DE2363285A1 - Verfahren zur herstellung von lapfelsaeure durch mikrobiologische fermentation und mittel zur durchfuehrung des verfahrens - Google Patents
Verfahren zur herstellung von lapfelsaeure durch mikrobiologische fermentation und mittel zur durchfuehrung des verfahrensInfo
- Publication number
- DE2363285A1 DE2363285A1 DE2363285A DE2363285A DE2363285A1 DE 2363285 A1 DE2363285 A1 DE 2363285A1 DE 2363285 A DE2363285 A DE 2363285A DE 2363285 A DE2363285 A DE 2363285A DE 2363285 A1 DE2363285 A1 DE 2363285A1
- Authority
- DE
- Germany
- Prior art keywords
- malic acid
- fermentation
- production
- acid according
- acid
- Prior art date
- Legal status (The legal status is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the status listed.)
- Ceased
Links
Classifications
-
- C—CHEMISTRY; METALLURGY
- C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
- C12N—MICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
- C12N9/00—Enzymes; Proenzymes; Compositions thereof; Processes for preparing, activating, inhibiting, separating or purifying enzymes
- C12N9/88—Lyases (4.)
-
- C—CHEMISTRY; METALLURGY
- C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
- C12P—FERMENTATION OR ENZYME-USING PROCESSES TO SYNTHESISE A DESIRED CHEMICAL COMPOUND OR COMPOSITION OR TO SEPARATE OPTICAL ISOMERS FROM A RACEMIC MIXTURE
- C12P7/00—Preparation of oxygen-containing organic compounds
- C12P7/40—Preparation of oxygen-containing organic compounds containing a carboxyl group including Peroxycarboxylic acids
- C12P7/44—Polycarboxylic acids
- C12P7/46—Dicarboxylic acids having four or less carbon atoms, e.g. fumaric acid, maleic acid
-
- Y—GENERAL TAGGING OF NEW TECHNOLOGICAL DEVELOPMENTS; GENERAL TAGGING OF CROSS-SECTIONAL TECHNOLOGIES SPANNING OVER SEVERAL SECTIONS OF THE IPC; TECHNICAL SUBJECTS COVERED BY FORMER USPC CROSS-REFERENCE ART COLLECTIONS [XRACs] AND DIGESTS
- Y10—TECHNICAL SUBJECTS COVERED BY FORMER USPC
- Y10S—TECHNICAL SUBJECTS COVERED BY FORMER USPC CROSS-REFERENCE ART COLLECTIONS [XRACs] AND DIGESTS
- Y10S435/00—Chemistry: molecular biology and microbiology
- Y10S435/8215—Microorganisms
- Y10S435/822—Microorganisms using bacteria or actinomycetales
Landscapes
- Chemical & Material Sciences (AREA)
- Organic Chemistry (AREA)
- Life Sciences & Earth Sciences (AREA)
- Engineering & Computer Science (AREA)
- Health & Medical Sciences (AREA)
- Zoology (AREA)
- Wood Science & Technology (AREA)
- Genetics & Genomics (AREA)
- Bioinformatics & Cheminformatics (AREA)
- Microbiology (AREA)
- Biochemistry (AREA)
- General Engineering & Computer Science (AREA)
- General Health & Medical Sciences (AREA)
- Biotechnology (AREA)
- General Chemical & Material Sciences (AREA)
- Chemical Kinetics & Catalysis (AREA)
- Medicinal Chemistry (AREA)
- Molecular Biology (AREA)
- Biomedical Technology (AREA)
- Preparation Of Compounds By Using Micro-Organisms (AREA)
Description
SNAM PROGETTI S.ρ.Α., Mailand /Italien
Verfahren zur Herstellung von !-Apfelsäure durch mikrobiologische
Fermentation und Mittel zur Durchführung des Verfahrens
Die Erfindung betrifft ein Verfahren zur Herstellung von
!-Apfelsäure (1-Monohydroxybernsteinsäure), wobei man Fumarsäure als Ausgangsmaterial verwendet und eine mikrobiologische
Fermentation durchführt. Die Erfindung betrifft ebenfalls Mittel, um das Verfahren selbst durchzuführen.
Es ist bekannt, daß 1-Apfelsäure gemäß der folgenden Umsetzung
Fumarat + H2O 1-Malat
erhalten werden kann, wobei die Umsetzung durch das Enzym
Fumarase (Fumarathydratase oder 1-Maiathydrolyase) katalysiert
wird. Die Umsetzung kann in beiden Richtungen verlaufen, so daß es möglich ist, Fumarsäure aus !-Apfelsäure und 1-Apfelsäure
aus Fumarsäure herzustellen.
Im allgemeinen wird Fumarase aus Schweineherz extrahiert und aus vielen Mikroorganismen der verschiedenen Arten wie Coryne-
409828/0751
bacterium, Microbacterium, Proteous, Eseherichia, Micrococcus,
Bacillus, Lactobacillus, Pseudomonas, Candida, Aspergillus,
Saccharomyces gewonnen.
!-Apfelsäure, die auf solche Weise erhalten wird, muß dann
einem neuen Reinigungsverfahren unterworfen werden, damit man ein Produkt erhält, das den Reinheitsgrad besitzt, der
für seine Verwendung erforderlich ist.
Der vorliegenden Erfindung liegt die Aufgabe zugrunde, hochreine 1-Apfelsäure herzustellen, ohne daß eine Reinigungsbehandlung erforderlich ist. Überraschenderweise wurde gefunden,
daß man durch ein Fermentationsverfahren 1-Apfelsäure in hoher Reinheit herstellen kann, indem man einfach Mikrobenstämme
verwendet, die zuvor noch nicht als Fumarase-Quelle verwendet wurden und die zu dem Paracolobactrum-Genus gehören
und die als solche ebenfalls Gegenstand der vorliegenden Erfindung
sind.
Die Zellen, die man gegen Ende der Fermentation gewinnt, können als solche zur Durchführung der enzymatischen Umsetzung verwendet
werden. Gegenstand der vorliegenden Anmeldung ist somit ebenfalls ein Verfahren zur Herstellung von Fumarase,
wobei man Mikrobeustämme des Paracolobactrum-Genus verwendet.
Diese Stämme, die aus gemahlenen landwirtschaftlichen Proben isoliert werden, werden durch die Zahlen 743, 745 und 746
bezeichnet und besitzen die im folgenden beschriebenen Eigenschaften.
Sie wurden hinterlegt bei dem Central Bureau Voor Schimmelcultures-Baarn-Holland.
Einzelne, kleine Stiele, 0,5 bis 0,8 χ 1,0 bis 2,0 Mikron,
ohne Kapseln und Sporen, nicht mobil, gram-negativ.
Kolonien auf Nähragar (Difc-o)., dick, weiß, vollständig, feucht,
409828/07 51
schleimabsondernd. Kultur auf Nährmedium (Difco): trübe, mit
Membranenhäutchen und reichliche Abscheidung. Schrägplatten auf Nähragar (Difco): reichlich, fließend, weiß, feucht,
metallischer Glanz bzw. metallisches Leuchten. Infusion in Nährgelatine (Difco): dick, weiß, feucht, fließend auf der
Oberfläche, ohne Verflüssigung.
Biochemische Eigenschaften: Säure und Gas aus Glucose, Fructose, Galactose, Arabinose, Maltose, Mannit, Stärke.
Lactose wird innerhalb von 30 Tagen nicht fermentiert. Citrat wird als Kohlenstoffquelle verwendet. Methylrot-Versuch:
negativ. Voges-Proskauer-Versueh; positiv. Indol: negativ.
H2S: negativ. Nitrite gebildet durch Nitrate. Katalyse: positiv.
Lackmusmilch: Ansäuerung unter Koagulation, keine Peptonisierung, Wachstumsbedingungen: Sie wachsen gut auf Labormedien,
die optimale Temperatur beträgt ungefähr 25°C, aerob (fakultativ anaerob).
Vergleicht man die zuvor erwähnten Eigenschaften mit den Beschreibungen
in "Bergey's Manual of Determinative Bacteriology", 8. Auflage, so gehören die erfindungsgemäßen Stämme zu
Familie: Enterobacteriaceae Tribus : Escherichieae
Genus : Paracolobactrum
Species: Paracolobactrum aerogenoides.
Erfindungsgemäß wird 1-Apfelsäure auf fermentativem Weg hergestellt, indem man einen der zuvor erwähnten Bakterienstämme
verwendet und indem man als Kulturmedium eine Salzlösung, die Stickstoff- und Kohlenstoffquellen in Anwesenheit des Fumarate
enthält, verwendet.
Die Mikroorganismen können unter aeroben Bedingungen in Kulturmedien
kultiviert werden·, die Quellen für Kohlenstoff, Stickstoff und Mineralsalze enthalten, bei Temperaturen im Bereich
von 20 bis 40°C, bevorzugt im Bereich von 28 bis 30°C, während Zeiten von 18 bis 36 Stunden, bevorzugt 24 Stunden, und bei pH-
40 9 8 28/0751
Werten von 5,5 Ms 8, bevorzugt bei pH 7.
Als Kohlenstoff quelle kann man verwenden Glucose, Stärke, Glycerin und Melasse. Das Substrat (Fumarsäure) wird in Konzentrationen
von 1 bis 5% zugegeben, bevor der pH-Wert mit Natriumhydroxyd eingestellt wird.· Als Stickstoffquelle kann
man verwenden Pepton, hydrolyseerte Derivate von Casein oder
Sojabohnen, Ammonium- oder Natriumnitrate, Ammoniumsulfat oder -phosphat, Getreide- oder Maiseinweichwasser (CSL) sog.
corn steep liquor, Malzextrakt usw.
Die Ausbeute an !-Apfelsäure wird erhöht, wenn die Belüftung
vermindert wird. Wie oben erwähnt, werden die Zellen bei der Fermentation gewonnen und sie werden als solche bei der
enzymatischen Reaktion eingesetzt. Werden Bakterienzellen bei der enzymatischen Umwandlung von Fumarat in MaIa t verwendet,
so werden sie in Medien, die ähnlich sind wie die des Fermentationsverfahrens kultiviert.
Als Kohlenstoffquelle kann man verwenden Glucose, Stärke,
Glycerin, Melassen, Fumarat, Tartrat, Citrat oder Acetat in Konzentrationen von 1 bis 5%· Sonst kann man ebenfalls die
Extrakte dieser Zellen verwenden. In einem solchen Fall werden die Zellen nach einem der bekannten Verfahren gebrochen,
und man verwendet den Rohextrakt oder den teilweise gereinigten Extrakt, der das Enzym enthält.
Die Enzymdosierung kann entsprechend den in den naturwissenschaftlichen
Publikationen beschriebenen Verfahren erfolgen. Eine Einheit entspricht der Enzymmenge, die in 1 Minute bei
einer Temperatur von 25°C eine 0.D.-Änderung von 0,001 ergibt.
Die Apfelsäure wird auf spektrometrische Weise entsprechend dem in Modern Food Analysis (Hart-Fisher 1971) beschriebenen
Verfahren mit Schwefelsäure und 2,7-Naphthalindiol dosiert
bzw. bestimmt (O.D. = optische Dichte).
409828/0751
Die Proteine werden auf spektrophotometrisehe Weise mit ·
Differentialablesungen bei 224 und 233 nm gegenüber einer
Standardkurve mit bekannter Albuminkonzentration bestimmt. Die spezifische Aktivität wird als Einheiten/mg Protein
(nm =; Nanometer) angegeben.
Die folgenden Beispiele erläutern die Erfindung, ohne sie zu beschränken.
20 | Il |
1 | It |
5 | Il |
2 | Il |
0 | ,5» |
1 | Il |
Ein Kulturmedium der folgenden Zusammensetzung wird hergestellt:
Fumarsäure 20 g/l
Glucose
Hefeextrakt
NaNO3
K2HPO4
MgSO4 V 7H2O
Tween 80
Die zuvor erwähnten Produkte werden in entmineralisiertem Wasser gelöst und mit Natriumhydroxyd wird der pH-Wert der
Lösung auf 7 eingestellt. Man sterilisiert während 20 Minuten bei 1100C. Das Medium wird in 500 ml-Kolben mit einem breiten
Hals gegeben, wobei man 100 ml Medium in jeden Kolben füllt.
Die Kolben werden mit einer Suspension der Stämme 743, die man während 24 Stunden bei 300C auf Schrägplatten mit Nähragar
gezüchtet hatte, inokuliert. Die optische Dichte der Bakteriensuspension, die als Inokulierungsmittel verwendet,
wird, verdünnt auf 1/10, beträgt 0,200 bei 550 nm.
Die Inkubation wird unter orbitalem Rühren bei 3°C während 88 Stunden durchgeführt.
In dem Fermentationsmedium verbleiben 4,5 g/l Fumarsäure und
17,25 g/l 1-Apfelsäure werden gebildet, was einer Ausbeute
von 75# entspricht.
409828/0751
Man verwendet eine Laborfermentationsvorrichtung mit einer
Kapazität von 20 1, die mit vier im Wasser liegenden Ablenkblechen (antisloshing buffles) und einer Turbine mit acht
Flügeln ausgerüstet ist und die 17 1 des folgenden Mediums enthält: -
Fumarsäure 20 g/l
Hefeextrakt 1 «
NaNO, 5 lf
K2HPO4 2 »
MgSO4 · 7H2O 0,5"
In entmineralisiertem Wasser und deren pH-Wert mit Natriumhydroxyd auf 7 eingestellt ist und die während 20 Minuten
bei 1100C sterilisiert wird. Man inokuliert mit 340 ml
(=2%) einer Kultur von 24 Stunden bei 300C des Stammes 743.
Die optische Dichte der Präkultur, verdünnt auf 1/10, bei
550 nm beträgt 0,200. Die Fermentation wird bei 30°C während 23 Stunden mit einer Belüftung von 0,1 Vol/Vol/min durchgeführt.
Man erhält unter solchen Bedingungen 10 g feuchter Zellen/l Kultur.
15 g der erhaltenen Zellen werden in 100 ml 0,01m Phosphatpuffer,
pH 7,0, der 0,05 Mol Fumarsäure (neutralisiert mit Natriumhydroxyd) enthält, suspendiert. Die Mischung wird
bei 20°C gerührt. Nach 5 Stunden werden 1,76 g Fumarsäure und 2,6 g !-Apfelsäure festgestellt, was einer Ausbeute von 39%
entspricht.
15 g der nach Beispiel 2 erhaltenen Zellen werden in 50 ml 0,01m Phosphatpuffer, pH 7,0, suspendiert. 250 ml kaltes Aceton
werden zu der Suspension zugegeben. Der Niederschlag wird durch Filtration abgetrennt und im Vakuum (15 mm Hg,Zimmertemperatur,
18 Stunden) getrocknet. 15 g feuchte Zellen ergeben
409828/0751
2,5 g trockene Zellen. 2,5 g der trockenen Zellen werden in
100 ml 0,01m Phosphatpuffer, pH 7,0, der 0,05 Mol Fumarsäure (neutralisiert mit Natriumhydroxyd) enthält, suspendiert.
Die Reaktionsmisehung wird bei 200C gerührt. Nach 4 Stunden
verbleiben 1,58 g Fumarsäure und 4,9 g 1-Apfelsäure wurden gebildet, was einer Ausbeute von 73 12.% entspricht.
Die Zellen werden aus der Reaktionsmischung durch Zentrifugieren abgetrennt und erneut in 100 ml Puffer zusammen mit
Fumarsäure, wie oben beschrieben, suspendiert."Nach 6 Stunden
bei 200C verbleiben 1,58 g Fumarsäure und 4,9 g 1-Apfelsäure
sind gebildet, was einer Ausbeute von 73»2% entspricht.
1,5 g Zellen, erhalten gemäß Beispiel 2, werden in 2 ml Phosphatpuffer,
pH 7,0, suspendiert und Ultraschallwellen während 7 Minuten (MSE, 7 Mikron) ausgesetzt. 2 ml des überfließenden
Materials werden nach der Zentrifugation abgetrennt,
sie enthalten 92 mg Proteine.
Diese 2 ml v/erden zu 100 ml Phosphatpuffer, pH 7,0, der 0,05 Mol Fumarsäure (neutralisiert mit Natriumhydroxyd) enthält,
gegeben. Die Reaktionsmischung wird bei 200C gerührt. Nach 11 Stunden verbleiben 1,38 g Fumarsäure und es haben
sich 5,05 g 1-Apfelsäure gebildet, was einer Ausbeute von 76% entspricht.
500 ml-Kolben mit breitem Hals, die 100 ml der Grundkultur und
zugefügt verschiedene Kohlenstoffquellen (Glucose, Natriumfumarat,
Tartrat, Citrat und Acetat) in 10 g/l-Konzentrationen
enthalten, werden mit 1 ml einer Suspension des Stammes 743
inokuliert und während 24 Stunden bei 30°C unter orbitalem Rühren inkubiert. Die Zellen werden dann Ultraschallwellen
bei einer Temperatur, die niedriger ist als 100C während 7 Minuten
ausgesetzt.
409828/0751
Die BestimmiAngen der enzyroatisehen Aktivität wurden mit'dem
Rohextrakt (überfließendes Material des zuvor erhaltenen Produktes) bei 20°C durchgeführt.
Das Naßgewicht der Kulturen, die gebildeten Enzymeinheiten und die spezifischen Aktivitäten sind in der folgenden
Tabelle aufgeführt.
Kohlenstoff quelle |
Naßgewicht/1C Kulturmedium |
)0 ml (g) |
Einheit/100 ml Kulturmedium |
spez.Aktivi tät Einheit/ mg Protein |
Glucose | 1,2 | 13 000 | 300 | |
Na-triumfumarat | 1,2 | 32 000 | 445 | |
Natriumtartrat | 1,0 | 25 000 | 405 | |
Natriumeitrat | 0,65 | 10 000 | 228 | |
Natriumacetat | 0,35 | 12 000 | 382 |
409828/0751 . ·
ORIGINAL INSPECTED
Claims (8)
1. Mikrobenstämme des Paracolobactrum-Genus mit den
Bezeichnungen 743, 745 und 746.
2. Verfahren zur Herstellung von l-Apfelsaure aus Fumarsäure
durch Fermentation unter Verwendung von Mikroorganismen des Paracolobactrum-Genus nach Anspruch 1.
3. Verfahren zur Herstellung von 1-Apfelsäure nach
Anspruch 2, dadurch gekennzeichnet, daß man die Umsetzung in einem Kulturmedium durchführt, welches eine Salzlösung enthält,
die Stickstoff- und Kohlenstoffquellen in Anwesenheit
von Fumarat enthält.
4. Verfahren zur Herstellung von 1-Apfelsäure nach Anspruch 3, dadurch gekennzeichnet, daß man als Kohlenstoffquelle
Glucose, Stärke, Glycerin o.der/und Melassen verwendet.
5. ; Verfahren zur Herstellung von 1-Apfelsäure nach
Anspruch 3» dadurch gekennzeichnet, daß man als Stickstoffquelle
Pepton, hydrolysierte Derivate von Casein und Sojabohnen, Ammonium- oder Natriumnitrate, Ammoniumsulfat
oder -phosphat, Mais- oder Getreideeinweichflüssigkeit (CSL) oder/und Malzextrakt verwendet.
6. ' . Verfahren zur Herstellung von 1-Apfelsäure nach einem der Ansprüche 2 bis 5, dadurch gekennzeichnet, daß die
Fermentation während einer Zeit von 18 bis 36 Stunden und bei einem pH-Wert von 5,5 bis 8 durchgeführt wird.
7. Verfahren zur Herstellung von 1-Apfelsäure nach einem der Ansprüche 2 bis 6, dadurch gekennzeichnet, daß die·
Fermentation bei einer Temperatur im Bereich von 20 bis 40°C in einem Kulturmedium durchgeführt wird, das Glucose als
409828/0751
- ίο -
Hauptkohlenstoffquelle und 1 bis 10% Fumarsäure enthält.'
8. Verfahren zur Herstellung von Fumaraseenzym durch Fermentation nach einem oder mehreren der vorhergehenden
Ansprüche und durch Trennung der Bakterienzellen aus dem Fermentationsmedium.
4 0 9828/07 5 1
Applications Claiming Priority (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
IT33567/72A IT972897B (it) | 1972-12-27 | 1972-12-27 | Procedimento per la produzione di acido l malico per fermentazione microbiologica e mezzi adatti per la realizzazione del procedimento stesso |
Publications (2)
Publication Number | Publication Date |
---|---|
DE2363285A1 true DE2363285A1 (de) | 1974-07-11 |
DE2363285B2 DE2363285B2 (de) | 1979-09-20 |
Family
ID=11237801
Family Applications (1)
Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
---|---|---|---|
DE2363285A Ceased DE2363285B2 (de) | 1972-12-27 | 1973-12-19 | Verfahren zur Herstellung von 1-Apfelsäure aus Fumarsäure |
Country Status (10)
Country | Link |
---|---|
US (1) | US3980520A (de) |
BE (1) | BE808849A (de) |
CA (1) | CA1000221A (de) |
CH (1) | CH606417A5 (de) |
DE (1) | DE2363285B2 (de) |
FR (1) | FR2212431B1 (de) |
GB (1) | GB1419668A (de) |
IT (1) | IT972897B (de) |
LU (1) | LU69054A1 (de) |
NL (1) | NL169501C (de) |
Families Citing this family (6)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
JPS5210488A (en) * | 1975-07-11 | 1977-01-26 | Tanabe Seiyaku Co Ltd | Preparation of l-malic acid |
US4734368A (en) * | 1984-03-23 | 1988-03-29 | Huels Aktiengesellschaft | Process for the bioconversion of fumarate to L-malate |
US4912042A (en) * | 1989-08-17 | 1990-03-27 | Eastman Kodak Company | Preparation of D-malic acid or derivative |
CA2214318A1 (en) * | 1994-12-28 | 1996-07-04 | Genencor International, Inc. | Production of organic acids and amino acids |
WO2008143147A1 (en) * | 2007-05-11 | 2008-11-27 | Sumitomo Chemical Company, Limited | Method for producing malic acid |
CN102191282B (zh) * | 2011-03-29 | 2014-07-23 | 安徽丰原发酵技术工程研究有限公司 | 一种利用柠檬酸母液发酵生产苹果酸的方法 |
Family Cites Families (2)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
US2972566A (en) * | 1959-12-07 | 1961-02-21 | Kyowa Hakko Kogyo Kk | Process for the production of l-malic acid |
FR1256566A (fr) * | 1960-02-08 | 1961-03-24 | Kyowa Hakko Kogyo Kk | Procédé de production de l'acide l-malique par fermentation |
-
1972
- 1972-12-27 IT IT33567/72A patent/IT972897B/it active
-
1973
- 1973-12-17 FR FR7345130A patent/FR2212431B1/fr not_active Expired
- 1973-12-19 BE BE139054A patent/BE808849A/xx not_active IP Right Cessation
- 1973-12-19 DE DE2363285A patent/DE2363285B2/de not_active Ceased
- 1973-12-20 CH CH1791473A patent/CH606417A5/xx not_active IP Right Cessation
- 1973-12-20 NL NLAANVRAGE7317522,A patent/NL169501C/xx not_active IP Right Cessation
- 1973-12-21 US US05/427,340 patent/US3980520A/en not_active Expired - Lifetime
- 1973-12-21 GB GB5948573A patent/GB1419668A/en not_active Expired
- 1973-12-21 LU LU69054A patent/LU69054A1/xx unknown
- 1973-12-24 CA CA188,874A patent/CA1000221A/en not_active Expired
Also Published As
Publication number | Publication date |
---|---|
US3980520A (en) | 1976-09-14 |
NL7317522A (de) | 1974-07-01 |
CH606417A5 (de) | 1978-10-31 |
DE2363285B2 (de) | 1979-09-20 |
NL169501B (nl) | 1982-02-16 |
NL169501C (nl) | 1982-07-16 |
FR2212431B1 (de) | 1976-06-25 |
IT972897B (it) | 1974-05-31 |
CA1000221A (en) | 1976-11-23 |
FR2212431A1 (de) | 1974-07-26 |
BE808849A (fr) | 1974-04-16 |
LU69054A1 (de) | 1974-02-22 |
GB1419668A (en) | 1975-12-31 |
Similar Documents
Publication | Publication Date | Title |
---|---|---|
DE2413963B2 (de) | Verfahren zur Herstellung von 2-Keto-L-gulonsäure und deren Salzen auf mikrobiologischem Wege | |
DE2018058B2 (de) | Biotechnisches verfahren zur herstellung von glucose-isomerase | |
DE2400323C2 (de) | Neue Glucose-Isomerase und ihre Herstellung | |
DE2656160A1 (de) | Lebensfaehige bifidobakterien enthaltendes, fermentiertes milchprodukt und verfahren zu seiner herstellung | |
DE2631048B2 (de) | Verfahren zur Herstellung von D-Phenylglycin | |
DE2939269A1 (de) | Verfahren zur optischen trennung von d,l-2-amino-4-methylphosphinobuttersaeure | |
DE2245402C3 (de) | Xyloseisomerase-Enzymzubereitung, Verfahren zu deren Herstellung und Verwendung derselben | |
DE3049308A1 (de) | Verfahren zur bildung des enzyms (alpha)-galactoxidase und zur hydrolyse von raffinose unter verwendung dieses enzyms | |
DE2363285A1 (de) | Verfahren zur herstellung von lapfelsaeure durch mikrobiologische fermentation und mittel zur durchfuehrung des verfahrens | |
DE2153232B2 (de) | Verfahren zur Herstellung einer Amylose | |
DE3539702C2 (de) | ||
DE2164018C3 (de) | Verfahren zur biotechnischen Her stellung von Uncase | |
DE2904225A1 (de) | Beta-galactosidase und verfahren zu ihrer herstellung | |
DE2554407A1 (de) | Herstellung thermostabiler lactase | |
DE2600682A1 (de) | Verfahren zur herstellung von l(+)-weinsaeure | |
DE3137049C2 (de) | Verfahren zur Gewinnung von Uricase mit Mikroorganismen | |
DE2108760B2 (de) | Verfahren zur mikrobiologischen herstellung von jodinin | |
JPS62208293A (ja) | ビフイドバクテリウム菌増殖促進因子の製造法 | |
DE3018584A1 (de) | Verfahren zur herstellung von d- alpha -aminosaeuren | |
DE2107461A1 (de) | Verfahren zum Herstellen von alkali schem Dextranase Enzym | |
DE2413939C3 (de) | Verfahren zur Herstellung von Fructose und Sirups, die Fructose und Glucose enthalten | |
AT200544B (de) | Verfahren zur Herstellung von 1-Glutaminsäure bzw. deren Salzen durch Fermentation | |
DE2708112C3 (de) | Verfahren zur mikrobiologischen Erzeugung von Protein | |
DE2322128A1 (de) | Enzympraeparate mit lipolytischer aktivitaet, verfahren zu ihrer herstellung auf mikrobiologischem wege und ihre verwendung | |
DE1946682C (de) | Verfahren zur Herstellung und Gewin nung von Hyaluromdase |
Legal Events
Date | Code | Title | Description |
---|---|---|---|
8235 | Patent refused |