JPS63109798A - α−アミラ−ゼの定量法及び定量用試薬 - Google Patents
α−アミラ−ゼの定量法及び定量用試薬Info
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Classifications
-
- C—CHEMISTRY; METALLURGY
- C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
- C12Q—MEASURING OR TESTING PROCESSES INVOLVING ENZYMES, NUCLEIC ACIDS OR MICROORGANISMS; COMPOSITIONS OR TEST PAPERS THEREFOR; PROCESSES OF PREPARING SUCH COMPOSITIONS; CONDITION-RESPONSIVE CONTROL IN MICROBIOLOGICAL OR ENZYMOLOGICAL PROCESSES
- C12Q1/00—Measuring or testing processes involving enzymes, nucleic acids or microorganisms; Compositions therefor; Processes of preparing such compositions
- C12Q1/34—Measuring or testing processes involving enzymes, nucleic acids or microorganisms; Compositions therefor; Processes of preparing such compositions involving hydrolase
- C12Q1/40—Measuring or testing processes involving enzymes, nucleic acids or microorganisms; Compositions therefor; Processes of preparing such compositions involving hydrolase involving amylase
-
- C—CHEMISTRY; METALLURGY
- C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
- C12Q—MEASURING OR TESTING PROCESSES INVOLVING ENZYMES, NUCLEIC ACIDS OR MICROORGANISMS; COMPOSITIONS OR TEST PAPERS THEREFOR; PROCESSES OF PREPARING SUCH COMPOSITIONS; CONDITION-RESPONSIVE CONTROL IN MICROBIOLOGICAL OR ENZYMOLOGICAL PROCESSES
- C12Q2334/00—O-linked chromogens for determinations of hydrolase enzymes, e.g. glycosidases, phosphatases, esterases
- C12Q2334/10—O-linked chromogens for determinations of hydrolase enzymes, e.g. glycosidases, phosphatases, esterases p-Nitrophenol derivatives
Landscapes
- Chemical & Material Sciences (AREA)
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Abstract
(57)【要約】本公報は電子出願前の出願データであるた
め要約のデータは記録されません。
め要約のデータは記録されません。
Description
【発明の詳細な説明】
産業上の利用分野
本発明はα−アミ2−ゼの定量法及びその定量試薬に関
する。
する。
従来技術
血清中のα−アミラーゼ含有量の測定は#臓機能のX要
な臨床上のパラメータである。α−アミラーゼ定量用の
市販試薬は、主として、澱粉をα−アミラーゼにより分
解し、分解生成物を、アミラーゼ基質としての着色澱粉
又は天然の澱粉をこの試験で使用したかに応じて、可視
又はUV−域で測定するという方式を基礎としている。
な臨床上のパラメータである。α−アミラーゼ定量用の
市販試薬は、主として、澱粉をα−アミラーゼにより分
解し、分解生成物を、アミラーゼ基質としての着色澱粉
又は天然の澱粉をこの試験で使用したかに応じて、可視
又はUV−域で測定するという方式を基礎としている。
この方法もしくは試薬の1螢な欠点は、巨大分子として
の原初が不十分にしか特性を表わすことかできず、かつ
標準化することができないので、各々のチャージの反応
率が非常にさまざまの結果となり、測定の際、常に標準
を一緒に実施しなければならないということに基づく。
の原初が不十分にしか特性を表わすことかできず、かつ
標準化することができないので、各々のチャージの反応
率が非常にさまざまの結果となり、測定の際、常に標準
を一緒に実施しなければならないということに基づく。
より良い結果を得るためには、分解の際に正確な結果を
提供するより均一な基質が必要である。
提供するより均一な基質が必要である。
より均一な基質へという方向への第一歩はマルトペンタ
オースの使用をもたらした。これをα−アミラーゼによ
りマルトトリオース及びマルトースに分解し、マルトト
リオース及びマルトースをα−グルコシダーゼによりグ
ルコースに変じ、次いでこのグルコースを任意の方法、
例えば公知のへキンキナーゼ法で測定することができる
。
オースの使用をもたらした。これをα−アミラーゼによ
りマルトトリオース及びマルトースに分解し、マルトト
リオース及びマルトースをα−グルコシダーゼによりグ
ルコースに変じ、次いでこのグルコースを任意の方法、
例えば公知のへキンキナーゼ法で測定することができる
。
基質としてすでに、マルトペンタオースの他にもマルト
テトラオース及びマルトヘキサオースが提案されている
(米国特許第3879263号及び同第4000042
号明細V)。しかしながら、この際、テトラオースでは
ペンタオースによるよりも明らかに悪い結果が得られ、
ヘキサオースではテトラオースによるよりも更に悪い結
果が得られた。マルトテトラオース及びマルトペンタオ
ースの場合にはなお化学量論的反応が示されるが、ヘキ
サオースの場合は、すでに化学量論的反応からのかろう
じて許容可能な偏差が認められた。
テトラオース及びマルトヘキサオースが提案されている
(米国特許第3879263号及び同第4000042
号明細V)。しかしながら、この際、テトラオースでは
ペンタオースによるよりも明らかに悪い結果が得られ、
ヘキサオースではテトラオースによるよりも更に悪い結
果が得られた。マルトテトラオース及びマルトペンタオ
ースの場合にはなお化学量論的反応が示されるが、ヘキ
サオースの場合は、すでに化学量論的反応からのかろう
じて許容可能な偏差が認められた。
テトラオースの際にも見られるのだが、マルトペンタオ
ースの欠点性、高い「潜行反応」が現われる、すなわち
測定するための試料を添加する前にすでに測定反応が進
行するということである。更に、この「a行反応」は高
濃度では一定ではなく、この副反応が一定不変に達する
前に25分間以上変化する。識別を可能にするであろう
と想定された膵臓−α−アミラーゼ及び唾液−α−アミ
ラーゼによるマルトペンタオースによる異なる分解は、
事実上生じないということがわかった(J、BC,19
70、第245巻第3917〜3927頁; J、 B
iochem、 第51SP、XVl 1952年
)。
ースの欠点性、高い「潜行反応」が現われる、すなわち
測定するための試料を添加する前にすでに測定反応が進
行するということである。更に、この「a行反応」は高
濃度では一定ではなく、この副反応が一定不変に達する
前に25分間以上変化する。識別を可能にするであろう
と想定された膵臓−α−アミラーゼ及び唾液−α−アミ
ラーゼによるマルトペンタオースによる異なる分解は、
事実上生じないということがわかった(J、BC,19
70、第245巻第3917〜3927頁; J、 B
iochem、 第51SP、XVl 1952年
)。
発明が解決しようとする問題点
従って、本発明の昧題は、公知の基質より優れた純粋性
及び均一性を示し、容易に入手可能な基質を使用して、
血清なしの空値、層状時間及び達成可能な最高活性に関
して要求に適合する、α−アミ2−ゼの定量法及び定量
試薬をつくることである。更に高価で複雑な機械を使用
せずに簡単な測定が可能であり、例えば試験片のような
迅速診断剤に好適であるのが良い。
及び均一性を示し、容易に入手可能な基質を使用して、
血清なしの空値、層状時間及び達成可能な最高活性に関
して要求に適合する、α−アミ2−ゼの定量法及び定量
試薬をつくることである。更に高価で複雑な機械を使用
せずに簡単な測定が可能であり、例えば試験片のような
迅速診断剤に好適であるのが良い。
問題点を解決するための手段
本発明のvA題は、基質としてマルトヘプタオースを使
用することよりなるα−アミラーゼ基質の酵素的分解及
び分解生成物の測定によるα−アミラーゼの定量法によ
り解決される。
用することよりなるα−アミラーゼ基質の酵素的分解及
び分解生成物の測定によるα−アミラーゼの定量法によ
り解決される。
この目的のために、すでに提案されたオリゴマルトース
において、マルトペンタオースからマルトヘキサオース
への適性の大きな落下が見られた(即ちヘキサオースで
はペンタオースでより非常に劣った結果が得られた)K
もかかわらず、意想外にもマルトヘプタオースはα−ア
ミラーゼの基質として優れた性質を有するということが
わかった。従って、マルトース−オリゴ糖鎖の延長に伴
ないもはや許容可能でない誤差が生じることが予想され
ていた。しかしながら、意想外にもペンタオースでより
も優れた結果が得られる。
において、マルトペンタオースからマルトヘキサオース
への適性の大きな落下が見られた(即ちヘキサオースで
はペンタオースでより非常に劣った結果が得られた)K
もかかわらず、意想外にもマルトヘプタオースはα−ア
ミラーゼの基質として優れた性質を有するということが
わかった。従って、マルトース−オリゴ糖鎖の延長に伴
ないもはや許容可能でない誤差が生じることが予想され
ていた。しかしながら、意想外にもペンタオースでより
も優れた結果が得られる。
本願発明において基質として使用する化合物群のうちで
、マルトヘプタオース(G7)の効果の優位性について
、以下に説明する。
、マルトヘプタオース(G7)の効果の優位性について
、以下に説明する。
本願発明の場合には、オリゴサツカロイドが酵素アミラ
ーゼにより加水分解される。助酵累α−グルコシダーゼ
の存在により生じる断片は更に加水分解されて、グルコ
ースにされる。本願明細書中に記載の他の反応により、
グルコースは、次いで、NADH、PNPを経て、特有
の色(黄色)により可視にされる。しかしながら、α−
グルコシダーゼは、マルトースだけと反応するのではな
く、マルトトリオースとも、かつ僅かではあるが、マル
トテトラオースおよびより高いオリゴサツカライドとも
反応する。このことはChem、 Ab、、 Mol、
91 、190585μからも公知である。本願発明
におけるオリがサッカ2イドは非常に純粋な形でアミ2
−ゼ基質として使用されるから、これは、α−グルコシ
ダーゼによって多かれ少なかれ徐々にグルコースまで変
えられ、これが、後の反応で、単位時間当りの吸光度(
ΔE/min )の上昇を出現させる。このよりなα−
グルコシダーゼにより増強される加水分解反応を本殿で
は「潜行反応」と称し、単位時間当りの吸光度(ΔE(
L) 7分)で表示することにしたものである。このよ
うな「潜行反応」は、アミラーゼ活性の測定時には、補
正を考慮せねばならず、具体的にはアミラーゼの活性は
、以下のような計算式によって計算されることになる。
ーゼにより加水分解される。助酵累α−グルコシダーゼ
の存在により生じる断片は更に加水分解されて、グルコ
ースにされる。本願明細書中に記載の他の反応により、
グルコースは、次いで、NADH、PNPを経て、特有
の色(黄色)により可視にされる。しかしながら、α−
グルコシダーゼは、マルトースだけと反応するのではな
く、マルトトリオースとも、かつ僅かではあるが、マル
トテトラオースおよびより高いオリゴサツカライドとも
反応する。このことはChem、 Ab、、 Mol、
91 、190585μからも公知である。本願発明
におけるオリがサッカ2イドは非常に純粋な形でアミ2
−ゼ基質として使用されるから、これは、α−グルコシ
ダーゼによって多かれ少なかれ徐々にグルコースまで変
えられ、これが、後の反応で、単位時間当りの吸光度(
ΔE/min )の上昇を出現させる。このよりなα−
グルコシダーゼにより増強される加水分解反応を本殿で
は「潜行反応」と称し、単位時間当りの吸光度(ΔE(
L) 7分)で表示することにしたものである。このよ
うな「潜行反応」は、アミラーゼ活性の測定時には、補
正を考慮せねばならず、具体的にはアミラーゼの活性は
、以下のような計算式によって計算されることになる。
IUW[2g(A) /分−Δ11(L) /分〕・C
式中、ΔE(A) 7分はアミラーゼ存在下での単位時
間当りの吸光度であり、Cは、μMo 1m1n” L
izar−1テある。
式中、ΔE(A) 7分はアミラーゼ存在下での単位時
間当りの吸光度であり、Cは、μMo 1m1n” L
izar−1テある。
したがって、「潜行反応」にもとづくΔE(L)7分が
小さければ小さい穆、アミラーゼの測定結果に及ぼす影
響を除くことができ、より正確な測定ができることは、
明らかである。
小さければ小さい穆、アミラーゼの測定結果に及ぼす影
響を除くことができ、より正確な測定ができることは、
明らかである。
このような「潜行反応」の効果を比較すると以下のよう
になる(実施例3参照)。
になる(実施例3参照)。
このデータからヘプタオースは、「潜行反問による影響
を少ししか受けず、その値は、従来の化合物を基質とし
たものと比較しても、小さく、ヘプタオースがアミラー
ゼ活性の測定において、誤差が少なく、より正確な測定
方法のための試薬として、非常に有用なものであること
は明らかである。
を少ししか受けず、その値は、従来の化合物を基質とし
たものと比較しても、小さく、ヘプタオースがアミラー
ゼ活性の測定において、誤差が少なく、より正確な測定
方法のための試薬として、非常に有用なものであること
は明らかである。
本発明の方法は、α−グルコシダーゼ又はマルトースホ
スポリ2−ゼを用いる分解生成物の定量の際に特に好適
である。
スポリ2−ゼを用いる分解生成物の定量の際に特に好適
である。
α−グルコシダーゼを用いる測定の際に、マルトヘプタ
オース、マルトテトラオース及びマルトトリオースの分
解生成物は、更にグルコースまで分解され、次いでこの
グルコースを公知法で測定する。生じたグルコースの測
定のためには、α−グルコシダーゼの存在で、特にヘキ
ソキナーゼ法が有利である。本発明方法の実施形式の原
理を次の反応式であられすことができる; トリオース+マルトテト2オース α−グルコシダーゼ マルトトリオース+2H205 グルコース α−グルコシダーゼ マルトテトラオース+3 H2O4 グルコース K 7グルコース+7 ATP−→7グルコースー6−P本
発明方法の実施のためには、一般に5〜9の一一価が好
適である。7〜7.5の一価で作業するのが有利である
、というのはこの際最高の結果と最短の反応時間が得ら
れるからである。
オース、マルトテトラオース及びマルトトリオースの分
解生成物は、更にグルコースまで分解され、次いでこの
グルコースを公知法で測定する。生じたグルコースの測
定のためには、α−グルコシダーゼの存在で、特にヘキ
ソキナーゼ法が有利である。本発明方法の実施形式の原
理を次の反応式であられすことができる; トリオース+マルトテト2オース α−グルコシダーゼ マルトトリオース+2H205 グルコース α−グルコシダーゼ マルトテトラオース+3 H2O4 グルコース K 7グルコース+7 ATP−→7グルコースー6−P本
発明方法の実施のためには、一般に5〜9の一一価が好
適である。7〜7.5の一価で作業するのが有利である
、というのはこの際最高の結果と最短の反応時間が得ら
れるからである。
使用酵素の主活性範囲で有効なものが緩衝剤として好適
である。燐酸塩、HICPR8[N −(2−ヒドロキ
シエチル)−tペラシン−N−2−エタンスルホン酸〕
及びグリシルグリシンが有利である。有利な濃度は10
〜200 mMol /lの間である。
である。燐酸塩、HICPR8[N −(2−ヒドロキ
シエチル)−tペラシン−N−2−エタンスルホン酸〕
及びグリシルグリシンが有利である。有利な濃度は10
〜200 mMol /lの間である。
一般にα−グルコシダーゼを0.1〜5000U/ml
の量で使用する。比較的多針の酵素を使用できるのでα
−アミラーゼ分解が律速段階になることは、本発明方法
の特別な利点である。
の量で使用する。比較的多針の酵素を使用できるのでα
−アミラーゼ分解が律速段階になることは、本発明方法
の特別な利点である。
もちろんこの酵素をもつと多量に使用することも可能で
あるが、これによりそれ以上の利点はもはや達成されな
い。
あるが、これによりそれ以上の利点はもはや達成されな
い。
マルトヘプタオースは一般に試験中に0.1〜250m
Mol/lの量で使用する。0.5〜100mMol
/ lの間の量は有利である。
Mol/lの量で使用する。0.5〜100mMol
/ lの間の量は有利である。
α−アミラーゼのマルトヘプタオースでの基質飽和は、
濃度8〜1Q mMolである。従って、基質飽和の条
件下で作業すべき場合(はとんどの場合がそうであるが
)、マルトヘプタオースに関して8mMolの最低濃度
を使用するのが有利である。
濃度8〜1Q mMolである。従って、基質飽和の条
件下で作業すべき場合(はとんどの場合がそうであるが
)、マルトヘプタオースに関して8mMolの最低濃度
を使用するのが有利である。
更に、α−アミラーゼの賦活物質を添加することも有利
である。このような賦活物質は公知である。塩化ナトリ
ウム又は塩化カリウムは有利である。
である。このような賦活物質は公知である。塩化ナトリ
ウム又は塩化カリウムは有利である。
本発明方法のもう1つの有利な実施形式では分解生成物
の測定を、マルトースホスポリ2−ゼと反応させ、公知
方法で定量できるグルコース−1−ホス7アートを生成
させることにより行なう。特に有利な実施形式によれは
、グルコース−1−ホス7アートの測定は、β−ホスホ
グルコースムターゼを用いる転位によりグルコース−6
−ホス7アートに変じ、生じたグルコース−6−ホスフ
ァートを、グルコース−6−ホスファート−デヒドロゲ
ナーゼの存在でNADを用いて酸化させてグルコナート
−6−ホスファート及びNADHを形成させて行ない、
この際後者の形成は光学的に容易に追跡できる。6−ホ
スホゲルコナートーデヒドログナーゼの存在でNADを
用いてひき続き酸化させてリブロース−5−リン敗及び
もう1分子のNADHl生成させることにより、測定信
号を更に強くすることができる。
の測定を、マルトースホスポリ2−ゼと反応させ、公知
方法で定量できるグルコース−1−ホス7アートを生成
させることにより行なう。特に有利な実施形式によれは
、グルコース−1−ホス7アートの測定は、β−ホスホ
グルコースムターゼを用いる転位によりグルコース−6
−ホス7アートに変じ、生じたグルコース−6−ホスフ
ァートを、グルコース−6−ホスファート−デヒドロゲ
ナーゼの存在でNADを用いて酸化させてグルコナート
−6−ホスファート及びNADHを形成させて行ない、
この際後者の形成は光学的に容易に追跡できる。6−ホ
スホゲルコナートーデヒドログナーゼの存在でNADを
用いてひき続き酸化させてリブロース−5−リン敗及び
もう1分子のNADHl生成させることにより、測定信
号を更に強くすることができる。
この実施形式の原理を次の反応式で表わす。
トリオース+マルトテトラオース→マルトースコース+
β−グルコース−1−p スー6−p ト −6−p + NADH+ H”スー5− p
+ NAD)(+ H”本発明のこの実施形式の利点
は、マルトースホスポリ2−ゼがα−グルコシダーゼよ
りも特異性が尚<、従って内生グルコースは妨讐しない
ということである。
β−グルコース−1−p スー6−p ト −6−p + NADH+ H”スー5− p
+ NAD)(+ H”本発明のこの実施形式の利点
は、マルトースホスポリ2−ゼがα−グルコシダーゼよ
りも特異性が尚<、従って内生グルコースは妨讐しない
ということである。
緩衝剤に関しては、本発明方法の実施形式はα−グルコ
シダーゼ法での詳細と同様に轟てはまる。
シダーゼ法での詳細と同様に轟てはまる。
本発明方法の上記二実施形式の他にも、マルトヘプタオ
ースの生じた分解物、つまりマルトテトラオース、マル
トトリオース及びそれから生じたマルトースの測定は、
他のこのための公知法によっても冥施できる。
ースの生じた分解物、つまりマルトテトラオース、マル
トトリオース及びそれから生じたマルトースの測定は、
他のこのための公知法によっても冥施できる。
本発明のもう一つの目的は、α−アミラーゼ基質及びα
−アミラーゼ基質からα−アミラーゼにより生ずる分解
生成物を定量するための系を含有するα−アミラーゼの
定量試薬であり、基質はマルトヘプタオースから成る。
−アミラーゼ基質からα−アミラーゼにより生ずる分解
生成物を定量するための系を含有するα−アミラーゼの
定量試薬であり、基質はマルトヘプタオースから成る。
分解生成物定量用の有利な系はα−グルコシタt %
ヘキソ中ナーゼ(HX)、グルコース−6−ホスファー
トーデヒドロデナーゼ(06PDH)、並びにNAD
、 ATP 、マグネシウム、塩化アルカリ及び緩衝剤
を含有するα−グルコシダーゼ系である。
ヘキソ中ナーゼ(HX)、グルコース−6−ホスファー
トーデヒドロデナーゼ(06PDH)、並びにNAD
、 ATP 、マグネシウム、塩化アルカリ及び緩衝剤
を含有するα−グルコシダーゼ系である。
α−グルコシダーゼ系を基礎とする試薬は有利に次のも
のからなる: α−グルコシダーゼ 5 X 103〜3 X 10
’ U/1HK 103〜5 x
10’ U/IG6PDH103〜5 x 10’ U
/INAD 0.5〜8 mM/IAT
P 0.5〜5 mMol/J”
1〜3 rnM/INaCl又はKCL
25〜100mM/1m’s剤 25〜20
0mM/j! (pH6,2〜7.8)及び マルトヘプタオース 5〜100 mM/ノ から成
るか又はその数倍又は数分の1から成る乾燥した又は溶
解した形である。
のからなる: α−グルコシダーゼ 5 X 103〜3 X 10
’ U/1HK 103〜5 x
10’ U/IG6PDH103〜5 x 10’ U
/INAD 0.5〜8 mM/IAT
P 0.5〜5 mMol/J”
1〜3 rnM/INaCl又はKCL
25〜100mM/1m’s剤 25〜20
0mM/j! (pH6,2〜7.8)及び マルトヘプタオース 5〜100 mM/ノ から成
るか又はその数倍又は数分の1から成る乾燥した又は溶
解した形である。
他の有利な実施方法において、試薬はα−グルコシダー
ゼ、K(J又はNaCl 、緩衝剤及び基質からなる。
ゼ、K(J又はNaCl 、緩衝剤及び基質からなる。
このような試薬は試験の濃度に関連させて、特にα−グ
ルコシダーゼ102〜5×10’ U / l %Na
Cl又はKCJ 1〜100 mMol/J。
ルコシダーゼ102〜5×10’ U / l %Na
Cl又はKCJ 1〜100 mMol/J。
緩衝剤10〜250 mMol/41 CP)45〜9
)及びマルトヘプタオース0.1〜250 mMol
/Jを含有する。この試薬は、乾燥した、特に凍結乾燥
した形で、又は溶液の形で、すべての組成部分の混合物
として又は分離して存在してよい。
)及びマルトヘプタオース0.1〜250 mMol
/Jを含有する。この試薬は、乾燥した、特に凍結乾燥
した形で、又は溶液の形で、すべての組成部分の混合物
として又は分離して存在してよい。
分解生成物の定量のための他の有利な系は、主に1ルト
ースホスホリ2−ゼ、β−ホスホグルコムターゼ(βP
MG) 、グルコース−6−ホスファートーデヒドロデ
ナーゼ(G(5PDH)、グルコース−1,6−ジホス
7アート(G1,6DP)、NAD、緩衝剤、マルトヘ
プタオース及び場合により6−ホスホゲルコナートーデ
ヒドロデナーゼ(6PGDH)からなるマルトースホス
ホリラーゼ系である。
ースホスホリ2−ゼ、β−ホスホグルコムターゼ(βP
MG) 、グルコース−6−ホスファートーデヒドロデ
ナーゼ(G(5PDH)、グルコース−1,6−ジホス
7アート(G1,6DP)、NAD、緩衝剤、マルトヘ
プタオース及び場合により6−ホスホゲルコナートーデ
ヒドロデナーゼ(6PGDH)からなるマルトースホス
ホリラーゼ系である。
この検出系を有する特に有利な試薬は、次のものより成
る: マルトースホスホリラ 0.5 x 10’ 〜20
x 103u/l−ゼ β−P C) l uM I X 103
〜I X 10’グルコース−6−ホス 2x102
〜3x104U/jフアートーデヒドロ デナーゼ NAD O,5〜10mM/Jグ
ルコースー1 、6− 0.001〜1 mu/1ジ
ホスファート 緩衝剤 0.5〜100 mM/1(
pH6,0〜7.5) マルトヘプタオース 5〜5QmM/J及び場合によ
っては 6−ホスホゲルコナー 1 xio” 〜I X10’
U/Jトーデヒドロデナーゼ 本発明の試薬は乾燥させた又溶解させた形で存在して良
く、これは薄膜状の担体、例えばシート、含浸性の紙等
に含浸されていてもよい。
る: マルトースホスホリラ 0.5 x 10’ 〜20
x 103u/l−ゼ β−P C) l uM I X 103
〜I X 10’グルコース−6−ホス 2x102
〜3x104U/jフアートーデヒドロ デナーゼ NAD O,5〜10mM/Jグ
ルコースー1 、6− 0.001〜1 mu/1ジ
ホスファート 緩衝剤 0.5〜100 mM/1(
pH6,0〜7.5) マルトヘプタオース 5〜5QmM/J及び場合によ
っては 6−ホスホゲルコナー 1 xio” 〜I X10’
U/Jトーデヒドロデナーゼ 本発明の試薬は乾燥させた又溶解させた形で存在して良
く、これは薄膜状の担体、例えばシート、含浸性の紙等
に含浸されていてもよい。
最後の場合は、少なくとも三層から成り、この際第1の
層は基質を含有し、第2の層は遮断層として働き、第3
の層は分解生成物の測定のための系を含有するのが有利
である。α−アミラーゼの簡易迅速テストに適するこの
ような多層試薬材料を液状のα−アミラーゼ含有試料と
接触させると、α−アミ2−ゼは基質を分解し生じた分
解物は中間mを通って測定系を含有する第6の層に浸透
する。検出反応として、この場合、α−アミラーゼの濃
度を、生ずる変色に基づき視覚的に見ることができるよ
うにするために、色素形成反応を使用するのが有利であ
る。
層は基質を含有し、第2の層は遮断層として働き、第3
の層は分解生成物の測定のための系を含有するのが有利
である。α−アミラーゼの簡易迅速テストに適するこの
ような多層試薬材料を液状のα−アミラーゼ含有試料と
接触させると、α−アミ2−ゼは基質を分解し生じた分
解物は中間mを通って測定系を含有する第6の層に浸透
する。検出反応として、この場合、α−アミラーゼの濃
度を、生ずる変色に基づき視覚的に見ることができるよ
うにするために、色素形成反応を使用するのが有利であ
る。
前記載のように、本発明によりα−アミラーゼの走置の
ための速(、t¥!!異的な方法が得られるだけでなく
、特に層状態が完全に又はほとんど除かれ、このことは
自動分析装置へのこの方法の使用の際K特に重要である
。もう1つの利点は厳密な比例であり、かつ血液の化学
的類似物質による妨害がないことである。
ための速(、t¥!!異的な方法が得られるだけでなく
、特に層状態が完全に又はほとんど除かれ、このことは
自動分析装置へのこの方法の使用の際K特に重要である
。もう1つの利点は厳密な比例であり、かつ血液の化学
的類似物質による妨害がないことである。
本発明に使用される基質は、良好Kかつ高純度で手に入
る。マルトヘプタオースの簡単な製法は西ドイツ国特許
出願第p2741191.2号BAwI臀中に記載され
ている。この方法は生物学的液体、例えば血清、へA
IJン血漿、尿等又は他の液体又は固形物質中のα−ア
ミラーゼの測定に好適である。
る。マルトヘプタオースの簡単な製法は西ドイツ国特許
出願第p2741191.2号BAwI臀中に記載され
ている。この方法は生物学的液体、例えば血清、へA
IJン血漿、尿等又は他の液体又は固形物質中のα−ア
ミラーゼの測定に好適である。
実施例
次の実施例につき本発明な詳細KM明する。
例 1
マルトダン法(α−グルコシダーゼ系)α−グルコシダ
ーゼ、G6 PDH,HK、 NAD。
ーゼ、G6 PDH,HK、 NAD。
ATP、 ?ルトヘプタオース、Mg” 、NaC1
及び燐酸塩緩衝剤を含有する試薬混合物を無留水ao
yttt 中に溶かす。室温での試薬の有効期間は約
1時間であり8℃以下の温度では6時間である。
及び燐酸塩緩衝剤を含有する試薬混合物を無留水ao
yttt 中に溶かす。室温での試薬の有効期間は約
1時間であり8℃以下の温度では6時間である。
得られた溶液は、次に挙げる試薬濃度を有する:
燐酸塩緩衝剤 50 m Mol/j : pH7,
0NaCJ 5 Q mMol/ IMg”
2m Mol/1マルトヘプタオ
ース 1 Q m Mol/IATP
1.2 m Mol/jNAD
2 m Mol/JHK
≧2U/!G6PDH≧’lTJ/1 α−グルコシダーゼ ≧IQU/J この溶液t−25℃で0.021Jの血清試料と混合さ
せ層の厚さ1cILのクベット中に入れ、次いでHg
365 nm s 340 nm又はHg 334 n
mでの吸光を光度計で測定する。10分後に吸光を読み
取り次いで1分間隔で5回読み収りを繰り返す。
0NaCJ 5 Q mMol/ IMg”
2m Mol/1マルトヘプタオ
ース 1 Q m Mol/IATP
1.2 m Mol/jNAD
2 m Mol/JHK
≧2U/!G6PDH≧’lTJ/1 α−グルコシダーゼ ≧IQU/J この溶液t−25℃で0.021Jの血清試料と混合さ
せ層の厚さ1cILのクベット中に入れ、次いでHg
365 nm s 340 nm又はHg 334 n
mでの吸光を光度計で測定する。10分後に吸光を読み
取り次いで1分間隔で5回読み収りを繰り返す。
こうしてわかった1分毎の吸光度差(ΔE/min )
から平均値を出し、試薬9値を引き、補正値を計算に入
れる。
から平均値を出し、試薬9値を引き、補正値を計算に入
れる。
計算は次のように行なう:
U/125°C= 4244 XΔE365nm/m1
n= 2290 XΔE340 nm/ m1n= 2
335 XΔE334nm/win第1図に、生理食塩
水での人血清の希釈列のむの方法により得られた結果を
示す。
n= 2290 XΔE340 nm/ m1n= 2
335 XΔE334nm/win第1図に、生理食塩
水での人血清の希釈列のむの方法により得られた結果を
示す。
試薬を2つのチャージに分け、その1万はマルトヘプタ
オースを、他方は他のすべての試薬の混合物を含有する
と、こうして製造された溶液の有効期間は高めることが
できる。これは、試薬混合物では86Cまでの温度で6
0時間であり、室温では約8時間である。マルトヘプタ
オース浴液の有効期間は、相応する温度でそれぞれ6週
間もしくは約1週間である。
オースを、他方は他のすべての試薬の混合物を含有する
と、こうして製造された溶液の有効期間は高めることが
できる。これは、試薬混合物では86Cまでの温度で6
0時間であり、室温では約8時間である。マルトヘプタ
オース浴液の有効期間は、相応する温度でそれぞれ6週
間もしくは約1週間である。
例 2
マルトースホスホリラーゼ−系を用いる定量アミラーゼ
基質及びマルトースホスホリラーゼ−系からなる二種の
試薬を製造した。一方の試薬はマルトヘプタオース基質
を含有し、他方の試薬は公知法に従がって可溶性デンプ
ンを含有した。水に溶解後の試薬濃度は次の様であった
: 本発明 比 較 燐酸塩緩衝剤 20 mM s FJ(6−5
20mM ; p’ 6−5NAD 2
mM 2mMマルトヘプタオース 10m
M −可溶性デンプン
51n9/dグルコース−1,6− 二燐酸 少々 少々マルト
ヘプタオースホス ホリラーゼ(微生物)’ 5U/酩 3U/
酊β−ホスホグルコムター ゼ(微生物) 1U/廐 iU/m
lG<5PD)! [ロイコノストク ・メセンテロイズ 9U/18 9U/
rnt(Ls、uconogt+oc *meaenz
)]+5PGDE Cロイ;ノストク ・メセンテロイズ I U/rILtI U/m
l(L+euconoszocIImesenz))得
られた溶液を30’Cで恒温保持し、試料溶液を添加し
、光度計でHg 354 nmでの吸光度差を測定する
。10分間の予備恒温保持後、10分間にわたる吸光度
差を測定する。試薬2.0rLl及び試料0.10ff
ltに対して次の計算式を使用する: 異なった5種の人血清を使用した際に上記試薬で次の結
果が得られた: 1 37.4 U/l 15.3 U/1
2 61.2 U/l 27.3 U/1
3 95、I U/l 39.I U/1
4 114 U/l 44.2U/15
374 U、# 161 TJ/1例
3 マルトヘキサオースをα−デキストリンの化学的分割及
び続いてクロマトグラフィーによるff裂を行ない製造
した。唾液アミラーゼとしてはシグマ化学有限会社(西
ドイツ)の製品を使用した。膵臓アミラーゼはり、J
、8tiefel、P、J、 Weller (BBA
302.1973年、第345〜661頁)及びM、J
、 Kaczmarek 。
基質及びマルトースホスホリラーゼ−系からなる二種の
試薬を製造した。一方の試薬はマルトヘプタオース基質
を含有し、他方の試薬は公知法に従がって可溶性デンプ
ンを含有した。水に溶解後の試薬濃度は次の様であった
: 本発明 比 較 燐酸塩緩衝剤 20 mM s FJ(6−5
20mM ; p’ 6−5NAD 2
mM 2mMマルトヘプタオース 10m
M −可溶性デンプン
51n9/dグルコース−1,6− 二燐酸 少々 少々マルト
ヘプタオースホス ホリラーゼ(微生物)’ 5U/酩 3U/
酊β−ホスホグルコムター ゼ(微生物) 1U/廐 iU/m
lG<5PD)! [ロイコノストク ・メセンテロイズ 9U/18 9U/
rnt(Ls、uconogt+oc *meaenz
)]+5PGDE Cロイ;ノストク ・メセンテロイズ I U/rILtI U/m
l(L+euconoszocIImesenz))得
られた溶液を30’Cで恒温保持し、試料溶液を添加し
、光度計でHg 354 nmでの吸光度差を測定する
。10分間の予備恒温保持後、10分間にわたる吸光度
差を測定する。試薬2.0rLl及び試料0.10ff
ltに対して次の計算式を使用する: 異なった5種の人血清を使用した際に上記試薬で次の結
果が得られた: 1 37.4 U/l 15.3 U/1
2 61.2 U/l 27.3 U/1
3 95、I U/l 39.I U/1
4 114 U/l 44.2U/15
374 U、# 161 TJ/1例
3 マルトヘキサオースをα−デキストリンの化学的分割及
び続いてクロマトグラフィーによるff裂を行ない製造
した。唾液アミラーゼとしてはシグマ化学有限会社(西
ドイツ)の製品を使用した。膵臓アミラーゼはり、J
、8tiefel、P、J、 Weller (BBA
302.1973年、第345〜661頁)及びM、J
、 Kaczmarek 。
H,Rosenmund (C11n、 Chin、
ACZ、第79巻、1977年、第69〜76頁)によ
り単離した。
ACZ、第79巻、1977年、第69〜76頁)によ
り単離した。
基質適性は膵臓アミラーゼによる基質の比変y8率とし
て測定する。1分間あたりの吸光度差(287分)を例
1により測定した。この際、添加したα−アミラーゼの
そのつど同じ活性において基質の濃度は10ミリモル/
lである。この値は基質としてのマルトヘプタオース(
100%)に関連させた。
て測定する。1分間あたりの吸光度差(287分)を例
1により測定した。この際、添加したα−アミラーゼの
そのつど同じ活性において基質の濃度は10ミリモル/
lである。この値は基質としてのマルトヘプタオース(
100%)に関連させた。
潜行反応の測定は次のように行なった;α−グルコシダ
ーゼ% G<5PDH,HK、NAD。
ーゼ% G<5PDH,HK、NAD。
ATP、マルトヘプタオース、Mg Q +、Na(J
及び燐酸塩緩衝剤を含有する試薬混合物yk蒸留水2d
中に溶かす。室温における試薬の有効期間は約1時間で
ある。
及び燐酸塩緩衝剤を含有する試薬混合物yk蒸留水2d
中に溶かす。室温における試薬の有効期間は約1時間で
ある。
得られる溶液は次の試薬の濃度を示す;燐酸塩緩衝液
5 QmMol / J (pH7,0)NaC
J 50mMol/1Mg”
2mMol/Jマルトヘプ
タオース 10mMol/JATP
1.2mMol/1NAD
2mMol/JHK
2U/IU06PDH2U/祷 α−グルコシダーゼ 10U/m/;この溶液を
25℃でo、o2mtの蒸留水(空値拭料)を混合し、
層厚1crILのタペット中に入れ、次いでHg 36
5 nmでの吸光を光度計で測定する。10分後に吸光
を読み収り、次いで1分間隔で5回読み取りを繰り返す
。
5 QmMol / J (pH7,0)NaC
J 50mMol/1Mg”
2mMol/Jマルトヘプ
タオース 10mMol/JATP
1.2mMol/1NAD
2mMol/JHK
2U/IU06PDH2U/祷 α−グルコシダーゼ 10U/m/;この溶液を
25℃でo、o2mtの蒸留水(空値拭料)を混合し、
層厚1crILのタペット中に入れ、次いでHg 36
5 nmでの吸光を光度計で測定する。10分後に吸光
を読み収り、次いで1分間隔で5回読み取りを繰り返す
。
こうしてわかった1分毎の吸光度差(287分)から潜
行反応を示す平均値を得た。同様にして比較化合物であ
るテトラオース、ぺ/タオース、ヘキサオースの「潜行
反応」の平均値を得た。
行反応を示す平均値を得た。同様にして比較化合物であ
るテトラオース、ぺ/タオース、ヘキサオースの「潜行
反応」の平均値を得た。
この表から、マルトヘプタオースが最適なアミラーゼ基
質であるということは明らかである。
質であるということは明らかである。
マルトヘプタオースはアミラーゼによる高い変換率及び
唾液アミラーゼによる変換率と、膵臓アミラーゼによる
変換率との間の適当な割合(約1=1〕及び特に低い潜
行反応を示す。
唾液アミラーゼによる変換率と、膵臓アミラーゼによる
変換率との間の適当な割合(約1=1〕及び特に低い潜
行反応を示す。
重付図面は、生理食塩水での人血清の希釈列の実施例1
により得られた結果を示す図表である。
により得られた結果を示す図表である。
Claims (1)
- 【特許請求の範囲】 1、α−アミラーゼ基質の酵素的分解及び分解生成物の
測定によりα−アミラーゼを定量するための方法におい
て、マルトヘプタオースを基質として使用することを特
徴とする、α−アミラーゼの定量法 2、分解生成物をα−グルコシダーゼによりグルコース
に変換し、これを公知法で定量する、特許請求の範囲1
項記載の方法 3、pH−値5〜9の間で作業する、特許請求の範囲第
2項記載の方法 4、マルトヘプタオース0.1〜250mMol/lを
使用する、特許請求の範囲第2項又は第3項記載の方法 5、分解生成物をマルトースホスホリラーゼにより変換
させてグルコース−1−ホスファートを生成させ、これ
を定量する、特許請求の範囲第1項記載の方法 6、生じたグルコース−1−ホスファートの定量のため
に、これをホスホグルコムターゼでグルコース−6−ホ
スファートに変じ、このグルコース−6−ホスファート
を用いてNADをグルコース−6−ホスファ−ト−デヒ
ドロゲナーゼの存在下に還元してNADHにし、これを
測定する、特許請求の範囲第5項記載の方法 7、NADの還元の際に生じたNADHを電子キャリヤ
ーの存在下にテトラゾリウム塩と反応させてホルマザン
にし、これを定量する、特許請求の範囲第6項に記載の
方法 8、電子キャリヤーとしてジアホラーゼもしくはフエナ
ジンメトスルファートを使用する、特許請求の範囲第7
項記載の方法 9、α−アミラーゼ基質及びアミラーゼ基質からα−ア
ミラーゼにより生成した分解生成物を測定するための系
を含有するα−アミラーゼの定量試薬において、基質が
マルトヘプタオースであることを特徴とするα−アミラ
ーゼの定量試薬 10、主としてα−グルコシダーゼ、ヘキソキナーゼ、
グルコース−6−ホスファート−デヒドロゲナーゼ、N
AD、ATP、Mg^2^+、NaCl、燐酸塩緩衝剤
及び基質としてのマルトヘプタオースからなる、特許請
求の範囲第9項記載の試薬 11、α−グルコシダーゼ5×10^3〜3×10^4
U/l、ヘキソキナーゼ10^3〜5×10^4/l、
グルコース−6−ホスファート−デヒドロゲナーゼ10
^3〜5×10^4U/l、 NAD0.5〜8mMol/l、 ATP0.5〜5mMol/l、 Mg^2^+1〜3mMol/l、 NaCl又はKCl25〜100mMol/l 緩衝剤25〜100mMol/l(pH6.2〜7.8
) 及び マルトヘプタオース5〜100mMol/lから成るか
又はその数倍又は数分の1 から成る、乾燥した又は溶解した形である、特許請求の
範囲第10項記載の試薬 12、主としてマルトースホスホリラーゼ、β−ホスホ
グルコムターゼ、グルコース−6−ホスファート−デヒ
ドロゲナーゼ、グルコース−1,6−ジホスファート、
NAD、緩衝剤、基質及び場合によっては6−ホスホ−
グルコナート−デヒドロゲナーゼからなり基質はマルト
ヘプタオースからなる、特許請求の範囲第9項記載の試
薬 13、マルトース−ホスホリラーゼ0.5×10^3〜
2×10^4U/l、 β−ホスホ−グルコムターゼ1×10^2〜1×10^
4U/l、 グルコース−6−ホスファート−デヒドロゲナーゼ2×
10^2〜3×10^4U/l、 NAD0.5〜10mMol/l、 グルコース−1,6−ジホスファート0.001〜1m
Mol/l、 緩衝剤0.5〜100mMol/l(pH6.0〜7.
5) マルトヘプタオース5〜50mMol/l 及び場合により 6−ホスホ−グルコナート−デヒドロゲナーゼ1×10
^2〜1×10^4U/l よりなる、特許請求の範囲第12項記載の試薬 14、試薬はα−グルコシダーゼ、NaCl又はKCl
、緩衝剤、及びマルトヘプタオースからなる、特許請求
の範囲第9項記載の試薬 15、試験濃度に関して、 α−グルコシダーゼ10^2〜5×10^6U/l、 NaCl又はKCl1〜100mMol/l、 緩衝剤10〜250mMol/l(pH5〜9) 及びマルトヘプタオース0.1〜250mMol/l を含有する、特許請求の範囲第9項又は第14項記載の
試薬 16、付加的に、β−グルコシダーゼ又は/及びフェノ
ールオキシダーゼ及び6−メチル−6−スルホニル−ベ
ンズテアゾロン−ヒドラゾン−(2)を含有する、特許
請求の範囲第9項、第14項又は第15項のいずれか1
項に記載の試薬 17、薄膜状担体に含浸させ又は混入させた、特許請求
の範囲第9項から第16項までのいずれか1項記載の試
薬
Applications Claiming Priority (3)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
DE2741192A DE2741192C2 (de) | 1977-09-13 | 1977-09-13 | Verfahren zur Bestimmung von alpha- Amylase |
DE2741192.3 | 1977-09-13 | ||
DE2755803.8 | 1977-12-14 |
Publications (1)
Publication Number | Publication Date |
---|---|
JPS63109798A true JPS63109798A (ja) | 1988-05-14 |
Family
ID=6018847
Family Applications (1)
Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
---|---|---|---|
JP62143464A Pending JPS63109798A (ja) | 1977-09-13 | 1987-06-10 | α−アミラ−ゼの定量法及び定量用試薬 |
Country Status (4)
Country | Link |
---|---|
JP (1) | JPS63109798A (ja) |
BE (1) | BE870365A (ja) |
DE (1) | DE2741192C2 (ja) |
ZA (1) | ZA785157B (ja) |
Families Citing this family (3)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
US4097336A (en) * | 1976-02-13 | 1978-06-27 | Beckman Instruments, Inc. | Reagent system for beta-amylase assay |
JPS5768798A (en) * | 1980-10-14 | 1982-04-27 | Toyo Jozo Co Ltd | Novel measurement of amylase activity |
DE3328616A1 (de) * | 1983-08-08 | 1985-02-28 | Boehringer Mannheim Gmbh, 6800 Mannheim | Oligoglucosidderivate |
Citations (4)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
JPS5311092A (en) * | 1976-07-13 | 1978-02-01 | Du Pont | Method for detection of serum amylase and reagent kit |
JPS5425893A (en) * | 1977-07-28 | 1979-02-27 | American Hospital Supply Corp | Quantitative determination of amylase |
JPS5451892A (en) * | 1977-09-13 | 1979-04-24 | Boehringer Mannheim Gmbh | Quantitatively anlysing method and reagent for alphaaamylase |
JPS6250119A (ja) * | 1985-05-08 | 1987-03-04 | エクソン ケミカル パテンツ インコ−ポレ−テツド | 延伸エラストマーフィルム |
Family Cites Families (3)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
DE1940816C3 (de) * | 1969-08-11 | 1974-01-17 | Boehringer Mannheim Gmbh, 6800 Mannheim | Verfahren und diagnostisches Mittel zur enzymatischen Bestimmung von Glucose |
US3879263A (en) * | 1973-09-06 | 1975-04-22 | Du Pont | Method for the determination of amylase |
US4000042A (en) * | 1973-09-06 | 1976-12-28 | E. I. Du Pont De Nemours And Company | Diagnostic reagent for the determination of amylase |
-
1977
- 1977-09-13 DE DE2741192A patent/DE2741192C2/de not_active Expired
-
1978
- 1978-09-11 BE BE190390A patent/BE870365A/xx not_active IP Right Cessation
- 1978-09-12 ZA ZA00785157A patent/ZA785157B/xx unknown
-
1987
- 1987-06-10 JP JP62143464A patent/JPS63109798A/ja active Pending
Patent Citations (4)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
JPS5311092A (en) * | 1976-07-13 | 1978-02-01 | Du Pont | Method for detection of serum amylase and reagent kit |
JPS5425893A (en) * | 1977-07-28 | 1979-02-27 | American Hospital Supply Corp | Quantitative determination of amylase |
JPS5451892A (en) * | 1977-09-13 | 1979-04-24 | Boehringer Mannheim Gmbh | Quantitatively anlysing method and reagent for alphaaamylase |
JPS6250119A (ja) * | 1985-05-08 | 1987-03-04 | エクソン ケミカル パテンツ インコ−ポレ−テツド | 延伸エラストマーフィルム |
Also Published As
Publication number | Publication date |
---|---|
BE870365A (fr) | 1979-03-12 |
DE2741192C2 (de) | 1982-07-01 |
DE2741192A1 (de) | 1979-03-15 |
ZA785157B (en) | 1979-09-26 |
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