JP6226624B2 - 溶血性レンサ球菌診断イムノクロマト試薬、キット及び検出方法 - Google Patents
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Description
例えば、特許文献3では、第1の生物がグラム陽性細菌、例えば、A,B,F,又はG群連鎖球菌、腸球菌細菌等であり、第2の生物がウイルス類やグラム陰性細菌類等であるような試料中の複数の異なる生物種を測定する方法やキットであり、1つ以上の容器内に、a.亜硝酸、又は乾燥状態になっている酸及び亜硝酸塩、b.界面活性剤、c.第1の生物から得られる第1のマーカーに結合する第1の結合試薬、d.第2の生物から得られる第2のマーカーに結合する第2の結合試薬、を備えたキットによる複数の検体の同時検出を可能にすることにより、検査効率の倍増と患者さんの検査に伴う苦痛の軽減を達成している(特許文献3参照。)。
テストパック・プラスOBC(三和化学研究所)などがあり、また、スライドラテックス凝集法試薬としてはAストレプトAD「生研」(デンカ生研)などが知られている。
が高い展開速度の速い検査薬を提供することができることを初めて知見したものである。
本発明の免疫測定法としては、次のような特徴を有する。
(1)本発明の第1の特徴は、検体中のグラム陽性菌の抗原を、有機酸と亜硝酸化合物の反応によりデバイス上で生成される亜硝酸により抽出して検出する免疫測定法において、環状オリゴ糖の存在下に行うことを特徴とする免疫測定法、にある。
(2)本発明の第2の特徴は、環状オリゴ糖がα−シクロデキストリン、β−シクロデキストリン、γ−シクロデキストリン又はそれらの誘導体であることを特徴とする(1)に記載の免疫測定法、にある。
(3)本発明の第3の特徴は、亜硝酸化合物が、亜硝酸塩であることを特徴とする(1)に記載の免疫測定法にある。
(5)本発明の第5の特徴は、抽出するpH条件が、6.8〜7.0である(1)に記載の免疫測定法、にある。
(6)本発明の第6の特徴は、抗原が、多糖体である(1)に記載の免疫測定法、にある。
(7)本発明の第7の特徴は、グラム陽性菌が、溶血性連鎖球菌である(1)に記載の免疫測定法、にある。
本発明の免疫測定用試薬としては、次のような特徴を有する。
(8)本発明の第8の特徴は、上記のいずれかに記載の免疫測定法において使用する、環状オリゴ糖を含有する免疫測定用試薬、にある。
本発明の免疫測定用装置としては、次のような特徴を有する。
(9)本発明の第9の特徴は、上記のいずれかに記載の免疫測定法を行なうためのイムノクロマトグラフィー装置、にある。
(10)本発明の第10の特徴は、検体希釈液と、試料滴下部、抗原抽出部、標識物質保持部、検出部を有するクロマトグラフ媒体、および吸収部から構成されていて、かつ抗原抽出部に有機酸が保持されてなる検体中のグラム陽性菌を検出するためのイムノクロマトキットであって、検体希釈液及び/又は試料滴下部のいずれか一方又は両方に、環状オリゴ糖、亜硝酸化合物又はそれらの混合物のうちのいずれか一つ以上を含有することにより、環状オリゴ糖および亜硝酸化合物を含有するようにしたことを特徴とするイムノクロマトキット、にある。
(11)本発明の第11の特徴は、環状オリゴ糖は、イムノクロマトキットの1キット当り含有量が0.1〜5μgであることを特徴とする(10)に記載のイムノクロマトキット、にある。
(13)本発明の第13の特徴は、有機酸と共に非イオン性界面活性剤を保持することを特徴とする(10)に記載のイムノクロマトキット、にある。
(14)本発明の第14の特徴は、亜硝酸化合物が、亜硝酸塩であることを特徴とする(10)に記載のイムノクロマトキット、にある。
(15)本発明の第15の特徴は、抗原抽出部に、クエン酸と共にクエン酸塩を保持することを特徴とする(10)に記載のイムノクロマトキット、にある。
本発明は以上のような特徴点を備えることにより、問題を達成することができたものである。
さらに、その検査の都度に、亜硝酸塩を酸性溶液と反応させる亜硝酸生成工程を設けるという煩雑な用時調製をすることなく、検査デバイス上で亜硝酸を生成させることにより検査の煩雑を省略し、検査効率および検査精度を向上させた検査方法を達成することができる。
本発明の実施形態は、各種検体中の被検出物質である検出対象物(抗原)に各種の標識をつけた特異的に結合する結合物質(抗体)を、クロマトグラフ媒体上で反応させる抗原−抗体反応により複合体を形成させ、イムノクロマトグラフ媒体上を吸収部位の方向へ展開させて、それを各種の検出手段により確認するという、イムノクロマトグラフ法またはそれを応用した検出法に基づくものである。その抗原と最も特異的に反応して結合する抗体としては、それと特異的に結合する、例えばモノクローナル抗体およびポリクローナル抗体若しくはその他の公知の抗体を任意に使用することができる。
又、検出手段は、操作が簡単で、比較的短時間で判定できると言う、イムノクロマトグラフ法の特色を表すためには、目視判定で、正確に判定できると言う性能を有することを特徴とするが、時間、精度などが要求される場合には、分光光度検出、放射線検出など、各種の検出手段を付帯させて、検出することができる。
本発明の、この免疫測定用試薬とは、免疫測定に際して使用する試薬であって、検体希釈液(「検体処理液」、「検体抽出液」ともいう。)中に含有させて用いるか、及び/又は、試料滴下部(2)(試薬保持部(2)ともいう。)に含有保持させて用いる試薬である。しかし、これに加えて試薬保持部(3)(「抗原抽出部」(3)ともいう。)、標識物質保持部(4)、及びクロマトグラフ媒体におけるこれらの1以上の部位に含有保持させても構わない。この試薬を検体希釈液中に、もしくは試料滴下部に含有させた場合には、有機酸含有抗原抽出部(試薬保持部(3))、標識物質保持部(4)、クロマトグラフ媒体、および吸収部(5)へと順次移動および展開する性質を備えたものである。
本発明の免疫測定用試薬としては、検体希釈液および試薬保持部(2)のいずれか一方にまたは両方に環状オリゴ糖および亜硝酸化合物のそれぞれを単独にまたは同時に含有させるものである。この免疫測定用試薬を形成する環状オリゴ糖および亜硝酸化合物を検体抽出液中に含むおよび試料滴下部(試薬保持部(2))に存在させる実施態様としては次のようなものが挙げられる。
パターン 検体処理液(抽出液)部(6) 試料滴下部(2)
1 無 亜化・環オ
2 亜化 環オ
3 環オ 亜化
4 亜化・環オ 無
5 亜化・環オ 亜化・環オ
6 亜化・環オ 亜化
7 亜化 亜化・環オ
8 環オ 亜化・環オ
9 亜化・環オ 環オ
以上のような実施態様(パターン)に従って、本発明は実施できる。
なお、この試料滴下部(試薬保持部(2))の試薬状態は、溶液状のものや、凍結乾燥などにより滴下パッドに保持された状態のものを包含する。
同様に、本発明の亜硝酸化合物とは、好ましくは、亜硝酸塩であり、酸と反応して亜硝酸を生成するものであって、検査デバイス系において検査に悪影響が及ばないものであれば無機亜硝酸塩、例えば、亜硝酸ナトリウム、亜硝酸カリウム、亜硝酸カルシウム、亜硝酸マグネシウム等が挙げられ、有機亜硝酸化合物、例えば、亜硝酸メチル、亜硝酸エチル、亜硝酸ブチル、亜硝酸アミル等々であっても良く何ら限定されるものではない。さらにはそれらを混合して使用することも可能である。好ましくは、無機亜硝酸塩であって、なかでも、亜硝酸のアルカリ金属塩が好ましく、亜硝酸ナトリウムが最も好ましい。
この免疫測定用試薬中に含有する亜硝酸化合物の含有量は、10〜100μmol/試験であり、好ましくは20〜80μmol/試験である。
本発明の免疫測定用試薬に存在する環状オリゴ糖がα−シクロデキストリン、β−シクロデキストリン、γ−シクロデキストリンおよびそれらの誘導体であることが特に好ましい。
環状オリゴ糖は、一試験あたり0.02〜0.5μmol用いることが好ましい。
次に、本発明の免疫測定法としては、試料中の検出対象物の抗原を抽出試薬により抽出して検出するに於いて環状オリゴ糖の存在下に行うことを特徴とする免疫測定法を実施することにある。この免疫測定法の特徴は、抽出試薬が有機酸と亜硝酸化合物の反応により検査デバイス上で、特に有機酸含有抗原抽出部(試薬保持部(3))において生成される亜硝酸によるものである。この有機酸とは、有機カルボン酸であるあるが、有機酸と共に下記の非イオン性界面活性剤を保持することにより免疫測定法を実施することが好ましい。
そして、この抽出試薬が有機酸と亜硝酸化合物の反応により生成される亜硝酸によるものであって、下記の理由により、その抽出pHが6.8〜7であることを好ましい。
そこで、本発明は、共通抽出液[1)酵素、2)添加塩、3)界面活性剤、4)イオン液体、5)(亜硝酸生成)触媒 6)亜硝酸]の仕様の抽出液で、1)酵素の挙動に着目して、多面的に検討した結果、やはり、1)〜5)の抽出液系では、 6)亜硝酸に比べて、抗原抽出効率が低いことを確認することができた。このため、抗原抽出の為には、亜硝酸が必要であり、亜硝酸は、酸性条件で生成するが、酸性条件では共通抽出液中のタンパク質のカゼインが析出するために、併用が非常に難しい。そこで、本発明はカゼインが析出しない程度の酸性条件で亜硝酸を生成する条件を模索した。
[共通抽出液と亜硝酸併用系の挙動]
pH 6 6.5 6.8 7 8
気泡(亜硝酸) 有 有 やや有 無 無
沈殿(カゼイン) 有 やや有 無 無 無
この解析結果から、亜硝酸と共通抽出液との併用可能な条件を、pH=6.5〜7程度にすれば、対応できることが判明した。このように、本発明は、抗原抽出効率の向上の為に、共通抽出液の面からの対策と、以下に示す、キットの構成の面という、両面からの改良を検討したものである。
しかし、抽出液に含まれる成分(カゼイン)は弱酸性条件では、析出してしまう為に、展開が不均一になる問題を抱えている。この成分の析出を抑える為に、種々の化合物を加えて、成分の析出を抑えることを検討した結果、シクロデキシトリン(CD)として、特に、代表的なβ−シクロデキシトリン(β−CD)を含有することで成分の析出を抑えることができ、展開の均一性が向上することを知見したものであり、その傾向を以下に示す。注.BSA:牛血清アルブミン、PEG;ポリエチレングリコール(PEG20000)、TH;トレハロースを示す。
無添加 BSA PEG TH β−CD
展開均一性 やや不均一 不均一 不均一 やや不均一 均一
これらの傾向は、環状オリゴ糖に包含される各種のCDに於いて、同様の傾向を示すことを確認することができる。
また、比較のために、CDを含まない検査デバイスを作成して、対比評価したものを図2に示した。
本発明で使用する環状オリゴ糖は、イムノクロマトグラフ用試料抽出液(以下、「展開抽出液」ともいう。)または検体希釈液(以下、「検体処理液」ともいう。)中に含有させても良く、イムノクロマトキットにおける他の試薬保持部〔2〕に含有させても良く、またはそれら両方に含有させても良く、環状オリゴ糖の機能が発揮できる限り、何処に含有させても良いが、展開初期段階である検体処理液あるいは展開上流部に含有させるのが、機能上好ましい。
(i)検体を緩衝液および界面活性剤を含む検体希釈液と接触混合して検体希釈液混合物を作成する工程、
(ii)検体処理液混合物を試料滴下部に供給する工程、
(iii)検体処理液混合物をイムノクロマト媒体上で展開して、抗原抽出部に存在する有機酸と亜硝酸化合物の反応によって媒体上で生成される亜硝酸によりグラム陽性菌中の抗原を抽出する工程、
(iv)標識物質保持部において抗原を標識化する工程、および
(v)クロマトグラフ媒体上を移動して検出部において標識化抗原を検出する工程、
(vi)検体処理液混合物が、吸収部により吸収される工程、
からなるイムノクロマト検出方法により達成することができる。
本発明の抽出展開液などのイムノクロマトグラフ用試薬中に使用される塩の濃度としては、1mM〜500mMの範囲であり、5mM〜200mMの範囲が好ましく、10mM〜50mMの範囲がより好ましい。濃度が1mMより低くなると、例えば0.1mMと少なくなるとタンパク質の抽出作用が不十分になる。500mM以上では、例えば、1M、2Mと多くなれば、技術的に無意味な量であり、必要以上の濃度となり経済的でなく無駄となる。
本発明のイムノクロマトグラフ用試薬中に使用される塩としては、1種のみならず2種以上配合して使用することもできる。
本発明において、緩衝剤としては、リン酸緩衝液(リン酸+リン酸ナトリウム)、酢酸緩衝液(酢酸+酢酸ナトリウム)、クエン酸緩衝液(クエン酸+クエン酸ナトリウム)、ホウ酸緩衝液、トリス塩酸緩衝液(トリス(ヒドロキシルメチル)アミノメタン+塩酸)、TE緩衝液(トリス+エチレンジアミン四酢酸)、TAE緩衝液(トリス+酢酸+エチレンジアミン四酢酸)、TBE緩衝液(トリス+ホウ酸+エチレンジアミン四酢酸)又はHEPES緩衝液(2−[4−(2−ヒドロキシエチル)−1−ピペラジニル]エタンスルフォン酸)、Bicine緩衝液(N,N−ビス(2−ヒドロキシエチル)グリシン緩衝剤)等が挙げられる。好ましくは、リン酸緩衝液、トリス塩酸緩衝液、酢酸緩衝液、などであり、より好ましくは、トリス塩酸緩衝液である。本発明のイムノクロマト検出系においては、悪影響を及ぼさない範囲内であれば2種以上の緩衝剤を用いることも可能であって、何ら制限されない。
従来のイムノクロマトキットのサンプルパッド中へ、本発明の検体処理液を使用して予め検体を希釈処理して得られた検体試料を滴下して、イムノクロマトグラフ媒体上を吸収部位の方向へ展開させて展開中に検体中の抗原を抽出し、抗原抗体反応により検体中の被検出物質の同定・定量等の検査をすることができる。
通常、イムノクロマトキットは、クロマトグラフ媒体(1)(「検出部(判定部)」を有する。)、試料滴下部(2)(「サンプルパッド」ともいう、「試薬保持部(2)」ともいう。)、有機酸含有抗原抽出部(3)(「試薬保持部(3)」ともいう。)、標識物質保持部(4)、吸収部(5)(「展開速度コントロール部」ともいう。)およびバッキングシート(7)、試料抽出液(6)から構成されている。
本発明のイムノクロマトグラフ用試薬の成分をイムノクロマトグラフ媒体上で実施する、いわゆるイムノクロマトグラフ検出法を適正に実施するに於いて、特に抗原抽出効率の向上のために工夫したキットの構造を示すのが図1(a)、(b)である。この図1(a)、(b)に基づいて説明をする。
図1に示すキットの構造の構成要素は、1;クロマトグラフィー媒体〔1〕であり、2;試薬保持部〔2〕であり(サンプルパッドと総称することもできる。)、3;試薬保持部〔3〕であり(有機酸含有抗原抽出部(3)と総称することができる。)、4;標識物質保持部〔4〕であり(コンジュゲートパッドと総称できる。)、5;吸収部〔5〕、および7;バッキングシートより構成される。本発明は、少なくともこの1〜5の各要素から構成される構造を有するイムノクロマトキットである。
本発明の構造(1) 2 3 4 1 5 展開良好
比較対象構造(2) 3 2 4 1 5 展開不良
というように、この1〜5の構成要素の順位を任意に変えれば、特に展開作用のような挙動に影響を与えることになり、それらの構成要素の組み合わせにおいて、本発明の図1(a)、(b)に見るような要素の組み合わせの展開順序が、最も好ましい態様であり、若干展開性などを問題にしない場合には、構成要素の順序を変えた構造にすることも可能である。
このように、本発明の図1に見るようなキットは、検査の性能や検査上の取り扱いにおいて格別の機能を果たすことを本発明者等は知見したものである。
検出部位には、モノクローナル抗体又はポリクローナル抗体若しくはそのフラグメント(第一試薬)が、ニトロセルロースのシート上に担持固定されている。
1.検体(試料)を検体希釈液(6)で希釈処理した検体希釈液混合物を、サンプルパッド(2)上に、所定量(通常、0.1〜2ml)滴下する。検体希釈液混合物が滴下されると、検体希釈液混合物はサンプルパッド(2)に迅速に吸収されるが、速やかに移動を始める。また、サンプルパッド(2)中に乾燥・保持されていた亜硝酸塩及びシクロデキストリンを含む試薬組成物は、検体希釈液混合物の水分に溶解し、検体(試料)と共に移動を始める。
2.亜硝酸塩を溶解含有した検体希釈液混合物は、まず抗原抽出部(3)へと移動する。ここで抗原抽出部(3)中に乾燥・保持されていた有機酸は、移動してきた検体希釈液混合物中に溶解している亜硝酸塩と接触反応して亜硝酸を生成する。この亜硝酸は検体(試料)中に溶連菌が存在する場合に、該菌体表面の多糖体を抽出する。
3.次いで、亜硝酸を生成含有する検体希釈液混合物は、標識物質保持部(4)へと均一且つスムーズに移動する。ここを検体希釈液混合物が通過する際、標識物質保持部(4)に保持されていた標識試薬(第二試薬)が検体希釈液混合物の水分に溶解し、検体(試料)と共に移動する。
5.最後に、検体希釈液混合物の水分は、吸収部位(5)へと移動する。
このように、検体(試料)中の被検出物質(例えば、多糖体)の有無を正確に判定することができる。
(1)クロマトグラフ媒体〔1〕上への判定部の作製
メンブレンとしてニトロセルロースからなるシート(ミリポア社製、商品名:HF120、250mm×25mm)を用いた。5質量%のイソプロパノールを含む10mMのリン酸緩衝液(pH7.4)で1.0mg/mlの濃度になるようにウサギ由来抗溶連菌ポリクローナル抗体(第一抗体)を希釈し、その希釈された溶液150μLを抗体塗布機(BioDot社製)によりメンブレン上に1mmの幅で塗布し、50℃で30分間乾燥させ、室温で一晩乾燥させ、クロマトグラフ媒体〔1〕上に判定部を作製した。
金コロイド懸濁液(田中貴金属工業社製:平均粒子径40nm)0.5mLに、リン酸緩衝液(pH7.4)で0.1mg/mLの濃度になるように希釈したウサギ由来抗溶連菌ポリクローナル抗体(第二抗体)抗体0.1mL加え、室温で10分間静置した。次いで、10質量%の牛血清アルブミンを含むリン酸緩衝液(pH7.4)を0.1ml加え、十分撹拌した後、8000×gで15分間遠心分離を行い、上清を除去した後、1質量%の牛血清アルブミンを含むリン酸緩衝液(pH7.4)0.1mLを加え、標識物質溶液を作製した。
12×100mmのグラスファイバーコンジュゲートパッド(メルク社製)に、1mmolの亜硝酸ナトリウムを含む2μmolのβ−シクロデキストリンを含む水溶液0.6mLを塗布し、凍結乾燥させ、試薬保持部〔2〕を作製した。
(4)クエン酸を含む試薬保持部〔3〕の作製
12×100mmのグラスファイバーコンジュゲートパッド(メルク社製)に、50μmolのクエン酸を含む1.7質量%の非イオン性界面活性剤Triton-X100水溶液0.6mLを塗布し、凍結乾燥させ、抗原抽出部位を作製した。
上記作製した標識物質溶液200μlに100μlの25質量%トレハロース水溶液と80μlの5質量%のカゼイン(終濃度:1質量%)を含むリン酸緩衝液(pH9.0)を加えたものを12×100mmのグラスファイバーパッド(ミリポア社製)に均一になるように添加した後、真空乾燥機にて乾燥させ、標識保持部〔4〕を作製した。次に、バッキングシートから成る基材に、展開した試料や標識物質を吸収するための吸収パッド(吸収部)〔5〕、上記作製した判定部を有するクロマトグラフ媒体〔1〕、標識物質保持部〔4〕、試薬保持部〔2〕、試薬保持部〔3〕、をイムノクロマトグラフ展開方向上流から表1に示す順(展開方向は右から左)に貼り合わせた。そして、裁断機で幅が5mmとなるように裁断し、イムノクロマトグラフ用試験片とした。
0.5質量%のTween20、0.6質量%ポリビニルピロリドン(平均分子量36万)、1質量%の牛血清アルブミンと150mM塩化ナトリウムを含む20mMのトリス緩衝溶液(pH8.0)から成る検体を希釈しイムノクロマトグラフ試験片へ添加し展開するための検体希釈液とした。
上記作製したイムノクロマトグラフィー用試験片および検体希釈液を用いて、以下の方法で検体中の抗原である溶連菌の存在の有無を測定した。即ち、抗原を加えない検体希釈液を陰性検体試料とし、また、陰性検体試料に、不活化したA群β溶血性レンサ球菌(溶連菌)を2×106org/mLとなるように加えたものを陽性検体試料とした。
陰性検体試料、陽性検体試料とも150μLをイムノクロマトグラフィー用試験片の展開方向の最上流部、具体的には、実施例1、2では、試薬保持部〔2〕上に、比較例1、2では、試薬保持部〔3〕上に、比較例3及び実施例3では、標識物質保持部〔4〕上に添加し展開させ、15分後に目視判定をした。テストラインの赤い線を確認できるものを「+」、鮮明に確認できるものを「++」、赤い線は確認できるが、非常に色が薄いものを「±」、赤い線を確認できないものを「−」とした。展開性の評価は、展開液がクロマトグラフィー媒体上へ流れなかったもの、展開液はクロマトグラフィー媒体上で展開されるが金ナノ粒子標識試薬が流れなかったもの、クロマトグラフィー媒体上での展開中の液の先端流形にムラが生じたもの、を展開不良と判定し、不良がなかったものを良好と判定した。表1に結果を示す。
比較のため、CDを含まない検査デバイスも作成し、合わせて評価を行った。その結果を図2に示す。下記の検査条件で実施した。
Positive:4×105org/mL溶連菌(判定時間8分)
Negative:展開液(判定時間30分)
表中、1〜5の数字は、1;クロマトグラフ媒体(1)、2;試薬保持部(2)、3;試薬保持部(3)、4;標識物質保持部(4)、5;吸収部(5)を表わす。
比較例1〜3では、展開性は不良であった。これらの場合は、クエン酸を含む試薬保持部〔3〕が試薬保持部〔2〕の展開方向上流になっているため、試料中のタンパク成分が酸により析出し、目詰まりを起こすなどの理由が推察される。上記の試験結果から、試薬保持部〔2〕は、試薬保持部〔3〕の展開方向上流であることが必須条件である。
一試験(test)あたりの亜硝酸ナトリウム、環状シクロデキストリン、クエン酸を表2に記載の各種量とし、実施例1と同じ手順態様で実施した。陽性検体は、不活性溶連菌を一試験(test)あたり濃度が2×106org/mLのものを150μL用いた。
そして、同じ目視判定基準に従って判定した。その判定結果を表2に示す。
試薬保持部〔3〕へクエン酸の代わりに酒石酸を含有させたこと以外は、実施例1と同じ手順態様で実施した。そして、同じ目視判定基準に従って判定した。その判定結果を表2に示す。
[実施例14]
試薬保持部〔2〕へ亜硝酸ナトリウムを含有させず、検体希釈液中に50μmol/testの亜硝酸カリウムを加えたこと以外は、実施例1と同じ手順態様で実施した。そして、同じ目視判定基準に従って判定した。その判定結果を表2に示す。
試薬保持部〔2〕へβ−シクロデキストリンを含有させず、検体希釈液中に0.1μmolのβ−シクロデキストリンを加え、試薬保持部〔3〕へクエン酸の代わりにイタコン酸を含有させたこと以外は、実施例1と同じ手順態様で実施した。そして、同じ目視判定基準に従って判定した。その判定結果を表2に示す。
実施例14及び15は、亜硝酸塩または環状オリゴ糖を検体希釈液に保持させた形態です。
試薬保持部〔2〕へβ−シクロデキストリン及び亜硝酸ナトリウムを含有させず、検体希釈液中に50μmolの亜硝酸ナトリウム及び0.1μmolのβ−シクロデキストリンを加えたこと以外は、実施例1と同じ手順態様で実施した。そして、同じ目視判定基準に従って判定した。その判定結果を表2に示す。
実施例16は亜硝酸塩及び環状オリゴ糖を検体希釈液に保持させた形態です。
注1.
陽性検体は、不活化溶連菌を一試験あたり濃度が2×106org/mLのものを150μL用いた。
注2.
Amino−β−シクロデキストリン: 3A−アミノ−3A−デオキシ-(2AS,3AS)−β−シクロデキストリン水和物
注3.
mβ−シクロデキストリン: 6−0−α−D−マルトシル−β−シクロデキストリン (分子量 1459)
注4.
クエン酸の代わりに酒石酸を用いた。
注5. 亜硝酸ナトリウムの代わりに亜硝酸カリウムを用いた。
注6. クエン酸の代わりにイタコン酸を用いた。
亜硝酸ナトリウムは、一試験当り10〜100μmol用いることが好ましい。
クエン酸をクエン酸とクエン酸3ナトリウムの混合物として表3に記載の各種比率で用いたこと以外は、実施例4と同じ手順態様で実施した。そして、同じ目視判定基準に従って判定した。その判定結果を表3に示す。
検体希釈液の作製において、牛血清アルブミンの代わりにカゼインを1質量%用いたこと以外は、実施例4と同様に試験を行った。結果は、陰性検体での偽陽性は見られず、カゼインの亜硝酸との反応による析出に由来する展開不良も確認されず、陽性検体で実施例4と同等の検出感度が得られた(5回の繰り返し試験で、陽性検体は全て+以上の判定)。
2.試料滴下部〔2〕(試薬保持部(2))
3.抗原抽出部〔3〕(試薬保持部(3))
4.標識物質保持部〔4〕
5.吸収部〔5〕
6.検体処理液(抽出液)(6)
Claims (16)
- 検体中のグラム陽性菌の抗原を、有機酸と亜硝酸化合物の反応によりデバイス上で生成される亜硝酸により抽出して検出する免疫測定法において、環状オリゴ糖の存在下に行うことを特徴とする免疫測定法。
- 環状オリゴ糖がα−シクロデキストリン、β−シクロデキストリン、γ−シクロデキストリン又はそれらの誘導体であることを特徴とする請求項1に記載の免疫測定法。
- 亜硝酸化合物が、亜硝酸塩であることを特徴とする請求項1又は2に記載の免疫測定法。
- 有機酸が有機カルボン酸である請求項1〜3のいずれかに記載の免疫測定法。
- 抽出するpH条件が、6.8〜7.0である請求項1〜4のいずれかに記載の免疫測定法。
- 抗原が、多糖体である請求項1〜5のいずれかに記載の免疫測定法。
- グラム陽性菌が、溶血性連鎖球菌である請求項1〜6のいずれかに記載の免疫測定法。
- 請求項1〜7のいずれかに記載の免疫測定法において使用する、環状オリゴ糖を含有する免疫測定用試薬。
- 請求項1〜7のいずれかに記載の免疫測定法を行なうためのイムノクロマトグラフィー装置。
- 検体希釈液と、試料滴下部、抗原抽出部、標識物質保持部、検出部を有するクロマトグラフ媒体、および吸収部から構成されていて、かつ抗原抽出部に有機酸が保持されてなる検体中のグラム陽性菌を検出するためのイムノクロマトキットであって、検体希釈液及び/又は試料滴下部のいずれか一方又は両方に、環状オリゴ糖、亜硝酸化合物又はそれらの混合物のうちのいずれか一つ以上を含有することにより、環状オリゴ糖および亜硝酸化合物を含有するようにしたことを特徴とするイムノクロマトキット。
- 環状オリゴ糖は、イムノクロマトキットの1キット当り含有量が0.1〜5μgであることを特徴とする請求項10に記載のイムノクロマトキット。
- 環状オリゴ糖がα−シクロデキストリン、β−シクロデキストリン、γ−シクロデキストリン又はそれらの誘導体の1以上であることを特徴とする請求項10又は11に記載のイムノクロマトキット。
- 有機酸と共に非イオン性界面活性剤を保持することを特徴とする請求項10〜12のいずれかに記載のイムノクロマトキット。
- 亜硝酸化合物が、亜硝酸塩であることを特徴とする請求項10〜13のいずれかに記載のイムノクロマトキット。
- 抗原抽出部に、クエン酸と共にクエン酸塩を保持することを特徴とする請求項10〜14のいずれかに記載のイムノクロマトキット。
- 請求項1〜7のいずれかに記載の免疫測定法を行なうために使用する請求項10〜15のいずれかに記載のイムノクロマトキット。
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