JPH09502186A

JPH09502186A - 抗原特異的なｔ細胞寛容の誘導方法

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Publication number: JPH09502186A
Application number: JP7508291A
Authority: JP
Inventors: ノエル，ランドルフ・ジェイ; フォイ，テレサ・エム; デュリー，フィオナ・エイチ
Original assignee: Dartmouth College
Current assignee: Dartmouth College
Priority date: 1993-09-02
Filing date: 1994-09-02
Publication date: 1997-03-04
Anticipated expiration: 2015-02-14
Also published as: CN1134113A; AU7644594A; EP0721469A1; HU220296B; ES2143553T3; EP0721346A1; FI960978A0; DK0721469T3; CN1127351C; US20020187135A1; HU9600522D0; JPH09502096A; US5876718A; AU7642994A; DE69422523T2; WO1995006666A1; HUT74250A; FI960980A0; WO1995006481A1; JP3007977B2

Abstract

(57)【要約】抗原特異的なＴ細胞寛容を誘導する方法が開示される。該方法は、Ｔ細胞を、（１）該Ｔ細胞に抗原を呈示し、接触依存性のヘルパーエフェクター機能を媒体する該Ｔ細胞の表面上の受容体と相互作用するリガンドを有する細胞、および（２）該抗原呈示細胞上の該リガンドと該Ｔ細胞上の該受容体との相互作用を抑制する、該Ｔ細胞の表面上の該受容体のアンタゴニストと接触させることを含む。好ましい態様において、該Ｔ細胞に抗原を呈示する細胞はＢ細胞であり、接触依存性のヘルパーエフェクター機能を媒体する該Ｔ細胞の表面上の受容体はｇｐ３９である。該アンタゴニストは、抗ｇｐ３９抗体または可溶性のｇｐ３９リガンド（たとえば、可溶性のＣＤ４０）であるのが好ましい。本発明の方法は、可溶性抗原または同種細胞に対するＴ細胞寛容を誘導するのに用いることができる。本発明の方法はまた、骨髄移植および他の臓器の移植の場合に寛容を誘導し、および対宿主移植片疾患を抑制するのにも用いることができる。

Description

【発明の詳細な説明】抗原特異的なＴ細胞寛容の誘導方法発明の背景抗原特異的なＴ細胞の活性化およびクローン拡張（clonal expansion）を誘導するには、抗原呈示細胞（ＡＰＣｓ）によって提供される２つのシグナルが休止Ｔリンパ球の表面に送達される必要がある（ジェンキンス（Ｊenkins,Ｍ.）およびシュバルツ（Ｓchwartz,Ｒ.）（１９８７）Ｊ.Ｅxp.Ｍed.１６５、３０２〜３１９；ミュラー（Ｍueller,Ｄ.Ｌ.）ら（１９９０）Ｊ.Ｉmmunol.１４４、３７０１〜３７０９；ウイリアムズ（Ｗilliams，Ｉ.Ｒ.）およびウナヌエ（Ｕnanue ,Ｅ.Ｒ.）（１９９０）Ｊ.Ｉmmunol.１４５、８５〜９３）。第一のシグナルは免疫応答に特異性を付与するものであり、主要組織適合性複合体（ＭＨＣ）と関連して呈示される外来抗原性ペプチドの認識後のＴ細胞受容体（ＴＣＲ）を介して媒体される。第二のシグナルはコスティミュレーション（costimulation）と呼ばれるもので、Ｔ細胞を誘導して増殖させ、機能的にする（シュバルツ（１９９０）Ｓcience２４８、１３４９〜１３５６）。コスティミュレーションは抗原特異的でもないしＭＨＣに限定されるものでもなく、ＡＰＣｓによって発現される１または２以上の異なる細胞表面分子によって提供されると思われる（ジェンキンスら（１９８８）Ｊ.Ｉmmunol.１４０、３３２４〜３３３０；リンスレイ（Ｌinsley,Ｐ.Ｓ.）ら（１９９１）Ｊ.Ｅxp.Ｍed.１７３、７２１〜７３０；ギミ（Ｇimmi,Ｃ.Ｄ.）ら（１９９１）Ｐroc.Ｎatl.Ａcad.Ｓci.ＵＳＡ８８、６５７５〜６５７９；ヤング（Ｙoung,Ｊ.Ｗ.）ら（１９９２）Ｊ.Ｃlin.Ｉnvest.９０、２２９〜２３７；クーロバ（Ｋoulova,Ｌ.）ら（１９９１）Ｊ.Ｅxp.Ｍed.１７３、７５９〜７６２；ライザー（Ｒeiser,Ｈ.）ら（１９９２）Ｐroc.Ｎatl. Ａcad.Ｓci.ＵＳＡ８９、２７１〜２７５；バン−セベンター（van-Ｓeventer, Ｇ.Ａ.）ら（１９９０）Ｊ.Ｉmmunol.１４４、４５７９〜４５８６；ラサル（Ｌ aＳalle,Ｊ.Ｍ.）ら（１９９１）Ｊ.Ｉmmunol.１４７、７７４〜８０；ダスティン（Ｄustin,Ｍ.Ｉ.）ら（１９８９）Ｊ.Ｅxp.Ｍed.１６９、５０３；アーミテージ（Ａrmitage,Ｒ.Ｊ.）ら（１９９２）Ｎature３５７、８０〜８２；リウ（Ｌiu,Ｙ.）ら（１９９２）Ｊ.Ｅxp.Ｍed.１７５、４３７〜４４５）。Ｔ細胞活性化に関与する一つのコスティミュラトリー経路にはＴ細胞表面上の分子ＣＤ２８が関与する。この分子は、Ｂ細胞または他のＡＰＣｓ上のリガンドによって送達されるコスティミュラトリーシグナルを受け取ることができる。ＣＤ２８のリガンドとしては、Ｂ７−１および／またはＢ７−２などのＢリンパ球活性化抗原のＢ７ファミリーの成員が挙げられる（フリードマン（Ｆreedman,Ａ.Ｓ.）ら（１９８７）Ｊ.Ｉmmunol.１３７、３２６０〜３２６７；フリーマン（Ｆreem an,Ｇ.Ｊ.）ら（１９８９）Ｊ.Ｉmmunol.１４３、２７１４〜２７２２；フリーマンら（１９９１）Ｊ.Ｅxp.Ｍed.１７４、６２５〜６３１；フリーマンら（１９９３）Ｓcience２６２、９０９〜９１１；アズマ（Ａzuma,Ｍ.）ら（１９９３）Ｎature３６６、７６〜７９；フリーマンら（１９９３）Ｊ.Ｅxp.Ｍed.１７８、２１８５〜２１９２）。Ｂ７−１およびＢ７−２はまた活性化Ｔ細胞表面上に存在する他の分子、ＣＴＬＡ４のリガンドでもあるが、コスティミュレーションにおけるＣＴＬＡ４の役割はわかっていない。コスティミュラトリーシグナルとともに抗原特異的シグナルがＴ細胞に送達されるとＴ細胞が活性化される。Ｔ細胞の活性化にはT細胞の増殖およびサイトカイン分泌の両方が含まれる。対照的に、コスティミュラトリーシグナルの不在下で抗原特異的シグナルがＴ細胞に送達されると非応答性の状態またはアネルギーがＴ細胞において誘導され、それによって抗原特異的な寛容がＴ細胞において誘導されると考えられている。Ｔ細胞とＢ細胞との相互作用は免疫応答において中心的役割を果たしている。胸腺依存性抗原への体液性免疫の誘導にはＴヘルパー（以下、Ｔｈという）細胞によって提供される「ヘルプ」が必要である。Ｂリンパ球に提供されるある種のヘルプはＴｈ細胞によって放出される可溶性分子（たとえば、ＩＬ−４やＩＬ− ５などのリンホカイン）によって媒体されるが、Ｂ細胞の活性化にはまた接触依存性のＢ細胞とＴｈ細胞との相互作用が必要である（ヒロハタ（Ｈirohata）ら、Ｊ.Ｉmmunol.、１４０：３７３６〜３７４４（１９８８）；バートレット（Ｂartlett）ら、Ｊ.Ｉmmunol.、１４３：１７４５〜１７５４（１９８９））。このことは、Ｂ細胞の活性化にはＢ細胞およびＴｈ細胞上の細胞表面分子間での必須の相互作用が関与していることを示している。それゆえ、Ｔ細胞上の該分子はＴ細胞の接触依存性のヘルパーエフェクター機能を媒体している。Ｂ細胞およびＴ細胞上の分子間の接触依存性の相互作用はさらに、活性化Ｔ細胞から単離した原形質膜がＢ細胞の活性化に必要なヘルパー機能を提供しうるという観察によって支持されている。ブライアン（Ｂrian）、Ｐroc.Ｎatl.Ａcad.Ｓci.ＵＳＡ、８５：５６４〜５６８（１９８８）；ホジキン（Ｈodgkin）ら、Ｊ.Ｉmmuno l.、１４５：２０２５〜２０３４（１９９０）；ノエル（Ｎoelle）ら、Ｊ.Ｉmm unol.、１４６：１１１８〜１１２４（１９９１）。分子ＣＤ４０は未成熟および成熟Ｂリンパ球の表面上で同定されており、抗体と架橋したときにＢ細胞の増殖を誘導する。バル（Ｖalle）ら、Ｅur.Ｊ.Ｉmmun ol.、１９：１４６３〜１４６７（１９８９）；ゴードン（Ｇordon）ら、Ｊ.Ｉm munol.、１４０：１４２５〜１４３０（１９８８）；グルーバー（Ｇruber）ら、Ｊ.Ｉmmunol.、１４２：４１４４〜４１５２（１９８９）。ＣＤ４０は分子レベルでクローニングされ、特徴付けられている。スタメンコビッチ（Ｓtamenkov ic）ら、ＥＭＢＯＪ.、８：１４０３〜１４１０（１９８９）。ＣＤ４０のリガンドであるｇｐ３９（ＣＤ４０リガンドまたはＣＤ４０Ｌとも称する）もまた分子レベルでクローニングされ、特徴付けられている。アーミテージラ、Ｎature 、３５７：８０〜８２（１９９２）；レーダーマン（Ｌederman）ら、Ｊ.Ｅxp. Ｍed.、１７５：１０９１〜１１０１（１９９２）；ホレンバウ（Ｈollenbaugh ）ら、ＥＭＢＯＪ.、１１：４３１３〜４３１９（１９９２）。ｇｐ３９タンパク質は活性化されたＣＤ４⁺Ｔｈ細胞では発現されるが、休止のＣＤ４⁺Ｔｈ細胞では発現されない。スプリッグス（Ｓpriggs）ら、Ｊ.Ｅxp.Ｍed.、１７６：１５４３〜１５５０（１９９２）；レーン（Ｌane）ら、Ｅur.Ｊ.Ｉmmunol.、２２：２５７３〜２５７８（１９９２）；ロイ（Ｒoy）ら、Ｊ.Ｉmmunol.、１５１：１〜１４（１９９３）。ｇｐ３９遺伝子でトランスフェクトされ細胞表面上にｇｐ３９タンパク質を発現する細胞はＢ細胞の増殖を誘導することができ、他の刺激性シグナルとともに抗体の産生を誘導することができる。アーミテージら、Ｎature 、３５７：８０〜８２（１９９２）；ホレンバウら、ＥＭＢＯＪ.、１１：４３１３〜４３１９（１９９２）。発明の要約Ｔ細胞の接触依存性のヘルパーエフェクター機能を媒体する細胞表面分子は、Ｔ細胞ヘルプを必要とする免疫応答を誘導するのに重要である。たとえば、Ｔ細胞上のｇｐ３９とＢ細胞上のＣＤ４０との相互作用は、抗原へのＢ細胞応答を活性化するうえで中心的な役割を果たしている。本発明は、少なくともその一部は、接触依存性のヘルパーエフェクター機能を媒体する細胞表面分子はまた抗原へのＴ細胞の応答においても重要な役割を果たしているという知見に基づいている。とりわけ、適当な条件下、Ｔ細胞上のｇｐ３９と該Ｔ細胞に抗原を呈示する細胞上のリガンドとの間の相互作用を妨害することによって抗原特異的な寛容を誘導できることがわかった。従って、該Ｔ細胞に抗原を呈示する細胞は、該Ｔ細胞の活性化に必要なシグナルを提供しうるためには該細胞上のｇｐ３９リガンド（たとえば、ＣＤ４０）と該Ｔ細胞上のｇｐ３９との間の相互作用が必要である。ｇｐ３９とｇｐ３９リガンドとの間の相互作用を抑制するとＴ細胞活性化が妨害され、抗原特異的なＴ細胞寛容が誘導される。本発明の方法は、抗原特異的なＴ細胞寛容の誘導に関する。該方法には、Ｔ細胞を、（１）該Ｔ細胞に抗原を呈示し、接触依存性のヘルパーエフェクター機能を媒体する該Ｔ細胞の表面上の受容体と相互作用するリガンドを表面に有する細胞、および（２）接触依存性のヘルパーエフェクター機能を媒体するＴ細胞の表面上の該受容体のアンタゴニストと接触させることが含まれる。該アンタゴニストは該受容体とそのリガンドとの相互作用を抑制する。Ｔ細胞を抗原を呈示する細胞および該アンタゴニストとインビトロで接触させることができるし、または該細胞と該アンタゴニストとを被験者に投与してＴ細胞寛容をインビボで誘導することもできる。好ましい態様において、接触依存性のヘルパーエフェクター機能を媒体するＴ細胞の表面上の受容体はｇｐ３９である。この態様においては、アンタゴニストはｇｐ３９と該Ｔ細胞に抗原を呈示する細胞上のそのリガンドとの相互作用を抑制する分子である。特に好ましいｇｐ３９アンタゴニストは抗ｇｐ３９抗体である。別の態様として、ｇｐ３９アンタゴニストは可溶性の形態のｇｐ３９リガンド、たとえば可溶性のＣＤ４０である。Ｔ細胞に抗原を呈示する細胞は好ましくはＢ細胞である。このＢ細胞は小さな休止Ｂ細胞であってよい。可溶性抗原に対してＴ細胞寛容を誘導するには、該Ｂ細胞を該Ｔ細胞に接触させる前に（たとえば、被験者に投与する前に）該抗原に接触させることができる。他の態様において、アロ抗原に対してＴ細胞寛容を誘導する場合は、該Ｔ細胞に抗原を呈示するのに用いる細胞は同種細胞である。同種細胞は、たとえば、同種Ｂ細胞、同種骨髄、同種脾臓細胞または末梢血液中の同種細胞であってよい。本発明の方法は、たとえば、可溶性抗原に対するＴ細胞寛容を誘導するため、骨髄移植片または他の臓器移植に対するＴ細胞寛容を誘導するため、または骨髄移植における対宿主移植片疾患を抑制するために用いることができる。骨髄移植の場合には、移植した骨髄細胞自身が本発明の方法においてＴ細胞に抗原を呈示する細胞として働く。従って、本発明の一つの態様において、同種骨髄をｇｐ３９アンタゴニスト（たとえば、抗ｇｐ３９抗体）とともに被験者に投与することによって骨髄の受け入れが促進される。本発明はさらに、Ｂ細胞増殖、Ｂ細胞分化およびＴ細胞応答を抑制しうる抗ヒトｇｐ３９モノクローナル抗体、および該抗体を含む医薬組成物に関する。本発明の抗ヒトｇｐ３９モノクローナル抗体は一般に免疫応答を調節するため、および特に抗原特異的なＴ細胞寛容を誘導するために使用するのが好ましい。好ましい抗体としては、実施例６に記載するモノクローナル抗体３Ｅ４、２Ｈ５、２Ｈ８、４Ｄ９−８、４Ｄ９−９、２４−３１、２４−４３、８９−７６および８９ −７９が挙げられる。特に好ましい抗体はモノクローナル抗体８９−７６および２４−３１である。８９−７６および２４−３１抗体をそれそれ産生する８９− ７６および２４−３１ハイブリドーマは、ブダペスト条約の規定に従ってアメリカン・タイプ・カルチャー・コレクション、パークローンドライブ、ロックビル、メリーランドに１９９４年９月２日に寄託してある。８９−７６ハイブリドーマはＡＴＣＣ受託番号を、２４−３１ハイブリドーマはＡＴＣＣ受託番号を付与された。２４−３１抗体および８９−７６抗体はＩｇＧ１イソタイプである。従って、一つの態様において、本発明はＩｇＧ１イソタイプの抗ヒトｇｐ３９モノクローナル抗体（ｍＡｂ）を提供する。本発明の抗ヒトｇｐ３９ｍＡｂは標準インビトロアッセイにおけるＢ細胞増殖、たとえばインターロイキン−４および可溶性ｇｐ３９でＢ細胞を処理することにより誘導されるＢ細胞増殖を抑制することができる。抗ヒトｇｐ３９抗体によるＢ細胞増殖の抑制は、約０.０１〜５.０μｇ／ｍｌ、より好ましくは約０.１〜２.５μｇ／ｍｌ、さらに一層好ましくは約０.１〜１.２５μｇ／ｍｌのＩＣ₅₀（すなわち、増殖を５０％抑制するのに必要な濃度）で行うのが好ましい。本発明の抗ヒトｇｐ３９ｍＡｂはまた、標準インビトロアッセイにおけるＢ細胞によるＩｇＧ、ＩｇＭおよび／またはＩｇＡの産生、たとえばＢ細胞を活性化Ｔ細胞（たとえば、抗ＣＤ３抗体で処理することによって活性化されたＴ細胞）とともに培養することによって誘導されるＩｇの産生を抑制することができる。ＩｇＧ、ＩｇＭおよび／またはＩｇＡのＢ細胞産生の抗ｇｐ３９抗体による抑制は、約０.０１〜１.０μｇ／ｍｌ、または一層好ましくは約０.０１〜０．１μｇ／ｍｌのＩＣ５０で行うのが好ましい。好ましい態様において、本発明の抗ヒトｇｐ３９ｍＡｂは、３Ｅ４、２Ｈ５、２Ｈ８、４Ｄ９−８、４Ｄ９−９、２４−３１、２４−４３、８９−７６および８９−７９よりなる群から選ばれたモノクローナル抗体によって認識されるエプトープに結合する。さらに好ましくは、抗ヒトｇｐ３９ｍＡｂはモノクローナル抗体２４−３１またはモノクローナル抗体８９−７６によって認識されるエプトープに結合する。上記抗体のいずれかにより認識されるエプトープに結合するｍＡｂの能力は、標準交差競合アッセイにより決定することができる。たとえば、ｍＡｂ２４−３１によって認識されるエプトープと同じエプトープに結合する抗体は標識２４−３１の活性化Ｔ細胞への結合に競合するであろうし、一方、ｍＡｂ２４−３１によって認識されるエプトープとは異なるエプトープに結合する抗体は標識２４−３１の活性化Ｔ細胞への結合に競合しないであろう。本発明はまた、本発明の抗ヒトｇｐ３９抗体の医薬組成物をも提供する。これら組成物は一般に、抗ヒトｇｐ３９ｍＡｂ（たとえば、好ましくは２４−３１または８９−７６）および薬理学的に許容しうる担体を含む。本発明のさらに他の側面は、抗ヒトｇｐ３９ｍＡｂをコードする核酸（たとえば、抗ヒトｇｐ３９ｍＡｂの免疫グロブリンＨ鎖またはＬ鎖またはその一部をコードするＤＮＡ）に関する。かかる核酸は、抗ヒトｇｐ３９ｍＡｂを産生する細胞（たとえば、ハイブリドーマ）から標準法により単離することができる。たとえば、２４−３１または８９−７６ｍＡｂをコードする核酸は、それぞれ２４− ３１または８９−７６ハイブリドーマから、ｃＤＮＡライブラリースクリーニング、ＰＣＲ増幅または他の標準法により単離することができる。抗ヒトｇｐ３９ｍＡｂ鎖をコードする核酸は、標準組換えＤＮＡ法により操作して組換え抗ヒトｇｐ３９ｍＡｂ、たとえばキメラ化またはヒト化した抗ヒトｇｐ３９ｍＡｂを製造することができる。さらに、抗ヒトｇｐ３９ｍＡｂをコードする核酸は、発現ベクター中に組み込み、宿主中に導入して組換え形態の抗ヒトｇｐ３９抗体の発現および産生を容易にすることができる。図面の簡単な説明図１は、インビボ抗ｇｐ３９抗体処理により誘導されたタンパク質抗原に対するＴ細胞寛容を示すグラフである。Ｔ細胞応答の測定は、抗ｇｐ３９抗体を用い、または用いることなく、すでにインビボで投与した抗原を抗原パルス標識した（antigen-pulsed）Ｂ細胞に攻撃することによりインビトロで行った。図２は、インビボ抗ｇｐ３９抗体処理により誘導された同種Ｂ細胞に対するＴ細胞寛容を示すグラフである。Ｔ細胞応答の測定は、抗ｇｐ３９抗体を用い、または用いることなく、すでにインビボで投与した同種Ｂ細胞で攻撃することによりインビトロで行った。図３Ａは、受容動物を抗ｇｐ３９抗体で処理した場合の、同種Ｂ細胞によって誘導される一次同種ＣＴＬ応答の抑制を示すグラフである。表示したグループは、未処理マウス（■）、抗ｇｐ３９抗体処理マウス（△）および未感作Ｂａｌｂ／ｃマウスからの脾臓細胞（●；負の対照エフェクター細胞として使用）である。図３Ｂおよび３Ｃは、受容動物を抗ｇｐ３９抗体で処理した場合の、ＬＰＳ処理Ｂ幼若細胞によって誘導される一次同種ＣＴＬ応答の抑制を示すグラフである。パネルＢおよびＣは２つの独立した実験を表す。表示したグループは、処理しない場合のインビボＬＰＳ幼若細胞（▲）、抗ｇｐ３９抗体処理したインビボＬＰＳ幼若細胞（●）、処理しない場合のインビボ休止Ｂ細胞（○）および抗ｇｐ３９抗体処理したインビボ休止Ｂ細胞（□）である。図４Ａは、受容動物を抗ｇｐ３９抗体で処理した場合の、同種Ｂ細胞によって誘導される二次同種ＣＴＬ応答の抑制を示すグラフである。表示したエフェクターグループは、ＨＩｇ処理した受容者（■）、未感作（naive）Ｂａｌｂ／ｃ（ ▲）および抗ｇｐ３９抗体処理した受容者（■）である。対応する同系応答（Ｂａｌｂ／ｃ細胞で刺激したＢａｌｂ／ｃ細胞）は白抜きの記号で示す。図４Ｂは、抗ｇｐ３９抗体処理による同種ＣＴＬ応答の抑制の特異性を示す。未感作Ｂａｌｂ／ｃ細胞による（○）またはＨ−２^bハプロタイプＢ細胞および抗ｇｐ３９抗体を投与することによりＨ−２^bに対して寛容となった細胞による（■）Ｈ−２^k標的に対するＣＴＬ応答を示す。図５は、抗ｇｐ３９抗体で処理した場合および処理しない場合の、骨髄移植を宿主に移植後の種々の時間における宿主の脾臓細胞の数を示す棒グラフである。図６Ａは、抗ｇｐ３９抗体でインビボ処理した場合および処理しない場合の、骨髄移植を受けたマウスから取り出した脾臓Ｂ細胞によりインビトロで産生されたＩｇＡの濃度を示すグラフである。骨髄移植から７日後または１４日後に脾臓Ｂ細胞を取り出し、抗体産生を測定した。図６Ｂは、抗ｇｐ３９抗体でインビボ処理した場合および処理しない場合の、骨髄移植を受けたマウスから取り出した脾臓Ｂ細胞によりインビトロで産生されたＩｇＧｌの濃度を示すグラフである。骨髄移植から７日後または１４日後に脾臓Ｂ細胞を取り出し、抗体産生を測定した。図７Ａは、抗ｇｐ３９抗体でインビボ処理した場合および処理しない場合の、骨髄移植を受けたマウスにおける骨髄移植後の種々の時間の血清ＩｇＥ濃度を示すグラフである。図７Ｂは、抗ｇｐ３９抗体でインビボ処理した場合および処理しない場合の、骨髄移植を受けたマウスにおける骨髄移植後の種々の時間の血清抗ＤＮＡ抗体濃度を示すグラフである。図８Ａおよび８Ｂは、抗ｇｐ３９抗体でインビボ処理した場合および処理しない場合の、骨髄移植を受けたマウスからの細胞障害性Ｔ細胞のインビトロ細胞溶解活性を異なるエフェクター／標的細胞比（Ｅ：Ｔ比）で示すグラフである。パネルＡおよびＢは２つの独立した実験を示す。図９Ａ、９Ｂおよび９Ｃは、ＣＤ４０Ｉｇ（パネルＡ）、ｍＡｂ４Ｄ９−８（パネルＢ）またはｍＡｂ４Ｄ９−９（パネルＣ）のいずれかによる６時間活性化ヒト末梢血リンパ球の染色を示すフローサイトメトリープロフィールである。図１０Ａ、１０Ｂおよび１０Ｃは、ｍＡｂ４Ｄ９−８（パネルＡ）、ｍＡｂ４Ｄ９−９（パネルＢ）またはＣＤ４０Ｉｇ（パネルＣ）のいずれかで染色し、シクロスポリンＡの存在下で培養した６時間活性化ヒト末梢血リンパ球の染色を示すフローサイトメトリープロフィールである。図１１Ａおよび１１Ｂは、非標識ｍＡｂ４Ｄ９−８（パネルＡ）または非標識ｍＡｂ４Ｄ９−９（パネルＢ）の存在下、ＣＤ４０Ｉｇによる６時間活性化ヒト末梢血リンパ球の染色を示すフローサイトメトリープロフィールである。図１２は、細胞を抗ヒトｇｐ３９ｍＡｂ４Ｄ９−８、４Ｄ９−９、２４−３１、２４−４３、８９−７６または８９−７９の存在下で培養した場合の、可溶性ｇｐ３９およびＩＬ−４によって誘導されたヒトＢ細胞増殖の抑制を示すグラフである。図１３は、細胞を抗ヒトｇｐ３９ｍＡｂ２４−３１または８９−７９の存在下で培養した場合の、アロ特異的混合リンパ球応答の抑制を示すグラフである。発明の詳細な記載本発明は、抗原特異的なＴ細胞寛容の誘導方法に関する。本発明の方法には、Ｔ細胞を、（１）該Ｔ細胞に抗原を呈示し、接触依存性のヘルパーエフェクター機能を媒体する該Ｔ細胞の表面上の受容体と相互作用するリガントを表面に有する細胞、および（２）接触依存性のヘルパーエフェクター機能を媒体するＴ細胞の表面上の該受容体のアンタゴニストと接触させることが含まれる。本明細書において接触依存性のヘルパーエフェクター機能を媒体する分子または受容体とは、Ｔｈ細胞上で発現され、エフェクター細胞（たとえば、Ｂ細胞）上のリガンドと相互作用するものであって、該受容体とそのリガンドとの相互作用がエフェクター細胞の応答（たとえば、Ｂ細胞活性化）に必要であるものをいう。エフェクター細胞の応答に関与することに加えて、かかる分子はまた該Ｔ細胞の抗原への応答にも関与することが今やわかった。接触依存性のヘルパーエフェクター機能を媒体するＴ細胞上の好ましい分子はｇｐ３９である。従って、好ましい態様において、本発明の方法にはＴ細胞を抗原を呈示する細胞およびｇｐ３９アンタゴニストと接触させることが含まれる。従って、抗原を呈示させるのに用いる細胞は、Ｔ細胞の表面上のｇｐ３９と相互作用して該Ｔ細胞を活性化させる（すなわち、該Ｔ細胞にＴ細胞活性化に必要なシグナルを送達する）ものである。たとえば、該細胞は、ＣＤ４０を発現し、抗原をＴ細胞に呈示するＢ細胞であってよい。抗原呈示細胞上のｇｐ３９リガンドと該Ｔ細胞上のｇｐ３９との相互作用を抑制することにより、該Ｔ細胞は呈示された該抗原によって活性化されず、該抗原に対して寛容となる。本発明の方法は、インビボで抗原に対するＴ細胞寛容を誘導させるのに用いることができる。たとえば、Ｔ細胞に抗原を呈示する細胞を、接触依存性のヘルパーエフェクター機能を媒体する該Ｔ細胞上に発現された受容体のアンタゴニスト（たとえば、ｇｐ３９アンタゴニスト）とともに被験者に投与することができる。本発明の方法はさらに、Ｔ細胞を、接触依存性のヘルパーエフェクター機能を媒体するＴ細胞上に発現される受容体のアンタゴニスト（たとえば、ｇｐ３９アンタゴニスト）とともに該Ｔ細胞に抗原を呈示する細胞とインビトロにて接触させることにより、抗原に対してＴ細胞をインビトロにて寛容にするのに用いることができる。ついで、インビトロで寛容にされたＴ細胞を被験者に投与することができる。本発明の方法は、特定の抗原に対して、または同種骨髄（たとえば、骨髄移植において）などの移植された細胞に対して被験者のＴ細胞を寛容にするのに用いることができる。本発明の方法はまた、骨髄移植における対宿主移植片疾患を抑制するうえでも有用である。本発明の種々の側面を以下の細項目においてさらに詳細に記載する。Ｉ．ｇｐ３９アンタゴニスト：本発明の方法によれば、ｇｐ３９アンタゴニストをＴ細胞と接触させて（たとえば被験者に投与して）、Ｔ細胞上のｇｐ３９とＢ細胞などの抗原呈示細胞上のｇｐ３９リガンドとの相互作用を妨害する。ｇｐ３９アンタゴニストとは、この相互作用を妨害する分子として定義される。ｇｐ３９アンタゴニストは、ｇｐ３９に対して向けられた抗体（たとえば、ｇｐ３９に対するモノクローナル抗体）、ｇｐ３９に対して向けられた抗体のフラグメントまたは誘導体（たとえば、ＦａｂまたはＦ（ａｂ'）２フラグメント、キメラ抗体またはヒト化抗体）、可溶性形態のｇｐ３９リガンド（たとえば、可溶性ＣＤ４０）、可溶性形態のｇｐ３９リガンドの融合タンパク質（たとえば、可溶性ＣＤ４０Ｉｇ）、またはｇｐ３９−ＣＤ４０相互作用を破壊または妨害する薬剤であってよい。Ａ．抗体哺乳動物（たとえば、マウス、ハムスター、またはウサギ）は、該哺乳動物において抗体応答を引き起こす免疫原の形態のｇｐ３９タンパク質またはタンパク質断片（たとえば、ペプチド断片）で免疫することができる。その表面にｇｐ３９を発現する細胞もまた免疫原として用いることができる。他の免疫原としては、精製したｇｐ３９タンパク質またはタンパク質断片が挙げられる。ｇｐ３９の精製は、標準精製法によりｇｐ３９発現細胞から行うことができる。ｇｐ３９ｃＤＮＡ（アーミテージら、Ｎature、３５７：８０〜８２（１９９２）；レーダーマンら、Ｊ.Ｅxp.Ｍed.、１７５：１０９１〜１１０１（１９９２）；ホレンバウら、ＥＭＢＯＪ.、１１：４３１３〜４３１９（１９９２））を宿主細胞、たとえば細菌または哺乳動物細胞株中で発現させ、細胞培養液から標準法に従ってｇｐ３９タンパク質を精製することができる。ｇｐ３９ペプチドは、ｇｐ３９のアミノ酸配列（アーミテージら、Ｎature、３５７：８０〜８２（１９９２）；レーダーマンら、Ｊ.Ｅxp.Ｍed.、１７５：１０９１〜１１０１（１９９２）；ホレンバウら、ＥＭＢＯＪ.、１１：４３１３〜４３１９（１９９２）に開示）に基づき、公知の方法（たとえば、Ｆ−ｍｏｃまたはＴ−ｂｏｃ化学合成）により合成することができる。タンパク質に免疫原性を付与する技術としては、担体への結合、または当該技術分野でよく知られた他の方法が挙げられる。たとえば、タンパク質をアジュバントの存在下で投与することができる。免疫の進行は、血漿または血清中の抗体力価の検出によりモニターすることができる。抗体レベルを評価するため、抗原として免疫原を用いた標準ＥＬＩＳＡまたは他のイムノアッセイを用いることができる。免疫後、抗血清を得ることができ、所望ならポリクローナル抗体を該血清から単離することができる。モノクローナル抗体を産生するには、抗体産生細胞（リンパ球）を免疫動物から回収し、標準体細胞融合法によりミエローマ細胞と融合させてこれら細胞を不死化し、ハイブリドーマ細胞を得る。かかる技術は当該技術分野においてよく知られている。たとえば、コーラーおよびミルシュテインにより最初に開発されたハイブリドーマ法（Ｎature（１９７５）２５６：４９５〜４９７）、並びにヒトＢ細胞ハイブリドーマ法（コズバー（Ｋozbar）ら、Ｉm munol.Ｔoday（１９８３）４：７２）、ヒトモノクローナル抗体を産生するためのＥＢＶ−ハイブリドーマ法（コール（Ｃole）ら、Ｍonoclonal Ａntibodiesin Ｃancer Ｔherapy（１９８５）（アレン・アール・ブリス、７７〜９６頁））、および結合（combinatorial）抗体ライブラリーのスクリーニング（ヒューズ（Ｈuse）ら、Ｓcience（１９８９）２４６：１２７５）などの他の方法。該タンパク質またはペプチドに特異的に反応する抗体の産生についてハイブリドーマ細胞を免疫化学的にスクリーニングし、モノクローナル抗体を単離することができる。本明細書において用いる抗体なる語は、ｇｐ３９タンパク質またはそのペプチドまたはｇｐ３９融合タンパク質と特異的に反応するフラグメントをも包含する。抗体は常法によりフラグメントとすることができ、全抗体について記載したのと同様にしてフラグメントを有用性についてスクリーニングすることができる。たとえば、Ｆ(ａｂ')₂フラグメントは抗体をペプシンで処理することにより生成させることができる。得られたＦ(ａｂ^')₂フラグメントは、ジスルフィド架橋を還元すべく処理してＦａｂ'フラグメントとすることができる。本発明の抗体はさらに、抗ｇｐ３９部分を有する２特異的分子およびキメラ分子を包含する。非ヒト被験者において産生された抗体をヒトの治療に用いる場合には、これら抗体は種々の程度で外来のものとして認識され、該患者において免疫応答が生じるかもしれない。この問題を最小限に抑えまたは排除する（一般的な免疫抑制に好ましい）一つの方法は、キメラ抗体誘導体、すなわち非ヒト動物の可変領域とヒトの定常領域とを組み合わせた抗体分子を作製することである。キメラ抗体分子としては、たとえば、マウス、ラットまたは他の種からの抗体の抗原結合ドメインをヒト定常領域と組み合わせたものが挙げられる。種々のキメラ抗体の作製法が記載されており、ｇｐ３９を認識する免疫グロブリン可変領域を含むキメラ抗体を作製するのに用いることができる。たとえば、モリソン（Ｍorrison）ら、Ｐroc.Ｎatl.Ａcad.Ｓci.ＵＳＡ８１：６８５１（１９８５）；タケダ（Ｔak eda）ら、Ｎature ３１４：４５２（１９８５）、カビリー（Ｃabilly）ら、米国特許第４,８１６,５６７号；ボス（Ｂoss）ら、米国特許第４,８１６,３９７号；タナグチ（Ｔanaguchi）ら、ヨーロッパ特許出願公開ＥＰ１７１４９６号；ヨーロッパ特許出願公開第０１７３４９４号、英国特許第ＧＢ２１７７０９６Ｂ号を参照。かかるキメラ抗体は、対応する非キメラ抗体に比べてヒト被験者にける免疫原性が小さいことが期待される。ヒトの治療目的に用いる場合、可変領域の一部、とりわけ抗原結合ドメインの保存されたフレームワーク領域をヒト由来のものとし、超可変領域のみを非ヒト由来のものとしたヒト可変領域キメラを作成することによって、ｇｐ３９タンパク質またはペプチドに特異的に反応するモノクローナル抗体またはキメラ抗体をさらにヒト化することができる。かかる改変免疫グロブリン分子は当該技術分野で知られた幾つかの技術（たとえば、テング（Ｔeng）ら、Ｐroc.Ｎatl.Ａcad. Ｓci.ＵＳＡ、８０：７３０８〜７３１２（１９８３）；コズバーら、Ｉmmunolo gyＴoday、４：７２７９（１９８３）；オルソン（Ｏlsson）ら、Ｍeth.Ｅnzymo l.、９２：３〜１６（１９８２））のいずれによっても作製することができ、ＰＣＴ公開ＷＯ９２／０６１９３号またはＥＰ０２３９４００号の教示に従って作成するのが好ましい。ヒト化抗体は、たとえば、スコットジェン・リミテッド（Ｓco tgen Ｌimited）、グレートブリテン、ミドルセックス、トゥイッケナム、ホリー・ロード２番によって商業的に製造することができる。ｇｐ３９タンパク質またはペプチドに対して特異的に反応する特異的抗体、または抗体フラグメントの他の作製方法は、細菌中に発現された免疫グロブリン遺伝子またはその一部をコードする発現ライブラリーをｇｐ３９タンパク質またはペプチドでスクリーニングすることである。たとえば、ファージ発現ライブラリーを用い、完全なＦａｂフラグメント、ＶＨ領域およびＦＶ領域を細菌中で発現させることができる。たとえば、ウォード（Ｗard）ら、Ｎature、３４１：５４４〜５４６：（１９８９）；ヒューズら、Ｓcience、２４６：１２７５〜１２８１（１９８９）；およびマッカファーティ（ＭcＣafferty）ら、Ｎature、３４８：５５２〜５５４（１９９０）を参照。かかるライブラリーを、たとえばｇｐ３９ペプチドを用いてスクリーニングすることにより、ｇｐ３９に反応性の免疫グロブリンフラグメントを同定することができる。別法として、ＳＣＩＤ−ｈｕマウス（ジェンファーム（Ｇenpharm）より入手可能）を用いて抗体またはそのフラグメントを作製することができる。ヒトｇｐ３９およびマウスｇｐ３９を含むｇｐ３９に対して向けられたモノクローナル抗体の作製方法および本発明の方法に使用するのに適したモノクローナル抗体については実施例６にさらに詳細に記載してある。本発明の特に好ましい抗ヒトｇｐ３９抗体は、ハイブリドーマ２４−３１および８９−７６によってそれそれ産生されたｍＡｂ２４−３１および８９−７６である。８９−７６抗体および２４−３１抗体をそれそれ産生する８９−７６ハイブリドーマおよび２４− ３１ハイブリドーマは、ブダペスト条約の規定に従い、アメリカン・タイプ・カルチャー・コレクション、パークローンドライブ、ロックビル、メリーランドに１９９４年９月２日に寄託してある。８９−７６ハイブリドーマはＡＴＣＣ受託番号を、２４−３１ハイブリドーマはＡＴＣＣ受託番号を付与された。キメラ抗体やヒト化抗体などの組換え抗ｇｐ３９抗体は、標準組換えＤＮＡ法に従い、抗ｇｐ３９抗体をコードする核酸（たとえば、ＤＮＡ）を操作することにより作製することができる。従って、本発明の他の側面は、ｇｐ３９、とりわけヒトｇｐ３９に反応性の免疫グロブリンＨ鎖またはＬ鎖またはその一部をコードする単離核酸分子に関する。該免疫グロブリンをコードする核酸は、免疫グロブリンのＬ鎖またはＨ鎖可変領域をコードしていてよく、Ｈ鎖またはＬ鎖の定常領域（またはその一部）が結合していても結合していなくてもよい。かかる核酸は、抗ヒトｇｐ３９ｍＡｂを産生する細胞（たとえば、ハイブリドーマ）から標準法により単離することができる。たとえば、２４−３１または８９−７６ｍＡｂをコードする核酸は、それぞれ２４−３１ハイブリドーマまたは８９−７６ハイブリドーマからｃＤＮＡライブラリースクリーニング、ＰＣＲ増幅その他の標準法により単離することができる。抗ヒトｇｐ３９ｍＡｂをコードする核酸を単離およびさらに操作した後、該核酸を発現ベクター中に組み込み、宿主細胞中に導入して組換え形態の抗ヒトｇｐ３９抗体の発現および産生を容易にすることができる。Ｂ．ｇｐ３９の可溶性リガンドＴ細胞寛容を誘導するのに用いることのできる他のｇｐ３９アンタゴニストは、可溶性形態のｇｐ３９リガンドである。可溶性ＣＤ４０などのｇｐ３９の１価可溶性リガンドはｇｐ３９に結合することができ、それによってｇｐ３９とＢ細胞上のＣＤ４０との相互作用を抑制する。「可溶性」なる語は、リガンドが細胞膜に永久的に結合していないことを示す。可溶性ｇｐ３９リガンドは、化学合成によって、または好ましくは組換えＤＮＡ法によって、たとえば、該リガンドの細胞外ドメインのみ（経膜ドメインおよび細胞質ドメインを欠く）を発現させることによって作製することができる。好ましい可溶性ｇｐ３９リガンドは可溶性ＣＤ４０である。別の態様として、可溶性ｇｐ３９リガンドはまた融合タンパク質の形態であってもよい。かかる融合タンパク質は、第二の分子に結合した少なくとも一部のｇｐ３９リガンドを含む。たとえば、ＣＤ４０は免疫グロブリンとの融合タンパク質（すなわち、ＣＤ４０Ｉｇ融合タンパク質）として発現させることができる。一つの態様において、免疫グロブリンＨ鎖、たとえばＣγ１のヒンジ領域、ＣＨ２領域およびＣＨ３領域に対応する配列のアミノ酸残基に結合したＣＤ４０分子の細胞外ドメイン部分のアミノ酸残基からなる融合タンパク質を作製してＣＤ４０Ｉｇ融合タンパク質を生成する（たとえば、リンスレイら（１９９１）Ｊ.Ｅxp.Ｍed.１７８３：７２１〜７３０；カポン（Ｃapon）ら（１９８９）Ｎature ３３７、５２５〜５３１；およびカポン米国特許第５,１１６,９６４号を参照）。融合タンパク質は、化学合成によって、または好ましくはＣＤ４０のｃＤＮＡに基づいて組換えＤＮＡ法によって作製することができる（スタメンコビッチら、ＥＭＢＯＪ.、８：１４０３〜１４１０（１９８９））。II．抗原特異的な寛容を誘導する細胞：本発明は、少なくとも一部、抗原を呈示しｇｐ３９と相互作用する細胞により該抗原がＴ細胞に呈示されると、該抗原の該Ｔ細胞への呈示がｇｐ３９アンタゴニストの存在下で行われた場合に抗原特異的なＴ細胞寛容が生じるという知見に基づいている。このメカニズムによるＴ細胞寛容を誘導しうる細胞としては、Ｔ細胞に抗原を呈示し、Ｔ細胞活性化に必要なシグナルを該Ｔ細胞に送達するためにその表面上のｇｐ３９リガンドと該Ｔ細胞上のｇｐ３９との相互作用を必要とする細胞が挙げられる。この相互作用を抑制することにより、呈示された抗原によるＴ細胞の活性化が妨害され、該Ｔ細胞において抗原特異的な寛容が誘導される。ｇｐ３９を介したＴ細胞の活性化を妨害することにより、抗原呈示細胞上のコスティミュラトリー分子（たとえば、Ｂ細胞などの抗原呈示細胞上のＢ７ファミリー分子）の誘導が妨害され、該抗原呈示細胞はコスティミュラトリーシグナルの不在下で抗原性シグナルのみを送達しそれゆえ寛容が誘導される。従って、本発明の方法において、抗原を呈示する細胞を受容者に投与する。「抗原を呈示する細胞」および「抗原呈示細胞」なる語は本明細書において同じ意味で用いられ、受容者のＴ細胞に抗原を呈示しうる細胞を包含し、Ｂリンパ球、「プロフェッショナル（professional）」抗原呈示細胞（たとえば、単球、樹状細胞、ランゲルハンス細胞）および免疫細胞に抗原を呈示する他の細胞（たとえば、ケラチノサイト、内皮細胞、星状細胞、線維芽細胞、寡突起神経膠細胞）が含まれる。さらに、抗原呈示細胞は受容Ｔ細胞においてコスティミュラトリーシグナルを刺激する能力が減少しているのが好ましい。たとえば、抗原呈示細胞はＢ７ファミリーのタンパク質（たとえば、Ｂ７−１およびＢ７−２）などのコスティミュラトリー分子を発現しないかまたは低レベルしか発現しなくてよい。本発明の方法において使用すべき可能な抗原呈示細胞上のコスティミュラトリー分子の発現は、標準法により、たとえば、コスティミュラトリー分子に対して向けられた抗体を用いたフローサイトメトリーにより評価することができる。Ｔ細胞寛容を誘導するための好ましい抗原呈示細胞は、リンパ球細胞、たとえば末梢血リンパ球または脾臓細胞である。Ｔ細胞寛容を誘導するのに好ましいリンパ球細胞はＢ細胞である。Ｂ細胞は細胞の混合集団（たとえば、末梢血または脾臓中の他の細胞型）から標準細胞分離法により精製することができる。たとえば、接着細胞は、脾臓細胞をプラスチック皿上で培養し、ついで非接着細胞集団を回収することによって除去することができる。Ｔ細胞は、抗Ｔ細胞抗体（たとえば、抗Ｔｈｙ１.１抗体および／または抗Ｔｈｙ１.２抗体）および補体で処理することにより細胞の混合集団から取り出すことができる。一つの態様において、休止リンパ球細胞、好ましくは休止Ｂ細胞を抗原呈示細胞として用いる。休止Ｂ細胞などの休止リンパ球細胞の単離は、当該技術分野で知られた技術により、たとえばこれら細胞の小さなサイズおよび密度に基づいて行うことができる。休止リンパ球細胞の単離は、たとえば、トニー（Ｔony,Ｈ−Ｐ.）およびパーカー（Ｐarker,Ｄ.Ｃ.）（１９８５）Ｊ.Ｅxp.Ｍed.１６１：２２３〜２４１に記載された向流遠心エルトリエーション（counterflow centrifugal elutriation）により行うことができる。向流遠心エルトリエーションを用い、１４〜１９ｍｌ／分、好ましくは１９ｍｌ／分（３，２００ｒｐｍ）にてフラクションを回収することにより、Ｔ細胞応答を活性化しうる細胞を含まない休止リンパ球細胞集団を得ることができる。別法として、たとえばフィコールまたはパーコール勾配を用いた不連続密度勾配遠心分離により小さな休止リンパ球（たとえば、Ｂ細胞）を単離することができ、遠心分離後に小さな休止リンパ球を含む層を得ることができる。小さな休止Ｂ細胞はまた、標準法（たとえば、蛍光抗体法）により、活性Ｂ細胞などの抗原呈示細胞は、該Ｔ細胞に接触させる前に（たとえば、被験者に投与する前に）抗原（たとえば、可溶性タンパク質）と接触させることができ、該細胞を用いてｇｐ３９アンタゴニストの存在下で該Ｔ細胞に該抗原を呈示させることにより該抗原に特異的なＴ細胞寛容を誘導させることができる（実施例１参照）。別法として、抗原呈示細胞として同種細胞を用いることにより、アロ抗原に対する寛容を誘導することができる（実施例２および３参照）。同種細胞はＴ細胞に同種タンパク質の抗原性断片を呈示する。一つの態様において、同種細胞は同種Ｂ細胞などの同種リンパ球細胞である。別法として、被験者はまた末梢血中の細胞（たとえば、末梢血リンパ球）、脾臓細胞または骨髄細胞で寛容にすることができる。骨髄移植の場合、ドナーの骨髄細胞自身がＴ細胞に接触する抗原呈示細胞として働く（たとえば、被験者に投与）。従って、同種骨髄をｇｐ３９アンタゴニストとともに投与することにより、受容者において骨髄に対する寛容を誘導し、対宿主移植片疾患を防ぐことができる（実施例４および５参照）。III．細胞およびｇｐ３９アンタゴニストの投与：抗原特異的なＴ細胞寛容は、本発明に従い、Ｔ細胞に抗原を呈示し、該Ｔ細胞上のｇｐ３９と相互作用するリガンドを発現する細胞とともにｇｐ３９アンタゴニストを被験者に投与することによって誘導することができる。好ましい態様において、抗原呈示細胞およびｇｐ３９アンタゴニストは同時に投与する。別法として、たとえばｇｐ３９アンタゴニストが長い半減期を有する抗体である場合に、該細胞を投与する前に該アンタゴニストを投与することができる。投与しようとする細胞が骨髄細胞であり、対宿主移植片疾患の抑制が望まれる場合には、ドナー骨髄を受容者のＢ細胞およびｇｐ３９アンタゴニストとともにインビトロでインキュベートすることにより、受容者宿主に移す前に該骨髄中のドナーＴ細胞を寛容にすることができる。ｇｐ３９処置は、必要なら骨髄を移す間または移した後にインビボで継続することができる。骨髄または他の臓器移植を受ける被験者において、該臓器または骨髄細胞を移す前に同種寛容を誘導させる治療計画で処置することにより、該被験者において該移植に対する同種寛容を誘導することができる。この前処置治療計画には、ｇｐ３９アンタゴニストとともにドナーの細胞を被験者に投与することが含まれる。ドナーの細胞としては、たとえば、Ｂ細胞、全末梢血またはそのフラクション（たとえば、末梢血リンパ球または小さな休止リンパ球またはＢ細胞）が挙げられる。抗原呈示細胞の（アンタゴニストと組み合わせた）単回投与量の投与が、Ｔ細胞寛容を誘導するに充分であることがわかった（実施例参照）。投与する抗原呈示細胞の数は、使用した細胞のタイプ、組織または臓器移植のタイプ、受容者の体重、受容者の一般的状態または当業者に知られた他の変数に依存して変わってよい。本発明の方法に使用する細胞の適当な数は、常法（たとえば、実施例に記載するアッセイを用いて）により当業者が決定することができる。細胞の投与は、受容者において寛容を誘導するのに適した形態および経路で行う。細胞の投与は、緩衝食塩水や同様のビヒクルなどの生理学的に許容しうる溶液中にて行うことができる。細胞は静脈内に投与するのが好ましい。本発明のアンタゴニストは、Ｔ細胞寛容を誘導するため、インビボの医薬投与に適した生物学的に両立しうる形態にて被験者に投与する。「インビボの医薬投与に適した生物学的に両立しうる形態」とは、該タンパク質の治療効果が毒性作用より重視されるように投与されるアンタゴニストの形態をいう。被験者なる語は、免疫応答を引き起こしうる生物、たとえば哺乳動物を包含する。被験者の例としては、ヒト、イヌ、ネコ、マウス、ラット、およびこれらのトランスジェニック種が挙げられる。ｇｐ３９アンタゴニストの投与は、任意に薬理学的に許容しうる担体中にて医薬形態で行うことができる。治療学的に活性な量のアンタゴニストの投与とは、所望の結果を達成するのに必要な投与量および時間にて有効な量と定義される。たとえば、ｇｐ３９のアンタゴニストの治療学的に活性な量は、個体の疾患状態、年齢、性および体重、および該アンタゴニストが該個体において所望の応答を引き起こす能力に従って変わってよい。投与計画は最適の治療応答をもたらすように調節する。たとえば、幾つかの分割投与量を毎日投与することができるし、または治療状況の緊急性によって示されるように比例して投与量を減らしていくこともできる。活性化合物（たとえば、アンタゴニスト）の投与は、注射（皮下、静脈内など）、経口投与、吸入、経皮投与、または直腸投与などの常法により行うことができる。投与経路に応じて、活性化合物を不活化する酵素、酸または他の天然の条件から該化合物を保護するために該化合物を物質中にコーティングすることができる。好ましい投与経路は静注である。非経口以外の投与によりｇｐ３９のアンタゴニストを投与するには、不活化を防ぐ物質で該アンタゴニストをコーティングするかまたは該物質と該アンタゴニストとを同時に投与する必要がある。たとえば、アンタゴニストは、適当な担体または希釈剤中にて、または酵素阻害剤とともにまたはリポソームなどの適当な担体中にて一緒に投与することができる。薬理学的に許容しうる希釈剤としては、食塩および水性緩衝液が挙げられる。酵素阻害剤としては、膵臓トリプシンインヒビター、ジイソプロピルフルオロホスフェート（ＤＥＰ）およびトラシロール（trasylol）が挙げられる。リポソームとしては、水中油中水懸濁液並びに通常のリポソーム（ストレジャン（Ｓtrejan）ら（１９８４）Ｊ.Ｎeuroimmunol ７：２７）が挙げられる。活性化合物はまた、非経口または腹腔内投与することもできる。グリセロール、液体ポリエチレングリコール、およびそれら混合物中、および油中で分散液を調製することもできる。通常の貯蔵および使用条件では、これら調製物には微生物の増殖を防ぐための保存剤が含まれる。注射用途に適した医薬組成物としては、滅菌水溶液（水溶性の場合）または分散液および滅菌注射用溶液または分散液を即座に調製するための滅菌粉末が挙げられる。いずれの場合においても組成物は滅菌されていなければならず、容易な注射器操作が可能な程度に流体でなければならない。該組成物は製造および貯蔵条件下で安定でなければならず、細菌や真菌などの混入微生物の作用から保護されていなければならない。担体は、たとえば、水、エタノール、ポリオール（たとえば、グリセロール、プロピレングリコール、および液体ポリエチレングリコールなど）、およびこれらの適当な混合物を含む溶媒であるかまたは分散媒体であってよい。適当な流動性は、たとえば、レシチンなどのコーティングを使用することによって、分散液の場合は必要な粒径を維持することによって、および界面活性剤を使用することによって維持することができる。微生物の作用からの保護は、種々の抗菌剤および抗真菌剤、たとえばパラベン、クロロブタノール、フェノール、アスコルビン酸、チメロサールなどにより行うことができる。多くの場合、等張剤、たとえば糖、ポリアルコール、たとえばマンニトール、ソルビトール、塩化ナトリウムなどが組成物中に含まれているのが好ましいであろう。注射用組成物の持続吸収は、吸収を遅らせる薬剤、たとえばモノステアリン酸アルミニウムやゼラチンなどを組成物中に配合することにより行うことができる。滅菌注射用溶液の調製は、必要なら上記成分の１またはその組み合わせとともに所要量の活性化合物（たとえば、ｇｐ３９のアンタゴニスト）を適当な溶媒中に配合し、ついで滅菌濾過することにより行うことができる。一般に分散液の調製は、基本的な分散媒体と上記から選ばれた必要な他の成分を含む滅菌ビヒクル中に活性化合物を配合することにより行う。滅菌注射溶液の調製のための滅菌粉末の場合は、好ましい調製法は真空乾燥および凍結乾燥であり、これにより活性成分（たとえば、アンタゴニスト）と前以て滅菌濾過した溶液からの所望の追加成分との粉末が得られる。上記のように活性化合物を適切に保護してある場合は、該タンパク質は、たとえば不活性な希釈剤または同化しうる食用担体とともに経口投与することができる。本明細書において「薬理学的に許容しうる担体」とは、溶媒、分散媒体、コーティング、抗菌剤および抗真菌剤、等張剤および吸収遅延剤などのすべてを包含する。薬理学的に活性な物質のためのかかる媒体および剤の使用は、当該技術分野でよく知られている。通常の媒体または剤が活性化合物と両立しない場合以外は、治療学的組成物中に使用することができる。補助的な活性化合物を該組成物中に配合することもできる。投与の容易および投与量の均一さのため、単位投与剤型で非経口組成物に調合するのが特に有利である。本明細書において単位投与剤型とは、治療すべき哺乳動物被験者に対する単位投与量として適した物理的に区別される単位をいう。各単位には、所要の薬理学的担体と組み合わせて所望の治療効果を奏するように計算された前以て決定された量の活性化合物が含まれる。本発明の単位投与剤型は、（ａ）活性化合物の独特の特性および達成しようとする特定の治療効果、および（ｂ）個体における治療感受性（treatment of sensitivity）のためにかかる活性化合物を調合する際の内在する技術的制約に直接依存して個々に特定される。インビボでのＴ細胞の寛容に加え、本発明はまた、たとえばｇｐ３９アンタゴニストの存在下で抗原呈示細胞と接触させることによる、インビトロでのＴ細胞の寛容をも包含する。たとえば、Ｔ細胞を被験者から採取し、抗原呈示細胞およびアンタゴニストとともに培養することによってインビトロで寛容にし、ついで該Ｔ細胞を被験者に再投与することができる。IV．本発明の方法の用途：本発明の方法は、種々の抗原に対してＴ細胞寛容を誘導するために応用することができる。たとえば、実施例１に記載するように、可溶性抗原（たとえば、可溶性タンパク質）に対してＴ細胞寛容を誘導することができる。Ｔ細胞の寛容はまた、自己免疫疾患または異常な免疫応答を伴う疾患に関与する抗原に対して行うことができる。たとえば、一つの態様において、抗原は自己抗原である。他の態様において、抗原はアレルゲンである。別の態様において、Ｔ細胞の寛容はまた外来細胞上に発現される抗原に対して行うことができる（実施例２〜５に記載するように）。従って、さらに他の態様において、抗原はアロ抗原または異種抗原である。アロ抗原および異種抗原に対するＴ細胞寛容の誘導は、ドナーの移植片、たとえば組織または臓器移植片または骨髄移植の移植受容者による拒絶を抑制するために移植において特別の用途を有する。加えて、骨髄移植中のドナーＴ細胞の寛容は、対宿主移植片疾患を抑制するのに有用である（実施例５参照）。本発明を下記実施例によりさらに詳しく説明するが、本発明はこれらに限られるものではない。本明細書中に引用した全ての参考文献、特許および公開された特許出願の内容は参照のため本明細書中に引用される。実施例１：抗原特異的な寛容の誘導方法マウスをＫＬＨ−パルス標識した脾臓Ｂリンパ球で５日間免疫した。一次免疫の間、動物を抗ｇｐ３９抗体ＭＲＩで処理するかまたは処理しなかった。最初の免疫から５日後、マウスをフロイントの完全アジュバント（ＣＦＡ）中のＫＬＨで局所（食趾（food pad））攻撃した。マウスを５日後に屠殺し、取り出したリンパ節の水を切り、その後、ＫＬＨに対するＴ細胞増幅応答をインビトロでアッセイした。結果抗原でパルス標識した活性化Ｂリンパ球で免疫し、その後、同抗原で攻撃した動物は、免疫を行った該抗原に対して有意の免疫応答を生じる。抗原特異的Ｔリンパ球の増殖により測定した応答を図１に示す。一次免疫の間に抗ｇｐ３９抗体で動物を処理すると、インビトロで抗原攻撃したときに抗原特異的なＴリンパ球の非応答性という結果となった。抗ｇｐ３９抗体で処理した動物のリンパ節から得られたＴリンパ球は、未処理の動物のリンパ節から得られたＴリンパ球に比べて低下した増殖能を示す。実施例２：同種細胞に対するＴ細胞寛容の誘導方法Ｂａｌｂ／ｃ（Ｈ−２^d）マウスをＤＢＡ／２（Ｈ−２^b）マウスからの同種脾臓Ｂ細胞で免疫した。免疫後の５日間、動物を抗ｇｐ３９抗体、ＭＲＩで処理するかまたは処理しなかった。第６日目に動物を屠殺し、脾臓を取り出した。その後、抗ｇｐ３９抗体で処理した動物または未処理動物からの脾臓を刺激なしでまたは照射ＤＢＡ／２脾臓細胞とともにインビトロで培養した。この二次同種刺激に対する増殖応答を培養の開始後３日目に測定した。結果同種脾臓Ｂ細胞で免疫した動物からのＴリンパ球は、同細胞でインビトロにて５日後に攻撃したときに強い増殖応答を生じる（図２）。しかしながら、同種Ｂ細胞で免疫し抗ｇｐ３９抗体で処理したマウスからのＴリンパ球は、その後インビトロで攻撃したときに低下した増殖能を有する。抗ｇｐ３９抗体処理したマウスは、対照の未処理動物に比べて攻撃に対する応答性において約５０％の低下を示す。実施例３：抗ｇｐ３９抗体処理は同種Ｂ細胞に対するＣＴＬ応答の生成を妨害する本実施例においては、細胞障害性Ｔ細胞（ＣＴＬ）の生成におけるｇｐ３９の役割を調べた。ＣＴＬの発生におけるｇｐ３９のインビボ機能を評価するため、同種Ｂ細胞で免疫することによるアロ特異的なＣＴＬの生成に対する抗ｇｐ３９抗体処理の効果を調べた。一次ＣＴＬ応答および二次ＣＴＬ応答の両方に対する抗ｇｐ３９抗体処理の効果を決定した。一次ＣＴＬ応答同種Ｂ細胞がインビボでアロ特異的なＣＴＬ応答を引き起こすのを抗ｇｐ３９抗体が妨害しうるか否かを試験するため、同種Ｂ細胞（Ｔ細胞を欠く脾臓細胞）を抗ｇｐ３９抗体とともに、または抗ｇｐ３９抗体なしで受容者のマウスに投与した。Ｂａｌｂ／ｃマウス（雌、６〜８週齢、ジャクソン・ラボラトリーズ（Ｊ ackson Ｌaboratories）、バーハーバー、メイン州）を、抗Ｔｈｙ１.２抗体（ＡＴＣＣクローンＨＯ１３.４から調製した腹水）およびウサギ補体処理によりＴ細胞を欠くＣ５７ＢＬ／６（雌、６〜８週齢、ジャクソン・ラボラトリーズ、バーハーバー、メイン州）脾臓細胞（３０〜５０×１０⁶）で免疫した。ついで、これら受容者のマウスを抗ｇｐ３９抗体で５日間処理するか（第０日目、第２日目および第４日目に２５０ｍｇ／受容者）または処理しなかった。第５日目に脾臓を取り出し、４時間クロム放出アッセイを用いてＣＴＬ応答を測定した。未感作Ｂａｌｂ／ｃマウスからの脾臓細胞を負の対照エフェクター細胞として用いた。使用した標的細胞は、Ｅ雄Ｋ１（Ｈ−２^b，Ｃ５７ＢＬ／６株由来のＴ細胞リンパ腫）およびＰ８１５（Ｈ−２^d、肥満細胞腫、ＤＢＡ／２Ｊ株由来）であった。⁵¹Ｃｒ−標識した標的細胞を洗浄し、エフェクター細胞とともにエフェクター：標的（Ｅ：Ｔ）比が１００：１、２０：１および４：１で９６ウエルプレート中にウエル当たり１×１０⁴細胞にてプレーティングした。プレートを簡単に遠心分離にかけ、ついで５％ＣＯ₂中、３７℃にて４時間インキュベートした。プレートをもう一度遠心分離にかけ、各ウエルから１００ｍｌの細胞不含上澄み液を回収し、ガンマカウンティングにかけた（ＬＫＢクリニガンマ（ＬＫＢＣ linigamma）、ウオレス（Ｗallace Inc.）、ゲイサーズバーグ、メリーランド州）。特異的溶解％を（ａ−ｂ）／ｃと定義する（式中、ａ＝エフェクター細胞とともにインキュベートした標的細胞により放出されるｃｐｍ、ｂ＝培地のみでインキュベートした標的細胞により放出される（自然放出）ｃｐｍ、およびｃ＝標的細胞から凍結−解糖により放出可能なｃｐｍ（導入された全ｃｐｍの約８０％））。Ｐ８１５標的は、試験した細胞試料のいずれによっても溶解しなかった。Ｅ雌Ｋ１標的の結果を図３Ａに示す。図３Ａにおいて、図示したグループは、未処理マウス（■）、抗ｇｐ３９抗体処理マウス（△）および未感作Ｂａｌｂ／ｃマウスからの脾臓細胞（●；負の対照エフェクター細胞として使用）である。これら結果は、抗ｇｐ３９抗体および同種細胞を与えられたマウスは同種Ｂ細胞に応答してインビボで一次ＣＴＬ応答を生成しないことを示す。対照的に、抗ｇｐ３９抗体が存在しないと、同種Ｂ細胞はアロ抗原に対して受容者を感作し、実質的なＣＴＬ応答を誘導する。抗ｇｐ３９抗体が活性化されていない脾臓Ｂ細胞の寛容原作用のみを増幅しうるか否かを決定するため、ＬＰＳ−活性化Ｂ細胞を用いて抗ｇｐ３９抗体の存在下または不在下でＣＴＬを感作させた。Ｃ５７ＢＬ／６マウスからのＢ細胞を上記と同様にして調製し、リポ多糖（ＬＰＳ；５０ｍｇ／ｍｌ；シグマ・ダイアグノスティックス（Ｓigma Ｄiagnositics）、セントルイス、ミズーリ州）の存在下または不在下で２日間培養した。ついで、細胞を回収し、充分に洗浄し、Ｂａｌｂ／ｃ受容マウスに腹腔内注射した（３０〜５０×１０⁶）。受容マウスを上記のように第０日目、第２日目および第４日目に抗ｇｐ３９抗体で処理するかまたは処理しなかった。第５日目に脾臓細胞を取り出し、ＣＴＬ応答を上記と同様にして決定した。２つの独立した実験の結果を図３Ｂに示す（上段および下段のパネル）。図示したグループは、処理なしのインビボＬＰＳ幼若細胞（blasts）（＞）、抗ｇｐ３９抗体処理したインビボＬＰＳ幼若細胞（●）、処理なしのインビボ休止Ｂ細胞（○）、および抗ｇｐ３９抗体処理したインビボ休止Ｂ細胞（ □）である。これら結果は、完全ではないが、抗ｇｐ３９抗体はまた同種ＬＰＳ幼若細胞に対する一次ＣＴＬ応答をも減少させることを示している。二次ＣＴＬ応答ＣＴＬ生成に対する抗ｇｐ３９抗体および同種Ｂ細胞の投与の影響を調べるため、処理および未処理マウスからの脾臓細胞をインビトロで刺激し、ＣＴＬ応答の範囲を調べた。Ｂａｌｂ／ｃマウスを上記と同様にしてＣ５７ＢＬ／６由来のＢ細胞でインビボにて感作させた。抗ｇｐ３９抗体および対照のハムスターＩｇ（ＨＩｇ）処理した動物から脾臓細胞を取り出し、種々のマイトマイシンＣ処理した（３７℃にて２.５ｍｇ／ｍｌ、シグマ・ダイアグノスティックス、セントルイス、ミズーリ州）脾臓Ｂ細胞の株（抗Ｔｈｙ１.２抗体＋補体処理により調製）とともに５×１０⁶スティミュレーター／ｍｌにて５日間培養した（「レスポンダー（responders）」）。スティミュレーターグループはＣ５７ＢＬ／６（Ｈ−２^b）およびＢａｌｂ／ｃ（Ｈ−２^d）であり、それぞれ二次同種応答および一次同系応答を示す。スティミュレーター細胞およびレスポンダー細胞を、新たに調製した感作ＲＰＭＩ−１６４０培地（バイオ・ホワイテーカー（Ｂio Ｗhit taker）、ウオーカースビル、メリーランド州）、１×１０⁵Ｍ２−メルカプトエタノール（バイオーラド・ラボラトリーズ（Ｂio−Ｒad Ｌaboratories）、ハーキュールズ、カリフォルニア州）、２ｍＭＬ−グルタミン（シグマ・ダイアグノスティックス、セントルイス、ミズーリ州）、５００Ｕ／ｍｌペニシリンおよび５０００Ｕ／ｍｌストレプトマイシン（シグマ・ダイアグノスティックス、セントルイス、ミズーリ州）中で培養した。５日後、レスポンダー細胞を回収し、死細胞を密度勾配遠心分離により除去した。得られた生細胞を上記ＣＴＬアッセイにおいてエフェクターとして用いた。標的にはＥ雌Ｋ１（Ｈ−２^b，Ｃ５７ＢＬ／６株由来のＴ細胞リンパ腫）およびＰ８１５（Ｈ−２^d，肥満細胞腫、ＤＢＡ／２Ｊ株由来）が含まれていた。その結果を図４Ａに示す。図示した同種刺激エフェクターグループは、ＨＩｇ処理受容者（●）、未感作Ｂａｌｂ／ｃ（＞）および抗ｇｐ３９抗体処理した受容者（■）である。対応する同系応答（Ｂａｌｂ／ｃ細胞で刺激したＢａｌｂ／ｃ細胞）は白抜きの記号で示す。予想されたように、抗ｇｐ３９抗体の不在下で同種Ｔ欠損脾臓細胞（Ｈ−２^b）でマウスをインビボ免疫すると、インビトロで強い二次ＣＴＬ応答となった。マウスに抗ｇｐ３９抗体を与えた場合には、強められた二次抗Ｈ−２^bＣＴＬ応答は観察されなかった。抗ｇｐ３９抗体によるＣＴＬ応答の抑制の特異性を決定するため、上記脾臓細胞培養を、ＣＴＬアッセイにおいてスティミュレーターとしてＢ１０ＢＲ（Ｈ− ２^k）脾臓Ｂ細胞を、標的としてＳＬ８（Ｈ−２^k、ＡＫＲ株由来の特発性Ｔ細胞リンパ腫）を用いて抗Ｈ−２^k同種応答（第三者同種応答）について分析した。その結果を図４Ｂに示す。図示したグループは、未感作Ｂａｌｂ／ｃ（○）および抗ｇｐ３９抗体処理した受容者（■）である。これら結果は、抗ｇｐ３９抗体処理による抗Ｈ２^b特異的ＣＴＬ応答の抑制がアロ特異的であることを示している。なぜなら、Ｈ−２^b脾臓細胞および抗ｇｐ３９抗体の投与が傍観者であるアロ抗原（Ｈ−２^k）に対するインビトロＣＴＬ応答に変化をもたらさなかったからである。以上を総合すると、これらデータは、抗ｇｐ３９抗体がアロ特異的なＣＴＬ応答（一次および二次の両者）の生成を妨害することを示している。抗ｇｐ３９抗体の存在下では、関連するアロ抗原に特異的なＣＴＬ前駆体はなお存在している。なぜなら、インビトロの二次培養において若干の抗Ｈ−２^bＣＴＬ活性を示すことができるからである。抗ｇｐ３９抗体処理は、ＣＴＬ感作（priming）を阻止することにより、または感作アロ特異的ＣＴＬの頻度を減少させることにより、二次インビトロ応答を減少させたと結論することができる。休止Ｂ細胞の使用は、この非応答性を示すために強制的なものではない。なぜなら、ＬＰＳ幼若細胞によって誘導された同種ＣＴＬ応答もまた抗ｇｐ３９抗体によって損なわれたからである。実施例４：同種マウス骨髄の移植は、受容者をｇｐ３９に対する抗体で処理した場合には安定なキメラを誘導する従来の化学療法では治癒され得なかった多くの血液疾患の治療には、同種骨髄の移植が含まれる。この攻撃的な療法には、クロノジェニックな（clonogenic）腫瘍細胞を撲滅させるべく、同種骨髄の潅流と組み合わせた骨髄腫を撲滅しうる（myeloablative）高投与量の化学療法剤の投与が含まれる。胸腺を照射して胸腺Ｔ細胞を欠失させると、抗ＣＤ４モノクローナル抗体（ｍＡｂ）を含むＴ細胞に対するｍＡｂを使用した場合に安定なキメラの頻度が増大することがすでに示されている。この抗体療法により、Ｔ細胞欠失、それゆえドナー特異的な寛容が得られ、このことはドナー皮膚移植に対する寛容によって示される。３００ラドのＷＢＩ、インビボ抗Ｔ細胞ｍＡｂ処理、および同種骨髄の投与後に永久的な同種移植を達成できないのは、胸腺内の影響を受けないＴ細胞によるものである。抗ＣＤ４ｍＡｂおよび抗ＣＤ８ｍＡｂの使用により末梢血および脾臓のＴ細胞の有効な欠失をもたらし得るが、胸腺のＴ細胞はｍＡｂでコーティングされるのみで欠失されるわけではない。それゆえ、胸腺照射をマウスに行う。方法対宿主移植片疾患が誘導されるのを回避するため、親へのＦ１の同種骨髄移植（ＢＭＴ）のマウスモデルを用いた。本発明者らは、（Ｃ５７ＢＬ／６×Ｂａｌｂ／ｃ）Ｆ１であるＦ１株ＣＢ６を用い、その結果、Ｈ−２^d/bの全ＭＨＣハプロタイプとなった。骨髄を取り出し、抗ｇｐ３９抗体ＭＲ１とともに、または抗ｇｐ３９抗体なしで、照射したＢＡＬＢ／ｃ親に静脈内注射した。キメラ化（ch imerism）の最良のレベルを決定するため、および各照射レベルで抗ｇｐ３９抗体処理した動物と処理しない動物とを比較するため、全身照射（whole body irr adiation）（ＷＢＩ）レベルを変化させた。キメラ化の決定は、Ｈ−２^d（ＢＡＬＢ／ｃ）マウス内に存在するＨ−２^bＭＨＣハプロタイプの末梢血リンパ球のフローサイトメトリーにより行った。このマウスの組み合わせが適しており、５００および６００ラドＷＢＩのレベルでキメラ現象が得られることが以前に示されている。結果フローサイトメトリーによりＣ５７ＢＬ／６由来細胞（Ｈ−２^b）の同定を行うことによってキメラ化を検出した。この研究の開始のときから抗ｇｐ３９抗体で処理した場合にのみ、４００、５００および６００全身照射にて照射したマウスにおいて１４日以内にキメラ化が出現することがわかった。６００全身照射を受けた場合に４００ラドの抗体処理群と同じ程度に骨髄を受け入れたのを例外として、抗体処理を受けなかったマウスはすべての照射レベルにおいて細胞を拒絶した（表１）。抗ｇｐ３９抗体療法とともに４００、５００および６００ラドで治療後６週間のキメラ化のレベルは、それぞれ７０.７＋５.７４、９４.１および８４.４＋８.５６であったのに対し、抗体処理なしでの６００ラドでは８５. ７＋５.９キメラであることがわかった（表２）。この時点で細胞を表現型で分類すると、Ｔ細胞、Ｂ細胞およびマクロファージはすべてキメラ化され、処理した場合の４００ラドでの程度は未処理群の６００ラドでの程度と同じであった（表２）。また、抗ｇｐ３９抗体処理は、末梢内でのリンパ球細胞のいずれの全パーセント集団をも有意に変化させないとも思われた。抗ｇｐ３９抗体により動物の処理が終了したとき、これら動物は移植後８週間まで安定にキメラ化されることがわかった。実施例５：抗ｇｐ３９抗体による受容者の処理と組み合わせた同種骨髄移植は急性および慢性の対宿主移植片疾患を抑制する本実施例においては以下の方法を用いた。マウス：ＤＢＡ／２（Ｈ−２^d）、Ｃ５７ＢＬ／６（Ｈ−２^b）およびＢ６Ｄ２Ｆ₁（（Ｃ５７ＢＬ／６（Ｈ−２^d）×ＤＢＡ／２）Ｆ₁ハイブリッド）マウスをＮＣＩラボラトリーズ（ベセスダ、メリーランド州）から入手し、ダートーマス・メディカル・スクールの動物施設中のウイルス不含環境中で維持した。この研究に使用したマウスはすべて雌であり、６〜８週齢であった。慢性ＧＶＨＤの誘導：慢性ＧＶＨＤの誘導を、親（ＤＢＡ／２）の脾臓細胞を非照射（Ｃ５７ＢＬ／６×ＤＢＡ／２）Ｆ₁ハイブリッド受容者に静脈内注射することにより行った（ファスト（Ｆast,Ｌ.Ｄ.）（１９９０）、Ｊ.Ｉmmunol.１４４：４１７７）。脾臓を取り出すため、親マウスを麻酔し、頚部脱臼により屠殺した。分離した脾臓細胞を洗浄し、Ｆ₁受容者に静脈内注射するためＲＰＭＩ１６４０培地中に再懸濁した（ホワイテーカー、ウオルダースビル、メリーランド州）。急性ＧＶＨＤの誘導：急性ＧＶＨＤの誘導は、親Ｃ５７ＢＬ／６脾臓細胞を非照射（Ｃ５７ＢＬ／６×ＤＢＡ／２）Ｆ₁ハイブリッド受容者に静脈内注射することにより行った。慢性ＧＶＨＤの誘導の場合と同様にして、移植のための細胞を調製した。抗体：抗ｇｐ３９抗体：以前に記載されているようにして（フォイら（１９９３）Ｊ.Ｅxp.Ｍed.１７８：１５６７〜１５７５；ノエル（Ｎoelle,Ｒ.Ｊ.）ら（１９９２）Ｐroc.Ｎatl.Ａcad.Ｓci.ＵＳＡ８９：６５５０）、ＭＲ１を腹水中に産生させ、イオン交換ＨＰＬＣにより精製した。ポリクローナル抗イソタイプ抗体：抗ＩｇＧ１抗体および抗ＩｇＡ抗体および標準対照はすべてサザーン・バイオテクノロジー・アソシエーツ（Ｓouthern Ｂiotechnology Ａssociates, Ｉnc.）（バーミンガム、アラバマ州）から入手した。抗ＩｇＥ抗体：ＩｇＥ特異的ＥＬＩＺＡに用いる抗ＩｇＥ抗体（ＢＩＥ３およびビオチンＡＭ９５）および標準（Ａ３Ｂ１）はすべて、ワルドシュミット（Ｔ.Ｗaldschmidt）博士（アイオワ州）から親切に贈呈されたものであった。抗ＭＨＣハプロタイプ抗体：Ｈ −２Ｋ^bＦＩＴＣ結合抗体およびＨ−２Ｄ^dビオチン結合抗体をファーミンジェン（ＰharＭingen）（サンジエゴ、カリフォルニア州）から入手した。細胞株：使用した細胞株にはＰ８１５（Ｈ−２^d）およびＬＢ２７.４（Ｈ−２^bxd ）が含まれ、これらはアメリカン・タイプ・カルチャー・コレクションから入手した。細胞株ｃｌ.１８.５（Ｈ−２ｂ）はウイリアム・アール・グリーン（Ｗilliam Ｒ.Ｇreen）博士から親切に贈呈されたものであった。インビトロでのポリクローナルＩｇ産生：対照およびｃＧＶＨＤマウスから脾臓を取り出し、単一細胞懸濁液を調製した。細胞をトリス緩衝塩化アンモニウムで処理して赤血球を除去し、血球計で目視でカウントすることにより全白血球数を決定した。細胞（５×１０⁶）を１ｍｌの完全(ｃ)ＲＰＭＩ−１６４０培地（１０％ウシ胎仔血清（ハイクローン（Ｈyclone）、ローガン（Ｌogan）、ユタ州）、２５ｍＭＨＥＰＥＳ、２ｍＭＬ−グルタミン、５０００Ｕ／ｍｌペニシリンおよび５０００ｍｇ／ｍｌストレプトマイシンを添加）中、３７℃、５％ＣＯ₂ にて３日間インキュベートした。細胞をペレット化することにより培養上澄み液を回収し、イソタイプ−特異的ＥＬＩＳＡアッセイによりＩｇを定量した。イソタイプ特異的および抗原特異的ＥＬＩＳＡ：ＩｇＧ₁およびＩｇＡの検出のためのＥＬＩＳＡ：ＰＢＳ中のヤギ抗マウスＩｇＧ₁およびＩｇＡ（１０μｇ／ｍｌ；サザーン・バイオテクノロジー・アソシエーツ、バーミンガム、アラバマ州）を９６−ウエルポリビニルマイクロタイタープレートのウエル上に、３７ ℃にて１時間、ついで４℃にて一夜吸着させた。プレートを洗浄し、１％ＦＣＳを含有するＰＢＳで３７℃にて１時間ブロックした。プレートを再び洗浄し、上澄み液の適当な希釈液および標準対照（ＩｇＧ₁およびＩｇＡ、サザーン・バイオテクノロジー・アソシエーツ、バーミンガム、アラバマ州）を３７℃にて２時間かけて加えた。この時間後、プレートを３回洗浄し、アルカリホスファターゼを結合したヤギ抗マウスＩｇＧ₁またはＩｇＡ（１／５００希釈）（サザーン・バイオテクノロジー・アソシエーツ、バーミンガム、アラバマ州）を３７℃にて２時間かけて加えた。プレートを充分に洗浄し、ホスファターゼ基質（１ｍｇ／ｍｌ；シグマ・ダイアグノスティックス（Ｓima Ｄiagnostics）、セントルイス、ミズーリ州）を加え、適当な発色変化を起こさせた。４１０ｎｍの吸光度をＥＬＩＳＡリーダー（ダイナテック・ラボラトリーズ（Ｄynatech Ｌaboratories, Ｉnc.））で読み取ることにより読み取りを行った。適当なイソタイプ標準曲線と比較することによってＩｇの濃度を決定し、平均＋標準誤差（ｎ＝３）として表した。ＩｇＥの検出のためのＥＬＩＳＡ：９６−ウエルポリビニルマイクロタイタープレートのウエルを抗マウスＩｇＥ捕捉抗体（Ｂ１Ｅ３（２ｍｇ／ｍｌ））で４ ℃にて一夜コーティングし、ついで１％ＦＣＳを含有するＰＢＳで３７℃にて１時間ブロックした。プレートを再び洗浄し、上澄み液の適当な希釈液および標準対照（Ａ３Ｂ１（ＩｇＥ））を３７℃にて２時間かけて加えた。プレートを充分に洗浄し、各ウエルにＥＭ９５−ビオチン（５ｍｇ／ｍｌ）を加え、３７℃にて２時間インキュベートした。この時間の後、ストレプトアビジンに結合したアルカリ−ホスファターゼをさらに２時間かけて加え（１／５００希釈）、ついでホスファターゼ基質（１ｍｇ／ｍｌ；シグマ・ダイアグノスティックス、セントルイス、ミズーリ州）を加える前に充分に洗浄し、適当な発色変化を起こさせた。４１０ｎｍの吸光度をＥＬＩＳＡリーダー（ダイナテック・ラボラトリーズ）で読み取ることにより読み取りを行った。標準曲線と比較することによってＩｇの濃度を決定し、平均＋標準誤差（ｎ＝３）として表した。抗ＤＮＡ抗体の検出のためのＥＬＩＳＡ：０．１Ｍ炭酸ナトリウム／重炭酸ナトリウムを含有するカップリング緩衝液（ｐＨ９．８）中でウシ胸腺ＤＮＡ（シグマ、セントルイス、ミズーリ州）を溶解した。これを１０分間沸騰させ、ついで氷上で３分間インキュベートした。ついで、このＤＮＡのＯＤ２６０を決定し、所望の５μｇ／ｍｌのＤＮＡが得られるよう濃度を調節した。ついで、１００ μｌを９６ウエルポリビニルマイクロタイタープレートのウエルに加え、４℃にて一夜インキュベートした。ついで、プレートを３回洗浄し、１％ＣＦＣＳおよび０．０２％アジ化ナトリウムを含むＰＢＳで３７℃にて１時間ブロックした。プレートを再び洗浄し、ついで系列希釈の血清試料を加え（１００ｍｌ）、３７ ℃にて２時間インキュベートした。ついで、検出抗体、ヤギ抗マウスＩｇＧ₁アルカリホスファターゼを各ウエルに加え、３７℃にて再び２時間インキュベートした。プレートを充分に洗浄し、ホスファターゼ基質（１ｍｇ／ｍｌ；シグマ・ダイアグノスティックス、セントルイス、ミズーリ州）を加え、適当な発色変化を起こさせた。４１０ｎｍの吸光度をＥＬＩＳＡリーダー（ダイナテック・ラボラトリーズ）で読み取ることにより読み取りを行った。抗体力価を陽性血清試料と比較し、結果を任意の単位で表した。ドナー由来の細胞の検出のためのフローサイトメトリー分析：正常ＢＤＦ₁、抗ｇｐ３９抗体で処理したｃＧＶＨＤマウスおよび処理していないｃＧＶＨＤマウスから脾臓細胞を取り出し、単一細胞懸濁液を調製した。細胞をフィコール− ハイパック（４；１）上に重層し、ついで室温で２０００ｒｐｍにて２０分間遠心分離にかけた。得られたリンパ球層を取り、５％ＦＣＳを含有するＢＳＳで１回洗浄した。チューブ当たり１×１０⁶細胞を５０μｌの最終容量中で染色のため用いた。各チューブに５０μｌのラット血清を加えて抗体の非特異的結合を防いだ。細胞を（ａ）対照抗体：ラットＩｇＦＩＴＣ（１：１００最終希釈）およびＰＥ−ストレプトアビジン（１：５００最終希釈）および（ｂ）ＦＩＴＣＨ−２Ｋ^bおよびビオチンＨ−２Ｄ^d（ともに１：１００最終希釈）で染色した。細胞を水上で２０分間インキュベートし、ついで２回洗浄して未結合抗体を除去した。最後にＰＥ−ストレプトアビジン（１：５００最終希釈）を適当なチューブに加えてビオチン結合抗体を氷上でさらに２０分間検出した。細胞をさらに２回洗浄してベクトンディッキンソンＦＡＣスキャン（ＦＡＣＳan）上で分析するための準備をした。前および側部スキャッターによる陽性ゲーティングの後、関連するＭＨＣハプロタイプについて陽性の細胞のパーセントを決定するために試料当たり１０,０００の事象を集めた。ＣＴＬアッセイの評価のためのクロム放出アッセイ：⁵¹Ｃｒ−標識標的細胞を洗浄し、エフェクター細胞とともにＥ：Ｔ比１００：１、２０：１および４：１にて９６ウエルプレート中にウエル当たり１×１０⁴でプレーティングした。使用した標的細胞には、Ｐ８１５（Ｈ−２^d）、ＬＢ２７.４（Ｈ−２^bxd）およびｃ１１８.５（Ｈ−２^b）が含まれていた。プレートを簡単に遠心分離にかけ、ついで５％ＣＯ₂中、３７℃にて４時間インキュベートした。プレートをもう一度遠心分離にかけ、細胞不含上澄み液のアリコートを各ウエルから回収してガンマカウンターでカウントした。特異的溶解パーセントは、（ａ−ｂ）／ｃ（式中、ａ＝エフェクター細胞とともにインキュベートした標的細胞から放出されるｃｐｍ、ｂ＝培地とのみインキュベートした標的細胞から放出される（自然放出）ｃｐｍ、およびｃ＝標的細胞について凍結−融解放出可能なｃｐｍ（導入した全ｃｐｍの約８０％））として定義される。急性ＧＶＨＤ脾臓細胞のインビトロでの二次刺激：急性ＧＶＨＤ脾臓を、抗ｇｐ３９抗体処理した動物、ＨＩｇ処理した動物、または未処理動物から取り出した。脾臓の赤血球を欠失させ、ついで細胞ウエル当たり１×１０⁴のアリコートとした。照射したスティミュレーター細胞（Ｐ８１５）を上記のように適当な標的細胞に加えた。化Ｂ細胞の表面上のＢ７−１および／またはＢ７−２などのコスティミュラトリー分子の発現をアッセイすることにより活性化Ｂ細胞から区別することができる。結果マウスにおけるＧＶＨＤは脾腫となるマウスにおいてｃＧＶＨＤの結果の一つは脾臓の肥大である。これはドナー細胞の存在に応答して生じるものであるが、脾臓中に浸潤し肥大させるのは主として宿主自身の細胞である（ロリンク（Ｒolink,Ａ.Ｇ.）ら（１９８３）Ｊ.Ｅxp. Ｍed.１５８：５４６）。図５は、ｃＧＶＨＤの開始から７〜１４日後には、脾臓がｃＧＶＨＤのないマウスに比べてほとんど２倍の数の白血球を含むことを示している。ｃＧＶＨＤの開始のときにマウスを抗ｇｐ３９抗体で処理すると（２５０μｇ／マウス、第０日目、２日目、４日目、および６日目）、ｃＧＶＨＤマウス中の白血球／脾臓の数が疾患のないマウスと同等の値まで減少する。ＧＶＨＤによって誘導されたポリクローナル免疫グロブリンの過剰産生ｃＧＶＨＤを有するマウスではドナーＴ細胞とＢ細胞との間の同族相互作用のためにＩｇの過剰産生が起こることが報告されている（モリス（Ｍorris,Ｓ.Ｅ. ）ら（１９９０）Ｊ.Ｅxp.Ｍed.１７１：５０３）。抗ｇｐ３９抗体がＩｇの過剰産生を抑制するかどうかを決定するため、ｃＧＶＨＤを有するマウスに抗ｇｐ３９抗体を投与した。第７日目または１４日目に対照およびｃＧＶＨＤマウスから脾臓を取り出し、インビトロでのＩｇＧ₁およびＩｇＡの自然産生についてＢ細胞をアッセイした。ｃＧＶＨＤを有するマウスの脾臓細胞はインビトロで高レベルのＩｇＡおよびＩｇＧ₁を産生した（図６Ａおよび６Ｂ）。しかしながら、ｃＧＶＨＤを有し抗ｇｐ３９抗体で処理した（第０日目、２日目、４日目および６日目）マウスでは、疾患を有しないマウスと同等のレベルでＩｇＧ₁およびＩｇＡを産生した。ｃＧＶＨＤを有するマウスの脾臓細胞の培養液に抗ｇｐ３９抗体を加えてもインビトロでのＩｇ産生レベルは減少せず、抗ｇｐ３９抗体がインビボでその作用を発揮することが示唆された。これら実験においてハムスターＩｇ（ＨＩｇ）を対照として用いると、ＧＶＨＤの誘導において何ら抑制的役割を示さず、実際にはポリクローナルＩｇの産生のみならず結果としての脾腫においても該疾患が強調されることがわかった。未処理の１週間ＧＶＨＤ誘導マウスに比べ、１週間ＨＩｇ処理したＧＶＨＤ誘導マウスにより産生されるＩｇのレベルは８倍増加することが検出された。ＨＩｇはそれ自体免疫原であることは明白であった。従って、未処理のＦ₁受容マウスを関連対照群と表示することに決定した。ＧＶＨＤにより誘導された血清の過剰なＩｇＥおよび抗ＤＮＡ自己抗体に対する抗ｇｐ３９抗体の作用ｃＧＶＨＤの経過は、血清ＩｇＥおよび二本鎖ＤＮＡに対する抗体の上昇によりモニターできる（モリスら（１９９０）Ｊ.Ｅxp.Ｍed.１７１：５０３）。血清ＩｇＥレベルはＩｇＥ特異的なＥＬＩＳＡを用いて測定した。慢性ＧＶＨＤが誘導されたマウスを抗ｇｐ３９抗体で第０日目、２日目、４日目および６日目に処理し、その後、何ら抗体を投与しなかった。マウスを１週間毎に採血し、血清ＩｇＥレベルを確かめた（図７Ａ）。ｃＧＶＨＤは血清ＩｇＥレベルを１０〜１５倍増加させる。抗ｇｐ３９抗体の投与は、ｃＧＶＨＤによって誘導された血清ＩｇＥの増加を疾患の開始から８週間後まで抑制した。上昇血清ＩｇＥの抑制に加え、抗ｇｐ３９抗体の投与はまた血清の抗ＤＮＡ自己抗体の生成を阻止した。慢性ＧＶＨＤは抗ＤＮＡ抗体のレベルを５〜１０倍上昇させるが、これが抗ｇｐ３９抗体処理によって減少した（図７Ｂ）。以前の研究によると抗ｇｐ３９抗体（ＭＲ１クローン）の半減期は１２日である（フォイら（１９９３）Ｊ.Ｅxp.Ｍed.１７８：１５６７〜１５７５）。抗ｇｐ３９抗体の検出に特異的なＥＬＩＳＡアッセイは、治療後８週間の処理マウスの血清で抗ｇｐ３９抗体が検出されないことを示している。それゆえ、持続する抗ｇｐ３９抗体ではｃＧＶＨＤの長引いた抑制を説明できない。ｃＧＶＨＤを有するマウスおよび抗ｇｐ３９抗体を投与したマウスからの脾臓細胞がｃＧＶＨＤを転移しうるか否かを調べるため、転移研究を行った。ｃＧＶＨＤおよび抗ｇｐ３９抗体を受けた脾臓細胞は養子転移（adoptive transfer）によりＩｇＥおよび抗ＤＮＡ自己抗体の上昇血清レベルを誘導できなかったが、一方、ｃＧＶＨＤを有するマウスの脾臓細胞は高められたｓＩｇＥおよび抗ＤＮＡ抗体を誘導した。これらデータは、アロ反応性のＴ細胞が誘導されて抗ｇｐ３９抗体処理の結果、非応答性になったことを示唆している。アロ反応性のドナー細胞の検出ドナー由来の細胞の脾臓内での存在についてｃＧＶＨＤ誘導したマウスを分析したところ、Ｈ−２Ｋ^bおよびＨ−２Ｄ^dに対して二重に陽性に染色される正常なＢＤＦ₁と比べ、ｃＧＶＨＤは約５〜７％のドナー細胞を有していた。これら細胞はＤＢＡ／２由来であり、それゆえＨ−２Ｄ^dに対してのみ陽性に染色される。これら細胞は抗ｇｐ３９抗体処理とは無関係に検出された。このことは、未処理のｃＧＶＨＤ群においてポリクローナルＩｇの産生をもたらす受容Ｂ細胞に対するヘルパー機能を生じさせることなく抗ｇｐ３９抗体処理がドナー細胞の移植を可能とする時点を示している。急性ＧＶＨＤの誘導に対する抗ｇｐ３９抗体処理の効果急性ＧＶＨＤは、増大した抗同種ＣＴＬ応答の誘導を伴う。ｇｐ３９−ＣＤ４０相互作用がＴ_h−Ｂ細胞相互作用に重要であることは明らかであるが、他の免疫エフェクター機構の誘導もまた抗ｇｐ３９抗体療法によって変化を受けるのかどうかについては明らかではない。ＡＧＶＨＤをＦ₁受容者にＣ５７ＢＬ／６脾臓を投与することにより誘導した。図８に示すように、同種細胞の移植から１２日後に強いＨ−２^b抗Ｈ−２^d ＣＴＬ応答が測定される。マウスをＨＩｇではなく抗ｇｐ３９抗体で処理すると、Ｈ−２^b抗Ｈ−２^d ＣＴＬの生成が妨害された（図８）。２つの実験のうち一つにおいて、抗ｇｐ３９抗体で処理するとＣＴＬ応答が未感作脾臓細胞で観察されるものよりも低い程度まで減少した。このことは、攻撃したときにＧＶＨＤマウスからの脾臓細胞を示唆した。ついで、これら脾臓細胞を照射Ｐ８１５細胞の存在下で７日間培養し、ついでＣＴＬアッセイを行うと、これら細胞は該Ｐ８１５細胞に対して二次刺激を起こさなかったが、正常なＢＤＦ₁脾臓は一次応答を起こした。未処理のａＧＶＨＤ誘導マウスは、予想通り二次免疫応答を起こした。これら結果は、急性ＧＶＨＤマウスを抗ｇｐ３９抗体で処理するとＣＤ８＋集団が二次攻撃に対して非応答性になることを示している。考察抗ｇｐ３９抗体投与によるＧＶＨ誘導マウスにおける脾腫の逆転（図５）、過剰Ｉｇ産生の抑制（図６Ａおよび６Ｂ）、ＩｇＥおよび抗ＤＮＡ自己抗体産生の血清レベルの抑制（図７Ａおよび７Ｂ）は、抗ｇｐ３９抗体が移植したＴ細胞が宿主Ｂ細胞活性化を誘導する能力を阻止することを示唆している。この脾腫およびポリクローナルＩｇＧ₁およびＩｇＡ産生の抑制は抗体投与終了の７日後に低いままである。ＩｇＥおよび抗ＤＮＡ抗体の減少は、該処理の終了後８週間持続する。これら結果は、反応性Ｔ細胞のクローン性欠失かまたはＴ細胞アネルギーが起こったかのいずれかによりＴ細胞機能が影響を受けたことを示している。サイトカイン産生細胞レベルは抗体処理マウスにおいて正常のままであることが免疫マウスのインシトゥ研究において以前に示されている（ファン・デン・アートウエ（Ｖan den Ｅertwegh）ら（１９９３）Ｊ.Ｅxp.Ｍed.１７８：１５５５〜１５６５）。このことは該処理の結果としてＴ細胞が欠失しないことを示している。ｃＧＶＨＤマウスをドナー由来細胞の存在について分析すると、未処理であるか抗ｇｐ３９抗体で処理したかに関係なく存在することがわかった。それゆえ、抗ｇｐ３９抗体は、これらドナーＴ細胞に非応答性の状態を誘導する能力を有し、抗体応答の抑制を引き起こす。実際、これら動物の脾臓を未感作の受容者に移植すると、ドナーの脾臓が未処理のｃＧＶＨＤである場合に抗体レベルが上昇するが、抗ｇｐ３９抗体処理したｃＧＶＨＤマウスは移植後に二次ｃＧＶＨＤ状態を生じさせることができない。このデータは、抗ｇｐ３９抗体がＴ細胞が強いＧＶＨＤ臨床免疫病理学および脾腫を引き起こす能力を妨害すること、抗体投与がＣＤ４⁺サブ集団に非応答性を引き起こすことを示唆している。フリーンド（Ｆriend）マウス白血病ウイルス誘発白血病に対する防御Ｔ細胞免疫を誘導させるためのＢ細胞欠失マウスの研究によって認められるように、ＣＴＬの誘導のためにヘルプを提供するにはＢ細胞が必要である（シュルツ（Ｓch ultz,Ｋ.Ｒ.）ら（１９９０）Ｓcience２４９）。それゆえ、ａＧＶＨＤ誘導マウスにおいて抗ｇｐ３９抗体はＢ細胞の活性化を抑制し、それゆえ抗原の呈示を妨害し、かくしてＣＤ８⁺Ｔ細胞を感作するものと思われる。ＣＤ８⁺ＣＴＬの生成にはクラスII制限（class II−restricted）Ｔｈ細胞が必要であること（フォン・ベーマー（von Ｂoehmer,Ｈ.）ら（１９７９）Ｊ.Ｅxp.Ｍed.１５０：１１３４；キーン（Ｋeene,Ｊ.）ら（１９８２）Ｊ.Ｅxp.Ｍed.１５５：７６８）およびＴＣＲ親和性が低い場合にはＣＤ４＋媒体Ｔ細胞ヘルプがインビボで必要であることもまた示唆されている（ガオ（Ｇao,Ｘ.）ら（１９９１）Ｊ.Ｉmmuno l.１４７：３２６８）。ＣＤ８＋ＣＴＬ応答の誘導におけるＣＤ２８−Ｂ７／ＢＢ１相互作用の役割を考察する研究が行われている。ＣＤ２８−Ｂ７／ＢＢ１相互作用はクラスＩＭＨＣ特異的ＣＴＬの生成に必要であり充分であることがわかった（ハーディング（Ｈarding,Ｆ.Ａ.）およびアリソン（Ａllison,Ｊ.Ｐ.）（１９９３）Ｊ.Ｅxp.Ｍ ed.１７７：１７９１）。ＣＤ４０に対する抗体による正常および白血病Ｂ細胞でのＢ７発現の抑制を含む研究によって示されるように、ＣＤ４０のリガンドがＢ７の重要なインデューサーであるかもしれないことが示唆されている（ランハイム（Ｒanheim,Ｅ.Ａ.）およびキップス（Ｋipps,Ｔ.Ｊ.）（１９９３）Ｊ.Ｅx p.Ｍed.１７７：９２５）。以上を総合すると、これら研究は、抗ｇｐ３９抗体は、ＣＤ４＋Ｔ細胞とＢ細胞との相互作用を阻止することによって、増殖およびサイトカインの産生を可能とするほど充分にＢ細胞がＴ細胞を活性化させるようにするＢ７の発現を誘導できないようにすることを示している。以上を要するに、このデータは、まずｇｐ３９とそのリガンドＣＤ４０との間のＴ−Ｂ細胞同族相互作用によるＣＴＬ生成の誘導にＣＤ４＋Ｔ細胞が必要であることを示唆している。ついで、Ｂ細胞上のＣＤ４０のシグナル生成（signaling）はＢ７／ＢＢ１を上方制御（upregulation）する。ついで、Ｂ７／ＢＢ１とＴ細胞上のリガンドＣＤ２８との相互作用がＴ細胞増殖およびサイトカイン産生を促進させる。しかしながら、Ｔ細胞に一つのシグナルのみが提供される、すなわちｇｐ３９とＣＤ４０との相互作用のみの場合には、第二のシグナルは得られない。ついで、Ｔ細胞において非応答性が誘導され、寛容となり、またはアネルギーとなる。これら研究は、ａＧＶＨＤがマウスに誘導される場合には抗Ｈ−２^d応答が得られることを示している。しかしながら、動物を抗ｇｐ３９抗体で処理するとＣＴＬ応答は得られない。抗ｇｐ３９抗体は、以前に記載された方法によって（シュルツら（１９９０）Ｓcience２４９）ＣＴＬ生成を抑制することが明らかである。Ｂ細胞はＣＤ４０結合によって活性化されえず、それゆえＣＴＬの誘導を促進することができない。さらに、本発明者らの研究は、脾臓細胞をインビトロでＰ８１５細胞で攻撃した場合に、抗ｇｐ３９抗体にインビボで暴露された細胞は二次抗Ｈ−２^dＣＴＬを起こさせることができないことを示している。それゆえ、このことは、抗ｇｐ３９抗体がＴ細胞区画に寛容の状態を誘導したことを示している。なぜなら、ｇｐ３９はＣＤ４０に結合することができないからであり、かくしてＢ７／ＢＢ１上方制御は存在せず、それゆえＴ細胞はさらに活性化されることなく非応答性のままである。また、休止Ｂ細胞は、抗ＩｇＭ抗体、ＰＭＡまたはＬＰＳで前以て活性化されない限り、混合リンパ球反応において同種Ｔ細胞の効果のないスティミュレーターであることも知られている（イナバ（Ｉnaba ,Ｋ.）およびステインマン（Ｓteinman,Ｒ.Ｍ.）（１９８９）Ｊ.Ｅxp.Ｍed.１６０：１７１７；メットレイ（Ｍetley,Ｊ.Ｐ.）ら（１９８９）Ｊ.Ｅxp.Ｍed. １６９：２３９；フローマン（Ｆrohman,Ｍ.）およびカウイング（Ｃowing,Ｃ. ）（１９８５）Ｊ.Ｉmmunol.１３４：２２６９）。加えて、インビボでの呈示のためのＢ細胞に向けられた可溶性のモノマー抗原は特異的Ｔ細胞アネルギーとなる（エイノン（Ｅynon,Ｅ.Ｅ.）およびパーカー（Ｐarker,Ｄ.）（１９９２）Ｊ .Ｅxp.Ｍed.１７５：１３１）。それゆえ、関与する抗原およびＡＰＣの投与法に依存してアネルギーまたは寛容が誘導されることが明らかであると思われる。脾臓のＣＤ８＋Ｔ細胞区画にＰ８１５細胞を攻撃させると、抗原呈示のためにＢ細胞は必要ではなく、かくしてアロ抗原を直接呈示することができ、ＣＴＬを誘導することができる。該脾臓の二次刺激への非応答性は、この系においてアロ特異的な寛容が誘導されたことを示している。このことは、抗原特異的な系において抗体によって寛容が誘導されないことを示す以前の研究（フォイら（１９９３）Ｊ.Ｅxp.Ｍed.１７８：１５６７〜１５７５）と反対である。これら２つの系は異なる。というのは、ａＧＶＨＤモデルは抗原呈示細胞にすでに結合したアロ抗原を呈示するのに対して、抗原特異的な系では抗原を投与し、インビボで取り込み、プロセスを受け、プロフェッショナルＡＰＣによって呈示されるからである。それゆえ、抗ｇｐ３９抗体は使用した抗原および呈示方法に依存して異なる効果を有する。抗ｇｐ３９抗体は免疫系のＣＤ４＋およびＣＤ８＋区画の両方においてアロ特異的な寛容を誘導すること、およびこのことは移植免疫学および免疫療法を考慮する場合に明らかに有利な治療学的介入であることが結論付けられる。骨髄移植を受けている患者の治療において、抗ｇｐ３９抗体療法は該移植に対する寛容を誘導するに充分であり、ＧＶＨＤなどのような移植処置による結果の誘導を防ぐであろうことが考えられる。実施例６：抗ｇｐ３９抗体の産生および特徴付け実験１−ヒトｇｐ３９に対する抗体ヒト被験者において抗原特異的なＴ細胞寛容を誘導するには、ヒトｇｐ３９に対する抗体を投与するのが好ましい。マウス抗ヒトｇｐ３９モノクローナル抗体を作製するため、以下の方法を用いた。Ｂａｌｂ／ｃマウスを完全フロイントアジュバント（ＣＦＡ）中の可溶性ｇｐ３９融合タンパク質、ｇｐ３９−ＣＤ８で免疫した。引き続き、マウスを不完全フロイントアジュバント（ＩＦＡ）中の可溶性ｇｐ３９−ＣＤ８で６週間後に攻撃した。二次免疫の４週間後に可溶性ｇｐ３９−ＣＤ８を可溶性の形態で与えた。ついで、２週間後にマウスを活性化ヒト末梢血リンパ球でブースター処理し、ついでさらに２週間後に活性化ｇｐ３９− ＣＤ８で最後のブースター処理を行った。最後の免疫から４日目に標準プロトコールに従って脾臓細胞をＮＳ−１融合相手と融合させた。抗ｇｐ３９抗体を産生する細胞を、複数スクリーニング法に基づいて選択した。クローンをまず、ｇｐ３９−ＣＤ８を用いたプレート結合アッセイによりスクリーニングした。ついで、陽性のクローンを対照のＣＤ８融合タンパク質であるＣＤ７２−ＣＤ８に対してスクリーニングした。ＣＤ８−ＣＤ７２プレート結合アッセイで陽性とされたクローンを排除した。残ったクローンを、引き続き休止および６時間活性化ヒト末梢血リンパ球（ＰＢＬ）上でスクリーニングし、ついでフローサイトメトリー分析を行った。活性化されたＰＢＬは染色するが休止ＰＢＬは染色しないハイブリドーマを陽性とした。最後に、残りのクローンをｇｐ３９の結合したプレートへのＣＤ４０Ｉｇの結合を阻止する能力について試験した。プレート結合アッセイにおいて、約３００クローンがｇｐ３９−ＣＤ８およびＣＤ７２−ＣＤ８に対して最初にスクリーニングされた。これらクローンのうち、３０のクローンはプレートに結合したｇｐ３９を検出するがＣＤ８は検出しないことがわかった。引き続き、これらクローンを活性化ヒトＰＢＬ上のｇｐ３９の検出についてスクリーニングした。約１５のクローンが活性化ＰＢＬ上の分子を検出したが、休止細胞上の分子は検出しなかった。これらクローンがプレートに結合したｇｐ３９のＣＤ４０Ｉｇ検出を阻止する能力を決定することにより特異性をさらに確認した。１０のクローンのうち３つのクローンが、このアッセイにおいてＣＤ４０Ｉｇ結合を阻止することが試験された。これらクローンは、３Ｅ４、２Ｈ５および２Ｈ８であった。かかるクローンは本発明の方法に使用するのに好ましい。活性化ＰＢＬでは陽性だが休止ＰＢＬでは陽性ではないと試験されたクローンを、活性化されたラットＴ細胞クローンであるＰＯＭＣ８との反応性についてもスクリーニングした。クローン２Ｈ８はこのラットＴ細胞株との交差反応性を示した。実験２−ヒトｇｐ３９に対する抗体実験１と同様の免疫手順を用い、ヒトｇｐ３９に対する別の抗体を産生させた。１匹のＢａｌｂ／ｃマウスをＣＦＡ中の可溶性ｇｐ３９−ＣＤ８で免疫し、ついで４週間後に６時間活性化ヒト末梢血リンパ球で攻撃した。脾臓細胞をＮＳ− １融合相手と標準プロトコールに従って融合させる４日前に、マウスを可溶性ｇｐ３９−ＣＤ８でブースター処理した。ハイブリドーマクローンのスクリーニングを６時間活性化ヒトＰＢＬのフローサイトメトリー染色により行った。活性化ヒトＰＢＬは染色するが休止ヒトＰＢＬは染色しないクローンを選択した。６つのクローン、４Ｄ９−８、４Ｄ９−９、２４−３１、２４−４３、８９−７６および８９−７９を選択し、さらに分析した。これら選択した抗体の特異性を幾つかのアッセイにより確認した。まず、フローサイトメトリー分析は、６つのすべてのｍＡｂが活性化末梢血Ｔ細胞を染色するが休止末梢血Ｔ細胞は染色しないことを示した（代表的な例について図９Ｂおよび９Ｃを参照、それぞれ、活性化Ｔ細胞の４Ｄ９−８および４Ｄ９−９による染色を示す）。これら６つの抗体のそれぞれによって認識される分子の発現は、活性化の４時間以内には検出可能であり、活性化の６〜８時間で最大であり、活性化の２４時間後には検出できない。６つのすべてのｍＡｂは活性化ＣＤ３⁺ＰＢＬ上に発現される分子（主としてＣＤ４＋表現型の）を認識するが、ＣＤ８⁺ Ｔ細胞の一部もまた該分子を発現する。これら６つのｍＡｂによって認識される分子の発現は、ｇｐ３９の発現と同様に培地中のシクロスポリンＡの存在によって抑制される（代表的な例について図１０Ａおよび１０Ｂを参照、それそれ、シクロスポリン処理Ｔ細胞の４Ｄ９−８および４Ｄ９−９による染色を示す）。これら６つのｍＡｂによって認識される分子の発現の動力学および分布は、ヒトＣＤ４０Ｉｇの融合タンパク質によって検出されるようにｇｐ３９のものと同一である。加えて、これら６つのすべてのｍＡｂはＣＤ４０Ｉｇによるｇｐ３９の染色を阻止する（代表的な例について図１１Ａおよび１１Ｂを参照、それぞれ、４Ｄ９−８および４Ｄ９−９の存在下でのＣＤ４０Ｉｇによるｇｐ３９染色の抑制を示す）。ＥＬＩＳＡアッセイにおいて、これら６つのすべてのｍＡｂは可溶性融合形態のｇｐ３９分子であるｇｐ３９−ＣＤ８を認識する。さらに、これら６つのすべてのｍＡｂは、³⁵Ｓ−メチオニン標識した活性化ヒトＰＢＬから約３６ｋｄの分子を免疫沈降させる。この免疫沈降した分子は、ヒトＣＤ４０Ｉｇ融合タンパク質によって沈降したものと同一である。上記６つのの選択したｍＡｂ（４Ｄ９−８、４Ｄ９−９、２４−３１、２４− ４３、８９−７６および８９−７９）の機能的活性を以下のようにしてアッセイした。まず、ＩＬ−４および可溶性ｇｐ３９とともに培養した精製ヒトＢ細胞の増殖をｍＡｂが抑制する能力を測定した。精製ヒトＢ細胞を、精製モノクローナル抗体またはＣＤ４０Ｉｇ（０〜１２．５μｇ／ｍｌの範囲の投与量）の存在下または不在下でｇｐ３９およびＩＬ−４とともに培養した。培養３日後にチミジン導入によりＢ細胞増殖を決定した。得られた結果（図１２に示す）は、６つのすべてのｍＡｂがｇｐ３９およびＩＬ−４によって誘導されるＢ細胞増殖を抑制しうることを示している。ｍＡｂ８９−７６および２４−３１は誘導Ｂ細胞増殖の抑制において最も効果的であった。ＩＣ₅₀（Ｂ細胞増殖を５０％抑制するのに必要な抗体の濃度）は、８９−７６については約１μｇ／ｍｌ、２４−３１については約１.２５μｇ／ｍｌであった。つぎに、抗ＣＤ３抗体活性化Ｔ細胞およびＩＬ−２によって誘導されるＩｇ産生により測定されるように、Ｂ細胞分化をｍＡｂが抑制する能力を調べた。精製ＩｇＤ⁺ヒトＢ細胞をＦＡＣＳによる陽性選択により調製し、ついで精製抗ｇｐ３９モノクローナル抗体（０〜１０μｇ／ｍｌの範囲の投与量）の存在下または不在下、抗ＣＤ３抗体活性化ヒトＴ細胞（マイトマイシンＣ処理）およびＩＬ− ２とともに６日間培養した。ＩｇＭ、ＩｇＧおよびＩｇＡ産生を第６日目にＥＬＩＳＡにより評価した。得られた結果（下記表３に示す）は、ＩｇＭ、ＩｇＧおよびＩｇＡ産生によって測定されるように、これら６つのすべての抗体はＴ細胞依存性Ｂ細胞分化を抑制しうることを示している。ＩＣ₅₀（Ｉｇ産生を５０％抑制するのに必要な抗体の濃度）は、２４−３１抗体および８９−７６抗体を含む上記６つのｍＡｂについて１.０μｇ／ｍｌから０.１μｇ／ｍｌ未満の範囲であった。Ｔ細胞応答に対する抗ｇｐ３９ｍＡｂの作用を調べるため、これらｍＡｂを標準混合リンパ球反応（ＭＬＲ）中に含めた。３００,０００個のヒト末梢血リンパ球（レスポンダー＝Ｒ）を抗ｇｐ３９ｍＡｂ（１０μｇ／ｍｌ）の存在下または不在下、１００,０００個の照射同種末梢血リンパ球（スチィミュレーター＝Ｓ）とともに培養した。培養液を第４日目、５日目または６日目に３Ｈ−チミジンでパルス標識し、１８時間後に回収した。６つのすべての抗ヒトｇｐ３９ｍＡｂは、ＭＬＲによって測定されるようにアロ特異的応答を抑制した（代表的な例について図１３を参照、ＲおよびＳを２４−３１および８９−７６の存在下でインキュベートした場合のアロ特異的応答の抑制を示す；ＣＴＬＡ４−免疫グロブリン融合タンパク質および抗ＣＤ２８ｍＡｂを正の対照として用いた）。上記６つのｍＡｂがヒトｇｐ３９分子上の異なるエピトープを認識するのかどうかを決定するため、交差実験を行った。まず、活性化ヒトＰＢＬを上記６つのｍＡｂのそれぞれで阻止した（２５μｇ／ｍｌの未結合抗体）。細胞を洗浄し、ついで１０μｇ／ｍｌのビオチン結合抗体で染色し、ついでフィトエリトリン（ phytoerythrin）結合アビジン（ＰＥ−Ａｖ）と反応させた。ＰＥ−Ａｖでの細胞の染色をＦＡＣＳにより分析した。その結果を下記表４に示す。すべての抗体が活性化ヒトＰＢＬへのＣＤ４０Ｉｇの結合を阻止した。しかしながら、表４に示すデータは、幾つかの抗体は他の抗体が活性化ヒトＰＢＬに結合するのを阻止できないことを明らかに示しており、これらがヒトｇｐ３９分子上の異なるエピトープを認識することを示唆している。８９−７６抗体および２４−３１抗体をそれそれ産生する８９−７６および２４−３１ハイブリドーマは、ブダペスト条約の規定に従い、アメリカン・タイプ・カルチャー・コレクション、パークローンドライブ、ロックビル、メリーランド州に１９９４年９月２日に寄託してある。８９−７６ハイブリドーマはＡＴＣＣ受託番号、２４−３１ハイブリドーマはＡＴＣＣ受託番号を与えられた。２４−３１抗体および８９−７６抗体はＩｇＧ１イソタイプである。実験３−マウスｇｐ３９に対する抗体本発明の一つの態様にいて、ｇｐ３９アンタゴニストは抗マウスｇｐ３９モノクローナル抗体、ＭＲ１である。以下の方法を用いてＭＲ１モノクローナル抗体を作製し、ｇｐ３９に対する他の抗体を作製するのにも用いることができる。ハムスターを５〜１０⁶個の活性化Ｔ_h１細胞（ｄ１.６）で１週間間隔で６週間腹腔内免疫した。マウスＴ_h１に対する血清力価が約１：１０,０００よりも大きいときに、免疫ハムスターの脾臓細胞およびＮＳ−１を用いてポリエチレングリコールで細胞融合を行った。増殖するハイブリドーマを含むウエルからの上澄み液を休止Ｔ_h１および活性化Ｔ_h１に対するフローサイトメトリーによりスクリーニングした。活性化Ｔ_hを選択的に認識するＭａｂを産生した一つの特定のハイブリドーマをさらに試験し、サブクローニングしてＭＲ１を得た。ＭＲ１は腹水中で産生され、イオン交換ＨＰＬＣにより精製した。ハイブリドーマＭＲ１はアメリカン・タイプ・カルチャー・コレクションに寄託してあり、受託番号ＨＢ１１０４８を与えられた。

───────────────────────────────────────────────────── フロントページの続き (81)指定国ＥＰ(ＡＴ，ＢＥ，ＣＨ，ＤＥ，ＤＫ，ＥＳ，ＦＲ，ＧＢ，ＧＲ，ＩＥ，ＩＴ，ＬＵ，ＭＣ，ＮＬ，ＰＴ，ＳＥ)，ＯＡ(ＢＦ，ＢＪ，ＣＦ，ＣＧ，ＣＩ，ＣＭ，ＧＡ，ＧＮ，ＭＬ，ＭＲ，ＮＥ，ＳＮ，ＴＤ，ＴＧ)，ＡＰ(ＫＥ，ＭＷ，ＳＤ)，ＡＭ，ＡＴ，ＡＵ，ＢＢ，ＢＧ，ＢＲ，ＢＹ，ＣＡ，ＣＨ，ＣＮ，ＣＺ，ＤＥ，ＤＫ，ＥＥ，ＥＳ，ＦＩ，ＧＢ，ＧＥ，ＨＵ，ＪＰ，ＫＥ，ＫＧ，ＫＰ，ＫＲ，ＫＺ，ＬＫ，ＬＲ，ＬＴ，ＬＵ，ＬＶ，ＭＤ，ＭＧ，ＭＮ，ＭＷ，ＮＬ，ＮＯ，ＮＺ，ＰＬ，ＰＴ，ＲＯ，ＲＵ，ＳＤ，ＳＥ，ＳＩ，ＳＫ，ＴＪ，ＴＴ，ＵＡ，ＵＳ，ＵＺ，ＶＮ (72)発明者デュリー，フィオナ・エイチアメリカ合衆国98107ワシントン、シアトル、ナンバー101、ノース・ウエスト・フィフティーエイス1731番

Claims

【特許請求の範囲】１．被験者に、（ａ）Ｔ細胞に抗原を呈示し、接触依存性のヘルパーエフェクター機能を媒体する該Ｔ細胞の表面上の受容体と相互作用するリガンドを表面に有する細胞、および（ｂ）該リガンドと該受容体との間の相互作用を抑制する、該Ｔ細胞の表面上の該受容体のアンタゴニストを投与することを特徴とする、抗原特異的なＴ細胞寛容をインビボで誘導する方法。２．接触依存性のヘルパーエフェクター機能を媒体する該Ｔ細胞の表面上の該受容体がｇｐ３９である、請求項１に記載の方法。３．該アンタゴニストが抗ｇｐ３９抗体である請求項２に記載の方法。４．該細胞が休止Ｂ細胞である請求項１に記載の方法。５．該Ｂ細胞を投与する前に抗原と接触させる請求項４に記載の方法。６．該細胞が同種Ｂ細胞である請求項１に記載の方法。７．被験者に、（ａ）Ｔ細胞に抗原を呈示し、該Ｔ細胞の表面上のｇｐ３９と相互作用するリガンドを表面に有する細胞、および（ｂ）ｇｐ３９のアンタゴニストを投与することを特徴とする、抗原特異的なＴ細胞寛容をインビボで誘導する方法。８．該アンタゴニストが抗ｇｐ３９抗体である請求項７に記載の方法。９．該抗ｇｐ３９抗体がモノクローナル抗体である請求項８に記載の方法。１０．該抗ｇｐ３９抗体が抗ヒトｇｐ３９抗体である請求項９に記載の方法。１１．該抗ｇｐ３９抗体がモノクローナル抗体２４−３１である請求項１０に記載の方法。１２．該抗ｇｐ３９抗体がモノクローナル抗体８９−７６である請求項１０に記載の方法。１３．該抗ｇｐ３９抗体がキメラモノクローナル抗体である請求項８に記載の方法。１４．該抗ｇｐ３９抗体がヒト化モノクローナル抗体である請求項８に記載の方法。１５．該アンタゴニストが可溶性形態のＣＤ４０である請求項７に記載の方法。１６．該可溶性形態のＣＤ４０が融合タンパク質である請求項１５に記載の方法。１７．該細胞が休止Ｂ細胞である請求項７に記載の方法。１８．該Ｂ細胞を投与する前に抗原と接触させる請求項１６に記載の方法。１９．該抗原がタンパク質である請求項１８に記載の方法。２０．該抗原がアレルゲンである請求項１９に記載の方法。２１．該タンパク質が自己抗原である請求項１９に記載の方法。２２．該細胞が同種Ｂ細胞である請求項７に記載の方法。２３．該細胞が末梢血である請求項７に記載の方法。２４．該細胞が同種骨髄である請求項７に記載の方法。２５．被験者に、（ａ）Ｔ細胞に抗原を呈示するＢ細胞、（ｂ）該Ｂ細胞に付随する抗原、および（ｃ）抗ｇｐ３９抗体を投与することを特徴とする、抗原特異的なＴ細胞寛容をインビボで誘導する方法。２６．該抗ｇｐ３９抗体がモノクローナル抗体である請求項２４に記載の方法。２７．該抗ｇｐ３９抗体が抗ヒトｇｐ３９抗体である請求項２５に記載の方法。２８．該抗ｇｐ３９抗体がモノクローナル抗体２４−３１である請求項２７に記載の方法。２９．該抗ｇｐ３９抗体がモノクローナル抗体８９−７６である請求項２７に記載の方法。３０．該抗原がタンパク質である請求項２５に記載の方法。３１．被験者に、（ａ）Ｔ細胞に抗原を呈示する同種細胞、および（ｂ）抗ｇｐ３９抗体を投与することを特徴とする、同種細胞に対するＴ細胞寛容をインビボで誘導する方法。３２．該抗ｇｐ３９抗体がモノクローナル抗体である請求項３１に記載の方法。３３．該抗ｇｐ３９抗体が抗ヒトｇｐ３９抗体である請求項３１に記載の方法。３４．該抗ｇｐ３９抗体がモノクローナル抗体２４−３１である請求項３３に記載の方法。３５．該抗ｇｐ３９抗体がモノクローナル抗体８９−７６である請求項３３に記載の方法。３６．被験者に、（ａ）同種骨髄、および（ｂ）抗ｇｐ３９抗体を投与することを特徴とする、骨髄移植に対するＴ細胞寛容をインビボで誘導する方法。３７．該抗ｇｐ３９抗体がモノクローナル抗体である請求項３６に記載の方法。３８．該抗ｇｐ３９抗体が抗ヒトｇｐ３９抗体である請求項３７に記載の方法。３９．該抗ｇｐ３９抗体がモノクローナル抗体２４−３１である請求項３８に記載の方法。４０．該抗ｇｐ３９抗体がモノクローナル抗体８９−７６である請求項３８に記載の方法。４１．被験者に、（ａ）同種骨髄、および（ｂ）抗ｇｐ３９抗体を投与することを特徴とする、対宿主移植片疾患を抑制する方法。４２．該抗ｇｐ３９抗体がモノクローナル抗体である請求項４１に記載の方法。４３．該抗ｇｐ３９抗体が抗ヒトｇｐ３９抗体である請求項４２に記載の方法。４４．該抗ｇｐ３９抗体がモノクローナル抗体２４−３１である請求項４３に記載の方法。４５．該抗ｇｐ３９抗体がモノクローナル抗体８９−７６である請求項４３に記載の方法。４６．Ｔ細胞を、（ａ）該Ｔ細胞に抗原を呈示し、該Ｔ細胞の表面上のｇｐ３９と相互作用するリガンドを表面に有する細胞、および（ｂ）ｇｐ３９のアンタゴニストと接触させることを特徴とする、抗原特異的なＴ細胞寛容を誘導する方法。４７．該アンタゴニストが抗ｇｐ３９抗体である請求項４６に記載の方法。４８．該抗ｇｐ３９抗体がモノクローナル抗体である請求項４７に記載の方法。４９．該抗ｇｐ３９抗体が抗ヒトｇｐ３９抗体である請求項４８に記載の方法。５０．該抗ｇｐ３９抗体がモノクローナル抗体２４−３１である請求項４９に記載の方法。５１．該抗ｇｐ３９抗体がモノクローナル抗体８９−７６である請求項４９に記載の方法。５２．該アンタゴニストが可溶性形態のＣＤ４０である請求項４６に記載の方法。５３．該可溶性形態のＣＤ４０が融合タンパク質である請求項５２に記載の方法。５４．該細胞がリンパ細胞である請求項４７に記載の方法。５５．該リンパ細胞が休止Ｂ細胞である請求項５４に記載の方法。５６．該抗原がアレルゲンである請求項４７に記載の方法。５７．該抗原が自己抗原である請求項４７に記載の方法。５８．該抗原がアロ抗原である請求項４７に記載の方法。