WO2009154234A1 - 新種微生物、セレン酸化合物還元製剤、セレン酸化合物の還元方法および除去方法、並びに金属セレンの製造方法 - Google Patents

新種微生物、セレン酸化合物還元製剤、セレン酸化合物の還元方法および除去方法、並びに金属セレンの製造方法 Download PDF

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selenate
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松本　光史
恭彦 西村
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電源開発株式会社
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Definitions

  • the present invention relates to a novel microorganism, a selenate compound reducing preparation containing the microorganism as an active ingredient, a method for reducing and removing a selenate compound using the microorganism, and a method for producing metal selenium.
  • Selenium is known to be useful as a semiconductor material and a photosensitive material, and is also an element with high utility value in the industry, such as being used as a colorant and decolorizer for glass.
  • a trace amount of selenium is an essential element for the human body, it is known that it shows toxicity when ingested in excess of the necessary amount. Therefore, in order to prevent water pollution and soil contamination, it has been designated as an environmental standard. Under such circumstances, in the industry as described above, there is a possibility that selenium may be mixed in factory effluent, and since selenium is also contained in coal in trace amounts, Therefore, the removal of selenium in the wastewater is an important issue.
  • the selenium (hexavalent) selenate is a compound (H 2 SeO 4) or a salt thereof
  • selenious acid is a compound of selenium (tetravalent) (H 2 SeO 4) Or a salt thereof.
  • these selenate compounds are present in the form of selenate ions (SeO 4 2 ⁇ ) and a part of them in the form of selenite (SeO 3 2 ⁇ ) ions in aqueous solutions such as industrial wastewater. Conceivable. When these selenate compounds are reduced, they become zero-valent metal selenium.
  • Some extracellular macromolecules such as polysaccharides, lipids, and vacuoles present on the cell surface of microorganisms can adsorb selenium oxyanions, and this phenomenon is known as bioadsorption. It is said that the selenium oxyanion can also be removed from the solution by utilizing this phenomenon. Thus, it can be said that the method of removing a selenate compound from waste water using microorganisms is an excellent method with little environmental load.
  • the present invention has been made in view of the above circumstances, a novel microorganism excellent in reducing ability of a selenate compound, a selenate compound reducing preparation containing the microorganism as an active ingredient, and a method for reducing a selenate compound using the microorganism
  • Another object of the present invention is to provide a removal method and a method for producing metal selenium.
  • a microorganism belonging to the species to which the Aeromonas genus JPCC SEP JP-1 belongs, a microorganism belonging to the species to which the Klebsiella genus JPCC SEP JP-2 belongs and a Sulfurospirillum genus JPCCY A method for reducing a selenate compound comprising a step of co-culturing a microorganism belonging to a species to which the three strains belong in the presence of a selenate compound.
  • JPCC SEP JP-1 belongs, microorganisms belonging to the species to which Klebsiella sp. JPCC SEP JP-2 belongs, and Sulfurospirillum sp.
  • JPCCY SEP- A method for removing a selenate compound comprising a step of co-culturing a microorganism belonging to the species to which the three strains belong in the presence of a selenate compound. (3) Microorganisms belonging to the species to which Aeromonas sp. JPCC SEP JP-1 belongs, microorganisms belonging to the species to which Klebsiella sp. JPCC SEP JP-2 belongs, and Sulfurospirillum sp.
  • JPCCY SEP- A method for producing metal selenium, comprising a step of co-culturing a microorganism belonging to the species to which the three strains belong in the presence of a selenate compound and a step of separating the obtained culture.
  • (11) A microorganism belonging to the genus Sulfurospirillum having a base sequence of 16S rDNA having a homology of 96% or more with the base sequence shown in SEQ ID NO: 3 and having the ability to reduce a selenate compound.
  • a selenate compound-reduced preparation comprising the microorganism according to any one of (4) to (12) as an active ingredient.
  • a method for reducing a selenate compound comprising a step of culturing the microorganism according to any one of (4) to (12) in the presence of a selenate compound.
  • a method for removing a selenate compound comprising a step of culturing the microorganism according to any one of (4) to (12) in the presence of a selenate compound.
  • a method for producing metal selenium which comprises a step of culturing the microorganism according to any one of (4) to (12) in the presence of a selenate compound and a step of separating the obtained culture.
  • 6 is a graph showing hexavalent and tetravalent selenium removal activity in Example 2.
  • FIG. 6 is a graph showing the hexavalent and tetravalent selenium-removing activities of the mixed cells of JPCC SEP JP-1 and JPCC SEP JP-2 and the microorganisms of the genus Bacillus (control strain).
  • FIG. 6 is a graph showing hexavalent and tetravalent selenium removing activity in Example 3.
  • FIG. 6 is a graph showing hexavalent and tetravalent selenium removal activity in Example 4.
  • FIG. 6 is a graph showing hexavalent and tetravalent selenium removing activity in Example 5.
  • “Aeromonas sp. JPCC SEP JP-1” may be abbreviated as “Aeromonas sp. JPCC SEP JP-1” or “JPCC SEP JP-1.”
  • “Klebsiella sp. JPCC SEP JP-2 strain” may be abbreviated as “Klebsiella sp. JPCC SEP JP-2 strain” or “JPCC SEP JP-2”.
  • “Sulfurospirilum genus JPCCY SEP-3 strain” may be abbreviated as “Sulfurospirillum genus JPCCY SEP-3 strain” or “JPCCY SEP-3”.
  • the selenate compound refers to selenate, selenite and salts thereof, and ions thereof.
  • JPCC SEP JP-1, JPCC SEP JP-2 and JPCCY SEP-3 are found in the soil of a mangrove forest in Amami Oshima, and are obtained by culturing and purifying a sample collected from this soil.
  • the sample is cultured and purified, for example, as follows.
  • the sample is cultured in the presence of a selenate compound, preferably using a liquid medium that has been sterilized, and a medium in which growth of JPCC SEP JP-1, JPCC SEP JP-2 or JPCCY SEP-3 has been confirmed is selected.
  • JPCC SEP JP-1, JPCC SEP JP-2 and JPCCY SEP-3 can be confirmed by the presence or absence of red coloring of the medium. This red color is derived from metal selenium in the body of these microorganisms.
  • JPCC SEP JP-1, JPCC SEP JP-2 and JPCCY SEP-3 can be distinguished from other microorganisms by the form of microorganisms and selenium removal activity.
  • JPCC SEP JP-1, JPCC SEP JP -2 and JPCCY SEP-3 themselves can be distinguished from each other by various properties such as morphological properties and physiological properties described later.
  • the medium used for culturing JPCC SEP JP-1, JPCC SEP JP-2 and JPCCY SEP-3 should contain carbon source, nitrogen source, inorganic salt, trace elements, yeast extract, etc. necessary for the growth of these microorganisms. If it does not specifically limit.
  • the carbon source include alcohols such as methanol and ethanol, and organic acids such as acetic acid and lactic acid. Of these, lactic acid and ethanol are preferable, and lactic acid is particularly preferable.
  • nitrogen sources include nitrates and ammonium salts.
  • inorganic salts include potassium or sodium phosphate, sodium chloride, calcium chloride, and magnesium chloride.
  • trace elements include iron, cobalt, copper, zinc, boron, nickel, and molybdenum.
  • ME medium composition Lactic acid 0.6 g, potassium dihydrogen phosphate 0.5 g, ammonium chloride 0.2 g, cysteine 0.05 g, yeast extract 0.2 g, distilled water 1 L, mineral liquid 4 ml
  • the composition of the mineral liquid is as follows.
  • the conditions for the sterilization treatment of the medium may be appropriately selected according to the type of the medium.
  • the conditions for the sterilization treatment of the medium may be appropriately selected according to the type of the medium.
  • the culture conditions such as the pH of the medium, the concentration of the selenate compound in the medium, the culture temperature, and the culture time are not particularly limited as long as JPCC SEP JP-1, JPCC SEP JP-2, or JPCCY SEP-3 grows well.
  • the pH of the medium is preferably 5.8 to 7.2, and more preferably 6.0 to 6.5.
  • the concentration of the selenate compound in the medium is preferably 5 to 80 ppm, more preferably 20 to 60 ppm.
  • the culture temperature is preferably 15 to 38 ° C, more preferably 25 to 37 ° C, and particularly preferably 25 to 35 ° C.
  • the culture time may be appropriately selected according to the growth situation, but is preferably 20 hours or longer, and more preferably 30 hours or longer. Further, JPCC SEP JP-1, JPCC SEP JP-2 and JPCCY SEP-3 are anaerobic, and it is preferable to culture by replacing the gas phase with argon gas or the like.
  • the obtained JPCC SEP JP-1, JPCC SEP JP-2 or JPCCY SEP-3 is preferably further precultured and main cultured.
  • the medium and culture conditions used at this time are the same as described above.
  • the selenate compound is not always necessary.
  • the inoculation amount of these microorganisms in the medium is not particularly limited.
  • the inoculation may be performed so that the concentration in the medium is about 1.0 ⁇ 10 6 to 1.0 ⁇ 10 8 cells / ml. preferable.
  • Bacterial identification kit API20E (bioMerieux, France) was used for nitrate reduction, denitrification reaction, VP test, indole production, hydrogen sulfide production, urease activity, and other physiological properties. .
  • the homology search against the international nucleotide sequence database also showed a high homology with the base sequence of Aeromonas-derived 16S rDNA and a homology of 99.6% with the base sequence of 16S rDNA of Aeromonas punctata ATCC15468 strain.
  • JPCC SEP JP-1 was found to be Aeromonas punctata AY987728.1, Aeromonas sp. RK217215 AY987764.1, Aeromonas sp. Formed.
  • JPCC SEP JP-1 was presumed to be a new species of the genus Aeromonas.
  • JPCC SEP JP-2 was identified in the same manner as that of JPCC SEP JP-1, consigned to Techno Suruga Co., Ltd.
  • the partial base sequence of 16SrDNA of JPCC SEP JP-2 is It showed high homology to the base sequence of 16S rDNA derived from Klebsiella, and showed the highest homology to the base sequence of 16S rDNA of Klebsiella variicola F2R9 AJ783916.1 with a homology rate of 99.8%.
  • JPCC SEP JP-2 was found to be a phylogenetic branch formed by Klebsiella sp. 1 and Klebsiella sp. Strain zmvsy U31076.1 all form branch branches alone on the outside, and the known Klebsiella microorganisms have the ability to reduce selenate compounds.
  • JCPC SEP JP-2 was judged to be a new species of the genus Klebsiella.
  • Agar medium 1 medium having a pH of 6.5 to 7.0 in which glucose is used instead of lactic acid and 15 g of agar is further added to the liquid ME medium.
  • JPCCY SEP-3 was included in a cluster formed by sulfurospirillum and formed a phylogenetic branch with sulfurospirillum cavolei.
  • the bootstrap value indicating the reliability of the branch (branch) of JPCCY SEP-3 is 100%, and various system branches of the sulfurylpyram that are formed in the vicinity also exhibit a relatively high bootstrap value.
  • JPCCY SEP-3 was included in sulfurospirillum, and it was considered to be the closest relative to sulfurospirillum cavolei among known species. However, since the base sequences of both 16S rDNAs were not completely the same and it was presumed from the phylogenetic branch that both were less likely to be the same species, JPCCY SEP-3 It was judged as a new species.
  • JPCC SEP JP-1 of the present invention has an accession number NITE BP-345 dated March 23, 2007, and is a patent microbial deposit center of the National Institute for Product Evaluation and Technology (Kazusa Kamashi 2, Kisarazu City, Chiba Prefecture, Japan). -5-8 (zip code 292-0818).
  • JPCC SEP JP-2 of the present invention has an accession number NITE BP-346 dated March 23, 2007, and is the Patent Evaluation Microorganism Depositary of the National Institute for Product Evaluation and Technology (Kazusakami, Kisarazu City, Chiba Prefecture, Japan). 2-5-8 (zip code 292-0818)).
  • JPCCY SEP-3 of the present invention was received as NITE BP-582 on June 4, 2008, and the National Institute of Technology and Evaluation for Microorganisms (Kazusa Kamashika, Kisarazu City, Chiba Prefecture, Japan) 2-5-8 (zip code 292-0818)).
  • the first microorganism of the present invention is Aeromonas sp. JPCC SEP JP-1.
  • the present invention also relates to a microorganism belonging to the species to which Aeromonas sp. JPCC SEP JP-1 belongs, and the base sequence of 16S rDNA has 96% or more homology with the base sequence shown in SEQ ID NO.
  • a microorganism belonging to the genus Aeromonas having Such a microorganism is considered to be the same type of microorganism as the Aeromonas sp. JPCC SEP JP-1.
  • such a microorganism and Aeromonas sp are considered to be the same type of microorganism as the Aeromonas sp.
  • JPCC SEP JP-1 strain may be collectively referred to as the first microorganism group.
  • Aeromonas salmonicida (Aeromonas salmonicida) having the ability to reduce selenite ions to metal selenium is known.
  • strains of Aeromonas spp. That have the ability to reduce selenate compounds have not been known so far.
  • the first microorganism group of the present invention has a particularly high ability to reduce selenite ions to metal selenium.
  • the second microorganism of the present invention is Klebsiella sp. JPCC SEP JP-2.
  • the present invention also relates to a microorganism belonging to the species to which the Klebsiella sp. JPCC SEP JP-2 belongs, and the base sequence of 16S rDNA has 96% or more homology with the base sequence shown in SEQ ID NO: 2, Including microorganisms belonging to the genus Klebsiella.
  • Such a microorganism is considered to be the same type of microorganism as the Klebsiella sp. JPCC SEP JP-2 strain.
  • such a microorganism and the Klebsiella sp are the same type of microorganism as the Klebsiella sp.
  • JPCC SEP JP-2 strain may be collectively referred to as a second microorganism group.
  • No microorganisms belonging to the genus Klebsiella have any ability to reduce selenate compounds.
  • the second group of microorganisms of the present invention has the ability to reduce both selenate ions and selenite ions to metal selenium, and the ability to reduce selenate ions to metal selenium is usually the above first. It is higher than the microbial group.
  • the third microorganism of the present invention is the Sulfurospirillum sp. JPCCY SEP-3 strain.
  • the present invention also relates to a microorganism belonging to the species to which the sulfurospirillum genus JPCCY SEP-3 belongs, and a base sequence of 16S rDNA having 96% or more homology with the base sequence shown in SEQ ID NO: 3, It includes microorganisms belonging to the genus sulfurospirillum having reducing ability.
  • Such a microorganism is considered to be the same type of microorganism as the Sulfurospyriram sp. JPCCY SEP-3 strain.
  • Such a microorganism and the sulfurospirillum genus JPCCY SEP-3 may be collectively referred to as a third group of microorganisms.
  • Sulfurospirillum barnesii is known as having the ability to reduce selenate compounds.
  • microorganisms belonging to the genus sulfurospirillum having the ability to reduce selenate compounds have not been known so far.
  • the third microorganism group of the present invention has a particularly high ability to reduce selenate ions to metal selenium, and usually has a higher ability than the first and second microorganism groups.
  • the selenate compound reduced preparation of the present invention contains one or more microorganisms selected from the group consisting of the first microorganism group, the second microorganism group, and the third microorganism group as active ingredients. Among them, one containing one or more microorganisms selected from the first microorganism group, one or more microorganisms selected from the second microorganism group, and one or more microorganisms selected from the third microorganism group Those containing JPCC SEP JP-1, JPCC SEP JP-2 and JPCCY SEP-3 are particularly preferred.
  • selenium containing a plurality of types of microorganisms of different microbial groups is more preferable than those containing a single type of microorganism of the present invention or containing a plurality of types of microorganisms of the same microbial group.
  • the reduced preparation contains a plurality of microorganisms of different microorganism groups, the content ratio of these microorganisms (for example, microorganisms of the first microorganism group, microorganisms of the second microorganism group, and microorganisms of the third microorganism group) is , Can be appropriately selected according to the purpose.
  • a filtrate obtained by filtering the culture solution obtained by culturing the microorganism of the present invention may be used as it is, or the filtrate may be used after being dried. good. Or what refine
  • cultivation may be used.
  • various additives may be added to these selenate compound-reduced preparations as necessary, as long as the effects of the present invention are not hindered.
  • microorganisms of the present invention are used by immobilizing them on, for example, natural polymer gels such as agar and gellan gum; acrylamide; polymer resins such as ultraviolet curable resins; fibers such as carbon fibers, hollow film, and nonwoven fabrics; Also good. Immobilization may be either internal encapsulation or surface fixation.
  • one or more microorganisms selected from the group consisting of the first microorganism group, the second microorganism group, and the third microorganism group are cultured in the presence of the selenate compound. It has a process.
  • one or more microorganisms selected from the first microorganism group, one or more microorganisms selected from the second microorganism group, and one or more microorganisms selected from the third microorganism group may be co-cultured.
  • JPCC SEP JP-1, JPCC SEP JP-2 and JPCCY SEP-3 are co-cultured.
  • the selenate compound reduction efficiency is higher when a plurality of types of microorganisms of different microorganism groups are co-cultured than when the microorganisms of the present invention are cultured alone or when a plurality of types of microorganisms of the same microorganism group are cultured.
  • the content ratio of these microorganisms for example, microorganisms of the first microorganism group, microorganisms of the second microorganism group and microorganisms of the third microorganism group.
  • selenium can be used in comparison with the conventional case where microorganisms having the ability to reduce selenate compounds are cultivated alone or in combination.
  • the acid can be rapidly reduced to metal selenium.
  • microorganisms reported so far even when cultivating a microorganism belonging to the genus Bacillus which is considered to belong to the fastest reduction rate of the selenate compound (see JP-A-9-248595), It takes about 100 hours to completely reduce the selenate ion to metal selenium.
  • the amount of the microorganism of the present invention used for reducing the selenate compound varies depending on the environment in which the reduction is performed, but the selenate compound reduction activity is better when the density of the microorganism is increased within a range that does not interfere with the effect of the present invention. Since it becomes high, it is preferable.
  • the culture conditions of the microorganism of the present invention when reducing the selenate compound are not particularly limited, and for example, the culture conditions may be determined with reference to the culture conditions at the time of obtaining the microorganism described above.
  • the above ingredients necessary for the growth of the microorganism of the present invention are appropriately added to these objects Is used as a medium, and otherwise, the culture is preferably performed with reference to the above-described culture conditions at the time of microorganism acquisition.
  • the inoculation of the microorganism of the present invention may be performed by adding the selenate compound reducing preparation or by adding a preculture of the microorganism of the present invention.
  • the addition amount may be determined in consideration of the microbial content of the present invention in the reduced preparation or the preculture.
  • one or more microorganisms selected from the group consisting of the first microorganism group, the second microorganism group, and the third microorganism group are cultured in the presence of the selenate compound. It has a process. Inoculation and culture of the microorganism of the present invention may be performed under the same conditions as described in the method for reducing a selenate compound.
  • the selenate compound incorporated into the microorganism is reduced to metal selenium. Therefore, the selenate compound can be effectively removed from the removal target by removing it by a known method such as filtration.
  • the method for producing metal selenium according to the present invention comprises culturing one or more microorganisms selected from the group consisting of the first microorganism group, the second microorganism group, and the third microorganism group in the presence of a selenate compound. And a step of separating the obtained culture.
  • the step of culturing the microorganism in the presence of a selenate compound may be performed, for example, by the method described in the method for removing a selenate compound. And if the method with the high reduction
  • the separation method is not particularly limited, and may be appropriately selected according to, for example, the type of selenate compound removal target. Specifically, filtration may be performed using a filter, or solid-liquid separation may be performed using a centrifuge. Since the separated filtrate contains the microorganism of the present invention having metal selenium in the cells, the metal selenium can be recovered from the cells.
  • the recovery method may be any known method involving destruction of bacterial cells as long as metal selenium does not react. For example, recovery of metal selenium by thermal decomposition of bacterial cells can be mentioned. By applying heat to the cells composed of organic matter, the organic matter can be decomposed to CO 2 and metal selenium can be recovered from the resulting residue.
  • the microorganism of the present invention comprises a tellurium compound, which is a metal element belonging to the same group as selenium, specifically telluric acid (H 2 TeO 4 ), telluric acid (H 2 TeO 3 ) and salts thereof, and ions thereof (TeO).
  • telluric acid compounds such as 4 2 ⁇ and TeO 3 2 ⁇ ). That is, they can be incorporated and reduced to metal tellurium. Therefore, a telluric acid compound reducing preparation, a telluric acid compound reducing method, a telluric acid compound removing method, and a metallic tellurium producing method using the microorganism of the present invention are also included in the present invention.
  • the telluric acid compound refers to telluric acid, telluric acid and salts thereof, and ions thereof.
  • Example 1 (Acquisition of JPCC SEP JP-1, JPCC SEP JP-2, and JPCCY SEP-3)
  • the ME medium (pH 6.5 to 7.0) was steam sterilized at 121 ° C. for 10 minutes.
  • 20 ml of the steam-sterilized ME medium was added to a 30 ml vial that had been subjected to dry heat sterilization at 180 ° C. for 20 minutes, and then sterilized by filtration using a filter having a pore diameter of 0.22 ⁇ m.
  • the treated 10,000 ppm selenic acid was added to a concentration of 50 ppm.
  • Example 2 Evaluation of selenate ion removal activity when JPCC SEP JP-1, JPCC SEP JP-2 and JPCCY SEP-3 were co-cultured.
  • a sterilized ME medium containing 50 ppm of selenate was sealed in a vial with a capacity of 30 ml subjected to dry heat sterilization, and argon gas subjected to filter sterilization with a filter having a pore size of 0.22 ⁇ m was used.
  • the medium was degassed by aeration in the medium.
  • Example 2 the mixed cells of JPCC SEP JP-1, JPCC SEP JP-2 and JPCCY SEP-3 obtained in Example 1 were degassed using a syringe with a syringe needle that had been ⁇ -ray sterilized. 2% by volume (0.4 ml) was inoculated. Subsequently, the gas phase portion of the vial was replaced with argon gas that was sterilized by filtration with a filter having a pore size of 0.22 ⁇ m, and cultured at 28 ° C. for 48 hours under anaerobic conditions, thereby obtaining a preculture solution.
  • the glass container is covered with a top plate, and the gas phase part of the container is replaced with argon gas sterilized by filtration with a filter having a pore diameter of 0.22 ⁇ m for 5 minutes at a flow rate of 100 ml / min.
  • the main culture was performed at 28 ° C. under the conditions. Then, the concentration of hexavalent and tetravalent selenium in the medium was measured over time by atomic absorption, and the selenate removal activity was evaluated. The results are shown in FIG.
  • the vertical axis in FIG. 3 shows the total concentration of hexavalent and tetravalent selenium in the medium, and the horizontal axis shows the time of main culture.
  • FIG. 4 is a graph showing the hexavalent and tetravalent selenium-removing activities of these microorganisms with the axis scale aligned, and the vertical axis represents the total remaining hexavalent and tetravalent selenium in the medium.
  • the abscissa indicates the time of main culture. Since it is difficult to culture the mixed cells and the control strain under the same conditions, it is not possible to compare the hexavalent and tetravalent selenium-removing activities under the same conditions. Is sufficient to compare the best scavenging activity. As is clear from FIG. 4, it can be seen that the mixed cells comprising the microorganism of the present invention can completely remove hexavalent and tetravalent selenium in 1 ⁇ 4 or less of the time of the control strain.
  • Example 3 Evaluation of selenate ion removal activity when JPCC SEP JP-1, JPCC SEP JP-2 and JPCCY SEP-3 are co-cultured
  • 30 ppm selenate, JPCC SEP JP-1, JPCC SEP JP-2, and JPCCY SEP-3 were added to 1 ⁇ 10 7 cells / 30 ml in a vial with a capacity of 30 ml after dry heat sterilization.
  • 30 ml of sterilized ME medium containing a concentration of ml is sealed, and the pH of the medium is set to 7 types of 5.0, 5.5, 6.2, 7.0, 7.6, 8.2, 9.0
  • the culture was carried out at 25 ° C.
  • FIG. 5 represents the total removal rate of hexavalent and tetravalent selenium in the medium, and the horizontal axis represents the culture time.
  • the pH is 6.2, 7.0, and 7.6
  • the removal rate is almost 100%
  • the pH is 6.2 and 7.0
  • the removal rate is fast, especially when the pH is 6.2.
  • Example 4 Evaluation of selenate ion removal activity when JPCC SEP JP-1, JPCC SEP JP-2 and JPCCY SEP-3 were co-cultured
  • the selenate removal activity was evaluated in the same manner as in Example 3 except that the pH of the medium was 6.2 and the culture temperature was 7 types of 23, 28, 32, 37, 40, 45, and 60 ° C.
  • the results are shown in FIG. As shown in FIG. 6, the removal rate is almost 100% at 28, 32, and 37 ° C., and the removal rate is fast at 28 and 32 ° C., and most rapidly at 6 ° C. and 4 at 28 ° C. It was confirmed that the selenium of the valence can be removed.
  • Example 5 (Evaluation of selenate ion removal activity when JPCC SEP JP-1, JPCC SEP JP-2 and JPCCY SEP-3 are co-cultured)
  • Example 3 except that ethanol, methanol, ethanol + methanol, and acetic acid were added instead of lactic acid in the ME medium as the carbon source, except that the pH of the medium was 6.2 and the culture temperature was 28 ° C.
  • the selenate removal activity was evaluated in the same manner as described above. Evaluation was performed simultaneously when ME medium was used. The results are shown in FIG. As shown in FIG. 7, it was confirmed that the removal rate was significantly high when lactic acid and ethanol were used as the carbon source, and that hexavalent and tetravalent selenium could be removed at the highest rate especially when lactic acid was used. It was.
  • Example 6 Manufacture of metal selenium by JPCC SEP JP-1
  • 30 ml of the sterilized ME medium adjusted to pH 6.2 was added to a 30 ml volume vial that had been sterilized by dry heat in the same manner as in Example 1, and JPCC SEP JP-1 was inoculated and purified for 24 hours. Pre-culture was performed by culturing. Next, 30 ml of the ME medium is added to a sterilized 30 ml capacity vial so that the concentrations of selenate ion (hexavalent selenium) and selenite ion (tetravalent selenium) are both 50 ppm.
  • Example 7 Manufacture of metal selenium by JPCC SEP JP-2
  • JPCC SEP JP-2 was used instead of JPCC SEP JP-1.
  • Table 12 The results are shown in Table 12.
  • Example 8 (Production of metallic selenium by JPCCY SEP-3) The recovery rate of metal selenium was calculated in the same manner as in Example 6 except that JPCCY SEP-3 was used instead of JPCC SEP JP-1. The results are shown in Table 12.
  • Example 9 (Production of metal selenium by JPCC SEP JP-1 and JPCC SEP JP-2) Instead of inoculating 2% by volume of the preculture of JPCC SEP JP-1, except that 1% by volume of each of the preculture of JPCC SEP JP-1 and the preculture of JPCC SEP JP-2 was inoculated.
  • the recovery rate of metal selenium was calculated in the same manner as in Example 6. The results are shown in Table 12.
  • Example 10 (Production of metal selenium by JPCC SEP JP-1, JPCC SEP JP-2 and JPCCY SEP-3) Instead of inoculating 2% by volume of the preculture of JPCC SEP JP-1, a total of 2 precultures of JPCC SEP JP-1, preculture of JPCC SEP JP-2 and preculture of JPCCY SEP-3 The recovery rate of metal selenium was calculated in the same manner as in Example 6 except that inoculation was performed in a volume%. The results are shown in Table 12.
  • JPCC SEP JP-1, JPCC SEP JP-2 and JPCCY SEP-3 all have the ability to reduce selenate compounds, and when these three types of microorganisms are used in combination, reduction of hexavalent and tetravalent selenium. It was confirmed that the performance was extremely high.
  • the present invention can be used for removing selenate compounds such as in waste water, soil and sludge.

Abstract

本発明により、セレン酸化合物の還元能に優れる新種微生物、該微生物を有効成分とするセレン酸化合物還元製剤、並びに該微生物を用いるセレン酸化合物の還元方法および除去方法、金属セレンの製造方法が提供される。本発明の微生物は、アエロモナス（Ａｅｒｏｍｏｎａｓ）属ＪＰＣＣ　ＳＥＰ　ＪＰ－１株；クレブシエラ（Ｋｌｅｂｓｉｅｌａ）属ＪＰＣＣ　ＳＥＰ　ＪＰ－２株；スルフロスピリラム（Ｓｕｌｆｕｒｏｓｐｉｒｉｌｌｕｍ）属ＪＰＣＣＹ　ＳＥＰ－３株であり、かかる微生物をセレン酸化合物共存下において共培養する工程を有するセレン酸化合物の還元方法；かかる微生物をセレン酸化合物共存下において共培養する工程と、得られた培養物を分離する工程とを有する金属セレンの製造方法が本発明により提供される。

Description

新種微生物、セレン酸化合物還元製剤、セレン酸化合物の還元方法および除去方法、並びに金属セレンの製造方法
　本発明は、新種微生物、該微生物を有効成分とするセレン酸化合物還元製剤、並びに該微生物を用いるセレン酸化合物の還元方法および除去方法、金属セレンの製造方法に関する。
　本願は、２００８年６月１８日に、日本に出願された特願２００８－１５９２２４号に基づき優先権を主張し、その内容をここに援用する。
　セレンは、半導体材料や感光性材料として有用であることが知られているほか、ガラスの着色剤、脱色剤としても利用されるなど、産業界において利用価値の高い元素である。
　その一方で、微量のセレンは人体にとって必須元素であるが、必要量以上に摂取すると毒性を示すことが知られている。そこで、水質汚濁および土壌汚染を防止するために、環境基準の指定項目となっている。
　このような中、上記のような産業界においては、工場排水中にセレンが混入する可能性があり、また、セレンは石炭中にも微量含まれていることから、火力発電所等の排水にも混入する可能性があるため、このような排水中のセレンの除去は重要な課題となっている。
　工場排水中などで問題となるセレンは、セレン（６価）の化合物であるセレン酸（Ｈ２ＳｅＯ４）またはその塩、セレン（４価）の化合物である亜セレン酸（Ｈ２ＳｅＯ４）またはその塩である。通常これらセレン酸化合物は、工場排水などの水溶液中では、セレン酸イオン（ＳｅＯ４ ２－）の形態で、ごく一部は亜セレン酸（ＳｅＯ３ ２－）イオンの形態で存在していると考えられる。これらセレン酸化合物は、還元されると０価の金属セレンとなる。
　ところで、自然界の微生物には、これらセレンオキシアニオンを体内に取り込んで還元処理するものがあることが知られている。具体的には、特定の微生物をセレンオキシアニオンと栄養源の存在下で生育させると、微生物はこれらアニオンを体内に取り込み、生育と共にセレン酸イオンを亜セレン酸イオンに還元し、さらに亜セレン酸イオンを粒子状の金属セレンにまで還元するのである（例えば、特許文献１および非特許文献１参照）。この現象はバイオミネラリゼーションとして知られており、この現象を利用すれば、溶液中からセレンオキシアニオンを粒子化しながら除去することができる。
　また、微生物の細胞表面に存在する多糖類や脂質、液胞などの細胞外高分子には、セレンオキシアニオンを吸着し得るものがあり、この現象はバイオアドソープションとして知られている。この現象を利用することでも、溶液中からセレンオキシアニオンを除去することができると言われている。
　このように微生物を利用して、セレン酸化合物を排水中から除去する方法は、環境負荷も少なく優れた方法であると言える。
特開平９－２４８５９５号公報
Ａｐｐｌｉｅｄ　ａｎｄ　Ｅｎｖｉｒｏｎｍｅｎｔａｌ　Ｍｉｃｒｏｂｉｏｌｏｇｙ，Ｖｏｌ．６３，Ｎｏ．８，ｐ３０７９－３０８４．
　しかし、特許文献１および非特許文献１をはじめとする、従来のバイオミネラリゼーションによるセレンオキシアニオンの除去においては、さらに高い除去能力を有する微生物が求められているのが現状である。これは、亜セレン酸イオンを金属セレンに還元する速度が遅いことが、主な理由の一つであると考えられている。例えば、特許文献１に記載のバチルス属の微生物は、これまでに報告されている微生物の中でも、セレンオキシアニオンの除去速度が最も速いものに属すると考えられているが、この微生物を用いた場合でも、セレン酸イオン１mＭを金属セレンにまで完全に還元するのに１００時間程度を要する。
　また、バイオアドソープションを利用したセレンオキシアニオンの除去については、実用的な方法がまだ確立されていないのが現状である。
　本発明は上記事情に鑑みて為されたものであり、セレン酸化合物の還元能に優れる新種微生物、該微生物を有効成分とするセレン酸化合物還元製剤、並びに該微生物を用いるセレン酸化合物の還元方法および除去方法、金属セレンの製造方法を提供することを課題とする。
　上記課題を解決するため、鋭意検討した結果、本発明者らは以下の（１）～（１６）の発明を完成するに至った。
　（１）アエロモナス（Ａｅｒｏｍｏｎａｓ）属ＪＰＣＣ　ＳＥＰ　ＪＰ－１株が属する種に属する微生物、クレブシエラ（Ｋｌｅｂｓｉｅｌａ）属ＪＰＣＣ　ＳＥＰ　ＪＰ－２株が属する種に属する微生物およびスルフロスピリラム（Ｓｕｌｆｕｒｏｓｐｉｒｉｌｌｕｍ）属ＪＰＣＣＹ　ＳＥＰ－３株が属する種に属する微生物を、セレン酸化合物共存下において共培養する工程を有するセレン酸化合物の還元方法。
　（２）アエロモナス（Ａｅｒｏｍｏｎａｓ）属ＪＰＣＣ　ＳＥＰ　ＪＰ－１株が属する種に属する微生物、クレブシエラ（Ｋｌｅｂｓｉｅｌａ）属ＪＰＣＣ　ＳＥＰ　ＪＰ－２株が属する種に属する微生物およびスルフロスピリラム（Ｓｕｌｆｕｒｏｓｐｉｒｉｌｌｕｍ）属ＪＰＣＣＹ　ＳＥＰ－３株が属する種に属する微生物を、セレン酸化合物共存下において共培養する工程を有するセレン酸化合物の除去方法。
　（３）アエロモナス（Ａｅｒｏｍｏｎａｓ）属ＪＰＣＣ　ＳＥＰ　ＪＰ－１株が属する種に属する微生物、クレブシエラ（Ｋｌｅｂｓｉｅｌａ）属ＪＰＣＣ　ＳＥＰ　ＪＰ－２株が属する種に属する微生物およびスルフロスピリラム（Ｓｕｌｆｕｒｏｓｐｉｒｉｌｌｕｍ）属ＪＰＣＣＹ　ＳＥＰ－３株が属する種に属する微生物を、セレン酸化合物共存下において共培養する工程と、得られた培養物を分離する工程とを有する金属セレンの製造方法。
　（４）アエロモナス（Ａｅｒｏｍｏｎａｓ）属ＪＰＣＣ　ＳＥＰ　ＪＰ－１株が属する種に属する微生物。
　（５）１６ＳｒＤＮＡの塩基配列が配列番号1に示す塩基配列と９６％以上の相同性を有し、セレン酸化合物還元能を有するアエロモナス（Ａｅｒｏｍｏｎａｓ）属に属する微生物。
　（６）アエロモナス（Ａｅｒｏｍｏｎａｓ）属ＪＰＣＣ　ＳＥＰ　ＪＰ－１株。
　（７）クレブシエラ（Ｋｌｅｂｓｉｅｌａ）属ＪＰＣＣ　ＳＥＰ　ＪＰ－２株が属する種に属する微生物。
　（８）１６ＳｒＤＮＡの塩基配列が配列番号２に示す塩基配列と９６％以上の相同性を有し、セレン酸化合物還元能を有するクレブシエラ（Ｋｌｅｂｓｉｅｌａ）属に属する微生物。
　（９）クレブシエラ（Ｋｌｅｂｓｉｅｌａ）属ＪＰＣＣ　ＳＥＰ　ＪＰ－２株。
　（１０）スルフロスピリラム（Ｓｕｌｆｕｒｏｓｐｉｒｉｌｌｕｍ）属ＪＰＣＣＹ　ＳＥＰ－３株が属する種に属する微生物。
　（１１）１６ＳｒＤＮＡの塩基配列が配列番号３に示す塩基配列と９６％以上の相同性を有し、セレン酸化合物還元能を有するスルフロスピリラム（Ｓｕｌｆｕｒｏｓｐｉｒｉｌｌｕｍ）属に属する微生物。
　（１２）スルフロスピリラム（Ｓｕｌｆｕｒｏｓｐｉｒｉｌｌｕｍ）属ＪＰＣＣＹ　ＳＥＰ－３株。
　（１３）（４）～（１２）のいずれか一項に記載の微生物を有効成分とするセレン酸化合物還元製剤。
　（１４）（４）～（１２）のいずれか一項に記載の微生物をセレン酸化合物共存下において培養する工程を有するセレン酸化合物の還元方法。
　（１５）（４）～（１２）のいずれか一項に記載の微生物をセレン酸化合物共存下において培養する工程を有するセレン酸化合物の除去方法。
　（１６）（４）～（１２）のいずれか一項に記載の微生物をセレン酸化合物共存下において培養する工程と、得られた培養物を分離する工程とを有する金属セレンの製造方法。
　本発明によれば、排水中などのセレン酸化合物を迅速に除去できる。
ＪＰＣＣ　ＳＥＰ　ＪＰ－１およびＪＰＣＣ　ＳＥＰ　ＪＰ－２の１６ＳｒＤＮＡの分子系統解析の結果を示す分子系統樹である。 ＪＰＣＣＹ　ＳＥＰ－３の１６ＳｒＤＮＡの分子系統解析の結果を示す分子系統樹である。 実施例２における６価および４価のセレン除去活性を示すグラフである。 ＪＰＣＣ　ＳＥＰ　ＪＰ－１およびＪＰＣＣ　ＳＥＰ　ＪＰ－２の混合菌体、並びにバチルス属の微生物（対照株）の、６価および４価のセレン除去活性を併載したグラフである。 実施例３における６価および４価のセレン除去活性を示すグラフである。 実施例４における６価および４価のセレン除去活性を示すグラフである。 実施例５における６価および４価のセレン除去活性を示すグラフである。
　以下、本発明について詳しく説明する。以下、「アエロモナス（Ａｅｒｏｍｏｎａｓ）属ＪＰＣＣ　ＳＥＰ　ＪＰ－１株」のことを「アエロモナス属ＪＰＣＣ　ＳＥＰ　ＪＰ－１株」または「ＪＰＣＣ　ＳＥＰ　ＪＰ－１」と略記することがある。また、「クレブシエラ（Ｋｌｅｂｓｉｅｌａ）属ＪＰＣＣ　ＳＥＰ　ＪＰ－２株」のことを「クレブシエラ属ＪＰＣＣ　ＳＥＰ　ＪＰ－２株」または「ＪＰＣＣ　ＳＥＰ　ＪＰ－２」と略記することがある。また、「スルフロスピリラム（Ｓｕｌｆｕｒｏｓｐｉｒｉｌｌｕｍ）属ＪＰＣＣＹ　ＳＥＰ－３株」のことを「スルフロスピリラム属ＪＰＣＣＹ　ＳＥＰ－３株」または「ＪＰＣＣＹ　ＳＥＰ－３」と略記することがある。
　本発明においてセレン酸化合物とは、セレン酸、亜セレン酸およびこれらの塩並びにこれらのイオンを指す。
＜ＪＰＣＣ　ＳＥＰ　ＪＰ－１、ＪＰＣＣ　ＳＥＰ　ＪＰ－２およびＪＰＣＣＹ　ＳＥＰ－３の獲得＞
　本発明のＪＰＣＣ　ＳＥＰ　ＪＰ－１、ＪＰＣＣ　ＳＥＰ　ＪＰ－２およびＪＰＣＣＹ　ＳＥＰ－３は、奄美大島のマングローブ林の土壌中に見られ、この土壌中より採取したサンプルを培養および純化することで得られる。
　サンプルの培養および純化は、例えば、以下のようにして行われる。滅菌処理済みの好ましくは液体培地を用いてセレン酸化合物の存在下にサンプルの培養を行い、ＪＰＣＣ　ＳＥＰ　ＪＰ－１、ＪＰＣＣ　ＳＥＰ　ＪＰ－２またはＪＰＣＣＹ　ＳＥＰ－３の生育が確認された培地を選別して、さらに培養を繰り返すことで、これら微生物を獲得できる。ＪＰＣＣ　ＳＥＰ　ＪＰ－１、ＪＰＣＣ　ＳＥＰ　ＪＰ－２およびＪＰＣＣＹ　ＳＥＰ－３の生育の有無は、培地の赤色着色の有無で確認できる。この赤色は、これら微生物の体内中の金属セレンに由来するものである。また、ＪＰＣＣ　ＳＥＰ　ＪＰ－１、ＪＰＣＣ　ＳＥＰ　ＪＰ－２およびＪＰＣＣＹ　ＳＥＰ－３は、微生物の形態やセレン除去活性によっても、他の微生物との区別が可能であり、ＪＰＣＣ　ＳＥＰ　ＪＰ－１、ＪＰＣＣ　ＳＥＰ　ＪＰ－２およびＪＰＣＣＹ　ＳＥＰ－３自体も、後記する形態的性質、生理学的性質などの諸性質により、互いに区別が可能である。
　ＪＰＣＣ　ＳＥＰ　ＪＰ－１、ＪＰＣＣ　ＳＥＰ　ＪＰ－２およびＪＰＣＣＹ　ＳＥＰ－３の培養に用いる培地は、これら微生物の生育に必要な炭素源、窒素源、無機塩、微量元素、酵母エキス等を含むものであれば特に限定されない。
　炭素源としては、メタノールやエタノール等のアルコール類、酢酸や乳酸などの有機酸類が例示できる。なかでも乳酸およびエタノールが好ましく、乳酸が特に好ましい。
　窒素源としては、硝酸塩、アンモニウム塩が例示できる。
　無機塩としては、リン酸のカリウム塩またはナトリウム塩、塩化ナトリウム、塩化カルシウム、塩化マグネシウムが例示できる。
　微量元素としては、鉄、コバルト、銅、亜鉛、ホウ素、ニッケル、モリブデンが例示できる。
　なかでも、好ましい培地としては、以下に示す組成の液体ＭＥ培地を例示できる。
　ＭＥ培地組成；乳酸０．６ｇ、リン酸二水素カリウム０．５ｇ、塩化アンモニウム０．２ｇ、システイン０．０５ｇ、酵母エキス０．２ｇ、蒸留水１Ｌ、ミネラル液４ｍｌ
　なお、ミネラル液の組成は以下の通りである。
　ミネラル液組成；ニトリロ三酢酸１．８ｇ、塩化マグネシウム六水和物２．５ｇ、塩化マンガン（ＩＩ）四水和物０．６ｇ、塩化ナトリウム１．０ｇ、塩化鉄（ＩＩ）四水和物０．１３６ｇ、塩化コバルト（ＩＩ）六水和物０．１ｇ、塩化カルシウム二水和物０．１３ｇ、硫酸銅（ＩＩ）五水和物０．０１４６ｇ、塩化亜鉛０．０１ｇ、ホウ酸（Ｈ３ＢＯ３）０．０１ｇ、塩化ニッケル（ＩＩ）六水和物０．０１ｇ、モリブテン（ＶＩ）酸二ナトリウム二水和物０．０１ｇ、塩化銅（ＩＩ）二水和物０．０１ｇ、蒸留水１Ｌ
　また、本発明の効果を損なわない範囲において、培地にはここに挙げたもの以外の成分を含有させても良い。
　培地の滅菌処理の条件は、培地の種類に応じて適宜選択すれば良く、例えば、前記ＭＥ培地の場合には、１００～１３０℃で５～１５分間の蒸気滅菌が挙げられる。また、滅菌済みの培地に添加するものについては、添加前にろ過滅菌処理等を行って滅菌しておく必要がある。
　培地のｐＨ、培地中のセレン酸化合物の濃度、培養温度、培養時間等の培養条件は、ＪＰＣＣ　ＳＥＰ　ＪＰ－１、ＪＰＣＣ　ＳＥＰ　ＪＰ－２またはＪＰＣＣＹ　ＳＥＰ－３が良好に生育する限り特に限定されない。
　例えば、前記ＭＥ培地を用いる場合には、培地のｐＨは５．８～７．２であることが好ましく、６．０～６．５であることがより好ましい。
　培地中のセレン酸化合物の濃度は５～８０ｐｐｍであることが好ましく、２０～６０ｐｐｍであることがより好ましい。
　培養温度は１５～３８℃であることが好ましく、２５～３７℃であることがより好ましく、２５～３５℃であることが特に好ましい。
　培養時間は生育状況に応じて適宜選択すれば良いが、２０時間以上であることが好ましく、３０時間以上であることがより好ましい。
　また、ＪＰＣＣ　ＳＥＰ　ＪＰ－１、ＪＰＣＣ　ＳＥＰ　ＪＰ－２およびＪＰＣＣＹ　ＳＥＰ－３は嫌気性であり、気相部分をアルゴンガスなどで置換して培養することが好ましい。
　獲得されたＪＰＣＣ　ＳＥＰ　ＪＰ－１、ＪＰＣＣ　ＳＥＰ　ＪＰ－２またはＪＰＣＣＹ　ＳＥＰ－３は、さらに前培養および本培養を行うことが好ましい。この時用いる培地および培養条件は、前記と同様である。ただし、セレン酸化合物は必ずしも必要ではない。また、培地へのこれら微生物の植菌量は特に限定されないが、例えば、培地中における濃度が１．０×１０６～１．０×１０８ｃｅｌｌｓ／ｍｌ程度となるように植菌することが好ましい。
＜ＪＰＣＣ　ＳＥＰ　ＪＰ－１の同定＞
　ＪＰＣＣ　ＳＥＰ　ＪＰ－１の同定は、株式会社テクノスルガに委託して実施した。そして取得した検体を用いて、「形態的性質」、「培養的性質」、「生理学的性質」、「糖類からの酸生成／ガス産生」および「その他の生理学的性質」を確認し、「塩基配列」の同定および系統解析を行った。「形態的性質」を表１に、「培養的性質」を表２に、「生理学的性質」を表３に、「糖類からの酸生成／ガス産生」を表４に、「その他の生理学的性質」を表５にそれぞれ示す。
　なお、表１～５において、（１）ゼラチン液化、グラム染色性については、文献「ＢＡＲＲＯＷ，（Ｇ．Ｉ．）　ａｎｄ　ＦＥＬＴＨＡＭ，（Ｒ．Ｋ．Ａ）：Ｃｏｗａｎ　ａｎｄ　Ｓｔｅｅｌ’ｓ　Ｍａｎｕａｌ　ｆｏｒ　ｔｈｅ　Ｉｄｅｎｔｉｆｉｃａｔｉｏｎ　ｏｆ　Ｍｅｄｉｃａｌ　Ｂａｃｔｅｒｉａ．３ｒｄ　ｅｄｉｔｉｏｎ．１９９３，Ｃａｍｂｒｉｄｇｅ　Ｕｎｉｖｅｒｓｉｔｙ　Ｐｒｅｓｓ．」を参考にした。
　また、（２）リトマス・ミルクでの培養条件、ＭＲテスト、デンプンの加水分解、クエン酸の利用、無機窒素源の利用、カタラーゼ、オキシダーゼ、Ｏ－Ｆテスト（酸化／発酵）、糖類からの酸生成／ガス産生については、文献「坂崎利一、吉崎悦郎、三木寛二：新細菌培地学講座・下，第二版．１９９８，近大出版，東京」を参考にした。
　また、（３）硝酸塩の還元、脱窒反応、ＶＰテスト、インドール産生、硫化水素の生成、ウレアーゼ活性、その他の生理学的性質については、「細菌同定キットＡＰＩ２０Ｅ，（ｂｉｏＭｅｒｉｅｕｘ，Ｆｒａｎｃｅ）」を使用した。
Figure JPOXMLDOC01-appb-T000001
Figure JPOXMLDOC01-appb-T000002
Figure JPOXMLDOC01-appb-T000003
Figure JPOXMLDOC01-appb-T000004
Figure JPOXMLDOC01-appb-T000005
（塩基配列）
　ＪＰＣＣ　ＳＥＰ　ＪＰ－１の１６ＳｒＤＮＡを、公知の方法により同定した結果、配列番号１に示す塩基配列であることが判った。
（系統解析）
　培地としてＮｕｔｒｉｅｎｔ　ａｇａｒ（Ｏｘｏｉｄ社製）を用い、３０℃で２４時間好気培養したＪＰＣＣ　ＳＥＰ　ＪＰ－１を用い、ＤＮＡ抽出をＩｎｓｔａＧｅｎｅ　Ｍａｔｒｉｘ（ＢＩＯ　ＲＡＤ社）のプロトコール、ポリメラーゼ連鎖反応（ＰＣＲ）をＭｉｃｒｏＳｅｑ　５００　１６ｓ　ｒＤＮＡ　Ｂａｃｔｅｒｉａｌ　Ｉｄｅｎｔｉｆｉｃａｔｉｏｎ　ＰＣＲ　Ｋｉｔ（Ａｐｐｌｉｅｄ　Ｂｉｏｓｙｓｔｅｍｓ社）のプロトコール、サイクルシークエンスをＭｉｃｒｏＳｅｑ　５００　１６ｓ　ｒＤＮＡ　Ｂａｃｔｅｒｉａｌ　Ｉｄｅｎｔｉｆｉｃａｔｉｏｎ　Ｓｅｑｕｅｎｃｉｎｇ　Ｋｉｔ（Ａｐｐｌｉｅｄ　Ｂｉｏｓｙｓｔｅｍｓ社）のプロトコール、シークエンスをＡＢＩ　ＰＲＩＳＭ　３１００　Ｇｅｎｅｔｉｃ　Ａｎａｌｙｚｅｒ　Ｓｙｓｔｅｍ（Ａｐｐｌｉｅｄ　Ｂｉｏｓｙｓｔｅｍｓ社）のプロトコールに従ってそれぞれ行った。
　解析ソフトウェアとしてＡｕｔｏ　Ａｓｓｅｍｂｌｅｒ（Ａｐｐｌｉｅｄ　Ｂｉｏｓｙｓｔｅｍｓ社）、アポロン（株式会社テクノスルガ）を用い、得られた１６ＳｒＤＮＡの５’末端から約５００番目までの塩基配列を、アポロンＤＢ細菌基準株データベース（株式会社テクノスルガ）、国際塩基配列データベース（ＧｅｎＢａｎｋ／ＤＤＢＪ／ＥＭＢＬ）から取得した塩基配列情報と照合して、分子系統解析を行った。その結果得られた分子系統樹を図１に示す。なお、図１中、左下の線はスケールバーを示し、株名の末尾の「Ｔ」はその種の基準株（Ｔｙｐｅ　ｓｔｒａｉｎ）であることを示す。
　ＢＬＡＳＴ（ＡＬＴＳＣＨＵＬ，（Ｓ．Ｆ．），ＭＡＤＤＥＮ，（Ｔ．Ｆ．），ＳＣＨＡＦＦＥＲ，（Ａ．Ａ．），ＺＨＡＮＧ，（Ｊ．），ＺＨＡＮＧ，（Ｚ．），ＭＩＬＬＥＲ，（Ｗ．），ａｎｄ　ＬＩＰＭＡＮ，（Ｄ．Ｊ．），Ｎｕｃｌｅｉｃ　Ａｃｉｄｓ　Ｒｅｓｅａｒｃｈ，１９９７，２５：３３８９－３４０２．参照）を用いた細菌基準株データベースに対する相同性検索の結果、ＪＰＣＣ　ＳＥＰ　ＪＰ－１の１６ＳｒＤＮＡの上記部分塩基配列は、アエロモナス由来の１６ＳｒＤＮＡの塩基配列に対し高い相同性を示し、相同率９９．６％でアエロモナス　パンクタタ（Ａｅｒｏｍｏｎａｓ　ｐｕｎｃｔａｔａ）ＡＴＣＣ１５４６８株の１６ＳｒＤＮＡの塩基配列に対し最も高い相同性を示した。国際塩基配列データベースに対する相同性検索においても、アエロモナス由来の１６ＳｒＤＮＡの塩基配列に対し高い相同性を示し、アエロモナス　パンクタタＡＴＣＣ１５４６８株の１６ＳｒＤＮＡの塩基配列に対し相同率９９．６％の相同性を示した。
　そして分子系統解析の結果、ＪＰＣＣ　ＳＥＰ　ＪＰ－１は、アエロモナス　パンクタタ（Ａｅｒｏｍｏｎａｓ　ｐｕｎｃｔａｔａ）ＡＹ９８７７２８．１、アエロモナス　エスピー（Ａｅｒｏｍｏｎａｓ　ｓｐ．）ＲＫ２１７２１５　ＡＹ９８７７６４．１、アエロモナス　エスピー（Ａｅｒｏｍｏｎａｓ　ｓｐ．）Ｍ１０　ＤＱ２００８６５．１と系統枝を形成した。しかし後記するように、これら微生物とは、セレン酸化合物還元能を有するなど生理学的性質に明らかな相違が認められることから、ＪＰＣＣ　ＳＥＰ　ＪＰ－１は、アエロモナス属の新種と推測された。
＜ＪＰＣＣ　ＳＥＰ　ＪＰ－２の同定＞
　ＪＰＣＣ　ＳＥＰ　ＪＰ－２の同定は、前記ＪＰＣＣ　ＳＥＰ　ＪＰ－１と同様に、株式会社テクノスルガに委託して、同様の方法で実施した。ＪＰＣＣ　ＳＥＰ　ＪＰ－２の「形態的性質」を表６に、「培養的性質」を表７に、「生理学的性質」を表８に、「糖類からの酸生成／ガス産生」を表９に、「その他の生理学的性質」を表１０にそれぞれ示す。
Figure JPOXMLDOC01-appb-T000006
Figure JPOXMLDOC01-appb-T000007
Figure JPOXMLDOC01-appb-T000008
Figure JPOXMLDOC01-appb-T000009
Figure JPOXMLDOC01-appb-T000010
（塩基配列）
　ＪＰＣＣ　ＳＥＰ　ＪＰ－２の１６ＳｒＤＮＡを、公知の方法により同定した結果、配列番号２に示す塩基配列であることが判った。
（系統解析）
　前記ＪＰＣＣ　ＳＥＰ　ＪＰ－１の場合と同様に、ＪＰＣＣ　ＳＥＰ　ＪＰ－２の分子系統解析を行った。その結果得られた分子系統樹を図１に示す。
　ＢＬＡＳＴ（ＡＬＴＳＣＨＵＬ，（Ｓ．Ｆ．），ＭＡＤＤＥＮ，（Ｔ．Ｆ．），ＳＣＨＡＦＦＥＲ，（Ａ．Ａ．），ＺＨＡＮＧ，（Ｊ．），ＺＨＡＮＧ，（Ｚ．），ＭＩＬＬＥＲ，（Ｗ．），ａｎｄ　ＬＩＰＭＡＮ，（Ｄ．Ｊ．），Ｎｕｃｌｅｉｃ　Ａｃｉｄｓ　Ｒｅｓｅａｒｃｈ，１９９７，２５：３３８９－３４０２．参照）を用いた微生物基準株データベースに対する相同性検索の結果、ＪＰＣＣ　ＳＥＰ　ＪＰ－２の１６ＳｒＤＮＡの部分塩基配列は、クレブシエラ由来の１６ＳｒＤＮＡの塩基配列に対し高い相同性を示し、相同率９９．８％でクレブシエラ　ヴァリイコラ（Ｋｌｅｂｓｉｅｌａ　ｖａｒｉｉｃｏｌａ）Ｆ２Ｒ９　ＡＪ７８３９１６．１の１６ＳｒＤＮＡの塩基配列に対し最も高い相同性を示した。また、クレブシエラ　プネウモニアエ（Ｋｌｅｂｓｉｅｌａ　ｐｎｅｕｍｏｎｉａｅ）由来の１６ＳｒＤＮＡの塩基配列に対しても、相同率９９．０％の相同性を示した。国際塩基配列データベースに対する相同性検索においても、クレブシエラ　プネウモニアエ由来の１６ＳｒＤＮＡの塩基配列に対し高い相同性を示した。
　そして分子系統解析の結果、ＪＰＣＣ　ＳＥＰ　ＪＰ－２は、クレブシエラ　ヴァリイコラＦ２Ｒ９　ＡＪ７８３９１６．１とクレブシエラ　エスピー（Ｋｌｅｂｓｉｅｌａ　ｓｐ．）Ｐ２　ＡＢ１１４６３４．１が形成する系統枝、およびクレブシエラ　エスピー（Ｋｌｅｂｓｉｅｌａ　ｓｐ．）ｓｔｒａｉｎ　ｚｍｍｏ　Ｕ３１０７５．１とクレブシエラ　エスピー（Ｋｌｅｂｓｉｅｌａ　ｓｐ．）ｓｔｒａｉｎ　ｚｍｖｓｙ　Ｕ３１０７６．１が形成する系統枝のいずれも外側に単独で系統枝を形成し、公知のクレブシエラ属の微生物とは、セレン酸化合物還元能を有するなど生理学的性質に明らかな相違が認められることから、ＪＰＣＣ　ＳＥＰ　ＪＰ－２は、クレブシエラ属の新種と判断された。
＜ＪＰＣＣＹ　ＳＥＰ－３の同定＞
　ＪＰＣＣＹ　ＳＥＰ－３の同定は、株式会社テクノスルガに委託して実施した。そして取得した検体を用いて、「形態的性質」、「培養的性質」、「生理学的性質」および「糖類からの酸生成／ガス産生」を確認した。その結果を表１１に示す。そして、「塩基配列」の同定および系統解析を行った。
　なお、表１１において、（４）カタラーゼ反応、オキシダーゼ反応、グルコースからの酸生成／ガス産生については、文献「ＢＡＲＲＯＷ，（Ｇ．Ｉ．）　ａｎｄ　ＦＥＬＴＨＡＭ，（Ｒ．Ｋ．Ａ）：Ｃｏｗａｎ　ａｎｄ　Ｓｔｅｅｌ’ｓ　Ｍａｎｕａｌ　ｆｏｒ　ｔｈｅ　Ｉｄｅｎｔｉｆｉｃａｔｉｏｎ　ｏｆ　Ｍｅｄｉｃａｌ　Ｂａｃｔｅｒｉａ．３ｒｄ　ｅｄｉｔｉｏｎ．１９９３，Ｃａｍｂｒｉｄｇｅ　Ｕｎｉｖｅｒｓｉｔｙ　Ｐｒｅｓｓ．」を参考にした。
　また、（５）グラム染色には、フェイバーＧ「ニッスイ」（日水製薬株式会社）を使用した。
　また、形態観察には、光学顕微鏡ＢＸ５０Ｆ４（オリンパス株式会社）を使用した。
Figure JPOXMLDOC01-appb-T000011
　寒天培地１；前記液体ＭＥ培地において、乳酸に代わりグルコースを使用し、さらに寒天１５ｇを添加したｐＨ６．５～７．０の培地。
（塩基配列）
　ＪＰＣＣＹ　ＳＥＰ－３の１６ＳｒＤＮＡを、公知の方法により同定した結果、配列番号３に示す塩基配列であることが判った。
（系統解析）
　解析ソフトウェアとしてアポロン２．０（株式会社テクノスルガ・ラボ）を用い、得られた１６ＳｒＤＮＡ塩基配列を、アポロンＤＢ－ＢＡ３．０（株式会社テクノスルガ・ラボ）、国際塩基配列データベース（ＧｅｎＢａｎｋ／ＤＤＢＪ／ＥＭＢＬ）から取得した塩基配列情報と照合して、分子系統解析を行った。その結果得られた分子系統樹を図２に示す。なお、図２中、左下の線はスケールバーを示し、株名の末尾の「Ｔ」はその種の基準株（Ｔｙｐｅ　ｓｔｒａｉｎ）であることを示し、枝の分枝付近の数字はブートストラップ値を示す。
　ＢＬＡＳＴ（ＡＬＴＳＣＨＵＬ，（Ｓ．Ｆ．），ＭＡＤＤＥＮ，（Ｔ．Ｆ．），ＳＣＨＡＦＦＥＲ，（Ａ．Ａ．），ＺＨＡＮＧ，（Ｊ．），ＺＨＡＮＧ，（Ｚ．），ＭＩＬＬＥＲ，（Ｗ．），ａｎｄ　ＬＩＰＭＡＮ，（Ｄ．Ｊ．），Ｎｕｃｌｅｉｃ　Ａｃｉｄｓ　Ｒｅｓｅａｒｃｈ，１９９７，２５：３３８９－３４０２．参照）を用いたアポロンＤＢ－ＢＡ３．０に対する相同性検索の結果、ＪＰＣＣＹ　ＳＥＰ－３の１６ＳｒＤＮＡの塩基配列は、スルフロスピリラム由来の１６ＳｒＤＮＡの塩基配列に対し高い相同性を示し、相同率９６．４％でスルフロスピリラム　デレイイアナム　スピリラム（Ｓｕｌｆｕｒｏｓｐｉｒｉｌｌｕｍ　ｄｅｌｅｙｉａｎｕｍ　Ｓｐｉｒｉｌｌｕｍ）５１７５株（ＶＡＬＩＤＡＴＩＯＮ　ＬＩＳＴ　Ｎｏ４４．Ｉｎｔ．ｊ．Ｓｙｓｔ．Ｂａｃｔｅｒｉｏｌ．，１９９３，４３，１８８－１８９．参照）の１６ＳｒＤＮＡの塩基配列に対し最も高い相同性を示した。また、国際塩基配列データベースに対する相同性検索においても、スルフロスピリラム由来の１６ＳｒＤＮＡの塩基配列に対し高い相同性を示し、相同率９８．６％でスルフロスピリラム　カヴォレイ（Ｓｕｌｆｕｒｏｓｐｉｒｉｌｌｕｍ　ｃａｖｏｌｅｉ）Ｐｈｅ９１株（ＫＯＤＡＭＡ（Ｙ．），ＨＡ（Ｌ．Ｔ．）　ａｎｄ　ＷＡＴＡＮＡＢＥ（Ｋ．），　Ｉｎｔ．ｊ．Ｓｙｓｔ．Ｅｖｏｌ．Ｍｉｃｒｏｂｉｏｌ．，２００７，５７，８２７－８３１．参照）の１６ＳｒＤＮＡの塩基配列に対し最も高い相同性を示した。これらの結果から、ＪＰＣＣＹ　ＳＥＰ－３は、スルフロスピリラムに帰属する可能性が高いと考えられた。そこで、スルフロスピリラムに帰属する全７種の基準株を中心に、スルフロスピリラムに比較的近縁であるカンピロバクター（Ｃａｍｐｙｌｏｂａｃｔｅｒ）やアクロバクテリウム（Ａｃｒｏｂａｃｔｅｒｉｕｍ）等の各属より基準株と、基準株由来の１６ＳｒＤＮＡを取得し、分枝系統樹を作成した。
　そして分子系統解析の結果、ＪＰＣＣＹ　ＳＥＰ－３は、スルフロスピリラムが形成するクラスター内に含まれ、スルフロスピリラム　カヴォレイと系統枝を形成した。ＪＰＣＣＹ　ＳＥＰ－３の系統枝（分岐）の信頼性を示すブートストラップ値は、１００％を示し、周囲に形成されるスルフロスピリラムの各種の系統枝も比較的高いブートストラップ値を示していることから、系統枝の安定性は高いと考えられた。これらの結果から、ＪＰＣＣＹ　ＳＥＰ－３はスルフロスピリラムに含まれ、既知種ではスルフロスピリラム　カヴォレイに最も近縁と考えられた。しかし、両者の１６ＳｒＤＮＡの塩基配列は、完全には一致しておらず、系統枝からは両者が同種である可能性は低いと推察されたことから、ＪＰＣＣＹ　ＳＥＰ－３は、スルフロスピリラム属の新種と判断された。
　本発明のＪＰＣＣ　ＳＥＰ　ＪＰ－１は、平成１９年３月２３日付けで受託番号ＮＩＴＥ　ＢＰ－３４５として、独立行政法人製品評価技術基盤機構特許微生物寄託センター（日本国　千葉県木更津市かずさ鎌足２－５－８（郵便番号　２９２－０８１８））に受託されている。
　また、本発明のＪＰＣＣ　ＳＥＰ　ＪＰ－２は、平成１９年３月２３日付けで受託番号ＮＩＴＥ　ＢＰ－３４６として、独立行政法人製品評価技術基盤機構特許微生物寄託センター（日本国　千葉県木更津市かずさ鎌足２－５－８（郵便番号　２９２－０８１８））に受託されている。
　また、本発明のＪＰＣＣＹ　ＳＥＰ－３は、平成２０年６月４日付けで受領番号ＮＩＴＥ　ＢＰ－５８２として、独立行政法人製品評価技術基盤機構特許微生物寄託センター（日本国　千葉県木更津市かずさ鎌足２－５－８（郵便番号　２９２－０８１８））に受託されている。
＜新種微生物＞
　本発明の第一の微生物は、アエロモナス属ＪＰＣＣ　ＳＥＰ　ＪＰ－１株である。そして、本発明は、アエロモナス属ＪＰＣＣ　ＳＥＰ　ＪＰ－１株が属する種に属する微生物、および１６ＳｒＤＮＡの塩基配列が配列番号1に示す塩基配列と９６％以上の相同性を有し、セレン酸化合物還元能を有するアエロモナス属に属する微生物を包含する。このような微生物は、アエロモナス属ＪＰＣＣ　ＳＥＰ　ＪＰ－１株と同種の微生物であると考えられる。以下、このような微生物とアエロモナス属ＪＰＣＣ　ＳＥＰ　ＪＰ－１株とをあわせて、第一の微生物群と言うことがある。
　アエロモナス属の微生物では、亜セレン酸イオンを金属セレンへ還元する能力を有するアエロモナス　サルモニシダ（Ａｅｒｏｍｏｎａｓ　ｓａｌｍｏｎｉｃｉｄａ）が知られている。しかし、その他には、アエロモナス属ＪＰＣＣ　ＳＥＰ　ＪＰ－１株の近縁種はもとより、セレン酸化合物還元能を有するアエロモナス属の微生物はこれまで知られていなかった。そして、本発明の第一の微生物群は、特に亜セレン酸イオンを金属セレンへ還元する能力が高い。
　また、本発明の第二の微生物は、クレブシエラ属ＪＰＣＣ　ＳＥＰ　ＪＰ－２株である。そして、本発明は、クレブシエラ属ＪＰＣＣ　ＳＥＰ　ＪＰ－２株が属する種に属する微生物、および１６ＳｒＤＮＡの塩基配列が配列番号２に示す塩基配列と９６％以上の相同性を有し、セレン酸化合物還元能を有するクレブシエラ属に属する微生物を包含する。
　このような微生物は、クレブシエラ属ＪＰＣＣ　ＳＥＰ　ＪＰ－２株と同種の微生物であると考えられる。以下、このような微生物とクレブシエラ属ＪＰＣＣ　ＳＥＰ　ＪＰ－２株とをあわせて、第二の微生物群と言うことがある。
　クレブシエラ属の微生物では、セレン酸化合物還元能を有するものはこれまで知られていない。そして、本発明の第二の微生物群は、セレン酸イオンおよび亜セレン酸イオンのいずれをも金属セレンへ還元する能力を有し、セレン酸イオンを金属セレンへ還元する能力が、通常前記第一の微生物群よりも高い。
　本発明の第三の微生物は、スルフロスピリラム属ＪＰＣＣＹ　ＳＥＰ－３株である。そして、本発明は、スルフロスピリラム属ＪＰＣＣＹ　ＳＥＰ－３株が属する種に属する微生物、および１６ＳｒＤＮＡの塩基配列が配列番号３に示す塩基配列と９６％以上の相同性を有し、セレン酸化合物還元能を有するスルフロスピリラム属に属する微生物を包含する。このような微生物は、スルフロスピリラム属ＪＰＣＣＹ　ＳＥＰ－３株と同種の微生物であると考えられる。以下、このような微生物とスルフロスピリラム属ＪＰＣＣＹ　ＳＥＰ－３株とをあわせて、第三の微生物群と言うことがある。
　スルフロスピリラム属の微生物では、セレン酸化合物還元能を有するものとしてスルフロスピリラム　バルネシイ（Ｓｕｌｆｕｒｏｓｐｉｒｉｌｌｕｍ　ｂａｒｎｅｓｉｉ）が知られている。しかし、その他には、スルフロスピリラム属ＪＰＣＣＹ　ＳＥＰ－３株の近縁種はもとより、セレン酸化合物還元能を有するスルフロスピリラム属の微生物はこれまで知られていなかった。そして、本発明の第三の微生物群は、特にセレン酸イオンを金属セレンへ還元する能力が高く、通常前記第一および第二の微生物群よりも、その能力が高い。
＜セレン酸化合物還元製剤＞
　本発明のセレン酸化合物還元製剤は、前記第一の微生物群、第二の微生物群および第三の微生物群からなる群から選択される一種以上の微生物を有効成分として含有するものである。なかでも、第一の微生物群から選択される一種以上の微生物、第二の微生物群から選択される一種以上の微生物および第三の微生物群から選択される一種以上の微生物を共に含有するものが好ましく、ＪＰＣＣ　ＳＥＰ　ＪＰ－１、ＪＰＣＣ　ＳＥＰ　ＪＰ－２およびＪＰＣＣＹ　ＳＥＰ－３を含有するものが特に好ましい。
　セレン酸化合物還元製剤は、本発明の微生物を一種単独で含有するものや、同一の微生物群の微生物を複数種類含有するものよりも、異なる微生物群の微生物を複数種類含有するものの方が、セレン酸化合物還元能が高い。
　前記還元製剤が、異なる微生物群の微生物を複数種類含有する場合、これら微生物（例えば、第一の微生物群の微生物、第二の微生物群の微生物および第三の微生物群の微生物）の含有比率は、目的に応じて適宜選択できる。
　セレン酸化合物還元製剤としては、例えば、本発明の微生物を培養して得られた培養液をろ過して得られるろ過物をそのまま用いても良いし、または該ろ過物を乾燥して用いても良い。あるいは、培養後の本発明の微生物を精製処理したものを用いても良い。そして、これらセレン酸化合物還元製剤には、必要に応じて本発明の効果を妨げない範囲で、各種添加剤を添加しても良い。さらに本発明の微生物を、例えば、寒天、ゲランガムなどの天然物高分子ゲル；アクリルアミド；紫外線硬化樹脂などの高分子樹脂；炭素繊維、中空子膜、不織布などの繊維；などに固定化して用いても良い。固定化は内包、表面固定のいずれでも良い。
＜セレン酸化合物の還元方法＞
　本発明のセレン酸化合物の還元方法は、前記第一の微生物群、第二の微生物群および第三の微生物群からなる群から選択される一種以上の微生物を、セレン酸化合物共存下において培養する工程を有するものである。なかでも、第一の微生物群から選択される一種以上の微生物、第二の微生物群から選択される一種以上の微生物および第三の微生物群から選択される一種以上の微生物を共培養することが好ましく、ＪＰＣＣ　ＳＥＰ　ＪＰ－１、ＪＰＣＣ　ＳＥＰ　ＪＰ－２およびＪＰＣＣＹ　ＳＥＰ－３を共培養することが特に好ましい。本発明の微生物を一種単独で培養する場合や、同一の微生物群の微生物を複数種類培養する場合よりも、異なる微生物群の微生物を複数種類共培養する方が、セレン酸化合物還元効率が高い。
　異なる微生物群の微生物を複数種類共培養する場合、これら微生物（例えば、第一の微生物群の微生物、第二の微生物群の微生物および第三の微生物群の微生物）の含有比率は、前記セレン酸化合物還元製剤の場合と同様である。
　例えば、ＪＰＣＣ　ＳＥＰ　ＪＰ－１、ＪＰＣＣ　ＳＥＰ　ＪＰ－２およびＪＰＣＣＹ　ＳＥＰ－３を共培養することにより、従来のセレン酸化合物還元能を有する微生物を単独でまたは複数種類を共培養する場合よりも、セレン酸を金属セレンにまで速く還元できる。例えば、これまでに報告されている微生物の中でも、セレン酸化合物の還元速度が最も速いものに属すると考えられているバチルス属の微生物（特開平９－２４８５９５号公報参照）を培養した場合でも、セレン酸イオンを金属セレンにまで完全に還元するのに１００時間程度を要する。これは、亜セレン酸イオンを金属セレンに還元する速度が遅いことが主な理由の一つである。これに対して、ＪＰＣＣ　ＳＥＰ　ＪＰ－１、ＪＰＣＣ　ＳＥＰ　ＪＰ－２およびＪＰＣＣＹ　ＳＥＰ－３を共培養した場合では、セレン酸イオンを金属セレンにまで完全に還元するのに２４時間程度の時間しか要しない。これは、セレン酸イオンを亜セレン酸イオンに還元する速度、および亜セレン酸イオンを金属セレンに還元する速度のいずれもが従来よりも速いからである。
　セレン酸化合物を還元する際に用いる本発明の微生物の量は、還元を行う環境によって種々異なるが、本発明の効果を妨げない範囲で微生物の密度を高くする方が、セレン酸化合物還元活性が高くなるので好ましい。
　セレン酸化合物を還元する際の、本発明の微生物の培養条件は特に限定されず、例えば、先に述べた微生物獲得時の培養条件を参考に培養すると良い。また、排水、土壌、汚泥、地下水、貯水池の水等の対象中に含まれるセレン酸化合物を還元する場合には、これら対象に、本発明の微生物の生育に必要な前記成分を適宜添加したものを培地とし、それ以外は先に述べた微生物獲得時の培養条件を参考に培養すると良い。
　本発明の微生物の植菌は、前記セレン酸化合物還元製剤を添加するか、本発明の微生物の前培養物を添加することで行うと良い。添加量は、前記還元製剤や前培養物中の本発明の微生物含有量を考慮して決めれば良い。
＜セレン酸化合物の除去方法＞
　本発明のセレン酸化合物の除去方法は、前記第一の微生物群、第二の微生物群および第三の微生物群からなる群から選択される一種以上の微生物を、セレン酸化合物共存下において培養する工程を有するものである。
　本発明の微生物の植菌や培養は、セレン酸化合物の還元方法で述べたのと同様の条件で良い。
　そして、セレン酸化合物除去の対象を含有する培地に本発明の微生物を適当量植菌し培養することで、該微生物中にセレン酸化合物が取り込まれつつ取り込まれたセレン酸化合物が金属セレンに還元されるので、これを例えば、ろ過等の公知の手法で除くことで、効果的に除去対象からセレン酸化合物を除去できる。
＜金属セレンの製造方法＞
　本発明の金属セレンの製造方法は、前記第一の微生物群、第二の微生物群および第三の微生物群からなる群から選択される一種以上の微生物を、セレン酸化合物共存下において培養する工程と、得られた培養物を分離する工程とを有するものである。
　微生物をセレン酸化合物共存下において培養する工程は、例えば、前記セレン酸化合物の除去方法で述べた方法で行えば良い。そして、セレン酸化合物の還元効率が高い方法を選択すれば、金属セレンの収率も高くできる。
　得られた培養物を分離する工程では、分離方法は特に限定されず、例えば、セレン酸化合物除去対象の種類に応じて適宜選択すれば良い。具体的には、フィルターを用いてろ過しても良いし、遠心機を用いて固液分離しても良い。分離されたろ過物中には、金属セレンを菌体内に有する本発明の微生物が含まれるので、菌体内からこの金属セレンを回収できる。回収方法は、金属セレンが反応しない方法であれば、菌体の破壊を伴う公知のいずれの方法でも良い。例えば、菌体の熱分解による金属セレンの回収が挙げられる。有機物から構成される菌体に熱を加えることで、有機物をＣＯ２にまで分解し、得られた残渣中から金属セレンを回収できる。
　本発明の微生物は、セレンと同属の金属元素であるテルルの化合物、具体的にはテルル酸（Ｈ２ＴｅＯ４）、亜テルル酸（Ｈ２ＴｅＯ３）およびこれらの塩並びにこれらのイオン（ＴｅＯ４ ２－、ＴｅＯ３ ２－）等のテルル酸化合物に対しても同様の効果を示す。すなわち、これらを取り込んで金属テルルにまで還元できる。よって、本発明の微生物を用いた、テルル酸化合物還元製剤、テルル酸化合物の還元方法、テルル酸化合物の除去方法、金属テルルの製造方法も本願発明に含まれる。なお、ここでテルル酸化合物とは、テルル酸、亜テルル酸およびこれらの塩並びにこれらのイオンを指す。
　以下、具体的実施例により、本発明についてさらに詳しく説明する。ただし、本発明は、以下に示す実施例に何ら限定されるものではない。
［実施例１］
（ＪＰＣＣ　ＳＥＰ　ＪＰ－１、ＪＰＣＣ　ＳＥＰ　ＪＰ－２およびＪＰＣＣＹ　ＳＥＰ－３の獲得）
　前記ＭＥ培地（ｐＨ６．５～７．０）を１２１℃で１０分間蒸気滅菌処理を行った。次いで、クリーンベンチ内において、１８０℃で２０分間乾熱滅菌処理を行った容量３０ｍｌのバイアル瓶に、蒸気滅菌済みの前記ＭＥ培地を２０ｍｌ加えた後、孔径０．２２μｍのフィルターを用いて濾過滅菌処理を行った１００００ｐｐｍのセレン酸を５０ｐｐｍの濃度となるように添加した。
　次いで、奄美大島のマングローブ林の砂泥を添加し、ブチルゴム栓およびアルミキャップで蓋をして密閉した。密閉後、孔径０．２２μｍのフィルターで濾過滅菌処理したアルゴンガスを培地中に通気し、培地を脱気した
　次いで、２５℃で培養し、２～７日の間で培養液が赤色に着色したバイアル瓶を選別した。選別したバイアル瓶から培養液を１００μｌ抜き取り、前記滅菌済みＭＥ培地で１００倍、１０００倍、１００００倍希釈し、上記のセレン酸を含むＭＥ培地の寒天プレートに塗布して微生物の培養を行った。
　そして、最も生育の早いコロニーを選別し、ＭＥ培地の寒天プレート上で純化を行なった結果、ＪＰＣＣ　ＳＥＰ　ＪＰ－１、ＪＰＣＣ　ＳＥＰ　ＪＰ－２およびＪＰＣＣＹ　ＳＥＰ－３が同時に得られた。
［実施例２］
（ＪＰＣＣ　ＳＥＰ　ＪＰ－１、ＪＰＣＣ　ＳＥＰ　ＪＰ－２およびＪＰＣＣＹ　ＳＥＰ－３を共培養した場合のセレン酸イオン除去活性の評価１）
　実施例１と同様にして、乾熱滅菌処理済みの容量３０ｍｌのバイアル瓶中に、セレン酸５０ｐｐｍを含む滅菌処理済みＭＥ培地を密閉し、孔径０．２２μｍのフィルターで濾過滅菌処理したアルゴンガスを培地中に通気して、培地を脱気した。
　次いで、実施例１で得られたＪＰＣＣ　ＳＥＰ　ＪＰ－１、ＪＰＣＣ　ＳＥＰ　ＪＰ－２およびＪＰＣＣＹ　ＳＥＰ－３の混合菌体を、γ線滅菌処理済みの注射針付シリンジを用いて、脱気済みの培地に対して２容量％（０．４ｍｌ）植菌した。
　次いで、バイアル瓶の気相部分を、孔径０．２２μｍのフィルターで濾過滅菌処理したアルゴンガスで置換し、嫌気性条件下において２８℃で４８時間培養することで、前培養液を得た。
　クリーンベンチ内で、殺菌灯滅菌処理を１０分間行った容量２００ｍｌのガラス容器に、１２１℃で１０分間蒸気滅菌処理を行ったＭＥ培地を１７０ｍｌ加えた。次いで、孔径０．２２μｍのフィルターを用いて濾過滅菌処理を行った１００００ｐｐｍのセレン酸を１ｍＭ（約４２ｐｐｍ）の濃度となるように前記ＭＥ培地に添加した。そしてさらに、前記前培養液を３容量％（５ｍｌ）植菌した。
　植菌後、ガラス容器に天板で蓋をして、容器の気相部分を、孔径０．２２μｍのフィルターで濾過滅菌処理したアルゴンガスを用いて流量１００ｍｌ／分で５分間置換し、嫌気性条件下において２８℃で本培養を行った。
　そして、原子吸光により、経時的に培地中の６価および４価のセレンの濃度を測定し、セレン酸除去活性を評価した。結果を図３に示す。図３の縦軸は、培地中の６価および４価のセレンの合計濃度を示し、横軸は、本培養の時間を示す。
　図３に示すように、６価および４価のセレンは、本培養開始から約２４時間でほぼ完全に培地中から除去されたことが判った。
　なお参考までに、文献「Ｋａｓｈｉｗａ　Ｍ，Ｉｋｅ　Ｍ，Ｍｉｈａｒａ　Ｈ，Ｅｓａｋｉ　Ｎ，Ｆｕｊｉｔａ　Ｍ．Ｒｅｍｏｖａｌ　ｏｆ　ｓｏｌｕｂｌｅ　ｓｅｌｅｎｉｕｍ　ｂｙ　ａ　ｓｅｌｅｎａｔｅ－ｒｅｄｕｃｉｎｇ　ｂａｃｔｅｒｉｕｍ　Ｂａｃｉｌｌｕｓ　ｓｐ．ＳＦ－１．Ｂｉｏｆａｃｔｏｒｓ．２００１；１４（１－４）：２６１－５．」に記載の、バチルス属の微生物（対照株）の６価および４価のセレン除去活性データを、本実施例データとあわせて、図４に示す。図４のグラフは、これら微生物の６価および４価のセレン除去活性を示すグラフを、軸スケールを揃えて記載したものであり、縦軸は培地中の６価および４価のセレンの合計残存率を示し、横軸は本培養の時間を示す。
　前記混合菌体および前記対照株は、同一条件下で培養を行うことが困難なので、同一条件下での６価および４価のセレン除去活性を比較することはできないが、図４のグラフはそれぞれの最良な除去活性を比較するのに十分である。図４から明らかなように、本発明の微生物からなる混合菌体は、前記対照株の１／４以下の時間で６価および４価のセレンを完全に除去できることが判る。
［実施例３］
（ＪＰＣＣ　ＳＥＰ　ＪＰ－１、ＪＰＣＣ　ＳＥＰ　ＪＰ－２およびＪＰＣＣＹ　ＳＥＰ－３を共培養した場合のセレン酸イオン除去活性の評価２）
　実施例１と同様にして、乾熱滅菌処理済みの容量３０ｍｌのバイアル瓶中に、セレン酸３０ｐｐｍ、さらにＪＰＣＣ　ＳＥＰ　ＪＰ－１、ＪＰＣＣ　ＳＥＰ　ＪＰ－２およびＪＰＣＣＹ　ＳＥＰ－３を１×１０７ｃｅｌｌｓ／ｍｌの濃度で含む滅菌処理済みＭＥ培地を３０ｍｌ密閉し、培地のｐＨを５．０、５．５、６．２、７．０、７．６、８．２、９．０の７通りに調整し、これら培地を用いて２５℃にて４８時間培養を行った。そして、原子吸光により、経時的に培地中の６価および４価のセレンの濃度を測定し、セレン酸除去活性を評価した。結果を図５に示す。図５の縦軸は、培地中の６価および４価のセレンの合計除去率を示し、横軸は、培養時間を示す。
　図５に示すように、ｐＨ６．２、７．０、７．６の場合に、除去率がほぼ１００％となり、ｐＨ６．２、７．０の場合に除去速度が速く、特にｐＨ６．２の場合に最も迅速に６価および４価のセレンを除去できることが確認された。
［実施例４］
（ＪＰＣＣ　ＳＥＰ　ＪＰ－１、ＪＰＣＣ　ＳＥＰ　ＪＰ－２およびＪＰＣＣＹ　ＳＥＰ－３を共培養した場合のセレン酸イオン除去活性の評価３）
　培地のｐＨを６．２とし、培養温度を２３、２８、３２、３７、４０、４５、６０℃の７通りとしたこと以外は、実施例３と同様にセレン酸除去活性を評価した。結果を図６に示す。
　図６に示すように、２８、３２、３７℃の場合に、除去率がほぼ１００％となり、２８、３２℃の場合に除去速度が速く、特に２８℃の場合に最も迅速に６価および４価のセレンを除去できることが確認された。
［実施例５］
（ＪＰＣＣ　ＳＥＰ　ＪＰ－１、ＪＰＣＣ　ＳＥＰ　ＪＰ－２およびＪＰＣＣＹ　ＳＥＰ－３を共培養した場合のセレン酸イオン除去活性の評価４）
　炭素源として、ＭＥ培地中の乳酸に代わり、エタノール、メタノール、エタノール＋メタノール、酢酸を添加した培地を用い、培地のｐＨを６．２、培養温度を２８℃としたこと以外は、実施例３と同様にセレン酸除去活性を評価した。評価は、ＭＥ培地を用いた場合も同時に行った。結果を図７に示す。
　図７に示すように、炭素源として乳酸、エタノールを用いた場合に、除去率が有意に高く、特に乳酸を用いた場合に最も高率で６価および４価のセレンを除去できることが確認された。
［実施例６］
（ＪＰＣＣ　ＳＥＰ　ＪＰ－１による金属セレンの製造）
　ｐＨ６．２に調整した滅菌処理済みの前記ＭＥ培地３０ｍｌを、実施例１と同様にして乾熱滅菌処理済みの３０ｍｌ容量のバイアル瓶に加え、ＪＰＣＣ　ＳＥＰ　ＪＰ－１を植菌し、２４時間純粋培養することで前培養を行った。
　次いで、前記ＭＥ培地３０ｍｌを、滅菌処理済みの３０ｍｌ容量のバイアル瓶に加え、さらにセレン酸イオン（６価のセレン）および亜セレン酸イオン（４価のセレン）の濃度が共に５０ｐｐｍとなるようにこれらを加え、前記前培養液を２容量％植菌し、本培養を行った（ｎ＝３）。そして、本培養開始から４８時間後のサンプルを、孔径０．２２μｍのフィルターでろ過し、フィルター上に回収されたものの内、６価および４価のセレンを原子吸光分光光度計により定量し、培養液中の６価および４価のセレンの濃度（平均値）を求め、下記式から金属セレンの回収率を算出した。結果を表１２に示す。
　（金属セレン回収率（％））＝１００－｛（培養液中のセレン濃度（ｐｐｍ））／５０（ｐｐｍ）｝×１００
［実施例７］
（ＪＰＣＣ　ＳＥＰ　ＪＰ－２による金属セレンの製造）
　ＪＰＣＣ　ＳＥＰ　ＪＰ－１に代わりＪＰＣＣ　ＳＥＰ　ＪＰ－２を用いたこと以外は、実施例６と同様に金属セレンの回収率を算出した。結果を表１２に示す。
［実施例８］
（ＪＰＣＣＹ　ＳＥＰ－３による金属セレンの製造）
　ＪＰＣＣ　ＳＥＰ　ＪＰ－１に代わりＪＰＣＣＹ　ＳＥＰ－３を用いたこと以外は、実施例６と同様に金属セレンの回収率を算出した。結果を表１２に示す。
［実施例９］
（ＪＰＣＣ　ＳＥＰ　ＪＰ－１およびＪＰＣＣ　ＳＥＰ　ＪＰ－２による金属セレンの製造）
　ＪＰＣＣ　ＳＥＰ　ＪＰ－１の前培養液を２容量％植菌する代わりに、ＪＰＣＣ　ＳＥＰ　ＪＰ－１の前培養液およびＪＰＣＣ　ＳＥＰ　ＪＰ－２の前培養液をそれぞれ１容量％ずつ植菌したこと以外は、実施例６と同様に金属セレンの回収率を算出した。結果を表１２に示す。
［実施例１０］
（ＪＰＣＣ　ＳＥＰ　ＪＰ－１、ＪＰＣＣ　ＳＥＰ　ＪＰ－２およびＪＰＣＣＹ　ＳＥＰ－３による金属セレンの製造）
　ＪＰＣＣ　ＳＥＰ　ＪＰ－１の前培養液を２容量％植菌する代わりに、ＪＰＣＣ　ＳＥＰ　ＪＰ－１の前培養液、ＪＰＣＣ　ＳＥＰ　ＪＰ－２の前培養液およびＪＰＣＣＹ　ＳＥＰ－３の前培養液を合計２容量％植菌したこと以外は、実施例６と同様に金属セレンの回収率を算出した。結果を表１２に示す。
Figure JPOXMLDOC01-appb-T000012
　ＪＰＣＣ　ＳＥＰ　ＪＰ－１、ＪＰＣＣ　ＳＥＰ　ＪＰ－２およびＪＰＣＣＹ　ＳＥＰ－３は、いずれもセレン酸化合物の還元能を有し、これら三種の微生物を併用した場合には、６価および４価のセレンの還元能が著しく高いことが確認された。
　本発明は、排水、土壌および汚泥中などのセレン酸化合物の除去に利用可能である。
ＮＩＴＥ　ＢＰ－３４５，　ＮＩＴＥ　ＢＰ－３４６，　ＮＩＴＥ　ＢＰ－５８２

Claims (10)

  1. 　アエロモナス（Ａｅｒｏｍｏｎａｓ）属ＪＰＣＣ　ＳＥＰ　ＪＰ－１株が属する種に属する微生物、クレブシエラ（Ｋｌｅｂｓｉｅｌａ）属ＪＰＣＣ　ＳＥＰ　ＪＰ－２株が属する種に属する微生物およびスルフロスピリラム（Ｓｕｌｆｕｒｏｓｐｉｒｉｌｌｕｍ）属ＪＰＣＣＹ　ＳＥＰ－３株が属する種に属する微生物を、セレン酸化合物共存下において共培養する工程を有するセレン酸化合物の還元方法。
  2. 　アエロモナス（Ａｅｒｏｍｏｎａｓ）属ＪＰＣＣ　ＳＥＰ　ＪＰ－１株が属する種に属する微生物、クレブシエラ（Ｋｌｅｂｓｉｅｌａ）属ＪＰＣＣ　ＳＥＰ　ＪＰ－２株が属する種に属する微生物およびスルフロスピリラム（Ｓｕｌｆｕｒｏｓｐｉｒｉｌｌｕｍ）属ＪＰＣＣＹ　ＳＥＰ－３株が属する種に属する微生物を、セレン酸化合物共存下において共培養する工程を有するセレン酸化合物の除去方法。
  3. 　アエロモナス（Ａｅｒｏｍｏｎａｓ）属ＪＰＣＣ　ＳＥＰ　ＪＰ－１株が属する種に属する微生物、クレブシエラ（Ｋｌｅｂｓｉｅｌａ）属ＪＰＣＣ　ＳＥＰ　ＪＰ－２株が属する種に属する微生物およびスルフロスピリラム（Ｓｕｌｆｕｒｏｓｐｉｒｉｌｌｕｍ）属ＪＰＣＣＹ　ＳＥＰ－３株が属する種に属する微生物を、セレン酸化合物共存下において共培養する工程と、得られた培養物を分離する工程とを有する金属セレンの製造方法。
  4. 　スルフロスピリラム（Ｓｕｌｆｕｒｏｓｐｉｒｉｌｌｕｍ）属ＪＰＣＣＹ　ＳＥＰ－３株が属する種に属する微生物。
  5. 　１６ＳｒＤＮＡの塩基配列が配列番号３に示す塩基配列と９６％以上の相同性を有し、セレン酸化合物還元能を有するスルフロスピリラム（Ｓｕｌｆｕｒｏｓｐｉｒｉｌｌｕｍ）属に属する微生物。
  6. 　スルフロスピリラム（Ｓｕｌｆｕｒｏｓｐｉｒｉｌｌｕｍ）属ＪＰＣＣＹ　ＳＥＰ－３株。
  7. 　請求項４～６のいずれか一項に記載の微生物を有効成分とするセレン酸化合物還元製剤。
  8. 　請求項４～６のいずれか一項に記載の微生物をセレン酸化合物共存下において培養する工程を有するセレン酸化合物の還元方法。
  9. 　請求項４～６のいずれか一項に記載の微生物をセレン酸化合物共存下において培養する工程を有するセレン酸化合物の除去方法。
  10. 　請求項４～６のいずれか一項に記載の微生物をセレン酸化合物共存下において培養する工程と、得られた培養物を分離する工程とを有する金属セレンの製造方法。
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