NO337009B1 - Fremgangsmåte for fremstilling av fosfatidylserin - Google Patents

Fremgangsmåte for fremstilling av fosfatidylserin Download PDF

Info

Publication number
NO337009B1
NO337009B1 NO20076158A NO20076158A NO337009B1 NO 337009 B1 NO337009 B1 NO 337009B1 NO 20076158 A NO20076158 A NO 20076158A NO 20076158 A NO20076158 A NO 20076158A NO 337009 B1 NO337009 B1 NO 337009B1
Authority
NO
Norway
Prior art keywords
concentration
phosphatidylcholine
pld
volume
enzyme
Prior art date
Application number
NO20076158A
Other languages
English (en)
Other versions
NO20076158L (no
Inventor
Susanna Vaccaro
Anna Maria Zanellato
Mara Pittarello
Antonio Gambillara
Original Assignee
Fidia Farmaceutici
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Fidia Farmaceutici filed Critical Fidia Farmaceutici
Publication of NO20076158L publication Critical patent/NO20076158L/no
Publication of NO337009B1 publication Critical patent/NO337009B1/no

Links

Classifications

    • AHUMAN NECESSITIES
    • A23FOODS OR FOODSTUFFS; TREATMENT THEREOF, NOT COVERED BY OTHER CLASSES
    • A23JPROTEIN COMPOSITIONS FOR FOODSTUFFS; WORKING-UP PROTEINS FOR FOODSTUFFS; PHOSPHATIDE COMPOSITIONS FOR FOODSTUFFS
    • A23J7/00Phosphatide compositions for foodstuffs, e.g. lecithin
    • AHUMAN NECESSITIES
    • A61MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61KPREPARATIONS FOR MEDICAL, DENTAL OR TOILETRY PURPOSES
    • A61K31/00Medicinal preparations containing organic active ingredients
    • A61K31/66Phosphorus compounds
    • A61K31/683Diesters of a phosphorus acid with two hydroxy compounds, e.g. phosphatidylinositols
    • A61K31/685Diesters of a phosphorus acid with two hydroxy compounds, e.g. phosphatidylinositols one of the hydroxy compounds having nitrogen atoms, e.g. phosphatidylserine, lecithin
    • AHUMAN NECESSITIES
    • A61MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61PSPECIFIC THERAPEUTIC ACTIVITY OF CHEMICAL COMPOUNDS OR MEDICINAL PREPARATIONS
    • A61P25/00Drugs for disorders of the nervous system
    • A61P25/28Drugs for disorders of the nervous system for treating neurodegenerative disorders of the central nervous system, e.g. nootropic agents, cognition enhancers, drugs for treating Alzheimer's disease or other forms of dementia
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C07ORGANIC CHEMISTRY
    • C07FACYCLIC, CARBOCYCLIC OR HETEROCYCLIC COMPOUNDS CONTAINING ELEMENTS OTHER THAN CARBON, HYDROGEN, HALOGEN, OXYGEN, NITROGEN, SULFUR, SELENIUM OR TELLURIUM
    • C07F9/00Compounds containing elements of Groups 5 or 15 of the Periodic Table
    • C07F9/02Phosphorus compounds
    • C07F9/06Phosphorus compounds without P—C bonds
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C07ORGANIC CHEMISTRY
    • C07FACYCLIC, CARBOCYCLIC OR HETEROCYCLIC COMPOUNDS CONTAINING ELEMENTS OTHER THAN CARBON, HYDROGEN, HALOGEN, OXYGEN, NITROGEN, SULFUR, SELENIUM OR TELLURIUM
    • C07F9/00Compounds containing elements of Groups 5 or 15 of the Periodic Table
    • C07F9/02Phosphorus compounds
    • C07F9/06Phosphorus compounds without P—C bonds
    • C07F9/08Esters of oxyacids of phosphorus
    • C07F9/09Esters of phosphoric acids
    • AHUMAN NECESSITIES
    • A61MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61KPREPARATIONS FOR MEDICAL, DENTAL OR TOILETRY PURPOSES
    • A61K8/00Cosmetics or similar toiletry preparations
    • A61K8/02Cosmetics or similar toiletry preparations characterised by special physical form
    • A61K8/14Liposomes; Vesicles
    • AHUMAN NECESSITIES
    • A61MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61KPREPARATIONS FOR MEDICAL, DENTAL OR TOILETRY PURPOSES
    • A61K8/00Cosmetics or similar toiletry preparations
    • A61K8/18Cosmetics or similar toiletry preparations characterised by the composition
    • A61K8/30Cosmetics or similar toiletry preparations characterised by the composition containing organic compounds
    • A61K8/55Phosphorus compounds
    • A61K8/553Phospholipids, e.g. lecithin
    • AHUMAN NECESSITIES
    • A61MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61QSPECIFIC USE OF COSMETICS OR SIMILAR TOILETRY PREPARATIONS
    • A61Q19/00Preparations for care of the skin
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C07ORGANIC CHEMISTRY
    • C07FACYCLIC, CARBOCYCLIC OR HETEROCYCLIC COMPOUNDS CONTAINING ELEMENTS OTHER THAN CARBON, HYDROGEN, HALOGEN, OXYGEN, NITROGEN, SULFUR, SELENIUM OR TELLURIUM
    • C07F9/00Compounds containing elements of Groups 5 or 15 of the Periodic Table
    • C07F9/02Phosphorus compounds
    • C07F9/06Phosphorus compounds without P—C bonds
    • C07F9/08Esters of oxyacids of phosphorus
    • C07F9/09Esters of phosphoric acids
    • C07F9/10Phosphatides, e.g. lecithin
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12PFERMENTATION OR ENZYME-USING PROCESSES TO SYNTHESISE A DESIRED CHEMICAL COMPOUND OR COMPOSITION OR TO SEPARATE OPTICAL ISOMERS FROM A RACEMIC MIXTURE
    • C12P13/00Preparation of nitrogen-containing organic compounds
    • C12P13/04Alpha- or beta- amino acids
    • C12P13/06Alanine; Leucine; Isoleucine; Serine; Homoserine
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12PFERMENTATION OR ENZYME-USING PROCESSES TO SYNTHESISE A DESIRED CHEMICAL COMPOUND OR COMPOSITION OR TO SEPARATE OPTICAL ISOMERS FROM A RACEMIC MIXTURE
    • C12P9/00Preparation of organic compounds containing a metal or atom other than H, N, C, O, S or halogen

Landscapes

  • Chemical & Material Sciences (AREA)
  • Life Sciences & Earth Sciences (AREA)
  • Health & Medical Sciences (AREA)
  • Organic Chemistry (AREA)
  • General Health & Medical Sciences (AREA)
  • Engineering & Computer Science (AREA)
  • Biochemistry (AREA)
  • Public Health (AREA)
  • Zoology (AREA)
  • Wood Science & Technology (AREA)
  • Veterinary Medicine (AREA)
  • Animal Behavior & Ethology (AREA)
  • Molecular Biology (AREA)
  • Bioinformatics & Cheminformatics (AREA)
  • Epidemiology (AREA)
  • Chemical Kinetics & Catalysis (AREA)
  • General Chemical & Material Sciences (AREA)
  • Birds (AREA)
  • Biotechnology (AREA)
  • Genetics & Genomics (AREA)
  • General Engineering & Computer Science (AREA)
  • Microbiology (AREA)
  • Food Science & Technology (AREA)
  • Polymers & Plastics (AREA)
  • Dermatology (AREA)
  • Medicinal Chemistry (AREA)
  • Neurology (AREA)
  • Biophysics (AREA)
  • Neurosurgery (AREA)
  • Pharmacology & Pharmacy (AREA)
  • Biomedical Technology (AREA)
  • Psychiatry (AREA)
  • Nuclear Medicine, Radiotherapy & Molecular Imaging (AREA)
  • Hospice & Palliative Care (AREA)
  • Preparation Of Compounds By Using Micro-Organisms (AREA)
  • Saccharide Compounds (AREA)
  • Pharmaceuticals Containing Other Organic And Inorganic Compounds (AREA)
  • Coloring Foods And Improving Nutritive Qualities (AREA)
  • Medicinal Preparation (AREA)
  • Cosmetics (AREA)

Abstract

Fremgangsmåte for fremstillingen av fosfatidylserin med formel CH2OR1CHOR2CH2O-P(=O)-OCH2-CH(NH2)-COOH X hvori R1 og R2 uavhengig representerer et mettet, mono-umettet eller polyumettet acyl C10-C30, X=OH eller OM, hvor M = alkalie eller jordalkaliemetall, ammonium, alkylammonium (inklusive det indre saltet) inklusive transfosfatidyleringsreaksjonen mellom fosfatidylkolin med generell formel CH2OR1CHOR2CH2O-P(=O)-OR3 X hvori R1 og R2 og X har ovennevnte betydninger, R3=CH2-CH2-NH2 o CH2-CH2-N+(CH3)3 og serin i D, L eller racemisk form katalysert med fosfolipase D-enzymet (PLD), karakterisert ved at reaksjonen utføres i et hydroalkoholisk middel inneholdende en alifatisk alkohol og ved nærvær av bivalent metalloksid.

Description

Foreliggende oppfinnelse vedrører fremgangsmåter for fremstilling og rensing av fosfatidylserin (PS) med formel som angitt i krav l's ingress, for å oppnå sluttproduktet i høyt utbytte ved hjelp av bivalente metalloksider ( BMO), slik som angitt i krav l's karakteriserende del.
OPPFINNELSENS OMRÅDE
Det funksjonelle forfallet av sentralnervesystemet (CNS) som forekommer under den fysiologiske prosessen av cerebral aldring, forårsaker ofte forringelse av de kognitive funksjonene hos eldre, noe som igjen forårsaker atferdsforstyrrelser og endring av det tidsmessige og romlige minnet.
Dette funksjonelle forfallet i CNS-aktivitet er koblet til både igangsettingen av bio-kjemiske og strukturelle endringer i lipidsammensetningen av nervemembranene og redusert aktivitet av de cerebrale enzymene som kan redusere nervesynapser.
Fosfatidylserin (PS) er det viktigste sure fosfolipidet i hjernen. Vitenskapelig forsk-ning har derfor i lengre tid vært fokusert på det å finne en farmakologisk behandling for aldersrelaterte kognitive forstyrrelser, basert på fosfolipider som kan for-hindre (og/eller delvis gjenopprette) den strukturelle og funksjonelle mangelen på aldringsnervemembraner.
Prekliniske og kliniske studier i mennesker har vist at oral administrasjon av PS kan, spesielt hos eldre, bestemme en vesentlig økning i lærekapasitet og tidsmes-sig og romlig minne, selv i tilfellet av spesielt ødeleggende patologier slik som Alzheimers sykdom (Cenacchi T. et al.; Aging Clin Exp Res; 1993; 5:123-133; Nun-zi MG et al.; Adv Exp Med Biol; 1992; 318:393-8).
Det har videre blitt vist at fosfatidylserin er i stand til å bekjempe økningen i hor-monet kortisol hos individer som gjennomgår psykisk stress (Monteleone P. et al.; Neuroendocrinology; 1990; 52(3):243-8), noe som derved reduserer glukosekata-bolismen, med større funksjonell bedring etter intens fysisk anstrengelse.
Foreliggende oppfinnelse vedrører en fremgangsmåte for fremstilling av PS som angitt i krav 1. Slikt fremstilt PS kan benyttes som den aktive bestanddelen i legemidler(og/eller kost-tillegg) for forebygging av ovennevnte aldersrelaterte patologier samt i kosttilskudd for alle tilfeller av intenst fysisk stress og videre i fremstil ling av liposomer for anvendelse innen området av kosmetikk og/eller som et kon-trollert frigivingssystem for legemidler.
Forskjellige fremgangsmåter for fremstilling og rensing av PS er allerede kjent fra den vitenskapelige litteraturen og patenter beskriver den enzymatiske omdannelsen av fosfat-idylkolin (PC) til PS ved en transfosfatidyleringsreaksjon katalysert ved enzymet/ fosfolipase D (PLD), med etterfølgende rensing fremkalt hovedsakelig ved å ekstrahere PS med organiske løsemidler.
I senere år har ulike fremgangsmåter blitt bearbeidet for å syntetisere PS ved enzymatisk omdannelse i tofasesystemer av vann/organisk løsemiddel eller i et vandig middel.
Patent nr. EP 0776976 beskriver en fremgangsmåte for den enzymatiske fremstillingen av PS i et system bestående av vann/toluen, hvori den organiske fasen inneholder utgangsfosfolipidet fra hvilket PS dannes, den vandige fasen inneholder hy-dra ksyaksepto ren og syntesereaksjonen forekommer i vann/løsemiddelgrense-snittet i nærværet av rå fosfolipase D fra fermenteringsbuljonger av stammer av mikroorganismer som fremstiller PLD.
Fra WO 00/77183 A er det kjent å anvende fosfolipase D for å omdanne fosfatidylkolin (PC) til fosfatidyleringsreaksjon mellom PC og serin.
For første gang i 1990 forsøkte forskere å forbigå tofasesystemet fordi det krevde store mengder løsemiddel som da var vanskelig å eliminere, med etterfølgende høye kostnader for fremstillingen og rensingen av PS (Comfurius P. et al., Journal of Lipid Research 1990, 31:1719-1721).
Det organiske løsemidlet ble derfor erstattet med en detergent/surfaktant i stand til å dispergere utgangsfosfolipidet i micelleform for å bringe med seg den enzymatiske reaksjonen av syntese utelukkende i et vandig middel.
Riktignok vedrører EP 1048738 en fremgangsmåte for den enzymatiske syntesen av PS i et vandig middel fullstendig fritt for enhver kontaminasjon ved organiske løsemidler i nærværet av gitte konsentrasjoner av spesifikke detergenter og kalsiumsalter.
DE 19917249 beskriver en fremgangsmåte for den enzymatiske fremstillingen av PS i et vandig middel uten anvendelse av sufaktanter, utelukkende med tilsetningen av kalsiumkloridsalt (CaCI2), men prosentdelen av enzymatisk omdannelse og graden av renhet av det oppnådde PS er ikke spesifisert.
Patentsøknad nr. EP 1310563 beskriver en fremgangsmåte for fremstillingen av PS
i en vandig fase uten anvendelse av detergenter og/eller kalsiumsalter, basert på homogeniseringen av utgangsstartblandingen bestående av fosfolipid, hydroksy-akseptor og PLD i vann, for å gi et endelig homogenat med en struktur lik den for en bi-lamellær fosfolipidmembran, hvori transfosfatidyleringsreaksjonen deretter kan forekomme.
Patentsøknad nr. EP 1427839 beskriver den enzymatiske syntesen av fosfolipider, inklusive PS, i vann, uten detergenter, men ved nærvær av metallioner som frigis fra de tilsvarende saltene når de fremstilles/oppløses i vann. Fremgangsmåten forekommer i to atskilte faser, hvori med utgangspunkt i blandinger av fosfolipider en første enzymatisk hydrolysereaksjon katalyseres med PLD for å fremstille fosfatidsyre, etterfulgt av en andre transfosfatidyleringsreaksjon, hvori PS dannes i nærværet av et overskudd av serin.
Til sist krever EP 12312134 en fremgangsmåte for den enzymatiske syntesen av PS ved anvendelse av, i vann, en fraksjon av PLD-enzymet fremstilt og renset fra Streptoverticillium hachijoense- stammen for et større utbytte i den endelige fremstillingen av PS.
Når det gjelder rensingen av PS (oppnådd enten ved transfosfatidylering i et vandig middel/organisk løsemiddel eller i et vandig middel), krever EP 1213294 en fremgangsmåte for rensing basert på anvendelsen av en blanding bestående av vann/polart organisk løsemiddel (slik som isopropanol) for å ekstrahere ovennevnte fosfolipid fra løsningen som inneholder det, som igjen er representert med et hy-drokarbonløsemiddel (slik som toluen), mens EP 0922707 vedrører en fremgangsmåte for ekstraksjon/rensing av PS fra en blanding av fosfolipider ved anvendelse av et difasesystem av organiske løsemidler slik som heptan og metanol.
Foreliggende oppfinnelse vedrører en fremgangsmåte for fremstilling av fosfatidylserin (PS) ifølge krav 1 som gir sluttproduktet i et svært høyt utbytte takket være en effektiv omdannelse av PC til PS ved den spesifikke virkningen av bivalente metalloksider (BMO) i medier som angitt i krav 1, nemlig i et hydroalkoholisk medium inneholdende en alifatisk alkohol eller i et aprotisk polart oppløsningsmiddel eller i et medium bestående av et tofase-system dannet av vann/organisk oppløsnings-middel.
Videre muliggjør transfosfatidyleringsfremgangsmåten katalysert ved PLD-enzymet at en høy prosentdel omdannes til PS uten hensyn til midlet, hvori den enzymatiske reaksjonen forekommer.
Foreliggende oppfinnelse muliggjør derfor fremstilling av PS katalysert ved PLD og BMO, som angitt i krav l's ingress og hvor fremgangsmåten er særpreget ved at den utføres i et medium valgt fra
- et hydroalkoholisk middel inneholdende en alifatisk alkohol,
- et aprotisk polart aprotisk løsemiddel, eller
- et tofasesystem bestående av vann/organiske løsemidler.
DETALJERT BESKRIVELSE AV OPPFINNELSEN
Foreliggende oppfinnelse vedrører en fremgangsmåte for fremstillingen av PS (formel I) som angitt i krav 1, hvori en transfosfatidylering utføres ved PLD-enzymet i nærværet av BMO, og oppnår derved en overføring av en fosfatidylenhet fra fosfatidylkolin (PC) (formel II) som angitt i krav 1 til serin (som i dette tilfellet representerer hydroksyakseptoren); hvor reaksjonen kan finne sted: • i et hydroalkoholmiddel inneholdende en alifatisk alkohol som ikke danner et tofasesystem, eller
• i et aprotisk polart løsemiddel som ikke danner et tofasesystem, eller
• i et tofasesystem bestående av vann/organiske løsemidler.
hvori R<1>og R2 uavhengig representerer et mettet, mono-umettet og/eller polyumettet acyl Cio"C3o, X—OH eller OM, hvor M—alkali eller jordalkalimetall, ammonium, alkylammonium (inklusive det indre saltet) og som innbefatter transfosfatidyleringsreaksjonen mellom en forbindelse av den generelle formel II
hvori R<1>og R2 og X er som definert over og R3=CH2-CH2-NI-l2 eller CH2-CH2-N<+>(CH3)3eller rasemisk form katalysert av fosfolipase D-enzymet (PLD).
Det har overraskende blitt funnet at BMO drastisk endrer reaksjonssubstratet representert av utgangsfosfatidylkolinet, som bestemmer en endring slik at virkningen av PLD-enzym vesentlig øker når det gjelder endelig utbytte av PS, noe som således muliggjør en svært fordelaktig fremstilling av PS som angitt i krav 1 i en industriell skala. Denne vesentlige endringen forekommer i selve substratets struktur. Riktignok favoriserer BMO sprekkdannelsen av PC-vesiklene og derved penetre-ring av enzymet deri, noe som bestemmer en økning i prosentdelen omdannelse av PC til PS siden, ved å penetrere inne i vesiklene kan PLD-enzymet også virke på lipidlaget inn i vesikkelen, som ikke tidligere kunne penetreres ved hydrofile løs-ninger slik som de som inneholder selve enzymet.
Ifølge oppfinnelsen ble ulike bivalente metalloksider testet, slik som kalsiumoksid
(CaO), magnesiumoksid (MgO) og sinkoksid (ZnO), både hydroalkoholisk og i aprotisk middel, samt i tofasesystemer, hvori de ga utmerkede resultater, som vist i de etterfølgende eksemplene, sammenlignet med resultatene oppnådd ved hjelp av de samme fremgangsmåtene, men i nærværet av kalsiumklorid (CaCI2).
Det er riktignok kjent at kalsiumsalter, og spesielt CaCI2, som kalsiumionkilder satt til midlet, hvori transfosfatidyleringsreaksjonen forekommer (Comfurius P. et al., Journal of Lipid Research 1990, 31:1719-1721; Comfurius P. et al., Biochim Biophys Acta, 1977, 488:36-42), promoterer PLD-enzymets katalytiske aktivitet og derved øker fosfatidylkolinomdannelsen til PS (Okawa Y. et al.al; J Biochem.; 1975; 78:363-372).
For å differensiere og klarlegge at BMO er fullstendig forskjellig fra metallsalter og for å demonstrere deres effektivitet i de nye produksjonssystemene som er formålet med foreliggende oppfinnelse, har søkeren utført eksperimenter som sammen-ligner de ulike utbyttene fra omdannelsen av PC til PS i nærværet av kalsiumsalter og i nærværet av BMO.
Som det kan sees fra de oppnådde resultatene, viste utbyttet fra omdannelsen av fosfatidylkolin til PS seg konsekvent å ikke bare være ulikt, men også bestemt og vesentlig høyere enn det oppnådd med CaCI2.
Ved siden av oksidene beskrevet over kan ulike forskjellig BMO anvendes i den nye fremgangsmåten for fremstillingen av PS, slik som manganoksid, bivalent jern-oksid, koboltoksid, kobberoksid og alle de gjenværende bivalente metalloksidene i det periodiske system.
Eksempel på løsemidler, hvori fremgangsmåten av foreliggende oppfinnelse kan utføres er alifatiske alkoholer, slik som isopropanoler; aprotiske polare løsemidler, slik som dimetylsulfoksid (DMSO), dimetylformamid, acetonitril, N-metyl-pyrrolidon og organiske løsemidler, slik som n-heksan, toluen, n-butanol, benzen.
Den foretrukne alkoholen er isopropanol, det foretrukne aprotiske løsemidlet er DMSO og det foretrukne organiske løsemidlet er heksan.
Eksempel 1 beskriver omdannelsen av PC til PS med utgangspunkt i å starte et hydroalkoholisk middel inneholdende gitte prosentdeler av isopropanol tilsatt til en utgangsløsning bestående av acetatbuffer, hvori CaO (eller MgO eller ZnO) har blitt oppløst, sammenlignet med PS-produksjonsprosessen utført i det samme hydro-alkoholiske midlet, men i nærværet av CaCI2-salt.
Prosentdelen alkohol (isopropanol spesielt) som kan anvendes i foreliggende fremgangsmåte (uttrykt som volum % på volumet av utgangsbufferen) kan variere fra 0,1 til 50 %, fortrinnsvis fra 1,25 til 20 %, og mest foretrukket 10 %, i et hydroalkoholisk middel inneholdende en konsentrasjon av BMO (spesielt CaO) som varie rer mellom 0,1 og IM, fortrinnsvis mellom 0,3 og 0,6M og mest foretrukket lik 0,54
M.
Det maksimale utbyttet fra omdannelsen av PC til PS er 90 %, som er fjernt fra utbyttet oppnådd ved den samme produksjonsprosessen, men i nærværet av CaCI2.
Eksempel 2 på den annen side viser at det er mulig å oppnå utbytter enda høyere enn 80 % fra omdannelsen av PC/PS, ved å tilsette gitte mengder DMSO (uttrykt som volum % på volumet av bufferen anvendt) til utgangsbufferløsningen inneholdende gitte molare konsentrasjoner av CaO (eller MgO eller ZnO), og at de ovennevnte utbyttene av PS er svært forskjellig fra de oppnådd med den samme produksjonsprosessen, men i nærværet av CaCI2.
Prosentdelen av aprotisk løsemiddel (og DMSO spesielt) som skal anvendes, kan variere fra 0,1 til 50 %, fortrinnsvis fra 1,25 til 10 %, og mest foretrukket være 1,25 %, i et aprotisk medium inneholdende en konsentrasjon av BMO (CaO spesielt) som varierer mellom 0,1 og 1 M, fortrinnsvis mellom 0,3 og 0,6 M, og enda mer foretrukket kan den være lik 0,33 M.
Den enzymatiske reaksjonen av transfosfatidylering gir et svært høyt utbytte av PC/PS-omdannelse, selv i et tofasesystem bestående av vann/organisk løsemiddel.
Eksempel 3 beskriver fremstillingen av PS i et tofasesystem bestående av vann/ heksan, igjen i nærværet av CaO, MgO og ZnO. Mengden løsemiddel anvendt i de nye fremgangsmåtene som er formålet av foreliggende oppfinnelse er svært liten (som vist under), så lav at produksjonskostnader er begrenset og det er ikke vanskelig å eliminere løsemidlet fra sluttproduktet.
Konsentrasjonen av løsemiddel som skal anvendes i nevnte fremgangsmåte kan variere fra 0,1 to 40 % v/v (uttrykt som volum % på volumet av utgangsbufferen), fortrinnsvis fra 1 til 5 % v/v, og mest foretrukket 1,25 % v/v og 2,5 % v/v, i nærværet av BMO (og CaO spesielt) ved en konsentrasjon som varierer mellom 0,1 og IM, fortrinnsvis mellom 0,3 og 0,6 M og mest foretrukket lik 0,54 M.
I dette tilfellet var også det maksimale utbyttet fra omdannelsen av PC til PS over 80 %, helt forskjellig fra det oppnådd med den samme fremgangsmåten, men i nærværet av CaCI2.
Transfosfatidyleringsreaksjonen kan utføres ved ulike temperaturer, som strekker seg mellom 20 og 70 °C, fortrinnsvis ved 45 eller 55 °C.
Utgangsfosfatidsubstratet er representert ved fosfatidylkolin av animalsk og/eller vegetabilsk opprinnelse, naturlig eller syntetisk, til stede i renset form eller som råmateriale, ved utgangskonsentrasjoner som strekker seg mellom 10 og 500 mg/ml, fortrinnsvis mellom 200 og 300 mg/ml.
Det vandige utgangsmidlet som skal blandes/bindes med alkoholen, det aprotiske løsemidlet eller det organiske løsemidlet for å oppnå et hydroalkoholisk, aprotisk eller tofaset sluttmiddel, er representert ved vann eller en ubufret salinløsning eller en bufferløsning dannet, for eksempel ved natriumacetattrihydrat og eddiksyre ved konsentrasjoner på mellom 0,02 og 0,2 M.
Den optimale serinkonsentrasjonen, fortrinnsvis i L-form, kan variere mellom 1 g/g (gg) av utgangsfosfatid, opp til 5 gg, fortrinnsvis mellom 2 og 3 g/g av fosfatid.
Den optimale pH av bufferløsningen kan variere mellom 4 og 9 fordi den avhenger av opprinnelsen av den anvendte PLD, men fortrinnsvis mellom 5 og 6, og mest foretrukket lik 5,6 dersom en PLD av fermenterbar opprinnelse avledet fra mikroorganismen Streptoverticillium hachijoense anvendes.
Enzymet kan anvendes i renset eller delvis renset form, eller i en ikke-renset form etter enkel filtrering av mikroorganismen fra dens dyrkingsbuljong.
Eksempel 4 (og figur 1) beskriver et nytt system for den delvise rensingen av PLD for å oppnå et enzym som er vesentlig ikke kontaminert med proteiner av en ulik opprinnelse som kan gripe inn mot den katalytiske aktiviteten til PLD, en fremgangsmåte som ikke involverer for mange trinn, siden langvarige prosesser fører til overdrevne industrielle kostnader og en følgende mangel på gjennomførbarhet på en industriell skala.
Det delvis rensede enzymet beskrevet i eksempel 4 ble testet i produksjonsprosessen beskrevet i eksempel 3, sammenlignet med et enzym til stede i ikke-renset form (etter enkel eliminering av produsentmikroorganismen) og med svært rensede enzymatiske preparater (oppnådd ved anvendelse av ionebyttekromatografiske resiner og mono/polyklonale antistoffer rettet mot PLD-enzymet, men som også kan renses ved anvendelse av alle rensemetoder kjent for fagmannen): prosent delen av PC/PS-omdannelse var lik for alle de testede enzymatiske preparatene (renset, delvis renset og ikke-renset).
Den optimale mengden PLD for å sikre over 80 % omdannelse av PC til PS strekker seg mellom 1 og 100 enheter/g av utgangsfosfatid, fordi det avhenger av opprinnelsen til det anvendte PLD. For eksempel når PLD fra Streptoverticillium hachijoense anvendes, varierer den optimale konsentrasjonen mellom 1 og 10 enheter/g av fosfatid.
Fremgangsmåten ifølge oppfinnelsen muliggjør også separasjon og rensing av PS fra serin, PC og PLD (som representerer urenheter) som blir igjen i midlet, hvori transfosfatidyleringsreaksjonen har funnet sted.
For å separere og rense PS har følgende fremgangsmåter blitt utført.
1. Ved slutten av den enzymatiske transfosfatidyleringsreaksjonen separeres
PS ved å tilsette en løsning av natriumklorid, ved en konsentrasjon på mellom 2 og 6 % (fortrinnsvis 5 %), til reaksjonsmidlet, hvori det nylig fremstilte fosfolipidet er til stede: to faser vil således oppnås fordi PS forblir uløselig i denne løsningen mens residukomponentene (som er mest løselige) hovedsakelig forblir i subnatanten. PS, som har blitt avsatt i den øvre delen av reaksjonsmidlet, isoleres deretter ved å separere og eliminere subnatanten.
Det er alternativt mulig å starte en ny prosess for separasjon og rensing av PS, ved å filtrere PS-beholderen i reaksjonsmidlet for umiddelbart å eliminere alle dens re-sidukomponenter. En NaCI-løsning tilsettes deretter. To faser dannes og supernatanten elimineres fordi PS er funnet i subnatanten. NaCI-vaskinger kan gjentas to eller flere ganger, for å justere saltkonsentrasjonen om nødvendig. Disse vaskepro-sedyrene muliggjør den fullstendige elimineringen av alkoholene, aprotiske og organiske løsemidler anvendes i prosessene for å fremstille PS beskrevet over, som vist i eksempel 5. Deretter, etter behandling av ionene til stede i reaksjonsmidlet med en chelatdanner, presipiteres/vaskes produktet med en etanolløsning (ved en prosentdel på mellom 50 og 100 %, fortrinnsvis 95 %), eller med en blanding av ketonløsemidler (slik som aceton) i vann (ved en prosentdel på mellom 50 og 95 %); vasking med etanol kan gjentas flere ganger (justering av prosentdelen av etanol til stede, om nødvendig). Til sist utføres en endelig vask med etanol og mellom 90 og 100 %, etter hvilken det ferdige produktet kan eller kan ikke tørkes; 2. Separasjonen og rensingen av PS utføres ved ultrafiltrering ved slutten av den transfosfatidylerings enzymatiske reaksjonen, ved anvendelse av en porøs membran av porestørrelse stor nok til å tillate passeringen av små molekyler, sam-tidig som de store fanges. På grunn av dette er det foretrukket å anvende filtre med porer små nok til å fange molekyler med en molekylvekt på 100,000/300,000 Dalton eller mer.
Fremgangsmåtene for isolasjonen og rensingen av PS muliggjør eliminering av resi-duene av substansene som er igjen etter enzymatisk reaksjon og ble i begynnelsen inneholdt i transfosfatidyleringsmidlet slik som serin, PC, mineralsalter, kolin som frigis fra PC, PA, salter/oksider, og over alle, muliggjør den fullstendige rensingen av PS fra PLD-enzymet, hvorav ingen spor, som vist i eksempel 5, er tilbake. Den endelige PS således oppnådd har en svært høy grad av renhet.
Noen antioksidanter slik som askorbinsyre og/eller vitamin E kan inkluderes i fremgangsmåten for fremstilling og rensing av PS.
Oppfinnelsen er beskrevet mer detaljert i de følgende eksemplene.
Eksempel 1
Fremstilling av PS fra vegetabilsk PC i et hydroalkoholisk middel ( ved nærværet av isopropanol ) med CaO . MgO og ZnO 0 . 54M eller med CaCl7 _ 0 . 54M
To ulike hydroalkoholløsninger ble fremstilt, dannet ved to konsentrasjoner av isopropanol (lik 1,25 og 10 % av volumet av startbufferen) i acetatbuffer inneholdende CaO (eller MgO eller ZnO) 0,54 M, sammenlignet med fremstillingen av PS ved den samme fremgangsmåten, men i nærværet av CaCI2-salt, 0,54 M.
De testede oksidene og kalsiumklorid løses i 40 ml acetatbuffer 0,2 M (pH 5,6) til hvilken det deretter tilsettes 0,5 ml isopropanol for å nå 1,25 % v/v (bare for CaO), eller 4 ml isopropanol for å nå 10 % v/v (alkoholene kan også settes til bufferen inneholdende BMO etter oppløsning av serin).
De resulterende løsningene omrøres i en dobbeltvegget reaktor med kondensator i omkring 10 minutter, deretter tilsettes 20 g L-serin ved en temperatur på 55 °C, omrøring til fullstendig oppløsning. Deretter tilsettes 10 g soyafosfatidylkolin og omrøres i 10 minutter. 5,5 U PLD-enzym per gg PC tilsettes deretter og blandingen omrøres i 24-48 timer ved 55 °C.
Til slutt tas en prøve av hvert produkt og den vellykkede omdannelsen av PC til PS testes ved tynnskiktkromatografi (TLC).
Utbytte fra omdannelsen av PC til PS:
distribusjon av produktene til stede ved slutten av reaksjonen, uttrykt som % PA (fosfatidsyre frigitt av PC som et resultat av virkningen av PLD) og PS oppnådd etter transfosfatidyleringsprosessen. PA og PC må vurderes som residuer fra reaksjonen.
Utbytte fra omdannelsen av PC til PS oppnådd med isopropanol, 1,25 % v/v, i nærværet av CaO:
PA 8,0 %
PS 85,5 %
PC 6,5 %
Utbytte fra omdannelsen av PC til PS oppnådd med isopropanol, 10 % v/v, i nærværet av CaO:
PE-OH 4,0 %
PA 3,5 %
PS 89,5 %
PC 3,0 %
Utbytte fra omdannelsen av PC til PS oppnådd med isopropanol, 10 % v/v, i nærværet av CaCI2:
PE-OH 15,8 %
PA 10,7 %
PS 70,1 %
PC 3,4 %
Utbytte fra omdannelsen av PC til PS oppnådd med isopropanol, 10 % v/v, i nærværet av MgO:
PE-OH 9,0 %
PA 4,5 %
PS 84,0 %
PC 2,5 %
Utbytte fra omdannelsen av PC til PS oppnådd med isopropanol, 10 % v/v, i nærværet av ZnO:
PE-OH 10,0 %
PA 8,0 %
PS 80,0 %
PC 2, 0 %
(produktet definert som PE-OH dannes under transfosfatidyleringsreaksjonen fordi reaksjonen forekommer ved nærvær av alkohol).
Eksempel 2
Fremstilling av PS fra vegetabilsk PC i et aprotisk middel f ved nærværet av DMSO ) med CaO , MgO og ZnO 0 . 33M eller med CaCl2 _ 0 . 33M
DMSO ble anvendt ved ulike konsentrasjoner som varierer mellom en prosentdel på 1,25 og 10 % når det gjelder volumet av utgangsbuffer, i alle tilfeller i nærværet av CaO (eller MgO eller ZnO) 0,33M sammenlignet med fremstillingen av PS ved den samme fremgangsmåten, men i nærværet av CaCI2salt.
De testede kalsiumoksidene og kalsiumklorid løses i 40 ml acetatbuffer 0,2 M, ved pH 5,6. Løsningene således oppnådd omrøres i en dobbeltvegget reaktor med kondensator. Etter omkring 10 minutter omrøring tilsettes 20 g L-serin ved en temperatur på 45 °C and deretter fortsetter omrøring til fullstendig oppløsning oppnås.
Deretter tilsettes 10 g soya PC og 0,5 ml DMSO (tilsvarende 1,25 % v/v) eller 4 ml DMSO (tilsvarende 10 % v/v) og blandingen omrøres (DMSO kan tilsettes under prosessens startfase, etter oppløsning av BMO, som i det forrige eksemplet). Ti minutter etter tilsettes 5,5 U PLD-enzym per gg PC, og blandingen omrøres i 24-48 timer ved 45 °C.
Deretter tase prøver av de respektive produktene oppnådd ved slutten av reaksjonen og testes for vellykket omdanning av PC til PS.
Utbytte fra omdannelsen av PC til PS:
Utbytte fra omdannelsen av PC til PS oppnådd med DMSO 1,25 % v/v i nærværet av CaO:
PA 7,1 %
PS 86,3 %
PC 6,6 %
Utbytte fra omdannelsen av PC til PS oppnådd med DMSO 1,25 % v/v i nærværet av CaCI2:
PA 8,1 %
PS 66,7 %
PC 25,2 %
Utbytte fra omdannelsen av PC til PS oppnådd med DMSO 10 % v/v i nærværet av CaCI2:
PA 6 %
PS 69 %
PC 25 %
Utbytte fra omdannelsen av PC til PS oppnådd med DMSO 10 % v/v i nærværet av CaO:
PA 7,5 %
PS 72,5 %
PC 20 %
Utbytte fra omdannelsen av PC til PS oppnådd med DMSO 10 % v/v i nærværet av MgO:
PA 9,0 %
PS 71,0 %
PC 20 %
Utbytte fra omdannelsen av PC til PS oppnådd med DMSO 10 % v/v i nærværet av ZnO:
PA 8,5 %
PS 71,5 %
PC 20 %
Eksempel 3 a
Fremstilling av PS fra vegetabilsk PC i et tofasesystem ( ved nærværet av det organiske løsemidlet heksan ) med CaO , MgO og ZnO 0 . 54M eller med CaCl2 _ 0 . 54M
Først av alt ble et tofasesystem bestående av acetatbuffer inneholdende CaO (eller MgO eller ZnO) 0,54 M fremstilt, og deretter ble en mengde heksan lik 1,25 % av utgangsvolumet av bufferen tilsatt, sammenlignet med fremstillingen av PS ved den samme produksjonsprosessen, men i nærværet av CaCI2, 0,54 M.
De testede oksidene og kalsiumklorid oppløses deretter i 40 ml acetatbuffer 0,2 M (pH 5,6) til hvilket en mengde heksan lik 0,5 ml deretter tilsettes for å nå 1,25 % v/v (det valgte organiske løsemidlet kan tilsettes til bufferen inneholdende BMO før eller etter oppløsning av serin).
Løsningene således oppnådd omrøres i dobbeltvegget reaktor med kondensator.
Fremgangsmåten fortsetter deretter som beskrevet i eksempel 1.
Til slutt tas en prøve av hvert oppnådde produkt og testes for vellykket omdannelse av PC til PS.
Utbytte fra omdannelsen av PC til PS:
Utbytte fra omdannelsen av PC til PS oppnådd med heksan 1,25 % v/v i nærværet av CaO:
PA 7,5 %
PS 87,0 %
PC 5,5 %
Utbytte fra omdannelsen av PC til PS oppnådd med heksan 1,25 % v/v i nærværet av CaCI2:
PA 8,1 %
PS 68,4 %
PC 23,5 %
Utbytte fra omdannelsen av PC til PS oppnådd med heksan 1,25 % v/v i nærværet av MgO:
PA 8,5 %
PS 82,5 %
PC 9,0 %
Utbytte fra omdannelsen av PC til PS oppnådd med heksan 1,25 % v/v i nærværet av ZnO: PA 11,0 %
PS 80,0 %
PC 9,0 %
Eksempel 3 b
Fremstilling av PS fra vegetabilsk PC i et tofasesystem f ved nærværet av det organiske løsemidlet heksan ) med CaO 0 . 54M eller med CaCl7 _ 0 , 54M
Et tofasesystem bestående av acetatbuffer inneholdende CaO 0,54M ble fremstilt og deretter ble en mengde heksan lik 2,5 % av utgangsvolumet av bufferen tilsatt, sammenlignet med fremstillingen av PS ved den samme produksjonsprosessen, men i nærværet av CaCI2, 0,54M. Fra dette punktet og videre er fremgangsmåten den samme som i eksempel 3 a.
Utbytte fra omdannelsen av PC til PS:
Utbytte fra omdannelsen av PC til PS oppnådd med heksan 2,5 % v/v i nærværet av CaO:
PA 7,5 %
PS 86,0 %
PC 6,5 %
Utbytte fra omdannelsen av PC til PS oppnådd med heksan 2,5 % v/v i nærværet av CaCI2: PA 10,0 %
PS 65,0 %
PC 25,0 %
Eksempel 4
Delvis rensing av PLD - enzymet
PLD-enzymet anvendt i ny produksjonsprosesser kan renses delvis ved følgende trinn: • eliminere produksjonsmidlet ved tangentialstrøm mikrofiltrering gjennom filtre (fortrinnsvis med polyetersulfonmembraner: PES) med en porestørrelse på 0,2 nm; • tangentialstrøm ultrafiltrering gjennom filtre (fortrinnsvis i PES) med en molekylreduksjon på 10,000 D; • tangentialstrøm ultrafiltrering gjennom filtre med membraner (fortrinnsvis i PES) med en molekyl reduksjon på 300,000 D;
endelig tangentialstørm ultrafiltrering gjennom membraner (fortrinnsvis i
PES) med en molekylreduksjon på 10,000 D for å rekonsentrere enzymet og dialysere det mot TRIS-HCL-buffer, 50 mM pH=8.
Figur 1 viser funnene fra kromatografianalyse av PLD-enzym delvis renset som beskrevet over, sammenlignet med analyse av en fermenteringsbuljong renset alene fra midlet som fremstiller selve enzymet (figur 2).
Eksempel 5 a
Separasjon og rensing av PS ifølge fremgangsmåte 1
Reaksjonsmidlet, hvori PS har blitt fremstilt, suppleres med 1,5 volumer (når det gjelder utgangsreaksjonsvolum) av en 5 % løsning av NaCI, og blandingen omrøres ved en temperatur på 30 °C i minst 30 minutter. PS, som har blitt avsatt i den øvre delen av reaksjonsmidlet, isoleres deretter ved å separere og eliminere subnatanten. Supernatanten (PS) suppleres med 4 volumer av en 3 % løsning av NaCI og omrøres ved 30 + 10 °C i minst 30 minutter. Etter det separeres supernatanten og kastes (dette trinnet har blitt gjentatt 2 ganger), mens det til subnatanten (representert ved PS) tilsettes 2 volumer av en løsning av EDTA (etylendiaminotetra-eddiksyre) (ved en konsentrasjon på 40 gg/liter) fremstilt i en acetatbuffer, 0,1 M pH 7,5.
Etter ytterligere blanding (ved 25 + 10 °C i minst 1 time) ved omrøring av blandingen således oppnådd justeres pH til 7/7,5 og 2 volumer (når det gjelder volum av EDTA) av 95 % etanol tilsettes, og blandingen omrøres ved 25 + 10 °C i minst 1 time.
Etter en periode av sedimentering av PS, samles den og supernatanten (fasen bestående av etanol i vann) kastes fordi PS ikke vil oppløse seg i en hydroalkoholisk fase. Vasking med etanol/vann (med en prosentdel av etanol på 70-95 %) har blitt gjentatt etter hvilket en endelig vasking med 100 % etanol utføres, og som et endelig trinn kan PS tørkes.
Sluttprodukt: distribusjon av lipidfraksjonene isolert ifølge fremgangsmåte 1, med PS fremstilt som beskrevet i eksempel 3 med CaO 0,54 M.
PA 5,8 %
PS 94, 2 %
Eksempel 5 b
Separasjon og rensing av PS ifølge fremgangsmåte 1
Reaksjonsmidlet, hvori PS har blitt fremstilt suppleres med 1,5 volumdeler (når det gjelder utgangsreaksjonsvolumet) av en 5 % løsning av NaCI, og blandingen om-røres ved en temperatur på 20 °C i minst 30 minutter. PS, som har blitt avsatt i den øvre delen av reaksjonsmediet, isoleres deretter ved å separere og eliminere subnatanten. Supernatanten (PS) suppleres med 3 volumdeler av en 3 % løsning av NaCI og omrøres ved 20 + 10 °C i minst 30 minutter. Etter det separeres supernatanten og kastes (dette trinnet har blitt gjentatt 3 ganger), mens det til subnatanten (representert ved PS) tilsettes 3 volumer av en løsning av EDTA (ved en konsentrasjon av 30 gg/liter) fremstilt i en acetatbuffer, 0,1 M pH 7,0.
Etter ytterligere blanding (ved 20 + 10 °C i minst 1 time) ved omrøring av blandingen således oppnådd, justeres pH til 7/7,5 og 2 volumer (når det gjelder volumet av EDTA) av 100 % etanol tilsettes, og blandingen omrøres ved 20 + 10 °C i minst 1 time.
Etter en periode av sedimentering av PS, samles det og supernatanten (fasen bestående av etanol i vann) elimineres. Vasking med etanol/vann (med en prosentdel av etanol på 70 %) har blitt gjentatt etter hvilket en endelig vasking med 100 % etanol utføres, og som et endelig trinn kan PS tørkes.
Sluttprodukt: distribusjon av lipidfraksjonene isolert ifølge fremgangsmåte 1, med PS fremstilt som beskrevet i eksempel 3 med CaO 0,54M.
PA 6,8 %
PS 93, 2 %
Eksempel 5 c
Separasjon og rensing av PS ifølge fremgangsmåte 1
Før tilsetning av NaCI-løsningen filtreres PS for umiddelbart å fjerne alle residukomponentene av reaksjonsmidlet. Deretter tilsettes NaCI og isolasjons- og renseprosessen fortsetter som beskrevet i eksempel 5 a.
Sluttprodukt: distribusjon av lipidfraksjonene isolert ifølge fremgangsmåte 1, med PS fremstilt som beskrevet i eksempel 3 med CaO 0,54M.
PA 5,0 %
PS 95, 0 %
Etter transfosfatidyleringsreaksjonen viser TLC-analyse av det oppnådde produktet (Vitello F. et al.; J Chromatog; 1978; 166(2):637-40) en 2 % konsentrasjon av serinresidu.
Mengden PLD i denne fasen ble bestemt ved fremgangsmåter i henhold til teknik-kens stand (Aurich I. et al.; Anal Biochem; 1999; 268:337-342) og vist å være 2 u/g.
Serinkonsentrasjonen ble målt igjen ved slutten av fremgangsmåten for rensingen av PS beskrevet tidligere og vist å være lavere enn/lik 0,2 %.
Residuaktiviteten av PLD-enzymet ble også bestemt på nytt og vist å være under grensen for bestemmelse ved denne fremgangsmåten.
For å vise det totale fraværet av selv det minste spor av organisk løsemiddel anvendt i fremgangsmåten for fremstilling av PS (beskrevet i eksempel 3) og således bekrefte nyheten og det oppfinneriske trinnet av foreliggende oppfinnelse, analy-serte søkeren den delvis rensede PS beskrevet i eksempel 5, i fasen som kommer umiddelbart før tilsetningen av alkoholløsninaen.
Denne analysen ble utført ved kjent teknikk av " Gasskromatografi med statisk overromsinjeksjon" som beskrevet i European Pharmacopoeia 5,0, seksjon 2,4,24: Identification and control of residual solvents.
Kalibreringskromatogrammet (figur 3) ble oppnådd ved anvendelse av en standard bestående av etylacetat og n-heksan tilsvarende 1000 ppm hver, lik 100 mg test-produkt.
Figur 4 viser det totale fraværet av n-heksan i PS renset ifølge fremgangsmåte 1.
Eksempel 6
Separasjon og rensing av PS ifølge fremgangsmåte 2
Dette reaksjonsmidlet, hvori PS ble fremstilt suppleres med 1,5 volumer (når det gjelder utgangsreaksjonsvolum) av en løsning av 5 % NaCI og det hele omrøres ved 45 °C i minst 30 minutter, etterfulgt av en periode for separasjon av PS som varer i minst 1 time.
To faser dannes: de separeres og subnatanten forkastes, mens supernatanten suppleres med 2,5 volumer av en løsning av EDTA 22 gg/liter, fremstilt i vann. Straks en temperatur på 28 °C har blitt nådd, utføres ultrafiltrering. Filtre som har porer av en størrelse som vil fange molekyler med en molekylvekt på 100,000/300,000 Daltons bør fortrinnsvis anvendes.
Sluttproduktet kan deretter frysetørkes.
Sluttprodukt: distribusjon av lipidfraksjonene isolert ifølge fremgangsmåte 2, med PS fremstilt, for eksempel, ifølge eksempel 1 med CaO 0,54 M.
PA 6,0 %
PS 94, 0 %
Serinkonsentrasjonen ble målt og slutten av PS-renseprosessen tidligere beskrevet og vist å være lavere enn/lik 0,2 %, mens ytterligere bestemmelse av residuaktiviteten av PLD-enzymet viste seg å være under grensen for bestemmelse ved denne fremgangsmåten.

Claims (24)

1. Fremgangsmåte for fremstillingen av fosfatidylserin med formel
hvori R<1>og R2 uavhengig representerer et mettet, mono-umettet eller polyumettet acyl Cio-C3o, X—OH eller OM, hvor M—alkali eller jordalkaliemetall, ammonium, alkylammonium (inklusive innersaltet) og som innbefatter transfosfatidyleringsreaksjonen mellom en forbindelse av den generelle formel
hvori R<1>og R<2>og X harde ovennevnte spesifiserte betydninger, R<3>=CH2-CH2-NH2eller CH2-CH2-N<+>(CH3)3og serin i D, L eller racemisk form katalysert av fosfolipase D-enzymet (PLD), karakterisert vedat nevnte reaksjon utføres ved nærvær av bivalent metalloksid og i et medium valgt fra et hydroalkoholisk medium inneholdende en alifatisk alkohol; et aprotisk polart oppløsningsmiddel eller et medium bestående av et tofase-system dannet av vann/organisk oppløs-ningsmiddel.
2. Fremgangsmåte ifølge krav 1, hvor mediet er hydroalkoholisk inneholdende en alifatisk alkohol.
3. Fremgangsmåte ifølge krav 1, hvor mediet er et aprotisk polart oppløs-ningsmiddel.
4. Fremgangsmåte ifølge krav 1, hvor mediet består av et tofase-system dannet av vann/organisk oppløsningsmiddel.
5. Fremgangsmåte ifølge krav 1 eller 2, hvori de alifatiske alkoholene velges fra metanol, etanol, n-propanol, isopropanol.
6. Fremgangsmåte ifølge krav 5, hvori den alifatiske alkoholen er isopropanol i en konsentrasjon mellom 0,1 og 50 % uttrykt som en volum% av volumet av startbufferen.
7. Fremgangsmåte ifølge krav 6, hvori isopropanolkonsentrasjon er 10 %.
8. Fremgangsmåte ifølge krav 1 eller 3, hvori de aprotiske polare løsemidlene velges fra dimetylsulfoksid, acetonitril, dimetylformamid og N-metyl-pyrrolidon.
9. Fremgangsmåte ifølge krav 8, hvori det aprotiske polare løsemidlet er dimetylsulfoksid i en konsentrasjon mellom 0,1 og 50 % uttrykt som en volum% av volumet av startbufferen.
10. Fremgangsmåte ifølge krav 9, hvori dimetylsulfoksidkonsentrasjon er 1,25 %.
11. Fremgangsmåte ifølge krav 1 eller 4, hvori de organiske oppløsningsmidlene er valgt fra n-heksan, toluen, benzen og n-butanol.
12. Fremgangsmåte ifølge krav 11, hvori det organiske oppløsningsmiddelet er n-heksan i en konsentrasjon mellom 0,1 og 40 % uttrykt som volum% av volumet av startbufferen.
13. Fremgangsmåte ifølge krav 12, hvori n-heksankonsentrasjon er 1,25 % eller 2,5 %.
14. Fremgangsmåte ifølge de foregående krav, hvori det bivalente metalloksidet er kalsium eller magnesium eller sinkoksid i en konsentrasjon mellom 0,1 og 1 M.
15. Fremgangsmåte ifølge krav 14, hvori konsentrasjonen av de valgte oksidene er 0,33 eller 0,54 M.
16. Fremgangsmåte ifølge krav 1, hvori forbindelsen er fosfatidylcholin og serinkonsentrasjonen ligger i området mellom 1 og 5 g/g av fosfatidylcholin.
17. Fremgangsmåte ifølge krav 16, hvori serinkonsentrasjonen ligger i området mellom 2 og 3 g/g av fosfatidylcholin.
18. Fremgangsmåte ifølge krav 1, hvori forbindelsen er fosfatidylcholin og fos-fatidylcholinet er av animalsk og/eller vegetabilsk opprinnelse, naturlig eller syntetisk, til stede i renset form eller som råmateriale, ved en startkonsentrasjon på mellom 10 og 500 mg/ml, fortrinnsvis mellom 200 og 300 mg/ml.
19. Fremgangsmåte ifølge ethvert av de foregående krav, hvori transfosfatidyle-ringsreaksjonenen utføres ved en temperatur på mellom 20 °C og 60 °C og fortrinnsvis ved 45 °C.
20. Fremgangsmåte ifølge ethvert av de foregående krav, hvori transfosfatidyleringsreaksjonen utføres ved en temperatur på mellom 20 °C og 60 °C og fortrinnsvis ved 55 °C.
21. Fremgangsmåte ifølge ethvert av de foregående krav, hvori PLD-enzymet er av fermentativ opprinnelse avledet fra mikroorganismen Streptoverticillium hachijoense, anvendt i renset, delvis renset eller ikke-renset form.
22. Fremgangsmåte ifølge krav 21, hvor forbindelsen er fosfatidylcholin og konsentrasjonen av PLD som anvendes, varierer mellom 1 og 100 enheter/g av fosfatidylcholin.
23. Fremgangsmåte ifølge krav 22, hvori konsentrasjonen av PLD som anvendes varierer mellom 1 og 10 enheter/g av fosfatidylcholin.
24. Fremgangsmåte ifølge krav 21, hvor enzymet PLD avledet fra mikroorganismen Streptoverticillium hachijoense er renset ved hjelp av de følgende trinn: I) fjerning av fremstillingsmiddelet ved mikrofiltrering med en porestørrelse på 0,2 pm; II) ultrafiltrering gjennom filtre med en molekylær cut-off på 10.000 D; III) ultrafiltrering gjennom filtre med membraner med en molekylær cut-off på 300.000 D: IV) ultrafiltrering gjennom membraner med en molekylær cut-off på 10.000 D for å rekonsentrere enzymet og dialysere det mot Tris-HCI-buffer.
NO20076158A 2005-05-30 2007-11-29 Fremgangsmåte for fremstilling av fosfatidylserin NO337009B1 (no)

Applications Claiming Priority (3)

Application Number Priority Date Filing Date Title
IT000164A ITPD20050164A1 (it) 2005-05-30 2005-05-30 Processo per la preparazione e l'isolamento di fosfatidi
US70387005P 2005-08-01 2005-08-01
PCT/EP2006/005030 WO2006128639A2 (en) 2005-05-30 2006-05-26 Process for the preparation and isolation of phosphatides

Publications (2)

Publication Number Publication Date
NO20076158L NO20076158L (no) 2007-11-29
NO337009B1 true NO337009B1 (no) 2015-12-21

Family

ID=39449427

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
NO20076158A NO337009B1 (no) 2005-05-30 2007-11-29 Fremgangsmåte for fremstilling av fosfatidylserin

Country Status (18)

Country Link
US (1) US7759095B2 (no)
EP (2) EP1890706B1 (no)
JP (1) JP5113042B2 (no)
KR (1) KR101298560B1 (no)
CN (1) CN101184494B (no)
AT (1) ATE546145T1 (no)
AU (1) AU2006254376B2 (no)
BR (1) BRPI0611316B8 (no)
CA (1) CA2610575C (no)
ES (2) ES2501015T3 (no)
HK (1) HK1119584A1 (no)
IL (1) IL187749A (no)
IT (1) ITPD20050164A1 (no)
MX (1) MX2007015064A (no)
NO (1) NO337009B1 (no)
PL (2) PL2431020T3 (no)
PT (2) PT1890706E (no)
WO (1) WO2006128639A2 (no)

Families Citing this family (7)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
ITPD20050164A1 (it) 2005-05-30 2006-11-30 Fidia Farmaceutici Processo per la preparazione e l'isolamento di fosfatidi
HUE043241T2 (hu) 2007-06-05 2019-08-28 Bank Of Canada Tinta- vagy festékkészítmények, eljárások alkalmazásukra és azokból származó termékek
CN102439125B (zh) * 2010-12-03 2014-04-30 上海赢贝生物技术有限公司 一种制备富含多不饱和双键脂肪酰基的磷脂酰丝氨酸的高品质南极磷虾油的方法
CN102485899A (zh) * 2010-12-03 2012-06-06 张永志 一种制备富含多不饱和双键脂肪酰基的磷脂酰丝氨酸的高品质南极磷虾油的方法
ITPD20120021A1 (it) 2012-01-26 2013-07-27 Fidia Farmaceutici "nuove composizioni farmaceutiche contenenti fosfatidilserina e curcumina".
CN104327114A (zh) * 2014-11-06 2015-02-04 江南大学 一种磷脂酰丝氨酸的制备方法
WO2021134439A1 (zh) * 2019-12-31 2021-07-08 邦泰生物工程(深圳)有限公司 一种提高磷脂酶d转脂活性的方法以及用其生产磷脂酰丝氨酸的方法

Family Cites Families (22)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
AT315359B (de) * 1972-07-31 1974-05-27 Etapharm Chem Pharm Lab Ges M Verfahren zur Herstellung von hochgereinigten Phosphatiden aus tierischen Organen
US3869482A (en) * 1972-07-31 1975-03-04 Etapharm Chem Pharm Lab G M B Method of producing highly purified phosphatides
JPS63245684A (ja) * 1987-03-31 1988-10-12 Japanese Res & Dev Assoc Bio Reactor Syst Food Ind ホスフアチジン酸誘導体の製造法
EP0399544B1 (en) 1989-05-26 1994-08-24 Kao Corporation Process for the production of phosphatidic acid
IT1260149B (it) * 1992-04-17 1996-03-28 Fidia Spa Metodo per la preparazione e purificazione di miscele di fosfolipidi prive di contaminanti da virus non convenzionali
JP3053537B2 (ja) * 1994-11-08 2000-06-19 株式会社ヤクルト本社 脳機能改善剤
US5700668A (en) 1995-12-08 1997-12-23 Italfarmaco Sud S.P.A. Process for the industrial preparation of phosphatidylserine
DE19917249C2 (de) 1999-02-26 2001-09-27 Meyer Lucas Gmbh & Co Verfahren zur Herstellung von Phosphatidylserin-Produkten
IT1311929B1 (it) 1999-04-28 2002-03-20 Chemi Spa Procedimento per la preparazione di fosfatidilserine.
DE19926770A1 (de) 1999-06-11 2000-12-14 Basf Ag Nukleinsäurefragment und Vektor, enthaltend eine Halogenase, sowie ein Verfahren zur Halogenierung chemischer Verbindungen
CA2376604A1 (en) 1999-06-15 2000-12-21 Yissum Research Development Company Of The Hebrew University Of Jerusale M Enzymatic preparation of phospholipids in aqueous media
AU2001261647A1 (en) * 2000-05-15 2001-11-26 Identix Incorporated Fingerprint imaging device
JP4298902B2 (ja) 2000-08-09 2009-07-22 株式会社ヤクルト本社 リン脂質の製造法
IT1319679B1 (it) 2000-12-05 2003-10-23 Chemi Spa Processo di purificazione di fosfatidilserina.
ITPD20010031A1 (it) 2001-02-09 2002-08-09 Fidia Farmaceutici Procedimento per la preparazione di fosfatidi puri e loro impiego in campo cosmetico, farmaceutico ed alimentare.
DE10142014B4 (de) * 2001-08-28 2004-11-11 Degussa Bioactives Deutschland Gmbh & Co. Kg Verfahren zur Herstellung von Phosphatidylserin
DE10149108A1 (de) * 2001-10-05 2003-04-30 Degussa Bioactives Deutschland Verwendung von Phosphatidylserin zur Behandlung des Aufmerksamkeits-Defizit-Syndroms (ADHS)
WO2003032946A2 (en) * 2001-10-12 2003-04-24 United Therapeutics Corporation Ph-sensitive liposomes for targeted drug delivery
DE10217555A1 (de) * 2002-04-19 2004-02-19 Degussa Bioactives Deutschland Gmbh Physiologisch verträgliche, Phospholipid-haltige, stabile und harte Matrix
DE10340740A1 (de) * 2003-09-04 2005-03-31 Degussa Food Ingredients Gmbh Physiologisch aktive Zusammensetzung auf Phosphatidylserin-Basis
DE102004002053A1 (de) * 2004-01-15 2005-08-04 Bioghurt Biogarde Gmbh & Co. Kg Verfahren zur Herstellung von Phosphatidylserin und dessen Reinigung durch Extraktion
ITPD20050164A1 (it) 2005-05-30 2006-11-30 Fidia Farmaceutici Processo per la preparazione e l'isolamento di fosfatidi

Also Published As

Publication number Publication date
WO2006128639A3 (en) 2007-08-09
ES2501015T3 (es) 2014-10-01
PL2431020T3 (pl) 2015-01-30
CN101184494B (zh) 2012-03-21
WO2006128639A2 (en) 2006-12-07
MX2007015064A (es) 2008-02-19
CA2610575A1 (en) 2006-12-07
IL187749A0 (en) 2008-04-13
PT1890706E (pt) 2012-05-25
BRPI0611316B8 (pt) 2021-05-25
CN101184494A (zh) 2008-05-21
EP1890706B1 (en) 2012-02-22
IL187749A (en) 2014-04-30
JP5113042B2 (ja) 2013-01-09
PT2431020E (pt) 2014-09-16
ES2382748T3 (es) 2012-06-13
AU2006254376A1 (en) 2006-12-07
HK1119584A1 (en) 2009-03-13
NO20076158L (no) 2007-11-29
CA2610575C (en) 2014-09-30
EP1890706A2 (en) 2008-02-27
KR20080011678A (ko) 2008-02-05
US20080275006A1 (en) 2008-11-06
EP2431020B1 (en) 2014-07-16
PL1890706T3 (pl) 2012-07-31
JP2008545420A (ja) 2008-12-18
BRPI0611316A2 (pt) 2010-08-31
ATE546145T1 (de) 2012-03-15
EP2431020A1 (en) 2012-03-21
ITPD20050164A1 (it) 2006-11-30
AU2006254376B2 (en) 2011-04-21
US7759095B2 (en) 2010-07-20
BRPI0611316B1 (pt) 2020-04-07
KR101298560B1 (ko) 2013-08-22

Similar Documents

Publication Publication Date Title
NO337009B1 (no) Fremgangsmåte for fremstilling av fosfatidylserin
ES2206099T3 (es) Un procedimiento para la preparacion de fosfatidilserinas.
JP2009519245A (ja) エキノカンジン型化合物の精製方法
KR100331932B1 (ko) 리소포스파티딜에탄올아민의 제조방법
CN110144369A (zh) 一种制备高纯度溶血磷脂酰胆碱的方法
JP2017171747A (ja) 日向夏みかん由来のアラビノガラクタン
US5100787A (en) Method for preparing highly purified phosphatidylinositol
JP3032357B2 (ja) リン脂質画分の分画精製方法
RU2305548C1 (ru) Способ комплексной переработки плоских морских ежей
JP6380840B2 (ja) 脂肪前駆細胞増殖抑制作用を呈するカロチノイド誘導体
JP2002241385A (ja) ホスファチジルセリンの分画法
JP5585958B2 (ja) 血圧低下作用を呈するカフェ酸誘導体の製造方法
JP7245966B2 (ja) AGEs吸着作用を呈するスフィンゴシン誘導体
JPH07265089A (ja) 魚介類からのセラミドの製造方法
RU2635665C1 (ru) Способ получения l-a-глицерофосфорилхолина фармакопейного качества
KR102026235B1 (ko) 미세조류로부터 클로로필 a를 분리 및 정제하는 방법
BE1003486A5 (fr) Procede d&#39;obtention de l&#39;inhibiteur de la neuraminidase du virus de la grippe.
JP2018193339A (ja) 抗炎症作用を呈するペプチドグリカン誘導体
JP2016216381A (ja) サイトケラチン増加作用を呈するカロチノイド誘導体及びその製造方法
BE566435A (no)
FR2654623A1 (fr) Procede d&#39;obtention de l&#39;inhibiteur de la neuraminidase du virus de la grippe.

Legal Events

Date Code Title Description
MM1K Lapsed by not paying the annual fees