JP5819949B2 - ナノ粒子フィルム送達システム - Google Patents
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Description
(a)少なくとも1種のポリマーを含む1つまたは複数のフィルムマトリックスと、
(b)前記フィルムマトリックスの少なくとも1つに組み込まれた複数のナノ粒子と
を含む、治療的または生体作用性フィルム送達システムであって、前記ナノ粒子が、
(i)金属を含むコアと、
(ii)コアに共有結合により連結した複数のリガンドを含むコロナであって、前記リガンドの少なくとも1つが、炭水化物部分を含む、コロナと
を含み、
(iii)少なくとも1つのペプチドがコロナに結合している、治療的または生体作用性フィルム送達システムが提供される。
(a)少なくとも1種のポリマーを含む1つまたは複数のフィルムマトリックスと、
(b)前記フィルムマトリックスの少なくとも1つに組み込まれた複数のナノ粒子と
を含む、インスリン含有フィルム送達システムであって、前記ナノ粒子が、
(i)金を含むコアと、
(ii)コアに共有結合により繋がり、コアの周囲にコロナを形成する複数のリガンドと
を含み、リガンドが、それらのそれぞれの硫黄原子を介してコアにそれぞれ結合した2'-チオエチル-α-D-ガラクトピラノシドおよび1-アミノ-17-メルカプト-3,6,9,12,15-ペンタオキサ-ヘプタデカノールを含み、ナノ粒子が、ナノ粒子コア1個当たりに結合した平均少なくとも5個のインスリンモノマーを有する、インスリン含有フィルム送達システムが提供される。
(a)水溶性または水膨潤性ポリマー、溶媒および活性物質担持成分を含む流動性ポリマーマトリックスを形成するステップであって、前記活性物質担持成分が、
(i)金属を含むコアと、
(ii)コアに共有結合により連結した複数のリガンドを含むコロナであって、前記リガンドの少なくとも1つが、炭水化物部分を含む、コロナと、
(iii)コロナに結合したペプチドと
を含む複数のナノ粒子を含み、前記マトリックスが、前記活性物質担持成分の均一な分布を有する、ステップと、
(b)前記流動性ポリマーマトリックスをキャストするステップと、
(c)前記流動性ポリマーマトリックスから前記溶媒の少なくとも一部分を蒸発させて、約10分以内に粘弾性フィルムを形成して、前記粘弾性フィルム内の前記活性物質担持成分を固定すること、またはその移動を実質的に防止することにより、前記活性物質担持成分の前記均一な分布を維持するステップと、
(d)前記粘弾性フィルムから結果として生じるフィルムを形成するステップであって、前記結果として生じるフィルムが、10%以下の含水量を有し、前記活性物質担持成分の前記固定またはその移動の実質的な防止による活性物質担持成分の前記均一な分布が維持される、ステップと
を含む方法が提供される。最初の層の上に配置されるフィルムの追加の層を形成するさらなるステップが追加されてもよい。
(a)溶媒ならびに水溶性ポリマー、水膨潤性ポリマーおよびそれらの組合せの群から選択されるポリマーを含む、マスターバッチ予混合物を形成するステップと、
(b)所定量の前記マスターバッチ予混合物に活性物質担持成分を添加して、流動性ポリマーマトリックスを形成するステップであって、前記活性物質担持成分が、
(i)金属を含むコアと、
(ii)コアに共有結合により連結した複数のリガンドを含むコロナであって、前記リガンドの少なくとも1つが、炭水化物部分を含む、コロナと、
(iii)コロナに結合したペプチドと
を含む複数のナノ粒子を含み、前記マトリックスが、前記活性物質担持成分の均一な分布を有する、ステップと、
(c)前記流動性ポリマーマトリックスをキャストするステップと、
(d)前記流動性ポリマーマトリックスから前記溶媒の少なくとも一部分を蒸発させて、約10分以内に粘弾性フィルムを形成して、前記粘弾性フィルム内の前記活性物質担持成分を固定すること、またはその移動を実質的に防止することにより、前記活性物質担持成分の前記均一な分布を維持するステップと、
(e)前記粘弾性フィルムから結果として生じるフィルムを形成するステップであって、前記結果として生じるフィルムが、10%以下の含水量を有し、前記活性物質担持成分の前記固定またはその移動の実質的な防止による活性物質担持成分の前記均一な分布が維持される、ステップと
を含む方法が提供される。
(a)少なくとも1種のポリマーを含む1つまたは複数のフィルムマトリックスと、
(b)前記フィルムマトリックスの少なくとも1つに組み込まれた複数のナノ粒子と
を含む少なくとも1つのフィルムを含む製造品であって、前記ナノ粒子が、
(i)金属を含むコアと、
(ii)コアに共有結合により連結した複数のリガンドを含むコロナであって、前記リガンドの少なくとも1つが、炭水化物部分を含む、コロナと、
(iii)コロナに結合したペプチドと
を含み、前記少なくとも1つのフィルムが、少なくとも1つのフィルムの約10重量%以下の含水量、および少なくとも1つのフィルムの約10重量%以下の、複数のナノ粒子またはペプチド含量の単位体積当たりの分散を有する、製造品が提供される。
少なくとも1つの本明細書における本発明の実施形態のいずれか1つに記載のフィルム送達システムと、
フィルムの少なくとも1つのフィルム送達システムを収容するための容器と、
任意選択で添付文書および/またはラベルと
を含む製造品が提供される。
(a)少なくとも1種のポリマーを含む1つまたは複数のフィルムマトリックスと、
(b)前記フィルムマトリックスの少なくとも1つに組み込まれた複数のナノ粒子と
を含む、治療的または生体作用性フィルム送達システムであって、前記ナノ粒子が、
(i)金属を含むコアと、
(ii)コアに共有結合により連結した複数のリガンドを含むコロナであって、前記リガンドの少なくとも1つが、炭水化物部分を含む、コロナと、
(iii)コロナに結合している少なくとも1つのペプチドとを含む、治療的または生体作用性フィルム送達システムを提供する。
本発明の送達システムは、本明細書において定義されるようなフィルムであってもよい。本明細書において説明されるように、流動性フィルム形成マトリックスは、本発明の教示に従って、含量が均一となるように調製される。含量の均一性は、望ましくは、流動性マトリックスがフィルムとして形成され乾燥される際に維持される。本発明の乾燥プロセスは、活性成分を安全な温度に、すなわち活性物質が実質的に劣化しない、または効力が低下もしくは実質的に不活性化しない温度および/または条件に維持しながら、フィルム内の均一性をもたらすための、いくつかの因子を使用し得る。まず、本発明のフィルムは、全温度暴露が可能な限り最小限となるように、通常はわずか約数分の極めて短い熱履歴を有する。フィルムは、成分の凝集および移動を防止するとともに、内部での発熱を防止するために、制御可能に乾燥される。フィルムは、底部から乾燥されてもよく、または、上部および底部乾燥を組み合わせて乾燥されてもよい。望ましくは、湿潤フィルムの上部表面は、フィルムの厚さを、本明細書において後述されるように全フィルム組成物の約10重量%以下である所望の最終含水量レベルまで乾燥させる前に、被膜形成をもたらす様式では乾燥されない。
本発明のフィルム単位または用量は、少なくとも1種の水溶性ポリマーを含む。また、フィルムは、所望により、水膨潤性または水不溶性ポリマーを含んでもよい。
「制御放出」という用語は、予め選択された、または所望の速度での成分の放出を意味するように意図される。例えば、フィルムがフィルム本体内にナノ粒子を含む実施形態において、フィルムからのその放出を制御することが望ましい場合がある。この速度は、用途に依存して変動する。望ましい速度は、急速または即時放出プロファイル、および遅延、持続または逐次放出を含む。放出パターンの組合せ、例えば、活性物質の最初の急激な放出に続く、より低レベルの持続放出が企図される。薬剤のパルス放出もまた企図される。
様々な他の成分および充填剤がまた、本発明のフィルムに添加されてもよい。これらは、限定されることなく、界面活性剤;混合物内の成分の適合化を補助する可塑剤;ポリアルコール;フィルムから酸素を放出することによってより滑らかなフィルム表面を促進する消泡剤、例えばシリコーン含有化合物;ならびに、成分の分散の維持に役立つ熱硬化性ゲル、例えばペクチン、カラギーナン、およびゼラチンを含み得る。
ピロリドン誘導体、例えばN-(2-ヒドロキシエチル)-2-ピロリドンの脂肪酸エステル;環状アミド、例えば1-ドデシルアザシクロヘプタン-2-オン(Azone)、1-ゲラニルアザシクロヘプタン-2-オン、1-ファルネシルアザシクロヘプタン-2-オン、1-テラニルゲラニルアザシクロヘプタン-2-オン、1-(3,7-ジメチルオクチル)アザシクロヘプタン-2-オン、1-(3,7,11-トリメチルドデシル)アザシクロヘプタン-2-オン、1-ゲラニルアザシクロヘキサン-2-オン、1-ゲラニルアザシクロペンタン-2,5-ジオン、1-ファルネシルアザシクロペンタン-2-オン;ヘキサメチレンラウラミドおよびその誘導体;ジエタノールアミン、トリエタノールアミン;陰イオン性界面活性剤、例えばラウリン酸ナトリウム、ラウリル硫酸ナトリウム;陽イオン性界面活性剤、例えば臭化セチルトリメチルアンモニウム、臭化テトラデシルトリメチルアンモニウム、塩化ベンザルコニウム、塩化オクタデシルトリメチルアンモニウム、塩化セチルピリジニウム、塩化ドデシルトリメチルアンモニウム、塩化ヘキサデシルトリメチルアンモニウム;ポリオキシエチレン/ポリオキシプロピレン/ポリオキシエチレンのブロックコポリマー(例えばPoloxamer 231、182、および184の商品名で販売されているもの)、ポリオキシエチレンドデシルエーテル(Brij 30の商品名で販売されている)、ポリオキシエチレンモノオレイルエーテル(Brij 93、96および99の商品名で販売されている)、ソルビタン脂肪酸エステル、例えばSpan(20、40、60、80、85)の商品名で販売されているもの、モノステアリン酸ソルビタン、例えばTween(20、40、60、80)の商品名で販売されているもの、モノステアリン酸ポリエチレングリコール、例えばMyrj(45、51、52)の商品名で販売されているもの、およびMiglyol 840等の商品名で販売されているジカプリル/ジカプリン酸プロピレングリコールを含む、非イオン性界面活性剤;胆汁塩、例えばコール酸ナトリウム、タウロコール酸、グリコール酸およびデスオキシコール酸のナトリウム塩;レシチン;炭化水素、例えばD-リモネン、a-ピネン、B-カレン;アルコール、例えばa-テルピネオール、テルピネン-4-オール、カルボール;ケトン、例えばカルボン、プレゴン、ピペリトン、メントン;オキシド、例えばシクロヘキセンオキシド、リモネンオキシド、a-ピネンオキシド、シクロペンテンオキシド、1,8-シネオール;油、例えばイランイラン、アニス、アカザ、ユーカリ;N-ヘプタン、N-オクタン、N-ノナン、N-デカン、N-ウンデカン、N-ドデカン、N-トリデカン、N-テトラデカン、N-ヘキサデカン;サリチル酸およびサリチレート(そのメチル、エチル、およびプロピルグリコール誘導体を含む);クエン酸およびコハク酸を含む。
本発明のフィルムは、乾燥前にフィルムストリップまたはシートとして形成されてもよい。所望の成分が組み合わされてポリマー、水、およびナノ粒子、ならびに所望により任意の他の成分を含む複数成分マトリックスを形成した後、組合せは、複数成分マトリックスのコーティング、展着、キャストまたは引出等の当技術分野において知られた任意の方法により、シートまたはフィルムとして形成される。複数層フィルムが望ましい場合、これは、同じまたは異なる組成であってもよい成分の2つ以上の組合せの共押出により達成されてもよい。複数層フィルムはまた、既に形成されたフィルム層への組合せのコーティング、展着またはキャストにより達成されてもよい。
本発明は、成分の実質的に均一な分布を有する自立型フィルムを作製するための方法を使用する。自立型フィルムは、本明細書において説明されるような活性物質の送達に特に有用である。フィルムを作製するためのプロセスは、フィルム全体にわたり分布した成分の組成の均一性を維持するように設計されるが、これは、薬学的活性物質等の活性物質がフィルムに組み込まれる場合特に必要である。薬学的観点から、フィルムが個々のフィルム用量単位に分割され得るように組成的に均一であることが必須であり、各用量単位は、規制認可が確保され得るように、投与される際に適切な量の活性物質を有する。
乾燥ステップもまた、フィルム組成物の均一性を維持する点での要因である。制御乾燥プロセスは、粘度増加組成物、または、例えばポリマーの選択により粘度が制御される組成物の非存在下において、フィルム内の成分が、凝集または集塊化する傾向の増加を有し得る場合、特に重要である。
代替の実施形態において、本発明のフィルム生成物は、キャストまたは堆積法ではなく、押出により成形されてもよい。押出は、後述されるように、ポリエチレンオキシド系ポリマー成分を含有するフィルム組成物に対して特に有用である。例えば、本発明によれば、単軸押出プロセスを使用することができる。そのような押出プロセスによれば、ダイを通して押し出され得る、または型内に射出され得るように、ポリマー溶融物内で圧力が高まる。
本発明のフィルムは、多くの使用に好適である。フィルムの成分の高度の均一性により、フィルムは、医薬品の組込みに特に好適である。さらに、フィルムの構築に使用されるポリマーは、フィルムの崩壊時間の範囲を可能とするように選択され得る。フィルムが崩壊する期間の変動または延長により、活性物質が放出される速度に対する制御が達成され得るが、これは持続放出送達システムを可能とし得る。さらに、フィルムは、粘膜および臓器組織(本明細書において定義されるような)を有するものを含む、皮膚および他の体表面に対するナノ粒子の投与に使用されてもよい。
(実施例1)
リガンドの調製
2-チオ-エチル-α-D-ガラクトシド(α-ガラクトースC2SH)の調製
混合金ナノ粒子の調製
β-グルコースC2誘導体1、N-アセチルグルコサミンC2誘導体2、α-ガラクトースC2誘導体3、α-グルコースC2誘導体4、グルコサミンC5誘導体5およびヘキサエチレングリコールアミン連結基6は、Midatech Bioguneストックからのものを使用した。N-(3-ジメチルアミノプロピル)-N'-エチルカルボジイミド塩酸塩(EDC・HCl)、HAuCl4、NaBH4は、Sigma-Aldrich Chemical Companyから購入した。イミダゾール-4-酢酸一塩酸塩は、Alfa Aesar Companyから購入した。高品質MeOHおよびNanopure水(18.1mΩ)を、全ての実験および溶液に使用した。
GlcC2
GlcNHAcC2
GlcNH2-IAA-C5
α-GalC2(α)
α-GlcC2(α)
EG6NH2
NP-GlcC2(9)GlcNAc(1)
1(21.6mg、90μmmol)および2(2.8mg、10μmmol)のMeOH(8.3mL)中の溶液に、HAuCl4の0.025M水溶液(1.33mL、33μmmol)を添加した。溶液を30秒間振盪し、次いで、NaBH4の1N水溶液(0.67mL、0.67mmol)を、数回に分けて添加した(134μL×5)。暗色懸濁液を100分間振盪した。メタノール層を除去し、ペレットを10mLの水に溶解し、遠心濾過(10KDa AMICON 4mL、4500g、15分、15℃)により精製した。このプロセスを3回繰り返し、2mLの水で洗浄した。残渣を7mLの水に溶解した。定量のために一定分量を凍結乾燥した。[NP]=0.8mg/mL。
1(19.2mg、80μmmol)および2(5.6mg、20μmmol)のMeOH(8.3mL)中の溶液に、HAuCl4の0.025M水溶液(1.33mL、33μmmol)を添加した。溶液を30秒間振盪し、次いで、NaBH4の1N水溶液(0.67mL、0.67mmol)を、数回に分けて添加した(134μL×5)。暗色懸濁液を100分間振盪した。メタノール層を除去し、ペレットを10mLの水に溶解し、遠心濾過(10KDa AMICON 4mL、4500g、15分、15℃)により精製した。このプロセスを3回繰り返し、2mLの水で洗浄した。残渣を7mLの水に溶解した。定量のために一定分量を凍結乾燥した。[NP]=0.8mg/mL。
1(12mg、50μmmol)および2(14mg、50μmmol)のMeOH(8.3mL)中の溶液に、HAuCl4の0.025M水溶液(1.33mL、33μmmol)を添加した。溶液を30秒間振盪し、次いで、NaBH4の1N水溶液(0.67mL、0.67mmol)を、数回に分けて添加した(134μL×5)。暗色懸濁液を100分間振盪した。メタノール層を除去し、ペレットを10mLの水に溶解し、遠心濾過(10KDa AMICON 4mL、4500g、15分、15℃)により精製した。このプロセスを3回繰り返し、2mLの水で洗浄した。残渣を7mLの水に溶解した。定量のために一定分量を凍結乾燥した。[NP]=0.9mg/mL。
1(2.4mg、10μmmol)および2(25.3mg、90μmmol)のMeOH(8.3mL)中の溶液に、HAuCl4の0.025M水溶液(1.33mL、33μmmol)を添加した。溶液を30秒間振盪し、次いで、NaBH4の1N水溶液(0.67mL、0.67mmol)を、数回に分けて添加した(134μL×5)。暗色懸濁液を100分間振盪した。メタノール層を除去し、ペレットを10mLの水に溶解し、遠心濾過(10KDa AMICON 4mL、4500g、15分、15℃)により精製した。このプロセスを3回繰り返し、2mLの水で洗浄した。残渣を7mLの水に溶解した。定量のために一定分量を凍結乾燥した。[NP]=0.8mg/mL。
1(12mg、50μmmol)および3(12mg、50μmmol)のMeOH(8.3mL)中の溶液に、HAuCl4の0.025M水溶液(1.33mL、33μmmol)を添加した。溶液を30秒間振盪し、次いで、NaBH4の1N水溶液(0.67mL、0.67mmol)を、数回に分けて添加した(134μL×5)。暗色懸濁液を100分間振盪した。メタノール層を除去し、ペレットを10mLの水に溶解し、遠心濾過(10KDa AMICON 4mL、4500g、15分、15℃)により精製した。このプロセスを3回繰り返し、2mLの水で洗浄した。残渣を7mLの水に溶解した。定量のために一定分量を凍結乾燥した。[NP]=0.7mg/mL。
1(12mg、50μmmol)および6(14.85mg、50μmmol)のMeOH(8.3mL)中の溶液に、HAuCl4の0.025M水溶液(1.33mL、33μmmol)を添加した。溶液を30秒間振盪し、次いで、NaBH4の1N水溶液(0.67mL、0.67mmol)を、数回に分けて添加した(134μL×5)。暗色懸濁液を100分間振盪した。メタノール層を除去し、ペレットを10mLの水に溶解し、遠心濾過(10KDa AMICON 4mL、4500g、15分、15℃)により精製した。このプロセスを3回繰り返し、2mLの水で洗浄した。残渣を7mLの水に溶解した。定量のために一定分量を凍結乾燥した。[NP]=0.9mg/mL。
2(14mg、50μmmol)および6(14.85mg、50μmmol)のMeOH(8.3mL)中の溶液に、HAuCl4の0.025M水溶液(1.33mL、33μmmol)を添加した。溶液を30秒間振盪し、次いで、NaBH4の1N水溶液(0.67mL、0.67mmol)を、数回に分けて添加した(134μL×5)。暗色懸濁液を100分間振盪した。メタノール層を除去し、ペレットを10mLの水に溶解し、遠心濾過(10KDa AMICON 4mL、4500g、15分、15℃)により精製した。このプロセスを3回繰り返し、2mLの水で洗浄した。残渣を6mLの水に溶解した。定量のために一定分量を凍結乾燥した。[NP]=0.6mg/mL。
4(12mg、50μmmol)および6(14.85mg、50μmmol)のMeOH(8.3mL)中の溶液に、HAuCl4の0.025M水溶液(1.33mL、33μmmol)を添加した。溶液を30秒間振盪し、次いで、NaBH4の1N水溶液(0.67mL、0.67mmol)を、数回に分けて添加した(134μL×5)。暗色懸濁液を100分間振盪した。メタノール層を除去し、ペレットを10mLの水に溶解し、遠心濾過(10KDa AMICON 4mL、4500g、15分、15℃)により精製した。このプロセスを3回繰り返し、2mLの水で洗浄した。残渣を4mLの水に溶解した。定量のために一定分量を凍結乾燥した。[NP]=0.8mg/mL。
4(24mg、100μmmol)のMeOH(8.3mL)中の溶液に、HAuCl4の0.025M水溶液(1.33mL、33μmmol)を添加した。溶液を30秒間振盪し、次いで、NaBH4の1N水溶液(0.67mL、0.67mmol)を、数回に分けて添加した(134μL×5)。暗色懸濁液を100分間振盪した。メタノール層を除去し、ペレットを10mLの水に溶解し、遠心濾過(10KDa AMICON 4mL、4500g、15分、15℃)により精製した。このプロセスを3回繰り返し、2mLの水で洗浄した。残渣を5mLの水に溶解した。定量のために一定分量を凍結乾燥した。[NP]=1.0mg/mL。
1(12mg、50μmmol)および5(12mg、50μmmol)のMeOH(8.3mL)中の溶液に、HAuCl4の0.025M水溶液(1.33mL、33μmmol)を添加した。溶液を30秒間振盪し、次いで、NaBH4の1N水溶液(0.67mL、0.67mmol)を、数回に分けて添加した(134μL×5)。暗色懸濁液を100分間振盪した。メタノール層を除去し、ペレットを10mLの水に溶解し、遠心濾過(10KDa AMICON 4mL、4500g、15分、15℃)により精製した。このプロセスを3回繰り返し、2mLの水で洗浄した。残渣を8mLの100mM MESに溶解し、EDC(153mg、0.8mmol)およびイミダゾール-4-酢酸一塩酸塩(81mg、0.5mmol)で14時間処理した。混合物を遠心濾過(10KDa AMICON 4mL、4500g、15分、15℃)により精製した。このプロセスを3回繰り返し、2mLの水で洗浄した。残渣を4mLの水に溶解した。定量のために一定分量を凍結乾燥した。[NP]=0.9mg/mL。
アミンα-gal金ナノ粒子Batch MI-NP-10-AMINE-GALの調製:1:1(0.58mmol、3当量)の比のアミン-メルカプトヘキサエチレングリコール連結基6およびα-ガラクトースリガンド3のMeOH(49mL)中の混合物に、金塩の水溶液(7.86mL、0.19mmol、0.025M)を添加した。反応物を30秒間撹拌し、次いで、NaBH4(1N)の水溶液を、数回に分けて添加した(4.32mL、4.32mmol)。反応物を、900rpmで100分間振盪した。この時間後、懸濁液を14000rpmで1分間遠心分離した。上清を除去し、沈殿物を2mLの水に溶解した。次いで、2mLの懸濁液を2つのフィルタ(AMICON、10KDa、4mL)に導入し、4500gで5分間遠心分離した。フィルタ内の残渣をさらに2回水で洗浄した。最終残渣を80mLの水に溶解した。
ナノ粒子へのインスリン結合
以下の方法は、αGal(1)EG6NH2(1)NPに対するインスリンの結合がいかにして行われたかを詳細に示すものである。方法は、一定インスリンおよび様々なNPレベルを使用し、試験された他のNP試料に対してはより低い/異なるレベルのNPが使用されたが、これ以外は方法は試験された全てのNPに対して同じであった。
Glc=2'-チオエチル-β-D-グルコピラノシドであり、
GlcNAc=2'-チオエチル-2-アセトアミド-2-デオキシ-β-D-グルコピラノシドであり、
GlcamineIAA=5'-チオペンタニル-2-デオキシ-2-イミダゾールアセトアミド-α,β-D-グルコピラノシド(α、β異性体混合物)であり、
AGal=2'-チオエチル-α-D-ガラクトピラノシドであり、
EG6NH2=1-アミノ-17-メルカプト-3,6,9,12,15-ペンタオキサ-ヘプタデカノールであり、
AGlc=2'-チオエチル-α-D-グルコピラノシドであり、
凡例中の数字は、リガンドの化学量を指す。
AGal:EG6NH2 1:1(トレース11、図12)
Glc:GlcamineIAA 1:1(トレース10、図12)
AGlc:EG6NH2 1:1(トレース8、図12)
BGlc:EG6NH2 1:1(トレース6、図12)
GlcNAc:EG6NH2 1:1(トレース7、図12)。
ナノ粒子の特性決定
I)インスリン金ナノ粒子バッチMI-NP-10-Ins(NP-α-Gal(1)EG6NH2(1))の特性決定
a)金含量:エトプロパジンと、Au(III)への完全酸化後の金との間の着色錯体の形成に基づく方法を使用して、金含量を測定した。513nmにおいて試料の吸光度を測定し、既知量の金を有する同様の溶液と定量的に比較する。
カウント=783
平均(直径)=2.323nm±0.716nm
最小=1.002nm
最大=4.859nm
最頻値=2.104nm
ピーク1 4.875nm
ピーク1 5.289nm
金ナノ粒子MI-NP-10(13.041mg金)の溶液を、水で49.68mLとした。最終溶液に酢酸を添加し、pH=4.6を得た。次いで、27.85mLのトリスHCl pH7.5中の55.7mgのヒトインスリンを添加した。懸濁液を24時間放置し、この時間後に、4500gで1分間遠心分離した。上清を除去し、さらなるインスリンおよび金含量の分析のために保存した。沈殿物を3.220mLの水に再懸濁させ、500単位インスリン/mLの最終インスリン濃度を得た。
a)MI-NP-10-INS(アミン-gal-INSULINナノ粒子)の数および体積による動的光散乱での粒径分布を、それぞれ図15AおよびBに示す。
ピーク1 68.46nm
ピーク1 88.38nm
ナノ粒子へのインスリン結合の%を、以下の式により決定した。
インスリン:55.7mgインスリン
金:13.041mgの金
全体積:3.23mL水
最終インスリン濃度:17.25mgインスリン/mL=500単位/mL
最終金濃度:4.037mgAu/mL。
4.037mg=2.049e-5モル=1.234e19原子=1.21e17ナノ粒子
17.25mg=2.97e-6モル=1.789e18分子
いかなる理論にも束縛されることを望まないが、本発明者らは、インスリン-NPに関して、乾燥重量が500ugであり、そのうち410ugが分解していると考える。したがって、有機物パーセントは82%である。1個のα-ガラクトース-EG6NH2-Auナノ粒子中に102原子の金を考えると、金重量は、20091(18%)であり、有機物コロナは12122である。したがって、82有機物%である粒子を有するには、111616の重量、すなわち91525の有機物を有さなければならない。有機物の12122はコロナであるため、有機物の約79403がインスリンとなる。インスリンはMW5808を有するため、粒子1個当たり14モルインスリンとなるはずである。
インスリン結合のZn最適化
金ナノ粒子(NP)、αGal(1)EG6NH2(1)NPを、上記実施例2に記載のように調製した。NPへのインスリン結合に対するZnの影響を評価するために、Znの非存在下でNPの第1のバッチを合成した。NPの第2のバッチは、1.33当量のZnの存在下で合成した。NPの第3のバッチは、Znの非存在下で合成したが、合成後に1.33当量のZnCl2をNPに添加した。次いで、3つのバッチの金NPに対するヒトインスリンの結合を測定した。
金ナノ粒子へのGLP-1結合
金ナノ粒子(NP)、αGal(1)EG6NH2(1)NPを、上記実施例2に記載のように調製した。インスリンを添加するのではなく、GLP-1を添加した。GLP-1がNPに結合することが判明した。様々な金NP濃度に対し、一定の29.8ナノモルのGLP-1が結合することが、図18に示されている。これらの結果は、インスリン以外のペプチドが本発明のナノ粒子に結合することを示している。
2種以上のタンパク質が共結合したナノ粒子:混合インスリン/GLP-1ナノ粒子
金ナノ粒子(NP)、αGal(1)EG6NH2(1)NPを、上記実施例2に記載のように調製した。インスリンおよびGLP-1の両方をNPに添加した。GLP-1/インスリンNPの水溶液を、MALDIによる分析に供したが、その結果を図19に示す。GLP-1/インスリンNPをHPLCに供したが、そのトレースを図20に示す。HPLCデータは、19.8mgのインスリンおよび1.33mgのGLP-1が測定されたことを示している。
インスリンナノ粒子(インスリンNP)を組み込んだ経口フィルムの生成および特性決定
(実施例8)
アッセイ測定用インスリンフィルムストリップ(0.01mg)およびプラセボストリップ
以下のフィルム組成物を調製し、それからフィルムストリップを作製した。フィルムストリップの一部(約50ストリップ)を、後の試験用のプラセボ試料として使用した。
1. 4.796g(7.993%)のポリエチレンオキシド(PEO) WSR 1105 LEO(Colorcon社製)
2. 26.977g(44.961%)のPEO WSR N80 LEO(Colorcon社製)
3. 11.99g(19.983%)のPEO WSR N10 LEO(Dow社製)
4. 5.995g(9.991%)の固形物および1.998gの水を含有する7.993gのマルチトールシロップ(Lycasin 80/55)(Roquette社製)
5. 5.995g(9.991%)の天然グリセリン(Spectrum社製)
6. 4.196g(6.994%)のHPMC E15(Dow社製)
7. 0.0444g(0.074%)のシメチコンを含有する0.072gのMED 341シメチコンエマルジョン(Nusil社製)
8. 176.802gの滅菌水USP(Braun社製)
(注:ナノ粒子およびインスリンを含有する固体の残りの0.013%は、実験において後に添加される。)
40分撹拌=125rpm 真空=0% 温度=63℃、加熱を停止し、加熱マントルを取り外した。
20分撹拌=125rpm 真空=0% 温度=35℃。
2、3、および6の要素のブレンドを添加した。
滅菌水を添加してQSを得た。
20分撹拌=125rpm 真空=60%(16in Hg)
8分撹拌=100rpm 真空=80%(23in Hg)
8分撹拌=100rpm 真空=85%(24in Hg)
8分撹拌=100rpm 真空=90%(25in Hg)
8分撹拌=100rpm 真空=95%(26in Hg)
4分撹拌=100rpm 真空=98%(27in Hg)
滅菌水を添加してQSを得た。
4分撹拌=100rpm 真空=98%(27in Hg)
4分撹拌=100rpm 真空=100%(28in Hg)
第1のマウス試験用のインスリンフィルムストリップ(1IU)およびプラセボ(NP-インスリン溶液を添加する堆積法)(NP-インスリンを添加するin situ溶液法)
目的:インスリンストリップの製造、およびストレプトゾトシン処理後の糖尿病マウスにおける腹腔内(IP)注射による、製造後に影響を受けていないインスリン生物活性の実証。
1. 4.796g(7.993%)のポリエチレンオキシド(PEO) WSR 1105 LEO(Colorcon社製)
2. 26.984g(44.974%)のPEO WSR N80 LEO(Colorcon社製)
3. 11.99g(19.983%)のPEO WSR N10 LEO(Dow社製)
4. 5.995g(9.991%)の固形物および1.998gの水を含有する7.993gのマルチトールシロップ(Lycasin 80/55)(Roquette社製)
5. 5.995g(9.991%)の天然グリセリン(Spectrum社製)
6. 4.196g(6.994%)のHPMC E15(Dow社製)
7. 0.0444g(0.074%)のシメチコンを含有する0.072gのMED 341シメチコンエマルジョン(Nusil社製)
8. 177.982gの滅菌水USP(Braun社製)
20分撹拌=125rpm 真空=0% 温度=67℃。
40分撹拌=125rpm 真空=0% 温度63℃、加熱を停止し、加熱マントルを取り外した。
20分撹拌=125rpm 真空=0% 温度=35℃。
2、3、および6の成分のブレンドを添加した。
滅菌水を添加してQSを得た。
20分撹拌=125rpm 真空=60%(16in Hg)
8分撹拌=100rpm 真空=80%(23in Hg)
8分撹拌=100rpm 真空=85%(24in Hg)
8分撹拌=100rpm 真空=90%(25in Hg)
8分撹拌=100rpm 真空=95%(26in Hg)
2重量%のSpan 80(Spectrum社製)を固体に添加し、取り込まれた空気を低減した。
8分撹拌=100rpm 真空=95%(26in Hg)
インスリンフィルムストリップ(1IU)徐溶解性調合物
フィルムマトリックス組成物
1. 1.959g(7.834%)のポリエチレンオキシド(PEO) WSR 1105 LEO(Colorcon社製)
2. 11.017g(44.067%)のPEO WSR N80 LEO(Colorcon社製)
3. 4.896g(19.585%)のPEO WSR N10 LEO(Dow社製)
4. 2.448g(9.793%)の固形物および0.816gの水を含有する3.264gのマルチトールシロップ(Lycasin 80/55)(Roquette社製)
5. 2.448g(9.793%)の天然グリセリン(Spectrum社製)
6. 1.714g(6.854%)のHPMC E15(Dow社製)
7. 0.0185g(0.074%)のシメチコンを含有する0.03gのMED 341シメチコンエマルジョン(Nusil社製)
8. 0.50g(2.000%)のSpan 80(Spectrum社製)
9. 71.684gの滅菌水USP(McGaw社製)
40分撹拌=125rpm 真空=0%
加熱を停止し、加熱マントルを取り外した。
滅菌水を添加してQSを得た。
要素2、3、および6のブレンドを添加した。
20分撹拌=125rpm 真空=60%(16in Hg)
20分撹拌=100rpm 真空=90%(25in Hg)
12分撹拌=100rpm 真空=95%(27in Hg)
8分撹拌=100rpm 真空=98%(27.5in Hg)
滅菌水を添加してQSを得た。
4分撹拌=100rpm 真空=100%(28.5in Hg)
インスリンフィルムストリップ(1IU)(第2のマウス試験用の60℃および100℃で乾燥させた急速調合物)
フィルムマトリックス組成物
1. 5.171g(49.25%)のポリエチレンオキシド(PEO) WSR N10 LEO(Dow社製)
2. 2.586g(24.63%)のHPMC E15(Dow社製)
3. 1.293g(12.31%)の固形物および0.431gの水を含有する1.724gのマルチトールシロップ(Lycasin 80/55)(Roquette社製)
4. 1.293g(12.31%)の天然グリセリン(Spectrum社製)
5. 0.053g(0.50%)のSpan 80(Spectrum社製)
6. 0.105g(1.00%)の二酸化チタンUSP(Brenntag社製)
7. 300IUインスリン(ストリップ当たり1IUとなる)を含有する3.0mlのNP-6-インスリン(Midatech社製)
8. 14.069gの滅菌水USP(McGaw社製)
40分撹拌=100rpm 真空=90%(25in Hg)
12分撹拌=100rpm 真空=95%(27in Hg)
8分撹拌=100rpm 真空=98%(27.5in Hg)
滅菌水を添加してQSを得た。
4分撹拌=100rpm 真空=100%(28.5in Hg)
成分7を添加した。
滅菌水を添加してQSを得た。
8分撹拌=100rpm 真空=100%(28.5in Hg)
第2のマウス試験用の即溶解性フィルムストリッププラセボ調合物
フィルムマトリックス組成物
1. 18.469g(49.25%)のポリエチレンオキシド(PEO) WSR N10 LEO(Dow社製)
2. 9.236g(24.63%)のHPMC E15(Dow社製)
3. 4.616g(12.31%)の固形物および1.539gの水を含有する6.155gのマルチトールシロップ(Lycasin 80/55)(Roquette社製)
4. 4.616g(12.31%)の天然グリセリン(Spectrum社製)
5. 0.188g(0.50%)のSpan 80
6. 0.375g(1.00%)の二酸化チタンUSP(Brenntag社製)
7. 60.961gの蒸留水
加熱を停止し、加熱マントルを取り外した。
20分撹拌=125rpm 真空=0%
蒸留水を添加してQSを得た。
20分撹拌=125rpm 真空=60%(16in Hg)
20分撹拌=125rpm 真空=90%(25in Hg)
12分撹拌=100rpm 真空=95%(27in Hg)
8分撹拌=100rpm 真空=98%(27.5in Hg)
滅菌水を添加してQSを得た。
4分撹拌=100rpm 真空=100%(28.5in Hg)
滅菌水を添加してQSを得た。
8分撹拌=100rpm 真空=100%(28.5in Hg)
ミニブタ試験用の徐溶解性閉塞フィルムストリップの調製
フィルムマトリックス組成物
1. 7.844g(7.47%)のポリエチレンオキシド(PEO) WSR 1105 LEO(Colorcon社製)
2. 53.981g(51.41%)のPEO WSR N80 LEO(Colorcon社製)
3. 12.758g(12.15%)の固形物および4.253gの水を含有する17.011gのマルチトールシロップ(Lycasin 80/55)(Roquette社製)
4. 12.758g(12.15%)の天然グリセリン(Spectrum社製)
5. 10.805g(10.29%)のHPMC E15(Dow社製)
6. 2.10g(2.00%)のスクラロース
7. 4.20g(4.00%)のペパーミント2303香料(Ungerer社製)
8. 0.525g(0.50%)のモノオレイン酸グリセリル(Spectrum社製)
9. 0.0315g(0.03%)の青色1号
10. 240.747gの滅菌水(Braun社製)
40分撹拌=150rpm 真空=0%
加熱を停止し、加熱マントルを取り外した。
成分2、5、6、および9のブレンドを添加した。
滅菌水を添加してQSを得た。
20分撹拌=125rpm 真空=60%(17in Hg)
20分撹拌=100rpm 真空=90%(26in Hg)
12分撹拌=100rpm 真空=95%(27in Hg)
8分撹拌=100rpm 真空=98%(28in Hg)
滅菌水を添加してQSを得た。
成分7を添加した。
8分撹拌=100rpm 真空=100%(28.5in Hg)
ミニブタ試験用の即溶解性MI-NP-10-インスリンフィルムストリップの調製
この試験の主目的は、フィルムマトリックス内に埋め込まれた金ナノ粒子により担持されたインスリンの口腔用調製物が、治療反応に好適な全身濃度に達するかどうかを試験すること、および、ヒトにおいてさらに調査されるべき適切な用量を確定するために、頬粘膜を通したインスリンの吸収を測定することである。
a)金ナノ粒子MI-NP-10-INS(13.041mg金)の溶液を、水で49.68mLとした。
ナノ粒子へのインスリン結合の%を、以下の式により決定した。
インスリン:54.4mgインスリン
金:13.041mgの金
全体積:3.23mL水
最終インスリン濃度:16.8mgインスリン/mL=488単位/mL
最終金濃度:4.037mgAu/mL。
1. 14.775g(49.25%)のPEO WSR N10 LEO(Colorcon社製)
2. 7.389g(24.63%)のHPMC E15(Dow社製)
3. 3.693g(12.31%)の固形物および1.231gの水を含有する4.924gのマルチトールシロップ(Lycasin 80/55)(Roquette社製)
4. 3.693g(12.31%)の天然グリセリン(Spectrum社製)
5. 0.15g(0.50%)のモノオレイン酸グリセリル(Spectrum社製)
6. 0.30g(1.00%)の二酸化チタン(Brenntag社製)
7. 53.769gの滅菌水(Braun社製)
40分撹拌=100rpm 真空=90%(26in Hg)
12分撹拌=100rpm 真空=95%(27in Hg)
8分撹拌=100rpm 真空=98%(28in Hg)
滅菌水を添加してQSを得た。
4分撹拌=100rpm 真空=100%(28.5in Hg)
即溶解性インスリンフィルムストリップの徐溶解性閉塞フィルムへのラミネーション
即溶解性フィルムマトリックス組成物
上記実施例14において作製された即溶解性インスリンフィルムのフィルムストリップ(7×18mm)を、上記実施例10において作製された徐溶解性閉塞フィルムのストリップ(11×22mm)の中央に設置した。3の熱設定を使用してGBCヒートシーラーH212にストリップを2回通過させることにより、フィルムストリップをラミネートした。ストリップ当たり2.5IUインスリンの2つのラミネートストリップを含有する、またはパウチ当たり5IUインスリンの24個の箔パウチをラベル付けした。この実施例のラミネートフィルムを、ミニブタ試験における使用のために送付した:
即溶解性プラセボフィルムストリップの調製およびミニブタ試験のための徐溶解性閉塞フィルムストリップへのラミネーション
即溶解性フィルム組成物
1. 14.775g(49.25%)のPEO WSR N10 LEO(Colorcon社製)
2. 7.389g(24.63%)のHPMC E15(Dow社製)
3. 3.693g(12.31%)の固形物および1.231gの水を含有する4.924gのマルチトールシロップ(Lycasin 80/55)(Roquette社製)
4. 3.693g(12.31%)の天然グリセリン(Spectrum社製)
5. 0.15g(0.50%)のモノオレイン酸グリセリル(Spectrum社製)
6. 0.30g(1.00%)の二酸化チタン(Brenntag社製)
7. 68.769gの蒸留水
40分撹拌=100rpm 真空=90%(26in Hg)
12分撹拌=100rpm 真空=95%(27in Hg)
8分撹拌=100rpm 真空=98%(28in Hg)
滅菌水を添加してQSを得た。
4分撹拌=100rpm 真空=100%(28.5in Hg)
層流キャビネット下で2種の溶液を調製した。
1.陰性対照:
滅菌生理食塩水緩衝液(0.85%NaCl)の溶液20mLに、
フェノール(40μL、0.2%)(バッチ:067K0765-Sigma-aldrichウシ血清アルブミン(0.01mg、0.1%)(K40246318 936-Merck))
を添加した。
混合物を15分間撹拌し、次いで1N HClでpHを約3に調節した。溶液を0.22μフィルタに通過させ、滅菌した8mlバイアルに充填し、ラベル付けした。
10mLの陰性対照(pH調節前)に、
インスリン(3.45mg、100IU)(11 376 497 001-Roche)
を添加した。
混合物を15分間撹拌し、1N HClでpHを約3.0に調節した。
溶液を0.22μフィルタに通過させ、滅菌した8mlのバイアルに充填した。次いでバイアルをラベル付けした。
a.2つのバイアルの陽性対照V=6ml:生理食塩水緩衝液インスリン0.06mM
b.2つのバイアルの陰性対照V=6ml:生理食塩水緩衝液
c.10個のストリップのプラセボ(実施例13)
d.24個のパウチのインスリンMI-NP-10;各パウチは2つのフィルムを含有し、各フィルムは2.5IUインスリンを含有していた(実施例12)。
ヒトインスリンを結合させるナノ粒子構造体を、上述のように合成し、次いでポリマーフィルムストリップ送達システムに組み込んだ。フィルムストリップを水に溶解し、次いで一定量を糖尿病マウスの腹腔内に注射して、生物学的活性について試験した。注射後、血中グルコースレベルを監視し、各マウスに対して血中グルコースの変化をプロットした。
試料2.1IU/kgの用量の純粋なヒトインスリン(ヒトインスリン)
試料3.1IU/kgの用量のナノ粒子に繋げられた純粋なヒトインスリン(NP-インスリン)
試料4.ブランクストリップの溶液中に溶解されたヒトインスリン(1IU/kg)(インスリンおよび実施例13からのストリップ)
試料5.室温でブランクストリップ上に堆積され、次いで水中に溶解された、ナノ粒子に繋げられたヒトインスリン(2lU/kg)(ストリップRT;実施例13からのストリップ上に堆積されたNP-5-インスリン)。
試料6.ナノ粒子に繋げられ、60℃でストリップとして製造され(1IU/kg)、次いで水に溶解されたヒトインスリン(ストリップ60(ストリップ中のNP5-インスリン))
試料7.溶解したブランクストリップの溶液(ブランクストリップ;実施例13からのプラセボフィルムストリップ)
試料8.ナノ粒子に繋げられ、60℃でストリップとして製造され(1IU/kg)、次いで水に溶解されたウシインスリン(ストリップB;フィルムストリップ中のウシインスリン)
対照
- 対照(試料1)は、水ブランクがグルコース低下活性を有さないことを示している。
- 対照(試料2)は、ヒトインスリンが一時的に血中グルコースを正常血糖値まで降下させるが、次いで400分までに高血糖値に戻ることを示している。
- 対照(試料4)は、ストリップの溶解したポリマー製剤がインスリン活性に干渉しないことを示している。
- 対照(試料5)は、ストリップ上に堆積され(すなわちフィルム内に組み込まれていない)、生成後に発送された(発送対照)ヒトインスリンを含有するナノ粒子が、まだ活性であったことを示している。
- 対照(試料7)は、ストリップからの溶解したポリマーブランクが、グルコース低下活性を有さなかったことを示している。
- 試料3は、インスリンが繋げられたナノ粒子が、血中グルコースを正常血糖値まで低下させる上で活性であることを示した。活性は、400分維持した。データは、ナノ粒子に結合したヒトインスリンが、ナノ粒子から急速に解離せず、短期間の活性のみを有する純粋なインスリンとは対照的に、インスリンの連続的送達を提供することを示している。
- 試料6は、インスリンが繋がり60℃で製造されたナノ粒子が、血中グルコースを正常血糖値まで低減することができたことを示している。製造プロセスおよび温度は、これらのナノ粒子に結合したインスリンの生物活性には影響しなかったが、これは、結合した際にインスリンが安定化されることを示している。活性の速度論は試料3と同様であり、これは、60℃でのフィルムへの製造後もインスリンがまだナノ粒子に結合していることを示唆している。
- 試料8は、60℃で製造し、室温で2ヶ月間放置したナノ粒子上のウシインスリンがまだ生物学的に活性であったことを示している。
3匹のミニブタの群を一晩絶食させ、次いで麻酔した。次いで、2IUのヒトインスリンを皮下注射した。対照として4匹目の動物を使用し、同一に処理したが、無菌緩衝液を注射した。180分まで既知の間隔をおいて血液試料を採取した。この処理後、ミニブタに1週間のウォッシュアウト期間を与え、インスリンが接続したナノ粒子を含有する、ストリップ当たり2.5IUヒトインスリンの濃度の2つの経口腔(tb)投与用ポリマーストリップ(実施例13)で皮下(sc)注射を置き換えて実験を繰り返した。180分の期間まで一定の間隔をおいて血液試料を再び採取した。血漿を血中グルコースレベル、インスリンおよびC-ペプチドについて分析した。
結果を図23に示す。ヒトC-ペプチドの測定は、糖尿病患者において一般的である。C-ペプチドのレベルの低減は、患者における内因性インスリンの低減をもたらす外因性インスリンのレベルの増加の兆候であるとみなされる。本発明者らの実験の場合、全ての動物のプロットは、内因性インスリン産生の抑制と一致している。最も高いダイナミックレンジを有していたブタ2の場合(図23B)参照)、データは、この反応がsc投与の場合よりも急速であることを示唆している。他の動物では、それらのより低いダイナミックレンジの結果として、情報が得られなかった。処理された全ての動物において、レベルは最低検出可能レベル(36.3pM)を下回っており、対照動物は、測定可能なレベルを維持していることに留意されたい。
血中グルコースに関するデータは、絶対値としてプロットされ、図24に示されている。各グラフは、完全な2つの実験に対するプロットを示し、皮下注射データが左に、経口腔データが右側に示されている。図24A)〜C)のグラフの組は、2回の実験を平均した対照データを有する。したがって、これは、各動物が自身の対照として効果的に機能する縦断的研究を示し、グラフの左部分は、7日後に、動物がscインスリンに対してどのように反応したかを示し、右側は、同じ動物がtbインスリンに対してどのように反応したかを示している。左右のパネルの比較は、経時的および大きさにおける反応の違いを示す。上述のように、グラフは、第1の実験においては滅菌水を、第2の実験においてはブランクストリップを与えられた対照動物に対してプロットされている。
1.陽性対照sc注射に対する縦断的比較対照に基づき、インスリンの存在と一致する血中グルコースレベルの低下が、tb動物において、sc投与と同程度に良好に達成された。
2.グルコースレベルが上昇することが観察されている、文献中に報告されているような使用された麻酔薬に対する反応を考慮して、得られる結果は、測定されたレベルが示すものよりもさらに顕著であると結論付けることができる。
図25は、試料中のインスリンの測定から得られたデータを示す。
1.縦断的分析は、tb送達がscインスリンと同程度に良好であり、恐らくはミニブタのいくつかにおいてより急速な発現を有していたことを示唆している。
2.現時点で利用可能なインスリンの測定(上記参照)は、血中グルコースレベルから導かれた結論を支持していると思われる。つまり、頬の膜を介したストリップからのヒトインスリンの吸収が達成された。
3.C-ペプチド測定は、結論1および2をさらに支持している。
4.ミニブタは飢餓状態にあり、低い安静時血中グルコースレベルを有していたことから、この実験における反応の本発明者らのダイナミックレンジは非常に小さい。データはまた、陽性対照scインスリン注射であっても、本発明者らが合理的に達成し得る最低値が2.5〜3mM血中グルコースであることを示している。これらの動物は低血糖の傾向を有し、したがって、肝臓がグルコースを産生してレベルがそれ以上低くなることを防止する。
5.対照ブタもまた、血中グルコースの実質的な降下を示したが、絶対値スケールにおいて最低レベルは常にインスリン処理動物より高い。また、対照ブタは、より高い空腹時血中グルコースを示したが、本発明者らは、これはこの系統のミニブタにおける通常の変動性範囲内であると理解している。処理されたミニブタの全ては、安静時血中グルコースの同様の開始点を有していた。
Claims (66)
- (A)少なくとも1種のポリマーを含む1つまたは複数のフィルムマトリックスと、
(B)前記フィルムマトリックスの少なくとも1つに組み込まれた複数のナノ粒子と
を含む、治療的または生体作用性フィルム送達システムであって、前記ナノ粒子が、
(i)金属を含むコアと、
(ii)コアに共有結合により連結した複数のリガンドを含むコロナであって、複数のリガンドが、少なくとも第一のリガンドと第二のリガンドとを含み、前記第一のリガンドおよび第二のリガンドは異なっており、前記リガンドの少なくとも1つが、炭水化物部分を含む、コロナと、
(iii)コロナに非共有結合している少なくとも1つのペプチドであって、少なくとも一つのペプチドが、インスリン、GLP-1、オキシトシン、副腎皮質刺激ホルモン放出ホルモン(CRH)、卵胞刺激ホルモン(FSH)、成長ホルモン(GH)、インヒビン、ガストリン、レプチン、レニン、INSL7、黒色素細胞刺激ホルモン(MSH)、リポトロピン、アディポネクチン、およびレジスチンからなる群から選択されるペプチド、
とを含み、
かつ、
(a)前記第一のリガンドが、2'-チオエチル-α-D-ガラクトピラノシドを含み、および、第二のリガンドが、1-アミノ-17-メルカプト-3,6,9,12,15-ペンタオキサ-ヘプタデカノールを含み;
(b)前記第一のリガンドが、2'-チオエチル-β-D-グルコピラノシド、もしくは、2'-チオエチル-α-D-ガラクトピラノシドを含み、および、前記第二のリガンドが、5'-チオペンタニル-2-デオキシ-2-イミダゾールアセトアミド-α,β-D-グルコピラノシドを含み、
(c)前記第一のリガンドが、2'-チオエチル-β-D-グルコピラノシド、もしくは、2'-チオエチル-α-D-グルコピラノシドを含み、および、前記第二のリガンドが、1-アミノ-17-メルカプト-3,6,9,12,15-ペンタオキサ-ヘプタデカノールを含み;
または、
(d)前記第一のリガンドが、2'-チオエチル-2-アセトアミド-2-デオキシ-β-D-グルコピラノシドを含み、および、前記第二のリガンドが、1-アミノ-17-メルカプト-3,6,9,12,15-ペンタオキサ-ヘプタデカノールを含み、
かつ、前記第一のリガンドおよび第二のリガンドが、それらの各硫黄原子を介してコアに共有結合により連結している、
治療的または生体作用性フィルム送達システム。 - ペプチドが、可逆的にコロナに結合している、請求項1に記載のフィルム送達システム。
- ペプチドが、ナノ粒子を生理溶液に接触させると、結合したペプチドの少なくとも一部がナノ粒子から放出されるように、コロナに結合している、請求項1または請求項2に記載のフィルム送達システム。
- 前記放出が、ナノ粒子からの結合ペプチド分子の数分以内の急速解離に次ぐ、少なくとも2時間の期間にわたるさらに持続的な放出を含む、請求項3に記載のフィルム送達システム。
- 前記放出が、ナノ粒子からの結合ペプチド分子の少なくとも4時間の期間にわたる解離を含む、請求項4に記載のフィルム送達システム。
- ペプチドが、哺乳動物対象における生理学的反応を刺激することができる、請求項1から5のいずれか一項に記載のフィルム送達システム。
- ペプチドが、インスリンおよびGLP-1からなる群から選択される、請求項1から6のいずれか一項に記載のフィルム送達システム。
- ペプチドが、哺乳動物対象における血中グルコースレベルの低減を刺激することができる、請求項6または請求項7に記載のフィルム送達システム。
- ペプチドが、単量体および/または二量体ヒトインスリンである、請求項7または請求項8に記載のフィルム送達システム。
- 前記第一のリガンドおよび第二のリガンドが、1:40から40:1の比でナノ粒子上に存在する、請求項1に記載のフィルム送達システム。
- 前記比が、1:10から10:1である、請求項10に記載のフィルム送達システム。
- 前記比が、1:2から2:1である、請求項11に記載のフィルム送達システム。
- コロナが、コア1個当たり少なくとも5個のリガンドを含む、請求項1から12のいずれか一項に記載のフィルム送達システム。
- コロナが、コア1個当たり10個から1000個の間のリガンドを含む、請求項13に記載のフィルム送達システム。
- コロナが、コア1個当たり44〜106個のリガンドを含む、請求項14に記載のフィルム送達システム。
- コア1個当たり少なくとも5個以上のペプチド分子が結合している、請求項1から15のいずれか一項に記載のフィルム送達システム。
- コアが、Au、Ag、Cu、Pt、Pd、Fe、Co、Gd、Znまたはそれらの任意の組合せからなる群から選択される金属を含む、請求項1から16のいずれか一項に記載のフィルム送達システム。
- コアが、Au、Ag、Pt、PdおよびCu、またはそれらの任意の組合せからなる群から選択される不動態化金属を含む、請求項17に記載のフィルム送達システム。
- コアが、Au/Fe、Au/Ag、Au/Cu、Au/Ag/Cu、Au/Pt、Au/Pd、Au/Ag/Cu/Pd、Au/Gd、Au/Fe/Cu、Au/Fe/Gd、Au/Fe/Cu/Gdからなる群から選択される金属の組合せを含む、請求項17に記載のフィルム送達システム。
- コアが、磁性である、請求項1から19のいずれか一項に記載のフィルム送達システム。
- コアが、Mn2+、Gd3+、Eu2+、Cu2+、V2+、Co2+、Ni2+、Fe2+、Fe3+およびランタニド3+からなる群から選択されるNMR活性原子をさらに含む、請求項1から20のいずれか一項に記載のフィルム送達システム。
- コアが、半導体をさらに含む、請求項1から21のいずれか一項に記載のフィルム送達システム。
- 半導体が、セレン化カドミウム、硫化カドミウム、テルル化カドミウムおよび硫化亜鉛からなる群から選択される、請求項22に記載のフィルム送達システム。
- コアが、Au、Ag、Cu、Pt、PdおよびZn、またはそれらの任意の組合せからなる群から選択される金属でコーティングされた金属酸化物を含む、請求項1から23のいずれか一項に記載のフィルム送達システム。
- 前記金属酸化物が、式XFe2O4(式中、Xは、Fe、MnおよびCoからなる群から選択される金属である)の金属酸化物である、請求項24に記載のフィルム送達システム。
- ナノ粒子コアが、0.5nmから50nmの範囲内の平均直径を有する、請求項1から25のいずれか一項に記載のフィルム送達システム。
- 前記平均直径が、1nmから10nmの範囲内である、請求項26に記載のフィルム送達システム。
- 前記平均直径が、1.5nmから2nmの範囲内である、請求項26に記載のフィルム送達システム。
- ナノ粒子コアが、二価金属を含む、請求項1から28のいずれか一項に記載のフィルム送達システム。
- 前記二価金属が、ナノ粒子のコロナ内に存在する、請求項29に記載のフィルム送達システム。
- 前記二価金属が、亜鉛、マグネシウム、銅、ニッケル、コバルト、カドミウム、またはカルシウム、ならびにそれらの酸化物および塩からなる群から選択される、請求項29または30に記載のフィルム送達システム。
- 前記亜鉛が、Zn2+およびZnOから選択される、請求項31に記載のフィルム送達システム。
- 亜鉛が、ZnCl2を含む、請求項32に記載のフィルム送達システム。
- 前記二価金属が、安定化効果を生成するのに十分な量で存在する、請求項29または30のいずれかに記載のフィルム送達システム。
- 前記二価金属が、前記コアの前記金属の0.5当量から2.0当量の量で存在する、請求項34に記載のフィルム送達システム。
- 前記二価金属が、前記コアの前記金属の0.75当量から1.5当量の量で存在する、請求項34に記載のフィルム送達システム。
- 1つまたは複数のフィルムマトリックスが、熱または放射エネルギーの適用から最初の10分以内に、マトリックスから溶媒担体を蒸発させて粘弾性フィルムを形成することにより形成され、それによりナノ粒子が固定され、またはマトリックスとともに移動することが実質的に防止されて、ナノ粒子の均一な分布を有するフィルム送達システムを提供する、請求項1から36のいずれか一項に記載のフィルム送達システム。
- 1つまたは複数のフィルムマトリックスが、異なる放出特性を有する2つのフィルム層を備える、請求項1から37のいずれか一項に記載のフィルム送達システム。
- 1つまたは複数のフィルムマトリックスが、少なくとも1種の水溶性または水膨潤性ポリマーを含む、請求項1から38のいずれか一項に記載のフィルム送達システム。
- 少なくとも1種の水溶性または水膨潤性ポリマーが、単独のまたはポリエチレンオキシドと組み合わせた、ポリエチレンオキシド、セルロース、セルロース誘導体、プルラン、ポリビニルピロリドン、ポリビニルアルコール、ポリエチレングリコール、カルボキシビニルコポリマー、ヒドロキシプロピルメチルセルロース、ヒドロキシエチルセルロース、ヒドロキシプロピルセルロース、カルボキシメチルセルロース、アルギン酸ナトリウム、キサンタンガム、トラガカントガム、グアーガム、アカシアガム、アラビアガム、ポリアクリル酸、メチルメタクリレートコポリマー、カルボキシビニルコポリマー、デンプン、ゼラチン、およびそれらの組合せからなる群から選択される、請求項39に記載のフィルム送達システム。
- 少なくとも1種の水溶性または水膨潤性ポリマーが、エチルセルロース、ヒドロキシプロピルエチルセルロース、酢酸フタル酸セルロース、フタル酸ヒドロキシプロピルメチルセルロース、ポリビニルアセテートフタレート、フタル酸化ゼラチン、架橋ゼラチン、ポリ(乳酸)/ポリ(グリコール酸)/ポリエチレングリコールコポリマー、ポリカプロラクトンおよびそれらの組合せからなる群から選択される、請求項39に記載のフィルム送達システム。
- 少なくとも1種の水溶性または水膨潤性ポリマーが、メチルメタクリレートコポリマー、ポリアクリル酸ポリマー、ポリ(グリコール酸)(PGA)、ポリ(乳酸)(PLA)、ポリ(乳酸)/ポリ(グリコール酸)/ポリエチレングリコールコポリマー、ポリジオキサノン、ポリオキサレート、ポリ(α-エステル)、ポリ無水物、ポリアセテート、ポリカプロラクトン、ポリ(オルトエステル)、ポリアミノ酸、ポリアミノカーボネート、ポリウレタン、ポリカーボネート、ポリアミド、ポリ(アルキルシアノアクリレート)、ならびにそれらの混合物およびコポリマーからなる群から選択される、請求項39に記載のフィルム送達システム。
- 前記ポリマーが、アルギン酸ナトリウム、キサンタンガム、トラガカントガム、グアーガム、アカシアガム、アラビアガム、デンプン、ゼラチン、カラギーナン、ローカストビーンガム、デキストラン、ジェランガムおよびそれらの組合せからなる群から選択されるポリマーをさらに含む、請求項40に記載のフィルム送達システム。
- 前記ポリマーが、エチルセルロース、ヒドロキシプロピルエチルセルロース、酢酸フタル酸セルロース、フタル酸ヒドロキシプロピルメチルセルロース、ポリビニルアセテートフタレート、フタル酸化ゼラチン、架橋ゼラチン、ポリ(乳酸)/ポリ(グリコール酸)/ポリエチレングリコールコポリマー、ポリカプロラクトン、メチルメタクリレートコポリマー、ポリアクリル酸ポリマー、ポリ(グリコール酸)(PGA)、ポリ(乳酸)(PLA)、ポリ(乳酸)/ポリ(グリコール酸)/ポリエチレングリコールコポリマー、ポリジオキサノン、ポリオキサレート、ポリ(α-エステル)、ポリ無水物、ポリアセテート、ポリカプロラクトン、ポリ(オルトエステル)、ポリアミノ酸、ポリアミノカーボネート、ポリウレタン、ポリカーボネート、ポリアミド、ポリ(アルキルシアノアクリレート)、アルギン酸ナトリウム、キサンタンガム、トラガカントガム、グアーガム、アカシアガム、アラビアガム、デンプン、ゼラチン、カラギーナン、ローカストビーンガム、デキストラン、ジェランガムおよびそれらの組合せからなる群から選択されるポリマーをさらに含む、請求項40に記載のフィルム送達システム。
- 前記溶媒が、水、極性有機溶媒、およびそれらの組合せからなる群から選択される、請求項40に記載のフィルム送達システム。
- ナノ粒子が、少なくとも1つまたは複数のフィルムマトリックス内に均一に分布している、請求項1から45のいずれか一項に記載のフィルム送達システム。
- ナノ粒子が、フィルムの単位体積当たりのナノ粒子またはナノ粒子により担持されるペプチドの重量パーセント分散が10%を超えて変動しないように、前記マトリックスの1つ内に分布している、請求項1から46のいずれか一項に記載のフィルム送達システム。
- 総含水量が、送達システムの10重量%以下である、請求項1から47のいずれか一項に記載のフィルム送達システム。
- ナノ粒子が、1つまたは複数のフィルムマトリックスの表面上に組み込まれている、または堆積している、請求項1から48のいずれか一項に記載のフィルム送達システム。
- 浸透および/または透過向上剤をさらに含む、請求項1から49のいずれか一項に記載のフィルム送達システム。
- 浸透または透過向上剤が、中鎖モノおよびジアシルグリセロール脂肪酸誘導体、合成および天然界面活性剤、中鎖脂肪酸ならびにそれらの塩およびエステル、胆汁塩、キレート剤、洗浄剤、リン脂質、レシチン、セトマクロゲル、グリセロールおよびポリアルキレングリコールおよびそれらのエステル、サリチレート、ポリソルベート、アルキルスルホキシド、アルカノール、脂肪酸ならびにそれらの対応するエステルおよびアルコール、尿素および環状尿素、ピロリドン誘導体、アルキルおよび環状アミド、陰イオン性界面活性剤、陽イオン性界面活性剤、非イオン性界面活性剤、ケトン、アルキルオキシド、シクロアルケンオキシド、油、アルキルグリコシド、閉鎖帯、アルコール、ならびにそれらの組合せからなる群から選択される、請求項50に記載のフィルム送達システム。
- 浸透向上剤が、ナノ粒子コアおよび/またはナノ粒子コロナに接続されている、請求項50または請求項51に記載のフィルム送達システム。
- (a)少なくとも1種のポリマーを含む1つまたは複数のフィルムマトリックスと、
(b)前記フィルムマトリックスの少なくとも1つに組み込まれた複数のナノ粒子と
を含む、インスリン含有フィルム送達システムであって、前記ナノ粒子が、
(i)金を含むコアと、
(ii)コアに共有結合により繋がり、コアの周囲にコロナを形成する複数のリガンドと
を含み、前記リガンドが、それらのそれぞれの硫黄原子を介してコアにそれぞれ結合した2'-チオエチル-α-D-ガラクトピラノシドおよび1-アミノ-17-メルカプト-3,6,9,12,15-ペンタオキサ-ヘプタデカノールを含み、前記ナノ粒子が、ナノ粒子コア1個当たりに結合した平均少なくとも5個のインスリンモノマーを有する、インスリン含有フィルム送達システム。 - 成分の実質的に均一な分布を有するフィルムを作製するための方法であって、
(a)水溶性または水膨潤性ポリマー、溶媒および活性物質担持成分を含む流動性ポリマーマトリックスを形成するステップであって、前記活性物質担持成分が、請求項1から53のいずれか一項に規定される複数のナノ粒子を含み、前記マトリックスが、前記活性物質の均一な分布を有する、ステップと、
(b)前記流動性ポリマーマトリックスをキャストするステップと、
(c)前記流動性ポリマーマトリックスから前記溶媒の少なくとも一部分を蒸発させて、10分以内に粘弾性フィルムを形成して、前記粘弾性フィルム内の前記活性物質を固定すること、またはその移動を実質的に防止することにより、前記活性物質の前記均一な分布を維持するステップと、
(d)前記粘弾性フィルムから結果として生じるフィルムを形成するステップであって、前記結果として生じるフィルムが、10%以下の含水量を有し、前記活性物質の前記固定またはその移動の実質的な防止による活性物質の前記均一な分布が維持される、ステップと
を含む方法。 - 粘弾性フィルムが、4分以内に形成する、請求項54に記載の方法。
- その上に配置されるフィルムの第2の層を形成するステップをさらに含む、請求項54または請求項55に記載の方法。
- 成分の実質的に均一な分布を有するフィルムを作製するための方法であって、
(a)溶媒ならびに水溶性ポリマー、水膨潤性ポリマーおよびそれらの組合せからなる群から選択されるポリマーを含む、マスターバッチ予混合物を形成するステップと、
(b)所定量の前記マスターバッチ予混合物に活性物質担持成分を添加して、流動性ポリマーマトリックスを形成するステップであって、前記活性物質担持成分が、請求項1から53のいずれか一項に規定される複数のナノ粒子を含み、前記マトリックスが、前記活性物質の均一な分布を有する、ステップと、
(c)前記流動性ポリマーマトリックスをキャストするステップと、
(d)前記流動性ポリマーマトリックスから前記溶媒の少なくとも一部分を蒸発させて、10分以内に粘弾性フィルムを形成して、前記粘弾性フィルム内の前記活性物質を固定すること、またはその移動を実質的に防止することにより、前記活性物質担持成分の前記均一な分布を維持するステップと、
(e)前記粘弾性フィルムから結果として生じるフィルムを形成するステップであって、前記結果として生じるフィルムが、10%以下の含水量を有し、前記活性物質担持成分の前記固定またはその移動の実質的な防止による活性物質担持成分の前記均一な分布が維持される、ステップと
を含む方法。 - 請求項1から53のいずれか一項に記載のフィルム送達システムを作製するための方法である、請求項54から57のいずれか一項に記載の方法。
- それを必要とする哺乳動物対象における、糖尿病の治療、および/または、血中グルコースの低下における使用のための医薬の調製における、請求項1から53のいずれか一項に記載のフィルム送達システムの使用であって、
ペプチドが、請求項7に規定される通りである、使用。 - 前記医薬が、粘膜または臓器組織表面または膜を介した投与のためのものである、請求項59に記載の使用。
- 前記粘膜表面が、口、目、直腸、膣、耳組織、または臓器組織における表面からなる群から選択される、請求項60に記載の使用。
- 前記医薬が、経口腔投与のためのものである、請求項61に記載の使用。
- 請求項1から53のいずれか一項に記載の少なくとも1つのフィルム送達システムおよび少なくとも1つのフィルムを収容するための容器を備える製造品。
- 添付文書および/またはラベルをさらに備える、請求項63に記載の製造品。
- ナノ粒子が、単位体積当たりのナノ粒子またはナノ粒子により担持される活性物質の重量パーセントが10パーセント(10%)を超えて変動しないように、フィルム内に分布している、請求項1から53のいずれか一項に記載のフィルム送達システム。
- 前記フィルムが、ほぼ等しいサイズの個々のフィルムに分割され、個々のフィルムのナノ粒子の重量による量が、個々のフィルム間で10パーセント以下の分散を有する、請求項1から53のいずれか一項に記載のフィルム送達システム。
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