ES2273502T3 - Derivados de epotilona y su sintesis y uso. - Google Patents
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Abstract
Un compuesto representado por la fórmula I en donde el enlace ondulado indica que el enlace "a" está presente bien en la forma cis o bien en la forma trans; (i) R2 está ausente o es oxígeno; "a" puede ser un enlace sencillo o doble; "b" puede estar ausente o es un enlace sencillo; y "c" puede estar ausente o es un enlace sencillo, con la condición de que si R2 es oxígeno, entonces "b" y "c" son ambos un enlace sencillo y "a" es un enlace sencillo; si R2 está ausente, entonces "b" y "c" están ausentes y "a" es un enlace doble; y si "a" es un enlace doble, entonces R2, "b" y "c" están ausentes; R3 es un radical seleccionado del grupo consistente en alquilo C1-C7, especialmente metilo, etilo, n- propilo, iso-propilo, n-butilo, iso-butilo, terc-butilo, n-pentilo, n-hexilo; -CH=CH2; -C=CH; -CH2F; - CH2Cl; -CH2-OH; -CH2-O-(alquilo C1-C6), especialmente -CH2-O-CH3; y -CH2-S-(alquilo C1-C6), especialmente -CH2-S-CH3; R4 y R5 se eligen independientemente entre hidrógeno, metilo o un grupo protector,preferentemente hidrógeno; y R1 es un radical seleccionado entre las siguientes estructuras: o una sal de un compuesto de fórmula I cuando está presente un grupo formador de sales.
Description
Derivados de epotilona y su síntesis y uso.
La presente invención se refiere a análogos de
epotilona que presentan modificaciones en la cadena lateral y a
métodos para la producción de dichos compuestos, a su uso en la
terapia de enfermedades o en la obtención de preparados
farmacéuticos para el tratamiento de enfermedades, así como a nuevos
compuestos intermedios empleados en la síntesis de dichos análogos
y nuevos métodos de síntesis.
Esta invención se llevó a cabo con el apoyo del
estado a través de la Subvención CA 46446 concedida por los
Institutos Nacionales de la Salud. El estado U.S. dispone de ciertos
derechos sobre la invención.
Las epotilonas (1-5) son
sustancias naturales que exhiben citotoxicidad incluso contra
células tumorales resistentes a paclitaxel al promover la
polimerización de subunidades de \alpha- y
\beta-tubulina y estabilizar los conjuntos de
microtúbulos resultantes. Las epotilonas desplazan a paclitaxel (el
principio activo de TAXOL™) de su sitio de unión a microtúbulos y
sobre las mismas se ha dicho que son más potentes que paclitaxel con
respecto a la estabilización de microtúbulos.
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Lo que se necesita son análogos de epotilona A y
B que exhiban superiores propiedades farmacológicas, en especial
una o más de las siguientes propiedades: un índice terapéutico
acentuado (por ejemplo, un intervalo más grande de dosis
citotóxicas contra, por ejemplo, enfermedades proliferativas sin
toxicidad para las células normales), mejores propiedades
farmacocinéticas, mejores propiedades farmacodinámicas, mejor
solubilidad en agua, mejor eficacia contra tipos de tumores que
son, o llegan a ser, resistentes a la factura de formulaciones, por
ejemplo, mejor solubilidad en disolventes polares, especialmente
aquellos que comprenden agua, estabilidad mejorada, producción
conveniente de los compuestos como tales, inhibición mejorada de la
proliferación al nivel celular, altos niveles de efectos
estabilizantes de microtúbulos y/o perfiles farmacológicos
específicos.
La WO 98/25929A describe análogos de epotilona y
librerías de análogos de epotilona y la síntesis de los mismos. Se
ha demostrado que varios de los análogos tienen una superior
actividad citotóxica para inducir la polimerización y estabilización
de microtúbulos.
La presente invención se refiere a nuevos
compuestos que de manera sorprendente presentan una o más de las
ventajas antes mencionadas.
\newpage
Un aspecto principal de la invención se refiere
a un compuesto análogo de epotilona representado por la fórmula
I
en donde el enlace ondulado indica
que el enlace "a" está presente bien en la forma cis o bien en
la forma trans; (i) R_{2} está ausente o es oxígeno; "a"
puede ser un enlace sencillo o doble; "b" puede estar ausente o
es un enlace sencillo; y "c" puede estar ausente o es un enlace
sencillo, con la condición de que si R_{2} es oxígeno, entonces
"b" y "c" son ambos un enlace sencillo y "a" es un
enlace sencillo; si R_{2} está ausente, entonces "b" y
"c" están ausentes y "a" es un enlace doble; y si "a"
es un enlace doble, entonces R_{2}, "b" y "c" están
ausentes;
R_{3} es un radical seleccionado del grupo
consistente en hidrógeno; alquilo inferior, especialmente metilo,
etilo, n-propilo, iso-propilo,
n-butilo, iso-butilo,
terc-butilo, n-pentilo,
n-hexilo; -CH=CH_{2}; -C\equivCH; -CH_{2}F;
-CH_{2}Cl; -CH_{2}-OH;
-CH_{2}-O-(alquilo
C_{1}-C_{6}), especialmente
-CH_{2}-O-CH_{3}; y
-CH_{2}-S-(alquilo
C_{1}-C_{6}), especialmente
-CH_{2}-S-CH_{3};
R_{4} y R_{5} se eligen independientemente
entre hidrógeno, metilo o un grupo protector, preferentemente
hidrógeno; y
R_{1} es un radical seleccionado entre las
siguientes estructuras:
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o una sal de un compuesto de
fórmula I cuando está presente un grupo formador de
sales.
Los términos generales usados anteriormente y de
aquí en adelante tienen preferentemente, dentro del contexto de esta
descripción, los siguientes significados, salvo que se indique otra
cosa:
El término "inferior" significa que el
respectivo radical tiene preferentemente hasta 7 inclusive, más
preferentemente hasta 4 inclusive átomos de carbono.
Alquilo inferior puede ser lineal o estar
ramificado una o más veces y preferentemente tiene hasta 7
inclusive, más preferentemente hasta 4 inclusive, átomos de carbono.
Con preferencia, alquilo inferior es metilo, etilo,
n-propilo, iso-propilo,
n-butilo, isobutilo, terc-butilo o
además n-pentilo o n-hexilo.
Un grupo protector es con preferencia un grupo
protector estándar. Si uno o más grupos funcionales distintos, por
ejemplo carboxi, hidroxi, amino o mercapto, están presentes o
necesitan ser protegidos en un compuesto de fórmula I, debido a que
los mismos no deberán tomar parte en la reacción, dichos grupos son
como los usualmente empleados en la síntesis de compuestos
peptídicos, y también de cefalosporinas y penicilinas, así como
derivados de ácidos nucleicos y azúcares.
Los grupos protectores ya pueden estar presentes
en precursores y deben proteger los grupos funcionales implicados
contra reacciones secundarias no deseadas, tales como acilaciones,
eterificaciones, esterificaciones, oxidaciones, solvolisis y
reacciones similares. Es una característica de los grupos
protectores que tienden ellos mismos fácilmente, es decir, sin
reacciones secundarias no deseadas, a retirarse, típicamente
mediante solvolisis, reducción, fotolisis o también mediante
actividad enzimática, por ejemplo bajo condiciones análogas a las
condiciones fisiológicas, y no están presentes en los productos
finales. El especialista sabe, o puede establecer fácilmente, qué
grupos protectores son adecuados para las reacciones mencionadas
previamente y más adelante aquí.
La protección de tales grupos funcionales
mediante dichos grupos protectores, los propios grupos protectores
y sus reacciones de separación se describen, por ejemplo, en
trabajos de referencia estándar, tales como J.F.W. McOmie,
"Protective Groups in Organic Chemistry", Plenum Press, Londres
y Nueva York 1991, en T.W. Greene, P.G.M. Wuts, "Protective
Groups in Organic Synthesis", 2ª edición, John Wiley & Son
Inc., 1981, en "The Peptides"; Volumen 3 (E. Gross y J.
Meienhofer), Academic Press, Londres y Nueva York 1981, en
"Methoden der organischen Chemie", Houben Weyl, 4ª edición,
Volumen 15/I, Georg Thieme Verlag, Stuttgart 1974, en H.D. Jakubke
y H. Jescheit, "Aminosäuren, Peptide, Proteine", Verlag Chemie,
Weinheim, Deerfield Beach, and Basel 1982 y en Jochen Lehmann,
"Chemie der Kohlenhydrate: Monosaccharide und Derivate", Georg
Thieme Verlag, Stuttgart 1974. Grupos protectores especialmente
preferidos son grupos hidroxi-protectores, tal como
terc-butildimetilsililo o tritilo.
R_{4} y R_{5} son con preferencia
hidrógeno.
El enlace ondulado que parte del átomo de
carbono que porta R_{3} significa que el enlace "a" está
presente en la forma trans o preferentemente en la forma cis.
Las sales son principalmente las sales
farmacéuticamente aceptables de compuestos de fórmula I.
Tales sales se forman, por ejemplo, como sales
de adición de ácidos, preferiblemente con ácidos orgánicos o
inorgánicos, a partir de compuestos de fórmula I con un átomo de
nitrógeno básico, especialmente las sales farmacéuticamente
aceptables. Ácidos inorgánicos adecuados son, por ejemplo, ácidos
halogenados, tal como ácido clorhídrico, ácido sulfúrico o ácido
fosfórico. Ácidos orgánicos adecuados son, por ejemplo, ácidos
carboxílicos, fosfónicos, sulfónicos o sulfámicos, por ejemplo ácido
acético, ácido propiónico, ácido octanoico, ácido decanoico, ácido
dodecanoico, ácido glicólico, ácido láctico, ácido fumárico, ácido
succínico, ácido adípico, ácido pimélico, ácido subérico, ácido
azelaico, ácido málico, ácido tartárico, ácido cítrico,
aminoácidos, tal como ácido glutámico o ácido aspártico, ácido
maleico, ácido hidroximaleico, ácido metilmaleico, ácido
ciclohexanocarboxílico, ácido adamantancarboxílico, ácido benzoico,
ácido salicílico, ácido 4-aminosalicílico, ácido
ftálico, ácido fenilacético, ácido mandélico, ácido cinámico, ácido
metano- o etano-sulfónico, ácido
2-hidroxietanosulfónico, ácido
etano-1,2-disulfónico, ácido
bencenosulfónico, ácido 2-naftalenosulfónico, ácido
1,5-naftalenodisulfónico, ácido 2-, 3- o
4-metilbencenosulfónico, ácido metilsulfúrico, ácido
etilsulfúrico, ácido dodecilsulfúrico, ácido
N-ciclohexilsulfámico, ácido
N-metil-, N-etil- o
N-propil-sulfámico, u otros ácidos
protónicos orgánicos, tal como ácido ascórbico.
Para fines de aislamiento o purificación,
también es posible usar sales farmacéuticamente inaceptables, por
ejemplo picratos o percloratos. Sólo las sales farmacéuticamente
aceptables o los compuestos libres (si se da el caso, en forma de
preparados farmacéuticos) alcanzan uso terapéutico y por lo tanto
estos se prefieren.
En vista de la estrecha relación entre los
nuevos compuestos en forma libre y en forma de sus sales,
incluyendo las sales que pueden usarse como productos intermedios,
por ejemplo en la purificación o la identificación de los nuevos
compuestos, previamente y más adelante aquí debe entenderse que
cualquier referencia a los compuestos libres se refiere también a
las sales correspondientes, según sea apropiado y conveniente.
El término "aproximadamente" o "alrededor
de" en conexión con valores numéricos, por ejemplo "un exceso
aproximadamente dos veces molar" o similar, está destinado
preferentemente a indicar que el valor numérico dado puede
desviarse del número dado de hasta 10%, más preferentemente hasta
3%; con suma preferencia, el valor numérico es exactamente el
indicado.
En especial se prefiere un compuesto libre de
fórmula I o bien una sal del mismo.
Bioactividad: El compuesto o los
compuestos de la invención se pueden emplear para el tratamiento de
una enfermedad proliferativa, especialmente un cáncer, tales como
cánceres de pulmón, especialmente carcinoma de pulmón de células de
pulmón no microcíticas, de próstata, de intestino, por ejemplo
cánceres colorrectales, tumores epidemoides, tales como tumores de
cabeza y/o cuello, o cáncer de mama, u otros cánceres tales como
cánceres de vejiga, páncreas o cerebro o melanoma, incluyendo
especialmente el tratamiento de cánceres que son resistentes a
múltiples fármacos (por ejemplo, debido a la expresión de
p-glicoproteína = P-gp) y/o
refractarios al tratamiento con paclitaxel (por ejemplo, en forma
de TAXOL).
La capacidad de los compuestos de la presente
invención para bloquear la despolimerización de microtúbulos se
puede demostrar por el siguiente ensayo:
Se efectúan ensayos con microtúbulos siguiendo
los procedimientos de la bibliografía al respecto y se evalúan los
compuestos sintetizados respecto a su capacidad para formar y
estabilizar microtúbulos. También se llevan a cabo estudios de
citotoxicidad.
Los compuestos de fórmula I son ensayados
respecto a su acción sobre el ensamblado de tubulina empleando
tubulina purificada con un ensayo desarrollado para amplificar las
diferencias entre compuestos más activos que Taxol. Se comprueba
que los compuestos de fórmula I tienen un alto nivel de actividad
citotóxica y de polimerización de tubulina, en comparación con las
epotilonas A y B (Lin et al., Cancer Chemother. Pharmacol.
38, 136-140 (1996); Rogan et al., Science
244, 994-996 (1984)).
Se coloca proteína de microtúbulos (0,25 ml de 1
mg/ml) en un tubo de ensayo y se añaden 2,5 \mul del compuesto
del ensayo. La muestra se mezcla y se incuba a 37ºC durante 30
minutos. Se transfiere la muestra (150 \mul) a un pocillo de una
placa de filtración hidrófila de 96 pocillos con un tamaño de poro
de 0,22 \mum de Millipore Multiscreen Durapore que previamente
había sido lavada con 200 \mul de tampón MEM bajo vacío. El
pocillo se lava entonces con 200 \mul de tampón MEM. Para teñir la
proteína retenida sobre la placa, se añaden al filtro, durante 2
minutos, 50 \mul de solución negra amido [0,1% de negro azul
naftol (Sigma)/45% de metanol/10% de ácido acético]; se aplica
entonces de nuevo el vacío. Para separar el colorante no unido se
efectúan dos adiciones de 200 \mul de solución de desteñido negra
amido (90% de metanol/2% de ácido acético). La señal de cuantifica
por el método de Schaffner y Weissmann et al., Anal.
Biochem., 56: 505-514, 1973 como sigue: se añaden
al pocillo 200 \mul de solución de elución (25 mM
NaOH-0,05 mm EDTA-50% etanol) y la
solución se mezcla con una pipeta después de 5 minutos. Después de
una incubación durante 10 minutos a temperatura ambiente, se
transfieren 150 \mul de la solución de elución al pocillo de una
placa de 96 pocillos y se mide la absorbancia en un Molecular
Devices Microplate Reader (Lector de Microplacas).
Los experimentos de citotoxicidad con líneas de
células 1A9, 1A0PTX10 (mutante de \alpha-tubulina)
y 1A9PTX22 (mutante de \alpha-tubulina) pueden
revelar la actividad citotóxica de los compuestos de fórmula I. Al
igual que las epotilonas 1 y 2 de origen natural, los compuestos de
fórmula I muestra una actividad importante contra las líneas de
células alteradas que expresan \alpha-tubulina
1A9PTX10 y 1A0PTX22. Para los compuestos de fórmula I, los valores
IC50 preferidos (concentración a la que se encuentra una inhibición
del crecimiento semi-máxima de células tumorales en
comparación con un control sin inhibidor incorporado de fórmula I)
pueden residir en el intervalo de 1 a 1.000 nM, con preferencia de 1
a 200 nM.
La capacidad de los compuestos de la presente
invención para inhibir el crecimiento de tumores se puede demostrar
por los siguientes ensayos con las siguientes líneas de células:
El ensayo colorimétrico de citotoxicidad
empleado es un ensayo adaptado a partir de Skehan et al
(Journal of National Cancer Inst 82: 1107-1112,
19901). El procedimiento proporciona un método rápido, sensible y
económico para medir el contenido en proteína celular de cultivos
adherentes y en suspensión en placas de microvaloración de 96
pocillos. El método es adecuado para la selección de descubrimientos
de fármacos anticancerosos in vitro orientados a enfermedad
del National Cancer Institute.
En particular, se tiñen durante 30 minutos
cultivos fijados con ácido tricloroacético con 0,4% (p/v) de
sulforrodamina (SRB) disuelta en 1% de ácido acético. El colorante
no unido se separa mediante cuatro lavados con 1% de ácido acético
y el colorante unido a la proteína se extrae con 10 mM de base Tris
sin tamponar [tris(hidroximetil)aminometano] para la
determinación de la densidad óptica en un lector de placas de
microvaloración de 96 pocillos, conectado con un ordenador. Los
resultados del ensayo SRB son lineales con el número de células y
con valores para la proteína celular medidos por los ensayos de
Lowry y Bradford a densidades que van desde una subconfluencia
esparcida a una supraconfluencia en múltiples capas. La relación de
señal a ruido a 564 nm es de aproximadamente 1,5 con 1.000 células
por pocillo.
El ensayo SRB proporciona un punto final
calorimétrico que es no destructivo, indefinidamente estable y
visible a simple vista. Proporciona una medida sensible de la
citotoxicidad inducida por fármacos. La SRB fluoresce fuertemente
con excitación lasérica a 488 nm y se puede medir cuantitativamente
al nivel de células individuales mediante citometría de
fluorescencia estática (Skehan et al (Journal of National
Cancer Inst 82: 1107-1112, 19901)).
Alternativamente, la eficacia de los compuestos
de fórmula I como inhibidores de la despolimerización de
microtúbulos puede probarse como sigue:
Se preparan soluciones madre de los compuestos
de ensayo DMSO y se guardan a -20ºC. Se extrae proteína de los
microtúbulos de cerebro de cerdo mediante dos ciclos de
despolimerización/polimerización dependiente de la temperatura,
según se sabe (véase Weingarten y otros, Biochemistry 1974;
13:5529-37). Las soluciones madre de trabajo de
proteína de microtúbulos (es decir, tubulina más proteínas
asociadas con los microtúbulos) se guardan a -70ºC. El grado de
polimerización inducida por compuesto de ensayo de proteína de
microtúbulos se determina básicamente como ya se sabe (véase Lin y
otros, Cancer Chem. Pharm. 1996; 38:136-140).
En resumen, se mezclan 5 \mul de solución madre del compuesto de
ensayo en 20 veces la concentración final deseada con 45 \mul de
agua a temperatura ambiente y a continuación se ponen sobre hielo.
Una parte alícuota de trabajo de proteína de microtúbulos de
cerebro de cerdo se descongela rápidamente y a continuación se
diluye hasta 2 mg/ml en tampón 2 x MEM (200 ml de MES, EGTA 2 mM,
MgCl_{2} 2 mM, pH 6,7) enfriado con hielo [MES = ácido
2-morfolinoetanosulfónico, EGTA = ácido
etilenglicol-bis-2-(2-aminoetil)tetraacético].
La reacción de polimerización se comienza añadiendo 50 \mul de
cada proteína de microtúbulos diluida al compuesto de ensayo,
seguido por la incubación de la muestra durante 5 minutos en un
baño de agua a temperatura ambiente. A continuación, las mezclas de
reacción se ponen en una microcentrífuga de Eppendorf y se incuban
durante 15 minutos más a temperatura ambiente. Las muestras se
centrifugan a continuación durante 20 minutos a 14.000 rpm a
temperatura ambiente, para separar proteína de microtúbulos
polimerizada de la no polimerizada. Como una medida indirecta de la
polimerización de tubulina, la concentración de proteína del
sobrenadante (que contiene la proteína de microtúbulos solubles no
polimerizada restante) se determina mediante el método de Lowry (CD
Assay Kit, Bio-Rad Laboratories, Hercules, CA) y se
mide la densidad óptica (DO) de la reacción cromática a 750 nm
usando un espectrómetro (SpectraMax 340, Molecular Devices,
Sunnydale, CA). La diferencia en DOs entre muestras tratadas con un
compuesto de ensayo y controles tratados con vehículo se compara
con la obtenida con incubaciones que contienen epotilona B 25
\muM (control positivo). El grado de polimerización inducido por
un compuesto de ensayo se expresa con relación al control positivo
(100%). Comparando la actividad de varias concentraciones, puede
determinarse la EC50 (concentración a la que se produce 50% de la
polimerización máxima). Para compuestos de fórmula I, la EC50 está
en el intervalo de 1 a 200, preferiblemente en el intervalo de 1 a
50 \muM. La inducción de la polimerización de tubulina del
compuesto del ensayo de fórmula I en una concentración de 5 \muM
como porcentaje en comparación con 25 \muM de epotilona B reside
preferentemente en el intervalo de 50 a 100%, especialmente de 80 a
100%.
La eficacia contra células tumorales puede
demostrarse del siguiente modo:
Se preparan soluciones madre de los compuestos
de ensayo (10 mM) en DMSO y se guardan a -20ºC. Células de
carcinoma epidermoide KB-31 y
KB-8511 (resistente a múltiples fármacos, que
expresa P-gp170) humanas originarias del Dr. M.
Baker, Roswell Park Memorial Institute (Buffalo, NY, USA)
(descripción: véase también Akiyama y otros, Somat. Cell. Mol.
Genetics 11, 117-126 (1985) y Fojo A. y
otros, Cancer Res. 45, 3002-3007 (1985) -
KB-31 y KB-8511 son ambos derivados
de la línea celular KB (ATCC) y son células de carcinoma de
epidermis humano. Las células KB-31 pueden
cultivarse en monocapas usando medio de Eagle modificado de Dulbecco
(D-MEM) con 10% de suero de ternero fetal (M.A.
Bioproducts), L-glutamina (Flow), penicilina (50
unidades/ml) y estreptomicina (50 \mug/ml (Flow)); se hacen
crecer a continuación con un tiempo de duplicación de alrededor de
22 horas y su eficacia de cultivo en placas relativa es alrededor
de 60%. KB-8551 es una variante derivada de la línea
celular KB-31, que se obtuvo usando ciclos de
tratamiento con colchicina, y tiene una resistencia relativa a la
colchicina de aproximadamente 40 veces en comparación con células
KB-31. Las células se incuban a 37ºC en una
incubadora con CO_{2} al 5% v/v y a una humedad relativa de 80%
con medio MEM Alpha que contiene ribonucleósidos y
desoxirribonucleósidos (Gibco BRL), complementado con 10 UI de
penicilina, 10 \mug/ml de estreptomicina y 5% de suero de ternero
fetal. Las células se siembran en una cantidad de 1,5 x 10^{3}
células/pocillo en placas de microvaloración de 96 pocillos y se
incuban durante la noche. Se añaden diluciones en serie de los
compuestos de ensayo en medio de cultivo el día 1. Las placas se
incuban a continuación durante 4 días más, después de lo cual las
células se fijan con glutaraldehído al 3,3% v/v, se lavan con agua y
se tiñen con azul de metileno al 0,05% p/v. Después de lavar, el
colorante se eluye con HCl al 3% y la densidad óptica se mide a 665
nm con un SpectraMax 340 (Molecular Devices, Sunnyvale, CA). Los
valores de IC50 se determinan mediante adaptación de curvas
matemáticas, usando el programa SofrPro2.0 (Molecular Devices,
Sunnyvale, CA) y usando la fórmula
[(DO \
tratado) - (DO \ inicio)]/[(DO \ control) - (DO \ inicio)] \ x \
100
La IC50 se define como la concentración de un
compuesto de ensayo al final del período de incubación, que
conducía a 50% del conteo de células por pocillo en comparación con
el control (concentración a la inhibición semimáxima del
crecimiento celular). Los compuestos de fórmula I muestran así
preferiblemente una IC50 en el intervalo de 0,1 x 10^{-9} a 500 x
10^{-9} M, preferiblemente entre 0,1 y 60 nM.
También pueden llevarse a cabo ensayos
comparables con otras líneas de células tumorales, tales como A459
(pulmón; ATCC CCL 185), NCIH460 (pulmón), Colo 205 (colon; ATCC CCL
225 - ATCC = American Type Culture Collection (Rockville, MD,
USA)), HCT-116 (colon), Du145 (próstata; ATCC No.
HTB 81; véase también Cancer Res. 37,
4049-58 [1978]), PC-3M (derivado
insensible a la hormona de próstata, obtenido de Dr. I.J. Fidler
(MD Anderson Cancer Center, Houston, TX, USA) y derivado de
PC-3, una línea celular que puede obtenerse del
ATCC (ATCC CRL 1435)), MCF-7 (mama; ATCC HTB 22) o
MCF-7/ADR (mama, resistente a múltiples fármacos;
véase también Blobe G.C. y otros, J. Biol. Chem. (1983),
658-664; la línea celular es en gran extensión
resistente (de 360 a 2400 veces) a doxorrubicina y alcaloides Vinca
en comparación con células de "tipo salvaje"
MDR-7)), en donde se obtienen resultados similares
como con las células KB-31 y
KB-8511. Los compuestos de fórmula I muestran aquí
preferentemente un valor IC50 del orden de 0,1 x 10^{-9} a 500 x
10^{-9} M, preferentemente entre 0,1 y 60 nM.
En base a estas propiedades, los compuestos de
fórmula I (significando también las sales de los mismos) son
adecuados para el tratamiento de enfermedades proliferativas, tales
como especialmente enfermedades tumorales, incluyendo también
metástasis cuando esté presente, por ejemplo de tumores sólidos,
tales como tumor de pulmón, tumor de mama, cáncer colorectal,
cáncer de próstata, melanoma, tumor cerebral, tumor de páncreas,
tumor de cabeza y cuello, cáncer de vejiga, neuroblastoma, tumor
faringeal o también de enfermedades proliferativas de células
sanguíneas, tal como leucemia; o además para el tratamiento de otras
enfermedades que responden al tratamiento de inhibidores de la
despolimerización de microtúbulos, tal como psoriasis. Los
compuestos de fórmula I, o sus sales, son también adecuados para
implantes médicos de recubrimiento (útiles en la profilaxis de
restenosis) (véase WO 99/16416, prioridad 29 septiembre 1997).
La actividad in vivo de un compuesto de
la invención se puede demostrar con el siguiente modelo animal:
Se mantienen ratones BALB/c nu/nu (desnudos)
hembras o machos bajo condiciones estériles (10 a 12 ratones por
jaula de tipo III) con acceso libre a comida y agua. El peso de los
ratones está comprendido entre 20 y 25 g en el momento de la
implantación del tumor. Los tumores son establecidos por inyección
subcutánea de células (mínimo 2 x 10^{6} células en 100 \mul de
PBS o medio) en ratones portadores (4-8 ratones por
línea celular). Los tumores resultantes son
sub-cultivados en serie para un mínimo de tres
transplantes consecutivos antes de iniciar el tratamiento. Se
implantan fragmentos de tumor (aproximadamente 25 mg) s.c. en el
lomo izquierdo de los animales con una aguja trocar de calibre 13,
al tiempo que los ratones se exponen a anestesia con Forene (Abbott,
Switzerland).
El crecimiento de los tumores y los pesos
corporales se controlan una o dos veces a la semana. Todos los
tratamientos se administran intravenosamente (i.v.) y se inician
cuando se alcanza un volumen medio de tumor de aproximadamente 100
a 250 mm^{3}, dependiendo del tipo de tumor. Los volúmenes de los
tumores se determinan empleando la fórmula (L x D x \pi)/6
(véase, Cancer Chemother. Pharmacol. 24: 148-154
[1989]). Los tratamientos con epotilonas de fórmula I varían en
cuanto a la dosis y frecuencia de administración. Se administran
agentes comparadores de acuerdo con los regímenes de tratamiento
óptimos previamente determinados. Además de presentar cambios en
los volúmenes de los tumores en el transcurso del tratamiento, la
actividad antitumoral se expresa como T/C% (incremento medio de
volúmenes de los tumores en animales tratados dividido por el
incremento medio de volúmenes de los tumores en animales de control
multiplicado por 100). La regresión de los tumores (%) representa
el volumen medio más pequeño del tumor en comparación con el volumen
medio del tumor al inicio del tratamiento, de acuerdo con la
fórmula
Regresión\
(%) = (1-VendNstart)\ x\
100
(Vend = volumen medio final del
tumor, Vstart = volumen medio del tumor al inicio del
tratamiento).
Con este modelo, se puede ensayar el efecto
inhibidor de un compuesto de la invención sobre el crecimiento, por
ejemplo, de tumores derivados de las siguientes líneas
celulares:
La línea de células de adenocarcinoma colorectal
humano HCT-15 (ATCC CCL 225) es de la American Type
Culture Collection (Rockville, MD, USA) y las células se cultivan
in vitro tal como recomienda el proveedor. La
HCT-15 es una línea de células de tipo epitelial
(Cancer Res. 39: 1020-25 [1979]), es decir,
resistentes a múltiples fármacos en virtud de la
sobre-expresión de P-glicoproteína
(P-gp, gp170, MDR-1; Anticancer Res.
11: 1309-12 [1991]; J. Biol. Chem. 264:
18031-40 [1989]; Int. J. Cancer 1991; 49:
696-703 [1991]) y mecanismos de resistencia
dependiente de glutationa (Int. J. Cancer 1991; 49:
688-95 [1991]). La línea de células Colo 205 es
también una línea de células de carcinoma de colon humano (ATCC No.
CCL 222; véase también Cancer Res. 38, 1345-55
[1978]) que fue aislada a partir del fluido ascítico de un paciente,
exhibe morfología de tipo epitelial y se considera generalmente
como sensible a los fármacos. Se emplea una línea de células de
cáncer de próstata humano independiente de andrógenos, para
establecer modelos subcutáneos y ortópicos en ratones. El carcinoma
de próstata metastático humano PC-3M se obtiene Dr.
I.J. Fidler (MD Anderson Cancer Center, Houston, TX, USA) y se
cultiva en medio F12K de Ham suplementado con 7% v/v FBS. La línea
de células PC-3M es el resultado del aislamiento a
partir de metástasis de hígado producida en ratones desnudos después
de la inyección intrasplénica de células PC-3 [ATCC
CRL 1435; American Type Culture Collection (Rockville, MD, USA)] y
pueden crecer en MEM de Eagle suplementado con 10% de suero bovino
fetal, piruvato sódico, aminoácidos no esenciales,
L-glutamina, una solución vitamínica doble (Gibco
Laboratories, Long Island, N.Y.) y
penicilina-estreptomicina (FloW Laboratories,
Rockville, Md.). La línea de células PC-3M es
insensible a las hormonas (es decir, crece en ausencia de
andrógenos). La línea de células PC-3 es negativa
al receptor de andrógenos, como lo es presumiblemente la línea
derivada de células PC-3M. La PC-3
es una línea de células disponible en ATCC (ATCC CRL 1435) y
corresponde a un adenocarcinoma prostático de grado IV aislado a
partir de varón caucasiano de 62 años de edad; las células exhiben
baja actividad de fosfatasa ácida y
testosterona-5-arreductasa. Las
células son casi triploides con un número modal de 62 cromosomas.
No se pueden detectar cromosomas Y normales por análisis de bandas
Q. Adenocarcinoma de pulmón humano A549 (ATCC CCL 185; aislado como
cultivo de explante a partir de tejido de carcinoma de pulmón de un
varón caucasiano de 58 años de edad); muestra morfología epitelial y
puede sintetizar lecitina con un alto porcentaje de ácidos grasos
desaturados utilizando la vía citidina difosfocolina; en todas las
metafases se encuentra un cromosoma marcador subtelocéntrico que
implica al cromosoma 6 y al brazo largo del cromosoma 1. El
carcinoma de mama humano ZR-75-1
(ATCC CRL 1500; aislado de una efusión ascítica maligna de una mujer
caucasiana de 63 años de edad con carcinoma ductal infiltrante); es
de origen epitelial mamario; las células poseen receptores para
estrógenos y otras hormonas esteroidades y presentan un número de
cromosomas hipertriploides. La línea de células de carcinoma
epidérmico (boca) humano KB-8511 (una línea celular
que sobre-expresa P-gp derivada de
la línea de células de carcinoma epidermoide (boca)
KB-31 se obtiene en Dr. R.M. Baker, Roswell Park
Memorial Institute (Buffalo, N.Y., USA) (respecto a la descripción
véase Akiyama et al., Somat. Cell. Mol. Genetics 11,
117-126 (1985) y Fojo A., et al., Cancer Res.
45, 3002-3007 (1985)) and is cultured as previously
described (Meyer, T., et al., Int. J. Cancer 43,
851-856 (1989)). Las células
KB-8511, al igual que KB-31, se
derivan de la línea de células KB (ATCC) y son células de carcinoma
epidérmico humano; las células KB-31 pueden
desarrollarse en mono-capa empleando medio de Eagle
modificado según Dulbecco (D-MEM) con 10% de suero
vacuno fetal (M.A. Bioproducts), L-glutamina (Flow),
penicilina (50 unidades/ml) y estreptomicina (50 mg/ml (Flow)). Las
mismas crecen entonces con un tiempo de duplicación de 22 horas y su
eficacia de deposición relativa es de aproximadamente 60%. La
KB-8511 es una línea celular derivada de la línea
celular KB-31 mediante el uso de ciclos de
tratamiento con colchicina; muestra aproximadamente una resistencia
relativa de 40 veces contra colchicina en comparación con las
células
\hbox{KB-31; se puede hacer crecer bajo las mismas condiciones que la KB-31.}
Solubilidad: La solubilidad en agua se
determina como sigue, por ejemplo: los compuestos de fórmula I, o
sus sales, se agitan con agua a temperatura ambiente hasta que ya no
se disuelve más compuesto (alrededor de 1 hora). Las solubilidades
encontradas están comprendidas preferentemente entre 0,01 y 1% en
peso.
Dentro de los grupos de compuestos preferidos de
fórmula I mencionados a continuación, se pueden emplear de manera
razonable definiciones de sustituyentes a partir de las definiciones
generales mencionadas anteriormente, por ejemplo, para reemplazar
definiciones más generales por definiciones más específicas o
especialmente por definiciones caracterizadas como preferidas.
La invención se refiere también preferentemente
a un compuesto de fórmula I en donde
R_{2} está ausente o es oxígeno; "a"
puede ser un enlace sencillo o doble; "b" puede estar ausente o
es un enlace sencillo; y "c" puede estar ausente o es un
enlace sencillo, con la condición de que si R_{2} es oxígeno,
entonces "b" y "c" son ambos un enlace sencillo y "a"
es un enlace sencillo; si R_{2} está ausente, entonces "b" y
"c" están ausentes y "a" es un enlace doble; y si "a"
es un enlace doble, entonces R_{2}, "b" y "c" están
ausentes;
R_{3} es un radical seleccionado del grupo
consistente en alquilo inferior, especialmente metilo, etilo,
n-propilo, iso-propilo,
n-butilo, iso-butilo,
terc-butilo, n-pentilo,
n-hexilo; -CH=CH_{2}; -C\equivCH; -CH_{2}F;
-CH_{2}Cl; -CH_{2}-OH;
-CH_{2}-O-(alquilo
C_{1}-C_{6}), especialmente
-CH_{2}-O-CH_{3}; y
-CH_{2}-S-(alquilo
C_{1}-C_{6}), especialmente
-CH_{2}-S-CH_{3};
R_{4} y R_{5} se eligen independientemente
entre hidrógeno, metilo o un grupo protector, preferentemente
hidrógeno; y
R_{1} es un radical seleccionado entre las
siguientes estructuras:
o una sal del mismo cuando están
presentes uno o más grupos formadores de
sales.
La invención se refiere también de manera más
específica a un compuesto de fórmula Id
en donde A es etilo, fluormetilo,
metoxi, metiltio o etenilo (-CH=CH_{2}) y D es hidrógeno, fluor,
hidroxi o metilo, especialmente
hidrógeno.
La invención se refiere también de manera más
específica a un compuesto de fórmula Ie
en donde A es etilo, fluormetilo,
metoxi, metiltio o etenilo (-CH=CH_{2}) y D es hidrógeno, fluor,
hidroxi o
metilo.
La invención se refiere de manera más específica
a los compuestos de fórmula I indicados en los ejemplos o a sus
sales farmacéuticamente aceptables cuando están presentes uno o más
grupos formadores de sales.
Con suma preferencia, la invención se refiere a
un compuesto seleccionado del grupo consistente en el compuesto 18b
(véase ejemplo 2), compuesto 19b (ejemplo 2) o una sal
farmacéuticamente aceptable de los mismos en el caso de que estén
presentes uno o más grupos formadores de sales.
Los compuestos de la invención se pueden
sintetizar empleando métodos de analogía a los métodos ya conocidos
en la técnica, preferentemente mediante un método caracterizado
porque comprende:
a) reaccionar un yoduro de fórmula II
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip1.000000\baselineskip
en donde R_{2}, R_{3}, R_{4},
R_{5}, a, b y c y el enlace ondulado tienen los significados
indicados para la fórmula I, con un compuesto de fórmula
III,
(III)R_{1}-Sn(R)_{3}
en donde R_{1} tiene los
significados indicados para la fórmula I y R es alquilo inferior,
especialmente metilo o etilo,
o
b) reaccionar un compuesto de estaño de fórmula
IV
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip1.000000\baselineskip
en donde R_{2}, R_{3}, R_{4},
R_{5}, a, b y c y el enlace ondulado tienen los significados
indicados para la fórmula I, con un yoduro de fórmula
V
(V)R_{1}-I
en donde R_{1} tiene los
significados indicados para la fórmula
I;
y, si se desea, un compuesto resultante de
fórmula I se convierte a un compuesto diferente de fórmula I, un
compuesto libre resultante de fórmula I se convierte a una sal de un
compuesto de fórmula I y/o una sal resultante de un compuesto de
fórmula I se convierte a un compuesto libre de fórmula I o a una sal
diferente de un compuesto de fórmula I, y/o una mezcla
estereoisómera de compuestos de fórmula I se separa en los
correspondientes
isómeros.
isómeros.
En todos los materiales de partida, y cuando sea
necesario, los grupos funcionales que no deben participar en la
reacción se protegen mediante grupos protectores, en especial grupos
protectores estándar. Los grupos protectores, su introducción y su
escisión son ya conocidos en la técnica, por ejemplo, se describen
en las referencias estándar mencionadas anteriormente.
\newpage
Reacción a): La reacción a) (un
acoplamiento de Stille (preferentemente mejorado)) tiene lugar con
preferencia bajo condiciones estándar; más preferentemente, la
reacción tiene lugar:
(i) en un disolvente adecuado, por ejemplo
tolueno, a temperatura elevada, en especial de 90 a 100ºC
aproximadamente, preferentemente con un exceso del compuesto de
estaño de fórmula III, con preferencia con un exceso de 1,1 a 3,
por ejemplo 1,5 a 2 veces molar; y una cantidad catalítica, con
preferencia de 1 a 30% aproximadamente, preferentemente 5 a 10%, de
Pd(PPh_{3})_{4}; o
(ii) en un disolvente adecuado, por ejemplo
dimetilformamida (DMF), a temperaturas de 10 a 40ºC, especialmente
a 25ºC, con preferencia con un exceso del compuesto de estaño de
fórmula III, preferentemente con un exceso de 1,1 a 3, por ejemplo
1,5 a 2,3 veces molar; en presencia de una cantidad catalítica,
preferentemente de 10 a 50%, en especial 20 a 30%, de
Pd(MeCN)_{2}Cl_{2}.
Condiciones alternativas para este acoplamiento
comprenden también el uso de los siguientes reactivos y/o
condiciones:
(iii) 2-tiofencarboxilato
cuproso,
N-metil-2-pirrolidina;
(iv) PdCl_{2}(MeCN)_{2}
(cat.), DMF, 50-150º (con o sin adición de base
terciaria);
(v) Pd(PPh_{3})_{4}/Cul
(cat.), DMF, 50-150º (con o sin adición de base
terciaria).
Reacción b): La reacción (un acoplamiento
de Stille mejorado) tiene lugar preferentemente bajo condiciones
estándar; más preferentemente, la reacción tiene lugar en un
disolvente adecuado, en especial DMF, a temperaturas de 50 a 100ºC,
con preferencia de 80 a 85ºC, preferentemente con un exceso del
yoduro de fórmula V, en presencia de una cantidad catalítica de
AsPh_{3}, preferentemente alrededor de 0,4 equivalentes de Cul,
con preferencia alrededor de 0,1 equivalentes, y
PdCl_{2}(MeCN)_{2}, con preferencia alrededor de
0,2 equivalentes.
Especialmente preferidas son las condiciones de
reacción mencionadas en los ejemplos.
Los compuestos de fórmula I se pueden convertir
a diferentes compuestos de fórmula I mediante métodos estándar o
nuevos.
Por ejemplo, un compuesto de fórmula I en donde
R_{2} está ausente, b y c están ausentes y a es un doble enlace, y
las otras mitades son como las descritas para los compuestos de
fórmula I, se puede convertir al correspondiente epóxido en donde
R_{2} es O y b y c están presentes mientras que a es un enlace
sencillo. Con preferencia, la epoxidación tiene lugar en presencia
de
(+)-dietil-D-tartrato
((+)-DET) (con preferencia alrededor de 0,5
equivalentes), Ti(i-PrO)_{4} (con
preferencia alrededor de 0,5 equivalentes), hidroperóxido de
terc-butilo (con preferencia alrededor de 0,2
equivalentes) y tamiz molecular, en especial tamices moleculares 4A,
en un disolvente adecuado, por ejemplo cloruro de metileno y
opcionalmente un alcano tal como decano, a bajas temperaturas, con
preferencia de -78 a 0ºC, en especial a -40ºC aproximadamente;
o en presencia de peróxido de hidrógeno (con
preferencia alrededor de 30 equivalentes), acetonitrilo (con
preferencia alrededor de 60 equivalentes), una base, especialmente
KHCO_{3} (con preferencia alrededor de 10 equivalentes) en un
disolvente adecuado, por ejemplo un alcohol, preferentemente
metanol, a temperaturas preferidas entre 10 y 40ºC, por ejemplo a
25ºC aproximadamente.
Un compuesto de fórmula I en donde R_{3} es
hidroximetilo se puede convertir a un compuesto de fórmula I en
donde R_{3} es fluormetilo, por ejemplo por tratamiento de DAST
(con preferencia 1,05 a 1,4 equivalentes) en un disolvente
adecuado, por ejemplo cloruro de metileno, a bajas temperaturas, con
preferencia a temperaturas de -95 a 0ºC, en especial a -78ºC
aproximadamente. DAST es trifluoruro de dietilaminoazufre.
Un compuesto de fórmula I en donde R_{3} es
yodometilo se puede convertir a un compuesto de fórmula I en donde
R_{3} es metilo, por ejemplo por tratamiento con cianoborohidruro
(con preferencia alrededor de 10 equivalentes) en HMPA
(hexametilfosfotriamida) a temperaturas elevadas, por ejemplo a
temperaturas de 40 a 45ºC.
Se pueden llevar a cabo otras conversiones de
acuerdo con procedimientos conocidos, por ejemplo aquellos indicados
en la solicitud PCT WO 98/25929, la cual se incorpora aquí solo con
fines de referencia.
Las sales de compuestos de formula I con un
grupo formador de sal pueden prepararse de una manera conocida de
por sí. Las sales de adición de ácido de los compuestos de fórmula I
pueden así obtenerse, por ejemplo, mediante el tratamiento con un
ácido o con un reactivo de intercambio aniónico adecuado.
Las sales pueden convertirse habitualmente en
compuestos libres, por ejemplo tratando con agentes básicos
adecuados, por ejemplo con carbonatos, hidrogenocarbonatos o
hidróxidos de metales alcalinos, típicamente carbonato potásico o
hidróxido sódico.
Los compuestos libres resultantes pueden ser
entonces convertidos, si se desea, a diferentes sales, tal como se
ha descrito para la formación de sales a partir de los compuestos
libres.
Las mezclas estereoisómeras, por ejemplo mezclas
de diastereoisómeros, pueden separarse en sus isómeros
correspondientes de una manera conocida de por sí por medio de
métodos de separación adecuados. Las mezclas diastereoisómeras
pueden separarse así en sus diastereoisómeros individuales por medio
de cristalización fraccionada, cromatografía, distribución en
disolventes y procedimientos similares. Esta separación puede tener
lugar en la fase de uno de los compuestos de partida o en un
compuesto de fórmula I de por sí. Los enantiómeros pueden separarse
a través de la formación de sales diastereoisómeras, por ejemplo
mediante formación de sal con un ácido quiral enantiómeramente
puro, o por medio de cromatografía, por ejemplo mediante HPLC,
usando substratos cromatográficos con ligandos quirales. (La
separación de enantiómeros se efectúa normalmente en la fase
intermedia).
Los materiales de partida y compuestos
intermedios son conocidos en la técnica, son comercialmente
disponibles y/o pueden producirse mediante procedimientos conocidos
en la técnica o en analogía con los mismos.
Los compuestos de fórmula II y de fórmula III
pueden sintetizarse, por ejemplo, como se describe en la solicitud
PCT WO 98/25929, la cual se incorpora aquí solo con fines de
referencia, o como se describe en, o en analogía a, los métodos de
los ejemplos.
Los compuestos de fórmula IV son accesibles a
través de la reacción de los respectivos compuestos de fórmula II,
por ejemplo por reacción de un compuesto de fórmula II con
(R)_{6}Sn_{2}, en donde R es alquilo inferior,
especialmente metilo o n-butilo, en presencia de una
base nitrogenada adecuada, por ejemplo, base de Hünig, y en
presencia de una cantidad catalítica (con preferencia alrededor de
0,1 equivalentes) de Pd(PPh_{3})_{4} en un
disolvente adecuado, por ejemplo tolueno, a temperaturas elevadas,
por ejemplo 30 a 90ºC, en especial 80 a 85ºC.
Los yoduros de fórmula V son conocidos y se
pueden obtener de acuerdo con los procedimientos de la bibliografía
al respecto, o bien son comercialmente disponibles. Por ejemplo, la
2-yodo-6-metilpiridina
se puede obtener de acuerdo con Klei, E.; Teuben, J.H. J.
Organomet. Chem. 1981, 214, 53-64; la
2-yodo-5-metilpiridina
de acuerdo con Talik, T.; Talik, Z. Rocz. Chem. 1968, 42,
2061-76; y la
2-yodo-4-metilpiridina
de acuerdo con Talik, T.; Talik, Z. Rocz. Chem. 1968,
2061-76, Yamamoto, Y.; Yanagi, A. Heterocycles 1981,
16, 1161-4 o Katritzky, A.R.; Eweiss, N.F.; Nie,
P.-L. Perkin Trans I 1979, 433-5. Los
correspondientes compuestos hidroximetil-sustituidos
de fórmula V son disponibles, por ejemplo, por oxidación de los
grupos metilo de los yoduros mencionados anteriormente con
SeO_{2} y posterior reducción, por ejemplo con NaBH_{4} o
DIBALH, del aldehído o por oxidación del grupo metilo para formar
el ácido (por ejemplo con KMnO_{4}) y posterior reducción del
éster, por ejemplo con DIBAL.
Preferentemente, los materiales de partida
nuevos o también conocidos y compuestos intermedios se pueden
preparar de acuerdo con, o en analogía a, los métodos descritos en
los ejemplos, en donde las cantidades, temperaturas y similares de
las reacciones respectivas se pueden modificar, por ejemplo por
variación en la cantidad de 99%, preferentemente 25%, y se pueden
emplear otros disolventes y reactivos adecuados.
La invención se refiere también a todos los
nuevos compuestos intermedios, especialmente aquellos mencionados en
los ejemplos.
La presente invención se refiere también al uso
de un compuesto de fórmula I en la preparación de una formulación
farmacéutica para utilizarse contra una enfermedad proliferativa
como anteriormente se ha definido; o a una formulación farmacéutica
para el tratamiento de dicha enfermedad proliferativa y que
comprende un compuesto de la invención y un vehículo
farmacéuticamente aceptable.
Los compuestos de fórmula I son referidos de
aquí en adelante como el ingrediente activo.
La invención se refiere también a composiciones
farmacéuticas que comprenden un ingrediente activo como antes se ha
definido, para el tratamiento de una enfermedad proliferativa,
especialmente como anteriormente se ha definido, y a la obtención
de preparados farmacéuticos para dicho tratamiento.
La invención se refiere también a una
composición farmacéutica que es adecuada para administrarse a un
animal de sangre caliente, especialmente un ser humano, para el
tratamiento de una enfermedad proliferativa como se ha definido
anteriormente, que comprende una cantidad de un ingrediente activo,
que es eficaz para el tratamiento de dicha enfermedad
proliferativa, junto con al menos un vehículo farmacéuticamente
aceptable. Las composiciones farmacéuticas de acuerdo con la
invención son aquellas para administración enteral, tal como nasal,
rectal u oral, o preferentemente parenteral, tal como intramuscular
o intravenosa, a un animal de sangre caliente (humano o animal),
que comprenden una dosis eficaz del ingrediente farmacológicamente
activo, solo o junto con una cantidad importante de un vehículo
farmacéuticamente aceptable. La dosis del ingrediente activo
depende de la especie de animal de sangre caliente, peso corporal,
edad y estado individual, datos farmacocinéticos del individuo,
enfermedad a tratar y modo de administración; preferentemente, la
dosis consiste en una de las dosis preferidas como las definidas
más adelante, pudiéndose adaptar adecuadamente cuando haya de
realizarse el tratamiento
pediátrico.
pediátrico.
Las composiciones farmacéuticas comprenden de
0,00002 a 95% aproximadamente, en especial (por ejemplo, en el caso
de diluciones de infusión listas para ser usadas) de 0,0001 a 0,02%,
o (por ejemplo, en el caso de concentrados para infusión) de 0,1 a
95% aproximadamente, con preferencia de 20 a 90% aproximadamente,
de ingrediente activo (peso/peso, en cada caso). Las composiciones
farmacéuticas de acuerdo con la invención pueden encontrarse, por
ejemplo, en forma de unidades de dosificación, tal como en forma de
ampollas, viales, supositorios, grageas, comprimidos o
cápsulas.
Las composiciones farmacéuticas de la presente
invención se preparan de una manera conocida de por sí, por ejemplo
por medio de procedimientos de mezcla, granulación, revestimiento,
disolución o liofilización convenciona-
les.
les.
Se da preferencia al uso de soluciones del
ingrediente activo y también a suspensiones, especialmente
soluciones o suspensiones acuosas isotónicas, siendo posible, por
ejemplo, en el caso de composiciones liofilizadas que contienen el
ingrediente activo solo o junto con un vehículo, por ejemplo
manitol, que tales soluciones o suspensiones puedan elaborarse
antes de su uso. Las composiciones farmacéuticas pueden
esterilizarse y/o pueden contener excipientes, por ejemplo
conservantes, estabilizantes, agentes humectantes y/o emulsionantes,
solubilizantes, sales para regular la presión osmótica y/o tampones
y se preparan de una manera conocida de por sí, por ejemplo por
medio de procedimientos de disolución o liofilización
convencionales. Dichas soluciones o suspensiones pueden contener
sustancias que incrementan la viscosidad, tales como
carboximetilcelulosa sódica, carboximetilcelulosa, dextrano,
polivinilpirrolidona o gelatina.
Las suspensiones en aceite contienen como el
componente oleoso los aceites vegetales, sintéticos o
semisintéticos habituales para inyección. Con relación a estos,
puede hacerse una mención especial a ésteres de ácidos grasos
líquidos que contienen como el componente ácido un ácido graso de
cadena larga que tiene de 8 a 22, especialmente de 12 a 22, átomos
de carbono, por ejemplo ácido láurico, ácido tridecílico, ácido
mirístico, ácido pentadecílico, ácido palmítico, ácido margárico,
ácido esteárico, ácido araquídico, ácido behénico o ácidos
insaturados correspondientes, por ejemplo ácido oleico, ácido
elaídico, ácido erúcico, ácido brasídico o ácido linoleico, si se
desea con la adición de antioxidantes, por ejemplo vitamina E,
\beta-caroteno o
3,5-di-terc-butil-4-hidroxitolueno.
El componente de alcohol de estos ésteres de ácido graso tiene un
máximo de 6 átomos de carbono y es un alcohol mono- o
poli-hidroxilado, por ejemplo, mono-, di- o
tri-hidroxilado, por ejemplo metanol, etanol,
propanol, butanol o pentanol o los isómeros de los mismos, pero
especialmente glicol y glicerol.
Las composiciones para inyección o infusión se
preparan del modo usual bajo condiciones estériles; lo mismo se
puede decir también respecto a la introducción de las composiciones
en ampollas o viales y sellado de los
recipientes.
recipientes.
Se prefiere una formulación para infusión que
comprende un ingrediente activo y un disolvente orgánico
farmacéuticamente aceptable.
El disolvente orgánico farmacéuticamente
aceptable usado en una formulación de acuerdo con la invención puede
seleccionarse entre cualesquiera de tales disolventes orgánicos
conocidos en la técnica. Con preferencia, el disolvente se elige
entre alcoholes, por ejemplo etanol absoluto o mezclas de
etanol/agua, más preferentemente 70% de etanol, polietilenglicol
300, polietilenglicol 400, polipropilenglicol o
N-metilpirrolidona, con suma preferencia
polipropilenglicol o etanol al 70% o polietilenglicol 300.
El ingrediente activo puede estar presente
preferentemente en la formulación en una concentración de alrededor
de 0,01 a 100 mg/ml, más preferentemente alrededor de 0,1 a 100
mg/ml, todavía más preferentemente alrededor de 1 a 10 mg/ml
(especialmente en concentrados para infusión).
El ingrediente activo se puede emplear como la
sustancia pura o como una mezcla con otro ingrediente activo.
Cuando se emplea en su forma pura es preferible utilizar una
concentración de ingrediente activo de 0,01 a 100, más
preferentemente 0,05 a 50, todavía más preferentemente 1 a 10 mg/ml
(este número hace referencia especialmente a un concentrado para
infusión que, antes del tratamiento, se diluye de manera
consecuente, véase a
continuación).
continuación).
Dichas formulaciones se guardan convenientemente
en viales o ampollas. En general, los viales o ampollas son de
vidrio, por ejemplo vidrio de borosilicato o
sosa-cal. Los viales o ampollas pueden ser de
cualquier volumen convencional en la técnica, siendo preferentemente
de un tamaño suficiente para alojar de 0,5 a 5 ml de formulación.
La formulación es estable durante periodos de almacenamiento de
hasta 12-24 meses a temperaturas de por lo menos 2 a
8ºC.
Las formulaciones han de ser diluidas en un
medio acuoso adecuado para administración intravenosa antes de
administrar a un paciente la formulación del ingrediente activo.
\newpage
La solución para infusión debe tener
preferentemente la misma o esencialmente la misma presión osmótica
que los fluidos corporales. En consecuencia, el medio acuoso
contiene preferentemente un agente isotónico que presenta el efecto
de hacer que la presión osmótica de la solución para infusión sea la
misma o esencialmente la misma que la del fluido corporal.
El agente isotónico puede seleccionarse entre
cualquiera de los conocidos en la técnica, por ejemplo, manitol,
dextrosa, glucosa y cloruro sódico. Preferentemente, el agente
isotónico es glucosa o cloruro sódico. Los agentes isotónicos
pueden emplearse en cantidades que impactan a la solución para
infusión la misma o esencialmente la misma presión osmótica que el
fluido corporal. Las cantidades precisas necesarias se pueden
determinar mediante experimentación usual y dependerán de la
composición de la solución para infusión y de la naturaleza del
agente isotónico. La selección de
\hbox{un agente isotónico particular se lleva a cabo teniendo en cuenta las propiedades del agente activo.}
La concentración de agente isotónico en el medio
acuoso dependerá de la naturaleza del agente isotónico particular
empleado. Cuando se emplea glucosa, la misma se usa preferentemente
en una concentración de 1 a 5% p/v, más particularmente 5% p/v.
Cuando el agente isotónico es cloruro sódico, este se emplea
preferentemente en cantidades de hasta 1% p/v, en particular 0,9%
p/v.
La formulación para infusión puede ser diluida
con el medio acuoso. La cantidad de medio acuoso empleado como
diluyente se elige de acuerdo con la concentración deseada de
ingrediente activo en la solución para infusión. Con preferencia,
la solución para infusión se prepara mezclando un vial o ampolla del
concentrado para infusión antes mencionado con un medio acuoso,
llevando el volumen a un valor entre 20 y 200 ml, con preferencia
entre 50 y 100 ml aproximadamente, con el medio acuoso.
Soluciones para infusión pueden contener otros
excipientes normalmente empleados en formulaciones que han de ser
administradas por vía intravenosa. Los excipientes incluyen
antioxidantes. Las soluciones para infusión se pueden preparar
mezclando una ampolla o vial de la formulación con el medio acuoso,
por ejemplo una solución de glucosa al 5% p/v en WFI o
especialmente una solución de cloruro sódico al 0,9% en un
recipiente adecuado, por ejemplo una bolsita o frasco para
infusión. La solución para infusión, una vez formada, se emplea con
preferencia inmediatamente o en el plazo de un corto periodo de
tiempo después de formarse, por ejemplo en el plazo de 6 horas. Los
recipientes para contener las soluciones para infusión se pueden
elegir entre cualesquiera recipientes convencionales que no sean
reactivos con la solución para infusión. Los recipientes de vidrio
producidos a partir de aquellos tipos de vidrio mencionados
anteriormente resultan adecuados aunque puede ser preferible
emplear recipientes de plástico, por ejemplo bolsitas de plástico
para infusiones.
La invención se refiere también a un método de
tratamiento de un animal de sangre caliente, en especial un ser
humano, que está necesitado de dicho tratamiento, especialmente de
tratamiento de una enfermedad proliferativa, que comprende
administrar un compuesto de fórmula I, o una sal farmacéuticamente
aceptable del mismo, a dicho animal de sangre caliente,
especialmente un ser humano, en una cantidad que sea suficiente
para dicho tratamiento, especialmente eficaz contra dicha enfermedad
proliferativa.
Las formas de dosificación se pueden administrar
de manera conveniente por vía intravenosa en una dosis de 0,01 mg
hasta 100 mg/m^{2} de ingrediente activo, con preferencia de 0,1 a
20 mg/m^{2} de ingrediente activo. La dosis exacta requerida y la
duración de la administración dependerán de la severidad del
estado, del estado del paciente y del régimen de administración. La
dosis se puede administrar diariamente o con preferencia con
intervalos de algunos días o semanas, por ejemplo semanalmente o
cada 3 semanas. Dado que la dosis se puede suministrar
intravenosamente, la dosis recibida y al concentración en sangre se
pueden determinar con precisión en base a técnicas in vivo e
in vitro conocidas.
Las composiciones farmacéuticas para
administración oral se pueden obtener combinando el ingrediente
activo con vehículos sólidos, si se desea granulando la mezcla
resultante y elaborando la mezcla, si se desea o es necesario,
después de la adición de excipientes adecuados, para formar
comprimidos, núcleos de grageas o cápsulas. También es posible su
incorporación en recipientes de plástico que permitan la difusión o
liberación de los ingredientes activos en cantidades medidas.
Los compuestos de la invención se pueden emplear
solos o en combinación con otras sustancias farmacéuticamente
activas, por ejemplo con otros compuestos quimioterapéuticos, tales
como los citostáticos clásicos. En el caso de combinaciones con
otros compuestos quimioterapéuticos, se preparan una combinación
fija de dos o más componentes o dos o más formaciones
independientes (por ejemplo, en un kit de partes) como se ha
descrito anteriormente, o bien los otros compuestos
quimioterapéuticos se emplean en formulaciones estándar como las
existentes en el mercado y conocidas para el experto en la materia,
y el compuesto de la presente invención y cualquier otro compuesto
quimioterapéutico se administran en un intervalo que permita un
efecto común, adicional o preferentemente sinérgico para el
tratamiento del tumor.
Los siguientes ejemplos están destinados a
ilustrar la presente invención sin intentar de manera alguna limitar
su alcance.
La primera síntesis total de epotilona E (3) se
efectúa mediante una estrategia en donde la etapa clave es un
acoplamiento de Stille (Stille et al. Angew. Chem. Int. Ed.
Engl. 1986, 25, 508-524; Farina et al. J Org.
React. 1997, 50, 1-65) entre yoduro de vinilo 7 y la
mitad tiazol (8h, esquema 2a). Posteriormente se emplea el
fragmento de núcleo de macrolactona 7, que se prepara por vía de
metátesis de olefinas por cierre de anillo (RCM), para proporcionar
un acceso conveniente y flexible a una variedad de análogos de
epotilona modificados en la cadena lateral (9) para evaluación
biológica (esquema 2b). La reacción RCM usada para acceder a 7
proporciona también trans-macrolactona (11, esquema
2b) que sirve como una plantilla alternativa para el proceso de
acoplamiento de Stille y que proporciona una disposición adicional
de análogos 10.
Esquema
2
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\vskip1.000000\baselineskip
La síntesis química de los yoduros de vinilo 7 y
11 requeridos queda delineada en la solicitud PCT WO 98/25929.
En el esquema 3 se muestran los socios del
acoplamiento de estannano usados en la reacción de Stille.
\vskip1.000000\baselineskip
Esquema
3
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip1.000000\baselineskip
Acoplamiento de Stille: procedimiento A: 2,0
equivalentes de 8, 5-10 moles% de
Pd(PPh_{3})_{4}, tolueno,
90-100ºC, 15-40 min,
39-88%; procedimiento B: 2,0-2,2
equivalentes de 8, 20-30 moles% de
Pd(MeCN)_{2}Cl_{2}, DMF, 25ºC,
12-33 horas, 49-94%.
Los socios 8b del acoplamiento son accesibles a
través de 2,4-dibromotiazol (20) por vía de
monobromuros 21 como se indica en los esquemas 4 y 5.
\vskip1.000000\baselineskip
Esquema
4
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\vskip1.000000\baselineskip
Preparación de A) estáñanos 8b. Reactivos y
condiciones: (b) 3,0 equiv. de NaSMe, EtOH, 25ºC, 2 h, 92%; (d) 13
equiv. NaOH, EtOH, 25ºC, 30 h, 91%; (e) 13 equiv. NaOH, MeOH, 25ºC,
16 h, 82%; (f) 5-10 equiv. de Me_{3}SnSnMe_{3},
5-10 mol% de Pd(PPh3)4, tolueno,
80-100ºC, 0,5-3 h,
81-100%; (g) 1,1 equiv. de n-BuLi,
1,2 equiv. de n-Bu_{3}SnCl, -78 a 25ºC, 30 min,
98%.
El sulfuro 21b se obtiene en un rendimiento del
92% reemplazando el sustituyente 2-bromo de 20 por
la mitad tiometilo empleando tiometóxido sódico (EtOH, 25ºC). El
bromuro (21b) se transforma entonces al trimetilestannano deseado
(8b) con hexametildiestaño bajo condiciones catalizadas con paladio
[Pd(PPh_{3})_{4}, tolueno,
80-100ºC].
\newpage
Teniendo a mano los componentes necesarios, se
investigan los acoplamientos críticos de Stille. Dos series
alternativas de condiciones de reacción resultan ser adecuadas
(esquema 3). El procedimiento A implica el calentamiento de una
solución en tolueno del yoduro de vinilo deseado (7 u 11) con el
estannano adecuado 8 en presencia de cantidades catalíticas de
Pd(PPh_{3})_{4} a 80-100ºC
durante un tiempo comprendido entre 15 y 40 minutos. Este protocolo
se emplea para acoplar el estannano 8b.
Las síntesis total se completa por epoxidación
con ácido metilperoxicarboximídico generado in situ
(H_{2}O_{2}, KHCO_{3}, MeCN, MeOH, 25ºC; Chaudhuri et
al. J.J. Org. Chem. 1982, 47, 5196-5198) para
suministrar epotilona E (3) (66% basado en una conversión del 50%),
que exhibe características físicas idénticas (^{1}H NMR,
[\alpha]_{D}) a las publicadas en la técnica.
Se prolonga entonces la técnica de acoplamiento
de Stille para proporcionar un fácil acceso a una variedad de
análogos modificados en la cadena lateral de epotilona B (2), tanto
en C-26 como en la cadena lateral. El análisis
retrosintético de análogos de epotilona que poseen estas
modificaciones dobles se muestra en el esquema 6b y requiere la
preparación del fragmento de núcleo de yoduro de vinilo crucial. Se
cree que lo más adecuado para esta tarea es una estrategia de
macrolactonización similar a la usada en nuestra síntesis de
epotilona B y de una variedad de análogos de epotilona.
\vskip1.000000\baselineskip
Esquema
6b
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\vskip1.000000\baselineskip
ustración de un análisis
retrosintético de análogos de epotilona que poseen mitades
modificadas en C-26 y en la cadena
lateral.
La síntesis comienza a partir del yoduro de
vinilo 13 (esquema 7) usado en la preparación de epotilona E y
análogos relacionados (esquema 3).
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\vskip1.000000\baselineskip
\vskip1.000000\baselineskip
(Esquema pasa a página
siguiente)
\newpage
Esquema
7
(a) 1,7 equiv. TBSCI, 2,8 equiv. imidazol, DMF,
0 a 25ºC, 7 h, 84%; (b) i, 1,0 mol% OsO4, 1,1 equiv. NMO,
THF:t-BuOH:H_{2}O (5:5:1), 0 a 25ºC, 13 h, 89%;
ii, 6,0 equiv. NalO_{4}, MeOH:H_{2}O (2:1), 0ºC, 30 min, 92%;
(c) 2,4 equiv. 27, benceno, reflujo, 1,2 h, 98%; (d) 3,0 equiv.
DIBAL, THF, -78ºC, 2,5 h, 100%, (e) 1,4 equiv. de TrCl, 1,7 equiv.
de 4-DMAP, DMF, 80ºC, 21 h, 95%; (f) 1,4 equiv. de
9-BBN, THF, 0ºC, 9 h; luego NaOH acuoso 3 N y 30%
H_{2}O_{2} 0ºC, 1 h, 95%; (g) 2,6 equiv. de I_{2}, 5,0 equiv.
de imidazol, 2,5 equiv. de Ph_{3}P, Et_{2}O:MeCN (3:1), 0ºC, 45
min, 97%; (h) 1,3 equiv. de la hidrazona SAMP de propionaldehido,
1,4 equiv. de LDA, THF, 0ºC, 16 h; luego -100°C y añadir 1,0 equiv.
de 32 en THF, -100 a -20ºC, 20 h, 71%; (i) 2,5 equiv. de MMPP,
MeOH: tampón fosfato pH 7 (1:1), 0ºC, 3,5 h, 89%; (j) 3,0 equiv. de
DIBAL, tolueno, -78ºC, 1 h, 88%, 9-BBN =
9-borabiciclo[3,3,1]nonano; DIBAL =
hidruro de diisobutilaluminio; 4-DMAP =
4-dimetilaminopiridina; LDA = diisopropilamida de
litio; NMO = N-óxido de 4-metilmorfolina; SAMP =
(S)-(-)-1-amino-2-(metoximetil)pirrolidina;
MMPP = ácido monoperoxiftálico, sal de magnesio.
La protección del grupo hidroxilo alílico
(TBSCl, imidazol, DMF, 0 a 25ºC) proporciona el sililéter 25 (84%)
el cual se transforma al aldehído 26 mediante una secuencia en dos
etapas de
dihidroxilación-glicol-disociación
(OsO_{4}, NMO, THF/t-BuOH/H_{2}O, 0 a 25ºC;
luego NalO_{4}, MeOH/H_{2}O, 0ºC, 82% para las dos etapas). Una
reacción de Wittig estereocontrolada con el iluro estabilizado 27
(benceno, reflujo, Marshall et al. J. Org. Chem. 1986, 51,
1735-1741; Bestmann et al. Angew. Chem. Int.
Ed. Engl. 1965, 4, 645-660) proporciona el éster 28
como un único isómero geométrico en un rendimiento del 98%. La
reducción del último compuesto (DIBAL, THF, -78ºC) proporciona el
alcohol 29, el cual se protege como el derivado de trifenilmetilo
(tritilo) 30 (TrCl, 4-DMAP, DMF, 70ºC, 95%).
Se consigue entonces la elaboración de la
olefina terminal mediante hidroboración-oxidación
selectiva para proporcionar el alcohol 31 (9-BBN,
THF, 0ºC; luego NaOH, H_{2}O_{2}, 0ºC) el cual se transforma
además al diyoduro 32 (I_{2}, imidazol, Ph_{3}P, 0ºC) en un
rendimiento total del 92%. Se logra entonces la introducción del
estereocentro C8 empleando un protocolo de alquilación de Ender
(hidrazona SAMP de propionaldehído, LDA, THF, 0ºC; luego -100ºC y
adición de 32 en THF; Enders et al. Asymmetric Synthesis
1984; Morrison, J.D., Ed.; Academia Press, Orlando, Vol. 3, p.
275-339; damos aquí las gracias al profesor Enders
por su obsequio generoso de SAMP) dando lugar a la formación de
hidrazona SAMP 33 en un rendimiento del 71%. La conversión al
nitrilo 34 (MMPP, MeOH/tampón fosfato pH 7, 0ºC, 89%) y posterior
reducción (DIBAL, tolueno, -78ºC) proporciona el aldehído deseado
35 en un rendimiento del 88%.
La transformación del aldehído 35 al núcleo
macrocíclico deseado de epotilona 24 se resume en el esquema 8.
\vskip1.000000\baselineskip
Esquema
8
\vskip1.000000\baselineskip
(a) 1,45 equiv. de LDA, THF, -78ºC, luego 1,4
equiv. de 36 en THF, -78ºC, 1,5 h luego; -40°C, 0,5 h; luego 1,0
equiv. de 35 en THF a -78ºC (rendimiento combinado 66%, relación
alrededor de 1,5:1 de 37:38); (b) 3,2 equiv. de TBSOTf, 4,3 equiv.
de 2,6-lutideno, CH_{2}Cl_{2}, -20 a 0ºC, 2,5 h,
90%; (c) HF\cdotpir. en pirideno, THF, 0ºC, 3 h, 84%; (d) 2,0
equiv. de (COCl)_{2}, 4,0 equiv. de DMSO, 6,0 equiv. de
Et_{3}N, CH_{2}Cl_{2}, -78 a 0ºC, 1,5 h, 98%; (e) 5,0 equiv.
de NaClO_{2}, 75 equiv. de
2-metil-2-buteno,
2,5 equiv. de NaH_{2}PO_{4}, t-BuOH:H_{2}O
(4,5:1), 25ºC, 40 min, 100%; (f) 6,0 equiv. de TBAF, THF, 0 a 25ºC,
19 h, 95%; (g) 6,0 equiv. de Et_{3}N, 2,4 equiv. de cloruro de
2,4,6-triclorobenzoilo, THF, 0ºC, 1,5 h; luego
adición a una solución de 2,2 equiv. de 4-DMAP en
alueno (0,005 M basado en 43), 75ºC, 2,5 h, 84%; (h) 25% v/v
HF\cdotpir. en THF 0 a 25°C, 15 h, 86%, TBAF = fluoruro de
tetra-n-butilamonio.
La reacción aldólica de la cetona 36,
previamente usada en nuestra síntesis de epotilona B y análogos
relacionados (LDA, THF, -78º a -40ºC) y aldehído 35, proporciona los
alcoholes 37 y 38 en un rendimiento total del 66%, con una
selectividad modesta para el diastereoisómero 6R,7S deseado (37). La
separación y sililación (TBSOTf, 2,6-luditina,
CH_{2}Cl_{2}, -20 a 0ºC) del producto aldócido correcto 37
proporciona el tris-sililéter 39 en un rendimiento
del 90%. La separación selectiva del grupo sililéter
primario-protector (HF\cdotpir. en piridina/THF,
0ºC) proporciona el alcohol 40 (84%), el cual se oxida al ácido 42
por vía del aldehído 41 mediante un procedimiento en dos etapas
[Swern; luego NaClO_{2},
2-metil-2-buteno,
NaH_{2}PO_{4}, t-BuOH/H_{2}O, 25ºC, 98% para
las dos etapas]. La separación del grupo
silicio-protector C15 (TBAF, THF, 0 a 25ºC)
proporciona el hidroxiácido 43 (95%) dejando así la base para el
proceso de macrolactonización. Esta etapa clave se consigue bajo
las condiciones de Yamaguchi (cloruro de
2,4,6-triclorobenzoilo, Et_{3}N, THF, luego
adición a una solución de 4-DMAP en tolueno, 0,005
M, 75ºC; Inanaga et al. Bull. Chem. Soc. Jpn. 1979, 52,
1989; Mulzer et al. Synthesis 1992, 215-228;
Nicolau et al. Chem. Eur. J. 1996, 2,
847-868) para proporcionar el núcleo protegido de
epotilona 44 en un rendimiento del 84%. La desprotección global
(HF\cdotpir., THF, 0 a 25ºC, 86%) completa la síntesis del
compuesto intermedio clave de yoduro de vinilo 34.
Teniendo a mano el compuesto intermedio 24, se
emplea entonces el protocolo de acoplamiento de Stille para unir la
mitad heterocíclica deseada.
La química descrita en este ejemplo está basada
en una técnica de acoplamiento de Stille para construir una serie de
análogos de epotilona con diversidad en la cadena lateral o tanto en
la cadena lateral como en el sitio C26 a partir de un compuesto
intermedio macrocíclico común.
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Ejemplo
2
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Ejemplo
3
De acuerdo con los métodos descritos
anteriormente se mide la inhibición de la despolimerización de
tubulina por un compuesto de fórmula I empleando microtúbulos de
cerebro de cerdo, en comparación con 25 \muM de epotilona B; so
ensayos celulares son análogos a los descritos anteriormente para
las células KB-31.
En analogía con los métodos descritos
anteriormente y a continuación, se preparan los siguientes
compuestos pertenecientes a la fórmula I y que tienen las siguientes
fórmulas:
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General: Todas las reacciones se efectúan
bajo una atmósfera de argón con disolventes secos, recientemente
destilados, bajo condiciones anhidras, salvo que se indique otra
cosa. Se destilan tetrahidrofurano (THF) y dietiléter (éter) a
partir de benzofenona sódica, y diclorometano (CH_{2}Cl_{2}),
benceno (PhH) y tolueno a partir de hidruro cálcico. Se obtienen
también disolventes anhidros pasándolos a través de columnas de
alúmina activa comercialmente disponibles. Los rendimientos se
refieren a materiales cromatográfica y espectroscópicamente
(^{1}H NMR) homogéneos, salvo que se indique otra cosa. Todas las
soluciones usadas en los procedimientos de trabajo son saturadas
salvo que se indique otra cosa. Todos los reactivos son adquiridos
con la calidad comercial más alta y empleados sin purificación
adicional, salvo que se indique otra cosa. Todas las reacciones son
controladas por cromatografía de capa fina efectuada sobre placas de
gel de sílice de E. Merck de 0,25 mm (60F-254)
empelando UV como agente de visualización y solución etanólica al 7%
de ácido fosfomolíbdico o p-anisaldehído y calor
como agentes de desarrollo. Se emplea gel de sílice E. Merck (60,
tamaño de partícula 0,040-0,063 mm) para la
cromatografía en columna instantánea. Las separaciones por
cromatografía de capa fina preparativa se efectúan en placas de gel
de sílice de E. Merck de 0,25, 0,50 o 1 mm
(60F-254). Los espectros NMR se registran en
instrumentos Broker DRX-600,
AMX-500, AMX-400 o
AC-250 y calibrados empleando disolvente no
deuterado residual como referencia interna. Se emplean las
siguientes abreviaturas para explicar las multiplicidades; s,
singlete; d, doblete; t, triplete; q, cuartete; m, multiplete;
banda, varias señales superpuestas; b, ancho. Los espectros IR son
registrados en un espectrómetro Perkin-Elmer 1600
serie FT-IR. Las rotaciones ópticas son registradas
en un polarímetro Perkin-Elmer 241. Los espectros de
masas de alta resolución (HRMS) son registrados en un espectrómetro
de masas VG ZAB-ZSE en condiciones de bombardeo con
átomos rápidos (FAB).
Cis-macrolactona diol 7 como
se ilustra en el esquema 3. A una solución de yoduro 16 (305 mg,
0,491 mmol) en THF (8,2 ml, 0,06 M) a 25ºC se añade HF\cdotpir.
(2,7 ml) y la solución resultante se agita a la misma temperatura
durante 27 horas. La reacción se enfría entonces por adición
cuidadosa a una mezcla de NaHCO_{3} acuoso saturado (100 ml) y
EtOAc (100 ml) y la mezcla bifásica resultante se agita a 25ºC
durante 2 horas. Los extractos se separan entonces y la capa
orgánica se lava con NaHCO_{3} acuoso saturado (100 ml) y
salmuera (100 ml) y luego se seca (MgSO_{4}). La purificación por
cromatografía en columna instantánea (gel de sílice, 20 a 50% EtOAc
en hexanos) suministra el diol 7 (208 mg, 84%). R_{f} = 0,21 (gel
de sílice gel, 25% EtOAc en hexanos); [\alpha]^{22}_{D}
-53,1 (c 1,37, CHCl_{3}); IR (película fina) v_{max} 3499 (br),
2930, 1732, 1688, 1469, 1379, 1259, 1149, 1093, 1048, 1006, 732
cm^{-1}; ^{1}H NMR (500 MHz, CDCl_{3}) \delta 6,43 (s, 1H,
IC H=C(CH_{3})), 5,44 (ddd, J= 10,5, 10,5, 4,5 Hz, 1H, C
H=CHCH_{2}), 5,34 (dd, J = 9,5, 2,0 Hz, 1H, CHOCO), 5,32 (ddd, J =
10,5, 10,5, 5,5 Hz, 1H, C H=CHCH_{2}), 4,07 (ddd, J = 11,0, 6,0,
3,0 Hz, 1H, (CH_{3})_{2}CC H(OH)), 3,73 (ddd, J =
2,5, 2,5, 2,5 Hz, 1H, C HOH(CHCH_{3})), 3,10 (qd, J = 7,0,
2,5 Hz, 1H, CH_{3}C H(C=O)), 2,84 (d, J = 2,5 Hz, 1H,
CH(CH_{3})CHOHCH(CH_{3})), 2,66 (ddd, J =
15,0, 9,5, 9,5 Hz, 1H, =CHC H_{2}CHO), 2,51 (dd, J = 15,5, 11,0
Hz, 1H, CH_{2}COO), 2,42 (dd, J = 15,5, 3,0 Hz, 1H, CH_{2}COO),
2,35 (d, J = 6,0 Hz, 1H, (CH_{3})_{2}CHO H),
2,21-2,12 (m, 2 H), 2,05-1,97 (m,
1H), 1,88 (s, 3 H, ICH=CCH_{3}), 1,76-1,70 (m,
1H), 1,70-1,62 (m, 1H), 1,32 (s, 3 H,
C(CH_{3})_{2}), 1,18 (d, J = 7,0 Hz, 3H,
CH_{3}CH(C=O)), 1,10 (s, 3H,
C(CH_{3})_{2}), 1,35-1,05 (m, 3H),
0,99 (d, J = 7,0 Hz, 3H, CH_{3}CHCH_{2}); HRMS (FAB), calcd.
para C_{22}H_{35}IO_{5} (M + Cs+) 639.0584, encontrado
639.0557.
Trans-macrolactona diol 11
como se ilustra en el esquema 3. Una solución de yoduro 17 (194
mg, 0,313 mmol) en THF (5,2 ml, 0,06 M) se trata con HF\cdotpir.
(1,7 ml) según el procedimiento descrito para la preparación del
diol 7 para proporcionar, después de la cromatografía en columna
instantánea (gel de sílice, 20 a 50% EtOAc en hexanos, el diol 11
(134 mg, 85%). R_{f} = 0,16 (gel de sílice, 25% EtOAc en hexanos;
[\alpha]^{22}_{D} -53,1 (c 1,15, CHCl_{3}); IR
(película) v_{max} 3478, 2930, 1732, 1693 cm^{-1}; ^{1}H NMR
(500 MHz, CDCl_{3}) \delta 6,37 (d, J = 1,5 Hz, 1H,
ICH=CCH_{3}), 5,35 (ddd, J = 14,5, 7,0, 7,0 Hz, 1H,
CH=CHCH_{2}), 5,24 (ddd, J = 14,5, 7,0, 7,0 Hz, 1H,
CH=CHCH_{2}), 5,17 (dd, J = 6,5, 3,5 Hz, 1H, CHOCO), 4,41 (dd, J =
8,0, 3,5 Hz, 1H, (CH_{3})_{2}CCH(OTBS)), 3,85 (bs,
1H, CHOH(CHCH_{3})), 3,38 (bs, 1H, CHO H (CHCH_{3})),
3,18 (qd, J = 7,0, 6,5 Hz, 1H, CH_{3}CH(C=O)),
2,68-2,34 (m, 4 H), 2,44 (s, 3H, CH_{3}Ar),
2,19-2,11 (m, 1H), 1,96 (s, 3H, CH_{3}C=CH),
1,99-1,93 (m, 1H), 1,67-1,52 (m, 2
H), 1,48-1,42 (m, 1H), 1,31-0,99 (m,
2 H), 1,22 (d, J = 7,0 Hz, 3H, CH_{3}CH(C=O)), 1,14 (s, 3H,
C(CH_{3})2), 1,09 (s, 3H,
C(CH_{3})2), 1,02 (d, J = 7,0 Hz, 3H,
CH_{3}CHCH_{2}), 0,84 (s, 9 H,
SiC(CH_{3})_{3}(CH_{3})_{2}),
0,08 (s, 3H,
SiC(CH_{3})_{3}(CH_{3})_{2}),
-0,01 (s, 3H,
SiC(CH_{3})_{3}(CH_{3})_{2});
HRMS (FAB), calcd. para C_{22}H_{35}IO_{5} (M + Cs^{+})
639.0584, encontrado 639.0606.
2-tiometil-4-bromotiazol
21b como se ilustra en el esquema 4. Se disuelve
2,4-dibromotiazol 20 (82 mg, 0,34 mmol, 1,0 equiv.)
en etanol (2,3 ml, 0,15 M) y se trata con tiometóxido sódico (75 mg,
1,02 mmol, 3,0 equiv.). La mezcla de reacción se agita a 25ºC
durante 2 horas, tras lo cual se establece el término de la
reacción por ^{1}H NMR. La mezcla se vierte en agua (5 ml) y se
extrae con éter (2 x 5 ml). Las fracciones orgánicas combinadas se
secan (MgSO_{4}), se evaporan los disolventes y el residuo se
purifica por cromatografía en columna instantánea (gel de sílice,
5% EtOAc en hexanos) para suministrar el
2-tiometil-4-bromotiazol
21b (77 mg, 92%). R_{f} = 0,58 (gel de sílice, 10% EtOAc en
hexanos); IR (película) v_{max} 3118, 2926, 1459, 1430, 1388,
1242, 1040, 966, 876, 818 cm^{-1}; ^{1}H NMR (500 MHz,
CDCl_{3}) \delta 7.07 (s, 1H, ArH), 2.69 (s, 3H, SCH_{3});
GC/MS (EI), calcd. para C_{4}H_{4}BrNS_{2} (M^{+}) 209/211,
encontrado 209/211.
2-tiometil-4-trimetilestanniltiazol
8b como se ilustra en el esquema 3. A una solución de
bromotiazol 21b (51 mg, 0,24 mmol, 1,0 equiv.) en tolueno
desgasificado (4,9 ml, 0,1 M) se añade hexametildiestaño (498
\mul, 2,4 mmol, 10 equiv.) y Pd(PPh_{3})_{4} (14
mg, 0,012 mmol, 0,05 equiv.) y la mezcla de reacción se calienta a
80ºC durante 3 horas. Se enfría luego la mezcla de reacción a 25ºC
para proporcionar, después de cromatografía en columna instantánea
(gel de sílice, 5% Et_{3}N en hexanos), el estannano 8b (71 mg,
100%). R_{f} = 0,67 (gel de sílice; pre-tratado
con Et_{3}N, 10% EtOAc); IR (película) v_{max} 2981, 2924,
1382, 1030, 772 cm^{-1}; ^{1}H NMR (500 MHz, CDCl_{3})
\delta 7,25 (s, 1H, ArH), 2,70 (s, 3H, SCH_{3}), 0,32 (s, 9H,
Sn(CH_{3})_{3}); HRMS (FAB), calcd. para
C_{7}H_{13}NS_{2}Sn (M + H^{+}) 295.9588, encontrado
295.9576.
Epotilona E (3) como se ilustra en los
esquemas 2 y 3. A una solución de lactona 18h (10,0 mg, 0,020
mmol, 1,0 equiv.) en metanol. (600 \mul, 0,03 M) se añade
acetonitrilo (32 \mul, 0,606 mmol, 30 equiv.), KHCO_{3} (10 mg,
0,102 mmol, 5 equiv.) y peróxido de hidrógeno (27 \mul, 35% p/p en
agua, 0,303 mmol, 15 equiv.) y la mezcla de reacción se agita a
25ºC durante 3 horas. Se añade entonces más acetonitrilo (32 \mul,
0,606 mmol, 30 equiv.), KHCO_{3} (10 mg, 0,102 mmol, 5 equiv.) y
peróxido de hidrógeno (27 \mul, 35% p/p en agua, 0,303 mmol, 15
equiv.) y se continúa la agitación durante 3 horas. La mezcla de
reacción se pasa entonces directamente a través de un papón corto
de gel de sílice, eluyendo con éter, y el filtrado se concentra bajo
presión reducida. La cromatografía de capa fina preparativa (placa
de gel de sílice en 250 mm, 50% EtOAc en hexanos) suministra
material de partida sin reaccionar 18h (5,0 mg, 50%) y epotilona E
(3) (3,4 mg, 33%). R_{f} = 0,56 (gel de sílice, 66% EtOAc en
hexanos); [\alpha]^{22}_{D} = -27,5 (c 0,20,
CHCl_{3}); IR (película) v_{max} 3413, 2928, 2867, 1731, 1689,
1462, 1375, 1257, 1152, 1061, 978, 756 cm^{-1}; ^{1}H NMR (600
MHz, CDCl_{3}) \delta 7,13 (s, 1H, ArH), 6,61 (s, 1H,
CH=CCH_{3}), 5,46 (dd, J = 8,1, 2,4 Hz, 1H, CHOCO), 4,94 (d, J =
5,2Hz, 2H, CH_{2}OH), 4,16-4,12 (m, 1H,
(CH_{3})_{2}CCH(OH)), 3,82-3,78
(m, 1H, CHOH(CHCH_{3})), 3,66 (bs, 1H, OH), 3,23 (qd, J =
6,8, 5,2Hz, 1H, CH_{3}CH(C=O)), 3,04 (ddd, J = 8,1, 4,5,
4,5 Hz, 1H, CH_{2}CH(O)CHCH_{2}), 2,91 (ddd, J =
7,3, 4,5, 4,1Hz, 1H, CH_{2}CH(O)CHCH_{2}), 2,61
(t, J = 5,2Hz, 1H, CH_{2}OH), 2,55 (dd, J = 14,7, 10,4 Hz, 1H,
CH_{2}COO), 2,48 (bs, 1H, OH), 2,45 (dd, J = 14,7, 3,2Hz, 1H,
CH_{2}COO), 2,14-2,07 (m, 1H,
CH_{2}CH(O)CHCH_{2}), 2,11 (s, 3H, CH=CCH_{3}),
1,91 (ddd, J = 15,1, 8,1, 8,1Hz, 1H,
CH_{2}CH(O)CHCH_{2}), 1,78-1,66
(m, 2H, CH_{2}CH(O)CHCH_{2}),
1,52-1,38 (m, 5H), 1,36 (s, 3H,
C(CH_{3})_{2}), 1,18 (d, 3H, J = 6,8 Hz,
CH_{3}CH(C=O)), 1,10 (s, 3H,
C(CH_{3})_{2}), 1,01 (d, J = 7,0 Hz, 3H,
CH_{3}CHCH_{2}); HRMS (FAB), calcd. para
C_{26}H_{39}NO_{7}S (M + H^{+}) 510.2525. encontrado
510.2539.
Cis-macrolactona 18b como se
ilustra en el esquema 3. Una solución de yoduro de vinilo 7 (9,2
mg, 0,018 mmol, 1,0 equiv.), estannano 8b (10,7 mg, 0,036 mmol, 2,0
equiv.) y Pd(PPh_{3})_{4} (2,1 mg, 0,0018 mmol,
1,0 equiv.) en tolueno desgasificado (180 \mul, 0,1 M) se calienta
a 100ºC durante 40 min., de acuerdo con el procedimiento descrito
para la síntesis de la lactona 18h, para proporcionar, después de
cromatografía en capa fina preparativa (placa de gel de sílice de
250 mm, 75% de éter en hexanos), la macrolactona 18b (4,2 mg, 44%).
R_{f} = 0,50 (gel de sílice, 50% EtOAc en hexanos);
[\alpha]^{22}_{D} -38,6 (c 0,21, CHCl_{3}); IR
(película fina) v_{max} 3444, 2925, 1732, 1682, 1259, 1037, 756
cm^{-1}; ^{1}H-NMR (500 MHz, CDCl_{3})
\delta 6,99 (s, 1H, CH=C(CH_{3})), 6,52 (bs, 1H, ArH),
5,45 (ddd, J = 10,5, 10,5, 4,0 Hz, 2H, CH=CHCH_{2}), 5,39 (ddd, J
= 10,5, 10,5, 4,0 Hz, 1H, CH=CHCH_{2}), 5,29 (d, J = 8,0 Hz, 1H,
CHOCO), 4,20 (ddd, J = 11,0, 5,5, 2,5 Hz, 1H,
(CH_{3})_{2}CCH(OH)), 3,75-3,73
(m, 1H, CHOH(CHCH_{3})), 3,13 (qd, J = 6,5, 2,0 Hz, 1H,
CH_{3}CH(C=O)), 2,98 (d, J = 2,0 Hz, 1H,
CHOH(CHCH_{3})), 2,93 (d, J = 5,5 Hz, 1H,
(CH_{3})_{2}CCH(OH)), 2,71 (ddd, J = 15,0, 10,0,
10,0 Hz, 1H, CH=CHCH_{2}), 2,70 (s, 3H, SCH_{3}), 2,51 (dd, J =
15,5, 11,5 Hz, 1H, CH_{2}COO), 2,30 (dd, J = 15,0, 2,5 Hz, 1H,
CH_{2}COO), 2,28-2,16 (m, 2H), 2,13 (d, J = 1,0
Hz, 3H, CH=CCH_{3}), 2,06-1,98 (m, 1H),
1,79-1,60 (m, 2H), 1,40-1,06 (m,
3H), 1,33 (s, 3H, C(CH_{3})_{2}), 1,19 (d, J =
7,0 Hz, 3H, CH_{3}CH(C=O)), 1,09 (s, 3H,
C(CH_{3})_{2}), 1,00 (d, J = 7,0 Hz, 3H,
CH_{3}CHCH_{2}); HRMS (FAB), calcd. para
C_{26}H_{39}NO_{5}S_{2} (M + Cs^{+}) 642.1324. encontrado
642.1345.
Trans-macrolactona 19b como
se ilustra en el esquema 3. Una solución de yoduro de vinilo 11
(6,9 mg, 0,014 mmol, 1,0 equiv.), estannano 8b (8,2 mg, 0,28 mmol,
2,0 equiv.) y Pd(PPh_{3})_{4} (1,6 mg, 0,0014
mmol, 0,1 equiv.) en tolueno desgasificado (140 \mul, 0,1 M) se
calienta a 100ºC durante 40 min, de acuerdo con el procedimiento
descrito para la síntesis de la lactona 18h, para proporcionar,
después de cromatografía en capa fina preparativa (placa de gel de
sílice de 250 mm, 75% de éter en hexanos), la macrolactona 19b (5,0
mg, 72%). R_{f} = 0,47 (gel de sílice, 50% EtOAc en hexanos);
[\alpha]^{22}_{D} -32,9 (c 0,35, CHCl_{3}); IR
(película) v_{max} 3488, 2928, 1728, 1692, 1259, 1036, 800, 757
cm^{-1}; ^{1}H NMR (500 MHz, CDCl_{3}) \delta 7,00 (s, 1H,
ArH), 6,48 (s, 1H, CH=CCH_{3}), 5,53 (ddd, J = 15,0, 7,5, 7,5 Hz,
1H, CH=CHCH_{2}), 5,40 (d, J = 8,0 Hz, 1H, CHOCO), 5,39 (ddd, J =
15,0, 7,5, 7,5 Hz, 1H, CH=CHCH_{2}), 4,12 (ddd, J = 11,0, 2,5,
2,5 Hz, 1H, (CH_{3})_{2}CCHOH), 3,77-3,74
(m, 1H, CHOH(CHCH_{3})), 3,24 (m, 1H, CH=CHCH_{2}), 3,07
(m, 1H, CH_{3}CH(C=O)), 2,70 (s, 3H, SCH_{3}), 2,61 (d, J
= 3,5 Hz, 1H, CHOH(CHCH_{3})), 2,59-2,44
(m, 5H), 2,19-2,12 (m, 1H), 2,13 (s, 3H,
CH=CCH_{3}), 2,02-1,94 (m, 1H),
1,70-1,55 (m, 2H), 1,48-1,41 (m,
1H), 1,29 (s, 3H, C(CH_{3})_{2}), 1,18 (d, J = 7,0
Hz, 3H, CH_{3}CH(C=O)), 1,08 (s, 3H,
C(CH_{3})_{2}), 0,99 (d, J = 7,0 Hz, 3H,
CH_{3}CHCH_{2}); HRMS (FAB), calcd. para
C_{26}H_{39}NO_{5}S_{2} (M + Cs^{+}) 642.1324. encontrado
642.1298.
Sililéter 25 como se ilustra en el esquema
7. A una solución de alcohol 13 (12,96 g, 54,4 mmol, 1,0
equiv.) en DMF (180 \mul, 0,3 M) a 0ºC, se añaden imidazol (10,2
g, 150,0 mmol, 2,8 equiv.) seguido por
terc-butildimetilclorosilano (13,5 g, 89,8 mmol, 1,7
equiv.). Después de calentar a 25ºC durante 7 horas, se separa el
disolvente bajo presión reducida y el aceite resultante se reparte
entre éter (200 ml) y NH_{4}Cl acuoso saturado (200 ml). La capa
acuosa se extrae con éter (200 ml) y los extractos orgánicos
combinados se lavan con salmuera (550 ml), se seca (MgSO_{4}) y
se concentra bajo presión reducida. La cromatografía en columna
instantánea (gel de sílice, 0 a 5% EtOAc en hexanos) suministra el
sililéter 25 como un aceite (16,03 g, 84%). R_{f} = 0,48
(hexanos); [\alpha]^{22}_{D} -17,5 (c 1,65,
CHCl_{3}); IR (película fina) v_{max} 2954, 2928, 2857, 1472,
1361, 1278, 1252, 1082, 914, 836, 776, 677 cm^{-1}; ^{1}H NMR
(500 MHz, CDCl_{3}) \delta 6,15 (s, 1H, CH=CCH_{3}),
5,74-5,66 (m, 1H, CH=CH_{2}), 5,03 (bm, 1H,
CH=CH_{2}), 5,01 (s, 1H, CH=CH_{2}), 4,16 (dd, J = 6,5, 6,5 Hz,
1H, CHOH), 2,25 (m, 1H, CH_{2}=CHCH_{2}), 1,77 (s, 3H,
CH=CCH_{3}), 0,88 (s, 9H, SiC(CH_{3})_{3}), 0,04
(s, 3H, Si(CH_{3})_{2}), -0,01 (s, 3H,
Si(CH_{3})_{2}).
Aldehído 26 como se ilustra en el esquema
7. A una solución de olefina 25 (16,0 g, 45,3 mmol, 1,0 equiv.)
en una mezcla de THF (206 ml), t-BuOH (206 ml) y
H_{2}O (41 ml) a 0ºC se añade N-óxido de
4-metilmorfolina (NMO) (5,84 g, 49,8 mmol, 1,1
equiv.) seguido por OsO_{4} (5,2 ml, 2,5% p/p en
t-BuOH, 0,453 mmol, 0,01 equiv.). La mezcla se
agita vigorosamente durante 13 horas a 25ºC y luego se enfría con
Na_{2}SO_{3} acuoso saturado (125 ml). La solución resultante
se agita durante 2 horas y luego se reparte entre EtOAc (150 ml) y
agua (150 ml). La fase orgánica se separa y la fase acuosa se extrae
con EtOAc (2 x 200 ml). Los extractos orgánicos combinados se secan
(MgSO_{4}), se filtra y los disolventes se separan bajo presión
reducida. La cromatografía en columna instantánea (gel de sílice,
50 a 90% de éter en hexanos) proporciona material de partida sin
reaccionar (1,0 g, 6%) y los dioles deseados como una mezcla 1:1
aproximadamente de diastereoisómeros (15,5 g, 89%). R_{f} = 0,44
(gel de sílice, 50% EtOAc en hexanos); IR (película fina) v_{max}
3387, 2952, 2928, 1252, 1080, 837, 777 cm^{-1}; ^{1}H NMR (500
MHz, CDCl_{3}) \delta 6,28 y 6,26 (singletes, 1H total,
CH=CCH_{3}), 4,47-4,42 (m, 1H, CHOSi),
3,86-3,76 (m, 1H, CHOH), 3,61-3,55 y
3,49-3,39 (m, 2H total, CH_{2}OH), 3,33 y 3,15 (2
dobletes, J = 2,0 y 3,5 Hz, 1H total, CHOH), 2,46 y 2,45 (triplets,
J = 5,5 y 5,5 Hz, CH_{2}OH), 1,78 y 1,76 (singletes, 3H total),
1,63-1,60 y 1,58-1,53 (m, 2H total,
CH_{2}), 0,88 y 0,87 (singletes, 9H total,
SiC(CH_{3})_{3}), 0,08 y 0,07 (singletes, 3H
total, Si(CH_{3})_{2}), 0,01 y 0,00 (singletes,
3H total, Si(CH_{3})_{2}); HRMS (FAB), calcd. para
C_{13}H_{27}IO_{3}Si (M + Na^{+}) 409.0672 encontrado
409.0662.
Los dioles (obtenidos como antes se ha descrito)
(23,3 g, 60,2 mmol, 1,0 equiv.) se disuelven en una mezcla de MeOH
(400 ml) y agua (200 ml) y la solución se enfría a 0ºC. Se añade
entonces en porciones, durante 5 minutos, NaIO_{4} (77,2 g, 361,1
mmol, 6,0 equiv.) y la suspensión espesa resultante se agita
vigorosamente durante 30 minutos a 25ºC. Terminada la reacción, la
mezcla se reparte entre CH_{2}Cl_{2} (500 ml) y agua (500 ml)
se separa la fase orgánica. La capa acuosa se extrae con
CH_{2}Cl_{2} (500 ml) y los extractos orgánicos combinados se
lavan con salmuera (1 litro), se seca (MgSO_{4}) y se concentra
bajo presión reducida. La cromatografía en columna instantánea (gel
de sílice, 17 a 50% de éter en hexanos) proporciona el aldehído 26
como un aceite (19,6 g, 92%) R_{f} = 0,35 (gel de sílice, 20% éter
en hexanos); [\alpha]^{22}_{D} -34,1 (c 2,8,
CHCl_{3}); IR (película fina) v_{max} 2954, 2928, 2885, 2856,
1728, 1471, 1279, 1254, 1091, 838, 777, 677 cm^{-1}; ^{1}H NMR
(500 MHz, CDCl_{3}) \delta 9,73 (dd, J = 2,5, 2,5 Hz, 1H,
CHO), 6,34 (s, 1H, CH=CCH_{3}), 4,70 (dd, J = 8,0, 4,0 Hz, 1H,
CHOSi), 2,68 (ddd, J = 16,0, 8,3, 2,5 Hz, 1H,
(CHO)CH_{2}), 2,44 (ddd, J = 16,0, 4,0, 2,5 Hz, 1H,
(CHO)CH_{2}), 1,80 (s, 3H, CH=CCH_{3}), 0,85 (s, 9H,
SiC(CH_{3})_{3}), 0,05 (s, 3H,
Si(CH_{3})_{2}), 0,01 (s, 3H,
Si(CH_{3})_{2});
HRMS (FAB), calcd. para C_{12}H_{23}IO_{2}Si (M + Na^{+}) 377.0410 encontrado 377.0402.
HRMS (FAB), calcd. para C_{12}H_{23}IO_{2}Si (M + Na^{+}) 377.0410 encontrado 377.0402.
Ester metílico 28 como se ilustra en el
esquema 7. Una mezcla del aldehído 26 (19,6 g, 55,2 mmol, 1,0
equiv.) e iluro estabilizado 27 (50,2 g, 134,0 mmol, 2,4 equiv.)
[preparado a partir de
4-bromo-1-buteno
mediante: (i) formación de la sal fosfonio; (ii) formación del anión
con KHMDS; y (iii) enfriamiento con MeOC(O)Cl)]
(véase Marshall, J.A., et al., J. Org. Chem. 51,
1735-1741 (1986) y Bestmann, H.J., Angew. Chem. Int.
Ed. Engl. 1965, 654-60) en benceno (550 ml, 0,1 M)
se calienta a reflujo durante 1,5 horas. Despues de enfriar a 25ºC,
la mezcla se filtra y el disolvente se separa bajo presión reducida.
La cromatografía en columna instantánea (gel de sílice, 9 a 17%
éter en hexanos) suministra el éster metílico 28 (24,5 g, 98%).
R_{f} = 0,37 (gel de sílice, 20% éter en hexanos);
[\alpha]^{22}_{D} -7,25 (c 1,6, CHCl_{3}); IR
(película fina) v_{max} 3078, 2952, 2920, 2856, 1720, 1462, 1434,
1276, 1253, 1208, 1084, 836, 776, 672 cm^{-1}; ^{1}H NMR (600
MHz, CDCl_{3}) \delta 6,81 (dd, J = 7,4, 7,4 Hz, 1H,
CH=CCOOCH_{3}), 6,22 (s, 1H, CH=CCH_{3}),
5,83-5,75 (m, 1H, CH=CH_{2}),
4,99-4,98 (m, 1H, CH=CH_{2}), 4,96 (m, 1H,
CH=CH_{2}), 4,22 (dd, J = 7,5, 5,1Hz, 1H, CHOSi), 3,72 (s, 3H,
COOCH_{3}), 3,05 (d, J = 6,0 Hz, 2H,
CH_{2}C(CO_{2}Me)), 2,40 (ddd, J = 15,0, 7,5, 7,5 Hz,
1H, CH_{2}CHOSi), 2,33 (ddd, J = 15,0, 7,5, 5,1Hz, 1H,
CH_{2}CHOSi), 1,77 (s, 3H, CH=CCH_{3}), 0,85 (s, 9H,
SiC(CH_{3})_{3}), 0,02 (s, 3H,
Si(CH_{3})_{2}), -0,02 (s, 3H,
Si(CH_{3})_{2}); HRMS (FAB), calcd. para
C_{18}H_{31}IO_{3}Si (M + Cs^{+}), 583.0142 encontrado
583.0159.
Alcohol arílico 29 como se ilustra en el
esquema 7. Se disuelve el éster metílico 28 (24,5 g, 54,3 mmol,
1,0 equiv.) en THF (280 ml) y la solución se enfría a -78ºC. Se
añade DIBAL (163,0 ml, 1 M en CH_{2}Cl_{2}, 163,0 mmol, 3,0
equiv.) gota a gota -78ºC durante 50 minutos, y la mezcla de
reacción se agita durante 80 minutos más. La mezcla de reacción se
enfría con tartrato de sodio-potasio acuoso saturado
(150 ml) y la mezcla resultante se deja calentar hasta 25ºC durante
16 horas. La capa orgánica se separa y la fase acuosa se extrae con
éter (3 x 250 ml). Los extractos orgánicos combinados se lavan con
salmuera (650 ml), se seca (MgSO_{4}) y se concentra bajo presión
reducida. La cromatografía en columna instantánea (gel de sílice,
17 a 50% éter en hexanos) suministra el alcohol 29 (22,9 g, 100%)
R_{f} = 0,11 (gel de sílice, 20% éter en hexanos);
[\alpha]^{22}_{D} -7,25 (c 1,6, CHCl_{3}); IR
(película fina) v_{max} 3346, 3078, 2954, 2928, 2857, 1637, 1471,
1361, 1276, 1252, 1078, 1005, 836, 775, 674, 558 cm^{-1}; ^{1}H
NMR (500 MHz, CDCl_{3}) \delta 6,16 (s, 1H, CH=CCH_{3}),
5,81-5,73 (m, 1H, CH=CH_{2}), 5,45 (dd, J = 6,5,
6,5 Hz, 1H, CH=CCH_{2}OH), 5,03 (m, 2H, CH=CH_{2}), 4,16 (dd, J
= 6,5, 6,5 Hz, 1H, CHOSi), 4,02 (d, J = 4,5 Hz, 2H, CH_{2}OH),
2,85 (dd, J = 15,0, 5,1Hz, 1H, CH_{2}CH=CH_{2}), 2,84 (dd, J =
15,0, 5,0 Hz, 1H, CH_{2}CH=CH_{2}), 2,27 (ddd, J = 15,0, 6,5,
6,5 Hz, 1H, CH_{2}CHOSi), 2,25 (ddd, J = 15,0, 6,5, 6,5 Hz, 1H,
CH_{2}CHOSi), 1,78 (s, 3H, CH=CCH_{3}), 0,88 (s, 9H,
SiC(CH_{3})_{3}), 0,02 (s, 3H,
Si(CH_{3})_{2}), -0,02 (s, 3H,
Si(CH_{3})_{2}); HRMS (FAB), calcd. Para
C_{17}H_{31}IO_{2}Si (M + Cs^{+}), 555.0192 encontrado
555.0177.
Trifenilmetiléter 30 como se ilustra en el
esquema 7. Se disuelve el alcohol 29 (23,5 g, 55,7 mmol, 1,0
equiv.) en DMF (300 ml, 0,15 M) y se añaden 4-DMAP
(11,3 g, 92,5 mmol, 1,7 equiv.) y cloruro de tritilo (22,1 g, 79,3
mmol, 1,4 equiv.). La mezcla de reacción se agita a 80ºC durante 21
horas, se enfría a temperatura ambiente y el disolvente se separa
bajo presión reducida. El residuo resultante se purifica por
cromatografía en columna instantánea para proporcionar el éter
requerido 30 como un aceite (35,3 g, 95%). R_{f} = 0,88 (gel de
sílice, 20% éter en hexanos); [\alpha]^{22}_{D} -0,74
(c 0,3, CHCl_{3}); IR (película fina) v_{max} 3058, 2927, 2854,
1488, 1470, 1448, 1250, 1082, 836, 702, 632 cm^{-1}; ^{1}H NMR
(600 MHz, CDCl_{3}) \delta 7,45-7,43 (m, 5H,
Ph), 7,32-7,21 (m, 10 H, Ph), 6,19 (s, 1H,
CH=CCH_{3}), 5,61 (m, 2H, CH=CH_{2}, CH=CH_{2}), 4,87 (m, 2H,
CH=CH_{2}, CH(C)CH_{2}OTr), 4,19 (dd, J = 6,8, 6,8
Hz, 1H, CHOSi), 3,46 (s, 2H, CH_{2}OTr), 2,78 (dd, J = 15,4, 6,7
Hz, 1H, CH_{2}CH=CH_{2}), 2,73 (dd, J = 15,4, 6,3Hz, 1H,
CH_{2}CH=CH_{2}), 2,33 (ddd, J = 14,5, 6,8, 6,8 Hz, 1H,
CH_{2}CHOSi), 2,31 (ddd, J = 14,5, 6,8, 6,8 Hz, 1H,
CH_{2}CHOSi), 1,80 (s, 3H, CH=CCH_{3}), 0,87 (s, 9H,
SiC(CH_{3})_{3}), 0,04 (s, 3H,
Si(CH_{3})_{2}), 0,00 (s, 3H,
Si(CH_{3})_{2}); HRMS (FAB), calcd. para
C_{36}H_{45}IO_{2}Si (M + Cs^{+}), 797.1288 encontrado
797.1309.
Alcohol 31 como se ilustra en el esquema
7. Se disuelve la olefina 30 (35,3 g, 53,1 mmol, 1,0 equiv.) en
THF (53 ml, 1,0 M) y la solución se enfría a 0ºC. Se añade gota a
gota, durante 1,5 horas, 9-BBM (149 ml, 0,5 M en
THF, 74,5 mmol, 1,4 equiv.) y la mezcla resultante se agita durante
9 horas a 0ºC. Se añade NaOH acuoso (106 ml de una solución 3 N,
319,0 mmol, 6,0 equiv.), seguido por H_{2}O_{2} acuoso (32 ml,
30% p/p en agua, 319,0 mmol, 6,0 equiv.). Se continúa la agitación
durante 1 hora a 0ºC, tras lo cual la mezcla de reacción se diluye
con éter (500 ml) y agua (500 ml). La capa orgánica se separa y la
fase acuosa se extrae con éter (2 x 500 ml). Los extractos
orgánicos combinados se lavan con salmuera (1 litro), se seca
(MgSO_{4}) y se concentra bajo presión reducida. La cromatografía
en columna instantánea (gel de sílice, 9 a 50% éter en hexanos)
suministra el alcohol primario 31 (34,6 g, 95%) R_{f} = 0,54 (gel
de sílice, 60% éter en hexanos); [\alpha]^{22}_{D}
-3,5 (c 0,2, CHCl_{3}); IR (película fina) v_{max} 3380, 3058,
3032, 2926, 2855, 1489, 1449, 1278, 1251, 1078, 835, 706, 632
cm^{-1}; ^{1}H NMR (500 MHz, CDCl_{3}) \delta
7,47-7,45 (m, 5H, Ph), 7,32-7,22 (m,
10 H, Ph), 6,22 (s, 1H, CH=CCH_{3}), 5,58 (dd, J = 7,1, 7,1Hz,
1H, C=CHCH_{2}), 4,22 (dd, J = 6,8, 6,0 Hz, 1H, CHOSi), 3,52 (bm,
2H, CH_{2}OH), 3,50 (s, 2H, CH_{2}OTr), 2,33 (dd, J = 14,5,
6,8, 6,8 Hz, 1H, CH_{2}CHOSi), 2,28 (ddd, J = 14,5, 6,8, 6,8 Hz,
1H, CH_{2}CHOSi), 2,14 (m, 2H, CH_{2}CH_{2}CH_{2}OH), 1,82
(s, 3H, CH=CCH_{3}), 1,46 (m, 2H, CH_{2}CH_{2}OH), 0,90 (s,
9H, SiC(CH_{3})_{3}), 0,06 (s, 3H,
Si(CH_{3})_{2}), 0,02 (s, 3H,
Si(CH_{3})_{2}); HRMS (FAB), calcd. para
C_{36}H_{47}IO_{3}Si (M + Cs^{+}), 815.1394 encontrado
815.1430.
Yoduro 32 como se ilustra en el esquema
7. Una solución del alcohol 31 (34,6 g, 50,73 mmol, 1,0 equiv.)
en una mezcla de éter (380 ml) y MeCN (127 ml) se enfría a 0ºC. Se
añaden entonces imidazol (17,3 g, 253,7 mmol, 5,0 equiv.) y
PPh_{3} (33,3 g, 126,8 mmol, 2,5 equiv.) y la mezcla se agita
hasta que se disuelven todos los sólidos. Se añade yodo (33,5 g,
131,9 mmol, 2,6 equiv.) y la mezcla se agita durante 45 minutos a
0ºC. La reacción se enfría por adición de Na_{2}S_{2}O_{3}
acuoso saturado (150 ml) y las capas se separan. La fase acuosa se
extrae entonces con éter (2 x 250 ml) y los extractos orgánicos
combinados se lavan con salmuera (750 ml), se seca (MgSO_{4}) y
se concentra bajo presión reducida. La cromatografía en columna
instantánea (gel de sílice, 5 a 9% éter en hexanos) proporciona el
yoduro 32 (39,2 g, 97%). R_{f} = 0,88 (gel de sílice, 60% éter en
hexanos); [\alpha]^{22}_{D} -2,9 (c 2,6, CHCl_{3});
IR (película fina) v_{max} 3057, 2926, 2855, 1481, 1448, 1251,
1083, 939, 836, 774, 706, 632 cm^{-1}; ^{1}H NMR (500 MHz,
CDCl_{3}) \delta 7,49-7,45 (m, 5H, Ph),
7,33-7,23 (m, 10 H, Ph), 6,23 (s, 1H, CH=CCH_{3}),
5,67 (dd, J = 7,2, 7,1Hz, 1H, CH_{2}C=CH), 4,22 (dd, J = 6,8, 6,8
Hz, 1H, CHOSi), 3,51 (s, 2H, CH_{2}OTr), 3,07 (dd, J = 7,1, 7,0
Hz, 2H, CH_{2}I), 2,34 (ddd, J = 14,5, 6,8, 6,8 Hz, 1H,
CH_{2}CHOSi), 2,25 (ddd, J = 14,5, 6,8, 6,8 Hz, CH_{2}CHOSi),
2,13 (m, 2H, CH_{2}CH_{2}CH_{2}), 1,84 (s, 3H, CH=CCH_{3}),
1,75 (m, 2H, CH_{2}CH_{2}CH_{2}I), 0,90 (s, 9H,
SiC(CH_{3})_{3}), 0,07 (s, 3H,
Si(CH_{3})_{2}), 0,02 (s, 3H,
Si(CH_{3})_{2}); HRMS (FAB), calcd. para
C_{36}H_{46}I_{2}O_{2}Si (M + Cs^{+}), 925.0411 encontrado
925.0450.
Hidrazona 33 como se ilustra en el esquema
7. Se añade diisopropilamina (5,0 ml, 35,28 mmol, 1,4 equiv.) a
una solución de n-BuLi (22,0 ml, 1,6 M en hexanos,
35,28 mmol, 1,4 equiv.) en 32 ml de THF a 0ºC y se agita durante 1
hora. La hidrazona SAMP de propionaldehído (5,6 g, 32,76 mmol, 1,3
equiv.) en THF (16 ml) se añade a esta solución recientemente
preparada de LDA a 0ºC. Después de agitar a esa temperatura durante
16 horas, la solución amarilla resultante se enfría a -100ºC y se
añade gota a gota, durante un periodo de 2 horas, una solución del
yoduro 32 (20,0 g, 25,23 mmol, 1,0 equiv.) en THF (32 ml). La mezcla
se deja calentar a -20ºC durante 20 horas y luego se vierte en
NH_{4}Cl acuoso saturado (50 ml) y se extrae con éter (3 x 100
ml). El extracto orgánico combinado se seca (MgSO_{4}), se filtra
y se evapora. La purificación por cromatografía en columna
instantánea sobre gel de sílice (5 a 50% éter en hexanos)
proporciona la hidrazona 33 (15,0 g, 71%) como un aceite amarillo.
R_{f} = 0,63 (gel de sílice, 40% éter en hexanos);
[\alpha]^{22}_{D} -22,7 (c 0,2, CHCl_{3}); IR
(película fina) v_{max} 3057, 2927, 2854, 1489, 1448, 1251, 1078,
940, 836, 775, 706, 668, 632 cm_{-1}; _{1}H NMR (500 MHz,
CDCl_{3}) \delta 7,46-7,44 (m, 5H, Ph),
7,31-7,21 (m, 10H, Ph), 6,40 (d, J = 6,5 Hz, 1H,
N=CH), 6,21 (s, 1H, CH=CCH_{3}), 5,50 (dd, J = 7,0, 7,0 Hz, 1H,
CH_{2}C=CH), 4,20 (dd, J = 6,0, 6,0 Hz, 1H, CHOSi), 3,54 (dd, J =
9,2, 3,5 Hz, 1H, CH_{2}OCH_{3}), 3,45 (s, 2H, CH_{2}OTr) 3,41
(dd, J = 9,5, 7,0 Hz, 1H, CH_{2}OCH_{3}), 3,37 (s, 3H,
CH_{2}OCH_{3}), 3,32-3,30 (m, 2H, CH_{2}N),
2,60-2,55 (m, 1H), 2,34-2,20 (m,
3H), 2,04-1,95 (m, 1H), 1,98-1,73
(m, 5H), 1,82 (s, 3H, CH=CCH_{3}), 1,38-1,21 (m,
4H), 0,96 (d, J = 6,9 Hz, 3H, CHCH_{3}), 0,89 (s, 9H,
SiC(CH_{3})_{3}),
0,06 (s, 3H, Si(CH_{3})_{2}), 0,01 (s, 3H, Si(CH_{3})_{2}); HRMS (FAB), calcd. para C_{45}H_{63}IN_{2}O_{3}Si (M + Cs^{+}), 967.2707 encontrado 967.2740.
0,06 (s, 3H, Si(CH_{3})_{2}), 0,01 (s, 3H, Si(CH_{3})_{2}); HRMS (FAB), calcd. para C_{45}H_{63}IN_{2}O_{3}Si (M + Cs^{+}), 967.2707 encontrado 967.2740.
Nitrilo 34 como se ilustra en el esquema
7. Se añade en porciones, durante 10 minutos, sal de magnesio de
ácido monoperoxiftálico (MMPP\cdot6H_{2}O, 80%, 52,4 g, 84,8
mmol, 2,5 equiv.) a una solución rápidamente agitada de hidrazona
33 (28,3 g, 33,9 mmol, 1,0 equiv.) en una mezcla de MeOH (283 ml),
THF (100 ml) y tampón fosfato pH 7 (283 ml) a 0ºC. La mezcla se
agita a 0ºC durante 1,5 horas y luego se añade más THF (120 ml) en
dos porciones durante 30 minutos, para facilitar la disolución del
material de partida. Después de agitar durante 1,5 horas más, la
mezcla de reacción se vierte en solución acuosa saturada de
NaHCO_{3} (750 ml) y el producto se extrae con éter (750 ml) y
luego con EtOAc (2 x 750 ml). Los extractos orgánicos combinados se
lavan con salmuera (1 litro), se seca (MgSO_{4}) y se concentra
bajo presión reducida. La cromatografía en columna instantánea (gel
de sílice, 9 a 20% éter en hexanos) suministra el nitrilo 34 como un
aceite incoloro (21,8 g, 89%). R_{f} = 0,44 (gel de sílice, 20%
éter en hexanos); [\alpha]^{22}_{D}
+2,9 (c 1,2, CHCl_{3}); IR (película fina) v_{max} 3057, 2928, 2855, 2238, 1490, 1448, 1252, 1081, 836, 775, 707, 632 cm^{-1}; ^{1}H NMR (500 MHz, CDCl_{3}) \delta 7,47-7,45 (m, 5H, Ph), 7,33-7,23 (m, 10 H, Ph), 6,22 (s, 1H, CH=CCH_{3}), 5,56 (dd, J = 6,8, 6,8 Hz, 1H, CH_{2}C=CH), 4,21 (dd, J = 6,8, 6,8 Hz, 1H, CHOSi), 3,49 (s, 2H, CH_{2}OTr), 2,48 (m, 1H, CH(CH_{3})), 2,29 (ddd, J = 14,5, 6,8, 6,8 Hz, 1H, CH_{2}CHOSi), 2,24 (ddd, J = 14,5, 6,8, 6,8 Hz, 1H, CH_{2}CHOSi), 2,07 (m, 2H, CH_{2}(C)CH_{2}OTr)), 1,82 (s, 3H, CH=CCH_{3}), 1,58-1,23 (m, 4H), 1,24 (d, J = 7,0 Hz, 3H, CHCH_{3}), 0,90 (s, 9H, SiC(CH_{3})_{3}), 0,07 (s, 3H, Si(CH_{3})_{2}), 0,0 (s, 3H, Si(CH_{3})_{2}); HRMS (FAB), calcd. para C_{39}H_{50}INO_{2}Si (M + Cs^{+}), 852.1710 encontrado 852.1738.
+2,9 (c 1,2, CHCl_{3}); IR (película fina) v_{max} 3057, 2928, 2855, 2238, 1490, 1448, 1252, 1081, 836, 775, 707, 632 cm^{-1}; ^{1}H NMR (500 MHz, CDCl_{3}) \delta 7,47-7,45 (m, 5H, Ph), 7,33-7,23 (m, 10 H, Ph), 6,22 (s, 1H, CH=CCH_{3}), 5,56 (dd, J = 6,8, 6,8 Hz, 1H, CH_{2}C=CH), 4,21 (dd, J = 6,8, 6,8 Hz, 1H, CHOSi), 3,49 (s, 2H, CH_{2}OTr), 2,48 (m, 1H, CH(CH_{3})), 2,29 (ddd, J = 14,5, 6,8, 6,8 Hz, 1H, CH_{2}CHOSi), 2,24 (ddd, J = 14,5, 6,8, 6,8 Hz, 1H, CH_{2}CHOSi), 2,07 (m, 2H, CH_{2}(C)CH_{2}OTr)), 1,82 (s, 3H, CH=CCH_{3}), 1,58-1,23 (m, 4H), 1,24 (d, J = 7,0 Hz, 3H, CHCH_{3}), 0,90 (s, 9H, SiC(CH_{3})_{3}), 0,07 (s, 3H, Si(CH_{3})_{2}), 0,0 (s, 3H, Si(CH_{3})_{2}); HRMS (FAB), calcd. para C_{39}H_{50}INO_{2}Si (M + Cs^{+}), 852.1710 encontrado 852.1738.
Aldehído 35 como se ilustra en el esquema
7. Se disuelve el nitrilo 34 (7,01 g, 9,74 mmol, 1,0 equiv.) en
tolueno (195 ml, 0,05 M) y se enfría a -78ºC. Se añade gota a gota a
-78ºC, durante 10 minutos, DIBAL (29,2 ml, 1,0 M en tolueno, 29,2
mmol, 3,0 equiv.) la mezcla de reacción se agita a -78ºC hasta que
se verifica el término por TLC (1 hora). Se añaden en secuencia
metanol (10 ml) y HCl (10 ml, 1,0 N en agua) y la mezcla resultante
se lleva a 0ºC durante 1 hora. Se añaden éter (250 ml) y agua (250
ml) y las capas se separan. La fase acuosa se extrae con éter (2 x
250 ml) y los extractos orgánicos combinados se lavan con salmuera
(500 ml), se seca (MgSO_{4}) y se concentra bajo presión reducida.
La cromatografía en columna instantánea (gel de sílice, 17 a 33%
éter en hexanos) proporciona el aldehído 35 como un aceite (6,18 g,
88%). R_{f} = 0,51 (gel de sílice, 20% éter en hexanos);
[\alpha]^{22}_{D} +2,0 (c 0,3, CHCl_{3}); IR
(película fina) v_{max} 3057, 2927, 2855, 1726, 1490, 1448, 1251,
1081, 836, 775, 707, 632 cm^{-1}; ^{1}H NMR (500 MHz,
CDCl_{3}) \delta 9,51 (d, J = 1,9 Hz, 1H, CHO),
7,46-7,45 (m, 5H, Ph), 7,32-7,22 (m,
10 H, Ph), 6,20 (s, 1H, CH=CCH_{3}), 5,54 (dd, J = 7,0, 7,0 Hz,
1H, CH_{2}C=CH), 4,20 (dd, J = 6,5, 6,0 Hz, 1H, CHOSi), 3,47 (s,
2H, CH_{2}OTr), 2,34-2,20 (m, 3H, CH_{2}CHOSi y
CH(CH_{3})), 2,04 (m, 2H,
CH_{2}(C)CH_{2}OTr), 1,82 (s, 3H, CH=CCH_{3}),
1,66 (m, 1H), 1,30-1,19 (m, 3H), 1,02 (d, J = 7,0
Hz, 3H, CHCH_{3}), 0,89 (s, 9H,
SiC(CH_{3})_{3}), 0,06 (s, 3H,
Si(CH_{3})_{2}),- 0,00 (s, 3H,
Si(CH_{3})_{2}); HRMS (FAB), calcd. para
C_{39}H_{51}IO_{3}Si (M + Cs^{+}), 855.1707 encontrado
855.1672.
Tris-(sililéteres) 37 y 38 como se ilustra en
el esquema 8. Una solución de la cetona 36 (véase Nicolaou,
K.C., et al., J. Am. Chem. Soc. 119, 7974-91
(1997) (1,20 g, 2,99 mmol, 1,4 equiv.) en THF (4,3 ml) se añade
gota a gota durante 5 minutos a una solución recientemente preparada
de LDA [diisopropilamina (424 \mul, 3,03 mmol, 1,40 equiv.) a
n-BuLi (2,0 ml, 1,52 M en hexanos, 3,04 mmol, 1,45
equiv.) a 0ºC y, después de 5 minutos, se añade THF (4,3 ml)] a
-78ºC. Después de agitar durante 1,5 horas a -78ºC, la solución se
deja calentar hasta -40ºC durante un periodo de 30 minutos. La
mezcla de reacción se enfría entonces a -78º C y se añade gota a
gota, durante 15 minutos, una solución del aldehído 35 (1,51 g, 2,09
mmol, 1,0 equiv.) en THF (12,5 ml). La mezcla resultante se agita
durante 1 hora a -78ºC y luego se enfría por adición gota a gota de
AcOH acuoso saturado (3,1 ml de una solución 1 M en THF, 3,10 mmol,
1,5 equiv.). La mezcla se calienta entonces a 25ºC y se reparte
entre éter (25 ml) y NH_{4}Cl acuoso saturado (25 ml). La fase
acuosa se extrae con éter (3 x 25 ml) y los extractos orgánicos
combinados se secan (MgSO_{4}) y se concentra bajo presión
reducida. La cromatografía en columna instantánea (gel de sílice, 4
a 20% éter en hexanos) proporciona cetona sin reaccionar (502 mg,
42%), producto aldólico indeseado 38 (705 mg, 27%) y una mezcla del
producto aldólico deseado 37 y aldehído sin reaccionar 35 [1,136 g
(relación alrededor de 9:1 de 37:35 según ^{1}H NMR)] (es decir,
un rendimiento del 39% de 37). Esta mezcla se emplea directamente en
la siguiente etapa. 37: (principal) (obtenido como un aceite
incoloro a partir de una mezcla que contiene 35 por cromatografía en
columna instantánea sobre gel de sílice (10 a 17% EtOAc en
hexanos). R_{f} = 0,22 (gel de sílice, 10% éter en hexanos);
[\alpha]^{22}_{D} -20,0 (c 0,3, CHCl_{3}); IR
(película fina) v_{max} 3486, 2954, 2928, 2856, 1682, 1472, 1448,
1253, 1090, 994, 836, 775, 706, 668, 632 cm^{-1}; ^{1}H NMR
(600 MHz, CDCl_{3}) \delta 7,45-7,43 (m, 5H,
Ph), 7,30-7,19 (m, 10H, Ph), 6,19 (s, 1H,
CH=CCH_{3}), 5,51 (dd, J = 7,0, 6,9 Hz, 1H, C=CHCH_{2}), 4,18
(dd, J = 6,3, 6,2 Hz, 1H, CHOSi), 3,88 (dd, J = 7,5, 2,6 Hz, 1H,
CHOSi), 3,65 (m, 1H, CH_{2}OSi), 3,59 (m, 1H, CH_{2}OSi), 3,46
(d, J = 11,2 Hz, 1H, CH_{2}OTr), 3,43 (d, J = 11,2 Hz, 1H,
CH_{2}OTr), 3,27 (m, 1H, CH_{3}CH(C=O)), 3,22 (d, J =
9,3 Hz, 1H, CHOH), 2,32-2,18 (m, 2H,
C=CHCH_{2}CHOSi) 2,00 (m, 2H,
CH_{2}(C)CH_{2}OTr), 1,80 (s, 3H,
CH=C(CH_{3})), 1,66 (m, 2H), 1,46 (m, 2H), 1,27 (m, 1H,
CH(CH_{3}), 1,19 (s, 3H, C(CH_{3})_{2}),
1,07 (s, 3H, C(CH_{3})_{2}), 0,99 (d, J = 6,8 Hz,
3H, CH(CH_{3})), 0,89 (s, 9H,
SiC(CH_{3})_{3}), 0,87 (s, 9H,
SiC(CH_{3})_{3}), 0,86 (s, 9H,
SiC(CH_{3})_{3}), 0,71 (d, J = 6,7 Hz, 3H,
CH(CH_{3})), 0,10 (s, 3H,
Si(CH_{3})_{2}), 0,07 (s, 3H,
Si(CH_{3})_{2}), 0,04 (s, 3H,
Si(CH_{3})_{2}), 0,03 (s, 6 H,
Si(CH_{3})_{2}),
-0,01 (s, 3H, Si(CH_{3})_{2}); HRMS (FAB), calcd. Para C_{60}H_{97}IO_{6}Si_{3} (M + Cs^{+}), 1257.4692 encontrado 1257.4639. 38: (menor) aceite incoloro; Rf = 0,38 (gel de sílice, 20% éter en hexanos); [\alpha]^{22}_{D} -11,9 (c 2,9, CHCl_{3}); IR (película fina) v_{max} 3501, 2954, 2930, 2856, 1682, 1469, 1254, 1088, 836, 776, 705, 670 cm^{-1}; ^{1}H NMR (500 MHz, CDCl_{3}) \delta 7,46-7,44 (m, 5H, Ph), 7,31-7,21 (m, 10H, Ph), 6,21 (s, 1H, CH=CCH_{3}), 5,52 (dd, J = 7,0, 6,9Hz, 1H, C=CHCH_{2}), 4,20 (dd, J = 6,5, 6,5 Hz, 1H, CHOSi), 3,88 (dd, J = 7,5, 2,5 Hz, 1H, CHOSi), 3,67 (m, 1H, CH_{2}OSi), 3,60 (m, 1H, CH_{2}OSi), 3,46 (s, 2H, CH_{2}OTr), 3,30-3,21 (m, 2H, CHOH, CH_{3}CH(C=O)), 2,30-2,25 (m, 2H, C=CHCH_{2}CHOSi), 2,05-1,93 (m, 2H, CH_{2}C(CH_{2}OTr)=CH), 1,81 (s, 3H, CH=C(CH_{3})), 1,63 (m, 1H, CH(CH_{3}), 1,45 (m, 2H), 1,24 (m, 2H), (s, 3H, C(CH_{3})_{2}), 1,05 (s, 3H, C(CH_{3})_{2}), 1,01 (d, J = 6,9 Hz, 3H, CH(CH_{3})), 0,92 (s, 18 H, SiC(CH_{3})_{3}), 0,89 (s, 9H, SiC(CH_{3})_{3}),
0,88 (obscured d, 3H, CH(CH_{3})), 0,88 (s, 18H, SiC(CH_{3})_{3}), 0,11 (s, 3H, Si(CH_{3})_{2}), 0,07 (s, 3H, Si(CH_{3})_{2}), 0,06 (s, 3H, Si(CH_{3})_{2}), 0,04 (s, 6 H, Si(CH_{3})_{2}), 0,01 (s, 3H, Si(CH_{3})_{2}); HRMS (FAB), calcd. para C_{60}H_{97}IO_{6}Si_{3} (M + Cs^{+}), 1257.4692 encontrado 1257.4749.
-0,01 (s, 3H, Si(CH_{3})_{2}); HRMS (FAB), calcd. Para C_{60}H_{97}IO_{6}Si_{3} (M + Cs^{+}), 1257.4692 encontrado 1257.4639. 38: (menor) aceite incoloro; Rf = 0,38 (gel de sílice, 20% éter en hexanos); [\alpha]^{22}_{D} -11,9 (c 2,9, CHCl_{3}); IR (película fina) v_{max} 3501, 2954, 2930, 2856, 1682, 1469, 1254, 1088, 836, 776, 705, 670 cm^{-1}; ^{1}H NMR (500 MHz, CDCl_{3}) \delta 7,46-7,44 (m, 5H, Ph), 7,31-7,21 (m, 10H, Ph), 6,21 (s, 1H, CH=CCH_{3}), 5,52 (dd, J = 7,0, 6,9Hz, 1H, C=CHCH_{2}), 4,20 (dd, J = 6,5, 6,5 Hz, 1H, CHOSi), 3,88 (dd, J = 7,5, 2,5 Hz, 1H, CHOSi), 3,67 (m, 1H, CH_{2}OSi), 3,60 (m, 1H, CH_{2}OSi), 3,46 (s, 2H, CH_{2}OTr), 3,30-3,21 (m, 2H, CHOH, CH_{3}CH(C=O)), 2,30-2,25 (m, 2H, C=CHCH_{2}CHOSi), 2,05-1,93 (m, 2H, CH_{2}C(CH_{2}OTr)=CH), 1,81 (s, 3H, CH=C(CH_{3})), 1,63 (m, 1H, CH(CH_{3}), 1,45 (m, 2H), 1,24 (m, 2H), (s, 3H, C(CH_{3})_{2}), 1,05 (s, 3H, C(CH_{3})_{2}), 1,01 (d, J = 6,9 Hz, 3H, CH(CH_{3})), 0,92 (s, 18 H, SiC(CH_{3})_{3}), 0,89 (s, 9H, SiC(CH_{3})_{3}),
0,88 (obscured d, 3H, CH(CH_{3})), 0,88 (s, 18H, SiC(CH_{3})_{3}), 0,11 (s, 3H, Si(CH_{3})_{2}), 0,07 (s, 3H, Si(CH_{3})_{2}), 0,06 (s, 3H, Si(CH_{3})_{2}), 0,04 (s, 6 H, Si(CH_{3})_{2}), 0,01 (s, 3H, Si(CH_{3})_{2}); HRMS (FAB), calcd. para C_{60}H_{97}IO_{6}Si_{3} (M + Cs^{+}), 1257.4692 encontrado 1257.4749.
Tetra-(sililéter) 39 como se ilustra en el
esquema 8. Se disuelve el alcohol 37 (1,136 g de una mezcla 9:1
con aldehído 35, 0,933 mmol, 1,0 equiv.) en CH_{2}Cl_{2} (5,0
ml), se enfría a -20ºC y se trata con 2,6-lutidina
(470 \mul, 4,04 mmol, 4,3 equiv.) y trifluormetanosulfonato de
terc-butil-dimetilsililo (695
\mul, 3,03 mmol, 3,2 equiv.). La mezcla se agita entonces durante
2,5 horas con lento calentamiento a 0ºC. La reacción se enfría
entonces con NaHCO_{3} acuoso saturado (25 ml) y la fase acuosa se
extrae con éter (3 x 25 ml). Los extractos orgánicos combinados se
lavan con salmuera (250 ml), se seca (MgSO_{4}) y se concentra
bajo presión reducida. La cromatografía en columna instantánea (gel
de sílice, 4 a 9% éter en hexanos) suministra el tetra-(sililéter)
39 como un aceite incoloro (1,04 g, 90%). R_{f} = 0,91 (gel de
sílice, 20% éter en hexanos); [\alpha]^{22}_{D} -16,8
(c 0,7, CHCl_{3}); IR (película fina) v_{max} 3058, 2951, 2856,
1693, 1471, 1253, 1079, 1004, 836, 706 cm^{-1}; ^{1}H NMR (600
MHz, CDCl_{3}) \delta 7,46-7,43 (m, 5H, Ph),
7,29-7,19 (m, 10 H, Ph), 6,19 (s, 1H, CH=CCH_{3}),
5,49 (dd, J = 7,0, 7,0 Hz, 1H, C=CHCH_{2}), 4,18 (dd, J = 6,3,
6,1Hz, 1H, CHOSi), 3,85 (dd, J = 7,6, 2,5 Hz, 1H, CHOSi), 3,70 (dd,
J = 6,7, 2,0 Hz, 1H, CHOSi), 3,67 (ddd, J = 9,6, 4,8, 4,8 Hz, 1H,
CH_{2}OSi) 3,59 (ddd, J = 9,7, 7,9, 7,9 Hz, 1H, CH_{2}OSi),
3,45 (d, J =11,2 Hz, 1H, CH_{2}OTr) 3,42 (d, J =11,2 Hz, 1H,
CH_{2}OTr), 3,08 (qd, J = 6,8, 6,8 Hz, 1H,
CH_{3}CH(C=O)), 2,27 (ddd, J = 14,4, 7,2, 7,2 Hz, 1H,
C=CHCH_{2}CHOSi), 2,23 (ddd, J = 14,5, 6,2, 6,2 Hz, 1H,
C=CHCH_{2}CHOSi), 1,97 (m, 2H, CH_{2}C(CH_{2}OTr)=CH),
1,79 (s, 3H, CH=C(CH_{3})), 1,57 (m, 1H), 1,46 (m, 1H),
1,25 (m, 3H), 1,17 (s, 3H, C(CH_{3})_{2}), 1,01
(d, J = 6,8 Hz, 3H, CH(CH_{3})), 0,95 (s, 3H,
C(CH_{3})_{2}),
0,87 (s, 18 H, SiC(CH_{3})_{3}), 0,86 (s, 18 H, SiC(CH_{3})_{3}), 0,09- -0,03 (m, 24H, Si(CH_{3})_{2}); HRMS (FAB), calcd. para C_{66}H_{111}IO_{6}Si_{4} (M + Cs^{+}), 1371.5557 encontrado 1371.5523.
0,87 (s, 18 H, SiC(CH_{3})_{3}), 0,86 (s, 18 H, SiC(CH_{3})_{3}), 0,09- -0,03 (m, 24H, Si(CH_{3})_{2}); HRMS (FAB), calcd. para C_{66}H_{111}IO_{6}Si_{4} (M + Cs^{+}), 1371.5557 encontrado 1371.5523.
Alcohol 40 como se ilustra en el esquema
8. A una solución de tetra-(sililéter) 39 (180 mg, 0,145 mmol)
en THF (1,5 ml) a 0ºC se añade HF\cdotpir. en una mezcla de
piridina/THF (preparada a partir de una solución madre que contiene
420 \mul de HF\cdotpiridina, 1,14 ml de piridina y 2,0 ml de
THF) (1,5 ml) y la solución resultante se agita durante 2 horas a
0ºC. Se añade entonces más HF\cdotpir. en mezcla de piridina/THF
(0,5 ml) y se continúa la agitación durante 1 hora más a 0ºC. La
reacción se enfría por adición cuidadosa de NaHCO_{3} acuoso
saturado y el producto se extrae con EtOAc (3 x 25 ml). Los
extractos orgánicos combinados se secan entonces (MgSO_{4}) y se
concentra bajo presión reducida. La cromatografía instantánea (gel
de sílice, 30% éter en hexanos) suministra el alcohol 40 como un
aceite amarillo pálido (137 mg, 84%). R_{f} = 0,36 (gel de
sílice, 40% éter en hexanos); [\alpha]^{22}_{D} -26,0
(c 0,3, CHCl_{3}); IR (película fina) v_{max} 3422, 2928, 2855,
1690, 1490, 1471, 1448, 1360, 1252, 1086, 1004, 986, 836, 774, 706
cm^{-1}; ^{1}H NMR (600 MHz, CDCl_{3}) \delta
7,44-7,42 (m, 5H, Ph), 7,29-7,20 (m,
10 H, Ph), 6,19 (s, 1H, CH=CCH_{3}), 5,49 (dd, J = 7,1, 7,1Hz,
1H, C=CHCH_{2}), 4,17 (dd, J = 6,2, 6,0 Hz, 1H, CHOSi), 4,03 (dd,
J = 6,6, 3,7 Hz, 1H, CHOSi), 3,73 (dd, J = 7,2, 1,7 Hz, 1H, CHOSi),
3,65 m, 2H, CH_{2}OH), 3,45 (d, J =11,7 Hz, 1H, CH_{2}OTr),
3,42 (d, J =11,7 Hz, 1H, CH_{2}OTr), 3,06 (qd, J = 6,9, 6,9 Hz,
1H, CH_{3}CH(C=O)), 2,28 (ddd, J = 14,7, 7,3, 7,3 Hz, 1H,
C=CHCH_{2}CHOSi), 2,22 (ddd, J = 14,7, 6,3, 6,3 Hz, 1H,
C=CHCH_{2}CHOSi), 1,98 (m, 2H, CH_{2}C(CHzOTr)=CH), 1,79
(s, 3H, CH=C(CH_{3})), 1,56 (m, 2H), 1,24 (m, 3H), 1,18 (s,
3H, C(CH_{3})_{2}), 1,03 (d, J = 6,9 Hz, 3H,
CH(CH_{3})), 0,97 (s, 3H, C(CH_{3})_{2}),
0,87 (3 singletes, 27H, SiC(CH_{3})_{3}), 0,81
(d, J = 6,7 Hz, 3H, CH(CH_{3})), 0,10 (s, 3H,
Si(CH_{3})_{2}), 0,04 (s, 9H,
Si(CH_{3})_{2}), 0,03 (s, 3H,
Si(CH_{3})_{2}), 0,00 (s, 3H,
Si(CH_{3})_{2}); HRMS (FAB), calcd. para
C_{60}H_{97}IO_{6}Si_{3} (M + Cs^{+}), 1257.4692
encontrado 1257.4780.
Aldehído 41 como se ilustra en el esquema
8. A una solución de cloruro de oxalilo (150 \mul, 1,72 mmol,
2,0 equiv.) en CH_{2}Cl_{2} (10 ml) a -78ºC se añade gota a gota
DMSO (247 \mul, 3,48 mmol, 4,0 equiv.). Después de agitar durante
10 minutos a -78ºC, se añade gota a gota una solución del alcohol 40
(960 mg, 0,853 mmol, 1,0 equiv.) en CH_{2}Cl_{2} (10 ml). La
solución resultante se agita a -78ºC durante 1 hora y luego se
añade Et_{3}N (714 \mul, 5,12 mmol, 6,0 equiv.) y se deja
calentar la mezcla de reacción a 25ºC durante 30 minutos. Se añade
agua (30 ml) y el producto se extrae con éter (3 x 40 ml). Los
extractos orgánicos combinados se secan (MgSO_{4}) y luego se
concentra bajo presión reducida. La cromatografía en columna
instantánea (gel de sílice, 17 a 50% éter en hexanos) suministra el
aldehído 41 como un aceite incoloro (943 mg, 98%). R_{f} = 0,74
(gel de sílice, 40% éter en hexanos); [\alpha]^{22}_{D}
-10,8 (c 0,1, CHCl_{3}): IR (película fina) v_{max} 2928, 2855,
1728, 1690, 1471, 1448, 1260, 1252, 1085, 987, 836, 774, 706
cm^{-1}; ^{1}H NMR (600 MHz, CDCl_{3}) \delta 9,74 (dd, J =
2,4, 1,5 Hz, 1H, CHO), 7,44-7,42 (m, 5H, Ph),
7,29-7,20 (m, 10 H, Ph), 6,19 (s, 1H,
CH=CCH_{3}), 5,49 (dd, J = 7,0, 6,8 Hz, 1H, C=CHCH_{2}), 4,44
(dd, J = 6,3, 5,0 Hz, 1H, CHOSi), 4,18 (dd, J = 6,9, 6,4 Hz, 1H,
CHOSi), 3,70 (dd, J = 7,2, 1,8 Hz, 1H, CHOSi), 3,45 (d, J = 11,4
Hz, 1H, CH_{2}OTr), 3,42 (d, J = 11,4 Hz, 1H, CH_{2}OTr), 3,05
(qd, J = 7,0, 7,0 Hz, 1H, CH_{3}CH(C=O)), 2,49 (ddd, J =
17,0, 4,5, 1,4 Hz, CH_{2}CHO), 2,38 (ddd, J = 17,0, 5,4, 2,8 Hz,
1H, CH_{2}CHO), 2,27 (ddd, J = 14,0, 7,1, 7,1 Hz, 1H,
C=CHCH_{2}CHOSi), 2,23 (ddd, J = 14,5, 6,5, 6,5 Hz, 1H,
C=CHCH_{2}CHOSi), 1,98 (m, 2H, CH_{2}C(CH_{2}OTr)=CH),
1,79 (s, 3H, CH=C(CH_{3})), 1,27 (m, 4H), 1,19 (s, 3H,
C(CH_{3})_{2}), 1,12 (m, 1H), 1,00 (d, J = 6,8
Hz, 3H, CH(CH_{3})), 0,98 (s, 3H,
C(CH_{3})_{2}), 0,87 (s, 27 H,
Si(CH_{3})_{3}), 0,80 (d, J = 6,7 Hz, 3H,
CH(CH_{3})), 0,07 (s, 3H,
Si(CH_{3})_{2}), 0,04 (s, 3H,
Si(CH_{3})_{2}), 0,03 (s, 3H,
Si(CH_{3})_{2}), 0,03 (s, 3H,
Si(CH_{3})_{2}), 0,02 (s, 3H,
Si(CH_{3})_{2}), 0,00 (s, 3H,
Si(CH_{3})_{2}); HRMS (FAB), calcd. para
C_{60}H_{95}IO_{6}Si_{3} (M + Cs^{+}), 1255.4536
encontrado 1255.4561.
Ácido carboxílico 42 como se ilustra en el
esquema 8. A una solución del aldehído 41 (943 mg, 0,839 mmol,
1,0 equiv.) en t-BuOH (38,5 ml) y agua (8,4 ml) se
añade
2-metil-2-buteno
(31,5 ml, 2 M en THF, 63,0 mmol, 75 equiv.) y NaH_{2}PO_{4}
(250 mg, 2,08 mmol, 2,5 equiv.) seguido pro NaClO_{2} 8380 mg,
4,20 mmol, 5,0 equiv.) y la mezcla resultante se agita a 25ºC
durante 40 minutos. Se separan entonces los volátiles bajo presión
reducida y el residuo se reparte entre EtOAc (40 ml) y salmuera (40
ml) y se separan las capas. La fase acuosa se extrae entonces con
EtOAc (3 x 40 ml) y los extractos orgánicos combinados se secan
(MgSO_{4}) y luego se concentra bajo presión reducida. La
cromatografía en columna instantánea (gel de sílice, 60% éter en
hexanos) suministra el ácido carboxílico 42 como un aceite (956 mg,
100%). R_{f} = 0,47 (gel de sílice, 40% éter en hexanos);
[\alpha]^{22}_{D} -19,6 (c 0,2, CHCl_{3}); IR
(película fina) v_{max} 3389, 2930, 2856, 1711, 1469, 1254, 1085,
988, 835, 775, 705 cm^{-1}; ^{1}H NMR (600 MHz, CDCl_{3})
\delta 7,44-7,43 (m, 5H, Ph),
7,29-7,20 (m, 10H, Ph), 6,19 (s, 1H, CH=CCH_{3}),
5,49 (dd, J = 7,3, 7,1Hz, 1H, C=CHCH_{2}), 4,34 (dd, J = 6,4, 3,3
Hz, 1H, CHOSi), 4,18 (dd, J = 6,2, 6,2 Hz, 1H, CHOSi), 3,72 (dd, J
= 7,2, 1,7 Hz, 1H, CHOSi), 3,45 (d, J = 11,4 Hz, 1H, CH_{2}OTr),
3,41 (d, J = 11,4 Hz, 1H, CH_{2}OTr) 3,07 (qd, J = 7,0, 7,0 Hz,
1H, CH_{3}CH(C=O)), 2,46 (dd, J = 16,3, 3,1 Hz, 1H,
CH_{2}CO_{2}H), 2,32-2,18 (m, 3H,
CH_{2}CO_{2}H y C=CHCH_{2}CHOSi), 1,97 (m, 2H,
CH_{2}C(CH_{2}OTr)=CH), 1,80 (s, 3H,
CH=C(CH_{3})), 1,31-1,19 (m, 5H), 1,19 (s,
3H, C(CH_{3})_{2}), 1,02 (d, J = 6,9 Hz, 3H,
CH(CH_{3})), 0,99 (s, 3H,
C(CH_{3})_{2}),
0,87 (s, 27 H, Si(CH_{3})_{3}), 0,80 (d, J = 6,8 Hz, 3H, CH(CH_{3})), 0,07, (s, 3H, Si(CH_{3})_{2}), 0,04 (s, 3H, Si(CH_{3})_{2}), 0,04 (s, 3H, Si(CH_{3})_{2}), 0,03 (s, 3H, Si(CH_{3})_{2}), 0,02 (s, 3H, Si(CH_{3})_{2}), 0,00 (s, 3H, Si(CH_{3})_{2}); HRMS (FAB), calcd. para C_{60}H_{95}IO_{7}Si_{3} (M + Cs^{+}), 1271.4485 encontrado 1271.4550.
0,87 (s, 27 H, Si(CH_{3})_{3}), 0,80 (d, J = 6,8 Hz, 3H, CH(CH_{3})), 0,07, (s, 3H, Si(CH_{3})_{2}), 0,04 (s, 3H, Si(CH_{3})_{2}), 0,04 (s, 3H, Si(CH_{3})_{2}), 0,03 (s, 3H, Si(CH_{3})_{2}), 0,02 (s, 3H, Si(CH_{3})_{2}), 0,00 (s, 3H, Si(CH_{3})_{2}); HRMS (FAB), calcd. para C_{60}H_{95}IO_{7}Si_{3} (M + Cs^{+}), 1271.4485 encontrado 1271.4550.
Hidroxiácido 43 como se ilustra en el esquema
8. Una solución del ácido carboxílico 42 (956 mg, 0,839 mmol,
1,0 equiv.) en THF (17 ml) a 0ºC se trata con TBAF (5,0 ml, 1,0 M en
THF, 5,0 mmol, 6,0 equiv.) y la mezcla se deja calentar a 25ºC
durante 19 horas. La reacción se enfría entonces por adición de
NH_{4}Cl acuoso saturado (40 ml) y el producto se extrae con
EtOAc (3 x 40 ml). Los extractos orgánicos combinados se secan
(MgSO_{4}) y se concentra bajo presión reducida. La cromatografía
en columna instantánea (gel de sílice, 5% MeOH en CH_{2}Cl_{2})
suministra el hidroxiácido 43 como un aceite amarillo (817 mg, 95%).
R_{f} = 0,27 (gel de sílice, 5% MeOH en CH_{2}Cl_{2});
[\alpha]^{22}_{D} -11,4 (c 0,2, CHCl_{3}); IR
(película fina) v_{max} 3364, 3057, 2938, 2856, 1712, 1694, 1469,
1254, 1086, 1053, 988, 836, 776, 734, 705 cm^{-1}; ^{1}H NMR
(600 MHz, CDCl_{3}) \delta 7,43-7,42 (m, 5H,
Ph), 7,30-7,21 (m, 10H, Ph), 6,32 (s, 1H,
CH=CCH_{3}), 5,46 (dd, J = 7,2, 7,2 Hz, 1H, C=CHCH_{2}), 4,35
(dd, J = 6,3, 3,2 Hz, 1H, CHOH), 4,21 (dd, J = 6,4, 6,3 Hz, 1H,
CHOSi), 3,73 (dd, J = 7,3, 1,2 Hz, 1H, CHOSi), 3,52 (d, J = 12,1Hz,
1H, CH_{2}OTr) 3,48 (d, J = 12,1Hz, 1H, CH_{2}OTr), 3,06 (m,
2H, CH_{3}CH(C=O) y OH), 2,45 (dd, J = 16,4, 3,0 Hz, 1H,
CH_{2}CO_{2}H), 2,35 (m, 2H, C=CHCH_{2}CHOH), 2,29 (dd, J =
16,4, 6,5 Hz, 1H, CH_{2}CO_{2}H), 2,07-1,94 (m,
2H, CH_{2}C(CH_{2}OTr)=CH), 1,85 (s, 3H,
CH=C(CH_{3})), 1,71 (m, 1H), 1,39 (m, 1H,
CH(CH_{3})), 1,27 (m, 3H), 1,18 (s, 3H,
C(CH_{3})_{2}), 1,02 (oscuro d, 3H,
CH(CH_{3})), 1,02 (s, 3H,
C(CH_{3})_{2}),
0,87 (s, 18 H, Si(CH_{3})_{3}), 0,81 (d, J = 6,8 Hz, 3H, CH(CH_{3})), 0,09 (s, 3H, Si(CH_{3})_{2}), 0,07 (s, 3H, Si(CH_{3})_{2}), 0,04 (s, 3H, Si(CH_{3})_{2}), 0,02 (s, 3H, Si(CH_{3})_{2}); HRMS (FAB), calcd. para C_{54}H_{81}IO_{7}Si_{2} (M + Cs^{+}), 1157.3620 encontrado 1157.3669.
0,87 (s, 18 H, Si(CH_{3})_{3}), 0,81 (d, J = 6,8 Hz, 3H, CH(CH_{3})), 0,09 (s, 3H, Si(CH_{3})_{2}), 0,07 (s, 3H, Si(CH_{3})_{2}), 0,04 (s, 3H, Si(CH_{3})_{2}), 0,02 (s, 3H, Si(CH_{3})_{2}); HRMS (FAB), calcd. para C_{54}H_{81}IO_{7}Si_{2} (M + Cs^{+}), 1157.3620 encontrado 1157.3669.
Macrolactona 44 como se ilustra en el esquema
8. A una solución del hidroxiácido 43 (1,06 g, 1,04 mmol, 1,0
equiv.) en THF (15 ml, 0,07 M) se añade Et_{3}N (870 \mul, 0,24
mmol, 6,0 equiv.) y cloruro de
2,4,6-triclorobenzoilo (390 \mul, 2,50 mmol, 2,4
equiv.). La mezcla de reacción se agita a 0ºC durante 1,5 horas y
luego se añade lentamente durante un periodo de 12 horas por medio
de una bomba de jeringa a una solución de 4-DMAP
(280 mg, 2,29 mmol, 2,2 equiv.) en tolueno (208 ml, 0,005 M basado
en 43) a 75ºC. La mezcla se agita a esa temperatura durante 0,5
horas más y luego se concentra bajo presión reducida. El residuo
resultante se filtra a través de un tapón de gel de sílice eluyendo
con 50% de éter en hexanos. La cromatografía en columna instantánea
(gel de sílice, 17% éter en hexanos) suministra la macrolactona 44
como una espuma incolora (877 mg, 84%). R_{f} = 0,19 (10% éter en
hexanos); [\alpha]^{22}_{D} -7,4 (c 0,2, CHCl_{3});
IR (película fina) v_{max} 2929, 2855, 1742, 1695, 1468, 1381,
1253, 1156, 1065, 985, 834, 774, 733, 706 cm^{-1}; ^{1}H NMR
(600 MHz, CDCl_{3}) \delta 7,44-7,42 (m, 5H,
Ph), 7,29-7,20 (m, 10 H, Ph), 6,39 (s, 1H,
CH=CCH_{3}), 5,51 (dd, J = 9,5, 6,8 Hz, 1H, C=CHCH_{2}), 5,07
(d, J = 9,3 Hz, 1H, CHOCO), 4,02 (d, J = 9,2 Hz, 1H, CHOSi), 3,82
(d, J = 8,9 Hz, 1H, CHOSi), 3,46 (d, J =11,5 Hz, 1H, CH_{2}OTr),
3,42 (d, J = 11,5 Hz, 1H, CH_{2}OTr), 2,95 (dq, J = 8,7, 7,0 Hz,
1H, CH_{3}CH(C=O)), 2,72 (m, 2H, C=CHCH_{2}CHO y
CH_{2}COO), 2,54 (dd, J = 16,2, 9,7 Hz, 1H, CH_{2}COO), 2,29 (m,
1H, C=CHCH_{2}CHO), 2,12 (dd, J = 14,3, 5,1Hz, 1H,
CH_{2}C(CH_{2}OTr)=CH), 1,98 (m,
CH_{2}C(CH_{2}OTr)=CH), 1,88 (s, 3H,
CH=C(CH_{3})), 1,44-1,23 (m, 5H), 1,18 (s,
3H, C(CH_{3})_{2}), 1,10 (s, 3H,
C(CH_{3})_{2}), 1,07 (d, J = 6,8 Hz, 3H,
CH(CH_{3})), 0,92 ((s, 9H,
Si(CH_{3})_{3}), 0,82 (d, J = 6,9 Hz, 3H,
CH(CH_{3})), 0,72 (s, 9H,
Si(CH_{3})_{3}), 0,08 (s, 3H,
Si(CH_{3})_{2}), 0,05 (s, 3H,
Si(CH_{3})_{2}), 0,05 (s, 3H,
Si(CH_{3})_{2}), -0,32 (s, 3H,
Si(CH_{3})_{2}); HRMS (FAB), calcd. para
C_{54}H_{79}IO_{6}Si_{2} (M + Cs^{+}), 1139.3514
encontrado 1139.3459.
Triol 24 como se ilustra en el esquema 8.
A una solución de la macrolactona 44 (608 mg, 0,604 mmol, 1,0
equiv.) en THF (45 ml) a 0ºC se añade HF\cdotpir. (15 ml). La
mezcla resultante se deja calentar a 25ºC durante 15 horas y se
enfría luego a 0ºC y la reacción se enfría por adición cuidadosa de
NaHCO_{3} acuoso saturado (50 ml). El producto se extrae luego
con EtOAc (3 x 50 ml) y los extractos orgánicos combinados se secan
(MgSO_{4}) y luego se concentra bajo presión reducida. La
cromatografía en columna instantánea (gel de sílice, 60% EtOAc en
hexanos) proporciona el triol 24 como una espuma incolora (280 mg,
86%). R_{f} = 0,32 (gel de sílice, 60% EtOAc en hexanos);
[\alpha]^{22}_{D} -32,1 (c 0,2, CHCl_{3}); IR
(película fina) v_{max} 3413, 2923, 2857, 1731, 1686, 1461, 1379,
1259, 1148, 1046, 737 cm^{-1}; ^{1}H NMR (600 MHz, CDCl_{3})
\delta 6,43 (s, 1H, CH=CCH_{3}), 5,38 (dd, J = 9,7, 5,4 Hz, 1H,
C=CHCH_{2}), 5,29 (dd, J = 8,8, 1,9 Hz, 1H, CHOCO), 4,08 (m, 1H,
CHOH), 4,06 (d, J = 13,0 Hz, 1H, CH_{2}OH), 4,00 (d, J = 13,0 Hz,
1H, CH_{2}OH), 3,69 (dd, J = 3,5, 3,4 Hz, 1H, CHOH), 3,12 (qd, J =
6,9, 3,1 Hz, 1H, CH_{3}CH(C=O)), 2,76 (bs, 1H, OH), 2,67
(ddd, J = 15,0, 9,7, 9,7 Hz, 1H, C=CHCH_{2}CHO), 2,45 (dd, J =
15,4, 10,6 Hz, 1H, CH_{2}COO), 2,38 (bs, 1H, OH), 2,33 (dd, J =
15,4, 3,0 Hz, 1H, CH_{2}COO), 2,21 (m, 2H,
CH_{2}C(CH_{2}OH)=CH), 2,06 (m, 1H, C=CHCH_{2}CHO),
1,87 (s, 3H, CH=C(CH_{3})), 1,71 (m, 1H), 1,66 (m, 1H),
1,32 (s, 3H, C(CH_{3})_{2}),
1,29-1,24 (m, 3H), 1,17 (d, J = 6,9 Hz, 3H,
CH(CH_{3})), 1,08 (s, 3H, C(CH_{3})_{2}),
0,99 (d, J = 7,0 Hz, 3H, CH(CH_{3})); HRMS (FAB), calcd.
para C_{23}H_{37}IO_{6} (M + Cs^{+}), 669.0689 encontrado
669.0711.
La polimerización de tubulina se determina por
el método colorimétrico por filtración desarrollado por Bollag et
Cancer Res. 1995, 55, 2325-2333. Se incuba tubulina
purificada (1 mg/ml) a 37ºC durante 30 minutos en presencia de
cada compuesto (20 mM) en tampón MEM [(100 mM ácido
2-(N-morfolino)etanosulfónico, pH 6,75, 1 mM
bis(\beta-aminoetiléter de etilenglicol),
ácido N,N,N',N'-tetraacético y 1 mM MgCl_{2}]; la
mezcla se filtra entonces para separar tubulina sin polimerizar
mediante el uso de una placa de filtración hidrófila de 96
pocillos Millipore Multiscreen Durapore con un tamaño de poro de
0,22 \mum; la tubuilina polimerizada recogida se tiñe con
solución negra amido y se cuantifica midiendo la absorbancia de la
solución teñida en un Molecular Devices Microplate Reader (Lector
de Microplacas). El crecimiento de todas las líneas celulares se
evalúa por cuantificación de la proteína en placas de 96 pocillos
como se ha descrito anteriormente. De forma resumida, se siembras
500 células en cada pocillo de las placas y se incuban con las
diversas concentraciones de las epotilonas a 37ºC en una atmósfera
humidificada de 5% de CO_{2} durante 4 días. Después de fijar las
células con ácido tricloroacético al 50%, se mide la densidad óptica
correspondiente a la cantidad de proteínas en solución de NaOH 25
mM (50% metanol: 50% agua) a una longitud de onda de 564 nm. La IC50
se define como la dosis de fármaco requerida para inhibir el
crecimiento celular en un 50%.
Claims (10)
1. Un compuesto representado por la fórmula
I
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip1.000000\baselineskip
en donde el enlace ondulado indica
que el enlace "a" está presente bien en la forma cis o bien en
la forma trans; (i) R_{2} está ausente o es oxígeno; "a"
puede ser un enlace sencillo o doble; "b" puede estar ausente
o es un enlace sencillo; y "c" puede estar ausente o es un
enlace sencillo, con la condición de que si R_{2} es oxígeno,
entonces "b" y "c" son ambos un enlace sencillo y "a"
es un enlace sencillo; si R_{2} está ausente, entonces "b" y
"c" están ausentes y "a" es un enlace doble; y si "a"
es un enlace doble, entonces R_{2}, "b" y "c" están
ausentes;
R_{3} es un radical seleccionado del grupo
consistente en alquilo C_{1}-C_{7},
especialmente metilo, etilo, n-propilo,
iso-propilo, n-butilo,
iso-butilo, terc-butilo,
n-pentilo, n-hexilo; -CH=CH_{2};
-C\equivCH; -CH_{2}F; -CH_{2}Cl;
-CH_{2}-OH; -CH_{2}-O-(alquilo
C_{1}-C_{6}), especialmente
-CH_{2}-O-CH_{3}; y
-CH_{2}-S-(alquilo
C_{1}-C_{6}), especialmente
-CH_{2}-S-CH_{3};
R_{4} y R_{5} se eligen independientemente
entre hidrógeno, metilo o un grupo protector, preferentemente
hidrógeno; y
R_{1} es un radical seleccionado entre las
siguientes estructuras:
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip1.000000\baselineskip
o una sal de un compuesto de
fórmula I cuando está presente un grupo formador de
sales.
2. Un compuesto de fórmula I según la
reivindicación 1, en donde
R_{2} está ausente o es oxígeno; "a"
puede ser un enlace sencillo o doble; "b" puede estar ausente o
es un enlace sencillo; y "c" puede estar ausente o es un
enlace sencillo, con la condición de que si R_{2} es oxígeno,
entonces "b" y "c" son ambos un enlace sencillo y "a"
es un enlace sencillo; si R_{2} está ausente, entonces "b" y
"c" están ausentes y "a" es un enlace doble; y si "a"
es un enlace doble, entonces R_{2}, "b" y "c" están
ausentes;
R_{3} es un radical seleccionado del grupo
consistente en alquilo C_{1}-C_{7},
especialmente metilo, etilo, n-propilo,
iso-propilo, n-butilo,
iso-butilo, terc-butilo,
n-pentilo, n-hexilo; -CH=CH_{2};
-C\equivCH; -CH_{2}F; -CH_{2}Cl;
-CH_{2}-OH; -CH_{2}-O-(alquilo
C_{1}-C_{6}), especialmente
-CH_{2}-O-CH_{3}; y
-CH_{2}-S-(alquilo
C_{1}-C_{6}), especialmente
-CH_{2}-S-CH_{3};
R_{4} y R_{5} se eligen independientemente
entre hidrógeno, metilo o un grupo protector, preferentemente
hidrógeno; y
R_{1} es un radical seleccionado entre las
siguientes estructuras:
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip1.000000\baselineskip
o una sal del mismo cuando están
presentes uno o más grupos formadores de
sales.
3. Un compuesto según la reivindicación I de
fórmula Id
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip1.000000\baselineskip
en donde A es metiltio y D es
hidrógeno, fluor, hidroxi o
metilo.
4. Un compuesto según la reivindicación I de
fórmula Ie
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip1.000000\baselineskip
en donde A es metiltio y D es
hidrógeno, fluor, hidroxi o
metilo.
5. Un compuesto según la reivindicación 1,
seleccionado del grupo consistente en los compuestos de las
siguientes fórmulas:
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip1.000000\baselineskip
o una sal farmacéuticamente
aceptable de los mismos cuando esté presente un grupo formador de
sales.
6. Una formulación farmacéutica que comprende un
compuesto según cualquiera de las reivindicaciones 1 a 5 y un
vehículo farmacéuticamente aceptable.
7. Un compuesto según cualquiera de las
reivindicaciones 1 a 5 para su uso en el tratamiento de una
enfermedad proliferativa.
8. Uso de un compuesto de fórmula I según
cualquiera de las reivindicaciones 1 a 5 en la preparación de un
medicamento para el tratamiento de una enfermedad proliferativa.
9. Una composición farmacéutica que es adecuada
para administrarse a un animal de sangre caliente para el
tratamiento de una enfermedad proliferativa, que comprende una
cantidad de un ingrediente activo de fórmula I según la
reivindicación 1, que es eficaz para el tratamiento de dicha
enfermedad proliferativa, junto con al menos un vehículo
farmacéuticamente aceptable.
10. Método para la síntesis de un compuesto de
fórmula I según la reivindicación 1, que comprende
a) acoplar un yoduro de fórmula II
en donde R_{2}, R_{3}, R_{4},
R_{5}, a, b y c y el enlace ondulado tienen los significados
indicados para la fórmula I en la reivindicación 1, con un
compuesto de fórmula
III,
(III)R_{1}-Sn(R)_{3}
en donde R_{1} tiene los
significados indicados para la fórmula I y R es alquilo
C_{1}-C_{7}, especialmente metilo o etilo,
o
b) acoplar un compuesto de estaño de fórmula
IV
en donde R_{2}, R_{3}, R_{4},
R_{5}, a, b y c y el enlace ondulado tienen los significados
indicados para la fórmula I, con un yoduro de fórmula
V
(V)R_{1}-I
en donde R_{1} tiene los
significados indicados para la fórmula I en la reivindicación
1;
y, si se desea, un compuesto resultante de
fórmula I se convierte a un compuesto diferente de fórmula I, un
compuesto libre resultante de fórmula I se convierte a una sal de un
compuesto de fórmula I y/o una sal resultante de un compuesto de
fórmula I se convierte a un compuesto libre de fórmula I o a una sal
diferente de un compuesto de fórmula I, y/o una mezcla
estereoisómera de compuestos de fórmula I se separa en los
correspondientes isómeros.
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