JP5873923B2 - ビス(フルオロアルキル)−1,4−ベンゾジアゼピノン化合物 - Google Patents
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Description
NOTCHの活性化および成熟には、γセクレターゼ(プレセニリン1もしくはプレセニリン2、ニカストリン、APH1、およびPEN2を含む多タンパク質複合体)により仲介されるタンパク質切断ステップを含む、一連のプロセシングステップが必要とされる。NOTCHが切断されると、NOTCH細胞内ドメイン(NICD)が膜から遊離される。遊離されたNICDは核へ移行し、そこで、CSLファミリーメンバー(RBPSUH, ”suppressor of hairless”、およびLAG1)と協力して、転写活性化因子として機能する。NOTCH標的遺伝子には、HESファミリーメンバー(例えばHES-1)が含まれる。HES-1は、遺伝子の転写抑制因子(例えば、HERP1(HEY2としても知られる)、HERP2(HEY1としても知られる)、およびHATH1(ATOH1としても知られる))として機能する。
特許文献1は、神経障害(例えばアルツハイマー病)の処置に有用なスクシノイルアミノベンゾジアゼピン化合物を開示している。該文献には、これらのスクシノイルアミノベンゾジアゼピン化合物は、γセクレターゼ活性およびアミロイドタンパク質の神経への蓄積の形成に関連するアミロイド前駆体タンパク質のプロセシングを阻害することが開示されている。該文献は、増殖性疾患(例えば癌)の処置におけるこれらの化合物の使用は開示していない。
本発明は、Notchシグナリング経路の選択的阻害剤として有用なビス(フルオロアルキル)-1,4-ベンゾジアゼピノン化合物、およびそのプロドラッグを提供することにより、前述の要求を満たす。
本発明の第一の態様は、式(I):
R1は、-CH2CF3または-CH2CH2CF3であり;
R2は、-CH2CF3、-CH2CH2CF3、または-CH2CH2CH2CF3であり;
R3は、Hまたは-CH3であり;
各Raは、独立して、F、Cl、-CN、-OCH3、および/または-NHCH2CH2OCH3であり;そして、
zは0、1、または2である]
の化合物またはそのプロドラッグを提供する。
本発明の特徴および利点は、以下の詳細な説明を読むことで、当業者によってさらに容易に理解されうる。当然のことながら、上部および下部の別個の実施態様中に明確な根拠として記載された本発明のある特定の特徴を組み合わせて、単独の実施態様を形成してもよい。反対に、単独の実施態様中に簡潔な根拠として記載された本発明の様々な特徴を組み合わせて、それらのサブコンビネーションを形成してもよい。本明細書において、例として特定された実施態様かまたは好ましい実施態様は、例示目的であって限定するものではないことが意図される。
a)Wermuth, C.G. et al., The Practice of Medicinal Chemistry, Chapter 31, Academic Press (1996);
b)Bundgaard, H. ed., Design of Prodrugs, Elsevier (1985);
c)Bundgaard, H., Chapter 5, “Design and Application of Prodrugs,” Krosgaard-Larsen, P. et al., eds., A Textbook of Drug Design and Development, pp. 113-191, Harwood Academic Publishers (1991); および、
d)Testa, B. et al., Hydrolysis in Drug and Prodrug Metabolism, Wiley-VCH (2003)
に記載されている。
一実施態様において、実施例1の化合物:
格子定数(Cell dimensions):
a = 9.41 Å
b = 17.74 Å
c = 31.94 Å
α = 90.0°
β = 98.4°
γ = 90.0°
空間群: P21
実施例1の分子数/非対称ユニット: 4
体積/単位格子中の分子数 = 659 Å3
密度 (計算値) = 1.402 g/cm3,
ここで、形態N-1の単位格子パラメータは、約-10℃の温度にて測定される。
表1
約25℃の温度にて算出された実施例1の形態N-1の分率原子座標; 原子座標(x104)および等価等方性原子変位パラメータ(Equivalent Isotropic Displacement Parameter)(Å2x 103)
*U(eq)は直交Uijテンソルのトレースの3分の1として定義される。
格子定数:
a = 9.25 Å
b = 17.11 Å
c = 19.63 Å
α = 90.0°
β = 99.2°
γ = 90.0°
空間群: P21
実施例1の分子数/非対称ユニット: 2
体積/単位格子中の分子数 = 767 Å3
密度 (計算値) = 1.331 g/cm3,
ここで、形態A-2の単位格子パラメータは約-50℃の温度にて測定される。
表2
約25℃の温度にて算出した実施例1の形態A-2の分率原子座標; 原子座標(x104)および等価等方性原子変位パラメータ(Å2x 103)
*U(eq)は直交Uijテンソルのトレースの3分の1として定義される。
格子定数:
a = 8.84 Å
b = 15.95 Å
c = 22.38 Å
α = 90.0°
β = 90.0°
γ = 90.0°
空間群: P212121
実施例1の分子数/非対称ユニット: 1
体積/単位格子中の分子数 = 789 Å3
密度 (計算値) = 1.357 g/cm3,
ここで、形態EA-3の単位格子パラメータは約-50℃の温度にて測定される。
表3
約25℃の温度にて算出した実施例1の形態EA-3の分率原子座標; 原子座標(x104)および等価等方性原子変位パラメータ(Å2x 103)
*U(eq)は、直交Uijテンソルのトレースの3分の1として定義される。
格子定数:
a = 9.34 Å
b = 16.44 Å
c = 20.60 Å
α = 90.0°
β = 102.8°
γ = 90.0°
空間群: P21
実施例1の分子数/非対称ユニット: 2
テトラヒドロフランの分子/非対称ユニット: 2
体積 = 3082 Å3,
ここで、形態THF-2の単位格子パラメータは約-50℃の温度で測定される。
表4
約-50℃の温度にて算出した実施例1の形態THF-2の分率原子座標(溶媒分子は含まない); 原子座標(x104)および等価等方性原子変位パラメータ(Å2x 103)
*U(eq)は直交Uijテンソルのトレースの3分の1として定義される。
一実施態様において、実施例2の化合物
格子定数:
a = 8.44 Å
b = 21.02 Å
c = 17.52 Å
α = 90.0°
β = 90.88°
γ = 90.0°
空間群: P21
実施例2の分子/非対称ユニット: 2
体積/単位格子中の分子数 = 777 Å3
密度 (計算値) = 1.297 g/cm3,
ここで、形態M-1の単位格子パラメータは約-100℃の温度で測定される。
表5
約25℃の温度にて測定した形態M2-1の分率原子座標; 実施例2, 形態M2-1についての原子座標(x 104)および等価等方性原子変位パラメータ(Å2x 103)
式(I)の化合物は、癌、例えば、Notch活性化に依存した癌の処置に有用である。Notch活性化は、様々な固形腫瘍(卵巣、膵臓、ならびに乳癌を含む)および血液腫瘍(例えば、白血病、リンパ腫、および多発性骨髄腫)の病因と関係している。
本発明の化合物は、有機合成の分野の当業者に周知の多くの方法で製造することができる。本発明の化合物は、以下に記載される方法、および有機合成化学の分野で公知の合成方法、あるいは当業者により認められているその改変方法を用いて合成することができる。好ましい方法としては、限定はされないが、以下に記載のものが挙げられる。本明細書中の全ての引用文献は、引用によりその全般が本明細書に援用される。
(略語)
AcOH 酢酸
ACN アセトニトリル
AlMe3 トリメチルアルミニウム
Boc tert-ブチルオキシカルボニル
DCC 1,3-ジシクロヘキシルカルボジイミド
DCM ジクロロメタン
DEA ジエチルアミン
DMAP ジメチルアミノピリジン
DME ジメチルエーテル
DMF ジメチルホルムアミド
DMSO ジメチルスルホキシド
EDC 1-(3-ジメチルアミノプロピル)-3-エチルカルボジイミド塩酸塩
EDCI 1-(3-ジメチルアミノプロピル)-3-エチルカルボジイミド
Et2AlCl ジエチルアルミニウムクロリド
EtOAc 酢酸エチル
H2SO4 硫酸
HCl 塩酸
HOBT ヒドロキシベンゾトリアゾール
HPLC 高速液体クロマトグラフィー
hr 時間
IPA イソプロピルアルコール
LCMS 液体クロマトグラフィー質量分析
LDA リチウムジイソプロピルアミド
LiHMDS リチウム ビス(トリメチルシリル)アミド
Me メチル
MeOH メタノール
min 分
MTBE メチル tert-ブチルエーテル
N2 窒素
NaHMDS ナトリウム ビス(トリメチルシリル)アミド
Pd/C パラジウム炭素
Ph フェニル
RT 保持時間
sat 飽和
TBTU O-(1H-ベンゾトリアゾール-1-イル)-N,N,N',N'-テトラメチルウロニウムテトラフルオロボレート
TEA トリエチルアミン
Tf2O トリフルオロメタンスルホン酸無水物(trifluoromethylsulfonic anhydride)
TFA トリフルオロ酢酸
THF テトラヒドロフラン
(2R,3S)-N-((3S)-1-メチル-2-オキソ-5-フェニル-2,3-ジヒドロ-1H-1,4-ベンゾジアゼピン-3-イル)-2,3-ビス(3,3,3-トリフルオロプロピル)スクシンアミド
製造物1D: (2R,3R)-tert-ブチル 6,6,6-トリフルオロ-3-((S)-4-イソプロピル-2-オキソオキサゾリジン-3-カルボニル)-2-(3,3,3-トリフルオロプロピル)ヘキサノエート
冷却した(-78℃)、THF(59 mL)中のジイソプロピルアミン(5.3 mL, 37.2 mmol)の撹拌した溶液に、窒素雰囲気下においてn-BuLi(2.5M/ヘキサン)(14.7 mL, 36.8 mmol)を加えた後、0℃まで昇温させて、LDAの0.5M溶液を得た。別個の容器に製造物1B(2.45 g, 9.17 mmol)を入れ、該物質をベンゼンと2回共沸混合させた(RotoVapの空気吸入口に窒素入口(inlet)を装着して湿気を完全に排除した)後、トルエン(15.3 mL)を加えた。この溶液を、乾燥塩化リチウム(1.96 g, 46.2 mmol)を含むフラスコに加えた。得られた混合液(-78℃まで冷却した)に、LDA溶液(21.0 mL, 10.5 mmol)を加え、-78℃で10分間撹拌し、0℃まで10分間昇温させた後、-78℃まで再冷却した。製造物1A(3.41 g, 16.07 mmol)を含む別個の反応容器(これもまたベンゼンと2回共沸混合させた)に、トルエン(15.3 mL)を加え、-78℃まで冷却し、LDA(37.0 mL, 18.5 mmol)を加え、得られた溶液を-78℃で25分間撹拌した。その後、該エステル由来のエノラートを、カニューレを介してオキサゾリジノンエノラートの溶液に移し、-78℃でさらに5分間撹拌した後、セプタムを取り外し、該反応容器に固体粉末のビス(2-エチルヘキサノイルオキシ)銅(9.02 g, 25.8 mmol)を迅速に加え、該セプタムを元に戻した。すぐに該溶液を冷浴から取り出し、急速旋回させながら温水浴(40℃)に入れ、それと同時に最初の青緑色から茶色へ色が変化した。該反応混合液を20分間撹拌し、5%NH4OH水溶液(360 mL)に注ぎ入れ、EtOAc(2x)で抽出した。有機物を合わせて、食塩水で洗浄し、乾燥させ(Na2SO4)、濾過し、減圧下で濃縮した。残渣を、フラッシュクロマトグラフィー(Teledyne ISCO CombiFlash Rf, 0%〜60% 溶媒 A/B=ヘキサン/EtOAc, REDISEP(登録商標) SiO2 120g)により精製した。適切な画分を濃縮して、製造物1C(2.87 g, 66%)を淡黄色の粘稠性の油状物として得た。 1H NMRによって、該製造物はジアステレオ異性体 1C:1Dの1.6:1 混合物(2.74 & 2.84 ppmでの多重線の積分による測定として)であることが示された: 1H NMR (400 MHz, CDCl3) δ ppm 4.43-4.54 (2 H, m), 4.23-4.35 (5 H, m), 4.01 (1 H, ddd, J=9.54, 6.27, 3.51 Hz), 2.84 (1 H, ddd, J=9.41, 7.28, 3.64 Hz), 2.74 (1 H, ddd, J=10.29, 6.27, 4.02 Hz), 2.37-2.48 (2 H, m, J=10.38, 6.98, 6.98, 3.51, 3.51 Hz), 2.20-2.37 (3 H, m), 1.92-2.20 (8 H, m), 1.64-1.91 (5 H, m), 1.47 (18 H, s), 0.88-0.98 (12 H, m).
製造物1F: (2R,3R)-3-(tert-ブトキシカルボニル)-6,6,6-トリフルオロ-2-(3,3,3-トリフルオロプロピル)ヘキサン酸
冷却した(0℃)、THF(140 mL)および水(42 mL)中の製造物1Cおよび1D(4.54 g, 9.51 mmol)の撹拌した溶液に、過酸化水素(30%/水)(10.3 g, 91 mmol)およびLiOH(685.3 mg, 28.6 mmol)を連続して加え、該混合液を1時間撹拌した。その後、該反応容器を冷浴から取り出し、次いで、1.5時間撹拌した。HPLCにより該反応は完了したと判断された。該反応混合液に、飽和NaHCO3(45 mL)および飽和Na2SO3(15 mL)を加えた後、減圧下である程度濃縮した。得られたクルードな溶液をDCM(3x)で抽出した。水相を、1N HClを用いてpH〜1-2まで酸性化し、DCM(3x)およびEtOAc(1x)で抽出した。有機物を合わせて、食塩水で洗浄し、乾燥させ(Na2SO4)、濾過し、減圧下で濃縮して、製造物1Eおよび1Fの混合物(3.00 g, 86%)を無色の油状物として得た: 1H NMR (400 MHz, CDCl3) δ ppm 2.76-2.84 (1 H, m, ジアステレオ異性体2), 2.64-2.76 (3 H, m), 2.04-2.35 (8 H, m), 1.88-2.00 (4 H, m), 1.71-1.83 (4 H, m), 1.48 (9 H, s, ジアステレオ異性体1), 1.46 (9 H, s, ジアステレオ異性体2); 1H NMRによって、t-ブチル基のピークの積分により、1E:1Fの1.7:1混合物が示された。
製造物1F: (2R,3R)-3-(tert-ブトキシカルボニル)-6,6,6-トリフルオロ-2-(3,3,3-トリフルオロプロピル)ヘキサン酸
冷たい(-78℃)、THF(19 mL)中のジイソプロピルアミン(1.7 mL, 11.93 mmol)の撹拌した溶液に、窒素雰囲気下において、n-BuLi(2.5M/ヘキサン)(4.8 mL, 12.00 mmol)を加えた。該混合液を5分間撹拌した後、0℃まで昇温させた。別個の容器において、冷たい(-78℃)、THF(18 mL)中の製造物1Eおよび1Fの混合物(1.99 g, 5.43 mmol)の撹拌した溶液に、上記で製造したLDA溶液を、カニューレを介し、25分間かけてゆっくりと加えた。該混合液を15分間撹拌した後、室温(24℃水浴に入れた)まで15分間昇温させ、次いで、-78℃まで15分間再び冷却した。該反応混合液に、シリンジを介してEt2AlCl(1M/ヘキサン)(11.4 mL, 11.40 mmol)を加え、10分間撹拌し、室温まで15分間昇温させた後、-78℃まで15分間冷却し戻した。メタノール(25 mL)を迅速に加え、室温まで昇温させながら激しく旋回させ、その後、最初の体積の〜1/4まで濃縮した。該混合物を、EtOAc中に溶解させ、1N HCl(50 mL)および氷(75g)で洗浄した。水相を分離し、EtOAc(2x)で抽出した。有機物を合わせて、KF(2.85g/75 mL水)および1N HCl(13 mL)[得られた溶液 pH 3-4]の混合物、次いで食塩水で洗浄し、乾燥させ(Na2SO4)、濾過し、減圧下で濃縮して、製造物1Eおよび製造物1Fの9:1(1E:1F)のジアステレオ異性体リッチな混合物(1H NMRによる決定で)(2.13 g, >99%)を淡黄色の粘稠性の油状物として得た: 1H NMR (400 MHz, CDCl3) δ ppm 2.64-2.76 (2 H, m), 2.04-2.35 (4 H, m), 1.88-2.00 (2 H, m), 1.71-1.83 (2 H, m), 1.48 (9 H, s).
製造物1H: (3R)-3-アミノ-1-メチル-5-フェニル-1,3-ジヒドロ-2H-1,4-ベンゾジアゼピン-2-オン
ラセミの3-アミノ-1-メチル-5-フェニル-1,3-ジヒドロ-2H-1,4-ベンゾジアゼピン-2-オン(Rittle, K.E. et al., Tetrahedron Letters, 28(5):521-522 (1987))を、文献の方法に従って製造した。該エナンチオマーを、キラル-SFC条件下において以下の方法を用いて、分離させた: CHIRALPAK(登録商標) AS-H 5x25; 移動相: CO2中、30%MeOH+0.1%DEA; 流速: 280 mL/分; 圧力: 100 bar; 温度: 35℃.
製造物1G・CSA塩: (3S)-3-アミノ-1-メチル-5-フェニル-1,3-ジヒドロ-2H-1,4-ベンゾジアゼピン-2-オン, (1S)-(+)-10-カンファースルホン酸塩
DMF(19 mL)中の製造物1G(1.45 g, 5.47 mmol)および製造物1Eおよび1Fの9:1混合物(1.989 g, 5.43 mmol)の撹拌した溶液に、O-ベンゾトリアゾール-1-イル-N,N,N',N'-テトラ-メチルウロニウムテトラフルオロボレート(1.79 g, 5.57 mmol)およびトリエチルアミン(3.0 mL, 21.52 mmol)を加え、終夜撹拌した。LCMSにより、該反応は完了したと判断された。該反応混合液を水(125 mL)に注ぎ入れ、沈殿した固形物を濾過により集め、水で洗浄し、風乾させて、製造物1Iおよび製造物1Jの8:1混合物(2.95 g, 89%)をクリーム色の固形物として得た: MS (ES): m/z= 614 [M+H]+; 1H NMR (400 MHz, CDCl3) δ ppm 7.55-7.65 (3 H, m), 7.44-7.52 (2 H, m), 7.35-7.45 (4 H, m), 5.52 (1 H, d, J=8.03 Hz), 3.48 (3 H, s), 2.63 (2 H, ddd, J=9.35, 3.95, 3.76 Hz), 2.14-2.25 (4 H, m), 1.90-2.03 (3 H, m), 1.69-1.82 (1 H, m), 1.51 (9 H, s).
冷却した(0℃)、DCM(20 mL)中の上記の製造物1Iおよび製造物1Jの混合物(2.95 g, 4.81 mmol)の撹拌した溶液に、TFA(20 mL, 260 mmol)を加えた。該反応混合液を1時間撹拌した後、室温まで昇温させ、2.5時間撹拌した。LCMSにより該反応は完了したと判断された。該反応混合液をトルエン(50 mL)で希釈し、減圧下で濃縮した。該反応混合液をトルエン(50 mL)に溶解させ、減圧下で濃縮した後、高真空下で乾燥させた。該粗生成物をDCMに溶解させ、SiO2(15g)を加え、濃縮した後、フラッシュクロマトグラフィー(Teledyne ISCO CombiFlash Rf, 0%〜45% 溶媒 A/B=DCM/EtOAc, REDISEP(登録商標) SiO2 80g)により精製した。適切な画分を濃縮して、製造物1Kおよび製造物1Lの混合物(2.00 g, 75%)をクリーム色の固形物として得た: HPLC: 保持時間=2.770分 (クロモリス(登録商標) SpeedROD 4.6 x 50 mm (4分グラジエント) 4分にわたる10-90%MeOH水溶液(0.1%TFA含有)、4 mL/分で溶出, 254 nmでモニタリング); MS (ES): m/z= 558 [M+H]+; 1H NMR (400 MHz, CDCl3) δ ppm 8.32 (1 H, d, J=8.03 Hz), 7.65-7.71 (1 H, m), 7.50-7.60 (3 H, m), 7.41-7.49 (2 H, m), 7.39 (1 H, dd, J=7.91, 1.63 Hz), 7.23-7.35 (2 H, m), 5.59 (1 H, d, J=8.03 Hz), 3.51 (3 H, s), 2.81 (1 H, ddd, J=10.54, 6.90, 3.64 Hz), 2.67-2.76 (1 H, m), 2.22-2.33 (3 H, m), 1.99-2.12 (3 H, m), 1.85-1.94 (1 H, m), 1.79 (1 H, ddd, J=13.87, 7.84, 3.64 Hz).
DMF(25 mL)中の製造物1Kおよび製造物1Lの8:1混合物(3.46 g, 6.21 mmol)の撹拌した溶液に、窒素雰囲気下において、塩化アンモニウム(3.32 g, 62.1 mmol)、EDC(3.55 g, 18.52 mmol)、HOBT(2.85 g, 18.61 mmol)、およびトリエチルアミン(16 mL, 115 mmol)を加え、終夜撹拌した。LCMSにより、該反応は完了したと判断された。該反応混合液を、激しく旋回させながら水(200 mL)に注ぎ入れた後、静置した。固形物を濾過により集め、水で洗浄し、乾燥させて、3.6 gの無色の固形物を得た。該固形物を、プレパラティブSFCクロマトグラフィー(Lux-Cellulose-2 (3x25cm), 8%メタノール/CO2, 140ml/分 220nmおよび35℃にて; サンプル: 50ccのメタノール中に3.6g, 濃度=70mg/ml, スタックインジェクション: 0.5cc/9.2分)により精製した。生成物を含む画分を濃縮し、減圧下で終夜乾燥させた。実施例1(2.74 g, 79%)を無色の固形物(結晶形態N-1)として得た: HPLC: 保持時間=9.601分(H2O/CH3CN(TFA含有), Sunfire C18 3.5um, 4.6x150mm, 4.6x150mm, グラジエント = 15分, 波長 = 220および254 nm). MS (ES): m/z= 557 [M+H]+; 1H NMR (400 MHz, DMSO-d6) δ ppm 9.54 (1 H, d, J=7.28 Hz), 7.71-7.80 (1 H, m), 7.68 (2 H, d, J=8.78 Hz), 7.50-7.62 (3 H, m), 7.45 (2 H, t, J=7.28 Hz), 7.29-7.40 (2 H, m), 7.15 (1 H, br. s.), 5.30 (1 H, d, J=7.28 Hz), 3.39 (3 H, s), 2.74-2.86 (1 H, m), 2.02-2.32 (3 H, m), 1.45-1.79 (4 H, m); [α]D = -107.0° (5.73 mg/mL, DMSO).
製造物1M: 3,3,3-トリフルオロプロピル トリフルオロメタンスルホネート
製造物1F: (2R,3R)-3-(tert-ブトキシカルボニル)-6,6,6-トリフルオロ-2-(3,3,3-トリフルオロプロピル)ヘキサン酸
製造物1F: (2R,3R)-3-(tert-ブトキシカルボニル)-6,6,6-トリフルオロ-2-(3,3,3-トリフルオロプロピル)ヘキサン酸
製造物1Eおよび製造物1Fの混合物(64 mg, 1.758 mmol)をTHF(6 mL)に溶解させて無色の溶液を得て、それを-78℃まで冷却した。次いで、LDA(2.149 mL, 3.87 mmol)(ヘプタン/THF/エチルベンゼン中、1.8M)を該反応混合液に10分かけてゆっくりと加えた。15分間撹拌した後、該反応混合液を室温の水浴中に置いた。15分後、該反応混合液を-78℃の浴に戻し、その後、ジエチルアルミニウムクロリド(3.87 mL, 3.87 mmol)(1M/ヘキサン)を5分かけてゆっくりと加えた。該反応混合液を-78℃で撹拌した。15分後、該反応混合液を室温の水浴に10分間設置し、その後、-78℃浴まで冷却し戻した。15分後、該反応液をMeOH(8 mL, 198 mmol)でクエンチし、-78℃浴を取り外し、濃縮した。該反応混合液に、氷およびHCl(16 mL, 16.00 mmol)を加え、続いて、EtOAc(2x)で抽出した。有機層をフッ化カリウム(920 mg, 15.84 mmol)(25 mLのH2O中)およびHCl(4.5 mL, 4.50 mmol)で洗浄した。有機物を無水硫酸マグネシウムで乾燥させ、減圧下で濃縮して、製造物1Eおよび製造物1Fの9:1(1E:1F)のリッチな混合物(540 mg, 1.583 mmol, 90%収率)を薄い黄色/オレンジ色の固形物を得た。 1H NMR (400 MHz, CDCl3) δ ppm 2.64-2.76 (2 H, m), 2.04-2.35 (4 H, m), 1.88-2.00 (2 H, m), 1.71-1.83 (2 H, m), 1.48 (9 H, s). それを、上記で概説した反応順序によって実施例1に変換した。
製造物1Q: (2R,3S)-1-ベンジル 4-tert-ブチル 2,3-ビス(3,3,3-トリフルオロプロピル)スクシネート
製造物1E: (2R,3S)-3-(tert-ブトキシカルボニル)-6,6,6-トリフルオロ-2-(3,3,3-トリフルオロプロピル)ヘキサン酸
製造物1I: tert-ブチル (2S,3R)-6,6,6-トリフルオロ-3-(((3S)-1-メチル-2-オキソ-5-フェニル-2,3-ジヒドロ-1H-1,4-ベンゾジアゼピン-3-イル)カルバモイル)-2-(3,3,3-トリフルオロプロピル)ヘキサノエート
反応容器に、製造物1K(30 g, 53.81 mmol)、HOBt(8.7g, 64.38 mmol)、およびTHF(150 mL)を、室温にて入れた。該均一な溶液に、EDCI(12.4g, 64.68 mmol)を加え、15分間撹拌した後、8℃まで冷却した。該反応混合液に、温度を10℃以下に維持するように、アンモニア(2M/IPA)(81 mL, 162 mmol)を5分かけて加えた。得られた濃いスラリー(heavy slurry)を10分間撹拌し、30分かけて室温まで昇温させた後、4時間撹拌した。反応が完了した時点で、水(230 mL)を、温度が20℃以下に維持されるように15分かけてゆっくりと加えた後、2時間撹拌した。固形物を濾過により集め、水(3X60 mL)で洗浄し、次いで、55℃にて減圧下で48時間、乾燥させた。上記の粗生成物を、1 L 3つ口丸底フラスコに加えた。IPA(200 mL)を加えた後、80℃まで加熱して均一な溶液を得た。水(170 mL)を、内部温度を>75℃に維持するようにゆっくりと(15分)加えた。得られたスラリーを撹拌し、室温まで2時間冷却した。固形物を濾過により集め、水(2 X 50 mL)で洗浄した後、減圧下で乾燥させた(55℃で24時間、および30℃で48時間)。実施例1(23.4 g, 78%収率)を得た: HPLC純度: 99.43%。
(2R,3S)-N-((3S)-2-Oxo-5-フェニル-2,3-ジヒドロ-1H-1,4-ベンゾジアゼピン-3-イル)-2,3-ビス(3,3,3-トリフルオロプロピル)スクシンアミド
製造物2A: (3S)-3-アミノ-5-フェニル-1,3-ジヒドロ-2H-1,4-ベンゾジアゼピン-2-オン、および
製造物2B: (3R)-3-アミノ-5-フェニル-1,3-ジヒドロ-2H-1,4-ベンゾジアゼピン-2-オン
ラセミの3-アミノ-5-フェニル-1,3-ジヒドロ-2H-1,4-ベンゾジアゼピン-2-オン(J. Med. Chem., 49:2311-2319 (2006), compound# 5)を、文献の方法に従って製造した。エナンチオマーを、Berger SFC MGIIIカラムで分離した: Lux 25X3 cm, 5cm; 移動相: CO2中、30%MeOH+0.1%DEA ; 流速: 150 mL/分; 温度: 40℃; 検出器波長: 250 nM。S-エナンチオマー製造物2Aを白色の固形物として得た: 1H NMR (400 MHz, DMSO-d6) δ ppm 10.67 (1 H, br. s.), 7.58 (1 H, td, J=7.65, 1.76 Hz), 7.37-7.53 (5 H, m), 7.23-7.30 (2 H, m), 7.14-7.22 (1 H, m), 4.23 (1 H, s), 2.60 (2 H, br. s.); HPLC: 保持時間=3.0625分 (OD-Hカラムで、CO2中、30%MeOH+0.1%DEA, 3 mL/分, 35℃, 96 bar, 230 nm, 10μl注入); [α]D = -208.3° (5.05 mg/mL, MeOH). また、R-エナンチオマー製造物2Bをオフホワイト色の固形物として得た: HPLC: 保持時間=3.970分; [α]D = 182.1° (2.01 mg/mL, MeOH).
製造物2D: tert-ブチル (2R,3R)-6,6,6-トリフルオロ-3-(((3S)-2-オキソ-5-フェニル-2,3-ジヒドロ-1H-1,4-ベンゾジアゼピン-3-イル)カルバモイル)-2-(3,3,3-トリフルオロプロピル)ヘキサノエート
製造物2F: (2R,3R)-6,6,6-トリフルオロ-3-(((3S)-2-オキソ-5-フェニル-2,3-ジヒドロ-1H-1,4-ベンゾジアゼピン-3-イル)カルバモイル)-2-(3,3,3-トリフルオロプロピル)ヘキサン酸
実施例2を、製造物2Eおよび製造物2Fの混合物(354 mg, 0.651 mmol)から、実施例1について示した一般的な方法に従って、製造した。ジアステレオ異性体を分割した後、実施例2(188 mg, 52%)を白色の固形物として得た: HPLC: 保持時間=9.063分(H2O/CH3CN(TFA含有), Sunfire C18 3.5um, 4.6x150mm, 4.6x150mm, グラジエント = 15分, 波長 = 220および254 nm); MS (ES): m/z= 543 [M+H]+; 1H NMR (400 MHz, DMSO-d6) δ ppm 10.87 (1 H, br. s.), 9.50-9.55 (1 H, m), 7.62-7.69 (2 H, m), 7.40-7.57 (5 H, m), 7.29-7.36 (2 H, m), 7.22-7.28 (1 H, m), 7.16 (1 H, br. s.), 5.25 (1 H, d), 3.30-3.32 (1 H, m), 2.75-2.86 (1 H, m), 2.44-2.48 (1 H, m), 2.06-2.34 (3 H, m), 1.51-1.77 (4 H, m); [α]D = -114.4° (8.04 mg/mL, DMSO).
(2R,3S)-N-((3S)-1-メチル-2-オキソ-5-フェニル-2,3-ジヒドロ-1H-1,4-ベンゾジアゼピン-3-イル)-2-(2,2,2-トリフルオロエチル)-3-(3,3,3-トリフルオロプロピル)スクシンアミド
製造物3Aを、(4S)-4-(プロパン-2-イル)-1,3-オキサゾリジン-2-オン(4.66 g, 36.1 mmol)および4,4,4-トリフルオロブタン酸(5.02 g, 35.3 mmol)から、製造物1Bについて示した一般的な方法によって、製造した。製造物3Aを無色の油状物として得た(3.64g, 40%)。 1H NMR (400 MHz, CDCl3) δ ppm 4.44 (1 H, ddd, J=8.41, 3.51, 3.39 Hz), 4.31 (1 H, t, J=8.66 Hz), 4.25 (1 H, dd, J=9.03, 3.26 Hz), 3.13-3.32 (2 H, m), 2.47-2.59 (2 H, m), 2.38 (1 H, dddd, J=13.96, 7.01, 3.89 Hz), 0.93 (3 H, d, J=7.28 Hz), 0.88 (3 H, d, J=6.78 Hz).
実施例3を、製造物3F(446 mg, 0.821 mmol)から、実施例1について示した一般的な方法によって、製造した。ジアステレオ異性体の分割後、実施例3を得た: HPLC: 保持時間=3.17分 (H2O/CH3CN(TFA含有), Sunfire C18 3.5um, 4.6x150mm, 4.6x150mm, グラジエント = 15分, 波長 = 220および254 nm). MS (ES): m/z= 543.3 [M+H]+; 1H NMR (400 MHz, DMSO-d6) δ ppm 9.72 (1 H, d, J=8.53 Hz), 7.71-7.77 (1 H, m), 7.66-7.71 (1 H, m), 7.64 (1 H, d, J=1.25 Hz), 7.48-7.57 (3 H, m), 7.39-7.47 (2 H, m), 7.30-7.39 (2 H, m), 7.23 (1 H, s), 5.36 (1 H, d, J=8.53 Hz), 3.39 (3 H, s), 3.12-3.23 (1 H, m), 2.53-2.61 (1 H, m), 2.43 (1 H, td, J=10.10, 3.89 Hz), 2.16-2.28 (1 H, m), 2.02-2.16 (1 H, m), 1.82-1.96 (1 H, m), 1.68-1.82 (1 H, m).
(2R,3S)-N-((3S)-1-メチル-2-オキソ-5-フェニル-2,3-ジヒドロ-1H-1,4-ベンゾジアゼピン-3-イル)-3-(2,2,2-トリフルオロエチル)-2-(3,3,3-トリフルオロプロピル)スクシンアミド
実施例4を、製造物4F(476.3 mg, 0.667 mmol)から、実施例1について示した一般的な方法に従って、製造した。ジアステレオ異性体の分割後、実施例4をクリーム色の固形物として得た(120.3 mg, 32%)。 HPLC: 保持時間=9.446分 (H2O/CH3CN(TFA含有), Sunfire C18 3.5μm, 4.6x150mm, 4.6x150mm, グラジエント = 15分, 波長 = 220および254 nm); MS (ES):m/z = 543 [M+H+]; 1H NMR (400 MHz, DMSO-d6) δ ppm 9.56 (1 H, d, J=7.03 Hz), 7.82 (1 H, s), 7.70-7.78 (1 H, m), 7.64-7.70 (1 H, m), 7.50-7.63 (3 H, m), 7.47 (2 H, d, J=7.78 Hz), 7.30-7.42 (2 H, m), 7.21 (1 H, s), 5.30 (1 H, d, J=7.03 Hz), 3.39 (3 H, s), 2.67-2.80 (2 H, m), 2.51-2.62 (2 H, m), 2.19-2.29 (1 H, m), 2.07-2.21 (1 H, m), 1.60-1.72 (2 H, m).
(2R,3S)-N-((3S)-1-(2H3)メチル-2-オキソ-5-フェニル-2,3-ジヒドロ-1H-1,4-ベンゾジアゼピン-3-イル)-2,3-ビス(3,3,3-トリフルオロプロピル)スクシンアミド
以下に記載の化合物を、実施例1に記載の一般的な合成方法に従って、当業者に公知の方法(例えば、Carter, M.C. et al., J. Med. Chem., 49:2311-2319 (2006))によって得た適切なベンゾジアゼピノンを用いて、製造した。
表6
a Xbridge Phenyl (4.6X150 mm), 3.5ミクロン; 1mL/分 流速; グラジエント 30分にわたる10-100%B(A:水/CH3CN(95:5)中の0.05%TFA, B:水/CH3CN(5:95)中の0.05%TFA @ 220および250nm); 30分ラン.
b Xbridge Phenyl (4.6X150 mm), 3.5ミクロン; 1mL/分 流速; グラジエント 15分にわたる10-100%B(A:水/CH3CN中の0.05%TFA(95:5)、B:水/CH3CN中の0.05%TFA(5:95) @ 220および250nm); 15分ラン.
以下に記載の化合物を、実施例1に記載の一般的な合成方法に従って、当業者に公知の方法(例えば、Carter, M.C. et al., J. Med. Chem., 49:2311-2319 (2006))によって得た適切なベンゾジアゼピノンを用いて、製造した。
表7
a Xbridge Phenyl (4.6X150mm), 3.5ミクロン; 1mL/分 流速; グラジエント 12分にわたる10-100%B (A:水/CH3CN(95:5)中の0.05%TFA, B:水/CH3CN(5:95)中の0.05%TFA @ 220および250 nm); 25分ラン.
b Xbridge Phenyl (4.6X150mm), 3.5ミクロン; 1mL/分 流速; グラジエント 12分にわたる10-100%B(A:水/CH3CN(95:5)中の0.05%TFA, B:水/CH3CN(5:95)中の0.05%TFA @ 220および250 nm); 15分ラン.
c LCMS: MeOH/H2O/0.1%TFA, BEH C18 2.1x50mm 1.7u, 2分グラジエント, 波長=254nm.
d MeOH/H2O/0.1%TFA, Waters Sunfire C18 2.1x30mm, 2分グラジエント, 波長=254nm.
e クロモリス(登録商標) ODS 4.6 x 50 mm (4分グラジエント) 4分にわたって10-90%MeOH水溶液(0.1%TFA含有)で溶出、4 mL/分, 220 nmでモニタリング.
(2R,3S)-N-((3S)-2-オキソ-5-フェニル-2,3-ジヒドロ-1H-1,4-ベンゾジアゼピン-3-イル)-3-(4,4,4-トリフルオロブチル)-2-(3,3,3-トリフルオロプロピル)スクシンアミド
実施例19を、製造物19D(80 mg, 0.119 mmol)から、実施例1について示した一般的な方法に従って、製造した。ジアステレオ異性体の分割後、実施例19(35 mg, 49%)を得た。 HPLC: 保持時間=2.731分 (クロモリス(登録商標) 5u C18 4.6 x 30mm(4分グラジエント) 4分にわたる10-90%MeOH水溶液(0.1%TFA含有)で溶出, 220 nmでモニタリング); MS (ES): m/z= 557 [M+H]+; 1H NMR (500 MHz, DMSO-d6) δ ppm 10.82 (1 H, s), 9.42 (1 H, d, J=7.21 Hz), 7.65 (1 H, ddd, J=8.32, 7.07, 1.53 Hz), 7.60 (1 H, d, J=2.22 Hz), 7.49-7.57 (3 H, m), 7.42-7.49 (2 H, m), 7.29-7.35 (2 H, m), 7.20-7.28 (1 H, m), 7.03 (1 H, s), 5.23 (1 H, d, J=7.21 Hz), 2.70-2.79 (1 H, m), 2.57-2.69 (1 H, m), 2.39-2.47 (1 H, m), 2.05-2.32 (3 H, m), 1.50-1.67 (3 H, m), 1.40-1.49 (1 H, m), 1.24-1.39 (2 H, m).
(2R,3S)-N1-((3S)-8-メトキシ-2-オキソ-5-フェニル-2,3-ジヒドロ-1H-1,4-ベンゾジアゼピン-3-イル)-3-(4,4,4-トリフルオロブチル)-2-(3,3,3-トリフルオロプロピル)スクシンアミド
(2R,3S)-N-((3S)-9-((2-メトキシエチル)アミノ)-2-オキソ-5-フェニル-2,3-ジヒドロ-1H-1,4-ベンゾジアゼピン-3-イル)-2,3-ビス(3,3,3-トリフルオロプロピル)スクシンアミド
製造物21A: (3-((4-メトキシベンジル)(2-メトキシエチル)アミノ)-2-ニトロフェニル)(フェニル)メタノン
実施例21を、製造物21Cから、実施例1について概説した一般的な反応順序を用いることによって、製造した。得られたジアステレオ異性体の混合物を、キラルHPLCによって分割して、実施例21を得た: LC/MS (PHENOMENEX(登録商標) Luna 5ミクロン C18 4.6 X 30 mm, 4分で30〜100 Bおよび1分のホールド時間, 流速 = 5 ml/分, 254 nmで検出, 溶媒A: 10%メタノール/90%水/0.1%TFA; 溶媒B: 10%水/90%メタノール/0.1%TFA) 保持時間 = 2.13分; MS (ES): m/z = 616.22 [M+H]+.
(2R,3S)-N-((3S)-1-メチル-2-オキソ-5-フェニル-2,3-ジヒドロ-1H-1,4-ベンゾジアゼピン-3-イル)-2,3-ビス(3,3,3-トリフルオロプロピル)スクシンアミドを含有する医薬製剤
注射製剤を、(2R,3S)-N-((3S)-1-メチル-2-オキソ-5-フェニル-2,3-ジヒドロ-1H-1,4-ベンゾジアゼピン-3-イル)-2,3-ビス(3,3,3-トリフルオロプロピル)スクシンアミド, 実施例1を含有する、静脈内(IV)投与用の使い捨てのそのまますぐに使用できる(RTU)無菌の溶液として、精製ポリオキシエチル化ヒマシ油(界面活性剤)および無水アルコール(溶媒)の50:50(v/v)の組み合わせを用いて、製剤化した。該製剤は澄明〜わずかに濁った(opalescent)、無色〜淡黄色の無菌の溶液であり、5-mLのI型フリントガラスバイアル中に入れ、20 mmストッパーで閉め、20-mmのアルミニウムシールで密封した。濃縮された製剤は、投薬前に、通常用いられる静脈内用希釈剤(intravenous diluent)(例えば、生理食塩水(NS)または5%ブドウ糖)を用いて希釈され、生理学的に許容される希釈生成物を得る。
表11
濃縮医薬組成物
精製ポリオキシエチル化ヒマシ油:クレモフォール(BASF Corp.)
本発明の化合物の薬理学的特性は、多くの生物学的アッセイによって確認されうる。以下に例示される生物学的アッセイを本発明の化合物で実施した。
Notch-CBF1(C-プロモーター結合因子I)セルベーストランス活性化アッセイは、放出されたNotch細胞内ドメインフラグメント(NICD)の、CBF1および他の核因子との結合における転写因子として機能する能力に基づいている。ルシフェラーゼアッセイを用いてNotch-CBF1転写活性の拮抗作用を測定した。HeLa子宮頚癌細胞に、切断されたNotch 1、Notch 2、Notch 3、もしくはNotch 4受容体を含むpCDNA3.1/Hygroプラスミド、および4コピーのCBF1結合部位を含むPGL3ルシフェラーゼ受容体ベクターを一時的に同時トランスフェクトする。次いで該細胞を、試験化合物の非存在下または存在下でのNotch-CBF1活性について試験した。DMEM(高グルコース、HEPES含有)、1X グルタミン/ペニシリン/ストレプトマイシンおよび10%ウシ胎仔血清中で維持されているHeLa細胞を、製造者の仕様書に従って、Monster Transfection Kit(Mirus #MIR2906)を用いて、T175フラスコ(4.5 x106 細胞/フラスコ)中において、一時的にトランスフェクトした。表12は、トランスフェクションについての各DNA量を示す。
表12
表13
非経口的投与された化合物は、血流に入り、肝臓を通る1つ以上の経路を経る。肝臓によって容易に代謝されない化合物を、治療上有効な血漿中濃度で、治療上有効な期間、投与することができる。
表14
代謝安定性 - 結果解釈ガイドライン
表15
肝臓ミクロソームとのインキュベーション
試験化合物を、100%DMSO中の3.5 mMのストック溶液として得た。試験化合物を希釈して1.4%DMSOを含む50 μMアセトニトリル(ACN)溶液を作り、次いでそれをミクロソームとのインキュベーションのための100x ストックとして用いた。各化合物を、代謝安定性-ヒト、ラット、およびマウスアッセイ一式の3種をそれぞれ別々に、または代謝安定性-イヌ一式もしくは代謝安定性-サル一式を個々の種として、二重で試験した。化合物、NADPH、および肝臓ミクロソーム溶液を、インキュベーションのために、3工程で合わせた:
1. 100 mM NaPi, pH 7.4、5 mM MgCl2バッファー中の、152 μlの肝臓ミクロソーム懸濁液(タンパク質濃度 1.1 mg/ml)を、37℃にて予め温めた。
2. 1.7 μlの50 μM 化合物(98.6%ACN, 1.4%DMSO)を同じチューブに加え、37℃にて5分間、予めインキュベートした。
3. 該反応を、予め温めた100 mM NaPi, pH 7.4中の10 mM NADPH溶液を17 μl加えることによって開始させた。
表16
代謝安定性アッセイ - 反応成分
サンプル分析 - 器具使用
HPLC: ポンプ - Thermo Surveyor; オートサンプラー - CTC/LEAP HTS; UV検出器 - Thermo Surveyor PDA plus; カラム - 0.5 μm インラインフィルターを備えたVarian C18, 3 μm, 2 x 20 mm; 構造的完全性事前分析(structural integrity pre-analysis)のための移動相 : (A) 98%水、2%アセトニトリル(10 mM 酢酸アンモニウム含有); (B) 10%水、90%アセトニトリル(10 mM 酢酸アンモニウム含有); 反応サンプル分析のための移動相 : (A)98%水、2%アセトニトリル(0.1%ギ酸含有); (B) 2%水、98%アセトニトリル(0.1%ギ酸含有); (C) 0.1%水酸化アンモニウム/水; (D) 0.1%水酸化アンモニウム/アセトニトリル.
質量分析計: Thermo TSQ Quantum Ultra トリプル四重極質量分析計;
サンプル分析: 構造的完全性事前分析.
表17
代謝安定性 - 構造的完全性グラジエント
MS/MS条件の最適化を、加熱エレクトロスプレー(H-ESI)源を備えたThermo TSQ Quantum トリプル四重極質量分析計において、自動注入によって実施し、SRMトランジションおよびそれらの対応する衝突エネルギー値を得た。1:1 メタノール:水中の20 μM濃度の化合物溶液を、流速90 μL/分で注入した後、流速50 μL/分で移動相を合わせ、その後、供給源に導入した。全ての化合物を、まず移動相AおよびB(50%Aおよび50%B)を用い、必要であれば、移動相CおよびD(また、50:50組成物である)を用いて、最適化した。最適化されたパラメータ(極性、SRMトランジションおよび衝突エネルギーを含む)を、Microsoft Access データベースに保存した。
表18
代謝安定性 - サンプル分析グラジエント
ピーク積分を、XCALIBUR(登録商標)ソフトウェアを用いて行った。残存率の算出を、各化合物についてのT10分サンプルからのLC-MS/MSピーク領域とT0分サンプルからのLC-MS/MSピーク領域を比較することによって、実施した。
一連のこれらの化合物を、各アッセイプレートにおいて、試験化合物と一緒に試験した。これらコントロール化合物についての結果が以下に示す期待される範囲に該当した場合のみ、データを承認してアップロードした。
表19
代謝安定性アッセイ - ミクロソーム種によるコントロール化合物の値
SD = 標準偏差
ヒトまたは動物の肝臓ミクロソームにおいて、in vitroで決定された代謝速度および半減期を用いて、化合物の固有クリアランス(CLint)および肝クリアランス(CLh,b)を決定した。これらのパラメータは、in vivoヒトクリアランス(in vivoでの薬物曝露のレベルを定義する)を予測するために有用であった(Obach et al., J. Pharmacol. Exp. Ther., 283:46-58 (1997); Obach, Drug Metab. Dispos., 27:1350-1359 (1999))。
これらのアッセイの結果を半減期(T1/2, 分)として表し、また、各時点での反応混合物中の親化合物の残存率(残存率)も報告した。一般に、これらの結果は、試験化合物のCYP-媒介またはNADPH-依存性の代謝の程度のみを評価するために用いられるべきである。該化合物が著しく代謝された(T1/2 <8〜14分)場合、これにより、in vivoでの高いクリアランスはCYP-媒介代謝に起因することが示唆された。しかしながら、これらのin vitroアッセイにおいて該化合物が中程度(50〜80%)または低い(>85%)代謝を示した場合、高いクリアランスは依然としてin vivoでの他の代謝および排出経路を介している可能性があった。
表20
代謝安定性 半減期 - 結果解釈ガイドライン
肝臓ミクロソームはBD-Biosciences(Woburn, MA)から入手し、NADPHはAppliChem Incから入手し;全ての他の試薬はSigmaから入手した。
試験化合物を100%DMSO中の3.5 mMストック溶液として得た。該試験化合物を希釈して50 μM アセトニトリル(ACN)溶液(1.4%DMSO含有)を作り、その後、それをミクロソームとのインキュベーション用の100-倍ストックとして用いた。各化合物を、ヒト、ラット、マウス、イヌおよびサルの肝臓ミクロソームにおいて試験した。化合物、NADPHおよび肝臓ミクロソーム溶液を、インキュベーションのために3つの工程で合わせた:
1. 450 μlの肝臓ミクロソーム懸濁液、100 mM NaPi, pH 7.4、5 mM MgCl2バッファー中の1.1 mg/mlのタンパク質濃縮物を、37℃にて予め温めた。
2. 5 μlの50 μM 化合物(98.6%ACN, 1.4%DMSO)を同じチューブに加え、37℃で5分間、プレインキュベートした。
3. 50 μlの予め温めた100 mM NaPi, pH 7.4中の10 mM NADPH溶液を加えることによって、反応を開始させた。
表21
代謝安定性 半減期 アッセイ - 反応成分
サンプル分析 - 器具使用
HPLC: ポンプ - 島津LC-20 ADシリーズ バイナリポンプ; オートサンプラー - CTC/LEAP HTS.
全ての齧歯動物をHarlan Sprague Dawley Co.(Indianapolis, Indiana)から入手し、区別された(defined)病原体フリーのコロニー中のアンモニア-フリーの環境で維持した。全てのマウスを約1週間検疫した後で、それらを腫瘍増殖および薬効試験のために用いた。食物および水を自由裁量でマウスに摂食させた。Bristol-Myers Squibb 薬学研究所の動物管理プログラムは、米国実験動物管理公認協会(AAALAC)により公認されている。全ての実験を、Bristol-Myers Squibb (BMS)動物試験法およびガイドラインに従って、実施した。
表22
マウスにおける様々なヒト腫瘍異種移植片の増殖に対する組織型および宿主マウス系統/性別要件
有意義な反応を見いだすために必要な数の動物を、実験開始時にプールし、各々に、13-内径トロカールを用いて腫瘍断片(〜20 mg)を皮下移植した。腫瘍を、予め定められたサイズ(size window)(該範囲外の腫瘍は除いた)まで増殖させ、動物を、様々な処置群およびコントロール群に均等に分配した。SAL-IGF(表22には含まれない)腫瘍モデルで実施した実験(典型的には各処置群およびコントロール群当たり5個体のマウスであった)を除いて、典型的には、各処置群およびコントロール群当たり8個体のマウスであった。個々の体重に基づいて各動物を処置した。処置された動物を、処置に関連する毒性/死亡数について毎日調べた。処置を開始する前に各群の動物の体重を測定し(Wt1)、その後、最後の処置用量の後に再度測定した(Wt2)。体重の差異(Wt2-Wt1)は処置関連毒性の指標を提供する。
腫瘍重量 = (長さ x 幅2) ÷ 2
から推定した。
(式中、
Ct = 処置の終了時における腫瘍サイズの中央値
C0 = 処置開始時におけるコントロールの腫瘍サイズの中央値
Tt = 処置の終了時における処置群の腫瘍サイズの中央値
T0 = 処置開始時における処置群の腫瘍サイズの中央値)
in vitro研究において、全ての剤を、100%DMSOに溶解させ、培地/10%ウシ胎仔血清中に連続希釈した。Notch阻害剤の齧歯動物への投与において、2つの異なる賦形剤を用いた:[1]94%Labrafil/5%ETOH/1%TW80または[2]ETOH/TPGS/PEG300(10:10:80)。Notch阻害剤は、典型的には、QDx15, 10日-オン-2日-オフのスケジュールで経口投与された(他のスケジュールもまた評価され、有効であることが示されたけれども)。例えば、QDx12, 4日-オン-3日-オフを含む投与レジメンは、QDx15, 10日-オン-2日-オフと同等の有効性であることが示された。
静脈内経路(IV)によって投与された実施例1の抗腫瘍活性を、マウスに移植されたヒト腫瘍異種移植片において評価した。図6に示す通り、実施例1は抗腫瘍活性を示した。
表23
スケジュール: QDx15, 10日-オン-2日-オフ; 経口投与
QD - 毎日一回
LCK - 殺細胞数の常用対数値(Log Cell Kill)
表24
a全ての処置は、5-10 mg/kg/admの範囲の用量で、PO, QDx15, 10日-オン-2日-オフであった。
一連の研究を実施して、実施例1と多くの抗癌剤(ダサチニブ、パクリタキセル、タモキシフェン、デキサメタゾン、およびカルボプラスチンを含む)との組み合わせ適合性(combinability)を評価した。
ヒトT-細胞リンパ性白血病を用いて、実施例1およびダサチニブの組み合わせ効果を評価した。ダサチニブ処置単独では、1.7 LCK(10 mg/kg/adm, QD x 49, PO)の抗腫瘍効果がもたらされた。実施例1の化合物は、3.75-7.5 mg/kgの用量範囲で0.1-0.5 LCKという中程度の活性のみをもたらした。しかしながら、相乗的抗腫瘍活性をもたらす2つの剤の組み合わせは>>2.6 LCKの抗腫瘍効果をもたらし、それはダサチニブ単剤のみよりも顕著に優れていた(P<0.05)。加えて、組み合わせレジメンは100%のマウスにおいて完全奏功(CR)をもたらしたが、一方、単剤では一個体でもCRがもたらされなかった(図7-8および表25)。
表25
ALL-SIL T細胞リンパ性白血病における、実施例1およびダサチニブでの組み合わせ化学療法による抗腫瘍効果
aレジメン = PO, QD x3, 毎週 x7
bレジメン = PO, QD x 49
c標的腫瘍サイズ = 1000 mg
パクリタキセルと組み合わせた実施例1の抗腫瘍効果を、MDA-MB-468 乳癌において評価した。単剤としての実施例1は、3.75-7.5 mg/kg/admの用量範囲にて0.5-1.4 LCKをもたらした。12 mg/kg/admの用量で毎週投与されたパクリタキセルは、0.5 LCK(図9-10および表26)であった。3.75-7.5 mg/kg/admの用量範囲での実施例1およびパクリタキセルの組み合わせは3.4-4.1 LCKの抗腫瘍効果をもたらし、それは単剤の実施例1の化合物単独に比べて顕著に優れていた(P=0.0006および0.0002, 各々)。
表26
MDA-MB-468 ヒト乳癌における、実施例1およびパクリタキセルの組み合わせ化学療法による抗腫瘍効果
aレジメン = PO, QD x3, 毎週 x7
bレジメン = IV, Q7D x 6
c標的腫瘍サイズ = 500 mg
タモキシフェンと組み合わせた実施例1の抗腫瘍効果を、雌nu/nuマウスにおいて増殖させたER受容体陽性ヒト乳癌異種移植片 MCF7において評価した。単剤としての実施例1は、3.75-7.5 mg/kg/admの用量範囲にて43-58%の腫瘍増殖阻害(TGI)をもたらした(CRもPRもなし)。MTD用量の20 mg/kg/adm, IP, Q2 DX12にて投与されたタモキシフェンは、78%の%TGIをもたらした(CRもPRもなし)。実施例1の化合物とタモキシフェンの組み合わせは、明らかに相乗的であり、7.5および3.75 mg/kg/admの実施例1の用量にて、各々、101および99の%TGIをもたらした。さらに、組み合わせで処置されたマウスの約50%において腫瘍の縮小(PRまたはCRのいずれかとして)がもたらされた(図11-12および表27)。
表27
MCR7 ヒト乳癌における実施例1およびタモキシフェンの組み合わせ化学療法による抗腫瘍効果
aレジメン = PO, QD x3, 毎週 x3
bレジメン = IP, Q2D x 10
c標的腫瘍サイズ = 500 mg
グルココルチコイド、デキサメタゾンと組み合わせた実施例1の抗腫瘍効果を、NOD-SCIDマウスにおいて増殖させたヒトT-ALL白血病異種移植片 HPB-ALLにおいて評価した。単剤としての実施例1はこのモデルにおいて活性であり、7.5 mpkにて1.1 LCKをもたらした。デキサメタゾンは単剤として中程度に活性であり、そのMTDで7.5 mpkにて0.7 LCKをもたらした。実施例1およびデキサメタゾンの組み合わせは1.9 LCKをもたらし、いずれかの個々の単剤のみより顕著にすぐれていた(図13および表28)。
表28
HPB-ALL ヒト急性リンパ性白血病における実施例1およびデキサメタゾンの組み合わせ化学療法による抗腫瘍効果
aレジメン = PO, QD x3, 毎週 x3
bレジメン = IP, QD x 14
c標的腫瘍サイズ = 3000 mg
カルボプラスチンと組み合わせた実施例1の抗腫瘍効果を、雌nu/nuマウスにおいて増殖させたヒト卵巣テラトカルシノーマ異種移植片 PA-1において評価した。単剤としての実施例1は、1 mg/kg/admの用量にて0.2 LCKをもたらした。90 mg/kg/admの用量にて毎週投与されたカルボプラスチンは、2.1 LCKをもたらした(図14および表29)。1 mg/kg/admの用量の実施例1およびカルボプラスチンの組み合わせは、>3.1 LCKの抗腫瘍効果をもたらし、それは単剤の実施例1化合物のみよりも顕著に優れていた(P=0.004)。
表29
PA-1 ヒト卵巣テラトカルシノーマにおける実施例1とカルボプラスチンの組み合わせ化学療法による抗腫瘍効果
aレジメン = PO, QD x21 (1 mg/kg)
bレジメン = IV, Q7D x 3
c標的腫瘍サイズ = 500 mg
Bruker-AXS APEX2 CCDシステムにおいて、Cu Kα照射(λ= 1.5418 Å)を用いて、単結晶データを集めた。測定した強度データの指標化および処理を、APEX2ソフトウェアプログラム一式を用いて行った。必要であれば、データ収集の間、Oxford cryo systemの冷気流において結晶を冷却した。該構造を直接法によって解析し、SHELXTLを用いて、実測の反射に基づいて精密化した。得られた原子パラメータ(座標および温度因子)を、フルマトリックス最小二乗によって精密化した。精密化において最小にされる関数は、Σw(|Fo|-|Fc|)2であった。RはΣ||Fo|-|Fc||/Σ|Fo|と定義し、一方、Rw=[Σw(|Fo|-|Fc|)2/Σw|Fo|2]1/2(式中、wは実測強度における誤差に基づく適切な重み関数である)である。典型的には、H以外の全ての原子を異方的に(anisotropically)精密化し、NおよびO原子に結合したH原子以外の全てのH原子を幾何学的方法により計算して、riding modelを用いて精密化した。
Bruker GADDS (General Area Detector Diffraction System)マニュアルカイプラットフォームゴニオメーターを用いて、粉末X-線回折(PXRD)データを得た。粉末のサンプルを直径0.7mmの薄壁のガラスキャピラリーに設置し;該キャピラリーをデータ収集の間、回転させた。サンプルから検出器の距離を17 cmに保った。Cu Kα照射(λ = 1.5418 Å)を用いて、600秒のサンプル曝露時間で、2.5<2θ<35°の範囲について、データを収集した。
Claims (19)
- R1が-CH2CF3または-CH2CH2CF3であり;そして、
R2が-CH2CF3または-CH2CH2CF3である、
請求項1に記載の化合物。 - zが0または1である、請求項1に記載の化合物。
- R1が-CH2CH2CF3であり;そして、
R2が-CH2CH2CF3である、
請求項1に記載の化合物。 - zが0または1である、請求項4に記載の化合物。
- zが1または2である、請求項1に記載の化合物。
- (2R,3S)-N-((3S)-1-メチル-2-オキソ-5-フェニル-2,3-ジヒドロ-1H-1,4-ベンゾジアゼピン-3-イル)-2,3-ビス(3,3,3-トリフルオロプロピル)スクシンアミド (1); (2R,3S)-N-((3S)-2-オキソ-5-フェニル-2,3-ジヒドロ-1H-1,4-ベンゾジアゼピン-3-イル)-2,3-ビス(3,3,3-トリフルオロプロピル)スクシンアミド (2); (2R,3S)-N-((3S)-1-メチル-2-オキソ-5-フェニル-2,3-ジヒドロ-1H-1,4-ベンゾジアゼピン-3-イル)-2-(2,2,2-トリフルオロエチル)-3-(3,3,3-トリフルオロプロピル)スクシンアミド (3); (2R,3S)-N-((3S)-1-メチル-2-オキソ-5-フェニル-2,3-ジヒドロ-1H-1,4-ベンゾジアゼピン-3-イル)-3-(2,2,2-トリフルオロエチル)-2-(3,3,3-トリフルオロプロピル)スクシンアミド (4); (2R,3S)-N-((3S)-1-(2H3)メチル-2-オキソ-5-フェニル-2,3-ジヒドロ-1H-1,4-ベンゾジアゼピン-3-イル)-2,3-ビス(3,3,3-トリフルオロプロピル)スクシンアミド (5); (2R,3S)-N-((3S)-7-クロロ-1-メチル-2-オキソ-5-フェニル-2,3-ジヒドロ-1H-1,4-ベンゾジアゼピン-3-イル)-2,3-ビス(3,3,3-トリフルオロプロピル)スクシンアミド (6); (2R,3S)-N-((3S)-8-メトキシ-1-メチル-2-オキソ-5-フェニル-2,3-ジヒドロ-1H-1,4-ベンゾジアゼピン-3-イル)-2,3-ビス(3,3,3-トリフルオロプロピル)スクシンアミド (7); (2R,3S)-N-((3S)-8-フルオロ-1-メチル-2-オキソ-5-フェニル-2,3-ジヒドロ-1H-1,4-ベンゾジアゼピン-3-イル)-2,3-ビス(3,3,3-トリフルオロプロピル)スクシンアミド (8); (2R,3S)-N-((3S)-7-メトキシ-1-メチル-2-オキソ-5-フェニル-2,3-ジヒドロ-1H-1,4-ベンゾジアゼピン-3-イル)-2,3-ビス(3,3,3-トリフルオロプロピル)スクシンアミド (9); (2R,3S)-N-((3S)-7-フルオロ-1-メチル-2-オキソ-5-フェニル-2,3-ジヒドロ-1H-1,4-ベンゾジアゼピン-3-イル)-2,3-ビス(3,3,3-トリフルオロプロピル)スクシンアミド (10); (2R,3S)-N-((3S)-8-クロロ-1-メチル-2-オキソ-5-フェニル-2,3-ジヒドロ-1H-1,4-ベンゾジアゼピン-3-イル)-2,3-ビス(3,3,3-トリフルオロプロピル)スクシンアミド (11); (2R,3S)-N-((3S)-9-メトキシ-2-オキソ-5-フェニル-2,3-ジヒドロ-1H-1,4-ベンゾジアゼピン-3-イル)-2,3-ビス(3,3,3-トリフルオロプロピル)スクシンアミド (12); (2R,3S)-N-((3S)-8-メトキシ-2-オキソ-5-フェニル-2,3-ジヒドロ-1H-1,4-ベンゾジアゼピン-3-イル)-2,3-ビス(3,3,3-トリフルオロプロピル)スクシンアミド (13); (2R,3S)-N-((3S)-7-メトキシ-2-オキソ-5-フェニル-2,3-ジヒドロ-1H-1,4-ベンゾジアゼピン-3-イル)-2,3-ビス(3,3,3-トリフルオロプロピル)スクシンアミド (14); (2R,3S)-N-((3S)-8-シアノ-9-メトキシ-2-オキソ-5-フェニル-2,3-ジヒドロ-1H-1,4-ベンゾジアゼピン-3-イル)-2,3-ビス(3,3,3-トリフルオロプロピル)スクシンアミド (15); (2R,3S)-N-((3S)-8,9-ジクロロ-2-オキソ-5-フェニル-2,3-ジヒドロ-1H-1,4-ベンゾジアゼピン-3-イル)-2,3-ビス(3,3,3-トリフルオロプロピル)スクシンアミド (16); (2R,3S)-N-((3S)-9-フルオロ-2-オキソ-5-フェニル-2,3-ジヒドロ-1H-1,4-ベンゾジアゼピン-3-イル)-2,3-ビス(3,3,3-トリフルオロプロピル)スクシンアミド (17); (2R,3S)-N-((3S)-9-クロロ-2-オキソ-5-フェニル-2,3-ジヒドロ-1H-1,4-ベンゾジアゼピン-3-イル)-2,3-ビス(3,3,3-トリフルオロプロピル)スクシンアミド (18); (2R,3S)-N-((3S)-2-オキソ-5-フェニル-2,3-ジヒドロ-1H-1,4-ベンゾジアゼピン-3-イル)-3-(4,4,4-トリフルオロブチル)-2-(3,3,3-トリフルオロプロピル)スクシンアミド (19); (2R,3S)-N1-((3S)-8-メトキシ-2-オキソ-5-フェニル-2,3-ジヒドロ-1H-1,4-ベンゾジアゼピン-3-イル)-3-(4,4,4-トリフルオロブチル)-2-(3,3,3-トリフルオロプロピル)スクシンアミド (20); または、(2R,3S)-N-((3S)-9-((2-メトキシエチル)アミノ)-2-オキソ-5-フェニル-2,3-ジヒドロ-1H-1,4-ベンゾジアゼピン-3-イル)-2,3-ビス(3,3,3-トリフルオロプロピル)スクシンアミド (21)から選択される、請求項1に記載の化合物。
- 該化合物が、以下のうちの1つを特徴とする結晶形態N-1である、請求項10に記載の化合物:
a)5.7±0.2、7.5±0.2、10.3±0.2、10.7±0.2、15.2±0.2、16.8±0.2、20.2±0.2、または20.7±0.2の2θ値(CuKα λ=1.5418Å)を含む、シミュレーション粉末x-線回折パターンおよび/または実測PXRDパターン(ここで、該形態N-1のPXRDパターンは20℃の温度にて測定される);
b)5.7±0.2、7.5±0.2、10.3±0.2、10.7±0.2、15.2±0.2、16.8±0.2、20.2±0.2、または20.7±0.2から選択される、4つ以上の2θ値(CuKα λ=1.5418Å)を含む粉末x-線回折パターン(ここで、該形態N-1のPXRDパターンは20℃の温度にて測定される);
c)以下と同等の単位格子パラメータ:
格子定数:
a = 9.41 Å
b = 17.74 Å
c = 31.94 Å
α = 90.0°
β = 98.4°
γ = 90.0°
空間群: P21
該化合物の分子数/非対称ユニット: 4
(ここで、形態N-1の単位格子パラメータは-10℃の温度にて測定される);および/または、
d)下記表に記載される通りの25℃の温度での分率原子座標。
- 請求項1〜11のいずれか1項に記載の化合物;および医薬的に許容される担体を含有する、癌の処置のための医薬組成物。
- 該癌が、T細胞急性リンパ性白血病、乳癌、膵癌、卵巣癌、非小細胞肺癌、大腸癌、骨肉腫、または神経芽腫である、請求項12に記載の医薬組成物。
- 適宜、ダサチニブ、パクリタキセル、タモキシフェン、デキサメタゾン、またはカルボプラスチンから選択される1つ以上のさらなる薬剤を含む、請求項12〜14のいずれか一項に記載の医薬組成物。
- 該医薬的に許容される担体がポリエトキシヒマシ油である、請求項12〜15のいずれか一項に記載の医薬組成物。
- さらに無水アルコールを含む、請求項16に記載の医薬組成物。
- 癌の処置のための医薬の製造における請求項1〜11のいずれか一項に記載の化合物の使用。
- 請求項1〜11のいずれか一項に記載の化合物、ならびに、ダサチニブ、パクリタキセル、タモキシフェン、デキサメタゾン、またはカルボプラスチンから選択される1つ以上のさらなる薬剤を組み合わせて含む、癌の処置のための剤であって、該化合物は該さらなる薬剤と連続的または同時に投与される、該剤。
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