F分離を行わないホモジニアスな方法で行ってもよい。
　試料と反応させるレクチン１及びレクチン２の量（濃度）は、検出対象物質の種類、必要な測定感度、測定方法や測定装置などに応じて適宜設定される。
　不溶性担体を用いてB／F分離を行う方法は、例えば不溶性担体に結合したレクチン１と、不溶性担体に結合していない遊離のレクチン２と、検出対象物質とを接触させて複合体を形成させることにより行われる。より具体的には、B／F分離を行う方法は、検出対象物質と、不溶性担体に結合したレクチン１とを接触させて、レクチン１と検出対象物質とから構成される複合体１を得る第一手順と、複合体１と遊離のレクチン２とを接触させて、レクチン１と検出対象物質とレクチン２とから構成される複合体２を得る第二手順と、によって行われる。
　この際、不溶性担体に結合しているレクチン１には、糖鎖を有さないレクチンを用いることが好ましく、レクチン１及びレクチン２の両方に糖鎖を有さないレクチンを用いることがより好ましい。なお、ここでは、レクチン１を不溶性担体に結合させる例を説明したが、レクチン２を不溶性担体に結合することも当然に可能であり、この場合、好ましくはレクチン２に、より好ましくはレクチン２及びレクチン１の両方に糖鎖を有さないレクチンが用いられる。
　B／F分離のための不溶性担体には、スライドグラス、ＥＬＩＳＡプレート、磁気ビーズ、フィルター、フィルム、メンブレンなど、通常のタンパク質固定化法に用いられる基材を使用できる。基材の材料には、通常、ガラス、シリコン、ポリカーボネート、ポリスチレン又はポリウレタンなどが用いられる。
　レクチンを不溶性担体に固定化させる方法は、特に限定されず、化学的結合法（共有結合により固定化する方法）、物理的に吸着させる方法などの公知の方法を適用できる。アビジン-ビオチン反応のような非常に強固な結合反応を利用してレクチンを不溶性担体に固定化することも可能である。この場合、レクチンにビオチンを結合したビオチン化レクチンを、ストレプトアミジンをコーティングしたストレプトアミジンプレートに固定化すればよい。また、この分野で通常使用される各種リンカーを介して、レクチンを不溶性担体に固定化させてもよい。
　不溶性担体を用いてB／F分離を行う方法では、試料と不溶性担体に固定化されたレクチン１とを反応させる第一手順の後、複合体１（不溶性担体－レクチン１－検出対象物質）と遊離のレクチン２とを反応させる第二手順を行う前に、固相表面上から不要な物質を除去するための洗浄手順を含んでもよい。また、第二手順の後、検出手順を行う前にも、洗浄手順を含んでもよい。洗浄手順によって、固相表面上から試料中の夾雑物や未反応のレクチン２を除去し、複合体２（不溶性担体－レクチン１－検出対象物質－レクチン２）のみを固相表面上に分離できる。
　B／F分離を行わない方法では、レクチン１と検出対象物質とレクチン２との複合体を分離するための方法として、例えばクロマトグラフィー法、高速液体クロマトグラフィー法、電気泳動法、キャピラリー電気泳動法、キャピラリーチップ電気泳動法、例えばLiBASys（島津製作所（株）製）等の自動免疫分析装置を用いた方法等を適用できる。具体的な条件は、試料、検出対象物質、レクチン１及びレクチン２の種類や性状に応じて適宜設定される。例えばHPLCを用いて分離する場合、Anal.Chem.65,5,613-616(1993)及び特許文献１等に記載の方法に準じて行えばよい。キャピラリー電気泳動法を用いる場合にはＪ.Chromatogr. 593 253－258 （1992）、Anal.Chem. 64 1926－1932 （1992）、及び特許文献２等に記載の方法に準じて行えばよい。また、自動免疫分析装置として例えばLiBASysを用いる場合、生物試料分析22巻4号303-308(1999)に記載されている方法に準じて行えばよい。
　既に説明したように、本手順において、レクチン１及びレクチン２の両方に糖鎖を有さないレクチンを用いることで、レクチン１同士の複合体、レクチン２同士の複合体、及びレクチン１とレクチン２の複合体の生成をなくして、「レクチン１－検出対象物質－レクチン２」の複合体のみを選択的に形成させることができる。また、レクチン１及びレクチン２の一方に糖鎖を有さないレクチンを用いることによっても、レクチン１同士の複合体、レクチン２同士の複合体、及びレクチン１とレクチン２の複合体の生成を抑制して、「レクチン１－検出対象物質－レクチン２」の複合体を選択的に形成させることが可能である。
［検出手順］
　複合体形成手順で形成された「レクチン１－検出対象物質－レクチン２」の複合体の検出は、例えば標識物質を用いた方法により行うことができる。標識物質としては、例えば、通常の免疫測定法等において用いられる酵素類、放射性同位元素、蛍光性物質、発光性物質、紫外部に吸収を有する物質、スピンラベル化剤としての性質を有する物質など、通常この分野で用いられている標識物質が全て挙げられる。
　標識物質をレクチン１及び／又はレクチン２に結合させるには、例えば、通常の免疫測定法等において行われている標識方法を適宜利用して行えばよい。また、１個又は数個のアミノ酸を介して、又は１個又は数個のアミノ酸とリンカーを介して、レクチンに標識物質を結合させる方法も採用できる。さらに、標識物質をタンパク質に結合させるキットも各種市販されているので、それらを用い、キットに添付の取扱説明書に従って標識を行ってもよい。
　複合体の検出及び測定は、標識物質が有している、何らかの方法によって検出し得る性質に応じて、それぞれ所定の方法に従って実施される。例えば、不溶性担体に固定化したレクチン１と、標識物質として西洋ワサビペルオキシダーゼ（HRP）を標識した遊離のレクチン２とを用いてB／F分離を行う方法は、概略以下の通りである。
　すなわち、糖鎖を有する検出対象物質を含有する試料を、レクチン１を固定化した不溶性担体に接触させ、4～40℃で3分～20時間で反応を行って、固相表面上にレクチン１と検出対象物質との複合体１を生成させる。次に、HRPで標識したレクチン２を含有する溶液を固相表面上に加え、4～40℃で3分～16時間反応させて、固定化レクチン１－検出対象物質－標識レクチン２の複合体２を生成させる。続いて、適当な濃度のＴＭＢ（3,3’5,5’-テトラメチルベンジジン）溶液を添加し、一定時間反応させる。その後、１M硫酸等の反応停止液を加えて反応を停止させ、４５０ｎｍの吸光度を測定する。得られた測定値と、予め濃度既知の検出対象物質の溶液について同様の測定を行って得た検量線とから、試料中の検出対象物質の量を求めることができる。
　また、例えばAlexa　Fluor-488 tetrafluorophenyl　ester等で標識したレクチン１と、例えばAlexa　Fluor-647　succinimidyl　ester等で標識したレクチン２を用い、公知の蛍光相互相関分光法（Fluorescence　Correlation　Spectroscopy,　FCCS)に従って検出対象物質を測定することもできる。
　また、「レクチン１－検出対象物質－レクチン２」の複合体の検出は、標識物質を用いることなく、例えば複合体に由来する性質を利用して測定する方法、具体的には表面プラズモン共鳴などのホモジニアスイムノアッセイ系等の方法によっても行うことが可能である。
　既に説明したように、複合体形成手順において、レクチン１及びレクチン２の両方に糖鎖を有さないレクチンを用いることで、本手順では、「レクチン１－検出対象物質－レクチン２」の複合体のみを高感度に検出することができる。また、複合体形成手順において、レクチン１及びレクチン２の一方に糖鎖を有さないレクチンを用いることによっても、本手順で「レクチン１－検出対象物質－レクチン２」の複合体を感度よく検出することが可能となる。
［実施形態例］
　以下に、レクチン－レクチンサンドイッチ法の実施態様の具体例を述べる。なお、各操作の後に必要に応じて不要物質を除去する操作（洗浄等）を行ってもよい。
（１－１）不溶性担体に固定化されたレクチン１と、不溶性担体に固定化されていない遊離の非標識レクチン２を用いる方法１
（i）試料と、不溶性担体に固定化されたレクチン１と、遊離の非標識レクチン２とを接触させて、不溶性担体に固定化されたレクチン１と検出対象物質と非標識レクチン２との複合体を形成させ、
（ii）該複合体の量を測定し、
（iii）得られた該複合体の量に基づいて、試料中の検出対象物質の量を測定する。
（１－２）不溶性担体に固定化されたレクチン１と、遊離の非標識レクチン２を用いる方法２
（i）試料と不溶性担体に固定化されたレクチン１とを接触させて、不溶性担体に固定化されたレクチン１と検出対象物質との複合体１を形成させ、次いで
（ii）該複合体１と遊離の非標識レクチン２とを接触させて、複合体１と非標識レクチン２との複合体２を形成させ、次いで
（iii）該複合体２の量を測定し、
（iv）該複合体２の量に基づいて、試料中の検出対象物質の量を測定する。
（２－１）不溶性担体に固定化されたレクチン１と、標識物質で標識した遊離のレクチン２を用いる方法１
（i）試料と、不溶性担体に固定化されたレクチン１と、標識物質で標識した遊離のレクチン２とを接触させて、不溶性担体に固定化されたレクチン１と検出対象物質と標識レクチン２との複合体を形成させ、
（ii）該複合体中の標識物質量を測定し、
（iii）得られた標識物質量に基づいて、試料中の検出対象物質の量を測定する。
（２－２）不溶性担体に固定化されたレクチン１と、標識物質で標識した遊離のレクチン２を用いる方法２
（i）試料と不溶性担体に固定化されたレクチン１とを接触させて、不溶性担体に固定化されたレクチン１と検出対象物質との複合体１を形成させ、次いで
（ii）該複合体１と標識物質で標識した遊離のレクチン２とを接触させて、複合体１と標識レクチン２との複合体２を形成させ、次いで
（iii）該複合体２中の標識物質量を測定し、
（iv）得られた標識物質量に基づいて、試料中の検出対象物質の量を測定する。
（３－１）遊離のレクチンを用いる方法１
（ｉ）試料と遊離のレクチン１と遊離のレクチン２とを接触させて、レクチン１と検出対象物質とレクチン２との複合体を形成させ、
（ii）該複合体の量を測定し、
（iii）得られた該複合体の量に基づいて、試料中の検出対象物質の量を測定する。
（３－２）遊離のレクチンを用いる方法２
（i）試料と遊離のレクチン１とを接触させて、検出対象物質とレクチン１との複合体１を形成させ、次いで
（ii）該複合体１と遊離のレクチン２とを接触させて、レクチン１と検出対象物質とレクチン２との複合体２を形成させ、次いで
（iii）該複合体２の量を測定し、
（iv）得られた該複合体２の量に基づいて、試料中の検出対象物質量を測定する。
（４－１）遊離のレクチン１と、標識物質で標識した遊離のレクチン２を用いる方法１
（i）試料と遊離のレクチン１と標識物質で標識した遊離のレクチン２とを接触させて、レクチン１と検出対象物質と標識レクチン２との複合体を形成させ、
（ii）該複合体中の標識物質量を測定し、
（iii）得られた標識物質量に基づいて、試料中の検出対象物質の量を測定する。
（４－２）遊離のレクチン１と、標識物質で標識した遊離のレクチン２を用いる方法２
（i）試料と遊離のレクチン１とを接触させて、検出対象物質とレクチン１との複合体１を形成させ、次いで
（ii）該複合体１と、標識物質で標識した遊離のレクチン２とを接触させて、複合体１と標識レクチン２との複合体２を形成させ、次いで
（iii）該複合体２中の標識物質量を測定し、
（iv）得られた標識物質量に基づいて、試料中の検出対象物質の量を測定する。
（５－１）標識物質で標識した遊離のレクチン１と、標識物質で標識した遊離のレクチン２を用いる方法１
（i）試料と、標識物質で標識した遊離のレクチン１と、標識物質で標識した遊離のレクチン２とを接触させて、標識レクチン１と検出対象物質と標識レクチン２との複合体を形成させ、
（ii）該複合体中の標識物質量を測定し、
（iii）得られた標識物質量に基づいて、試料中の検出対象物質の量を測定する。
（５－２）標識物質で標識した遊離のレクチン１と、標識物質で標識した遊離のレクチン２を用いる方法２
（i）試料と標識物質で標識した遊離のレクチン１とを接触させて、検出対象物質と標識レクチン１との複合体１を形成させ、次いで
（ii）該複合体１と、標識物質で標識した遊離の標識レクチン２とを接触させて、複合体１と標識レクチン２との複合体２を形成させ、次いで
（iii）該複合体２中の標識物質量を測定し、
（iv）得られた標識物質量に基づいて、試料中の検出対象物質の量を測定する。
［レクチン‐レクチンサンドイッチ法の有利な効果］
　以上に説明したレクチン‐レクチンサンドイッチ法によれば、例えば複合糖質として糖タンパク質の検出を行う場合に、糖タンパク質が複数の糖鎖を有していれば、当該糖鎖に反応するレクチンを複数糖タンパク質に結合させることができる。また、糖タンパク質が一つの糖鎖しか有していない場合であっても、その一つの糖鎖にレクチンが反応する構造が複数存在してれば、当該レクチンを複数糖タンパク質に結合させることができる。これに対して、従来の抗体－抗体サンドイッチ法では、糖タンパク質の一つのエピトープに一つの抗体しか結合させることができない。このため、レクチン‐レクチンサンドイッチ法によれば、抗体－抗体サンドイッチ法に比して、糖タンパク質の検出感度を顕著に高めることができる。
　また、特定の糖鎖構造を有する糖タンパク質のみに結合する抗体を得ることは難しく、抗体－抗体サンドイッチ法による検出系が構築できない場合であっても、レクチン‐レクチンサンドイッチ法によれば、当該糖鎖構造に反応するレクチンを用いて容易に検出系を構築できる。さらに、レクチン‐レクチンサンドイッチ法では、レクチンとしてリコンビナントタンパク質を用いれば、低コストな検出系の構築が可能である。
　最近の研究により、糖鎖の多様な機能が明らかになってきた。とくに癌（転移、腫瘍マーカー等）、免疫（免疫受容体調節、免疫細胞分化、抗体医薬等）、受精、発生・分化（再生医療等）、感染症（インフルエンザ、ピロリ菌、コレラ毒素等）、バイオ医薬、脳、血液型、などにおいて、糖鎖は、注目される重要な役割を果たしていることが解ってきている。従って、特定の糖鎖構造の検出を行える本発明のレクチン‐レクチンサンドイッチ法は、例えば癌マーカー（SLX抗原、CA19-9抗原等）等の疾患関連バイオマーカーの研究（発見・開発等）、該バイオマーカーを検出することによる癌その他疾患の診断・判定（例えば癌の悪性度判定、癌転移能の評価等）、各疾患の発症機構の解明及び治療法の開発、間葉系幹細胞マーカー・分化マーカー等の研究、バイオ医薬品の品質管理及びその開発、細胞の品質管理等の分野において、特に有効に用いられる。
　なお、本発明に係るレクチン‐レクチンサンドイッチ法は、用手法に限らず、自動分析装置を用いた測定系に適用して容易かつ迅速に測定を行うこともできる。用手法又は自動分析装置を用いて測定を行う場合の試薬類等の組み合わせなどについては、特に制約はなく、適用する自動分析装置の環境、機種に合わせて、あるいは他の要因を考慮に入れて最もよいと思われる試薬類等の組み合わせを適宜選択して用いればよい。さらに、本発明に係るレクチン‐レクチンサンドイッチ法は、Micro-TAS(Micro-Total Analysis
Systems:μ-TAS、μ総合分析システム)への応用も可能である。
［具体例］
　以下、複合糖質として、上述した幹細胞の培養上清中の未分化糖鎖マーカーを検出する場合を例に、レクチン‐レクチンサンドイッチ法をさらに具体的に説明する。ここでは、上記の実施形態例のうち「（２－２）不溶性担体に固定化されたレクチン１と、標識物質で標識した遊離のレクチン２を用いる方法２」に従った方法を、図１を参照しながら説明する。
（ア）複合体形成手順の第一手順
　まず、レクチンＬ１として組換型ＢＣ２ＬＣＮ（以下「ｒＢＣ２ＬＣＮ」とも称する）が固定化された不溶性担体の固相表面Ｓ（図Ａ参照）に培養上清を接触させ、反応を行う。ｒＢＣ２ＬＣＮは、培養上清に検出対象物質Ｔとして含まれる、上記（式１）又は（式２）で示される未分化糖鎖マーカーが有する糖鎖構造Ｇ１（Fucα1-2Galβ1-3GlcNAc/GalNAc）に対して結合性を有する。従って、反応後の固相表面Ｓには、レクチンＬ１が糖鎖構造Ｇ１を介して検出対象物質Ｔと結合した複合体１が形成される（図Ｂ参照）。
　レクチンＬ１は、検出対象物質Ｔが有する糖鎖構造Ｇ１に対して高い特異性を有することが好ましい。この点、ｒＢＣ２ＬＣＮは糖鎖構造「Fucα1-2Galβ1-3GlcNAc/GalNAc」に対して高い特異性を有する。このため、本手順では、レクチンＬ１と糖鎖構造Ｇ１との特異的な結合によって、培養上清中の未分化糖鎖マーカーを特異的に固相表面Ｓ上に捕捉することができる。
　本手順において、レクチンＬ１として、糖鎖を有さないｒＢＣ２ＬＣＮを用いることで、次に説明する第二手順において、レクチンＬ１とレクチンＬ２との複合体が生成するのを防止できる。
（イ）複合体形成手順の第二手順
　次に、固相表面Ｓに形成された複合体１に、蛍光物質等により標識された遊離のレクチンＬ２を接触させ、反応を行う。前段手順として、固相表面Ｓに存在する夾雑物を取り除くための洗浄を行ってもよい。
　レクチンＬ２には、未分化糖鎖マーカーに結合性を有することが明らかとなったＳＲＬ，ＣＧＬ２，ＡＢＡ、ＸＣＬが用いられる（実施例６参照）。配列番号２～５にこれらのレクチンのアミノ酸配列を示す。配列表において、配列番号２はＡＢＡのアミノ酸配列、配列番号３はＸＣＬのアミノ酸配列、配列番号４はＳＲＬのアミノ酸配列、配列番号５はＣＧＬ２のアミノ酸配列をそれぞれ示す。これらのレクチンは、二以上を組み合わせて用いてもよい。図では、未分化糖鎖マーカーが有する糖鎖構造のうち、これらのレクチンが結合する糖鎖構造を符号Ｇ２で示した。
　なお、ＳＲＬ，ＣＧＬ２，ＡＢＡ及びＸＣＬは、未分化糖鎖マーカーを特異的に認識する特性を維持していれば、配列番号２～５に対応する全長は必要とせず、また配列番号２～５において部分的に一部のアミノ酸が欠失、置換、挿入、付加されていてもよい。
　本手順により、固相表面Ｓには、レクチンＬ１が糖鎖構造Ｇ１を介して検出対象物質Ｔと結合した複合体１に、さらに糖鎖構造Ｇ２を介してレクチンＬ２が結合した複合体２が形成される（図Ｃ参照）。
　上記の第一手順において、レクチンＬ１として、糖鎖を有さないｒＢＣ２ＬＣＮを用いることで、本手順では、レクチンＬ２がレクチンＬ１の糖鎖に結合して複合体を形成することを防止でき、固相表面Ｓ上にｒＢＣ２ＬＣＮと未分化糖鎖マーカーとレクチンＬ２とからなる複合体２のみを選択的に形成させることができる。
　さらに、レクチンＬ２にも、糖鎖を有さないｒＳＲＬ，ｒＣＧＬ２，ｒＡＢＡ、ｒＸＣＬを用いることで、レクチンＬ１がレクチンＬ２の糖鎖に結合して複合体を形成したり、レクチンＬ２同士が複合体を形成したりするのを防止できる。
（ウ）検出手順
　最後に、蛍光検出等の標識物質の性質に応じた検出方法によってレクチンＬ２に標識された標識物質を検出することによって、固相表面Ｓ上に形成された複合体２を検出する。複合体形成手順において、レクチンＬ１及びレクチンＬ２の両方に糖鎖を有さない組換型レクチンを用いることで、本手順では、複合体２のみを高感度に検出することができる。
　さらに、蛍光強度の測定等によって標識物質量を測定し、得られた標識物質量に基づいて、培養上清中の未分化糖鎖マーカーの量を測定してもよい。前段手順として、固相表面Ｓに存在する夾雑物や未反応のレクチンＬ２を取り除くための洗浄を行ってもよい。
　本具体例では、異なる糖鎖構造に結合するｒＢＣ２ＬＣＮ（レクチンＬ１）と、ｒＳＲＬ，ｒＣＧＬ２，ｒＡＢＡ及び／又はｒＸＣＬ（レクチンＬ２）とを組み合わせて用いてサンドイッチ法を行うことで、ｒＢＣ２ＬＣＮのみを用いて検出する場合に比べて、未分化糖鎖マーカーの検出特異性を向上させることができる。
　また、本具体例によれば、標識されたｒＳＲＬ，ｒＣＧＬ２，ｒＡＢＡ及び／又はｒＸＣＬ（レクチンＬ２）を用いてサンドイッチ法を行うことで、標識されたｒＢＣ２ＬＣＮ（レクチンＬ１）のみを用いて検出する場合や、標識された試料をｒＢＣ２ＬＣＮのみを用いて検出する場合に比べて、高い検出シグナルを得られる。このため、本具体例によれば、検出シグナルの強度に基づいて未分化糖鎖マーカーを定量的に検出する際に、より高精度な定量が可能となる（実施例７参照）。
［キット］
　本発明にかかる糖鎖を有する検出対象物質の検出に用いられるキットは、前記糖鎖に対して結合性を有するレクチン１及びレクチン２を含むものであり、レクチン１及びレクチン２の少なくとも一つは糖鎖を有さないレクチンとされる。
　キットの構成要件の好ましい態様と具体例は、上記のレクチン－レクチンサンドイッチ法に関する説明において記載した通りである。また、これら試薬の濃度等の好ましい態様も、通常この分野で通常用いられる濃度範囲から適宜選択すればよい。
　また、キットに含まれる試薬中には、通常この分野で用いられる試薬類、例えば緩衝剤、反応促進剤、糖類、タンパク質、塩類、界面活性剤等の安定化剤、防腐剤等であって、共存する試薬等の安定性を阻害したりせず、検出対象物質とレクチン１及びレクチン２との反応を阻害しないものが含まれていてもよい。また、その濃度も、通常この分野で通常用いられる濃度範囲から適宜選択すればよい。
　さらに、キットは、検出対象物質について検量線を作成するために用いられる標準品を含んでいてもよい。標準品は、市販の物質を用いても、公知の方法に従って製造された物質を用いてもよい。
　本発明における用語や概念は、当該分野において慣用的に使用される用語の意味に基づくものであり、本発明を実施するために使用する様々な技術は、特にその出典を明示した技術を除いては、公知の文献等に基づいて当業者であれば容易かつ確実に実施可能である。
　また、各種の分析などは、使用した分析機器又は試薬、キットの取り扱い説明書、カタログなどに記載の方法を準用して行った。
　なお、本明細書中に引用した技術文献、特許公報及び特許出願明細書中の記載内容は、本発明の記載内容として参照されるものとする。
　以下に実施例を示し、本発明を具体的に説明するが、本発明はこれらに限定されるものではない。
　なお、各実施例において、毎日新鮮な培養液に培地交換しながら、細胞を培養した。また、培地交換した際に得られた廃棄用の培養液を用いて、すなわち新鮮培養液に培地交換した後約２４時間経過した培養液の培養上清を用いて、各検出を行った。
（実施例１）ＥＳ細胞の細胞染色
　本実施例で用いるＥＳ細胞（KhES1株）は、京都大学再生医科学研究所幹細胞医学研究センターから分譲を受けた。Suemoriらの手法（非特許文献４参照）により培養した。細胞は4％パラホルムアルデヒドで固定し、PBSで洗浄した後、蛍光ラベル化（Cy3を結合）したｒＢＣ２ＬＣＮを加えて室温で１時間反応させた（図２，中段左。右は同じ細胞の核を染色したもの）。
　比較対象として、ＥＳ細胞やｉＰＳ細胞を特異的に認識するTra1-60抗体をＫｈＥＳ１細胞コロニーと反応させた後、二次抗体であるanti-mouse IgM-Alexa488をさらに反応させたコロニーの染色像を図２上段左に示す。同上段右は同じ細胞の核をDAPIで染色したものである。
　蛍光ラベル化されたｒＢＣ２ＬＣＮはTra1-60抗体と同様に、ＥＳ細胞を強く染色する（図２中段左、右は同じく組織の核を染色したもの。）。ネガティブコントロールとしてBSAを蛍光ラベル化したものを用いた場合は蛍光が観察されないことから（図２下段左。右は同じ細胞の核を染色したもの。）、ｒＢＣ２ＬＣＮはTra1-60抗体と同程度またはそれ以上にＥＳ細胞を強く検出することがわかる。
　上記実験では細胞を破砕せずに行っているため、Tra1-60抗体が細胞表面の糖タンパク質抗原を認識しているのと同様、ｒＢＣ２ＬＣＮが認識している糖鎖構造の「Fucα1-2Galβ1-3GlcNAc/GalNAc」は、未分化状態の幹細胞表面で大量に発現している糖タンパク質及び糖脂質の構成糖として、細胞表面を覆うように存在していることが窺われる。
（実施例２）ＥＳ細胞の分化誘導時における細胞染色
　実験例１と同様の方法で調製したＥＳ細胞（KhES1株）培養液中に、Draperらの方法（非特許文献５参照）に従って、終濃度１０－５Ｍになるようにレチノイン酸を添加して培養することにより、ＥＳ細胞の分化誘導を行った。８日間培養したところ、細胞の形態からみて充分に分化が進んだことを確認して、蛍光標識したｒＢＣ２ＬＣＮを各細胞と反応させた（図３）。比較対象として、Tra1-60抗体を反応させた後、二次抗体であるanti-mouse IgM-Alexa488をさらに反応させた。図中、「＋ＲＡ」の段は、レチノイン酸処理をして神経方向へ分化させた場合を示し、「－ＲＡ」の段は未処理の場合を示す。なお、図３右の「ＤＡＰＩ」は、同じ細胞の核をＤＡＰＩで染色した結果を示す。
　神経細胞に分化したKhES1株ではｒＢＣ２ＬＣＮの蛍光はほとんど検出されなかった。これに対して、Tra1-60抗体の蛍光の強度は、充分に観察可能な強度を保ったままである。この実験結果は、公知の未分化マーカーとして用いられているTra1-60抗体が認識する糖タンパク抗原では、分化が進んだ状態でも依然として細胞表面でかなりの発現量を維持しているのに対し、ｒＢＣ２ＬＣＮが認識している糖鎖構造の「Fucα1-2Galβ1-3GlcNAc/GalNAc」の場合は、未分化状態では細胞表面を覆うように発現していたが、分化が進むとほとんど発現しなくなることを示している。
　以上のことから、「Fucα1-2Galβ1-3GlcNAc/GalNAc」の糖鎖構造は、分化、未分化を判定するための未分化糖鎖マーカーとして極めて優れたマーカーであることが明らかになった。また、ｒＢＣ２ＬＣＮ固定化基板が未分化性を有したＥＳ細胞、ｉＰＳ細胞など幹細胞を特異的に認識する優れた分化、未分化判定用のキットとしての高い有用性を有していることがわかった。
（実施例３）蛍光ラベル化した培養上清の直接解析
　この実験で用いたｉＰＳ細胞（201B7株、253G1株）は理化学研究所バイオリソースセンターから分譲を受けた。同TIGMKOS#19株は(独)産業技術総合研究所幹細胞工学研究センターにて樹立された(論文未発表)。Tatenoらの手法（非特許文献１参照）により培養した。約２４時間培養した培養液を回収し、遠心分離により液性成分のみを分離し、培養上清を得た。
　培養上清中に「Fucα1-2Galβ1-3GlcNAc/GalNAc」の糖鎖構造が存在しているか否かを固定化したｒＢＣ２ＬＣＮを用いて調べた。具体的には、実施例２と同様の方法でｉＰＳ細胞の201B7株及び253G1株を８日間培養して分化誘導した。コントロールとして、レチノイン酸（ＲＡ）なしで同じｉＰＳ細胞の201B7株及び253G1株についても同日間培養した。また、TIGMKOS#19株についてもレチノイン酸（ＲＡ）なしで４日間培養した。培養液は毎日、新鮮な培養液と培地交換し、得られた廃棄用の培養上清を以下の測定工程に供した。各ｉＰＳ細胞の培養上清を蛍光ラベル化して、スライドグラス上に固定化したｒＢＣ２ＬＣＮと20℃で一晩反応させて、洗浄した後に、エバネッセント波励起蛍光型スキャナーでその結合を検出した（図４）。
　その結果、ｒＢＣ２ＬＣＮはレチノイン酸なしで培養した未分化を維持したｉＰＳ細胞（201B7株、253G1株、TIGMKOS#19株）の培養上清とは反応したものの、レチノイン酸存在下で培養した分化したｉＰＳ細胞（201B7株、253G1株）やコントロール培地とは反応性を示さなかった。このことは、「Fucα1-2Galβ1-3GlcNAc/GalNAc」の糖鎖構造が、培養上清中の分化、未分化を判定するための未分化糖鎖マーカーとして有効に機能することを実証するものである。
　本性質を利用して、細胞を採取することなく、培養上清を用いてＥＳ細胞、ｉＰＳ細胞が樹立されたことが検証可能である。また、これら幹細胞を保存する際や未分化性を有したまま増殖させようとする際に、分化細胞が混入していないことを検証することも可能である。また、本性質を利用し、各種臓器細胞（心筋細胞、肝臓細胞、神経細胞、膵島細胞、軟骨細胞、骨細胞等）をＥＳ細胞、ｉＰＳ細胞などの幹細胞から作製した際、未分化性を有したまま残留している細胞を、培養上清を検査するだけで簡便かつ迅速に検出することが可能である。
　なお、従来、未分化細胞のマーカーとしてNanog、POU5F1、DNMT3B、TERT、UTF1　(undifferentiated　embryonic　cell　transcription　factor　1)、FOXD3、LIN28、BRIX等のタンパク質が公知であるが、これらのタンパク質の多くは核内に局在しており、培養上清中での検出は不可能と考えられる。
（実施例４）レクチンオーバーレイによる培養上清の解析
　培養上清中の未分化糖鎖マーカーをより高感度に検出するため、スライドグラス上のｒＢＣ２ＬＣＮ（レクチン１）に捕捉された未分化糖鎖マーカーに対して検出用レクチン（レクチン２）を結合させ、レクチン‐レクチンサンドイッチ法による検出を試みた。検出用レクチンには、ビオチン化ｒＡＡＬを用いた。
　すなわち、実施例３において、レチノイン酸（ＲＡ）なしのｉＰＳ細胞（TIGMKOS#19株）と、培地のみ（コントロール培地）を４日培養した培養上清を採取して、ｒＢＣ２ＬＣＮを固定化したスライドグラスに２０℃で一晩反応させた。洗浄した後にビオチン化ｒＡＡＬを２０℃で一晩反応させた後、１μｇ/ｍＬのＣｙ３ラベル化したストレプトアビジンを２０℃で３０分反応させた後、エバネッセント波励起蛍光型スキャナーで結合を検出した（図５）。コントロール培地についても同様の処理及び測定を行った。
　本実施例の結果から、スライドグラスに固定化したｒＢＣ２ＬＣＮとビオチンで標識したＡＡＬを用いた本発明のレクチン－レクチンサンドイッチ法によって、培養上清中の未分化糖鎖マーカーを検出できることが明らかになった。
（実施例５）オーバーレイレクチンのスクリーニング
　本実施例では、未分化糖鎖マーカーをレクチン‐レクチンサンドイッチ法により検出するために、捕捉用レクチンであるｒＢＣ２ＬＣＮとともに検出用レクチン（オーバーレイレクチン）として使用可能なレクチンのスクリーニングを行った。スクリーニング対象とした組換型レクチンを以下の「表１」に示す。
Figure JPOXMLDOC01-appb-T000001
 ＊ＰＤＢ：RCSB Protein Data Bank (http://www.rcsb.org/pdb/home/home.do)、ＮＣＢＩ：National　Center　of　Biotechnology　Information　(http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed)
＊＊Ｒｅｆ．１：" Carbohydrate　binding　specificity　of　a　fucose-specific　lectin　from　Aspergillus　oryzae:　a　novel　probe　for　core　fucose."　J　Biol　Chem.　2007　May　25;282(21):15700-8、
Ｒｅｆ．２："A　Novel　Core　Fucose-specific　Lectin　from　the　Mushroom　Pholiota　squarrosa."　J　Biol　Chem.　2012　Oct　5;287(41):33973-82.
　エポキシ活性化スライドグラス（#1066643、SCHOTT）上に固定化したｒＢＣ２ＬＣＮと、コントロール培地又はiPS細胞(TIG/MKOS）を毎日培地交換しながら３日間培養し、培養３日目の培養上清（培地交換後約２４時間経過したもの）を２０℃で一晩反応させた。次に、溶液 (25 mM　Tris-HCl pH 7.5,　140 mM　NaCl　(TBS),　2.7　mM　KCl,　1　mM　CaCl2,　1　mM　MnCl2,　and　1%　Triton　X-100)で１回洗浄した。その後、Cy3ラベル化組換型レクチンを加えて、２０℃で３時間インキュベートした。GlycoStationＴＭ Reader 1200（GP　BioSciences）で蛍光強度を測定した結果を図６に示す。図の縦軸には、培養上清で得られた蛍光強度値からコントロール培地で得られた蛍光強度値を差し引いた値を表示した。
　図６に示されるように、実施例４で用いたＡＡＬの他、ＳＲＬ，ＣＧＬ２，ＡＢＡ，ＸＣＬの４つの組換型レクチンで特に優位な蛍光強度値が観察された。このことから、これら４つのレクチンが、レクチン‐レクチンサンドイッチ法により未分化糖鎖マーカーを検出する際の検出用レクチンとして有用であることが明らかとなった。
（実施例６）レクチン‐レクチンサンドイッチ法（リコンビナントレクチン）
　本実施例では、実施例５で特定されたｒＳＲＬ，ｒＣＧＬ２，ｒＡＢＡ，ｒＸＣＬをレクチン２（検出用レクチン）に用い、ｒＢＣ２ＬＣＮをレクチン１（捕捉用レクチン）に用いて、レクチン‐レクチンサンドイッチ法による未分化糖鎖マーカーの検出を行った。
　ストレプトアビジンプレート(Nunc, #436020)上にビオチン化rBC2LCNを固定化した。洗浄後のプレートに、レチノイン酸(RA)存在下又は非存在下でiPS細胞を毎日培地交換しながら８日間培養し、培養８日目の培養上清（培地交換後約２４時間経過したもの）を回収して得られた培養上清を滴下し、３７℃で１時間反応させた。再度洗浄を行ったプレートに、HRPラベル化した上述の組換型レクチンを加えて、３７℃で１時間反応させた。洗浄後、1-step ULTRA TMB-ELISA (Thermo, #34028)を滴下し、室温で３０分反応後、1M硫酸を加えて反応停止し、450nmの吸光度を測定した。
　結果を図７に示す。図７には、培養上清で得られた吸光度値をコントロール培地で得られた吸光度値で除して値をS/Nとして表示した。何れのレクチンを反応させた場合でも、未分化のiPS細胞の培養上清（253G1(RA-))は高いS/N値を示したのに比して、分化させたiPS細胞の培養上清（253G1(RA+))はより低いS/N値を示した。４種のオーバーレイレクチンのうち、ｒＡＢＡは最も高いS/N値を示した。一方、フィーダー細胞（MEF）の培養上清は、レチノイン酸(RA)の添加にかかわらず、コントロール培地とほぼ同程度の反応性を示した。
（実施例７）レクチン‐レクチンサンドイッチ法における検量線の作成
　本実施例では、実施例６で構築したレクチン‐レクチンサンドイッチ法による未分化糖鎖マーカーの検出系において、培養上清中の未分化細胞数を定量するための検量線の作成を行った。
　iPS細胞（201B7又は253G4）を２４時間培養後、培地（Medium　WakoB、Nutristem、ReproFF又はMEF-CM）を回収し、培地中のiPS細胞の細胞数をカウントした。iPS細胞の培養上清を段階希釈して、実施例６と同様の方法で解析を行い、得られた吸光度値と細胞数との関係を示す回帰直線を検量線として得た。検出用レクチンとしてｒＡＢＡを用いて得られた検量線を図８、図９に、ｒＳＲＬを用いて得られた検量線を図１０、図１１に示す。図８～図１１に示す検量線は、いずれも０．９６１以上の高い相関係数を示した。
　本実施例の結果から、特定のレクチンの組み合わせで培養上清中の未分化糖鎖マーカーの測定を行えば、未分化細胞を定量的に検出して、未分化細胞数が０となったか否かの判定を行い得ることがわかる。
（実施例８）未分化糖鎖マーカーの同定
　本実施例では、未分化糖鎖マーカーの同定を行った。
　毎日培地交換しながら３日間培養して得られたES細胞の培養上清（KhES1　 sup）、３日間培養して得られたiPS細胞の培養上清（253G1　sup）（培地交換後約２４時間経過したもの）及びそれぞれのコントロール培地を1 mLずつとり、ｒＢＣ２ＬＣＮ固定化ビーズと混合し、室温で３時間反応させた。反応後ビーズを0.2 % SDS 100 μLで９５℃５分間加熱し、結合画分を溶出させた。結合画分10 μLをアクリアミドゲルで電気泳動し、銀染色と、HRP-rABA又はHRP-rSRLによるブロットを行った。
　結果を図１２のＡ～Ｃに示す。HRP-rABA及びHRP-rSRLによるブロットでは、２４０ｋＤａ以上の分子量を有する分子がシグナルを示した（Ｂ，Ｃ参照）。
　さらに、抗ポドカリキシン抗体でブロットした結果を図１２Ｄに示す。２４０ｋＤａ以上の分子量を示す分子でシグナルが認められ、この分子がポドカリキシンタンパクあるいはポドカリキシンタンパクの一部であることが明らかとなった。
　この結果から、未分化糖鎖マーカーの一つとして、ポドカリキシンが同定された。ポドカリキシンは、ポドカリキシンは１型膜貫通型糖タンパク質で、足細胞として知られる上皮性糸球体細胞から同定され、糸球体の機能・形態の保持において重要な役割をしているほか、種々の癌の発達にも関係していることが知られている（非特許文献８参照）。
　また、本実施例の結果及びポドカリキシンのアルカリ消化を行った実験の結果から、ポドカリキシンは、修飾糖鎖の構造中に「Fucα1-2Galβ1-3GalNAc（Ｈタイプ３糖鎖）」を含むものと予想された。なお、Ｈタイプ１糖鎖がポドカリキシンに存在しているか否かは不明である。
　本実施例において、Ｈタイプ３糖鎖を有するポドカリキシンが同定されたことは、未分化細胞を検出するためのプローブとして、抗ポドカリキシン抗体であって、ポドカリキシンのＨタイプ３糖鎖の修飾部位を特異的に認識する抗体を利用できる可能性を示している。
（実施例９）ｒＢＣ２ＬＣＮの結合特性の解析
　本実施例では、ｒＢＣ２ＬＣＮが認識する糖鎖構造の解析を行った。
　舘野らの方法（非特許文献７参照）に従って、ｒＢＣ２ＬＣＮをNHS-activated Sepharose 4FF (GE)に固定化し、ミニカラム (inner　diameter, 2　mm;　length,　10　mm,　bed　volume,　31.4 μl)に詰めた後、高速液体クロマトグラフィーに接続した。ヒトiPS細胞（201B7）から単離したピリジルアミノ化糖鎖をカラムに注入し、励起285 nm、蛍光350 nmで蛍光検出した。解析の結果、ｒＢＣ２ＬＣＮは、iPS細胞から単離したＨタイプ３を含むＯ型糖鎖に対し、Ka=2.5 x 10４ M－１の親和性で結合することが分かった（図１３参照）。
　図１３（Ａ）中、点線は、コントロールPA化糖鎖であるManα1-6(Manα1-3)Manβ1-4GlcNAcβ1-4GlcNAc-PAの溶出プロファイルを示す。実線は、iPS細胞から単離したPA化糖鎖であるFucα1-2Galβ1-3(Galβ1-3GlcNAcβ1-6)GalNAc-PAの溶出プロファイルを示す。また、図１３（Ｂ）は、Fucα1-2Galβ1-3(Galβ1-3GlcNAcβ1-6)GalNAc-PA（Ｈタイプ３を含むＯ型糖鎖）の模式図である。円はガラクトース、白四角はＮ－アセチルガラクトサミン、黒四角はＮ－アセチルグルコサミン、三角はフコースを示す。また、ガラクトースとＮ－アセチルグルコサミン、ガラクトースとＮ－アセチルガラクトサミンの間の太線はβリンケージ、ガラクトースとフコースの間の細線はαリンケージを示す。
（参考実施例１０）天然型レクチンを用いた比較実験
　本参考実施例では、レクチン‐レクチンサンドイッチ法において、糖鎖を有するレクチンを用いた場合の問題点を検証した。
　９６種類のレクチンがスライドグラス上に固定化された高密度天然型レクチンアレイ（非特許文献１参照）にPNGaseFを滴下し、３７℃で一晩反応させた。反応後１回洗浄を行って、Ｃｙ３ラベル化組換型レクチン（ｒＯｒｙｓａｔａ）を滴下し、２０℃で一晩反応させた。反応後２回洗浄を行って、GlycoStationＴＭ Reader　1200（GP　BioSciences）で蛍光強度を測定した。また、比較としてPNGase処理を行っていない高密度天然型レクチンアレイを用いても同様の操作を行った。
　その結果、PNGaseF処理を行っていないレクチンアレイでは、ＳＳＡ，ＳＮＡ，ＲＣＡ１２０，ＭＣＡでシグナルが検出され、ｒＯｒｙｓａｔａがこれら４つのレクチンに結合していた。一方、PNGaseF処理を行ったレクチンアレイでは、ＳＳＡ，ＳＮＡ，ＲＣＡ１２０，ＭＣＡからのシグナルが消失した。このことは、レクチン‐レクチンサンドイッチ法において糖鎖を有するレクチンを用いた場合には、レクチン同士が、検出対象物質を介することなく、当該レクチン自身が有する糖鎖を介して結合して目的としない複合体を形成してしまうことを示すものである。すなわち、レクチン‐レクチンサンドイッチ法において天然型レクチンを用いると、糖鎖検出において疑陽性が生じる可能性が高くなることが明らかとなった。
（実施例１１）レクチンサンドイッチ法（糖鎖除去天然型レクチン）
　本参考実施例では、天然型レクチンアレイを糖分解酵素で処理して得た改変型レクチンアレイを用いて、レクチン‐レクチンサンドイッチ法による糖タンパク質の検出を行った。
　参考実施例１０で用いた天然型レクチンアレイにPNGaseFを滴下し、３７℃で一晩インキュベートした。インキュベーション後、２回洗浄を行って、チログロブリン（10 μg/mL）を滴下し、３７℃で一晩反応させた。反応後２回洗浄を行って、Ｃｙ３ラベル化組換型レクチン（ｒＯｒｙｓａｔａ）を滴下し、２０℃で３時間反応させた。反応後２回洗浄を行って、GlycoStationＴＭ Reader 1200（GP　BioSciences）で蛍光強度を測定した。また、比較としてチログロブリンを滴下せずに同様の操作を行い、チログロブリンを滴下したアレイで得られた蛍光強度値（Ｓｉｇｎａｌ）と滴下していないアレイで得られた蛍光強度値（Ｎｏｉｓｅ）との比（Ｓ／Ｎ比）を算出した。なお、チログロビンの糖鎖構造から、ＳＳＡ，ＳＮＡ，ＲＣＡ１２０，ＭＣＡ及びｒＯｒｙｓａｔａは、いずれもチログロビンに対して結合性を有すると予想された。
　結果を「表２」に示す。
Figure JPOXMLDOC01-appb-T000002
　PNGaseF処理を行っていないレクチンアレイのＳＳＡ（天然型レクチン）でのＳ／Ｎ比は約１．９であった。これに対して、PNGaseF処理を行ったレクチンアレイのＳＳＡ（糖鎖除去天然型レクチン）ではＳ／Ｎ比は約８．０と顕著に改善した。同様に、ＳＮＡ、ＲＣＡ１２０、ＭＣＡについても、PNGaseF処理を行ったレクチンアレイでは、PNGaseF処理を行っていないレクチンアレイに比して、チログロブリン検出のＳ／Ｎ比が顕著に改善した。
　この結果及び実施例１０の結果から、PNGaseF処理を行っていないアレイでは、ｒＯｒｙｓａｔａ（検出用レクチン）が、チログロブリン（検出対象物質）を介することなくＳＳＡ、ＳＮＡ、ＲＣＡ１２０、ＭＣＡ（捕捉用レクチン）に直接結合し、ノイズが発生していることが考えられる。これに対して、PNGaseF処理を行ったアレイでは、捕捉用レクチンの糖鎖除去によって、検出用レクチンと捕捉用レクチンとの直接結合が防止され、捕捉用レクチンと検出対象物質と検出用レクチンとの複合体から生じるシグナルを高感度に検出できた。
　本実施例の結果から、レクチン－レクチンサンドイッチアッセイを行う場合には、レクチンの糖鎖の影響を排除することにより、使用するレクチンの糖鎖に他のレクチンが結合してしまうのを防止して、測定のバックグラウンドを低く抑え、高感度で検出対象物質を測定できることが明らかとなった。
１：複合体１（レクチンＬ１と検出対象物質Ｔの複合体）、２：複合体２（レクチンＬ１と検出対象物質ＴとレクチンＬ２の複合体）、Ｌ１：レクチン１、Ｌ２：レクチン２、Ｇ１、Ｇ２：糖鎖構造、Ｓ：固相表面、Ｔ：検出対象物質

Claims (20)

  1. 　幹細胞の培養上清中の下記（式１）又は（式２）で表される未分化糖鎖マーカーの存在の有無又は存在量を測定することを特徴とする、幹細胞の分化状態を判別する方法；
    Figure JPOXMLDOC01-appb-I000001
    （図中、Ｒ１はＯＨ基、若しくは任意の糖鎖を表す。Ｒ２はＯＨ基、又は任意の糖鎖、タンパク質、脂質、若しくは他の分子を表す。）
    Figure JPOXMLDOC01-appb-I000002
    （図中、Ｒ１はＯＨ基、若しくは任意の糖鎖を表す。Ｒ２はＯＨ基、又は任意の糖鎖、タンパク質、脂質、若しくは他の分子を表す。）。
  2. 　前記未分化糖鎖マーカーの有無又は存在量を、（式１）又は（式２）で表される糖鎖構造を特異的に認識するタンパク質を用いて測定することを特徴とする、請求項１に記載の方法。
  3. 　前記タンパク質が、下記のタンパク質である請求項２に記載の方法；
    配列番号１に示されるアミノ酸配列、又は当該アミノ酸配列の１若しくは数個のアミノ酸が欠失、置換、挿入、もしくは付加されたアミノ酸配列を含み、前記（式１）又は（式２）で表される糖鎖構造を特異的に認識するタンパク質。
  4. 　前記幹細胞の培養上清が、当該幹細胞に対して分化誘導処理を施した後の培養上清であることを特徴とする、請求項１～３のいずれか１項に記載の方法。
  5. 　ポドカリキシンに由来する前記（式１）又は／及び（式２）で表される前記未分化糖鎖マーカーの存在の有無又は存在量を測定することを特徴とする、請求項１～４のいずれか１項に記載の方法。
  6. 　前記未分化糖鎖マーカーを、
    前記（式１）又は（式２）で表される糖鎖構造を特異的に認識し、
    配列番号１に示されるアミノ酸配列、又は当該アミノ酸配列の１若しくは数個のアミノ酸が欠失、置換、挿入、もしくは付加されたアミノ酸配列を含み、かつ、糖鎖を有さない、
    タンパク質を用いたレクチン‐レクチンサンドイッチ法により検出することを特徴とする、請求項１～５記載の方法。
  7. 　分化誘導処理を施した幹細胞の培養上清中の下記（式１）又は（式２）で表される未分化糖鎖マーカーが存在しないことを確認して採取することを特徴とする、未分化細胞の混入していない分化細胞の取得方法；
    Figure JPOXMLDOC01-appb-I000003
    （図中、Ｒ１はＯＨ基、若しくは任意の糖鎖を表す。Ｒ２はＯＨ基、又は任意の糖鎖、タンパク質、脂質、若しくは他の分子を表す。）
    Figure JPOXMLDOC01-appb-I000004
    （図中、Ｒ１はＯＨ基、若しくは任意の糖鎖を表す。Ｒ２はＯＨ基、又は任意の糖鎖、タンパク質、脂質、若しくは他の分子を表す。）。
  8. 　前記未分化糖鎖マーカーが存在しないことの確認を、配列番号１に示されるアミノ酸配列、又は当該アミノ酸配列の１若しくは数個のアミノ酸が欠失、置換、挿入、もしくは付加されたアミノ酸配列を含み、前記（式１）又は（式２）で表される糖鎖構造を特異的に認識するタンパク質を用いて行うことを特徴とする、請求項７に記載の方法。
  9. 　幹細胞の分化状態を判別する方法に用いるためのキットであって、下記（式１）又は（式２）で表される糖鎖構造を特異的に認識するタンパク質を含むことを特徴とするキット。
    Figure JPOXMLDOC01-appb-I000005
    （図中、Ｒ１はＯＨ基、若しくは任意の糖鎖を表す。Ｒ２はＯＨ基、又は任意の糖鎖、タンパク質、脂質、若しくは他の分子を表す。）
    Figure JPOXMLDOC01-appb-I000006
    （図中、Ｒ１はＯＨ基、若しくは任意の糖鎖を表す。Ｒ２はＯＨ基、又は任意の糖鎖、タンパク質、脂質、若しくは他の分子を表す。）。
  10. 　前記タンパク質が、下記のタンパク質である請求項９に記載のキット；
    配列番号１に示されるアミノ酸配列、又は当該アミノ酸配列の１若しくは数個のアミノ酸が欠失、置換、挿入、もしくは付加されたアミノ酸配列を含み、前記（式１）又は（式２）で表される糖鎖構造を特異的に認識するタンパク質。
  11. 　糖鎖を有する検出対象物質と前記糖鎖に対して結合性を有するレクチン１及びレクチン２とを接触させて、前記レクチン１と前記検出対象物質と前記レクチン２とから構成される複合体を形成させ、該複合体を検出することにより行う前記検出対象物質の検出方法であって、
    前記レクチン１及び前記レクチン２の少なくとも一方は、糖鎖を有さないレクチンである検出方法。
  12. 　前記検出対象物質が、糖蛋白質、糖脂質、プロテオグリカン、グリコペプチド、リポ多糖、ペプチドグリカン、及びステロイド化合物に糖鎖が結合した配糖体からなる群より選択される複合糖質である請求項１１記載の検出方法。
  13. 　前記レクチン１と前記レクチン２が、互いに異なる糖鎖構造に対する結合性を有するものである請求項１１又は１２記載の検出方法。
  14. 　前記糖鎖を有さないレクチンが、原核細胞で発現した組換型レクチン、又は天然型タンパク質の糖鎖構造を改変して得た改変型レクチンである請求項１１～１３のいずれか一項に記載の検出方法。
  15. 　前記検出対象物質と、不溶性担体に結合した、糖鎖を有さない前記レクチン１と、不溶性担体に結合していない前記レクチン２と、を接触させて前記複合体を形成させ、該複合体を検出することにより行う請求項１１～１４のいずれか一項に記載の検出方法。
  16. 　前記検出対象物質と、不溶性担体に結合した、糖鎖を有さない前記レクチン１とを接触させて、前記レクチン１と前記検出対象物質とから構成される複合体１を得る第一手順と、
    前記複合体１と、前記レクチン２とを接触させて、前記レクチン１と前記検出対象物質と前記レクチン２とから構成される複合体２を得る第二手順と、を含む請求項１５記載の検出方法。
  17. 　前記レクチン１と前記レクチン２の両方が糖鎖を有さないレクチンである請求項１１～１６のいずれか一項に記載の検出方法。
  18. 　糖鎖を有する検出対象物質の検出に用いられるキットであって、前記糖鎖に対して結合性を有するレクチン１及びレクチン２を含み、前記レクチン１及び前記レクチン２の少なくとも一方は糖鎖を有さないレクチンであるキット。
  19. 　不溶性担体と、
    前記不溶性担体に結合した、糖鎖を有さない前記レクチン１と、
    前記不溶性担体に結合していないレクチン２と、
    を含む請求項１８に記載のキット。
  20. 　前記レクチン１と前記レクチン２の両方が糖鎖を有さないレクチンである請求項１８又は１９に記載のキット。
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Cited By (17)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
WO2014126146A1 (ja) 2013-02-14 2014-08-21 独立行政法人産業技術総合研究所 未分化細胞除去方法
WO2015166845A1 (ja) * 2014-05-01 2015-11-05 株式会社島津製作所 細胞の分化状態の評価方法
WO2016052558A1 (ja) * 2014-09-29 2016-04-07 東京エレクトロン株式会社 培養培地分析による多能性幹細胞の未分化状態の判定方法
WO2016147514A1 (ja) * 2015-03-17 2016-09-22 国立研究開発法人産業技術総合研究所 幹細胞を検出するための方法及びキット
WO2017061449A1 (ja) * 2015-10-05 2017-04-13 国立研究開発法人産業技術総合研究所 がん細胞の検出方法、がん細胞内に物質を導入するための試薬、及びがん治療用組成物
WO2017068801A1 (ja) * 2015-10-23 2017-04-27 株式会社島津製作所 細胞の分化状態の評価方法
JP2017184713A (ja) * 2016-03-31 2017-10-12 国立研究開発法人産業技術総合研究所 細胞分化ポテンシャル判定法
JP2018000038A (ja) * 2016-06-28 2018-01-11 東ソー株式会社 システインタグを付加したフコース結合性レクチン、および当該レクチンを利用した吸着剤
WO2018174044A1 (ja) 2017-03-22 2018-09-27 富士フイルム和光純薬株式会社 糖鎖を有する物質とレクチンとの複合体形成方法
JP2018148873A (ja) * 2017-03-13 2018-09-27 東ソー株式会社 改変型フコース結合性レクチン、およびその製造方法
WO2018190357A1 (ja) * 2017-04-11 2018-10-18 国立研究開発法人産業技術総合研究所 レクチンの固定化方法
JP2018538551A (ja) * 2015-12-02 2018-12-27 ユニベルシテ デ リモージュＵｎｉｖｅｒｓｉｔｅ Ｄｅ Ｌｉｍｏｇｅｓ 癌幹細胞を単離する方法
JP2018538550A (ja) * 2015-12-02 2018-12-27 ユニベルシテ デ リモージュＵｎｉｖｅｒｓｉｔｅ Ｄｅ Ｌｉｍｏｇｅｓ 癌幹細胞を検出する方法
WO2019035462A1 (ja) * 2017-08-17 2019-02-21 東京エレクトロン株式会社 細胞培養容器において培養される多能性幹細胞の未分化状態を位置特異的に判定する方法、多能性幹細胞の継代培養方法およびそれら方法に使用される装置
WO2020036118A1 (ja) 2018-08-13 2020-02-20 東ソー株式会社 フコース結合性タンパク質、その製造方法、およびその用途
US20210317171A1 (en) * 2018-08-31 2021-10-14 Unichem Laboratories Ltd Recombinant lectin variants
WO2022220154A1 (ja) * 2021-04-13 2022-10-20 株式会社明治 菌体外多糖の検出方法

Families Citing this family (4)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
EP2821498B1 (en) * 2012-02-28 2018-12-12 National Institute of Advanced Industrial Science and Technology Method for isolating undifferentiated stem cells
EP3347487B1 (en) * 2015-09-11 2021-07-14 INSERM (Institut National de la Santé et de la Recherche Médicale) Non-invasive methods for assessing genetic integrity of pluripotent stem cells
EP3417888A1 (de) * 2017-06-25 2018-12-26 co.don AG Verfahren zum herstellen von transplantierbarem knorpelgewebe
CA3230395A1 (en) 2021-10-01 2023-04-06 Unichem Laboratories Limited Lectin-drug conjugates

Citations (5)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
JPH04130274A (ja) * 1990-09-20 1992-05-01 Kyoto Ikagaku Kenkyusho:Kk 糖蛋白の分析，検出方法
JPH09301995A (ja) 1995-07-18 1997-11-25 Wako Pure Chem Ind Ltd 新規なポリペプチド及びそれを用いる生体成分測定方法
WO2007027495A1 (en) 2005-09-02 2007-03-08 Wako Pure Chemical Industries, Ltd Complex formation method and separation method
WO2008093828A1 (ja) * 2007-02-02 2008-08-07 National Institute Of Advanced Industrial Science And Technology 生細胞表層分子解析方法及び部材
WO2009057755A1 (ja) * 2007-11-02 2009-05-07 National Institute Of Advanced Industrial Science And Technology 糖鎖アレイ基板とそれを用いた糖鎖結合分子検出法

Family Cites Families (3)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
US20070020625A1 (en) * 2001-02-07 2007-01-25 Eric Duchaud Sequence of the photorhabdus luminescens strain tt01 genome and uses
WO2008087258A1 (en) * 2007-01-18 2008-07-24 Suomen Punainen Risti, Veripalvelu Novel carbohydrate from human cells and methods for analysis and modification thereof
EP2821498B1 (en) * 2012-02-28 2018-12-12 National Institute of Advanced Industrial Science and Technology Method for isolating undifferentiated stem cells

Patent Citations (5)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
JPH04130274A (ja) * 1990-09-20 1992-05-01 Kyoto Ikagaku Kenkyusho:Kk 糖蛋白の分析，検出方法
JPH09301995A (ja) 1995-07-18 1997-11-25 Wako Pure Chem Ind Ltd 新規なポリペプチド及びそれを用いる生体成分測定方法
WO2007027495A1 (en) 2005-09-02 2007-03-08 Wako Pure Chemical Industries, Ltd Complex formation method and separation method
WO2008093828A1 (ja) * 2007-02-02 2008-08-07 National Institute Of Advanced Industrial Science And Technology 生細胞表層分子解析方法及び部材
WO2009057755A1 (ja) * 2007-11-02 2009-05-07 National Institute Of Advanced Industrial Science And Technology 糖鎖アレイ基板とそれを用いた糖鎖結合分子検出法

Non-Patent Citations (21)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Title
"Tosa no Jinsoku Profiling Gijutsu de iPS Saibo o Seimitsu Hyoka", 22 June 2011 (2011-06-22), XP055160098, Retrieved from the Internet <URL:http://www. aist.go.jp/aist_j/new_research/nr20110622/ nr20110622,html> [retrieved on 20130109] *
ANAL. CHEM., vol. 64, 1992, pages 1926 - 1932
ANAL. CHEM., vol. 65, no. 5, 1993, pages 613 - 616
DRAPER JS; PIGOTT C; THOMSON JA; ANDREWS PW, J. ANAT, vol. 200, 2000, pages 249 - 58
IIJIMA ET AL., CHEM. BIO. CHEM., vol. 10, 2009, pages 999 - 1006
J. CHROMATOGR., vol. 593, 1992, pages 253 - 258
J. MOL. BIOL., vol. 56, 1971, pages 209
JOURNAL OF ANALYTICAL BIO-SCIENCE, vol. 22, no. 4, 1999, pages 303 - 308
METHOD IN ENZYMOLOGY, vol. 68, 1979, pages 326 - 331
MOL. GEN. GENET., vol. 168, 1979, pages 111
NIELSEN, J. S.; MCNAGNY, K. M., J. AM. SOC. NEPHROL., vol. 20, 2009, pages 1669 - 1676
PROC. NATL. ACAD. SCI. U.S.A., vol. 9, 1972, pages 2110
See also references of EP2774994A4 *
SUEMORI H.; YASUCHIKA K.; HASEGAWA K.; FUJIOKA T.; TSUNEYOSHI N.; NAKATSUJI N., BIOCHEM. BIOPHYS. RES. COMMUN., vol. 345, 2006, pages 926 - 932
SULAK O; CIOCI G; DELIA M; LAHMANN M; VARROT A; IMBERTY A; WIMMEROVA M., STRUCTURE, vol. 18, no. 1, 2010, pages 59 - 72
SULAK, ONDRVEJ ET AL.: "A TNF-like trimeric lectin domain from Burkholderia cenocepacia with specificity for fucosylated human histo- blood group antigens", STRUCTURE, vol. 18, no. 1, 2010, pages 59 - 72, XP026924077 *
TANG C; LEE AS; VOLKMER JP; SAHOO D; NAG D; MOSLEY AR; INLAY MA; ARDEHALI R; CHAVEZ SL; PERA RR, NAT. BIOTECHNOL., vol. 29, no. 9, 2011, pages 829 - 34
TANG, CHAD ET AL.: "An antibody against SSEA-5 glycan on human pluripotent stem cells enables removal of teratoma-forming cells", NATURE BIOTECHNOLOGY, vol. 29, no. 9, 14 August 2011 (2011-08-14), pages 829 - 834, XP055067218 *
TATENO H; TOYOTA M; SAITO S; ONUMA Y; ITO Y; HIEMORI K; FUKUMURA M; MATSUSHIMA A; NAKANISHI M; OHNUMA K, J. BIOL. CHEM., vol. 286, no. 23, 2011, pages 20345 - 53
TATENO HIROAKI ET AL.: "Glycome diagnosis of human induced pluripotent stem cells using lectin microarray", THE JOURNAL OF BIOLOGICAL CHEMISTRY, vol. 286, no. 23, 10 June 2011 (2011-06-10), pages 20345 - 20353, XP055067216 *
TATENO, H.; NAKAMURA-TSURUTA, S.; HIRABAYASHI, J., NAT. PROTOC., vol. 2, 2007, pages 2529 - 2537

Cited By (36)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
WO2014126146A1 (ja) 2013-02-14 2014-08-21 独立行政法人産業技術総合研究所 未分化細胞除去方法
WO2015166845A1 (ja) * 2014-05-01 2015-11-05 株式会社島津製作所 細胞の分化状態の評価方法
US11022600B2 (en) 2014-05-01 2021-06-01 Shimadzu Corporation Method for assessing state of differentiation of cells
CN106460028B (zh) * 2014-05-01 2020-03-10 株式会社岛津制作所 细胞的分化状态的评价方法
CN106460028A (zh) * 2014-05-01 2017-02-22 株式会社岛津制作所 细胞的分化状态的评价方法
KR101931420B1 (ko) 2014-05-01 2018-12-20 가부시키가이샤 시마즈세이사쿠쇼 세포의 분화 상태의 평가 방법
JPWO2015166845A1 (ja) * 2014-05-01 2017-04-20 株式会社島津製作所 細胞の分化状態の評価方法
JP2018121659A (ja) * 2014-05-01 2018-08-09 株式会社島津製作所 細胞の分化状態の評価方法
AU2015254267B2 (en) * 2014-05-01 2018-03-08 Shimadzu Corporation Method for assessing state of differentiation of cells
JPWO2016052558A1 (ja) * 2014-09-29 2017-07-13 東京エレクトロン株式会社 培養培地分析による多能性幹細胞の未分化状態の判定方法
WO2016052558A1 (ja) * 2014-09-29 2016-04-07 東京エレクトロン株式会社 培養培地分析による多能性幹細胞の未分化状態の判定方法
US10704073B2 (en) 2014-09-29 2020-07-07 Tokyo Electron Limited Method for determining undifferentiated state of pluripotent stem cells by culture medium analysis
JPWO2016147514A1 (ja) * 2015-03-17 2017-12-28 国立研究開発法人産業技術総合研究所 幹細胞を検出するための方法及びキット
WO2016147514A1 (ja) * 2015-03-17 2016-09-22 国立研究開発法人産業技術総合研究所 幹細胞を検出するための方法及びキット
US10539553B2 (en) 2015-03-17 2020-01-21 National Institute Of Advanced Industrial Science And Technology Method and kit for detecting stem cell
WO2017061449A1 (ja) * 2015-10-05 2017-04-13 国立研究開発法人産業技術総合研究所 がん細胞の検出方法、がん細胞内に物質を導入するための試薬、及びがん治療用組成物
JPWO2017061449A1 (ja) * 2015-10-05 2018-07-26 国立研究開発法人産業技術総合研究所 がん細胞の検出方法、がん細胞内に物質を導入するための試薬、及びがん治療用組成物
WO2017068801A1 (ja) * 2015-10-23 2017-04-27 株式会社島津製作所 細胞の分化状態の評価方法
CN108350480A (zh) * 2015-10-23 2018-07-31 株式会社岛津制作所 细胞的分化状态的评价方法
CN108350480B (zh) * 2015-10-23 2022-04-22 株式会社岛津制作所 细胞的分化状态的评价方法
WO2017068727A1 (ja) * 2015-10-23 2017-04-27 株式会社島津製作所 細胞の分化状態の評価方法
JP2018538551A (ja) * 2015-12-02 2018-12-27 ユニベルシテ デ リモージュＵｎｉｖｅｒｓｉｔｅ Ｄｅ Ｌｉｍｏｇｅｓ 癌幹細胞を単離する方法
JP2018538550A (ja) * 2015-12-02 2018-12-27 ユニベルシテ デ リモージュＵｎｉｖｅｒｓｉｔｅ Ｄｅ Ｌｉｍｏｇｅｓ 癌幹細胞を検出する方法
JP2017184713A (ja) * 2016-03-31 2017-10-12 国立研究開発法人産業技術総合研究所 細胞分化ポテンシャル判定法
JP2018000038A (ja) * 2016-06-28 2018-01-11 東ソー株式会社 システインタグを付加したフコース結合性レクチン、および当該レクチンを利用した吸着剤
JP2018148873A (ja) * 2017-03-13 2018-09-27 東ソー株式会社 改変型フコース結合性レクチン、およびその製造方法
WO2018174044A1 (ja) 2017-03-22 2018-09-27 富士フイルム和光純薬株式会社 糖鎖を有する物質とレクチンとの複合体形成方法
JPWO2018190357A1 (ja) * 2017-04-11 2020-02-27 国立研究開発法人産業技術総合研究所 レクチンの固定化方法
US11078254B2 (en) 2017-04-11 2021-08-03 National Institute Of Advanced Industrial Science And Technology Method for immobilizing lectin
WO2018190357A1 (ja) * 2017-04-11 2018-10-18 国立研究開発法人産業技術総合研究所 レクチンの固定化方法
JP7228163B2 (ja) 2017-04-11 2023-02-24 国立研究開発法人産業技術総合研究所 レクチンの固定化方法
WO2019035462A1 (ja) * 2017-08-17 2019-02-21 東京エレクトロン株式会社 細胞培養容器において培養される多能性幹細胞の未分化状態を位置特異的に判定する方法、多能性幹細胞の継代培養方法およびそれら方法に使用される装置
WO2020036118A1 (ja) 2018-08-13 2020-02-20 東ソー株式会社 フコース結合性タンパク質、その製造方法、およびその用途
US20210317171A1 (en) * 2018-08-31 2021-10-14 Unichem Laboratories Ltd Recombinant lectin variants
US11965003B2 (en) * 2018-08-31 2024-04-23 Unichem Laboratories Ltd Recombinant lectin variants
WO2022220154A1 (ja) * 2021-04-13 2022-10-20 株式会社明治 菌体外多糖の検出方法

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