JP2812352B2 - 核酸製剤 - Google Patents

核酸製剤

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JP2812352B2 JP6049102A JP4910294A JP2812352B2 JP 2812352 B2 JP2812352 B2 JP 2812352B2 JP 6049102 A JP6049102 A JP 6049102A JP 4910294 A JP4910294 A JP 4910294A JP 2812352 B2 JP2812352 B2 JP 2812352B2
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    • C12N2760/16122New viral proteins or individual genes, new structural or functional aspects of known viral proteins or genes

Description

【発明の詳細な説明】
【0001】
【産業上の利用分野】本発明は、新規の医薬製品、即ち
脊椎動物生体組織中に直接導入した場合にヒトインフル
エンザウイルスを特異的に認識する免疫反応の生成を誘
発する核酸の製造及び使用に関する。
【0002】
【従来の技術】インフルエンザはA又はB型インフルエ
ンザウイルスによる気道の感染により引き起こされる急
性発熱性疾患である。インフルエンザの大発生は殆ど毎
年、周期的流行病又は汎性流行病を伴って全世界で起こ
る。インフルエンザは重篤な全身性症状、入院を要する
重症疾患(例えばウイルス性肺炎)、及び二次細菌性肺
炎のような合併症を引き起こし得る。最近の米国での流
行の年で>10,000(40,000まで)以上の死
亡者を出しているが、非流行年の1年当たりの死亡は
5,000〜10,000名であると考えられる。イン
フルエンザ関連の罹患及び死亡を防止するための最良の
方法はワクチン接種である。最新の認可ワクチンは卵中
で増殖させ、次いで不活性化した3種類のウイルス株
(A株2種及びB株1種)を含むウイルスから得られ
る。3種類のワクチン:即ち全ウイルス、サブビリオン
及び精製表面抗原が利用できる。全ウイルスワクチンで
は発熱性反応が増大するため、小児に用いられるのは後
者の2種のみである。9歳以下の小児は2段階の免疫化
を要するが、一方成人は1回の注射だけでよい。しかし
ながら、老齢患者ではワクチン接種後の抗体力価が4か
月又はそれ以前に防御レベル未満にまで減少した例があ
ったことにより、“初秋にワクチン接種を受けた患者は
冬又は初春に二次投与すると有効である”ことが示唆さ
れている(Medical Letter 32:89
−90,Sept.17,1993参照)。最近のウイ
ルス株で臨床的に流行するものを予測し、新規の有毒株
は来たるべきインフルエンザシーズンに優勢であると予
期されるものに基づき、これらのワクチンを毎年再処方
する。ワクチン再接種は毎年行なうよう推奨されてい
る。
【0003】A.認可ワクチンの限界: 1)特にA型インフルエンザでは抗原変異が生じ、以前
のワクチン(又は以前の感染)により生じている抗体で
は中和されないウイルスを生じる。表面糖タンパク質
(ヘマグルチニン[HA]及びニューラミニダーゼ)を
コードする遺伝子の点突然変異(抗原連続変異)により
及び再類別(抗原不連続変異)により新規の株が生じ、
一方内部タンパク質は連続変異株及び不連続変異株内で
も高度に保存される。免疫化は、細胞媒介免疫を基礎に
した“異種”群間共通免疫ではなく、“同種”株特異性
抗体媒介免疫を引き出すに過ぎない。
【0004】2)インフルエンザウイルスの優勢流行株
が、ある年からその翌年にかけて有意に不連続変異又は
連続変異しない場合でも、抗体力価が低減するため免疫
化は毎年実施しなければならない。血球凝集阻止(H
I)及び中和の抗体は数か月〜数年存続し、その後次第
に低減することが幾人かにより報告されているけれど
も、Advisory Committee on I
mmunizationPracticesは、大きな
連続変異又は不連続変異が認められなかった場合でも年
に1度の免疫化を推奨する理由として、ワクチン接種後
その年内に抗体力価が低減すると言及している(HI抗
体は赤血球を凝集するインフルエンザウイルスの能力を
阻害する。中和抗体と同じく、それはHA抗原に主とし
て対応する。血球凝集阻止試験は中和検定より容易に且
つ低経費で実施し得るので、異なる株に対して反応する
インフルエンザのある株に対して生じる抗体の能力を評
価する手段としてしばしば用いられる)。上記のよう
に、ある程度危険な状態にある老齢患者は、上記防御抗
体力価の有効期間が短いために1シーズンに2回ワクチ
ン接種すべきであると、上記Medical Lett
erは示唆している。
【0005】3)ワクチンの有効性は満足なものではな
い。次シーズンのワクチンの開発は、来たるべき流行株
を予測すること(アジアにおける監視サンプリングによ
る)に依っており、これは不正確で、ワクチン用に用い
る株と実際に野外で流行するものとが余り適合しないと
いうことが起こり得る。さらに1992〜1993年の
インフルエンザシーズン中に起きたように、新規のH3
N2株(A/Beijing/92)がインフルエンザ
シーズンの後期になってから臨床的に明らかになった。
これは、抗原不連続変異のために昔のH3N2株(A/
Beijing/89)により誘発された抗体が、A/
Beijing/92と交叉反応性が不十分となったた
めで、1993〜1994年ワクチンの組成の変更を促
した。しかしながら、現在では認可ワクチンの製造及び
調剤に時間を要するために、既存のワクチンによる防御
が不十分であることが判明し、且つ新規流行中のH3N
2株の被害が増大しているにもかかわらず、1992〜
1993年シーズン中には新規のワクチン株は導入でき
なかった。
【0006】ワクチンと流行株とがよく適合した場合で
も、認可ワクチンは健康な小児及び青年の約70%、虚
弱老齢者の30〜40%の疾患を予防するに過ぎない。
したがって、ワクチン株が流行株に対応する場合にワク
チンの効能を示すためには他の判定基準を用いる。これ
らの判定基準としては、重症疾患及び二次合併症の予防
が挙げられるが、これらは入院防止(自宅生活年配者に
関しては70%、老人ホーム生活年配者に関しては50
〜60%)及び死亡防止(老人ホーム居住者に関しては
80%)に反映される。老人ホームでの感染の蔓延を低
減するための集団免疫は、免疫化のもう一つの利点であ
ると考えられる。
【0007】B.理想的な普遍的インフルエンザワクチ
ンの特性(本発明の目的): 1)群共通(異種)防御の生成。 普遍的ワクチンと
は、例えばH3N2サブタイプ内の、そしてできればサ
ブタイプ間でも、例えばH1N1からH3N2までの異
なる株に対して防御し得るものである。これは内部保存
ウイルスタンパク質からの抗原を認識する細胞毒性Tリ
ンパ球(CTL)の媒介に依存するものと思われるが、
しかし膜結合タンパク質の保存部分に対して向けられる
中和抗体もある役割を演じると考えられる。
【0008】2)抗体反応の幅の増大。 CTLは疾病
からの回復にある役割を演じると考えられるため、もっ
ぱらCTL反応を基礎にしたワクチンは疾病の持続期間
を短縮する(疾病を無症状にさせる点までの場合を含
む)ことが予期されるが、しかし疾病を完全に防止はし
ないと思われる。卵中での継代による現在のインフルエ
ンザワクチンの製造方法は、HA抗原性を変えたウイル
ス亜集団が選択され得ることが実験的に示されている。
その結果、ワクチンにより引き出された抗体が優勢な流
行株に対して完全には有効でないために、ワクチン効力
が減殺される可能性がある。したがって現在のワクチン
と比較して反応の幅を改良した抗体の産生が望まれる。
1992〜93年のインフルエンザシーズンは、A/B
eijing/89を用いたワクチンがやはり毒性の大
きい新規のA/Beijing/92株に対して十分に
交叉反応を示さず、防御力の低い抗体を生成するとい
う、現行のワクチンの限界の優れた事例を提供した。両
株はH3N2、即ち同一サブタイプのものでありなが
ら、アミノ酸配列に関しては、A/Beijing/9
2株はHA1領域における点突然変異が僅かに11(位
置133、135、145、156、157、186、
190、191、193、226及び262)で、A/
Beijing/89株とは異なっていた。現在の製造
方法が交差反応性の欠如に影響を及ぼすか否かは分から
ないが、しかし抗体反応の幅の改良が望ましいことは明
らかである。
【0009】3)抗体反応の持続時間の増大。 インフ
ルエンザ感染の罹患率及び死亡率に関して最も危険性の
高い群の1つ(年配者)は、防御抗体力価が年1度の免
疫化では急速に低減して有効でない群でもあるため、改
良ワクチンはより長く存続する抗体の防御力価を生成す
る必要がある。
【0010】C.ワクチンとしてのポリヌクレオチド ポリヌクレオチド構築物、即ちタンパク質をコードする
DNAプラスミドの筋肉内接種は、筋肉細胞でタンパク
質をその場で生成させることが示されている。ウイルス
タンパク質をコードするcDNAプラスミドを用いるこ
とにより、抗体及びCTL反応をともに生じて、それぞ
れ同種又は交差株防御をその後の誘発の際の同種及び異
種防御に提供する。これらの種類の免疫反応は各々、既
存のワクチン法を上回ると思われる利点を提供する。抗
体を生成するためにPNVを使用すると、抗体反応の持
続時間の増大と、並びにウイルスの臨床的流行株の正確
な配列並びに元のタンパク質(組換え体タンパク質に対
して)の適正な翻訳後修飾及び配座とを有し得る抗原の
供給が生じ得る。この方法によるCTL反応の発生によ
り、病原となる可能性のある生ベクター又は弱毒ウイル
スを使用せずに、交差株防御の実現が可能となる。
【0011】D.背景のさらなる説明: したがって、インフルエンザのようなウイルス(中和抗
体が生成される対象の)に対するワクチンの開発のため
の主な課題は、単離物間又は株間のウイルスエンベロー
プタンパク質の多様性である。マウス及びヒト双方にお
ける細胞毒性Tリンパ球は保存内部ウイルスタンパク質
由来のエピトープを認識でき[J.W.Yewdell
ら,Proc.Natl.Acad.Sci.(US
A)82,1785(1985);A.R.M.Tow
nsendら,Cell 44,959(1986);
A.J.McMichaelら,J.Gen.Viro
l.67,719(1986);J.Bastinら,
J.Exp.Med.165,1508(1987);
A.R.M.Townsend及びH.Bodmer,
Annu.Rev.Immunol.7,601(19
89)]、ウイルスに対する免疫反応に重要であると考
えられる[Y.L.Lin及びB.A.Askona
s,J.Exp.Med.154,225(198
1):I.Gardnerら,Eur.J.Immun
ol.4,68(1974);K.L.Yap及びG.
L.Ada,Nature 273,238(197
8);A.J.McMichaelら,NeW Eng
l.J.Med.309,13(1983);P.M.
Talor及びB.A.Askonas,Immuno
l.58,417(1986)]ので、異なるウイルス
株に対する異種防御を提供し得るCTLワクチンの開発
に尽力が注がれた。
【0012】CD8CTLは、それらのT細胞受容体
がMHCクラスI分子と会合したウイルスペプチドを認
識したとき、ウイルス感染細胞を殺す。[R.M.Zi
nkernagel及びP.C.Doherty,同誌
141,1427(1975);R.N.Germai
n,Nature 353,605(1991)]。こ
れらのペプチドは、ウイルス内のタンパク質の位置又は
機能にかかわらず、内生的合成ウイルスタンパク質由来
のものである。したがって、保存ウイルスタンパク質か
らエピトープを認識することにより、CTLは交差株防
御を提供し得る。CTL認識に関してMHCクラスIと
会合し得るペプチドは細胞質又は小胞体の中に又はそれ
を通過して存在するタンパク質から生じる[J.W.Y
ewdell及びJ.R.Bennink,Scien
ce 244,1072(1989);A.R.M.T
ownsendら,Nature 340,443(1
989);J.G.Nuchternら,同誌339,
223(1989)]。したがって、エンドソーム性処
理経路に入る外生タンパク質は(MHCクラスII分子
による抗原の場合と同様に)概して、CD8+CTL反
応を生じるに際して有効でない。
【0013】CTL反応を生じるための研究の殆どが、
細胞内でタンパク質抗原を産生するための複製ベクター
を用いる[J.R.Benninkら、同誌311,5
78(1984);J.R.Bennink及びJ.
W.Yewdell,Curr.Top,Microb
iol.Immunol.163,153(199
0);C.K.Stoverら,Nature 35
1,456(1991);A.Aldovini及び
R.A.Young,Nature 351,479
(1991);R.Schaferら,J.Immun
ol.149,53(1992);C.S.Hahn
ら,Proc.Natl.Acad.Sci.(US
A)89,2679(1992)]か、又は細胞質ゾル
中へのペプチドの導入に集中した[F.R.Carbo
ne及びM.J.Bevan,J.Exp.Med.1
69,603(1989);K.Deresら,Nat
ure 342,561(1989);H.Takah
ashiら,同誌344,873(1990);D.
S.Collinsら,J.Immunol.148,
3336(1992);M.J.Newmanら,同誌
148,2357(1992)]。これらのアプローチ
はともに、ワクチンとしての有用性をそこなうような限
界を有する。レトロウイルスベクターは融合タンパク質
として発現され得るポリペプチドの大きさ及び構造が限
られているが、一方複製する組換え体ウイルスの能力は
保持しており[A.D.Miller,Curr.To
P.Microbiol.Immunol.158,1
(1992)]、その後の免疫化のためのワクチンのよ
うなベクターの有効性は、ベクターそれ自体に対する免
疫反応により弱体化され得る[E.L.Cooney
ら,Lancet 337,567(1991)]。さ
らに、ウイルスベクター及び修飾病原体は、ヒトでのそ
の使用を妨げ得る固有の危険性を有する[R.R.Re
dfieldら,New Engl.J.Med.31
6,673(1987);L.Mascolaら,Ar
ch.Intern.Med.149,1569(19
89)]。さらに、示されるペプチドエピトープの選択
は、個々のMHC抗原の構造に依っており、したがって
ペプチドワクチンは異系交配集団におけるMHCハプロ
タイプの多様性のために限定された有効性を有する。
【0014】Benvenisty,N.とReshe
f,L.[PNAS 83,9551−9555,(1
986)]は、マウスに腹腔内、静脈内又は筋肉内投与
された、CaCl沈降したDNAが発現されることを
示した。マウスにDNA発現ベクターを筋注(i.
m.)すると、筋肉細胞のDNA取り込み及びDNAに
よりコードされるタンパク質の発現が生じることが立証
された[J.A.Wolffら,Science 24
7,1465(1990);G.Ascadiら,Na
ture 352,815(1991)]。プラスミド
はエピソーム的に保持され、複製しないことが示され
た。その後、ラット、魚類及び霊長類の骨格筋並びにラ
ットの心筋に筋注後に持続性発現が観察された[H.L
inら,Circulation 82,2217(1
990);R.N.Kitsisら,Proc.Nat
l.Acad.Sci.(USA)88,4138(1
991);E.Hansenら,FEBS Lett.
290,73(1991);S.Jiaoら,Hum.
Gene Therapy 3,21(1992);
J.A.Wolffら,Human Mol.Gene
t.1,363(1992)]。治療薬として核酸を用
いる技術は、WO90/11092(1990年10月
4日)に報告されているが、この場合、裸ポリヌクレオ
チドを用いて脊椎動物にワクチン接種した。
【0015】方法の成功のためには免疫化が筋注である
必要はない。即ち、Tang等[Nature,35
6,152−154(1992)]は、ウシ成長ホルモ
ン(BGH)をコードするDNAで被覆した金ミクロ入
射粒子をマウスの皮膚に導入するとマウスにおいて抗−
BGH抗体が産生されることを開示した。Furth等
[Analytical Biochemistry,
205,365−368(1992)]は、生きた動物
の皮膚、筋肉、脂肪及び乳房組織をトランスフェクトす
るためにジェットインジェクターを用い得ることを示し
た。核酸を導入するための種々の方法に関し、近年Fr
iedman,T.,[Science,244,12
75−1281(1989)]の総説がある。Robi
nsonら,Abstracts of Papers
Presented at the 1992 me
eting on Modern Approache
sto New Vaccines,Includin
g Preventionof AIDS,Cold
Spring Harbor,p92も参照して頂きた
いが、この場合、鳥類インフルエンザDNAの鶏へのi
m、ip及びiv投与は致命的影響に対する防御を提供
したと記載されている。しかしながら、どの鳥類インフ
ルエンザウイルス遺伝子を用いたかの開示はなかった。
さらに、交差株防御の誘発については何も触れずに、H
7特異性免疫反応のみが記載されている。
【0016】したがって、本発明はタンパク質の発現を
誘発するために生組織中に核酸を導入するための任意の
公知の方法を意図する。本発明は、ウイルス特異性CT
Lを生成するための抗原処理経路にウイルスタンパク質
を導入する方法を提供する。したがって、ウイルス性病
原体に対する所望の予防的免疫反応を引き出し得る特異
的治療薬の必要性は、本発明のインフルエンザウイルス
により満たされた。本治療アプローチにおいて特に重要
なことは、抗原遺伝子を得た株と比べ異種であるウイル
ス株の感染をさえ防止し得るT細胞免疫反応を誘発する
能力である。したがって、本発明は、ヒトインフルエン
ザウイルス核タンパク質(NP)、ヘマグルチニン(H
A)、ニューラミニダーゼ(NM)、マトリックス
(M)、非構造(NS)、ポリメラーゼ(PB1及びP
B2=塩基性ポリメラーゼ1及び2;PA=酸性ポリメ
ラーゼ)のウイルスタンパク質をコードするDNA構築
物、又は特異的CTLを生成する物質をコードする任意
の他のインフルエンザ遺伝子を提供する。
【0017】インフルエンザウイルスは、複数のRNA
セグメントから成るリボ核酸(RNA)ゲノムを有す
る。各RNAは少なくとも1つの遺伝子物質をコードす
る。NP遺伝子物質はRNAと結合して、ウイルスRN
Aを感染細胞の核中にトランスロケートする。配列は、
50年の期間を見ても、アミノ酸配列中に僅か約7%の
変化率で保存されている。P遺伝子物質(PB1、PB
2、PA)は新規のウイルスRNAの合成に関与する。
これらの遺伝子は、NP遺伝子よりさらに高度に保存さ
れている。HAは主要ウイルスエンベロープ遺伝子物質
である。それはNPほど高度には保存されていない。そ
れは細胞受容体を結合し、したがって新規のインフルエ
ンザ感染をもたらす。主要な中和抗体反応はこの遺伝子
物質に対して向けられる。大部分の細胞毒性Tリンパ球
反応もこのタンパク質に対して向けられる。ヒトインフ
ルエンザウイルスに対する現行のワクチンは、3種類の
株のインフルエンザウイルス又はそれらのHAタンパク
質を有している。しかしながら、株が違うとHAのタン
パク質配列が変異するので、ワクチンは絶えず流行して
いる病原株に合わせて作られねばならない。しかしなが
ら、HAは、適正に存在する場合には、CTLの生成の
ためのいくつかの保存要素を有している。NS1及びN
S2遺伝子物質は生理機能が十分に判明していないが、
しかし防御CTL反応の生成に有意であると思われる。
最後に、HAにおけるよりもわずかに多く保存されたM
1及びM2遺伝子物質は、主要CTL反応を誘発する。
M1タンパク質は非常に豊富に存在するウイルス遺伝子
物質である。
【0018】その後のウイルス感染に対するDNAワク
チン接種の防御効力は、1つ又はそれ以上の上記のウイ
ルスタンパク質をコードする非複製プラスミドDNAを
用いた免疫化により実証される。これは、感染性物質の
関与がなく、ウイルス粒子を集める必要がなく、そして
決定因子選択が可能であるために有益である。さらに、
核タンパク質及びいくつかの他のウイルス遺伝子物質の
配列がインフルエンザの種々の株内に保存されているた
め、クローン化遺伝子が得られた株と同種の又は異種の
インフルエンザウイルスの有毒株によるその後の感染に
対する防御が可能となる。
【0019】本発明の要約 注射又は他の方法により動物組織中に直接導入する場合
に発現され得る本発明のDNA構築物は、新規の予防製
剤である。それらは、株特異性である一般の抗体に対比
して、異なる株のウイルスと反応するウイルス抗原に特
異的な細胞毒性Tリンパ球(CTL)を誘発する。この
ようなCTLのin vivo生成は通常、ウイルス感
染の場合と同様に、抗原の内生的発現を要する。直接ペ
プチド供給の制約を伴わず又はウイルスベクターを使用
せずに、免疫系に関与するウイルス抗原を生成するため
に、ヒトインフルエンザウイルスタンパク質をコードす
るプラスミドDNAをBALB/cマウスの四頭筋に注
入した。これによりインフルエンザウイルス特異性CT
Lが生成され、ウイルス肺力価の低下、体重損失の阻
止、及び生存率の増大で測定されたように、インフルエ
ンザウイルスの異種株を用いたその後の感染試験の防御
がなされた。ヘマグルチニンに対する抗力価中和抗体及
び核タンパク質に対する抗体がアカゲザルで生成され、
鼻腔ウイルスカ価の低下がフェレットの同種及び異種誘
発試験後に観察された。
【0020】本発明に関連する主要な観察を以下に挙げ
る: 1)効力の実証。 NP遺伝子の供給源株とは異なるイ
ンフルエンザの株を用いて試験したマウスにおける生存
率の増大、ウイルス肺力価の低下、及び体重損失の阻止
で測定されるように、核タンパク質(NP)DNAを用
いた免疫化後に異種防御が認められる。この場合、2つ
の株の表面タンパク質はまったく異なっており(H1N
1対H3N2)、試験株は初期株後34年目に生じたも
のである。NP DNA及びマトリックス(M1)DN
Aを別々に、一緒に、又はHADNAと組合せてフェレ
ットを免疫化すると、連続変異株(臨床的単離物)を用
いた試験に対する防御(鼻腔ウイルス脱落低減)が示さ
れた。特にDNAカクテル(Beijing/89タン
パク質をコードするNP及びM1 DNA、及びBei
jing/89又はHawaii/91 HAをコード
するHA DNA)による防御は、フェレットにおける
連続変異株(Georgia/93)に対しては、認可
ワクチン(Beijing/89含有)によってもたら
されるものより大きかった。Hawaii/91からの
HA DNAを含有するカクテルは、Beijing/
89からのHA DNAを含有するカクテルよりもわず
かに効力が高いと思われた。HaWaii/91に関す
るHA DNAを含むカクテルを用いて観察された防御
は同種HA DNA(Georgia/93)を用いて
観察された防御と同等だったが、一方Beijing/
89に関するHA DNAを有するカクテルは同種防御
とは異なっていたが、しかしそれは依然として認可物質
よりも有意に効力が良好であった。HI抗体は、マウ
ス、フェレット、アカゲザル及びアフリカミドリザルを
含めたすべての試験種で産生された。
【0021】2)持続性。 リポーター遺伝子をコード
するDNAを用いた試験において、DNA及びタンパク
質発現の存在は少なくとも1.5年間存続した(マウス
で試験した最長時間;Wolffら,Human Mo
l.Genet.,1992)。したがって、インフル
エンザ遺伝子物質も持続的に発現されるならば、その結
果生じる免疫反応も持続しているはずである。インフル
エンザDNA注入により生成される抗体及びCTL(Y
ankauckasら,DNA & CellBio
l.,1993)、並びに同種防御免疫(MRLデー
タ)は、マウスでは1年に亘って存続することが示され
ている。抗体は、アカゲザルでは今までのところ少なく
とも1年間存続することが示されている。CTL反応及
び異質防御の持続時間(生存率増大)は、6か月まで存
続する(これまでの試験最長時間)。異種防御度のわず
かな低減が生じたが、防御は増強可能である。
【0022】3)用量範囲。 アカゲザルで投与試験を
実施した結果、HA DNA 100μgを2回投与す
ると、今までのところ1年HI抗体の良好な力価が存続
することが示された。マウスにおける防御の発生(異種
試験後の生存率増大)は、6μg(3回投与)という低
い用量で、そして200μgの1回注入で観察された
が、しかし概して注射回数を増大すると(3回まで)防
御程度が改良された。霊長類試験からは、3つのHAs
並びにNP及びM1(後者はH3N2 Beijing
/89遺伝子をコードする)をコードするDNA 10
〜100μgを2回注射すると、認可ワクチンにより生
成されるものとほぼ同じHI抗体力価を生じた。試験し
たすべての動物がインフルエンザには未感染であった
が、一方で標的臨床集団(老齢個体)はすべてインフル
エンザを経験しているということを思い起こすことは重
要である(9才以下の小児に認可ワクチンを2回注射し
たことを思い出していただきたい)。
【0023】本発明の詳しい説明 本発明は、哺乳類及びヒトのような脊椎動物を含めた動
物に直接導入する場合に、動物内でのコード化タンパク
質の発現を誘発する核酸製剤を提供する。タンパク質が
病的症状の場合を除いて通常はその動物には生じないも
の、例えばインフルエンザウイルスと会合したタンパク
質、例えばインフルエンザ核タンパク質、ニューラミニ
ダーゼ、ヘマグルチニン、ポリメラーゼ、マトリックス
又は非構造タンパク質である(しかしこれらに限定され
ない)場合、動物の免疫系が活性化されて防御反応を起
こす。これらの外生タンパク質は動物自身の組織により
生成されるため、発現タンパク質は主な組織適合性複合
体MHCにより処理され、提示される。この認識は、関
連する生物体による実際の感染時に起きるものと類似す
る。結果は、本開示に示すように、有毒感染に対して防
御する免疫反応の誘発である。
【0024】本発明は、同様の機序(上記の“発明の背
景”参照)により注射、吸入又は押印によって動物組織
中にin vivoに導入した場合に、ヒトインフルエ
ンザウイルス遺伝子物質の発現が起きる核酸を提供す
る。したがって、例えば本発明のDNA構築物をマウス
の筋肉中に注射すると、コード化遺伝子物質の発現が誘
発される。フェレット及びアカゲザルでも同様である。
有毒インフルエンザウイルスを用いたその後の試験にお
いては、等しく対照動物を殺す用量を用いても、ポリヌ
クレオチドワクチンを注射した動物は罹患率及び死亡率
が非常に低下する。したがって、本発明は、インフルエ
ンザウイルス感染を防止するためのヒトに有用なワクチ
ンを開示する。
【0025】インフルエンザウイルスタンパク質をコー
ドするDNA構築物が動物における防御免疫反応を引き
出すことを、我々は示す。下記でさらに詳しく述べるよ
うに、動物における免疫反応としては、マウスにおける
抗体及びCTL産生、フェレット及び霊長類における抗
体産生、並びにマウス及びフェレットにおけるインフル
エンザの同種の連続変異及び不連続変異株を用いたウイ
ルス誘発試験に対する防御が挙げられる。ウイルスタン
パク質をコードするDNAを用いた免疫化のおそらくは
最もめざましい結果は、別のサブタイプのウイルスに対
する防御を付与する能力であった。これは、CTL誘発
成分のワクチンへの付加は、シーズン半ばに発生したり
又はワクチン株が翌年のために毎年選択された際には予
想できなかった新変種の出現による衝撃を軽減するのに
役立つことを示唆する。HA、NP及びM1遺伝子をコ
ードするcDNAベクターによる免疫化が、認可ワクチ
ンの場合よりもフェレットにおけるウイルスの連続変異
株に対してより有効に防御し得た、ということは重要で
ある。これは、PNVにおける内部遺伝子をコードする
構築物の使用の妥当性を意味する。
【0026】ある態様において、連続変異及び不連続変
異抗原に対する群共通防御を提供するために、本ワクチ
ン生成物質は、例えばA/H1N1(A/Texas/
91)、A/H3N2(A/Georgia/93)及
びB(B/Panama/90)ウイルスに代表された
3つの流行の臨床株からのHAをコードする別々のDN
Aプラスミド、並びにA(Beijing/89;H3
N2)及びB株の両方からの内部保存タンパク質NP及
びM1(マトリックス)をコードするDNA構築物から
成る。HA DNAは、HAを生成し、その結果HAに
対する中和抗体を生じることにより機能する。これはタ
イプ特異性であって、あるものは現行認可タンパク質ベ
ースのワクチンに比して連続変異株に対する防御の幅を
増大した。NP及びM1構築物はCTL生成を促し、こ
れが交差株防御を提供して、ウイルス負荷を低減し、疾
病からの回復を促進する。DNA構築物(筋細胞におけ
るエピソーム性非複製非一体化形態での)の予測持続性
は、現行ワクチンに比して防御の持続時間を増大するこ
とが予期される。
【0027】現行認可ワクチンよりも有益であると考え
られる点を以下に挙げる:CTL反応による防御幅の増
大±抗体幅の増大、及び防御継続時間の増大。PNVア
プローチは、新規のDNA構築物は臨床的野外単離物か
らもっと直接的に作り得るため、現行認可ワクチンのよ
うにリアソータントを作製し、選択しそして増殖する必
要がない。
【0028】本発明のある態様では、A/PR/8/3
4株から得られたヒトインフルエンザウイルス核タンパ
ク質NP配列を発現ベクター中でクローン化する。ベク
ターはRNAポリメラーゼ転写のためのプロモーター、
及びNPコード配列の末尾に転写ターミネーターを含有
する。ある好ましい態様においては、プロモーターは、
強力な転写プロモーターであるラウス肉腫ウイルス(R
SV)ロングターミナルリピート(LTR)である。さ
らに好ましいプロモーターは、イントロンA配列を有す
るサイトメガロウイルスプロモーター(CMV−int
A)である。好ましい転写ターミネーターは、ウシ成長
ホルモンターミネーターである。CMVintA−BG
Hターミネーターの組合せが特に好ましい。さらに、製
剤の調製を容易にするために、抗生物質耐性マーカーも
発現ベクター中に含まれるのが好ましい。アンピシリン
耐性遺伝子、ネオマイシン耐性遺伝子又は任意の他の製
薬上許容可能な抗生物質耐性マーカーを用い得る。本発
明の好ましい態様において、抗生物質耐性遺伝子はネオ
マイシン耐性のための遺伝子物質をコードする。さら
に、原核生物において発酵による製剤を高効率で達成す
るためには、ベクターが複製原点を含有し、高複写数を
有すると有益である。多数市販されている原核性クロー
ニングベクターは、いずれもこれらの利益を提供する。
本発明の好ましい態様においては、これらの機能性は、
pUCとして公知の市販ベクターにより提供される。非
必須DNA配列は除去するのが望ましい。したがって、
pUCのlacZ及びlacIコード配列は、本発明の
ある態様においては除去される。
【0029】ある態様では、発現ベクターpnRSVを
用いるが、この場合ラウス肉腫ウイルス(RSV)ロン
グターミナルリピート(LTR)をプロモーターとして
用いる。別の態様では、CMVプロモーター及びBGH
転写ターミネーターをその中でクローン化したV1、即
ち突然変異化pBR322ベクターを用いる。V1−N
P構築物を用いてマウスを免疫化し、異種感染を防御す
るCTLを誘発した。本発明の特に好ましい態様におい
て、V1の要素を組合せてV1Jと命名する発現ベクタ
ーを生成した。V1J中で、インフルエンザウイルス遺
伝子、例えばA/PR/8/34 NP、PB1、NS
1、HA、PB2又はM1遺伝子をクローン化する。さ
らに別の態様において、アンピシリン耐性遺伝子をV1
Jから除去し、ネオマイシン耐性遺伝子に置き換えて、
V1J−neo(配列番号18、図7)を形成し、この
中で、本発明に従って用いるために多数の異なるインフ
ルエンザウイルス遺伝子をクローン化した。さらに別の
態様では、ベクターはV1Jnsであって、これは、そ
れまでになかったSfiI制限部位をV1J−neoの
2114位に一つだけあるKpnI部位に組み込んだ以
外は、V1Jと同様である。ヒトゲノムDNAにおける
SfiI部位の頻度は非常に低い(約1部位/100,
000塩基)。したがって、抽出ゲノムDNAをSfi
I消化するだけで、このベクターにより宿主DNAとの
発現ベクター一体化を注意深く監視し得る。さらなる改
良において、ベクターはV1Rである。このベクターに
おいては、できるだけ非必須DNAをベクターから“切
り取って”高度に詰まったベクターを生成した。このベ
クターはV1Jnsの誘導体であって、図36(配列番
号45)に示す。このベクターによって、望ましくない
配列がコードされることなく大きな挿入物を使用できる
し、特異的インフルエンザウイルス遺伝子をコードする
構築物が周囲組織に導入される場合の細胞による取り込
みを最適化できる。図36では、切り取られたV1Jn
eo(図7)の部分をギャップで、挿入配列は太字で示
すが、V1Jneoの塩基番号は変えていない。前述の
ベクター修飾及び開発手順は当業者に公知の方法により
達成し得る。記載した特定の生成物質は、慣用的方法に
より得られたが、適用される特定の目的には特に有用で
あった。
【0030】本発明のある態様はA/PR/8/34株
からのインフルエンザNP遺伝子を組み入れるのである
が、さらに好ましい態様は最近のインフルエンザウイル
ス単離物からのNP遺伝子、HA遺伝子、NA遣伝子、
PB遺伝子、M遺伝子又はNS遺伝子を組み入れる。こ
れは、ウイルス遺伝子のDNAコピーを調製し、次いで
個々の遺伝子をサブクローニングすることにより達成さ
れる。多数のインフルエンザウイルス株の多数の遺伝子
に関する配列が、現在、GENBANKから公式に入手
できる(インフルエンザA遺伝子に関しては約509の
配列)。したがって、ウイルスの近年のTexas,B
eijing又はPanama単離物からクローン化さ
れ、Center for Disease Cont
rolが抗インフルエンザワクチンに望ましいと推奨し
た株であるこれらの遺伝子が本発明に好ましい(Led
erle,Physicians Desk Refe
rence,1993,p1232のFLU−IMMU
NER インフルエンザウイルスワクチンを参照。A/
Texas/36/91,H1N1;A/Beijin
g/353/89,H3N2;及びB/Panama/
45/90からのヘマグルチニンタンパク質を含有する
3価の精製インフルエンザ表面抗原ワクチン)。用語を
統一するために、DNA構築物を記述するために本明細
書中では以下の慣例に従った:“ベクター名 − イン
フルエンザ株 − 遺伝子”。したがって、A/PR/
8/34株のNP遺伝子が発現ベクターV1Jneo中
にクローン化される構築物は、本明細書では“V1Jn
eo−PR−NP”と呼ぶ。当然、ウイルス変異の病因
株として、製剤中に組み込まれるのに最適な遺伝子は変
わり得る。しかしながら、下記に実証するように、異種
株に対して防御し得る細胞毒性リンパ球反応が誘発され
るため、全ウイルス又はサブユニットポリペプチドベー
スのワクチンと比較した場合、本発明の新規のワクチン
において株変異性は余り重要でない。さらに、製剤は新
規の遺伝子を容易に挿入できるため、これは分子生物学
の標準的方法で容易になされる調節手段である。
【0031】核タンパク質の配列はインフルエンザの種
々の株に保存されるため、核タンパク質に関する遺伝子
をクローニングした株に対して異種であるインフルエン
ザAの有毒株によるその後の誘発に対しても、防御が達
成される。インフルエンザAの多数の株からのNPの比
較は、二次構造に有意差を示さず[M.Gammeli
nら,Virol.170,71,1989]、アミノ
酸配列の変化も非常に少なかった[O.T.Gorma
nら,J.Virol.65,3704,1991]。
約50年の間に、ヒト株におけるNPは0.66アミノ
酸変化/年の割合で進化したに過ぎない。さらに、A/
HK/68−特異性CTLがA/PR/8/34 NP
の配列に由来する合成ペプチド NP(147−15
5)で刺激された標的細胞を認識するという我々の結果
は、このH−2K−制限CTLエピトープが34年間
機能的に無傷のままであったことを示している(図2参
照)。遺伝子がウイルス表面抗原、例えばヘマグルチニ
ン又はニューラミニダーゼをさえコードする場合、相当
の中和体液性(抗体)免疫反応が非常に重要な細胞毒性
リンパ球反応に加えて生じ得るということにも留意すべ
きである。
【0032】インフルエンザAの保存内部タンパク質を
コードするDNA発現ベクターを筋注すると、その後の
ウイルス誘発に対し有意の防御免疫が生じる。特に、N
P特異性抗体及び一次CTLが生成された。NP DN
A免疫化は、対照と比較した場合、ウイルス肺力価の低
下、体重損失の阻止及び生存率の増大を引き起こした。
防御免疫反応は、ウイルス感染との戦いにおいてNP抗
体単独の作用の欠如によって実証される(実施例4参
照)ように、NP−特異性抗体により媒介されず、した
がってNP特異性細胞免疫によるものと考えられた。さ
らに、NPに対して向けられる相当量の一次CTLを生
じた。防御は、DNAをクローニングした株とは異種の
インフルエンザAの有毒株に対してであった。さらに、
誘発株がA/PR/8/34株後30年以上経ったもの
だが、これは、変異性エンベロープタンパク質は抗原性
不連続変異及び連続変異したにもかかわらず、保存タン
パク質に対して向けられる免疫反応が有効であることを
示す。インフルエンザウイルス遺伝子物質は各々ある程
度の保存を示すため、そしてCTLは細胞内発現及びM
HCプロセッシングに対する反応で生成され得るため、
他のインフルエンザウイルス遣伝子はNPに関してなさ
れたのと同様の反応を生じることが予測される。免疫原
性エピトープの同定方法は、当業者には十分公知である
[例えば、Shiraiら,J.Immunol.14
8:1657−1667,1992;Choppin
ら,J.Immunol.147:575−583,1
991;Calin−Laurensら,Vaccin
e 11:974−978,1993参照]。したがっ
て、発現ベクターにおけるクローン化し配列決定した結
合物によって示される(下記参照)ように、多数のこれ
らの遺伝子が、これらの構築物が利用可能形態の予防薬
であるようクローン化された。
【0033】したがって、本発明は免疫原としてインフ
ルエンザウイルスタンパク質をコードする発現ベクター
を提供する。本発明は、自己複製剤又はアジュバントを
必要としない交差株防御免疫を誘発する手段を提供す
る。さらに、DNAを用いた免疫化は、多数の他の利点
を提供する。先ず、ワクチン接種のためのこのアプロー
チは、CD8CTL反応が病理生理学的工程に重要で
あるため、腫瘍並びに感染剤に適用できる[K.Tan
akaら,Annu.Rev.Immunol.6,3
59(1988)]。したがって、形質転換工程に決定
的なタンパク質に対する免疫反応を引き出すことは、癌
防御又は免疫療法の有効な手段である。第二に、ウイル
スタンパク質(NP及びヘマグルチニン)及びヒト成長
ホルモンDNAの注入後の発現タンパク質に対する高力
価抗体の形成[例えば、D.C.Tangら,Natu
re 356,152,1992参照]は、これが、別
々に又は保存抗原を標的にした細胞毒性Tリンパ球ワク
チンと組合せて、抗体由来のワクチンを製造する平易で
且つ非常に有効な手段であることを示す。
【0034】DNA構築物の生成及び精製が容易である
ことは、伝統的タンパク質精製によく比べ、組合せワク
チンの生成がしやすいという利点がある。したがって、
例えばNP、HA、M1、PB1、NS1又は他のイン
フルエンザウイルス遺伝子をコードする多面的構築物を
調製、混合、同時投与し得る。最後に、タンパク質発現
がDNA注入後に保持されるため[H.Linら,Ci
rculation82,2217(1990);R.
N.Kitsisら,Proc.Natl.Acad.
Sci.(USA)88,4138(1991);E.
HanSonら,FEBS Lett.290,73
(1991);S.Jiaoら,Hum.Gene T
herapy 3,21(1992);J.A.Wol
ffら,Human Mol.Genet.1,363
(1992)]、B−及びT細胞記憶の持続性が増強さ
れ[D.Gray及びP.Matzinger,J.E
xp.Med.174,969(1991);S.Oe
henら,同誌176,1273(1992)]、それ
により永続性体液性及び細胞媒介性免疫が生み出され
る。
【0035】現行認可インフルエンザワクチンの限界に
より、感染防止及び病状軽減のためのさらに有効な手段
の開発の必要性が強調されている。古いワクチンは防御
の限界を示し、2〜3の選択ウイルス株に対してのみ有
効であって、その効力は短期間で衰える。したがって、
現在のワクチンは、有効性維持のためには毎年接種用に
再処方せねばならない。内部タンパク質に対する改良C
TL反応の生成は、現在の認可ワクチンではできない有
意の長期交差反応性免疫を提供するものと思われる。
【0036】インフルエンザ抗原に対して向けられる宿
主免疫反応の検出により、マウス、フェレット及び非ヒ
ト霊長類におけるPNV構築物からのタンパク質発現
を、我々は実証した。マウスにインフルエンザNPをコ
ードするDNAを注射すると、DNA構築物に含まれる
ものとは異なるインフルエンザサブタイプ(不連続変異
株)による誘発後に、対照動物と比較して、生存率の増
大、ウイルス肺力価の低下及び体重損失減少をもたらし
た。NP DNAを接種したフェレットにおける不連続
変異株での誘発後のウイルス脱落低減も我々は観察し
た。これらの結果は、インフルエンザ株における主要不
連続変異に対する防御がNPをコードする遺伝子を含む
DNAワクチンにより増強されたことを示す。HA D
NAを注射し、その後連続変異ウイルス株で実験動物を
誘発すると、ウイルス脱落のさらなる実質的低減が引き
起こされた。内部タンパク質DNAを付加すると、HA
DNA単独注入後に観察された高程度の防御が多少増
大した。
【0037】インフルエンザDNAに対する免疫反応
を、注射後6か月間マウスで追跡調査した結果、抗体、
CTL活性及びin vivo防御の持続が認められ
た。DNAを反復注入すると、異なるサブタイプのイン
フルエンザ株による25週目の誘発後の生存率がさらに
増大し、防御的細胞媒介免疫を高める能力を示した。抗
体持続性も、アフリカミドリザルにおいてHA DNA
を2回注射後少なくとも1年間実証され、HA DNA
を1回注射後は少なくとも1か月間存続した。
【0038】これらの動物実験の結果は、直接DNA注
入がインフルエンザ感染及び疾病に対するヒトの防御の
ための方法改良を提供することを示す。留意すべきは、
DNA注入による実験的防御が未感染マウス及びフェレ
ットのワクチン接種により達成されたことである。DN
Aを接種した成人は、過去にインフルエンザに曝された
ことがある。これらの人々は、DNA構築物による免疫
化により、おそらくは持続時間の増大したさらに実質的
な免疫反応を示す。
【0039】使用濃度を最適にするために、免疫原性に
関して用量範囲を比較する。小哺乳類実験では、1μg
という少量のNPDNAが抗体及びCTL反応を誘発し
た。アカゲザルの免疫化は、100及び1000μgの
用量のHA DNA(A/PR/08/34)を用いて
2匹中2匹とも抗体反応をもたらしたが、一方、10μ
g 1回注射には2匹のうち1匹が反応した。別々の実
験において、未使用アフリカミドリザルに3種類のウイ
ルスサブタイプからのHAをコードする5つの異なるD
NA構築物並びにインフルエンザAウイルスからのNP
及びM1をコードするDNAの混合物を注射した。各群
とも3匹のサルのうち3匹が5つの構築物の各々を10
μg又は100μg含有するワクチンに反応した。これ
らの所見に基づいて、10、50、100及び200μ
gのDNAの投与がヒトでは有効であると予測される。
【0040】認可不活化ワクチンによる感染防止は、H
Aに対して向けられる血清及び粘膜抗体レベルと相関す
るが、内部インフルエンザタンパク質に対する抗体反応
とは相関しない。したがって、HAはインフルエンザD
NAワクチンの開発に含まれねばならない。しかしなが
ら、NPに対する免疫反応はHAに対する抗体反応を増
強し、インフルエンザ内部タンパク質はインフルエンザ
の抗原的に別種の株と交差反応性のCTL反応を提供す
る。上記のように、注射に内部タンパク質並びにHAを
コードするDNA構築物が含まれる場合の免疫原性及び
防御の改良を動物実験は示している。内部タンパク質を
コードするDNA構築物を含入すると、ヒトにおけるD
NAワクチンの効力が増強されると思われる。投与レベ
ルはこれらの成分の相互作用に依っていると考えられる
ため、標準的手段により当業者はHA、NP及びM1
DNA構築物の混合物を製造するためにワクチン中のD
NAの量を決定し得る。これらの各成分に対する宿主反
応は、ヘマグルチニン抑制(HI)力価、及びHA成分
に対する中和、並びにM1及びNPエピトープに対する
CTL反応を比較して、別々に測定し得る。結果を、H
Aのみを発現する構築物を注射後の抗体反応と比較す
る。これらの試験によりHA及び内部タンパク質をコー
ドするDNAを含有するワクチンに対する反応増強の可
能性を評価できる。
【0041】ヒトでの有効性を、同一のウイルス株並び
に異なるサブタイプのインフルエンザ株に対するワクチ
ン効力を示すよう、インフルエンザDNAワクチンを接
種し、その後鼻腔内誘発を施された有志で明らかにし
た。ワクチンの組成、用量及び投与計画は前記試験を基
礎にする。臨床的効力は、感染率、疾病状況及び疾病持
続期間で示す。防御と相関する代用マーカーを調べるた
めに、これらの臨床所見を、宿主免疫反応及びウイルス
脱落の実験室評価と比較する。
【0042】DNA構築物を調製及び精製するための分
子生物学の標準技法により、本発明のDNA治療薬の調
製が可能である。したがって分子生物学の標準技法は本
発明の生成物質の製造のために十分である一方、本明細
書に開示した特定の構築物は意外にも、標準不活化全ウ
イルス又はサブユニットタンパク質ワクチンによっては
これまで得られなかった交差株防御を生じる、新規の治
療薬を提供する。
【0043】ワクチン受容者に導入される発現可能なD
NAの量は、DNA構築物中に用いる転写及び翻訳プロ
モーターの強度に、そして発現化遺伝子物質の免疫原性
に依っている。概して、約1μg〜1mg、好ましくは
約10μg〜300μgの免疫的又は予防的有効量を筋
組織に直接投与する。皮下注射、皮内導入、皮膚を通し
ての押印、及び他の投与方法、例えば腹腔内、静脈内、
又は吸入投与を意図してもよい。ブースターワクチン接
種が提供されることも意図し得る。
【0044】DNAは裸で、即ちいずれのタンパク質、
アジュバント又は受容者免疫系に影響を及ぼす他の薬剤
とも会合していないこともある。この場合、DNAが生
理的に許容可能な溶液、限定はしないが例えば滅菌食塩
水又は滅菌緩衝食塩水中に存在することが望ましい。あ
るいは、DNAは、DNA−リポソーム混合物として、
リポソーム、例えばレシチンリポソーム又は当業界で公
知の他のリポソームと会合し得る(例えばWO93/2
4640参照)か、あるいはDNAは免疫反応を増強す
るために当業界で公知のアジュバント、例えばタンパク
質又は他の担体(これらに限定されない)と会合し得
る。DNAの細胞取り込みを助ける薬剤、例えばカルシ
ウムイオン、ウイルスタンパク質及び他のトランスフェ
クション促進剤(これらに限定されない)を用いるのも
有益である。これらの薬剤は一般に、トランスフェクシ
ョン促進剤及び製薬上許容可能な担体と呼ばれる。本明
細書で用いる場合、遺伝子という用語は、独立のポリペ
プチドをコードする核酸のセグメントを指す。製剤及び
ワクチンという用語は、免疫反応の誘発に有用な組成物
を示すために同じ意味で用いる。構築物及びプラスミド
という用語は、同じ意味で用いる。ベクターという用語
は、本発明の方法に用いるために遺伝子がその中にクロ
ーン化されるDNAを示すために用いる。
【0045】したがって、本発明のある態様は、ヒトを
含めた哺乳類のような脊椎動物における免疫反応をin
vivoで誘発するためのインフルエンザウイルス遺
伝子の使用方法であって、以下の: a)遺伝子を単離し; b)生組織中に導入される場合に遺伝子の転写開始及び
その後の翻訳を指図する制御配列と操作可能的に遺伝子
が結合するように遺伝子を調節配列と結合させ; c)遺伝子を生組織中に導入し;そして d)任意に付加的インフルエンザ遺伝子で増強する ことを包含する方法である。
【0046】本発明の好ましい態様は、インフルエンザ
ウイルスの異種株に対する防御方法である。これは、保
存インフルエンザウイルスエピトープをコードする免疫
的有効量の核酸を投与することにより達成される。例え
ば、核タンパク質に関する全インフルエンザ遺伝子はこ
の機能を提供するので、これらの遺伝子内の保存エピト
ープをコードする他のインフルエンザ遺伝子及びその部
分に関するコード配列も同様に交差株防御を提供すると
みられる。
【0047】本発明の別の態様では、DNAワクチンは
ヒトインフルエンザウイルス核タンパク質、ヘマグルチ
ニン、マトリックス、非構造、又はポリメラーゼ遺伝子
物質をコードする。この態様の特定の実施例を以下に示
すが、この場合ヒトインフルエンザウイルス遺伝子は、
ヒトインフルエンザウイルス単離物 A/PR/8/3
4の核タンパク質、塩基性ポリメラーゼ1、非構造タン
パク質1、ヘマグルチニン、マトリックス1、塩基性ポ
リメラーゼ2、ヒトインフルエンザウイルス単離物 A
/Beijing/353/89の核タンパク質、ヒト
インフルエンザウイルス単離物 A/Texas/36
/91のヘマグルチニン遺伝子、又はヒトインフルエン
ザウイルス単離物 B/Panama/46/90のヘ
マグルチニン遺伝子をコードする。
【0048】本発明の特定の態様において、DNA構築
物はインフルエンザウイルス遺伝子をコードするが、こ
の場合、DNA構築物を動物生体組織中に導入すると発
現して、そのコード化インフルエンザ遺伝子発現物質に
対する免疫反応を生じ得る。このようなDNA構築物の
例を以下に示す: a)pnRSV−PR−NP; b)V1−PR−NP; c)V1J−PR−NP(これの5′末端が配列番号1
2である); d)V1J−PR−PB1(これの5′末端が配列番号
13である); e)V1J−PR−NS(これの5′末端が配列番号1
4である); f)V1J−PR−HA(これの5′末端が配列番号1
5である); g)V1J−PR−PB2(これの5′末端が配列番号
16である); h)V1J−PR−M1(これの5′末端が配列番号1
7である); i)V1Jneo−BJ−NP(これの5′末端が配列
番号20でありそしてこれの3′末端が配列番号21で
ある); j)V1Jneo−TX−NP(これの5′末端が配列
番号24でありそしてこれの3′末端が配列番号25で
ある); k)V1Jneo−PA−HA(これの5′末端が配列
番号26でありそしてこれの3′末端が配列番号27で
ある); l)V1Jns−GA−HA(A/Georgia/0
3/93),構築物サイズ6.56Kb(これの5′末
端が配列番号46でありそしてこれの3′末端が配列番
号47である); m)V1Jns−TX−HA(A/Texas/36/
91),構築物サイズ6.56Kb(これの5′末端が
配列番号48でありそしてこれの3′末端が配列番号4
9である); n)V1Jns−PA−HA(B/Panama/45
/90),構築物サイズ6.61Kb(これの5′末端
が配列番号50でありそしてこれの3′末端が配列番号
51である); o)V1Jns−BJ−NP(A/Beijing/3
53/89),構築物サイズ6.42Kb(これの5′
末端が配列番号52でありそしてこれの3′末端が配列
番号53である); p)V1Jns−BJ−M1(A/Beijing/3
53/89),構築物サイズ5.62Kb(これの5′
末端が配列番号54でありそしてこれの3′末端が配列
番号55である); q)V1Jns−PA−NP(B/Panama/45
/90),構築物サイズ6.54Kb(これの5′末端
が配列番号56でありそしてこれの3′末端が配列番号
57である); r)V1Jns−PA−M1(B/Panama/45
/90),構築物サイズ5.61Kb(これの5′末端
が配列番号58でありそしてこれの3′末端が配列番号
59である)。
【0049】
【実施例】以下の実施例で本発明をさらに説明するが、
本発明はこれら実施例の個別条件に限定されるものでは
ない。
【0050】実施例1 ヒトインフルエンザウイルスタンパク質をコードするD
NA構築物の調製 : i)pnRSV−PRNP:A/PR/8/34遺伝子
をpAPR−501[J.F.Youngら,The
Origin of Pandemic Influe
nza Viruses,W.G.Laver編(El
sevierScience Publishing
Co.,Inc.,1983)]から1565塩基対E
coRI断片(pRSV−BLのクレノウ充填及びホス
ファターゼ処理XbaI部位中にクレノウ充填及びクロ
ーン化した)として単離した。pRSV−BLを、先ず
pBL−CAT3[B.Luckow及びG.Schu
tz,Nuc.Acid Res.15,5490(1
987)]ベクターをXhoI及びNcoIで消化して
CATコード配列を除去し、クレノウ充填及び自己結紮
(ligate)して構築した。RSVプロモーター断
片をNdeI及びAsp718断片としてpRshgr
nx[V.Giguereら,Nature 330,
624(1987)](クレノウ充填して上記で生じた
中間ベクター(CAT配列を欠くpBL−CAT)のH
indIII部位中にクローン化した)から単離した。
【0051】ii)V1−NP:pCMVIE−AKI
−DHFR[Y.Whangら,J.Viol.61,
1796(1987)]から発現ベクターV1を構築し
た。ベクターをEcoRIで切断し、自己結紮してAK
I及びDHFR遺伝子を除去した。このベクターはCM
Vプロモーター中にイントロンAを含有しないので、そ
れを内部にSacI部位を欠くPCR断片として加えた
[B.S.Chapmanら,Nuc.Acids R
ec.19,3979(1991)の配列番号による1
855に]。PCR反応のために用いた鋳型は、pCM
VintBLを生成するよう、hCMV−IE1エンハ
ンサー/プロモーター及びイントロンAを含むpCMV
6a120[B.S.Chapmanら,同誌を参照]
からのHindIII及びNheI断片を、pBL3の
HindIII及びXbaI部位に結紮して作ったpC
MVintA−Luxであった。RSV−Lux[J.
R.de Wetら,Mol.Cell Biol.
7,725,1987]からの1881塩基対ルシフェ
ラーゼ遺伝子断片(クレノウ充填したHindIII−
SmaI)を、クレノウ充填しホスファターゼ処理した
pCMVintBLのSa1I部位中にクローン化し
た。
【0052】イントロンAを結びつけるプライマーを以
下に示す: 5′プライマー(配列番号5): 5′−CTATATAAGCAGAG CTCGTTT
AG−3′. 3′プライマー(配列番号6): 5′−GTAGCAAAGATCTAAGGACGGT
GA CTGCAG−3′. SacI部位を除去するのに用いたプライマーを以下に
示す: センスプライマー(配列番号7): 5′−GTATGTGTCTGAAAATGAGCGT
GGAGATTGGGCTCGCAC−3′ 及びアンチセンスプライマー(配列番号8): 5′−GTGCGAGCCCAATCTCCACGCT
CATTTTCAGACACATAC−3′ PCR断片をSacI及びBglIIで切断し、同一酵
素で切断済のベクターに挿入した。インフルエンザA
(A/PR/8/34)からのNP遺伝子をpAPR5
01[J.F.Youngら,The Origin
of Pandemic Influenza Vir
uses,W.G.Laver編(Elsevier
Science PubliShing Co.,In
c.,1983)]から1565塩基対のEcoRI断
片として切り離し、盲端化した。それを盲端化BglI
I部位でV1に挿入して、V1−NPを作製した。大腸
E.coli中でプラスミドを増殖させて、アルカリ
性溶解法により精製した[J.Sambrook,E.
F.Fritsch及びT.Maniatis,Mol
ecular Cloning,A Laborato
ry Manual,第二版(Cold Spring
Harbor Laboratory Press,
1989)]。CsClバンド化DNAをエタノール沈
降させ、注射用に0.9%食塩水中に2mg/mlで再
懸濁した。
【0053】実施例2 ヒトインフルエンザウイルス細胞毒性Tリンパ球に関す
る検定 : 細胞毒性Tリンパ球を、DNAで免疫化した、又はA/
HK/68の感染から回復したマウスから生成した。対
照培養は、対照DNAを注射したマウス並びに非注射マ
ウスから得た。単一細胞懸濁液を調製し、塩化アンモニ
ウムを用いて溶血させて赤血球を除去し、10% ウシ
胎仔血清(FBS)、100U/mlのペニシリン、1
00μg/mlのストレプトマイシン、0.01M H
EPES(pH7.5)及び2mM 1−グルタミンを
補充したRPMI 1640中で脾細胞を培養した。同
数の自系照射刺激体細胞をH−2K制限ペプチドエピ
トープ NP147−155(Thr Tyr Gln
Arg Thr ArgAla Leu Val
(配列番号9))を用いて10μMで60分間パルスす
るか、又はインフルエンザA/PR/8/34(H1N
1)で感染させ、10U/mlの組換え体ヒトIL−2
(Cellular Products,Buffal
o,NY)を加えて、培養を5%CO及び100%相
対湿度で37℃で7日間保持した。選択実験では、rh
IL−2(20U/ml)及びConA(2μg/m
l)を自系刺激体細胞の代わりに加えた。細胞毒性T細
胞エフェクター活性を、細胞10個当たり60μCi
51Crを用いて3時間標識化し、上記の様にNP1
47−155でパルス化した、又はインフルエンザA/
Victoria/73(H3N2)に感染させたP8
15細胞を用いて測定した。対照標的(ペプチド又はウ
イルスを用いずにP815で標識化)は溶解しなかっ
た。標的を丸底96ウエルプレート中に1×10細胞
/ウエルで平板培養し、3通りで4時間インキュベート
した。上清(30μl)を各ウエルから取り出してBe
taplateシンチレーションカウンター(LKB−
Wallac,Turku,Finland)で計数し
た。6M HClの付加により放出される最大計数及び
CTLを用いずに放出される自発的計数を各標的標本に
関して調べた。特異的溶解率(%)は以下のように算出
した:[(実験値−自然発生値)/(最大値−自然発生
値)]×100。
【0054】実施例3 NP特異性CTL及び抗体のin vivo生成 : BALB/cマウスの両足の四頭筋に、ラウス肉腫ウイ
ルス又はサイトメガロウイルスプロモーターにより駆動
されるA/PR/8/34核タンパク質をコードするプ
ラスミドcDNAを注射した。
【0055】使用した発現ベクターを以下に示す: i)pnRSV−PRNP(実施例1参照): ii)V1−NP(実施例1参照)。
【0056】用いた動物は、Charles Rive
r Laboratories,Raleigh,NC
から入手した雌BALB/c マウスであった。マウス
は生後4〜5週齢で入手し、最初に5〜6週齢でDNA
を注射した。別記しない限り、DNAの注射は両足の四
頭筋に投与し、各足はDNA 100μgを含有する滅
菌食塩水 50μlを摂取した。マウスには3週間の間
隔で1、2又は3回の摂取を施した。陰性対照動物には
注射しないか又は挿入NP遺伝子を欠いた適切なブラン
クベクターを注射した。
【0057】選択動物の筋肉中のNPプラスミドDNA
の存在又は非存在をPCRで分析した(図1)。プラス
ミドDNA(NP又はルシフェラーゼDNA)は、試験
した注射筋肉48例中44例で検出された。ルシフェラ
ーゼDNA注射マウスでは、当業界で公知の方法によっ
て筋抽出物中に回収されたルシフェラーゼ活性により、
タンパク質発現を実証した[J.A.Wolffら,S
cience 247,1465(1990):G.A
scadiら,Nature 352,815(199
1);H.Linら,Circulation 82,
2217(1990);R.N.Kitsisら,Pr
oc.Natl.Acad.Sci.(USA)88,
4138(1991);E.Hansenら,FEBS
Lett.290,73(1991);S.Jiao
ら,Hum.Gene Therapy 3,21(1
992);J.A.Wolffら,Human Mo
l.Genet.1,363(1992)]。
【0058】NP DNAの注射後の筋肉中のNP発現
は、ウエスタンブロット分析に関する検出限界を下回っ
た(<1ng)が、しかしNP特異性抗体の産生によっ
て示された(図2参照)。NP特異性CTL生成の分析
のために、免疫化後1〜4週目に脾臓を取り出し、脾臓
胞を組換え体ヒトIL−2+インフルエンザA(A/P
R/8/34)に感染させるか又はH−2K制限核タ
ンパク質ペプチドエピトープ(NP残基147−15
5。O.K.Rotzsckeら,Nature34
8,252(1990)参照)でパルス化した自系脾細
胞で再刺激した。ウイルス感染又はエピトープパルス化
同系細胞で再刺激した脾細胞は、核タンパク質エピトー
プパルス化標的細胞を殺すことができる(図3A)。こ
れは、NPDNAの筋注が、特異的CTL反応の誘発の
ためにI種のMHCと会合した適切なNP由来ペプチド
を生成したことを示す。これらのCTLはウイルスに感
染した標的細胞(図3B)を、又はH−2K制限核タ
ンパク質ペプチドエピトープ及びウイルス感染標的細胞
でパルス化した標的細胞を認識又は溶解できる。このこ
とはそれらの特異性並びに感染細胞中に自然に生じるエ
ピトープを検出するそれらの能力の表われである。
【0059】NP DNAワクチンの免疫原性のさらに
厳密な測定は、一次CTL反応の評価であった。NP
DNA注入マウスから採取した脾細胞をCon A及び
IL−2に曝して活性化したが、しかし適切な標的を殺
すそれらの能力を試験する前の抗原発現細胞によるin
vitro再刺激は実施しなかった。NP DNAで
免疫化したマウスからの脾細胞は、抗原特異性再刺激を
行なわずにCon A及びIL−2でin vitro
で活性化した場合、エピトープパルス化及びウイルス感
染標的細胞をともに溶解した(図3C及びD)。再刺激
化及び活性化脾細胞の両方のこの溶解活性は、A/PR
/8/34(H1N1)後34年目に生じた有毒マウス
適合H3N2株であるインフルエンザA/HK/68で
予め感染させたマウスから得た同様に処理した脾細胞よ
りも優れている。したがって、NP DNAの注入は、
核タンパク質エピトープに特異的な、そして天然に処理
された抗原を同定し得る(即ちウイルス感染細胞を殺し
得る)CTLを生成した。NP CTLも、ヒトHLA
−A2を発現するC3H及びB6トランスジェニックマ
ウスで生成された。
【0060】NP CTLは、1用量1μgという少な
いNP DNA(試験した最低用量)を注射したBAL
B/cマウスの脾臓でも検出されている(表3−I
V)。
【0061】表 3−IV NP DNA1回注射後のマウスにおけるCTL反応
【0062】
【表1】 表3−IV:雌BALB/cマウス(4〜6週)にA/
PR/34 NP DNA(V1JNP)又は対照DN
A(V1J)を指定用量で1回注射した。比較のため
に、マウスをインフルエンザウイルスA/PR/34に
感染させた。CTLを8週目に得て、NPペプチドパル
ス化同系脾細胞でin vitro再刺激し、50:1
のエフェクター:標的比でNPペプチドパルス化P81
5細胞に対して検定した。データは代表的な個々のマウ
スに関して特異的溶解度(%)で表した。
【0063】追加実験は、1μgのNP DNAを1用
量投与したマウスが少なくとも4.5か月(試験終了
時)NP CTLを保持したことを示した。DNA注入
後のCTL反応の大きさは、インフルエンザ感染マウス
に匹敵した。しかしながら、in vitro抗原再刺
激後のCTLの分析は厳密には定量的でないことに留意
すべきである。したがって、マウスにおけるNP特異的
CTLのレベルをより定量的に評価するために、限定希
釈検定を我々は目下開発中である。100μgのNP
DNAを3用量注入されたマウスにおいて、CTL反応
は免疫化後少なくとも6か月検出された(図19)。し
たがって、インフルエンザPNVは、保存インフルエン
ザ抗原に向けられる長期的CTL反応を生成する可能性
を有する。
【0064】マウスにNP DNAを注射すると、高力
価抗NP IgG抗体の産生が生じた(図2)。マウス
における高力価IgG抗体の生成は、CD4T細胞の
助けを要すると考えられる(P.Vieira及びK.
Rajewsky,Int.Immunol.2,48
7(1990);J.J.Donnellyら,J.I
mmunol.145,3071(1990))。これ
はin situでプラスミドから発現されたNPがI
種及びII種のMHCの両方を提示するようにプロセッ
シングされたことを示す。
【0065】実施例4 有毒性ヒトインフルエンザウイルスによる誘発における
マウスの防御 : インフルエンザに対する防御免疫におけるNP抗体の役
割を、2つのアプローチで示す:先ず、ウイルス肺力価
を受動輸送実験で測定した。雌BALB/cマウス(生
後10週齢以上)に、NP DNA 200μgを3回
注射したマウスからプールした血清(PBS 2.0m
lで希釈)0.5mlを腹腔内注射した。対照マウスに
は等容量のプールした正常マウス血清か又はA/HK/
68による感染から回復したマウスからのプール血清を
これも2.0mlのPBSに希釈して注射した。A/H
K/68免疫血清の用量は、抗NP抗体のELISA力
価がNP DNA注射マウスからのプール血清と等しく
なるように調整した。血清注射後2時間目に10TC
ID50のA/HK/68を用いて盲検的に麻酔せずに
マウスに誘発し、3日後、等量の血清をさらに注射し
た。注射後6及び7日目にマウスを屠殺し、TCID
50/mlでのウイルス肺力価をMoran[J.Im
munol.146,321,1991]の記載と同様
にして測定した。
【0066】未使用マウスに、NP DNAを注射した
マウスから得た抗NP抗血清を注入し、次いでA/HK
/68を用いて誘発した。ウイルス誘発はA/HK/6
8のマウス適合株を用いて実施し、その後マウスでin
vivo継代を維持させた(Dr.I.Mbawui
ke私信)。使用したウイルス種子ストックは感染マウ
スからの肺のホモジネートであって、MDCK細胞では
5×10TCID50/mlの感染力価を有した。ウ
イルス肺力価測定及び体重損失試験のために、非麻酔マ
ウスの鼻孔に10TCID50を含有する20μlを
鼻腔内点滴注入してウイルス誘発した。この方法はウイ
ルスの肺感染を徐々に引き起こすが、BALB/cマウ
スには致命的でない[Yetter,R.A.ら,In
fect.Immunity 29,654,198
0]。生存実験では、ケタミン及びキシラジンによる全
身麻酔下でマウスの鼻孔に102.5TCID50を含
有する20μlを点滴注入してウイルス誘発した。この
用量で麻酔マウスを感染させると急速な肺感染が生じ、
非免疫化マウスの90〜100%が死亡した[J.L.
Schulman及びE.D.Kilbourne,
J.Exp.Med.118,257,1963;G.
H.Scott及びR.J.Sydiskis,Inf
ect.Immunity 14,696,1976;
R.A.Yetterら,Infect.Immuni
ty 29,654,1980]。ウイルス肺力価は、
Moran等(上掲)の記載と同様に96ウエルプレー
ト中のMDCK細胞(ATCC,Rockville,
MDから入手)における順次滴定により測定した。
【0067】抗NP抗血清(6.3±0.2;平均±S
EM;n=4)を投与したマウスにおいては、正常血清
(6.1±0.3;平均±SEM;n=4)を投与した
対照マウスと比較して、ウイルス肺力価の低下は認めら
れなかった。陽性対照として、A/HK/68に感染さ
せたマウスから血清を収集し、4匹の未使用マウスに受
動輸送させた。A/HK/68による誘発後、ウイルス
感染はそれらの肺では検出されなかったが、これは全ウ
イルスに対するこの血清が同種ウイルスを用いた誘発を
完全に防御したことを示す。第二に、筋注により未使用
マウスを精製NP(5μg/足。6週間に3回)で免疫
化した。これらのマウスは高力価NP特異性抗体を生成
したが、しかしNP特異性CTLは生成できず、致死用
量のウイルスを防御できなかった。したがって、全ウイ
ルスに対する抗体の中和作用と違って、流行中の抗NP
IgGはマウスに対して防御免疫を付与しなかった。
【0068】NP DNA注射のin vivo防御効
力を評価して、細胞媒介免疫反応が機能的に有意である
か否かを調べた。免疫反応の有効性の直接測定法の1つ
は、最初にNP DNAで免疫化したマウスが異種株の
インフルエンザ(A/HK/68;H3N2)による漸
進的亜致命的肺感染を消散する能力であった。ウイルス
誘発は上記と同様に実施した。NP DNAで免疫化し
たマウスは、免疫化されなかった(4.1±0.3;平
均±SEM;n=4)、又はブランクベクターで免疫化
された(4.5±0.0;平均±SEM;n=4)対照
マウスの場合に比べ、7日目の大きさが3等級低い
(1.0±1.0;平均±SEM;n=4)誘発後ウイ
ルス肺力価を有した。実際、4匹の免疫化マウスのうち
3匹がその肺に検出不可能なレベルのウイルスを有した
に過ぎなかったが、一方この時点でウイルスが除去され
た対照はなかった。この実験及び別の6つの実験で観察
されたウイルス肺力価の顕著な差異は、免疫反応がウイ
ルスの清掃を促すことを意味する。ブランクベクター対
照に防御作用が欠けていることは、DNAそれ自体は免
疫反応に関与しないことを示す。さらに、ウイルスの誘
発株A/HK/68(有毒性マウス適合H3N2株)は
NP遺伝子をクローン化した株A/PR/8/34(H
1N1)とは異種であるため、免疫は明らかに異型であ
った。
【0069】ウイルス誘発性罹患の尺度として、NP
DNAで免疫化後にインフルエンザA/HK/68で亜
致命的に感染させたマウスにおいて体重損失を監視した
(図4)。非注射マウス又はブランクベクターを注射し
たマウスを対照として用いた。NP DNAで免疫化し
たマウスは対照マウスに比して体重損失が少なく、イン
フルエンザA感染後により迅速に試験前の体重に戻っ
た。
【0070】全身麻酔マウスをインフルエンザAで鼻腔
内感染させると、肺での急速な広範囲のウイルス複製が
生じ、感染を制御できない場合には6〜8日で死亡した
(R.A.Yetterら,Infect.Immun
ity 29,654(1980))。この方法で誘発
したマウスの生存率は急性肺感染の重症度を制限するそ
れらの能力を反映する。インフルエンザの2つの異なる
株A/HK/68(図5参照)及びA/PR/8/34
を用いた誘発に生き残るマウスの能力を調べた。NP
DNAで予め免疫化したマウスは90%の生存率を示し
たが、これに比してブランクベクター注射対照では0
%、非注射対照動物では20%であった(図5)。この
ような14の試験全体で、NP DNAで免疫化したマ
ウスは対照よりも少なくとも50%多い生存率を示し
た。したがって、34年後に生じた異なる株のウイルス
により引き起こされる回復及び疾病低減を有効に促すN
P DNA誘発性免疫反応の能力は、細胞毒性Tリンパ
球反応の生成のために保存タンパク質を標的とすべきだ
とする論理的根拠を支持する。
【0071】実施例5 インフルエンザウイルス単離物からの遺伝子の単離 : 古くから多数のインフルエンザウイルス株がATCCに
寄託されている(Animal Viruses &
Antisera,Chlamydiae &Rick
ettsiae第六版の1990年カタログにはインフ
ルエンザA株20種及びインフルエンザB株14種が列
挙されている)。
【0072】A.ウイルス株及び精製: 現在の1992年インフルエンザシーズンワクチンを包
含するインフルエンザ株は、Division of
Viral and RickettsialDise
ases,Centers of Disease C
ontrol,Atlanta,GAのNancy
J.Cox博士から入手した。これらの株を以下に挙げ
る:(1)A/Beijing/353/89(H3N
2);(2)A/Texas/36/91(H1N
1);(3)B/Panama/45/90;及び
(4)A/Georgia/03/93。
【0073】これらのウイルスはすべて、9〜11日齢
鶏卵胚中で継代により増殖させ(MDCK細胞中で増殖
させたA/Georgiaを除く)(100〜200/
ウイルス標本)、Massicot等(Virolog
y 101,242−249(1980))が記載した
方法の変法により精製した。手短に言えば、ウイルス懸
濁液を8000rpmで遠心分離(Sorvall R
C5C遠心分離器。GS−3ローター)して透明にし、
次いでBeckman 19型ローターで18,000
rpmで2時間遠心分離してペレットとした。ペレット
化ウイルスをSTE(0.1M NaCl、20mM
Tris,pH7.4、1mM EDTA)中に再懸濁
し、4,000rpmで10分遠心分離(Hermle
Z360K遠心分離器)して、凝集物を除去した。上
清 2mlを、60%ショ糖 2mlとSTEで緩衝し
た上層の30%ショ糖 7mlから成る不連続ショ糖勾
配上に層とし、36,000rpm(SW−40ロータ
ー,Beckman)で90分遠心分離した。バンド化
ウイルスを界面で収集し、STEで10倍に希釈して、
30,000rpmで2時間(Beckman Ti4
5ローター)ペレット化した。次にペレット化ウイルス
を−70℃で凍結した。
【0074】B.ウイルスRNAの抽出及びcDNA合
: Chomczynskiとsacchi(Anal.B
iochem.162,156−159(1987))
の方法を用い、市販キット(Stratagene,L
a Jolla,CA)を用いてグアニジニウムイソチ
オシアネート抽出により凍結ウイルスからウイルスRN
Aを精製した。メーカーの指示に従い、いくつかの修正
を加えて、市販cDNA合成キット(Pharmaci
a)を用いてウイルスRNAから二本鎖cDNAを調製
した。すべてのA株遺伝子に関し、ウイルスRNAの
3′末端に位置する保存配列と相補的である合成オリゴ
デオキシリボヌクレオチド 5′−AGCAAAAGC
AGG−3′(配列番号30)を用いて、cDNAの一
次鎖をプライムした。この配列はすべてのA型インフル
エンザウイルスRNAに共通であり、したがって任意の
A株インフルエンザウイルス遺伝子をクローニングして
もよい。cDNAの一次及び二次鎖の合成後、フェノー
ル/クロロホルムで反応物を抽出し、キットの指令に従
うよりむしろエタノール沈降させた。次にこれらの盲端
化cDNAを、BglII制限酵素で消化したV1Jn
eo又はV1Jnsベクターに直接結紮し、T4DNA
ポリメラーゼで盲端化して、仔ウシ腸アルカリ性ホスフ
ァターゼで処理した。
【0075】特定の全長ウイルス遺伝子をスクリーニン
グするために、指定ウイルス遺伝子の翻訳開放読み枠の
末尾に3′末端を補足するよう意図された合成オリゴデ
オキシリボヌクレオチドを我々は用いた。アガロース電
気泳動ゲル上での制限マッピング及びサイズ確定により
全長遺伝子を示すと思われる標本を、ウイルス遺伝子と
V1Jneoとの両接合部のジデオキシヌクレオチドシ
ーケンシングにより実証した。これらのウイルスからク
ローン化した各遺伝子の配列接合部を下記の実施例8に
示す。
【0076】同様の方法を用いて、ウイルスRNAの各
末端に共通の配列を有さぬB/Panama/45/9
0に関するものを除き、上記のウイルスの各々からcD
NAをクローニングし、オリゴデオキシリボヌクレオチ
ドの混合物を用いて一次鎖cDNA合成をプライムし
た。これらのプライマーを以下に示す: (1)5′−AGCAGAAGCGGAGC−3′(P
B1及びPB2、配列番号31); (2)5′−AGCAGAAGCAGAGCA−3′
(NS及びHA、配列番号19); (3)5′−AGCAGAAGCACGCAC−3′
(M、配列番号22);及び (4)5′−AGCAGAAGCACAGCA−3′
(NP、配列番号23)。
【0077】PCRでクローン化された遺伝子に関して
は、盲端cDNA溶液をDNA鋳型としてPCR反応に
直接用いた。PCRによって得た6つのインフルエンザ
遣伝子をクローニングするために用いたプライマーを以
下に挙げる: 1.A/Georgia/03/93からのHA遺伝子 センスプライマー(配列番号33) 5′GGT ACA ACC ATG AAG ACT
ATC ATT GCT TTG AGC 3′ アンチセンスプライマー(配列番号33) 5′CCA CAT AGA TCT TCA AAT
GCA AAT GTT GCA CCT AAT
G 3′ 2.A/Texas/36/91からのHA遺伝子 センスプライマー(配列番号35) 5′GGT ACA ACC ATG AAA GCA
AAA CTA CTA GTC CTG TTA
TG 3′ アンチセンスプライマー(配列番号36) 5′CCA CAT TCA GAT GCA TAT
TCT ACA CTG CAA AG 3′ 3.B/Panama/45/90からのHA遺伝子 センスプライマー(配列番号37) 5′GGT ACA ACC ATG AAG GCA
ATA ATT GTA CTA CTC ATG
3′ アンチセンスプライマー(配列番号38) 5′CCA CAT TTA TAG ACA GAT
GGA GCA AGA AAC ATT GCT
3′ 4.A/Beijing/353/89からのM1遺伝
センスプライマー(配列番号39) 5′GGT ACA AGA TCT ACC ATG
CTT CTA ACC GAG GTC 3′ アンチセンスプライマー(配列番号40) 5′CCA CAT AGA TCT TCA CTT
GAA CCG TTG CAT CTG CAC
3′ 5.B/Panama/45/90からのNP遣伝子 センスプライマー(配列番号41) 5′GGT ACA GGA TCC ACC ATG
TCC AAC ATG GAT ATT GAC
GGC 3′ アンチセンスプライマー(配列番号42) 5′CCA CAT GGA TCC TTA ATA
ATC GAG GTC ATC ATA ATC
CTC 3′ 6.B/Panama/45/90からのM1遺伝子 センスプライマー(配列番号43) 5′GGT ACA GGA TCC ACC ATG
TCG CTG TTT GGA GAC ACA
ATT GCC 3′ アンチセンスプライマー(配列番号44) 5′CCA CAT GGA TCC TTA TAG
GTA TTT CTT CAC AAG AGC
TG 3′ 生成するのがcDNAであれPCRであれ、すべてのイ
ンフルエンザ遺伝子クローンを遺伝子結紮部位を中心に
配列解析し、トランスフェクトRD細胞において遣伝子
を発現することにより立証した。発現はイムノブロット
により検出した。
【0078】A/H3N2株に関するNP及びM1構築
物(ベクター4及び5)をA/Beijing/353
/89から作製した。NP及びM1遺伝子には高程度の
保存が期待でき、そしてそれらの有効性のために、これ
らの遺伝子を選択した。
【0079】前記の研究から、組合せて生成される7つ
の発現ベクターの特に好ましい群を以下に挙げる: 1.V1Jns−HA(A/Georgia/03/93) 6.56Kb 2.V1Jns−HA(A/Texas/36/91) 6.56Kb 3.V1Jns−HA(B/Panama/45/90) 6.61Kb 4.V1Jns−NP(A/Beijing/353/89)6.42Kb 5.V1Jns−M1(A/Beijing/353/89)5.62Kb 6.V1Jns−NP(B/Panama/45/90) 6.54Kb 7.V1Jns−M1(B/Panama/45/90) 5.61Kb 発現ベクター中のこれらの遺伝子の接合部に関して関連
のある配列を以下に示す。構築物の小部分の配列解析
が、正確に遺伝子がクローン化されたことを実証するの
に十分だった。同様の公知の遺伝子と比較すれば、指定
遺伝子がNP遺伝子、HA遺伝子、M1遺伝子等である
ことを実証するのは容易である。例えば、A/Texa
s HA遺伝子配列はA/Kiev/59/79のHA
遺伝子配列と非常に類似しており、その配列は受け入れ
番号M38353号としてGENBANKで入手可能で
ある。同様に、B/Panama HA配列に関して
は、受け入れ番号M18384号としてGENBANK
で入手可能なB/England/222/82 HA
配列と非常に類似している。同様の方法で、任意のヒト
インフルエンザウイルスからの指定の遣伝子に関するク
ローン化配列の同一性を実証し得る。下記の各々の場
合、全遺伝子が存在することの確認のために、5′配列
と3′配列の両方を検討した。各々の場合、下線ATG
はインフルエンザ遺伝子の開始コドンを示し、一方3′
部分の下線配列は停止コドンである: 実施例6 V1J発現ベクター(配列番号10) : V1Jを作るに際しての我々の目的は、それらを所要の
状況により対処するようにわれわれのベクター V1か
らプロモーター及び転写終止要素を除去し、より密なベ
クターを作製し、そしてプラスミド精製収率を改良する
ことであった。
【0080】V1Jは、ベクターV1(実施例1参照)
及び市販プラスミドであるpUC18から得た。V1を
SspI及びEcoRI制限酵素で消化して、DNAの
2つの断片を生成した。CMVintAプロモーター及
び異種遺伝子の発現を制御するウシ成長ホルモン(BG
H)転写終止要素を含有するこれらの断片の小さい方
(配列番号11)を、アガロース電気泳動ゲルから精製
した。次に、別の“盲端”DNA断片にそれを結紮しや
すくするために、T4 DNAポリメラーゼ酵素を用い
てこのDNA断片の末端を“盲端”にした。
【0081】発現ベクターの“骨格”には、pUC18
を選択した。それは高収率のプラスミドを生成として知
られ、配列及び機能が十分特徴づけられており、サイズ
は最小である。われわれはHaeII制限酵素を用いた
部分消化により、このベクターから全lacオペロンを
除去したが、これはわれわれの目的には不必要であっ
て、プラスミド収率及び異種遺伝子発現に不利益であ
る。残りのプラスミドを、上記と同様にアガロース電気
泳動ゲルから精製し、T4 DNAポリメラーゼで盲端
化して、仔ウシ腸アルカリ性ホスファターゼで処理し、
上記のCMVintA/BGH要素と結紮した。pUC
骨格内のプロモーター要素の2つの考え得る配向のいず
れかを持つプラスミドを得た。これらのプラスミドの1
つは大腸菌中でさらに高収率のDNAを生じ、これをV
1J(配列番号10)と名づけた。このベクターの構造
を接合領域の配列解析により確認し、次いでV1と比較
した場合に、それに匹敵する又はより高い異種遺伝子発
現率をしめすことを実証した。
【0082】実施例7 発現ベクターV1Jにおけるインフルエンザウイルス遺
伝子構築物 : インフルエンザウイルスのA/PR/8/34株からの
遺伝子の多くは、実施例4に記載されているように、V
1ベクターと同様か又はそれより高いレベルでの発現を
生じるベクターV1J中にクローン化した。PR8遺伝
子配列は公知であって、GENBANKデータベースか
ら入手できる。下記のクローン化遺伝子の各々に関し
て、クローン化される断片のサイズをサイジングゲルに
より点検し、部分配列が比較対象となるGENBANK
受け入れ番号を提示した。ウイルス株から、例えばAT
CCから入手したウイルス(A/PR/8/34はAT
CCVR−95である)からこれらの遺伝子を得る方法
に関しては、実施例5を参照して頂きたい。
【0083】A.PR8遺伝子のV1J中でのサブクロ
ーニング: 1.NP遺伝子 pAPR501からNP遺伝子をサブクローニングした
(J.F.Young,U.Desselberbe
r,P.Graves,P.Palese,A.Sha
tzman及びM.Rosenberg(1983),
The Origins of Pandemic I
nfluenza Viruses,W.G.Lave
r編(Elsevier,Amsterdam)pp.
129−138)。EcoRIでpAPR501を切断
することにより切り出し、断片ゲルを精製し、T4 D
NAポリメラーゼで盲端化した。盲端化断片をBglI
Iで切断したV1J中に挿入し、再びT4 DNAポリ
メラーゼで盲端化した。クローン化断片は1.6キロ塩
基の長さであった。
【0084】2.NS pAPR801からNS遺伝子をサブクローニングした
(J.F.Young,U.Desselberbe
r,P.Gravet,P.Palese,A.Sha
tzman及びM.Rosenberg(1983),
The Origins of Pandemic I
nfluenza Viruses,W.G.Lave
r編(Elsevier,Amsterdam)pp.
129−138)。EcoRIでpAPR801を切断
することにより切り出し、断片ゲルを精製し、T4 D
NAポリメラーゼで盲端化した。盲端化断片をBglI
Iで切断したV1J中に挿入し、再びT4 DNAポリ
メラーゼで盲端化した。クローン化断片は0.9キロ塩
基の長さ(NS1及びNS2を含む完全NSコード領
域)であった。
【0085】3.HA pJZ102からHA遺伝子をサブクローニングした
(J.F.Young,U.Desselberbe
r,P.Graves,P.Palese,A.Sha
tzman及びM.Rosenberg(1983),
The Origins of Pandemic I
nfluenza Viruses,W.G.Lave
r編(Elsevier,Amsterdam)pp.
129−138)。HindIIIでPJZ102を切
断することにより切り出し、断片ゲルを精製し、T4
DNAポリメラーゼで盲端化した。盲端化断片をBgl
IIで切断したV1J中に挿入し、再びT4 DNAポ
リメラーゼで盲端化した。クローン化断片は1.75キ
ロ塩基の長さであった。
【0086】4.PB1 pGem1−PB1からPB1遺伝子をサブクローニン
グした(ベクターとの遺伝子の5′及び3′接合部を配
列解析してそれらの同一性を実証した。J.F.You
ng,U.Desselberber,P.Grave
s,P.Palese,A.Shatzman及びM.
Rosenberg(1983),The Origi
ns of Pandemic Influenza
Viruses,W.G.Laver編(Elsevi
er,Amsterdam)pp.129−138を参
照)。HindIIIでpGem1−PB1を切断する
ことにより切り出し、断片ゲルを精製し、T4 DNA
ポリメラーゼで盲端化した。盲端化断片をBglIIで
切断したV1J中に挿入し、再びT4 DNAポリメラ
ーゼで盲端化した。クローン化断片は2.3キロ塩基の
長さであった。
【0087】5.PB2 pGem1−PB2からPB2遺伝子をサブクローニン
グした(ベクターとの遺伝子の5′及び3′接合部を配
列解析してそれらの同一性を実証した。J.F.You
ng,U.Desselberber,P.Grave
s,P.Palese,A.Shatzman及びM.
Rosenberg(1983),The Origi
ns of Pandemic Influenza
Viruses,W.G.Laver編(Elsevi
er,Amsterdam)pp.129−138)。
それを、BamHIでpGem1−PB2を切断するこ
とにより切り出し、断片ゲルを精製した。付着端化断片
をBglIIで切断したV1J中に挿入した。クローン
化断片は2.3キロ塩基の長さであった。
【0088】6.M1 プラスミドp8901 MITEからPCRによりM1
遺伝子を生成した。このプラスミド中のM配列は、“セ
ンス”プライマーに関してはオリゴマー5′−GGT
ACA AGA TCT ACC ATG CTT C
TA ACCGAG GTC−3′(配列番号3)を、
“アンチセンス”プライマーに関してはオリゴマー
5′−CCA CAT AGA TCT TCA CT
T GAA CCG TTG CAT CTG CAC
−3′(配列番号4)を用いて、pAPR701からP
CRにより生成した(J.F.Young,U.Des
selberber,P.Graves,P.Pale
se,A.Shatzman及びM.Rosenber
g(1983),The Origins ofPan
demic Influenza Viruses,
W.G.Laver編(Elsevier,Amste
rdam)pp.129−138)。PCR断片をゲル
精製し、BglIIで切断して、BglIIで切断した
V1J中に結紮した。クローン化断片は0.7キロ塩基
の長さであった。コード化M1のアミノ末端は上記のよ
うに“ATG”として“センス”プライマー中にコード
され、一方M1翻訳停止コドンは、センス方向では停止
コドン“TGA”である “TCA”コドンの復帰によ
りコードされる。
【0089】B.インフルエンザ遺伝子−V1J発現構
築物: 各々の場合に、クローン化遺伝子中での5′プロモータ
ー領域(CMVintA)からの接合配列を示す。これ
らの配列は、コード配列の配列を生成するプライマー: CMVintAプライマー 5′−CTA ACA G
AC TGT TCCTTT CCA TG−3′(配
列番号28) をシーケンシングして作成した。接合が起きる位置を
“/”で区分したが、これは配列がここで切れているこ
とを示すものではない。これらの構築物の調製方法を下
記のすべての配列の後に要約した。提示した各配列は指
定のインフルエンザ遺伝子に関する完全な、利用可能且
つ発現可能なDNA構築物を表す。
【0090】各構築物を一時的に培養中のヒト横紋筋肉
腫細胞系であるRD細胞(ATCCCCL136)中で
トランスフェクトした。トランスフェクション後48時
間目に細胞を採集し、溶解させて、ウエスタンブロット
を実施した(マウスで試験し、ウエスタンブロット実施
前に抗HA特異性抗体を生じ、したがって発現がin
vivoで観察されたのでウエスタンブロットを実施す
る必要がないV1J−PR−HA構築物を除く)。PB
1、PB2及びNSタンパク質に特異的な抗体は、β−
ガラクトシダーゼ融合タンパク質として発現される精製
タンパク質を用いてポリクローナル抗血清を生成したケ
ンブリッジ大学のStephen Inglisの提供
によるものであった。全A/PR/8/34ウイルスを
用いてウサギを免疫化して、抗NPポリクローナル抗血
清を生成した。抗M1抗体は、ヤギ抗インフルエンザA
抗血清として、カタログ番号B65245GでBiod
esignから市販されている。各々の場合、予測サイ
ズのタンパク質が観察されたが、これはコード化インフ
ルエンザタンパク質のin Vitro発現を示すもの
である。
【0091】これらの構築物に対する呼称は慣用的に以
下のように示す:“ベクター名−インフルエンザ株−遺
伝子”。すべての場合に、クローン化及びシーケンス化
A/PR/8/34遺伝子配列に関してGENBANK
の公知配列との異同を点検した。これらの構築物の各々
の生理活性を、上記の実施例2、3及び4と同様に実証
した: CMVintA及びA/PR/8/34からのインフル
エンザ遺伝子の5′接合部付近の配列: 断片接合方法: 1.V1J−PR−NP:盲端化BglII(ベクタ
ー)−盲端化EcoRI(NP) 2.V1J−PR−PB1:盲端化BglII(ベクタ
ー)−盲端化HindIII(PB1) 3.V1J−PR−NS:盲端化BglII(ベクタ
ー)−盲端化EcoRI(NS1) 4.V1J−PR−HA:盲端化BglII(ベクタ
ー)−盲端化HindIII(HA) 5.V1J−PR−PB2:付着端化BglII(ベク
ター)−付着端化BamHI(PB2) 6.V1J−PR−M1:付着端化BglII(ベクタ
ー)−付着端化BglII(M1) M1は、鋳型としてのp890−M1TE及び両端にB
glII部位を付加し、M1(TGA)に関してATG
の3塩基前で開始して終止コドン後の右で終結するプラ
イマーを用いて、PCRにより得た。
【0092】実施例8 V1Jneo発現ベクター(配列番号18) : 大規模発酵槽中ではアンピシリンを用い得ないため、V
1Jを採取した細菌の抗生物質選択のためにあるamp
遺伝子を除去する必要があった。SspI及びEam
I1051制限酵素で消化することにより、V1Jのp
UC骨格からamp遺伝子を除去した。残りのプラス
ミドをアガロースゲル電気泳動により精製し、T4 D
NAポリメラーゼで盲端化して、次いで仔ウシ腸アルカ
リ性ホスファターゼで処理した。トランスポゾン903
から得られ、pUC4Kプラスミド内に含有される市販
のkan遺伝子をPstI制限酵素を用いて切り出
し、アガロースゲル電気泳動により精製し、T4 DN
Aポリメラーゼで盲端化した。この断片をV1J骨格と
結紮し、いずれかの方向でkan遺伝子を有するプラ
スミドを得て、これをV1Jneo#1及び3と命名し
た。これらのプラスミドの各々を制限酵素消化分析、接
合領域のDNA配列解析により確認し、V1と同様の量
のプラスミドを生成することを示した。異種遺伝子物質
の発現も、これらのV1JneoベクターはV1Jに匹
敵した。我々は取りあえずV1Jneo#3という呼称
を選択したが、以後V1Jneo(配列番号18)と呼
ぶ。これは発現構築物としてのV1J中にamp遺伝
子と同じ方向にkan遺伝子を含有する。
【0093】A/Beijing/353/89、A/
Texas/36/91及びB/Panama/46/
90株の各々からの遺伝子をcDNAとして、ベクター
V1Jneo中でクローン化した。各々の場合、コード
配列の配列を規制する5′プロモーター領域(CMVi
ntA)からクローン化遺伝子への接合配列を、プライ
マー: CMVintA プライマー 5′−CTA ACA
GAC TGT TCCTTT CCA TG−3′
(配列番号28) を用いて配列解析した。これはターミネーター/コード
配列へ続いており、その接合も示されている。この配列
は、非コード化鎖の配列を規制するプライマー:BGH
プライマー 5′−GGA GTG GCA CCT
TCC AGG−3′(配列番号29)を用いて生成し
た。すべての場合に、これらの又は他のインフルエンザ
単離物からのクローン化し配列解析した遺伝子に関して
は、GENBANKからの公知の配列と照合した。接合
が起きる位置を“/”で区分したが、ここで配列が切れ
ているわけではない。V1Jneo−TX−HA接合の
場合、シーケンシングゲルが圧縮され、初期配列を読み
取るのは難しかった。したがって、この接合部の最初の
8塩基を“N”とした。これらのヌクレオチドは後に確
認し、同定ヌクレオチドが表示されている。各配列に含
まれる最初の“ATG”はそれぞれのクローン化遺伝子
に関する翻訳開始コドンである。表示した各配列は指定
のインフルエンザ遺伝子に関する完全な、利用可能且つ
発現可能なDNA構築物を表す。これらの構築物に対す
る呼称は慣用的に以下のように示す:“ベクター名−イ
ンフルエンザ株−遺伝子”。これらの構築物の各々の生
理活性を、上記の実施例2、3及び4と同様に実証し
た。
【0094】異なるインフルエンザ株及びタンパク質を
用いての、CMVintA及びインフルエンザ遺伝子の
5′接合部、並びにインフルエンザ遣伝子及びBGHタ
ーミネーター発現構築物との3′接合部配列: 実施例9 インフルエンザ遺伝子の皮内注射 : 遺伝子の皮内導入のための手法は筋注の場合と同様で、
V1−PR−NP 200μgを3週間おきに3回注射
した。3回目の注射後55日目にin vitro検定
のために脾臓を採取し、ノナペプチド核タンパク質エピ
トープ147−155(配列番号9)で再刺激した。標
的細胞(P815細胞、マウス肥満細胞腫、BALB/
cマウス H−2と同系のもの)を異種ウイルスA/
Victoria/73に感染させて、5:1〜40:
1の範囲のエフェクター:標的比でエフェクターとして
脾細胞を用いて特異的溶解を施した。陰性対照には、イ
ンフルエンザウイルスに感染していない標的細胞の溶解
を測定した。陽性対照には、V1−PR−NP 130
μgを3回注射し、A/HK/68による生インフルエ
ンザウイルス感染を生き抜いたマウスから得た脾細胞に
よるインフルエンザウイルス感染標的細胞の溶解を測定
した。
【0095】結果:全エフェクター:標的比での皮内注
射マウスからの脾細胞を用いて特異的溶解を達成した。
非注射マウス又は挿入PR−NP遺伝子を含有しないベ
クターV1を注射したマウスから得た脾細胞をエフェク
ター細胞として用いた場合は、特異的溶解は認められな
かった。さらに、皮内供給を用いて達成した特異的溶解
は、全エフェクター:標的比で筋注により得た結果に匹
敵した。インフルエンザウイルス肺力価も皮内注射又は
筋注マウスで測定した。各群5匹のマウスを用い、3×
200μgの用量で3週間おきに投与し、そして最終投
与後3週目に誘発した結果を以下に示す:
【0096】最後に、マウスの生存率(%)を28日ま
で試験した。28日目に、V1−NP−PRを投与した
マウスのうち、筋注受容者の89%、皮内受容者の50
%が生存した。V1ベクターのものはまったく生存せ
ず、非処理マウスは30%だけが生存した。この実験
は、A/PR/8/34株からの核タンパク質をコード
するDNAが、それとは異種株のA/Victoria
/73からの核タンパク質を認識するCTL及び異種株
A/HK/68に対する防御免疫反応を誘発し得たこと
を実証する。
【0097】実施例10 霊長類におけるポリヌクレオチドワクチン接種 1.アカゲザルにおけるNPに対する抗体:アカゲザル
(006 NP、009NP又は対照101;021)
に1mg/部位のRSV−NPを1日目に3部位に筋注
した。各々1mgのRSV−LUX及びCMV−int
LUX(リポーター遺伝子ホタルルシフェラーゼ発現に
関する構築物)を同時に別々の部位に注射した。15日
目に動物に、以前と同量のDNAと、並びに1mgのp
D5−CAT(リポーター遺伝子クロラムフェニコール
アセチルトランスフェラーゼ発現に関する構築物)を各
々の部位に再注射した。リポーター遺伝子を含有する筋
肉部位を生検し、リポーター遺伝子活性に関して検定し
た。最初の注射後3、5、9、11、13及び15週目
に血清を採集した。抗NP抗体に関する陽性標本は11
週目に初めて採集され、さらに陽性標本を13及び15
週目にも採集した。抗NP抗体は、ELISAにより定
量した。結果を図9に示す。
【0098】2.アカゲザルにおけるヘマグルチニン抑
制(HI)抗体:1日目にサルにV1J−PR−HAを
筋注した。2匹の動物の各四頭筋に各々1mg、100
μg又は10μgのDNAを投与した。注射は各々0.
5mlの容量で投与した。1日目の注射の前に動物を採
血した。15日目に全動物にDNAを再注射して、その
後2〜4週間おいて血液を採集した。A/PR/8/3
4に対するヘマグルチニン抑制(HI)力価は、V1J
−PR−HA DNAの最初の注射後5、9及び12週
目に陽性となった。結果を表10−Iに示す。
【0099】表 10−I V1J−PR−HA DNA投与アカゲザルのHI抗体
力価
【0100】
【表2】 実施例11 フェレットにおけるポリヌクレオチドワクチン試験 1.HA(株特異性中和抗体を誘発し得る表面タンパク
質)又は内部タンパク質NP、NS1、PB1、M(株
非依存性である細胞媒介免疫反応を誘発すると考えられ
る)をコードする遺伝子で免疫化することにより、イン
フルエンザA感染から動物が防御されるか否かを調べる
ために、フェレットにおけるポリヌクレオチドワクチン
接種の試験を開始した。下記のように、われわれのV1
J−ベクター中の種々のインフルエンザ遺伝子をコード
するDNAを動物に注射した:表 11−I
【0101】
【表3】 2.免疫化後22日目及び43日目に、免疫化動物から
血清を採集し、中和(ヘマグルチニン抑制−HI)抗体
及び核タンパク質(NP)に対する抗体に関して、EL
ISAにより検定した。DNAを投与した動物は、対応
する遺伝子に対する抗体を発現していた。これらを添付
の図10、11及び16に示す。
【0102】3.128日目に、選択免疫化動物に12
00TCID50のインフルエンザA/HK/68によ
る誘発を施した。この株は、免疫化するために用いるコ
ード配列の供給源であるA/PR/8/34株に対して
異種であって、したがって防御は細胞媒介株非依存性免
疫機序を基礎にした免疫を示す。添付の図12に示すよ
うに、対照と比較した場合のウイルス脱落の統計的に有
意の低減は内部タンパク質をコードするDNAで免疫化
した動物に認められ、このことはフェレットにおけるポ
リヌクレオチド免疫化が免疫反応を引き出し得、このよ
うな反応は防御的であることを実証する。
【0103】4.A/PR/8/34を用いた同種誘発
を同様に実施し、ポリヌクレオチドワクチン接種により
誘発される中和抗体の防御効力を同様に実証する。
【0104】実施例12 V1Jnsの取得 組込み研究を可能にするために、Sfil部位をV1J
neoに付加した。市販の13塩基対SfiIリンカー
(New England BioLabs)をベクタ
ーのBGH配列内のKpnl部位に付加した。V1Jn
eoをKpnIで線状にし、ゲル精製して、T4 DN
Aポリメラーゼにより盲端化し、盲端SfiIリンカー
に結紮した。制限マッピングによりクローン性単離物を
選択し、リンカー部分の配列解析で確認した。新規のベ
クターをV1Jnsと呼ぶ(図17)。V1Jns(S
fiIを有する)における異種遺伝子の発現は、V1J
neo(KpnIを有する)における同一遣伝子の発現
に匹敵した。
【0105】実施例13 免疫原性 1.体液性免疫反応 インフルエンザHA、NP及びM1をコードするDNA
の注入は、マウス、フェレット又は非ヒト霊長類(アフ
リカミドリザル及びアカゲザルを含む)において、体液
性免疫反応を引き起こした。今日までのところ、インフ
ルエンザウイルスのA/PR/34、B/Panama
/90、A/Beijing/89、A/Texas/
91、A/Hawaii/91及びA/Georgia
/93株からクローン化したHA遺伝子を含有するPN
Vは、抗体を生成することが示された。
【0106】a)マウス:NP及びM1に対する抗体
を、DNA注射後のマウスからの血清中でELISAに
より検出した。抗体力価の相当な値(10〜10
が、1μgという少ないNP DNA(A/PR/3
4)を1回投与(試験最小用量)でも生じ、注射後2週
間という早さ(試験最短時間)で生じ、注射後少なくと
も6か月間は低減しなかった。これらのNP抗体は中和
を示さず、防御に関与しなかった。しかしながら、それ
らはDNA注射後のin vivoでのNPタンパク質
発現をもたらす。これに対比して、HAに対する抗体
は、インフルエンザウイルスの同種株に対する防御免疫
を提供する。A/PR/34株からクローン化したHA
DNAを注入すると、ヘマグルチニン抑制(HI)検
定によりinVitroで測定されたところによると、
中和抗体の産生が起こる。HI力価≧1280は、10
0μgのHA DNAを3回投与したマウスの多数で測
定され、検出可能な力価は0.1μgの2回投与といっ
た少量投与動物でも何匹かに観察された。HI力価とD
NA用量との間、並びにHI力価と注入回数との間に用
量−反応関係が認められた(表13−I): 表 13−I マウスにおける体液性免疫反応の発生
【0107】
【表4】 表13−I:雌BALB/cマウス(4〜6週齢)にA
/PR/34 HADNA(V1JHA)を3週間おき
に指定用量で1、2又は3回注射した。陰性対照には、
遺伝子挿入物を含有しないベクター(V1J)から成る
対照DNAを注射したマウス、及び未使用非注射マウス
が含まれた。投与後7週目に血清標本を採集し、ヘマグ
ルチニン抑制(HI)抗体の存在に関して分析した。デ
ータはゲノム平均HI力価(n=10)で表す。
【0108】HI力価に対して陽性の試験マウスが一
部あった。
【0109】全マウス。
【0110】試験したすべてのマウスにおいて、HI抗
体の存在は同種誘発モデルにおける防御と相関した。H
A DNA(A/PR/34)を注射したマウスにおけ
るHI抗体反応は、少なくとも6か月間は事実上変わら
ぬままであった。HA抗体は、ELISAで測定される
ように、インフルエンザウイルスのA/Beijing
/89、B/Panama/90及びA/Texas/
91株からのHA DNAを用いてマウスにおいて生成
された。
【0111】DNA注入後の老齢マウスにおける低リポ
ーター遺伝子発現を示した文献の報告に基づいて、HA
に対する体液性免疫反応に及ぼす年齢の影響を調べた。
老齢処女雌マウスが入手できないために、約10か月齢
の引退した繁殖用動物を用いた。引退繁殖用動物及び4
〜6週齢処女マウスを、HAに対する抗体を生成するそ
の能力に関して比較した。老齢マウスは、若年マウスよ
り低い力価にもかかわらず、1μg(試験最低用量)と
いう低用量でのHA DNA注射後にもHA抗体を生成
した(表13−II)。
【0112】表 13−II 体液性免疫反応に及ぼす年齢の影響
【0113】
【表5】 表13−II:雌BALB/cマウス(4〜6週齢処女
及び10か月齢引退繁殖用動物)にA/PR/34 H
A DNA(V1JHA)を3週間おきに指定用量で3
回注射した。陰性対照には、対照DNA(V1J)を注
射したマウス、及び未使用非注射マウスが含まれた。比
較のために、他のマウスに亜致死量のインフルエンザA
/PR/34を注入した。投与後9週目に血清標本を採
集し、HI力価に関して分析した。データはゲノム平均
HI力価(n=15)で表す。
【0114】HI力価に対して全試験マウスが陰性だ
った。
【0115】しかしながら、これはPNVそれ自体の結
果ではなく、むしろ生A/PR/34ウイルスに感染後
に老齢マウスは概して若年マウスよりも低いHI反応を
示すという、体液性免疫反応を生成する老齢マウスの能
力の低下の結果であった。実際、HI抗体はDNA接種
老齢マウスにおいてはインフルエンザ感染老齢マウスよ
りHI抗体の抑制度は低いと思われた。さらに、本試験
に用いた引退繁殖用動物は、同一年齢の典型的処女より
約50%重かったが、このことはマウスにおけるカロリ
ー制限餌を用いた他の研究者の研究に基づけば、これら
の動物の免疫反応に不利益な作用を及ぼし得た。このそ
して他の理由により、これらのマウスの免疫反応は代表
的なものとはいえない。にもかかわらず、年齢(少なく
とも10か月まで)によっては、1μgという低用量に
おいてさえ、体液性免疫反応を誘発するポリヌクレオチ
ドワクチン接種の能力が有意に低減したとは思えない。
【0116】b)フェレット:体液性免疫反応は、イン
フルエンザウイルスのA/PR/34、A/Beiji
ng/89、A/Hawaii/91及びA/Geor
gia/93株からのHA DNAを注射したフェレッ
トにおいて生じた。A/PR/34に対するHI抗体及
び他の株からのHAに対するELISA抗体を適切なP
NVにより引き出した。A/Beijing/89、A
/Hawaii/91及びA/Georgia/93
HA DNAを注射したフェレットからの血清は、これ
らの動物がウイルス誘発から防御されたため、HI抗体
及び中和抗体を有することが判明している。
【0117】c)非ヒト霊長類:(上記実施例10も参
照)。10、100及び1000μg/足の用量でHA
DNA(A/PR/34)を2回用いてアカゲザルを
免疫化した。320に及ぶHI力価が、100又は10
00μg用量を投与した動物において測定されたが、2
匹の10μg投与サルのうちの1匹はHI力価が80で
あった。今までのところ、13か月まで血清を検定し
た。HI力価は6〜13か月では検出できるほどは低減
しなかった(表13−III): 表 13−III アカゲザルにおけるHI抗体の生成
【0118】
【表6】
【0119】表13−III:体重4.3〜8.8kg
の大きさのアカゲザル(雌雄)にA/PR/34 HA
DNA(V1J HA)を指定用量で0及び2週目に
注入した。血清標本は投与後の指定時間に採取し、HI
力価に関して分析した。データは個々の動物に関するH
I力価を表す。
【0120】HA DNA(A/Beijing/8
9)100μgを含有する組合せPNVを注射したアフ
リカミドリザルにおいて、1回投与後4〜6週目の血清
の評価は29というGMTを示した(8/9感応)。こ
れは、同時点での認可サブビリオンワクチン(GMT=
16,5/6感応)及び認可全ビリオンワクチン(GM
T=36,6/6感応)に対する反応よりも優れている
(図18)。二次免疫化すると顕著な効力増強の起こる
ことが、10μg用量のHA DNA投与動物で観察さ
れた(1回投与後のGMT=1.9,2回投与後=19
9)。認可全ビリオンワクチンでは同様の効力増強を示
したが、一方サブビリオンワクチンの二次投与では生成
したHI力価は一過性に過ぎなかった。今までのとこ
ろ、同様レベルのHI抗体は、最良認可ワクチン(全ビ
リオン)と比較して、10μg及び100μg用量のH
A DNAで免疫化した動物において18週までに測定
されている。これらの結果は、PNVが、全ビリオンワ
クチンと少なくとも同様にそしてサブビリオンワクチン
を上回って、中和抗体生成に際して有効であることを示
す。精製サブユニットワクチンは、マウスにおいて検出
可能な免疫原性を示さなかった。したがって、非ヒト霊
長類ではそれらを試験しなかった。本試験では、候補ワ
クチンに似せて、PNVは、A/Beijing/8
9、B/Panama/90及びA/Texas/91
からのHA、並びにA/PR/34からのNP及びM1
をコードするDNAの5価のカクテルを含有した。ワク
チンの他の成分に対する体液性免疫反応の発生に関して
これらの動物をさらにわれわれは調べ、B/Panam
a/90 HA及びA/PR/34 NPに対する抗体
を検出した。別々の実験において、A/Texas/9
1に対するHI及び中和抗体はともにPCRクローン化
HA DNAの2回投与により誘発した。
【0121】2.細胞媒介免疫反応 上記実施例3参照。
【0122】3.免疫反応の生成 a)体液性免疫:DNA注入後に体液性及び細胞媒介免
疫反応の発生が起こる現象は、まだ解明されていない。
中和抗体(例えばインフルエンザウイルスHAに対す
る)を生成するためには、細胞は形質膜上で抗原を発現
するか又はそれを細胞外環境に分泌しなければならな
い。さらに、トランスフェクト化細胞は、ビリオンの場
合のそれと同様の二次、三次及び四次構造を有するHA
を発現する必要がある。ロゼット検定においては、HA
の細胞表面発現は、HA DNAで一時的にトランスフ
ェクト化したRD細胞(横紋筋肉腫;筋原細胞起源)で
実証された。赤血球はHAトランスフェクト化細胞の表
面に凝集し、疑似トランスフェクト化細胞には凝集しな
かったが、これはHAが表面上で発現されただけでな
く、シアル酸含有タンパク質と結合するための適正な形
状を有していたことを示す。
【0123】b)細胞媒介免疫:細胞媒介免疫反応(例
えば、インフルエンザウイルスNPに対する)の発生に
は、I種MHCと会合してそこから得られるペプチドの
予防的プロセッシング及び提示を要する。DNA注入後
に免疫反応を発生させる抗原提示細胞の性質はまだ分か
っていない。筋細胞は低レベルのI種MHCしか発現せ
ず、その表面に同時刺激分子を発現するとは考えられな
い。したがって、筋細胞は一般に、抗原提示細胞ではな
いと考えられる。しかしながら、数種類の証拠は、筋細
胞がDNA筋注後の免疫反応の発生に関与していること
を示唆する。先ず、in situでのタンパク質発現
を引き起こす裸プラスミドDNAを内在化し得る組織の
限定調査は、プラスミドを直接組織中に注入すると多数
の細胞型がリポーター遺伝子を発現し得るが、しかし実
質的には筋細胞より効力が低いことを示した。筋注後の
非筋細胞によるDNAの取り込みの完全分析はまだ報告
されていないが、しかし取り込みはさらに低効率である
と思われる。第二に、DNA筋注後のリポーター遺伝子
の発現は、多数の異なる種の骨格筋及び心筋で示され
た。第三に、CTL反応は他の経路(静注及び皮内注
射)によってもDNA注入後に発生し得るが、しかしマ
ウスにおける最良の免疫反応はDNA筋注後に引き出さ
れた。第四に、筋原細胞及び筋細胞はin vitro
でCTLに認識され、溶解され、この溶解はI種MHC
発現を向上させるγ−インターフェロンで前処理するこ
とにより増強し得る。最後に、安定トランスフェクト化
NP発現筋原細胞を未使用同系マウスに移植すると、防
御的細胞媒介免疫反応がin vivoで引き起こされ
る(図20)。したがって、筋細胞による抗原の発現
は、DNA注入後に観察される防御的免疫反応を誘発す
るのに十分である。さらに、非筋細胞によるDNAの取
り込み及び発現は、防御免疫の生成を引き起こすのに必
要でないかも知れない。ワクチンとしてのポリヌクレオ
チドの見地から、DNA取り込みを筋細胞に限定するの
は有益である可能性がある。第一に、筋細胞は最終的に
弁別され、分裂しない。これはプラスミドDNAが染色
体DNAと一体化する可能性を低減し、抗原の永続的発
現を保持するのに重要であって、これにより長期免疫反
応が生じ得る。第二に、筋細胞は、筋原細胞の融合によ
り再生し得る大型多核細胞である。これはDNA注入が
なぜ、CTLによる細胞溶解的分解の証拠がなくてもお
そらくは長期間存続し得るタンパク質発現を引き起こす
のかを説明するのに役立つものと思われる。
【0124】実施例14 防御試験 ヒトインフルエンザ感染のため、広く用いられる二つの
動物モデル(マウス及びフェレット)を用いて、インフ
ルエンザ株を種々の組合せで、インフルエンザウイルス
抗原をコードするDNAを用いて免疫化すると、死亡及
び疾病が防御され、ウイルス負荷が低減した。
【0125】1.異種(異型,群共通)防御は、認可死
菌ワクチンによっては有効に達成されないものである
が、動物モデルにおけるDNAワクチン接種により提供
された。この防御は、NP又はM1をコードするDNA
を実験室動物に注入した場合に示された。これらのDN
Aを用いたワクチン接種により誘発される交差反応細胞
媒介免疫(CMI)反応は、防御反応を提供した。
【0126】a.マウス:A/PR/34からのNPを
コードするDNAを筋注したBALB/c及びC3Hマ
ウスは、LD90のA/Hong Kong/68(H
3N2)(H3であり、H1であるA/PR/34とは
異型株)を用いた全気道感染による誘発の場合に、死亡
及び疾病を防御した(体重減少で評価)。図21は、3
週間おきにNP DNA(200μg/投与)で3回免
疫化し、最終免疫化後3週目に誘発したBALB/cマ
ウスの生存率を示す。図22は、免疫化マウスにおける
誘発後の体重損失の阻止を示すが、これに比して対照マ
ウスは重度の体重損失を示した。図23は、対照非コー
ドDNAを投与したマウスと比較した場合の、NP D
NAにより免疫化したマウスの上気道誘発後7日目の肺
におけるウイルス負荷の減少を示す。NP DNAで免
疫化したマウスは、対照マウスと比較して、死亡を完全
に防御し、体重損失を低減し、肺のウイルス負荷の低下
を示した。死亡及び体重損失を防御するのに要するNP
DNAの量は、DNAを3回投与する場合は、≦6.
25μg/注射であることが判明した(図24)。NP
DNAを用いた免疫化により生じる防御は、免疫化マ
ウスにおいては少なくとも3か月間は事実上変わらずに
存続することが判明した。防御は6か月後まで続いた
が、最終免疫化後3〜6か月間にわずかに低下した。し
かしながら、NP DNAを25週目の誘発の3週間前
である22週目に1回注射する再接種をすると、完全防
御を回復した(図25)。したがって、NP DNAに
よるマウスの免疫化は長期存続性で、増強可能な異種防
御を生じた。これらの動物を再接種した場合に既往反応
を生じる能力は、免疫学的記憶がNP DNA免疫化に
より生成されたことを示唆する。
【0127】b.フェレット:フェレットは、インフル
エンザウイルスの広範囲のヒト単離物で感染しやすいた
め、ヒトインフルエンザ感染のためのモデルとして一般
に用いられる。フェレットにおけるウイルス複製は主に
鼻孔及び気管で、そして非常に少程度には肺で生じる
が、これに対比してマウスでは肺におけるウイルス負荷
が大きい。フェレットにおける感染は、鼻腔洗浄液中に
ウイルスを滴入することにより最も容易にできる。ヒト
から得られた最近の株(A/Beijing/89,H
3N2)からのNP DNA又はM1 DNAを単一で
又は組合せて用いて免疫化したフェレットは、野外単離
物A/Georgia/93(H3N2)で誘発した場
合1〜6日目にウイルス脱落の有意の低減を示した(図
26)。この野外単離物は、A/Beijing/89
認可ワクチンがA/Georgia/93によって引き
起こされる疾病に対するヒトの防御を殆ど又はまったく
提供しない程度に、A/Beijing/89型株から
の抗原連続変異を示した。A/PR/34の内部タンパ
ク質をコードするDNAで免疫化したフェレットは、同
型株A/PR/34で感染後5及び6日目に鼻腔ウイル
ス脱落の有意の低減を示した(図27)。ウイルス脱落
の低減は初期及び後期時点の両方でA/Georgia
/93誘発後に観察されたが、一方脱落の後期低減はA
/PR/34誘発後に観察された。これは2株間のフェ
レットに対する毒性の差に依るものと思われる。
【0128】2.同種(同型,型特異性)防御は、HA
DNAで免疫化したマウス及びフェレットの両方で容
易に実証された。
【0129】a.マウス:HA DNA(A/PR/3
4)で免疫化したBALB/cマウスは、LD90のA
/PR/34による誘発から完全に防御された。免疫化
マウスでは誘発後に死亡(図28)も体重の5%以上の
損失(図29)も認められなかったが、一方対照の90
〜100%が死亡しそして重度の体重損失を示した。防
御を達成するのに要するHA DNAの用量は、1μg
のHA DNAを3回注射すれば、完全防御を達成する
のに十分であることを示した(図30)。
【0130】b.フェレット:A/PR/34からのH
AをコードするDNAで免疫化したフェレットは、対照
DNAを投与したフェレットより有意に低いウイルス脱
落を同種誘発後1〜6日目に示した(図31)。同様
に、A/Georgia/93HA DNAで免疫化し
たフェレットは、同種感染後1日目及び3〜7日目にウ
イルス脱落の低減を示した(図32)。HI抗体は免疫
化フェレットのすべてからの血清中の適切な株に対して
存在した(上記参照)。したがって、HA DNAによ
る免疫化は同種防御を生じる。
【0131】3.ワクチン組合せ:NP及びM1 DN
Aと組合せて、一層普遍的な防御を提供するHA DN
Aの能力をフェレットで調べた。
【0132】a.抗原性連続変異変種に対する防御の
:A/Beijing/89及びA/Beijing
/92株間に生じた抗原性連続変異は、A/Beiji
ng/89株を含有する認可ワクチンで免疫化した多数
のヒトがA/Beijing/92変種により引き起こ
される疾病に対して防御されないほどに、広範囲のもの
であった。北米では、蔓延した疾病が、A/Beiji
ng/92様の野外単離物、例えばA/Georgia
/93により引き起こされた。この北米野外単離物は抗
原的にはその型株、即ちA/Beijing/92と同
様であるが、しかし単離の地理的位置、及びそれらが卵
ではなく哺乳類細胞培養中で継代されたという継代歴が
異なる。しかしながら、HAのアミノ酸配列に関して
は、A/Beijing/92様の株はHA1領域の1
1の点突然変異(133、135、145、156、1
57、186、190、191、193、226及び2
62位置)だけがA/Beijing/89様の株と異
なる。したがって、HA DNAに誘発される同型免疫
反応と、NP及びM1 DNAにより誘発される交差反
応性CMI反応とを組合せれば、この抗原性連続変異変
種に対し、より大きな防御を提供するのではないかを検
討することにした。A/Beijing/89株を含有
する認可ワクチンによる、あるいはA/Beijing
/89又はA/Beijing/89様の野外単離物
(A/Hawaii/91)からのHADNAによるフ
ェレットの免疫化は、フェレットにA/Georgia
/93による誘発を施した場合、ウイルス脱落の低減を
生じた(図33)。NP、M1及びHA DNAを含有
する組合せPNVで免疫化したフェレットは、認可物質
で、又はHA DNA単独で免疫化したフェレットより
有意に低いウイルス脱落を示した(図34)。A/Be
ijing/89 NP及びM1DNAと組合せたA/
Hawaii/91HA DNAの場合、生じた防御は
同種A/Georgia/93HA DNAにより提供
される最大防御とはさして異ならなかった(図35)。
したがって、HA、NP及びM1 DNAを組合せる
と、認可ワクチンに比して抗原性連続変異変種に対する
防御の改良が生じた。
【0133】b.ワクチン抗原の継代歴の影響:組織培
養のMDCK細胞中で継代させた米国野外単離物(A/
Hawaii/91)から得られたHA DNA配列か
ら成るワクチンで免疫化したフェレットは、抗原的連続
変異株A/Georgia/93で誘発した場合、卵継
代A/Beijing/89株を含有する認可死菌ウイ
ルスワクチンを投与したフェレットに比べ、低い(2次
元分散分析によりp=0.021)ウイルス脱落を示し
た(図33)。これに対比して、A/Beijing/
89からのHA DNAを投与したフェレットは、同一
ウイルスを含有する認可ワクチンを投与したフェレット
とは、有意に異なる(p=0.058)A/Georg
ia/93誘発後ウイルス脱落を示した。卵及び哺乳類
細胞増殖株はHAのHA1領域の2つの点突然変異(1
86及び193位置)で異なるが、これはともにHI及
び中和抗体の結合に重要であると考えられる領域のHA
モノマーの先端に近い抗原部位Bに位置する。いくつか
のヒトインフルエンザ単離物がニワトリRBCと結合す
る能力は、最初は非常に低いがしかし卵中での連続継代
により増大することがある。このことはHAの受容体結
合領域が鳥細胞における増殖による実質的選択を受け得
ることを示唆する。実験室動物におけるHAベースのイ
ンフルエンザワクチンの効力に及ぼす小配列変異の作用
は、このようなワクチンを調製する場合に野生型ウイル
スの配列にできるだけ近いものにすることの重要性を強
調する。
【0134】c.非ヒト霊長類:非ヒト霊長類は、感染
の臨床反応が乏しいために、インフルエンザ誘発モデル
としては一般に用いない。しかしながら、認可死菌ウイ
ルスワクチンとの比較に際して、非ヒト霊長類における
PNVワクチン組合せの免疫原性をわれわれは調べた。
HA及び内部タンパク質遺伝子を含有する組合せPNV
によりもたらされる抗体力価は、HI抗体力価及び反応
の持続時間に関しては認可物質と少なくとも等しかった
(上記参照)。PNVで免疫化したアフリカミドリザル
は抗原連続変異性変種に関するHA PNVに反応した
が、これはPNVに対する型特異性反応が過去に免疫化
された被験体に生じ得ることを示す。PNVで免疫化さ
れたサルはさらに慣用の死菌ウイルスワクチンを用いた
その後の免疫化にも反応した。
【0135】4.結論:インフルエンザに対するポリヌ
クレオチドワクチンは、インフルエンザ感染の実験室動
物モデルに有効である。同種防御はHAをコードするD
NAベクターを用いて、最も有利には現行認可インフル
エンザワクチンに用いるHAタンパク質により誘発され
るのと同様の免疫学的機序により達成し得る。異種防御
は、インフルエンザの保存内部タンパク質をコードする
DNAを含入することにより、抗原的不連続変異及び連
続変異株の両方に対して達成し得る。1回免疫化にこれ
らのアプローチを組合せると、フェレットモデルにおい
ては現行認可ワクチンと比較して、抗原性連続変異変種
に対する防御の改良が生じた。
【0136】実施例15 ベクターV1R調製 基礎ワクチンベクターを絶えず最適化しようと、我々は
V1Rと呼ばれるV1Jnsの誘導体を調製した。この
ベクター構築の目的は、V1J及びV1Jnsがもたら
す全体的最適化遺伝子発現特性及び高プラスミド収率を
依然として保持したまま、最小サイズの、即ち不必要な
DNA配列を含有しないワクチンベクターを生成するこ
とであった。文献から並びに経験により、(1)大腸菌
の複製原点をなすpUC骨格内の領域を、プラスミド収
率を犠牲にせずに細菌から切り取り得る;(2)カナマ
イシン開放読み枠後のkan遺伝子の3′領域を、そ
の代わりに細菌ターミネーターを挿入して切り取り得
る;そして(3)BGHの3′側の〜300塩基対の半
分を、その調節機能に影響を及ぼさずに切り取り得る
(BGHエレメント内に現存するKpnl制限部位の
後)ということを我々は確かめた。
【0137】それぞれCMVintAプロモーター/B
GHターミネーター、複製原点及びカナマイシン耐性遺
伝子のDNAの3つのセグメントをV1JnsからPC
Rを用いて合成し、V1Rを構築した。PCRオリゴマ
ーを用いて、各々のセグメントに特有の制限酵素を各セ
グメント末端に付加した:CMVintA/BGHに関
してはSspI及びXhoI;kan遺伝子に関して
はEcoRV及びBamHI;そしてoriに関して
はBclI及びSalI。各々のPCR−由来DNAセ
グメントを方向性をもって結紮させ、各部位をその後除
去できるよう、これらの酵素部位を選択した:EcoR
V及びSspIは結紮に適合性の盲端DNAを残し、一
方BamHI及びBclIはSalI及びXhoIの場
合と同様に相補的オーバーハングを残す。PCRにより
これらのセグメントを得た後、各セグメントを上記の適
切な制限酵素で消化し、次いで3つのDNAセグメント
をすべて含有する、単一の反応混合物に結紮した。or
5′末端は、カナマイシン耐性遺伝子に関する終結
情報を提供し得るようにこの領域内に一般に見出される
T2 rho非依存性ターミネーター配列を包含するよ
う意図した。制限酵素消化(>8酵素)により、並びに
結紮接合部のDNA配列解析により、結紮物質を確認し
た。V1R内でのウイルス遺伝子を用いたDNAプラス
ミド収率及び異種発現は、V1Jnsと同様であると思
われる。ベクターサイズの正味低減は、1346bp
(V1Jns=4.86Kb;V1R=3.52Kb)
であった(図36(配列番号45)参照)。
【0138】V1Rを合成するために用いたPCRオリ
ゴマー配列を以下に示す(制限酵素部位には下線を施
し、配列の後ろのかぎ括弧内にその名称を示した):
【0139】
【配列表】
【0140】
【0141】
【0142】
【0143】
【0144】
【0145】
【0146】
【0147】
【0148】
【0149】
【0150】
【0151】
【0152】
【0153】
【0154】
【0155】
【0156】
【0157】
【0158】
【0159】
【0160】
【0161】
【0162】
【0163】
【0164】
【0165】
【0166】
【0167】
【0168】
【0169】
【0170】
【0171】
【0172】
【0173】
【0174】
【0175】
【0176】
【0177】
【0178】
【0179】
【0180】
【0181】
【0182】
【0183】
【0184】
【0185】
【0186】
【0187】
【0188】
【0189】
【0190】
【0191】
【0192】
【0193】
【0194】
【0195】
【0196】
【0197】
【0198】
【0199】
【0200】
【0201】
【0202】
【0203】
【図面の簡単な説明】
【図1】PCRによる筋肉中のNPプラスミドDNAの
検出を示す電気泳動の写真である。RSV−NP DN
A又はブランクベクター(100μg/足)をBALB
/cマウスの両四頭筋に3週間間隔で3回注射し、その
後マウスをインフルエンザに感染させた。最終注射後4
週間目に筋肉を摘出し、直ちに液体窒素中で凍結させ
た。次にそれらをMIKRODISMEMBRATOR
TM(B.Braun Instruments)に入
れた溶解緩衝液(25mM トリス−HPO,pH
8、2mM トランス−1:2−ジアミノシクロヘキサ
ン四酢酸(CDTA)、2mM DTT、10% グリ
セロール、1% Triton X−100)中で粉砕
し、高分子DNAをフェノール/クロロホルム及びエタ
ノール沈降により抽出した。40サイクルPCR反応
(PCRはPerkin Elmer Cetus G
ENEAMPTMキットでの操作支持どおりとした)を
実施して筋肉中のNPプラスミドDNAの存在を検出し
た。CMVプロモーターからの挿入NP遺伝子の5′部
分の殆どに及ぶ772塩基対のPCR生成物質(矢印を
参照)を、プロモーター領域でプライムした18塩基長
センスオリゴヌクレオチド(GTGTGCACCTCA
AGCTGG,配列番号1)及び挿入NP配列の5′部
分の23塩基長オリゴヌクレオチドアンチセンスプライ
マー(CCCTTTGAGAATGTTGCATTC,
配列番号2)から生成した。この772bp物質は、選
択NP DNA注入筋肉標本において臭化物染色アガロ
ースゲル上で観察されるが、ブランクベクター対照(6
00L)では認められない。上記の各レーンの名称は、
マウス同定番号及び右又は左足を示す。
【図2】NP DNA注射マウスにおけるNP抗体の産
生。マウスの各足にV1−NPDNA 100μgを
0、3及び6週間目に注射し、0、2、5及び8週目に
血液を採取した。血清中の抗NP IgGの存在を、バ
キュロウイルス発現ベクターでトランスフェクトしてお
いた昆虫細胞から精製したNPを用いて、ELISA
(J.J.Donnellyら,J.Immunol.
145,3071(1990))により検定した。結果
は、最初のNP DNA注射後の時間に対する平均lo
10ELISA力価±SEM(n=10)としてプロ
ットした。ブランクベクターで免疫化したマウスは検出
可能なNP抗体を生じなかった。
【図3】DNAで免疫化したマウスから得られたCTL
に関して4時間51Cr放出検定で測定した特異的溶解
(%)。マウスを400μgのV1−NP DNA(黒
丸)又はブランクベクター(黒四角)で免疫化して、3
〜4週間後に屠殺した。陰性対照CTLは、未使用マウ
ス(白三角)、そして陽性対照は4週間前にA/HK/
68で感染させておいたマウス(黒三角)から得た。グ
ラフは代表的な個々のマウスからのデータを示す。少な
くとも8匹の個体を各組の条件に関して調べた。A図:
NP147−155パルス化自系脾細胞で再刺激し、N
P147−155パルス化P815細胞に対して検定し
た脾細胞。B図:NP147=155パルス化自系脾細
胞で再刺激し、CTL付加前に6時間インフルエンザA
/Victoria/73(H3N2)で感染させたP
815標的に対して検定した脾細胞。C図:付加的抗原
を用いずにCon A及びIL−2で再刺激し、NP1
47−155でパルス化したP815細胞に対して検定
した脾細胞。D図:マウスに1回の注射につき200μ
gのV1−NP DNA又はブランクベクターを3週間
置きに3回注射した。最終免疫化後4週目に脾臓を取り
出して、脾細胞をIL−2及びCon Aと7日間培養
し、CTLをA/Victoria/73で感染させた
P815標的細胞に対して検定した。
【図4】10TCID50のA/HK/68を用いた
非麻酔下鼻腔内誘発後のDNA免疫化マウスにおける体
重損失(グラム)及び回復。V1−NP DNA又はブ
ランクベクターを用いて3週間置きに3回マウスを免疫
化するか、あるいは注射せずに、最終免疫化後3週目に
誘発した。誘発時点でそして4日目から毎日、NP D
NA注射マウス(黒丸)、ブランクベクター対照(白三
角)及び非注射対照(白丸)に関し、各群マウス10匹
の重量を調べた。ここに、平均体重±SEMを示す。N
P DNA注射マウスは、t−検定によると、8〜13
日目にブランクベクター注射(p≦0.005)及び非
注射マウス(p≦0.01)より有意に低い体重損失を
示した。2つの対照間に有意差は認められなかった(t
−検定ではp=0.8)。
【図5】102.5TCID50のA/HK/68を用
いた非麻酔下鼻腔内誘発後のDNA免疫化マウスの生存
率。V1−NP DNA(黒丸)又はブランクベクター
(白丸)で3週間置きに3回免疫化したマウス、及び非
注射対照(白三角)を最終免疫化後3週間目に誘発し
た。生存率(%)は、9匹又は10匹のマウス群に関し
て示す。NP DNA注射マウスの生存率は、対照より
有意に大きかった(χ2乗分析でp=0.0004)
が、一方ブランクベクター注射マウスと非注射マウスと
の間に有意差は認められなかった(χ2乗分析でp=
0.17)。
【図6】発現ベクターV1J,配列番号10の配列。
【図7】発現ベクターV1Jneo,配列番号18の配
列。
【図8】CMVintA−BGHプロモーター−ターミ
ネーター配列,配列番号11の配列。
【図9】サル抗−NP抗体。
【図10】フェレット赤血球凝集抑制。点線は最小防御
抗体力価を示し、貫通横線付き丸で平均値を示す。
【図11】DNA免疫化後のフェレットにおけるIgG
抗NP抗体。
【図12】DNA免疫化をした場合としない場合のフェ
レットにおけるインフルエンザウイルス脱落。
【図13】pRSV−PR−NP及びV1−NPベクタ
ーの図解。NPは挿入されたコーディング領域を示す。
【図14】インフルエンザタンパク質及び株の図解。
【図15】細胞内での注入DNAプロセッシングの図
式。
【図16】HA及び内部タンパク質遺伝子による免疫化
によって誘発されるインフルエンザA/RP/8/34
に対するフェレットの耐性。
【図17】V1Jnsベクターの図解。
【図18】アフリカミドリザルにHA DNA(A/B
eijing/89,B/Panama/90,A/T
exas/91)、NP DNA(A/PR/34)及
びM1 DNA(A/PR/34)から成るDNAのカ
クテルを注射した。各成分は、10μg(黒四角)又は
100μg(黒丸)を6週間の間隔をおいて(矢印参
照)2回投与した。比較のために、他の動物に完全ヒト
用量(45μgタンパク質当量;15μg/HA)で、
認可サブビリオン(白四角)及び全ビリオン(白丸)ワ
クチンを別の動物に注射した。血清標本を2週間毎に1
8週間収集し、A/Beijing/89 HAに対す
るHI力価に関して分析した。データは幾何平均HI力
価±SEM(この場合n=3)として表す。
【図19】雌BALB/cマウス(4〜6週齢)にA/
PR/34 NP DNA(200μg)を3週間おき
に3回注射した。陰性対照としては、対照DNA(20
0μg)、組換え体NPタンパク質(10μg)を注射
したマウス、及び未使用非注射マウス(模擬)が含まれ
た。比較のために、インフルエンザウイルスA/HK/
68(インフルエンザ)に感染させたマウスも試験し
た。CTLは投与後6か月のものから得られ、ウイルス
感染同系脾細胞を用いてin vitroで再刺激し
て、10:1のエフェクター:標的比でNPペプチドパ
ルス化P815細胞に対して試験した。データは%特異
的溶解±sd(n=3)で示す。
【図20】C3H/HeNマウスに正常C12筋原
細胞(1×10細胞)、組換え体NPタンパク質(2
μg)又はNPトランスフェクト化筋原細胞(1×10
細胞)を注射した。この量のNPタンパク質(2μ
g)は抗体反応を生じるのに十分であり、移植NPトラ
ンスフェクト化筋原細胞中に存在するNPの量の約10
0倍と等価であった。CTLは処置後6週目のこれらの
マウスから調製し、インフルエンザウイルス感染同系脾
細胞でin vitroで再刺激した。陽性対照とし
て、CTLをインフルエンザウイルスA/HK/68に
感染させておいたマウスから調製した。未処置(黒)、
インフルエンザウイルスA/Victoria/73−
感染(斜線)及びNPトランスフェクト筋原細胞(点
描)を25:1のエフェクター:標的比で標的細胞とし
て用いた。データは%特異的溶解±sd(n=3)で示
す。
【図21】4週齢雌BALB/cマウスを、3週間おき
に3回NP DNA 200μgを筋注して免疫化し
た。麻酔下での300TCID50のA/HK/68投
与により3回目の免疫化後3週目にマウスに誘発した
(全気道誘発)。生存マウス(10匹/群)の比率を誘
発後の時間に対してプロットした。
【図22】4週齢雌BALB/cマウスを、3週間おき
に3回NP DNA 100μgを筋注して免疫化し
た。麻酔下での300TCID50のA/HK/68投
与により3回目の免疫化後3週目にマウスに誘発した
(全気道誘発)。マウスを毎日計量し、各生存マウスに
関して初期体重との比率を算出した。初期体重との平均
パーセントを±SEM対誘発後の時間でプロットした。
【図23】4週齢雌BALB/cマウスを、3週間おき
に3回NP DNA 200μgを筋注して免疫化し
た。非麻酔下での2000TCID50のA/HK/6
8投与により3回目の免疫化後3週目にマウスに誘発し
た(上部気道誘発)。誘発後7日目にマウスを安楽死さ
せて、肺を摘出し、ホモジェナイズして、MDCK細胞
に関する順次測定によりウイルス力価を測定した。
【図24】4週齢雌BALB/cマウスを、3週間おき
に3回NP DNA 6.25、25、100又は20
μ″gを筋注して免疫化した。麻酔下での300TCI
50のA/HK/68投与により3回目の免疫化後3
週目にマウスに誘発した(全気道誘発)。生存マウス
(10匹/群)の比率を誘発後の時間に対してプロット
した。
【図25】4週齢雌BALB/cマウスを、3週間おき
に3回、200μgのNP DNA、対照DNA又は模
擬物質を筋注して免疫化した。次に麻酔下で300TC
ID50のA/HK/68を用いてDNAの3回注射後
6、12及び25週目にマウスに誘発した。選択マウス
では22週目にNP DNA 200μgで再免疫化
し、次いで25週目に誘発した(“追加免疫”)。平均
体重は、各群に関する初期全体重の百分率として示す。
図示した対照体重は6、12及び25週誘発からの全対
照群、対照DNAを摂取した又は模擬物質を注射した6
群の合計の体重の平均である。各群は最初は各々10匹
の動物を含有した。死亡したマウスは次の重量分析から
除外した。
【図26】成熟(22〜28週齢)雄フェレットをA/
Beijing/89からのNPをコードするDNA
1mg、A/Beijing/89からのM1をコード
するDNA 1mg、又は両DNAを併合したもの 1
mgを用いて、0及び42日目に免疫化した。対照フェ
レットは非コードDNA又は全ヒト用量(15μg/
株)のA/Beijing/89を含有する認可全ウイ
ルスインフルエンザワクチン(92〜93処方物)を0
及び42日目に摂取した。A/Georgia/93を
用いて56日目にフェレットに誘発した。鼻腔洗浄時の
ウイルス脱落は上記と同様に測定した。3〜5日目のウ
イルス脱落を2次元分散分析により対照DNA投与フェ
レットの脱落と比較した。NP DNA、M1 DNA
又はNP+M1 DNA投与フェレットにおける脱落は
対照フェレットの脱落よりも有意に低かった(それぞれ
p<0.0001、0.0016及び<0.000
1)。NP(データは示されていない)、M1又はNP
+M1投与フェレットの脱落は、認可ワクチン投与フェ
レットの場合の脱落と有意に異ならなかった(それぞれ
p=0.104、0.533及び0.145)。1mg
の免疫化用量は、任意に選択した。用量範囲試験は非ヒ
ト霊長類で実施した。
【図27】雄22〜25週齢フェレット8匹の各群を対
照DNA、食塩水又はインフルエンザA/PR/8/3
4タンパク質をコードするDNAを筋注して0、21及
び121日目に免疫化し、148日目に200TCID
50のA/PR/8/34を鼻腔内投与して誘発した。
免疫化動物はNP DNA 1mg又はNP、NS1、
PB1、PB2及びM1 DNAを併合したもの 2m
g(各構成分 400μg)を摂取した。対照は食塩水
0.5ml/足又は対照DNA 1mgを摂取した。
解析の都合上、食塩水及び対照DNAを摂取した群を併
合し(対照)、NP DNAを単独で又は他の内部タン
パク質遺伝子と組合せて摂取した群(内部)と比較し
た。グラフは、3mlの容量の鼻腔洗浄液の50μl当
たりのTCID50での鼻腔洗浄感染性力価を示す。未
希釈洗浄液(試験最低希釈)は原鼻腔浸出物の1:10
希釈物であると仮定して、陽性未希釈標本は1 log
の値を割り当てた。1 logより大きい力価は3回の
反復実験の中からReed−Muench内挿法に基づ
いて割り当てて、5g%感染性終点を得た。未希釈を試
験した場合に陰性であった標本には、0 logの値を
割り当てた。グラフに示したpの値を、2平均に関する
T−検定により指定日に免疫化フェレット対対照に関し
てコンピューター処理する。全曲線に関するpの値を2
次元分散分析によりコンピューター処理すると、NP対
対照は<0.0001、併合DNA対対照は<0.00
1となった。
【図28】DNAで免疫化し、次いでインフルエンザウ
イルスで誘発したマウスの生存率。マウスに、200μ
gのA/PR/34からのHAをコードするDNA又は
対照(非コード)DNAを3週間置きに3回節注した。
最終免疫化後3週目にマウスに1000TCID50
A/PR/34を用いた全気道誘発(麻酔下での鼻腔下
での鼻腔内点滴注入による)を施した。データは、誘発
後の生存率(%)対時間としてプロットした(n=9又
は10匹/群)。
【図29】DNAで免疫化し、次いでインフルエンザウ
イルスで誘発したマウスの体重損失。マウスに、200
μgのA/PR/34からのHAをコードするDNA又
は対照(非コード)DNAを3週間置きに3回節注し
た。最終免疫化後3週目にマウスに1000TCID
50のA/PR/34を用いた全気道誘発(麻酔下での
鼻腔内点滴注入による)を施した。データは、各群に関
して平均を出した各固体の初期体重の%対時間としてプ
ロットした(死亡動物は平均から除外した)。
【図30】DNAで免疫化し、次いでインフルエンザウ
イルスで誘発したマウスの生存率。マウスに、1、10
又は100μgのA/PR/34からのHAをコードす
るDNA又は対照(非コード)DNAを3週間置きに3
回節注した。最終免疫化後3週目にマウスに1000T
CID50のA/PR/34を用いた全気道誘発(麻酔
下での鼻腔内点滴注入による)を施した。データは、誘
発後の生存率(%)対時間としてプロットした(n=9
又は10匹/群)。
【図31】雄22〜25週齢フェレット8匹の各群を対
象DNA、食塩水又はインフルエンザA/PR/8/3
4タンパク質をコードするDNAを筋注して0、21及
び121日目に免疫化し、148日目に200TCID
50のA/PR/8/34を鼻腔内投与して誘発した。
免疫化動物はHA DNA 1mg又はHA、NP、N
S1、PB1、PB2及びM1 DNAを併合したもの
2mg(各構成分 330μg)を摂取した。対照は食
塩水 0.5ml/足又は対照DNA 1mgを摂取し
た。解析の都合上、食塩水及び対照DNAを摂取した群
を併合し(対照)、HA DNAを単独で又は他の内部
タンパク質遺伝子と組合せて摂取した群(HA,HA+
内部)と比較した。グラフは、3mlの容量の鼻腔洗浄
液の50μl当たりのTCID50での鼻腔洗浄感染性
力価を示す。末希釈洗浄液(試験最低希釈)は原鼻腔浸
出物の1:10希釈物であると仮定して、陽性末希釈標
本に1 logの値を割り当てた。1 logより大き
い力価は3回の反復実験の中からReed−Muenc
h内挿法に基づいて割り当てて、50g%感染性終点を
得た。未希釈を試験した場合に陰性であった標本には、
0 logの値を割り当てた。全曲線に関するpの値を
2次元分散分析によりコンピューター処理すると、HA
対対照は<0.0001、併合DNA対対照は<0.0
001となった。
【図32】成熟(22〜28週齢)雄フェレットをA/
Geogia/93からのHAをコードするDNA 1
mgを筋注して、0及び42日目に免疫化した。対照フ
ェレットは非コードDNA又は全ヒト用量(15μg/
株)のA/Beijing/89を含有する認可全ウイ
ルスインフルエンザワクチン(92〜93処方物)を0
及び42日目に摂取した。A/Georgia/93を
用いて56日目にフェレットに誘発した。鼻腔洗浄時の
ウイルス脱落は上記と同様に測定した。1〜6日目のウ
イルス脱落を2次元分散分析により対照DNA投与フェ
レットの脱落と比較した。HA DNA投与フェレット
における脱落は対照フェレットの脱落よりも有意に低か
った(p<0.0001)。
【図33】成熟(22〜28週齢)雄フェレットをA/
Hawaii/91又はA/Beijing/89(デ
ータは示されていない)からのHAをコードするDNA
1mgを筋注して、0及び42日目に免疫化した。対
照フェレットは非コードDNA又は全ヒト用量(15μ
g/株)のA/Beijing/89を含有する認可全
ウイルスインフルエンザワクチン(92〜93処方物)
を0及び42日目に摂取した。A/Georgia/9
3を用いて56日目にフェレットに誘発した。鼻腔洗浄
時のウイルス脱落は上記と同様に測定した。1〜6日目
のウイルス脱落を2次元分散分析により対照DNA投与
フェレットの脱落と比較し、著しく低い(p<0.00
01)ことを認めた。A/Hawaii/91 HA
DNA投与フェレットにおける脱落は認可物質投与フェ
レットの脱落よりも有意に低かった(A/Hawaii
/91 HA DNAに関してはp=0.021;1〜
6日目についての2次元分散分析)。一方、A/Bei
jing/89 HADNA投与フェレットの場合の脱
落(データは示されていない)は認可物質投与フェレッ
トにおける脱落と有意に異ならなかった(p=0.05
8;1〜6日目についての2次元分散分析)。
【図34】成熟(22〜28週齢)雄フェレットをA/
Hawaii/91(図13参照)からのHAをコード
するDNA 1mgを用いて、又はA/Hawaii/
91からのHA並びにA/Beijing/89からの
NP及びM1をコードするDNA各々330μgを筋注
して、0及び42日目に免疫化した。対照フェレットは
非コードDNA又は全ヒト用量(15μg/株)のA/
Beijing/89を含有する認可全ウイルスインフ
ルエンザワクチン(92〜93処方物)を0及び42日
目に摂取した。A/Georgia/93を用いて56
日目にフェレットに誘発した。鼻腔洗浄時のウイルス脱
落は上記と同様に測定した。1〜6日目のウイルス脱落
を2次元分散分析により対照DNA投与フェレットの脱
落と比較した。HA+NP+M1 DNA投与フェレッ
トにおける脱落は認可ワクチン(p<0.0001)又
はHA DNA単独(p=0.0053)投与フェレッ
トの脱落よりも有意に低かった。
【図35】成熟(22〜28週齢)雄フェレットをA/
Geogia/93からのHAをコードするDNA 1
mgを用いて、又はA/Hawaii/91からのH
A、並びにA/Beijing/89からのNP及びM
1をコードするDNA 各々330μgを筋注して、0
及び42日目に免疫化した。対照フェレットは非コード
DNA又は全ヒト用量(15μg/株)のA/Beij
ing/89を含有する認可全ウイルスインフルエンザ
ワクチン(92〜93処方物)を0及び42日目に摂取
した。A/Georgia/93を用いて56日目にフ
ェレットに誘発した。鼻腔洗浄時のウイルス脱落は上記
と同様に測定した。1〜6日目のウイルス脱落を2次元
分散分析により対照DNA投与フェレットの脱落と比較
した。HA+NP+M1 DNA投与フェレットにおけ
る脱落は同種HA DNA投与フェレットにおける脱落
と有意に異ならなかった(p=0.064)。
【図36】発現ベクターV1R,配列番号45の配列。
フロントページの続き (72)発明者 ジヨン・ジエイ・ドンリー アメリカ合衆国、ペンシルバニア・ 19083、ヘイバータウン、ビアウツド・ ロード・1505 (72)発明者 バラバニ・ジエイ・ドウワルキ アメリカ合衆国、カリフオルニア・ 94501、アラメダ、ブロードウエイ・ 1175、アパートメント・エヌ (72)発明者 マーガレツト・エイ・リウ アメリカ合衆国、ペンシルバニア・ 19190、ローズモント、クツシユマン・ ロード・4 (72)発明者 ドンナ・エル・モンゴメリー アメリカ合衆国、ペンシルバニア・ 18914、カルフオント、ヒツコリー・レ ーン・9 (72)発明者 スザンヌ・イー・パーカー アメリカ合衆国、カリフオルニア・ 92130、サン・デイエゴ、カーメル・ラ ンデイング・3646 (72)発明者 ジヨン・ダブリユ・シバー アメリカ合衆国、ペンシルバニア・ 18901、ドイルスタウン、ビユーラ・ロ ード・125 (72)発明者 ジエフリー・ビー・ウルマー アメリカ合衆国、ペンシルバニア・ 18914、カルフオント、ドリー・サーク ル・128 (56)参考文献 特開 昭63−304988(JP,A) 特開 昭62−51992(JP,A) 特表 平7−507203(JP,A) 特表 平1−503464(JP,A) 特表 昭62−501973(JP,A) 国際公開93/3173(WO,A1) Jourral of Geuera l Virology,Vol.73 (1992)p.359−367 (58)調査した分野(Int.Cl.6,DB名) C12N 15/44 A61K 39/145 A61K 31/70 A61K 48/00 C07H 21/04 WPI(DIALOG) MEDLINE(STN) BIOSYS(DIALOG)

Claims (7)

    (57)【特許請求の範囲】
  1. 【請求項1】 インフルエンザウイルスによる疾病から
    動物を防御するために投与されるポリヌクレオチドワク
    チンであって、核タンパク質、ポリメラーゼ、マトリッ
    クス又は非構造ヒトインフルエンザウイルス遺伝子生成
    物質から選択されるインフルエンザウイルスタンパク質
    をコードするヌクレオチド配列に操作可能に結合した調
    節配列を少なくとも1つ有するDNAブラスミドを含む
    ポリヌクレオチドワクチン。
  2. 【請求項2】 上記DNAがV1Jns DNAプラス
    ミドベクターと調節配列の少くとも1つに操作可能に結
    合した上記インフルエンザウイルスタンパク質をコード
    する上記ヌクレオチド配列とを含む請求項1に記載のポ
    リヌクレオチドワクチン。
  3. 【請求項3】 1つ又はそれ以上の下記の: a)V1Jns−BJ−NP(A/Beijing/3
    53/89),構築物サイズ6.42Kb(これの5′
    末端が配列番号52でありそしてこれの3′末端が配列
    番号53である); b)V1Jns−BJ−M1(A/Beijing/3
    53/89),構築物サイズ5.62Kb(これの5′
    末端が配列番号54でありそしてこれの3′末端が配列
    番号55である); c)V1Jns−PA−NP(B/Panama/45
    /90),構築物サイズ6.54Kb(これの5′末端
    が配列番号56でありそしてこれの3′末端が配列番号
    57である);及び d)V1Jns−PA−M1(B/Panama/45
    /90),構築物サイズ5.61Kb(これの5′末端
    が配列番号58でありそしてこれの3′末端が配列番号
    59である)から選択されるDNA構築物を含有する請
    求項1または2に記載のポリヌクレオチドワクチン。
  4. 【請求項4】 非ヒト動物における、予防的有効量の請
    求項1ないし3のいずれかに記載のDNAによる免疫化
    を包含するインフルエンザウイルスによる感染に対する
    防御方法。
  5. 【請求項5】 生体組織へのDNAの直接投与を包含す
    る請求項4記載の方法。
  6. 【請求項6】 DNAが担体を用いずに生理的に許容可
    能な溶液中の裸DNAとしてあるいはDNAとリポソー
    ムの混合物としてあるいはアジュバントとの又はトラン
    スフェクション促進剤との混合物として投与される請求
    項5記載の方法。
  7. 【請求項7】 下記のDNA; a)V1Jns−BJ−NP(A/Beijing/3
    53/89),構築物サイズ6.42Kb(これの5′
    末端が配列番号52でありそしてこれの3′末端が配列
    番号53である); b)V1Jns−BJ−M1(A/Beijing/3
    53/89),構築物サイズ5.62Kb(これの5′
    末端が配列番号54でありそしてこれの3′末端が配列
    番号55である); c)V1Jns−PA−NP(B/Panama/45
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