JPS5863399A - 新規なプラスミン測定用基質 - Google Patents
新規なプラスミン測定用基質Info
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- JPS5863399A JPS5863399A JP56163649A JP16364981A JPS5863399A JP S5863399 A JPS5863399 A JP S5863399A JP 56163649 A JP56163649 A JP 56163649A JP 16364981 A JP16364981 A JP 16364981A JP S5863399 A JPS5863399 A JP S5863399A
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- phe
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- C07K5/00—Peptides containing up to four amino acids in a fully defined sequence; Derivatives thereof
- C07K5/04—Peptides containing up to four amino acids in a fully defined sequence; Derivatives thereof containing only normal peptide links
- C07K5/08—Tripeptides
- C07K5/0802—Tripeptides with the first amino acid being neutral
- C07K5/0804—Tripeptides with the first amino acid being neutral and aliphatic
- C07K5/0808—Tripeptides with the first amino acid being neutral and aliphatic the side chain containing 2 to 4 carbon atoms, e.g. Val, Ile, Leu
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- C07K5/0802—Tripeptides with the first amino acid being neutral
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- C07K5/0815—Tripeptides with the first amino acid being basic
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- C07K5/00—Peptides containing up to four amino acids in a fully defined sequence; Derivatives thereof
- C07K5/04—Peptides containing up to four amino acids in a fully defined sequence; Derivatives thereof containing only normal peptide links
- C07K5/08—Tripeptides
- C07K5/0819—Tripeptides with the first amino acid being acidic
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- C—CHEMISTRY; METALLURGY
- C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
- C12Q—MEASURING OR TESTING PROCESSES INVOLVING ENZYMES, NUCLEIC ACIDS OR MICROORGANISMS; COMPOSITIONS OR TEST PAPERS THEREFOR; PROCESSES OF PREPARING SUCH COMPOSITIONS; CONDITION-RESPONSIVE CONTROL IN MICROBIOLOGICAL OR ENZYMOLOGICAL PROCESSES
- C12Q1/00—Measuring or testing processes involving enzymes, nucleic acids or microorganisms; Compositions therefor; Processes of preparing such compositions
- C12Q1/34—Measuring or testing processes involving enzymes, nucleic acids or microorganisms; Compositions therefor; Processes of preparing such compositions involving hydrolase
- C12Q1/37—Measuring or testing processes involving enzymes, nucleic acids or microorganisms; Compositions therefor; Processes of preparing such compositions involving hydrolase involving peptidase or proteinase
-
- C—CHEMISTRY; METALLURGY
- C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
- C12Q—MEASURING OR TESTING PROCESSES INVOLVING ENZYMES, NUCLEIC ACIDS OR MICROORGANISMS; COMPOSITIONS OR TEST PAPERS THEREFOR; PROCESSES OF PREPARING SUCH COMPOSITIONS; CONDITION-RESPONSIVE CONTROL IN MICROBIOLOGICAL OR ENZYMOLOGICAL PROCESSES
- C12Q2337/00—N-linked chromogens for determinations of peptidases and proteinases
- C12Q2337/10—Anilides
-
- C—CHEMISTRY; METALLURGY
- C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
- C12Q—MEASURING OR TESTING PROCESSES INVOLVING ENZYMES, NUCLEIC ACIDS OR MICROORGANISMS; COMPOSITIONS OR TEST PAPERS THEREFOR; PROCESSES OF PREPARING SUCH COMPOSITIONS; CONDITION-RESPONSIVE CONTROL IN MICROBIOLOGICAL OR ENZYMOLOGICAL PROCESSES
- C12Q2337/00—N-linked chromogens for determinations of peptidases and proteinases
- C12Q2337/10—Anilides
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- G01N—INVESTIGATING OR ANALYSING MATERIALS BY DETERMINING THEIR CHEMICAL OR PHYSICAL PROPERTIES
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Abstract
(57)【要約】本公報は電子出願前の出願データであるた
め要約のデータは記録されません。
め要約のデータは記録されません。
Description
【発明の詳細な説明】
本発明は、プラスミン及びプラスミン様酵素に対する新
規発色性且つ螢光性基質に関する。本発明の基質は従来
報告されている基質に比して、きわめて選択性よく、且
つ高感度にプラスミンの定量を行う事が出来、プラスミ
ンが形成、阻害又は消費される反応の研究、又はそれ等
に関与する因子の測定、例えばプラスミノ−ビン、α、
−P工(プラスミン・インヒビター)及びプラスミンの
測定に特に適している。
規発色性且つ螢光性基質に関する。本発明の基質は従来
報告されている基質に比して、きわめて選択性よく、且
つ高感度にプラスミンの定量を行う事が出来、プラスミ
ンが形成、阻害又は消費される反応の研究、又はそれ等
に関与する因子の測定、例えばプラスミノ−ビン、α、
−P工(プラスミン・インヒビター)及びプラスミンの
測定に特に適している。
凝固・線溶反応に於ける合成基質の導入は、1954年
8.8hern7等(J、B、O,、20895〜10
6(1954) ) の合成したTAMe (Toa
−ムrg−OMe) 等のアルヤニンエステルが、基
質としてトロンビンのエステラーゼ活性の測定に使用さ
れたのに始まるが、エステル氷解活性が凝固活性と一致
せず、基質の特異性や感度が低い等の問題があった。し
かし、最近のペプチド化学の進歩から、フィブリノビン
のトロンビンによる解裂部のアミノ酸栴造に類似したペ
プチド基質Bm−Ph・−Vat−Arg−PNA(8
−2160)がB16m1tach (Thromb、
Re5earch 1267〜278 (1972)
) らにより合成され、酵素反応を受けて遊離した
バラニトロアニリン(PNA)の黄色の発色による酵素
化学的分光分析の容易な事、試薬調整の容易さなどから
しだいに、研究検査に用いられるに至った。更にプラス
ミン用として引継きToe−G17−Pr07L711
−PNA (OHR,PL−Pentapharm社)
〔特開昭52〜3494)、歳はH−D−vat−Le
u−Lys−PNA (s −2251,Kabi )
(特開昭52−24581 )が開発され、続いて、
同様に遊離すると螢光を発するTミノメチルクマリン(
ムMS)を結合させた螢光性ペプチド基質も老木等(1
977)(:r、Biochem、、 82.1495
〜1498 (1977) )により開発されている。
8.8hern7等(J、B、O,、20895〜10
6(1954) ) の合成したTAMe (Toa
−ムrg−OMe) 等のアルヤニンエステルが、基
質としてトロンビンのエステラーゼ活性の測定に使用さ
れたのに始まるが、エステル氷解活性が凝固活性と一致
せず、基質の特異性や感度が低い等の問題があった。し
かし、最近のペプチド化学の進歩から、フィブリノビン
のトロンビンによる解裂部のアミノ酸栴造に類似したペ
プチド基質Bm−Ph・−Vat−Arg−PNA(8
−2160)がB16m1tach (Thromb、
Re5earch 1267〜278 (1972)
) らにより合成され、酵素反応を受けて遊離した
バラニトロアニリン(PNA)の黄色の発色による酵素
化学的分光分析の容易な事、試薬調整の容易さなどから
しだいに、研究検査に用いられるに至った。更にプラス
ミン用として引継きToe−G17−Pr07L711
−PNA (OHR,PL−Pentapharm社)
〔特開昭52〜3494)、歳はH−D−vat−Le
u−Lys−PNA (s −2251,Kabi )
(特開昭52−24581 )が開発され、続いて、
同様に遊離すると螢光を発するTミノメチルクマリン(
ムMS)を結合させた螢光性ペプチド基質も老木等(1
977)(:r、Biochem、、 82.1495
〜1498 (1977) )により開発されている。
一方、酵素測定用合成基質は、酵素に対する高感度、及
び特異性、水又は生物学的試験液に対する良好な溶解性
及び、分解物の易検出性の4点を満足される事が重要で
ある。
び特異性、水又は生物学的試験液に対する良好な溶解性
及び、分解物の易検出性の4点を満足される事が重要で
ある。
このうちでも測定、Lようとする酵素に対する、高い特
異性及び反応性は特に重要である。
異性及び反応性は特に重要である。
一方、プラスミン用として、現在まで開発されている基
質の酵素に対する反応性は、トロンビン用に比して低く
、酵素と基質との反応性の指標になるミバエリス定数(
Km) を比べてみても、S−2238(トロンビン用
) Q、7 )c 10−5 mo1e/z(Huma
n Thrombin ) に対し、8−2251.
6x 1Q−’ mole/l(Human Plas
min )と1ケタ以上の大きさのちがいがあるが反応
による基質濃度変化による影響を少なくするために、実
際に測定に利用する場合一般には反応系の基質濃度はK
m値よりかなり大きく(望ましくは5馳以上)する必要
があるが、ILra値が大きいとこれを満たす事が困難
になる為より小さなXm値をもった基質の開発が望まれ
ている。
質の酵素に対する反応性は、トロンビン用に比して低く
、酵素と基質との反応性の指標になるミバエリス定数(
Km) を比べてみても、S−2238(トロンビン用
) Q、7 )c 10−5 mo1e/z(Huma
n Thrombin ) に対し、8−2251.
6x 1Q−’ mole/l(Human Plas
min )と1ケタ以上の大きさのちがいがあるが反応
による基質濃度変化による影響を少なくするために、実
際に測定に利用する場合一般には反応系の基質濃度はK
m値よりかなり大きく(望ましくは5馳以上)する必要
があるが、ILra値が大きいとこれを満たす事が困難
になる為より小さなXm値をもった基質の開発が望まれ
ている。
一般に血漿中のプラスミン或はゾラスミノーデン等を発
色性基質を利用して測定しようきする場合、血漿中に存
在すると子側されるプラスミン以外の凝固、線溶関連酵
素であるトロンビン、FXaφロキナーゼ(UK)等と
交差反応を起すと正確な測定が期しがたい。
色性基質を利用して測定しようきする場合、血漿中に存
在すると子側されるプラスミン以外の凝固、線溶関連酵
素であるトロンビン、FXaφロキナーゼ(UK)等と
交差反応を起すと正確な測定が期しがたい。
従来開発されて来た最良のプラスミン用基質としては上
記の0HR−PL及びEl−2251があげられるが、
基質特異性及び反応性に於いて必ずしも満足できるもの
ではない。
記の0HR−PL及びEl−2251があげられるが、
基質特異性及び反応性に於いて必ずしも満足できるもの
ではない。
即ち例えば0HR−PLは、Km値は8−2251より
小さいが凝固、線溶系関連酵素のうちプラスミン以外に
トロン、ビン、Factor Xa 1UK等と可成り
反応するし、又比較的選択性の良好と言われている8−
2251に於いても、反応性(b1Vm!LX/ KE
ll ) は、必ずしも満足いくものでない。
小さいが凝固、線溶系関連酵素のうちプラスミン以外に
トロン、ビン、Factor Xa 1UK等と可成り
反応するし、又比較的選択性の良好と言われている8−
2251に於いても、反応性(b1Vm!LX/ KE
ll ) は、必ずしも満足いくものでない。
本発明者等は以上の様な点を改良゛すべく1)反応性が
良好(恥が小さく 、’Vmaxが大でVmax/Km
が大) 2)選択性が良好(交差反応が少ない)6)溶解性がよ
い 4)検出方法が容易で高感度な発色が可能で且つ血勢威
分の影替はうけない 等の条件を満足する様プラスミン用基質のアミノ酸配列
、発色基及びアミノ酸の保膜基等について詳細に検討し
た結果、基質のN末端のアミノ酸の側鎖の官能基(例え
ば、リジンの場合、ω−アミノ基)を、他の化合物(例
えばトシルクロライド)と反応させ鎖長を延長する事に
より、プラスミンとの反応性が著しく改良される事を見
出した。
良好(恥が小さく 、’Vmaxが大でVmax/Km
が大) 2)選択性が良好(交差反応が少ない)6)溶解性がよ
い 4)検出方法が容易で高感度な発色が可能で且つ血勢威
分の影替はうけない 等の条件を満足する様プラスミン用基質のアミノ酸配列
、発色基及びアミノ酸の保膜基等について詳細に検討し
た結果、基質のN末端のアミノ酸の側鎖の官能基(例え
ば、リジンの場合、ω−アミノ基)を、他の化合物(例
えばトシルクロライド)と反応させ鎖長を延長する事に
より、プラスミンとの反応性が著しく改良される事を見
出した。
−例を示すと本願化合物であるNPN−2H−D−Ly
s(Ta2)−Phe−Lye−PHムの場合Pora
ine Plasmin (豚ゾラスミン)との反応性
をoHR−pL、 El−2251ト比較してみると、
下記に示す如く、 11PH−2(本願化合物) 1.6 4.
8 303.11SOER−PL 2
7.8 6.Q 21,6B−225134,
84,011,4 ム及びV/b共著しく改良されたプラスミン測定用基質
の合成に成功した。即ち8−2251の鴎値で実に鴇、
Vmax 1,2倍、反応性の指標となるV/Kma
値では26.7倍となり、本基質が従来のものと比較し
て、非常に優れている事が解る。
s(Ta2)−Phe−Lye−PHムの場合Pora
ine Plasmin (豚ゾラスミン)との反応性
をoHR−pL、 El−2251ト比較してみると、
下記に示す如く、 11PH−2(本願化合物) 1.6 4.
8 303.11SOER−PL 2
7.8 6.Q 21,6B−225134,
84,011,4 ム及びV/b共著しく改良されたプラスミン測定用基質
の合成に成功した。即ち8−2251の鴎値で実に鴇、
Vmax 1,2倍、反応性の指標となるV/Kma
値では26.7倍となり、本基質が従来のものと比較し
て、非常に優れている事が解る。
同様に発色基を3−カルボキシ8−24−ヒドロキシア
ニリドに変えて、アミノ酸配列による効果を実験してみ
ると、実施例3第2表に示す如く、本発明のアミノ酸配
列が旧来のアミノ酸配列H−D−V’al−Leu−L
ys−C;Hムと比して著しく向上している事が解る。
ニリドに変えて、アミノ酸配列による効果を実験してみ
ると、実施例3第2表に示す如く、本発明のアミノ酸配
列が旧来のアミノ酸配列H−D−V’al−Leu−L
ys−C;Hムと比して著しく向上している事が解る。
本発明による新規な発色性又は螢光性基質は、次の一般
式 %式% (式中 m = j〜4 0 0 0 −MH802R11 であり、 −(’Ha)n−OH(’Hs)s+ 、 (n=Q
〜6)Rs=−(”s)n+1−CH3(n=o〜3
)又は である) の化合物またはその塩で!る。
式 %式% (式中 m = j〜4 0 0 0 −MH802R11 であり、 −(’Ha)n−OH(’Hs)s+ 、 (n=Q
〜6)Rs=−(”s)n+1−CH3(n=o〜3
)又は である) の化合物またはその塩で!る。
本発明の化合物の用途は既に述べた通り、活性測定用の
基質であるが、その場合当該基質を−7,2〜7.6間
の緩衝液中でプラスミンに作用させ、生成する。P−ニ
トロアニリン又は、3−カルボキシ−4−ヒドロキシア
ニリドを、前者はそのま7405 nmにて又、後者の
場合は適当なカプラーと酸化縮合させて着色物質に導き
これを比色定量することによるが、又励起328 nm
螢光540nmにて螢光分析法により定量することによ
り活性を測定する。
基質であるが、その場合当該基質を−7,2〜7.6間
の緩衝液中でプラスミンに作用させ、生成する。P−ニ
トロアニリン又は、3−カルボキシ−4−ヒドロキシア
ニリドを、前者はそのま7405 nmにて又、後者の
場合は適当なカプラーと酸化縮合させて着色物質に導き
これを比色定量することによるが、又励起328 nm
螢光540nmにて螢光分析法により定量することによ
り活性を測定する。
カプラーとしては酸性側での発色の場合は、アニリン系
化合物例えばN、N−ジエチルアニリン、又アルカリ性
側ではフェノール、ナフトール系化合物例えば、2.5
−キシレノール、2.6−キシレノール、2,6−キシ
レノール、チモール、0−クレゾール、0−エチルフェ
ノール等が用いられる。
化合物例えばN、N−ジエチルアニリン、又アルカリ性
側ではフェノール、ナフトール系化合物例えば、2.5
−キシレノール、2.6−キシレノール、2,6−キシ
レノール、チモール、0−クレゾール、0−エチルフェ
ノール等が用いられる。
又、酸化組合の酸化剤として過酸化水素、過硫酸塩等種
々のものが用いられるが、メタ過ヨウ素敵が好適である
。
々のものが用いられるが、メタ過ヨウ素敵が好適である
。
6−カルポキシー4−ヒドロキシアニリンと上記カプラ
ーとの酸化縮合により生成する色素はカプラーにより極
大吸収波長が560〜770 nmに巾広く分布するが
呈色の温度による変動は極めて少く安定で、プラスミン
活性測定に適している。
ーとの酸化縮合により生成する色素はカプラーにより極
大吸収波長が560〜770 nmに巾広く分布するが
呈色の温度による変動は極めて少く安定で、プラスミン
活性測定に適している。
更に発色感度を比べてみても、P−ニトロアニリンの場
合一般測定使用波長405 nmにてC=10600で
あるのに対し、0−エチルフェノールと、5−アミノサ
リチル酸による発色に於て−まλ= 645 nmで2
9000又2,6−キシレツー、ルの場合はλ=615
!l!11で21600で極めて吸光度が大きく、この
点に於いても測定上極めて有利である。更に発色基に5
−アミノサリチル酸をもった基質は、親水性の官能基を
有するので、水に対する溶解性は、非常に良好であり、
界面活性剤、有機溶媒等の溶解補助剤を特に必要としな
いため試薬調整あるいは測定操作において非常に管理し
易く、且つ反応に必要十分な基質濃度を使用出来るとい
う長所を有している。
合一般測定使用波長405 nmにてC=10600で
あるのに対し、0−エチルフェノールと、5−アミノサ
リチル酸による発色に於て−まλ= 645 nmで2
9000又2,6−キシレツー、ルの場合はλ=615
!l!11で21600で極めて吸光度が大きく、この
点に於いても測定上極めて有利である。更に発色基に5
−アミノサリチル酸をもった基質は、親水性の官能基を
有するので、水に対する溶解性は、非常に良好であり、
界面活性剤、有機溶媒等の溶解補助剤を特に必要としな
いため試薬調整あるいは測定操作において非常に管理し
易く、且つ反応に必要十分な基質濃度を使用出来るとい
う長所を有している。
以上の通り本発明の化合物は、プラスミン活性用基質と
して、従来のものに比べて、非常に優れていることが明
らかである。
して、従来のものに比べて、非常に優れていることが明
らかである。
式〔1〕で表わされる本発明の化合物はペプチド化学に
おいてよく、知られる方法により合成される。
おいてよく、知られる方法により合成される。
α−アミノ保護基としては、カルざベンゾ″キシする基
、例えばP−メトキシ−P−二トロ、又は、P−メトキ
シフェニルアゾールカルボベンゾキシ等を用いるのが有
利である。
、例えばP−メトキシ−P−二トロ、又は、P−メトキ
シフェニルアゾールカルボベンゾキシ等を用いるのが有
利である。
2個のアミノ、酸カップリング又はジペプチドとアミノ
酸のカップリングは、α−カルボキシル基の活性化によ
り行われる。例えばN−ヒドロキシサクシロソイミド、
P−ニトロフェノール、4.6−シメチルビリミジルー
2−チオ等である事が出来る。前述のエステル誘導体へ
の活性化はカルボジイミド例えばN、N−ジシクロへキ
シルカルボジイミド(D、O,O)の存在下で行うのが
有利であるO 基質合成は最初発色量をリジル基に結合させ、遂次的に
カップリングしていく方法によることが出来る。
酸のカップリングは、α−カルボキシル基の活性化によ
り行われる。例えばN−ヒドロキシサクシロソイミド、
P−ニトロフェノール、4.6−シメチルビリミジルー
2−チオ等である事が出来る。前述のエステル誘導体へ
の活性化はカルボジイミド例えばN、N−ジシクロへキ
シルカルボジイミド(D、O,O)の存在下で行うのが
有利であるO 基質合成は最初発色量をリジル基に結合させ、遂次的に
カップリングしていく方法によることが出来る。
本発明を以下実施例により詳細に説明するが本発明はこ
れら実施例に限定されるものではない。
れら実施例に限定されるものではない。
■略号
Gly =グリジン
L@u =ロイシン
Lym =リジン
Fh・=フェニルアラニン
Pro =プロリン
Thr =スレオニン
Tyr =チロシン
’Vaj−バリン
2 =ベンジルオキシカルボニル
noc=t−ブチルオキシカルボニル
Z(OMe)=p−メトキシベンジルオキシカルポニル
To日 ;p−トリルスルホニル ”t=2 m 4 m 6− )リメチルーベンゼンス
ルホニルム0 ニアセチル NaO=β−ナフチルカルボニル DM’? =ジメチルホルムアミド MeOH=メタノール TH7=テトラハイドロフラン 組I =N−エチルモルホリン B8ム = エタンスルホン酸 ’[’RA =l−リエチルアミン。
To日 ;p−トリルスルホニル ”t=2 m 4 m 6− )リメチルーベンゼンス
ルホニルム0 ニアセチル NaO=β−ナフチルカルボニル DM’? =ジメチルホルムアミド MeOH=メタノール TH7=テトラハイドロフラン 組I =N−エチルモルホリン B8ム = エタンスルホン酸 ’[’RA =l−リエチルアミン。
TiPA == トリフルオロ酢酸DCHuニジシ
クロヘキシル尿素 D(3G =ジシクロへキシルカルがジイミド−PM
人=P−ニトロアニリド 一0HJ= 3−カルボキシ−4−ヒドロキシアニリ
ド−5Dp−4,6−ジメチルぎりミジン−2−チオB
z1=ベンジル TLO=薄層クロマトグラフィー GPC= デル濾過クロマトグラフィーNa8 =
β−ナフチルセスホニルTOO=4−メチルベンゾイル CHN=シクロヘキシルエステル 八〇〇H=酢酸 ム0OBt=酢酸エチル ■ 薄層クロマトグラフィー TLC分析はシリカゲル’12s4(メルり社製)プレ
ートを使用溶媒は at、 : 0HOL、:MeOH:ムcon:
u2o=80:20二z5:5Rfl ;n−BuOH
:ム0011:H10=4:1 二1Rf、 ;n−B
uOH:ACOH:H,O! 4:1:5■ rル濾過
にはPharmaoia ]Fin@Ohemioal
s社(スエーデン)のヒドロキシプロピル化交叉結合デ
キス°トランrルBapb&6ex IJ、H−20(
商品名)を使用した。
クロヘキシル尿素 D(3G =ジシクロへキシルカルがジイミド−PM
人=P−ニトロアニリド 一0HJ= 3−カルボキシ−4−ヒドロキシアニリ
ド−5Dp−4,6−ジメチルぎりミジン−2−チオB
z1=ベンジル TLO=薄層クロマトグラフィー GPC= デル濾過クロマトグラフィーNa8 =
β−ナフチルセスホニルTOO=4−メチルベンゾイル CHN=シクロヘキシルエステル 八〇〇H=酢酸 ム0OBt=酢酸エチル ■ 薄層クロマトグラフィー TLC分析はシリカゲル’12s4(メルり社製)プレ
ートを使用溶媒は at、 : 0HOL、:MeOH:ムcon:
u2o=80:20二z5:5Rfl ;n−BuOH
:ム0011:H10=4:1 二1Rf、 ;n−B
uOH:ACOH:H,O! 4:1:5■ rル濾過
にはPharmaoia ]Fin@Ohemioal
s社(スエーデン)のヒドロキシプロピル化交叉結合デ
キス°トランrルBapb&6ex IJ、H−20(
商品名)を使用した。
実施例 1
2HOL−H−D−Lye(Toe)−L−Phe−L
−Lye−OHムの合成(NPC−7) 11(04−H−Lys(Z)−0HA (分子量45
1.9)moxりをTHIF 200−に溶解しこれを
5−アミノサリチル酸(分子量153.14)21.l
r(0,14!no’le ’)を1.5 M −11
1cM、 DMF 溶液187―になるまで濃縮しこれ
にエーテル/酢酸エチk (”v/aov ) 160
011jヲ加、j冷511 HOL1000m17にて
6回飽和食塩水1o00−にて2回洗浄し活性炭を加え
硫酸マグネシウム上にて乾燥後溶媒を留去し、エーテル
/イソゾロビ、9r (0,01mclle )を、2
M −HOt/酢酸25m (Q、Q 5 mole
)に溶解しBoo脱離を行う。
−Lye−OHムの合成(NPC−7) 11(04−H−Lys(Z)−0HA (分子量45
1.9)moxりをTHIF 200−に溶解しこれを
5−アミノサリチル酸(分子量153.14)21.l
r(0,14!no’le ’)を1.5 M −11
1cM、 DMF 溶液187―になるまで濃縮しこれ
にエーテル/酢酸エチk (”v/aov ) 160
011jヲ加、j冷511 HOL1000m17にて
6回飽和食塩水1o00−にて2回洗浄し活性炭を加え
硫酸マグネシウム上にて乾燥後溶媒を留去し、エーテル
/イソゾロビ、9r (0,01mclle )を、2
M −HOt/酢酸25m (Q、Q 5 mole
)に溶解しBoo脱離を行う。
2器反応後、反応液にエーテル1tを加え結晶を析出さ
せP取乾燥を行う。
せP取乾燥を行う。
BOO−LJ”he−L−Lye(Z)−OHム(分子
量662.74 )HO4−H−L−Lye(Z)−0
Hム(分子量451.9 )65.5.9r (0,1
41EIOIJ )を1.5 N −NKM/DMIF
2801に浴解し、この溶液にBoo−Ph・−8DP
(分子量(587,504) 54.511rCQ、1
4mole)をDMF2QO+7に溶解した液を0〜5
℃にで滴下させる。
量662.74 )HO4−H−L−Lye(Z)−0
Hム(分子量451.9 )65.5.9r (0,1
41EIOIJ )を1.5 N −NKM/DMIF
2801に浴解し、この溶液にBoo−Ph・−8DP
(分子量(587,504) 54.511rCQ、1
4mole)をDMF2QO+7に溶解した液を0〜5
℃にで滴下させる。
一夜反応後、DMFを留去しム001111?1000
ilを加え、冷5チHOA1QQQNlにて2回飽和食
塩水500dにて洗浄後硫酸マグネシウム上乾燥後ムc
oNtを留去し酢酸エチル/n−ヘキサンよm、p
151〜155℃ 〔α) −5,7(01,DMF) * HOA、H−Phe−Lys(Z)−0Hム(分
子量599.1)Boo−pM−Lye(Z)−0HA
(分子量662.747)’ 60.2 gr (0
,0908noble )に1.5N−HOL/酢酸2
50−を加え、常温にて反応を行う。析出した結晶をP
取、乾燥する。
ilを加え、冷5チHOA1QQQNlにて2回飽和食
塩水500dにて洗浄後硫酸マグネシウム上乾燥後ムc
oNtを留去し酢酸エチル/n−ヘキサンよm、p
151〜155℃ 〔α) −5,7(01,DMF) * HOA、H−Phe−Lys(Z)−0Hム(分
子量599.1)Boo−pM−Lye(Z)−0HA
(分子量662.747)’ 60.2 gr (0
,0908noble )に1.5N−HOL/酢酸2
50−を加え、常温にて反応を行う。析出した結晶をP
取、乾燥する。
収it 49.99r(89,1嘔)m、p 22
2〜260℃ 〔α) −12,3(ox、u・OH)Rflo、1
7 fd Z−D−Lye(Toe)−phe−Lys(
Z)−0Hム(11979,1)HOA−B−Phe−
L+ya(Z)−0HA (分子量599.1 ) 1
5.59r(0,0225m01e)をDMIF 45
−に溶解し、これにpMy45i1に溶解したZ−D−
Lys(Toe)−8DP(分子量556.708 )
12.5111 (0,0225後、酢酸Xチ/l
500Mを加え冷s * Hat8001にて2回飽和
食塩水600dにて洗浄、乾燥濃縮後M@OHより再結
晶12.9 #r (58,6S) m、p 188〜195°C (α) −8,9(C1,DMIF)at、 0
.49 V 2HOt−H−D−Lys(Toe)−:L+−
Pha−L−Lys−OHム(父子it 785.8
’) Z−D−Lye(Toe)−L−Phe−L−Lysi
(Toe)−0Hム(分子ff1979.128)1.
96.9r(2mmO111)を5% HCj−MeO
H5−及びgeOH12QwLlに溶解しP%1 &r
を加え、接触還元を4時間行う。反応終了後MeOHを
留去し、エーテルにて結晶化させ、許取乾燥すると2H
Ot−1l−D−Lye (Toe )−L−phe−
L−(a) −26,1(OX、MeOH)Rfr
30.33 H−D−Lys(Toe)−Phe−LysPNム−)
HBrの合成<NPN−2>] BOC−Lye(
Z)PNA (分子量 500.557 >防湿
下Boo−Lys(Z)−OH(がFt380.444
> 56.59” (0,148mole )とバラ
ニトロアニリン(分子11138.13)20.4JJ
1”(0,148m01e)を酢酸エチル648dに溶
解o℃に冷却、そこにDOO15,3pr (0,07
4m016 )酢酸エチル74d溶液をゆっくり滴下、
その後o℃で2〜6時間反応後その才ま室温才で自然昇
温−晩攪拌反応する。
2〜260℃ 〔α) −12,3(ox、u・OH)Rflo、1
7 fd Z−D−Lye(Toe)−phe−Lys(
Z)−0Hム(11979,1)HOA−B−Phe−
L+ya(Z)−0HA (分子量599.1 ) 1
5.59r(0,0225m01e)をDMIF 45
−に溶解し、これにpMy45i1に溶解したZ−D−
Lys(Toe)−8DP(分子量556.708 )
12.5111 (0,0225後、酢酸Xチ/l
500Mを加え冷s * Hat8001にて2回飽和
食塩水600dにて洗浄、乾燥濃縮後M@OHより再結
晶12.9 #r (58,6S) m、p 188〜195°C (α) −8,9(C1,DMIF)at、 0
.49 V 2HOt−H−D−Lys(Toe)−:L+−
Pha−L−Lys−OHム(父子it 785.8
’) Z−D−Lye(Toe)−L−Phe−L−Lysi
(Toe)−0Hム(分子ff1979.128)1.
96.9r(2mmO111)を5% HCj−MeO
H5−及びgeOH12QwLlに溶解しP%1 &r
を加え、接触還元を4時間行う。反応終了後MeOHを
留去し、エーテルにて結晶化させ、許取乾燥すると2H
Ot−1l−D−Lye (Toe )−L−phe−
L−(a) −26,1(OX、MeOH)Rfr
30.33 H−D−Lys(Toe)−Phe−LysPNム−)
HBrの合成<NPN−2>] BOC−Lye(
Z)PNA (分子量 500.557 >防湿
下Boo−Lys(Z)−OH(がFt380.444
> 56.59” (0,148mole )とバラ
ニトロアニリン(分子11138.13)20.4JJ
1”(0,148m01e)を酢酸エチル648dに溶
解o℃に冷却、そこにDOO15,3pr (0,07
4m016 )酢酸エチル74d溶液をゆっくり滴下、
その後o℃で2〜6時間反応後その才ま室温才で自然昇
温−晩攪拌反応する。
上記反応液、を再び0〜5°CtC冷却更11CDOO
7,65g (0,057mole ) h酸エチル3
7alftj液’itm下0℃2〜3時間室温で一晩攪
拌反応する。
7,65g (0,057mole ) h酸エチル3
7alftj液’itm下0℃2〜3時間室温で一晩攪
拌反応する。
後処理はDOHuをP別しエーテル20011Jにて2
回、酢酸エチル層と合わせ冷5 % Hoz 450
gにて2回、H2O450dKて1回、5 % MaH
OO345Qiuにて2回、飽和食塩水4501にて2
回各々洗浄する。無水Mg804、活性炭上で一晩乾燥
後、35℃で酢酸エチルを減圧留去すると油状の粗製B
OO−bys(z)−pnムロ 6.4 Jilr (
89,6% )を得る。これを8@phadex LH
−20にて精製すると、Boo−Lye(Z)−PNA
33.2.9r (44,8% ”)を得るOm、p
、’ 106〜109°GRf :
肌66 (aucz3二M・011 W 9:
1 )1 18A−H−Lyeo(Z)−PNA (
分子tt510.6)防湿下BOO−Lye(Z)−P
NA(分子量500.6) 15.9r(0,050m
ole )に2l−Isム/酢酸75i1を加え20℃
で1時間攪拌脱離する。
回、酢酸エチル層と合わせ冷5 % Hoz 450
gにて2回、H2O450dKて1回、5 % MaH
OO345Qiuにて2回、飽和食塩水4501にて2
回各々洗浄する。無水Mg804、活性炭上で一晩乾燥
後、35℃で酢酸エチルを減圧留去すると油状の粗製B
OO−bys(z)−pnムロ 6.4 Jilr (
89,6% )を得る。これを8@phadex LH
−20にて精製すると、Boo−Lye(Z)−PNA
33.2.9r (44,8% ”)を得るOm、p
、’ 106〜109°GRf :
肌66 (aucz3二M・011 W 9:
1 )1 18A−H−Lyeo(Z)−PNA (
分子tt510.6)防湿下BOO−Lye(Z)−P
NA(分子量500.6) 15.9r(0,050m
ole )に2l−Isム/酢酸75i1を加え20℃
で1時間攪拌脱離する。
反応液は1.5tの無水エーテルにおとし、結晶化−晩
、冷却放置後、炉取、酢酸エチル洗浄後P20. KO
H上−晩減圧乾燥するとE8A、H−Lys(Z)−P
NA14.7 #r C96,11>を得る。
、冷却放置後、炉取、酢酸エチル洗浄後P20. KO
H上−晩減圧乾燥するとE8A、H−Lys(Z)−P
NA14.7 #r C96,11>を得る。
m、p : 100〜106°C
Rf、 : 0.55
1 Boo−Phe−Lye(Z)PNA (分
子量 647.75 )]]18A−H−LyeZ)P
NA (分子11510.6 ’) 7.7.9r(1
5m mole )をMIIiM 19.5−及びDM
?38mに溶解し、0℃に冷却、Boo−phe=8D
P (分子量687.5 ) 6.12 Iir (1
5,75m m01111 )を粉末で加え、0〜5℃
で2〜3時間反応、そのまま室温まで自然昇温−晩攪拌
反応する。
子量 647.75 )]]18A−H−LyeZ)P
NA (分子11510.6 ’) 7.7.9r(1
5m mole )をMIIiM 19.5−及びDM
?38mに溶解し、0℃に冷却、Boo−phe=8D
P (分子量687.5 ) 6.12 Iir (1
5,75m m01111 )を粉末で加え、0〜5℃
で2〜3時間反応、そのまま室温まで自然昇温−晩攪拌
反応する。
反応液に酢酸エチル38〇−加え冷5 % HOt15
0−にて2回、飽和食塩水1501にて1回、10 %
111LHCO3150mにて2回飽和食塩水15〇
−にて2助各々洗浄後、酢酸エチルに無水Mg804活
性炭を加え脱色、乾燥後酢酸エチルを減圧留去すると粗
結晶のBoo−’1he−Lye(Z)PIム10,1
iirを得るO 酢酸エチル−n−へキサンにより再結晶を行うと、Bo
o−phe−Lys(Z)−I’llム8.8.9r
(90,5% ’)を得る。
0−にて2回、飽和食塩水1501にて1回、10 %
111LHCO3150mにて2回飽和食塩水15〇
−にて2助各々洗浄後、酢酸エチルに無水Mg804活
性炭を加え脱色、乾燥後酢酸エチルを減圧留去すると粗
結晶のBoo−’1he−Lye(Z)PIム10,1
iirを得るO 酢酸エチル−n−へキサンにより再結晶を行うと、Bo
o−phe−Lys(Z)−I’llム8.8.9r
(90,5% ’)を得る。
m、p : 157〜160°CRt :
0.80(ムcOFft 二m−ヘキサン=
8: 2’)pi K8A−H−phe−Lye(Z
)−PNA(分子量657.7)防湿下Boo−pha
−Lye(Z)PNA(分子量647.7 ) 8.7
flr (13,5m mole) に2N−Ice
ム/酢酸33.8117を加え15〜20℃で1時間攪
拌脱離する。
0.80(ムcOFft 二m−ヘキサン=
8: 2’)pi K8A−H−phe−Lye(Z
)−PNA(分子量657.7)防湿下Boo−pha
−Lye(Z)PNA(分子量647.7 ) 8.7
flr (13,5m mole) に2N−Ice
ム/酢酸33.8117を加え15〜20℃で1時間攪
拌脱離する。
反応液を無水エーテル700−におとし、沈殿結晶化す
る。−晩冷却放置後F取、酢酸エチル洗浄後、P2O,
KOH上二日間減圧乾燥するとE8ム・H・phe−L
ys(Z)−PNA 7.134 、fr (80,5
fb )を得る。
る。−晩冷却放置後F取、酢酸エチル洗浄後、P2O,
KOH上二日間減圧乾燥するとE8ム・H・phe−L
ys(Z)−PNA 7.134 、fr (80,5
fb )を得る。
m、p = 190〜198℃Rf3
二 〇。86 V Boo−D−Lys(、Toe)−phe−L
ye(Z)PNA (分子量960.1)Boo−D−
Lye(Toe)−0H(分子量400.5 ) 0.
5999r(1,5m mole)、isム−H−ph
e−Lys(Z)PNA(分子量657、ハ、0.98
71/r (1,5m molす、HoBt O,20
3,Fr(1,5m mole) を各々はかりとり
、防湿下、0.5N−IBM/ DMF 6mに溶解、
0℃に冷却し、DOOO,3109r(1,5m mo
le)を粉末で加え、0℃で2〜6時間攪拌そのまま室
温まで自然昇温し、−晩攪拌反応する。
二 〇。86 V Boo−D−Lys(、Toe)−phe−L
ye(Z)PNA (分子量960.1)Boo−D−
Lye(Toe)−0H(分子量400.5 ) 0.
5999r(1,5m mole)、isム−H−ph
e−Lys(Z)PNA(分子量657、ハ、0.98
71/r (1,5m molす、HoBt O,20
3,Fr(1,5m mole) を各々はかりとり
、防湿下、0.5N−IBM/ DMF 6mに溶解、
0℃に冷却し、DOOO,3109r(1,5m mo
le)を粉末で加え、0℃で2〜6時間攪拌そのまま室
温まで自然昇温し、−晩攪拌反応する。
次に、反応液に酢酸エチル60−を加え、析出するDO
Huを除き、酢飯エチル層に冷5%10t/飽和食塩水
201にて2回、飽和食塩水201にて1回、1Q e
lk NgBCow 20−にて2回、飽和食塩水20
−にて2rBJ各々・洗浄後、無水Mg80.、活性炭
上、乾燥脱色後、酢酸エチルを60℃で減圧留去すると
、粗結晶のBoo−D−Lys(Toe)すh・−Ly
s(Z)P)iA1.1415.9r(81,8囁)を
得る。
Huを除き、酢飯エチル層に冷5%10t/飽和食塩水
201にて2回、飽和食塩水201にて1回、1Q e
lk NgBCow 20−にて2回、飽和食塩水20
−にて2rBJ各々・洗浄後、無水Mg80.、活性炭
上、乾燥脱色後、酢酸エチルを60℃で減圧留去すると
、粗結晶のBoo−D−Lys(Toe)すh・−Ly
s(Z)P)iA1.1415.9r(81,8囁)を
得る。
メタノール・酢酸エチル・n−ヘキサンにより再結晶を
行うとBo(1−D−Lys(Toe)−phe−”L
ys(Z)PNNO3817、Vr (58,6LfI
k’)を得る・m、p:165〜169.5℃ at : 0.56(ムcolt:n−ヘキサ
ン=7:3)VI H−D−Lya(Toe)−p
he−IJys(Z)Pliム・2HBr (分子量8
57.7) 防湿下BOC−D−Lys(Toe)−phe−Lye
(Z)PIム(分子量 950.1 ) O,色17
9r (Q、378m mole )を10〜15℃に
保ちながら冷25 % HBr/酢酸35111を加え
攪拌しながら1時間脱離する。
行うとBo(1−D−Lys(Toe)−phe−”L
ys(Z)PNNO3817、Vr (58,6LfI
k’)を得る・m、p:165〜169.5℃ at : 0.56(ムcolt:n−ヘキサ
ン=7:3)VI H−D−Lya(Toe)−p
he−IJys(Z)Pliム・2HBr (分子量8
57.7) 防湿下BOC−D−Lys(Toe)−phe−Lye
(Z)PIム(分子量 950.1 ) O,色17
9r (Q、378m mole )を10〜15℃に
保ちながら冷25 % HBr/酢酸35111を加え
攪拌しながら1時間脱離する。
反応液に酢酸エチルを少量加え、増量後、無水エーテル
150−におとし、結晶化する。結晶化物を炉取し、?
、03KOII上減圧乾燥すると粗結晶のH−D−Ly
e(Toe)−phe−Ly@(Z)I’Nム−2HB
r O,7139r(94,7%)を得る。これをas
p門aex LH−20にて精製すると、目的とする(
Vl) 0.449r (61,5ts)を得る。
150−におとし、結晶化する。結晶化物を炉取し、?
、03KOII上減圧乾燥すると粗結晶のH−D−Ly
e(Toe)−phe−Ly@(Z)I’Nム−2HB
r O,7139r(94,7%)を得る。これをas
p門aex LH−20にて精製すると、目的とする(
Vl) 0.449r (61,5ts)を得る。
m、P、: 148〜158℃
】ヨ(f 二 0.58
(”) : 24.5 (00,5MeOH)
実施例6 実施例1及び2の方法に従って下記基質の合成を行った
。
実施例6 実施例1及び2の方法に従って下記基質の合成を行った
。
実施例4
前記実施例により製造した基質を、下記のとおりプラス
ミン測定に用いる。この測定原理は、酵素加水分解によ
り生じる分解生成物のp−ニトロアニリンスは5−アミ
ノサリチル酸をp−ニトロアニリンは、405nmにて
そのまま又5−アミノサリチル酸の場合は、酸化剤存在
下、2.6−キシレノールと縮合発色させ、615nl
nにてその吸光度(0,D、 )を測定する事により、
各々形成されたp−ニトロアニリン或は5−アミノサリ
チル散を定量する方法である。
ミン測定に用いる。この測定原理は、酵素加水分解によ
り生じる分解生成物のp−ニトロアニリンスは5−アミ
ノサリチル酸をp−ニトロアニリンは、405nmにて
そのまま又5−アミノサリチル酸の場合は、酸化剤存在
下、2.6−キシレノールと縮合発色させ、615nl
nにてその吸光度(0,D、 )を測定する事により、
各々形成されたp−ニトロアニリン或は5−アミノサリ
チル散を定量する方法である。
次表は本発明のプラスミン基質及び前述の8−2251
、0Hz−PL並びに関連基質のKm値、Vmax及
びKm、/’lrmax値を比較した表である。
、0Hz−PL並びに関連基質のKm値、Vmax及
びKm、/’lrmax値を比較した表である。
酵素による加水分解反応は次のような図式で表わすこと
ができる。
ができる。
m+ p。
2;酵素
8=基質
!5W酵素−基質−複合体
Pl及びPll−生成物
に1・X畠・IC3及びx4二速度定数]1iElの解
難定数=士門Icm(ミバエリス定数)(8) > (
m)及びに4 <−の場合、式が有効である。
難定数=士門Icm(ミバエリス定数)(8) > (
m)及びに4 <−の場合、式が有効である。
Plが形成される速度定数は次の通りである。
V 繻 K3 ・ 〔1日〕
Eが完全に8に結合している場合は次の通りである。
(ms) =、 (1)
V=VH1&X =に5− (1)
<3)ラインライ−パー・パーク式: (2)式から、定数Kml及びに、は所与の酵素に対す
る基質の効力を決定することになる。これらの定数の測
定には、次の方法を適用する: 緩衝溶液沖で#素と基質を混合しかつ、30秒間、加水
分解反応を行なう。基質の濃度〔8〕を変え、酵素線度
を一定に保持する。吸光度(0,D )を測定する事に
より、加水分解の初速度を確定することができる。Tを
閏の関数としてプロットする場合に、ラインライ−パー
・パーク線図が得られ、これからグラフにより’Vma
x及びKmを確定することができる・ Km及びVmax並びにVmax / Kmをプラスミ
ン(シタ)Kついて一定した結果を第1表、第2表に総
括した。
<3)ラインライ−パー・パーク式: (2)式から、定数Kml及びに、は所与の酵素に対す
る基質の効力を決定することになる。これらの定数の測
定には、次の方法を適用する: 緩衝溶液沖で#素と基質を混合しかつ、30秒間、加水
分解反応を行なう。基質の濃度〔8〕を変え、酵素線度
を一定に保持する。吸光度(0,D )を測定する事に
より、加水分解の初速度を確定することができる。Tを
閏の関数としてプロットする場合に、ラインライ−パー
・パーク線図が得られ、これからグラフにより’Vma
x及びKmを確定することができる・ Km及びVmax並びにVmax / Kmをプラスミ
ン(シタ)Kついて一定した結果を第1表、第2表に総
括した。
表 1
番 号 基 質
Km(Xl 0−i 8−2251 4 1l
−D−Vaj−Leu−Lye−PIム−2”81
54.836IPM−1,H−D−Lye(To
e )−Leu−Lya−PIム、2HB1− 18
.914 NPM−2、H−D−Lye(To日)−
phe−Lya−PIム、2HBr 1.58・5
MPN−!I IH−D−Glu(OHM)−
phe−Lya−PHム−211B!−3,215)
V(xlo−’) V/km(xlo−’) 相
t4比D 59.876 11.449
1.00060.067 21.d28−
1.8897 63.600 55.6212.
9371 47.96B 503.595
26.5177 65.287 202.9431
7.726番号 基 質 6NPC−11l−D−Val−IJeu−Lye−O
HA−2HBr7 NPC−2H−D−Vat−ph
i−Lys−CHA、2Hclf3 IF(3−31
(−D−Lye−phi−Lys−CHA、5HOt9
NPC−4H−D−Lye(ム0)−phe−Ly
e−CHA、2H(3tlQ NPO−5H−L−L
ye(Toe)−phe−Lye−OHA、2HOAj
j NPO−6H−D−Lye(Too)−phi−
Lya−C!Hム、2HO112NPc−7H−D−L
ye(Toe)−phe−Lye−CHA、2ucz1
5 NPC−841−D−L7a(Na8)−phe
−L+7トOHム、2acz14 MPC−9H−D
−Lya(NaO)−phi−’Dye−OHム、2u
cz15 NPC−j [3〜IX−D−Lye(M
at)−phe−Lya−OHA−2HOt16NPC
−il )1−D−Tyr(Toe)−phe−Ly
a−CHA、2HOt17 aP(3−121i−D
−Lye(Toe)−Leu−Lye−0)1ム・2H
Br18 NPC−131−D−Tyr(Toe)−
Leu−Lya−CHA、2ucz相対比はa −22
51(V/l” Km(xlu−5) V(xl 0−)) Vb(
xID−’) 相対比321.027 5.556
0.111 1.00065.066
8.26’6 1.!111 11.8
1122.222 7.506 3.578
り0.43225.045 10.940
4.36B 39.35129.23
2 6.159 1.081 9.7
397.620 11.670 15.315
157.97520.629 29.417
14.260 128.46817.959
50.814 17.177 154.74
832.546 15.827 4.248
3B、27027.155 28.445
10.475 94.36915.404 1
7.018 11.048 99.552
100.000 25.679 2.56B
23.135144.340 17.991
1.246 11.225)を1.0として
比較 実施例5 新規に合成した基質の特異性を各穐酵素と反応させる事
により試験した。
Km(Xl 0−i 8−2251 4 1l
−D−Vaj−Leu−Lye−PIム−2”81
54.836IPM−1,H−D−Lye(To
e )−Leu−Lya−PIム、2HB1− 18
.914 NPM−2、H−D−Lye(To日)−
phe−Lya−PIム、2HBr 1.58・5
MPN−!I IH−D−Glu(OHM)−
phe−Lya−PHム−211B!−3,215)
V(xlo−’) V/km(xlo−’) 相
t4比D 59.876 11.449
1.00060.067 21.d28−
1.8897 63.600 55.6212.
9371 47.96B 503.595
26.5177 65.287 202.9431
7.726番号 基 質 6NPC−11l−D−Val−IJeu−Lye−O
HA−2HBr7 NPC−2H−D−Vat−ph
i−Lys−CHA、2Hclf3 IF(3−31
(−D−Lye−phi−Lys−CHA、5HOt9
NPC−4H−D−Lye(ム0)−phe−Ly
e−CHA、2H(3tlQ NPO−5H−L−L
ye(Toe)−phe−Lye−OHA、2HOAj
j NPO−6H−D−Lye(Too)−phi−
Lya−C!Hム、2HO112NPc−7H−D−L
ye(Toe)−phe−Lye−CHA、2ucz1
5 NPC−841−D−L7a(Na8)−phe
−L+7トOHム、2acz14 MPC−9H−D
−Lya(NaO)−phi−’Dye−OHム、2u
cz15 NPC−j [3〜IX−D−Lye(M
at)−phe−Lya−OHA−2HOt16NPC
−il )1−D−Tyr(Toe)−phe−Ly
a−CHA、2HOt17 aP(3−121i−D
−Lye(Toe)−Leu−Lye−0)1ム・2H
Br18 NPC−131−D−Tyr(Toe)−
Leu−Lya−CHA、2ucz相対比はa −22
51(V/l” Km(xlu−5) V(xl 0−)) Vb(
xID−’) 相対比321.027 5.556
0.111 1.00065.066
8.26’6 1.!111 11.8
1122.222 7.506 3.578
り0.43225.045 10.940
4.36B 39.35129.23
2 6.159 1.081 9.7
397.620 11.670 15.315
157.97520.629 29.417
14.260 128.46817.959
50.814 17.177 154.74
832.546 15.827 4.248
3B、27027.155 28.445
10.475 94.36915.404 1
7.018 11.048 99.552
100.000 25.679 2.56B
23.135144.340 17.991
1.246 11.225)を1.0として
比較 実施例5 新規に合成した基質の特異性を各穐酵素と反応させる事
により試験した。
試験方法:
1)基質液、濃度; 35 mmole/z )1.。
を使用し、反応−は酵素により次の通りとした。
i!I 素 −(25℃)トロンビン(
T H) 8.4ゾラスミン(P L
) 7.4カリクレイン(xL)
7.9P−Xa(IFXa)
8.4ウロキナーゼ(UK) 8.2
唖 臂 り測定方法
; 緩衝液0.5−と酵素試薬0.05−をシリコン処理硬
寒ガラス製試験’1!xは、ゾ?スチツク製試験管に採
取し、67℃恒温権中にて5分間予加温する。次いで基
質液0.1dを加えて酵素反応を37℃で10分間実施
する。正確に、10分後反応停止液又は停止発色試液2
,51117を加えて酵素反応を停止した後、25℃で
10分放置後405 nm又は645 nmの吸光度を
測定、 但しH2Nぺ一>Hog #H10,5X103.
λ4QI5表 6 番 号 基 質
TI(i、8−225i 、H−D−Vaz
−Leu−Lysi−PNA−2HOtO,05、NP
M−13il−D−Lye(ToB)−Leu−Lye
−PNA−2HBr Q4 MPM−2Ji−D
−Lys(ToEl)−phe−Lya−PNA、2H
Br Q5、 IBM−’) IH−D−G
ly((3HN)−phe−Lye−pHム−2HBr
O初期基質績K 80 W O,54m mo
t/l′ 測定数値は405 nmにおける吸光度PL
KI、 ?Xa UKol
0.486 0.017 0.007 0.00
10.647 0.004 0.026 0.06
90.726 0.00(S O,0030,00
10,6080,0040,0030,0010,74
00,0090,0030,001(0,D、 )を表
わす 表 4 査 号 基 質
THl> IP(3−1JI−D−VILj
−Leu−′L7a−OHA@2HBr Q
7、NPC−2’1l−D−VaA−phs−Lye−
(3HA−2)10A 0.0023 NPC−
3H−D−Lye−phe−Lye−OHA、3HOL
Q9、MPQ−4H−D−Lys(ムc)−pM−Ly
e−OHA、2mat O,0011Q、MPC
−51l−L−Lye(ToB)−phe−Lye−O
HA、2HOtQ11、NPC−6a−D−Lye(T
oo)−phe−Lya−OHA、2HC7:、 Q
12、 NPC−7J(−D−Lye(Toe)−ph
e−Lya−OHA、2HQl Q13、 MP(3
−J3 、H−D−Lys(Na8)−phe−L
ye−OHA−21(OtQ14、NPC−91l−D
−Lys(liao)−phe−Lye−OHA−2)
10tOi5.NPC−1Q H−D−Lye(M
at)−phe−Lye−OHA−2HOt016、N
PC−11旦−D−Tyr(ToB)−phe−Lye
−OHA、2に1at O,0011乙NP
O−12月−D−Lye(ToB)−Leu−Lye−
OHA、2HBr O,0011a NPO−1
3H−D−Tyr(ToB)−Leu−Lye−OHA
−2Hct 0.002初期基質濃度8
o = Q、54 m 測定数値は615nmにおけ・ PL KIa IP:Ia
UKO,0130,0020,002
0 0,0900,00,60,0040,0020,09
60,0040,0020 0,1440,0060,0020 0,0510,0010,0020 0,1470,0070,0010 0,4200,0070゜0010 0.498 0.011 0.002
0.0020.120 0.027 0.
OOj 00.344 0.010
0.002 0.0010.277 0
.012 0.003 0.0030.05
1 0.007 0.002 0.0
010.041 0.004 0.001
0.001mo4/l る吸光度(0,D、)を表わす 手続補正書輸発) 昭和57年5月21日 特許庁長官殿 1、事件の表示 昭和56年特許願第165649号 2、発明の名称 新規なプラスミン測定用基質 3、補正をする者 事件との関係 特許出願人 住 所 氏 名 (397) 日東紡績株式会社(名
称) 4、代理人 昭和 年 月 日 6、補正により増加する発明の数 8、補正の内容 別紙のとおり (2)明細書、5頁1o行の「Sh@rny Jをf
8h@rry Jに訂正する。
T H) 8.4ゾラスミン(P L
) 7.4カリクレイン(xL)
7.9P−Xa(IFXa)
8.4ウロキナーゼ(UK) 8.2
唖 臂 り測定方法
; 緩衝液0.5−と酵素試薬0.05−をシリコン処理硬
寒ガラス製試験’1!xは、ゾ?スチツク製試験管に採
取し、67℃恒温権中にて5分間予加温する。次いで基
質液0.1dを加えて酵素反応を37℃で10分間実施
する。正確に、10分後反応停止液又は停止発色試液2
,51117を加えて酵素反応を停止した後、25℃で
10分放置後405 nm又は645 nmの吸光度を
測定、 但しH2Nぺ一>Hog #H10,5X103.
λ4QI5表 6 番 号 基 質
TI(i、8−225i 、H−D−Vaz
−Leu−Lysi−PNA−2HOtO,05、NP
M−13il−D−Lye(ToB)−Leu−Lye
−PNA−2HBr Q4 MPM−2Ji−D
−Lys(ToEl)−phe−Lya−PNA、2H
Br Q5、 IBM−’) IH−D−G
ly((3HN)−phe−Lye−pHム−2HBr
O初期基質績K 80 W O,54m mo
t/l′ 測定数値は405 nmにおける吸光度PL
KI、 ?Xa UKol
0.486 0.017 0.007 0.00
10.647 0.004 0.026 0.06
90.726 0.00(S O,0030,00
10,6080,0040,0030,0010,74
00,0090,0030,001(0,D、 )を表
わす 表 4 査 号 基 質
THl> IP(3−1JI−D−VILj
−Leu−′L7a−OHA@2HBr Q
7、NPC−2’1l−D−VaA−phs−Lye−
(3HA−2)10A 0.0023 NPC−
3H−D−Lye−phe−Lye−OHA、3HOL
Q9、MPQ−4H−D−Lys(ムc)−pM−Ly
e−OHA、2mat O,0011Q、MPC
−51l−L−Lye(ToB)−phe−Lye−O
HA、2HOtQ11、NPC−6a−D−Lye(T
oo)−phe−Lya−OHA、2HC7:、 Q
12、 NPC−7J(−D−Lye(Toe)−ph
e−Lya−OHA、2HQl Q13、 MP(3
−J3 、H−D−Lys(Na8)−phe−L
ye−OHA−21(OtQ14、NPC−91l−D
−Lys(liao)−phe−Lye−OHA−2)
10tOi5.NPC−1Q H−D−Lye(M
at)−phe−Lye−OHA−2HOt016、N
PC−11旦−D−Tyr(ToB)−phe−Lye
−OHA、2に1at O,0011乙NP
O−12月−D−Lye(ToB)−Leu−Lye−
OHA、2HBr O,0011a NPO−1
3H−D−Tyr(ToB)−Leu−Lye−OHA
−2Hct 0.002初期基質濃度8
o = Q、54 m 測定数値は615nmにおけ・ PL KIa IP:Ia
UKO,0130,0020,002
0 0,0900,00,60,0040,0020,09
60,0040,0020 0,1440,0060,0020 0,0510,0010,0020 0,1470,0070,0010 0,4200,0070゜0010 0.498 0.011 0.002
0.0020.120 0.027 0.
OOj 00.344 0.010
0.002 0.0010.277 0
.012 0.003 0.0030.05
1 0.007 0.002 0.0
010.041 0.004 0.001
0.001mo4/l る吸光度(0,D、)を表わす 手続補正書輸発) 昭和57年5月21日 特許庁長官殿 1、事件の表示 昭和56年特許願第165649号 2、発明の名称 新規なプラスミン測定用基質 3、補正をする者 事件との関係 特許出願人 住 所 氏 名 (397) 日東紡績株式会社(名
称) 4、代理人 昭和 年 月 日 6、補正により増加する発明の数 8、補正の内容 別紙のとおり (2)明細書、5頁1o行の「Sh@rny Jをf
8h@rry Jに訂正する。
(3)同書、4頁5行4F) 「OHR,PL−J ヲ
「0HR−PL Jに訂正する。
「0HR−PL Jに訂正する。
(4)同書、7負4行の「(Toll)−Ph・−Ly
e−PNA Jをj (Tom)−Ph・−L7al
−PMA Jに訂正する。
e−PNA Jをj (Tom)−Ph・−L7al
−PMA Jに訂正する。
削除する。
(7)同書、12頁8行の「サクシロソイミr」を「サ
クシニックイミPJk訂正する。
クシニックイミPJk訂正する。
::
(8)同書、16真下から5行と下から4行との間に改
行して、jNa8=β−ナフチルスルホニル」を加入す
る。
行して、jNa8=β−ナフチルスルホニル」を加入す
る。
(9) fii131.21 II 10 行ノr−
L7El(Z)−PMA」をj−Lye(Z)−PMA
」に訂正する。
L7El(Z)−PMA」をj−Lye(Z)−PMA
」に訂正する。
Ql 同書、22頁5行および6行の[−Lys(T
o日)−」をf−Lys(Toリ−」に訂正する。
o日)−」をf−Lys(Toリ−」に訂正する。
αυ 同書、26頁6行、7行、9行および16行の[
−Lys(Ta2)−Jをj −Lys(Tog)−J
に訂正する。
−Lys(Ta2)−Jをj −Lys(Tog)−J
に訂正する。
鰺 同書、29頁の表1を下記の表1とさし変える。
αQ−同書、35jtの表4を下記の表4とさし変える
。
。
特開昭58−63399 (16)
2、特許請求の範囲
一般式
C式中
m = 1〜4
であり。
−(OHg )n−OH(’Ha )* (” ” O
〜3 )Rs+=−(OHs)n+x−’Bs (!
L==(1−3)である) の化合物またはその塩で表わされる事を特徴とするプラ
スミン又はプラスミン様酵素に対して、発色性又は螢光
性を有する新規なプラスミン測定用基質。
〜3 )Rs+=−(OHs)n+x−’Bs (!
L==(1−3)である) の化合物またはその塩で表わされる事を特徴とするプラ
スミン又はプラスミン様酵素に対して、発色性又は螢光
性を有する新規なプラスミン測定用基質。
手続補正書(、え)
昭和57年 6月17日
特許庁長官殿
1、事件の表示
昭和56年特許願第165649%
2、発明の名称
新規なプラスきン測定用基質
3、補正をする者
事件との関係 特許出願人
住 所
氏 名
侶 称)(397) 日東紡績株式会社4、代理人
昭和 年 月 日
6、補正により増加する発明の数
7、補正の対象
明細書の発明の詳細な説明の欄
表1、(ト))欄のうち試料番号NPN−1、NPN−
2、NPN−10およびNPN−11の化学式を次のご
とく訂正する。
2、NPN−10およびNPN−11の化学式を次のご
とく訂正する。
(21同書、5頁の表2、俤)欄、試料番号NPC−4
〜NPC−15の化学式を次のごとく訂正する。
〜NPC−15の化学式を次のごとく訂正する。
(33同書、6頁の表2のつづぎ、(e)欄、試料番号
NPC!−14〜NPC−20およびNPC’−25〜
NPC−25の化学式を次のごとく訂正する。
NPC!−14〜NPC−20およびNPC’−25〜
NPC−25の化学式を次のごとく訂正する。
(4) 同書、8頁の1[3、(B)欄f)5チ試料
書−j) NPN−1、Np*−2、NPN−10およ
びNPN−11の化学式を次のごとく訂正する。
書−j) NPN−1、Np*−2、NPN−10およ
びNPN−11の化学式を次のごとく訂正する。
(5)同書、10頁の表4、偉)欄、試料番号NPC−
4〜NPC’−13の化学式を次のごとく訂正する。
4〜NPC’−13の化学式を次のごとく訂正する。
(6) 同書、11頁の!l!4のつづき、(B)欄
、試料番号NPC−14〜NPC−20およびNPC−
23〜NPC−251:/y化学式を次のごとく訂正す
る。
、試料番号NPC−14〜NPC−20およびNPC−
23〜NPC−251:/y化学式を次のごとく訂正す
る。
Claims (1)
- 【特許請求の範囲】 一般式 (式中 −MII80.R。 (OHs) −0H(OHs)s(n−0〜5)R11
= (OHII)n+1−”3 (n=o〜5)又は である) の化合物またはその塩で表わされる事を特徴とするプラ
スミン又はプラスミン様酵素に対して、発色性又は螢光
性を有する新規なプラスミン測定用1s ’X @
Priority Applications (5)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
JP56163649A JPS5863399A (ja) | 1981-10-14 | 1981-10-14 | 新規なプラスミン測定用基質 |
DE8282304589T DE3262797D1 (en) | 1981-10-14 | 1982-09-01 | Novel substrates for measuring plasmin |
EP82304589A EP0077124B1 (en) | 1981-10-14 | 1982-09-01 | Novel substrates for measuring plasmin |
US06/417,377 US4452736A (en) | 1981-10-14 | 1982-09-13 | Substrates for measuring plasmin |
US06/579,868 US4605614A (en) | 1981-10-14 | 1984-02-13 | Method for measuring plasmin |
Applications Claiming Priority (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
JP56163649A JPS5863399A (ja) | 1981-10-14 | 1981-10-14 | 新規なプラスミン測定用基質 |
Publications (2)
Publication Number | Publication Date |
---|---|
JPS5863399A true JPS5863399A (ja) | 1983-04-15 |
JPS619840B2 JPS619840B2 (ja) | 1986-03-26 |
Family
ID=15777947
Family Applications (1)
Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
---|---|---|---|
JP56163649A Granted JPS5863399A (ja) | 1981-10-14 | 1981-10-14 | 新規なプラスミン測定用基質 |
Country Status (4)
Country | Link |
---|---|
US (2) | US4452736A (ja) |
EP (1) | EP0077124B1 (ja) |
JP (1) | JPS5863399A (ja) |
DE (1) | DE3262797D1 (ja) |
Families Citing this family (10)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
DE3244030A1 (de) * | 1982-11-27 | 1984-05-30 | Behringwerke Ag, 3550 Marburg | Chromogene verbindungen, verfahren zu ihrer herstellung und ihre verwendung |
DK201084A (da) * | 1983-04-28 | 1984-10-29 | Kimberly Clark Co | Fremgangsmaade til bestemmelse af cathepsin b i naervaerelse af andre proteolytiske enzymer, og forbindelser til anvendelse ved fremgangsmaaden |
JPS60241900A (ja) * | 1984-05-16 | 1985-11-30 | Nitto Boseki Co Ltd | 新規な第Xa因子活性測定用基質 |
JPS6117956A (ja) * | 1984-07-04 | 1986-01-25 | Nitto Boseki Co Ltd | 新規な尿中カリクレイン測定用基質 |
DE3512909A1 (de) * | 1985-04-11 | 1986-10-23 | Behringwerke Ag, 3550 Marburg | Verfahren zur bestimmung von plasminogenaktivatoren (pa) |
JPS62126196A (ja) * | 1985-11-26 | 1987-06-08 | Nitto Boseki Co Ltd | 新規なα1−アンチトリプシン測定用化合物 |
JPH075634B2 (ja) * | 1987-10-30 | 1995-01-25 | 日東紡績株式会社 | トリペプチド類及びこれを含有する抗プラスミン剤 |
DE3843422A1 (de) * | 1988-12-23 | 1990-06-28 | Behringwerke Ag | Verfahren zur bestimmung der plasminogenaktivator-aktivitaet in alpha-2-antiplasmin-haltigen proben |
US5849510A (en) * | 1994-04-26 | 1998-12-15 | Selectide Corporation | Factor Xa inhibitors |
US6759384B1 (en) | 1994-04-26 | 2004-07-06 | Aventis Pharmaceuticals Inc. | Factor Xa inhibitors |
Family Cites Families (9)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
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SE380257B (sv) * | 1972-05-02 | 1975-11-03 | Bofors Ab | Nya diagnostiskt verksamma substrat med hog specificitet till trombin och andra proteolytiska enzymer av typen peptidyl-peptid-hydrolaser |
FR2236963B1 (ja) * | 1973-07-13 | 1977-02-18 | Cit Alcatel | |
CH622286A5 (ja) * | 1975-06-23 | 1981-03-31 | Pentapharm Ag | |
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-
1981
- 1981-10-14 JP JP56163649A patent/JPS5863399A/ja active Granted
-
1982
- 1982-09-01 EP EP82304589A patent/EP0077124B1/en not_active Expired
- 1982-09-01 DE DE8282304589T patent/DE3262797D1/de not_active Expired
- 1982-09-13 US US06/417,377 patent/US4452736A/en not_active Expired - Lifetime
-
1984
- 1984-02-13 US US06/579,868 patent/US4605614A/en not_active Expired - Lifetime
Also Published As
Publication number | Publication date |
---|---|
US4452736A (en) | 1984-06-05 |
EP0077124A1 (en) | 1983-04-20 |
US4605614A (en) | 1986-08-12 |
JPS619840B2 (ja) | 1986-03-26 |
EP0077124B1 (en) | 1985-03-27 |
DE3262797D1 (en) | 1985-05-02 |
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