DE916574C - Verfahren zur Herstellung des Antibiotikums Sistomycosin - Google Patents

Verfahren zur Herstellung des Antibiotikums Sistomycosin

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DE916574C
DE916574C DEP7337A DEP0007337A DE916574C DE 916574 C DE916574 C DE 916574C DE P7337 A DEP7337 A DE P7337A DE P0007337 A DEP0007337 A DE P0007337A DE 916574 C DE916574 C DE 916574C
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sistomycosin
antibiotic
culture
streptococcus
medium
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DEP7337A
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English (en)
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Quentin Royal Bartz
John Ehrlich
Mildred Penner Knudsen
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Parke Davis and Co LLC
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Parke Davis and Co LLC
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    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12PFERMENTATION OR ENZYME-USING PROCESSES TO SYNTHESISE A DESIRED CHEMICAL COMPOUND OR COMPOSITION OR TO SEPARATE OPTICAL ISOMERS FROM A RACEMIC MIXTURE
    • C12P1/00Preparation of compounds or compositions, not provided for in groups C12P3/00 - C12P39/00, by using microorganisms or enzymes
    • C12P1/06Preparation of compounds or compositions, not provided for in groups C12P3/00 - C12P39/00, by using microorganisms or enzymes by using actinomycetales
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12NMICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
    • C12N1/00Microorganisms; Compositions thereof; Processes of propagating, maintaining or preserving microorganisms or compositions thereof; Processes of preparing or isolating a composition containing a microorganism; Culture media therefor
    • C12N1/20Bacteria; Culture media therefor
    • C12N1/205Bacterial isolates
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    • C12RINDEXING SCHEME ASSOCIATED WITH SUBCLASSES C12C - C12Q, RELATING TO MICROORGANISMS
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    • C12R2001/465Streptomyces

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Description

  • Verfahren zur Herstellung des Antibiotikums Sistomycosin Die Erfindung bezieht sich auf eine neue chemische Verbindung mit einzigartigen antibiotischen Eigenschaften und Verfahren zu ihrer Herstellung. Insbesondere betrifft die Erfindung ein neues Antibiotikum, dem der Name Sistomycosin gegeben wurde, und mikrobiologische Verfahren zu seiner Herstellung.
  • Sistomycosin ist eine neutrale organische Verbindung, die nur die Elemente Kohlenstoff, Wasserstoff, Stickstoff und Sauerstoff enthält. Es ist ein büffellederfarbener oder hellgelber fester Körper, der unter dem Polarisationsmikroskop mikrokristallin zu sein scheint. Beim Erhitzen beginnt die Verbindung bei etwa i30° braun zu werden, schmilzt aber nicht unter 23o°. Sistomycosin ist in Wasser und Methanol leicht löslich, etwas weniger löslich in feuchtem Aceton und wäBrigen Gemischen höherer aliphatischer Alkohole und praktisch unlöslich in weniger polaren Lösungsmitteln, wie Chloroform, Diäthyläther, Äthylacetat, Benzol, Petroläther und ähnlichen. Es wird aus wäBrigen Lösungen im ps-Bereich von 2 bis 9 durch n-Butanol und ähnlichen höheren aliphatischen Alkoholen extrahiert.
  • Sistomycosin reduziert kalte wäBrige Kaliumpermanganatlösung und siedende Benedictsche Lösung schnell, gibt eine positive Molisch-Probe für Kohlehydrate, aber eine negative Beilstein-Probe für Halogen und einen negativen Ferrichloridtest. Ein Zusatz einer sehr geringen Menge des Antibiotikums, i bis 2 mg zu warmer konzentrierter Schwefelsäure, erteilt der Lösung eine tiefkirschrote bis schokoladebraune Färbung.
  • Die Zugabe einer kleinen Menge Antibiotikum zu warmer konzentrierter, mit Thymol gesättigter Salpeter- oder Salzsäure ergibt keine Farbänderung.
  • Das Antibiotikum nach der Erfindung ist ferner durch ein eigenes Ultraviolett- und Infrarotspektrum gekennzeichnet. Das Ultraviolettabsorptionsspektrum (Fig. i) hat ein Maximum in der Nähe von 300 mA und ein anderes bei 218 ni,@ Das Maximum in der Nähe von 300 m,u ist aus drei getrennten Absorptionsspitzen bei 292,5, 3o6 und 32o,5 MA und 2 Minima zwischen diesen Spitzen bei 298 und 314 m,u zusammengesetzt. Das größere Minimum im Ultraviolettabsorptionsspektrum liegt bei 253 mu. Die in Fig. i gezeigte Kurve der Absorption ist die in Wasser erhaltene. Kennzeichnend für Sistomycosin ist, daß dieses Spektrum durch mäßige Variation des Säuregehaltes oder der Basizität der Lösung, d. h. von dem Neutralpunkt bis etwa 0,05 n-Säure oder Base, nicht merklich verändert wird.
  • Fig.2 zeigt die sogenannte Fingerabdruckregion, d. h. die charakteristische Region des Infrarotspektrums in einer neutralen Mineralölemulsion. Die Spitzen bei oder nahe 6,88 und 7,30 mu sind dem Mineralölträger zuzuschreiben. Die stärksten Absorptionsbanden, die für Sistomycosin charakteristisch sind, sind diejenigen bei oder nahe 6,34 und 9,44 ,u. Banden von schwacher bis mäßiger Intensität befinden sich bei oder nahe 7,7o, 7,86, 8,55, 11,16, 11,85, 12,4,u mit anderen auf den Flanken oder vorhergehenden Banden erscheinenden bei oder nahe 7,o8, 7,i6, 8,95, 9,89, 10,25 und 1o,6 ,u. Eine andere für Sistomycosin charakteristische Bande, die außerhalb der Fingerabdruckregion liegt, findet sich bei oder nahe 2,96 ,u. Sistomycosin, insbesondere seine Lösungen, unterliegt einer fotochemischen Zersetzung, wenn es dem Licht ausgesetzt ist. Es wird durch Säure und Alkali zerstört, ist aber in neutralen oder schwach basigen Lösungen, d. h. bei- pA 7 bis 9, beständiger als in sauren Lösungen. Es ist in Wasser unter 25° sehr beständig, und seine wäßrigen Lösungen können sogar i Stunde auf 5o° erhitzt werden, ohne ihre antibiotische Wirksamkeit zu verlieren. In wäßrigen Lösungen bei ioo° bleiben nach i Stunde noch mehr als 5o °/o der antibiotischen Wirksamkeit zurück.
  • Im Gegensatz zu bekannten Antibiotika besitzt Sistomycosin eine hohe Wirksamkeit gegen zahlreiche Hefe- und Schimmelpilze, ist aber, praktisch genommen, wirkungslos gegen gramnegative und grampositive Bakterien. Zum Beispiel ist das Produkt nach der Erfindung wirkungslos gegen Bakterien, wie Escherichia coli, Salmonella schottmuellerie, Shigella Bonnei, Klebsiella pneumoniae, Micrococcus pyogenes var. aureus und Streptococcus haemolyticus, ist aber außerordentlich wirksam und von großem Wert bei Behandlung von Pilzinfektionen, die verursacht werden durch Blastomyces dermatitidis, Candida albicans, Histoplasma capsulatum, Microsporum canis, Sporotrichum schenckii, Trichophyton interdigitale und Trichophyton rubrum. Die folgende Tabelle erläutert eingehender das einzigartige Spektrum des antibiotischen Sistomycosins im Vergleich zu den Spektren bekannter Antibiotika, die durch Actinomyceten erzeugt werden, einschließlich solcher, die durch eine antifungale Wirksamkeit gekennzeichnet sind.
  • Aus der Tabelle ist zu ersehen, daß nur das Antibiotikum Actidion dem Sistomycosin in seiner Wirkungslosigkeit-gegen Bakterien und seiner Wirksamkeit gegen Eumyceten ähnelt. Actidion ist jedoch gegen Cryptococcus neoformans wirksam, während Sistomycosin dies nicht ist. Sistomycosin ist gegen die übrigen unten angegebenen Eumyceten wirksam, während Actidion dies nicht ist. Hieraus ist ersichtlich, daß die beiden deutlich verschiedene Stoffe sind.
    Antibiotische Wirksamkeit
    Mikroorganismen Sisto- Aureo- Chloram- Strepto- Strepto- Terra-
    mycosin Actidion mycin phenicol mycin thricin mycin
    Bakterien
    grampositive (die meisten) ...... - - -f- -f-
    Bakterien
    gramnegative (die meisten) .... - - -E-
    Bakterien
    säurefeste (die meisten) ........ - - -1-
    Actinomyceten
    Nocardia asteroides ........... - - -E- ZL -I-
    Eumyceten
    (Hefe- und Schimmelpilze)
    Blastomyces dermatitidis ........ - - - - -E- -
    Candida albicans . .. . . . . . . . . . .. . . - - - - - -
    Cryptococcus neoformans ........ - - - - -
    Histoplasma capsulatum ......... -f- - - - - -f- -
    Microsporum canis ... ... ........ -f- - - - - - -
    Sporotrichum schenckii .......... - - - - - -
    Trichophyton rubrum ........... T - - - - - -
    -{- Das Wachstum wird durch weniger als 25 #tg Antibiotikum je Kubikzentimeter Fleischbrühe oder Agar gehemmt.
    - Das Wachstum wird durch ioo gg Antibiotikum je Kubikzentimeter Fleischbrühe oder Agar nicht gehemmt.
    Die Toxizität von Sistomycosin ist fast zu vernachlässigen. Bei Mäusen beträgt die intravenöse tödliche Dosis 50 (LDfio) 9o mg/kg und die mittlere Erträglichkeitsdosis (M. T. D.) 8o mg/kg.
  • Gemäß der Erfindung wird Sistomycosin durch aerobe Züchtung von Kulturen einer neuen Actinomycete der Genus Streptomyces, der der Name Streptomyces viridosporus gegeben wurde, hergestellt. Diese Mikroorganismen kommen unter anderem in Böden vor. Die Kulturen können durch Vermischen der bestimmten Eumycetenkulturen, die durch Sistomycosin gehemmt werden, mit wäßrigem Agar und Zufügen einer Bodenprobe, welche den gewünschten Streptomyces viridosporus enthält, erhalten werden. Nach Züchtung des Gemisches während i bis 1o Tagen erscheinen Kolonien der gewünschten Actinomyceten. Die Gewächse von Streptomyces viridosporus werden ausgewählt, auf ein neues Nährmedium übertragen und später als reine Kulturen nach üblichen Arbeitsweisen isoliert. Eine lebende Kultur dieses Mikroorganismus wurde dem Kulturbüro der Parke Davis & Co., Detroit, Michigan, unter der Nummer 0q.889 eingereicht.
  • Mikroskopisch ist das feuchte primäre Mycel von Streptomyces viridosporus glasklar und überreich verzweigt. Die Außenenden sind gebogen und etwas wellenförmig. Das sekundäre Luftmycel ist ebenfalls außerordentlich verzweigt. Primäre, sekundäre und tertiäre Zweigteile sind ebenfalls vorhanden und können abwechselnd in entgegengesetzter Richtung oder nur gelegentlich gewunden sein. Die Außenenden des Luftmycels unterteilen sich in Ketten von Fruchtträgern (Konidien). Die konidialen Ketten erscheinen als kurze offene Spiralen von etwa 1o bis 2o ,u axialer Länge. Die Fruchtträger sind glasklar, kugel- bis eiförmig und haben 1,3 bis 1,9,u Durchmesser, aber im Mittel angenähert 1,5 bis 1,6,u. Bei Züchtung auf Glukose-Trypton-Agar-Nährmedium erscheint das junge Primärmycel von Streptomyces viridosporus farblos, nimmt aber später eine dunkelgelbe Farbe an. Das Luftmycel ist weiß und trägt Sporen, die in der Masse dunkelolivgrün erscheinen. In dem Agar erscheint wenig oder kein Farbstoff. Die Oberflächenkolonien sind kreisförmig, hervorgewölbt, mit Falten versehen oder radial gerippt, mit runder bis gewellter Grenzlinie. Die folgende Tabelle erläutert die charakteristischen Unterschiede zwischen dieser neuen Actinomycete und anderen Antibiotika erzeugenden Antimyceten bei Züchtung auf einem Glukose-Trypton-Agar-Nährboden.
  • Das Lebewesen verflüssigt Gelatine ohne Pigmentbildung und peptonisiert Lakmusmilch mit geringer Änderung im px-Wert. In einem synthetischen Medium (Gottliebs) wertet das Lebewesen leicht zahlreiche Kohlenstoffquellen aus, wie Arabinose, Fruktose, Galaktose, Inosit, Laktose, Maltose, Mannit, Rhamnose, Xylose. Weniger leicht wertet es Natriumacetat, Natriumcitrat, Natriumsuccinat und Sucrose aus. Dagegen werden nicht ausgewertet Dulcit, Inulin, Raffinose und Sorbit. Im synthetischen Medium verwertet der Organismus anorganische Stickstoffquellen, wie Ammoniumsalze und Nitrate, organischen Stickstoff, wie Harnstoff, Glycin, Alanin, ß-Alanin, Valin, Leucin, Serin, Threonin, Phenyl-
    Mycel Substrat
    Mikroorganismen Antibiotikum Form des Farbe des Luftm Gels Farbe der Farbe in
    Luftmycels und der Rückseite Glukose-
    Sporen Trypton-Agar
    Streptococcus Sistomycosin Spiralen weiß gelb keine
    viridosporus olivgrün gelbbraun
    Streptococcus Actinomycin gerade weiß schwarz schwarz
    antibioticus grau
    Streptococcus Aureomycin gerade weiß gelb keine
    aureofaciens grau gelbbraun
    Streptococcus Viomycin gerade, weiß rotviolett nichts
    floridae leicht gewellt lavendel himbeer-
    blau farben
    graugrün
    Streptococcus Neomycin gerade, weiß farblos , keine
    fradiae und Fradicin gelegentlich seemuschel- gelbbraun
    Schleifen rosa
    und Spiralen
    Streptococcus Griseoviridin gerade, weiß gelbgrau keine
    griseoviridus Viridogrisein leicht gewellt hellrosa
    hellgrau
    grün ,
    Streptococcus Streptomycin gerade, weiß farblos keine
    griseus und Actidion leicht gewellt hellrosa lavendel
    hellgrau blau
    grün hellbraun
    Mycel Substrat
    Mikroorganismen Antibiotikum Form des Farbe des Farbe der Farbe in
    Luftm cels
    Luftmycels und der Rückseite Glukose-
    Sporen Trypton-Agar
    Streptococcus Grisein gerade, weiß farblos keine
    griseus leicht gewellt hellrosa gelbbraun
    hellgrau
    grün
    Streptococcus Streptothricin, gerade mit weiß schwarz schwarz
    lavendulae Lavendulin gelegent- rosa
    und Streptolin lichen Lavendel
    Schleifen blau
    und Spiralen
    Streptococcus Terramycin Spiralen weiß gelb keine
    rimosus
    Streptococcus sp. Actinorubin Spiralen weiß rosa keine
    rosa rot
    grau
    Streptococcus Chloramphenicol gerade weiß schwarz schwarz
    venezuelae grau
    alanin, Tyrosin, Tryptophan, Cystin, Glutaminsäure, Asparaginsäure, Asparagin, Lydin, Arginin, Histidin und Adeninsulfat, aus.
  • Die folgende Tabelle ist ein Vergleich über die Fähigkeit von Streptomyces viridosporus und anderer Antibiotika erzeugender Actinomyceten, verschiedene Kohlenstoffquellen bei Züchtung auf einem aus Agar, anorganischen Salzen und der untersuchten Kohlenstoffquelle zusammengesetzten Nährmedium zu verwerten.
    M
    Angewendetes
    Carbon Source
    kroorganismen Antibiotikum Ara- Fruk- Galak- Inosit I Inulin I Lak I Mal- I IMannit Rham-
    I I X lose
    binose tose tose tose tose ` pose y
    Streptococcus Sistomycosin -E-- -f- + o -j- + -r- -i- -E-
    viridosporus
    Streptococcus Actinomycin etwas -E- + o -f- -E- -f- -f- -f-
    antibioticus
    Streptococcus Aureomycin -j- o o etwas + o o
    aureofaciens -f -
    Streptococcus Viomycin o bis -E- o o . etwas -f- o -f-
    floridae etwas
    Streptococcus Fradicin und -R- etwas -f-- 0 0 0 -f- o o
    fradiae Neomycin -f-
    Streptococcus Griseoviridin und -[- -f- o o etwas -E- -f- -f-
    griseoviridus- Viridogrisein -f-
    Streptococcus Grisein -E- 0 0 etwas .+ -f-
    griseus2) -E-
    Streptococcus Streptomycin o 0 0 o bis a
    griseusl) und Actidion
    Streptococcus Streptothricin, o bis o bis etwas o 0 o bis -j-- 0 0 o bis
    lavendulae Lavendulin und -r-. -f- +. etwas
    Streptolin bis
    Streptococcus sp. Actinorubin -f- -f- -f- -i- -@- -f- -r-- -r- -E-
    Streptococcus Chloramphenicol -@- -f- -f- 0 0 etwas -t- o -f- -f-
    venezuelae
    o = kein oder sehr geringes Wachstum. -f- - gutes Wachstum. ') oder z) Die Unterschiede in den Nährbedürfnissen
    beruhen auf einem Unterschied der Stämme.
    Wie oben festgestellt, wird Sistomycosin durch aerobe Züchtung einer Kultur von Streptomyces viridosporus hergestellt. Dies wird gewöhnlich durch Impfung eines geeigneten Nährmediums mit Streptomyces viridosporus und Züchtung des Gemisches unter aeroben Bedingungen bei etwa 2o bis 35° während i bis 8 Tagen erreicht. Bei wäßrigen Nährmedien wird das feste Material aus dem Kulturgemisch entfernt und das gewünschte Antibiotikum durch die späterhin beschriebenen Verfahren aus der Kulturflüssigkeit entfernt. Wenn ein festes Nährmedium verwendet wird, wird das Kulturgemisch gut mit einem Lösungsmittel für das Antibiotikum, wie Wasser oder Methanol, gewaschen und das gewünschte Sistomycosin aus dem Extrakt isoliert. Während des Züchtens wird die Temperatur vorzugsweise in der Nähe von 25 bis 28° gehalten. Bei einem wäßrigen Nährmedium soll der Anfangs-pH-Wert zwischen 6 und 8,2, vorzugsweise auf der alkalischen Seite zwischen etwa 7,3 und 7,7, liegen. Um die maximale Ausbeute an Sistomycosin zu erhalten, soll während der Züchtung des Kulturgemisches und der Isolierung des Antibiotikums Licht so vollständig wie möglich ausgeschaltet sein. Eine Beimpfung von Nährmedium-Sporensuspensionen, Nachkulturen und Strichkulturen von Streptomyces viridosporus können verwendet werden.
  • Die Züchtung des Mikroorganismus in den wäßrigen Nährmedien kann auf einer Reihe von verschiedenen Wegen durchgeführt werden. Zum Beispiel kann der Mikroorganismus unter aeroben Bedingungen auf der Oberfläche des Mediums gezüchtet werden, oder er kann unter der Oberfläche des Mediums, d. h. unter submersen Bedingungen, entwickelt werden, wenn gleichzeitig Sauerstoff zugeführt wird. Das bevorzugte Verfahren zur Herstellung von Sistomycosin im großen Maßstabe umfaßt die Verwendung von submersen oder Tiefenkulturen von Streptomyces viridosporus. Nach dieser Ausführungsform der Erfindung wird ein steriles wäßriges Nährmedium mit Streptomyces viridosporus beimpft und unter Rühren und Belüftung bei einer Temperatur zwischen 2o und 35°, vorzugsweise in der Nähe von 25 bis 28°, etwa i bis q. Tage gezüchtet. Unter diesen Bedingungen entwickelt sich der Organismus in zahlreichen mehr oder weniger getrennten Teilmengen, die im Nährmedium verteilt sind, im Gegensatz zu dem mehr oder weniger zusammenhängenden Häutchen, die beim Oberflächenkulturverfahren auf der Oberfläche des Nährmediums vorhanden sind. Dank dieser Verteilung des Organismus über das ganze Medium können große Volumina des beimpften Nährmediums gleichzeitig in großen Behältern und Fässern,wie sie gebräuchlicherweise in der Gärungsindustrie benutzt werden, gezüchtet werden. Stationäre Gärfässer, die mit geeigneten Rühr- und Belüftungseinrichtungen ausgerüstet sind, sowie auch horizontale Drehtrommelgärbehälter sind, wie gefunden wurde, in dieser Hinsicht besonders vorteilhaft, jedoch kann für die Herstellung kleinerer Mengen des Antibiotikums oder der Kulturen des Mikroorganismus dieses submerse Kulturverfahren in kleineren Kolben durchgeführt werden, die entweder geschüttelt oder durch mechanische Mittel gerührt werden. Das Rühren und Belüften des Kulturgemisches kann in einer Reihe von Wegen durchgeführt werden. Zum Rühren können Propeller oder ähnliche Rühreinrichtungen vorgesehen oder der Behälter selbst gedreht oder geschüttelt werden oder verschiedene Pumpeneinrichtungen oder ein Hindurchleiten von Lift oder anderen sauerstoffhaltigen Gasen durch das Medium vorgesehen sein. Die Belüftung kann durch Einblasen von Luft oder anderen sauerstoffhaltigen Ga-,en in das Gärgemisch durch offene oder perforierte Rohre, poröse Diffusionsmedien, wie Kohlestäbe, Carborund oder gesintertes Glas, bewirkt werden. Oder es kann ein Versprühen, Zerschleudern oder Verspritzen der Maische in oder durch eine sauerstoffhaltige Atmosphäre hindurch vorgesehen sein. Das sauerstoffhaltige Gas soll vor dem Einleiten in das Kulturgemisch von Sporen, Bakterien und anderen Giftstoffen befreit sein. Dies kann sehr zweckmäßig durch Filtration durch eine Schicht aktiver Kohle erfolgen. Die Geschwindigkeit der Belüftung, die das Optimum der Sistomycosinbildung fördert, ist naturgemäß etwas von der Art des verwendeten Behälters, der Geschwindigkeit und der Art des Rührens, dem PH-Wert, der Temperatur und anderen Bedingungen der Umgebung abhängig. In diesem Fall muß das sauerstoffhaltige Gas mit ausreichender Geschwindigkeit zugeführt werden, um einen leichten Überdruck in dem Gärbehälter aufrechtzuerhalten und so die Möglichkeit einer Vergiftung der Kultur durch eingesaugte Luft zu vermeiden. Bei tankartigen 3o-1-Gärbehältern ergab, wie gefunden wurde, eine Geschwindigkeit von io bis x5 1 Luft je Minute gute Ergebnisse bei gleichzeitiger Anwendung eines sechsblättrigen mechanischen Turbinenrührers von io cm Durchmesser bei einer Drehzahl von ioo bis 200 gegen vier senkrechte Prallplatten von 2,5 X q.o cm.
  • Eine große Vielzahl von Nährmedien kann in der Wachstumsstufe des Verfahrens verwendet werden. Solche Nährmedien sollen Kohlenstoffverbindungen, eiweißhaltige Stoffe, Mineralsalze und Spuren von verschiedenen Nährstoffen, Vitamine und andere Wachstumsstimulantien enthalten, die gewöhnlich als Verunreinigungen in den anderen Bestandteilen des Mediums gefunden werden. Für die optimale Herstellung von Sistomycosin soll das Nährmediun auch Fettstoffe enthalten. Es sei verstanden, daß die assimilierbaren Kohlenstoffverbindungen hier mehrwertige Alkohole und Mono-, Di- und Polysaccharide umfaßt, während unter eiweißhaltigen Stoffen nichtmodifiziertes Eiweiß und Eiweißabbauprodukte, insbesondere solche Produkte, wie sie bei der Hydrolyse von Eiweißstoffen entstehen, verstanden werden. Diese Eiweißabbauprodukte umfassen Proteasen, Peptone, Polypeptide, Peptide und Aminosäuren.
  • Als assimilierbare Kohlenstoffverbindungen können Arabinose, Fruktose, Galaktose, Laktose, Maltose, Rhamnose, Xylose, Glyzerin, Mannit, Rhamnit u. dgl. verwendet werden. Komplexe Kohlenstoffhydrate, wie Stärke, Dextrine, Gär- und Destillationsschlempe, Feststoffe aus Maiseinweichwasser, Ma.iseinweichwasser, getrocknete Gärrückstände u. dgl., können ebenfalls verwendet werden. Unter den in den verschiedenen Nährmedien verwendbaren eiweißhaltigen Stoffen sind Rindfleischextrakt, mit Säure hydrolysiertes Kasein, Rindfleischpepton, gemahlener Sojabohnenölkuchen, getrocknete Gärrückstände, wasserlösliches, entfettetes und teilweise hydrolysiertes Sojabohnenmehl, Aminosäuregemische natürlicher oder synthetischer Herkunft, Harnstoff, Purine u. dgl.
  • Die Verwendung von gemahlenem Sojabohnenölkuchen oder Sojabohneneiweißderivaten als Bestandteil des Nährmediums ist wünschenswert, da sie eine geringe ' Menge Fett für die Verwertung durch den Mikroorganismus bereitstellen.
  • Die hauptsächlichsten Mineralerfordernisse des Mediums können durch Zugabe von o,1 bis o,50/, von einem oder mehreren anorganischen Salzen, wie Natriumchlorid, Calciumcarbonat, Dikaliumphosphat oder Monokaliumphosphat, befriedigt werden. Die anderen Bestandteile des Nährmediums, d. h. Vitamine, Wachstumsstimulantia u. dgl., sind gewöhnlich in den unreinen assimilierbaren Kohlenstoffquellen und bzw. oder den eiweißhaltigen Stoffen in hinreichender Menge vorhanden.
  • Die Isolierung von Sistomycosin aus dem rohen Kulturgemisch kann in einer Reihe von verschiedenen Wegen erfolgen. Wenn in der Wachstumsphase ein festes Kulturmedium verwendet wird, wird das Mycel mit einem Lösungsmittel für Sistomycosin, z. B. Wasser, extrahiert und das Produkt aus dem Extrakt, wie hernach beschrieben, isoliert. Aus flüssigen Kulturen wird das Mycel abgetrennt, gut mit Wasser gewaschen, und das Filtrat und die Waschwässer werden in den nachfolgenden Isolierungsstufen aufgearbeitet. Ein Verfahren zur Isolierung von Sistomycosin aus der rohen Kulturflüssigkeit oder aus Kulturextrakten umfaßt folgende Arbeitsgänge: Das Extrahieren der Lösung mit einem mit Wasser nicht mischbaren Alkohol, wie n-Butanol, die Entfernung des Lösungsmittels durch Destillation, die Extraktion des Rückstandes mit einem Fettlösungsmittel, wie Chloroform, das Verwerfen des Extraktes, die Extraktion des in Chloroform unlöslichen festen Anteiles mit Chloroform, das etwa 1o01, eines niedrigen aliphatischen Alkohols, wie Methanol, enthält und das Gießen des anfallenden Extraktes auf einen Ionenaustauscher aus einem anorganischen Silikat (Permutit). Das ionenaustauschende Material wird zunächst mit Chloroform, das fortschreitend höhere Konzentrationen an niederen aliphatischen Alkoholen, wie Methanol, enthält, gewaschen, und dann wird das Antibiotikum mit dem erwähnten Alkohol eluiert. Die alkoholischen Eluate werden zur Trockne eingedampft, und der Rückstand wird mit Wasser extrahiert. Der wäßrige Extrakt wird filtriert, das Filtrat gefroren und das Eis daraus im Vakuum unter Gewinnung des gewünschten Antibiotikums heraussublimiert.
  • Die Erfindung wird durch die folgenden Beispiele erläutert Beispiel 1 Ein- Gemisch aus 18o g käuflicher Glukose, 18o g partiell hydrolysiertem Sojabohneneiweiß, go g Maiseinweichwasser, go g Natriumchlorid, 18 g Calciumcarbonat und eine hinreichende Menge heißes Wasser, um das Volumen auf z81 zu bringen, werden in einen ortsfesten, faßartigen 3o-1-Gärbehälter aus Glas eingebracht, der mit einem rostfreien Stahlkopf, einem Propellerrührer, vier inneren senkrechten Prallblechen von 2,5 X 40 cm und einem perforierten kreisförmigen Luftdiffusionsring versehen ist.
  • Der Gärbehälter wird in einen Autoklav eingebracht und der Inhalt mit Dampf bei 121° 1 Stunde sterilisiert. Gärbehälter und Inhalt werden abgekühlt und dann aus dem Autoklav herausgenommen. Das Medium wird aseptisch mit goo ccm einer in 72 Stunden in einer Schüttelflasche gewonnenen Nachkultur von Streptomyces viridosporus beimpft, die auf dem gleichen Medium, wie oben beschrieben, gezüchtet wurde und aus einem mit Sporen versehenen Glukose-Trypton-Agar-Kulturstamm von Streptomyces viridosporus stammt.
  • Nach der Beimpfung wird die Kultur 88 Stunden bei 23 bis 27° gezüchtet. Während der Züchtung wird sterile Luft durch den Diffusionsring mit einer Geschwindigkeit von x5,6 bis 17,81/min hindurchgeleitet und der Rührer mit einer Geschwindigkeit von etwa 150 Umdr./min rotieren gelassen.
  • Die Herstellung des Antibiotikums während der Züchtung wird von Zeit zu Zeit durch Abziehen von Proben untersucht, wobei diese gegen Candida albicans nach der Zylinderplatten-Agar-Diffusionsmethode untersucht wurden. Der Gehalt an Antibiotikum wird durch den Durchmesser der Hemmzone in Millimeter angezeigt. Die folgende Tabelle erläutert die Erzeugung des Antibiotikums durch die oben beschriebene Arbeitsweise.
    Entwicklungszeit
    . Hemmung von Candida albicans
    Stunden Zonendurchmesser in
    mm
    40 16,6
    47 19,2
    64 22,1
    71 21,9
    88 23,4
    Am Ende der Entwicklungszeit werden 25 g Silikatfilterhilfe je Liter zugegeben, und das Kulturgemisch wird filtriert. Der Filterkuchen wird zweimal mit je 25 ccm Wasser je Liter Kulturgemisch gewaschen, und die Waschflüssigkeiten werden zum Hauptfiltrat gegeben.
  • 31,461 Kulturfiltrat oder -flüssigkeit, hergestellt wie oben beschrieben, die gegenüber Candida albicans bei einer Verdünnung von 1 : 2 eine Hemmzone von 18,5 mm Durchmesser ergeben, werden zweimal mit 1o 1 n-Butanol extrahiert. Die wäßrige Lösung wird verworfen und die Extrakte im Dunkeln und unter Vakuum unterhalb 45° fast bis zur Trockne konzentriert. Der Rückstand wird viermal mit 50 ccm und einmal mit Zoo ccm Chloroform bei ioo° extrahiert, und die Extrakte werden verworfen. Der in Chloroform unlösliche Rückstand wird mit 3oo ccm Wasser geschüttelt und unter Gewinnung von 3,39 g Feststoffen (Feststoffe A) und einem Filtrat (Filtrat A) filtriert. Das Filtrat A wird gefroren und das Eis daraus im Vakuum unter Gewinnung von 3,725 9 Sistomycosin heraussublimiert. 5oo y dieses Materials ergeben in i ccm Wasser gegen Candida albicans bei Verdünnungen von i : i bzw. 1 : 2 Hemmzonen von 16,8 und 11,5 mm.
  • Der Feststoff A (3,39 g) wird zweimal mit ioo ccm und sechsmal mit i5o ccm Wasser extrahiert. Die Extrakte werden filtriert, gesondert untersucht, und diejenigen mit ähnlichen Titern werden vereinigt und zu Muscheln gefroren. Das Eis wird aus den sublimierten Extrakten im Vakuum unter Gewinnung von insgesamt 3,5 g rohem Sistomycosin sublimiert. Die Ausbeuten und die Reinheit der einzelnen rohen Fraktionen werden in der folgenden Tabelle wiedergegeben.
    Konzentration Probenergebnisse gegen Candida albicans
    Gewicht Rohprodukt
    Feststoffe Verdünnung 1:1 1:2 1:4 1:8
    Rohprodukt in der
    untersuchten
    Durchmesser der
    Lösung Hemmzone mm mm mm , mm
    B 1623 200 17,1 14,1 io,6 -
    C 1613 400 20,1 17,5 14,4 12,0
    C 114 200 15,9 11,3 -I-;- -1--
    E ioo 330 16,o 13,5 11,6
    F 6o 550 13,9 ii.9 ++ , +
    Hemmung innerhalb des Zylinders. ++ Leichte Hemmung unmittelbar um den Zylinder herum.
    995 mg Feststoffe B werden 1/Z Stunde mit igg ccm Chloroform, das io Volumprozent Methanol enthält, extrahiert, und das Gemisch wird filtriert. Der unlösliche Rückstand wiegt 770,5 mg. Der Extrakt wird in eine Chromatographiesäule gegossen, die 21,1 g Silikataustauscher, käuflich unter dem Handelsnamen »FlorisiLc, enthält, der vorher gründlich mit Chloroform, das io Volumprozent Methanol enthielt, gewaschen wurde. Man läßt die folgenden Lösungsmittelgemische in der angegebenen Reihenfolge durch die Säule laufen: Chloroform mit 10, 20, 30 und 4o Volumprozent Methanol. Die Eluate werden verworfen und 5o ccm Methanol durch die Säule fließen gelassen. Das erste Eluat wird verworfen, und dann werden etwa ?o5o ccm Methanol in kleinen Anteilen durch die Säule laufen gelassen. Insgesamt werden acht Fraktionen gesammelt, von denen die ersten fünf im Vakuum zur Trockne eingedampft werden. Der gelbe Rückstand wird mit einer Gesamtmenge von 35 ccm Wasser extrahiert. Der Extrakt wird gefroren und das Eis daraus unter Gewinnung von 85,4 mg Sistomycosin als hellgelber fester Körper absublimiert. 400 y von diesem Feststoff werden in i ccm Wasser gelöst und ergeben bei einer Verdünnung von i : i eine Hemmzone von 22 mm Durchmesser gegenüber Candida albicans.
  • Die anderen drei Fraktionen werden vereinigt und zur Trockne eingedampft unter Gewinnung von 131 mg Sistomycosin als heller gelber, fester Körper. 400 y dieses Materials in i ccm Wasser ergeben eine Hemmzone von 16 mm beim Versuch gegen Candida albicans bei einer Verdünnung von i : i. Bei der turbidometrischen Versuchsmethode verursachten 7,14 y/ccm eine 5o°/oige Hemmung des Wachstums bei Candida albicans.
  • 1435 g Feststoff wurden mit 287 ccm Chloroform mit io Volumprozent Methanol 1/a Stunde extrahiert. Der unlösliche Rückstand (Feststoff G) wiegt 1,o84 g. Der Extrakt wird auf eine Absorptionssäule mit 32 g Silikationenaustauscher, käuflich unter dem Handelsnamen »Decalso«, der vorher gründlich mit Chloroform mit io Volumprozent Methanol gewaschen wurde, gegossen. Die folgenden Lösungsmittelgemische wurden in Anteilen von je 7oo ccm durch die Säule in der angegebenen Reihenfolge laufen gelassen: Chloroform mit 10, 20, 30, 40 und 5o Volumprozent Methanol. Die Perkolate werden verworfen. Die Säule wird mit 84o ccm Methanol, geteilt in sechs Portionen, eluiert, und die Eluate werden vereinigt. Die Lösung wird im Vakuum zur Trockne eingedampft und der Rückstand mit einer Gesamtmenge von 30 ccm Wasser extrahiert. Der wäßrige Extrakt wird gefroren und das Eis unter vermindertem Druck unter Gewinnung von Sistomycosin als büffellederfarbener fester Körper absubliniert. Dieses Material gibt gegenüber Candida albicans eine Hemmzone von 23,6 mm bei einer Konzentration von 400 y/ccm.
  • Die Säule wird nochmals fünfmal mit je 700 ccm Methanol eluiert, und die vereinigten Extrakte werden im Vakuum zur Trockne eingedampft, der Rückstand wird mit Wasser extrahiert, der Extrakt gefroren und im gefrorenen Zustand unter Gewinnung von 85 mg Sistomycosin als hellgelber fester Körper getrocknet, der beim Versuch gegen Candida albicans bei einer Konzentration von 400 y/ccm eine Hemmzone von 20,3 mm ergab. Beim turbidometrischen Versuch ergaben 3,47 y/ccm des Produktes eine 5oo°/oige Hemmung des Wachstums von Candida albicans.
  • Der Feststoff G wird mit Chloroform mit io Volumprozent Methanol extrahiert und der Extrakt auf eine Chromatographiesäule mit dem Silikationenaustauscher »Decalsoa gegossen. Die Säule wird mit Chloroformanteilen mit 10, 20, 30, 40, 50 Volumprozent Methanol gewaschen, und die Waschlösungen werden verworfen. Die Säule wird mit 66o ccm Methanol, geteilt in sechs gleiche Teilmengen, eluiert. Die ersten 50 ccm werden verworfen und die restlichen vereinigt und im Vakuum zur Trockne eingedampft. Der Rückstand wird mit Wasser extrahiert, der Extrakt gefroren und das Eis daraus unter vermindertem Druck unter Gewinnung von 92 mg reinem Sistomycosin absublimiert. 4oo y/ccm dieses hellgelben festen Materials ergeben gegen Candida albicans bei einer Verdünnung von i : x eine Hemmzone von 23,8 mm. Weitere 6o mg Sistomycosin können durch Waschen der Adsorptionssäule mit weiterem Methanol und Aufarbeitung des Eluats, wie oben beschrieben, erhalten werden.
  • Sistomycosin, insbesondere seine Lösungen, unterliegen photochemischer Zersetzung, wenn sie dem Licht ausgesetzt werden. Es wird durch Säure und Alkali zersetzt, ist aber in neutralen oder schwach basischen Lösungen, d. h. pH 7 bis 9, stabiler als in sauren Lösungen. Es ist völlig stabil in Wasser unter 25°, und seine wäßrigen Lösungen können sogar i Stunde auf 50° erhitzt werden ohne Verlust der antibiotischen Wirksamkeit. In wäßrigen Lösungen bleiben bei ioo° nach i Stunde noch mehr als 50% der antibiotischen Wirksamkeit zurück. Beispiel 2 Ein Nährmedium, bestehend aus 5 g käuflicher Glukose, 2,5 g Rindfleischextrakt, 2,5 g Pepton, 2,5 g Natriumchlorid und hinreichend Wasser, um die Lösung auf 500 ccm zu bringen, wird mit io n-Natronlauge bis zum pH-Wert 7,7 alkalisch gemacht. Das Medium wird in einen Fernbachkolben eingebracht, mit einem Baumwollpfropfen verschlossen und bei etwa 1,3 at Dampfdruck ao Minuten sterilisiert. Das Medium wird mit i ccm einer Suspension von Streptomyces-viridosporus-Sporen aus einem io Tage alten Glukose-Trypton-Agar-Kulturstamm beimpft. Das resultierende Gemisch wird 8 Tage bei 24° gezüchtet. Am Ende dieser Zeit hat die Kulturflüssigkeit unter dem Mycel an der Oberfläche einen pH-Wert von 6,8 und ergibt beim Versuch für Sistomycosin gegen Candida albicans nach der Tischplattenmethode eine Hemmzone von 22 mm Durchmesser. Das in der Kulturflüssigkeit vorhandene Sistomycosin kann nach dem im Beispiel i beschriebenen Verfahren isoliert werden. Beispiel 3 Ein Gemisch aus i80 g technischer Maltose, i80 g Maiseinweichwasser, 9o g Natriumchiorid, 36 g Dikaliumphosphat und hinreichend Wasser zur Auffüllung auf i81 werden in einen Gärbehälter von 1141 der im Beispiel i beschriebenen Art eingebracht. Der pH-Wert der Lösung wird mit io n-Natronlauge auf 7,5 eingestellt, 18 g Calciumcarbonat werden zugegeben und Gärbehälter und Medium 2 Stunden bei 25o° sterilisiert. Das Nährmedium wird abgekühlt und aseptisch mit io ccm einer Sporendispersion von Streptomyces viridosporus beimpft, die durch Schütteln eines 7 Tage alten Glukose-Trypton-Agar-Stammes von Streptomyces viridosporus mit io ccm o,oi°/oiger wäßriger Marseiller Seifenlösung hergestellt wurde.
  • Das Kulturgemisch wirkt 136 Stunden, bei 28 bis 29° entwickelt, -während welcher Zeit der Rührer mit einer Umlaufgeschwindigkeit von 15o Umdr./min laufen gelassen und sterile Luft in das Gemisch mit einer Geschwindigkeit von 7,2 bis 181/min eingeführt werden. Am Ende der Entwicklungszeit wird das Mycel aus dem Gemisch entfernt und die klare Kulturflüssigkeit auf seinen Sistomycosingehalt nach der turbidometrischen Methode gegen Candida albicans untersucht. Bei dem beschriebenen Versuch ergab die Kulturflüssigkeit, wie gefunden wurde, bei der Verdünnung von 1 : 135 eine 5o°/oige Wachstumshemmung von Candida albicans. Das in der Kulturflüssigkeit vorhandene Sistomycosin kann unter Verwendung des im Beispiel i beschriebenen Isolierverfahrens in reinem Zustand isoliert werden. Beispiel 4 In mehrere Erlenmeyerkolben werden je 125 ccm Nährmedium aus 0,5% Pepton, o,i°/o Brauhefe, o,25°/0 Feststoffe aus Maiseinweichwasser, 0,25°/o gemahlenem Soj abohnenölkuchen, 0,250/, Butanol-Aceton-Gärrückstand, 0,25 °/o Natriumchlorid, o,i °/o Calciumcarbonat und Restwasser eingebracht. Die Kolben werden mit mittels Gaze bedeckter Baumwolle verschlossen und bei etwa 1,3 at Druck 25 Minuten sterilisiert, dann wird je ein Kolben aseptisch mit i ccm Sporensuspension von Streptomyces viridosporus beimpft, die aus einem 7 Tage alten Glukose-Trypton-Agar-Kulturstamm hergestellt wurde. Die Kolben wurden auf einer rotierenden Schüttelmaschine mit i50 Umdr./min 4 Tage geschüttelt. Die Temperatur wurde während der Züchtung bei 22 bis 24° gehalten. Am Ende dieser Zeit hatte die Kulturflüssigkeit einen pH-Wert von etwa 6,4. Nach der turbidometrischen Probe gegen Candida albicans enthielt die Kulturflüssigkeit, wie gefunden wurde, hinreichend Sistomycosin, um bei einer Verdünnung von 1 : 135 eine 5o°/oige Wachstumshemmung der Versuchsorganismen zu verursachen.
  • Wenn gewünscht, können die Kulturgemische in den Kolben vereinigt, filtriert und das Sistomycosin nach dem im Beispiel i beschriebenen Verfahren isoliert werden. Beispiel 5 In mehrere Erlenmeyerkolben werden je 125 ccm Nährmedium, bestehend aus 10/, Maltose, 10/, Maiseinweichwasser, o,2 °/o Dikaliumphosphat, o,5 % Natriumchlorid und Rest Wasser, eingestellt mit io n-Natronlauge auf PH 7,5, eingebracht und die Kolben mit mittels Gaze bedeckter Baumwolle verschlossen. Die Kolben mit dem Nährmedium werden, wie im Beispiel 4 beschrieben, sterilisiert, beimpft und gezüchtet. Am Ende wird das Mycel durch Filtration entfernt, und die Kulturflüssigkeiten werden vereinigt. Die Kulturflüssigkeit hat einen pH-Wert von etwa 6,35 und erhält, wie gefunden wurde, bei Untersuchung nach der turbidometrischen Methode hinreichend Sistomycosin, um bei einer Verdünnung von i : 32o eine 5o°/oige Wachstumshemmung von Candida albicans hervorzurufen. Das reine Sistomycosin kann aus der Kulturflüssigkeit nach der im Beispiel i beschriebenen Methode isoliert werden.

Claims (3)

  1. PATENTANSPRÜCHE: i. Verfahren zur Herstellung des Antibiotikums Sistomycosin, dadurch gekennzeichnet, daß ein Nährmedium mit Streptomyces viridosporus beimpft wird, das beimpfte Medium unter aeroben Bedingungen bei einer Temperatur von etwa 2o bis 35° etwa i bis 8 Tage gezüchtet und das so erzeugte Sistomycosin aus dem Kulturgemisch isoliert wird.
  2. 2. Verfahren nach Anspruch i, dadurch gekennzeichnet, daß die Entwicklung in submersem Zustand durchgeführt wird und ein Nährmedium mit einem Anfangs-pH-Wert zwischen 6 und 8,2 und mit assimilierbaren Kohlenstoffverbindungen, eiweißhaltigen Stoffen und Mineralsalzen verwendet wird.
  3. 3. Verfahren nach Anspruch 2, dadurch gekennzeichnet, daß das wäßrige Nährmedium einen Anfangs-PH-Wert von 7,3 bis 7,7 besitzt und die Temperatur während der Züchtung bei 25 bis 28° gehalten wird.
DEP7337A 1951-03-26 1952-03-25 Verfahren zur Herstellung des Antibiotikums Sistomycosin Expired DE916574C (de)

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