SK659090A3 - Serumfree cell cultures useful for antigens preparation and process for producing flavivirus/virus antigen or arenavirus/virus antigen - Google Patents

Serumfree cell cultures useful for antigens preparation and process for producing flavivirus/virus antigen or arenavirus/virus antigen Download PDF

Info

Publication number
SK659090A3
SK659090A3 SK6590-90A SK659090A SK659090A3 SK 659090 A3 SK659090 A3 SK 659090A3 SK 659090 A SK659090 A SK 659090A SK 659090 A3 SK659090 A3 SK 659090A3
Authority
SK
Slovakia
Prior art keywords
virus
cells
antigen
matrix
bound
Prior art date
Application number
SK6590-90A
Other languages
English (en)
Other versions
SK279236B6 (sk
Inventor
Wolfgang Mundt
Noel Barrett
Friedrich Dorner
Johann Eibl
Original Assignee
Immuno Ag
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Immuno Ag filed Critical Immuno Ag
Publication of SK279236B6 publication Critical patent/SK279236B6/sk
Publication of SK659090A3 publication Critical patent/SK659090A3/sk

Links

Classifications

    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12NMICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
    • C12N7/00Viruses; Bacteriophages; Compositions thereof; Preparation or purification thereof
    • AHUMAN NECESSITIES
    • A61MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61KPREPARATIONS FOR MEDICAL, DENTAL OR TOILETRY PURPOSES
    • A61K39/00Medicinal preparations containing antigens or antibodies
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12NMICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
    • C12N2531/00Microcarriers
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12NMICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
    • C12N2770/00MICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA ssRNA viruses positive-sense
    • C12N2770/00011Details
    • C12N2770/24011Flaviviridae
    • C12N2770/24111Flavivirus, e.g. yellow fever virus, dengue, JEV
    • C12N2770/24151Methods of production or purification of viral material
    • YGENERAL TAGGING OF NEW TECHNOLOGICAL DEVELOPMENTS; GENERAL TAGGING OF CROSS-SECTIONAL TECHNOLOGIES SPANNING OVER SEVERAL SECTIONS OF THE IPC; TECHNICAL SUBJECTS COVERED BY FORMER USPC CROSS-REFERENCE ART COLLECTIONS [XRACs] AND DIGESTS
    • Y02TECHNOLOGIES OR APPLICATIONS FOR MITIGATION OR ADAPTATION AGAINST CLIMATE CHANGE
    • Y02ATECHNOLOGIES FOR ADAPTATION TO CLIMATE CHANGE
    • Y02A50/00TECHNOLOGIES FOR ADAPTATION TO CLIMATE CHANGE in human health protection, e.g. against extreme weather
    • Y02A50/30Against vector-borne diseases, e.g. mosquito-borne, fly-borne, tick-borne or waterborne diseases whose impact is exacerbated by climate change

Landscapes

  • Health & Medical Sciences (AREA)
  • Life Sciences & Earth Sciences (AREA)
  • Chemical & Material Sciences (AREA)
  • Wood Science & Technology (AREA)
  • Genetics & Genomics (AREA)
  • Organic Chemistry (AREA)
  • Engineering & Computer Science (AREA)
  • Bioinformatics & Cheminformatics (AREA)
  • Zoology (AREA)
  • Biochemistry (AREA)
  • General Health & Medical Sciences (AREA)
  • Microbiology (AREA)
  • Immunology (AREA)
  • Biomedical Technology (AREA)
  • Medicinal Chemistry (AREA)
  • General Engineering & Computer Science (AREA)
  • Biotechnology (AREA)
  • Virology (AREA)
  • Micro-Organisms Or Cultivation Processes Thereof (AREA)
  • Medicines Containing Antibodies Or Antigens For Use As Internal Diagnostic Agents (AREA)
  • Preparation Of Compounds By Using Micro-Organisms (AREA)
  • Compounds Of Unknown Constitution (AREA)
  • Peptides Or Proteins (AREA)
  • Immobilizing And Processing Of Enzymes And Microorganisms (AREA)
  • Medicines Containing Material From Animals Or Micro-Organisms (AREA)

Description

BEZSÉROVÉ BUNKOVÉ KULTÚRY NA VÝROBU ANTIGÉNOV A SPÔSOB VÝROBY FLAVI-VÍRUS/VÍRUSOVÉHO ANTIGÉNU ALEBO ARENAVÍRUS/VÍRUSOVÉHO ANTIGÉNU
Oblasť techniky
Vynález sa týka bezsérovej bunkovej kultúry na výrobu antigénov a spôsobu výroby flavi-vírus/vírusového antigénu alebo arena-vírus/vírusového antigénu za použitia uvedenej kultúry.
Doterajší stav techniky
Infekcie vyvolané vírusom rannej letnej meningoencefalitídy /FSME/ sa pozorujú v Európe od doby 2. svetovej vojny. V Rakúsku, v južnom Nemecku a v Československu sa každý rok lieči niekoľko stoviek pacientov v dôsledku prenosnej FSME - infekcie.
FSME - vírus sa zaraďuje do skupiny Flavivírusov, predošlej sérologickej skupiny B arbovírusov, ktorá predstavuje rod vírusov rodín/ Togaviridae.
Proti jednému z najdôležitejších a najčastejších pôvodcov encefalitídy u ľudí, japonskému B-vírusu encefalitídy, existujú už dlhšiu dobu vakcíny. Tieto vakcíny sa získavajú z mozgu infikovaných myší, čistia a sú považované za isté a bezpečné /Hoke et al., N. Engl. J. Med., 319, 608 /1988//.
Od r. 1976 je k dispozícii očkovacia látka proti FSME a táto je povolená zdravotnými úradmi. Na výrobu tejto očkovacej látky sa kultivuje vírus v mozgu infikovaných myších mláďat, rozmnožuje sa v embryonálnych bunkách kurčiat, inaktivuje formalínom a potom sa podrobuje eficientnému čisteniu /Heinz et al., J. Med. Virol., 6, 103 /1980//.
V literatúre je popísaný rad možností pomnožovania arbovírusov s ohľadom na možnú výrobu očkovacej látky. Dnes sa najčastejšie používa metóda očkovania embryonálnych fibroblastov kurčiat vypestovaným vírusom
FSME získaným z mozgu myší a kultiváciou naočkovaných buniek. Táto metóda vyžaduje nákladné čistenie antigénu, aby sa odstránil komplexný, heterologický biologický materiál a aby sa pri opakovanom podávaní dávok očkovacej látky, ktorá bola z neho získaná, zabránilo senzitívnemu účinku u očkovaných osôb.
Na výrobu embryonálnych buniek kurčiat sa musí vychádzať od SPF /=specific pathogen free = špecificky bezpatogénnych/ v?iec. Tieto SPF-vajcia sa musia podrobiť pred každým použitím väčšiemu počtu dlhotrvajúcich skúšok na uchovanie ich SPF-štatútu.
Ďalej vykazujú kultúry embryonálnych buniek kurčiat len malý počet generácií pri ďalšej kultivácii, čím sú veľkosti šarží obmedzené, kultivácia primárnej kultúry sa len s ťažkosťami udržuje sterilná a neexistuje žiadna trvalá kvalita primárnych buniek s ohľadom na pomnožovanie vírusu a výrobu antigénu.
Tieto nedostatky nespočívajú iba v spôsobe výroby antigénu FSMEvírusu pri výrobe antigénu.
Vynález si kladie za základnú úlohu zlepšiť výrobu vírus/vírus antigénu, obzvlášť FSME-vírus/vírus antigénu tak, že sa vyššie uvedené nedostatky odstránia a poskytne sa k dispozícii spôsob kultivácie vírus/vírus antigénu v bunkových kultúrach, ktorý dovolí realizovať výrobu vo veľkoprevádzkovom meradle, pričom sa súčasne kultúra uchová sterilná jednoduchým spôsobom. Ďalej sa má minimalizovať uvoľňovanie nežiadúcich celulárnych proteínov do narastenej kultúry.
Podstata vynálezu
Predmetom predloženého vynálezu je bezsérová bunková kultúra, obsahujúca matricu s adherentne na ňu naviazanými ľudskými alebo zvieracími bunkami na produkciu flavi-vírus/vírusového antigénu alebo arenavírus/vírusového antigénu, pričom bunky sú infikované flavi-vírusom alebo arena-vírusom.
Vynález spočíva na poznatku, že bunky závislé na povrchu, ktoré sa hodia na pomnožovanie vírusov, zostanú samé od seba i v infikovanom stave adherentne viazané na matrici, relatívne dlhú dobu produkujú kontinuálne antigén vírusu a odovzdávajú ho do média kultúry.
Je možné uchovať prostriedok podľa vynálezu s naadsorbovanými infikovanými bunkami niekoľko dní pri teplote medzi 0 °C až 8 °C, teda za podmienok, pri ktorých je brzdený metabolizmus bunky a tým produkcia vírusu. Týmto spôsobom uchovávaný prostriedok sa môže nasledovne bez problému vnášaním do média kultúry a nastavením potrebných podmienok na kultiváciu použiť na výrobu antigénu vírusu. Prostriedok podľa vynálezu predstavuje teda východiskovú kultúru, ktorá sa môže vyrábať s konštantnou kvalitou a aktivitou do zásoby a ktorej stav sa s ohľadom na sterilitu dá ľahko preskúšať a môže sa použiť kedykoľvek na výrobu antigénu vírusu.
Väzba buniek produkujúcich antigén na nosič dovoľuje ďalej celkom jednoduchú manipuláciu s bunkami infikovanými vírusmi a schopnými produkcie. Tak je napríklad možné vykonávať výrobu antigénu vírusu kontinuálne v perfúznom reaktore. Oddelenie buniek od média obsahujúceho antigén sa podstatne uľahčí ich väzbou na matricu, čím sa zjednoduší výroba antigénu vírusu vo veľkoprevádzkovom meradle.
Výhodná forma realizácie prostriedku podľa vynálezu spočíva v tom, že sa ako adherentne viazané bunky použijú vero-bunky ATTC CCL 81, ktoré sa používajú s výhodou na výrobu antigénu rannej letnej meningoencefalitídy /FSME/ a preto sú infikované vírusom FSME.
Bunky viazané adherentne na matrici sa môžu ale tiež infikovať flavivírusom alebo arenavírusom.
Ako materiál na matricu sa dobre osvedčilo sklo, priečne zosietený dextrán, želatína alebo plastická hmota, pričom matrica sa vytvorí najlepšie ako mikronosič, ktorého priemer častíc sa s výhodou pohybuje v oblasti medzi 100 μιτι až 300 μητ Tieto mikronosiče môžu mať hladký povrch alebo povrch s poréznou štruktúrou.
Ďalšia výhodná forma realizácie bunkovej kultúry podľa vynálezu je charakterizovaná tým, že na cm2 povrchu matrice je adhe' entne viazané medzi 1x105 až 4x105 buniek.
Predmetom predloženého vynálezu je ďalej spôsob výroby flavivírus/vírusového antigénu alebo arena-vírus/vírusového antigénu za použitia uvedenej bunkovej kultúry, ktorého podstata spočíva v tom, že sa na povrchu závislej permanentnej bunky, s výhodou vero-bunky ATTC CCL 81, zaočkujú flavi-vírusom a bunky sa udržujú v médiu, bez séra so zachovaním ich životaschopnosti, adherentne viazané na matrici, aby sa zachovala tvorba antigénu v bunkách a odovzdávanie antigénu do média, potom sa antigén obsahujúci médium oddelí od buniek viazaných na nosiči a známym spôsobom sa spracuje zakoncentrovaním, inaktiváciou a čistením na galenicky prijateľný preparát.
Línia verobuniek ATTC CCL 81 sa získa z tkan ya obličiek zeleného kočkodana /cercopithecus aethiops/ a môže sa uchovávať metabolický aktívna v bezsérovom médiu. Pre takéto permanentné línie buniek sa jedenkrát založí banka na materskú zásobu buniek a banka na spracovanie materských zásobných buniek a vykonajú sa všetky vyšetrenia na kontaminujúce látky. Táto permanentná línia buniek je teda tým presne charakterizovaná nielen s ohľadom na neprítomnosť kontaminujúcich mikroorganizmov, ale i čo sa týka správania pri raste, kultivácii, správaní pri rozmnožovaní a - ak sú jedenkrát optimalizované - možno na ne nahliadať ako na konštantné.
Pri spôsobe podľa vynálezu sa s výhodou používajú verobunky, ktoré sú viazané na mikronosič. Tým sa môže dosiahnuť vysoká hustota buniek, ktorú nebolo možné dosiahnuť u doteraz používaných primárnych bunkových štruktúr ani v Roux-fľašiach ani v suspenzii a ďalej sa dosiahne verké zvýšenie antigénu vírusu na objem fermentácie.
Výhodný spôsob realizácie podľa vynálezu spočíva v tom, že sa pomnožovanie vírusu a tvorba antigénu vykonáva v kontinuálne prevádzkovanom perfúznom reaktore po dobu najmenej 5 dní, pri teplote medzi 34 až 37 °C, pričom perfúzia sa môže realizovať s perfúznym výťažkom 0,3 až v/v/deň. V perfúznom reaktore sa môže ďalej dosiahnuť hustota buniek 2 x 109 až 2 x 101° buniek na liter fermentačného objemu, posledný údaj u fermentora s fluidným lôžkom.
Pomnožovanie vírusu podľa vynálezu v perfúznej kultúre umožňuje v porovnaní so šaržovitou kultiváciou podstatné skrátenie zotrvávania vírusu a antigénu v médiu, ktoré je dopredu dané perfúznym výťažkom. Pomocou kratšieho zotrvávania dochádza k podstatne nižšej termickej inaktivácii a tým i k vyššej produktivite spôsobu podľa vynálezu. Tak sa môže v perfúznom médiu získať a uchovať koncentrácia antigénu 1 až 10 pg/ml.
Pri spôsobe podľa vynálezu sa môžu nastaviť jednoduchým spôsobom optimálne podmienky na kultiváciu. Okrem toho je pri spôsobe realizácie podstatne menej manipulácií ako pri všetkých ostatných známych spôsoboch, čo predstavuje väčšiu bezpečnosť pri zaobchádzaní s infekčným materiálom a umožňuje kontinuálne rýchle spracovanie vírusu a antigénu vírusu z média kultúry.
Výroba inokula vírusu, kultivácia buniek na výrobu vírusu prípadne antigénu vírusu a vlastná výroba vírusu prípadne antigénu vírusu budú bližšie popísané.
Príklady realizácie vynálezu
1. Inokulum vírusu
Bunky /napríklad Vero ATTC CCL 81/ sa kultivujú vo valcovitých fľašiach pri 37 °C až do konfluencie a infikujú sa 1 ml suspenzie vírusov./ 2. deň po infekcii sa denne vykonáva výmena polovice média za bezsérové médium. Prebytky média od od 4. až do 8. dňa obsahujú 2 - 5 x 107 p.f.u. na ml a skladujú sa až do svojho použitia ako inokulum vírusu pri - 20 °C.
2. Kultivácia buniek na výrobu vírus/vírus antigénu
Vychádzajúc od ATTC CCL 81 pracovných základných buniek uložených v kvapalnom dusíku, zrealizuje sa pomnoženie týchto buniek vo fľašiach na tkáne kultúr až sa dosiahne také množstvo buniek, ktoré dovolí inokulovať ferment. Ďalšia kultivácia buniek prebieha vo fermentačných nádobách pri 37 °C, pričom má byť adherentne rastúcim pracovným základným bunkám k dispozícii čo najväčší povrch na adhéziu, priľnutie. Takéto veľké povrchy sú k dispozícii pri použití valcových fliaš zo skla alebo polystyrénu alebo pri použití
I mikronosičov /MC/. Najlepšie sú MC z priečne zosieťovaného' dextránu s veľkosťou medzi 170 pm až 250 pm.
MC s naadsorbovanými základnými bunkami sa kultivuje pri 37 °C až do hustoty buniek 1.10 - 4.10 buniek na cm. Táto hustota buniek je dosiahnutá vo všeobecnosti po šiestich dňoch. Počas kultivácie dôjde k dokonalému nárastu mikronosiča bunkami, pričom nakoniec môžu jednotlivé mikronosiče zrásť pomocou svojich bunkových trávnikov priľnutých na povrchu dokopy za tvorby skupín.
3. výroba vírus/vírus antigénu
Potom, čo sa dosiahla uvedená hustota buniek, infikujú sa na výrobu matrice podľa vynálezu bunky viazané na MC inokulom vírusu /1 - 0,01 pfu/bunku, s výhodou 0,1 pfu/bunku/. Matrica podľa vynálezu sa môže skladovať niekoľko dní pri teplote medzi 0°C C až 8 °C C a ihneď sa použiť na výrobu antigénu vírusu.
Na výrobu antigénu sa MC s naadsorbovanými infikovanými bunkami vnesú do perfúzneho reaktora. Od tohto okamihu vírusovej infekcie sa v kultúre používa len bezsérové médium, ktoré sa čerpá kontinuálne perfúznym reaktorom, zatiaľ čo sa bunky kultivované na mikronosičoch zadržujú pomocou retenčného zariadenia v reaktore. V odtekajúcom kultivačnom médiu kultúry sa nachádza od 2. dňa po infekciu antigénu vírusu vo vysokej koncentrácii a môže sa z neho získavať kontinuálne minimálne 10 dní.
Pomocou nasledujúcich príkladov bude spôsob podľa vynálezu ešte ďalej vysvetlený. Stanovenie antigénu vírusu sa rea'zovalo vo všetkých príkladoch pomocou ELISY na stanovenie antigénu.
Príklad 1
Vero-bunky ATTC CCL 81 boli kultivované v šesťlitrovom fermentore na mikronosiči /Cytodex 3 firmy Pharmacia/ pri 37 °C až do počtu buniek 2 x IO6 na ml kultivačného média /DMEM = Dulbecco's Eagle médium/ a a/ infikuje sa FSME vírusom /0,1 pfu/bunku/ a zrealizuje sa pomnoženie vírusu po šaržiach
Tabuľka 1
dni po infekcii antigén vírusu pg/ml
2 0,20
3 0,70
4 1,60
5 2,70
6 4,00
7 3,80
8 2,90
Produktivita činidla na 1 fermentačný objem 4 mg antigénu vírusu.
b/ infikuje sa FSME-virusom /0,1 pfu/bunka/ a kultivačné médium /DMEM/ perfunduje kontinuálne s objemom 0,5/objem fermentoru/deň.
Tabuľka 2
dni po infekcii antigén vírusu pg/ml
2 0,30
3 1,60
4 4,50
5 4,50
6 2,50
7 3,20
8 2,90
9 2,50
10 2,30
Produktivita činidla na 1 fermentačný objem 13,7 mg antigénu vírusu.
c/ infikuje sa FSME-vírusom /0,1 pfu/bunku/ a kultivačné médium /DMEM/ kontinuálne perfunduje s 1 objemom/objem fermentoru/deň.
Tabuľka 3
dni po infekcii antigén vírusu pg/mi
2 0,45
3 1,40
4 2,00
5 2,00
6 1,70
7 1,60
8 1,10
9 1,10
10 0,90
Produktivita činidla na 1 fermentačný objem 12,4 mg antigénu vírusu.
Príklad 2
Vero-bunky /ATTC CCL 81/ boli kultivované v štyridsaťlitrovom fermentore na mikronosičoch /Cytodex 3 firmy Pharmacia/ pri 37 C až do počtu buniek 2 x ΙΟ/ml a po infekcii FSME-vírusom /0,1 pfu/bunka/ perfundované kontinuálne médiom /DMEM/ /0,33 obj./fermentora obj./deň/.
Tabuľka 4
dni po infekcii antigén víru su pg/ml
2 1,60
3 3,50
4 5,00
5 4,30
6 4,00
7 2,90
8 2,70
9 2,10
10 2,00
Produktivita činidla na 1 fermentačný objem 10,7 mj antigénu vírusu.
Príklad 3
Vero-bunky /ATTC CCL 81/ boli kultivované v štyridsaťlitrovom' fermentore na mikronosičoch /Cytodex 3 firmy Pharmacia/ pri 37 °C až do počtu buniek 2 x ΙΟ/ml a po infekcii FSME-vírusom /0,1 pfu/bunka/ perfundované kontinuálne médiom /DMEM/ /1 obj./fermentora obj./deň/.
Tabuľka 5
dni po infekcii antigén vírusu pg/ml
2 1,10
3 3,80
4 3,90
5 3,00
6 2,30
7 2,20
8 2,00
9 3,15
10 2,30
Výťažok bol redukovaný na 0,5 V/objem fermentoru/deň.
Produktivita bola na 1 fermentačný objem 13,7 mg antigén vírusu.
Vero-bunky /ATTC CCL 81/ boli kultivované v stopäťdesiatlitrovom fermentore na mikronosičoch /Cytodex 3 firmy Pharmacia/ pri 37 °C až do počtu buniek 2 x IO6/ml a po infekcii FSME-vírusom /0,1 pfu/bunka/ perfunduje kontinuálne médiom /DMEM/ / 0,33 obj./fermentora obj./deň/.
Tabuľka 6
dni po infekcii antigén vírusu pg/ml
2 0,20
, 3 1,90
4 2,40
5 4,80
6 5,40
7 4,10
8 4,40
9 3,20
10 4,50
Produktivita činidla na 1 fermentačný objem 14,7 mg antigénu vírusu.

Claims (10)

1. Bezsérové bunkové kultúry, obsahujúce matricu s adherentne na ňu naviazanými ľudskými alebo zvieracími bunkami na produkciu flavivírus/vírusového antigénu alebo arena-vírus/vírusového antigénu, pričom bunky sú infikované flavi-vírusom alebo arena-vírusom.
2. Bunkové kultúry podľa nároku 1, vyznačujúce sa tým, že ako adherentne viazané bunky obsahujú vero-bunky ATCC CCL 81.
3. Bunkové kultúry podľa nároku 1 alebo 2, vyznačujúce sa tým, že matrica pozostáva zo skla, priečne zosieteného dextránu, želatíny alebo plastu.
4. Bunkové kultúry podľa nároku 3, vyznačujúce sa tým, že matrica je vytvorená ako mikronosič.
5. Bunkové kultúry podľa jedného alebo niekoľkých nárokov 1 až 4, vyznačujúce sa tým, že na povrchu matrice je na jednom cm2 adherentne viazané 1 x 105 až 4 x 105 buniek. 6 * * *
6. Spôsob výroby flavi-vírus/vírusového antigénu alebo arenavírus/vírusového antigénu za použitia matrice podľa niektorého z nárokov 1 až 5, vyznačujúci sa tým, že sa na povrchu závislé permanentné bunky, s výhodou vero-bunky ATTC CCL 81, zaočkujú flavi-vírusom alebo arenavírusom a bunky sa udržiavajú v médiu, bez séra za zachovania ich životaschopnosti, adherentne viazané na matrici, aby s? zachovala tvorba antigénu v bunkách a odovzdávanie antigénu do média, na čo sa antigén obsahujúce médium oddelí od buniek, viazaných na nosiči a známym spôsobom sa spracuje zakoncentrovaním, inaktiváciou a čistením na galenicky prijateľný preparát.
7. Spôsob podľa nároku 6, vyznačujúci sa tým, že sa rozmnožovanie vírusu a tvorba antigénu vykonáva '' kontinuálne po dobu aspoň 5 dní pri teplote v rozmedzí 34 až 37 °C.
8. Spôsob podľa nároku 6, vyznačujúci sa tým, že sa perfúzia vykonáva s perfúznou hodnotou 0,3 až 10 v/v/deň.
9. Spôsob podľa nároku 6, vyznačujúci sa tým, že sa ' používa hustota buniek 2 x 109 až 2 x 1O10 na jeden liter fermentačného objemu, vyššia u fermentora s fluidným lôžkom.
10. Spôsob podľa jedného alebo niekoľkých nárokov 6 až 9, vyznačujúci sa tým, že sa v médiu udržuje koncentrácia vírus/antigén vírusu 1 až 10 pg/ml.
SK6590-90A 1989-12-22 1990-12-21 Serumfree cell cultures useful for antigens preparation and process for producing flavivirus/virus antigen or arenavirus/virus antigen SK659090A3 (en)

Applications Claiming Priority (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
AT2928/89A AT393356B (de) 1989-12-22 1989-12-22 Verfahren zur herstellung von fsme-virus-antigen

Publications (2)

Publication Number Publication Date
SK279236B6 SK279236B6 (sk) 1998-08-05
SK659090A3 true SK659090A3 (en) 1998-08-05

Family

ID=3542524

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
SK6590-90A SK659090A3 (en) 1989-12-22 1990-12-21 Serumfree cell cultures useful for antigens preparation and process for producing flavivirus/virus antigen or arenavirus/virus antigen

Country Status (16)

Country Link
EP (1) EP0506714B1 (sk)
JP (1) JP2633391B2 (sk)
AT (2) AT393356B (sk)
CA (1) CA2071954C (sk)
CZ (1) CZ281804B6 (sk)
DE (1) DE59007659D1 (sk)
DK (1) DK0506714T3 (sk)
ES (1) ES2067916T3 (sk)
FI (1) FI98377C (sk)
HR (1) HRP921354A2 (sk)
HU (1) HU213886B (sk)
NO (1) NO310305B1 (sk)
RU (1) RU2082757C1 (sk)
SK (1) SK659090A3 (sk)
WO (1) WO1991009935A1 (sk)
YU (1) YU242390A (sk)

Families Citing this family (9)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
ATE542891T1 (de) * 1994-11-10 2012-02-15 Baxter Healthcare Sa Verfahren zur herstellung von biologischen produkten in protein-freier kultur
FR2737412B1 (fr) * 1995-08-01 1997-10-24 Pasteur Merieux Serums Vacc Procede de production d'un vaccin contre le virus de l'encephalite japonaise et vaccin obtenu par ce procede
CA2228128C (fr) * 1995-08-01 2011-03-29 Pasteur Merieux Serums & Vaccins Procede de production industrielle d'un vaccin contre l'encephalite japonaise et vaccin obtenu
KR20010032699A (ko) * 1998-10-05 2001-04-25 무따이 마사히꼬 일본 뇌염 바이러스 감염에 대한 불활성 백신을 위한증강된 면역원 및 그 제조방법
AT409379B (de) 1999-06-02 2002-07-25 Baxter Ag Medium zur protein- und serumfreien kultivierung von zellen
US6951752B2 (en) 2001-12-10 2005-10-04 Bexter Healthcare S.A. Method for large scale production of virus antigen
US6855535B2 (en) * 2001-12-10 2005-02-15 Baxter Healthcare S.A. Method of large scale production of Hepatitis A virus
JP2007068401A (ja) * 2003-08-07 2007-03-22 Chemo Sero Therapeut Res Inst 西ナイルウイルスワクチン
US9359629B2 (en) * 2007-12-27 2016-06-07 Baxalta Incorporated Cell culture processes

Family Cites Families (7)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
AT358167B (de) * 1978-12-22 1980-08-25 Immuno Ag Verfahren zur herstellung von fruehsommer- -meningoenzephalitis-virus (fsme-virus)- -vakzinen
SE445116B (sv) * 1979-09-12 1986-06-02 Pharmacia Fine Chemicals Ab Sett att odla celler pa mikroberare med fibronektinytskikt
NO161446C (no) * 1981-03-13 1989-08-16 Damon Biotech Inc Fremgangsmaate for dyrking av celler som er avhengige av forankring.
SE8103138L (sv) * 1981-05-19 1982-11-20 Pharmacia Fine Chemicals Ab Mikroberare for odling av forankringsberoende celler
CA1206900A (en) * 1981-12-21 1986-07-02 Raymond L. Downs Hollow glass shell microcarrier for growth of cell cultures, and method of shell manufacture
AT385203B (de) * 1985-04-26 1988-03-10 Immuno Ag Verfahren zur herstellung einer fruehsommermeningoenzephalitis-virus (fsme-virus)-vakzine
DD274336A3 (de) * 1985-10-03 1989-12-20 Npo Biolar Verfahren zur Gewinnung einer Mikroträgersubstanz für die Zellkultivierung

Also Published As

Publication number Publication date
CZ281804B6 (cs) 1997-02-12
FI922851A0 (fi) 1992-06-18
FI98377B (fi) 1997-02-28
WO1991009935A1 (de) 1991-07-11
ATE113652T1 (de) 1994-11-15
FI922851A (fi) 1992-06-18
EP0506714A1 (de) 1992-10-07
SK279236B6 (sk) 1998-08-05
CA2071954A1 (en) 1991-06-23
CA2071954C (en) 1996-06-18
CZ659090A3 (en) 1996-11-13
FI98377C (fi) 1997-06-10
JP2633391B2 (ja) 1997-07-23
HRP921354A2 (en) 1996-02-29
YU242390A (sh) 1993-05-28
NO922422L (no) 1992-08-17
EP0506714B1 (de) 1994-11-02
AT393356B (de) 1991-10-10
NO310305B1 (no) 2001-06-18
HU213886B (en) 1997-11-28
ES2067916T3 (es) 1995-04-01
JPH05502581A (ja) 1993-05-13
NO922422D0 (no) 1992-06-19
RU2082757C1 (ru) 1997-06-27
HUT65410A (en) 1994-06-28
HU9202009D0 (en) 1992-10-28
ATA292889A (de) 1991-03-15
DE59007659D1 (de) 1994-12-08
DK0506714T3 (da) 1995-04-18

Similar Documents

Publication Publication Date Title
AU2008207588B2 (en) Methods for producing an active constituent of a pharmaceutical or a diagnostic agent in an MDCK cell suspension culture
Van Hemert et al. Homogeneous cultivation of animal cells for the production of virus and virus products
AU2002338666B2 (en) Multiplication of viruses in a cell culture
US4024020A (en) Method of cell culture on polyacrylonitrile surface
HU225791B1 (en) Method for large scale production of virus antigen
US7666654B2 (en) Method for preparing viral material
SK659090A3 (en) Serumfree cell cultures useful for antigens preparation and process for producing flavivirus/virus antigen or arenavirus/virus antigen
US3520972A (en) Feline virus vaccines obtained by propagation and serial passage attenuation of virulent feline viruses in diploid feline embryo tissue cell serial passage subculture strains
IE51454B1 (en) High titer production of hepatitis a virus
US5719051A (en) Perfusion system and a method for the large scale production of virus or virus antigen
US3935066A (en) Cell lines
US4169761A (en) Process for the cultivation of viruses
NO860180L (sk)
Nicholson Growth of fish cell lines on microcarriers
Moran A microcarrier-based cell culture process for the production of a bovine respiratory syncytial virus vaccine
KR20010033558A (ko) 생물학적 제제를 생산하기 위한 세포의 제조
JPH0998778A (ja) マレク病ワクチン
Schmidt et al. Morphology and in vivo growth characteristics of an atypical murine proliferative osseous lesion induced in vitro
RU2816765C1 (ru) Способ получения культуральной инактивированной вакцины против вируса бешенства
RU2142816C1 (ru) Способ получения антигерпетической вакцины и лекарственная форма на ее основе
RU2014084C1 (ru) Способ получения вирионной герпетической вакцины
EP0727484A1 (en) Process for growing virus
CN114306587B (zh) 一种低血清乙型脑炎灭活疫苗的制备方法及乙型脑炎灭活疫苗
JP2011500034A (ja) ロウソニア・イントラセルラリス(lawsoniaintracellularis)を培養する方法
Hayle Culture of respiratory syncytial virus infected diploid bovine nasal mucosa cells on cytodex 3 microcarriers

Legal Events

Date Code Title Description
MM4A Patent lapsed due to non-payment of maintenance fees

Effective date: 20091221