DE2443570B2 - Gereinigte und konzentrierte isolate von proteinen von sonnenblumenkernen, raps und kleiner saubohne und verfahren zu deren gewinnung - Google Patents
Gereinigte und konzentrierte isolate von proteinen von sonnenblumenkernen, raps und kleiner saubohne und verfahren zu deren gewinnungInfo
- Publication number
- DE2443570B2 DE2443570B2 DE19742443570 DE2443570A DE2443570B2 DE 2443570 B2 DE2443570 B2 DE 2443570B2 DE 19742443570 DE19742443570 DE 19742443570 DE 2443570 A DE2443570 A DE 2443570A DE 2443570 B2 DE2443570 B2 DE 2443570B2
- Authority
- DE
- Germany
- Prior art keywords
- solution
- residue
- ultrafiltration
- residue solution
- proteins
- Prior art date
- Legal status (The legal status is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the status listed.)
- Granted
Links
- 108090000623 proteins and genes Proteins 0.000 title claims description 37
- 102000004169 proteins and genes Human genes 0.000 title claims description 37
- 235000020238 sunflower seed Nutrition 0.000 title claims description 14
- 238000000605 extraction Methods 0.000 title claims description 10
- 239000012528 membrane Substances 0.000 claims description 43
- 239000007788 liquid Substances 0.000 claims description 31
- 238000000108 ultra-filtration Methods 0.000 claims description 31
- 150000002830 nitrogen compounds Chemical class 0.000 claims description 29
- 238000000034 method Methods 0.000 claims description 28
- 229910017464 nitrogen compound Inorganic materials 0.000 claims description 28
- XLYOFNOQVPJJNP-UHFFFAOYSA-N water Substances O XLYOFNOQVPJJNP-UHFFFAOYSA-N 0.000 claims description 18
- 239000000126 substance Substances 0.000 claims description 15
- 240000006677 Vicia faba Species 0.000 claims description 10
- 235000010749 Vicia faba Nutrition 0.000 claims description 10
- 235000002098 Vicia faba var. major Nutrition 0.000 claims description 10
- 238000005406 washing Methods 0.000 claims description 9
- 235000013312 flour Nutrition 0.000 claims description 8
- 239000011148 porous material Substances 0.000 claims description 8
- 238000000926 separation method Methods 0.000 claims description 7
- 241000196324 Embryophyta Species 0.000 claims description 6
- 235000013339 cereals Nutrition 0.000 claims description 4
- 239000000243 solution Substances 0.000 description 68
- 235000018102 proteins Nutrition 0.000 description 34
- HEMHJVSKTPXQMS-UHFFFAOYSA-M Sodium hydroxide Chemical compound [OH-].[Na+] HEMHJVSKTPXQMS-UHFFFAOYSA-M 0.000 description 24
- 239000000203 mixture Substances 0.000 description 22
- 239000012670 alkaline solution Substances 0.000 description 14
- GEHJYWRUCIMESM-UHFFFAOYSA-L sodium sulfite Chemical compound [Na+].[Na+].[O-]S([O-])=O GEHJYWRUCIMESM-UHFFFAOYSA-L 0.000 description 14
- 239000012141 concentrate Substances 0.000 description 10
- 241000208818 Helianthus Species 0.000 description 9
- 235000003222 Helianthus annuus Nutrition 0.000 description 9
- 239000012466 permeate Substances 0.000 description 9
- 239000000725 suspension Substances 0.000 description 8
- QJGQUHMNIGDVPM-UHFFFAOYSA-N nitrogen group Chemical group [N] QJGQUHMNIGDVPM-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 7
- 235000010265 sodium sulphite Nutrition 0.000 description 7
- IJGRMHOSHXDMSA-UHFFFAOYSA-N Atomic nitrogen Chemical compound N#N IJGRMHOSHXDMSA-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 6
- 235000004977 Brassica sinapistrum Nutrition 0.000 description 6
- 238000005119 centrifugation Methods 0.000 description 6
- 240000002791 Brassica napus Species 0.000 description 5
- 239000012460 protein solution Substances 0.000 description 5
- 238000004108 freeze drying Methods 0.000 description 4
- 239000012535 impurity Substances 0.000 description 4
- 238000001914 filtration Methods 0.000 description 3
- 229910052757 nitrogen Inorganic materials 0.000 description 3
- 238000001556 precipitation Methods 0.000 description 3
- 239000006228 supernatant Substances 0.000 description 3
- CSCPPACGZOOCGX-UHFFFAOYSA-N Acetone Chemical compound CC(C)=O CSCPPACGZOOCGX-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 2
- VEXZGXHMUGYJMC-UHFFFAOYSA-N Hydrochloric acid Chemical compound Cl VEXZGXHMUGYJMC-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 2
- 235000013305 food Nutrition 0.000 description 2
- 239000011521 glass Substances 0.000 description 2
- 150000002632 lipids Chemical class 0.000 description 2
- 239000000463 material Substances 0.000 description 2
- 239000002244 precipitate Substances 0.000 description 2
- 239000000047 product Substances 0.000 description 2
- 238000000746 purification Methods 0.000 description 2
- 239000007787 solid Substances 0.000 description 2
- 238000005063 solubilization Methods 0.000 description 2
- 230000007928 solubilization Effects 0.000 description 2
- 238000009987 spinning Methods 0.000 description 2
- 238000001694 spray drying Methods 0.000 description 2
- 238000005507 spraying Methods 0.000 description 2
- 241000894006 Bacteria Species 0.000 description 1
- 235000014698 Brassica juncea var multisecta Nutrition 0.000 description 1
- 235000006008 Brassica napus var napus Nutrition 0.000 description 1
- 235000006618 Brassica rapa subsp oleifera Nutrition 0.000 description 1
- 244000188595 Brassica sinapistrum Species 0.000 description 1
- CURLTUGMZLYLDI-UHFFFAOYSA-N Carbon dioxide Chemical compound O=C=O CURLTUGMZLYLDI-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 1
- 241000195493 Cryptophyta Species 0.000 description 1
- 244000068988 Glycine max Species 0.000 description 1
- 235000010469 Glycine max Nutrition 0.000 description 1
- 229920002488 Hemicellulose Polymers 0.000 description 1
- 208000002720 Malnutrition Diseases 0.000 description 1
- 108010064851 Plant Proteins Proteins 0.000 description 1
- 239000004952 Polyamide Substances 0.000 description 1
- KWYUFKZDYYNOTN-UHFFFAOYSA-M Potassium hydroxide Chemical compound [OH-].[K+] KWYUFKZDYYNOTN-UHFFFAOYSA-M 0.000 description 1
- 240000004808 Saccharomyces cerevisiae Species 0.000 description 1
- 238000003915 air pollution Methods 0.000 description 1
- 235000011089 carbon dioxide Nutrition 0.000 description 1
- 229920002678 cellulose Polymers 0.000 description 1
- 239000001913 cellulose Substances 0.000 description 1
- 229920002301 cellulose acetate Polymers 0.000 description 1
- 238000004140 cleaning Methods 0.000 description 1
- 238000004040 coloring Methods 0.000 description 1
- 235000012343 cottonseed oil Nutrition 0.000 description 1
- 238000004090 dissolution Methods 0.000 description 1
- 238000001035 drying Methods 0.000 description 1
- 235000006694 eating habits Nutrition 0.000 description 1
- 238000005516 engineering process Methods 0.000 description 1
- RTZKZFJDLAIYFH-UHFFFAOYSA-N ether Substances CCOCC RTZKZFJDLAIYFH-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 1
- 238000001125 extrusion Methods 0.000 description 1
- 239000000706 filtrate Substances 0.000 description 1
- 238000007710 freezing Methods 0.000 description 1
- 230000008014 freezing Effects 0.000 description 1
- 239000012510 hollow fiber Substances 0.000 description 1
- 230000001071 malnutrition Effects 0.000 description 1
- 235000000824 malnutrition Nutrition 0.000 description 1
- 238000006386 neutralization reaction Methods 0.000 description 1
- 208000015380 nutritional deficiency disease Diseases 0.000 description 1
- 230000020477 pH reduction Effects 0.000 description 1
- 239000000049 pigment Substances 0.000 description 1
- 235000021118 plant-derived protein Nutrition 0.000 description 1
- 229920002239 polyacrylonitrile Polymers 0.000 description 1
- 229920002647 polyamide Polymers 0.000 description 1
- 229920000098 polyolefin Polymers 0.000 description 1
- 229920000915 polyvinyl chloride Polymers 0.000 description 1
- 239000004800 polyvinyl chloride Substances 0.000 description 1
- 239000000843 powder Substances 0.000 description 1
- 238000003825 pressing Methods 0.000 description 1
- 229940088336 primor Drugs 0.000 description 1
- 239000002994 raw material Substances 0.000 description 1
- 238000011084 recovery Methods 0.000 description 1
- 238000001223 reverse osmosis Methods 0.000 description 1
- 239000002904 solvent Substances 0.000 description 1
- 238000003756 stirring Methods 0.000 description 1
- 229920001059 synthetic polymer Polymers 0.000 description 1
- 238000010257 thawing Methods 0.000 description 1
- YNJBWRMUSHSURL-UHFFFAOYSA-N trichloroacetic acid Chemical compound OC(=O)C(Cl)(Cl)Cl YNJBWRMUSHSURL-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 1
Classifications
-
- A—HUMAN NECESSITIES
- A23—FOODS OR FOODSTUFFS; TREATMENT THEREOF, NOT COVERED BY OTHER CLASSES
- A23J—PROTEIN COMPOSITIONS FOR FOODSTUFFS; WORKING-UP PROTEINS FOR FOODSTUFFS; PHOSPHATIDE COMPOSITIONS FOR FOODSTUFFS
- A23J1/00—Obtaining protein compositions for foodstuffs; Bulk opening of eggs and separation of yolks from whites
- A23J1/14—Obtaining protein compositions for foodstuffs; Bulk opening of eggs and separation of yolks from whites from leguminous or other vegetable seeds; from press-cake or oil-bearing seeds
-
- B—PERFORMING OPERATIONS; TRANSPORTING
- B01—PHYSICAL OR CHEMICAL PROCESSES OR APPARATUS IN GENERAL
- B01D—SEPARATION
- B01D61/00—Processes of separation using semi-permeable membranes, e.g. dialysis, osmosis or ultrafiltration; Apparatus, accessories or auxiliary operations specially adapted therefor
- B01D61/14—Ultrafiltration; Microfiltration
- B01D61/145—Ultrafiltration
-
- B—PERFORMING OPERATIONS; TRANSPORTING
- B01—PHYSICAL OR CHEMICAL PROCESSES OR APPARATUS IN GENERAL
- B01D—SEPARATION
- B01D63/00—Apparatus in general for separation processes using semi-permeable membranes
- B01D63/02—Hollow fibre modules
Landscapes
- Chemical & Material Sciences (AREA)
- Engineering & Computer Science (AREA)
- Chemical Kinetics & Catalysis (AREA)
- Life Sciences & Earth Sciences (AREA)
- Water Supply & Treatment (AREA)
- Biochemistry (AREA)
- Food Science & Technology (AREA)
- Polymers & Plastics (AREA)
- Peptides Or Proteins (AREA)
- Separation Using Semi-Permeable Membranes (AREA)
- Fodder In General (AREA)
Description
ίο Man sucht heute nach neuen Proteinquellen, um
sowohl der Unterernährung von mehr als der Hälfte der Weltbevölkerung abzuhelfen als auch den Bedarf auf
den neuen Märkten zu decken, die sich aus der Veränderung der Ernährungsgewohnheiten in den
• 5 Industrieländern ergeben haben.
Unter den zur Zeit ausgenutzten neuen Proteinquellen wie Pflanzen, Algen, Bakterien und Hefen sind die
ölsaaten, insbesondere Sonnenblumen, Raps und Baumwollsaat, auf Grund ihres reichlichen Vorkom-
JO mens und ihres derzeitigen niedrigen Marktpreises die
Ausgangsmaterialien der Wahl. Bekannt sind bereits Verfahren zur Gewinnung von Proteinen aus Sonnenblumen.
Als Beispiele sind das sogenannte Fällungs-Waschverfahren, das von Gheyasuddin, Cater
und Mattil in Food Technology, 24 (1970), 272 beschrieben wird, und andere ähnliche Verfahren zu
nennen. Diese Verfahren besiehen aus den folgenden wesentlichen Stufen:
a) Löslichmachung der im Preßrückstand der Sonnenblumenkerne
enthaltenen Proteine auf aiakalischem Wege mit einer Natriumhydroxydlösung, die
Natriumsulfit enthält.
b) Klären der hierbei erhaltenen Suspension durch Zentrifugieren oder Dekantieren, wodurch es
möglich ist, die alkalische Proteinlösung vom festen Rückstand, der im wesentlichen aus Cellulose und
Hemicellulosen besteht, abzutrennen.
c) Ausfällung der in der alkalischen Lösung enthaltenen Proteine durch Ansäuern bis zum isoelektrisehen
Punkt, der dem pH-Wert entspricht, bei dem die Löslichmachung der Sonnenblumenproteine
minimal ist.
d) Reinigung der Proteine in der in der vorherigen Stufe erhaltenen unlöslichen Form durch Waschen
mit anschließenden Zentrifugierungen oder Filtrationen und anschließendes Waschen mit Alkohol-Äther.
Die in dieser Weise isolierten Proteine werden beispielsweise durch Gefriertrocknen oder Versprühen
getrocknet.
Diese Verfahren erfordern keine komplizierten Apparaturen, jedoch den Einsatz großer Wasser- und
Lösungsmittelmengen, die den Beitrag der Anlage, in der dieses Verfahren durchgeführt wird, zur Luftverunreinigung
steigern. Außerdem geht ein nicht unbeachtlicher Teil der Sonnenblumenproteine im Wasser, mit
dem die in der Stufe c) erhaltene Fällung gewaschen wird, auf Grund der Löslichkeit eines Teils der Proteine
bei diesem pH-Wert verloren. Die nach dieser Behandlung erhaltenen Proteinisolate sind nicht genügend
gereinigt. Ferner sind die bei diesem Verfahren erhaltenen Isolate dunkel gefärbt, und sie erwiesen sich
auf Grund der Anwesenheit schleimiger Stoffe in konzentrierter alkalischer Lösung als ungeeignet zum
6S Spinnen, da diese Stoffe die Spinndüsen verstopfen.
Es sind bereits Verfahren zur Extraktion von Proteinen bekannt, die auf dem Verfahren der
umgekehrten Osmose oder Ultrafiltration beruhen.
Beispielsweise betrifft die USA.-Patentschrift 36 22 556
die Isolierung der Proteine aus Sonnenblumen nach einem Verfahren, das die folgenden Stufen umfaßt:
a) Alkalische Extraktion des aus den Sonnenblumenkernen erhaltenen pflanzlichen Materials.
b) Trennung der bei der Extraktion erhaltenen Phasen.
c) Ultrafiltration der alkalischen Phase auf einer semipermeablen Membran, deren Poren einen
Durchmesser zwischen 10 und 80 A haben, unter einem Druck von 0,7 bis 7 kg/cm2.
Die Stufen a) bis c) werden, in inerter Atmosphäre durchgeführt.
d) Gewinnung des Rückstandes, der die Proteine enthält, die frei von Stoffen sind, die sine
unerwünschte Färbung verleihen können.
Das Verfahren der USA.-Patentschrift 36 22 556 hat den Nachteil, daß bei der Extraktion und bei der
Trennung der Phasen in inerter Atmosphäre gearbeitet werden muß. Ferner macht diese USA.-Patentsehrift
keine Angaben darüber, wie die Ultrafiltration durchgeführt werden soll, um Proteinisolate zu erhalten, die
gleichzeitig einen hohen Gehalt an Trockenmasse, einen hohen Gehalt an stickstoffhaltigen Verbindungen und
einen sehr geringen Gehalt an Verunreinigungen haben.
Die Entfernung der farbigen Verunreinigungen in den aus Sonnenblumenkernen, Raps und kleiner Saubohne
extrahierten Proteinfraktionen wirft schwierige Probleme auf, die im Falle von Sojabohnen nicht im gleichen
Maße auftreten.
Die vorliegende Erfindung schaltet die Nachteile der bekannten Verfahren aus.
Die Erfindung betrifft gereinigte und konzentrierte Isolate von Proteinen von Sonnenblumenkernen, Raps
und kleiner Saubohne, erhalten durch wenigstens eine Ultrafiltration von durch alkalische Extraktion der
betreffenden Pflanze in Form von feingemahlenen Körnern, Mehl oder Preßrückstand erhaltenen Lösungen
durch eine semipermeable Membran mit einem Porendurchmesser von 0,1 bis 30 mu, Durchführung der
Ultrafiltration bis der Gehalt an Stickstoffverbindungen (N χ 6,25) in der Rückstandslösung 3-12% des
Gewichts der Rückstandslösung beträgt, Zusetzen von Wasser oder einer alkalischen Waschflüssigkeit, die im
wesentlichen den gleichen pH-Wert wie die Rück-Standslösung aufweist, zu der Rückstandslösung unter
weiterer Durchführung der Ultrafiltration in einer solchen Menge, daß, wenn das Volumen der durch die
Membran hindurchgetretenen Lösung dem Volumen der zugesetzten Flüssigkeit entspricht, die Konzentration
an Stickstoffverbindungen (N χ 6,25) in der Rückstandslösurig 70 bis 85% der gesamten Trockensubstanz
der Rückstandslösung beträgt, Durchführung der vorstehend genannten Stufen bei einer Temperatur
zwischen 2 und 300C, Einstellen der Temperatur der
gewaschenen Rückstandslösung auf einen Wert zwischen 20 und 6O0C und Fortsetzung der Ultrafiltration
bis die Konzentration der Stickstoffverbindungen (N χ 6,25) einen Wert über 85 bis 95% der gesamten
Trockensubstanz der Rückstandslösung erreicht hat.
Das Verfahren gemäß der Erfindung zur Gewinnung von gereinigten und konzentrierten Isolaten von
Proteinen von Sonnenblumen, Raps und kleiner Saubohne umfaßt die folgenden Stufen
1. Man unterwirft die in an sich bekannter Weise durch alkalische Auflösung der betreffenden
Pflanze in Form von feingemahlenem Samen, Mehl oder Preßkuchen erhaltenen Lösungen der Pflanzenproteine
bei einer Temperatur zwischen 2 und 300C wenigstens einer Ultrafiltration, indem man
die Lösung mit einer semipermeablen Membran, deren Poren einen Durchmesser zwischen 0,1 und
30 ιτιμ haben, in Berührung bringt, wobei man die
Ultrafiltration durchführt, bis der Gehalt der von der semipermeablen Membran zurückgehaltenen
und nachstehend als »Rückstand« bezeichneten Lösung an stickstoffhaltigen Stoffen (N χ 6,25)
zwischen 3 und 12 Gew.-% des Rückstandes liegt.
2. Man gibt dem Rückstand unter weiterer Durchführung der Ultrafiltration durch die Membran eine
Waschflüssigkeit in einer solchen Menge zu, daß, wenn das Volumen der durch die Membran
hindurchgetretenen Lösung dem Volumen der zugesetzten Flüssigkeit entspricht, die Konzentration
an stickstoffhaltigen Stoffen (N χ 6,25) in der Flüssigkeit, die nicht durch die Membran hindurchtritt,
oder der Rückstand 70 bis 85% der gesamten Trockenstoffe des Rückstandes darstellt.
3. Man s'.ellt die Temperatur des in dieser Weise gewaschenen Rückstandes auf einen Wert zwischen
20 und 6O0C ein und setzt die Ultrafiltration des gewaschenen Rückstandes fort, bis die stickstoffhaltigen
Stoffe (N χ 6,25) 85 bis 95 Gew.-% der gesamten Trockenstoffe ausmachen.
Den in dieser Weise isolierten endgültigen Rückstand kann man abschließend durch Gefriertrocknen oder
Sprühtrocknen trocknen oder bei einer Temperatur zwischen —20 und -8O0C einfrieren oder als solchen
verwenden.
Der erfindungsgemäß erhaltene Rückstand kann ohne besondere Behandlung den anschließenden Arbeitsgängen
des Strangpressens oder Spinnens mit dem Ziel der Herstellung von texturierten Eiweißstoffen
unterworfen werden.
Die aus dem getrockneten Rückstand als solchem oder nach teilweiser Neutralisation oder aus den durch
Fällen der konzentrierten Rückstandslösung am isoelektrischen Punkt, Abtrennen, Waschen und Trocknen
des Niederschlages erhaltenen Proteine können direkt in der menschlichen oder tierischen Nahrung verwendet
werden.
Schließlich gelingt erfindungsgemäß die Entfernung der gefärbten Verunreinigungen aus den aus Sonnenblumenkernen,
Raps und kleiner Saubohne extrahierten Proteine ohne die Notwendigkeit, komplizierte und
kostspielige Verfahren wie Arbeiten unter inerter Atmosphäre anzuwenden.
Die Erfindung wird nachstehend ausführlicher im Zusammenhang mit der Behandlung von Sonnenblumensamen
beschrieben.
Die Sonnenblumensamen werden beim Verfahren gemäß der Erfindung in Form von Kernen, Mehl oder
Preßkuchen verwendet. Vorzugsweise wird jedoch der Sonnenblumenkern-Preßkuchen verwendet. Die Flüssigkeit,
die in die Ultrafiltrationseinheit eintritt, steht im allgemeinen unter einem Druck zwischen 1 und
50 kg/cm2, und die Geschwindigkeit dieser Flüssigkeit an der Membran ist möglichst hoch und beträgt
beispielsweise etwa 1 bis 2 m/Sekunde.
Bei einer Variante des Verfahrens gemäß der Erfindung wird die Waschflüssigkeit, die aus Wasser
besteht, unmittelbar nach der Berührung der alkalischen Proteinlösung mit der semipermeablen Membran
zugesetzt.
Beispielsweise wird das Verfahren gemäß der Erfindung wie folgt durchgeführt:
a) Man suspendiert bei einer Temperatur zwischen 20 und 50°C, vorzugsweise bei etwa 40°C, den
Sonnenblumen-Preßkuchen η einer alkalischen Lösung, die gegebenenfalls Natriumsulfit enthält,
wobei die verwendete Menge der alkalischen Lösung das 8- bis 12fache, vorzugsweise das
lOfache des Gewichts des Preßkuchens beträgt und
die Lösung eine solche Alkalinität hat, daß das erhaltene Gemisch einen pH-Wert zwischen 8 und
12, vorzugsweise zwischen 10,5 und 11,0 hat;
b) man laugt das gemäß a) gebildete Gemisch unter Rühren 20 bis 60 Minuten, vorzugsweise 30
Minuten, aus und trennt vom Gemisch in an sich bekannter Weise den unlöslichen Rückstand ab.
Die erhaltene Lösung stellt die geklärte alkalische Lösung dar;
c) man unterwirft die geklärtp alkalische Lösung anschließend der Ultrafiltration mit einer semipermeablen
Membran, deren Poren einen Durchmesser zwischen 0,1 πιμ und 30 μ, vorzugsweise
zwischen 1 und 20 ιτιμ haben, bei einer Temperatur
zwischen 2 und 30° C, wobei der Druck der in die Ultrafiltrationszelle eintretenden Flüssigkeit zwischen
1 und 50 kg/cm2 und die Geschwindigkeit der Flüssigkeit an der Membran möglichst hoch ist;
d) man wiederholt die Stufe c), bis der Gehalt der als Rückstand verbleibenden Losung an stickstoffhaltigen
Stoffen (N χ 6,25) 3 bis 12%, vorzugsweise 5 bis 8 Gew.-% der Rückstandslösung beträgt;
e) man gibt zur Rückstandslösung bei einer Temperatür
zwischen 2 und 30° C eine alkalische Extraktionslösung, die den gleichen pH-Wert wie die
Rückstandslösung hat, oder Wasser in einer solchen Menge, daß, wenn das Volumen der durch
die Membran hindurchgetretenen Flüssigkeit dem zugefügten Volumen entspricht, die Konzentration
an stickstoffhaltigen Stoffen (N χ 6,25) in der über der Membran zurückbleibenden Flüssigkeit 70 bis
85% der gesamten Trockenmasse beträgt und
f) man erhöht anschließend die Temperatur der in dieser Weise gewaschenen Rückstandslösung auf
20 bis 60° C, vorzugsweise auf 40 bis 45° C und setzt
die Ultrafiltration fort, bis die stickstoffhaltigen Verbindungen (N χ 6,25) 85 bis 95 Gew.-% der
gesamten Trockenmasse ausmachen, und trocknet anschließend die in dieser Weise isolierte Rückstandslösung
durch Gefriertrocknen oder Sprühtrocknen oder friert sie bei einer Temperatur zwischen —20 und —80°C ein oder verwendet sie
als solche.
Die beim Verfahren gemäß der Erfindung erhaltenen Proteinlösungen (mit einem Gehalt an Trockensubstanz
von 15 bis 25%) haben einen Gehalt an Verunreinigungen von höchstens 15 Gew.-% und häufig unter 5
Gew.-% bei einem Gehalt an Stickstoffverbindungen von wenigstens 15%.
Die Viskosität dieser Lösungen beträgt wenigstens Poise unter den folgenden Bedingungen;
Temperatur 50C
Geschwindigkeitsgradient 3 Sek.-'
Scherspannung 25 Dyn/cm2
Scherspannung 25 Dyn/cm2
60
Auf Grund dieser physikalisch-chemischen Eigenschaften können die erhaltenen Proteine unmittelbar
ohne Nachbehandlung stranggepreßt oder versponnen werden.
Die in der Stufe a) verwendete alkalische Lösung ist eine Natriumhydroxydlösung (oder Kaliumhydroxydlösung),
die eine Konzentration von beispielsweise 0,1 bis 10 g/1 hat und in einer solchen Menge verwendet wird,
daß der pH-Wert der gebildeten Suspension zwischen 8 und 12, vorzugsweise zwischen 10,5 und U1O liegt.
Beispielsweise wird eine Natriumhydroxydlösung einer Konzentration von 4 g/l verwendet. Um die im
Sonnenblumenpreßkuchen vorhandenen Pigmente in reduzierter Form zu halten, werden der gebildeten
alkalischen Lösung im allgemeinen 0,5 bis 0,10 Gew.-% Natriumsulfit zugesetzt.
Bei einer Variante des Verfahrens gemäß der Erfindung wird der Sonnenblumenpreßrückstand in eine
wäßrige Natriumsulfitlösung gebracht, die eine Temperatur zwischen 20 und 50° C, vorzugsweise eine
Temperatur von 400C hat, und die hierbei gebildete
Suspension wird durch Zugabe einer konzentrierten Natriumhydroxydlösung auf einen pH-Wert zwischen 8
und 12, vorzugsweise zwischen 10,5 und 11,0 eingestellt.
Der unlösliche Rückstand wird von der alkalischen Proteinlösung beispielsweise durch Dekantieren und
Zentrifugieren abgetrennt.
Für das Verfahren gemäß der Erfindung werden semipermeable Membranen verwendet, die Poren mit
einem Durchmesser zwischen 0,1 und 30 πιμ, vorzugsweise
zwischen 1 und 20 πιμ enthalten und sowohl
gegen alkalische Lösungen, d. h. Lösungen, deren pH-Wert zwischen 8 und 12 liegt, als auch bei den
vorstehend für die Durchführung des Verfahrens genannten Temperaturen beständig sind. Die Art der für
die Durchführung des Verfahrens verwendeten Membranen hängt von den Arbeitsbedingungen, insbesondere
vom pH-Wert, von der gewünschten Molekültrennung und von den Arbeitstemperaturen ab. Um
beispielsweise eine Proteinlösung mit einem pH-Wert von 10 zu behandeln, können keine Membranen auf
Basis von Celluloseacetat verwendet werden, deren Eigenschaften unter pH 3 und über pH 8 verändert
werden. Hierzu müssen Membranen auf Basis von synthetischen Polymerisaten (Polyamide, Polyolefine,
Polyvinylchlorid, Polyacrylnitril usw.) oder beliebiger anderer Werkstoffe, die bei diesem pH-Wert eingesetzt
werden können, verwendet werden.
Ebenso werden je nach der gewünschten Molekültrennung (Größe der zu konzentrierenden und zu
reinigenden Proteinmoleküle und Größe der zu entfernenden Moleküle) Membranen mit einer wohldefinierten
Trenngrenze verwendet. Beim Verfahren gemäß der Erfindung werden vorteilhaft Membranen
mit einer Trenngrenze zwischen 2000 und 30 000 verwendet.
Wenn ein Volumen V\ der geklärten alkalischen Lösung des Sonnenblumenkernpreßrückstands mit
einer semipermeablen Membran zusammengeführt wird, werden zwei Flüssigkeiten erhalten: eine erste
Flüssigkeit, die durch die Membran hindurchtritt, als »Permeat« bezeichnet wird und eine Zusammensetzung
hat, die dicht bei derjenigen der eingesetzten Lösung liegt mit dem Unterschied, daß das Permeat keine
Proteine enthält, und eine zweite Flüssigkeit, die nicht durch die Membran hindurchtritt, als »Rückstand«
bezeichnet wird und eine Zusammensetzung hat, die dicht bei derjenigen der gegen die Membran geführten
Lösung liegt mit dem Unterschied, daß der Rückstand einen als »(Ν χ 6,25)« ausgedrückten Proteingehalt hat,
der höher ist als der Froteingehali der eingesetzten alkalischen Lösung.
Die nach einer oder mehreren Filtrationsoperationen im Ultrafiltrationskreis zurückbleibende Rückstandslö-
sung wird mit einem bestimmten Volumen (V3) Wasser
oder einer alkalischen Lösung, die den gleichen pH-Wert hat wie die Rückstandslösung, gewaschen.
Vorteilhaft wird die gleiche alkalische Lösung wie in der Stufe a) verwendet. Wie bereits erwähnt, wird das
Volumen V3 so gewählt, daß, wenn das Volumen der durch die Membran hindurchgetretenen Flüssigkeit
diesem Wert V3 entspricht, die Konzentration an Stickstoffverbindungen (N χ 6,25) in der Rückstandslösung
70 bis 85% der Gesamttrockensubstanz entspricht. Es wurde gefunden, daß diese Konzentration im
allgemeinen erreicht wird, wenn das Volumen V3 gleich dem Volumen V( der mit der Membran in Berührung
gebrachten ursprünglichen alkalischen Lösung ist, und wenn das Volumen V3 der alkalischen Extraktionslösung
in einer Menge pro Zeiteinheit zugesetzt wird, die der pro Zeiteinheit durch die Membran hindurchtretenden
Flüssigkeitsmenge gleich ist.
Die Konzentration der in dieser Weise erhaltenen Rückstandslösung wird bei einer Temperatur zwischen
20 und 60° C verfolgt. Es wurde gefunden, daß im allgemeinen das endgültige Volumen der nicht durch die
Membran hindurchtretenden Flüssigkeit V5 bis Vi0 des
Volumens Vi ausmacht. Der Gehalt an Trockenmasse in dieser Flüssigkeil liegt zwischen 12 und 30 g/100 g.
Es ist ferner möglich, die erhaltenen Proteine auszufällen, indem man die endgültige Rückstandslösung
auf einen pH-Wert einstellt, der im wesentlichen dem isoelektrischen pH-Wert (pH 4,6) der Proleine
entspricht, und diese ausgefällten Proteine zu waschen und durch Gefriertrocknen oder Versprühen zu
trocknen. Diese andere Variante der Erfindung ermöglicht die Gewinnung von Proleinpulvern von sehr
hoher Reinheit, wobei das Verhältnis von N χ 6,25 zur gesamten Trockensubstanz bei oder über 0,95 liegt.
Das Verfahren gemäß der Erfindung ist nicht nur auf feingemahlene Körner, Mehl oder den Preßrückstand
von Sonnenblumen, sondern auch auf feingemahlenes Saatgut, Mehl und Preßrückstände von Raps anwendbar.
Außerdem wurde das Verfahren erfolgreich zur Reinigung von Proteinen angewendet, die in der kleinen
Saubohne enthalten sind. Aus kleinen Saubohnen wurden Proteinisolate mit einem Verhältnis von
N χ 6,25/Gesamttrockensubstanz von wenigstens 0,80 erhalten.
Die Erfindung wird durch die folgenden Beispiele weiter erläutert.
1 kg handelsüblicher Preßrückstand von Sonnenblumenkernen mit folgender Zusammensetzung wurde
verwendet:
Gehalt an Trockensubstanz 91,5 g/100 g
Gehalt an Stickstoffverbindungen
(N χ 6,25) 33,5 g/100 g
Dieser Preßrückstand wurde in 10 kg Wasser suspendiert, das 50 g Natriumsulfit enthielt und dessen
Temperatur vorher auf 40°C gebracht worden war. Die Suspension wurde 30 Minuten bei 4O0C gerührt, wobei
die Lösung durch Zusatz einer 10 n-Natriumhydroxydlösung ständig bei pH 10,5 gehalten wurde. Die Lösung
wurde durch Zentrifugieren bei 2000 χ # geklärt und dann auf einer Glasfritte der Porosität Nr. 2 filtriert.
7,7 kg der erhaltenen Lösung, die 4,61 g Trockensubstanz pro 100 g und 2,64 g Stickstoffverbindungen
(N χ 6,25) pro 100 g enthielt, wurden auf 9°C gebracht und in einer Osmosezelle des Typs »Hollow Fiber 1« mit
einer Membran des Typs »PM 30«, am Anmeldetag von der Firma Amicon erhältlich, in Berührung gebracht Die
Osmose wurde so lange durchgeführt, bis das Volumen des Konzentrats die Hälfte des Volumens der
ursprünglichen Lösung ausmachte. Zum Konzentrat wurden anschließend 7,7 kg Wasser mit der gleichen
Geschwindigkeit, mit der das Permeat abfloß, zugesetzt. Nach dem Verbrauch der 7,7 kg Wasser wurde die
Temperatur des Konzentrats auf 30°C erhöht und das Konzentrat, während es mit der Membran in Berührung
war, weiter konzentriert, bis sein Volumen V7 des
volumens der ursprünglichen Lösung betrug. 1,1 kg des
Konzentrats, das 21,2 g Trockensubstanz pro 100 g und 18,3 g Stickstoffverbindungen pro 100 g enthielt, wurden
in einem Gemisch von Aceton und Trockeneis (Temperatur — 8O0C) schockgefroren. Das Produkt, das
nach dem Auftauen und Einstellen des Gehalts an Trockensubstanz auf 15 g/100 g und des pH-Werts auf
11,5 erhalten wurde, konnte erfolgreich gesponnen werden.
400 g PreGrückstand von entölten und geschälten Sonnenblumenkernen wurden verwendet. Der Preßrückstand
hatte die folgende Zusammensetzung:
Gehalt an Trockensubstanz 92,9%
Gehalt an Stickstoffverbindungen
(N χ 6,25) 46,7%
Dieser Preßrückstand wurde in 4 kg Wasser suspendiert, das 20 g Natriumsulfit enthielt. Die Temperatur
dieser Lösung war vorher auf 40° C gebracht worden. Die Suspension wurde 30 Minuten bei 40° C gerührt und
die Lösung durch Zusatz einer konzentrierten 10 n-Natriumhydroxydlösung ständig bei pH 10 gehalten. Die
Suspension wurde durch Zentrifugieren bei 2000 χ g geklärt. Die überstehende Flüssigkeit hatte nach
Filtration mit einer Glasfritte Nr. 2 die folgende Zusammensetzung:
Gehalt an Trockensubstanz 5,67%
Gehalt an Stickstoffverbindungen
(N χ 6,25) 3,31%
(N χ 6,25) 3,31%
3,3 kg der geklärten und filtrierten Lösung wurden auf 60C gekühlt. Diese Lösung wurde in einer Osmosezelle
des Typs »Hollow Fiber HUX 1« mit einer Membran des Typs »PM 30«, am Anmeldetag von der Fa. Amicon
erhältlich, in Berührung gebracht. Der Druck der in die Zelle eintretenden Flüssigkeit betrug 1 kg/cm2 und die
Geschwindigkeit der Flüssigkeit an der Membran 1 m/Sek. Gleichzeitig wurden dieser Lösung 4,95 kg
Wasser mit der gleichen Geschwindigkeit, mit der das Permeat abfloß, zugesetzt. Nach dem Durchlauf von
4,95 kg Permeat hatte dieses die folgende Zusammensetzung:
Gehalt an Trockensubstanz 0,97 g/100 g
Gehalt an Stickstoffverbindungen
(N χ 6,25) 0,013 g/100 g
Die Rückstandslösung, deren Stickstoffverbindungen 79% der Trockensubstanz ausmachten, wurde über der
Membran bei einer Temperatur von 90C konzentriert, bis das Volumen des Konzentrats die Hälfte des
Volumens der ursprünglichen Lösung betrug. Die Temperatur des Konzentrats wurde dann auf 30° C
erhöht. Es wurde weiter auf ungefähr V5 des Volumens der ursprünglichen Lösung konzentriert. Das Permeat
hatte während des Konzentrierens die folgende
709 544/344
Zusammensetzung:
Gehalt an Trockensubstanzen
Stickstoffgehalt
Stickstoffgehalt
0,74 g/100 g
0,016 g/100 g
0,016 g/100 g
Der nach beendeter Konzentrierung erhaltene Rückstand hatte die folgende Zusammensetzung:
Gehalt an Trockensubstanz 16,6 g/100 g
Gehalt an Stickstoffverbindungen
(N χ 6,25) 15,1 g/100 g
Ein Teil dieses Konzentrats wurde gefriergetrocknet. Die erhaltenen Proteine hatten die folgende Zusammensetzung:
Gehalt an Trockensubstanz 95,6 g/100 g
Gehalt an Stickstoffverbindungen 86,9 g/100 g
Der verbleibende Teil der Lösung wurde durch Zusatz von 1 η-Salzsäure auf pH 4,8 eingestellt. Die bei
diesem pH-Wert ausgefällten Proteine wurden mit Wasser gewaschen und gefriergetrocknet. Sie hatten die
folgende Zusammensetzung:
Gehalt an Trockensubstanz 96,6 g/100 g
Gehalt an Stickstoffverbindungen
(N χ 6,25) 94,3 g/100 g
Dieses Beispiel zeigt, daß es durch das Verfahren gemäß der Erfindung möglich ist, Proteinisolate, die
etwa 97 Gew.-% Stickstoffverbindungen (N χ 6,25) enthalten, zu erhalten.
60 g feingemahlene kleine Saubohnen der folgenden Zusammensetzung wurden verwendet:
Trockensubstanz | 92,6% |
Stickstoffverbindungen | 283% |
Lipide | 1,9% |
Dieses Mehl wurde in 600 ml Wasser suspendiert, das 3 g Natriumsulfit enthielt Die Temperatur dieser
Lösung war vorher auf 40° C gebracht worden. Die Suspension wurde 30 Minuten bei 35° C gerührt, wobei
sie durch Zusatz einer konzentrierten Natriumhydroxydlösung (10 n) ständig bei pH 11 gehalten wurde. Die
Lösung wurde durch Zentrifugieren bei 1500 χ g geklärt. Der erhaltene flüssige Überstand hatte die folgende
Zusammensetzung:
Trockensubstanz
Stickstoffverbindungen
Stickstoffverbindungen
4,64%
2,71%
2,71%
400 g der geklärten Lösung wurden bei einer Temperatur von 18°C mit einer »Amicon«-Membran
des Typs »PM 30« in einer Zelle des Typs »402«, am Anmeldetag von der Fa. Amicon erhältlich, in
Berührung gebracht. Die Flüssigkeit, die vor der Membran gerührt wurde, stand unter einem Stickstoffdruck
von 4 kg/cm2.
Die Menge der Rückstandslösung wurde wieder auf 400 g eingestellt, indem 500 g Wasser in drei Portionen
jeweils auf einmal zugesetzt wurden, nachdem 100 g, 200 g und 200 g Filtrat abgelaufen waren. Die
Ultrafiltration wurde fortgesetzt, bis das Konzentrat V4
des Volumens der ursprünglichen Lösung hatte. Das aufgefangene Permeat hatte die folgende Zusammensetzung:
Trockensubstanz
Stickstoffverbindungen
Stickstoffverbindungen
0,7% 0,1%
Das nach beendeter Konzentrierung erhaltene Konzentrat hatte die folgende Zusammensetzung:
Trockensubstanz 13%
Stickstoffverbindungen 10%
Dieses Beispiel zeigt, daß es durch das Verfahren gemäß der Erfindung möglich ist, Ultrafiltrationsrückstände
von Proteinen der kleinen Saubohne mit einem Verhältnis von N χ 6,25/Trockensubstanz von 0,8 zu
erhalten.
1200 g Preßrückstand von Raps, Sorte Primor, der folgenden Zusammensetzung wurden verwendet:
Trockensubstanz (E. S. T.) 91,0Gew.-%
Stickstoffverbindungen (N χ 6,25) 37,5 Gew.-% Verhältnis von N χ 6,25/Trocken-
substanz 0,41
Lipide 0,7 Gew.-%
Dieser Preßrückstand wurde in 12 kg Wasser bei 20°C suspendiert. Der pH-Wert wurde mit konzentrierter
10 n-Natriumhydroxydlösung auf 9,0 eingestellt. Die erhaltene Suspension wurde auf 40° C gebracht und
30 Minuten gerührt. Die Lösung wurde anschließend durch Zentrifugieren bei 1500xg geklärt. Der flüssige
Überstand hatte die folgende Zusammensetzung:
Trockensubstanz (E. S. T.) 4,05Gew.-%
Stickstoffverbindungen (N χ 6,25) l,78Gew.-% Verhältnis von N χ 6,25/Trockensubstanz
0,44
8 kg dieser geklärten Lösung wurden mit einer Membran des Typs »XM 50« in einer Osmose-Zelle des
Typs »Hollow Fiber«, am Anmeldetag von der Firma Amicon erhältlich, bei einer Temperatur von 2O0C in
Berührung gebracht. Der Druck der in die Zelle eintretenden Flüssigkeit betrug 1 kg/cm2 und die
Geschwindigkeit der Flüssigkeit an der Membran 1 m/Sekunde. Die Ultrafiltration wurde durchgeführt,
bis die Rückstandslösung V4 des Volumens der
ursprünglichen Lösung ausmachte.
Anschließend wurden dieser Lösung 8 kg Wasser mit der gleichen Geschwindigkeit, mit der das Permeat
abfloß, zugesetzt. Die Rückstandslösung wurde anschließend durch Ultrafiltration konzentriert, bis sie ein
Volumen von V6 des Volumens der Ausgangslösung hatte. Das insgesamt aufgefangene Permeat hatte die
folgende Zusammensetzung:
Trockensubstanz 1,15Gew.-%
In 12%igerTrichloressigsäure
löslicher Nichtproteinstickstoff 0,031 Gew.-%
löslicher Nichtproteinstickstoff 0,031 Gew.-%
Der nach beendeter Ultrafiltration erhaltene Rückstand hatte die folgende Zusammensetzung:
Trockensubstanz (E. S. T.) 11,4 Gew.-%
Stickstoffverbindungen (N χ 6,25) 8,7 Gew.-%
Dieses Beispiel zeigt, daß es durch Ultrafiltration durch Membranen möglich ist, als Produkte Rapsproteine
mit einem Verhältnis von N χ 6,35/Trockensubstanz
von wenigstens 0,76 zu erhalten.
Claims (3)
1. Gereinigte und konzentrierte Isolate von Proteinen von Sonnenblumenkernen, Raps und
kleiner Saubohne, erhalten durch wenigstens eine Ultrafiltration von durch alkalische Extraktion der
betreffenden Pflanze in Form von feingemahlenen Körnern, Mehl oder Preßrückstand erhaltenen
Lösungen durch eine semipermeable Membran mit einem Porendurchmesser von 0,1 bis 30 Γημ,
Durchführung der Ultrafiltration bis der Gehalt an Stickstoffverbindungen (N χ 6,25) in der Rückstandslösung 3 bis 12% des Gewichts der Rückstandslösung
beträgt, Zusetzen von Wasser oder einer alkalischen Waschflüssigkeit, die im wesentlichen
den gleichen pH-Wert wie die Rückstandslösung aufweist, zu der Rückstandslösung unter weiterer
Durchführung der Ultrafiltration in einer solchen Menge, daß, wenn das Volumen der durch die
Membran hindurchgetretenen Lösung dem Volumen der zugesetzten Flüssigkeit entspricht, die
Konzentration an Stickstoffverbindungen (N χ 6,25) in der Rückstandslösung 70 bis 85% der gesamten
Trockensubstanz der Rückstandslösung beträgt, Durchführung der vorstehend genannten Stufen bei
einer Temperatur zwischen 2 und 300C, Einstellen der Temperatur der gewaschenen Rückstandslösung
auf einen Wert zwischen 20 und 600C und Fortsetzung der Ultrafiltration bis die Konzentration
der Stickstoffverbindungen (N χ 6,25) einen Wert über 85 bis 95% der gesamten Trockensubstanz
der Rückstandslösung erreicht, hat.
2. Verfahren zur Gewinnung der gereinigten und konzentrierten Isolate von Proteinen von Sonnenblumenkernen,
Raps und kleiner Saubohne nach Anspruch 1, wobei man die durch alkalische Extraktion der betreffenden Pflanze in Form von
feingemahlenen Körnern, Mehl oder Preßrückstand erhaltenen Lösungen wenigstens einer Ultrafiltration
durch eine semipermeable Membran unterwirft und die Rückstandslösung während der Ultrafiltration
wäscht, dadurch gekennzeichnet, daß man die Ultrafiltration fortsetzt, bis der Gehalt an Stickstoffverbindungen
(N χ 6,25) in der Rückstandslösung 3 bis 12% des Gewichts der Rückstandslösung beträgt,
der Rückstandslösung unter weiterer Durchführung der Ultrafiltration Wasser oder eine alkalische
Waschflüssigkeit, die im wesentlichen den gleichen pH-Wert wie die Rückstandslösung aufweist, in
einer solchen Menge zusetzt, daß, wenn das Volumen der durch die Membran hindurchgetretenen
Lösung dem Volumen der zugesetzten Flüssigkeit entspricht, die Konzentration an Stickstoffverbindungen
(N χ 6,25) in der Rückstandslösung 70 bis 85% der gesamten Trockensubstanz der Rückstandslösung
beträgt, wobei man die vorstehend genannten Stufen bei einer Temperatur zwischen 2
und 30°C durchführt, und daß man die Temperatur der gewaschenen Rückstandslösung auf einen Wert
zwischen 20 und 600C einstellt und die Ultrafiltration !ortsetzt, bis die Konzentration der Stickstoffverbindungen
(N χ 6,25) einen Wert über 85 bis 95% der gesamten Trockensubstanz der Rücksiandsiösung
erreicht, wobei der Durchmesser der Poren der semipermeablen Membran 0,1 bis 30 Γημ beträgt.
3. Verfahren nach Anspruch 2, dadurch gekennzeichnet, daß man als semipermeable Membran eine
solche verwendet, deren Poren einen Durchmesser zwischen 1 und 20 ηιμ und eine Trenngrenze
zwischen 2000 und 30 000, vorzugsweise zwischen 10 000 und 30 000 aufweist.
Applications Claiming Priority (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
FR7333123A FR2257230B1 (de) | 1973-09-14 | 1973-09-14 |
Publications (3)
Publication Number | Publication Date |
---|---|
DE2443570A1 DE2443570A1 (de) | 1975-04-03 |
DE2443570B2 true DE2443570B2 (de) | 1977-11-03 |
DE2443570C3 DE2443570C3 (de) | 1978-06-22 |
Family
ID=9125059
Family Applications (1)
Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
---|---|---|---|
DE2443570A Expired DE2443570C3 (de) | 1973-09-14 | 1974-09-12 | Gereinigte und konzentrierte Isolate von Proteinen von Sonnenblumenkernen, Raps und kleiner Saubohne und Verfahren zu deren Gewinnung |
Country Status (9)
Country | Link |
---|---|
US (1) | US3993636A (de) |
JP (1) | JPS5718851B2 (de) |
CA (1) | CA1044071A (de) |
DE (1) | DE2443570C3 (de) |
FR (1) | FR2257230B1 (de) |
GB (1) | GB1471014A (de) |
IT (1) | IT1019291B (de) |
NL (1) | NL7412206A (de) |
SE (1) | SE412159B (de) |
Families Citing this family (25)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
US3995071A (en) * | 1975-06-23 | 1976-11-30 | Mead Johnson & Company | Aqueous purified soy protein and beverage |
US4072670A (en) * | 1976-10-26 | 1978-02-07 | Mead Johnson & Company | Low phytate isoelectric precipitated soy protein isolate |
US4091120A (en) * | 1976-11-15 | 1978-05-23 | Mead Johnson & Company | Liquid dietary product containing soy protein membrane isolate |
US4088795A (en) * | 1976-11-19 | 1978-05-09 | Mead Johnson & Company | Low carbohydrate oilseed lipid-protein comestible |
JPS53109966A (en) * | 1977-03-03 | 1978-09-26 | Sugiyama Sangyo Kagaku Kenk | Production of soybean protein |
US4420425A (en) * | 1982-08-02 | 1983-12-13 | The Texas A&M University System | Method for processing protein from nonbinding oilseed by ultrafiltration and solubilization |
JPS59206059A (ja) * | 1983-05-09 | 1984-11-21 | Kuraray Co Ltd | 微粒子の洗浄方法及び装置 |
US4624805A (en) * | 1984-09-27 | 1986-11-25 | The Texas A&M University System | Process for recovery of protein from agricultural commodities prior to alcohol production |
US5086166A (en) * | 1987-02-13 | 1992-02-04 | The Texas A&M University System | Protein foods and food ingredients and processes for producing them from defatted and undefatted oilseeds |
US4889921A (en) * | 1987-04-29 | 1989-12-26 | The University Of Toronto Innovations Foundation | Production of rapeseed protein materials |
US5366862A (en) * | 1990-02-14 | 1994-11-22 | Receptor Laboratories, Inc. | Method for generating and screening useful peptides |
FR2760751B1 (fr) * | 1997-03-17 | 2002-10-04 | Richard De Nyons | Procede de production d'un mixte de proteines tensioactives a partir des tourteaux d'huilerie |
JP2004521642A (ja) | 2000-11-21 | 2004-07-22 | カーギル インコーポレイテッド | 改変された脂肪種子物質 |
US7429399B2 (en) * | 2001-06-18 | 2008-09-30 | Solae, Llc | Modified oilseed material |
US6630195B1 (en) | 2000-11-21 | 2003-10-07 | Cargill, Incorporated | Process for producing oilseed protein products |
US20050202154A1 (en) * | 2002-05-28 | 2005-09-15 | Diosady Levente L. | Production of high-quality protein isolated from defatted meals of Brassica seeds |
US8048463B2 (en) * | 2001-05-29 | 2011-11-01 | Levente Laszlo Diosady | Production of high-quality protein isolated from oil seeds |
WO2002096214A1 (en) * | 2001-05-29 | 2002-12-05 | Levente Laszlo Diosady | Production of high-quality protein isolates from defatted meals of brassica seeds |
US7608292B2 (en) | 2003-10-14 | 2009-10-27 | Land O'lakes Purina Feed Llc | Method of processing soy protein |
US7354616B2 (en) * | 2003-11-25 | 2008-04-08 | Solae, Llc | Modified oilseed material with a high gel strength |
US20050220978A1 (en) * | 2004-03-31 | 2005-10-06 | Cargill, Incorporated | Dispersible protein composition |
MY149604A (en) | 2005-04-18 | 2013-09-13 | Schering Plough Ltd | C.perfringens alpha toxoid vaccine |
EP3669662A1 (de) | 2018-12-20 | 2020-06-24 | Avril | Proteinisolat aus sonnenblumenkernen und verfahren zur herstellung davon |
AU2022374444A1 (en) | 2021-11-01 | 2024-05-16 | Coöperatie Koninklijke Cosun U.A. | Fava protein composition |
EP4324331A1 (de) | 2022-08-05 | 2024-02-21 | Cereal Docks S.p.A. | Methode zur herstellung einer hellen proteinzutat aus sonnenblumensamen |
Family Cites Families (3)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
US3622556A (en) * | 1969-09-08 | 1971-11-23 | Procter & Gamble | Preparing light-colored protein isolate from sunflower meal by alkali extraction under an inert gas blanket followed by membrane ultrafiltration |
US3586662A (en) * | 1969-09-08 | 1971-06-22 | Procter & Gamble | Preparing light-colored protein isolate from sunflower meal by acid washing prior to alkaline extraction |
US3736147A (en) * | 1971-04-05 | 1973-05-29 | Coca Cola Co | Process for preparing protein products |
-
1973
- 1973-09-14 FR FR7333123A patent/FR2257230B1/fr not_active Expired
-
1974
- 1974-09-12 SE SE7411533A patent/SE412159B/xx not_active IP Right Cessation
- 1974-09-12 DE DE2443570A patent/DE2443570C3/de not_active Expired
- 1974-09-13 US US05/505,912 patent/US3993636A/en not_active Expired - Lifetime
- 1974-09-13 CA CA209,195A patent/CA1044071A/en not_active Expired
- 1974-09-13 GB GB4002074A patent/GB1471014A/en not_active Expired
- 1974-09-13 JP JP10589474A patent/JPS5718851B2/ja not_active Expired
- 1974-09-13 NL NL7412206A patent/NL7412206A/xx active Search and Examination
- 1974-09-16 IT IT53042/74A patent/IT1019291B/it active
Also Published As
Publication number | Publication date |
---|---|
US3993636A (en) | 1976-11-23 |
GB1471014A (en) | 1977-04-21 |
FR2257230A1 (de) | 1975-08-08 |
FR2257230B1 (de) | 1976-11-19 |
CA1044071A (en) | 1978-12-12 |
DE2443570A1 (de) | 1975-04-03 |
SE7411533L (de) | 1975-03-17 |
JPS5718851B2 (de) | 1982-04-19 |
JPS5082253A (de) | 1975-07-03 |
IT1019291B (it) | 1977-11-10 |
SE412159B (sv) | 1980-02-25 |
NL7412206A (nl) | 1975-03-18 |
DE2443570C3 (de) | 1978-06-22 |
Similar Documents
Publication | Publication Date | Title |
---|---|---|
DE2443570C3 (de) | Gereinigte und konzentrierte Isolate von Proteinen von Sonnenblumenkernen, Raps und kleiner Saubohne und Verfahren zu deren Gewinnung | |
DE2335535A1 (de) | Verfahren zum reinigen und konzentrieren einer von meeresalgen gewonnenen waessrigen polysaccharidloesung | |
DE2633068A1 (de) | Verfahren zum behandeln von anthocyanextrakten | |
CH632395A5 (de) | Diaetetisches produkt in fluessiger form, enthaltend sojaprotein-membran-isolat. | |
EP0387649A2 (de) | Verfahren zur Herstellung eines löslichen Kakaoerzeugnisses | |
DE202014011178U1 (de) | Im Wesentlichen aus Albuminen bestehendes Ultrafiltrationsretentat | |
DE3004526C2 (de) | ||
DE2737989A1 (de) | Verfahren zum klaeren einer xanthangummiloesung | |
DE2557782A1 (de) | Verfahren zur herstellung eines waermekoagulierbaren viskosen proteinproduktes | |
DE2145936C2 (de) | Verfahren zum Isolieren von Protein aus Fischen oder Fischprodukten | |
DE2546787A1 (de) | Verfahren zur herstellung von gereinigten proteinisolaten | |
DE68920472T2 (de) | Verfahren zum Extrahieren von Lipiden aus Zuckerrohr. | |
DE60107446T2 (de) | Gereinigtes cochinealpigment und verfahren zur herstellung desselben | |
DE2753478C2 (de) | ||
DE2807339C2 (de) | Verfahren zur Behandlung von sauren Hydrolysaten von pflanzlichen Materialen und die Verwendung der Verfahrensprodukte | |
DE4203315A1 (de) | Verfahren zur gewinnung von pankreatin | |
DE2855827C2 (de) | Verfahren zur Gewinnung von Human-Chorion-Somatomammotropin | |
DE3010972A1 (de) | Verfahren zur herstellung von mindestens 120ie/cm hoch 3 heparin und daneben nur wenig fette und sonstige verunreinigungen enthaltenden waessrigen auszuegen, insbesondere organauszuegen, konstanter zusammensetzung | |
DE2401428C2 (de) | Anisotrope Membrane für die umgekehrte Osmose und Verfahren zu ihrer Herstellung | |
DE2500399C3 (de) | Verfahren zur Gewinnung von Phytin | |
DE2407294C2 (de) | Verfahren zur Gewinnung von 5,7,3',4'-Tetrahydroxy-flavan-3,4-diol und seinen Oligomeren | |
DE553130C (de) | Verfahren zur Herstellung von Eiweissstoffen pflanzlichen Ursprungs | |
DE69814849T2 (de) | Isolierung von Kristallen von Alpha-L-aspartyl-L-phenylalaninmethyl ester | |
DE3213095A1 (de) | Verfahren zur isolierung von (+)-usninsaeure aus usnea barbata l. | |
DE1642592C (de) | Verfahren zur Gewinnung von praktisch Fremdoxydase freier Glucose oxydase |
Legal Events
Date | Code | Title | Description |
---|---|---|---|
C3 | Grant after two publication steps (3rd publication) | ||
8339 | Ceased/non-payment of the annual fee |