DE2912173A1 - Reaktor/separator-vorrichtung - Google Patents
Reaktor/separator-vorrichtungInfo
- Publication number
- DE2912173A1 DE2912173A1 DE19792912173 DE2912173A DE2912173A1 DE 2912173 A1 DE2912173 A1 DE 2912173A1 DE 19792912173 DE19792912173 DE 19792912173 DE 2912173 A DE2912173 A DE 2912173A DE 2912173 A1 DE2912173 A1 DE 2912173A1
- Authority
- DE
- Germany
- Prior art keywords
- column
- reactor
- matrix
- binding
- separator
- Prior art date
- Legal status (The legal status is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the status listed.)
- Granted
Links
Classifications
-
- B—PERFORMING OPERATIONS; TRANSPORTING
- B04—CENTRIFUGAL APPARATUS OR MACHINES FOR CARRYING-OUT PHYSICAL OR CHEMICAL PROCESSES
- B04B—CENTRIFUGES
- B04B5/00—Other centrifuges
- B04B5/04—Radial chamber apparatus for separating predominantly liquid mixtures, e.g. butyrometers
- B04B5/0407—Radial chamber apparatus for separating predominantly liquid mixtures, e.g. butyrometers for liquids contained in receptacles
- B04B5/0414—Radial chamber apparatus for separating predominantly liquid mixtures, e.g. butyrometers for liquids contained in receptacles comprising test tubes
- B04B5/0421—Radial chamber apparatus for separating predominantly liquid mixtures, e.g. butyrometers for liquids contained in receptacles comprising test tubes pivotably mounted
-
- G—PHYSICS
- G01—MEASURING; TESTING
- G01N—INVESTIGATING OR ANALYSING MATERIALS BY DETERMINING THEIR CHEMICAL OR PHYSICAL PROPERTIES
- G01N33/00—Investigating or analysing materials by specific methods not covered by groups G01N1/00 - G01N31/00
- G01N33/48—Biological material, e.g. blood, urine; Haemocytometers
- G01N33/50—Chemical analysis of biological material, e.g. blood, urine; Testing involving biospecific ligand binding methods; Immunological testing
- G01N33/53—Immunoassay; Biospecific binding assay; Materials therefor
- G01N33/536—Immunoassay; Biospecific binding assay; Materials therefor with immune complex formed in liquid phase
- G01N33/537—Immunoassay; Biospecific binding assay; Materials therefor with immune complex formed in liquid phase with separation of immune complex from unbound antigen or antibody
- G01N33/538—Immunoassay; Biospecific binding assay; Materials therefor with immune complex formed in liquid phase with separation of immune complex from unbound antigen or antibody by sorbent column, particles or resin strip, i.e. sorbent materials
-
- Y—GENERAL TAGGING OF NEW TECHNOLOGICAL DEVELOPMENTS; GENERAL TAGGING OF CROSS-SECTIONAL TECHNOLOGIES SPANNING OVER SEVERAL SECTIONS OF THE IPC; TECHNICAL SUBJECTS COVERED BY FORMER USPC CROSS-REFERENCE ART COLLECTIONS [XRACs] AND DIGESTS
- Y10—TECHNICAL SUBJECTS COVERED BY FORMER USPC
- Y10S—TECHNICAL SUBJECTS COVERED BY FORMER USPC CROSS-REFERENCE ART COLLECTIONS [XRACs] AND DIGESTS
- Y10S435/00—Chemistry: molecular biology and microbiology
- Y10S435/975—Kit
-
- Y—GENERAL TAGGING OF NEW TECHNOLOGICAL DEVELOPMENTS; GENERAL TAGGING OF CROSS-SECTIONAL TECHNOLOGIES SPANNING OVER SEVERAL SECTIONS OF THE IPC; TECHNICAL SUBJECTS COVERED BY FORMER USPC CROSS-REFERENCE ART COLLECTIONS [XRACs] AND DIGESTS
- Y10—TECHNICAL SUBJECTS COVERED BY FORMER USPC
- Y10S—TECHNICAL SUBJECTS COVERED BY FORMER USPC CROSS-REFERENCE ART COLLECTIONS [XRACs] AND DIGESTS
- Y10S436/00—Chemistry: analytical and immunological testing
- Y10S436/804—Radioisotope, e.g. radioimmunoassay
-
- Y—GENERAL TAGGING OF NEW TECHNOLOGICAL DEVELOPMENTS; GENERAL TAGGING OF CROSS-SECTIONAL TECHNOLOGIES SPANNING OVER SEVERAL SECTIONS OF THE IPC; TECHNICAL SUBJECTS COVERED BY FORMER USPC CROSS-REFERENCE ART COLLECTIONS [XRACs] AND DIGESTS
- Y10—TECHNICAL SUBJECTS COVERED BY FORMER USPC
- Y10S—TECHNICAL SUBJECTS COVERED BY FORMER USPC CROSS-REFERENCE ART COLLECTIONS [XRACs] AND DIGESTS
- Y10S436/00—Chemistry: analytical and immunological testing
- Y10S436/807—Apparatus included in process claim, e.g. physical support structures
-
- Y—GENERAL TAGGING OF NEW TECHNOLOGICAL DEVELOPMENTS; GENERAL TAGGING OF CROSS-SECTIONAL TECHNOLOGIES SPANNING OVER SEVERAL SECTIONS OF THE IPC; TECHNICAL SUBJECTS COVERED BY FORMER USPC CROSS-REFERENCE ART COLLECTIONS [XRACs] AND DIGESTS
- Y10—TECHNICAL SUBJECTS COVERED BY FORMER USPC
- Y10S—TECHNICAL SUBJECTS COVERED BY FORMER USPC CROSS-REFERENCE ART COLLECTIONS [XRACs] AND DIGESTS
- Y10S436/00—Chemistry: analytical and immunological testing
- Y10S436/815—Test for named compound or class of compounds
- Y10S436/817—Steroids or hormones
- Y10S436/818—Human chorionic gonadotropin
Landscapes
- Health & Medical Sciences (AREA)
- Immunology (AREA)
- Life Sciences & Earth Sciences (AREA)
- Engineering & Computer Science (AREA)
- Molecular Biology (AREA)
- Biomedical Technology (AREA)
- Chemical & Material Sciences (AREA)
- Hematology (AREA)
- Urology & Nephrology (AREA)
- Food Science & Technology (AREA)
- Biochemistry (AREA)
- Cell Biology (AREA)
- Biotechnology (AREA)
- Medicinal Chemistry (AREA)
- Physics & Mathematics (AREA)
- Analytical Chemistry (AREA)
- Microbiology (AREA)
- General Health & Medical Sciences (AREA)
- General Physics & Mathematics (AREA)
- Pathology (AREA)
- Investigating Or Analysing Biological Materials (AREA)
- Automatic Analysis And Handling Materials Therefor (AREA)
- Centrifugal Separators (AREA)
- Peptides Or Proteins (AREA)
- Organic Low-Molecular-Weight Compounds And Preparation Thereof (AREA)
Description
Die vorliegende Erfindung betrifft eine Reaktor/Separator-Vorrichtung
zur Verwendung in der automatisierten Festphasen-Immunoanalyse. Weiterhin ist die vorliegende Erfindung auf ein
Verfahren zur Durchführung von Radioimmunoanalysen gerichtet, wobei eine Säule verwendet wird, die eine Scheibe enthält, die
für Flüssigkeiten bei niedrigen Drücken undurchlässig ist, jedoch für Flüssigkeiten bei höheren Drücken in einem Zentrifugalfeld
durchlässig i'st.
Die Einführung der Radioimmunoanalyse (RIA) im Jahre 1959 durch Yalow und Berson (Nature, 184, 1648, 1959) als eine diagnostische
Indikatonnethode (tracer technique) zum Ersatz der damals
verwendeten langsamen bioanalytischen Methoden hat infolge ihrer Spezifität und extremen Empfindlichkeit viele Gebiete der klinischen
Prüfung und Forschung revolutioniert.
Die RIA-Technik basiert auf der Fähigkeit eines Antikörpers und
eines spezifischen Antigens, einen reversiblen Antigen-Antikörper-Kornplex
zu bilden. Die Analyse wird durchgeführt, indem eine bestimmte Menge eines radiomarkierten Antigens zu Proben hinzugegeben
wird, die Antiserum und bekannte Mengen eines."Standards-Antigens
enthalten. Während der Inkubation konkurrieren radiomarkiertes Antigen und nicht markiertes Antigen um eine begrenzte
Zahl von Bindungsstellen an dem Antikörper. Nach der Inkubation wird das an den Antikörper gebundene Antigen vom
freien Antigen abgetrennt und das Verhältnis des freien zum gebundenen kann in eine Dosis-Empfindlichkeitskurve (doseresponse
curve) eingetragen werden. Eine unbekannte Serumprobe kann dann nach dem gleichen Verfahren gemessen werden und die
Konzentration des Antigens durch Vergleich mit der Standard-Dosis-Empfindlichkeitskurve
bestimmt werden.
909840/0805
_ 5 —
Häufig sind die klassischen RIA-Methoden mühsam, zeitraubend
und enthalten Fehler verursachende Schritte, da sie vielfache Pipettierungen und Teströhrchen, doppelte Analysen, verlängerte
Inkubationszeiten und schwierige, ineffiziente Trennungsverfahren
erfordern.
Vor dem Zeitpunkt der vorliegoüen Anmeldung gab es im bekannten
Stand der Technik verschiedene Vorrichtungen zur Durchführung der Sättigungsanalyse. Beispielsweise beschreibt die US-PS
3 918 909 eine Vorrichtung, die ein röhrenförmiges Bauteil enthält, das an beiden Enden offen ist und am oberen Ende eine
Reaktionskammer enthält. Ein hydrophobes Filter befindet sich am Boden der Reaktionskammer und ist oberhalb einer Abscheidungskammer
gelegen. Bei der Durchführung der Analyse werden die Reaktanten vermischt und in der oberen Kammer inkubiert,
und dann durch das Filter durch Schütteln oder Anlegen einer Druckdifferenz zwischen der oberen und unteren Kammer in die
untere Kammer überführt. In der unteren Kammer trennt das Trennmittel eine radioaktive Substanz, die an einem konkurrierenden
Bindemittel gebunden ist, von deren nicht gebundener Form. Im Gegensatz zu der vorliegenden Erfindung ist die Vorrichtung
nicht direkt auf die automatisierte Festphasen-Immunoanalyse
anwendbar und sie verwendet auch keine Zentrifugalkräfte. Weiterhin werden die Reaktion und die Abtrennung in verschiedenen
Kammern durchgeführt.
Die US-PS 3 961 894 und die US-PS 4 039 652 beschreiben eine
Methode zur Bestimmung von Substanzen in Flüssigkeitsproben unter Verwendung einer Vorrichtung, die aus einer Säule besteht,
die eine unlösliche poröse Matrix enthält, in der sich immobilisierte Bindungspartner für die zu analysierenden Substanzen
befinden.
909840/080S
Die Vorrichtung ist ein zylindrischer Körper mit einer bestimmten Gestalt, die an einem Ende in einer sich verjüngenden Spitze
ausläuft. Im unteren Teil der Säule befindet sich eine poröse Polyäthylenscheibe, die die Matrix stützt. In der US-PS 4 039
ist ausgeführt, daß die Fließcharakteristiken der festen Phase vorzugsweise so sain sollen, daß sie unter dem Einfluß der
Schwerkraft schwammähnliche FIuJ ^.-Retentionseigenschaften zeigen.
Die in der Matrix zurückgehaltene Flüssigkeit kann dann durch Zugabe weiterer Flüssigkeit zu der Vorrichtung verdrängt
werden. Wenn einmal eine Flüssigkeitsphase zu der festen Phase hinzugefügt worden ist und darin festgehalten wird, sind die
Phasen in einem wirksamen Zustand der Inkubation, bis eine weitere Flüssigkeit, wie z.B. ein Puffer, hinzugefügt wird, um
die festgehaltene Flüssigkeit zu verdrängen. Wenn auch diese Vorrichtungen geeignet sind zur Durchführung der Inkubation
und Abtrennung in einer einzigenKammer, so verwenden sie doch keine wasserundurchlässige Scheibe oder Zentrifugalkomponenten.
Somit werden durch die Anwendung der vorliegenden Erfindung eines oder mehrere der folgenden Ziele erreicht. Ein Ziel der vorliegenden
Erfindung ist die Schaffung einer Reaktor/Separator-Vorrichtung
zur Verwendung in Immunoanalysensystemen. Ein weiteres Ziel der vorliegenden Erfindung ist die Schaffung einer
Vorrichtung zur Verwendung in analytischen Systemen, worin zum Mischen, Überführen und Abtrennen der Reaktanten Zentrifugalkräfte
verwendet v/erden. Ein weiteres Ziel ist die Schaffung einer Reaktor/Separator-Vorrichtung, die an ihrem Boden mit
einer wasserundurchlässigen Scheibe ausgerüstet ist. Ein weiteres Ziel der vorliegenden Erfindung ist die Schaffung einer
Vorrichtung zur Verwendung in automatisierten Festphasen-Radio-
909840/0805
immunoanalysen, wobei die Reaktion und Abtrennung in der gleichen
Kammer durchgeführt wird. Ein weiteres Ziel ist die Schaffung einer Vorrichtung, in der die wasserundurchlässige Rückhaltescheibe
durch Steigerung der Zentrifugalkraft durchlässig gemacht wird. Ein weiteres Ziel ist die Schaffung einer Reaktor/
Separator-Vorrichtung, die sicher transportiert und gelagert werden kann, bis sie eingesetzt viird. Ein weiteres Ziel der
vorliegenden Erfindung ist die Schaffung eines Verfahrens zur Durchführung von Immunoanalysen unter Verwendung der Separator/
Reaktor-Vorrichtungen. Diese und weitere Ziele werden dem Fachmann im Lichte der folgenden Offenbarung leicht offenbar.
Die Ziele und Gegenstände der Erfindung sowie ihre bevorzugten Ausfülirungsformen werden am besten unter Bezugnahme auf die
beigefügten Zeichnungen erläutert:
Fig. 1 "ist die Ansicht eines Querschnittes der erfindungsgemäßen Reaktor/Separator-Vorrichtung.
Fig. 2 ist die Ansicht eines Querschnittes, die von oben nach unten die aufeinanderfolgenden Reaktions-jlnkubations-
und Abtrennungsfunktionen einer Reaktor/Separator-Vorrichtung zeigt, die an einem handelsüblichen Instrument
zur Analyse flüssiger Materialien angebracht ist.
Fig. 1 zeigt unter weiterer Bezugnahme auf die Zeichnungen die Ansicht eines Querschnittes einer erfindungsgemäßen Reaktor/
Separator-Vorrichtung. Die Säule 10 kann aus nahezu jedem inerten
Material bestehen, wie z.B. Glas, Plastik und dergleichen. Ein bevorzugtes Material ist Polystyrol, das durchscheinend
hell ist und nicht leicht bricht. Die Säule 10 ist etwa 10 cm (4 inches) lang und hat einen äußeren Säulendurchmesser von
909*40/080-8
etwa 10 mm (0,4 inches). Sie kann etwa 2,5 ml Flüssigkeit enthalten.
Die Spitze 12 hat einen inneren Durchmesser von etwa 1 mm (0,04 inches) und der obere Vorratsbehälter 14 hat einen
äußeren Durchmesser von etwa 20 mm (0,8 inches). Der Stopfen verschließt die Spitze der Säule. Die. Rückhaltescheibe 18 ist
ein Filter, das für Flüssigkeiten bei atmosphärischen und niedrigen Zentrifugalkräften undurchlässig ist, jedoch bei hohen Zentrifugalkräften
für Flüssigkeiten durchlässig ist. Die Reaktionskammer 20 enthält das immobilisierte Reagens und Inkubat.
Fig. 2 ist die Ansicht eines Querschnittes einer der Reaktor/ Separator-Säulen 10, die mit einer wasserundurchlässigen Filterscheibe
18 ausgerüstet sind und mit einer Menge eines immobilisierten Antiserums in einer trockenen Matrix 22 beschickt sind.
Die Säulen, die das Reaktans enthalten, werden in Teströhrchen 24 gelagert, die der Reihe nach an ihrem äußeren Rand in Kugelsitzen
26 in einem Plastikring 28 aufgehängt sind. Die Serumproben und anderen Reagenzien 30 v/erden in die Ausnehmungen 32
und 34 einer Transferscheibe 36 gebracht, die der Reihe nach
auf einem Drehtisch des Centria-Systems ' angebracht ist, und automatisch befestigt wird, so daß jede Ausnehmung mit der öffnung
der entsprechenden Reaktor/Separator-Säule übereinstimmt. Dann wird ein Motor so in Betrieb genommen, daß durch die
Beschleunigung der entstandenen Zentrifugalkraft alle Proben und Reagenzien gleichzeitig auf die Reaktor/Separator-Säule,
die das immobilisierte Reaktanz 22 enthält, übertragen werden.
*)Handelsmarke für einen von der Union Carbide Corporation
vertriebenen Apparat für die Immunoanalyse.
909840/0805
In dem Fall, daß das immobilisierte Reaktans in einer dehydratisieren
Matrix, wie z.B. Polyacrylamid, eingeschlossen ist, findet gleichzeitig mit der Reaktion eine schnelle Rehydratisierung
statt. Nachdem eine geeignete Inkubationszeit verstrichen
ist, wird der Motor auf eine höhere Geschwindigkeit beschleunigt,
worauf ein geeignetes Eluierungsmittel 38 angewendet
wird, das einen hinreichenden hydrostatischen Druck ausübt, so daß das wasserundurchlässige Filter nunmehr frei
durchlässig wird. Dies wird erreicht, indem ein Strom einer geeigneten Flüssigkeit, z.B. Pufferlösung, aus einem Vorratsbehälter
über eine nicht gezeigte Eluierungsmittelpumpe durch eine Leitung 40 und einen Verteiler in die Aushöhlungen 32
und 34 der sich rasch drehenden Transferscheibe geleitet wird.
Die Pumpe be\7irkt eine bestimmte Fließrate des Eluierungsmittels
über einen bestimmten Zeitraum und die gesamte Menge dos Eluierungsmittels wird automatisch durch die Verteiler auf der
Scheibe -geteilt, die den Fluß in die Reaktor/Separatorsäule leiten. Alle Komponenten 42, die wasserlöslich und nicht an das
immobilisierte Reaktans gebunden sind, laufen frei durch das Filter und werden in den Teströhrchen gesammelt. In dem Falo.e,
daß eines der verwendeten Reagenzien radioaktiv ist, kann jedes Röhrchen von dem Trägerring entfernt werden und die Radioaktivität
des Inhalts gemessen werden. Analysen, die die vorliegende Erfindung in Verbindung mit dem Centria-System verwenden,
konnten in 7 Minuten durchgeführt werden. Dies erlaubt dem Benutzer die Durchführung kinetischer Festphasenanalysen (Nicht-Gleichgewichtsbedingungen)
, was mit anderen konventionellen Methoden bisher extrem schwer war.
Die Erfindung betrifft eine Reaktor/Separator-Vorrichtung und dessen Verwendung in der automatisierten Festphasen-Immuno-Schnellanalyse.
Die Vorrichtung besteht aus einer Kombination
909840/0305
- ίο -
(a) einer Säule, die an beiden Enden offen ist,
(b) in der Säule angeordneten Binde- und Filtervorrichtungen, die bei annähernd atmosphärischem Druck für wässrige Lösungen
undurchlässig sind, jedoch für wässrige Lösungen durcnlässig, wenn sie einerZentrifugalkraft ausgesetzt
werden, und
(c) einer Reaktions- und Trennkammer, die oberhalb der Binde-
und Filtervorrichtungen angeordnet ist, die eine Matrix für die Iiiunobilisierung zumindest eines Antigen-Antikörper-Systems
enthalten.
Die erfindungsgemäße Vorrichtung erlaubt, wenn sie in Verbindung
mit analytischen Instrumenten verwendet wird, die Zentrifugalkraft anwenden, die Leistungsfähigkeit der Apparatur auf die
automatisierte Festphasen-Immunoanalyse, Affinitätschromatographie und verschiedene Anwendungen auszudehnen, die auf dem
Zusanmenbringen oder der Umsetzung von zwei oder mehr Substanzen und der nachfolgenden Abtrennung beruhen.
Mehrteilige (multistation) analytische Vorrichtungen, die ein Zentrifugalfeld verwenden, sind kürzlich für die schnelle Mikroanalyse
einer großen Vielzahl von Flüssigkeiten, wie z.B. Körperflüssigkeiten, z.B. Blutserum, von Nahrungsmittelprodukten und
dergl. verfügbar geworden. Ein solches Instrument, das für die automatisierte Radiοimmunoanalyse entwickelt wurde, wird beispielsweise
durch die Union Carbide Corporation unter der Handelsmarke "Centria" vertrieben. Das Centria-System bietet verschiedene
interessante Merkmale zur Durchführung von Iinmuno-
909840/080S
analysen in gelöster Phase. Das System besteht aus:
a) einer automatischen Pipettiervorrichtung, die die Proben
und Reagenzien verteilt,
b) dem .rccilüsselbauteil (key module),' einem Inkubator/Separator,
in dem mtrifugalkraft verxi?endet wird, um gleichzeitig mehrfache
radioanalytische Inkubationen und Trennoperationen zu initiieren und zu beenden, und
c) einem Gammazähler/Computer, der drei Teströhrchen gleichzeitig
zählt und die Zählungen in Konzentrationseinheiten umwandelt.
Das Centria-System und dessen Verwendung ist in der US-PS 3 953 172 von S.I.Shapiro und G.Ertingshausen beschrieben.
Wie in dieser Druckschrift angegeben ist, verwendet das System Adsorptionssäulen, um die zu analysierenden Komponenten voneinander
zu trennen.
Wie bereits vorher erwähnt, besteht die Reaktor/Separator-Vorrichtung
der vorliegenden Erfindung aus einer Säule, die mit einer wasserundurchlässigen Binde- und Filtervorrichtung ausgerüstet
ist, die Reagenzien, wie immobilisierte Antisera,-Enzyme, Immunosorbenzien, Ionenaustauscher und derglo festhalten
kann. Die Inhaltsbestandteile der Säule können miteinander in Kontakt gebracht werden durch Zentrifugalkraft oder manuelle
Zugabe der eine wässrige Phase enthaltenden Reagenzien oder Reaktanten. Nach einer geeigneten Inkubationszeit wird eine
Zentrifugalkraft auf die Säule ausgeübt, die die wässrige Phase, durch die Filtervorrichtung, die wasserdurchlässig gemacht ist,
preßt. Bei dieser überführung wird die wasserunlösliche Phase von der löslichen Phase abgetrennt, von denen jede anschließend
gesammelt und analysiert werden kann.
909840/0 8 05
BAD ORIGINAL .
In der Praxis ist die Binde- und Filtervorrichtung in Form einer Scheibe ausgeführt, die aus einer Vielzahl poröser Folien hergestellt
sein kann. Solche Materialien können Polyäthylen, Polypropylen, Teflon oder ähnliches sein. Außerdem können anorganische
Materialien, wie Glas und Keramik ebenso in der vorliegenden Erfindung verwendet werden. In den Beispielen wird
Polyäthylenfolie mit einer Dicke von etwa 1,6 mm (1/16 inch)
und einer Porosität von 25 +, 3 Mikron verwendet. Es können
Porositäten von etwa 25 bis etwa 150 und vorzugsweise von 25 bis 40 Mikron verwendet werden. Aus den Folien werden Scheiben
von etwa 0,310 bis 0,316 (inches) äußerem Durchmesser geschnitten und Befestigungswerkzeug im tiefsten Abschnitt des
Säulenrohrs befestigt.
Die Säule selbst kann aus nahezu jedem Material bestehen, z.B. Glas, Plastik und dergl.. Ein bevorzugtes Material ist Polystyrol,
das durchscheinend, hell und beständig ist und das, falls erwünscht, zweckmäßig verwendet wird, um Antisera, Enzyme
und Affinitätsliganden durch physikalische Adsorption oder kovalente Metiiodologien zu immobilisieren. Eine Säule, die zur
Verwendung im Centria-System gedacht ist, hat eine Länge von etwa 100 mm (4 inches) und einen äußeren Rohrdurchmesser von
etwa 10 mm (0,4 inches). Sie kann etwa 2,5 ml Flüssigkeit enthalten. Die Spitze hat einen äußeren Durchmesser von etwa
1 mm (0,04 inches) und der obere Vorratsbehälter einen äußeren Durchmesser von 20 mm (0,8 inches). Andere Säulen als die oben
beschriebenen können leicht in kleinereroder größerer Ausführung
hergestellt werden.
Wie bereits erwähnt, ist die Binde- und Filtervorrichtung bei atmosphärischem Druck für wässrige Lösungen undurchlässig. Sie
ist ebenso bei niedrigen Drücken in einem Zentrifugalfeld für
909840/0805
Lösungen undurchlässig. Somit ist es möglich, Proben und Reagenzien
durch Zentrifugalkraft auf die Säule zu überführen und dort zu vermischen, ohne daß Flüssigkeit durch die Filterscheibe
hin&urclitritt. Erst bei Steigerung der Zentrifugalkraft wird
die Scheibe durchlässig.
Beispielsweise wurde gefunden, daß bei verwendung der Reaktor/
Separator-Vorrichtungen mit einer Transferseheibe des Centria-Systems
mit einem Radius von 13 cm die Filterscheibe bei Geschwindigkeiten von 100 U/Min o'der weniger für Flüssigkeiten
undurchlässig ist. daß sie jedoch bei der Zugabe von Eluierungsmitteln bei einer gesteigerten Geschwindigkeit von 200 U/Min
oder mehr durchlässig wird. Die angewendete Zentrifugalkraft, die die Scheibe durchlässig macht, ist selbstverständlich eine
Funktion der Geschwindigkeit des Instruments und der Entfernung der Vorrichtung vom Rotationszentrum.
Ein einzigartiges Merkmal des erfindungsgemäßen Reaktor/Separators
ist, daß es auf νerschiedene nützliche Art und Weisen
verwendet werden kann«, Beispielsweise kann die Vorrichtung als Reaktionskammer verwendet werden, wobei eine oder mehrere der
Reaktanten, wie z.B. Antikörper, Enzyme, Proteine, Affinitätsliganden,
Ionenaustauscher oder Zellen an den Wänden der Säule befestigt werden. Sie kann auch als Reaktionskammer verwendet
werden, die eine oder mehrere immobilisierte Reaktanten in oder auf der Matrix oder dem Träger, wie z.B. Polyacrylamid,
Sepharose, Agarose oder andere natürliche Materialien, synthetische Polymere, oder anorganische Materialien wie z.B. Glas oder
Keramiken enthält. Die Matrix kann beispielsweise in Form eines dehydrati si erteil Gels, einer festen Matrix, Perlen oder Pulver
ausgeführt sein. Zusätzlich kann sie als Reaktionskammer für
IO98A0/080S
Reaktionen unter Einschluß von Mikroorganismen, Viren, roten Blutkomponenten, Geweben und dergl. verwendet werden. Die Vorrichtung
ist ebenfalls brauchbar als Reaktionskammer, wenn sich bei der Vermischung von zwei oder mehr Lösungen eine unlösliche
Phase ergibt und von einer von ihnen darauf abfiltriert werden muß. Die erfindungsgemäße Vorrichtung kann, sowohl für die Festphasen-Immunoanalyse
von kurzer ^.Is auch von langer Dauer verwendet
werden. Jedoch ist sie besonders vorteilhaft für Reaktionszeiten von sehr kurzer Dauer, dth. weniger als 5 Minuten
und insbesondere, wenn zwei Phasen schnell getrennt werden müssen. Gerade bei diesen kurzen Reaktionszeiten sind manuelle Methoden
nicht schnell genug, um mehrfache Proben zu verarbeiten.
Die neue Reaktor/Separator-Vorrichtung kann zweckmäßig verwendet werden, um mit frei gebundenem Analyt aus Serumproteinen einen
enzymatischen Vorbehandlungsschritt durchzuführen und gleichzeitig
eine Immunoanalyse durchzuführen. Ein solches Verfahren kann auf folgende Weise durchgeführt werden: Der Reaktor/Separator
wird vorzugsweise mit einem Teil von Antiserum beschickt, das von dehydratisiertem Polyacrylamid eingeschlossen ist, das
Poren aufweist, die im hydratisierten Zustand genügend klein
sind, um Enzyme oder Proteine mit mittlerem und niedrigem Molekulargewicht auszuschließen. Mit dem immobilisierten Antiserum
ist eine genügende Menge eines proteolytischen Enzyms vermischt,
das das Serumprotein, das das interessierende Analyt bindet, denaturieren oder hydrolysieren (hydrolyze) kann. Die Serumproben
und Radiomarkierungen werden zentrifugal in den Reaktor/
909840/0805
Separator überführt. Nach der Hydratation des Gels und Solubilisierung
des Enzyms beginnen zwei Prozesse: die Freisetzung des proteingebundenen Analyts und dessen Diffusion und Bindung an
das Antiserum in der Gelmatrix. Nach einer vorbestimmten Zeit wird die Elution des Enzyms, ungebundenen Analyts und der Radioin arkierung durchgeführt. Wenn andererseits das proteolytische
Enzym in der wässrigen Lösung am stabilsten ist, kann der Vorbehandlungsschritt erfolgreich dadurch durchgeführt werden, daß
das Enzym und die Serumproben in die inneren und äußeren Ausnehmungen auf der Transferscheibe gebracht werden. Wenn der
Motor in Betrieb genommen wird, werden die Reagenzien gleichzeitig gemischt und in die Reaktor/Separator-Säule überführt,
wo die Inkubation stattfindet.
Es wurde gefunden, daß die erfindungsgemäß hergestellten Reaktor/
Separator-Vorrichtungen ideal zur Anwendung mit dem Centria-System bei radioimmunoanalytischen Versuchen für das thyreoidstimulierende
Hormon (TSH) geeignet sind. Der TSH-Test verwendet eine immunologische Reaktion, bei der markierte und nicht
markierte TSH-Holeküle um die Bindungsstellen auf einem spezifischen
Antikörpermolekül konkurrieren. Das Centria-System verwendet Zentrifugalkraft zur gleichzeitigen Vermischung der verschiedenen
Reagenzien und zur Abtrennung des gebundenen und freien Antigens in den Säulen nach der Inkubation, die einen
zweiten Antikörper auf den erfindungsgemäßen Festphasenträgern
enthalten. Die Bindevorrichtung oder Scheibe am Boden der Säule hat eine solche Porosität und Zusammensetzung, daß die gesamte
überführte Flüssigkeit in der Säule zur Absorption zurückbleibt. Nur nach Vergrößern der obigen Zentrifugalkraft, die zur Überführung
der Flüssigkeiten von der Scheibe benötigt werden, kommt Flüssigkeit aus der Säule heraus.
909840/0805
Die folgenden Beispiele sind lediglich Erläuterungen:
Wäßrige Standardkurve mit durch Polyacrylamid immobilisiertem
Angiotensin-I-Antiserum
Trockenes von Polyacrylamid umhülltes Angiotensin I~Antiserum
in einer Menge, die hinreicht, um etwa 50 % des markierten Antigens zu binden, wurde in eine Polystyrolsäule überführt,
die am Boden mit einer wasserundurchlässigen Polyäthylenscheibe ausgerüstet war. Ein 100 ul Anteil des Angiotensins I-( I),
verdünnt in Trisacetat-Puffer (0,1 M, pH 7,4, enthaltend 0,1 %
Rinderserumalbumin), das etwa 20 000 cpm pro 100 ul ergab,
wurde manuell in die äußere Aushöhlung der Centria-System-Transferscheibe pipettiert. Es wurden Standardlösungen von
Angiotensin I hergestellt, die 100 bis 0 ng/ml in Trisacetat-Puffer
enthielten und ein 300 pl Anteil jeder Standardkonzentration wurde doppelt in die entsprechenden äußeren Ausnehmungen
der Transferscheibe pipettiert. Die Säulen, die das gelumhüllte Antiserum enthielten, wurden in Teströhrchen gegeben
und gleichzeitig mit der Transferscheibe in den Inkubator/
Separator-Bauteil des Centria-Systems gegeben. Eine Zentrifugation
auf dem System von 15 Sekunden Dauer überführte die 400 pl der Lösung in die Säulen.
Nach einer 15-minütigen Inkubation wurde eine Zentrifugation
bei hoher Geschwindigkeit begonnen und 4 ml/Röhrchen Trisacetat-Puffer
zu der Transferscheibe hinzugefügt, und eine schnelle gleichzeitige Elution des nicht gebundenen Tracers vom Gel
begonnen. Die Elutionslösung, die das ungebundene Angiotensin
I-(i) enthielt, wurde in Röhrchen unter jeder Säule gesam-
909840/0805
melt und in dem Dreikammer (tri-well) Gammazählerbauteil des Centria-Systems gezählt. Die Säulen wurden ebenfalls gezählt,
um die gebundene Fraktion zu bestimmen.
Die Ergebnisse wurden wie folgt berechnet:
B/m Zählungen in der Säule (gebunden) __
' Zählungen in der Säule (gebunden) + Zählungen,eluiert
% gebunden = B/T X 100 %
Ώ/„ __ % gebunden,, ,jeder Standard «_____„ _»______>_>_„
' ο = % gebunden, wenn die Standard-Konzentration im Inkubal·
= 0 ng/ml
Aus den Daten wurde eine Dosis-Empfindlichkeitskurve (doseresponse
curve) gebildet und auf halblogarithmisehern Papier aufgetragen. Die nicht spezifische Bindung des Antigens am
Gel und der Säule wurde durch Einschließen von normalem Kaninchenserum in der Polyacrylamidmatrix und Inkubation und EIution
in ähnlicher Weise bestimmt. Es wurde gefunden, daß sie weniger als 4 % betrug.
Automatisierte Analyse für Cortisol unter Verwendung eines Wärme-Vorbehandlungsschrittes
Es wurden Cortisol-Standards hergestellt, indem zunächst Cortisol in 95 Soigem Äthanol und dann in 0,1 M Natriumphosphatpuffer
(pH 7,4, 0,05 % Tween 20) verdünnt wurde. Diese Standards wurden nacheinander mit Serum verdünnt, das mit Kohle vorbehandelt
worden war, um endogenes Cortisol, zu entfernen. Die klinischen Proben wurden mit den Standards auf Serumbasis mit einem
909840/0805
Denaturationspuffer (90 % 0,1 M Natriumphosphat bei pH 7,4,.
enthaltend 0,05 % Tween 20, 10 % Methanol) verdünnt und 30 Minuten
auf 60° erhitzt, um das Cortisol bindende Globulin (CBG) zu zerstören.
Nach dem Wärmevorbehandlungsschritt wurden die Standards und Proben zusammen mit radioinarkier+em Cortisol und Puffer (0,1 M
Natriumphosphat, enthaltend 0,05 % Tween 20 bei pH 7,4) auf die Transferscheibe des Centria-Systems mit einem Gesamtvolumen von
350 ul pipettiert. Der Inhalt der Scheibe wurde auf den Ring
von Röhrchen übertragen, der die Säulen trug, die von Polyacrylamid umhülltes Cortisol-Antiserum enthielten. Nach der
folgenden Inkubation von 15 Minuten wurde die nicht gebundene Fraktion von markiertem Cortisol durch Spülen mit 4 ml/Röhrchen
Phosphat/Tween-Puffer wie oben gespült. Die Säulen und Röhrchen wurden im Dreilochzähler des Centria-Systems gezählt und die so
erhaltenen Daten zur Aufstellung einer Standardkurve verwendet.
Die mit diesem Verfahren gemessenen klinischen Proben zeigten eine gute Näherung an die erwarteten Werte, insbesondere wenn sie
mit Daten verglichen wurden, die durch Lösungsphasenanalyse mit dem gleichen Antiserum erhalten wurden.·
Automatisierte Analyse für Cortisol unter Verwendung eines proteolytischen Enzyms zur Zerstörung des CBG
Die Analyse wurde in der gleichen Weise wie in dem obigen Beispiel
beschrieben, durchgeführt, außer daß der Wärmevorbehandlungsschritt und der Denaturationspuffer weggelassen xvurde.
Die Inaktivierung des Cortisol bindenden Globulins fand in den Aushöhlungen der Transferscheibe statt, indem 150 ul einer
909840/08 05
Pepsinlösimg (4 mg/ml in 0,14 N HCl, 4100 Einheiten/mg), 50 pl Cortisol-Standard auf Serumbasis, 100 pl Tracer und
50 ul 0,1 M Natriumphosphatpuffer (pH 7,4, 0,05 % Tween 20)
etwa 5 Minuten vorkubiert wurden, bevor sie auf die Säulen gegeben wurden, die das Polyacrylamid umhüllte Cortisol-Antiserum
enthielt.
Mit dieser Technik gemessene Kontrollsera stimmten mit den erwarteten
Werten überein. Die Wiedergewinnung, der Parallelismus und Analyse der Studien der Proteinabhängigkeit gaben ebenfalls
ausgezeichnete Ergebnisse.
SPRIA bei der Säulen-Reaktor/Separator-Entwicklung einer
wässrigen Standardkurve für Cortisol .
Eine Polystyrolsäule wird vor der Einführung von 1 ml Cortisol-Antiserum,
das mit 0,1 M Natriumphosphatpuffer bei pH 7,4 verdünnt wurde, mit einer porösen semipermeablen Scheibe aus
Polyäthylen ausgerüstet. Nach ein- bis zweistündiger Inkubation
mit der Antiserumlösung wurde die Säule von nicht absorbiertem
Antiserum freigesaugt. Normale Salzlösung (1,5 ml) wird zu der Säule hinzugegeben und unmittelbar abgesaugt. Die Spülprozedur
mit Salzlösung wird wiederholt, und die Säule dann mit 0,5 % Rinderserumalbumin (BSA)-Salzlösung gefüllt. Nach einer kurzen
Inkubation mit der BSA-Lösung (10-30 Minuten) wird die Säule
freigesaugt und an der Luft getrocknet. Die Säule enthält an ihrer inneren Wand das immobilisierte Antiserum und kann unmittelbar
für die Analyse von Cortisol verwendet werden oder kann unter WasserausSchluß bei Umgebungstemperatur gelagert
werden und innerhalb 2 bis 3 Monaten verwendet werden.
909840/0805
Eine Standardkurve für Cortisol wird entweder manuell oder mit
Hilfe des Inkubator/Separators des Centria-Systems und dern
Pipettierbauteil aufgestellt. Cortisol-( DJ.), Markierung,
""bekannte" Standardmengen von Cortisol und 0,1 M Natriumphosphat
(pH 7>4)-Puffer werden mit einer Gesamtmenge von 1,0 rnl in die
Aushöhlungen der Centria-Transferscheibe pipettiert. Die mit Antikörpar ausgekleideten Säulen werden in die Teströhr dien
gesetzt und mit der Transferscheibe in den Inkubator/Separator-Bauteil
des Centria-Systems gesetzt. Durch eine Zentrifugati on
von 15 Sekunden werden die 1 ml Reaktionskomponenten zu den mit Antikörper überzogenen Säulen überführt, wo die statische
Inkubation stattfindet. Nach 1 bis 2 Stunden werden die Säulen zentrifugiert, wobei 2 ml pro Röhrchen 0,1 M Natriumphosphatpuffer
zugegeben wird, um die Säule frei von nicht gebundenem Tracer zu spülen. Der Puffer, der den nicht gebundenen Tracer
trägt, wird in den Röhrchen, die die Säulen tragen, gesammelt. Der Centria-Gammazähler wird zur Bestimmung des gebundenen
125
Cortisol-( I) in den Röhrchen verwendet. Die nicht spezifische Bindung (NSB) des Tracers an die Polystyrolsäulenober«
flaehe wird bestimmt, indem die Antiserum-Inkubation aufgehoben
wird und eine Säule nur mit BSA behandelt wird.
Die Ergebnisse werden wie oben beschrieben berechnet.
Aus diesen Werten wird eine Standardkurve aufgestellt, die Prozentgebundenes gegen Konzentration des Cortisols in jedem
Standard angibt.
909840/0805
Affinitätschromatographische Abtrennung von Cortisol-Antiserum
aus Serumproteinen = .
Eine Menge von Cortisol, das kovalent an Sepharose-4-B gebunden
war, wurde in eine Polystyrolsäule gegeL?n, die mit einer PoIyäthylensclieibe
ausgerüstet war und in dem Centria-Inkubator/ Separator-System angeordnet war. Rohes Cortisol-Antiserum
(100 pl), verdünnt mit 300 pl 0,1 M Natriumphosphatpuffer,
pH 7»4, wurde zu der Reaktor/Separator-Säule hinzugegeben, die das immobilisierte Hapten (the immobilized hapten) enthielt. Nach
einem geeigneten Zeitraum wurde die Säule zentrifugiert und gleichzeitig mit Puffer eluiert, um die ungebundene Fraktion
zu entfernen. Die Serumproteine und nicht gebundenen Komponenten, die in den die Säulen tragenden Röhrchen gesammelt waren, wurden
entfernt. Stattdessen wurden saubere Teströhrchen an deren Stelle gesetzt und das Verfahren wiederholt, wobei der Phosphatpuffer
durch eine Säure oder eine chaotropische Lösung ersetzt wurde« Nach der Zentrifugal-Elution wurde das Cortisol-Antiserum aus
den Teströhrchen gewonnen.
Obwohl die Erfindung durch die obigen Beispiele erläutert wird, soll sie durch die darin verwendeten Materialien nicht beschränkt
werden. Die Erfindung umfaßt vielmehr den hierin offenbarten allgemeinen Erfindungsgedanken. Verschiedene Modifikationen
und Ausführungsformen der vorliegenden Erfindung können durchgeführt werden, ohne den Erfindungsgedanken zu verlassen.
909840/0805
Claims (1)
- SAT="- Γ λ r*'*/-\ LT27. März 1979 GzHa/Ra.Union CarMde Corporation, New York, NeY. 10017 / USA Reaktor/Separator-VorrichtungPatentansprüche1J Reaktor/Separator-Vorrichtung zur Verwendung in der automatisierten Festphasen-Iinmuno-Schnellanalyse, bei der die Komponenten durch Zentrifugalkraft gemischt, überführt und getrennt werden, dadurch gekennzeichnet, daß sie aus einer Kombination von(a) einer Säule, die an beiden Enden offen ist,(b) in der Säule angeordnete Binde- und Filtervorrichtungen, die bei annähernd atmosphärischem Druck für wässrige Lösungen undurchlässig sind, jedoch für wässrige Lösungen durchlässig, wenn sie einer Zentrifugalkraft ausgesetzt werden, und(c) einer Reaktions- und Trennkammer, die oberhalb der Binde- und Filtervorrichtung angeordnet ist, die zumindest eine Matrix für die Immobilisierung und Abtrennung zumindest einer Komponente eines Antigen-Antikörper-Systems enthält,besteht.2. Vorrichtung nach Anspruch 1, dadurch gekennzeichnet, daß die Säule von zylindrischer Gestalt ist und einen Mittelteil von im wesentlichen gleichförmigem Durchmesser, einem Bodenteil,9098^0/0805der sich zu einem kleineren Durchmesser als der mittlere Teil verjüngt, und einem oberen Teil, der von größerem Durchmesser ist als der mittlere Teil, aufweist, wobei die Binde- und Filtervorrichtungen in der Säule an einem Punkt angeordnet sind, an dem sich der mittlere Teil zu dem kleineren Durchmesser verengt.3. Vorrichtung nach Anspruch 1, dadurch gekennzeichnet, daß die Binde- und Filtervorrichtung die Form einer Scheibe aufweist.4. Vorrichtung nach Anspruch 3, dadurch gekennzeichnet, daß die Scheibe aus einem porösen Polj^äthylenmaterial besteht«5. Vorrichtung nach Anspruch 3, dadurch gekennzeichnet, daß die Scheibe eine Porosität von etwa 25 bis etwa 150 Mikron aufweist.6. Vorrichtung nach Anspruch 1, dadurch gekennzeichnet, daß die Matrix in der Reaktions- und Abtrennungskammer als Pulver vorliegt.7· Vorrichtung nach Anspruch 1, dadurch gekennzeichnet, daß die Matrix in der Reaktions- und Abtrennungskammer als Tablette vorliegt, die nach Kontakt mit der Lösung quillt und sich der Konfiguration der Säulen anpaßt.8. Vorrichtung nach Anspruch 1, dadurch gekennzeichnet, daß die Matrix an der inneren Wand der Reaktions- und Abtrennungskammer enthalten ist.909840/0805_ 3 —Verbesserung einer Immune-analyse, in der die Proben und Reagenzien durch Zentrifugalkraft gemischt und überführt werden, dadurch gekennzeichnet, daß die Proben und Reagenzien in die Reaktor/Separator-Vorrichtung nach Anspruch 1 überführt v/erden, die Proben und Reagenzien auf der Matrixwenigstens inkubiert werden und schlieMch/eine Komponente des Antigen-Antikörper-Systems daraus entfernt wird.9 0 9 S 4 Π / 0 R Π 5
Applications Claiming Priority (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
US05/892,321 US4244694A (en) | 1978-03-31 | 1978-03-31 | Reactor/separator device for use in automated solid phase immunoassay |
Publications (2)
Publication Number | Publication Date |
---|---|
DE2912173A1 true DE2912173A1 (de) | 1979-10-04 |
DE2912173C2 DE2912173C2 (de) | 1983-05-05 |
Family
ID=25399781
Family Applications (1)
Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
---|---|---|---|
DE2912173A Expired DE2912173C2 (de) | 1978-03-31 | 1979-03-28 | Reaktor/Separator-Vorrichtung |
Country Status (9)
Country | Link |
---|---|
US (1) | US4244694A (de) |
JP (1) | JPS5918663B2 (de) |
AU (1) | AU529435B2 (de) |
CA (1) | CA1134172A (de) |
CH (1) | CH631016A5 (de) |
DE (1) | DE2912173C2 (de) |
FR (1) | FR2421382A1 (de) |
GB (1) | GB2017910B (de) |
SE (1) | SE7902859L (de) |
Cited By (6)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
EP0052769A1 (de) * | 1980-11-25 | 1982-06-02 | Roche Diagnostics GmbH | Verfahren zur Durchführung analytischer Bestimmungen und hierfür geeignetes Rotoreinsatzelement |
WO1982003690A1 (en) * | 1981-04-10 | 1982-10-28 | Bjoerkman Rune | Apparatus for carrying out separation step in analyses,eg.in radioimmunoassays |
FR2530819A1 (fr) * | 1982-07-26 | 1984-01-27 | Seiko Instr & Electronics | Procede pour faire reagir un echantillon contenant une substance a l'etat de trace |
EP0152603A1 (de) * | 1984-02-23 | 1985-08-28 | Becton Dickinson and Company | Probe auf Liganden |
US5045193A (en) * | 1986-09-15 | 1991-09-03 | Hopital Maison Blanche | Device for detection, analysis, identification and characterization by filtration and immunofiltration |
DE102011050836A1 (de) * | 2011-06-03 | 2012-12-06 | Andreas Hettich Gmbh & Co. Kg | Zentrifugenrotor für ein schwenkbares Gehänge und Verfahren zur Herstellung |
Families Citing this family (61)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
FR2468909A1 (fr) * | 1979-10-26 | 1981-05-08 | Guigan Jean | Dispositif d'analyse simultanee |
IN154925B (de) * | 1979-10-26 | 1984-12-22 | Guigan Jean | |
FR2483078A1 (fr) * | 1980-05-23 | 1981-11-27 | Guigan Jean | Dispositif d'analyse simultanee perfectionne notamment pour liquide biologique |
JPS56147070A (en) * | 1980-04-17 | 1981-11-14 | Olympus Optical Co Ltd | Reaction container for discrete type automatic biochemical analyzer |
US4663296A (en) * | 1980-05-05 | 1987-05-05 | Hoffmann-La Roche Inc. | Multicuvette rotor for analyzer |
CA1152353A (en) * | 1980-05-05 | 1983-08-23 | Georges Revillet | Multicuvette rotor for analyser |
EP0047840B1 (de) * | 1980-09-15 | 1985-03-06 | Shandon Southern Products Limited | Zyto-Zentrifuge |
FR2496268A1 (fr) * | 1980-12-15 | 1982-06-18 | Guigan Jean | Dispositif autonome d'analyse simultanee et procede de mise en oeuvre |
US4425438A (en) | 1981-03-13 | 1984-01-10 | Bauman David S | Assay method and device |
US4442218A (en) * | 1981-05-27 | 1984-04-10 | Corning Glass Works | Method of measuring degree of partitioning |
JPS5836631A (ja) * | 1981-08-27 | 1983-03-03 | Mochida Pharmaceut Co Ltd | 固相と液相との反応方法及び装置 |
EP0073593A1 (de) * | 1981-09-01 | 1983-03-09 | E.I. Du Pont De Nemours And Company | Grössendiskriminierende heterogene Immunzusammensetzung |
US4486315A (en) * | 1982-03-11 | 1984-12-04 | Ortho Diagnostic Systems Inc. | Immunoassay microparticle washing system and method of use |
JPS58225354A (ja) * | 1982-06-24 | 1983-12-27 | Olympus Optical Co Ltd | 免疫分析法 |
JPS6081B2 (ja) * | 1982-07-26 | 1985-01-05 | サヌキ工業株式会社 | 自動抽出装置 |
AU2169483A (en) * | 1983-01-03 | 1984-07-05 | Warner-Lambert Company | Solid phase immunoassay |
US4871683A (en) * | 1985-04-18 | 1989-10-03 | Beckman Instruments, Inc. | Apparatus and method using a new reaction capsule |
US5338689A (en) * | 1987-08-24 | 1994-08-16 | Stiftung Fur Diagnostische Forschung | Method and card for detecting antigens and/or antibodies |
JPH087215B2 (ja) * | 1987-08-24 | 1996-01-29 | シュティフツング・フュア・ディアグノスティッシュ・フォルシュンク | 抗原および/又は抗体の検出方法および検出用の試験キット |
DE8800301U1 (de) * | 1988-01-13 | 1988-03-03 | Diekmann, Stephan, Dr., 3400 Goettingen | Trenn- oder Reaktionssäuleneinheit |
DE3843610A1 (de) * | 1988-01-13 | 1989-07-27 | Stephan Dr Diekmann | Trenn- oder reaktionssaeuleneinheit |
US5258309A (en) * | 1988-07-25 | 1993-11-02 | Cirrus Diagnostics, Inc. | Procedure for automated solid-phase immunoassay using a centrifuge tube |
US5098845A (en) * | 1988-07-25 | 1992-03-24 | Cirrus Diagnostics, Inc. | Device and procedure for automated solid-phase immunoassay |
JPH02151769A (ja) * | 1988-12-02 | 1990-06-11 | Jeol Ltd | 反応容器 |
US5976389A (en) * | 1988-12-30 | 1999-11-02 | Zavos; Panayiotis M. | Method of semen filtration |
JP2883347B2 (ja) * | 1989-03-15 | 1999-04-19 | 日本電子株式会社 | 自動免疫測定装置のカートリッジ洗浄装置 |
US5164090A (en) * | 1989-11-06 | 1992-11-17 | E. R. Squibb & Sons, Inc. | Process for the direct chromatographic analysis of drugs and metabolites in whole blood samples using internal surface reverse phase technology |
CA2068220A1 (en) * | 1989-11-08 | 1991-05-09 | Samuel Nochumson | Combined centrifuge tube and porous selection means for separation and recovery of biological materials |
AU635008B2 (en) * | 1989-12-13 | 1993-03-11 | Genelabs Diagnostics Pte Ltd | Analytical apparatus and method for automated blot assay |
US5783400A (en) * | 1990-04-27 | 1998-07-21 | Genzyme Corporation | Method for the isolation of lipoprotein allowing for the subsequent quantification of its mass and cholesterol content |
US5403745A (en) * | 1990-04-27 | 1995-04-04 | Genzyme Corporation | Determination of analytes in biological fluids in the presence of substances interfering with assays therefor |
US5877028A (en) * | 1991-05-29 | 1999-03-02 | Smithkline Diagnostics, Inc. | Immunochromatographic assay device |
US5998220A (en) * | 1991-05-29 | 1999-12-07 | Beckman Coulter, Inc. | Opposable-element assay devices, kits, and methods employing them |
US6168956B1 (en) | 1991-05-29 | 2001-01-02 | Beckman Coulter, Inc. | Multiple component chromatographic assay device |
US5725832A (en) * | 1992-03-25 | 1998-03-10 | Gundelsheimer; Peter | Laboratory test tubes for the dosing of liquids |
US5552064A (en) * | 1993-02-26 | 1996-09-03 | Ortho Diagnostic Systems, Inc. | Column agglutination assay and device using biphasic centrifugation |
US5578269A (en) * | 1993-06-11 | 1996-11-26 | Ortho Diagnostic Systems Inc. | Automated blood analysis system with an integral centrifuge |
US5594808A (en) * | 1993-06-11 | 1997-01-14 | Ortho Diagnostic Systems Inc. | Method and system for classifying agglutination reactions |
US5665558A (en) * | 1994-05-17 | 1997-09-09 | Gamma Biologicals, Inc. | Method and apparatus useful for detecting bloodgroup antigens and antibodies |
US5905028A (en) * | 1994-05-17 | 1999-05-18 | Gamma Biologicals, Inc. | Method and apparatus useful for detecting bloodgroup antigens and antibodies |
US6121054A (en) * | 1997-11-19 | 2000-09-19 | Trega Biosciences, Inc. | Method for separation of liquid and solid phases for solid phase organic syntheses |
US6846460B1 (en) | 1999-01-29 | 2005-01-25 | Illumina, Inc. | Apparatus and method for separation of liquid phases of different density and for fluorous phase organic syntheses |
GB9909630D0 (en) | 1999-04-28 | 1999-06-23 | Zeneca Ltd | Reactor |
US7390459B2 (en) * | 1999-12-13 | 2008-06-24 | Illumina, Inc. | Oligonucleotide synthesizer |
DK1239952T3 (da) * | 1999-12-13 | 2012-01-02 | Illumina Inc | Syntetiseringsindretning til oligonukleotider ved anvendelse af en centrifugalkraft |
US20020057996A1 (en) * | 2000-04-10 | 2002-05-16 | Bass Leland L. | Centrifuge tube assembly |
US6401552B1 (en) * | 2000-04-17 | 2002-06-11 | Carlos D. Elkins | Centrifuge tube and method for collecting and dispensing mixed concentrated fluid samples |
KR100538050B1 (ko) * | 2000-08-18 | 2005-12-21 | 아크레이 인코퍼레이티드 | 원심분리장치 및 이것을 구비한 분석장치 |
AU2003247689A1 (en) * | 2002-07-05 | 2004-01-23 | Aventis Pharmaceuticals Inc. | Apparatus and method for use in solid phase chemical synthesis |
GB0225631D0 (en) * | 2002-07-05 | 2002-12-11 | Aventis Pharma Inc | Apparatus and method for use in solid phase chemical synthesis |
DE102004006470B4 (de) * | 2004-02-06 | 2006-06-01 | Senova Gesellschaft für Biowissenschaft und Technik mbH | Absorptionsphotometrisches Verfahren zur quantitativen Stoffanalyse |
JP5055282B2 (ja) * | 2005-09-14 | 2012-10-24 | イルミナ インコーポレイテッド | 連続的なポリマー合成器 |
US7651869B2 (en) * | 2006-03-14 | 2010-01-26 | Research International, Inc. | Optical assay apparatus and methods |
JP2008268194A (ja) * | 2007-03-27 | 2008-11-06 | Toray Ind Inc | 分析方法 |
EP2367632B1 (de) * | 2008-12-23 | 2020-05-13 | Symbion Medical Systems Sàrl | Vorrichtung, analysesystem und verfahren zur durchführung eines agglutinationstests |
EP3108949A1 (de) * | 2009-03-02 | 2016-12-28 | Dignity Health | Diagnostische instrumente und verfahren zu ihrer verwendung |
EP2372366B1 (de) * | 2010-03-30 | 2019-07-03 | Symbion Medical Systems Sàrl | Analysestation mit Inkubationssystem |
CN103168222A (zh) * | 2010-07-14 | 2013-06-19 | 恰根有限公司 | 用于分离和/或纯化生物分子的装置 |
US10094749B2 (en) | 2010-07-14 | 2018-10-09 | Qiagen Gmbh | Storage, collection or isolation device |
GB201109203D0 (en) | 2011-06-01 | 2011-07-13 | Carclo Technical Plastics Ltd | Fluid flow control |
WO2014046942A1 (en) * | 2012-09-18 | 2014-03-27 | Cynvenio Biosystems, Inc. | Spin elute tube |
Citations (4)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
US3918909A (en) * | 1971-09-21 | 1975-11-11 | Philips Corp | Apparatus for performing saturation analyses |
US3961894A (en) * | 1973-04-24 | 1976-06-08 | Yissum Research Development Company | Test for determination of triiodothyronine |
DE2626823A1 (de) * | 1975-06-16 | 1976-12-23 | Union Carbide Corp | Verfahren zur herstellung einer adsorptionssaeule und ihre verwendung fuer radioimmunoassays |
US4039652A (en) * | 1973-10-11 | 1977-08-02 | Miles Laboratories, Inc. | Column method of immunoassay employing an immobilized binding partner |
Family Cites Families (6)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
CA983358A (en) * | 1971-09-08 | 1976-02-10 | Kenneth D. Bagshawe | Performance of chemical or biological reactions |
US3896217A (en) * | 1973-03-19 | 1975-07-22 | Summa Corp | Method and apparatus for radioimmunoassay with regeneration of immunoadsorbent |
CA1054050A (en) * | 1973-05-01 | 1979-05-08 | Stuart J. Updike | Gel column device and use in blood purification and immunoassay |
US3953172A (en) * | 1974-05-10 | 1976-04-27 | Union Carbide Corporation | Method and apparatus for assaying liquid materials |
US4128628A (en) * | 1976-03-12 | 1978-12-05 | University Of Virginia Alumni Patents Foundation | Automated immunoassay |
US4170454A (en) * | 1978-03-30 | 1979-10-09 | Union Carbide Corporation | Process for the preparation of a solid-phase radioimmunoassay support and use thereof |
-
1978
- 1978-03-31 US US05/892,321 patent/US4244694A/en not_active Expired - Lifetime
-
1979
- 1979-03-20 CA CA323,868A patent/CA1134172A/en not_active Expired
- 1979-03-28 DE DE2912173A patent/DE2912173C2/de not_active Expired
- 1979-03-30 JP JP54037152A patent/JPS5918663B2/ja not_active Expired
- 1979-03-30 CH CH300379A patent/CH631016A5/fr not_active IP Right Cessation
- 1979-03-30 SE SE7902859A patent/SE7902859L/xx not_active Application Discontinuation
- 1979-03-30 GB GB7911100A patent/GB2017910B/en not_active Expired
- 1979-03-30 FR FR7908016A patent/FR2421382A1/fr active Pending
- 1979-03-30 AU AU45644/79A patent/AU529435B2/en not_active Ceased
Patent Citations (4)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
US3918909A (en) * | 1971-09-21 | 1975-11-11 | Philips Corp | Apparatus for performing saturation analyses |
US3961894A (en) * | 1973-04-24 | 1976-06-08 | Yissum Research Development Company | Test for determination of triiodothyronine |
US4039652A (en) * | 1973-10-11 | 1977-08-02 | Miles Laboratories, Inc. | Column method of immunoassay employing an immobilized binding partner |
DE2626823A1 (de) * | 1975-06-16 | 1976-12-23 | Union Carbide Corp | Verfahren zur herstellung einer adsorptionssaeule und ihre verwendung fuer radioimmunoassays |
Cited By (6)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
EP0052769A1 (de) * | 1980-11-25 | 1982-06-02 | Roche Diagnostics GmbH | Verfahren zur Durchführung analytischer Bestimmungen und hierfür geeignetes Rotoreinsatzelement |
WO1982003690A1 (en) * | 1981-04-10 | 1982-10-28 | Bjoerkman Rune | Apparatus for carrying out separation step in analyses,eg.in radioimmunoassays |
FR2530819A1 (fr) * | 1982-07-26 | 1984-01-27 | Seiko Instr & Electronics | Procede pour faire reagir un echantillon contenant une substance a l'etat de trace |
EP0152603A1 (de) * | 1984-02-23 | 1985-08-28 | Becton Dickinson and Company | Probe auf Liganden |
US5045193A (en) * | 1986-09-15 | 1991-09-03 | Hopital Maison Blanche | Device for detection, analysis, identification and characterization by filtration and immunofiltration |
DE102011050836A1 (de) * | 2011-06-03 | 2012-12-06 | Andreas Hettich Gmbh & Co. Kg | Zentrifugenrotor für ein schwenkbares Gehänge und Verfahren zur Herstellung |
Also Published As
Publication number | Publication date |
---|---|
CA1134172A (en) | 1982-10-26 |
AU529435B2 (en) | 1983-06-09 |
US4244694A (en) | 1981-01-13 |
CH631016A5 (fr) | 1982-07-15 |
AU4564479A (en) | 1979-10-04 |
JPS54154397A (en) | 1979-12-05 |
DE2912173C2 (de) | 1983-05-05 |
GB2017910A (en) | 1979-10-10 |
SE7902859L (sv) | 1979-10-01 |
GB2017910B (en) | 1982-10-13 |
JPS5918663B2 (ja) | 1984-04-28 |
FR2421382A1 (fr) | 1979-10-26 |
Similar Documents
Publication | Publication Date | Title |
---|---|---|
DE2912173C2 (de) | Reaktor/Separator-Vorrichtung | |
DE3586983T2 (de) | Verfahren und vorrichtung fuer immunotest. | |
DE2522086C2 (de) | Reagenz zum Abtrennen und Bestimmen von in biologischen Fluiden vorhandenen AK:Ag-Komplexen | |
DE3882040T2 (de) | Verfahren und vorrichtungen zur durchführung von untersuchungen. | |
DE69126142T2 (de) | Verbessertes bestimmungsverfahren für liganden | |
DE69122832T2 (de) | Vorrichtung zur Durchführung einer raschen einfachen Handprüfung | |
EP0557288B1 (de) | Einwegreaktionsgefäss für die festphasenimmunanalytik und verfahren zur messung von über immunreaktionen bestimmmbare komponenten | |
DE3889833T2 (de) | Diagnostische Vorrichtung und Verfahren, gekennzeichnet durch einen gezielten Durchfluss. | |
DE3781180T2 (de) | Pruefung unter verwendung von bindungspaargliedern auf teilchen und auf einem filter oder einer membran. | |
DE68920140T2 (de) | Gerät und verfahren zur schnellen qualitativen und quantitativen bestimmung der anwesenheit eines reaktiven liganden in einer flüssigkeit. | |
DE69309152T2 (de) | Vorrichtung und Verfahren zur räumlich begrenzten Reaktion und Detektion | |
DE2751588C3 (de) | Verfahren zur Bestimmung eines Liganden oder der Liganden-Bindungskapazität in einem flüssigen Medium | |
DE2751589A1 (de) | Verfahren zur bestimmung eines liganden oder der liganden-bindungskapazitaet in einem fluessigen medium | |
EP1061369B1 (de) | Element, Verfahren und Kit zur Bestimmung eines Analyts in einer Flüssigkeit | |
DE2824742C2 (de) | ||
EP0634015B1 (de) | Einwegreaktionsgefäss für die festphasenimmunanalytik und verfahren zur messung von über immunreaktionen bestimmbaren komponenten | |
EP0797097B1 (de) | Partikel-Immunoassay mit kompakter Matrix | |
DE3889479T2 (de) | Mit Nieder-pI-Protein beschichtete Membranstruktur und Verfahren zu ihrer Herstellung und Verwendung. | |
DE69818706T2 (de) | Analytisches verfahren mit teilchen und testkit um das verfahren durchzuführen | |
DE3816953A1 (de) | Verfahren zur reversiblen aggregation von teilchen | |
JPH02140147A (ja) | 赤血球から血漿を分離する方法および装置 | |
DE2912239C2 (de) | Verfahren zur Herstellung eines Festphasenträgers für die Radioimmunoanalyse sowie dessen Verwendung in chromatographischen Säulen | |
EP2564196A1 (de) | Mikrofluidiksystem mit probenvorbehandlung | |
DE4041300A1 (de) | Verfahren zur trennung von komponenten in einer mischung | |
DE3782282T2 (de) | Festphasensystem mit tetrazoliumsalzen zum gebrauch in liganden-rezeptor assays. |
Legal Events
Date | Code | Title | Description |
---|---|---|---|
OAP | Request for examination filed | ||
OD | Request for examination | ||
D2 | Grant after examination | ||
8364 | No opposition during term of opposition | ||
8339 | Ceased/non-payment of the annual fee |