ES2315531T3 - Polimero biocompatible y filtro que permite eliminar leucocitos con su utilizacion. - Google Patents
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Abstract
Material de filtro para la eliminación selectiva de leucocitos, en el que un polímero biocompatible que comprende el 8-45% molar de una unidad que se origina a partir de un monómero polimerizable que tiene una cadena de óxido de polialquileno, el 30-90% molar de una unidad que se origina a partir de un monómero polimerizable que tiene un grupo hidrofóbico, y el 2-50% molar de una unidad que se origina a partir de un monómero polimerizable que tiene un grupo hidroxilo está presente, como mínimo, en la superficie un cuerpo de apoyo de filtro.
Description
Polímero biocompatible y filtro que permite
eliminar leucocitos con su utilización.
La presente invención se refiere a un filtro
para eliminar selectivamente leucocitos, que presenta sólo una
ligera adherencia con las plaquetas y puede eliminar selectivamente
leucocitos de la sangre. Más particularmente, la presente invención
se refiere a un material de filtro para eliminar selectivamente
leucocitos en la sangre durante una transfusión o la circulación
extracorpórea, a un aparato para eliminar selectivamente leucocitos
y a un sistema para eliminar selectivamente leucocitos. En el
material de filtro, sobre el cuerpo de apoyo del filtro está
presente un polímero que tiene una biocompatibilidad excelente.
Siguiendo la evolución de la inmunología y de
las transfusiones de sangre en los últimos años, la transfusión de
componentes, en la cual sólo se transfunden componentes sanguíneos
que se requieren para el tratamiento de diversas enfermedades, se
ha vuelto más popular que la transfusión de sangre completa
convencional. La transfusión de componentes sanguíneos es un
destacado tratamiento de transfusión que presenta un efecto
curativo elevado, mientras que se alivia la carga sobre pacientes
durante la transfusión. Mediante la centrifugación de la sangre
completa obtenida por donación se preparan diversas preparaciones
sanguíneas utilizadas para la transfusión de componentes sanguíneos,
tales romo eritrocitos concentrados, plaquetas concentradas y
plasma pobre en plaquetas. Sin embargo, se ha hecho conocido el
hecho de que después de la transfusión se inducen reacciones
secundarias debido a los leucocitos que contienen dichas
preparaciones sanguíneas, dado que las preparaciones de sangre
obtenidas por centrifugación contienen muchos leucocitos. Las
reacciones secundarias después de la transfusión incluyen
reacciones secundarias comparativamente leves, tales como dolor de
cabeza, náuseas, resfriado y una reacción exotérmica no hemolítica,
así como reacciones secundarias graves, tales como la inducción de
una reacción injerto contra huésped (GVH) a un paciente con un
trastorno inmune en el cual los leucocitos transfundidos tienen un
efecto inductor de muerte sobre la piel y los órganos internos del
receptor, la infección por virus presentes en los leucocitos, tal
como la infección por citomegalovirus y la sensibilización de
aloantígeno. La eliminación de los leucocitos de las preparaciones
sanguíneas es eficaz en la prevención de dichas reacciones
secundarias después de la transfusión.
Ha habido una demanda creciente de tecnología
para la eliminación de los leucocitos de la sangre periférica de
pacientes para el tratamiento médico de eritematodes sistémico,
artritis reumatoide crónica o maligna, enfermedad de Behcet,
púrpura trombo-citopénica idiopática, hepatitis
autoinmune, colitis ulcerativa crónica, enfermedad de Crohn,
dermatitis atópica, glomerulonefritis rápidamente progresiva, y
síndrome de respuesta inflamatoria sistémica, y para el objetivo de
la supresión inmune antes de un transplante. La eliminación de
leucocitos también se practica en el campo de la cirugía cardiaca,
en la que se eliminan los leucocitos de la sangre perfundida
después de una cirugía de puente "bypass" arterial coronario
para aliviar un efecto obstaculizador de los leucocitos
activados.
En términos generales, los métodos para la
eliminación de los leucocitos de la sangre se clasifican en un
método de separación centrífuga, haciendo uso de las diferencias en
la gravedad específica de los componentes sanguíneos, y un método
de filtro que utiliza un medio fibroso, tal como una tela no tejida
o un material de tipo esponjoso poroso que tiene redes de poros
continuas tridimensionales, como filtro. El método del filtro es
más popular, debido a una eficacia de eliminación de leucocitos
superior, a que es un proceso simple y tiene un coste menor.
Generalmente, los materiales poliméricos que
comprenden estos filtros para la eliminación de leucocitos son
hidrofóbicos y provocan que otros componentes sanguíneos útiles,
tales como las plaquetas, se adhieran mientras se están eliminando
los leucocitos. Ha sido difícil conseguir un equilibrio entre la
eficacia de eliminación de leucocitos y la eficacia de recuperación
de plaquetas. Se ha deseado fuertemente el desarrollo de un
material que pueda eliminar selectivamente los leucocitos, a la vez
que permite que las plaquetas pasen a través de él, en particular
para pacientes con una enfermedad en la cual no es deseable una
disminución de las plaquetas, tal como la púrpura trombocitopénica
idiopática o la hepatitis autoinmune.
Cuando un líquido de tipo acuoso que contiene
plaquetas, tal como la sangre, se hace entrar en contacto con un
material, cuanto mayor es la hidrofilicidad de la superficie del
material, más difícil es que las plaquetas se activen y más fácil es
que se forme una capa acuosa sobre la superficie del material
mediante el puente de hidrógeno del agua y el material, por lo que
se puede inhibir la adsorción de plaquetas y de proteínas
hidrofílicas. Por lo tanto, se han desarrollado diversos polímeros
hidrofílicos para modificar la superficie de los materiales y en la
técnica se conocen métodos para la introducción de dichos polímeros
sobre la superficie de los materiales mediante polimerización por
injerto o recubrimiento. La patente JP-A
2000-245833 da a conocer un material de filtro para
eliminar selectivamente leucocitos. El material permite que los
eritrocitos y las plaquetas pasen a través de él, pero no permite
que los leucocitos pasen a través de el. En el material de filtro,
se han superado los problemas anteriores mediante el recubrimiento
del material que forma el filtro con un polímero hidrofílico. Un
posible problema con el material de filtro recubierto es la elución
del polímero hidrofílico de la superficie. Aunque la posibilidad de
la elución del polímero en una solución acuosa es muy baja, se ha
deseado un material con un riesgo de elución más pequeño para la
utilización en el procesado de una cantidad grande de sangre, tal
como la utilizada para la circulación extracorpórea, para asegurar
la estabilidad del ma-
terial de filtro cuando se mantiene en contacto con una solución acuosa, tal como sangre, durante un tiempo largo.
terial de filtro cuando se mantiene en contacto con una solución acuosa, tal como sangre, durante un tiempo largo.
La patente JP-A
07-25776 da a conocer un material de filtro
recubierto con un polímero que tiene tanto grupos hidrofóbicos como
cadenas de óxido de polietileno hidrofílicas. Este es un material
de filtro con un riesgo reducido de elución del polímero,
disminuyendo la solubilidad del polímero en una solución acuosa
mediante la introducción de grupos hidrofóbicos en el polímero. Sin
embargo, dado que el polímero tiene tanto grupos hidrofóbicos como
grupos hidrofílicos que tienen propiedades opuestas entre ellos en
la molécula polimérica, se reduce la acción de las partes
hidrofóbicas a través de las cuales se hace adherir el polímero al
cuerpo de apoyo del filtro que comprende el material de filtro. Por
lo tanto, ha sido difícil asegurar un equilibrio entre el
rendimiento del filtro y las propiedades de elución utilizando esta
tecnología sola. Los inventores de la presente invención examinaron
esta tecnología utilizando un polímero hecho de metacrilato de
metilo y metoxipoli(metacrilato de etilen glicol) con
cadenas de óxido de polietileno. Como resultado, los presentes
inventores han encontrado que las soluciones acuosas se vuelven
turbias debido a la elución del polímero.
Los presentes inventores también han encontrado
que una superficie de material específica de eliminación puede
absorber virus, eliminar leucocitos y recuperar plaquetas y
presentaron una solicitud de patente sobre la invención que trata
de este descubrimiento (PCT/JP 02/10766,
WO-A-03/033035). Aunque esta
solicitud de patente anterior describe el mismo polímero que el
polímero de la presente invención, como ejemplo del polímero para
la formación de una superficie específica, la invención anterior se
diferencia de la presente invención en que el filtro reivindicado
elimina virus simultáneamente con leucocitos. Además, los
inventores de la presente invención recubrieron un cuerpo de apoyo
específico con el polímero descrito en la solicitud de patente
anterior como una realización, de la cual las condiciones de
polimerización y purificación se diferencian de las aplicadas a la
presente invención, y evaluaron la elución del polímero. Como
resultado, los presentes inventores han encontrado que tuvo lugar
un ligero grado de elución, aunque el grado no era destacable como
para provocar que la solución de prueba se volviera turbia. No hace
falta mencionar que es más deseable eliminar aún más la elución
tomando en consideración la aplicación del filtro en un tratamiento
médico.
No han habido polímeros de alto rendimiento
utilizados para filtros para la eliminación selectiva de leucocitos
que presentaran al mismo tiempo una seguridad elevada y un
rendimiento de filtración de sangre elevado.
\vskip1.000000\baselineskip
Son objetivos de la presente invención dar a
conocer un material de filtro para la eliminación selectiva de
leucocitos, un aparato de filtro para la eliminación selectiva de
leucocitos, y un sistema para la eliminación selectiva de
leucocitos, utilizando un polímero que tiene una propiedad de
elución extremadamente baja y una biocompatibilidad excelente, útil
como filtro para la eliminación selectiva de leucocitos, que puede
eliminar selectivamente leucocitos de diferentes sangres,
particularmente de sangre completa, mientras que evita en lo
posible la adsorción las plaquetas. El polímero, que se puede
utilizar de forma eficaz para la transfusión de plaquetas o la
circulación extracorpórea para la eliminación de leucocitos,
destaca en biocompatibilidad, presenta sólo una baja adsorción las
plaquetas y tiene una propiedad de elución baja.
Como resultado de amplios estudios, los
presentes inventores han encontrado que un polímero que comprende
una unidad que se origina a partir de un monómero polimerizable que
tiene una cadena de óxido de polialquileno, una unidad que se
origina a partir de un monómero polimerizable que tiene un grupo
hidrofóbico y una unidad que se origina a partir de un monómero
polimerizable que tiene un grupo hidroxilo en una proporción
específica presenta de forma sorprendente una propiedad de elución
increíblemente baja, una biocompatibilidad excelente, una adsorción
particularmente baja a las plaquetas y una capacidad de eliminación
selectiva de leucocitos excelente. Este descubrimiento ha conducido
a la finalización de la presente invención.
Específicamente, la presente invención da a
conocer un material de filtro para la eliminación selectiva de
leucocitos en el que está presente un polímero biocompatible que
comprende el 8-45% molar de una unidad que se
origina a partir de un monómero polimerizable que tiene una cadena
de óxido de polialquileno, el 30-90% molar de una
unidad que se origina a partir de un monómero polimerizable que
tiene un grupo hidrofóbico, y el 2-50% molar de una
unidad que se origina a partir de un monómero polimerizable que
tiene un grupo hidroxilo, como mínimo, sobre la superficie de un
cuerpo de apoyo de filtro.
En la presente invención, se ha confirmado que
se obtiene una propiedad de elución más excelente si el peso
molecular promedio en peso de polímero se encuentra en el intervalo
desde 100.000 hasta 3.000.000. La presente invención también se
refiere un aparato de filtro para la eliminación selectiva de
leucocitos que comprende el material de filtro de la presente
invención empaquetado en un contenedor que tiene, como mínimo, un
puerto de entrada de sangre y un puerto de salida de sangre.
Además, la presente invención se refiere a un
sistema para la eliminación selectiva de leucocitos que comprende
aparato de filtro para la eliminación selectiva de leucocitos de la
presente invención.
Las realizaciones preferentes son evidentes a
partir de las reivindicaciones dependientes.
La figura 1 es una vista en sección transversal
del aparato de filtro para la eliminación de leucocitos de la
presente invención.
La figura 2 es un dibujo esquemático que muestra
una realización del sistema para la eliminación selectiva de
leucocitos de la presente invención.
La cadena de óxido de polialquileno utilizada en
la presente invención se refiere a una estructura que se repite en
la que un grupo alquilo y un átomo de oxígeno se enlazan de forma
alterna. Son preferentes las cadenas de óxido de polialquileno con
el grupo alquilo que tiene 2-4 átomos de carbono,
tal como una cadena de óxido de polietileno, una cadena de óxido de
polipropileno y una cadena de óxido de polibutileno. La cadena de
óxido de polialquileno en el polímero presenta un elevado efecto de
prevención de la adsorción de plaquetas debido a la extraordinaria
compatibilidad con la sangre que tiene la cadena de óxido de
polialquileno.
El número de repeticiones de la cadena de óxido
de alquileno utilizado en la presente invención es,
preferentemente, de 2 a 10. Si el número de repeticiones es
inferior a 2, es difícil obtener suficiente efecto de prevención de
la adsorción de plaquetas. Si el número de repeticiones es superior
a 10, el polímero se vuelve menos adhesivo al cuerpo de apoyo del
filtro, aumentando, de este modo, la tendencia del polímero a eluir
más fácilmente. El número de repeticiones es, preferentemente, de 2
a 6, y más preferentemente, de 2 a 4.
Entre los ejemplos del monómero polimerizable
que tiene la cadena de óxido de polialquileno se incluyen, aunque
no existe limitación los mismos, (met)acrilato de
metoxidietilen glicol, (met)acrilato de etoxidietilen glicol,
(met)acrilato de metoxidipropilen glicol,
(met)acrilato de etoxidipropilen glicol, (met)acrilato
de metoxitrietilen glicol, (met)acrilato de
metoxitripropilien glicol, (met)acrilato de etoxitrietilen
glicol, (met)acrilato de etoxitripropilen glicol,
(met)acrilato de metoxitetraetilen glicol,
(met)acrilato de metoxitetrapropilen glicol,
(met)acrilato de etoxitetraetilen glicol,
(met)acrilato de etoxitetrapropilen glicol, metoxidietilen
glicol vinil éter, etoxidietilen glicol vinil éter, metoxitrietilen
glicol vinil éter, y etoxitrietilen glicol vinil éter. De éstos,
debido a su elevado efecto de prevención de la adsorción de
plaquetas, se utilizan preferentemente (met)acrilatos que
tienen una cadena de polietilen glicol, tal como
(met)acrilato de metoxidietilen glicol, (met)acrilato
de etoxidietilen glicol, (met)acrilato de metoxitrietilen
glicol, (met)acrilato de etoxitrietilen glicol,
(met)acrilato de metoxitetraetilen glicol, y
(met)acrilato de etoxitetraetilen glicol. El
(met)acrilato de metoxidietilen glicol es el más preferente,
desde el punto de vista de fácil disponibilidad, facilidad de
manipulación, facilidad de polimerización, y similares. En la
presente invención, (met)acrilato se refiere a acrilato o
metacrilato, o bien a ambos.
Es necesario que el polímero utilizado en el
material de filtro de la presente invención contenga la unidad que
se origina a partir del monómero polimerizable que tiene una cadena
de óxido de polialquileno en una cantidad desde el 8% molar hasta
el 45% molar. Si es inferior al 8% molar, el efecto de prevención
de la adsorción de plaquetas de la cadena de óxido de polialquileno
es insuficiente, dando como resultado un rendimiento de
recuperación de plaquetas reducido. Si es superior al 45% molar, la
hidrofobicidad del polímero disminuye, dando lugar a un aumento de
la facilidad de elución del polímero cuando entra en contacto con
una solución acuosa, tal como sangre. La cantidad de la unidad es,
preferentemente, del 20% molar al 40% molar, y más preferentemente,
del 25% molar al 35% molar.
El término "unidad" en la presente
invención se refiere a una unidad de repetición mínima en una
molécula de polímero que se origina a partir de los respectivos
monómeros polimerizables. Por ejemplo, en el caso de la
polimerización de adición de un monómero polimerizable de un
compuesto vinílico con la fórmula CH_{2} = CXY (en la que X es H
o un sustituyente diferente de H e Y es un sustituyente diferente
de X) mediante la simple apertura del doble enlace, la anidad de
repetición mínima es -(CH_{2} - CXY)-. En el caso en que el
polímero se sintetiza mediante policondensación a partir de un
polímero precursor de fórmula A-(R)-B, en la que R
indica una parte no liberada en la polimerización y A y B son
partes liberables durante la reacción de polimerización, -(R)- es
la unidad de repetición mínima.
El término "monómero polimerizable que tiene
un grupo hidra óbito" en la presente invención se refiere a un
monómero polimerizable que tiene una solubilidad en agua a 20ºC del
0% en peso o más e inferior al 50% en peso, y que no contiene una
cadena de óxido de polialquileno ni un grupo hidroxilo en la
molécula. La unidad que se origina a partir de un monómero
polimerizable que tiene un grupo hidrofóbico provoca el efecto de
disminuir la solubilidad del polímero en una solución acuosa,
evitando la elución del polímero y aumentando el rendimiento de
eliminación de leucocitos.
La solubilidad se puede determinar mediante un
método conocido, tal como un método del punto de rocío, análisis
térmico, método eléctrico que comprende la medición de la fuerza
electromotriz o la conductividad eléctrica de la solución, análisis
por cromatografía de gases, y un método trazador, en el caso de que
el monómero sea un sólido. Cuando el monómero es un líquido, la
solubilidad se puede determinar, además de con los métodos
aplicados a un monómero sólido, mediante un método de capacitancia,
método de dispersión de luz, método de presión de vapor, o
similares, todos los cuales se conocen en la técnica. Como método
más simple, cuando el monómero tiene un punto de ebullición
suficientemente más alto que el punta de ebullición del agua, se
puede utilizar un método de vaporización del agua a partir de una
solución saturada del monómero y la medición del peso del
residuo.
Como ejemplos de los monómeros polimerizables
mencionados anteriormente que tienen un grupo hidrofóbico se pueden
mencionar estireno, metilestireno, (met)acrilato de butilo,
(met)acrilato de isobutilo, (met)acrilato de propilo,
(met)acrilato de isopropilo, (met)acrilato de etilo,
(met)acrilato de metilo, (met)acrilato de fenilo,
(met)acrilato de etilhexilo, y acetato de vinilo. De éstos,
son preferentes, debido a sus propiedades de ser adecuadamente
hidrofóbicos y fácilmente polimerizables, los (met)acrilatos
de alquilo, tales como (met)acrilato de butilo,
(met)acrilato de isobutilo, (met)acrilato de propilo,
(met)acrilato de isopropilo, (met)acrilato de etilo,
y (met)acrilato de metilo. El (met)acrilato de metilo
es el más preferente desde el punto de vista de una seguridad
biológica elevada.
Es necesario que el polímero de la presente
invención contenga la unidad que se origina partir del monómero
polimerizable que tiene un grupo hidrofóbico en una cantidad desde
el 30% molar hasta el 90% molar. Si es inferior al 30% molar, la
hidrofobicidad del polímero disminuye, dardo lugar a un aumento de
la facilidad de elución del polímero cuando se pone en contacto con
una solución acuosa, tal como sangre. Si es superior al 90% molar,
la hidrofobicidad del polímero aumenta, dando lugar a una adsorción
de plaquetas aumentada en la superficie del material de filtro. La
cantidad de la unidad es, preferentemente, desde el 35% molar hasta
el 80% molar, y más preferentemente, desde el 40% molar hasta el
70% molar.
El término "monómero polimerizable que
contiene un grupo hidroxilo", tal como se utiliza en la presente
invención, se refiere a un monómero polimerizable que tiene un
grupo hidroxilo, pero que no contiene una cadena de óxido de
polialquileno en la molécula. Por ejemplo, se utilizan,
preferentemente, monómeros polimerizables que contienen un grupo
alquil hidroxilo, tales como (met)acrilato de
2-hidroxietilo, (met)acrilato de
2-hidroxipropilo, (met)acrilato de
3-hidroxipropilo, (met)acrilato de
2-hidroxiisobutilo, (met)acrilato de
3-hidroxiisobutilo, (met)acrilato de
2-hidroxibutilo, (met)acrilato de
3-hidroxibutilo, y (met)acrilato de
4-hidroxibutilo.
Es necesario que el polímero de la presente
invención contenga la unidad que se origina a partir del monómero
polimerizable que tiene un grupo hidroxilo en una cantidad desde el
2% molar hasta el 50% molar. Si. es inferior al 2% molar, la
hidrofilicidad del polímero disminuye, dando lugar a una adsorción
de plaquetas aumentada en la superficie del material de filtro. Si
es superior al 50% molar, la hidrofobicidad del polímero disminuye,
dando lugar a una fácil elución del polímero cuando se pone en
contacto con una solución acuosa, tal como sangre. La cantidad de
unidad es, preferentemente, desde el 5% molar hasta el 40% molar, y
más preferentemente, desde el 10 melar hasta el 30% molar.
La proporción de contenido de a unidad que se
origina a partir del monómero polimerizable que tiene un grupo
hidroxilo respecto a la unidad que se origina a partir del monómero
polimerizable que tiene un grupo hidrofóbico en el polímero de la
presente invención es, preferentemente, de 0,05 a 1. La proporción
de contenido en la presente invención es un valor obtenido
dividiendo el contenido de moles la unidad que se origina a partir
del monómero polimerizable que tiene in grupo hidroxilo entre el
contenido de moles de la unidad que se origina a partir del
monómero polimerizable que tiene un grupo hidrofóbico en el
polímero. Si la proporción de contenido es inferior a 0,05, la
hidrofilicidad aportada por les grupos hidroxilo se encela por los
grupos hidrofóbicos y la hidrofilicidad del polímero disminuye,
dando lugar a una adsorción de plaquetas aumentada en la superficie
del material de filtro. Si es superior a 1, el efecto preventivo de
elución de los grupos hidrofóbicos se cancela por los grupos
hidroxilo y la hidrofobicidad del polímero disminuye, dando lagar a
una elución fácil del polímero cuando entra en contacto con una
solución acuosa, tal como sangre. La proporción de contenido es,
preferentemente, de 0,1 a 0,9, y más preferentemente, de 0,15 a
0,8.
El monómero polimerizable que tiene un grupo
hidroxilo utilizado en el polímero de la presente invención,
preferentemente, tiene una solubilidad en agua a 20ºC en el
intervalo del 3% en peso o más, pero inferior al 50% en peso.
Debido a las propiedades hidrofílicas e hidrofóbicas moderadas, el
monómero polimerizable que tiene un grupo hidroxilo aporta al
polímero el efecto de prevención de la adsorción de plaquetas y de
proteínas hidrofóbicas junto con la cadena de óxido de
polialquileno y, al mismo tiempo, el efecto de prevención de la
elución del polímero junto con una unidad que se origina a partir
de monómeros polimerizables fuertemente hidrofóbicos. Como monómero
polimerizable que contiene un grupo hidroxilo y que tiene la
solubilidad mencionada anteriormente, se utiliza, preferentemente,
debido a sus propiedades hidrofílicas e hidrofóbicas moderadas,
(met)acrilato de 2-hidroxipropilo y
(met)acrilato de 2-hidroxiisobutilo. De
éstos, el (met)acrilato de
2-hidroxiisobutilo es el más preferente desde el
punto de vista de propiedades hidrofílicas moderadas.
La composición química de un polímero se puede
determinar mediante la extracción del polímero utilizando un
disolvente adecuado que no disuelva el cuerpo de apoyo del filtro y
el análisis del extracto mediante un método conocido, tal como
espectro de RMN, espectro de IR, y análisis elemental. Cuando el
polímero no se disuelve, además de los métodos mencionados
anteriormente, se pueden utilizar métodos analíticos de superficie
conocidos, tales como espectroscopía fotoelectrónica de rayos X
(ESCA) y un método de utilización de un microanalizador de rayos X
son sonda electrónica (EPMA).
El polímero de la presente invención,
preferentemente, tiene un peso molecular promedio en peso (Mw) en
el intervalo de 100.000 a 3.000.000. Si el Mw es inferior a 100.000,
el peso molecular del polímero disminuye cuando el polímero se
esteriliza, particularmente mediante radiación, dando lugar a un
aumento de la cantidad eluída. Si el peso molecular promedio en
pese (Mw) es superior a 3.000.000, la solubilidad del polímero en
el disolvente utilizado para el recubrimiento disminuye. Además,
puede darse el caso de que el polímero no se pueda producir de una
forma estable. El Mw es, más preferentemente, de 150.000 a
2.000.000, y el rías preferente, de 200.000 a 1.500.000. Aunque el
Mw se puede determinar mediante varios métodos conocidos, en la
presente invención se utilizó un valor determinado mediante
cromatografía de permeación en gel (abreviado a partir de ahora
como GPC), utilizando metacrilato de polimetilo como patrón.
El polímero puede ser un copolímero aleatorio o
bien un copolímero en bloque. Sin embargo, el copolímero aleatorio
es rías preferente, dado que el copolímero en bloque puede tener
una tendencia a disminuir la solubilidad en un disolvente cuando se
utiliza para recubrir y puede tener tendencia a perjudicar la
uniformidad del recubrimiento debido a la formación de micelas en
la solución. En cuanto a la forma de la cadena de molécula de
polímero, un polímero lineal es más preferente, dado que un
polímero ramificado puede tener tendencia a disminuir la solubilidad
en un disolvente cuando se utiliza para el recubrimiento y puede
tener tendencia a perjudicar la uniformidad del recubrimiento
debido a la formación de micelas en la solución.
El polímero de la presente invención es,
preferentemente, un polímero de tipo no iónico. El término "no
iónico" se refiere a las propiedades del polímero ni anionizado
ni cationizado por la sangre o un fluido corporal alrededor de pH
neutro, y que no contiene en la molécula ni un grupo funcional
cargado negativamente, tal como un grupo ácido carboxílico, grupo
sulfónico, grupo fosfato y grupo fenol ni un grupo funcional
cargado positivamente, tal como un grupo amino primario, grapa
amino secundario, grupo amino terciario, grupo amonio cuaternario,
grupo piridilo y grupo imidazoílo.
Se dice que en la superficie de un material
cargado negativamente el factor de coagulación XII se activa y
causa una reacción en cadena en el sistema de coagulación. Por otra
parte, una superficie de un material cargado positivamente tiende a
adsorber las células sanguíneas, tales como eritrocitos, plaquetas y
leucocitos debido a la interación electrostática con la carga
negativa de la superficie celular. La patente JP-A
06-51060 da a conocer una tecnología para la
eliminación de leucocitos de forma más eficaz mientras se evita la
adsorción de plaquetas aportando una superficie con una ligera
carga positiva. Sin embargo, no es deseable la interacción
electrostática, dado que es necesario un rendimiento de
recuperación de plaquetas elevado para el procesamiento de una gran
cantidad de sangre. Cuando el polímero es no iónico, el sistema de
coagulación se activa sólo ligeramente, de modo que se puede
conseguir un rendimiento de recuperación de plaquetas estable
incluso aunque el polímero se utilice para un tratamiento de sangre
a gran escala, tal como la circulación extracorpórea.
Para sintetizar el polímero de la presente
invención se puede utilizar un método común de polimerización. Se
puede utilizar polimerización por adición (polimerización de
vinilo) y similares, implicando reacciones de cadena;
polimerización de isomerización; y reacción de disociación,
poliadición, policondensación, policondensación por adición, y
similares implicando reacciones consecutivas. En la producción del
polímero se pueden utilizar radicales, iones y similares como
transportadores de cadena.
En cuanto al tipo de polimerización, se pueden
mencionar la polimerización en solución, polimerización en masa,
polimerización por deposición, polimerización en emulsión y
similares. De éstas, es preferente la polimerización en solución. A
continuación se da un ejemplo del método de polimerización. Se
añade mediante goteo una solución de etanol en la cual se ha
disuelto cada monómero o un iniciador diazo a etanol utilizado como
disolvente de polimerización, mientras se agita a una temperatura
constante por debajo del punto de ebullición del etanol en una
atmósfera de nitrógeno. Es adecuado añadir un estabilizante y
similares. Se mide el rendimiento de la reacción y se confirma
utilizando un método conocido, tal como cromatografía de gases.
El producto de la reacción se puede purificar
mediante un método químico de purificación común para eliminar
impurezas, tales como componentes de bajo peso molecular y
materiales que no han reaccionado, que están contenidos en el
polímero en la solución de reacción que contiene el polímero. Como
método de purificación, se puede mencionar un método que comprende
la disolución de la mezcla reacción en un disolvente que disuelve
las impurezas pero que no disuelve el polímero, para provocar la
precipitación del polímero y la separación del precipitado
(polímero) mediante filtración, decantación o similares. Tal como
se requiere, el precipitado se lava con un disolvente con una
solubilidad ligeramente superior a la del disolvente de
precipitación (una mezcla del disolvente de precipitación y un
disolvente, por ejemplo) y el precipitado se seca bajo presión
reducida hasta que el peso del precipitado se vuelve constante,
obteniendo, de este modo, un polímero sólido.
El polímero puede aumentar la biocompatibilidad
de un material médico cuando recubre la superficie. Por ejemplo, el
polímero se puede utilizar para órganos artificiales, tales como un
vaso sanguíneo artificial, un riñón artificial, un hígado
artificial, filtros de separación de células sanguíneas, tales como
un filtro para la eliminación de leucocitos, una membrana de
diálisis, material antitrombos, y similares. En particular, dado
que el polímero puede eliminar selectivamente leucocitos de la
sangre, es decir, una preparación de eritrocitos concentrada, una
preparación de plaquetas concentrada, una preparación de plasma
pobre en plaquetas, sangre periférica, soluciones con células
flotantes que contienen leucocitos y plaquetas, tales como la linfa
y el fluido medular, el polímero puede utilizarse de forma adecuada
como filtro para la eliminación selectiva de leucocitos de Las
preparaciones sanguíneas y como filtro para la eliminación
selectiva de leucocitos para la circulación extracorpórea. Además,
dado que el polímero se eluye sólo con dificultad y estable aunque
se ponga en contacto con una solución acuosa durante un largo
periodo de tiempo, el polímero se puede utilizar, de forma más
adecuada, para un aparato para la eliminación selectiva de
leucocitos para la circulación extracorpórea, diseñado para procesar
una gran cantidad de sangre.
La presente invención da a conocer un material
de filtro para la eliminación selectiva de leucocitos,
caracterizado por tener el polímero biocompatible de la presente
invención presente, como mínimo, sobre la superficie del cuerpo de
apoyo del filtro. El término "tener el polímero presente, como
mínimo, sobre la superficie del material de apoyo" indica que el
polímero esta presente sobre la superficie del material de apoyo,
recubriendo sustancialmente la superficie. Cono método para tener
el polímero presente sobre la superficie del filtro, se pueden
utilizar métodos conocidos, tales como un método, para el
recubrimiento o deposición e insolubilización del polímero sobre el
cuerpo de apoyo del filtro, un método de separación de fases del
polímero del cuerpo de apoyo del filtro durante la fabricación, y
similares. De éstos, el método de recubrimiento es el más
preferente, debido a la fácil aplicación industrial y la excelente
estabilidad de rendimiento.
Dado que el polímero utilizado para el material
de filtro para la eliminación selectiva de leucocitos de la
presente invención entra en contacto con fluidos corporales, tales
como sangre, es deseable que el polímero tenga una solubilidad en
agua extremadamente baja. A efectos de evitar el desprendimiento
del polímero del material de apoyo del filtro, es deseable que el
polímero tenga una adsorción elevada con el material de apoyo del
filtro. Como índice de solubilidad del polímero en agua y de
adsorción del polímero con el cuerpo de apoyo del filtro, se puede
utilizar el valor \delta del parámetro de solubilidad descrito en
J. H. Hildebrand y R. L. Scott, "La Solubilidad de los no
Electrolitos" ("The Solubility of
Nonelectrclytes"), 3a ed. (Dover Pub., Nueva York). En
general, cuanto más parecido es el valor \delta de dos
sustancias, más fuerte es la adsorción y más alta es la solubilidad
de las dos sustancias. Por lo tanto, el polímero utilizado para el
material de filtro para la eliminación selectiva de leucocitos de
la presente invención debería tener, preferentemente, un valor
\delta que difiera en gran medida del valor \delta (23,3) del
agua y que sea parecido al valor \delta del cuerpo de apoyo del
filtro. Una combinación del polímero que tiene el valor \delta en
el intervalo desde 10,0 hasta 11,5 y el cuerpo de apoyo del filtro
que tiene un valor \delta en el intervalo desde 7,0 hasta 15,0
puede producir un material de filtro con una solubilidad en agua
extremadamente baja sin riesgo de desprendimiento del polímero del
cuerpo de apoyo del filtro. Una combinación más preferente es un
valor \delta del polímero de 10,0 a 10,8 y un valor \delta el
cuerpo de apoyo del filtro de 7,2 a 14, 5, y una combinación aún más
preferente es el valor \delta del polímero de 10,0 a 10,5 y el
valor \delta del cuerpo de apoyo del filtro de 7,5 a 14,0.
Los valores \delta se pueden calcular según la
fórmula (1) siguiente, la cual se describe En el documento
anterior:
(1)\delta =
(E/V)^{1/2}
en la que E es la energía cohesiva
(cal mol^{-1}) y V es el volumen molar (cm^{3}
mol^{-1}).
"El Manual o Adhesión" ("The
Adhesion Handbook"), Segunda Edición, editado por la
Sociedad de Adhesión de Japón (THE NIKKAN KOGTO SHIMBUN, LTD.)
describe los valores \delta de disolventes y polímeros medidos
hasta el momento. Se pueden utilizar estos valores. Cuando los
valores E y V en la fórmula (1) no se conocen, se pueden calcular
los valores \delta a partir de la estructura molecular, según el
método de Fedors descrito en Kozo Shinoda, "Solución y
solubilidad" ("Solution and Solubility"), Maruzen
Co., Ltd. Utilizando el método de Fedors, se integran los valores e
(energía cohesiva (cal mol^{-1})) y los valores (volumen molar.
(cm^{3} mol^{-1})) que se han calculado mediante el método de
Fedors para diversas unidades estructurales de compuestos, a efectos
de determinar el valor E y el valor V del compuesto. El valor
\delta del compuesto se calcula entonces utilizando el valor E y
el valor V. El valor \delta resultante es muy parecido al valor
medido.
Cualquier material que tenga un valor \delta
en el intervalo anterior y que no dañe las células sanguíneas se
puede utilizar como cuerpo de apoyo del filtro para el material de
filtro para la eliminación selectiva de leucocitos de la presente
invención sin limitaciones específicas. Como ejemplos de dicho
material, se pueden mencionar poliéster, poliolefina,
poliacrilonitrilo, poliamida, poliestireno, (met)acrilato de
polialquilo, cloruro de polivinilo, policloropreno, poliuretano,
alcohol polivinílico, acetato de polivinilo, polisulfona, poliéter
sulfona, polibutadieno, copolímero de
butadieno-acrilonitrioa, copolímero de
estireno-butadieno, copolímero de
etileno-alcohol vinílico, diacetato de celulosa, y
etil celulosa. De éstos, son preferentes el poliéster y la
poliolefina, con un material de filtro orgánico particularmente
preferente que es el poliéster.
Para recubrir el cuerpo de apoyo del filtro con
el polímero se pueden utilizan diversos métodos sin limitaciones
específicas, siempre que la superficie del cuerpo de apoyo del
filtro se pueda recubrir con un cierto grado de uniformidad sin que
los poros en el cuerpo de apoyo del filtro obturen excesivamente.
Entre los ejemplos de métodos para recubrir el cuerpo de apoyo del
filtro con el polímero se incluyen, aunque no existe limitación a
los mismos, un método para la impregnación del cuerpo de apoyo del
filtro con una solución del polímero, un método de pulverización de
la solución del polímero, sobre el cuerpo de apoyo del filtro, y un
método de aplicación o de transcripción de la solución del polímero
al cuerpo de apoyo del filtro, utilizando un rodillo de rotograbado
o similar. De estos métodos, son preferentes el método de
impregnación del cuerpo de apoyo del filtro con una solución del
polímero y el método de aplicación o de transcripción de la
solución del polímero al cuerpo de apoyo del filtro utilizando un
rodillo de rotograbado, debido a la excelente productividad en
continuo y al bajo coste.
Como disolventes para disolver el polímero en el
proceso de recubrimiento se pueden utilizar varios disolventes que
no disuelven el cuerpo de apoyo del filtro a un grado perceptible,
sin limitaciones específicas. Entre los ejemplos de un disolvente
de este tipo se incluyen, aunque no existe limitación a los mismos,
agua y soluciones acuosas que contienen una sal inorgánica,
alcoholes, tales como metanol, etanol, propanol y butanol, cetonas,
tales como acetona y metil etil cetona, ésteres, tales como acetato
de metilo y acetato de etilo, hidrocarburos, tales como benceno y
ciclohexano, hidrocarburos halogenados, tales como cloroformo y
diclorometano, disolventes que contienen azufre, tales como dimetil
sulfóxido, amidas, tales como dimetilformamida y dimetilacetamida,
y mezclas de dos o más de los disolventes anteriores en la medida
de lo posible.
La concentración de la solución del polímero
utilizada para el recubrimiento es, preferentemente, del 0,001% en
peso o más, pero inferior al 10% en peso. Si la concentración es
inferior al 0,001% en peso, la cantidad de polímero sobre la
superficie es demasiado pequeña para que el material de filtro
muestre suficiente biocompatibilidad, tal como propiedades de
prevención de la adsorción de plaquetas. Por el contrario, si la
concentración es del 10% en peso o más, no sólo la solución tiene
una viscosidad demasiado grande para la fácil manipulación, sino
que además, las propiedades superficiales del material médico se
pueden ver significativamente afectadas. Adicionalmente, una
concentración tan alta es demasiado cara para utilizarse de forma
eficaz. Por estos motivos, la concentración del polímero es, más
preferentemente, del 0,005% en peso o más, pero inferior al 7% en
peso, y la más preferente, del 0,01% en peso o más, pero inferior al
5% en peso. La cantidad del polímero soportado sobre el material de
apoye del filtro es, preferentemente, del 0,001% en peso o más,
pero inferior al 10% en peso. Si es inferior al 0,001% en peso, la
cantidad del polímero sobre la superficie es demasiado pequeña para
que el material de filtro muestre suficiente biocompatibilidad, tal
como propiedades de prevención de la adsorción de plaquetas. Si es
del 10% en peso o más, la cantidad del polímero es excesiva, dando
lugar a una fácil elución del polímero cuando el material de filtro
entra en contacto con una solución acuosa, tal como sangre. Una
cantidad del polímero más preferente es el 0,005% en peso o más,
pero inferior al 7% en peso, siendo la cantidad del 0,01% en peso o
más, pero inferior al 5% la más preferente.
Para secar la solución del polímero después del
recubrimiento, se puede utilizar un método que comprende la
eliminación del exceso de disolvente mediante compresión mecánica,
por gravedad, o mediante la inyección de gas, tal como aire o
nitrógeno, y el tratamiento del material recubierto en aire seco o
bajo presión reducida a temperatura atmosférica o con calefacción.
La adsorción del polímero al cuerpo de apoyo del filtro aún se
puede aumentar más mediante un tratamiento con calor después del
recubrimiento con el polímero o mediante el procesado posterior de
irradiación de la superficie recubierta con rayos \gamma, haces de
electrones o similares. El proceso de recubrimiento se puede llevar
a cabo durante la fabricación del cuerpo de apoyo del filtro o bien
después de la fabricación del cuerpo de apoyo del filtro.
El porcentaje de recubrimiento con el polímero
en toda la superficie del material de filtro para la eliminación de
leucocitos de la presente invención es, preferentemente, del 40% al
90%. El porcentaje de recubrimiento en la presente invención se
refiere a la proporción del área recubierta con el polímero en toda
el área superficial del cuerpo de apoyo del filtro. Si el
porcentaje de recubrimiento es inferior al 40% en peso, la cantidad
del polímero sobre la superficie es demasiado pequeña para que el
material de filtro presente suficiente biocompatibilidad, tal como
propiedades de rechazo de adsorción de plaquetas. Si es del 90% o
más, la cantidad del polímero es excesiva, dando lugar a una fácil
elución del polímero cuando el material de filtro entra en contacto
en una solución acuosa, tal como sangre. Un intervalo más
preferente de porcentaje de recubrimiento es del 45% al 85%, siendo
un intervalo todavía más preferente del 50% al 80%.
El porcentaje de recubrimiento se puede
determinar utilizando un analizador utilizado comúnmente para
analizar superficies polarizadas, tal como un analizador XPS
(Espectroscopia Fotoelectrónica de rayos X) o un analizador
TOF-SIMS (Espectrometría de Masas de Iones
Secundarios con detección de Tiempo de Vuelo). Cuando se pueden
utilizar dos o más métodos analíticos para la medición del
porcentaje de recubrimiento superficial, el valor se obtiene
utilizando la XPS y similares, en cuyo método se considera que es
correcta la información a nivel de varias decenas hasta cien
\ring{A} (ángstrom) de la superficie, pero cuando las propiedades
superficiales permiten sólo la medición del porcentaje de
recubrimiento mediante el método SIMS o similar, el valor obtenido
utilizando uno de estos métodos se considera que es correcto.
El método de medición del porcentaje de
recubrimiento se describirá a continuación con más detalle,
mediante un ejemplo específico.
En el caso de un material de filtro preparado
mediante el recubrimiento de un cuerpo de apoyo de filtro de una
tela no tejida de tereftalato de polietileno con un polímero hecho
de tres monómeros polimerizables (metacrilato de metoxidietilen
glicol, metacrilato de metilo, y metacrilato de
2-hidroxiisobutilo), el porcentaje de recubrimiento
se puede determinar de la siguiente forma.
Se miden los espectros C1s del material de
filtro recubierto con el polímero, el cuerpo de apoyo del filtro y
el polímero mediante un analizador XPS. Se determina la relación de
alturas del pico (286 eV) que se origina a partir del componente
-C-O- y el pico (289 eV) que se origina a partir del
componente -C-O-O- en el espectro
C1s. La relación de alturas en la presente invención se refiere al
valor calculado dividiendo la altura del pico que se origina a
partir del componente -C-O- entre la altura del pico
que origina a partir del componente
-C-O-O-. En el caso del tereftalato
de polietileno, dado que la estructura molecular no tiene el
componente -C-O- diferente del que se origina a
partir del componente -C-O-O-, la
altura del pico que se origina a partir del componente
-C-O- es equivalente a la altura del pico que se
origina partir del componente
-C-O-O-. Por lo tanto, la relación
de alturas del tereftalato de polietileno es 1. Dado que el
polímero anterior contiene el componente -C-O-
diferente del que se origina a partir del componente
-C-O-O-, la relación de alturas
aumenta en proporción al contenido del polímero. El porcentaje de
recubrimiento se puede determinar utilizando la fórmula
siguiente.
Porcentaje de
recubrimiento =
(A-B)/(C-B)
en la que A es la relación de
alturas del material de filtro recubierto con el polímero, B es la
relación de alturas del cuerpo de apoyo del filtro, y C es la
relación de alturas del
polímero.
Para aumentar el contacto con la sangre en fase
líquida, es deseable que el material de filtro para la eliminación
selectiva de leucocitos de la presente invención tenga una
configuración con un área superficial grande. Por ejemplo, se
pueden mencionar materiales estructurales fibrosos en forma de una
tela no tejida, fibra, algodón, hilo, haz, pantalla y tela;
materiales porosos poliméricos, tales como una esponja; y otros
materiales estructurales en forma de partículas, gel, y similares.
La tela y la tela no tejida son particularmente preferentes como
medio de separación en vista de la adsortividad de los leucocitos y
la facilidad de manipulación. La tela no tejida es la más
preferente debido a la capacidad de facilitar muchos puntos de
contacto con los leucocitos.
En el caso de un material estructural fibroso,
tal como una tela no tejida, es importante el diámetro de fibra
promedio, que influye en la capacidad de adsorción. Si el diámetro
de fibra es demasiado grande, la cantidad y porcentaje de adsorción
de leucocitos disminuye; si es demasiado pequeño, la cantidad de
adsorción de plaquetas aumenta. El diámetro de fibra promedio del
material de filtro de la presente invención es, preferentemente, de
0,5 \mum a 50 \mum, y zar preferentemente, de 1 \mum a 40
\mum, y el más preferente, de 2 \mum a 35 \mum.
El diámetro de fibra promedio en la presente
invención se determina de la siguiente manera. Se toma una muestra
de una parte que se considera que es sustancialmente homogénea de
uno o más trozos de telas que forman el material de filtro y se
fotografían utilizando un microscopio electrónico de barrido o
similar. Para tomar las muestras, un área en sección transversal de
la tela eficaz en la filtración se divide en cuadrados con una
longitud de ludo de 0,5 cm y se toman muestras de 6 cuadrados
aleatoriamente. En la toma de muestras aleatorias, cada cuadrado
disidido se numera y el número requerido de cuadrados se selecciona
utilizando una tabla de números aleatorios, por ejemplo. Se toman
fotografías con un aumento de 2.500 en tres o más, preferentemente,
cinco o más lugares de cada cuadrado que se ha tomado como muestra.
Se hacen fotografías de las partes centrales y de ras zonas
circundantes de cada cuadrado que se ha tomado como muestra hasta
que el número total de fibras que se fotografían es 100. El
diámetro en la presente invención se refiere a la anchura de la
fibra en la dirección perpendicular al eje de la fibra. A
continuación, se determina el diámetro promedio dividiendo la suma
de los diámetros de todas las fibras medidas entre el número de
fibras. Sin embargo, los datos obtenidos se excluyen, por ejemplo,
en los casos en los que fibras múltiples se solapan impidiendo la
medición de una fibra que se esconde detrás de otra fibra, fibras
múltiples se fusionan en una fibra con un diámetro más grande
debido a la fusión u otro motivo, o existen fibras con diámetros
marcadamente diferentes.
La presente invención también da a conocer un
aparato de filtro para la eliminación selectiva de leucocitos
caracterizado por tener el material de filtro de la presente
invención colocado en un contenedor que tiene, como mínimo, un
puerto de entrada y un puerto de salida. No existen limitaciones
específicas en cuanto a la forma del contenedor, siempre que el
contenedor tenga un puerto de entrada y un puerto de salida. Entre
los ejemplos de un contenedor de este tipo se incluyen un
contenedor en el cual el material de filtro para la eliminación
selectiva de leucocitos se puede colocar en forma de capas
laminadas, un contenedor cilíndrico, un contenedor columnar, tal
como un prisma triangular, un prisma cuadrático, un cilindro
hexagonal, y un cilindro octogonal, un contenedor en el cual puede
colocar el material de filtro para la eliminación selectiva de
leucocitos enrollado en forma de un cilindro, y un contenedor
cilíndrico que permite que la sangre fluya para entrar en el
cilindro desde el perímetro exterior, dirigiendo la sangre al área
más interna, y dejando que la sangre fluya desde un puerto de
salida. Además, se utiliza un contenedor en el cual el área en
sección transversal disminuye desde el puerto de entrada hacia el
puerto de salida.
La densidad de relleno del material de filtro
para la eliminación selectiva de leucocitos en el contenedor de la
presente invención, que se refiere al cese del material de filtro
empaquetado por unidad de volumen de contenedor, se encuentra entre
0,5 g/cm^{3} y 0,5 g/cm^{3}. Para aumentar la eficacia de la
eliminación selectiva de leucocitos, al tiempo que se asegura una
fluidez regular de la sangre evitando la obturación del filtro y
eliminando un aumento de la pérdida de presión, la densidad de
relleno se encuentra, preferentemente, entre 0,075 g/cm^{3} y 0,4
g/cm^{3}, y la más preferente, entre 0,1 g/cm^{3} y 0,35
g/cm^{3}.
A continuación se describirá, utilizando los
dibujos, una realización del aparato de filtro para la eliminación
selectiva de leucocitos de la presente invención. La figura 1 es
una vista en sección transversal de una realización del aparato de
filtro para la eliminación selectiva de leucocitos de la presente
invención.
En una realización preferente del aparato de
filtro (1) para la eliminación selectiva de leucocitos de la
presente invención, el material de filtro para la eliminación
selectiva de leucocitos se enrolla en forma de un cilindro para
aportar un filtro cilíndrico hueco (4), el cual se empaqueta en un
contenedor cilíndrico (2) con los dos extremos (5,5) sellados
herméticamente de modo que no se permita que la sangre fluya. Se
utiliza un material de sellado con excelente compatibilidad con la
sangre cuando se pone en contacto con la sangre y que tiene
propiedades de impermeabilidad a los líquidos. Se pueden utilizan
resinas sintéticas conocidas, tales como uretanos. Se puede
facilitar un puerto de entrada de sangre (3) en cualquier
localización opcional del contenedor que permita que la sangre se
procese para que se suministre al perímetro exterior o interior del
filtro cilíndrico hueco los dos extremos del cual están sellados.
Se puede facilitar un puerto de salida de la sangre (6) en
cualquier localización comunicada con el perímetro interior cuando
la sangre que se va a procesar se suministra al perímetro exterior o
cualquier localización comunicada con el perímetro exterior cuando
la sangre que se va a procesar se suministra al perímetro
interior.
\newpage
El filtro cilíndrico hueco en el aparato de
filtro para la eliminación selectiva de leucocitos de la presente
invención tiene, preferentemente, un área de filtración de la
primera capa de contacto con la sangre (4a) desde 50 cm^{2} hasta
1.000 cm^{2}. La primera capa de contacto con la sangre en la
presente invención se refiere a una parte del filtro cilíndrico
hueco con la cual la sangre que se va a procesar, suministrada
desde el puerto de entrada, entra en contacto por primera vez. La
primera capa de contacto con la sangre puede ser cualquier parte
del perímetro exterior o interior del filtro cilíndrico hueco. Se
dice que las plaquetas se unen de forma abundante con el factor de
von Willebrand a través del aceptor GFIIb/IIIa bajo una tensión
cortante elevada y para experimentar una coagulación activada. Por
lo tanto, para aumentar el porcentaje de recuperación de plaquetas,
es deseable hacer que sangre entre en contacto con la primera capa
de contacto de forma moderada a una velocidad de flujo baja. Si el
área de filtración de la primera capa de contacto con la sangre es
inferior a 50 cm^{2}, la velocidad de flujo de la sangre por
unidad de área de filtración aumenta, dando como resultado la
reducción de la velocidad de recuperación de plaquetas. Si el área
de filtración de la primera capa de contacto con la sangre es
superior a 1.000 cm^{2}, se requiere un contenedor grande para el
aparato de filtro. El área de filtración es, más preferentemente, de
80 cm^{2} a 500 cm^{2}, y aún más preferentemente, de 100
cm^{2} a 400 cm^{2}.
Desde el punto de vista de prevención de la
tensión cortante dada a las plaquetas, es preferente determinar el
área superficial específica estándar por volumen de la primera capa
de contacto con la sangre en un intervalo adecuado. El área
superficial específica estándar por volumen, tal como se utiliza en
la presente invención, se refiere al área superficial por unidad de
volumen del material de filtro y se puede medir mediante un método
conocido, tal como el método BET o el método de Langmuir. Cuando el
material de filtro es fibra, el área superficial específica
estándar por volumen se puede calcular utilizando el diámetro de
fibra promedio, la gravedad específica de la fibra y similares. El
mitro cilíndrico hueco en el aparato de filtro para la eliminación
selectiva de leucocitos de la presente invención tiene,
preferentemente, un área superficial específica estándar por
volumen de la primera capa de contacto con la sangre en un
intervalo desde 0,08 m^{2}/ml hasta 1,0 m^{2}/ml. El área
superficial específica estándar por volumen es, más
preferentemente, de 0,1 m^{2}/ml a 0,8 m^{2}/ml, y aún más
preferentemente, de 0,2 m^{2}/ml a 0,5 m^{2}/ml.
El filtro cilíndrico hueco en el aparato de
filtro para la eliminación selectiva de leucocitos de la presente
invención puede ser un rollo de un cuerpo laminado hecho de un
material de filtro y de un material de capa espaciadora, ambos, en
forma de lámina. El término "capa espaciadora" en la presente
invención se refiere a una capa de un material en el cual la sangre
puede fluir más fácilmente que en el material de filtro para la
eliminación selectiva de leucocitos. Como material de la capa
espaciadora se puede utilizar una malla gruesa de metal, resina
sintética, fibra inorgánica, o fibra sintética, tela no tejida con
un diámetro de fibra promedio más grande que el de la tela no tejida
utilizada para el filtro cilíndrico hueco, o similares. La capa
espaciadora se lamina con el material de filtro para la eliminación
selectiva de leucocitos y se enrolla en forma de un rollo de tela
para asegurar el área que permite que la sangre fluya fácilmente
entre el filtro cilíndrico hueco. Tanto el extremo inicial como el
terminal de la capa espaciadora enrollada en forma de rollo se
abren, preferentemente, al perímetro exterior y/o al perímetro
interior del filtro cilíndrico hueco para facilitar un conducto
para la sangre.
El espesor del filtro cilíndrico hueco en el
aparato de filtro para la eliminación selectiva de leucocitos de la
presente invención se encuentra, preferentemente, entre 0,6 mm y
12,0 mm. Si el espesor es inferior a 0,6 mm, la longitud de
filtración es demasiado pequeña para aportar a los componentes de
la sangre suficiente oportunidad de entrar en contacto con el
material de filtro, dando como resultado una eficacia de
eliminación de leucocitos pobre. Si el espesor es superior a 12,0
mm, la longitud de filtración es tan grande que a los componentes
de la sangre se les da demasiadas oportunidades de entrar en
contacto con el material de filtro, dando como resultado una
disminución en el porcentaje de recuperación de plaquetas. Un
intervalo de espesor más preferente del filtro cilíndrico hueco es
de 1,0 mm a 10,0 mm, con un intervalo de espesor todavía más
preferente de 1,5 mm 8,0 mm.
En el filtro cilíndrico hueco en el aparato de
filtro para la eliminación selectiva de leucocitos de la presente
invención en se puede facilitar una segunda capa de contacto con la
sangre en una parte más abajo de la primera capa de contacto con la
sangre. Dado que la segunda capa de contacto con la sangre tiene
una función de eliminar los leucocitos que no se han eliminado en
la primera capa de contacte con la sangre, la segunda capa de
contacto con la sangre debe tener un área superficial específica
estándar por volumen más grande que la de la primera capa de
contacto con la sangre. Un intervalo preferente del área
superficial específica estándar por volumen de la segunda capa de
contacto con la sangre se encuentra es desde 1,0 m^{2}/ml hasta
m^{2}/ml, y aún más preferentemente, desde 2,0 m^{2}/ml
hasta
15 m^{2}/ml.
15 m^{2}/ml.
Además, la proporción de espesores de las capas
laminadas, es decir, de la segunda capa de contacto con la sangre
respecto a la primera capa de contacto con la sangre es,
preferentemente, desde 0,2 hasta 10,0. La proporción de espesores
de las capas laminadas en la presente invención se refiere al valor
obtenido dividiendo el espesor de la primera capa de contacto con
la sangre entre el espesor de la segunda capa de contacto con la
sangre. Si la proporción de espesores de las capas laminadas es
inferior a 0,2, la longitud de filtración de la primera capa de
contacto con la sangre es pequeña comparativamente. Por lo tanto,
la primera capa de contacto con la sangre no puede atenuar
suficientemente la tensión cortante que las plaquetas reciben en la
segunda capa de contacto con la sangre, dando lugar a una
disminución en el porcentaje de recuperación de plaquetas. El
espesor de la capa laminada superior a
10,0 mm no es deseable porque el volumen de la primera capa de contacto con la sangre se vuelve grande, de modo que se requiere un contenedor grande para el aparato de filtro. Por estos motivos, el espesor de la capa laminada es, más preferentemente, de 0,3 a 8,0, y el más preferente, de 0,5 a 6,0.
10,0 mm no es deseable porque el volumen de la primera capa de contacto con la sangre se vuelve grande, de modo que se requiere un contenedor grande para el aparato de filtro. Por estos motivos, el espesor de la capa laminada es, más preferentemente, de 0,3 a 8,0, y el más preferente, de 0,5 a 6,0.
\newpage
El aparato de filtro para la eliminación
selectiva de leucocitos de la presente invención se puede
esterilizar mediante un método conocido, tal como esterilización
por radiación, esterilización con calor húmedo, esterilización
química, esterilización gaseosa, y esterilización con calor seco. La
esterilización húmeda mediante el mantenimiento del material de
filtro bajo condiciones de contenido de humedad de saturación
superior utilizando un líquido de relleno es preferente debido al
simple proceso de preparación. Un método más preferente es la
esterilización por radiación que comprende la irradiación del
material de filtro con radiación, tal como rayos y y haces de
electrones o la esterilización con calor húmedo, utilizando una
corriente de presión elevada o similares. Aunque como líquido de
relleno se puede utilizar cualquier líquido que no provoque el
deterioro del polímero, es preferente el agua o una solución acuosa
de una sustancia so1ubre en agua que tenga un riesgo mínimo de dan,
a los cuerpos vivos.
Como sustancia soluble en agua que tiene un
riesgo mínimo de daño para los cuerpos vivos, se pueden mencionar
los compuestos solubles en agua que manifiestan sólo un ligero daño
a los cuerpos vivos, por ejemplo, sales, tales como cloruro sódico,
carbonato sódico, hidrógeno carbonato sódico, fosfato sódico,
hidrogenofosfato sódico y pirosulfito sódico, y compuestos
orgánicos solubles en agua, tales como glicerol, citrato sódico,
gelatina y caseína. También se puede utilizar un compuesto que
puede ser perjudicial para los cuerpos vivos si está presente en
una gran cantidad, si dicho compuesto se puede eliminar mediante el
lavado del filtro de separación de células sanguíneas mediante el
simple procedimiento de lavado, tal como un proceso de preparación
en un grado tal, que sólo permanezca una pequeña cantidad no
perjudicial para los cuerpos vivos tras el lavado. Se puede
utilizar, muy preferentemente, un compuesto que forme fácilmente
una solución isotónica cuando se disuelva en agua. Estos compuestos
se puede utilizar individualmente, o bien en combinación de dos o
más. Entre los compuestos solubles en agua preferentes se encuentran
el cloruro sódico, carbonato sódico, hidrogenocarbonato sódico,
fosfato sódico, hidrogenofosfato sódico y pirosulfito sódico, siendo
el cloruro sódico el más preferente.
Las condiciones de contenido de humedad de
saturación o superior utilizadas en la presente invención pueden
incluir unas condiciones en las cuales el material de filtro se
sumerge completamente en agua o una solución acuosa de un compuesto
soluble en agua que tiene un riesgo mínimo para los cuerpos vivos o
unas condiciones en las cuales el material de filtro se humedece
suficientemente con anterioridad para que se humedezca hasta el
contenido de humedad de saturación o superior del material. En
resumen, es suficiente que el material de filtro esté expuesto a la
humedad en la cantidad equivalente al contenido de humedad de
saturación o superior del material de filtro sin tener en cuenta el
grado de exposición.
La concentración de la solución acuosa es,
preferentemente, del 5,0% en peso o inferior. Si la concentración
supera el 5,0% en peso, es difícil eliminar la sustancia soluble en
agua mediante el proceso de preparación. Dado que la elución del
polímero se puede evitar con un grado de seguridad muy superior a
una concentración del 0,01% en peso o más, un intervalo de
concentración más preferentes desde el 0,01% en peso al 4,0% en
peso, siendo una concentración todavía más preferente del 0,1% en
peso al 3,0% en peso.
La presente invención también da a conocer un
sistema para la eliminación selectiva de leucocitos que comprende
un medio para la liberación de sangre, un medio para la inyección
de fluido anticoagulante, y un medio de eliminación selectiva de
leucocitos que contiene el aparato de filtro para la eliminación
selectiva de leucocitos de la presente invención. El sistema para
la eliminación selectiva de leucocitos de la presente invención
puede mantener estable la capacidad de eliminación selectiva de
leucocitos al tiempo que evita la adsorción de plaquetas, aunque se
procese una cantidad grande de sangre (por ejemplo,
1-10 l).
Como medio para la liberación de sangre se puede
utilizar cualquier medio de liberación de líquidos conocido, tal
como una bomba. Como tipo de bomba, se pueden mencionar una bomba
peristáltica con tubo interior, una borraba de uña "finger
pump", y similares. En la presente invención es particularmente
preferente una bomba que puede liberar de forma precisa la sangre
con un intervalo de velocidad de flujo desde 5 ml/min hasta 500
ml/min.
La velocidad del flujo de sangre utilizando el
medio de liberación de sangre en el sistema de eliminación
selectiva de leucocitos de la presente invención es,
preferentemente, de 10 ml/min a 200 ml/min. Si la velocidad del
flujo de sangre es inferior a 10 ml/min, la sangre tiende a
estancarse en el aparato de filtro para la eliminación selectiva de
leucocitos. Si la velocidad del flujo es superior a 200 ml/min, la
tensión cortante aumenta significativamente, dando como resultado
una disminución del porcentaje de recuperación de plaquetas. Por
estos motivos, la velocidad del flujo de sangre es,
preferentemente, de 15 ml/min a 150 ml/min, y la más preferente, de
20 ml/min a 100 ml/min.
El medio de inyección de fluido anticoagulante
utilizado la presente invención, preferentemente, tiene una
capacidad de alimentación del fluido anticoagulante al circuito del
flujo de sangre a una velocidad de flujo del 1% al 20% de la
velocidad del flujo de sangre. El anticoagulante se puede cargar
tal cual o tras una dilución. Si la velocidad del flujo es inferior
al 1% de la velocidad del flujo de sangre, es difícil que el
anticoagulante se mezcle con la sangre y presente, por lo tanto, un
efecto de anticoagulación suficiente. En la práctica, no es
deseable la velocidad del flujo del anticoagulante superior al 20%
de la velocidad del flujo de sangre, dado que la sangre puede estar
excesivamente diluida. Por estos motivos, la velocidad del flujo
del anticoagulante es, más preferentemente, del 3% al 18%, y la más
preferente, del 5% al 18% de la velocidad del flujo de sangre.
Como tipo de anticoagulante contenido en el
fluido anticoagulante utilizado en la presente invención, se pueden
utilizar, preferentemente, heparinas, tales como heparina sódica,
heparina cálcica, y dalteparina sódica; inhibidores de proteasas,
tales como mesilato de nafamostat y mesilato de gabexato; y
anticoagulantes basados en ácido cítrico, tales como
ACD-A, ACD-B, y CPD; y similares.
Los anticoagulantes anteriores se pueden utilizar más eficazmente
cuando se diluyen con una solución tampón, tal como una solución
salina fisiológica o una solución de glucosa que ni afecta a la
coagulación ni desnaturaliza los constituyentes sanguíneos.
En el caso de la heparina o una heparina de peso
molecular bajo, por ejemplo, is cantidad de anticoagulante añadido
a 1 l de sangre es de 100 a 2.000 unidades, y preferentemente, de
300 a 1.500 unidades. En el caso del mesilato de nafamostat, la
cantidad es de 2 a 40 mg, y preferentemente, de 6 a 30 mg. En el
caso de una solución de ACD-A o
ACD-B, la cantidad eficaz de anticoagulante es de
20 a 160 ml, y preferentemente, de 30 a 125 ml.
Como medio para la adición de una solución de
anticoagulante, se puede utilizar cualquier medio tipificado por
las bombas de dosificación utilizadas comúnmente, tales como una
bomba peristáltica con tubo interior, una bomba de uña, una bomba
de infusión y una bomba de jeringa. Mas específicamente, se pueden
utilizar adecuadamente una bomba peristáltica con tubo interior,
una bomba de uña y similares, mediante las cuales se puede inyectar
una cantidad muy pequeña de fluido con elevada precisión.
El sistema para la eliminación selectiva de
leucocitos de la presente invención se puede construir mediante el
empalme hermético del medio de liberación de sangre, el medio de
inyección de fluido anticoagulante y el medio para la eliminación
selectiva de leucocitos descritos anteriormente, utilizando un
circuito de sangre para introducir la sangre al medio de
eliminación selectiva de leucocitos y un circuito de sangre para
descargar la sangre del medio de eliminación selectiva de
leucocitos, formando de este modo un circuito para la circulación
extracorpórea. Para formar la configuración completa, el medio de
liberación de sangre y el medio de inyección de anticoagulante se
facilitan al circuito en la parte de la introducción de la sangre,
que tiene un medio de recuperación de sangre, por ejemplo, este
circuito se empalma a la parte del puerto de entrada de la sangre
del medio de eliminación selectiva de leucocitos. El sistema se
puede utilizar, preferentemente, para la circulación extracorpórea
si el circuito lateral de descarga de la sangre que tiene un medio
para devolver la sangre al paciente se facilita en la parte de
salida de la sangre del medio de eliminación selectiva de
leucocitos.
La figura 2 es un diagrama esquemático que
muestra una realización del sistema para la eliminación selectiva
de leucocitos de la presente invención. En el sistema para la
eliminación selectiva de leucocitos de la figura 1, el sistema
comprende un medio (7) para la extracción de la sangre del
paciente, un medio de inyección del fluido anticoagulante (8) para
inyectar un fluido anticoagulante (8a) a la sangre extraída, un
medio de liberación de sangre (9) para liberar la sangre mezclada
con el anticoagulante a una velocidad de flujo de
10-200 ml/min, un medio de retención de
microagregados (12) que tiene un monitor de presión arterial (12a),
y un aparato de filtro para la eliminación selectiva de leucocitos.
Se conectan herméticamente y en el siguiente orden un medio para la
eliminación selectiva de leucocitos (10) que tiene un puerto de
entrada y un puerto de salida de sangre, una cámara de goteo (13)
que tiene un monitor de presión venosa (13a), y un medio (11) para
devolver la sangre al paciente. El material de filtro para la
eliminación selectiva de leucocitos según la presente invención se
puede utilizar para el tratamiento de la anormalidad inmune
celular, que comprende hacer que la sangre de un paciente que sufre
anormalidad inmune celular entre en contacto con el filtro de la
presente invención. Para completar el tratamiento medico de la
enfermedad, después del procesado, la sangre puede ser devuelta al
paciente. Esto se puede llevar a cabo, preferentemente, aplicando
diversos medios y métodos de utilización descritos en conexión con
el sistema de eliminación selectiva de leucocitos. La anormalidad
inmune celular, tal como se hace referencia en la presente
invención, es una enfermedad en la cual células inmunocompetentes,
células T citotóxicas, células inflamatorias similares en cuerpo
vivo presentan anormalidades para producir una sustancia inductora
de inflamación, tal como citoquina, mediante la cual los tejidos
corporales se ven atacados. Se mencionan como ejemplos enfermedades
autoinmunes, tales como la artritis reumatoide crónica o maligna,
eritematodes sistémico, enfermedad de Behcet, púrpura
trombo-citopénica idiopática, y hepatitis
autoinmune; enfermedades inflamatorias del intestino, tales como
colitis ulcerativa crónica enfermedad de Crohn; enfermedades
alérgicas, tales como dermatitis atópica; glomerulonefritis
rápidamente progresiva; y síndrome de respuesta inflamatoria
sistémica.
Es deseable que el sistema de eliminación de
leucocitos de la presente invención tenga una capacidad de
eliminación de leucocitos en términos de porcentaje de eliminación
de leucocitos del 50% o más. En la presente invención, el
porcentaje de eliminación de leucocitos se puede determinar a
partir de la concentración de leucocitos en la sangre en la parte
del puerto de entrada, introducida en el medio de eliminación
selectiva de leucocitos y la concentración de leucocitos en la
sangre en la parte del puerto de salida, descargada desde el medio
de eliminación selectiva de leucocitos según la fórmula
siguiente.
Porcentaje de
eliminación de leucocitos (%) = (1 - Concentración de leucocitos en
la parte del puerto de salida / Concentración de leucocitos en la
parte del puerto de entrada) x
100
Si el porcentaje de eliminación de leucocitos es
inferior al 50%, la cantidad de leucocitos eliminados en un proceso
no es suficiente, dando sólo un efecto de mejora limitado en la
anormalidad inmune celular. Un porcentaje de eliminación de
leucocitos más preferente es el 60% o más, siendo el 70% más el
porcentaje de eliminación de leucocitos más preferente.
Con respecto a la capacidad de recuperación de
plaquetas, es deseable que el porcentaje de recuperación de
plaquetas sea del 50% o más. En la presente invención, el
porcentaje de recuperación de plaquetas se puede determinar partir
de la concentración de plaquetas en la sangre en la parte del
puerto de entrada, introducida en el medio de eliminación selectiva
de leucocitos y la concentración de plaquetas en la sangre en la
parte del puerto de salida, descargada desde el medio de
eliminación selectiva de leucocitos, según la siguiente fórmula.
Porcentaje de
recuperación de plaquetas (%) = (Concentración de plaquetas en la
parte del puerto de salida / Concentración de plaquetas en la parte
del puerto de entrada) x
100
Si el porcentaje de recuperación de plaquetas es
inferior al 50%, a cantidad de plaquetas recuperadas puede ser
demasiado pequeña cuando se procesa sangre que tiene un contenido de
plaquetas pequeño (por ejemplo, 100.000 plaquetas/\mul inferior).
Un porcentaje de recuperación de plaquetas más preferente es el 60%
o más, siendo el 70% o más el porcentaje de recuperación de
plaquetas más preferente.
La presente invención se describe a continuación
mediante ejemplos.
Ejemplo
1
Se mostrará un ejemplo de método de síntesis del
polímero utilizado para la preparación de un filtro para la
eliminación selectiva de leucocitos mediante recubrimiento. Se
cargó con etanol (277 ml) un recipiente de reacción equipado con un
condensador de reflujo. Después de burbujear nitrógeno en el etanol
y de agitar la muestra a 73ºC durante una hora, se añadieron
mediante goteo los monómeros durante 120 minutos mientras se
mantenía una atmósfera de nitrógeno. Al mismo tiempo, se añadió una
solución de indicador mediante goteo durante 300 minutos. Después
de completar la adición de la solución de iniciador, los monómeros
se polimerizaron durante dos horas adicionales.
La mezcla de monómeros era un líquido que
contenía 4,8 g (30,0 mmol) de metacrilato de metoxidietilen glicol
(MDG), que es un monómero polimerizable que tiene una cadena de
óxido de alquileno, 4,3 g (50,0 mmol) de metilmetacrilato (MMA),
que es un monómero polimerizable que tiene un grupo hidrofóbico, y
2,7 g (20,0 mmol) de metacrilato de
2-hidroxiisobutilo (HBMA), que es un monómero
polimerizable que tiene un grupo hidroxilo. La proporción molar de
los monómeros fue del 30% molar (MDG): 50% molar (MMA). 20% molar
(HBMA). Se utilizó una solución de etanol que contenía 0,034 g de
azobisdimetilvaleronitrilo (V-65) como solución de
iniciador. La mezcla de reacción se añadió mediante goteo a agua
purificada para provocar la precipitación del polímero. El
precipitado del polímero recuperado se cortó en trozos y nuevamente
se colocó en agua purificada, seguido de agitación durante una hora
para lavar el polímero. A continuación, el polímero lavado se secó
al vacío a 60ºC para obtener el polímero objetivo.
La composición del polímero resultante se
analizó a partir del valor integral de la medición de RMN,
confirmando que la composición casi estaba en concordancia con la
composición de monómero cargada. El valor \delta del polímero se
calculó según el método de Fedors para confirmar que el valor
\delta era 10,29. El peso molecular promedio en peso del polímero
medido mediante GPC fue de 6,8 x 10^{5}.
A continuación se describirá un método para la
preparación del material de filtro para la eliminación selectiva de
leucocitos. Se disolvió 1 g del polímero obtenido en 100 ml de un
disolvente, mezcla de etanol y agua purificada (70:30). En el
disolvente se sumergió una tela no tejida hecha de tereftalato de
polietileno. Después de eliminar el líquido en exceso, la tela no
tejida se secó a temperatura ambiente durante 16 horas para obtener
el filtro objetivo. El valor \delta del cuerpo de apoyo del filtro
fue 10,30, el diámetro de fibra promedio del material del filtro
fue 2,7 \mum, la densidad fue 90 g/m^{2} y el espesor fue 0,42
mm.
El método del ensayo de elución fue el
siguiente. Se empaquetó un contenedor de 200 ml con 15 g del
material de filtro preparado en el apartado anterior, el contenedor
se llenó con una solución salina fisiológica, y el contenido se
esterilizó con rayos \gamma (dosis de irradiación: 25 kGy). Para
confirmar la elución en el intervalo de temperatura que
posiblemente tiene lugar durante la conservación real de los
dispositivos médicos, el contenedor se dejó a 25ºC durante 24
horas, a continuación, a 4ºC durante 24 horas. Se observo la
apariencia de la solución de relleno después de la conservación que
confirmaba que la solución era transparente e incolora, sin
cambios, comparada con el estado antes de la esterilización. La
absorbancia máxima de la solución de relleno se midió utilizando in
espectrofotónetro de ultravioleta (V-560, fabricado
por JASCO Corp.) una longitud de onda de 220 nm hasta 350 nm para
encontrar que a absorbancia máxima era 0,04.
A continuación se describirá un método de ensayo
para evaluar el porcentaje de eliminación de leucocitos y el
porcentaje de recuperación de plaquetas. El material de filtro
preparado en el apartado anterior se corto en discos, cada uno con
un diámetro de 6,8 mm. Se laminaron siete laminas de los discos en
una columna de 1 ml con un puerto de entrada y un puerto de salida.
La columna se llenó con una solución salina fisiológica y se
esterilizó con rayos \gamma (dosis de irradiación: 25 kGy. para
preparar la columna para la evaluación del rendimiento. Se
alimentaron 3 ml de sangre humana fresca (número de leucocitos:
4.500-8.400/\mul, número de plaquetas:
150.000-440.000/\mul) a la cual se añadió
ACD-A como anticoagulante (sangre:
ACD-A = 8:1; a la columna desde el puerto de entrada
utilizando una bomba de jeringa a una velocidad de flujo constante
de 0,5 ml/min. Se recuperó la sangre procesada. Se midió la
concentración de leucocitos y la concentración de plaquetas en la
sangre antes y después de pasar por la columna utilizando un
contador de células automático Sysniex SF-3000,
fabricado por Toa Medical Electronics Co., Ltd.), y se calcularon
el porcentaje de eliminación de leucocitos y el porcentaje de
recuperación de plaquetas.
Como resultado, el porcentaje de eliminación de
leucocitos fue del 97,5% y el porcentaje de recuperación de
plaquetas fue del 85,0% confirmando la capacidad de eliminar de
forma selectiva los leucocitos.
Ejemplo
2
Se sintetizó un polímero de la misma forma que
en el Ejemplo 1, excepto en que se utilizó el 40,0% molar de MDG,
50,0% molar de MMA, y 10 molar de HBML. La composición del polímero
resultante se analiza a partir del valor integral de la medición de
RMN, confirmando que la composición caso estaba en concordancia con
la composición de monómero cargada. El valor \delta del polímero
se calculó según el método de Fedors para confirmar que el valor
\delta era 10,04. El peso molecular promedio en peso del polímero
medido mediante GPC fue de 8,7 x 10^{5}.
A partir del polímero se preparó un material de
filtro de la misma manera que en el Ejemplo 1. El valor \delta
del cuerpo de apoyo del filtro fue 10,30, el diámetro de fibra
promedio del material del filtro fue 2,7 \mum, la densidad fue 90
g/m^{2}, y el espesor fue 0,42 mm.
Utilizando el material de filtro obtenido, se
llevaron a cabo el ensayo de elución y el ensayo de rendimiento de
la sangre de la misma manera que en el Ejemplo 1. La apariencia de
la solución de relleno después de la esterilización y conservación
confirmó que la solución era transparente e incolora, sin cambios,
comparada con el estado antes de la esterilización. La absorbancia
máxima de la solución de relleno se midió utilizando un
espectrofotómetro de ultravioleta a una longitud de onda de 220 nm
hasta 350 nm para encontrar que la absorbancia máxima era 0,05. El
porcentaje de eliminación de leucocitos fue del 97,0% y el
porcentaje de recuperación de plaquetas fue del 85,0% confirmando la
capacidad de eliminar de forma selectiva los leucocitos.
Ejemplo
3
Se sintetizó un polímero de la misma forma que
en el Ejemplo 1, excepto en que se utilizó el 20% molar de MDG,
60,0% molar de MMA, y 20% molar de HBMA. La composición del
polímero resultante se analizó a partir del valor integral de la
medición de RMN, confirmando que la composición casi estaba en
concordancia con la composición de monómero cargada. El valor
\delta del polímero se calculó según el método de Fedors para
confirmar que el valor \delta era 10,31. El peso molecular
promedio en peso del polímero medido mediante GPC fue 9,2 x
10^{5}.
Se disolvió 1 g del polímero obtenido en 100 ml
de un disolvente, mezcla de etanol y agua purificada (70:30). En el
disolvente se sumergió una tela no tejida hecha de polipropileno.
Después de eliminar el líquido en exceso, la tela no tejida se secó
a temperatura ambiente durante 16 horas para obtener el filtro
objetivo. El valor \delta del cuerpo de apoyo del filtro fue 7,90,
el diámetro de fibra promedio del material filtro fue 2,6 \mum, la
densidad fue 80 g/m^{2}, y el espesor fue 0,51 mm.
Utilizando el material 1e filtro obtenido, se
llevaron a cabo el ensayo de elución y el ensayo de rendimiento de
la sangre de la misma manera que en el Ejemplo 1. La apariencia de
la solución de relleno después de la esterilización y conservación
confirmó que la solución era transparente incolora, sin cambios,
comparada con el estado antes de la esterilizador. La absorbancia
máxima de la solución de relleno se midió utilizando un
espectrofotómetro de ultravioleta una longitud de onda de 220 nm
hasta 350 nm para encontrar que la absorbancia máxima era 0,08. El
porcentaje de eliminación de leucocitos fue del 98,5% y el
porcentaje de recuperación de plaquetas fue del 89,4%, confirmando
la capacidad de eliminar de forma selectiva los leucocitos.
Ejemplo
4
Se sintetizó un polímero de la misma manera que
el Ejemplo 1, excepto en que utilizó metacrilato de
n-butilo (BMA) como monómero polimerizable con un
grupo hidrofóbico y metacrilato de
2-hidroxiisopropilo (HPMA) como monómero
polimerizable con un grupo hidroxilo, y que se cargó con el 20%
molar de MDG, el 50% molar de BMA, y el 30% molar de HPMA. La
composición del polímero resultante se analizó a partir del valor
integral de la medición de RMN, confirmando que la composición casi
estaba en concordancia con la composición de monómero cargada. El
valor \delta del polímero se calculó según el método de Fedors
para confirmar que el valor \delta era 10,46. El peso molecular
promedio en peso del polímero medido mediante GPC fue 1,1 x
10^{5}.
Se preparó un material de filtro a partir del
polímero de la misma manera que en el Ejemplo 1. El valor \delta
del cuerpo de apoyo del filtro fue 10,30, el diámetro de fibra
promedio del material del filtro fue 2,7 \mum, la densidad fue 90
g/m^{2}, y el espesor fue 0,42 mm.
Utilizando el material de filtro obtenido, se
llevaron a cabo el ensayo de elución y el ensayo de rendimiento de
la sangre de la misma manera que en el Ejemplo 1. La apariencia de
la solución de relleno después de la esterilización conservación
confirmó que la solución era transparente e incolora, sin cambios,
comparada con el estado antes de la esterilización. La absorbancia
máxima de la solución de relleno se midió utilizando un espectro
fotómetro de ultravioleta a una longitud de onda de 220 nm hasta
350 nm para encontrar que la absorbancia máxima era 0,08. El
porcentaje de eliminación de leucocitos fue del 93,8% y el
porcentaje de recuperación de plaquetas fue del 83,7%, confirmando
la capacidad de eliminar de forma selectiva los leucocitos.
Ejemplo
5
Se sintetizó un polímero de la misma forma que
en el Ejemplo 1, excepto en que se utilizó el 15% molar de MDC, el
40% molar de MMA, y el 45% molar de HBMA. La composición del
polímero resultante se analizó a partir del valor integral de la
medición de RMN, confirmando que la composición casi estaba en
concordancia con la composición de monómero cargara. El valor
\delta del polímero se calculó según el método de Fedors para
confirmar que el valor \delta era 10,86. El peso molecular
promedio en peso del polímero medido mediante GPC fue 2,1 x
10^{5}.
Se preparó un material de filtro a partir del
polímero de la misma manera que en el Ejemplo 1. El valor \delta
del cuerpo de apoyo del filtro fue 10,30, el diámetro de fibra
promedio del material del filtro fue 2,7 \mum, la densidad fue 90
g/m^{2}, el espesor fue 0,42 mm.
Utilizando el material de filtro obtenido, se
llevaron a cabo el ensayo de elución y el ensayo de rendimiento de
la sangre de le misma manera que en el Ejemplo 1. La apariencia de
la solución de relleno después de la esterilización y conservación
confirmó que la solución era transparente e incolora, sin cambios,
comparada con el estado antes de la esterilización. La absorbancia
máxima de la solución de relleno se midió utilizando un
espectrofotómetro de ultravioleta a una longitud de onda de 220 nm
hasta 350 nm para encontrar que la absorbancia máxima era 0,15. El
porcentaje de eliminación de leucocitos fue del 82,2% y el
porcentaje de recuperación de plaquetas fue del 80,2%, confirmando
la capacidad de eliminar de forma selectiva los leucocitos.
Ejemplo Comparativo
1
Se sintetizó un polímero de la misma forma que
en el Ejemplo 1, excepto en que se utilizó el 5,0% molar de MDG, el
5,0% molar de MMA, y el 90,0% molar de HPMA. La composición del
polímero resultante se analizó a partir del valor integral de la
medición de RMN, confirmando que la composición casi estaba en
concordancia con la composición de monómero cargada. El valor
\delta del polímero se calculó según el método de Fedors para
confirmar que el valor \delta era 12,39. El peso molecular
promedio en peso del polímero medido mediante GPC fue 3,2 x
10^{5}.
Se preparó un material de filtro a partir del
polímero de la misma manera que en el Ejemplo 1. El valor \delta
de cuerpo de apoye del filtro fue 10,30, el diámetro de fibra
promedio del material del filtro fue 2,7 \mum, la densidad fue 90
g/m^{2}, el espesor fue 0,42 mm.
Utilizando el material de filtro obtenido, se
llenaron a cabo el ensayo de elución y el ensayo de rendimiento de
la sangre de la mismo manera que en el Ejemplo 1. La solución de
relleno después de la esterilización y conservación estaba turbia,
confirmando que el polímero eluyó durante la esterilización y
conservación. La arbsorbancia máxima de la solución de relleno se
midió utilizando un espectro-fotómetro de
ultravioleta a una longitud de onda de 220 nm hasta 350 nm para
encontrar que la absorbancia máxima era 2,4. El porcentaje de
eliminación de leucocitos fue de 93,3% y el porcentaje de
recuperación de plaquetas fue del 3,1%, confirmando un porcentaje de
eliminación de plaquetas bajo.
Ejemplo Comparativo
2
Se sintetizó un polímero de la misma forma que
en el Ejemplo 1, excepto en que se utilizó metacrilato de
metoxinonaetilen glicol (MNG) como monómero polimerizable con una
cadena de óxido de polialquileno y que se cargó con el 65,0% molar
de MNG, y el 35% molar de MMA. La composición del polímero
resultante se analizó a partir del valor integral de la medición de
RMN, confirmando que la composición casi estaba en concordancia con
la composición de monómero cargada. El valor \delta del polímero
se calculé según el método de Fedors para confirmar que el valor
\delta era 9,64. El peso molecular promedio en peso del polímero
medido mediante GPC fue 2,2 x 10^{5}.
Se preparó un material de filtro a partir del
polímero de la misma manera que en el Ejemplo 1. El valor \delta
del cuerpo de apoyo del filtro fue 10,30, el diámetro de fibra
promedio del material del filtro fue 2,7 \mum, la densidad fue 90
g/m^{2}, y el espesor fue 0,42 mm.
Utilizando el material de filtro obtenido, se
llevaron a cabo el ensayo de elución y el ensayo de rendimiento de
la sangre de la misma manera que en el Ejemplo 1. La solución de
relleno después de la esterilización y conservación estaba turbia,
confirmando que el polímero eluyó durante la esterilización y
conservación. La absorbancia máxima de la solución de relleno se
midió utilizando un espectrofotómetro de ultravioleta a una
longitud de onda de 220 nm hasta 350 nm para encontrar que la
absorbancia máxima era 5,0 o superior. El porcentaje de eliminación
de leucocitos fue del 99,5% y el porcentaje de recuperación de
plaquetas fue del 52,0%.
\newpage
Ejemplo Comparativo
3
Se sintetizo un polímero de la misma forma que
en el Ejemplo 1, excepto en que se utilizo el 5,0% molar de MDG, el
50,0% molar de MMA, y el 45,0% molar de HBMA. La composición del
polímero resultante se analizó a partir del valor integral de la
medición de RMN, confirmando que la composición casi estaba en
concordancia con la composición de monómero cargada. El valor
\delta del polímero calculó según el método de Fedors para
confirmar que el valor \delta era 10,89. El peso molecular
promedio en peso del polímero medido mediante GPC fue 1,2 x
10^{5}.
Se disolvió 1 g del polímero obtenido en 100 ml
de un disolvente, mezcla de etanol y agua purificada (70:30). En el
disolvente se sumergió una tela no tejida hecha de celulosa.
Después de eliminar el líquido en exceso, la tela no tejida se secó
a temperatura ambiente durante 16 horas para obtener el filtro
objetivo. El valor \delta del cuerpo de apoyo del filtro fue
15,65, el diámetro de fibra promedio del material del filtro fue 4,1
\mum, la densidad fue 18 g/m^{2}, y el espesor fue 0,1 mm.
Utilizando el material de filtro preparado,
llevó a cabo el ensayo de elución se de la misma manera que en el
Ejemplo 1. La solución de relleno después de la esterilización y
conservación estaba turbia, confirmando que el polímero eluyó
durante la esterilización y conservación. La absorbancia máxima de
la solución de relleno se midió utilizando un espectrofotómetro de
ultravioleta a una longitud de onda de 220 nm hasta 350 nm para
encontrar que la absorbancia máxima era 5,0 o superior.
El material de filtro preparado anteriormente se
cortó en discos, cada uno con un diámetro de 6,8 mm. Se laminaron
28 láminas de los discos en una columna de 7 ml con un puerto de
entrada y un puerto de salida. Se llevó a cabo el ensayo de
rendimiento de la sangre de la misma manera que en el Ejemplo 1. El
porcentaje de eliminación de leucocitos fue del 85,1% y el
porcentaje de recuperación de plaquetas fue del 45,4%, confirmando
un porcentaje de recuperación de plaquetas bastante bajo.
\vskip1.000000\baselineskip
Ejemplo Comparativo
4
Se sintetizo un polímero de la misma forma que
en el Ejemplo 1, excepto en que se utilizó el 90,0% molar de MDG y
10,0% molar de MMA. La composición del polímero resultante se
analizó a partir del valor integral de la medición de RME,
confirmando que la composición casi estaba en concordancia con la
composición de monómero cargada. El valor \delta del polímero se
calculó según el método de Fedors para confirmar que el valor
\delta era 9,70. El peso molecular promedio en pese del polímero
medido mediante GPC fue 3,5 x 10^{5}.
Se preparó un material de filtro partir del
polímero de la misma manera que en el Ejemplo 1. El valor \delta
del cuerpo de apoyo del filtro fa 10,30, el diámetro de fibra
promedio del material del filtro fue 2,7 \mum, la densidad fue 90
g/m^{2}, y el espesor fue 0,42 mm.
Utilizando el material de filtro obtenido, se
llevaron a cabo el ensayo de elución y el ensayo de rendimiento de
la sangre de la misma manera que en el Ejemplo 1. La solución de
relleno después de la esterilización y conservación estaba turbia,
confirmando que el polímero eluyó durante la esterilización y
conservación. La absorbancia máxima de la solución de relleno se
midió utilizando un espectrofotómetro de ultravioleta a una
longitud de onda de 220 nm hasta 350 nm para encontrar que la
absorbancia máxima era 5,0 o superior. El porcentaje de eliminación
de leucocitos fue del 97,0% y el porcentaje de recuperación de
plaquetas fue del 78,0%.
\vskip1.000000\baselineskip
Ejemplo Comparativo
5
Se sintetizó un polímero de la misma forma que
en el Ejemplo 1, excepto en que se utilizo el 40,0% molar de MDG,
el 25,0% molar de MMA y el 35,0% molar de HBMA. La composición del
polímero resultante se analizó a partir del valor integral de la
medición de RMN, confirmando que la composición casi estaba en
concordancia con la composición de monómero cargada. El valor
\delta del polímero se calculó según el método de Fedors para
confirmar que el valor \delta era 10,58. El peso molecular
promedio en peso del polímero medido mediante GPC fue 9,2 x
10^{5}.
Se preparó un material de filtro a partir del
polímero de la misma manera que en el Ejemplo 1. El valor \delta
del cuerpo de apoyo del filtro fue 10,30, el diámetro de fibra
promedio del material del filtro fue 2,7 \mum, la densidad fue 90
g/m^{2}, y el espesor fue 0,42 mm.
Utilizando el material de filtro obtenido, se
llevaron a cabo el ensayo de elución y el ensayo de rendimiento de
la sangre de la misma manera que en el Ejemplo 1. La solución de
relleno después de la esterilización y conservación estaba turbia,
confirmando que el polímero eluyo durante la esterilización y
conservación. La absorbancia máxima de solución de relleno se midió
utilizando un espectrofotómetro de ultra Violeta a una longitud de
onda de 220 nm hasta, 350 nm para encontrar que la absorbancia
máxima era 2,3. El porcentaje de eliminación de leucocitos fue del
85,8% el porcentaje de recuperación de plaquetas fue del 72,7%.
Se llevó a cabo la polimerización a 70ºC durante
seis horas utilizando 2,3 g (12 mmol) de monómero MEG, 2,0 g (20
mmol) de monómero MMA y 1,3 g (8 mmol) de monómero HBMA (MDG : MMA
: HBMA = 30 : 50 : 20, en proporción molar), 300 ml de etanol, y
0,1 g de V-65. La mezcla de reacción obtenida se
añadió mediante goteo a 10 l de agua mientras se agitaba para
provocar la precipitación del polímero y el polímero se recuperó
como una sustancia insoluble en agua. La composición del polímero
resultante se analizó a partir del valor integral de la medición de
RMN, confirmando que la composición casi estaba en concordancia con
la composición de monómero cargada. El valor \delta del polímero
se calculó según el método de Fedors para confirmar que el valor
\delta era 10,29. El peso molecular promedio en peso del polímero
medido mediante GPC fue 4,0 x 10^{4}.
Se disolvió 1 g del polímero obtenido de esta
forma en 99 g de una solución acuosa al 70% de etanol para obtener
una solución de recubrimiento al 1%. Se sumergió 1 g de una tela no
tejida hecha de tereftalato de polietileno en 10 ml de la solución
de recubrimiento al 1% y se secó a 25ºC durante 12 horas para
obtener un material de filtro. El valor \delta del cuerpo de apoyo
del filtro fue 10,30, el diámetro de fibra promedio del material
del filtro fue 2,9 \mum, la densidad fue 90 g/m^{2}, y el
espesor fue 0,40 mm.
Utilizando el material de filtro obtenido, se
llevaron a cabo el ensayo de elución y el ensayo de rendimiento de
la sangre de la misma manera que en el Ejemplo 1. La apariencia de
la solución de relleno después de la esterilización y conservación
confirmó que la solución era transparente incolora. La absorbancia
máxima de la solución de relleno medida utilizando un
espectrofotómetro de ultravioleta a una longitud de onda de 220 nm
hasta 350 nm fue 0,41, indicando la elución de una pequeña cantidad
del polímero. El porcentaje de eliminación de leucocitos fue del
95,1% y el porcentaje de recuperación de plaquetas fue del
74,3%.
Los resultados se resumen en la Tabla 1.
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(Tabla pasa a página
siguiente)
Tal como puede observarse en la Tabla 1, se
confirmó que los materiales de filtro que utilizan un polímero que
comprende una unidad que se origina a partir de un monómero
polimerizable que tiene una cadena de óxido de polialquileno, una
unidad que se origina a partir de un monómero polimerizable que
tiene un grupo hidrofóbico, y una unidad que se origina a partir de
un monómero polimerizable que tiene un grupo hidroxilo en una
proporción específica eluían sólo una cantidad mínima de
componentes del polímero y mostraban una capacidad de eliminación
selectiva de leucocitos. Por el contrario, los materiales de filtro
que utilizan un polímero que no satisface estas condiciones no
satisfacían el ensayo de elución, o bien el ensayo de rendimiento
de la sangre, o bien ninguno de los dos. Ademas, se ha encontrado
que el material de filtro que utiliza un polímero con un peso
molecular promedio en peso de 100.000 o más obtiene unos resultados
excelentes en el ensayo de elución.
Ejemplo
7
Se preparó el material de filtro de la misma
manera que en el Ejemplo 1, excepto en que se disolvieron 10 g del
polímero en 100 ml de un disolvente, mezcla de etanol y agua
purificada (70:30). Se realizó una medición del polímero retenido
por el material de filtro para encontrar que el material de filtro
contenía el 20% en peso del polímero, comparado con el 2% en peso
en el material de filtro del Ejemplo 1. La cantidad del polímero
retenida por el material de filtro se calculó a partir del cambio
de peso del material de filtro antes y después del
recubrimiento.
Utilizando el material de filtro obtenido, se
llevaron a cabo el ensayo de elución y el ensayo de rendimiento de
la sangre de la misma manera que en el Ejemplo 1. La apariencia de
la solución de relleno después de la esterilización y conservación
era transparente e incolora. La absorbancia máxima de la solución
de relleno se midió utilizando un espectrofotómetro de ultravioleta
e una longitud de onda de 220 nm hasta 350 nm para encontrar que la
absorbancia máxima era 0,21. Como resultado, el porcentaje le
eliminación de leucocitos fue del 92,3% y el porcentaje de
recuperación de plaquetas fue del 82,1%, confirmando la capacidad
de eliminar de forma selectiva los leucocitos.
Ejemplo
8
A continuación se describirá un método para la
preparación del aparato de filtro para la eliminación selectiva de
leucocitos utilizado en el método para eliminar selectivamente
leucocitos. Se disolvieron 4,0 g del polímero obtenido en el
Ejemplo 1 en 500 ml de un disolvente, mezcla de etanol y agua
purificada (70:30). En el disolvente se sumergió una tela no tejida
hecha de tereftalato de polietileno, con un diámetro de fibra
promedio de 2,7 \mum, una densidad de 90 g/m^{2}, y un espesor
de 0,42 mm. Después de eliminar el líquido en exceso, la tela no
tejida se secó a temperatura ambiente durante 16 horas para obtener
un material de filtro (A). Se disolvieron 0,5 g del polímero
obtenido en el Ejemplo 1 en 500 ml de un disolvente, mezcla de
etanol y agua purificada (70:30). En el disolvente se sumergió una
tela no tejida hecha de tereftalato de polietileno, con un diámetro
de fibra promedio de 12 \mum, una densidad de
30 g/m^{2}, y un espesor de 0,20 mm. Después de eliminar el líquido en exceso, la tela no tejida se secó a temperatura ambiente durante 16 horas para obtener un material de filtro (B).
30 g/m^{2}, y un espesor de 0,20 mm. Después de eliminar el líquido en exceso, la tela no tejida se secó a temperatura ambiente durante 16 horas para obtener un material de filtro (B).
El material de filtro (A) se cortó en una lámina
(anchura: 150 mm, longitud: 250 mm) y la lámina se enrolló
alrededor de una malla de polietileno con un diámetro de 28 mm. El
material de filtro (B) cortado en un rectángulo de 150 mm x 1.660
mm se enrolló alrededor del cilindro y se laminó por encima del
material de filtro (A). Adicionalmente, alrededor del material de
filtro (B) se enrollo una malla de polietileno con una anchura de
150 mm y una longitud de 130 mm para obtener un filtro cilíndrico
hueco. Después de sellar los dos extremos mediante poliuretano, el
cilindro se colocó en un contenedor de policarbonato cilíndrico con
un diámetro interno de 41 mm, en la parte superior e inferior del
cual se facilitó, respectivamente, un puerto de entrada de sangre y
un puerto de salida de sangre, de modo que la circunferencia
exterior del cilindro se conectó al puerto de entrada de la sangre
del contenedor y la circunferencia interior del cilindro se conectó
al puerto de salida de la sangre del contenedor. El contenedor se
llenó con una solución salina fisiológica y se esterilizó con rayos
\gamma (dosis de irradiación: 25 kGy) para preparar el aparato de
filtro para la eliminación selectiva de leucocitos. En el aparato
de filtro para la eliminación selectiva de leucocitos, la densidad
de relleno del material de filtro fue 0,157 g/cm^{3}, el área de
filtración de la primera capa de contacto de la sangre fue
174 cm^{2}, el área superficial específica por volumen de la primea capa de contacto de la sangre fue 0,33 m^{2}/ml, el área superficial específica por volumen de la segunda capa de contacto de la sangre fue 1,5 m^{2}/ml, la proporción de espesor de capa laminada de la primera capa de contacto de la sangre respecto a la segunda capa de contacto con la sangre fue 4,0, y el espesor del filtro cilíndrico hueco fue 4,5 mm.
174 cm^{2}, el área superficial específica por volumen de la primea capa de contacto de la sangre fue 0,33 m^{2}/ml, el área superficial específica por volumen de la segunda capa de contacto de la sangre fue 1,5 m^{2}/ml, la proporción de espesor de capa laminada de la primera capa de contacto de la sangre respecto a la segunda capa de contacto con la sangre fue 4,0, y el espesor del filtro cilíndrico hueco fue 4,5 mm.
Se preparó un sistema de eliminación selectiva
de leucocitos para tratar la sangre de un paciente con colitis
ulcerativa, mostrado en la figura 2. Se realizó circulación
extracorpórea, siendo cada tratamiento de una hora a una velocidad
de flujo de 50 ml/min, cinco veces para cada paciente con una
frecuencia de una vez a la semana utilizando el sistema de
eliminación selectiva de leucocitos en el cual se utilizó el
aparato de filtro anterior. Como solución anticoagulante se inyectó
de forma continua una mezcla de 3.000 unidades de heparina y 500 ml
de una solución salina fisiológica a una velocidad de flujo de 8
ml/min.
A los 30 minutos después de la iniciación de la
circulación extracorpórea, se recuperaron muestras de sangre en
posiciones antes y después del medio de eliminación selectiva de
leucocitos para determinar la concentración de leucocitos y la
concentración de plaquetas, utilizando un contador de células
sanguíneas automático. Se calcularon el porcentaje de eliminación
de leucocitos y el porcentaje de recuperación de plaquetas a partir
de las concentraciones encontradas. Como resultado, el porcentaje
de eliminación de leucocitos fue del 82% y el porcentaje de
recuperación de plaquetas fue del 65%. Se consiguió un porcentaje
de recuperación de plaquetas elevado. Después de 5 tratamientos, el
numero de veces que el paciente tuvo diarrea disminuyó desde 11
veces/día hasta 4 veces/día, confirmando la mejora del síntoma.
Ejemplo
9
Se preparó un sistema de eliminación selectiva
de leucocitos para tratar la sangre de un paciente con reumatismo,
mostrado en la figura 2. Se realizó circulación extracorpórea,
siendo cada tratamiento de una hora a una velocidad de flujo de 50
ml/min, siete veces para cada paciente con una frecuencia de una
vez a la semana utilizando el sistema de eliminación selectiva de
leucocitos en el cual se utilizó el aparato de filtro del Ejemplo
8. Como solución anticoagulante se inyectó de forma continua una
mezcla de 250 ml de solución le ACD-A y 250 ml de
una solución salina fisiológica a una velocidad de flujo de 8
ml/min.
A los 30 minutos de la iniciación de la
circulación extracorpórea, se recuperaron muestras de sangre en
posiciones antes y después del medio de eliminación selectiva de
leucocitos para determinar la concentración de leucocitos y la
concentración de plaquetas, utilizando un contador de células
sanguíneas automático. Se calcularon el porcentaje de eliminación de
leucocitos y el porcentaje de recuperación de plaquetas a partir de
las concentraciones encontradas. Como resultado, el porcentaje de
eliminación de leucocitos fue del 75% y el porcentaje de
recuperación de plaquetas fue del 82%. Se consiguió un porcentaje
de recuperación de plaquetas elevado. El índice de Ritchie (véase
"Índice de Ritchie, Índice para evaluar el estado de un paciente
con reumatismo articular" ("Ritchie Index, Index to evaluate
the conditions of articular rheumatism patient"), Ritchie y
otros Quarterly Journal of Medicine, New Series XXXVII, No.
147, págs. 393-406, Julio 1968) del paciente
después de 7 tratamientos disminuyó desde 15 puntos hasta 8 puntos,
mostrando mejora del síntoma.
Ejemplo
10
El material de filtrar (B) del Ejemplo 8 se
cortó en una lamina (anchura: 150 mm, longitud: 1.500 mm) y la
lamina se enrolló alrededor de una malla cilíndrica con un diámetro
de 31 mm hecha de polietileno. Adicionalmente, alrededor del
material de filtro (B) se enrolló una malla de polietileno con una
anchura de 150 mm y una longitud de 130 mm para obtener un filtro
cilíndrico hueco. Se preparó un aparato de filtro para la
eliminación selectiva de leucocitos de la misma manera que en el
Ejemplo 8. En el aparato de filtro para la eliminación selectiva d
leucocitos, la densidad de relleno del material de filtro fue 0,145
g/cm^{3}, el área de filtración de la primera capa de contacto
con la sangre fue 174 cm^{2}, el área superficial específica por
volumen de la primera capa de contacto con la sangre fue 0,33
m^{2}/ml, y el espesor del filtro cilíndrico hueco fue 3,0
mm.
Se preparó un sistema de eliminación selectiva
de leucocitos para tratar la sangre de un paciente con síndrome de
respuesta inflamatoria sistémica, mostrado en la figura 2. Se
realizó en el paciente la circulación extracorpórea durante una
hora a una velocidad de flujo de 50 ml/min, utilizando el sistema
de eliminación selectiva de leucocitos en el cual se utilizó el
aparato de filtro anterior. Como solución anticoagulante se inyectó
de forma continua una mezcla de 3.000 unidades de heparina y 500 ml
de una solución salina fisiológica a una velocidad de flujo de 8
ml/min.
A los 30 minutos después de la iniciación de la
circulación extracorpórea, se recuperaron muestras de sangre en
posiciones antes y después del medio de eliminación de leucocitos
para determinar la concentración de leucocitos y la concentración de
plaquetas, utilizando un contador de células sanguíneas automático.
Se calcularon el porcentaje de eliminación de leucocitos y el
porcentaje de recuperación de plaquetas a partir de las
concentraciones encontradas. Como resultado, el porcentaje de
eliminación de leucocitos fue del 58% y el porcentaje de
recuperación de plaquetas fue del 92%. Se consiguió un porcentaje
de recuperación de plaquetas elevado. Además, se determinó la
capacidad de producción de TNF-\alpha que se
origina del sobrenadante de un cultivo de la célula mononuclear en
la sangre periférica del paciente antes y después del tratamiento.
Para determinar la capacidad de producción de
TNF-\alpha, se separó una capa de células
mononucleares de la sangre utilizando una solución de Conray-
Ficoll, las células se estimularon con Concanavarina A (Con A) a
una concentración final de 7 mg/m, por 1 x 10^{6} células
mononucleares, a continuación, las células se cultivaron durante 24
horas para medir la concentración de TNF-\alpha
del sobrenadante. Como resultado, la concentración de 9.100 pg/ml
antes del tratamiento disminuyó hasta 4.800 pg/ml después del
tratamiento, confirmando la eliminación de la enfermedad. Dado que
el TNF-\alpha activa los leucocitos (leucocitos
neutrófilos) e induce une daño en el tejido, la disminución en la
concentración se supone que mejora el síntoma de la
inflamación.
Tal como queda claro a partir de la descripción
anterior, la presente invención da a conocer un polímero que tiene
una biocompatibilidad excelente, que presenta, en particular, sólo
una baja adsorción de plaquetas y que tiene una propiedad de
elución baja. El material de filtro para la eliminación selectiva
de leucocitos, el aparato de filtro para la eliminación selectiva
de leucocitos y el sistema para la eliminación selectiva de
leucocitos, que utilizan un polímero biocompatible, pueden eliminar
selectivamente leucocitos de diversas sangres, particularmente, de
sangre completa, mientras inhiben la adsorción de plaquetas y son
útiles para la transfusión de plaquetas y para la circulación
extracorpórea para la eliminación de leucocitos.
Claims (39)
-
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1. Material de filtro para la eliminación selectiva de leucocitos, en el que un polímero biocompatible que comprende el 8-45% molar de una unidad que se origina a partir de un monómero polimerizable que tiene una cadena de óxido de polialquileno, el 30-90% molar de una unidad que se origina a partir de un monómero polimerizable que tiene un grupo hidrofóbico, y el 2-50% molar de una unidad que se origina a partir de un monómero polimerizable que tiene un grupo hidroxilo está presente, como mínimo, en la superficie un cuerpo de apoyo de filtro. - 2. Material de filtro para la eliminación selectiva de leucocitos, según la reivindicación 1, en el que el polímero tiene un peso molecular promedio en peso de 100.000 hasta 3.000.000.
- 3. Material de filtro para la eliminación selectiva de leucocitos, según la reivindicación 1 o la reivindicación 2, en el que la proporción del contenido de la unidad que se origina a partir del monómero polimerizable que tiene un grupo hidroxilo respecto a la unidad que se origina a partir del monómero polimerizable que tiene un grupo hidrofóbico es de 0,05 hasta 1.
- 4. Material de filtro para la eliminación selectiva de leucocitos, según cualquiera de las reivindicaciones 1 a 3, en el que el polímero es un polímero no iónico.
- 5. Material de filtro para la eliminación selectiva de leucocitos, según cualquiera de las reivindicaciones 1 a 4, en el que el monómero polimerizable que tiene un grupo hidroxilo tiene una solubilidad en agua a 20ºC en el intervalo del 3% en peso o más, pero inferior al 50% en peso.
- 6. Material de filtro para la eliminación selectiva de leucocitos, según la reivindicación 5, en el que el monómero polimerizable que tiene un grupo hidroxilo es (met)acrilato de 2-hidroxiisobutilo.
- 7. Material de filtro para la eliminación selectiva de leucocitos, según cualquiera de las reivindicaciones 1 a 6, en el que el polímero tiene un factor de solubilidad (valor \delta) de 10,0 hasta 11,5 y el cuerpo de apoyo del filtro tiene un factor de solubilidad (valor \delta) de 7,0 hasta 15,0.
- 8. Material de filtro, según cualquiera de las reivindicaciones 1 a 7, en el que la cantidad del polímero soportada sobre el cuerpo de apoyo del filtro es del 0,001% en peso o más, pero inferior al 10% en peso.
- 9. Material de filtro, según cualquiera de las reivindicaciones 1 a 8, en el que el porcentaje de recubrimiento del polímero del cuerpo de apoyo del filtro es del 40% al 90%.
- 10. Material de filtro, según cualquiera de las reivindicaciones 1 a 9, en el que el material de filtro es una tela tejida o una tela no tejida.
- 11. Material de filtro, según la reivindicación 10, en el que el diámetro de fibra promedio de la tela tejida o no tejida es de 0,5 \mum hasta 50 \mum y la densidad de relleno es de 0,05 g/cm^{3} hasta 0,5 g/cm^{3}.
- 12. Material de filtro para la eliminación selectiva de leucocitos, según cualquiera de las reivindicaciones 1 a 11, utilizado para la eliminación selectiva de leucocitos de sangre extraída de un paciente con anormalidad inmune celular.
- 13. Material de filtro para la eliminación selectiva de leucocitos, según la reivindicación 12, en el que la enfermedad es artritis reumatoide crónica o maligna, eritematodes sistémico, enfermedad de Behcet, púrpura trombo-citopénica idiopática hepatitis autoinmune, colitis ulcerativa, enfermedad de Crohn, dermatitis atópica, glomerulonefritis rápidamente progresiva, o síndrome de respuesta inflamatoria sistémica.
- 14. Aparato de filtro para la eliminación selectiva de leucocitos que comprende el material de filtro, según cualquiera de las reivindicaciones 1 a 11, empaquetado en un contenedor que tiene, como mínimo, un puerto de entrada de sangre un puerto de salida de sangre.
- 15. Aparato de filtro para la eliminación selectiva de leucocitos, según la reivindicación 14, en el que un filtro cilíndrico hueco formado a partir del material de filtro enrollado en forma de un cilindro se empaqueta en el contenedor con los dos extremos sellados, y se facilita el puerto de entrada de sangre o bien el puerto de salida de sangre comunicando con el perímetro interior o bien con el perímetro exterior del material de filtro cilíndrico.
- 16. Aparato de filtro para la eliminación selectiva de leucocitos, según la reivindicación 15, en el que filtro cilíndrico hueco tiene una configuración de un rollo de un cuerpo laminado hecho de a) el material de filtro en forma de una lámina y b) un material de capa espaciadora en forma de una lámina que permite que la sangre pasea través de ella, estando abiertos los extremos inicial y/o terminal de la capa espaciadora, enrollados en forma de un rollo, al perímetro exterior y/o el perímetro interior del filtro cilíndrico hueco para aportar un conducto para la sangre.
- 17. Aparato de filtro para la eliminación selectiva de leucocitos, según la reivindicación 15 o la reivindicación 16, en el que el filtro cilíndrico hueco tiene una primera capa de contacto con la sangre con un área de 50 cm^{2} hasta
1.000 cm^{2}.\global\parskip1.000000\baselineskip
- 18. Aparato de filtro para la eliminación selectiva de leucocitos, según la reivindicación 17, en el que el área superficial específica por volumen de la primera capa de contacto con la sangre es 0,08 m^{2}/ml o más, pero inferior a 1,0 m^{2}/ml.
- 19. Aparato de filtro para la eliminación selectiva de leucocitos, según la reivindicación 18, en el que el filtro cilíndrico hueco tiene una segunda capa de contacto con la sangre con un área superficial específica por volumen de 1,0 m^{2}/ml o más, pero inferior a 20 m^{2}/ml.
- 20. Aparato de filtro para la eliminación selectiva de leucocitos, según la reivindicación 19, en el que la proporción de espesores de la segunda capa de contacto con la sangre respecto a la primera capa de contacto de la sangre es de 0,2 hasta 10,0.
- 21. Aparato de filtro para la eliminación selectiva de leucocitos, según la cualquiera de las reivindicaciones 15 a 20, en el que el espesor del filtro cilíndrico hueco es de 0,6 mm a 12,0 mm.
- 22. Aparato de filtro para la eliminación selectiva de leucocitos, según la cualquiera de las reivindicaciones 14 a 21, en el que el material de filtro se mantiene bajo un estado de contenido de humedad de saturación o superior utilizando agua o una solución acuosa de una sustancia soluble en agua con un riesgo mínimo de daño a los cuerpos vivos y está esterilizado.
- 23. Aparato de filtro para la eliminación selectiva de leucocitos, según la reivindicación 22, en el que la concentración de la sustancia soluble en agua en la solución acuosa es del inferior.
- 24. Aparato de filtro para la eliminación selectiva de leucocitos, según la reivindicación 22 ó 23, en el que la sustancia soluble en agua es cloruro sódico.
- 25. Aparato de filtro para la eliminación selectiva de leucocitos, según la cualquiera de las reivindicaciones 14 a 24, utilizado para la eliminación selectiva de leucocitos de la sangre extraída de un paciente con anormalidad inmune celular.
- 26. Aparato de filtro para la eliminación selectiva de leucocitos, según la reivindicación 25, en el que la enfermedad es artritis reumatoide crónica o maligna, eritematodes sistémico, enfermedad de Behcet, púrpura trombo-citopénica idiopática hepatitis autoinmune, colitis ulcerativa, enfermedad de Crohn, dermatitis atópica, glomerulonefritis rápidamente progresiva, o síndrome de respuesta inflamatoria sistémica.
- 27. Sistema para la eliminación selectiva de leucocitos que comprende un medio de liberación de sangre, un medio de inyección de fluido anticoagulante y un medio de eliminación selectiva de leucocitos, en el que el medio de eliminación selectiva de leucocitos comprende el aparato de filtro para la eliminación selectiva de leucocitos, según cualquiera de las reivindicaciones 14 a 24.
- 28. Sistema para la eliminación selectiva de leucocitos, según la reivindicación 27, en el que el medio de liberación de sangre libera sangre en una cantidad desde 1 l hasta 10 l a una velocidad de flujo de 10 ml/min hasta 200 ml/min.
- 29. Sistema para la eliminación selectiva de leucocitos, según la reivindicación 27 ó 28, en el que el medio de inyección de fluido anticoagulante inyecta un fluido anticoagulante a una velocidad del 1% al 20% le la velocidad de flujo de la sangre.
- 30. Sistema para la eliminación selectiva de leucocitos, según cualquiera de las reivindicaciones 27 a 29, en el que el fluido anticoagulante inyectado desde el medio de inyección de fluido anticoagulante comprende heparina o una heparina de bajo peso molecular.
- 31. Sistema para la eliminación selectiva de leucocitos, según cualquiera de las reivindicaciones 27 a 29, en el que el fluido anticoagulante inyectado desde el medio de inyección de fluido anticoagulante comprende un inhibidor de proteasas.
- 32. Sistema para la eliminación selectiva de leucocitos, según cualquiera de las reivindicaciones 27 a 29, en el que el fluido anticoagulante inyectado desde el medio de inyección de fluido anticoagulante comprende una solución de ACD-A o una solución de ACD-B.
- 33. Sistema para la eliminación selectiva de leucocitos, según la reivindicación 30, en el que la cantidad de fluido anticoagulante inyectado es desde 100 unidades hasta 2.000 unidades por 1 l de sangre.
- 34. Sistema para la eliminación selectiva de leucocitos, según la reivindicación 31, en el que la cantidad de fluido anticoagulante inyectado es desde 2 mg hasta 40 mg por 1 l de sangre.
- 35. Sistema para la eliminación selectiva de leucocitos, según la reivindicación 32, en el que la cantidad de fluido anticoagulante inyectado es desde 20 ml hasta 160 ml por 1 l de sangre.
- 36. Sistema para la eliminación selectiva de leucocitos, según cualquiera de las reivindicaciones 27 a 35, utilizado para la eliminación selectiva de leucocitos de sangre extraída de un paciente con anormalidad inmune celular.
- 37. Sistema para la eliminación selectiva de leucocitos, según la reivindicación 36, en el que la enfermedad es artritis reumatoide crónica o maligna, eritematodes sistémico, enfermedad de Behcet, púrpura trombo-citopénica idiopática hepatitis autoinmune, colitis ulcerativa, enfermedad de Crohn, dermatitis atópica, glomerulonefritis rápidamente progresiva, o síndrome de respuesta inflamatoria sistémico.
- 38. Método ex-vivo para la eliminación selectiva de leucocitos de la sangre, comprendiendo dicho método poner en contacto sangre con el material de filtro para la eliminación selectiva de leucocitos, según se ha definido en cualquiera de las reivindicaciones 1 a 13.
- 39. Método, según la reivindicación 38, en el que la sangre es sangre completa.
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FR2925352B1 (fr) * | 2007-12-21 | 2010-02-26 | Maco Pharma Sa | Procede de greffage d'un element poreux pour la deleucocytation |
NZ586316A (en) * | 2007-12-28 | 2012-06-29 | Baxter Int | Counter-pressure filtration of proteins |
WO2010061580A1 (ja) * | 2008-11-25 | 2010-06-03 | 旭化成クラレメディカル株式会社 | Hla-dr陽性単球の選択除去器及びその製造のための抗酸化剤の使用 |
JP5555022B2 (ja) * | 2010-03-18 | 2014-07-23 | オリンパス株式会社 | 破骨細胞除去フィルタおよび破骨細胞除去装置 |
WO2011133671A2 (en) * | 2010-04-20 | 2011-10-27 | The University Of North Carolina | Adsorption devices, systems and methods |
US9243353B2 (en) | 2011-01-26 | 2016-01-26 | Asahi Kasei Fibers Corp. | Stent grafts |
US20120261329A1 (en) * | 2011-04-14 | 2012-10-18 | Eaton Corporation | Filter cartridge for use in a fluid filter housing and method of making same |
RU2513858C9 (ru) * | 2012-10-05 | 2014-09-10 | Общество с ограниченной ответственностью Научно-исследовательский центр химических волокон "ВИСКОЗА" (ООО "НИЦ "ВИСКОЗА") | Фильтровальный комплект для лейкофильтрации гемотрансфузионных сред (варианты) |
RU2522626C1 (ru) * | 2012-12-07 | 2014-07-20 | Общество с ограниченной ответственностью "Фильтры академика Петрянова" (ООО "Фильтры ак. Петрянова") | Фильтровальный нетканый волокнистый материал для микроагрегатной и лейкофильтрации гемотрансфузионных сред |
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RU2633491C2 (ru) * | 2013-03-18 | 2017-10-12 | Асахи Касеи Медикал Ко., Лтд. | Удаляющий агрегаты фильтрующий материал, способ удаления агрегатов, фильтр для удаления лейкоцитов и способ фильтрования продукта крови |
FR3003764B1 (fr) * | 2013-03-27 | 2015-05-01 | Maco Pharma Sa | Unite de filtration des leucocytes a adhesion des plaquettes reduite |
SG11201509453PA (en) * | 2013-05-31 | 2015-12-30 | Toray Industries | Adsorption carrier-packed column |
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US9796166B2 (en) | 2014-03-24 | 2017-10-24 | Fenwal, Inc. | Flexible biological fluid filters |
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CN106421842B (zh) * | 2016-11-18 | 2019-02-12 | 四川南格尔生物科技有限公司 | 一种去白滤器灭菌工艺 |
CN106390219B (zh) * | 2016-11-18 | 2021-04-27 | 四川南格尔生物科技有限公司 | 一种去白滤器提高红细胞回收率的方法 |
JP6690780B2 (ja) | 2017-03-27 | 2020-04-28 | 三菱ケミカル株式会社 | 多孔質膜、膜モジュール、水処理装置、及び多孔質膜の製造方法 |
JP7076437B2 (ja) * | 2017-05-17 | 2022-05-27 | 旭化成メディカル株式会社 | 血液処理用リン吸着剤、血液処理システム及び血液処理方法 |
CN108676716A (zh) * | 2018-08-10 | 2018-10-19 | 武汉赛科成科技有限公司 | 一种3d结构细胞培养载体及生物反应器 |
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Family Cites Families (15)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
JPS56168623A (en) | 1980-05-29 | 1981-12-24 | Toyo Contact Lens Co Ltd | Middle class water-containing contact lens |
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JPH0672759A (ja) | 1991-07-30 | 1994-03-15 | Lion Corp | セラミックス成形用バインダー |
EP0561379B1 (en) * | 1992-03-17 | 1998-07-08 | ASAHI MEDICAL Co., Ltd. | Filter medium having a limited surface negative charge for treating a blood material |
JP3292528B2 (ja) * | 1992-12-21 | 2002-06-17 | 綜研化学株式会社 | アルカリ可溶性粘着剤組成物 |
JP3741320B2 (ja) * | 1993-07-15 | 2006-02-01 | 旭化成メディカル株式会社 | 白血球選択除去フィルター材 |
JPH10230014A (ja) * | 1997-02-18 | 1998-09-02 | Asahi Medical Co Ltd | 白血球除去装置及び白血球除去方法 |
DE69834651T2 (de) * | 1997-08-28 | 2007-04-26 | Asahi Kasei Medical Co., Ltd. | Filtermaterial zur entfernung von weissen blutkörperchen |
JP4190150B2 (ja) * | 1998-05-13 | 2008-12-03 | 旭化成クラレメディカル株式会社 | 血液処理フィルター装置及び血液処理方法 |
JP4097826B2 (ja) * | 1998-12-21 | 2008-06-11 | 旭化成クラレメディカル株式会社 | 白血球選択除去フィルター装置 |
JP4219041B2 (ja) * | 1999-02-25 | 2009-02-04 | 旭化成クラレメディカル株式会社 | 白血球選択除去材 |
US6281319B1 (en) | 1999-04-12 | 2001-08-28 | Surgidev Corporation | Water plasticized high refractive index polymer for ophthalmic applications |
JP2001300221A (ja) * | 2000-04-27 | 2001-10-30 | Asahi Medical Co Ltd | 白血球除去用フィルター材及び該フィルター用ポリマー |
JP3950615B2 (ja) * | 2000-05-09 | 2007-08-01 | ポーラ化成工業株式会社 | コポリマー及びそれを含有してなる化粧料 |
KR20050036848A (ko) * | 2001-10-16 | 2005-04-20 | 아사히 카세이 메디칼 가부시키가이샤 | 바이러스 및 백혈구의 선택적 제거 방법, 제거재 및 제거장치 |
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