JP2016172749A - インフルエンザを治療するための化合物および方法 - Google Patents
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Abstract
【解決手段】下記式Iで表される化合物を有効成分として含有するインフルエンザウィルス感染の予防又は治療のための医薬組成物。
[R1〜R3の1つはOH又はOC(=O)Q;QはR7、OR7又NHR7;R7は置換可低級アルキル、置換可アリール又は置換可ヘテロアリール;R4、R5並びにR1〜R3の残りはH;R6はNO2;R9はH。]
【選択図】なし
Description
本出願は、2009年6月26日出願の米国特許仮出願第61/220,891号から
優先権を主張し、その全体の内容は、参照により本明細書に組み込まれる。
成物を対象とする。
けで年間に約36,000名の死亡者および226,000名を超える入院患者をもたら
す。インフルエンザウイルスは、核タンパク質およびマトリックスタンパク質の抗原性の
違いによって(A型、B型、およびC型として)分類され、エンベロープを有する、マイ
ナス鎖RNAウイルスであり;A型が、臨床的に最も重要である。A型インフルエンザウ
イルスの多くのサブタイプは、2つの表面糖タンパク質である血球凝集素(「HA」)お
よびノイラミニダーゼ(「NA」)が異なり、これらは防御免疫応答の主な標的であり、
(H番号で示される)血球凝集素および(N番号で示される)ノイラミニダーゼのタイプ
に従って表示される。HAおよびNAは、抗原連続変異および抗原不連続変異の結果とし
て連続的に変化する。16種のHサブタイプ(または「血清型」)および9種のNサブタ
イプが知られている。
現は、世界的なヒトの健康に特に深刻な脅威を示す。監視および早期診断に加えて、新興
インフルエンザ株を制御する努力により、有効なワクチンおよび新規な抗ウイルス薬の開
発が際立っている。
N結合型グリコシル化シークオンを含む三量体糖タンパク質である。HAは、小胞体にお
いて、最初に合成され、75〜79kDa前駆体(HA0)としてコアグリコシル化され
、この前駆体が集合して、非共有結合ホモ三量体となる。この三量体は、速やかにゴルジ
複合体に運搬され、原形質膜に到達し、そこで、HAの挿入が新たに形成されたウイルス
粒子の集合および成熟のプロセスを開始するする。原形質膜への挿入の直前またはそれと
同時に、各三量体サブユニットはタンパク分解により2つの糖タンパク質、HA1および
HA2に切断されるが、これらはジスルフィド結合によって連結されたままである。
凝集素の成熟をブロックすることによりウイルス感染症を治療および予防する方法に関す
る。治療および予防は、式Iの化合物または薬学的に許容されるその塩を、単独でまたは
他の薬剤と組み合わせて投与することにより行われる。式Iの化合物は、ウイルス表面タ
ンパク質HAの成熟を選択的にブロックし、それによって、細胞内運搬および宿主細胞原
形質膜への挿入を障害する新規な機序によって、抗ウイルス活性を示す。予備的な結果に
よれば、式Iの化合物はA型インフルエンザ感染に対して有効な抗ウイルス薬の新規なク
ラスを構成することが示唆されている。本発明はまた、抗ウイルス療法において個別、同
時の、または逐次使用のための組み合わせ製剤としての、式Iの化合物または薬学的に許
容されるその塩、および有効量の追加の抗ウイルス薬、または有効量の免疫賦活薬、また
は有効量のワクチンを含む製品を提供する。
ザ感染を治療および予防するための、式Iのチアゾリドを使用する方法、医薬組成物、お
よび組み合わせ製剤を対象とする。本発明による組み合わせ製剤、医薬組成物および治療
方法において、抗ウイルス薬は、1から4種の化合物または調製物を含むことができ、ワ
クチンおよび/または免疫賦活薬を含むこともできる。
塩もしくはエステルおよび薬学的に許容される担体を含む医薬組成物を提供または企図す
る。
の抗ウイルス薬を含む、インフルエンザを治療するために有用な組み合わせを提供または
企図する。
およびノイラミニダーゼ阻害薬を含む、インフルエンザを治療するために有用な組み合わ
せを提供または企図する。
の塩、および免疫賦活薬を含む、インフルエンザを治療するために有用な組み合わせを提
供または企図する。
の塩、およびペグ化インターフェロンを含む、インフルエンザを治療するために有用な組
み合わせを提供または企図する。
その塩、および組換えシアリダーゼ融合タンパク質を含む、インフルエンザを治療するた
めに有用な組み合わせを提供または企図する。
の塩、およびワクチンを含む、インフルエンザを治療するために有用な組み合わせを提供
または企図する。
の塩、およびアンチセンスオリゴヌクレオチドを含む、インフルエンザを治療するために
有用な組み合わせを提供または企図する。
の化合物または薬学的に許容されるその塩および他の抗ウイルス薬を含む、インフルエン
ザを治療するために有用な組み合わせを提供または企図する。
または薬学的に許容されるその塩および他の抗ウイルス薬を含む、インフルエンザを治療
するために有用な組み合わせを提供または企図する。
ることによりウイルス感染症を治療および予防する方法を提供する。
に許容されるその塩を投与することによりウイルス感染症を治療および予防する方法を提
供する。
または薬学的に許容されるその塩を投与することによりウイルス感染症を治療および予防
する方法を提供する。
許容されるその塩を投与することによりウイルス感染症を治療および予防する方法を提供
する。
の化合物または薬学的に許容されるその塩を投与することにより、ウイルス感染症を治療
および予防する方法を提供する。
は薬学的に許容されるその塩を投与することによりウイルス感染症を治療および予防する
方法を提供する。
イラミニダーゼ阻害薬を含む、インフルエンザを治療するために有用な組み合わせパック
またはキットを提供する。
疫賦活薬を含む、インフルエンザを治療するために有用な組み合わせパックまたはキット
を提供する。
ダマンチン類似体を含む、インフルエンザを治療するために有用な組み合わせパックまた
はキットを提供する。
換えシアリダーゼ融合タンパク質を含む、インフルエンザを治療するために有用な組み合
わせパックまたはキットを提供する。
ンチセンスオリゴヌクレオチドを含む、インフルエンザを治療するために有用な組み合わ
せパックまたはキットを提供する。
用可能な結合部位の数に基づいた1から最大数のあり得る置換基を意味する。
はかかる状態もしくは障害の1つまたは複数の症状の進行を逆転する、緩和する、抑制す
る、あるいは、それらを予防することを意味する。本明細書では、「治療」という用語は
、「治療する」が直上に定義される通り、治療する行為を意味する。
、およびこれらの治療薬の協調的作用から有益な効果を提供することを目的としたある特
定の治療レジメンの一部としての他の薬剤の投与を包含する。組み合わせの有益な効果に
は、それだけには限らないが、治療薬の組み合わせから生じる薬物動態学的または薬力学
的な相互作用が含まれる。組み合わせでのこれらの治療薬の投与は、通常、規定された期
間(選択された組み合わせに依存して、通常、分、時間、日または週)にわたって実施さ
れる。
の単独療法レジメンの一部としてこれらの治療薬の2つ以上の投与を包含することは意図
しない。「組み合わせ療法」は、実質的に同時の方式または逐次的な方式で治療薬の投与
が含まれるものとする。実質的に同時の投与は、例えば、治療薬の固定比率を含む単一の
カプセルを投与することによりまたはそれぞれの治療薬のための単一のカプセルを投与す
ることにより達成することができる。治療薬の逐次および実質的に同時の投与は、それだ
けには限らないが、経口経路、静脈内経路、筋肉内経路、および粘膜組織による直接吸収
が含まれる任意の適当な経路により実施することができる。治療薬は、同一経路または異
なる経路により投与することができる。例えば、選択される組み合わせの第一の治療薬を
静脈内注射により投与することができ、組み合わせの他の治療薬を経口で投与することが
できる。あるいは、例えば、すべての治療薬を経口で投与してもよく、すべての治療薬を
静脈内注射により投与してもよい。治療薬を投与する順序は、重要なことも重要ではない
こともある。「組み合わせ療法」はまた、生物学的有効成分(それだけには限らないが、
異なる抗ウイルス薬、ワクチン、または免疫賦活薬など)、ならびに栄養補助食品を含め
た非薬物療法とさらに組み合わせた、前述した通り治療薬の投与を包含することもできる
。
物のイオンとの水素塩および水酸化物塩が含まれる。いくつかの実施形態において、「塩
」という用語は、薬理学的活性を有する本化合物の塩であり、生物学的にも他の点でも望
ましくないものではない、薬学的に許容される塩と称されるサブクラスとなり得る。すべ
ての実施形態では、塩は、それだけには限らないが、酸で形成することができ、水素塩、
ハロゲン化物、酢酸塩、アジピン酸塩、アルギン酸塩、アスパラギン酸塩、安息香酸塩、
ベンゼンスルホン酸塩、重硫酸塩酪酸塩、クエン酸塩、樟脳酸塩(camphorate)、樟脳ス
ルホン酸塩、シクロペンタンプロピオン酸塩、二グルコン酸塩、ドデシル硫酸塩、エタン
スルホン酸塩、フマル酸塩、グルコヘプタン酸塩(glucoheptanoate)、グリセロリン酸
塩、ヘミ硫酸塩、ヘプタン酸塩、ヘキサン酸塩、塩酸塩、臭化水素酸塩、ヨウ化水素酸塩
、2−ヒドロキシエタンスルホン酸塩、乳酸塩、マレイン酸塩、メタンスルホン酸塩、2
−ナフタレンスルホン酸塩、ニコチン酸塩、シュウ酸塩、チオシアン酸塩、トシル酸塩(
tosylate)、およびウンデカン酸塩などであり得る。すべての実施形態において、塩は、
それだけには限らないが、水酸化物塩、アンモニウム塩、リチウム、ナトリウムおよびカ
リウム塩などのアルカリ金属塩、カルシウムなどのアルカリ土類金属塩、マグネシウム塩
、アルミニウム塩、アンモニア、メチルアミン、ジエチルアミン、エタノールアミン、ジ
シクロヘキシルアミン、N−メチルモルホリン、N−メチル−D−グルカミンなどの有機
塩基との塩、ならびにアルギニンおよびリシンなどのアミノ酸との塩など、塩基で形成す
ることができる。塩基性の窒素含有基は、メチル、エチル、プロピルおよびブチル塩化物
、臭化物およびヨウ化物などの低級アルキルハロゲン化物;硫酸ジメチル、硫酸ジエチル
、硫酸ジブチルおよび硫酸ジアミルなどの硫酸ジアルキル;デシル、ラウリル、ミリスチ
ルおよびステアリル塩化物、臭化物およびヨウ化物などの長鎖ハロゲン化物;および臭化
ベンジルおよび臭化フェネチルなどのアラルキルハロゲン化物を含めた薬剤で四級化する
ことができる。
は、水または油に可溶性または分散性であり;過度の毒性、刺激性、およびアレルギー応
答がなく疾患の治療に適しており;妥当な利益/危険比と釣り合い;これらの所期の使用
のために有効である、本発明の化合物の塩および両性イオンの形態を表す。塩は、化合物
の最終の単離および精製中に調製することもでき、または別々に遊離塩基の形態の適当な
化合物を適当な酸と反応させることにより調製することもできる。代表的な酸付加塩には
、酢酸塩、アジピン酸塩、アルギン酸塩、L−アスコルビン酸塩、アスパラギン酸塩、安
息香酸塩、ベンゼンスルホン酸塩(ベシル酸塩)、重硫酸塩、酪酸塩、カンホラート、カ
ンファースルホン酸塩、クエン酸塩、二グルコン酸塩、ギ酸塩、フマル酸塩、ゲンチジン
酸塩、グルタル酸塩、グリセロリン酸塩、グリコール酸塩、ヘミ硫酸塩、ヘプタン酸塩、
ヘキサン酸塩、馬尿酸塩、塩酸塩、臭化水素酸塩、ヨウ化水素酸塩、2−ヒドロキシエタ
ンスルホン酸塩(イセチオン酸塩)、乳酸塩、マレイン酸塩、マロン酸塩、DL−マンデ
ル酸、メシチレンスルホン酸塩、メタンスルホン酸塩、ナフタレンスルホン酸塩、ニコチ
ン酸塩、2−ナフタレンスルホン酸塩、シュウ酸塩、パモ酸塩、ペクチン酸塩(pectinat
e)、過硫酸塩、3−フェニルプロプリオナート(phenylproprionate)、ホスホン酸塩、
ピクリン酸塩、ピバラート、プロピオン酸塩、ピログルタミン酸塩、コハク酸塩、スルホ
ン酸塩、酒石酸塩、L−酒石酸塩、トリクロロ酢酸塩、トリフルオロ酢酸塩、リン酸塩、
グルタミン酸塩、炭酸水素塩、p‐トルエンスルホン酸(p−トシラート)、およびウン
デカン酸塩が含まれる。また、本発明の化合物中の塩基性基は、メチル、エチル、プロピ
ル、およびブチル塩化物、臭化物、およびヨウ化物;硫酸ジメチル、硫酸ジエチル、硫酸
ジブチルおよび硫酸ジアミル;デシル、ラウリル、ミリスチルおよびステアリル塩化物、
臭化物、およびヨウ化物;ならびに臭化ベンジルおよび臭化フェネチルで四級化すること
ができる。治療上許容される付加塩を形成するために用いることができる酸の例には、塩
酸、臭化水素酸、硫酸、およびリン酸などの無機酸、およびシュウ酸、マレイン酸、コハ
ク酸、およびクエン酸などの有機酸が含まれる。塩は、化合物のアルカリ金属イオンまた
はアルカリ土類イオンとの配位により形成することもできる。そのため、本発明は、本発
明の化合物の化合物のナトリウム塩、カリウム塩、マグネシウム塩、およびカルシウム塩
などを考えている。
ボナート、もしくは炭酸水素塩などの適当な塩基と、あるいはアンモニアまたは有機第1
級、第2級、もしくは第3級アミンと反応させることにより、化合物の最終の単離および
精製中に調製することができる。治療上許容される塩の陽イオンには、リチウム、ナトリ
ウム、カリウム、カルシウム、マグネシウム、およびアルミニウム、ならびにアンモニウ
ム、テトラメチルアンモニウム、テトラエチルアンモニウム、メチルアミン、ジメチルア
ミン、トリメチルアミン、トリエチルアミン、ジエチルアミン、エチルアミン、トリブチ
ルアミン、ピリジン、N,N−ジメチルアニリン、N−メチルピペリジン、N−メチルモ
ルホリン、ジシクロヘキシルアミン、プロカイン、ジベンジルアミン、N,N−ジベンジ
ルフェネチルアミン、1−エフェナミン、およびN,N’−ジベンジルエチレンジアミン
などの非毒性の第4級アミン陽イオンが含まれる。塩基付加塩の形成に有用な他の代表的
な有機アミンには、エチレンジアミン、エタノールアミン、ジエタノールアミン、ピペリ
ジン、およびピペラジンが含まれる。
、本発明の化合物が1つまたは複数の結合水分子を含むときに形成された水和物が含まれ
る。
ニル基により親分子部分に結合したアルキル基を意味する。かかる基の例には、アセチル
としても知られるメチルカルボニル;プロピオニルとしても知られるエチルカルボニル;
および2−メチル−シクロペンチルカルボニルなどが含まれる。
リール、ヘテロシクロアルキルに結合したカルボニル、またはそのカルボニルに結合した
原子が炭素である任意の他の部分を意味する。「アセチル」基は、−C(O)CH3基を
意味する。アシル基の例には、ホルミル、アセチル、およびプロピオニルなどのアルカノ
イル基、ベンゾイルなどのアロイル基、およびシンナモイルなどの混合されたアルキル−
アリール基が含まれる。
アシルアミノ」ラジカルの一例は、アセチルアミノ(CH3C(O)NH−)であり;他
は、ベンゾイルアミノである。
化水素ラジカル、または1つまたは複数の二重結合を有し、2から20個の炭素原子を含
む、または環式部分の場合では、3から20個の環員を有する、直鎖もしくは分枝鎖、お
よび環式部分の任意の組み合わせを含むラジカルを意味する。多くの実施形態では、アル
ケニル基は、2から6個の炭素原子を含む。「アルケニル基」という用語は、最も広義に
用いられる。例えば、「(C2〜C8)アルケニル基」という用語は、少なくとも1つの
二重結合を有する2から8個の炭素原子を含む直鎖、分枝、および環式炭化水素ラジカル
を包含する。適当なアルケニルラジカルの例には、ビニルとしても知られるエテニル、プ
ロペニル、イソプロペニル、ブテニル、イソブテニル、sec−ブテニル、tert−ブ
テニル、1,3−ブタジエニル、n−ペンテニル、n−ヘキセニル、シクロヘキセニルお
よび1,3−シクロペンタジエニルなどのシクロアルケニルラジカル、シクロヘキセニル
メチルなどのシクロアルケニルアルキルラジカル、メチレンシクロヘキシルなどのアルケ
ニルシクロアルキルラジカルなどが含まれる。
上の位置で結合した炭素−炭素二重結合系を意味する。
ルキルという用語は、本明細書で定義する通りである。適当なアルキルエーテルラジカル
の例には、メトキシ、エトキシ、n−プロポキシ、イソプロポキシ、n−ブトキシ、イソ
ブトキシ、sec−ブトキシ、tert−ブトキシ、シクロメントキシなどが含まれる。
子部分に結合した1つまたは複数のアルコキシ基を意味する。例には、エトキシエトキシ
、メトキシプロポキシエトキシ、エトキシペントキシエトキシエトキシなどが含まれる。
結合したアルコキシ基を意味する。「アルコキシアルキル」という用語は、アルキル基に
結合した、すなわち、モノアルコキシアルキルおよびジアルコキシアルキル基を形成する
ために結合した、1つまたは複数のアルコキシ基を有するアルコキシアルキル基をも包含
する。
分に結合したアルコキシ基を意味する。かかる「アルコキシカルボニル」基の例には、メ
トキシカルボニル、エトキシカルボニル、プロポキシカルボニル、ブトキシカルボニルお
よびヘキシルオキシカルボニルが含まれる。
カルに置換された「アルコキシカルボニル」を有するラジカルを意味する。より好ましい
アルコキシカルボニルアルキルラジカルは、上記で定義した通り1から6個の炭素原子に
結合した低級アルコキシカルボニルラジカルを有する「低級アルコキシカルボニルアルキ
ル」である。かかる低級アルコキシカルボニルアルキルラジカルの例には、メトキシカル
ボニルメチルが含まれる。
ルまたは直鎖、分枝および/または環式ラジカルの任意の組み合わせからなるラジカルを
意味し、1〜20個の炭素原子を含む飽和脂肪族炭化水素基である。多くの実施形態では
、アルキル基は、1〜10個の炭素原子を含む。多くの他の実施形態では、アルキル基は
、1〜6個の炭素原子を含む。「アルキル基」という用語は、最も広義に用いられる。ア
ルキル基は、本明細書で定義する通り、場合によって置換することができる。アルキルラ
ジカルの例には、メチル、エチル、n−プロピル、イソプロピル、シクロプロピル、シク
ロプロピルメチル、n−ブチル、イソブチル、s−ブチル、t−ブチル、シクロブチル、
ペンチル、ネオペンチル、イソアミル、ヘキシル、シクロヘキシル、トランス−1,2−
ジ−エチルシクロヘキシル、オクチル、ノニルなどが含まれる。例えば、略語「(C1〜
C6)−アルキル基」には、(C3〜C6)−シクロアルキル基ならびに直鎖および分枝
アルキル基が含まれ、「O(C1〜C8)−アルキル基」は、直鎖O(C1〜C8)−ア
ルキル基、分枝O(C1〜C6”)−アルキル基、および環式O(C1〜C6)−アルキ
ル基が含まれる。
よび1,3−シクロブチレンなど、2つ以上の位置で結合した直鎖または分枝鎖飽和炭化
水素に由来する飽和脂肪族基を意味する。
したアミノ基を意味する。
子部分に結合したアルキルアミノ基を意味する。かかるラジカルの例には、N−メチルア
ミノカルボニルおよびN,N−ジメチルカルボニルが含まれる。
がアルケニル基が結合した部分に属するアルケニル基を意味する。
部分に結合したアルキル基を意味する。アルキルスルフィニル基の例には、メチルスルフ
ィニル、エチルスルフィニル、ブチルスルフィニルおよびヘキシルスルフィニルが含まれ
る。
に結合したアルキル基を意味する。アルキルスルフィニル基の例には、メタンスルホニル
、エタンスルホニル、tert−ブタンスルホニルなどが含まれる。
ジカルを意味し、アルキルという用語は、上記で定義される通りである。適当なアルキル
チオエーテルラジカルの例には、メチルチオ、エチルチオ、n−プロピルチオ、イソプロ
ピルチオ、n−ブチルチオ、イソブチルチオ、sec−ブチルチオ、tert−ブチルチ
オ、エトキシエチルチオ、メトキシプロポキシエチルチオ、エトキシペントキシエトキシ
エチルチオなどが含まれる。
ジカルを包含する。アルキルチオアルキルラジカルには、1から6個の炭素原子のアルキ
ルラジカルおよび前述した通りアルキルチオラジカルを有する「低級アルキルチオアルキ
ル」ラジカルが含まれる。かかるラジカルの例には、メチルチオメチルが含まれる。
または環式不飽和の炭化水素ラジカル、ならびに1つまたは複数の炭素−炭素三重結合を
有し、2から20個の炭素原子を含む直鎖、分枝、および/または環式ラジカルの任意の
組み合わせを含むラジカルを意味する。多くの実施形態では、アルキニル基は、2から6
個の炭素原子を含む。多くの他の実施形態では、アルキニル基は、2から4個の炭素原子
を含む。「アルキニレン」は、エチニレン(−C:::C−、−C≡C−)などの2つの
位置で結合した炭素−炭素三重結合を意味する。例えば、(C2〜C8)アルキニル基は
、少なくとも1つの三重結合を有する2から8個の炭素原子を含む直鎖、分枝、および環
式炭化水素鎖を包含し、この用語には、それだけには限らないが、別段の指示がない限り
、エチニル、プロピニル、ヒドロキシプロピニル、ブチン−1−イル、ブチン−2−イル
、ペンチン−1−イル、ペンチン−2−イル、4−メトキシペンチン−2−イル、3−メ
チルブチン−1−イル、ヘキシン−1−イル、ヘキシン−2−イル、ヘキシン−3−イル
、3,3−ジメチルブチン−1−イルなどの置換基が含まれる。
により親分子部分に結合したアミノ基を意味する。本明細書では、「Cアミド」という用
語は、C(=O)NR2基を意味し、Rは本明細書で定義する通りである。本明細書では
、「Nアミド」という用語は、RC(=O)NH基を意味し、Rは本明細書で定義する通
りである。
に、水素、アルケニル、アルコキシ、アルコキシアルキル、アルコキシカルボニル、アル
キル、アルキルカルボニル、アリール、アリールアルケニル、アリールアルキル、シクロ
アルキル、ハロアルキルカルボニル、ヘテロアリール、ヘテロアリールアルケニル、ヘテ
ロアリールアルキル、複素環、ヘテロシクロアルケニル、およびヘテロシクロアルキルか
らなる群から選択され、アリール、アリールアルケニルのアリール部位、アリールアルキ
ル、ヘテロアリール、ヘテロアリールアルケニルのヘテロアリール部位およびヘテロアリ
ールアルキル、複素環、ヘテロシクロアルケニルの複素環部位およびヘテロシクロアルキ
ルは、独立に、アルケニル、アルコキシ、アルコキシアルキル、アルキル、シアノ、ハロ
、ハロアルコキシ、ハロアルキル、ヒドロキシ、ヒドロキシ−アルキル、ニトロ、および
オキソからなる群から選択される1、2、3、4または5個の置換基で場合によって置換
することができる。
したアミノ基を意味する。例には、アミノメチル、アミノエチルおよびアミノブチルが含
まれる。「アルキルアミノ」という用語は、1または2個のアルキルラジカルで置換され
ているアミノ基を意味する。モノ−またはジアルキル化し、それによって、例えば、N−
メチルアミノ、N−エチルアミノ、N,N−ジメチルアミノ、N,N−ジエチルアミノな
どの基を形成することができる。
換カルボニル基を意味し、アミノ基は、アルキル、アリール、アラルキル、シクロアルキ
ル、シクロアルキルアルキルラジカルなどから選択される置換基を含む第または第2アミ
ノ基となり得る。
ラジカルに結合したアミノカルボニルラジカルを意味する。かかるラジカルの例は、アミ
ノカルボニルメチルである。「アミジノ」という用語は、−C(NH)NH2ラジカルを
意味する。「シアノアミジノ」という用語は、−C(N−CN)NH2ラジカルを意味す
る。
ニル基により親分子部分に結合したアリール基を意味する。
キシ基により親分子部分に結合したアリール基を意味する。
により親分子部分に結合したアリール基を意味する。
、窒素原子により親分子部分に結合したアリールアルキル基を意味し、窒素原子は、水素
で置換されている。
ルキリデン基により親分子部分に結合したアリール基を意味する。
黄原子により親分子部分に結合したアリールアルキル基を意味する。
ニル基により親分子部分に結合したアリール基を意味する。
)−のラジカルを意味し、「アラルキル」という用語は、上述した意義を有する。アラル
コキシカルボニルラジカルの例は、ベンジルオキシカルボニル(「Z」または「Cbz」
)および4−メトキシフェニルメトキシカルボニル(「MOS」)である。
−フェニルプロピオニル(ヒドロシンナモイル)、4−フェニルブチリル、(2−ナフチ
ル)アセチル、4−クロロヒドロシンナモイル、4−アミノヒドロシンナモイル、4−メ
トキシヒドロシンナモイルなどのアリール置換アルカンカルボン酸由来のアシルラジカル
を意味する。「アロイル」という用語は、アリールカルボン酸に由来するアシルラジカル
を意味し、「アリール」は、以下の意味を有する。かかるアロイルラジカルの例には、ベ
ンゾイル、4−クロロベンゾイル、4−カルボキシベンゾイル、4−(ベンジルオキシカ
ルボニル)ベンゾイル、1−ナフトイル、2−ナフトイル、6−カルボキシ−2−ナフト
イル、6−(ベンジルオキシカルボニル)−2−ナフトイル、3−ベンジルオキシ−2−
ナフトイル、3−ヒドロキシ−2−ナフトイル、3−(ベンジルオキシホルムアミド)−
2−ナフトイルなどの置換されたおよび非置換のベンゾイルまたはナフトイルが含まれる
。
族系を意味し、かかる環は、ペンダント方式で一緒になって結合してもよく、縮合しても
よい。「アリール」という用語は、フェニル、ナフチル、アントラセニル、フェナントリ
ル、およびビフェニルなどの芳香族ラジカルを包含する。本発明のアリール基は、本明細
書で定義する通り基から独立に選択される1、2、3、4または5個の置換基で、場合に
よって置換することができる。
により親部分に結合したアリール基を意味する。
基により親分子部分に結合したアリール基を意味する。
たアリール基を意味する。
に結合したアリール基を意味する。
アリール基を意味する。
単独で用いられても他の用語と共に用いられても−CO2Hを意味する。
ジカルC6H4=を意味する。例には、ベンゾチオフェンおよびベンズイミダゾールが含
まれる。
(=O)O−)により親分子部分に結合したアミノ置換カルボニル基を意味し、アミノ基
は、アルキル、アリール、アラルキル、シクロアルキル、シクロアルキルアルキルラジカ
ルなどから選択される置換基を含む1級もしくは2級アミノ基であり得る。
基−OC(O)NR基を意味する。
れる任意の置換基を意味する。
本明細書で定義する通りである。
は本明細書で定義する通りである。
を含み、組み合わせたとき、−C(O)−基である。
体もしくはエステル誘導体などの対応する「カルボキシラート」を意味する。「O−カル
ボキシ」基は、RC(O)O−基を意味し、Rは本明細書で定義する通りである。「C−
カルボキシ」基は、−C(O)OR基を意味し、Rは、本明細書で定義する通りである。
単環式、二環式または三環式アルキルラジカルを意味し、それぞれの環式部分は、3から
12個、好ましくは3から7個の炭素原子環員を含み、本明細書で定義する通り、場合に
よって置換されているベンゾ縮合環系に場合によってなり得る。かかるシクロアルキルラ
ジカルの例には、シクロプロピル、シクロブチル、シクロペンチル、シクロヘキシル、シ
クロヘプチル、オクタヒドロナフチル、2,3−ジヒドロ−1H−インデニル、アダマン
チルなどが含まれる。本明細書では、「二環式」および「三環式」は、デカヒドナフタレ
ン、オクタヒドロナフタレンなどの縮合環系、ならびに多環式(多中心性)の飽和もしく
は部分的に不飽和のタイプが含まれるものとする。異性体の後者のタイプは、ビシクロ[
2.2.2]オクタン、ビシクロ[2.2.2]オクタン、ビシクロ[1.1.1]ペン
タン、カンフルおよびビシクロ[3.2.1]オクタンによって一般に例示される。
もしくは三環式ラジカルを意味し、それぞれの環式部分は、3から12個、好ましくは5
から8個の、炭素原子環員を含み、本明細書で定義する通り、場合によって置換されてい
るベンゾ縮合環系に場合によってなり得る。かかるシクロアルケニルラジカルの例には、
シクロペンテニル、シクロヘキセニル、シクロヘキサジエニル、シクロヘプテニル、シク
ロオクタジエニル、−1H−インデニルなどが含まれる。
アルキルラジカルによって置換されている上記で定義したアルキルラジカルを意味する。
かかるシクロアルキルアルキルラジカルの例には、シクロプロピルメチル、シクロブチル
メチル、シクロペンチルメチル、シクロヘキシルメチル、1−シクロペンチルエチル、1
−シクロヘキシルエチル、2−シクロペンチルエチル、2−シクロヘキシルエチル、シク
ロブチルプロピル、シクロペンチルプロピル、シクロヘキシルブチルなどが含まれる。
ロアルケニルラジカルによって置換されている上記で定義したアルキルラジカルを意味す
る。かかるシクロアルケニルアルキルラジカルの例には、1−メチルシクロヘキシ−1−
エニル−、4−エチルシクロヘキシ−1−エニル−、1−ブチルシクロペント−1−エニ
ル−、3−メチルシクロペント−1−エニル−などが含まれる。
カルボニルオキシ−(C=O)O−基を意味する。例には、安息香酸エチル、桂皮酸n−
ブチル、酢酸フェニルなどが含まれる。
オキシ基を意味する。
はヨウ素を意味する。
たハロアルキル基を意味する。
ラジカルを意味し、1つまたは複数の水素は、ハロゲンで置き換えられる。具体的に含ま
れるのは、モノハロアルキル、ジハロアルキル、ペルハロアルキル、およびポリハロアル
キルラジカルである。一例としては、モノハロアルキルラジカルは、ラジカルの中でヨー
ド、ブロモ、クロロまたはフルオロ原子を有し得る。ジハロおよびポリハロアルキルラジ
カルは、同一のハロ原子の2つ以上または異なるハロラジカルの組み合わせを有し得る。
ハロアルキルラジカルの例には、フルオロメチル、ジフルオロメチル、トリフルオロメチ
ル、クロロメチル、ジクロロメチル、トリクロロメチル、トリクロロエチル、ペンタフル
オロエチル、ヘプタフルオロプロピル、ジフルオロクロロメチル、ジクロロフルオロメチ
ル、ジフルオロエチル、ジフルオロプロピル、ジクロロエチルおよびジクロロプロピルが
含まれる。「ハロアルキレン」は、2つ以上の位置で結合したハロヒドロカルビル基を意
味する。例には、フルオロメチレン(−CHF−)、ジフルオロメチレン(−CF2−)
、クロロメチレン(−CHCl−)などが含まれる。かかるハロアルキルラジカルの例に
は、クロロメチル、1−ブロモエチル、フルオロメチル、ジフルオロメチル、トリフルオ
ロメチル、1,1,1−トリフルオロエチル、ペルフルオロデシルなどが含まれる。
和を含む、定まった数の炭素原子ならびにO、N、およびSからなる群から選択される1
から3個のヘテロ原子からなる、安定した直鎖もしくは分枝鎖、もしくは環式炭化水素ラ
ジカル、またはそれらの組み合わせを意味し、窒素および硫黄原子は、場合によって酸化
することができ、窒素ヘテロ原子は、場合によって、四級化することができる。1個(ま
たは複数)のヘテロ原子O、NおよびSは、ヘテロアルキル基の任意の内側の位置に置く
ことができる。2個までのヘテロ原子は、例えば、−CH2−NH−OCH3など、連続
的になり得る。
よびSからなる群から選択され、残りの環原子が炭素である場合、芳香族5または6員環
を意味する。5員環は、2つの二重結合を有し、6員環は、3つの二重結合を有する。ヘ
テロアリール基は、環の中の置換可能な炭素または窒素原子により親分子基に連結される
。「ヘテロアリール」という用語はまた、ヘテロアリール環が、本明細書で定義する通り
、アリール基、本明細書で定義する通り複素環基、または追加のヘテロアリール基に縮合
される系が含まれる。ヘテロアリールは、ベンゾチエニル、ベンゾオキサゾリル、ベンゾ
フラニル、ベンズイミダゾリル、ベンズチアゾリルベンゾトリアゾリル、シンノリニル、
フリル、イミダゾリル、トリアゾリル[例えば、4H−1,2,4−トリアゾリル、1H
−1,2,3−トリアゾリル、2H−1,2,3−トリアゾリルなど]、テトラゾリル[
例えば、1H−テトラゾリル、2H−テトラゾリルなど]、インダゾリル、インドリル、
イソオキサゾリル、イソキノリニル、イソチアゾリル、ナフチリジニル、オキサジアゾリ
ル[例えば、1,2,4−オキサジアゾリル、1,3,4−オキサジアゾリル、1,2,
5−オキサジアゾリルなど]、オキサゾリル、イソオキサゾリル、プリニル、チアゾリル
、イソチアゾリル、チエノピリジニル、チエニル、チアジアゾリル[例えば、1,2,4
−チアジアゾリル、1,3,4−チアジアゾリル、1,2,5−チアジアゾリルなど]、
ピリジニル、ピリダジニル、ピリミジニル、ピラジニル、ピラゾリル、ピロリル、ピリド
[2,3−d]ピリミジニル、ピロロ[2,3−b]ピリジニル、キナゾリニル、キノリ
ニル、チエノ[2,3−c]ピリジニル、テトラゾリル、トリアジニルなどによって例示
される。本発明のヘテロアリール基は、場合によって、本明細書で定義された基から独立
に選択される1、2、3、4または5個の置換基で置換することができる。
リル、ベンゾフリル、ジベンゾフリル、ピロリル、イミダゾリル、ピラゾリル、ピリジル
、ピラジニル、ピリミジニル、インドリル、キノリル、イソキノリル、キノキサリニル、
テトラゾリル、オキサゾリル、チアゾリル、トリアゾリル、およびイソオキサゾリルが含
まれる。
、アルキル基により親分子部分に結合したヘテロアリール基を意味する。
語は、アルケニル基により親分子部分に結合したヘテロアリール基を意味する。
語は、アルコキシ基により親分子部分に結合したヘテロアリール基を意味する。
う用語は、アルキリデン基により親分子部分に結合したヘテロアリール基を意味する。
結合したヘテロアリール基を意味する。
子部分に結合したヘテロアリール基を意味する。
、環員として1つまたは複数のヘテロ原子を含む、飽和、部分的に不飽和の、または完全
に不飽和の単環式、二環式、もしくは三環式複素環式ラジカルをそれぞれ意味し、それぞ
れの前記ヘテロ原子は、窒素、酸素、および硫黄からなる群から独立に選択することがで
き、それぞれの環に通常3から8個の環員がある。最も一般的な複素環式環は、5から6
個の環員を含む。本発明のいくつかの実施形態において、複素環式環は、1から4個のヘ
テロ原子を含み;他の実施形態では、複素環式環は、1から2個のヘテロ原子を含む。「
ヘテロシクロアルキル」および「複素環」は、スルホン、スルホキシド、三級窒素環員の
N−オキシド、および炭素環式縮合およびベンゾ縮合環系を含むものとし、さらに、両方
の用語にはまた、複素環が本明細書で定義する通りアリール基または追加の複素環基に縮
合される系が含まれる。本発明の複素環基は、アジリジニル、アゼチジニル、1,3−ベ
ンゾジオキソリル、ジヒドロイソインドリル、ジヒドロイソキノリニル、ジヒドロシンノ
リニル、ジヒドロベンゾジオキシニル、ジヒドロ[1,3]オキサゾロ[4,5−b]ピ
リジニル、ベンゾチアゾリル、ジヒドロインドリル、ジヒドロピリジニル、1,3−ジオ
キサニル、1,4−ジオキサニル、1,3−ジオキソラニル、イソインドリニル、モルホ
リニル、ピペラジニル、ピロリジニル、テトラヒドロピリジニル、ピペリジニル、チオモ
ルホリニルなどによって例示される。複素環基は、特に禁止されない限り、場合によって
置換してもよい。
部分に結合した複素環基を意味する。
結合した複素環基を意味する。
素原子が、ピロリジニルメチル、テトラヒドロチエニルメチル、ピリジルメチルなど、上
記で定義した通りヘテロシクロアルキルラジカルによって置き換えられる、上記で定義し
たアルキルラジカルを意味する。
分子部分に結合した複素環基を意味する。
て結合される2個のアミノ基を意味する。
する。
する直鎖または分枝アルキル基を意味し、そのいずれか1つは、1つまたは複数のヒドロ
キシルラジカルで置換することができる。かかるラジカルの例には、ヒドロキシメチル、
ヒドロキシエチル、ヒドロキシプロピル、ヒドロキシブチルおよびヒドロキシヘキシルが
含まれる。
結合したヒドロキシ基を意味する。
意味する。
長い隣接するまたは近接する鎖を意味する。
の最も長い直鎖を意味する。
う用語は、1、2、3、4、5、または6個の炭素原子を有するものを意味する。
びR’は本明細書で定義する通りである。
Rは、本明細書で定義する通りである。
定義する通りである。
くてもよいことを意味する。「置換されている」は、炭素に結合した1個または複数の水
素原子が、「置換基」によって置き換えられていることを意味する。「場合によって置換
されている」という用語の範囲内に含まれるまたはそれらによって考えられる置換基は、
C1〜3アルキル、C3〜6シクロアルキル、C1〜3アルコキシ、ヒドロキシ、C1〜
3アルカノイル、C1〜3アルコキシカルボニル、ハロ、フェニル、ベンジル、フェノキ
シ、ベンゾイル、ピリジル、アミノ、C1〜3アルキルアミノ、アミド、C1〜3アルキ
ルアミド、シアノ、C1〜3ハロアルキル、およびC1〜3ペルハロアルキルである。2
つの置換基は、メチレンジオキシ、またはエチレンジオキシなどの0から3個のヘテロ原
子からなる縮合された4−、5−、6−、もしくは7員炭素環式または複素環式環を形成
するために一緒になって結合することができる。場合によって置換されている基は、非置
換(例えば、−CH2CH3)、完全に置換されている(例えば、−CF2CF3)、一
置換されている(例えば、−CH2CH2F)または完全に置換されているおよび一置換
されている(例えば、−CH2CF3)の間のどこかで、あるレベルで置換されていてよ
い。置換基が置換に関して資格を有さず列挙される場合、置換および非置換の形態は包含
される。置換基が「置換されている」資格がある場合、置換された形態は、特に意図され
る。すべてのペンダントアリール、ヘテロアリール、およびヘテロシクロ部分は、上に挙
げた基から独立に選択される、1、2、3、4または5個の置換基で場合によってさらに
置換することができる。
換えられるアルコキシ基を意味する。
によって置き換えられるアルキル基を意味する。
ニル、アルキニル、アリール、ヘテロアリールなどから選択される、−P(=O)(OG
)(OG1)基を意味する。
ケニル、アルキニル、アリール、ヘテロアリールなどから選択される、−P(=O)(G
)(OG1)基を意味する。
は、−SO3H基を意味し、スルホン酸としてのその陰イオンは、塩形成に用いられる。
で定義する通りである。
で定義する通りである。
し、酸素は、硫黄で置き換えられる。チオ基の酸化型の誘導体、すなわちスルフィニルお
よびスルホニルは、チアおよびチオの定義に含まれる。
するチオ基を意味する。
)Hを含み、組み合わせたとき、−C(S)−基である。
で定義する通りである。
(S)NRを意味する。
、Xは、ハロゲンであり、Rは本明細書で定義する通りである。
−基を意味する。
された基を有する、その3つの自由原子価で置換されたシリコーン基を意味する。例には
、トリメチシリル、tert−ブチルジメチルシリル、トリフェニルシリルなどが含まれ
る。
、Rは本明細書で定義する通りである。
体、賦形剤、添加剤、湿潤剤、緩衝剤、懸濁化剤、潤滑剤、アジュバント、ビヒクル、送
達系、乳化剤、崩壊剤、吸収剤、保存剤、界面活性剤、着色料、香料、および甘味剤を意
味する。いくつかの実施形態において、担体は、「薬学的に許容される担体」という用語
が、医薬組成物中で使用するために適しているはずである非毒性を意味するため、担体よ
りも狭義の用語である、薬学的に許容される担体となり得る。
量を含む医薬組成物に関する。
らすために必要とされる量を意味する。
抗インフルエンザ薬によって得られるのと異なる段階で、感染性ウイルス粒子の産生を妨
害するための機会を提供する。他の実施形態では、本発明は、式Iの化合物の有効量を投
与することによってヒトおよび他の哺乳動物におけるウイルス感染症を治療および予防す
る方法を提供または企図する。1つのかかる化合物は、慢性C型肝炎の治療について米国
および海外で第II相臨床試験を現在行っている感染性胃腸炎の治療のための、米国にお
いて承認済みの生成物である、ニタゾキサニド(1)である。薬物は、1年にわたって投
与されるとき、安全かつ有効であることが示されており、第II相臨床試験は、将来は任
意の期間でインフルエンザの治療において開始することができる。臨床試験では、ロタウ
イルス性胃腸炎および慢性B型およびC型肝炎を治療することにおけるニタゾキサニドの
市販の医薬製剤の活性が最近実証されている。
材料および方法
材料
ニタゾキサニド(NTZ、I)、チゾキサニド(TIZ、2)、およびチアゾリド類似
体および参照化合物スウェインソニン(SW)(Sigma−Aldrich)を、ジメ
チルスルホキシド(DMSO)に溶解した。ツニカマイシン(TM)および1−デオキシ
マンノジリマイシン(DMJ)(Sigma−Aldrich)を水溶液に溶解した。
インフルエンザ試験の方法
細胞培養、治療および形質移入−メイディン−ダービーイヌ腎臓(MDCK)細胞、お
よびヒトA549肺胞II型様上皮細胞、ジャーカットTリンパ芽球様細胞およびU39
7単球性白血病細胞を、10%ウシ胎児血清(FCS)、2mMグルタミンおよび抗生物
質を補充したRPMI 1640(Invitrogen)中でCO2 5%の雰囲気で
37℃で増殖させた。試験化合物を、1時間の吸収期間の直後に加え、別に指定されない
限り、実験の時間全体で培養培地中で保持した。対照には、等量のビヒクルを投与し、こ
れは、細胞生存率またはウイルス複製に影響を与えなかった。細胞生存率を、前述の通り
MTTホルマザン転換アッセイ(Sigma−Aldrich)への3−(4,5−ジメ
チルチアゾル−2−イル)−2,5−ジフェニルテトラゾリウムブロミド(MTT)によ
って決定した。擬似感染したもしくはウイルス−感染細胞の顕微鏡検査を、Leica
DM−IL顕微鏡を用いて行い、画像を、Leica Image−Manager50
0ソフトウェアを用いたLeica DC 300カメラで取り込んだ。
ermo Fisher Scientific Inc.)に播種したMDCK細胞を
、製造業者の指示によりLipofectamine 2000(Invitrogen
)を用いて、緑色蛍光タンパク質(GFP)タグ付き内部移行欠損ヒト低密度リポタンパ
ク質受容体(hLDLR)変異体(E.Rodriguez−Boulan、Corne
ll University New York、NYによって快く提供されたLDLR
−A18−GFPプラスミド)で一時的に形質移入した。
のH1N1 A/PR/8/34(PR8)およびA/WSN/33(WSN)、および
H3N2 A/Firenze/7/03(A/FI)、およびH5N9低病原性トリ株
A/Ck/It/9097/97(A/Ck)、ならびにインフルエンザB型ウイルス、
B/Parma/3/04臨床分離株を、本試験のために利用した。A/Firenze
/7/03、A/Ck/It/9097/97およびB/Parma/3/04インフル
エンザウイルスは、Dr.Isabella Donatelli、Istituto
Superiore di Sanita’、Rome、Italyからの親切な寄贈品
であった。トリ株A/Ck/It/9097/97を、10日齢特定病原体除去の(SP
F)胚発育鶏卵中でニワトリ臓器ホモジネートの初期継代後に単離した。A型インフルエ
ンザウイルスを、8日齢胚発育卵の尿膜腔中で成長させた。37℃で48時間後、尿膜腔
液を回収し、5000rpmで30分間遠心して細胞細片を除去し、ウイルス力価を、標
準手順に従って血球凝集素滴定およびプラークアッセイによって決定した。コンフルエン
トな細胞単層を、別に指定されない限り、5HAU/105細胞の感染多重度(m.o.
i.)で37℃で1時間インフルエンザウイルスに感染させた。吸着期間後(時間0)、
ウイルス接種物を除去し、細胞単層をリン酸緩衝食塩水(PBS)で3回洗浄した。細胞
を2%ウシ胎児血清を含むRPMI 1640培養培地中で37℃で維持した。多段階ウ
イルス成長曲線について、感染細胞を、1μg/mlトリプシンIX(Sigma−Al
drich)を含む同じ培地中でインキュベートした。ウイルス収率を、血球凝集素滴定
により感染後(p.i.)24もしくは48時間決定した。PR8ウイルス感染性アッセ
イについて、96−穴プレートで成長したMDCK細胞を、1μg/mlトリプシンの存
在下で48時間37℃でウイルス懸濁液の連続希釈で接種し、TCID50(50%組織
培養感染量)を記載の通り決定した。あるいは、ウイルス力価を、MDCK細胞上で感染
後の蛍光細胞数をカウントするおよび抗インフルエンザA/PR/8/34抗体(抗−P
R8、E.Rodriguez−Boulan、Cornell University
New York、NYから親切な寄贈品)で間接免疫蛍光染色することにより決定し
た。力価を、対応するように、ffu(蛍光形成単位)/mlとして表した。
擬似感染した細胞またはインフルエンザウイルス感染細胞を、メチオニン/システイン除
去培地中で30分の飢餓の後、指示された時間に[35S]−メチオニン−システイン(
[35S]−Met/Cys、Redivue Pro−Mix 35S in vit
ro cell−labeling mix;GE Healthcare)10μCi
/mlで標識した。パルス/チェイス実験について、細胞を、メチオニン/システイン除
去培地中で30分の飢餓の後15分間[35S]−Met/Cys(100μCi/ml
)で標識した。パルスの終了時、細胞を、TIZの非存在もしくは存在下で異なる時間に
10mM冷メチオニンおよび1mMシクロヘキシミドを含む完全培地中で追跡した。パル
ス/チェイスを氷の上で細胞を置くことにより終了させた。1mMフェニルメチルスルホ
ニルフルオリド(PMSF)およびプロテアーゼ阻害薬カクテル(PIC;Roche
Diagnostics GmbH)を含むRIPA緩衝液(150mM NaCl、1
0mM トリス−HCl pH7.5、4mM EDTA、1%Triton X−10
0、600mM KCl)中で細胞溶解後、同量の放射能を含むサンプルを、SDS/P
AGE(3%濃縮ゲル、10%分離ゲル)によって分離し、記載した通り、オートラジオ
グラフィー用に処理した。オートラジオグラフィーのパターンを視覚化し、Typhoo
n−8600 Imager(Molecular Dynamics、Amersha
m Pharmacia Biotech)において定量化し、画像をImageQua
ntソフトウェア(Amersham Pharmacia Biotech)を用いて
得た(MDP分析)。
Mまたはビヒクルで処理した、PR8感染したもしくは擬似感染したMDCK細胞を、p
.i.3時間目に薬物の存在下で[35S]−Met/Cys(25μCi/ml、21
h−パルス)で標識した。p.i.24時間目に、細胞培養上清を回収し、10分間13
,000rpmで遠心にかけて、細胞細片を除去し、次いで、45,000rpm(Be
ckman XL−100K Ultracentrifuge、rotor 70.1
Ti;Beckman Coulter Inc.)で2時間超遠心をかけた。ウイルス
粒子を含むペレットを、Laemmliサンプル緩衝液に再懸濁し、放射能標識したウイ
ルスタンパク質を、10%SDS−PAGEで分離し、Amplify(商標)Fluo
rographic Reagent(GE Healthcare)に曝露後、オート
ラジオグラフィーによって調べた。オートラジオグラフィーのパターンを、前述した通り
視覚化した。
、1mM PMSF、1mM オルトバナダート、20mM β−グリセロリン酸塩、1
mM p−ニトロフェニルリン酸(pNPP)およびPICを含む冷高塩抽出(HSB)
緩衝液で溶解した、または1mM PMSFおよびPICを含むRIPA緩衝液で溶解し
た。全細胞抽出物(30μg)を、SDS−PAGEによって分離し、ニトロセルロース
にブロットし、フィルターを、ポリクローナル抗ホスホSer51−eIF2α(p−e
IF2α、Calbiochem)、抗eIF2α(FL−315、Santa Cru
z Biotechnology)、および抗インフルエンザA/PR/8/34抗体ま
たはモノクローナル抗HA(IVC102;Biodesign Inc.)および抗−
Grp78/BiP(Stressgene)抗体と共にインキュベートし、その後、ペ
ルオキシダーゼ標識された抗ウサギIgGまたは抗マウスIgG(Super Sign
al検出キット;Pierce)で修飾した。タンパク質の定量的評価を、BIO−RA
D Laboratoriesにより入出可能なQuantity Oneソフトウェア
プログラムを用いたVersadoc−1000分析により決定した。
染もしくは擬似感染したMDCK細胞の免疫沈降を、p.i.5もしくは6時間目にメチ
オニン/システイン除去培地中で30分の飢餓の後に[35S]−Met/Cys(70
μCi/ml、4h−パルス)で標識した。PICおよび1mM PMSFの存在下でR
IPA緩衝液中に溶解後、細胞細片を、13,000rpmで10分間冷却遠心によって
除去した。放射能標識したライセート(50μl)を、1mM PMSF、PICおよび
タンパク質−A−セファロース(Sigma−Aldrich)を含むRIPA緩衝液中
で抗HAモノクローナル抗体(IVC102;Biodesign Inc.)で4℃で
16時間インキュベートした。遠心後、ペレットを、RIPA緩衝液で3回洗浄し、La
emmliサンプル緩衝液(20)中で95℃で5分間溶出させた。免疫沈降したサンプ
ルを、Endo−H消化(後述の通り)にかけ、かつ/またはAmplify(商標)F
luorographic試薬に曝露後、SDS/PAGE(3%濃縮ゲル、10%分離
ゲル)およびオートラジオグラフィー用に処理した。オートラジオグラフィーのパターン
を、Typhoon−8600 Imagerにおいて視覚化し、画像を前述した通りに
得た。
たはインフルエンザウイルス感染細胞を、[3H]−マンノースまたは[3H]−グルコ
サミン塩酸塩(GE Healthcare)20μCi/mlでp.i.6時間目に4
時間標識し、次いで、前述した通りSDS/PAGE(3%濃縮ゲル、10%分離ゲル)
およびオートラジオグラフィー用に処理した。エンドグリコシダーゼ消化実験について、
MDCK細胞を、PR8インフルエンザウイルスに感染させ、洗浄して未結合のウイルス
を除去し、10μg/ml TIZの存在または非存在下でインキュベートした。p.i
.5時間目に、細胞を、メチオニン/システイン除去培地中で30分の飢餓の後[35S
]−Met/Cys(50μCi/ml、4h−パルス)で標識した。パルスの終了時、
放射活性培地を除去し、細胞を氷の上に置いた。PICおよび1mM PMSFの存在下
でL緩衝液(100mM NaCl、10mM トリス−HCl pH7.5、5mM
EDTA、1% Triton X−100、0.1% SDS)に溶解、および13,
000rpmで10分間冷遠心後、同量の放射能を含むサンプルを、エンドグリコシダー
ゼH(Endo−H)またはペプチドN−グリコシダーゼF(PNGase−F)消化用
に処理した。Endo−H消化の場合に、(前述した通り)抗HAモノクローナル抗体で
免疫沈降したサンプルまたは免疫沈降していないサンプルを、100mM クエン酸ナト
リウム(pH5.5)中の0.1%SDSおよび140mM β−メルカプトエタノール
100μl中でインキュベートし、95℃で5分間加熱した。1mM PMSFおよびP
ICの添加後、サンプルを2等分のアリコートに分け、一方のアリコートを、5mU E
ndo−H(Roche Diagnostics GmbH)で37℃で16時間イン
キュベートした。ペプチドN−グリコシダーゼ消化を、製造業者のプロトコール(New
England BioLabs Inc.)に従ってPNGase−F 500Uで
行った。消化を、Laemmliサンプル緩衝液を加えて終了させた。サンプルを、10
% SDS−PAGEゲル上に添加する前に95℃で5分間加熱した。三量体形成の分析
について、HAの架橋を、0.2mM EGS[エチレングリコールビス(スクシンイミ
ジルスクシナート);Pierce]を含むDMSOの容積1:10を擬似感染したMD
CK細胞およびPR8感染したMDCK細胞から得られた全細胞抽出物に加えることによ
り行った。22℃で15分後に、反応を、最終濃度75mMでグリシンを加えて急冷し、
サンプルをSDS−PAGE(6%分離ゲル)にかけた。HA架橋生成物を、モノクロー
ナル抗HA抗体またはポリクローナル抗PR8で探索することにより視覚化した。
したA549細胞を、リン酸緩衝食塩水中の4%パラホルムアルデヒドでそれぞれp.i
.16時間目または24時間目に室温で20分間固定した。擬似感染細胞を同様に処理し
た。固定された細胞を抗HAモノクローナル抗体(IVC102;Biodesign
Inc.)と共に原形質膜染色用に37℃で1時間インキュベートした、または0.1%
TritonX100−PBSで10分間室温で透過させ、次いで、モノクローナル抗
HAおよび抗p230トランス−ゴルジ(clone 15;BD Bioscienc
es)またはポリクローナル抗α−チューブリン(11H10;Cell Signal
ing、Technology Inc.)抗体と共に1時間37℃でインキュベートし
、その後、Alexa Fluor488共役(Molecular Probes−I
nvitrogen)またはローダミン共役(Pierce)ヤギ抗−マウスIgG、お
よびローダミン共役ヤギ抗ウサギIgG(Pierce)で修飾した。核を、4’,6−
ジアミジノ−2−フェニルインドール(DAPI)またはHoechst 33342(
Molecular Probes−Invitrogen)で染色した。画像を取り込
み、SoftWoRx−2.50ソフトウェア(Applied−Precision)
を用いてDeltaVision顕微鏡(Applied−Precision)で畳み
込みを解いた。対照インキュベーションは、抗免疫グロブリン複合体間の、または抗免疫
グロブリン複合体と不適切な一次抗体との非交差反応性を実証した。類似の結果を有する
3つのうち代表的な実験を示す。
、カバーガラスチャンバーに蒔いたMDCK細胞を、GFPタグ付き内部移行欠損hLD
LR変異体(LDLR−A18−GFPプラスミド)で一時的に形質移入し、8時間後、
TIZ(10μg/ml)またはビヒクルで次の16時間処理した。タンパク質合成を1
00μg/mlシクロヘキシミド(Sigma−Aldrich)で1時間遮断した後、
原形質膜を、CellMask(商標)Orange原形質膜染色(Molecular
Probes、Invitrogen)を用いて染色した。染色後、細胞をUV励起フ
ィルターを備えたLeica DM−IL蛍光顕微鏡を用いて試験した。画像をLeic
a Image−Manager500ソフトウェアを用いたLeica DC−300
カメラで取り込んだ。
、TIZ、TMまたはビヒクルで処理した。p.i.5時間目に、細胞を、PBSで3回
洗浄し、PBS中で20分間4℃でヒト赤血球(RBC)0.1%でインキュベートして
ノイラミニダーゼ活性を阻害した。PBSで3回洗浄することにより未結合の赤血球を除
去してから、MDCK細胞表面で吸着したRBCを位相差顕微鏡により検出した。画像を
、Leica Image−Manager500ソフトウェアを用いたLeica D
C300カメラを装備したLeica DMLB顕微鏡で取り込んだ。粘着性の赤血球を
、150mM NH4Cl緩衝液に室温で2時間溶解し、ヘモグロビン吸光度をλ=54
0nmで測定することにより定量化した。
ータを、複製サンプルの平均+S.D.として表す。<0.05のp値を有意とみなした
。
A型インフルエンザウイルスの異なる株に対するチアゾリドの抗ウイルス活性。チアゾ
リド治療の効果を、ヒトおよびイヌの細胞において、A型インフルエンザウイルスの4種
の異なる株、すなわち、哺乳動物のH1N1 A/PR/8/34(PR8)およびA/
WSN/33(WSN)、およびH3N2 A/Firenze/7/03(A/FI)
ウイルス、およびH5N9低病原性トリ株A/Ck/It/9097/97(A/Ck)
による感染後に観察した。PR8、WSNまたはA/Ckインフルエンザウイルスに感染
したメイディン−ダービーイヌ腎臓(MDCK)細胞を、ウイルス吸着期間の直後にNT
Z、TIZまたはビヒクルの異なる濃度で処理し、ウイルス収率を、感染後(p.i.)
24時間目に決定した。NTZ治療は、PR8、WSNおよびA/Ckウイルスについて
EC50がそれぞれ1、0.5および1μg/mlであるウイルス複製の用量依存阻害を
もたらした(図1B)。TIZは、EC50が1μg/ml(PR8)および0.5μg
/ml(WSNおよびA/Ck)であるすべてのインフルエンザA株に対して等しく活性
であった(図1B)。TIZは、H3N2 A/FIA型インフルエンザおよびB/Pa
rma/3/04インフルエンザB型ウイルスの複製の阻害においてやはり非常に有効で
あった(図10および図11)。NTZもTIZも、非感染性細胞についての有効な抗ウ
イルス薬濃度(CC50>50μg/ml)で細胞毒性でなかった。インフルエンザウイ
ルス試験のために通常用いられるイヌMDCK細胞に加えて、TIZは、単球性U937
,T−リンパ球性ジャーカットおよび肺胞II型様A549細胞を含めたヒト細胞の異な
るタイプで、μM以下(EC50=0.3μg/ml)の非毒性濃度でA型インフルエン
ザウイルス複製を阻害するのに有効であった(図1C)。TIZの抗インフルエンザ活性
は、感染のm.o.i.と無関係であり、H1N1 PR8ウイルス複製の劇的な遮断は
、多段階および一段階ウイルス成長の条件下で等しく検出された(図10C、D)。PR
8A型インフルエンザウイルス対するいくつかのチアゾリドの抗ウイルス活性を、表1に
収集する。試験されたチアゾリドのうち、NTZ(1)、TIZ(2)、チゾキサニドナ
トリウム塩(3)、化合物14〜16、27、28、36および37は、強力かつ選択的
であることが判明した。化合物27および28は、非常に選択的であり、NTZおよびT
IZよりも10倍強力であり、それぞれがEC50=0.1μg/mlおよびCC50>
50μg/mlであった。
表1は、チアゾリドについてのA型インフルエンザ細胞アッセイから得られたデータを
示す。
をウイルス感染症から保護できるか否かを観察するために、MDCK細胞を10μg/m
l TIZで12時間、6時間または3時間処理した。指示された時間で、薬物を除去し
、PR8ウイルスに感染前に細胞単層を3回洗浄した。図1D(前)に示す通り、ウイル
ス感染症前の12時間までの細胞のチゾキサニド(2)前処理は、インフルエンザウイル
ス複製に対して影響しなかった。さらに、ウイルス接種物(データ未掲載)の処理または
吸着期間中細胞のみの処理は、ウイルス複製を阻害せず(図1D)、薬物がウイルス感染
性にも、標的細胞へのその結合または侵入へも直接影響を与えないことが示された。p.
i.0から3時間の間で開始したTIZ処理は、ウイルス複製を阻害するのに最も有効で
あった(図1D、後)。p.i.6時間目に開始した治療は、有効性に欠けるが、やはり
、ウイルス複製を阻害することができ、p.i.12時間目に投与したとき薬物は無効で
あった。ウイルス吸着後の薬物の単回投与は、感染後少なくとも48時間ウイルス複製を
阻害するのに有効であった(図1E)。
フルエンザ活性がタンパク質合成の変更によって引き起こされたか否かを観察するために
、ウイルス吸着後すぐにTIZで処理した、擬似感染細胞またはPR8感染細胞を、[3
5S]−メチオニン−システイン([35S]−Met/Cys)でp.i.の異なる時
間で標識し、タンパク質を、SDS/PAGEおよびオートラジオグラフィー、またはウ
エスタンブロット分析によって分析した。図2Aで示される通り、TIZは、宿主タンパ
ク質合成を阻害せず(下部)、合成されたポリペプチドの電気泳動パターンにおける検出
可能な変更をもたらさず(上部);さらに、TIZは、非感染性細胞またはPR8感染細
胞中で真核生物翻訳開始因子2α(eIF2−α)(中央)のリン酸化に影響を与えなか
った。主なインフルエンザウイルスタンパク質を、p.i.4時間目に開始する未処理の
細胞中で大量に合成することが判明し;インフルエンザウイルスタンパク質合成の主な変
化は、およそ79kDa分子量のバンドの消失を除いて、処理された細胞中で検出され、
続いて、血球凝集素前駆体の成熟したアイソフォーム、および74kDaの高速遊走性の
バンドの同時の出現として同定された(図2A)。
g/ml)で処理した擬似感染したもしくはPR8感染したMDCK細胞を、p.i.5
時間目に代謝的に標識し(4時間パルス)、放射能標識したタンパク質を、抗血球凝集素
モノクローナル抗体で免疫沈降し、次いで、SDS−PAGEおよびオートラジオグラフ
ィー用に処理した。図2Bに示したデータは、電気泳動の移動度がウイルスHA0前駆体
としてTIZによって変更されるタンパク質を同定する。TIZ誘導HA0修正が一時的
であったか否かを決定するために、TIZ(10μg/ml)もしくはN−グリコシル化
阻害薬ツニカマイシン(TM、5μg/ml)で処理された、擬似感染したまたはPR8
−感染したMDCK細胞を、p.i.3時間目に次の15時間、代謝的に標識し、タンパ
ク質をSDS/PAGEおよびオートラジオグラフィーにより分析した。あるいは、PR
8感染細胞をp.i.5時間目に標識し、次いで、次のp.i.3時間10mM冷メチオ
ニンおよび1mMシクロヘキシミドの存在下で追跡した。図2Cに示される通り、TIZ
誘導HA0翻訳後の修正は、やはりp.i.18時間目に明らかであり、2つのHA0形
態の異なる電気泳動の移動度パターンによって指示される通り、TM誘導変更と異なると
思われ;さらに、TMは、HA0蓄積の減少をもたらし、前述のように、長期のTIZ処
理は、感染細胞中の細胞内のHA0レベルを低下させなかった。TMとは異なって、TI
Zは、MDCK細胞中の折り畳まれていないタンパク質応答のマーカーであるグルコース
調節ストレスタンパク質Grp78/BiPの発現を誘導しなかった(図2C)。チェイ
ス実験から得られた結果は、未治療の細胞中でHA0が合成後10から20分で成熟した
79kDa形態になったものを示し、TIZの存在下で、緩徐遊走性の74kDaHA0
形態が開始して合成した後(30分)に現れ(図2D)、電気泳動の移動度のさらなる変
化は、次の2.5時間で検出できなかった(データ未掲載)。
を、ウイルス吸着後にTIZまたはツニカマイシンで処理し、p.i.6時間目に、[3
5S]−Met/Cys、[3H]−グルコサミンまたは[3H]−マンノースで標識し
た。図3Aに示される通り、TMは、HA0グリコシル化を完全に防止し、TIZによる
処理は、グルコサミンを減少させず、未成熟のHA0形態へのマンノース取り込みを実際
に増加させた。しかし、チアゾリドは、2つの阻害薬で処理した細胞中に存在するHA0
形態に比べて、TIZ誘導未成熟HA0の異なる電気泳動の移動度によって示される通り
、α−マンノシダーゼI、1−デオキシマンノジリマイシン、およびα−マンノシダーゼ
II、スウェインソニンの阻害薬と異なって作用すると思われる(図3B)。
。記載されたHA0変更がPR8ウイルスに特異的であったか細胞依存であったかを決定
するために、ヒト肺上皮A549細胞をA型インフルエンザヒトWSN株に感染させ、M
DCK細胞をトリA/Ck株に感染させた。両方の場合では、PR8株について記載され
たものと類似のHA0成熟の変更を検出し(図3、CおよびD)、TIZが独立に宿主細
胞およびA型インフルエンザ株のタイプのHA0成熟を阻害することができることを示し
た。最後に、図3、EおよびFに示される通り,ニタゾキサニドは、ヒト(E)およびト
リ(F)インフルエンザウイルスの血球凝集素の類似の変化をもたらした。
。他の細胞表面糖タンパク質のようなHAのグリコシル化を、「高マンノース」オリゴ糖
を加え、ERにおいて開始する。マンノースに富んだ糖成分は、細胞表面への運搬中ゴル
ジ装置で処理され、末端グリコシル化は、ゴルジ装置のトランス槽で生じる。TIZがゴ
ルジによるHA0通過に影響を与え得るか否かを観察するため、本発明者らは、放射能標
識したタンパク質のアリコートおよびHA0免疫沈降したサンプルを、末端的にグリコシ
ル化されていないN結合型糖鎖を除去する酵素である、エンド−β−N−アセチルグルコ
サミニダーゼH(Endo−H)で、または全N−グリカンを除去する酵素である、ペプ
チドN−グリコシダーゼF(PNGase−F)で消化させた。予想通り、タンパク質の
両方の形態は、PNGase−F消化に感受性があるが;対照細胞から得られたHA0を
、最後にグリコシル化(glysosylated)しEndo−H抵抗性になり、TI
Zで処理された細胞から得られたHA0は、合成後4時間までプロテアーゼによる消化に
依然として感受性があった(図4、AおよびB)。図4Cに示される通り、TIZ誘導変
更は、三量体を形成するHA0能力を防止しなかった。
めのマーカーであるため、これらの結果は、TIZ誘導変更が、ERとゴルジ複合体との
間のHA0輸送をブロックすることができ、原形質膜へのその運搬を防止するということ
が示される。トランス−ゴルジコンパートメントへの運搬の阻害を、特異的トランス−ゴ
ルジ抗体を用いた免疫蛍光によって実際に検出した(図4D)。成熟したウイルス粒子を
出さないようにする宿主細胞原形質膜へのHA運搬を阻害したTIZ処理を確認するため
、擬似感染したおよびPR8−感染したMDCK細胞を、ウイルス吸着後にTIZ(10
μg/ml)またはツニカマイシン(5μg/ml)で処理し、細胞質(図5A)および
原形質膜(図5B)ウイルス血球凝集素のレベルを、p.i.16時間目に免疫蛍光によ
って検出した。これらの試験は、TIZ処理細胞におけるHA0細胞質レベルが対照に類
似し(図5A)、ウイルスタンパク質の原形質膜レベルは、TIZ処理細胞を劇的に減少
させたことが確認された(図5B、上部)。TIZ処理後のHA原形質膜レベルの相当な
減少を、受容体−結合(赤血球の血球吸着)アッセイによる原形質膜取り込みHAの生物
学的機能を決定することによりさらに確認した(図5B、下部)。平行試験では、MDC
K細胞の、GFPタグ付き内部移行欠損ヒト低密度リポタンパク質受容体変異体(LDL
R−A18−GFPプラスミド)による一時的な形質移入後、TIZがLDLRの原形質
膜標的指向化を阻害しなかったことが判明し、チアゾリドの選択的効果を示唆した(図1
1)。類似の結果を、MDCK細胞およびHEK−293細胞の、異なる原形質膜細胞の
糖タンパク質、ヒトToll様受容体−4による一時的な形質移入後に得た(データ未掲
載)。
間目に[35S]−Met/Cysで代謝的に標識し、放射能標識したビリオンを、感染
細胞の上澄みから精製した。ウイルス粒子に取り込まれたタンパク質を、SDS−PAG
Eおよびオートラジオグラフィーによって分析した。図5Cに示される通り、ウイルスタ
ンパク質は、TIZ−処理した細胞の上澄み中で検出することができなかった。ウイルス
粒子の劇的な低減を、p.i.24時間目にTCID50感染力アッセイ(図5D、上部
)またはHAUアッセイ(図5D、下部)による平行の、非標識サンプルからのウイルス
収率を決定することにより確認した。
害薬ザナミビルおよびオセルタミビルによる組み合わせ試験は、相乗的な活性を実証する
。臨床的のインフルエンザ阻害薬と組み合わせたNTZの抗ウイルス活性を決定するため
に、本発明者らは、異なる濃度でNTZのザナミビルとの組み合わせおよびNTZのオセ
ルタミビルとの組み合わせを試験した。ザナミビルおよびオセルタミビルは、感染した宿
主細胞からのウイルスの効率的な放出を障害し、チアゾリドの機序と明確に異なる機序に
より作用するノイラミニダーゼ(NA)阻害薬である。
/34(PR8)ウイルスによる感染後、イヌ細胞中で観察した。PR8インフルエンザ
ウイルスに感染したメイディン−ダービーイヌ腎臓(MDCK)細胞を、ウイルス吸着期
間直後にNTZ、ザナミビル、またはビヒクルの異なる濃度で処理し、ウイルス収率を、
感染後(p.i.)24時間目に決定した。
)のEC50を有するウイルス複製の用量依存的な阻害をもたらした(図1B)。以下の
表2は、組み合わせ実験から得られた抗ウイルス薬データをまとめて示す。活性を、未治
療の対照に対してHAU/mlの低減として表す。ザナミビルによる実験において、NT
Zは、以前の試験においてよりもわずかに強力であると思われ、〜0.66μg/ml(
〜2.2μM)のEC50を有した。ザナミビル単独では、最高試験濃度1μMでのみウ
イルス収率が50%低減(阻害)になり、したがって、本発明者らは、ザナミビルがこれ
らの実験条件下で1μMのEC50を有したことを決定した(図6および7、左側)。1
μMのザナミビルを0.1μg/ml(0.33μM)のNTZと組み合わせると、未処
理の対照に対してウイルスの複製を83%減少させ、ザナミビル単独による治療に対して
およそ3倍の効力の増加に対応する(図6、右側)。
(図7、左側)。しかし、0.1μMのザナミビルおよび1.0μg/ml(3.3μM
)のNTZの組み合わせでは、NTZ単独による治療に対してウイルス複製の50%を超
える低減をもたらした(図7、右側)。これらの結果は、ザナミビル単独による治療に対
しておよそ6倍の効力の増加に対応し、NTZ単独による治療に対して2倍の効力の増加
に対応する。1.0μMのザナミビルおよび1.0μg/ml(3.3μM)のNTZを
組み合わせると、NTZ単独による治療に対してウイルス複製を94%低減した(図7、
右側)。これらの結果は、ザナミビル単独による治療に対しておよそ24倍の効力の増加
に対応し、NTZ単独による治療に対して16倍の効力の増加に対応する。まとめると、
これらの結果により、ザナミビルおよびNTZの組み合わせの抗ウイルス活性がPR8A
型インフルエンザウイルスに対して相乗的であることが示唆される。
物H1N1 A/PR/8/34(PR8)ウイルスによる感染後のイヌ細胞中で観察し
た。PR8インフルエンザウイルスに感染したメイディン−ダービーイヌ腎臓(MDCK
)細胞を、ウイルス吸着期間直後にNTZ、オセルタミビル、またはビヒクルの異なる濃
度で処理し、ウイルス収率を感染後(p.i.)24時間目に決定した。
発明者らは、1μMまでの試験濃度でオセルタミビル単独によるウイルス収率の低減(阻
害)を観察せず、したがって、EC50を、オセルタミビルについて決定しなかった(図
8および9、左側)。オセルタミビルまたはNTZ単独による治療に対しておよそ1.5
倍の効力の増加に対応して、1μMのオセルタミビルを、0.1μg/ml(0.33μ
M)のNTZと組み合わせると、ウイルス複製の低減が33%増加した(図8、右側)。
NTZ用量がその確立されたEC50の10分の1であったことに留意する。
わせると、オセルタミビル単独による治療に対してウイルス複製の低減を67%増加させ
、NTZ単独による治療に対してウイルス複製の低減を33%増加させた(図9、右側)
。これらの結果は、オセルタミビル単独による治療に対しておよそ3倍の効力の増加に対
応し、NTZ単独による治療に対して1.5倍の効力の増加に対応する。まとめると、こ
れらの結果は、オセルタミビルおよびNTZ組み合わせの抗ウイルス活性がPR8A型イ
ンフルエンザウイルスに対して相加および相乗の間くらいであることが示唆される。
コンパートメントに運搬するためのマーカーであるエンドグリコシダーゼ−H消化の抵抗
性を先行する段階で、HA末端のグリコシル化をブロックすることが実証されている。感
染細胞により産生されたウイルス粒子の免疫顕微鏡研究および分析では、TIZ誘導変更
は、ERおよびゴルジ複合体の間のHA0輸送を障害し、宿主細胞原形質膜へのその運搬
および挿入を防ぎ、宿主細胞からの成熟したビリオンの出口を遮断することが確認されて
いる。HA成熟の変更が、ウイルス糖タンパク質へのTIZの直接結合によって引き起こ
されるのか、または細胞によって媒介された効果によるものなのかは確立されていない。
イルス、およびロタウイルス、二本鎖RNAウイルス、およびDNAウイルス、B型肝炎
(HBV)ウイルスに対して抗ウイルス活性を有することが前もって示されている。広ス
ペクトル抗ウイルス活性は、特異的なウイルス標的ではなく細胞媒介効果を示唆している
。ウイルス糖タンパク質の成熟が、HBVおよびHCVに対する抗ウイルス活性が関与し
得る可能性は、現在試験中である。ロタウイルスの場合においては、構造上のウイルス糖
タンパク質VP7のTIZ誘導修正は最近示されており(Santoro MG and
Rossignol JF、結果非公表)、最重要なウイルス糖タンパク質の成熟およ
び運搬がこの新規なクラスの薬物の抗ウイルス活性の一般的な機序となり得るという仮説
を裏付けている。チアゾリドが、成熟が細胞膜へのウイルス糖タンパク質輸送を必要とし
ないピコルナウイルスである、ヒトライノウイルスの複製にあまり影響を与えないという
知見は、さらにこの仮説を支持している。
;EC50、50%有効濃度;CC50、50%細胞毒性濃度;HA、血球凝集素;TM
、ツニカマイシン;Endo−H、エンド−β−NアセチルグルコサミニダーゼH;PN
G−ase F、ペプチドN−グリコシダーゼ F;TCID50、50%組織培養感染
量;SW、スウェインソニン;DMJ、1−デオキシマンノジリマイシン;HAU/ml
、血球凝集単位/ml、EGS、エチレングリコールビス(スクシンイミジルスクシナー
ト)。
フルエンザの治療として300mgまたは600mg1日2回5日間の用量で経口投与す
ることができる。臨床試験では、この用量レジメンはインフルエンザを治療する能力を有
することが示されている。好ましくは、ニタゾキサニドの用量は、300mg1日2回5
日間であり、これは、腸管感染症を治療するために必要なNTZの用量を超えず、それに
よって、高用量に伴う副作用を低減することができるようになる。チアゾリドは、調節放
出二重層錠剤として投与することもできる。そのようなものとして、チアゾリドは、ウイ
ルス感染を治療するために100mg、200mg、300mg、400mg、500m
gまたは600mg用量で1日2回5日間投与することができる。
見出されている。Invivoデータを表3に示す。
者を治療する能力を有する。インフルエンザ様疾患は、インフルエンザの症状を呈し、別
のウイルスまたは病原体によって引き起こされ得る。
回ニタゾキサニド5日間の効果の評価を行った。2つの二重盲検プラセボ対照試験を行っ
た。年齢12ヵ月〜11歳の小児に、NTZ懸濁剤を投与し(n=100、1群当たり5
0名)、≧12歳の患者にNTZ500mg錠剤を投与した(n=86、1群当たり43
名)。単施設試験を行った。試験は、TAMIFLU(登録商標)試験に基づいた。試験
は、特定の組み入れ/除外基準に従った。組み入れは、(咳、鼻汁、くしゃみ、咽頭痛な
どを含めた)呼吸器症状≧1および/または全身症状(筋肉痛、倦怠感、疲労、頭痛、悪
寒/発汗など)≧1を有する>100Fの発熱を伴う≧12歳の患者のうち小児年齢1〜
11歳を要した。主な除外には、症状期間>72時間、妊娠または授乳、併用抗生物質/
抗ウイルス薬剤、または喘息もしくは他の肺疾患の病歴が含まれた。
のスワブは、7種のウイルス(RSV、A型およびB型インフルエンザ、パラインフルエ
ンザ1〜3型、およびアデノウイルス)に関する急速直接免疫蛍光アッセイ(Simul
Fluor respiratory Screen)のベースライン時に収集した。症
状は、0から3の尺度:なし、軽度、中等度、重度で類別した各症状を有する患者(また
は親)によって毎日の日誌に記録した。組織をジッパー付きプラスチック袋に保存し、こ
れは秤量のために試験員によって毎日収集された。フォローアップ身体検査を7日目に行
った。主要エンドポイントは、ベースラインから各症状がなしまたは軽度(<2)に戻る
までの時間であった。副次的エンドポイントには、抗生物質の使用、7日の呼吸器症状、
毎日の組織/粘液重量が含まれる。
して効果を有することを実証している。患者構成については表4およびウイルス検出につ
いては表5を参照のこと。表5は、大部分の患者が、アデノウイルス、RSV、A型イン
フルエンザ、パラインフルエンザ1型の存在について陽性を試験しなかったことを示す。
しかし、図12〜15は、NTZがインフルエンザ様疾患を有する患者を治療する能力を
有することを示す。これらのデータは、驚くべきことに、インフルエンザの症状を示すが
、アデノウイルス、RSV、A型インフルエンザ、パラインフルエンザ1型についての陽
性を試験しない患者が、NTZなどのチアゾリドで治療することができることを示す。
図1はチアゾリドが侵入後レベルで作用するA型インフルエンザウイルスの複製を阻
害することを示す図である。A、ニタゾキサニド(NTZ)およびチゾキサニド(TIZ
)の構造、B、NTZ(青色の円)およびTIZ(赤色の円)がMDCK細胞中でヒト(
PR8、WSN)およびトリ(A/Ck)A型インフルエンザウイルス株の複製を阻害す
る。ウイルス収率は、p.i.24時間目に決定される。C、ヒト単球性U937(●)
およびT−リンパ芽球様ジャーカット(▲)細胞中のA型インフルエンザPR8ウイルス
、およびヒト肺上皮A549細胞(■)中のWSNウイルスに対するTIZの抗ウイルス
活性。D、MDCK細胞を感染前(前)、吸着期間直後(後)の指示された時間で10μ
g/mlTIZ(黒棒)、または吸着期間中のみ(Ad、破線棒)で処理した。白抜き棒
は、未治療の感染した対照を表す(C)。E、ウイルス吸着後の10μg/mlTIZ(
黒丸)またはビヒクル(白抜きの円)で処理したPR8感染MDCK細胞中のTIZの長
期抗ウイルス活性。B〜E、HAU/mlで(BおよびE)または未治療対照のパーセン
トとして(CおよびD)表されるウイルス収率は、類似の結果を有する3つのうちの代表
的な実験から得られた複製サンプルの平均値±標準偏差を表す。*=P<0.01;**
=P<0.05
図である。A、PR8ウイルスタンパク質合成の速度に対するTIZの効果。ウイルス吸
着後の10μg/ml TIZで処理した擬似感染細胞(U)またはPR8感染細胞から
得られたp.i.異なる時間での[35S]−Met/Cys標識タンパク質(1.5h
−パルス)のオートラジオグラフィー(上部)。ウイルスタンパク質を示す。同じ実験に
おいて、タンパク質合成を、TIZ(●)またはビヒクル(○)で治療した細胞のタンパ
ク質への[35S]−Met/Cys取り込みにより決定し(下部)、ホスホ−eIF−
2αタンパク質レベルを抗ホスホSer−51−eIF2α(p−eIF2α)またはe
IF2α汎特異的抗体を用いて免疫ブロット分析により決定した(中央)。B、p.i.
5時間目に[35S]−Met/Cys−標識化後に抗−HA抗体を用いた免疫沈降によ
る血球凝集素同定(4時間−パルス)。免疫沈降したタンパク質(+αHA、IP)およ
び抗体付加前の同一サンプルから得られた放射能標識したタンパク質(−αHA)を示す
。HA非切断前駆体(HA0)の位置を示す。C、ウイルス吸着後の10μg/ml T
IZ、5μg/mlツニカマイシン(TM)またはビヒクル(C)で処理した擬似感染細
胞(U)またはPR8感染細胞から得られた[35S]−Met/Cys標識されたタン
パク質(15h−パルス)のオートラジオグラフィー。白色の三角形および黒矢印は、そ
れぞれTM誘導GRP78/BiPおよび非グリコシル化HA0を示す[免疫ブロットに
よって同定された(未掲載)]。D、Aのように処理したPR8感染細胞から得られた[
35S]−Met/Cys標識タンパク質(p.i.5時間目に15分パルス、その後指
示された時間追跡)のオートラジオグラフィー。A〜D、未治療のもしくはTIZ治療細
胞中の緩徐遊走性および高速遊走性のHA0形態を、それぞれアステリスクおよび黒色の
三角形により同定する。
ある。A、擬似感染した(U)またはPR8感染した(PR8)MDCK細胞を、ウイル
ス吸着後に10μg/ml TIZ、5μg/ml TMまたはビヒクル(C)で処理し
た。p.i.6時間目に、細胞を[35S]−Met/Cys(上部)、[3H]−グル
コサミン(中央)または[3H]−マンノース(下部)で4時間標識した。放射能標識し
たサンプルをSDS−PAGEおよびオートラジオグラフィー用に処理した。SDS/P
AGEゲルから得られた蛍光図のセクションを示す。白色の矢印は、TM誘導Grp78
/BiPを示す。B、擬似感染した(U)もしくはPR8感染したMDCK細胞を、ウイ
ルス吸着後に10μg/ml TIZ、10μg/mlスウェインソニン(SW)、15
μg/ml 1−デオキシマンノジリマイシン(DMJ)またはビヒクル(C)で処理し
た。p.i.6時間目に、細胞を[35S]−Met/Cys(4h−パルス)で標識し
、放射能標識したサンプルをSDS−PAGEおよびオートラジオグラフィー用に処理し
た。C〜D、擬似感染した(U)もしくはWSN感染した(WSN)A549細胞(C)
、およびウイルス吸着後に5μg/ml TIZ、5μg/mlツニカマイシン(TM)
またはビヒクル(C)で処理した擬似感染したもしくはトリA型インフルエンザウイルス
感染した(A/Ck)MDCK細胞(D)から得られた放射能標識したタンパク質のオー
トラジオグラフィー。p.i.3時間目(WSN)または6時間目(A/Ck)に、細胞
を、15時間(WSN)または4時間(A/Ck)[35S]−Met/Cysで標識し
た。E〜F、擬似感染した(U)PR8感染した(PR8)(E)またはウイルス吸着後
に10μg/ml TIZ、10μg/mlニタゾキサニド(NTZ)またはビヒクル(
C)で処理したトリのA型インフルエンザウイルス感染した(A/Ck)(F)MDCK
細胞から得られた放射能標識したタンパク質のオートラジオグラフィー。p.i.6時間
目に、細胞を4時間[35S]−Met/Cysで標識した。A〜F、ウイルスタンパク
質HA0、NP、M1およびNS1を示す。未処理のもしくはチアゾリドで処理した細胞
中の緩徐遊走性および高速遊走性のHA0形態を、それぞれアステリスクおよび三角形に
よって同定する。
す図である。A、ウイルス吸着後に10μg/ml TIZ(+)またはビヒクル(−)
で処理した擬似感染した(U)もしくはPR8感染した(PR8)MDCK細胞を、p.
i.5時間目に[35S]−Met/Cys(4時間−パルス)で標識した。放射能標識
したタンパク質をPNGase−FまたはEndo−Hを消化した(+)または消化せず
(−)、SDS−PAGEおよびオートラジオグラフィー用に処理した。切断しないグリ
コシル化された(HA0)および非グリコシル化の(HAp)血球凝集素前駆体形態を示
す。B、Aのように処理したMDCK細胞を、p.i.6時間目に[35S]−Met/
Cys(4時間−パルス)で標識した。放射能標識したタンパク質を、抗HA抗体(α−
HA)で免疫沈降し、Endo−Hで消化した(+)または消化せず(−)、SDS−P
AGE用に処理した。蛍光図のセクションを示す。C、TIZ(+)またはビヒクル(−
)で処理した擬似感染した(U)およびPR8感染した(PR8)MDCK細胞から得ら
れた全細胞抽出物を架橋試薬EGS(0.2mM)を用いて(+)または用いずに(−)
インキュベートし、抗HA抗体を用いてウエスタンブロット用に処理した。HA単量体(
1)、二量体(2)および三量体(3)を示す。A〜C、未処理のもしくはTIZで処理
した細胞中の緩徐遊走性および高速遊走性のHA0形態を、それぞれアステリスクおよび
三角形によって同定する。D、24時間TIZ(5μg/ml)もしくはビヒクルで処理
した擬似感染した(U)およびWSN感染したA549細胞の免疫蛍光は、抗p230ト
ランス−ゴルジ(赤色)および抗HA(緑色)抗体で標識した。核をDAPI(青色)で
染色した。3種の蛍光色素のオーバーレイを示す(マージ)。拡大された領域(差し込み
図)は、未処理のおよびTIZ処理した細胞中のHAの局在化を強調している。画像を、
SoftWoRx−2.50ソフトウェアを用いたDeltaVision顕微鏡で取り
込み、畳み込みを解いた。横棒=5μm。
とを示す図である。A、全血球凝集素(緑色)およびα−チューブリン(赤色)のレベル
を、間接免疫蛍光によりp.i.16時間目に擬似感染した(U)および未処理のもしく
はTIZ処理した(10μg/ml)PR8感染したMDCK細胞中で検出した(横棒=
10μm)。核をDAPI(青色)で染色する。3種の蛍光色素のオーバーレイを示す(
マージ)。画像をSoftWoRx−2.50ソフトウェアを用いたDeltaVisi
on顕微鏡で取り込み、畳み込みを解いた。B、原形質膜血球凝集素(緑色)のレベルを
、10μg/ml TIZまたは5μg/ml TMで処理した擬似感染細胞またはPR
8感染細胞中で間接免疫蛍光(上部)によりp.i.16時間目に検出した。核を、Ho
echst 33342(青色)で染色した。画像を、Aのように処理した(横棒=10
μm)。2種の蛍光色素のオーバーレイを示す。p.i.5時間目に原形質膜上の赤血球
血球吸着を、平行サンプルにおいて示す(下部)(横棒=35μm)。結合した赤血球の
ヘモグロビンレベルを、分光光度的に定量した(λ=540nm)。光学密度(O.D.
)で表されるデータは、類似の結果を有する2つのうちの代表的な実験から得られた複製
サンプルの平均値±標準偏差を表す。*=P<0.05対感染した対照。C、Bのように
擬似感染細胞またはPR8感染細胞の上澄みからp.i.24時間目に精製したウイルス
粒子に取り込まれた[35S]−Met/Cys標識タンパク質のオートラジオグラフィ
ー。ウイルスタンパク質(HA、NP、M1)を示す。D、平行して、ウイルス収率を、
感染力アッセイ(上部)および血球凝集アッセイ(下部)によりp.i.24時間目に未
治療の(白抜き棒)またはTIZ処理した(黒棒)PR8−感染細胞中で決定した。TC
ID50/mlおよびHAU/mlでそれぞれ表されたデータは、類似の結果を有する2
つのうちの代表的な実験から得られた複製サンプルの平均±標準偏差を表す。
のニタゾキサニドと組み合わせたザナミビルの抗ウイルス活性を示す図である。ザナミビ
ルを0.01、0.1および1.0μMの用量でおよび0.1μg/mlのNTZの存在
下でA型インフルエンザ(MDCK/PR8)に対して単独で試験した。
のニタゾキサニドと組み合わせたザナミビルの抗ウイルス活性を示す図である。ザナミビ
ルを0.01、0.1および1.0μMの用量でおよび1.0μg/mlのNTZの存在
下でA型インフルエンザ(MDCK/PR8)に対して単独で試験した。
mLのニタゾキサニドと組み合わせたオセルタミビルの抗ウイルス活性を示す図である。
オセルタミビルを0.01、0.1および1.0μMの用量でおよび0.1μg/mlの
NTZの存在下でA型インフルエンザ(MDCK/PR8)に対して単独で試験した。
mLのニタゾキサニドと組み合わせたオセルタミビルの抗ウイルス活性を示す図である。
オセルタミビルを、0.01、0.1および1.0Mの用量でおよび1.0μg/mlの
NTZの存在下でA型インフルエンザ(MDCK/PR8)に対して単独で試験した。
活性を示す図である。A、MDCK細胞を、10HAU/105細胞のm.o.i.で、
異なる4種のA型インフルエンザウイルス株、哺乳動物のH1N1 PR8およびWSN
、およびH3N2 A/FI、およびH5N9トリ株A/Ckに感染させ、吸着期間直後
に10μg/ml TIZ(黒棒)またはビヒクル(白抜き棒)で処理した。ウイルス収
率をp.i.24時間目に決定した。B、インフルエンザB型ウイルス(B/Parma
/3/04)に感染し、ウイルス吸着後に10μg/ml TIZ(●)またはビヒクル
(★)で治療したMDCK細胞中のTIZの長期抗ウイルス活性。C〜D、単一段階(C
)および多段階(D)PR8ウイルス成長曲線を、Aのように10(C)または0.00
1(D)ffu/細胞のm.o.i.で感染し、10μg/ml TIZ(●)またはビ
ヒクル(★)で処理したMDCK細胞について行った。ウイルス収率を、p.i.の指定
された時間で決定した。(A〜D)未治療の対照(A)のパーセントとしてまたはHAU
/ml(B〜D)で表したウイルス収率は、類似の結果を有する3つのうちの代表的な実
験から得られた複製サンプルの平均値±標準偏差を表す。*=P<0.01;**=P<
0.05。
的指向化に影響を与えないことを示す図である。MDCK細胞を、緑色蛍光タンパク質(
GFP)タグ付き内部移行欠損ヒト低密度リポタンパク質受容体変異体(LDLR−A1
8−GFPプラスミド)(40)で一時的に形質移入され、8時間後、次の16時間TI
Z(10μg/ml)またはビヒクルで処理した。シクロヘキシミドで1時間タンパク質
合成をブロックしてから、原形質膜をCellMask(商標)Orange原形質膜(
PM)染色を用いて染色し、UV励起フィルターを装備したLeica DM−IL蛍光
顕微鏡を用いて撮像した。画像を、Leica Image−Manager500ソフ
トウェアを用いたLeica DC−300カメラで取り込んだ。LDLR−GFP(緑
色)およびPM(赤色)のレベルを、未治療の(上部パネル)またはTIZ処理された(
下部パネル)形質移入されたMDCK細胞中で検出した。2つの蛍光色素のオーバーレイ
を示す(マージ)。代表的な実験の同じ画像のセクション(横棒=10μm)を示す。
ることを示す図である。
ルエンザ様疾患に伴う呼吸器症状を低減する。
2)およびSO2R12から選択することができる]に従って、本明細書で定義する通り
、適当な反応条件下でアロイル誘導体[式中、G1は、ヒドロキシ、クロロ、フルオロ、
ブロモ、アルコキシなどである]を、アミノチアゾール誘導体と反応させることにより合
成することができる。いくつかの実施形態において、反応を、以下の通り総称的に表す。
PCT WO2006042195A1およびUS2009/0036467Aに従って
合成することもできる。
ことができる。例のこのセットは、本発明を限定するものではない。
とが理解される。これは、様々な修正が開示された実施形態になされることができ、かか
る修正が本発明の範囲内であることを意図している当業者に行われる。
により本明細書に組み込まれる。
Claims (20)
- i)治療有効量の式Iで表される化合物、または、薬学的に許容されるその塩もしくはエ
ステル
[式中、R1、R2、R3の1つは、OHまたはOC(=O)Qであり、ここで、Qは、
R7、OR7、またはNHR7であり;R7は低級アルキル、アリール、またはヘテロア
リールであり、場合によって置換されており;R4、R5、ならびにR1、R2、および
R3の残りは、H、であり;R6がNO2であり、R9がHである]
および
ii)薬学的に許容される賦形剤
を含む、インフルエンザウィルス感染の予防または治療のための医薬組成物。 - R1が、OHまたはOC(=O)Qであり、ここで、Qは、R7、OR7、またはNH
R7であり;R7は、低級アルキル、アリール、またはヘテロアリールであり、場合によ
って置換されており;R4、R5、R2、およびR3が、Hである、請求項1に記載の医
薬組成物。 - 前記式Iの化合物が下記の化学式により表される化合物から選択される、請求項1に記
載の医薬組成物
- 前記式Iの化合物を、ノイラミニダーゼ阻害薬、ワクチン、免疫賦活薬、アダマンチン
類似体、組換えシアリダーゼ融合タンパク質、アンチセンスオリゴヌクレオチドまたは、
ペグ化インターフェロンと組み合わせて投与する、請求項1〜3のいずれか1項に記載の
医薬組成物。 - 前記式Iの化合物がワクチンおよび免疫賦活薬の組み合わせで投与される、請求項1〜
3のいずれか1項に記載の医薬組成物。 - ノイラミニダーゼ阻害薬が、オセルタミビル、ザナミビル、ペルミビル、RWJ−27
0201、DANA、およびCS−8958からなる群から選択されるか;前記アダマン
チン類似体が、アマンタジンおよびリマンタジンからなる群から選択されるか;免疫賦活
薬がポリオキシドニウムであるか;組換えシアリダーゼ融合タンパク質がFludase
(登録商標)であるか;または、アンチセンスオリゴヌクレオチドがNeugene(登
録商標)アンチセンスホスホロジアミデートモルホリノオリゴマーを含む、
請求項4または5に記載の医薬組成物。 - 組み合わせを、逐次的な方法または実質的に同時の方式で投与する、請求項4〜6のい
ずれか1項に記載の医薬組成物。 - 前記予防または治療がインフルエンザウイルスの感染に対するものであり、インフルエ
ンザウイルス感染症が、H1N1、H2N2、H3N2、H5N1、H7N7、H1N2
、H9N2、H7N2、H7N3、およびH10N7から選択されるウイルスによって引
き起こされる、請求項1〜7のいずれか1項に記載の医薬組成物。 - インフルエンザ治療のための、(a)請求項1〜3のいずれか1項に規定される式Iの
化合物または薬学的に許容されるその塩、および(b)ノイラミニダーゼ阻害薬、免疫賦
活薬、アダマンチン類似体、組換えシアリダーゼ融合タンパク質、または、アンチセンス
オリゴヌクレオチドを含むキット。 - 前記ノイラミニダーゼ阻害薬が、オセルタミビル、ザナミビル、ペルミビル、RWJ−
270201、DANA、およびCS−8958からなる群から選択されるか;前記アダ
マンチン類似体が、アマンタジンおよびリマンタジンからなる群から選択されるか;免疫
賦活薬がポリオキシドニウムであり;組換えシアリダーゼ融合タンパク質がFludas
e(登録商標)であるか;または、アンチセンスオリゴヌクレオチドが、Neugene
(登録商標)アンチセンスホスホロジアミデートモルホリノオリゴマーである、請求項9
に記載のキット。 - ウイルス糖タンパク質の成熟をブロックする、インフルエンザウィルス感染の治療のた
めの、請求項1に記載の式Iの化合物または薬学的に許容されるその塩もしくはエステル
の化合物を薬学的に許容される治療有効量含む、医薬組成物。 - エンドグリコシダーゼ−H消化に対する抵抗性に先行する段階でウイルス血球凝集素の
成熟をブロックする、インフルエンザウィルス感染の治療のための、請求項1に記載の式
Iの化合物または薬学的に許容されるその塩もしくはエステルの化合物を薬学的に許容さ
れるその塩もしくはエステルの治療有効量で含む、医薬組成物。 - 前記化合物が、請求項1〜3のいずれか1項に記載の式Iの化合物または薬学的に許容
されるその塩もしくはエステルである、請求項11に記載の医薬組成物。 - 式Iの化合物との相乗効果をもたらすのに十分な量の他の抗ウイルス薬またはワクチン
をさらに含む、請求項1に記載の医薬組成物。 - 前記組成物が、経口的に投与される、請求項1に記載の医薬組成物。
- 前記式Iで表される化合物が100mg、200mg、300mg、400mg、50
0mgおよび600mgからなる群から選択される用量で投与される、請求項1に記載の
医薬組成物。 - 前記組成物が1日2回で投与され、前記式Iで表される化合物を300mgおよび60
0mgからなる群から選択される用量を含む、請求項1に記載の医薬組成物。 - 前記組成物が5日以上投与されず、前記式Iの組成物を300mgの用量で含む、請求
項17に記載の医薬組成物。 - 前記式Iで表される化合物がニタゾキサニドであり、前記ニタゾキサニドが、300m
g用量で、1日2回投与される、請求項1に記載の医薬組成物。 - 前記ニタゾキサニドが調節放出二重層錠剤として投与される、請求項19に記載の医薬
組成物。
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