JP2011141287A - 腹圧性尿失禁の予防・治療剤及びそのスクリーニング方法 - Google Patents

Abstract

【課題】腹圧性尿失禁治療薬を効率よくスクリーニングできる新たな評価系および優れた腹圧性尿失禁治療薬を提供する。
【解決手段】セロトニン５-ＨＴ_２Ｃ受容体を活性化する物質を含有してなる腹圧性尿失禁の予防・治療剤、アンドロゲン結合部位を刺激する物質を含有してなる腹圧性尿失禁の予防・治療剤及び動物の腹筋もしくはそれを支配する神経を電気刺激して腹圧を上昇させ、この時の漏出時圧（leak point pressure）を測定することを特徴とする腹圧性尿失禁予防・治療薬のスクリーニング方法を提供する。
【選択図】なし

Description

本発明は、腹圧上昇時の漏出時圧を増大する物質を含有してなる腹圧性尿失禁予防・治療剤及び腹圧性尿失禁予防・治療薬のスクリーニング方法などに関する。

「腹圧性尿失禁」とは、咳、くしゃみ、いきみあるいは階段昇降などの軽い運動や重い荷物を持つ等により腹圧が一過性に上昇した時に尿が漏れる症状を特徴とする疾患であり、尿禁制機構の障害である。この疾患は、女性に多く、出産や加齢により骨盤底筋群が弱体化し、膀胱及び尿道を含む骨盤底内の臓器の解剖学的位置が変化するために起こるとされている（例えば、“Ｔｈｅ Ｊｏｕｒｎａｌ ｏｆ Ｆａｍｉｌｙ Ｐｒａｃｔｉｃｅ”、１９８２年、第１４巻、ｐ．９３５−９３６参照）。急激な腹圧上昇により膀胱内圧が上昇する場合には、腹圧が受動的に膀胱及び尿道に伝わるとともに、神経系を介して骨盤底筋群及び外尿道括約筋が能動的に収縮し、尿禁制を保つと考えられている（例えば、“Ｔｈｅ Ｊｏｕｒｎａｌ ｏｆ Ｕｒｏｌｏｇｙ”、１９８２年、第１２７巻、ｐ．１２０２−１２０６参照）。腹圧性尿失禁は出産や加齢により骨盤底筋群や外尿道括約筋が弱体化することがその一因と考えられており、腹圧性尿失禁の患者では反射性の尿禁制機構が障害されている可能性が報告されている（例えば、“Ｂｒｉｔｉｓｈ Ｊｏｕｒｎａｌ ｏｆ Ｕｒｏｌｏｇｙ”、１９９４年、第７３巻、ｐ．４１３−４１７参照）。

ヒトを含む哺乳動物において、尿禁制機構が無傷の場合、急激な腹圧の上昇に伴う膀胱内圧の上昇はそれに拮抗する尿道内圧の反射性上昇により尿漏れが回避される。一方、例えば、反射に関る神経回路の障害や尿道内圧上昇に関る筋群の収縮力低下など尿禁制機構に関る一部にでも障害がある場合、急激な腹圧の上昇に伴う膀胱内圧の上昇に尿道内圧の反射性上昇が抗いきれず尿漏れが起きる。したがって、腹圧性尿失禁治療薬をスクリーニングするためには、このような病態を反映した評価系が重要である。

ヒトの腹圧性尿失禁患者に経産婦が多いこと、その頻度が閉経後に高くなることから、出産に伴う外傷ならびに女性ホルモンの低下が関っているとされ、動物に雌ラットを用い、経産又は処女の状態での膣拡張、卵巣摘出、あるいはこれらの組み合わせによりモデルラットが作出されているのが現状である（例えば、“Ｕｒｏｌｏｇｙ”、１９９８年、第５２巻、ｐ．１４３−１５１、及び“Ｔｈｅ Ｊｏｕｒｎａｌ ｏｆ Ｕｒｏｌｏｇｙ”、２００１年、第１６６巻、ｐ．３１１−３１７参照）。臨床において腹圧性尿失禁の診断に使用される評価項目に、蓄尿期の尿道抵抗を示す漏出時圧（ｌｅａｋ ｐｏｉｎｔ ｐｒｅｓｓｕｒｅ）が使用されているが、動物実験においては、排尿反射が起きない条件下で膀胱内に徐々に食塩水を注入し尿道から食塩水が漏れ出る時点での膀胱内圧（ｍｏｄｉｆｉｅｄ ｌｅａｋ ｐｏｉｎｔ ｐｒｅｓｓｕｒｅ）測定あるいは膀胱をその容量の半量に満たした状態で腹壁を電気刺激して膀胱内圧を上昇させるか鼻腔粘膜を頬髭で刺激しくしゃみを惹起し尿漏れの有無を観察する方法が一般的である（例えば、“Ｕｒｏｌｏｇｙ”、１９９８年、第５２巻、ｐ．１４３−１５１、及び“Ｔｈｅ Ｊｏｕｒｎａｌ ｏｆ Ｕｒｏｌｏｇｙ”、２００１年、第１６６巻、ｐ．３１１−３１７参照）。しかし、前者の測定では膀胱内圧の上昇は持続的かつ緩徐であり、腹圧性尿失禁を惹起する急激な膀胱内圧の上昇を反映しているとは考え難く、また、後者では腹圧性尿失禁の有無を検出するだけであり、病態の程度を定量的に表わすとは言い難い。また、麻酔ラットでくしゃみを誘発し、その時の漏出時圧（ｓｎｅｅｚｅ ｌｅａｋ ｐｏｉｎｔ ｐｒｅｓｓｕｒｅ）を測定する方法も報告されているが（例えば、“Ａｍｅｒｉｃａｎ Ｊｏｕｒｎａｌ ｏｆ Ｐｈｙｓｉｏｌｏｇｙ−Ｒｒｅｇｕｌａｔｏｒｙ， Ｉｎｔｅｇｒａｔｉｖｅ ａｎｄ Ｃｏｍｐａｒａｔｉｖｅ Ｐｈｙｓｉｏｌｏｇｙ”、２００３年、第２８５巻、ｐ．Ｒ３５６−Ｒ３６５６参照）、膀胱内圧の上昇程度はくしゃみの大きさに依存し、制御がむずかしい。尿禁制保持のメカニズムを調べる目的で、麻酔イヌでくしゃみをさせ尿道内圧等を測定している報告がある（例えば、“Ｔｈｅ Ｊｏｕｒｎａｌ ｏｆ Ｕｒｏｌｏｇｙ”、１９８２年、第１２７巻、ｐ．１２０２−１２０６、及び“Ｕｒｏｌｏｇｉａ ｉｎｔｅｒｎａｔｉｏｎａｌｉｓ”、１９８７年、第４２巻、ｐ．１９５−２００参照）。しかし、これらの報告においては、尿道局所の圧変化を測定しており、腹圧上昇時の尿道全体の抵抗を評価している訳ではない。
また、動物に電気刺激を与え、尿漏れの有無のみを測定する方法が報告されている（“Ｉｎｔｅｒｎａｔｉｏｎａｌ Ｕｒｏｇｙｎｅｃｏｌｏｇｙ Ｊｏｕｒｎａｌ”、２００１年，第１２巻，ｐ１７０−１７７参照）。
さらに、小型哺乳動物において、骨盤底筋群の反射性収縮力を尿道内圧で測定することを特徴とする腹圧性尿失禁予防・治療薬のスクリーニング方法が報告されている（特開２００４−１５９９１９号公報参照）。

セロトニン５−ＨＴ_２Ｃ受容体に結合する化合物は多数知られており、ＷＯ０２／０４０４５７号公報、ＷＯ０２／０８３８６３号公報、ＷＯ０３／０９７６３６号公報、ＷＯ０４／０００８２９号公報、ＷＯ０４／０００８３０号公報、及びＷＯ０２／００８１７８号公報には、セロトニン５−ＨＴ_２Ｃ受容体に結合する化合物が尿失禁等の治療に有用であることが記載されているが、腹圧性尿失禁に対する治療効果については記載されていない。
ＷＯ９９／２０２７９号公報には、セロトニン取り込み阻害薬が尿失禁の治療に有用であることが記載されている。
特開平７−１８８００３号公報には、セロトニン取り込み阻害薬であるデュロキセチンが切迫性失禁、ストレス性失禁の治療に有用であることが記載されている。

新たな腹圧性尿失禁治療薬をスクリーニングする上で、簡便で有用かつ効率的なインビボ評価系を構築することは重要な課題である。しかし、急激な腹圧上昇に基づく膀胱内圧上昇による漏出時圧を動物で測定するような薬効評価系は、くしゃみ漏出時圧を除いては確立されていないのが現状である。そして、そのくしゃみ漏出時圧についても、くしゃみの誘発及び膀胱内圧上昇程度の制御が難しく、スクリーニングに適した簡便な方法ではない。
腹圧性尿失禁治療薬を効率よくスクリーニングできる新たな評価系が構築されれば、優れた腹圧性尿失禁治療薬を提供することができる。

本発明者らは、上記の課題を解決するために鋭意研究を重ねた結果、麻酔雌性ラットの腹壁を電気刺激して腹圧上昇を介して膀胱内圧を上昇せしめて尿漏れを惹起させることによって漏出時圧の測定を可能にした。この腹壁電気刺激による漏出時圧は、膀胱からの知覚神経を含む骨盤神経を両側切断することにより顕著に低下することから、膀胱圧迫による反射性尿道収縮反応が関与する評価項目であり、この評価項目を導入することにより腹圧性尿失禁治療薬の新たなインビボ薬効評価方法が提供されることを見出した。さらに、本発明者らは、このインビボ薬効評価方法等を用いることによって、セロトニン５−ＨＴ_２Ｃ受容体を活性化する物質やアンドロゲンが尿道抵抗を増大して、腹圧性尿失禁を予防・治療できることを見出した。本発明者らは、これらの知見に基づいて、さらに検討を重ねた結果、本発明を完成するに至った。

すなわち、本発明は、以下のとおりである。
〔１〕セロトニン５−ＨＴ_２Ｃ受容体を活性化する物質を含有してなる腹圧性尿失禁の予防・治療剤、
〔２〕セロトニン５−ＨＴ_２Ｃ受容体を活性化する物質がセロトニン５−ＨＴ_２Ｃ受容体アゴニストである上記〔１〕記載の予防・治療剤、
〔３〕アンドロゲン結合部位を刺激する物質を含有してなる腹圧性尿失禁の予防・治療剤、
〔４〕哺乳動物に対して、セロトニン５−ＨＴ_２Ｃ受容体を活性化する物質の有効量を投与することを特徴とする腹圧性尿失禁の予防・治療方法、
〔５〕セロトニン５−ＨＴ_２Ｃ受容体を活性化する物質がセロトニン５−ＨＴ_２Ｃ受容体アゴニストである上記〔４〕記載の方法、
〔６〕アンドロゲン結合部位を刺激する物質の有効量を投与することを特徴とする腹圧性尿失禁の予防・治療方法、
〔７〕腹圧性尿失禁の予防・治療剤を製造するためのセロトニン５−ＨＴ_２Ｃ受容体を活性化する物質の使用、
〔８〕セロトニン５−ＨＴ_２Ｃ受容体を活性化する物質がセロトニン５−ＨＴ_２Ｃ受容体アゴニストである上記〔７〕記載の使用、
〔９〕腹圧性尿失禁の予防・治療剤を製造するためのアンドロゲン結合部位を刺激する物質の使用、
〔１０〕動物の腹筋もしくは横隔膜又はそれらを支配する神経を電気刺激して腹圧を上昇させ、この時の漏出時圧（ｌｅａｋ ｐｏｉｎｔ ｐｒｅｓｓｕｒｅ）を測定することを特徴とする腹圧上昇時の漏出時圧を増大する物質のスクリーニング方法、
〔１１〕動物の腹筋もしくは横隔膜又はそれらを支配する神経を電気刺激して腹圧を上昇させ、この時の漏出時圧（ｌｅａｋ ｐｏｉｎｔ ｐｒｅｓｓｕｒｅ）を測定することを特徴とする腹圧性尿失禁予防治療薬のスクリーニング方法、
〔１２〕腹圧上昇時の漏出時圧が低下状態にある上記〔１０〕又は〔１１〕記載の方法、
〔１３〕腹圧上昇時の漏出時圧の低下状態が、骨盤底筋群あるいは外尿道括約筋の反射性収縮に関与する神経の切断もしくは損傷、出産、卵巣摘出術、機械的な膣拡大処置、糖尿病、薬物投与又はそれらの組み合わせに基づくものである上記〔１２〕記載の方法、
〔１４〕動物が雌性である上記〔１０〕又は〔１１〕記載の方法に関する。

図１は、ウレタン麻酔雌性ラットにおける膀胱内圧上昇に誘発される尿道収縮反応に対するデュロキセチンの作用の典型例を示す。

以下本発明の内容を詳細に説明する。
本発明の腹圧性尿失禁の予防・治療剤に用いられる物質（以下、本発明の物質と略記する）は、腹圧上昇時の尿道抵抗を増大する物質である。
腹圧上昇時の尿道抵抗を増大する物質は、例えば、後述する本発明のスクリーニング方法などを用いて得られうる腹圧上昇時の漏出時圧（ｌｅａｋ ｐｏｉｎｔ ｐｒｅｓｓｕｒｅ；尿道抵抗を示す）を上昇させる物質であり、骨盤底筋群や尿道の反射性収縮を増強する物質、骨盤底筋群及び尿道の重量を増大させる物質などが挙げられる。

より具体的には、本発明の腹圧性尿失禁の予防・治療剤に用いられる物質としては、セロトニン５−ＨＴ_２Ｃ受容体を活性化する物質、アンドロゲン結合部位を刺激する物質などが好ましく用いられる。

セロトニン５−ＨＴ_２Ｃ受容体を活性化する物質としては、例えば、セロトニン５−ＨＴ_２Ｃ受容体アゴニスト（部分アゴニストを含む）、セロトニン５−ＨＴ_２Ｃ受容体部分アンタゴニスト、なかでもセロトニン５−ＨＴ_２Ｃ受容体アゴニスト（特にフルアゴニスト）が好ましく用いられる。

セロトニン５−ＨＴ_２Ｃ受容体アゴニストは、例えば、結合試験による５０％阻害濃度（ＩＣ_５０）が約１０００ｎＭ以下、好ましくは約１００ｎＭ以下の阻害活性を有するものがより好ましい。具体的には、セロトニン_２Ｃ受容体アゴニストとしては、ＥＰ０５７２８６３、ＥＰ０８６３１３６、ＥＰ１２１３０１７、ＵＳＰ３２５３９８９、ＵＳＰ３６７６５５８、ＵＳＰ３６５２５８８、ＵＳＰ４０８２８４４、ＵＳＰ４９７１９６９、ＵＳＰ５４９４９２８、ＵＳＰ５６４６１７３、ＵＳＰ６３１０２０８、ＷＯ９７／４２１８３、ＷＯ９８／３０５４６、ＷＯ９８／３０５４８、ＷＯ９８／３３５０４、ＷＯ９９／０２１５９、ＷＯ９９／４３６４７（ＵＳＰ６２８１２４３）、ＷＯ００／１２４７５（ＵＳＰ６３８０２３８）、ＷＯ００／１２５０２（ＵＳＰ６３６５５９８）、ＷＯ００／１２５１０（ＵＳＰ６４３３１７５）、ＷＯ００／１２４７５、ＷＯ００／１２４８１（ＵＳＰ６５５２０６２）、ＷＯ００／１２４８２、ＷＯ００／１２５０２、ＷＯ００／１６７６１、ＷＯ００／１７１７０、ＷＯ００／２８９９３、ＷＯ００／３５９２２（ＵＳＰ６３７２７４５）、ＷＯ００／４４７３７、ＷＯ００／４４７５３、ＷＯ００／６４８９９、ＷＯ００／７７００１、ＷＯ００／７７００２、ＷＯ００／７７０１０、ＷＯ００／７６９８４（ＵＳＰ６４６５４６７）、ＷＯ０１／０９１１１、ＷＯ０１／０９１２２、ＷＯ０１／０９１２３（ＵＳＰ６６３８９３６）、ＷＯ０１／０９１２６、ＷＯ０１／１２６０２、ＷＯ０１／１２６０３（ＵＳＰ６７０６７５０）、ＷＯ０１／４０１８３、ＷＯ０１／６６５４８（ＵＳＰ６５８３１３４）、ＷＯ０１／７０２０７、ＷＯ０１／７０２２３、ＷＯ０１／７２７５２（ＵＳＰ６７３４３０１）、ＷＯ０１／８３４８７、ＷＯ０２／０４４５６、ＷＯ０２／０４４５７、ＷＯ０２／０８１７８、ＷＯ０２／１０１６９、ＷＯ０２／２４７００、ＷＯ０２／２４７０１、ＷＯ０２／３６５９６、ＷＯ０２／４０４５６、ＷＯ０２／４０４５７、ＷＯ０２／４２３０４、ＷＯ０２／４４１５２（ＵＳＰ６４７９５３４）、ＷＯ０２／４８１２４、ＷＯ０２／５１８４４（ＵＳＰ６６１０６８５）、ＷＯ０２／５９１２４、ＷＯ０２／５９１２７、ＷＯ０２／５９１２９、ＷＯ０２／７２５８４、ＷＯ０２／７４７４６、ＷＯ０２／８３８６３、ＷＯ０２／９８３５０、ＷＯ０２／９８４００、ＷＯ０２／９８８６０、ＷＯ０３／００６６３、ＷＯ０３／００６６６、ＷＯ０３／０４５０１、ＷＯ０３／０６４６６、ＷＯ０３／１１２８１、ＷＯ０３／１４１１８、ＷＯ０３／１４１２５、ＷＯ０３／２４９７６、ＷＯ０３／２８７３３、ＷＯ０３／３３４９７、ＷＯ０３／５７１６１、ＷＯ０３／５７２１３、ＷＯ０３／５７６７３、ＷＯ０３／５７６７４、ＷＯ０３／６２２０５、ＷＯ０３／６４４２３、ＷＯ０３／８６３０６、ＷＯ０３／８７０８６、ＷＯ０３／８９４０９、ＷＯ０３／９１２５０、ＷＯ０３／９１２５１、ＷＯ０３／９１２５７、ＷＯ０３／９７６３６、ＷＯ０４／００８２９、ＷＯ０４／００８３０（ＵＳＰ６６６７３０３）、ＷＯ０４／５６３２４、ＷＯ０４／７８７１８、ＷＯ０４／８１０１０、ＷＯ０４／０８７１５６、ＷＯ０４／８７６６２、ＷＯ０４／８７６９２、ＷＯ０４／８９８９７、ＷＯ０４／０９６１９６、ＷＯ０４／９６２０１、ＷＯ０４／１１２７６９、ＵＳ２００４１９２７５４、ＷＯ０５／００８４９、ＷＯ０５／０３０９６、ＥＰ１５００３９１、ＷＯ０５／１６９０２、ＷＯ０５／１９１８０、ＵＳ２００５０８００７４、ＷＯ０５／４０１４６、ＷＯ０５／４１８５６、ＷＯ０５／４２４９０、ＷＯ０５／４２４９１、ＷＯ０５／４４８１２などに記載の化合物が用いられる。

これらの中でも、特に、
（１）ＷＡＹ−１６１５０３

（２）ｍ−ＣＰＰ

（３）ＰＮＵ−２２３９４Ａ

（４）Ｒｏ６０−０１７５

（５）ＯＲＧ−１２９６２

（６）Ｎｏｒｄｅｘｆｅｎｆｌｕｒａｍｉｎｅ

（７）ＭＫ−２１２

（８）Ｏｘａｆｌｏｚａｎｅ

（９）ＷＯ００／１２５１０（ＵＳＰ６４３３１７５）に記載されている下記構造式で表される化合物

（１０）ＷＯ０２／５１８４４（ＵＳＰ６６１０６８５）に記載されている下記構造式で表される化合物

（１１）ＷＯ０１／６６５４８（ＵＳＰ６５８３１３４）に記載されている下記構造式で表される化合物

（１２）ＷＯ００／１２４８２に記載されている下記構造式で表される化合物

（１３）ＷＯ０３／２４９７６に記載されている下記構造式で表される化合物

（１４）ＡＬＸ−２２１８

（１５）ＡＬＸ−２２２６

（１６）Ｒｏ６０−０３３２

（１７）ＶＥＲ−２６９２

（１８）ＶＥＲ−６９２５

（１９）ＶＥＲ−７３９７

（２０）ＶＥＲ−７４９９

（２１）ＶＥＲ−７４４３

（２２）ＶＥＲ−３９９３

（２３）ＹＭ−３４８

（２４）ＷＯ０３／５７２１３に記載されている下記構造式で表される化合物

（２５）ＷＯ０３／５７６７４に記載されている下記構造式で表される化合物

（２６）ＷＯ０２／９８８６０に記載されている下記構造式で表される化合物

（２７）ＶＥＲ−５５９３

（２８）ＶＥＲ−５３８４

（２９）ＶＥＲ−３３２３

（３０）ＷＯ０２／４４１５２（ＵＳＰ６４７９５３４）に記載されている下記構造式で表される化合物

（３１）ＷＯ０／４４７３７に記載されている下記構造式で表される化合物

（３２）ＡＰＤ−３５６
（３３）ＡＲ−１０Ａ
（３４）ＷＯ０２／４０４５６に記載されている下記構造式で表される化合物

（３５）ＢＶＴ−９３３
（３６）ＷＯ０２／０８１７８に記載されている下記構造式で表される化合物

（３７）ＰＮＵ−２４３９２２

（３８）ＷＯ０３／００６６６に記載されている下記構造式で表される化合物

（３９）ＷＯ０１／０９１２３（ＵＳＰ６６３８９３６）に記載されている下記構造式で表される化合物

（４０）ＷＯ０１／０９１２２に記載されている下記構造式で表される化合物

（４１）ＷＯ０１／０９１２６に記載されている下記構造式で表される化合物

（４２）Ｏｒｇ−３７６８４

（４３）Ｏｒｇ−３６２６２（Ｒｏ６０−０５２７）

（４４）ＥＰ０５７２８６３に記載されている下記構造式で表される化合物

（４５）Ｒｏ６０−００１７（Ｏｒｇ−３５０１３）

（４６）ＶＥＲ−３８８１

（４７）ＷＯ０２／７２５８４に記載されている下記構造式で表される化合物

（４８）Ｒｏ０７２１２５６

（４９）ＰＮＵ−１８１７３１Ａ

（５０）ＷＯ０２／５９１２７に記載されている下記構造式で表される化合物

（５１）ＷＯ０３／１４１１８に記載されている下記構造式で表される化合物

（５２）ＷＯ０３／３３４９７に記載されている下記構造式で表される化合物

（５３）ＩＬ−６３９

（５４）ＩＫ−２６４

（５５）ＶＲ−１０６５
（５６）Ｒｏ６０−０７５９

（５７）Ｒｏ６０−０８６９

（５８）ＷＯ００／６４８９９に記載されている下記構造式で表される化合物

（５９）ＰＮＵ−５７３７８Ｅ

（６０）ＷＯ０３／０６４６６に記載されている下記構造式で表される化合物

（６１）ＷＯ０２／７４７４６に記載されている下記構造式で表される化合物

（６２）ＷＯ０２／４２３０４に記載されている下記構造式で表される化合物

（６３）ＷＡＹ−４７０

（６４）ＷＡＹ−６２９

（６５）ＷＯ９７／４２１８３に記載されている下記構造式で表される化合物

（６６）ＷＯ０２／４８１２４に記載されている下記構造式で表される化合物

（６７）ＷＡＹ−１６２５４５

（６８）ＷＡＹ−１６３９０９

（６９）ＩＸ−０６５

（７０）Ａ−３７２１５

（７１）ＷＯ０５／４２４９１に記載されている下記構造式で表される化合物

（７２）ＷＯ０５／１６９０２に記載されている下記構造式で表される化合物

（７３）ＷＯ０４／９９１５０に記載されている下記構造式で表される化合物

（７４）ＰＡＬ−２８７
などが好ましく用いられる。

アンドロゲン結合部位とは、アンドロゲンが結合し得る部位（例、受容体）をいい、アンドロゲン受容体に限定されない。アンドロゲン結合部位を刺激する物質としては、アゴニスト（部分アゴニストを含む）、部分アンタゴニストなどが挙げられる。
アンドロゲン結合部位を刺激する物質としては、例えば、
テストステロン（Ｔｅｓｔｏｓｔｅｒｏｎｅ）

ジヒドロテストステロン（Ｄｉｈｙｄｒｏｔｅｓｔｏｓｔｅｒｏｎｅ、ＤＨＴ）、

１７−メチルテストステロン

テストステロン プロピオネート（Ｔｅｓｔｏｓｔｅｒｏｎｅ ｐｒｏｐｉｏｎａｔｅ）

などが用いられる。

本発明の物質は腹圧上昇時の漏出時圧を増大することができるので、哺乳動物（例えば、マウス、ラット、ハムスター、ウサギ、ネコ、イヌ、ウシ、ヒツジ、サル、ヒトなど）に対する安全で、低毒性な腹圧性尿失禁の予防・治療剤として有用である。

腹圧性尿失禁は、膀胱の収縮の非存在下で、腹腔内圧を増加する咳、くしゃみ、笑い又は他の身体的活動中に起こる尿の不随意的漏出であり、過活動膀胱に起因する症状である尿意切迫感や切迫性尿失禁とは異なる。
腹圧性尿失禁は、国際尿禁制学会の提唱するパッドテスト（１時間法）により、正常、軽度、中等度、高度、きわめて高度に分類される。すなわち、５００ｍｌの水を摂取した後、１時間定められた運動及び動作をして腹圧を上昇させ、その間の失禁量をパッド（又は紙おむつ）重量により測定するもので、正常（２ｇ以下）、軽度（２．１ｇ〜５．０ｇ）、中等度（５．１ｇ〜１０．０ｇ）、高度（１０．１ｇ〜５０．０ｇ）、きわめて高度（５０．１ｇ以上）に分類されるが、本発明の物質はいずれの腹圧性尿失禁にも有用である。

本発明の物質を含む医薬組成物は、散剤、顆粒剤、錠剤、カプセル剤、坐剤などの固形製剤、シロップ剤、乳剤、注射剤、懸濁剤などの液剤のいずれであってもよい。
本発明の医薬組成物は、製剤の形態に応じて、例えば、混和、混練、造粒、打錠、コーティング、滅菌処理、乳化などの慣用の方法で製造できる。なお、製剤の製造に関して、例えば日本薬局法製剤総則の各項などを参照できる。また本発明の医薬組成物は、有効成分と生体内分解性高分子化合物とを含む徐放剤に成形してもよい。該徐放剤の調製は、特開平９−２６３５４５号公報に記載の方法に準ずることができる。

本発明の医薬組成物において、本発明の物質又はその塩の含有量は、製剤の形態によって相違するが、通常、製剤全体に対して約０．０１〜１００重量％、好ましくは約０．１〜５０重量％、さらに好ましくは約０．５〜２０重量％程度である。

本発明の物質を前記の医薬組成物として用いる場合、そのまま、或いは適宜の薬学的に許容され得る担体、例えば、賦形剤（例えば、デンプン、乳糖、白糖、炭酸カルシウム、リン酸カルシウムなど）、結合剤（例えば、デンプン、アラビアゴム、カルボキシメチルセルロース、ヒドロキシプロピルセルロース、結晶セルロース、アルギン酸、ゼラチン、ポリビニルピロリドンなど）、滑沢剤（例えばステアリン酸、ステアリン酸マグネシウム、ステアリン酸カルシウム、タルクなど）、崩壊剤（例えば、カルボキシメチルセルロースカルシウム、タルクなど）、希釈剤（例えば、注射用水、生理食塩水など）、必要に応じて添加剤（安定剤、保存剤、着色剤、香料、溶解補助剤、乳化剤、緩衝剤、等張化剤など）などと常法により混合し、散剤、細粒剤、顆粒剤、錠剤、カプセル剤などの固形剤又は注射剤などの液剤の形態で経口的又は非経口的に投与することができる。
本発明の医薬組成物において担体の含有量は、通常、製剤全体に対して、約０〜９９.９重量％、好ましくは約１０〜９９．９重量％、さらに好ましくは約１０〜９０重量％程度である。

投与量は、本発明の物質又は薬学上許容可能なその塩の種類、症状の程度、投与対象の年齢、性別、体重、感受性差、投与の時期、投与ルート、投与間隔、医薬組成物とした場合のその性質、調剤、種類などによっても異なるが、例えば、腹圧性尿失禁の成人患者に経口的に投与する場合、１日当たり体重１ｋｇあたり本発明の物質として約０．００５〜１００ｍｇ、好ましくは約０．０５〜５０ｍｇ、さらに好ましくは約０．２〜３０ｍｇを１〜３回に分割投与できる。
本発明の医薬組成物が徐放性製剤である場合の投与量は、本発明の物質の種類と含量、剤形、薬物放出の持続時間、投与対象動物（例、ヒト、ラット、マウス、ネコ、イヌ、ウサギ、牛、豚等の哺乳動物）、投与目的により種々異なるが、例えば非経口投与により適用する場合には、１週間に約０．１から約１００ｍｇの本発明の物質が投与製剤から放出されるようにすればよい。

本発明の物質は、適宜、他の医薬活性成分と適量配合又は併用して使用することもできる。
本発明の物質と他の医薬活性成分とを併用することにより、
（１）本発明の物質又は他の医薬活性成分を単独で投与する場合に比べて、その投与量を軽減することができる。より具体的には、本発明の物質とβ２アゴニストであるクレンブテロール（Ｃｌｅｎｂｕｔｅｒｏｌ、腹圧性尿失禁治療薬）を併用した場合、クレンブテロール単独投与する場合に比べて、その投与量を軽減することができるので、例えば、振戦などの副作用の軽減を図ることができる、
（２）患者の症状（軽症、重症など）に応じて本発明の物質と併用する薬物を選択することができる、
（３）本発明の物質と作用機序が異なる他の医薬活性成分を選択することにより治療期間を長く設定することができる、
（４）本発明の物質と作用機序が異なる他の医薬活性成分を選択することにより治療効果の持続を図ることができる、
（５）本発明の物質と他の医薬活性成分とを併用することにより相乗効果が得られる、などの優れた効果を得ることができる。

本発明の物質と配合又は併用し得る薬物（以下、併用薬物と略記する）としては、例えば、以下のようなものが用いられる。
（１）他の腹圧性尿失禁治療薬
アドレナリンα１受容体アゴニスト（例、塩酸エフェドリン、塩酸ミトドリン）、アドレナリンβ２受容体アゴニスト（例、クレンブテロール（Ｃｌｅｎｂｕｔｅｒｏｌ））、ノルアドレナリン取り込み阻害物質、ノルアドレナリンおよびセロトニン取り込み阻害物質（例、デュロキセチン）、３環性抗うつ薬（例、塩酸イミプラミン）、抗コリン薬又は平滑筋刺激薬（例、塩酸オキシブチニン、塩酸プロビベリン、塩酸セリメベリン）、女性ホルモン薬（例、結合型エストロゲン（プレマリン）、エストリオール）等。
（２）糖尿病治療剤
インスリン製剤〔例、ウシ、ブタの膵臓から抽出された動物インスリン製剤；大腸菌、イーストを用い、遺伝子工学的に合成したヒトインスリン製剤；インスリン亜鉛；プロタミンインスリン亜鉛；インスリンのフラグメント又は誘導体（例、ＩＮＳ−１等）など〕、インスリン感受性増強剤（例、塩酸ピオグリタゾン、トログリタゾン、ロジグリタゾン又はそのマレイン酸塩、ＪＴＴ−５０１、ＭＣＣ−５５５、ＹＭ−４４０、ＧＩ−２６２５７０、ＫＲＰ−２９７、ＦＫ−６１４、ＣＳ−０１１等）、α−グルコシダーゼ阻害剤（例、ボグリボース、アカルボース、ミグリトール、エミグリテート等）、ビグアナイド剤（例、フェンホルミン、メトホルミン、ブホルミン等）、スルホニルウレア剤（例、トルブタミド、グリベンクラミド、グリクラジド、クロルプロパミド、トラザミド、アセトヘキサミド、グリクロピラミド、グリメピリド等）やその他のインスリン分泌促進剤（例、レパグリニド、セナグリニド、ミチグリニド又はそのカルシウム塩水和物、ＧＬＰ−１、ナテグリニド等）、ジペプチジルペプチダーゼＩＶ阻害剤（例、ＮＶＰ−ＤＰＰ−２７８、ＰＴ−１００、Ｐ３２／９８等）、β３アゴニスト（例、ＣＬ−３１６２４３、ＳＲ−５８６１１−Ａ、ＵＬ−ＴＧ−３０７、ＡＪ−９６７７、ＡＺ４０１４０等）、アミリンアゴニスト（例、プラムリンチド等）、ホスホチロシンホスファターゼ阻害剤（例、バナジン酸等）、糖新生阻害剤（例、グリコーゲンホスホリラーゼ阻害剤、グルコース−６−ホスファターゼ阻害剤、グルカゴン拮抗剤等）、ＳＧＬＴ（ｓｏｄｉｕｍ−ｇｌｕｃｏｓｅ ｃｏｔｒａｎｓｐｏｒｔｅｒ）阻害剤（例、Ｔ−１０９５等）等。
（３）糖尿病性合併症治療剤
アルドース還元酵素阻害剤（例、トルレスタット、エパルレスタット、ゼナレスタット、ゾポルレスタット、フィダレスタット（ＳＮＫ−８６０）、ミナルレスタット（ＡＲＩ−５０９）、ＣＴ−１１２等）、神経栄養因子（例、ＮＧＦ、ＮＴ−３等）、ＡＧＥ阻害剤（例、ＡＬＴ−９４５、ピマゲジン、ピラトキサチン、Ｎ−フェナシルチアゾリウムブロミド（ＡＬＴ−７６６）、ＥＸＯ−２２６等）、活性酸素消去薬（例、チオクト酸等）、脳血管拡張剤（例、チオプリド等）等。
（４）抗高脂血剤
コレステロール合成阻害剤であるスタチン系化合物（例、プラバスタチン、シンバスタチン、ロバスタチン、アトルバスタチン、フルバスタチン、セリバスタチン又はそれらの塩（例、ナトリウム塩等）等）、スクアレン合成酵素阻害剤あるいはトリグリセリド低下作用を有するフィブラート系化合物（例、ベザフィブラート、クロフィブラート、シムフィブラート、クリノフィブラート等）等。
（５）降圧剤
アンジオテンシン変換酵素阻害剤（例、カプトプリル、エナラプリル、デラプリル等）、アンジオテンシンＩＩ拮抗剤（例、ロサルタン、カンデサルタン、シレキセチル等）、カルシウム拮抗剤（例、マニジピン、ニフェジピン、アムロジピン、エホニジピン、ニカルジピン等）、クロニジン等。
（６）抗肥満剤
中枢性抗肥満薬（例、デキスフェンフルアミン、フェンフルラミン、フェンテルミン、シブトラミン、アンフェプラモン、デキサンフェタミン、マジンドール、フェニルプロパノールアミン、クロベンゾレックス等）、膵リパーゼ阻害薬（例、オルリスタット等）、β３アゴニスト（例、ＣＬ−３１６２４３、ＳＲ−５８６１１−Ａ、ＵＬ−ＴＧ−３０７、ＡＪ−９６７７、ＡＺ４０１４０等）、ペプチド性食欲抑制薬（例、レプチン、ＣＮＴＦ（毛様体神経栄養因子）等）、コレシストキニンアゴニスト（例、リンチトリプト、ＦＰＬ−１５８４９等）等。
（７）利尿剤
キサンチン誘導体（例、サリチル酸ナトリウムテオブロミン、サリチル酸カルシウムテオブロミン等）、チアジド系製剤（例、エチアジド、シクロペンチアジド、トリクロルメチアジド、ヒドロクロロチアジド、ヒドロフルメチアジド、ベンジルヒドロクロロチアジド、ペンフルチジド、ポリチアジド、メチクロチアジド等）、抗アルドステロン製剤（例、スピロノラクトン、トリアムテレン等）、炭酸脱水酵素阻害剤（例、アセタゾラミド等）、クロルベンゼンスルホンアミド系製剤（例、クロルタリドン、メフルシド、インダパミド等）、アゾセミド、イソソルビド、エタクリン酸、ピレタニド、ブメタニド、フロセミド等。
（８）化学療法剤
アルキル化剤（例、サイクロフォスファミド、イフォスファミド等）、代謝拮抗剤（例、メソトレキセート、５−フルオロウラシル等）、抗癌性抗生物質（例、マイトマイシン、アドリアマイシン等）、植物由来抗癌剤（例、ビンクリスチン、ビンデシン、タキソール等）、シスプラチン、カルボプラチン、エトポキシド等、なかでも５−フルオロウラシル誘導体であるフルツロンあるいはネオフルツロン等。
（９）免疫療法剤
微生物又は細菌成分（例、ムラミルジペプチド誘導体、ピシバニール等）、免疫増強活性のある多糖類（例、レンチナン、シゾフィラン、クレスチン等）、遺伝子工学的手法で得られるサイトカイン（例、インターフェロン、インターロイキン（ＩＬ）等）、コロニー刺激因子（例、顆粒球コロニー刺激因子、エリスロポエチン等）等、なかでもＩＬ−１、ＩＬ−２、ＩＬ−１２等。
（１０）動物モデルや臨床で悪液質改善作用が認められている薬剤
プロゲステロン誘導体（例、メゲステロールアセテート）〔ジャーナル・オブ・クリニカル・オンコロジー（Ｊｏｕｒｎａｌ ｏｆ Ｃｌｉｎｉｃａｌ Ｏｎｃｏｌｏｇｙ）、第１２巻、２１３〜２２５頁、１９９４年〕、メトクロプラミド系薬剤、テトラヒドロカンナビノール系薬剤（文献はいずれも上記と同様）、脂肪代謝改善剤（例、エイコサペンタエン酸等）〔ブリティシュ・ジャーナル・オブ・キャンサー（Ｂｒｉｔｉｓｈ Ｊｏｕｒｎａｌ ｏｆ Ｃａｎｃｅｒ）、第６８巻、３１４〜３１８頁、１９９３年〕、成長ホルモン、ＩＧＦ−１、あるいは悪液質を誘導する因子であるＴＮＦ−α、ＬＩＦ、ＩＬ−６、オンコスタチンＭに対する抗体等。
（１１）消炎剤
ステロイド剤（例、デキサメサゾン等）、ヒアルロン酸ナトリウム、シクロオキシゲナーゼ阻害剤（例、インドメタシン、ケトプロフェン、ロキソプロフェン、メロキシカム、アムピロキシカム、セレコキシブ、ロフェコキシブ等）等。
（１２）その他
糖化阻害剤（例、ＡＬＴ−７１１等）、神経再生促進薬（例、Ｙ−１２８、ＶＸ８５３、ｐｒｏｓａｐｔｉｄｅ等）、中枢神経系作用薬（例、デシプラミン、アミトリプチリン、イミプラミン、フロキセチン、パロキセチン、ドキセピンなどの抗うつ薬）、抗てんかん薬（例、ラモトリジン、カルバマゼピン）、抗不整脈薬（例、メキシレチン）、アセチルコリン受容体リガンド（例、ＡＢＴ−５９４）、エンドセリン受容体拮抗薬（例、ＡＢＴ−６２７）、モノアミン取り込み阻害薬（例、トラマドル）、インドールアミン取り込み阻害薬（例、フロキセチン、パロキセチン）、麻薬性鎮痛薬（例、モルヒネ）、ＧＡＢＡ受容体作動薬（例、ギャバペンチン）、ＧＡＢＡ取り込み阻害薬（例、チアガビン）、α_２受容体作動薬（例、クロニジン）、局所鎮痛薬（例、カプサイシン）、プロテインキナーゼＣ阻害剤（例、ＬＹ−３３３５３１）、抗不安薬（例、ベンゾジアゼピン類）、ホスホジエステラーゼ阻害薬（例、シルデナフィル）、ドーパミン受容体作動薬（例、アポモルフィン）、ドーパミン受容体拮抗薬（例、ハロペリドール）、セロトニン受容体作動薬（例、クエン酸タンドスピロン、スマトリプタン）、セロトニン受容体拮抗薬（例、塩酸シプロヘプタジン、オンダンセトロン）、セロトニン取り込み阻害薬（例、マレイン酸フルボキサミン、フロキセチン、パロキセチン）、睡眠導入剤（例、トリアゾラム、ゾルピデム）、抗コリン剤、α_１受容体遮断薬（例、タムスロシン）、筋弛緩薬（例、バクロフェンなど）、カリウムチャンネル開口薬（例、ニコランジル）、カルシウムチャンネル遮断薬（例、ニフェジピン）、アルツハイマー病予防・治療薬（例、ドネペジル、リバスチグミン、ガランタミン）、パーキンソン病治療薬（例、Ｌ−ドーパ）、多発性硬化症予防・治療薬（例、インターフェロンβ−１ａ）、ヒスタミンＨ_１受容体阻害薬（例、塩酸プロメタジン）、プロトンポンプ阻害薬（例、ランソプラゾール、オメプラゾール）、抗血栓薬（例、アスピリン、シロスタゾール）、ＮＫ−２受容体アンタゴニスト、ＨＩＶ感染症治療薬（サキナビル、ジドブジン、ラミブジン、ネビラビン）、慢性閉塞性肺疾患治療薬（サルメテロール、チオトロピウムブロミド、シロミラスト）等。

抗コリン剤としては、例えば、アトロピン、スコポラミン、ホマトロピン、トロピカミド、シクロペントラート、臭化ブチルスコポラミン、臭化プロパンテリン、臭化メチルベナクチジウム、臭化メペンゾラート、フラボキサート、ピレンセビン、臭化イプラトピウム、トリヘキシフェニジル、オキシブチニン、プロピベリン、ダリフェナシン、トルテロジン、テミベリン、塩化トロスピウム又はその塩（例、硫酸アトロピン、臭化水素酸スコポラミン、臭化水素酸ホマトロピン、塩酸シクロペントラート、塩酸フラボキサート、塩酸ピレンセビン、塩酸トリヘキシフェニジル、塩化オキシブチニン、酒石酸トルテロジンなど）などが用いられ、なかでも、オキシブチニン、プロピベリン、ダリフェナシン、トルテロジン、テミベリン、塩化トロスピウム又はその塩（例、塩化オキシブチニン、酒石酸トルテロジンなど）が好適である。また、アセチルコリンエステラーゼ阻害薬（例、ジスチグミンなど）なども使用することができる。

ＮＫ−２受容体アンタゴニストとしては、例えば、ＧＲ１５９８９７、ＧＲ１４９８６１、ＳＲ４８９６８（ｓａｒｅｄｕｔａｎｔ）、ＳＲ１４４１９０、ＹＭ３５３７５、ＹＭ３８３３６、ＺＤ７９４４、Ｌ−７４３９８６、ＭＤＬ１０５２１２Ａ、ＺＤ６０２１、ＭＤＬ１０５１７２Ａ、ＳＣＨ２０５５２８、ＳＣＨ６２３７３、Ｒ−１１３２８１などのピペリジン誘導体、ＲＰＲ−１０６１４５などのペルヒドロイソインドール誘導体、ＳＢ−４１４２４０などのキノリン誘導体、ＺＭ−２５３２７０などのピロロピリミジン誘導体、ＭＥＮ１１４２０（ｎｅｐａｄｕｔａｎｔ）、ＳＣＨ２１７０４８、Ｌ−６５９８７７、ＰＤ−１４７７１４（ＣＡＭ−２２９１）、ＭＥＮ１０３７６、Ｓ１６４７４などのプソイドペプチド誘導体、その他、ＧＲ１００６７９、ＤＮＫ３３３、ＧＲ９４８００、ＵＫ−２２４６７１、ＭＥＮ１０３７６、ＭＥＮ１０６２７、又はそれらの塩などが挙げられる。

本発明の物質と併用薬物とを配合又は併用する医薬組成物には、本発明の物質と併用薬物を含有する医薬組成物として単一に製剤化されたもの、及び本発明の物質と併用薬物とが別個に製剤化されたもののいずれも含まれる。以下、これらを総称して本発明の併用剤と略記する。
本発明の併用剤は、本発明の物質及び併用薬物を、別々にあるいは同時に、そのまま若しくは薬学的に許容され得る担体などと混合し、上述した本発明の物質を含む医薬組成物と同様の方法により製剤化することができる。本発明の併用剤の一日投与量は、症状の程度、投与対象の年齢、性別、体重、感受性差、投与の時期、間隔、医薬組成物の性質、調剤、種類、有効成分の種類などによって異なり、特に限定されない。本発明の物質及び併用薬物のそれぞれの投与量は、副作用の問題とならない範囲で、特に限定されないが、通常、経口投与で哺乳動物１ｋｇ体重あたり約０．００５〜１００ｍｇ、好ましくは約０．０５〜５０ｍｇであり、更に好ましくは約０．２〜３０ｍｇであり、これを通常１日１〜３回に分けて投与する。
本発明の併用剤を投与するに際しては、本発明の物質と併用薬物とを同時期に投与してもよいが、併用薬物を先に投与した後、本発明の物質を投与してもよいし、本発明の物質を先に投与し、その後で併用薬物を投与してもよい。時間差をおいて投与する場合、時間差は投与する有効成分、剤形、投与方法により異なるが、例えば、併用薬物を先に投与する場合、併用薬物を投与した後１分〜３日以内、好ましくは１０分〜１日以内、より好ましくは１５分〜１時間以内に本発明の物質を投与する方法が挙げられる。本発明の物質を先に投与する場合、本発明の物質を投与した後、１分〜１日以内、好ましくは１０分〜６時間以内、より好ましくは１５分から１時間以内に併用薬物を投与する方法が挙げられる。
本発明の物質及び併用薬物とを同時に含む本発明の併用剤において、本発明の物質及び併用薬物のそれぞれの含有量は、製剤の形態によって相違するが、通常、製剤全体に対して約０．０１〜９０重量％、好ましくは約０．１〜５０重量％、さらに好ましくは約０．５〜２０重量％程度である。
該併用剤における担体の含有量は、通常、製剤全体に対して、約０〜９９.８重量％、好ましくは約１０〜９９．８重量％、さらに好ましくは約１０〜９０重量％程度である。
また、本発明の物質と併用薬物を別々に含む本発明の併用剤において、併用薬物を含む医薬組成物は本発明の物質を含む医薬組成物と同様にして製造して用いることができる。

本発明のスクリーニング方法は、動物に被験物質を投与した場合と投与しない場合において、その被験物質の当該動物（例、非ヒト哺乳動物）の尿道総抵抗への影響を、漏出時圧の測定によって調べることにより実施することができる。
「漏出時圧（ｌｅａｋ ｐｏｉｎｔ ｐｒｅｓｓｕｒｅ）」とは、排尿筋の収縮なしに尿漏れが生じた時の膀胱内圧をいい、膀胱内圧の上昇に抵抗できる最大尿道抵抗を示す。本発明のスクリーニング方法においては、動物の腹筋もしくは横隔膜又はそれらを支配する神経を電気刺激して一過性に腹圧を上昇させて最大膀胱内圧を計測した場合に、尿失禁が観察された試行の中で最も低い最大膀胱内圧をもって漏出時圧とした。漏出時圧の具体的な測定方法は、後述する実施例に詳細に記載されている。

本発明で用いる「動物」の性としては雌性が好ましく、種としてはサル、イヌ、ネコ、ウサギ、モルモット、ハムスター、ラット、マウス、スナネズミなどの非ヒト動物が挙げられ、とりわけラット（Ｗｉｓｔａｒ、ＳＤなど）が最も好ましい。
本発明で用いる「動物」の週齢、体重、分娩の有無等については、目的とするスクリーニングに適用可能である限り、特に制限はないが、これらの条件を適宜変更させてもよい。本発明で用いる「動物」は、正常な動物（病態などを示さない動物）を用いてもよいが、腹圧上昇時の漏出時圧が低下状態にあるもの、ラットの場合、漏出時圧が約７５ｍｍＨｇ以下のものが好ましい。ここで、漏出時圧の低い状態としては、尿道収縮反射に関与する神経が切断もしくは損傷した状態又は骨盤底筋群及び外尿道括約筋の重量が減少した状態にあるものが好ましい。骨盤底筋群及び外尿道括約筋の反射性収縮力を低下状態にさせるには、尿道収縮反射に関与する神経（例えば、骨盤神経、陰部神経、ｉｌｉｏｃｏｃｃｙｇｅｏｕｓ 筋／ｐｕｂｏｃｏｃｃｙｇｅｏｕｓ 筋に向かう神経など）を物理的、化学的もしくは生物学的に切断又は損傷させるか、出産させるか、卵巣を摘出するか、機械的に膣を拡大させるか、糖尿病を誘発するか、薬物を投与するか、あるいは、それらを組み合わせればよい。
薬物としては、例えば、神経筋接合部遮断薬であるα−バンガロトキシン、ｄ−ツボクラリン、パンクロニウム、デカメソニウム、スキサメソニウムなどが用いられる。
これらのモデル動物は、既知の方法、例えば、Ｕｒｏｌｏｇｙ， １９９８年，第５２巻， ｐ．１４３−１５１、Ｊｏｕｒｎａｌ ｏｆ Ｕｒｏｌｏｇｙ， ２００１年，第１６６巻， ｐ．３１１−３１７に記載の方法に従って作製することができる。

また、本発明のスクリーニング方法においては、動物における腹圧の急激な一過性上昇時に漏出時圧を測定するが、急激な一過性の腹圧上昇を引き起こす方法として、腹筋もしくは横隔膜又はそれらを支配する神経への電気刺激（例えば、持続約０．０１〜約１０ミリ秒、好ましくは約０．１〜約１ミリ秒、電圧約１〜約１００Ｖ、好ましくは約３〜約５０Ｖの単あるいは反復矩形波での電気刺激）による筋収縮などが挙げられる。

被験物質としては、公知又は新規の合成化合物、天然物由来の生理活性物質、ペプチド、蛋白質などの他に、例えば温血哺乳動物（例えば、マウス、ラット、ブタ、ウシ、ヒツジ、サル、ヒトなど）の組織抽出物、細胞培養上清などが用いられる。

このスクリーニング方法を用いることにより、被験物質を投与しない場合に比べて、投与した場合の漏出時圧が上昇することを指標として、腹圧上昇時の漏出時圧を増大する物質をスクリーニングすることができる。
例えば、ラットを用いて本スクリーニング方法を行うことにより、被験物質を投与しない場合に比べて、投与した場合の漏出時圧が約５ｃｍＨ_２Ｏ、好ましくは約１０ｃｍＨ_２Ｏ以上、より好ましくは約１５ｃｍＨ_２Ｏ以上上昇した場合、当該被験物質は腹圧性尿失禁の改善効果を有すると判断できる。

本発明におけるスクリーニング方法は、動物における腹圧の急激な上昇時の漏出時圧を測定するものであり、腹圧性尿失禁の予防・治療のために用いられる物質（例えば、アドレナリンα１受容体アゴニスト、アドレナリンβ２受容体アゴニスト、セロトニン取り込み阻害物質、ノルアドレナリン取り込み阻害物質、又はセロトニン及びノルアドレナリン取り込み阻害物質など）のスクリーニングに有用かつ効率的に適用することが可能である。
例えば、約０．０００１〜約１０００ｍｇ／ｋｇ（好ましくは、約０．００１〜約１００ｍｇ／ｋｇ）の被験物質を本発明のスクリーニング方法において非ヒト哺乳動物に投与し、漏出時圧を指標に、その被験物質の治療効果を調べることにより腹圧性尿失禁予防・治療薬の評価を行うことができる。ここで、腹圧性尿失禁の予防という概念には、尿道抵抗低下抑制が含まれ、腹圧性尿失禁の治療という概念には、腹圧性尿失禁の改善、進展抑制、重症化予防も含まれる。また、被験物質を本発明の評価方法において動物に投与する時期としては、漏出時圧低下処置前あるいは後から、さらには、漏出時圧測定中などの時期が挙げられ、各々の投与時期に応じて、腹圧性尿失禁の予防や治療を目的とした薬物の評価を行うことができる。

また、本発明で用いる動物は、正常な動物（病態を示さない動物）を用いてもよいが、例えば、腹圧性尿失禁、過活動膀胱、前立腺肥大症、膀胱低緊張症、糖尿病、糖尿病性神経症、高血圧、肥満、高脂血症、動脈硬化症、胃潰瘍、喘息、慢性閉鎖性呼吸器疾患、子宮がん、脳血管障害、脳損傷、脊髄損傷などの病態を示す動物（例えば、肥満ラット（Ｗｉｓｔａｒ Ｆａｔｔｙ ラット）など）を用いて、前記した漏出時圧測定を実施してもよい。このような病態を示す動物に前記した漏出時圧測定を実施する場合、新たな腹圧性尿失禁モデル動物の探索が可能であり、かかる合併症の予防・治療用医薬物質のスクリーニングに有効に適用することも可能であるが、例えば、前記病態（例、胃潰瘍などの消化器系疾患など）のみに有効であり、腹圧性尿失禁には影響を及ぼさない医薬物質をスクリーニングすることにも適用でき、あるいは、腹圧性尿失禁を惹起する被験物質を選定すべき医薬物質から除外することを目的とするスクリーニングにも適用できる。

更に、本発明のスクリーニング方法は、被験物質を適用し、漏出時圧上昇効果を検定することによって、腹圧性尿失禁の予防・治療用医薬物質のスクリーニングに有効に適用することのみならず、被験物質を適用し、腹圧上昇時の尿道抵抗への影響（増悪、無影響、改善を含む）を検定することによって、種々の医薬物質をスクリーニングするのに、有効に適用することも可能である。即ち、腹圧性尿失禁を増悪する被験物質を選定すべき医薬物質から除外すること；腹圧性尿失禁に影響を及ぼさない被験物質を腹圧性尿失禁以外の疾患の予防・治療用医薬物質として選定すること；腹圧性尿失禁に改善効果を示す被験物質を腹圧性尿失禁又は腹圧性尿失禁とある種の疾患（例、過活動膀胱などの泌尿器系疾患など）との合併症の予防・治療用医薬物質として選定すること；などの目的でスクリーニングに有効に適用することができる。本発明のスクリーニング方法は、従来の方法とは異なり、病態とほぼ一致した状態での評価ができ、かつ、有無の判定ではなくパラメトリックな指標での腹圧性尿失禁に関する評価（増悪、無影響、改善を含む）ができるので、前記した何れの目的で各種医薬物質をスクリーニングする場合でも、有用な評価系として適用することが可能である。

本発明のスクリーニング方法で得られる物質は、前記した本発明の物質と同様に製剤化して、腹圧性尿失禁の予防・治療剤として使用することができる。

以下に実施例及び製剤例を挙げて本発明をより具体的に説明するが、本発明はこれらに限定されるものではない。

実施例１
〔実験方法〕
体重１８０−３５０ｇのＳＤ系雌性ラットをウレタン（和光純薬）で麻酔し、排尿反射を消失させる目的で脊髄をＴ８−９レベルで切断した。なお、手術中は必要に応じてハロセン（武田薬品工業）麻酔を追加した。カテーテル（ＰＥ−９０、Ｃｌａｙ Ａｄａｍｓ）を膀胱内に留置し、腹筋及び皮膚の切開部をそれぞれ縫合した。横隔膜近傍の腹部皮膚を左右２箇所切開し、新たに腹筋を露出させた。膀胱にエバンスブルー色素（Ｍｅｒｃｋ）溶液を注入し、膀胱容量が０．２〜０．３ｍｌになるように調整した。膀胱カテーテルを圧トランスデューサーに接続し、トランスデューサーの信号をアンプ（血圧用増幅ユニットＡＰ−６４１Ｇ；日本光電）、データ解析装置（ＢＩＯＰＡＣ；ＭＰ１００）を介してコンピュータへ送り、ハードディスク上に記録した。また、データはソフトウェア（ＢＩＯＰＡＣ；ＡｃｑＫｎｏｗｌｅｄｇｅ）を用いてコンピュータ上で解析した。露出させた腹筋を電気刺激装置（ＳＥＮ−３３０１；日本光電）及びアイソレーター（ＳＳ−２０２Ｊ；日本光電）を用いて電気刺激し、尿道口からの尿失禁の有無を観察した。なお、電気刺激は、電圧３〜５０Ｖ、持続０．０５〜０．５ミリ秒、頻度５０Ｈｚで１秒間行い、段階的に膀胱内圧を上昇させた。腹壁電気刺激時の最大膀胱内圧を計測し、尿失禁が観察された試行の中で最も低い最大膀胱内圧を漏出時圧と定義した。なお、実験によっては、一定の刺激強度で腹筋を電気刺激した後、開腹し、再び同刺激条件で腹筋を電気刺激した。また、骨盤神経、下腹神経、又は陰部神経とｉｌｉｏｃｏｃｃｙｇｅｏｕｓ筋／ｐｕｂｏｃｏｃｃｙｇｅｏｕｓ筋に向かう神経をそれぞれ両側切断し、神経切断の効果も検討した。
〔結果〕
（１）正常ラットの腹壁電気刺激による膀胱内圧の変化
ラット腹壁を電圧３〜５０Ｖ、持続０．０５〜０．５ミリ秒、頻度５０Ｈｚで１秒間電気刺激したところ、一過性に膀胱内圧が上昇し、刺激後０．３秒から１秒の間でピークを示した。刺激強度に依存して膀胱内圧は上昇し、７／１０例で尿失禁が観察された。尿失禁を誘発した刺激における最大膀胱内圧の中で最も低い試行時の圧を漏出時圧と定義したところ、尿失禁が観察された７例の漏出時圧は５０．８±２．５ｃｍＨ_２Ｏであった。尿失禁を起こさなかった３例の漏出時圧を最も高い膀胱内圧以上であったと仮定して１０例の漏出時圧を算出したところ、５７．３±４．４ｃｍＨ_２Ｏ以上となった。
（２）腹壁電気刺激による膀胱内圧上昇反応に対する開腹の効果
ラット３例において、腹壁電気刺激による膀胱内圧上昇反応を確認後、開腹し、再び同一条件で電気刺激をしたところ、刺激時の最大膀胱内圧は４４．５±１．２ｃｍＨ_２Ｏ（開腹前）から２０．３±３．４ｃｍＨ_２Ｏ（開腹後）に低下した。この結果から、腹壁電気刺激による膀胱内圧上昇反応が、少なくとも一部は腹圧上昇に基づくことが明らかになった。
（３）腹壁電気刺激による漏出時圧に対する神経切断の効果
膀胱からの知覚情報を絶つ目的で骨盤神経を両側切断したラットでは、全例（５例）で尿失禁が観察され、有意な漏出時圧の低下が認められた（表１）。この結果は、腹圧上昇時には膀胱からの知覚情報が漏出時圧を高めることに関与することを示唆する。平滑筋である内尿道括約筋を収縮させる下腹神経を両側切断したラットでは、腹壁電気刺激により全例（５例）で尿失禁が観察された。しかし、偽手術ラットと比較し、漏出時圧の低下は認められなかった（表１）。
骨格筋である外尿道括約筋と骨盤底筋群を支配する陰部神経及びｉｌｉｏｃｏｃｃｙｇｅｏｕｓ筋／ｐｕｂｏｃｏｃｃｙｇｅｏｕｓ筋に向かう神経を両側切断したラット（表１）では、全例（６例）で尿失禁が観察され、有意な漏出時圧の低下が認められた（表１）。これらの結果から、腹圧上昇による膀胱内圧上昇時には骨格筋である外尿道括約筋と骨盤底筋群の反射性収縮反応が尿道抵抗を高めるために重要な役割を果たしていることが明らかになった。

実施例２
〔実験方法〕
体重１８０−３５０ｇのＳＤ系雌性ラットをウレタン（和光純薬）で麻酔し、排尿反射を消失させる目的で脊髄をＴ８−９レベルで切断した。また、一側のｉｌｉｏｃｏｃｃｙｇｅｏｕｓ筋／ｐｕｂｏｃｏｃｃｙｇｅｏｕｓ筋に向かう神経を切断した。なお、手術中は必要に応じてハロセン（武田薬品工業）麻酔を追加した。カテーテル（ＰＥ−９０、Ｃｌａｙ Ａｄａｍｓ）を膀胱内に留置し、腹筋及び皮膚の切開部をそれぞれ縫合した。横隔膜近傍の腹部皮膚を左右２箇所切開し、新たに腹筋を露出させた。膀胱にエバンスブルー色素（Ｍｅｒｃｋ）溶液を注入し、膀胱容量が０．２〜０．３ｍｌになるように調整した。膀胱カテーテルを圧トランスデューサーに接続し、トランスデューサーの信号をアンプ（血圧用増幅ユニットＡＰ−６４１Ｇ；日本光電）、データ解析装置（ＢＩＯＰＡＣ；ＭＰ１００）を介してコンピュータへ送り、ハードディスク上に記録した。また、データはソフトウェア（ＢＩＯＰＡＣ；ＡｃｑＫｎｏｗｌｅｄｇｅ）を用いてコンピュータ上で解析した。露出させた腹筋を電気刺激装置（ＳＥＮ−３３０１；日本光電）及びアイソレーター（ＳＳ−２０２Ｊ；日本光電）を用いて電気刺激し、尿道口からの尿失禁の有無を観察した。なお、電気刺激は、電圧３〜５０Ｖ、持続０．０５〜０．５ミリ秒、頻度５０Ｈｚで１秒間行い、段階的に膀胱内圧を上昇させた。腹壁刺激時の最大膀胱内圧を計測し、尿失禁が観察された試行の中で最も低い最大膀胱内圧を漏出時圧と定義した。漏出時圧をデュロキセチン（ｄｕｌｏｘｅｔｉｎｅ）およびミドドリン（ｍｉｄｏｄｒｉｎｅ）投与の前後で比較した。なお、デュロキセチンはＮ，Ｎ−ｄｉｍｅｔｈｙｌｆｏｒｍａｍｉｄｅ（ＤＭＡ）／ｐｏｌｙｅｔｈｙｌｅｎｅ ｇｌｙｃｏｌ ４００（ＰＥＧ４００）（１：１）に溶解し、０．５ｍｌ／ｋｇの割合で静脈内投与した．また、ミドドリン（塩酸塩、Ｓｉｇｍａ）は生理食塩水に溶解し、１ｍｌ／ｋｇの割合で静脈内投与した。
〔結果〕
腹壁の電気刺激により膀胱内圧を一過性に上昇させ、徐々に刺激強度を強めたところ、偽手術群では、１０例中７例において尿失禁が観察され、１０例の漏出時圧は５７．３±４．４ｃｍＨ_２Ｏ以上であった（前項）。これに対し、一側のｉｌｉｏｃｏｃｃｙｇｅｏｕｓ筋／ｐｕｂｏｃｏｃｃｙｇｅｏｕｓ筋に向かう神経を切断したラットでは、１１例全例で尿失禁が観察され、漏出時圧は４６．０±３．０ｃｍＨ_２Ｏであり、偽手術群と比較して有意に低い値を示した（Ｐ＝０．０４３６、Ｓｔｕｄｅｎｔのｔ検定）。また、一側のｉｌｉｏｃｏｃｃｙｇｅｏｕｓ筋／ｐｕｂｏｃｏｃｃｙｇｅｏｕｓ筋に向かう神経を切断したラットを用い、腹圧性尿失禁に対し効果を示すデュロキセチン又はミドドリンを静脈内投与し、その前後で漏出時圧を比較したところ、いずれの薬物も漏出時圧を有意に上昇させた（表２）。

実施例３
〔実験方法〕
体重１８０〜３５０ｇのＳＤ系雌性ラットをウレタン（和光純薬）で麻酔し、排尿反射を消失させる目的で脊髄をＴ８−９レベルで切断した。また、一側のｉｌｉｏｃｏｃｃｙｇｅｏｕｓ筋／ｐｕｂｏｃｏｃｃｙｇｅｏｕｓ筋に向かう神経を切断した。なお、手術中は必要に応じてハロセン（武田薬品工業）麻酔を追加した。カテーテル（ＰＥ−９０、Ｃｌａｙ Ａｄａｍｓ）を膀胱内に留置し、腹筋及び皮膚の切開部をそれぞれ縫合した。横隔膜近傍の腹部皮膚を左右２箇所切開し、新たに腹筋を露出させた。膀胱にエバンスブルー色素（Ｍｅｒｃｋ）溶液を注入し、膀胱容量が０．２〜０．３ｍｌになるように調整した。膀胱カテーテルを圧トランスデューサーに接続し、トランスデューサーの信号をアンプ（血圧用増幅ユニットＡＰ−６４１Ｇ；日本光電）、データ解析装置（ＢＩＯＰＡＣ；ＭＰ１００）を介してコンピュータへ送り、ハードディスク上に記録した。また、データはソフトウェア（ＢＩＯＰＡＣ；ＡｃｑＫｎｏｗｌｅｄｇｅ）を用いてコンピュータ上で解析した。露出させた腹筋を電気刺激装置（ＳＥＮ−３３０１；日本光電）及びアイソレーター（ＳＳ−２０２Ｊ；日本光電）を用いて電気刺激し、尿道口からの尿失禁の有無を観察した。なお、電気刺激は、電圧２．５〜５０Ｖ、持続０．５ミリ秒、頻度５０Ｈｚで１秒間行い、段階的に膀胱内圧を上昇させた。腹壁刺激時の最大膀胱内圧を計測し、尿失禁が観察された試行の中で最も低い最大膀胱内圧を漏出時圧と定義した。セロトニン５−ＨＴ受容体アゴニスト、ＷＡＹ−１６１５０３（５−ＨＴ_２Ｃ受容体アゴニスト）、ＷＡＹ−１６３９０９（５−ＨＴ_２Ｃ受容体アゴニスト）、ＤＯＩ（５−ＨＴ_{２Ａ／２Ｂ／２Ｃ}受容体アゴニスト）、ｍＣＰＰ（５−ＨＴ_{２Ｂ／２Ｃ}受容体部分アゴニスト）、エルトプラジン（ｅｌｔｏｐｒａｚｉｎｅ；５−ＨＴ_{１Ａ／１Ｂ／２Ｃ}受容体部分アゴニスト）、８−ＯＨ−ＤＰＡＴ（５−ＨＴ_１Ａ受容体アゴニスト）、スマトリプタン（ｓｕｍａｔｒｉｐｔａｎ；５−ＨＴ_{1Ｂ／１Ｄ}受容体アゴニスト）およびＢＷ７２３Ｃ８６（５−ＨＴ_2Ｂ受容体アゴニスト）を静脈内投与し、その前後で漏出時圧を比較した。なお、ＤＯＩ、ｍＣＰＰおよびエルトプラジンは生理食塩水に溶解し、その他の薬物はＤＭＡ／ＰＥＧ４００（１：１）に溶解し、それぞれ１ｍｌ／ｋｇ又は０．５ｍｇ／ｋｇの割合で静脈内投与した。なお、実験によっては、セロトニン５−ＨＴ_２Ｃ受容体アンタゴニストであるＲＳ−１０２２２１又はセロトニン５−ＨＴ_{２Ｂ／２Ｃ}受容体アンタゴニストであるＳＢ２２１２８４を、ＷＡＹ−１６１５０３又はＷＡＹ−１６３９０９投与５分前に静脈内投与し、ＷＡＹ−１６１５０３又はＷＡＹ−１６３９０９の作用に対する拮抗試験を行った。なお、ＲＳ−１０２２２１およびＳＢ２２１２８４は、いずれもＤＭＡ／ＰＥＧ４００（１：１）に溶解し、０．５ｍｌ／ｋｇの割合で静脈内投与した。
〔結果〕
セロトニン５−ＨＴ_２Ｃ受容体アゴニストであるＷＡＹ−１６１５０３およびＷＡＹ−１６３９０９の静脈内投与は、用量依存性に漏出時圧を上昇させ、それぞれ０．０３ｍｇ/ｋｇおよび０．１ｍｇ／ｋｇ以上の用量では有意な作用であった（表３）。しかし、ＷＡＹ−１６３９０９の光学異性体であり、５−ＨＴ_２Ｃ受容体アゴニスト作用のないとされるＷＡＹ−１６３９０７（Ｔｈｅ Ｊｏｕｒｎａｌ ｏｆ Ｐｈａｒｍａｃｏｌｏｇｙ ａｎｄ Ｅｘｐｅｒｉｍｅｎｔａｌ Ｔｈｅｒａｐｅｕｔｉｃｓ， ３１３，８６２−８６９，２００５）は作用を示さなかった（表３）。
セロトニン５−ＨＴ_２Ｃ受容体アゴニスト作用を有するＤＯＩ（５−ＨＴ_{２Ａ／２Ｂ／２Ｃ}受容体アゴニスト）、ｍＣＰＰ（５−ＨＴ_{２Ｂ／２Ｃ}受容体部分アゴニスト）、エルトプラジン（５−ＨＴ_{１Ａ／１Ｂ／２Ｃ}受容体部分アゴニスト）は、それぞれ漏出時圧を有意に上昇させた（表３）。しかし、５−ＨＴ_１Ａ受容体アゴニスト、５−ＨＴ_{1Ｂ／１Ｄ}受容体アゴニストおよび５−ＨＴ_2Ｂ受容体アゴニストである８−ＯＨ−ＤＰＡＴ、スマトリプタンおよびＢＷ７２３Ｃ８６は、いずれも作用を示さず（表３）、５−ＨＴ_１Ａ受容体、５−ＨＴ_１Ｂ受容体、５−ＨＴ_１Ｄ受容体および５−ＨＴ_２Ｂ受容体刺激は尿道抵抗に影響を及ぼさないことが明らかになった。
セロトニン５−ＨＴ_２Ｃ受容体アンタゴニストであるＲＳ−１０２２２１の静脈内投与は、ＷＡＹ−１６１５０３（０．３ｍｇ／ｋｇ，ｉ．ｖ．）又はＷＡＹ−１６３９０９（０．３ｍｇ／ｋｇ，ｉ．ｖ．）による漏出時圧の上昇を抑制し、３ｍｇ／ｋｇにおける抑制は有意であった（表４）。また、セロトニン５−ＨＴ_２Ｃ受容体アンタゴニスト作用を有するＳＢ２２１２８４（５−ＨＴ_{２Ｂ／２Ｃ}受容体アンタゴニスト）もＷＡＹ−１６１５０３による漏出時圧上昇作用を有意に抑制した（表４）。

実施例４
〔実験方法〕
体重１８０−３５０ｇのＳＤ系雌性ラットをウレタン (和光純薬)で麻酔し、手術中は必要に応じてハロセン（武田薬品工業）麻酔を追加した。排尿反射を消失させるために脊髄をＴ８−９レベルで切断した。下腹部を正中線に沿って切開し、膀胱内圧測定用のカテーテル（ＰＥ−９０、Ｃｌａｙ Ａｄａｍｓ）を膀胱へ刺入して、圧トランスデューサーを介して膀胱内圧を測定した。予め、２本の綿棒で膀胱の両側を圧迫して尿を排出させた後、０．１％ Ｅｖａｎｓ ｂｌｕｅ（Ｍｅｒｃｋ）溶液を膀胱内に注入（0．4ｍＬ）した。２本の綿棒で膀胱の両側を徐々に圧迫し、尿道口より生理食塩水が漏出した時の膀胱内圧を計測し、漏出時圧と定義した。漏出時圧の測定を繰り返し、安定した最後の5回の平均値を薬物投与前の値とした。その後、薬物を静脈内投与し、２０分後に再び漏出時圧を測定し、薬物投与後の値を求めた。なお、ＤＯＩ、ｍＣＰＰおよびエルトプラジンは生理食塩水に溶解し、その他の薬物はＤＭＡ／ＰＥＧ４００（１：１）に溶解し、それぞれ１ｍｌ／ｋｇ又は０．５ｍｇ／ｋｇの割合で静脈内投与した。 なお、実験によっては、セロトニン５−ＨＴ_２Ｃ受容体アンタゴニスト作用を有するＲＳ−１０２２２１又はＳＢ２２１２８４を投与し、その５分後にＷＡＹ−１６１５０３又はＷＡＹ−１６３９０９を投与し、更に１０分後に漏出時圧を測定し、ＷＡＹ−１６１５０３又はＷＡＹ−１６３９０９の作用に対する拮抗試験を行った。なお、ＲＳ−１０２２２１およびＳＢ２２１２８４は、いずれもＤＭＡ／ＰＥＧ４００（１：１）に溶解し、０．５ｍｌ／ｋｇの割合で静脈内投与した。
〔結果〕
腹圧性尿失禁治療薬であるデュロキセチンは、膀胱を直接圧迫することにより測定される漏出時圧を上昇させた（表５）。セロトニン５−ＨＴ_２Ｃ受容体アゴニストである ＷＡＹ−１６１５０３ およびＷＡＹ−１６３９０９の静脈内投与は、用量依存性に漏出時圧を上昇させ、いずれも０．１ｍｇ／ｋｇ以上の用量では有意な作用であった（表５）。しかし、ＷＡＹ−１６３９０９の光学異性体であり、５−ＨＴ_２Ｃ受容体アゴニスト作用のないとされるＷＡＹ−１６３９０７は作用を示さなかった（表５）。
セロトニン５−ＨＴ_２Ｃ受容体アゴニスト作用を有するＤＯＩ（５−ＨＴ_{２Ａ／２Ｂ／２Ｃ}受容体アゴニスト）、ｍＣＰＰ（５−ＨＴ_{２Ｂ／２Ｃ}受容体部分アゴニスト）、エルトプラジン（５−ＨＴ_{１Ａ／１Ｂ／２Ｃ}受容体部分アゴニスト）は、それぞれ漏出時圧を有意に上昇させた（表５）。
セロトニン５−ＨＴ_２Ｃ受容体アンタゴニストであるＲＳ−１０２２２１の静脈内投与は、ＷＡＹ−１６１５０３（０．３ｍｇ／ｋｇ，ｉ．ｖ．）による漏出時圧の上昇を用量依存性に抑制し、３ｍｇ／ｋｇにおける抑制は有意であった（表６）。
ＲＳ−１０２２２１の静脈内投与は、ＷＡＹ−１６３９０９による漏出時圧の上昇を用量依存性に抑制し、３ｍｇ／ｋｇにおける抑制は有意であった（表８）。また、セロトニン５−ＨＴ_２Ｃ受容体アンタゴニストＳＢ２２１２８４（５−ＨＴ_{２Ｂ/２Ｃ}受容体アンタゴニスト）もＷＡＹ−１６３９０９による漏出時圧上昇作用を有意に抑制した（表６）。

実施例５
〔実験方法〕
体重１８０−３５０ｇのＳＤ系雌性ラットをウレタン（和光純薬）で麻酔し、排尿反射を消失させる目的で脊髄をＴ８−９レベルで切断した。なお、手術中は必要に応じてハロセン（武田薬品工業）麻酔を追加した。開腹後、縫合糸を用いて膀胱頚部を結さつし、その後、カテーテル（ＰＥ−９０、Ｃｌａｙ Ａｄａｍｓ）を膀胱内に留置した。膀胱カテーテルの他方の端を、三方活栓を介して圧トランスデューサー及び生理食塩水の貯水槽（６０ｍｌシリンジ）に接続した。マイクロチップ・トランスデューサー・カテーテル（ＳＰＲ−５２４， Ｍｉｌｌａｒ Ｉｎｓｔｒｕｍｅｎｔｓ Ｉｎｃ．）を尿道口より膀胱に向かって挿入し、カテーテル表面に書かれた目盛りを用いて、トランスデューサー部分を尿道口から１２．５〜１５．０ｍｍの尿道部位に位置させ、また、トランスデューサー表面が尿道内面の３時の方向に接するように調整した。
マイクロチップ・トランスデューサーで測定される尿道内の局所的圧変化（以後、便宜上尿道内圧と表記）をアンプ（血圧用増幅ユニットＡＰ−６４１Ｇ；日本光電）、データ解析装置（ＭＰ−１００；ｂｉｏｐａｃｋ；５００ Ｈｚでサンプリング）を介してコンピュータへ送り、ハードディスク上に記録した。生理食塩水の貯水槽の位置を２５ｃｍ又は５０ｃｍ高めることで膀胱内圧を急激に２５ｃｍＨ_２Ｏ又は５０ｃｍＨ_２Ｏに３０秒間上昇させ、尿道内圧の変化を観察した。膀胱内圧上昇に誘発される尿道の反応を３回測定し、最後の２回の平均値を薬物投与前の値とした。
評価項目は静止時尿道内圧及び反射性尿道収縮反応とし、１秒間あたりの平均尿道内圧を算出した後、膀胱内圧を上昇させる直前の値を静止時尿道内圧、膀胱内圧上昇時の最大値から静止時尿道内圧を差し引いた値を尿道収縮反応とした。薬物投与前の反応を測定した後、特異的セロトニン５−ＨＴ_２Ｃ受容体アゴニストであるＷＡＹ−１６１５０３（０．３ｍｇ／ｋｇ）又はデュロキセチン（１０ｍｇ／ｋｇ）を静脈内投与し、その５分後に再び膀胱内圧を上昇させ、尿道の反応を測定した。なお、両薬物は、ともにＤＭＡ−ＰＥＧ４００（１：１）に溶解し、０．５ｍｌ／ｋｇの割合で投与した。
〔結果〕
脊髄を切断して排尿反射を消失させたラットを用い、膀胱内圧を０ｃｍＨ_２Ｏから２５ｃｍＨ_２Ｏ又は５０ｃｍＨ_２Ｏまで急激に上昇させたところ、膀胱内圧の上昇程度に依存した尿道内圧の上昇反応（尿道収縮反応）が観察された（図１）。
デュロキセチン（１０ｍｇ／ｋｇ）の静脈内投与は、膀胱内圧上昇時の尿道収縮反応を増強した（図１、表７）のに対し、溶媒は作用を示さなかった（表７）。セロトニン５−ＨＴ_２ＣアゴニストであるＷＡＹ１６１５０３を０．３ｍｇ／ｋｇの用量で静脈内投与したところ、尿道収縮反応は有意に増大した（表７）。なお、いずれの薬物も静止時尿道内圧には変化を与えなかった。
これらの結果から、両薬物は膀胱内圧上昇時の反射性尿道収縮反応（蓄尿反射）を増強し、尿道抵抗を高めることが明らかになった。

実施例６
〔実験方法〕
体重１８０−３５０ｇのＳＤ系雌性ラットをウレタン（和光純薬）で麻酔し、排尿反射を消失させる目的で脊髄をＴ８−９レベルで切断した。なお、手術中は必要に応じてハロセン（武田薬品工業）麻酔を追加した。開腹後、縫合糸を用いて膀胱頚部を結さつし、その後、カテーテル（ＰＥ−９０、Ｃｌａｙ Ａｄａｍｓ）を膀胱内に留置した。膀胱カテーテルの他方の端を、三方活栓を介して圧トランスデューサー及び生理食塩水の貯水槽（６０ｍｌ シリンジ）に接続した。トランスデューサーで測定される膀胱内圧の変化をアンプ（血圧用増幅ユニットＡＰ−６４１Ｇ；日本光電）とデータ解析装置（ＭＰ−１００；ｂｉｏｐａｃｋ）を介してコンピュータへ送り、ハードディスク上に記録した。生理食塩水の貯水槽を一定の高さに位置させることで膀胱内圧を９０秒間上昇させ、尿道口よりの生理食塩水漏出の有無を観察した。なお、膀胱内圧は２．５ｃｍＨ_２Ｏ毎に上昇させ、また、９０秒の観察期間後は、一旦、膀胱内圧を０ｃｍＨ_２Ｏに戻し、その後、次のステップへ移行した。尿道口より生理食塩水の漏出が観察された時の膀胱内圧を漏出時圧とした。漏出時圧の測定を繰り返し、最後の３回の平均値を薬物投与前の値とした．その後、薬物を静脈内投与し、１０分後に再び漏出時圧を測定した。なお、薬物はＤＭＡ−ＰＥＧ４００（１：１）に溶解し、０．５ｍｌ／ｋｇの割合で投与した。
〔結果〕
デュロキセチン及びＷＡＹ−１６１５０３は、いずれも膀胱内圧固定法（ｉｎｔｒａｖｅｓｉｃａｌ ｐｒｅｓｓｕｒｅ−ｃｌａｍｐ ｍｅｔｈｏｄ）における漏出時圧を高めた（表８）。また、アンドロゲンであるジヒドロテストステロン（ＤＨＴ）は、膀胱内圧固定法における漏出時圧を高めた（表８）。これらの結果は、デュロキセチン、セロトニン５−ＨＴ_２Ｃ受容体アゴニスト及びアンドロゲンは、いずれも膀胱内圧上昇時の尿道抵抗を高めることを示している。

製剤例１
（１）ＷＡＹ−１６１５０３ １０ｍｇ
（２）乳糖 ６０ｍｇ
（３）コーンスターチ ３５ｍｇ
（４）ヒドロキシプロピルメチルセルロース ３ｍｇ
（５）ステアリン酸マグネシウム ２ｍｇ
ＷＡＹ−１６１５０３ １０ｍｇと乳糖６０ｍｇ及びコーンスターチ３５ｍｇとの混合物を、１０重量％ヒドロキシプロピルメチルセルロース水溶液０．０３ｍＬ（ヒドロキシプロピルメチルセルロースとして３ｍｇ）を用いて顆粒化した後、４０℃で乾燥し篩過する。得られた顆粒をステアリン酸マグネシウム２ｍｇと混合し、圧縮する。得られる素錠を、蔗糖、二酸化チタン、タルク及びアラビアゴムの水懸濁液による糖衣でコーティングする。コーティングが施された錠剤をミツロウで艶出してコート錠を得る。

製剤例２
（１）ＷＡＹ−１６１５０３ １０ｍｇ
（２）乳糖 ７０ｍｇ
（３）コーンスターチ ５０ｍｇ
（４）可溶性デンプン ７ｍｇ
（５）ステアリン酸マグネシウム ３ｍｇ
ＷＡＹ−１６１５０３ １０ｍｇとステアリン酸マグネシウム３ｍｇを可溶性デンプンの水溶液０．０７ｍＬ（可溶性デンプンとして７ｍｇ）で顆粒化した後、乾燥し、乳糖７０ｍｇ及びコーンスターチ５０ｍｇと混合する。混合物を圧縮して錠剤を得る。

製剤例３
（１）ジヒドロテストステロン １０ｍｇ
（２）乳糖 ６０ｍｇ
（３）コーンスターチ ３５ｍｇ
（４）ヒドロキシプロピルメチルセルロース ３ｍｇ
（５）ステアリン酸マグネシウム ２ｍｇ
ジヒドロテストステロン１０ｍｇと乳糖６０ｍｇ及びコーンスターチ３５ｍｇとの混合物を、１０重量％ヒドロキシプロピルメチルセルロース水溶液０．０３ｍＬ（ヒドロキシプロピルメチルセルロースとして３ｍｇ）を用いて顆粒化した後、４０℃で乾燥し篩過する。得られた顆粒をステアリン酸マグネシウム２ｍｇと混合し、圧縮する。得られる素錠を、蔗糖、二酸化チタン、タルク及びアラビアゴムの水懸濁液による糖衣でコーティングする。コーティングが施された錠剤をミツロウで艶出してコート錠を得る。

製剤例４
（１）ジヒドロテストステロン １０ｍｇ
（２）乳糖 ７０ｍｇ
（３）コーンスターチ ５０ｍｇ
（４）可溶性デンプン ７ｍｇ
（５）ステアリン酸マグネシウム ３ｍｇ
ジヒドロテストステロン１０ｍｇとステアリン酸マグネシウム３ｍｇを可溶性デンプンの水溶液０．０７ｍＬ（可溶性デンプンとして７ｍｇ）で顆粒化した後、乾燥し、乳糖７０ｍｇ及びコーンスターチ５０ｍｇと混合する。混合物を圧縮して錠剤を得る。

本発明の腹圧性尿失禁予防・治療薬のスクリーニング方法は、病態に即した急激で一過性の腹圧上昇時における尿道抵抗を漏出時圧で測定するので、インビボ評価系として優れており、腹圧性尿失禁の予防・治療のために用いられる物質のスクリーニングに有用かつ効率的に適用することが可能である。他方、他の疾患の予防・治療のために用いられる物質が、腹圧性尿失禁を惹起しないことを検定する評価系としても有用である。また、本発明のスクリーニング方法を用いることで、病態に伴い発現が変動する遺伝子の同定や動態の解明、蛋白発現変動の解析、遺伝子導入による腹圧性尿失禁治療効果の検討など、腹圧性尿失禁の病態メカニズムの解明を目的とした種々の病態生理学的研究を、高い精度で効率よく行うことが可能である。
そして、本発明のスクリーニング方法で得られうる物質、例えば、腹圧上昇時の漏出時圧を増大する物質は、腹圧性尿失禁の予防・治療剤として使用することができる。

以上、本発明の具体的な態様のいくつかを詳細に説明したが、当業者であれば示された特定の態様には、本発明の教示と利点から実質的に逸脱しない範囲で様々な修正と変更をなすことは可能である。従って、そのような修正及び変更も、すべて後記の請求の範囲で請求される本発明の精神と範囲内に含まれるものである。

本出願は、日本で出願された特願２００４−２４５９３１（出願日：２００４年８月２５日）を基礎としており、その内容は本明細書に包含されるものである。

Claims (5)

1. 動物の腹筋もしくは横隔膜又はそれらを支配する神経を電気刺激して腹圧を上昇させ、この時の漏出時圧（ｌｅａｋ ｐｏｉｎｔ ｐｒｅｓｓｕｒｅ）を測定することを特徴とする腹圧上昇時の漏出時圧を増大する物質のスクリーニング方法。
2. 動物の腹筋もしくは横隔膜又はそれらを支配する神経を電気刺激して腹圧を上昇させ、この時の漏出時圧（ｌｅａｋ ｐｏｉｎｔ ｐｒｅｓｓｕｒｅ）を測定することを特徴とする腹圧性尿失禁予防治療薬のスクリーニング方法。
3. 腹圧上昇時の漏出時圧が低下状態にある請求項１又は２記載の方法。
4. 腹圧上昇時の漏出時圧の低下状態が、骨盤底筋群あるいは外尿道括約筋の反射性収縮に関与する神経の切断もしくは損傷、出産、卵巣摘出術、機械的な膣拡大処置、糖尿病、薬物投与又はそれらの組み合わせに基づくものである請求項３記載の方法。
5. 動物が雌性である請求項１又は２記載の方法。

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