PL123822B1 - Process for preparing novel tripeptideamides - Google Patents

Process for preparing novel tripeptideamides Download PDF

Info

Publication number
PL123822B1
PL123822B1 PL1980225269A PL22526980A PL123822B1 PL 123822 B1 PL123822 B1 PL 123822B1 PL 1980225269 A PL1980225269 A PL 1980225269A PL 22526980 A PL22526980 A PL 22526980A PL 123822 B1 PL123822 B1 PL 123822B1
Authority
PL
Poland
Prior art keywords
group
solution
mmol
general formula
dissolved
Prior art date
Application number
PL1980225269A
Other languages
English (en)
Other versions
PL225269A1 (pl
Inventor
Lajos Kisfaludy
Tamas Szirtes
Lajos Balaspiri
Eva Palosi
Laszlo Sporny
Adam Sarkadi
Original Assignee
Richter Gedeon Vegyeszet
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Richter Gedeon Vegyeszet filed Critical Richter Gedeon Vegyeszet
Publication of PL225269A1 publication Critical patent/PL225269A1/xx
Publication of PL123822B1 publication Critical patent/PL123822B1/pl

Links

Classifications

    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C07ORGANIC CHEMISTRY
    • C07KPEPTIDES
    • C07K5/00Peptides containing up to four amino acids in a fully defined sequence; Derivatives thereof
    • C07K5/04Peptides containing up to four amino acids in a fully defined sequence; Derivatives thereof containing only normal peptide links
    • C07K5/08Tripeptides
    • C07K5/0821Tripeptides with the first amino acid being heterocyclic, e.g. His, Pro, Trp
    • C07K5/0825Tripeptides with the first amino acid being heterocyclic, e.g. His, Pro, Trp and Glp-amino acid; Derivatives thereof
    • AHUMAN NECESSITIES
    • A61MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61PSPECIFIC THERAPEUTIC ACTIVITY OF CHEMICAL COMPOUNDS OR MEDICINAL PREPARATIONS
    • A61P25/00Drugs for disorders of the nervous system
    • AHUMAN NECESSITIES
    • A61MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61PSPECIFIC THERAPEUTIC ACTIVITY OF CHEMICAL COMPOUNDS OR MEDICINAL PREPARATIONS
    • A61P25/00Drugs for disorders of the nervous system
    • A61P25/26Psychostimulants, e.g. nicotine, cocaine
    • AHUMAN NECESSITIES
    • A61MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61PSPECIFIC THERAPEUTIC ACTIVITY OF CHEMICAL COMPOUNDS OR MEDICINAL PREPARATIONS
    • A61P5/00Drugs for disorders of the endocrine system
    • A61P5/10Drugs for disorders of the endocrine system of the posterior pituitary hormones, e.g. oxytocin, ADH
    • A61P5/12Drugs for disorders of the endocrine system of the posterior pituitary hormones, e.g. oxytocin, ADH for decreasing, blocking or antagonising the activity of the posterior pituitary hormones
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C07ORGANIC CHEMISTRY
    • C07KPEPTIDES
    • C07K5/00Peptides containing up to four amino acids in a fully defined sequence; Derivatives thereof
    • C07K5/04Peptides containing up to four amino acids in a fully defined sequence; Derivatives thereof containing only normal peptide links
    • C07K5/06Dipeptides
    • C07K5/06008Dipeptides with the first amino acid being neutral
    • C07K5/06017Dipeptides with the first amino acid being neutral and aliphatic
    • C07K5/06034Dipeptides with the first amino acid being neutral and aliphatic the side chain containing 2 to 4 carbon atoms
    • C07K5/06043Leu-amino acid
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C07ORGANIC CHEMISTRY
    • C07KPEPTIDES
    • C07K5/00Peptides containing up to four amino acids in a fully defined sequence; Derivatives thereof
    • C07K5/04Peptides containing up to four amino acids in a fully defined sequence; Derivatives thereof containing only normal peptide links
    • C07K5/06Dipeptides
    • C07K5/06008Dipeptides with the first amino acid being neutral
    • C07K5/06017Dipeptides with the first amino acid being neutral and aliphatic
    • C07K5/06034Dipeptides with the first amino acid being neutral and aliphatic the side chain containing 2 to 4 carbon atoms
    • C07K5/06052Val-amino acid
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C07ORGANIC CHEMISTRY
    • C07KPEPTIDES
    • C07K5/00Peptides containing up to four amino acids in a fully defined sequence; Derivatives thereof
    • C07K5/04Peptides containing up to four amino acids in a fully defined sequence; Derivatives thereof containing only normal peptide links
    • C07K5/06Dipeptides
    • C07K5/06139Dipeptides with the first amino acid being heterocyclic
    • C07K5/06147Dipeptides with the first amino acid being heterocyclic and His-amino acid; Derivatives thereof
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C07ORGANIC CHEMISTRY
    • C07KPEPTIDES
    • C07K5/00Peptides containing up to four amino acids in a fully defined sequence; Derivatives thereof
    • C07K5/04Peptides containing up to four amino acids in a fully defined sequence; Derivatives thereof containing only normal peptide links
    • C07K5/06Dipeptides
    • C07K5/06139Dipeptides with the first amino acid being heterocyclic
    • C07K5/06173Dipeptides with the first amino acid being heterocyclic and Glp-amino acid; Derivatives thereof
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C07ORGANIC CHEMISTRY
    • C07KPEPTIDES
    • C07K5/00Peptides containing up to four amino acids in a fully defined sequence; Derivatives thereof
    • C07K5/04Peptides containing up to four amino acids in a fully defined sequence; Derivatives thereof containing only normal peptide links
    • C07K5/08Tripeptides
    • C07K5/0821Tripeptides with the first amino acid being heterocyclic, e.g. His, Pro, Trp
    • AHUMAN NECESSITIES
    • A61MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61KPREPARATIONS FOR MEDICAL, DENTAL OR TOILETRY PURPOSES
    • A61K38/00Medicinal preparations containing peptides

Landscapes

  • Chemical & Material Sciences (AREA)
  • Organic Chemistry (AREA)
  • Health & Medical Sciences (AREA)
  • Medicinal Chemistry (AREA)
  • General Health & Medical Sciences (AREA)
  • Life Sciences & Earth Sciences (AREA)
  • Biochemistry (AREA)
  • Genetics & Genomics (AREA)
  • Biophysics (AREA)
  • Molecular Biology (AREA)
  • Proteomics, Peptides & Aminoacids (AREA)
  • Public Health (AREA)
  • General Chemical & Material Sciences (AREA)
  • Animal Behavior & Ethology (AREA)
  • Bioinformatics & Cheminformatics (AREA)
  • Pharmacology & Pharmacy (AREA)
  • Veterinary Medicine (AREA)
  • Nuclear Medicine, Radiotherapy & Molecular Imaging (AREA)
  • Engineering & Computer Science (AREA)
  • Chemical Kinetics & Catalysis (AREA)
  • Biomedical Technology (AREA)
  • Neurology (AREA)
  • Neurosurgery (AREA)
  • Diabetes (AREA)
  • Psychiatry (AREA)
  • Endocrinology (AREA)
  • Medicines That Contain Protein Lipid Enzymes And Other Medicines (AREA)
  • Peptides Or Proteins (AREA)

Description

Przedmiotem wynalazku jest sposób wytwarzania nowych trójpeptydoamidów o ogólnym wzorze X-Y-W- -NH3, w którym X oznacza grupe L-piroglutamylowa, D-piroglutamylowa, L^2-ketoimidazolidyno-4-karbony- lowa, L-6-ketopipekolilowa, L-tiazolidyno-4-karbony- lowa, L-prolilowa lub orotylowa, Y oznacza grupe L-leucylowa, L-norwalilowa lub L-histydylowa, W oznacza grupe L-prolilowa, D-prolilowa, L-tiazolidy- no-4-karbonylowa, L-homoprolilowa, L-lcucylowa, L- -izoleucylowa, L-metionylowa, L-pipekolilowa lub D- -pipekolilowa albo grupa o wzorze -W-NH2 razem oznacza gtupe pirolidylowa lub piperydylowa, przy czym jezeli X oznacza grupe L-piroglutamylowa a Y oznacza giupe L-histydylowa, wówczas W ma znacze¬ nie inne niz grupa L-prolilowa. Zwiazki te dzialaja na centralny uklad nerwowy.Nowe pochodne trójpeptydów odpowiadajace po- wyzej okreslonemu wzorowi ogólnemu stanowia zwiazki analogiczne do L-piroglutamylo-L-histydylo-L-prolina- midów (Glp-His-Pro-NH2) znanych pod nazwa an¬ gielska „thyrotropin-releasing hoimone" (TRH), lecz w których niektóre grupy aminokwasowe wymienione sa na inne gtupy aminokwasowe wyszczególnione w powyzszej definicji wzoru ogólnego lub grupa -W-NH3 na grupe pirolidylowa lub piperydylowa.Istnienie trójpeptydu TRH bylo znane juz w latach szescdziesiatych ale ich budowa zostala opisana do¬ piero w latach 1969—1970 niezaleznie przez dwie gru¬ py badawcze [Bowers, C.Y., etc. Ensocrinology 86, 30 20 25 1143 (1970); R. Burgus etc. C.R., Acad. Sci (Paris) 269, 1870 (1969)].Trójpeptyd TRH zostal dotychczas opisany jako czynnik regulujacy uwalnianie TSH (hormon pobu¬ dzajacy tarczyce) w leczeniu niskiego cisnienia u ssa¬ ków. Badania nad tymi hormonami zostaly utorowane w nowym kierunku wówczas, gdy zostal poznany fakt, ze biologiczne dzialanie tego trójpeptydu nie jest ogra¬ niczone do stymulowania uwalniania hormonu tyro- tropinowego lecz dziala on takze na centralny uklad nerowy [N.P. Plotnikoff i inni, Science 178, 417/ /1972); AJ. Prangs i inni, Lancet 2,999 (1972)].Zostalo stwierdzone nastepnie, ze TRH niezaleznie od funkcji hormonlanej takze obniza znacznie okres czasu dzialania barbiiutanów i alkoholu na sen a po¬ nadto redukuje dzialanie róznych leków wywolujacych obnizenie temperatury ciala i podwyzsza zdolnosci ruchowe.Jeszcze inna wazna funkcja TRH wplywu na cen¬ tralny uklad nerwowy jest zahamowanie katalepsji wywolywanej przez chloroperidol. Z punktu widzenia praktyki terapeutycznej pozadane jest takze wytwa¬ rzanie takiego zwiazku analogicznego do TRH, który tylko slabo dziala na niskie cisnienie krwi ale przy tym wykazuje dzialanie równe lub przewyzszajace dziala¬ nie znanych zwiazków TRH na centralny uklad ner¬ wowy. W tym celu tego typu zwiazki zostaly opisane w opisach patentowych RFN DOS nr nr 2343035, 2343037, 2449167, 2514381, 2609154, 2639393 jak równiez w opisie patentowym Belgii nr 819198. Jednak- 123 822123 822 3 ze dotychczasowe badania w tym kierunku [AJ. Prange i inni, „The Role of Hormones in Depresion" Life ^^^^y^r^^PP7) * A-w- SchaUy i inni „Hypo- | thalamic Kegulatoryf Hormones" Ann. Reg. Biochem. 147,89 (1978)], nic mogly prowadzic do zadawalaja- jcyom*dW$u»fltów^pojl I kazdym wzgledem z punktu wi- I Obecnie stwierdzono, te przez systematyczna wy¬ miane niektórych aminokwasów* które moga byc od* AwWwt z czasteczek TRH zbudowanych z 3 amino¬ kwasów, dzialanie hormonalne trójpeptydów zostaje zupelnie zlikwidowane lub co najmniej znacznie zre¬ dukowane, przy czym dzialanie na centralny uklad nerwowy zostaje zachowane lub nawet znacznie zwiek¬ szone.Szczególnie korzystne sa te pochodne trójpeptydów w których zamiast grupy histydynowej w polozeniu 2 znajduje sie alifatyczna grupa aminokwasowa o pros¬ tym lub rozgalezionym lancuchu weglowym. Dla zwiekszenia selektywnosci biologicznego dzialania oka¬ zalo sie korzystne równiez wprowadzenie do czastecz¬ ki grupy kwasu 6-ketopipekolinowego zamiast ukladu pierscieniowego piroglutamylowego.Pochodne trójpeptydów o wzorze X-Y-W-NHa» w którym X, Y i W maja powyzej podane znaczenie, wytwarza sie z odpowiednich aminokwasów albo po¬ chodnych aminokwasów metodami znanymi w chemii peptydów.Zgodnie z wynalazkiem, wychodzac ze zwiazków o ogólnym wzorze W-NHW w którym W ma wyzej podane znaczenie wytwarza sie etapami zwiazek o wzo¬ rze X-Y-W-NHjprzez zastosowanie znanych w chemii peptydów metod sprzegania, przy czym zwiazek o ogól¬ nym wzorze W-NH„ w którym W ma wyzej podane znaczenie, acyluje sie zabezpieczonym estrem piecio- fluorófenylowym aminokwasu o ogólnym wzorze BOC- -Y-OPFP, w którym BOC oznacza grupe Ill-rzed, butoksykarbonylowa, OPFP oznacza grupe piecio- fluorofenoksylowa a Y ma wyzej podane znaczenie, i z tak otrzymanego zabezpieczonego dwupeptydu o ogólnym wzorze BOC-Y-W-NHa, w którym BOC, Y 1 W maja wyzej podane znaczenie, uwalnia sie przez hydrolize kwasowa dwupeptyd o ogólnym wzorze H-Y-W-NH2w którym Y, W maja wyzej podane zna¬ czenie, i ten dwupeptyd acyluje sie zabezpieczonym estrem pieciofluorofenylowym aminokwasu o ogólnym wzorze Z-X-OPFP,w którym Z oznacza grupe benzylo- ksykarbonylówa a X i OPFP maja wyzej podane zna¬ czenie, i w otrzymanym zabezpieczonym trójpepty- coamidzie o ogólnym wzorze 2-X-Y-W-NH3Jw któ¬ rym Z, X, Y i W maja wyzej podane znaczenie, odszcze- pia sie przez katalityczne uwodornienie grupe zabez¬ pieczajaca Z.Pochodne trójpeptydów wytwarza sie równiez w ten sposób, ze zwiazek o ogólnym wzorze W-KHj, w któ¬ rym W ma wyzej podane znaczenie, acyluje sie zabez¬ pieczonym azydkiem dwupeptydu o ogólnym wzorze Z-X-Y-NMw którym Z, X i Y maja wyzej podane zna¬ czenie, i w otrzymanym zabezpieczonym trójpeptydo- amidzie o ogólnym wzorze Z-X-Y-W-NH2w którym Z, X I Y i M maja wyzej podane znaczenie, odszcze- pia sie przez katalityczne uwodornienie grupe zabez¬ pieczajaca 2.Przy zastosowaniu metody stopniowego budowania czasteczki korzystnie stosuje sie nadmiar wyjsciowego 4 zwiazku o ogólnym wzorze W-NH3 w reakcji z akty¬ wowana pochodna, zwlaszcza z pieciofluorofenylowym estrem zabezpieczonego aminokwasu o ogólnym wzorze BOC-Y-OH, w którym BOC oznacza zabezpieczajaca 5 grupe Hlrz.-butylokarbonylowa, przy czym odpowied¬ nia pochodna dwupeptydowa o ogólnym wzorze BOC- -Y-W-NH3 mozna zbudowac stosujac inne metody sprzegania, np. z mieszanymi bezwodnikami alba z wolnymi kwasami w obecnosci dwucykloheksylokar- io bodwuimidu.Pochodna dwupeptydowa o ogólnym wzorze H-Y- -W-NH2, uwolniona z otrzymanej zabezpieczonej po¬ chodnej dwupeptydowej BOC-Y-W-NH3 przez hy¬ drolize kwasowa, korzystnie poddaje sie reakcji z piecio- 25 fluorofenyloestrem zabezpieczonego aminokwasu o ogól¬ nym wzorze Z-X-OH, przy czym pózniej w opisany wyzej sposób mozna wytworzyc odpowiednia zabez¬ pieczona pochodna trójpeptydowa o ogólnym wzorze Z-X-Y-W-NH3.I0 Acylowanie wyjsciowego zwiazku W-NH2 za po¬ moca azydku otrzymywanego z hydrazydków o ogól¬ nym wzorze Z-X-Y-NH-NH3 ma te zalete, ze ten jiydrazydek daje sie latwo wykrystalizowac i w zwiaz¬ ku z tym jest produktem przejsciowym dajacym sie 25 wyodrebnic w bardzo czystej postaci.Zwiazki o ogólnym wzorze X-Y-W-NH3 zawiera¬ jace w polozeniu X grupe piroglutamylowa moga byc takze budowane w ten sposób, ze pierscien pirogluta- mylowy dopiero w ostatnim etapie syntezy tworzy sie 30 z grupy glutaminowej. Dzieje sie tak dlatego, ze glu¬ tamine wprowadza sie do czasteczki jako trzeci amino¬ kwas i w ten sposób otrzymany trójpeptyd o ogólnym wzorze Glu-Y-W-NH2ogrzewa sie kilka minut w kwa¬ sie octowym. 35 Z zabezpieczonych pochodnych trójpeptydów o ogól¬ nym wzorze Z-X-Y-W-NH3wytwarzanych za pomoca jednej z powyzej opisanych metod mozna wytwarzac pozadane koncowe produkty korzystnie przez kata¬ lityczne uwodornienie. Otrzymany produkt koncowy 40 mozna oczyszczac przez prosta krystalizacje lub wy¬ tracanie w razie potrzeby chromatograficznie. Ewen¬ tualnie produkt koncowy, po usunieciu produktów ubocznych, mozna takze przygotowac przez proste liofilizowanie. 41 Wytworzone sposobem wedlug wynalazku pochodne trójpeptydów o ogólnym wzorze X-Y-W-NH2zostaly przebadane pod wzgledem ich farmakologicznego dzialania wedlug nizej opisanych metod biologicznych. 1. Hamowanie katalepsji u szczurów wywolanej 50 Haloperidolem. 40 mg/kg Haloperidolu, to znaczy 4- (p-chlorofenylo)-l [3- (p-fluorobenzoilo)-propylo] - -piperydynohi-4 podano podskórnie zwierzetom i po 120 minutach stwierdzono wystapienie katalepsji. Nas¬ tepnie szczury podzielono w grupy po 10 sztuk i poda- 55 wano im dozyme dawki trójpeptydów analogów TRH.Zwierzeta badanej grupy potraktowano fizjologicznym roztworem soli kuchennej- Po uplywie 15,3Q» tO i 130 minut przebadano katakptyczne dzialanie poszczegól¬ nych zwiazków. Te zwierzeta uwazano za kataleptyo- 10 ne, które po ustawieniu przednimi lapami aa slupku o wysokosci 7 cnr, w ciagu 30 sekund, nie skorygowaly swej pozycji.Ze zwierzat, które nie wykazaly objawów katalepsji, zostaly wyznaczone odpowiednie wartosci ED^ dla 55 poszczególnych zwiazków za pomoca analizy przez123 8U 5 sondowanie. Próby te zastaly przeprowadzone na meskich osobnikach szczurów. Wistftf ó masie ldO-^- --¦180 g. 2. Wzmaganie aktywnosci ruchowej myszy wywo¬ lanej pfczez L-Dopa. Zwierzetom podawano doótrzew- nówb najpierw pó 40 mg/kg N-metylo-N-piopargilo- -benzytóaininy (Pargilina), nastepnie 20 mg/kg TRH, wzglednie taka sama dawke badanego nowego trój- peptydu i w koncu 100 mg/kg L-Dopa. Po 30, 60 i 90 minutach zmierzono ruchowa aktywnosc zwierzat.Uzyskanc wartosci zostaly podane w ponizszej tablicy W procentach w stosunku do zwierzat potraktowanych ttójpeptydem TRH. Do tych prób uzyto po 15 meskich Osobników myszy o masie ciala 18—22 g. 3 Dzialanie zwalczajace hypotermie u myszy wy¬ wolana Reserpinem. Osobnikom meskim podzielonym w grupach po 10 sztuk o masie ciala od 18—22 g po¬ dano dootrzewnowo 5 mg/kg Reserpinu. Po 16 go¬ dzinach zwierzetom podano dawki po 20 mg/kg TRH albo badanych trójpeptydow.Zmierzone temperature w odbycie zwierzat przed podawaniem Reserpinu (w tablicy oznaczenie jjndrm.")* po 16 godzinach po podaniu Reserpinu (w tablicy #»ret.") i po jednej ewentualnie dwóch godzinach fd podaniu badanego trójpeptydu (w tablicy ,*pti pofr.")i W tablicy podano srednie wartosci temperatury w 6d- byeie u badanych po 10 81tuk myszy* 4. Wplyw na czas trwania fenu wywolanego Hekso- 6 barbitalemi Osobnikom meskim myszy w grupach po 10 sztuk podano dozylnie pó 60 mg/kg Heksobarbitalu- -Ib (fitipan R B*yer) Po 10 minutach podano dóO- trzewnOWO Zwierzetom dawki po 20 mg/kg TRH 5 Wzglednie badanego trójpeptydu. Czas trWahia snu zostal podany W tablicy w procentach w Btosunku do grupy kontrolnej (wartosci przecietne dla 10 zwierzat). 5. Narkoza etahólówa. Myszom w grupach po 20 sztuk 0 róznej plci i masie ciala od 18 do 22 g podano lo pb 4,5 g etanolu, Po 10 minutach podano dootrzewno¬ wo zwierzetom jeszcze po 20 mg/kg badanego trójpep¬ tydu. Czas snu zostal w tablicy podany w procentach W stosunku do zwierzat z grupy kontrolnej (przeciet¬ ne Wartosci dla 20 zwierzat), i5 5* Hormonalna aktywnosc (dzialanie T8H) u szczu¬ rów. Meskim osobnikom szczurów o masie dala okolo 200 g w grupach po1 7 dó 8 zwierzat podano dozylnie dawki 20 mg/kg TS.H wzglednie badanego trójpepty¬ du. Reakcje TSH u zwierzat okreslono w 15 minut lo po podaniu TRH wzglednie zwiazków analogicznych do TRH po pobraniu osóeza krWi zwierzat przez ba¬ danie rtdl^rnmunbl^ificztte. Wzgledne wartosci okres¬ lajace dzialanie zostaly wyliczone metoda, czteropunkto- wa za pomoc* fcoinpute*a Tt^A 101$ przy czym war- $5 tosci dla TRH oznaczono )dko 100.Dane okreslajace biologiczne dzialanie najwazniej¬ szych zwiazków ó ogólnym Wzorze X-Y-W-Nlfi, które zostaly przebadane za pomoca opisanych metod farmakologicznych zostaly zebrane w" tablicy.X—Y—Z—NHi X K »¦¦ ¦¦|'ll Kpc £pe ©fc bip pip |Kpc Rpc b- -Glp |Kic Y Lett Nva Lett Leu M*a NVa NVa Lett Len z £r0 Pro Tca Pip Tca Tca HprO Pro Pro I TRH ,r-l..itst m « t.i.i-. -, , ,.i ,-....— Hamowanie katalepsji pO Halope^ rldolu mg/ m 23,5 10,6 31,4 38,5 56 60,3 35,3 ?0 80 80 »-¦--¦ ¦ • Czas min. -~— - —— -i 00 30 120 120 3o 3ó 15 15 30 15 Ta Wzmaganie aktywnosci ru¬ chowe) pó L-Dopa, % po3ó min.M tur 319 36 m 201 lfc 1Ó3 63 54 118 100 po 60 min. i ntrrn -g rr go 45 142 89 147 38 30 5& 70 100 po 90 min. 127 65 52 112 7$ 70 10S 115 100 blics Zmiana hypotermii po Resepinie, tempe* ratura w odbycie, °G norm. 36,3 36,3 36,2 36,4 36,5 36,4 36,3 36,5 35,5 36,2 re*. 24,5 23,9 24,9 24,6 32,S 23,6 20,7 2t,4 24,1 25,9 | po potr. lh 32,0 33,1 33,1 30,7 31,4 30,4 26,5 25,S 27,7 35,5 2h 33,$ 32,5 32,2 31,0 30,7 29,0 32,2 25,6 28,8 30,2 Czas shti pó Heksó* barbitolu* % do zwie¬ rzat Kon¬ trolnych 37 51 39 38 69 ' 61 76 97 59 56 G*as lnu PO etano¬ lu % dO zwierzat kóntfol* nych W 46 56 60 ii 48 35 54 69 35 Reak¬ cja ¥SH Vi 0 0 7,2 0 — — 0 0 100 Czas Sfiu po Hekeobarbitolu: Czai snu po etanolu: (x±SE)3Mit 1,36 min. (i±SE)46i9±2,17min.Z danych zawartych w tablicy widac, ze nowe zwiaz¬ ki analogiczne do TRH, w których dwa lub trzy ami¬ nokwasy w czasteczce TRH zostaly zastapione innymi aminokwasami^ wykazuja wzmocnione dzialanie na centralny uklad nerwowy, Z tego punktu widzenia szczególnie korzystne sa te pochodnej w których za¬ miast grupy His w polozeniu 2 czasteczki TRH. znaj¬ duje sie alifatyczny aminokwas o prostym lub roz¬ galezionym lancuchu weglowym^ Równiez korzystne sa z punktu widzenia takiego dzialania te analogi TRH, 60 w których grupa Glp zastapiona jest kwasem 6-Ieto- -pipekolinowym. U tego typu pochodnych dzialanie hormonalne TRH jest albo calkowicie zlikwidowane albo zmniejszone do minimum, przy czym równoczesnie dzialanie na centralny uklad nerwowy zoltaje znacznie* 6* w pewnych przypadkach nawet osmiokrotnie zwiekszone.123 822 8 Nowe trójpeptydy wytwarzane sposobem wedlug wynalazku moga byc stosowane w postaci zwykle stosowanych w terapii preparatów leczniczych. Pre¬ paraty te zawieraja substancje czynna wytwarzana sposobem wedlug wynalazku w polaczeniu z nieorga¬ nicznym albo organicznym nosnikiem odpowiednim do podawania dojelitowego lub pozajelitowego. Pre¬ paraty lecznicze moga byc wytwarzane na przyklad w postaci tabletek, drazetek, preparatów do wstrzy¬ kiwania, liofilizatów itp. Preparaty lecznicze w takich postaciach wytwarza sie zwyklymi metodami farma¬ ceutycznymi.Praktycznie sposób wedlug wynalazku, to znaczy sposób wytwarzania nowych trójpeptydów analogicz¬ nych do TRH, zostal blizej opisany w ponizszych przykladach. Zastosowane w tych przypadkach skróty stanowia skróty znane w chemii peptydów wedlug J. Biol. Chem. 247, 977 (1972).Ponadto w przykladach zastosowano nastepujace dodatkowe skróty: HPro — Lrhomoprolina .Kie — kwas L-2-ketoimidazolidynokarboksylo- wy-4 Kpc — kwas L-6-ketopipekolinowy Oro — kwas orotowy Pip — kwas L-pipekolinowy Tca —kwas L-tiazolidynokarboksylowy-4 DCC — dwucykloheksylokarbodwuimid DCU — dwucykloheksylomocznik PEPOH — pieciofluorofenol DMFA — dwumetyloformamid Podane w przykladach temperatury topnienia zwiaz¬ ków okreslono za pomoca specjalnego aparatu Dr. Tot- toli Biichi, Skrecalnosc optyczna zmierzono za pomoca polarymetru typu Perkin-Elmer 141.W badaniach metoda chromatografii cienkowarstwo¬ wej albo przy rozdzielaniu stosowano plytki z zelu krzemionkowego („Kieselgel G nach Stahl — E. Merck, Darmastadt). Do rozwijania chromatografmów sto¬ sowano nastepujace mieszaniny rozpuszczalników: 1) chloroform :metanol 9:1 2) octan etylu:(pirydyna:kwas octowy:woda 20:6:11) 95:5 3) octan etylu: (pirydyna:kwas octowy:woda 20:6:11) 9:1 4) octan etylu: (pirydyna :kwas octowy :woda 20:6:11) 8:2 , 5) octan etylu: (pirydyna :kwas octowy:woda 20:6:11) 3:2 6) octan etylu: (pirydyna:kwas octowy:woda 20:6:11) 2:3 Do wywolania plamki zastosowano roztwór ninhy- dryny. Po spryskaniu plytki suszono w ciagu 5 minut w temperaturze 105°C. Potem chromatogramy umiesz¬ czono w atmosferze gazowego chloru i po przewiet¬ rzeniu wywolywano za pomoca roztworu o-tolidyny w jodku potasowym.Do oczyszczania produktu w kolumnie chroma¬ tograficznej zastosowano zel krzemionkowy „Kieselgel G" E. Mercka o rozmiarach czastek 0,062 do 0,2 mm.Do odparowywania roztworów w prózni zastosowano prózniowa wyparke Rotavapor R (Biichi), przy czym odparowywanie przeprowadzono w temperaturze nie przekraczajacej 50°C.Pieciofhiorofenylowe estry aminokwasów z grupa ochronna BOC wytwarzano metoda opisana przez L-Kisfaludy i inni Ann. 1973, 1421.Przyklad I. Wytwarzanie amidu kwasu L- -piroglutamylo-L-leucylo-L-pipekolinowego. 5 Etap 1. Wytwarzanie chlorowodorku amidu kwasu L-leucylo-L-pipekolinowego. 1,54 g (12 mmoli) H- -Pip-NH2 rozprowadzono w 20 ml DMFA i do otrzy¬ manej zawiesiny mieszajac dodano 5,16 g (13 moli) BOC-Leu-OPFP i 1,6 ml (12 moli) trójetyloaminy. 10 Mieszanine dalej mieszano w ciagu 6 godzin a potem otrzymany roztwór odparowywano w prózni, a otrzyr many jako pozostalosc olej rozpuszczono w 60 ml chlo¬ roformu. Do roztworu dodano 0,2 ml 2-(dwumetylo- amino)-etyloaminy, pozostawiono go w spokoju w cia- 15 gu 5 minut a nastepnie wstrzasano go kolejno trzy - krotnie z normalnym roztworem kwasu solnego w ilos¬ ci po 20 ml i raz z 20 ml wody. Pózniej osuszono w obec¬ nosci siarczanu sodu i odparowano. Oleista pozosta¬ losc rozpuszczono w 3 ml octanu etylu i do roztworu 20 dodano 10 ml 5N roztworu kwasu solnego w octanie etylu. Po godzinie rozcienczono mieszanine reakcyjna eterem, a otrzymany osad odsaczono i oszuszono w próz¬ ni nad bezwodnym wodorotlenkiem sodu. W ten spo¬ sób otrzymano 3,12 g H-Leu-Pip-NH2 • HC1, czyli 25 94% teoretycznej wydajnosci w przeliczeniu na H-Pip* -NH2:Rf(5) = 0,46.Etap 2. Wytwarzanie amidu kwasu benzyloksykar- bonylo-L-piroglutamylo-L-leucylo-L-pipekolinowego. 3,13 g (11,2 mola) H-Leu-Pip-NH2. HC1 i 4,94 g 30 (11,5 mola) Z-Glp-OPFP rozpuszczono w 35 ml DMFA i do roztworu dodano 1,57 ml (11,2 mola) trójetyloaminy. Po 5 minutach mieszania dodano dal¬ sze 1,57 ml (11,2 mola) trójetyloaminy, a po 20 mi¬ nutach dalszego mieszania mieszanine reakcyjna od- 35 parowano w prózni. Pozostalosc rozpuszczono w chlo¬ roformie, a powstaly roztwór wstrzasano kolejno dwu-» krotnie z normalnym roztworem kwasu solnego w ilos¬ ci po 30 ml, trzykrotnie z normalnym roztworem wo¬ dorotlenku sodu w ilosci po 30 ml i raz w 30 ml wody* 40 Faze organiczna osuszono bezwodnym siarczanem sodu i odparowano. Bezpostaciowy przesacz zmieszano z zimnym eterem, eter odlano, a pozostaly olej pcH traktowano n-heksanem dla zestalenia. Tak otrzymana bezpostaciowy surowy produkt w ilosci 4,7 g krysta-J 45 lizowano z mieszaniny octanu etylu z eterem. Otrzy-t mano 3,32 g ^-Glp-Leu-Pip-NH2 co stanowilo 61% wydajnosci teoretycznej. Mial on nastepujace wlas-: nosci: temperatura topnienia 143—144 °C, Rf(4) = = 0,51, [a] D25 =—97,2° (c = l, w kwasie octowym). 50 Analiza dla C25H3406N4: (masa czasteczkowa 486,57) obliczono C 61,71% H 7,04% N 11,51% znaleziono C 61,67% H 7,05% N 11,40% Etap 3. Wytwarzanie amidu kwasu L-pirygluta- mylo-L-leucylo-L-pipekclinowego. 2,1 g (4,32 mola) 55 Z-Glp-Leu-Pip-NH2 rozpuszczono w 40 ml metanolu, dodano 0,2 g 10% katalizatora palladowoweglowego i nastepnie do mieszaniny doprowadzono w ciagu godziny wodór. Nastepnie odsaczono katalizator, prze¬ sacz odparowano, a osad roztarto z eterem. Tak otrzy- 60 many produkt w ilosci 1,48 g rozpuszczono w wodzie, oczyszczono weglem aktywnym i odsaczono. W czys¬ tym przesaczu rozpuszczono 4 g chlorku, a roztwór' wstrzasano trzykrotnie z chloroformem w ilosci po 10 ml. Faze organiczna oszuszono bezwodnym siar-r es czanem sodu, odparowano, a bezpostaciowy osad roz*-123 822 9 tarto z mieszanina octanu etylu i eteru. W ten st otrzymano 1,33 g Glp-Leu-Pip-NH2, co stanowi 87,5% wydajnosci teoretycznej. Wlasnosci otrzymane¬ go produktu: Rf(5) ^ 0,60, [a] D25 = —86,4° (c = l, w kwasieoctowym). 5 Przyklad II. Wytwarzanie amidu kwasu L- -piroglutamylo-L-leucylo-L-tiazolidynokarboksylowe- go-4.Etap 1. Wytwarzanie chlorowodorku amidu kwasu L-leucylo-L-tiazolidynokarboksylowego-4. 1,81 g (11 io moli) H-Tca-NH2.HC1 rozprowadzono w 30 ml DMFA i dodano do roztworu 3,97 g (10 mmoli) BOC- -Leu-OPFP, 149 g (11 mmoli) 1-hydroksy-benzotria- zolu i 1,22 ml (11 mmoli) N-metylo-morfoliny. Otrzy¬ many roztwór pozostawiono na noc w temperaturze 15 pokojowej, odparowano w prózni, a osad rozpuszczono w 80 ml chloroformu. Roztwór ten wstrzasano trzy¬ krotnie z normalnym roztworem kwasu solnego w ilos¬ ci po 20 ml, trzykrotnie z normalnym roztworem wo- - doroweglanu sodu w ilosci po 20 ml oraz raz z 10 ml 20 wody, osuszono bezwodnym siarczanem sodu i odparo¬ wano w prózni. Wytracony bezpostaciowy osad roz¬ puszczono w 5 ml octanu etylu, dodano nas¬ tepnie 10 ml 7N roztworu kwasu solnego w octa¬ nie etylu i pozostawiono na godzine. Nastepnie mie- 25 szanine reakcyjna rozcienczono eterem, a otrzymany osad odsaczono i wysuszono w prózni nad bezwodnym wodorotlenkiem sodu. W ten sposób otrzymano 1,84 g H-Leu-Tca-NH2 • HG1, co stanowi 65% wydajnosci teoretycznej w przeliczeniu na BOC-Leu-OPFP. Pro- 30 dukt mial nastepujace wlasnosci: Rf(s) = 0,25, i tem¬ perature topnienia 170—175 °C.Etap 2. Wytwarzanie amidu kwasu benzyloksy- karbonylo-L-piroglutamylo-L-leucylo-tiazolidynokarbo- ksylowego-4. 1,69 g (6 mmoli) H-Leu-Tca-NH2.HC1 35 rozprowadzono w 20 ml DMFA i dodano 2,7 g (6,3 mmola) Z-Glp-OPFP oraz 0,84 ml (6 mmoli) trój- etyloaminy. Mieszanie mieszano w ciagu 20 minut w temperaturze pokojowej, a potem odparowano w prózni. Pozostaly po odparowaniu osad rozpuszczo- 40 no w 50 ml chloroformu i roztwór ten wstrzasano dwukrotnie z normalnym roztworem kwasu solnego w ilosci po 10 ml, trzykrotnie z normalnym roztwo¬ rem wodoroweglanu sodu w ilosci po 10 ml i w koncu raz z 10 ml wody. Nastepnie faze organiczna odparo- 45 wano, pozostalosc roztarto z eterem, a otrzymany pro¬ dukt oczyszczono przez kilkakrotne wytracanie z mie¬ szaniny octanu etylu i eteru. Otrzymano 1,64 g Z- -Glp-Leu-Tca-NH256% wydajnosci teoretycznej, o nas¬ tepujacych wlasnosciach: temperatura topnienia 108— 50 —110°C, Rf(4) = 0,46, [a]D25 = 130,30° (c = 1, w kwasie octowym).Etap 3. Wytwarzanie amidu kwasu L-piroglutamylo- -L-leucylo-L-tiazolidynokaiboksylowego-4. 1,62 g (3,3 mmola) Z-Glp-Leu-Tca-NH2 rozpuszczono w 6 ml 55 3,5 N roztworu bromowodoru w lodowatym kwasie octowym, a roztwór pozostawiono na póltorej godziny w temperaturze 0—5°C. Nastepnie mieszanine reak¬ cyjna rozcienczono eterem, górna faze zlano, a pozos¬ taly olej rozpuszczono w 20 ml wody. Wodny roztwór 60 zobojetniono stalym wodoroweglanem sodu i trzy¬ krotnie wstrzasano z eterem w ilosci 10 ml. Wodna faze odparowano w prózni, pozostalosc rozpuszczo¬ no w 20 ml chloroformu, roztwór osuszono bezwod¬ nym siarczanem sodu i odparowano. Bezpostaciowa M 10 pozostalosc roztarto z eterem i wysuszono. Otrzymany produkt w ilosci 1,13 g rozpuszczono w mieszaninie rozpuszczajacej (4) i umieszczono w kolumnie chroma¬ tograficznej zawierajacej 20 g zelu krzemionkowego.Kolumne przemyto ta sama mieszanina. Z frakcji za¬ wierajacej czysty produkt wyodrebniono 0,78 bez¬ postaciowego produktu, który rozpuszczono w 20 ml wody, powstaly roztwór oczyszczono weglem aktyw¬ nym, a przezroczysty roztwór liofilizowano. W ten sposób otrzymano 0,62 g Glp-Leu-Tca-NH2, co sta¬ nowi wydajnosci teoretycznej 53% o wlasnosciach: Rf(5) = 0,53, [a] D" = —145,0° (c = l, w kwasie octowym).Przyklad III. Wytwarzanie L-piroglutamylo-L- -leucylo-D-prolinamidu.Etap 1. Wytwarzanie benzyloksykarbonylo-L-piro- glutamylo-L-leucylo-D-pirolinamidu. 1,54 g (5,8 mmo¬ la) H-Leu-D-Pro-NH2.HCl rozpuszczono w 20 ml DMFA i do roztworu tego dodano 0,81 g (5,8 mmola) trójetyloaminy i 2,58 g (6 mmoli) Z-Glp-OPFP. Mie¬ szanine mieszano w ciagu 5 minut, potem dodano jeszcze 0,81 ml 95,8 mmola trójetyloaminy i po 10 minutach dalszego mieszania mieszanine reakcyjna odparowano w prózni. Powstaly po odparowaniu osad rozpuszczono w 60 ml chloroformu, a roztwór ten przemyto trzykrotnie normalnym roztworem wodoro¬ tlenku sodu w ilosci po 15 ml oraz w koncu raz 15 ml wody, osuszono bezwodnym siarczanem sodu i odpa¬ rowano. Bezpostaciowa pozostalosc roztarto z eterem.Otrzymany pólprodukt w ilosci 2,1 g wykrystalizowano z 5 ml octanu etylu. W ten sposób otrzymano 1,8 g Z-Glp-Leu-D-Pro-NH2, co stanowi 66% wydajnosci teoretycznej o wlasnosciach: temperatura topnienia 153—157°C, Rf(4) = 0,38, [a] D25 = —24,5 ° (c= l, w kwasie octowym).Etap 2. Wytwarzanie L-piroglutamylo-L-leucylo-D- -prolinamidu. 1,5 g (3,25 mmola) Z-Glp-Leu-D-Pro- -NH2 rozpuszczono w 70 ml metanolu a do otrzyma¬ nego roztworu dodano 0,3 g 10% katalizatora z palla¬ du i aktywnego wegla a nastepnie przez roztwór prze¬ puszczono w ciagu godziny wodór. Po odsaczeniu ka¬ talizatora przesacz odparowano i bezpostaciowa po¬ zostalosc roztarto z eterem. Otrzymany pólprodukt w ilosci 0,94 g rozpuszczono w wodzie, roztwór oczysz¬ czono weglem aktywnym i odsaczono. Przezroczysty przesacz liofilizowano. Otrzymano 0,87 g Glp-Leu- -D-Pro-NH2 (79% wydajnosci teoretycznej), o wlas¬ nosciach Rf(5) = 0,47, [a]D25 = +8,4° (c = l, w kwasie octowym.Przyklad IV. Wytwarzanie amidu kwasu L- -piroglutamylo-L-norwalilo-L-tiazolidynokarboksylo- wego-4.Etap 1. Wytwarzanie chlorowodorku amidu kwasu L-norwalilo-L-tiazolidynokarboksylowego-4, 8,0 g (20 mmoli) BOC-Nva-OH.DCHA rozprowadzono w 60 ml eteru, dodano 20 ml 2N roztworu kwasu siarkowego i wstrzasano az do rozpuszczenia ciala stalego. Fazy rozdzielono. Faze eterowa wstrzasano z 20 ml 2N roz¬ tworu kwasu siarkowego oraz z 20 ml wody, osuszono bezwodnym siarczanem sodu i odparowano. Otrzy¬ many jako pozostalosc olej rozpuszczono w 40 ml DMFA, do roztworu dodano 2,8 ml (20 mmoli) trój¬ etyloaminy, ochlodzono do temperatury —15°C a na- tepnie mieszajac wkroplono 2,5 ml (20 mmoli) chlo¬ rku piwaloilu, utrzymujac temperature mieszaniny113822 ll 12 reakcyjnej ~"5°G, Tak otrzymana zawiesine mieszano jeszcze w ciagu 10 minut w tej parnej temperatur*?.W tym cwic rozprowadzono 3,72 g (32 mmolt) H^Tca-NtL.HCl w 30 ml PMFAi dodano 3,1 ml (23 mmole) t£$jetyloaminy. Otrzymany osad prze- aaezonp, przesacz wkfoplono do przygotowanego w PO- wyfczy sppfipb roztworu mieszanego bezwodnika w tem¬ peraturze *—§°.G Po zakonczeniu podawania miewa¬ no jaszcza mieszanino reakcyjna W ciagu 30 minut W temperaturiie "~10°C nastepnie pozostawione ja mi noc w lodówce, a nastepnego dnia odparowano W prózni. Pozostalosc po odparowaniu rozpuszczono w 100 ml chloroformu, roztwór wstrzasano trzykrotnie z normalnym roztworem kwaau solnego w ilosci po 20 ml, nastepnie równiez trzykrotnie z normalnym roz¬ tworem wodoroweglanu sodu w ilosci po 20 ml • w koncu z 20 ml wody. osuszono bezwodnym siarczanem *odu i odparowano. Oleista pozostalosc rozpuszczono w 10 ml octanu etylu* roztwór oziebiono do tempera¬ tury pon**eJ $°C i dodano do niej 20 ml 3N roztworu kwa*u solnego w octanie etylu. Mieszanine rekaeyjna przetrzymywano w kapieli lodowej w ciagu godziny, a nastepnie rozcienczono ja eterem, Otrzymany o*ad osuszono w próbni nad bezwodnym wodorotlenkiem sodu. W ten sposób otrzymano 3,77 g H-Nva-Tca^ -NH2,HCla co sianowi 70% wydajnosci teoretycznej w przeliczeniu na EOONyarOH.DCHA; Rf(*) = = 0,20.Etap 2. Wytwarzanie amidu kwasu benzyloksykar^ bonylo-L-piroglutamylo-L-norwaUlo-l-^tiazolidynokarr boksylowego-4. 2,8 g (10,5 mmola) H-Nva-Tca-NH2, • HC1 rozprowadzono w 50 mi DMFA i mieszajac dodano 1,47 ml (10,5 mmola) trójetyloaminy ora? 5,15 g (12 mmoli) Z-Glp-OPFP. Do mieszaniny reak¬ cyjnej po 5 minutach dodadno dalsze 1,47 ml (10,5 mmola) trójetyloaminy, mieszano w ciagu dalszych 10 minut i potem odparowano w prózni, Pozostalosc rozpuszczono w 100 ml chloroformu, roztwór wstrza¬ sano trzykrotnie z normalnym roztworem kwasu sol¬ nego w ilosci po 20 ml, trzykrotnie roztworem wodoro¬ weglanu sodu w ilosci po 20 ml i w koncu raz z woda w ilosci 20 ml, osuszono bezwodnym siarczanem sodu i odparowano. Bezpostaciowa pozostalosc roztarto z eterem, a otrzymany pólprodukt w ilosci 4,6 g prze¬ krystalizowano z mieszaniny octanu etylu i eteru.W ten sposób otrzymano 3,2 g Z-Glp-Nva-Tca-NH3, (64% wydajnosci teoretycznej, o wlasnosciach: tern* peratura topnienia 116—U8°C, Rf(4) = 0,45, [a] D25 =—129,0°, (c = l, w kwasie octowym).Etap 3. Wytwarzanie amidu kwasu L-pirogluta- mylo-L-norwalilo-l^-tiazolidynokarboksylowego-4.4,76 g (10 mmoli) Z-Glp-Nva-Tca-NH2 rozpuszczono w 20 ml lodowatego 3,5 N roztworu kwasu octowego z bromowodorem. Otrzymany roztwór pozostawiono w ciagu póltorej godziny w temperaturze 0—5 °C.Nastepnie mieszanine reakcyjna rozcienczono eterem, a wytracony olej oddzielono od rozpuszczalnika przez dekaufacje. Otrzymany olej rozpuszczono w 50 ml wody i zobojetniono dodatkiem stalego wodoroweglanu sodu i wstrzasano trzykrotnie z eterem w ilosci po 20 ml. Wodna faze odparowano, pozostalosc rozpusz¬ czono w 100 ml chloroformu, a otrzymany roztwór osuszono bezwodnym siarczanem sodu, odparowano, a pozostalosc roztarto z eterem. Otrzymany pólpro¬ dukt w ilosci 3 % umieszczono w kolumnie chromato¬ graficznej na zelu krzemionkowym w ilosci 80 g i ehio- wano mieszanina rozpuszczalników (4)t Z rrakqi za¬ wierajacej czysty produkt wyodrebniono 2,18 g bez¬ postaciowego produktu, który rouzpuszczono w 40 ml 5 wody, otrzymany roztwór oczyszczono weglem aktyw¬ nym, a przezroczysty roztwór liofilizowano. W ten speaób otrzymano 1,84 g Glp~Nva-TcarNH2, 54% wydajnosci teoretycznej o wlasnosciach: Rf(5) =? 0,50 [o] D2* - ¦™-145,6 • (e^l, w kwasie octowym). 10 Przyklad V. Wytwarzania L-piroglutamylo-L- -norwalilo-Lrleucynamidu.Etap 1. Wytwarzanie estru metylowego ni-rz^bu- tyktoykarbonylo-L-norwalilo-L-Jeueyny. Uwolniony z 8,0 g (2Q mmoli) soli PCHA w sposób opisany w przy- *5 kladzie IV etapie 1 BOC«Nva»OH i 3,82 g (21 mmoli) H«LeupQMe.HCl rozpuszczono w 60 ml chlorofor¬ mu, a nastepnie otrzymany roztwór potraktowano najpierw 2,04 ml (21 mmoli) trójetyloaminy, potem chlodzac i mieszajac dodano do niego roztwór 4,33 g w (21 mmoli) DCC w 40 ml chloroformu. Mieszanine reakcyjna pozostawiono przez noc w temperaturze 5°C, a nastepnie wydzielony DGU odsaczono, prze¬ sacz wstrzasano trzykrotnie z normalnym roztworem kwasu solnego w ilosci kazdorazowo po 30 ml, a po- ** tem trzykrotnie normalnym roztworem wodorowegla¬ nu sodu w ilosci po 30 ml* a w koncu raz z woda w ilos¬ ci 30 ml," osuszono siarczanem sodu i odparowano.Krystaliczna pozostalosc roztarto z n-heksanem, od¬ saczono a otrzymany surowy produkt w ilosci 6,65 g 3? przekrystalizowano z mieszaniny 5 ml octanu etylu i 20 ml eteru naftowego. W ten sposób otrzymano 5,20 g BOC-Nva-Leu, OMe (75% wydajnosci teo¬ retycznej), o nastepujacych wlasnosciach: temperatu¬ ra topnienia 100—101 °C, Rf(2) = 0,84, [a]D25^ 85 ^—47,5° (c = l, w metanolu).Etap 2. Wytwarzanie IIIrz.-butyloksykarbonylo-L- ^norwalilo-L-leucynamidu. 5,0 g (14,5 mmola) BOC- -Nva-Leu-OMe rozpuszczono w 50 ml metanolu, otrzymany roztwór oziebiono lodem i w ciagu pól 40 godziny doprowadzono do niego gazowy amoniak.Roztwór pozostawiono na noc w temperaturze poko-* jowej, a potem znowu ochlodzono, ponownie nasy- cono amoniakiem, pozostawiono na 4 godziny i odpa* rowano. Krystaliczna pozostalosc przekrystalizowano 45 z mieszaniny octanu etylu i eteru. W ten sposób otrzy¬ mano 4,37 g BOC-Nva-Leu-NH2 91% wydajnosci teoretycznej o wlasnosciach nastepujacych: tempera¬ tura topnienia 158—159°C, Rf(2) = 0,60, [a]D25 = =—48,7° (c = l, w metanolu). se Etap 3. Wytwarzanie chlorowodorku L-norwalilo- -L-leucynamidu. 4,12 (12,5 mmola) BOC-Nya-rLeu- -NH2 rozprowadzono w 15 ml octanu etylu i potrak¬ towano 20 ml 6N roztworu kwasu solnego w octanie etylu. Mieszanine pozostawiono na 1 godzine a potem 55 rozcienczono eterem. Otrzymany osad odsaczono, a surowy produkt w ilosci 3,64 g przekrystalizowano z 25 ml metanolu* W ten sposób otrzymano 2,7$ g U-Nva-Leu-NH2 ' HC1 (83%wydajnosci teoretycznej) o wlasnosciach: temperatura topnienia 215—216°C, SO Rf(5)=0,45, [a]D25—-3,47° (c = l, w metanolu).Etap 4. Wytwarzanie benzyloksykarbonylo-L-piro- glutamylo-L-norwalilo-L-leucynamidu. 2,67 g (10 mmo¬ li) H-Nva-Lreu-NH2.PC1 rozpuszczono w 30 ml DMFA. Do roztworu dodano najpierw 1,4 ml (J.0 •• mmoli) trójetyloaminy, potem po odsaczeniu powsta*-1»822 13 14 lego osadu dodano 4,73 g (11 mmoli) Z-Glp-QPFP.Pe uplywie 5 minut dodano dalsze M ml (10 mmoJU) trójetyloaminy, a po uplywie dalszych 10 minut mie¬ szanine reakcyjna odparowano w prózni. Pozostalosc roztarto z eterem i tak otrzymany surowy produkt w ilosci 535 g przekrystalizowano z etanolu. Otrzy¬ mano 3*S4 g Z-QlpNva«Leu^Nli; (81% wydajnosci teoretycznej) o nastepujacych wlasnosciach: tempe¬ ratura topnienia 241^-242 °G, Rf(4)=0,55, [a]D*5 = =****62,Q9 (c^l, w kwasie octowym).Etap 5. Wytwarzanie LTpiroglutamylo-Lrporwaliloc- rl^rleucynamidu, 3,8 g (8 mmoli) Z-Glp-?Nva«-Leu»- -NH3 rozpuszczpno w 200 ml kwaau octowego, rozr twór potraktowano 10% katalizatorem z palladu i wegla aktywnego, a nastepnie przepuszczano przez niego wodór w ciagu godziny. Nastepnie katalizator odsaczono, a zelowa pozostalosc roztarto z eterem.W ten sposób otrzymano 2,7 g Glp?NyarLeu-NH2 (99% wydajnosci teoretycznej) o nastepujacych wlas? noscjachr temperatura topnienia 240°C, Rf(s)±=0,57, [a]D**=*-35,8p (c = l, w kwasie octowym).Przyklad VI. Wytwarzanie L-piroglutamylo^ -L-norwalilo-L-ize^eucynamidu.Btap 1. Wytwarzanie III. rz.~butyloksykarbonylo^L- -norwalilo-L^izoleucynamidu. 3,7 g (19 mmoli) Hr -Ile-NH3. HC1 rozpuszczono w 30 ml FMDA, a powstar ly roztwór mieszajac potraktowano 2,7 ml (19 mmoli) trójetyloaminy i 6,63 g (17,3 mmoli) BQC*Nva^QPFP a po uplywie 5 minut dodano dalsze 2,4 ml (17,3 mmo- la) trójetyloaminy. Po uplywie dalszych 10 minut mieszanine reakcyjna odparowano w prózni, a pozosta¬ losc rozpuszczono w 100 ml chloroformu. Dwukrot¬ nie roztwór wstrzasano z normalnym roztworem kwasu solnego w ilosci po 20 ml, a nastepnie trzykrotnie z normalnym roztworem wodoroweglanu sodu w ilos¬ ci po 20 ml i w koncu raz z woda w ilosci 20 ml, osu*- szono bezwodnym siarczanem sodu i odparowano.Krystaliczny osad roztarto z eterem i wysuszono. W ten sposób otrzymano 4,7 g BOC-Nva-Ile-NH3 (83% wydajnosci teotetycznej) o nastepujacych wlasnosciach: temperatura topnienia 192—194°C, Rf(2) = 0,60, [a]D35 =^43,7° (c= l, w metanolu).Etap 2. Wytwarzanie chlorowodorku L-nerwalilo^- -L-izoleucynamidu. 4,3 g (13,7 mmola) BOC-Nva- -Ile-NH2 rozprowadzono w 20 ml octanu etylu i po¬ traktowano 6N roztworem kwasu siarkowego w octa¬ nie etylu w ilosci 12 ml. Mieszanine reakcyjna pozosta¬ wiono na godzine, a nastepnie rozcienczono eterem.Otrzymany osad oddzielono pizez odsaczenie, a otrzy¬ many w ten sposób surowy produkt w ilosci 3,6 g przekrystalizowano z mieszaniny metanolu i eteru.Otrzymano 3,5 g H-Nva-Ile-NH2..HC1 (96% wydaja nosci teoretycznej) o wlasnosciach: temperatura top^ nienia 254^255 °C, Rf(*) = 0,45, [a]D25^+3,8° (c = 1, w metanolu).Etap 3. Wytwarzanie benzyloksykarbonylo-Lrpiro- glutamylo^L-norwalilo-L-izoleucynamidu. 3,3 g (12,4 mmola) H-Nva-Ile-NH2. HC1 rozpuszczono w 40 ml DMFA a nastepnie mieszajac do roztworu dodano 1,74 ml (12,4 mmola) trójetyloaminy i 5,85 g (13,6 mmola) Z-Glp-OPFP. Po 5 minutach dodano jeszcze 1,74 ml (12,4 mmola) trójetyloaminy. Po kilku se¬ kundach zelowa stezona mieszanine reakcyjna roz¬ cienczono eterem i wymieszano, pozostawiono na 2 godziny w lodówoe i nastepnie odsaczono. W ten spowij otrzymano 54 * Z*Gta-NYa-4k-NPa ($$% wydajnosci teprgtyeiiUM) e wtasaosfiaclM tempera* tura topnieja 292^2?9'& Rf(*)^fc6Q, [nJO«w ^^§7*5° (e = l, w kwasie octowym). 5 Etap 4. Wytwarzanie L-pirpgiutamylQ-LrnQrwalii- lo-L-izoleucynoamidu. 4,75 g (10 mmoli) ?pG!bt -Nv*-Ile-NHa rozpuszczono, w ?QQ ml kwasu octowe¬ go i po dodaniu 1 g 10% katalizator* h palladu i wegla aktywnego przez roztwór przepuszczane} w ejagu ge- M oddzielono katalizator przez odlaczenie, prpesacz o4-« parowano a pozostalosc rpztarto z eterem. Otrzymano. 3*34 g Glp-Nva-Ile-N*L (98% wydajnosci teoretycy nej) o wlasnosciach? temperatura topnienia 2*7-^279?C, ** Rf(*)^0,$l, [a]B'<^$ towyrn).Przyklad VII. Wytwarzanie L^pirogteamyJ©.-!^ -norwalUo-L-metioninaraidu.Etap h Wytwarzanie eafru metylowego IIJ,rg,*bu« «• tylokay^axbonylo-L-norwaJiU^L-mctioniny.Uwolniony z 4,78 g (12 mmoli) toli DGliA w spo£6b opisany w przykladzie IY etapie 1 BQC-Nva^QP I 2,6 g (13 mmoli) H-Met-OMe.HCl rozpuszczono w 40 ml chloroformuj a nastepnie otrzymany roztwór ts potraktowano najpierw 1*8? ml (13 mmoli) trójetyl©* aminy, potem chlodzac i mieszajac* dodano dp niego roztwór 2,58 g (12,5 mmola) PCC w 20 ml chloro- formu, Mieszanine reakcyjna pozostawiono przgz noc w temperaturze 59C* a nastepnie wybielony PCV 30 odsaczono* przesacz wstrzasano trzykrotnie, z nor¬ malnym roztworem kwasu solnego w ilosci po 20 ml potem tizykrotnie z normalnym roztworem wpdoro-. weglanu sodu w ilosci po 20 ml a W koncu ra? z woda w ilosci 20 ml, osuszono siarczanem sodu i odparowa- 36 no. Oleista pozostalosc wykrystalizowano dodajac eto.-* ru naftowego, Otrzymany surowy produkt w ilosci 3,42 przekrystalizowano z mieszaniny octanu etylu i eteru naftowego. W ten sposób otrzymano 3,08 g BOC-Nva-Met-OMe (71% wydajnosci teoretycznej) 4P o nastepujacych wlasnosciach: temperatura topnienia 69—70°C, Rf(2)=0,81, [a]P2f =^42,?0 (c = l, w metanolu).Etap 2. Wytwarzanie XILrz*-butylok8ykarbonylo-L- ^norwalilo-L-metioninamidu. 1,81 g (5 mmoli) BOC- 45 -Nva-Met-OMe rozpuszczono w 20 ml metanpluj otrzymany roztwór oziebiono i w ciagu pój godziny doprowadzano do niego gazowy amoniak. Roztwór pozostawiono na noc w temperaturze pokojowej a po¬ tem znowu pozostawiono na kilka godzin w lodówce. go Wydzielony krystaliczny produkt odsaczono (1,27 g)* przesacz odparowano, pozostalosc przekrystalizowano z 5 ml etanolu i polaczono z zasadnicza iloscia produktu otrzymana w wyzej opisany sposób. Ogólem otrzymano 1,62 g BOC-Nva-Met-NH2 (93% wydajnosci teore- 55 tycznej) o wlasnosciach: temperatura topnienia 166^— -167°C, Rf(2)=o,57, [a]D25 =—40,9° (c=--l, w me¬ tanolu).Etap 3. Wytwarzanie chlorowodorku L-norwalilo-» -L-metioninamidu. 4,5 g (13 mmoli) JJOC-Nya,- go -Met-NH2 rozprowadzono w 20 ml octanu etylu i do¬ dano do niego 20 ml 6N roztworu kwasu solnego w octanie etylu. Mieszanine reakcyjna pozostawiono W ciagu godziny w temperaturze pokojowej* potem roz¬ cienczono eterem* otrzymany osad odsaczono i 04u« •5 szono nad bezwodnym wodorotlenkiem sodu. Qtrpp-123 822 15 many w ten sposób surowy produkt w ilosci 4 g prze- krystalizowano z mieszaniny metanolu i eteru. Otrzy¬ mano 3,28 g H-Nva-Met-NH3.HC1 (89% wydajnosci teoretycznej) o wlasnosciach: temperatura topnienia 198—200 °C, Rf(*)=0,40, [a] D2S=+ 10,2° (c= l, w metanolu).Etap 4. Wytwarzanie III.rz.-butyloksykarbonylo-L- -gmtaminylo-L-norwalilo-L-metioninamidu. 2,84 g (10 mmoli) H-Nva-Met-NH2. HC1 rozprowadzono w 40 ml DMFA i mieszajac dodano jeszcze 1,4 ml (10 mmoli) trójmetyloaminy i 4,53 g (11 mmoli) BOC-Gln-OPFP.Po uplywie 5 minut dodano jeszcze 1,4 ml (10 mmoli) trójetyloaminy a po mieszaniu w ciagu dalszych 10 minut otrzymana gesta zawiesine odparowano w próz¬ ni. Stala pozostalosc po odparowaniu roztarto etano¬ lem i tak otrzymany surowy produkt w ilosci 4,82 g doprowadzono do stanu wrzenia z 50 ml etanolu. Po ochlodzeniu zawiesine przetrzymano w lodówce w cia¬ gu kilku godzin a nastepnie przesaczono. Otrzymano w ten sposób 4^08 g BOC-Gln-Nva-Met-NH2 (86% wydajnosci teoretycznej) o wlasnosciach: temperatu¬ ra topnienia 237—238 °C, Rf(4) = 0,43, [a]D25 = =—37,1°, (c = l, w kwasie octowym).Etap 5. Wytwarzanie L-piroghttamylo-L-norwalild- -L-metionamidu. 3,8 g (8 mmoli) BOC-Gln-Nva- -Met-NH2 rozpuszczono w 100 ml 98% kwasu mrów¬ kowego, roztwór przechowywano w ciagu 2 godzin w temperaturze pokojowej a nastepnie odparowano w prózni. Otrzymany jako pozostalosc olej rozpuszczo¬ no w 50 ml kwasu octowego i roztwór doprowadzono do stanu wrzenia w ciagu 2 minut a nastepnie znowu odparowano w prózni. Zelowy osad roztarto z eterem i przesaczono. W ten sposób otrzymano 8,8 g Glp- -Nva-Met-NH2 (98% wydajnosci teoretycznej) o wlas¬ nosciach: temperatura topnienia 249—250 °C, Rf(5) = =0,58, [a]D25=—48,4° (c = l, w kwasie octowym).Przyklad VIII. Wytwarzanie N- (L-pirogluta- mylo-L-leucylo)-pirolidyny.Etap 1. Wytwarzanie chlorowodorku N-(L-leucylo)- -pirolidyny. 3,46 g (15 mmoli) BOC-Leu-OH roz¬ puszczono w 50 ml octanu etylu, do roztworu tego do¬ dano 2,1 ml (15 mmoli) trójetyloaminy i ochlodzono do temperatury —15 °C. Nastepnie mieszajac w tem¬ peraturze ponizej —10°C wkroplono 1,97 ml (16 mmoli) chlorku piwaloilu. Otrzymana zawiesine mie¬ szano dalej w ciagu 10 minut, a potem wkroplono do niej w tej samej temperaturze 1,37 ml (16,5 mmola) piro- lidyny i mieszanine mieszano jeszcze pól godziny w temperaturze —10°C i w koncu pozostawiono ja na 3 godziny w temperaturze 5°C. Otrzymany roztwór wstrzasano trzykrotnie z normalnym roztworem kwasu solnego w ilosci po 10 ml, trzykrotnie z normalnym roztworem wodorotlenku sodu po 10 ml i w koncu raz z woda w ilosci 10 ml, osuszono siarczanem sodu i odparowano w prózni. Otrzymany jako pozostalosc olej rozpuszczono w 5 ml octanu etylu i dodano do nieg3 10 ml 5N roztworu kwasu solnego w octanie etylu. Mieszanine pozostawiono na godzine, potem rozcienczono eterem i wstrzasano z woda. Faze wodna przemyto eterem, alkalizowano weglanem potasu i ekstrahowano chloroformem. Roztwór chloroformu oddzielono, osuszono siarczanem sodu i odparowano.Oleisty osad rozpuszczono w 10 ml eteru, doprowadzono wartosc pH roztworu za pomoca stezonego roztworu kwasu solnego w octanie etylu do 3 i wydzielony kry- 16 staliczny produkt odsaczono. W ten sposób otrzymano 2,41 g H-Leu-pirolidyny.HCl (73% wydajnosci teo¬ retycznej) o wlasnosciach: temperatura topnienia 170— - 174 °C,Rf(5) = 0,37. 5 Etap 2. Wytwarzanie N-(benzyloksykarbonylo-L- -piroglutamylo-L-leucylo)-pirolidyny. 1,7 g (7,7 mmo¬ la) H-Leu-pirolidyny.HCl 3,0 g (7 mmoli) Z-Gl- -OPFP i 1,08 ml (7,7 mmola) trójetyloaminy rozpusz¬ czono w 20 ml chloroformu a po uplywie 5 minut 10 dodano jeszcze 0,98 ml (7 mmoli) trójetyloaminy.Po dalszych 5 minutach roztwór rozcienczono 30 ml chloroformu i wstrzasano go dwukrotnie z normalnym roztworem kwasu solnego w ilosci po 10 ml, trzy¬ krotnie z normalnym roztworem wodoroweglanu sodu 15 w ilosci po 10 ml i w koncu z woda w ilosci 10 ml, osu¬ szono siarczanem sodu i odparowano. Oleisty osad doprowadzono do krystalizacji za pomoca n-heksanu i otrzymany w ten sposób surowy produkt w ilosci 2,85 g przekrystalizowano z mieszaniny etanolu i ete- 20 ru. Otrzymano 2,14 g Z-Gp-Leu-pirolidyny (71% wydajnosci teoretycznej) o wlasnosciach: temperatu¬ ra topnienia 109—110 °G, Rf(4) = 0,55, [a]D25 = =—53,3° (c = l, w kwasie octowym).Analiza dla C23H3105N3 (masa czasteczkowa 429,52) 25 obliczono: C 64,32% H 7,27% N 9,78% znaleziono: C 64,31% H 7,47% N 9,78% Etap 3. Wytwarzanie N-(L-piroglutanylo-L-leucylo)- -pirolidyny. 2,0 g (4,66 mmola) Z-Gp-Leu-pirolidyny rozproszono w 40 ml metanolu, do roztworu dodano 30 0,4 g katalizatora z palladu i wegla aktywnego oraz w ciagu godziny przepuszczono przez roztwór gazowy wodór. Po odsaczeniu katalizatora przesacz odparo¬ wano otrzymany jako pozostalosc olej rozpuszczono w eterze, roztwór pozostawiono na noc w lodówce, 35 potem wydzielona faze krystaliczna oddzielono przez odsaczenie. W ten sposób otrzymano 1,25 g Glp-Leu- -pirolidyny (91% wydajnosci teoretycznej) o wlas¬ nosciach: temperatura topnienia 103—104°C, Rf(s) = = 0,65, [a]D25 = —31,6° (c = l, w kwasie octowym). 40 Analiza aminokwasów: Glu 1,00 (1,0), Leu 1,00 (1,0) Przyklad IX. Wytwarzanie N- (L-pirogluta- mylo-L-leucylo)-piperydyny.Etap 1. Wytwarzanie chlorowodorku N-(L-leucylo)- 45 -piperydyny. 3,46 g (15 mmoli) BOC-Leu-OH roz¬ puszczono w 50 ml octanu etylu, do roztworu dodano 2,1 ml (15 mmoli) trójetyloaminy i oziebiono go do temperatury —15 °C. Mieszajac w tej temperaturze wkroplono do roztworu najpierw 1,97 ml (16 mmoli) 50 chlorku piwawolilu a potem po 10 minutach 1,65 ml (16,5 mmola) piperydyny. Po zakonczeniu tego wkra- plania mieszanine reakcyjna mieszano jeszcze pól go¬ dziny w temperaturze —10 °C a potem pozostawiono ja na noc w lodówce. Osad potem odsaczono a prze- 55 sacz wJtrzasano trzykrotnie z normalnym roztworem kwasu solnego w ilosci po 10 ml, równiez trzykrotnie z normalnym roztworem wodoroweglanu sodu w ilosci po 10 ml i w koncu raz z woda w ilosci 10 ml, wysu¬ szono w obecnosci siarczanu sodu i odparowano. Jako 60 pozostalosc otrzymany olej rozpuszczono w 15 ml 4N roztworu kwasu solnego, roztwór pozostawiono na 1 godzine, potem rozcienczono go eterem i pozosta¬ wiono na noc w lodówce. Nastepnego dnia oddzielo¬ no przez odsaczenie otrzymany produkt w postaci 65 osadu. W ten sposób otrzymano 2,0 g H-Leu-pipe-123 822 17 rydyny.HCl (57% wydajnosci teoretycznej) o wlas¬ nosciach: temperatura topnienia 123—125 °C, Rf(5) = = 0,45.Etap 2. Wytwarzanie N-(benzyloksykarbonylo-L- -piroglutamylo-L-leucylo)-piperydyny. 1,81 g (7,7 mmo- la) H-Leu-piperydyny.HCl 3,0 g (7 mmoli) Z-Glp- -OPFP i 1,08 ml (7,7 mmola) trójetyloaminy rozpusz¬ czono w 20 ml chloroformu i po 5 minutach dodano jeszcze 0,98 ml (7 mmoli) trójetyloaminy. Po dal¬ szych 5 minutach roztwór rozcienczono 30 ml chloro¬ formu, nastepnie wstrzasano dwukrotnie z normalnym roztworem kwasu solnego w ilosci po 10 ml, trzykrot¬ nie normalnym roztworem wodoroweglanu sodu w ilosci po 10 ml i w koncu raz woda w ilosci 10 ml, osu¬ szono siarczanem sodu i odparowano. Otrzymany jako pozostalosc krystalizujacy olej roztarto z mieszanina eteru i n-heksanu. W ten sposób otrzymany surowy produkt w ilosci 2,75 g przekrystalizowano z miesza¬ niny etanolu i eteru. Otrzymano 2,21 g Z-Glp-Leu- -piperydyny (71% wydajnosci teoretycznej) o wlas¬ nosciach: temperatura topnienia 113—115°C, Rf(4) = =0,69, [a]D25=—42j5° (c = l, w kwasie octowym).Analiza dla C24H33,,5N3: (masa czasteczkowa 443,55) obliczono: C 64,99% H 7,50% N 9,47% znaleziono: C 64,90% H 7,72% N 9,53% Etap 3. Wytwarzanie N-(L-piroglutamylo-)-pipe- rydyny. 2,0 g (4,51 mmola) Z-Glp-Leu-piperyny rozpuszczono w 40 ml metanolu, dodano do niej 0,4 g 10% katalizatora pallad-wegiel aktywny w ciagu go¬ dziny doprowadzono do roztworu gazowy wodór.Po odfiltrowaniu katalizatora przesacz odparowano, a pozostalosc doprowadzono do krystalizacji za po¬ moca eteru. W ten sposób otrzymano 1,12 g Glp-Leu- -piperydyny (81% wydajnosci teoretycznej) o wlas¬ nosciach: temperatura topnienia 99—100 °C, Rf(5) = =0,71, [a] D25=+30,4° (c = l, w kwasie octowym).Analiza aminokwasów: Gin 0,95 (1,0), Leu 1,00 (1,0) Przyklad X. Wytwarzanie L-tiazolidyno-4-kar- bonylo-L-leucylo-L-prolinamidu.Etap 1. Wytwarzanie L-tiazolidyno-4-karbonylo-L- -leucylo-prolinamidu. 5,13 g (22 mmola) BOG-Tca-OH i 4,05 g (22 mmole) POPOH rozpuszczono w 60 ml octanu etylu i do tego roztworu mieszajac i chlodzac, dodano 4,12 g (20 mmoli) DCC. Mieszanine reakcyj¬ na mieszano w ciagu 2 godzin w temperaturze od 0 do 5°C, nastepnie DGU odfiltrowano, przesacz od¬ parowano a osad rozpuszczono w 50 mln-heksanu.Roztwór wstrzasano pieciokrotnie z normalnym roz¬ tworem wodoroweglanu sodu w ilosci po 25 ml, póz¬ niej raz z woda w ilosci 25 ml, wystudzono w obecnosci siarczanu sodu i odparowano. Otrzymano w ten sposób 7,32 g oleistej BOC-Tca-OPFP, która rozpuszczono w 20 ml DMFA. Roztwór ten dodano do zawiesiny 5,23 g (20 mmoli) H-Leu-Pro-NH2. HC1 w 30 ml DMFA. Potem do mieszaniny tej chlodzac i mieszajac dodano 2,8 ml (20 mmoli) trójetyloaminy. Po 5 mi¬ nutach dodano jeszcze 2;8 ml (20 mmoli) trójetylo¬ aminy i mieszanine mieszano dalej 20 minut po czym odparowano w prózni. Otrzymany olej rozpuszczono w 100 ml chloroformu. Roztwór wstrzasano trzykrot¬ nie z normalnym roztworem kwasu solnego w ilosci po 30 ml, trzykrotnie z normalnym roztworem wodo¬ roweglanu sodu iw koncu z woda w ilosci 30 ml osu¬ szono bezwodnym siarczanem sodu i odparowano. 18 Jako pozostalosc otrzymano 8,84 g oleistego BOC- -Tca-Leu-Pro-NH2*który rozpuszczono w 15 ml octa¬ nu etylu i do roztworu dodano 15 ml 6N roztworu kwasu solnego w octanie etylu. Mieszanine reakcyjna 5 pozostawiono na godzine, nastepnie rozcienczono octa¬ nem etylu, powstaly osad roztarto i odsaczono a po¬ tem w prózni wysuszono nad bezwodnym wodorotlen¬ kiem sodu. Otrzymany w ten sposób chlorowodorek trójpeptydoamidu w ilosci 8,05 g rozpuszczono w 80 10 ml wody. Roztwór wstrzasano trzykrotnie eterem w ilosci po 20 ml, potem za pomcoa wodoroweglanu sodu doprowadzono do pH =8. Alkaliczny roztwór ekstra¬ howano pieciokrotnie chloroformem w ilosci po 20 ml.Polaczone ekstrakty chloroformu wysuszono w obec- 15 nosci bezwodnego siarczanu sodu oraz odparowano* Pozostalosc po odparowaniu roztarto z eterem i wysu¬ szono. W ten sposób otrzymano 5,20 g H-Tca-Leu- -NHj (76% wydajnosci teoretycznej) o wlasnosciach: temperatura topnienia 159—160°C, Rf(5)=0,63, 20 [a]2$ = —162,9 ° (c= 1, w kwasie octowym).Przyklad XI. Wytwarzanie l*-2-ketoimidozo- lidino-4-karbonylo-L-leucylo-L-prolinamidu.Etap 1. Wytwarzanie pieciofluorofenylowego estru kwasu benzyloksykarbonylo-L-2-ketoimidazolidinokar- 25 boksylowego-4. 1056 g (40 mmoli) Z-Kic-OH i 9,09 g (44 mmoli) PEP-OH rozpuszczono w 100 ml mie:-, szaniny DMFA i dioksanu w proporcji 1:2 a nastep¬ nie do roztworu, chlodzac i mieszajac dodano 9,06 g (44 mmole) DCC. Mieszanine reakcyjna mieszano 30 w ciagu póltorej godziny w temperaturze od 0 do 5°C, potem DCU odsaczono, przesacz odparowano a jako pozostalosc otrzymany olej potraktowano n-heksanem w celu wykrystalizowania. Otrzymany w ten sposób surowy produkt w ilosci 16,46 g przekrystalizowano 35 z 50 ml octanu etylu. Otrzymano 12,75 g Kic-Z-OPFP (74% wydajnosci teoretycznej) o wlasnosciach: tem¬ peratura topnienia 146—148°C, Rf(*)=0,53, [a]D25 = =—42,1° (c = l, w octanie etylu).Analiza dla CisHu^NzFj: (masa czasteczkowa 40 430,29) obliczono: C 50,25% H 2,58% N 6,51% F 22,08% znaleziono: C 49,88% H 2,35% N 6,66% F 21,81% , Etap 2. Wytwarzanie benzyloksykarbonylo-L-2-ke- toimidazolidyno-4-karbonylo-L-leucyloTL-prolinaniidu. 45 2,38 g (9 mmoli) H-Leu-Pro-NH2. HC1 rozprowa¬ dzono w 30 ml DMFA i dodano do niego 3,87 g (9 mmo¬ li) Z-Kic-OPFP oraz 1,26 ml (9 mmoli) trójetyloaminy.Po 5 minutach mieszania dodano jeszcze 1,26 ml (9 mmoli) trójetyloaminy i po 20 minutach dalszego mie- 50 szania mieszanine reakcyjna odparowano w prózni.Pozostalosc po odparowaniu rozpuszczono w 50 ml chloroformu, roztwór wstrzasano dwukrotnie z nor¬ malnym roztworem kwasu solnego w ilosci po 10 ml i raz z woda w ilosci 10 ml, osuszono bezwodnym siar* 55 czanem sodu i odparowano. Jako pozostalosc otrzy¬ many olej potraktowano eterem w celu jego wykrysta¬ lizowania i odsaczono. W ten sposób otrzymany su¬ rowy produkt w ilosci 3,31 g doprowadzono do wrze¬ nia z 30 ml octanu etylu. Po ochlodzeniu zawiesine 60 pozostawiono na kilka godzin w lodówce i potem od¬ saczono. Otrzymano 3,0 g Z-Kic-Leu-Pro-NH2 (70% wydajnosci teoretycznej) o wlasnosciach: tempera¬ tura topnienia 172—174°C, Rf(4) = 0,18, [a]D25 = =—102,6° (c = l, w kwasie octowym). 65 Analiza dla C23H3206N5: (masa czasteczkowa 473,50):123 822 19 20 oMfczono: Ci8,34% H 6)60% N l4)?9% znaleziono: G 57,52% H 6,68% N 14)62% Etap 3. Wytwafzarile L-2-k*t»lmidazolidmo-4^kar- ft©&ylo-L-l-L-^roliMUiidU. 1$2 g (2,54 mmoltt) Z-Rlc^-LWi-^r^NHi rozpuszczono w 30 ml wody, 5 dd rOztWOru dodano 0*25 g 10% katalizatora pallad* figiel dkty#ny i przez mieSzanm* przepuszczano # clajU 4 g&dzili gazowy wódótf. Nastepnie odsaczono katalizatot przeSasa OdparóWanO a btapostftciowa po- 26sfa*0Sc wysuszona w prózni nad bezwodnym pifciO*- 10 tlenkiem fesf&ru* Otrzymany W ten sposób pólprodukt W Hosci 0,^5 f ftzpuizczódo W wodzie, roztwór oczysa- ezirad w^glein aktywn?m a przezroczysty roztwór Ho- fillzdwa&o. OfrtfyffiafaO 0,61 g Kic-Leu-PttHNHs (71% Wydajndsci teoretycznej) © WlaShosetachr tempera* ii tdra tdpfli^ls,RfC) = 0,35i [tt]D"=^90,4° (c = l, W kwasie oeiowym).Przyklad XII. Wytwarzanie L-6-kótotipery- dyno-S-kafbonylo-L-leilcylo-L^prolinftttlidu.Etap 1. WytWarfeante pieriofluorbfeitflOWego estni *§ kwlau i^ketopipel^iBaWegO. 4si g (JO mmoli) kwasu L-64tet0pipe*0lineWegó i ó,0t g (33 mmoli} PSPOH r^zid*zO«onb w 100 ml chloroformu i do fÓitw§ru dódftftd mieszajac 1 chlodzac 8)fe g (33 mzaote) ©Gfc. Mieszanin* mieifclhó w ciagu godziny w tenl* if pfcritutffce 0°C5 p*f#m pozostawiono j* na fiOO W lo^ d«wee\ Nastepnego dnia wydzielony lCtt odsaczono* frrzesacz ódpafoWano a krystalldza* pozostalosc ton- falf© fc fl-he*sahem. Otrgyman? w ten fcpósob BttroWy prbdutt w ilosci 9,87 g fozpttsz&bnO W 20 rnl Octanu M etylU, reitwbf petottawiOfiO W lodWo tUtu* potem O«fydz*aeuo w*gleMI aktywnym* odia* iSbtttii i odparowano. Jako póloltetOSC Otrzymany tle) Wfcpttiiczone- W mtetianiltle 5 ml octanu etyl* i 36 Ali h-lleklahu, róztwóf ten pOiditawiono na nftc M W lodoWOe i nastepnego dnia Wydzielona Substancje kfystallWna oddzielono priez odlaczenie. Otrzymano 6,34 g Kpc-OPFP t6fc5H Wydajnosci teoretycznej) o wlaSnoteiafehi temperatur* topnienia 96^*98 *C, [a]D25=+30,0° (c = l, w octanie etylu). *• Analiza dla Ci2tls9(3Kf^; (masa czasteczkowa 309,20) obliczono: 6 46,02% H 2,61% N 4,51% F 30)72% zftalwieno: ifeaf 2. Wytwarzanie Io-ketopipcrydyno-2-karbo- nyl6*L-leUcyfe-L-prblbia»ld*4 i£& g (5 mhioli) H- 41 -Leu-Pro-NKi.HCl rozprowadzono W 20 ml DMFA i dodano dÓ niego mieszajac i chlodzac 1)01 g (5,2 mmola) Jtpc-OPFP i 0)7 ml 0 mmol!) trójetyloaminy* Pb 3 minutach miisialiia dodano jcszcjt« 0,7 ml (5 rnrnd- li) tfejet?lbafiiifiy 1 P© 20 minutach dals*ego mieszt- 50 nii ntieszanlnf fói&yjiia odparowano w ptóani. Krys- talfeena pozOltslO§c roztarto z ^tettm, substancja k^staliczna odfeaczoóo, pweffiyto na filtrze eterem i ziffinySi tóhlofoformeni oraz Wysuszono. Otrzymano W ten sposób 1)87 g Kpc-Lett-PfO-NH2 (72% wydaj- 59 nOsei teóletyczne) ó tolasnO&iatth t temperatura top¬ nienia al4^2l6°C R|(5) = 0)4l, [a] DM=^83% (c^ = 15 W kwasie btlbwym).Analiza anlittbkwasów: kwas -aminóadypinowy 0,99 (1)9) Led 1,00 (1,0), PfO a,98 (1,0). e0 Przyklad Xlii. Wytwarzanie L-6-ketópipetydy- n^-2-ksrbonylo^L-nbrwalilo-L-prOlinarnidu. 2,3S g (9,5 mmbia) H-NVa^ro-^fl2.rtCl rozprowadzono w 30 ml DMFA i dodano cfilodzac i mieszajac 3D,09 g (10 rnlnoii) Kpe-OPFP i 1,33 nil (#35 rnmola) trojtttylo- 61 aminy. Po 5 minutach mieszania dodano jeSzcze 1,33 ml (9,5 mmdla) trójetyloaminy a jeszcze po 20 minutach mieszania mieszanine reakcyjna odparowano w prózni.Krystaliczna pozostalosc roztarto z eterem, odsaczono przemyto na filtrze zimnym etanolem i wysuszono.Otrzyhiany w ted spOsdb surowy produkt W ilosci 3)66 g rozpuszczono w wodzie, roztwór oCzyizczOno wegleni aktywnym) przezroczysty roztwór Odparowano a krystaliczna pozostalosc roztarto z 10 ml etanolu.Mieszanine pozostawiono w lodówce a potem Odsa¬ czono. Otrzymano 2,10 g Kpc-Nra-Pro-NH2 (65% Wydajnosci teoretycznej o wlasnosciach: temperatura topnienia 192—193°C* Rf(5)=0,31) [o] Da5=—83)8° (c=*l) w kwasie octowym).Przyklad XIV. Wytwarzanie D-piroglutamylo- "L-deucylo-L-prólinamidu.Etap li Wytwarzanie pieciofluorofenylowegó estru kwasu b*nzyloksykarbonylo*D-pifóglutaminowegO. 4)55 g (IB mmdli) Z-D-Glp-OH i 3,68 (20 mmoli) PEPOH rozpuszczono w 50 ml ostanu etylu & do roztworu mieszajac i chlbdzac dodano 4,12 g (20 mmoli) DCC.Mieszanine reakcyjna mieszano w ciagu godziny W tem¬ peraturze 0°C, patem odsaczono DCU* przesacz od¬ parowano i Oleista pózOstialosc potraktowano n-hek- sanem dla WykrYstalizOWinii. Otrzymalry w teh spo* sób surowy produkt w ilosci 7,3 g roipussezono w 20 ml octanu etyhi, rOztWór pozostawiono na godzine w lo¬ dówce, potem oczyszczono weglom aktywnym i odpa- rowanOi Jako pozostalosc otrzymany olej rozpuszczo¬ no w 5 ml octtnu etylu i wytracono produkt dodajac 20 ml n-heksanu. Otrzymano 6,60 g Z-D-Olp-OPFP (85% wydajnosci teoretycznej) o wlasnosciach: tem¬ peratura topnienia 81"-82°C, RfC)=0,84, [a]D"<* -*+40)l% (c**h w octanie etylu).Analiza dli GuHl404NF4: (mnsa czastecikowa 459,30) Obliczono: C 53)16% H 2,82% N 3)26% F 22,13% znaleziono: C 53,28% H 3,04% N 3,02% F 21,86% Btap 2< Wytwarzanie benzylbk3ykarbonylo~D-pijro- glutamylo-L-leucylo-L-prólinamidu* 3,24 g (12,3 mmo* la) H*Leu-Pro-NH*.HGl rozprowadzono w 50 ml DMFA a nastepnie mieszajac cblodiae dodano 5)6 g (13 Mmoli) Z-D-Qlp-OPFP otai 1,72 ml (12)3 mmola) trójetyloaminy. Po 5 minutach mieszania dodano jesz- eze 1)72 ml (12,3 mmola) trójetyloaminy a po dalszych 20 minutach mieszania mieszanine reakcyjna odparo* wano w prOzni. Pozostalosc rozpuszczono w 120 ml chloroformu) roztwór wstrzasano dwukrotnie z nor¬ malnym roztworem kwasu Solnego w ilosci po 30 ml) trzykrotnie z normalnym roztworem wodoroweglanu sodu w ilosci po 30 ml i W koncu raz z Woda w ilosci 30 ml) osuszono benzWódnym siarczanem sodu i od* parowano. Oleista pozostalosc po Odparowaniu do*- prowadzono do krystalizacji za pomoca eteru* Otrzy¬ many w teA sposób surOwy produkt w ilosci 5,31 g doprowadzono do wrzenia z 50 ml octanu etylu, ótrzy* mina zawiesine pozostawiono ha 3 godziny W lodówce i potem Uzyskany produkt W postaci osadu Oddzielo¬ no przez Odsaczanie. Otrzymano 4)61 g Z-Glp-Leu- -Pro-NHi (80% wydajnosci teoretycznej o wlasnos¬ ciach: temperatura topnienia 189—194°C, Rf(4) = =* Etap 3. Wytwarzanie D»piroglutamylo-L-leucylO-L- -prolinamidu 4,48 g (9,5 mmola) Z-Glp-D-Leu- -Pro^NHi rozpuszczono w 200 ml metanolu i do rox~123 822 21 tworu dodano 0,9 g 10% katalizatora pallad-wegiel aktywny a nastepnie przepuszczono przez niego w cia¬ gu godziny gazowy wodór. Wówczas odsaczono kata¬ lizator a przesacz odparowano i bezpostaciowa po¬ zostalosc po odparowaniu roztarto z eterem. Otrzy- 5 many w ten sposób surowy produkt w ilosci 3,07 g rozpuszczono w wodzie, roztwór oczyszczono weglem aktywnym a przezroczysty roztwór liofilizowano. O- trzymano 2,90 g D-Glp-Leu-Pro-NH2 (90,5% wy¬ dajnosci teoretycznej) o wlasnosciach: [a]D25= —23,6° 10 (c =l, w kwasie octowym), Rf(5) = 0,40.Przyklad XV. Wytwarzanie amidu kwasu orotylo-L-histydylo-L-pipekolinowego.Etap 1. Wytwarzanie metylowego estru orotylo-L- -histydyny. 24,2 g (100 mmoli) H-His-OMe.2HCl 15 rozpuszczono w mieszaninie 120 ml DMFA i dioksanu w proporcji 1:1. Do roztworu tego dodano 17,41 g (100 mmoli) jednowodzianu kwasu orotowego. Roz¬ twór oziebiono do temperatury 0 °C i w tej marnej tem¬ peraturze dodano 11,5 g (100 mmoli) N-hydroksy- 20 -sukcynimidu, 11,1 ml (100 mmoli) N-metylo-mor- foliny i w koncu 20,6 g (100 mmoli) DCC. Miesza¬ nine reakcyjna mieszano w ciagu godziny w tempera¬ turze 0CC a pózniej przez noc w temperaturze poko¬ jowej. Nastepnego dnia mieszanine trzymano 2 go- 25 dziny w lodówce a potem odsaczono DCU i przesacz odparowano. Jako pozostalosc otrzymany olej przez roztarcie z woda doprowadzono do krystalizacji, krysz¬ taly odsaczono i przemyto na filtrze 5% wodnym roz¬ tworem kwasu cytrynowego i woda. W ten sposób ao otrzymano 11,6 g Oro-His-OMe (38% wydajnosci teoretycznej) o wlasnosciach: temperatura topnienia 258—262 °C,Rf(5)=0,40.Analiza dla C12H1305N5: (masa czasteczkowa 307,27) obliczono: N22,79% 35 znaleziono: N 22,51% Etap 2. Wytwarzanie hydrazydu orotylo-histydyny. 9,21 g (30 mmoli) Oro-His-OMe rozpuszczono w 120 ml DMFA i do roztworu dodano 7,35 (150 mmoli) wodzianu hydrazyny. Mieszanine reakcyjna pozosta- 40 wiono na 2 dni w temperaturze pokojowej, potem roz¬ cienczono 100 ml octanu etylu i na noc wstawiono do lodówki. Wydzielony osad odfiltrowano i przekrysta- lizowano z metanolu . W ten sposób otrzymano 8,07 g Oro-His-N2H3 (88% wydajnosci teoretycznej) o wlas- 45 nosciach: temperatura topnienia 250—260 CC, Rf(5) = = 0,35, Analiza dla C11H1304N7: (masa czasteczkowa 308,28) obliczono: N 31,91% znaleziono: N30,75% 50 Etap 3. Wytwarzanie amidu kwasu orotylo-L-histy- dyno-L-pipekolinowego. 5,0 g (16,28 mmola) Oro- -His-N2H3 rozprowadzono w 135 ml DMFA i do roz¬ tworu dodano 5,99 ml (48,84 mmola) 8,1 N roztworu kwasu solnego w dioksanie. Otrzymany roztwór ochlo- 55 dzono do temperatury —15 CC i mieszajac wkroplono do niego 2,13 ml (17,9 mmola) azotynu-III.rz.butylu.Mieszano mieszanine reakcyjna w ciagu 20 minut w temperaturze —10°C, w której nastepnie dodano 4,56 ml (32,56 mmola) trójetyloaminy. Do miesza- 60 niny dodano roztwór 2,05 g (16,28 mmola) H-Pip-NH2 w 10 ml DMFA i w koncu wkroplono 2,28 ml (16,28 mmola) trójetyloaminy. Po zakonczeniu tego doda¬ wania mieszanine reakcyjna mieszano jeszcze godzine w temperaturze —10 °C a nastepnie pozostawiono na « 22 noc w temperaturze 2°C. Nastepnego dnia wydzielony osad odsaczono, przesacz odparowano w prózni a po¬ zo:talosc roztarto z octanem etylu. Otrzymany w ten sposób surowy produkt w ilosci 4,6 g, co stanowilo 74% wydajnosci teoretycznej, oddzielono i 1,3 g tego produv.tu umieszczono w kolumnie chromatograficz¬ nej na mieszaninie fcarboksymetylocehllozy-23 i kar- boksymetylocelulozy-52 w proporqi 1:1 a nastepnie eluowano 0,005—0,1 molarnym roztworem octanu amonu o wartosci pH=5. Czysty produkt zebrano i liofilizowano. Otrzymano 820 mg bezpostaciowego Oro-His-Pip-NH2 o wlasnosciach: Rf(5)=0,10, [a]D«=^19,0° (c = l, w wodzie).Analiza aminokwasów: His 1,00 (1,0), Pip 0,94 (1,0).Przyklad XVI. Wytwarzanie amidu kwasu orotylo-L-histydylo-D-pipekolinowego. 5,0 g (16,28 mmola) Oro-His-N2H3 rozprowadzono w 135 ml DMFA i dodano 5,99 ml (48,84 mmola) 8,1 N roz¬ tworu kwasu solnego w dioksanie. Otrzymany roztwór ochlodzono do temperatury —15°C i mieszajac wkro¬ plono do niego 2,13 ml (17,9 mmola) azotynu-III.rz.- -butylu. Mieszanine reakcyjna mieszano w ciagu 20 minut w temperaturze —10 °C, potem w tej samej temperaturze wkroplono 4,56 ml (32,56 mmola) trój* etyloaminy, dodano do mieszaniny roztwór 2,05 g (16,28 mmola) H-D-Pip-NH2 i w koncu 2,28 ml (16,28 mmola) trójetyloaminy. Po zakonczeniu doda¬ wania mieszanine reakcyjna mieszano jeszcze godzine w temperaturze —10 °C, potem pozostawiono ja na noc w lodówce w temperaturze 2°. Nastepnego dnia wydzielony osad odsaczono przesacz odparowano w prózni a pozostalosc po odparowaniu roztarto z octa¬ nem etylu. Otrzymano w ten sposób 4,1 g surowego produktu, co stanowilo 66% wydajnosci teoretycznej. 1,3 g tego pólproduktu umieszczono w kolumnie chro¬ matograficznej na mieszaninie karboksymetylocelulo- zy-23 i karboksymetylocelulozy-52 w proporcji 1:1 oraz eluowano 0,005—0,1 molarnym roztworu octanu amonu o wartosci pH = 5. Frakcje zawierajace czysty produkt polaczono i liofilizowano. Otrzymano 795 mg bezpostaciowego Oro-His-D-Pip-NH2 o wlasnosciach: Rf(5)=0,lÓ, [a]D24=+13,5c (c = l, w wodzie).Analiza aminokwasów: His 1,00 (1,0), Pip 0,96 (1,0) Przyklad XVII. Wytwarzanie orotylo-L-histy- dylo-L-homoprolinamidu. 5,0 g (16,28 mmola) Oro- -His-N2H3 rozprowadzono w 135 ml DMFA i dodano 5,99 ml (48,84 mmola) 8,1-normalnego roztworu kwasu solnego w dwuóksanie. Otrzymany roztwór ochlodzono do temperatury —15°C mieszajac wkro¬ plono do niego 2,13 ml (17,9 mmola) azotynu-III-rz.- butylu. Mieszanine reakcyjna mieszano w ciagu 20 minut w temperaturze —10°C, potem w tej same; temperaturze wkroplono kolejno 4,56 ml (32,56 mmola) trójetyloaminy, roztwór 2,05 g (16,28 mmola) H-Pro- -NH2 w 10 ml DMFA i w koncu jeszcze 2,28 ml (16,28 mmola) trójetyloaminy. Po zakonczeniu tego dodawa¬ nia mieszanine reakcyjna mieszano jeszcze w czasie godziny w temperaturze —10°C a potem pozostawio¬ no na noc w lodówce w temperaturze 2°C. Nastepne¬ go dnia osad odsaczono, przesacz odparowano w próz¬ ni a pozostalosc roztarto z octanem etylu. Otrzymano w ten sposób surowy produkt w ilosci 4,2 g (67% wy¬ dajnosci teoretycznej). 1,3 g tego pólproduktu umiesz¬ czono w kolumnie chromatograficznej na mieszane123 23 karboksymetylocelulozy-23 i karboksymetylocelutozy-52 w proporcji 1:1 oraz eluowano 0,005—0,1, molarnym roztworem octanu amonu. Frakcje zawierajace czysty produkt polaczono i liofilizowano. Otrzymano 802 mg bezpostaciowego Oro-His-HPro-NH2 o wlasnosciach: Rf(5)=0,10, [a]D" =—12,8 *(c = l, w wodzie).Analiza aminokwas ów: His 1,00 (1,0), HPro 0,91 (1,0).Przyklad XVIII. Wytwarzanie amidu kwasu L-6-ketopiperydyno-2-karbonylo-L-norwalilo-L-tiazoli- dyno-karboksyIowego-4. 2,55 g (9,5 mmola) H-Nva-rca- -NH2.HC1 rozprowadzono w 30 ml DMFA i miesza¬ jac i chlodzac dodano 3,09 g (10 mmoli) Kpc-OPFP i 1,33 ml/ (9,5 mmola) trójetyloaminy. Po 5 minutach mieszania dodano jeszcze 1,33 ml (9,5 mmola) tiój- etyloaminy i po dalszych 20 minutach mieszania mie¬ szanine reakcyjna odparowano w prózni. Jako pozos¬ talosc otrzymany olej pozostawiono na noc w lodówce i przez to doprowadzono do jego krystalizacji. Nastep¬ nego dnia krysztaly odsaczono oraz przemyto eterem i zimnym etanolem. Otrzymany w ten sposób surowy produkt w ilosci 3,25 g rozpuszczono w wodzie, roz¬ twór oczyszczono weglem aktywnym, przezroczysty roztwór odparowano, krystaliczna pozostalosc roztarto z 20 ml etanolu i pozostawiono na noc w lodówce.Nastepnego dnia otrzymany produkt odsaczono i wy¬ suszono. Otrzymano 2,0 g Kpc-Nva-Tca-NH2 (59% wy¬ dajnosci teoretycznej) o wlasnosciach: temperatura topnienia 183—185°C, Rf(5) = 0,47, [a] D" =—136,0°C (c = 1, w kwasie octowym).Przyklad XIX. Wytwarzanie L-6-ketopipery- dyno-2-karbonylo-L-norwalilo-L-homoprolinamidu.Etap 1. Wytwarzanie III.rz.-butyloksykarbonylo-L- -homoprolinamidu. 2,29 g (10 mmoli) BOC-HPro- -OH rozpuszczono w 30 ml octanu etylu, do roztworu 35 dodano 1,4 ml (10 mmoli) trójetyloaminy, potem mie¬ szanine ochlodzono do temperatury —10°C i wkro- plono do niej 1,3 ml (10 mmoli) estru i izobutylowego kwasu chloroweglowego. Po 15 minutach mieszania do roztworu doprowadzono w ciagu pól godziny amoniak 40 gazowy w temperaturze —10°C. Nastepnie miesza¬ nine pozostawiono na 2 godzi ly w temperaturze od 0—5°C. Osad odsaczono, przesacz odparowano a jako pozostalosc otrzymany olej rozpuszczono w 30 ml chloroformu. Roztwór wstrzasano dwukrotnie z nor- 4) malnym roztworem kwasu solnego w ilosci po 10 ml, równiez dwukrotnie z normalnym roztworem wodoro¬ weglanu sodu w ilosci po 10 ml i w koncu z woda w ilosci 10 ml, wysuszono bezwodnym siarczanem sodu, odparowano a jako pozostalosc otrzymany olej dopro- 50 wadzono do krystalizacji za pomoca n-heksanu. Otrzy¬ many w ten sposób surowy produkt w ilosci 1,95 prze- krystalizowano z mieszaniny octanu etylu i eteru.W koncu otrzymano 1,78 g BOC-HPro-NH2 (78% wydajnosci teoretycznej) o wlasnosciach: tempera- 55 tura topnienia 138—140°C Rf(2) = 0,43, [a]D?5= =—24,85° (c = l, w kwasie octowym).Analiza dla C^H^OaNj: (masa czasteczkowa 228,29) obliczono: C 57,87% H 8,83% N 12,27% znaleziono: C 57,65% H 8,89% N 12,11% «° Etap 2. Wytwarzanie chlorowodorku L-homopro- linamidu, 1,6 g (7 mmoli) BOC-HPro-NH2 rozpusz¬ czono w 10 ml cieplego octanu etylu, roztwór ochlo¬ dzono do temperatury pokojowej i dodano do niego 10 ml 6N roztworu kwasu solnego w octanie etylu, m 822 24 Mieszanine reakcyjna pozostawiono na godzine w tem¬ peraturze pokojowej, rozcienczono eterem, osad roz¬ tarto z eterem i odsaczono. W ten sposób otrzymano 1,05 g H-HPro-NH2.HCl (91% wydajnosci teore¬ tycznej) o wlasnosciach: temperatura topnienia 178— —180°C, Rf(6)=0,32, [a]D25=+26,2° (c = l, w me¬ tanolu).Etap 3. Wytwarzanie chlorowodorku L-norwalilo-L- -homoprolinamidu. 0,99 g (6 mmoli) H-Pro-NH2.HCl rozprowadzono w 20 ml DMFA i mieszajac dodano 0,84 ml (6 mmoli) trójetyloaminy oraz 2,3 g (6 mmoli) BOC*Nva-OPFP. Po uplywie 15 minut dodano jesz¬ cze 0,84 g (6 mmoli) trójetyloaminy i po godzinnym mieszaniu mieszanine odparowano w prózni. Pozosta¬ losc rozpuszczono w 50 ml chloroformu, roztwór wstrzasano dwukrotnie z normalnym kwasem solnym w ilosci po 10 ml, równiez dwukrotnie z normalnym roztworem wodoroweglanu sodu w ilosci po 10 ml, osuszono bezwodnym siarczanem sodu i odparowano.Otrzynuny jako pozostalosc olej rozpuszczono w 6 ml octanu etylu, do roztworu dodano 10 ml 6N roztworu kwasu solnego w octanie etylu. Po godzinie mieszani¬ ne reakcyjna rozcienczono eterem, bezpostaciowy osad roztarto, odsaczono i wysuszono w prózni nad bezwod¬ nym wodorotlenkiem sodu. W ten sposób otrzymano 1,22 g H-Nva-HPro-NH2.HCl (89,5% wydajnosci teoretycznej) o wlasnosciach Rf(5) =0,12.Etap 4. Wytwarzanie L-6-ketopiperydyno-2-karbo- nylo-L-norwalilo-L-homoprolinamidu. 1,22 g (5,37 mmoli) H-Nva-HPro-NH2•HC1 rozpuszczono w 20 ml DMFA i do roztworu dodano 0,75 ml (5,37 mmola) trójetyloaminy oraz 1,7 g (5,5 mmola) Kpc-OPFP.Po 5 minutach mieszania dodano dodatkowo 0,75 ml (5,37 mmola). trójetyloaminy i po uplywie dalszych 20 minut, w czasie których mieszanine mieszano, odparowano ja w prózni. Pozostalosc roztarto z ete¬ rem i w ten sposób otrzymany bezpostaciowy surowy produkt w ilosci 1,8 g umieszczono w kolumnie chro¬ matograficznej na zelu krzemionkowym w ilosci 40 g a nastepnie eluowano mieszanine rozpuszczalników (4).Francje eluatu zawierajace czysty produkt polaczono i odparowano. Otrzymano 1,11 g czystego produktu, który rozpuszczono w wodzie, oczyszczono weglem aktywnym a przezroczysty roztwór liofilizowano. W ten sposób otrzymano 1,0 g Kcp-Nva-HPRo-NH2 (53% wydajnosci teoretycznej) o nastepujacych wlas¬ nosciach: Rf(5) = 0,35, [a]D35 =—44,6° (c = l, w kwasie octowym).Zastrzezenia patentowe 1 Sposób wytwarzania nowych trójpeptydoamidów o ogólnym wzorze X-Y-W-NH2,w którym X oznacza grupe L-piroglutamylowa, D-piroglutamylowa, L-2- -ketoimidazolidyno- 4-karbonylowa, L-6-ketopipekolilo- wa, L-tiazolidyno-4-karbonylowa, L-prolilowa lub oro- tylowa, Y oznacza grupe L-leucylowa, L-norwalilowa lub L-histydylowa, W oznacza grupe L-prolilowa, D-prolilowa, L-tiazolidyno-4-karbonylowa, L-homo- prolilowa, L-leucylowa, L-izoleucylowa, L-metiony- lowa, L-pipekolilowa lub D-pipekolilowa albo grupa o wzorze -W-NH2 razem oznacza grupe pirolidylowa lub piperydylowa, przy czym jezeli X oznacza grupe L-piroglutamylowa a Y oznacza grupe L-histydylowa, wówczas W ma znaczenie inne niz grupa L-prolilowa, znamienny tym, ze wychodzac ze zwiazków o ogól-123 822 25 nym wzorze W-NH2,w którym W ma wyzej podane znaczenie wytwarza sie etapami zwiazek o wzorze X-Y-W-NH2 przez zastosowanie znanych w chemii peptydów metod sprzegania, przy czym zwiazek o ogól¬ nym wzorze W-NH2, w którym W ma wyzej podane znaczenie acyluje sie zabezpieczonym estrem piecio- fluorofenylowym aminokwasu o ogólnym wzorze BOC- -Y-OPFP, U którym BOC oznacza grupe III-rzed. butoksykarbonylowa, OPFP oznacza grupe piecio- fluorofenoksylowa, a Y ma wyzej podane znaczenie, i z tak otrzymanego zabezpieczonego dwupeptydu o ogólnym wzorze BOC-Y-W-NH2, w którym BOC, Y i W maja wyzej podane znaczenie, uwalnia sie przez hydrolize kwasowa dwupeptyd o ogólnym wzorze H-Y-W-NH2,w którym Y i W maja wyzej podane zna¬ czenie i ten dwupeptyd acyluje sie zabezpieczonym ' estrem pieciofluorofenylowym aminokwasu o ogól¬ nym wzorze Z-X-OPFP, w którym Z oznacza grupe benzyloksykarbonylowa, a X i OPFP maja wyzej po¬ dane znaczenie, o w otrzymanym zabezpieczonym trójpeptydoamidzie o ogólnym wzorze Z-X-Y-W-NH2, w którym Z, X, Y i W maja wyzej podane znaczenie, odszczepia sie przez katalityczne uwodornienie grupa zabezpieczajaca Z. 26 2. Sposób wytwarzania nowych trójpeptydoamidów o ogólnym wzorze X-Y-W-NH2,w którym X oznacza grupe L-piroglutamylowa, D-piroglutamylowa, L-2- -ketoimidazolidyno-4-karbonylowa, L-6-ketopipekolilo- 5 wa, L-tiazolidyno-4-karbonylowa, L-prolilowa lub oro- tylowa, Y oznacza grupe L-leucylowa, L-norwalilowa lub L-histydylowa, W oznacza grupe L-prolilowa, D-prolilowa, L-tiazolidyno-4-karbonylowa, L-homo- prolilowa, L-leucylowa, L-izoleucylowa, L-metiony- lowa, L-pipekolilowa lub D-pipekolilowa albo grupa o wzorze -W-NH2 razem oznacza fcrujpe pirolidylowa lub piperydylowa, przy czym jezeli X oznacza grupe L-piroglutamylowa a Y oznacza grupe L-histydylowa, wówczas W ma znaczenie inne niz grupa L-prolilowa, znamienny tym, ze zwiazek o ogólnym wzorze W-NH2, w którym W ma wyzej podane znaczenie, acyluje sie zabezpieczonym azydkiem dwupeptydu o ogólnym wzorze Z-X-Y-N3,w którym Z, X, i Y maja wyzej po¬ dane znaczenie, i w otrzymanym zabezpieczonym trój¬ peptydoamidzie o ogólnym wzorze Z-X-Y-W-NH2 w którym Z, X, Y i W maja wyzej podane znaczenie, odszczepia sie przez katalityczne uwodornienie grupa zabezpieczajaca Z. PL PL PL

Claims (1)

1. Zastrzezenia patentowe 1 Sposób wytwarzania nowych trójpeptydoamidów o ogólnym wzorze X-Y-W-NH2,w którym X oznacza grupe L-piroglutamylowa, D-piroglutamylowa, L-2- -ketoimidazolidyno- 4-karbonylowa, L-6-ketopipekolilo- wa, L-tiazolidyno-4-karbonylowa, L-prolilowa lub oro- tylowa, Y oznacza grupe L-leucylowa, L-norwalilowa lub L-histydylowa, W oznacza grupe L-prolilowa, D-prolilowa, L-tiazolidyno-4-karbonylowa, L-homo- prolilowa, L-leucylowa, L-izoleucylowa, L-metiony- lowa, L-pipekolilowa lub D-pipekolilowa albo grupa o wzorze -W-NH2 razem oznacza grupe pirolidylowa lub piperydylowa, przy czym jezeli X oznacza grupe L-piroglutamylowa a Y oznacza grupe L-histydylowa, wówczas W ma znaczenie inne niz grupa L-prolilowa, znamienny tym, ze wychodzac ze zwiazków o ogól-123 822 25 nym wzorze W-NH2,w którym W ma wyzej podane znaczenie wytwarza sie etapami zwiazek o wzorze X-Y-W-NH2 przez zastosowanie znanych w chemii peptydów metod sprzegania, przy czym zwiazek o ogól¬ nym wzorze W-NH2, w którym W ma wyzej podane znaczenie acyluje sie zabezpieczonym estrem piecio- fluorofenylowym aminokwasu o ogólnym wzorze BOC- -Y-OPFP, U którym BOC oznacza grupe III-rzed. butoksykarbonylowa, OPFP oznacza grupe piecio- fluorofenoksylowa, a Y ma wyzej podane znaczenie, i z tak otrzymanego zabezpieczonego dwupeptydu o ogólnym wzorze BOC-Y-W-NH2, w którym BOC, Y i W maja wyzej podane znaczenie, uwalnia sie przez hydrolize kwasowa dwupeptyd o ogólnym wzorze H-Y-W-NH2,w którym Y i W maja wyzej podane zna¬ czenie i ten dwupeptyd acyluje sie zabezpieczonym ' estrem pieciofluorofenylowym aminokwasu o ogól¬ nym wzorze Z-X-OPFP, w którym Z oznacza grupe benzyloksykarbonylowa, a X i OPFP maja wyzej po¬ dane znaczenie, o w otrzymanym zabezpieczonym trójpeptydoamidzie o ogólnym wzorze Z-X-Y-W-NH2, w którym Z, X, Y i W maja wyzej podane znaczenie, odszczepia sie przez katalityczne uwodornienie grupa zabezpieczajaca Z. 262. Sposób wytwarzania nowych trójpeptydoamidów o ogólnym wzorze X-Y-W-NH2,w którym X oznacza grupe L-piroglutamylowa, D-piroglutamylowa, L-2- -ketoimidazolidyno-4-karbonylowa, L-6-ketopipekolilo- 5 wa, L-tiazolidyno-4-karbonylowa, L-prolilowa lub oro- tylowa, Y oznacza grupe L-leucylowa, L-norwalilowa lub L-histydylowa, W oznacza grupe L-prolilowa, D-prolilowa, L-tiazolidyno-4-karbonylowa, L-homo- prolilowa, L-leucylowa, L-izoleucylowa, L-metiony- lowa, L-pipekolilowa lub D-pipekolilowa albo grupa o wzorze -W-NH2 razem oznacza fcrujpe pirolidylowa lub piperydylowa, przy czym jezeli X oznacza grupe L-piroglutamylowa a Y oznacza grupe L-histydylowa, wówczas W ma znaczenie inne niz grupa L-prolilowa, znamienny tym, ze zwiazek o ogólnym wzorze W-NH2, w którym W ma wyzej podane znaczenie, acyluje sie zabezpieczonym azydkiem dwupeptydu o ogólnym wzorze Z-X-Y-N3,w którym Z, X, i Y maja wyzej po¬ dane znaczenie, i w otrzymanym zabezpieczonym trój¬ peptydoamidzie o ogólnym wzorze Z-X-Y-W-NH2 w którym Z, X, Y i W maja wyzej podane znaczenie, odszczepia sie przez katalityczne uwodornienie grupa zabezpieczajaca Z. PL PL PL
PL1980225269A 1979-06-28 1980-06-27 Process for preparing novel tripeptideamides PL123822B1 (en)

Applications Claiming Priority (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
HU79RI718A HU180926B (en) 1979-06-28 1979-06-28 Process for preparing trh analogues,tripeptide amides infectives on the central nerve sysrhem

Publications (2)

Publication Number Publication Date
PL225269A1 PL225269A1 (pl) 1981-05-08
PL123822B1 true PL123822B1 (en) 1982-11-30

Family

ID=11001101

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
PL1980225269A PL123822B1 (en) 1979-06-28 1980-06-27 Process for preparing novel tripeptideamides

Country Status (23)

Country Link
US (1) US4386073A (pl)
JP (1) JPS568354A (pl)
AT (1) AT380259B (pl)
AU (1) AU538621B2 (pl)
BE (1) BE884015A (pl)
BG (1) BG60739B2 (pl)
CA (1) CA1188296A (pl)
CH (1) CH650519A5 (pl)
CS (1) CS241028B2 (pl)
DD (1) DD151745A5 (pl)
DE (1) DE3024256A1 (pl)
DK (1) DK149610C (pl)
FI (1) FI73224C (pl)
FR (1) FR2460291A1 (pl)
GB (1) GB2058079B (pl)
HU (1) HU180926B (pl)
IL (1) IL60406A (pl)
IT (1) IT1174678B (pl)
NL (1) NL192575C (pl)
PL (1) PL123822B1 (pl)
SE (1) SE447389B (pl)
SU (1) SU1085505A3 (pl)
YU (1) YU43220B (pl)

Families Citing this family (21)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
HU184481B (en) * 1981-10-02 1984-08-28 Richter Gedeon Vegyeszet Process for producing tripeptides for diminishing appetite
CA1256650A (en) * 1983-03-25 1989-06-27 Toshinari Tamura Process of producing 2-azetidinone-4-substituted compounds, and medicaments containing the compounds
GB2146026A (en) * 1983-09-07 1985-04-11 Tanabe Seiyaku Co Peptides and process for preparing the same
JPS60190795A (ja) * 1984-03-09 1985-09-28 Takeda Chem Ind Ltd ペプタイド
US4608365A (en) * 1984-03-30 1986-08-26 University Of Southern California Treatment of neurologic functions
US4719207A (en) * 1984-06-25 1988-01-12 Yamanouchi Pharmaceutical Co., Ltd. CNS active substituted azetidinone compounds
IL75641A (en) * 1984-07-10 1990-11-05 Tanabe Seiyaku Co 1-methyl-4,5-dihydro-orotyl-histidyl-prolinamide,its preparation and pharmaceutical compositions comprising it
IE58849B1 (en) * 1984-12-18 1993-11-17 Gruenenthal Chemie Use of dipeptide derivatives for the manufacture of medicaments for the treatment of patients with amyotrophic lateral sclerosis
JPS6222797A (ja) * 1985-07-19 1987-01-30 Tanabe Seiyaku Co Ltd 新規ペプタイド
IT1202426B (it) * 1987-01-26 1989-02-09 Poli Ind Chimica Spa Derivato di acido tiazolidin-4-carbossilico,sua preparazione e composizioni farmaceutiche che lo contengono
JPH06104079B2 (ja) * 1988-07-14 1994-12-21 日東紡績株式会社 新規な酵素活性測定用基質
FR2649110B1 (fr) * 1989-06-29 1994-10-21 Adir Nouveaux derives peptidiques, leur procede de preparation et les compositions pharmaceutiques qui les contiennent
EP0473993B1 (en) * 1990-08-17 1996-04-17 Japan Tobacco Inc. Novel peptide derivatives and their pharmaceutical use
HU206374B (en) * 1990-09-03 1992-10-28 Richter Gedeon Vegyeszet Process for producing pentapeptide and its salts specifically inhibiting proliferation of epidermic cells, as well as pharmaceutical compositions comprising same as active ingredient
IT1244548B (it) * 1991-02-06 1994-07-15 Poli Ind Chimica Spa Derivati della 5-oxo-l-prolina e loro applicazioni farmaceutiche
US20050233973A1 (en) * 1997-10-09 2005-10-20 Albert Sattin Tri-peptides for antidepressant applications
US20020151502A1 (en) * 1997-10-09 2002-10-17 Albert Sattin Tri-peptides for neurological and neurobehavior applications
US20030175350A1 (en) * 2000-07-11 2003-09-18 Katsuji Sugita Enteric preparations containing physiologically active peptides
EP1321151A4 (en) * 2000-08-31 2009-07-15 Shionogi & Co MEANS FOR THE TREATMENT OF PARKINSON
US8143369B2 (en) * 2009-06-02 2012-03-27 International Business Machines Corporation Polymers bearing pendant pentafluorophenyl ester groups, and methods of synthesis and functionalization thereof
JP6847948B2 (ja) * 2016-07-14 2021-03-24 昭和電工株式会社 メラニン産生抑制剤、美白剤、線維芽細胞活性化剤、コラーゲン及び/又はエラスチン産生促進剤、及びシワ改善剤

Family Cites Families (5)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
DE2343037A1 (de) * 1973-08-25 1975-03-06 Hoechst Ag Arzneimittel mit antidepressiver wirkung
US3959248A (en) * 1974-04-03 1976-05-25 Merck & Co., Inc. Analogs of thyrotropin-releasing hormone
DE2449167C2 (de) * 1974-10-16 1984-05-24 Grünenthal GmbH, 5190 Stolberg N-Acyl-L-histidyl-L-prolinamide, Verfahren zu deren Herstellung und diese Verbindungen enthaltende pharmazeutische Zubereitungen
SE408300B (sv) * 1974-10-16 1979-06-05 Gruenenthal Chemie Sett att framstella nya dipeptidderivat
JPS5944308B2 (ja) * 1976-03-23 1984-10-29 武田薬品工業株式会社 ペプタイド

Also Published As

Publication number Publication date
BE884015A (fr) 1980-12-29
AU5972080A (en) 1981-01-08
DD151745A5 (de) 1981-11-04
NL8003766A (nl) 1980-12-30
GB2058079A (en) 1981-04-08
JPS568354A (en) 1981-01-28
DE3024256A1 (de) 1981-01-08
IL60406A (en) 1984-10-31
NL192575B (nl) 1997-06-02
FI73224C (fi) 1987-09-10
CA1188296A (en) 1985-06-04
SE8004745L (sv) 1980-12-29
BG60739B2 (bg) 1996-01-31
DK149610B (da) 1986-08-11
IT1174678B (it) 1987-07-01
SU1085505A3 (ru) 1984-04-07
JPH0159278B2 (pl) 1989-12-15
NL192575C (nl) 1997-10-03
FR2460291A1 (fr) 1981-01-23
SE447389B (sv) 1986-11-10
IL60406A0 (en) 1980-09-16
IT8023097A0 (it) 1980-06-26
YU169580A (en) 1984-04-30
DE3024256C2 (pl) 1991-01-24
PL225269A1 (pl) 1981-05-08
DK149610C (da) 1987-05-04
ATA334780A (de) 1985-09-15
YU43220B (en) 1989-06-30
FI73224B (fi) 1987-05-29
CS241028B2 (en) 1986-03-13
AT380259B (de) 1986-05-12
DK274580A (da) 1980-12-29
FI802058A (fi) 1980-12-29
CS458380A2 (en) 1985-06-13
FR2460291B1 (pl) 1984-11-23
US4386073A (en) 1983-05-31
GB2058079B (en) 1983-03-02
CH650519A5 (de) 1985-07-31
AU538621B2 (en) 1984-08-23
HU180926B (en) 1983-05-30

Similar Documents

Publication Publication Date Title
PL123822B1 (en) Process for preparing novel tripeptideamides
EP0236872B1 (de) Hydroxylaminderivate, deren Herstellung und Verwendung für Heilmittel
US4053588A (en) Pharmaceutical preparations having psychotropic activity and process for their manufacture
US3975367A (en) Arabinofuranosyl N4 -aminoacyl cytosine containing compounds
JPS609518B2 (ja) ジペプチド−誘導体の製法
US4623715A (en) Novel peptides which are active on the central nervous system and have an action on the cholinergic system
DE2730549A1 (de) Peptidderivate und deren herstellung
NZ202784A (en) Enkephalin derivatives and pharmaceutical compositions
CA1158236A (en) Process for the preparation of novel substituted phenylacetic acid amide compounds
EP0228625B1 (de) Peptid-Derivate mit inhibitorischer Wirkung auf hydroxylierende Enzyme, Verfahren zu ihrer Herstellung, diese enthaltende Mittel und ihre Verwendung
US4849408A (en) Method of treatment of cerebral disturbances with oligopeptides containing tryptophan
PL127100B1 (en) Method of obtaining new tripeptidamides
US4060603A (en) Histidine derivatives
EP0668290A1 (en) Physiologically active substance well capable of permeating biomembrane
US3931139A (en) Tripeptides having an antidepressive and prolactin-releasing action
AU597749B2 (en) Peptides
US4339440A (en) Enkephalin analogs and a process for the preparation thereof
Bodanszky et al. Structure and synthesis of malformin A1
GB2109796A (en) Anorexigenic tripeptides, process for the preparation thereof and pharmaceutical compositions containing them
US5180712A (en) Petide antidementia and nootropic agents
US3752800A (en) Process for the manufacture of a pyroglutamylpeptide
EP0253882A1 (en) Acylated cyanamide composition
US3749706A (en) Novel dipeptide amide and process for its manufacture
CA1308515C (en) Peptide derivatives and processes for their preparation
US3700651A (en) L-leucyl-l-leucyl-l-valyl-l-tyrosinol