JP2839608B2 - 核酸配列の検出方法 - Google Patents
核酸配列の検出方法Info
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- C12Q—MEASURING OR TESTING PROCESSES INVOLVING ENZYMES, NUCLEIC ACIDS OR MICROORGANISMS; COMPOSITIONS OR TEST PAPERS THEREFOR; PROCESSES OF PREPARING SUCH COMPOSITIONS; CONDITION-RESPONSIVE CONTROL IN MICROBIOLOGICAL OR ENZYMOLOGICAL PROCESSES
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- C12Q1/6876—Nucleic acid products used in the analysis of nucleic acids, e.g. primers or probes
Description
【発明の詳細な説明】 核酸配列の検出方法 本出願は1985年12月5日出願の米国特許出願第805,27
9号の一部継続出願である。従って、該出願の内容は本
出願に含まれるものとする。
9号の一部継続出願である。従って、該出願の内容は本
出願に含まれるものとする。
発明の背景 本出願においては、種々の特許及び刊行物を参照及び
引用した。これらの特許及び刊行物は、本発明が所属す
る技術分野の現状の十分な理解に役立つものであり、従
ってその記載内容は全て本出願に含まれるものとする。
引用した。これらの特許及び刊行物は、本発明が所属す
る技術分野の現状の十分な理解に役立つものであり、従
ってその記載内容は全て本出願に含まれるものとする。
米国特許出願第805,279号の大要は既に公開されてい
る。例えば、1987年8月7日公開の欧州特許出願第8611
6906.8号を参照するとよい。
る。例えば、1987年8月7日公開の欧州特許出願第8611
6906.8号を参照するとよい。
現行のDNAプローブの方法論は、ターゲットDNAをフィ
ルターと直接接触させるかまたはアガロースゲルからの
サザン転移法を介してフィルターと接触させることによ
ってターゲットDNAをニトロセルロースフィルターに結
合させる原理に基づく。次にDNAを変性し、フィルター
を加熱してしっかりと結合させる。一般に、DNAの調製
及びゲル流込み(running)の処理にはかなり高レベル
の熟練技術を要し時間及び費用もかかる。
ルターと直接接触させるかまたはアガロースゲルからの
サザン転移法を介してフィルターと接触させることによ
ってターゲットDNAをニトロセルロースフィルターに結
合させる原理に基づく。次にDNAを変性し、フィルター
を加熱してしっかりと結合させる。一般に、DNAの調製
及びゲル流込み(running)の処理にはかなり高レベル
の熟練技術を要し時間及び費用もかかる。
次の段階でプローブDNAを調製する。プローブDNAを調
製するためには、32P標識ヌクレオチドを使用しニック
トランスレーション、ポリヌクレオチドキナーゼまたは
その他のポリメラーゼタイプの複写反応によって特異的
DNAを放射性標識する。調製したプローブDNAと結合ター
ゲットDNAとをハイブリダイズさせる。適温で典型的に
は数時間ハイブリダイゼーションを進行させる。DNAプ
ローブは、相補的塩基配列を有する結合ターゲットDNA
のいずれかと会合してハイブリッド二重鎖(duplex)を
形成する。次に非結合プローブDNAのごとき外来物質を
フィルターから洗い落とし、放射性標識に感受性のフィ
ルムにフィルターを露光する。
製するためには、32P標識ヌクレオチドを使用しニック
トランスレーション、ポリヌクレオチドキナーゼまたは
その他のポリメラーゼタイプの複写反応によって特異的
DNAを放射性標識する。調製したプローブDNAと結合ター
ゲットDNAとをハイブリダイズさせる。適温で典型的に
は数時間ハイブリダイゼーションを進行させる。DNAプ
ローブは、相補的塩基配列を有する結合ターゲットDNA
のいずれかと会合してハイブリッド二重鎖(duplex)を
形成する。次に非結合プローブDNAのごとき外来物質を
フィルターから洗い落とし、放射性標識に感受性のフィ
ルムにフィルターを露光する。
1982年12月22日公開の欧州特許出願第0,067,597号(B
ender等)は、オリゴヌクレオチド及びその製造方法を
開示している。この方法では、デオキシリボヌクレオチ
ド鎖の特異的部位にリボヌクレオチド単位を組み込ん
で、鎖を容易に開裂させる所定の開裂部位を形成する。
この方法によって得られた産生物は、ヌクレオチド産生
物とポリヌクレオチド産生物の混合物を分離するために
有効であると記載されてはいるが、Bender等は、プロー
ブフラグメントの増幅に基づくターゲット核酸分子の検
出方法は教示していない。
ender等)は、オリゴヌクレオチド及びその製造方法を
開示している。この方法では、デオキシリボヌクレオチ
ド鎖の特異的部位にリボヌクレオチド単位を組み込ん
で、鎖を容易に開裂させる所定の開裂部位を形成する。
この方法によって得られた産生物は、ヌクレオチド産生
物とポリヌクレオチド産生物の混合物を分離するために
有効であると記載されてはいるが、Bender等は、プロー
ブフラグメントの増幅に基づくターゲット核酸分子の検
出方法は教示していない。
1984年9月13日公開の国際特許出願第W084/03520号
(Maleolm等)は、核酸プローブと酵素含有マーカーと
のタンデムハイブリダイゼーションを利用する核酸配列
の検出方法を開示している。該方法では、相補的ターゲ
ット配列を含むサンプルとプローブとをハイブリダイズ
条件下に接触させる。ターゲット配列とのハイブリダイ
ゼーションの前または後でプローブを、プローブの配列
に相補的な配列を有する酵素標識マーカーポリヌクレオ
チドにハイブリダイゼーションによって結合される。
(Maleolm等)は、核酸プローブと酵素含有マーカーと
のタンデムハイブリダイゼーションを利用する核酸配列
の検出方法を開示している。該方法では、相補的ターゲ
ット配列を含むサンプルとプローブとをハイブリダイズ
条件下に接触させる。ターゲット配列とのハイブリダイ
ゼーションの前または後でプローブを、プローブの配列
に相補的な配列を有する酵素標識マーカーポリヌクレオ
チドにハイブリダイゼーションによって結合される。
米国特許第4,358,535号(Falkow等)は、対象となる
ターゲット核酸配列に相補的な放射性標識ヌクレオチド
プローブと、これらのプローブを使用してターゲット核
酸配列を生じた病原体の存在を検出する方法とを開示し
ている。該方法では、プローブとのハイブリダイゼーシ
ョン以前にまずターゲット核酸配列を不活性担体に固定
する。次いで固定した核酸と放射性標識プローブとをハ
イブリダイズ条件下に接触させて固体担体上でハイブリ
ダイゼーションを生起する。次に、不活性担体上の標識
の存在を検出することによってターゲット核酸配列の存
在を検査する。かかる系の欠点は、プローブ自体を固定
できないことである。Falkow等の方法において、ターゲ
ット核酸配列でなくプローブが固定された場合、固定さ
れたプローブの標識分子は、プローブがターゲット核酸
配列とハイブリダイズしたか否かにかかわりなく固体担
体に結合するであろう。その結果、ターゲット核酸配列
が検出できないことになる。
ターゲット核酸配列に相補的な放射性標識ヌクレオチド
プローブと、これらのプローブを使用してターゲット核
酸配列を生じた病原体の存在を検出する方法とを開示し
ている。該方法では、プローブとのハイブリダイゼーシ
ョン以前にまずターゲット核酸配列を不活性担体に固定
する。次いで固定した核酸と放射性標識プローブとをハ
イブリダイズ条件下に接触させて固体担体上でハイブリ
ダイゼーションを生起する。次に、不活性担体上の標識
の存在を検出することによってターゲット核酸配列の存
在を検査する。かかる系の欠点は、プローブ自体を固定
できないことである。Falkow等の方法において、ターゲ
ット核酸配列でなくプローブが固定された場合、固定さ
れたプローブの標識分子は、プローブがターゲット核酸
配列とハイブリダイズしたか否かにかかわりなく固体担
体に結合するであろう。その結果、ターゲット核酸配列
が検出できないことになる。
欧州特許出願公開第0,117、440号は非放射性の化学的
標識ポリヌクレオチドプローブ及びかかるプローブの使
用方法を開示している。開示された方法はFalkow等の方
法と同様に、ターゲット核酸配列をハイブリダイゼーシ
ョン以前に固体担体に固定する。
標識ポリヌクレオチドプローブ及びかかるプローブの使
用方法を開示している。開示された方法はFalkow等の方
法と同様に、ターゲット核酸配列をハイブリダイゼーシ
ョン以前に固体担体に固定する。
最近になって、蛍光タグまたは変色酵素系のごとき別
の検出系が開発された。しかしながらかかる系は感度及
びバックグラウンド(ノイズ)のレベルでかなり問題を
含む。
の検出系が開発された。しかしながらかかる系は感度及
びバックグラウンド(ノイズ)のレベルでかなり問題を
含む。
米国特許第4,362,867号(Paddock)は、ハイブリダイ
ズして二重鎖螺旋構造を形成する2つの相補的なデオキ
シヌクレオチド配列を含むハイブリッド核酸構造を開示
している。2つのデオキシヌクレオチドの間に1つのリ
ボヌクレオチド配列が存在し、このリボヌクレオチド配
列は前記デオキシヌクレオチドに共有結合している。こ
の構造が1つの単位を形成し、この単位中にヌクレオチ
ド配列の繰返しは存在しない。
ズして二重鎖螺旋構造を形成する2つの相補的なデオキ
シヌクレオチド配列を含むハイブリッド核酸構造を開示
している。2つのデオキシヌクレオチドの間に1つのリ
ボヌクレオチド配列が存在し、このリボヌクレオチド配
列は前記デオキシヌクレオチドに共有結合している。こ
の構造が1つの単位を形成し、この単位中にヌクレオチ
ド配列の繰返しは存在しない。
米国特許第4,683,195号(Mullis等)は、ターゲット
核酸配列を増殖及び検出するために、核酸の別々の相補
鎖を過剰モル量の2つのオリゴヌクレオチドプライマー
で処理する方法を開示している。プライマーを延長し所
望の核酸配列の合成鋳型の機能を果たす相補的プライマ
ー延長産物を形成することによって、増幅配列を検出す
る。この方法の欠点は、熱交換サイクル(thermal cycl
ing)を要すること及び定温条件が欠如していることで
ある。
核酸配列を増殖及び検出するために、核酸の別々の相補
鎖を過剰モル量の2つのオリゴヌクレオチドプライマー
で処理する方法を開示している。プライマーを延長し所
望の核酸配列の合成鋳型の機能を果たす相補的プライマ
ー延長産物を形成することによって、増幅配列を検出す
る。この方法の欠点は、熱交換サイクル(thermal cycl
ing)を要すること及び定温条件が欠如していることで
ある。
米国特許第4,683,194号(Saiki等)は、制限部位を含
む核酸配列の1つの鎖に相補的なオリゴヌクレオチドプ
ローブを使用して核酸配列の特異的部位の有無を検出す
る方法を開示している。Saiki等は、核酸即ちオリゴヌ
クレオチドプローブをそのままで使用してもよく、また
該プローブが含む配列を米国特許第4,683,202号に記載
の方法で増幅させ感度の向上を図ってもよいと教示して
いる。しかしながらかかる増幅方法は前述の米国特許第
4,683,195号に固有の欠点から免れることができない。
む核酸配列の1つの鎖に相補的なオリゴヌクレオチドプ
ローブを使用して核酸配列の特異的部位の有無を検出す
る方法を開示している。Saiki等は、核酸即ちオリゴヌ
クレオチドプローブをそのままで使用してもよく、また
該プローブが含む配列を米国特許第4,683,202号に記載
の方法で増幅させ感度の向上を図ってもよいと教示して
いる。しかしながらかかる増幅方法は前述の米国特許第
4,683,195号に固有の欠点から免れることができない。
発明の概要 本発明は、(a)ターゲット核酸分子とターゲット分
子よりも多量の相補的一重鎖核酸プローブとを含む反応
混合物を、プローブとターゲット核酸分子とが互いにハ
イブリダイズして二重鎖ターゲット−プローブ複合体を
形成し得る条件下に調製し、(b)ターゲット核酸分子
にハイブリダイズした少なくとも2つのプローブフラグ
メントが形成され次いでプローブフラグメントが一重鎖
になり従ってターゲット核酸分子が別のプローブとハイ
ブリダイズ可能になるように、ハイブリダイズしたプロ
ーブに所定配列内部で少なくとも1回ニックを導入し、
(c)プローブフラグメントを同定しこれによりターゲ
ット核酸分子を検出する段階を含むターゲット核酸分子
の検出方法を提供する。
子よりも多量の相補的一重鎖核酸プローブとを含む反応
混合物を、プローブとターゲット核酸分子とが互いにハ
イブリダイズして二重鎖ターゲット−プローブ複合体を
形成し得る条件下に調製し、(b)ターゲット核酸分子
にハイブリダイズした少なくとも2つのプローブフラグ
メントが形成され次いでプローブフラグメントが一重鎖
になり従ってターゲット核酸分子が別のプローブとハイ
ブリダイズ可能になるように、ハイブリダイズしたプロ
ーブに所定配列内部で少なくとも1回ニックを導入し、
(c)プローブフラグメントを同定しこれによりターゲ
ット核酸分子を検出する段階を含むターゲット核酸分子
の検出方法を提供する。
本発明はまた、(a)相補的または非相補的な1つ以
上のデオキシリボヌクレオチドに1端または両端で共有
結合し得るターゲットデオキシリボ核酸分子を用い、タ
ーゲットデオキシリボ核酸分子と該ターゲットデオキシ
リボ核酸分子に相補的なリボヌクレオチド配列を有する
一重鎖核酸プローブとを含む反応混合物を、プローブと
ターゲットデオキシリボ核酸分子とが互いにハイブリダ
イズして二重鎖ターゲット−プローブ複合体を形成し得
る条件下に調製し、(b)ターゲットデオキシリボ核酸
分子にハイブリダイズした少なくとも2つのプローブフ
ラグメントが形成されその結果としてプローブフラグメ
ントが一重鎖になりターゲットデオキシリボ核酸分子が
別んプローブとハイブリダイズ可能になるように、ハイ
ブリダイズしたプローブに所定配列内部で少なくとも1
回ニックを導入し、(c)プローブフラグメントを同定
しこれによりターゲットデオキシリボ核酸分子を検出す
る段階を含むターゲットデオキシリボ核酸分子の検出方
法を提供する。
上のデオキシリボヌクレオチドに1端または両端で共有
結合し得るターゲットデオキシリボ核酸分子を用い、タ
ーゲットデオキシリボ核酸分子と該ターゲットデオキシ
リボ核酸分子に相補的なリボヌクレオチド配列を有する
一重鎖核酸プローブとを含む反応混合物を、プローブと
ターゲットデオキシリボ核酸分子とが互いにハイブリダ
イズして二重鎖ターゲット−プローブ複合体を形成し得
る条件下に調製し、(b)ターゲットデオキシリボ核酸
分子にハイブリダイズした少なくとも2つのプローブフ
ラグメントが形成されその結果としてプローブフラグメ
ントが一重鎖になりターゲットデオキシリボ核酸分子が
別んプローブとハイブリダイズ可能になるように、ハイ
ブリダイズしたプローブに所定配列内部で少なくとも1
回ニックを導入し、(c)プローブフラグメントを同定
しこれによりターゲットデオキシリボ核酸分子を検出す
る段階を含むターゲットデオキシリボ核酸分子の検出方
法を提供する。
図面の簡単な説明 第1図は本発明のターゲット核酸分子の検出方法にお
いて自己増幅性及び反復性構築に使用される核酸プロー
ブを示す。核酸プローブのプール及びRNアーゼHのごと
きリボヌクレアーゼとターゲット核酸分子を含むサンプ
ルとを反応させる。一重鎖核酸プローブはターゲット核
酸分子に相補的でありターゲット核酸分子よりも多量で
ある。ハイブリダイゼーションの結果として、二重鎖タ
ーゲット−プローブ複合体が形成される。RNアーゼHは
ハイブリダイズした二重鎖RNA−DNAのRNA配列をニック
または切除する。
いて自己増幅性及び反復性構築に使用される核酸プロー
ブを示す。核酸プローブのプール及びRNアーゼHのごと
きリボヌクレアーゼとターゲット核酸分子を含むサンプ
ルとを反応させる。一重鎖核酸プローブはターゲット核
酸分子に相補的でありターゲット核酸分子よりも多量で
ある。ハイブリダイゼーションの結果として、二重鎖タ
ーゲット−プローブ複合体が形成される。RNアーゼHは
ハイブリダイズした二重鎖RNA−DNAのRNA配列をニック
または切除する。
かかるニック導入後に残るDNAプローブフラグメント
がターゲット分子から融解して分離される。即ち非ハイ
ブリダイズになる。得られた一重鎖プローブフラグメン
トは同位体標識またはプローブフラグメントの長さの直
接測定によって検出可能である。実際には、プローブフ
ラグメントを検出するために、核酸プローブに最初に配
置した蛍光標識に結合させるか、または、一リン酸化し
たヌクレオチド例えばアデノシン一リン酸を用いてATP
を生成させる。追加のプローブ分子は遊離したターゲッ
ト分子と反応して反復配列を完成する。RNアーゼHは非
ハイブリダイズRNAをニックまたは開裂しない。かかる
反復系の使用によってターゲット分子を感度約10-19〜
約10-20で検出し得る。
がターゲット分子から融解して分離される。即ち非ハイ
ブリダイズになる。得られた一重鎖プローブフラグメン
トは同位体標識またはプローブフラグメントの長さの直
接測定によって検出可能である。実際には、プローブフ
ラグメントを検出するために、核酸プローブに最初に配
置した蛍光標識に結合させるか、または、一リン酸化し
たヌクレオチド例えばアデノシン一リン酸を用いてATP
を生成させる。追加のプローブ分子は遊離したターゲッ
ト分子と反応して反復配列を完成する。RNアーゼHは非
ハイブリダイズRNAをニックまたは開裂しない。かかる
反復系の使用によってターゲット分子を感度約10-19〜
約10-20で検出し得る。
発明の詳細な説明 本発明は、(a)ターゲット核酸分子とターゲット分
子よりも多量の相補的一重鎖核酸プローブとを含む反応
混合物を、プローブとターゲット核酸分子とが互いにハ
イブリダイズして二重鎖ターゲット−プローブ複合体を
形成し得る条件下に調製し、(b)ターゲット核酸分子
にハイブリダイズした少なくとも2つのプローブフラグ
メントが形成されその結果としてプローブフラグメント
が一重鎖になりターゲット核酸分子が別のプローブとハ
イブリダイズ可能になるように、ハイブリダイズしたプ
ローブに所定配列内部で少なくとも1回ニックを導入
し、(c)プローブフラグメントを同定しこれによりタ
ーゲット核酸分子を検出する段階を含むターゲット核酸
分子の検出方法を提供する。
子よりも多量の相補的一重鎖核酸プローブとを含む反応
混合物を、プローブとターゲット核酸分子とが互いにハ
イブリダイズして二重鎖ターゲット−プローブ複合体を
形成し得る条件下に調製し、(b)ターゲット核酸分子
にハイブリダイズした少なくとも2つのプローブフラグ
メントが形成されその結果としてプローブフラグメント
が一重鎖になりターゲット核酸分子が別のプローブとハ
イブリダイズ可能になるように、ハイブリダイズしたプ
ローブに所定配列内部で少なくとも1回ニックを導入
し、(c)プローブフラグメントを同定しこれによりタ
ーゲット核酸分子を検出する段階を含むターゲット核酸
分子の検出方法を提供する。
1つの実施態様によれば、本発明は更に、前記段階
(a)、(b)及び(c)が繰返されるターゲット核酸
分子の検出方法を提供する。これらの段階の繰返しによ
って、ターゲット分子より多量、即ち過剰モル量の相補
的一重鎖核酸プローブは、ターゲット分子を再使用し得
る。即ち、反応混合物に含まれた別の核酸プローブがタ
ーゲット分子とハイブリダイズし得る。
(a)、(b)及び(c)が繰返されるターゲット核酸
分子の検出方法を提供する。これらの段階の繰返しによ
って、ターゲット分子より多量、即ち過剰モル量の相補
的一重鎖核酸プローブは、ターゲット分子を再使用し得
る。即ち、反応混合物に含まれた別の核酸プローブがタ
ーゲット分子とハイブリダイズし得る。
本発明の実施に有用な核酸プローブは、構造: [NA1…R…NA2]n 〔式中、NA1及びNA2は核酸配列、RはRNA配列、nは約
1〜約10の整数〕で示される。
1〜約10の整数〕で示される。
本発明の1つの実施態様において核酸プローブ中のNA
1及びNA2は夫々、約0〜約20個のヌクレオチドを含み、
Rは約1〜約100個またはそれ以上のリボヌクレオチド
を含み、nは約1〜約10の整数である。
1及びNA2は夫々、約0〜約20個のヌクレオチドを含み、
Rは約1〜約100個またはそれ以上のリボヌクレオチド
を含み、nは約1〜約10の整数である。
本発明の別の実施態様において核酸プローブ中のNA1
及びNA2はDNA配列である。別の実施態様においてNA1及
びNA2はRNA配列である。更に別の実施態様において核酸
プローブは、NA1がRNAまたはDNA配列でNA2がRNAまたはD
NA配列である構造を有する。
及びNA2はDNA配列である。別の実施態様においてNA1及
びNA2はRNA配列である。更に別の実施態様において核酸
プローブは、NA1がRNAまたはDNA配列でNA2がRNAまたはD
NA配列である構造を有する。
1つの実施態様においては、ハイブリダイズしたプロ
ーブを所定RNA配列でニックするために、二重鎖リボヌ
クレアーゼを使用する。かかるリボヌクレアーゼは、ハ
イブリダイズした二重鎖DNA−RNAからリボ核酸配列をニ
ックまたは切除する。本発明の実施に有用なリボヌクレ
アーゼの例はRNアーゼHである。ExoIII及び逆転写酵素
のごとき別のリボヌクレアーゼ及び酵素もRNA−DNAから
RNAをニックまたは切除するために適当である。
ーブを所定RNA配列でニックするために、二重鎖リボヌ
クレアーゼを使用する。かかるリボヌクレアーゼは、ハ
イブリダイズした二重鎖DNA−RNAからリボ核酸配列をニ
ックまたは切除する。本発明の実施に有用なリボヌクレ
アーゼの例はRNアーゼHである。ExoIII及び逆転写酵素
のごとき別のリボヌクレアーゼ及び酵素もRNA−DNAから
RNAをニックまたは切除するために適当である。
本発明の分子は、核酸配列NA1またはNA2の一方または
両方に結合された検出可能マーカーを有していてもよ
い。このマーカーは、検出可能ないかなる分子または試
薬から成ってもよい。かる検出可能分子の例は、放射性
同位体、放射性標識分子、蛍光分子、蛍光抗体、酵素ま
たは化学発光触媒である。その他の適当なマーカーは、
酵素、蛍光分子またはその他の検出可能分子でタグ標識
した特異的タンパク質に結合し得るリガンドである。適
当なリガンドの一例は、アビジンまたはストレプトアジ
ンに結合するビオチンである。
両方に結合された検出可能マーカーを有していてもよ
い。このマーカーは、検出可能ないかなる分子または試
薬から成ってもよい。かる検出可能分子の例は、放射性
同位体、放射性標識分子、蛍光分子、蛍光抗体、酵素ま
たは化学発光触媒である。その他の適当なマーカーは、
酵素、蛍光分子またはその他の検出可能分子でタグ標識
した特異的タンパク質に結合し得るリガンドである。適
当なリガンドの一例は、アビジンまたはストレプトアジ
ンに結合するビオチンである。
本発明の1つの実施態様においては、核酸プローブを
固体担体に固定する。別の実施態様においては、核酸プ
ローブを検出可能マーカーで標識する。
固体担体に固定する。別の実施態様においては、核酸プ
ローブを検出可能マーカーで標識する。
核酸配列NA1及びNA2がDNAのとき、前記のR部分は、1
985年12月5日出願の米国特許出願第805,279号で使用し
た「切れ易い結合」なる用語で適切に表現できる。かか
る結合は、分子自体またはターゲット核酸分子の核酸配
列の開裂または分裂を全く生じさせるとなく開裂または
分裂できる。本明細書において、かかる「切れ易い結
合」、即ちRは、2つの核酸配列に結合し、結合した核
酸配列の開裂を生じさせることなく選択的に開裂し得る
任意の化学的結合構造を意味する。「切れ易い結合」は
単一結合でもよくまたは多単位配列でもよい。本文中の
Rはリボ核酸(RNA)配列を示す。
985年12月5日出願の米国特許出願第805,279号で使用し
た「切れ易い結合」なる用語で適切に表現できる。かか
る結合は、分子自体またはターゲット核酸分子の核酸配
列の開裂または分裂を全く生じさせるとなく開裂または
分裂できる。本明細書において、かかる「切れ易い結
合」、即ちRは、2つの核酸配列に結合し、結合した核
酸配列の開裂を生じさせることなく選択的に開裂し得る
任意の化学的結合構造を意味する。「切れ易い結合」は
単一結合でもよくまたは多単位配列でもよい。本文中の
Rはリボ核酸(RNA)配列を示す。
本発明のプローブとして有用な分子においてnが1よ
り大きい値を有する分子では、単位NA1…R…NA2が繰返
し存在する。各繰返し単位は同じでもよくまたはランダ
ムもしくは所定パターンで変化していてもよい。各繰返
し単位中のNA1またはNA2または両者が変化していてもよ
い。NA1またはNA2の変化は、繰返し中の1つの単位と直
後の単位との間で核酸配列が異なっているような変化で
もよい。この変化はまた、繰返し中の1つの単位と直後
の単位との間で、夫々の単位に含まれるNA1及びNA2の各
々の塩基の数が多少とも異なるようなランダムな変化で
もよい。n=3でNA1及びNA2の両方が変化するランダム
変化の一例は、 NA1…R…NA2…NA1′…R…NA2′…NA1″…R…NA2″で
ある。
り大きい値を有する分子では、単位NA1…R…NA2が繰返
し存在する。各繰返し単位は同じでもよくまたはランダ
ムもしくは所定パターンで変化していてもよい。各繰返
し単位中のNA1またはNA2または両者が変化していてもよ
い。NA1またはNA2の変化は、繰返し中の1つの単位と直
後の単位との間で核酸配列が異なっているような変化で
もよい。この変化はまた、繰返し中の1つの単位と直後
の単位との間で、夫々の単位に含まれるNA1及びNA2の各
々の塩基の数が多少とも異なるようなランダムな変化で
もよい。n=3でNA1及びNA2の両方が変化するランダム
変化の一例は、 NA1…R…NA2…NA1′…R…NA2′…NA1″…R…NA2″で
ある。
n=4でNA1及びNA2の両方が変化するパターン的変化
の一例は、 NA1…R…NA2…NA1′…R…NA2′…NA1…R…NA2…N
A1′…R…NA2′である。
の一例は、 NA1…R…NA2…NA1′…R…NA2′…NA1…R…NA2…N
A1′…R…NA2′である。
上記の両方の例で、各単位を結合している実線は水素
結合または共有結合から成る化学結合である。
結合または共有結合から成る化学結合である。
また、繰返し単位の変化が、「切れ易い結合」、即ち
Rの変化であってもよい。その場合にはR、即ち「切れ
易い結合」のリボヌクレオチドの配列が変化している。
R、即ち「切れ易い結合」結合中のリボヌクレオチド配
列の変化も前記のごとくランダムでもよくパターン的で
もよい。また、繰返し単位の変化が、NA1、NA2または
「切れ易い結合」、即ちRの前記のごとき変化を組み合
わせて含んでいてもよく、これらの変化がランダムでも
よくパターン的でもよい。
Rの変化であってもよい。その場合にはR、即ち「切れ
易い結合」のリボヌクレオチドの配列が変化している。
R、即ち「切れ易い結合」結合中のリボヌクレオチド配
列の変化も前記のごとくランダムでもよくパターン的で
もよい。また、繰返し単位の変化が、NA1、NA2または
「切れ易い結合」、即ちRの前記のごとき変化を組み合
わせて含んでいてもよく、これらの変化がランダムでも
よくパターン的でもよい。
比較的長さが短く従ってターゲット核酸分子に高度に
特異的である核酸プローブの使用によって最良結果が得
られることは当業者に容易に理解されよう。相補的核酸
プローブ中のヌクレオチドの総数を増加させるよりもむ
しろ制限することによって、ターゲット核酸分子の高ゲ
イン−低ノイズ検出が達成できる。
特異的である核酸プローブの使用によって最良結果が得
られることは当業者に容易に理解されよう。相補的核酸
プローブ中のヌクレオチドの総数を増加させるよりもむ
しろ制限することによって、ターゲット核酸分子の高ゲ
イン−低ノイズ検出が達成できる。
検出すべきターゲット核酸の種類、核酸プローブの構
造、即ちプローブがDNA−RNAハイブリッドであるかまた
はRNA配列単独から構成さえているか、等を含む多数の
要因に従って核酸プローブの全長を変更し得ることは当
業者に容易に理解されよう。DNA配列及びRNA配列からプ
ローブを構築する場合には、RNAプローブフラグメント
がターゲット核酸分子にハイブリダイズして維持される
ように、R部分即ち「切れ易い結合」がニックまたは切
除し易くなっていることが重要である。この点で、プロ
ーブフラグメントを本発明方法で一重鎖にするために、
R部分、即ち「切れ易い結合」がヌクレオチド約8〜約
10個のDNA配列間に存在するのが有利である。但しこれ
は必須要件ではない。
造、即ちプローブがDNA−RNAハイブリッドであるかまた
はRNA配列単独から構成さえているか、等を含む多数の
要因に従って核酸プローブの全長を変更し得ることは当
業者に容易に理解されよう。DNA配列及びRNA配列からプ
ローブを構築する場合には、RNAプローブフラグメント
がターゲット核酸分子にハイブリダイズして維持される
ように、R部分即ち「切れ易い結合」がニックまたは切
除し易くなっていることが重要である。この点で、プロ
ーブフラグメントを本発明方法で一重鎖にするために、
R部分、即ち「切れ易い結合」がヌクレオチド約8〜約
10個のDNA配列間に存在するのが有利である。但しこれ
は必須要件ではない。
プローブがRNA配列だけから構築される場合、RNアー
ゼHまたはExoIIIのごとき二重鎖リボヌクレアーゼを使
用するとニック導入が特に容易である。RNA配列だけか
ら構築された直線状のRNAプローブが特に有用である。
その第1の理由は酵素によって産生され易いことにあ
り、第2の理由は、上記リボヌクレアーゼのごときニッ
ク導入試薬によってニックまたは開裂され易い開裂部位
を多数有することにある。従って、直線状RNAプローブ
は、DNA−RNAハイブリッドプローブのように「切れ易い
結合」に依存しない。
ゼHまたはExoIIIのごとき二重鎖リボヌクレアーゼを使
用するとニック導入が特に容易である。RNA配列だけか
ら構築された直線状のRNAプローブが特に有用である。
その第1の理由は酵素によって産生され易いことにあ
り、第2の理由は、上記リボヌクレアーゼのごときニッ
ク導入試薬によってニックまたは開裂され易い開裂部位
を多数有することにある。従って、直線状RNAプローブ
は、DNA−RNAハイブリッドプローブのように「切れ易い
結合」に依存しない。
本発明はまた、(a)相補的または非相補的な1つ以
上のデオキシリボヌクレオチドに1端または両端で共有
結合し得るターゲットデオキシリボ核酸分子を用い、タ
ーゲットデオキシリボ核酸分子と該ターゲットデオキシ
リボ核酸分子に相補的なリボヌクレオチド配列を有する
一重鎖核酸プローブとを含む反応混合物を、プローブと
ターゲットデオキシリボ核酸分子とが互いにハイブリダ
イズし二重鎖ターゲット−プローブ複合体を形成し得る
条件下に調製し、(b)ターゲットデオキシリボ核酸分
子にハイブリダイズした少なくとも2つのプローブフラ
グメントが形成されその結果としてプローブフラグメン
トが一重鎖になりターゲットデオキシリボ核酸分子が別
のプローブとハイブリダイズ可能になるように、ハイブ
リダイズしたプローブに所定配列内部で少なくとも1回
ニックを導入し、(c)プローブフラグメントを同定し
これによりターゲットデオキシリボ核酸分子を検出する
段階を含むターゲットデオキシリボ核酸分子の検出方法
を提供する。
上のデオキシリボヌクレオチドに1端または両端で共有
結合し得るターゲットデオキシリボ核酸分子を用い、タ
ーゲットデオキシリボ核酸分子と該ターゲットデオキシ
リボ核酸分子に相補的なリボヌクレオチド配列を有する
一重鎖核酸プローブとを含む反応混合物を、プローブと
ターゲットデオキシリボ核酸分子とが互いにハイブリダ
イズし二重鎖ターゲット−プローブ複合体を形成し得る
条件下に調製し、(b)ターゲットデオキシリボ核酸分
子にハイブリダイズした少なくとも2つのプローブフラ
グメントが形成されその結果としてプローブフラグメン
トが一重鎖になりターゲットデオキシリボ核酸分子が別
のプローブとハイブリダイズ可能になるように、ハイブ
リダイズしたプローブに所定配列内部で少なくとも1回
ニックを導入し、(c)プローブフラグメントを同定し
これによりターゲットデオキシリボ核酸分子を検出する
段階を含むターゲットデオキシリボ核酸分子の検出方法
を提供する。
1つの実施態様において、本発明は、前記段階
(a)、(b)及び(c)が繰返されるターゲットデオ
キシリボ核酸分子の検出方法を提供する。
(a)、(b)及び(c)が繰返されるターゲットデオ
キシリボ核酸分子の検出方法を提供する。
本発明のターゲットデオキシリボ核酸の検出方法に有
用な一重鎖核酸プローブは約10〜約2000のリボヌクレオ
チドを含む。かかる核酸プローブ中のリボヌクレオチド
の数はターゲットデオキシリボ核酸、所要感度、等に従
って広い範囲で変更できることが当業者に容易に理解さ
れよう。段階(a)で反応混合物を調製する際に、当業
界で公知の方法を用いてターゲットデオキシリボ核酸分
子をDNA配列に変換し得る。
用な一重鎖核酸プローブは約10〜約2000のリボヌクレオ
チドを含む。かかる核酸プローブ中のリボヌクレオチド
の数はターゲットデオキシリボ核酸、所要感度、等に従
って広い範囲で変更できることが当業者に容易に理解さ
れよう。段階(a)で反応混合物を調製する際に、当業
界で公知の方法を用いてターゲットデオキシリボ核酸分
子をDNA配列に変換し得る。
本発明の更に別の実施態様では、段階(b)でハイブ
リダイズプローブにニックを導入するために、二重鎖リ
ボヌクレアーゼを用いる。更に別の実施態様では、かか
るリボヌクレアーゼがRNアーゼHでもよい。RNアーゼH
様活性を有する別の酵素、例えばExoIII及び逆転写酵素
等もある。これら及びその他の酵素は本発明の方法の変
形方法または非変形方法のいずれにも適している。
リダイズプローブにニックを導入するために、二重鎖リ
ボヌクレアーゼを用いる。更に別の実施態様では、かか
るリボヌクレアーゼがRNアーゼHでもよい。RNアーゼH
様活性を有する別の酵素、例えばExoIII及び逆転写酵素
等もある。これら及びその他の酵素は本発明の方法の変
形方法または非変形方法のいずれにも適している。
前記段階(a)で反応混合物を形成する際に、ターゲ
ット核酸分子とターゲット分子より多量、即ち過剰モル
量の相補的一重鎖核酸プローブとを、プローブとターゲ
ットとが互いにハイブリダイズでき二重鎖ターゲット−
プローブ複合体を形成できるようなハイブリダイゼーシ
ョン条件下に混合する。
ット核酸分子とターゲット分子より多量、即ち過剰モル
量の相補的一重鎖核酸プローブとを、プローブとターゲ
ットとが互いにハイブリダイズでき二重鎖ターゲット−
プローブ複合体を形成できるようなハイブリダイゼーシ
ョン条件下に混合する。
前記段階(b)でハイブリダイズプローブをニックす
るために、例えば酵素的方法を用いてもよい。即ち、ハ
イブリダイズしたプローブとハイブリダイズプローブ中
の所定配列をニック即ち切除し得る試薬とを接触させ
る。本発明の実施において、かかる所定配列は「切れ易
い結合」、即ちRまたはRNA配列を含む。
るために、例えば酵素的方法を用いてもよい。即ち、ハ
イブリダイズしたプローブとハイブリダイズプローブ中
の所定配列をニック即ち切除し得る試薬とを接触させ
る。本発明の実施において、かかる所定配列は「切れ易
い結合」、即ちRまたはRNA配列を含む。
典型的には、ターゲット核酸分子とターゲト分子より
過剰の標識相補的一重鎖核酸プローブと適当なバッファ
中で合せて反応混合物を調製する。このように調製され
た反応混合物を約30℃〜約45℃、最適には約37℃の温度
で約5分〜約30分間または60分間以内またはアニーリン
グ所要時間だけインキュベートする。
過剰の標識相補的一重鎖核酸プローブと適当なバッファ
中で合せて反応混合物を調製する。このように調製され
た反応混合物を約30℃〜約45℃、最適には約37℃の温度
で約5分〜約30分間または60分間以内またはアニーリン
グ所要時間だけインキュベートする。
ハイブリダイズしたターゲット及びプローブを含む反
応混合物を次に、約30℃〜約45℃最適には約37℃で更に
時間をかけてニック導入用試薬と結合される。この時間
は約5分〜約60分であるが、たいていの場合は30分で十
分である。ハイブリダイゼーション、ニック導入及び一
重鎖プローブフラグメントの形成の段階の繰返しを含む
反復反応は、短時間例えば数ミリ秒のオーダで生じる。
応混合物を次に、約30℃〜約45℃最適には約37℃で更に
時間をかけてニック導入用試薬と結合される。この時間
は約5分〜約60分であるが、たいていの場合は30分で十
分である。ハイブリダイゼーション、ニック導入及び一
重鎖プローブフラグメントの形成の段階の繰返しを含む
反復反応は、短時間例えば数ミリ秒のオーダで生じる。
ハイブリダイズした二重鎖ターゲット−プローブ複合
体に対し、この複合体の所定の配列、例えばRまたは
「切れ易い結合」を少なくとも1回ニックすることによ
って、ターゲット核酸分子にハイブリダイズした少なく
とも2つのプローブフラグメントを形成させると、ター
ゲット−プローブ複合体中のハイブリダイズプローブ配
列のサイズ変化の結果として一重鎖になったハイブリダ
イズプローブフラグメントが残る。例えば、20量体(モ
ノマー)二重鎖DNA配列は37℃でアニーリングされハイ
ブリダイズして維持される。ニック導入後に、2つの8
−デオキシリボヌクレオチド(DNA)塩基配列間に介在
する4−リボヌクレオチド(RNA)が、リボヌクレアー
ゼ例えばRNアーゼHまたはExoIIIによって切除されたと
想定すると、残りの2つの8量体のハイブリダイズプロ
ーブフラグメントはターゲット−プローブ複合体から融
解して分離する。これらの一重鎖プローブフラグメント
を公知方法を用いて同定しターゲット核酸分子を検出す
る。
体に対し、この複合体の所定の配列、例えばRまたは
「切れ易い結合」を少なくとも1回ニックすることによ
って、ターゲット核酸分子にハイブリダイズした少なく
とも2つのプローブフラグメントを形成させると、ター
ゲット−プローブ複合体中のハイブリダイズプローブ配
列のサイズ変化の結果として一重鎖になったハイブリダ
イズプローブフラグメントが残る。例えば、20量体(モ
ノマー)二重鎖DNA配列は37℃でアニーリングされハイ
ブリダイズして維持される。ニック導入後に、2つの8
−デオキシリボヌクレオチド(DNA)塩基配列間に介在
する4−リボヌクレオチド(RNA)が、リボヌクレアー
ゼ例えばRNアーゼHまたはExoIIIによって切除されたと
想定すると、残りの2つの8量体のハイブリダイズプロ
ーブフラグメントはターゲット−プローブ複合体から融
解して分離する。これらの一重鎖プローブフラグメント
を公知方法を用いて同定しターゲット核酸分子を検出す
る。
A−T及びG−C塩基対は、短いオリゴマーの場合約
2°/塩基対及び4°/塩基対のTmをそれぞれ呈する。
ハイブリダイズしたターゲット−プローブ複合体におい
てA−T及びG−C塩基対の比が等しいとすると、各対
合ヌクレオチドの融解温度は平均約3°/塩基対とな
る。
2°/塩基対及び4°/塩基対のTmをそれぞれ呈する。
ハイブリダイズしたターゲット−プローブ複合体におい
てA−T及びG−C塩基対の比が等しいとすると、各対
合ヌクレオチドの融解温度は平均約3°/塩基対とな
る。
ステップ(c)でのプローブフラグメントの同定とそ
れによるターゲット核酸分子の検出とは幾つかの方法で
実施できる。ステップ(c)での同定及び検出は標識方
法に従属し、即ち核酸プローブに予め付加されたか、ま
たは上述のステップ(b)で発生する検出可能なマーカ
ーの種類に従属する。例えば、ターゲット核酸分子の検
出を蛍光ラベルとの結合またはATP産生によって実現し
得る。例えばプローブの全体がリボ核酸(RNA)配列か
ら成る場合、ニック導入ステップ(b)で得られるプロ
ーブフラグメントはモノヌクレオチドから短いオリゴヌ
クレオチドまでであり得る。このようなフラグメント
は、その検出に有利に用い得る独得の5′−リン酸基を
有する。そのようなフラグメントの一つであるアデノシ
ン5′−リン酸(5′−AMP)は、ATP産生酵素系に供給
し、その後ルシフェリン−ルシフェラーゼ測光読み出し
系と結合させることができる。他の検出方法として、生
成したプローブフラグメントを、例えば高速液体クロマ
トグラフィー(HPLC)を用いて直接検出することが可能
である。
れによるターゲット核酸分子の検出とは幾つかの方法で
実施できる。ステップ(c)での同定及び検出は標識方
法に従属し、即ち核酸プローブに予め付加されたか、ま
たは上述のステップ(b)で発生する検出可能なマーカ
ーの種類に従属する。例えば、ターゲット核酸分子の検
出を蛍光ラベルとの結合またはATP産生によって実現し
得る。例えばプローブの全体がリボ核酸(RNA)配列か
ら成る場合、ニック導入ステップ(b)で得られるプロ
ーブフラグメントはモノヌクレオチドから短いオリゴヌ
クレオチドまでであり得る。このようなフラグメント
は、その検出に有利に用い得る独得の5′−リン酸基を
有する。そのようなフラグメントの一つであるアデノシ
ン5′−リン酸(5′−AMP)は、ATP産生酵素系に供給
し、その後ルシフェリン−ルシフェラーゼ測光読み出し
系と結合させることができる。他の検出方法として、生
成したプローブフラグメントを、例えば高速液体クロマ
トグラフィー(HPLC)を用いて直接検出することが可能
である。
本発明の方法を、ターゲット核酸分子検出用の高利得
−低雑音増幅系の達成に用い得ることも、当業者には理
解されよう。一重鎖核酸プローブは、デオキシリボ核酸
(DNA)及びリボ核酸(RNA)配列から成るものであれリ
ボ核酸(RNA)配列のみから成るものであれ、例えばRN
アーゼHなどの一定の二重鎖リボヌクレアーゼの作用に
対して完全に安定である。このようなプローブがターゲ
ット核酸分子とハイブリダイズすると、「切れ易い結
合」であってもなくともよいRNA結合がリボヌクレアー
ゼ、即ち例えばRNアーゼHによって消化されるようにな
る。
−低雑音増幅系の達成に用い得ることも、当業者には理
解されよう。一重鎖核酸プローブは、デオキシリボ核酸
(DNA)及びリボ核酸(RNA)配列から成るものであれリ
ボ核酸(RNA)配列のみから成るものであれ、例えばRN
アーゼHなどの一定の二重鎖リボヌクレアーゼの作用に
対して完全に安定である。このようなプローブがターゲ
ット核酸分子とハイブリダイズすると、「切れ易い結
合」であってもなくともよいRNA結合がリボヌクレアー
ゼ、即ち例えばRNアーゼHによって消化されるようにな
る。
単なる説明のための一例として、プローブを、全長が
20個のヌクレオチドから成り、そのうち最初の8個及び
最後の8個のヌクレオチドがデオキシリボヌクレオチド
で、中の4個のヌクレオチドはリボヌクレオチドである
ものとすることで、本発明の方法の増幅段階を説明する
ことができる。同一条件下に、20量体(モノマー)プロ
ーブは相補的なターゲットと安定なハイブリッドを形成
するが、8量体(モノマー)プローブまたはプローブフ
ラグメントは容易に融解して離れ、即ちハイブリダイズ
していない状態となる。従って、ターゲット核酸分子と
のハイブリダイゼーション後の20量体プローブは開裂可
能となり、リボヌクレアーゼ、即ち例えばRNアーゼHに
よって開裂して、一重鎖核酸プローブがターゲット分子
とハイブリダイズして二重鎖ターゲット−プローブ複合
体を生成した一次ハイブリダイゼーションの際と同一の
条件の下に容易に融解して離れる断片となる。
20個のヌクレオチドから成り、そのうち最初の8個及び
最後の8個のヌクレオチドがデオキシリボヌクレオチド
で、中の4個のヌクレオチドはリボヌクレオチドである
ものとすることで、本発明の方法の増幅段階を説明する
ことができる。同一条件下に、20量体(モノマー)プロ
ーブは相補的なターゲットと安定なハイブリッドを形成
するが、8量体(モノマー)プローブまたはプローブフ
ラグメントは容易に融解して離れ、即ちハイブリダイズ
していない状態となる。従って、ターゲット核酸分子と
のハイブリダイゼーション後の20量体プローブは開裂可
能となり、リボヌクレアーゼ、即ち例えばRNアーゼHに
よって開裂して、一重鎖核酸プローブがターゲット分子
とハイブリダイズして二重鎖ターゲット−プローブ複合
体を生成した一次ハイブリダイゼーションの際と同一の
条件の下に容易に融解して離れる断片となる。
ハイブリダイゼーションを、通常程度に過剰なプロー
ブを用い、かつ例えばRNアーゼHのような適当なリボヌ
クレアーゼを存在させて実現すると上述の系が反復して
(第1図参照)、開裂したプローブフラグメントを産生
し、このフラグメントは、例えば化学ルミネセンス、放
射性同位元素などを用いる幾つかの公知方法で検出する
ことができる。一次アンプリファイア即ちプローブは核
酸特異性であり、不変条件下に機能する。放射線同位元
素で標識すれば、10-20モルのターゲットを検出する高
井利得の初段検出が可能である。
ブを用い、かつ例えばRNアーゼHのような適当なリボヌ
クレアーゼを存在させて実現すると上述の系が反復して
(第1図参照)、開裂したプローブフラグメントを産生
し、このフラグメントは、例えば化学ルミネセンス、放
射性同位元素などを用いる幾つかの公知方法で検出する
ことができる。一次アンプリファイア即ちプローブは核
酸特異性であり、不変条件下に機能する。放射線同位元
素で標識すれば、10-20モルのターゲットを検出する高
井利得の初段検出が可能である。
全体がリボ核酸配列から成る直線状RNAプローブを形
成した場合RNアーゼH反復の後に得られる生成物は、元
のプローブの大きさに従属してモノヌクレオシドからオ
リゴヌクレオチドまでである。しかし、各生成物は3′
−OH未端を有する。これらの末端には、ポリヌクレオチ
ドホスホリラーゼまたはポリAポリメラーゼのような適
当なポリメラーゼをテールとして付加することができ
る。
成した場合RNアーゼH反復の後に得られる生成物は、元
のプローブの大きさに従属してモノヌクレオシドからオ
リゴヌクレオチドまでである。しかし、各生成物は3′
−OH未端を有する。これらの末端には、ポリヌクレオチ
ドホスホリラーゼまたはポリAポリメラーゼのような適
当なポリメラーゼをテールとして付加することができ
る。
このアプローチへの有用な付加手段は、プローブの
5′末端にビオチンを配置し、3′末端には例えばジデ
オキシのようなチェインターミネータヌクレオチドを配
置することである。プローブを、5′未満に“U"を有
し、3′未満にも“U"を有するが中央の領域には“U"を
有しないように設計した場合、及びそのようなプローブ
を適当な鋳型上でT7RNAポリメラーゼの作用によって形
成した場合、次の状況が維持されよう。
5′末端にビオチンを配置し、3′末端には例えばジデ
オキシのようなチェインターミネータヌクレオチドを配
置することである。プローブを、5′未満に“U"を有
し、3′未満にも“U"を有するが中央の領域には“U"を
有しないように設計した場合、及びそのようなプローブ
を適当な鋳型上でT7RNAポリメラーゼの作用によって形
成した場合、次の状況が維持されよう。
T7転写体(プローブ)重合のためのヌクレオシド三リ
ン酸前駆体の比が ATP 100 CTP 100 GTP 100 ジデオキシUTP 100 ビチオニル化したUTP 1 である場合、実質的にいずれのプローブ転写体もビオチ
ニル化したUで始まり、ジデオキシUで終わる。最初の
塩基としてジデオキシUを選択すると、重合は失敗す
る。即ち、ビオチニル化したUでの開始は必須である。
鋳型が過剰に存在するのでほぼ総てのビオチニル化した
Uが開始に用いられるため、及びジデオキシUの方がビ
オチニル化したUより100倍過剰であるため、3′Uは
ほとんど常にジデオキシUである。従って、検出の目的
は酵素合成を介して達成できる。得られるプローブは、
3′位にジデオキシUの存在するためRNアーゼHによっ
て切断されないとテールの付加ができず、蛍光塩基その
他の検出可能分子をテールとして付加したプローブの非
ビオチニル化反応物質からの分離にはビオチンを用いる
ことができる。
ン酸前駆体の比が ATP 100 CTP 100 GTP 100 ジデオキシUTP 100 ビチオニル化したUTP 1 である場合、実質的にいずれのプローブ転写体もビオチ
ニル化したUで始まり、ジデオキシUで終わる。最初の
塩基としてジデオキシUを選択すると、重合は失敗す
る。即ち、ビオチニル化したUでの開始は必須である。
鋳型が過剰に存在するのでほぼ総てのビオチニル化した
Uが開始に用いられるため、及びジデオキシUの方がビ
オチニル化したUより100倍過剰であるため、3′Uは
ほとんど常にジデオキシUである。従って、検出の目的
は酵素合成を介して達成できる。得られるプローブは、
3′位にジデオキシUの存在するためRNアーゼHによっ
て切断されないとテールの付加ができず、蛍光塩基その
他の検出可能分子をテールとして付加したプローブの非
ビオチニル化反応物質からの分離にはビオチンを用いる
ことができる。
核酸プローブの全体が、ターゲット分子と相補的であ
り、従って「切れ易い結合」に依存しないRNA配列から
成る場合はプローブに、ここに説明した本発明から十分
に予測できる様々な変形を施すことが可能である。
り、従って「切れ易い結合」に依存しないRNA配列から
成る場合はプローブに、ここに説明した本発明から十分
に予測できる様々な変形を施すことが可能である。
例えば、リボ核酸プローブ、即ち全体がRNA配列から
成るプローブを合成し、その3′ヒロドキシル末端を任
意にブロックすることができる。ブロッキングは、リボ
核酸プローブに“テール”を、ビオチン、過ヨウ素酸酸
化したリボヌクレオシドまたは親和性テールのようなリ
ガンドへの吸着により酵素的に付加すること、即ち例え
ばポリA(ポリメラーゼA)テール付加によって行ない
得る。プローブに付加した“テール”は、親和性単離及
び信号発生に用いることができる。RNAプローブの5′
末端も任意に変更し得る。例えば、5′末端を非相同の
RNA/DNA配列で延長し得、この場合はこの非相同配列を
上記のようなリガンド、即ち例えばビオチン、過ヨウ素
酸酸化したリボヌクレオシドまたは親和性テールに付着
させ得る。この特別の例では、5′未満を蛍光塩基のよ
うな信号ジェネレーターと結合させることも可能であ
る。この構成を下図に示す。
成るプローブを合成し、その3′ヒロドキシル末端を任
意にブロックすることができる。ブロッキングは、リボ
核酸プローブに“テール”を、ビオチン、過ヨウ素酸酸
化したリボヌクレオシドまたは親和性テールのようなリ
ガンドへの吸着により酵素的に付加すること、即ち例え
ばポリA(ポリメラーゼA)テール付加によって行ない
得る。プローブに付加した“テール”は、親和性単離及
び信号発生に用いることができる。RNAプローブの5′
末端も任意に変更し得る。例えば、5′末端を非相同の
RNA/DNA配列で延長し得、この場合はこの非相同配列を
上記のようなリガンド、即ち例えばビオチン、過ヨウ素
酸酸化したリボヌクレオシドまたは親和性テールに付着
させ得る。この特別の例では、5′未満を蛍光塩基のよ
うな信号ジェネレーターと結合させることも可能であ
る。この構成を下図に示す。
X:付着リガンドで、例えばビオチン、過ヨウ素酸酸化し
たリボヌクレイシド、または親和性テール。
たリボヌクレイシド、または親和性テール。
Y:蛍光塩基のような信号ジェネレーター。
このような構成中の非相同5′テールは、ターゲット
と対になったRNAプローブの相同領域をRNアーゼHのよ
うなリボヌクレアーゼでニックすること、即ち切除また
咀嚼することを可能にする。即ち、5′テール構成は、
ポリヌクレオシドリン酸(PNP)またはポリメラーゼA
(ポリA)テール付加に有効なフラグメントを脱離す
る。このようなテールは、溶液から信号を引き出す親和
性テールとして、または検出能を高める更に別のフラグ
メントとして用い得る。この構成を下図に示す。
と対になったRNAプローブの相同領域をRNアーゼHのよ
うなリボヌクレアーゼでニックすること、即ち切除また
咀嚼することを可能にする。即ち、5′テール構成は、
ポリヌクレオシドリン酸(PNP)またはポリメラーゼA
(ポリA)テール付加に有効なフラグメントを脱離す
る。このようなテールは、溶液から信号を引き出す親和
性テールとして、または検出能を高める更に別のフラグ
メントとして用い得る。この構成を下図に示す。
本発明の別の特徴において、反復核酸プローブは、抗
体または抗原を検出するイムノアッセイに用い得る。そ
の場合、競合的または非競合的イムノアッセイで抗体か
または抗原に、ホモポリマーであり得る核酸配列を付加
することが可能である。
体または抗原を検出するイムノアッセイに用い得る。そ
の場合、競合的または非競合的イムノアッセイで抗体か
または抗原に、ホモポリマーであり得る核酸配列を付加
することが可能である。
競合的イムンアッセイの例として、酵素結合イムノア
ッセイ(ELISA)を挙げることができる。
ッセイ(ELISA)を挙げることができる。
本発明を、以下に実施例において詳述する。これらの
実施例は本発明の理解の一助となるように提示するもの
であり、最後に掲げた請求の範囲各項に記した本発明を
一切限定せず、また限定すると解釈されるべきでもな
い。
実施例は本発明の理解の一助となるように提示するもの
であり、最後に掲げた請求の範囲各項に記した本発明を
一切限定せず、また限定すると解釈されるべきでもな
い。
実施例1 「切れ易い結合」プローブの形成 本発明の検出方法に有用であるプローブ分子を固体支
持媒体(シリカゲルまたは制御した多孔ガラス)上に、
加水分解可能結合または恒常的(加水分解不能)結合を
用いて形成した。この合成には、公表されている化学的
方法を用いた[Alvarado−Urbina,G.,G.M.Sathe,W.C.Li
u,M.F.Gillan、P.D.Duck,R.Bender and K.K.Ogilvie(1
981),Automated Synthesis of Gene Fragments,Scienc
e 214:270−274;Roberts,D.M.,R.Crea,M.Malecha,G.Alv
arado−Urbina,R.H.Chiarello and D.M.Watterson(198
5),Chemical Synthesis and Expression of a Calmodu
lin gene designed for a Site−Specific Mutagenesi
s,Biochemistry,in press;Van Boom,J.H.and C.T.Wrees
man(1984),Chemical Synthesis of Small Oligoribon
ucleotides in Solution,In Oligonucleotide Synthesi
s−A Practical Approach,pp.153−183,Ed.M.J.Gait,IR
L Press]。標準的な保護されたデオキシヌイクレオシ
ドモノマーを市販製品から得、一方保護されたデオキシ
ウリジン及びリボヌクレオシドモノマーは公知手順で製
造した[Ti,G.S.,B.L.Gaffney and R.A.Jones(1982),
Transient Protection:Efficient One Flask Synthesis
of Protected Nucleosides,J.AM.Chem.Soc.104:131
6]。合成は、各DNA縮合については10分、各RNA縮合に
ついては12分の周期を用いてBIOLOGICALS自動合成機で
行なった。
持媒体(シリカゲルまたは制御した多孔ガラス)上に、
加水分解可能結合または恒常的(加水分解不能)結合を
用いて形成した。この合成には、公表されている化学的
方法を用いた[Alvarado−Urbina,G.,G.M.Sathe,W.C.Li
u,M.F.Gillan、P.D.Duck,R.Bender and K.K.Ogilvie(1
981),Automated Synthesis of Gene Fragments,Scienc
e 214:270−274;Roberts,D.M.,R.Crea,M.Malecha,G.Alv
arado−Urbina,R.H.Chiarello and D.M.Watterson(198
5),Chemical Synthesis and Expression of a Calmodu
lin gene designed for a Site−Specific Mutagenesi
s,Biochemistry,in press;Van Boom,J.H.and C.T.Wrees
man(1984),Chemical Synthesis of Small Oligoribon
ucleotides in Solution,In Oligonucleotide Synthesi
s−A Practical Approach,pp.153−183,Ed.M.J.Gait,IR
L Press]。標準的な保護されたデオキシヌイクレオシ
ドモノマーを市販製品から得、一方保護されたデオキシ
ウリジン及びリボヌクレオシドモノマーは公知手順で製
造した[Ti,G.S.,B.L.Gaffney and R.A.Jones(1982),
Transient Protection:Efficient One Flask Synthesis
of Protected Nucleosides,J.AM.Chem.Soc.104:131
6]。合成は、各DNA縮合については10分、各RNA縮合に
ついては12分の周期を用いてBIOLOGICALS自動合成機で
行なった。
次に示すプローブ構成を、様々な試験系で用いた。
プローブ分子1〜3及び5〜8は、膵RNアーゼを含め
た幾つかのRNアーゼによって、及び塩基条件下(例えば
0.5M NaOH)に、リボヌクレオチドにおいて開裂可能で
あることが判明した。RNアーゼによる切断その他のルー
チン作用のごく一般的な方法を、Maniatis等(Maniati
s,T.,E.F.Fritsch and J.Sambrook(1982),Molecular
Cloning,A Laboratory Manual,Cold Spring Harbor Lab
oratory)に見いだすことができる。
た幾つかのRNアーゼによって、及び塩基条件下(例えば
0.5M NaOH)に、リボヌクレオチドにおいて開裂可能で
あることが判明した。RNアーゼによる切断その他のルー
チン作用のごく一般的な方法を、Maniatis等(Maniati
s,T.,E.F.Fritsch and J.Sambrook(1982),Molecular
Cloning,A Laboratory Manual,Cold Spring Harbor Lab
oratory)に見いだすことができる。
実施例2 次のプローブ構成*を、本発明による方法に従って用
いた。
いた。
*:大文字はDNA。小文字はRNA。上記配列の幾つかはM13
ファージと相補的であったが、総ての上記配列は該配列
のために構成された合成DNAターゲット相補配列を有し
た。
ファージと相補的であったが、総ての上記配列は該配列
のために構成された合成DNAターゲット相補配列を有し
た。
RNアーゼHでのキネーション及び反復 2μgの電気的に精製したプローブ(9〜22)を添加
して、次の諸成分を含有する混合物を調製した。
して、次の諸成分を含有する混合物を調製した。
2μgプローブ 2μl 4μM ATP 4μl 10X KB(キナーゼ緩衝液) 5μl dH2O 32μl P32ATP 2μl=20uCi ポリヌクレオチドキナーゼ 5μl=5単位 混合物を、37℃で40分間インキュベートしてから熱失
活させた。その後混合物を、溶離液として脱イオン水を
用いてセファデックスG−50カラムに通した。(使い捨
てカラムとしてSancoのトランスファーピペット15mm×
7.5mm使用。シリコン化グラスウールで栓をし、またG
−50は12mmまで充填。) 500μl画分を1.5ml Eppendorf管内に採集し、第一の
ピークを選択した(普通、管3〜5個)。選択した画分
を速度vac濃縮機で乾燥した。管を総て一緒にプール
し、無菌水中での最終濃度を0.1μg/μlとした。
活させた。その後混合物を、溶離液として脱イオン水を
用いてセファデックスG−50カラムに通した。(使い捨
てカラムとしてSancoのトランスファーピペット15mm×
7.5mm使用。シリコン化グラスウールで栓をし、またG
−50は12mmまで充填。) 500μl画分を1.5ml Eppendorf管内に採集し、第一の
ピークを選択した(普通、管3〜5個)。選択した画分
を速度vac濃縮機で乾燥した。管を総て一緒にプール
し、無菌水中での最終濃度を0.1μg/μlとした。
反復反応のための稀釈 ターゲット:2μgを20μlで稀釈して濃度0.1μg/μl
とする。この開始濃度を、1:10の割合(蒸留水90μl中
に10μl)での連続的稀釈によって所望濃度とする。反
復反応のために、各反応混合物毎に10μl(100ng)を
用いた。
とする。この開始濃度を、1:10の割合(蒸留水90μl中
に10μl)での連続的稀釈によって所望濃度とする。反
復反応のために、各反応混合物毎に10μl(100ng)を
用いた。
標識したプローブ:2μgを20μlで稀釈する(0.1μg/
μl)。この開始濃度を、1:10の割合(蒸留水90μl中
に10μl)での稀釈によって0.01μg/μlとする。各反
応混合物毎に10μl(100ng)を用いた。
μl)。この開始濃度を、1:10の割合(蒸留水90μl中
に10μl)での稀釈によって0.01μg/μlとする。各反
応混合物毎に10μl(100ng)を用いた。
反復反応 反復反応のために、各プローブ(9〜22)を別個に添
加して、次の諸成分から成る反応混合物を調製した。
加して、次の諸成分から成る反応混合物を調製した。
蒸留水(無菌)中のプローブ 10μl(100ng) 10X RNアーゼH緩衝液 3μl 蒸留水 7μl ターゲットDNA(1μgから0.01fg) 10μl 反応混合物30μlを65℃で10分間、及び37℃で30分間
インキュベートした。各30μl反応混合物から、 C1(RNアーゼH)コントロール:5μl=16.7ngのプロー
ブ C2(時間30分)コントロール:5μl=16.7ngのプローブ を取り出した。
インキュベートした。各30μl反応混合物から、 C1(RNアーゼH)コントロール:5μl=16.7ngのプロー
ブ C2(時間30分)コントロール:5μl=16.7ngのプローブ を取り出した。
残りの反応混合物20μlに、上記コントロールC1と共
にRNアーゼHを次のように添加した。
にRNアーゼHを次のように添加した。
時間0分で1μl 時間10分で1μl 時間20分で1μl 反応混合物を30分間インキュベートした。各反応混合
物に、コントロールとしてのプローブに等量のホルムア
ミド染料を加えたものを同量ずつ、加熱プレートを伴っ
た800ボルトの0.8mm20%アクリルアミド/7M尿素ゲル上
で添加した。
物に、コントロールとしてのプローブに等量のホルムア
ミド染料を加えたものを同量ずつ、加熱プレートを伴っ
た800ボルトの0.8mm20%アクリルアミド/7M尿素ゲル上
で添加した。
───────────────────────────────────────────────────── フロントページの続き (56)参考文献 特開 昭62−21062(JP,A) 特開 昭62−190086(JP,A) (58)調査した分野(Int.Cl.6,DB名) C12Q 1/68 C12N 15/09 C07H 21/02 - 21/04 G01N 33/50 BIOSYS(DIALOG) MEDLINE(STN)
Claims (18)
- 【請求項1】ターゲット核酸分子を検出する方法であっ
て、 (a)ターゲット核酸分子と該ターゲット分子より多量
の実質的に相補的な一重鎖核酸プローブとを含む反応混
合物を、プローブとターゲット核酸分子とが互いにハイ
ブリダイズして二重鎖ターゲット−プローブ複合体を生
成するのを可能にする条件下に製造し、ここで該プロー
ブは、構造 [NA 1 -S-NA 2 ] n を有し、NA 1 およびNA 2 は核酸配列であり、そしてSは、
NA 1 またはNA 2 の核酸配列、あるいはNA 1 またはNA 2 配列に
ハイブリダイズし得るターゲット核酸配列の核酸配列を
開裂または分裂することなく開裂または分裂し得る切れ
易い結合である、 (b)ハイブリダイズしたプローブに所定配列内で少な
くとも1回ニックを導入して、ターゲット核酸分子とハ
イブリダイズした少なくとも2個のプローブフラグメン
トを形成し、その際形成されたプローブフラグメントは
一重鎖となり、それによってターゲット核酸分子の別の
プローブとのハイブリダイゼーションが可能となり、 (c)ステップ(a)および(b)を繰り返し;そして (d)プローブフラグメントを同定し、そしてそれによ
ってターゲット核酸分子を検出する ことを含む検出方法。 - 【請求項2】一重鎖核酸プローブが構造 [NA1…R…NA2]n を有し、その際 NA1及びNA2は核酸配列であり、 RはRNA配列であり、 nは1から10の整数である ことを特徴とする請求項1に記載の方法。
- 【請求項3】NA1及びNA2が0個から20個のヌクレオチド
を互いに独立に含み、Rは1個から100個のリボヌクレ
オチドを含み、nは1から10の整数であることを特徴と
する請求項2に記載の方法。 - 【請求項4】NA1及びNA2がDNA配列であることを特徴と
する請求項2に記載の方法。 - 【請求項5】NA1及びNA2がRNA配列であることを特徴と
する請求項2に記載の方法。 - 【請求項6】NA1がRNAまたはDNA配列であり、NA2もRNA
またはDNA配列であることを特徴とする請求項2に記載
の方法。 - 【請求項7】ニック導入ステップを二重鎖リボヌクレア
ーゼで実施することを特徴とする請求項2に記載の方
法。 - 【請求項8】リボヌクレアーゼがRNアーゼHであること
を特徴とする請求項7に記載の方法。 - 【請求項9】リボヌクレアーゼがExoIIIであることを特
徴とする請求項7に記載の方法。 - 【請求項10】核酸プローブを検出可能なマーカーで標
識することを特徴とする請求項1に記載の方法。 - 【請求項11】核酸プローブを固体サポート上に固定す
ることを特徴とする請求項1に記載の方法。 - 【請求項12】ターゲットデオキシリボ核酸分子を検出
する方法であって、 (a)ターゲットデオキシリボ核酸分子と、一方または
両方の末端でターゲットデオキシリボ核酸分子と相補的
であってもなくてもよい1個以上のデオキシリボヌクレ
オチドと共有供給し得る、ターゲットデオキシリボ核酸
分子と実質的に相補的であるリボヌクレオチド配列を有
する一重鎖核酸プローブとを含む反応混合物を、プロー
ブとターゲットデオキシリボ核酸分子とが互いにハイブ
リダイズして二重鎖ターゲット−プローブ複合体を生成
するのを可能にする条件下に製造し、ここで該プローブ
は、構造 [NA 1 -S-NA 2 ] n を有し、NA 1 およびNA 2 は核酸配列であり、Sは、NA 1 ま
たはNA 2 の核酸配列、あるいはNA 1 またはNA 2 配列にハイ
ブリダイズし得るターゲット核酸配列の核酸配列を開裂
または分裂することなく開裂または分裂し得る切れ易い
結合である、 (b)ハイブリダイズしたプローブに所定配列内で少な
くとも1回ニックを導入して、ターゲットデオキシリボ
核酸分子とハイブリダイズした少なくとも2個のプロー
ブフラグメントを形成し、その際形成されたプローブフ
ラグメントは一重鎖となり、それによってターゲット核
酸分子の別のプローブとのハイブリダイゼーションが可
能となり、 (c)ステップ(a)および(b)を繰り返し;そして (d)プローブフラグメントを同定し、そしてそれによ
ってターゲットデオキシリボ核酸分子を検出する ことを含む検出方法。 - 【請求項13】一重鎖核酸プローブが10個から2000個の
リボヌクレオチドを含むことを特徴とする請求項12に記
載の方法。 - 【請求項14】ニック導入ステップを二重鎖リボヌクレ
アーゼで実施することを特徴とする請求項12に記載の方
法。 - 【請求項15】リボヌクレアーゼがRNアーゼHであるこ
とを特徴とする請求項14に記載の方法。 - 【請求項16】リボヌクレアーゼがExoIIIであることを
特徴とする請求項14に記載の方法。 - 【請求項17】核酸プローブを検出可能なマーカーで標
識することを特徴とする請求項12に記載の方法。 - 【請求項18】核酸プローブを固体サポート上に固定す
ることを特徴とする請求項12に記載の方法。
Applications Claiming Priority (2)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
US07/187,814 US5011769A (en) | 1985-12-05 | 1988-04-29 | Methods for detecting nucleic acid sequences |
US187,814 | 1988-04-29 |
Publications (2)
Publication Number | Publication Date |
---|---|
JPH02504110A JPH02504110A (ja) | 1990-11-29 |
JP2839608B2 true JP2839608B2 (ja) | 1998-12-16 |
Family
ID=22690579
Family Applications (1)
Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
---|---|---|---|
JP1505932A Expired - Lifetime JP2839608B2 (ja) | 1988-04-29 | 1989-04-28 | 核酸配列の検出方法 |
Country Status (6)
Country | Link |
---|---|
US (1) | US5011769A (ja) |
EP (1) | EP0365663A4 (ja) |
JP (1) | JP2839608B2 (ja) |
AU (1) | AU3569789A (ja) |
CA (1) | CA1341495C (ja) |
WO (1) | WO1989010415A1 (ja) |
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Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
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KR950013953B1 (ko) * | 1990-01-26 | 1995-11-18 | 애보트 래보라토리즈 | 리가제 연쇄 반응에 적용가능한 표적 핵산의 증폭 방법 |
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US5846717A (en) * | 1996-01-24 | 1998-12-08 | Third Wave Technologies, Inc. | Detection of nucleic acid sequences by invader-directed cleavage |
US6872816B1 (en) * | 1996-01-24 | 2005-03-29 | Third Wave Technologies, Inc. | Nucleic acid detection kits |
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WO1995000665A1 (en) * | 1993-06-17 | 1995-01-05 | The Research Foundation Of State University Of New York | Thermodynamics, design, and use of nucleic acid sequences |
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