JP2007515961A - 2ミクロン系プラスミドおよびその使用 - Google Patents
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Abstract
Description
本願は改変プラスミドおよびその使用に関する。
発芽酵母のある近縁種は天然の環状二本鎖DNAプラスミドを含むことが示されている。これらのプラスミドは2μm系プラスミドと総称され、チゴサッカロミセス・ルクシー(Zygosaccharomyces rouxii)(以前はチゴサッカロミセス・ビスポルス(Zygosaccharomyces bisporus) として分類されていた)由来のpSR1、pSB3およびpSB4、チゴサッカロミセス・バイリー(Zygosaccharomyces bailii)由来のプラスミドpSB1およびpSB2、チゴサッカロミセス・フェルメンタチ(Zygosaccharomyces fermentati)由来のプラスミドpSM1、クルイベロミセス・ドロソフィラルム(Kluyveromyces drosphilarum)由来のプラスミドpKD1、ピキア・メンブラネファシエンス(Pichia membranaefaciens)由来の命名されていないプラスミド(以下、「pPM1」と呼ぶ)、ならびにサッカロミセス・セレビシエ(Saccharomyces cerevisiae) (Volkert, et al., 1989, Microbiological Reviews, 53, 299; Painting, et al., 1984, J. Applied Bacteriology, 56, 331)およびその他のサッカロミセス種、例えば、S.カルスベルゲネシス(S. carlsbergensis)由来の2μmプラスミドおよび変異体(例えば、Scp1、Scp2およびScp3)が挙げられる。1つのプラスミドファミリーとして、これらの分子はプラスミドの反対側に2つの逆方向反復を有し、6kbp前後(4757〜6615bpの範囲)の類似の大きさ、少なくとも3つのオープンリーディングフレーム(そのうちの1つは部位特異的レコンビナーゼ(例えば、2μmのFLP)をコードする)、および逆方向反復の1つの末端付近に位置する、複製起点(ori)としても知られる自立複製配列(ARS)を有するという一連の共通の特徴を持っている(Futcher, 1988, Yeast, 4, 27; Murray et al., 1988, J. Mol. Biol. 200, 601およびToh-e et al., 1986, Basic Life Sci. 40, 425)。それらの認識できるDNA配列の相同性の欠如はあるものの、それらの共有の分子構造およびオープンリーディングフレームの機能の保存は、これらのファミリーメンバー間の一般的な連関を証明している。
・カリオフェリン/インポーチンファミリータンパク質のメンバーであるタンパク質、例えば、カリオフェリン/インポーチンタンパク質のαまたはBファミリー、例えば、PSE1によりコードされているカリオフェリンβタンパク質。
・Hjelmqvist et al, 2002, Genome Biology, 3(6), research0027.1-0027.16が記載しているORMDLファミリーのメンバーであるタンパク質、例えばOrm2p。
・小胞体または分泌経路の他所、例えばゴルジ体に本来存在するタンパク質。例えば、小胞体(ER)の管腔、特にPDIなどの分泌細胞で本来働くタンパク質。
・ERに固定されているトランスメンブランタンパク質であるタンパク質、例えば、Hjelmqvist et al, 2002, 前掲が記載しているORMDLファミリーのメンバー(例えば、Orm2p)。
・サイトゾルで働くタンパク質、例えば、hsp70タンパク質(SSAおよびSSBタンパク質、例えば、SSA1、SSA2、SSA3、SSA4、SSB1およびSSB2によりコードされているタンパク質を含む)。
・核、核エンベロープおよび/または細胞質で働くタンパク質、例えば、Pse1p。
・細胞の生存力に必須のタンパク質、例えば、PDIまたは必須カリオフェリンタンパク質、例えば、Pse1p。
・スルヒドリル酸化またはジスルフィド結合の形成、切断または異性化に関与するタンパク質、または特に分離タンパク質および細胞表面タンパク質の生合成中にタンパク質のチオール:ジスルフィド交換反応を触媒するタンパク質、例えば、タンパク質ジスルフィドイソメラーゼ(例えば、Pdi1p、Mpd1p)、ホモログ(例えば、Eug1p)および/または関連タンパク質(例えば、Mpd2p、Fmo1p、Ero1p)。
・タンパク質合成、アセンブリまたはフォールディングに関与するタンパク質、例えば、PDIおよびSsa1p。
・成熟タンパク質よりも折り畳まれていないタンパク質に優先的または排他的に結合するタンパク質、例えば、hsp70タンパク質(SSAおよびSSBタンパク質、例えば、SSA1、SSA2、SSA3、SSA4、SSB1およびSSB2によりコードされているタンパク質)。
・サイトゾルにおいて前駆体タンパク質の凝集を防ぐタンパク質、例えば、hsp70タンパク質(SSAおよびSSBタンパク質、例えば、SSA1、SSA2、SSA3、SSA4、SSB1およびSSB2によりコードされているタンパク質)。
・損傷したタンパク質に結合して安定化させるタンパク質、例えば、Ssa1p。
・折り畳み異常タンパク質応答に関与するか、または折り畳み異常タンパク質応答を誘導する薬剤(例えば、ツニカマイシンおよびジチオトレイトール)に対する耐性の増強をもたらすタンパク質、例えば、Hjelmqvist et al, 2002, 前掲が記載しているORMDLファミリーの(例えば、Orm2p)またはストレス応答に関与する(例えば、Ubi4p)。
・コシャペロンであるタンパク質、ならびに/または タンパク質フォールディングおよび/もしくは折り畳み異常タンパク質応答に間接的に関与するタンパク質(例えば、hsp104p、Mdj1p)。
・高分子の核−細胞質間輸送に関与するタンパク質、例えば、Pse1p。
・核局在配列と核輸出配列を認識し、核膜孔複合体と相互作用することにより、核膜を通過する高分子の輸送を媒介するタンパク質、例えば、Pse1p。
・EP0746611およびHillson et al, 1984, Methods Enzymol., 107, 281-292に記載されているようなスクランブルリボヌクレアーゼのDNAに対してリボヌクレアーゼ活性を復活させ得るタンパク質、例えば、PDI。
・酸性pI(例えば、4.0〜4.5)を有するタンパク質、例えば、PDI。
・Hsp70ファミリーのメンバーであり、好ましくは、N末端ATP結合ドメインとC末端ペプチド結合ドメインを有するタンパク質、例えば、Ssa1p。
・ペプチジル−プロリルシス−トランスイソメラーゼであるタンパク質(例えば、Cpr3p、Cpr6p)。
・既知シャペロンのホモログであるタンパク質(例えば、Hsp10p)。
・ミトコンドリアシャペロンであるタンパク質(例えば、Cpr3p)。
・細胞質または核シャペロンであるタンパク質(例えば、Cns1p)。
・膜結合シャペロンであるタンパク質(例えば、Orm2p、Fmo1p)。
・シャペロンアクチベーター活性またはシャペロンレギュレーター活性を有するタンパク質(例えば、Aha1p、Hac1p、Hch1p)。
・未熟型のタンパク質と一時的に結合して適切なフォールディング輸送、および/または分泌誘導するタンパク質、例えば、小胞体への効率的な輸送に必要なタンパク質(例えば、Lhs1p)またはそれらの細胞内の作用部位に必要なタンパク質(例えば、PseIp)。
・タンパク質複合体アセンブリおよび/またはリボソームアセンブリに関与するタンパク質(例えば、Atp11p、PseIp、Nob1p)。
・シャペロニンT複合体のンパク質(例えば、Cct2p)。または
・プレフォルディン複合体のタンパク質(例えば、Pfd1p)。
・マルチプル・アライメント・パラメーター:ギャップ・オープン・ペナルティー;10、ギャップ・エクステンション・ペナルティー;0.05。
・スコアリング・マトリックス:BLOSUM。
(a)REP2遺伝子またはFLP遺伝子および該遺伝子に隣接する逆方向反復を含む2μm系プラスミドを準備すること;
(b)ポリヌクレオチド配列を準備し、そのポリヌクレオチド配列を、プラスミドの、本発明の第一、第二または第三の好ましい態様に従う位置に挿入すること;
(c)工程(b)に加えて、またはその代わりに、本発明の第一、第二または第三の好ましい態様に従う位置のヌクレオチド塩基の一部または総てを欠失させること;および/または
(d)工程(b)および(c)のいずれかに加えて、またはその代わりに、本発明の第一、第二または第三の好ましい態様に従う位置のヌクレオチド塩基の一部または総てを別のヌクレオチド塩基で置換すること
を含む。
pSAC35のスモールユニーク領域内のXcmI部位への合成DNAリンカーの挿入
pSAC35のUS領域への付加的DNAの挿入に関してまず評価した部位は、599bpの逆方向反復内のXcmI部位であった。逆方向反復と重複するため、あるXcmI部位はREP2翻訳終結コドンの後の51bpを切断し、また他のXcmI部位はFLPコード配列の終末端の前の127bpを切断する(図3参照)。 挿入された配列は、オリゴヌクレオチドCF86とCF87の0.5mM溶液をアニーリングすることにより作製された52bpのリンカーであった。このDNAリンカーは、pSAC35には存在しない制限部位をコードするコア領域「SnaBI−PacI−FseI/SfiI−SmaI−SnaBI」を含んでいた。
pDB2688のXcmIリンカーへのPDI1遺伝子の挿入
2μm様ベクターのUS領域への大きなDNA断片の挿入は、S.セレビシエ PDI1遺伝子をpDB2688のXcmIリンカーにクローニングすることにより証明した。このPDI1遺伝子(図9)を、PDI1遺伝子を含む大きなS.セレビシエSKQ2nゲノムDNA断片(米国特許第6,291,205号に記載され、また、Crouzet & Tuite, 1987, Mol. Gen. Genet., 210, 581-583およびFarquhar et al, 1991, 前掲にもクローンC7として記載されているプラスミドpMA3a:C7において提供されているもの)(これは、YIplac211(Gietz & Sugino, 1988, Gene, 74, 527-534)にクローニングされたものであり、PDI1遺伝子の3’非翻訳領域内のユニークなBsu36I部位に挿入されたSacI制限部位を含む合成DNAリンカーを有していた)に由来の1.9kb SacI−SpeI断片にクローニングした。この1.9kb SacI−SpeI断片をT4 DNAポリメラーゼで処理してSpeI 5’−オーバーハングを埋め、SacI 3’−オーバーハングを除去した。このPDI1断片は、翻訳開始コドンの上流に212bpのPDI1プロモーターと、翻訳終結コドンの下流に148bpを含んでいた。これを、SmaI線状化/ウシ腸管アルカリ性ホスファターゼで処理したpDB2688に連結し、REP2と同じ方向で転写されるPDI1遺伝子を有するプラスミドpDB2690(図10)を作出した。S.セレビシエ株をpDB2690で形質転換してロイシン原栄養性とした。
REP2遺伝子およびpSAC35の逆方向反復内の下流配列へのDNAリンカーの挿入
REP2遺伝子およびその下流の逆方向反復内の配列への付加的DNAの挿入に関して有用な制限を定義するため、さらなるリンカーをpSAC35に挿入した。図12はこれらの挿入に用いた制限部位およびこれらの部位における翻訳終結のRep2タンパク質に対する影響を示している。
FLP遺伝子およびpSAC35の逆方向反復内の下流配列へのDNAリンカーの挿入
FLP遺伝子および逆方向反復内の下流配列への付加的DNAの挿入に関して有効な制限を定義するため、DNAリンカーをpSAC35へ挿入した。図3は、これらの挿入に用いた制限部位およびこれらの部位における翻訳終結のFlpタンパク質に対する影響を示している。
スモールユニーク領域および逆方向反復中に挿入されたDNAリンカーを含むpSAC35様プラスミドで形質転換した酵母におけるLEU2マーカーの相対的安定性
S.セレビシエ株を、US領域および逆方向反復中に挿入されたDNAリンカーを含むpSAC35様プラスミドで形質転換した。プラスミドの安定性を試験するため、低温保存トレハロース原液を調製した(表3)。プラスミド安定性は、pSAC35内のXcmI部位に挿入されたリンカーに関して上記したように分析した。分析する挿入部位につき二反復のフラスコを設定した。振盪フラスコ培養にて3日後の細胞から得られたコロニーの分析に加え、コロニーを増殖させ、さらに4日、振盪フラスコ培養した細胞からも分析した。このため、3日目の各フラスコから100μLのサンプルを取り出し、100mL YEPS培養液中、回転振盪機にて、30.0℃でおよそ96時間(94〜98時間)、さらに継代培養し、その後、単一コロニーを得、LEU2マーカーの欠損に関して分析した。この場合、分析は選択した株からの1本のフラスコに限定し、それにつき50コロニーを採種した。全結果を表4にまとめる。
pSAC35のスモールユニーク領域内のREP2遺伝子のすぐ後におけるDNA配列の挿入
REP2遺伝子およびその下流の逆方向反復内の配列への付加的DNAの挿入に関して有効な制限をさらに定義するため、合成DNAリンカーを、pSAC35のREP2翻訳終結コドン(TGA)のすぐ後に挿入した。2μm(またはpSAC35)内のREP2コード配列のすぐ後に都合よく存在する天然の制限エンドヌクレアーゼ部位がないので、オリゴヌクレオチド特異的突然変異誘発によりFLP遺伝子および逆方向反復内の下流配列への付加的DNAの挿入に関して有効な制限を定義するために、この位置にSnaBI部位を導入した。rREP2のすぐ下流にユニークなSnaBI部位を有するpSAC35誘導体をpDB2938(図37)と呼称した。pDB2938では、SnaBI部位の挿入により、逆方向反復の末端が逆方向反復の残りの部分からはすれている。次に、pDB2938のユニークなSnaBI部位に、オリゴヌクレオチドCF104およびCF105(前掲)からなるSnaBIリンカーの同一の31bpの配列が挿入され、その結果、REP2のTGA翻訳終結コドンのすぐ後にある制限エンドヌクレアーゼ部位の順序がSnaBI−PacI−FseI/SfiI−SmaI−SnaBIとなったpDB2954(図38)を構築した。
REP2遺伝子のすぐ後に挿入されたDNAを含むpSAC35様プラスミドで形質転換した酵母におけるLEU2マーカーの相対的安定性
pSAC35においてREP2遺伝子の後に導入されたSnaBI部位におけるリンカー配列の挿入からのプラスミド安定性に対する影響をpDB2954に関して評価した。これは最初の実施例で用いたものと同じS.セレビシエ株で、YEPS上での非選択的増殖中のLEU2マーカーの欠損により判定した。実施例1に記載した方法により、このpDB2954の安定性を、pSAC35(対照プラスミド)、pDB2688(XcmI−リンカー)およびpDB2817(XmnI−リンカー)の安定性と比較した。
非選択条件下30世代の増殖で判定した場合のpSAC35様プラスミドで形質転換した酵母におけるLEU2マーカーの安定性
US領域にDNAが挿入されたpSAC35様プラスミドの安定性を、Chinery & Hinchcliffe (1989, Curr. Genet., 16, 21-25)により定義されたものと類似の方法を用いて判定した。これを、これまでの実施例で用いたものと同じS.セレビシエ株で、所定の世代数にわたって非選択YEPS上での対数増殖中のLEU2マーカーの欠損により判定した。対照プラスミドpSAC35との間の違いを示す、または対照プラスミドとの比較安定性を示すには30世代が好適である。このアッセイよる分析のために選択したプラスミドは、pSAC35(対照)、pDB2688(XcmI−リンカー)、pDB2812(HgaI−リンカー)、pDB2817(XmnI−リンカー)、pDB2960(PDI1遺伝子がREP2の後のXcmI部位に挿入されている)およびpDB2711(PDI1遺伝子がREP2の後のXcmI部位に挿入され、トランスフェリン発現カセットがUL領域内のNotI部位に挿入されている)。
PDI1遺伝子分断を2μm系プラスミド上のPDI1遺伝子と組み合わせるとプラスミドの安定性を高めた
表7に挙げられている一本鎖オリゴヌクレオチドDNAプライマーは、酵母PDI1コード領域の上流の領域と酵母PDI1コード領域の下流の別の領域を増幅するように設計されたものである。
種々のPDI1遺伝子と、同じ2μm様プラスミド上の種々の異種タンパク質の発現カセットを含む発現ベクターの構築
PDI1遺伝子のPCR増幅およびYIplac211へのクローニング
S.セレビシエS288cおよびS.セレビシエSKQ2n由来のPDI1遺伝子をPCR増幅し、プロモーター配列を含む5’非翻訳領域の長さが様々に異なるDNA断片を作製した。YIplac211(Gietz & Sugino, 1988, Gene, 74, 527-534)のEcoRIおよびBamHI部位へのPCR産物のクローニングが可能となるようにPCRプライマーを設計した。後のクローニングを容易にするため、付加的な制限エンドヌクレアーゼ部位もPCRプライマーに組み込んだ。表10に構築されたプラスミドを記載し、表11にPDI1遺伝子を増幅するために用いたPCRプライマー配列を示す。これらのYIplac211系プラスミド内のPDI1プロモーターの長さの違いは表10に記載されている。
rHAを種々のPDI1遺伝子と同時発現させるためのpSAC35系プラスミドを構築した(表13)。
Claims (63)
- REP2遺伝子またはFLP遺伝子の少なくともいずれか一方の最後の機能的コドンの1つ後の塩基と、該遺伝子に隣接する逆方向反復内のFRT部位の1つ前の塩基との間に、ポリヌクレオチド配列の挿入、欠失および/または置換を含んでなる、2μm系プラスミド。
- 前記ポリヌクレオチド配列の挿入、欠失および/または置換を除き、FLP遺伝子および/またはREP2遺伝子が、天然2μm系プラスミド由来のFLP遺伝子および/またはREP2遺伝子の配列をそれぞれ有するものである、請求項1に記載の2μm系プラスミド。
- 天然2μm系プラスミドが、チゴサッカロミセス・ルクシーから得られるようなpSR1、pSB3またはpSB4、双方ともチゴサッカロミセス・バイリーから得られるようなpSB1またはpSB2、チゴサッカロミセス・フェルメンタチから得られるようなpSM1、クルイベロミセス・ドロソフィラルムから得られるようなpKD1、ピキア・メンブラネファシエンスから得られるようなpPM1、およびサッカロミセス・セレビシエから得られるような2μmプラスミドから選択される、請求項1に記載の2μm系プラスミド。
- 前記FLPおよび/またはREP2遺伝子に隣接する逆方向反復の配列が、その遺伝子が由来する配列と同じ天然2μm系プラスミドの対応する逆方向反復の配列に由来するものである、請求項2または3に記載の2μm系プラスミド。
- 天然2μm系プラスミドがサッカロミセス・セレビシエから得られるような2μmプラスミドである、請求項2〜4のいずれか一項に記載の2μm系プラスミド。
- 前記ポリヌクレオチド配列の挿入、欠失および/または置換が、REP2遺伝子のコドン59の最初の塩基と、隣接する逆方向反復内のFRT部位の1つ前の塩基の間の位置に存在する、請求項5に記載の2μm系プラスミド。
- 前記ポリヌクレオチド配列の挿入、欠失および/または置換を除き、REP2遺伝子および隣接する逆方向反復の配列が、配列番号1で定義されたものまたはその変異体である、請求項5または6に記載の2μm系プラスミド。
- 前記ポリヌクレオチド配列の挿入、欠失および/または置換が、逆方向反復の最初の塩基とFRT部位の1つ前の塩基の間の位置に存在する、請求項1〜7のいずれか一項に記載の2μm系プラスミド。
- 前記ポリヌクレオチド配列の挿入、欠失および/または置換が、REP2コード配列の終末端の1つ後の塩基とFRT部位の1つ前の塩基の間、例えば、REP2コード配列の終末端の1つ後の塩基に存在する、請求項1〜7のいずれか一項に記載の2μm系プラスミド。
- 前記ポリヌクレオチド配列の挿入、欠失および/または置換を除き、REP2コード配列の後に続く逆方向反復が、サッカロミセス・セレビシエから得られるような2μmプラスミドの対応する領域に由来する配列を有し、好ましくは、そのポリヌクレオチド配列の挿入、欠失および/または置換が逆方向反復内のXcmI部位またはFspI部位に存在する、請求項1〜7のいずれか一項に記載の2μm系プラスミド。
- 前記ポリヌクレオチド配列の挿入、欠失および/または置換が、FLP遺伝子のコドン344の最初の塩基と、隣接する逆方向反復内のFRT部位の1つ前の塩基の間の位置に存在する、請求項5に記載の2μm系プラスミド。
- 前記ポリヌクレオチド配列の挿入、欠失および/または置換を除き、FLPコード配列および隣接する逆方向反復の配列が、配列番号2で定義されたもの、またはその変異体である、請求項5または11に記載の2μm系プラスミド。
- 前記ポリヌクレオチド配列の挿入、欠失および/または置換が、逆方向反復の最初の塩基とFRT部位の1つ前の塩基の間の位置に存在する、請求項11または12に記載の2μm系プラスミド。
- 前記ポリヌクレオチド配列の挿入、欠失および/または置換が、FLPコード配列の終末端の1つ後の塩基と、FRT部位の1つ前の塩基の間の位置に存在する、請求項13に記載の2μm系プラスミド。
- 前記ポリヌクレオチド配列の挿入、欠失および/または置換が、FLPコード配列の終末端の1つ後の塩基に存在する、請求項14に記載の2μm系プラスミド。
- 前記ポリヌクレオチド配列の挿入、欠失および/または置換を除き、FLP遺伝子の後に続く逆方向反復が、サッカロミセス・セレビシエから得られるような2μmプラスミドの対応する領域に由来する配列を有し、好ましくは、前記ポリヌクレオチド配列の挿入、欠失および/または置換が逆方向反復内のHgaI部位またはFspI部位に存在する、請求項11〜15のいずれか一項に記載の2μm系プラスミド。
- REP2遺伝子およびFLP遺伝子の双方の最後の機能的コドンの1つ後の塩基と、該遺伝子の各々に隣接する逆方向反復内のFRT部位の1つ前の塩基との間に、ポリヌクレオチド配列の挿入、欠失および/または置換を含んでなり、これらのポリヌクレオチド配列の挿入、欠失および/または置換が同じであっても異なっていてもよい、請求項1〜16のいずれか一項に記載の2μm系プラスミド。
- 請求項1〜17のいずれか一項で定義された位置にはない、ポリヌクレオチド配列の挿入、欠失および/または置換をさらに含んでなる、請求項1〜17のいずれか一項に記載の2μm系プラスミド。
- 前記ポリヌクレオチド配列の挿入、欠失および/または置換が、ARS配列の前後の非転写領域内に存在する、請求項18に記載の2μm系プラスミド。
- 前記ポリヌクレオチド配列の挿入、欠失および/または置換、またはその少なくとも一つがポリヌクレオチド配列の挿入である、請求項1〜19のいずれか一項に記載の2μm系プラスミド。
- 前記ポリヌクレオチド配列の挿入がオープンリーディングフレームをコードするものである、請求項20に記載の2μm系プラスミド。
- 前記オープンリーディングフレームが非2μm系プラスミドタンパク質をコードするものである、請求項21に記載の2μm系プラスミド。
- 前記非2μm系プラスミドタンパク質が、タンパク質フォールディングに関与する、またはシャペロン活性を有するか、もしくは折り畳み異常タンパク質応答に関与するタンパク質、アルブミン、モノクローナル抗体、エトポシド、血清タンパク質(例えば、血液凝固因子)、アンチスタシン、tick抗凝固ペプチド、トランスフェリン、ラクトフェリン、エンドスタチン、アンギオスタチン、コラーゲン、免疫グロブリンまたは免疫グロブリンに基づく分子またはいずれかの断片(例えば、dAb、Fab’断片、F(ab’)2、scAb、scFvまたはscFv断片)、Kunitzドメインタンパク質、インターフェロン、インターロイキン、IL10、IL11、IL2、インターフェロンα種および亜種、インターフェロンβ種および亜種、インターフェロンγ種および亜種、レプチン、CNTF、CNTFAX15、IL1−受容体アンタゴニスト、エリスロポエチン(EPO)およびEPO模倣体、トロンボポエチン(TPO)およびTPO模倣体、プロサプチド、シアノビリン−N,5−ヘリックス、T20ペプチド、T1249ペプチド、HIVgp41、HIV gp120、ウロキナーゼ、プロウロキナーゼ、tPA、ヒルディン、血小板由来増殖因子、副甲状腺ホルモン、プロインスリン、インスリン、グルカゴン、グルカゴン様ペプチド、インスリン様増殖因子、カルシトニン、成長ホルモン、トランスフォーミング増殖因子β、腫瘍壊死因子、G−CSF、GM−CSF、M−CSF、FGF、プレ型および活性型双方の凝固因子(限定されるものではないが、プラスミノーゲン、フィブリノーゲン、トロンビン、プレトロンビン、プロトロンビン、フォン・ウィルブランド因子、α1アンチトリプシン、プラスミノーゲンアクチベーター、因子VII、因子VIII、因子IX、因子Xおよび因子XIIIを含む)、神経増殖因子、LACI、血小板由来内皮細胞増殖因子(PD−ECGF)、グルコースオキシダーゼ、血清コリンエステラーゼ、アプロチニン、アミロイド前駆体タンパク質、インターαトリプシン阻害剤、抗トロンビンIII、アポリポタンパク質種、Cタンパク質、Sタンパク質、または前記のいずれかの変異体もしくは断片の配列を含むものである、請求項22に記載の2μm系プラスミド。
- 前記非2μm系プラスミドタンパク質が、アルブミン、その変異体もしくは断片、またはこれらのいずれかの配列を含む融合タンパク質の配列を含むものである、請求項23に記載の2μm系プラスミド。
- 前記非2μm系プラスミドタンパク質が、トランスフェリン、その変異体もしくは断片、またはこれらのいずれかの配列を含む融合タンパク質の配列を含むものである、請求項23に記載の2μm系プラスミド。
- 前記非2μm系プラスミドタンパク質が、ラクトフェリン、その変異体もしくは断片、またはこれらのいずれかの配列を含む融合タンパク質の配列を含むものである、請求項23に記載の2μm系プラスミド。
- 前記非2μm系プラスミドタンパク質が、Fc、その変異体もしくはその断片、またはこれらのいずれかの配列を含む融合タンパク質の配列を含むものである、請求項23に記載の2μm系プラスミド。
- 前記非2μm系プラスミドタンパク質が、AHA1、CCT2、CCT3、CCT4、CCT5、CCT6、CCT7、CCT8、CNS1、CPR3、CPR6、EPS1、ERO1、EUG1、FMO1、HCH1、HSP10、HSP12、HSP104、HSP26、HSP30、HSP42、HSP60、HSP78、HSP82、JEM1、MDJ1、MDJ2、MPD1、MPD2、PDI1、PFD1、ABC1、APJ1、ATP11、ATP12、BTT1、CDC37、CPR7、HSC82、KAR2、LHS1、MGE1、MRS11、NOB1、ECM10、SSA1、SSA2、SSA3、SSA4、SSC1、SSE2、SIL1、SLS1、UBI4、ORM1、ORM2、PER1、PTC2、PSE1およびHAC1または末端切断型イントロンレスHAC1のいずれか一つによりコードされているような、タンパク質フォールディングに関与する、またはシャペロン活性を有するか、もしくは折り畳み異常タンパク質応答に関与するタンパク質の配列を含むものである、請求項23に記載の2μm系プラスミド。
- 前記シャペロンが、タンパク質ジスルフィドイソメラーゼ(PDI)であるか、またはORM2、SSA1もしくはPSE1によりコードされるタンパク質である、請求項23または28に記載の2μm系プラスミド。
- 前記非2μm系プラスミドタンパク質が分泌リーダー配列を含むものである、請求項22〜29のいずれか一項に記載の2μm系プラスミド。
- 前記非2μm系プラスミドタンパク質が細菌選択マーカーおよび/または酵母選択マーカーの配列を含むものである、請求項22に記載の2μm系プラスミド。
- 前記細菌選択マーカーがβ−ラクタマーゼ遺伝子であり、かつ/または前記酵母選択マーカーがLEU2選択マーカーである、請求項31に記載の2μm系プラスミド。
- (i)非2μm系プラスミドタンパク質をコードする異種配列;(ii)タンパク質フォールディングに関与するタンパク質、シャペロン、または折り畳み異常タンパク質応答に関与するタンパク質、好ましくはタンパク質ジスルフィドイソメラーゼの配列を含むタンパク質をコードする異種配列;および(iii)選択マーカーの配列を含むタンパク質をコードする異種配列、を含んでなり、これらの異種配列のうち少なくとも一つが請求項1〜16のいずれか一項で定義された位置に存在する、請求項1〜32のいずれか一項に記載の2μm系プラスミド。
- 請求項1〜33のいずれか一項で定義されたプラスミドを作製する方法であって、
(a)REP2遺伝子とREP2遺伝子の後に続く逆方向反復、またはFLP遺伝子とFLP遺伝子の後に続く逆方向反復の配列を含んでなり、それぞれの場合において、その逆方向反復がFRT部位を含むものである、プラスミドを準備すること、
(b)ポリヌクレオチド配列を準備し、そのポリヌクレオチド配列を、プラスミドの請求項1〜16のいずれか一項で定義された位置に挿入すること、および/または
(c)請求項1〜16のいずれか一項で定義された位置のヌクレオチド塩基の一部または総てを欠失させること、および/または
(d)請求項1〜16のいずれか一項で定義された位置のヌクレオチド塩基の一部または総てを別のヌクレオチド塩基で置換すること
を含んでなる、方法。 - 請求項34に記載の方法によって得られる、プラスミド。
- 請求項1〜33および35のいずれか一項で定義されたプラスミドを含んでなる、宿主細胞。
- 酵母細胞である、請求項36に記載の宿主細胞。
- プラスミドがマルチコピープラスミドとして安定である、請求項36または37に記載の宿主細胞。
- プラスミドがpSR1、pSB3もしくはpSB4に基づくものであって、酵母細胞がチゴサッカロミセス・ルクシーであるか、プラスミドがpSB1もしくはpSB2に基づくものであって、酵母細胞がチゴサッカロミセス・バイリーであるか、プラスミドがpSM1に基づくものであって、酵母細胞がチゴサッカロミセス・フェルメンタチであるか、プラスミドがpKD1に基づくものであって、酵母細胞がクルイベロミセス・ドロソフィラルムであるか、プラスミドがpPM1に基づくものであって、酵母細胞がピキア・メンブラネファシエンスであるか、またはプラスミドが2μmプラスミドに基づくものであって、酵母細胞がサッカロミセス・セレビシエもしくはサッカロミセス・カルルスベルゲネシスである、請求項38に記載の宿主細胞。
- プラスミドが選択マーカーを含むか、または含むように改変されている場合に、マーカーの欠損によって測定される安定性が、5世代後に、少なくとも1%、2%、3%、4%、5%、10%、15%、20%、25%、30%、40%、50%、60%、70%、75%、80%、85%、90%、95%、96%、97%、98%、99%、99.9%または実質的に100%である、請求項38または39に記載の宿主細胞。
- タンパク質を製造する方法であって、
(a)請求項1〜33または35のいずれか一項で定義されたプラスミドを準備する工程、
(b)好適な宿主細胞を準備する工程、
(c)宿主細胞をそのプラスミドで形質転換する工程、および
(d)その形質転換宿主細胞を培養培地中で培養する工程、
(e)これによりタンパク質を生産する工程
を含んでなる、方法。 - タンパク質を製造する方法であって、請求項1〜33または35のいずれか一項で定義されたプラスミドを含む、請求項36〜40のいずれか一項で定義された宿主細胞を準備する工程、およびその宿主細胞を培養培地中で培養することによってタンパク質を生産する工程を含んでなる、方法。
- 生産されたタンパク質を培養宿主細胞または培養培地から単離する工程をさらに含んでなる、請求項41または42に記載の方法。
- 単離されたタンパク質を商業上許容されるレベルの純度にまで精製する工程をさらに含んでなる、請求項43に記載の方法。
- 精製されたタンパク質を担体または希釈剤とともに製剤化する工程、および、所望により、このようにして製剤化されたタンパク質を単位形で提供する工程をさらに含んでなる、請求項44に記載の方法。
- 単離されたタンパク質を医薬上許容されるレベルの純度にまで精製する工程をさらに含んでなる、請求項43に記載の方法。
- 精製されたタンパク質を医薬上許容される担体または希釈剤とともに製剤化する工程、および、所望により、このようにして製剤化されたタンパク質を単位投与形で提供する工程をさらに含んでなる、請求項44に記載の方法。
- 宿主酵母細胞においてその必須タンパク質をコードする遺伝子が欠失または不活性化された場合に、その宿主細胞は培養系では生存できず、かつ、その欠陥が培養培地に対する付加または改変によっては補償できないという意味で、宿主酵母細胞の生存力に必須のタンパク質をコードする遺伝子を単独の酵母選択マーカーとして含んでなる、プラスミド。
- 前記必須タンパク質をコードする遺伝子が、プラスミドによりコードされる単独の選択マーカーである、請求項48に記載のプラスミド。
- 前記必須タンパク質がシャペロンである、請求項48または49に記載のプラスミド。
- 前記シャペロンがタンパク質ジスルフィドイソメラーゼまたはPse1pである、請求項51に記載のプラスミド。
- 請求項23〜27のいずれか一項で定義されたタンパク質のような、非2μm系プラスミドタンパク質をコードする遺伝子をさらに含んでなる、請求項48〜51のいずれか一項に記載のプラスミド。
- 2μm系プラスミドである、請求項48〜52のいずれか一項に記載のプラスミド。
- 請求項1〜33のいずれか一項で定義されたプラスミドである、請求項53に記載のプラスミド。
- その宿主細胞の生存力に必須のタンパク質をコードする遺伝子を含むプラスミドを含んでなる宿主細胞であって、該プラスミドの不在下では宿主細胞は必須タンパク質が生産できず、かつ、培養培地に対する付加または改変によっては生存力が得られない、宿主細胞。
- 前記プラスミドが請求項1〜33または48〜54のいずれか一項に記載のプラスミドである、請求項55に記載の宿主細胞。
- 前記プラスミドの不在下では生存できない、請求項55または56に記載の宿主細胞。
- 請求項23〜27のいずれか一項で定義されたタンパク質のような、目的のタンパク質をコードする組換え遺伝子をさらに含んでなる、請求項55〜57のいずれか一項に記載の宿主細胞。
- 目的のタンパク質が請求項23〜27のいずれか一項で定義された非2μm系プラスミドタンパク質である、請求項58に記載の宿主細胞。
- 前記必須タンパク質が、タンパク質ジスルフィドイソメラーゼまたはPSE1などのシャペロンである、請求項59に記載の宿主細胞。
- 前記組換え遺伝子が、前記必須タンパク質をコードする遺伝子と同じプラスミド上に存在している、請求項59または60に記載の宿主細胞。
- 目的の組換えタンパク質を製造する方法であって、請求項59〜61のいずれか一項で定義された宿主細胞を準備する工程、該宿主細胞を、培養培地中、必須タンパク質および目的のタンパク質の発現を可能とする条件下で培養する工程、ならびに、所望により、このようにして発現した目的のタンパク質を培養宿主細胞または培養培地から単離する工程、ならびに、所望により、このようにして単離された目的のタンパク質を商業上許容されるレベルの純度にまで精製する工程、さらには、所望により、このようにして精製されたタンパク質を凍結乾燥するか、または精製された目的のタンパク質を担体または希釈剤(例えば、医薬上許容される担体または希釈剤)とともに製剤化する工程、ならびに、所望により、このようにして製剤化された目的のタンパク質を単位投与形で提供する工程を含んでなる、方法。
- 宿主細胞を培養する工程が、宿主細胞を複合培地または富栄養培地などの非選択培地で培養することを含む、請求項62に記載の方法。
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