HU226015B1 - Compositions and preparations comprising viruses - Google Patents

Compositions and preparations comprising viruses Download PDF

Info

Publication number
HU226015B1
HU226015B1 HU0100670A HUP0100670A HU226015B1 HU 226015 B1 HU226015 B1 HU 226015B1 HU 0100670 A HU0100670 A HU 0100670A HU P0100670 A HUP0100670 A HU P0100670A HU 226015 B1 HU226015 B1 HU 226015B1
Authority
HU
Hungary
Prior art keywords
virus
composition according
concentration
adenovirus
preparation
Prior art date
Application number
HU0100670A
Other languages
English (en)
Inventor
Andreas Frei
Henry K H Kwan
Varda E Sandweiss
Gary J Vellekamp
Pui-Ho Yuen
Laureano Ljr Bondoc
Frederick William Porter Iv
John Chu-Tay Tang
Peter Ihnat
Original Assignee
Schering Corp
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Schering Corp filed Critical Schering Corp
Publication of HUP0100670A2 publication Critical patent/HUP0100670A2/hu
Publication of HUP0100670A3 publication Critical patent/HUP0100670A3/hu
Publication of HU226015B1 publication Critical patent/HU226015B1/hu

Links

Classifications

    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12NMICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
    • C12N7/00Viruses; Bacteriophages; Compositions thereof; Preparation or purification thereof
    • AHUMAN NECESSITIES
    • A61MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61PSPECIFIC THERAPEUTIC ACTIVITY OF CHEMICAL COMPOUNDS OR MEDICINAL PREPARATIONS
    • A61P31/00Antiinfectives, i.e. antibiotics, antiseptics, chemotherapeutics
    • A61P31/12Antivirals
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12NMICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
    • C12N15/00Mutation or genetic engineering; DNA or RNA concerning genetic engineering, vectors, e.g. plasmids, or their isolation, preparation or purification; Use of hosts therefor
    • C12N15/09Recombinant DNA-technology
    • C12N15/63Introduction of foreign genetic material using vectors; Vectors; Use of hosts therefor; Regulation of expression
    • C12N15/79Vectors or expression systems specially adapted for eukaryotic hosts
    • C12N15/85Vectors or expression systems specially adapted for eukaryotic hosts for animal cells
    • C12N15/86Viral vectors
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12NMICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
    • C12N2710/00MICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA dsDNA viruses
    • C12N2710/00011Details
    • C12N2710/10011Adenoviridae
    • C12N2710/10311Mastadenovirus, e.g. human or simian adenoviruses
    • C12N2710/10341Use of virus, viral particle or viral elements as a vector
    • C12N2710/10343Use of virus, viral particle or viral elements as a vector viral genome or elements thereof as genetic vector
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12NMICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
    • C12N2710/00MICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA dsDNA viruses
    • C12N2710/00011Details
    • C12N2710/10011Adenoviridae
    • C12N2710/10311Mastadenovirus, e.g. human or simian adenoviruses
    • C12N2710/10351Methods of production or purification of viral material

Description

A találmány tárgyát vírusokat, különösen vírusvektorokat tartalmazó készítmények képezik, amelyek szignifikánsan javított stabilitással rendelkeznek. A találmány szerinti készítmények vírusok tárolás alatti stabilitásának fenntartására alkalmasak, és a találmány szerinti, vírust tartalmazó készítmények különösen hasznosak terápiás alkalmazásokban, például génterápiában. A találmány továbbá víruspreparátumok töményítésére és tisztítására szolgáló új eljárásokat is tárgyal.
A vírusoknak egyre nagyobb jelentősége van terápiás alkalmazásokban, például vakcinációkban és génterápiában, és szükség van olyan stabil, vírustartalmú készítmények kifejlesztésére és előállítására, amelyeket könnyen lehet tárolni és szállítani, miközben még elegendően biztonságosak és hatékonyak maradnak. A vírusvektorok elterjedt génterápiás alkalmazását véve, különösen fontos olyan formák kifejlesztése és előállítása, amelyek stabilan képesek tartósítani élő, rekombináns vírusokat, ha terápiás transzgéneket hordoznak.
Továbbá jelentős igény van olyan formákra, amelyek -80 °C felett képesek víruspreparátumokat stabilizálni, hosszabb időtartamra. Vírustartalmú készítményeket normálisan -80 °C-on kell tárolni, és nem lehet standard hűtési körülmények között (például 2 °C és 8 °C között, vagy magasabb hőmérsékleten) tárolni számottevő ideig. Ez a korlátozás komoly akadályt jelent a feldolgozásban, kiszerelésben és széles körű klinikai alkalmazásban.
Szükség van olyan vírustartalmú készítmények kifejlesztésére is, amelyeket körülbelül 7 és körülbelül 8,5 pH-tartományban lehessen tartani annak ellenére, hogy hűtve vannak, és viszontagságos körülmények között vannak, például fagyasztáson/felolvasztáson, különösen lassú fagyasztáson/felolvasztáson esnek át, amely nagy mennyiségű anyag termelésekor, kezelésekor és kiszerelésekor fordulhat elő. A pH adott értéken tartása fontos víruspreparátumok esetén, mivel 7,0 alatti és 8,5 feletti pH-η az élő vírusrészecskék sérülékennyé válnak életképességük tekintetében fiziológiai és biológiai instabilitás következtében.
További problémákat jelent a víruskoncentrációk növelése. Különösen a magas víruskoncentráció járul hozzá szignifikánsan a vírusinstabilitáshoz. Viszont egyre magasabb koncentrációjú vírusokra és vírusvektorokra van szükség terápiás alkalmazásra. Ennélfogva jelentős igény van olyan formák kifejlesztésére, amelyek vírust viszonylag magas koncentrációkban stabilizálnak, különösen a fentebb említett viszontagságos körülmények között. És továbbá különös igény van meglévő víruspreparátumok koncentrálására szolgáló, új eljárások kidolgozására, magasabb koncentrációjú, stabil preparátumok előállítása céljából. A magasabb víruskoncentrációkkal társult instabilitási problémák szignifikánsan súlyosbodnak, ha meglévő víruspreparátumot próbálunk töményíteni. Ez részben további mechanikai nyíróerőknek tulajdonítható, amelyek meglévő víruspreparátum koncentrációjának növelésekor lépnek fel. Ha találnánk egy módszert víruspreparátum töményítésére a vírus stabilitásának lényegi károsodása nélkül, akkor bármilyen kívánt koncentrációjú klinikai dózist könnyen elő lehetne állítani (még akkor is, ha alacsony koncentrációjú anyagból indulunk ki), és ami jelentős, hogy lehetővé válna olyan vírustöményítés, amelyben elíminálva lenne a problematikus szűk keresztmetszet és más méretnövelési problémák a tisztítási eljárás alatt, szignifikánsan nagyobb hatékonyságot lehetővé téve a különböző feldolgozási lépések alatt, például méretkizárásra alapuló kromatográfiában.
Tehát van igény olyan anyagokra és módszerekre, amelyekkel megoldhatók a fenti célkitűzések.
A találmány készítményt biztosít adenovírusok stabilitásának fenntartására, amely készítményben az adenovírus 20-200 mg/ml glicerint, szacharózt és egy, a pH-t 2 °C-tól 27 °C-ig terjedő hőmérséklet-tartományban 7 és 8,5 között tartó pufferrendszert tartalmazó formulációban van, ahol a pufferrendszer 0,5-10 mg/ml koncentrációban mononátrium-dihidrogén-foszfát-dihidrátot és 0,5-10 mg/ml koncentrációban trometamint tartalmaz.
A leírásban tárgyalunk továbbá új eljárásokat meglévő víruspreparátumok töményítésére, amelyek lehetővé teszik klinikai dózisok könnyű kiválasztását és előállítását tág, kívánt koncentrációtartományban. Egy víruspreparátum töményítésére szolgáló előnyös eljárás tartalmazza:
(a) egy polihidroxi-szénhidrogénnek egy víruspreparátumhoz körülbelül 20% vagy magasabb polihidroxi-szénhidrogén-végkoncentrációig való hozzáadását; és (b) a víruspreparátum olyan szűrési eljárásnak való alávetését, amelyben a vírus koncentrációját úgy növeljük, hogy nyomást alkalmazunk a preparátumra, így az oldószer eltávozik a víruspreparátumból egy szűrőn keresztül, miközben a vírus visszatartódik.
A leírásban tárgyalunk továbbá egy olyan eljárást is víruspreparátum töményítésére, amelyben:
(a) centrifugálunk egy készítményt, amely egy első réteget tartalmaz, amely polihidroxi-szénhidrogént tartalmaz 35 térf.% és 80 térf.% közötti koncentrációban, az első rétegre rá van rétegezve egy második réteg, amely polihidroxi-szénhidrogént tartalmaz 5 térf.% és 30 térf.% közötti koncentrációban, a második rétegre rá van rétegezve egy harmadik réteg, amely vírust tartalmaz; és (b) kinyerjük a vírust az első rétegből.
Továbbá azt találtuk, hogy a víruskoncentráció növelésére szolgáló új eljárás további előnye, hogy fokozza a további feldolgozás hatékonyságát (például csökkenti vagy eliminálja a problematikus szűk keresztmetszetet az azt követő tisztítás alatt, szignifikánsan nagyobb hatékonyságot lehetővé téve a különböző feldolgozási lépések alatt, például méretkizárásra alapuló kromatográfiában). A víruspreparátumok töményítésére szolgáló eljárásban van ezt követően még egy további tisztítási lépés (például méretkizárásra alapuló kromatográfia). Ebben a vonatkozásban az eljárás különösen hasznos akkor, ha méretkizárásra alapuló kromatográfiát végzünk ioncserélő kromatográfia után, és
HU 226 015 Β1 a víruspreparátumot az ioncserélő kromatográfia után, de a méretkizárásra alapuló kromatográfia előtt töményítjük. Az anioncserélő kromatográfiából származó vírusfrakciók például tipikusan nagy mennyiségű sót és valószínűleg más, olyan szennyeződést tartalmaznak, amelyek tovább veszélyeztetik a vírus stabilitását a töményítési eljárások alatt. A leírásban tárgyalunk továbbá egy olyan eljárást víruspreparátum tisztítására, amelyben:
(a) a víruspreparátumot anioncserélő kromatográfiának vetjük alá, amelyben a vírust víruspreparátumtermékként eluáljuk egy anioncserélő kromatográfiás közegről;
(b) az (a) lépésből származó víruspreparátum-termékhez hozzáadunk polihidroxi-szénhidrogént úgy, hogy a preparátumban lévő polihidroxi-szénhidrogén végkoncentrációja elérjen körülbelül 25%-ot vagy magasabb értéket; és (c) növeljük a (b) lépésből származó víruspreparátum-termékben lévő vírus koncentrációját úgy, hogy nyomást alkalmazunk a preparátumon, így az oldószert eltávolítjuk a víruspreparátumból egy szűrőn keresztül, miközben a vírust visszatartjuk; és (d) a (c) lépésből származó, töményített víruspreparátum-terméket egy vagy több, további feldolgozási lépésnek vetjük alá.
A leírásban tárgyalunk a fenti eljárások alkalmazásával töményített és/vagy tisztított víruspreparátumokat is.
A fentebb leírtak szerint, a találmány tárgyát új, vírustartalmú készítmények képezik, valamint új eljárások vírustartalmú készítmények töményítésére és tisztítására.
A készítmények tekintetében, kifejlesztettünk egy új, pufferolt formát, amely képes víruspreparátumokat fokozott stabilitással tartósítani. A forma különösen jóval -80 °C feletti hőmérsékleteken képes stabilizálni víruspreparátumokat. Még fontosabb, hogy a találmány szerinti készítmények stabilak tipikus hűtési hőmérsékleteken, például 2 °C és 8 °C között, vagy magasabb hőmérsékleten, számottevő ideig, előnyösen néhány hónapig vagy tovább. Ez jelentős előny, mivel a fentebb említettek szerint, klinikai igények kielégítése céljából nem praktikus víruspreparátumokat -80 °C-on fagyasztani tárolás és szállítás alatt.
A találmány szerinti készítmények fontos jellemzője, hogy egy polihidroxi-szénhidrogént, nevezetesen glicerint tartalmaznak. A leírásban „polihidroxi-szénhidrogén” elágazó vagy egyenes láncú, vagy ciklikus vegyületet jelent, melyek 2 vagy több (előnyösen 2 és 6 közötti, előnyösebben 2 és 4 közötti) hidroxicsoporttal vannak szubsztituálva. A polihidroxi-szénhidrogének polihidroxiszubsztituált alkilvegyületek (elágazóak vagy nem elágazóak), előnyösen 2-7 szénatomosak, ilyen például glicerin, szorbit és polipropanol. A lentebb bemutatott adatok alapján azt találtuk, hogy a glicerin meglepően nagymértékű stabilitást lesz lehetővé hosszabb ideig, még standard hűtési körülmények között is.
A találmány szerinti készítményekben alkalmazott glicerin hatásos mennyisége akkora mennyiség, amely elegendő a vírus stabilizálásához a találmány szerinti formában, anélkül hogy károsan befolyásolná a vírus hatékonyságát későbbi alkalmazásban, különösen olyan esetekben, amikor a vírus génterápiában alkalmazott transzgént tartalmaz. A jelen lévő glicerin végkoncentrációja körülbelül 20-200 mg/ml. Szűkebben vett koncentrációtartomány lehet 80-120 mg/ml. Egynél több polihidroxi-szénhidrogént is lehet alkalmazni. A polihidroxi-szénhidrogének adott esetben tartalmazhatnak egy aldehidcsoportot. A polihidroxi-szénhidrogén lehet egy diszacharid, például szacharóz. A glicerin nem tartalmaz aldehidcsoportot, a készítmény azonban még tartalmazhat egy diszacharidot, például szacharózt stabilizátorként és tonicitásbeállító ágensként. A találmány szerinti készítmény tartalmaz glicerint és hozzáadott stabilizátorként és tonicitásbeállító ágensként szacharózt. A szacharóz előnyösen 5-25 mg/ml, előnyösebben 20 mg/ml tartományban van jelen.
A találmány előnyös megvalósítási módja szerint, a találmány szerinti készítményben gyógyászatilag elfogadható, divalens fémsó-stabilizátorokat, például magnéziumsókat, cinksókat és kalciumsókat alkalmazunk. A só előnyösen kloridsó vagy magnéziumsó, a magnéziumsó különösen előnyös. A só (például magnéziumsó) előnyösen körülbelül 0,1 és 1 mg/ml közötti koncentrációban van jelen, előnyösebben körülbelül 0,4 mg/ml koncentrációban van jelen.
A találmány előnyös megvalósítási módja szerint gyógyászatilag elfogadható, monovalens fémsó-stabilizátorokat, például kálium-, nátrium-, lítium- vagy céziumsókat alkalmazhatunk, adott esetben választható stabilizátorként. A só előnyösen körülbelül 0,6 és 10,0 mg/ml közötti koncentrációban jelen lévő nátriumklorid, előnyösebben körülbelül 5,8 mg/ml koncentrációban van jelen.
A készítmény stabilizálásán kívül, a nátrium-klorid szuppresszálhatja fermentációs melléktermékek megjelenésének sebességét és mértékét, gyógyászatilag elegánsabb tálalást eredményezve, amely csökkentheti a fehérjeaggregátumoknak tulajdonítható antigenikus potenciált. Nátrium-klorid hozzáadása nem befolyásolja a forma pH-ját.
A találmány szerinti készítmény képes a pH-t körülbelül 7 és körülbelül 8,5 pH-tartományban tartani hosszabb ideig, még akkor is, ha viszontagságos körülményeknek vetjük alá azokat, például hűtésnek és fagyasztásnak/felolvasztásnak. Továbbá a készítmények stabilak maradhatnak, és megtarthatják a kívánt pH-tartományt még akkor is, ha viszonylag lassú fagyasztásnak/felolvasztásnak vetjük alá azokat, amely nagy mennyiségű anyag termelésével, kiszerelésével és kezelésével kapcsolatban fordulhat elő. A fentebb említettek szerint, a pH adott értéken tartása fontos víruspreparátumok esetén, mivel 7,0 alatti és 8,5 feletti pH-η az élő vírusrészecskék instabilakká válhatnak és bomolhatnak. Az adott víruskészítményekben nehéz a vírusokat stabilizálni és tartósítani.
A pH viszontagságos körülmények közötti fenntartása céljából a találmány szerinti megoldásban olyan
HU 226 015 Β1 pufferrendszert alkalmazunk, amely képes optimális pH-t körülbelül 7,0 és körülbelül 8,5 közötti pH-tartományban fenntartani annak ellenére, hogy hűtve, -80 ’C és 27 ’C között vannak tárolva, és annak ellenére, hogy fagyasztás/felolvasztás hatásának vannak kitéve. Mivel a pH változhat a hőmérséklet függvényében, a találmány szerinti pH-tartományokat lentebb konkrétabban szemléltetjük, konkrét hőmérséklet-tartományokra vonatkoztatva. Például hűtési hőmérsékleteken (például körülbelül 2 °C és 8 °C között) az előnyös pH-tartomány körülbelül 7,7 és körülbelül 8,3 között van, előnyösebben körülbelül 7,9 és körülbelül 8,2 között van. Szobahőmérsékleten (például körülbelül 20 ’C és 27 °C között, előnyösen 22 °C és 25 °C között) az előnyös pH-tartomány körülbelül 7,3 és körülbelül 8,2 között van, előnyösebben körülbelül 7,4 és körülbelül 7,9 között van.
A találmány szerinti készítmény olyan pufferrendszert tartalmaz, amelyben nátrium-dihidrogén-foszfátdihidrát van körülbelül 0,5-10 mg/ml koncentrációban, és trometamint tartalmaz körülbelül 0,5-10 mg/ml koncentrációban. (A trometamin [trisz(hidroxi-metil)-amino-metán] TRIS-ként vagy „Trizma”-ként is ismeretes, beszerezhető a Sigma Chemical Co. cégtől.) Azonban más pufferrendszereket is tárgyalunk. Például dinátrium-hidrogén-foszfát-dihidrátot is lehet alkalmazni, ha a tris-puffer savas formájával kapcsoljuk össze. A találmány különösen előnyös megvalósítási módja szerint, a pufferrendszer mononátrium-dihidrogén-foszfát-dihidrátot tartalmaz körülbelül 1,7 mg/ml koncentrációban, és trometamint körülbelül 1,7 mg/ml koncentrációban, és képes a forma optimális pH-t körülbelül 7,3 és körülbelül 7,9 közötti pH-tartományban fenntartani 25 ’C-on.
A találmány szerinti forma további előnye, hogy képes nagy koncentrációban lévő vírust stabilizálni a fentebb említett, viszontagságos körülmények között (például hűtési hőmérsékleteken és fagyasztási/felolvasztási folyamat alatt). A találmány szerinti forma különleges előnye, hogy képes vírus stabilitását fenntartani egészen 1*1013 részecske/ml koncentrációig terjedő tartományban. A találmány szerint alkalmazott előnyös víruskoncentrációk 1 * 109 és 1*1013 részecske/ml között vannak, előnyösebben 1*1012 részecske/ml koncentrációig terjedő tartományban vannak, például 1*109 (vagy 1*10) és 1 *1012 között vannak.
A leírásban használt „hígítószer” kifejezésen oldószert (például vizet, előnyösen steril vizet) vagy oldószerkeveréket és más adalék anyagokat értünk, például további oldószereket, további stabilizátorokat, további puffereket és/vagy más olyan anyagokat, amelyek nincsenek káros hatással a forma biztonságára, hatékonyságára és stabilitására. Hígítószerek, stabilizátorok, pufferek és hasonlók vonatkozásában lásd például „Remington's s Pharmaceutical Science” című kiadványt, 15. kiadás, Mack Publishing Company, Easton, Pennsylvania.
A találmány szerinti készítmény adott esetben tartalmazhat felületaktív anyagot, előnyösen nemionos detergenst, például poli(oxi-etilén)-zsírsav-észtert [például poli(oxi-etilén)-szorbitánokat, például Polysorbate 20-at, Polysorbate 40-et, Polysorbate 60-at vagy Polysorbate 80-at, melyeket az ICI Americas, Inc. cégtől szerezhetünk be, Wilmington, Delaware, vagy Tween 20-at, Tween 40-et, Tween 60-at vagy Tween 80-at, melyeket a Sigma cégtől szerezhetünk be, St. Louis, Mo]. A nemionos detergens előnyösen poli(oxi-etilén)zsírsav-észter, és a poli(oxi-etilén)-zsirsav-észter előnyösen Polysorbate 80, amely stabilizátorként hat a találmány szerinti készítményben. A nemionos detergens koncentrációja előnyösen 0,03 és 0,3 mg/ml közötti tartományban van; előnyösebben 0,15 mg/ml.
A találmány szerinti készítmények tartalmazhatnak továbbá egy vagy több „célba juttatást fokozó ágenst”. „Célba juttatást fokozó ágensen” értünk bármilyen olyan ágenst, amely fokozza terápiás gén, például tumorszupresszorgén célba juttatását rákos szövethez vagy szervhez. Ilyen célba juttatást fokozó ágensek lehetnek például detergensek, alkoholok, glikolok, felületaktív anyagok, epesavak sói, heparinantagonisták, ciklooxigenázinhibitorok, hipertóniás sóoldatok és acetátok.
Detergensek (mivel a kifejezést a leírásban alkalmazzuk) lehetnek például anionos, kationos, zwitterionos és nemionos detergensek. Detergens lehet például taurokolát, dezoxikolát, taurodezoxikolát, cetil-piridium, benzalkonium-klorid, ZWITTERGENT® 3-14 detergens, CHAPS [3-(3-kolamido-propil)-dimetil-ammónioj1-propánszulfonát-hidrát, Aldrich), Big CHAP, dezoxiBig CHAP, TRITON®-X-100 detergens, C12E8, oktilβ-D-glükopiranozid, PLURONIC®-F68 detergens, TWEEN®-20 detergens és TWEEN®-80 detergens (CALBIOCHEM® Biochemicals).
Célba juttatást fokozó ágensek alkalmazását részletesen ismertetik az alábbi, párhuzamosan benyújtott szabadalmi iratokban: U.S.S.N. 08/889.335 számú szabadalmi irat (benyújtva 1997. július 8-án), és a WO 97/25072 számú nemzetközi közzétételi irat (1997. július 17.), és az U.S.S.N. 09/112.074 számú szabadalmi irat (benyújtva 1998. július 8.), PCT/US 98/14241 számú szabadalmi irat. Továbbá kalpaininhibitorok alkalmazását vírusvektorokkal, transzdukciós hatékonyság növelésére leírják az U.S.S.N. 09/172.685 és 60/104321 számú (benyújtva 1998. október 15.) szabadalmi iratokban.
Vírusok széles körét tárgyaljuk a leírásban, például adenovírusokat, himlővírusokat iridovírusokat, herpeszvírusokat, papovavírusokat, paramyxovírusokat, ortomyxovírusokat, retrovírusokat, adenoasszociált vírust, tehénhimlővírust, rotavírust stb. [lásd például Anderson, Science 256, 808-813 (1992)]. A találmányban alkalmazott adenovírusok, előnyösen rekombináns vírusok, de lehetnek klinikai izolátumok, gyengített vakcinatörzsek stb. Tehát, a találmány szerinti készítményekben alkalmazható rekombináns adenovírus lehet például A/C/N/53, amelyet a WO 95/11984 számú nemzetközi közrebocsátási iratban ismertetnek.
A találmány szerinti forma különösen jól megfelel rekombináns vírus, például élő rekombináns adenovírus (vagy „vírusvektor) stabilizálására, génterápiában való terápiás alkalmazásra. A találmány szerint alkal4
HU 226 015 Β1 mázott vírus tartalmazhat például tumorszupresszorgént, például vad típusú p53-gént vagy Rb-gént (például p110RB-t vagy p56RB-t), és transzgéneket, például vad típusú p53-at vírusvektorba inszertálva tartalmazó, találmány szerinti készítményt rák kezelésre szolgáló gyógyászati készítményként lehet alkalmazni.
Ebben a vonatkozásban, a találmány szerinti forma figyelemre méltóan képes élő vírus életképességét fenntartani, különösen olyan vírusvektorét, amelybe transzgén, például p53-at kódoló nukleotidszekvencia van inszertálva. Ez a jelenség lehetővé teszi, hogy a vírus célsejteket fertőzőképessége fennmaradjon, így az inszertált transzgén által kódolt terápiás hatású fehérje kielégítő mértékben termelődjön.
Konkrétan p53 és alkalmazásainak vonatkozásában megjegyezzük, hogy a p53-gén mutációja a legelterjedtebb genetikai változás humán rákos esetekben [Bartek, Oncogene 6, 1699-1703 (1991); Hollstein, Science 253, 49-53 (1991)]. Vad típusú p53 bevitele endogén, vad típusú p53-fehérjét nem tartalmazó emlősráksejtekbe szuppresszálja az ilyen sejtek neopláziás fenotípusát (lásd például az USP 5.532.220 számú szabadalmi iratot).
Az alábbi példákban vírusként vad típusú p53-gént tartalmazó, élő rekombináns adenovírust alkalmazunk. Ezekben a példákban konkrétan alkalmazott vírusvektor-konstrukciót „A/C/N/53”-ként jelöljük. Az A/C/N/53 (,ÁCN53-nak is jelöljük) különösen előnyös vírusvektorkonstrukció, melyet leírnak az USSN 08/328.673 számú, párhuzamosan benyújtott szabadalmi iratban (benyújtva 1994. október 25.) és a WO 95/11984 (1995. május 4.) számú szabadalmi iratban, melyeket a kitanítás részének tekintünk.
A találmány előnyös megvalósítási módja szerinti reprezentatív formát, amely Polysorbate 80-at tartalmaz, az alábbiakban mutatjuk be.
Reprezentatív forma
Hatóanyag A/C/N/53 1*109 és 1χ1013 részecske/ml között
Puffer mononátrium- dihidrogén- foszfát 0,5-10 mg/ml
trometamin 0,5-10 mg/ml
Stabilizáló/ tonizáló ágens szacharóz 5-25 mg/ml
Stabilizátorok glicerin 20-200 mg/ml
magnézium-klorid 0,1-1 mg/ml
Polysorbate 80 0,03-0,3 mg/ml
Oldószer víz q.s ad injekcióhoz 1 ml
(A készítményeket tipikusan 1 ml-es dózisokban tároljuk. „q.s. ad” jelentése a fenti formában az 1 ml teljes térfogat eléréséhez szükséges mennyiségű oldószer hozzáadását jelenti.)
A találmány négy, különösen előnyös megvalósítási módját ismertetjük az alábbiakban. (Polysorbate 80-at alkalmazunk az 1. és 2. példában, viszont a 3. és
4. példában nem.)
1. példa 2. példa
A/C/N/53 7,5x1011 7,5χ10
részecske/ml részecske/ml
Monobázikus
nátrium-foszfát-
dihidrát 1,7 mg/ml 1,7 mg/ml
Trometamin 1,7 mg/ml 1,7 mg/ml
Magnézium-klorid-
hexahidrát 0,4 mg/ml 0,4 mg/ml
Szacharóz 20 mg/ml 20 mg/ml
Polysorbate 80 0,15 mg/ml 0,15 mg/ml
Glicerin 100 mg/ml 100 mg/ml
Víz q.s. ad injekcióhoz 1 ml 1 ml
pH 7,4-7,8 7,4-7,8
3. példa 4. példa
A/C/N/53 7,5x1011 7,5x101°
részecske/ml részecske/ml
Monobázikus
nátrium-foszfát-
dihidrát 1,7 mg/ml 1,7 mg/ml
Trometamin 1,7 mg/ml 1,7 mg/ml
Magnézium-klorid-
hexahidrát 0,4 mg/ml 0,4 mg/ml
Szacharóz 20 mg/ml 20 mg/ml
Glicerin 100 mg/ml 100 mg/ml
Víz q.s. ad injekcióhoz 1 ml 1 ml
pH 7,4-7,8 7,3-7,8
Az alábbi alkotórészeket például az EM Industries, INC. cégtől (7 Skyline Drive, Hawthorne, New York 10532) lehet beszerezni: monobázikus nátrium-foszfátdihidrát, trometamin, magnézium-klorid-hexahidrát, szacharóz és glicerin. Polysorbate 80 beszerezhető például az ICI Americas, Inc. cégtől, Wilmington Delaware, 19897.
A találmány szerinti készítményeket elő lehet állítani a vírus tisztításával gélszűrő kromatográfiás oszlopon úgy, hogy kívánt koncentrációjú adalék anyagokkal (Polysorbate 80-at kivételével) kombináljuk a gélszűrő oszlopban. (A gélszűrés módszerének vonatkozásában, hivatkozásokat lásd például lentebb, az V. részben.) Azután, ha a vírus koncentrációját hígítani kívánjuk, vagy Polysorbate 80-at szeretnénk hozzáadni, a hígítószereket standardtechnikák szerint lehet előállítani. Egy szemléltető példát az alábbiakban bemutatunk.
Bemérünk és feloldunk monobázikus nátrium-foszfát-dihidrátot, trometamint, szacharózt, magnézium-klorid-hexahidrátot és glicerint, egy reakció-térfogat körülbelül 75%-ának megfelelő mennyiségű vízben, szobahőmérsékleten, rozsdamentes acélból készült, keverővei ellátott reakcióedényben. Az eredményül kapott folyadékot feltöltjük injekcióban alkalmazott vízzel végtérfogatra. Ellenőrizzük a pH-t. Kiszámítjuk az A/C/N/53ból („Drug Substance in Suspension) szükséges térfogatot (transzgénként vad típusú p53-at alkalmazunk), és az A/C/N/53-injekció elkészítéséhez szükséges hígítószer térfogatát. Ha a végső A/C/N/53-injekció Polysorbate 80-at tartalmaz, törzsoldatot készítünk, amelyben a Polysorbate 80 10%-os feleslegben van a hígítószerben. Bemérjük a számított mennyiségű A/C/N/53-et
HU 226 015 Β1 („Drug Substance in Suspension”) és hígítószert egy rozsdamentes tartályba és összekeverjük. Ha szükséges, bemérjük a Polysorbate 80 oldatot a teljes A/C/N/53-injekció-sarzs térfogatának 10%-ára alapozva, majd hozzáadjuk az összes hígítószert. Sterilen átszűrjük a szuszpenziót egy sterilizált (0,22 pm vagy ezzel ekvivalens) szűrőn át. Szűrés után teszteljük a szűrő integritását, összegyűjtjük és megfelelő térfogatú edényekbe töltjük a sterilizált szuszpenziót. Ledugózzuk és légmentesen lezárjuk az edényeket.
Az 1., 2., 3. és 4. példákból származó stabilitási adatokat az alábbiakban bemutatjuk a megfelelő 1., 2.,
3. és 4. táblázatban.
Az alábbi táblázatokban feltüntetett, antiproliferatív vizsgálati eljárás olyan biológiai vizsgálati eljárás, amelyben azt mérjük, hogy a termék milyen mértékben képes szuppresszálni ráksejteket, és általában Wills és munkatársai [Humán Gene Therapy 5, 1079-1088 (1994)] által alkalmazott eljárásokra épül. A felsorolt számok az aktivitást jelzik, míg a kontroll nem rendelkezik aktivitással.
A „plakkvizsgálati eljárásban tenyészetben lévő vírusrészecskék számát mérjük, vírusplakkok számának meghatározásával a hígítás függvényében, és általában Graham, F. L. és Prevec, L. által leírt [„Methods in Molecular Biology”, 7. kötet: „Gene Transfer and Expression Protocols”, szerk. E. J. Murray, Humana Press, Inc., Clifton, NJ, 109-128. old. (1991); lásd még Graham, F. L. et al., J. Gén. Virol. 36, 59-74 (1977)] eljárásokra épül.
A „FACS” vizsgálati eljárásban kimutatjuk, hogy a vírus milyen mértékben képes sejteket fertőzni, és általában ezek a mérések például a PCT/US97/11865 (WO 98/01582) számú szabadalmi iratban (közzétéve 1998. január 15.) leírt eljárásra épülnek. Jobbra a következő oszlopban a számok a „Koncentráció” (rövid ít5 ve: C) című oszlopban az összes vírusrészecskére vonatkoztatott koncentrációt jelentik. Végül, a „Részecske/FACS arány” (rövidítve: R) című oszlopban lévő számok jelentése: az összes vírusrészecskeszám viszonyítva a fertőzött vírusrészecskék számához, így jelezve a víruspreparátum relatív potenciálját.
Az „UV című oszlopban lévő adatok a vírusrészecskék aggregációját jelzik, melyet A32o/A2eo hullámhosszakon mért, UV-abszorbancia-aránnyal mutatunk ki, amely fényszórást jelez. A 320 nm hullámhossznál mért abszorbancia a fényszórás mennyiségét méri, míg a 260 nm hullámhossznál mért abszorbancia a DNS mennyiségére utal.
A táblázatok második, „Körülmények című (rövidítve: K) oszlopában felsorolt hőmérsékletek a tárolási hőmérsékletnek felelnek meg. Fiziológiai vizsgálati eljárásokat 37 °C-on végzünk, és az utolsó oszlopban lévő pH-értékeket szobahőmérsékleten, körülbelül 25 °C-on mérjük.
Jelmagyarázat a táblázatokhoz:
K=körülmények,
AVE=antiproliferációs vizsgálati eljárás (SPU/ml), PVE=plakkvizsgálati eljárás (PFU/ml), C=koncentráció (részecske/ml),
R=részecske/FACS arány,
UV=UV A32q/A25o,
NT=nem teszteltük.
1. táblázat
Az 1. példa stabilitási adatai
Stáb. ideje K(°C) AVE*105 PVE*108 FACS*1010 U/ml C*1011 R UV pH
Kezdeti 3,3 5,8 3,86 7,95 21 0,23 7,53
1. hét 25 4,9 10 2,27 8,06 36 0,24 7,53
2. hét 4 3,1 6,6 3,41 7,84 23 0,23 7,49
4. hét 4 3,4 17 3,91 7,79 20 0,23 7,63
8. hét 4 5,8 8,8 3,38 7,80 23 0,24 7,61
12. hét 4 3,9 36 2,24 7,80 35 0,24 7,72
5. hónap 4 NT NT 1,57 8,21 52 0,26 7,60
6. hónap 4 3,0 7,6 2,74 7,68 28 0,28 7,58
9. hónap 4 3,1 19 3,47 7,19* 21 0,28 7,58
11. hónap 4 NT NT NT 6,71 - 0,29 NT
12. hónap 4 2,6 10 0,81 6,13 76 0,30 7,62
*9 hónapos UV-minták újratesztelése: 6,89* 1011 részecske/ml; ^32(/^260=θ'2θ·
2. táblázat
A 2. példa stabilitási adatai
Stáb. ideje K (°C) AVE*104 PVE*107 FACS*109 U/ml C*1010 R UV pH
Kezdeti 3,3 4,8 1,99 10,0 50 0,24 7,36
1. hét 25 2,4 7,1 1,64 nd* - 0,46 7,42
HU 226 015 Β1
2. táblázat (folytatás)
Stáb. ideje K(’C) AVExlO4 PVExlO7 FACSx109 U/ml Cx101° R UV pH
2. hét 4 2,4 6,9 2,13 9,79 46 0,24 7,51
4. hét 4 3,2 8,4 2,50 9,24 37 0,22 7,55
8. hét 4 6,9 8,6 2,60 8,10 31 0,25 7,54
12. hét 4 5,5 8,3 1,09 8,60 79 0,24 7,64
5. hónap 4 NT NT 1,74 8,03 46 0,27 7,55
6. hónap 4 3,3 7,3 2,10 8,25 39 0,23 7,52
9. hónap 4 2,3 13 1,97 7,59 39 0,24** 7,53
11. hónap 4 NT NT NT 7,48 - 0,23 NT
12. hónap 4 1,8 9,4 0,60 4,94 82 0,26 7,59
*nd=nincs meghatározva a vizsgálati eljárás interferenciája miatt **9 hónapos UV-minták újratesztelése: 7,37x101° részecske/ml; ^32(/^260=θ'24·
3. táblázat
A 3. példa stabilitási adatai
Stáb. ideje K(*C) AVExlO5 PVExlO8 FACSxlO10 U/ml Cx1011 R UV pH
Kezdeti 3,2 6,3 2,59 7,45 29 0,24 7,67
1. hét 25 4,4 4,3 1,65 7,49 45 0,24 7,68
2. hét 4 2,3 8,0 3,62 7,27 20 0,24 7,49
4. hét 4 2,7 7,6 4,08 6,97 17 0,24 7,75
8. hét 4 5,9 8,7 2,69 7,00 26 0,25 7,82
12. hét 4 3,0 15 0,70 7,10 101 0,25 7,80
6. hónap 4 2,4 6,4 2,45 7,12 29 0,25 7,76
9. hónap 4 2,8 9,4 2,51 7,06 28 0,26 7,81
11. hónap 4 NT NT NT 6,71 - 0,25 NT
12. hónap 4 2,2 9,8 0,74 6,75 91 0,26 7,81
4. táblázat
A 4. példa stabilitási adatai
Stáb. ideje K(°C) AVExlO4 PVExlO7 FACSxlO9 U/ml Cx1010 R UV pH
Kezdeti 3,3 4,7 2,36 8,91 38 0,23 7,37
1. hét 25 2,3 9,3 1,40 8,25 59 0,24 7,37
2. hét 4 2,8 8,0 2,16 8,80 41 nd* 7,37
4. hét 4 2,9 6,6 2,54 9,35 37 0,20 7,63
8. hét 4 6,9 7,2 2,56 7,60 30 0,24 7,60
12. hét 4 4,4 8,6 1,45 7,20 50 0,23 7,73
6. hónap 4 3,6 7,1 2,85 7,92 28 0,21 7,58
9. hónap 4 2,9 11 1,87 7,26 39 0,20 7,60
11.hónap 4 NT NT NT 6,93 - 0,22 NT
12. hónap 4 2,4 22 0,70 7,15 102 0,23 7,61
*nd=nincs meghatározva a vizsgálati eljárás interferenciája miatt
HU 226 015 Β1
5. példa
Az 5. példában alkalmazott forma: A/C/N/53 (7,5*1011 részecske/ml), trometamin (TRIS) (1,7 mg/ml), mononátrium-dihidrogén-foszfát-dihidrát (1,7 mg/ml), szacharóz (20 mg/ml), magnézium-klorid-hexahidrát (0,4 mg/ml), glicerin (100 mg/ml), nátrium-klorid (5,8 mg/ml), töltési térfogat=10 ml.
5. táblázat
Az 5. példa stabilitási adatai
Stáb. ideje K(°C) AVE*105 FACSxlO10 U/ml Cx1011 R UV pH
Kezdeti 4,5 1,87 7,81 42 0,23 7,80
1. hónap 4 NT 1,67 7,83 47 0,23 7,80
4. hónap 4 3,0 1,58 7,84 50 0,23 7,70
Néhány esetben részecskék képződését figyeltük meg a formában 4 °C-on való tárolás közben. A részecskék SDS-PAGE-val végzett analízise alapján feltételeztük, hogy a részecskéket kisebb arányban jelen lévő szennyeződések (azaz további fehérjék és néhány éretlen vírusrészecske) alkotják, és ennélfogva ezek a részecskék nincsenek hatással a forma életképességére. Mindazonáltal, a találmány előnyös megvalósítási módja szerint a forma további tisztítása céljából (az esetleges részecskeképződés megakadályozása céljából) adott esetben választható, mikroszűrési lépést végezhetünk, bármilyen potenciális részecske eltávolítása céljából, vírusrészecskék kis vesztesége mellett. (Meg kell jegyeznünk, ha mikroszűrést végzünk, a mikroszűréshez alkalmazott, szűrési térfogathoz viszonyított elegendő membránfelület biztosítása döntő fontosságú a vírusveszteség elkerülése céljából, mivel a részecskét eltávolítjuk.)
A találmány előnyös megvalósítási módja szerint továbbá azt találtuk, hogy a kevertetés felgyorsítja a részecskeképződést, és ennélfogva egy további, választható lépésként alkalmazzuk a tisztítási eljárásban. Tehát kimutattuk, hogy enyhe kevertetés (például egy éjszakán át, 10 °C-on, mágneses keverőpálcát alkalmazva), azt követően mikroszűrés alkalmazásával el lehet távolítani a részecskéket úgy, hogy ismételt kevertetés esetén nem képződnek újra részecskék.
Azt is felismertük, hogy fagyasztás/felolvasztás ciklusok elősegíthetik a részecskeképződést ismételt kevertetés esetén. Tehát egy másik előnyös eljárásban, adott esetben, egy vagy több fagyasztás/felolvasztás ciklust végezhetünk, azt követően kevertetünk és azután mikroszűrést végzünk, hogy megelőzzük a részecskeképződést a vírusvégtermék tárolása alatt, hűtési hőmérsékleteken (például 4 °C-on).
Eljárások vírustartalmú készítmények töményítésére és tisztítására A leírás közöl egy új eljárást meglévő víruspreparátum stabil töményítésére tangenciális áramlással való szűrés (amelyet a továbbiakban néha „TFF”-nek jelölünk) alkalmazásával, amely lehetővé teszi klinikai dózisok könnyű kiválasztását és előállítását kívánt, tág koncentrációtartományban. Víruspreparátum töményítésére szolgáló új eljárásban:
(a) hozzáadunk annyi polihidroxi-szénhidrogént egy víruspreparátumhoz, hogy a polihidroxi-szénhidrogén végkoncentrációja körülbelül 20% vagy magasabb ér20 ték legyen; és (b) a viruspreparátumot szűrési eljárásnak vetjük alá, amelyben a vírus koncentrációját úgy növeljük, hogy nyomást alkalmazunk a preparátumon, így az oldószert eltávolítjuk a víruspreparátumból egy szűrőn keresztül, miközben a vírust visszatartjuk.
Az eljárások széles körből származó vírusokra alkalmazhatók, például adenovírusokra, himlővírusokra, iridovírusokra, herpeszvírusokra, papovavírusokra, paramyxovírusokra, ortomyxovírusokra, retrovírusokra, ade30 noasszociált vírusra, tehénhimlővírusra, rotavírusokra stb.; különösen az adenovírusokat részesítjük előnyben. A vírusok előnyösen rekombináns vírusok, de lehetnek klinikai izolátumok, gyengített vakcinatörzsek stb. Az eljárások különösen alkalmasak olyan rekombi35 náns vírusok töményítésére, amelyek heterológ transzgént tartalmaznak génterápiás alkalmazásra. Ilyen vírusok különösen érzékenyek potenciális destabilizáló erőkre, például víruspreparátumok töményítési eljárását kísérő, további mechanikai nyíróerőkkel szemben. Pél40 daként szolgáló rekombináns adenovírus, amelyet a találmány szerinti eljárás alkalmazásával lehet töményíteni, az A/C/N/53, amelyet a WO 95/11984 számú PCT szabadalmi iratban írnak le.
A vírus töményítésére alkalmazott szűrési eljárás45 bán alkalmazhatunk bármilyen szűrési folyamatot (például ultraszűrést), amelyben a vírus koncentrációját úgy növeljük, hogy a hígítószert erővel átnyomjuk egy szűrőn, így a hígítószert eltávolítjuk a víruspreparátumból, míg a vírus nem képes átjutni a szűrőn, és ezáltal töményített formában visszamarad a víruspreparátumban. Az ultraszűrés részletes leírását lásd például L. Zeman és A. Zeman, „Microfiltration and Ultrafiltration: Principles and Applications című könyvben (Marcel Dekkar, Inc., New York, NY, 1996). Különösen előnyös szűrési eljárás a tangenciális áramlással való szűrés („TFF”), melyet leírnak például a MILLIPORE katalógusban, „Pharmaceutical Process Filtration Catalogue” címmel, 177-202. old. (Bedford, Massachusetts, 1995/96). Egy előnyösen alkalmazható TFF-készülék
Pellicon II vagy Pellicon XL szűrőrendszert tartalmaz,
HU 226 015 Β1 melyet a Millipore Corporation cégtől szerezhetünk be, 80 Ashby Rd., Bedford, Massachusetts (interneteim: www.millipore.com), a Pellicon XL rendszert részesítjük különleges előnyben. A találmány szerinti eljárásokat 2 °C és 27 °C közötti hőmérséklet-tartományban végezzük.
Más töményítési eljárásokat is lehet alkalmazni víruspreparátumok töményítésére a találmány szerint. Például polihidroxi-szénhidrogént előnyösen lehet alkalmazni víruspreparátum töményítésére centrifugálással. A leírásban tárgyalunk egy olyan eljárást víruspreparátum töményítésére, amelyben:
(a) centrifugálunk egy készítményt, amely egy első réteget tartalmaz, amely polihidroxi-szénhidrogént tartalmaz 35 térf.% és 80 térf.% közötti koncentrációban, az első rétegre rá van rétegezve egy második réteg, amely polihidroxi-szénhidrogént tartalmaz 5 térf.% és 30 térf.% közötti koncentrációban, a második rétegre rá van rétegezve egy harmadik réteg, amely vírust tartalmaz; és (b) kinyerjük a vírust az első rétegből.
Például adenovíruspreparátumot alacsony sebességű centrifugálással lehet töményíteni 3200 g-n, Beckman-centrifugában, lengőfejes rotor alkalmazásával. Ebből a célból a víruspreparátumot több 5 ml-es csőbe helyezzük, minden egyes cső térfogatának 6,25%-a 70%-os glicerint tartalmaz a cső alján, az első rétegben, erre rárétegzünk a térfogat 2,5%-ának megfelelő 20%-os glicerint, és a tetejére a víruspreparátumot. A preparátumot azután 3200 g-n centrifugáljuk 4 °C-on, körülbelül 16 óra hosszáig, hogy a töményített vírus leülepedjen a glicerines rétegekbe, és azután a frissen töményített víruspreparátumot kinyerjük az első rétegből. A fentebb leírt eljárással töményített vírus jó fényszórás! tulajdonságokkal és megfelelő fertőzési jellemzőkkel rendelkezik.
A leírt eljárásokban alkalmazott polihidroxi-szénhidrogént tekintve, a „polihidroxi-szénhidrogén elágazó vagy egyenes láncú, vagy ciklikus vegyületet jelent, melyek 2 vagy több (előnyösen 2 és 6 közötti, előnyösebben 2 és 4 közötti) hidroxilcsoporttal vannak szubsztituálva, és a polihidroxi-szénhidrogén hatásos mennyisége akkora mennyiség, amely elegendő a vírus stabilizálásához potenciális destabilizáló erőkkel, például a töményítési eljárás alatt fellépő mechanikai nyíróerőkkel szemben. A vírustöményítésre szolgáló eljárásokban jelen lévő polihidroxi-szénhidrogén minimális koncentrációja előnyösen 20%, előnyösebben 25%. Az alkalmazott polihidroxiszénhidrogének előnyösen polihidroxiszubsztituált alkilvegyületek (elágazóak vagy nem elágazóak), előnyösen 2-7 szénatomosak, és lehet glicerin, szorbit és polipropanol. Különösen a glicerint részesítjük előnyben.
A víruskoncentráció növelésére szolgáló új eljárás további előnye, hogy fokozza a további feldolgozás hatékonyságát, például eliminálja a problematikus szűk keresztmetszetet, szignifikánsan nagyobb hatékonyságot lehetővé téve a különböző feldolgozási lépések alatt, például méretkizárásra alapuló kromatográfiában.
A víruspreparátumok töményítésére szolgáló eljárás alkalmazható vírusok tisztítására szolgáló eljárásokban, amelyekben méretkizárásra alapuló kromatográfiát végzünk (például gélszűrést) anioncserélő kromatográfia után. Ebben az eljárásban további káros hatások veszélyeztetik a vírus stabilitását, amelyek nemcsak a sebességmeghatározó, méretkizárásra alapuló kromatográfiás lépés előtt végzett vírustöményítésnél szükségszerűen fellépő mechanikai nyíróerőktől származnak, hanem azon tény következtében, hogy az anioncserélő kromatográfiás lépésben eluált víruspreparátum tipikusan nagy mennyiségű sókat és más olyan szennyeződéseket tartalmaz, amelyek tovább veszélyeztetik a vírus stabilitását. Egy további eljárás egy olyan eljárás víruspreparátum tisztítására, amelyben:
(a) a víruspreparátumot anioncserélő kromatográfiának vetjük alá, amelyben a vírust víruspreparátumtermékként eluáljuk egy anioncserélő kromatográfiás közegről;
(b) az (a) lépésből származó víruspreparátum-termékhez hozzáadunk polihidroxi-szénhidrogént úgy, hogy a preparátumban lévő polihidroxi-szénhidrogén végkoncentrációja elérjen körülbelül 25%-ot vagy magasabb értéket; és (c) növeljük a (b) lépésből származó víruspreparátum-termékben lévő vírus koncentrációját úgy, hogy nyomást alkalmazunk a preparátumon, így az oldószert eltávolítjuk a víruspreparátumból egy szűrőn keresztül, miközben a vírust visszatartjuk; és (d) a (c) lépésből származó, töményített víruspreparátum-terméket egy vagy több, további feldolgozási lépésnek vetjük alá.
A fentebb leírt eljárásban az anioncserélő kromatográfiával összefüggésben megállapítjuk, hogy a glicerin minimális mennyisége 25% (az előbb említett töményítési eljárásban általánosan alkalmazott 20%-os minimális szint helyett), mivel ezen adott alkalmazásban figyelembe kell venni az anioncserélő oszlopról eluált termékben lévő magas sókoncentráció miatt felvetődött, stabilitást veszélyeztető további hatásokat. 25% glicerin (előnyösen 30%) hozzáadása a sótartalmú, egyesített DEAE-eluátum stabilitását eredményezi 10 napnál hosszabb ideig, például 4 °C-on; ennélfogva a vírustöményítés ezt követő lépéseit és/vagy a gélszűrést el lehet végezni más napokon, lényegesen nagyobb rugalmassággal, 10 napos időtartamon belül. Szakember számára nyilvánvaló, hogy polihidroxi-szénhidrogént 25% vagy magasabb koncentrációban is lehet alkalmazni az előbb említett eljárásokban, ha a víruspreparátum sótartalma magasabb, az egyéb feldolgozási körülmények következtében.
V. A találmány szerinti eljárásokat szemléltető példák
Az alábbi példákkal az előbbiekben tárgyalt eljárásokat kívánjuk szemléltetni.
Rövid áttekintés Egy töményített adag előállításához fermentációs eljárásból kinyert, fagyasztott, nyers vírusanyagból indulunk ki. Az egyik eljárásban az adenovírusterméket először anioncserélő kromatográfiával
HU 226 015 Β1 tisztítjuk. Azután, mielőtt a preparátumot méretkizárás alapján elválasztóoszlopra visszük, az anioncserélőről eluált, egyesített anyagot töményíthetjük tangenciális áramlással való szűréssel (TFF), 30 térf.% glicerin jelenlétében. Más módszer szerint, egy másik eljárásban a TFF töményítési lépést 20 térf.% vagy több (előnyösen 25%) glicerin jelenlétében lehet végezni a méretkizárásra alapuló kromatográfia után.
Kiindulási anyagok előállítása anioncserélő kromatográfiával TFF előtt
Az előnyös eljárásban anioncserélő kromatográfiával tisztított adenovíruskészletet koncentráláshoz az alábbiak szerint preparálunk. Fermentációból és feldolgozási lépésekből származó fagyasztott vírusanyagot felolvasztunk, és átszűrünk 0,45 pm-es hidrofil membránon. A szűrlet sókoncentrációját beállítjuk 4 M nátrium-klorid hozzáadásával. Ezt az oldatot felviszzük Fractogel EMD DEAE-650M oszlopra, melyet előzőleg 50 mM nátrium-foszfátot (pH 7,5), 260 mM nátrium-kloridot, 2 mM magnézium-kloridot, 2 vegyes% szacharózt tartalmazó pufferrel (A-puffer) ekvilibráltunk. Az adenovírus kötődik az anioncserélő gyantához, míg a közeg nagyobb része és a gazdaszervezetből származó szennyeződések átfolynak az oszlopon. Az oszlopot először 4 térfogat A-pufferrel mossuk, ezt egy második, 8 térfogat izokratikus mosás követi 94% A-puffert és 6% B-puffert (50 mM nátrium-foszfát, pH 7,5, 600 mM nátrium-klorid, 2 mM magnézium-klorid, 2 vegyes% szacharóz) tartalmazó oldattal, további szennyeződések eltávolítása céljából. A vírust az oszlopról 30 ágytérfogat 6%-100%, lineáris B-puffer-gradienssel mossuk le. Az elúciós profilban az adenovíruscsúcsot A280 alapján határozzuk meg, és ezt gyűjtjük. Glicerint adunk a DEAE-ról eluált anyaghoz, 30 térf.% végkoncentrációban, további feldolgozás céljából.
DEAE-ról eluált anyag töményítése tangenciális áramlással való szűréssel
A DEAE-ról eluált anyagot (a fentebb leírtak szerint preparálva) 10-20-szor töményítjük, Millipore TFF-egységben (Pellicon XL rendszer), amelyben 1 millió molekulatömegnél visszatartó Biomax-membránokat alkalmazunk. Az eljárást 2-10 °C-on vagy szobahőmérsékleten (25 °C) végezzük. Az alábbi szűrési paramétereket alkalmazzuk ebben az eljárásban: átlagos bemenőnyomás=14 psi; átlagos permeátumnyomás=0 psi; átlagos fluxussebesség=13 liter/óra négyzetméterenként. Az adenovírus végkoncentrációja körülbelül 1,0-2,0*1013 részecske/ml-t ér el. Resource-Q-HPLC-vel és UV-abszorbancia (A260) mérésével végzett analízisre alapozva, a töményítés kitermelése >80%, szignifikáns aggregáció nélkül (fényszórást alkalmazó vizsgálati eljárással meghatározva A320/A260).
Puffercsere méretkizárásra alapuló kromatográfiával (gélszűréssel)
A töményített adenovíruspreparátumot felvisszük
Superdex-200, méretkizárást biztosító oszlopra, melyet előzőleg 20 mM nátrium-foszfátot (pH 8,0), 100 mM nátrium-kloridot, 2 mM magnézium-kloridot, 2 vegyes% szacharózt és 10% glicerint tartalmazó pufferrel (C-pufferrel) vagy 11 mM nátrium-foszfátot, 14 mM Trist, 2 mM magnézium-kloridot, 2 vegyes% szacharózt és 10% glicerint tartalmazó pufferrel (pH 7,8, D-puffer) ekvilibráltunk. Az oszlopot az ekvilibrációs pufferrel eluáljuk. Az elúciós profilban az adenovíruscsúcsot A280 alapján határozzuk meg, és ezt gyűjtjük és egyesítjük. A töményített adenovíruspreparátumot 0,2 pm-es hidrofil Durapore membránon (Stericup, Millipore) átszűrjük 2-10 °C-on és -80 °C-on vagy magasabb hőmérsékleteken (például 2-10 °C-on) lehet tárolni.
Superdex-200-ról eluált anyag töményítése tangenciális áramlással való szűréssel
A fentebb leírtak szerint egy előnyös eljárásban a vírust töményítjük anioncserélő kromatográfia után, de gélszűrés előtt. Egy másik eljárásban azonban a víruspreparátumok töményítésre szolgáló eljárásokat a gélszűrési lépés után is lehet alkalmazni (még akkor is, ha nem alkalmazunk vírustöményítést az anioncserélö lépés és a gélszűrési lépés között). Ebben az esetben a szűrés paraméterei ugyanazok, mint amelyeket a DEAE-eluátum töményítésére alkalmaztunk, kivéve azt, hogy a polihidroxi-szénhidrogént (például glicerin) lehet hozzáadni a Superdex-200-eluátumhoz, akár 20 térf.% végkoncentrációban, mivel tovább már nem kell foglalkozni a DEAE-eluátumban lévő magas sókoncentrációkkal. Ebben a vonatkozásban meg kell jegyeznünk, hogy azokban az esetekben, ahol polihidroxi-szénhidrogén hozzáadása el van halasztva a gélszűrés utánra, a DEAE-eluátumot az elúció után azonnal fel kell vinni a gélszűrő oszlopra (a DEAEeluátum érzékenysége miatt, a magas sókoncentráció következtében). Tehát látható, hogy polihidroxi-szénhidrogén hozzáadása a DEAE-eluátumhoz azzal a további előnnyel jár, hogy növeli az időintervallumok és tárolási lehetőségeinek flexibilitását az anioncserélő kromatográfia és azt követő eljárások közötti időtartamban.
Víruspreparátumok töményítésére szolgáló eljárásokat különféle tisztítási módszerekkel összekapcsolva lehet alkalmazni. A tisztítási eljárások tekintetében további információkat lehet találni az alábbi hivatkozásokban: például Huyghe és munkatársai, Humán Gene Therapy 6, 1403-1416 (1995), és USP 08/989.227 számú szabadalmi iratban, melyet kifejezetten a kitanítás részének tekintünk.
VI. Víruspreparátumok töményítésre szolgáló, tangenciális áramlással való szűrést alkalmazó eljárások stabilitási adatai
Az alábbi kísérleti adatok azt mutatják, hogy az előbbiekben tárgyalt eljárások nagymértékben fokozott vírusstabilitást tesznek lehetővé, a vírus töményítésekor fellépő mechanikai nyíróerők és a viszontag10
HU 226 015 Β1 ságos körülmények, például a DEAE-eluátumban lévő magas sókoncentráció ellenére. Tehát az előbbiekben tárgyalt eljárások lehetővé teszik, többek között (1) bármilyen kívánt koncentrációjú klinikai dózist könnyű előállítását (még akkor is, ha alacsony koncentrációjú anyagból indulunk ki), (2) a feldolgozás hatékonyságának fokozását (például szignifikánsan nagyobb hatékonyságot lehetővé téve a méretkizárásra alapuló kromatográfiában), és (3) lehetővé téve a sótartalmú, egyesített DEAE-eluátum stabilitását 10 napnál hosszabb ideig, 2-10 °C-on, ennélfogva a vírustöményítés ezt követő lépéseit és/vagy a gélszűrést el lehet végezni más napokon, lényegesen nagyobb rugalmassággal, 10 napos időtartamon belül.
A. Vírus töményítése DEAE-kromatográfia után
Az alábbi három példában előállítunk stabil, tömény adenovírusoldatot, DEAE-eluátum töményítésével, 30% glicerinben (az előbbiekben tárgyalt eljárásokkal összhangban). A preparátumokat azután Superdex-200 gélszűrő kromatográfiával tisztítjuk, így jutunk a tesztelendő végső formához.
D-1. példa
Végső forma: 20 mM NaPi, 100 mM NaCI, 2 mM MgCI2, 2% szacharóz, 10% glicerin, pH 8, 2-10 °C-on.
Eredmények: részecske/FACS=24, fényszórás (A320/A260)=0,22, konc.=1,6><1013 részecske/ml.
D-2. példa
Végső forma: 14 mM Tris-bázis, 11 mM NaPi, 2 mM MgCI2, 2% szacharóz, 10% glicerin, pH 7,8, 2-10 °C-on.
Eredmények: részecske/FACS=17, fényszórás (A320/A260)=0,25, konc.=1,5x1013 részecske/ml.
D-3. példa
Végső forma: 20 mM NaPi, 100 mM NaCI, 2 mM MgCU, 2% szacharóz, 10% glicerin, pH 8, 2-10 °C-on.
Eredmények: részecske/FACS=24, fényszórás (A320/A260)=0,25, konc.=1,3x1013 részecske/ml.
B. Vírus töményítése gélszűrés után
S-1. példa
Az alábbi példában víruspreparátumot töményítünk
20% glicerinben, gélszűrés után.
Végső forma: 16 mM NaPi, 80 mM NaCI, 1,6 mM MgCI2, 1,6% szacharóz, 20% glicerin, pH 8,0 2-10 °C-on.
Eredmények: részecske/FACS=72, fényszórás (A320/A260)=0,26, konc.=1,66*1013 részecske/ml.

Claims (17)

  1. SZABADALMI IGÉNYPONTOK
    1. Készítmény adenovírusok stabilitásának fenntartására, amely egy 20-200 mg/ml glicerint, szacharózt és 2 °C-tól 27 °C-ig terjedő hőmérséklet-tartományban a pH-t 7-8,5 értéken tartó pufferrendszert tartalmazó formulációban tartalmaz adenovírust, ahol a pufferrendszer 0,5-10 mg/ml koncentrációban mononátriumdihidrogén-foszfát-dihidrátot és 0,5-10 mg/ml koncentrációban trometamint tartalmaz.
  2. 2. Az 1. igénypont szerinti készítmény, azzal jellemezve, hogy 5-25 mg/ml koncentrációban tartalmaz szacharózt.
  3. 3. Az 1. vagy 2. igénypont szerinti készítmény, azzal jellemezve, hogy stabilizátorként egy két vegyértékű fém sóját is tartalmazza.
  4. 4. A 3. igénypont szerinti készítmény, azzal jellemezve, hogy két vegyértékű fémsó-stabilizátorként magnézium-dikloridot tartalmaz.
  5. 5. A 4. igénypont szerinti készítmény, azzal jellemezve, hogy 0,1-1 mg/ml koncentrációban tartalmaz magnézium-dikloridot.
  6. 6. Az 1-5. igénypontok bármelyike szerinti készítmény, azzal jellemezve, hogy továbbá egy szurfaktánst is tartalmaz.
  7. 7. A 6. igénypont szerinti készítmény, azzal jellemezve, hogy szurfaktánsként egy poli(oxi-etilén)-szorbitánt tartalmaz.
  8. 8. A 7. igénypont szerinti készítmény, azzal jellemezve, hogy poli(oxi-etilén)-szorbitánként Polysorbat 80-at tartalmaz.
  9. 9. A 8. igénypont szerinti készítmény, azzal jellemezve, hogy 0,03-0,3 mg/ml koncentrációban tartalmaz Polysorbat 80-at.
  10. 10. Az 1-9. igénypontok bármelyike szerinti készítmény, azzal jellemezve, hogy tartalmaz továbbá egy vizet tartalmazó hígítót.
  11. 11. Az 1-10. igénypontok bármelyike szerinti készítmény, azzal jellemezve, hogy 1*109-1*1013 vírusrészecske/ml koncentrációban tartalmaz adenovírust.
  12. 12. Az 1-11. igénypontok bármelyike szerinti készítmény, azzal jellemezve, hogy adenovírusként rekombináns adenovírust tartalmaz.
  13. 13. A 11. vagy 12. igénypont szerinti készítmény, azzal jellemezve, hogy az adenovírus a készítményben hűtőszekrény-hőmérsékleten legalább két hétig stabil.
  14. 14. A 13. igénypont szerinti készítmény, azzal jellemezve, hogy az adenovírus 2 °C-tól 8 °C-ig terjedő tartományba eső hűtőszekrény-hőmérsékleten legalább két hétig stabil.
  15. 15. A 14. igénypont szerinti készítmény, azzal jellemezve, hogy az adenovírus 4 °C hűtőszekrény-hőmérsékleten legalább két hétig stabil.
  16. 16. A 11. vagy 12. igénypont szerinti készítmény, azzal jellemezve, hogy az adenovírus a készítményben szobahőmérsékleten legalább egy hétig stabil.
  17. 17. A 16. igénypont szerinti készítmény, azzal jellemezve, hogy az adenovírus a készítményben 25 °C szobahőmérsékleten legalább egy hétig stabil.
HU0100670A 1998-02-17 1999-02-12 Compositions and preparations comprising viruses HU226015B1 (en)

Applications Claiming Priority (3)

Application Number Priority Date Filing Date Title
US2446298A 1998-02-17 1998-02-17
US7964398A 1998-05-15 1998-05-15
PCT/US1999/001873 WO1999041416A2 (en) 1998-02-17 1999-02-12 Compositions comprising viruses and methods for concentrating virus preparations

Publications (3)

Publication Number Publication Date
HUP0100670A2 HUP0100670A2 (hu) 2001-06-28
HUP0100670A3 HUP0100670A3 (en) 2003-10-28
HU226015B1 true HU226015B1 (en) 2008-02-28

Family

ID=26698472

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
HU0100670A HU226015B1 (en) 1998-02-17 1999-02-12 Compositions and preparations comprising viruses

Country Status (25)

Country Link
EP (4) EP1526173B1 (hu)
JP (3) JP4358434B2 (hu)
KR (5) KR100918187B1 (hu)
CN (2) CN101164623B (hu)
AR (3) AR020054A1 (hu)
AT (3) ATE341614T1 (hu)
AU (1) AU757976B2 (hu)
BR (1) BR9908015A (hu)
CA (2) CA2320419C (hu)
CO (1) CO4820440A1 (hu)
DE (3) DE69933433T2 (hu)
DK (1) DK1054955T3 (hu)
ES (2) ES2290613T3 (hu)
HK (3) HK1073481A1 (hu)
HU (1) HU226015B1 (hu)
ID (1) ID28298A (hu)
IL (2) IL137510A0 (hu)
MY (1) MY141641A (hu)
NO (1) NO20004104L (hu)
PE (1) PE20000265A1 (hu)
PL (1) PL197747B1 (hu)
PT (1) PT1054955E (hu)
SK (1) SK11842000A3 (hu)
TW (1) TWI232107B (hu)
WO (1) WO1999041416A2 (hu)

Families Citing this family (51)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
US7732129B1 (en) 1998-12-01 2010-06-08 Crucell Holland B.V. Method for the production and purification of adenoviral vectors
JP4492826B2 (ja) 1996-11-20 2010-06-30 イントロジェン セラピューティクス,インコーポレイテッド アデノウイルスベクターの産生および精製のための改良された方法
EP1133316B1 (en) * 1998-11-16 2009-01-21 Introgen Therapeutics, Inc. Formulation of adenovirus for gene therapy
US6689600B1 (en) 1998-11-16 2004-02-10 Introgen Therapeutics, Inc. Formulation of adenovirus for gene therapy
EP1263461A4 (en) * 2000-03-07 2009-08-12 Merck & Co Inc ADENOVIRUS FORMULATIONS
US7456009B2 (en) 2000-03-07 2008-11-25 Merck & Co., Inc. Adenovirus formulations
US20020064860A1 (en) 2000-11-29 2002-05-30 Schering Corporation Method for purifying adenoviruses
AU2002218535A1 (en) * 2000-12-12 2002-06-24 Japan Tobacco Inc. Pharmaceutical composition containing an active with a hemolytic action and a surfactant
CA2469491A1 (en) 2001-12-12 2003-06-19 Kerrie Setiawan Composition for viral preservation
US20030153065A1 (en) * 2002-01-14 2003-08-14 Genvec, Inc. Composition and method for maintaining non-enveloped viral vectors
MXPA04006995A (es) * 2002-01-18 2005-07-13 Schering Ag Formulaciones estabilizadas de adenovirus.
ATE435906T1 (de) 2004-02-23 2009-07-15 Crucell Holland Bv Verfahren zur reinigung von viren
CA2586107A1 (en) 2004-11-03 2006-05-18 Introgen Therapeutics Inc. A novel method for the production and purification of adenoviral vectors
EP1831352B1 (en) 2004-12-13 2011-07-13 CANJI, Inc. Cell lines for production of replication-defective adenovirus
DK1869171T4 (en) 2005-04-11 2016-01-18 Crucell Holland Bv Virus cleaning using ultrafiltration
CN1961961B (zh) * 2005-11-11 2010-05-26 深圳市源兴生物医药科技有限公司 一种药物制剂及其制备方法
WO2007070392A2 (en) 2005-12-12 2007-06-21 Canji, Inc. Adenoviral expression vectors having an expression cassette in the e1 region and an inactivated e2b polymerase
WO2007123961A2 (en) * 2006-04-20 2007-11-01 Wyeth Purification processes for isolating purified vesicular stomatitis virus from cell culture
US10041049B2 (en) 2008-11-03 2018-08-07 Janssen Vaccines & Prevention B.V. Method for the production of adenoviral vectors
MX356669B (es) 2009-05-02 2018-06-08 Genzyme Corp Terapia genica para trastornos neurodegenerativos.
CA2786835C (en) 2010-02-15 2021-08-31 Crucell Holland B.V. Method for the production of ad26 adenoviral vectors
WO2012038367A1 (en) 2010-09-20 2012-03-29 Crucell Holland B.V. Therapeutic vaccination against active tuberculosis
WO2012041669A1 (en) 2010-09-27 2012-04-05 Crucell Holland B.V. Heterologous prime boost vaccination regimen against malaria
US9045728B2 (en) * 2010-12-02 2015-06-02 Oncolytics Biotech Inc. Liquid viral formulations
TW201233803A (en) 2010-12-02 2012-08-16 Oncolytics Biotech Inc Lyophilized viral formulations
SG194449A1 (en) * 2011-04-29 2013-12-30 Oncolytics Biotech Inc Methods of purifying viruses using gel permeation chromatography
US8932607B2 (en) 2012-03-12 2015-01-13 Crucell Holland B.V. Batches of recombinant adenovirus with altered terminal ends
KR102044051B1 (ko) 2012-03-12 2019-11-12 얀센 백신스 앤드 프리벤션 비.브이. 터미널 말단이 변경된 재조합 아데노바이러스의 배치
US9125870B2 (en) 2012-03-22 2015-09-08 Crucell Holland B.V. Vaccine against RSV
WO2013139916A1 (en) 2012-03-22 2013-09-26 Crucell Holland B.V. Vaccine against rsv
DK2988780T3 (en) 2013-04-25 2019-04-08 Janssen Vaccines & Prevention Bv STABILIZED SOLVEN RSV-F PREFUSION POLYPTIDES
US10294279B2 (en) 2013-06-17 2019-05-21 Janssen Vaccines & Prevention B.V. Stabilized soluble pre-fusion RSV F polypeptides
KR20170004966A (ko) * 2014-05-28 2017-01-11 에이전시 포 사이언스, 테크놀로지 앤드 리서치 바이러스 감소 방법
PL3283634T3 (pl) 2015-04-14 2019-10-31 Janssen Vaccines & Prevention Bv Rekombinowany adenowirus eksprymujący dwa transgeny z dwukierunkowym promotorem
BR112017027448A2 (pt) 2015-07-07 2018-09-04 Janssen Vaccines & Prevention Bv vacina contra rsv
BR112017028449A2 (pt) 2015-07-07 2018-09-04 Janssen Vaccines & Prevention Bv polipeptídeos rsv f pré-fusão solúveis estabilizados
CA3018139A1 (en) 2016-04-05 2017-10-12 Janssen Vaccines & Prevention B.V. Vaccine against rsv
SG11201807913XA (en) 2016-04-05 2018-10-30 Janssen Vaccines & Prevention Bv Stabilized soluble pre-fusion rsv f proteins
SG11201810078PA (en) 2016-05-30 2018-12-28 Janssen Vaccines & Prevention Bv Stabilized pre-fusion rsv f proteins
EP3472327B1 (en) 2016-06-20 2020-08-19 Janssen Vaccines & Prevention B.V. Potent and balanced bidirectional promoter
US10744196B2 (en) 2016-07-14 2020-08-18 Janssen Vaccines & Prevention B.V. HPV vaccines
WO2018210871A1 (en) 2017-05-17 2018-11-22 Janssen Vaccines & Prevention B.V. Methods and compositions for inducing protective immunity against rsv infection
US11229692B2 (en) 2017-05-17 2022-01-25 Janssen Vaccines & Prevention B.V. Methods and compositions for inducing protective immunity against RSV infection
WO2019021305A1 (en) * 2017-07-24 2019-01-31 Ella Foundation VACCINE AGAINST FOOT AND MOUTH DISEASE
EP3681533A1 (en) 2017-09-15 2020-07-22 Janssen Vaccines & Prevention B.V. Method for the safe induction of immunity against rsv
EP3990031A4 (en) * 2019-06-28 2023-08-09 Takeda Pharmaceutical Company Limited METHODS FOR PURIFYING ADENO-ASSOCIATED VIRUS
JP2023512519A (ja) 2020-01-31 2023-03-27 ベス イスラエル ディーコネス メディカル センター インコーポレイテッド コロナウイルス感染症を予防および処置するための組成物および方法-sars-cov-2ワクチン
JP2024509756A (ja) 2021-02-19 2024-03-05 ヤンセン ファッシンズ アンド プリベンション ベーフェー 安定化された融合前rsv fb抗原
WO2023020939A1 (en) 2021-08-17 2023-02-23 Janssen Pharmaceuticals, Inc. Sars-cov-2 vaccines
CN115989321A (zh) * 2021-08-17 2023-04-18 上海行深生物科技有限公司 病毒制剂、用于配制病毒制剂的溶液及其用途
WO2023111725A1 (en) 2021-12-14 2023-06-22 Janssen Pharmaceuticals, Inc. Sars-cov-2 vaccines

Family Cites Families (11)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
DE299213C (hu) *
US4147772A (en) * 1976-02-03 1979-04-03 Merck & Co., Inc. Vaccine stabilizer
GB1575155A (en) * 1978-04-11 1980-09-17 Merck & Co Inc Vaccine stabilizer
BE866330A (fr) * 1978-04-25 1978-10-25 Merck & Co Inc Procede de fabrication d'un agent de stabilisation de vaccin
US5532220A (en) 1987-08-31 1996-07-02 The Regents Of The University Of California Genetic mechanisms of tumor suppression
DD299213A7 (de) * 1988-05-04 1992-04-09 Saechsische Landesgewerbefoerderungsgesellschaft M.B.H.,De Verfahren zur stabilisierung eines lebendvirusimpfstoffes gegen temperatureinwirkung
DD295927A5 (de) * 1988-05-06 1991-11-14 Saechsisches Serumwerk Gmbh Dresden, Immobilisiertes immunologisch aktives reagens
EP2113569A1 (en) 1993-10-25 2009-11-04 CANJI, Inc. Recombinant adenoviral vector and methods of use
KR100368686B1 (ko) * 1994-12-29 2003-12-01 주식회사 엘지생명과학 수크로즈를이용한세포와바이러스의분리방법
FR2742756B1 (fr) * 1995-12-22 1998-04-03 Pasteur Merieux Serums Vacc Stabilisants pour vaccins vivants, vaccins les contenant et procedes pour leur preparation
US5789244A (en) * 1996-01-08 1998-08-04 Canji, Inc. Compositions and methods for the treatment of cancer using recombinant viral vector delivery systems

Also Published As

Publication number Publication date
AR063314A2 (es) 2009-01-21
ES2272053T3 (es) 2007-04-16
EP1526173A2 (en) 2005-04-27
WO1999041416A2 (en) 1999-08-19
KR20090127947A (ko) 2009-12-14
PL342847A1 (en) 2001-07-16
AR020054A1 (es) 2002-04-10
SK11842000A3 (sk) 2001-05-10
HK1073481A1 (en) 2005-10-07
AU2653899A (en) 1999-08-30
CA2320419C (en) 2011-02-08
PE20000265A1 (es) 2000-04-25
DE69933433D1 (de) 2006-11-16
KR100862169B1 (ko) 2008-10-09
DE69936948D1 (de) 2007-10-04
JP2010213727A (ja) 2010-09-30
HK1028416A1 (en) 2001-02-16
JP2006166925A (ja) 2006-06-29
AU757976B2 (en) 2003-03-13
EP1054955B1 (en) 2006-10-04
CO4820440A1 (es) 1999-07-28
EP1054955A2 (en) 2000-11-29
EP1741777A1 (en) 2007-01-10
KR20090038927A (ko) 2009-04-21
KR20080065615A (ko) 2008-07-14
KR100912362B1 (ko) 2009-08-19
EP1526173A3 (en) 2005-08-10
CA2723040A1 (en) 1999-08-19
DE69942708D1 (de) 2010-10-07
IL137510A (en) 2012-10-31
ATE371020T1 (de) 2007-09-15
EP1526174A3 (en) 2005-08-31
CN100374551C (zh) 2008-03-12
HK1097413A1 (en) 2007-06-22
CN101164623A (zh) 2008-04-23
IL137510A0 (en) 2001-07-24
WO1999041416A3 (en) 1999-11-18
NO20004104L (no) 2000-10-17
DE69936948T2 (de) 2008-05-15
KR20080065614A (ko) 2008-07-14
TWI232107B (en) 2005-05-11
DE69933433T2 (de) 2007-08-23
CA2320419A1 (en) 1999-08-19
KR100918187B1 (ko) 2009-09-22
HUP0100670A3 (en) 2003-10-28
CN1297478A (zh) 2001-05-30
ES2290613T3 (es) 2008-02-16
EP1526174B1 (en) 2007-08-22
ID28298A (id) 2001-05-10
KR100991683B1 (ko) 2010-11-04
PT1054955E (pt) 2007-01-31
ATE478945T1 (de) 2010-09-15
KR101018992B1 (ko) 2011-03-07
JP2002503484A (ja) 2002-02-05
MY141641A (en) 2010-05-31
ATE341614T1 (de) 2006-10-15
EP1741777B1 (en) 2010-08-25
KR20010072547A (ko) 2001-07-31
CN101164623B (zh) 2012-11-14
EP1526173B1 (en) 2012-11-21
NO20004104D0 (no) 2000-08-16
DK1054955T3 (da) 2007-01-15
HUP0100670A2 (hu) 2001-06-28
JP4358434B2 (ja) 2009-11-04
PL197747B1 (pl) 2008-04-30
EP1526174A2 (en) 2005-04-27
BR9908015A (pt) 2001-04-24
AR063315A2 (es) 2009-01-21

Similar Documents

Publication Publication Date Title
HU226015B1 (en) Compositions and preparations comprising viruses
US20080293123A1 (en) Compositions comprising viruses and methods for concentrating virus preparations
US20080261289A1 (en) Compositions comprising viruses and methods for concentrating virus preparations
ES2349106T3 (es) Composiciones que comprenden virus y procedimientos para concentrar preparaciones virales.
NZ505952A (en) Compositions comprising viruses and methods for concentrating virus preparations
MXPA00008008A (en) Compositions comprising viruses and methods for concentrating virus preparations
CZ20002864A3 (cs) Prostředek obsahující virus, způsoby jeho koncentrace a purifikace

Legal Events

Date Code Title Description
MM4A Lapse of definitive patent protection due to non-payment of fees