JPH10210984A - エチレンジアミン−ｎ，ｎ’−ジコハク酸：エチレンジアミンリアーゼ活性を有するタンパク質およびその遺伝子 - Google Patents
エチレンジアミン−ｎ，ｎ’−ジコハク酸：エチレンジアミンリアーゼ活性を有するタンパク質およびその遺伝子Info
- Publication number
- JPH10210984A JPH10210984A JP9060077A JP6007797A JPH10210984A JP H10210984 A JPH10210984 A JP H10210984A JP 9060077 A JP9060077 A JP 9060077A JP 6007797 A JP6007797 A JP 6007797A JP H10210984 A JPH10210984 A JP H10210984A
- Authority
- JP
- Japan
- Prior art keywords
- ethylenediamine
- gene
- disuccinic acid
- dna
- polypeptide
- Prior art date
- Legal status (The legal status is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the status listed.)
- Granted
Links
Classifications
-
- C—CHEMISTRY; METALLURGY
- C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
- C12N—MICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
- C12N9/00—Enzymes; Proenzymes; Compositions thereof; Processes for preparing, activating, inhibiting, separating or purifying enzymes
- C12N9/88—Lyases (4.)
Landscapes
- Life Sciences & Earth Sciences (AREA)
- Chemical & Material Sciences (AREA)
- Health & Medical Sciences (AREA)
- Genetics & Genomics (AREA)
- Organic Chemistry (AREA)
- Zoology (AREA)
- Engineering & Computer Science (AREA)
- Bioinformatics & Cheminformatics (AREA)
- Wood Science & Technology (AREA)
- Microbiology (AREA)
- Biotechnology (AREA)
- Biomedical Technology (AREA)
- Molecular Biology (AREA)
- Biochemistry (AREA)
- General Engineering & Computer Science (AREA)
- General Health & Medical Sciences (AREA)
- Medicinal Chemistry (AREA)
- Enzymes And Modification Thereof (AREA)
- Micro-Organisms Or Cultivation Processes Thereof (AREA)
- Saccharide Compounds (AREA)
- Preparation Of Compounds By Using Micro-Organisms (AREA)
Abstract
(57)【要約】
【解決手段】 エチレンジアミン-N,N'-ジコハク酸：エ
チレンジアミンリアーゼ活性を有するタンパク質および
それをコードする遺伝子 【効果】 遺伝子組換えの方法でクローン化されたエチ
レンジアミン-N,N'-ジコハク酸：エチレンジアミンリア
ーゼ遺伝子によるジアミノアルキレン-N,N'-ジコハク酸
の製造では、菌体内に同遺伝子を多コピー存在させるこ
とができるため、微生物の触媒能力を飛躍的に増大させ
ることが期待できる。
チレンジアミンリアーゼ活性を有するタンパク質および
それをコードする遺伝子 【効果】 遺伝子組換えの方法でクローン化されたエチ
レンジアミン-N,N'-ジコハク酸：エチレンジアミンリア
ーゼ遺伝子によるジアミノアルキレン-N,N'-ジコハク酸
の製造では、菌体内に同遺伝子を多コピー存在させるこ
とができるため、微生物の触媒能力を飛躍的に増大させ
ることが期待できる。
Description
【０００１】
【発明の属する技術分野】本発明は、エチレンジアミン
-N,N'-ジコハク酸：エチレンジアミンリアーゼ活性を有
するタンパク質およびそれをコードする遺伝子に関す
る。エチレンジアミン-N,N'-ジコハク酸：エチレンジア
ミンリアーゼ活性を有するタンパク質を用いればフマル
酸またはマレイン酸と各種ジアミンからジアミノアルキ
レン-N,N'-ジコハク酸を合成することができる。ジアミ
ノアルキレン-N,N'-ジコハク酸は医農薬合成中間体とし
て重要であると共に重金属を捕捉するという特異な性質
を持つ。また、該化合物の光学異性体は自然界に放出さ
れた後に生分解を受け易いなどの可能性が期待できるた
め、キレート剤や洗剤用ビルダーなどの用途が見込まれ
る。
-N,N'-ジコハク酸：エチレンジアミンリアーゼ活性を有
するタンパク質およびそれをコードする遺伝子に関す
る。エチレンジアミン-N,N'-ジコハク酸：エチレンジア
ミンリアーゼ活性を有するタンパク質を用いればフマル
酸またはマレイン酸と各種ジアミンからジアミノアルキ
レン-N,N'-ジコハク酸を合成することができる。ジアミ
ノアルキレン-N,N'-ジコハク酸は医農薬合成中間体とし
て重要であると共に重金属を捕捉するという特異な性質
を持つ。また、該化合物の光学異性体は自然界に放出さ
れた後に生分解を受け易いなどの可能性が期待できるた
め、キレート剤や洗剤用ビルダーなどの用途が見込まれ
る。
【０００２】
【従来の技術】ジアミノアルキレン-N,N'-ジコハク酸は
有機合成的手法により各種のアミンとマレイン酸または
フマル酸から容易に合成することができる。しかし、光
学活性ジアミノアルキレン-N,N'-ジコハク酸の場合に
は、その有機合成的手法の出発原料として光学活性アス
パラギン酸などが必要になる。例えば、光学活性ジアミ
ノエチレン-N,N'-ジコハク酸はL-アスパラギン酸とジブ
ロムエタンから製造できる〔John A. Neal et al. Inor
ganic Chem. 7, 2405 (1968)〕。しかし、L-アスパラギ
ン酸やジブロムエタンからの製造は、製造原料が比較的
高価となり、安価で汎用性のある化合物として供給する
ことは困難である。一方、微生物の生産するジアミノア
ルキレン-N,N'-ジコハク酸は放線菌の培養液から単離同
定されている〔T. Nishikiori et al. J. Antibiotics
37, 426 (1984)〕が、この放線菌による生産性は極めて
低く工業的製法とは成り得ない。
有機合成的手法により各種のアミンとマレイン酸または
フマル酸から容易に合成することができる。しかし、光
学活性ジアミノアルキレン-N,N'-ジコハク酸の場合に
は、その有機合成的手法の出発原料として光学活性アス
パラギン酸などが必要になる。例えば、光学活性ジアミ
ノエチレン-N,N'-ジコハク酸はL-アスパラギン酸とジブ
ロムエタンから製造できる〔John A. Neal et al. Inor
ganic Chem. 7, 2405 (1968)〕。しかし、L-アスパラギ
ン酸やジブロムエタンからの製造は、製造原料が比較的
高価となり、安価で汎用性のある化合物として供給する
ことは困難である。一方、微生物の生産するジアミノア
ルキレン-N,N'-ジコハク酸は放線菌の培養液から単離同
定されている〔T. Nishikiori et al. J. Antibiotics
37, 426 (1984)〕が、この放線菌による生産性は極めて
低く工業的製法とは成り得ない。
【０００３】
【発明が解決しようとする課題】これに対し、本出願人
は、先に、微生物の触媒作用を利用してフマル酸あるい
はマレイン酸と各種ジアミンから効率よく光学活性S,S-
ジアミノアルキレン-N,N'-ジコハク酸を合成する新規な
方法を提案している（特願平8-79404 号、同8-127655号
および同8-130594号明細書参照）。本発明は、この微生
物の触媒作用をさらに向上させることを課題とする。
は、先に、微生物の触媒作用を利用してフマル酸あるい
はマレイン酸と各種ジアミンから効率よく光学活性S,S-
ジアミノアルキレン-N,N'-ジコハク酸を合成する新規な
方法を提案している（特願平8-79404 号、同8-127655号
および同8-130594号明細書参照）。本発明は、この微生
物の触媒作用をさらに向上させることを課題とする。
【０００４】
【課題を解決するための手段】遺伝子組換えによる目的
遺伝子のクローニングは菌体内に目的遺伝子を多コピー
存在させることが可能となるため、微生物の触媒能力を
飛躍的に増大させることが期待できる。それ故、本発明
者は菌体の触媒活性の向上および菌体生産量の改善を目
的に、エチレンジアミン-N,N'-ジコハク酸：エチレンジ
アミンリアーゼ遺伝子のクローニングを行った。
遺伝子のクローニングは菌体内に目的遺伝子を多コピー
存在させることが可能となるため、微生物の触媒能力を
飛躍的に増大させることが期待できる。それ故、本発明
者は菌体の触媒活性の向上および菌体生産量の改善を目
的に、エチレンジアミン-N,N'-ジコハク酸：エチレンジ
アミンリアーゼ遺伝子のクローニングを行った。
【０００５】すなわち、本発明は、(1) エチレンジアミ
ン-N,N'-ジコハク酸：エチレンジアミンリアーゼ活性を
有し、配列番号１で示されるアミノ酸配列を有するポリ
ペプチドをコードする遺伝子ＤＮＡおよび遺伝子コード
の同義性に由来するこの類縁体、(2) 配列番号２に示さ
れる配列またはそのフラグメントとハイブリダイズし、
かつ、エチレンジアミン-N,N'-ジコハク酸：エチレンジ
アミンリアーゼ活性を示すポリペプチドをコードする遺
伝子ＤＮＡ、(3) 配列番号４および５に示される合成Ｄ
ＮＡで増幅されるサイズが 200〜350bp のＤＮＡ断片、
(4) 上記エチレンジアミン-N,N'-ジコハク酸：エチレン
ジアミンリアーゼ活性を有するポリペプチドをコードす
る遺伝子を含む組換えプラスミド、(5) 上記プラスミド
により形質転換された形質転換微生物、および(6) 上記
形質転換微生物を用いたジアミノアルキレン-N,N'-ジコ
ハク酸の製造法である。(2) のポリペプチドをコードす
る遺伝子ＤＮＡとしては、例えば、配列番号２の塩基配
列を有するＤＮＡが挙げられる。
ン-N,N'-ジコハク酸：エチレンジアミンリアーゼ活性を
有し、配列番号１で示されるアミノ酸配列を有するポリ
ペプチドをコードする遺伝子ＤＮＡおよび遺伝子コード
の同義性に由来するこの類縁体、(2) 配列番号２に示さ
れる配列またはそのフラグメントとハイブリダイズし、
かつ、エチレンジアミン-N,N'-ジコハク酸：エチレンジ
アミンリアーゼ活性を示すポリペプチドをコードする遺
伝子ＤＮＡ、(3) 配列番号４および５に示される合成Ｄ
ＮＡで増幅されるサイズが 200〜350bp のＤＮＡ断片、
(4) 上記エチレンジアミン-N,N'-ジコハク酸：エチレン
ジアミンリアーゼ活性を有するポリペプチドをコードす
る遺伝子を含む組換えプラスミド、(5) 上記プラスミド
により形質転換された形質転換微生物、および(6) 上記
形質転換微生物を用いたジアミノアルキレン-N,N'-ジコ
ハク酸の製造法である。(2) のポリペプチドをコードす
る遺伝子ＤＮＡとしては、例えば、配列番号２の塩基配
列を有するＤＮＡが挙げられる。
【０００６】以下に、本発明を詳細に説明する。本発明
でいうエチレンジアミン-N,N'-ジコハク酸：エチレンジ
アミンリアーゼとは、フマル酸とエチレンジアミンから
エチレンジアミン-N,N'-ジコハク酸を可逆的に生成する
能力を持つ酵素を示すが、反応の条件によってはエチレ
ンジアミン -N-モノコハク酸を生成することもある。さ
らに本酵素は、エチレンジアミン以外のジアミン類にも
反応性を示し対応するジアミノアルキレン-N,N'-ジコハ
ク酸を生成する。また、生成するジアミノアルキレン-
N,N'-ジコハク酸は、多くの場合光学活性体であるが、
ラセミ体を生成する酵素もある。
でいうエチレンジアミン-N,N'-ジコハク酸：エチレンジ
アミンリアーゼとは、フマル酸とエチレンジアミンから
エチレンジアミン-N,N'-ジコハク酸を可逆的に生成する
能力を持つ酵素を示すが、反応の条件によってはエチレ
ンジアミン -N-モノコハク酸を生成することもある。さ
らに本酵素は、エチレンジアミン以外のジアミン類にも
反応性を示し対応するジアミノアルキレン-N,N'-ジコハ
ク酸を生成する。また、生成するジアミノアルキレン-
N,N'-ジコハク酸は、多くの場合光学活性体であるが、
ラセミ体を生成する酵素もある。
【０００７】このような反応性を示す一群の酵素は、本
出願人により自然界から分離同定した複数の属に属する
細菌類に見いだされており、これら細菌類は上記特願平
8-79404 号、同8-127655号および同8-130594号明細書に
記載されている。本発明は、そのうち特願平8-130594号
明細書記載のブレブンジモナス(Brevundimonas) sp. Ｔ
Ｎ−３株由来のエチレンジアミン-N,N'-ジコハク酸：エ
チレンジアミンリアーゼ遺伝子に関する。
出願人により自然界から分離同定した複数の属に属する
細菌類に見いだされており、これら細菌類は上記特願平
8-79404 号、同8-127655号および同8-130594号明細書に
記載されている。本発明は、そのうち特願平8-130594号
明細書記載のブレブンジモナス(Brevundimonas) sp. Ｔ
Ｎ−３株由来のエチレンジアミン-N,N'-ジコハク酸：エ
チレンジアミンリアーゼ遺伝子に関する。
【０００８】
【発明の実施の形態】本発明は、下記の工程により実施
される。 (1) ＴＮ−３株染色体ＤＮＡの調製 ＴＮ−３株より染色体ＤＮＡを分離、調製する。
される。 (1) ＴＮ−３株染色体ＤＮＡの調製 ＴＮ−３株より染色体ＤＮＡを分離、調製する。
【０００９】(2) 精製酵素の調製 ＴＮ−３株よりエチレンジアミン-N,N'-ジコハク酸：エ
チレンジアミンリアーゼタンパクを精製する。
チレンジアミンリアーゼタンパクを精製する。
【００１０】(3) 精製酵素のＮ末端アミノ酸配列および
内部ペプチドのアミノ酸配列の分析
内部ペプチドのアミノ酸配列の分析
【００１１】(4) プローブの調製 Ｎ末端アミノ酸配列および内部ペプチドのアミノ酸配列
より塩基配列を推定して２種の合成ＤＮＡを作製した。
この合成ＤＮＡをプライマーとし、ＴＮ−３株染色体Ｄ
ＮＡを鋳型としてポリメラーゼ伸長反応を行い、エチレ
ンジアミン-N,N'-ジコハク酸：エチレンジアミンリアー
ゼ遺伝子の一部が増幅されたＤＮＡ断片を得る。
より塩基配列を推定して２種の合成ＤＮＡを作製した。
この合成ＤＮＡをプライマーとし、ＴＮ−３株染色体Ｄ
ＮＡを鋳型としてポリメラーゼ伸長反応を行い、エチレ
ンジアミン-N,N'-ジコハク酸：エチレンジアミンリアー
ゼ遺伝子の一部が増幅されたＤＮＡ断片を得る。
【００１２】(5) ＤＮＡライブラリーの作製 染色体ＤＮＡを制限酵素で切断後、プラスミドベクター
pUC18に挿入してライブラリーとする。
pUC18に挿入してライブラリーとする。
【００１３】(6) 大腸菌形質転換体の作製および組換え
体ＤＮＡの選別 工程(5) で作製したＤＮＡライブラリーによる大腸菌形
質転換体を作製し、工程(4) で作製したＤＮＡ断片をプ
ローブとしたコロニーハイブリダイゼーション法により
目的の組換え体ＤＮＡを含む形質転換体を選別する。
体ＤＮＡの選別 工程(5) で作製したＤＮＡライブラリーによる大腸菌形
質転換体を作製し、工程(4) で作製したＤＮＡ断片をプ
ローブとしたコロニーハイブリダイゼーション法により
目的の組換え体ＤＮＡを含む形質転換体を選別する。
【００１４】(7) 組換えプラスミドの調製 工程(6) にて選別した組換え体よりプラスミドを調製す
る。
る。
【００１５】(8) 制限酵素地図の作製およびエチレンジ
アミン-N,N'-ジコハク酸：エチレンジアミンリアーゼ遺
伝子領域の特定 工程(7) で得られたプラスミドについて制限酵素地図を
作製し、プローブがハイブリダイズする領域を特定す
る。
アミン-N,N'-ジコハク酸：エチレンジアミンリアーゼ遺
伝子領域の特定 工程(7) で得られたプラスミドについて制限酵素地図を
作製し、プローブがハイブリダイズする領域を特定す
る。
【００１６】(9) 塩基配列の決定 工程(8) で特定された領域周辺の塩基配列を決定する。
【００１７】なお、ＴＮ−３株は、Brevundimonas sp.
ＴＮ−３(FERM P-15558)として、工業技術院生命工学工
業技術研究所に寄託されており、その菌学的性質は下記
のとおりである。
ＴＮ−３(FERM P-15558)として、工業技術院生命工学工
業技術研究所に寄託されており、その菌学的性質は下記
のとおりである。
【００１８】
【００１９】
【実施例】以下、本発明を実施例により詳細に説明す
る。ただし、本発明はこれらの実施例により限定される
ものではない。
る。ただし、本発明はこれらの実施例により限定される
ものではない。
【００２０】実施例１ (1) ＴＮ−３株染色体ＤＮＡの調製 ＴＮ−３株を 100mlのEDDS培地 (0.2%エチレンジアミン
-N,N'-ジコハク酸、0.2%グルコース、0.1%バクトイース
トエキス、 0.05%ポリペプトン、0.1%硫酸マグネシウム
・７水塩、25%(v/v)燐酸緩衝液(1M 、pH 7.0) 、0.5%(v
/v) 金属塩混合物溶液（硫酸ナトリウム 56g、塩化マグ
ネシウム・６水塩 8g 、塩化カルシウム0.8g 、硫酸マ
ンガン・４水塩 0.6g 、塩化第二鉄・６水塩 0.12g、硫
酸亜鉛 0.06g/100ml）中、30℃にて４日間振盪培養した
後集菌し、この菌体を Saline-EDTA溶液(0.1M EDTA、15
M NaCl、pH 8.0) 4ml に懸濁し、リゾチーム 8mgを加え
て37℃で１時間振盪した後凍結した。次に、10mlの Tri
s-SDS 液(1%SDS、0.1M NaCl 、0.1M Tris 、pH 9.0) を
穏やかに振盪しながら加え、さらにプロテイナーゼK
（メルク社）（終濃度 1mg) を加え37℃で１時間振盪し
た。次に、等量のTE飽和フェノールを加え撹拌後(TE:10
mM Tris 、1mM EDTA、pH 8.0) 遠心し、上層を採り２倍
量のエタノールを加えた後ガラス棒でＤＮＡを巻きと
り、90% 、80% 、70% のエタノールで順次フェノールを
取り除いた。次に、ＤＮＡを 3mlのTE緩衝液に溶解さ
せ、リボヌクレアーゼ A溶液(100℃、15分間の熱処理済
み）を 10mg/mlになるように加え37℃で30分間振盪し
た。さらにプロテイナーゼ Kを加え37℃で30分間振盪し
た後、等量のTE飽和フェノールを加え遠心し上層と下層
に分離させた。上層についてこの操作を２回繰り返した
後、同量のクロロフォルム (4%イソアミルアルコール含
有）を加え同様の抽出操作を繰り返した（以後この操作
をフェノール処理と呼ぶ）。その後上層に２倍量のエタ
ノールを加えガラス棒でＤＮＡを巻き取り回収し、染色
体ＤＮＡ標品を得た。
-N,N'-ジコハク酸、0.2%グルコース、0.1%バクトイース
トエキス、 0.05%ポリペプトン、0.1%硫酸マグネシウム
・７水塩、25%(v/v)燐酸緩衝液(1M 、pH 7.0) 、0.5%(v
/v) 金属塩混合物溶液（硫酸ナトリウム 56g、塩化マグ
ネシウム・６水塩 8g 、塩化カルシウム0.8g 、硫酸マ
ンガン・４水塩 0.6g 、塩化第二鉄・６水塩 0.12g、硫
酸亜鉛 0.06g/100ml）中、30℃にて４日間振盪培養した
後集菌し、この菌体を Saline-EDTA溶液(0.1M EDTA、15
M NaCl、pH 8.0) 4ml に懸濁し、リゾチーム 8mgを加え
て37℃で１時間振盪した後凍結した。次に、10mlの Tri
s-SDS 液(1%SDS、0.1M NaCl 、0.1M Tris 、pH 9.0) を
穏やかに振盪しながら加え、さらにプロテイナーゼK
（メルク社）（終濃度 1mg) を加え37℃で１時間振盪し
た。次に、等量のTE飽和フェノールを加え撹拌後(TE:10
mM Tris 、1mM EDTA、pH 8.0) 遠心し、上層を採り２倍
量のエタノールを加えた後ガラス棒でＤＮＡを巻きと
り、90% 、80% 、70% のエタノールで順次フェノールを
取り除いた。次に、ＤＮＡを 3mlのTE緩衝液に溶解さ
せ、リボヌクレアーゼ A溶液(100℃、15分間の熱処理済
み）を 10mg/mlになるように加え37℃で30分間振盪し
た。さらにプロテイナーゼ Kを加え37℃で30分間振盪し
た後、等量のTE飽和フェノールを加え遠心し上層と下層
に分離させた。上層についてこの操作を２回繰り返した
後、同量のクロロフォルム (4%イソアミルアルコール含
有）を加え同様の抽出操作を繰り返した（以後この操作
をフェノール処理と呼ぶ）。その後上層に２倍量のエタ
ノールを加えガラス棒でＤＮＡを巻き取り回収し、染色
体ＤＮＡ標品を得た。
【００２１】(2) 精製酵素の調製 ＴＮ−３株を2LのEDDS培地中、30℃にて４日間振盪培養
した後集菌し、10mMリン酸ナトリウム緩衝液(pH 8.0 、
1mM ジチオスレイトール含有）100ml に懸濁し、超音波
破砕機で菌体を破砕し、12,000rpm で20分間遠心分離し
た。得られた上澄に 30%飽和となるように硫酸アンモニ
ウムを添加し、４℃にて30分間静置後遠心分離した。得
られた上澄に 60%飽和となるように硫酸アンモニウムを
添加し４℃にて30分間静置後遠心分離した。得られた沈
殿を10mlの10mMリン酸ナトリウム緩衝液(pH 8.0 、1mM
ジチオスレイトール含有）に溶解し、部分精製酵素液と
した。この部分精製酵素液をイオン交換クロマトグラフ
ィーでさらに精製した。すなわち、1mM ジチオスレイト
ールを含む10mMリン酸ナトリウム緩衝液(pH 8.0)で緩衝
化した DEAE-sephacryl （ファルマシア社製）を充填し
たカラム（φ10mm×20cm) に、部分精製酵素液を流し吸
着させた。40mlの同緩衝液でカラムを洗浄した後、 0〜
0.6M KClの直線勾配で本酵素を溶出させ、2ml づつ分画
した。エチレンジアミン-N,N'-ジコハク酸：エチレンジ
アミンリアーゼ活性の認められた画分を集めて精製酵素
液とした。この画分をSDS-ポリアクリルアミドゲル電気
泳動により分析したところ分子量約６万のほぼ均一な一
本のバンドが検出された。
した後集菌し、10mMリン酸ナトリウム緩衝液(pH 8.0 、
1mM ジチオスレイトール含有）100ml に懸濁し、超音波
破砕機で菌体を破砕し、12,000rpm で20分間遠心分離し
た。得られた上澄に 30%飽和となるように硫酸アンモニ
ウムを添加し、４℃にて30分間静置後遠心分離した。得
られた上澄に 60%飽和となるように硫酸アンモニウムを
添加し４℃にて30分間静置後遠心分離した。得られた沈
殿を10mlの10mMリン酸ナトリウム緩衝液(pH 8.0 、1mM
ジチオスレイトール含有）に溶解し、部分精製酵素液と
した。この部分精製酵素液をイオン交換クロマトグラフ
ィーでさらに精製した。すなわち、1mM ジチオスレイト
ールを含む10mMリン酸ナトリウム緩衝液(pH 8.0)で緩衝
化した DEAE-sephacryl （ファルマシア社製）を充填し
たカラム（φ10mm×20cm) に、部分精製酵素液を流し吸
着させた。40mlの同緩衝液でカラムを洗浄した後、 0〜
0.6M KClの直線勾配で本酵素を溶出させ、2ml づつ分画
した。エチレンジアミン-N,N'-ジコハク酸：エチレンジ
アミンリアーゼ活性の認められた画分を集めて精製酵素
液とした。この画分をSDS-ポリアクリルアミドゲル電気
泳動により分析したところ分子量約６万のほぼ均一な一
本のバンドが検出された。
【００２２】(3) 精製酵素のＮ末端アミノ酸配列および
内部ペプチドのアミノ酸配列の分析 (2) の工程で得られた精製酵素を直接、あるいは tryps
inで消化後SDS-ポリアクリルアミドゲル電気泳動でポリ
ペプチドを分画し、PVDFメンブレン(ImmobilonPsq（ミ
リポア社））にエレクトロブロッティングした。ブロッ
ティングしたメンブレンをクマシーブリリアントブルー
で染色し、染色されたバンドを切り取りアミノ酸配列の
分析に供した。アミノ酸配列の分析は島津製作所製 PSQ
-1型アミノ酸分析装置により行った。結果を以下に示
す。
内部ペプチドのアミノ酸配列の分析 (2) の工程で得られた精製酵素を直接、あるいは tryps
inで消化後SDS-ポリアクリルアミドゲル電気泳動でポリ
ペプチドを分画し、PVDFメンブレン(ImmobilonPsq（ミ
リポア社））にエレクトロブロッティングした。ブロッ
ティングしたメンブレンをクマシーブリリアントブルー
で染色し、染色されたバンドを切り取りアミノ酸配列の
分析に供した。アミノ酸配列の分析は島津製作所製 PSQ
-1型アミノ酸分析装置により行った。結果を以下に示
す。
【００２３】a)無処理酵素のＮ末端アミノ酸配列：（分
子量約６万）；(Met-)Thr-Pro-His-Asn-Pro-Asp-Ala b)trypsin 部分分解物：（分子量約５万）；Glu-Ile-Gl
y-Ser-Val-Gly-Lys-Met-Glu-Ile-Gly-Arg-Xaa-Ala-Asn-
Asp-Leu-Arg-Asn-Arg c)trypsin 部分分解物：（分子量約１万）；Ala-Ser-Gl
y-Ala-Lys-Ala-Pro-Glu-Phe-Gln-Glu-Leu-Tyr-Asp-Phe-
Glu-Ala-Ala-Xaa-Leu-Xaa-Leu 〔（ ）内は分画したペプチドの分子量を示し、Xaa は
分析上特定できなかったアミノ酸を示す〕
子量約６万）；(Met-)Thr-Pro-His-Asn-Pro-Asp-Ala b)trypsin 部分分解物：（分子量約５万）；Glu-Ile-Gl
y-Ser-Val-Gly-Lys-Met-Glu-Ile-Gly-Arg-Xaa-Ala-Asn-
Asp-Leu-Arg-Asn-Arg c)trypsin 部分分解物：（分子量約１万）；Ala-Ser-Gl
y-Ala-Lys-Ala-Pro-Glu-Phe-Gln-Glu-Leu-Tyr-Asp-Phe-
Glu-Ala-Ala-Xaa-Leu-Xaa-Leu 〔（ ）内は分画したペプチドの分子量を示し、Xaa は
分析上特定できなかったアミノ酸を示す〕
【００２４】(4) プローブの調製 (3) の工程で得られたアミノ酸配列情報を基に配列番号
４および５に示されるような合成ＤＮＡを作成してプラ
イマー(#1 および #2)とし、(1) の工程で得られたＴＮ
−３株の染色体ＤＮＡを鋳型としてポリメラーゼ連鎖反
応を行った。すなわち、ＴＮ−３株染色体ＤＮＡ 1μl
、10倍濃度の反応緩衝液 10μl 、10mM dNTP 4μl
、プライマー #1 、#2各々 1μl(100pmol 濃度相当）E
xTaq （宝酒造株式会社） 1μl を加えて100 μl とし
た。この溶液について、95℃、30秒間（変性ステッ
プ）、55℃、30秒間（アニーリングステップ）、72℃、
２分間（伸長ステップ）のインキュベーションを30サイ
クル行った。反応終了後、クロロフォルム抽出を３回行
い、エタノール沈殿により増幅されたＤＮＡを回収し
た。これを1.0%アガロース電気泳動で分離後、ＴＮ−３
株のエチレンジアミン-N,N'-ジコハク酸：エチレンジア
ミンリアーゼ遺伝子をコードすると考えられる約300bp
のＤＮＡ断片を得た。こうして得られたＤＮＡ断片をDI
G DNA Labeling kit（ベーリンガー・マンハイム株式会
社）を用いて標識し、プローブとした。
４および５に示されるような合成ＤＮＡを作成してプラ
イマー(#1 および #2)とし、(1) の工程で得られたＴＮ
−３株の染色体ＤＮＡを鋳型としてポリメラーゼ連鎖反
応を行った。すなわち、ＴＮ−３株染色体ＤＮＡ 1μl
、10倍濃度の反応緩衝液 10μl 、10mM dNTP 4μl
、プライマー #1 、#2各々 1μl(100pmol 濃度相当）E
xTaq （宝酒造株式会社） 1μl を加えて100 μl とし
た。この溶液について、95℃、30秒間（変性ステッ
プ）、55℃、30秒間（アニーリングステップ）、72℃、
２分間（伸長ステップ）のインキュベーションを30サイ
クル行った。反応終了後、クロロフォルム抽出を３回行
い、エタノール沈殿により増幅されたＤＮＡを回収し
た。これを1.0%アガロース電気泳動で分離後、ＴＮ−３
株のエチレンジアミン-N,N'-ジコハク酸：エチレンジア
ミンリアーゼ遺伝子をコードすると考えられる約300bp
のＤＮＡ断片を得た。こうして得られたＤＮＡ断片をDI
G DNA Labeling kit（ベーリンガー・マンハイム株式会
社）を用いて標識し、プローブとした。
【００２５】(5) ＤＮＡライブラリーの作製 ＴＮ−３株染色体ＤＮＡ 10 μl に10倍濃度制限酵素反
応用緩衝液 5μl 、滅菌水 33μl 、制限酵素 KpnI 2
μl を加え、37℃にて16時間反応させた後エタノール沈
殿によりＤＮＡを回収した。アガロース電気泳動を行
い、6.5Kb から 5.5KbのＤＮＡ断片をゲルから切り出
し、DNA PREP（株式会社ダイヤトロン）を用いて回収し
た。このＤＮＡ断片をライゲーションキット（宝酒造株
式会社）を用いて大腸菌ベクター pUC18の KpnI 部位に
挿入し、組換え体ＤＮＡライブラリーを作製した。
応用緩衝液 5μl 、滅菌水 33μl 、制限酵素 KpnI 2
μl を加え、37℃にて16時間反応させた後エタノール沈
殿によりＤＮＡを回収した。アガロース電気泳動を行
い、6.5Kb から 5.5KbのＤＮＡ断片をゲルから切り出
し、DNA PREP（株式会社ダイヤトロン）を用いて回収し
た。このＤＮＡ断片をライゲーションキット（宝酒造株
式会社）を用いて大腸菌ベクター pUC18の KpnI 部位に
挿入し、組換え体ＤＮＡライブラリーを作製した。
【００２６】ライゲーションに用いた pUC18断片は次の
ように作製した。pUC18 保存液 2μl に対し、10倍濃度
制限酵素用緩衝液 5μl 、滅菌水 40μl 、制限酵素 K
pnI3μl を加え、37℃で２時間反応後、フェノール処
理、エタノール沈殿させた後乾燥して50μl の滅菌水に
溶解させた。さらにアルカリフォスファターゼ（宝酒造
株式会社） 1μl 、10倍濃度緩衝液 10μl 、滅菌水
39μl を加え65℃で反応後フェノール処理、エタノール
沈殿を行い乾燥して滅菌水に溶解させた。
ように作製した。pUC18 保存液 2μl に対し、10倍濃度
制限酵素用緩衝液 5μl 、滅菌水 40μl 、制限酵素 K
pnI3μl を加え、37℃で２時間反応後、フェノール処
理、エタノール沈殿させた後乾燥して50μl の滅菌水に
溶解させた。さらにアルカリフォスファターゼ（宝酒造
株式会社） 1μl 、10倍濃度緩衝液 10μl 、滅菌水
39μl を加え65℃で反応後フェノール処理、エタノール
沈殿を行い乾燥して滅菌水に溶解させた。
【００２７】(6) 大腸菌形質転換体の作製および組換え
体ＤＮＡの選別 大腸菌 JM109株をLB培地(1% バクトトリプトン、0.5%バ
クトイーストエキス、0.5% NaCl) 1mlに接種し37℃、５
時間好気的に前培養し、この培養物 100mlを SOB培地 4
0ml(2%バクトトリプトン、0.5%バクトイーストエキス、
10mM NaCl 、2.5mM KCl 、1mM MgSO4 、1mM MgCl2 ) に
加え、18℃で20時間培養した。この培養物を遠心分離に
より集菌した後、冷TF溶液(20mM PIPES-KOH(pH 6.0) 、
200mM KCl 、10mM CaCl2 、40mM MnCl2 ) を13ml加
え、０℃で10分間放置後、再度遠心し、上澄を除いた
後、沈殿した大腸菌を冷TF溶液 3.2mlに懸濁し、0.22ml
のジメチルスルフォキシドを加え０℃で10分間放置し
た。こうして作製したコンピテントセル 200μl に工程
(5) で作製した組換え体プラスミドを含有する溶液（Ｄ
ＮＡライブラリー）を10μl 加え、０℃で30分放置後、
42℃で30秒間ヒィートショックを与え０℃で２分間冷却
後、SOC 培地(20mM グルコース、2%バクトトリプトン、
0.5%バクトイーストエキス、10mM NaCl 、2.5mM KCl 、
1mM MgSO4 、1mM MgCl2 ）1ml を添加して37℃にて１時
間振盪培養した。これを 200μl ずつアンピシリン 100
μg/ml含有のLB寒天培地にまき、37℃で培養した。寒天
培地上に生育した形質転換体コロニーについてコロニー
ハイブリダイゼーション法にてエチレンジアミン-N,N'-
ジコハク酸：エチレンジアミンリアーゼ遺伝子を持つ形
質転換体を選別した。すなわち、寒天培地上に生育した
形質転換体をナイロンメンブレン（バイオダイン A：日
本ポール株式会社）上に移し、菌体を溶かしてＤＮＡを
固定した後、これを工程(4) で作製したプローブ（約30
0bp)で処理し、DIG Luminescent Detection Kit （ベー
リンガー・マンハイム株式会社）を用い、目的の組換え
体ＤＮＡを持つコロニーを選択した。
体ＤＮＡの選別 大腸菌 JM109株をLB培地(1% バクトトリプトン、0.5%バ
クトイーストエキス、0.5% NaCl) 1mlに接種し37℃、５
時間好気的に前培養し、この培養物 100mlを SOB培地 4
0ml(2%バクトトリプトン、0.5%バクトイーストエキス、
10mM NaCl 、2.5mM KCl 、1mM MgSO4 、1mM MgCl2 ) に
加え、18℃で20時間培養した。この培養物を遠心分離に
より集菌した後、冷TF溶液(20mM PIPES-KOH(pH 6.0) 、
200mM KCl 、10mM CaCl2 、40mM MnCl2 ) を13ml加
え、０℃で10分間放置後、再度遠心し、上澄を除いた
後、沈殿した大腸菌を冷TF溶液 3.2mlに懸濁し、0.22ml
のジメチルスルフォキシドを加え０℃で10分間放置し
た。こうして作製したコンピテントセル 200μl に工程
(5) で作製した組換え体プラスミドを含有する溶液（Ｄ
ＮＡライブラリー）を10μl 加え、０℃で30分放置後、
42℃で30秒間ヒィートショックを与え０℃で２分間冷却
後、SOC 培地(20mM グルコース、2%バクトトリプトン、
0.5%バクトイーストエキス、10mM NaCl 、2.5mM KCl 、
1mM MgSO4 、1mM MgCl2 ）1ml を添加して37℃にて１時
間振盪培養した。これを 200μl ずつアンピシリン 100
μg/ml含有のLB寒天培地にまき、37℃で培養した。寒天
培地上に生育した形質転換体コロニーについてコロニー
ハイブリダイゼーション法にてエチレンジアミン-N,N'-
ジコハク酸：エチレンジアミンリアーゼ遺伝子を持つ形
質転換体を選別した。すなわち、寒天培地上に生育した
形質転換体をナイロンメンブレン（バイオダイン A：日
本ポール株式会社）上に移し、菌体を溶かしてＤＮＡを
固定した後、これを工程(4) で作製したプローブ（約30
0bp)で処理し、DIG Luminescent Detection Kit （ベー
リンガー・マンハイム株式会社）を用い、目的の組換え
体ＤＮＡを持つコロニーを選択した。
【００２８】(7) 組換えプラスミドの調製 工程(6) で選択した形質転換体を 100mlのLB培地にて37
℃で一晩培養し、集菌後滅菌水により洗浄し、溶液I(2m
M グルコース、10mM EDTA 、25mM Tris-HCl(pH8.0) を
5ml、リゾチームを25mg加え、０℃で30分間放置した。
溶液II(1N-NaOH、5%SDS)を 10ml 加え０℃で５分間放置
し、溶液III(3M酢酸ナトリウム(pH 4.8)）を 7.5ml加え
０℃で30分間放置した。これを遠心し、その上澄に50ml
のエタノールを加え、さらに遠心し上澄を取り除き 5ml
の溶液IV(10mM 酢酸ナトリウム、50mM Tris-HCl(pH8.0)
)とリボヌクレアーゼ A溶液(10mg/ml)2.5μl を加え室
温で20分間放置した。これに12mlのエタノールを加え、
遠心によりプラスミドを回収、70% エタノールでリンス
し、乾燥後 0.4mlの滅菌水に溶解した。こうして得られ
た組換え体プラスミドを pEDS001と名付けた。
℃で一晩培養し、集菌後滅菌水により洗浄し、溶液I(2m
M グルコース、10mM EDTA 、25mM Tris-HCl(pH8.0) を
5ml、リゾチームを25mg加え、０℃で30分間放置した。
溶液II(1N-NaOH、5%SDS)を 10ml 加え０℃で５分間放置
し、溶液III(3M酢酸ナトリウム(pH 4.8)）を 7.5ml加え
０℃で30分間放置した。これを遠心し、その上澄に50ml
のエタノールを加え、さらに遠心し上澄を取り除き 5ml
の溶液IV(10mM 酢酸ナトリウム、50mM Tris-HCl(pH8.0)
)とリボヌクレアーゼ A溶液(10mg/ml)2.5μl を加え室
温で20分間放置した。これに12mlのエタノールを加え、
遠心によりプラスミドを回収、70% エタノールでリンス
し、乾燥後 0.4mlの滅菌水に溶解した。こうして得られ
た組換え体プラスミドを pEDS001と名付けた。
【００２９】(8) 制限酵素地図の作製およびエチレンジ
アミン-N,N'-ジコハク酸：エチレンジアミンリアーゼ遺
伝子領域の特定 工程(7) で得られたプラスミド pEDS001を数種の制限酵
素を用いて切断し制限酵素地図を作製した（図１）。さ
らに、通常行われるようにサブクローニングを行った。
すなわち、pEDS001 を制限酵素 KpnI と BamHIとで切断
し、pUC18 を同制限酵素で切断したものとライゲーショ
ンし、大腸菌 JM109株を形質転換することにより、約3.
9Kb の断片が挿入されたプラスミド(pEDS002) （図２）
と約2.6Kb の断片が挿入されたプラスミド(pEDS003)
（図３）を得た。各々のプラスミドについて制限酵素 B
amHI、EcoRI 、SacI、SalIなどで切断後、アガロース電
気泳動を行い、サザンハイブリダイゼーション法により
プローブがハイブリダイズする断片を特定した。
アミン-N,N'-ジコハク酸：エチレンジアミンリアーゼ遺
伝子領域の特定 工程(7) で得られたプラスミド pEDS001を数種の制限酵
素を用いて切断し制限酵素地図を作製した（図１）。さ
らに、通常行われるようにサブクローニングを行った。
すなわち、pEDS001 を制限酵素 KpnI と BamHIとで切断
し、pUC18 を同制限酵素で切断したものとライゲーショ
ンし、大腸菌 JM109株を形質転換することにより、約3.
9Kb の断片が挿入されたプラスミド(pEDS002) （図２）
と約2.6Kb の断片が挿入されたプラスミド(pEDS003)
（図３）を得た。各々のプラスミドについて制限酵素 B
amHI、EcoRI 、SacI、SalIなどで切断後、アガロース電
気泳動を行い、サザンハイブリダイゼーション法により
プローブがハイブリダイズする断片を特定した。
【００３０】(9) 塩基配列の決定 工程(8) で特定された領域周辺の塩基配列をファルマシ
ア社蛍光シーケンサ ALFIIを用いて決定した。その結
果、配列番号２に示される塩基配列が得られ、配列番号
１に示されるアミノ酸配列を持つオープンリーディング
フレームが見いだされた。アミノ酸配列データーベース
NBRF(National Biomedical Research Foundation)との
比較の結果、本遺伝子は delta-crystallin あるいは a
rgininosuccinate lyase と20〜30% のホモロジーを有
しており、両酵素にはともにフマル酸とアミン（アミノ
酸）の縮合あるいは分解反応を触媒する活性が知られて
いる。また、このオープンリーディングフレームの塩基
配列を配列番号３に示した。
ア社蛍光シーケンサ ALFIIを用いて決定した。その結
果、配列番号２に示される塩基配列が得られ、配列番号
１に示されるアミノ酸配列を持つオープンリーディング
フレームが見いだされた。アミノ酸配列データーベース
NBRF(National Biomedical Research Foundation)との
比較の結果、本遺伝子は delta-crystallin あるいは a
rgininosuccinate lyase と20〜30% のホモロジーを有
しており、両酵素にはともにフマル酸とアミン（アミノ
酸）の縮合あるいは分解反応を触媒する活性が知られて
いる。また、このオープンリーディングフレームの塩基
配列を配列番号３に示した。
【００３１】実施例２ 実施例１（工程(7))で得られたエチレンジアミン-N,N'-
ジコハク酸：エチレンジアミンリアーゼ遺伝子を有する
組換え体プラスミド pEDS003 2μl に対し、10倍濃度制
限酵素用緩衝液 2μl 、滅菌水 15μl 、制限酵素 Kpn
I 1μl を添加し、37℃にて２時間反応させた。エタノ
ール沈殿によりプラスミドを回収し、乾燥後17μl の滅
菌水、 2μl の10倍濃度制限酵素緩衝液、制限酵素 Bam
HI 1μlを添加して37℃にて２時間反応させた。この反
応液からアガロース電気泳動により約2.6Kb の断片を調
製し、大腸菌ベクター pUC119 に挿入した。作製したラ
イゲーション溶液を用いて大腸菌 JM109を形質転換して
目的のプラスミドを得た。ここで作製したプラスミドを
pEDS020と、また形質転換体を JM109/pEDS020と名付け
た。JM109/pEDS020 をアンピシリン 50mg/L 含有するLB
培地 1mlに接種して37℃にて８時間振盪培養後、40mlの
LB培地(50mg/L アンピシリン、1mM isopropyl-β-thiog
alactosideを含有）で37℃、30時間培養した。得られた
培養物を10mMリン酸ナトリウム緩衝液(pH 8.0)で洗浄
後、2ml の同緩衝液に懸濁した。得られた菌体懸濁液の
一部を 342mMフマル酸と 171mMエチレンジアミンを含む
pH 8.0の水溶液50ml に懸濁し24時間反応させた。反応
液から菌体を遠心分離により除いた後、HPLCを用いて生
成したエチレンジアミン-N,N'-ジコハク酸を分析した
（WAKOSIL5C8 （和光純薬）〔溶出液；10mM水酸化テト
ラ-n- ブチルアンモニウムと0.4mMCuSO4 を含む50mM燐
酸pH 2〕）。その結果、50mMのS,S-エチレンジアミン-
N,N'-ジコハク酸が生成していた。なお、エチレンジア
ミン-N,N'-ジコハク酸：エチレンジアミンリアーゼ遺伝
子を含むプラスミド pEDS020（図４）はこれを含有する
形質転換体 E. coli JM109/pEDS020(FERM P-15961)とし
て、工業技術院生命工学工業技術研究所に寄託されてい
る。
ジコハク酸：エチレンジアミンリアーゼ遺伝子を有する
組換え体プラスミド pEDS003 2μl に対し、10倍濃度制
限酵素用緩衝液 2μl 、滅菌水 15μl 、制限酵素 Kpn
I 1μl を添加し、37℃にて２時間反応させた。エタノ
ール沈殿によりプラスミドを回収し、乾燥後17μl の滅
菌水、 2μl の10倍濃度制限酵素緩衝液、制限酵素 Bam
HI 1μlを添加して37℃にて２時間反応させた。この反
応液からアガロース電気泳動により約2.6Kb の断片を調
製し、大腸菌ベクター pUC119 に挿入した。作製したラ
イゲーション溶液を用いて大腸菌 JM109を形質転換して
目的のプラスミドを得た。ここで作製したプラスミドを
pEDS020と、また形質転換体を JM109/pEDS020と名付け
た。JM109/pEDS020 をアンピシリン 50mg/L 含有するLB
培地 1mlに接種して37℃にて８時間振盪培養後、40mlの
LB培地(50mg/L アンピシリン、1mM isopropyl-β-thiog
alactosideを含有）で37℃、30時間培養した。得られた
培養物を10mMリン酸ナトリウム緩衝液(pH 8.0)で洗浄
後、2ml の同緩衝液に懸濁した。得られた菌体懸濁液の
一部を 342mMフマル酸と 171mMエチレンジアミンを含む
pH 8.0の水溶液50ml に懸濁し24時間反応させた。反応
液から菌体を遠心分離により除いた後、HPLCを用いて生
成したエチレンジアミン-N,N'-ジコハク酸を分析した
（WAKOSIL5C8 （和光純薬）〔溶出液；10mM水酸化テト
ラ-n- ブチルアンモニウムと0.4mMCuSO4 を含む50mM燐
酸pH 2〕）。その結果、50mMのS,S-エチレンジアミン-
N,N'-ジコハク酸が生成していた。なお、エチレンジア
ミン-N,N'-ジコハク酸：エチレンジアミンリアーゼ遺伝
子を含むプラスミド pEDS020（図４）はこれを含有する
形質転換体 E. coli JM109/pEDS020(FERM P-15961)とし
て、工業技術院生命工学工業技術研究所に寄託されてい
る。
【００３２】
【発明の効果】遺伝子組換えの方法でクローン化された
エチレンジアミン-N,N'-ジコハク酸：エチレンジアミン
リアーゼ遺伝子によるジアミノアルキレン-N,N'-ジコハ
ク酸の製造では、菌体内に同遺伝子を多コピー存在させ
ることができるため、微生物の触媒能力を飛躍的に増大
させることが期待できる。
エチレンジアミン-N,N'-ジコハク酸：エチレンジアミン
リアーゼ遺伝子によるジアミノアルキレン-N,N'-ジコハ
ク酸の製造では、菌体内に同遺伝子を多コピー存在させ
ることができるため、微生物の触媒能力を飛躍的に増大
させることが期待できる。
【００３３】
配列番号１： 配列の長さ：495 配列の型：アミノ酸 トポロジー：直鎖状 配列の種類：タンパク質 起源： 生物名：ブレブンジモナス sp.（Brevundimonas sp.) 株名：ＴＮ−３ 配列： 1 11 21 31 41 51 XTPHNPDATR IGRAKRAKAP EFQELYDFEA AALTLTSAVF PYDSKIHRAH VVMLAEQDIL 61 71 81 91 101 111 TRDEAASILN GLAKADELAG KDAALRTYLP YEAALKREIG SVAGKMHIGR SANDLRNRVN 121 131 141 151 161 171 ACSCVTALRT VEAVIALREA VVTKAADHLD TVMVVYTQRK EAQPITLGHY LMAISENLGK 181 191 201 211 221 231 NLARYRELHP RINQCPLGAA ATAGTGWPLD RDRTAALLGF HGLVVNSIEG VAGWDHVAEF 241 251 261 271 281 291 AFDNAVFLSG LSRLASEIQL WSTDEYQMAE LDSAFAGTSS IMPQKKNPDS LERSRKGAFA 301 311 321 331 341 351 AMGPLVAILT SLNGIEYQYS AARVELEPRS IDALIAATHA MTGVVRTLHP NKEQDACAMR 361 371 381 391 401 411 QENYATMTDL TDLLVRRIGI DYREAHEIVA RVVMTAIERG IKANAIGLDL VQEAAVAQTG 421 431 441 451 461 471 NRIEIGAADI ADALDPVQNV ARRKGRGMPA PESVRAAIAE ARQELDADKA WLEDRRAGLA 481 491 DADAALEEAV AGITT* （上記式中 Xは欠失または Mを表す）
【００３４】配列番号２： 配列の長さ：1922 配列の型：核酸 鎖の数：二本鎖 トポロジー：直鎖状 起源： 生物名：ブレブンジモナス sp.（Brevundimonas sp.) 株名：ＴＮ−３ 配列： 1 11 21 31 41 51 GGATCCTCAT CAGCGAGCGC TTTCCGTCCG GCACCCGTAT TCTGCTGGAA GTCCTGCACA 61 71 81 91 101 111 GCAACCCCAA TGGCCGCACC TTCTGGGAGC GGATGGGGTT CGACCCCTAC GCGCTCTATC 121 131 141 151 161 171 TCGAGCGGCG CGCCGGCCCC CTCACCTGAC CCTCAGACGA CTAGAGAAGA ACGCGATGAC 181 191 201 211 221 231 CCCGCATAAC CCAGATGCCA CCCGTATCGG CCGTGCCAAG CGCGCGAAGG CGCCGGAATT 241 251 261 271 281 291 CCAGGAACTC TATGACTTCG AAGCAGCGGC ACTCACCCTG ACGAGCGCCG TCTTTCCTTA 301 311 321 331 341 351 CGACAGCAAG ATTCATCGTG CTCACGTCGT CATGCTGGCT GAACAGGACA TCCTGACCCG 361 371 381 391 401 411 GGACGAGGCT GCCAGCATCC TGAACGGGCT GGCCAAGGCG GATGAACTGG CGGGAAAGGA 421 431 441 451 461 471 CGCGGCGCTG CGCACCTACC TGCCCTATGA GGCCGCGCTG AAACGCGAGA TCGGCTCCGT 481 491 501 511 521 531 TGCCGGGAAG ATGCATATCG GGCGCAGTGC CAACGACCTC CGCAATCGGG TAAACGCATG 541 551 561 571 581 591 TTCCTGCGTG ACAGCTCTGC GCACCGTCGA GGCTGTGATC GCATTGCGCG AGGCAGTCGT 601 611 621 631 641 651 GACCAAGGCC GCCGACCATC TCGACACGGT GATGGTCGTC TACACCCAGC GCAAGGAGGC 661 671 681 691 701 711 CCAGCCGATC ACGCTCGGCC ATTACCTAAT GGCGATCAGC GAAAATCTGG GCAAGAACCT 721 731 741 751 761 771 CGCCCGCTAT CGCGAGCTCC ATCCGCGCAT CAACCAATGT CCCCTCGGCG CCGCTGCCAC 781 791 801 811 821 831 GGCGGGCACG GGCTGGCCGC TGGATCGCGA CCGCACCGCA GCACTGCTGG GTTTCCACGG 841 851 861 871 881 891 GCTCGTCGTC AACAGCATCG AGGGCGTGGC CGGCTGGGAC CACGTCGCGG AATTCGCCTT 901 911 921 931 941 951 CGACAATGCC GTCTTCCTGA GCGGCCTCAG CCGCCTGGCT TCCGAGATCC AGCTCTGGAG 961 971 981 991 1001 1011 CACGGACGAG TATCAGATGG CGGAACTCGA CTCCGCCTTC GCCGGCACCA GCAGCATCAT 1021 1031 1041 1051 1061 1071 GCCGCAGAAG AAAAACCCGG ATTCGCTGGA GCGCAGCCGG AAAGGCGCCT TCGCGGCGAT 1081 1091 1101 1111 1121 1131 GGGGCCGCTG GTCGCCATCC TCACCTCTCT CAATGGTATC GAGTACCAGT ACAGCGCCGC 1141 1151 1161 1171 1181 1191 CAGGGTCGAG CTCGAACCGC GATCCATCGA TGCGCTGATC GCGGCCACCC ACGCGATGAC 1201 1211 1221 1231 1241 1251 GGGCGTCGTG CGGACGCTTC ATCCCAACAA GGAGCAAGAT GCTTGCGCTA TGCGGCAAGA 1261 1271 1281 1291 1301 1311 GAACTACGCC ACCATGACCG ACCTGACCGA CCTGCTCGTC CGTCGCATCG GCATCGACTA 1321 1331 1341 1351 1361 1371 TCGCGAGGCC CATGAGATCG TGGCGCGCGT GGTGATGACG GCGATCGAGC GCGGCATCAA 1381 1391 1401 1411 1421 1431 GGCCAACGCC ATCGGACTGG ACCTCGTGCA GGAGGCCGCG GTCGCGCAGA CGGGCAACCG 1441 1451 1461 1471 1481 1491 GATCGAGATC GGTGCGGCCG ACATCGCCGA TGCGCTCGAT CCGGTTCAGA ACGTCGCCCG 1501 1511 1521 1531 1541 1551 TCGCAAGGGC AGGGGCATGC CCGCGCCCGA ATCCGTCAGG GCCGCCATCG CGGAGGCGCG 1561 1571 1581 1591 1601 1611 TCAGGAATTG GACGCCGACA AGGCCTGGCT AGAGGACCGG CGCGCCGGGC TGGCCGATGC 1621 1631 1641 1651 1661 1671 GGATGCGGCG CTGGAGGAGG CGGTGGCCGG CATCACGACC TGAGGCCTGC TGCCTCCCTG 1681 1691 1701 1711 1721 1731 CCGAAAATCT CGACTCGTGG TTCAAAAAAG AGGGGATAGC CATGACGAAG ACGGTTTTTT 1741 1751 1761 1771 1781 1791 TCTATCTGCT GACGATGACT GCCGGCGCCA TGAGCGGCTT GACCGGAGCG GCGCATGGCC 1801 1811 1821 1831 1841 1851 AAGCCATCAC CGTTCCCGCC GCGCTGAAGG AAAAAGGCGA GTTGCGTGTC GGCGTCAAAT 1861 1871 1881 1891 1901 1911 GCGACACGCC GCCTGCCGGT TTCCTCGACG AAAAGGGTAA GCCCACCGGC ATCGATATCG 1921 AT
【００３５】配列番号３： 配列の長さ：1488 配列の型：核酸 鎖の数：二本鎖 トポロジー：直鎖状 起源： 生物名：ブレブンジモナス sp.（Brevundimonas sp.) 株名：ＴＮ−３ 配列： 1 11 21 31 41 51 ATGACCCCGC ATAACCCAGA TGCCACCCGT ATCGGCCGTG CCAAGCGCGC GAAGGCGCCG 61 71 81 91 101 111 GAATTCCAGG AACTCTATGA CTTCGAAGCA GCGGCACTCA CCCTGACGAG CGCCGTCTTT 121 131 141 151 161 171 CCTTACGACA GCAAGATTCA TCGTGCTCAC GTCGTCATGC TGGCTGAACA GGACATCCTG 181 191 201 211 221 231 ACCCGGGACG AGGCTGCCAG CATCCTGAAC GGGCTGGCCA AGGCGGATGA ACTGGCGGGA 241 251 261 271 281 291 AAGGACGCGG CGCTGCGCAC CTACCTGCCC TATGAGGCCG CGCTGAAACG CGAGATCGGC 301 311 321 331 341 351 TCCGTTGCCG GGAAGATGCA TATCGGGCGC AGTGCCAACG ACCTCCGCAA TCGGGTAAAC 361 371 381 391 401 411 GCATGTTCCT GCGTGACAGC TCTGCGCACC GTCGAGGCTG TGATCGCATT GCGCGAGGCA 421 431 441 451 461 471 GTCGTGACCA AGGCCGCCGA CCATCTCGAC ACGGTGATGG TCGTCTACAC CCAGCGCAAG 481 491 501 511 521 531 GAGGCCCAGC CGATCACGCT CGGCCATTAC CTAATGGCGA TCAGCGAAAA TCTGGGCAAG 541 551 561 571 581 591 AACCTCGCCC GCTATCGCGA GCTCCATCCG CGCATCAACC AATGTCCCCT CGGCGCCGCT 601 611 621 631 641 651 GCCACGGCGG GCACGGGCTG GCCGCTGGAT CGCGACCGCA CCGCAGCACT GCTGGGTTTC 661 671 681 691 701 711 721 731 741 751 761 771 GCCTTCGACA ATGCCGTCTT CCTGAGCGGC CTCAGCCGCC TGGCTTCCGA GATCCAGCTC 781 791 801 811 821 831 TGGAGCACGG ACGAGTATCA GATGGCGGAA CTCGACTCCG CCTTCGCCGG CACCAGCAGC 841 851 861 871 881 891 ATCATGCCGC AGAAGAAAAA CCCGGATTCG CTGGAGCGCA GCCGGAAAGG CGCCTTCGCG 901 911 921 931 941 951 GCGATGGGGC CGCTGGTCGC CATCCTCACC TCTCTCAATG GTATCGAGTA CCAGTACAGC 961 971 981 991 1001 1011 GCCGCCAGGG TCGAGCTCGA ACCGCGATCC ATCGATGCGC TGATCGCGGC CACCCACGCG 1021 1031 1041 1051 1061 1071 ATGACGGGCG TCGTGCGGAC GCTTCATCCC AACAAGGAGC AAGATGCTTG CGCTATGCGG 1081 1091 1101 1111 1121 1131 CAAGAGAACT ACGCCACCAT GACCGACCTG ACCGACCTGC TCGTCCGTCG CATCGGCATC 1141 1151 1161 1171 1181 1191 GACTATCGCG AGGCCCATGA GATCGTGGCG CGCGTGGTGA TGACGGCGAT CGAGCGCGGC 1201 1211 1221 1231 1241 1251 ATCAAGGCCA ACGCCATCGG ACTGGACCTC GTGCAGGAGG CCGCGGTCGC GCAGACGGGC 1261 1271 1281 1291 1301 1311 AACCGGATCG AGATCGGTGC GGCCGACATC GCCGATGCGC TCGATCCGGT TCAGAACGTC 1321 1331 1341 1351 1361 1371 GCCCGTCGCA AGGGCAGGGG CATGCCCGCG CCCGAATCCG TCAGGGCCGC CATCGCGGAG 1381 1391 1401 1411 1421 1431 GCGCGTCAGG AATTGGACGC CGACAAGGCC TGGCTAGAGG ACCGGCGCGC CGGGCTGGCC 1441 1451 1461 1471 1481 GATGCGGATG CGGCGCTGGA GGAGGCGGTG GCCGGCATCA CGACCTGA
【００３６】配列番号４： 配列の長さ：23 配列の型：核酸 配列： ATGACICCICAYAAYCCIGAYGC （上記式中Y はC またはT を表す。I はイノシンを示
し、ACGTの何れの塩基でも代替しうる）
し、ACGTの何れの塩基でも代替しうる）
【００３７】配列番号５： 配列の長さ：35 配列の型：核酸 配列： CCDATYTCATYTTICCIGCRACIGAICCDATYTC （上記式中 Yは Cまたは Tを、D は A、 Gまたは Tを、
R は Aまたは Gを表す。I はイノシンを示しACGTの何れ
の塩基でも代替しうる）
R は Aまたは Gを表す。I はイノシンを示しACGTの何れ
の塩基でも代替しうる）
【００３８】
【図１】プラスミド(pEDS001) の制限酵素地図。
【図２】プラスミド(pEDS002) の制限酵素地図。プラス
ミド(pEDS001) を制限酵素 KpnI 、BamHI で切断して得
た約3.9kb の断片を pUC18に挿入。
ミド(pEDS001) を制限酵素 KpnI 、BamHI で切断して得
た約3.9kb の断片を pUC18に挿入。
【図３】プラスミド(pEDS003) の制限酵素地図。プラス
ミド(pEDS001) を制限酵素 KpnI 、BamHI で切断して得
た約2.6kb の断片を pUC18に挿入。
ミド(pEDS001) を制限酵素 KpnI 、BamHI で切断して得
た約2.6kb の断片を pUC18に挿入。
【図４】プラスミド(pEDS020) の制限酵素地図。プラス
ミド(pEDS003) を制限酵素 KpnI 、BamHI で切断して得
た約2.6kb の断片を pUC119 に挿入。
ミド(pEDS003) を制限酵素 KpnI 、BamHI で切断して得
た約2.6kb の断片を pUC119 に挿入。
───────────────────────────────────────────────────── フロントページの続き (51)Int.Cl.6 識別記号 ＦＩ //(Ｃ１２Ｎ 15/09 ＺＮＡ Ｃ１２Ｒ 1:01） (Ｃ１２Ｎ 1/21 Ｃ１２Ｒ 1:19） (Ｃ１２Ｐ 7/46 Ｃ１２Ｒ 1:19）
Claims (7)
- 【請求項１】 エチレンジアミン-N,N'-ジコハク酸：エ
チレンジアミンリアーゼ活性を有し、配列番号１で示さ
れるアミノ酸配列を有するポリペプチドをコードする遺
伝子ＤＮＡおよび遺伝子コードの同義性に由来するこの
類縁体。 - 【請求項２】 ポリペプチドをコードする遺伝子が配列
番号２の塩基配列を有する請求項１記載の遺伝子ＤＮ
Ａ。 - 【請求項３】 配列番号２に示される配列またはそのフ
ラグメントとハイブリダイズし、かつ、エチレンジアミ
ン-N,N'-ジコハク酸：エチレンジアミンリアーゼ活性を
示すポリペプチドをコードする遺伝子ＤＮＡ。 - 【請求項４】 配列番号４および５に示される合成ＤＮ
Ａで増幅されるサイズが 200〜350bp のＤＮＡ断片。 - 【請求項５】 請求項１から４のいずれかに記載のエチ
レンジアミン-N,N'-ジコハク酸：エチレンジアミンリア
ーゼ活性を有するポリペプチドをコードする遺伝子を含
む組換えプラスミド。 - 【請求項６】 請求項５記載のプラスミドにより形質転
換された形質転換微生物。 - 【請求項７】 請求項６記載の形質転換微生物を用いた
ジアミノアルキレン-N,N'-ジコハク酸の製造法。
Priority Applications (6)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| JP06007797A JP3370545B2 (ja) | 1996-11-29 | 1997-02-28 | エチレンジアミン−ｎ，ｎ’−ジコハク酸：エチレンジアミンリアーゼ活性を有するタンパク質およびその遺伝子 |
| DE69729780T DE69729780T2 (de) | 1996-11-29 | 1997-11-27 | Protein mit Ethylendiamine-N,N'-Dibarnsteinsäure: Ethylendiamin Lyase Aktivität und dafür kodierendes Gen |
| EP97309601A EP0845536B1 (en) | 1996-11-29 | 1997-11-27 | Protein having ethylenediamine-N,N'-disuccinic acid: ethylenediamine lyase activity and gene encoding the same |
| TW086117867A TW505695B (en) | 1996-11-29 | 1997-11-27 | Protein having ethylenediamine-n, n'-disuccinic acid: ethylenediamine lyase activity and gene encoding the same |
| KR1019970064575A KR100500978B1 (ko) | 1996-11-29 | 1997-11-29 | 에틸렌디아민-n,n'-디숙신산:에틸렌디아민리아제활성을가진단백질및그를암호화하는유전자 |
| US08/980,994 US6168940B1 (en) | 1996-11-12 | 1997-12-01 | Protein having ethylenediamine-N,N′-disuccinic acid:ethylenediamine lyase acitivity and gene encoding the same |
Applications Claiming Priority (3)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| JP33301896 | 1996-11-29 | ||
| JP8-333018 | 1996-11-29 | ||
| JP06007797A JP3370545B2 (ja) | 1996-11-29 | 1997-02-28 | エチレンジアミン−ｎ，ｎ’−ジコハク酸：エチレンジアミンリアーゼ活性を有するタンパク質およびその遺伝子 |
Publications (2)
| Publication Number | Publication Date |
|---|---|
| JPH10210984A true JPH10210984A (ja) | 1998-08-11 |
| JP3370545B2 JP3370545B2 (ja) | 2003-01-27 |
Family
ID=26401135
Family Applications (1)
| Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
|---|---|---|---|
| JP06007797A Expired - Lifetime JP3370545B2 (ja) | 1996-11-12 | 1997-02-28 | エチレンジアミン−ｎ，ｎ’−ジコハク酸：エチレンジアミンリアーゼ活性を有するタンパク質およびその遺伝子 |
Country Status (5)
| Country | Link |
|---|---|
| US (1) | US6168940B1 (ja) |
| EP (1) | EP0845536B1 (ja) |
| JP (1) | JP3370545B2 (ja) |
| DE (1) | DE69729780T2 (ja) |
| TW (1) | TW505695B (ja) |
Cited By (1)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| US8728792B2 (en) | 2004-05-20 | 2014-05-20 | Mitsubishi Rayon Co., Ltd. | Modified ethylenediamine-N, N′-disuccinate: ethylenediamine lyase |
Families Citing this family (2)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| DE69820975T2 (de) * | 1997-10-28 | 2005-01-27 | Mitsubishi Rayon Co., Ltd. | Verfahren zum Entfernen von Fumarase Aktivität, durch diese Verfahren erhältliche Mikroorganismen und Herstellung von optisch aktiven Aminopolycarbonsäuren mit diesen Mikroorganismen |
| DE60038371T2 (de) | 1999-04-27 | 2009-04-23 | Mitsubishi Rayon Co., Ltd. | Verfahren zur herstellung von s,s-2-hydroxypropylendiamin-n,n'-dibernsteinsäure |
Family Cites Families (2)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| US5707836A (en) * | 1995-03-10 | 1998-01-13 | Nitto Chemical Industry Co., Ltd. | Production of alkylene or phenylenediamine disuccinic acid from fumaric acid and a diamine using lyase from microbes |
| DE19518150A1 (de) | 1995-05-17 | 1996-11-21 | Ciba Geigy Ag | Mikrobiologisches Verfahren zur Herstellung von (S,S)-N,N'-Ethylendiamindibernsteinsäure |
-
1997
- 1997-02-28 JP JP06007797A patent/JP3370545B2/ja not_active Expired - Lifetime
- 1997-11-27 TW TW086117867A patent/TW505695B/zh active
- 1997-11-27 DE DE69729780T patent/DE69729780T2/de not_active Expired - Lifetime
- 1997-11-27 EP EP97309601A patent/EP0845536B1/en not_active Expired - Lifetime
- 1997-12-01 US US08/980,994 patent/US6168940B1/en not_active Expired - Lifetime
Cited By (3)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| US8728792B2 (en) | 2004-05-20 | 2014-05-20 | Mitsubishi Rayon Co., Ltd. | Modified ethylenediamine-N, N′-disuccinate: ethylenediamine lyase |
| US8895285B2 (en) | 2004-05-20 | 2014-11-25 | Mitsubishi Rayon Co., Ltd. | Modified ethylenediamine-N, N′-disuccinate: ethylenediamine lyase |
| US9212356B2 (en) | 2004-05-20 | 2015-12-15 | Mitsubishi Rayon Co., Ltd. | Modified ethylenediamine-N,N′-disuccinate:ethylenediamine lyase |
Also Published As
| Publication number | Publication date |
|---|---|
| EP0845536A2 (en) | 1998-06-03 |
| TW505695B (en) | 2002-10-11 |
| US6168940B1 (en) | 2001-01-02 |
| DE69729780T2 (de) | 2005-07-14 |
| EP0845536A3 (en) | 1999-07-21 |
| EP0845536B1 (en) | 2004-07-07 |
| DE69729780D1 (de) | 2004-08-12 |
| JP3370545B2 (ja) | 2003-01-27 |
Similar Documents
| Publication | Publication Date | Title |
|---|---|---|
| JP4561010B2 (ja) | Ｄ−ヒダントインハイドロラーゼをコードするｄｎａ、ｎ−カルバミル−ｄ−アミノ酸ハイドロラーゼをコードするｄｎａ、該遺伝子を含む組み換えｄｎａ、該組み換えｄｎａにより形質転換された細胞、該形質転換細胞を用いるタンパク質の製造方法、および、ｄ−アミノ酸の製造方法 | |
| RU2215782C2 (ru) | СПОСОБ ПОЛУЧЕНИЯ L-АМИНОКИСЛОТ, ШТАММ Escherichia coli - ПРОДУЦЕНТ L-АМИНОКИСЛОТЫ (ВАРИАНТЫ) | |
| KR20000060322A (ko) | 슈도모나스 플루오레슨스 유래의 외래단백질 분비촉진유전자 | |
| EP0719862B1 (en) | A regulatory factor for expression of nitrilase gene and a gene thereof | |
| EP0780471B1 (en) | Novel nitrilase gene | |
| KR20070085922A (ko) | 니트릴히드라타제를 발현하는 형질 전환체 | |
| JPH10337185A (ja) | アスパルターゼ活性を有する新規なタンパク質および該タンパク質をコードする遺伝子ｄｎａ | |
| JP4561009B2 (ja) | Ｄ−ヒダントインハイドロラーゼをコードするｄｎａ、ｎ−カルバミル−ｄ−アミノ酸ハイドロラーゼをコードするｄｎａ、該遺伝子を含む組み換えｄｎａ、該組み換えｄｎａにより形質転換された細胞、該形質転換細胞を用いるタンパク質の製造方法、および、ｄ−アミノ酸の製造方法 | |
| JP3370545B2 (ja) | エチレンジアミン−ｎ，ｎ’−ジコハク酸：エチレンジアミンリアーゼ活性を有するタンパク質およびその遺伝子 | |
| JP4551978B1 (ja) | 酢酸菌の増殖促進機能に関与する遺伝子、該遺伝子を用いて育種された酢酸菌、及び該酢酸菌を用いた食酢の製造方法 | |
| KR100500978B1 (ko) | 에틸렌디아민-n,n'-디숙신산:에틸렌디아민리아제활성을가진단백질및그를암호화하는유전자 | |
| KR100449456B1 (ko) | 신규한 ｄ-입체특이적 아미노산 아미다아제, 그의 유전자, 그의 제조방법, 이를 이용한 ｄ-아미노산의 제조방법 | |
| JP4083455B2 (ja) | 酢酸菌のアコニターゼ遺伝子、該遺伝子を用いて育種された酢酸菌、及び該酢酸菌を用いた食酢の製造方法 | |
| JPH08107788A (ja) | セリンヒドロキシメチルトランスフェラーゼをコードする遺伝子を含むｄｎａ断片 | |
| KR100365838B1 (ko) | 브레비바실러스 보스테렌시스 ｂｃｓ-1 에서 유래한 신규내열성 ｄ-입체특이적 디펩티다아제 및 이를 이용한ｄ-아미노산 함유 펩타이드의 합성 방법 | |
| JP4528270B2 (ja) | 酢酸菌の増殖促進機能に関与する遺伝子、該遺伝子を用いて育種された酢酸菌、及び該酢酸菌を用いた食酢の製造方法 | |
| JP3565727B2 (ja) | フマラーゼ活性の除去方法、この方法によって得られる微生物、およびこの微生物を用いる光学活性アミノポリカルボン酸の製造方法 | |
| RU2215785C2 (ru) | СПОСОБ ПОЛУЧЕНИЯ L-АМИНОКИСЛОТ, ШТАММ Escherichia coli - ПРОДУЦЕНТ L-АМИНОКИСЛОТЫ (ВАРИАНТЫ) | |
| KR100629773B1 (ko) | 대장균에서 발현가능한 ｇｕａＡ 유전자를 포함하는 벡터,이를 포함하는 에스케리키아 속 미생물, 및 상기 미생물을이용하여 ５＇－구아닐산 합성효소를 배지 중에축적시키는 방법 | |
| KR20010044879A (ko) | 슈도모나스 이어루지노사 유래의 신규 에스터라제, 그유전자 및 이를 이용한 광학활성 카르복실산의 제조방법 | |
| CN114315999A (zh) | leuD蛋白突变体和相关生物材料及其在制备L-缬氨酸中的应用 | |
| CN114277069A (zh) | 制备l-缬氨酸的方法及其所用生物材料 | |
| JPH0556779A (ja) | 遺伝子組換えによる耐熱性β−チロシナーゼの製造方法 | |
| JP2005040078A (ja) | タンパク質ｏｍｐ１、その遺伝子、高度な酢酸耐性を有する微生物、及び該微生物を用いた食酢の製造方法 | |
| KR19990039947A (ko) | 고온성 절대공생 미생물 심비오박테리움의 공생균주인 고온성미생물 바실러스 속 균주 유래의 내열성 글루타메이트 라세마아제를 암호하는 유전자 및 이를 이용한 내열성 글루타메이트 라세마아제의 제조방법 |
Legal Events
| Date | Code | Title | Description |
|---|---|---|---|
| FPAY | Renewal fee payment (event date is renewal date of database) |
Free format text: PAYMENT UNTIL: 20081115 Year of fee payment: 6 |
|
| FPAY | Renewal fee payment (event date is renewal date of database) |
Free format text: PAYMENT UNTIL: 20081115 Year of fee payment: 6 |
|
| FPAY | Renewal fee payment (event date is renewal date of database) |
Free format text: PAYMENT UNTIL: 20091115 Year of fee payment: 7 |
|
| FPAY | Renewal fee payment (event date is renewal date of database) |
Free format text: PAYMENT UNTIL: 20091115 Year of fee payment: 7 |
|
| FPAY | Renewal fee payment (event date is renewal date of database) |
Free format text: PAYMENT UNTIL: 20101115 Year of fee payment: 8 |
|
| FPAY | Renewal fee payment (event date is renewal date of database) |
Free format text: PAYMENT UNTIL: 20111115 Year of fee payment: 9 |
|
| FPAY | Renewal fee payment (event date is renewal date of database) |
Free format text: PAYMENT UNTIL: 20111115 Year of fee payment: 9 |
|
| FPAY | Renewal fee payment (event date is renewal date of database) |
Free format text: PAYMENT UNTIL: 20111115 Year of fee payment: 9 |
|
| FPAY | Renewal fee payment (event date is renewal date of database) |
Free format text: PAYMENT UNTIL: 20121115 Year of fee payment: 10 |
|
| FPAY | Renewal fee payment (event date is renewal date of database) |
Free format text: PAYMENT UNTIL: 20121115 Year of fee payment: 10 |
|
| S531 | Written request for registration of change of domicile |
Free format text: JAPANESE INTERMEDIATE CODE: R313531 |
|
| FPAY | Renewal fee payment (event date is renewal date of database) |
Free format text: PAYMENT UNTIL: 20121115 Year of fee payment: 10 |
|
| R350 | Written notification of registration of transfer |
Free format text: JAPANESE INTERMEDIATE CODE: R350 |
|
| FPAY | Renewal fee payment (event date is renewal date of database) |
Free format text: PAYMENT UNTIL: 20121115 Year of fee payment: 10 |
|
| FPAY | Renewal fee payment (event date is renewal date of database) |
Free format text: PAYMENT UNTIL: 20131115 Year of fee payment: 11 |
|
| R250 | Receipt of annual fees |
Free format text: JAPANESE INTERMEDIATE CODE: R250 |
|
| R250 | Receipt of annual fees |
Free format text: JAPANESE INTERMEDIATE CODE: R250 |
|
| R250 | Receipt of annual fees |
Free format text: JAPANESE INTERMEDIATE CODE: R250 |
|
| EXPY | Cancellation because of completion of term |