ES2312719T3 - Medidor con sensor de glucosa de respuesta rapida. - Google Patents
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Abstract
Un medidor que comprende: una caja (81); un visualizador (82) para la visualización de los resultados; una ranura para la inserción de un sensor electroquímico desechable para la detección y/o cuantificación de un analito en una muestra líquida; y un circuito de medición de tiempo adaptado para controlar la medición de la corriente indicativa de analito en la muestra después de la detección de la aplicación de la muestra al sensor cuando el sensor está insertado en el medidor, caracterizado porque el circuito de medición de tiempo está adaptado además para dar lugar a que la medición de corriente se produzca en un tiempo de 15 segundos o menor después de la detección de la aplicación de la muestra.
Description
Medidor con sensor de glucosa de respuesta
rápida.
Esta solicitud se refiere a un sensor de glucosa
electroquímico desechable del tipo usado para diabéticos para
controlar los niveles de glucosa en sangre.
Los sensores de glucosa electroquímicos en tiras
desechables han estado disponibles comercialmente durante unos 10
años, y han sido descritos en diversas patentes incluyendo las
Patentes de EE.UU. Nos. 4.711.245, 5.708.247 y 5.802.551. Estos
sensores usan mediadores redox para facilitar el intercambio de
carga entre la enzima y el electrodo. Estos dispositivos ofrecen
ventajas significativas sobre la tecnología óptica más antigua, tal
como el hecho de que la sangre no penetra dentro del medidor y los
propios medidores tienden a ser mucho más ligeros y menos
engorrosos; pero adolecen igualmente de ciertos inconvenientes. Los
resultados de los ensayos electroquímicos están típicamente
afectados por otras especies electro-activas
presentes en la muestra, así como por el contenido en oxígeno y
hematocrito de la muestra.
La razón de la interferencia por especies
electro-activas es muy clara. Las especies que son
fácilmente oxidables dan como resultado un incremento de corriente
lo que conduce a una lectura elevada. El incremento de corriente
puede ser debido a oxidación directa en la superficie del electrodo
o producirse mediante catálisis redox. Algunos fabricantes han
tratado de hacer frente a este problema usando un electrodo
auxiliar para eliminar el valor de fondo. Aunque esta vía es útil,
agrega una etapa de fabricación extra; agregando costes y una
medición extra con sus errores asociados, degradando, de esta
forma, la precisión. Igualmente, la eliminación del valor de fondo
puede conducir a una sobrecorrección dado que las eficacias de la
catálisis redox del interferente pueden ser diferentes sobre los
dos electrodos, dependiendo de la concentración del analito.
Los efectos del oxígeno y del hematocrito están
unidos. El oxígeno es el cofactor natural para la glucosa oxidasa,
por lo tanto, en la presencia de oxígeno existirá una fuerte
competencia entre el oxígeno y el mediador redox lo que da como
resultado una señal disminuida. De manera similar, puesto que la
hemoglobina es un medio de suministro de oxígeno altamente eficaz,
altos contenidos en hematocrito en las muestras darán como
resultado señales disminuidas. Se han propuesto membranas de
exclusión que mantienen las células de sangre alejadas de la
superficie del electrodo para reducir el efecto del hematocrito
(Patente de EE.UU. No. 5.658.444). Esta vía agrega etapas de
fabricación adicionales, y es, en cualquier caso, únicamente eficaz
para una parte del efecto basado en el oxígeno.
De acuerdo con ello, existe una necesidad de
dispositivos electroquímicos desechables que proporcionen lecturas
para niveles de analito en sangre, particularmente glucosa, que
estén influidos lo más mínimamente por la presencia de
interferentes.
De acuerdo con la invención, se proporciona un
sensor electroquímico desechable para la detección de un analito
tal como glucosa en una muestra líquida. El sensor comprende un
electrodo de trabajo y un electro de referencia dispuesto de una
cavidad receptora de la muestra, una capa de reactivo dispuesta
dentro de la cavidad receptora de la muestra y sobre el electrodo de
trabajo, comprendiendo dicha capa de reactivo al menos una enzima
para la producción de una señal electroquímica en la presencia del
analito, en el que la cavidad receptora de la muestra tiene un
volumen menor de 1,5 \mul, y en el que el sensor proporciona una
medición que se corresponde suficientemente bien (por ejemplo
R^{2}>0,95) con la cantidad de analito en un período de 10
segundos o menor para permitir el uso de la medición en la
detección y cuantificación precisa y exacta del analito.
El sensor se usa en combinación un medidor para
detección del analito en una muestra líquida. Un medidor adecuado
comprende un circuito de medición de tiempo para controlar la
medición de la corriente indicativa del analito en la muestra
después de la detección de la aplicación de la muestra a una tira de
ensayo insertada en el medidor, en el que el circuito de medición
de tiempo da lugar a que la medición de la corriente se produzca en
un tiempo de 15 segundos o menor después de la detección de la
aplicación de la muestra.
La Figura 1 ilustra el movimiento de difusión de
las especies reactantes en la proximidad de un electro
desechable;
la Figura 2 muestra una vista en sección
transversal de un biosensor de acuerdo con una primera realización
de la invención;
la Figura 3 muestra una vista en sección
transversal de un biosensor de acuerdo con una segunda realización
de la invención;
la Figura 4 muestra un aparato para la impresión
en húmedo de un dispositivo sensor cara contra cara;
la Figura 5 muestra un dispositivo sensor cara
contra cara construido parcialmente;
la Figura 6 muestra una vista en sección
transversal de un sensor de acuerdo con la invención;
la Figura 7 muestra una gráfica del coeficiente
de correlación frente al tiempo de ensayo;
la Figura 8 muestra una vista exterior de un
medidor de acuerdo con la invención;
las Figuras 9A-C muestra la
construcción de un sensor de acuerdo con la invención; y
la Figura 10 muestra una comparación de una tira
comercial con una tira de respuesta rápida de acuerdo con la
invención.
La clave para mejorar el resultado de la tira
electroquímica se basa en el diseño de la tira, de manera tal que
reacción mediada esté favorecida frente a las reacciones
interferentes. En el caso de la detección de glucosa, la reacción
específica del analito es una reacción mediada que implica la
generación enzimática de mediador reducido después de la oxidación
del mediador en la superficie del electrodo. De acuerdo con ello,
los presentes autores han llegado a la conclusión que el ensayo
debería construirse de manera tal que estas reacciones tuvieran
lugar en íntima proximidad con la superficie del electrodo con el
fin de proporcionar la máxima eficacia de recogida.
Es importante considerar los procesos de
difusión que se producen durante un ensayo. Considérese la
aplicación de una muestra a la tira de ensayo tal como se muestra
en la Figura 1. La tira de ensayo, en su estado seco, incluye un
electrodo recubierto con una capa de reactivo que contiene la
enzima, E, y el mediador, M. La muestra de ensayo contiene glucosa,
G, interferentes electroquímicos, I, y oxígeno, O_{2}, el cual
puede unirse a la hemoglobina, Hb. Durante la aplicación de la
muestra, se produce un flujo de difusión neto de E y M fuera del
electrodo hacia la muestra de ensayo y un flujo de difusión neto de
G e I hacia el electrodo. En consecuencia, en tiempos muy cortos
después de la aplicación de la muestra la mayor parte de la enzima
está aún cerca del electrodo y la reacción con la glucosa tiene una
alta probabilidad de dar como resultado la generación de una
molécula mediadora reducida suficientemente cerca del electrodo
como para ser capturada. En tiempos más largos, mucha parte de la
enzima se ha difundido "más profundamente" dentro de la muestra
y puede reaccionar con la glucosa ahora. Esto tiene dos efectos. En
primer lugar, existe una alta probabilidad de que la enzima
reducida sea oxidada por O_{2} en lugar de por M, puesto que la
concentración de M disminuirá adicionalmente a partir del electrodo
y la concentración de O_{2} se incrementará adicionalmente a
partir del electrodo (debido a esta misma reacción). Incluso si la
enzima reducida no reacciona con M, la probabilidad de que la M
reducida se vuelva a difundir hacia el electrodo para ser
nuevamente oxidada con la producción simultánea de una señal
detectable es baja. En segundo lugar, la secuencia de reacciones
anteriormente descrita tiene el efecto de agotar la difusión
interiormente de G, de manera tal que la cantidad de G que
realmente llega a la proximidad del electrodo en el cual puede
detectarse con alguna eficacia es reducida. Claramente ambos de
estos factores contribuyen a una señal reducida en la presencia de
oxígeno en la muestra.
De manera similar, los interferentes comunes son
materiales fácilmente oxidados tales como ascorbato, acetaminofeno
y ácido úrico, los cuales una vez que han alcanzado la superficie
del electrodo, son oxidados conjuntamente con el mediador reducido
que puede estar presente. Puesto que este efecto puede ocurrir
únicamente cuando I está presente cerca de la superficie del
electrodo, estará en su mínimo en tiempos cortos antes de que se
produzca la difusión de I al electrodo.
Tal como resulta evidente a partir de esta
explicación mecánica, una solución a ambos de los problemas de
niveles de interferentes y hematocrito/oxigeno es realizar las
medidas en tiempos muy cortos. Una solución alternativa es
restringir el volumen de la muestra de manera tal que el área
superficial del electrodo sea muy grande en comparación con el
volumen de la muestra. Una buena configuración es una que asegure
que la capa de muestra sobre el electrodo es muy fina (por ejemplo,
<200 micrómetros). Un beneficio de limitar el volumen de la
muestra es que las características hidrodinámicas de la solución se
fijan más rápidamente. Con un volumen de muestra más grande, los
efectos de convección en la muestra inducen a ruido en la medición.
Mediante el mantenimiento de un bajo volumen de muestra en la forma
de una película fina se minimizan los efectos de convección. Esto
significa que con un bajo volumen de muestra es posible hacer
mediciones más fácilmente.
En la práctica, estas soluciones están
relacionadas y ambas son efectuadas en los biosensores de la
presente invención. De acuerdo con ello, la presente invención
proporciona sensores electroquímicos desechables y medidores
asociados los cuales están adaptados para la toma de mediciones
electroquímicas de la cantidad de un analito en una muestra, por
ejemplo para la cuantificación de los niveles de glucosa en sangre,
en un tiempo más corto que el de los sistemas previamente
conocidos. Los sensores de la invención se aprovechan de la
relación sinérgica entre tiempos de medición cortos y pequeños
volúmenes de muestra para lograr un rendimiento superior. El volumen
de muestra pequeño permite una medición más pronto debido a la
fijación anticipada de los efectos hidrodinámicos y, de esta forma,
se facilita las mediciones en tiempos cortos. Igualmente, un
volumen de muestra bajo necesita mediciones de tiempo cortas debido
a que la pequeña señal disminuye a tiempos más largos y, por ello,
no puede proporcionar una lectura fiable. Mediante la elección de
este tipo de configuración los presentes autores aseguran que la
concentración del mediador se mantiene alta, de manera tal que el
mediador compite más eficazmente con el oxígeno por la enzima
reducida.
El lograr un dispositivo que usa un pequeño
volumen de muestra es altamente deseable desde el punto de vista
del paciente. El desafío es la creación de un dispositivo que use
un pequeño volumen de muestra para producir mediciones fiables de
la concentración del analito. La primera parte de este
procedimiento es la definición de una cavidad que reciba la muestra
de pequeño volumen. El volumen de esta cavidad está definido por el
área de los electrodos y el espesor del espacio entre los
electrodos. Existe un límite inferior al área de los electrodos que
puede lograrse mediante cualquier procedimiento de impresión,
determinado por la definición del borde y las tolerancias de la
impresión. Una vía para mejorar esta precisión cuando se usan
tintas de impresión de electrodos conocidas es con la metodología
de impresión comúnmente asignada a la Publicación de Patente
Internacional No. WO00/42422.
Una vez que se ha minimizado el "área" de
los electrodos, el volumen de la muestra está definido
posteriormente por la separación entre las superficies de los
electrodos. El primer objetivo es una separación fina, pero
conveniente. No obstante, debería recordarse que si se logra un
volumen de muestra pequeño mediante el uso de una separación muy
fina (es decir, <200 \mum), no se cumplen las condiciones
usuales de difusión semi-infinita. Por ello, la capa
de difusión puede extenderse a través de la separación total, y
agotar significativamente la muestra. Bajo estas circunstancias, la
precisión de los dispositivos empieza estar influida por el factor
adicional de la precisión del procedimiento de montaje que
determina el tamaño de la separación. Existe una relación entre el
tiempo de medición y el tamaño en el cual la precisión en el tamaño
de la separación llega a ser importante, la cual puede entenderse
considerando la fórmula
L =
\surd(Dt)
en la que L es la longitud de
difusión, D es el coeficiente de difusión y t es el tiempo. Cuando
el tiempo de ensayo se reduce desde 15 segundos hasta 5 segundos,
la longitud de difusión se reduce por un factor de 3. Esto quiere
decir en términos prácticos que acortando el tiempo de medición, se
puede reducir aun el tamaño del espacio, sin entrar dentro de la
condición límite en la que la precisión en la separación llega a
ser un factor substancial en la precisión del dispositivo. De
acuerdo con ello, por ejemplo, suponiendo un coeficiente de
difusión de 10^{-5} cm^{2}seg^{-1} un ensayo a los 5 segundos
requeriría una separación mayor de 70 \mum, comparada con los 125
\mum que se requerirían para un segundo ensayo a los 15 segundos.
Considerando estos factores, una configuración adecuada para un
sensor de acuerdo con la invención tiene una cavidad de recepción
de muestra con un volumen menor de 1,5 \mul. Combinado con las
consideraciones sobre el tamaño de la separación, esto significa que
el electrodo de trabajo está de manera deseable dimensionado de
manera tal que la relación del área superficial del electrodo de
trabajo al tamaño de la separación es aproximadamente de 0,5 hasta
100 mm. En una configuración preferida específica, el área de cada
electrodo es de
0,8 mm^{2} y la separación es de 100-150 \mum, para definir un compartimento de recepción de la muestra con un volumen de 0,5 hasta 0,8 \mul.
0,8 mm^{2} y la separación es de 100-150 \mum, para definir un compartimento de recepción de la muestra con un volumen de 0,5 hasta 0,8 \mul.
La Figura 2 muestra un sensor electroquímico 10
de acuerdo con una primera realización de la invención. Los
electrodos 11 y 12 están formados sobre un substrato base 13. El
substrato base 13 en combinación con los espaciadores 14,15 y la
cubierta superior 16 definen una cavidad 17, en la cual tienen lugar
las reacciones electroquímicas. En una realización a modo de
ejemplo, los electrodos tienen un área superficial de 5 mm^{2} y
el volumen de la cavidad es de manera adecuada menor de 1,5 \mul,
preferiblemente menor de 1 \mul y lo más preferiblemente menor de
0,5 \mul.
Un dispositivo del tipo mostrado en la Figura 2
puede fabricarse tal como sigue. Los electrodos 11 y 12 se
depositan sobre el substrato 13. La manera específica de
depositarlos estará determinada por la naturaleza de los electrodos,
aunque la impresión mediante pantalla es una técnica preferida para
muchos materiales. El área del electrodo a exponer a la muestra en
la cámara se define depositando una máscara aislante sobre los
electrodos. (Véase la Publicación de Patente Internacional cedida
en común No. WO00/42422). A continuación, se deposita la capa de
reactivo. Esta capa puede cubrir ambos electrodos, o puede estar
confinada al área sobre el electrodo de trabajo. A continuación, se
forman los espaciadores 14 y 15 de acuerdo con un patrón alrededor
de los electrodos. En una realización preferida, estos espaciadores
se forman mediante la impresión de una capa de adhesivo que tiene
una altura en seco de aproximadamente 150 pm. Este espaciador
define la separación capilar sin necesidad de usar un material
sólido preformado y, de esta forma, se facilita de manera
substancial la producción de los dispositivos de la invención. La
etapa final es la aplicación de una cubierta 16 para completar la
cámara 17. En una realización preferida, la cubierta 16 se fija al
dispositivo mediante los espaciadores adhesivos 14,15.
Las Figuras 9A-C ilustran una
realización específica de una técnica de fabricación para la
producción de un sensor de acuerdo con la invención. La figura
muestra un único sensor, pero se da por entendido que generalmente
se prepararán más de un sensor. La Figura 9A muestra la estructura
del dispositivo antes de la laminación de la cubierta. El sensor,
en esta fase, tiene dos electrodos 11,12 depositados sobre un
substrato (no mostrado por motivos de claridad). No se muestran las
conexiones eléctricas a estos electrodos. Sobre ambos electrodos,
se deposita una almohadilla de reactivo 100 conteniendo, por
ejemplo, una enzima apropiada para el analito. Las almohadillas
adhesivas 101, 102 y 103 se depositan sobre tres lados de la
almohadilla de reactivo. A continuación, se colocan en dos sitios
dos piezas 104, 105 de una película hidrófila (tal como 9962 de 3M,
una película de poliéster ópticamente transparente tratada con un
tensioactivo de 100 micrómetros de espesor), una abrazando las
almohadillas adhesivas 101 y 102 y cubriendo los electrodos y la
almohadilla de reactivo, y una cubriendo una porción de la
almohadilla adhesiva 103 para proporcionar un soporte de altura
conveniente para recibir la cubierta 116. (Figura 9B). Las
posiciones de estas piezas de película hidrófoba crean una cámara
capilar sobre los dos electrodos. El recubrimiento hidrófilo de la
película incita el movimiento, mediante acción capilar, del líquido
de ensayo dentro de la cámara de muestra creada. La separación 106,
formada en el área en el que no existe espaciador o película,
permite escapar el aire procedente de la parte posterior de la
cámara conforme el líquido de ensayo se mueve dentro de la cámara
de ensayo creada. Sobre las películas hidrófobas se aplica una
cinta sensible a la presión como una cubierta superior 116. La
cubierta superior 116 está formada de manera adecuada por una
película de poliéster y puede estar recubierta o bien con un
adhesivo activado por calor o bien un adhesivo sensible a la
presión. La etapa final es el cortado del dispositivo para crear la
cámara de muestra de abertura apropiada, por ejemplo mediante
cortado a lo largo de la línea de rayas C-C en la
Figura 9B. La Figura 9C muestra una vista final del dispositivo
después del corte a lo largo de esta línea C-C. Tal
como se muestra, la entrada capilar 110 a la cámara de muestra está
definida por el substrato 13, las almohadillas adhesivas 101, 102 y
la película hidró-
fila 104 y la cubierta superior 116. Las películas 104 y 105 están soportadas por las almohadillas adhesivas 101 y 102.
fila 104 y la cubierta superior 116. Las películas 104 y 105 están soportadas por las almohadillas adhesivas 101 y 102.
La Figura 3 muestra un sensor electroquímico 20
de acuerdo con una segunda realización de la invención. Los
electrodos 21 y 22 están formados respectivamente sobre un
substrato base 23 y una cubierta superior 26. El substrato base 23
en combinación con los espaciadores 24,25 y la cubierta superior 26
definen una cavidad 27, en la cual se producen las reacciones
electroquímicas. El sensor está construido con un bajo volumen y un
fino espacio entre el substrato base 23 y la cubierta superior 26,
por ejemplo desde 50 hasta 200 pm. Es preciso indicar que el área
superficial de los electrodos puede ser doble para el dispositivo
del mismo tamaño, debido a la configuración cara contra cara,
plegada.
Un dispositivo con esta estructura puede
realizarse usando la tecnología de impresión en húmedo. Esta
tecnología usa un aparato del tipo mostrado esquemáticamente en la
Figura 4. Sobre un rodillo de suministro 32 se dispone una tela en
movimiento de substrato 31 que es transportada sobre una pluralidad
de estaciones de impresión 33, 34 y 35, cada una de las cuales
imprime una capa diferente sobre el substrato. El número de
estaciones de impresión puede ser cualquier número y dependerá del
número de capas requeridas para el dispositivo en particular a
fabricar. Entre estaciones de impresión sucesivas, la tela es
transportada preferiblemente a través de un secador 36, 37 y 38,
para secar cada capa antes de proceder a la deposición de la
siguiente. Después del secador final 38, la tela impresa es
recogida sobre un rodillo de recogida o introducida directamente
dentro del aparato de post-tratamiento 39. Para
realizar un dispositivo con la estructura mostrada en la Figura 3
en este aparato, se depositan pistas conductoras paralelas 71 y 72,
capa(s) de reactivo 73 y una capa aislante 74 sobre un
substrato 70 tal como se muestra en la Figura 5. A continuación, el
substrato se pliega a lo largo de una línea de pliegue dispuesta
entre las dos pistas conductoras para producir un sensor en el cual
dos electrodos cara contra cara están separados por una capa de
reactivo. Una geometría de electrodo con los electrodos dispuestos
sobre superficies opuestas dentro de la cavidad es beneficiosa,
dado que la caída de voltaje debida a la resistencia de la solución
es baja como resultado de la capa fina de solución que separa los
electrodos.
En cada una de las realizaciones de la invención
descritas anteriormente, la cavidad está definida por materiales
aislantes. Los materiales aislantes adecuados para este fin
incluyen nailon, poliéster, policarbonato y cloruro de polivinilo.
Los materiales adecuados para uso como el substrato incluyen
películas de poliéster, por ejemplo una película de poliéster de
300 micrómetros, y otros materiales substrato aislantes tales como
cloruro de polivinilo (PVC) y policarbonato. Un material
dieléctrico imprimible a base de poliéster a partir del cual puede
formarse la máscara aislante es ERCON
R488-B(HV)-B2 Blue. Dentro
de la cavidad, se forman un electrodo de trabajo y uno de referencia
a partir de un material conductor. Los materiales conductores
apropiados incluyen carbono conductor, oro, platino, aluminio o
materiales semiconductores dopados tal como SnO_{2} del tipo n.
Los materiales de carbono conductor preferidos son ERCON ERC1,
ERCON ERC2 y Acheson Carbon Electrodag 423. El carbono con esta
especificación está disponible de Ercon, Inc. (Waltham,
Massachusetts, USA), o Acheson Colloids (Princes Rock, Plymouth,
Inglaterra). Los electrodos semiconductores ofrecen una opción
atractiva dado que pueden funcionalizarse con el fin de permitir la
unión de la superficie de enzimas u otros componentes de la capa de
reactivo. Esto proporciona los beneficios asociados con la
inmovilización, y permite igualmente dirigir la transferencia de
electrones entre el reactivo y el electrodo.
Los electrodos pueden obtenerse a partir de
diferentes materiales o pueden ser del mismo material. Las
realizaciones en las cuales los electrodos son de la misma
composición, por ejemplo un electrodo de carbono, pueden ofrecer
ventajas. Específicamente, el uso de un único material de electrodo
permite depositar los electrodos de trabajo y de referencia en una
única etapa, eliminando, de esta forma, una impresión del electrodo
a partir del procedimiento de producción. Los dos electrodos pueden
imprimirse muy próximos entre sí puesto que la separación entre
ellos está determinada únicamente por la impresión sobre una
pantalla (tolerancia de aproximadamente 200 \mum) y no por la
alineación que pueda lograrse entre operaciones de impresión
separadas (tolerancia aproximada de 0,5 mm). Esto permite que el
área de reacción sea más compacta y, de esta forma, conduzca a una
reducción en el volumen de sangre requerido para cubrir los
electrodos.
El electrodo de trabajo tiene una o más capas de
reactivo dispuestas sobre el electrodo que contiene la enzima y el
mediador usado en la detección del analito diana. De acuerdo con
ello, por ejemplo, en un sensor de glucosa, la capa(s) de
reactivo incluirían una enzima tal como glucosa oxidasa y un
mediador tal como ferricianuro, compuestos metaloceno, quinonas,
sales fenacinio, indicador redox DCPIP, y compuestos de osmio
substituidos con imidazol. La capa de reactivo puede ser una única
capa que incluya tanto enzima como mediador, o puede estar
constituida a partir de una pluralidad de sub-capas,
algunas conteniendo enzima o enzima y mediador y algunas
conteniendo únicamente mediador.
Dado que los dispositivos de la invención están
destinados a ser usados en intervalos de tiempo cortos, una
característica importante de los electrodos es la capacidad para
hidratarse rápidamente. La velocidad de hidratación está
determinada por la composición de la capa de reactivo. Un sistema de
electrodo que usa una capa de reactivo a base de sílice del tipo
descrito en la Patente de EE.UU. No. 5.708.247, y la Publicación de
Patente Internacional No. WO00/42422, permite la rápida humectación
e hidratación y, por ello, es adecuado para uso en los sensores de
la invención. El material óptimo para las capas de reactivo de los
electrodos de los sensores de la presente invención es uno que se
hidrata rápidamente para formar un gel, el cual permanece en
contacto con la superficie del electrodo y retiene los reactivos en
la proximidad del electrodo. Si la capa de reactivo se dispersa
rápidamente después de la hidratación, los reactivos (y en
particular el reactivo enzima) son rápidamente alejados de la
proximidad de la superficie del electrodo en donde son lo más
beneficioso para el desarrollo de una señal que refleje la
concentración de analito en una muestra.
La capa de reactivo debe, igualmente, comprender
un mediador en una forma disponible para participación inmediata en
la generación de una señal que refleje la concentración de analito.
En el caso de un analito tal como glucosa que es oxidada por la
enzima, esto significa que el mediador debe ser rápidamente soluble
y estar presente en la forma oxidada. En una tira de glucosa
comercial comercializada por Medisense bajo los nombres comerciales
QID™ y EXACTECH™, el mediador está realmente presente en la forma
reducida y debe ser oxidado in situ antes de que pueda
participar en una reacción de control de glucosa. Esto limita el
tiempo de respuesta de la tira, y excluye su uso en tiempos de
ensayo cortos.
En el caso del electrodo de referencia, el
electrodo necesita ser hidratarse rápidamente, e igualmente capaz
de estabilizarse suficiente rápidamente para suministrar la
corriente demandada por el electrodo de trabajo instantáneamente,
es decir, dentro de los 200 mseg de hidratación. Un electrodo de
referencia de plata/cloruro de plata convencional no se estabiliza
lo suficiente rápidamente. Por otra parte, puede crearse una
referencia de ferri-ferrocianuro para equilibrar muy
rápidamente. En este diseño, se usa una capa que contiene mediador
que se solubiliza o dispersa rápidamente. En una realización
específica de la invención, se usan electrodos de tinta de carbono
con una capa de reactivo que contiene ferricianuro potásico como el
mediador. La glucosa oxidasa se usa como la enzima en una base de
hidroxi etilcelulosa-sílice con polímeros agregados
para incrementar la naturaleza hidrófila de la formulación. Este
sistema tiene un área superficial muy afta y se humecta muy
rápidamente.
Además del electrodo de trabajo y el electrodo
de referencia, el dispositivo de la invención puede construirse
para incluir un tercer electrodo. El tercer electrodo puede ser un
electrodo fingido, destinado a compensar las reacciones de fondo de
base, o un electrodo contador de un sistema de tres electrodos
convencional. El tercer electrodo podría ser también un electrodo de
trabajo idéntico.
En las realizaciones de la invención expuestas
anteriormente, todas las capas son rápidamente solubilizadas o
hidratadas. Aunque la rápida solubilización o al menos hidratación
del mediador oxidado no es un problema para el consumo de
interferente, y posiblemente ayude a lograr esta exigencia, no es
completamente una buena característica para una capa que contiene
enzima, tal como se ha descrito anteriormente, puesto que esto
facilita la difusión de la enzima fuera del área próxima al
electrodo en donde es lo más beneficioso. De acuerdo con ello, en
la Figura 6 se-muestra una configuración útil que
combina ambos aspectos. En esta realización de la invención, el
sensor 60 tiene una cavidad 67 formada a partir de un substrato
inferior 63, espaciadores 64, 65 y una cubierta superior 66. Dos
electrodos de carbono 61, 62 se encuentran dispuestos sobre el
substrato inferior 63 dentro de la cavidad 67. El electrodo 62 está
recubierto con una capa de gel viscoso relativamente fina (por
ejemplo, 5 \mum) 68 que contiene enzima y mediador. A
continuación, ambos electrodos 61, 62 son recubiertos con una capa
de dispersión relativamente fina (por ejemplo,
25 \mum) 69 que contiene mediador, pero no enzima.
25 \mum) 69 que contiene mediador, pero no enzima.
En otra realización de la invención, están
configuradas dos capas separadas para reducir adicionalmente los
efectos de los interferentes. Una vía para aprovechar el consumo
químico de interferentes es proporciona una capa de reactivo con un
exceso de mediador oxidado sobre la parte exterior. En una
configuración particularmente atractiva, un electrodo está
recubierto con una capa fina de reactivo que contiene enzima y
mediador y, a continuación, una capa fina que contiene únicamente
mediador. Ambas capas están depositadas en una matriz que limita la
difusión, pero que es rápidamente hidratada de manera tal que puede
transportar una corriente. Confinando la enzima a una capa fina, la
enzima se mantiene en gran medida en íntima proximidad con el
electrodo de manera tal que las reacciones parásitas descritas
anteriormente no son importantes. La capa de mediador gruesa
exterior proporciona una barrera a la difusión interior de los
interferentes y se mantiene en la posición deseada a causa de la
matriz que limita la difusión. Puede incluirse una tercera capa
opcional fuera de las primera y segunda capas que contienen el
mediador en una matriz dispersable rápidamente hidratada. Una vez
más, al asegurar que el volumen de la muestra es pequeño, la
cantidad total de interferente en la muestra se mantiene en
un mínimo, y la concentración del mediador oxidado durante
la re-constitución es tan alta que el mediador
elimina de manera eficaz el interferente. Obviamente, a tiempos más
largos la concentración local del mediador cae conforme se difunde
dentro de la muestra y la interferencia llega a ser más
significativa.
En la experiencia de los presentes autores, un volumen de muestra menor de 1 \mul, preferiblemente 0,5 \mul, es ideal.
En la experiencia de los presentes autores, un volumen de muestra menor de 1 \mul, preferiblemente 0,5 \mul, es ideal.
Los sensores realizados de acuerdo con la
invención permiten la toma de mediciones de ensayo en tiempos mucho
más cortos que los logrados usando sensores conocidos. Al acortar
el tiempo de ensayo, pueden reducirse los efectos del hematocrito.
Si el sensor comprende un electrodo recubierto con una capa de
reactivo que tiene un efecto retardante sobre ciertos componentes de
la sangre tal como glóbulos blancos y eritrocitos, en ese caso, en
tiempos cortos el fluido que llega al electrodo contendrá
significativamente menos de estos componentes que en tiempos
largos.
La Figura 7 muestra un gráfico del coeficiente
de correlación frente al tiempo de ensayo. A tiempos de ensayos
extremadamente cortos la correlación es pobre dado que el sistema
no está aún estabilizado. A tiempos de ensayo muy largos la
correlación comienza igualmente a degradarse. Teniendo en cuenta el
objetivo de la limitación de interferencias mediante el acortamiento
del tiempo de ensayo, el ensayo se llevará a cabo de manera
adecuada en el régimen indicado por las líneas de trazos, el cual
para los sensores descritos más adelante será menor de 10 segundos
y preferiblemente alrededor de 5 segundos. Los sensores desechables
de la invención trabajan en combinación con un medidor del ensayo
para proporcionar mediciones exactas de glucosa dentro de este
régimen de tiempo. De acuerdo con ello, el sensor se configura para
proporcionar señales que proporcionen información exacta y fiable
en tiempos cortos, y el medidor dentro del cual se inserta el
sensor está adaptado para recoger información durante este
tiempo.
La Figura 8 muestra una vista exterior de un
medidor portátil a modo de ejemplo de acuerdo con la invención. Al
igual que los medidores convencionales, el medidor de la invención
tiene una caja 81 con un visualizador 82 para visualizar los
resultados, y una ranura 83 para la inserción del sensor desechable.
Pueden incluirse botones 85 y/o conmutadores para manipular el
medidor, incluyendo la recuperación de los resultados almacenados,
comprobaciones de calibración y similares. En lo que el medidor de
la invención difiere del medidor convencional, es en la electrónica
de dentro de la caja. En el medidor convencional, la adición de una
muestra líquida, tal como una gota de sangre, a un sensor desechable
en la caja comienza un ciclo de medición durante el cual los
reactivos se disuelven y se toma una lectura. El comienzo del ciclo
puede igualmente ser iniciado al apretar un botón el usuario,
aunque esto no es lo preferido. El microprocesador en un medidor
está, típicamente, en un modo "dormido" y "despierta"
periódicamente (por ejemplo cada ½ segundo) para comprobar las
interrupciones. Si el programa detecta que aparece una bandera de
interrupción, lo que indica que se ha insertado una tira en el
medidor o que se ha presionado el botón de comenzar, el programa
entra en el modo RUN. En este modo, se aplica típicamente un
potencial a la tira y el microprocesador controla la salida (ciclo
de rendimiento) de un controlador de la anchura del impulso, lo
cual indica el nivel de cualquier corriente consumida por la tira.
Tan pronto como la muestra se aplica a la tira, fluye una corriente
puesto que la tira está previamente sometida a un potencial de
polarización. La detección de esta corriente de comienzo inicia una
secuencia de medición de tiempo. La medición de tiempo está
controlada por el microprocesador. Existen dos cristales: un reloj
de 4 MHz para la función de operación (es decir, la realización de
las mediciones) y un reloj de 32 MHz el cual mantiene el tiempo en
el modo OFF. Al iniciarse el proceso de medición de tiempo, el
potencial aplicado puede, o bien (1) mantenerse a un nivel
constante, o bien (2) variar siguiendo un perfil predeterminado. En
ambos casos, la corriente se mide después de un tiempo
predeterminado para evaluar la cantidad de analito en la muestra. A
modo de ejemplo, los datos mostrados en la Figura 7 se recogieron
en un sistema en el cual la aplicación de la muestra se detectó a
t=0, el potencial detectado se interrumpió durante 2 segundos,
durante cuyo tiempo la tira es un circuito abierto y, a
continuación, se volvió a aplicar el mismo potencial. La corriente
se midió a numerosos puntos de tiempo y se determinó la correlación
de corriente con la concentración de analito a cada punto de
tiempo.
En medidores comercialmente disponibles
conocidos en la técnica, el ciclo de medición se establece para
obtener la medición de corriente a los 20 a 60 segundos después de
la detección de la muestra. En los medidores de la invención, los
cuales están particularmente adaptados para uso con tiras de
respuesta rápida de la invención, el ciclo de medición se establece
para obtener mediciones de corriente en un tiempo de 15 segundos o
menor después de la detección de la muestra, y preferiblemente en un
tiempo de desde 5 hasta 10 segundos después de la detección de la
muestra.
La invención se describirá a continuación con
más detalle con referencia a los ejemplos siguientes no
limitativos.
Ejemplo
1
Se prepararon sensores de respuesta rápida de
acuerdo con la invención usando los procedimientos descritos en las
Figuras 9A-C y los materiales siguientes:
substrato: película de poliéster;
formulación de tinta de carbono: carbón
conductor Ercon;
composición de la capa de reactivo: tal como se
describe más adelante;
adhesivo: adhesivo de copolímero acrílico al
agua (Apollo Adhesives);
película hidrófila: película hidrófila 9962 de
3M de 100 micrómetros;
cubierta superior: tira de poliéster recubierta
de adhesivo sensible a la presión (Tape Specialties).
La capa de reactivo se formuló tal como sigue.
100 ml de citrato trisódico acuoso 100 mM se ajustaron a pH 5
mediante la adición de ácido cítrico 1 M. A esos, se agregaron 5 g
de hidroxietilcelulosa (HEC), 1 g de alcohol polivinílico, 1 g de
PVP-VA S-630 poli(vinil
pirrolidona acetato de vinilo), y 0,5 ml de antiespuma DC 1500 de
Dow Corning, y se mezclaron mediante homogeneización. La mezcla se
dejó reposar durante una noche para permitir que las burbujas de
aire se dispersaran y, a continuación, se usó como una solución
madre para la formulación de la composición de recubrimiento. Se
agregaron gradualmente 7,5 g de
Cab-o-Sil TS610 de manera manual a
la solución de HEC hasta que se agregó aproximadamente 4/5 de la
cantidad total. El resto se agregó con mezclado mediante
homogeneización. A continuación, la mezcla se volteó durante 12
horas. A continuación, se agregaron 11 g de ferricianuro potásico y
se mezclaron mediante homogeneización hasta completa disolución.
Finalmente, se agregaron 2,8 g de preparación de enzima glucosa
oxidasa (250 unidades/mg) y, a continuación, se mezclaron
intensamente dentro de la solución. La formulación resultante
estaba lista para impresión, o podía almacenarse con
refrigeración.
Los sensores se usaron para ensayar soluciones
de glucosa convencionales y se midió la corriente a diferentes
tiempos después de la adición de la glucosa al sensor. Se determinó
el coeficiente de correlación entre la concentración de glucosa real
y la concentración de glucosa medida para cada intervalo de tiempo.
La Figura 7 muestra un gráfico de los resultados. Tal como se
muestra, se logró un coeficiente de correlación máximo y un alto
valor a los 5 segundos después de la adición de glucosa al
sensor.
Ejemplo
2
Se prepararon sensores de glucosa de respuesta
rápida de acuerdo con la invención tal como en el Ejemplo 1. Estos
sensores se usaron para determinar la cantidad de corriente a los
cinco segundos después de exposición a diferentes concentraciones
de glucosa. Para fines comparativos, se ensayó un sensor de glucosa
Medisense QID bajo las mismas condiciones. La Figura 10 muestra los
resultados de este experimento gráficamente. Tal como se muestra, la
linealidad de la respuesta del sensor de respuesta rápida de
acuerdo con la invención es muy buena (R^{2} = 0,999). La
linealidad del sensor QID a los cinco segundos no fue tan buena
(R^{2} = 0,863).
Claims (4)
1. Un medidor que comprende:
una caja (81);
un visualizador (82) para la visualización de
los resultados;
una ranura para la inserción de un sensor
electroquímico desechable para la detección y/o cuantificación de
un analito en una muestra líquida; y
un circuito de medición de tiempo adaptado para
controlar la medición de la corriente indicativa de analito en la
muestra después de la detección de la aplicación de la muestra al
sensor cuando el sensor está insertado en el medidor,
caracterizado porque el circuito de
medición de tiempo está adaptado además para dar lugar a que la
medición de corriente se produzca en un tiempo de 15 segundos o
menor después de la detección de la aplicación de la muestra.
2. El medidor de la reivindicación 1, en el que
el circuito de medición de tiempo produce la medición de la
corriente en un tiempo de 10 segundos o menor después de la
detección de la aplicación de la muestra.
3. El medidor de la reivindicación 1, en el que
el circuito de medición de tiempo produce la medición de la
corriente en un tiempo de 5 segundos o menor después de la
detección de la aplicación de la muestra.
4. El medidor de cualquiera de las
reivindicaciones 1 a 3, en el que el medidor comprende una caja
portátil en la cual está dispuesto el circuito de medición de
tiempo, conteniendo dicha caja una abertura en ella para la
recepción del sensor.
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Families Citing this family (92)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
US20050103624A1 (en) | 1999-10-04 | 2005-05-19 | Bhullar Raghbir S. | Biosensor and method of making |
US7276146B2 (en) * | 2001-11-16 | 2007-10-02 | Roche Diagnostics Operations, Inc. | Electrodes, methods, apparatuses comprising micro-electrode arrays |
US8641644B2 (en) | 2000-11-21 | 2014-02-04 | Sanofi-Aventis Deutschland Gmbh | Blood testing apparatus having a rotatable cartridge with multiple lancing elements and testing means |
US7025774B2 (en) | 2001-06-12 | 2006-04-11 | Pelikan Technologies, Inc. | Tissue penetration device |
US9795747B2 (en) | 2010-06-02 | 2017-10-24 | Sanofi-Aventis Deutschland Gmbh | Methods and apparatus for lancet actuation |
US9427532B2 (en) | 2001-06-12 | 2016-08-30 | Sanofi-Aventis Deutschland Gmbh | Tissue penetration device |
US9226699B2 (en) | 2002-04-19 | 2016-01-05 | Sanofi-Aventis Deutschland Gmbh | Body fluid sampling module with a continuous compression tissue interface surface |
US20030116447A1 (en) | 2001-11-16 | 2003-06-26 | Surridge Nigel A. | Electrodes, methods, apparatuses comprising micro-electrode arrays |
US7648468B2 (en) | 2002-04-19 | 2010-01-19 | Pelikon Technologies, Inc. | Method and apparatus for penetrating tissue |
US9314194B2 (en) | 2002-04-19 | 2016-04-19 | Sanofi-Aventis Deutschland Gmbh | Tissue penetration device |
US9248267B2 (en) | 2002-04-19 | 2016-02-02 | Sanofi-Aventis Deustchland Gmbh | Tissue penetration device |
US7717863B2 (en) | 2002-04-19 | 2010-05-18 | Pelikan Technologies, Inc. | Method and apparatus for penetrating tissue |
US8579831B2 (en) | 2002-04-19 | 2013-11-12 | Sanofi-Aventis Deutschland Gmbh | Method and apparatus for penetrating tissue |
US8702624B2 (en) | 2006-09-29 | 2014-04-22 | Sanofi-Aventis Deutschland Gmbh | Analyte measurement device with a single shot actuator |
US9795334B2 (en) | 2002-04-19 | 2017-10-24 | Sanofi-Aventis Deutschland Gmbh | Method and apparatus for penetrating tissue |
US8784335B2 (en) | 2002-04-19 | 2014-07-22 | Sanofi-Aventis Deutschland Gmbh | Body fluid sampling device with a capacitive sensor |
US7901362B2 (en) | 2002-04-19 | 2011-03-08 | Pelikan Technologies, Inc. | Method and apparatus for penetrating tissue |
US7674232B2 (en) | 2002-04-19 | 2010-03-09 | Pelikan Technologies, Inc. | Method and apparatus for penetrating tissue |
US7226461B2 (en) | 2002-04-19 | 2007-06-05 | Pelikan Technologies, Inc. | Method and apparatus for a multi-use body fluid sampling device with sterility barrier release |
US7547287B2 (en) | 2002-04-19 | 2009-06-16 | Pelikan Technologies, Inc. | Method and apparatus for penetrating tissue |
US8267870B2 (en) | 2002-04-19 | 2012-09-18 | Sanofi-Aventis Deutschland Gmbh | Method and apparatus for body fluid sampling with hybrid actuation |
US6743635B2 (en) | 2002-04-25 | 2004-06-01 | Home Diagnostics, Inc. | System and methods for blood glucose sensing |
US6964871B2 (en) | 2002-04-25 | 2005-11-15 | Home Diagnostics, Inc. | Systems and methods for blood glucose sensing |
US6946299B2 (en) | 2002-04-25 | 2005-09-20 | Home Diagnostics, Inc. | Systems and methods for blood glucose sensing |
US9017544B2 (en) | 2002-10-04 | 2015-04-28 | Roche Diagnostics Operations, Inc. | Determining blood glucose in a small volume sample receiving cavity and in a short time period |
US6939450B2 (en) | 2002-10-08 | 2005-09-06 | Abbott Laboratories | Device having a flow channel |
WO2004039897A2 (en) * | 2002-10-30 | 2004-05-13 | Inverness Medical Limited | Process for making an electrochemical sensor |
EP1556226B1 (en) * | 2002-10-30 | 2009-11-25 | Lifescan Scotland Ltd | Enzyme print humidification in a continuous process for manufacture of electrochemical sensors |
US8574895B2 (en) | 2002-12-30 | 2013-11-05 | Sanofi-Aventis Deutschland Gmbh | Method and apparatus using optical techniques to measure analyte levels |
US7228162B2 (en) | 2003-01-13 | 2007-06-05 | Isense Corporation | Analyte sensor |
US7473264B2 (en) | 2003-03-28 | 2009-01-06 | Lifescan, Inc. | Integrated lance and strip for analyte measurement |
US20040193202A1 (en) | 2003-03-28 | 2004-09-30 | Allen John J. | Integrated lance and strip for analyte measurement |
US7862519B1 (en) | 2003-05-21 | 2011-01-04 | Isense Corporation | Easy-to-use multi-use body fluid specimen collection and analyte sensing assembly |
US7225008B1 (en) | 2003-05-21 | 2007-05-29 | Isense Corporation | Multiple use analyte sensing assembly |
US20040238359A1 (en) * | 2003-05-28 | 2004-12-02 | Matsushita Electric Industrial Co., Ltd. | Biosensor |
US7462265B2 (en) | 2003-06-06 | 2008-12-09 | Lifescan, Inc. | Reduced volume electrochemical sensor |
WO2006001797A1 (en) | 2004-06-14 | 2006-01-05 | Pelikan Technologies, Inc. | Low pain penetrating |
US7645421B2 (en) | 2003-06-20 | 2010-01-12 | Roche Diagnostics Operations, Inc. | System and method for coding information on a biosensor test strip |
US8148164B2 (en) | 2003-06-20 | 2012-04-03 | Roche Diagnostics Operations, Inc. | System and method for determining the concentration of an analyte in a sample fluid |
US7718439B2 (en) | 2003-06-20 | 2010-05-18 | Roche Diagnostics Operations, Inc. | System and method for coding information on a biosensor test strip |
US7645373B2 (en) | 2003-06-20 | 2010-01-12 | Roche Diagnostic Operations, Inc. | System and method for coding information on a biosensor test strip |
US8071030B2 (en) | 2003-06-20 | 2011-12-06 | Roche Diagnostics Operations, Inc. | Test strip with flared sample receiving chamber |
US8058077B2 (en) | 2003-06-20 | 2011-11-15 | Roche Diagnostics Operations, Inc. | Method for coding information on a biosensor test strip |
EP1642117B1 (en) | 2003-06-20 | 2018-06-13 | Roche Diabetes Care GmbH | Reagent stripe for test strip |
US8206565B2 (en) | 2003-06-20 | 2012-06-26 | Roche Diagnostics Operation, Inc. | System and method for coding information on a biosensor test strip |
US7452457B2 (en) | 2003-06-20 | 2008-11-18 | Roche Diagnostics Operations, Inc. | System and method for analyte measurement using dose sufficiency electrodes |
JP4038575B2 (ja) * | 2003-07-25 | 2008-01-30 | 独立行政法人産業技術総合研究所 | バイオセンサ、バイオセンサ装置またはバイオセンサの保存方法 |
EP1671096A4 (en) | 2003-09-29 | 2009-09-16 | Pelikan Technologies Inc | METHOD AND APPARATUS FOR PROVIDING IMPROVED SAMPLE CAPTURING DEVICE |
WO2005037095A1 (en) | 2003-10-14 | 2005-04-28 | Pelikan Technologies, Inc. | Method and apparatus for a variable user interface |
US7655119B2 (en) | 2003-10-31 | 2010-02-02 | Lifescan Scotland Limited | Meter for use in an improved method of reducing interferences in an electrochemical sensor using two different applied potentials |
DK1678490T3 (da) | 2003-10-31 | 2009-10-05 | Lifescan Scotland Ltd | Fremgangsmåde til reduktion af interferenser i en elektrokemisk sensor ved anvendelse af to forskellige påförte potentialer |
CN1871046B (zh) | 2003-11-06 | 2010-10-27 | 生命扫描有限公司 | 带有事件通知装置的药物配送笔 |
EP1706026B1 (en) | 2003-12-31 | 2017-03-01 | Sanofi-Aventis Deutschland GmbH | Method and apparatus for improving fluidic flow and sample capture |
DE102004024432A1 (de) * | 2004-05-14 | 2005-12-08 | Tesa Ag | Verwendung einer Folie mit hydrophiler Oberfläche in medizinischen Diagnosestreifen |
US8828203B2 (en) | 2004-05-20 | 2014-09-09 | Sanofi-Aventis Deutschland Gmbh | Printable hydrogels for biosensors |
KR101328608B1 (ko) | 2004-05-21 | 2013-11-12 | 아가매트릭스, 인코포레이티드 | 전기화학 셀 및 전기화학 셀 제조 방법 |
WO2005120365A1 (en) | 2004-06-03 | 2005-12-22 | Pelikan Technologies, Inc. | Method and apparatus for a fluid sampling device |
US9775553B2 (en) | 2004-06-03 | 2017-10-03 | Sanofi-Aventis Deutschland Gmbh | Method and apparatus for a fluid sampling device |
US7569126B2 (en) | 2004-06-18 | 2009-08-04 | Roche Diagnostics Operations, Inc. | System and method for quality assurance of a biosensor test strip |
US20050284773A1 (en) | 2004-06-29 | 2005-12-29 | Allen John J | Method of preventing reuse in an analyte measuring system |
TWI385379B (zh) | 2004-10-12 | 2013-02-11 | Bayer Healthcare Llc | 在擴散障壁層中濃度的測定 |
GB0511270D0 (en) * | 2005-06-03 | 2005-07-13 | Hypoguard Ltd | Test system |
US7695600B2 (en) | 2005-06-03 | 2010-04-13 | Hypoguard Limited | Test system |
US8066866B2 (en) | 2005-10-17 | 2011-11-29 | Lifescan, Inc. | Methods for measuring physiological fluids |
US7468125B2 (en) | 2005-10-17 | 2008-12-23 | Lifescan, Inc. | System and method of processing a current sample for calculating a glucose concentration |
US7738264B2 (en) | 2006-03-31 | 2010-06-15 | Lifescan Scotland Ltd. | Devices and methods for protecting handheld electronic devices from electrostatic discharge |
EP2082222B1 (en) | 2006-10-05 | 2012-11-21 | Lifescan Scotland Limited | Systems and methods for determining a substantially hematocrit independent analyte concentration |
ES2544353T3 (es) | 2006-10-05 | 2015-08-28 | Lifescan Scotland Ltd | Métodos para determinar una concentración de analitos usando algoritmos de procesamiento de señales |
US9046480B2 (en) | 2006-10-05 | 2015-06-02 | Lifescan Scotland Limited | Method for determining hematocrit corrected analyte concentrations |
WO2008040997A1 (en) | 2006-10-05 | 2008-04-10 | Lifescan Scotland Limited | A test strip comprising patterned electrodes |
US8388821B2 (en) | 2006-10-05 | 2013-03-05 | Lifescan Scotland Limited | Method for determining hematocrit corrected analyte concentrations |
US20080164142A1 (en) | 2006-10-27 | 2008-07-10 | Manuel Alvarez-Icaza | Surface treatment of carbon composite material to improve electrochemical properties |
DE102007003755A1 (de) | 2007-01-19 | 2008-07-31 | Tesa Ag | Bahnförmiges Material mit einer Beschichtung, die ein dauerhaftes schnelles Spreiten beziehungsweise einen dauerhaften sehr schnellen Transport von Flüssigkeiten ermöglicht |
DE102007018383A1 (de) | 2007-04-17 | 2008-10-23 | Tesa Ag | Flächenförmiges Material mit hydrophilen und hydrophoben Bereichen und deren Herstellung |
DE102007026998A1 (de) | 2007-06-07 | 2008-12-11 | Tesa Ag | Hydrophiler Beschichtungslack |
US7875461B2 (en) | 2007-07-24 | 2011-01-25 | Lifescan Scotland Limited | Test strip and connector |
EP2183671B1 (en) | 2007-08-29 | 2018-08-29 | Lifescan Scotland Limited | A data management system and method |
US7943022B2 (en) | 2007-09-04 | 2011-05-17 | Lifescan, Inc. | Analyte test strip with improved reagent deposition |
DE102008006225A1 (de) | 2008-01-25 | 2009-07-30 | Tesa Ag | Biosensor und dessen Herstellung |
EP2265324B1 (en) | 2008-04-11 | 2015-01-28 | Sanofi-Aventis Deutschland GmbH | Integrated analyte measurement system |
DE102008051008A1 (de) | 2008-10-13 | 2010-04-15 | Tesa Se | Haftklebeband mit funktionalisierter Klebmasse und dessen Verwendung |
US9375169B2 (en) | 2009-01-30 | 2016-06-28 | Sanofi-Aventis Deutschland Gmbh | Cam drive for managing disposable penetrating member actions with a single motor and motor and control system |
AU2010238253A1 (en) | 2009-04-17 | 2011-11-24 | Universal Biosensors Pty Ltd. | On-board control detection |
CN102471796A (zh) | 2009-07-27 | 2012-05-23 | 舒尔传感器有限公司 | 传感器设备的改进 |
EP2283774A1 (de) | 2009-08-13 | 2011-02-16 | Roche Diagnostics GmbH | Testelement zur Analyse einer Körperflüssigkeit |
US8965476B2 (en) | 2010-04-16 | 2015-02-24 | Sanofi-Aventis Deutschland Gmbh | Tissue penetration device |
JP5599012B1 (ja) | 2014-06-23 | 2014-10-01 | 国立大学法人 東京大学 | 採取部及びバイオセンサ |
CN104792993B (zh) * | 2015-03-14 | 2017-07-11 | 深圳市贝沃德克生物技术研究院有限公司 | 用于血糖仪试纸针的试纸条 |
EP3440493B1 (en) | 2016-04-08 | 2020-10-14 | Alentic Microscience Inc. | Sample processing for microscopy |
CA3053002A1 (en) * | 2017-02-08 | 2018-08-16 | Essenlix Corp. | Bio/chemical material extraction and assay |
WO2021064466A1 (en) * | 2019-09-30 | 2021-04-08 | Universal Biosensors Pty Ltd | Electrochemical sensor for analysis of beverages |
CN112251069A (zh) * | 2020-10-29 | 2021-01-22 | 郑州百瑞动物药业有限公司 | 一种基于水性丝网印刷技术的酶电极用酶油墨及其制备方法 |
Family Cites Families (17)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
JPS61259158A (ja) * | 1985-05-14 | 1986-11-17 | Toyota Central Res & Dev Lab Inc | 油の酸性,塩基性度検出方法及び基準電極 |
JPH0820412B2 (ja) * | 1990-07-20 | 1996-03-04 | 松下電器産業株式会社 | 使い捨てセンサを用いた定量分析方法、及び装置 |
JP3063393B2 (ja) * | 1992-05-12 | 2000-07-12 | 東陶機器株式会社 | バイオセンサ及びその製造方法 |
JP3215237B2 (ja) * | 1993-10-01 | 2001-10-02 | 富士通株式会社 | 記憶装置および記憶装置の書き込み/消去方法 |
AUPN661995A0 (en) * | 1995-11-16 | 1995-12-07 | Memtec America Corporation | Electrochemical cell 2 |
US5708247A (en) * | 1996-02-14 | 1998-01-13 | Selfcare, Inc. | Disposable glucose test strips, and methods and compositions for making same |
JP3394262B2 (ja) * | 1997-02-06 | 2003-04-07 | セラセンス、インク. | 小体積インビトロ被検体センサー |
EP0859230A1 (en) * | 1997-02-10 | 1998-08-19 | Cranfield University | Detection of analytes using electrochemistry |
US5759364A (en) * | 1997-05-02 | 1998-06-02 | Bayer Corporation | Electrochemical biosensor |
JP3528529B2 (ja) * | 1997-07-31 | 2004-05-17 | Nok株式会社 | バイオセンサ |
JPH1194790A (ja) * | 1997-09-12 | 1999-04-09 | Nok Corp | バイオセンサ |
JPH1194791A (ja) * | 1997-09-12 | 1999-04-09 | Nok Corp | バイオセンサ |
EP1025439B1 (en) * | 1997-09-30 | 2003-12-10 | Amira Medical | Membrane based electrochemical test device and related methods |
JPH11337514A (ja) * | 1998-05-26 | 1999-12-10 | Omron Corp | バイオセンサ |
US6475372B1 (en) * | 2000-02-02 | 2002-11-05 | Lifescan, Inc. | Electrochemical methods and devices for use in the determination of hematocrit corrected analyte concentrations |
US6258229B1 (en) * | 1999-06-02 | 2001-07-10 | Handani Winarta | Disposable sub-microliter volume sensor and method of making |
US6733655B1 (en) * | 2000-03-08 | 2004-05-11 | Oliver W. H. Davies | Measurement of substances in liquids |
-
2001
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