JP6779293B2 - イムノアッセイにおける干渉を低減するための方法 - Google Patents

Description

本発明は、イムノアッセイにおいて分析物(analyte)の直接または間接検出に用いられる検出可能な標識に結合する干渉因子により起きる干渉を低減するための方法に関する。より具体的には、本発明は、分析物を含有する疑いのある単離した試料中の分析物、ある態様において抗原または抗体を検出するためのイムノアッセイ法であって、試料を複数の結合パートナーと共にインキュベートし、それらのうちの１つは検出可能な標識を保有し、その際、標識を保有せず、検出可能な標識に結合する標識特異的結合パートナーを添加することによる方法に関する。

免疫診断アッセイにおいて干渉を排除するための方法は当技術分野で周知であり、詳細に記載されている。総説については、たとえばPark and Kricka (The Immunoassay Handbook Elsevier Ltd. 2013, Chapter 5.3, pages 403-415)を参照されたい。特に、固相ベースのイムノアッセイ、いわゆる不均一アッセイは、偽陽性または偽陰性のアッセイ結果、高いバックグラウンド信号、低いアッセイ感度および動態、試薬安定性の欠如、ならびにこれらの試薬の保存寿命の短縮をもたらす可能性がある種々の干渉を受ける。非特異的干渉はしばしば、分析物の存在とは無関係に、固相材料へのアッセイ成分の非特異的な結合により起きる。干渉の他の原因は、リウマチ因子、抗ＩｇＭ抗体または抗−動物抗体（異好抗体(heterophilic antibody)）、たとえばヒト−抗マウス抗体（ＨＡＭＡ）の存在である。

しばしばみられる干渉の他の原因は、イムノアッセイに用いる信号発生成分である。既知の信号発生化合物は、たとえば酵素であるか、あるいは蛍光、比色、化学発光または電気化学発光の原理に基づいて光を発する標識である。特に、電気化学発光性化合物について、信号発生化合物への非特異的結合による干渉が先行技術において記載されている(Ando et al. Intern Med 2007, 46(15): 1225-1229; Sapin et al., Clin Chem Lab Med 2007; 45(3):416-418)。

信号発生成分に基づく干渉を避けるために、しばしば、その信号発生成分に連結する過剰量のキャリヤータンパク質がイムノアッセイ混合物に添加される。その結果、干渉性の化合物または因子は遊離キャリヤータンパク質に付着したその信号発生成分に結合する。この措置が干渉を排除するのに不十分である場合、真の信号発生成分に類似しているけれどもそれ自体はいかなる信号も生じない物質をイムノアッセイ混合物に添加することもできる。その結果、試料中に存在する干渉因子はこの過剰の類似化合物に定量的に結合し、真のターゲット、すなわち信号発生化合物には結合しない。こうして干渉を抑制できる。そのような方法は、たとえばUS patent no. 5,888,745およびそれに相当するDE 195 19 973に記載されている。これらの文書には分析物を決定するための方法が開示され、その場合、分析物特異的な結合物質は発光信号を与えることができる金属含有錯体に付着している。その方法では、第１の金属含有錯体に関係があるけれども分析物には結合しない第２の金属含有錯体を、被験試料に添加する。この第２の金属含有錯体は第１の金属含有錯体の信号の減弱を低減するのに役立つ。

US patent no. 5,888,745 DE 195 19 973

Park and Kricka (The Immunoassay Handbook Elsevier Ltd. 2013, Chapter 5.3, pages 403-415) Ando et al. Intern Med 2007, 46(15): 1225-1229 Sapin et al., Clin Chem Lab Med 2007; 45(3):416-418

しかし、干渉を排除するための措置はあるけれども、イムノアッセイは信号発生化合物に類似する追加量の競合化合物をアッセイ混合物に添加するだけでは排除できない干渉を示す傾向がある。

したがって、解決すべき問題は検出可能な信号の発生に基づくイムノアッセイの特異度を増大させることにある。
本発明者らが、問題を引き起こす標識自体に結合する化合物をイムノアッセイに添加した際、干渉は低減した。本発明者らの予想は、標識自体がマスクおよびシールドされ、したがってシールドされた標識によって検出可能な光信号はもはや全く発生できないかあるいは不十分に発生できるにすぎないというものであったので、これは意外であった。

本発明は、信号発生化合物、または検出可能な標識、特に結合パートナーに付着した発光性標識は、標識特異的な結合パートナーの添加によりそれの環境からマスクおよびシールドされるという知見に基づく。

本発明は、分析物を含有する疑いのある単離した試料中の分析物、ある態様において抗原または抗体を検出するためのイムノアッセイ法であって、試料を複数の結合パートナーと共にインキュベートし、それらのうちの１つは検出可能な標識を保有し、その際、標識を保有せず、検出可能な標識に結合する、標識特異的結合パートナーを添加することによる方法に関する。

本方法は多種多様な分析物に適用でき、病原体の感染により試料中に存在するＩｇＧおよびＩｇＭクラスの被分析抗体に特に有用であることが証明された。
本発明はさらに、複数の結合パートナーを含み、それらのうちの少なくとも１つが分析物に結合し、それらのうちの１つが検出可能な標識を保有し、それらのうちの１つが標識特異的結合パートナーであって検出可能な標識に結合するけれどもそれ自体は検出可能な標識を保有しない、前記方法に有用な試薬キットに関する。

さらに、本発明は、試料中に存在する抗標識抗体により起きる干渉を排除するためのインビトロ診断検査における、検出可能な標識を保有しない標識特異的結合パートナーの使用を含む。

図１ａは、実施例２および３に記載するトキソプラズマ・ゴンディイ(Toxoplasma gondii)ＩｇＭイムノアッセイの結果を示す。 図１ｂは、実施例２および３に記載するトキソプラズマ・ゴンディイ(Toxoplasma gondii)ＩｇＭイムノアッセイの結果を示す。 図２は、種々の濃度の標識特異的な結合パートナーを抗干渉成分として用いたトキソプラズマＩｇＭイムノアッセイの結果を示す（参照：実施例３）。 図３は、最適濃度の標識特異的な結合パートナーを抗干渉成分として用いた抗Ｂ型肝炎コア−イムノアッセイの結果を示す。詳細については実施例４を参照。 図４は、非競合アッセイ原理の模式図を示す。このフォーマットにおいて、検出された信号は分析物の量に正比例する；すなわち、低濃度の分析物は低い測定信号を生じ、これに対し高濃度の分析物は高い信号をもたらす。分析物が存在しなければ、前決定したバックグラウンドまたはカットオフ値を超える信号を検出できない。 ａ）特定クラスの抗体、ある態様においてＩｇＭ抗体を検出するためのフォーマット（μ捕獲）；第１結合パートナーは、検出可能な標識を保有する分析物特異的な抗原である； ｂ）ａ）と同様であるが、第１結合パートナーは、第１結合パートナーを結合する標識された追加の結合パートナーを添加することにより間接標識されている； ｃ）抗体を検出するための二重抗原サンドイッチ(double-antigen sandwich)（ＤＡＧＳ）フォーマット；第１および第２結合パートナーは両方とも分析物を結合する。第１結合パートナーはそれ自体が検出可能な標識を保有するか、あるいはそれはｂ）に示すように標識を保有しかつ第１結合パートナーに結合する追加の結合パートナーを添加することにより間接標識されていてもよい。 図５（態様ａ））は、競合アッセイフォーマットの模式図を示す。競合フォーマットにおいては、検出された信号と分析物の存在との関係は逆転する；すなわち、態様ａ）については、分析物の非存在下で特定子(specifier)は分析物特異的な結合パートナーに結合でき、測定可能な信号を生じる。他方、分析物の存在下では、分析物特異的な結合パートナーへの特定子の結合は分析物との競合によって抑制される。分析物が存在すれば、分析物特異的な結合パートナーへの第２結合パートナーの結合も低減する。その結果、無信号またはより低い信号は分析物が被験試料中に存在することを示す。 図６は、本発明による競合アッセイフォーマットの２つの追加態様ｂ）およびｃ）を示す。この場合も同様に、検出信号と分析物の存在との関係は逆転する；すなわち、分析物の非存在下では標識により発せられる検出可能な信号は高く、すなわち分析物の存在下（測定可能な信号が低減する）より高い。 ｂ）この態様において、第１結合パートナーが標識を保有し、特定子は用いられない。第２結合パートナーは、標識された第１結合パートナーへの結合について分析物と競合する。 ｃ）この態様において、第１結合パートナーは標識を保有せず、固相に結合させることができる。固相へ免疫複合体を付着させるために第２結合パートナーを用いることはない。特定子が標識を保有する。分析物は、第１結合パートナーへの結合について特定子と競合する。 態様ｂ）およびｃ）の両方において、第１結合パートナー（ｂ））または特定子（ｃ））のいずれかが保有する標識に結合する第３結合パートナーを添加する。 図７は、甲状腺ホルモンＴＳＨの検出のためのイムノアッセイ（非競合サンドイッチフォーマット）において、標識特異的な結合パートナーを添加することによる干渉排除を示す。詳細を実施例５に記載する。

本発明は、分析物を含有する疑いのある単離した試料中の分析物、ある態様において抗原または抗体を検出するためのイムノアッセイ法であって、試料を複数の結合パートナーと共にインキュベートし、それらのうちの１つは検出可能な標識を保有し、その際、標識を保有せず、検出可能な標識に結合する、標識特異的結合パートナーを添加することによる方法に関する。イムノアッセイは、アミノ酸から構成された結合パートナーの使用により、生物体液中に存在する生体分子の存在および／または量を検出する生化学的試験である；これらの結合パートナーは抗体および／または抗原から誘導される。

イムノアッセイの種々のフォーマットおよび変法、たとえば均一および不均一イムノアッセイが当技術分野で広く知られている。均一イムノアッセイでは、試薬と試料を混合し、たとえば比濁法により直接測定する。

本発明は、不均一イムノアッセイに関する。不均一イムノアッセイは多工程で行なわれ、その際、検出可能な標識を保有する試薬、ある態様においては結合パートナー、他の態様においては分析物特異的な結合パートナーを、被験試料に添加する。これらのアッセイは液相と固相の２相が必要であるので“不均一”と呼ばれる。溶液中での分析物と特異的結合パートナー −免疫複合体を構成する− との免疫反応の前、途中または後に、その免疫複合体を固相、ある態様においてはマイクロタイタープレート ラテックスまたはポリスチロールビーズに付着させる。その結果、２つの“不均一”相、液相および固相が生じる。液相と固相を分離した後、分析物特異的な結合パートナーに付着した標識から発せられる信号を固相もしくは液相のいずれかまたは両方の相において検出する。

イムノアッセイは競合または非競合フォーマットのいずれかで実施できる。競合フォーマットでは、試料に含有される分析物が、捕獲化合物（しばしば抗体であるか、あるいは血清試料中の被験病原性物質に対する抗体が存在する場合はその病原性物質の抗原である）への結合について標識された結合パートナー（分析物と類似または同一である）と競合する。

本発明のある態様において、イムノアッセイ法は非競合フォーマットをとっている（種々の特定のフォーマットの説明については図４を参照）。この場合、分析物は、分析物に結合する化合物、すなわち分析物特異的な結合パートナーと分析物を接触させることにより検出される。この分析物特異的な結合パートナーは、それ自体が検出可能な標識を保有するか、あるいは検出可能な標識を保有する他の結合パートナーのターゲットである。用語“検出可能な標識を保有する”には、直接結合した標識、および分析物特異的な結合パートナーに結合する他の標識された結合パートナーを添加することにより間接的に付与された標識（説明については、たとえば図４ｂを参照））の両方が含まれる。よって、非競合イムノアッセイでは、分析物と標識を保有する検出化合物との間で形成された複合体の量を決定することにより分析物の量を決定する。周知の非競合イムノアッセイフォーマットは、古典的なサンドイッチフォーマット（分析物は２つの分析物特異的な抗体の間に捕獲される）、二重抗原サンドイッチフォーマット（分析物は、２つの特異的抗原の間に捕獲される抗体である）、およびＩｇＭ−抗体がヒト−ＩｇＭ抗体に対して特異的な抗体により捕獲されるμ−捕獲フォーマットである。このいわゆるμ−捕獲フォーマットでは、通常は、分析物であるＩｇＭ−抗体はμ−捕獲されたＩｇＭ分析物に結合する標識抗原を用いて検出される。

より詳細には、非競合フォーマットで実施されるイムノアッセイ法は下記の工程を含む：
ａ．試料を下記のものと共にインキュベートする：
ｉ．分析物に結合し、検出可能な標識を保有する、第１結合パートナー；
ｉｉ．固相に結合させることができ、かつ分析物に結合する、第２結合パートナー；
ｉｉｉ．第１結合パートナーの検出可能な標識に結合する第３結合パートナーであって、標識を保有しない第３結合パートナー；
ｂ．試料を第１、第２および第３結合パートナーと混合することにより免疫反応混合物を形成する；
ｃ．体液試料中に分析物が存在するならばそれを第１および第２結合パートナーと免疫反応させて免疫反応生成物を形成させるのに十分な、かつ第３結合パートナーを第１結合パートナーの検出可能な標識と免疫反応させるのに十分な期間、免疫反応混合物を保持する；
ｄ．いずれかの免疫反応生成物の存在および／または濃度を検出する。

非競合フォーマットの態様を図４にさらに説明する。本発明によれば、複数の結合パートナーを適用し、それらのうちの少なくとも１つは分析物特異的な結合パートナーである。

結合パートナーは、アミノ酸から構成されるポリペプチドを基礎とする生体分子である。用語“アミノ酸から構成される”は、結合パートナーの主成分が、ポリペプチドを形成するアミノ酸であることを意味する。それには、１以上の残基が糖部分または脂質残基により修飾されたアミノ酸からなる主鎖をもつポリペプチドも含まれる。しかし、主成分としての核酸または炭水化物から構成される結合パートナーは含まれない。ある態様において、結合パートナーは糖残基による修飾を含む。ある態様において、結合パートナーは、追加部分（ある態様においては、標識、またはその結合パートナーを固相に付着させるために用いられる化合物）を付着させるための化学的リンカー分子を含む。これの例はビオチンであり、それはたとえばポリエチレングリコール単位を基礎とする化学的リンカーにより結合パートナーに結合させることができる。

分析物特異的な結合パートナーは、アミノ酸から構成されるポリペプチドを基礎とする生体分子であって分析物に結合するものである。結合パートナーについて前記に詳述した特徴は、分析物特異的な結合パートナーにも適用される。分析物特異的な結合パートナーを第１結合パートナーとして適用する。そのような分析物特異的な結合パートナーは、分析物に結合する抗体またはそのフラグメントであってもよい。分析物が抗原であれば、抗体または抗体フラグメントは分析物特異的な結合パートナーとして特に有用である。分析物が抗体であれば、一般にその被分析抗体に結合する抗原を分析物特異的な結合パートナーとして適用する。非競合アッセイフォーマットにおいては、第１結合パートナー（分析物特異的な結合パートナー）が標識を保有する。

具体例として、トキソプラズマ・ゴンディイに対するＩｇＭ抗体を検出するためのアッセイにおいては、試料中に存在するトキソプラズマ・ゴンディイ抗体に結合する抗原であるＴｏｘｏ ｐ３０抗原を、分析物特異的な結合パートナーとして適用する。Ｔｏｘｏ ｐ３０抗原は検出可能な標識を保有する。本発明のある態様は、分析物がトキソプラズマ・ゴンディイに対する抗体である前記の非競合フォーマットによるイムノアッセイ法である。

さらなる具体例として、分析物としてのホルモン、ある態様においては糖タンパク質である甲状腺刺激ホルモン（ＴＳＨ）を検出するためのイムノアッセイにおいて、ＴＳＨ特異的な抗体を被験試料中の抗原である分析物ＴＳＨに結合する分析物特異的な結合パートナーとして適用する。そのＴＳＨ特異的抗体は検出可能な標識を保有する。分析物は、固相に結合させることができる第２のＴＳＨ特異的抗体とのサンドイッチを形成する。本発明のある態様は非競合フォーマットに従ったイムノアッセイ法であり、その際、分析物はホルモン、ある態様においては糖タンパク質ホルモン、さらに他の態様においてはＴＳＨである。

ｉ．、ｉｉ．、およびｉｉｉ．の表示は記述用語であるにすぎず、時間的または段階的な順序が免疫反応混合物への個々の結合パートナーの添加に関連すると解釈すべきではない。たとえば、第３結合パートナー（参照：工程ｉｉｉ）を最後に添加する必要はなく、最初に添加してもよく、あるいはｉ．、ｉｉ．、およびｉｉｉ．に挙げたすべての結合パートナーを同時に添加してもよい、など。

分析物への第１および第２結合パートナーの結合、ならびに標識（第１結合パートナーが保有するもの）への第３結合パートナーの結合は、特異的に起き、それは高アフィニティーでの排他的結合と述べることもできる。これは、第１結合パートナーが分析物に特異的に結合し、第２結合パートナーも分析物に特異的に結合し、第３結合パートナーも第１結合パートナーに付着している標識に同様に特異的に結合することを意味する。これは、たとえば分析物がトキソプラズマ・ゴンディイに対するＩｇＭ分子である態様においては、第１結合パートナーは分析物ＩｇＭにより認識されてそれに結合する抗原、ある態様においてはＴｏｘｏ ｐ３０抗原であることを意味する。この態様において、固相に結合させることができる第２結合パートナーはＩｇＭ抗体のＦｃ部（μ−鎖）に対する抗体である。その結果、第２結合パートナーはＩｇＭ抗体のＦｃ部に特異的に結合し、標識を保有する第１結合パートナー（Ｔｏｘｏ ｐ３０抗原）は分析物ＩｇＭ抗体のパラトープに特異的に結合する。

用語“特異的”または“特異的に結合する”は、試料中に存在する他の化合物、一般に生体分子が、分析物、結合パートナー類および標識（ターゲット分子としてまとめる）に有意には結合しないことをも示す。これは、分析物、結合パートナー類および標識との相互作用に関与しないターゲット分子領域への他の化学物質の結合を除外しない。

本発明によれば、固相に結合させることができる第２結合パートナーを適用する。この結合パートナーは抗体またはそのフラグメントであってもよい。被分析抗体を検出するために使用できるいわゆる二重抗原サンドイッチ（ＤＡＧＳ）フォーマットにおいては、第２結合パートナーは被分析抗体に結合する抗原である。この抗原は、たとえばその抗原をビオチンとコンジュゲートさせ、それをストレプトアビジン−コートした固相に付着させることにより、固相に結合させることができる。

前記に説明したように、μ−捕獲フォーマットに従ったアッセイにおいては、追加の結合パートナー（第２結合パートナー）としてヒトＩｇＭに結合する抗体を適用する。この第２結合パートナーは、ＩｇＭ分析物のパラトープに反映されるそれらの抗原特異性に関係なくＩｇＭ分子類を結合する（それは試料中のすべてのＩｇＭ分子類に結合するであろう）。第２結合パートナーを固相に結合させることができる。固相への生体分子の結合メカニズムは当技術分野で周知であり、最も容易な方法はプラスチック表面、たとえばマイクロタイタープレートへのタンパク質の直接コーティングである。ある態様において、固相への結合はビオチン−ストレプトアビジン相互作用により行なわれ、その際、第２結合パートナーはビオチン部分を保有し、固相がストレプトアビジンでコートされる。

本発明によれば、被分析試料および複数の結合パートナーを含有するインキュベーション混合物に、標識特異的な結合パートナーを第３結合パートナーとして添加する。この標識特異的な結合パートナーはアミノ酸から構成されるポリペプチドを基礎とする生体分子であり、結合パートナーのうちの１つが保有する検出のために適用された標識に結合する。さらに前記の結合パートナーの定義は標識特異的な結合パートナーにも適用される。非競合フォーマットにおいて、標識を通常は分析物特異的な結合パートナーのうちの１つに直接または間接的に付着させる。ある態様において、それを第１結合パートナーに付着させる。競合アッセイフォーマット（さらに後記を参照）のある態様においては、インキュベーション混合物中に存在する他の結合パートナーへの結合について分析物と競合する特定子に標識を付着させる。

好ましくは、その標識特異的な結合パートナーは、標識に結合する抗体またはそのフラグメントである。標識特異的な結合パートナー自体は標識を保有せず、標識以外の他のアッセイ成分と相互作用しないか、あるいは有意には相互作用しないことが重要である。言い換えると、当技術分野で既知の検出概念である、特異的結合パートナーの標識をそれ自体も標識を保有する標識特異的な結合パートナー（たとえば、ジゴキシン／ジゴキシゲニンと抗ジゴキシン／ジゴキシゲニン抗体）により認識する方法に基づくものは含まれない；それらの概念は、抗標識抗体から生じる干渉を低減するためには適用されないからである。

標識の量と比較した第３結合パートナーとして作用する標識特異的な結合パートナーの量についての厳密な化学量論的量は重要ではないので、絶対的な最大および最小濃度範囲は本発明の作業を行なうために本質的ではない。満たす必要がある唯一の条件は、アッセイ試薬が機能性を維持することである。

第３結合パートナー（標識特異的な結合パートナー）のモル比を比較およびカウントするために、標識をマスキングするのに使われる実際の結合部位を決定しなければならない。これは、たとえばＦａｂフラグメントは１つのパラトープをもち、したがって１つの結合部位としてカウントすることを意味する；これに対し、たとえば完全ＩｇＧ抗体またはＦａｂ_２フラグメントは２つのパラトープ（結合部位）をもち、よって２つの結合部位としてカウントする。

特定のアッセイにおいては、標識のモル量と比較して過剰の標識特異的な結合パートナー（＝第３結合パートナー）を供給することが有益な可能性がある。他のアッセイにおいては状況が逆転する可能性があり、標識特異的な結合パートナーの量と比較して過剰モルの標識を添加することが有益な可能性がある。たとえば、１：１０（標識特異的な結合パートナーの結合部位と標識の比）の態様においては、標識特異的な結合パートナーの結合部位と比較してシールドすべき標識の過剰モルは１０倍である；これは、１０分の１の標識分子が標識特異的な結合パートナーの結合部位により結合およびカバーされる可能性があることを意味する。たとえば、１０：１、すなわち標識特異的な結合パートナーの結合部位が１０倍過剰に存在する他の態様においては、状況が逆転するであろう。さらに他の態様において、標識特異的な結合パートナーの結合部位と標識のモル比は少なくとも１：２０、他の態様において１：１０、他の態様において１：５、他の態様において１：３、他の態様において１：２、他の態様において１：１．５、他の態様において１：１、他の態様において２：１、他の態様において３：１、他の態様において５：１、他の態様において１０：１、他の態様において２０：１、他の態様において５０：１、さらに他の態様において少なくとも１００：１である。

標識特異的な結合パートナーをイムノアッセイ混合物に添加すると、それは標識に結合し、それにより標識を試料中に存在する干渉化合物との相互作用からカバーおよびシールドする。同時に、標識特異的な結合パートナーはそれのサイズおよび三次元構造のため、標識に結合したリンカーを干渉性である試料化合物との相互作用から立体的にシールドおよびブロックすることもできる。その結果、リンカー配列への試料成分の非特異的な結合により起きる干渉も避けられる。それ自体は標識を保有しない標識特異的な結合パートナーを添加することにより、干渉成分（すなわち標識）を意図的にマスクし、それによって、試料中に存在する可能性のあるさらなる抗標識成分が標識に結合するのを阻止する。

標識特異的な結合パートナーを添加しなければ、かなり頻繁に偽陽性結果が観察される可能性がある。たとえば、μ捕獲フォーマットに基づくアッセイフォーマットにおいて、これらの干渉は非特異的なＩｇＭクラスの抗体の存在によってしばしば起きる。μ−捕獲フォーマットに基づくアッセイデザインにおいて、これらの干渉性の抗−標識ＩｇＭ類は固相に捕獲される。抗−標識ＩｇＭ類は標識された特異的化合物にも結合するので、真の分析物が試料中に存在しないにもかかわらず、標識された分析物特異的な結合パートナーは固相に結合する。その結果、偽陽性信号が観察される。

検出可能な標識も専門家に広く知られている。本発明のある態様によれば、検出可能な標識は、酵素であるか、あるいは光、ある態様においては蛍光、発光、化学発光、電気化学発光または放射能を発生する標識である。好ましい態様において、標識は電気化学発光性標識、ある態様においてはトリス（２，２’−ビピリジル）ルテニウム（ＩＩ）−錯体（Ｒｕ（ｂｐｙ））である。干渉は自己抗体および類似の干渉分子を引き付ける標識分子の三次元構造により起きるのであってその標識の信号発生メカニズム、たとえば光または放射能により起きるのではないので、前記の標識はすべて本発明に使用できる。

検出可能な標識という用語には、標識に結合して標識と分析物特異的な結合パートナーとを連結しているリンカー配列も含まれる。通常は、リンカー配列は天然または合成アミノ酸１〜１００個のペプチド主鎖を基礎とする。

他の態様において、下記の工程を含む競合フォーマットでイムノアッセイ法を実施することができる：
ａ．試料を下記のものと共にインキュベートする：
ｉ．分析物に結合し、検出可能な標識を保有しない、第１結合パートナー；
ｉｉ．第１結合パートナーに結合し、第１結合パートナーへの結合について分析物と競合する特定子であって、検出可能な標識を保有する特定子；
ｉｉｉ．固相に結合させることができ、第１結合パートナーに結合し、第１結合パートナーへの結合について分析物および特定子と競合する、第２結合パートナー；
ｉｖ．特定子の検出可能な標識に結合する第３結合パートナーであって、標識を保有しない第３結合パートナー；
ｂ．試料を第１、第２および第３結合パートナーならびに特定子と混合することにより免疫反応混合物を形成する；
ｃ．体液試料中に分析物が存在するならばそれを第１結合パートナーへの結合について特定子および第２結合パートナーと競合させるのに十分な、かつ第３結合パートナーを特定子の検出可能な標識と免疫反応させてそれにより免疫反応生成物を形成させるのに十分な期間、免疫反応混合物を保持する；
ｄ．いずれかの免疫反応生成物の存在および／または濃度を検出する。

競合イムノアッセイフォーマットの態様を図５に示す。競合イムノアッセイフォーマットにおいて、干渉問題を下記のように説明できる：本発明による標識特異的な結合パートナーが存在しない場合、標識への干渉化合物の結合が測定信号の低減を生じる。競合フォーマットにおける信号の解釈について、真の分析物との競合も信号の低減を生じるので、これは低減した信号が（偽）陽性結果として理解および解釈される可能性があることを意味する。この干渉を避けるために、本発明による標識特異的な結合パートナーをイムノアッセイ混合物に添加し、したがって干渉化合物に対する潜在的な結合部位は既に占有およびブロックされている。その結果、全体的な信号範囲は低減する。ところが意外にも、真の陽性試料中に存在する分析物はなおアッセイ成分と競合し、したがってこの真の陽性試料をなお信頼性をもって検出できる。

競合イムノアッセイフォーマットに用いる複数の結合パートナーの特性は、ある側面において非競合フォーマットに用いるものと異なる。分析物に結合する第１結合パートナーは、その競合フォーマットにおいては標識を保有しない。その代わり、検出可能な標識は適用される特定子に結合している。特定子は第１結合パートナーに結合し、構造的に分析物に類似する。したがって、その特定子は第１結合パートナーへの結合について分析物と競合する。第２結合パートナーを固相に結合させることができ、そこまでは非競合フォーマットについて前記にさらに記載した第２結合パートナーの特性に対応する。しかし、競合フォーマットでは、第２結合パートナーは第１結合パートナーに（分析物にではなく）結合し、第１結合パートナーへの結合について分析物および特定子と競合する。

それ自体は標識を保有せず、特定子の標識に結合する、第３結合パートナーの特性は、非競合フォーマットのものと同じである。ｉ．、ｉｉ．、ｉｉｉ．およびブロックｉｖ．の表示は記述用語であるにすぎず、時間的または段階的な順序が免疫反応混合物への個々の結合パートナーの添加に関連すると解釈すべきではない。たとえば、第３結合パートナー（参照：工程ｉｖ）を最後に添加する必要はなく、最初に添加してもよく、あるいはｉ．、ｉｉ．、ｉｉｉ．およびブロックｉｖ．に挙げたすべての結合パートナーを同時に添加してもよい、など。

競合イムノアッセイの例は抗Ｂ型肝炎コア抗体の検出のためのアッセイである；実施例４を参照。
他の態様において、単離した試料中の分析物を検出するための方法は図６ 態様ｂ）に説明する競合フォーマットで実施でき、その場合、特定子を添加せず、第１結合パートナーが標識を保有する（この場合には存在しない特定子の代わりに）。その方法は下記の工程を含む：
ａ．単離した試料を下記のものと共にインキュベートする：
ｉ．分析物に結合し、検出可能な標識を保有する、第１結合パートナー；
ｉｉ．固相に結合させることができ、第１結合パートナーに結合し、第１結合パートナーへの結合について分析物と競合する、第２結合パートナー；
ｉｉｉ．第１結合パートナーの検出可能な標識に結合する第３結合パートナーであって、標識を保有しない第３結合パートナー；
ｂ．試料を第１、第２および第３結合パートナーと混合することにより免疫反応混合物を形成する；
ｃ．体液試料中に分析物が存在するならばそれを第１結合パートナーへの結合について第２結合パートナーと競合させるのに十分な、かつ第３結合パートナーを第１結合パートナーの検出可能な標識と免疫反応させてそれにより免疫反応生成物を形成するのに十分な期間、免疫反応混合物を保持する；
ｄ．いずれかの免疫反応生成物の存在および／または濃度を検出する。

さらに他の態様において、図６ 態様ｃ）に説明する競合フォーマットで実施でき、その場合、第２結合パートナーを添加せず、第１結合パートナーを固相に結合させることができる（この場合には存在しない第２結合パートナーを用いる代わりに）。その方法は下記の工程を含む：
ａ．単離した試料を下記のものと共にインキュベートする：
ｉ．分析物に結合し、固相に結合させることができ、検出可能な標識を保有しない、第１結合パートナー；
ｉｉ．第１結合パートナーに結合し、第１結合パートナーへの結合について分析物と競合する特定子であって、検出可能な標識を保有する特定子；
ｉｉｉ．第１結合パートナーの検出可能な標識に結合する第３結合パートナーであって、標識を保有しない第３結合パートナー；
ｂ．試料を第１および第２結合パートナーならびに特定子と混合することにより免疫反応混合物を形成する；
ｃ．体液試料中に分析物が存在するならばそれを第１結合パートナーへの結合について特定子と競合させるのに十分な、かつ第３結合パートナーを特定子の検出可能な標識と免疫反応させてそれにより免疫反応生成物を形成するのに十分な期間、免疫反応混合物を保持する；
ｄ．いずれかの免疫反応生成物の存在および／または濃度を検出する。

競合および非競合イムノアッセイのための分析物は共に、イムノアッセイにより検出するのに十分な大きさであるいずれかの化学分子または生体分子、ある態様においては抗原、抗体およびホルモンであってよい。ある分析物は、感染症、炎症性、敗血症性、代謝性、心臓または癌の事象または疾患の結果として試料中に出現する。他の分析物は、患者が摂取する薬物であってこの薬物の濃度をモニターする必要があるもの、たとえば臓器移植後の免疫抑制のための薬物である（療法薬物モニタリング）。ある分析物（大部分はホルモン）は妊娠検査において判定される。

さらに他の態様において、分析物は酵素、サイトカイン、増殖因子、ホルモン、ワクチン、抗体などである。より具体的には、分析物は下記のものであってもよい：甲状腺ホルモン、ある態様においてトリヨードチロニン（Ｔ３）およびそれのプロホルモンであるチロキシン（Ｔ４）、甲状腺刺激ホルモン（ＴＳＨ）およびＴＳＨ受容体自己抗体、エリスロポエチン、インスリン、ソマトトロピン、成長ホルモン放出因子、増殖因子、ある態様において血小板由来増殖因子、上皮増殖因子、トランスフォーミング増殖因子α、トランスフォーミング増殖因子、上皮増殖因子、線維芽細胞増殖因子、神経増殖因子、インスリン様増殖因子Ｉ、インスリン様増殖因子ＩＩ、凝固因子ＶＩＩＩ、スーパーオキシドジスムターゼ、インターフェロン、ｙ−インターフェロン、インターロイキン−１、インターロイキン−２、インターロイキン−３、インターロイキン−４、インターロイキン−５、インターロイキン−６、顆粒球コロニー刺激因子、多系統コロニー刺激因子、顆粒球−マクロファージ刺激因子、マクロファージコロニー刺激因子、Ｔ細胞増殖因子、リンホトキシンなど。ある態様において、分析物は心臓マーカー、ある態様においてトロポニンＴおよびＩ、ＮＴ−ｐｒｏＢＮＰ、ＢＮＰ、ならびに敗血症マーカーである。

ある態様において、分析物は単離した試料中に存在するポリペプチド、ある態様において抗原または抗体である。ある態様において、分析物は、病原体、ならびにその病原体の感染により存在する検出可能なタンパク質および抗原である。分析物はウイルス性、細菌性または原虫性の病原体に由来するものであってもよく、それは感染の結果として検出可能な免疫反応、すなわち抗体、特にＩｇＭ抗体の生成を引き起こす可能性がある。たとえば、病原体は下記のものからなる群から選択される：
ｉ．トキソプラズマ属生物、ある態様においてトキソプラズマ・ゴンディイ；
ｉｉ．肝炎ウイルス、ある態様においてＡ型肝炎ウイルス（ＨＡＶ）、Ｂ型肝炎ウイルス（ＨＢＶ）およびＣ型肝炎ウイルス（ＨＣＶ）；
ｉｉｉ．ヘルペスウイルス、ある態様においてヒト単純ヘルペスウイルス１および２（ＨＨＶ１およびＨＨＶ２）、水痘−帯状疱疹ウイルス（ＨＨＶ３）、エプスタイン−バーウイルス（ＨＨＶ４／ＥＢＶ）またはヒト−サイトメガロウイルス（ＨＨＶ５）、ならびにヒト−ヘルペスウイルス６、７および８；
ｉｖ．風疹ウイルス；
ｖ．レトロウイルス、ある態様においてＨＩＶ１および２ならびにＨＴＬＶ１および２；
ｖｉ．パラミクソウイルス、ある態様において麻疹ウイルスおよび流行性耳下腺炎ウイルス；
ｖｉｉ．ボレリア属生物。

他の態様において、分析物は前記に挙げたいずれかの病原体の感染の結果として存在するＩｇＭまたはＩｇＧクラスの抗体である。分析物がＩｇＭまたはＩｇＧ抗体である場合、分析物は、病原体自体の構造または非構造タンパク質、ある態様において病原体内に存在するカプシド／コア抗原またはエンベロープ抗原または可溶性抗原に由来する、エピトープに結合する。

ある態様において、分析物は、トキソプラズマ・ゴンディイ、サイトメガロウイルス（ＣＭＶ）、風疹、Ａ型肝炎およびＢ型肝炎からなる群から選択される病原体の感染に対する反応として存在するＩｇＭクラスの抗体である。

当業者に既知であるすべての生物体液を本発明のイムノアッセイ法のために単離した試料として使用できる。通常用いられる試料は、全血、血清、血漿、尿または唾液などの体液である。試料としては、脊椎動物から単離したいかなる生物体液も使用できる。ある態様において、試料は哺乳動物、特にヒトに由来する。

本発明のさらに他の側面は、イムノアッセイにより分析物を検出するための試薬キットであって、複数の結合パートナーを含み、それらのうちの少なくとも１つは分析物に結合し、それらのうちの１つは検出可能な標識を保有し、標識特異的結合パートナーは検出可能な標識に結合するけれどもそれ自体は検出可能な標識を保有しない。ある態様において、分析物特異的な結合パートナーがその標識を保有する。本発明のさらに他の主題は、トキソプラズマ・ゴンディイに対するＩｇＭ抗体を検出するための試薬キットであって、複数の結合パートナーを含み、それらのうちの少なくとも１つは固相に結合させることができる抗ヒトＩｇＭ抗体であり、それらのうちの１つは検出可能な標識を保有するトキソプラズマ・ゴンディイ特異的抗原であり、標識特異的結合パートナーは検出可能な標識に結合するけれどもそれ自体は検出可能な標識を保有しない。

さらに、前記に定めた試薬キットは、対照および基準溶液、ならびに平均的な当業者が用いる一般的な添加剤、緩衝剤、塩類、界面活性剤などを含む１以上の溶液中における試薬、ならびに使用のための指示を収容している。

本発明のさらなる態様は、インビトロ診断検査において試料中に存在する抗標識抗体により起きる干渉を排除するための、検出可能な標識を保有しない標識特異的結合パートナーの使用である。

以下の例により本発明を説明する。

実施例１：
ルテニウム標識に対するモノクローナル抗体の作製
モノクローナル抗体を作製するための一般法は当業者に周知である。予め配合した融合ポリペプチド免疫原を実験動物、たとえばマウス、ラット、ヒツジまたはハムスターに、種々の用量で腹腔内投与する。Ｂ細胞の採集前に、ブースト免疫化を実施する。Ｂ細胞ハイブリドーマをKoehlerおよびMilsteinの方法(Koehler, G. and Milstein, C., Nature 256 (1975) 495-497)に従って得ることができる。得られたハイブリドーマは、単一のクローンまたは細胞としてマルチウェルプレートのウェル内に沈着する。初代培養上清を免疫原に対する反応性についてＥＬＩＳＡにより試験する。

先行技術に記載された方法に従って、免疫原であるキーホールリンペットヘモシアニン(keyhole limpet hemocyanin)−コンジュゲートしたルテニウム（ＩＩ） トリス−ビピリジン Ｎ−ヒドロキシスクシンイミド（ＢＰＲｕ−ＫＬＨ）をマウスに投与することにより、電気化学発光性標識ルテニウム（ＩＩ） トリス−ビピリジン Ｎ−ヒドロキシスクシンイミドに対する特異性をもつモノクローナルマウス抗体を作製した。免疫化により得られた細胞を、ＥＬＩＳＡを用いてルテニウム（ＩＩ） トリス−ビピリジン Ｎ−ヒドロキシスクシンイミドに対するそれらの特異性について分析した。

それぞれ８〜１２週齢のＢａｌｂ／ｃマウスに、免疫原であるキーホールリンペットヘモシアニン−コンジュゲートしたルテニウム（ＩＩ） トリス−ビピリジン Ｎ−ヒドロキシスクシンイミド（ＢＰＲｕ−ＫＬＨ）１００μｇによる反復腹腔内免疫化を施した。マウスを３回、すなわち初回免疫化の後、６週および１０週の時点でも免疫化した。初回免疫化は完全フロイントアジュバント(Freund’s adjuvant)を用いて実施され、２回目および３回目の免疫化は不完全フロイントアジュバントを用いて行なわれた。マウス血清力価を１２週後に下記に従ってＥＬＩＳＡ法により試験した。ＥＬＩＳＡをマイクロプレートリーダー上で実施した。０．５μｇの抗原／ｍｌを含む溶液の適用により、ＥＬＩＳＡプレートを、免疫原であるキーホールリンペットヘモシアニン−コンジュゲートしたルテニウム（ＩＩ） トリス−ビピリジン Ｎ−ヒドロキシスクシンイミド（ＢＰＲｕ−ＫＬＨ）でコートした。その後、ＰＢＳ中に１％のＲＰＬＡを含む溶液を室温で１時間適用することにより、空いている結合部位をブロックした。０．９％（ｗ／ｖ）の塩化ナトリウムおよび０．０５％（ｗ／ｖ）のＴｗｅｅｎ ２０を含む溶液でウェルを３回洗浄した。マウス血清をＰＢＳで１：５０希釈し、試料として用いた。インキュベーション時間は室温で１時間であった。０．９％（ｗ／ｖ）の塩化ナトリウムおよび０．０５％（ｗ／ｖ）のＴｗｅｅｎ ２０を含む溶液でウェルを３回洗浄した。検出抗体として、ペルオキシダーゼ−コンジュゲートしたターゲット抗体の定常ドメインに対するポリクローナル抗体（ＰＡＫ＜Ｍ−Ｆｃγ＞Ｓ−Ｆ（ａｂ’）_２−ＰＯＤ）を用いた。１％（ｗ／ｖ）のＲＳＡを含むＰＢＳ中、８０ｎｇ／ｍｌの濃度で検出抗体を適用した。インキュベーション時間は室温で１時間であった。０．９％（ｗ／ｖ）の塩化ナトリウムおよび０．０５％（ｗ／ｖ）のＴｗｅｅｎ ２０を含む溶液でウェルを３回洗浄した。その後、ウェルをＡＢＴＳ溶液と共に室温で１５分間インキュベートした。発現した色の強度を測光法により決定した。

脾細胞の調製および骨髄腫細胞系との融合の３日前に、免疫原であるキーホールリンペットヘモシアニン−コンジュゲートしたルテニウム（ＩＩ） トリス−ビピリジン Ｎ−ヒドロキシスクシンイミド（ＢＰＲｕ−ＫＬＨ）１００μｇの静脈内注射により、最終ブースター免疫化を実施した。

ハイブリドーマのＥＬＩＳＡスクリーニング
初代培養上清を、ＥＬＩＳＡにより、それぞれ、免疫原であるキーホールリンペットヘモシアニン−コンジュゲートしたルテニウム（ＩＩ） トリス−ビピリジン Ｎ−ヒドロキシスクシンイミド（ＢＰＲｕ−ＫＬＨ）およびブランクプレートに対する反応性について試験した。ＥＬＩＳＡプレートを、免疫原であるキーホールリンペットヘモシアニン−コンジュゲートしたルテニウム（ＩＩ） トリス−ビピリジン Ｎ−ヒドロキシスクシンイミド（ＢＰＲｕ−ＫＬＨ）０．５μｇ／ｍｌでコートした。その後、空いている結合部位をＰＢＳ中の１％ＲＰＬＡにより室温で１時間ブロックした。０．９％（ｗ／ｖ）の塩化ナトリウムおよび０．０５％（ｗ／ｖ）のＴｗｅｅｎ ２０を含む溶液でウェルを３回洗浄した。希釈していないハイブリドーマ上清を試料として用いた。インキュベーション時間は室温で１時間であった。０．９％（ｗ／ｖ）の塩化ナトリウムおよび０．０５％（ｗ／ｖ）のＴｗｅｅｎ ２０を含む溶液でウェルを３回洗浄した。検出抗体として、ペルオキシダーゼにコンジュゲートしたターゲット抗体の定常ドメインに対するポリクローナル抗体（ＰＡＫ＜Ｍ−Ｆｃγ＞Ｓ−Ｆ（ａｂ’）_２−ＰＯＤ）を用いた。１％（ｗ／ｖ）のＲＳＡを含むＰＢＳ中、８０ｎｇ／ｍｌの濃度で検出抗体を適用した。インキュベーション時間は室温で１時間であった。０．９％（ｗ／ｖ）の塩化ナトリウムおよび０．０５％（ｗ／ｖ）のＴｗｅｅｎ ２０を含む溶液でウェルを３回洗浄した。その後、ウェルをＡＢＴＳ溶液と共に室温で１５分間インキュベートした。発現した色の強度を４０５ｎｍで測光法により決定した。基準波長は４９２ｎｍであった。キーホールリンペットヘモシアニン−コンジュゲートしたルテニウム（ＩＩ） トリス−ビピリジン Ｎ−ヒドロキシスクシンイミド（ＢＰＲｕ−ＫＬＨ）に結合した際にＥＬＩＳＡにおいて堅牢な強い発色を示している初代ハイブリドーマ上清を選択した。この方法を用いて、実施例３および４で適用したＭａｂ＜ＢＰＲｕ＞Ｍ−１ ＩｇＧを同定した。

実施例２：
トキソプラズマ・ゴンディイに対するＩｇＭ抗体の検出
トキソプラズマ・ゴンディイに対するＩｇＭ抗体のインビトロ定性判定のためのイムノアッセイを、自動Ｅｌｅｃｓｙｓ（登録商標） ２０１０分析計（Ｒｏｃｈｅ Ｄｉａｇｎｏｓｔｉｃｓ ＧｍｂＨ）で製造業者の指示に従って実施した。Ｅｌｅｃｓｙｓ（登録商標）はＲｏｃｈｅグループの登録商標である。

Ｅｌｅｃｓｙｓ（登録商標） ２０１０における信号検出は電気化学発光に基づく。ビオチンコンジュゲート（すなわち、捕獲抗原）をストレプトアビジンコートした磁性ビーズ上に固定化し、一方で検出抗原は錯化ルテニウムカチオン（レドックス状態２＋と３＋の間でスイッチングする）を信号発生部分として保有する。特異的な免疫グロブリン分析物の存在下では、クロモゲンであるルテニウム錯体が固相に架橋され、白金電極で励起された後に６２０ｎｍで発光する。信号出力は任意の光単位による。

このアッセイはいわゆるμ−捕獲原理に基づき、その際、抗トキソプラズマ・ゴンディイＩｇＭ抗体を含有する疑いのある試料を、ルテニウム化されたトキソプラズマ・ゴンディイ特異的な組換え抗原およびビオチニル化した抗ヒトＩｇＭマウスモノクローナル抗体と共にインキュベートする。トキソプラズマ・ゴンディイ特異的なＩｇＭ抗体がその試料中に存在すれば、抗ＩｇＭはこれらの抗体を捕獲する。ストレプトアビジンコートした固相を添加し、過剰の液体を除去した後、ルテニウム錯体標識から発生する電気化学発光信号を検出することができる。

詳細には、下記の工程を実施した；アッセイの総期間は１８分間であった：
・ １回目のインキュベーション：１０μＬの試料をＤｉｌｕｅｎｔ Ｕｎｉｖｅｒｓａｌで自動的に１：２０に予備希釈した。ルテニウム錯体（Ｒ１；Ｒｕ錯体：トリス（２，２’−ビピリジル）ルテニウム（ＩＩ）−錯体（Ｒｕ（ｂｐｙ））で標識したトキソプラズマ・ゴンディイ組換え抗原を添加した。試料中に存在する抗トキソプラズマ・ゴンディイＩｇＭ抗体は、ルテニウム標識したトキソプラズマ・ゴンディイ組換え抗原と反応した；
・ ２回目のインキュベーション：ビオチニル化したモノクローナルｈ−ＩｇＭ特異的抗体（Ｒ２）およびストレプトアビジンコートしたマイクロ粒子（Ｍ）を添加した。複合体はビオチンとストレプトアビジンの相互作用により固相に結合した状態になった；
・ 反応混合物を測定セル内へ吸引し、そこでマイクロ粒子は電極表面に磁気捕獲された。結合しなかった物質を次いでＰｒｏＣｅｌｌで除去した。次いで電極に電圧を印加して化学発光を誘導し、それを光電子増倍管により測定した；
・ 試料の反応生成物から得られた電気化学発光信号を予めキャリブレーションにより得たカットオフ値の信号と比較することにより、結果をソフトウェアにより自動的に判定した。

陰性キャリブレーターとして、抗−Ｔｏｘｏ ＩｇＭについて陰性であるＣａｌ１ヒト血清を用いた。陽性キャリブレーターとして、ヒト血清中のＣａｌ２ 抗Ｔｏｘｏ ＩｇＭ（ヒト）約１３０Ｕ／ｍＬ（Ｒｏｃｈｅ単位）を適用した。

実施例３：
トキソプラズマ・ゴンディイに対するＩｇＭ抗体についてのイムノアッセイにおける干渉の低減
市販のヒト血清試料をｉｎ．ｖｅｎｔ Ｄｉａｇｎｏｓｔｉｃａ ＧｍｂＨ（ヘニッヒスドルフ／ドイツ、ベルリン）から購入し、干渉性についてスクリーニングした。これらの試料を、自社の偽陽性試料、ならびに真のＴｏｘｏ ＩｇＭおよびＩｇＧ陽性試料と一緒に試験した。Ｔｏｘｏ ＩｇＭおよびＩｇＧ陽性試料では、２つのサブグループの試料、すなわち高アビディティーのＩｇＧを含む１グループ（後期感染症）および低アビディティーのＩｇＧを含む１グループ（早期または一次感染症）も試験した。すべての試料をＥｌｅｃｓｙｓ Ｔｏｘｏ ＩｇＭ（Ｒｏｃｈｅ Ｄｉａｇｎｏｓｔｉｃｓ ＧｍｂＨ Ｇｅｒｍａｎｙ）で前記方法に従って試験した。陰性対照としてＰＣ１［抗Ｔｏｘｏ抗体を含まないヒト血清］；陽性対照としてＰＣ２［Ｔｏｘｏ−ＩｇＭ陽性ヒト血清］を用いた。信号−対−カットオフ比（Ｓ／ＣＯ）＜０．８を非反応性（陰性）とみなした；信号−対−カットオフ比（Ｓ／ＣＯ）≧０．８＜１．０を判定されないとして分類し、信号−対−カットオフ比（Ｓ／ＣＯ）≧１．０を反応性（陽性）として分類した。

結果を図１に示す。“Ｃ２１”で始まり“ＳＮ９４７（１６）”までの干渉試料として分類した、干渉を排除するための標識特異的な結合パートナーの非存在下の血清では、これらの試料は偽陽性として示される。標識に結合する標識特異的な結合パートナー（Ｍａｂ＜ＢＰＲｕ＞Ｍ−１ ＩｇＧ）を添加した場合、真の陽性を含めたすべての試料について全体的信号は低減する。しかし、カットオフ指数は一定のままである。真の陽性試料はなお正確に陽性として検出される。興味深いことに、意外にも干渉試料についての信号は陰性キャリブレーション値まで低減する。言い換えると、標識特異的な結合パートナーを添加した場合、偽陽性が避けられ、結果としてより高いアッセイ特異度になる。

図２は、種々の濃度の標識特異的な結合パートナーにおける干渉排除作用の結果を示す。市販の陰性試料およびトキソプラズマ・ゴンディイ抗体を含有しない自社試料を、Ｅｌｅｃｓｙｓ 抗−Ｔｏｘｏ ＩｇＭアッセイで陽性結果について調べた。基準欄は８つの被験試料すべてがカットオフ値を超える陽性信号を提示することを示し、これらの試料がＴｏｘｏ−ＩｇＭ抗体を含有すると誤って指示している。

漸増量（０．２５、０．５および１０μｇ／ｍｌ）の干渉排除化合物をアッセイ混合物（Ｒ１）に添加した；すなわち、この例では、信号を発生するルテニウム錯体に結合する抗ルテニウム錯体モノクローナル抗体Ｍａｂ＜ＢＰＲｕ＞Ｍ−１ ＩｇＧが組換えＴｏｘｏ抗原に付着した。予想どおり、絶対信号強度はその標識特異的な結合パートナーを添加することによって減弱する。しかし、意外にも、抗標識特異的な結合パートナーを十分に添加した場合、干渉を抑制することができ、カットオフより低くかつカットオフ指数より低い正確な結果が提示される（参照：Ｒ１中１０μｇ／ｍｌの欄）。この例では、標識と比較した標識特異的結合パートナー（それは２つのパラトープをもつ）の過剰モルまたは割合は約１：１０であり、すなわち標識は約１０倍のアクセスで存在し、したがって１０分の１の標識が標識特異的な結合パートナーでカバーされる。

Ｒ１中１μｇ／ｍｌの濃度（それは、よりさらに小さな割合の標識がシールドされることを意味する）ですら、満足すべき干渉排除を観察できる（データを示していない）。言い換えると、分析物が存在するか否かを指示することを意図した標識に結合する標識特異的な結合パートナーを添加することにより、干渉を効果的に抑制し、したがって偽陽性アッセイ結果を避けることができる。同時に、陽性対照（参照：列ＰＣ１，陰性対照、およびＰＣ２，Ｔｏｘｏ−ＩｇＭを含有する陽性対照）はなお正確な陰性または陽性結果を提示する。

実施例４
抗Ｂ型肝炎コアＩｇＧおよびＩｇＭ抗体の検出（競合フォーマット）
Ｂ型肝炎コア抗原に対するＩｇＧおよびＩｇＭ抗体のインビトロ定性判定のためのイムノアッセイを、自動Ｅｌｅｃｓｙｓ（登録商標） ２０１０分析計（Ｒｏｃｈｅ Ｄｉａｇｎｏｓｔｉｃｓ ＧｍｂＨ）で製造業者の指示に従って実施した。Ｅｌｅｃｓｙｓ（登録商標）はＲｏｃｈｅグループの登録商標である。この分析計についての全般的検出原理は実施例１（抗−Ｔｏｘｏ ＩｇＭ）に記載したものと同様に作動する。

詳細には、抗ＨＢｃアッセイは競合原理に従って作動し、その場合、分析物（抗−ＨＢｃ抗体）は混合物中のＨＢｃ抗原への結合についてビオチニル化したルテニウム標識抗体と競合する。アッセイの総期間は２７分間であった。

・ １回目のインキュベーション：４０μＬの試料の前処理を還元剤で行なった（Ｒ０）；
・ ２回目のインキュベーション：ＨＢｃＡｇ組換え抗原（Ｒ１）を添加した後、試料中の抗ＨＢｃ抗体との複合体が形成された；
・ ３回目のインキュベーション：ＨＢｃＡｇに対するビオチニル化した抗体およびルテニウム錯体標識した抗体（Ｒ２；Ｒｕ錯体：トリス（２，２’−ビピリジル）ルテニウム（ＩＩ）−錯体（Ｒｕ（ｂｐｙ））を、ストレプトアビジンコートしたマイクロ粒子（Ｍ）と一緒に添加した後、ＨＢｃ抗原上のまだ空いていた結合部位は占有された。複合体全体がビオチンとストレプトアビジンの相互作用により固相に結合した；
・ 反応混合物を測定セル内へ吸引し、そこでマイクロ粒子は電極表面に磁気捕獲された。結合しなかった物質を次いでＰｒｏＣｅｌｌで除去した。次いで電極に電圧を印加して化学発光を誘導し、それを光電子増倍管により測定した；
・ 試料の反応生成物から得られた電気化学発光信号を予めキャリブレーションにより得たカットオフ値の信号と比較することにより、結果をソフトウェアにより自動的に判定した。

陰性キャリブレーターとして、抗−Ｔｏｘｏ ＩｇＭについて陰性であるＣａｌ１ヒト血清（Ｂ型肝炎に感染していないもの）を用いた。陽性キャリブレーターとして、ヒト血清中のＣａｌ２ ＡｎｔｉＨＢｃ（ヒト）＞８ ＷＨＯ ＩＵ／ｍＬｂ）を用いた。ＷＨＯ ＩＵはＷＨＯ国際単位を意味する。

図３は、Ｂ型肝炎コア抗原に対する抗体の検出のためのイムノアッセイにおける標識特異的な結合パートナーの添加により、干渉が排除されたことを示す。このアッセイは競合フォーマットで実施されている；それは、高い信号および信号−対−カットオフ比＞１．０は非反応性（陰性）試料を指示し、それに対し、低い信号および信号−対−カットオフ比≦１．０は反応性（陽性）試料の指標であることを意味する。

試料ＳＥ−００６４＿１８（Ｔｒｉｎａ Ａ−ＨＢｃ陰性血清）は、カットオフにきわめて近似するカットオフ値１．０２の信号を提示する。標識特異的な結合パートナーを添加した場合、試料はその試料中に抗ＨＢｃ抗体が存在しないことを指示する測定結果（Ｓ／ＣＯ＝１．８０）を提示する。この例でも、標識特異的な結合パートナーの添加はアッセイの特異度の増大をもたらす。

実施例５
甲状腺刺激ホルモンの検出（ＴＳＨ，チロトロピン，古典的サンドイッチフォーマット）
ＴＳＨのインビトロ定量測定のためのイムノアッセイを、自動Ｅｌｅｃｓｙｓ（登録商標） ｃｏｂａｓ分析計（Ｒｏｃｈｅ Ｄｉａｇｎｏｓｔｉｃｓ ＧｍｂＨ）で製造業者の指示に従って実施した。Ｅｌｅｃｓｙｓ（登録商標）はＲｏｃｈｅグループの登録商標である。この分析計についての全般的検出原理は実施例１（抗−Ｔｏｘｏ ＩｇＭ）に記載したものと同様に作動する。

詳細には、ＴＳＨアッセイは、ビオチニル化したＴＳＨ特異的モノクローナル抗体（Ｒ１）およびルテニウム錯体で標識したＴＳＨ特異的モノクローナル抗体（Ｒ２）を含む試薬Ｒ１を用いるサンドイッチ原理に従って作動し、それらは反応してサンドイッチ複合体を形成する。第１インキュベーション工程として、３０μｌの試料を両方の抗体と共に９分間インキュベートした。第２工程で、ストレプトアビジンコートしたマイクロ粒子を含む試薬Ｒ２を添加し、さらに９分間インキュベートした。その後、反応混合物を測定セル内へ吸引し、そこでマイクロ粒子は電極表面に磁気捕獲された。次いで電極に電圧を印加して化学発光を誘導し、それを光電子増倍管により測定した。２点キャリブレーションにより計測器特異的に作成したキャリブレーション曲線により結果を判定した。

それぞれの試料について、２つのアリコートを測定した。１つのアリコートは干渉低減用の結合パートナーを添加せずに標準法で測定された（非処理基準）。第２アリコートは比較アリコートとしてＲ１およびＲ２と共にインキュベートされたが、第２アリコートのためのＲ２試薬（ルテニウム化抗体）はさらに標識特異的な結合パートナー（この場合：２０μｇ／ｍｌのＭａｂ＜ＢＰＲｕ＞Ｍ−１ ＩｇＧ，ルテニウム錯体に特異的に結合する）、すなわちルテニウム標識錯体に結合するマウスモノクローナル抗体を含有していた。

図７から分かるように、キャリブレーター（低ＴＳＨ濃度についてのＣａｌ１、より高いＴＳＨ濃度についてのＣａｌ２）についての絶対カウントは、非処理基準と比較して抗干渉剤を適用したセットアップについて低減する。しかし、Ｃａｌ２についての信号カウントは５０％低減するけれどもなお妥当な測定範囲が得られる。一定の目標ＴＳＨ濃度範囲をもつ対照（１．２５〜１．７９μＩＵ／ｍｌをもつＰＣＵ＿１、および７．５９〜１０．３μＩＵ／ｍｌをもつＰＣＵ＿２）に注目すると、これらの目標範囲は標識特異的な結合パートナーの添加後に十分に満たされている。

次の工程として、干渉試料１〜４を標識特異的な結合パートナーの添加なしで測定すると、これらの試料はあるＴＳＨ濃度を指示するように思われた。これらの試料は非処理ＴＳＨ基準アッセイにおいてきわめて高い信号を示した；それは −これらの患者の病歴によれば− 彼らの甲状腺ホルモン分析の個々の病像に当てはまらなかった。しかし、本発明による標識特異的な結合パートナーを添加した場合、干渉がかなり低減し、それにより４試料中の３つが正確なＴＳＨ目標範囲内にみられた。たとえば、干渉試料３は −非処理状態で測定した場合には− １４３，７２８の信号を提示した。標識特異的な抗体を添加すると、その干渉を完全に低減して７８２カウントにすることができ、それはＣａｌ１キャリブレーション信号にきわめて近似していた（１００％の干渉低減）。閾値測定においてきわめて高かった干渉試料１、２および４のＴＳＨ濃度は、標識特異的な結合パートナーの添加によって大幅に低減して、それぞれ７８％、９０％および６９％の干渉低減となった。

Claims (11)

1. 分析物を含有する疑いのある単離した試料中の分析物を検出するためのイムノアッセイ法であって、試料を複数の結合パートナーと共にインキュベートし、それらのうちの１つは検出可能な標識を保有し、その際、標識を保有せず、検出可能な標識に結合する、標識特異的結合パートナーを添加することによるイムノアッセイ法。
2. ａ．試料を下記のものと共にインキュベートする：
   ｉ．分析物に結合し、検出可能な標識を保有する、第１結合パートナー；
   ｉｉ．固相に結合させることができ、かつ分析物に結合する、第２結合パートナー；
   ｉｉｉ．第１結合パートナーの検出可能な標識に結合する第３結合パートナーであって、標識を保有しない第３結合パートナー；
   ｂ．試料を第１、第２および第３結合パートナーと混合することにより免疫反応混合物を形成する；
   ｃ．体液試料中に分析物が存在するならばそれを第１および第２結合パートナーと免疫反応させて免疫反応生成物を形成させるのに十分な、かつ第３結合パートナーを第１結合パートナーの検出可能な標識と免疫反応させるのに十分な期間、免疫反応混合物を保持する；
   ｄ．いずれかの免疫反応生成物の存在および／または濃度を検出する
   ことを含む、請求項１に記載のイムノアッセイ法。
3. ａ．試料を下記のものと共にインキュベートする：
   ｉ．分析物に結合し、検出可能な標識を保有しない、第１結合パートナー；
   ｉｉ．第１結合パートナーに結合し、第１結合パートナーへの結合について分析物と競合する特定子であって、検出可能な標識を保有する特定子；
   ｉｉｉ．固相に結合させることができ、第１結合パートナーに結合し、第１結合パートナーへの結合について分析物および特定子と競合する、第２結合パートナー；
   ｉｖ．特定子の検出可能な標識に結合する第３結合パートナーであって、標識を保有しない第３結合パートナー；
   ｂ．試料を第１、第２および第３結合パートナーならびに特定子と混合することにより免疫反応混合物を形成する；
   ｃ．体液試料中に分析物が存在するならばそれを第１結合パートナーへの結合について特定子および第２結合パートナーと競合させるのに十分な、かつ第３結合パートナーを特定子の検出可能な標識と免疫反応させてそれにより免疫反応生成物を形成させるのに十分な期間、免疫反応混合物を保持する；
   ｄ．いずれかの免疫反応生成物の存在および／または濃度を検出する
   ことを含む、請求項１に記載のイムノアッセイ法。
4. 分析物が、感染症、炎症性、敗血症性、代謝性、心臓性または腫瘍性の事象または疾患に関連する生体分子または化学分子である、請求項１〜３のいずれか１項に記載のイムノアッセイ法。
5. 分析物がホルモン、抗原または抗体である、請求項４に記載のイムノアッセイ法。
6. 分析物が、
   ａ．トキソプラズマ属生物、ある態様においてトキソプラズマ・ゴンディイ(Toxoplasma gondii)；
   ｂ．肝炎ウイルス、ある態様においてＡ型肝炎ウイルス（ＨＡＶ）、Ｂ型肝炎ウイルス（ＨＢＶ）およびＣ型肝炎ウイルス（ＨＣＶ）；
   ｃ．ヘルペスウイルス、ある態様においてヒト単純ヘルペスウイルス１および２（ＨＨＶ１およびＨＨＶ２）、水痘−帯状疱疹ウイルス（ＨＨＶ３）、エプスタイン−バーウイルス（ＨＨＶ４／ＥＢＶ）またはヒト−サイトメガロウイルス（ＨＨＶ５）、ならびにヒト−ヘルペスウイルス６、７および８；
   ｄ．風疹ウイルス；
   ｅ．レトロウイルス、ある態様においてＨＩＶ１および２ならびにＨＴＬＶ１および２；
   ｆ．パラミクソウイルス、ある態様において麻疹ウイルスおよび流行性耳下腺炎ウイルス；
   ｇ．ボレリア属生物
   からなる群から選択される病原体に対する抗体である、請求項５に記載のイムノアッセイ法。
7. 分析物がＩｇＭクラスの抗体である、請求項６に記載のイムノアッセイ法。
8. 分析物が、トキソプラズマ・ゴンディイ(Toxoplasma gondii)、サイトメガロウイルス（ＣＭＶ）、風疹、Ａ型肝炎およびＢ型肝炎からなる群から選択される病原体の感染に対する反応として存在するＩｇＭクラスの抗体である、請求項７に記載のイムノアッセイ法。
9. 検出可能な標識が酵素性、放射性、蛍光性、化学発光性または電気化学発光性の標識である、前記請求項のいずれか１項に記載のイムノアッセイ法。
10. イムノアッセイにより分析物を検出するための試薬キットであって、複数の結合パートナーを含み、その際、結合パートナーのうちの少なくとも１つが分析物に結合し、結合パートナーのうちの１つが検出可能な標識を保有し、結合パートナーのうちの１つが標識特異的であって検出可能な標識に結合するけれども検出可能な標識を保有しない、試薬キット。
11. インビトロ診断検査において試料中に存在する抗標識抗体により起きる干渉を排除するための、検出可能な標識を保有しない標識特異的結合パートナーの使用。