ES2237215T3 - Nueva enzima termoestable que digiere el colageno, nuevo microorganismo que produce la enzima y procedimiento para producir la enzima. - Google Patents

Nueva enzima termoestable que digiere el colageno, nuevo microorganismo que produce la enzima y procedimiento para producir la enzima.

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ES2237215T3 ES99973990T ES99973990T ES2237215T3 ES 2237215 T3 ES2237215 T3 ES 2237215T3 ES 99973990 T ES99973990 T ES 99973990T ES 99973990 T ES99973990 T ES 99973990T ES 2237215 T3 ES2237215 T3 ES 2237215T3
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Toru Nakayama
Naoki Tsuruoka
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Abstract

Una enzima termoestable que descompone el colágeno que se puede obtener a partir de una bacteria que pertenece al género Bacillus, donde: (1) la bacteria es Gram-negativa o Gram-indefinida; (2) la bacteria tiene capacidad de formar esporas; (3) la bacteria tiene motilidad; (4) la bacteria crece a 70ºC, no crece a 30ºC ni 80ºC; (5) crece a pH 5 y no crece a pH 7; (6) la bacteria tiene forma de bastón; (7) la bacteria es negativa a la catalasa; (8) la bacteria es negativa a la oxidasa; (9) la bacteria es negativa al ensayo O/F; (10) la bacteria tiene actividad de producción de acetoína; y (11) la bacteria tiene actividad de descomposición de la gelatina, y dicha enzima se caracteriza además por los siguientes rasgos: (a) la enzima tiene mayor actividad de hidrólisis hacia el colágeno y la gelatina que la caseína y la albúmina; (b) el pH óptimo de reacción está entre 3, 5 y 4, 5; (c) la temperatura óptima de reacción está entre 65ºC y 70ºC; (d) la enzima retiene más del 60% de su actividad original después del tratamiento térmico a 60ºC y pH 6, 0 durante 4 horas; (e) la enzima es estable entre pH 3 y 6; y (f) el peso molecular de la enzima estimado por electroforesis en gel de SDS- poliacrilamida es aproximadamente 46000.

Description

Nueva enzima termoestable que digiere el colágeno, nuevo microorganismo que produce la enzima y procedimiento para producir la enzima.
Campo de la invención
La presente invención se refiere a una enzima termoestable que descompone el colágeno producida por un nuevo microorganismo, y a dicho microorganismo y a un método para la producción de dicha enzima por dicho microorganismo. Concretamente, la presente invención se refiere a una enzima termoestable novedosa que descompone el colágeno, que tiene la máxima reactividad (especificidad de sustrato) para el colágeno, producida por un microorganismo novedoso del género Bacillus, a dicho microorganismo novedoso y a un proceso para producir dicha enzima por dicho microorganismo.
Descripción de la técnica anterior
Las enzimas que descomponen el colágeno y que descomponen la gelatina se han utilizado ampliamente en la industria. Por ejemplo, los péptidos de colágeno, que son productos de la hidrólisis del colágeno por estas enzimas, son útiles como material para cosmética, por sus interesantes actividades fisiológicas tales como los efectos de conservación de la humedad o la actividad de activación de la inmunidad. Por tanto, los péptidos de colágeno se usan ampliamente con propósitos médicos y cosméticos. Además, la gelatina, que es una forma desnaturalizada del colágeno, se usa como el agente de recubrimiento de películas fotográficas, y las enzimas que descomponen la gelatina se usan para el reciclado de las películas fotográficas y de rayos X. Se conocen muchas clases de proteasas que descomponen la gelatina; sin embargo, la descomposición del colágeno por estas proteasas es aún difícil. Para la hidrólisis del colágeno deberían usarse proteasas de metal específicas, llamadas "colagenasa".
Recientemente se han hecho muchos intentos para el uso eficaz de los residuos orgánicos. Por ejemplo, el compostaje de basuras es un ejemplo concreto del biorreciclado de residuos orgánicos. Más del 30% de la proteína animal se compone de colágeno, por lo tanto, las basuras producidas por las actividades diarias de cocina en casas y restaurantes y los residuos de las fábricas de procesado de carne deberían contener grandes cantidades de colágeno.
Por su estructura específica altamente ordenada, el colágeno es generalmente insoluble en agua y difícil de descomponer y por lo tanto la degradación del colágeno avanza muy despacio durante el compostaje. La mayoría de las partes no utilizables producidas en las industrias ganaderas se componen de colágeno, y, por lo tanto, se tratan por incineración, causando problemas como el calentamiento de la tierra o la generación de dióxido de carbono o dioxina que causan la polución del aire.
Estos problemas deben resolverse desde el punto de vista de hacer un uso eficaz de los materiales.
Es bien sabido que la temperatura de los residuos orgánicos sube a 50-65ºC ó más durante el proceso de compostaje. Por lo tanto, si se usan enzimas termoestables o microorganismos termo filos que sean activos incluso bajo tales condiciones de compostaje a alta temperatura, el compostaje de residuos orgánicos debería avanzar más eficazmente.
Hoy en día, las colagenasas industriales son las de los microorganismos (bacterias), y como ejemplo concreto, puede mencionarse una colagenasa de actinomicetos del género Streptomyces. Se conocen también otras colagenasas microbianas; por ejemplo, colagenasas de Clostridium hystolyticum (Biochemistry 1984, 23, 3077-3085) y Cytophaga sp. (Biosci, Biotech, Biochem., 1993, 57, 1894-1898) son los ejemplos concretos.
Respecto al ejemplo de la enzima que se usa industrialmente, es necesario que la enzima sea termoestable desde el punto de vista de la velocidad de tratamiento y del objeto que se va a tratar.
Sin embargo, todas las colagenasas conocidas son de origen mesófilo y carecen de termoestabilidad, y estas circunstancias dificultan sus aplicaciones industriales eficaces. Hasta ahora aún no se ha desarrollado para aplicaciones industriales una enzima de descomposición del colágeno con suficiente termoestabilidad (que tenga una temperatura óptima elevada).
Por lo general, es difícil usar colágeno a escala industrial porque no hay suficiente enzima termoestable para actuar eficazmente a escala industrial. Por lo tanto, es obvio que el problema antes mencionado puede resolverse perfectamente si se desarrolla una enzima que tenga una alta actividad frente al colágeno.
Como se mencionó antes, el objeto de esta invención es descubrir una enzima termoestable que descomponga el colágeno.
Los inventores de esta invención han llevado a cabo un estudio exhaustivo para encontrar en la naturaleza un microorganismo que produzca una enzima termoestable que descompone el colágeno, y han encontrado una prometedora bacteria termófila perteneciente al género Bacillus que produce dicha enzima en el suelo de Sendai, Japón, y han logrado la presente invención.
El microorganismo, que se usa para producir una enzima termoestable que descompone el colágeno de esta invención, pertenece al género Bacillus, y se califica como cepa NTAP-1. Se ha hecho el depósito de esta cepa de acuerdo con el requisito de depósito según el Tratado de Budapest en el Instituto de Industrias de Tecnología Biótica de la Agencia de Ciencia Industrial de la Tecnología que pertenece al Ministerio de Comercio e Industria Internacional de Japón y aceptado por el número de aceptación FERM BP-6926 el 1 de noviembre de 1999. (Esta cepa se depositó originalmente el 27 de agosto de 1999 bajo número de entrada FERM P-17535.) (en la memoria, la cepa se abrevia solo como cepa NTAP-1).
Los inventores han encontrado que la enzima útil industrialmente puede obtenerse por el uso de esta cepa, y la enzima obtenida puede utilizarse como catalizador de bioconversión.
Descripción detallada de la invención
El primer punto importante de esta invención es una enzima termoestable que descompone el colágeno que se puede obtener a partir de una bacteria que pertenece al género Bacillus, en donde: (1) la bacteria es Gram-negativa o Gram-indefinida; (2) la bacteria tiene capacidad de formar esporas; (3) la bacteria tiene motilidad; (4) la bacteria crece a 70ºC, no crece a 30ºC ni a 80ºC; (5) crece a pH 5 y no crece a pH 7; (6) la bacteria tiene forma de bastón; (7) la bacteria es negativa a catalasas; (8) la bacteria es negativa a oxidasas; (9) la bacteria es negativa al ensayo O/F; (10) la bacteria tiene actividad de producción de acetoína; y (11) la bacteria tiene actividad de descomposición de gelatina, y dicha enzima se caracteriza además por las siguientes características: (a) la enzima tiene mayor actividad de hidrólisis hacia el colágeno y la gelatina que la caseína y la albúmina; (b) el pH óptimo de reacción está entre 3,5 y 4,5; (c) la tempe-
ratura óptima de reacción está entre 65ºC y 70ºC; (d) la enzima conserva más del 60% de su actividad original después de un tratamiento térmico a 60ºC y a pH 6,0 durante 4 horas; (e) la enzima es estable entre pH de 3 a 6; y (f) el peso molecular de la enzima estimado por electroforesis de gel de SDS-poliacrilamida es de aproximadamente 46000.
En consecuencia, pueden esperarse una acción y un efecto excelentes que pueden usarse para la descomposición del colágeno a 70ºC o temperaturas inferiores. Y lo que es más deseable, dicha enzima termoestable que descompone el co-
lágeno de esta invención la produce el microorganismo que pertenece al género Bacillus o Bacillus sp. cepa NTAP-1.
El segundo punto importante de esta invención es un método de producción de la enzima termoestable que descompone el colágeno de la invención que comprende el uso de un microorganismo que tiene los siguientes rasgos, es decir, por las siguientes características: (1) la bacteria es Gram-negativa o Gram-indefinida, (2) la bacteria tiene la capacidad de formar esporas, (3) la bacteria tiene motilidad, (4) la bacteria crece a 70ºC, no crece a 30ºC ni 80ºC y crece a pH 5, no crece a pH 7, (6) la bacteria tiene forma de bastón, (7) la bacteria es negativa a catalasas, (8) la bacteria es negativa a oxidasas, (9) la bacteria es negativa al ensayo O/F, (10) la bacteria tiene actividad productora de acetoína y (11) la bacteria tiene actividad de descomposición de la gelatina, purificando y acumulando la enzima termoestable que descompone el colágeno.
De forma conveniente, el método de producción de dicha enzima termoestable que descompone el colágeno, donde el microorganismo que pertenece al género Bacillus es la cepa NTAP-1 de bacterias del género Bacillus.
El tercer punto importante de esta invención es un microorganismo de nuevo desarrollo que pertenece a un género Bacillus, que produce dicha enzima termoestable que descompone el colágeno, convenientemente dicho microorganismo es la cepa con la denominación Bacillus sp. NTAP-1 que se ha depositado de acuerdo con el requisito de depósitos según el Tratado de Budapest en el Instituto de Tecnologías Bióticas de la Agencia de Ciencia Industrial de la Tecnología perteneciente al Ministerio de Comercio e Industria Internacional de Japón y aceptado por número de entrada FERM BP-6926 el 1 de noviembre de 1999. (Esta cepa fue depositada originalmente el 27 de agosto de 1999 bajo número de entrada FERM P-17535).
Los inventores de esta invención han encontrado que entre los microorganismos que pertenecen al género Bacillus hay un microorganismo novedoso que produce la enzima termoestable que descompone el colágeno, y han realizado la presente invención.
Breve ilustración de los dibujos
La Fig.1 es un gráfico que muestra la estabilidad térmica de la enzima termoestable que descompone el colágeno, la Fig.2 es un gráfico que muestra la estabilidad al pH de dicha enzima termoestable que descompone el colágeno, la Fig.3 es un gráfico que muestra la dependencia con la temperatura de la reacción de dicha enzima termoestable que descompone el colágeno y la Fig.4 es un gráfico que muestra la dependencia con el pH de la reacción de dicha enzima termoestable que descompone el colágeno.
La mejor realización de la invención
Se ilustrará más en detalle la presente invención.
A. Se han mencionado antes las características microbiológicas de las bacterias usadas para producir una enzima termoestable que descompone el colágeno. Además, este microorganismo puede conservarse por el método de congelación (alrededor de - 80ºC).
B. Condiciones de cultivo.
nombre del medio de cultivo: medio GGY
componentes del medio: medio que contiene 1,5% de glucosa, 1,5% de gelatina y 0,01% de extracto de levadura.
pH del medio: 4,8
condiciones de esterilización del medio: 20 minutos a 120ºC
temperatura del medio: 60ºC
condiciones aeróbicas
C. Componente del agente protector: disolución acuosa al 30% de glicerol (no es necesario ajustar el pH del agente protector)
no es necesario ajustar el pH del agente protector
condiciones de esterilizado del agente protector: 20 minutos a 120ºC.
Las características de la enzima termoestable que descompone el colágeno de esta invención se ilustrarán más minuciosamente con referencia a los dibujos.
La Fig.1 es el gráfico que muestra la actividad remanente relativa de la enzima termoestable que descompone el colágeno después de tratamiento térmico durante 1 hora a varias temperaturas, y en este gráfico se toma la actividad después del tratamiento térmico a 30ºC como el 100%.
La Fig.2 es el gráfico que muestra la actividad remanente relativa de la enzima termoestable que descompone el colágeno después de tratamiento a varios pHs durante 1 hora, y en este gráfico, la actividad después de tratamiento a pH 4,1 se toma como el 100%.
La Fig.3 es el gráfico que muestra la actividad relativa de la enzima termoestable que descompone el colágeno a varias temperaturas, y en este gráfico se toma la actividad de la enzima a 60ºC que indica la máxima actividad como el 100%.
La Fig.4 es el gráfico que muestra la actividad relativa de la enzima termoestable que descompone el colágeno a varios pHs y en este gráfico, la actividad de la enzima a pH 3,8 que indica el valor de actividad máxima se toma como el 100%.
Ejemplos Ejemplo 1
Se diluyen varias clases de muestras como suelos, abonos, aguas de río y lago de 100 a 10000 veces con 0,85% de NaCl, y se extiende 0,1 ml de dicha disolución diluida en un medio agar-agar GGY, después se dejan durante 2 ó 3 días a 70ºC. La colonia desarrollada en el medio se aisló e inoculó en 5 ml de medio líquido GGY y se cultivó con agitación durante 2 ó 3 días a 70ºC. Se evalúa la actividad de la enzima que descompone el colágeno de varios cientos de tipos de aislados usando el sobrenadante del cultivo de acuerdo con el método descrito en el Ejemplo 2.
Se seleccionó la cepa que indica la máxima actividad de descomposición del colágeno y se denominó cepa
NTAP-1.
Las características taxonómicas de la cepa NTAP-1 pueden ilustrarse como sigue.
(1) morfología de la célula: forma cilíndrica (0,8x2-3 \mum), curvada y adquiere forma de cadena por envejecimiento.
(2) tinción de Gram: negativa o indefinida
(3) capacidad de formación de esporas: sí
(4) movilidad: sí
(5) forma y característica de las colonias: circular, arrugada o ligeramente convexa, transparente y con superficie suave.
(6) temperatura de crecimiento: crece a 70ºC, pero no crece a 80ºC.
(7) catalasa: negativa
(8) oxidasa: negativa
(9) ensayo O/F: negativo
(10) ensayo bioquímico:
Descompone
glucosa, fructosa, sorbosa, D-arabinosa, L-arabinosa, ribosa, D-xilitol, L-xilitol, D-turanosa, L-turanosa, D-lixosa, D-tagatosa, ácido 5-cetoglucónico.
No descompone
glicelol, eritritol, adonitol, \beta-metil-D-xilosa, galactosa, manosa, ramnosa, dulcitol, \alpha-metil-D-manosa, \alpha-metil-D-glucosa, N-acetil-glucosamina, amidaglina, arbutina, esculina, salicina, celobiosa, maltosa, azúcar de leche, melibiosa, azúcar de caña, trehalosa, inulina, melezitosa, rafinosa, glicógeno, xilitol, gentiobiosa, D-fucosa, L-fucosa, D-arabitol, ácido 2-cetoglucónico.
Actividad enzimática
\beta-galactositasa negativa
arginina dihidrolasa negativa
ligina descarboxilasa negativa
ureasa negativa
triptófano desaminasa negativa
gelatinasa positiva
Otros
uso de ácido cítrico no
producción de H2S no
producción de indol negativa
producción de acetoína positivo
reducción de nitrato positivo
crecimiento anaeróbico observado ligeramente
crecimiento a pH 7 no
crecimiento a pH 5,1
crecimiento a 30ºC no.
De las características taxonómicas mencionadas antes, la colocación taxonómica de estas bacterias se indica en el Bergey's Manual of Systematic Bacteriology, vol 2 p1104-1139, autor: S.H. Sneath, editor: P.H. Snerth et al. (editorial Williams & Willkins).
Esta bacteria es una bacteria con forma de bastón formadora de esporas. Aunque la naturaleza Gram-negativa de la bacteria es distinta de la naturaleza Gram-positiva de especies conocidas del género Bacillus, se reconoce que es una cepa del género Bacillus porque crece aeróbicamente.
Entre las especies conocidas del género Bacillus, se sabe que B. acidocaldarius, B. lichenformis o B. coagulans son termófilas y acidófilas. Sin embargo, esta cepa no debería ser B. lichenformis ni B. coagulance porque B. lichenformis y B. coagulance son catalasa-positivas y pueden crecer a 40ºC pero no a 65ºC. Asimismo, es diferente de la especie estándar de B. acidocaldarius porque produce acetoína. Por tanto, no es posible confirmar si es una especie modificada de B. acidocaldarius o si pertenece a una especie diferente; no puede especificarse la especie de esta
bacteria.
Ejemplo 2
Se vierten 5 ml de medio (pH 4,8) que contiene 1,5% de glucosa, 1,5% de gelatina y 0,01% de extracto de levadura en un tubo de ensayo de 5 ml y se esteriliza durante 20 minutos a 120ºC. Se inocula en dicho medio NTAP-1 (el nombre abreviado de género Bacillus NTAP-1 para discriminar el microorganismo de esta invención) y se cultiva con agitación durante 4 días. Se centrífuga el medio de cultivo durante 20 minutos a 8000 r.p.m., y se mide la actividad de la enzima que descompone del colágeno en el sobrenadante. A saber, se mezclan 0,4 ml de líquido de enzima con 0,1 ml de tampón de acetato sódico 1M (pH 4,5) y la mezcla se preincuba durante 5 minutos a 60ºC. Después se suspenden 3 mg de Azocoll (polvo de colágeno combinado con colorante azoico: producto de Sigma Co., Ltd), y la reacción de la enzima se lleva a cabo a 60ºC con agitación durante 1 hora. Después de la reacción, se enfría la mezcla de reacción en hielo, y se separa el Azocoll insoluble por centrifugación.
Durante la reacción de la enzima, la enzima descompone el Azocoll y el sobrenadante se vuelve rojo. Midiendo la absorbancia del sobrenadante a 518 nm, se estima la actividad de la enzima termoestable que descompone del colágeno. La cantidad de enzima que hace que la absorbancia a 518 nm aumente en 0,001 por minuto en dichas condiciones se define como 1 unidad (U). La concentración de la actividad de enzima del líquido sobrenadante obtenido del líquido cultivado es 3,1 U/ml.
Ejemplo 3
Se vierten 6 litros del mismo medio del Ejemplo 2 en un fermentador con recipiente de 10 litros. Después de esterilizarse durante 30 minutos a 120ºC, se inoculan en dicho medio 200 ml de cultivo de NTAP-1. El cultivo se lleva a cabo a 60ºC con aireación de 6 l/min durante 4 días. Se mide la actividad termoestable de descomposición del colágeno del cultivo sobrenadante. La actividad de enzima del líquido sobrenadante es 5,0 U/ml.
El sobrenadante resultante se usó como material de partida, la purificación y concentración de la enzima termoestable que descompone el colágeno se llevaron a cabo de acuerdo con el siguiente proceso.
Se añade sulfato amónico al líquido sobrenadante y el precipitado formado por sulfato amónico a 40% de saturación, se recogió y disolvió en 585 ml de tampón de acetato 0,01 M (pH 5,0). Se añadió a la disolución Phenil-Sepharose (producto de AmeshamPharmacia Biotech.), se agitó y se mezcló durante 1 hora, después se filtró la mezcla y se separó la resina. La actividad enzimática absorbida a la resina se eluyó con una mezcla 1:1 de tampón de ácido acético 0,01M (pH 5,0) y etilenglicol, y la fracción activa se dializó después frente a un tampón de fosfato 0,01M (pH 7,0).
Después, se pasó la disolución a través de una columna de DEAE-Sephadex (AmeshamPharmacia Biotech) previamente equilibrada con tampón de fosfato 0,01M (pH 7,0). Se usó el gradiente lineal (0-1M) de cloruro sódico para eluir la actividad enzimática de la columna. Se fraccionó el eluato en unas 90 fracciones y se midió la actividad enzimática de cada fracción de acuerdo con el método descrito en el Ejemplo 1.
Después, se añade sulfato amónico a las fracciones activas (233 ml) a 20% de saturación. La actividad enzimática se absorbe en una columna por paso de la disolución de enzima a través de la columna de phenyl-Sepharose (AmeshamPharmacia Biotech) que previamente se equilibra con tampón de ácido acético 0,01M (pH 5,0).
Después, se eluyó la actividad enzimática absorbida en la columna lavando la columna con una pendiente lineal de concentración (0-50%) de etilenglicol en el tampón regulador. La disolución eluida se divide en 90 fracciones aproximadamente y se mide la actividad enzimática de cada fracción de acuerdo con el método de medida descrito en el Ejemplo 1. De las fracciones de la disolución eluida se recogen fracciones activas (total 48 ml).
Esta disolución se dializa frente a un tampón de fosfato 0,01M (pH 7,0), después se aplica a una columna de MONO-Q (AmeshamPharmacia Biotech) que previamente se equilibra con el mismo tampón. La actividad se eluye lavando la columna con un gradiente lineal (0-1M) de cloruro sódico.
Se recogen fracciones activas (10,6 ml) y se concentran hasta 0,5 ml usando Centricon (concentrador centrífugo: Amicon Co., Ltd.: dicho concentrador tiene una membrana de ultrafiltración hecha de un derivado celulósico en el fondo del recipiente. Cuando la disolución mezclada compuesta de enzima y proteína se vierte al recipiente y se centrífuga a 6000 r.p.m., la proteína contenida en la disolución se queda en la membrana, mientras que el agua o iones de bajo peso molecular pasan a través de la película y se recuperan como un líquido filtrado), y se separan por un método de cromatografía de filtración en gel, y se recoge 1,2 ml de fracción con una actividad más alta. El rendimiento de actividad de la fracción disuelta del líquido cultivado es 1,4% y la concentración de la enzima activada es 416 U/ml.
La disolución de enzima así obtenida se analizó por electroforesis de gel de SDS-poliacrilamida de acuerdo con el procedimiento de Laemmli (Laemmli, Reino Unido, Nature, 1970, 227, 680-685) y se estimó que el peso molecular de la enzima termoestable que descompone el colágeno es de aproximadamente 46000.
Ejemplo 4 Experimento para investigar la especificidad de sustrato de la enzima termoestable que descompone el colágeno
Después de suspender 5 mg de Azocoll en 0,4 ml de tampón de acetato sódico 0,01M (pH 4,5), se añaden 0,1 ml de disolución de enzima, cuya concentración en enzima se ajusta convenientemente por dilución, y se deja reaccionar durante 1 hora a 60ºC con agitación constante. Después de la reacción, la mezcla de reacción se enfría en hielo durante 1 hora y después se centrífuga. Se mide la absorbancia a 518 nm del sobrenadante. Se usó como disolución blanco la mezcla de reacción preparada por el mismo proceso excepto usando agua en lugar de la disolución de enzima. Se midió la absorbancia a 518 nm de la mezcla de reacción en la cual el Azocoll que se añadió se solubilizó perfectamente. Los
mismos experimentos se llevan a cabo a varias concentraciones de enzima, y se determina la cantidad de enzima que da aproximadamente 50% de degradación bajo estas condiciones (para solubilizar aproximadamente 2,5 mg de Azocoll).
Por el mismo proceso que se mencionó antes, se suspenden (o disuelven) respectivamente 5 mg de colágeno, gelatina, caseína o seroalbúmina de vaca (todos son productos de Nacalai Tesque, Co.) en 0,4 ml de disolución tampón de acetato sódico 0,01M (pH 4,5), después se añaden 0,1 ml de disolución de enzima de concentración previamente decidida y se deja reaccionar durante 1 hora a 60ºC con agitación constante. Después de la reacción, la mezcla de reacción se mantuvo a 4ºC durante 20 minutos y se centrifugó. En los casos en que se usa caseína o seroalbúmina bovina se añaden a la mezcla de reacción 0,5 ml de ácido tricloroacético al 50% y se mantiene a 4ºC durante 20 minutos, luego se centrifuga. Se midió la absorción del sobrenadante a 280 nm. A partir del valor de absorción a 280 nm cuando todas las proteínas están perfectamente solubilizadas se miden los grados de descomposición de todas las proteínas. En la Tabla 1 se da una relación de los grados de solubilización relativos de todas las proteínas cuando el grado de descomposición del Azocoll se considera del 100%.
TABLA 1 Grado de solubilización relativo de cada proteína, cuando el grado de descomposición del Azocoll se considera del 100%
1
observaciones
+++: tiene actividad relativa mayor que 80% respecto a Azocoll
\pm: tiene actividad relativa inferior a 20% respecto a Azocoll
-: no reacciona.
Los resultados obtenidos se muestran en la Fig.1. Esta enzima es estable hasta 60ºC. Mientras, se investiga la estabilidad de las enzimas cuando las enzimas se tratan a varios pH. A continuación se da una relación de los tampones que se deben usar en el intervalo específico de pH.
pH 2,5 a 3,5: tampón 1M glicina-HCl
pH 3,5 a 5,5: tampón 1M acetato sódico
pH 6,0 a 8,0: tampón 1M fosfato sódico
pH 8,0 a 9,0: tampón 1M glicina-NaOH
pH 9,0 a 10,0: tampón 1M fosfato sódico.
Después de añadir 0,0025 ml de estos tampones y 0,0025 ml de disolución acuosa al 1% de Tween 80 a 0,02 ml de líquido de enzima, se ponen a la temperatura de 60ºC durante 1 hora. Luego, se añaden 0,05 ml de tampón de ácido acético 1M (pH 4,0) a este líquido de enzima tratado y se mide la actividad. El resultado obtenido indica que esta enzima es estable en el intervalo de pH de 3 a 6 (Fig.2).
Ejemplo 7
(Experimento para investigar la temperatura óptima de reacción y el pH óptimo de reacción de la enzima termoestable que descompone el colágeno).
Se midió la actividad de la enzima termoestable que descompone el colágeno de esta invención a 30, 40, 50, 60, 70 y 80ºC. Se usó el método descrito en el Ejemplo 1 excepto cambiando la temperatura de reacción. Los resultados mostraron que esta enzima exhibía la máxima actividad a 60ºC (referirse a la Fig. 3).
En segundo lugar, se mide la actividad de esta enzima a varios pH (de pH 2,5 a 7,2). El método para la medida de la actividad se basó en el método descrito en el Ejemplo 1 excepto cambiando el componente del tampón que se ha de usar en el sistema de reacción como sigue: tampón 0,01M de glicina-HCl (pH 2,5 a 7,2), tampón 0,01M de acetato sódico (pH 4 a 6) o tampón 0,01M de fosfato potásico (pH 6 a 8). Los resultados mostraron que esta enzima mostraba la máxima actividad a pH 3,7 a 3,9 (referirse a la Fig. 4).
Posibilidades para el uso industrial
Obviamente, de los ejemplos mencionados antes por la presente invención se hace posible preparar eficazmente una enzima termoestable que descompone el colágeno que es excelente a la temperatura óptima, pH óptimo y especificidad de sustrato de colágeno por el uso del microorganismo novedoso mencionado antes. Por tanto, la presente invención posibilita utilizar los materiales que no se utilizan en las industrias ganaderas, y contribuye en gran medida a la producción de péptidos de colágeno que tienen aplicaciones potenciales en las industrias médica, farmacéutica y alimentaria.

Claims (7)

1. Una enzima termoestable que descompone el colágeno que se puede obtener a partir de una bacteria que pertenece al género Bacillus, donde: (1) la bacteria es Gram-negativa o Gram-indefinida; (2) la bacteria tiene capacidad de formar esporas; (3) la bacteria tiene motilidad; (4) la bacteria crece a 70ºC, no crece a 30ºC ni 80ºC; (5) crece a pH 5 y no crece a pH 7; (6) la bacteria tiene forma de bastón; (7) la bacteria es negativa a la catalasa; (8) la bacteria es negativa a la oxidasa; (9) la bacteria es negativa al ensayo O/F; (10) la bacteria tiene actividad de producción de acetoína; y (11) la bacteria tiene actividad de descomposición de la gelatina, y dicha enzima se caracteriza además por los siguientes rasgos: (a) la enzima tiene mayor actividad de hidrólisis hacia el colágeno y la gelatina que la caseína y la albúmina; (b) el pH óptimo de reacción está entre 3,5 y 4,5; (c) la temperatura óptima de reacción está entre 65ºC y 70ºC; (d) la enzima retiene más del 60% de su actividad original después del tratamiento térmico a 60ºC y pH 6,0 durante 4 horas; (e) la enzima es estable entre pH 3 y 6; y (f) el peso molecular de la enzima estimado por electroforesis en gel de SDS-poliacrilamida es aproximadamente 46000.
2. Una enzima de acuerdo con la reivindicación 1, donde la bacteria es una bacteria del género Bacillus cepa NTAP-1.
3. Un método para producir una enzima de acuerdo con la reivindicación 1 ó 2, comprendiendo el método el uso de una bacteria como se definió en la reivindicación 1 para acumular la enzima en un medio de cultivo, para purificar la enzima y para recogerla.
4. Un método de acuerdo con la reivindicación 3, donde la bacteria es una bacteria del género Bacillus cepa
NTAP-1.
5. Una bacteria perteneciente al género Bacillus, la cual bacteria produce una enzima de acuerdo con la reivindicación 1.
6. Una bacteria de acuerdo con la reivindicación 5, que es Bacillus sp. NTAP-1 depositada según el Tratado de Budapest en el Instituto de Tecnología Biótica de la Agencia de Ciencia Industrial de la Tecnología perteneciente al Ministerio de Comercio e Industria Internacional de Japón y aceptada con el número de entrada FERM BP-6926 el 1 de noviembre de 1999 (depositada bajo el número de entrada original FERM P-17535 el 27 de agosto de 1999).
7. El uso de una enzima de acuerdo con la reivindicación 1 ó 2 para descomponer el colágeno.
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* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
DE10237317B4 (de) * 2002-08-15 2010-04-08 3M Espe Ag Enzymhaltige Zusammensetzung, Verfahren zu deren Herstellung und deren Verwendung
DE10315640A1 (de) * 2003-04-04 2004-10-14 Ignatov, Konstantin Verfahren zur kontrollierten Freisetzung von Komponenten in eine Lösung
EP1600141B1 (en) * 2004-05-24 2013-04-17 3M Deutschland GmbH Collagenolytic active enzyme containing compositions for the treatment of dental caries
GB2416352B (en) * 2004-07-21 2009-01-28 Bioline Ltd A method for performing the hot start of enzymatic reactions
NO20051216A (no) * 2005-03-08 2006-01-23 Wahl Process Systems As Enzymatisk hydrolyseprosess for kollagen og proteinholdige råstoffer og en klaringstank for separasjon av kollagen, og anvendelser derav.
EP1754464A1 (en) * 2005-08-17 2007-02-21 3M Innovative Properties Company Enzyme comprising dental composition
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* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
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