DE2322116A1 - Substrat mit hoher empfindlichkeit fuer proteolytische enzyme vom typ der peptidpeptidohydrolasen - Google Patents
Substrat mit hoher empfindlichkeit fuer proteolytische enzyme vom typ der peptidpeptidohydrolasenInfo
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Description
DR.-ING. RICHARD GLAWE · DIPL-ING KLAUS DFLFS DIPL-PHYS. DR. WALTER MOLL
MÖNCHEN HAMBURG MÜNCHEN
8 MÖNCHEN 26 POSTFACH 37 LIEBHERRSTR. 20
TEL. (0811) 22 £5 48 TELEX 52 25 05 SfKZ
2 HAMBURG WAITZSTR. TEL. (0411)89 22 21 29 21 «pez
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A | 91 | ||
BETRIFFT: |
MÖNCHEN
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Substrat mit hoher Empfindlichkeit für proteolytische
Enzyme vom Typ der Peptid-Peptidohydrolasen.
Die Erfindung betrifft ein Substrat der allgemeinen Formel
R1-NH-CH-CO-NH-CH-CO-NH-CH-CO-NH-Rr-1
ι ι 1 5
R2 R-j (CH2)H-NH-R^
in der R^ ein Wasserstoffatom, eine Acylgruppe mit 1-12
C-Atomen, eine i/0-Aminoacylgruppe mit 1-12 C-Atomen, eine
Cyclohexylcarbonylgruppe, eine νΛ3 -Cyclohexylacylgruppe,
eine ^-Amlnomethyl-cyclohexylcarbonylgruppe, eine gegebenenfalls
mit einem Halogenatom, einer Methyl-, Amino- oder Phenylgruppe od.dgl. oder mehreren dieser Substituenten
309847/1123
substituierte Benzoylgruppe, eine UP -Phenylacylgruppe
mit 1-5 C-Atomen im Acylteil und deren Phenylgruppe
gegebenenfalls substituiert ist, oder eine Benzolsulfonyl-,
4-Toluolsulfonyl- oder N -Benzoyl-phenylalanylgruppe ist,
und R2 eine Phenyl-, Benzyl, 4-Hydroxybenzyl-, 4-Methoxybenzyl-
oder 4-Methylbenzylgruppe,
IU eine geradkettige verzweigte oder cyclische Alkylgruppe
mit 3-8 C-Atomen oder eine Phenyl- oder Benzylgruppe,
η die Zahlen 2, 3 und 4,
R^ ein Wasserstoffatom oder eine Guanylgruppe sowie Rjeine.
Phenyl-, Nitrophenyl-, Methylnitrophenyl-, Dinitrophenyl-,
Naphthyl-, Nitronaphthyl-, Chinolyl-- oder
Nitrochinolylgruppe bedeuten, sowie deren Salze.
' Die Erfindung betrifft weiterhin ein Substrat mit hoher Empfindlichkeit für proteolytische Enzyme vom Typ
der Peptid-Peptidohydrolasen, wie Thrombin, Plasmin oder Trypsin, zur diagnostischen Verwendung, das durch die Verbindung
der obigen allgemeinen Formel, in der R,, R2, R,',
R^, Rc- und η wie oben definiert sind.
Das Substrat der Erfindung kann zur qualitativen Bestimmung von klassifizierten und bisher nicht klassifizierten
Enzymen verwendet werden, und zwar insbesondere von solchen Enzymen, die Peptide oder Proteine in den Peptidketten
3 G 9 8 Λ 7 / 1 -i ? 5
ander Carboxylseite des Arginins oder Lysins abbauen, z.B. Thrombin, Trypsin, Plasmin, Reptilase (Pentapharm,
Basel, Schweiz), Arvine (Perring AB, Malmö, Schweden),
sowie des bisher nicht klassifizierten Enzyms Brinase (AB Astra, Södertälje, Schweden). Das Substrat der Erfindung
kann weiterhin zur Untersuchung von Reaktionen verwendet werden, in denen diese Enzyme gebildet, inhibiert
oder verbraucht werden, sowie zur Bestimmung von Faktoren, die derartige Reaktionen beeinflussen oder an
diesen teilnehmen, beispielsweise zur Bestimmung von Proenzymen, Aktivatoren, Antienzymen und Enzyminhibitoren.
Pur die Klassifizierung der Enzyme wurde die von der
International Union of Biochemietry'Esevier, Amsterdam,
I965, empfohlene Enzymnomenklatur verwendet.
Verbindungen (Substrate), die bisher zur quantitativen Bestimmung der oben genannten Enzyme verwendet worden
sind, sind in "Methoden der enzymatischen Analyse,
Babd I, Seite Io2^ (Hrsg. Bergmeyer, H.U., Verlag
Chemie, 197o) beschrieben. In Abhängigkeit davon, welche •katalytische Reaktion der proteolytischen Enzyme stattfindet
- esterolytisch oder amidolytisch - können diese synthetischen Substrate prinzipiell in zwei Hauptgruppen
unterteilt werden: Estersubstrate und Amidsubsträte.
3098 47/1123
Die größte Gruppe der bisher verwendeten synthetischen Substrate ist die Gruppe der Estersubstrate. Dies liegt
in dem Umstand begründet, daß diese wesentlich schneller als die bisher hergestellten Amidsubstrate durch die Peptid-Peptidohydrolasen
umgewandelt werden. Die prinzipielle biologische Wirkungsweise der als Peptid-Peptidohydrolasen
klassifizierten Enzyme ist jedoch, wie bereits aus ihrem Namen hervorgeht, die Hydrolyse von Peptid - oder Amidbindungen
natürlicher Substrate, nicht jedoch von Esterbindungen. In der Literatur (Blood Clotting Enzymology,
Seite j56 und 42 - 44, Hrsg.: Seegers W.H., Academic Press,
19β7) wird berichtet, daß das Verhältnis der Reaktionsgeschwindigkeiten
der esterolytischen und der ämidolytischen
Katalyse des Thrombins bei verschiedenen Reaktionsbedingungen nicht konstant ist. Es besteht daher ein Bedürfnis
für synthetische Amidsubstrate, die eine weit größere Empfindlichkeit bzw. Spezifizität für die betreffenden
Enzyme aufweisen und die auch schneller als die bisher bekannten zu meß- bzw. bestimmbaren Produkten abgebaut
werden.können.
Um den Reaktionsverlauf der enzymatischen Hydrolyse untersuchen
und verfolgen zu können, sind die Amidsubstrate besonders geeignet, da sie die folgenden Produkte ergeben:
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a) Chromophore Produkte, die spektrophotometrisch leicht
gemessen werden können und Lichtabsorptionsmaxima aufweisen, die nicht mit denjenigen der ursprünglichen
Amidsubstrate zusammenfallen;
b) Fluoreszierende Produkte, die durch die Fluoreszenzspektrophotometrie
bestimmt werden können; und.
c) Produkte, aus denen nach der Verkopplung mit einem geeigneten Reagenz Kopplungsprodukte entstehen, die
mit großer Empfindlichkeit photometrisch gemessen werden können.
Es sind bereits einige synthetische Amidsubstrate mit hydrolysierbaren chromophoren Gruppen zur Verwendung gelangt.
Diese Substrate sind hauptsächlich vom Typ der N^-unsubstituierten
und N^ -substituierten Mono-aminosäure-p-nitroanilid-
und Mono-aminosäure- r-naphthylamid- Derivate. Von diesen
Substanzen ist N^-Benzoyl-DL-arginin-p-nitroanilid-Hydrochlorid
(BAPNA) als Reagenz für Trypsin (E.C. 3.4.4.) und für Reaktionen, an denen Trypsin teilnimmt, zu nennen.
Die enzymatische Hydrolyse dieses Substrats liefert das chromophore Produkt p-Nitroanilin, das in leichter Weise
spektrophotometrisch gemessen werden kann.
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Diese bisher bekannten A.mid -Substrate weisen jedoch nicht
die.gewünsch te Spezifizität und Empfindlichkeit auf. Dies ist
ein erheblicher Nachteil, durch den ein komplizierteres Verfahren für die Probenentnahme erforderlich werden kann, da
dann eine erhebliche Menge an biologischem Material erforderlich ist. Weiterhin ist die enzymatische Reaktionszeit lang
und die Genauigkeit der Enzymbestimmung kann unbefriedigend sein.
Insbesondere für Thrombin existiert kein synthetisches Amldsubstrat, das in befriedigender Weise arbeitet. BAPNA,
wird beispielsweise hauptsächlich für Trypsin verwendet und ist für die Bestimmung von Thrombin nicht besonders geeignet,
da es für, dieses Enzym eine niedrige Empfindlichkeit aufweist
und nicht der Michaelis - Menten-Kinetik folgt. Durch das Substrat der Erfindung vom Amidtyp können diese Nachteile
behoben werden.
Das Substrat der Erfindung kann im wesentlichen gemäß zwei verschiedenen Verfahren erhalten werden.
1) Das erste Verfahren beruht auf der Kopplung der chromophoren Gruppe H,- mit der betreffenden Aminosäure. Daran
schließt sich ein stufenweiser Aufbau der gewünschten Peptidestruktur an, indem die übrigen Aminosäuren stufenweise
angekoppelt werden. Die chromophore Gruppe wird hier als Block!erungsgruppe für die C-terminale Carboxylgruppe
der ersten Aminosäure verwendet.
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2) Die andere Methode beruht auf einem stufenweisen Aufbau
der gewünschten Peptidstruktur und auf der anschließenden Entfernung der verwendeten Blockierungsgruppen, wonach schließlich die chromophore Gruppe
Η- an die Peptidstruktur angekoppelt wird.
PUr die stufenweise Synthese der Peptidderivate werden
in der Peptidchemie übliche und bekannte Verfahren angewendet. Für die Blockierung der Aminogruppen werden bekannte
Blockierungsgruppen verwendet, z.B. Cbo (Carbobenzoxy), MeOCbo (p-Methoxycarbobenzoxy) NOgCbo (p-Nitrocarbobenzoxy),
MCbo (p-Methoxyphenylazo-carbobenzoxy), BOC (terfc-Butyloxycarbonyl),
TFA (Trifluoracetyl) oder Formyl. Die dv. -Carboxylgruppe
kann aktiviert werden, indem man sie in verschiedene, in der Peptidchemie bekannte und häufig verwendete reaktionsfähige
Derivate überführt. Diese können entweder isoliert oder in situ hergestellt werden. Beispiele für die reaktionsfähigen
Derivate sind p-Niferophenylester, Trichlorphenylester,
Pentachlorphenylester, N-Hydroxysuccinimidester,
Säureazid sowie symmetrische oder unsymmetrische Säureanhydride. Die cv -Carboxylgruppe kann auch mit einem
Carbodiimid, z.B. N^-Dicyclohexylcarbidiimid aktiviert
werden. Die C-terminale Carboxylgruppe des Aminopeptid-
oder Aminosäurederivats kann geschützt werden, indem man sie beispielsweise zum Methyl-, Äthyl- oder Isopropylester
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verestert oder in das chromophore Anilinderivat überführt, welches dann als Blockierungsgruppe während des Aufbaues
der Peptidkette wirkt. Diejenigen freien funktioneilen Gruppen, die nicht an der Reaktion teilnehmen, können
während der Synthese des Peptids oder der Peptidderivate
in der folgenden Weise geschützt werden:
Für die Blockade der Arginyl-& -guanidogruppe und der
Lysyl-£ - Aminogruppe kann man in der Peptidchemie übliche
Aminoblockierungsgruppen, wie NOp, Tos (p-Toluolsulfonyl)
oder auch lediglich die Protonierung als Schutz für die Guanidogruppe, oder Cbo (Carbobenzoxy), BOC (tert.-Butyloxycarbonyl
oder ebenfalls Tos für die <£ -Aminogruppe verwenden.
Als Schutz für die Hydroxylgruppe im Tyrosin kann man ebenfalls in der Peptidchemie üblicherweise
verwendete Blοckierungsgruppen, z.B. Benzyl- und tertiäre
Butylschutzgruppen einsetzen.
Bei der stufenweisen Synthese der Peptidstruktur kann
eine systematische Reinigung mittels Gelfiltration nach jeder Verkopplung einer neuen Aminosäure durchgeführt werden.
Für diese Gelfiltration wird eine Säule verwendet, die mit einem für die Gelfiltration geeigneten Material gefüllt ist,
z.B. ein vernetztes Dextrangel vom Typ Sephadex G oder LH (Pharmacia Fine Chemicals, Uppsala, Schweden). Ein anderes
geeignetes Gel besteht aus Copolymeren des Vinylacetats,
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z.B. vom Typ MerckogelR OR-PVA (AG E. Merck, Darmstadt,
West-Deutschland). Das Gelmaterial wird im Gleichgewicht mit einem geeigneten Lösungsmittel verwendet.- Die EIuierung
wird dann mit dem gleichen Lösungsmittel durchgeführt, z.B. mit Methanol, Äthanol, Aceton, Dimethylformamid,
Dimethylacetamid, Dimethylsulfoxid oder Hexamethylphosphorsäuretriamid.
Die Erfindung wird im folgenden anhand von Ausführungsbeispielen
näher erläutert. Die Beispiele zeigen die Herstellung von verschiedenen Substraten gemäß der Erfindung
durch stufenweise Synthese.
Für die dünnschichtchromatographische Analyse des Eluats und der Produkte wurden mit Silicagel (P 25^ AG
E. Merck, Darmstadt, West-Deutschland) als Absorptionsmedium beschichtete Glasplatten verwendet. Für die Entwicklung
der Dünnschichtchromatogramme wurden die folgenden Lösungsmittelsysteme
eingesetzt:
A: n-Butanol:Essigsäure:Wasser (3:1:1)
C: n-Propanol:Ä'thylacetat:Wasser (7:1:2)
D: n-Heptan:n-ButanolEssigsäure (3:2:1)
P1: Chloroform:Methanol (9:1)
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Nach Beendigung der Dünnschichtchromatographie wurden die Platten zunächst unter einer UV-Lampe (254nm) und
anschließend mittels der Chlor/Toluidin-Reaktion (G. Pataki: Dünnschichtchromatographie in der Aminosäure-
und Peptidchemie, Walter de Gruyter & Co., Berlin, 1956,
S. 125) entwickelt.
Sämtliche verwendeten Aminosäuren weisen L-Konfiguration
auf, wenn nichts anderes angegeben ist. Die verwendeten Abkürzungen haben die folgenden Bedeutungen:
Arg = Arginin Phe = Phenylalanin
lie = Isoleucin Tyr = Tyrosin
Leu = Leucin VaI = Valin
Lys = Lysin C-Ph.GIy = C-Phenylglycin.
In den Beispielen werden weiterhin die folgenden Abkürzungen verwendet:
Ac | = Acetyl |
Ac2O | = Acetanhydrid |
AcOH | = Essigsäure |
BOC | = tert.-Butyloxycarbonyl |
Bz | = Benzoyl |
BzI | = Benzyl |
2 | = Benzoesäureanhydrid |
Cbo | = Carbobenzoxy |
DCCI | = Dicyclohexylcarbodiimid |
- Io - | |
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DCHA = Dicyclohexylamin
DCU = Dicyclohexylarbamid
DMP = Dimethylformamid
Et,N = Triäthylamin'
HMPTA = N,N,N1,N1, N",N"-Hexamethylphosphorsäuretriamid
MCbo = p-Methoxyphenylazocarbobenzoxy
MeOH = Methanol
NA = Naphthylamin
OtBu = tert.-Butyloxy
OEt = Äthyloxy
OMe = Methyloxy
OpNP = ρ-Nitrophenoxy
OisoPr = iso-Propyloxy
pNA = p-Nitroanilid
TPA = Trifluoroacetyl
Tos = p-Toluo!sulfonyl
TLC = Dünnschichtchromatografie.
Die Gele SephadexR G-I5 und G-25, die für die Gelfiltration
verwendet wurden,, sind - jeweils vernetzte Dextrangele '
mit unterschiedlichem Vernetzungsgrad der Pharmacia
jD
Pine Chemical, Uppsala, Schweden. Das Gel Sephadex LH-2o ist ein hydroxypropyliertes vernetztes Dextrangel
der Pharmacia Pine Chemical, Uppsala, Schweden.
(D
(la)
1) '55s5 g (0,1 Mol) trockenes Cbo - Arg(N02)-0H werden
in 2oo ml trockenem frisch destilliertem HMTA bei Raum-
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temperatur gelöst. Danach werden Ip,1 g (0,1 Mol)
Et^N und 24,6 g (0,15 Mol) p-Nitrophenylisoeyanat unter
Rühren und unter Peuchtigkeitsausschluß zugegeben. Nach
einer Reaktionszeit von 24 Stunden bei Raumtemperatur wird die Reaktionsmischung 2 1 2^-iger Natriumbicar^onat-Lösung
unter Rühren eingegossen. Der gebildete Niederschlag wird filtriert und dreimal mit 0,5 1 2#-iger
Natriumbicarhonatlösung, zweimal mit 0,2 1 destilliertem Wasser unddanach zweimal mit 0,5 1 0,5 N Salzsäure
sowie schließlich fünfmal mit 0,2 1 destilliertem Wasser gewaschen. Das getrocknete Rohprodukt wird mit warmem
Methanol extrahiert. Auf diese Weise werden das gewünschte Produkt und einige zusätzliche Nebenprodukte
gelöst. Der unlösliche Rückstand, der aus Ν,Ν'-bisp-nitrophenylcarbamid
besteht, wird abfiltriert. Das Pil'trat wird auf einer Säule gereinigt, die mit mit
Methanol in Gleichgewicht gesetztem Sephadex LH-2o
gefüllt ist.
29,8 g (63,0#) Ia, Smp. l85-l88°C, werden erhalten.
Das Produkt ist gemäß TLC in P und C homogen. p4=-l,3° (c = 1.1; AcOH).
2) 35,3 g (0,1 Mol) Cbo-Arg(N02)-0H(getrocknet), werdei£n
000 1 Tetrahydrofuran: DMF (1:1) gelöst. Dazu werden lo,l g
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(0,1 Mol) Et,N gegeben. Danach wird die Lösung auf
-10°C unter Feuchtigkeitsausschluß gekühlt. I3,7 g
(0,1 Mol) Chlorameisemsäureisobutylester, gelöst in 5o ml Tetrahydrofuran,werden tropfenweise innerhalb von
Io Minuten zu der gekühlten Mischung gegeben. Nach einer weiteren Zeitspanne von Io Minuten werden 16,4 g
(0,1 Mol) p-Nitroanilin zugesetzt. Man läßt die Reaktionslösung
sich auf Raumtemperatur erwärmen und läßt 24 Stunden stehen. Das Lösungsmittel der Reaktionsmischung
wird dann im Vakuum abdestilliert. Das Reaktionsgemisch wird dann 3-5 mal jeweils mit destilliertem
Wasser, 5^-iger Natriumbicarbonatlösung und destilliertem
Wasser digeriert. Danach wird der Rückstand im Vakuum getrocknet.
Reinigung: Zweimaliges Umkristallisieren aus Methanol. Die Mutterlauge wird an Sephadex LH-2o in Methanol
gelfiltriert.
Man erhält 2.5,ο g (48,5$) Ia mit den gleichen physikalischen
Daten wie beim vorhergehenden Beispiel.
2) 35,3 g (0,1 Mol) Cbo - Arg(N02 - OhJ werden in DMP gelöst.
Die Lösung wird auf -100C gekühlt. Danach werden
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2ο,5 g (0,1 Mol) DCCI und 16,4 g (0,1 Mol) p-Nitroanilin
zugesetzt. Nach einer Reaktionszeit von 24 Stunden bei Raumtemperatur wird die Reaktionslösung zur Trockne
eingedampft und 3-5 mal jeweils mit destilliertem Wasser,
5^-iger Bicarbonatlösung, destilliertem Wasser, 0,5 N HCl und destilliertem Wasser digeriert.
JD
Reinigung: Gelfiltration an Sephadex LH-2o in Methanol.
Man erhält 14,7 g (j54,O#) Ia mit einem Schmelzpunkt
von 186 - l88°C. Das Produkt ist gemäß TLC in P1 und C homogen.
4="1j8° (c = lj0-: Ac0H)·
Cbo- VaI - Arg(NOp) - pNA (Ib)
Unter Feuchtigkeitsausschluß werden Ho ml AcOH und 110 ml 4M HBr in AcOH zu 2o,6 g (4;?,5m Mol) gegeben. Die Lösung
wird bei Raumtemperatur 6o Minuten gerührt. Danach wird sie langsam in 75o ml trockenem Äther eingegossen. Das
Gemisch wird heftig gerührt. Es bildet sich ein Niederschlag von 1,5 HBr. Die Ätherphase wird dekantiert. Der
Niederschlag wird weiterhin 4mal mit 25o ml trockenem Äther
gewaschen, um das gebildete Benzylbromid und den Überschuß
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an HBr und AcOH zu entfernen. Nach dem Trocknen la Vakuum über PgO,- erhält man das Hydrobromld des Amino-
tr
säure-derivate in quantitativer Ausbeute (2o,o g).
20,o g (45,5 m Mol) 1,5 HBr.H-Arg(N02)-pNA werden In
I5o ml DMF gelöst und auf 100C gekühlt. 6,60 g (65,2 m
Mol) EtJi werden zugesetzt, um H-Arg(N02)pNA aus- dem
Hydrobromid freizusetzen. Das gebildete Et^N.HBr wird
abfiltriert/ Das Piltrat wird auf -10°C gekühlt und mit
2o,j5 g (54,3 m Mol) Cbo-Val-OpNP versetzt. Wenn die
Reaktionslösung nach mehreren Stunden Raumtemperatur erreicht
hat, wird sie erneut gekühlt und mit 2,2 g (21,7 m Mol) Et5N gepuffert. Die Pufferungsmaßnahn«
wird nach etwa 3 Stunden ein weiteres Mal wiederholt. Nach einer Gesamtreaktionszeit von etwa 24 Stunden wird
das Reaktionsgemisch im Vakuum bei 4o°C getrocknet. Der Rückstand wird dreimal mit loo ml destilliertem Wasser
digeriert. Danach wird er im Vakuum getrocknet.
Reinigung: Die zweimalige Umkristallisation des Rohprodukts aus Methanol ergibt 12,4 g (5ο#) Reinsubstanz. Die
Mutterlauge wird mit Gelfiltration an einer mit Methanol ins Gleichgewicht gesetzte*1 Sephadex LH-2o-Kolonne gereinigt.
Aus dem Eluat wird eine Fraktion erhalten, die weitere 10,8 g Reinsubstanz ergibt.
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Beispiel Ic:
Cbo - Phe - VaI - Arg(NO2) - pNA (Ic)
Ausgangsmaterial: 28,6 g (5om Mol) Ib und 31,5 δ
(75 m Mol)Cbo-Phe-OpNP.
Herstellungsverfahren: Gemäß Beispiel Ib.
Reinigung: Die dreimalige Umkristallisation des Rohmaterials
aus Methanol ergibt 14,1 g Reinsubstanz gemäß TLC in P1.
R Die Mutterlauge wird durch Gelfiltration an Sephadex LH-2o in Methanol gelfiltriert. Dabei werden 19*6 g Reinsubstanz
gemäß TLC in P1 erhalten.
Man erhält somit ^4,0 g (94,4$) Ic mit einem Schmelzpunkt
von 219.5 - 2220C, das gemäß TLC in P1 homogen ist.
?p =-17,1° (c=l,o; DMP-AcOHj 99:1) .
Beispiel Id:
N^-Bz - Phe - VaI - Arg (NO3)-OMe (Id)
Ausgangsmaterial: J5o,7 g (50 m Mol) Cho-Phe-Val-Arg(NO
OMe und 16,0 g (75 m Mol)
Herstellungsverfahren: Decarbobenzoxylierung von Cbo-Phe-Val-Arg(N02)-0Me,
durchgeführt in der im Beispiel Ib beschriebenen Weise.
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30,o g (5o m Mol) HBr.H-Phe VaI-Arg(NO2)OMe werden in
35o ml DMP gelöst und auf -100C gekühlt. Danach werden
7*6 g (75 ra Mol) Et-,Ν zugesetzt. Die Lösung wird unter
Peuchtigkeitsausschluß eine Stunde lang gerührt. Danach
wird das gebildete EtJi.HBr abfiltriert. Das Piltrat
wird auf -100C gekühlt und mit 16.ο (75 m Mol) Bz3O versetzt.
Nach einer Reaktionszeit von etwa 5 Stunden hat die Lösung Raumtemperatur erhalten. Wird dann erneut gekühlt
und mit 2,5 g (25 m Mol) Et5N gepuffert. Die
Puffermaßnahme wird nach etwa 2 Stunden ein weiteres Mal wiederholt. Nach einer Gesamtreaktionszeit von etwa
24 Stunden wird die Lösung im Vakuum eingedampft. Der
Rückstand wird in der im Beispiel Ib beschriebenen Weise digeriert und getrocknet.
Reinigung: Gelfiltration an Sephadex LH-2o in Methanol. 26.0 g (88,9) Id mit einem Schmelzpunkt von 138 - 1Al0C
werden erhalten. Das Produkt ist gemäß TLC in P1 und D
homogen.
4 = -39.8° (c=l; MeOH).
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N^-Bz - Phe - VaI - Arg(N02) - OH (Ie)
11,7 g (2o m Mol) Id werden in 2oo ml 5o#igem Äthanol
gelöst und mit 2oo ml IN KOH/95# EtOH versetzt. Man rührt
75 Minuten bei Raumtemperatur. Dann leitet man COo durch
die Lösung, bis diese einenpH-Wert von 7 erhalten hat.
Die Lösung wird im Vakuum auf ein Volumen von etwa 25 ml
eingeengt und dann mit Wasser bis zu einem Gesamtvolumen von 5oo ml verdünnt. Die Lösung wird viermal mit Äthylacetat
extrahiert. Danach wird die wässrige Phase mit IN HCl auf einen pH-Wert von 2,8 angesäuert. Die freigesetzte
Benzoyl-tripeptidsäure, die beim Ansäuern ausfällt, wird abfiltriert und mehrmals mit destilliertem
Wasser gewaschen. Die Substanz wird im Vakuum getrocknet.
Reinigung: Zweimaliges Umkristallisieren aus Methanol. Die Mutterlauge wird durch Gelfiltration an Sephadex1*
LH-2o in Methanol gereinigt.
lo,l g (88,5$) Ie mit einem Äquivalentgewicht von 555.7
werden erhalten. Das Produkt ist gemäß TLC in A und C homogen.
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N^- Bz - Phe - VaI - Arg(N02) - pNA (If)
1) Ausgangsmaterial: 7,2 g (Io m MoI) Ic und 3,4 g
(15 m MoI) Bz2O.
Herstellungsverfahren: Gemäß Beispiel Id.
Reinigung: Gelfiltration an SephadexR LH-2o in Methanol.
5,2 g (75,5#) If mit einem Schmelzpunkt 236-2370C werden
erhalten. Das Produkt ist gemäß TLC in P1 und D homogen.
£·* r\T y-*O /_ 1_
2) Ausgangsmaterial: 5,7 g (Io m Mol) Ie und 2,46 g
(15 m Mol) p-Nitrophenylisocyanat.
Herstellungsverfahren: gemäß Beispiel Ia-I. Reinigung: Gelfiltration an Sephadex LH-2o in Methanol,
5,3 g {15,5%) If mit einem Schmelzpunkt von werden erhalten. Das Produkt ist gemäß TLC in P. und
D homogen.
D4=-22,5° (c=l; DMP).
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- Bz - Phe - VaI - Arg - pNA . HCl
Beispiel Ig: ™
mg (0,5 m Mol) If werden in das Reaktionsgefäß einer Apparatur nach Sakakibara gegeben. 5 ml trockener Fluorwasserstoff
werden in das Reaktionsgefäß einkondensiert. Nach einer Reaktionszeit von 1 Stunde bei einer Temperatur
die
von 00C unter Rühren ist die Guanidinfunktion schützende Nitrogruppe abgespalten worden. Der Fluorwasserstoff wird dann im Vakuum abdestilliert. Der trocknere Bestand wird in DMF gelöst. Zur Überführung des Fluorwasserstoff-Derivats des Peptids in sein Hydrochlorid werden 0,25 ml konzentrierter Salzsäure zu der DMF-Lösung gegeben. Die Lösung wird im Vakuum zur Trockne eingedampft. Die Konversionsmaßnahme wird ein weiteres Mal wiederholt. Der Rückstand wird dann in33#-"*i6e ssigsäure gelöst.
von 00C unter Rühren ist die Guanidinfunktion schützende Nitrogruppe abgespalten worden. Der Fluorwasserstoff wird dann im Vakuum abdestilliert. Der trocknere Bestand wird in DMF gelöst. Zur Überführung des Fluorwasserstoff-Derivats des Peptids in sein Hydrochlorid werden 0,25 ml konzentrierter Salzsäure zu der DMF-Lösung gegeben. Die Lösung wird im Vakuum zur Trockne eingedampft. Die Konversionsmaßnahme wird ein weiteres Mal wiederholt. Der Rückstand wird dann in33#-"*i6e ssigsäure gelöst.
Reinigung: Gelfiltration an Sephadex G-I5 in
Essigsäure.
275 mg (8o.7y£) I werden nach der Gefriertrocknung in Form
eines amorphen Pulvers erhalten. Das Produkt weist einen Chlorgehalt von 5,12$ auf und ist gemäßTLC in A homogen.
[fKJjP=-4;3.50 (c » 0,69; 5o# AcOH).
Aminosäureanalyse: VaI: 1,0; Phe 1.2; Arg: 0,99.
- 2o -
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Beispiel II
N=^- 5 Phenylpropionyl - Phe - VaI - Arg - pNA . HCl (II)
N 0^ -3-Phenylpropionyl-Phe-Val-Arg(N02)-
Ausgangsmaterial: 3o,7 g (5o m Mol Cbo-Phe-Val-Arg(NOp)
OMe und 16,3 g (6o m Mol) 3-Phenylpropionyl-OpNP.
Herstellungsverfahren: gemäß Beispiel Ib.
R ' Reinigung: Gelfiltration an Sephadex LH-2o in Methanol,
Man erhält 25,2 g (82,5$) Ha. Das Produkt ist homogen
gemäß TLC in P und C.
Ntt- 3 Phenylpropionyl-Phe-Val-Arg(N02) - OH (Hb)
Ausgangsmaterial: 7,1 g (11,5 m Mol) Ha.
Herstellungsverfahren: gemäß Beispiel Ie. Reinigung: Gelfiltration an Sephadex LH-2o in Methanol,
o,5 g (93,1%) Hb mit einem Äquivalentgewicht von 584,1
werden erhalten. Das Produkt ist homogen gemäß TLC in A und C.
[flj ψ=- 9,3° (c = 1.0j MeOH).
- 3-Phenylpropionyl-Phe-Val-Arg(N02) pNA (lic)
Ausgangsmaterial: 3g 5 m Mol) Hb und 1,23 g (7,5 m Mol)
p-Ni trophenylisocyanat.
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Herstellungsverfahren: gemäß Beispiel Ia Reinigung: Gelfiltration an Sephadex LH-2o in Methanol.
Man erhält 2,65 g (56,%) lic. Das.Produkt ist gemäß TLC in
P, homogen.
N^ - 3-Phenylpropionyl-Phe-Val-Arg-pNA .- HCl (II) ■
Ausgangsmaterial: I79 mg (0,25 m Mol) lic.
Herstellungsverfahren: gemäß Beispiel Ig.
Reinigung: Gelfiltration an Sephadex G-15 in 33#iger
Essigsäure.
45 mg (26,5$) II werden in amorpher Form beim Gefriertrocknen
erhalten. Das Produkt weist einen Chlorgehalt von 4,91$
auf und ist gemäß TLC in A homogen.
5 0 ln Ac0H)·
Aminosäureanalyse: alio; Phe: 1.1; Arg: 0,99.
H-Phe-Val-Arg-pNA . 2 HCl (Hl)
Ausgangsmaterial: I98 mg (0,28 m Mol) Ic.
Herstellungsverfahren: gemäß Beispiel Ig.
Reinigung: Gelfiltration an Sephadex G-25 in 5o#iger
Essigsäure.
I70 mg (6l,0^) des amorphen gefriergetrockneten Produktes
III werden erhalten. Das Produkt weist einen Chlorgehalt von 11,^7$ auf und ist gemäß TLC in A homogen.
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^ =-26.3° (c=0,6l; 5o# AcOH).
Aminosäureanalyse: VaI: 1.0; Phe: 0,95; Arg: 1.0.
H-Phe-Phe-Val-Arg-pNA'2 HCl (IV) Cbo-Phe-Val-Arg (NO2)-pNA (IVa)
Ausgangsmaterial: 335 mg (0,46 m Mol) Ic und 317 mg
(0,75 m Mol) Cbo-Phe-OpNP. Syntheseverfahren: gemäß Beispiel Ib.
Reinigung: Gelfiltration an Sephadex LH-2o in DMF.
282 mg (70.OJi)IVa mit einem Schmelzpunkt von 2olr2o4°C
werden erhalten. Das Produkt ist gemäß TLC in P1 homogen.
Kl β5 =-l,o2° (c=0,98; DMF).
H-Phe-Phe-Val-Arg-pNA ' HCl (IV)
Ausgangsmaterial: 92,9 mg (0,Io7 m Mol) IVa. Herstellungsverfahren: gemäß Beispiel Ig.
Reinigung: Gelfiltration an SephadexR G-25 in 5o#iger
Essigsäure.
Man erhält 59*5 mg (73.1 %) des amorphen gefriergetrockneten
Produktes IV. Es weist einen Chlorgehalt von 9,18# auf und ist gemäß TLC in A homogen.
(X] Jp= -19,7° (c=0,76; 5oji AcOH).
Aminosäureanalyse: VaI: 1,0; Phe: 2.2; Arg: 0,98.
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Beispiel V:
p-Me-Bz-Phe-Val-Arg-pNA ' HCl (V)
p-Me-Bz-Phe-Val-Arg(N02)-pNA (Va)
Ausgangsmaterial: 155 mg (0,216 m Mol) Ic und 83,2 mg
(0,324 m Mol) p-Me-Bz-OpNP (Smp I69 - 1720C).
Syntheseverfahren: gemäß Beispiel Ib. Reinigung: Gelfiltration an Sephadex LH-2o in Methanol.
69,5 mg (45$) des amorphen Produktes Va werden erhalten.
Das Produkt ist gemäß TLC in P^ homogen.
QCj Jp= -26,1° (c= 0,69; DMF).
p-Me-Bz-Phe-Val-Arg-pNA ' HCl (V)
Ausgangsmaterial: 68,98 mg (0,0965 m Mol) Va. Syntheseverfahren: gemäß Beispiel Ig.
Reinigung: Gelfiltration an Sephadex G-15 in 33$iger
Essigsäure.
Man erhält 44,5 mg (66%) des&morphen gefriergetrockneten
Produktes V. Es weist einen Chlorgehalt von 5,ol# auf und ist gemäß TLC in A homogen.
Jp=-4o, 8° (c= 0,7o; 5o$ AcOH).
Aminosäureanalyse: VaI: 1.0; Phe: 1.0; Arg: 1.0.
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3.098 A7/1123
H<k _Ac - Phe - VaI - Arg - pNA * HCl (VI) ■
N^-Ac- Phe - Val-Arg (N02)-pNA (VIa)
Ausgangsmaterial: 233 mg (0,33 m Mol) Ic und 41 mg
(0,4om Mol) Ac2Ot
Herstellungsverfahren: gemäß Beispiel Id.
Reinigung: Gelfiltration an Sephadex LH-2o in Methanol.
Man erhält 118 mg {66%) des amorphen Produktes VIa. Das
Produkt ist gemäß TLC in P1 homogen.
D5= -i> 6° (G= l'16'
N ^-Ac-Phe-Val-Arg-pNA* HCl (Vl)
Ausgangsmaterial: 116 mg (O,l85 m Mol) VIa. Herstellungsverfahren: gemäß Beispiel Ig.
■p
Reinigung: Gelfiltration an Sephadex G-15 in 2o#iger
Essigsäure.
Man erhält 9° mg (79$) des amorphen gefriergetrockneten
Produktes VI. Es weist einen Chlorgehalt von 5,59$ auf und
ist gemäß TLC in A homogen.
d= -21.0° (c=0,62; 5o$ AcOH).
Aminosäureanalyse: VaI: 1.0; Phe: 1,2; Arg: 1.1.
Beispiel VII:
- n-Öctanoyl-Phe-Val-Arg-pNA ' HCl (VII)
-n-Octanoyl-Phe-Val-Arg(N02)-pNA (VIIa)
- 25 -
303847/1123
2322118
Ausgangsmaterial: 2o7 mg (0,288 m Mol) Ic und Io9 mg.
(0,41 m Mol) Caprylsäure-p-nitrophenylester.
Syntheseverfahren: gemäß Beispiel Ib.
Reinigung: Gelfiltration an Sephadex LH-2o in Methanol.
Man erhält 172 mg (84#)des amorphen Produktes VIIa.
Das Produkt ist gemäß TLC in P1 homogen.
[5i.]jp = -6.6° (c=o,5; DMF).
N^-n-Octanoyl-Phe-Val-Arg-pNA' HCl (VII)
Ausgangsmaterial: 129,4 mg (0,182 m Mol) VIIa.
Herstellungsverfahren: gemäß Beispiel Ig.
Reinigung: Gelfiltration an Sephadex LH-2o in Methanol und
SephadexR G-15 in j53$iger Essigsäure.
Man erhält Io9 mg (85$) des amorphen gefriergetrockneten
Produktes VII. Es weist einen Chlorgehalt von 4,90% auf
und ist gemäß TLC in A homogen.
p = -29,5° (c=0,7i 5o% AcOH).
Aminosäureänalyse: VaI: 1.0; Phe: 1.0; Arg: 0,95.
Beispiel VIII
N^ -Cyclohexylcarbonyl - Phe - VaI- Arg - pNA * HCl (VIII)
N^-Cyclohexylcarbonyl-Phe-Val-Arg(N02-pNA " (Villa)
Ausgangsmaterial: 23^ mg (0,j>3 m Mol) Ic und loo mg (o,4o ra
Mol) Cyclohexylcarbonsäure-pTnitrophenylester.
Syntheseverfahren: gemäß Beispiel Ib.
20 -
309847/1123
Reinigung: Gelfiltration an Sephadex LH-2o in Methanol.
Man erhält 117 mg (ca. 5o#) des amorphen Produktes Villa.
Bs ist gemäß TLC in P1 homogen.
N^-Cyclohexylcarbonyl-Phe-Val-Arg-pNA ' HCl (VIII)
Ausgangsmaterial: 48 ,o2 mg (0,069 m Mol) Villa.
Syntheseverfahren: gemäß Beispiel Ig.
Reinigung: Gelfiltration an SephadexR G-15 in 5o#iger
Essigsäure.
Man erhält 33*7 mg (71$) des amorphen gefriergetrockneten
Produktes VIII. Das Produkt weist einen Chlorgehalt von
auf und ist gemäß TLC in A homogen.
auf und ist gemäß TLC in A homogen.
= -32.8° (c=O,68; 5o# AcOH).
D
Aminosäureanalyse: VaI: 1.0; Phe: 1.3* Arg: 1.0.
Aminosäureanalyse: VaI: 1.0; Phe: 1.3* Arg: 1.0.
N0^-ToS-Phe-VaI-Arg-pNA ' HCl (IX)
N^-Tos-Phe-Val-Arg(N02) -pNA (IXa)
N^-Tos-Phe-Val-Arg(N02) -pNA (IXa)
Ausgangsmaterial: 360 mg (0,5 m Mol) Ie und I80 mg (0,95m
Mol) p-Toluolsulfochlorid.
Herstellungsverfahren: 360 mg Ic werden 1 ml Essigsäure ■ und 1 ml 5,6 NHBr/AcOH in feuchtigkeitsfreier Atmosphäre
gelöst. Man rührt das Gemisch eine Stunde lang bei Raumtemperatur. Die Reaktionsmischung wird dann tropfenweise unter heftigem Rühren zu destilliertem Äther getropft.
Dabei fallen 35o mg I.5 HBr.H-Phe-Val-Arg (NO2J-PNA aus. Man dekantiert die Ätherphase und wäscht den Rückstand
weitere dreimal mit Äther. Nach dem Trocknen im Vakuum
gelöst. Man rührt das Gemisch eine Stunde lang bei Raumtemperatur. Die Reaktionsmischung wird dann tropfenweise unter heftigem Rühren zu destilliertem Äther getropft.
Dabei fallen 35o mg I.5 HBr.H-Phe-Val-Arg (NO2J-PNA aus. Man dekantiert die Ätherphase und wäscht den Rückstand
weitere dreimal mit Äther. Nach dem Trocknen im Vakuum
- 27 309847/1123
über Phosphorpentoxid erhält man das Hydrobromid des
Aminosäurederivats in quantitativer Ausbeute. Das Hydrobromid-Derivat
wird in 4 ml DMP gelöst. Die Lösung wird auf -lo°C gekühlt. Dann fügt man 75 mg (0,75 m Mol)
Triethylamin hinzu, um das H-Phe-Val-Arg(N02)-pNA aus
dem Hydrobromid freizusetzen. Die Reaktionszeit beträgt eine Stunde in feuchtigkeitsfreier Atmosphäre. Das gebildete ·
Triathylaminhydrobromid wird abfiltri-ert. Man kühlt das
Piltrat auf -100C. I90 mg p-Toluolsulfochlorid werden
zugegeben. Man läßt die Lösung sich langsam auf Raumtemperatur erwärmen. Danach, d.h. nach etwa 3 Stunden, wird die Lösung
auf 100C gekühlt und mit 25 mg (0,25 m Mol) Triäthylamin
gepuffert. Die Puffermaßnahme wird etwa 2 bis 5 Stunden
späterhin weiteres Mal wiederholt. Nach einer Reaktionszeit von etwa 24 Stunden wird die Lösung bei 4o°C im Vakuum
zur Trockne eingedampft. Der Rückstand wird dreimal mit destilliertem Wasser behandelt und im Vakuum getrocknet.
Der Rückstand wird dann in Methanol gelöst und gereinigt.
Reinigung: Gelfiltration an Sephadex LH-2o in Methanol.
Man erhält 135 mg (j56,5#) des amorphen Produktes Villa,
das gemäß TLC in P, homogen ist.
ESljp= - 0° (c=1.0i DMP).
N ^ -Tos-Phe-Val-Arg-pNA * HCl (IX)
Ausgangsmaterial: 81,4^ mg-(0,11 m Mol) IXa.
Syntheseverfahren: gemäß Beispiel Ig.
Reinigung: Gelfiltration an Sephadex G-I5 in 2o#iger
Essigsäure.
63 mg (78.4$) des amorphen gefriergetrockneten Produktes IX.
Das Produkt weist einen Cl-Gehalt von 4,79# auf und ist
gemäß TLC in A homogen.
P ° (c073;
- 28 -309847/1123
Aminosäureanalyse: VaI: 1.0; Phe: 1,2; Arg: 1.0.
~p - Amino - Bz - Phe - VaI - Arg - pNA * 2 HCl (X)
Cbo-p-amino-Bz-Phe-Val-Arg (N02)-pNA (Xa)
Ausgangsmaterial: 2^5 mg (O,j53 m Mol) Ic und 17o mg
(0,44 m Mol) Cbo-p-amino-Bz-OpNP, Smp. 169-172°.
Herstellungsverfahren: gemäß Beispiel Ib. Reinigung: Gelfiltration an SephadexR LH-2o in Methanol.
Man erhält 55 mg (2o#) des amorphen Produktes Xa. Das
Produkt ist gemäß TLC in P1 homogen.
.2° (c=0,53;
N^ -prAmino-Bz-Phe-Val-Arg-pNA * 2 HCl (X)
Ausgangsmaterial: 46,8l mg (0,056 m Mol) Xa. Herstellungsverfahren: gemäß Beispiel Ig.
Reinigung: Gelfiltration an Sephadex G-15 in 2o#iger
Essigsäure.
Man erhält 15 mg (37$) des amorphen gefriergetrockneten
Produktes X mit einem Chlorgehalt von 9.42$ auf und ist
gemäß TLC in A homogen.
ψ = -46,7° (c=0,74; 59# AcOH).
Aminosäureanalyse: VaI: 1.0; Phe: 1.0; Arg: 0,95.
309847/1123
N^-ö-Aminohexanoyl-Phe-Val-Arg-pNA * HCl (Xl)
Cbo-6-aminohexanoyl-Phe-Val-Arg(N02)-pNA. (XIa)
Ausgangsmaterial: 360 mg (0,5 m Mol) Ic und 290 mg (0,75 m
Mol) Cbo-o-aminocapronsäure-p-nitrophenylester.
Herstellungsverfahren: gemäß Beispiel Ib.
Reinigung: Gelfiltration an Sephadex LH-2o in Methanol.
Man erhält 598 mg (95,5$) des amorphen Produktes XIa. · Das
Produkt ist gemäß TLC homogen.
N de -6-Aminohexanoyl-Phe-Arg-pNA ' 2 HCl (Xl)
Ausgangsmaterial: J5oo mg (0,^61 m Mol) XIa.
Herstellungsverfahren: gemäß Beispiel Ig. Reinigung: Gelfiltration an SephadexR G-I5 in ^^iger
Essigsäure. . '
Man erhält 12J mg (48$) des amorphen gefriergetrockneten Produktes
XI. Das Produkt weist einen Chlorgehalt von 9,68$
auf und ist gemäß TLC in A homogen.
= -32.0 (g=0,72; 5o# AcOH).
Aminosäureanalyse: VaI: 1,0, Phe: 1,1; Arg: 1,0.
309847/1123
Beispiel XII,:
H - Phe - Leu - Arg - pNA . 2 HCl
Cbo-Leu-Arg (NO2>-pNÄ (XIIa)
Ausgangsmaterial: 5 g (lo,6m Mol) Ia und 4,92 g (12,7 m
Mol) Cbo-Leu-OpNP).
Herstellungsverfahren: gemäß Beispiel Ib.
R Reinigung: Gelfiltration an Sephadex LH-2o in Methanol.
Man erhält 6,1 g (98$) des amorphen Produktes XIIa. Das
Produkt ist gemäß. TLC in P1 homogen. 5 = -53,5° (c=l,0; MeOH).
Cbo - Phe - Leu - Arg (NO2) -pNA (XIIb1)
Ausgangsmaterial: 3,6 g (6,5 m Mol) XIIa und 3,27 g
(7,8 m Mol) Cbo-Phe-OpNP.
Herstellungsverfahren: gemäß Beispiel Ib.
Reinigung: Gelfiltration an Sephadex LH-2o in Methanol.
Man erhält 2,95 (69,0$) des amorphen Produktes XIIb. Das
Produkt ist gemäß TLC in P, homogen. .
JSC] β5 = -6,2° (c=l.05 DMP).
H-Phe-Leu-Arg-pNA . 2 HCl (XII) Ausgangsmaterial: 124.9 mg (0,17 m Mol) XIIb.
Herstellungsverfahren: gemäß Beispiel Ig.
Reinigung: Gelfiltration an Sephadex G-25 in 50% AcOH.
Man erhält .Vo mg (Λ%) des amorphen gefriergetrockneten
Produktes XII. Das Produkt weist einen Chlorgehalt von
3 0 9 8 I* 7 7 ii 2~3
11,15$ auf und ist gemäß TLC in A homogen.
ψ = -24.4° (c=0,63; 5o$ AcOH).
Aminosäureanalyse: Leu: 1.0; Phe: 1,1; Arg: 1,0.
Beispiel XIII
Ν«*- -Bz-Phe-Leu-Arg-pNA . HCl (XIIl)
N^-Bz-Phe-Leu-Arg (N02)-pNA (XIIIa)
Ausgangsmaterial: 7^4 mg (1 m Mol) XIIb und 272 mg (1,2m
Mol) Bz2O.
Herstellungsverfahren: gemäß Beispiel Id.
Reinigung: Gelfiltration an Sephadex LH-2o in Methanol.
Man erhält 589 mg.(84$) des Produktes XIIIa , Smp. l9o-197°C,
Es ist gemäß TLC in P, und D homogen. nf = -19*1° (c=l.ol; DMP).
N <h> - Bz-Phe-Leu-Arg-pNA . HCl (XIII)
Ausgangsmaterial: 198,5 mg (0,282 m Mol) XIIIa. Herstellungsverfahren: gemäß Beispiel Ig.
Reinigung: Gelfiltration11 G-25 in 5o$iger Essigsäure.
Man erhält I88 mg (96$) des amorphen gefriergetrockneten
Produktes XIII. Es weist einen Chlorgehalt von 4,96$ auf und ist gemäß TLC in A homogen.
I = -38,3° (c_O,69; 5o$ AcOH).
Aminosäureanalyse: Leu: 1.0; Phe: 1,0; Arg: 1,0.
- 32 -
309847/1123
Beispiel XIV:
fl-Phe-Ile-Arg-pNA . 2 HCl (XIV)
Cbo-Ile-Arg(NO2)-pNA (XIVa)
Ausgangsmaterial: 1 g (2,1 m Mol) Ia und 0,98 g (2,46 m Mol)
Cbo-OpNP.
Herstellungsverfahren: gemäß Beispiel Ib.
■p
Reinigung: Gelfiltration an Sephadex LH-2o in Methanol.
Man erhält 1,12 g (91$) des Produktes XIVa, Smp. 195-2o2°C.
Das Produkt ist gemäß TLC in P^ homogen.
gC] 25= +2i8° (c= 1,Oj DMP).
Cho-Phe-Ile-Arg(NO2)-pNA (XIVb)
Ausgangsmaterial: 0,8 g (1,36 m Mol) XIVa und 0,69 g U,63 m
Mol) Cbo-Phe-OpNP.
Herstellungsverfahren: gemäß Beispiel Ib.
Reinigung: Gelfiltration an Sephadex LH-2o in Methanol.
Man erhält 445 mg (41$) XIVb mit Smp. 219 - 222°. Das Produkt
ist gemäß TLC in P1 homogen.
I5 = -7,1° (c=l; DMP).
H-Phe-Ile-Arg-pNA * HCl (XIV)
Ausgangsmaterial: 166,43 mg (0,226 m Mol) XlVb. Herstellungsverfahren: gemäß Beispiel Ig.
Reinigung: Gelfiltration an Sephadex G-25 in 5o#iger
Essigsäure.
Man erhält 95*3 mg (67$) des amorphen gefriergetrockneten
Produktes XIV. Es weist einen Chlorgehalt von 11,17$ auf und ist gemäß TLC in A homogen.
309847/ΓΙ23
Aminosäureanalyse: lie: 1,0; Phe: 1,1; Arg: 1,0. .
N Λ -Bz-Phe-Ile-Arg-pNA * HCl (XV)
NcL_ Bz-Phe-Ile-Arg (NO2) -pNA (XVa)
Ausgangsmaterial: 25o mg (0,^4 m Mol) XIVb und 92 mg (0,4 m
Mol) Bz2O.
Herstellungsverfahren: gemäß Beispiel Id.
Reinigung: Gelfiltration an Sephadex LH-2o in Methanol.
Man erhält 21o mg (88$) des. Pr-oduktes -XVa, -Smp. 244-245°C
Es ist gemäß TLC in P, homogen.
^5 = -22.3 (c=l; DMP).
-Bz-Phe-Ile-Arg-pNA * HCl (XV)
Ausgangsmaterial: 182.7 mg (0,26 m Mol) XVa. Herstellungsverfahren: gemäß Beispiel Ig.
Reinigung: Gelfiltration an SephadexR G-25 in 5o#iger
Essigsäure.
Man erhält I76.9 mg (97^) des amorphen gefriergetrockneten
Produktes XV. Es weist einen Chlorgehalt von 4,98$ auf
und ist gemäß TLC in A homogen,
pTj^ = -41.5° (c= 0,69; 50$ AcOH).
Aminosäureanalyse: He: 1,0; Phe: 1,1; Arg: 1,1.
Aminosäureanalyse: He: 1,0; Phe: 1,1; Arg: 1,1.
309847/1123
Beispiel XVI:
H-Phe-Phe-Arg-pNA ' 1 HCl
CbOrPhe-Arg (NO2)-pNA
CbOrPhe-Arg (NO2)-pNA
(XVI) (XVIa)
Ausgangsmaterial: 1 g (2,1 m Mol) Ia und I,o6 g (2,46 m Mol)
Cbo-Phe-OpNP.
Herstellungsverfahren: gemäß Beispiel Ib.
R Reinigung: Gelfiltration an Sephadex LH-2o in Methanol.
Man erhält 1,25 g (96,0#) des Produktes XVIa, Smp. 198-2o4°C.
Das Produkt ist gemäß TLC in P, homogen.
d5 = +^,2° (c= 1,0; DMP).
Cbo-Phe-Phe-Arg (NO2)-pNA
(XVIb)
Ausgangsmaterial: 0,9 g (1,45 m Mol) XVIa und 0,737 S
(1,7^ m Mol) Cbo-Phe-OpNP.
Herstellungsverfahren: gemäß Beispiel Ib.
Reinigung: Gelfiltration an Sephadex LH-2o in Methanol.
Man erhält 635 mg (58^) des Produktes XVIb, Smp. 2ol-2o3pC.
Das Produkt ist gemäß TLC in P, homogen.
IiKl D
5= -23.0° (c= 1.0; DMP).
H-Phe-Phe-Arg-pNA * 2 HCl
(XVI)
Ausgangsmaterial: I96.9 mg (0,257 m Mol) XVIb. Herstellungsverfahren: gemäß Beispiel Ig.
Reinigung: Gelfiltration an SephadexR G-25 in 5o#iger
Essigsäure.
Man erhält 75*8 mg (46$) des amorphen gefriergetrockneten
Produktes XVI. Es weist einen Chlorgehalt von lo,65# auf
und-ist gemäß TLC in A homogen.
- 35 -
309847/1123
= -6,7° (c=o,65; 5o# AcOH).
Aminosäureanalyse: Phe 2.0; Arg: 1,1.
Beispiel XVII:
N^-Bz-Phe-Phe-Arg-pNA ' HCl (XVIl)
N^-Bz-Phe-Phe-Arg-pNA ' HCl (XVIl)
N<K_Bz-Phe-Phe-Arg(N02)-pNA (XVIIa)
Ausgangsmaterial: 25o mg (0,^25 m Mol) XVIb und 90 mg (0,512
m Mol) Bz2O.
Herstellungsverfahren: gemäß Beispiel Id.
Reinigung: Gelfiltration an Sephadex LH-2o in Methanol.
Man erhält 22o mg (92$) des amorphen Produktes XVIIa. Es
ist gemäß TLC in P1 homogen.
d3= -36>6° (c = 0,95; DMP).
N Jv -Bz-Phe-Phe-Arg-pNA * HCl (XVII)
N Jv -Bz-Phe-Phe-Arg-pNA * HCl (XVII)
Ausgangsmaterial: 114,6 mg (0,156 m Mol) XVIIa.
Herstellungsverfahren:
in 5o#iger Essigsäure.
in 5o#iger Essigsäure.
Herstellungsverfahren: Gelfiltration an SephadexR G-25
Man erhält 7Ti1I- mg (68%) des amorphen gefriergetrockneten
Produktes XVII. Es weist einen Chlorgehalt von 4,81$ auf und ist gemäß TLC in A homogen.
f °
jf = -25-5° (c=0,72; 5o# AcOH).
Aminosäureanalyse: Phe: 2,0; Arg: 0,97.
309847/1123
Beispiel XVIII:
H-D- Phe - VaI - Arg - pNA * 2 HCl (XVIIl)
Cbo-D-Phe-Val-Arg(NO2)-pNA / (XVIIIa)
Ausgangsraaterial: 48o rag (0,83.mMol) Ib und 53o rag (1,25
Mol) Cbo-D-Phe-OphP mit Smp. 126,2 - 126.6°,
4 °
ß4 = +24,75° (c=1.0; DMP).
Herstellungsverfahren: gemäß Beispiel Ib.
R · Reinigung: Gelfiltration an Sephadex LH-2o in Methanol.
Man erhält 587 mg (98$) des amorphen Produktes XVIIIa. Es
ist gemäß TLC in P, homogen.
9o (θΞ l)0. DMF).
H-D-Phe-Val-Arg-pNA* 2 HCl (XVIIl)
Ausgangsmaterial: I53.8 mg (0,212m Mol) XVIIIa.
Herstellungsverfahren: gemäß Beispiel I. Reinigung: Gelfiltration an SephadexR G-15 in 2o#iger
Essigsäure.
Man erhält 36,3 mg (28$) des amorphen gefriergetrockneten
Produktes XVIII. Es weist einen Chlorgehalt von 11,34# auf
und ist gemäß TLC in A homogen.
D5" -7ο·3° (c=0f61; 5o# AcOH).
Aminosäureanalyse: VaI: 1,0; Phe: 1,1; Arg: 1,0.
Beispiel XIX:
N ^.Bz-D-Phe-Val-Arg-pNA * HCl (XIX)
- 37 -
309647/1123
N^V- Bz-D-Phe-Val-Arg (NO2)-ρΝΑ (XIXa)
Ausgangsraaterial: 244 mg ,0,34 ra Mol) XVIIIa und 92 mg
(0,4lm Mol) Bz2O.
Herstellungsverfahren: gemäß Beispiel Id.
Reinigung: Gelfiltration an Sephadex LH-2o in Methanol
Man erhält l8l mg {11%) des Produktes XIX, Smp. 211-215°C
Das Produkt ist gemäß TLC in P^ homogen.
= -l,>i° (c=o,8; DMP).
-Bz-D-Phe-Val-Arg-pNA * HCl (XIX)
Ausgangsmaterial: 128,3 mg (O,186 m Mol) XIXa.
Herstellungsverfahren: gemäß Beispiel Ig.
Reinigung: Gelfiltration an SephadexR G-25 in 5#iger
Essigsäure.
Man erhält Io3,8 mg (81$) des amorphen gefrxergetrockneten
Produktes XIX. Es weist einen Chlorgehalt von 5,15$ auf
und ist gemäß TLC in A homogen.
D^= -36.9° (c=0,68; 5o# AcOH).
Aminosäureanalyse: VaI: 1,0; Phe: 0,9; Arg: 0,9.
Beispiel XX:
H-Tyr-Val-Arg-pNA · HCl (XX)
Cbo-Tyr-(OBz)-VaI-Arg (NO2)-pNA (XXa)
Ausgangsmaterial: 48o mg (0,8^m Mol) ve« /-or-
und 66o mg (1,25 m Mol) Cho-Tyr-(OBz)-OpNP, Smp. 147.5'- l49.o°C
und [el"] Q5 = -8,5° (c=2,0; DMF).
- 38 -
am
30 984 7/1123
2322118
Herstellungsverfahren: gemäß Beispiel Ib.
Reinigung: Gelfiltration an Sephadex LH-2o in Methanol.
Man erhält 46o mg (55$) des amorphen Produktes XXa. Es ist
gemäß TLC in P-, homogen
H-Tyr-Val-Arg-pNA * HCl (XX) Ausgangsmaterial: 144,7 mg (0,169 m Mol) XXa.
Herstellungsverfahren: gemäß Beispiel Ig.
Reinigung: Gelfiltration an Sephadex G-15 in 2o#iger
Essigsäure.
Man erhält 65*4 mg (625ε) des amorphen gefriergetrockneten
Produktes XX. Es weist einen Chlorgehalt von 11·,2ο$ auf
und ist gemäß TLC in A homogen.
= -29,8° (c=0,63; 5o$ AcOH).
Aminosäureanalyse: VaI: 1,0; Tyr: 1,2; Arg: 1,0.
Beispiel XXI:
N^- - Bz-Tyr-Val-Arg-pNA ' HCl (XXl)
-Bz-Tyr-Val-Arg(NO2)-pNA (XXIa)
Ausgangsmaterial: 246 mg (0,287 m Mol) XXa und 65 mg (0,29 m Mol) Bz2O.
Herstellungsverfahren: gemäß Beispiel Id.
Die Bz-Gruppe, die die OH-Gruppe des Tyrosine schützt, wird während der Behandlung HBr in gewissem Ausmaß abgespalten.
Die Ausbeute ist daher niedrig. Das erhaltene Produkt steht
- 39 -
309847/1123
im wesentlichen sowohl aus XXIa und NdWBz-Tyr (OBz)-Val-Arg
(N02)-pNA).
■p
Reinigung: Gelfiltration an Sephadex LH-2o in Methanol.
Man erhält 193 mg (8l#)eines amorphen Produktes, das im TLC
in P-, zwei Substanzen zeigt (siehe oben).
N <^-Bz-Tyr-Val-Arg-pNA * HCl (XXl)
Ausgangsmaterial: I38.9 mg XXIa und N -Bz-Tyr (OBz)-Val-Arg
(N02)-pNA.
Herstellungsverfahren: gemäß Beispiel Ig.
Reinigung: Gelfiltration an Sephadex G-15 in 5o$iger
Essigsäure.
Man erhält 75»^ mg des amorphen gefriergetrockneten Produktes
XXI. Es weist einen Chlorgehalt von 5t5% auf und ist gemäß
TLC in A homogen.
p = -34.7° (c=0,7; 5o% AcOH).
Aminosäureanalyse: VaI: 1,0; Tyr: 1,2; Arg: 1,0.
Beispiel XXII:
Nck-^-Aminoäthylcyclohexylcarbonyl-Phe-Val-Arg-pNA -2 HCl (XXII)
Cbo-4-aminoäthylcyclohexylcarbonyl-Phe-Val-Arg-pNA (XXIIa)
Ausgangsmaterial: 268 mg (0,65m Mol) Cbo—4— AminoäthylcycIohexylcarbonyl-OpNP
und 360 mg (0,5 m Mol) Ic.
Herstellungsverfahren: gemäß Beispiel Ib.
Reinigung: Gelfiltration an Sephadex LH-2o in Methanol.
309847/1123
Man erhält 2o5 mg (62$) des amorphen Produktes XXIIa. Das
Produkt ist gemäß TLC in P, homogen. (XjJp = _8j5o (c=oi5i; DMP).
NiK-^-Aminoäthylcyclohexylcarbonyl-Phe-Val-Arg-pNA * 2 HCl (XXIl]
Ausgangsmaterial: 137 mg (0,16 m Mol) XXIa. Herstellungsverfahren: gemäß Beispiel Ig.
Reinigung: Gelfiltration an SephadexR G-15 in 33 $iger
Essigsäure.
Man erhält 82,2 (68,5$) des amorphen gefriergetrockneten
Produktes XXII. Es weist einen Chlorgehalt von 9,37$ auf und
ist gemäß TLC in A homogen.
°5= -35.2° (c= 0,73;· 5o$ AcOH).
Aminosäureanalyse: VaI: 1,0; Phe: 1,1; Arg: 1,0.
Beispiel XXIII:
Mdv-a-Cyclohexylacetyl-Phe-Val-Arg (N0P)-pNA (XXIIIa)
ΝίΚ-2-Cyclohexylacetyl-Phe-Val-Arg (UO2)-pNA (XXIIIa)
Ausgangsmaterial: I97 mg (0,75 m Mol) Cyclohexylacetyl- OpNP
und 331 mg (0,46 m Mol) Ic.
Herstellungsverfahren: gemäß Beispiel Ib.
Reinigung: Gelfiltration an Sephadex LH-2o in Methanol.
Man erhält 2o5 mg (63$) des amorphen Produktes XXIIIa.
Es ist gemäß TLC in P1 homogen.
p = -5.0° (c=0,5; DMP).
- 41 -
309847/1123
Ndv_2-Cyclohexylacetyl-Phe-Val-Arg-pNA * HCl -(XXIlI)
Ausgangsmaterial: 173 mg (0,244 m Mol XXIIIa) Herstellungsverfahren: gemäß Beispiel Ig.
R Reinigung: Gelfiltration an Sephadex G-15 in ^)^) $&iger
Essigsäure.
Man erhält 139 mg (8l#) des amorphen gefriergetrockneten
Produktes XXIII. Es weist einen Chlorgehalt von ^,ο\% auf
und ist gemäß TLC in A homogen.
J= 0,35; 5o# AcOH).
Aminosäureanalyse: VaI: 1,0; Phe: 1,1; Arg: 1,0.
Beispiel XXIV:
4-Aminobutylryl-Phe-Val-Arg-pNA * 2 HCl (XXIV)
Cbo-4-aminobutylryl-Phe-V^l-Arg (NO2) -pNA (XXIVa)
Ausgangsmaterial: 234 mg (0,65 m Mol) Cbo-4-amino-butyryl-OpNP
und 360 mg (0,5m Mol) Ic.
Herstellungsverfahren: gemäß Beispiel Ib. Reinigung: Gelfiltration an S§phadexR LH-2o in Methanol.
Man erhält 297 mg (74$) des amorphen Produktes XXIVa. Das
Produkt ist gemäß TLC in P1 homogen.
4-Aminobutyryl-Phe-Val-Arg-pNA '_2_HC1 (XXIV)
Ausgangsmaterial:' 29I mg (0,362 m Mol) XXIVa. Herstellungsverfahren: gemäß Beispiel Ig.
Reinigung: Gelfiltration an S phadexR G-15 in 33#iger
Essigsäure.
- 42 -
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Man erhält 167 mg ^66%) des amorphen gefriergetrockneten
Produktes XXIV. Es weist einen Chlorgehalt von Io,o5# auf
und ist gemäß TLC in A homogen.
P ° (c=0,72; 5o# AcOH).
Aminosäureanalyse: VaI: 1,0; Phe: 1,0; Arg: 1,1.
Beispiel XXV:
2-(4-Aminophenyl)-acetyl-Phe-Val-Arg-pNA * 2 HCl (XXV)
2-(4-Cbo-aminophenyl)-acetyl-Phe-Val-Arg(N02)-pNA (XXVa)
Ausgangsmaterial: 2oo mg (0,278 m Mol) Ic und 152 mg
(0,371m Mol) 2-(4-Aminophenyl)-acetyl-0pNP.
Herstellungsverfahren: gemäß Beispiel Ib.
R Reinigung: Gelfiltration an Sephadex ■ LH-2o in Methanol.
Man erhält 2ol mg (85$) des amorphen Produktes XXVa. Es ist
gemäß TLC in P1 homogen.
24
24
£4 = -4,3° (c=o,5; DMP).
2-(4-Aminophenyl)-acetyl-Phe-Val-Arg,pNA * HCl (XXV)
Ausgangsmaterial: 97,5 mg (0,114 m Mol) XXVa. Herstellungsverfahren: gemäß Beispiel Ig.
Reinigung: Gelfiltration an Stphadex G-I5 in 33#iger
Essigsäure.
Man erhält 43,5 (51$) des amorphen gefriergetrockneten Produktes
XXV. Das Produkt weist einen Chlorgehalt von 9,47# auf und
ist gemäß TLC in A homogen.
Kl jp = -33.0° (c=0,75; 5o# AcOH).
Aminosäureanalyse: VaI: 1,0; Phe: 1,1; Arg: 1,1.
- 43 -
309847/1123
Beispiel XXVI:
N^-Bz-C-Phe-Gly-Val-Arg-pNA * HCl (XXVl)
Cbo-C-Ph * Gly-Val-Arg(N02)-pNA (XXVIa)
Ausgangsmaterial: 23o mg (0,568 m Mol) Cbo-C-Ph . GIy-OpNP
und 250 mg (O,4j57 m Mol) Ib.
Herstellungsverfahren: gemäß Beispiel Ic.
Reinigung: Gelfiltration an Sephadex LH-2o in Methanol.
Man erhält 292 mg (95$) des amorphen Produktes XXVIa. Es
ist gemäß TLC in P1 homogen.
[3CJ ß4 = +8,2°■■ (C=O-,5o; DMF).
. Gly-Val-Arg (NO2)-pNA (XXVIb)
Aus gangs material: 29ο mg (0,4l m Mol) XXVIa und Ij5o mg
(0,575 m Mol) Bz2O.
Herstellungsverfahren: gemäß Beispiel Id.
Reinigung: Gelfiltration an Sephadex LH-2o in Methanol.
Man erhält 211 mg (J6%) des amorphen Produktes XXVIb. Das
Produkt ist gemäß TLC in P1 homogen. ,0
ß3 = +lo,4° (c=0,51; DMP)
N<^-Bz-C-Ph . Gly-Val-Arg-pNA . HCl (XXVI)
Ausgangsmaterial: 2oo mg (0,296 m Mol) XXVIb. Herstellungsverfahren: gemäß Beispiel Ig.
Reinigung: Gelfiltration an SephadexR G-I5 in
Essigsäure.
- 44 -
3098 4 7/1123
Man erhält l86 mg (95$) des amorphen gefriergetrockneten
Produktes XXVI. Es weist einen Chlorgehalt von 5,25$ auf
und ist gemäß TLC in A homogen.
g5 = -27,0° (c-0,67i 5o% AcOH).
Aminosäureanalyse: VaI: 1,0; C-Ph . GIy: 1,2; Arg: 0,9.
Beispiel XXVII:
N^-Bz-Phe-Phe-Val-Arg-pNA . HCl (XXVII) '
-Bz-Phe-Phe-Val-Arg(NO2)-pNA (XXVIIa)
Ausgangsmaterial: I4l mg (0,165 m Mol) IVa und 9o mg
(0,4 m Mol) Bz2O.
Herstellungsverfahren: gemäß Beispiel Id.
Reinigung: Gelfiltration an Sephadex LH-2o in Methanol.
Man erhält 114 mg (84$) des amorphen Produktes XXVIIa. Es
ist gemäß TLC in Pl homogen.
5 ξ4= -0,75° (c=l,2; DMP).
N^-Bz-Phe-Phe-Val-Arg-pNA . HCl (XXVII)
Ausgangsmaterial: 71 mg (ca. 0,087m Mol) XXVIIa.
Herstellungsverfahren: gemäß Beispiel Ig. Reinigung: Gelfiltration an SephadexR G-I5 in 33#iger
Essigsäure.
Man erhält 47 mg (60$) des amorphen gefriergetrockneten
Produktes XXVII. Das Produkt weist einen Chlorgehalt von 4,23$ auf und ist gemäß TLC in A homogen.
Aminosäureanalyse: VaI: 1,0; Phe: 2,3; Arg: 1,0.
- 45 -
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τ*
Beispiel XXVIII:
NdUBz-DL-C-Ph . Gly-Val-Arg-pNA · HCl (XXVIIl)
Cbo-DL-C-Ph ' Gly-Val-Arg(NO2)-pNA (XXVIHa)
Ausgangsmaterial: 285 mg (0,5 m Mol) Ib und 285 mg (0,7m Mol)
Cbo-DL-C-Ph . GIy-OpNP, Smp. lo7-lo8°C.
Herstellungsverfahren: gemäß Beispiel Ic.
Reinigung: Gelfiltration an Sephadex LH-2o in Methanol.
Man erhält 353 mg (8l#) des amorphen Produktes XXVIIIa. Es
ist gemäß TLC in P, homogen.
N^-Bz-DL-C-PH . Gly-Val-Arg (NO2) . pNA (XXVIIIb)
Ausgangsmaterial: 285 mg (0,4o3m Mol) XXVIIIa und I8I mg
(0,8 m Mol) Bz2O.
Herstellungsverfahren: gemäß Beispiel Id.
Ti
Reinigung: Gelfiltration an Sephadex LH-2o in Methanol.
Man erhält 226 mg 83$) des amorphen Produktes XXVIIIb.
Das Produkt ist gemäß TLC in Ρχ homogen.
N (K -Bz-DL-C-Ph . Gly-Val-Arg-pNA . HCl (XXVIIl)
Ausgangsmaterial: lol mg (0,15 m Mol) XXVIIIb.
Herstellungsverfahren: gemäß Beispiel Ig.
Reinigung: Gelfiltration an SephadexR G-15 in 33#iger
Essigsäure.
Man erhält 6l mg (6l#) des amorphen gefriergetrockneten
Produktes XXVIII. Es weist einen Chlorgehalt von 5,21# auf und ist gemäß TLC in D homogen.
Aminosäureanalyse: VaI: 1,Oj C-Ph . GIy: 1,2; Arg: 0,9.
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Beispiel XXIX:
Ν'Λ-Bz-Phe-Val-Arg-2-NA . HCl (XXIX)
Cbo-Arg;NO2)-2-NA ' (XXIXa)
Ausgangsmaterial: 5,6 g lora Mol) Cbo-Arg (NC>2)-0H und
1,72 g (12m Mol) 2-Maph£ylamin.
Herstellungsverfahren: gemäß Beispiel Ia-2.
R Reinigung: Gelfiltration an Sephadex LH-2o in Methanol,
Man erhält 4,05 g (84$) des amorphen Produktes XXIXa.
Das Produkt ist gemäß TLG in P1 homogen.
] 2J* = +7,4° (c=l.Oj DMP).
Cbo-Val-Arg(NO2)-2-NA (XXIXb)
Ausgangsmaterial: 1,5 g (J5,lm Mol) XXIXa und 1,^8 g
(3,7 m Mol) Cbo-Val-OpNP.
Herstellungsverfahren: gemäß Beispiel Ib.
Reinigung: Gelfiltration an Sephadex LH-2o in Methanol,
Man erhält l.Jo g (95%) eines zum Teil kristallenen Produktes
XXIXb. Es ist gemäß TLC in P1 homogen. ·
Q2 = -6.0° (c=l,ol; DMP).
Cbo-Phe-Val-Arg(NO2)-2-NA (XXIXc)
A us gangs material: 1,65 g (2,84m Mol) XXIXb und 1,4.5 g
O,k m Mol) Cbo-Phe-OpNP.
Herstellungsverfahren: gemäß Beispiel Ic.
Reinigung: Gelfiltration an Sephadex LH-2o in Methanol.
- 47 -
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Man erhält 1,55 g {15%) eines amorphen Produktes XXIXc. Es
ist gemäß TLC in P1 homogen.
p2 = -10,9° (e=l,01; DMF).
NCv._Bz_phe_Val-Arg(N02)-2-NA (XXIXd)
Ausgangsmaterial: .1,15 g (1,58m Mol) XXIXc und ΚΘ5 mg
(2.05m Mol) Bz2O.
Herstellungsverfahren: gemäß Beispiel Id.
R Reinigung: Gelfiltration an Sephadex LH-2o in Methanol.
Man erhält 0,89 g (8o,3$) eines zum Teil kristallenen Produktes
XXIXd. Das Produkt ist gemäß TLC in P1 homogen.
*~ D = -31.1° (o=l,öl; DMF).
N^-Bz-Phe-Val-Arg-2-NA . HCl (XXIX)
Ausgangsmaterial: 620 mg (0,89 m Mol) XXIXd.
Herstellungsverfahren: gemäß Beispiel Ig. Reinigung: Gelfiltration an SephadexR G-I5 in 5o#iger
Essigsäure.
Man erhält 385 mg (ό3>#) eines amorphen gefriergetrockneten
Produktes XXIX. Das Produkt weist einen Chlorgehalt von 5,12$ auf und ist gemäß TLC in A homogen.
ο2 = -53..8° (c=0,71; 50$ AcOH).
Aminosäureanalyse: VaI: 1,0; Phe: 1,1; Arg: 1,0.
- 48 -
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Beispiel XXX:
Nd._Bz-Phe-Val-Arg-l-nitro-2-NA · HCl (XXX)
Cbo-Arg (NO2)-l-nitro-2-NA (XXXa)
Ausgangsmaterial: 3,6 g (Io m Mol) Cbo-Arg(NO2)-OH und
2,26 g (12 m Mol) l-Hitro-2-naphthylamin.
Herstellungsverfahren: gemäß Beispiel Ia-2.
Reinigung: Gelfiltration an Sephadex LH-2o in Methanol.
Man erhält 3,85 g (J3,l% des amorphen Produktes XXXa. Es
ist gemäß TLC in P1 homogen.
*9 = -11.8° (c=l.0; DMF).
Cbo-Val-Arg(NO2)-1-nitro-2-NA (XXXb)
Ausgangsmaterial: 95o mg (1,8 m Mol) XXXa und 825 mg
(2,2 m Mol) Cbo-Val-OpNP.
Herstellungsverfahren: gemäß Beispiel Ib.
Reinigung: Gelfiltration an Sephadex LH-2o in Methanol.
Man erhält 0,9 g (8o#) eines zum Teil kristallenen Produktes
XXXb. Es ist gemäß TLC in P1 homogen.
Cbo-Phe-Val-Arg(NO2)-l-nitro-2-NA (XXXc)
Ausgangsmaterial: 800 mg (1,27 m MoI)1XXXb und o4o mg
(1,52 m Mol) Cbo-Phe-OpNP.
Herstellungsverfahren: gemäß Beispiel Ic.
TD
Reinigung: Gelfiltration an Sephadex LH-2o in Methanol,
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Man erhält 785 mg (79,9$) des amorphen Produktes XKXc.
Das Produkt ist gemäß TLC in P1 homogen.
d~ = ~7'°° (°=l'02'>
DMp)·
N^-Bz-Phe-Val-Arg(N02)-nitro-2-NA (XXXd)
Ausgangsmaterial: 680 mg (0,88 m Mol) XXXb und 2öO mg
(115 m Mol) Bz2O.
Herstellungsverfahren: gemäß Beispiel Id.
Reinigung: Gelfiltration an Sephadex LH-2o in Methanol.
Man erhält 48o mg (73$) des amorphen Produktes XXXd.
Das Produkt ist gemäß TLC in P1 homogen.
jd] ^4 = -31,4° (c=0,9; DMP).
Nök-Bz-Phe-Val-Arg-l,nitro-2-NA · HCl (XXX)
Ausgangsmaterial: 48o mg (0,65 m Mol) XXXd. Herstellungsverfahren: gemäß Beispiel Ig.
Tj
Reinigung: Gelfiltration an Sephadex G-I5 in jjyol
Essigsäure.
Man erhält 258 mg (57$) des amorphen gefriergetrockneten
Produktes XXX. Es weist einen Chlorgehalt von 4,80$ uaf
und ist gemäß TLC in A homogen.
D2 = -^9,7° (c=0,7J>; 5o$ AcOH). '
Beispiel XXXI:
N^-Bz-Phe-Val-Arg-4-nitro-l-NA » HCl (XXXI)
Cbo-Arg(N02)-4-nitro-l-NA (XXXIa)
Ausgangsmaterial: p,6 g (Io m Mol) Cbo-Arg(N02)-0H und
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:->,'do g (12 in Mol) 4-Kitro-l-naphthylamin.
Herstellungsverfahren: gemäß Beispiel Ia-2.
Ti
Reinigung: Gelfiltration an Sephadex LH-2o in Methanol.
Man erhält j>,6l g jO>S) eines zum Teil kristallenen Produktes
XXXa. Es ist gemäß TLC in P1 homogen. ^2 = -11,4° (c= l,ol; DMF).
Cbo-Val-Arg(N02)-4-nitro-l-NA (XXXIb) .
Ausgangsmaterial: 650 mg (1.2,5 m Mol) XXXIa und 55O mg
(1,45 m Mol) Cbo-Val-OpNP.
Herstellungsverfahren: gemäß Beispiel Ib.
Reinigung: Gelfiltration an Sephadex LH-2o in Methanol.
Man erhält 460 mg (60#) des amorphen Produktes XXXIb. Ss
ist gemäß TLC in P-, homogen.
Cbo-Phe-Val-ArgiN02)-4-nitro-l-NA (XXXIc)
Ausgangsmaterial: 450 mg (0,72 m Mol) XXXIb und j5o5 mg
(0,86 m Mol) -Cbo-Phe-OpNP.
Herstellungsverfahren: gemäß Beispiel Jc.
Reinigung: Gelfiltration an Sephadex LH-2o in Methanol.
Man erhält 500 mg (90$) eines zum Teil kristallenen Produktes
XXXIc. Es ist gemäß TLC in P1 homogen. ^4= -6.0° (c=l,Oj DMF).
-Bz-Phe-Val-Arg(N02)-4-nitro-l-NA XXXId)
Ausgangsmaterial: 490 mg (0,635 m Mol) XXXIc und 180 mg
(0,8o rn Mol) Bz2O.
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2322118
Herstellungsverfahren: gemäß Beispiel Id.
JD
Reinigung: Gelfiltration an Sephadex LH-2o in Methanol,
Man erhält 400 mg (84,7#) des amorphen Produktes XXXId.
Es ist gemäß TLC in P, homogen.
N^-Bz-Phe-Val-Arg-4-nitro-l-NA * HCl (XXXl)
Ausgangsmaterial: 380 mg (0,51 m Mol) XXXId.
Herstellungsverfahren: gemäß Beispiel Ig.
Reinigung: Gelfiltration an Sephadex G-I5 in 5o#lger
Essigsäure.
Man erhält 3oj5 mg (81%) des amorphen gefriergetrockneten
Produktes XXXI. Das Produkt weist einen Chlorgehalt von 4 auf und ist gemäß TLC in A homogen.
= -37,7° (c=O,74; 50# AcOH).
Aminosäureanalyse: VaI: 1,0; Phe: 1,1; Arg: 0,9.
Beispiel XXXII:
N^-Bz-Phe-Val-Lys-pNA . Hcl (XXXII)
Nd--BOC-Lys(£-Cbo)-pNA . (XXXIIa)
6,3 g (11,2 m Mol) N^-B0C-Lys-(£-Cbo)-OH * DCHA werden in
4o ml trockenem frisch destilliertem HMPTA bei Raumtemperatur gelöst. Danach werden 5 g (3o,5 m Mol) p-Nitrophehylisocyanat
portionsweise unter Rühren und in einer feuchtigkeitsfreien Atmosphäre zugegeben. Nach 24 Stunden bei Raumtemperatur
wird die Reaktionsmischung gemäß der in Beispiel Ia angegebenen Beschreibung behandelt. Nebenprodukte der Reaktion sind
N, N'-Bis-p-nitro-phenylcarbamid und N-p-Nitrophenyl-N,
N'-dlcyclohexylcarbamid, .die kaum löslich in Methanol sind.
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Das Produkt wurde durch Gelfiltration an einer Kolonne mit Sephadex LH
setzt, gereinigt.
setzt, gereinigt.
mit Sephadex LH-2o, mit Methanol ins Gleichgewicht ge-
Man erhält 4,17 g (7^,5#) des zum Teil kristallinen Produktes
XXXIIa. Das Produkt ist gemäß TLC in P1 homogen.
N^-BOC-VaI-Lys (fc-Cbo)-pNA (XXXIIb)
10 ml frisch destillierte Trifluoresslgsäure werden zu
2,2o g (4,4 m Mol) XXXIIa in einer feuchtigkeitsfreien
Atmosphäre gegeben. Nach 60-minütigem Rühren bei Raumtemperatur wird die Reaktionslösung in 15O ml trockenen
Äther unter heftigem Rühren eingegossen. Dies führt zu der Ausfällung von CP5COOH · H-Lys (£-Cbo)-pNA in Form <änes
Öls, das beim Kühlen hart wird. Die Ätherphase wird dekantiert und der Niederschlag weitere drei mal mit 75 ml trockenem
Äther behandelt. Nach dem Trocknen im Vakuum über Natriumhydroxid und Phosphorpentoxid erhält man das Trifluoracetat
des Lysinderivats in quantitativer Ausbeute (2,25 g).
2,25 g (4,4 m Mol) CF^COOH . H-Lys(fc-Cbo)-pNA werden in
Io ml DMP gelöst und auf -100C gekühlt. 0,75 ml (5,5 m Mol)
Trläthylamin werden zugegeben, um das Aminosäurederivat aus seinem Trifluoracetat freizusetzen. Danach versetzt
man 2,0 g (5,5 m Mol) BOC-VaI-OpNP. Nachdem die Reaktionslösung nach mehreren Stunden Raumtemperatur erreicht hat,
wird sie erneut gekühlt und mit 0,^1 ml (2,2 m Mol) Triäthylamin
gepuffert. Die Puffermaßnahme wird nach etwa 2 Stunden ein weiteres Mal wiederholt. Nach einer Reaktionszeit
von 24 Stunden wird die Lösung im Vakuum bei ca. 40°C zur Trockne eingedampft. Der Rückstand wird dreimal mit 2o ml
destilliertem Wasser behandelt und im Vakuum getrocknet.
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Das Rohprodukt wird in Methanol gelöst und durch Gel»-
filtration auf einer Kolonne mit mit Methanol ins Gleichgewicht gesetztem Sephadex LH-2o gereinigt. Man erhält
aus dem Eluat eine Fraktion mit einem Gewicht,von 2,12 g
(80,yft) XXXIIb. Das Produkt ist gemäß TLC in P1 und C
homogen.
22 = _lj9o (Cslf0; DMP).
BOC-Phe-Val-Lys fc -Cbo)-pNA (XXXIIc)
Ausgangsmaterial: 0,85 g (1,42m Mol) XXXIIb und 0,77 g
(2,0 m Mol) BOC-Phe-OpNP.
Herstellungsverfahren: gemäß Beispiel XXXIIb. Reinigung: Gelfiltration an Sephadex LH-2o in Methanol
Man erhält 0,84 g (79,3$) des amorphen Produktes XXXIIc.
Das Produkt ist gemäß TLC in P1 homogen.
= -9,3° (c=l,02; DMP).
N d-Bz-Phe-Val-Lys (£ -Cbo) -pNA (XXXIId)
Ausgangsmaterial: 6OO mg (O,8o4m Mol) XXXIIc und 280 mg
(1,25 m Mol) Bz2O.
Herstellungsverfahren: Decarbobutyloxylierung von XXXIIc
wird analog zu dem Verfahren des Beispiels XXXIIIb durchgeführt.
608 mg CP3COOH * H-Phe-Val-Lys(£-Cbo)-pNA werden in Io ml
DMF gelöst und auf -10°C gekühlt. Danach fügt man H^ ml
(0,8 m Mol) Triäthylamin hinzu, um das Peptidamin aus seinem Salz in Freiheit zu setzen. 28o mg (1,25 m Mol) Bz2O werden
zu der Lösung bei einer Temperatur von -100C gegeben. Die
Lösung wird danach gepuffert und gemäß Beispiel XXXIIb behandelt. Die Gelfiltration des Rohproduktes an einer
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■ρ
Kolonne mit Sephadex LH-2o in Methanol ergibt 46o mg
Produkt, das gemäß TLC in P1 und C homogen ist.
g4= -22.8° (c=O,99J
N d.-Bz-Phe-Val-Lys-pNA · HCl (XXXII)
Ausgangsmaterial: 28o mg (0,373 m Mol) XXXIId.
Herstellungsverfahren: Gemäß Beispiel Ig.
Reinigung: Gelfiltration an Sephadex G-15 in 5o#iger
Essigsäure.
Man erhält 172 g (71#) cles amorphen gefriergetrockneten
Produktes XXXII mit einem Chlorgehalt von 5,39 #· Das Produkt
ist gemäß TLC in A homogen.
AcOH). .
Aminosäureanalyse: VaI: 1,0; Phe: 0,9; Lys 1,1.
Die gemäß den vorstehenden Beispielen hergestellten Substrate wurden in der folgenden Weise zur Bestimmung von
verschiedenen Enzymen verwendet:
Das Prinzip der Bestimmung beruht auf der Tatsache, daß das durch die enzymatische Hydrolyse gebildete Produkt ein
UV-Spektrum aufweist, welches von dem des Substrats vollständig getrennt ist. Das Substrat gemäß Beispiel I, N1^-
Bz-Phe-Val-Arg-pNA · HCl, weist somit ein Absorptionsmaximum
bei 3o3 nm mit einem molaren Extinctionskoeffizienten von
12900 auf. Die Absorption des Substrats ist bei 4o5 nm nicht signifikant. p-Nitroanilin (pNA), das aus dem Substrat
während der enzymatischen Hydrolyse gebildet wird, weist ein Absorptionsmaximum bei 380 nm mit einem molaren Extinktionskoeffizienten von 13200 auf, welcher bei 4o5 nm lediglich
auf 9620 vermindert ist.
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Die enzymatische Reaktion kann in der folgenden Weise
scheniatisch wiedergegeben werden:
kl k3
E + .q ■ ES ^ES1 + Chromophor P1
Ic2 1^
E + P2
E = Enzyme S 3= Substrat ES = Enzym-Substrat-Komplex
Pl und P2 = Produkte
ki, k2, kx und kij. = Geschwindigkeitskonstanten
k2 Dissoziationskonstant, für ES = -^— =.Km {Michaelis TKons t. )
Wenn (S) >^ (E) und k^ <$C k^ ist, gilt:
K CtP) - (ESl7x (S) (1)
(BB)
Die Bildungsgeschwindigkeit des Chromophors ist: ν =k-j>
χ (ES)
k, x (E) χ (S)
v=—2 r-
(2)
Km+ (S)
Wenn alles E an S gebunden ist, gilt: (ES) = (E) und
v = Vtx = k3 x
Lineweaver-Burk-Gleichung:
K.
max
- 56 -3098O/1
Wie sich aus Gleichung (2) ergibt, bestimmen die Konstanten K und k^ die Wirksamkeit des Enzymsubstrats für ein vorgegebenes
Enzym. Zum Zweck der Bestimmung dieser Konstanten wird im wesentlichen das folgende Verfahren angewandt: Das
Enzym und das Substrat werden in einer Pufferlösung gemischt und die Reaktion wird spektrophotometrisch 5 Minuten lang verfolgt.
Die Konzentration des Substrats (S) wird variiert, während die Enzymkonzentration (E) für jedes Substrat konstant
gehalten wird. Die Extinktion (OD) wird als Punktion der Zeit aufgetragen. Aus der in dieser Weise erhaltenen Kurve
ergibt der Tangent (=Differenz der Extinktion pro Minute, /Nk OD/min., aus der die Menge in uMol des gebildeten p-NÄ/min
(v) berechnet werden kann) zur Zeit Null die Anfangsreaktionsgeschwindigkeit,
v. Wenn __ gegen ,^\ aufgetragen wird, erhält
man K und ν „ (aus äer Gleichung (4)) aus dem Diagramm,
ro max
K1n und k-5 (= max ) für Thrombin und verschiedene
Enzymsubstrate sind in Tabelle 1 und für Trypsin in Tabelle wiedergegeben. Die Daten bezüglich Km und k, sind in solchen
Fällen nicht angegeben, in denen die Werte nicht bestimmt worden sind, oder diese konnten nicht bestimmt werden, weil
keine lineare Abhängigkeit zwischen 1 und 1 erhalten wurde.
Eine orientierende Bewertung der Enzym-Substrat-Beziehung für verschiedene Substrate kann erhalten werden, indem man die
Menge des pro Minute und pro ml gebildeten p-Nitroanilins bei gleicher Substratkonzentration vergleicht. Dies ist in
Tabelle J> für Thrombin, in Tabelle 4 für Trypsin und in
Tabelle 5 für das Enzym Reptilase , welches ein aus Bothrops Atrox isoliertes und in seiner Wirkungsweise dem Thrombin
ähnliches Enzym 1st, sowie in Tabelle 6 für Plasmin gezeigt.
Optimale Bedingungen für die Arnidolyse des Substrats gemäß Beispiel I mit Thrombin werden bei einem pH-Wert von 8,2, einer
309847/1 123
Ionenstärke von 0,13 bis 0,15 und einer Temperatur von
37 - 40°C erhalten.
Die in den Tabellen verwendeten Buchstaben NIH beziehen sich auf Einheiten des National Institute of Health.
Die Trypsineinheit ist gleich der Hydrolyse eines uMols
N^-Tosyl-arginin-methylester-Hydrochlorid (TAME) pro Minute
bei 25°C und einem pH-Wert von 8,1 in Gegenwart von 0,01 MjI
Kalziumionen. Das Trypsin wurde von der Worthington Biochemical Corporation, Freehold, N.J., USA erhalten.
Das Plasmin wurde von AB Kabi, Stockholm, Schweden, erhalten. 1 mg entsprach 3 Kaseineinheiten (CU).
Tabelle 1: Thrombinaktivität
K und k-, m 3
Substrat
Substrat-
Konz.
(uMol/1
Enzymkonz. ,NIH/ml)
Km χ 10* Mol/l
k5 χ ΙΟ2*-
(uMol/min, NIH/ml)
ΒΑΡΝΑ | 250-666 | 5o | 5 | 6 | 6<i | 11 |
I | I9.3-89.6 | 0, | 1, | 8 | 134o | |
II | 28.2-94.Ο | 5 | 5 | 0, | 55 | 5o |
VIII | I9.3-89.6 | 0, | 0, | 91 | 360 | |
XII | 3I.8-I06.O | 5 | 3, | Ho | ||
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Tabelle 21 Trypsinaktivität, Km und k
Subs trat
Substrat-
konz.
(uMol/1)
Enzymkonz. (NIH/ml) Km χ 10*
(Mol/l)
(Mol/l)
uMol/min, NIH/ml
BAPNA
VIII
XII
255-666 75
19.0-88,2 3
28.2-94.Ο 3
19.0-88,2 3
31.8-I06.O 3
16
0,31
1,01
1,01
0,31
0,89
0,89
8,3 110
112" 98
60
60
Tabelle 3: Thrombinaktivität
Substrat
Substratkonz.
uMol/ml
uMol/ml
Enzymekonz.
NIH-Einheiten/ml
NIH-Einheiten/ml
Gebild.p-Nitroanilin Ί1Μ0 l/min und
ml
BAPNA | 333.0 | 5o,o |
I | 64,6 | 0,417 |
VI | 57,4 | 0,:4l7 |
VIII | 65,4 | 0,417 |
IX | 66,4 | 0,417 |
X | 58,2 | 0,417 |
XI | 65,1 | 0,417 |
XVIII | 06,9 | 0,417 |
XIX | 66,2 | 0,417 |
XX | 67,6 | 0,417 |
XXI | 65,6 | 0,417 |
XXII | 65,7 | 0,417 |
XXIV | 65,6 | 0,417 |
XXV | 56,4 | 0,417 |
XXVI | 64,7 | 0,417 |
XXXII | 59,0 | 0,417 |
I,o4
6,0
0,3
2,7
0,5
1,7
0,2
5,6
0,3 0,2
1,7 2,0 0,4 0,6 1,4 0,1
3098A7/1123
€0
Tabelle 4: | VI | Trypsinaktiv!tat | Enzymkonz. | Gebild.p-Nitroanilin |
VIII | Substratkonz | Einheiten/ml | nMol/min und /ml | |
Substrat | IX | nMol/ml | 2,o8 | 6,1 |
X | 0,0833 | 16,3 | ||
ΒΑΡΝΑ | XI | 66,7 | 0,0833 | 12,9 |
I | XVIII | 66,2 | 0,0833 | 11,1 |
V | XIX | 67,4 | 0,0833 | 13,7 |
XX | 65,4 | 0,0833 | 6,8 | |
XXI | 56,4 | 0,0833 | 13,1 | |
XXII | 58,2 | 0,0833 | 1,6 | |
XXIII | 65,1 | 0,0833 | 14,1 | |
XXIV | 66,9 | 0,0833 | 5,5 | |
XXV | 66,2 | 0,0833 | 6,2 | |
XXVI. | 67,6 | 0,0833 | 14,0 | |
XXXII | 65,6 | 0,0833 | 6,2 | |
o5,7 | 0,0833 | 5,9 | ||
57,1 | 0,0833 | 6,2 | ||
66,6 | 0,0833 | 10,9 | ||
65,4 | 0,0833 | 23,7 | ||
64,7 | 0,0833 | 2,9 | ||
69,0 | ||||
- 60 -
309847/1 123
Tabelle 5: ReptilaseR-Aktivität
Substrat
Substratkonz. nMol/ml
Enzymkonz. Einheiten/ml
Gebild.p-Ni troanllin nMol/min und
/ml
XIII
XV
XV
66,7 66,7 66,7 66,7
0,5 0,5 0,5 0,5
4,4 5,0 4,6 2,2
Tabelle 6: Piasminaktivität
Substrat
Substratkonz, nMol/ml
Enzymkonz, CU-Einheiten/ml
Gebild.p-Ni troanilin nMol/min und /ml
I | 66,7 | 0,167 | 5,6 |
V | 66,2 | 0,167 | 6,2 |
VI | 67,4 | 0,167 | 4,l' |
VIII | 65,4 | 0,167 | 7,6 |
IX | 66,4 | 0,167 | 3,4 |
X | 58,2 | 0,167 | 2,7 |
XI | 65,1 | 0,167 | 4,7 |
XVIII | 66,9 | 0,167 | 5,3 |
XIX | 66,2 | 0,167 | 2,1 |
XX | 67,6 | 0,167 | 2,1 |
XXI | 65,6 | 0,167 | 3,4 |
XXII | 65,7 | 0,167 | 2.2 |
XXIII | 67,1 | 0,167 | 5,4 |
XXIV | 66,6 | 0,167 | 2,5 |
XXV | 66,5 | 0,167 | 4,3 |
XXVI | 64,7 | 0,167 | 6,2 |
XXXII | 69,0 | 0,167 | 5,7 |
- 61 -
309847/1123
Die Tabellen 1 bis 6 zeigen in eindeutiger Weise die Vorteile der Enzymsubstrate der Erfindung im Vergleich zu
dem bekannten Amidsubstrat für Trypsin (BAPNA). Infolge Ihrer größeren Empfindlichkeit ermöglichen die Substrate
der Erfindung die Bestimmung von kleinen Enzymmengen, ohne daß dabei die Genauigkeit der Bestimmung gefährdet
wird. Vom klinischen Standpunkt gesehen ist dies sehr wichtig, da dadurch die Probenentnahme erleichtert wird.
Die Blutkoagulation ist ein sehr komplizierter Vorgang, bei dem die Umwandlung des Pibrinogens zu Fibrin durch
Thrombin enzymatisch reguliert wird. Verschiedene der anderen Koagulationsfaktoren des Blutes sind durch Reaktionen
in der gleichen Weise am Thrombin gekoppelt. Die Enzymsubstrate der Erfindung ermöglichen, diese Koagulationsfaktoren
zu bestimmen.
Die folgende Bestimmung des Antithrombins gründet sich
im Prinzip auf die Tatsache, daß eine bekannte Thrombinmenge im Uberschluß einer Plasmäprobe zugesetzt wird. Das
freie Antithrombin im Blut wird an das zugesetzte Thrombin gebunden, und das überschüssige Thrombin wird dann mit
Hilfe des Enzymsubstrats bestimmt. ^Danach kann die reagierende Menge des Antithrombins berechnet werden.
■Anti thrombinbes timmung
Venöses Blut wird defitoüinogeniert und zentrifugiert.
0,5 ml Plasma werden entnommen und mit 2 ml einer Trisimidazol-Pufferlösung
gepuffert. 0,1 ml einer wässrigen Thrombinlösung (10 NIH *= National Institute of Health) werden .dann
mit 0,25 ml dieser Plasmalösung für genau 5 Minuten bei
- 62 -
309847/112
einer Temperatur von 37 - 40°C inkubiert. 1 ml einer vorgewärmten
Pufferlösung und 0,25 ml einer wässrigen Enzym- Substratlösung (1 mg/ml) werden nacheinander zugegeben.
Die Mischung wird dann,genau 1 Minute lang bei einer Temperatur von J57 - 40°C inkubiert. Die Reaktion wird
dann mit 0,25 ml konzentrierter Essigsäure gestoppt. Die Extinktion wird bei 4o5 nm an einem Spektrophotometer
abgelesen.
309847/1123
Claims (2)
- Patentansprüche/Ή. Substrat der allgemeinen FormelR1 -NH-CH-CO-NH-CH-CO-NH-CH-CO-NH-Rc-R2 R^ (CH2Jn-NH-Rj+in der R-^ ein Wasserstoff atom, eine Acylgruppe mit 1 - 12 C-Atomen, eine U7-Aminoaeylgruppe mit 1-12 C-Atomen, eine Cyclohexylcarbonylgruppe, eine tä-Cyelohexylaeylgruppe, eine 4-Aminomethyl-cyclohexylcarbonylgruppe, eine gegebenenfalls mit einem Halogenatom, einer Methyl-, Amino- oder Phenylgruppe od.dgl. oder mehreren dieser Substituenten substituierte Benzoylgruppe, eine Itf-Phenylacylgruppe mit 1 - 5 C-Atomen im Acylteil und deren Phenylgruppe gegebenenfalls substituiert ist, oder eine Benzolsulfonyl-, 4-Toluolsulfonyl- oder N0*—Benzoyl-phenylalanylgruppe ist, undR2 eine Phenyl-, Benzyl, 4-Hydroxybenzyl-, 4-Methoxybenzyl- oder 4-Methylbenzyogruppe,R-, eine geradkettige, verzweigte oder cyclische Alkylgruppe mit 3-8 C-Atomen oder eine Phenyl- oder Benzylgruppe, η die Zahlen 2, 3 und 4,Rh ein Wasserstoffatorn oder eine Guanylgruppe sowieRc; eine Phenyl-, Nitrophenyl-, Methylnitrophenyl-, Dinitrophenyl-, Naphthyl-, Nitronaphthyl-, Chin.olyl- oder Nitrochln.olylgruppe bedeuten, sowie, deren Salze.- 64 -.309847/1123
- 2. Substrat mit hoher Empfindlichkeit für proteolytische Enzyme vom Typ der Peptid-Peptidohydrolasen wie Thrombin, Plasmin oder Trypsin, zur diagnostischen Verwendung, gekennzeichnet durch die Verbindung der obigen allgemeinen Formel, wobei R1, R2, R-*, R^, Rc und η wie oben definiert sind. '- 65 -309847/1123
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Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
SE7205757A SE380257B (sv) | 1972-05-02 | 1972-05-02 | Nya diagnostiskt verksamma substrat med hog specificitet till trombin och andra proteolytiska enzymer av typen peptidyl-peptid-hydrolaser |
Publications (2)
Publication Number | Publication Date |
---|---|
DE2322116A1 true DE2322116A1 (de) | 1973-11-22 |
DE2322116B2 DE2322116B2 (de) | 1980-01-10 |
Family
ID=20267168
Family Applications (1)
Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
---|---|---|---|
DE2322116A Withdrawn DE2322116B2 (de) | 1972-05-02 | 1973-05-02 | Tri- und Tetrapeptide und deren Verwendung zur Bestimmung von Peptid-Peptidohydrolasen |
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---|---|
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SE (1) | SE380257B (de) |
SU (1) | SU671721A3 (de) |
ZA (1) | ZA732976B (de) |
Cited By (3)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
DE2740323A1 (de) * | 1977-06-14 | 1978-12-21 | Seikagaku Kogyo Co Ltd | Verfahren zur bestimmung von bakteriellem endotoxin sowie dazu verwendete reagenzien |
DE2943580A1 (de) * | 1978-10-30 | 1980-05-14 | Torii & Co Ltd | Phenylalanylvalylargininderivate, verfahren zu deren herstellung und deren verwendung |
EP0110306A2 (de) * | 1982-11-27 | 1984-06-13 | BEHRINGWERKE Aktiengesellschaft | Chromogene Verbindungen, Verfahren zu ihrer Herstellung und ihre Verwendung |
Families Citing this family (58)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
JPS50139215U (de) * | 1974-04-30 | 1975-11-17 | ||
DE2527932C2 (de) * | 1974-07-02 | 1983-04-21 | Pentapharm AG, 4052 Basel | Säureadditionssalze von Tripeptidderivaten und deren Verwendung als Substrate zur Bestimmung von Plasmakallikrein |
US4016259A (en) * | 1974-07-26 | 1977-04-05 | Research Corporation | Contraceptive polypeptides |
US4162941A (en) * | 1974-12-05 | 1979-07-31 | Ab Kabi | Method for determining a proteolytic enzyme |
SE407058B (sv) * | 1974-12-05 | 1979-03-12 | Kabi Ab | Nya kromogena enzymsubstrat for serinproteaser |
CH622286A5 (de) * | 1975-06-23 | 1981-03-31 | Pentapharm Ag | |
US4169015A (en) * | 1975-07-11 | 1979-09-25 | Ab Kabi | Novel chromogenic thrombin substrates |
SE407405B (sv) * | 1975-07-11 | 1979-03-26 | Kabi Ab | Nya kromogena trombinsubstrat |
US4061625A (en) * | 1975-07-11 | 1977-12-06 | Ab Kabi | Novel chromogenic thrombin substrates |
SE407571B (sv) * | 1975-07-11 | 1979-04-02 | Kabi Ab | Nya kromogena enzymsubstrat for serinproteaser |
SE407115B (sv) * | 1975-10-06 | 1979-03-12 | Kabi Ab | Forfarande och metelektroder for studium av enzymatiska och andra biokemiska reaktioner |
SE419871B (sv) * | 1975-12-01 | 1981-08-31 | Pharmacia Ab | Sett att bestemma aktiviteten hos faktor xa-inhibitor i blod |
CH634662A5 (de) * | 1976-05-28 | 1983-02-15 | Pentapharm Ag | Verwendung von tripeptidderivaten zur quantitativen bestimmung von plasminogen-aktivatoren. |
FR2416883A2 (fr) * | 1977-02-18 | 1979-09-07 | Delalande Sa | Nouveaux oligopeptides trifluoromethyles, leur procede de preparation et leur application en therapeutique |
CA1087075A (en) * | 1977-08-05 | 1980-10-07 | Robert J. Gargiulo | Composition and method for determining transferase and protease activity |
DE2757992A1 (de) * | 1977-12-24 | 1979-06-28 | Boehringer Mannheim Gmbh | Verfahren zur prothrombin-bestimmung |
SE7801373L (sv) * | 1978-02-07 | 1979-08-08 | Kabi Ab | Lett spjelkbara substrat for kvantifiering av proteaser |
DE2812943C3 (de) * | 1978-03-23 | 1981-05-14 | Boehringer Mannheim Gmbh, 6800 Mannheim | Verfahren und Reagens zur Bestimmung der biologischen Aktivität von Heparin im Plasma |
US4302538A (en) * | 1978-03-27 | 1981-11-24 | Ortho Diagnostics Inc. | Buffer system in an anti-thrombin III test |
IL60888A (en) * | 1978-06-16 | 1984-07-31 | Yeda Res & Dev | Substrates and process for the quantitative assay of enzymes |
DE2964956D1 (en) * | 1978-07-18 | 1983-04-07 | Kabi Ab | Bradykinin inhibiting tripeptide derivatives, process for their preparation and pharmaceutical preparations containing them |
US4275153A (en) * | 1978-08-03 | 1981-06-23 | American Hospital Supply Corporation | Analytical fluorogenic substrates for proteolytic enzymes |
US4336186A (en) * | 1978-08-03 | 1982-06-22 | Gargiulo Robert J | Analytical fluorogenic substrates for proteolytic enzymes |
US4166825A (en) * | 1978-08-17 | 1979-09-04 | Abbott Laboratories | Chromogenic substrates |
US4161488A (en) * | 1978-08-17 | 1979-07-17 | Abbott Laboratories | Enzymatic substrates |
JPS5559149A (en) * | 1978-10-30 | 1980-05-02 | Torii Yakuhin Kk | Aminoacid derivative |
JPS59499B2 (ja) * | 1978-11-02 | 1984-01-07 | 味の素株式会社 | ペプチド誘導体 |
US4289498A (en) * | 1979-01-08 | 1981-09-15 | Ortho Diagnostics, Inc. | One-stage prothrombin assay and compositions useful therein |
US4217269A (en) * | 1979-03-23 | 1980-08-12 | Abbott Laboratories | Dipeptide chromogenic substrates |
US4219497A (en) | 1979-04-06 | 1980-08-26 | Abbott Laboratories | Chromogenic substrates |
US4409140A (en) * | 1979-04-23 | 1983-10-11 | Smith Robert E | Substrates and method for determining enzymes |
EP0018002B1 (de) * | 1979-04-24 | 1983-02-09 | Marcel Jozefonvicz | Neues Bestimmungsverfahren für Proteasen und Antiproteasen |
CA1161431A (en) * | 1979-05-11 | 1984-01-31 | Lars G. Svendsen | Tripeptide derivatives |
US4221706A (en) * | 1979-06-14 | 1980-09-09 | Abbott Laboratories | Chromogenic substrates |
DE2936543A1 (de) * | 1979-09-10 | 1981-04-09 | Behringwerke Ag, 3550 Marburg | Chromogene verbindungen |
US4308202A (en) * | 1979-10-25 | 1981-12-29 | Torii & Co., Ltd. | Prolylphenylalanylarginine derivatives, process for producing same and method for measuring activity of enzymes using same |
JPS5661339A (en) * | 1979-10-26 | 1981-05-26 | Ajinomoto Co Inc | Arginine derivative |
US4318904A (en) * | 1980-04-25 | 1982-03-09 | Research Corporation | Peptide affinity labels for thrombin and other trypsin-like proteases |
DK155051C (da) * | 1980-05-06 | 1989-07-03 | Pentapharm Ag | Tripeptidderivater samt fremgangsmaade til kvantitativ analyse for proteolytiske enzymer under anvendelse deraf |
WO1982000641A1 (en) * | 1980-08-25 | 1982-03-04 | Ab Kabivitrum | Peptide substrates for determination of protease activity |
US4568636A (en) * | 1981-03-25 | 1986-02-04 | Pentapharm Ag | Tripeptide derivatives |
US4388233A (en) * | 1981-05-15 | 1983-06-14 | The Regents Of The University Of California | Synthetic substrates for enzyme analysis |
US4434096A (en) | 1981-06-30 | 1984-02-28 | E. I. Du Pont De Nemours And Company | Substrates for the quantitative determination of proteolytic enzymes |
JPS5856695A (ja) * | 1981-09-28 | 1983-04-04 | Nitto Boseki Co Ltd | 新規なトロンビン測定用基質 |
JPS5863399A (ja) * | 1981-10-14 | 1983-04-15 | Nitto Boseki Co Ltd | 新規なプラスミン測定用基質 |
US4448715A (en) * | 1981-11-02 | 1984-05-15 | University Of Miami | Tagged pyroglu-L-Phe-L-Arg derivatives, substrates and assays for kallikrein |
DE3268329D1 (en) * | 1981-11-02 | 1986-02-13 | Pentapharm Ag | Process for the quantitative determination of the blood clotting factor xii in human plasma |
SE8203887D0 (sv) * | 1982-06-23 | 1982-06-23 | Kabivitrum Ab | Nya trombininhiberande foreningar |
JPS6117956A (ja) * | 1984-07-04 | 1986-01-25 | Nitto Boseki Co Ltd | 新規な尿中カリクレイン測定用基質 |
US4897444A (en) * | 1985-05-31 | 1990-01-30 | The Research Foundation Of The State University Of New York | Immobilized fluorogenic substrates for enzymes; and processes for their preparation |
JPH0413880Y2 (de) * | 1985-08-22 | 1992-03-30 | ||
US5187069A (en) * | 1990-08-06 | 1993-02-16 | Henry Ford Health System | Active site labelling of plasminogen |
EP0535485B1 (de) * | 1991-10-03 | 1997-07-16 | Bayer Corporation | Vorrichtung und Verfahren zur Auftrennung und Analyse von Vollblut |
AU4287593A (en) * | 1992-04-27 | 1993-11-29 | Avocet Medical, Inc. | Test article and method for performing blood coagulation assays |
US5580744A (en) * | 1992-04-27 | 1996-12-03 | Avocet Medical, Inc. | Test article and method for performing blood coagulation assays |
US5399487A (en) * | 1993-03-04 | 1995-03-21 | Haematologic Technologies, Inc. | 6-peptidylamino-1-naphthalenesulfonamides useful as fluorogenic proteolytic enzyme substrates |
US6297024B1 (en) | 1998-10-15 | 2001-10-02 | Cell Activation, Inc. | Methods for assessing complement activation |
US6235494B1 (en) | 1999-02-08 | 2001-05-22 | The Scripps Research Institute | Substrates for assessing mannan-binding protein-associated serine protease activity and methods using the substrates |
-
1972
- 1972-05-02 SE SE7205757A patent/SE380257B/xx unknown
-
1973
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- 1973-04-30 NO NO1790/73A patent/NO135245C/no unknown
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- 1973-04-30 AT AT381173A patent/AT324557B/de not_active IP Right Cessation
- 1973-04-30 BE BE130583A patent/BE798916A/xx unknown
- 1973-05-01 GB GB2069373A patent/GB1428039A/en not_active Expired
- 1973-05-01 AU AU55038/73A patent/AU475377B2/en not_active Expired
- 1973-05-01 CA CA170,179A patent/CA1010849A/en not_active Expired
- 1973-05-01 JP JP4899373A patent/JPS559199B2/ja not_active Expired
- 1973-05-02 CH CH626773A patent/CH590476A5/xx not_active IP Right Cessation
- 1973-05-02 FR FR7315771A patent/FR2183188B1/fr not_active Expired
- 1973-05-02 PL PL1973162270A patent/PL90746B1/pl unknown
- 1973-05-02 CS CS733128A patent/CS187376B2/cs unknown
- 1973-05-02 NL NL7306085A patent/NL7306085A/xx not_active Application Discontinuation
- 1973-05-02 DE DE2322116A patent/DE2322116B2/de not_active Withdrawn
- 1973-05-02 ZA ZA732976A patent/ZA732976B/xx unknown
- 1973-05-24 IT IT50204/73A patent/IT1050662B/it active
Cited By (4)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
DE2740323A1 (de) * | 1977-06-14 | 1978-12-21 | Seikagaku Kogyo Co Ltd | Verfahren zur bestimmung von bakteriellem endotoxin sowie dazu verwendete reagenzien |
DE2943580A1 (de) * | 1978-10-30 | 1980-05-14 | Torii & Co Ltd | Phenylalanylvalylargininderivate, verfahren zu deren herstellung und deren verwendung |
EP0110306A2 (de) * | 1982-11-27 | 1984-06-13 | BEHRINGWERKE Aktiengesellschaft | Chromogene Verbindungen, Verfahren zu ihrer Herstellung und ihre Verwendung |
EP0110306A3 (en) * | 1982-11-27 | 1985-11-27 | Behringwerke Aktiengesellschaft | Chromogene compounds, process for their preparation and their use |
Also Published As
Publication number | Publication date |
---|---|
JPS4949695A (de) | 1974-05-14 |
NL7306085A (de) | 1973-11-06 |
AT324557B (de) | 1975-09-10 |
ES414252A1 (es) | 1976-05-01 |
AU475377B2 (en) | 1976-08-19 |
CH590476A5 (de) | 1977-08-15 |
JPS559199B2 (de) | 1980-03-08 |
FR2183188B1 (de) | 1977-02-11 |
HU170670B (de) | 1977-08-28 |
FI56828C (fi) | 1980-04-10 |
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