JPH0514556B2 - - Google Patents
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Description
(産業上の利用分野)
本発明はL−アラニンの製法に関し、更に詳し
くはL−アスパラギン酸β−脱炭酸酵素活性を有
する微生物のアラニンラセマーゼ活性を除去し、
該微生物を用いてL−アラニンを製造する方法に
関する。 (従来の技術) L−アスパラギン酸β−脱炭酸酵素はL−アス
パラギン酸のみに作用してL−アラニンと炭酸ガ
スとを生成する反応を触媒する酵素である。 従来、上記L−アスパラギン酸β−脱炭酸酵素
を利用するL−アラニンの製造法としては、L−
アスパラギン酸β−脱炭酸酵素活性を有する微生
物を基質であるL−アルパラギン酸またはその塩
含有培地に培養する方法や該微生物の生産した酵
素を基質に作用させる方法等多数知られている。
しかしながら、一般に微生物の細胞壁の構成成分
としてD−アラニンが必須であるため、これらの
微生物は同時にアラニンラセマーゼ活性を有する
ことが知られており、L−アラニンの生成と共に
D−アラニンも副生してくる。従つてL−アスパ
ラギン酸β−脱炭酸酵素活性を有する微生物を用
いて光学純度の高いL−アラニンを効率よく製造
するためには該微生物のアラニンラセマーゼ活性
発現を阻止する必要がある。 しかしながら現在知られている酵素を酸処理す
る方法(特開昭57−132882)では、低PHにおける
タンパク変性を引き起すため、アラニンラセマー
ゼ活性は抑えられるがL−アスパラギン酸β−脱
炭酸酵素活性も共に抑えられるためL−アラニン
の生成量が低下するという難点があつた。 (本発明が解決しようとする問題点) 上記の従来技術のもつている欠点を解決し、低
PHによるタンパク変性を防ぎながらアラニンラセ
マーゼ活性を抑え光学純度の高いL−アラニンの
製造法を確立することにある。 (問題点を解決するための手段) しかるに本発明者等は鋭意研究を重ねた結果、
微生物の有するL−アスパラギン酸β−脱炭酸酵
素活性には全く失活を与えることなく微生物のも
つアラニンラセマーゼ活性のみを選択的に失活さ
せ、同時に菌体内酵素であるL−アスパラギン酸
−β−脱炭素酵素の活性化を図る方法を見出し
た。 即ち、本発明によれば、L−アスパラギン酸β
−脱炭酸酵素活性を有する微生物又はその固定化
微生物をアルカリ処理することにより当該微生物
又は固定化微生物のアラニンラセマーゼ活性が除
去され、更にはこの様にして得られた微生物又は
固定化微生物にL−アスパラギン酸を作用させる
ことによりL−アラニンを製造することができ
る。 また、L−アスパラギン酸の変わりにDL−ア
スパラギン酸を用いれば、本発明の方法によりL
−アラニンとD−アスパラギン酸の混合物を製造
することもできる。 本発明方法において用いられるL−アスパラギ
ン酸β−脱炭酸酵素活性を有する微生物としては
上記活性を有する微生物であればいずれも用いる
ことが出来、かかる微生物としては、例えばシユ
ードモナス・エスピーATCC19121、シユードモ
ナス・ダクネ−IAM1152、アセトバクター・ラ
ンセンスOUT8300、アクロモバクター・ペスチ
フアーIAM1446、アクロモバクター・ペスチフ
アーATCC2509,キサントモナス・ベゴニアエ
IAM1644、ブレビバクテリウム・インペリアル
ATCC8365、アースロバクター・ウレアフアシエ
ンスIAM1658、エルビニア・アロイダエ
IAM1068号等が好適にあげられる。 これらの微生物は遊離菌体のまま用いることが
でき、該菌体をそれ自体公知の方法で固定化した
微生物であつてもよく、例えば光重合生樹脂、ポ
リアクリルアミドゲル、含硫多糖類ゲル(カラギ
ーナン、フアーセレラン等、コラーゲンゲル、ア
ルギン酸ゲル、ポリビニルアルコールゲル、寒天
ゲルで固定した微生物をいずれも本発明の目的に
用いることができる。上記の内光重合生樹脂によ
る場合は例えば特開昭58−187187号記載の通り微
生物菌体の水けん濁液に光重合生樹脂〔例えば
ENT−4000〕およびベンゾインエチルエーテル
を混合したのち光照射により重合せしめることに
より、固定化微生物が得られる。また、カラギー
ナン、フアーセレラン等の含硫多糖類による場合
は例えば特開昭53−6483号に記載の通り微生物菌
体をカラギーナン水溶液にけん濁し、このけん濁
液にゲル化剤(例えば第4周期以上のアルカリ金
属、アルカリ土類金属、アンモニウムイオン等)
を接触させるか冷却してゲル化させることにより
固定化微生物が得られる。含硫多糖類としては分
子内の硫酸基含量10W/W%以上、とりわけ硫酸
基含量12〜62W/W%のものを用いるのが好まし
い。その他、コラーゲンゲル、アルギン酸ゲル、
ポリビニルアルコールゲル、寒天ゲル等による場
合も、それ自体公知の方法例えば特開昭51−
144780号、特開昭49−30582号、特開昭49−80285
号、特開昭51−133484号記載の方法に従つて当該
微生物を処理することにより容易に相当する固定
化微生物を得ることができる。これらの固定化微
生物は例えば立方体状(1辺約3mm程度)、球状
(直径約3mm程度)、繊維状(径約1mm程度)、膜
状あるいは板状等の適当な形状に成型すればつづ
いての処理操作を効率よく実施できるので好まし
い。 上記の如き微生物又は固定化微生物のアルカリ
処理は当該微生物又は固定化微生物をアルカリ溶
液中に浸漬するか又は当該微生物又は固定化微生
物を含有する液中にアルカリを加えることにより
実施できる。アルカリとしては、例えば苛性ソー
ダ、苛性カリ、水酸化カルシウム、水酸化アンモ
ニウム、炭酸ソーダ等の無機アルカリ、テトラヒ
ドロフラン、トリスヒドロキシメチルエタン等の
有機アルカリのいずれも用いることができる。こ
れらアルカリによる処理はPH8〜12、とりわけ
8.5〜10の条件下に実施するのが好ましく、又ア
ルカリは水溶液それ自体だけでなくアルカリ緩衝
液をも用いることができる。 微生物又は固定化微生物含有液中にアルカリを
加えて実施する場合には前記アルカリを上記PH範
囲となるようにアルカリの添加量を調整すること
により行なう。更に微生物又は固定化微生物のア
ルカリ処理は約0〜60℃、とりわけ約20〜50℃で
実施するのが好ましい。接触時間は微生物が遊離
菌体の場合約3分〜24時間、とりわけ約5分〜10
時間程度とするのが好ましく、固定化微生物の場
合には約10分〜5日間、とりわけ約1〜48時間程
度とするのが好ましい。 かくして得られたアラニンラセマーゼ活性の除
去された微生物又は固定化微生物にL−アスパラ
ギン酸またはその塩を作用させるとL−アラニン
が得られ、またDL−アスパラギン酸を作用させ
ると、L−アラニンが得られD−アスパラギン酸
はそのまま残る。ここでL−アスパラギン酸また
はDL−アスパラギン酸の塩としては、例えばそ
れらのナトリウム塩、カリウム塩、カルシウム
塩、アンモニウム塩等が好ましい。酵素反応は、
0〜50℃の広い温度範囲で実施することができる
が、微生物の酵素の安定性を考慮して30〜40℃で
実施するのが好ましい。尚、上記酵素反応に際し
ては基質溶液にピリドキサールリン酸、ケト酸
(例えばピルビン酸、α−ケトグルタール酸等)
等を適宣添加することにより該酵素反応を一層促
進させることが出来、また更にコバルトイオン、
ニツケルイオン等の2価金属イオンを添加すると
微生物の酵素活性の安定性を高めることが出来
る。 上記において、遊離の微生物を用いる場合の反
応はバツチ法で実施するのが好ましい。又、固定
化微生物を用いる場合の反応は使用する固定化微
生物が水に不溶性であるため、バツチ法によるの
みならずカラム法によつて連続的に実施すること
が出来る。例えばカラム法による場合、該固定化
微生物をカラムに充填し、このカラムにL−アス
パラギン酸、DL−アスパラギン酸またはそれら
の塩を有する溶液を適当な速度で導通すればL−
アラニンのみ、あるいはL−アラニンとD−アス
パラギン酸とを含む流出液が得られる。なおこの
場合、酸素反応により生成する炭酸ガスのカラム
内への滞留を避けるため基質溶液はカラム下部よ
り上部に向けて流すのが好ましい。またバツチ法
による場合、該固定化微生物を上記基質溶液にけ
ん濁し、かく拌する如き方法によりL−アラニン
のみあるいはL−アラニンとD−アスパラギン酸
とを含む反応液が得られる。この場合には反応終
了液から固定化微生物をろ過あるいは遠心分離す
る如き方法により取得すれば再びこれを反覆使用
することができる。これらの方法において、基質
としてDL−アスパラギン酸またはその塩を用い
る場合L−アラニンとD−アスパラギン酸とを含
む溶液が得られるが、これらの両者は例えば直接
晶析法、イオン交換樹脂処理等の公知の単離精製
操作を適宜組合せることのより容易に分離採取す
ることができる。上記反応を実施するにあたつて
反応進行率は固定化微生物の量、温度、反応時
間、基質の流速その他により影響される。例えば
カラム法による場合は使用する固定化微生物の量
に従い基質溶液の導通速度を、またバツチ法によ
る場合はその反応時間を適当に調整することによ
り反応進行率を100%にまで高める至適条件を見
出すことも容易である。 (作用及び効果) 以上の如く、本発明方法は(1)L−アスパラギン
酸β−脱炭酸酵素活性を有する微生物をアルカリ
処理するという極めて簡単な操作で該微生物のア
ラニンラセマーゼ活性を完全に除去できること。
(2)アルカリ処理により菌体内酵素であるL−アス
パラギン酸−β−脱炭酸酵素が活性化されるこ
と。(3)該方法は遊離の微生物にも固定化微生物に
もともに適用できること。(4)又、一旦除去される
アラニンラセマーゼ活性は長期間酵素反応を実施
しても再び出現することがないこと。(5)更にアラ
ニンラセマーゼ活性の除去された微生物を公知の
方法で固定化してもその得られる効果には何ら変
りがない等、種々のすぐれた特徴及び効果を有す
るものである。又、本発明方法によりアラニンラ
セマーゼ活性の除去された微生物あるいは固定化
微生物を用いてL−アスパラギン酸からL−アラ
ニンを製造すれば生成物中にDL−アラニンが含
まれていないので再結晶等後処理が不要であり、
この点からも本発明方法はL−アスパラギン酸の
工業的に極めてすぐれた製造方法となるものであ
る。 以下、実施例により本発明をさらに詳細に説明
する。 実施例 1 下記により調製した微生物を用いてL−アスパ
ラギン酸からL−アラニンを生成させ、その際副
生するD−アラニン生成物を比較した。 (1) 微生物の調製 (本発明方法による微生物の調製) フマール酸0.5g/dl、大豆蛋白加水分解物
(全窒素6.4g/dl)1.8ml/dl、KH2PO40.1
g/dl、MgSO4・7H2O0.1g/dl、大豆油0.5
g/dlおよびオレイン酸0.5g/dlを含む溶液
をPH6.5に調整後、500ml容肩付フラスコに50ml
分注し、115℃で10分間殺菌した。 この倍地に、ブイヨン寒天倍地で30℃にて24
時間生育させたシユードモナス・エスピー
(Pseudomonas.sp.)ATCC19121を1白金耳植
菌し、30℃にて16時間振盪培養した。培養終了
後苛性ソーダを加えPHを9.5に調整し37℃で1
時間放置した。 (対照微生物の調製) 苛性ソーダ処理をしない以外は上記と同様に
して微生物を調製した。 (2) 実施方法 上記で得られた微生物各1gを、10-4Mピリ
ドキサールリン酸を含む1ML−アスパラギン
酸アンモニウム水溶液(アンモニアでPH5.0に
調整)70mlを入れた200ml容三角フラスコに加
え37℃にて振とう反応させ反応中の全アラニン
量とD−アラニン量を経時的に測定した。 尚、全アラニン量の測定はロイコノストツ
ク・チトロボラムATCC8081を用いるバイオア
ツセイにより行ない、D−アラニン量の測定は
豚賢より調製したD−アミノ酸オキシダーゼを
作用させ生成したピルビン酸をヒドラゾンとし
て測定する方法で行なつた。 (3) 結果 結果は表1に示す通りであり本発明方法によ
り調製した微生物はD−アラニンを全く生成し
ないのに対し対照の微生物は20時間目における
D−アラニン生成量が約25%に達することが認
められた。
くはL−アスパラギン酸β−脱炭酸酵素活性を有
する微生物のアラニンラセマーゼ活性を除去し、
該微生物を用いてL−アラニンを製造する方法に
関する。 (従来の技術) L−アスパラギン酸β−脱炭酸酵素はL−アス
パラギン酸のみに作用してL−アラニンと炭酸ガ
スとを生成する反応を触媒する酵素である。 従来、上記L−アスパラギン酸β−脱炭酸酵素
を利用するL−アラニンの製造法としては、L−
アスパラギン酸β−脱炭酸酵素活性を有する微生
物を基質であるL−アルパラギン酸またはその塩
含有培地に培養する方法や該微生物の生産した酵
素を基質に作用させる方法等多数知られている。
しかしながら、一般に微生物の細胞壁の構成成分
としてD−アラニンが必須であるため、これらの
微生物は同時にアラニンラセマーゼ活性を有する
ことが知られており、L−アラニンの生成と共に
D−アラニンも副生してくる。従つてL−アスパ
ラギン酸β−脱炭酸酵素活性を有する微生物を用
いて光学純度の高いL−アラニンを効率よく製造
するためには該微生物のアラニンラセマーゼ活性
発現を阻止する必要がある。 しかしながら現在知られている酵素を酸処理す
る方法(特開昭57−132882)では、低PHにおける
タンパク変性を引き起すため、アラニンラセマー
ゼ活性は抑えられるがL−アスパラギン酸β−脱
炭酸酵素活性も共に抑えられるためL−アラニン
の生成量が低下するという難点があつた。 (本発明が解決しようとする問題点) 上記の従来技術のもつている欠点を解決し、低
PHによるタンパク変性を防ぎながらアラニンラセ
マーゼ活性を抑え光学純度の高いL−アラニンの
製造法を確立することにある。 (問題点を解決するための手段) しかるに本発明者等は鋭意研究を重ねた結果、
微生物の有するL−アスパラギン酸β−脱炭酸酵
素活性には全く失活を与えることなく微生物のも
つアラニンラセマーゼ活性のみを選択的に失活さ
せ、同時に菌体内酵素であるL−アスパラギン酸
−β−脱炭素酵素の活性化を図る方法を見出し
た。 即ち、本発明によれば、L−アスパラギン酸β
−脱炭酸酵素活性を有する微生物又はその固定化
微生物をアルカリ処理することにより当該微生物
又は固定化微生物のアラニンラセマーゼ活性が除
去され、更にはこの様にして得られた微生物又は
固定化微生物にL−アスパラギン酸を作用させる
ことによりL−アラニンを製造することができ
る。 また、L−アスパラギン酸の変わりにDL−ア
スパラギン酸を用いれば、本発明の方法によりL
−アラニンとD−アスパラギン酸の混合物を製造
することもできる。 本発明方法において用いられるL−アスパラギ
ン酸β−脱炭酸酵素活性を有する微生物としては
上記活性を有する微生物であればいずれも用いる
ことが出来、かかる微生物としては、例えばシユ
ードモナス・エスピーATCC19121、シユードモ
ナス・ダクネ−IAM1152、アセトバクター・ラ
ンセンスOUT8300、アクロモバクター・ペスチ
フアーIAM1446、アクロモバクター・ペスチフ
アーATCC2509,キサントモナス・ベゴニアエ
IAM1644、ブレビバクテリウム・インペリアル
ATCC8365、アースロバクター・ウレアフアシエ
ンスIAM1658、エルビニア・アロイダエ
IAM1068号等が好適にあげられる。 これらの微生物は遊離菌体のまま用いることが
でき、該菌体をそれ自体公知の方法で固定化した
微生物であつてもよく、例えば光重合生樹脂、ポ
リアクリルアミドゲル、含硫多糖類ゲル(カラギ
ーナン、フアーセレラン等、コラーゲンゲル、ア
ルギン酸ゲル、ポリビニルアルコールゲル、寒天
ゲルで固定した微生物をいずれも本発明の目的に
用いることができる。上記の内光重合生樹脂によ
る場合は例えば特開昭58−187187号記載の通り微
生物菌体の水けん濁液に光重合生樹脂〔例えば
ENT−4000〕およびベンゾインエチルエーテル
を混合したのち光照射により重合せしめることに
より、固定化微生物が得られる。また、カラギー
ナン、フアーセレラン等の含硫多糖類による場合
は例えば特開昭53−6483号に記載の通り微生物菌
体をカラギーナン水溶液にけん濁し、このけん濁
液にゲル化剤(例えば第4周期以上のアルカリ金
属、アルカリ土類金属、アンモニウムイオン等)
を接触させるか冷却してゲル化させることにより
固定化微生物が得られる。含硫多糖類としては分
子内の硫酸基含量10W/W%以上、とりわけ硫酸
基含量12〜62W/W%のものを用いるのが好まし
い。その他、コラーゲンゲル、アルギン酸ゲル、
ポリビニルアルコールゲル、寒天ゲル等による場
合も、それ自体公知の方法例えば特開昭51−
144780号、特開昭49−30582号、特開昭49−80285
号、特開昭51−133484号記載の方法に従つて当該
微生物を処理することにより容易に相当する固定
化微生物を得ることができる。これらの固定化微
生物は例えば立方体状(1辺約3mm程度)、球状
(直径約3mm程度)、繊維状(径約1mm程度)、膜
状あるいは板状等の適当な形状に成型すればつづ
いての処理操作を効率よく実施できるので好まし
い。 上記の如き微生物又は固定化微生物のアルカリ
処理は当該微生物又は固定化微生物をアルカリ溶
液中に浸漬するか又は当該微生物又は固定化微生
物を含有する液中にアルカリを加えることにより
実施できる。アルカリとしては、例えば苛性ソー
ダ、苛性カリ、水酸化カルシウム、水酸化アンモ
ニウム、炭酸ソーダ等の無機アルカリ、テトラヒ
ドロフラン、トリスヒドロキシメチルエタン等の
有機アルカリのいずれも用いることができる。こ
れらアルカリによる処理はPH8〜12、とりわけ
8.5〜10の条件下に実施するのが好ましく、又ア
ルカリは水溶液それ自体だけでなくアルカリ緩衝
液をも用いることができる。 微生物又は固定化微生物含有液中にアルカリを
加えて実施する場合には前記アルカリを上記PH範
囲となるようにアルカリの添加量を調整すること
により行なう。更に微生物又は固定化微生物のア
ルカリ処理は約0〜60℃、とりわけ約20〜50℃で
実施するのが好ましい。接触時間は微生物が遊離
菌体の場合約3分〜24時間、とりわけ約5分〜10
時間程度とするのが好ましく、固定化微生物の場
合には約10分〜5日間、とりわけ約1〜48時間程
度とするのが好ましい。 かくして得られたアラニンラセマーゼ活性の除
去された微生物又は固定化微生物にL−アスパラ
ギン酸またはその塩を作用させるとL−アラニン
が得られ、またDL−アスパラギン酸を作用させ
ると、L−アラニンが得られD−アスパラギン酸
はそのまま残る。ここでL−アスパラギン酸また
はDL−アスパラギン酸の塩としては、例えばそ
れらのナトリウム塩、カリウム塩、カルシウム
塩、アンモニウム塩等が好ましい。酵素反応は、
0〜50℃の広い温度範囲で実施することができる
が、微生物の酵素の安定性を考慮して30〜40℃で
実施するのが好ましい。尚、上記酵素反応に際し
ては基質溶液にピリドキサールリン酸、ケト酸
(例えばピルビン酸、α−ケトグルタール酸等)
等を適宣添加することにより該酵素反応を一層促
進させることが出来、また更にコバルトイオン、
ニツケルイオン等の2価金属イオンを添加すると
微生物の酵素活性の安定性を高めることが出来
る。 上記において、遊離の微生物を用いる場合の反
応はバツチ法で実施するのが好ましい。又、固定
化微生物を用いる場合の反応は使用する固定化微
生物が水に不溶性であるため、バツチ法によるの
みならずカラム法によつて連続的に実施すること
が出来る。例えばカラム法による場合、該固定化
微生物をカラムに充填し、このカラムにL−アス
パラギン酸、DL−アスパラギン酸またはそれら
の塩を有する溶液を適当な速度で導通すればL−
アラニンのみ、あるいはL−アラニンとD−アス
パラギン酸とを含む流出液が得られる。なおこの
場合、酸素反応により生成する炭酸ガスのカラム
内への滞留を避けるため基質溶液はカラム下部よ
り上部に向けて流すのが好ましい。またバツチ法
による場合、該固定化微生物を上記基質溶液にけ
ん濁し、かく拌する如き方法によりL−アラニン
のみあるいはL−アラニンとD−アスパラギン酸
とを含む反応液が得られる。この場合には反応終
了液から固定化微生物をろ過あるいは遠心分離す
る如き方法により取得すれば再びこれを反覆使用
することができる。これらの方法において、基質
としてDL−アスパラギン酸またはその塩を用い
る場合L−アラニンとD−アスパラギン酸とを含
む溶液が得られるが、これらの両者は例えば直接
晶析法、イオン交換樹脂処理等の公知の単離精製
操作を適宜組合せることのより容易に分離採取す
ることができる。上記反応を実施するにあたつて
反応進行率は固定化微生物の量、温度、反応時
間、基質の流速その他により影響される。例えば
カラム法による場合は使用する固定化微生物の量
に従い基質溶液の導通速度を、またバツチ法によ
る場合はその反応時間を適当に調整することによ
り反応進行率を100%にまで高める至適条件を見
出すことも容易である。 (作用及び効果) 以上の如く、本発明方法は(1)L−アスパラギン
酸β−脱炭酸酵素活性を有する微生物をアルカリ
処理するという極めて簡単な操作で該微生物のア
ラニンラセマーゼ活性を完全に除去できること。
(2)アルカリ処理により菌体内酵素であるL−アス
パラギン酸−β−脱炭酸酵素が活性化されるこ
と。(3)該方法は遊離の微生物にも固定化微生物に
もともに適用できること。(4)又、一旦除去される
アラニンラセマーゼ活性は長期間酵素反応を実施
しても再び出現することがないこと。(5)更にアラ
ニンラセマーゼ活性の除去された微生物を公知の
方法で固定化してもその得られる効果には何ら変
りがない等、種々のすぐれた特徴及び効果を有す
るものである。又、本発明方法によりアラニンラ
セマーゼ活性の除去された微生物あるいは固定化
微生物を用いてL−アスパラギン酸からL−アラ
ニンを製造すれば生成物中にDL−アラニンが含
まれていないので再結晶等後処理が不要であり、
この点からも本発明方法はL−アスパラギン酸の
工業的に極めてすぐれた製造方法となるものであ
る。 以下、実施例により本発明をさらに詳細に説明
する。 実施例 1 下記により調製した微生物を用いてL−アスパ
ラギン酸からL−アラニンを生成させ、その際副
生するD−アラニン生成物を比較した。 (1) 微生物の調製 (本発明方法による微生物の調製) フマール酸0.5g/dl、大豆蛋白加水分解物
(全窒素6.4g/dl)1.8ml/dl、KH2PO40.1
g/dl、MgSO4・7H2O0.1g/dl、大豆油0.5
g/dlおよびオレイン酸0.5g/dlを含む溶液
をPH6.5に調整後、500ml容肩付フラスコに50ml
分注し、115℃で10分間殺菌した。 この倍地に、ブイヨン寒天倍地で30℃にて24
時間生育させたシユードモナス・エスピー
(Pseudomonas.sp.)ATCC19121を1白金耳植
菌し、30℃にて16時間振盪培養した。培養終了
後苛性ソーダを加えPHを9.5に調整し37℃で1
時間放置した。 (対照微生物の調製) 苛性ソーダ処理をしない以外は上記と同様に
して微生物を調製した。 (2) 実施方法 上記で得られた微生物各1gを、10-4Mピリ
ドキサールリン酸を含む1ML−アスパラギン
酸アンモニウム水溶液(アンモニアでPH5.0に
調整)70mlを入れた200ml容三角フラスコに加
え37℃にて振とう反応させ反応中の全アラニン
量とD−アラニン量を経時的に測定した。 尚、全アラニン量の測定はロイコノストツ
ク・チトロボラムATCC8081を用いるバイオア
ツセイにより行ない、D−アラニン量の測定は
豚賢より調製したD−アミノ酸オキシダーゼを
作用させ生成したピルビン酸をヒドラゾンとし
て測定する方法で行なつた。 (3) 結果 結果は表1に示す通りであり本発明方法によ
り調製した微生物はD−アラニンを全く生成し
ないのに対し対照の微生物は20時間目における
D−アラニン生成量が約25%に達することが認
められた。
【表】
実施例 2
下記より調製した固定化微生物を用い反応を実
施し反応終了液中のD−アラニン生成量を比較し
た。 (1) 固定化微生物の調製 (本発明方法による固定化微生物の調製) 実施例1(1)と同様の倍地を500ml容坂口フラ
スコ10本に50ml宛分注しこれにシユードモナ
ス・エスピーATCC19121を植菌した。30℃で
16時間振とう培養したのちこれに苛性カリを加
えPHを10.0に調整し30℃で1時間放置した。こ
れに酢酸を加えPH5.0に調整したのち遠心分離
することによりシユードモナス・エスピー菌体
10g(湿重量)を集めた。 0.05M酢酸バツフアー(PH5)25mlに光重合
性樹脂ENT−400010gおよびベンゾイルエチ
ルエーテル100mgを溶解した溶液に上記菌体10
gを投入した。混合した後、透明フイルム上に
流し込み、300〜400nmの近紫外線を表裏に3
分づつ照射した。得られた重合物を5×5mmの
大きさに切断し固定化シユードモナス・エスピ
ーを得た。 (本発明方法の固定化微生物の調製) 上記と同様の倍地、菌体を用いて上記と同様
に30℃で24時間振とう培養したのち遠心分離し
てシユードモナス・エスピー菌体10g(湿重
量)を集めた。 この菌体を用い上記固定化操作を行ない固定
化シユードモナス・エスピーを得た。このゲル
を10mML−アスパラギン酸を含む0.2M炭素ソ
ーダ緩衝液(PH10.0)260ml中に浸漬し30℃に
て24時間放置した。その後0.05M酢酸バツフア
ー(PH5)で洗浄することにより固定化シユー
ドモナス・ダクネーを得る。 (対照微生物の調製) 上記本発明方法による微生物と同様にして
調製した。固定化微生物を以後何ら処理するこ
となく用いた。 (2) 実験方法 固定化シユードモナス・エスピー40gをそれ
ぞれ実容200mlの撹拌型反応器に入れ、10-4M
ピリドキサールリン酸を含む1ML−アスパラ
ギン酸アンモニウム溶液(アンモニアにてPH
6.0に調整)になるように添加し、37℃で20時
間反応したその反応液の全アラニンとD−アラ
ニン濃度を測定した。 尚、全アラニン量およびD−アラニン量の測
定は実施例1と同様にして行なつた。 (3) 結果 結果は下記表2に示す通りであり、本発明方
法により調製した固定化微生物はD−アラニン
を全く生成しないのに対し、対照の固定化微生
物は約7%のD−アラニンを生成することが認
められた。
施し反応終了液中のD−アラニン生成量を比較し
た。 (1) 固定化微生物の調製 (本発明方法による固定化微生物の調製) 実施例1(1)と同様の倍地を500ml容坂口フラ
スコ10本に50ml宛分注しこれにシユードモナ
ス・エスピーATCC19121を植菌した。30℃で
16時間振とう培養したのちこれに苛性カリを加
えPHを10.0に調整し30℃で1時間放置した。こ
れに酢酸を加えPH5.0に調整したのち遠心分離
することによりシユードモナス・エスピー菌体
10g(湿重量)を集めた。 0.05M酢酸バツフアー(PH5)25mlに光重合
性樹脂ENT−400010gおよびベンゾイルエチ
ルエーテル100mgを溶解した溶液に上記菌体10
gを投入した。混合した後、透明フイルム上に
流し込み、300〜400nmの近紫外線を表裏に3
分づつ照射した。得られた重合物を5×5mmの
大きさに切断し固定化シユードモナス・エスピ
ーを得た。 (本発明方法の固定化微生物の調製) 上記と同様の倍地、菌体を用いて上記と同様
に30℃で24時間振とう培養したのち遠心分離し
てシユードモナス・エスピー菌体10g(湿重
量)を集めた。 この菌体を用い上記固定化操作を行ない固定
化シユードモナス・エスピーを得た。このゲル
を10mML−アスパラギン酸を含む0.2M炭素ソ
ーダ緩衝液(PH10.0)260ml中に浸漬し30℃に
て24時間放置した。その後0.05M酢酸バツフア
ー(PH5)で洗浄することにより固定化シユー
ドモナス・ダクネーを得る。 (対照微生物の調製) 上記本発明方法による微生物と同様にして
調製した。固定化微生物を以後何ら処理するこ
となく用いた。 (2) 実験方法 固定化シユードモナス・エスピー40gをそれ
ぞれ実容200mlの撹拌型反応器に入れ、10-4M
ピリドキサールリン酸を含む1ML−アスパラ
ギン酸アンモニウム溶液(アンモニアにてPH
6.0に調整)になるように添加し、37℃で20時
間反応したその反応液の全アラニンとD−アラ
ニン濃度を測定した。 尚、全アラニン量およびD−アラニン量の測
定は実施例1と同様にして行なつた。 (3) 結果 結果は下記表2に示す通りであり、本発明方
法により調製した固定化微生物はD−アラニン
を全く生成しないのに対し、対照の固定化微生
物は約7%のD−アラニンを生成することが認
められた。
Claims (1)
- 1 L−アスパラギン酸β−脱炭酸酵素活性を有
する微生物またはその固定化微生物をアルカリ処
理した後、アラニンラセマーゼ活性の除去された
当該微生物または固定化微生物にL−アスパラギ
ン酸若しくはDL−アスパラギン酸、またはそれ
らの塩を作用させることを特徴とするL−アラニ
ンの製造法。
Priority Applications (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
JP22822085A JPS6287088A (ja) | 1985-10-14 | 1985-10-14 | L―アラニンの製造法 |
Applications Claiming Priority (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
JP22822085A JPS6287088A (ja) | 1985-10-14 | 1985-10-14 | L―アラニンの製造法 |
Publications (2)
Publication Number | Publication Date |
---|---|
JPS6287088A JPS6287088A (ja) | 1987-04-21 |
JPH0514556B2 true JPH0514556B2 (ja) | 1993-02-25 |
Family
ID=16873055
Family Applications (1)
Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
---|---|---|---|
JP22822085A Granted JPS6287088A (ja) | 1985-10-14 | 1985-10-14 | L―アラニンの製造法 |
Country Status (1)
Country | Link |
---|---|
JP (1) | JPS6287088A (ja) |
Families Citing this family (3)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
EP0386476B1 (en) * | 1989-02-06 | 1994-07-13 | Mitsubishi Petrochemical Co., Ltd. | Process for producing L-alanine |
JPH04218364A (ja) * | 1990-04-27 | 1992-08-07 | Mitsubishi Petrochem Co Ltd | シュードモナス属微生物の培養方法 |
US5478733A (en) * | 1993-07-16 | 1995-12-26 | Kyowa Hakko Kogyo Co., Ltd. | Process for producing L-alanine by fermentation with arthrobacter |
-
1985
- 1985-10-14 JP JP22822085A patent/JPS6287088A/ja active Granted
Also Published As
Publication number | Publication date |
---|---|
JPS6287088A (ja) | 1987-04-21 |
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Legal Events
Date | Code | Title | Description |
---|---|---|---|
EXPY | Cancellation because of completion of term |