JP2006111638A - 第ＩＸ因子／第ＩＸａ因子の抗体および抗体誘導体 - Google Patents

Abstract

【課題】活性化された第ＩＸ因子（ＦＩＸａ）の凝血促進活性を増大する、第ＩＸ因子／活性化された第ＩＸ因子に対する抗体または抗体誘導体を提供すること。
【解決手段】本願発明に従って、活性化された第ＩＸ因子（ＦＩＸａ）の凝血促進活性を増大する、第ＩＸ因子／活性化された第ＩＸ因子に対する抗体または抗体誘導体が提供される。本発明の第ＩＸ因子／第ＩＸａ因子−活性化抗体または抗体誘導体の作用は、インヒビター（例えば、第ＶＩＩＩ因子／第ＶＩＩＩａ因子に対するインヒビター）の存在によっては反対方向に影響されないが、代わりに、この場合は第ＩＸａ因子の凝血促進活性がまた増加される。本発明に従う調製物の投与は、ＦＶＩＩＩを抑制する患者の場合でさえも、第ＶＩＩＩ因子または第ＶＩＩＩａ因子の非存在においてでも迅速な血液凝固を可能とする。
【選択図】なし

Description

本発明は、第ＩＸ因子／第ＩＸａ因子−抗体および抗体誘導体に関する。

血餅（血栓）は、凝固カスケードとして呼ばれる一連のチモーゲン活性化によって形成される。この酵素的カスケードの過程において、このようなチモーゲン（因子といわれる）の各々の活性化形態は、次のチモーゲンの活性化を触媒する。血栓は、血管壁の表面上の血液成分の蓄積物であり、そして主に、凝集した血小板および不溶性の架橋したフィブリンからなる。フィブリンの形成は、フィブリノーゲンの制限されたタンパク分解によって、トロンビンによってもたらされる。トロンビンは、凝固カスケードの最終生成物である（Ｋ．Ｇ．Ｍａｎｎ，Ｂｌｏｏｄ，１９９０，Ｖｏｌ．７６，ｐｐ．１−１６）。

活性化された第ＩＸ因子（ＦＩＸａ）および活性化された第ＶＩＩＩ因子（ＦＶＩＩＩａ）の複合体による第Ｘ因子の活性化は、凝固における重要な工程である。この複合体の成分の非存在またはその機能の妨害は、血友病と呼ばれる血液凝固障害に関連する（Ｊ．Ｅ．Ｓａｄｌｅｒ＆Ｅ．Ｗ．Ｄａｖｉｅ：Ｈｅｍｏｐｈｉｌｉａ Ａ，Ｈｅｍｏｐｈｉｌｉａ Ｂ ａｎｄ ｖｏｎ Ｗｉｌｌｅｂｒａｎｄ’ｓ ｄｉｓｅａｓｅ，Ｇ．Ｓｔａｍａｔｏｙａｎｎｏｐｏｕｌｏｓら（編）：Ｔｈｅ ｍｏｌｅｃｕｌａｒ ｂａｓｉｓ ｏｆ ｂｌｏｏｄ ｄｉｓｅａｓｅｓ．Ｗ．Ｂ．Ｓａｕｎｄｅｒｓ Ｃｏ．，Ｐｈｉｌａｄｅｌｐｈｉａ，１９８７，ｐｐ．５７６−６０２）。血友病Ａは、第ＶＩＩＩ因子活性の（機能的）欠如を示すが、血友病Ｂは、第ＩＸ因子活性の欠如によって特徴付けられる。現在は、血友病Ａの処置は、第ＶＩＩＩ因子濃縮物の投与による補充療法を介してもたらされる。しかし、約２０〜３０％の血友病Ａの患者は、第ＶＩＩＩ因子インヒビター（すなわち、第ＶＩＩＩ因子に対する抗体）を発生させ、それによって投与された第ＶＩＩＩ因子調製物の効果が阻害される。第ＶＩＩＩ因子を抑制する患者の処置は、非常に困難かつ危険性を含み、そして従来はこれらの患者を処置するために限定された数の処置しか存在しなかった。

低いＦＶＩＩＩインヒビターレベルを有する患者の場合において、高用量の第ＶＩＩＩ因子をこのような患者に投与して、従って第ＶＩＩＩ因子に対する抗体を中和することは、高価であるが可能である。次いで、インヒビター抗体を中和するために必要な量を超える量の第ＶＩＩＩ因子は、うっ血作用を有する。多くの場合において、脱感作がもたらされ得、次いでその上に、標準的な第ＶＩＩＩ因子処置を再び適用し得る。しかし、大量の第ＶＩＩＩ因子を必要とするこのような高用量第ＶＩＩＩ因子処置は多大な時間を必要とし、そして重篤なアナフィラキシーの副反応を伴い得る。あるいは、この処置は、ブタの第ＶＩＩＩ因子分子を用いて行われ得る。

さらなる高コストの方法は、免疫グロブリン（プロテインＡ、プロテインＧ）または固定化された第ＶＩＩＩ因子に結合するレクチン上の、特別な体の免疫吸着（ｅｘｔｒａ ｃｏｒｐｏｒｅａｌ ｉｍｍｕｎｏａｄｓｏｒｐｔｉｏｎ）を介して第ＶＩＩＩ因子インヒビターを除去する工程を包含する。この処置の間、患者はアフェレーシス器械に連結されなければならないので、この処置はまた、患者への大きな負担となる。この方法においてはまた、急性の出血を処置することはできない。

現在、最上の治療は、活性化されたプロトロンビン複合体濃縮物（ＡＰＣＣ）（例えば、ＦＥＩＢＡ（登録商標）およびＡＵＴＯＰＬＥＸ（登録商標））を投与することであり、これは、高いインヒビター力価を有する患者においてでさえも、急性出血の処置に適切である（ＤＥ ３１ ２７ ３１８）。

血液凝固の脈管内系において、最後の段階は第Ｘ因子の活性化である。この反応は、第ＶＩＩＩａ因子の第ＩＸａ因子への結合、ならびに第ＩＸａ因子、第ＶＩＩＩａ因子、第Ｘ因子およびリン脂質からなる「テナーゼ（ｔｅｎａｓｅ）」複合体の形成によって刺激される。ＦＶＩＩＩａの結合なしでは、ＦＩＸａは酵素活性を示さないか、またはＦＸと比較してほんのわずかの酵素活性しか示さない。

最近の数年間にわたって、第ＩＸａ因子に対する第ＶＩＩＩａ因子の可能な多くの結合部位が特徴付けられ、これらの領域に結合する抗体またはペプチドが、ＦＩＸａの活性を阻害することが示されている（Ｆａｙら、Ｊ．Ｂｉｏｌ．Ｃｈｅｍ．，１９９４，Ｖｏｌ．２６９，ｐｐ．２０５２２−２０５２７，Ｌｅｎｔｉｎｇら、Ｊ．Ｂｉｏｌ．Ｃｈｅｍ．，１９９６，Ｖｏｌ．２７１，ｐｐ．１９３５−１９４０，Ｊｏｒｑｕｅｒａら、Ｃｉｒｃｕｌａｔｉｏｎ，１９９２，Ｖｏｌ．８６，抄録２７２５）。第ＩＸ因子のような凝固因子の阻害はまた、血栓症の形成の予防の目的で、モノクローナル抗体の使用を介して達成される（ＷＯ
９７／２６０１０）。

逆の効果（すなわち、第Ｘ因子の第ＩＸａ因子媒介活性化における増大）は、第ＩＸ因子への第ＶＩＩＩ因子ペプチド（アミノ酸６９８〜７１２）の結合を介して、Ｌｉｌｅｓ Ｄ．Ｋ．ら、（Ｂｌｏｏｄ，１９９７，Ｖｏｌ．９０，補遺１，２０５４）によって記載された。けれども、この効果は、第ＶＩＩＩａ因子の非存在においてのみ生じ、一方、第ＶＩＩＩａの存在下では、第Ｘ因子の第ＩＸａ因子／第ＶＩＩＩａ因子媒介切断は、このペプチドによって阻害される。

（発明の要旨）
血友病患者の処置において生じ得る可能な危険性および副作用の観点から、ＦＶＩＩＩを抑制する患者の有効な処置を可能にする治療の必要性が存在する。そのため、第ＶＩＩＩ因子を抑制する患者についての特定の利点を有する、血液凝固障害の処置のための調製物を提供することが本発明の目的である。

従って、本発明によって、以下が提供される：
（項目１） 第ＩＸ因子／第ＩＸａ因子に対する抗体または抗体誘導体であって、ＦＩＸａの凝血促進活性を増大させる、抗体または抗体誘導体。
（項目２） 前記抗体または抗体誘導体が、ＦＶＩＩＩインヒビターの存在下でＦＩＸａの凝血促進活性を増大させる、項目１に記載の抗体または抗体誘導体。
（項目３） 前記抗体が、ＩｇＧ抗体、ＩｇＭ抗体、ＩｇＡ抗体およびＩｇＥ抗体からなる群から選択される、項目１に記載の抗体。
（項目４） 項目１に記載の抗体または抗体誘導体であって、ここで、該抗体または抗体誘導体は、モノクローナル抗体、抗体フラグメント、キメラ抗体、ヒト化抗体、単鎖抗体、二重特異性抗体、ダイアボディー、およびそれらのダイマー、オリゴマー、またはマルチマーからなる群から選択される、抗体または抗体誘導体。
（項目５） 前記抗体誘導体が、相補的決定領域（ＣＤＲ）ペプチドを含む、項目１に記載の抗体誘導体。
（項目６） 前記ＣＤＲペプチドがＣＤＲ３ペプチドである、項目５に記載の抗体誘導体。
（項目７） 項目６に記載の抗体誘導体であって、ここで、前記ＣＤＲ３ペプチドが、以下：
Ｔｙｒ−Ｇｌｙ−Ａｓｎ−Ｓｅｒ−Ｐｒｏ−Ｌｙｓ−Ｇｌｙ−Ｐｈｅ−Ａｌａ−Ｔｙｒ；
Ｃｙｓ−Ｘ−Ｘ−Ｔｙｒ−Ｇｌｙ−Ａｓｎ−Ｓｅｒ−Ｐｒｏ−Ｌｙｓ−Ｇｌｙ−Ｐｈｅ−Ａｌａ−Ｔｙｒ−Ｘ−Ｘ−Ｃｙｓ；
Ｔｙｒ−Ｇｌｙ−Ａｓｎ−Ｓｅｒ−Ｐｒｏ−Ｌｙｓ−Ｇｌｙ−Ｐｈｅ−Ａｌａ−Ｔｙｒ；
Ａｓｐ−Ｇｌｙ−Ｇｌｙ−Ｈｉｓ−Ｇｌｙ−Ｔｙｒ−Ｇｌｙ−Ｓｅｒ−Ｓｅｒ−Ｐｈｅ−Ａｓｐ−Ｔｙｒ；および
Ｐｈｅ−Ａｒｇ−Ａｓｎ−Ａｒｇ−Ｇｌｙ−Ｍｅｔ−Ｔｈｒ−Ａｌａ−Ｌｅｕ−Ｌｅｕ−Ｌｙｓ−Ｖａｌ−Ｓｅｒ−Ｓｅｒ−Ｃｙｓ−Ａｓｐ、
からなる群から選択されるアミノ酸配列を含み、ここで、
Ｘは、任意の所望のアミノ酸であり得る、抗体誘導体。
（項目８） 項目１に記載の抗体または抗体誘導体であって、ここで、該抗体または抗体誘導体の可変領域が、図１４に記載のアミノ酸１〜３５７および／またはアミノ酸４０３〜７２６を含む、抗体または抗体誘導体。
（項目９） 前記抗体または抗体誘導体が、人工的なリンカー配列をさらに含む、項目８に記載の抗体または抗体誘導体。
（項目１０） 項目１に記載の抗体または抗体誘導体であって、ここで、該抗体または抗体誘導体の可変領域が、図１５に記載のアミノ酸１〜３６３および／またはアミノ酸４０９〜７４７を含む、抗体または抗体誘導体。
（項目１１） 前記抗体または抗体誘導体が、人工的なリンカー配列をさらに含む、項目１０に記載の抗体または抗体誘導体。
（項目１２） 項目１に記載の抗体または抗体誘導体であって、ここで、該抗体または抗体誘導体の可変領域が、図１６に記載のアミノ酸１〜３６６および／またはアミノ酸４１２〜７４７を含む、抗体または抗体誘導体。
（項目１３） 前記抗体または抗体誘導体が、人工的なリンカー配列をさらに含む、項目１２に記載の抗体または抗体誘導体。
（項目１４） 項目１に記載の、第ＩＸ因子／第ＩＸａ因子に対する抗体または抗体誘導体を発現する、ハイブリドーマ細胞株。
（項目１５） 項目１４に記載のハイブリドーマ細胞株であって、ここで、該細胞株が、＃１９６／ＡＦ１、＃１９６／ＡＦ２、＃１９３／ＡＤ３、＃１９３／Ｋ２−１、＃１９８／ＡＣ１／１、＃１９８／ＡＭ１、＃１９８／Ａ１、＃１９８／Ｂ１、＃１９８／ＡＰ１、１９８／Ａ１、１９８／Ｂ１、１９８／ＢＢ１、１９８／Ａ１、１９８／Ｂ１、１９８／ＢＢ１からなる群から選択される、ハイブリドーマ細胞株。
（項目１６） 項目１４に記載のハイブリドーマ細胞株によって発現される、項目１に記載の抗体または抗体誘導体。
（項目１７） ＤＮＡ分子であって、該ＤＮＡ分子が、項目１に記載の抗体または抗体誘導体をコードする、ＤＮＡ分子。
（項目１８） 項目１に記載の抗体または抗体誘導体および薬学的に受容可能なキャリアを含有する、薬学的調製物。
（項目１９） 第ＩＸａα因子および／または第ＩＸａβ因子をさらに含む、項目１８に記載の調製物。
（項目２０） 血液凝固障害に罹患した患者を処置するための方法であって、薬学的有効量の項目１８に記載の調製物を該患者に投与する工程を包含する、方法。
（項目２１） 項目２０に記載の方法であって、ここで、前記血液凝固障害が、血友病Ａおよび出血性素質を含む群から選択される、方法。
（項目２２） 血友病を抑制する患者を選択する工程をさらに包含する、項目２１に記載の方法。
（項目２３） 第ＩＸ因子／第ＩＸａ因子と相互作用し、そして第ＩＸａ因子の凝血促進活性を増大させる抗体または抗体誘導体を得る方法であって、以下の工程：
− ＦＩＸ、ＦＩＸａα、ＦＩＸａβまたはそれらのフラグメントからなる群から選択される抗原で、免疫応答性マウスを免疫する工程、
− 免疫されたマウスの脾細胞を単離する工程、
− ハイブリドーマクローンを産生する工程、
− 第ＩＸａ因子の凝血促進活性における増大について、ハイブリドーマ細胞の上清をスクリーニングし、第ＩＸａ因子の凝固促進活性における増大を示すハイブリドーマ細胞の上清から、該抗体または抗体誘導体を単離および精製する工程、
を包含する、方法。
（項目２４） 第ＩＸａ因子のアミド分解活性を増大させるための、項目１に記載の抗体または抗体誘導体の使用。

本発明に従って、この目的は、第ＶＩＩＩａ因子補因子活性または第ＩＸａ因子活性化活性を有し、そして第ＩＸａ因子の凝血促進活性における増加を導く、第ＩＸ因子／第ＩＸａ因子に対する抗体または抗体誘導体の使用を通して達成される。驚いたことに、本発明の第ＩＸ因子／第ＩＸａ因子−活性化抗体または抗体誘導体の作用は、インヒビター（例えば、第ＶＩＩＩ因子／第ＶＩＩＩａ因子に対するインヒビター）の存在によっては反対方向に影響されないが、代わりに、この場合は第ＩＸａ因子の凝血促進活性がまた増加される。

本発明のさらなる利点は、本発明に従う調製物の投与が、ＦＶＩＩＩを抑制する患者の場合でさえも、第ＶＩＩＩ因子または第ＶＩＩＩａ因子の非存在においてでも迅速な血液凝固を可能とすることである。驚いたことに、これらの因子はまた、第ＶＩＩＩａ因子の存在下においても有効である。

従って、本発明に従う抗体および抗体誘導体は、ＦＶＩＩＩ補因子様の活性を有し、これは、２時間のインキュベーション後のＦＶＩＩＩアッセイ（例えば、ＣＯＡＴＥＳＴ（登録商標）アッセイまたはイムノクロム（Ｉｍｍｕｎｏｃｈｒｏｍ）試験）において、少なくとも３のバックグラウンド（基本的ノイズ）対測定値の比を示す。この比の計算は、例えば、２時間のインキュベーションの後に、以下のスキームに従って達成され得る：

本発明に従う抗体は、好ましくは少なくとも５日、より好ましくは少なくとも１０日のインビボ半減期を有するが、少なくとも２０日の半減期を有するのがより好ましい。

本発明のさらなる局面は、第ＩＸ因子／第ＩＸａ因子に対する抗体および／または抗体誘導体、ならびに薬学的に受容可能なキャリア物質を含む調製物である。さらに、本発明に従う調製物は、第ＩＸ因子および／または第ＩＸａ因子をさらに含み得る。

本発明のさらなる局面は、第ＩＸａ因子のアミド分解（ａｍｉｄｏｌｙｔｉｃ）活性を増加するための、この抗体または抗体誘導体の使用である。

（抗体および抗体誘導物）
本発明はまた、本発明の抗体および抗体誘導物、発現ベクター、ハイブリドーマ細胞株をコードする核酸、ならびにこれらを産生するための方法を包含する。

抗体は、免疫グロブリン分子の合成（または、それぞれ、その免疫原）を誘発する抗原にのみ結合する、あるいはその抗原に大変類似する抗原（または免疫原）にのみ結合する、特異的なアミノ酸配列を有する免疫グロブリン分子である。各免疫グロブリン分子は、２つの型のポリペプチド鎖からなる。各分子は、大きな、同一の重鎖（Ｈ鎖）、および２つの軽い、同一でもある鎖（Ｌ鎖）からなる。ポリペプチドは、ジスルフィド架橋および非共有結合によって結合する。インビボでは、重鎖および軽鎖は、異なるリボソーム上で形成され、細胞内で組み立てられ、そしてインタクトな免疫グロブリンとして分泌される（Ｉｍｍｕｎｏｌｏｇｙ、第２版、１９８９内のＲｏｉｔｔ Ｉ．ら）。

本発明の抗体、および抗体誘導物、ならびにこれらから誘導された有機化合物は、ヒトおよび動物のモノクローナル抗体またはそれらのフラグメント、一本鎖抗体およびそれらのフラグメントならびにミニ抗体、二重特異的（ｂｉｓｐｅｃｉｆｉｃ）抗体、二重抗体（ｄｉａｂｏｄｙ）、三重抗体（ｔｒｉａｂｏｄｙ）、またはそれらのダイマー、オリゴマーもしくはマルチマー（ｍｕｌｔｉｍｅｒ）を含む。本発明に従う抗体から誘導されたペプチドミメティックス（ｐｅｐｔｉｄｏｍｉｍｅｔｉｃｓ）またはペプチド（例えば、これらは、１つまたはいくつかのＣＤＲ領域、好ましくはＣＤＲ３領域を含む）もまた含まれる。

さらに、構造的活性関連に基づいて、人工的モデリングプロセスによって産生されるヒトモノクローナル抗体およびペプチド配列も含まれる（Ｇｒｅｅｒ Ｊ．ら、Ｊ．Ｍｅｄ．Ｃｈｅｍ．、１９９４、Ｖｏｌ．３７、ｐｐ．１０３５−１０５４）。

用語第ＩＸ／ＩＸａ因子活性化抗体および抗体誘導物はまた、宿主細胞内における、変更された、免疫グロブリンコード領域の発現によって産生されるタンパク質（例えば、合成抗体、キメラ抗体またはヒト化抗体のような「技術的改変抗体」、またはそれらの混合物、あるいは例えば、Ｆｖ、Ｆａｂ、Ｆａｂ’またはＦ（ａｂ）’₂などの定常領域を部分的もしくは完全に欠損する抗体フラグメントを含み得る。これらの技術的改変抗体において、例えば、軽鎖および／または重鎖の一部分またはいくらかの部分は、置換され得る。このような分子は、例えば、ヒト化重鎖および未改変軽鎖（またはキメラ軽鎖）からなる抗体を含み得、逆も同様である。用語Ｆｖ、Ｆｃ、Ｆｄ、Ｆａｂ、Ｆａｂ’またはＦ（ａｂ）’₂は、先行技術（Ｈａｒｌｏｗ Ｅ．およびＬａｎｅ Ｄ．、「抗体、実験室マニュアル（Ａｎｔｉｂｏｄｉｅｓ、Ａ Ｌａｂｏｒａｔｏｒｙ Ｍａｎｕａｌ）」、Ｃｏｌｄ Ｓｐｒｉｎｇ Ｈａｒｂｏｒ Ｌａｂｏｒａｔｏｒｙ、１９８８）に記載されるように用いられる。

本発明はまた、モノクローナル抗体（ｍＡｂ）から誘導されるＦａｂフラグメントまたはＦ（ａｂ）₂フラグメントの使用を含み、これらのフラグメントは、第ＩＸ因子／第ＩＸａ因子に対して指向され、そして第ＩＸａ因子のプロコアギュラント（ｐｒｏｃｏａｇｕｌａｎｔ）活性の増加を引き起こす。好ましくは、異種のフレームワーク領域および定常領域は、ヒト免疫グロブリンクラスおよびアイソタイプ（例えば、ＩｇＧ（サブタイプ１〜４）、ＩｇＭ、ＩｇＡおよびＩｇＥ）から選択される。免疫応答の過程において、免疫グロブリンのクラス変更（例えば、ＩｇＭからＩｇＧへの変更；ここでは、定常領域が（例えば、μからγへ）変換される）が起こり得る。先行技術（Ｅｓｓｅｒ Ｃ．およびＲａｄｂｒｕｃｈ Ａ．、Ａｎｎｕ．Ｒｅｖ．Ｉｍｍｕｎｏｌ．、１９９０、Ｖｏｌ．８、ｐｐ．７１７−７３５）から公知のように、クラス変更はまた、指向された様式で、遺伝子操作方法（「指向されたクラス変更組換え」）によって引き起こされ得る。しかし、本発明に従う抗体および抗体誘導物は、免疫グロブリンタンパク質のヒト配列を特別に含む必要はない。

ある特定の実施形態において、ヒト化抗体は、マウスモノクローナル抗体からの補体決定領域（ＣＤＲ）を含み、この領域は、選択されたヒト抗体配列のフレームワーク領域に挿入される。しかし、ヒトＣＤＲ領域もまた使用され得る。好ましくは、ヒト軽鎖および重鎖における可変領域は、１以上のＣＤＲ変換によって技術的に変えられる。６つの全てのＣＤＲ、または６未満のＣＤＲの種々の組み合わせを使用することもまた可能である。

本発明に従うヒト化抗体は、好ましくは、ヒト抗体の構造、またはそのフラグメントの構造を有し、そして治療的適用（例えば、患者（好ましくは、第ＶＩＩＩ因子を抑制する患者）における凝固障害の処置）のために必要な特徴の組み合わせを含む。

キメラ抗体は、ヒト免疫グロブリンからの重鎖および軽鎖の両方の鎖の定常領域と組み合わせて、非ヒト起原の重鎖および軽鎖のフレームワーク領域を含む、可変領域全体を含むという点で、ヒト化抗体と異なる。例えば、マウス配列およびヒト配列からなるキメラ抗体が産生され得る。本発明に従うと、抗体および抗体誘導物はまた、一本鎖抗体、またはミニ抗体（例えば、プロリンリッチ配列およびオリゴマー化（ｏｌｉｇｏｍｅｒｉｓａｔｉｏｎ）ドメインに結合するｓｃＦｖフラグメント（例えば、Ｐｌｕｃｋｔｈｕｎ Ａ．およびＰａｃｋ Ｐ．、Ｉｍｍｕｎｏｔｅｃｈｎｏｌｏｇｙ、１９９７、Ｖｏｌ．３、ｐｐ．８３−１０５）、もしくは一本鎖Ｆｖ（ｓＦｖ）（これは、一本のポリペプチド鎖内の抗体結合領域全体を組み込む）であり得る。例えば、一本鎖抗体は、オリゴヌクレオチドにＶ遺伝子を結合することによって形成され得、このオリゴヌクレオチドは、リンカー配列として構築されており、そして第１のＶ領域のＣ末端を第２のＶ領域のＮ末端と、例えば、ＶＨ−リンカー−ＶＬまたはＶＬ−リンカー−Ｖ_Hの配置で結合し；従って、両方とも（Ｖ_HおよびＶ_L）は、Ｎ末端ドメインを表し得る（Ｈｕｓｔｏｎ ＪＳら、Ｉｎｔ．Ｒｅｖ．Ｉｍｍｕｎｏｌ．、１９９３、Ｖｏｌ．１０、ｐｐ．１９５−２１７；Ｒａａｇ Ｒ．およびＷｈｉｔｌｏｗ Ｍ．、ＦＡＳＥＢ Ｊ．、１９９５、Ｖｏｌ．９、ｐｐ．７３−８０）。リンカー配列として使用され得るタンパク質は、例えば、１５０Åまで、好ましくは８０Åまで、そしてより好ましくは４０Åまでの長さを有する。グリシンおよびセリンを含むリンカー配列は、これらの可撓性のために特に好ましく、または、グルタミンおよびリジンを含むリンカー配列は、それぞれ、これらの可溶性のために好ましい。アミノ酸の選択は、免疫原性および安定性の基準に従ってなされ、これらの一本鎖抗体が、生理学的適用または工業的適用（例えば、免疫アフィニティクロマトグラフィー）に適し得るか否かにも依存する。この一本鎖抗体はまた、凝集体として（例えば、トリマー、オリゴマー、またはマルチマーとして）存在し得る。しかし、リンカー配列はまた失われ、そしてＶ_H鎖およびＶ_L鎖の結合が直接起こり得る。

二重特異性抗体は、１つの単一分子内に２つの異なった結合特異性を有する、高分子のヘテロ二機能性架橋である。この群には、例えば、二重特異性（ｂｓ）ＩｇＧ、ｂｓ ＩｇＭ−ＩｇＡ、ｂｓ ＩｇＡ−二量体、ｂｓ（Ｆａｂ’）₂、ｂｓ（ｓｃＦｖ）₂、ダイアボディー（ｄｉａｂｏｄｉｅｓ）、およびｂｓ ｂｉｓ Ｆａｂ Ｆｃが属する（Ｃａｏ Ｙ．およびＳｕｒｅｓｈ Ｍ．Ｒ．，Ｂｉｏｃｏｎｊｕｇａｔｅ Ｃｈｅｍ．，１９９８，第９巻、６３５−６４４頁）。

ペプチド模倣物によって、天然ペプチド成分の構造を模倣するかまたはその鋳型が隣接したペプチド配列における特異的構造形成を誘導する低分子のタンパク質成分が理解される（Ｋｅｍｐ ＤＳ，Ｔｒｅｎｄｓ Ｂｉｏｔｅｃｈｎｏｌ．，１９９０，２４９−２５５頁）。ペプチド模倣物は、例えば、ＣＤＲ３ドメインに由来し得る。所定のペプチド配列の系統的な変異分析、すなわち、アラニンまたはグルタミン酸走査変異分析によって、凝血促進性活性に重要なペプチド残基の同定を可能にする。特定のペプチド配列の活性を改善するための別の可能性は、高い処理能力のスクリーニングと組み合わせたペプチドライブラリーの使用である。

用語抗体および抗体誘導体はまた、構造−活性関係に関連するデータの分析によって獲得される因子を含み得る。これらの化合物はまた、ペプチド模倣物として使用され得る（Ｇｒａｓｓｙ Ｇ．ら、Ｎａｔｕｒｅ Ｂｉｏｔｅｃｈｎｏｌ．１９９８，第１６巻、７４８−７５２頁；Ｇｒｅｅｒ Ｊ．ら、Ｊ．Ｍｅｄ．Ｃｈｅｍ．，１９９４，第３７巻、１０３５−１０５４頁）。

本発明に従って、抗体または抗体誘導体を発現するハイブリドーマ細胞の例としては、ブタペスト条約に従って、番号９９０９０９２４（＃１９８／Ａ１）、９９０９０９２５（＃１９８／Ｂ１）および９９０９０９２６（＃１９８／ＢＢ１）下で１９９９年９月９日に、そして、番号９９１２１６１４（＃１９３／Ａ０）、９９１２１６１５（＃１９６／Ｃ４）、９９１２１６１６（＃１９８／Ｄ１）、９９１２１６１７（１９８／Ｔ２）、９９１２１６１８（＃１９８／Ｇ２）、９９１２１６１９（＃１９８／ＡＣ１）および９９１２１６２０（＃１９８／Ｕ２）下で１９９９年１２月１６日に寄託された。

（産生の方法）
本発明の抗体は、先行技術から公知の方法によって調製され得る（例えば、慣例的なハイブリドーマ技術によってかまたはファージディスプレイ遺伝子ライブラリー、免疫グロブリン鎖混合の方法もしくはヒト化技術によって）（Ｈａｒｌｏｗ Ｅ．およびＬａｎｅ Ｄ．，Ａｎｔｉｂｏｄｉｅｓ，Ａ Ｌａｂｏｒａｔｏｒｙ Ｍａｎｕａｌ，Ｃｏｌｄ Ｓｐｒｉｎｇ Ｈａｒｂｏｒ Ｌａｂｏｒａｔｏｒｙ，１９８８）。本発明の抗体および抗体誘導体の産生は、例えば、慣例的なハイブリドーマ技術によって行なわれる（Ａｎｔｉｂｏｄｉｅｓ，Ａ Ｌａｂｏｒａｔｏｒｙ Ｍａｎｕａｌ，Ｃｏｌｄ Ｓｐｒｉｎｇ Ｈａｒｂｏｒ Ｌａｂｏｒａｔｏｒｙ，１９８８，ＨａｒｌｏｗおよびＬａｎｅ編、１４８−２４２頁）。本発明に従って、ヒトおよび非ヒト種（例えば、ウシ、ブタ、サル、ニワトリおよびげっ歯類（マウス、ラット））はまた、ハイブリドーマ技術のために使用され得る。通常、免疫競合Ｂａｌｂ／ｃマウスまたはＦＩＸ欠損マウスは、使用され得る（第ＩＸ因子欠損マウスは、ノースキャロライナ大学、Ｃｈａｐｅｌ ＨｉｌｌのＤａｒｒｅｌ Ｓｔａｆｆｏｒｄ博士より分譲され得る）。免疫化は、例えば、第ＩＸ因子、第ＩＸａα因子または完全に活性化された第ＩＸａβ因子、またはそのフラグメントで影響され得る。

ハイブリドーマ細胞の上清における抗体および抗体誘導体が第ＩＸ因子／第ＩＸａ因子に結合し、そして、第ＩＸａ因子の凝血促進性活性の増加の原因となるという事実を望んで、ハイブリドーマは選択される。凝血促進性活性の増加は、例えば、第ＶＩＩＩ因子様活性の測定のための先行技術から公知のアッセイ方法（例えば、色素形成（ｃｈｒｏｍｏｇｅｎｉｃ）アッセイ）によって証明され得る。

あるいは、本発明の抗体および抗体誘導体はまた、組換え産生方法によって産生され得る。そうする際、本発明に従う抗体のＤＮＡ配列は、公知の技術によって決定され得、そして、抗体ＤＮＡ全体またはその一部は、適切な系で発現され得る。ファージディスプレイ、合成および天然ライブラリー、公知の発現系における抗体タンパク質の発現、またはトランスジェニック動物における発現を含むような組換え産生方法は、使用され得る（Ｊｏｎｅｓら、Ｎａｔｕｒｅ，１９８６、第３２１巻、５２２−５２５頁；Ｐｈａｇｅ Ｄｉｓｐｌａｙ ｏｆ Ｐｅｐｔｉｄｅｓ ａｎｄ Ｐｒｏｔｅｉｎｓ，Ａ Ｌａｂｏｒａｔｏｒｙ Ｍａｎｕａｌ，１９９６，Ｋａｙら編、１２７−１３９頁；米国特許第４，８７３，３１６号；Ｖａｕｇｈａｎ Ｔ．Ｊ．ら、Ｎａｔｕｒｅ Ｂｉｏｔｅｃｈｎｏｌｏｇｙ，１９９８，５３５−５３９頁；Ｐｅｒｓｉｃ Ｌら、Ｇｅｎｅ，１９９７，９−１８頁；Ａｍｅｓ Ｒ．Ｓ．ら、Ｊ．Ｉｍｍｕｎｏｌ．Ｍｅｔｈｏｄｓ，１９９５，１７７−１８６頁）。

組換え的に産生された抗体の発現は、慣例的な発現ベクターの方法（例えば、細菌ベクター（例えば、ｐＢｒ３２２およびその誘導体）、ｐＳＫＦまたは真核生物ベクター（例えば、ｐＭＳＧおよびＳＶ４０ベクター））によって影響され得る。抗体をコードするこれらの配列は、複製、発現および宿主細胞からの分泌を調節する制御配列を提供され得る。これらの制御配列は、プロモーター（例えば、ＣＭＶまたはＳＶ４０）およびシグナル配列を含む。

発現ベクターはまた、ジヒドロ葉酸レダクターゼ遺伝子（ＤＨＦＲ）、ハイグロマイシン−Ｂ−ホスホトランスフェラーゼ、チミジンキナーゼなどの選択および増幅マーカーを含み得る。

使用されるベクターの成分（例えば、選択マーカー、レプリコン、エンハンサーなど）は、慣例的な方法の手段によって商業的に獲得され得るかまたは調製され得る。このベクターは、例えば、哺乳動物細胞（ＣＨＯ、ＣＯＳ、線維芽細胞など）、昆虫細胞、酵母または細菌（Ｅ．ｃｏｌｉなど）についての種々の細胞培養物における発現のために構築され得る。好ましくは、発現タンパク質の最適なグリコシル化を可能にするこれらの細胞が使用される。特に好ましいのは、ＣＨＯ細胞またはＳＫ−Ｈｅｐにおいて発現されるベクターｐＢａｘ（参考、図１７）である。
ＦａｂフラグメントまたはＦ（ａｂ）₂フラグメントの産生は、先行技術から公知の方法に従って影響され得る（例えば、パパインおよび／またはペプシンなどのタンパク分解性酵素を使用して、ｍＡｂを切断することによってかまたは組換え法によって）。これらのＦａｂおよびＦ（ａｂ）₂フラグメントはまた、ファージディスプレイ遺伝子ライブラリーの方法によって調製され得る（Ｗｉｎｔｅｒら、１９９４，Ａｎｎ．Ｒｅｖ．Ｉｍｍｕｎｏｌ．，１２：４３３−４５５）。

抗体誘導体はまた、先行技術から公知の方法の手段によって調製され得る（例えば、Ｇｒａｓｓｙ Ｇ．ら、Ｎａｔｕｒｅ Ｂｉｏｔｅｃｈｎｏｌ．，１９９８，第１６巻、７４８−７５２、またはＧｒｅｅｒ Ｊ．ら、Ｊ．Ｍｅｄ．Ｃｈｅｍ．，第３７巻、１０３５−１０５４頁、またはＲｅｅｓ Ａ．ら、「Ｐｒｅｔｅｉｎ Ｓｔｒｕｃｔｕｒｅ Ｐｒｅｄｉｃｔｉｏｎ；Ａ ｐｒａｃｔｉｃａｌ ａｐｐｒｏａｃｈ」Ｓｔｅｒｎｂｅｒｇ Ｍ．Ｊ．Ｅ．編、ＩＲＬ出版、１９９６、第７〜１０章、１４１−２６１頁からの分子モデリングによって）。

本発明の抗体および抗体誘導体の精製はまた、先行技術で記載された方法によって行なわれ得る（例えば、硫酸アンモニウム沈殿、アフィニティー精製（プロテインＧセファロース）、イオン交換クロマトグラフィー、またはゲルクロマトグラフィーによって）。本発明の抗体および抗体誘導体が、第ＩＸ因子／第ＩＸａ因子に結合し、第ＩＸａ因子の凝血促進性活性を増加するかまたは第ＶＩＩＩ因子様活性を有することを示すための試験方法として、以下の方法は使用され得る：一工程凝血試験（ＭｉｋａｅｌａｓｓｏｎおよびＯｓｗａｌｄｓｏｎ，Ｓｃａｎｄ．Ｊ．Ｈａｅｍａｔｏｌ．，Ｓｕｐｐｌ．，３３，７９−８６頁、１９８４）または色素形成試験（ＣＯＡＴＥＳＴ ＶＩＩＩ：Ｃ（登録商標）（Ｃｈｒｏｍｏｇｅｎｉｘ）またはＩｍｍｕｎｏｃｈｒｏｍ（ＩＭＭＵＮＯ）など）。原則的には、第ＶＩＩＩ因子活性を決定するために使用される全ての方法が使用され得る。測定のコントロールブランク値として、例えば、非特定的マウスＩｇＧ抗体が使用され得る。

本発明の抗体および抗体誘導体は、例えば、血友病Ａの場合において、第ＶＩＩＩ因子を抑制する患者などのための凝血障害の処置における治療的使用に適している。投与は、患者に治療学的因子を効果的に投与するのに適切な任意の方法によって、影響され得る（例えば、経口投与、皮下投与、筋内投与、静脈内投与または鼻腔内投与によって）。

本発明に従う治療学的因子は、薬学的に受容可能なキャリア物質中に活性な因子として十分な量の抗体または抗体誘導体を含む調製物として産生され得る。これらの因子は、液体または粉末形態のいずれかで存在し得る。さらに、本発明に従う調製物はまた、異なった抗体、その誘導体および／またはそれらから誘導された有機化合物の混合物、ならびに、抗体および第ＩＸ因子および／または第ＩＸａ因子からなる混合物を含み得る。第ＩＸａ因子は、第ＩＸａα因子および／または第ＩＸａβ因子として存在し得る。水性キャリア物質の例は、例えば、生理食塩水である。溶液は滅菌性で、滅菌は慣例的な方法によって影響される。

本発明に従う抗体または抗体誘導体は、貯蔵のために凍結乾燥形態で存在し得、そして、投与の前に適切な溶媒で懸濁され得る。この方法は、一般的に慣例的な免疫グロブリンについて有利であることが証明され、そして、公知の凍結乾燥および再構成方法は、この場合で適用され得る。

さらに、本発明に従う抗体および抗体誘導体はまた、工業的適用に使用され得る（例えば、アフィニティークロマトグラフィーの方法による第ＩＸ因子／第ＩＸａ因子の精製のためか、または検出方法（例えば、ＥＬＩＳＡアッセイ）の成分としてか、または標的タンパク質の機能的ドメインの同定および相互作用のための因子として）。

本発明は、以下の実施例および図面によって、より詳細に記載されるが、本発明はそれに対して制限されるべきではない。

（実施例１：免疫競合マウスの免疫化および抗ＦＩＸ／ＩＸａ抗体分泌ハイブリドーマ細胞の産生）
１〜３匹の正常免疫競合５〜８週齢Ｂａｌｂ／ｃマウスを個体内（ｉ．ｐ．）経路を介して１００μｇの抗原（１００μｌ用量）で免疫化した。代表的な実験では、マウスを組換えヒト凝血因子（Ｆ）ＩＸ（Ｂｅｎｅｆｉｘ^TM）、ヒト活性化ＦＩＸａα（Ｅｎｚｙｍｅ Ｒｅｓｅａｒｃｈ Ｌａｂｏｒａｔｏｒｉｅｓ，Ｌｏｔ：ＦＩＸａα １１９０Ｌ）または水酸化アルミニウムもしくはＫＦＡで補助したヒトＦＩＸａβ（Ｅｎｚｙｍｅ Ｒｅｓｅａｒｃｈ Ｌａｂｏｒａｔｏｒｉｅｓ，Ｌｏｔ：ＨＦＩＸａα １３３２ ＡＬ）のいずれかで接種した。

個々のマウスを１００μｇの抗原（１００μｌ用量、ｉ．ｐ．）で種々の時間にブーストし、そして、２日後に屠殺した。脾臓細胞を取り出し、そして、Ｌａｎｅら、１９８５（Ｊ．Ｉｍｍｕｎｏｌ．Ｍｅｔｈｏｄｓ，第８１巻、２２３−２２８頁）に基本的に記載されるように、Ｐ３ Ｘ６３−Ａｇ８６．５．３骨髄腫細胞に融合させた。それぞれの融合実験を個々に番号付けした（すなわち、＃１９３、１９５、１９６または１９８）。

ハイブリドーマ細胞をマクロファージフィーダー層上の９６ウェルプレート上で増殖し（約１０⁵細胞／ｍｌ）そしてＨＡＴ培地（抗生物質、１０％ＦＣＳ、ピルビン酸ナトリウム、Ｌ−グルタミン、２−メルカプトエタノールおよびＨＡＴ（ＨＡＴ １００×：Ｈ₂Ｏ中の１．０×１０^-2Ｍヒポキサンチン（１３６．１ｍｇ／１００ｍｌ Ｈ₂Ｏ）、Ｈ₂Ｏ中の４．０×１０^-5Ｍアミノプテリン（１．７６ｍｇ／１００ｍｌ Ｈ₂Ｏ）およびＨ₂Ｏ中の１．６×１０^-3Ｍチミジン（３８．７ｍｇ／１００ｍｌ Ｈ₂Ｏ））で補充したＲＰＭＩ−１６４０培地）中で選択した。培地を６日後に最初に交換し、その後１週間に２回交換した。２〜３週間後、ＨＡＴ培地をＨＴ培地（抗生物質、１０％ＦＣＳ、ピルビン酸ナトリウム、Ｌ−グルタミン、２−メルカプトエタノールおよびＨＴで補充したＲｐＭＩ−１６４０）に変更し、その後（さらに１〜２週間後）通常の増殖培地（１０％ＦＣＳ、ピルビン酸ナトリウム、Ｌ−グルタミンおよび２−メルカプトエタノールで補充したＲＰＭＩ−１６４０培地）（ＨＹＢＲＩＤＯＭＡ ＴＥＣＨＮＩＱＵＥＳ、ＥＭＢＯ，ＳＫＭＢ Ｃｏｕｒｓｅ １９８０，Ｂａｓｅｌを参照のこと）に変更した。

別のセットの実験において、ＦＩＸ欠損Ｃ５７Ｂ１６マウス（Ｌｉｎら、１９９７、Ｂｌｏｏｄ，９０：３９６２）を免疫化および後に続くハイブリドーマ産生のために使用した。ＦＩＸノックアウト（ｋ．ｏ．）マウスは、内因性ＦＩＸを発現しないので、達成可能な抗（ａ）−ＦＩＸ抗体スペクトルは、正常なＢａｌｂ／ｃマウスと比較して異なっていることが推定される（耐性の欠如に起因して）。

（実施例２：抗ＦＩＸ／ＦＩＸａ抗体分泌ハイブリドーマ細胞の上清におけるＦＶＩＩＩ様活性のためのアッセイ）
ハイブリドーマ細胞によって分泌される抗ＦＩＸａ抗体のＦＶＩＩＩ様活性をアッセイするために、市販されている試験キットＣＯＡＴＥＳＴ ＶＩＩＩ：Ｃ／４（登録商標）（Ｃｈｒｏｍｏｇｅｎｉｘ）を使用した。アッセイは、以下の改変を使用して基本的に製造業者によって記載されるように行なった：
高い処理能力のスクリーニングを可能にするために、アッセイをマイクロタイタープレート型式に小規模化した。簡潔には、ハイブリドーマ上清の２５μｌのアリコートを、マイクロタイタープレート（Ｃｏｓｔａｒ，＃３５９８）ウェルに移し、そして、３７℃に温めた。色素形成基質（Ｓ−２２２２）、合成トロンビンインヒビター（Ｉ−２５８１）、因子（Ｆ）ＩＸａおよびＦＸを滅菌水中で再構築し、そして、ＦＩＸａ／ＦＸを、製造業者のプロトコルに従って、リン脂質で混合した。反応液当り、５０μｌのリン脂質／ＦＩＸａ／ＦＸ溶液を２５μｌの塩化カルシウム（２５ｍＭ）および５０μｌの基質／インヒビター反応混液と組み合わせた。反応を開始するために、１２５μｌのプレミックスをマイクロタイタープレート中のハイブリドーマ上清に添加し、そして、３７℃でインキュベートした。サンプルの４０５ｎｍおよび４９０ｎｍの吸光度を、Ｌａｂｓｙｓｔｅｍｓ ｉＥＭＳ Ｒｅａｄｅｒ ＭＦ^TMマイクロタイタープレートリーダーで、試薬ブランクに対して（ＭＬＷ、ハイブリドーマ上清の代わりの細胞培養培地）種々の時間（３０分〜１２時間）測定した。サンプルのＦＶＩＩＩ様活性を、ＧＥＮＥＳＩＳ^TMソフトウェアを用いて、希釈したＦＶＩＩＩ参照規準（ＩＭＭＵＮＯ ＡＧ＃５Ｔ４ＡＲ００）の吸光度に対してサンプルの吸光度を比較することによって計算した。
ハイブリドーマ細胞培養物上清におけるＦＶＩＩＩ様活性のスクリーニングの結果を図１に示す。融合実験＃１９３、＃１９５および＃１９６由来の選択される前のクローン（上記を参照のこと）を記載されるように、色素形成ＦＶＩＩＩアッセイで調査した。クローン１９３／Ｍ１、１９３／Ｎ１および１９３／Ｐ１は、マスタークローン１９３／Ｃ０由来のサブクローンであった（以下を参照のこと）。マスタークローン１９５／１０は融合実験＃１９５に由来し、そして、クローン１９６／Ａ０、１９６／Ｂ０および１９６／Ｃ０は、融合実験＃１９６由来であった。代表的なスクリーニング実験において、単一の融合実験由来の約１０００クローン（９６ウェル中）は、ＦＶＩＩＩ様活性についてスクリーニング前と同じであった。続いて、選択されたクローンを大規模に増殖し（３〜５ｍｌの上清）、そして、色素形成アッセイで再分析した。陰性コントロールとして、細胞培養培地をそれぞれのプレート（ＭＬＷ）上でアッセイした。

高いＦＶＩＩＩ様活性または有意なＦＶＩＩＩ様活性のどちらかを示すウェルをサブクローニング手順に供した。選択およびサブクローニングプロセスは、細胞株（すなわち、１９３／Ｃ０）を産生するＩｇＧのスクリーニングおよびサブクローニングについて例示されるが、クローンを産生するＩｇＭ（すなわち、１９６／Ｃ０、以下を参照のこと、図５）について同一の方法を正確に行なった。

選択プロセスを、１０の９６ウェルプレート上の単一融合実験由来の全てのハイブリドーマ細胞クローンを最初に播種することによって行ない、これによって、いわゆる「マスタープレート」を作製した。マスタープレート上の別々の位置（ウェル）は、通常、１つ以上のハイブリドーマ細胞クローン（通常３〜１５の異なったクローン）を含んだ。続いて、数千の細胞のみによって分泌された抗体を試験した。これらの細胞を、抗体産生に最適以下の条件下で増殖し、この条件は、瀕死の細胞において最も公知である。それで、上清における予想された特異的な抗ＦＩＸ抗体濃度は、１０^-12〜１０^-14Ｍの範囲であり得る。このことは、なぜインキュベーション期間が、標準的ＦＶＩＩＩアッセイと比較して延長されなければならないかを説明する。

マスタープレートのハイブリドーマ細胞培養物上清におけるＩｇＧ媒介性ＦＶＩＩＩ様活性についてのスクリーニングの結果を、図２に示す。上清を、色素形成ＦＶＩＩＩアッセイにおいて試験した。融合実験番号＃１９３（ＦＩＸａαで免疫したＢａｌｂ／ｃマウス）の５番目のマスタープレートから誘導される結果を示す。吸光度を、３７℃でのインキュベーションの４時間後に読み取った。ＥＳ位を、ブランク（ＭＬＷ）より有意に高いＦＶＩＩＩ様活性を示すと同定した。この細胞プールを、１９３／Ｃ０と名付け、そしてさらにサブクローニングした（図３）。マスタープレートの各ウェルは、１つより多いハイブリドーマ細胞クローンを含むので、単一の陽性ウェルの細胞を、２〜０．２細胞／ウェルの計算された細胞密度で、９６ウェルプレートにおいて、伸長およびプレートした。再度、その上清を、ＦＶＩＩＩ様活性について試験し、そして陽性位置を、サブクローニングのさらなるラウンドに供した。代表的に、均一な細胞集団を得るために、ＦＶＩＩＩ様活性を示す各クローンを使用して、３〜４ラウンドのサブクローニングを実施した。ここで、１９３／Ｃ０サブクローンの色素形成アッセイの結果を示す。吸光度を、３７℃での４時間のインキュベーション期間の後に、読み取った。Ａ６位およびＤ５位は、かなりのＦＶＩＩＩ様活性を示し、そしてそれぞれ、１９３／Ｍ１および１９３／Ｐ１と命名した。これら２つのクローンを、さらなるラウンドのサブクローニングに供した。ネガティブコントロールとして、単純細胞培養培地を、各プレートにおいてアッセイした（ＭＬＷ（Ｈ１））。

小スケール（３ｍｌ）ハイブリドーマ培養物における色素形成ＦＶＩＩＩ様活性とＦＩＸ−ＥＬＩＳＡ反応性との比較を、図４に示す。マスタークローン（またはサブクローン）がさらにサブクローニングされるべきか否かを決定する前に、クローンを３〜５ｍｌのスケールで増殖し、そしてその上清を、再度チェックした。このグラフは、マスタークローン１９３／Ｃ０、および陽性と同定され、そして再チェックされた全てのそのサブクローンの、ＦＩＸ特異的ＥＬＩＳＡの結果およびＦＶＩＩＩ様色素形成活性を示す。本明細書中に記載されるＥＬＩＳＡおよび色素形成アッセイの読み取りの場合には、ブランク（色素形成試薬自体の吸光度）を減算した。クローン１９３／Ｍ１をサブクローニングし、そしてクローン１９３／Ｖ２、１９３／Ｍ２および１９３／Ｕ２を得た。１９３／Ｐ１、１９３／ＡＢ２および１９３／Ｐ２由来の第２ラウンドの他のクローンを、サブクローニングした。１９３／ＡＦ３、１９３／ＡＢ３および１９３／ＡＥ３は、１９３／ＡＢ２のサブクローンである。第３ラウンドの他のクローンが、１９３／Ｐ２から生じた。最後に、１９３／ＡＦ３（→１９３／ＡＦ４）、ＡＥ３（→１９３／ＡＥ４、１９３／ＡＬ４、１９３／ＡＮ４および１９３／ＡＯ４）ならびに１９３／ＡＤ３（→１９３／ＡＧ４、１９３／ＡＨ４、１９３／ＡＤ４、１９３／ＡＩ４、１９３／ＡＫ４）を、サブクローニングした。

各融合実験から、いくつかの（５〜１５）マスタークローン（マスタープレートから選択される）を同定し、そしてサブクローニングに供した。３ラウンドのサブクローニングの後に、大部分の細胞株は、ＥＬＩＳＡおよび色素形成活性分析（図４を参照のこと）ならびにｃＤＮＡ配列分析により示されるように、均一であった。特定のマスタークローンおよびその全てのサブクローンは、同じＦＩＸ／ＦＩＸａ結合抗体を産生する。しかし、異なるマスタークローン由来のクローンの抗体タンパク質配列には、大きな差異が存在する（実施例１１を参照のこと）。大部分のハイブリドーマ細胞株は、ＩｇＧサブクラスから抗体を発現する（すなわち、クローン＃１９３、＃１９８から、１９８／Ａ１、１９８／Ｂ１、１９８／ＢＢ１のような）。しかし、本発明者らはまた、ＩｇＭ抗体を発現するいくつかのクローンを、選択し得た。

いくつかの重要なマスタークローンおよびサブクローンのハイブリドーマ上清の色素形成活性を、決定した。吸光度を、３７℃での１時間３０分および３時間３０分のインキュベーション期間の後に、測定した（図５）。１９３番目の融合物由来の全てのクローンとは対照的に、クローン１９６／Ｃ０およびそのサブクローン１９６／ＡＰ２は、ＦＩＸ／ＦＩＸａ特異的ＩｇＭ抗体を産生した。この抗体は、短時間のインキュベーションの後でさえも、強力な色素形成活性を示した。

以下の細胞株を、ブダペスト条約に従って、Ｅｕｒｏｐｅａｎ Ｃｏｌｌｅｃｔｉｏｎ ｏｆ Ｃｅｌｌ Ｃｕｌｔｕｒｅｓ（ＥＣＡＣＣ）に寄託した：９８／Ｂ１（ＥＣＡＣＣ Ｎｏ．９９０９０９２５）；１９８／Ａ１（ＥＣＡＣＣ Ｎｏ．９９０９０９２４）；１９８／ＢＢ１（ＥＣＡＣＣ Ｎｏ．９９０９０９２６）；１９３／ＡＯ（ＥＣＡＣＣ Ｎｏ．９９１２１６１４）；１９６／Ｃ４（ＥＣＡＣＣ Ｎｏ．９９１２１６１５）；１９８／Ｄ１（ＥＣＡＣＣ Ｎｏ．９９１２１６１６）；１９８／Ｔ２（ＥＣＡＣＣ Ｎｏ．９９１２１６１７）；１９８／Ｇ２（ＥＣＡＣＣ Ｎｏ．９９１２１６１８）；１９８／ＡＣ１（ＥＣＡＣＣ Ｎｏ．９９１２１６１９）；および１９８／Ｕ２（ＥＣＡＣＣ Ｎｏ．９９１２１６２０）。

特定の抗体の生物学的特性の、より深い分析を行うために、ＦＶＩＩＩ様活性を有する異なる抗体を発現する均一なハイブリドーマ細胞株を伸長し、そして目的の抗体をより大きなスケール（１００〜１０００ｍｌ）で発現するために使用した。これらの抗体をアフィニティー精製し（実施例３を参照のこと）、その後、さらなる実験に使用した。

（実施例３：ＦＩＸ／ＦＩＸａ活性化活性を示す抗体の第ＩＸ因子／ＦＩＸａ（α，β）結合特性）
第ＩＸ因子ならびにＦＩＸの２つの活性化形態（ＦＩＸａαおよびＦＩＸａβ）（ＦＩＸ／ＦＩＸａ_(α,β)）を、２ｇ／ｍｌの最終濃度まで、ＴＢＳ（２５ｍＭ Ｔｒｉｓ ＨＣｌ、１５０ｍＭ ＮａＣｌ、ｐＨ７．５）に希釈した。Ｎｕｎｃ Ｍａｘｉｓｏｒｐ ＥＬＩＳＡプレートを、標準的な手順（４℃、一晩）に従って、１００μｌのＦＩＸ／ＦＩＸａ_(α,β)溶液でコートし、そしてＴＢＳＴ（ＴＢＳ、０．１％（ｖ／ｖ）Ｔｗｅｅｎ ２０）で数回洗浄した。５０μｌのハイブリドーマ上清を、５０μｌ ＴＢＳＴ／２％ ＢＳＡで１：１に希釈し、コートしたＥＬＩＳＡプレートに添加した。室温（ＲＴ）で２時間のインキュベーション期間の後に、プレートをＴＢＳＴで４回洗浄し、そして１００μｌ／ウェルの抗マウスＩｇＧ（Ｆｃ特異的）ペルオキシダーゼ結合体化抗体（Ｓｉｇｍａ，＃Ａ−０１６８）の１：２５０００希釈物（ＴＢＳＴ／１％ ＢＳＡ中）とともにインキュベートした（２時間、ＲＴ）。ウェルを、ＴＢＳＴで５回洗浄し、そして最後に、１００μｌの新たに調製した染色溶液（１００μｌ ＯＰＤ（６０ｍｇ ＯＰＤ／ｍｌ）および１０μｌ ３０％ Ｈ₂Ｏ₂を補充した１０ｍｌの５０ｍＭクエン酸ナトリウム（ｐＨ５））で染色した。この反応を、５０ｍｌのＨ₂ＳＯ₄の添加により停止させ、そしてその光学密度を、４９２ｎｍおよび６２０ｎｍにおいて、ＧＥＮＥＳＩＳ^TMソフトウェアを使用して、Ｌａｂｓｙｓｔｅｍｓ ｉＥＭＳ Ｒｅａｄｅｒ ＭＦ^TMマイクロタイタープレートリーダーで記録した。

特定の場合においては、抗マウスＩｇＧ ＥＬＩＳＡの代わりに、抗マウスＩｇＭ ＥＬＩＳＡを実施した。

（ハイブリドーマ細胞培養物上清からのマウスＩｇＧの精製）
ハイブリドーマ上清（１００〜５００ｍｌ）に、２００ｍＭ Ｔｒｉｓ／ＨＣｌ緩衝液（ｐＨ７．０）および固体ＮａＣｌを補充して、それぞれ２０ｍＭ Ｔｒｉｓおよび３Ｍ ＮａＣｌの最終濃度を得た。次いで、この上清を、５５００×ｇにおける１０分間の遠心分離によって、清澄化した。１ｍｌのプロテインＧアフィニティークロマトグラフィーカラム（Ｐｒｏｔｅｉｎ Ｇ Ｓｅｐｈａｒｏｓｅ Ｆａｓｔ Ｆｌｏｗ，Ａｍｅｒｓｈａｍ−Ｐｈａｒｍａｃｉａ）を、１５ｍｌの２０ｍＭ Ｔｒｉｓ／Ｃｌ（ｐＨ７．０）で洗浄し、そしてその後、３Ｍ ＮａＣｌを含む１０ｍｌの２０ｍＭ Ｔｒｉｓ／Ｃｌ緩衝液（ｐＨ７．０）で平衡化した。次いで、この３Ｍ ＮａＣｌを含むハイブリドーマ上清を、重力によってこのカラムに装填した。このカラムを、３Ｍ ＮａＣｌを含む１５ｍｌの２０ｍＭ Ｔｒｉｓ／Ｃｌ緩衝液（ｐＨ７．０）で洗浄した。結合したＩｇＧを、１２ｍｌのグリシン／ＨＣｌ緩衝液（ｐＨ２．８）でさらに溶出し、そして１ｍｌの画分を収集した。中和のために、１００μｌの１Ｍ Ｔｒｉｓ（ｐＨ９．０）を、各画分に添加した。ＩｇＧを含む画分を、マイクロプレートのウェル内で、５０μｌを１５０μｌの染色溶液（ＢｉｏＲａｄ濃縮物、水で１：５に希釈）と混合することによって、同定した。陽性の画分を「プール」し、限外濾過濃縮器デバイス（Ｃｅｎｔｒｉｃｏｎ Ｐｌｕｓ ２０，Ａｍｉｃｏｎ）によって、製造業者に従って、１ｍｌに濃縮した。この濃縮物を、１９ｍｌ ＴＢＳ（１５０ｍＭ ＮａＣｌを含む２０ｍＭ Ｔｒｉｓ／Ｃｌ緩衝液（ｐＨ７．０））で希釈し、そして再度、１ｍｌに濃縮した。ＩｇＧをＴＢＳにするために、この希釈−濃縮工程を、さらに２回繰り返した。

（ハイブリドーマ細胞上清からのマウスＩｇＭの精製）
１００〜５００ｍｌのハイブリドーマ細胞培養物上清を、限外濾過濃縮器デバイス（Ｃｅｎｔｒｉｃｏｎ Ｐｌｕｓ ２０，Ａｍｉｃｏｎ）を用いて製造業者に従ってか、または硫酸アンモニウム沈殿（４０％飽和、０℃）およびこの沈殿物の５〜１０ｍｌのＴＢＳへの再溶解によってかのいずれかで、５〜１０ｍｌに濃縮した。いずれの場合においても、この濃縮物を、１．２５Ｍ ＮａＣｌを含む２０ｍＭ Ｔｒｉｓ Ｃｌ緩衝液（ｐＨ７．４）に対して透析し、そしてさらに、Ｃｅｎｔｒｉｃｏｎ Ｐｌｕｓ ２０（Ａｍｉｃｏｎ）限外濾過デバイスにおいて１ｍｌに濃縮した。ＩｇＭを、ＩｍｍｕｎｏＰｕｒｅ ＩｇＭ Ｐｕｒｉｆｉｃａｔｉｏｎ Ｋｉｔ（Ｐｉｅｒｃｅ）を用いて、製造業者に従って、この濃縮物から精製した。マルトース結合タンパク質カラムからの溶出の間に収集された画分を、ＩｇＭに関して試験し、プールし、濃縮し、そしてＩｇＧに関して記載したように、ＴＢＳにした。

（精製した調製物におけるＩｇＧ濃度の決定）
適切な希釈物の、全ＩｇＧ内容物の２８０ｎｍ消光を、測定した。Ｅ２８０＝１．４は、１ｍｇ／ｍｌのタンパク質に対応する。

（第ＩＸａ因子特異的ＩｇＧ（定量的ＥＬＩＳＡ））
マイクロプレート（Ｎｕｎｃ Ｍａｘｉｓｏｒｐ）のウェルを、ＴＢＳ（１５０ｍＭ ＮａＣｌを含む２５ｍＭ Ｔｒｉｓ／ＨＣｌ（ｐＨ７．５））に希釈された２μｇ／ｍｌの第ＩＸａ因子とともに、４℃で一晩インキュベートした。ウェルを、ＴＢＳＴ（１５０ｍＭ ＮａＣｌおよび０．１％（ｖ／ｖ）Ｔｗｅｅｎ
２０を含む２５ｍＭ Ｔｒｉｓ／ＨＣｌ（ｐＨ７．５））で４回洗浄した。標準モノクローナルＡＢとして、ＨＩＸ１抗ＦＩＸ（精密）を使用した。標準およびサンプルを、２％（ｗ／ｖ）ＢＳＡを含むＴＢＳＴ中で希釈した。標準希釈系列およびサンプルの適切な希釈物を、ＥＬＩＳＡプレート上で室温で２時間インキュベートした。プレートを、ＴＢＳＴで４回洗浄し、そして抗マウスＩｇＧ（Ｆｃ特異的）ペルオキシダーゼ結合体化抗体（Ｓｉｇｍａ、＃Ａ−０１６８）ＦＩＸａの１００μｌ／ウェルの１：２５０００の希釈物（ＴＢＳＴ／１％ ＢＳＡ中）とともにインキュベートした（２時間、ＲＴ）。ウェルを、ＴＢＳＴで５回洗浄し、そして最後に、１００μｌの新たに調製した染色溶液（１００μｌのＯＰＤ（６０ｍｇ ＯＰＤ／ｍｌ）および１０μｌの３０％ Ｈ₂Ｏ₂を補充した１０ｍｌ ５０ｍＭクエン酸ナトリウム（ｐＨ５））で染色した。この反応を、５０ｍｌ Ｈ₂ＳＯ₄の添加により停止させ、そして３０分後、光学密度を、４９２ｎｍおよび６２０ｎｍにおいて、Ｌａｂｓｙｓｔｅｍｓ ｉＥＭＳ Ｒｅａｄｅｒ ＭＦ^TMマイクロタイタープレートリーダーによって、ＧＥＮＥＳＩＳ^TMソフトウェアを使用して、記録した。

（実施例４：色素形成ＦＶＩＩＩアッセイにおいてＦＶＩＩＩ様活性を示す抗ＦＩＸ／ＦＩＸａ抗体）
いくつかの抗ＦＩＸ／ＦＩＸａ抗体産生ハイブリドーマクローンを、４回までサブクローニングし、そして得られるモノクローナルハイブリドーマ細胞株を使用して、モノクローナル抗体含有上清を産生した。これらの上清由来のＩｇＧアイソタイプ抗体を、アフィニティーカラムで精製し、そしてＴＢＳに対して透析した（上記を参照のこと）。ＩｇＭ抗体を、精製していない上清画分として使用した。以下の実験を、以下の２セットの代表的な抗体を使用して行った：１９３／ＡＤ３および１９８／ＡＣ１／１（ＩｇＧアイソタイプ、抗体１９８／ＡＣ１／１は、親１９８／ＡＣ１ハイブリドーマクローンからの調製物であり、すなわち、１９８／ＡＣ１細胞を含む（凍結した）ウイルスが、培養され、そして抗体が産生される。次いで、この上清を、これらの実験のために使用する）ならびに１９６／ＡＦ２および１９６／ＡＦ１（ＩｇＭアイソタイプ）（図６Ａおよび図６Ｂ）。簡単に言えば、モノクローナル抗体を含むサンプル（精製されていないハイブリドーマ上清、または示される場合には、特定の量のＦＩＸ特異的抗体）の２５μｌのアリコートを、マイクロタイタープレートウェルに移し、そして３７℃に昇温させた。色素形成基質（Ｓ−２２２２）、合成トロンビンインヒビター（Ｉ−２５８１）、第ＩＸａ因子（ＦＩＸａ）およびＦＸを、滅菌水中で再形成し、そしてＦＩＸａ／ＦＸを、供給者のプロトコルに従って、リン脂質と混合した。１反応あたり、５０μｌのリン脂質／ＦＩＸａ／ＦＸ溶液を、２５μｌのＣａＣｌ₂（２５ｍＭ）および５０μｌの基質／インヒビターカクテルと混合した。反応を開始させるために、１２５μｌのプレミックス（ｐｒｅｍｉｘ）を、マイクロタイタープレート中のモノクローナル抗体溶液に添加し、そして３７℃でインキュベートした。４０５ｎｍおよび４９０ｎｍにおける、サンプルの吸光度を、種々の時点において（５分〜６時間）、試薬ブランク（ハイブリドーマ上清の代わりに細胞培養培地）に対して、Ｌａｂｓｙｓｔｅｍｓ ｉＥＭＳ Ｒｅａｄｅｒ ＭＦ^TMマイクロタイタープレートリーダーによって、ＧＥＮＥＳＩＳ^TMソフトウェアを使用して、読み取った。

ヒトＦＶＩＩＩ（１２および１６ｍＵ／ｍｌ）、ＴＢＳならびに細胞培養培地と比較した、モノクローナル抗体１９３／ＡＤ３（ＩｇＧアイソタイプ）および１９６／ＡＦ２（ＩｇＭアイソタイプ）により示されるＦＶＩＩＩ様活性の時間経過を、図６Ａに示す。４０５ｎｍの波長において測定可能な光学密度の増加により判断する場合に、誘導期の後に、両方の抗体が、色素形成基質切断を生じる。

ヒトＦＶＩＩＩ（１６ｍＵ／ｍｌ）および１０μｇ／ｍｌのマウスＩｇＧと比較した、モノクローナル抗体１９８／ＡＣ１／１（ＩｇＧアイソタイプ、１０μｇ／ｍｌ）および１９６／ＡＦ１（ＩｇＭアイソタイプ、精製されていない上清）により示されるＦＶＩＩＩ様活性の時間経過を、図６Ｂに示す。４０５ｎｍの波長において測定可能な光学密度の増加により判断する場合に、誘導期の後に、両方の抗体が、色素形成基質切断を生じる。

（実施例５：抗ＦＩＸ／ＦＩＸａ−抗体により示されるＦＶＩＩＩ様活性は、第Ｘａ因子を産生し、そしてリン脂質、ＦＩＸａ／ＦＸおよびＣａ²⁺に依存性である。）
第ＶＩＩＩ因子活性は、通常、色素形成アッセイおよび／またはＡＰＴＴに基づく凝固アッセイを用いて、決定される。両方の型のアッセイは、ＦＶＩＩＩａ／ＦＩＸａにより媒介される第Ｘａ因子産生に依存する。色素形成ＦＶＩＩＩアッセイの場合には、産生される第Ｘａ因子は、引き続いて色素形成基質と反応し、これは、分光学的に（例えば、ＥＬＩＳＡリーダーにおいて）モニタリングされ得る。ＡＰＴＴに基づく凝集アッセイにおいては、遊離の第Ｘａ因子が、リン脂質表面におけるＦＶａと組み合わさって、いわゆるプロトロンビナーゼ複合体となり、そしてプロトロンビンをトロンビンへと活性化させる。トロンビンは、次に、フィブリン産生を生じ、そして最終的に、凝固の形成を生じる。これら２つのアッセイ系の中心は、ＦＶＩＩＩａ／ＦＩＸａ複合体による第Ｘａ因子の産生である。

抗ＦＩＸ／ＦＩＸａ−抗体により示されるＦＶＩＩＩ様活性が実際に第Ｘａ因子を産生することを実証するために、以下の実験を実施した。精製されていないハイブリドーマ上清１９６／ＡＦ２（ＩｇＭアイソタイプ）のいくつかの２５μｌのアリコートを、マイクロタイタープレートウェルに移し、そして３７℃まで昇温させた。ポジティブコントロールとして、１６ｍＵのＲｅｃｏｍｂｉｎａｔｅ^TMを、ハイブリドーマ培地（１９６ ＨＭ ００７／９９）中に希釈し、そしてハイブリドーマ上清と全く同じ様式で処理した。ネガティブコントロールとして、純ハイブリドーマ培地を使用した。色素形成基質（Ｓ−２２２２）合成トロンビンインヒビター（Ｉ−２５８１）第ＩＸａ因子およびＦＸを、滅菌水中で再形成し、そしてＦＩＸａ／ＦＸを、供給者のプロトコルに従って、リン脂質と混合した。Ｐｅｆａｂｌｏｃ Ｘａ（登録商標）（第Ｘａ因子特異的プロテイナーゼインヒビター）（Ｐｅｎｔａｐｈａｒｍ，ＬＴＤ）を、水で再形成して、最終濃度を１ｍＭ／ｌとした。１反応あたり５０μｌのリン脂質／ＦＩＸａ／ＦＸ溶液を、２５μｌのＣａＣｌ₂（２５ｍＭ）および５０μｌの基質／トロンビンインヒビターカクテルと混合した。反応を開始させるために、１２５μｌのプレミックスを、マイクロタイタープレート中のサンプルに添加し、そして３７℃でインキュベートした。示される場合には、３５μＭのＰｅｆａｂｌｏｃ Ｘａ（登録商標）を添加した。４０５ｎｍおよび４９０ｎｍにおける吸光度を、種々の時点において（５分ごと〜６時間ごと）、試薬ブランク（細胞培養培地）に対して、Ｌａｂｓｙｓｔｅｍｓ ｉＥＭＳ Ｒｅａｄｅｒ ＭＦ^TMマイクロタイタープレートリーダーによって、ＧＥＮＥＳＩＳ^TMソフトウェアを使用して、読み取った。

色素形成基質Ｓ−２２２２の容易に測定可能な切断により判断する場合の、ＩｇＭ抗ＦＩＸ／ＦＩＸａ抗体１９６／ＡＦ２により示されるＦＶＩＩＩ様活性による、第Ｘａ因子の産生における第ＩＸａ因子刺激の結果（「１６ｍＵ ＦＶＩＩＩ」と「１９６／ＡＦ２」とを比較のこと）を、図７Ａに示す。第Ｘａ因子活性は、ＦＸａ特異的インヒビター「Ｐｅｆａｂｌｏｃ Ｘａ（登録商標）」により効果的にブロックされ（「１９６／ＡＦ２」と「１９６／ＡＦ２ ３５μＭ Ｐｅｆａｂｌｏｃ Ｘａ（登録商標）」とを比較のこと）、このことは、実際にＦＸａが産生されたことを示す。

同じ実験を、クローン１９８／ＡＭ１の精製したＩｇＧ調製物を使用して、実施した（図７Ｂ）。精製されたＩｇＧをＴＢＳで希釈し、最終濃度を０，４ｍｇ／ｍｌおよび２５μｌ（すなわち、合計１０μｇ）とし、マイクロタイタープレートウェルに移し、そして３７℃に昇温させた。ポジティブコントロールとして、６ｍＵの血漿由来ＦＶＩＩＩを使用した。１０μｇの非特異的マウスＩｇＧ（Ｓｉｇｍａ，Ｉ−５３８１）は、ネガティブコントロールとして作用した。このアッセイを、上記のように実施した。

さらなる実験は、容易に測定可能な色素形成基質Ｓ−２２２２の切断により判断する場合に、ＩｇＧ抗ＦＩＸ／ＦＩＸａ抗体１９８／ＡＭ１により示されるＦＶＩＩＩ様活性による第ＩＸａ因子の刺激が、第Ｘａ因子を産生することを示す（図７Ｂ）。再度、第ＶＩＩＩ因子および抗体１９８／ＡＭ１は、ＦＸａを産生し、これは、ＦＸａ特異的インヒビター「Ｐｅｆａｂｌｏｃ Ｘａ（登録商標）」によって効果的にブロックされる。ネガティブコントロールとして、非特異的マウスＩｇＧ（Ｓｉｇｍａ，Ｉ５３８１）をアッセイした。

別のセットの実験において、精製した抗ＦＩＸ／ＦＩＸａ抗体（ＩｇＭ、図８Ａ）または細胞培養物上清由来の精製していない抗体（ＩｇＧ、図８Ｂ）のいずれかのＦＶＩＩＩ様活性の、リン脂質（ＰＬ）、ＦＩＸａ／ＦＸおよびＣａ²⁺の存在への依存を、実証した。マウスＩｇＧを、コントロールとして使用した（図８Ｃ）。第ＶＩＩＩ因子様活性を、本質的に上に記載のように、アッセイした。示される場合には、ＦＩＸａ／ＦＸ混合物、ＰＬまたはＣａ²⁺のいずれかを、その反応から省略した。４０５ｎｍおよび４９０ｎｍにおける、サンプルの吸光度を、種々の時点において、試薬ブランク（精製された抗体の代わりに緩衝液）に対して、Ｌａｂｓｙｓｔｅｍｓ ｉＥＭＳ Ｒｅａｄｅｒ ＭＦ^TMマイクロタイタープレートリーダーで読み取った。その結果を図８Ａ、図８Ｂおよび図８Ｃに示す。

精製された抗ＦＩＸａ抗体１９８／ＡＣ１／１（ＩｇＧアイソタイプ、このアッセイを通して使用された濃度は１０μｇ／ｍｌであった）の、リン脂質（ＰＬ）、ＦＩＸａ／ＦＸ、およびＣａ²⁺の存在下におけるＦＶＩＩＩ様活性の依存性をさらに、図８Ａに示す。容易に認識可能であるように、競合的アッセイ（抗体、ＰＬ、Ｃａ²⁺およびＦＩＸａ／ＦＸを含む）のみが、穏当なＦＸａ生成を引き起こす。リン脂質、ＦＩＸａ／ＦＸ、およびＣａ²⁺の存在下における不純ＩｇＭアイソタイプ抗ＦＩＸ／ＦＩＸａ抗体（１９６／ＡＦ１）を含む細胞培養上清のＦＶＩＩＩ様活性の依存性を、図８Ｂに示す。

重ねて、精製されたＩｇＧ調製物について既に示されたように（図８Ａ）、抗体１９８／ＡＣ１／１は、競合的アッセイ（ＰＬ、Ｃａ²⁺およびＦＩＸａ／ＦＸを含む）のみが、穏当な量のＦＸａ生成を引き起こす。反応の特異性を実証するために、正常なマウス血漿から調製された総ＩｇＧを、上記と同じ条件下でアッセイした。この結果を、図８Ｃに示す。いかなるＦＶＩＩＩ様活性も検出され得なかった。予期されたように、リン脂質、ＦＩＸａ／ＦＸ、およびＣａ²⁺の不在下において検出可能な活性は存在しない。すべての実験をマイクロタイタープレートにおいて実施し、そしてＯＤ４０５を、６時間にわたって５分毎に走査した。

（実施例６：特定の抗ＦＩＸ／ＦＩＸａ抗体は、ＦＩＸａの存在下において凝血原である）
正常なホメオーシスの間、ＦＩＸはまず、組織因子（ＴＦ）／第ＶＩＩａ因子経路によってか、または後に活性化第ＸＩ因子（ＦＩＸａ）によってかのいずれかで活性化となる。その活性化後、ＦＩＸａは、活性化ＦＶＩＩＩとの膜結合複合体において、血小板表面上で会合する。第ＩＸａ因子は単独では、ＦＸに対する酵素活性をほとんどまたは全く有さないが、ＦＶＩＩＩａの存在下では、高度に活性となる。特定の抗ＦＩＸ／ＦＩＸａ抗体が、ＦＶＩＩＩ様活性を有し、従って、ＦＶＩＩＩを欠損したヒト血漿における凝血原であることを実証するために、以下の実験を行った。異なる量の抗体１９３／ＡＤ３またはマウスＩｇＧ（コントロールとして）を、標準的なａＰＴＴに基づく一段階凝固アッセイにおいて使用した。簡潔には、１００μｌの抗体含有サンプルを、１００μｌのＦＶＩＩＩ欠損血漿（ＤＰ）および１００μｌのＤＡＰＴＴＩＮ（活性化されたトロンボプラスチンの時間を決定するためのＰＴＴ試薬；ＩＭＭＵＮＯ ＡＧ）試薬と共に、ＫＣ１０Ａ凝固分析装置においてインキュベートした。示された場合では、総量５０ｎｇの活性化ＦＩＸを、反応混合物中に含ませた。４分間のインキュベーション後に、１００μｌのＣａＣｌ₂（２５ｍＭ）を添加することによって、反応を開始した。この結果を、表１および図９に示す。

表１：５０ｎｇの活性化ＦＩＸ（０．０１ＵＦＩＸ）の存在下で、種々の量の凝血原（１９３／ＡＤ３）およびコントロール抗体（マウスＩｇＧ）を使用するＡＰＴＴに基づく凝固アッセイにおけるＦＶＩＩＩ欠損血漿の凝固時間。反応および活性化ＦＩＸにおける抗体のモル比は、１０：１である。抗体と総ＦＩＸ（ＦＩＸおよびＦＩＸａ、ヒトＦＶＩＩＩ欠損血漿が１Ｕ（５μｇ）のＦＩＸを含むと仮定）との間のモル比は、６：１（反応における９μｇの抗体）と１：６（反応における０．２３μｇの抗体）との間で変動する。凝固時間の最適な短縮化に際して、抗体と総ＦＩＸとの間のモル比は、１：１である。ＦＩＸａの添加を伴わない凝固時間は、１２０秒間の範囲である。

図９は、５０ｎｇの活性化ＦＩＸの存在下で、種々の量の凝血原（１９３／ＡＤ３）およびコントロール（マウスＩｇＧ）抗体を使用するａＰＴＴに基づく凝固アッセイにおけるＦＶＩＩＩ欠損血漿の凝固時間のグラフ表示である。抗体１９３／ＡＤ３を補充したサンプルには、明らかな凝固時間の用量依存的減少が存在する。これらの結果は、抗体１９３／ＡＤ３が、ＦＩＸａの存在下において凝血原であることを意味する。

（実施例７：抗ＦＩＸ／ＦＩＸａ抗体は、ＦＶＩＩＩインヒビターおよびＦＩＸａの存在下において凝血原である）
標準的なＦＶＩＩＩ置換療法の重篤な合併症が、ＦＶＩＩＩに対する同種抗体の発達であり、これは、ＦＶＩＩＩの中和へと導き、そして患者の血液が凝固しないという状態に導く。

特定の抗ＦＩＸａ抗体が、ＦＶＩＩＩインヒビターの存在下においてさえ、ＦＶＩＩＩ様活性を有するということを実証するために、以下の実験を行った。異なる量の抗体１９３／ＡＤ３またはコントロールとしてのマウスＩｇＧを、標準的なＡＰＴＴに基づく一段階凝固アッセイにおいて使用した。簡潔には、１００μｌの抗体サンプルを、１００μｌのＦＶＩＩＩ欠損血漿（図１０Ａ）またはＦＶＩＩＩインヒビター血漿（インヒビター効力４００ＢＵ／ｍｌ）（図１０Ｂ）のいずれか、および１００μｌのＤＡＰＴＴＩＮ試薬と共に、ＫＣ１０Ａ凝固分析装置においてインキュベートした。さらに、総量５０ｎｇの活性化ＦＩＸａを、反応混合物に含ませた。４分間のインキュベーション後に、１００μｌのＣａＣｌ₂（２５ｍＭ）を添加することによって、反応を開始した。等価な条件を確実にするために、ＦＶＩＩＩ欠損血漿およびＦＶＩＩＩインヒビター血漿を使用する実験を、並置して実施した。この結果を、図１０Ａおよび１０Ｂに示す。実施例６において既に示したように、ＦＶＩＩＩインヒビターの存在下で抗体１９３／ＡＤ３を補充したサンプルには、明らかな凝固時間の用量依存的減少が存在する。

（実施例８：抗ＦＩＸ／ＦＩＸａ抗体は、欠損性ＦＶＩＩＩおよびＦＩＸａの存在下において凝血原である）
特定の抗ＦＩＸａ抗体が、欠損性ＦＶＩＩＩの存在下においてＦＶＩＩＩ様活性を有することを実証するために、以下の実験を実施し得る。漸増量の抗体１９３／ＡＤ３、またはコントロールとしてのマウスＩｇＧを、標準的なａＰＴＴに基づく一段階凝固アッセイにおいて使用する。この凝固アッセイでは、欠損性ＦＶＩＩＩ（ＤＦ８）の存在に起因して非常に低い凝固活性を有する血友病Ａの患者の血漿を、使用する。簡潔には、１００μｌの抗体サンプルを、１００μｌのＤＦ８血漿またはＦＶＩＩＩ欠損性血漿のいずれか、および１００μｌのＤＡＰＴＴＩＮ試薬と共に、ＫＣ１０Ａ凝固分析装置においてインキュベートする。さらに、総量５０ｎｇの活性化ＦＩＸａを、反応混合物に含ませた。短期間のインキュベーション後に、１００μｌのＣａＣｌ₂（２５ｍＭ）を添加することによって、反応を開始した。等価な条件を確実にするために、ＦＶＩＩＩ欠損血漿およびＤＦ８血漿を使用する実験を、並置して実施する。

（実施例９：ＦＩＸａの存在下において凝血原活性を有する抗ＦＩＸ／ＦＩＸａ抗体は、ヒトＦＩＸａとウシＦＩＸａとの間を識別する）
１９８回目の融合実験から選択されたＦＩＸ／ＦＩＸａ特異的モノクローナル抗体を、個々のハイブリドーマ上清から精製し、そして実施例３に記載のように定量した。これらの抗体を、改変された一段階凝固アッセイ（実施例６に記載のような）において分析した。そしていくつかが、凝血原活性を示した。

これらの抗体調製物の色素形成活性を、以下のＦＸａ生成動力学的アッセイにおいて測定した：１０μｇのモノクローナル抗体（２５μｌ中）を、マイクロタイタープレートウェルに移し、そして３７℃まで加温した。色素形成基質（Ｓ−２２２２）、合成トロンビンインヒビター（Ｉ−２５８１）、第ＩＸａ因子、およびＦＸを、滅菌水中で再構築し、そしてＦＩＸａ／ＦＸ（両方ともウシ）を、供給業者のプロトコールに従って、リン脂質と混合した。反応につき、５０μｌのリン脂質／ＦＩＸａ／ＦＸ溶液を、２５μｌのＣａＣｌ₂（２５ｍＭ）および５０μｌの基質／インヒビター反応混液と組み合わせた。反応を開始するために、１２５μｌのプレミックスを、マイクロタイタープレート中におけるモノクローナル抗体溶液に添加し、そして３７℃でインキュベートした。サンプルの４０５ｎｍおよび４９０ｎｍでの吸光度を、ＧＥＮＥＳＩＳ^TMソフトウェアを使用するＬａｂｓｙｓｔｅｍｓ ｉＥＭＳ Ｒｅａｄｅｒ ＭＦ^TMマイクロタイタープレートリーダーにおいて、試薬ブランク（モノクローナル抗体の代わりに、２５ｍｌ ＴＢＳ）に対して種々の時点（５分間〜２時間）で読み取った。並行して、反応あたり５０ｎｇのヒトＦＩＸａを添加したことを除いて、同じ反応を実施した。凝血原活性を示したこれらの抗体は、ウシＦＩＸの場合では色素形成活性を有さなかったが、ヒトＦＩＸａが存在した場合では、高い活性を示した。

図１１は、５０ｎｇのヒトＦＩＸａβの添加あり（＋）および添加なし（−）でモノクローナル抗体１９８／Ａ１、１９８／Ｂ１、および１９８／ＡＰ１によって示されたＦＶＩＩＩ様活性の時間経過を示す。非特異的ポリクローナルマウスＩｇＧを、コントロールとして使用した。１９８／Ａ１および１９８／Ｂ１は、凝血原活性を示す（実施例６における１９８／ＡＤ３と類似）が、１９８／ＡＰ１は示さない。抗体１９８／ＢＢ１は、同じ活性パターンを有した（データは示さず）。

１９８回目の融合実験から選択された、さらなるモノクローナル抗体としては、１９８／Ｄ１（ＥＣＡＣＣ番号 ９９１２１６１６）、１９８／Ｔ２（ＥＣＡＣＣ番号 ９９１２１６１７）、１９８／Ｇ２（ＥＣＡＣＣ番号 ９９１２１１８）、１９８／Ｕ２（ＥＣＡＣＣ番号 ９９１２１６２０）が挙げられる。

（実施例１０：抗ＦＩＸ／ＦＩＸａ抗体から誘導された抗体誘導体の構造および凝血原活性；ハイブリドーマ細胞株１９３／ＡＤ３、１９３／Ｋ２、１９８／Ａ１および１９８／Ｂ１（クローンＡＢ２）からの抗体可変ドメインのサブクローニング）
クローニング手順：「ＱｉｃｋＰｒｅｐ（登録商標）Ｍｉｃｒｏ ｍＲＮＡ Ｐｕｒｉｆｉｃａｔｉｏｎ Ｋｉｔ」（Ｐｈａｒｍａｃｉａ）を製造業者の指示書に従い使用して、メッセンジャーＲＮＡを、個々の細胞株（１９３／ＡＤ３、１９３／Ｋ２、１９８／Ａ１または１９８／Ｂ１（クローンＡＢ２）のいずれか）の１×１０⁶個のハイブリドーマ細胞から調製した。対応するｃＤＮＡを、「Ｒｅａｄｙ−Ｔｏ−Ｇｏ−Ｙｏｕ−Ｐｒｉｍｅ−Ｆｉｒｓｔ−Ｓｔｒａｎｄ Ｂｅａｄｓ ｋｉｔ」（Ｐｈａｒｍａｃｉａ）を製造業者の指示書に従い使用して、ｍＲＮＡのレトロ（ｒｅｔｒｏ）転写によって生成した。重鎖および軽鎖をコードする配列を、プライマーセットを使用して、対応するｃＤＮＡに変換した。重鎖特異的ｍＲＮＡ（ＶＨ）を逆転写するために、以下のオリゴヌクレオチドの等モル混合物を使用した（ＲＴｍｉｘ１）：ＭＯＣＧ１−２ＦＯＲ（５’ ＣＴＣ ＡＡＴ ＴＴＴ ＣＴＴ ＧＴＣ ＣＡＣ ＣＴＴ ＧＧＴ ＧＣ ３’）（配列番号１）、ＭＯＣＧ３ＦＯＲ（５’ ＣＴＣ ＧＡＴ ＴＣＴ ＣＴＴ ＧＡＴ ＣＡＡ ＣＴＣ ＡＧＴ ＣＴ ３’）（配列番号２）および、ＭＯＣＭＦＯＲ（５’ ＴＧＧ ＡＡＴ ＧＧＧ ＣＡＣ ＡＴＧ ＣＡＧ ＡＴＣ ＴＣＴ ３’）（配列番号３）。同じ反応チューブにおいて、軽鎖特異的ｃＤＮＡ（ＶＬ）を、プライマーＭＯＣＫＦＯＲ−（５’ ＣＴＣ ＡＴＴ ＣＣＴ ＧＴＴ ＧＡＡ ＧＣＴ ＣＴＴ ＧＡＣ ３’）（配列番号４）を使用して合成した。

ＶＨについてのコード配列を、図１２に示したプライマーセットおよびテンプレートとして上記の逆転写混合物（ＲＴｍｉｘ１）由来の特異的ｃＤＮＡを用いるＰＣＲによって増幅した。ＶＫ鎖遺伝子を、図１３に示したプライマーセットを使用し、そしてまたテンプレートとしてＲｔｍｉｘ１を用いて増幅した。ＶＨ−ＰＣＲ産物を、ＳｆｉＩ−ＡｓｃＩで切断し、そしてＳｆｉＩ−ＡｓｃＩで消化したベクターｐＤＡＰ２（ＧｅｎｅＢａｎｋ登録番号：Ｕ３５３１６）に挿入した。これにより得られたｐＤＡＰ２−ＶＨ構築物を、それぞれ、ｐＤＡＰ２−１９３ＡＤ３／ＶＨ、ｐＤＡＰ２−１９８Ａ１／ＶＨ、ｐＤＡＰ２−１９８ＡＢ２／ＶＨ（抗体１９８／Ｂ１由来）およびｐＤＡＰ２−１９３／Ｋ２／ＶＨと命名した。引き続いて、プラスミドをＡｓｃＩ−ＮｏｔＩで切断し、そして対応するＡｓｃＩ−ＮｏｔＩ消化されたＶＫ遺伝子のＰＣＲ産物を挿入した。結果として生じたベクターをｐＤＡＰ２−１９３／ＡＤ３ｓｃＦｖ、ｐＤＡＰ２−１９８／ＡｌｓｃＦｖ、ｐＤＡＰ２−１９８／ＡＢ２ｓｃＦｖ（抗体１９８／Ｂ１由来）およびｐＤＡＰ２−１９３／Ｋ２ｓｃＦｖと命名した。これらは、モノクローナル抗体１９３／ＡＤ３、１９８／Ａ１、１９８／ＡＢ２（抗体１９８／Ｂ１由来）および１９３／Ｋ２のＶＨ遺伝子およびＶＬ遺伝子をコードする。重鎖および軽鎖を、人工の可撓性リンカー（Ｇ₄ＳＧＧＲＡＳＧ₄Ｓ；Ｅｎｇｅｌｈａｒｄｔら，１９９４）についてのコード配列に連結し、そして個々の抗体のｓｃＦｖ改変体の発現を可能にする。

図１４では、ハイブリドーマ細胞株１９３／ＡＤ３由来のｓｃＦｖのＤＮＡおよび推定タンパク質配列を示す。ヌクレオチド１〜３５７は、重鎖可変ドメインをコードし、ヌクレオチド３５８〜４０２は、人工の可撓性リンカーをコードし、そしてヌクレオチド４０３〜７２６は、軽鎖可変領域をコードする。重鎖のＣＤＲ３領域のタンパク質配列は、配列ＹＧＮＳＰＫＧＦＡＹ（配列番号５）を有し、そしてボールドの文字で提供される。人工のリンカー配列（Ｇ₄ＳＧＧＲＡＳＧ₄Ｓ）を示す。

図１５では、ハイブリドーマ細胞株１９３／Ｋ２由来のｓｃＦｖのＤＮＡおよび推定タンパク質配列を示す。ヌクレオチド１〜３６３は、重鎖可変ドメインをコードし、ヌクレオチド３６４〜４０８は、人工の可撓性リンカーをコードし、そしてヌクレオチド４０９〜７４７は、軽鎖可変領域をコードする。重鎖のＣＤＲ３のタンパク質配列は、配列ＤＧＧＨＧＹＧＳＳＦＤＹ（配列番号６）を有し、そしてボールドの文字で提供される。人工のリンカー配列（Ｇ₄ＳＧＧＲＡＳＧ₄Ｓ）を示す。

図１６では、ハイブリドーマ細胞株１９８／ＡＢ２（抗体１９８／Ｂ１由来）由来のｓｃＦｖのＤＮＡおよび推定タンパク質配列を示す。ヌクレオチド１〜３６６は、重鎖可変ドメインをコードし、ヌクレオチド３６７〜４１１は、人工の可撓性リンカーをコードし、そしてヌクレオチド４１２〜７４７は、軽鎖可変領域をコードする。重鎖のＣＤＲ３領域のタンパク質配列は、配列ＥＧＧＧＦＴＶＮＷＹＦＤＶ（配列番号７）を有し、そしてボールドの文字で提供される。人工のリンカー配列（Ｇ₄ＳＧＧＲＡＳＧ₄Ｓ）もまた示す。

図１７では、ハイブリドーマ細胞株１９８／Ａ１由来のｓｃＦｖのＤＮＡおよび推定タンパク質配列を示す。ヌクレオチド１〜３６６は、重鎖可変ドメインをコードし、ヌクレオチド３６７〜４１１は、人工の可撓性リンカーをコードし、そしてヌクレオチド４１２〜７４７は、軽鎖可変領域をコードする。重鎖のＣＤＲ３領域のタンパク質配列は、配列ＥＧＧＧＹＹＶＮＷＹＦＤＶ（配列番号８）を有し、そしてボールドの文字で提供される。人工のリンカー配列（Ｇ₄ＳＧＧＲＡＳＧ₄Ｓ）もまた示す。

（実施例１１：抗ＦＩＸ／ＦＩＸａ抗体のＣＤＲ３領域由来のペプチドの凝血原活性）
原理上、抗体分子は、三次元空間におけるペプチドエレメントのコンビナトリアルアレイの提示のための生物学的デバイスとして想定され得る（Ｇａｏら，１９９９，ＰＮＡＳ，９６：６０２５を参照のこと）。従って、抗体（または抗体誘導体（例えば、ｓｃＦｖ、Ｆａｂなど））を特定の標的タンパク質の機能的に重要なドメインの検出のためのツールとして、または他方で、特定の相互作用を特異的に媒介する（すなわち、生物学的基質ＦＸに対するＦＩＸａの活性を活性化または増強する）アミノ酸配列を描写（ｄｅｌｉｎｅａｔｉｏｎ）するためのいずれにも使用され得る。後者のプロセスは、ＦＩＸａ増強剤としての、多数の重鎖ＣＤＲ３領域（ＣＤＲ３_H）由来ペプチド配列の評価へと導いた。

このような活性を示すペプチドの凝血原活性の増強は、ＦＩＸａ活性の増強を媒介するために重要なペプチド領域における配列改変を通して達成され得る。増強された凝血原活性を有するペプチド配列への可能な工程として、ＦＩＸａ分子上の抗体の結合部位（すなわち、１９８／Ａ１または１９８／Ｂ１）を、配列比較分析、競合的結合アッセイ、ウェスタンブロット分析および競合的ＥＬＩＳＡ分析を使用することによってマッピングする。ＦＩＸの結晶構造が既知であるので、引き続いて、分子モデリングを使用して、すなわち、ヒトＦＩＸａ上の１９８／Ｂ１結合部位における１９８／Ｂ１由来ペプチドの適合を改善する。

他方で、例えば、「アラニンスキャニング変異分析（ａｌａｎｉｎｅ ｓｃａｎｎｉｎｇ ｍｕｔａｔｉｏｎａｌ ａｎａｌｙｓｉｓ）」によって、所定のペプチド配列（例えば、１９８／Ａ１または１９８／Ｂ１ ＣＤＲ３_H由来のペプチド配列）の秩序的（ｍｅｔｈｏｄｉｃａｌ）変異分析によって、凝血原活性に重要なペプチド残基の同定が可能となる。特定のペプチド配列の活性を改善するための別の方法は、高スループットスクリーニングと組み合わせたペプチドライブラリーの使用である。

抗体の抗原結合部位は、ＶＬ−ＨＬダイマー（またはＦｖ領域）のＮ末端の近位する６つの「相補的決定領域（ｃｏｍｐｌｅｍｅｎｔ ｄｅｔｅｒｍｉｎｉｎｇ ｒｅｇｉｏｎ）（ＣＤＲ）」に由来する。所定の抗原に対する抗体特異性に対する単一のＣＤＲの寄与は、非常に多様であり得るが、一般に、重鎖のＣＤＲ３領域（ＣＤＲ３_H）が特に影響する、すなわち、ＣＤＲ３_H領域の特定のタンパク質配列が抗原認識に非常に重要であり得ると考えられる。ＣＤＲ３_H領域の長さは、非常に多様であることが報告されており、４〜２５アミノ酸の範囲である（Ｂｏｒｒｅｂａｅｃｋ、１６頁）。

ペプチド配列の系統的な変異分析の例を以下に示す。抗ＦＩＸ／ＦＩＸａ抗体のＣＤ３領域由来のペプチドの可溶性／凝血促進性（ｐｒｏｃｏａｇｕｌａｎｔ）効率を改善するために、Ｎ末端およびＣ末端のアミノ酸配列を変化させた。さらに、一連の変異ペプチドを構築しそして分析した。

このような研究の原理を、抗体１９８／Ａ１および１９８Ｂ／１のＣＤＲ３_H領域由来の一連のペプチドによって例示する。それぞれ、元のペプチドＡ１（表２を参照のこと）は、抗体１９８／Ａ１のＣＤＲ３_H領域に由来し、そしてペプチドＢ１は、抗体１９８Ｂ／１のＣＤＲ３_H領域由来に由来する（実施例１０、図１６および１７を参照のこと）。用語「スクランブルバージョン（ｓｃｒａｍｂｌｅｄ ｖｅｒｓｉｏｎ）」とは、ペプチドが、同じアミノ酸をランダムな順序で有することを意味する。

（表２）
一連の抗体１９８／Ａ１由来ペプチドのリスト。ペプチドの長さ（ａａ．アミノ酸数）、算出した分子量（ＭＷ、ダルトン（Ｄ））および統計学的等電点（ｐＩ）をリストする。Ｄ−Ａｒｇは、Ｒｄと省略する。

第１のシリーズの実験において、本発明者らは、元のＣＤＲ３_HペプチドのＣ末端Ｖａｌ残基を除去し、そしてＮ末端およびＣ末端にいくつかの荷電残基を付加することによって、その元のＣＤＲ３_Hペプチド配列（Ａ１；ＥＧＧＧＹＹＶＮＷＹＦＤＶ）の可溶性を改善した。得られたペプチドＡ１／２（酸性のｐＩ）、Ａ１／３（塩基性のｐＩ）およびこれらのそれぞれのスクランブルバージョンＡ１／４、Ａ１／５およびＡ１／３ｓｃｒ３は、生理学的ｐＨで種々の緩衝液系において容易に可溶性であった。

これらのペプチドのＦＶＩＩＩ様（ＦＩＸａ活性化）活性を分析するために、市販のＦＶＩＩＩアッセイに基づくアッセイ系を開発した（実施例２および４を参照のこと）。この基本的原理は、ＦＩＸａが、補因子なしで、その天然の基質ＦＸに対する非常に限定された活性を有することである。ＦＩＸａ活性化特性を有する基質（すなわち、ＦＶＩＩＩまたはＦＶＩＩＩ様活性を示す基質）の存在下でのみ、実質的な量のＦＸａが、ＦＩＸａ／アクチベーター複合体を介するＦＸの切断によって生成される。生成されたＦＸａの量を、色素形成性の基質の切断によってモニターする。この改正した色素形成アッセイの原理を、２つの代表的なペプチドＡ１／３およびＡ１／５（表２）について記載する。簡単に言うと、ペプチドストック溶液（イミダゾール緩衝液（ＩＺ）（５０ｍＭ イミダゾール、１００ｍＭ ＮａＣｌ、ｐＨ７．２）中）の２５μｌのアリコートを、マイクロタイタープレートウェルに移し、そして３７℃に温めた。供給者のプロトコルに従って、色素形成性のＦＸａ基質（Ｓ−２２２２）、合成トロンビンインヒビター（Ｉ−２５８１）、ウシＦＩＸａおよびウシＦＸを、滅菌水中で再構成し、そしてＦＩＸａ／ＦＸを、リン脂質と混合した。これらのペプチドは、ウシＦＩＸａとは反応しないので、（Ｔｅｓｔキット中のウシＦＸとの混合物として生じる）２．９ｎＭ（多くの場合では、２．３ｎＭ）のヒトＦＩＸａ（ＥＲＬ）を添加した（実施例１１、図１９を参照のこと）。反応あたり、５０μｌのこのリン脂質／ＦＩＸａ／ＦＸ溶液を、２５μｌのＣａＣｌ₂（２５ｍＭ）および５０μｌの基質／インヒビター混液と合わせた。反応を開始するために、この１２５μｌのプレミックスを、マイクロタイタープレート中のペプチド溶液に添加し、３７℃でインキュベートした。サンプルの４０５ｎｍおよび４９０ｎｍの吸光度を、ＧＥＮＥＳＩＳ^TMソフトウェアを使用するＬａｂｓｙｓｔｅｍｓ ｉＭＥＳ
Ｒｅａｄｅｒ ＭＦ^TMマイクロタイタープレートリーダーにおいて、試薬ブランクに対して種々の時点で（５分〜２時間）で読み取った。この実験の結果を、実施例１１、図１８に示す。ペプチドＡ１／３は、２．９ｎＭのヒトＦＩＸａの存在下で容易に測定可能なＦＸａ生成を誘導したが、そのスクランブルバージョンＡ１／５は、不活性であった。さらに、酸性ペプチドＡ１／２およびそのスクランブルバージョンＡ１／４およびＡ１／３−ｓｃｒ３は、匹敵する条件下で試験した場合に、有意な色素形成活性を付与しなかった（データは示さず）。このペプチドＡ１／３様の親抗体１９８／Ａ１が、ウシＦＩＸａおよびＦＸと反応しないことを証明するために、図１９に示す実験を行った。ペプチドＡ１／３を、２．３ｎＭのヒトＦＩＸａ（ｈＦＩＸａ）と共に（Ａ１／３（２４μＭ）、＋ｈＦＩＸａ）、または伴わずに（Ａ１／３（２４μＭ）、ｗ／ｏ ｈＦＩＸａ）、上記のようにインキュベートした。コントロール実験において、本発明者らは、反応混合液に、２．３ｎＭのｈＦＩＸａを補充したそのままの希釈緩衝液（ＩＺ）を添加した。図１９に示されるように、反応は、ヒトＦＩＸａの存在下でのみ生じる。

図１８は、２．９ｎＭのヒトＦＩＸａ（ｈＦＩＸａ）の存在下でのペプチドＡ１／３の色素形成性ＦＶＩＩＩ様活性を実証する。ペプチドＡ１／３のスクランブルバージョンであるペプチドＡ１／５は、ＦＸａの生成を生じない。図１９は、ヒトＦＩＸａ（ｈＦＩＸａ）の存在に対する、ペプチドＡ１／３の色素形成性のＦＶＩＩＩ様活性の依存性を実証する。ヒトＦＩＸａの非存在下で、ペプチドＡ１／３は、ＦＸａの生成を生じない。緩衝液コントロールであるそのままのイミダゾール緩衝液をＩＺと示す。

これらのペプチドをまた、ＦＶＩＩＩ欠乏血漿において凝固時間を減少するその能力について分析した。ａＰＴＴベースの１段階の凝固アッセイを、本質的には、記載（実施例６を参照のこと）のように行った。凝固時間（反応が開始してから「凝固」が形成するまでの時間）を、ＦＶＩＩＩ、緩衝液コントロール（ＩＺ）またはコントロールペプチド（スクランブルバージョン）のいずれかに対して比較した。２つの異なるａＰＴＴ試薬（ＤＡＰＴＴＩＮおよびＰａｔｈｒｏｍｔｉｎ ＳＬ）を用いて行った、２つの代表的な凝固実験の結果を、表３Ａおよび表３Ｂに示す。

表３Ａ．２．２ｎＭのヒトＦＩＸａの存在下または非存在下（ｗ／ｏ）のいずれかにおけるＦＶＩＩＩ欠乏血漿におけるペプチドＡ１／３およびＡ１／３−ｓｃｒ（Ａ１／３のスクランブルバージョン）の凝固活性。２つの独立した代表的な実験（実験１および実験２）を示す。全ての凝固実験を２連で行った。個々の実験についての凝固時間を取り、平均凝固時間を秒（ｓｅｃ．）で表す。表３Ａに示す実験は、ａＰＴＴ試薬ＤＡＰＴＴＩＮ（Ｂａｘｔｅｒ Ｈｙｌａｎｄ Ｉｍｍｕｎｏ）を使用して行った。緩衝液コントロール（ＩＺ、イミダゾール緩衝液）に比べて、ペプチドＡ１／３は、凝固時間における用量依存性の減少を生じた。この凝固時間の減少は、この反応混合液に対する２．２ｎＭの活性化ヒトＦＩＸの添加によってさらにより明らかとなった。ペプチドＡ１／３のスクランブルバージョンＡ１／３−ｓｃｒ３は、凝固時間の減少を示さなかった。実際に、２．５μＭよりも高い濃度では、このスクランブルペプチドは、阻害性になり、従って、凝固時間を延長した。ペプチドＡ１／１、Ａ１／２、Ａ１／４およびＡ１／５は、凝固時間の減少を生じず、これは、これらが、凝血促進活性を欠いていることを示す（データは示さず）。

表３Ｂ．Ｐａｔｈｒｏｍｔｉｎ ＳＬ（ＤＡＤＥ Ｂｅｈｒｉｎｇ）をａＰＴＴ試薬として使用する場合のＦＶＩＩＩ欠乏血漿におけるペプチドＡ１／３の凝固活性。実験を、２．２ｎＭのヒトＦＩＸａの存在下または非存在下（ｗ／ｏ）のいずれかで、２連で行った。個々の実験についての凝固時間を取り、平均凝固時間を秒（ｓｅｃ．）で表す。第ＶＩＩＩ因子およびイミダゾール緩衝液（ＩＺ）を、それぞれ、ポジティブコントロールおよびネガティブコントロールとして含んだ。

表３Ａに示した実験と対照的に、表３Ｂに示した実験は、ａＰＴＴ試薬Ｐａｔｈｒｏｍｔｉｎ ＳＬを使用して行った。ＦＩＸａの存在下で、ペプチドＡ１／３は、凝固時間の用量依存性の減少を生じたが、ＦＩＸａの非存在下では、凝固時間の減少は検出されなかった。

別のシリーズの実験において、本発明者らは、ペプチドＡ１／３の血漿安定性（例えば、タンパク質分解からの保護）を改善することを行った。１つのアプローチは、Ｎ末端およびＣ末端のＬ−Ａｒｇ残基のＤ−Ａｒｇ残基での置換である（ペプチドＡ１／３−ｒｄおよびＡ１／３−Ｒｄ−ｓｒｍｂによって例示される）。次いで、ペプチドＡ１／３−ｒｄおよびＡ１／３−Ｒｄ−ｓｒｍｂ（このペプチドＡ１／３−ｒｄのスクランブルバージョン）を、色素形成性およびａＰＴＴベースの凝固アッセイにおいて分析した。これらの実験は、末端Ｌ−Ａｒｇ残基のＤ−Ａｒｇ残基での交換が、色素形成アッセイにおいて測定されたようなＦＶＩＩＩ様活性を変化しないことを示し、これは、このＡｒｇ残基のキラリティーが、色素形成活性において主な役割を果たしていないことを示す（図２０）。さらに、ａＰＴＴベースの１段階の凝固活性は、幾分減少されたが、なお容易に検出可能であった（表４）。

表４ ペプチドＡ１／３、Ａ１／３−ＲｄおよびＡ１／３−Ｒｄ−ｓｒｍｂ（配列は、表２を参照のこと）の１段階の凝固活性。ＩＺ（緩衝液コントロール）。

図２０は、ペプチドＡ１／３−Ｒｄの変化されない色素形成活性を実証する。１２μＭの最終濃度のペプチドまたは緩衝液コントロール（ＩＺ）を、２．３ｎＭのヒトＦＩＸａ（＋）の存在下でインキュベートした。ペプチドＡ１／３およびＡ１／３−Ｒｄの色素形成活性は、実質的に変化されないことが示され、そしてこの色素形成アッセイにおいてほぼ同一の結果を生じた。Ａ１／３のスクランブルバージョン、Ａ１／５および緩衝液は、有意なＦＸａ生成を生じなかった。

次のシリーズの実験において、本発明者らは、各々の残基のアミノ酸アラニンでの置換による、このペプチドコア配列の任意のアミノ酸の個々の役割を決定することを行った（表５）。

表５．ペプチドコア配列（Ｅ₁Ｇ₂Ｇ₃Ｇ₄Ｙ₅Ｙ₆Ｖ₇Ｎ₈Ｗ₉Ｙ₁₀Ｆ₁₁Ｄ₁₂）内の任意の単一のアミノ酸の役割を解明するために設計されたペプチドを列挙する。下の枠の番号は、そのペプチド内のアミノ酸の位置を記載する。アラニン（荷電していない小さなアミノ酸）で、各アミノ酸を置換した（「アラニンスキャン」）。ペプチドの長さ（アミノ酸数）、分子量計算値（ＭＷ（ダルトン（Ｄ））および統計的等電点（ｐＩ）もまた列挙される。

各ペプチドを、それぞれイミダゾール緩衝液（５０ｍＭ イミダゾール、１００ｍＭ ＮａＣｌ、ｐＨ ７．２）に溶解し、続いて凝固緩衝液（５０ｍＭ イミダゾール、１００ｍＭ ＮａＣｌ、１％ ヒトアルブミン、ｐＨ ７．４）中所望の最終濃度まで希釈した。これらのペプチドをその色素形成活性について、およびそのＦＶＩＩＩ欠損血漿における凝固時間を減少する能力について分析した。一段階凝固アッセイを本質的に記載されるように（実施例６を参照のこと）行った。凝固時間（反応の開始から「凝塊」形成までの時間）を、緩衝液コントロールまたはコントロールペプチドのいずれかに対して比較した（スクランブルバージョン）。「アラニンスキャン」のいくつかの結果をペプチドＡ１／３−２およびＡ１／３−３について示す。ペプチドＡ１／３−２で例示される場合のＧ₃−Ａ₃の変化は、２．２ｎＭのヒトＦＩＸａの存在下で、高い色素形成活性および一段階凝固時間の強い減少（１２．５μＭの濃度で３４秒）を生じる。ペプチドＡ１／３−３（Ｇ₄−Ａ₄）は、より高いかまたはより低い濃度での減少した活性と共に、１２μＭ付近の最終濃度での最適の色素形成活性を示す。このペプチドは、ＦＩＸａの非存在下でのより高い濃度（１２．５μＭ）での一段階凝固アッセイにおいていくらか抑制性であるが、２．２ｎＭのＦＩＸａの存在下では強く活性になる（３１秒、１２．５μＭ）。

次の一連の実験において、本発明者らは、各コア残基をアミノ酸であるグルタミン酸（Ｅ）で置換することにより、ペプチドコア配列の任意のアミノ酸の個々の役割を決定するように設計した（表６を参照のこと）。

表６．ペプチドコア配列（Ｅ₁Ｇ₂Ｇ₃Ｇ₄Ｙ₅Ｙ₆Ｖ₇Ｎ₈Ｗ₉Ｙ₁₀Ｆ₁₁Ｄ₁₂）内の任意の単一のアミノ酸の役割を解明するために設計されたペプチドを列挙する。下の枠の番号は、そのペプチド内のアミノ酸の位置を記載する。グルタミン酸（負に荷電した大きなアミノ酸）で、このコア配列の各アミノ酸を置換した（「グルタミン酸スキャン」）。ペプチドの長さ（アミノ酸数）、分子量計算値（ＭＷ（ダルトン（Ｄ））および統計的等電点（ｐＩ）もまた列挙される。

各ペプチドを、それぞれイミダゾール緩衝液（５０ｍＭ イミダゾール、１００ｍＭ ＮａＣｌ、ｐＨ ７．２）に溶解し、続いて凝固緩衝液（５０ｍＭ イミダゾール、１００ｍＭ ＮａＣｌ、１％ ヒトアルブミン、ｐＨ ７．４）中所望の最終濃度まで希釈した。一連の「グルタミン酸スキャン」由来のペプチドをその色素形成ＦＶＩＩＩ様活性について、およびそのＦＶＩＩＩ欠損血漿における凝固時間を減少する能力について分析した。一段階凝固アッセイを本質的に記載されるように（実施例６を参照のこと）行った。

ペプチドＡ１／３−２４は、いくつかの興味深い特性を示した。この分子は、高色素形成ＦＶ−ＩＩＩ様活性を６．５μＭ〜１２μＭの間の濃度で示したが、より高い濃度（２４μＭまで）では失活した。このペプチドは、ヒトＦＩＸａの非存在下では凝血促進活性を有していなかったが、２．２ｎＭのｈＦＩＸａの存在下では強く活性であった。

第２の一連の実験において、本発明者らは、ペプチド配列Ｂ１由来の抗体１９８／Ｂ１ ＣＤＲ３Ｈの凝血促進活性を改善するように設計した。第１の工程において、本発明者らは、元のペプチド配列（Ｂ１；ＥＧＧＧＦＴＶＮＷＹＦＤＶ）の溶解性を、Ｃ末端Ｖａｌ残基を除去し、そしていくつかの荷電した残基をこのペプチドのＮ末端およびＣ末端に付加することにより改善した。得られたペプチドＢ１／４、Ｂ１／６（酸性 ｐＩ）、Ｂ１／７（塩基性 ｐＩ）およびそのスクランブルされたバージョンＢ１／５、Ｂ１／７ｓｃｒ３は、生理学的ｐＨにおいて種々の緩衝液系に容易に可溶である。

表７は、一連の抗体１９８／Ｂ１誘導ペプチドのリストである。ペプチドの長さ（ａａ、アミノ酸数）、分子量計算値（ＭＷ、ダルトン（Ｄ））および静止等電点（ｐＩ））が列挙される。

ペプチドＢ１／４およびＢ１／５は、５０ｍＭＴｒｉｓ、１００ｍＭ ＮａＣｌ、ｐＨ＝６．５に可溶であった。両方のペプチドを、色素形成ＦＶＩＩＩアッセイにおいて分析した。ペプチドＢ１／４は、いくらかの色素形成活性（データは示されず）を有することが見出されたが、スクランブルバージョンＢ１／５では見いだされなかった。

続いて、ペプチドＢ１／６、Ｂ１／７およびＢ１／７ｓｃｒ３を分析した。各ペプチドを、それぞれ５０ｍＭ イミダゾール、１００ｍＭ ＮａＣｌ、ｐＨ ７．２に溶解し、そして続いて凝固緩衝液（５０ｍＭ イミダゾール、１００ｍＭ ＮａＣｌ、１％ヒトアルブミン、ｐＨ ７．４）またはイミダゾール緩衝液のいずれか中に所望の最終濃度まで希釈した。これらのペプチドをその色素形成活性およびＦＶＩＩＩ欠損血漿における凝固時間を減少する能力について分析した（表８および９）。一段階凝固アッセイを、本質的に記載されるとおりに（実施例６を参照のこと）行った。凝固時間（反応の開始から「凝塊」形成までの時間）を、緩衝液コントロールまたはコントロールペプチドのいずれかに対して比較した（スクランブルバージョン）。

ペプチドＢ１／７由来のＦＩＸａ活性化活性（ＦＶＩＩＩ補因子様活性）を、最初に上記の色素形成アッセイにおいて測定した。

図２１に示されるように、２．４μＭペプチドＢ１／７の反応混合物への添加は、十分に測定可能なＦＸａの生成をもたらした。対照的に、３５μＭのＰｅｆａｂｌｏｃｋ Ｘａ（ＦＸａプロテアーゼ活性の特異的インヒビタ−）の添加は、色素形成基質切断反応の有意な減少（図２２）を生じ、それにより実際にペプチド−ＦＩＸａ媒介ＦＸａ生成をもたらした。ＦＩＸａおよびＦＸの反応混合物への添加がない場合、ＦＸａは合成されなかった（図２２）。ペプチドＢ１／６およびコントロールペプチドＢ１／５およびＢ１／７ｓｃｒ３は、活性を示さなかった（データは示さず）。

図２１は、ペプチドＢ１／７の色素形成活性を実証する。最終濃度２．４μＭでのペプチドまたは緩衝液コントロール（ＩＺ）を２．３ｎＭのヒトＦＩＸａの存在下でインキュベートした。

図２２において、最終濃度２．４μＭでのペプチドＢ１／７または緩衝液コントロール（ＩＺ）でのペプチドを２．３ｎＭのヒトＦＩＸａの存在下でインキュベートした（「＋２．３ｎＭ ｈＦＩＸａ」、または「＋」のいずれかとして示される）。ペプチドＢ１／７の色素形成活性は、ＦＩＸａおよびＦＸの存在に依存することが見出された。なぜならば、ＦＩＸａおよびＦＸが反応から離される場合（ｗ／ｏ ＦＩＸａ／ＦＸ）、反応が全く検出できないからである。ペプチドＢ１／７が実際にＦＸａ生成を媒介することを立証するために、ＦＸａ特異的プロテアーゼインヒビタ−Ｐｅｆａｂｌｏｃ Ｘａを反応混合物に添加した（３５μＭ Ｐｅｆａｂｌｏｃ Ｘａ）。第２の一連の実験において、ペプチドＢ１／６、Ｂ１／７およびＢ１／７ｓｃｒ３の凝血促進効果を、ａＰＴＴベースの１工程凝固アッセイにおいて試験した。これらの実験を本質的に実施例６に記載の通りに行った。結果を表８および９に示す。

表８：ＦＶＩＩＩ欠損血漿を、ペプチドＢ１／６、Ｂ１／７ｓｒｃ３またはＢ１／７のいずれかと共に活性化ヒトＦＩＸの非存在下でインキュベートした。ネガティブコントロールとして、純粋な緩衝液を欠損血漿に添加した。種々の組合せについての凝固時間を示す。これらの条件下で、その最高濃度（１２．５μＭ）におけるペプチドＢ１／７は、１５７秒という延長した凝固時間により示されるように、凝固プロセスに対して抑制性になる。

表９：ＦＶＩＩＩ欠損血漿を、ペプチドＢ１／６、Ｂ１／７ｓｃｒ３またはＢ１／７のいずれかと共に、活性化ヒトＦＩＸの存在下でインキュベートした。ネガティブコントロールとして、純粋な緩衝液をこの欠損血漿に添加した。凝固時間を種々の組合せについて示す。ＦＩＸａの存在下において、ペプチドＢ１／７は、減少した凝固時間（スクランブルペプチドについて１０２秒、および緩衝液コントロールについて１００秒と比較して８３秒）により示されるように凝血促進性になる。

（実施例１２：ＦＶＩＩＩインヒビタ−血漿における抗ＦＩＸ／ＦＩＸａ抗体のＣＤＲ３領域から得られるペプチド誘導体の凝血促進活性）
ＦＶＩＩＩインヒビター血漿におけるペプチドＡ１／３の凝血促進活性についてアッセイするために、以下の実験を実行した。本発明者らは、一段階凝固アッセイをベースとする標準ａＰＴＴを行ったが、ＦＶＩＩＩ欠損血漿の代わりに、本発明者らはＦＶＩＩＩインヒビター血漿を採用した。血漿の阻害性能力は、１ｍｌあたり８．１Ｂｅｔｈｅｓｄａユニットであった。

表１０：種々の量のペプチドＡ１／３（１２．５μＭ〜１．２５μＭ）をＦＶＩＩＩインヒビター血漿に（２．２ｎＭのＦＩＸａの存在下（ＦＩＸａ）または非存在下（ｗ／ｏ ＦＩＸａ）のいずれかで）添加した。ネガティブコントロールとして、純粋な緩衝液を血漿に添加した（ＩＺ）。実験を２回行い、そして平均（ａｖｅｒ．）を算出した。凝固時間（秒）を種々の組合せについて示す。ペプチドＡ１／３が、（用量依存性の様式で）ＦＶＩＩＩインヒビタ−血漿の凝固時間を、ＦＩＸａの存在下で、たとえ非常に少ない程度でも、またＦＩＸａの非存在下でも減少させることは容易に理解できる。

（実施例１３：１９６／Ｃ４ ＩｇＭのＩｇＧ１への変換）
いくつかのＩｇＭ抗体は高ＦＶＩＩＩ様活性を色素形成アッセイにおいて示すので、このようなＩｇＭ抗体をＩｇＧ抗体に（Ｆａｂ、Ｆ（ａｂ）２、ｓｃＦｖなどのような抗体誘導体もまた産生され得るが）変換させようと試みた。ＩｇＭ可変領域遺伝子のレスキューが以下に詳細に記載される。発現ベクターｐＢａｘ−ＩｇＧ１（図２３）を、ベクターｐＳＩ（Ｐｒｏｍｅｇａ）およびｐＥＦ／Ｂｓｄ（Ｉｎｖｉｔｒｏｇｅｎ）から複数のクローニング工程を介して最初に構築した。ドナーのＢリンパ球を血液から精製し、そして成熟ｍＲＮＡを「ｍｉｃｒｏ−ｍＲＮＡ ｐｕｒｉｆｉｃａｔｉｏｎ−ｋｉｔ」（Ｐｈａｒｍａｃｉａ）を使用してこれらの細胞から精製した。ヒトκ鎖およびヒトγ１鎖のｃＤＮＡを、「ｙｏｕ−ｐｒｉｍｅｆｉｒｓｔ−ｓｔｒａｎｄ−ｃＤＮＡ−ｋｉｔ」（Ｐｈａｒｍａｃｉａ）を採用して特異的プライマーを使用して調製した。

ヒトκ軽鎖定常ドメインのコード配列を、ＰＣＲにより特的プライマーを使用してｃＤＮＡから増幅する。

ヒトγ１鎖定常領域（ＣＨ１−ヒンジ−ＣＨ２−ＣＨ３）の遺伝子を、ＰＣＲにより特異的プライマーを使用して増幅する。

軽鎖定常ドメインの軽鎖のＰＣＲ産物を、ＸｂａＩおよびＮｈｅＩを用いて消化し、そして消化されたｐＳＩ中に挿入した。得られたベクターをＥｃｏＲＩおよびＸｂａＩを用いて切断し、そしてアニーリングされたオリゴヌクレオチドを挿入し、ベクターｐＳＩ−Ｃκを生じた。アニーリングされたオリゴヌクレオチドは、κ鎖可変領域挿入のためのリーダー部位およびＳａｃＩ−ＸｂａＩ部位を提供する。ヒトγ１鎖定常領域のＰＣＲ産物を、ＳｐｅＩおよびＢａｍＨＩを用いて消化し、そして消化されたｐＳＩに挿入する。得られたベクターをＳｐｅＩおよびＮｏｔＩで切断し、そしてアニーリングされたオリゴヌクレオチドを挿入して、ベクターｐＳＩ−Ｃγを生じる。アニーリングされたオリゴヌクレオチドは、重鎖可変領域の挿入のためのリーダー部位およびＸｈｏＩ−ＢｓｔＥＩ部位を提供する。ベクターｐＥＦ／ＢｓｄをＮｈｅＩおよびＳｆｉＩで消化し、Ｋｌｅｎｏｗ処理により平滑末端にし、そしてｐＳＩ−Ｃκ全体の発現カセット（ＢｇｌＩＩおよびＢａｍＨ１を用いて切除される）を（Ｋｌｅｎｏｗ処理の後に）挿入する。得られたベクターをＥｃｏＲＩおよびＨｉｎｄＩＩＩを用いて消化し、そしてＫｌｅｎｏｗ処理する。ｐＳＩ−Ｃγの全体の発現カセットをＢｇｌＩＩおよびＢａｍＨ１で切除し、そして挿入する（Ｋｌｅｎｏｗ処理後）。得られたベクターをｐＢａｘ−ＩｇＧ１と称する。

軽鎖可変領域をＳａｃＩ−ＸｂａＩ部位の間に挿入し得、κ軽鎖の完全コード配列を得る。重鎖可変領域を、ＸｈｏＩ−ＢｓｔＥＩ部位の間にクローニングし得、完全ＩｇＧ１重鎖遺伝子を生じる。両方のオープンリーディングフレームは、ＳＶ４０プロモーターの制御下で発現され、シグナルペプチドのコード配列を、遺伝子の５’末端において小胞体への重鎖および軽鎖の分泌のために含む。ＣＯＳ細胞へのトランスフェクションは、親ＩｇＭと同じ結合特性を有するＩｇＧ１の発現を可能にする。プラスミドｐＢａｘ−１９６／Ｃ４の構築は、特異的プライマーを使用するＰＣＲにより１９６／Ｃ４ ｓｃＦｖのＶＨ（実験１０において記載されるようにサブクローニングされる）を増幅することによりさらに達成され得る。ＰＣＲ産物を、ＸｈｏＩおよびＢｓｔＥＩＩを用いて消化し、そしてＸｈｏＩおよびＢｓｔＥＩＩ消化ｐＢａｘ ＩｇＧ１に挿入する。１９６／Ｃ４ ｓｃＦｖのＶＬを、特異的プライマーを使用するＰＣＲにより増幅する。ＰＣＲ産物をＳａｃＩおよびＸｂａＩを用いて消化し、そしてＳａｃＩおよびＸｂａＩ消化ｐＢａｘ ＩｇＧ１−ＶＨに挿入する。得られたベクター（ｐＢａｘ−１９６／Ｃ４）をエレクトロポレーションによりＣＯＳ細胞にトランスフェクトし、そして親ＩｇＭと同じ特異性を有するハイブリッドＩｇＧ１分子（マウス可変領域およびヒト定常領域）が発現される。

（実施例１４：抗ＦＩＸａ抗体によるＦＩＸａアミド分解活性の活性化：）
手短に言うと、２０μｌの第ＩＸａ因子（２００ｍＵのＦＩＸａ（Ｓｔａｇｏ）を含む）を、２００μｌの反応緩衝液（５０ｍＭ ＴｒｉｓＨＣｌ ｐＨ７．４，１００ｍＭ ＮａＣｌ，５ｍＭ ＣａＣｌ₂および４０％エチレングリコール）、２５μｌのＦＩＸａ基質（ＣＨ₃ＳＯ₂−Ｄ−ＣＨＧ−Ｇｌｙ−Ａｒｇ−ｐＮＡ，ＡｃＯＨ，１０μＭ／ｍｌ，Ｐｅｎｔａｐｈａｒｍ ＬＴＤ）と共に、種々の量の抗ＦＩＸ抗体１９８／Ｂ１（ＩｇＧアイソタイプ）または１９６／ＡＦ１（ＩｇＭアイソタイプ）の存在下または非存在下で、３７℃でインキュベートした。ＦＩＸａ基質の特異的切断を、ＥＬＩＳＡリーダーにおいて４０５ｎｍでモニターした。抗ＦＩＸ抗体の存在は、ＦＩＸａのアミド分解活性を少なくとも２倍増大した。図２４は、抗体１９８／Ｂ１（図２４Ａ）および抗体１９８／ＡＦ１（図２４Ｂ）の存在下でのＦＩＸａのアミド分解活性の増加を示す。

（実施例１５：抗ＦＩＸ／ＦＩＸａ−抗体由来のＦａｂフラグメントによって示されるＦＶＩＩＩ様活性）
抗ＦＩＸ／ＦＩＸａ抗体のＦａｂフラグメントを、標準的プロトコルに従って調製し、そして精製した。手短に言うと、１ｍｌの抗体１９８／Ａ１（５０ｍＭのイミダゾール中に４ｍｇ／ｍｌ，１００ｍＭ ＮａＣｌ，ｐＨ７．４）を、８７μｌの細分緩衝液（１Ｍ Ｎａアセテート，１０ｍＭ ＥＤＴＡ ６７．５ｍｇ／ｍｌ Ｌ−システイン）および０．２５ｍｇのパパイン（アガロースビーズ上に固定化）と共に一晩３７℃でインキュベートした。この調製物を濾過してパパインを除去した。Ｌ−ヒスチジンを添加し（最終濃度５０ｍＭ）、そしてその後ｐＨを７．０に調製した。最後に、固体のＮａＣｌを添加して、１Ｍの最終濃度を得た。引き続いて、１９８／Ａ１ Ｆａｂフラグメントを、プロテインＬに結合させることによって精製した：本発明者らは、ＰＨＡＲＭＡＣＩＡ ＸＫ １６／２０カラム（ゲル容量：２ｍｌ）中のＩｍｍｕｎｏＰｕｒｅ Ｉｍｍｏｂｉｌｉｚｅｄ ＰＲＯＴＥＩＮ Ｌ Ｐｌｕｓ（Ｐｉｅｒｃｅ）を使用し、クロマトグラフィーのための緩衝液は以下のようであった：１）平衡緩衝液：５０ｍＭ Ｌ−ヒスチジン ｐＨ７．０；１Ｍ ＮａＣｌ；０，１％（ｗ／ｖ）ＮａＮ₃；２）洗浄緩衝液：５０ｍＭ Ｌ−ヒスチジン ｐＨ７．０；０．１％（ｗ／ｖ）ＮａＮ₃；３）溶出緩衝液：１００ｍＭ グリシン ｐＨ２．５；０．１％（ｗ／ｖ）ＮａＮ₃；および４）中和緩衝液：２Ｍ Ｔｒｉｓ／Ｃｌ ｐＨ８，０；
クロマトグラフィーは、本質的に表１１に記載される以下の工程１〜７によって行った。溶出緩衝液の低いｐＨを中和するために、「画分チューブ（Ｆｒａｃｔｉｏｎ−ｔｕｂｅ）」を、０．２ｍｌ ２Ｍ Ｔｒｉｓ ｐＨ８．０と共に予めロードした。

最後の１９８／Ａ１ Ｆａｂ調製物を、５０ｍＭイミダゾール、１００ｍＭ ＮａＣｌ、ｐＨ７．４に対して透析し、そして上記のような色素形成（ｃｈｒｏｍｏｇｅｎｉｃ）ＦＶＩＩＩアッセイにおいて分析した（図２５）。インタクトな抗体と比較して、この１９８／Ａ１ Ｆａｂフラグメントはある程度低い活性を有していたが；このＦａｂフラグメントは依然としてＦＩＸ依存性ＦＸａ産生を生じた。図２５は、２．３ｎＭのヒトＦＩＸａの存在下での抗体１９８／Ａ１
Ｆａｂフラグメントの色素形成ＦＶＩＩＩ様活性を実証する。ポジティブコントロールとして、本発明者らはインタクトな抗体１９８／Ａ１ならびに７．５ｐＭのＦＶＩＩＩを使用した。１９８／Ａ１ ＦａｂフラグメントまたはＦＶＩＩＩの代わりに、緩衝液コントロール（ＩＺ）をネガティブコントロールとして使用した。

（実施例１６：抗ＦＩＸ／ＦＩＸａ抗体のおよびＥ．ｃｏｌｉアルカリホスファターゼのｓｃＦｖフラグメント間の融合タンパク質によって示されるＦＶＩＩＩ様活性）
抗体１９８／Ｂ１（サブクローンＡＢ２）の単鎖Ｆｖフラグメント（実施例１０を参照のこと）を、ｐＤＡＰ２ベクター系を用いてＥ．ｃｏｌｉアルカリホスファターゼのＮ末端に融合した（Ｋｅｒｓｃｈｂａｕｍｅｒら、１９９６）。２つの同一のクローンを単離し、そしてｐＤＡＰ２−１９８ＡＢ２＃１およびｐＤＡＰ２−１９８ＡＢ２＃１００と名付けた（図２６）。得られた融合タンパク質をＥ．ｃｏｌｉ中で発現し、金属親和性クロマトグラフィー（Ｋｅｒｓｃｈｂａｕｍｅｒら、１９９７）によって精製し、そして標準的な色素形成アッセイにおいて分析した（図２７）。図２７は、２．３ｎＭのヒトＦＩＸａの存在下での２つの抗体１９８／Ｂ１（サブクローンＡＢ２）ｓｃＦｖフラグメント−アルカリホスファターゼ融合タンパク質（１９８ＡＢ２＃１および１９８ＡＢ２＃１００）の色素形成ＦＶＩＩＩ様活性を実証する。ポジティブコントロールとして、本発明者らは７．５ｐＭ ＦＶＩＩＩを使用した。

（実施例１７：二価のミニ抗体によって示されるＦＶＩＩＩ様活性）
二価のミニ抗体を得るために、抗体１９８／Ｂ１（サブクローンＡＢ２）のｓｃＦｖフラグメントを、ｐＺｉｐ１ベクター系を用いて両親媒性らせん構造に融合した（Ｋｅｒｓｃｈｂａｕｍｅｒら（Ａｎａｌｙｔｉｃａｌ Ｂｉｏｃｈｅｍｉｓｔｒｙ ２４９，２１９−２２７，１９９７））。手短に言うと、１９８／Ｂ１ ｓｃＦｖフラグメントの遺伝子を、ＳｆｉＩおよびＮｏｔＩでの消化によってプラスミドｐＤＡＰ−１９８ＡＢ２＃１００（実施例１６）から単離した。このＤＮＡフラグメントをゲル精製し、そしてＳｆｉＩ／ＮｏｔＩ消化ベクターｐＺｉｐ１に挿入した。得られたプラスミドを配列決定し、そしてｐＺｉｐ−１９８ＡＢ２＃１０２と名付けた（図２８）。並行して、本発明者らは、＃８８６０と呼ばれる無関係のモノクローナル抗体からミニ抗体の異形を構築した。最初の段階において、抗体＃８８６０の単鎖Ｆｖフラグメントを、ベクターｐＤＡＰ２内に構築した。このクローニングを、本質的には実施例１０に記載されるように行った。この構築物をｐＤＡＰ２−８８６０ｓｃＦｖ＃１１と名付けた（図２９）。ｐＤＡＰ２−８８６０ｓｃＦｖ＃１１内に含まれるｓｃＦｖフラグメントの、プラスミドｐＺｉｐ１（上記を参照のこと）へのサブクローニングは、ミニ抗体構築物ｐ８８６０−Ｚｉｐ＃１．２を生じた（図３０）。抗体＃８８６０はＦＩＸ／ＦＩＸａとは反応しないので（ウエスタンブロットおよびＥＬＩＳＡ分析により判断）、これは適切なネガティブコントロールを表す。その後、このミニ抗体タンパク質をＥ．ｃｏｌｉにおいて発現させ、そして以下のプロトコルに従うプロテインＬへの結合によって細菌の上清から精製した：
アフィニティークロマトグラフィーについて、本発明者らは、４ｍｌのゲル容量を有するＰＨＡＲＭＡＣＩＡ ＸＫ １６／２０カラムにおいて、ＩｍｍｕｎｏＰｕｒｅ Ｉｍｍｏｂｉｌｉｚｅｄ ＰＲＯＴＥＩＮ Ｌ Ｐｌｕｓ（Ｐｉｅｒｃｅ）を使用した。使用した緩衝液は以下のようであった：１）平衡緩衝液：５０ｍＭ Ｌ−ヒスチジン ｐＨ７．０，１Ｍ ＮａＣｌ，０．１％（ｗ／ｖ）ＮａＮ₃；洗浄緩衝液：５０ｍＭ Ｌ−ヒスチジン ｐＨ７．０，０．１％（ｗ／ｖ）ＮａＮ₃；溶出緩衝液：１００ｍＭグリシン ｐＨ２．５，０．１％（ｗ／ｖ）ＮａＮ₃；および中和緩衝液：２Ｍ Ｔｒｉｓ／Ｃｌ ｐＨ８．０。

サンプルを以下のように調製した：細菌培養物の上清を、細菌発現培養物の遠心分離（１１，０００×ｇ、４℃、１０分）によって得た。４７０ｇの硫酸アンモニウムを１リットルの上清に加え、そしてこの溶液を氷上で１時間攪拌してタンパク質を沈殿させた。この沈殿を、２℃、１４，０００×ｇの３５分間によってペレット化し、そして１００ｍｌの２０ｍＭ Ｔｒｉｓ ｐＨ７．０に再溶解させた。その後、この濃縮物を２０ｍＭのＴｒｉｓ ｐＨ７．０に対して透析し、５０ｍＭの最終濃度までＬ−ヒスチジンを添加し、そしてｐＨを７．０に調節した。最後に、固体のＮａＣｌを添加し、１Ｍの最終濃度を得た。カラムにロードする前に、サンプルをまず室温、１６，０００×ｇで１５分間遠心分離し、次いで０．４５μｍの滅菌フィルタを通して濾過した。

クロマトグラフィーを、表１２に記載される以下の工程１〜７によって本質的に行った。溶出緩衝液の低いｐＨを中和するために、「画分チューブ（Ｆｒａｃｔｉｏｎ−ｔｕｂｅ）」を、０．２ｍｌ ２Ｍ Ｔｒｉｓ ｐＨ８．０と共に予めロードした。

表１２。最後の１９８／Ｂ１（サブクローンＡＢ２）ミニ抗体調製物（１９８ＡＢ−Ｚｉｐ＃１０２と名付けた）およびネガティブコントロールの８８６０−Ｚｉｐ＃１．２を、５０ｍＭイミダゾール、１００ｍＭ ＮａＣｌ、ｐＨ７．４に対して透析し、そして上記のように色素形成ＦＶＩＩＩアッセイにおいて分析した（図３１）。

図３１に見られ得るように、ミニ抗体構築物１９８ＡＢ−Ｚｉｐ＃１０２は、実質的なＦＸａ産生を生じたが（ＦＶＩＩＩと比較して）、一方、ネガティブコントロールミニ抗体８８６０−Ｚｉｐ＃１．２は生じなかった。図３１は、２．３ｎＭのヒトＦＩＸａの存在下での、１９８／Ｂ１（サブクローンＡＢ２）ミニ抗体１９８ＡＢ−Ｚｉｐ＃１０２の色素形成ＦＶＩＩＩ様活性を実証する。ポジティブコントロールとして、本発明者らは４．８ｐＭのＦＶＩＩＩを使用し、一方、無関係のミニ抗体（８８６０−Ｚｉｐ＃１．２）および単純反応緩衝液（ｐｌａｉｎ ｒｅａｃｔｉｏｎ ｂｕｆｆｅｒ）（ＩＺ）はネガティブコントロールとして役立った。

（実施例１８：抗ＦＩＸａ／ＦＩＸ抗体ｓｃＦｖフラグメントによって示されるＦＶＩＩＩ様活性）
抗体１９８／Ｂ１（サブクローンＡＢ２）の単鎖Ｆｖフラグメントならびに抗体＃８８６０のｓｃＦｖフラグメントを、ｐＭｙｃＨｉｓ６ベクター系を用いて発現させた。ベクターｐＭｙｃＨｉｓ６（図３２＆３３）を、ベクターｐＣＯＣＫ（Ｅｎｇｅｌｈａｒｄｔら，１９９４，Ｂｉｏｔｅｃｈｎｉｑｕｅｓ，１７：４４−４６）をＮｏｔＩおよびＥｃｏＲＩで切断し、そして以下のオリゴヌクレオチドの挿入によって構築した：ｍｙｃｈｉｓ６−ｃｏ：５’ｇｇｃｃｇｃａｇａａｃａａａａａｃｔｃａｔｃｔｃａｇａａｇａｇｇａｔｃｔｇａａｔｇｇｇｇｃｇｇｃａｃａｔｃａｃｃａｔｃａｃｃａｔｃａｃｔａａｔａａｇ３’（配列番号７９）およびｍｙｃｃｈｉｓ−ｉｃ：５’ａａｔｔｃｔｔａｔｔａｇｔｇａｔｇｇｔｇａｔｇｇｔｇａｔｇｔｇｃｃｇｃｃｃｃａｔｔｃａｇａｔｃｃｔｃｔｔｃｔｇａｇａｔｇａｇｔｔｔｔｔｇｔｔｃｔｇｃ３’（配列番号８０）。図３２は、プラスミドｐＭｙｃＨｉｓ６の略図を示す。ｃ−ｍｙｃ−タグ配列は、ＥＬＩＳＡまたはウエスタンブロット分析においてｓｃＦｖフラグメントを検出するために使用される（Ｅｖａｎら，Ｍｏｌ．Ｃｅｌｌ．Ｂｉｏｌ．，１９８５，５（１２），ｐｐ．３６１０−６）。Ｈｉｓ６−タグ配列は、金属イオンクロマトグラフィーによるｓｃＦフラグメントの精製を容易にするために含まれる（Ｈｏｃｈｕｌｉら，１９８８．Ｂｉｏｔｅｃｈｎｏｌｏｇｙ，６：１３２１−１３２５）。このプラスミドは、ｌａｃＺ遺伝子プロモーター（ＰｌａｃＺ）、ＰｅｌＢ−リーダー配列（図２６の説明文を参照のこと）、Ｅ．ｃｏｌｉ複製起源（ｃｏｌＥ１ｏｒｉ）およびＭ１３ファージ複製起源（Ｍ１３ｏｒｉ）を含む。特異的選択を可能にするために、このプラスミドはまた、抗生物質アンピシリンに対する耐性を媒介する酵素β−ラクタマーゼのための遺伝子（ＡｍｐＲ）を保有する。１９８／Ｂ１（クローンＡＢ２）−ｓｃＦｖの遺伝子を、ＳｆｉＩおよびＮｏｔＩで消化して、そしてＳｆｉＩ／ＮｏｔＩ切断されたｐＭｙｃＨｉｓ６に挿入することによって、プラスミドｐＤＡＰ２−１９８ＡＢ２＃１００（実施例１６）からレスキューした。得られたプラスミドをｐＭｙｃＨｉｓ−１９８ＡＢ２＃１０２と名付けた。図３４は、１９８ＡＢ２ ｓｃＦｖのヌクレオチド配列およびアミノ酸配列（ｃ−ｍｙｃ−タグおよびＨｉｓ６−タグに連結した）を示す：発現ベクターの得られたＯＲＦを、ｐＭｙｃＨｉｓ６−１９８ＡＢ２＃１０２と名付けた。ベクターｐＭｙｃＨｉｓ６を、ベクターｐＣＯＣＫ（Ｅｎｇｅｌｈａｒｄｔ Ｏ．ら，ＢｉｏＴｅｃｈｎｉｑｕｅｓ １７，４４−４６，１９９４）ＮｏｔＩ−ＥｃｏＲＩを切断し、そして以下のアニールされたオリゴヌクレオチドを挿入することによって構築した：（５’−ＧＧＣＣＧＣＡＧＡＡＣＡＡＡＡＡＣＴＣＡＴＣＴＣＡＧＡＡＧＡＧＧＡＴＣＴＧＡＡＴＧＧＧＧＣＧＧＣＡＣＡＴＣＡＣＣＡＴＣＡＣＣＡＴＣＡＣＴＡＡＴＡＡＧ−３’（配列番号１０３）および５’−ＴＴＡＴＴＡＧＴＧＡＴＧＧＴＧＡＴＧＧＴＧＡＴＧＴＧＣＣＧＣＣＣＣＡＴＴＣＡＧＡＴＣＣＴＣＴＴＣＴＧＡＧＡＴＧＡＧＴＴＴＴＴＧＴＴＣＴＧＣ−３’（配列番号１０４））。得られたベクター（ｐＭｙｃＨｉｓ６と名付けた）は切断されたＳｆｉＩ−ＮｏｔＩであり、そしてｓｃＦｖ １９８ＡＢ２の遺伝子を、ベクターｐＤＡＰ２−１９８ＡＢ２＃１００からこのベクターに交換した。１９８ＡＢ２構築物に対する類似性において、＃８８６０ｓｃＦｖフラグメントを、ｐＤＡＰ２−８８６０ｓｃＦｖクローン１１と名付けたプラスミドからクローンした。＃８８６０の純粋なｓｃＦｖタンパク質を、８８６０−Ｍ／Ｈ＃４ｃと名付けた（プラスミドｐ８８６０−Ｍ／Ｈ＃４ｃ、図３５）。ｓｃＦｖタンパク質をＥ．ｃｏｌｉ中で発現させ、そしてプロテインＬカラム上の細菌の上清から親和性精製した（実施例１７を参照のこと）。最後のＭｙｃＨｉｓ−１９８ＡＢ２＃１０２および８８６０−Ｍ／Ｈ＃４ｃ調製物を、５０ｍＭイミダゾール、１００ｍＭ ＮａＣｌ、ｐＨ７．４に対して透析し、そして上記のように色素形成ＦＶＩＩＩアッセイにおいて分析した（図３６）。

図３６において見られ得るように、ｓｃＦｖ構築物ＭｙｃＨｉｓ−１９８ＡＢ２＃１０２は、実質的なＦＸａの産生を生じるが、一方、ネガティブコントロール８８６０−Ｍ／Ｈ＃４ｃおよび単純反応緩衝液（ＩＺ）は生じない。図３６は、２．３ｎＭのヒトＦＩＸａの存在下での、１９８／Ｂ１（サブクローンＡＢ２）ｓｃＦｖフラグメント（ＭｙｃＨｉｓ−１９８ＡＢ２＃１０２）の色素形成ＦＶＩＩＩ様活性を実証する。ポジティブコントロールとして、本発明者らは４．８ｐＭのＦＶＩＩＩを使用し、一方、無関係のｓｃＦｖ（８８６０−Ｍ／Ｈ＃４ｃ）および単純反応緩衝液（ＩＺ）はネガティブコントロールとして役立った。

図１は、ＦＶＩＩＩ様活性についての、ハイブリドーマ細胞培養からの上清のスクリーニングの結果を示す。融合実験から予め選択されたクローン（＃１９３、＃１９５および＃１９６）を、色素形成アッセイで試験した。 図２は、マスタープレートのハイブリドーマ細胞培養における上清のＩｇＧ媒介第ＶＩＩＩ因子様活性についてのスクリーニングの結果を示す。 図３は、クローン１９３／Ｃ０のサブクローニング、すなわち、一回目のクローニングの結果を示す。 図４は、開始クローン１９３／Ｃ０由来のハイブリドーマ培養物の色素形成ＦＶＩＩＩ様活性および第ＩＸ因子−ＥＬＩＳＡ反応性の比較を示す。 図５は、いくつかのマスタークローンおよびサブクローンの色素形成活性の測定結果を示す。 図６Ａは、ヒトＦＶＩＩＩ、ＴＢＳ緩衝液および細胞培養培地と比較した、抗ＦＩＸ／ＦＩＸａ抗体１９３／ＡＤ３および１９６／ＡＦ２のＦＶＩＩＩ様活性を示す。遅滞期の後に、両方の抗体は、増加する光学密度によって判断されるように、色素形成基質の切断を生じた。 図６Ｂは、第ＶＩＩＩ因子、１９６／ＡＦ１、１９８／ＡＣ１／１およびマウスＩｇＧの色素形成活性の比較を示す。 図７Ａは、第Ｘａ因子特異的インヒビターの添加を伴った、または伴わない、第ＶＩＩＩ因子および１９６／ＡＦ２による第Ｘａ因子の生成の速度論の比較を示す。 図７Ｂは、第Ｘａ因子特異的インヒビターであるＰｅｆａｂｌｏｃ Ｘａ（登録商標）の添加を伴った、または伴わない、第ＶＩＩＩ因子、マウスＩｇＧ、および抗第ＩＸ／ＩＸａ因子抗体１９８／ＡＭ１による第Ｘａ因子の生成の速度論の比較を示す。 図８Ａは、リン脂質、ＦＩＸａ／ＦＸおよびカルシウムイオンの存在下、および非存在下における、精製された抗第ＩＸ／ＩＸａ因子抗体１９８／ＡＣ１／１の第ＶＩＩＩ因子様活性の依存性の測定を示す。 図８Ｂは、リン脂質、Ｃａ²⁺およびＦＩＸａ／ＦＸの存在下における、抗ＦＩＸａ抗体１９６／ＡＦ１によるＦＸａ生成の依存性の測定を示す。 図８Ｃは、非特異的マウスＩｇＧ抗体によるＦＸａの生成を示す。 図９は、種々の濃度の抗第ＩＸ／ＩＸａ因子抗体１９３／ＡＤ３を用いることによるＡＰＴＴアッセイにおける第ＶＩＩＩ因子欠乏血漿の凝固時間のグラフ表示である。 図１０Ａは、因子ＩＸａの存在下において、抗体１９３／ＡＤ３が、第ＶＩＩＩ因子欠乏血漿の凝固時間を短縮することを示す。 図１０Ｂは、第ＩＸａ因子インヒビターおよび第ＶＩＩＩ因子インヒビターの存在下における、抗体１９３／ＡＤ３による凝固時間の、用量依存性短縮を示す。 図１１は、ヒトＦＩＸａβの存在下、および非存在下における、抗体１９８／Ａ１、１９８／Ｂ１および１９８／ＡＰ１の色素形成活性を示す。 図１２は、マウス抗体の可変重鎖の遺伝子増幅のためのプライマー配列を示す。 図１２−１の続き。 図１３は、マウス抗体の可変軽（κ）鎖の遺伝子増幅のためのプライマー配列を示す。 図１３−１の続き。 図１４は、ハイブリドーマ細胞株１９３／ＡＤ３由来のｓｃＦｖのＤＮＡおよび誘導タンパク質の配列を示す（配列番号８１および配列番号８２）。 図１４−１の続き。 図１５は、ハイブリドーマ細胞株１９３／Ｋ２由来のｓｃＦｖのＤＮＡおよび誘導タンパク質配列を示す（配列番号８３および配列番号８４）。 図１５−１の続き。 図１６は、ハイブリドーマ細胞株１９８／ＡＢ２（１９８／Ｂ１のサブクローン）由来のｓｃＦｖのＤＮＡおよび誘導タンパク質配列を示す（配列番号８５および配列番号８６）。 図１６−１の続き。 図１７は、細胞株１９８／Ａ１由来のｓｃＦｖのＤＮＡおよび推論されるタンパク質配列を示す（配列番号８７および配列番号８８）。 図１７−１の続き。 図１８は、２．９ｎＭのヒトＦＩＸａの存在下における、ペプチドＡ１／３の色素形成ＦＶＩＩＩ様活性を示す。ペプチドＡ１／３のスクランブルバージョンペプチドＡ１／５は、いずれのＦＸａ生成も起こさない。 図１９は、ヒトＦＩＸａの存在に対する、ペプチドＡ１／３の色素形成ＦＶＩＩＩ様活性の依存性を示す。ヒトＦＩＸａの非存在下において、ペプチドＡ１／３は、いずれのＦＸａの生成も起こさない。緩衝液コントロールである単体のイミダゾール緩衝液は、ＩＺと表される。 図２０は、Ａｒｇ残基のキラリティーが、ペプチドＡ１／３−ｒｄおよびＡ１／３−Ｒｄ−ｓｒｍｂの色素形成活性に対して有意な役割を果たさないことを示す。 図２１は、反応混合物への２．４μＭのペプチドＢ１／７の添加が、Ｆｘａの測定可能な生成を引き起こしたことを示す。 図２２は、ＦＸ特異的インヒビターの添加が、反応に有意な減少を引き起こすことを示す。ＦＩＸａが全く存在せず、かつＦＸが反応混合物に添加される場合、ＦＸａは合成されなかった。 図２３は、ベクターｐＢａｘ−ＩｇＧ１を示す。 図２４は、抗体１９８／Ｂ１（図２４Ａ）およびＩｇＭ抗体１９８／ＡＦ１（図２４Ｂ）の存在下における、ＦＩＸａのアミド分解活性の増加を示す。 図２５は、２．３ｎＭのヒトＦＩＸａの存在下における抗体１９８／Ａ１ Ｆａｂフラグメントの色素形成ＦＶＩＩＩ様活性を示す。ポジティブコントロールとして、インタクトな抗体１９８／Ａ１および７．５ｐＭのＦＶＩＩＩを使用した。緩衝液コントロール（ＩＺ）を、ネガティブコントロールとして用いた。 図２６は、１９８ＡＢ２ ｓｃＦｖ−アルカリホスファターゼ融合タンパク質のヌクレオチド配列およびアミノ酸配列を示す（発現ベクターｐＤＡＰ２−１９８ＡＢ２＃１００のＯＲＦ、（配列番号８９および配列番号９０）。抗体１９８／ＡＢ２（１９８／ＡＢ２は、１９８／Ｂ１の同一サブクローンである）のＶＬおよびＶＨドメインに対する遺伝子は、実施例１０に記載されるように、対応するハイブリドーマ細胞に由来した。ＶＨ遺伝子のＰＣＲ産物は、消化ＳｆｉＩ−ＡｓｃＩであり、そしてＶＬ遺伝子のＰＣＲ産物は消化ＡｓｃＩおよびＮｏｔＩであった。ＶＨ遺伝子およびＶＬ遺伝子は、ＡｓｃＩ部位を介して結合し、ＳｆｉＩ−ＮｏｔＩ消化ベクターｐＤＡＰ２に挿入された（Ｋｅｒｓｃｈｂａｕｍｅｒ Ｒ．Ｊ．ら、Ｉｍｍｕｎｏｔｅｃｈｎｏｌｏｇｙ ２、１４５−１５０、１９９６；ＧｅｎｅＢａｎｋ 受託番号：Ｕ３５３１６）。ＰｅｌＢリーダー：Ｅｒｗｉｎｉａ ｃａｒｏｔｏｖｏｒａペクテートリアーゼＢのリーダー配列、Ｈｉｓタグ、金属イオンクロマトグラフィーのためのヒスチジン（Ｈｉｓｔｉｄｉｎｅｅ）タグ。 図２６−１の続き。 図２６−２の続き。 図２６−３の続き。 図２６−４の続き。 図２７は、２．３ｎＭのヒトＦＩＸａの存在下における、２つの抗体１９８／Ｂ１（サブクローンＡＢ２）ｓｃＦｖフラグメントアルカリホスファターゼ融合タンパク質（１９８ＡＢ２＃１および１９８ＡＢ２＃１００）の色素形成ＦＶＩＩＩ様活性を示す。ポジティブコントロールとして、７．５ｐＭのＦＶＩＩＩを使用した。 図２８は、ｐＺｉｐ１９８ＡＢ２＃１０２のアミノ酸およびヌクレオチド配列を示す（配列番号９１および配列番号９２）。 図２８−１の続き。 図２９は、ｍＡＢ＃８８６０ｓｃＦｖアルカリホスファターゼ融合タンパク質（ベクターｐＤＡＰ２−８８６０ｓｃＦｖ＃１１）のヌクレオチド配列およびアミノ酸配列を示す（配列番号９３および９４）。抗体＃８８６０のＶＬドメインおよびＶＨドメインに対する遺伝子は、実施例１０に記載されるように、対応するハイブリドーマ細胞から誘導された。ＶＨ遺伝子のＰＣＲ産物は、消化ＳｆｉＩ−ＡｓｃＩであり、そしてＶＬ遺伝子のＰＣＲ産物は、消化ＡｓｃＩおよびＮｏｔＩであった。ＶＨ遺伝子およびＶＬ遺伝子は、ＡｓｃＩ部位を介して結合し、そしてＳｆｉＩ−ＮｏｔＩ消化ベクターｐＤＡＰ２に挿入された（Ｋｅｒｓｃｈｂａｕｍｅｒ Ｒ．Ｊ．ら、Ｉｍｍｕｎｏｔｅｃｈｎｏｌｏｇｙ ２、１４５−１５０、１９９６；ＧｅｎｅＢａｎｋ 受託番号：Ｕ３５３１６）。 図２９−１の続き。 図２９−２の続き。 図２９−３の続き。 図２９−４の続き。 図３０は、ｍＡＢ＃８８６０ ｓｃＦｖ−ロイシンジッパー融合タンパク質のヌクレオチド配列およびアミノ酸配列を示す（ミニ抗体（ｍｉｎｉａｎｔｉｂｏｄｙ）；ベクターｐ８８６０−Ｚｉｐ＃１．２（配列番号９５および配列番号９６）。ｓｃＦｖフラグメントの遺伝子は、ｍＡＢ＃８８６０から誘導され、そしてベクターｐＤＡＰ２−８８６０ｓｃＦｖ＃１１からＳｆｉＩ−ＮｏｔＩ消化プラスミドｐＺｉｐ１へスワップされた（Ｋｅｒｓｃｈｂａｕｍｅｒ Ｒ．Ｊ．ら、Ａｎａｌｙｔｉｃａｌ Ｂｉｏｃｈｅｍｉｓｔｒｙ ２４９、２１９−２２７、１９９７；ＧｅｎｅＢａｎｋ 受託番号：Ｕ９４９５１）。 図３０−１の続き。 図３０−２の続き。 図３１は、２．３ｎＭのヒトＦＩＸａの存在下における、１９８／Ｂ１（サブクローンＡＢ２）ミニ抗体１９８ＡＢ−Ｚｉｐ＃１０２のの色素形成ＦＶＩＩＩ様活性を示す。ポジティブコントロールとして、４．８ｐＭのＦＶＩＩＩが用いられ、一方、ネガティブコントロールとして、無関係のミニ抗体（８８６０−Ｚｉｐ＃１．２）および単体反応緩衝液（ＩＺ）が利用された。 図３２は、プラスミドｐＭｙｃＨｉｓ６の概略図を示す。 図３３は、ベクターｐＣＯＣＫと異なるプラスミドｐＭｙｃＨｉｓ６の一部分のヌクレオチド配列およびアミノ酸配列を示す（配列番号９７および配列番号９８）。ベクターｐＭｙｃＨｉｓ６は、ＮｏｔＩおよびＥｃｏＲＩによって、ベクターｐＣＯＣＫ（Ｅｎｇｅｌｈａｒｄｔら、１９９４、Ｂｉｏｔｅｃｈｎｉｑｕｅｓ、１７：４４−４６）を切断し、そしてオリゴヌクレオチド：ｍｙｃｈｉｓ６−ｃｏ：５’ｇｇｃｃｇｃａｇａａｃａａａａａｃｔｃａｔｃｔｃａｇａａｇａｇｇａｔｃｔｇａａｔｇｇｇｇｃｇｇｃａｃａｔｃａｃｃａｔｃａｃｃａｔｃａｃｔａａｔａａｇ３’（配列番号７９）およびｍｙｃｃｈｉｓ−ｉｃ：５’ａａｔｔｃｔｔａｔｔａｇｔｇａｔｇｇｔｇａｔｇｇｔｇａｔｇｔｇｃｃｇｃｃｃｃａｔｔｃａｇａｔｃｃｔｃｔｔｃｔｇａｇａｔｇａｇｔｔｔｔｔｇｔｔｃｔｇｃ（配列番号８０）を挿入することによって構築された。 図３４は、（ｃ−ｍｙｃ−タグおよびＨｉｓ６−タグに結合した）１９８ＡＢ２ ｓｃＦｖ：発現ベクターｐＭｙｃＨｉｓ６−１９８ＡＢ２＃１０２のＯＲＦのヌクレオチド配列およびアミノ酸配列を示す。ベクターｐＭｙｃＨｉｓ６は、ベクターｐＣＯＣＫ（Ｅｎｇｅｌｈａｒｄｔ Ｏ．ら、ＢｉｏＴｅｃｈｎｉｑｕｅｓ １７、４４−４６、１９９４）をＮｏｔＩ−ＥｃｏＲＩで切断し、そして以下のアニーリングしたオリゴヌクレオチド：（５’−ＧＧＣＣＧＣＡＧＡＡＣＡＡＡＡＡＣＴＣＡＴＣＴＣＡＧＡＡＧＡＧＧＡＴＣＴＧＡＡＴＧＧＧＧＣＧＧＣＡＣＡＴＣＡＣＣＡＴＣＡＣＣＡＴＣＡＣＴＡＡＴＡＡＧ−３’（配列番号１０３）、および５’−ＴＴＡＴＴＡＧＴＧＡＴＧＧＴＧＡＴＧＧＴＧＡＴＧＴＧＣＣＧＣＣＣＣＡＴＴＣＡＧＡＴＣＣＴＣＴＴＣＴＧＡＧＡＴＧＡＧＴＴＴＴＴＧＴＴＣＴＧＣ−３’（配列番号１０４））を挿入することによって構築された。その結果得られたベクター（ｐＭｙｃＨｉｓ６と命名される）は、切断されたＳｆｉＩ−ＮｏｔＩであり、そしてｓｃＦｖ１９８ＡＢ２の遺伝子は、このベクターへ、ｐＤＡＰ２−１９８ＡＢ２＃１００ベクターからスワップされた。 図３４−１の続き。 図３５は、ｃ−ｍｙｃ−タグおよびＨｉｓ６−タグに結合したｍＡＢ＃８８６０ｓｃＦｖのヌクレオチド配列およびアミノ酸配列を示す（ベクターｐ８８６０−Ｍ／Ｈ＃４ｃ、配列番号１０１および配列番号１０２）。プラスミドｐＭｙｃＨｉｓ６は、ＳｆｉＩおよびＮｏｔＩによって切断され、そしてｓｃＦｖ ８８６０＃１１タンパク質をコードするＤＮＡ配列は、ｐＤＡＰ２−８８６０ｓｃＦｖ＃１１（図２９を参照）から挿入され、プラスミドｐ８８６０−Ｍ／Ｈ＃４を与えた。 図３５−１の続き。 図３６は、２．３ｎＭのヒトＦＩＸａの存在下における、１９８／Ｂ１（サブクローンＡＢ２）ｓｃＦｖフラグメント（ＭｙｃＨｉｓ−１９８ＡＢ２＃１０２）の色素形成ＦＶＩＩＩ様活性を示す。ポジティブコントロールとして、４．８ｐＭのＦＶＩＩＩを使用し、一方、ネガティブコントロールとして、無関係のｓｃＦｖ（８８６０−Ｍ／Ｈ＃４ｃ）および単体の反応緩衝液（ＩＺ）が利用された。

Claims (1)

1. 第ＩＸ因子または第ＩＸａ因子に対する抗体または抗体誘導体であって、凝血促進活性を増大させる、抗体または抗体誘導体。

Images