JP2016518332A - 抗体薬物コンジュゲート - Google Patents
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Abstract
Description
本発明は、一般に、抗FGFR2およびFGFR4抗体、抗体断片、抗体薬物コンジュゲート、ならびにがんの処置のためのそれらの使用に関する。
線維芽細胞増殖因子受容体
FGF受容体(FGFR)を通じてシグナル伝達する線維芽細胞増殖因子(FGF)は、基礎的な発達経路を調節して、多種多様な組織で発現される。FGFは、増殖、細胞遊走、分化を刺激して、骨格発達および四肢発達、創傷治癒、組織修復、造血、血管形成および腫瘍発生において重要な役割を果たす(例えば、Turner and Crose, Nature Reviews Cancer 10: 116-129 (2010)を参照)。
FGFシグナル伝達は、効果:成長/生存における自己充足性(self-sufficiency)、血管新生および腫瘍細胞遊走の強力な組合せを媒介する。その結果として、FGFシグナル伝達は、その生理学的機能で発揮される厳格な調節がいったん失われると、強力に発がん性となる可能性がある(例えば、Heinzle et al., Expert Opin. Ther. Targets 15(7):829-846 (2011)を参照)。
抗体薬物コンジュゲート(「ADC」)は、がんの処置における細胞毒性剤の局所送達のために使用されてきた(例えば、Lambert,Curr.Opinion In Pharmacology 5:543〜549,2005を参照されたい)。ADCにより、最小の毒性で最大の効能を達成することができる薬物部分の標的化された送達が可能になる。ADCが有望な臨床結果を示すにつれて、がん療法のための新しい治療剤を開発する必要性が増大する。
本発明は、式Ab−(L−(D)m)n(式中、AbはヒトFGFR2およびFGFR4の両方に特異的に結合する抗体もしくはその抗原結合性断片であり;Lはリンカーであり;Dは薬物部分であり;mは1〜8の整数であり;nは1〜10の整数である)またはその薬学的に許容される塩の抗体薬物コンジュゲートを提供する。幾つかの実施形態では、mは1である。幾つかの実施形態では、nは3または4である。特定実施形態では、mは1であり、nは3または4である。
を有する抗体薬物コンジュゲート、またはその薬学的に許容される塩を提供する。特定実施形態では、nは3または4である。1つの実施形態では、Abは、配列番号7のVH領域および配列番号17のVL領域を含む抗体である。別の実施形態では、Abは、配列番号9の重鎖および配列番号19の軽鎖からなる抗体である。
別途記述しない限り、本明細書で使用される以下の用語および語句は、以下の意味を有することが意図される。
本発明は、FGFR2およびFGFR4の両方(「FGFR2/4」)に結合する抗体、抗体断片(例えば、抗原結合性断片)、および抗体薬物コンジュゲートを提供する。特に、本発明は、FGFR2/4に結合し、そのような結合の際に内在化する抗体および抗体断片(例えば、抗原結合性断片)を提供する。本発明の抗体および抗体断片(例えば、抗原結合性断片)を、抗体薬物コンジュゲートを生成するために使用することができる。さらに、本発明は、望ましい薬物動態特性および他の望ましい属性を有し、したがって、胃がん、乳がん、横紋筋肉腫(例えば、胞巣状横紋筋肉腫または胎児性横紋筋肉腫)、肝臓がん、副腎がん、肺がん、結腸がんおよび子宮内膜がんのようなFGFR2および/またはFGFR4を発現するがんを処置するのに使用され得る抗体薬物コンジュゲートを提供する。本発明はさらに、本発明の抗体薬物コンジュゲートを含む医薬組成物、ならびにがんの処置のためにそのような医薬組成物を作製し、使用する方法を提供する。
本発明は、FGFR2/4に特異的に結合する抗体、抗原結合性断片またはその機能的等価物が薬物部分に連結された、抗体薬物コンジュゲートを提供する。一態様では、本発明の抗体、抗原結合性断片またはその機能的等価物は、リンカーによる共有結合を介して、抗がん剤である薬物部分に連結される。本発明の抗体薬物コンジュゲートは、有効用量の抗がん剤(例えば、細胞毒性剤)を、FGFR2および/またはFGFR4を発現する腫瘍組織に選択的に送達し、それによって、より高い選択性(およびより低い有効用量)を達成することができる。
Ab−(L−(D)m)n
(式中、Abは、本明細書に記載のFGFR2/4結合抗体を表し;
Lはリンカーであり;
Dは薬物部分であり;
mは1〜8の整数であり;および
nは1〜20の整数である)
のイムノコンジュゲートを提供する。一実施形態では、nは1〜10、2〜8、または2〜5の整数である。特定の実施形態では、nは2、3または4である。いくつかの実施形態では、mは1である。他の実施形態では、mは2、3または4である。
を有するものなどの、メイタンシノイド薬物部分である。Rは、出現する毎に、独立にHまたはC1〜C6アルキルである。アミド基を硫黄原子に結合させるアルキレン鎖は、メタニル、エタニル、またはプロピルであってよい、すなわち、mは1、2または3である(米国特許第633,410号、米国特許第5,208,020号、Chari et al. (1992) Cancer Res. 52; 127-131、Lui et al. (1996) Proc. Natl. Acad. Sci. 93:8618-8623)。
AbはヒトFGFR2およびFGFR4の両方に特異的に結合する抗体またはその抗原結合性断片であり;
アミド結合とAbの第1級アミンとの形成を介してAbに結合したD−L基の数を示すnは、1〜20の整数である。一実施形態において、nは1〜10、2〜8または2〜5の整数である。特定の実施形態において、nは3または4である。
本発明は、FGFR2/4に特異的に結合するイムノコンジュゲートを提供する。本発明のイムノコンジュゲートは、薬物部分、例えば、抗がん剤、自己免疫処置剤、抗炎症剤、抗真菌剤、抗細菌剤、抗寄生虫剤、抗ウイルス剤、または麻酔剤にコンジュゲートされた抗FGFR2/4抗体、抗体断片(例えば、抗原結合性断片)または機能的等価物を含む。本発明の抗体、抗体断片(例えば、抗原結合性断片)または機能的等価物を、当業界で公知の任意の方法を使用して、いくつかの同一の、または異なる薬物部分にコンジュゲートすることができる。
本明細書で使用される場合、「リンカー」は、薬物部分などの別の部分に、抗体、抗体断片(例えば、抗原結合性断片)または機能的等価物を連結することができる任意の化学部分である。幾つかの場合で、リンカーの一部が、メイタンシノイドにより供給される。例えば、チオール含有メイタンシノイドであるDM1は、天然メイタンシノイドの誘導体であり、リンカーの一部を供給する。メイタンシンのC−3水酸基にある側鎖は、CO−CH3に終わり、DM1の側鎖は、CO−CH2−CH2−SHに終わる。したがって、最終的なリンカーは、2つの片、即ち抗体へ導入される架橋試薬およびDM1由来の側鎖から構築される。リンカーは、化合物または抗体が活性を保持する条件下で、酸誘導性切断、光誘導性切断、ペプチダーゼ誘導性切断、エステラーゼ誘導性切断、およびジスルフィド結合切断などの切断の影響を受けやすいものであってもよい(切断性リンカー)。あるいは、リンカーは、切断に対して実質的に耐性であってもよい(例えば、安定性リンカーまたは非切断性リンカー)。いくつかの態様では、リンカーは、プロチャージリンカー、親水性リンカー、またはジカルボン酸に基づくリンカーである。
本発明のコンジュゲートを、米国特許第7,811,572号、第6,411,163号、第7,368,565号、および第8,163,888号、ならびに米国特許出願公開第2011/0003969号、第2011/0166319号、第2012/0253021号および第2012/0259100号に記載のものなどの当業界で公知の任意の方法により調製することができる。これらの特許および特許出願公開の全教示は、参照により本明細書に組み込まれる。
一実施形態では、本発明のコンジュゲートを、1ステッププロセスによって調製することができる。このプロセスは、実質的に水性の媒体中で抗体、薬物および架橋剤を混合すること、任意選択で、好適なpHで1または複数の共溶媒を含有させることを含む。一実施形態では、プロセスは、本発明の抗体を、薬物(例えば、DM1またはDM4)と接触させて、抗体と薬物とを含む第1の混合物を形成させるステップ、次いで、約4〜約9のpHを有する溶液中で、抗体と薬物とを含む第1の混合物を、架橋剤(例えば、SMCC、スルホ−SMCC、SPDB、スルホ−SPDBまたはCX1−1)と接触させて、(i)コンジュゲート(例えば、Ab−MCC−DM1、Ab−SPDB−DM4、またはAb−CX1−1−DM1)、(ii)遊離薬物(例えば、DM1またはDM4)、および(iii)反応副生成物を含む混合物を提供するステップを含む。
一実施形態では、本発明のコンジュゲートを、米国特許第7,811,572号および米国特許出願公開第2006/0182750号に記載のように調製することができる。このプロセスは、(a)本発明の抗体を、架橋剤(例えば、SMCC、スルホ−SMCC、SPDB、スルホ−SPDBまたはCX1−1)と接触させて、リンカー(すなわち、Ab−SMCC、Ab−SPDBまたはAb−CX1−1)を抗体に共有結合させることによって、リンカーが結合した抗体を含む第1の混合物を調製するステップ;(b)任意選択で、第1の混合物を精製プロセスにかけて、リンカーが結合した抗体の精製された第1の混合物を調製するステップ;(c)約4〜約9のpHを有する溶液中で、リンカーが結合した抗体を薬物(例えば、DM1またはDM4)と反応させることにより、薬物(例えば、DM1またはDM4)を、第1の混合物中のリンカーが結合した抗体にコンジュゲートして、(i)コンジュゲート(例えば、Ab−MCC−DM1、Ab−SPDB−DM4またはAb−CX1−1−DM1)、(ii)遊離薬物(例えば、DM1またはDM4);および(iii)反応副生成物を含む第2の混合物を調製するステップ;ならびに(d)第2の混合物を精製プロセスにかけて、第2の混合物の他の成分からコンジュゲートを精製するステップを含む。あるいは、精製ステップ(b)を省略してもよい。本明細書に記載の任意の精製方法を、ステップ(b)および(d)のために使用することができる。一実施形態では、TFFをステップ(b)と(d)の両方のために使用する。別の実施形態では、TFFをステップ(b)のために使用し、吸着クロマトグラフィー(例えば、CHT)をステップ(d)のために使用する。
一実施形態では、米国特許第6,441,163号および米国特許出願公開第2011/0003969号および第2008/0145374号に記載のように、予め形成された薬物−リンカー化合物(例えば、SMCC−DM1、スルホ−SMCC−DM1、SPDB−DM4またはCX1−1−DM1)を、本発明の抗体にコンジュゲートした後、精製ステップを行うことにより、本発明のコンジュゲートを調製することができる。本明細書に記載の任意の精製方法を使用することができる。薬物(例えば、DM1またはDM4)を、架橋剤(例えば、SMCC、スルホ−SMCC、SPDB、スルホ−SPDBまたはCX1−1)と反応させることにより、薬物−リンカー化合物を調製する。任意選択で、薬物−リンカー化合物(例えば、SMCC−DM1、スルホ−SMCC−DM1、SPDB−DM4またはCX1−1−DM1)を精製にかけた後、抗体にコンジュゲートする。
本発明の抗体、抗体断片(例えば、抗原結合性断片)または抗体薬物コンジュゲートを、当業界で公知の様々なアッセイにより、その物理的/化学的特性および/または生物学的活性について特性評価し、選択することができる。
本発明は、ヒトFGFR2およびFGFR4(FGFR2/4)に特異的に結合する抗体または抗体断片(例えば、抗原結合性断片)を提供する。本発明の抗体または抗体断片(例えば、抗原結合性断片)としては、実施例(以下のセクション6を参照)に記載するように単離されるヒトモノクローナル抗体またはそれらの断片が挙げられるが、これらに限定されない。
1つの実施形態では、本発明は、配列番号137のアミノ酸176(Lys)および210(Arg)を含むヒトFGFR2上のエピトープに特異的に結合する抗体または抗体断片(例えば、抗原結合性断片)を提供する。幾つかの態様では、本発明は、配列番号137で示されるようなヒトFGFR2の位置173(Asn)、174(Thr)、175(Val)、176(Lys)、178(Arg)、208(Lys)、209(Val)、210(Arg)、212(Gln)、213(His)、217(Ile)、219(Glu)にあるアミノ酸に特異的に結合する抗体または抗体断片(例えば、抗原結合性断片)を提供する。
本発明のイムノコンジュゲートは、例えば、抗体の特性を改善するための、VHおよび/またはVL内のフレームワーク残基に対する改変をさらに含む改変された抗体またはその抗原結合性断片を含んでもよい。いくつかの実施形態では、フレームワーク改変を行って、抗体の免疫原性を低下させる。例えば、1つの手法は、1または複数のフレームワーク残基を、対応する生殖系列配列に「復帰変異」させることである。より特には、体細胞変異を受けた抗体は、抗体が誘導される生殖系列配列とは異なるフレームワーク残基を含有してもよい。抗体フレームワーク配列を、抗体が誘導される生殖系列配列と比較することにより、そのような残基を同定することができる。フレームワーク領域配列をその生殖系列構成に戻すために、例えば、部位特異的突然変異誘発により、体細胞変異を生殖系列配列に「復帰変異」させることができる。そのような「復帰変異」した抗体もまた、本発明により包含されることが意図される。
限定されるものではないが、組換え発現、化学的合成、および抗体四量体の酵素的消化などの、当業界で公知の任意の手段によって抗FGFR2/4抗体およびその抗体断片(例えば、抗原結合性断片)を生成することができるが、完全長モノクローナル抗体を、例えば、ハイブリドーマまたは組換え生成によって取得することができる。組換え発現は、当業界で公知の任意の適切な宿主細胞、例えば、哺乳動物宿主細胞、細菌宿主細胞、酵母宿主細胞、昆虫宿主細胞などに由来するものであってよい。
本発明の抗体、抗体断片(例えば、抗原結合性断片)、および抗体薬物コンジュゲートは、限定されるものではないが、固形がんなどのがんの処置などの様々な適用において有用である。ある特定の実施形態では、本発明の抗体、抗体断片(例えば、抗原結合性断片)、および抗体薬物コンジュゲートは、腫瘍成長の阻害、分化の誘導、腫瘍体積の減少、および/または腫瘍の発がん性の低下にとって有用である。使用方法は、in vitro、ex vivo、またはin vivoでの方法であってもよい。
ある特定の例では、本発明の抗体、抗体断片(例えば、抗原結合性断片)、または抗体薬物コンジュゲートを、他の抗がん剤、抗アレルギー剤、抗嘔吐剤(または制吐剤)、疼痛緩和剤、細胞保護剤、およびその組合せなどの他の治療剤と組み合わせる。
イムノコンジュゲートを含む医薬組成物または滅菌組成物を調製するために、本発明のイムノコンジュゲートを、薬学的に許容される担体または賦形剤と混合する。組成物は、がん(乳がん、結腸直腸がん、肺がん、多発性骨髄腫、卵巣がん、肝臓がん、胃がん、膵臓がん、急性骨髄性白血病、慢性骨髄性白血病、骨肉腫、扁平上皮癌、末梢神経鞘腫瘍、シュワン腫、頭部および頸部がん、膀胱がん、食道がん、バレット食道がん、膠芽細胞腫、軟部組織の明細胞肉腫、悪性中皮腫、神経線維腫、腎臓がん、黒色腫、前立腺がん、良性前立腺肥大症(BPH)、女性化乳房、横紋筋肉腫および子宮内膜症)を処置または防止するのに適している1つまたは複数の他の治療剤をさらに含有することができる。
細胞株
Ba/F3細胞は、DSMZから購入し、KatoIII、SNU16、SNU5およびHCI−H716細胞は、American Type Culture Collection(ATCC)から購入されて、NUGC3細胞は、Japanese Collection of Research Bioresources(JCRB)Cell Bankから入手した。細胞株は全て、それぞれの供給業者により推奨されるように、ウシ胎児血清アルブミン(FBS)を補充した適切な成長培地中で日常的に培養された。
ヒト、マウスおよびラットFGFR細胞外ドメインは、GenBankまたはUniprotデータベース由来のアミノ酸配列に基づいて合成された遺伝子であった(表2を参照)。カニクイザルFGFR2および4 ECD cDNA鋳型は、各種カニクイザル組織由来のmRNAを使用して生成したアミノ酸配列情報に基づいて合成した遺伝子であった(例えば、Zyagen Laboratories、表3)。合成されたDNA断片は全て、精製を可能にするためのC末端タグを用いて、適切な発現ベクター、例えばCMVに基づくベクターまたはpCDNA(商標)3.1へクローニングした。
所望のFGFR組換えタンパク質は、予め懸濁培養に適応されて、無血清培地、L−グルタミンを伴わない50%HyClone(商標)SFM4Transfx−293(HyClone(商標))および50%FreeStyle−293(Gibco(登録商標))のミックス中で成長させたHEK293由来の細胞株(293T)で発現させた。小規模および大規模の両方のタンパク質生産は、一過性トランスフェクションを介したものであり、プラスミド担体としてポリエチレンイミン(PEI、25K、AlfaAesar(登録商標))を有するそれぞれ最大1Lの多重振とう機フラスコ(Nalgene(登録商標))中で実施した。ビオチン化タンパク質が、C末端Aviタグを介して発現されるべきであった場合、BirA酵素に関する遺伝子を保有するプラスミドは、ECDタンパク質プラスミドに対して1:2の比で含まれた。総DNAおよびポリエチレンイミンは、1:3(w:w)の比で使用された。DNA対培養物の比は1mg/Lであった。細胞培養物上清は、トランスフェクションの6日後に収集して、遠心分離して、精製前に滅菌濾過した。
組換えタグ付けFGFR2およびFGFR4 ECDタンパク質(例えば、APP−FGFR2およびAPP−FGFR4 ECD)は、細胞培養物上清を収集することにより精製した。抗APPカラムは、樹脂1mL当たり抗体10mgの最終比で、抗APPモノクローナル抗体をCNBr活性化Sepharose(登録商標)4Bへカップリングすることにより調製した。発現上清を、1〜2mL/分の流速で、または重力流により、抗APPカラムに適用させた。PBSを用いたベースライン洗浄後、結合された材料を100mMグリシン(pH2.7)で溶出させて、PBSに対して一晩、即座に透析した後、滅菌濾過した。タンパク質濃度は、280nmでの吸光度を測定して、個々のタンパク質のアミノ酸配列に基づいて算出されるタンパク質吸光係数を使用して変換することにより決定した。次に、精製したタンパク質を、SDS−PAGE、分析用サイズ排除クロマトグラフィー(HPLC−SEC)により特徴付けた。親和性精製した調製物中に10%を上回る凝集物を有するものに関して、第2のステップであるSEC精製を実施して、続いて確認特徴付けを行った。
これらの細胞を生成するために、ヒトFRGR2−IIIb−C3(NM_022970)をpENTR(商標)TOPOD(登録商標)ベクター(Invitrogen Cat#K2400−20)へクローニングした後、CMVプロモーター下でpLenti6 DEST(商標)ベクター(Invitrogen Cat#V49610)へクローニングした。次に、ウイルスをパッケージングして、Ba/F3細胞(DSMZ Cat#ACC300)にレンチウイルスを遠心感染させて、続いてブラストサイジン(例えば、Invitrogen、Cat#A11139−03またはCellgro(登録商標)、Cat#30−100−RB)20μgで処置して、37℃および5%CO2で組織培養インキュベーター中で5日間、IL3(R&D systems Cat#403−ml−010)を用いて選択した。続いて、生存細胞を、培地(10%FBS(Clontech Cat#631101)、2μg/mlのヘパリン(Sigma、Cat#H3149)および20μg/mlのブラストサイジン(例えば、Invitrogen、Cat#A11139−03またはCellgro(登録商標)、Cat#30−100−RB)を補充したが、IL3を有さないRPMI(Invitrogen Cat#11875−093))中で1カ月間成長させた。続いて、生存細胞を希釈クローニングして(dilution cloned)、クローン細胞集団を生成し、続いてこれらを、続く研究に使用した。
ヒトFGFR2を認識する抗体の選択のために、複数のパンニング戦略を使用した。抗体バリアントタンパク質の供給源として商業的に入手可能なファージディスプレイライブラリー、Morphosys HuCAL PLATINUM(登録商標)ライブラリーを使用して、FGFR2に結合するクローンの選択により、ヒトFGFRタンパク質に対する治療抗体を作成した。このファージミドライブラリーは、HuCAL(登録商標)コンセプト(Knappik et al., 2000, J Mol Biol 296: 57-86)に基づくものであり、ファージ表面上にFabを展示するためにCysDisplay(商標)技術を使用する(WO01/05950)。
抗原選択プロセスに先立って、コーティングチェックELISAを実施して、抗原に関して最適なコーティング濃度を決定した。各種タグを有する異なる組換えFGFR2タンパク質は、受動的吸着により、または抗原の各々のタグを標的とする捕捉抗体により、Maxisorp(商標)プレート(Nunc(登録商標))上にコーティングすることにより、固相パニングアプローチで使用された。あるいは、Reacti−Bind(商標)NeutrAvidin(商標)でコーティングされたポリスチレンストリッププレート(Pierce)を使用して、ビオチン化FGFR2抗原を捕捉した。96ウェルMaxisorp(商標)プレート(Nunc(登録商標))の適切な数(サブライブラリープールの数に応じる)のウェルを、4℃で一晩、抗原でコーティングした。コーティングされたウェルを、PBS(リン酸緩衝生理食塩水)/5%粉乳でブロックした。各パニングに関して、おおよそHuCAL PLATINUM(登録商標)ファージ−抗体をブロックした。ブロッキング手順後、予めブロックしたファージミックスを、抗原でコーティングしてブロックしたウェルそれぞれに添加して、マイクロタイタープレート(MTP)振とう機上で室温(RT)で2時間(h)インキュベートした。その後、非特異的な結合ファージを、幾つかの洗浄ステップにより洗い流した。特異的に結合されるファージの溶出に関して、25mMのDTT(ジチオスレイトール)をRTで10分(min)間添加した。DTT溶出液を、E.コリ(E. coli)(大腸菌(Escherichia coli))TG−1細胞の感染に使用した。感染後、細菌をLB(溶原性ブロス)/Cam(クロラムフェニコール)寒天プレート上で平板培養して、30℃で一晩インキュベートした。コロニーをプレートからこすり落として、ファージレスキュー、選択クローンのポリクローナル増幅およびファージ生産に使用した。各FGFR2固相パニング戦略は、パニングの個々のラウンドを含み、特有の抗原、抗原濃度、緩衝液組成物および洗浄ストリンジェンシーを含有した。
溶液パニングアプローチに関する必要条件は、抗原のビオチン化、およびビオチン化抗原の保持活性の確認であった。溶液パニング中、Fabディスプレイングファージおよびビオチン化抗原を、ファージによる抗原の到達性を促進する溶液中でインキュベートした。
各細胞パニングに関して、HuCAL PLATINUM(登録商標)ファージ−抗体をPBS/FCS中で予めブロックした。並行して、FGFR2の過剰発現を示すファージプール(FGFR2、Kato−III、SNU16、H716で安定にトランスフェクトしたBa/F3細胞)1つ当たり0.5〜1.0×107個の標的細胞を、氷上でPBS/FCS中に再懸濁した。
増加された親和性を有するFGFR2特異的抗体を得るために、成熟パニングを実施した(Prassler et al., 2009, Immunotherapy, 1: 571-583)。この目的で、標準的なパニング(固相および溶液相パニング)を、上述するように異なるFGFR2抗原を用いて実施した。
可溶性Fabの迅速な発現を促進するために、選択したHuCAL PLATINUM(登録商標)ファージのFabコード挿入物を、pMORPH(登録商標)30ディスプレイベクターから、pMORPH(登録商標)x11発現ベクターpMORPH(登録商標)x11_FHへサブクローニングした。
ELISAスクリーニングを使用して、単一Fabクローンを、標的抗原への結合に関してパニングアウトプットから同定する。Fabは、Fab含有粗製E.コリ(E. coli)溶解産物を使用して試験した。
FACSスクリーニングでは、細胞表面発現抗原に対する単一Fabクローン結合は、パニングアウトプットから同定される。Fabは、Fab含有粗製E.コリ(E. coli)溶解産物を使用して、細胞結合に関して試験される。
Fab断片の発現は、E.コリ(E. coli)TG1F−細胞で実施した。培養物を30℃で18時間振とうさせた。細胞を収集して、リゾチームおよびBug Buster(登録商標)タンパク質抽出試薬(Novagen、ドイツ)の組合せを使用して崩壊させた。His6でタグ付けしたFab断片をIMAC(Qiagen(登録商標)、ドイツ)によって単離して、タンパク質濃度をUV分光光度法により決定した。代表的に選択される試料の純度は、変性還元性15%SDS−PAGE(ドデシル硫酸ナトリウムポリアクリルアミドゲル電気泳動)で解析した。
完全長IgGを発現するために、重鎖(VH)および軽鎖(VL)の可変ドメイン断片を、ヒトIgG1に関して、Fab発現ベクターから適切なpMorph(登録商標)_hIgベクターへサブクローニングした。あるいは、真核生物HKB11細胞をpMorph(登録商標)4発現ベクターDNAでトランスフェクトした。細胞培養物上清を、トランスフェクションの3日後または7日後に収集した。滅菌濾過後、溶液を、液体ハンドリングステーションを使用してプロテインAアフィニティークロマトグラフィー(MabSelect SURE(商標)、GE Healthcare)に付した。別記されない場合には、緩衝液交換は、1×ダルベッコPBS(pH7.2、Invitrogen)へ実施され、試料は滅菌濾過された(孔サイズ0.2μm)。タンパク質濃度をUV分光光度法により決定して、IgGの純度は、Caliper Labchip(登録商標)を使用して、またはSDS−PAGEで、変性還元性条件下で解析した。
上述するパニングプロセス後に得られる抗FGFR抗体を、以下で例示されるアッセイで評価した:
抗FGFR2抗体の、FGF1依存性細胞増殖を阻害する能力を決定するために、増殖アッセイは、各々のキナーゼドメインを保有する完全長FGFR2IIIb受容体ECDおよびFGFR−1細胞内ドメインのキメラで安定に形質導入された操作Ba/F3細胞株(BaF3/CMV−FGFRIIIB−C3)を使用して実施した。ヒトFGF1の添加が、この細胞株において細胞増殖を促進した。
KD決定に関して、抗体タンパク質の単量体分画を使用した(単量体含有量少なくとも90%、解析用SECにより解析、それぞれ、Fabに関してはSuperdex(商標)75(Amersham Pharmacia)、またはIgGに関してはTosoh G3000SWXL(Tosoh Bioscience))。
溶液中の親和性決定は、基本的には文献(Friguet et al., 1985 J Immunol Methods 77: 305-319)に記載されるように実施された。SET法の感度および精度を改善するために、それは、古典的なELISAからECLに基づく技術に移された(Haenel et al., 2005 Anal Biochem 339: 182-184)。HuCAL(登録商標)_IgGのKD決定は、下記試薬:標準的なMSDプレート上で4℃で一晩PBS中で0.5μg/mlでコーティングされたビオチン化hFGFR2を使用して、記載されるように実施した。
x:適用される全可溶性抗原濃度(結合部位)
Bmax:抗原を含まないFabの最大シグナル
KD:親和性
である)。
x:適用される全可溶性抗原濃度(結合部位)
Bmax:抗原を含まないIgGの最大シグナル
KD:親和性
である)。
総計で、上記で概要するように組換え抗原材料ならびに細胞株を使用した28個の異なるパニング戦略を用いた。上述するアッセイを使用して、パニングアウトプットを、特異性および交差反応性に関してスクリーニングして、935個のクローンを配列決定に関して選択した。上述するスクリーニングプロセス後に、以下の実施例で記載されるように、さらなる特徴付けに関して、15個の抗体を選択した。これらの抗体のうち、12433、12947、10846および12931は、FGFR2 IIIbアイソフォーム(Uniprot 受託#P21802−3)に結合することがわかり、10164、11725、10220、11723および12944は、両方のヒトFGFR2 IIIb(Uniprot 受託#P21802−3)およびIIIcアイソフォーム(Uniprot 受託#P21802−1)に結合することがわかり、12425、12422、12439、10918、10923および11722は、両方のヒトFGFR2 IIIb(Uniprot 受託#P21802−3)およびIIIcアイソフォーム(Uniprot 受託#P21802−1)および同様にヒトFGFR4(Uniprot 受託#P22455)に結合することがわかった。
FGFR2種オルソログに対する、および同様にFGFR4に対する抗体の親和性を、Biacore(登録商標)技術を使用して、Biacore(登録商標)T100機器(GE Systems)を使用して、およびCM5センサーチップを用いて決定した。
精製抗体の、FGFR2のアゴニストまたはアンタゴニストのいずれかとして作用する能力を、Baf細胞がFGFR2を過剰発現するように形質導入されたBaf細胞系を使用して評価した。
1ステッププロセルによるDM1コンジュゲートの調製
抗体12425を、コンジュゲーション反応を開始する前に接線流濾過(TFF#1)により反応バッファー(15mMリン酸カリウム、2mM EDTA、pH7.6)中で透析濾過した。続いて、抗体12425(5.0mg/mL)をDM1(抗体量に対して5.6倍モル過剰)、次いで、SMCC(抗体量に対して4.7倍過剰)と混合した。反応を、2mM EDTAおよび10%DMAを含有する15mMリン酸カリウムバッファー(pH7.6)中、20℃で約16時間行った。1M酢酸を添加してpHを5.50に調整することにより反応をクエンチした。pH調整後、反応混合物を多層(0.45/0.22μm)PVDFフィルターを通して濾過し、精製し、接線流濾過(TFF#2)を使用して8.22%スクロースを含有する20mMコハク酸バッファー(pH5.0)中で透析濾過した。接線流濾過のための装置パラメーターを、以下の表5に列挙する。
本発明のコンジュゲートはまた、下記手順に従って、原位置でのプロセスにより調製することができる。抗体(21個のクローン)は、スルホサクシンイミジル4−(N−マレイミドメチル)シクロヘキサン−1−カルボン酸(スルホ−SMCC)リンカーを使用してDM1にコンジュゲートされた。DM1およびスルホ−SMCCヘテロ二官能性リンカーのストック溶液を、DMA中で調製した。スルホ−SMCCとDM1チオールとを一緒に混合して、40%v/vの水性50mMコハク酸バッファー、2mM EDTA、pH5.0を含有するDMA中で、DM1とリンカーとの比1.3:1モル当量およびDM1の最終濃度1.95mMで、25℃で10分間反応させた。次いで、抗体を反応のアリコートと反応させて、50mM EPPS、pH8.0および10%DMA(v/v)中、2.5mg/mLのAbの最終コンジュゲーション条件下で、約6.5:1のSMCCとAbとのモル当量比を得た。25℃で約18時間後、コンジュゲーション反応混合物を、10mMコハク酸塩、250mMグリシン、0.5%スクロース、0.01%Tween20、pH5.5で平衡化させたSEPHADEX(商標)G25カラムを使用して精製した。
抗体12422、12425および12433(8mg/ml)を、50mM NaCl、2mM EDTA、および5%DMAを含有する50mMリン酸カリウムバッファー(pH7.5)中、25℃で120分間、N−スクシンイミジル4−(2−ピリジルジチオ)ブタノエート(SPDB、それぞれ、5.0、5.5および4.9倍モル過剰)を使用して改変した。次いで、精製されていない改変Abを、50mM NaCl、2mM EDTA、および5%DMAを含有する50mMリン酸カリウムバッファー(pH7.5)中、4mg/mLの最終改変抗体濃度で、25℃で18時間、DM4(未結合のリンカーに対して1.7倍モル過剰)にコンジュゲートした。コンジュゲーション反応混合物を、10mMコハク酸塩、250mMグリシン、0.5%スクロース、0.01%Tween20、pH5.5で平衡化および溶出させるSEPHADEX(商標)G25カラムを使用して精製した。
抗体12425(5.0mg/mL)を、DM1(抗体量に対して7.15倍モル過剰)、次いで、CX1−1(抗体量に対して5.5倍過剰)と混合した。反応を、2mM EDTAおよび5%DMAを含有する60mM EPPS[4−(2−ヒドロキシエチル)−1−ピペラジンプロパンスルホン酸]バッファー(pH8.5)中、25℃で約16時間行った。次いで、反応混合物を、10mMコハク酸塩、250mMグリシン、0.5%スクロース、0.01%Tween20、pH5.5中で平衡化および溶出させるSEPHADEX(商標)G25カラムを使用して精製した。
SMCC−DM1にコンジュゲーション後のFGFR2およびFGFR4に対する抗体の親和性を、上記の実施例2に記載のものと同様の方法を使用して、Biacore(登録商標)T100装置(GE Systems)およびCM5センサーチップを使用するBiacore(登録商標)技術を使用して決定した。
SMCC−DM1リンカー−ペイロードへのコンジュゲーション後に、抗体薬物コンジュゲート(ADC)の、FGFR2増幅細胞株SNU16(ATCC Cat#CRL−5974)およびKato−III(ATCC Cat#HTB−103)の増殖を阻害する能力を決定した。簡潔に述べると、供給業者により推奨されるように、細胞を組織培養インキュベーター中で5%CO2で37℃で培養培地中で培養した。アッセイの当日に、細胞をPBS(Lonza Cat#17516C)で2度洗浄した後、0.25%トリプシン−EDTA(Gibco(登録商標)Cat#25300)で5分間処置して、推奨される培養培地中に再懸濁した。次に、細胞を計数して、細胞培養培地100μl中に2600〜3600個の細胞/ウェルの密度で96ウェルプレート(Costar Cat#3940またはCorning(登録商標)Cat#3340)中に播種した。二重反復プレートは、0日目の測定用に生成されて、全てのプレートを組織培養インキュベーター中で5%CO2で37℃で一晩インキュベートした。また、培地のみのウェルを生成して、陰性対照として作用させた。このインキュベーション後、50μl/ウェルのCell titer Glo(登録商標)試薬(Promega#G7573)を、0日目プレートに添加して、次にそれらを10分間、穏やかに振とうして、得られた発光強度を、Perkin Elmer EnVision(登録商標)2101プレートリーダーを使用して測定した。試験ADCは、適切な細胞培養培地中、2×ストック溶液へ二重反復で段階希釈して、アッセイプレートの残部それぞれから培地50μlを除去した後、2×段階希釈ADC 50μlを添加した(最終アッセイ濃度0.2〜50nM DM1等価体)後、組織培養インキュベーター中で5%CO2で37℃で5日間インキュベートした。このインキュベーション期間後に、相対細胞生存率を、上述するようにCell titer Glo(登録商標)試薬の添加により決定した。細胞増殖に対するADCの効果は、下記の通りに二重反復の平均値を使用して算出された:
阻害%=(処置ADC−未処置)/(未処置−0日目)×100
15個の抗FGFR2または抗FGFR2/FGFR4交差反応性ADCの抗腫瘍活性は、胃のFGFR2増幅(CN=31)、FGFR2 IIIbアイソフォーム発現性SNU16異種移植片腫瘍モデルで評価した。2つの独立した研究において、雌ヌードマウスに、ハンクス平衡塩溶液中に50%フェノールレッドフリーMatrigel(商標)(BD Biosciences)を含有する懸濁液中で、10×106個の細胞を皮下移植した。懸濁液中に細胞を含有する総注射容量は200μlであった。マウスは、平均腫瘍体積192.9mm3による移植の8日後に、第1の研究に加えた。9つの群(n=8匹/群)のうちの1つに無作為に割り当てた後、マウスにPBSまたは下記抗体薬物コンジュゲート:12433−MCC−DM1、10164−MCC−DM1、10220−MCC−DM1、10918−MCC−DM1、10923−MCC−DM1、11722−MCC−DM1、12422−MCC−DM1または12425−MCC−DM1の1つの単回3mg/kg静脈内(i.v.)注射を投与した。マウスは、平均腫瘍体積223.4mm3による移植の7日後に、第2の研究に加えた。9つの群(n=8匹/群)のうちの1つに無作為に割り当てた後、マウスにPBSまたは下記抗体薬物コンジュゲート:12433−MCC−DM1、12947−MCC−DM1、12931−MCC−DM1、12944−MCC−DM1、12439−MCC−DM1、10846−MCC−DM1、11725−MCC−DM1または11723−MCC−DM1の1つの3mg/kgのi.v.注射を投与した。12433−MCC−DM1は、両方の研究における抗体薬物コンジュゲートの直接的な比較を容易とするために、2つの研究間の懸け橋として含まれた。腫瘍は、1週につき2度カリパスで測定した。これらの研究で評価されるADCは、投与の23から24日後に広範囲の抗腫瘍活性を示した(33.2%T/Cから77.8%退縮に及ぶ)(図4(A)および図4(B))。
コンジュゲートされていない抗FGFR2抗体およびSMCC−DM1とコンジュゲートされた抗FGFR2抗体の、FGFR2増幅細胞株においてFGFRシグナル伝達を調節する能力を評価した。初期研究では、SNU16(ATCC Cat#CRL−5974)細胞における12433、12425および10164抗体の効果を決定した。簡潔に述べると、細胞を12ウェルCellBind(商標)プレート(Costar Cat#3336)において10%FBSを補充したRPMI中に播種して、組織培養インキュベーター中で5%CO2で37℃で一晩インキュベートした。実験の当日に、細胞培養培地を吸引して、試験抗体または小分子FGFR阻害剤BGJ398のいずれかで置き換えて、全てを、(13〜130nM、抗体/ADC、500nM、BGJ398)の最終濃度で、10%FBSを補充したRPMI中で希釈した。次に、細胞を組織培養インキュベーター中で5%CO2で37℃で2時間インキュベートした。このインキュベーション後、細胞を冷PBS(Lonza、Cat#17516C)で2度洗浄して、氷上に置いて、PhosphoSTOP(Roche Cat#04 906237001)とともに溶解緩衝液(CST Cat#9803)300μlを添加した。タンパク質濃度は、BCAアッセイ(Pierce Cat#23228)により決定した。続いて、タンパク質60μgをSDS−PAGEにより分離させて、ニトロセルロース膜上へ転写して、pFRS2(Cell Signaling Technology、Cat#3861)、総FGFR2(例えば、Santa Cruz Biotechnology、Cat#SC−122またはR&D systems Cat#6841)およびβ−アクチン(Bethyl、Cat#A300−485A)またはサイトケラチン(Dako Cat#M3515)に対する抗体でプローブした。結果を図5(A)に示し、コンジュゲートされてないか、またはMCC−DM1 ADCとしてのいずれの抗体も、2時間でpFRS2シグナルを調節することが不可能であることがわかった。12425抗体(4.3nM)および12425−MCC−DM1 ADC(4.3nM抗体、13nM DM1等価体)を用いてさらなる実験を行い、ここではSNU16および同様にKato−III(ATCC Cat#HTB−103)細胞の両方においてさらなる時点(4時間、24時間および72時間)を評価した。結果を図5(B)(SNU16)および図5(C)(Kato−III)に示す。ネイキッド抗体またはADCのいずれの効果も、SNU16細胞においては48時間まで、またはKato−III細胞においては72時間まで観察されなかった。pFRS2およびtFGFR2シグナルの両方の低減が、12425−MCC−DM1処置後にサイトケラチンに対してSNU16細胞において72時間に観察された。以下の実施例9に記載されるように、12425−MCC−DM1は、72時間の時点でのSNU16増殖の強力な阻害剤であり、この減少は、SNU16細胞集団においてFGFR2発現の不均一性を反映する可能性が高い。
コンジュゲートされていない抗FGFR抗体およびSMCC−DM1とコンジュゲートされた抗FGFR抗体の、FGFR2増幅過剰発現性およびヌル細胞株パネルの増殖を阻害する能力を評価した。これらの研究では、供給業者により推奨されるように、細胞を組織培養インキュベーター中で5%CO2で37℃で培養培地中で培養した。アッセイの当日に、細胞をPBS(Lonza Cat#17516C)で2度洗浄した後、0.25%トリプシン−EDTA(Gibco(登録商標)Cat#25300)で5分間処置して、推奨される培養培地中に再懸濁した。次に、細胞を計数して、細胞培養培地55〜100μl中に800〜3600個の細胞/ウェルの密度で96または384ウェルプレート(例えば、Costar Cat#3940、Corning(登録商標)Cat#3340、Costar Cat#3707)中に播種した。二重反復プレートは、0日目の測定用に生成されて、全てのプレートを組織培養中で5%CO2で37℃で一晩インキュベートした。また、培地のみのウェルを生成して、陰性対照として作用させた。このインキュベーション後、30〜50μl/ウェルのCell titer Glo(登録商標)試薬(Promega#G7573)を、0日目プレートに添加して、次にそれらを10分間、穏やかに振とうして、得られた発光強度を、Perkin Elmer EnVision(登録商標)2101プレートリーダーを使用して測定した。試験ADCは、適切な細胞培養培地中、2×または10×ストック溶液のいずれかへ二重反復で段階希釈した。2×ADCストック溶液が使用されるアッセイに関しては、アッセイ培地の半分を除去して、等量の2×段階希釈ADCで置き換えた。10×ADCストック溶液が用いられた場合、これを、アッセイプレートへ1:10で希釈した(例えば、5μl対55μl)後、組織培養インキュベーター中で5%CO2で37℃で5日間または6日間インキュベートした。ADCの最終的なアッセイ濃度は、0.005〜100nM DM1等価体の範囲であった。このインキュベーション期間後に、相対細胞生存率を、上述するようにCell titer Glo(登録商標)試薬の添加により決定した。細胞増殖に対するADCの効果は、下記の通りに二重反復の平均値を使用して算出された:
阻害%=(処置ADC−未処置)/(未処置−0日目)×100
12425−MCC−DM1の、in vivoで薬物動態マーカーを調節する能力を評価するために研究を行った。この研究の目標は、FGFR2またはFGFR4発現とG2/M細胞周期停止との間の関連性を評価することであった。免疫組織化学により評価されるように、pHH3陽性核の蓄積は、G2/M停止のマーカーとして使用した。
抗FGFR2および/または抗FGFR2/4 ADCの抗腫瘍活性を、幾つかの腫瘍異種移植片モデルで評価した。
モデル1:3つの抗FGFR2または抗FGFR2/FGFR4二重ターゲッティングADCの抗腫瘍活性を、胃のFGFR2増幅(コピー数=31、SNP6.0)、FGFR2 IIIcアイソフォーム発現性NCI−H716結腸直腸異種移植片腫瘍モデルで評価した。雌ヌードマウスに、ハンクス平衡塩溶液中に50%フェノールレッドフリーMatrigel(商標)(BD Biosciences)を含有する5×106個の細胞を皮下移植した。懸濁液中に細胞を含有する総注射容量は200μlであった。
12425−MCC−DM1の抗腫瘍活性はまた、正常なFGFR2コピー数および様々なFGFR2およびFGFR4 mRNA発現を有する23個のヒト肺原発性腫瘍異種移植片、および22個のヒト胸部原発性腫瘍異種移植片で評価した。ヒト原発性異種移植片モデルは、ヒト肺原発性腫瘍断片を、雌ヌードマウスへ皮下移植することにより樹立した。得られた腫瘍異種移植片を、雌ヌードマウスへの3mm3断片の皮下移植により、in vivoで継代培養した(passaged)。動物に腫瘍断片を移植して、随時登録(rolling enrollment)により、即ち腫瘍がいったんおよそ250mm3に達したが必ずしも腫瘍断片移植後の同じ時間ではなしに、処置(未処置、または12425−MCC−DM1、15mg/kg i.v.q2w)に割り当てた。異種移植片モデル1つ当たり1匹の動物が、2つの処置部門それぞれに割り当てられた。腫瘍は、1週につき2度カリパスで測定し、データは、腫瘍体積の変化パーセントとして解析した。
単独での、およびFGFR小分子チロシンキナーゼ阻害剤3−(2,6−ジクロロ−3,5−ジメトキシ−フェニル)−1−{6−[4−(4−エチル−ピペラジン−1−イル)−フェニルアミノ]−ピリミジン−4−イル}−1−メチル−尿素(Guagnano et al., 2011 J Med Chem 54: 7066-7083)と組み合わせたFGFR2/4抗体薬物コンジュゲート12425−MCC−DM1の抗腫瘍活性は、FGFR2増幅CHGA119患者由来の原発性胃腫瘍異種移植片モデル(FGFR2コピー数=22(SNP6.0))で評価した。これらの研究では、2mm×2mm×2mmのサイズのCHGA119腫瘍断片を、雌nu/nu無胸腺マウスへ皮下(s.c.)移植した。移植の40日後、CHGA119腫瘍を保有するマウス(n=8、平均251mm3、範囲104〜382mm3)を、それぞれ、経管栄養により経口的にビヒクル(酢酸/酢酸塩緩衝液中の50%PEG300)(pH4.6、10ml/kg、p.o.、qd)で、対照IgG−3207−DM1(10mg/kg、i.v.、q2wk)で、12425−MCC−DM1(10mg/kg、i.v.、q2wk)で、3−(2,6−ジクロロ−3,5−ジメトキシ−フェニル)−1−{6−[4−(4−エチル−ピペラジン−1−イル)−フェニルアミノ]−ピリミジン−4−イル}−1−メチル−尿素リン酸塩(10mg/kg、p.o.、qd)で、または12425−MCC−DM1および3−(2,6−ジクロロ−3,5−ジメトキシ−フェニル)−1−{6−[4−(4−エチル−ピペラジン−1−イル)−フェニルアミノ]−ピリミジン−4−イル}−1−メチル−尿素リン酸塩の組合せで処置した。腫瘍は、1週につき2度カリパスで測定した。単剤としての12425−MCC−DM1および3−(2,6−ジクロロ−3,5−ジメトキシ−フェニル)−1−{6−[4−(4−エチル−ピペラジン−1−イル)−フェニルアミノ]−ピリミジン−4−イル}−1−メチル−尿素リン酸塩はそれぞれ、腫瘍停滞または部分的応答(それぞれ、T/C=4%または33%、p<0.05)をもたらした一方で、12425−MCC−DM1および3−(2,6−ジクロロ−3,5−ジメトキシ−フェニル)−1−{6−[4−(4−エチル−ピペラジン−1−イル)−フェニルアミノ]−ピリミジン−4−イル}−1−メチル−尿素リン酸塩の組合せでの処置は、処置の5週後に、ほぼ完全な腫瘍退縮を誘導した(退縮=−94%、p<0.05)(図9および表15を参照)。10%未満の体重損失が、単剤または組合せ処置のいずれか後に観察された(表15)。これらのデータは、FGFR ADCをFGFRシグナル伝達の小分子阻害剤(例えば、3−(2,6−ジクロロ−3,5−ジメトキシ−フェニル)−1−{6−[4−(4−エチル−ピペラジン−1−イル)−フェニルアミノ]−ピリミジン−4−イル}−1−メチル−尿素リン酸塩、TKI258、ポナチニブ、AZD4547)と組み合わせることにより、抗腫瘍応答を改善させることができることを示唆する。
12425−MCC−DM1 Cmax(ピーク曝露)またはCavg(投薬間隔にわたる平均曝露)がその抗腫瘍活性において果たす役割をより良好に理解するために、SNU16異種移植片モデルを使用して、時間用量分割実験を行った。固定された処置持続期間にわたって予測される固定された総曝露をもたらす広範囲の投与スケジュール間隔および用量レベルを研究した。ある特定の用量レベルで、FGFR2 ADCは、TMDDに起因して、非線形PKを示す(実施例19を参照)。したがって、全ての投与スケジュール間隔および用量レベルに対して固定された総曝露を維持するためには、PKモデリングにより、TMDDはより低用量でより顕著であるため、より低くより頻繁な投与スケジュールで投与される場合には、より多くの総用量の12425−MCC−DM1が必要とされることが予測された。PKモデリングにより、3mg/kg q3w*2、2.5mg/kg q2w*3、1.5mg/kg qw*6および0.7mg/kg q3d*14で投与した12425−MCC−DM1が、類似した総曝露を達成することが予測された。
コンジュゲートされていない抗FGFR2抗体(12433、10164、12425、N297A_12425(ADCC枯渇変異体(Bolt et al., 2003 Eur J Immunol 23: 403-411)))の、抗体依存性細胞障害性(ADCC)を媒介する能力を、NK3.3細胞(キラー細胞またはエフェクター細胞、Jacky Kornbluth from San Louis Universityによりご厚意で提供していただいた)との同時インキュベーションで、Kato−III細胞(標的細胞、ATCC Cat#HTB−103)に対して決定した。簡潔に述べると、Kato−III細胞をカルセシンアセトキシメチルエステル(カルセイン−AM、Sigma−Aldrich Cat#17783−5MG)で染色して、2度洗浄して、ウェル1つ当たり5000個の細胞の濃度で96ウェルマイクロタイタープレート(96ウェル、U底、透明プラスチック、Corning(登録商標)Costar、Cat#650 160)へピペットで取り(pipetted)、上述の抗体およびタンパク質の段階希釈物(1ml当たり50,000〜0.003μg)とともに10分間、プレインキュベートした後、エフェクター細胞を添加した。標的細胞の抗体特異的溶解を算出するために、抗体またはエフェクター細胞を伴わない、標的細胞のみの平行インキュベーションは、ベースラインおよび陰性対照として作用したのに対して、陽性対照または最大溶解または100%の特異的溶解は、1%トリトン−T(商標)100溶液を用いて、標的細胞のみの溶解により決定した。1対5の比での標的およびエフェクター細胞の同時インキュベーション後に、マイクロタイタープレートを遠心分離して、上清液の分取量を別のマイクロタイタープレート(96ウェル、平底、黒色、透明な底を有する、Corning(登録商標)Costar、Cat#3904)に移し、溶液中の遊離カルセインの濃度を、蛍光カウンター(Victor(商標) 3マルチラベルカウンター、Perkin Elmer)で決定した。結果を、図11(A)に示し、全ての試験抗体が、様々な程度でADCCを媒介することが観察された。抗体のFc部分においてグリコシル化を保有せず、したがってエフェクター細胞のCD16a受容体への結合を欠如するN297A_12425は、いかなるADCCも媒介せず、特異的な陰性対照として作用した。標的細胞の一定、かつタンパク質濃度非依存性死滅は、非特異的バックグラウンドに起因して、Kato−III細胞に対するNK3.3細胞の天然死滅活性である。抗体12433は、約60%で標的細胞の最高の特異的溶解を媒介した(シグナルは、NK3.3細胞によるKato−III細胞のバックグラウンド溶解を推定した)のに対して、抗体12425および10164は、約55パーセントの特異的溶解に達した(シグナルは、NK3.3細胞によるKato−III細胞のバックグラウンド溶解を推定した)。3つの分子全ての効力(各用量応答曲線の最大半量の死滅での濃度、有効濃度50、EC50)は類似していた。一連の類似した実験では、ネイキッド抗体12425の、ADCCを誘導する能力を、12425−MCC−DM1と比較した。ネイキッド12425と12425−MCC−DM1との間の差は観察されず(データは示していない)、DM1コンジュゲーションは、ネイキッド抗体の、ADCCを誘導する能力を感知できるほど損なわないことを示唆した。
コンジュゲートされていない抗FGFR抗体およびコンジュゲートされた抗FGFR抗体の、FGFR4過剰発現性細胞株におけるFGFRシグナル伝達を調節する能力を評価した。初期研究では、MDA−MB453(ATCC Cat#HTB−131)細胞における10164(FGFR2特異的)、12433(FGFR2特異的)、12425(FGFR2/4交差反応性)および関連MCC−DM1コンジュゲートの効果を決定した。簡潔に述べると、細胞をCellBind(商標)12ウェルプレート(Costar、Cat#3336)において10%FBSを補充したRPMI中に播種して、組織培養インキュベーター中で5%CO2で37℃で一晩インキュベートした。実験の当日に、細胞培養培地を吸引して、試験抗体または小分子FGFR阻害剤BGJ398のいずれかで置き換えて、全てを、(13〜130nM、抗体/ADC、500nM、BGJ398)の最終濃度で、10%FBSを補充したRPMI中で希釈した。次に、細胞を組織培養インキュベーター中で5%CO2で37℃で2時間インキュベートした。このインキュベーション後、細胞を冷PBS(Lonza、Cat#17516C)で2度洗浄して、氷上に置いて、PhosphoSTOP(Roche、Cat#04 906237001)とともに溶解緩衝液(Cell Signaling Technology、Cat#9803)300μlを添加した。タンパク質濃度は、BCAアッセイ(Pierce、Cat#23228)により決定した。タンパク質濃度は、BCAアッセイ(Pierce)により決定した。続いて、タンパク質60μgをSDS−PAGEにより分離させて、ニトロセルロース膜上へ転写して、pFRS2(Cell Signaling Technology、Cat#3864)、総FGFR4(R&D Systems、Cat#8652)およびβ−アクチン(Bethyl、Cat#A300−485A)またはサイトケラチン(Dako、Cat#M3515)に対する抗体でプローブした。結果を図12(A)に示し、コンジュゲートされてないか、またはMCC−DM1 ADCとしてのいずれの抗体も、2時間でpFRS2シグナルを調節することが不可能であることがわかった。12425抗体4.3nMおよび12425−MCC−DM1 ADC(4.3nM抗体、13nM DM1等価体)を用いてさらなる実験を行い、ここではさらなる時点(4時間、24時間および72時間)を評価した。結果を図12(B)に示す。類似したデータが、RH4横紋筋肉腫細胞型細胞株でも得られた。
上述の実施例9で用いられるのと類似した方法論を使用して、コンジュゲートされていない抗FGFR抗体およびSMCC−DM1とコンジュゲートされた抗FGFR抗体の、FGFR4過剰発現性細胞株パネルの増殖を阻害する能力を評価した。
FGFR4陽性MDA−MB−453異種移植片モデルにおけるPD調節を評価するために、雌NSGマウスを利用した。細胞移植の1日前に、雌NSGマウスに、90日持続放出17β−エストラジオールペレット(Innovative Research of America)0.36mgを皮下移植した。17β−エストラジオールペレット移植の1日後、ハンクス平衡塩溶液中に50%フェノールレッドフリーMatrigel(商標)(BD Biosciences)を含有する懸濁液中で、5×106個の細胞を皮下移植した。懸濁液中に細胞を含有する総注射容量は200μlであった。腫瘍がいったん300〜500mm3に達したら、6匹のマウスを無作為に割り当てて、単回静脈内15mg/kg用量の12425−MCC−DM1または対照IgG−MCC−DM1のいずれかを受けさせた(n=3匹/群)。12425−MCC−DM1は、IgG−MCC−DM1を受けた対照マウスに対して、投与の96時間後に核pHH3陽性の顕著な増加をもたらした(代表的な画像を図14(A)に示す)。
12425−MCC−DM1の用量応答抗腫瘍活性を、FGFR4陽性MDA−MB−453乳がん異種移植片モデルにおいて評価した。細胞移植の1日前に、雌NSGマウスに、90日持続放出17β−エストラジオールペレット(Innovative Research of America)0.36mgを皮下移植した。17β−エストラジオールペレット移植の1日後、ハンクス平衡塩溶液中に50%フェノールレッドフリーMatrigel(商標)(BD Biosciences)を含有する懸濁液中で、5×106個の細胞を皮下注射した。懸濁液中に細胞を含有する総注射容量は200μlであった。マウスは、平均腫瘍体積197.9mm3による移植の12日後に、研究に加えた。5つの群(n=5匹/群)のうちの1つに無作為に割り当てた後、マウスにPBS(10mg/kg)、対照IgG−MCC−DM1(15mg/kg)、コンジュゲートされていない12425 IgG(15mg/kg)または12425−MCC−DM1(5、10または15mg/kg)をi.v.投与した(図15(A))。対照IgG−MCC−DM1は、このモデルでは活性ではなかった。15mg/kgのネイキッドIgG 12425または5mg/kgの12425−MCC−DM1の単回投与は、投与の29日後に類似した活性を示した(それぞれ、25%および24%T/C)。10および15mg/kgの両方で投与した12425−MCC−DM1は、腫瘍退縮をもたらした(それぞれ、72%および92%退縮)。
抗FGFR ADCの薬物動態(PK)を、1〜15mg/kgの範囲の幾つかの用量レベルで腫瘍保有および腫瘍非保有マウスで、1、5および45mg/kgでの腫瘍非保有ラットで、および30mg/kgでのカニクイザルで評価した。全ての研究において、「総」抗体および「抗体薬物コンジュゲート(ADC)」の両方の血清濃度は、確証されたELISA法を使用して全ての動物種で測定された。「総」分画は、コンジュゲートされたDM1を伴うか、または伴わない抗体の測定を指すのに対して、ADC分画は、DM1とコンジュゲートされた抗体のみの測定を指す(1つ以上のDM1分子)。全ての研究において、感知可能な差は、ADCと総抗体分画とのクリアランス間で観察されなかった。
潜在的な構造の傾向(liabilities)が、最終的なタンパク質の不均一性に影響を及ぼし得て、また例えば抗体製造可能性および免疫原性に影響を与え得る治療用抗体の配列に存在し得ることが理解される。かかる傾向は、グリコシル化部位、不対システイン、潜在的な脱アミド部位等を含み得る。かかる潜在的な傾向の危険性を低減するために、突然変異を導入して、これらの傾向の1つまたは複数を除去し得る。例えば、潜在的な脱アミド化部位は、単独で、または他の構造変化と併せて、置き換えることができる。潜在的な脱アミド部位の例としては、10164および12425の重鎖CDR2におけるDGが挙げられる(表1を参照)。これらの残基を他の適切なアミノ酸に突然変異させることができる。非限定的な例として、10164 HCDR2中のアスパラギン酸(D)をグルタミン酸(E)またはスレオニン(T)に突然変異させることができる。12425では、HCDR2 グリシン(G)を、アラニン(A)のような別のアミノ酸に突然変異させることができる。
選択された抗FGFR抗体の生物学的活性に対する親和性の影響を評価するために、親和性の最適化を、12433、10164および12425クローンで実施した。これらの研究では、L−CDR3およびH−CDR2領域が、トリヌクレオチド定方向突然変異誘発を使用したカセット突然変異誘発により並行して最適化された(Virnekas et al., 1994 Nucleic Acids Research 22: 5600-5607)一方で、フレームワーク領域が一定に保たれた。親和性成熟に関するクローニングに先立って、親Fab断片は、相当する発現ベクターpM(登録商標)x11から、XbaI/EcoRIを介して、CysDisplay(商標)ベクターpMORPH(登録商標)30へ移行させた。
重水素交換質量分析(HDx−MS)は、タンパク質のアミド骨格への重水素取込みを測定するものである。これらの測定値は、アミドの溶媒接近性および骨格アミドの水素結合ネットワークの変化に対して高感度である。HDx−MSは、アポおよびリガンド結合などの2つの異なる状態のタンパク質を比較するために使用されることが多く、ペプシンによる迅速な消化とカップリングする。そのような実験において、当業者であれば、2つの異なる状態間で異なる重水素取込みを示す領域、典型的には、10〜15アミノ酸を見つけることができる。保護される領域は、リガンド結合に直接関与するか、またはリガンドの結合によりアロステリックに影響される。
12425のFab断片(表22)に結合されたヒトFGFR2 ECD断片(FGFR2ドメイン2またはFGFR2 D2、配列番号138、表22)またはヒトFGFR4 ECD断片(FGFR4ドメイン2またはFGFR4 D2、配列番号143、表22)の結晶構造が決定される。以下に詳述するように、FGFR2 D2またはFGFR4 D2が発現されて、精製されて、12425Fabと混合されて、複合体を形成した。続いて、タンパク質結晶学を用いて、12425Fabに結合されたFGFR2 D2またはFGFR4 D2に関する原子分解能データを作成して、エピトープを規定した。FGFR2の結晶学的エピトープは、重要なエピトープ残基を突然変異させること、および表面プラズモン共鳴(SPR)技術を用いて12425への突然変異FGFR2の結合を測定することにより、さらに確証された。
結晶学およびSPR用に生産されるタンパク質の配列を表22に示す。FGFR2 D2の構築物は、組換え発現ベクター由来のN末端およびC末端残基(小文字で示される、配列番号137)とともに、ヒトFGFR2(UniProt識別子P21802−3、配列番号137)の残基146〜249(下線を付した)を含む。FGFR4 D2(配列番号143)の構築物は、組換え発現ベクター由来のN末端およびC末端残基(小文字で示される)とともに、ヒトFGFR4(UniProt識別子P22455−1、配列番号142)の残基140〜242(下線を付した)を含む。FGFR2ドメイン2〜ドメイン3(D2D3)の構築物は、残基140〜369(配列番号137ではイタリック体)を含む。FGFR2 D2D3の野生型(WT)およびK176A/R201A二重突然変異バージョンはともに、SPRによるエピトープ確証用に生産される(それぞれ、配列番号144および配列番号145、小文字は、組換え発現ベクター由来のN末端およびC末端残基である)。12425Fabに関して、重鎖および軽鎖の配列が示される(それぞれ、配列番号139および配列番号140)。
FGFR2 D2またはFGFR4 D2と12425 Fabとの複合体は、FGFR2 D2またはFGFR4 D2を12425 Fabと2:1のモル比(LCUVによって測定された濃度)を混合すること、氷上で30分間インキュベートすること、および20mM Hepes pH7.5、150mM NaCl中で平衡化したHiLoad(登録商標)16/60 Superdex(商標)75(GE Healthcare)上で複合体を精製することにより調製された。ピーク分画をSDS−PAGEおよびLCMSにより解析した。
QuikchangeR部位特異的突然変異誘発キット(Agilent Technologies)により、K176A/R210A二重突然変異をFGFR2 D2D3構築物に導入した。WTおよび突然変異FGFR2 D2D3タンパク質は、FGFR4 D2タンパク質に関するのと同じ手順を使用して生産した。
FGFR2 D2/12425 Fab複合体の結晶構造を使用して、12425に関するFGFR2エピトープを同定した。結晶の非対称ユニットにおいてFGFR2 D2/12425 Fab複合体の6つのコピーが存在する(非対称ユニットは、結晶全体を再現するのに必要とされる全ての構造情報を含有する)。6つ全てのコピーは、結晶充填に起因する小さな変動を除いて、12425 Fabと接触したほぼ同一の残基を共有する。6つ全てのコピーにより共有される12425接触FGFR2残基のみを使用して、エピトープを規定した。
FGFR4 D2/12425 Fab複合体の結晶構造を使用して、12425に関するFGFR4エピトープを同定した。結晶の非対称ユニットにおいてFGFR4 D2/12425 Fab複合体の4つのコピーが存在した。4つ全てのコピーは、結晶充填に起因する小さな変動を除いて、12425 Fabと接触したほぼ同一の残基を共有する。4つ全てのコピーにより共有される12425接触FGFR4残基のみを使用して、エピトープを規定した。
FGFR2およびFGFR4上の12425エピトープは、配列およびコンホメーションの両方で非常に類似している。配列アラインメント(図20(C))で示されるように、FGFR2上の全てのエピトープ残基(破線の四角内)は、FGFR4により共有され、FGFR4中に保存される。さらに、2つの複合体構造が、12425の可変ドメイン上で重ね合わせることができる場合、2つの抗原の構造は非常に良好に重ね合わさり、FGFR2およびFGFR4への12425結合のコンホメーションが非常に類似していることを示す。このことは、両方の受容体に対する12425の交差反応性に関する構造的説明を提供する。
どのようにしてFGFR−FGF−ヘパリン複合体が細胞表面上で二量体化して、下流シグナル伝達を活性化するかに関して2つのモデル、即ち2:2:2モデル(FGFR:FGF:ヘパリン)(Schlessinger et al., (2000) Mol. Cell 6:743-750)、および2:2:1モデル(FGFR:FGF:ヘパリン)(Pellegrini et al., (2000) Nature 407:1029-1034)が報告されている。FGFR D2/12425Fab複合体の結晶構造に基づいて、FGFR2および/またはFGFR4への12425の結合は、両方の二量体化モデルと調和せず、したがって両方の二量体化モデルを阻止することができた。
ADCの臨床サービス形態(CSF)は、50mgの12425−MCC−DM1、16.2mgのコハク酸ナトリウム、410.8mgのスクロースおよび1mgのポリソルベート20を含有するバイアル中の凍結乾燥物(宣言された含量の離脱を可能にするために10%の過充填を考慮しない)である。5mLの注射用水で凍結乾燥物を再構成させた後、10mg/mLの12425−MCC−DM1、20mMのコハク酸ナトリウム、240mMのスクロースおよび0.02%のポリソルベート20、pH5.0を含有する溶液が得られる。
既存の不均一性は、数多くのがんの一般的な特徴である。臨床的に有意な腫瘍(およびそれらに由来する細胞株)は、それらの初期発がん性事象から離れた多世代である。それらは、生存に関して一般的な遺伝子ドライバー病巣に必ずしも依存するとは限らない遺伝的に多様な部分集団(Nowell, Science 194: 23-28 (1976))を獲得するのに十分な時間を有していた。これらの部分集団が、各患者において単一クローン腫瘍を処置するのではなく、継続的世代で一緒に扱われるのに十分に適合している場合、本発明者らは、事実上、複雑な集団を処置している。したがって、発がん遺伝子または腫瘍抑制因子の異なる増幅を伴うクローン集団の存在は、単一療法に対する感受性または耐性を説明することができ、標的とされる併用療法を必要とし得る。
FGFR2発現は、当技術分野で公知であり、かつ本明細書中に記載する方法を使用して、免疫組織化学(IHC)、フローサイトメトリーおよび/またはin situハイブリダイゼーションにおける蛍光により、SNU16細胞で測定した。親SNU16パラフィン包埋細胞ペレットのIHC染色は、広範囲のFGFR染色強度を示した。さらに、培養物中で伝播されたSNU16細胞上のFGFR2表面発現もまた、フローサイトメトリーにより測定する場合に、FGFR2に関して広範囲の発現値を示した。興味深いことに、細胞集団がEGFRに関して同時染色された場合、EGFR陽性細胞の部分集団で存在するようであった。散乱されたEGFR増幅細胞(5%未満)はまた、前処置細胞ブロック調製物中でFISHにより明白であったが、集団がqPCRにより検査される場合には、EGFR増幅は、おそらく発現の低レベルに起因して、処置前の集団では検出することができなかった。
SNU16細胞(ACCT CRL−5974)を、RPMI−1640培地+10%FBS(ATCC Cat#30−2001)を有する0.5μMのBGJ398中で培養して、続いてBGJ398濃度を0.5μM〜1.0μM〜2.5μM〜5.0μMへ増加させた。培地を変更して、新鮮なBGJ398(5μM)を、1週に1度、6週間添加した。細胞を、回収細胞培養凍結培地(GIBCO(登録商標)#12648−101)中で凍結させて、RPMI−1640+10%FBS中で再構成した。続いて、耐性細胞株の解凍した継代を、1μM BGJ398選択のもとで維持した。BGJ398による選択のもと培養物中で保持されるSNU16細胞は、それぞれ、感受性細胞から耐性細胞において、1.7nMから2.4μMまで増加するIC50で、最終的には成長阻害に対してあまり感受性ではなくなった。
FGFR2を過剰発現する腫瘍領域およびFGFR2過剰発現を伴わない腫瘍領域から採取した対での腫瘍試料の顕微解剖した領域のディープシーケンシングは、FGFR2増幅との相関を示した。FGFR2過剰発現を有する腫瘍領域は全て、コピー数におけるFGFR2増幅(例えば、コピー数6〜16)を示した一方で、FGFR2過剰発現を伴わない腫瘍領域は、FGFR2コピー数増幅を示さなかった。上述のSNU16における見解と一致して、1つの腫瘍は、非FGFR2増幅領域においてのみEGFR増幅を示した。EGFR増幅は、この検体ではkras増幅と同時発生であった。この観察は、kras増幅が抗EGFR療法で処置したがんにおける耐性のメカニズムであることを示唆するこれまでの報告と一致している(Valtorta, et al., IJC (2013) 133:1259-1266; Misale, et al., Nature (2012) 486:532-538)。
FGFR2の増幅は、ラパチニブによる処置後の乳がん細胞における耐性メカニズムとして提唱されており(Azuma, et al. (2011) Biochem Biophys Res Comm, 407:219-224)、FGFR2発現は、ラパチニブに対して乏しい応答を有する乳がん患者において過剰発現されるとみなされた。本発明者らは、ディープシーケンシングによりヒトHer2増幅胃腫瘍試料が、FGFR2増幅細胞の既存の部分集団を有することを実証してきた(Deeds et al,. United States and Canadian Academy of Pathology, March 2014: Abstract no: 453290)。これにより、FGFR2増幅が、抗Her2療法後に他のHer2増幅腫瘍において耐性メカニズムを表し得ることが示唆される。したがって、FGFR2療法、例えば本明細書中に記載するFGFR2抗体およびADCと組み合わせたHer2療法の処置は、Her2発現性がんおよび/またはHer2耐性がんの処置に有用である。
Claims (70)
- 式:
Ab−(L−(D)m)n
(式中、
AbはヒトFGFR2およびFGFR4の両方に特異的に結合する抗体またはその抗原結合性断片であり;
Lはリンカーであり;
Dは薬物部分であり;
mは1〜8の整数であり;および
nは1〜10の整数である)
の抗体薬物コンジュゲート。 - 前記mが1である、請求項1に記載の抗体薬物コンジュゲート。
- 前記nが3または4である、請求項1または2に記載の抗体薬物コンジュゲート。
- 前記抗体または抗原結合性断片が、ヒトFGFR2の全てのアイソフォームに特異的に結合する、請求項1から3のいずれかに記載の抗体薬物コンジュゲート。
- 前記抗体または抗原結合性断片が、配列番号137のアミノ残基残基176(Lys)および210(Arg)を含むヒトFGFR2上のエピトープに特異的に結合する、請求項1から4のいずれかに記載の抗体薬物コンジュゲート。
- 前記抗体または抗原結合性断片が、配列番号137のアミノ残基173(Asn)、174(Thr)、175(Val)、176(Lys)、178(Arg)、208(Lys)、209(Val)、210(Arg)、212(Gln)、213(His)、217(Ile)および219(Glu)に特異的に結合する、請求項1から5のいずれかに記載の抗体薬物コンジュゲート。
- 前記抗体または抗原結合性断片が、配列番号136または配列番号141を含むヒトFGFR2のエピトープに特異的に結合する、請求項1から6のいずれかに記載の抗体薬物コンジュゲート。
- 前記抗体または抗原結合性断片が、配列番号136または配列番号141からなるヒトFGFR2のエピトープに特異的に結合する、請求項1から6のいずれかに記載の抗体薬物コンジュゲート。
- 前記抗体または抗原結合性断片が、配列番号142のアミノ酸残基169(Lys)および203(Arg)を含むヒトFGFR4のエピトープに特異的に結合する、請求項1から8のいずれかに記載の抗体薬物コンジュゲート。
- 前記抗体または抗原結合性断片が、配列番号137のアミノ残基残基176(Lys)および210(Arg)を含むヒトFGFR2のエピトープ、および配列番号142のアミノ酸残基169(Lys)および203(Arg)を含むヒトFGFR4のエピトープに特異的に結合する、請求項1から9のいずれかに記載の抗体薬物コンジュゲート。
- 前記抗体または抗原結合性断片が、配列番号142のヒトFGFR4のアミノ残基150(Thr)、151(His)、154(Arg)、157(Lys)、160(His)、166(Asn)、167(Thr)、168(Val)、169(Lys)、171(Arg)、173(Pro)、174(Ala)、201(Arg)、202(Leu)、203(Arg)、204(His)、205(Gln)、206(His)、207(Trp)、210(Val)および212(Glu)に特異的に結合する、請求項1から10のいずれかに記載の抗体薬物コンジュゲート。
- 前記抗体または抗原結合性断片が、配列番号132または133を含むヒトFGFR4のエピトープに特異的に結合する、請求項1から11のいずれかに記載の抗体薬物コンジュゲート。
- 前記抗体または抗原結合性断片が、配列番号132または133からなるヒトFGFR4のエピトープに特異的に結合する、請求項1から11のいずれかに記載の抗体薬物コンジュゲート。
- 前記抗体またはその抗原結合性断片が、(a)配列番号1、21、41、61、81または101のVH CDR1、(b)配列番号2、22、42、62、82または102のVH CDR2、および(c)配列番号3、23、43、63、83または103のVH CDR3を含む重鎖可変領域を含み、前記CDRが、Kabat定義に従って規定される、請求項1から13のいずれかに記載の抗体薬物コンジュゲート。
- 前記抗体またはその抗原結合性断片が、(a)配列番号11、31、51、71、91または111のVL CDR1、(b)配列番号12、32、52、72、92または112のVL CDR2、および配列番号13、33、53、73、93または113のVL CDR3を含む軽鎖可変領域をさらに含み、前記CDRが、Kabat定義に従って規定される、請求項14に記載の抗体薬物コンジュゲート。
- 前記抗体またはその抗原結合性断片が、配列番号7、27、47、67、87または107のVH領域、および配列番号17、37、57、77、97または117のVL領域を含む、請求項15に記載の抗体薬物コンジュゲート。
- 前記抗体が、配列番号9、29、49、69、89または109の重鎖、および配列番号19、39、59、79、99または119の軽鎖からなる、請求項16に記載の抗体薬物コンジュゲート。
- 前記抗体または抗原結合性断片が、ヒトFGFR2およびFGFR4への結合に対して配列番号9、29、49、69、89または109の重鎖、および配列番号19の軽鎖からなる抗体と交差競合する、請求項1に記載の抗体薬物コンジュゲート。
- 前記抗体または抗原結合性断片が、配列番号9、29、49、69、89または109の重鎖、および配列番号19、39、59、79、99または119の軽鎖からなる抗体と比較した場合に、増強されたADCC活性を有する、請求項1に記載の抗体薬物コンジュゲート。
- 前記抗体または抗原結合性断片が、配列番号9、29、49、69、89または109の重鎖、および配列番号19、39、59、79、99または119の軽鎖からなる抗体と比較した場合に、増強されたADCC活性を有さない、請求項1に記載の抗体薬物コンジュゲート。
- 前記抗体が、ヒト抗体である、請求項1から20のいずれかに記載の抗体薬物コンジュゲート。
- 前記抗体が、モノクローナル抗体である、請求項1から21のいずれかに記載の抗体薬物コンジュゲート。
- 前記リンカーが、切断性リンカー、非切断性リンカー、親水性リンカー、プロチャージリンカーおよびジカルボン酸に基づくリンカーからなる群から選択される、請求項1から22のいずれか一項に記載の抗体薬物コンジュゲート。
- 前記リンカーが、N−スクシンイミジル−3−(2−ピリジルジチオ)プロピオネート(SPDP)、N−スクシンイミジル 4−(2−ピリジルジチオ)ペンタノエート(SPP)、N−スクシンイミジル 4−(2−ピリジルジチオ)ブタノエート(SPDB)、N−スクシンイミジル−4−(2−ピリジルジチオ)−2−スルホ−ブタノエート(スルホ−SPDB)、N−スクシンイミジルヨードアセテート(SIA)、N−スクシンイミジル(4−ヨードアセチル)アミノベンゾエート(SIAB)、マレイミドPEG NHS、N−スクシンイミジル 4−(マレイミドメチル)シクロヘキサンカルボキシレート(SMCC)、N−スルホスクシンイミジル 4−(マレイミドメチル)シクロヘキサンカルボキシレート(スルホ−SMCC)または2,5−ジオキソピロリジン−1−イル 17−(2,5−ジオキソ−2,5−ジヒドロ−1H−ピロール−1−イル)−5,8,11,14−テトラオキソ−4,7,10,13−テトラアザヘプタデカン−1−オエート(CX1−1)からなる群から選択される架橋試薬から誘導される、請求項23に記載の抗体薬物コンジュゲート。
- 前記リンカーが、架橋試薬N−スクシンイミジル 4−(マレイミドメチル)シクロヘキサンカルボキシレート(SMCC)から誘導される、請求項24に記載の抗体薬物コンジュゲート。
- 前記薬物部分が、V−ATPase阻害剤、プロアポトーシス剤、Bcl2阻害剤、MCL1阻害剤、HSP90阻害剤、IAP阻害剤、mTor阻害剤、微小管安定化剤、微小管脱安定化剤、オーリスタチン、ドラスタチン、メイタンシノイド、MetAP(メチオニンアミノペプチダーゼ)、タンパク質CRM1の核輸送の阻害剤、DPPIV阻害剤、プロテアソーム阻害剤、ミトコンドリアにおけるホスホリル転移反応の阻害剤、タンパク質合成阻害剤、キナーゼ阻害剤、CDK2阻害剤、CDK9阻害剤、キネシン阻害剤、HDAC阻害剤、DNA損傷剤、DNAアルキル化剤、DNA挿入剤、DNA副溝結合剤およびDHFR阻害剤からなる群から選択される、請求項1から25のいずれか一項に記載の抗体薬物コンジュゲート。
- 前記細胞毒性剤がメイタンシノイドである、請求項26に記載の抗体薬物コンジュゲート。
- 前記メイタンシノイドが、N(2’)−デアセチル−N(2’)−(3−メルカプト−1−オキソプロピル)−メイタンシン(DM1)またはN(2’)−デアセチル−N2−(4−メルカプト−4−メチル−1−オキソペンチル)−メイタンシン(DM4)である、請求項27に記載の抗体薬物コンジュゲート。
- 下記式:
Abは、配列番号1、21、41、61、81または101の重鎖CDR1、配列番号2、22、42、62、82または102の重鎖CDR2、配列番号3、23、43、63、83または103の重鎖CDR3、および配列番号11、31、51、71、91または111の軽鎖CDR1、配列番号12、32、52、72、92または112の軽鎖CDR2、配列番号13、33、53、73、93または113の軽鎖CDR3を含む抗体またはその抗原結合性断片であり、前記CDRは、Kabat定義に従って規定され;および
nは1〜10である)
を有する、請求項1に記載の抗体薬物コンジュゲート。 - 請求項1から29のいずれか一項に記載の抗体薬物コンジュゲートと、薬学的に許容される担体とを含む医薬組成物。
- 前記組成物が、凍結乾燥物として調製される、請求項30に記載の医薬組成物。
- 前記凍結乾燥物が、前記抗体薬物コンジュゲート、コハク酸ナトリウム、およびポリソルベート20を含む、請求項31に記載の医薬組成物。
- それを必要とする患者におけるFGFR2陽性および/またはFGFR4陽性がんを処置する方法であって、請求項1から30のいずれかに記載の抗体薬物コンジュゲート、または請求項30から32のいずれかに記載の医薬組成物を、前記患者に投与する工程を含む、方法。
- 前記がんが、FGFR2遺伝子コピー数の増加またはPAX3−FOXOトランスロケーションを有する、請求項29に記載の方法。
- 前記がんが、胃がん、乳がん、横紋筋肉腫、肝臓がん、副腎がん、肺がん、食道がん、結腸がんおよび子宮内膜がんからなる群から選択される、請求項33に記載の方法。
- チロシンキナーゼ阻害剤、IAP阻害剤、Bcl2阻害剤、MCL1阻害剤または別のFGFR2阻害剤を、前記患者に投与する工程をさらに含む、請求項33または34に記載の方法。
- 前記別のFGFR2阻害剤が、3−(2,6−ジクロロ−3,5−ジメトキシ−フェニル)−1−{6−[4−(4−エチル−ピペラジン−1−イル)−フェニルアミノ]−ピリミジン−4−イル}−1−メチル−尿素またはその薬学的に許容される塩である、請求項36に記載の方法。
- 前記がんが、チロシンキナーゼ阻害剤に耐性である、請求項33または35に記載の方法。
- 前記チロシンキナーゼ阻害剤が、EGFR、Her2、Her3、IGFRまたはMet阻害剤である、請求項38に記載の方法。
- 患者においてHer2阻害剤に耐性であるがんを処置する方法であって、請求項1から29のいずれかに記載の抗体薬物コンジュゲート、または請求項30から32のいずれかに記載の医薬組成物を、前記患者に投与する工程を含む、方法。
- 医薬としての使用のための、請求項1から29のいずれかに記載の抗体薬物コンジュゲート。
- FGFR2陽性またはFGFR4陽性がんの処置における使用のための、請求項1から29のいずれかに記載の抗体薬物コンジュゲート、または請求項31から33のいずれかに記載の医薬組成物。
- チロシンキナーゼ阻害剤に耐性であるがんの処置における使用のための、請求項1から29のいずれかに記載の抗体薬物コンジュゲート、または請求項31から33のいずれかに記載の医薬組成物。
- EGFR、Her2、Her3、IGFRまたはMet阻害剤に耐性であるがんの処置における使用のための、請求項1から29のいずれかに記載の抗体薬物コンジュゲート、または請求項30から32のいずれかに記載の医薬組成物。
- FGFR2およびFGFR4に特異的に結合する抗体またはその抗原結合性断片。
- 前記抗体または抗原結合性断片が、配列番号137のアミノ酸残基176(Lys)および210(Arg)を含むヒトFGFR2上のエピトープに特異的に結合する、請求項45に記載の抗体または抗原結合性断片。
- 前記抗体または抗原結合性断片が、配列番号137のアミノ酸残基173(Asn)、174(Thr)、175(Val)、176(Lys)、178(Arg)、208(Lys)、209(Val)、210(Arg)、212(Gln)、213(His)、217(Ile)および219(Glu)に特異的に結合する、請求項46に記載の抗体または抗原結合性断片。
- 前記抗体または抗原結合性断片が、配列番号136または配列番号141を含むヒトFGFR2のエピトープに特異的に結合する、請求項47に記載の抗体または抗原結合性断片。
- 前記抗体または抗原結合性断片が、配列番号142のアミノ酸残基169(Lys)および203(Arg)を含むヒトFGFR4のエピトープに特異的に結合する、請求項46から48に記載の抗体または抗原結合性断片。
- 前記抗体または抗原結合性断片が、配列番号137のアミノ酸残基176(Lys)および210(Arg)を含むヒトFGFR2のエピトープ、および配列番号142のアミノ酸残基169(Lys)および203(Arg)を含むヒトFGFR4のエピトープに特異的に結合する、請求項45に記載の抗体または抗原結合性断片。
- 前記抗体または抗原結合性断片が、配列番号142のアミノ酸残基150(Thr)、151(His)、154(Arg)、157(Lys)、160(His)、166(Asn)、167(Thr)、168(Val)、169(Lys)、171(Arg)、173(Pro)、174(Ala)、201(Arg)、202(Leu)、203(Arg)、204(His)、205(Gln)、206(His)、207(Trp)、210(Val)および212(Glu)に特異的に結合する、請求項45から50のいずれかに記載の抗体または抗原結合性断片。
- 前記抗体または抗原結合性断片が、配列番号132または133を含むヒトFGFR4のエピトープに特異的に結合する、請求項45から51のいずれかに記載の抗体または抗原結合性断片。
- 前記抗体または抗原結合性断片が、配列番号132または133からなるヒトFGFR4のエピトープに特異的に結合する、請求項45から51のいずれかに記載の抗体または抗原結合性断片。
- (a)配列番号1、21、41、61、81または101のVH CDR1、(b)配列番号2、22、42、62、82または102のVH CDR2、および(c)配列番号3、23、43、63、83または103のVH CDR3を含む重鎖可変領域を含み、前記CDRが、Kabat定義に従って規定される、請求項45から53のいずれかに記載の抗体または抗原結合性断片。
- (a)配列番号11、31、51、71、91または111のVL CDR1、(b)配列番号12、32、52、72、92または112のVL CDR2、および配列番号13、33、53、73、93または113のVL CDR3を含む軽鎖可変領域をさらに含み、前記CDRが、Kabat定義に従って規定される、請求項54に記載の抗体または抗原結合性断片。
- 配列番号7、27、47、67、87または107のVH領域、および配列番号17、37、57、77、97または117のVL領域を含む、請求項55に記載の抗体または抗原結合性断片。
- 配列番号9、29、49、69、89または109の重鎖、および配列番号19、39、59、79、99または119の軽鎖からなる、請求項56に記載の抗体。
- 前記抗体または抗原結合性断片が、ヒトFGFR2およびFGFR4への結合に関して、請求項57に記載の抗体または抗原結合性断片と交差競合する、請求項45に記載の抗体または抗原結合性断片。
- 前記抗体または抗原結合性断片が、請求項59に記載の抗体と比較した場合に、増強されたADCC活性を有する、請求項45に記載の抗体または抗原結合性断片。
- 前記抗体が、ヒト抗体である、請求項45から59のいずれかに記載の抗体または抗原結合性断片。
- 前記抗体が、モノクローナル抗体である、請求項45から60のいずれかに記載の抗体または抗原結合性断片。
- 前記抗体または抗原結合性断片が、単鎖抗体(scFv)である、請求項45から61のいずれかに記載の抗体または抗原結合性断片。
- 前記請求項のいずれか一項に記載の抗体または抗原結合性断片をコードする核酸。
- 請求項63に記載の核酸を含むベクター。
- 請求項64に記載のベクターを含む宿主細胞。
- 抗体または抗原結合性断片を生成するための方法であって、
請求項65に記載の宿主細胞を培養する工程、および培養物から抗体を回収する工程を含む、方法。 - 抗FGFR2およびFGFR4抗体薬物コンジュゲートを生成するための方法であって、
(a)SMCCを薬物部分DM−1に化学的に連結する工程;
(b)前記リンカー−薬物を、請求項66に記載の細胞培養物から回収された抗体にコンジュゲートする工程;および
(c)抗体薬物コンジュゲートを精製する工程
を含む、方法。 - UV分光光度計を使用して測定される、約3.5の平均DARを有する、請求項67に従って作製される抗体薬物コンジュゲート。
- 請求項45から62のいずれか一項に記載の抗体またはその抗原結合性断片、または標識された請求項1から29のいずれか一項に記載の抗体薬物コンジュゲートを含む診断試薬。
- 標識が、放射性標識、フルオロフォア、発色団、画像化剤、および金属イオンからなる群から選択される、請求項69に記載の診断試薬。
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