JPH0278635A - IgMを含有する静脈内投与のポリクローナル免疫グロブリン調製物の調製方法 - Google Patents
IgMを含有する静脈内投与のポリクローナル免疫グロブリン調製物の調製方法Info
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- JPH0278635A JPH0278635A JP1192814A JP19281489A JPH0278635A JP H0278635 A JPH0278635 A JP H0278635A JP 1192814 A JP1192814 A JP 1192814A JP 19281489 A JP19281489 A JP 19281489A JP H0278635 A JPH0278635 A JP H0278635A
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Abstract
(57)【要約】本公報は電子出願前の出願データであるた
め要約のデータは記録されません。
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Description
【発明の詳細な説明】
(従来の技術並びに発明が解決しようとする課題)免疫
グロブリンは、ヒトにおける感染を防除するうえで重要
な役割を演する。免疫グロブリンは均一な物質でなく、
そして種々の生化学的および生理学的性質をもつ種々の
クラスに割り当てることができる。ウィルス因子に対す
る防御に参加するのは本質的にIgGであるが、IgM
抗体は好ましくはバクテリアの感染を防除する。
グロブリンは、ヒトにおける感染を防除するうえで重要
な役割を演する。免疫グロブリンは均一な物質でなく、
そして種々の生化学的および生理学的性質をもつ種々の
クラスに割り当てることができる。ウィルス因子に対す
る防御に参加するのは本質的にIgGであるが、IgM
抗体は好ましくはバクテリアの感染を防除する。
そのペンタマーの構造のために、IgMはバクテリアの
凝集にことに適する。それは、また、IgGより100
〜400倍補体を活性化し、モしてモノマーのIgGの
100倍のバクテリアに対するオブソニン作用を有する
。
凝集にことに適する。それは、また、IgGより100
〜400倍補体を活性化し、モしてモノマーのIgGの
100倍のバクテリアに対するオブソニン作用を有する
。
IgMを含有するタンパク質の投与は、バクテリアの感
染に対して殊に有効である。免疫グロブリン調製物は、
広い範囲の病気の処置および予防に臨床的に30年間有
効に使用されてきている。しかしながら、これらの物質
は際だって厳格なIgMの調製物であり、微量のIgA
およびIgMを含有することがある。最初の調製物は筋
肉内にのみ適合性であったが、静脈内1gG調製物は、
また、20年以上にもわたり入手可能である。
染に対して殊に有効である。免疫グロブリン調製物は、
広い範囲の病気の処置および予防に臨床的に30年間有
効に使用されてきている。しかしながら、これらの物質
は際だって厳格なIgMの調製物であり、微量のIgA
およびIgMを含有することがある。最初の調製物は筋
肉内にのみ適合性であったが、静脈内1gG調製物は、
また、20年以上にもわたり入手可能である。
抗補体活性を減少する方法、それゆえ静脈内適合性を保
証する方法における工程は、[5chultz、1(、
E 、および5chvick、 G、、Dtehs、m
ed、Wochenschrll’t 87(1982
)、1643 ; BarandunSS、et a
l、、Vox Sang、 28 (1957)、1
57 ; BarandunSS。
証する方法における工程は、[5chultz、1(、
E 、および5chvick、 G、、Dtehs、m
ed、Wochenschrll’t 87(1982
)、1643 ; BarandunSS、et a
l、、Vox Sang、 28 (1957)、1
57 ; BarandunSS。
et al、、Vox Sang、7 (19B2)
、187 ; 5tephan 。
、187 ; 5tephan 。
ν1、Z、KI [n、ChelM、Kl in、Bj
ochem、7 (1969)、282]。
ochem、7 (1969)、282]。
に記載されている。
これらの方法のすべては1980年までIgGに限定さ
れ、最初であって現在まで、静脈内に適合性のIgG
、a製物[ペンタグロビン (1’entaglobi
n)fRl ]の例のみが欧州特許(CP)13901
号に記載された。この免疫グロブリン調製物は、0.0
5〜0.15%のβ−プロピオラクトンで処理されて静
脈内適合性とされ、10%のIgMに加えて、80%の
IgGおよび10%のIgAを含有する。
れ、最初であって現在まで、静脈内に適合性のIgG
、a製物[ペンタグロビン (1’entaglobi
n)fRl ]の例のみが欧州特許(CP)13901
号に記載された。この免疫グロブリン調製物は、0.0
5〜0.15%のβ−プロピオラクトンで処理されて静
脈内適合性とされ、10%のIgMに加えて、80%の
IgGおよび10%のIgAを含有する。
他の免疫グロブリン調製物、例えば、フィンランド国特
許838831号およびドイツ国特許24042(i5
号に記載されているものは、IgMが20〜30%に濃
縮されているが、静脈内適合性ではない。
許838831号およびドイツ国特許24042(i5
号に記載されているものは、IgMが20〜30%に濃
縮されているが、静脈内適合性ではない。
パン・デル・ホウフェン(Van der Horen
)、1mmunoche+mlstry to(197
3)、LQ7−14に記載されているもののような免疫
学的に純粋な1gM調製物は、高い抗補体活性をもつた
めに、静脈内投与に適さず、したがってバクテリアの感
染を処置するためにこれまで利用されてきていない。
)、1mmunoche+mlstry to(197
3)、LQ7−14に記載されているもののような免疫
学的に純粋な1gM調製物は、高い抗補体活性をもつた
めに、静脈内投与に適さず、したがってバクテリアの感
染を処置するためにこれまで利用されてきていない。
20%以上のIgMを含有する調製物の投与のこれまで
の唯一の道筋は筋肉内であった。この方法は非常に痛い
ばかりでなく、かつまたより多い量のIgMを投与する
ために使用することができず、IgHの血液中の濃度は
有意に高くならない。
の唯一の道筋は筋肉内であった。この方法は非常に痛い
ばかりでなく、かつまたより多い量のIgMを投与する
ために使用することができず、IgHの血液中の濃度は
有意に高くならない。
本発明の目的は、バクテリアの感染の処置および予防に
おいて静脈内投与に適当な、高い純粋の1gM濃縮物を
利用可能とすることである。
おいて静脈内投与に適当な、高い純粋の1gM濃縮物を
利用可能とすることである。
(課題を解決するための手段並びに作用、効果)この目
的は、全体の免疫グロブリン含量に基づいて少なくとも
50重二%のIgMを含有し、低い抗補体活性を有し、
そして水溶液において安定でありかつウィルスを含有し
ない免疫グロブリン調製物を使用して達成される。この
タイプの調製物は、ヒト、動物、またはバクテリア起源
の血漿または他の源から、イオン交換体で処理し、生理
的塩類溶液の勾配またはpl+の勾配で交換体を溶離し
、そしてゲルで濾過し、ここでβ−プロピオラクトンで
処理し、PEG4000で沈澱させ、そして必要に応じ
て、クロマトグラフィーの前または後に、加熱すること
によって調製することができる。これらの手順に引き続
いて、それら自体既知の手段、例えば、β−プロピオラ
クトンおよび紫外線による処理、あるいは溶媒および洗
浄剤による処理を実施すること。
的は、全体の免疫グロブリン含量に基づいて少なくとも
50重二%のIgMを含有し、低い抗補体活性を有し、
そして水溶液において安定でありかつウィルスを含有し
ない免疫グロブリン調製物を使用して達成される。この
タイプの調製物は、ヒト、動物、またはバクテリア起源
の血漿または他の源から、イオン交換体で処理し、生理
的塩類溶液の勾配またはpl+の勾配で交換体を溶離し
、そしてゲルで濾過し、ここでβ−プロピオラクトンで
処理し、PEG4000で沈澱させ、そして必要に応じ
て、クロマトグラフィーの前または後に、加熱すること
によって調製することができる。これらの手順に引き続
いて、それら自体既知の手段、例えば、β−プロピオラ
クトンおよび紫外線による処理、あるいは溶媒および洗
浄剤による処理を実施すること。
ができ、これらは、また、滅菌の機能を満足する。
また、いくつかのIgM抗体の混合物から調製物を調製
するか、あるいは、ちょうど上に述べた方法により調製
された調製物に1種または2種以上の抗体を添加するこ
とができる。
するか、あるいは、ちょうど上に述べた方法により調製
された調製物に1種または2種以上の抗体を添加するこ
とができる。
IgMの濃縮物は好ましくはダなくとも50%である。
注射可能な調製物は、1〜20g/100ml、好まし
くは3〜5 g /100mlの本発明による調製物を
含有する溶液である。
くは3〜5 g /100mlの本発明による調製物を
含有する溶液である。
驚くべきことには、本発明の方法により調製されかつ5
0%より多いIgMを含有する調製物の抗補体活性は非
常に低いので、調製物は静脈内適合性であることが発見
された。この結果は、90%のIgGおよびIgAでさ
らに安定化される、わずかにほぼ10%の1gM溶液に
関する欧州特許13901号中の情報からでさえ、予測
することができなかった。
0%より多いIgMを含有する調製物の抗補体活性は非
常に低いので、調製物は静脈内適合性であることが発見
された。この結果は、90%のIgGおよびIgAでさ
らに安定化される、わずかにほぼ10%の1gM溶液に
関する欧州特許13901号中の情報からでさえ、予測
することができなかった。
本発明による抗バクテリア効果は、欧州特許13901
号に記載される10%IgM調製物のそれと、動物試験
において比較した。驚くべきことには、本発明による調
製物の効果は、そのIgMの含量から予/1p1できる
ものよりも高かった。1gM濃縮物の抗バクテリア効果
はIgGおよびIgAの濃度を減少することによって増
加できるということは、完全に予1111されなかった
。換言すると、IgHの比濃度は、できるだけIgGお
よびIgAがほとんど存在しないとき、とくに有効であ
る。
号に記載される10%IgM調製物のそれと、動物試験
において比較した。驚くべきことには、本発明による調
製物の効果は、そのIgMの含量から予/1p1できる
ものよりも高かった。1gM濃縮物の抗バクテリア効果
はIgGおよびIgAの濃度を減少することによって増
加できるということは、完全に予1111されなかった
。換言すると、IgHの比濃度は、できるだけIgGお
よびIgAがほとんど存在しないとき、とくに有効であ
る。
このタイプの効果は、現在の技術水準において調製され
るIgMでは達成することができない。
るIgMでは達成することができない。
なぜなら、筋肉内に投与するためには少なすぎるか、あ
るいはIgGおよびIgAの比率が高すぎるからである
。
るいはIgGおよびIgAの比率が高すぎるからである
。
本発明による調製物の調製方法を下に説明する。
IgMを含有する分画、好ましくはコーン(Cohn)
アルコール分画により得られるコーン分画1!1、ある
いは血液からのIgGのクロマトグラフィーの分離の間
に生ずるIgM分画を、1〜5%、好ましくは2.5%
のカプリル酸で沈澱させる。
アルコール分画により得られるコーン分画1!1、ある
いは血液からのIgGのクロマトグラフィーの分離の間
に生ずるIgM分画を、1〜5%、好ましくは2.5%
のカプリル酸で沈澱させる。
IgMを含有する残留物をアニオン交換体、例えば、D
EAE%QAEまたはQMAの群にp+(5,5〜7.
5において適用する。IgM分画は結合するようになり
、そして生理的塩類溶液の勾配またはpHの勾配で溶離
する。限外濾過による濃縮後、1gM溶出液を1gM溶
液の100ml当り0.05〜5mlのβ−プロピオラ
クトンで処理する。この反応は好ましくは20〜37℃
およびput、o〜9,0、好ましくは8.0において
1〜10時間、β−プロピオラクトンが完全に消費され
るまで、実施する。抗補体活性をさらに低下させるため
、1gM溶液を1〜3%のPEG 4000、好ましく
は2.5%PEG4000で0〜10℃、好ましくは5
℃、pH4,5〜5において処理し、そして沈澱を遠心
分離する。
EAE%QAEまたはQMAの群にp+(5,5〜7.
5において適用する。IgM分画は結合するようになり
、そして生理的塩類溶液の勾配またはpHの勾配で溶離
する。限外濾過による濃縮後、1gM溶出液を1gM溶
液の100ml当り0.05〜5mlのβ−プロピオラ
クトンで処理する。この反応は好ましくは20〜37℃
およびput、o〜9,0、好ましくは8.0において
1〜10時間、β−プロピオラクトンが完全に消費され
るまで、実施する。抗補体活性をさらに低下させるため
、1gM溶液を1〜3%のPEG 4000、好ましく
は2.5%PEG4000で0〜10℃、好ましくは5
℃、pH4,5〜5において処理し、そして沈澱を遠心
分離する。
初期の抗補体活性が非常に高い場合、1gM溶液は必要
に応じて、また、40〜60℃、好ましくは57℃に0
65〜4時間、好ましくは1時間加熱することができる
。
に応じて、また、40〜60℃、好ましくは57℃に0
65〜4時間、好ましくは1時間加熱することができる
。
この処理に引き続いて、濃縮物は全体の免疫グロブリン
に基づいて50%以上の純度のIgMであろう。さらに
精製するため、この溶液を500000D以上の排除限
界をもつゲルクロマトグラフィー材料、例えばセファク
リル(Sephacryl)S400HRまたは530
0HRまたはセファ0−ズ(Sephar。
に基づいて50%以上の純度のIgMであろう。さらに
精製するため、この溶液を500000D以上の排除限
界をもつゲルクロマトグラフィー材料、例えばセファク
リル(Sephacryl)S400HRまたは530
0HRまたはセファ0−ズ(Sephar。
se) CLUBのクロマトグラフィーにかけることが
できる。抗補体活性を減少するための手段は、また、事
なる順序で実施することができる。β−プロピオラクト
ンを使用する処理は、例えば、排除クロマトグラフィー
後のアニオン交換クロマトグラフィーおよび加熱の前に
実施することができるか、あるいは加熱はβ−プロピオ
ラクトンによる処理およびPEG4000による沈澱の
前に実施することができる。
できる。抗補体活性を減少するための手段は、また、事
なる順序で実施することができる。β−プロピオラクト
ンを使用する処理は、例えば、排除クロマトグラフィー
後のアニオン交換クロマトグラフィーおよび加熱の前に
実施することができるか、あるいは加熱はβ−プロピオ
ラクトンによる処理およびPEG4000による沈澱の
前に実施することができる。
IgM分画を集め、既知の方法で加工し、そして濾過滅
菌する。
菌する。
(実施例)
本発明による調製方法を、次の実施例を参照して詳述す
る。
る。
実施例1
1 kgのコーンのペーストII+を51の0.1モル
の酢酸塩緩衝液、p1!5、中に溶解し、そして2.5
%のカプリル酸で25℃において処理した。
の酢酸塩緩衝液、p1!5、中に溶解し、そして2.5
%のカプリル酸で25℃において処理した。
沈澱を4時間後遠心し、そして残留物を0.025モル
のトロメタミンに対してpH6,5において透析した。
のトロメタミンに対してpH6,5において透析した。
この溶液を次いで同じ緩衝液中にQA−トリスアクリル
(Trlsacryl)−LSを備えた31のカラムに
加えた。IgMを吸着剤により保持し、そして0.3モ
ルの塩化ナトリウムで溶離した。
(Trlsacryl)−LSを備えた31のカラムに
加えた。IgMを吸着剤により保持し、そして0.3モ
ルの塩化ナトリウムで溶離した。
溶出液を40g/lのタンパク質含量に濃縮し、57℃
に1時間加熱し、そして0.15%のβ−プロピオラク
トンで25℃およびpua、oにおいて一夜処理した。
に1時間加熱し、そして0.15%のβ−プロピオラク
トンで25℃およびpua、oにおいて一夜処理した。
次いで、この溶液を2.5 g7100mlのPEG4
000でpH4,5において処理し、1時間、4℃にお
いて撹拌し、そして遠心した。次いで、残留物をセファ
クリル(Sephaeryl)S400HRの201の
カラムでクロマトグラフィーにかけた。第2分画はIg
Mを含有し、これを限外濾過し、そして濾過滅菌した。
000でpH4,5において処理し、1時間、4℃にお
いて撹拌し、そして遠心した。次いで、残留物をセファ
クリル(Sephaeryl)S400HRの201の
カラムでクロマトグラフィーにかけた。第2分画はIg
Mを含有し、これを限外濾過し、そして濾過滅菌した。
IgMの含量は85%であり、5%のIgGおよび9%
のIgAを含有した。
のIgAを含有した。
実施例2
501のヒト血漿から得られたプールを4℃において融
解し、そして低温沈澱を分離した。PP5g因子をDE
AEセファデックス(Sephadex)で除去し、そ
してフィブリノーゲンを9%のエタノールによる沈澱に
よりp)15.3において除去した。
解し、そして低温沈澱を分離した。PP5g因子をDE
AEセファデックス(Sephadex)で除去し、そ
してフィブリノーゲンを9%のエタノールによる沈澱に
よりp)15.3において除去した。
残留する血漿を22ミリモルのトロメタミン/IIcI
のイオン性環境にI)H7,5において調節した。クロ
マトグラフィーを同一緩衝液で平衡化したDEAE−ト
リスアクリル(Trlsacryl)−LSの10Rの
カラムで実施した。保持されたIgMを0.3モルの炭
酸ナトリウムでpH?、0において溶離した。溶出液を
25%のエタノールで一3℃およびpl(7,5におい
て沈澱させ、そして沈澱を0.1モルの酢酸塩緩、新液
中にpH15において5og/nのタンパク質濃度に溶
解した。この溶液を2.5%のカプリル酸で25℃およ
びpH5において処理し、そして沈澱を分離した。残留
物を0.11%のβ−プロピオラクトンで5時間、25
℃およびpl+7において処理し、1時間、4℃におい
て2.5 g /100mlのPEG4000で沈澱さ
せ、そして遠心した。残留物をセファクリル(Seph
acryl) 8400の20flのカラムで3回クロ
マトグラフィーにかけた。第2分画を限外濾過し、そし
て濾過滅菌した。この分画はIgMを93%の純度でを
含有し、そして2%のIgGおよび5%のIgAを含有
した。全体の免疫グロブリン含量は100%であった。
のイオン性環境にI)H7,5において調節した。クロ
マトグラフィーを同一緩衝液で平衡化したDEAE−ト
リスアクリル(Trlsacryl)−LSの10Rの
カラムで実施した。保持されたIgMを0.3モルの炭
酸ナトリウムでpH?、0において溶離した。溶出液を
25%のエタノールで一3℃およびpl(7,5におい
て沈澱させ、そして沈澱を0.1モルの酢酸塩緩、新液
中にpH15において5og/nのタンパク質濃度に溶
解した。この溶液を2.5%のカプリル酸で25℃およ
びpH5において処理し、そして沈澱を分離した。残留
物を0.11%のβ−プロピオラクトンで5時間、25
℃およびpl+7において処理し、1時間、4℃におい
て2.5 g /100mlのPEG4000で沈澱さ
せ、そして遠心した。残留物をセファクリル(Seph
acryl) 8400の20flのカラムで3回クロ
マトグラフィーにかけた。第2分画を限外濾過し、そし
て濾過滅菌した。この分画はIgMを93%の純度でを
含有し、そして2%のIgGおよび5%のIgAを含有
した。全体の免疫グロブリン含量は100%であった。
実施例3
1 kgのコーンのペースト11!を実施例1に記載す
るようにカプリル酸で沈澱させ、そして残留物を0.0
25モルのトロメタミンに対してpH7,0において透
析した。
るようにカプリル酸で沈澱させ、そして残留物を0.0
25モルのトロメタミンに対してpH7,0において透
析した。
IgMを吸着剤により保持し、1回カラムを0.05モ
ルの酢酸ナトリウムでI)H4,5において洗浄した後
、溶離した。溶出液をPEG4000およびβ−プロピ
オラクトンで実施例1に記載するように処理した。残留
物をセファデックス(Sephadex)G25の2f
tのカラムで再度緩衝化し、限界濾過し、そして濾過滅
菌した。
ルの酢酸ナトリウムでI)H4,5において洗浄した後
、溶離した。溶出液をPEG4000およびβ−プロピ
オラクトンで実施例1に記載するように処理した。残留
物をセファデックス(Sephadex)G25の2f
tのカラムで再度緩衝化し、限界濾過し、そして濾過滅
菌した。
1gM含量は73%であり、20%のIgAおよび7%
のIgGであった。合計の免疫グロブリン含量は100
%であった。
のIgGであった。合計の免疫グロブリン含量は100
%であった。
β−プロピオラクトンの処理は、β−プロピオラクトン
および紫外線を使用するか、あるいは洗浄剤および溶媒
、好ましくはトリーロープチルホスフェートおよびツイ
ーン(Tween)80を使用する処理によるか、ある
いは低温殺菌により達成することができる。この処理に
引き続いて、加熱と同様に、また、ゲル濾過を実施する
ことができる。
および紫外線を使用するか、あるいは洗浄剤および溶媒
、好ましくはトリーロープチルホスフェートおよびツイ
ーン(Tween)80を使用する処理によるか、ある
いは低温殺菌により達成することができる。この処理に
引き続いて、加熱と同様に、また、ゲル濾過を実施する
ことができる。
タンパク質、好ましくはヒトアルブミン、糖、好ましく
はマルトース、またはアミノ酸の混合物を、また、調製
物に添加することができる。
はマルトース、またはアミノ酸の混合物を、また、調製
物に添加することができる。
本発明により調製されたIgM m縮物を、その出発材
料、IgG 、 IgAおよびIgMを含有する商業的
に人手可能なペンタグロビン(Pentaglobln
)(3)と、および同一出発材料から調製したIgG分
画と比較した。結果は次の通りである。
料、IgG 、 IgAおよびIgMを含有する商業的
に人手可能なペンタグロビン(Pentaglobln
)(3)と、および同一出発材料から調製したIgG分
画と比較した。結果は次の通りである。
1、参照調製物の特性づけ
免疫グロブリンIgG 、 IgA 、およびIgMを
抗血清を使用して比濁的に決定した。全体のタンパク質
含量は、ビウレット(Biuret)法により決定した
。個々の試験調製物についてのデータを表1に要約する
。
抗血清を使用して比濁的に決定した。全体のタンパク質
含量は、ビウレット(Biuret)法により決定した
。個々の試験調製物についてのデータを表1に要約する
。
表 1
試験調製物のデータ
No、 調製物 タンパク質 IgG IgA
IgM(g/l) (i+g/lQOml>
1 ペンタグロビン 51.5 3720
920 7502 IgG分画 48.9
3770 890 703 1gM濃縮物 8.1
40 70 7502、動物試験 本発明による1gM濃縮物の抗バクテリア効果(調製物
3)を、シュードモナス(Pseudomonas)[
5tephanSW、およびDlehtelmulle
r 、 Il、、静脈内使用のための2つの78免疫グ
ロブリン調製物の生体外挙動および生体内効能の比較(
Comparison of’ 1n vitr
o behavIour and 1n vl
vo errlcacy oftwo 7S Imm
unoglobulln preparationsf
or 1ntravenous use) 、Arzn
eimlttel Forsch、/Drug Res
、33(If)(1983)、IL 1538−40]
で感染したマウスにおいて、ペンタグロビン(Pent
aglobln) ”’ (調製物1)およびIgG
分画(調製物2)のそれらと比較した。表2は生存率を
示す。
IgM(g/l) (i+g/lQOml>
1 ペンタグロビン 51.5 3720
920 7502 IgG分画 48.9
3770 890 703 1gM濃縮物 8.1
40 70 7502、動物試験 本発明による1gM濃縮物の抗バクテリア効果(調製物
3)を、シュードモナス(Pseudomonas)[
5tephanSW、およびDlehtelmulle
r 、 Il、、静脈内使用のための2つの78免疫グ
ロブリン調製物の生体外挙動および生体内効能の比較(
Comparison of’ 1n vitr
o behavIour and 1n vl
vo errlcacy oftwo 7S Imm
unoglobulln preparationsf
or 1ntravenous use) 、Arzn
eimlttel Forsch、/Drug Res
、33(If)(1983)、IL 1538−40]
で感染したマウスにおいて、ペンタグロビン(Pent
aglobln) ”’ (調製物1)およびIgG
分画(調製物2)のそれらと比較した。表2は生存率を
示す。
表 2
マウス予防試験の結果
Nα 調製物 感染後21時間生存するマウス1
ペンタグロビン 47.62 I
gG分画 33,33 1gM濃縮物(本
発明’) 88.74 未処理 9.
5 したがって、本発明による1gM濃縮物(調製物3)は
、そのタンパク質濃縮物が175のみであってさえ、調
製物1および2のそれらより有意に強力であり、予防作
用を有する。
ペンタグロビン 47.62 I
gG分画 33,33 1gM濃縮物(本
発明’) 88.74 未処理 9.
5 したがって、本発明による1gM濃縮物(調製物3)は
、そのタンパク質濃縮物が175のみであってさえ、調
製物1および2のそれらより有意に強力であり、予防作
用を有する。
3、抗補体活性(ACA)の決定
抗補体活性は、カバット(Kabat)およびメイヤー
(Mayer)の方法[Mayer、 M、M、、補体
および補体の固定(Compl、ement and
Complement f’1xatton)、Kab
at s E、A、およびMayer 、M、M、編、
実験免疫化学(Experimental Ima+u
noche1stry)、第2版、Springfle
ld 、 Ill、、1964、Thoa+asBoo
k 133−240]により、静脈内適合性の尺度とし
て、決定した。表3は、本発明による1gM濃縮物のそ
れと比較して、商業的に入手可能な調製物を使用して得
られた結果を要約する。すべての溶液は5%であった。
(Mayer)の方法[Mayer、 M、M、、補体
および補体の固定(Compl、ement and
Complement f’1xatton)、Kab
at s E、A、およびMayer 、M、M、編、
実験免疫化学(Experimental Ima+u
noche1stry)、第2版、Springfle
ld 、 Ill、、1964、Thoa+asBoo
k 133−240]により、静脈内適合性の尺度とし
て、決定した。表3は、本発明による1gM濃縮物のそ
れと比較して、商業的に入手可能な調製物を使用して得
られた結果を要約する。すべての溶液は5%であった。
表 3
4、ウィルス不活性化の試験
本発明によるIgM !縮物を、ΦX 174型バクテ
リオフアージおよびセンダイ(Sendai)ウィルス
で処理した。滅菌をβ−プロピオラクトン[Pr1nc
eSA、M、、l1orovttz、 B、、Dlch
telmul Ier s H=、5tephan S
ν、およびGa1lo 、 R,C,、HTLV−Il
lの不活性化手順の評価についての定量的アッセイニト
リ (n−ブチル)ホスフェート、ナトリウムコレート
、およびβ−プロピオラクト ン (Quantita
tive assays for eavlua
tion o fllTLV −Ill 1nact
lvat1on procedures;Tri(n−
butyl)phosphaete、sodlum c
l+olate、and β−proplolac
tone)、Cancer Re5earch 45(
1985)、4592s −4594s ] 、]β−
プロ準ビオラクトン+紫外線 Prlnce%A、M、
、5tephan % W、、Dichtelmule
r、H8、Brotman 、 B、、およびIIuI
Ina ST、、β−プロピオラクトンおよび紫外線照
射の組み合せた使用による非A/非B型肝炎ウィルスの
ハチンソン菌株の不活性化(lnaetlVatlon
orthe 1Iutch1nson 5train
of’ non−A/non−B hepatiti
s virus by combined u
se or β−propi。
リオフアージおよびセンダイ(Sendai)ウィルス
で処理した。滅菌をβ−プロピオラクトン[Pr1nc
eSA、M、、l1orovttz、 B、、Dlch
telmul Ier s H=、5tephan S
ν、およびGa1lo 、 R,C,、HTLV−Il
lの不活性化手順の評価についての定量的アッセイニト
リ (n−ブチル)ホスフェート、ナトリウムコレート
、およびβ−プロピオラクト ン (Quantita
tive assays for eavlua
tion o fllTLV −Ill 1nact
lvat1on procedures;Tri(n−
butyl)phosphaete、sodlum c
l+olate、and β−proplolac
tone)、Cancer Re5earch 45(
1985)、4592s −4594s ] 、]β−
プロ準ビオラクトン+紫外線 Prlnce%A、M、
、5tephan % W、、Dichtelmule
r、H8、Brotman 、 B、、およびIIuI
Ina ST、、β−プロピオラクトンおよび紫外線照
射の組み合せた使用による非A/非B型肝炎ウィルスの
ハチンソン菌株の不活性化(lnaetlVatlon
orthe 1Iutch1nson 5train
of’ non−A/non−B hepatiti
s virus by combined u
se or β−propi。
1actone and ultraviolet
Irradiatlon)、 J、med、Vir
ol、16(1985)、119−25] 、溶媒+洗
浄剤(前記β−プロピオラクトンの文献を参照)または
低温殺菌(60℃において10時間) N1elII
lbu「ger、 N、、Wortnsbacher
SW、、およびKumpc 。
Irradiatlon)、 J、med、Vir
ol、16(1985)、119−25] 、溶媒+洗
浄剤(前記β−プロピオラクトンの文献を参照)または
低温殺菌(60℃において10時間) N1elII
lbu「ger、 N、、Wortnsbacher
SW、、およびKumpc 。
G1、低温殺菌したイソアグリチニン不含因子−v11
1調製物および調製方法、欧州特許出願第017324
2号(1985)]を使用して実施した。表4は結果を
示す。
1調製物および調製方法、欧州特許出願第017324
2号(1985)]を使用して実施した。表4は結果を
示す。
表 4
タンパク質 ウィルス 滅 菌 不活性化(g/1
00ml) (IOg+o
”)4 ΦX 174 BPL )7
4 ΦX 174 BPL+UV 70
.5 センダイ 溶媒+洗浄剤 〉4,55
ΦX 174 低温殺菌 〉8.0結果は有効な
滅菌を示し、表4に記載する方法の1つにより滅菌した
18M濃縮物によるウィルスの伝達は防止することがで
きる。
00ml) (IOg+o
”)4 ΦX 174 BPL )7
4 ΦX 174 BPL+UV 70
.5 センダイ 溶媒+洗浄剤 〉4,55
ΦX 174 低温殺菌 〉8.0結果は有効な
滅菌を示し、表4に記載する方法の1つにより滅菌した
18M濃縮物によるウィルスの伝達は防止することがで
きる。
5、貯蔵寿命の試験
本発明の18M濃縮物を、1.8%の溶液(1,2g/
100mlのIgM)の形態で57℃に4時間加熱した
。
100mlのIgM)の形態で57℃に4時間加熱した
。
それをバクテリアE、colie sクレブシェラ属(
KIebsiel la)、および連鎖法菌属(Str
eptococci)に対する抗体について、ネーテル
(Neter)の受身赤血球凝集法(PHA) [N
eter 、 E、、Bact、Rev、20(195
B) 、18G ]により試験した。表5は加熱の前ま
たは後の活性を示す。
KIebsiel la)、および連鎖法菌属(Str
eptococci)に対する抗体について、ネーテル
(Neter)の受身赤血球凝集法(PHA) [N
eter 、 E、、Bact、Rev、20(195
B) 、18G ]により試験した。表5は加熱の前ま
たは後の活性を示す。
表 5
ペンタグロビン (Pentaglobin) ’ ”
と比較した18M濃縮物の逆抗バクテリアー抗体力価次
の菌に対 1gM ベンタグ IgM ベンタグす
る抗体 ロビン ロビンE、coli
G40 180 320 180Kle
bslella 1280 840 G40
320Streptococci 320
160Step、vlrld、 320 1[i
o 160 40本発明による18M濃縮物は
、したがって、決定の方法の誤差の限界(±1力価段階
)を仮定してその免疫学的活性に関して熱安定性である
。
と比較した18M濃縮物の逆抗バクテリアー抗体力価次
の菌に対 1gM ベンタグ IgM ベンタグす
る抗体 ロビン ロビンE、coli
G40 180 320 180Kle
bslella 1280 840 G40
320Streptococci 320
160Step、vlrld、 320 1[i
o 160 40本発明による18M濃縮物は
、したがって、決定の方法の誤差の限界(±1力価段階
)を仮定してその免疫学的活性に関して熱安定性である
。
それは寿命に関して、商業的に人手可能な1gM含有調
製物ペンタグロビン(Pentaglobin)(R’
と同様に挙動する。
製物ペンタグロビン(Pentaglobin)(R’
と同様に挙動する。
Claims (1)
- 【特許請求の範囲】 1、バクテリアの感染の処置および予防のための静脈内
投与のポリクローナル免疫グロブリン調製物であって、 イ)免疫グロブリンの瞬間の合計含量に基づいて少なく
とも50重量%のIgMを含有し、ロ)低い抗補体活性
を示し、 ハ)水溶液中で安定であり、 ニ)ウィルスを含有しない、 ことを特徴とする静脈内投与のポリクローナル免疫グロ
ブリン調製物。 2、いく種類かのモノクローナルIgM抗体の混合物か
ら成ることを特徴とする、上記第1項記載の免疫グロブ
リン調製物。 3、また、1種または2種以上の免疫グロブリン抗体を
含有することを特徴とする、上記第1または2項記載の
免疫グロブリン調製物。 4、また、追加のタンパク質、好ましくはヒトアルブミ
ン、糖、好ましくはマルトース、またはアミノ酸の混合
物を含有することを特徴とする、上記第1〜3項のいず
れかに記載の免疫グロブリン調製物。 5、1〜20g/100ml、好ましくは3〜5g/1
00mlのタンパク質濃度をもつ溶液の形態であること
を特徴とする、上記第1〜4項のいずれかに記載の免疫
グロブリン調製物。 6、ヒト、動物、またはバクテリア起源の免疫グロブリ
ン含有血漿分画から分離することを特徴とする、上記第
1〜5項のいずれかに記載の免疫グロブリン調製物を調
製する方法。 7、免疫グロブリン含有分画をアニオン交換体で処理し
、これを生理的塩類溶液またはpH勾配で溶離し、溶出
液をゲル濾過し、アニン交換クロマトグラフィーまたは
ゲル濾過の前または後に、β−プロピオラクトンおよび
PEG400で処理し、そして必要に応じて加熱するこ
とを特徴とする、上記第6項記載の方法。 8、アニオン交換体は、DEAE−トリスアクリル(T
risacryl)−LS、QA−トリスアクリル(T
risacryl)またはQMA−アクセル(Acce
ll)であることを特徴とする、上記第7項記載の方法
。 9、ゲル濾過のためのゲルはセファクリル(Sepha
cryl)S400HRまたはS300HRであること
を特徴とする、上記第7または8項記載の方法。 10、調製物を、アニオン交換クロマトグラフィーまた
はゲル濾過の前または後に、β−プロピオラクトンで、
あるいはβ−プロピオラクトンおよび紫外線で、および
0〜10℃、好ましくは5℃、およびpH4.5〜5に
おいて3%のPEG400で、処理することを特徴とす
る、上記第7〜9項のいずれかに記載の方法。 11、加熱を0.5〜5時間、40〜60℃において、
好ましくは1時間、57℃において実施することを特徴
とする、上記第7〜10項のいずれかに記載の方法。 12、調製物を、ゲル濾過の前または後に、溶媒および
洗浄剤、好ましくはトリ−n−ブチルホスフェートおよ
びツイーン(Tween)80で処理することを特徴と
する、上記第7〜11項のいずれかに記載の方法。 13、調製物を、ゲル濾過の前または後に、低温殺菌す
ることを特徴とする、上記第7〜11項のいずれかに記
載の方法。 14、タンパク質、好ましくはヒトアルブミン、糖、好
ましくはマルトース、またはアミノ酸の混合物を調製物
に添加することを特徴とする、上記第7〜11項のいず
れかに記載の方法。
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