JP2016166237A - ポリ−n−アセチルグルコサミンナノファイバを用いた疾患の治療 - Google Patents
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Abstract
Description
本発明は、ポリ−N−アセチルグルコサミン及び/又はその誘導体の短ファイバ(sNAGナノファイバ)を含む組成物、並びに、疾患の治療における当該組成物の使用に関する。
ディフェンシンは、小さく(3〜4kDa)、システインリッチなカチオンペプチドであり、動物、昆虫及び植物中において見られ、そのジスルフィド結合のパターンに基づいて、異なるファミリー(α、β及びθ)に分類されている。これらの小さいペプチドは、先天性免疫の重要なエフェクターであり、結果として、種々の疾患に対する体内の戦闘において重要な役割を果たす。
一つの局面において、ディフェンシン生成及び/又は分泌を増加させる、感染症及び/又は疾患を予防及び/又は治療する有益な方法を、ここに記載する。この方法は、ポリ−β−1→4−N−アセチルグルコサミン及び/又はその誘導体の短ファイバ(本明細書においては「sNAGナノファイバ」と称する)を含む組成物を、対象に投与することを含む。このような感染症及び/又は疾患の例は、固形癌、皮膚癌、ウイルス感染症、酵母感染症、真菌感染症、炎症性腸疾患、クローン病、乾癬、及び、皮膚炎を含むが、これに限定されない。
ここで使用する限り、用語「sNAGナノファイバ」、「sNAG」、「タリデルム(Taliderm)」又は「タリム(Talymed)」(以前は「タリデルム」として知られた)は、ポリ−N−アセチルグルコサミン及び/又はその誘導体の短ファイバに関して、交換可能に使用される。好ましい実施形態において、sNAGナノファイバは、ポリ−N−アセチルグルコサミン及び/又はその誘導体の短ファイバの全体からなる。タリデルム又はタリムは、ポリ−N−アセチルグルコサミン及び/又はその誘導体の短ファイバの全体からなる膜である、sNAGナノファイバの例である。
〔図1〕ナノファイバが、Ets1の上流レギュレータであるAkt1活性化を刺激する。(A)は、NAG応答によるリン酸化Akt及び血清欠乏ECのsNAG刺激のウエスタンブロット分析である。(B)は、スクランブルコントロール(SCR)又はAkt1 shRNAレンチウイルスの何れかに感染したECのRT−PCR分析、及び、ローディングコントロールとしてのEts1及びS26の発現評価である。(C)は、sNAGナノファイバからAkt1、Ets1及びディフェンシンへ信号伝達する信号伝達経路の概略図である。
ImageJソフトウェアを用いて行った、パラフィン包埋部位から発現したβ−ディフェンシン3発現の定量化である。実験を独立して3回繰り返し、p値を示す。
本発明の発明者らは、sNAGナノファイバが、ディフェンシンの発現を刺激し、先天性免疫反応を促進するであろうことを見出した。ディフェンシンは、先天性免疫において重要な役割を果たすことは広く受け入れられている。下記の項目6.1及び6.2に記載した実施例において実証したように、本発明の発明者らは、sNAGナノファイバが、i
vitro及びin vivoの創傷回復モデルにおいて、内皮細胞におけるα型ディフェンシンとβ型ディフェンシンとの両方、並びに、ケラチン生成細胞におけるβ型ディフェンシンの発現を増加させることを見出した。
sNAGナノファイバ組成物をここに記載する。sNAGナノファイバは、ポリ−N−アセチルグルコサミン及び/又はその誘導体のファイバを含んでおり、例えば、走査型電子顕微鏡(「SEM」)のような、当業者に公知のいずれかの方法により測定した長さは概ね30μmより短く、少なくとも1μmである。このようなsNAGナノファイバは、例えば、本明細書に記載したように得ることができる。
US特許番号5,622,834、5,623,064、5,624,679、5,686,115、5,858,350、6,599,720、6,686,342、7,115,588、及び、US特許公開番号2009/0117175(それぞれ参照としてここに組み込む)は、ポリ−N−アセチルグルコサミン及びその誘導体、並びに、これらの生成方法について記載されている。いくつかの実施形態において、ポリ−N−アセチルグルコサミンは、β−1→4構造である。他の実施形態において、ポリ−N−アセチルグルコサミンは、α−1→4構造である。ポリ−N−アセチルグルコサミン及びその誘導体は、ポリマー形式又はファイバ形式であり得る。
ポリ−N−アセチルグルコサミンポリマー若しくはファイバ、並びに、上記ポリ−N−アセチルグルコサミンポリマー若しくはファイバ誘導体のいずれかは、乾燥ポリマー若しくはファイバ、又は、ポリマー膜若しくはファイバ膜として、放射線照射することができる。代替として、ポリ−N−アセチルグルコサミンポリマー若しくはファイバ、並びに、上記ポリ−N−アセチルグルコサミンポリマー若しくはファイバ誘導体のいずれかは、湿った状態で放射線照射することができる。放射線照射によりsNAGナノファイバを生成する方法、及び、そのように生成したsNAGナノファイバは、米国特許公開番号2009/0117175に記載されており、その全てを参照としてここに組み込む。
sNAGナノファイバを、ここに記載したように局所投与するために、種々の組成物に成形してもよい。
ある実施形態において、ここに記載した組成物は、感染及び/又は疾患の予防及び/又は治療に使用可能であり、ディフェンシン生成及び/又は分泌の増加に有益である。このような疾患は、ディフェンシン欠乏の結果として引き起こされ得る、又は、ディフェンシンの存在量の増加が効果的であり得る。
に関連する疾患、の治療及び/又は予防に用いられる。変異/欠失/低GCN/無発現又は低発現若しくは発現が改変され得るディフェンシン遺伝子の例には、公知のα−ディフェンシン(例えば、DEFA1、DEFA1B、DEFA3、DEFA4、DEFA5、DEFA6)のいずれか、公知のβ−ディフェンシン(例えば、DEFB1、DEFB2、DEFB4、DEFB103A、DEFB104A、DEFB105B、DEFB107B、DEFB108B、DEFB110、DEFB112、DEFB114、DEFB118、DEFB119、DEFB123、DEFB124、DEFB125、DEFB126、DEFB127、DEFB128、DEFB129、DEFB131、DEFB136)のいずれか、及び、公知のθ−ディフェンシン(例えば、DEFT1P)のいずれかが含まれる。いくつかの実施形態において、ここに記載した組成物を、上記列挙した1以上の遺伝子における、無発現、低発現若しくは発現の改変、又は、変異/欠失/低GCN、に関連する疾患又は感染の治療又は予防に用いる。特定の実施形態において、ここに記載した組成物を、1以上の、DEFA1、DEFA3、DEFA4、DEFA5、DEFB1、DEFB3、DEFB103A、DEFB104A、DEFB108B、DEFB112、DEFB114、DEFB118、DEFB119、DEFB123、DEFB124、DEFB125、DEFB126、DEFB128、DEFB129及びDEFB131における、無発現、低発現若しくは発現の改変、又は、変異/欠失/低GCN、に関連する疾患又は感染の治療又は予防に用いる。いくつかの実施形態において、ここに記載した組成物を、1以上のTollレセプター(例えば、TLR1、TLR2、TLR3、TLR4、TLR5、TLR6、TLR7、TLR8、TLR9、TLR10、TLR11及び/又はTLR12)における、無発現、低発現若しくは発現の改変、又は、変異/欠失/低GCN、に関連する疾患又は感染の治療又は予防に用いる。さらに他の実施形態において、ここに記載した組成物を、1以上のIL−1、CEACAM3、SPAG11、SIGIRR(IL1−l様レセプター)、IRAK1、IRAK2、IRAK4、TBK1、TRAF6及びIKKiにおける、無発現、低発現若しくは発現の改変、又は、変異/欠失/低GCN、に関連する疾患又は感染の治療又は予防に用いる。いくつかの実施形態において、ここに記載した組成物を、1以上のRAK2、SIGIRR、TLR1、TLR2、TLR4、TLR7、TLR8、TLR10及びTRAF6における、無発現、低発現若しくは発現の改変、又は、変異/欠失/低GCN、に関連する疾患又は感染の治療又は予防に用いる。
ある実施形態において、ここに記載した組成物を、例えば、疾患又は感染を有さない対象のような、無症状の対象に投与してもよい。一実施形態において、ここに記載した組成物を、疾患にかかる又は感染するリスクのある無症状の対象に投与する。
ある実施形態において、感染及び/若しくは疾患、又はその症状を治療又は予防するための方法であって、sNAGナノファイバを含む組成物を、このような治療を必要とする患者に局所投与する方法について、ここで記載する。いくつかの実施形態において、sNAGナノファイバ組成物を、感染又は疾患の危険性が上昇した組織又は臓器に局所適用する。
種々の実施形態において、ここに記載したsNAGナノファイバ又はその組成物を、1以上の他の療法と組み合わせて対象に投与してもよい。1以上の他の療法は、疾患の治療若しくは予防に有益であり得る、又は、疾患に関連する症状若しくは状態を改善し得る。ある実施形態において、この療法は、5分未満空けて、30分未満空けて、1時間空けて、約1時間空けて、約1〜約2時間空けて、約2〜約3時間空けて、約3〜約4時間空けて、約4〜約5時間空けて、約5〜約6時間空けて、約6〜約7時間空けて、約7〜約8時間空けて、約8〜約9時間空けて、約9〜約10時間空けて、約10〜約11時間空けて、約11〜約12時間空けて、約12〜約18時間空けて、18〜24時間空けて、24〜36時間空けて、36〜48時間空けて、48〜52時間空けて、52〜60時間空けて、60〜72時間空けて、72〜84時間空けて、84〜96時間空けて、又は、96〜120時間空けて、適用する。特定の実施形態において、2以上の療法を、同一特許訪問内に投与する。
ここに記載したsNAGナノファイバ組成物の1以上を含む医薬パック又はキットもまた、ここで提供する。このパック又はキットは、ここに記載した組成物を含む1以上の構成要素を充填した1以上の容器を含んでいてもよい。この組成物は、組成物が汚染されることなく容易に除去することができるように、防水及び殺菌された容器中に密封収容されていることが好ましい。容器を形成する材料は、アルミ箔、プラスチック又は容易に殺菌される他の従来の材料を含んでいてもよい。キットは、組成物の1回投与又は複数回投与のための材料を含むことができ、好ましくは、各投与のための材料が、防水及び殺菌された容器中に独立して提供されている。
6.1 実施例1:創傷治癒及びAkt1/Ets−1依存経路を介したディフェンシン発現を促進する海洋珪藻植物由来sNAGナノファイバ
この実施例は、sNAGナノファイバが、皮膚創傷治癒及びディフェンシン発現を促進すること、並びに、Akt1→Ets1経路が、sNAGナノファイバによる皮膚創傷治癒の調節において中心的役割を果たすことを実証する。
sNAGナノファイバ(特にタリデルム)を、海洋ポリマー技術により製造及び提供し、創傷治癒に適した絆創膏に成形した。野生型C57Black及びAkt1欠損マウスを、サウスカロライナ医科大学の動物施設に保管した。8〜12週齢の範囲の野生型及びAkt1欠損マウスを、50%純酸素及び50%イソフルレンガスにより麻酔した。マウスを傷つけた直後に、Nair除毛ローションを背部に塗布し、不要な毛を除去した。生検切除穿孔器を用いて、背面の肌の4mm円形領域を除去した。0日目にタリデルムを各創傷部に配置するか、創傷部を処置せずに放置した。1、3、5及び7日目に、創傷部の撮影、測定及び8mm生検穿孔器を用いた切除を行い、創傷部とその周囲の皮膚が完全に除去されたことを裏付けた。タリデルム治療を行った及び行っていない野生型及びAkt1欠損マウスの創傷部を、H&E及び免疫蛍光染色のために、パラフィン包埋した。
sNAGナノファイバによる、Ets1の上流レギュレータであるAkt1活性化の刺激。図1Aは、NAG及び血清欠乏ECのsNAG刺激に応答するリン酸化Aktのウエスタンブロット分析を示す。図1Bは、スクランブルコントロール又はAkt1 shRNAレンチウイルスの何れかに感染したECのRT−PCR分析、並びに、ローディングコントロールとしてのEts1及びS26の発現分析を示す。図1Cは、sNAGナノファイバからAkt1、Ets1及びディフェンシンに信号を伝達する情報伝達経路を図示している。
提供したデータは、Ets1のsNAGナノファイバ刺激が、これらのナノファイバによるAkt1の活性化によってもたらされることを示す。ナノファイバ治療は、IL−1(Ets1の標的として知られている)、VEGF及び種々のディフェンシン(β3、α1、α4及びα5)のような細胞内補給を含む、遺伝子発現の顕著な増加をもたらした。小さい抗細菌ペプチドが化学誘引物質として作用することが近年示されている。shRNAを用いてノックダウンした、PI3K/Akt1経路及びAkt1の両方の薬理学的抑制は、これらの化学走化性因子の発現の減少をもたらした。Akt1欠損マウスは、タリデルムナノファイバにより部分的に救済される、創傷治癒が遅れた表現型を示した。タリデルムで治療した創傷は、また、Akt1依存ディフェンシン発現の増加も示した。
薬理学的抑制、ELISA:ヒト臍帯静脈EC(Lonza)を内皮基礎培地2(Lonza)中で、5%二酸化炭素雰囲気下、37℃に維持した。内皮基礎培地2(EMB2)を、Lonzaの手順に記載されたSingleQuotsでEC成長培地2に添加し、かつ、1%ペニシリン/ストレプトマイシン(Invitrogen)を添加した。血清飢餓を、80〜90%コンフルエントで、0.1%ウシ胎仔血清(Valley Biomedical)を添加したEBM2において24時間行った後、殺菌水中の、高度に生成されたpGlcNAc(50μg/mL)ナノファイバ(sNAG)(Marine
Polymer Technologies、Inc.、Danvers、Mass.、 USA提供)で刺激した。この研究において用いたpGlcNAc珪藻植物由来ナノファイバは、より長い形態(NAG)由来の短い生体分解性のファイバであり、平均長さが4〜7μm、及び、ポリマー分子量が約60,000Daである。PD098059(50μM)又はウォルトマンニン(wortmannin)(100μM)を用いた抑制のために、sNAG(50μg/mL)で3時間刺激する前に、45分間細胞を前治療した。
生産者の取扱説明書にしたがって、cDNAをSuperscript First Strand Synthesis Kit (Invitrogen)により、Oligo(dT)を用いて2μg全長RNAから合成した。PCR反応物は、cDNA及び1.25μMの適切なプライマー対(Sigma−Proligo、St.Louis、MO、USA)の同量を含んでいた。この分析で使用した全てのプライマー配列を下記表に示す。
Molecular Imaging System(Hercules、CA、USA)において可視化した。いずれもStratageneから購入したBrilliant CYBR green QPCR kitとMx3000P Real−Time PCR systemとを組み合わせて使用し、リアルタイムPCRを行った。リボソームサブユニットS26を検出するプライマーを内部コントロールとして用いた。
細胞培養物のディフェンシン発現をZeiss Axiovert 100M共焦点顕微鏡を用いて可視化し、水を媒体として用いて、LSM 510カメラ(Zeiss Fluor 63xW/1.2A対物)を用いて、周囲温度で記録した。
6.2.2.1 sNAGで刺激したときディフェンシンを発現及び分泌するケラチン生成細胞及び内皮細胞
この実施例は、sNAG治療がディフェンシン、先天性免疫反応の一部である抗細菌小ペプチドの発現を調節することを実証する。
近年発表されたデータは、一次内皮細胞のsNAG刺激が、インテグリン活性化、Ets1発現及びMAPキナーゼ活性化の増加をもたらすことを示している(Vournakis,J.N.,et al.,2008,J Vasc Res.45(3):222−32)。この発見は、内皮細胞及びショウジョウバエにおいて、Akt1をEts1の上流に位置付ける。ディフェンシン発現に寄与する情報伝達経路の決定を開始するために、sNAG刺激前に、内皮細胞を血清飢餓とし、PI3K(ウォルトマンニン)又はMAPキナーゼ(PD098059)に対する薬理的インヒビターで前処理した。量的リアルタイムPCR分析は、PI3K/Akt経路又はMAPキナーゼ経路の何れかの抑制後に、α−ディフェンシン1のmRNAレベルが、大きく減少したことを示した(図8A)。β−ディフェンシン3のRT−PCR分析は、また、これらの経路の抑制により同様に減少することを示した(図8B)。短期間の内皮細胞のsNAG治療が、Akt1のリン酸化、その活性化の標準指標を導いた(図8C)。Akt1が確かにディフェンシン発現に要求されることを確認するために、Akt1に対するshRNAのレンチウイルス運搬を用いた。スクランブルコントロール(SCR)又はAkt1 shRNAに感染させた後、sNAGで治療した、血清欠乏内皮細胞の定量的RT−PCRによって、Akt1発現がsNAG依存α−ディフェンシン発現に要求されることを確認した(図8D)。βディフェンシンは、内皮細胞において発現することが知られているので、Akt1に対するsgRNAのレンチウイルス運搬を、ヒトケラチン生成細胞(HaCat)において使用した。スクランブルコントロール(SCR)に感染した血清欠乏ケラチン生成細胞のsNAG治療は、Akt1ノックダウンにより排除したβ−ディフェンシン3発現の顕著な増加を引き起こした(図8E)。これらの結果は、sNAG治療が内皮細胞におけるAkt1を活性化することを説明し、sNAG依存ディフェンシン発現が内皮細胞及びケラチン生成細胞の両方において、Akt1を要求することを示唆している。
in vivoでのディフェンシン発現のAkt1依存を確認するために、切除創傷治癒モデルにおいて、野生型及びAkt1欠損動物を用いた。多くの哺乳動物(ヒト、ウサギ及びハムスター)の白血球はα−ディフェンシンを発現するが、マウス白血球はα−ディフェンシンを発現しない。それゆえに、これらのマウスモデルにおいて、β−ディフェンシン発現に注目した。生物分解性の薄膜のような、乾燥形態のsNAGを用いた3日間の皮膚創傷の治療は、野生型動物のケラチン生成細胞におけるβ−ディフェンシン3発現の統計的に顕著な増加をもたらした(図9A)。インボルクリン(Watt,F.M.,1983,J Invest Dermatol.81(1 Suppl):100s−3s)染色(赤)を、ケラチン生成細胞の細胞層を標識するために用い、β−ディフェンシン3の発現が表皮層に制限されていることが示された。sNAG発現がAkt1に依存しているか否かを評価するために、Akt1欠損動物モデルを用いて同様の分析を行った。sNAG膜で治療したAkt1欠損動物からの創傷部において、β−ディフェンシン3発現誘導の顕著な減少が示された(図9A)。β−ディフェンシン3を発現する表皮層をより良く可視化するために、図9Bは、3日目に回収したsNAG治療野生型創傷部の代表的な画像を示している。皮膚創傷のsNAG治療は、主に皮膚の基底層の上におけるβ−ディフェンシン3の発現を誘導する(図9B)。図9cに示す量的分析は、sNAG治療した野生型動物におけるβディフェンシン3の発現が約5倍増加したこと、及び、Akt1がこの増加に要求されることを示した。
先の結果は、糖尿病マウスモデルにおける閉創速度が、sNAG治療に反応して上がったことを示した。sNAGが、野生型動物において同様に影響することを試験した。膜の形状のsNAGで治療した又は治療しないままとした切除創傷を野生型動物から作製した。組織切片を損傷を与えてから1、3及び5日後に取得し、H&E染色の対象にした。図10に示すように、野生型創傷のsNAG治療は、損傷を与えて3日後には、実線に示されるように、完全な閉創をもたらした。これは、コントロールの創傷よりも2日間早く起こった。Akt1欠損動物は閉創の遅れを示し、これらの動物は、損傷を与えてから7日までは、完全に創傷が閉じなかった。Akt1欠損動物の閉創の遅れは、sNAG治療により救済されなかった(データ示さず)。これらの発見は、sNAGはディフェンシン発現を誘引するだけではなく、野生型マウスにおける創傷治癒速度も上げる、新規で効果的な療法であり得ることを示唆する。
ディフェンシンペプチドは、グラム陽性及びグラム陰性細菌に対して活性な抗細菌特性を有することが知られている。sNAGによる内皮細胞の治療は、ディフェンシン発現(α−及びβ−の両方)を増加させ、sNAGの皮膚創傷の治療は、in vivoでのβ−ディフェンシン3の発現を大幅に増加させるので、細菌感染創傷におけるsNAG治療の抗細菌効果を分析した。
ディフェンシンペプチドの添加が、sNAG治療により示されるのと同様に細菌感染を阻止できるか否かを決定するために、野生型マウスに損傷を与え、上述したようにS.アウレアスに感染させた後、3日間、生物学的に活性なヒトβ−ディフェンシン3ペプチド(1.0μm)で治療した。組織生検を組織グラム染色を用いて染色し、CFUを定量した。図11F〜Gは、これらの実験結果を示している。β−ディフェンシン3ペプチドで治療した感染マウスは細菌数が減少し、生存細菌は、sNAGで治療した野生型マウスで示されたのと同様に、約7.5倍減少した(図11G)。
ディフェンシンは分泌されたタンパク質であるので、本発明者らは、β−ディフェンシン3に対する抗体が抗細菌活性を阻害する可能性があるという仮説を立てた。この仮説を試験するために、上述したように創傷部を作製し、S.アウレアスに感染させ、sNAGで治療した。創傷部を、β−ディフェンシン3抗体又はアイソタイプコントロールの何れかを、3日間、1日1回適用して処置した。創傷切片を得て、グラム陽性細菌のために染色した。図13Aに示すように、β−ディフェンシン抗体で治療した創傷由来の切片は、アイソタイプコントロール抗体で治療したものよりもグラム陽性細菌を多く有していた。示した各切片は、痂皮直下の創傷領域由来であった。これらの創傷におけるCFUの定量化は、S.アウレアス感染創傷におけるSNAG治療前のβ−ディフェンシン3の中和は、細菌数の顕著な増加をもたらすことを示した。IgGアイソタイプコントロールで処置した動物は、生存細胞が約5倍減少した(図13B)。総合すると、これらの結果は、sNAG治療が創傷治癒速度を上げることのみならず、内因性抗細菌反応もまた促進し、創傷感染を減少させると同時に早朝治癒を強調する新規な療法としてのこのナノファイバの使用を支持することが示された。
ここに記載した発見は、海洋珪藻植物由来のナノファイバであるsNAGが、創傷感染を減少させると同時に創傷治癒を強調する、新規で効果的な方法として使用し得ることを証明する。このデータは、このFDA承認済みの材料が、現時点では止血剤として使用されているが、一次内皮細胞におけるα型及びβ型の両方のディフェンシンの発現を刺激し、一次ケラチン生成細胞においてβ型ディフェンシンの上方制御を刺激することを証明する。
Immunol.6(4):584−9)。また、αディフェンシンは、抗細菌反応中に分泌される(Ganz,T.,1987,Infect Immun.55(3):568−71)。ウサギ歯槽マクロファージは、ウサギ好中球に匹敵するレベルのα−ディフェンシンを有していることも示されている(Ganz,T.,et al.,1989,J Immunol.143(4):1358−65.)。β−ディフェンシンは、ケラチン生成細胞、粘膜上皮細胞のような上皮細胞型 (Harder,J.,et al.,1997,Nature 387(6636):861; and Harder,
J.,et al.,2001,J Biol Chem.276(8):5707−13)、口腔組織及び唾液分泌物(Mathews,M.,et al.,1999,Infect Immun.67(6):2740−5)、並びに、肝臓において見られ、感染又は炎症性刺激に対する反応において上方制御されることができる(Ganz,T.
and R.I.Lehrer,1994,Curr Opin Immunol.6(4):584−9).ヒトβ−ディフェンシン1(hDEFB1)は、上皮組織における最も重要な抗細菌ペプチドの1つである。ディフェンシン発現及び分泌は、創傷治療を付与するために非常に重要である。ディフェンシンによる抗細菌作用は、先天性免疫の一部であると考えられ、非特異的でかつ広範囲である。それゆえに、後天性の細菌抵抗性は、抗生物質の乱用に見られるように、問題ではない。
F., H. Ogawa, and I. Nagaoka, 2004, Immunology 111(3):273−81)が示している。ヒトβ−ディフェンシン2及び3は、また、マクロファージ、単球及び好中球において発現するレセプターであるCCR2との相互作用によって、走化性を誘引することも示されている(Rohrl,J.,et al.,2010,J Immunol,2010)。興味深いことに、データは、sNAG治療が、内皮細胞におけるα及びβの両方のディフェンシン発現を誘引することを示している。これらを総合すると、最近のデータは、ディフェンシンが、その抗細菌特性によってのみならず、適切な治癒のために他の細胞型では必須の化学走化性によっても、創傷治癒を媒介するかもしれないことを示唆している。しかしながら、β−ディフェンシン3単独の適用は、閉創の向上をもたらさず(図示せず)、ディフェンシン単独の局所投与が、化学的誘引、細胞要求及び閉創のために要求される細胞内相互作用を支持しないことをほのめかしている。
and J.M.Pongubala,2001,J Biol Chem.276(11):8460−8)。一次内皮細胞において、ショウジョウバエ気管成長の間、Akt1は、in vitro及びin vivoの両方において、Ets1の上流であることが示されている(Lavenburg,K.R.,et al.,2003,FASEB J. 17(15):2278−80)。細胞のsNAG刺激は、内皮細胞の移動に要求されるEts1の発現増加をもたらす(おそらくAkt1を介して)(Vournakis,J.N.,et al.,2008,J Vasc Res.45(3):222−32)。
この実施例は、ディフェンシン及びToll様レセプターの数が、ヒト内皮細胞のsNAG治療によって、上方制御されることを証明する。
BSA中で、37℃で48時間ハイブリダイズ)とハイブリダイズさせ、洗浄して乾燥させた。スライドをスキャニングし、Perkin−Elmer スキャンアレイ装置及びScanArray ExpressソフトウェアV3.0, updatedを用いてハイブリダイゼーションを検出した。上方制御遺伝子を同定するために、マイクロアレイデータをAgilent GeneSpring GX v.11 バイオインフォメーションデータ分析を用いて分析した。
(sNAG 10μg/mL 5時間に対するHUVEC反応)
(ABプリズム7000;sNAG(10μg/mL) 5時間 HUVEC)
(HUVEC、sNAG 10μg/mL 5時間)
この実施例は、sNAGナノファイバが、遺伝子発現に対するその効果において、p−GlcNAc長ファイバと異なり、特に、ディフェンシン及びToll様レセプターのいくつかの発現に対するその効果において異なることを証明する。
II aRNA増幅キット(Applied Biosystems)を用いて増幅した。RNA増幅中、LNAGで処理した細胞からのaRNA及びsNAGで処理した細胞からのaRNAを、Cy3又はCy5蛍光染色を用いて異なる標識を付与した。aRNAとハイブリダイズするために、スライドを、RT O/Nにおいてブロッキング溶液(pH8.0、1000mlのdH2O中のSigma Tris生理食塩水バッファ、1%BSAw/v、NaN3 0.05%)中に浸漬した後、洗浄して乾燥させて準備した。異なる標識が付与されたLNAG処理細胞及びsNAG処理細胞からの標的aRNAを同量含むサンプルを混合し、スライド(65μl/スライド;95℃で5分間変性;0.1%SDS及び5XSSC及び1%BSA中で、37℃で48時間ハイブリダイズ)とハイブリダイズさせ、洗浄して染色した。以下の表VIIにおける実施例のグラフにより、実験の構成を説明する:
表VII:
sNAG膜の調製方法。sNAG膜は、以前に記載されたように生成した(Vournakis et al.、米国特許番号5,623,064及び5,624,679を参照、その章の要旨の全てを参照としてここに組み込む)、微小藻類pGlcNAc由来である。簡単に述べると、微小藻類を、定義された成長培地を用いて、独自の生物反応条件において培養した。高密度培養物から微小藻類を回収した後、ファイバを徐々に分離して単離して精製し、注入のために水中に懸濁した純ファイバの群が得られた(wfi)。ファイバを濃縮及びオーブン乾燥させて絆創膏に形成し、包装してガンマ線照射により滅菌した。ファイバサイズは平均20〜50nm×1〜2nm×〜100μmとした。ファイバの束を、化学及び物理試験パラメータを用いて個別に質を制御し、放出前に各束が厳格な純度基準に満たすようにした。最終的な束は、タンパク質、金属イオン及び他の成分が実質的に含まれないことが要求された。その後、ファイバを放射線照射により短くし、sNAG膜を生成した。簡単に述べると、最初の材料は、1mg/mLの濃度のpGlcNAcスラリーを60g含んでいた。pGlcNAcスラリーの濃度を、0.2μmフィルター中で5mLろ過することによって、確認した。15gのpGlcNAcを含む15LのpGlcNAcスラリーを、ウエットケーキが形成されるまで溶かした。その後、ウエットケーキをフォイルポーチ中に移し、対応する容器においてガンマ線照射し、200kGyガンマ線照射の対象にした。他の放射線照射条件を、pGlcNAc組成物におけるその効果を試験するために行い、図14Aに反映させた。
材料及び方法。保管された、複数のドナーからのヒト臍帯血内皮細胞(EC)(Cambrex)を、Cambrexの手順に記載されたように、EC成長培地2SingleQuotsを添加した内皮基礎培地2(Cambrex)中で、5% CO2、37℃に維持した。血清欠乏を0.1%ウシ胎仔血清(Gibco BRL)を添加したRPMI−1640中で80〜90%コンフルエントで24時間行った後、VEGF165(20
ng/ml, R&D Systems)、又は、図中の説明で示す量の、滅菌水中の高度に精製したpGlcNAcナノファイバ若しくはsNAGナノファイバ(Marine Polymer Technologies,Inc.,Danvers,Mass.,USAにより提供)で刺激した。細胞増殖/生存能力評価のために、2つの異なる評価を用いた:血球計を用いて直接細胞数を計数することによるトリパンブルー排除、及び、製造者(Promega)により示された手順におけるMTT[3−(4,5−ジメチルチアゾール−2イル)−2,5−ジフェニルテトラゾリウム臭化物]分析。
pGlcNAcは代謝率に影響を及ぼさなかった。図15に示すように、pGlcNAcは、MTT分析により測定されたより高い代謝率をもたらし、このポリマー材料は、細胞増殖の顕著な増大を引き起こさなかったことが示された。
sNAGは、代謝率の顕著な増加を引き起こした。MTT分析によって測定されたように、50、100又は200μg/mLのsNAGは、VEGFよりも高いEC代謝率をもたらした(図17)。
6.7.1 被験物質
上記項目6.2.1に記載したとおり生成したsNAGを含む被験物質を用いた。被験物質は、Marine Polymer Technologies, Incにより無菌状態で提供された。
被験物質の生適合性試験を、マウス繊維芽細胞L929哺乳動物細胞において行った。被験物質の暴露後48時間において、L929細胞における生物学的反応性は観察されなかった(グレード0)。ポジティブコントロール物質(グレード4)及びネガティブコントロール物質(グレード0)から得た、観察した細胞反応を、適した試験系で確認した。手順の評価基準に基づくと、被験物質は、無毒であり、国際標準化機構(ISO)10993−5ガイドラインの溶出試験の要求にかなうものであった。下記表Xを参照。
6.7.3.1 材料及び方法
局所毒性効果に対する被験物質の能力を評価するために、筋肉内移植試験−ISO−4週間移植(筋肉内移植試験)を用いた。簡単に述べると、ニュージーランド白ウサギの脊椎傍筋肉組織に、4週間、被験物質を移植した。その後、ポジティブコントロールであるサージセル(Surgicel)(Johnson and Johnson、NJ)及びネガティブコントロールである高密度ポリエチレン(ネガティブコントロールプラスチック)の、2つのコントロール物質を用いて、被験物質を別々に評価した。
0=正常
1=穏やか
2=中程度
3=顕著
顕微鏡観察の後、移植材料をin situに残し、移植部位を含む組織スライスを処理した。ヘマトキシリン及びエオシン染色切片の組織学的スライドを、Toxikonによって準備した。光学顕微試験により、スライドを評価及び等級づけした。
1.炎症性反応:
a.多形核白血球
b.リンパ球
c.好酸球
d.プラズマ細胞
e.マクロファージ
f.巨細胞
g.壊死
h.変性
2.治癒反応:
a.線維形成
b.脂肪湿潤。
0=正常
0.5=極僅か
1=穏やか
2=中程度
3=顕著。
0=0mm、領域なし
0.5=0.5mm以下、極僅か
1=0.6〜1.0mm、穏やか
2=1.1〜2.0mm、中程度
3=2.0 mmより大きい、顕著。
1.ISO 10993−6、1994、医療機器の生物学的評価−Part 6:移植後の局所効果のための試験
2.ISO 10993−12、2002、医療機器の生物学的評価−Part 12:サンプル調整及び関連材料
3.ASTM F981−04、2004、筋肉及び骨における材料の効果に関して、手術により移植する生体材料の適合性を評価する標準的技法
4.ASTM F763−04、2004、移植材料の短期間検査のための標準的技法
5.ISO/IEC 17025、2005、試験及び実験室検定の能力のための一般的要件。
1.算出した評価:各移植部位について、総合得点を決定する。各動物からの試験部位の平均得点を、その動物からのコントロール部位の平均得点と比較する。全ての動物の試験部位とコントロール部位との間の平均得点差を算出し、初期生物反応性評価を下記の通り割り当てた:
0〜1.5 反応なし*
>1.5〜3.5 穏やかな反応
>3.5〜6.0 中程度の反応
>6.0 顕著な反応
*マイナスの計算結果はゼロ(0)として報告。
結果は、試験物質が、移植から4週間、ポジティブコントロールであるサージセルと比較して反応性を示さなかったこと(生物反応性評価は0.2)、並びに、ネガティブコントロールである高密度ポリエチレン(ネガティブコントロールプラスチック)と比較して反応性を示さなかったこと(生物反応性評価は0.0)を、示唆している。
注入(NaCl)のためのUSP 0.9% 塩化ナトリウム及び試験物質の綿実油(CSO)抽出物について、ニュージーランド白ウサギにおける皮内注入後の炎症発生に対する能力を評価した。試験物質注入部位は、コントロール物質注入部位よりも顕著に優れた生物学的反応性を示さなかった。慣例の基準に基づけば、試験物質は炎症性に関して無視してよいと考えられ、ISO 10993−10ガイドラインの要求を満たしている。結果を以下の表XIIIに示す。
注入(NaCl)のためのUSP 0.9% 塩化ナトリウム及び試験物質の綿実油(CSO)抽出物は、Hartleyギニーピッグにおける、誘発(0%感作)した後に導入段階を行ったとき、皮内反応を誘発しなかった。それゆえに、クリグマンの評価システムにより定義する場合、これは、グレードI反応であり、試験物質は、弱いアレルギー反応性を有するものとして分類される。慣例の基準に基づけば、グレードIの感作率は顕著であるとは考えられず、かつ、試験物質は、ISO 10993−10ガイドラインンの要求を満たしている。結果を以下の表XIVに示す。
この実施例は、sNAGナノファイバが、特に、in vivoで単純疱疹ウイルスに対して、有力な抗ウイルス効果を有することを証明する。特に、この実施例は、sNAGナノファイバをヒト患者のヘルペス感染部位に局所投与したときに、HSV感染が関連するヘルペスの治療に効果的であることを示す。特に、この実施例は、sNAGナノファイバを含む組成物によるヒト患者の局所治療により、HSV感染に関連する痛みを軽減し、かつ、ヘルペス症状の持続期間を短縮させることを証明する。
単純疱疹円唇化は、人口の20〜40%に影響すると見積もられる一般的な感染である(Spruance、1992;Lowhagen、2002)。これらの感染の大多数は、単純疱疹タイプIによるものであり、単純疱疹タイプIIに由来するのはより少ない。
初期の終点。この実験の初期の目的は、口周囲のヘルペス円唇化病斑の治療におけるsNAGナノファイバの効果を調査すること、並びに、sNAGナノファイバで治療した対象における、口周囲のヘルペス円唇化病斑の治療における、sNAGナノファイバの効果を調査することであった。
下記の全ての基準を満たす患者が、研究対象に加えるために適任であった。
2.直近12か月以内に、唇及び/又は唇周囲の皮膚に3回以上ヘルペスが再発した病歴により定義される、ヘルペス円唇化の再発を有する。
それぞれ200μL(sNAG濃度 50mg/mL)含む5つのプラスチックチューブに、sNAGナノファイバを、供給した。
10人の対象(ヒト患者)が実験に参加した。sNAGナノファイバ(使用したsNAGナノファイバの大多数は、長さ約1〜15μmであった)を、連続して5晩、1晩1回、就寝直前にヘルペスに添加した。
実験チームは、表XVに示すヘルペス臨床評価尺度に基づいて、実験に参加した対象の疱疹性潰瘍を評価した。
表XVI:実験終了時の調査者による治療の総合評価
10人の患者を上述した実験に加え、実験を終了した。調査チームは、これらの患者のヘルペスの臨床評価が確定した後、患者が所定の治療を行ったことを確認した。
Spruance SL.The natural history of recurrent oral−facial herpes simplex virus infection.Semin Dermatol 1992;11:200−206.
Lowhagen GB,Bonde E,Eriksson B,Nordin P,Tunback P,Krantz I.Self−reported herpes
labialis in a Swedish population.Scand J Infect Dis 2002;34:664−667.
Harmenberg J,Oberg B,Spruance S.Prevention of ulcerative lesions by episodic treatment of recurrent herpes labialis:A literature review.Acta Derm Venereol.2010
Mar;90(2):122−30.
Hull C,McKeough M,Sebastian K,Kriesel J,Spruance S.Valacyclovir and topical clobetasol gel for the episodic treatment of herpes labialis:a patient−initiated,double−blind,placebo−controlled pilot trial.J Eur Acad Dermatol Venereol.2009 Mar;23(3):263−7.
6.9 実施例9:in vivoの炎症性腸疾患の治療に効果的なsNAGナノファイバ
この実施例は、sNAGナノファイバが、炎症性腸疾患の進行治療及び/又は予防に効果的であることを示す。特に、この実施例は、sNAGナノファイバの直腸投与が、疾患の動物モデルにおいて化学的に誘引した炎症性腸疾患に関連する炎症の治療及び/又は予防に効果的であることを示す。
死亡率及び生活の質に顕著に影響する一般的な慢性炎症性疾患の1つは、クローン病及び潰瘍性大腸炎(UC)を含む炎症性腸疾患(IBD)である。この疾患の病理生理学に関連して、例えば、初期の要因は何なのか、並びに、疾患がどのように慢性炎症、損傷した組織の効果のない回復及び治癒不全に進行するのかのような、2つの主要な疑問点がある。近年、2番目の疑問点への関心が高まり、疾患の効果的な治療及び生活の質の向上を実現可能な衝撃的な新たな発見につながっている。
この実験に用いたモデルは、マウスに7日間飲料水を介して3%DSS(デキストラン硫酸ナトリウム)の投与からなるDSS−誘引潰瘍性大腸炎モデルである。炎症反応のピークを7日目に観察し、その後、損傷した直腸組織の修復期間、並びに、直腸疾患への最終的な再生若しくは進行及び線維形成の進行を観察した。
図21及び22は、炎症性腸疾患のDSS誘引マウスモデルにおいて、sNAGナノファイバによる治療が:コントロールマウスと比較して、炎症反応の顕著な減少(発表された組織学的基準により判断);並びに、腸内上皮を含む支持組織を再生するための再生メカニズムと協調して作用する、DSS大腸炎の亜急性段階における予防効果、をもたらすことを示す。
この明細書に記載した論文、特許及び特許出願のような全ての参照文献の開示の全てを、まるで個々の論文又は特許出願のそれぞれが、特に及び個別に、参照として組み込むことが示されているように、参照としてここに組み込む。本発明は、明確な理解の目的のための図面及び実施例により、いくつかの詳細が記載されているが、本発明の教示の観点から、単に当業者に明らかにするためのものであり、特定の変更及び修正は、特許請求の範囲に記載した精神又は範囲から離れることなく加えられ得る。
Claims (26)
- ヒト対象におけるウイルス感染を治療する方法であって、
ウイルス感染を有するヒト対象に、sNAGナノファイバを含む組成物を局所投与する工程を包含し、50%を超える上記sNAGナノファイバは、長さが約1から15μmの間であり、
上記sNAGナノファイバは、
(a)筋肉内移植試験において試験したときに非反応性であり、かつ
(b)MTT分析において血清欠乏ヒト臍帯静脈内皮細胞の代謝率を向上させる、及び/又は、トリパンブルー排除試験において血清欠乏ヒト臍帯静脈内皮細胞のアポトーシスを救済しない、方法。 - ヒト対象におけるウイルス疾患を予防する方法であって、
ウイルス疾患が進行する危険性のあるヒト対象に、sNAGナノファイバを含む組成物を局所投与する工程を包含し、50%を超える上記sNAGナノファイバは、長さが約1から15μmの間であり、
上記sNAGナノファイバは、
(a)筋肉内移植試験において試験したときに非反応性であり、かつ
(b)MTT分析において血清欠乏ヒト臍帯静脈内皮細胞の代謝率を向上させる、及び/又は、トリパンブルー排除試験において血清欠乏ヒト臍帯静脈内皮細胞のアポトーシスを救済しない、方法。 - 上記ウイルス感染又は上記ウイルス疾患は、局所的なウイルス感染又は局所的なウイルス疾患である、請求項1又は2に記載の方法。
- 上記ウイルス感染は、HSV感染である、請求項1又は2に記載の方法。
- sNAGナノファイバを含む上記組成物は、上記対象の皮膚又は粘膜に投与される、請求項1〜4のいずれか1項に記載の方法。
- sNAGナノファイバを含む上記組成物は、上記ウイルス感染又は上記ウイルス疾患の症状のある部位又はその近傍に局所投与される、請求項1〜5のいずれか1項に記載の方法。
- 上記ウイルス感染又は上記ウイルス疾患の症状は、発疹、病斑、ヘルペス、水疱、丘疹、小胞又は痂皮である、請求項6の方法。
- ヒト対象における固形癌を治療する方法であって、
固形癌であると診断されたヒト対象に、sNAGナノファイバを含む組成物を局所投与する工程を包含し、50%を超える上記sNAGナノファイバは、長さが約1から15μmの間であり、
上記sNAGナノファイバは、
(a)筋肉内移植試験において試験したときに非反応性であり、かつ
(b)MTT分析において血清欠乏ヒト臍帯静脈内皮細胞の代謝率を向上させる、及び/又は、トリパンブルー排除試験において血清欠乏ヒト臍帯静脈内皮細胞のアポトーシスを救済しない、方法。 - ヒト対象においてクローン病を治療する方法であって、
クローン病を有するヒト対象に、sNAGナノファイバを含む組成物を局所投与する工程を包含し、50%を超える上記sNAGナノファイバは、長さが約1から15μmの間であり、
上記sNAGナノファイバは、
(a)筋肉内移植試験において試験したときに非反応性であり、かつ
(b)MTT分析において血清欠乏ヒト臍帯静脈内皮細胞の代謝率を向上させる、及び/又は、トリパンブルー排除試験において血清欠乏ヒト臍帯静脈内皮細胞のアポトーシスを救済しない、方法。 - ヒト対象において炎症性腸疾患を治療する方法であって、
炎症性腸疾患を有するヒト対象に、sNAGナノファイバを含む組成物を局所投与する工程を包含し、50%を超える上記sNAGナノファイバは、長さが約1から15μmの間であり、
上記sNAGナノファイバは、
(a)筋肉内移植試験において試験したときに非反応性であり、かつ
(b)MTT分析において血清欠乏ヒト臍帯静脈内皮細胞の代謝率を向上させる、及び/又は、トリパンブルー排除試験において血清欠乏ヒト臍帯静脈内皮細胞のアポトーシスを救済しない、方法。 - 上記炎症性腸疾患は潰瘍性大腸炎である、請求項10に記載の方法。
- sNAGナノファイバを含む上記組成物は、上記対象の肛門又は直腸内に投与される、請求項9〜11のいずれか1項に記載の方法。
- ヒト対象において皮膚炎又は乾癬である疾患を治療する方法であって、
皮膚炎又は乾癬を有するヒト対象に、sNAGナノファイバを含む組成物を局所投与する工程を包含し、50%を超える上記sNAGナノファイバは、長さが約1から15μmの間であり、
上記sNAGナノファイバは、
(a)筋肉内移植試験において試験したときに非反応性であり、かつ
(b)MTT分析において血清欠乏ヒト臍帯静脈内皮細胞の代謝率を向上させる、及び/又は、トリパンブルー排除試験において血清欠乏ヒト臍帯静脈内皮細胞のアポトーシスを救済しない、方法。 - sNAGナノファイバを含む上記組成物は、皮膚炎又は乾癬の症状のある部位に局所投与される、請求項13の方法。
- 上記sNAGナノファイバは、膜、粉、懸濁液、溶液、軟膏、クリーム、スプレー又はゲルとして形成されている、請求項1〜14のいずれか1項に記載の方法。
- 上記固形癌の全て又は一部は外科手術により除去されている、請求項8に記載の方法。
- 上記sNAGナノファイバは、上記外科手術前、間及び/又は後に、上記固形癌の部位に投与される、請求項16に記載の方法。
- 上記sNAGナノファイバは座薬として形成されている、請求項9〜12のいずれか1項に記載の方法。
- 50%を超える上記sNAGナノファイバは、長さが約2から10μmの間である、請求項1〜18のいずれか1項に記載の方法。
- 50%を超える上記sNAGナノファイバは、長さが約4から7μmの間である、請求項1〜18のいずれか1項に記載の方法。
- 100%の上記sNAGナノファイバは、長さが約1から15μmの間である、請求項1〜18のいずれか1項に記載の方法。
- 上記sNAGナノファイバは、ポリ−N−アセチルグルコサミン及び/又はその誘導体のガンマ線照射により生成され、
上記ポリ−β−N−アセチルグルコサミン及び/又はその誘導体は、乾燥ファイバの形態で500〜2,000kgyにおいて放射線照射される、又は
上記ポリ−N−アセチルグルコサミン及び/又はその誘導体は、ウエットファイバの状態で100〜500kgyにおいて放射線照射される、
請求項1〜21のいずれか1項に記載の方法。 - 上記sNAGナノファイバは、微小藻類のポリ−N−アセチルグルコサミンから生成された、請求項1〜22のいずれか1項に記載の方法。
- 上記sNAGナノファイバは、N−アセチルグルコサミン単糖類及び/又はグルコサミン単糖類を含み、70%を超える上記sNAGナノファイバの上記単糖類は、N−アセチルグルコサミン単糖類である、請求項1〜23のいずれか1項に記載の方法。
- 上記sNAGナノファイバは、N−アセチルグルコサミン単糖類及び/又はグルコサミン単糖類を含み、90%を超える上記sNAGナノファイバの上記単糖類は、N−アセチルグルコサミン単糖類である、請求項1〜23のいずれか1項に記載の方法。
- 上記sNAGナノファイバは、N−アセチルグルコサミン単糖類及び/又はグルコサミン単糖類を含み、95%を超える上記sNAGナノファイバの上記単糖類は、N−アセチルグルコサミン単糖類である、請求項1〜23のいずれか1項に記載の方法。
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