JP2554848B2 - Ｖｉｉｉ：ｃ製剤 - Google Patents
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Description
【０００１】
【産業上の利用分野】この発明は、血漿から分離、精製
されたヒトのVIII：Ｃ製剤に関する。
されたヒトのVIII：Ｃ製剤に関する。
【０００２】
【従来の技術】血漿からの抗血友病因子の分離について
は、文献に発表されている。抗血友病因子、すなわち因
子VIII凝固活性蛋白質（因子VIII）の精密な構造は、一
部には、十分量の純物質がえられず、より深い研究が不
可能なために、いまだに確認されていない。純物質の入
手に制約があり、しかもこの因子が稀薄状態で存在する
ために、この因子の治療上の利用が妨げられていた。
は、文献に発表されている。抗血友病因子、すなわち因
子VIII凝固活性蛋白質（因子VIII）の精密な構造は、一
部には、十分量の純物質がえられず、より深い研究が不
可能なために、いまだに確認されていない。純物質の入
手に制約があり、しかもこの因子が稀薄状態で存在する
ために、この因子の治療上の利用が妨げられていた。
【０００３】因子VIII凝固活性蛋白質は、血友病血漿中
の凝固欠陥を正すよう機能する。これは、血漿中でフォ
ンウィルブランド因子蛋白質と複合して循環する。フォ
ンウィルブランド因子蛋白質は、フォンウィルブランド
病における血小板機能欠陥を変化させうる。因子VIII／
フォンウィルブランド因子複合物の凝固活性を有する部
分は因子VIII凝固活性蛋白質、因子VIII−凝固活性、ま
たは単にVIII：Ｃと呼ばれる（“VIII：Ｃ”の名称は、
以後、上記の凝固活性のある因子VIII分子の部分を同定
するために用いられる）。
の凝固欠陥を正すよう機能する。これは、血漿中でフォ
ンウィルブランド因子蛋白質と複合して循環する。フォ
ンウィルブランド因子蛋白質は、フォンウィルブランド
病における血小板機能欠陥を変化させうる。因子VIII／
フォンウィルブランド因子複合物の凝固活性を有する部
分は因子VIII凝固活性蛋白質、因子VIII−凝固活性、ま
たは単にVIII：Ｃと呼ばれる（“VIII：Ｃ”の名称は、
以後、上記の凝固活性のある因子VIII分子の部分を同定
するために用いられる）。
【０００４】因子VIII／フォンウィルブランド因子複合
物のフォンウィルブランド病の血小板機能欠陥を正す能
力を有する他の部分は、フォンウィルブランド因子、因
子VIII関連抗原、VIIIＲ：Ａg 、VIII：ＲＰ因子と呼ば
れる（表示“VIII：ＲＰ”は、以後因子VIII分子の血小
板補正機能を同定するために用いられる）。これまでに
実証されているわけではないが、VIII：Ｃが、非共有複
合物としてVIII：ＲＰと結合している小分子の性質と挙
動を示すという結論を裏付ける徴候がある。またVIII：
ＣおよびVIII：ＲＰの双方が結合している性質は適当な
条件のもとで開裂して２つの断片を生じうる単一分子で
もありうるという主張についての根拠もある。
物のフォンウィルブランド病の血小板機能欠陥を正す能
力を有する他の部分は、フォンウィルブランド因子、因
子VIII関連抗原、VIIIＲ：Ａg 、VIII：ＲＰ因子と呼ば
れる（表示“VIII：ＲＰ”は、以後因子VIII分子の血小
板補正機能を同定するために用いられる）。これまでに
実証されているわけではないが、VIII：Ｃが、非共有複
合物としてVIII：ＲＰと結合している小分子の性質と挙
動を示すという結論を裏付ける徴候がある。またVIII：
ＣおよびVIII：ＲＰの双方が結合している性質は適当な
条件のもとで開裂して２つの断片を生じうる単一分子で
もありうるという主張についての根拠もある。
【０００５】因子VIII／フォンウィルブランド因子複合
物、VIII：Ｃ、およびVIII：ＲＰの構造を同定する必要
性およびVIII：Ｃに帰せられる凝固活性の重要な薬剤価
値に鑑み、因子VIIIを精製する、およびVIII：ＣとVII
I：ＲＰを分離し、かつ濃縮する多くの試みが行なわれ
た。使用する技法は、一般に免疫吸着法またはイオン交
換クロマトグラフィのいずれかに基いていた。このため
に従来使用されている技法は、蛋白質を荷電イオン物質
から損傷のない状態で着脱させたり、または蛋白質を適
切量で回収することが困難なために、成功には制約があ
った。
物、VIII：Ｃ、およびVIII：ＲＰの構造を同定する必要
性およびVIII：Ｃに帰せられる凝固活性の重要な薬剤価
値に鑑み、因子VIIIを精製する、およびVIII：ＣとVII
I：ＲＰを分離し、かつ濃縮する多くの試みが行なわれ
た。使用する技法は、一般に免疫吸着法またはイオン交
換クロマトグラフィのいずれかに基いていた。このため
に従来使用されている技法は、蛋白質を荷電イオン物質
から損傷のない状態で着脱させたり、または蛋白質を適
切量で回収することが困難なために、成功には制約があ
った。
【０００６】免疫吸着クロマトグラフィを利用するVII
I：ＣをVIII：ＲＰから分離する上記方法の１つが、
Ｅ．Ｇ．Ｄ．Ｔuddenham等によりＪＯＵＲＮＡＬ ＯＦ
ＬＡＢＯＲＡＴＯＲＹ ＣＬＩＮＩＣＡＬ ＭＥＤＩ
ＣＩＮＥ，９３巻，４０頁（１９７９年）に“免疫吸着
クロマトグラフィによって調製した因子VIII凝固活性の
特性”の題名で発表されている。報告された方法は、VI
II：ＲＰに対する多クローン抗血清（抗−VIII：ＲＰ）
が結合されているアガロース・ビーズを充填したクロマ
トグラフィ・カラムを用いて、VIII：Ｃをほとんどすべ
てのVIII：ＲＰおよびほとんどのその他の血漿蛋白質か
ら分離する１段法である。因子VIII／フォンウィルブラ
ンド因子を含む血漿が、VIII：ＣとVIII：ＲＰの双方を
吸着するカラムにかけられる。その他の不要な血漿蛋白
質は、緩衝塩水溶液で洗浄することによってカラムから
除去され、そして所望のVIII：Ｃが、その後のカルシウ
ム・イオン勾配液による溶離によってえられる。この方
法は、従来の既知の方法と比較して、VIII：Ｃの純度と
収率の双方の改善であると述べらているが、生じた生成
物はVIII：ＲＰおよびその他の血漿蛋白質をも含むとも
述べられている。このような不純物質は、アガロース・
ビーズに結合された多クローン抗血清を使用することに
原因するものと考えられる。抗血清を構成する免疫グロ
ブリンの大多数は、VIII：ＲＰに対して特異でないか
ら、VIII：ＲＰに特異な抗体がアガロースに結合されう
る有効座数は、アガロース上の有限数の結合座に対する
抗血清の間の競合により、比較的少ない。
I：ＣをVIII：ＲＰから分離する上記方法の１つが、
Ｅ．Ｇ．Ｄ．Ｔuddenham等によりＪＯＵＲＮＡＬ ＯＦ
ＬＡＢＯＲＡＴＯＲＹ ＣＬＩＮＩＣＡＬ ＭＥＤＩ
ＣＩＮＥ，９３巻，４０頁（１９７９年）に“免疫吸着
クロマトグラフィによって調製した因子VIII凝固活性の
特性”の題名で発表されている。報告された方法は、VI
II：ＲＰに対する多クローン抗血清（抗−VIII：ＲＰ）
が結合されているアガロース・ビーズを充填したクロマ
トグラフィ・カラムを用いて、VIII：Ｃをほとんどすべ
てのVIII：ＲＰおよびほとんどのその他の血漿蛋白質か
ら分離する１段法である。因子VIII／フォンウィルブラ
ンド因子を含む血漿が、VIII：ＣとVIII：ＲＰの双方を
吸着するカラムにかけられる。その他の不要な血漿蛋白
質は、緩衝塩水溶液で洗浄することによってカラムから
除去され、そして所望のVIII：Ｃが、その後のカルシウ
ム・イオン勾配液による溶離によってえられる。この方
法は、従来の既知の方法と比較して、VIII：Ｃの純度と
収率の双方の改善であると述べらているが、生じた生成
物はVIII：ＲＰおよびその他の血漿蛋白質をも含むとも
述べられている。このような不純物質は、アガロース・
ビーズに結合された多クローン抗血清を使用することに
原因するものと考えられる。抗血清を構成する免疫グロ
ブリンの大多数は、VIII：ＲＰに対して特異でないか
ら、VIII：ＲＰに特異な抗体がアガロースに結合されう
る有効座数は、アガロース上の有限数の結合座に対する
抗血清の間の競合により、比較的少ない。
【０００７】アミノヘキシル置換アガロースを用いるク
ロマトグラフィ技法によって、VIII：ＲＰとリストセチ
ン共同因子からVIII：Ｃを分離するもう一つの方法が
Ｄ．Ｅ．Ｇ．Ａusten の、ＢＲＩＴＩＳＨ ＪＯＵＲＮ
ＡＬ ＯＦ ＨＡＥＭＡＴＯＬＯＧＹ，４３巻，６６９
頁（１９７９年）“因子VIIIのアミノヘキシル・セファ
ロース上でのクロマトグラフィによる分離”により報告
されている。記述の方法は、人間と豚の双方の因子VIII
／フォンウィルブランド因子の成分部分についての改善
法であると述べられている。しかしながら、この方法も
また、得られる生成物中に不純物質が存在するという欠
点を示す。ＴuddenhamらおよびＡusten による両方法に
おいて、不純物質を含む生成物が、通常希望されるより
さらに稀薄な状態で、生成する。
ロマトグラフィ技法によって、VIII：ＲＰとリストセチ
ン共同因子からVIII：Ｃを分離するもう一つの方法が
Ｄ．Ｅ．Ｇ．Ａusten の、ＢＲＩＴＩＳＨ ＪＯＵＲＮ
ＡＬ ＯＦ ＨＡＥＭＡＴＯＬＯＧＹ，４３巻，６６９
頁（１９７９年）“因子VIIIのアミノヘキシル・セファ
ロース上でのクロマトグラフィによる分離”により報告
されている。記述の方法は、人間と豚の双方の因子VIII
／フォンウィルブランド因子の成分部分についての改善
法であると述べられている。しかしながら、この方法も
また、得られる生成物中に不純物質が存在するという欠
点を示す。ＴuddenhamらおよびＡusten による両方法に
おいて、不純物質を含む生成物が、通常希望されるより
さらに稀薄な状態で、生成する。
【０００８】
【発明が解決しようとする課題】以上のように、VIII：
Ｃに帰せられる凝固活性の重要な薬剤価値に鑑み、VII
I：ＲＰやその他の血漿蛋白質を含まない、高い力価お
よび高い比活性を有するヒトのVIII：Ｃ製剤が要望され
ており、本発明はこのようなヒトのVIII：Ｃ製剤を提供
することを目的とする。
Ｃに帰せられる凝固活性の重要な薬剤価値に鑑み、VII
I：ＲＰやその他の血漿蛋白質を含まない、高い力価お
よび高い比活性を有するヒトのVIII：Ｃ製剤が要望され
ており、本発明はこのようなヒトのVIII：Ｃ製剤を提供
することを目的とする。
【０００９】
【課題を解決するための手段】本発明は、１３４〜１１
７２単位／ｍｌの力価を有し、且つ本質的にVIII：ＲＰ
を含まないことを特徴とするヒトのVIII：Ｃ製剤であ
り、また、２２４０単位／ｍｇ以上の比活性を有するこ
とを特徴とするヒトのVIII：Ｃ製剤からなる。
７２単位／ｍｌの力価を有し、且つ本質的にVIII：ＲＰ
を含まないことを特徴とするヒトのVIII：Ｃ製剤であ
り、また、２２４０単位／ｍｇ以上の比活性を有するこ
とを特徴とするヒトのVIII：Ｃ製剤からなる。
【００１０】このようなヒトのVIII：Ｃ製剤は、例え
ば、血漿または濃縮液を用いて、因子VIII／フォンウィ
ルブランド因子複合物の成分分子、即ちVIII：ＲＰとVI
II：Ｃとを分離し、凝固活性蛋白質VIII：Ｃを濃縮精製
することによって得ることができる。このような濃縮精
製法のひとつとして、血漿または濃縮液からの２段階の
クロマトグラフ吸着および濃縮法を用いた場合について
以下に説明する。
ば、血漿または濃縮液を用いて、因子VIII／フォンウィ
ルブランド因子複合物の成分分子、即ちVIII：ＲＰとVI
II：Ｃとを分離し、凝固活性蛋白質VIII：Ｃを濃縮精製
することによって得ることができる。このような濃縮精
製法のひとつとして、血漿または濃縮液からの２段階の
クロマトグラフ吸着および濃縮法を用いた場合について
以下に説明する。
【００１１】第１段階は、血漿または市販濃縮液からの
因子VIIIの免疫吸着法である。使用する吸着剤は、例え
ばアガロース・ビーズのような適当な基質に結合された
VIII：ＲＰに特異な単クローン抗体からなっている。VI
II：Ｃ／VIII：ＲＰが最初に吸着されてから、基質粒子
を緩衝溶液により十分に洗浄して、非吸着蛋白質を除去
する。つぎに吸着物質を、吸着VIII：Ｃを溶離するため
に、カルシウム・イオンを含む溶液で処理する。VIII：
ＲＰ部分は、抗VIII：ＲＰが結合した物質に吸着された
ままである。この時点で、最初に吸着されたVIII：Ｃの
約４０〜６０％が、高純度状態で回収される。ただし、
回収された凝固活性蛋白質は、きわめて純度は高いが、
すなわち、ほとんど汚染物質を含んでいないが、稀薄す
ぎるため、有意な治療的価値を有していない。
因子VIIIの免疫吸着法である。使用する吸着剤は、例え
ばアガロース・ビーズのような適当な基質に結合された
VIII：ＲＰに特異な単クローン抗体からなっている。VI
II：Ｃ／VIII：ＲＰが最初に吸着されてから、基質粒子
を緩衝溶液により十分に洗浄して、非吸着蛋白質を除去
する。つぎに吸着物質を、吸着VIII：Ｃを溶離するため
に、カルシウム・イオンを含む溶液で処理する。VIII：
ＲＰ部分は、抗VIII：ＲＰが結合した物質に吸着された
ままである。この時点で、最初に吸着されたVIII：Ｃの
約４０〜６０％が、高純度状態で回収される。ただし、
回収された凝固活性蛋白質は、きわめて純度は高いが、
すなわち、ほとんど汚染物質を含んでいないが、稀薄す
ぎるため、有意な治療的価値を有していない。
【００１２】この方法の第２段階は、アフィニィティ・
クロマトグラフィとして特性化される技法を用いて、回
収した高純度VIII：Ｃを主として濃縮することに向けら
れている。
クロマトグラフィとして特性化される技法を用いて、回
収した高純度VIII：Ｃを主として濃縮することに向けら
れている。
【００１３】この方法の第１段階からえられた約１０〜
２０国際単位（以下“単位”と呼称する）の効力をもつ
VIII：Ｃ溶液を、アミノヘキシル置換アガロースを含む
カラムで処理する。つぎにカラムを緩衝溶液で洗浄し、
そしてVIII：Ｃをカルシウム・イオン含有溶液で溶離
し、１０００単位／mlを超え、かつ血漿から１６０，０
００倍以上純化されているVIII：Ｃ濃縮液をうる。かく
て、この方法によって、予期しない高純度の凝固活性蛋
白質が、高度に濃縮され、かつ治療上有用な状態でえら
れた。これまでに使用された方法では、いくつかの理由
から、上記の顕著な結果を達成できない。前述したＴud
denhamらの方法は、この発明によるVIII：ＲＰに特異
で、かつ高度に選択的な単クローン抗体の代りに、結合
多クローン抗血清を使用している。その結果、VIII：Ｒ
Ｐに特異な抗体が、少数しか、一定重量のアガロースと
結合しない。この発明では、単クローン抗体がもっぱら
比較的不活性な基質と結合される。Ｔuddenhamらの方法
を使用するときは、免疫グロブリン−アガロース・ビー
ズml当りVIII：ＲＰ２．６〜６．４単位（カラムに適用
した量の５３．１〜８２．９％に相当）のみが除去され
る。これは、この発明の単クローン抗体免疫吸着剤を使
用する場合に回収されるビーズml当り１２．５−１８．
８単位（すなわち、カラムに適用したVIII：ＲＰの９０
〜１００％）以上と比較される。したがって、ビーズml
当りにより多くのVIII：Ｃ／VIII：ＲＰ（因子VIII／フ
ォンウィルブランド因子）を吸着する能力が、それが引
続き免疫吸着剤から溶離された時、より高濃度のVIII：
Ｃを生ずる。かくて、Ｔuddenhamらの方法による溶離液
mlあたり０．５〜１．２５単位と対比して、この発明で
は、溶離液ml当りVIII：Ｃ１０〜２０単位がえられる。
２０国際単位（以下“単位”と呼称する）の効力をもつ
VIII：Ｃ溶液を、アミノヘキシル置換アガロースを含む
カラムで処理する。つぎにカラムを緩衝溶液で洗浄し、
そしてVIII：Ｃをカルシウム・イオン含有溶液で溶離
し、１０００単位／mlを超え、かつ血漿から１６０，０
００倍以上純化されているVIII：Ｃ濃縮液をうる。かく
て、この方法によって、予期しない高純度の凝固活性蛋
白質が、高度に濃縮され、かつ治療上有用な状態でえら
れた。これまでに使用された方法では、いくつかの理由
から、上記の顕著な結果を達成できない。前述したＴud
denhamらの方法は、この発明によるVIII：ＲＰに特異
で、かつ高度に選択的な単クローン抗体の代りに、結合
多クローン抗血清を使用している。その結果、VIII：Ｒ
Ｐに特異な抗体が、少数しか、一定重量のアガロースと
結合しない。この発明では、単クローン抗体がもっぱら
比較的不活性な基質と結合される。Ｔuddenhamらの方法
を使用するときは、免疫グロブリン−アガロース・ビー
ズml当りVIII：ＲＰ２．６〜６．４単位（カラムに適用
した量の５３．１〜８２．９％に相当）のみが除去され
る。これは、この発明の単クローン抗体免疫吸着剤を使
用する場合に回収されるビーズml当り１２．５−１８．
８単位（すなわち、カラムに適用したVIII：ＲＰの９０
〜１００％）以上と比較される。したがって、ビーズml
当りにより多くのVIII：Ｃ／VIII：ＲＰ（因子VIII／フ
ォンウィルブランド因子）を吸着する能力が、それが引
続き免疫吸着剤から溶離された時、より高濃度のVIII：
Ｃを生ずる。かくて、Ｔuddenhamらの方法による溶離液
mlあたり０．５〜１．２５単位と対比して、この発明で
は、溶離液ml当りVIII：Ｃ１０〜２０単位がえられる。
【００１４】この方法によると、VIII：ＲＰに対して高
親和力を示す単クローン抗体の選択もできる。一方、多
クローン抗体を使用すると親和力に変化をもたらす。VI
II：ＲＰの結合抗体の親和性と、VIII：ＲＰの溶離の間
には、間接的な関係があることを認めなければならな
い。かくて、VIII：ＲＰに対する抗体の親和性が高くな
るほど、溶離液中にVIII：Ｃとともに存在するVIII：Ｒ
Ｐの量が減少する。この発明によって、特異単クローン
抗体を無制限にうることもでき、したがってまた種々の
バッチの間の変動を排除できる。
親和力を示す単クローン抗体の選択もできる。一方、多
クローン抗体を使用すると親和力に変化をもたらす。VI
II：ＲＰの結合抗体の親和性と、VIII：ＲＰの溶離の間
には、間接的な関係があることを認めなければならな
い。かくて、VIII：ＲＰに対する抗体の親和性が高くな
るほど、溶離液中にVIII：Ｃとともに存在するVIII：Ｒ
Ｐの量が減少する。この発明によって、特異単クローン
抗体を無制限にうることもでき、したがってまた種々の
バッチの間の変動を排除できる。
【００１５】前述したように、Ａusten は、VIII：Ｃを
VIII：ＲＰから分離するためにアミノヘキシル・アガロ
ースを使用したことを報告したが、分離および精製段階
に続いて、VIII：Ｃを濃縮するために、このような物質
が使用されたことはなかった。これまでに、クロマトグ
ラフィにアミノヘキシル・アガロースを用いて達成され
た最高のVIII：Ｃ濃度は、人間の蛋白質について溶離液
ml当りに０．５３単位、豚のVIII：Ｃについて溶離液ml
当り２．３８単位であった。この発明によれば、これよ
り数桁大きな濃度をうることができる。おそらく、さら
に重要と考えられるのは、この発明によって、これまで
に報告されたより高い純度の人間のVIII：Ｃがえられる
という事実である（血漿の１６４，０００倍対１７，０
００倍）。以後に、さらに詳細に述べるこの方法によっ
て、市販の濃縮液を使用すると、２，３００単位／mgの
比活性を有するVIII：Ｃがえられる。これは血漿からの
純度の１６４，０００倍に相当する。VIII：Ｃと、VII
I：ＲＰの比は、血漿中の比と比較すると１０5 以上で
ある。
VIII：ＲＰから分離するためにアミノヘキシル・アガロ
ースを使用したことを報告したが、分離および精製段階
に続いて、VIII：Ｃを濃縮するために、このような物質
が使用されたことはなかった。これまでに、クロマトグ
ラフィにアミノヘキシル・アガロースを用いて達成され
た最高のVIII：Ｃ濃度は、人間の蛋白質について溶離液
ml当りに０．５３単位、豚のVIII：Ｃについて溶離液ml
当り２．３８単位であった。この発明によれば、これよ
り数桁大きな濃度をうることができる。おそらく、さら
に重要と考えられるのは、この発明によって、これまで
に報告されたより高い純度の人間のVIII：Ｃがえられる
という事実である（血漿の１６４，０００倍対１７，０
００倍）。以後に、さらに詳細に述べるこの方法によっ
て、市販の濃縮液を使用すると、２，３００単位／mgの
比活性を有するVIII：Ｃがえられる。これは血漿からの
純度の１６４，０００倍に相当する。VIII：Ｃと、VII
I：ＲＰの比は、血漿中の比と比較すると１０5 以上で
ある。
【００１６】以下の記述によって、VIII：Ｃの分離、精
製および濃縮が、従来知られなかった程度の純度と濃縮
度に達成されるために、この発明の実施態様が実施さ
れ、かつ用いられる方法の詳細が示される。この記述
は、この発明を例示するものではあるが、とくにこの発
明を限定するものと解されるべきではなく、また、当業
者の知識範囲内にあると考えられる変化は、この発明の
範囲内に入るとみなすものとする。
製および濃縮が、従来知られなかった程度の純度と濃縮
度に達成されるために、この発明の実施態様が実施さ
れ、かつ用いられる方法の詳細が示される。この記述
は、この発明を例示するものではあるが、とくにこの発
明を限定するものと解されるべきではなく、また、当業
者の知識範囲内にあると考えられる変化は、この発明の
範囲内に入るとみなすものとする。
【００１７】
Ａ．VIII：ＲＰに対する単クローン抗体の調製 後に分離基質に結合されるVIII：ＲＰに対する単クロー
ン抗体は、因子VIII／フォンウィルブランド因子（VII
I：Ｃ／VIII：ＲＰ複合物）の高度に精製された調製物
から出発する段階的な方法に従って調製できる。免疫の
ための精製は、血漿源からえられた物質により行なう。
またポリビニル板のコーテングのためのあまり純度の高
くない物質は、ＦＡＣＴＯＲＡＴＥ（ニューヨーク州Ｔ
uckahoe 市Ａrmour Ｐharmaceutical Ｃo 社製品の商標
名）またはＨemophil （カリフォルニア州Ｃosta Ｍes
a 市Ｈyland Ｌaboratories 社製品の商標名）のような
市販されている抽出物からより高い濃度で得られる。精
製は、ＩＭＭＵＮＯ−ＡＳＳＡＹＳ：ＣＬＩＮＩＣＡＬ
ＬＡＢＯＲＡＴＯＲＹ ＴＥＣＨＮＩＱＵＥＳ ＦＯ
Ｒ ＴＨＥ １９８０´s ，Ｒ．Ｍ．Ｎakamura ．等
編、Ａlan Ｒ．Ｌiss ，Ｉnc．，Ｎew Ｙork 、３３９
〜３４９頁（１９８０年）に発表されたＺimmermanおよ
びＲobertsによる“因子VIII関連抗原”に記述されてい
るような、クリオプレピシテートの標準アガロース−ゲ
ル濾過によって行なわれる。マウスに、以下の手順にし
たがって血漿から得られた高度に精製した因子VIII／フ
ォンウィルブランド因子を注射した。ゼロ日に、マウス
に、０．０５Ｍのトリス、０．１５Ｍの塩化ナトリウ
ム、０．０２％のアジ化ナトリウム、１m Ｍのフェニル
・メチルフッ化スルフォニル、および１０単位／mlのト
レイシロール（traysylol ）を含む０．１mlの緩衝溶液
中にｐＨ７．３で蛋白質１０mgを溶解（または懸濁）さ
せ、等容量の完全フロイントアジュバントと振盪して調
製された組成物を、腹腔内注射した。１４日目に、完全
フロイントアジュバントが不完全フロイントアジュバン
トに替った以外は上記と同一である物質をマウスに再び
注射した。２１日目に、１４日目の注射を繰返した。３
８日目に、マウスに精製VIII：Ｃ／VIII：ＲＰのみを注
射した。４２日目に、マウスの脾臓を取り出しそしてＪ
ＯＵＲＮＡＬ ＯＦ ＢＩＯＬＯＧＩＣＡＬ ＣＨＥＭ
ＩＳＴＲＹ，２２５巻，４９８０〜４９８３頁（１９８
０年）記載のＪ．Ｐ．Ｂrownらによる“単クローン抗体
による免疫析出法により識別した正常および悪性人間細
胞の蛋白質抗原”で発表された型の標準法にしたがって
融合した。標準法は、５０％ポリエチレン・グリコール
１０００が３５％ポリエチレン・グリコールに替ってい
る程度にしか変えていない。VIII：ＲＰに対する抗体を
産生するクローンの放射免疫測定は次の手順により行な
う。“Ｖ”字型底を備えるフレキシブル型のポリビニー
ル板を、上記の手順にしたがって市販抽出液から精製さ
れた蛋白質濃度０．１２５mg／mlの因子VIII０．１mlで
コーティングする。ポリビニール板を、アルブミンでブ
ロックし、緩衝液で洗浄し、そして被験クローンからの
培養液とインキュベートする。つぎにポリビニール板を
洗浄して、ラビット抗マウスＩg Ｇ抗血清と反応させ、
もう一度洗浄し、そして125 Ｉで標識した山羊抗ラビッ
トＩg Ｇ抗血清をウェルに添加して、インキュベートす
る。ポリビニール板を再び洗浄して、つぎに乾燥し、そ
してウェルを切除して計数する。陽性のクローンを決定
してから、これらを少なくとも２回サブクローニング
し、つぎにVIII：ＲＰに対する抗体を産生する安定なク
ローンを、細胞注射の少なくとも４日前にプリスタン
０．５mlにより腹腔内に前処置してあるＢalb ／Ｃマウ
スの腹腔に注射する。ハイブリドーマ細胞をマウス当り
約５×１０6 細胞の濃度で、牛胎児血清のない０．５ml
のＤelbecco 改良Ｅagle培地を介して注入する。マウス
を、鼓脹した時に穿刺し、そして腹水液を約１０単位／
mlのヘパリン中に集める。複数のマウスからの腹水液を
プールして、その後の単クローンＩg Ｇの分離用の適当
量を供給する。ヘパリン化した腹水液をただちに使用し
ないときは、この腹水液は、−７０℃で保存し、そして
使用直前に解凍しうる。腹水液からのＩg Ｇの最終収量
は１００ml腹水液当りＩg Ｇ約１g である。
ン抗体は、因子VIII／フォンウィルブランド因子（VII
I：Ｃ／VIII：ＲＰ複合物）の高度に精製された調製物
から出発する段階的な方法に従って調製できる。免疫の
ための精製は、血漿源からえられた物質により行なう。
またポリビニル板のコーテングのためのあまり純度の高
くない物質は、ＦＡＣＴＯＲＡＴＥ（ニューヨーク州Ｔ
uckahoe 市Ａrmour Ｐharmaceutical Ｃo 社製品の商標
名）またはＨemophil （カリフォルニア州Ｃosta Ｍes
a 市Ｈyland Ｌaboratories 社製品の商標名）のような
市販されている抽出物からより高い濃度で得られる。精
製は、ＩＭＭＵＮＯ−ＡＳＳＡＹＳ：ＣＬＩＮＩＣＡＬ
ＬＡＢＯＲＡＴＯＲＹ ＴＥＣＨＮＩＱＵＥＳ ＦＯ
Ｒ ＴＨＥ １９８０´s ，Ｒ．Ｍ．Ｎakamura ．等
編、Ａlan Ｒ．Ｌiss ，Ｉnc．，Ｎew Ｙork 、３３９
〜３４９頁（１９８０年）に発表されたＺimmermanおよ
びＲobertsによる“因子VIII関連抗原”に記述されてい
るような、クリオプレピシテートの標準アガロース−ゲ
ル濾過によって行なわれる。マウスに、以下の手順にし
たがって血漿から得られた高度に精製した因子VIII／フ
ォンウィルブランド因子を注射した。ゼロ日に、マウス
に、０．０５Ｍのトリス、０．１５Ｍの塩化ナトリウ
ム、０．０２％のアジ化ナトリウム、１m Ｍのフェニル
・メチルフッ化スルフォニル、および１０単位／mlのト
レイシロール（traysylol ）を含む０．１mlの緩衝溶液
中にｐＨ７．３で蛋白質１０mgを溶解（または懸濁）さ
せ、等容量の完全フロイントアジュバントと振盪して調
製された組成物を、腹腔内注射した。１４日目に、完全
フロイントアジュバントが不完全フロイントアジュバン
トに替った以外は上記と同一である物質をマウスに再び
注射した。２１日目に、１４日目の注射を繰返した。３
８日目に、マウスに精製VIII：Ｃ／VIII：ＲＰのみを注
射した。４２日目に、マウスの脾臓を取り出しそしてＪ
ＯＵＲＮＡＬ ＯＦ ＢＩＯＬＯＧＩＣＡＬ ＣＨＥＭ
ＩＳＴＲＹ，２２５巻，４９８０〜４９８３頁（１９８
０年）記載のＪ．Ｐ．Ｂrownらによる“単クローン抗体
による免疫析出法により識別した正常および悪性人間細
胞の蛋白質抗原”で発表された型の標準法にしたがって
融合した。標準法は、５０％ポリエチレン・グリコール
１０００が３５％ポリエチレン・グリコールに替ってい
る程度にしか変えていない。VIII：ＲＰに対する抗体を
産生するクローンの放射免疫測定は次の手順により行な
う。“Ｖ”字型底を備えるフレキシブル型のポリビニー
ル板を、上記の手順にしたがって市販抽出液から精製さ
れた蛋白質濃度０．１２５mg／mlの因子VIII０．１mlで
コーティングする。ポリビニール板を、アルブミンでブ
ロックし、緩衝液で洗浄し、そして被験クローンからの
培養液とインキュベートする。つぎにポリビニール板を
洗浄して、ラビット抗マウスＩg Ｇ抗血清と反応させ、
もう一度洗浄し、そして125 Ｉで標識した山羊抗ラビッ
トＩg Ｇ抗血清をウェルに添加して、インキュベートす
る。ポリビニール板を再び洗浄して、つぎに乾燥し、そ
してウェルを切除して計数する。陽性のクローンを決定
してから、これらを少なくとも２回サブクローニング
し、つぎにVIII：ＲＰに対する抗体を産生する安定なク
ローンを、細胞注射の少なくとも４日前にプリスタン
０．５mlにより腹腔内に前処置してあるＢalb ／Ｃマウ
スの腹腔に注射する。ハイブリドーマ細胞をマウス当り
約５×１０6 細胞の濃度で、牛胎児血清のない０．５ml
のＤelbecco 改良Ｅagle培地を介して注入する。マウス
を、鼓脹した時に穿刺し、そして腹水液を約１０単位／
mlのヘパリン中に集める。複数のマウスからの腹水液を
プールして、その後の単クローンＩg Ｇの分離用の適当
量を供給する。ヘパリン化した腹水液をただちに使用し
ないときは、この腹水液は、−７０℃で保存し、そして
使用直前に解凍しうる。腹水液からのＩg Ｇの最終収量
は１００ml腹水液当りＩg Ｇ約１g である。
【００１８】VIII：Ｃを精製するために使用される単ク
ローンＩg Ｇの特異性は次のようにして判断される。即
ち、まず下記の方法でＩg Ｇを分離基質媒体と結合さ
せ、次に(1) 結合したＩg Ｇが血漿からVIII：ＲＰおよ
びVIII：Ｃの両方を除去すること、および(2) VIII：Ｃ
がその後カルシウム・イオン含有溶液で溶離され、一方
VIII：ＰＲは固体状態の基質と結合している単クローン
Ｉg Ｇと複合物を形成したままであることを明示するこ
とにより判断される。
ローンＩg Ｇの特異性は次のようにして判断される。即
ち、まず下記の方法でＩg Ｇを分離基質媒体と結合さ
せ、次に(1) 結合したＩg Ｇが血漿からVIII：ＲＰおよ
びVIII：Ｃの両方を除去すること、および(2) VIII：Ｃ
がその後カルシウム・イオン含有溶液で溶離され、一方
VIII：ＰＲは固体状態の基質と結合している単クローン
Ｉg Ｇと複合物を形成したままであることを明示するこ
とにより判断される。
【００１９】続いて免疫吸着剤を調製するために使用さ
れる単クローンＩg Ｇは、ヘパリン化してプールした腹
水液から捕集直後に分離でき、又は保存溶液の凍結部分
を解凍しうる。新鮮物質または凍結物質のいずれを使用
するかに関わりなく、溶液を４℃にたもち、その組成を
下記に示す等容量のリン酸塩緩衝塩水溶液（ＰＢＳ）に
よって処理する。稀釈腹水は、等容量の飽和硫酸アンモ
ニウム（ＳＡＳ）を４℃で撹拌しながら滴下することに
より沈殿させる。ＳＡＳは、過剰の硫酸アンモニウムを
水中で沸騰させ、４℃に冷却し、不溶解結晶を濾別し、
そして水酸化アンモニウムによって、ｐＨを７．０に調
節して、調製する。沈殿物とその上澄み液を少なくとも
２時間撹拌して、４℃で遠心分離する。遠心分離操作は
好ましくは１４，０００rpm で、６０分間行なう（３
０，０００×g ）。腹水の上澄み液は、もう２回ＳＡＳ
で沈殿させ、そして沈殿物と上澄み液の混合物を撹拌し
て、第１サイクルと同様な方法で遠心分離する。第３沈
殿からえられるペレットは、稀釈腹水液と等容量のＰＢ
Ｓ中に再懸濁させ、そしてつぎにＰＢＳに対して徹底的
に透析する。透析バッグ内に現われる凝固物質は、２０
℃で遠心分離により除去する。透析したＩg Ｇは、これ
を室温で、水酸化アルミニウムの５％水溶液と撹拌し、
吸着後２０℃で遠心分離することによって吸着させる。
吸着処理は、第１回の処理後の各処理ごとに、２．５％
水酸化アルミニウム溶液を用いて少なくともあと３回繰
返す。吸着されたＩg Ｇは、４℃にして、１回、上記の
ようにＳＡＳで再沈殿する。沈殿ペレットは、使用まで
−２０℃で保存するとよい。
れる単クローンＩg Ｇは、ヘパリン化してプールした腹
水液から捕集直後に分離でき、又は保存溶液の凍結部分
を解凍しうる。新鮮物質または凍結物質のいずれを使用
するかに関わりなく、溶液を４℃にたもち、その組成を
下記に示す等容量のリン酸塩緩衝塩水溶液（ＰＢＳ）に
よって処理する。稀釈腹水は、等容量の飽和硫酸アンモ
ニウム（ＳＡＳ）を４℃で撹拌しながら滴下することに
より沈殿させる。ＳＡＳは、過剰の硫酸アンモニウムを
水中で沸騰させ、４℃に冷却し、不溶解結晶を濾別し、
そして水酸化アンモニウムによって、ｐＨを７．０に調
節して、調製する。沈殿物とその上澄み液を少なくとも
２時間撹拌して、４℃で遠心分離する。遠心分離操作は
好ましくは１４，０００rpm で、６０分間行なう（３
０，０００×g ）。腹水の上澄み液は、もう２回ＳＡＳ
で沈殿させ、そして沈殿物と上澄み液の混合物を撹拌し
て、第１サイクルと同様な方法で遠心分離する。第３沈
殿からえられるペレットは、稀釈腹水液と等容量のＰＢ
Ｓ中に再懸濁させ、そしてつぎにＰＢＳに対して徹底的
に透析する。透析バッグ内に現われる凝固物質は、２０
℃で遠心分離により除去する。透析したＩg Ｇは、これ
を室温で、水酸化アルミニウムの５％水溶液と撹拌し、
吸着後２０℃で遠心分離することによって吸着させる。
吸着処理は、第１回の処理後の各処理ごとに、２．５％
水酸化アルミニウム溶液を用いて少なくともあと３回繰
返す。吸着されたＩg Ｇは、４℃にして、１回、上記の
ようにＳＡＳで再沈殿する。沈殿ペレットは、使用まで
−２０℃で保存するとよい。
【００２０】Ｂ． 免疫吸着剤の調製 免疫吸着剤は、結合のための単クローンＩg Ｇを調製
し、結合のための固体基質を調製し、そして前者が後者
と結合するよう両成分を反応させることによって調製さ
れる。
し、結合のための固体基質を調製し、そして前者が後者
と結合するよう両成分を反応させることによって調製さ
れる。
【００２１】（i ） 結合用Ｉg Ｇの調製 新たに沈殿したＩg Ｇを使用することができ、または、
予め凍結した沈殿物を解凍して使用してもよい。沈殿物
はつぎにＰＢＳに対して透析し、そしてなおＰＢＳ中に
ある間に、容積とＩg Ｇ濃度（Ａ280 ／１．４＝mg／ml
Ｉg Ｇ）を測定する。Ｉg Ｇは、つぎに、Ｉg Ｇ溶液５
０ml当り、１０〜３０マイクロリットル好ましくは２０
マイクロリットルの量のフッ化燐酸ジイソプロピルで処
理する。生ずる溶液を室温で３０分間、フード内で撹拌
し、そして処理したＩg Ｇを、使用直前に、結合用緩衝
液に対して一晩中透析する。最適と認められる結合用緩
衝液は、好ましくは水酸化ナトリウムによりｐＨ９に調
節した０．２５Ｍ炭酸水素ナトリウム溶液である。
予め凍結した沈殿物を解凍して使用してもよい。沈殿物
はつぎにＰＢＳに対して透析し、そしてなおＰＢＳ中に
ある間に、容積とＩg Ｇ濃度（Ａ280 ／１．４＝mg／ml
Ｉg Ｇ）を測定する。Ｉg Ｇは、つぎに、Ｉg Ｇ溶液５
０ml当り、１０〜３０マイクロリットル好ましくは２０
マイクロリットルの量のフッ化燐酸ジイソプロピルで処
理する。生ずる溶液を室温で３０分間、フード内で撹拌
し、そして処理したＩg Ｇを、使用直前に、結合用緩衝
液に対して一晩中透析する。最適と認められる結合用緩
衝液は、好ましくは水酸化ナトリウムによりｐＨ９に調
節した０．２５Ｍ炭酸水素ナトリウム溶液である。
【００２２】（ii） 結合用固体基質の調製 単クローン抗体は、蛋白質、とくに因子VIII自体に対し
て高度の親和性をもたないいかなる物質に結合させても
よいが、ガラス・ビーズ、アガロースおよびその誘導体
のような物質が好ましい。もっとも好ましい物質は、Ｓ
epharose ＣＬ２Ｂ（ニュージャージー州Ｐiscatway市
Ｐharmacia Ｆine Ｃhemicals社製品の商標名）とし
て知られるゲルとして市販されている架橋アガロースで
ある。
て高度の親和性をもたないいかなる物質に結合させても
よいが、ガラス・ビーズ、アガロースおよびその誘導体
のような物質が好ましい。もっとも好ましい物質は、Ｓ
epharose ＣＬ２Ｂ（ニュージャージー州Ｐiscatway市
Ｐharmacia Ｆine Ｃhemicals社製品の商標名）とし
て知られるゲルとして市販されている架橋アガロースで
ある。
【００２３】好ましい免疫吸着樹脂の調製方法は、一般
に、Ｊ．Ｐorath ら、ＪＯＵＲＮＡＬ ＯＦ ＣＨＲＯ
ＭＡＴＯＧＲＡＰＨＹ，８６巻，５３〜５６頁（１９７
３年）の方法のような、文献に発表されたと同一の方法
である。最適と認められる方法は、つぎの通りである。
すなわち、約２リットル容量のＳepharose ＣＬ２Ｂ
を、酸で洗浄された２リットル容量の焼結ガラス・フィ
ルタ漏斗中に置く。樹脂を水で洗浄し、そして濾過して
湿潤ケーキにする。洗浄した樹脂を、磁気撹拌棒を備え
る大きな（約４リットル）ガラス・ビーカ内に置く。つ
ぎに５Ｍの二塩基性燐酸カリ溶液１部と５Ｍの三塩基性
燐酸カリ溶液２部を混合して調製した冷燐酸カリ緩衝溶
液７５０mlを樹脂に添加する。冷却された水を加えて、
最終容量を３リットルとする。つぎに混合物を４℃に冷
却し、磁気撹拌板上に置いた氷−水浴中で４〜１０℃に
保持する。フード内で臭化シアンを、磁気撹拌棒を含む
ストッパ付きガラスびん内の水３００mlに添加する。溶
液を生ずるまで、混合物を迅速に撹拌する。つぎに臭化
シアン溶液を、２分間にわたって撹拌しながら、冷Ｓep
harose混合液に添加する。撹拌をさらに８分間続けて、
つぎに４リットル容量の真空フラスコに支持される冷し
た２リットル容量の焼結ガラス・フィルタに移す。臭化
シアンで処理した樹脂を、つぎに約２０リットルの冷水
によるか、または濾液のｐＨが中性となるまで洗浄す
る。洗浄した樹脂をつぎに速やかに、冷結合用緩衝液で
平衡化させて、つぎに大型の磁気撹拌棒を備える４リッ
トル容量のプラスチック・ビーカに移す。
に、Ｊ．Ｐorath ら、ＪＯＵＲＮＡＬ ＯＦ ＣＨＲＯ
ＭＡＴＯＧＲＡＰＨＹ，８６巻，５３〜５６頁（１９７
３年）の方法のような、文献に発表されたと同一の方法
である。最適と認められる方法は、つぎの通りである。
すなわち、約２リットル容量のＳepharose ＣＬ２Ｂ
を、酸で洗浄された２リットル容量の焼結ガラス・フィ
ルタ漏斗中に置く。樹脂を水で洗浄し、そして濾過して
湿潤ケーキにする。洗浄した樹脂を、磁気撹拌棒を備え
る大きな（約４リットル）ガラス・ビーカ内に置く。つ
ぎに５Ｍの二塩基性燐酸カリ溶液１部と５Ｍの三塩基性
燐酸カリ溶液２部を混合して調製した冷燐酸カリ緩衝溶
液７５０mlを樹脂に添加する。冷却された水を加えて、
最終容量を３リットルとする。つぎに混合物を４℃に冷
却し、磁気撹拌板上に置いた氷−水浴中で４〜１０℃に
保持する。フード内で臭化シアンを、磁気撹拌棒を含む
ストッパ付きガラスびん内の水３００mlに添加する。溶
液を生ずるまで、混合物を迅速に撹拌する。つぎに臭化
シアン溶液を、２分間にわたって撹拌しながら、冷Ｓep
harose混合液に添加する。撹拌をさらに８分間続けて、
つぎに４リットル容量の真空フラスコに支持される冷し
た２リットル容量の焼結ガラス・フィルタに移す。臭化
シアンで処理した樹脂を、つぎに約２０リットルの冷水
によるか、または濾液のｐＨが中性となるまで洗浄す
る。洗浄した樹脂をつぎに速やかに、冷結合用緩衝液で
平衡化させて、つぎに大型の磁気撹拌棒を備える４リッ
トル容量のプラスチック・ビーカに移す。
【００２４】（iii ） 単クローン抗体の固体基質への
結合 上記にしたがって調製した固体基質樹脂は、結合用緩衝
液で平衡化されると、使用するばかりの状態になってい
るから、その後に保存してはならない。したがって、樹
脂混合物を、先に一晩中結合用緩衝液に対して透析され
たＩg Ｇと結合させる。結合させた樹脂／Ｉg Ｇの懸濁
混合液を、約２４時間、４℃で撹拌する。上澄み結合液
の希釈しない試料のＡ280 を、標準として牛の血清アル
ブミン（ＢＳＡ）、または標準としてＢＳＡを使用する
バイオレイド（Bio-Rad ） プロテイン アセイ（ブラ
ッドフォード 試薬）を用いて測定しうる。次に結合さ
れた配位子の百分率が計算できる。上記の手順にしたが
うと、この百分率は通常約９５％である。抗体に結合さ
れない樹脂の残留活性座は、焼結ガラス・フィルタ漏斗
上で、０．１Ｍグリシンを含有する冷結合用緩衝液を用
いて樹脂を洗浄することによってブロックできる。つぎ
に樹脂をこの溶液中に再懸濁させて、それぞれの結合用
緩衝液中で樹脂と抗体が結合されたときの容積に等しい
最終容積にする。懸濁液を４℃で一晩中、ゆっくりと撹
拌する。つぎに樹脂を、以下に示す組成のVIII：Ｃ緩衝
液で十分に洗浄する。つぎに結合され、ブロックされた
樹脂を、好ましくは塩化カルシウムとしての０．５Ｍカ
ルシウム・イオンをさらに含むVIII：Ｃ緩衝液で予備溶
離する。樹脂を再びVIII：Ｃ緩衝液だけで洗浄し、使用
するまで、４℃で、または室温で連続的にポンプ送りさ
れるカラム中に保存する。Ｉg ＧのＳＥＰＨＡＲＯＳＥ
に対する結合密度は、ＳＥＰＨＡＲＯＳＥ リットル当
り２〜５g 、好ましくは３〜４g とする。
結合 上記にしたがって調製した固体基質樹脂は、結合用緩衝
液で平衡化されると、使用するばかりの状態になってい
るから、その後に保存してはならない。したがって、樹
脂混合物を、先に一晩中結合用緩衝液に対して透析され
たＩg Ｇと結合させる。結合させた樹脂／Ｉg Ｇの懸濁
混合液を、約２４時間、４℃で撹拌する。上澄み結合液
の希釈しない試料のＡ280 を、標準として牛の血清アル
ブミン（ＢＳＡ）、または標準としてＢＳＡを使用する
バイオレイド（Bio-Rad ） プロテイン アセイ（ブラ
ッドフォード 試薬）を用いて測定しうる。次に結合さ
れた配位子の百分率が計算できる。上記の手順にしたが
うと、この百分率は通常約９５％である。抗体に結合さ
れない樹脂の残留活性座は、焼結ガラス・フィルタ漏斗
上で、０．１Ｍグリシンを含有する冷結合用緩衝液を用
いて樹脂を洗浄することによってブロックできる。つぎ
に樹脂をこの溶液中に再懸濁させて、それぞれの結合用
緩衝液中で樹脂と抗体が結合されたときの容積に等しい
最終容積にする。懸濁液を４℃で一晩中、ゆっくりと撹
拌する。つぎに樹脂を、以下に示す組成のVIII：Ｃ緩衝
液で十分に洗浄する。つぎに結合され、ブロックされた
樹脂を、好ましくは塩化カルシウムとしての０．５Ｍカ
ルシウム・イオンをさらに含むVIII：Ｃ緩衝液で予備溶
離する。樹脂を再びVIII：Ｃ緩衝液だけで洗浄し、使用
するまで、４℃で、または室温で連続的にポンプ送りさ
れるカラム中に保存する。Ｉg ＧのＳＥＰＨＡＲＯＳＥ
に対する結合密度は、ＳＥＰＨＡＲＯＳＥ リットル当
り２〜５g 、好ましくは３〜４g とする。
【００２５】Ｃ． VIII：Ｃの分離と精製 人間および動物血漿、および市販の因子VIIIの濃縮液の
ような因子VIIIの試料調製物を、この発明で用いること
ができ、かつこの方法は、特定型の物質に限られるもの
ではない。好ましい物質、および良好な結果を示した物
質は、豚および人間の血漿、および市販されている人間
の因子VIIIの濃縮液例えば、Ａrmour Ｐharmaceutical
社から発売されているＦＡＣＴＯＲＡＴＥである。以下
の記述は、豚の血漿、または例えばＦＡＣＴＯＲＡＴＥ
のような市販の人間の濃縮液を用いての詳細を示すもの
である。
ような因子VIIIの試料調製物を、この発明で用いること
ができ、かつこの方法は、特定型の物質に限られるもの
ではない。好ましい物質、および良好な結果を示した物
質は、豚および人間の血漿、および市販されている人間
の因子VIIIの濃縮液例えば、Ａrmour Ｐharmaceutical
社から発売されているＦＡＣＴＯＲＡＴＥである。以下
の記述は、豚の血漿、または例えばＦＡＣＴＯＲＡＴＥ
のような市販の人間の濃縮液を用いての詳細を示すもの
である。
【００２６】すなわち、ＦＡＣＴＯＲＡＴＥを、VIII：
Ｃ緩衝液２５ml部を、ボトル当り４００−５００VIII：
Ｃ単位を含む２０ボトル（２５ml／ボトル）のそれぞれ
の内容物に加えることによって戻す。混合液を、VIII：
Ｃ緩衝液によって最終容量１リットルに調節する。０．
５mlで区分された試料を分析のため除くことができ、そ
して残余の物質を、免疫吸着カラムに、約６０ml／時の
割合で一晩中加えることができる。
Ｃ緩衝液２５ml部を、ボトル当り４００−５００VIII：
Ｃ単位を含む２０ボトル（２５ml／ボトル）のそれぞれ
の内容物に加えることによって戻す。混合液を、VIII：
Ｃ緩衝液によって最終容量１リットルに調節する。０．
５mlで区分された試料を分析のため除くことができ、そ
して残余の物質を、免疫吸着カラムに、約６０ml／時の
割合で一晩中加えることができる。
【００２７】新鮮な状態で取り出さない場合、豚の血漿
は、従来の方法でくえん酸処理して、凍結保存する。使
用する場合には、これを３５〜４０℃の間、好ましくは
３７℃の温度で解凍して、直接６０ml／時の割合でカラ
ムに加える。
は、従来の方法でくえん酸処理して、凍結保存する。使
用する場合には、これを３５〜４０℃の間、好ましくは
３７℃の温度で解凍して、直接６０ml／時の割合でカラ
ムに加える。
【００２８】この発明の記述は、クロマトグラフィ・カ
ラム中の免疫吸着剤が結合された粒子の使用に言及し、
かつ主としてこれらの使用を指向しているが、抗体結合
樹脂粒子を、適当な容器に入れ、そして上記にしたがっ
て、また下記にさらに詳述するように、戻した濃縮液、
または血漿を加えてから、バッチ方式でVIII：Ｃの分離
を行なうことは、この発明の範囲内であることに注目す
べきである。
ラム中の免疫吸着剤が結合された粒子の使用に言及し、
かつ主としてこれらの使用を指向しているが、抗体結合
樹脂粒子を、適当な容器に入れ、そして上記にしたがっ
て、また下記にさらに詳述するように、戻した濃縮液、
または血漿を加えてから、バッチ方式でVIII：Ｃの分離
を行なうことは、この発明の範囲内であることに注目す
べきである。
【００２９】クロマトグラフィ法により、この方法を実
施する場合には、以下の実施態様が好ましい。
施する場合には、以下の実施態様が好ましい。
【００３０】すなわち、樹脂を、Ａmicon ８６００１
（マサチュセッツ州レキシントン市Ａmicon 社製品商標
名）のような、蠕動ポンプを備え、かつ流れヘッドの高
いカラム内に入れる。因子VIII源として濃縮液を使用す
る場合には、２０ボトルの希釈濃縮液に対して、上記に
したがって調製した樹脂約１．５リットルを用いる。豚
の血漿を使用するときは、血漿リットルごとに１５０ml
の樹脂を使用する。
（マサチュセッツ州レキシントン市Ａmicon 社製品商標
名）のような、蠕動ポンプを備え、かつ流れヘッドの高
いカラム内に入れる。因子VIII源として濃縮液を使用す
る場合には、２０ボトルの希釈濃縮液に対して、上記に
したがって調製した樹脂約１．５リットルを用いる。豚
の血漿を使用するときは、血漿リットルごとに１５０ml
の樹脂を使用する。
【００３１】試料をカラムに施してから、これを１リッ
トルのVIII：Ｃ緩衝液で洗浄し、続いて、さらに０．５
ＭのＮa Ｃｌを含むVIII：Ｃ緩衝液により第２洗浄す
る。因子VIIIが濃縮液として与えられるときは、約２０
リットルの塩水緩衝液を用い、豚の血漿を用いるとき
は、２０床容積の緩衝液を用いる。１リットル／hrの流
速で最適の結果がえられる。
トルのVIII：Ｃ緩衝液で洗浄し、続いて、さらに０．５
ＭのＮa Ｃｌを含むVIII：Ｃ緩衝液により第２洗浄す
る。因子VIIIが濃縮液として与えられるときは、約２０
リットルの塩水緩衝液を用い、豚の血漿を用いるとき
は、２０床容積の緩衝液を用いる。１リットル／hrの流
速で最適の結果がえられる。
【００３２】精製VIII：Ｃの溶離は、カルシウム・イオ
ンを含むVIII：Ｃ緩衝液で行なわれる。上記のＴuddenb
ram らによって示されるように、線型勾配で良好に行な
えるが、この点は、この発明の目的を達成するためには
必要ない。固定された濃度のカルシウム・イオンを有す
る溶液が、きわめて適切である。かくて、濃縮液からえ
られるVIII：Ｃが溶離されているときは、塩化カルシウ
ムに関して０．２５〜０．５Ｍ、好ましくは０．３５Ｍ
のVIII：Ｃ緩衝液が、流速４５０〜７５０ml／時、好ま
しくは６００ml／時として有利に使用される。VIII：Ｃ
が豚の血漿からえられるときは、溶離は、塩化カルシウ
ム濃度０．３５〜０．７Ｍの間、好ましくは０．５Ｍの
VIII：Ｃ緩衝溶液で、かつ流速１０〜３０ml／時の間、
好ましくは２０ml／時で行なわれる。１２mlおよび３ml
のフラクションを、それぞれ濃縮液および豚の血漿から
えられるVIII：Ｃ用に集める。少なくとも１．０単位／
mlのVIII：Ｃ活性を含むフラクションをプールし、そし
てプールの総容量と活性を測定する。
ンを含むVIII：Ｃ緩衝液で行なわれる。上記のＴuddenb
ram らによって示されるように、線型勾配で良好に行な
えるが、この点は、この発明の目的を達成するためには
必要ない。固定された濃度のカルシウム・イオンを有す
る溶液が、きわめて適切である。かくて、濃縮液からえ
られるVIII：Ｃが溶離されているときは、塩化カルシウ
ムに関して０．２５〜０．５Ｍ、好ましくは０．３５Ｍ
のVIII：Ｃ緩衝液が、流速４５０〜７５０ml／時、好ま
しくは６００ml／時として有利に使用される。VIII：Ｃ
が豚の血漿からえられるときは、溶離は、塩化カルシウ
ム濃度０．３５〜０．７Ｍの間、好ましくは０．５Ｍの
VIII：Ｃ緩衝溶液で、かつ流速１０〜３０ml／時の間、
好ましくは２０ml／時で行なわれる。１２mlおよび３ml
のフラクションを、それぞれ濃縮液および豚の血漿から
えられるVIII：Ｃ用に集める。少なくとも１．０単位／
mlのVIII：Ｃ活性を含むフラクションをプールし、そし
てプールの総容量と活性を測定する。
【００３３】VIII：Ｃプールを最初に圧力限外濾過のよ
うな標準的な方法によって１０〜２０mlに濃縮する。こ
の目的に、５０psi の窒素圧の下におけるＹＭ−１０メ
ンブレンを含むＡmicon 攪拌セルが良好に作用すること
がわかった。窒素圧を解放してから、３０分間ゆっくり
と撹拌を続け、そして濃縮プールの容積と活性を測定す
る。プールは、温度が４℃に維持されるかぎり、短期
間、例えは、一晩中保存できる。
うな標準的な方法によって１０〜２０mlに濃縮する。こ
の目的に、５０psi の窒素圧の下におけるＹＭ−１０メ
ンブレンを含むＡmicon 攪拌セルが良好に作用すること
がわかった。窒素圧を解放してから、３０分間ゆっくり
と撹拌を続け、そして濃縮プールの容積と活性を測定す
る。プールは、温度が４℃に維持されるかぎり、短期
間、例えは、一晩中保存できる。
【００３４】上記した免疫吸着カラムは、流速約０．５
〜１リットル／時で３Ｍのチオシアン酸ナトリウム水溶
液２床容量で処理してVIII：ＲＰを溶離すると再生でき
ることに注目してよい。
〜１リットル／時で３Ｍのチオシアン酸ナトリウム水溶
液２床容量で処理してVIII：ＲＰを溶離すると再生でき
ることに注目してよい。
【００３５】Ｄ． 精製VIII：Ｃの濃縮 免疫吸着カラムによるVIII：ＲＰからの分離によって回
収されたVIII：Ｃは、高度に精製されているが、治療上
に利用するためには、未だ稀薄すぎる。これ以上の濃縮
は、以下の方法で調製され、かつ使用されるアミノヘキ
シル・アガロース・カラムを用いて行なわれる。
収されたVIII：Ｃは、高度に精製されているが、治療上
に利用するためには、未だ稀薄すぎる。これ以上の濃縮
は、以下の方法で調製され、かつ使用されるアミノヘキ
シル・アガロース・カラムを用いて行なわれる。
【００３６】（i ） アミノヘキシル・アガロース・カ
ラムの調製および（または）調整 アミノヘキシル・アガロースは、１．６−ジアミノヘキ
サンと反応したアガロースであって、そのそれぞれに端
末アミノ基をもつ多数の６炭素原子鎖をもつアガロース
樹脂を生ずる。このアガロース樹脂は、上記Ａusten に
よって記述された方法にしたがって調製でき、または供
給業者から入手できる。この発明で、好首尾に使用され
た上記物質の１つは、ＡＨ−ＳＥＰＨＡＲＯＳＥ ４Ｂ
（ニュージャージ州Ｐiscataway 市Ｐharmacia Ｆine
Ｃhemicals社製品の商標名）の名称のもとで入手でき
る。
ラムの調製および（または）調整 アミノヘキシル・アガロースは、１．６−ジアミノヘキ
サンと反応したアガロースであって、そのそれぞれに端
末アミノ基をもつ多数の６炭素原子鎖をもつアガロース
樹脂を生ずる。このアガロース樹脂は、上記Ａusten に
よって記述された方法にしたがって調製でき、または供
給業者から入手できる。この発明で、好首尾に使用され
た上記物質の１つは、ＡＨ−ＳＥＰＨＡＲＯＳＥ ４Ｂ
（ニュージャージ州Ｐiscataway 市Ｐharmacia Ｆine
Ｃhemicals社製品の商標名）の名称のもとで入手でき
る。
【００３７】調製したものであれ、購入したものであ
れ、樹脂は、使用前に調整しなければならない。これは
以下のようにして行なわれる。容積、量、および寸法は
濃縮対象物質の量に比例して調整される。
れ、樹脂は、使用前に調整しなければならない。これは
以下のようにして行なわれる。容積、量、および寸法は
濃縮対象物質の量に比例して調整される。
【００３８】約１g のアミノヘキシル・アガロースを、
焼結ガラス・フィルタ漏斗に入れ、撹拌しながら、少な
くとも２００mlの０．５Ｍ塩化ナトリウムで洗浄する。
つぎに樹脂をVIII：Ｃ緩衝液で平衡化させて、約０．９
cm径のカラムに充填する。ここで考慮される使用の型に
は、流れアダプタ付きのＢio−Ｒad Ｅconoカラムが極
めて適当であることがわかった。充填カラムの床容量は
約４mlである。
焼結ガラス・フィルタ漏斗に入れ、撹拌しながら、少な
くとも２００mlの０．５Ｍ塩化ナトリウムで洗浄する。
つぎに樹脂をVIII：Ｃ緩衝液で平衡化させて、約０．９
cm径のカラムに充填する。ここで考慮される使用の型に
は、流れアダプタ付きのＢio−Ｒad Ｅconoカラムが極
めて適当であることがわかった。充填カラムの床容量は
約４mlである。
【００３９】（ii） アミノヘキシル・アガロース・カ
ラムへの適用とその使用法 上記のようにして調製した濃縮プールを、前節で述べた
樹脂量およびカラム寸法を使用する場合、最終濃度１０
０〜２００mlまで、VIII：Ｃ緩衝液で１：１０に希釈す
る。希釈プールを、流速２００ml／時でカラムに適用す
る。
ラムへの適用とその使用法 上記のようにして調製した濃縮プールを、前節で述べた
樹脂量およびカラム寸法を使用する場合、最終濃度１０
０〜２００mlまで、VIII：Ｃ緩衝液で１：１０に希釈す
る。希釈プールを、流速２００ml／時でカラムに適用す
る。
【００４０】つぎにカラムを、好ましくは塩化カルシウ
ムからのカルシウム・イオンを含むVIII：Ｃ緩衝液で洗
浄する。溶液は、カルシウムイオンに関して、０．０１
Ｍ〜０．０３Ｍの間、好ましくは０．０２５Ｍとする。
ムからのカルシウム・イオンを含むVIII：Ｃ緩衝液で洗
浄する。溶液は、カルシウムイオンに関して、０．０１
Ｍ〜０．０３Ｍの間、好ましくは０．０２５Ｍとする。
【００４１】濃縮VIII：Ｃの溶離は、先の洗浄段階で用
いたより高濃度のカルシウム・イオンを含む含むVIII：
Ｃ緩衝液により、流速５〜２０ml／時、好ましくは１０
ml／時で行なう。この場合もまた、塩化カルシウムは、
０．２５〜０．５Ｍの間、好ましくは０．３Ｍ濃度の好
ましいカルシウム・イオン源である。１ml容積のフラク
ションを集め、そして下記にしたがって検定する。集め
たフラクションは、４℃でまたは凍結して保存できる。
豚の血漿源からえられたVIII：Ｃの調製物は、貯蔵前に
５〜１０％の人間血清アルブミンにより安定化される。
いたより高濃度のカルシウム・イオンを含む含むVIII：
Ｃ緩衝液により、流速５〜２０ml／時、好ましくは１０
ml／時で行なう。この場合もまた、塩化カルシウムは、
０．２５〜０．５Ｍの間、好ましくは０．３Ｍ濃度の好
ましいカルシウム・イオン源である。１ml容積のフラク
ションを集め、そして下記にしたがって検定する。集め
たフラクションは、４℃でまたは凍結して保存できる。
豚の血漿源からえられたVIII：Ｃの調製物は、貯蔵前に
５〜１０％の人間血清アルブミンにより安定化される。
【００４２】検定は、フラクションを、必要に応じてVI
II：Ｃ緩衝液で希釈し、そしてさらに基質へ添加する前
に、フラクションを検定緩衝液で１：１００に希釈して
行なう。標準部分トロンボプラスチン時間検定法が用い
られる。
II：Ｃ緩衝液で希釈し、そしてさらに基質へ添加する前
に、フラクションを検定緩衝液で１：１００に希釈して
行なう。標準部分トロンボプラスチン時間検定法が用い
られる。
【００４３】緩衝液の組成は以下のとおりである。
【００４４】燐酸塩緩衝塩水溶液 燐酸ナトリウム１．６g 一塩基性−水和物 燐酸ナトリウム８．４g 二塩基性無水物 塩化ナトリウム６１．４g 水で７リットルとする。緩衝液のｐＨは７．２である。 VIII：Ｃ緩衝液 ml ０．０２Ｍ イミダゾール ml ０．１５Ｍ 塩化ナトリウム ml ０．１０Ｍ リジン ml ０．０２％ アジ化ナトリウム 緩衝液のｐＨは、濃塩酸で６．８に調整する。
【００４５】表I および表IIに挙げるデータは、上記し
たこの発明にしたがってえられた代表的なデータであ
る。
たこの発明にしたがってえられた代表的なデータであ
る。
【００４６】
【表１】
【表２】 好ましい実施態様のみが、この明細書にとくに例示さ
れ、かつ記述されているが、この発明の多数の変形およ
び変更が、上記の教示に照して、またこの発明の精神と
意図する範囲から離れることなく、付記のクレームの範
囲内で、可能であることが認められるであろう。
れ、かつ記述されているが、この発明の多数の変形およ
び変更が、上記の教示に照して、またこの発明の精神と
意図する範囲から離れることなく、付記のクレームの範
囲内で、可能であることが認められるであろう。
【００４７】
【発明の効果】本発明に従い、VIII：ＲＰやその他の血
漿蛋白質を含まない、高い力価および高い比活性を有す
るヒトのVIII：Ｃ製剤が提供される。
漿蛋白質を含まない、高い力価および高い比活性を有す
るヒトのVIII：Ｃ製剤が提供される。
───────────────────────────────────────────────────── フロントページの続き (72)発明者 カーラル アン フルチャー アメリカ合衆国 カリフォルニア州 92037 ラ ジョラ ラ ジョラ ボー ルエバード 7543
Claims (6)
- 【請求項１】 ２２４０単位／mg以上の比活性を有する
ヒトのＶＩＩＩ：Ｃ製剤。 - 【請求項２】 １３４〜１１７２単位／mlの力価を有す
る請求項１の製剤。 - 【請求項３】 実質的にＶＩＩＩ：ＲＰを含まない、請
求項１または２の製剤。 - 【請求項４】 ＶＩＩＩ：ＲＰに対するＶＩＩＩ：Ｃの
比が血漿中におけるＶＩＩＩ：ＲＰに対するＶＩＩＩ：
Ｃの比の１００，０００倍以上である、請求項１または
２の製剤。 - 【請求項５】 ＶＩＩＩ：ＣがＶＩＩＩ：Ｃ／ＶＩＩ
Ｉ：ＲＰから単離され、且つＶＩＩＩ：ＲＰの９０〜１
００％が除去されている、請求項１または２の製剤。 - 【請求項６】 添加物として含まれ得るアルブミンを除
いたときの比活性が２２４０単位／mg以上である請求項
１のヒトのＶＩＩＩ：Ｃ製剤。
Applications Claiming Priority (2)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| US06/330,105 US4361509A (en) | 1981-12-14 | 1981-12-14 | Ultrapurification of factor VIII using monoclonal antibodies |
| US330105 | 1981-12-14 |
Related Parent Applications (1)
| Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
|---|---|---|---|
| JP57217928A Division JPH0723321B2 (ja) | 1981-12-14 | 1982-12-14 | 因子ｖｉｉｉ凝固活性蛋白質の調製 |
Related Child Applications (1)
| Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
|---|---|---|---|
| JP8112373A Division JPH08301787A (ja) | 1981-12-14 | 1996-05-07 | Ｖｉｉｉ：ｃ製剤 |
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| Publication Number | Publication Date |
|---|---|
| JPH07238034A JPH07238034A (ja) | 1995-09-12 |
| JP2554848B2 true JP2554848B2 (ja) | 1996-11-20 |
Family
ID=23288328
Family Applications (4)
| Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
|---|---|---|---|
| JP57217928A Expired - Lifetime JPH0723321B2 (ja) | 1981-12-14 | 1982-12-14 | 因子ｖｉｉｉ凝固活性蛋白質の調製 |
| JP3202313A Expired - Lifetime JPH0784480B2 (ja) | 1981-12-14 | 1991-07-18 | 改良免疫吸着剤 |
| JP6242965A Expired - Lifetime JP2554848B2 (ja) | 1981-12-14 | 1994-10-06 | Ｖｉｉｉ：ｃ製剤 |
| JP8112373A Pending JPH08301787A (ja) | 1981-12-14 | 1996-05-07 | Ｖｉｉｉ：ｃ製剤 |
Family Applications Before (2)
| Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
|---|---|---|---|
| JP57217928A Expired - Lifetime JPH0723321B2 (ja) | 1981-12-14 | 1982-12-14 | 因子ｖｉｉｉ凝固活性蛋白質の調製 |
| JP3202313A Expired - Lifetime JPH0784480B2 (ja) | 1981-12-14 | 1991-07-18 | 改良免疫吸着剤 |
Family Applications After (1)
| Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
|---|---|---|---|
| JP8112373A Pending JPH08301787A (ja) | 1981-12-14 | 1996-05-07 | Ｖｉｉｉ：ｃ製剤 |
Country Status (10)
| Country | Link |
|---|---|
| US (1) | US4361509A (ja) |
| EP (1) | EP0083483B2 (ja) |
| JP (4) | JPH0723321B2 (ja) |
| AR (1) | AR230954A1 (ja) |
| AU (1) | AU545770B2 (ja) |
| CA (1) | CA1208130A (ja) |
| DE (3) | DE3278402D1 (ja) |
| LU (1) | LU88333I2 (ja) |
| NL (1) | NL930118I2 (ja) |
| WO (1) | WO1983002114A1 (ja) |
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|---|---|---|---|---|
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| US4361509A (en) * | 1981-12-14 | 1982-11-30 | Scripps Clinic And Research Foundation | Ultrapurification of factor VIII using monoclonal antibodies |
| ES521371A0 (es) * | 1982-04-12 | 1984-05-16 | Hybritech Inc | Un procedimiento para la purificacion de un anticuerpo. |
| US4397841A (en) * | 1982-06-28 | 1983-08-09 | Monsanto Company | Production of blood coagulation factor VIII:C |
| US4614795A (en) * | 1982-08-05 | 1986-09-30 | University Of Rochester | Deglycosylated Human Factor VIII:C |
| US4495175A (en) * | 1982-08-05 | 1985-01-22 | University Of Rochester | Preparation of highly purified human antihemophilic factor |
| US4558005A (en) * | 1982-09-13 | 1985-12-10 | University Patents, Inc. | Monoclonal anti-erythropoietin |
| EP0118256B1 (en) * | 1983-03-04 | 1992-05-13 | Scripps Clinic And Research Foundation | Immunoadsorbent, and method of recovering vitamin-k dependent protein therewith |
| US5055557A (en) * | 1983-03-04 | 1991-10-08 | Scripps Clinic & Research Foundation | Ultrapurification of factor IX and other vitamin K-dependent proteins |
| US5614500A (en) * | 1983-03-04 | 1997-03-25 | The Scripps Research Institute | Compositions containing highly purified factor IX proteins prepared by immunoaffinity chromatography |
| WO1984003628A1 (en) | 1983-05-09 | 1984-09-27 | Nordisk Insulinlab | A concentrate of the antihemophilic factor viii and a process for producing it |
| US5362854A (en) * | 1983-03-31 | 1994-11-08 | Scripps Clinic & Research Foundation | Factor VIII coagulant polypeptides: method of making |
| US4657894A (en) * | 1983-03-31 | 1987-04-14 | Scripps Clinic & Research Foundation | New factor VIII coagulant polypeptides |
| DK172036B1 (da) * | 1983-03-31 | 1997-09-22 | Scripps Clinic Res | Faktor VIII:C-koaguleringsmiddel, fremgangsmåde til fremstilling heraf samt fremgangsmåde til udvinding heraf |
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| US6258938B1 (en) | 1983-10-28 | 2001-07-10 | Ne Medical Center Hospital, Inc. | Method for the purification and isolation of blood clotting proteins using conformation specific antibodies |
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| US4945041A (en) * | 1983-11-17 | 1990-07-31 | Board Of Regents | Monoclonal antibodies for Mycoplasma pneumoniae and use for diagnosis of pneumonia |
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