CZ281804B6 - Prostředek pro výrobu antigenů a způsob výroby viru ranné letní meningocefalitidy - Google Patents

Prostředek pro výrobu antigenů a způsob výroby viru ranné letní meningocefalitidy Download PDF

Info

Publication number
CZ281804B6
CZ281804B6 CS906590A CS659090A CZ281804B6 CZ 281804 B6 CZ281804 B6 CZ 281804B6 CS 906590 A CS906590 A CS 906590A CS 659090 A CS659090 A CS 659090A CZ 281804 B6 CZ281804 B6 CZ 281804B6
Authority
CZ
Czechia
Prior art keywords
virus
cells
antigens
antigen
production
Prior art date
Application number
CS906590A
Other languages
English (en)
Inventor
Wolfgang Dr. Mundt
Noel Dr. Barrett
Friedrich Prof. Dr. Dorner
Johann Dr. Eibl
Original Assignee
Immuno Aktiengesellschaft
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Immuno Aktiengesellschaft filed Critical Immuno Aktiengesellschaft
Publication of CZ659090A3 publication Critical patent/CZ659090A3/cs
Publication of CZ281804B6 publication Critical patent/CZ281804B6/cs

Links

Classifications

    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12NMICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
    • C12N7/00Viruses; Bacteriophages; Compositions thereof; Preparation or purification thereof
    • AHUMAN NECESSITIES
    • A61MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61KPREPARATIONS FOR MEDICAL, DENTAL OR TOILETRY PURPOSES
    • A61K39/00Medicinal preparations containing antigens or antibodies
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12NMICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
    • C12N2531/00Microcarriers
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12NMICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
    • C12N2770/00MICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA ssRNA viruses positive-sense
    • C12N2770/00011Details
    • C12N2770/24011Flaviviridae
    • C12N2770/24111Flavivirus, e.g. yellow fever virus, dengue, JEV
    • C12N2770/24151Methods of production or purification of viral material
    • YGENERAL TAGGING OF NEW TECHNOLOGICAL DEVELOPMENTS; GENERAL TAGGING OF CROSS-SECTIONAL TECHNOLOGIES SPANNING OVER SEVERAL SECTIONS OF THE IPC; TECHNICAL SUBJECTS COVERED BY FORMER USPC CROSS-REFERENCE ART COLLECTIONS [XRACs] AND DIGESTS
    • Y02TECHNOLOGIES OR APPLICATIONS FOR MITIGATION OR ADAPTATION AGAINST CLIMATE CHANGE
    • Y02ATECHNOLOGIES FOR ADAPTATION TO CLIMATE CHANGE
    • Y02A50/00TECHNOLOGIES FOR ADAPTATION TO CLIMATE CHANGE in human health protection, e.g. against extreme weather
    • Y02A50/30Against vector-borne diseases, e.g. mosquito-borne, fly-borne, tick-borne or waterborne diseases whose impact is exacerbated by climate change

Landscapes

  • Health & Medical Sciences (AREA)
  • Life Sciences & Earth Sciences (AREA)
  • Chemical & Material Sciences (AREA)
  • Wood Science & Technology (AREA)
  • Genetics & Genomics (AREA)
  • Organic Chemistry (AREA)
  • Engineering & Computer Science (AREA)
  • Bioinformatics & Cheminformatics (AREA)
  • Zoology (AREA)
  • Biochemistry (AREA)
  • General Health & Medical Sciences (AREA)
  • Microbiology (AREA)
  • Immunology (AREA)
  • Biomedical Technology (AREA)
  • Medicinal Chemistry (AREA)
  • General Engineering & Computer Science (AREA)
  • Biotechnology (AREA)
  • Virology (AREA)
  • Micro-Organisms Or Cultivation Processes Thereof (AREA)
  • Medicines Containing Antibodies Or Antigens For Use As Internal Diagnostic Agents (AREA)
  • Preparation Of Compounds By Using Micro-Organisms (AREA)
  • Compounds Of Unknown Constitution (AREA)
  • Peptides Or Proteins (AREA)
  • Immobilizing And Processing Of Enzymes And Microorganisms (AREA)
  • Medicines Containing Material From Animals Or Micro-Organisms (AREA)

Abstract

Řešení se týká prostředku pro výrobu antigenů, který pro produkci flavi-virus/virového antigenu nebo arena-virus/virového antigenu obsahuje matrici s adherentně na ni navázanými bezsérově kultivovanými lidskými nebo zvířecími buňkami, přičemž tyto buňky jsou infikovány flavi-virem nebo arena-virem. Dále se týká způsobu výroby antigenu viru ranné letní meningoencefalitidy (FSME) za použití uvedeného prostředku, při kterém se na povrchu závislé pernamentní buňky, výhodně vero-buňky ATTC CCl 81, zaočkují FSME-virem a buňky se udržují v mediu, prostém séra za zachování jejich životaschopnosti, adherentně vázané na matrici, aby se zachovala tvorba antigenu v buňkách a předávání antigenu do media, načež se antigen obsahující medium oddělí od buněk, vázaných na nosiči a známým způsobem se zpracuje zakoncentrováním, inaktivací a čištěním na galenicky přijatelný preparát. ŕ

Description

Oblast techniky
Vynález se týká prostředku pro výrobu antigenů a způsobu výroby antigenů viru ranné letní meningoencefalitidy (FSME) za použiti uvedeného prostředku.
Dosavadní stav techniky
Infekce vyvolané virem ranné letní meningoencefalitidy /FSME/ se pozorují v Evropě od doby 2. světové války. V Rakousku, v jižním Německu a v Československu se každý rok léčí více set pacientů v důsledku přenosné FSME - infekce.
FSME - vir se řadí do rodiny Flavivirů, dřívější serologické skupiny B arbovirů, která představuje rod virů rodiny Togaviridae.
Proti jednomu z nejdůležitějších a nejčastějších původců encefalitidy u lidí, japonskému B-viru encefalitidy, existují již delší dobu vakciny. Tyto vakciny se získávají z mozku infikovaných myší, čistí a jsou považovány za jisté a bezpečné /Hoke et al., N. Engl. J. med., 319. 608 /1988//.
Od r. 1976 je k dispozici očkovací látka proti FSME a tato je povolena zdravotními úřady, pro výrobu této očkovací látky se kultivuje vir v mozku infikovaných myších mládat, rozmnožuje se v embryonálních buňkách kuřat, inaktivuje formalinem a potom se podrobuje eficientnímu čištění /Heinz et al., J. Med. Virol., 6, 103 /1980//.
V literatuře je popsána řada možností pomnožování arbovirů s ohledem na možnou výrobu očkovací látky. Dnes se nejčastěji používá methoda očkování embryonálních fibroblastů kuřat vypěstovaným virem FSME získaným z mozku myši a kultivací naočkovaných buněk. Tato methoda vyžaduje nákladné čištění antigenů, aby se odstranil komplexní, heterologický biologický materiál a aby se při opakovaném podávání dávek očkovací látky, která z něho byla získána, zabránilo sensitivnímu účinku u očkovaných osob.
Pro výrobu embryonálních buněk kuřat se musí vyjít od SPF /= specific pathogen free = specificky bezpathogenních/ vajec. Tyto SPF-vejce se musí podrobit pro uchování jejich SPF-statutu před každým použitím většímu počtu dlouhotrvajících zkoušek.
Dále vykazují kultury embryonálních buněk kuřat jen malý počet generací při další kultivací, čímž jsou velikosti šarží omezeny, kultivace primární kultury se jen obtížně udržuje sterilní a neexistuje žádná trvalá kvalita primárních buněk s ohledem na pomnožování viru a výrobu antigenů.
Tyto nedostatky nespočívají pouze ve způsobu výroby antigenů FSME-viru při výrobě antigenů.
-1CZ 281804 B6
Vynález si klade za základní úlohu zlepšit výrobu vir/vir antigenů, zejména pak FSME-vir/vir antigenů tak, že se shora uvedené nedostatky odstraní a poskytne se k dispozici způsob kultivace Vir/vir antigenů v buněčných kulturách, který dovolí zejména provádět výrobu ve velkoprovozním měřítku, přičemž se současně kultura uchová jednoduchým způsobem sterilní. Dále se má minimalizovat uvolňování nežádoucích celulárních proteinů do vzrostlé kultury.
Podstata vynálezu
Předmětem předloženého vynálezu je prostředek pro výrobu antigenů, který pro produkci flavi-virus/virového antigenů nebo aréna-virus/virového antigenů obsahuje matrici s adherentně na ni navázanými bezsérové kultivovanými lidskými nebo zvířecími buňkami, přičemž tyto buňky jsou infikovány flavi-virem nebo arena-virem.
Vynález spočívá které se hodí pro na poznatku, pomnožování i v infikovaném stavu adherentně dlouhou dobu produkují kontinuálně média kultury.
že buňky závislé na povrchu, virů, zůstanou samy od sebe vázány na matrici, relativně antigen viru a předávají ho do
Je možné uchovat prostředek podle vynálezu s naadsorbovanými infikovanými buňkami několik dní při teplotě mezi 0 ’C až 8 °C, tedy za podmínek, při kterých je brzděn metabolismus buňky, a tím produkce viru. Tímto způsobem uchovávaný prostředek se může následovně bez problému vnášením do média kultury a nastavením potřebných podmínek pro kultivaci použít pro výrobu antigenů viru. Prostředek podle vynálezu představuje tedy výchozí kulturu, která se může vyrábět s konstantní kvalitou a aktivitou do zásoby a jejíž stav s ohledem na sterilitu se dá snadno přezkoušet a může se použít kdykoliv k výrobě antigenů viru.
Vazba buněk produkujících antigen na nosič dovoluje dále zcela jednoduchou manipulaci s buňkami infikovanými viry a schopnými produkce. Tak je například možné provádět výrobu antigenů viru kontinuálně v perfúzním reaktoru. Oddělení buněk od média obsahujícího antigen se podstatně usnadní jejich vazbou na matrici, čímž se zjednoduší výroba antigenů viru ve velkoprovozním měřítku.
Výhodná forma provedení prostředku podle vynálezu spočívá v tom, že se jako adherentně vázané buňky použijí vero-buňky ATTC CCL 81, které se používají s výhodou pro výrobu antigenů viru ranné letní meningoencefalitidy /FSME/ a proto jsou infikovány virem FSME.
Buňky vázané adherentně na matrici se mohou ale také infikovat flavivirem nebo arenavirem.
Jako materiál pro matrici se dobře osvědčilo sklo, příčně zesítěný dextran, želatina nebo plastická hmota, přičemž matrice se vytvoří nejlépe jako mikronosič, jehož průměr částic se s výhodou pohybuje v oblasti mezi 100 y.m až 300 p.m. Tyto mikronosiče mohou mít hladký povrch nebo povrch s porézní strukturou.
-2CZ 281804 B6
Další výhodná forma provedení prostředku podle vynálezu je charakterizována tím, že na cm2 povrchu matrice je adherentně vázáno mezi 1 χ 105 až 4 χ 105 buněk.
Vynález se týká rovněž způsobu výroby antigenů viru ranné letní memingoencefalitidy /FSME/ za použití matrice podle vynálezu, jehož podstata spočívá v tom, že se permanentní buňky závislé na povrchu, s výhodou vero-buňky ATTC CCL 81, očkují FSME-virem a buňky se uchovávají adherentně vázány na matrici v bezsérovém médiu při zachováni jejich životaschopnosti, aby se udržela tvorba antigenů a předávání antigenů médiu, načež se médium obsahující antigen oddělí od buněk vázaných na nosiči a zpracují se známým způsobem zkoncentrováním, inaktivací a čištěním na galenicky přijatelný preparát.
Linie verobuněk ATTC CCL 81 se získá z tkáně ledvin zeleného kočkodana /cercopithecus aethiops/ a může se uchovávat metabolicky aktivní v bezsérovém médiu. Pro takovéto permanentní linie buněk se jednou založí banka pro mateřskou zásobu buněk a banka pro zpracování mateřských zásobních buněk a provedou se všechna vyšetřeni na kontaminující látky. Tato permanentní linie buněk je tedy tím přesně charakterizována nejen s ohledem na nepřítomnost kontaminujících mikroorganismů, nýbrž i co se týká chování při růstu, kultivaci, chování při pomnožování a - jestliže jsou jednou optimalizovány - lze na ně pohlížet jako na konstantní.
U způsobu podle vynálezu se s výhodou používají verobuňky, které jsou vázány na mikronosič. Tím se může dosáhnout vysoká hustota buněk, kterou nebylo možné u dosud používaných primárních buněčných kultur dosáhnout ani v Roux-lahvich ani v suspensi a velkého zvýšení výtěžku viru a antigenů viru na objem fermentace.
Výhodné provedení způsobu podle vynálezu spočívá v tom, že se pomnožování viru a tvorba antigenů provádí v kontinuálně provozovaném perfúznim reaktoru po dobu nejméně 5 dnů, při teplotě mezi 34 až 37 °C, přičemž perfúze se může provádět s perfúznim výtěžkem 0,3 až 10 v/v/den. V perfúznim reaktoru se může dále dosáhnout hustoty buněk 2 χ 109 až 2 x 1010 buněk na litr fermentačního objemu, poslední u fermentoru s fluidnim ložem.
Pomnožování viru podle vynálezu v perfúzní kultuře umožňuje ve srovnání se šaržovitou kultivací podstatné zkrácení prodlevy viru a antigenů viru v médiu, která je předem dána perfúznim výtěžkem. Pomocí kratší prodlevy dochází k podstatně nižší termické inaktivaci, a tím i k vyšší produktivitě způsobu podle vynálezu. Tak se může v perfúznim médiu získat a uchovat koncentrace antigenů 1 až 10 μg/ml.
Při způsobu podle vynálezu se mohou nastavit jednoduchým způsobem optimální podmínky pro kultivaci. Kromě toho je pro provedení podstatně méně manipulaci než při všech ostatních známých způsobech, což představuje větší bezpečnost při zacházení s infekčním materiálem a umožňuje kontinuální rychlé zpracování viru a antigenů viru z média kultury.
-3CZ 281804 B6
Výroba inokula viru, kultivace buněk pro výrobu viru popřípadě antigenů viru a vlastní výroba viru popřípadě antigenů viru budou dále blíže popsány.
Příklady provedení vynálezu
1. Inokulum viru
Buňky /například Věro ATTC CCL 81/ se kultivují ve válcovitých lahvích při 37 C až do konfluence a infikují se 1 ml suspense virů. Od 2-hého dne po infekci se denně provádí výměna poloviny média za bezsérové médium. Přebytky média od 4. až do
8. dne obsahuji 2 - 5 x 10 p.f-μ. na ml a skladuji se až do svého použití jako inokulum viru při - 20 °C.
2. Kultivace buněk pro výrobu vir/vir antigenů
Vycházeje od ATTC CCL 81 pracovních základních buněk uložených v kapalném dusíku, provede se pomnožení těchto buněk v lahvích pro tkáně kultur až se dosáhne takového množství buněk, které dovolí inokulovat fermentor. Další kultivace buněk probíhá ve fermentačních nádobách při 37 ’C, přičemž má být adherentně rostoucím pracovním základním buňkám k dispozici co největší povrch pro adhezi /přilnutí/. Takovéto velké povrchy se nabízejí při použiti válcových lahví ze skla nebo polystyrenu nebo při použití mikronosičů /MC/. Nej lepší jsou MC z příčně zesilovaného dextranu s velikostí mezi 170 μιη až 250 μπι.
MC s naadsorbovanými základními buňkami se kultivuje při 37 ’C až do hustoty buněk 1.105 - 4.105 buněk na cm2. Tato hustota buněk je dosažena obecně po šesti dnech. Během kultivace dojde k dokonalému zárůstu mikronosiče buňkami, přičemž nakonec mohou jednotlivé mikronosiče srůst pomocí svých buněčných trávníků lpících na povrchu dohromady za tvorby skupin.
3. Výroba vir/vir antigenů
Poté co se dosáhla uvedená hustota buněk, infikují se pro výrobu matrice podle vynálezu buňky vázané na MC inokulem viru /1 - 0,01 pfu/buňku, s výhodou 0,1 pfu/buňku/. Matrice podle vynálezu se může skladovat několik dní při teplotě mezi 0 °C až 8 ’C a ihned použít pro výrobu antigenů viru.
Pro výrobu antigenů se MC s naadsorbovanými infikovanými buňkami vnesou do perfúzního reaktoru. Od tohoto okamžiku virové infekce se v kultuře používá pouze bezsérové médium, které se čerpá kontinuálně perfúzním reaktorem, zatím co se buňky kultivované na mikronosičích zadržují pomocí retenčního zařízení v reaktoru. V odtékajícím kultivačním médiu kultury se nachází od
2. dne po infekci antigenů viru ve vysoké koncentraci a může se z něho získávat kontinuálně minimálně 10 dnů.
Pomocí následujících příkladů bude způsob podle vynálezu ještě dále vysvětlen. Stanovení antigenů viru se provádělo ve všech příkladech pomocí ELISY pro stanovení antigenů.
-4CZ 281804 B6
Přiklad 1
Vero-buňky ATCC CCL 81 byly kultivovány v šestilitrovém fermentoru na mikronosiči /Cytodex 3 firmy Pharmacia/ při 37 °C až do počtu buněk 2 χ 106 na ml kultivačního média /DMEM = Dulbecco s Eagle Medium/ a a/ infikuje se FSME virem /0,1 pfu/buňku/ a provede se pomnožení viru po šaržích
Tabulka 1
dni po infekci antigen viru μg/ml
2 0,20
3 0,70
4 1,60
5 2,70
6 4,00
7 3,80
8 2,90
Produktivita činila pro 1 fermentační objem 4 mg antigenu viru.
infikuje se b//FSME-virem /0,1 pfu/buňka/ a kultivační médium /DMEM/ perfunduje kontinuálně s objemem 0,5/objem fermentoru/den.
Tabulka 2
dni po infekci antigen viru μα/ιηΐ
2 0,30
3 1,60
4 4,50
5 4,50
6 2,50
7 3,20
8 2,90
9 2,50
10 2,30
Produktivita činila na 1 fermentační objem 13,7 mg antigenu viru.
c/ infikuje se FSME-virem /0,1 pfu/buňku/ a kultivační médiu /DMEM/ kontinuálně perfunduje s 1 objemem/objem fermentoru/den .
-5CZ 281804 B6
Tabulka 3
dni po infekci antigen viru úg/ml
2 0,45
3 1,40
4 2,00
5 2,00
6 1,70
7 1,60
8 1,10
9 1,10
10 0,90
Produktivita činila na 1 fermentační objem 12,4 mg antigenů viru.
Příklad 2
Vero-buňky /ATCC CCL 81/ byly kultivovány ve 40ti litrovém fermentoru na mikronosičích /Cytodex 3 firmy Pharmacia/ při 37 C až do počtu buněk 2 x 106 buněk/ml a po infekci FSME-virem /0,1 pfu/buňka/ perfundovány kontinuálně médiem /DMEM/ /0,33 obj./obj. fermentoru/den/.
Tabulka 4
dni po infekci antigen viru μg/ml
2 1,60
3 3,50
4 5,00
5 4,30
6 4,00
7 2,90
8 2,70
9 2,10
10 2,00
Produktivita činila na 1 viru.
fermentační objem 10,7 mg antigenů
Přiklad 3
Vero-buňky /ATCC CCL 81/ byly kultivovány ve 40ti litrovém fermentoru na mikronosičích /Cytodex 3 firmy Pharmacia/ při 37 ’C až do počtu buněk 3 x 106 buněk/ml a po infekci FSME-virem /0,1 pfu/buňka/ perfundovány kontinuálně médiem /DMEM/ /1 obj./obj. fermentoru/den/.
-6CZ 281804 B6
Tabulka 5
dni po infekci antigen viru ůg/ml
2 1,10
3 3,80
4 3,90
5 3,00
6 2,30
7 2,20
8 2,00
9 3,15 * *
10 2,30
* * Výtěžek perfúze byl redukován na 0,5 V/objem fermentoru/den.
Produktivita činila na 1 fermentační objem 21,7 mg antigenu viru.
Příklad 4
Vero-buňky /ATCC CCL 81/ byly kultivovány ve 150ti litrovém fermentoru na mikronosičich /Cytodex firmy Pharmacia/ při 37 “C až do počtu buněk 2 x 106/ml a po infekci FSME-virem /0,1 pfu/buňka/ perfunduje kontinuálně médiem /DMEM/ /0,33 obj./objem fermentoru/den/.
Tabulka 6
dni po infekci antigen viru μg/ml
2 0,20
3 1,90
4 2,40
5 4,80
6 5,40
7 4,10
8 4,40
9 3,20
10 4,50
Produktivita činila na 1 fermentační objem 14,7 mg antigenu viru.

Claims (10)

  1. PATENTOVÉ NÁROKY
    1. Prostředek pro výrobu antigenů, vyznačující se tím, že pro produkci flavi-virus/virového antigenů nebo arena-virus/virového antigenů obsahuje matrici s adherentně na ni navázanými bezsérové kultivovanými lidskými nebo zvířecími buňkami, přičemž tyto buňky jsou infikovány flavi-virem nebo arena-virem.
  2. 2. Prostředek podle nároku 1, vyznačující se tím, že jako adherentně vázané buňky obsahuje vero-buňky ATCC CCL 81.
  3. 3. Prostředek podle nároků 1 nebo 2, vyznačující se tím, že matrice sestává ze skla, příčné zesitěného dextranu, želatiny nebo plastu.
  4. 4. Prostřed podle nároku 3, vyznačující se tím, že matrice je vytvořena jako mikronosič.
  5. 5. Prostředek podle jednoho nebo několika nároků 1 až 4, vyznačující se tím, že na povrchu matrice je na jednom cm2 adherentně vázáno 1 x 105 až 4 x 105 buněk.
  6. 6. Způsob výroby antigenů viru ranné letní meningoencefalitidy (FSME) za použití prostředku podle některého z nároků 1 až 5, vyznačující se tím, že se na povrchu závislé permanentní buňky, výhodné vero-buňky ATTC CCL 81, zaočkují FSME-virem a buňky se udržují v médiu, prostém séra za zachováni .jejich životaschopnosti, adherentně vázané na matrici, aby se zachovala tvorba antigenů v buňkách a předávání antigenů do média, načež se antigen obsahující médium oddělí od buněk, vázaných na nosiči a známým způsobem se zpracuje zakoncentrováním, inaktivací a čištěním na galenicky přijatelný preparát.
  7. 7. Způsob podle nároku 6, vyznačující se tím, že se rozmnožování viru a tvorba antigenů provádí v kontinuálně pracujícím perfúzním reaktoru po dobu alespoň 5 dnů při teplotě v rozmezí 34 až 37 “C.
  8. 8. Způsob podle nároku 6, vyznačující se tím, že se perfúze provádí s perfúzní hodnotou 0,3 až 10 v/v/den.
  9. 9. Způsob podle nároku 6, vyznačující se tím, že se v perfúzním reaktoru používá hustota buněk 2 x 108 9 až 2 x 103·0 buněk pro jeden litr fermentačniho objemu, vyšší u fermentoru s fluidním ložem.
    -8CZ 281804 B6
  10. 10.Způsob podle jednoho nebo několika nároku 6 až 9, vyznačující se tím, že se v médiu udržuje koncentrace vir/antigen viru 1 až 10 μg/ml.
CS906590A 1989-12-22 1990-12-21 Prostředek pro výrobu antigenů a způsob výroby viru ranné letní meningocefalitidy CZ281804B6 (cs)

Applications Claiming Priority (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
AT2928/89A AT393356B (de) 1989-12-22 1989-12-22 Verfahren zur herstellung von fsme-virus-antigen

Publications (2)

Publication Number Publication Date
CZ659090A3 CZ659090A3 (en) 1996-11-13
CZ281804B6 true CZ281804B6 (cs) 1997-02-12

Family

ID=3542524

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
CS906590A CZ281804B6 (cs) 1989-12-22 1990-12-21 Prostředek pro výrobu antigenů a způsob výroby viru ranné letní meningocefalitidy

Country Status (16)

Country Link
EP (1) EP0506714B1 (cs)
JP (1) JP2633391B2 (cs)
AT (2) AT393356B (cs)
CA (1) CA2071954C (cs)
CZ (1) CZ281804B6 (cs)
DE (1) DE59007659D1 (cs)
DK (1) DK0506714T3 (cs)
ES (1) ES2067916T3 (cs)
FI (1) FI98377C (cs)
HR (1) HRP921354A2 (cs)
HU (1) HU213886B (cs)
NO (1) NO310305B1 (cs)
RU (1) RU2082757C1 (cs)
SK (1) SK659090A3 (cs)
WO (1) WO1991009935A1 (cs)
YU (1) YU242390A (cs)

Families Citing this family (9)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
ATE542891T1 (de) * 1994-11-10 2012-02-15 Baxter Healthcare Sa Verfahren zur herstellung von biologischen produkten in protein-freier kultur
FR2737412B1 (fr) * 1995-08-01 1997-10-24 Pasteur Merieux Serums Vacc Procede de production d'un vaccin contre le virus de l'encephalite japonaise et vaccin obtenu par ce procede
CA2228128C (fr) * 1995-08-01 2011-03-29 Pasteur Merieux Serums & Vaccins Procede de production industrielle d'un vaccin contre l'encephalite japonaise et vaccin obtenu
KR20010032699A (ko) * 1998-10-05 2001-04-25 무따이 마사히꼬 일본 뇌염 바이러스 감염에 대한 불활성 백신을 위한증강된 면역원 및 그 제조방법
AT409379B (de) 1999-06-02 2002-07-25 Baxter Ag Medium zur protein- und serumfreien kultivierung von zellen
US6951752B2 (en) 2001-12-10 2005-10-04 Bexter Healthcare S.A. Method for large scale production of virus antigen
US6855535B2 (en) * 2001-12-10 2005-02-15 Baxter Healthcare S.A. Method of large scale production of Hepatitis A virus
JP2007068401A (ja) * 2003-08-07 2007-03-22 Chemo Sero Therapeut Res Inst 西ナイルウイルスワクチン
US9359629B2 (en) * 2007-12-27 2016-06-07 Baxalta Incorporated Cell culture processes

Family Cites Families (7)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
AT358167B (de) * 1978-12-22 1980-08-25 Immuno Ag Verfahren zur herstellung von fruehsommer- -meningoenzephalitis-virus (fsme-virus)- -vakzinen
SE445116B (sv) * 1979-09-12 1986-06-02 Pharmacia Fine Chemicals Ab Sett att odla celler pa mikroberare med fibronektinytskikt
NO161446C (no) * 1981-03-13 1989-08-16 Damon Biotech Inc Fremgangsmaate for dyrking av celler som er avhengige av forankring.
SE8103138L (sv) * 1981-05-19 1982-11-20 Pharmacia Fine Chemicals Ab Mikroberare for odling av forankringsberoende celler
CA1206900A (en) * 1981-12-21 1986-07-02 Raymond L. Downs Hollow glass shell microcarrier for growth of cell cultures, and method of shell manufacture
AT385203B (de) * 1985-04-26 1988-03-10 Immuno Ag Verfahren zur herstellung einer fruehsommermeningoenzephalitis-virus (fsme-virus)-vakzine
DD274336A3 (de) * 1985-10-03 1989-12-20 Npo Biolar Verfahren zur Gewinnung einer Mikroträgersubstanz für die Zellkultivierung

Also Published As

Publication number Publication date
FI922851A0 (fi) 1992-06-18
FI98377B (fi) 1997-02-28
WO1991009935A1 (de) 1991-07-11
ATE113652T1 (de) 1994-11-15
FI922851A (fi) 1992-06-18
EP0506714A1 (de) 1992-10-07
SK279236B6 (sk) 1998-08-05
CA2071954A1 (en) 1991-06-23
CA2071954C (en) 1996-06-18
CZ659090A3 (en) 1996-11-13
SK659090A3 (en) 1998-08-05
FI98377C (fi) 1997-06-10
JP2633391B2 (ja) 1997-07-23
HRP921354A2 (en) 1996-02-29
YU242390A (sh) 1993-05-28
NO922422L (no) 1992-08-17
EP0506714B1 (de) 1994-11-02
AT393356B (de) 1991-10-10
NO310305B1 (no) 2001-06-18
HU213886B (en) 1997-11-28
ES2067916T3 (es) 1995-04-01
JPH05502581A (ja) 1993-05-13
NO922422D0 (no) 1992-06-19
RU2082757C1 (ru) 1997-06-27
HUT65410A (en) 1994-06-28
HU9202009D0 (en) 1992-10-28
ATA292889A (de) 1991-03-15
DE59007659D1 (de) 1994-12-08
DK0506714T3 (da) 1995-04-18

Similar Documents

Publication Publication Date Title
Plotkin et al. The in vitro growth of rubella virus in human embryo cells
EP2454364B1 (en) Production of polio virus at high titers for vaccine production
Van Hemert et al. Homogeneous cultivation of animal cells for the production of virus and virus products
US3520972A (en) Feline virus vaccines obtained by propagation and serial passage attenuation of virulent feline viruses in diploid feline embryo tissue cell serial passage subculture strains
JP2633392B2 (ja) ウイルス/ウイルス抗原を生産するためのバイオマス
EP2075005B1 (en) Ipv-dpt vaccine
CZ281804B6 (cs) Prostředek pro výrobu antigenů a způsob výroby viru ranné letní meningocefalitidy
US5719051A (en) Perfusion system and a method for the large scale production of virus or virus antigen
US3935066A (en) Cell lines
US4169761A (en) Process for the cultivation of viruses
US4021302A (en) Cell cultures
NO860180L (cs)
US3228840A (en) Virus culture
RU2142816C1 (ru) Способ получения антигерпетической вакцины и лекарственная форма на ее основе
CN1513553B (zh) Vero细胞森林脑炎灭活疫苗
Mifune et al. Susceptibility of various cell lines to rabies virus
CN114306587B (zh) 一种低血清乙型脑炎灭活疫苗的制备方法及乙型脑炎灭活疫苗
RU2129876C1 (ru) Живая вакцина для профилактики кори
Gomes et al. Propagation of Peste des petits ruminants (PPR) Virus in Vero Cells for Vaccine Production using Tide Motion Bioreactor
RU2014084C1 (ru) Способ получения вирионной герпетической вакцины
FRAZATTI GALLINA et al. Obtention of rabies antigen through BHK21 cells adhered to microcarriers
NO751303L (cs)
SK279038B6 (sk) Inaktivovaná adsorbátová vakcína proti besnote a s

Legal Events

Date Code Title Description
IF00 In force as of 2000-06-30 in czech republic
MM4A Patent lapsed due to non-payment of fee

Effective date: 20091221