JPH03191795A - 微生物処理によるs―(+)―3―ハロゲノ―1,2―プロパンジオールの製法 - Google Patents
微生物処理によるs―(+)―3―ハロゲノ―1,2―プロパンジオールの製法Info
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Abstract
(57)【要約】本公報は電子出願前の出願データであるた
め要約のデータは記録されません。
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Description
【発明の詳細な説明】
〔産業上の利用分野〕
本発明は微生物により、ラセミ体3−ハロゲノ1.2−
プロパンジオールより光学活性なS(+)−3−ハロゲ
ノ−1,2−プロパンジオールを分取する方法に関する
ものである。
プロパンジオールより光学活性なS(+)−3−ハロゲ
ノ−1,2−プロパンジオールを分取する方法に関する
ものである。
S−(+)−3−ハロゲノ−1,2−プロパンジオール
は光学活性な医薬品や生理活性物質の合成原料として有
用な物質である。例えばS−(+)−3−ハロゲノ−1
,2−プロパンジオールは動物精子のグリコリシスを阻
害する活性をもつため抗生殖能作用を持つことが知られ
ている。またS(+)−3−ハロゲノ−1,2−プロパ
ンジオールからは光学活性な医農薬あるいは生理活性物
質9強誘電性液晶に有用な合成中間体S−(−)−グリ
シドールに導くことができる。
は光学活性な医薬品や生理活性物質の合成原料として有
用な物質である。例えばS−(+)−3−ハロゲノ−1
,2−プロパンジオールは動物精子のグリコリシスを阻
害する活性をもつため抗生殖能作用を持つことが知られ
ている。またS(+)−3−ハロゲノ−1,2−プロパ
ンジオールからは光学活性な医農薬あるいは生理活性物
質9強誘電性液晶に有用な合成中間体S−(−)−グリ
シドールに導くことができる。
S−(+)−3−ハロゲノ−1,2−プロパンジオール
の製法に関しては次のようなものが知られている。この
うちl1ayan F、Jonesによるメチル−6−
クロロ−6−ゾオキシーα−D−グルコピラノシドより
得る方法(Chemistry and Indust
ry。
の製法に関しては次のようなものが知られている。この
うちl1ayan F、Jonesによるメチル−6−
クロロ−6−ゾオキシーα−D−グルコピラノシドより
得る方法(Chemistry and Indust
ry。
15 P533,1978.西独特許第274385
8号)やPorter K、E、らによる1゜2.5.
6−ジアセドンーD−マンニトールより得る方法(Ch
ew、 −Biol、 Interaction l
上。
8号)やPorter K、E、らによる1゜2.5.
6−ジアセドンーD−マンニトールより得る方法(Ch
ew、 −Biol、 Interaction l
上。
P95,1982)が知られている。しかしこれらの方
法は化学合成法であるためいずれも原料の入手が困難で
あり、高度な合成手法を必要とし工程が複雑であるため
工業的には不適当である。また本発明と同じく微生物を
利用する方法としては高橋氏らの製法(特開昭62−1
22596号。
法は化学合成法であるためいずれも原料の入手が困難で
あり、高度な合成手法を必要とし工程が複雑であるため
工業的には不適当である。また本発明と同じく微生物を
利用する方法としては高橋氏らの製法(特開昭62−1
22596号。
昭63−36798号)が既に知られているが、これら
の方法はR−(−)−3−ハロゲノ−1゜2−プロパン
ジオールが酸化的に分解2代謝される反応を利用した方
法であり、以下のような問題点を有する。すなわち用い
る微生物群、例えば例示されているトリスコスポロン・
ファーメンタンス(Trichosporon fer
mentans ) CB S 2264 。
の方法はR−(−)−3−ハロゲノ−1゜2−プロパン
ジオールが酸化的に分解2代謝される反応を利用した方
法であり、以下のような問題点を有する。すなわち用い
る微生物群、例えば例示されているトリスコスポロン・
ファーメンタンス(Trichosporon fer
mentans ) CB S 2264 。
ピキア・ファリノーサ(Pichia farinos
a )IFO1003,コリネバクテリウム・アセトア
シドフィラム(Corynebacteriua+ a
setoacidop−hilum ) ATCC21
476,プロテウス・モルガニイ (Proteus
morganii) I F 0 3168はR−(
−)−3−ハロゲノ−1,2−プロパンジオールを代謝
しうるが、ラセミ体3−ハロゲノ−1,2−プロパンジ
オールを単一炭素源とし硫安あるいは硝安のような無機
体窒素を窒素源とする完全合成培地中では生育増殖でき
ない。よってその反応に際しては実施例にみられるよう
に、多量の菌体を栄養培地中で別に増殖させてその洗浄
菌体をラセミ体3−ハロゲノ−1,2−プロパンジオー
ルに作用させねばならない。又は他の栄養源を含み生育
できる培地中にラセミ体3−ハロゲノ1.2−プロパン
ジオールを加えなければならない。これらの事はその反
応あるいはその精製という観点からみると好ましくない
と考えられる。
a )IFO1003,コリネバクテリウム・アセトア
シドフィラム(Corynebacteriua+ a
setoacidop−hilum ) ATCC21
476,プロテウス・モルガニイ (Proteus
morganii) I F 0 3168はR−(
−)−3−ハロゲノ−1,2−プロパンジオールを代謝
しうるが、ラセミ体3−ハロゲノ−1,2−プロパンジ
オールを単一炭素源とし硫安あるいは硝安のような無機
体窒素を窒素源とする完全合成培地中では生育増殖でき
ない。よってその反応に際しては実施例にみられるよう
に、多量の菌体を栄養培地中で別に増殖させてその洗浄
菌体をラセミ体3−ハロゲノ−1,2−プロパンジオー
ルに作用させねばならない。又は他の栄養源を含み生育
できる培地中にラセミ体3−ハロゲノ1.2−プロパン
ジオールを加えなければならない。これらの事はその反
応あるいはその精製という観点からみると好ましくない
と考えられる。
本発明は上記の従来法より経済的に安価でかつ技術的に
簡便な方法によりS−(+)−3−ハロゲノ−1,2−
プロパンジオールを製造することを目的とする。
簡便な方法によりS−(+)−3−ハロゲノ−1,2−
プロパンジオールを製造することを目的とする。
本発明者らはラセミ体3−ハロゲノ−1,2−プロパン
ジオールからR−(−)−3−ハロゲノ1.2−プロパ
ンジオールを優先的に分解資化し、さらに単一炭素源と
して生育増殖しうる微生物を求めるべく検討を行い鋭意
研究した結果、目的とする微生物の分離に成功し、S−
(+) −3ハロゲノ−1,2−プロパンジオールの製
法を確立した。
ジオールからR−(−)−3−ハロゲノ1.2−プロパ
ンジオールを優先的に分解資化し、さらに単一炭素源と
して生育増殖しうる微生物を求めるべく検討を行い鋭意
研究した結果、目的とする微生物の分離に成功し、S−
(+) −3ハロゲノ−1,2−プロパンジオールの製
法を確立した。
すなわち本発明は、R−(−)−3−ハロゲノ−1,2
−プロパンジオール資化能を有し、R(−)−3−ハロ
ゲノ−1,2−プロパンジオールを単一炭素源として生
育増殖しうるアルカリゲネス属に属する細菌又はその培
養菌体を、ラセミ体3−ハロゲノ−1,2−プロパンジ
オールを単一炭素源とする培地中で培養せしめ、残存す
るS−(+)−3−ハロゲノ−1,2−プロパンジオー
ルを分取することを特徴とする微生物処理によるS−(
+)−3−ハロゲノ−1,2−プロパンジオールの製法
である。
−プロパンジオール資化能を有し、R(−)−3−ハロ
ゲノ−1,2−プロパンジオールを単一炭素源として生
育増殖しうるアルカリゲネス属に属する細菌又はその培
養菌体を、ラセミ体3−ハロゲノ−1,2−プロパンジ
オールを単一炭素源とする培地中で培養せしめ、残存す
るS−(+)−3−ハロゲノ−1,2−プロパンジオー
ルを分取することを特徴とする微生物処理によるS−(
+)−3−ハロゲノ−1,2−プロパンジオールの製法
である。
本発明者らが土壌より分離採取し、本発明に用いた微生
物の形態学的、生理学的諸性質は表1に示すとおりであ
る。
物の形態学的、生理学的諸性質は表1に示すとおりであ
る。
(以下余白)
d−への啼−一号一一−■
以上の結果をもとにパージエイズ・マニュアル・オブ・
システマチック・バクテリオロジー第9版に従い分類す
ると、ダラム陰性、好気性かん菌。
システマチック・バクテリオロジー第9版に従い分類す
ると、ダラム陰性、好気性かん菌。
周鞭毛を有し、オキシダーゼ陽性、カタラーゼ陽性から
アルカリゲネス属に属することが判明した。
アルカリゲネス属に属することが判明した。
近縁菌株としてはアルカリゲネス・フェーカリス(Al
caligenes faecalis) 、アルカリ
ゲネス・デニトリフィカンス サブスピーシーズ デニ
トリフィカンス(Alcaligenes denit
rificans 5ubsp。
caligenes faecalis) 、アルカリ
ゲネス・デニトリフィカンス サブスピーシーズ デニ
トリフィカンス(Alcaligenes denit
rificans 5ubsp。
denitrificans ) + アルカリゲネス
・デニトリフィカンス サブスピーシズ キジロスオキ
シダンス(Alcaligenes deniLrif
icans 5ubsp、 xyloso−χydan
s )が考えられるが、本菌株は炭素源としてD−グル
コン酸及びグリセリンを利用できるのに対してアルカリ
ゲネス・フェーカリスは炭素源としてグルコン酸及びグ
リセリンを利用できない点、また本菌株は炭素源として
D−グルコースを利用できないのに対してアルカリゲネ
ス・デニトリフィカンス サブスピーシーズ キジロス
オキシタンスは炭素源としてD−グルコースを利用でき
る点、また本菌株は硝酸塩を還元できないのに対して、
アルカリゲネス・デニトリフィカンス サブビーシーズ
デニトリフィカンスは硝酸塩を還元することができる
点が異なり、公知の菌株の特徴と一致するものがなく新
菌株と考えられ、Alcaligenes sp、 D
S−S−7G、^lcaligenes sp、 DS
−3−8S。
・デニトリフィカンス サブスピーシズ キジロスオキ
シダンス(Alcaligenes deniLrif
icans 5ubsp、 xyloso−χydan
s )が考えられるが、本菌株は炭素源としてD−グル
コン酸及びグリセリンを利用できるのに対してアルカリ
ゲネス・フェーカリスは炭素源としてグルコン酸及びグ
リセリンを利用できない点、また本菌株は炭素源として
D−グルコースを利用できないのに対してアルカリゲネ
ス・デニトリフィカンス サブスピーシーズ キジロス
オキシタンスは炭素源としてD−グルコースを利用でき
る点、また本菌株は硝酸塩を還元できないのに対して、
アルカリゲネス・デニトリフィカンス サブビーシーズ
デニトリフィカンスは硝酸塩を還元することができる
点が異なり、公知の菌株の特徴と一致するものがなく新
菌株と考えられ、Alcaligenes sp、 D
S−S−7G、^lcaligenes sp、 DS
−3−8S。
Alcaligenes sp、 O5−5−ICと命
名した。なお、これらの菌株は工業技術院微生物工業研
究所において微工研菌寄第11111号(FERM
Plllll)、徽工研菌寄第11112号(FERM
P−11112) 、徽工研菌寄第11113号(
FERM P−11113)として寄託されている。
名した。なお、これらの菌株は工業技術院微生物工業研
究所において微工研菌寄第11111号(FERM
Plllll)、徽工研菌寄第11112号(FERM
P−11112) 、徽工研菌寄第11113号(
FERM P−11113)として寄託されている。
本発明ではラセミ体3−ハロゲノ−1,2−プロパンジ
オールを含む培地中で上記微生物のいずれかを培養し、
R−(−)−3−ハロゲノ−1゜2−プロパンジオール
を資化せしめ、ラセミ体3ハロゲノ−1,2−プロパン
ジオールの光学活性化を行うものである。具体的にはラ
セミ体3ハロゲノ−1,2−プロパンジオールを単一炭
素源とし、無機態窒素(各種アンモニウム塩又は硝酸塩
)を窒素源として、その無機塩類を加えた合成培地中で
上記細菌を培養するか、又は上記いずれか1種類の細菌
をブイヨン培地あるいはペプトン培地等炭素源、窒素源
、有機栄養源、無機栄養源を含む通常よく用いられる培
地中で培養し、これらから得られる培養物あるいは培養
菌体をラセミ体3−ハロゲノ−1,2−プロパンジオー
ルを単一炭素源として含有する培地中に接種し、さらに
培養あるいは作用させ、残存するS−(+) −3−ハ
ロゲノ−1,2−プロパンジオールヲ分取すればよい。
オールを含む培地中で上記微生物のいずれかを培養し、
R−(−)−3−ハロゲノ−1゜2−プロパンジオール
を資化せしめ、ラセミ体3ハロゲノ−1,2−プロパン
ジオールの光学活性化を行うものである。具体的にはラ
セミ体3ハロゲノ−1,2−プロパンジオールを単一炭
素源とし、無機態窒素(各種アンモニウム塩又は硝酸塩
)を窒素源として、その無機塩類を加えた合成培地中で
上記細菌を培養するか、又は上記いずれか1種類の細菌
をブイヨン培地あるいはペプトン培地等炭素源、窒素源
、有機栄養源、無機栄養源を含む通常よく用いられる培
地中で培養し、これらから得られる培養物あるいは培養
菌体をラセミ体3−ハロゲノ−1,2−プロパンジオー
ルを単一炭素源として含有する培地中に接種し、さらに
培養あるいは作用させ、残存するS−(+) −3−ハ
ロゲノ−1,2−プロパンジオールヲ分取すればよい。
炭素源としてはラセミ体3−ハロゲノ−1,2−プロパ
ンジオール、グリセリン等のアルコール類、クエン酸、
マレイン酸、リンゴ酸。
ンジオール、グリセリン等のアルコール類、クエン酸、
マレイン酸、リンゴ酸。
フマール酸等の有機酸及びその塩類を、窒素源としては
硫酸アンモニウム、硝酸アンモニウム、リン酸アンモニ
ウム等の無機態窒素及び尿素、ペプトン、カゼイン、酵
母エキス、肉エキス、コーンプリカー等の有機態窒素源
を用いることができる。
硫酸アンモニウム、硝酸アンモニウム、リン酸アンモニ
ウム等の無機態窒素及び尿素、ペプトン、カゼイン、酵
母エキス、肉エキス、コーンプリカー等の有機態窒素源
を用いることができる。
その他無機塩類としてはリン酸塩、マグネシウム塩、カ
リ塩、マンガン塩、鉄塩、亜鉛塩、銅塩等が用いられる
。
リ塩、マンガン塩、鉄塩、亜鉛塩、銅塩等が用いられる
。
本菌の培養は慣用の方法で行うことができる。
通常、培養温度20−40℃、好ましくは2537℃、
p H約4−9好ましくはpH4,5= 8.5で振盪
培養あるいは通気撹拌培養等の手段により好気的に行わ
れる。反応液中の基質濃度は0.110%(V/V)程
度が好ましく、その反応時間は基質濃度、その他の反応
条件によって異なるが48−80時間で終了するのが好
ましい。反応の停止は残存する基質をガスクロマトグラ
フィー等で分析し、残存基質が約50%、すなわちR(
−)−3−ハロゲノ−1,2−プロパンジオールがすべ
て資化された時点で止めるのが好ましい。
p H約4−9好ましくはpH4,5= 8.5で振盪
培養あるいは通気撹拌培養等の手段により好気的に行わ
れる。反応液中の基質濃度は0.110%(V/V)程
度が好ましく、その反応時間は基質濃度、その他の反応
条件によって異なるが48−80時間で終了するのが好
ましい。反応の停止は残存する基質をガスクロマトグラ
フィー等で分析し、残存基質が約50%、すなわちR(
−)−3−ハロゲノ−1,2−プロパンジオールがすべ
て資化された時点で止めるのが好ましい。
残存するS−(+)−3−ハロゲノ−1,2−プロパン
ジオールの精製は次のように行う。すなわち培養終了後
、培養液を取り出し遠心分離操作あるいは凝集剤等によ
り微生物菌体とその上清液とに分離し、上清液中に残存
するS−(+) −3ハロゲノ−1,2−プロパンジオ
ールを活性炭に吸着させ、アセトンで溶出し減圧蒸留す
るか、酢酸エチル等の溶媒抽出を行い減圧蒸留するのか
のいずれかの方法で精製分取すればよい。
ジオールの精製は次のように行う。すなわち培養終了後
、培養液を取り出し遠心分離操作あるいは凝集剤等によ
り微生物菌体とその上清液とに分離し、上清液中に残存
するS−(+) −3ハロゲノ−1,2−プロパンジオ
ールを活性炭に吸着させ、アセトンで溶出し減圧蒸留す
るか、酢酸エチル等の溶媒抽出を行い減圧蒸留するのか
のいずれかの方法で精製分取すればよい。
以下実施例により本発明を具体的に説明する。
なお例中%は特に記載のない限り重量%を示す。
実施例1
硫安 0.5%リン酸第
2ナトリウム 0.1%リン酸第2カリウ
ム 0.1%リン酸第1ナトリウム
0.2%硫酸マグネシウム
0.05%硫酸鉄、硫酸銅、硫酸マンガン 微量
炭酸カルシウム 0.45%pH6
,8 からなる組成の培地100m&を入れた坂ロフラスコ(
500ml)を121℃、15分間滅菌後、ラセミ体3
−クロロ−1,2−プロパンジオールを1.0%(V/
V)になるように上記培地に添加し、ラセミ体3−クロ
ロ−1,2−プロパンジオ−ルを単一炭素源とする培地
を作製した。次に表1に示した微生物Alcalige
nes sp、 0S−S−7Gを傾斜寒天培地から1
白金耳上記培地に接種し、30’C,130rpmの条
件で4日間振盪培養した。
2ナトリウム 0.1%リン酸第2カリウ
ム 0.1%リン酸第1ナトリウム
0.2%硫酸マグネシウム
0.05%硫酸鉄、硫酸銅、硫酸マンガン 微量
炭酸カルシウム 0.45%pH6
,8 からなる組成の培地100m&を入れた坂ロフラスコ(
500ml)を121℃、15分間滅菌後、ラセミ体3
−クロロ−1,2−プロパンジオールを1.0%(V/
V)になるように上記培地に添加し、ラセミ体3−クロ
ロ−1,2−プロパンジオ−ルを単一炭素源とする培地
を作製した。次に表1に示した微生物Alcalige
nes sp、 0S−S−7Gを傾斜寒天培地から1
白金耳上記培地に接種し、30’C,130rpmの条
件で4日間振盪培養した。
培養終了後、培養液を取り出し遠心分離操作により菌体
を除去し、上清液を得た。この上清液を約20mJにま
で濃縮し、酢酸エチルにより抽出、そして硫酸マグネシ
ウムにより脱水後、減圧下で油状物質として3−クロロ
−1,2−プロパンジオールを0.4 g分取した。
を除去し、上清液を得た。この上清液を約20mJにま
で濃縮し、酢酸エチルにより抽出、そして硫酸マグネシ
ウムにより脱水後、減圧下で油状物質として3−クロロ
−1,2−プロパンジオールを0.4 g分取した。
本物質の同定はガスクロマトグラフィーによって行った
。カラム担体PEG−20MP、6080メツシュを用
いて市販のラセミ体3−クロロ1、 2−プロパンジオ
ール(東京化成社製品)と比較したところ保持時間は全
く同じであった。
。カラム担体PEG−20MP、6080メツシュを用
いて市販のラセミ体3−クロロ1、 2−プロパンジオ
ール(東京化成社製品)と比較したところ保持時間は全
く同じであった。
本物質の比旋光度及び(S)−3−クロロ−1゜2−プ
ロパンジオールの比旋光度(文献値)は次の如くである
。
ロパンジオールの比旋光度(文献値)は次の如くである
。
本物質 〔α) =7.99
(C=1.H,O)
文献値 [α] =7.3 (C=1.Hl O)ま
た、本物質を常法によりトシル化した後、光学異性体分
離カラム(CHIRALCEL QCカラム(25c
mX0.46cm1.D、))(ダイセル化学工業■製
)によりヘキサン−イソプロパツール(95: 5)の
溶媒を用いて室温、流速1、Qmj!/min、波長2
35nmの条件でHPLC分析を行った。この分析法で
保持時間は8体79分、R体89.8分となり、本物質
は8体に相当する保持時間を示し、光学純度98%e、
e、以上であった。
た、本物質を常法によりトシル化した後、光学異性体分
離カラム(CHIRALCEL QCカラム(25c
mX0.46cm1.D、))(ダイセル化学工業■製
)によりヘキサン−イソプロパツール(95: 5)の
溶媒を用いて室温、流速1、Qmj!/min、波長2
35nmの条件でHPLC分析を行った。この分析法で
保持時間は8体79分、R体89.8分となり、本物質
は8体に相当する保持時間を示し、光学純度98%e、
e、以上であった。
実施例2.3
菌株を表1に示したAlcaligenes sp、
0S−S−8S及びAlcaligenes sp、
0S−5−ICに変更した以外は実施例1と同様の方法
で行った。また得られた物質を実施例1に示した様に種
々分析を行った結果、それぞれ光学純度98%e、e、
以上のS−(+)3−クロロ−1,2−プロパンジオー
ルであった。以下に実施例2.3の結果をまとめて示す
。
0S−S−8S及びAlcaligenes sp、
0S−5−ICに変更した以外は実施例1と同様の方法
で行った。また得られた物質を実施例1に示した様に種
々分析を行った結果、それぞれ光学純度98%e、e、
以上のS−(+)3−クロロ−1,2−プロパンジオー
ルであった。以下に実施例2.3の結果をまとめて示す
。
実施例 菌株 〔α〕 収ffi(g)(C
=1.11□0) 2 DS−5−8S 7.90° 0.4
23 DS−5−IC7,97° 0.44実
施例4 硫安 0.5%リン酸第
2ナトリウム 0.02%リン酸第2カリ
ウム 0.02%リン酸第1ナトリウム
0.04%硫酸マグネシウム
0.05%硫酸鉄、硫酸銅、硫酸マンガン
微量pH6,8 からなる組成の培地2.51を入れた5N容培養器(ジ
ャーファーメンタ−)を121℃、15分間滅菌後、ラ
セミ体3−クロロ−1,2−プロパンジオールを1.0
%(V/V)になるように上記培地に添加し、ラセミ体
3−クロロ−1,2−プロパンジオールを単一炭素源と
する培地を作製した。
=1.11□0) 2 DS−5−8S 7.90° 0.4
23 DS−5−IC7,97° 0.44実
施例4 硫安 0.5%リン酸第
2ナトリウム 0.02%リン酸第2カリ
ウム 0.02%リン酸第1ナトリウム
0.04%硫酸マグネシウム
0.05%硫酸鉄、硫酸銅、硫酸マンガン
微量pH6,8 からなる組成の培地2.51を入れた5N容培養器(ジ
ャーファーメンタ−)を121℃、15分間滅菌後、ラ
セミ体3−クロロ−1,2−プロパンジオールを1.0
%(V/V)になるように上記培地に添加し、ラセミ体
3−クロロ−1,2−プロパンジオールを単一炭素源と
する培地を作製した。
次に表1に示した微生物Alcaligenes sp
、ds−s−7Gを予めペプトン1.0%、酵母エキス
1.0%、グリセロール1.0%、pH7,2からなる
栄養培地で30℃、24時間振盪培養し、上記ラセミ体
3−クロロ−1,2−プロパンジオールを単一炭素源と
する培地に2%(v/v)量無菌的に接種した。
、ds−s−7Gを予めペプトン1.0%、酵母エキス
1.0%、グリセロール1.0%、pH7,2からなる
栄養培地で30℃、24時間振盪培養し、上記ラセミ体
3−クロロ−1,2−プロパンジオールを単一炭素源と
する培地に2%(v/v)量無菌的に接種した。
そして以下の条件で4日間通気撹拌培養を行った。
温度 30℃
通気量 0.5β/min
回転数 50Orpm
なおpHの測定及び制御は連動させたpHメーターで行
い3N−NaOHによりp H6,8に制御した。
い3N−NaOHによりp H6,8に制御した。
培養終了後、培養液を取り出し遠心分離操作により菌体
を除去し、上清液を得た。上清液からの3−クロロ−1
,2−プロパンジオールの調製は実施例1と同様にして
行い、15.2 gを分取した。
を除去し、上清液を得た。上清液からの3−クロロ−1
,2−プロパンジオールの調製は実施例1と同様にして
行い、15.2 gを分取した。
この得られた物質を実施例1に示した様に種々分析を行
った結果、光学純度98%e、e、以上のS−(+)−
3−クロロ−1,2−プロパンジオールであった。本物
質の比旋光度は〔α〕 =7.95° (Cm1.H2
O)であった。
った結果、光学純度98%e、e、以上のS−(+)−
3−クロロ−1,2−プロパンジオールであった。本物
質の比旋光度は〔α〕 =7.95° (Cm1.H2
O)であった。
実施例5.6
菌株を表1に示したAlcaligenes sp、
O5−5−8S及び八Icaligenes sp、
DS−3−ICに変更した以外は実施例4と同様の方法
で行った。また、得られた物質を実施例1に示した様に
種々分析を行った結果、それぞれ光学純度98%e、e
0以上のS−(+)〜3〜クロロー1.2−プロパンジ
オールであった。以下に実施例5.6の結果をまとめて
示す。
O5−5−8S及び八Icaligenes sp、
DS−3−ICに変更した以外は実施例4と同様の方法
で行った。また、得られた物質を実施例1に示した様に
種々分析を行った結果、それぞれ光学純度98%e、e
0以上のS−(+)〜3〜クロロー1.2−プロパンジ
オールであった。以下に実施例5.6の結果をまとめて
示す。
実施例 菌株 〔α〕 収量(g)(C=L
ll□0) 5 DS−5−8S 7.87° 14
.66 DS−5−IC?、 89° 15
.3実施例7 ベプトン1.0%、酵母エキス1,0%、グリセロール
1.0%、pH7,2からなる組成の栄養培地100m
j2を入れた坂ロフラス−7(500m&容)を121
”C,15分間滅菌後、表1に示したAlcalige
nes sp、 DS−5−7Gを傾斜寒天培地から1
白金耳接種した。30°C124時間振盪培養した後、
遠心分離操作により菌体と上清液とを分離し、上清液を
廃棄した。得られた菌体を50mMリン酸緩衝液、pH
7,0にて2−3回洗浄し、洗浄菌体とした。次に実施
例1に示したラセミ体3−クロロ−1,2−プロパンジ
オールを単一炭素源とする培地100mAに懸濁し、3
0℃、130rpmで3日間反応させた。反応終了後、
遠心分離操作により菌体を除去し、上清液を得た。上清
液からの3−クロロ−1,2−プロパンジオールの調製
は実施例1と同様にして行い0.4 gを分取した。得
られた物質を実施例1に示した様に種々分析を行った結
果、光学純度98%e、e、以上のS−(+)−3−ク
ロロ−1,2−プロパンジオールであった。本物質の比
旋光度は〔α〕 −7,98” (Cm1.H2O)
であった。
ll□0) 5 DS−5−8S 7.87° 14
.66 DS−5−IC?、 89° 15
.3実施例7 ベプトン1.0%、酵母エキス1,0%、グリセロール
1.0%、pH7,2からなる組成の栄養培地100m
j2を入れた坂ロフラス−7(500m&容)を121
”C,15分間滅菌後、表1に示したAlcalige
nes sp、 DS−5−7Gを傾斜寒天培地から1
白金耳接種した。30°C124時間振盪培養した後、
遠心分離操作により菌体と上清液とを分離し、上清液を
廃棄した。得られた菌体を50mMリン酸緩衝液、pH
7,0にて2−3回洗浄し、洗浄菌体とした。次に実施
例1に示したラセミ体3−クロロ−1,2−プロパンジ
オールを単一炭素源とする培地100mAに懸濁し、3
0℃、130rpmで3日間反応させた。反応終了後、
遠心分離操作により菌体を除去し、上清液を得た。上清
液からの3−クロロ−1,2−プロパンジオールの調製
は実施例1と同様にして行い0.4 gを分取した。得
られた物質を実施例1に示した様に種々分析を行った結
果、光学純度98%e、e、以上のS−(+)−3−ク
ロロ−1,2−プロパンジオールであった。本物質の比
旋光度は〔α〕 −7,98” (Cm1.H2O)
であった。
実施例8.9
菌株は表1に示したAlcaligenes sp、
DS−S4Cに変更した以外は実施例7と同様の方法で
行った。
DS−S4Cに変更した以外は実施例7と同様の方法で
行った。
また得られた物質を実施例1に示した様に種々分析を行
った結果、それぞれ光学純度98%e、e。
った結果、それぞれ光学純度98%e、e。
以上のS−(+)−3−クロロ−1,2−プロパンジオ
ールであった。以下に実施例8,9の結果をまとめて示
す。
ールであった。以下に実施例8,9の結果をまとめて示
す。
実施例 菌株 〔α〕 収量(g)(Cm1
.II、0) 8 DS−5−8S ?、 99° 0.
429 DS−5−IC?、 94° 0.3
8実施例io〜12 実施例1〜3に従いラセミ体3−クロロ−1゜2−プロ
パンジオールをラセミ体3−ブロモ−1゜2−プロパン
ジオールに替えて実験を行った。実験方法及びその他の
操作は実施例1に従って行った。実施例10〜12で得
られた物質の比旋光度及び収量をまとめたものを以下に
示す。
.II、0) 8 DS−5−8S ?、 99° 0.
429 DS−5−IC?、 94° 0.3
8実施例io〜12 実施例1〜3に従いラセミ体3−クロロ−1゜2−プロ
パンジオールをラセミ体3−ブロモ−1゜2−プロパン
ジオールに替えて実験を行った。実験方法及びその他の
操作は実施例1に従って行った。実施例10〜12で得
られた物質の比旋光度及び収量をまとめたものを以下に
示す。
5
実施例 菌株 〔α〕
(Cm1.ClClり
10 DS−5−7G 3.82゜11
DS−5−BS 3.78゜収量(g) 0.62 0.56 1 2 DS−3−IC3,83° 0
.66また、実施例10〜12で得られた物質を常法に
よりトシル化した後、光学異性体分離カラムCCHIR
ALCEL QCカラム(25CmX0.46cm1
.D、))(ダイセル化学工業■製)によりヘキサン−
イソプロパツール(95: 5)の溶媒を用いて室温、
流速1.0ml/mi n、波長235nmの条件でH
PLC分析を行った。この分析法では保持時間は8体9
8.9分、R体115.4分となり、本物質は8体に相
当する保持時間を示し、それぞれ光学純度96%e、e
0以上であった。
DS−5−BS 3.78゜収量(g) 0.62 0.56 1 2 DS−3−IC3,83° 0
.66また、実施例10〜12で得られた物質を常法に
よりトシル化した後、光学異性体分離カラムCCHIR
ALCEL QCカラム(25CmX0.46cm1
.D、))(ダイセル化学工業■製)によりヘキサン−
イソプロパツール(95: 5)の溶媒を用いて室温、
流速1.0ml/mi n、波長235nmの条件でH
PLC分析を行った。この分析法では保持時間は8体9
8.9分、R体115.4分となり、本物質は8体に相
当する保持時間を示し、それぞれ光学純度96%e、e
0以上であった。
実施例13〜15
実施例4〜6に従いラセミ体3−クロロ−1゜2−プロ
パンジオールを3−ブロモ−1,2−プロパンジオール
に替えて実験を行った。実験方法及びその他の操作は実
施例4に従って行った。実施例13〜15で得られた物
質を実施例10に示した様に種々分析を行った結果、そ
れぞれ光学純度96%e、 e、以上のS−(+)
−3−プロモ−1,2−プロパンジオールであった。以
下に実施例13〜15の結果をまとめて示す。
パンジオールを3−ブロモ−1,2−プロパンジオール
に替えて実験を行った。実験方法及びその他の操作は実
施例4に従って行った。実施例13〜15で得られた物
質を実施例10に示した様に種々分析を行った結果、そ
れぞれ光学純度96%e、 e、以上のS−(+)
−3−プロモ−1,2−プロパンジオールであった。以
下に実施例13〜15の結果をまとめて示す。
実施例 菌株 〔α〕 収量(g)(C=
1 、 CBCl 3) 13 0S−5−7G 3.80° 15
.414 DS−3−BS 3.77 ’
16.315 DS−3−IC3,81″
16.2実施例16〜18 実施例7〜9に従いラセミ体3−クロロ−1゜2−プロ
パンジオールをラセミ体3−プロモー1゜2−プロパン
ジオールに替えて実験を行った。実験方法及びその他の
操作は実施例7に従って行った。実施例16〜18で得
られた物質を実施例10に示した様に種々分析を行った
結果、それぞれ光学純度96%e、e、以上のS−(+
) −3プロモー1.2−プロパンジオールであった。
1 、 CBCl 3) 13 0S−5−7G 3.80° 15
.414 DS−3−BS 3.77 ’
16.315 DS−3−IC3,81″
16.2実施例16〜18 実施例7〜9に従いラセミ体3−クロロ−1゜2−プロ
パンジオールをラセミ体3−プロモー1゜2−プロパン
ジオールに替えて実験を行った。実験方法及びその他の
操作は実施例7に従って行った。実施例16〜18で得
られた物質を実施例10に示した様に種々分析を行った
結果、それぞれ光学純度96%e、e、以上のS−(+
) −3プロモー1.2−プロパンジオールであった。
以下に実施例16〜18の結果をまとめて示す。
実施例 菌株 〔α〕 収量(g)(C=1
.CI(C1,) 1 6 DS−S−7G 3.80″
0.551 7 0S−S−853,79
° 0.611 8 DS−3−IC3
,84° 0.53〔発明の効果〕 本発明によれば土壌中より分離した新菌株を利用してラ
セミ体3−ハロゲノ−1,2−プロパンジオールからR
−(−)−3−ハロゲノ−1,2=プロパンジオールを
優先的に資化させることにより原料的に安価で、かつ工
業的に簡便な方法によってS−(+)−3−ハロゲノ−
1,2−プロパンジオールを製造することができる。
.CI(C1,) 1 6 DS−S−7G 3.80″
0.551 7 0S−S−853,79
° 0.611 8 DS−3−IC3
,84° 0.53〔発明の効果〕 本発明によれば土壌中より分離した新菌株を利用してラ
セミ体3−ハロゲノ−1,2−プロパンジオールからR
−(−)−3−ハロゲノ−1,2=プロパンジオールを
優先的に資化させることにより原料的に安価で、かつ工
業的に簡便な方法によってS−(+)−3−ハロゲノ−
1,2−プロパンジオールを製造することができる。
Claims (3)
- (1)R−(−)−3−ハロゲノ−1,2−プロパンジ
オール資化能を有しR−(−)−3−ハロゲノ−1,2
−プロパンジオールを単一炭素源として生育増殖しうる
アルカリゲネス属に属する細菌又はその培養菌体をラセ
ミ体3−ハロゲノ−1,2−プロパンジオールを単一炭
素源とする培地中で培養せしめ、残存するS−(+)−
3−ハロゲノ−1,2−プロパンジオールを分取するこ
とを特徴とする微生物処理によるS−(+)−3−ハロ
ゲノ−1,2−プロパンジオールの製法。 - (2)請求項1に記載の3−ハロゲノ−1,2−プロパ
ンジオールが3−クロロ−1,2−プロパンジオールで
ある製法。 - (3)請求項1に記載の3−ハロゲノ−1,2−プロパ
ンジオールが3−ブロモ−1,2−プロパンジオールで
ある製法。
Priority Applications (4)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
JP1330368A JPH03191795A (ja) | 1989-12-19 | 1989-12-19 | 微生物処理によるs―(+)―3―ハロゲノ―1,2―プロパンジオールの製法 |
US07/631,091 US5212089A (en) | 1989-12-19 | 1990-12-19 | Process for prepartion of s-(+)-3-halogeno-1,2-propanediol by treatment with alcaligenes |
EP90313922A EP0435551B1 (en) | 1989-12-19 | 1990-12-19 | Process for preparation S-(+)-3 halogeno-1,2-propanediol by treatment with microorganism |
DE69022014T DE69022014T2 (de) | 1989-12-19 | 1990-12-19 | Verfahren zur Herstellung von S-(+)-3-Halogeno-1,2-propandiol durch Behandlung mit Mikroorganismen. |
Applications Claiming Priority (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
JP1330368A JPH03191795A (ja) | 1989-12-19 | 1989-12-19 | 微生物処理によるs―(+)―3―ハロゲノ―1,2―プロパンジオールの製法 |
Publications (2)
Publication Number | Publication Date |
---|---|
JPH03191795A true JPH03191795A (ja) | 1991-08-21 |
JPH0473999B2 JPH0473999B2 (ja) | 1992-11-25 |
Family
ID=18231824
Family Applications (1)
Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
---|---|---|---|
JP1330368A Granted JPH03191795A (ja) | 1989-12-19 | 1989-12-19 | 微生物処理によるs―(+)―3―ハロゲノ―1,2―プロパンジオールの製法 |
Country Status (4)
Country | Link |
---|---|
US (1) | US5212089A (ja) |
EP (1) | EP0435551B1 (ja) |
JP (1) | JPH03191795A (ja) |
DE (1) | DE69022014T2 (ja) |
Cited By (4)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
US6316233B2 (en) | 1999-11-29 | 2001-11-13 | Daiso Co., Ltd. | Process for preparing (S)-3-halogeno-1,2-propanediol by microorganism |
US6727088B2 (en) | 2000-12-26 | 2004-04-27 | Daiso Co., Ltd. | Process for preparation of (R)-1, 2-propanediol by microbes |
US7235399B2 (en) | 2004-01-05 | 2007-06-26 | Daiso Co., Ltd. | Method for producing optically active 3-chloro-2-methyl-1, 2-propanediol taking advantage of microorganism |
US7247468B2 (en) | 2004-04-30 | 2007-07-24 | Daiso Co., Ltd. | Method for producing optically active 1,2-diols by microorganism culturing |
Families Citing this family (1)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
JP3687497B2 (ja) * | 2000-06-28 | 2005-08-24 | ダイソー株式会社 | 微生物培養法による光学活性1,2−ジオール類の製造法 |
Family Cites Families (5)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
JPS626697A (ja) * | 1985-07-03 | 1987-01-13 | Osaka Soda Co Ltd | 光学活性なエピクロルヒドリンの製法 |
CA1338723C (en) * | 1985-11-25 | 1996-11-19 | Hideyuki Takahashi | Process for preparing 3-chloro-1,2-propanediol |
JPS63251098A (ja) * | 1987-04-07 | 1988-10-18 | Kanegafuchi Chem Ind Co Ltd | (r)−3−ハロゲノ−1,2−プロパンジオ−ルの製造法 |
US4981796A (en) * | 1987-11-25 | 1991-01-01 | Kanegafuchi Kagaku Kogyo Kabushiki Kaisha | Manufacturing method of optically-active 1,2-diols |
US4943528A (en) * | 1988-11-22 | 1990-07-24 | Nitto Chemical Industry Co., Ltd. | Process for the production of optically active (R)-(-)-3-halo-1,2-propanediol |
-
1989
- 1989-12-19 JP JP1330368A patent/JPH03191795A/ja active Granted
-
1990
- 1990-12-19 US US07/631,091 patent/US5212089A/en not_active Expired - Lifetime
- 1990-12-19 DE DE69022014T patent/DE69022014T2/de not_active Expired - Fee Related
- 1990-12-19 EP EP90313922A patent/EP0435551B1/en not_active Expired - Lifetime
Cited By (4)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
US6316233B2 (en) | 1999-11-29 | 2001-11-13 | Daiso Co., Ltd. | Process for preparing (S)-3-halogeno-1,2-propanediol by microorganism |
US6727088B2 (en) | 2000-12-26 | 2004-04-27 | Daiso Co., Ltd. | Process for preparation of (R)-1, 2-propanediol by microbes |
US7235399B2 (en) | 2004-01-05 | 2007-06-26 | Daiso Co., Ltd. | Method for producing optically active 3-chloro-2-methyl-1, 2-propanediol taking advantage of microorganism |
US7247468B2 (en) | 2004-04-30 | 2007-07-24 | Daiso Co., Ltd. | Method for producing optically active 1,2-diols by microorganism culturing |
Also Published As
Publication number | Publication date |
---|---|
DE69022014D1 (de) | 1995-10-05 |
JPH0473999B2 (ja) | 1992-11-25 |
EP0435551A3 (en) | 1992-05-13 |
EP0435551B1 (en) | 1995-08-30 |
DE69022014T2 (de) | 1996-03-21 |
US5212089A (en) | 1993-05-18 |
EP0435551A2 (en) | 1991-07-03 |
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