JP5633077B2 - 被覆されたマイクロゲルファイバ - Google Patents
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Description
さらに、上記のいずれかのマイクロファイバを含む構造体を構築した後、高強度ハイドロゲルによる被覆又は被覆されたマイクロゲルファイバのいずれかを除去することにより得ることができる構造体が本発明により提供される。
典型的には、本発明のマイクロファイバは、マイクロゲルファイバであるコア部分、及び高強度ハイドロゲルを含むシェル(被覆)部分を含むコア・シェル構造を有している。本明細書において「マイクロゲルファイバ」は被覆されるべきファイバを意味しており、「マイクロファイバ」は被覆後のファイバを意味する。
例1(参考例)
アルギン酸ハイドロゲルファイバーを同軸の層流装置(Lab. Chip, 4, pp.576, 2004; Langmuir, 23, pp.9104, 2007)を用いて図6(A)に示す方法で製造した。内側の流体として1.5% w/vアルギン酸ナトリウム(流速 Qinner=9μl/min)を用い、外側の流体として780 mM塩化カルシウム溶液(Qsheath=0.2-1.0 ml/min)を用いてアルギン酸ハイドロゲルファイバを製造した(図6)。2つの流体が接触する位置でゲル化が生じ、得られたファイバの直径は外側流体の流速に応じて30μmから95μmとなった(図7(A)及び(B))。ゲル化したアルギン酸ハイドロゲルファイバは脱イオン水を入れたペトリ皿で受けた(図7(C))。
例1と同様にして、ただし二重の同軸の層流装置(Lab. Chip, 4, pp.576, 2004, Fig.1)を用いてコア・シェル構造のファイバを製造した。コア用流体として1.5% w/vアルギン酸ナトリウム(オレンジ色に着色)及びシェル用流体として1.5% w/vアルギン酸ナトリウム(緑色に着色)を用い、鞘部の流体として780 mM塩化カルシウム溶液(Qsheath=3.6 ml/min)を用いた(図1(A))。得られたコア・シェル構造のファイバの様子を図1(B)に示す。得られたファイバにおけるコア直径とシェル被服厚はコア部流体及びシェル部流体の流速比(Qcore/Qshell)に応じて変化した(図1(C)及び(D))。
例2と同様にして、ただしコア部の流体として3T3線維芽細胞(細胞数1〜10×106 cells/ml)を含むコラーゲン溶液(濃度2mg/ml)を用いて、コラーゲンマイクロゲルファイバが強度ハイドロゲルであるアルギン酸ゲルにより被覆されたマイクロファイバを製造した。図1(E)に方法の概念図を示す。得られたマイクロファイバはコア部であるコラーゲンゲル中に3T3細胞を含むコア・シェル構造を有しており(図1(F))、十分な機械的強度を有するファイバであった。
図4(A)及び(B)に示された方法で織布構造の3次元構造体を調製した。縦糸及び横糸として例1で得られたアルギン酸ハイドロゲルファイバ(直径230μm)を用いて図4(C)に示す織布構造を編み上げた。同様にして、縦糸の一部及び横糸として異なる蛍光色を有するアルギン酸ハイドロゲルファイバを用いて織布構造の3次元構造体を調製した(図4(D))。図4(E)は拡大図であり、(F)は断面図である)
例4と同様にして縦糸として例3で得られたマイクロファイバ(コア部直径40μm、外径140μm、3T3線維芽細胞密度107 cells/ml)を用い、横糸として例1で得られたアルギン酸ハイドロゲルファイバを用いて織布構造の3次元構造体を製造した。
2種類のマイクロファイバ(マイクロファイバA:コア部直径40μm、外径140μm、緑色蛍光着色;マイクロファイバB:コア部直径40μm、外径140μm、オレンジ色蛍光着色)を図5(A)に示すように2本そろえた状態ですき間ができないようにガラス管(直径1 mm)に巻き取り、得られたらせん構造体の外側をアガロースゲル(3%)でコーティングしてらせん構造の3次元構造体を製造した。図5(B)はらせん構造の拡大図、図5(C)は断面図を示す。
例6と同様にして3T3線維芽細胞を含むマイクロファイバ(コア部直径40μm、外径140μm、細胞密度107 cells/ml)をガラス管に巻き取ってらせん構造の3次元構造体を調製した。図5(D)は得られたらせん構造の表面の共焦点像であり、その断面図の概念図を右側に示した。
例3と同様にして、コア部のコラーゲンゲル及びシェル部のアルギン酸ゲルからなり3T3線維芽細胞(細胞数1〜10×106 cells/ml)及び可視化のためのポリスチレン製ブルービーズ(直径15μm)をコア部に含むマイクロファイバ(コア部直径80μm、外径150μm、細胞密度:107 cells/ml、ビーズ密度:0.5%(w/v))を製造し、37℃で30分間インキュベートした後にマイクロファイバの様子を光学的に観察した。3T3細胞とコア部のコラーゲンゲルはシェル部のアルギン酸ゲルにより被覆されていることが確認できた(図13)。
例3と同様にしてHepG2細胞をコア部に含むマイクロファイバを製造して培養することによりコア部にHepG2細胞の培養物を含むマイクロファイバを製造した。培養を継続することによりコラーゲンゲルからなるコア部は増殖した細胞で満たされていき、11日目にはコア部が完全に細胞で満たされたマイクロファイバ(コア部にコラーゲンゲルと細胞培養物を含みアルギン酸ゲルにより被覆されたマイクロファイバ)を得ることができた(図14A-C)。このマイクロファイバから酵素処理によりアルギン酸ゲルを除去してファイバ状の細胞培養物(細胞ファイバ)を露出させたところ、細胞ファイバの形態はそのまま保たれており、細胞どおしが強く結合しているものと推定された(図14D)。
例9により得られたラット脳由来の初代大脳皮質細胞(培養8日目)の細胞ファイバの機能を調べたところ、多数の皮質ニューロンにおいて自発的なCa2+振動が認められ、皮質細胞ファイバ中で神経ネットワークが形成されていることが示された(図16D)。また、例9により得られたHepG2細胞の細胞ファイバは培養により乳酸を分泌することが確認された(図17)。
Hela細胞の細胞培養物をコア部のコラーゲンゲルに含みシェル部がアルギン酸ゲルであるゲルファイバにより織布構造の細胞構造体を構築した。織布構造の細胞シートの調製方法の概念図を図18Aに示す。得られた織布構造の細胞シートはセンチメートルレベル(約1〜2 cm)の細胞構造体であった(図18B)。縦糸6本×横糸5本の織布構造の細胞構造体を図18C(可視光像)及び図18D(蛍光像)に示す。また、約1.5 cm長の細胞ファイバを平行に配列させた細胞構造体を製造した(図18E)。
HepG2細胞の細胞培養物をコア部のコラーゲンゲルに含みシェル部がアルギン酸ゲルであるゲルファイバ、及びMin6細胞の細胞培養物をコア部のコラーゲンゲルに含みシェル部がアルギン酸ゲルであるマイクロファイバを用いて、ヘテロコイル構造の細胞構造体を形成した(図19)。得られたコイル構造の細胞構造体はアルギン酸ゲルを除去した後にも増殖を続けており、細胞構造体に含まれる細胞が生物学的機能を保持していることが示された(図19C)。
コラーゲンゲルファイバ(コア部:3種類の異なる蛍光ビーズを含む)をアルギン酸ゲル(シェル部)で被覆したコアシェル構造のマイクロファイバを用いて布状の2次元構造体を製造し、それを用いてTシャツ構造の3次元構造体を製造した。マイクロファイバにより織布状の二次元構造体を製造して透明なフィルム上に置き、織布構造を維持するためにアガロースゲルで薄くコーティングした(図20)。アガロースでコーティングされた織布構造体は十分な機械的強度を有しており、ピンセットで構造体を持ち上げることができた(図21)。織布構造体の中央部にパンチで穴(直径1.5 mm)をあけ(図22)、開けた穴に直径1mmのガラス棒を通し、さらにそのガラス棒と直角に交差するように右と左に1本ずつのガラス棒を置いて布構造を折り曲げた(図23)。折り曲げた後、隙間にアガロースゲルを流し込みゲル化させ、折った状態で布構造を固定した(図24)。ガラス棒と透明フィルムを取り除き、余分な部分をカッターで切り取ってTシャツ型の3次元構造体を調製した(図25)。図26には得られた3次元構造体(縦6 mm×横6 mm)を直立させた状態で示した。首と腕の通る穴の開いたTシャツ型の3次元構造体が得られたことが分かる。図27は上記の3次元構造体の蛍光像である。蛍光ビーズに由来する3種類の蛍光が観測された。
細胞(Hela細胞又はNIH/3T3細胞)を含むコア部のコラーゲンゲル及びシェル部のアルギン酸ゲルにそれぞれ接着性タンパク質としてフィブリン(フィブリノーゲン添加量:1 mg/mL)を添加したマイクロファイバ(Type B)又はフィブリン無添加のマイクロファイバ(Type A)を製造して培養を行った。方法及び結果を図28に示す。Hela細胞はType Aのマイクロファイバ中で良好に増殖したが(図(C)左)、3T3細胞は増殖せず、細胞ファイバを形成することなく細胞集団(クラスター)を形成した(図(C)中央)。一方、フィブリンを添加したType Bのマイクロファイバ中では3T3細胞についても良好な増殖及び細胞ファイバの形成が認められた(図(C)右)。Type Aのマイクロファイバにおいては細胞の種類による増殖速度の違いが認められた(図(E))。
HepG2細胞を含むコア部のコラーゲンゲルにアルギン酸ゲルのシェル部を設けたマイクロファイバを製造して培養することによりコア部にHepG2細胞の細胞ファイバを含むマイクロファイバを得た。このマイクロファイバを培養することにより分泌されるアルブミンの量をディッシュ上でHepG2細胞を培養した場合に分泌されるアルブミンの量と比較したところ、細胞ファイバから分泌されるアルブミンの量がディッシュ上で培養を行った場合を上回っていた。結果を図29に示す。コア部に封入されたHepG2細胞は3次元的な至適環境下に維持されており、その結果、2次元的なディッシュ上の培養条件よりもより多量のアルブミンを分泌するすることができるものと考えられた。
NIH/3T3細胞を含むコア部のコラーゲンゲル及びシェル部のアルギン酸ゲルにそれぞれ接着性タンパク質としてフィブリンを添加したマイクロファイバ(Type B)を例14の方法で製造して培養することにより3T3細胞ファイバをコア部に含むマイクロファイバを得た。このマイクロファイバからアルギン酸ゲルを除去する前後における機械的強度を図30に示す方法により測定して、シェル部のアルギン酸ゲルによる機械的強度の増強効果を確認した。図30の(A)及び(B)の方法に従って細ガラス管(直径0.12 mm)の湾曲量を測定することによりマイクロファイバに負荷した張力を計算した。マイクロファイバが断裂するときに負荷されていた張力を機械的強度とした。この結果、シェル部を有するマイクロファイバはシェル部を除去した場合に比べて高い機械的強度を与えた(図31上段及び下段)。
コア部としてコラーゲンゲル、シェル部としてアルギン酸ゲル(1.5%)を有するマイクロファイバのコア部に神経幹細胞を導入したマイクロファイバを作製した。コア部にはコラーゲン500μL に対して0.5 μL EGF、5 μL FGF、10 μL B27を添加し、細胞密度を6.8 × 107 cells/mlとなるようにマイクロファイバを作製し、10 mLのNeurobasal A に1% 抗生物質(ペニシリン及びストレプトマイシン)、2μL EGF、20μL FGF、及び200μL B27 を添加した培地を用いて7日間培養を継続した。結果を図32に示す。上段はマイクロファイバ作製直後の様子を示し、下段は培養7日後の様子を示す。神経幹細胞がマイクロファイバのコア部で増殖し、コア部を満たしていた。
Claims (11)
- 高強度ハイドロゲルで被覆されたマイクロゲルファイバを含むマイクロファイバであって、該高強度ハイドロゲルが該マイクロゲルファイバの基材となるハイドロゲルより高い機械的強度を有するマイクロファイバ。
- 高強度ハイドロゲルがアルギン酸ゲル又はアガロースゲルである請求項1に記載のマイクロファイバ。
- マイクロゲルファイバがキトサンゲル、コラーゲンゲル、ゼラチン、ペプチドゲル、又はフィブリンゲル、あるいはそれらの混合物からなる群から選ばれるハイドロゲルを基材とするファイバである請求項1又は2に記載のマイクロファイバ。
- 被覆されるべきマイクロゲルファイバの外径が100 nm〜1,000μmの範囲であり、高強度ハイドロゲルによる被覆後のマイクロファイバの外径が200 nm〜2,000μmの範囲である請求項1ないし3のいずれか1項に記載のマイクロファイバ。
- マイクロゲルファイバ中に細胞又は細胞培養物を含む請求項1ないし4のいずれか1項に記載のマイクロファイバ。
- マイクロゲルファイバ中に成長因子を含む請求項5に記載のマイクロファイバ。
- 請求項1に記載の高強度ハイドロゲルで被覆されたマイクロゲルファイバを含むマイクロファイバから高強度ハイドロゲルによる被覆を除去する工程、又は請求項1に記載の高強度ハイドロゲルで被覆されたマイクロゲルファイバを含むマイクロファイバからマイクロゲルファイバを除去する工程を含むファイバの製造方法。
- 請求項1ないし6のいずれか1項に記載のマイクロファイバを含む構造体。
- 織布構造又はらせん構造を有する請求項8に記載の構造体。
- 請求項5に記載のマイクロファイバから高強度ハイドロゲルによる被覆を除去する工程を含む細胞ファイバの製造方法。
- 請求項5に記載のマイクロファイバにより構築された2次元又は3次元構造体から高強度ハイドロゲルによる被覆を除去する工程を含む細胞構造体の製造方法。
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